(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
毛幹着色を含む毛髪着色を促進するために、経口投与に適した任意の賦形剤と共に組成物中に配合される有効成分としての、スペルミジンの単独又は薬学的に許容できる誘導体の形態での使用。
【請求項２】
スペルミジンが、スペルミジン三塩酸塩の形態、即ちＮ−（３−アミノプロピル）ブタン−１，４−ジアミン・３ＨＣｌである、請求項１に記載の使用。
【請求項３】
スペルミジンが、被覆された若しくは被覆されていないタブレット、又は硬質若しくは軟質カプセル、又は粒質物として配合される、請求項１及び２のいずれかに記載の使用。
【請求項４】
スペルミジンが、１０−７〜１ｇ／１００ｍｌの範囲のスペルミジン三塩酸塩の量に相当する０．００４〜４・１０４μＭの範囲の量で組成物中に配合される、請求項１、２及び３のいずれかに記載の使用。
【請求項５】
スペルミジンが、１０−５〜１ｇ／１００ｍｌの範囲のスペルミジン三塩酸塩の量に相当する０．４〜４・１０４μＭの範囲の量で配合される、請求項４に記載の使用。
【請求項６】
スペルミジンが、１０−４〜２．４・１０−２ｇ／１００ｍｌの範囲のスペルミジン三塩酸塩の量に相当する３．９〜９．４・１０２μＭの範囲の量で配合される、請求項５に記載の使用。
【請求項７】
スペルミジンが、投与単位当たり０．１４〜０．７１ｍｇの範囲の量で経口投与用組成物中に配合される、請求項１に記載の使用。
【請求項８】
スペルミジン三塩酸塩が、投与単位当たり０．２５〜１．２５ｍｇの範囲の量で経口投与用組成物中に配合される、請求項２に記載の使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、人間の毛髪の着色に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
人間の毛嚢は、上皮（例えば、種々の系統のケラチノサイト、内皮）、間葉系（例えば、毛乳頭線維芽細胞、結合組織鞘線維芽細胞）、神経外胚葉（神経、メラノサイト）細胞集団、及び一過性移動細胞（免疫細胞、マスト細胞）の相互作用がある複雑な器官である。
【０００３】
毛髪繊維の成長及び着色は、毛周期、体内分布、年齢差及びジャンル差、変わりやすいホルモン感受性、遺伝子欠陥、並びに年齢に関連した変化による変化を含む幾つかの内因性因子によって影響される。また、毛髪の成長の研究は、気候及び季節、汚染物質、毒素並びに化学物質への曝露を含む外因性の変わるものによっても複雑にされる。表皮と毛嚢での着色の調節の間に見出される相違点は、哺乳動物の皮膚の色素形成システムの区画への分割を反映する。
【０００４】
表皮の、毛嚢球の、及び毛嚢外毛根鞘の鞘の、メラノサイトは、哺乳動物の皮膚の色素形成を開放システムとして理解しなければならないという事実にもかかわらず、お互いに大変異なっている。重要な違いは、それぞれのメラノサイト−ケラチノサイト機能単位の性質の違いである。毛球のメラミン単位は、近位成長期球（皮膚及び全体の免疫学的に特徴的な領域である）中に見られ、毛球中における５個のケラチノサイト毎に１個のメラノサイトによって形成されており、毛球基質の基底層中では、各ケラチノサイトに対して１個のメラノサイトである。これに対して、各表皮メラノサイトは、免疫担当性の表皮メラニン単位において、３６個の重要なケラチノサイトに関連している。
【０００５】
しかしながら、これら２つのメラノサイト皮膚集団の間で最も自明で、毛髪着色の調節のためにかなり意味のある相違点は、毛球メラノサイト活性が循環制御の影響を受けやすいという観察と、メラニン形成が毛髪成長周期に厳密に関連しているという観察である。一方、皮膚メラニン形成は、連続的であるように思われる。
【発明の概要】
【０００６】
驚くべきことに、スペルミジン化合物、即ちＮ−(３−アミノプロピル)ブタン−１，４−ジアミンそれ自体又は塩等の薬学的に許容できる誘導体の形態としてのものが、毛髪に対するメラニン形成活性を備えており、それ故に、その着色、特には毛幹着色の促進のために効果的に使用できることを見出した。これが、本発明の目的である。
【０００７】
かかる活性は、例えば毛髪染料に特有な、負の副作用がない天然着色剤としての人間の活性化合物の使用を構成することを可能にする。
【０００８】
また、本発明の目的は、かかる着色効果の促進に適している医薬用又は化粧品用又は栄養用組成物であって、それ故に、局所又は経口投与のため、有効成分として、スペルミジンを単独又は塩等の薬学的に許容できる誘導体の形態で含有する組成物である。
【図面の簡単な説明】
【０００９】
【図１】ビヒクルのみで処置した対照グループと濃度が０．１μＭのスペルミジン３ＨＣｌで処置したグループを測定し、それらの間で比較された、毛嚢における着色強度に関する図である。
【図２】マッソン・フォンタナ染色によってメラニンの組織化学ディスプレイから取られた対応画像を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
本発明に従う好ましい塩は、スペルミジン三塩酸塩、即ちＮ−(３−アミノプロピル)ブタン−１，４−ジアミン・３ＨＣｌである。
【００１１】
本発明の組成物は、局所使用のために配合された溶液中においてスペルミジン三塩酸塩を含むことが好ましい。局所使用に適した形態は、例えば、ローション、コンディショナー、シャンプー、マスクである。
【００１２】
本発明の異なる組成物は、経口使用のために配合された投与単位中においてスペルミジン三塩酸塩を含むことが好ましい。経口使用に適した形態は、例えば、被覆された若しくは被覆されていないタブレット若しくはカプセル、又は水若しくは他の液体中に分散させるための粒質物である。
【００１３】
スペルミジンそれ自体又は塩等の薬学的に許容できる誘導体の形態としてのものは、好ましくは以下に示す範囲の量に従って、本発明の組成物中に含有されている：
・  １０−７〜１ｇ／１００ｍｌ，０．００４〜４・１０４μＭに相当
・  １０−５〜１ｇ／１００ｍｌ，０．４〜４・１０４μＭに相当
・  １０−４〜２．４・１０−２ｇ／１００ｍｌ，４〜９・１０２μＭに相当
【００１４】
更に好ましい濃度範囲は、以下の通りである：
・  １０−６〜１０−１ｇ／１００ｍｌ
・  １０−５〜１０−２ｇ／１００ｍｌ
・  １０−４〜１０−３ｇ／１００ｍｌ
・  １０−７〜１０−６ｇ／１００ｍｌ
・  １０−６〜１０−５ｇ／１００ｍｌ
・  １０−５〜１０−４ｇ／１００ｍｌ
・  １０−４〜１０−３ｇ／１００ｍｌ
・  １０−３〜１０−２ｇ／１００ｍｌ
・  １０−２〜１０−１ｇ／１００ｍｌ
・  １０−１〜１ｇ／１００ｍｌ
【実施例】
【００１５】
以下に示す配合物の例は、本発明を説明するが、いかなる方法によっても制限することを目的としていない。成分量は、グラム又はミリグラムで表されており、例１〜４の場合では、濃度範囲によって表される。
【００１６】
例１
シャンプー
【表１】
0005947211.tif 000002
【００１７】
例２
ヘアマスク
【表２】
0005947211.tif 000003
【００１８】
例３
ヘアコンディショナー
【表３】
0005947211.tif 000004
【００１９】
例４
ヘアローション
【表４】
0005947211.tif 000005
【００２０】
例５
硬質ゼラチンカプセル
【表５】
0005947211.tif 000006
【００２１】
例６
軟質ゼラチンカプセル
【表６】
0005947211.tif 000007
【００２２】
例７
タブレット
【表７】
0005947211.tif 000008
【００２３】
例８
徐放性被覆タブレット
【表８】
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【００２４】
例９
即席の溶液を作るためのサシェ中における発泡性粒質物
【表９】
0005947211.tif 000010
【００２５】
以下に、本発明に従うスペルミジンの使用における活性に関する実験的な研究について説明する。
【００２６】
活性研究
組織サンプル
正常のヒトの頭皮の皮膚を、インフォームド・コンセントを受けた後に定期フェイスリフト手術を受けた女性から取った。全ての実験は、倫理委員会の承認を受けて、ヘルシンキ・プリンシプルに従い行われた。
【００２７】
完全な厚みを持つ皮膚器官培養物
３−４ｍｍ円柱状小刀を用いた生検を受ける組織を、１００ＩＵｍｌ−１のペニシリン、１０μｇｍｌ−１のストレプトマイシン（Ｇｉｂｃｏ，カルルスルーエ，ドイツ）、１０μｇｍｌ−１のインスリン（Ｓｉｇｍａ，タウフキルヘン，ドイツ）、１０ｎｇｍｌ−１のヒドロコルチゾン（Ｓｉｇｍａ）及び２ｍｍｏｌＬ−１のＬ−グルタミン（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，ペーズリー，Ｕ．Ｋ.）と一体にし、Ｗｉｌｌｉａｍｓ  Ｅ培地（Ｂｉｏｃｈｅｍ，ケンブリッジ，Ｕ．Ｋ.）中において、３７℃で６日間培養した。
【００２８】
次いで、スペルミジン三塩酸塩、又は参照物質としてのビヒクルを、０．１μＭの濃度にて、それぞれの培地を変えた時点で（即ち、４８時間毎に）、投与した。
【００２９】
毛嚢及び器官培養物のマイクロダイセクション
成長期ＶＩ相における正常の着色の毛嚢（ＨＦ）（灰色／白色毛嚢は研究から除外された）について、正常のヒトの頭皮からマイクロダイセクションを行い、それは、Ｐｈｉｌｐｏｔｔモデルに基づく器官培養物にさらされている。スペルミジン又はビヒクルを、それぞれの培地を変えた時点で（即ち、４８時間毎に）、投与した。
【００３０】
ＬＤＨ測定
上澄みにおけるＬＤＨ活性は、細胞毒性の指標として役立ち、それは、製造業者の説明書に従って毎日測定された（細胞毒性検出キット；Ｒｏｃｈｅ，マンハイム，ドイツ）。サンプルの吸光度は、ＥＬＩＳＡプレートリーダーを用い、４９０ｎｍにて測定された。
【００３１】
毛幹伸長
毛嚢の軸長の測定は、接眼レンズ測定シチクル付きのＺｅｉｓｓ倒立双眼顕微鏡を用いて、単一の毛嚢に関し、１日おきに取られた。
【００３２】
毛嚢周期段階の決定
毛嚢周期段階の決定は、先に規定したように形態学的基準に基づいて行われ、成長期及び早期の、中期の又は後期の退行期における毛嚢の割合が決定された。
【００３３】
毛髪着色
マッソン・フォンタナ染色は、凍結切片上のメラニンの組織化学ディスプレイについて行われた。メラニンを茶色顆粒の形態として染色し、定量マッソン・フォンタナ技術によって着色レベルを決定した（Ｉｔｏ  Ｎ．，Ｉｔｏ  Ｔ．，Ｋｒｏｍｍｉｎｇａ  Ａ．，Ｂｅｔｔｅｒｍａｎｎ  Ａ．，Ｔａｋｉｇａｗａ  Ｍ．，Ｋｅｅｓ  Ｆ．，Ｓｔｒａｕｂ  Ｒ．Ｈ．，及びＰａｕｓ  Ｒ．（２００５）：Ｈｕｍａｎ  ｈａｉｒ  ｆｏｌｌｉｃｌｅｓ  ｄｉｓｐｌａｙ  ａ  ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ  ｅｑｕｉｖａｌｅｎｔ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｈｙｐｏｔｈａｌａｍｉｃ−ｐｉｔｕｉｔａｒｙ−ａｄｒｅｎａｌ  ａｘｉｓ  ａｎｄ  ｓｙｎｔｈｅｓｉｚｅ  ｃｏｒｔｉｓｏｌ．ＦＡＳＥＢ  Ｊ１９，１３３２−４）。
【００３４】
この方法は、酵素活性アッセイ及び標準チロシナーゼ発現によって証明されるように、メラニン合成の変化の特に感受性が高く、信頼できる指標である（Ｋａｕｓｅｒ  Ｓ．，Ｓｌｏｍｉｎｓｋｉ  Ａ．，Ｗｅｉ  Ｅ．Ｔ．，及びＴｏｂｉｎ  Ｄ．Ｊ．（２００６）：Ｍｏｄｕｌａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｈｕｍａｎ  ｈａｉｒ  ｆｏｌｌｉｃｌｅ  ｐｉｇｍｅｎｔａｒｙ  ｕｎｉｔ  ｂｙ  ｃｏｒｔｉｃｏｔｒｏｐｉｎ−ｒｅｌｅａｓｉｎｇ  ｈｏｒｍｏｎｅ  ａｎｄ  ｕｒｏｃｏｒｔｉｎ  ｐｅｐｔｉｄｅｓ．ＦＡＳＥＢ  Ｊ２０，８８２−９５）。
【００３５】
染色強度は、イメージＪソフトウェア（国立衛生研究所）を用い、毛嚢着色単位の規定された参照領域において分析された。
【００３６】
増殖及びアポトーシス測定
増殖マーカーＫｉ−６７を用いてコロケーション中におけるアポトーシス細胞を評価するため、Ｋｉ−６７を用いたＴＵＮＥＬ（末端ｄＵＴＰニック末端標識）二重染色法を使用した。クリオスタット切片を、パラホルムアルデヒド及びエタノール−酢酸（２：１）中に固定し、末端デオキシヌクレオチジルトランスフェラーゼの存在下において、ジゴキシゲニン−デオキシ−ＵＴＰ（ＡｐｏｐＴａｇフルオレスセインによりインサイチューでアポトーシスを識別するためのキット；Ｉｎｔｅｒｇｅｎ，パーチェス，ＮＹ）を用いて標識付けし、次に、マウスのａｎｔｉ−Ｋｉ−６７抗血清（４℃にて一晩ＰＢＳ中において１：２０；Ｄａｋｏ，グロストルプ，デンマーク）と共にインキュベートした。ＴＵＮＥＬ陽性細胞は、複合イソチオシアナートフルオレスセインアンチジゴキシゲニン抗体（キットＡｐｏｐＴａｇ）によって示され、一方、Ｋｉ−６７は、ローダミンで標識付けされたヤギの抗マウス抗体によって検出された（Ｊａｃｋｓｏｎ  ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ，ウェストグローブ，ＰＡ）。陰性コントロールは、末端デオキシヌクレオチジルトランスフェラーゼ及びＫｉ−６７抗体を除いて行われた。対比染色は、４’，６−ジアミジノ−２−フェニルインドール（ＤＡＰＩ）（Ｒｏｃｈｅ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌｓ  ＧｍｂＨ，マンハイム，ドイツ）を用いて行われた。定量的な組織形態計測的評価を行った；毛嚢及び皮膚基質の予め規定された参照領域において、Ｋｉ−６７、ＴＵＮＥＬ又はＤＡＰＩ−陽性細胞をカウントし、陽性Ｋｉ−６７／ＴＵＮＥＬ細胞の割合を決定した。
【００３７】
Ｋ１５の定量的免疫組織化学
ケラチンＫ１５の発現を調べるため、先に説明したチラミドシグナル増幅法を使用した（Ｋｌｏｅｐｐｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，２００８）。簡単に言うと、アセトンによって固定された凍結切片を、ＴＮＴ（トリス−ＨＣＬ  ＮａＣｌ  Ｔｗｅｅｎ）緩衝液（０．１ｍｏｌ／ｌのＴｒｉｓ−ＨＣｌ，ｐＨ７．５；０．１５ｍｏｌ／ｌのＮａＣｌ及び０．０５％のＴｗｅｅｎ２０を含有する）を用いて、５分間３回洗浄した。次いで、等張リン酸緩衝液（ＰＢＳ）中において３％のＨ２Ｏ２を用いて１５分間洗浄することによって、ダイコンペルオキシダーゼをブロックした。アビジン及びビオチンのインキュベーションにより１５分間の、中間の洗浄工程によってＴＮＴ中５％の正常なヤギの血清と共に３０分間の、プレインキュベーションを行った。マウスの抗ヒトＫ１５（クローンＬＨＫ１５，Ｃｈｅｍｉｃｏｎ，ビルリカ，ＵＳＡ）をＴＮＴ中で希釈し、４℃にて一晩インキュベートし、その後に、二次ヤギ抗マウスビオチン標識抗体（ＴＮＴ中１：２００）が室温にて４５分間続いた。次いで、ダイコンストレプトアビジン−ペルオキシダーゼを、室温にて３０分間投与した（キットＴＳＡ；Ｐｅｒｋｉｎ−Ｅｌｍｅｒ，ボストン，ＭＡ，ＵＳＡ）（ＴＮＴ中１：１００）。ＦＩＴＣ−チラミド増幅剤を用いて、その反応を室温にて５分間増幅した（キットによって供給された増幅希釈剤中１：５０）。この免疫染色の強度をイメージＪ（国立衛生研究所）ソフトウェアによって定量化した。毛嚢中で規定された参照領域の染色強度を測定し、ビヒクルのみを用いて処置した対照グループとスペルミジンを用いて処置したグループの間で比較した。
【００３８】
統計分析
対になっていないサンプルについて、二者間のＳｔｕｄｅｎｔ  ｔ検定を用い、統計分析を行った。
【００３９】
結果
添付図面の図は、説明した実験的な研究の結果を示す。
【００４０】
図面の簡単な説明
図１は、ビヒクルのみで処置した対照グループと濃度が０．１μＭのスペルミジン３ＨＣｌで処置したグループを測定し、それらの間で比較された、毛嚢における着色強度に関する図である。
【００４１】
図２は、マッソン・フォンタナ染色によってメラニンの組織化学ディスプレイから取られた対応画像を示す。
【００４２】
メラニンの増加は、両方の図面から、スペルミジンを用いた処置の場合において、明らかであり、それ故に、かかる化合物によって処置した毛髪に対するメラニン形成活性は、参照ビヒクルと比較して、有意である。
【図１】
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【図２】
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