(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
（ａ）遊離している無傷の胎児赤芽球を含む血液試料に対して、重力フィールドフロー分
画（ＧｒＦＦＦ）によって層流を適用する工程（ただし、ＧｒＦＦＦは誘電泳動と同時に行われない）、および
（ｂ）その他の血液成分から前記無傷の胎児赤芽球を単離する工程
を含む、妊婦の末梢血試料から無傷の胎児赤芽球を単離するための方法。
【請求項２】
（ｃ）工程（ｂ）において単離された前記無傷の胎児赤芽球からＤＮＡ、ＲＮＡ、およびタンパク質を抽出する工程
をさらに含む、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記層流を適用する前に密度勾配の調製用の溶液で前記血液試料を処理する、請求項１または請求項２に記載の方法。
【請求項４】
前記末梢血試料が妊娠第８週から第２２週までの妊婦に由来する、請求項１〜請求項３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項５】
５０μｌ／分〜１ｍｌ／分の流速で前記層流が適用される、請求項１〜請求項４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項６】
５０μｌ中に１×１０５細胞〜１×１０６細胞を含む試料に、前記層流が適用される、請求項１〜請求項５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項７】
前記の遊離している胎児赤芽球が５分〜４０分の範囲の溶出時間で単離される、請求項１〜請求項６のいずれか一項に記載の方法。
【請求項８】
染色体異常および遺伝的疾患の特定を可能にする出生前診断を行うためのデータを収集するために、単離された前記胎児赤芽球を使用する、請求項１〜請求項７のいずれか一項に記載の方法。
【請求項９】
前記染色体異常が染色体の数的異常または構造的異常であり、前記遺伝的疾患が嚢胞性線維症、鎌状赤血球貧血、血友病、デュシェンヌ型筋ジストロフィー、脊髄性筋萎縮症、および神経線維腫症からなる群より選択される、請求項８に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は母体末梢血から胎児有核細胞、特に胎児赤芽球（「有核赤血球」、ＮＲＢＣ）を単離するための方法に関する。より具体的には、本発明は、無傷の胎児有核細胞を単離および提供することができる非侵襲的方法であって、全ての妊娠期間において実行可能である出生前診断の染色体、遺伝子およびタンパク質の発現に対するさらなる検査に有用である前記非侵襲的方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
染色体異常および遺伝的疾患の出生前診断には胎児のＤＮＡまたは染色体の供給源が必須である。
【０００３】
染色体異常は１，０００人の生産児のうち９人に悪影響を及ぼし、母体の年齢が進むにつれ発生率が高くなる（４０歳に達した母親について１／８０）。
【０００４】
対照的に、遺伝子異常に関して研究が発展し続けており、嚢胞性線維症、鎌状赤血球貧血およびデュシェンヌ症候群などの識別可能な疾患の数が増えつつある。ゲノム配列情報の進捗と共にこれらの遺伝的疾患の数が大いに増加すると予期される。また、遺伝子異常の相対的発生率は特定の表現型血統（ｐｈｅｎｏｔｙｐｉｃ  ｓｔｒａｉｎ）と地理領域に応じて変化する。
【０００５】
可能性がある染色体異常および遺伝的疾患を特定するために非侵襲的出生前スクリーニングテストまたは侵襲的出生前スクリーニングテストが既に確立されている。
【０００６】
現在までに知られている非侵襲的分析は、母親と子供に対してどのような危険性も伴わないが、しかしながら適切な程度の近似を有する（いわゆる「操作者依存的な」）形態学的（例えば超音波項部透過像）分析と血液化学的（母体血液に対するバイ（Ｂｉ−）テストおよびトリ（Ｔｒｉ−）テスト）分析に基づく検査からなる。不運なことに、現在までに知られている非侵襲的分析は明確で安全な結果を提供することができないという欠点を持っており、機能異常を明確に特定することができない。これらの分析によって可能になるのは予備的調査だけである。
【０００７】
代わりに、侵襲的検査により胎児ＤＮＡの分析に基づいて染色体異常または遺伝子異常を分析することが可能になる。侵襲的検査は、羊水穿刺および絨毛検査など、胎児に対してかなりの危険性を伴う診断検査からなる。
【０００８】
羊水穿刺は培養可能な胎児細胞を含む羊水の試料採取を伴う。そのような技法は１９５０年代から知られており、３５歳以上の妊婦または特定の危険状態にある妊婦に対して公然と提案されている。
【０００９】
絨毛膜絨毛試料採取（絨毛検査）は胎房（ｇｅｓｔａｔｉｏｎａｌ  ｃｈａｍｂｅｒ）からの絨毛の採取を伴う。
【００１０】
この技法は１９６０年代後期から知られており、（あまり一般的ではないが）羊水穿刺の代替法として提案されている。
【００１１】
これらの両方の侵襲的検査は１％超で妊娠の適切な進行を損なうかなりの危険性を含み、且つ、それらの侵襲的検査が行われる背景に応じて広範に変化する。
【００１２】
母体血液中に胎児ＤＮＡが存在するという観察は１９９７年までにさかのぼり（Ｌｏ  ＹＭＤら、Ｐｒｅｓｅｎｃｅ  ｏｆ  ｆｅｔａｌ  ＤＮＡ  ｉｎ  ｍａｔｅｒｎａｌ  ｐｌａｓｍａ  ａｎｄ  ｓｅｒｕｍ．Ｌａｎｃｅｔ誌、１９９７年；第３５０巻：４８５ｅ７）、それ以来世界中の多数のグループが胎児の主要なゲノム異常と染色体異常の出生前診断と早期特定のための有効な方法の開発に取り組んでいる。
【００１３】
しかしながら、これまで胎児ＤＮＡの分析によって可能になったのは胎児の性別とＲｈＤ因子の決定だけであるが、２０１０年に２１番染色体トリソミー向けのプロトコルが開発された（Ｃｈｉｕ  ＲＷＫ  ｅ  Ｌｏ  ＹＭＤ、Ｎｏｎ−ｉｎｖａｓｉｖｅ  ｐｒｅｎａｔａｌ  ｄｉａｇｎｏｓｉｓ  ｂｙ  ｆｅｔａｌ  ｎｕｃｌｅｉｃ  ａｃｉｄ  ａｎａｌｙｓｉｓ  ｉｎ  ｍａｔｅｒｎａｌ  ｐｌａｓｍａ：ｔｈｅ  ｃｏｍｉｎｇ  ｏｆ  ａｇｅ．Ｓｅｍｉｎａｒｓ  ｉｎ  Ｆｅｔａｌ  ＆  Ｎｅｏｎａｔａｌ  Ｍｅｄｉｃｉｎｅ誌、ｘｘｘ（２０１０年）１ｅ６）。
【００１４】
しかしながら、母体血液中の胎児ＤＮＡの使用について少なくとも２つの主要な問題が存在する。１つ目の問題は母体ＤＮＡから自由循環胎児ＤＮＡを確実に単離および特定することであり、２つ目の問題は胎児ＤＮＡが断片化されているという事実に起因する単離ＤＮＡの信頼性である。
【００１５】
胎児染色体異常と遺伝的障害の適切で正確な診断をさまざまな妊娠期間において可能にする新規非侵襲的診断技法であって、胎児または母親に対する危険性が無く、且つ、同時に再現性があり、実用的観点および経済的観点から有利である新規な非侵襲的診断技法の必要性が今日でも依然として存在する。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１６】
本発明の目的のうちの１つは有核胎児細胞、特に無傷のＤＮＡを含有する赤芽球を、母体血液中に存在する他の細胞から単離するための方法を提供することである。
【００１７】
したがって、本発明の別の目的は、非侵襲的手法の使用により胎児染色体異常および遺伝的疾患を迅速かつ早期に診断するための適切な方法を提供し、そうして公知の危険性と上述した非侵襲的方法および侵襲的方法の欠点を有しない、正確で安全な指標を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【００１８】
したがって、本発明は、妊婦の末梢血試料から無傷の胎児赤芽球を単離するための方法であって、
（ａ）遊離している無傷の胎児赤芽球を含む血液試料に対して重力フィールドフロー分画（ＧｒＦＦＦ）によって層流を適用すること、および
（ｂ）その他の血液成分から無傷の胎児赤芽球を単離すること
を含む前記方法に関する。
【００１９】
本発明の別の態様は、本発明の方法に従って母体末梢血から無傷の胎児赤芽球を単離するための診断キットであって、
−密度勾配を調製するための溶液、
−末梢血試料を希釈するための生理食塩水溶液、
−ヘパリン、および所望により洗浄溶液
を含む前記診断キットに関する。
【図面の簡単な説明】
【００２０】
添付されている図面を参照して本発明を詳細に説明する。
【図１】実施例４のＧｒＦＦＦ分離の代表的フラクトグラムを示す図である。グラフはリンフォライトによって分離された妊娠第９週の妊婦の血液細胞の分離時間に対する６００ｎｍ吸収スペクトルから作成されている。移動相：ヘパリン添加生理食塩水。緩和時間：２分。溶出速度：０．２５ｍｌ／分。注入細胞数：５×１０５。画分収集：１０００〜１５００秒。３本の線は同一試料の３回の異なる実行を表す。吸収スペクトルから４つのゾーン、すなわち、流動安定性が管理されているゾーン０、ＶＯＩＤとも呼ばれ、細胞破片とリンパ球の流出と共に吸光度の上昇が検出されるゾーン１、吸光度が減少するが、０値に戻ることはないゾーン２、リンパ球と顆粒球の流出と共に吸光度が上昇するゾーン３が察知され得る。
【図２】実施例４のＧｒＦＦＦ分離の代表的フラクトグラムを示す図である。グラフはリンフォライトによって分離された妊娠第１８週の妊婦の血液細胞の分離時間に対する６００ｎｍ吸収スペクトルから作成されている。移動相：ヘパリン添加生理食塩水。緩和時間：２分。溶出速度：０．３ｍｌ／分。注入細胞数：６×１０５。画分収集：９５０〜１２５０秒。緑色、赤色および青色の線は同一試料の３回の個別の実行を表す。吸収スペクトルから４つのゾーン、すなわち、流動安定性が管理されているゾーン０、ＶＯＩＤとも呼ばれ、細胞破片とリンパ球の流出と共に吸光度の上昇が検出されるゾーン１、吸光度が減少するが、０値に戻ることはないゾーン２、リンパ球と顆粒球の流出と共に吸光度が上昇するゾーン３が察知され得る。
【図３】サイトスピンによりスライドグラスに固定され、ギムザで染色された赤芽球の実施例５の顕微鏡画像であって、１００倍の倍率の顕微鏡画像を示す図である。
【図４】サイトスピンによりスライドグラスに固定され、オルト−ジアニシジンで染色された赤芽球の実施例５の顕微鏡画像であって、倍率１００倍の顕微鏡画像を示す図である。
【図５Ａ】図５は実施例６の細胞蛍光分析の代表例を示す図である。細胞を別々の集団：Ｐ１、Ｐ２、Ｐ３およびＰ４に分けることができる。Ｐ１は全ての細胞であり、Ｐ２は生細胞（７ＡＡＤ−ＰＥ対ＳＳＣ）であり、Ｐ３はＣＤ４５＋細胞（ＣＤ４５−ＰＥ対ＳＳＣ）であり、Ｐ４はＣＤ４５−細胞（ＣＤ４５−ＰＥ対ＳＳＣ）である。左下側のパネルから、グループＰ３およびグループＰ４のどちらの細胞がグリコホリン（Ｇｌｙ）とＣＤ７１（Ｇｌｙ−ＰＥ対７１−ＦＩＴＣ−Ａ）について検査で陽性または陰性であるか推測することができる。図５Ａ、図５Ｂおよび図５Ｃはリンフォライトによって分離され、リングから収集された母体血液細胞を示している。とりわけ、図５ＡはＶＯＩＤと名付けられたゾーン１の分離細胞の分析を示している。
【図５Ｂ】ＰＬＡＴＥと名付けられたゾーン２の分離細胞の分析を示している。
【図５Ｃ】ＰＥＡＫと名付けられたゾーン３の分離細胞の分析を示している。
【図５Ｄ】低浸透圧反応の後のリンフォライト分離時にチューブの底に沈降した、ペレットと名付けられた細胞のＦＡＣＳ分析を示している。
【図６】ＧｒＦＦＦを用いることによって母体血液から分離され、ゾーン２に収集された胎児細胞試料に対する実施例７のリアルタイムＰＣＲ分析像を示す図である。３つの試料において蛍光の増加を観察することができ、Ｙ染色体の存在を示している。蛍光は陽性対照である男性対象についても増加しているが、一方で女性対象については変化していない。
【図７】ゾーン２に回収された細胞について実施されたＱＦ−ＰＣＲ（「定量的蛍光ＰＣＲ」）による実施例７の試料分析を示す図である。その図は２つの異なるゲノムの存在、すなわち、母体ＤＮＡと胎児ＤＮＡの存在を示している。とりわけ、２つの異なるゲノムが存在することを示す高さと数の両方に関して異なるピークの存在（３つのピーク、または４つものピーク）を推測することが可能である。
【図８】血友病を有する妊婦の血液試料から抽出されたＤＮＡの配列についての実施例８の分析を示す図である。妊婦の血液をリンフォライトにより処理し、有核細胞をＧｒＦＦＦにより分離し、ゾーン２のわずかな割合の最終部分を収集した。その配列はＧｒＦＦＦにより分離された妊婦のＤＮＡにおけるヘテロ接合性の存在（塩基ＡとＣの存在）と胎児細胞におけるホモ接合性の存在（塩基Ａ単独の存在）を示している。
【発明を実施するための形態】
【００２１】
したがって、本発明は、末梢血試料、とりわけ妊婦の末梢血から無傷の胎児赤芽球を単離するための方法であって、
（ａ）遊離している無傷の胎児赤芽球を含む血液試料に対して、重力フィールドフロー分画（ＧｒＦＦＦ）によって層流を与えること、および
（ｂ）他の血液成分から前記無傷の胎児赤芽球を単離すること
を含む前記方法に関する。
【００２２】
本発明では、
「重力フィールドフロー分画（ＧｒＦＦＦ）システムによる層流」の定義は異なる大きさと形態を有する細胞の分離を可能にする技術を指す。試料は、その試料の様々な成分を物理的に分離して単離することを可能にする層流を適用できるように設計されたチャネルに導入される。
【００２３】
好ましくは、本発明による方法は工程ｂにおいて単離された胎児赤芽球からＤＮＡ、ＲＮＡ、およびタンパク質を抽出する追加工程ｃを含む。
【００２４】
ＤＮＡとＲＮＡの抽出は様々な実験プロトコルによって実施され得る。使用される抽出技法と無関係に、これは収率と純度について２つの主要な要求事項、すなわち、調査する核酸が溶液中に存在すること、および溶液中の試薬に結合してシークエンシングの結果を変えうる混入汚染物質が存在しないこと、という意味の、要求事項を満たすべきである。
【００２５】
その抽出および精製過程は通常は次の４つの工程、すなわち、細胞溶解、細胞性ヌクレアーゼの不活化、細胞溶解液を含む溶液からの核酸の分離と回収、および沈殿を含む。
【００２６】
様々な実験プロトコルによってタンパク質抽出を実施することができる。
【００２７】
１つの実施形態では、本発明による方法は診断方法である。
【００２８】
好ましい実施形態では、本発明の方法に従って、その試料に層流が適用される前に、前記末梢血試料が密度勾配の調製用の溶液で処理される。
【００２９】
フィコールは密度勾配の調製用の溶液の一例である。フィコールはショ糖とエピクロロヒドリンから合成される、超高分子量の、水溶性の合成分岐型重合体であり、細胞分離用の密度勾配を調製するために使用される。
【００３０】
本発明による方法では前記末梢血試料は妊娠第８週から第２２週までに採取されることが有利である。
【００３１】
本発明の方法の幾つかの実施形態では、無傷の胎児赤芽球を含む前記血液試料に適用される層流は、約１００μｌ／分から約１ｍｌ／分までの範囲の速度、好ましくは２５０μｌ／分の流速を有する流動である。
【００３２】
幾つかの実施形態では、本発明による方法は層流を含み、その方法では５０μｌ中に約１×１０５細胞から１×１０６細胞までの範囲の濃度を有する試料、好ましくは５０μｌ中に約５×１０５細胞を有する試料に前記層流が適用される。
【００３３】
本発明による方法の他の実施形態では、前記胎児赤芽球は５分から４０分までの範囲の溶出時間において単離される。
【００３４】
本発明の方法の１つの実施形態では、可能性がある染色体異常および遺伝的疾患の検出を可能にする出生前診断を実施するために、単離された前記胎児赤芽球を使用する。
【００３５】
好ましい実施形態では、本発明による方法において、前記染色体異常は染色体の数的異常または構造的異常であり、前記遺伝的疾患は嚢胞性線維症、鎌状赤血球貧血、血友病、デュシェンヌ型筋ジストロフィー、脊髄性筋萎縮症および神経線維腫症からなる群より選択される。
【００３６】
突然変異の結果として、核型がその核型を構成する染色体の数または形態に関して変化し、染色体の数的異常（異数性）と染色体の構造的異常をそれぞれ生じることがあり得る。
【００３７】
ヒトにおいて最も頻繁に観察される異数性はモノソミー（相同染色体対の１本の要素の不在）とトリソミー（相同染色体対の１本余分な要素の存在）である。これらの例は完全モノソミーおよび完全トリソミーとして定義されているが、しかしながら部分的モノソミー／トリソミーも個々の染色体部分の不在、または三重コピーの存在により生じ得る。
【００３８】
完全モノソミーは、ターナー症候群に関連するＸ染色体モノソミー（４５、Ｘ）を例外として、出生後の生命と両立しない。
【００３９】
反対に、幾つかの染色体の完全トリソミー、例えば、２１番染色体トリソミーすなわちダウン症候群（４７、ＸＸ、＋２１）、１８番染色体トリソミーすなわちエドワーズ症候群（４７、ＸＸ、＋１８）、１３番染色体トリソミーすなわちパトー症候群（４７、ＸＸ、＋１３）は、性染色体異数性と同様に、出生後の生命と両立する。
【００４０】
遺伝的疾患は、単因子性または多因子性であり得る。
【００４１】
単因子性遺伝的疾患は単一の遺伝子の突然変異によって引き起こされ、メンデル性とも呼ばれる。これまでに研究者によってこれらの疾患のうちの約７０００が分類された。最もよく知られているものは嚢胞性線維症、デュシェンヌ型筋ジストロフィー、脊髄性筋萎縮症、および神経線維腫症である。
【００４２】
多因子性遺伝的疾患は、同時に生じている幾つかの遺伝的要因および環境的要因の組合せによって生じる。一般に、多因子性疾患は、喘息、骨粗鬆症、肥満、高血圧症、様々な心奇形に伴う冠動脈性心疾患などの最も一般的な成人の病状を含むことが典型的である。新生児期でもそれより後の年齢でも、これらの疾患の臨床的影響はかなりの負担である。
【００４３】
別の態様では、本発明は、本発明の方法に従って母体末梢血から無傷の胎児赤芽球を単離するための診断キットであって、
−密度勾配を調製するための溶液、
−前記末梢血試料を希釈するための生理食塩水溶液
−ヘパリン、および所望により洗浄溶液
を含む前記診断キットに関する。
【００４４】
例示を目的として本発明の実施形態の実施例を下に提供する。
【実施例】
【００４５】
実施例１：患者
マンジャガッリ病院の産科において妊婦にインフォームドコンセントを提供した後に彼女らを動員した。１３０人の妊婦から６〜１４ｍｌの静脈血を採取した（表１）。
【００４６】
【表１】
0006023916.tif 000002
表１．妊娠期間に応じて患者の数で分けた、分析した患者のリスト
【００４７】
妊娠期間はＮＲＢＣ（「有核赤血球」）を特定することが可能であるときのものである。妊娠第５週から第３５週までの試料を分析した。しかしながら、文献に記載されているように、対象内変動が存在する。ＮＲＢＣの最大量は妊娠早期の週に見出された。最適な採取期間は妊娠第８週〜第１２週の辺りである。
【００４８】
実施例２：有核細胞の単離による試料前処理
分離前の母体末梢血試料の前処理工程がＮＲＢＣ単離工程に先立つ。
【００４９】
例えばフィコールなどの密度勾配の調製用の溶液によって、好ましくはリンフォライト−Ｈ（ユーロクローン社、ミラノ）によって、前処理工程を有利に実施することができる。
【００５０】
他の種類の試料前処理、例えば赤芽球の溶解または希釈も、考えられる。
【００５１】
実施例３：チャネルへの試料負荷
実施例２に記載されるように前処理し、分離した試料を、ＧｒＦＦＦによる細胞分離用の機器のチャネルに負荷する。
【００５２】
試料負荷の前に、チャネルを２０％次亜塩素酸ナトリウム溶液で洗浄し、その後に滅菌蒸留水で徹底的に洗浄し、最後にヘパリン含有滅菌生理食塩水で洗浄する。そのチャネル内の流動が安定（＝吸光度が安定）であるとき、前処理した試料をチャネルに注入する。５０μｌの最終体積中におよそ５×１０５個の細胞をチャネルに負荷する。
【００５３】
前記チャネル中での前記試料の好適な分離のための適切なパラメーターは、
−試料希釈係数、
−チャネルに負荷される細胞数、
−チャネル内における細胞の緩和期間の変動性
−チャネル内の流速、および
−希釈媒体及び存在する抗凝血因子の特徴
である。
【００５４】
試料希釈係数は５０μｌ中におよそ１×１０５細胞から１×１０６細胞の範囲で変化することができ、好ましくは５０μｌ中におよそ５×１０５細胞である。
【００５５】
チャネルに負荷される細胞数については、あまりに少ない細胞（きわめて希釈された試料）がロードされた場合、またはあまりに多い細胞（きわめて濃縮された試料）がロードされた場合には、試料分離度が小さいこと（ｐｏｏｒ  ｓｅｐａｒａｔｉｏｎ）が観察されている。
【００５６】
緩和期間は約２分続き、４分または６分というより長い期間でも有意な改善は見られず、一方でより短い期間では試料分離度が小さくなる。
【００５７】
溶出媒体については、２５，０００ＩＵ／５ｍｌのＥＰＳＯＣＬＡＲヘパリン点滴用溶液を使用する１：１０００ヘパリン添加生理食塩水で最良の結果が得られた。
【００５８】
チャネル内の流速は分当たり約５０μｌから最大で分当たり１ｍｌまでの範囲で変化させることができ、好ましくは約１００μｌ／分から約４００μｌ／分までの範囲であり得、さらにより好ましくは２５０μｌ／分である。
【００５９】
実施例４：吸光度による試料分析
実施例３に記載された、チャネル内で分離された試料を、分光光度計によって６００ｎｍで読み取り、図１および図２の試料について例示されているグラフを作成する。
【００６０】
前記グラフにおいて、ヘパリン含有生理食塩水溶液を流して得られたゼロ値（ゾーン０）に対する吸光度の変化を示す３つのゾーンを識別することができる。
ゾーン１（ＶＯＩＤ）は細胞破片とリンパ球のチャネルからの流出に対応し、
ゾーン２は主に胎児有核細胞の流出に対応し、
ゾーン３は主に顆粒球の流出に対応する。
【００６１】
実施例５：回収された細胞の画分の特徴解析
各画分中の細胞をバーカーチャンバーにより計数し、「スメア」またはサイトスピンによってスライドグラス上に付着させた。
【００６２】
その後にＮＲＢＣの存在を検証するために細胞をギムザ（図３）およびＯ−ジアニシジン（図４）により染色し、顕微鏡観察により分析した。
【００６３】
収集した溶離液画分中に赤芽球（ＮＲＢＣ）の存在を検出することができた。
【００６４】
実施例６：ＦＡＣＳ分析
１２人の患者についてＦＡＣＳ分析を実施した。
【００６５】
重力フィールドフロー分画（ＧｒＦＦＦ）システムは母体血液中に存在する様々な種類の集団を分離し得ることがわかっている。
【００６６】
胎児赤芽球（「有核赤血球」、ＮＲＢＣ）はゾーン２に見出される（図５）。
【００６７】
ＮＲＢＣのパーセント収率は生細胞の６１．７％にも達しており、ＮＲＢＣはＣＤ４５−であるので、ＣＤ４５＋細胞のネガティブ選択によってさらに濃縮することが考えられる。この場合では収率は１００％近くになるだろう。
【００６８】
実施例７：リアルタイムＰＣＲおよびＱＦ  ＰＣＲ分析
実施例３に記載されるように単離された胎児細胞から胎児の性別を特定することが可能であるか見出すため、ＳＲＹ遺伝子の存在を検出するためのＹ染色体特異的プローブを使用することにより１１試料に対してリアルタイムＰＣＲ分析を実施した。ＳＲＹプローブ（Ｙ．Ｍ．  Ｄｅｎｎｉｓ  Ｌｏ、Ｍａｒｋ  Ｓ．Ｃ．  Ｔｅｉｎ、Ｔｚｅ  Ｋ．  Ｌａｕ、Ｃｈｒｉｓｔｏｐｈｅｒ  Ｊ．  Ｈａｉｎｅｓ、Ｔｓｅ  Ｎ．  Ｌｅｕｎｇ、Ｐｒｉｓｃｉｌｌａ  Ｍ．Ｋ．  Ｐｏｏｎ、Ｊａｍｅｓ  Ｓ．  Ｗａｉｎｓｃｏａｔ、Ｐｈｉｌｉｐ  Ｊ．  Ｊｏｈｎｓｏｎ、Ａｌｌａｎ  Ｍ．Ｚ．  Ｃｈａｎｇ、およびＮ．  Ｍａｇｎｕｓ  Ｈｊｅｌｍ、Ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ  Ａｎａｌｙｓｉｓ  ｏｆ  Ｆｅｔａｌ  ＤＮＡ  ｉｎ  Ｍａｔｅｒｎａｌ  Ｐｌａｓｍａ  ａｎｄ  Ｓｅｒｕｍ：Ｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ  ｆｏｒ  Ｎｏｎｉｎｖａｓｉｖｅ  Ｐｒｅｎａｔａｌ  Ｄｉａｇｎｏｓｉｓ、Ａｍ．  Ｊ．  Ｈｕｍ．  Ｇｅｎｅｔ．誌、第６２巻：７６８〜７７５頁、１９９８年）を使用してＳＲＹ遺伝子の存在を判定することができ、したがって、男性試料にあるＹ染色体の存在を判定することができた。特に、上記の実験が図６に示されており、女性由来の対照試料において検出されない蛍光の増加を男性由来の試料において観察することができる。
【００６９】
また、１試料に対するＱＦ−ＰＣＲ（「定量的蛍光ＰＣＲ」）分析によって２つの異なるゲノム、すなわち、母体ＤＮＡと胎児ＤＮＡの存在が示された。
【００７０】
特に、図７は高さと数の両方に関して異なるピークの存在（３つのピーク、または４つものピーク）を示しており、したがって、２つの異なるゲノムが存在することを示している。
【００７１】
実施例８：血友病を有する妊婦に由来する胎児細胞のＤＮＡのシークエンシング
一人の血友病患者における疾患遺伝子領域のシークエンス解析ができた。母親はヘテロ接合性であり、胎児はホモ接合性であることがわかった。
【００７２】
実施例９：運用プロトコルの例
−リンフォライトを少なくとも２０分前に冷蔵庫から取り出して、室温でリンフォライトを平衡化する（細胞分離のために適切な密度を得るため）。
−ＰＢＳを少なくとも２０分前に冷蔵庫から取り出して、室温でＰＢＳを平衡化する（細胞への温度ショックを防止するため）。
−チャネル内の流動を安定化させるためにペリスタポンプのスイッチを入れる。速度は０．３５ｍｌ／分である。
【００７３】
１．血液試料とＥＤＴＡ（１４ｍｌ）を含む試験管を同量の（冷えていない）ＰＢＳで希釈する。
【００７４】
２．血液の体積と等しい体積のリンフォライトをとってファルコンチューブに入れる（室温）。
【００７５】
３．リンフォライト接触面を乱さずに、前記試験管の壁面にＰＢＳ希釈血液を非常に穏やかに注ぐ。
【００７６】
４．ブレーキ０で８００×ｇで２６分間遠心分離する。
【００７７】
５．ガラスパスツールピペットを用いて輪になったリンパ球（ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ  ｒｉｎｇ）を取り除く。
【００７８】
６．ヘパリン含有生理食塩水溶液（１：１０００）を添加し、８００×ｇで１０分間遠心分離する。
【００７９】
７．ヘパリン含有生理食塩水溶液（１：１０００）をペレットに添加する。
【００８０】
８．ペレットを４００マイクロリットルのヘパリン含有生理食塩水溶液（１：１０００）に再懸濁する。
【００８１】
９．細胞計数：
・両方の計数チャンバーにカバーをするためにカバーグラスを適合させてバーカーチャンバーを調製する。
・新しいチューブの中で１μｌの細胞懸濁液を１９μｌのヘパリン含有生理食塩水溶液に（または、より正確には,
２μｌの細胞懸濁液を３８μｌのヘパリン含有生理食塩水溶液に）添加することにより１：２０溶液を調製する。
・２本目のチューブを用意し、１μｌのトリパンブルーを９μｌの前記１：２０希釈液に添加する。
・２本目の試験管の１０μｌの試料（１μｌのトリパンブルー及び９μｌの前記１：２０希釈液からなる）を毛管現象によりバーカーチャンバーにロードする。
・視野内で細胞が停止するのを数秒間待ち、４つの大きな四角を数える：生細胞（色素が浸透していない細胞）だけを数える。
・平均（Ｍ）を計算し、希釈係数（２０）と１０４（バーカーチャンバー係数）を乗算する：Ｍ×２０×１０４＝ｍｌ当たりの細胞数ｎ。
・前記のｍｌ当たりの細胞数量に懸濁液の体積（０．４ｍｌ）を乗算する：ｍｌ当たりの細胞数×０．４＝懸濁液中に存在する全細胞数。
【００８２】
１０．前記懸濁液の必要な希釈係数を計算して、５０μｌの細胞懸濁液として５〜６×１０５個の細胞をロードする。
【００８３】
１１．流動を停止する。シリンジで前記試料を注入する。
【００８４】
１２．流動を０．２５ｍｌ／分で１５秒間にわたって再開する。
【００８５】
１３．停止し、試料を２分間緩和させる。
【００８６】
１４．バルブを回す。
【００８７】
１５．流動を０．３５ｍｌ／分で再開する。
【００８８】
１６．ファルコンチューブにピークの最初の部分（平坦部から高原部まで）を収集する。
【００８９】
１７．２回目の注入の前にチャネルから試料を完全に流出させる。
【００９０】
１８．ピークの最初の部分の幾つかの画分が収集されたところで、８００×ｇで６分間遠心分離する。
【００９１】
１９．その後のＤＮＡ抽出のためにペレットを乾燥するか、または計数およびスライド上への付着のためにペレットを再懸濁する。
【００９２】
本発明の方法により達成される利点は詳細な説明と上記実施例から明らかである。とりわけ、本方法は胎児の染色体異常および遺伝的疾患の非侵襲的診断に驚くばかりに有利に適切であることがわかった。同時に、本方法は迅速で非常に容易に実施可能であり、あらゆる種類の研究室または診断解析室において簡便に適用可能である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５Ａ】
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【図５Ｂ】
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【図５Ｃ】
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【図５Ｄ】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【配列表】
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