(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ポリ（３−ヒドロキシブチレート−ｃｏ−３−ヒドロキシバレレート−ｃｏ−３−ヒドロキシヘキサノエート）ランダム共重合体［Ｐ（３ＨＢ−ｃｏ−３ＨＶ−ｃｏ−３ＨＨｘ）］合成酵素活性を有するＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１に記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする、単離されたポリヌクレオチド。
【請求項２】
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２に記載のヌクレオチド配列を含む請求項１に記載の単離されたポリヌクレオチド。
【請求項３】
ＴはＵによって置換されるＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２に記載のヌクレオチド配列を含む請求項１に記載の単離されたポリヌクレオチド。
【請求項４】
請求項１に記載の単離されたポリヌクレオチドを含む組換えベクター。
【請求項５】
請求項４に記載の組換えベクターであって、それはプラスミドまたはファージである組換えベクター。
【請求項６】
請求項５に記載のベクターによって形質転換された形質転換体。
【請求項７】
Ｐ（３ＨＢ−ｃｏ−３ＨＶ−ｃｏ−３ＨＨｘ）を産生するための方法であって、
重合性材料を含む培地において請求項６に記載の形質転換体を培養する段階と、
培養培地からＰ（３ＨＢ−ｃｏ−３ＨＶ−ｃｏ−３ＨＨｘ）を回収する段階とを含む方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は高分子合成酵素および本酵素をコードする遺伝子に関する。より詳細には、本発明は高分子合成酵素の酵素をコードする機能遺伝子、遺伝子を含む組換えベクター、ベクターによって形質転換される形質転換体、および形質転換体を用いたプラスチック状高分子の合成に関する高分子合成酵素を産生するための方法を提供する。
【背景技術】
【０００２】
ポリヒドロキシアルカノエート（ＰＨＡｓ）は、主力汎用プラスチックの特性とよく似た特性を有する微生物貯蔵高分子である。最も多いＰＨＡｓは熱可塑性プラスチックであり、生分解性の利点が付加されて、石油化学由来の合成プラスチックのように熱処理可能である。また、ＰＨＡｓは、それらが糖類、植物油、および二酸化炭素などの再生可能な資源から産生し得るため、自然の力によって再生可能である。ポリ（３−ヒドロキシブチレート）［Ｐ（３ＨＢ）］は認定された最初のＰＨＡの種類であり、自然界において発見された最も一般的なＰＨＡである。
【０００３】
ＰＨＡの特性は、副単量体（ｓｅｃｏｎｄａｒｙ  ｍｏｎｏｍｅｒｓ）の取り込みおよび／または組成を制御することで、様々な応用に適合するように調製可能である。高分子を合成する微生物は、Ｃ３からＣ５の単量体単位を用いて高分子を合成するものと、Ｃ６からＣ１４の単量体単位を用いて高分子を合成するものの２つの群に分けることが可能である。これらのそれぞれの微生物は基質特異性高分子合成酵素を所有している。少なくともＣ６の単量体単位から成る高分子は、弾性特性を有する軟質高分子材料である。
【０００４】
これまでのＰＨＡへの高まる関心によって、改良されかつ新規の高分子生産のために新たな細菌株を単離することがもたらされてきた。グラム陰性およびグラム陽性の両方の微生物によるＰＨＡの産生は、調査されてかつ十分に立証されてきた。これらの微生物からのその鍵となる酵素、ＰＨＡ合成酵素を含めたＰＨＡ生合成において含まれる遺伝子は、認定されてかつ特徴付けられてきた。
【０００５】
高分子合成酵素およびそれをコードする遺伝子に関する先行技術に関するいくつかの特許技術がある。米国特許第６８１２０１３号明細書は、ＰＨＡを調製するための方法において有用なＰＨＡ合成酵素、本酵素をコードする遺伝子、遺伝子を含む組換えベクター、ベクターによって形質転換される形質転換体、形質転換体を利用したＰＨＡ合成酵素を産生するための方法、および形質転換体を利用したＰＨＡを調製するための方法に関する。本発明は、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ  ｐｕｔｉｄａからのＰＨＡ合成酵素遺伝子をＰＨＡ合成酵素またはＰＨＡを産生するために培養された宿主微生物中に導入することで得られる形質転換体を特徴とする。
【０００６】
また、他の米国特許出願公開第２００４１４６９９８号明細書も、同様のものを使用した高分子を産生するための形質転換体および方法に関する。本発明は、共重合体−合成酵素をコードする遺伝子、遺伝子を高分子の発酵合成のために利用する微生物、および微生物の補助を受けて高分子を産生する方法を開示する。本発明はポリエステル合成−関連酵素遺伝子、プロモータ、およびターミネータを含み、かつ酵母内に導入される形質転換体のコンストラクションに焦点を当てている。
【０００７】
同様のものを使用した高分子を産生するための改良された形質転換体および方法は、欧州特許第１６２６０８７号明細書に開示されている。本発明は、Ａｅｒｏｍｏｎａｓ  ｃａｖｉａｅ由来のＰＨＡ合成酵素をコードする遺伝子を含む遺伝子発現カセットを提供する。また、酵母が宿主として使用され、変異体をプロモータおよびターミネータにおいて導入することで、遺伝子カセットが酵母内で機能することを可能とする。
【０００８】
いくつかの特許技術は、高分子合成酵素をコードする遺伝子とその他の遺伝子との間の組み合わせを開示している。米国特許出願公開第２００８２３３６２０号明細書は、酵母内での遺伝子発現産物を産生するための形質転換体および方法に関する。形質転換体は、ＰＨＡ合成酵素とアセトアセチルＣｏＡ還元酵素遺伝子との組み合わせなど、ＰＨＡ合成に含まれる複数の酵素遺伝子を導入することで得られる。他の米国特許出願公開第２００３１４６７０３号明細書では、ＰＨＡ合成酵素および細胞内ＰＨＡデポリメラーゼの両方を発現する組換え微生物を開示している。本発明はＰＨＡの同時の合成および分解を可能とする。
【０００９】
特許技術の多くは、開示された形質転換体を用いた高分子またはＰＨＡを産生するための形質転換体および方法に関する。しかしながら、これらの特許技術は、異なる種類の有機体の異なる領域のゲノムに由来するＰＨＡ合成酵素遺伝子を含んでいる。また、これまでのところ、高分子合成酵素の合成においてＣ３からＣ７の単量体単位を組み込むことを開示した特許技術もない。したがって、本発明において、活性レベルが増加した高分子合成酵素の提供において有用な組換えベクターおよび形質転換体を産生するため、高分子合成酵素遺伝子の改良されたＤＮＡ断片を提供することが望まれている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１０】
【特許文献１】米国特許第６８１２０１３号明細書
【特許文献２】米国特許出願公開第２００４１４６９９８号明細書
【特許文献３】欧州特許第１６２６０８７号明細書
【特許文献４】米国特許出願公開第２００８２３３６２０号明細書
【特許文献５】米国特許出願公開第２００３１４６７０３号明細書
【発明の概要】
【００１１】
本発明の主要目的は、細菌種由来の高分子合成酵素遺伝子、および有用な単量体単位を組み込むことを含む遺伝子によってコードされた高分子合成酵素の合成を提供することである。
【００１２】
本発明の他の目的は、組換えベクターを産生するために適したベクターと結合するよう高分子合成酵素の新たなＤＮＡ断片を提供すること、したがって高分子合成酵素を含む形質転換体を提供することである。
【００１３】
また、本発明の他の目的は、活性レベルが増加した高分子合成酵素を提供することである。
【００１４】
さらに、本発明の他の目的は、高分子合成酵素を含む形質転換体を用いて高分子を産生するためのより効率的な方法を開発することである。
【００１５】
前述の目的の少なくとも１つは、本発明において全体または部分的に対応している。本発明の実施形態の１つは、高分子合成酵素活性を有するＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１に記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする単離されたポリヌクレオチドを示す。
【００１６】
本発明の他の実施形態は、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１に記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする単離されたポリヌクレオチドであり、１以上のアミノ酸は置換、欠失、置換または追加され、ポリペプチドは高分子合成酵素活性を有する。
【００１７】
本発明の好ましい実施形態によると、単離されたポリヌクレオチドは、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：２に記載のヌクレオチド配列、またはそれの相補配列を含む。
【００１８】
また、本発明の他の実施形態は、ＴがＵによって置換されるＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：２に記載のヌクレオチド配列、またはそれの相補配列を含む単離されたポリヌクレオチドである。
【００１９】
さらに、本発明の他の実施形態は、単離されたポリヌクレオチドを含む組換えベクターであり、単離されたポリヌクレオチドは高分子合成酵素活性を有するＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１に記載のアミノ酸配列を含むポリペプチド、またはＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１に記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードし、１以上のアミノ酸は置換、欠失、置換または追加され、ポリペプチドは高分子合成酵素活性を有する。好ましくは、組換えベクターはプラスミドである。
【００２０】
本発明のさらなる実施形態では、前述の実施形態に記載のベクターによって形質転換された形質転換体を開示する。
【００２１】
本発明の他のさらなる実施形態は、重合性材料を含む培地においてあらゆる前述の実施形態に記載の単離されたポリヌクレオチドを含む形質転換体の培養を含む高分子の産生、および培養培地から高分子を回収するための方法である。好ましくは、高分子はＰＨＡである。
【００２２】
本発明は目的を実行し、言及した目標および利点、またそこに内在するものも同様に得るために十分適応していることを、当業者は容易に理解するであろう。本明細書に記載の実施形態は、本発明の範囲において制限を意図するものではない。
【００２３】
本発明の理解を促すため、以下の説明、本発明、その構成、および操作に関して考慮するときの検証のために好ましい実施形態を添付の図面において例示しており、それの多数の利点が容易に理解および認識されるであろう。
【図面の簡単な説明】
【００２４】
【図１】図１は本発明の好ましい実施形態の１つにおいて記載されている、高分子合成酵素のポリペプチドのアミノ酸配列である。
【図２】図２は本発明の好ましい実施形態の１つにおいて記載されている、高分子合成酵素をコードするポリヌクレオチドのヌクレオチド配列である。
【図３】図３は本発明の好ましい実施形態の１つにおいて記載されている、高分子合成酵素のＰＣＲ増幅のために使用される増幅ヌクレオチドのヌクレオチド配列である。
【図４】図４は本発明の好ましい実施形態の１つにおいて記載されている、形質転換体によって合成された共重合体の例の１つである、Ｐ（３−ヒドロキシブチレート−ｃｏ−３−ヒドロキシバレレート−ｃｏ−３−ヒドロキシヘキサノエート）のＨ−ＮＭＲスペクトルである。
【発明を実施するための形態】
【００２５】
本発明は高分子合成酵素および本酵素をコードする遺伝子に関する。より詳細には、本発明は高分子合成酵素の酵素をコードする機能遺伝子、遺伝子を含む組換えベクター、ベクターによって形質転換される形質転換体、および形質転換体を用いたプラスチック状高分子の合成に関する高分子合成酵素を産生するための方法を提供する。
【００２６】
以下、本発明は、本発明の好ましい実施形態に基づき、かつ付随する説明および図面を参照することによって説明されるものとする。しかしながら、説明を本発明の好ましい実施形態および図面に限定するのは、単に本発明における考察を促すためであることを理解すべきであり、当業者は添付の特許請求の範囲から逸脱することなく様々な変更を発案可能であることが想定される。
【００２７】
本発明は、高分子合成酵素活性を有するＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１に記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする単離されたポリヌクレオチドを開示する。ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１を図１に示す。
【００２８】
本発明の好ましい実施形態によると、単離されたポリヌクレオチドは高分子合成酵素遺伝子である。さらに、本高分子合成酵素遺伝子はＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１のアミノ酸配列、または１以上のアミノ酸がＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１のアミノ酸配列から、欠失、置換もしくは追加された配列を含むポリペプチドをコードすることが可能である。ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１の配列における１以上のアミノ酸が、欠失、置換、または追加のような変異を経たとしても、アミノ酸配列を含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドは、ポリペプチドが高分子合成酵素活性を有する限り、本発明の遺伝子に含まれる。例えば、先頭位置にあるメチオニンが欠失しているＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドも、本発明の遺伝子において含まれる。言い換えると、本発明の遺伝子はＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：２のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列だけでなく、縮重コドン、同一ポリペプチドをコードすることを除いて、それの変性も包含する。欠失、置換、または追加などの上述した変異は、周知の部位特異的突然変異によって誘発され得る。
【００２９】
本発明の好ましい実施形態では、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：２に記載のヌクレオチド配列、またはそれの相補配列を含む単離されたポリヌクレオチドを開示する。ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：２を図２において示す。また、本発明の他の実施形態は、ＴがＵによって置換されるＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：２に記載のヌクレオチド配列、またはそれの相補配列を含む単離されたポリヌクレオチドである。これらのポリヌクレオチドは、高分子合成酵素活性を有するポリペプチドをコードする。
【００３０】
この高分子合成酵素遺伝子は、適した微生物からクローン化されることが好ましい。本発明の好ましい実施形態によると、高分子合成酵素遺伝子は淡水から単離されたＣｈｒｏｍｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ属に属する微生物から分離される。本発明の遺伝子は、化学合成、またはテンプレートとしてゲノムＤＮＡを用いたポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）技術、またはプローブとしてヌクレオチド配列を有するＤＮＡ断片を用いたハイブリダイゼーションによって得ることが可能である。
【００３１】
本発明の好ましい実施形態によると、ＰＣＲ検出法を適用することで、テンプレートとしてＣｈｒｏｍｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｓｐからのゲノムＤＮＡを用いた高分子合成酵素遺伝子のＤＮＡ断片を得ることが可能である。初めに、ゲノムＤＮＡはＣｈｒｏｍｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｓｐ株から単離する。あらゆる適した培地、例えば富栄養培地がゲノムＤＮＡを調製するために使用可能であることは、当技術分野において周知である。Ｃｈｒｏｍｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｓｐ由来の高分子合成酵素遺伝子を含むＤＮＡ断片を得るために、プローブを調製することが好ましい。高分子合成酵素遺伝子のよく保存された領域は、周知のアミノ酸配列から選択され、それらをコードするヌクレオチド配列はオリゴヌクレオチドを設計するために推定可能である。本目的を達成するために増幅ヌクレオチドのプライマー対を設計する。増幅ヌクレオチドの例を図３に示しており、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：３をフォワードプライマーとして使用し、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：４をリバースプライマーとして使用する。
【００３２】
増幅ＤＮＡ断片は、例えばＡｐａＩおよびＳａｌＩなどの適した制限酵素を用いて消化され得る。その後、ＤＮＡ断片はアルカリホスファターゼを用いた処理によって脱リン酸化される。それはＡｐａＩおよびＳａｌＩなどの制限酵素を用いて前もって切断されたベクターに結合される。
【００３３】
さらに、本発明の他の実施形態は、単離されたポリヌクレオチドを含む組換えベクターである。単離されたポリヌクレオチドは、高分子合成酵素活性を有するＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１に記載のアミノ酸配列を含むポリペプチド、またはＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１に記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードし、１以上のアミノ酸は置換、欠失、置換または追加され、ポリペプチドは高分子合成酵素活性を有する。
【００３４】
本発明の好ましい実施形態によると、宿主微生物において自律複製可能なプラスミドまたはファージがベクターとして使用される。適用され得るプラスミドベクターは、ｐＢＲ３２２、ｐＵＣ１８、およびｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ  ＩＩを含み、その一方、適用され得るファージベクターは、ＥＭＢＬ３、Ｍ１３、ｌａｍｂｄａ  ｇｔｌｌを含む。これらのベクターは市販されている。Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉまたはＢａｃｉｌｌｕｓ  ｂｒｅｖｉｓ、および様々なシャトルベクターなどの２以上の宿主細胞において自律複製可能なベクターも使用可能である。また、このようなベクターは制限酵素を用いて切断されるため、それらの断片を得ることが可能である。
【００３５】
したがって、従来のＤＮＡリガーゼを得られたＤＮＡ断片をベクター断片に結合させるために使用する。ＤＮＡ断片およびベクター断片をアニールし、その後結合させることで組換えベクターを生成する。
【００３６】
本発明のさらなる実施形態では、形質転換体は本発明の組換えベクターを該組換えベクターの構成において使用される発現ベクターと相性の良い宿主に導入することによって得られる。本発明は、標的遺伝子を発現可能である限り、特定宿主の使用に制限されることを意図しない。使用可能な適した例としては、Ｃｕｐｒｉａｖｉｄｕｓ、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ、もしくはＢａｃｉｌｌｕｓ属に属する微生物、またはＳａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓもしくはＣａｎｄｉｄａ属からの酵母、またはＣＯＳもしくはＣＨＯ細胞株などの動物細胞が挙げられる。
【００３７】
ＣｕｐｒｉａｖｉｄｕｓまたはＰｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ属に属する微生物などの細菌が宿主として使用される場合、本発明の組換えＤＮＡは、プロモータ、本発明のＤＮＡ断片、および転写終結配列を含むように構成されることが好ましい。これは宿主における自律複製の発生を確保するためである。好ましくは、発現ベクターは、限定されるものではないが、ｐＧＥＭ−ＴおよびｐＢＢＲ１ＭＣＳ−２誘導体を含む。同様に、プロモータは宿主においてそれが発現可能な提供されるいかなる種類であってもよい。Ｅ．ｃｏｌｉまたはファージ由来のプロモータの例としては、ｔｒｐプロモータ、ｌａｃプロモータ、ｐＬプロモータ、ｐＲプロモータおよびＴ７プロモータが挙げられる。
【００３８】
組換えベクターを宿主微生物に導入するために、あらゆる周知の方法を使用可能である。例えば、宿主微生物がＥ．ｃｏｌｉである場合、カルシウム法およびエレクトロポレーション法が使用可能である。ファージＤＮＡを使用する場合、インビトロパッケージング法を採用可能である。
【００３９】
酵母を宿主として使用する場合、Ｙｅｐ１３またはＹＣｐ５０などの発現ベクターを使用する。したがって、プロモータはｇａｌ  １プロモータまたはｇａｌ  １０プロモータであり、組換えＤＮＡを酵母に導入するための方法としては、エレクトロポレーション法、スフェロプラスト法、および酢酸リチウム法が挙げられる。動物細胞を宿主として使用する場合、ｐｃＤＮＡＩまたはｐｃＤＮＡ／Ａｍｐなどの発現ベクターを使用する。したがって、組換えＤＮＡを動物細胞に導入するための方法は、エレクトロポレーション法またはリン酸カリウム法であろう。
【００４０】
また、本発明は、重合性材料を含む培地においてあらゆる前述の実施形態に記載の単離されたポリヌクレオチドを含む形質転換体を培養する段階を含む高分子の産生、および培養培地から高分子を回収する方法を開示する。高分子は形質転換体において形成および蓄積可能である。
【００４１】
また、宿主を培養するために使用される従来の方法も、本発明の形質転換体を培養するために使用される。宿主としてＣｕｐｒｉａｖｉｄｕｓまたはＰｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ属に属する微生物から調製された形質転換体の培地は、微生物によって吸収可能な炭素源を含有する培地を含む。窒素源、無機塩類または他の有機栄養源は制限され、例えば、培地において栄養源は培地の０．０１重量％〜０．１重量％の範囲にある。
【００４２】
炭素源は微生物の成長のために必要であり、それは同時に高分子の出発物質である。使用される炭素源は、グルコース、フルクトース、スクロース、またはマルトースなどの炭化水素由来である。さらに、２以上の炭素原子を有する油脂、および油関連の物質も炭素源として使用可能である。これらの油脂、および油関連の物質は、トウモロコシ油、大豆油、サフラワー油、ひまわり油、オリーブ油、ヤシ油、パーム油、菜種油、魚油、鯨油、豚油、牛油などの天然油脂および油、酢酸、プロピオン酸、ブタン酸、ペンタン酸、ヘキサン酸、オクタン酸、デカン酸、ラウリン酸、オレイン酸、パルミチン酸、リノレン酸、リノール酸、ミリスチン酸、およびそれらのエステルなどの脂肪酸、エタノール、プロパノール、ブタノール、ペンタノール、ヘキサノール、オクタノール、ラウリルアルコール、オレイルアルコール、パルミチルアルコール、およびそれらのエステルなどのアルコールを含む。その一方で、窒素源は、アンモニア、アンモニウム塩、ペプトン、肉エキス、酵母エキスまたはコーンスティープリカーに由来し得る。無機物質としては、リン酸一カリウム、リン酸二カリウム、リン酸マグネシウム、硫酸マグネシウム、および塩化ナトリウムが挙げられる。
【００４３】
培養は、発現が誘導された後、好気条件下で２４時間以上、好ましくは１〜３日間、３０℃〜３４℃にて振盪させながら実施することが好ましい。培養の間、アンピシリン、カナマイシン、ゲンタマイシン、アンチピリン、またはテトラサイクリンなどの抗生物質を培養物に添加可能である。その結果、高分子は微生物中に蓄積し、その後高分子は回収可能となる。
【００４４】
誘導プロモータを使用して発現ベクターを用いて形質転換された微生物を培養するために、イソプロピル−β−Ｄ−チオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ）またはインドールアクリル酸（ＩＡＡ）などのそれの誘導物質も培地に添加可能である。宿主としての動物細胞からの形質転換体を培養するために、ウシ胎仔血清が添加されたＲＰＭＩ−１６４０またはＤＭＥＭなどの培地が使用可能である。本発明の好ましい実施形態によると、培養は通常、５％ＣＯ２存在下で３０℃〜３７℃において１４〜２８日間実施される。培養の間、カナマイシンまたはペニシリンなどの抗生物質が培地に追加されてもよい。
【００４５】
本発明の好ましい実施形態によると、高分子精製段階も実施可能である。好ましくは、形質転換体を遠心分離によって培養物から回収し、その後、蒸留水およびヘキサンで洗浄して乾燥させる。その後、乾燥形質転換体をクロロホルム中で懸濁させて加熱し、そこから高分子を抽出する。残留物はろ過によって除去可能である。好ましくは、メタノールを本クロロホルム溶液に添加することで高分子を沈殿させる。上澄みをろ過または遠心分離で除去した後、沈殿物を乾燥させて生成高分子を得る。得られた高分子は、例えば、ガスクロマトグラフィー、核磁気共鳴またはその他の手法などの通常の方法において、所望のものであることを確認する。
【００４６】
本高分子合成酵素は、式Ｉで表される単量体単位、３−ヒドロキシアルカノエートから成る共重合体（高分子）を合成可能である。式中、Ｒは水素原子またはＣ１〜Ｃ４アルキル基を表す。
【００４７】
【化１】
0005904370.tif 000002
【００４８】
好ましくは、高分子はポリヒドロキシアルカノエートである。高分子は、ポリ（３−ヒドロキシブチレート−ｃｏ−３−ヒドロキシバレレート）ランダム共重合体（Ｐ（３ＨＢ−ｃｏ−３ＨＶ））、またはポリ（３−ヒドロキシブチレート−ｃｏ−３−ヒドロキシヘキサノエート）ランダム共重合体［Ｐ（３ＨＢ−ｃｏ−３ＨＨｘ）］を含む共重合体である。高分子合成酵素遺伝子を保有する形質転換体は、非常に高い効率でＰ（３ＨＢ−ｃｏ−３ＨＨｘ）を産生する能力を有する。
【００４９】
ポリ（３−ヒドロキシブチレート）［Ｐ（３ＨＢ）］を産生するための従来の方法は、本高分子が高結晶性の高分子であるため、耐衝撃性が低いという物理的性質に関連する問題の原因となる。結晶化度は、５つの炭素原子を有する３−ヒドロキシバレレート、または６つの炭素原子を有する３−ヒドロキシヘキサノエートを高分子鎖に導入することで低下する。高分子は柔軟性のある高分子材料として機能し、耐熱性および成形性にも優れている。
【００５０】
本発明において、Ｐ（３ＨＢ−ｃｏ−３ＨＨｘ）共重合体は、使用されるＣｈｒｏｍｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｓｐの高分子合成酵素を使用することによって高収率で産生可能である。所望の高分子を上述の手段を用いて大量に得ることが可能であるため、糸、膜、または様々な管などの生分解性材料として使用可能である。さらに、本発明の遺伝子はＰ（３ＨＢ−ｃｏ−３ＨＨｘ）共重合体を高産生する株を増殖させるために使用可能である。
【００５１】
本開示は、添付の特許請求の範囲および前述の説明において含まれるものを含有する。本発明がその好ましい形態においてある程度詳細に記載されているが、好ましい形態における本開示は単に例示のために作成されており、構成の詳細ならびに部分の組み合わせおよび配置における多数の変更は、本発明の範囲から逸脱することなく行い得ることを理解すべきである。
【００５２】
実施例
本発明の種々の側面および実施形態を例示するために、以下に実施例を提供する。これらの実施例は、開示された発明を限定することを意図するものでは全くなく、特許請求の範囲によってのみ限定される。
【実施例１】
【００５３】
Ｃｈｒｏｍｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｓｐ．ＵＳＭ２からの高分子合成酵素遺伝子のクローニング
初めに、ゲノムＤＮＡライブラリーをＣｈｒｏｍｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｓｐ．ＵＳＭ２から単離した。Ｃｈｒｏｍｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｓｐ．ＵＳＭ２を５０ｍｌの富栄養培地（１％ペプトン、１％肉エキス、０．５％酵母エキス、ｐＨ７．０）において３０℃で一晩培養し、その後、ゲノムＤＮＡを標準法を用いて微生物から得た。
【００５４】
Ｃｈｒｏｍｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｓｐ．ＵＳＭ２からの高分子合成酵素遺伝子を含むＤＮＡ断片を得るために、プローブを調製した。参照としてＮＣＢＩデータベースを使用して設計された２つの領域固有オリゴヌクレオチド、ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：３、およびＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：４を合成した。
【００５５】
これらのオリゴヌクレオチドをプライマーとして、およびＣｈｒｏｍｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｓｐ．ＵＳＭ２からのゲノムＤＮＡをテンプレートとして使用して、高分子合成酵素遺伝子をＰＣＲによって増幅させた。ＰＣＲは３０サイクルを用いて実施し、それぞれ９５℃を２０秒、６０℃を１８０秒、および６０℃を１８０秒の反応から成る。
【００５６】
本断片からの１．７ｋｂｐのＡｐａＩ−ＳａｌＩのヌクレオチド配列を、サンガー法によって決定した。ヌクレオチド配列（１７０４）ＳＥＱ  ＩＤ  ＮＯ：１を含む高分子合成酵素遺伝子を得た。
【実施例２】
【００５７】
Ｃｕｐｒｉｖｉｄｕｓ  ｎｅｃａｔｏｒ形質転換体の調製
初めに、ＡｐａＩ−ＳａｌＩ高分子合成酵素遺伝子を、あらかじめ同じ制限酵素を用いて切断したクローニングベクターｐＧＥＭ−（Ｐｒｏｍｅｇａ）に挿入した。その後、断片をＡｐａＩおよびＳａｌＩ制限酵素を用いて再度消化し、得られたＡｐａＩ−ＳａｌＩ高分子合成酵素遺伝子断片を、Ｃｕｐｒｉａｖｉｄｕｓ属に属する微生物において発現可能な組換えベクターｐＢＢＲ１ＭＣＳ−２内に挿入した。得られた組換えプラスミドを接合伝達法によって、Ｃｕｐｒｉａｖｉｄｕｓ  ｎｅｃａｔｏｒ  ＰＨＢ−４（ＤＳＭ  ５４１）（高分子を合成する能力を欠いた株）に形質転換した。
【００５８】
初めに、組換えプラスミドを使用して塩化カルシウム法により、Ｅ．ｃｏｌｉ  Ｓ１７−１に形質転換した。その結果、組換えＥ．ｃｏｌｉが得られ、Ｃ．ｎｅｃａｔｏｒ  ＰＨＢ−４をトランス抱合（ｔｒａｎｓｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ）した。組換えＥ．ｃｏｌｉおよびＣ．ｎｅｃａｔｏｒ  ＰＨＢ−４を、１．５ｍｌのＬＢ培地および富栄養培地において３０℃で一晩培養し、それぞれの培養物、各０．１ｍｌを合わせて、振盪機において室温で１時間培養した。その後、混合物を振盪せずに３０分間インキュベートし、続いて再度３０分間振盪した。本微生物混合物を５０ｍｇ／Ｌのカナマイシンを含むシモンズのクエン酸塩培地に蒔いて、３０℃で２日間培養した。
【００５９】
Ｃ．ｎｅｃａｔｏｒ  ＰＨＢ−４は、組換えＥ．ｃｏｌｉにおけるプラスミドをそれに転移させることによってカナマイシンへの抵抗が与えられるため、シモンズのクエン酸塩培地において成長したコロニーはＣ．ｎｅｃａｔｏｒの形質転換体である。
【実施例３】
【００６０】
Ｃ．ｎｅｃａｔｏｒ形質転換体による高分子の合成
それぞれのＣ．ｎｅｃａｔｏｒＨ１６、Ｃ．ｎｅｃａｔｏｒ形質転換体、およびＰＨＢ−４を、１ｍｌ／Ｌの微量元素を含む５０ｍｌの無機培地（３．３２ｇ／Ｌのリン酸水素二ナトリウム、２．８ｇ／Ｌのリン酸二水素カリウム、０．５４ｇ／Ｌの尿素）に植え付け、フラスコ内において３０℃でインキュベートした。５０ｍｇ／ＬのカナマイシンをＣ．ｎｅｃａｔｏｒ形質転換体の培地に添加し、微生物を４８および７２時間培養した。
【００６１】
それぞれのＨ１６株、Ｃ．ｎｅｃａｔｏｒ形質転換体、およびＰＨＢ−４を、５ｇ／Ｌのフルクトースおよび粗パーム核油（ＣＰＫＯ）を加えた上述の無機培地に植え付け、それぞれの株を２５０ｍｌフラスコ内において３０℃で７２時間培養した。吉草酸ナトリウム（２．５ｇ／Ｌ）を３−ヒドロキシバレレート（３ＨＶ）生成のために添加した。５０ｍｇ／ＬのカナマイシンをＣ．ｎｅｃａｔｏｒ形質転換体の培地に添加した。ポリ（３−ヒドロキシブチレート−ｃｏ−３−ヒドロキシバレレート−ｃｏ−３−ヒドロキシヘキサノエート）［Ｐ（３ＨＢ−ｃｏ−３ＨＶ−ｃｏ−３ＨＨｘ）］ターポリマー合成のために、様々な濃度の吉草酸ナトリウムおよびプロピオン酸ナトリウムを１２ｇ／ＬのＣＰＫＯと共に添加した。
【００６２】
微生物を遠心分離によって回収し、（ＣＰＫＯ存在下で）蒸留水およびヘキサンで洗浄して凍結乾燥し、乾燥微生物の重量を決定した。２ｍｌの硫酸／メタノールの混合物（１５：８５）および２ｍｌのクロロホルムを１０−３０ｍｇの乾燥微生物に添加し、試料を密閉し、１００℃で１４０分間加熱した。それにより、微生物中の高分子はメチルエステルに分解された。１ｍｌの蒸留水をそれに加え、激しく撹拌した。それを放置して２つの層に分離し、下部の有機層を取り出し、Ｓｈｉｍａｄｚｕ  ＧＣ−２０１０のキャピラリーカラムＮｅｕｔｒａ  ＢＯＮＤ−１（長さ２５ｍ、内径０．２５ｍｍ、および液膜厚さ０．４μｍ、ＧＬ  Ｓｃｉｅｎｃｅ製のカラム）を介して、キャピラリーガスクロマトグラフィーによってそれの成分を分析した。温度は初期温度の１００℃から８℃／分の速度で上昇させた。結果を表１、２および３に示す。
【００６３】
表１に、フルクトース、フルクトースおよび吉草酸ナトリウムの混合物、ならびにＣＰＫＯからの、Ｃ．ｎｅｃａｔｏｒ形質転換体によるＰＨＡの生合成を示す。
【００６４】
【表１】
0005904370.tif 000003
ａ無機培地において４８時間３０℃、初期ｐＨ７．０、２００ｒｐｍでインキュベート。
吉草酸ナトリウムを培養２４時間の時点で添加した。
ｂ凍結乾燥細胞におけるＰＨＡ含有量
３ＨＢ、３−ヒドロキシブチレート；３ＨＶ、３−ヒドロキシバレレート；３ＨＨｘ、３−ヒドロキシヘキサノエート
ＮＤ−不検出
【００６５】
表１の結果に基づいて、形質転換体はＰ（３ＨＢ）ホモポリマーを生産するためにフルクトースを利用可能である。３．１±０．２ｇ／Ｌの細胞乾燥重量および微生物の６４±２重量％の高分子含有量は、Ｈ１６のそれ（３．３±０．１ｇ／Ｌおよび微生物の５６±１重量％）とほぼ同じであった。予測通り、ＰＨＢ−４において蓄積は全く観察されなかった。ＣＰＫＯを唯一の炭素源として使用したとき、より高い細胞乾燥重量が得られた。形質転換体の細胞バイオマスは、４．０±０．２ｇ／Ｌおよび高分子含有量は微生物の６３±２重量％であった。
【００６６】
興味深いことに、ＣＰＫＯの存在下では、４モル％の３ＨＨｘを伴うＰ（３ＨＢ−ｃｏ−３ＨＨｘ）共重合体の蓄積が形質転換体において観察された。これは野生型Ｃｈｒｏｍｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｓｐ．ＵＳＭ２またはＨ１６においては表れなかった。
【００６７】
Ｐ（３ＨＢ−ｃｏ−３ＨＶ）共重合体の産生を調査するために、吉草酸ナトリウムをフルクトースを添加した培養物に加えた。形質転換体によって生成された３ＨＶ組成は、Ｈ１６と比較してほぼ２倍高い。また、本組換え体によって産生された高分子含有量は、野生型の微生物の３８±２重量％と比較して、微生物の５７±２重量％と高かった。低濃度の前駆体から大量の３ＨＶを蓄積するためのクローン化高分子合成酵素は、３ＨＶの取り込みに対するそれの高い親和能力を示している。
【００６８】
表２に、ＣＰＫＯからのＣ．ｎｅｃａｔｏｒの形質転換体によるＰ（３ＨＢ−ｃｏ−３ＨＨｘ）蓄積の時間特性分析を示す。
【００６９】
【表２】
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ＰＨＡ、ポリヒドロキシアルカノエート；Ｐ（３ＨＢ）、ポリ（３−ヒドロキシブチレート）；Ｐ（３ＨＨｘ）、ポリ（３−ヒドロキシヘキサノエート）
ａＰＨＡ生合成培地において７２時間３０℃、初期ｐＨ７．０、２００ｒｐｍでインキュベート。
ＣＰＫＯを植付け中に添加した（０時間）
ｂ凍結乾燥細胞におけるＰＨＡ含有量はガスクロマトグラフィー（ＧＣ）で決定した
【００７０】
表２の結果から、３ＨＨｘモル％の割合は培養の継続時間に基づいて制御可能であり、３〜１１モル％の範囲で産生される。７２時間培養すると、高い細胞バイオマスおよび高分子含有量が得られた。８．８±０．５ｇ／Ｌの全細胞乾燥重量および微生物の８３±４重量％の高分子含有量を得た。細胞は供給された炭素源を効率的に利用することが予測され、それは７２時間の培養の終了時において何も検出されなくなるまで残油の濃度が実質的に減少することで示されている。
【００７１】
表３に、ＣＰＫＯおよび様々な濃度の前駆体の混合物からのＣ．ｎｅｃａｔｏｒの形質転換体による、Ｐ（３ＨＢ−ｃｏ−３ＨＶ−ｃｏ−３ＨＨｘ）ターポリマーの生合成を示す。
【００７２】
【表３】
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ａＰＨＡ生合成培地において７２時間３０℃、初期ｐＨ７．０、２００ｒｐｍでインキュベート。前駆体を培養６時間の時点で添加した。
ＣＰＫＯを植付け中に添加した（０時間）
ｂ凍結乾燥細胞におけるＰＨＡ含有量はガスクロマトグラフィー（ＧＣ）で決定した
【００７３】
表３に示されるように、３ＨＶモル％の割合は様々な異なる前駆体濃度を加えることによって制御可能である。一般的に、３ＨＶモル％は前駆体の濃度の増加に関連して増加することが分かった。吉草酸ナトリウムを有する場合、３ＨＶモル％は２４〜９１モル％の範囲であった。続いて、プロピオン酸ナトリウムを有する場合、それは１〜５１モル％の範囲であった。
【００７４】
低濃度の前駆体を使用するとき、３ＨＨｘモル％の割合はより高かった。それは１ｇ／Ｌの吉草酸ナトリウムおよびプロピオン酸ナトリウムそれぞれにおいて、７モル％および８モル％であった。９ｇ／Ｌの吉草酸ナトリウムを使用したとき、微生物の６９±１重量％の最も高い高分子含有量が産生された。一般的に、これらの前駆体が低濃度で与えられるとき、細胞バイオマスはより高くなった。
【００７５】
その後、乾燥したＣ．ｎｅｃａｔｏｒ形質転換細胞をクロロホルム中に懸濁させ、６０℃で４時間加熱することでそれから高分子を抽出した。残留物をろ過で除去した。メタノールを本クロロホルム溶液に添加して、高分子を沈殿させた。上澄みをろ過または遠心分離で除去した後、沈殿物を乾燥させて生成高分子を得た。
【００７６】
得られた高分子を核磁気共鳴で確認した。全部で２５ｍｇの高分子試料を１ｍｌの重水素クロロホルム（ＣＤＣｌ３）に溶解する。１ＨＮＭＲスペクトルを、Ｂｒｕｋｅｒ  ＡＶＡＮＣＥ  ３００；ノースカロライナ州、米国  分光計にて、４００ＭＨｚ、３０℃で測定した。テトラメチルシラン（Ｍｅ４Ｓｉ）を内部化学シフト基準として使用した。結果を図４に示す。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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