(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
プロテアーゼを含む試料中のタンパク質の検体の分解を抑制または防止する方法であって、試料を、特定の条件下で他の化合物を排除しながら検体およびプロテアーゼがポリマーマトリクスに侵入することを可能にするポアサイズを有するポリマーマトリクスを含む捕獲粒子と接触させ、
Ｎ−イソプロピルアクリルアミド（ＮＩＰＡｍ）およびアクリル酸（ＡＡｃ）のコポリマー粒子を、タンパク質をプロテアーゼから隔離する捕獲粒子として用い、
捕獲粒子が検体とプロテアーゼを隔離するのに必要な時間、試料と捕獲粒子とを接触させたままにすることによって、
隔離した検体の分解を抑制または防止する、方法。
【請求項２】
前記タンパク質の検体が：タンパク質、糖タンパク質、プロテオリピド、ホルモン、サイトカイン、成長因子、バイオマーカー、薬剤、揮発性臭気物質、毒物及び汚染物質からなる群から選択される、請求項１記載の方法。
【請求項３】
（ａ）適用された刺激に応答し、ポリマーマトリクスが膨張性又は収縮性であり、前記適用された刺激が、熱の変化である、請求項１または２記載の方法。
【請求項４】
前記ポリマーマトリクスが更に誘引物質を含み、
（ａ）前記誘引物質が前記捕獲粒子から遊離している；
あるいは
（ｂ）前記誘引物質が前記捕獲粒子に共有結合している；
あるいは
（ｃ）前記誘引物質が前記ポリマーマトリクス中に組み入れられている；
請求項１から３のいずれか１項記載の方法。
【請求項５】
前記誘引物質が親和性リガンドであり、
前記親和性リガンドが、抗体又はタンパク質、アプタマー、核酸、薬剤、化学物質、代謝産物、脂質、糖脂質、リン脂質、ポリペプチド、親和性基又は金属基を含む、請求項４記載の方法。
【請求項６】
前記捕獲粒子が、
構造モノマー及び親和性モノマーを含むコポリマーマトリクスを含有するコア；及び
シェルモノマーを含むポリマーマトリクスを含有するシェルとを含み、
前記コポリマーマトリクス及びポリマーマトリクスが、特定の条件下で、他の化合物を排除しながら検体がマトリクスに侵入することを可能にするポアサイズを有する、
請求項１から５のいずれか１項記載の方法。
【請求項７】
前記捕獲粒子が、５〜１００ｋＤａの分子量カットオフサイズを有する、請求項６記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本出願は、２００７年３月１９日に出願された米国仮特許出願第６０／８９５，６７４号及び２００７年１１月９日に出願された米国仮特許出願第６０／９８６，８０３号の優先権を有し、２００６年９月２７日に出願された米国特許出願第１１／５２７，７２７号の一部継続出願であり、その開示又はそれらは本明細書において参照として組み入れられる。
【０００２】
本発明は、混合物由来のバイオマーカーの収集のための粒子、及びその粒子の使用方法に関する。特に、本発明は混合物からバイオマーカーを捕捉することができ、混合物からバイオマーカーを分離することができる粒子、並びにバイオマーカーを捕捉する方法に関する。
【背景技術】
【０００３】
バイオマーカーは、多種多様の疾患の初期段階での検出を提供し得る。そのため、精度が高い、特定の疾患の検出を提供する、新規なバイオマーカーの急を要する発見することについて必要性がある（Ａｅｂｅｒｓｏｌｄ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｒｏｔｅｏｍｅ  Ｒｅｓ  ２００５，４，（４），１１０４−９；Ｓｒｉｎｉｖａｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃｌｉｎ  Ｃｈｅｍ  ２００２，４８，（８），１１６０−９）。バイオマーカーは、臨床病理所見の前に疾患を診断する方法を提供し、これは疾患の初期段階での治療を可能にし、通常良好な結果をもたらす。
【０００４】
例えば、癌は、主として、各種の疾患が、通常は癌が転移した後に診断されるという事実に起因し、米国において多くの人口集団についての死因を急速にもたらすようになる。この疾患の後期においては、治療は、一般的に侵襲的かつ効果のないものである。転移より前の癌の早期発見が治療成果における劇的な向上をもたらすであろうと広く信じられている。
【０００５】
アルツハイマー病及び糖尿病のようなバラエティに富む種々の病状及び状態を示すバイオマーカーも絶えず発見されている。これらの多くの疾患については、疾患の早期診断は、後期治療よりも成功のチャンスが大きい治療法の選択を可能にする。更に、あるケースにおいては、疾患又は疾患に対するかかりやすさの早期診断は、診断した人々に、より多くの治療を伴うことの必要性なしで、疾患の経過を予防及び逆転することを補助し得る生活様式を変化させることを可能にする。
【０００６】
バイオマーカーは、疾患の縮小又は存在の危険性と関連がある、特定の生物学的状態を示す、核酸、タンパク質、タンパク質断片又は代謝産物である（Ｆｒａｎｋ  ａｎｄ  Ｈａｒｇｒｅａｖｅｓ；Ｎａｔｕｒｅ  ｒｅｖｉｅｗｓ  ２００３，２，（７），５６６−８０）。バイオマーカーの研究は、少量の血中タンパク質及びペプチドが、全体として生命体の状態に関する豊富な情報源を示すことを示している（Ｅｓｐｉｎａ  ｅｔ  ａｌ．Ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ  ２００３，３，（１１），２０９１−１００）。２つの主な障害物：すなわち１）血中又は体液中の疾患に関連するバイオマーカーは生体分子の複合混合物中に非常に低濃度で存在し、アルブミンのような多量の種により隠すことができること、及び２）タンパク質バイオマーカーの分解は、内因性及び外因性プロテイナーゼの結果として血液又は体液の収集の直後に起こり得ることが、これらの発見が臨床的有用性に達することを阻んできた。
【０００７】
血中プロテオームを含むタンパク質及びペプチドの濃度は、アルブミンのような、数種の高分子量タンパク質、及び全タンパク質含有量の９０％の割合を占める免疫グロブリンと一緒になって１０−１２ｍｇ／ｍＬ〜１０−３ｍｇ／ｍＬと１０桁にかかる範囲である（Ａｎｄｅｒｓｏｎ  ａｎｄ  Ａｎｄｅｒｓｏｎ，Ｍｏｌ  Ｃｅｌｌ  Ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ  ２００２，１，（１１），８４５−６７）。しかし、血中にも存在する少量かつ低分子量のタンパク質及び代謝産物は、豊富な情報を提供し、新規なバイオマーカー源としての見込みがある。二次元電気泳動のような従来の方法は、少量で低分子量のタンパク質及び代謝産物を検出し定量する感度及び分解能を有していない。また、近代の質量分析計の中程度に高い感度にもかかわらず（アトモル濃度）、その運転範囲は３〜４桁上に及び、この結果、少量のタンパク質はより多いタンパク質に隠されてしまう。その結果として、質量分析法（ＭＳ）実験用の通常の試料調製は、市販の免疫親和性枯渇カラム（Ａｇｉｌｅｎｔ，Ｓｉｇｍａ，及びＢｅｃｋｍａｎ−Ｃｏｕｌｔｅｒ）を用いた大量のタンパク質の枯渇から開始する。枯渇の後、サイズ排除クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー及び／又は等電点電気泳動を用いて分別を実施する。しかし、非常に大部分の少量のバイオマーカーは、除去されるキャリアタンパク質と非共有的及び内生的に関連しているので、大量の天然の高分子量タンパク質の除去はバイオマーカーの候補の収量を減少し得る（Ｌｏｐｅｚ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃｌｉｎｉｃａｌ  ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ２００７，５３，（６），１０６７−７４；Ｃｏｎｒａｄｓ  ｅｔ  ａｌ．，ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ  ２００６，４０，（６），７９９−８０５；Ｌｏｗｅｎｔｈａｌ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃｌｉｎ  Ｃｈｅｍ  ２００５，５１，（１０），１９３３−  ４５；Ｌｏｐｅｚ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃｌｉｎｉｃａｌ  ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ２００５，５１，（１０），１９４６−５４）。変性条件下でのサイズ排除限外ろ過（Ｚｏｌｏｔａｒｊｏｖａ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ  ２００５，５，（１３），３３０４−１３）、連続溶出変性電気泳動（ｃｏｎｔｉｎｕｏｕｓ  ｅｌｕｔｉｏｎ  ｄｅｎａｔｕｒｉｎｇ  ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ）（Ｃａｍｅｒｉｎｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ  Ｃｌｉｎ．Ａｐｐｌ．２００７，１，１７６−１８４）、又はナノポーラスを用いた血清の分別（Ｇｅｈｏ  ｅｔ  ａｌ．，Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇ  Ｃｈｅｍ  ２００６，１７，（３），６５４−６１）のような方法が、この問題を解決するために提案されてきた。更に、これらと同じ最近の発見は、バイオマーカー候補の豊富かつ未開発の源としてのプロテオームの低分子量領域を指摘している（Ｔｉｒｕｍａｌａｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ＆  ｃｅｌｌｕｌａｒ  ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ  ２００３，２，（１０），１０９６−１０３；Ｍｅｒｒｅｌｌ  ｅｔ  ａｌ，Ｊ  ｏｆ  ｂｉｏｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ  ２００４，１５，（４），２３８−４８；Ｏｒｖｉｓｋｙ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ  ２００６，６，（９），２８９５−９０２）。
【０００８】
複合天然タンパク質混合物（血液等）に由来するバイオマーカーの候補の収集及び濃縮に関連する困難さに加え、これらの可能性のあるバイオマーカーの安定性は難題をもたらす。血液入手（例えば、静脈穿刺）の直後に、血清中のタンパク質は、血液凝固過程、血液細胞から流れる酵素、又は細菌汚染に関連するような、内因性プロテアーゼ又は外因性の環境のプロテアーゼにより分解されやすくなる。従って、血中の候補となる診断バイオマーカーは、搬送及び保存の間の分解にさらされ得る。これは、試料が凍結されることなく輸送された、種々の施設及び場所から集められた、血清及び体液の大きな保存場所内のバイオマーカーの忠実度にとって、なおさら重要な問題となる。
【０００９】
そのため、当該技術分野において、血清のような生体分子の複合混合物由来の選択されたタンパク質及びペプチドの濃縮及び不溶化、並びに次の試料の取り扱いの間に分解から粒子を保護することを可能にする粒子が必要とされている。次いで、次の定量的解析を可能にする電気泳動により、捕獲された検体を粒子から容易に抽出することができる。このタイプの粒子は、癌のような後期疾患のための新規なバイオマーカーの発見に他に類を見ないほどに適している強力な手段を提供する。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【００１０】
【非特許文献１】Ａｅｂｅｒｓｏｌｄ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｒｏｔｅｏｍｅ  Ｒｅｓ  ２００５，４，（４），１１０４−９；Ｓｒｉｎｉｖａｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃｌｉｎ  Ｃｈｅｍ  ２００２，４８，（８），１１６０−９
【非特許文献２】Ｆｒａｎｋ  ａｎｄ  Ｈａｒｇｒｅａｖｅｓ；Ｎａｔｕｒｅ  ｒｅｖｉｅｗｓ  ２００３，２，（７），５６６−８０
【非特許文献３】Ｅｓｐｉｎａ  ｅｔ  ａｌ．Ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ  ２００３，３，（１１），２０９１−１００
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【００１１】
本発明の目的は、バイオマーカー収集のための捕獲粒子を提供することである。捕獲粒子は、混合物からバイオマーカーを隔離し、抽出し、それを分解から保護することを可能にする材料からなる。本発明の一実施態様においては、捕獲粒子は規定の分子サイズ、質量及び又は親和性特性を有する分子種を特に捕獲する能力を有し、通常複数の異なる分子種を含む試料から興味のある分子を分離するために用いられる。捕獲粒子は試料に添加され、次いで興味のある分子種を捕獲するために利用される。
【００１２】
本発明の更なる目的は、バイオマーカー収集のためのスマート（ｓｍａｒｔ）ヒドロゲル粒子を提供することである。本発明のスマートヒドロゲル粒子は、スマートヒドロゲル粒子の周囲の環境を変化させることにより変えることができる孔及び全てのサイズを有していてもよい。スマートヒドロゲル粒子は、バイオマーカーが特定の条件下でヒドロゲルに入ることを可能にする孔を有していてもよく、その後、スマートヒドロゲル粒子の周囲環境は、バイオマーカーがスマートヒドロゲル粒子の内部に隔離することができるように、変化し得る。
【００１３】
本発明の更なる目的は、バイオマーカーを誘因し、相互作用することのできるバイオマーカー収集のための捕獲粒子を提供することである。特定の実施態様においては、前記誘因は、捕獲粒子の内部に存在するであろう。他の実施態様においては、誘因は、捕獲粒子事態を製造するための材料の一部である。
【００１４】
本発明の更なる目的は、以下の特性、すなわち：ａ）捕獲すべき分子のサイズ及び／又は質量を選択する能力、ｂ）捕獲すべき分子の親和性特性を選択する能力、及び／又はｃ）物理的又は化学的処理に応答し、所望の分子を捕獲及び／又は放出する能力の１種以上を有するバイオマーカー収集のための捕獲粒子を提供することである。
【００１５】
本発明の更に他の目的は、バイオマーカーの隔離が完了した後に、容易に隔離及び分離することができるバイオマーカー収集のための捕獲粒子を提供することである。本発明の特定の実施態様においては、物理的な力、電場又は磁場を通して、又は標的とする粒子上の一部における誘因により、混合物から分離することを可能にする特性を有し、又は修飾を有している。
【００１６】
本発明の更に他の目的は、混合物又は溶液中に存在する検体の特定のためのキットを提供することである。本発明のキットは、通常、捕獲粒子で満たされているか、又はコーティングされているある種の収集装置を有する。検体を含む溶液又は他の混合物は、収集装置に供され、捕獲粒子が、分析のための所望の検体を隔離及び分離することを可能にする。
【００１７】
本発明の更に他の目的は、溶液から捕獲した検体の分析のためのマイクロ流体システムを提供することである。このマイクロ流体システムは本発明の捕獲粒子を含むであろう。分析すべき検体を含む試料を、マイクロ流体システムに導入し、そこで、捕獲粒子は検体を隔離する。次いで、捕獲粒子を分離された場所に移動し、そこで、当該技術分野において公知の方法を用いて検体を遊離し、分析する。
【課題を解決するための手段】
【００１８】
本発明は、バイオマーカーを収集するための捕獲粒子、及びこれらの粒子を用いる方法を提供する。本発明の捕獲粒子は、混合物から特定のバイオマーカーを選択的に選択することができ、その後、捕獲粒子を混合物から除去され、バイオマーカーは捕獲粒子から放出される。
【図面の簡単な説明】
【００１９】
【図１】粒子の化学組成。（Ａ）Ｎ−イソプロピルアクリルアミド（ＮＩＰＡｍ）及びそのポリマー、（Ｂ）メチレンビスアクリルアミド及び（Ｃ）ＮＩＰＡｍ及びアクリル酸並びにそのポリマー。
【図２】粒子の特徴。（Ａ）温度の関数としてのＮＩＰＡｍの粒径の光散乱測定（温度が上昇すると直径が小さくなる）。（Ｂ）温度（温度が上昇すると直径が小さくなる）及びｐＨ（ｐＨが低下すると直径が小さくなる）を伴う、ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子のサイズの相関のプロット。雲母上の（Ｃ）ＮＩＰＡｍ粒子及び（Ｄ）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子のＡＦＭ像。
【図３】溶液中の粒子の分子ふるいの概略図。低分子量タンパク質を集め；高分子量タンパク質を排除する。
【図４】ＦＩＴＣでインキュベートした粒子のフローサイトメトリー解析。（Ａ）取り込みは濃度依存的である。（Ｂ）取り込みは、２０μＭ濃度のＦＩＴＣを用いて急速に飽和に達する。また、ＮＩＰＡｍ粒子を、ＦＩＴＣ標識したウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、ＭＷ６６，０００Ｄａ（ＦＩＴＣ−ＢＳＡ，Ｓｉｇｍａ）と１：１の色素：分子比で、ＦＩＴＣ標識したインシュリン、ＭＷ３，５００Ｄａ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）と１：７の色素：分子比で、又はＦＩＴＣ標識したミオグロビン、ＭＷ１７，０００Ｄａと１：３６の色素：分子比でインキュベートした。ミオグロビン（Ｓｉｇｍａ）は、ＨＯＯＫ−Ｄｙｅ  Ｌａｂｅｌｉｎｇ  Ｋｉｔ（Ｇ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ）を用いて、製造供給元の使用説明書に従い、ＦＩＴＣ標識した。全ての蛍光種の濃度は、蛍光シグナルを等しくするように調製した。
【図５】ＮＩＰＡｍ粒子をＦＩＴＣ及びＦＩＴＣ標識したタンパク質とインキュベートした：（Ａ）ＢＳＡ及びインシュリン、（Ｂ）ミオグロビン及びフリーのＦＩＴＣのフローサイトメトリー測定。（Ｃ）インシュリンとインキュベートした粒子のＳＤＳ−ＰＡＧＥ：レーン１）インシュリン溶液（コントロール）、２）ＮＩＰＡｍ上清（Ｏｕｔ、粒子から排除された基材）、３）洗浄液１）、４）洗浄液２）、５）ＮＩＰＡｍ粒子（Ｉｎ、粒子により捕獲された基材）。（Ｄ）ＢＳＡ及びミオグロビンとインキュベートしたＮＩＰＡｍ粒子のＳＤＳ−ＰＡＧＥ：１）ＢＳＡ及びミオグロビン（コントロール）、２）ＮＩＰＡｍ上清（Ｏｕｔ）、３）洗浄液２、４）ＮＩＰＡｍ粒子（Ｉｎ）。ＢＳＡは全体として排除される。
【図６】親和性をベースとする隔離の概略図。
【図７】ＮＩＰＡｍ粒子（−ｂａｉｔ）に対するＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子（＋ｂａｉｔ）によるタンパク質配列決定、粒子＋及び−ｂａｉｔによるミオグロビン（水溶液、ｐＨ５．５）隔離のＳＤＳ−ＰＡＧＥ（Ａ）。レーン１）ミオグロビン、２）ＮＩＰＡｍ上清（Ｏｕｔ）、３）ＮＩＰＡｍ粒子（Ｉｎ）、４）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ上清（Ｏｕｔ）、５）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子（Ｉｎ）、６）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子１：６４、７）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子:１：３２、８）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子１：１２８、及び９）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子（Ｉｎ）１：２５６。（Ｂ）２種のｐＨ値における粒子＋ｂａｉｔによるＢＳＡ及びミオグロビンの隔離。レーン１）ＢＳＡ及びミオグロビン、ｐＨ５．５、２）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ上清（Ｏｕｔ）ｐＨ５．５、３）洗浄液３、ｐＨ５．５、４）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子（Ｉｎ）ｐＨ５．５、５）洗浄液２、ｐＨ５．５、６）洗浄液１、ｐＨ５．５、７）ＢＳＡ及びミオグロビン、ｐＨ８、８）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ上清（Ｏｕｔ）ｐＨ８、及び９）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子（Ｉｎ）ｐＨ８。
【図８】（Ａ）ＢＳＡ及びライソザイムとインキュベートした、−及び＋ｂａｉｔ粒子のＳＤＳ−ＰＡＧＥ解析。レーン１）粒子導入前のＢＳＡ及びライソザイム溶液、２）ＮＩＰＡｍ（−ｂａｉｔ）上清（Ｏｕｔ）、３）洗浄液３、４）ＮＩＰＡｍ（−ｂａｉｔ）粒子（Ｉｎ）、５）洗浄液２、６）洗浄液１、７）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ（＋ｂａｉｔ）上清（Ｏｕｔ）、８）洗浄液３、及び９）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ（＋ｂａｉｔ）粒子（Ｉｎ）。分子量（ＭＷ）マーカーとインキュベートしたＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子（＋ｂａｉｔ）のＳＤＳ−ＰＡＧＥ解析：１）ＭＷマーカー、２）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ上清（Ｏｕｔ）、及び３）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子（Ｉｎ）。
【図９】ＰＤＧＦ  Ｂ及びＢＳＡとインキュベートした粒子＋ｂａｉｔのＳＤＳ  ＰＡＧＥ解析。レーン１）ＢＳＡ及びＰＤＧＦ  Ｂ、２）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ上清（Ｏｕｔ）、３）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子（Ｉｎ）。
【図１０】ＦＩＴＣ標識されたインシュリン水溶液とインキュベートした（Ａ）ＮＩＰＡｍ及び（Ｂ）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子、及び血清中でスパイクされたＦＩＴＣ標識されたインシュリンのフローサイトメトリー解析。
【図１１】ＦＩＴＣ標識されたインシュリンとインキュベートした（Ａ）ＮＩＰＡｍ及び（Ｂ）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子のフローサイトメトリー経時変化試験。
【図１２】取り込みの経時変化試験（Ａ）ＲＰＰＡｓにより測定される、２種の量のＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子とインキュベートした、溶液中のライソザイムの初期量と比較した割合の平均値（３種の再現分析及び標準偏差を示す）。（Ｂ）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子とインキュベートしたライソザイム及びＢＳＡ溶液のＳＤＳ−ＰＡＧＥ解析。レーン１）ＢＳＡ及びライソザイム溶液。２〜１１）それぞれ５、１０、２０、３０及び６０分間のインキュベーション時間についての交互の上清（Ｏｕｔ）及び粒子（Ｉｎ）。ライソザイムの取り込みは急速かつ完全であるが、ＢＳＡの排除は全てである。
【図１３】酵素分解からタンパク質を保護する粒子の能力を説明する概略図。
【図１４】存在し得る酵素による分解から結合タンパク質を保護するＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子（＋ｂａｉｔ）。（Ａ）ライソザイム及びトリプシンを含む溶液で１時間インキュベートしたＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子。１）ライソザイム、２）トリプシンとインキュベートしたライソザイム、３）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ上清（Ｏｕｔ）、４）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子（Ｉｎ）、５）ＢＳＡ及びライソザイム、６）ＢＳＡ及びライソザイム＋プロテアーゼ、７）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子上清（Ｏｕｔ）、及び８）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子（Ｉｎ）。（Ｂ）ＢＳＡ、ライソザイム及びトリプシンと一晩インキュベートしたＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子。レーン１）ライソザイム、２）トリプシン、３）ライソザイム＋トリプシン、４）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子上清（Ｏｕｔ）、５）ＮＩＰＡｍ／ＡＡＣ粒子（Ｉｎ）、６）ライソザイム及びＢＳＡ、７）ＢＳＡ及びライソザイム＋プロテアーゼ、（８）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ上清（Ｏｕｔ）、及び９）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子（Ｉｎ）。
【図１５】トリプシン消化にさらされ、＋ｂａｉｔ及び−ｂａｉｔ粒子でインキュベートされた、還元及びアルキル化されたライソザイムのＳＤＳ−ＰＡＧＥ解析。（Ａ）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子とインキュベートした、還元及びアルキル化されたライソザイム＋トリプシン：レーン１）ライソザイム、２）還元及びアルキル化されたライソザイム、３）＋トリプシン、４）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ上清（Ｏｕｔ）、５）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子（Ｉｎ）。（Ｂ）ＮＩＰＡｍ粒子とインキュベートした、還元及びアルキル化されたライソザイム：レーン１）ＮＩＰＡｍ粒子上清（Ｏｕｔ）、２）ＮＩＰＡｍ粒子（Ｉｎ）、３）＋トリプシンＮＩＰＡｍ上清（Ｏｕｔ）、４）＋トリプシンＮＩＰＡｍ粒子（Ｉｎ）、５）＋トリプシン、６）ＮＩＰＡｍ粒子、上清（Ｏｕｔ）とインキュベートしたＢＳＡ＋還元及びアルキル化したタンパク質溶液、７）ＮＩＰＡｍ粒子（Ｉｎ）。
【図１６】ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子として同じ分子量ふるいを有するコアシェル粒子。コントロールタンパク質溶液を、ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ及びコアシェル粒子とインキュベートした。レーン１）コントロールタンパク質溶液、２）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子上清（Ｏｕｔ）、３）ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子（Ｉｎ）、４）コアシェル粒子上清（Ｏｕｔ）、５）コアシェル粒子（Ｉｎ）。
【図１７】コアシェル粒子は、ライソザイムをキモトリプシンタンパク質分解から保護する。レーン１）ライソザイム、２）キモトリプシン、３）ライソザイム＋キモトリプシン、４）コアシェル粒子、上清（Ｏｕｔ）とインキュベートしたライソザイム＋キモトリプシン、５）コアシェル粒子、粒子（Ｉｎ）とインキュベートしたライソザイム＋キモトリプシン、６）ライソザイム＋ＢＳＡ＋キモトリプシン、７）コアシェル粒子、上清とインキュベートしたライソザイム＋ＢＳＡ＋キモトリプシン、８）コアシェル粒子、粒子（Ｉｎ）とインキュベートしたライソザイム＋ＢＳＡ＋キモトリプシン、９）ライソザイム＋ＢＳＡ。
【発明を実施するための形態】
【００２０】
本発明の特定の実施態様においては、捕獲粒子は、以下の特徴：すなわちａ）捕獲すべき分子のサイズ及び／又は質量を選択する能力、ｂ）捕獲すべき分子の親和性を選択する能力、及び／又はｃ）物理的又は科学的処理に対して所望の分子を捕獲及び／又は放出する能力の１種以上を有する。本発明の粒子は、例えば、アフィニティーカラム、逆相カラム及び分子ふるい工程のような従来の多段階工程の必要なしで、微量でこの課題を達成し得る。捕獲粒子の特徴は、捕獲粒子を構築するために用いられる材料に依存する。特定の材料から製造される特定のタイプの捕獲粒子を本明細書で説明するが、製造される方法から確定することができる特徴を有し、以下に説明する請求の範囲ないである、本明細書に明白に説明しない捕獲粒子の多の組み合わせ及び変形があることは当業者に明らかであろう。
【００２１】
本明細書の記載を通じて、バイオマーカー又は他の検体の収集が開示される。本発明の捕獲粒子及び方法は、興味のある任意のタイプの分子又は化合物、生体起源又は他の検体のいずれかにより製造されるバイオマーカーの収集に適応される。本発明の特定の実施態様においては、収集すべき検体は、代謝産物、タンパク質、ＲＮＡ、ミクロＲＮＡ、ＤＮＡ、糖タンパク質、脂質、糖脂質、プロテオリピド、ホルモン、サイトカイン、成長因子、バイオマーカー、薬剤、合成有機化合物、揮発性臭気物質、毒物及び汚染物質であり得る。本発明が、特定のタイプの分子の収集に多少なりとも限定されず、任意のタイプの混合物中に存在する任意の源に由来する分子が本発明の組成物及び方法を用いて収集され得ることが当業者には明らかであろう。
【００２２】
特定の実施態様においては、本発明の捕獲粒子は分子ふるい材料から構成され得る。これにより、材料は多孔質、格子状、蜂の巣状であるか、検体に、侵入する明確な分子の量又は重量を許容することを可能にする多の特性を有することを意味する。分子ふるい孔のサイズは、検体が捕獲粒子に浸透することができるかどうかにより決定される。粒子は、それ自体、適切なサイズ、例えば、その中の任意及び全ての値を含む、１ｎｍ以下；約１ｎｍ〜１００μｍ；約５ｎｍ〜５０μｍ；約１０ｎｍ〜２０ｎｍ；約１０ｎｍ〜１０μｍであり得る。本発明の粒子は、球、チューブ、分岐構造、多面体及びマイクロ流体バルブが含まれるがこれらに限定されない、任意の適切な形状であり得る。
【００２３】
本発明の捕獲粒子を製造するために用いられる分子ふるい材料は、特定のサイズの検体のみが捕獲粒子に侵入することを許容するように設計され得る。捕獲粒子のカットオフサイズは、粒子が用いられる方法に依存するであろう。本明細書で用いられる場合、カットオフサイズは、捕獲粒子に侵入し得る検体に近似するサイズを表現することを意味する。例えば、５０ｋＤａの分子量（Ｍｗ）カットオフサイズは、約５０ｋＤａ以下のサイズの分子が捕獲粒子に侵入し得るが、約５０ｋＤａを越える分子が粒子から排除されることを意味する。特定の実施態様においては、粒子は約５ｋＤａ〜約１００ｋＤａのＭＷカットオフサイズを有し得るが、この範囲意外の他のＭＷカットオフサイズを有する粒子も意図される。本明細書に記載される場合、本発明の捕獲粒子は、刺激に対してサイズを変化することができる「スマート」材料から製造することができる。このようなケースにおいては、粒子のＭＷカットオフサイズは、粒径の変化により変化し得、例えば、特定条件下で粒子は特定のＭＷカットオフサイズを、他の条件下で異なるＭＷカットオフサイズを有し得る。
【００２４】
本発明の捕獲粒子の特徴は、検体がいったん粒子に侵入すると、それを「捕捉」又は隔離する能力である。捕捉は、粒子を製造するための物理的又は化学的処理に対して収縮及び／又は膨張し得る分子ふるい材料を用いることにより達成される。例えば、化学的又は物理的処理にさらされた場合に収縮し、又は縮む材料を用い、それによって検体を内側に捕捉することができる。このような材料は、物理的又は化学的処理にさらすことにより、形状又はサイズを変化する能力を有する「スマート材料」と呼ぶことができる。
【００２５】
これらの性質を有する任意の材料を、本発明の捕獲粒子を製造するために制限なく用いることができる。特定の実施態様においては、これらの材料は、アクリルアミド及びその誘導体、Ｎ−イソプロピルアクリルアミド（例えば、Ｊｏｎｅｓ  ａｎｄ  Ｌｙｏｎ，Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ，３６：１９８８−１９９３，２００３；Ｊｏｎｅｓ  ａｎｄ  Ｌｙｏｎ，Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ，３３：８３１０−８３０６，２０００）及び他のＮ−アルキル置換アクリルアミド；Ｎ，Ｎ−メチレンビスアクリルアミド、Ｎ，Ｎ−シスタミンビスアクリルアミド、Ｎ−ビニルアクリルアミド、アクリル酸、メタクリル酸、アリルアミン、スチレン、ベンジルグルタメート、２−エチルアクリル酸、４−ビニルピリジン、シリコーン、ヒドロキシエチルメタクリレート、エチレンオキシド、ブチレンテレフタレート、２−アクリルアミド−２−メチル−１−プロパンスルホン酸、ビニルピロリドン及びエチレン−酢酸ビニルからなるポリマーである。本発明の他の実施態様においては、捕獲粒子は、ラクチド、グリコリド、カプロラクトン及びヒドロキシアルカノエートで構成される生分解性ポリマーで構成され得る。本発明の更なる他の実施態様においては、ポリマーは、キトサン、ヒアルロン酸、デンプン、セルロース及びアガロースで構成され得る。本発明の捕獲粒子を製造するために用いられるポリマーは、架橋可能な単位で構成されていても、されていなくてもよい。架橋可能なポリマーの場合、架橋は、恒久的又は可逆的のいずれかで形成してもよい。本発明によって意図されるポリマーは単一の繰り返し単位を有しているか、又はポリマーに含まれる２種以上のモノマー単位を有するコポリマーであってもよい。
【００２６】
用いられる材料の他の具体例は、強誘電性液晶エラストマー；圧電性ポリマー；「スマート」ヒドロゲル、ゲル、セラミック、合金及びポリマー等であり得る。適切な材料の他の具体例は、Ｇａｌａｅｖ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐａｇｅｓ  ８３５−８４９；Ｚｅｎｔｅｌ；Ｐａｇｅｓ  ８５０−８６０；Ｈａｒｒｉｓｏｎ  ａｎｄ  Ｏｕｎａｉｅｓ，Ｐａｇｅｓ  ８６０−８７３；Ｅｎｃｙｃｌｏｐｅｄｉａ  ｏｆ  Ｓｍａｌｌ  Ｍａｔｅｒｉａｌｓ，Ｖｏｌｕｍｅｓ  １−２，Ｅｄｉｔｅｄ  ｂｙ，Ｓｃｈｗａｒｔｚ，Ｍｅｌ（Ｃ）２００２  Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓに見ることができる。分子ふるい材料として適切な他の材料の具体例は、編んである、又は架橋ナノワイヤー、カーボンナノチューブ、金属コロイド、クラスリン、コラーゲン、修飾多糖類、シリコン、シリカ、アミノ酸からなる結合ペプチド、核酸からなるポリマー（例えば、Ｃｈｉｔｔａｍａｌｌａ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，２００５，１２７（３２），１１４３６−４１を参照されたい）、アミノ酸ポリマー，脂質（例えば、Ａｄｖａｎｃｅｄ  Ｄｒｕｇ  Ｄｅｌｉｖｅｒｙ  Ｒｅｖｉｅｗｓ，Ｌｉｐｉｄ  Ｎａｎｏｐａｒｔｉｃｌｅｓ：Ｒｅｃｅｎｔ  Ａｄｖａｎｃｅｓ，２００７，５９（６），３７５−５３０を参照されたい）、自己集合ウイルス及び自己集合タンパク質である。捕獲粒子は、当該技術分野において公知の方法により、又は前記文献のいずれかに記載された方法により、通常に製造することができる。
【００２７】
分子ふるい材料を収縮及び／又は膨張させるために用いることができる物理的及び／又は化学的処理には、熱、電気、磁気、超音波、圧力、放射、レーザー、浸透圧、ｐＨ、塩、酵素、酸化／還元、脱水／再水和、紫外線、放射線、強い赤光及び当該技術分野において公知の同様の処理が含まれる。
【００２８】
分子ふるい材料は、可逆的又は不可逆的に収縮又は縮小され得る。例えば、捕獲粒子は、検体が浸透することが可能である混合物中に置かれ、検体を捕獲するために不可逆的に縮小し得る。これは、対象が溶液から汚染物質を除去する場合に有用であり得、捕獲された検体を解析又は更に評価する必要はなく、その結果、それを膨張させる必要はない。また、不可逆的捕獲粒子は、超音波処理又は粒子の完全性を破壊する他の破壊的な力によって破壊され得る。
【００２９】
捕獲粒子は、バイオマーカーを誘因し、相互作用し得る誘引物質を更に含んでもよい。本発明の誘引物質は、興味のある検体と特異的に相互作用し得る任意の物質であり得る。特定の実施態様においては、誘引物質は親和性リガンドであり；抗体及びその誘導体（例えば、Ｆａｂ画分及び単一鎖抗体）；修飾タンパク質を含む結合タンパク質及びペプチド（例えば、特異的リガンド及びポリヒスチジンペプチドについての受容体又はその断片）；結合ペア（例えば、ストレプトアビジン／ビオチン）；基質；金属；キレート剤；核酸；アプタマー；酵素結合ポケット：レクチン；小分子を取り込むためのカリックスアレーン；金属又は金属塩（例えば、ヘム基についてのＦｅ、リン酸化ペプチド及びタンパク質についてのＴｉＯ２）；親和性色素；薬理活性化合物；ペプチド及びフラーレン、親油性化合物、芳香族化合物及び／又は興味のある検体に特異的な親和性基であってもよい。捕獲粒子は、当該技術分野において公知の分子インプリンティング法を用いて形成することもできる。本発明のこれらの実施態様においては、捕獲粒子は、特定の分子又は分子のファミリーと結合するようにインプリントしてもよい。
【００３０】
本発明の特定の他の実施態様においては、誘引物質は、検体と化学的又は静電気的に相互作用し得る化学的部分であってもよい。本発明のこれらの実施態様においては、誘引物質には、カルボキシル基、アミン基、脂質、リン酸基、アミド基、ヒドロキシル基、エステル基、アクリル基、チオール基、アクリル酸、疎水性表面、親水性表面、又は検体と化学的又は静電気的に相互作用し得る他の部分が含まれる。
【００３１】
誘引物質は、任意の適切な方法で捕獲粒子と結合され得る。例えば、分子ふるい材料が積層又は蒸着／核となる核又は周囲のコアとして用いることができ；それらは粒子が形成される前に分子ふるい材料に直接組み込まれ（すなわち、誘引物質は分子ふるい材料の成分である）；それらは、通常、分子ふるい材料の多孔質表面に結合することができる（共有結合又は非共有結合）。誘引物質は、分子ふるい材料を適切な物理的又は化学的処理によって分子ふるい材料を膨張させ、リガンドが入ることを許容するのに十分に大きい空隙率に到達させ、次いで、分子ふるい材料を、粒子が侵入するのに効果的な条件下で誘引物質と接触させることにより、捕獲粒子中に取り込むこともできる。いったん粒子に誘引物質が取り込まれると、適切な物理的又は化学的処理により縮小することができ、その結果、検体が粒子に浸透できるままであるが、より大きい検体は排除されるように、分子ふるい材料の空隙率を低下させることができる。分子ふるいの空隙率は、誘引物質取り込み工程の後に、拡散からの親和性リガンドを遮断するのに十分に小さいポアサイズまで低下させることができ、分子ふるい材料に誘引物質を結合することを不要にする。しかし、所望であれば、結合工程は、分子ふるい材料に誘引物質を結合させるために用いることができる。
【００３２】
親和性リガンドで誘引された捕獲粒子は、検体のサイズ又は質量についての選択に加え、検体選択工程を提供する。例えば、捕獲粒子は、検体が捕獲粒子中に浸透するのを可能にするように膨張し得、検体は、捕獲粒子と関連する親和性リガンドに特異的に結合する能力によって更に選択され得る。結合工程が達成された（例えば、平衡に達した）後、粒子を分離し、洗浄工程に供し、未結合の非標的検体を除去することができ、次いで、化学的又は物理的処理によって縮小させてもよい。
【００３３】
本発明の特定の実施態様においては、誘引物質は分子ふるい材料の成分である。例えば、分子ふるい材料は、帯電を有するモノマー単位を有するコポリマーであってもよい。特定の実施態様においては、コポリマーは、分子ふるい材料自体が、捕獲すべき検体を誘引することができるように、帯電していない構造モノマー単位及び親和性モノマー単位で構成されている。特定の実施態様においては、分子ふるい材料が全体として帯電するように、親和性モノマー単位は、正又は負に帯電していてもよい。これらの実施態様においては、分子ふるい材料の環境が変化することにより、例えば、捕獲粒子の周囲の媒体のｐＨ又は温度が変化することにより、その電荷が変化し得るようなものである帯電しモノマー単位はそのようであることが意図される。これらの実施態様においては、捕獲粒子は、検体のサイズ及び親和性の両者の選択をもたらす。
【００３４】
分子ふるい材料が帯電したコポリマーである特定の実施態様においては、帯電したモノマー単位は、特定の条件下で帯電することを可能にする部分を有していてもよい。例えば、負に帯電したモノマーは、カルボン酸基、ヒドロキシル基、チオール基、リン酸基又は負電荷を有し得る他の置換基を有する。本発明の特定の実施態様においては、負に帯電したモノマーはアクリル酸又はカルボン酸基を有する他のモノマーである。正に帯電したモノマーは、アミン、アミド基又は正の電荷を有し得る他の置換基を有する。本発明の特定の実施態様においては、正に帯電したモノマーはアリルアミン又はキトサンである。
【００３５】
分子ふるい材料がコポリマーである本発明の他の実施態様においては、親和性モノマーが分子ふるい材料中に組み入れられ、これは種々のタイプの検体の誘因を可能にする。例えば、コポリマーは、タンパク質及びペプチドに対する親和性を有する親和性色素；炭水化物、核酸及び糖ペプチド又は糖タンパク質に対する親和性を有するボロン酸基；低分子量化合物に対する親和性を有するシクロデキストリン；低分子量化合物に対する親和性を有するカリックスアレーン；金属イオンに対する親和性を有するポルフィリン；及び脂質に対する親和性を有する脂肪族基を有するモノマーを用いて組み入れられる。
【００３６】
本発明の特定の実施態様においては、分子ふるい材料は、Ｎ−イソプロピルアクリルアミド（ＮＩＰＡｍ）、ペンダントカルボン酸（ＣＯ２Ｈ）基が広い範囲のアミノ又はアルコール末端分子で官能化されているアクリル酸（ＡＡｃ）コポリマーである。これらの分子には、アルカン、溶液の脂質含有量を獲得するための他の脂肪性部分又は色素が含まれる。本発明の特定の実施態様においては、粒子は、ＮＩＰＡｍのみから構成されるシェルポリマー層によって囲まれた、ＮＩＰＡｍ  ＡＡｃコポリマーからなるコアを有する。
【００３７】
捕獲粒子は、更に検出可能な標識を含んでもよい。検出可能な標識な任意の手段により検出することができる任意の部分又は基質であり得る。これらには、量子ドット、蛍光標識、酵素、磁気粒子等が含まれる。検出可能な標識は、その孔及び外部表面を含む、捕獲粒子の任意の領域と関連し得る。
【００３８】
検出可能な標識は、選別のための種々のクラスの捕獲粒子を含む多くの方法において有用である。例えば、種々のクラスの捕獲粒子を製造することができ、ここで、各クラスは
種々の特徴（例えば、種々のポアサイズ及び／又は種々の吸引性）を有し、それぞれは、粒子の各クラスと関連する種々の検出可能な標識を有する。これは、それがどの検出可能な標識を有するかを決定することによって、粒子クラスの特性（例えば、特定の誘因物質に対する結合能力）を識別することを可能にする。例えば、ＰＳＡに対する単鎖抗体を有する粒子はＦＩＴＣで標識することができ、α−メチルアシル−ＣｏＡラセマーゼ（ＡＭＡＣＲ）に対する抗体を含む粒子はＴＲＩＴＣで標識することができる。取り込み工程を実施した後、蛍光活性化細胞分別を用いたフローサイトメトリーにより粒子を選別し、ＰＳＡ含有粒子をＡＭＡＣＲ含有粒子から分離することができる。他の実施態様においては、捕獲粒子は、親油性カルボシアニン色素で官能化し、その脂質成分を、薄層クロマトグラフィーを用いて分離することができる。
【００３９】
捕獲粒子は、電場、磁場の適用により、レーザーピンセットの使用を介して、又は溶媒との親和力により、溶液又は他の媒体中で移動し得る。捕獲粒子が全体的な電荷を有している場合、それらは電場の適用により移動することができる。分子ふるい材料が帯電を有するように分子ふるい材料を修飾する場合、それらは特に適用可能である。例えば、電場は負に帯電した捕獲粒子を含む媒体の全域で適用することができ、捕獲粒子は、電場を適用する装置の正電極に向かって移動する。
【００４０】
捕獲粒子は、磁石に誘引される磁気部分を有するように修飾されてもよい。本発明の特定の実施態様においては、これは、Ｆｅ３Ｏ４コアのような磁気コアの周囲に分子ふるい材料を形成することによって実施することができる。他の実施態様においては、捕獲粒子の表面は、磁気ナノ粒子によって完全又は部分的にコーティングされていてもよい（例えば、Ｗｏｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｍａｇｎｅｔｉｓｍ  ａｎｄ  Ｍａｇｎｅｔｉｃ  Ｍａｔｅｒｉａｌｓ，２００７，３１１（１），２１９−２３を参照されたい）。更に、ポリマーに直接組み込まれた磁気成分を有するコポリマーが形成されることが意図される。
【００４１】
捕獲粒子は、特定の標的に容易に結合し得る表面マーカーを有するように、例えば、粒子が、それぞれストレプトアビジン、グルタチオン及びニッケル基質により結合し得るビオチン、グルタチオン−Ｓ−トランスフェラーゼ又は６−ヒスチジンタグを有するように修飾することができる。粒子は、ＤＴＴによる逆転し得るジスルフィド結合から形成されるような、可逆性架橋剤を用いて形成することもできる。本発明のこれらの実施態様においては、捕獲粒子を含む溶液を適切な基質を有するビーズと混合することができる。例えば、ビオチン標識粒子をストレプトアビジン標識ビーズと混合することができる。お互いに結合させた後、遠心分離又は当該技術分野において公知の他の技術を用いて溶液からビーズを除去し、それにより捕獲粒子を戻すことができる。
【００４２】
本発明の特定の実施態様は、溶液相捕獲粒子、及び下記工程の１種以上、例えば、捕獲粒子が、所定の分子量又は粒径の検体を可逆的かつ選択的に捕捉するのに効果的な条件下で、検体を含む試料を溶液相捕獲粒子と接触させる工程（ここで、捕獲粒子は、所定の粒径又は分子量の検体を可逆的に捕捉及び放出し得る分子ふるい材料から構成されている）を有する、試料から検体を分離するための捕獲粒子の使用方法に関する。
【００４３】
本発明の捕獲粒子は、プロテアーゼ及び他の要因による分解から検体を保護することを可能にする。捕獲粒子は、粒子のサイズカットオフ及び／又は親和性により粒子からプロテアーゼを排除することによりこれを実施し得る。捕獲粒子は、検体とプロテアーゼは、プロテアーゼが検体を切断するのに必要な立体配置を防止するほど硬く結合するので、捕獲粒子は、プロテアーゼが検体を分解することも防止し得る。これらのケースにおいては、プロテアーゼは捕獲粒子中に侵入し得るが、検体は内部にあるままである。
【００４４】
本発明の捕獲粒子は、少量の検体を液体から濃縮するためにも用いることができる。検体が、液体中に低濃度で存在する場合、本発明の捕獲粒子を、元の液体から検体を集めるために用いることができる。検体を集めた後、少量の第二の液体中に溶出させることができる。この方法において、元の液体中に、種々の分析方法の検出限界より低い濃度を有する検体を、容易に検出し、分析することができる濃度を有するように濃縮することができる。
【００４５】
本発明の特定の実施態様においては、開示された捕獲粒子は、検体を分離及び／又は特定することができるキットの一部であり得る。キットは、検体を含む溶液又は他のタイプの混合物を集めるための任意のタイプの収集装置を有していてもよい。ある実施態様においては、収集装置は、バクテイナー（ｖａｃｕ −ｔａｉｎｅｒ）、チューブ，カートリッジ、又はマイクロ流体素子のような容器である。捕獲粒子が容器中に存在し得るか、又は捕獲粒子の層が容器上に形成され得ることが意図される。他の実施態様においては、収集装置は、捕獲粒子の層を含み得る繊維又はポリマー材料のシートである。これらの実施態様においては、捕獲粒子は表面に塗布されるパッチのタイプに形成され、ここから興味のある検体が分離されるか、又は興味のある検体が通過する。一実施態様においては、パッチは、皮膚に塗布し得るパッチであってもよく、皮膚表面から検体が分離されることを可能にする。
【００４６】
本発明により、粒子が種々の工程の間を連続的に移動するシステムも意図される。一般的に：
工程１：捕獲粒子を検体を含む試料と混合し：
工程２：捕獲粒子を、捕獲されなかった溶液相部分から分離し：
工程３：検体を粒子から溶出し、分析する。
【００４７】
本発明のこれらの実施態様においては、試料をシステムに導入し、あらゆる他の使用者の操作の必要なしで結果を得られるように、システムは、完全に内蔵型であり、自動化されている。このようなシステムはマイクロ流体システム中に含まれているか、大きいベンチトップ型のシステムであってもよい。
【００４８】
一般に、捕獲粒子を含むチャンバーに試料を加え、興味のある検体を隔離する。次いで、捕獲粒子を、明細書に記載されたサイズまで減少させ、検体を内部に捕捉するようにチャンバーの環境条件を変化させる。次いで、捕獲粒子を、本明細書に記載された方法を用いて新しいチャンバーまで移動させ、検体を残りの試料から分離することができる。
【００４９】
分析は、質量分析法、核磁気共鳴、赤外分析法、固相免疫測定法（例えば、ＥＬＩＳＡ等）、免疫沈降法、比色分析法、放射分析アッセイ、蛍光アッセイ、フロービーズ／
サイトメトリー、ウェスタンブロッティング、タンパク質配列決定及び代謝産物、薬剤、低分子化合物又はタンパク質の分析のための化学的分析法を含む、当該技術分野において公知の方法を用いて実施することができる。
【００５０】
溶液相捕獲工程以上に、粒子は、層を浸透し、平板を満たすために、支持体表面をコーティングするためにも用いることができる。他の具体例には、メッシュを維持する粒子を有するパッチのコーティング、皮膚の上又は中に存在する検体を捕獲するための、このパッチの患者の皮膚への塗布が含まれる。
【００５１】
血液、血液成分、脳脊髄液、リンパ液、細胞可溶化液、組織可溶化液、大便、尿、リンパ液、腹水、精液のような体液；土壌試料又は抽出物、海、池又は川の水のような環境試料；給水塔及び飲用水試料；化学合成反応に由来する試料；食品試料等が含まれるあらゆる試料が利用できるが、これらに限定されない。例えば、本明細書で議論する方法は、食品、飲用水及び環境試料中の汚染物質を検出するために用いることができる。有機分子、無機分子、ポリペプチド、炭水化物、核酸、脂質、薬剤、抗体、リガンド、リポタンパク質、糖タンパク質、脂肪酸、グリカン、それらの誘導体及びそれらの組み合わせを含む、興味のあるあらゆる分子を、本発明を用いて収集することができる。検体は、細胞表面から流れ、細胞から放出される（例えば、エクソサイトーシス、溶解等により）生体分子、代謝産物、分解産物、プロテアーゼ分解産物等を含むが、これらに限定されない。本発明の一実施態様においては、前記方法は、体液中の低分子量の分子、特に、可溶性であり、体液中で浮遊性であるか、キャリアタンパク質と関連する、正常な糸球体（腎臓）ろ過（例えば、３０，０００ダルトン未満の分子）により身体から排除されるものを捕獲するために用いることができる。一般に、本発明は、検出が望まれる興味のある検体を捕獲するために用いることができる。粒子は、反応生成物を選択的に捕獲するためのあらゆる化学反応の間、溶液中で用い、その結果、溶液中の生成物濃度を低下させることができる。これは、化学反応を完了させるか、時間とともにそれらが蓄積するように、１種以上の反応種を隔離することによって完了を促進することを可能にする。体液に関しては、本発明の捕獲粒子は、外因性分子、すなわち、試料が得られた被験者から、被験者の身体に取り込まれた分子を検出するためにも用いることができる。外因性分子は、被験者に積極的又は受動的に取り込まれ得る。外因性分子の具体例には、薬剤、食品、たばこ、環境製品及び汚染物質（例えば、殺虫剤、一酸化炭素等）中に含まれる分子又はそれらの形状の分子が含まれ、基本的に、あらゆる経路を通じて被験者の身体に侵入する任意の分子が含まれる。外因性分子は、身体において処理され、変換された代謝産物、副産物及び分解産物をも含む。粒子は、血液に由来する毒素を除去する手段としても用いることができる。粒子は、心臓麻痺を予防するために、尿素を除去し、又はコレステロールを過度に除去することによって身体の透析のために適用することができる。
【００５２】
異なる型の捕獲粒子を同時に用いることができ、それぞれが捕獲することができる分子種に関して種々の特徴を有していることをも意図する。異なる型は、例えば蛍光色素により標識することができ、後に、例えば、フローサイトメトリーを用いて分離することができる。この方法は、複数の種の全体の抽出及び分離を単一工程で実施することを可能にする。
【００５３】
本発明の更なる実施態様
【００５４】
バイオマーカーの濃縮及び保存のためのナノ粒子技術
【００５５】
低濃度及び保存の課題に対処するため、特定の実施態様においては、本発明は、血漿のようなタンパク質の複合混合物に加えた場合に、溶液中の選択したクラスのタンパク質を収集（蓄積する）「スマート」ナノ粒子を形成し、評価することを目的とする。送達可能な技術は、サイズ及び／又は親和性の両方に基づいて溶液中の分子を分類することができるユニークな構造を有する新規な多孔性収集粒子であろう。更に、粒子の空隙率は、捕獲した検体（例えば、タンパク質）を、後に分析のために遊離することができるように、熱的に修飾可能であり得る。更に、粒子中に捕獲されたタンパク質又は化学物質は、酵素又は微生物の増殖による分解から保護され得る。
【００５６】
この提案された技術は、血液、尿及び組織中の少量のタンパク質及びペプチドを濃縮、分離及び保存する手段にのための要求に対処することができる。このような低濃度分子は、小さい疾患、障害の状態にに関する特定の情報を含むことが予想される。一実施態様においては、提案された技術は、収集管中に予め分配され得るスマート粒子からなる。いったん、ナノ粒子が体液又は組織可溶化液中に懸濁されると、例えば、溶液中で、粒子は自動的に（一工程で）アフィニティクロマトグラフィー及び／又はサイズ排除クロマトグラフィーを実施する。従って、スマート粒子中に捕獲されたタンパク質及び他の代謝産物（バイオマーカーの候補）は、結合及び／又は隔離され、実質的な分解から保護される。スマート粒子集団のポアサイズ及び親和性を同調させることにより、非常に特異的なバイオマーカーのサブセットが捕獲され、入手した液体の全体の容量から濃縮することができる。これは、低分子量のプロテオミックバイオマーカーの室温での保存及び濃縮を可能にする。収集管の分析研究室への輸送に次ぎ、任意の分析技術を用いた特徴づけのために、結合／隔離バイオマーカーの積み荷を遊離することができるように、ナノ粒子を容易に分離することができる。他の方法においては、バイオマーカーはナノ粒子の破壊的処理によって接近することができる。
【００５７】
この技術は低価格であり、継ぎ目のない収集及び血液バイオマーカーの即時の保存のための所定の臨床の場において適用可能である。これは、大規模研究の病院環境を越え、多くの患者が治療を受ける自由診療に非常に強く広がっている。均一の「スマート」の１ミクロンサイズのナノ粒子の大量生産が確実に可能であるが、大きいか小さい、他のサイズのものも可能であり、同様に適用可能である。後述するように、粒子は、血清のような分子の複合混合物に由来する標識された分子のサブセットを捕獲、蓄積及び精製することができる。
【００５８】
バイオマーカー収集のためのスマート粒子選択の原理
熱応答性ポリマーゲルは、一般に、「スマートゲル」と呼ばれ、局所的な溶液温度、ｐＨ又は外部エネルギー適用の変化に応答して制御可能な、非線形な応答を示す（Ｓａｕｎｄｅｒｓ，ｅｔ  ａｌ．，１９９９  Ａｄｖａｎｃｅｓ  ｉｎ  Ｃｏｌｌｏｉｄ  ａｎｄ  Ｉｎｔｅｒｆａｃｅ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ８０，１；Ｐｅｌｔｏｎ，２０００，Ａｄｖａｎｃｅｓ  ｉｎ  Ｃｏｌｌｏｉｄ  ａｎｄ  Ｉｎｔｅｒｆａｃｅ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ８５，１）。このようなポリマーは、ゲル容量の変化をもたらす熱動力学的に有利な相分離を受ける架橋された鎖から構成される（Ｔａｎａｋａ，ｅｔ  ａｌ．，１９７９，Ｐｈｙｓ．Ｒｅｖ．Ｌｅｔｔ．４２，１５５６；Ｔａｎａｋａ，ｅｔ  ａｌ．，１９７８，Ｐｈｙｓ．Ｒｅｖ．Ｌｅｔｔ．４０，８２０）。ゲルは、容器の形状を示すために大量に合成され、又は直径４ｎｍ〜１００μｍの範囲の粒子中に合成することができる（Ｔａｎａｋａ，ｅｔ  ａｌ．，１９８０，Ｐｈｙｓ．Ｒｅｖ．  Ｌｅｔｔ．４５，１６３６；Ｔａｎａｋａ，ｅｔ  ａｌ．，１９８５，Ｐｈｙｓ．Ｒｅｖ．Ｌｅｔｔ．５５，２４５５）。各ケースにおいて、材料の内部構造は、軟質で、多孔質構造を作製する柔軟な鎖から構成され、これは溶液の局所的な状態に従って可逆的に拡大または縮小され得る。「スマート」ポリマーの例は、ポリ（Ｎ−イソプロピルアクリルアミド）（ｐＮＩＰＡｍ）であり、これは水中で３１℃の低臨界溶液温度（ＬＣＳＴ）を有する（Ｊｏｎｅｓ，２００３，Ｓｃｈｏｏｌ  ｏｆ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ａｎｄ  Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，Ｇｅｏｒｇｉａ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ  ｏｆ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ａｔｌａｎｔａ，ＧＡ，ｐ．１９３）。この温度以下では、ポリマーマトリクスは、溶媒分子ともに膨張し、ここで、ポリマー骨格に沿って水とアミド基との間に水素結合が生じる（Ｊｏｎｅｓ，２００３，Ｓｃｈｏｏｌ  ｏｆ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ａｎｄ  Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，Ｇｅｏｒｇｉａ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ  ｏｆ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ａｔｌａｎｔａ，ＧＡ，ｐ．１９３）。温度がＬＣＳＴを超えて上昇すると、水素結合が破壊され、水は内部マトリクスから排除され、一方、疎水性相互作用がイソプロピル基間で顕著になり始め、全体の容量の減少をもたらす。この技術は、同定のための生体マーカーを分離するために適用することができる。
【００５９】
本発明の一態様は、捕獲粒子の分子ふるい部分を記載するが、他の態様は、検体結合（バイト捕獲）部分に関する。バイト捕獲及び分子ふるいを単一の粒子中に組み合わせることは可能である。タンパク質の複合混合物を分画する一般的な手段は、親和性及び分子の大きさに基づく２種の連続的なクロマトグラフィー工程を用いることである（Ａｄｋｉｎｓ，ｅｔ  ａｌ．，２００２，Ｍｏｌ  Ｃｅｌｌ  Ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ  １，９４７）。血漿のような複雑で非常に濃縮された混合物の分析は、通常、試料の希釈、並びにクロマトグラフィー及びゲル電気泳動の前の、アルブミンのような大量に含まれるタンパク質の除去から開始される。本明細書に開示されるスマート粒子技術は、クロマトグラフィー又は希釈を使用せずに分離工程の両方を達成する。より具体的には、付加される選択性は、バイオマーカーの制限された集団を結合／隔離する粒子中へのバイト分子の添加を介して可能にされる。例えば、アクリル酸（ＡＡｃ）は、粒子中に組込まれ、同調可能な親和性樹脂として機能し得る。 例えば、低いｐＨ（３．５）において、粒子内のＡＡｃは、優先的にプロトン化され、そのｐＨで正の電荷を有する。より高いｐＨ条件下で、ＡＡｃ分子は、部分的又は優先的に脱プロトン化され、これは内因性の、正に帯電耐電したタンパク質についての電荷ベースの親和性エレメントを作製する。マイクロゲルにＡＡｃを組み込むことにより、電荷特性及び粒子のポアサイズ両方が、血清のような複合混合物からタンパク質を二重に分画する手段を提供する。
【００６０】
本発明の他の態様は、検体の隔離／結合による保存を扱い、それ故、室温において溶液中の検体（例えば、バイオマーカーの候補）を安定化することを可能にする。 これは、多孔質ナノ粒子内へのそれらの隔離により達成され得る。ナノ粒子内に隔離されたタンパク質又は分子は、液相分解酵素による接近に利用可能ではないと仮説が立てられる。このような酵素は、それらのより大きな大きさのために粒子の孔を浸透することができないかもしれない。
【００６１】
さらに、バイオマーカー候補分子の親和性捕獲及び固定化は、酵素基質複合体が粒子中で機能的に形成し得ないようにバイオマーカー分子の３−Ｄ利用能を妨げるであろう。この概念は、沈降又は沈降固定によるタンパク質の安定化にある程度類似する。キャピラリー電気泳動及び質量分析配列決定を適用することで、本発明者らは、外因性セリン又はメタロプロテイナーゼにより誘導される分解を研究することができ、粒子中に捕獲されたタンパク質対溶液中に遊離するそれらの、断片化の速度を比較することができる。公知の、及び予め特徴付けられた、または予め標識されたタンパク質の所定の混合物から開始して、本発明者らはヒト血清及び血漿参考試中ののタンパク質の捕獲及び安定化を進行することができる。
【００６２】
捕獲−粒子
特定の実施態様においては、本発明は、試料から分子種を分離及び捕獲するための、方法及び組成物を提供する。本発明の一実施態様においては、所定の分子サイズ、質量及び／又は親和性を有する分子種を特異的に捕獲する能力を有するスマート粒子は、様々な大きさを有する、種々の複数の分子種を典型的に含む試料から興味のある分子を単離するために用いられる。粒子は試料に添加され得、次いで、興味のある分子種を捕獲するために利用され得る。
【００６３】
粒子は、以下の機能、すなわち：ａ）捕獲すべき分子のサイズ、質量、及び／又は親和性を選択する能力、及び／又はｂ）物理的又は化学的な処理に応じて所望の分子を捕獲及び／又は放出する能力の１種以上を有し得る。粒子は、この課題を微量中で達成し得、親和性カラム、逆相カラム、並びに他の標準的な精製試薬及び装置を利用する従来の多段階の手順についての必要性を排除する。更に、種々のクラスの捕獲−粒子を用いることができ、それぞれは、それらが捕獲し得る分子種に関して種々の特性を有し、従って複数の種の全体的な抽出プロフィールを単一工程において実施することを可能にする。
【００６４】
本発明の一態様は、液相捕獲−粒子、及び試料から検体を単離することにおいて、それらを用いる方法を提供し、この方法は、１つ以上の以下を含む工程：検体を含む試料と液相捕獲−粒子とを、該捕獲−粒子が選択的に及び場合により可逆的に、所定の分子量または粒径の分析物を捕捉するのに効果的な条件下で、接触する工程を包含し、ここで前記捕獲−粒子は、所定の粒径又は分子量の検体を捕捉し得、場合により放出し得る分子ふるい材料を含む。本発明の他の態様は、以下により詳細に記載されるように、不可逆的に検体を捕捉する特定の捕獲−粒子を用いる。
【００６５】
血液、血液成分、脳脊髄液、リンパ液、細胞可溶化液、組織可溶化液、大便、尿、リンパ液、腹水、精液のような体液；土壌試料又は抽出物、海、池又は川の水のような環境試料；給水塔及び飲用水試料；化学合成反応に由来する試料；食品試料；食品加工試料（例えば、鶏肉処理工場由来の）等を含む、あらゆる試料を、制限なく用いることができる。例えば、方法は、食品、飲用水及び環境試料中の汚染を検出するために用いることができる。
【００６６】
検体
「検体」なる用語は、興味のある任意の分子を意味し、有機分子、無機分子、ポリペプチド、炭水化物、核酸、脂質、それらの誘導体、及びそれらの組み合わせが含まれる。検体には、分析物は、制限されないが、細胞表面から流れ、細胞から遊離する（例えば、エキソサイトーシス、溶解等により）代謝産物、分解産物、プロテアーゼ分解産物等が含まれるが、これらに限定されない。本発明の一態様においては、前記方法は、生物学的液体中の低分子量の分子、特に通常の糸球体（腎臓）ろ過により身 体から排除され、液体中で可溶性であり、浮遊するか、又はキャリアタンパク質と結合する分子（例えば、３０，０００ダルトン未満の分子）を捕捉することを利用し得る。一般に、本発明は、約６０，０００Ｄａ未満、約５０，０００Ｄａ未満、約４０，０００Ｄａ未満、約３０，０００Ｄａ未満、約２０，０００Ｄａ未満、約１０，０００Ｄａ未満、約８，０００Ｄａ未満、約６，０００Ｄａ未満、約４，０００Ｄａ未満、約２，０００Ｄａ未満、約 １，０００Ｄａ未満を含むが、これらに限定されない、その検出が所望される興味のある任意の検体を捕獲するために用いることができ、それぞれ記載された範囲内の全ての個々の値を含む。
【００６７】
体液に関して、本発明の捕獲−粒子は、外因性分子、すなわち、試料が得られた被験者の身体に導入された分子を検出するためにも用いることができる。外因性分子は、被験者に積極的又は受動的に導入され得る。外因性分子の具体例には、薬物、食品、タバコ、環境的産物、および汚染物質（例えば、殺虫剤、一酸化炭素等）、及び任意の経路を介して被験者に入る本質的に任意の分子が含まれる。外因性分子には、身体中で処理又は転換されるような、それらの代謝物、副生成物及び分解産物が含まれる。
【００６８】
捕獲粒子は、生体内、生体外及び試験管内を含む任意の環境において用いることができる。例えば、粒子は、生体内又は生体外の情況において血液から毒素を除去するための手段としても用いることができる。例えば、粒子は、血液からクレアチニン及び尿素のような毒性の老廃物を除去するために用いることができ、従来の透析についての要件を置き換える。
【００６９】
分子ふるい材料
本発明の捕獲−粒子は、分子ふるい材料（又は分子ふるい部分）から構成され得る。これにより、材料は、多孔質、格子状、蜂の巣状であるか、又は所定の分子の質量又は重量の、他の分子を排除しながらの通過を可能にする。分子ふるいの孔のサイズは、検体が捕獲−粒子を浸透し得るか否かの決定要因である。粒子は、それ自体、任意の適切な大きさ、例えば、それぞれ記載される範囲内の全ての個々の値を含む、約１０μｍ未満、約１０μｍ〜約１μｍ、約１μｍ〜約１００ｎｍ、約１ｎｍ〜約１００ｎｍ、約５ｎｍ〜と約５０ｎｍ；約１０ｎｍ〜約２０ｎｍ；約１０ｎｍ〜約１ｎｍであり得る。
【００７０】
分子ふるい材料中の孔は、所望されない分子の排除に必要な直径に対して、提供される方法に基づいて設計することができる。約２〜約２０ｎｍ、１ｎｍ〜１μｍ、 １ｎｍ〜１０ｎｍ、１ｎｍ〜５０ｎｍ、１０ｎｍ〜５０ｎｍ、５０ｎｍ〜１００ｎｍ、１０ｎｍ〜２００ｎｍ、５０ｎｍ〜５００ｎｍ、１ｎｍ〜１０ｎｍ、１ｎｍ〜５ｎｍ、および他の範囲の平均孔径が想定される。
【００７１】
捕獲−粒子の任意の特徴は、いったん検体が分子ふるい材料に侵入すると、これを「捕捉する」能力である。捕捉することは、物理的又は化学的な処理に応じて収縮及び／又は膨張し得る分子ふるい材料を用いることにより達成することができる。例えば、材料は、化学的又は物理的処理に供される場合、検体を収縮又は縮小し、それにより検体を内部に捕捉する材料が用いられ得る。このような材料は、「スマート材料」とも呼ばれ、これは物理的又は化学的な処理に供することにより、形状及び大きさを変化する能力を有する。この特性を有する任意の材料が制限なく用いられ、例えば、ポリアクリルアミド及びその誘導体（例えば、Ｊｏｎｅｓ  ａｎｄ  Ｌｙｏｎ，Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ，３６：１９８８−１９９３，２００３；Ｊｏｎｅｓ  ａｎｄ  Ｌｙｏｎ，Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ，３３：８３１０−８３０６，２０００）及び他のＮ−アルキル置換アクリルアミド；ポリ（Ｎ−ビニルアルキルアミド）；ポリ（メタクリル酸）；ポリ（ベンジルグルタメート）；ポリ（２−エチルアクリル酸）；ポリ（４−ビニルピリジン）；強誘電性液晶エラストマー；圧電性ポリマー；「スマート」ゲル、セラミクス、合金及びポリマーが含まれるが、これらに限定されない。例えば、Ｇａｌａｅｖ  ｅｔ  ａｔ．，Ｐａｇｅｓ  ８３５−８４９；Ｚｅｎｔｅｌ；Ｐａｇｅｓ  ８５０−８６０；Ｈａｒｒｉｓｏｎ  ａｎｄ  Ｏｕｎａｉｅｓ，Ｐａｇｅｓ  ８６０−８７３；ｉｎ  Ｅｎｃｙｃｌｏｐｅｄｉａ  ｏｆ  Ｓｍａｒｔ  Ｍａｔｅｒｉａｌｓ，Ｖｏｌｕｍｅｓ  １−２，Ｅｄｉｔｅｄ  ｂｙ，Ｓｃｈｗａｒｔｚ，Ｍｅｌ（Ｃ）２００２  Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓも参照されたい。捕獲−粒子は当該分野において知られるように、または上記の参考文献のいずれかにおいて記載されるように、日常的に製造することができる。
【００７２】
本発明の一実施態様において、捕獲−粒子はポリ（Ｎ−イソプロピルアクリルアミド）構成要素を何ら含まない。さらに、この実施態様における捕獲粒子はまた、ポリ（Ｎ−イソプロピルアクリルアミド−コ−アクリル酸）を排除する。
【００７３】
分子ふるい材料の物理的又は化学的な処理
分子ふるい材料を収縮及び／又は膨張するために用いることができる物理的及び／又は化学的な処理は、熱、電気、磁気、超音波、圧力、放射、レーザー、浸透圧、ｐＨ、塩、酵素、酸化／還元、脱水／再水和、紫外線、照射、強い赤色光の処理を含み得る。
【００７４】
分子ふるい材料は、可逆的又は不可逆的に収縮又は縮小し得る。例えば、捕獲−粒子は溶液中に配置され、ここでは検体が浸透され得、次いで検体を捕獲するために不可逆的に縮小し得る。このことは、目的が溶液から混入物を除去することである場合に有用であり得、捕獲された検体の性質を分析する、又は更に評価する必要がなく、従ってこれが膨張されることを要求しない。又は、不可逆的な捕獲−粒子は、粒子の完全性を破壊する超音波又は他の破壊的な力により分解され得る。
【００７５】
一実施態様においては、捕獲−粒子は検体の捕獲及び／又は隔離を許容するために膨張及び収縮し得る。
【００７６】
他の実施態様においては、捕獲−粒子は、検体の取り込みを増加又は減少し得る任意の有意な程度に膨張又は収縮しない。すなわち、粒子の容量が実質的に固定される。このような捕獲粒子の例としてはウイルスタンパク質、クラセリン、炭素ナノチューブ、又は以前に記載される膨張／収縮を許容しない種を含む粒子が含まれる。クラセリンに由来する多角形の構造の調製を説明する例は、本明細書中に参考として援用される、Ｊａａｒｓｖｅｌｄ ら、Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ １９８１、２０、４１２９〜４１３５において開示されている。
【００７７】
検体結合（親和性）部分
捕獲粒子は、選択的な検体結合のために表面タンパク質特性を含み得、及び／又はこのような結合特性を付与する部分の付着により改変され得る。
【００７８】
捕獲−粒子は、更に、検体を結合する、親和性リガンド又は「バイト」を含み得る。このような用語は、興味のある検体を特異的に付着し得る物質を意味し得る。典型的な具体例には、抗体及びその誘導体（例えば、Ｆａｂフラグメント及び単鎖抗体）；結合タンパク質（例えば、特異的なリガンドについての受容体又はそれらのフラグメント）；結合対（例えば、ストレプトアビジン／ビオチン）；基質；金属；キレート剤；核酸；アプタマー；酵素結合ポケッ ト；レクチン；及び／又は興味のある検体に特異的な親和性基が含まれるが、これらに限定されない。「特異的」なる用語は、親和性リガンドが、試料中の興味のある検体に選択的に結合し、非標的検体からそれを区別するために用いることができる。これが背景ノイズ（「非特異的結合」）を上回る検体を検出するために用いることができるという意味において、これは特異的である。親和性リガンドは、これが、試料中の他の成分よりも、興味のある検体について高い親和性を有するように選択することができ、検体について、任意のネイティブな結合タンパク質と競合しないことを可能にする。
【００７９】
親和性リガンドは、任意の適切な方法において、捕獲−粒子と会合され得る。例えば、それらは、その周りで捕獲−粒子を形成するために分子ふるい材料が重層又は蒸着／核形成され得る核として用いられ；それらは、粒子を形成する前に分子ふるい材料に直接的に取り込まれ得（すなわち、ここではリガンドは、分子ふるい材料の成分である）；それらは分子ふるい材料の孔表面に通常結合され得る（共有結合的に又は非共有結合的に）；等である。親和性リガンドはまた、リガンドを収容するのに十分大きい孔隙率を達成するために適切な物理的又は化学的な処理を介して分子ふるい材料を膨張させ、次いでこれが粒子中に侵入するのに有効な条件下で分子ふるい材料とリガンドとを接触させることにより、捕獲粒子中に負荷され得る。粒子が、いったん親和性リガンドとともに負荷されると、これは、適切な物理的又は化学的な処理により縮小し得、それにより分子ふるい材料の空隙率を減少し、そのため標的検体はなお粒子に浸透し得るが、より大きな検体は排除される。分子ふるいの空隙率は、親和性リガンド負荷工程の後に、親和性リガンドの分散をブロックするのに十分に小さいポアサイズに減少され得、親和性リガンドを分子ふるい材料に連結することを不要にする。しかし、所望であれば、結合プロセスが、これを分子ふるい材料に連結するために用いられれ得る。
【００８０】
親和性リガンドで誘引された捕獲−粒子は、検体の大きさ又は質量についての選択に加えて、検体選択工程を提供する。例えば、捕獲−粒子は、検体がその中に浸透することを可能にするために膨張することができ、次いで検体、更に捕獲−粒子と会合される親和性リガンドに特異的に結合するその能力により選択され得る。結合工程が達成された後（例えば、平衡が達成された後）、粒子は、分離され、未結合の非標的検体を除去するための洗浄工程に供され、次いで必要に応じて化学的又は物理的な処理により縮小する。
【００８１】
捕獲−粒子は、更に親和性部分として抗体をも含み得る。他の親和性部分の候補としては、可溶性受容体、ポリアミン類似体、アンチセンスオリゴヌクレオ チド、ＲＮＡｉポリヌクレオチド、リボザイム等が含まれるが、これらに限定されない。抗体及び可溶性受容体は、それらが興味のある検体を標的とする親和性の部分として特に興味深い。
【００８２】
抗体
親和性部分には、抗体と、検体と特異的に結合するそれらの機能的等価物とが含まれる。「免疫グロブリン」及び「抗体」は、交換可能に、及びそれらの最も広い意味において、本明細書中で用いられる。従って、それらは、無傷のモノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、少なくとも２個の無傷の抗体から構成される多重特異性抗体（例えば、二重特異性抗体）、及び抗体フラグメントを、それらが所望の生物学的活性を示す限り包含する。
【００８３】
抗体の重鎖及び軽鎖の可変領域は、同種抗体の特定のエピトープを認識するか、又はそれに結合する。「エピトープ」なる用語は、免疫グロブリンの可変領域と結合する抗原上の特異的な結合部位又は抗原決定基を意味するとして用いられる。エピトープは、線状、すなわち、アミノ酸残基の配列、免疫グロブリンが ３−Ｄ構造を認識するような配座、又はそれらの組み合わせから構成され得る。
【００８４】
モノクローナル及びポリクローナル抗体
本発明の免疫グロブリンは、ポリクローナル又はモノクローナルであり得、当該技術分野において周知の任意の方法により生成することができる
【００８５】
ポリクローナル抗体は、好ましくは、関連抗原及びアジュバントの複数回の皮下（ｓｃ）、腹腔内（ｉｐ）又は筋肉内（ｉｍ）注射により動物に若起される。免疫される種において免疫原性であるタンパク質に関連の抗原を結合させることは有用であり得る。さらに、ミョウバンのような凝集剤が、免疫応答を増強するために適切に使用される。
【００８６】
「モノクローナル抗体」なる用語は、実質的に相同的な抗体の集団から得られる抗体を意味する。モノクローナル抗体は、非常に特異的であり、単一の抗原部位に対して指向される。更に、異なる決定基に対して指向される異なる抗体を、典型的に含むポリクローナル抗体調製物とは対照的に、各モノクローナル抗体は、 抗原上の単一の決定基に対して指向される。
【００８７】
それらの特異性に加え、モノクローナル抗体は、それらが他の免疫グロブリンにより汚染されていながら、合成され得るという点において有利である。例えば、モノクローナル抗体は、ハイブリドーマ法により、または組換えＤＮＡ法により生成することができる。モノクローナル抗体はまた、ファージ抗体ライブラリーから単離され得る。
【００８８】
抗体フラグメント
「抗体フラグメント」は、無傷の抗体の部分、好ましくはその抗原結合領域又は可変領域を含む。抗体フラグメントの具体例には、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖフラグメント、二重特異性抗体、線状抗体、単鎖抗体分子、及び抗体フラグメントから形成される多重特異性抗体が含まれる。
【００８９】
種々の技術が、抗体フラグメントの生成のために開発されている。伝統的に、これらのフラグメントは無傷の抗体のタンパク質分解を介して得られる。当該技術分野において周知の２種の分解方法には、パパイン消化及びペプシン処理が含まれる。抗体フラグメントは現在では、更に組換え宿主細胞により直接的に生成することができる。
【００９０】
二重特異性抗体
本発明の二重特異性抗体は、２種の抗原結合部位を伴う小さな抗体フラグメントである。各フラグメントは、同じポリペプチド鎖中に軽鎖可変ドメインに連結された重鎖可変ドメインを含む。短かすぎて同じ鎖上の２個のドメイン間での対を形成しないリンカーを用いることにより、ドメインは、別の鎖の相補的なドメインと対合することを余儀なくされ、２個の抗原結合部位を作製する。
【００９１】
二重特異性抗体を作製するための方法は、当該技術分野において周知である。完全長の二重特異性抗体の伝統的な生成は、２個の免疫グロブリン重鎖−軽鎖対の同時発現に基づき、ここでは２個の鎖は異なる特異性を有している。しかし、二重特異性抗体は、ロイシンジッパーを使用して生成することもできる。
【００９２】
捕獲−粒子は、更に、検出可能な標識を含んでもよい。「検出可能な標識」なる用語は、、任意の手段により検出することができる任意の部分又は物質を意味する。これらには、量子ドット、蛍光標識、酵素、磁性粒子等が含まれる。検出可能な標識は、捕獲−粒子の任意の領域と会合することができ、その孔及び外部表面を包含する。検出可能な標識は、多くの方法において有用であり、異なるクラスの捕獲−粒子を分別するための方法を包含する。例えば、種々のクラスの捕獲−粒子を生成することができ、ここでは各クラスは異なる特性を有し（例えば、種々のポアサイズ及び／又は種々の親和性リガンド）、それぞれは、各クラスの粒子と会合される、種々の検出可能な標識を有する。これは、粒子のクラスの特性（例えば、特異的な抗原に結合し得る）が、それが保持する検出可能な標識を決定することにより同定されることを可能にする。例えば、ＰＳＡについての単鎖抗体を伴う粒子は、ＦＩＴＣで標識することができ、［アルファ］−メチルアシル−ＣｏＡラセマーゼ（ＡＭＡＣＲ）に対する抗体を含む粒子は、ＴＲＩＴＣで標識することができる。捕捉工程を実施した後、粒子は、蛍光活性化セルソーティングを用いて、フローサイトメトリーにより分別され、ＡＭＡＣＲを含有する粒子からＨＡを含有する粒子を分離することができる。
【００９３】
精製法
本発明の捕獲粒子は、試料から、興味のある検体を単離するための精製プロトコルにおいて用いられ得る。上述したように、捕獲粒子は、大きさ及び親和性に基づく検体の精製を可能にし、本発明は、興味のある検体を保存及び研究するために、試料からの興味のある検体の迅速な単離を可能にする。これらの検体は、試料中の酵素又は他の分子からの分解を防止するために、捕獲粒子中に保存される。
【００９４】
診断法
本発明はまた、所定の分子量、粒径、又は所定の親和性の検体を、捕獲−粒子が選択的に結合するために有効な条件下で、検体を含む試料と、液相捕獲−粒子とを接触させ、次いで捕獲粒子に選択的に結合される検体を同定することにより、疾患を診断する方法を包含する。同定された濃度における試料中の検体の存在は、病状の特徴である。検体の存在を検出することは、酵素結合免疫吸着法（ＥＬＩＳＡ）、質量分析法、ラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）、マイクロアレイ法、免疫蛍光法、ノーザンブロット、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）、及びインサイチュハイブリダイゼーションのような当業者に周知の方法を用いて実施することができた。
【００９５】
キット
特定のキットの実施態様においては、捕獲粒子は、精製又は診断の方法における使用に適切な形態において提供される。キットは一般に、捕獲粒子、並びに説明書、及び精製または診断方法を実施するために必要な物質を提供する。これらのキットは、試料を保存する医療機関における医師による、又は血清検体の精製および単離を開始するその他の人による使用について想定されている。
【００９６】
上記で引用された全ての刊行物の開示は、それぞれが個々に参照として組み入れられるのと同じ程度に、それらの全体が本明細書中に参照として明らかに組み入れられる。
【００９７】
ある実施態様においては、捕獲−粒子は分子ふるい部分及び検体結合部分を含み、ここで分子ふるい部分、検体結合部分、又はその両方は、改変された空隙率を有する架橋された領域を更に含む。
【００９８】
ある実施態様においては、捕獲粒子は、分子ふるい部分及び検体結合部分を含み、ここで分子ふるい部分、検体結合部分、又はその両方は、約６０ｋＤａよりも大きな分子を排除するのに十分な孔の寸法を含む。
【００９９】
一実施態様においては、前記検体結合部分は、検体を化学的又は静電的に結合又は隔離することができる少なくとも１種のタイプの部分を含む。従って、検体は捕獲−粒子内の領域に効果的に保持される。検体と検体結合領域との間の力は、共有結合、ファンデルワールス力、疎水性−疎水性、水素結合、親水性の引力、イオン性の引力、又はそれらの任意の組み合わせの力であり得る。
【０１００】
他の実施態様においては、捕獲粒子は、その間の全ての個々の値を伴う約２〜約２０ナノメートルのポアサイズを含む。
【０１０１】
他の実施態様においては、捕獲粒子は、その範囲内の全ての個々の値を含む、約１００ｎｍ未満のポアサイズを含む。
【０１０２】
他の実施態様においては、捕獲粒子は、約６０ｋＤａよりも大きい大きさを有する分子を排除するようにされたポアサイズを含む。
【０１０３】
他の実施態様においては、捕獲粒子は、アルブミンを排除するようにされたポアサイズを含む。
【０１０４】
他の実施態様においては、捕獲粒子は、アルブミン、約６０ｋＤａよりも大きな大きさを有する分子を排除しながら、１４０４Ｄａの大きさの分子の浸透を可能にするのに十分な大きさにされた孔を含む。
【０１０５】
前記、及び図面中に引用された全ての出願、特許及び出版物は、全体として参照として本明細書に組み入れられる。本発明の特定の実施態様は、以下の非限定的実施例において説明される。請求項に記載された本発明の範囲及び精神の範囲内である、本明細書に明確に示されていない他の実施態様があることは当業者に明らかであろう。
【０１０６】
本明細書中に記載される実施例は、本発明の具体例であり、それらに限定されることは意図されない。本発明の種々の実施態様が、本発明に従って記載されてきた。多くの修飾及び変化が、本発明の精神及び範囲から逸脱することなく、本明細書中に記載及び明される技術に対してなされ得る。従って、実施例は単に実例であり、本発明の範囲を限定するものではない。
【実施例】
【０１０７】
実施例１−Ｎ−イソプロピルアクリルアミド（ＮＩＰＡｍ）を組み込んだ捕獲粒子
界面活性剤を含まない沈殿重合により、Ｎ−イソプロピルアクリルアミド（ＮＩＰＡｍ）及びＮ，Ｎ’−メチレンビスアクリルアミド（ＢＩＳ）を組み込んだ捕獲粒子を生成した。ＢＩＳは架橋剤として用いられ、ＢＩＳ：ＮＩＰＡｍのモノマー比は、得られるネットワーク密度、従って平均孔径を決定する。更に、（ＡＡｃ）を含む粒子の製造は、電荷ベースの親和性バイトを取り込むために製造された。
【０１０８】
Ｎ−イソプロピルアクリルアミド（ＮＩＰ Ａｍ）及びＮ，Ｎ’−メチレンビスアクリルアミド（ＢＩＳ）、過硫酸アンモニウム（ＡＰＳ）、アクリル酸（ＡＡｃ）は、ＭＯ，Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃから購入した。反応、洗浄及び負荷のための水は、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ Ｍｉｌｌｉ−Ｑ水精製系で、１８ＭΩの耐性に精製され得、０．２μｍフィルターを通過される。
【０１０９】
全モノマー濃度（ＮＩＰＡｍ及びＢＩＳ）は０．３Ｍである。粒子は、重合化の間、種々の量の架橋剤を用いて製造され、粒子の孔の大きさを代えるために ２％及び５％の総濃度の架橋剤を含む。モノマーを、コンデンサー及び温度計を備えた、２５０ｍＬの三つ口の丸底フラスコの内部で、中程度の攪拌速度（磁気攪拌子）にて１９０ｍＬの水中に十分に溶解した。溶液を、窒素流れの下で７０℃で１時間加熱した。安定な最大攪拌速度に達した時、１．０ｍＬの６ｍＭ  ＡＰＳ溶液を用いて重合を開始した。窒素雰囲気下、反応を３時間継続させた。一晩、室温まで冷却した後、ミクロゲル溶液の０．５ｍＬの一定量と、個々の１．５ｍＬ容量の遠心チューブ中にいれ、１．０ｍＬの水で希釈した。次いで、Ｅｐｐｅｎｄｏｒｆ  ５４１  ＳＲを用いて、１６，１００ｒｃｆ、２３℃で２０分間遠心分離した。
【０１１０】
上清を他の容器に移し、ミクロゲルを、１．５ｍＬの容量まで再懸濁させた。遠心分離／再懸濁工程を合計５回、処理を繰り返した。光子相関分光法（ＰＣＳ  ｓｕｂｍｉｃｒｏｎ  ｐａｒｔｉｃｌｅｓ  ａｎａｌｙｚｅｒ，Ｂｅｃｋｍａｎ  Ｃｏｕｌｔｅｒ）、原子間力顕微鏡（ＡＦＭ）、光学顕微鏡、並びに蛍光顕微鏡による可視化による蛍光色素の取り込みを用いて、均一性及び大きさの範囲を評価した。フローサイトメトリーも、市販の蛍光標識された識別粒子の、標準としての使用を介して、相対的な大きさが割り当てられることを可能にした。
【０１１１】
粒子の分子排除特性を調べるめに、２％濃度の架橋剤を用いて製造した粒子を、５種の分子種：ＦＩＴＣ（ＭＷ３８９）、小さいペプチドアンジオテンシンＩＩと結合した蛍光色素（ＭＷ１４０４）、インシュリンと結合したＦＩＴＣ（ＭＷ３５００）、ストレプトアビジン（ＭＷ５３０００）及びアルブミン（ＭＷ６６０００）とインキュベートした。５種の分子の溶液中分離を実施した。５種の蛍光分子のそれぞれについて、０．１ｍＬの精製ミクロゲルを、１．５ｍＬの遠心チューブ中に入れた。このため、０．１ｍＬの分子溶液を加え、ボルテックスで穏やかに混合した。粒子による蛍光色素の取り込みを、ＦＡＣＳｃａｎ（Ｂｅｃｔｏｎ  Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）を用いて測定した。実験を、異なるインキュベーション時間、異なる蛍光色素分子の濃度において実施した。これらの実験は、早ければ１０分以内に、小さいＦＩＴＣ分子が容易に粒子内に移動し、応答は濃度依存的であることを示した。蛍光標識したペプチドも粒子中に移動するが、ＦＩＴＣと比べるとシグナルシフトは非常に弱く、これは、粒子がサイズ介在性の選択性を有することを示す。ＦＩＴＣ及び蛍光色素標識ペプチドの両方について、内面化のレベルは、５％架橋剤の集団よりも２％架橋剤の粒子集団が高かった。これは、高度に架橋した粒子集団の中で、より小さいナノポアサイズと一致しており、これは、ペプチドの内面化をより困難にするであろう。２％及び５％の両方の集団において、アルブミンは排除されていた。蛍光シグナル中におけるシフトがないので、ストレプトアビジン及びＢＳＡは粒子から排除されていた。ＦＩＴＣ標識したインシュリンは、水溶液、及びヒト血清中に混合し、その両者で調査した。血清とインキュベートした粒子は、蛍光シグナル中でシフトし、これは、複合生体液からインシュリンが収集されたことを証明する。ＦＩＴＣ標識したインシュリンの水溶液とインキュベートした粒子は、血清と比べ、非常に強い蛍光シフトを生じた。
【０１１２】
２％濃度の架橋剤を用いた粒子についてＳＤＳ  ＰＡＧＥ実験を実施し、インシュリン（ＭＷ３５００）及びミオグロビン（ＭＷ１７０００）の取り込み、  ＢＳＡ（ＭＷ６６０００）の排除を示した。アクリル酸官能化粒子を２０ｍＭミオグロビン溶液とインキュベートし、溶液中の全てのタンパク質を捕獲し、単純な粒子と比べた場合に、より高い取り込みを示した。
【０１１３】
実施例２−粒子の電子伝達
２％架橋剤を有する粒子とインキュベートした血清を、５ｍｍ長の３０％アクリルアミド／ビスゲルスライスを前もって重合化した、ｃｅｎｔｒｉｌｕｔｏｒ  ｍｉｃｒｏ−ｅｌｅｃｔｒｏｅｌｕｔｅｒ  （Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）の試験管内に負荷した。電場を形成した場合、粒子が、そのタンパク質含有量を損失することなく、ゲルスライスを通って正電極へ向かって移動した。
【０１１４】
実施例３−ヒドロゲル粒子
溶液中で一工程で直接的に血清中の低分子量タンパク質の分配、アフィニティー分離、濃縮及び安定化を実施するためのヒドロゲル粒子の能力を、バイオマーカー分離及び分析に由来する血液のための新規な迅速な方法として分析した。定義によれば、ヒドロゲルは、大量の水を吸収することのできる三次元架橋ポリマーネットワークである（Ｐｅｌｔｏｎ，Ｒ．Ａｄｖ  Ｃｏｌｌｏｉｄ  Ｉｎｔｅｒｆａｃｅ  Ｓｃｉ  ２０００，８５，（１），１−３３）。それらは、通常、架橋剤の存在下、通常、少なくとも２種の重合可能な官能基を有するモノマーであるモノマーの重合により製造される。ゲルは、非応答性（単純なポリマーネットワークは、水にさらされることにより劇的に膨潤する）又は応答性ゲル（追加の機能性を有し、溶媒中で温度（Ｌｉ  ａｎｄ  Ｔａｎａｋａ，Ｔｈｅ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｐｈｙｓｉｃｓ  １９９０，９２，（２），１３６５−１３７１）、ｐＨ（Ｊｏｎｅｓ  ａｎｄ  Ｌｙｏｎ，Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ  ２０００，３３，（２２），８３０１−８３０６；Ｍｏｓｅｌｈｙ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ  Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ｐｏｌｙｍｅｒ  Ｅｄｉｔｉｏｎ  ２０００，１１，（２），１２３−１４７）、イオン強度（Ｄｕｒａｃｈｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃｏｌｌｏｉｄ  ＆  Ｐｏｌｙｍｅｒ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  １９９８，２７６，（３），２１９−２３１；Ｄｕｒａｃｈｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃｏｌｌｏｉｄ  ＆  Ｐｏｌｙｍｅｒ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  １９９８，２７６，（１０），９２０−９２９）、光（Ｓｅｒｓｈｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ−ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ  ｐｏｌｙｍｅｒ−ｎａｎｏｓｈｅｌｌ  ｃｏｍｐｏｓｉｔｅｓ  ｆｏｒ  ｐｈｏｔｏｔｈｅｒｍａｌｌｙ  ｍｏｄｕｌａｔｅｄ  ｄｒｕｇ  ｄｅｌｉｖｅｒｙ，Ｉｎ  ２０００；Ｖｏｌ．５１，ｐｐ２９３−２９８；Ｓｕｚｕｋｉ  ａｎｄ  Ｔａｎａｋａ，Ｎａｔｕｒｅ  １９９０，  ３４６，（６２８２），３４５−３４７）及び電場（Ｔａｎａｋａ  ｅｔ  ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９８２，２１８，４６７−９）のような特定の刺激に対する応答において変化を示す）に分類することができる。
【０１１５】
ポリ（Ｎ−アルキルアクリルアミド）は、その熱反応性が広範に研究されてきており（Ｐｅｌｔｏｎ，Ｒ．Ａｄｖ  Ｃｏｌｌｏｉｄ  Ｉｎｔｅｒｆａｃｅ  Ｓｃｉ  ２０００，８５，（１），１−３３；Ｉｎｏｍａｔａ  ｅｔ  ａｌ．，Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ，１９９０，２３，４８８７−８）、ポリ（Ｎ−イソプロピルアクリルアミド）（ＮＩＰＡｍ）が、この群中で最も強い温度感受性を示すヒドロゲルである。粒子を含むＮＩＰＡｍは、粒子中で物理的−化学的修飾を生じる容易さについての、その安定性、均一性及び多様性のために、潜在的な生物工学的応用について非常に興味がそそられる。ＮＩＰＡｍ粒子は、溶質脱離（Ｋａｗａｇｕｃｈｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃｏｌｌｏｉｄ  ＆  Ｐｏｌｙｍｅｒ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  １９９２，２７０，（１），５３−５７；Ａｃｈｉｈａ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｏｌｙｍ．Ａｄｖ．Ｔｅｃｈｎｏｌ，１９９５，６，（７），５３４−５４０；Ｄｅｌａｉｒ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃｏｌｌｏｉｄｓ  ａｎｄ  Ｓｕｒｆａｃｅｓ  Ａ：Ｐｈｙｓｉｃｏｃｈｅｍｉｃａｌ  ａｎｄ  Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ  Ａｓｐｅｃｔｓ  １９９９，１５３，（１−３），３４１−３５３；Ｍａｔｔｉａｓｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ｎａｔ．Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ２００７，２，（１），２１３−２２０；Ｓｐａｒｎａｃｃｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ  Ｂｉｏｍａｔｅｒ  Ｓｃｉ  Ｐｏｌｙｍ  Ｅｄ  ２００５，１６，（１２），１５５７−７４；Ｈａｒｕｙｕｋｉ  Ｈｉｒａｔａｎｉ，Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ  ２００５，５，（８），７２８−７３３；Ｎａｈａｒ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃｒｉｔ  Ｒｅｖ  Ｔｈｅｒ  Ｄｒｕｇ  Ｃａｒｒｉｅｒ  Ｓｙｓｔ  ２００６，２３，（４），２５９−３１８；Ｗｕ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ  Ｒｅｌｅａｓｅ  ２００５，１０２，（２），３６１−３７２；Ｚｈａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ  ２００５，２６，（１６），３２９９−３０９；Ｗｏｏ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｈａｒｍ  Ｒｅｓ  ２００１，１８，（１１），１６００−６；Ｂａｓｉｎｓｋａ，Ｍａｃｒｏｍｏｌ  Ｂｉｏｓｃｉ２００５，５，（１２），１１４５−６８）、細胞との相互作用（Ａｃｈｉｈａ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｏｌｙｍ．Ａｄｖ．Ｔｅｃｈｎｏｌ，１９９５，６，（７），５３４−５４０）、及びハイブリダイゼーションのための固相としてのオリゴデオキシリボヌクレオチド（ＯＮＤ）との結合（Ｄｅｌａｉｒ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃｏｌｌｏｉｄｓ  ａｎｄ  Ｓｕｒｆａｃｅｓ  Ａ：Ｐｈｙｓｉｃｏｃｈｅｍｉｃａｌ  ａｎｄ  Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ  Ａｓｐｅｃｔｓ  １９９９，１５３，（１−３），３４１−３５３）のために、遅延した放出及び標的として放出の薬剤送達のために研究されてきた。大きさ及び空隙率は温度により調整することができるので、化学物質の取り込み及び放出を調製するための温度処理の使用は、薬物放出の制御のための媒体としての最も広範に特徴づけられたＮＩＰＡｍ粒子の応用の１つである（Ｓｐａｒｎａｃｃｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ  Ｂｉｏｍａｔｅｒ  Ｓｃｉ  Ｐｏｌｙｍ  Ｅｄ  ２００５，１６，（１２），１５５７−７４；Ｈａｒｕｙｕｋｉ  Ｈｉｒａｔａｎｉ，Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ  ２００５，５，（８），７２８−７３３；Ｎａｈａｒ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃｒｉｔ  Ｒｅｖ  Ｔｈｅｒ  Ｄｒｕｇ  Ｃａｒｒｉｅｒ  Ｓｙｓｔ  ２００６，２３，（４），２５９−３１８；Ｗｕ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ  Ｒｅｌｅａｓｅ  ２００５，１０２，（２），３６１−３７２；Ｚｈａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ  ２００５，２６，（１６），３２９９−３０９；Ｗｏｏ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｈａｒｍ  Ｒｅｓ  ２００１，１８，（１１），１６００−６；Ｂａｓｉｎｓｋａ，Ｍａｃｒｏｍｏｌ  Ｂｉｏｓｃｉ  ２００５，５，（１２），１１４５−６８）。
【０１１６】
本研究においては、親和性バイト及び所定の空隙率を有するヒドロゲル粒子が開発され、ａ）血清タンパク質、ペプチド及び代謝産物の低分子量画分の迅速かつ一工程隔離、ｂ）溶液からの標的分子の除去及び濃縮、及びｃ）酵素分解からの捕獲タンパク質の保護を示した。
【０１１７】
その高い水分含有量、同調可能な空隙率、合成に続く一貫性及び均一性、凍結乾燥に続く機能的再構成のため、ＮＩＰＡｍをベースとする粒子が選択される。架橋剤の割合及び温度を代えることにより、粒径及び有効空隙率を制御することが可能である。本明細書で研究された応用についての著しい利点は、そのオープン構造、高い水分含有量、ポリマー中で置換し得る二重の疎水性及び親水性化学的部分、並びに大きい表面積のために、分子を迅速に取り込む、これらの粒子の能力である。これは、溶液中の不安定な低分子量タンパク質の迅速な収集及びタンパク質の分解からの保護という目的のための重大な要求である。ＮＩＰＡｍの小さいサイズ、粒子径の均一性及びバッチ毎の再現性は、フローサイトメトリーにおける応用について特別な利益をもたらす。
【０１１８】
実施例４−ヒドロゲル粒子の合成及び特徴づけ
Ｎ−イソプロピルアクリルアミド（ＮＩＰＡｍ）を製造し、分子ふるい特性について評価した。ＮＩＰＡｍ及びアクリル酸（ＡＡｃ）をいずれも含む第二の粒子クラス、ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃを製造し、図１に示すように、電荷に基づいた親和性バイトを粒子中に導入した（Ｐｅｌｔｏｎ，Ａｄｖ  Ｃｏｌｌｏｉｄ  Ｉｎｔｅｒｆａｃｅ  Ｓｃｉ  ２０００，８５，（１），１−３３；Ｊｏｎｅｓ  ａｎｄ  Ｌｙｏｎ，Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ  ２０００，３３，（２２），８３０１−８３０６；Ｓａｕｎｄｅｒｓ  ａｎｄ  Ｖｉｎｃｅｎｔ，Ａｄｖａｎｃｅｓ  ｉｎ  Ｃｏｌｌｏｉｄ  ａｎｄ  Ｉｎｔｅｒｆａｃｅ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  １９９９，８０，（１），１−２５）。
【０１１９】
Ｎ−イソプロピルアクリルアミド（ＮＩＰＡｍ）粒子を得るため、ＮＩＰＡｍ（１．４ｇ）及びＢＩＳ（０．０４ｇ）を１５０ｍＬの水に溶解し、メンブランフィルター（Ｐａｌｌ  Ｇｅｌｍａｎ  Ｍｅｔｒｉｃｅｌ）を通し、２回ろ過した。溶液を減圧下で少なくとも２０分間脱気した。次いで、ＳＤＳ（０．０５７ｇ）をモノマー溶液に溶解し、再度ろ過した。ろ過の間、４０ｍＬの水を用いて移動及び線上した。溶液を、中程度の速度で攪拌しながら（Ｃｏｎｉｎｇ磁気攪拌子）、コンデンサー及び温度計を備えた２５０ｍＬの３ツ口フラスコに入れた。窒素雰囲気下、溶液を７０℃で１時間加熱した。安定した最大攪拌速度に到達し、１０ｍＬの脱気水に溶解したＡＰＳ（０．０６９ｇ）を加えることにより重合を開始した。窒素雰囲気下、反応を７０℃の温度で続行した。ＮＩＰＡｍ／アクリル酸（ＡＡｃ）粒子を、上記ＮＩＰＡｍ粒子と同じ反応条件を用いて製造した。ＮＩＰＡｍ（１．３ｇ）、ＢＩＳ（０．１０ｇ）及びＡＡｃ（０．０７２ｇ）を１５０ｍＬの水に溶解することにより初期モノマー溶液を得た。頻繁に交換する攪拌した水に対し、４℃で２週間、透析（Ｓｐｅｃｔｒａ／Ｐｏｒ  ７  ｄｉａｌｙｓｉｓ  ｍｅｍｂｒａｎｅｓ，ＭＷＣＯ  １０，０００，ＶＷＲ）することにより全ての粒子を精製した。
【０１２０】
実施例５−温度及びｐＨに依存する粒径
温度及びｐＨに依存する粒径を、Ｐｈｏｔｏｎ  Ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ  Ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ（ＰＣＳ，Ｓｕｂｍｉｃｒｏｎ  Ｐａｒｔｉｃｌｅ  Ｓｉｚｅ  Ａｎａｌｙｚｅｒ，Ｂｅｃｋｍａｎ  Ｃｏｕｌｔｅｒ）により測定した。２００秒積分時間を用いた３回の測定について平均値を計算し、各測定前に１０分間、溶液を熱的に平衡化した。次いで、測定した値を、ストークス−アインシュタインの関係により粒径に変換した（Ｐｅｃｏｒａ，Ｄｙｎａｍｉｃ  Ｌｉｇｈｔ  Ｓｃａｔｔｅｒｉｎｇ：Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ  ｏｆ  Ｐｈｏｔｏ  Ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ  Ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ．Ｓｐｒｉｎｇｅｒ：１９８５；ｐ４３６）。温度の上昇に従い、ＮＩＰＡｍの粒径は小さくなり（図２Ａ）、これは熱反応性ヒドロゲルの独特の特性である（Ｓｐａｒｎａｃｃｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ  Ｂｉｏｍａｔｅｒ  Ｓｃｉ  Ｐｏｌｙｍ  Ｅｄ  ２００５，１６，（１２），１５５７−７４；Ｈａｒｕｙｕｋｉ  Ｈｉｒａｔａｎｉ，Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ  ２００５，５，（８），７２８−７３３；Ｎａｈａｒ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃｒｉｔ  Ｒｅｖ  ＴｈｅｒＤｒｕｇ  Ｃａｒｒｉｅｒ  Ｓｙｓｔ  ２００６，２３，（４），２５９−３１８；Ｗｕ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ  Ｒｅｌｅａｓｅ  ２００５，１０２，（２），３６１−３７２；Ｚｈａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ  ２００５，２６，（１６），３２９９−３０９；Ｗｏｏ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｈａｒｍ  Ｒｅｓ  ２００１，１８，（１１），１６００−６）。ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子は、粒径に関して同じ温度依存性を示したが、それらはｐＨ依存挙動をも示した（図２Ｂ）。低いｐＨ（３．５）においては、ＡＡｃ基はプロトン化され、温度依存性のＮＩＰＡｍ／ＡＡｃの粒径は、誘導体化されていない粒子と同じである。より高いｐＨ（４．５及び６．５）においては、ＡＡｃ基は部分的にプロトン化され、粒子中の対イオン侵入により得られるポリマー鎖及び浸透圧の間のクーロン力相互作用のために平均粒径が大きくなっていると思われる（Ｆｅｒｎａｎｄｅｚ−Ｎｉｅｖｅｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ  ２０００，３３，２１１４−２１１８；Ｉｔｏ  ｅｔ  ａｌ．，Ｌａｎｇｍｕｉｒ  １９９９，１５，（１２），４２８９−４２９４）。
【０１２１】
ＮＳＣＲＩＰＴＯＲ（登録商標）ＤＰＮ（登録商標）Ｓｙｓｔｅｍ（Ｎａｎｏｌｎｋ）を用いて、原子間力顕微鏡（ＡＦＭ）により粒子を更に特徴づけた。３００ｋＨｚの共振周波数及び１０ｎｍより小さい半径でシリコンチップを用いてＡＣモードで画像を得た。１％ｗ／ｖの粒子の一定量（５０μＬ）を新たに開裂した雲母の上に蒸着し；試料を、室温で湿気の多い条件に１０分間インキュベートし、蒸着を可能にし、次いで窒素フローの下で乾燥させた。これらの粒子のＡＦＭ画像（図２Ｃ及び２Ｄ）は、それらがサイズにおいて一様であり、粒子の直径が光散乱で測定したものと一致していることを示す。
【０１２２】
実施例６−ヒドロゲル粒子による分子ふるい
図３に概略的に示したように、溶液中で、ＮＩＰＡｍ粒子を分子ふるい特性について試験し；ペプチドームがバイオマーカー源を豊富に含むと考えられるので（Ｔｉｒｕｍａｌａｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ＆  ｃｅｌｌｕｌａｒ  ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ  ２００３，２，（１０），１０９６−１０３；Ｍｅｒｒｅｌｌ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  ｂｉｏｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ  ２００４，１５，（４），２３８−４８；Ｏｒｖｉｓｋｙ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ  ２００６，６，（９），２８９５−９０２）、目的は、タンパク質及び２０，０００Ｄａ未満の分子量を有する低分子化合物を捕獲する粒子を作成することである。
【０１２３】
このサイズ範囲は、２−Ｄゲル電気泳動又はカラムクロマトグラフィーを用いて適切な生産量を伴う複合タンパク質混合物（例えば血清又は血漿）から分離することが困難であるか、もしそうでないなら不可能である、有益なタンパク質、ペプチド及び代謝産物を含む。粒子中の架橋の程度は、粒子のカットオフポアサイズよりも小さいサイズの分子を捕獲している間に、アルブミン及び他の大量にある分子の排除を可能にする。効果的な２０，０００Ｄａの排除ポアサイズを示すものが確認されるまで、種々の架橋の程度を有する粒子を調査した。更に、粒子を、粒子をそのふるい効率を評価するために調査した。血清アルブミンは、興味のあるタンパク質及びペプチドと比べ大量に（１０６〜１０９倍）存在するので、アルブミン排除の効果及び完全性を調べる必要がある。
【０１２４】
２種の独立した方法：フローサイトメトリー及びゲル電気泳動を用いて、分子ふるい特性を測定した。
一定量のＮＩＰＡｍ粒子（５０μＬ，１０ｍｇ／ｍＬ）を、標的分子種とインキュベートし、粒子を収集した（７分、２５℃、１６，１００ｒｃｆ）。上清を除去し、粒子を１ｍＬの水に再懸濁した。遠心分離及び洗浄を３回繰り返し、粒子の蛍光強度を、ＦＡＣＳｃａｎフローサイトメトリー（Ｂｅｃｔｏｎ  Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）を用いて測定した。未処理の粒子のバックグラウンド蛍光シグナルを、全ての測定の基準として用いた。フルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ、ＭＷ  ３８９Ｄａ）を、小さい分子の取り込み、並びにインキュベーション時間及び濃度における取り込みの依存を試験するためのモデルとして用いた。種々の濃度（５μＭ、２０μＭ及び１００μＭ）のＦＩＴＣとインキュベートした粒子は、飽和に向かって濃度依存的取り込み速度を示した（図４Ａ）。経時変化試験は、ＦＩＴＣの取り込みが１０％ｖ／ｖ粒子濃度において急速に起こることを示した（図４Ｂ）。
【０１２５】
図５Ａ及び５Ｂに示すように、ＦＩＴＣ−ＢＳＡ（ＭＷ６６，０００Ｄａ）とインキュベートした粒子は、粒子のバックグラウンドの蛍光と比較し、蛍光シグナルにおいて検出可能なシフトを示さず、これは、検出可能なＢＳＡの取り込みがないか、粒子による特異的結合がないことを示す。一方、ＦＩＴＣ−インシュリン（ＭＷ３，５００Ｄａ）とのインキュベーションは、コントロールと比較し、蛍光において右方移動をもたらし、粒子によるインシュリンの取り込みが裏付けられた。ＦＩＴＣ単独（ＭＷ３８９Ｄａ）、多くの代謝産物の粒径範囲における分子、及びＦＩＴＣ−ミオグロビン（ＭＷ１７，０００Ｄａ）、粒子の効果的なサイズカットオフより小さい他のタンパク質は、いずれも急速に捕獲された。
【０１２６】
これらの研究結果は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析により確認された。タンパク質溶液とのインキュベーション及び洗浄後に、粒子を直接ゲルに積層した。インシュリン（図５Ｃ）及びミオグロビン（図５Ｄ）は粒子により捕捉されたが、ＢＳＡは全体的に排除された（図５ＦＤ）。
【０１２７】
実施例７−分子ふるい粒子への帯電したバイトの取り込みは、取り込みを有意に増進する
粒子中に捕獲されたタンパク質の濃度は、タンパク質の排出速度、及び粒子の侵入速度及びバルク溶液中の標的タンパク質濃度の間の平衡に依存依存するので、不活性の分子ふるいは、溶液中の全ての標的タンパク質を直接的に収集及び濃縮するこができない。その結果、標的タンパク質の収集を容易にし、捕獲したタンパク質が粒子から排出されるのを防止するために親和性バイトを取り込んだ粒子が構成された。
【０１２８】
正の正味電荷を有するタンパク質及び分子のためのバイトとして負に帯電する部分が選択された。粒子内への負に帯電したバイトの取り込みは、粒子が正に帯電したタンパク質、ペプチド及び他の生体分子を優先的に隔離及び濃縮することを可能にする。従って、粒子は、３．５よりも大きいｐＨ値において大きい負の正味電荷を有する、ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃコポリマーをベースにして製造された。図６に概略的に示したように、原則として、帯電したバイトの存在は、Ｋｅｑを十分に向上させ、その結果、粒子外部の溶液と比べ、粒子内部における標的タンパク質の著しく高い濃縮を達成する。
【０１２９】
図７Ａに示すように、ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子は、所望でないＮＩＰＡｍ粒子と比較し、十分に効率よく溶液から検体を濃縮した。ＮＩＰＡｍ及びＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子の懸濁液（１０ｍｇ／ｍＬ）を、ミオグロビン（ＭＷ１７，０００Ｄａ，水中で２０μＭ）と１時間インキュベートした。ＮＩＰＡｍ粒子とのインキュベーションに次ぎ、有意なレベルのミオグロビンがバルク溶液中に残存し、多少のタンパク質が粒子に結合しており、アニオン性親和性バイトを欠如していた（図７Ａ）。アニオン性親和性バイトを含むＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子とのインキュベーション後、全てのミオグロビンはＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子に捕獲され、バルク溶液には検出可能なミオグロビンは残存していなかった。ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子の連続希釈についてのミオグロビンのバンドの強度ＮＰＩＡｍ粒子の強度と関連させることは、ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子が、親和性バイトを欠如する粒子と比較し、１２８倍優れた効率でミオグロビンを隔離することを示す。
【０１３０】
ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子に関連する優れたタンパク質取り込みが実施されることを証明するため、ｐＨ５．５又はｐＨ８のいずれかまで滴定したリン酸バッファー中、ミオグロビン（２０μＭ）及びＢＳＡ（２０μＭ）を含む溶液の一定量を、ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子とインキュベートした（図７Ｂ）。遠心分離により粒子を分離し、ＭｉｌｌｉＱ水で３回洗浄した。ｐＨ５．５で、ミオグロビン（ｐＩ７）は正に帯電していると予想され、タンパク質とＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子の負に帯電したカルボキシル基との間の静電相互作用は魅力的である。しかし、ｐＨ８においては、ミオグロビンは負に帯電し、アニオン性粒子とのあらゆる静電相互作用は、実際に反発的である。これらの予想に一致し、ミオグロビンは、タンパク質及び粒子が反対の正味電荷を有するｐＨ５．５でＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子により効果的に隔離され、ｐＨ８においては、ミオグロビンとインキュベートしたミオグロビンが粒子中に検出されなかった（図７Ｂ）。
【０１３１】
約２０，０００Ｄａより小さいＭＷを有するタンパク質及びペプチドを結合及び濃縮するためのＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ親和性粒子の効果を図８Ａに示す。ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ及びＮＩＰＡｍ粒子を、Ｔｒｉｓ（ｐＨ７，５０ｍＭ）中で、それぞれライソザイム（２０μＭ）及びＢＳＡ（２０μＭ）と１時間インキュベートした。次いで、粒子を１ｍＬ容量の水で洗浄し、捕獲されたタンパク質をＳＤＳポリアクリルアミドゲル上で電気泳動した。
【０１３２】
ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子は、溶液中に存在する全てのライソザイムを捕獲すると思われるが、ＢＳＡが粒子によって非特異的に結合することは示されなかった。ミオグロビンで観察されたように、親和性バイトを欠如するＮＩＰＡｍは、ライソザイムを有意に濃縮するとは思われなかった。
【０１３３】
タンパク質分子量マーカーの溶液を、粒子により隔離されるタンパク質の分子量カットオフ（ＭＷＣＯ）を更に評価するために用いた（図８Ｂ）。溶液は、以下のタンパク質：Ｔｒｉｓ（ｐＨ７，５０ｍＭ）に溶解したアプロチニン（ＭＷ６，５００Ｄａ，Ｓｉｇｍａ−  Ａｌｄｒｉｃｈ）、ライソザイム（ＭＷ１４，４００Ｄａ，Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ）、トリプシン阻害剤（ＭＷ２１，５００Ｄａ，Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）、炭酸脱水酵素（ＭＷ３１，０００Ｄａ，Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ）、オブアルブミン（ＭＷ４５，０００Ｄａ，Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ）及びＢＳＡ（ＭＷ６６，０００Ｄａ，Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）のそれぞれ０．５ｍｇ／ｍＬで構成される。タンパク質溶液とインキュベートした、ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃを含む粒子が、２１，５００Ｄａ未満のＭＷを有するタンパク質分子を捕獲及び濃縮し、２１，５００Ｄａ以上のＭＷを有するあらゆるタンパク質を結合しないことがわかった。ＮＩＰＡｍ粒子は、１４，４００Ｄａ以下のＭＷを有する、同じＭＷＣＯを示すか、１４，０００Ｄａ以上のＭＷのタンパク質を結合しない。ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ及びＮＩＰＡｍ粒子を用いて達成されたＭＷＣＯ分解能は、標準的分子ふるいクロマトグラフィー４１と関連づけられたものと好都合に比較され、又はそれを越える。ビーズの分子ふるい特性を更に測定するため、ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子を、Ｔｒｉｓ（１００ｍＭ，ｐＨ７）中、血小板由来成長因子Ｂ（０．００３ｍｇ／ｍＬ，１４，５０００Ｄａ、Ｃｅｌｌ  Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ）及びＢＳＡ（０．０６７ｍｇ／ｍＬ）とインキュベートした。洗浄工程は上述したのと同様であった。図９におけるＳＤＳ  ＰＡＧＥは、完全なＰＤＧＦの取り込み及びＢＳＡの排除を示した。ＰＤＧＦは、血中に存在する少量の低分子量タンパク質の代表的モデルであり、血中のＰＤＧＦ−Ｂ濃度は３．３ｎｇ／ｍＬである（Ｅｐｐｌｅｙ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｌａｓｔｉｃ  ａｎｄ  ｒｅｃｏｎｓｔｒｕｃｔｉｖｅ  ｓｕｒｇｅｒｙ  ２００４，１１４，（６），１５０２−８４２）。
【０１３４】
溶液の温度が変わった場合に粒径の劇的な変化が起こるので、ＭＷＣＯにおける温度の影響を調べた。前記分子量マーカーの溶液を、２５、３７及び４５℃でＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子とインキュベートし、温度はＭＷＣＯに影響を及ぼさない因子であった（データは示さず）。
【０１３５】
実施例８−血清からの隔離
次いで、前記結果に基づき、血清のような複合溶液中に混合されている小さい分子を捕獲するための粒子の性能を現実の世界のバイオマーカーの発見及びタイプの実験の解析を模倣するための試験を行った。血清で１：１０に希釈した、ＦＩＴＣ標識したインシュリンの一定量（最終濃度４０μＭ）を、ＮＩＰＡｍ及びＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子とインキュベートした。フローサイトメトリー分析は、ＦＩＴＣ−インシュリンを含む血清中でインキュベートしたＮＩＰＡｍ粒子が、コントロール粒子及び血清のみでインキュベートした粒子に比べ、蛍光強度において右方移動することを示した（図１０Ａ）。
【０１３６】
この結果は、血清のような複合マトリクスからインシュリンを捕獲する、ＮＩＰＡｍ粒子の性能を証明した。しかし、インシュリンのみを含む簡単な水溶液とインキュベートしたＮＩＰＡｍ粒子の捕獲効率は、血清とインキュベートしたＮＩＰＡｍ粒子で達成した効率よりも低かった。水溶液中で、２種のクラスの粒子が同じ取り込みを示したが、帯電したバイトを有する粒子は、誘導体化されていない粒子に比べ、血清中に含まれるインシュリンの捕獲において、より効率的であった。
【０１３７】
小さい分子、ＦＩＴＣについて得られたデータを確認し、延長するために、ＦＩＴＣ標識したインシュリン（ｐＩ５．３）とインキュベートしたＮＩＰＡｍ及びＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子についての経時変化取り込み試験を実施した。種々の時間間隔で集めた、ＦＩＴＣ標識したインシュリンとインキュベートしたＮＩＰＡｍ及びＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子のフローサイトメトリー分析と関連する蛍光強度のヒストグラムを図１１に示す。このデータは、隔離が急速に（５分）起こり、時間を越えて一定であることを示す。
【０１３８】
実施例９−バイトを含む粒子による標的タンパク質取り込みの急速な経時変化
タンパク質取り込みの反応速度論が非常に急速であることを証明するため、ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子とインキュベーションした後のバルク溶液中に残存するタンパク質量を、逆相タンパク質アレイ（ＲＰＰＡ）（Ｇｕｌｍａｎｎ  ｅｔ  ａｌ，Ｔｈｅ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  ｐａｔｈｏｌｏｇｙ  ２００６，２０８，（５），５９５−６０６）により測定した。Ｂｒａｄｆｏｒｄアッセイのような他の方法は十分な感度を有さず、我々の目的はバルク溶液からのタンパク質除去がどのように完了するかを証明することであるので、粒子上清中のタンパク質濃度を測定するための手段としてＲＰＰＡを選択した。種々の量のＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子（１１５万及び１１５０万）を、総量１００μＬのＴｒｉｓ（ｐＨ７，５０ｍＭ）中、ライソザイム（２０μＭ）と１及び１０分間インキュベートした。粒子を遠心分離した後、一定量の上清を、Ａｕｓｈｏｎ２４７０ロボットアレイヤー（Ａｕｓｈｏｎ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を用いてニトロセルロースをコーティングしたスライド（ＦＡＳＴスライド、Ｗｈａｔｍａｎ）にスポットした。アレイを、コロイド性金溶液、ＡｕｒｏＤｙｅ  Ｆｏｒｔｅ  Ｋｉｔ（Ａｍｅｒｓｈａｍ）を用いて染色し、ＰｏｗｅｒＬｏｏｋ  １１２０スキャナー（Ｕｍａｘ）を用いて画像を得、ＩｍａｇｅＱｕａｎｔ（ＧＥ  Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）を用いて画像から数値を得、ＳｉｇｍａＰｌｏｔ（Ｓｙｓｔａｔ）に供した。１分間のインキュベーション後、１１５万個の粒子を含むバルク溶液は、２８％の初期タンパク質量を、１０分後には１５％を含んでいた。更に、１及び１０分間後の１１５０万個の粒子によって回復した溶液は、それぞれ、５％及び９％の初期量を含んでいた（図１２Ａ）。全ての経時変化実験においては、溶液からの粒子の分離が遠心分離によって得られているので、報告された掲示変化値はインキュベーション時間間隔のみを意味することに注意すべきである。その上、更に７分間、溶液と接触した粒子が遠心分離のために必要であった。
【０１３９】
ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子によるタンパク質取り込みの反応速度論は、更に、粒子を、Ｔｒｉｓ（ｐＨ７，５０ｍＭ）中、室温でＢＳＡ（２０μＭ）及びライソザイム（２０μＭ）とインキュベートし、ＳＤＳ−ＰＡＧＥを用いて、１、１０、２０、３０及び６０分の時間ポイントにおけるライソザイムの取り込みを監視することにより調べた（図１２Ｂ）。この実験の結果は、ライソザイムの隔離が１分後にほとんど完了し、６０分で完了し、前述したフローサイトメトリーの経時変化試験において示したように、非常に早く起こることが確認された。予想されるように、ＢＳＡは粒子により排除され、実験の間（６０分間）、ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃによりＢＳＡは取り込まれなかった。
【０１４０】
実施例１０−血清からの低分子量かつ少量の検体の分離及び濃縮の証明
プロテオソーム解析のための血清に由来する低濃度のタンパク質バイオマーカーの候補を隔離及び濃縮するためのＮＩＰＡｍ及びＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子の能力を、水中で、１：１０ｖ／ｖの希釈で粒子と１時間インキュベートすることにより評価した。捕捉されたタンパク質を、変性条件下、粒子から電気泳動的に溶出した。粒子を、ＳＤＳ試料バッファー中、１００℃で５分間加熱し、４〜２０％Ｔｒｉｓ  Ｇｌｉｃｉｎｅゲル（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）に積載した。３０ｋＤａ未満のバンドを切り取り、ゲル内トリプシン消化を実施した（Ｃａｍｅｒｉｎｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ  Ｃｌｉｎ．Ａｐｐｌ．２００７，１，１７６−１８４）。得られたペプチド断片を、ＬＴＱ−Ｏｒｂｉｔｒａｐ質量分析計（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ）を用いて、オンライン液体クロマトグラフィー／エレクトロスプレイイオン化質量分析（ＬＣ／ＥＳＩＭＳ）により解析した。逆相カラムは、レーザーがけん引されたチップを供える１００ｍｍｉ．ｄ．×１０ｃｍの長の融合化シリカゲルキャピラリー（Ｐｏｌｙｍｉｃｒｏ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｐｈｏｅｎｉｘ，ＡＺ）中、５μｍ、２０Åのポアサイズの１８Ｃ樹脂（Ｍｉｃｈｒｏｍ ＢｉｏＲｅｓｏｕｒｃｅｓ，ＣＡ）でスラリーパックした。試料の注入後、カラムを移動相Ａ（０．１％ギ酸）で５分間洗浄し、２００ｎｌ／分で５０分間、０％移動層Ｂ（０．１％ギ酸、８０％アセトニトリル）から５０％移動相Ｂまでの、次いで更に５分間の１００％Ｂまでの直線勾配を用いてペプチドを溶出した。ＬＴＱ質量分析器を、データ依存モードにおいて操作し、それぞれ、全てのＭＳスキャン後に５種のＭＳ／ＭＳスキャンが続き、ここでは５つの最も豊富な分子イオンが、規格化された３５％の衝突エネルギーを用いて、衝突誘導性の解離（ＣＩＤ）について動的に選択される。ＭＳ／ＭＳデータを、完全なトリプシン切断条件を用いて、プログラムＳＥＱＵＥＳＴ（Ｂｉｏｗｏｒｋｓ  ｓｏｆｔｗａｒｅ，Ｔｈｅｒｍｏ）を用いたＮＣＢＩ（Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｃｅｎｔｅｒ  ｆｏｒ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ）ヒトタンパク質データベースに対してマッチさせた。高信頼性ペプチド同定は、調査結果に対して以下のフィルター：相関スコア（ＸＣｏｒｒ）＝１＋について１．９、２＋について２．２、３＋について３．５、無作為の０．０１の無作為同定について最大の可能性を適用することにより得られた。表１及び表２中で同定されたタンパク質のリストは、アルブミン及び他の大量に含まれる血清タンパク質が粒子中に存在しないことを示す。一方、同定されたタンパク質のリストは、粒子が、まれに小さいサイズの血清タンパク質及びペプチドを隔離することを示す。
【０１４１】
【表１】
0005843085.tif 000002
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表１．１：１０ｖ／ｖ希釈した血清と１時間インキュベートした後のＮＩＰＡｍ粒子から電気的に溶出したタンパク質の質量スペクトル分析、Ｐ（ｐｅｐ）は、ペプチドについての確率値を示し、Ｓｆは、タンパク質適合がどのようい良好であるかを示す最終スコアを示し、スコアは、ペプチドがスペクトルデータにランダムに適合する可能性に基づいた値を示す。受け入れ番号は、配列についてのユニークなタンパク質同定番号を示す。
【０１４２】
【表２】
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0005843085.tif 000005
0005843085.tif 000006
【０１４３】
表２．１：１０ｖ／ｖ希釈した血清と１時間インキュベートした後のＮＩＰＡｍ粒子から電気的に溶出したタンパク質の質量スペクトル分析、Ｐ（ｐｅｐ）は、ペプチドについての確率値を示し、Ｓｆは、タンパク質適合がどのようい良好であるかを示す最終スコアを示し、スコアは、ペプチドがスペクトルデータにランダムに適合する可能性に基づいた値を示す。受け入れ番号は、配列についてのユニークなタンパク質同定番号を示す。
【０１４４】
実施例１１−プロテアーゼ分解を阻止する粒子によるタンパク質隔離
体液と関連する主要な問題の１つは、収集、輸送、保存及び解析の間の試料の分解の可能性である。内因性凝固カスケード酵素、損傷された細胞から放出される酵素、外因性酵素（汚染細菌に由来する）は、図１３に概略的に示すように、診断上重要なタンパク質の分解に寄与する。
【０１４５】
標準化された保存方法の欠如は、血清及び血漿のハイスループット解析における偏りをもたらし得る（Ａｙａｃｈｅ  ｅｔ  ａｌ．，Ａｍｅｒｉｃａｎ  ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  ｃｌｉｎｉｃａｌ  ｐａｔｈｏｌｏｇｙ  ２００６，１２６，（２），１７４−８４）。粒子のＭＷＣＯ（〜２０，０００Ｄａ）より大きいＭＷを有するプロテアーゼが粒子の内部空間から排除され、その結果、捕獲されたタンパク質に接近することを拒絶することが予想されるが、トリプシン（２３，８００Ｄａ）のような、より小さいプロテアーゼは粒子に侵入できそうである。更に、基質タンパク質及び酵素の両方が粒子によって隔離された場合、帯電バイト粒子に侵入したプロテアーゼが酵素能力を保持し続けているかどうかは知られていなかった（図１２）。従って、ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子を、ライソザイム（０．５ｍｇ／ｍＬ）及びトリプシン（０．０５ｍｇ／ｍＬ，Ｐｒｏｍｅｇａ）を含むｐＨ７のＮＨ４ＨＣＯ３（１００ｍＭ）中、３７℃でインキュベートした。トリプシンは、その小さいサイズ、及びライソザイムのトリプシン消化が、非常に特徴的な切断生成物を産生するという事実に基づき、これらの研究のために選択された。この実験において用いられた条件は、ライソザイム及びトリプシンが、いずれも粒子に侵入することを可能にするであろう。１時間及び一晩のインキュベーション後のＳＤＳ  ＰＡＧＥによる捕獲タンパク質の解析は、２本のバンドのみを示し、１本はトリプシンに相当し、他方は完全長のライソザイムに相当し、これは、タンパク質の分解が起こらなかったことを示す（図１４）。ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子の非存在下での、ｐＨ７のＮＨ４ＨＣＯ３（１００ｍＭ）中、３７℃における、ライソザイム（０．５ｍｇ／ｍＬ）のトリプシン（０．０５ｍｇ／ｍＬ）とのインキュベーションは、ライソザイムの分解をもたらした。１時間及び一晩のインキュベーション後の反応物のＳＤＳ−ＰＡＧＥ解析は、明らかに低分子量ペプチドの存在を示し、これは、ライソザイムがＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子の非存在下にトリプシンによって分解されることを示す。これらの結果は、明らかに、親和性バイト粒子による低分子量タンパク質の隔離が、粒子内部に侵入することができるタンパク質を含む結合タンパク質を、プロテアーゼから効果的に隠蔽し得ることを示す。
【０１４６】
ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ親和性バイト粒子によるタンパク質の隔離に関し、更に理解するため、ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子を、１００ｍＭ  ＮＨ４ＨＣＯ３（ｐＨ７）中のＢＳＡ（０．５ｍｇ／ｍＬ）、ライソザイム（０．５ｍｇ／ｍＬ）及びトリプシン（０．０５ｍｇ／ｍＬ）の組み合わせとともに３７℃でインキュベートした。以前の保護試験と同様に、１時間及び一晩インキュベーションした後にＳＤＳ−ＰＡＧＥを用いて反応を解析した。ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子の非存在下で、大部分のＢＳＡは１時間後に消化され、完全長のＢＳＡに相当するバンドは一晩のインキュベーション後に消失した（図１４Ｂ）。以前に示したように、ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子は、ライソザイム及びトリプシンをいずれも効果的に隔離し、ライソザイムを、トリプシンのタンパク質分解から保護する。しかし、粒子はＢＳＡに結合せず、完全長のＢＳＡに相当するバンドの強度の減少に伴う１時間及び一晩のインキュベーション後の上清中の低分子量バンドの存在は、ＢＳＡがトリプシンによる分解から保護されなかったことを示す。帯電したバイト粒子による酵素の固定化が、基質タンパク質の結合からそれらを保護するので、トリプシンのような、粒子に侵入するのに十分に小さい酵素によるタンパク質分解活性の抑制が起こり、又は粒子中の親和性バイト基による基質の捕捉と関連する立体障害の結果であり得、その結果として、粒子中の生産的に結合した標的タンパク質から酵素を抑制する。
【０１４７】
酵素的分解の産物が前記結果に明らかに示されていたとしても、ライソザイムの広がった状態は、トリプシンのタンパク質分解に抵抗性があることが知られている（Ｎｏｄａ  ｅｔ  ａｌ．，Ｂｉｏｐｏｌｙｍｅｒｓ，１９９４，３４，（２），２１７−２２６）。従って、粒子とのインキュベーションは、あらゆる偏りを排除するために、還元及びアルキル化されたライソザイムを用いて繰り返した。ライソザイムは、尿素（２Ｍ）を含むＮＨ４ＨＣＯ３バッファー（５０ｍＭ，ｐＨ８）中のジチオスレイトール（ＤＴＴ）（１０ｍＭ）を用いて室温で１時間インキュベーションすることにより還元した。最終濃度が５０ｍＭとなるように、溶液にヨードアセトアミドを加え、暗所で３０分間反応させた。バッファーを交換し、３，０００ＤａのＭＷＣＯを有するＣｅｎｔｒｉｃｏｎ遠心フィルターユニット（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）を用いて、ＭｉｌｌｉＱ水でタンパク質を洗浄した。ライソザイムを、ＮＨ４ＨＣＯ３（ｐＨ８，１００ｍＭ）に、推測される最終濃度が０．５ｍｇ／ｍＬとなるように再懸濁した；トリプシン（０．０５ｍｇ／ｍＬ）及びＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子を加え、溶液を３７℃で１時間インキュベートした。既に記載したようにして粒子を洗浄し、ＳＤＳ  ＰＡＧＥに積載した。図１５Ａにおいて、還元及びアルキル化された形態であっても、ライソザイムを分解から保護し得ることが示される。
【０１４８】
タンパク質分解からの保護のメカニズムを更に理解するために、単なる粒子を用いて実験を実施した。ＮＩＰＡｍ粒子を、還元及びアルキル化されたライソザイム（０．５ｍｇ／ｍＬ）及びトリプシン（０．０５ｍｇ／ｍＬ，）を含むｐＨ７のＮＨ４ＨＣＯ３（１００ｍＭ）溶液中、３７℃で１時間インキュベートした。結果を図１５Ｂに示し、粒子内部に分解したライソザイムの産物を示した。
【０１４９】
液体から低分子量分子検体及びバイオマーカーの候補を収集し濃縮し、少量かつ低分子量化合物の高スループット解析を可能にするための新規な手段としてヒドロゲルバイト−含有粒子の開発及び応用を開示した。これらのナノ粒子は、原料のままの体液中の直接的有用性のための迅速かつ直接的なワークフローを示すが、明細書に開示された作業は、優先的にカチオン性種に結合する負電荷を有する粒子を開示し、ＮＩＰＡｍ／アリルアミンコポリマーのような正に帯電した粒子は、体液からアニオン性種を選択的に収集及び濃縮するために用いることができた。同様に、疎水性代謝産物は、ＮＩＰＡｍ／スチレンコポリマーのような更に疎水性の粒子を用いることにより、総合的なメタボロミクスのために捕獲することができた。検体特異的な化学物質又はタンパク質又は核酸親和性バイトを取り込むことができる。例えば、糖類を結合することが知られているボロン酸含有粒子は、溶液からの糖タンパク質を隔離するために用いることができる（Ｉｖａｎｏｖ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ｒｅｃｏｇｎｉｔｉｏｎ  ２００６，１９，（４），３２２−３１）。その結果、アニオン性タンパク質のためのバイトを含むＮＩＰＡｍ−アリルアミンコポリマーが、現在合成されている。更に、ｐ−ビニルフェニルボロン酸（ＶＰＢＡ）は、糖類及び核酸の収集のためのコポリマーとして考慮中である。トリアジニルをベースとする色素（タンパク質に対する親和性を有する）、ヘキサデシルアミン（脂質の取り込みのため）及びシクロデキストリン（低分子量の分子と関連し得る）のような、更なる親和性バイトは、粒子内で非共有的又は共有的に結合している。特に、前記バイト化合物は、以下の低分子量代謝産物、すなわち、Ｌ−ドーパ、ホモゲンチジン酸、ドーパミン、ドーパミン中間代謝物（Ｄｏｐａｃ）及び５−ヒドロキシインドール酢酸を収集するために用いられる。これは、メタボロミクスの領域に対する技術の有用性を広げる。
【０１５０】
一段階工程におけるサイズふるい分け手段の種々の親和性化学物質への結合は、疾患マーカーの発見及び分析ワークフローのための莫大な有用性を有し得る。
【０１５１】
本研究において示されるワークフローにおいては、タンパク質は粒子から溶出された時に変性しており、バイオマーカーの発見のための質量分析において分析される。それにもかかわらず、収集条件が天然のタンパク質混合物を用いて実施されることに気づくことが重要である。これは、興味のある検体を天然の状態で要求する、更なる応用を可能にする。これらの応用のため、タンパク質が粒子から放出される時に変性されていないことが重要である。Ａｈｍａｄ及び共同研究者らは、円偏光二色法を用い、薬剤送達のための分子が、天然の立体配座状態を維持し続け、温度変化によりＮｉＰａｍ粒子から放出されることを証明した（Ａｈｍａｄ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃｏｌｌｏｉｄ  ＆  Ｐｏｌｙｍｅｒ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２００２，２８０，（４），３１０−３１５）。その結果、粒子から天然のタンパク質を溶出される可能な手段は、界面活性剤の非存在下に、非変性条件下、溶液の温度又はｐＨを変更し、イオン強度を上昇させ、又はタンパク質を電気的に溶出させることを含む。
【０１５２】
実施例１２−ＮＩＰＡｍ／Ａｃｃコア−ＮＩＰＡｍシェル粒子の合成
この実践的な構造において、親和性バイト部分を含むコアは、ＮＩＰＡｍシェルによって包囲される。ＮＩＰＡｍシェルの分子ふるい性能はコア、並びに存在し、コア中で親和性バイトに結合するための、意図する少量かつ低分子量の分子標的と競合し得る大きい分子に由来する親和性バイト基を遮蔽するであろう。シェル溶液は、ＮＩＰＡｍ、それぞれＨ２Ｏ中の０．０２モル同等物のＢＩＳ及びＳを溶解し、この溶液を博膜フィルターでろ過することにより製造した。減圧下、数分間、溶液を脱気し、室温で攪拌しながら２時間窒素でパージした。シェル溶液をパージしながら、ＮＩＰＡｍ、０．０８モル同等物のＡＡｃ及び０．０２モル同等物のＢＩＳをＨ２Ｏ中に溶解し、溶液をろ過することによりコア溶液を調製した。次いで、コア溶液を脱気し、ＮＩＰＡｍ粒子の製造について記載したようにして、７０℃で窒素でパージした。いったん、溶液が７０℃で平衡に達し、窒素雰囲気下で１時間攪拌したら、ＡＰＳ（０．００５モル同等物）をコア溶液に加えた。ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃコア反応物を、窒素雰囲気下、７０℃で３時間インキュベートした後、シェル溶液を、次いで、ＡＰＳの追加の一定量を反応フラスコに加えた。次いで、反応物を窒素雰囲気下、７０℃で更に３時間攪拌した。この時点で、反応物を熱から取り出し、窒素雰囲気下、室温で一晩攪拌した。次いで、ＮＩＰＡｍ粒子について記載したようにして、粒子を集め、洗浄した。
【０１５３】
実施例１３−コアシェル粒子は、ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃと同じ分子ふるいカットオフを有していた。
コアシェルの直径の光散乱測定は、ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃコアについて１０４８ｎｍ及びＮＩＰＡｍシェルを加えた時に１１９８ｎｍの値を示した。コアシェル粒子が、ＮＩＰＡｍ／ＡＡｃ粒子と同じ分子量カットオフ（ＭＷＣＯ）を有するかどうかを調べるために、タンパク質分子量パーカーの溶液を用いた。溶液は、Ｔｒｉｓ（ｐＨ７，５０ｍＭ）に、溶解した、アプロチニン（ＭＷ６，５００Ｄａ，Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ）、ライソザイム（ＭＷ１４，４００Ｄａ，Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ）、トリプシン阻害剤（ＭＷ２１，５００Ｄａ，Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）、炭酸脱水酵素（ＭＷ３１，０００Ｄａ，Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ）、オブアルブミン（ＭＷ４５，０００Ｄａ，Ｓｉｇｍａ−  Ａｌｄｒｉｃｈ）及びＢＳＡ（ＭＷ６６，０００Ｄａ，Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を、それぞれそれぞれ０．５ｍｇ／ｍＬで含む。インキュベーション時間は１時間であり、原稿に記載されたようにして粒子を洗浄した。ＳＰＤ  ＰＡＧＥ分析は、図１６において、２種の粒子について、ＭＷＣＯ値の実質的な一致を示した。
【０１５４】
実施例１４−コアシェル粒子は、キモトリプシン酵素分解からライソザイムを保護する。
他のプロテアーゼ、α−キモトリプシン（ＭＷ２５，０００Ｄａ，ｐＩ＝８．７５，Ｓｉｇｍａ）を、分解からタンパク質を保護する粒子の能力を証明するために用いた。ライソザイムの消化は、１０ｍＭ  ＣａＣｌ２を含む１００ｍＭ  Ｔｒｉｓ  ＨＣｌ，ｐＨ７．８中、３０℃で３０分間実施した。コアシェル粒子を、前述の消化条件中、ライソザイム及びトリプシンとインキュベートした。このケースにおいては、粒子は、キモトリプシン分解からライソザイムを保護した（図１７、レーン５）。ライソザイム分解は、粒子なしのインキュベーションにおいても明らかである（図１７、レーン３）。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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