(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
（i）標的タンパク質の凝集を阻害するため、
（ii）変性した標的タンパク質のリフォールディングさせるため、
（iii）標的タンパク質の変性の予防するため、
（iv）品質管理のために、折りたたまれていないか、変性した標的タンパク質を検出するため、または
（v）標的タンパク質を安定化するため
のインビトロの薬剤であって、配列番号１のアミノ酸配列を有するタンパク質を含んでなる、薬剤。
【請求項２】
配列番号１のアミノ酸配列を有するタンパク質と標的タンパク質とのモル比が、２５：１〜１：１００である、請求項１に記載の薬剤。
【請求項３】
タンパク質ミスフォールディング病の予防及び／又は治療に用いるための医薬であって、配列番号１のアミノ酸配列を有するタンパク質を含んでなる、医薬。
【請求項４】
タンパク質ミスフォールディング病が、アルツハイマ病及びウシ海綿状脳症からなる群から選択される、請求項３に記載の医薬。
【請求項５】
タンパク質ミスフォールディング病が、発熱、タバコ、アルコールまたは酸素のフリーラジカルにより生じる、請求項３に記載の医薬。
【請求項６】
（i）配列番号１のアミノ酸配列を有するタンパク質と、
（ii）凝集または変性しやすい標的タンパク質と
を含んでなる、組成物。
【請求項７】
標的タンパク質が、クエン酸合成酵素、ルシフェラーゼ又はインスリンである、請求項６に記載の組成物。
【請求項８】
（i）配列番号１のアミノ酸配列を有するタンパク質と、
（ii）標的タンパク質と
を含んでなる生物学的又は診断キット。
【請求項９】
標的タンパク質が、レポーター酵素に連結した抗体である、請求項８に記載のキット。
【請求項１０】
配列番号１のアミノ酸配列を有するタンパク質と標的タンパク質とを含んでなる複合体の形成が、標的タンパク質の折りたたまれていない状態又は変性状態を示す、請求項８に記載のキット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、フィブリノーゲン４２０及びその活性ドメインの新規用途に関する。
【背景技術】
【０００２】
凝固因子Ｉとしても知られているフィブリノーゲンは、血液凝固プロセスにおいて重要なタンパク質である。フィブリノーゲンの分子量は、約３４０，０００ダルトンであり、ジスルフィド結合によって結合されて二量体を形成する２つのサブユニットから構成される。各サブユニットは、それぞれ、Ａ鎖、Ｂ鎖、Ｃ鎖と呼ばれる３本の絡み合ったポリペプチド鎖からなる。凝固プロセスにおいて、フィブリノーゲンは、トロンビンによって分解されてフィブリンを生成して、不溶性フィブリンポリマーを形成する。次いで、フィブリンポリマー線維及び血小板の組成物が、固体の止血栓を形成する。また、フィブリノーゲンは、ストレスタンパク質でもあり、その血液中の含有量は、約１．５ｍｇ／ｍＬ〜４ｍｇ／ｍＬである。フィブリノーゲンの含有量は、免疫状態に関連し、これは、心血管疾患のリスクも反映している場合がある。
【０００３】
フィブリノーゲン４２０は、フィブリノーゲンのサブタイプであり、Ａ鎖のＣ末端が、通常のフィブリノーゲンよりもさらに伸長し球状ドメインを形成する。この球状ドメインの伸長は、アルファＥＣドメインと呼ばれ、Ｂ鎖、Ｃ鎖の末端における球状ドメインと高い相同性を有する。フィブリノーゲン４２０の分子量は、約４２０，０００ダルトンであり、一般的な組織フィブリノーゲンの分子量（３４０，０００ダルトン）とは異なる。
【０００４】
タンパク質ミスフォールディング病は、組織において特定のタンパク質の立体構造が変化することに起因し、その間にタンパク質が集まってアミロイドーシスを生じさせ、最終的には、アルツハイマー病及びウシ海綿状脳症等の、組織及び器官における病理学的変化を有する分類の疾患を引き起こす。これまで、これら疾患の有効な予防的処置又は治療は存在しなかった。モノクローナル抗体技術、小分子、合成ポリペプチド等の既存の方法は、免疫拒絶反応、汎用性が低い、重篤な副作用、及びインビボにおける半減期が短い等を含む多くの問題点を有している。
【０００５】
身体が刺激を受けたときに、高温、フリーラジカル、有機溶媒（例えば、エタノール）、及び他のダメージから細胞内タンパク質を保護する多数の熱ショックタンパク質又はシャペロンが細胞内に豊富に存在する。しかし、熱ショックタンパク質は、循環系には存在しない。身体が細胞外タンパク質を保護する機構は、明らかになっていない。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明の目的は、フィブリノーゲン４２０及びその活性ドメインの新規用途を提供することにある。
【図面の簡単な説明】
【０００７】
【図１】図１は、フィブリノーゲン４２０又はアルファＥＣドメインタンパク質が、クエン酸合成酵素の熱変性及び凝集を阻害できることを示す。
【図２】図２は、アルファＥＣドメインタンパク質が、クエン酸合成酵素の化学変性及び凝集を阻害することを示す。
【図３】図３は、フィブリノーゲン４２０が、クエン酸合成酵素の熱変性及び不活化を阻害することを示す。
【図４】図４は、アルファＥＣドメインタンパク質が、クエン酸合成酵素の熱変性及び不活化を阻害することを示す。
【図５】図５は、アルファＥＣドメインタンパク質が、変性しているクエン酸合成酵素タンパク質を特異的に認識することを示す。
【発明を実施するための形態】
【０００８】
本発明者らによる研究において、フィブリノーゲン４２０が、分子シャペロン活性及び広範囲に使用できる非特異的保護効果を有することが示された。フィブリノーゲン４２０は、ヒトの内因性タンパク質であるので、体内で速やかに分解されず、免疫拒絶を引き起こさない。フィブリノーゲン４２０は、変性タンパク質の適切なリフォールディングを促進し、並びにタンパク質の立体構造及び機能を安定化させることができる。したがって、タンパク質のリフォールディング、品質管理における変性タンパク質の検出、及びタンパク質の変性防止等の応用において広く用いることができる。記載されるタンパク質は、組換えタンパク質であっても、天然タンパク質であってもよい。
【０００９】
フィブリノーゲン４２０分子は、アルファＥＣドメインタンパク質を含み、個々のアルファＥＣドメインタンパク質が、インタクトなフィブリノーゲン４２０と同一又は類似の機能を有する。アルファＥＣドメインタンパク質のアミノ酸配列を配列番号１に示す。フィブリノーゲン４２０の具体例は、特に、ヒトフィブリノーゲン４２０である。
【００１０】
フィブリノーゲン４２０又はアルファＥＣドメインは、使用するためのタンパク質試薬に調製することができる。記載されるタンパク質試薬は、少なくともフィブリノーゲン４２０又はアルファＥＣドメインタンパク質を含み、前記タンパク質試薬は、他の溶媒及び添加剤を含んでいてもよい。作用する他のタンパク質対フィブリノーゲン４２０又はアルファＥＣドメインタンパク質の比が２５：１〜１：１００である場合、特に、１：１である場合、良好な結果が得られると予測される。最良の比は、特定の用途の要件に依存する。
【００１１】
また、本発明は、フィブリノーゲン４２０又はアルファＥＣドメインタンパク質が、変性タンパク質の凝集を阻害し、その上タンパク質の活性を保護できることを示す。したがって、本発明は、タンパク質の立体構造に関連する疾患を治療するための医薬として用いることができる。
【００１２】
ここで、タンパク質変性病を治療するための医薬は、活性成分としてフィブリノーゲン４２０又はアルファＥＣドメインタンパク質を含む。記載されるタンパク質変性病を治療するための医薬は、発熱、タバコ、アルコール、酸素のフリーラジカル、及び他の有害物質によって引き起こされるタンパク質の変性等の様々な理由で生じるタンパク質変性疾患を治療するために用いることができる。
【００１３】
タンパク質ミスフォールディング病を治療するための医薬は、活性成分としてフィブリノーゲン４２０又はアルファＥＣドメインタンパク質を含む。
【００１４】
本発明では、フィブリノーゲン４２０又はアルファＥＣドメインタンパク質は、タンパク質のアンフォールディングプロセスを捕捉することができる。タンパク質の正確なリフォールディングを補助するか、又はタンパク質を折り畳まれた状態に維持することにより、タンパク質の凝集を防ぎ、且つタンパク質の活性及び機能を安定化させることができる。したがって、フィブリノーゲン４２０又はアルファＥＣドメインタンパク質は、タンパク質の抗変性能を高めることができるので、インビトロにおいてタンパク質安定化剤として用いることができる。
【００１５】
ここで、記載されるタンパク質安定化剤は、活性成分としてフィブリノーゲン４２０又はアルファＥＣドメインタンパク質を含む。記載されるタンパク質安定化剤は、凝集し沈殿しやすいタンパク質の凝集を阻害することができる。また、タンパク質安定化剤は、酵素活性を保護することができる。例えば、クエン酸合成酵素、ルシフェラーゼ、インスリン、及び他の酵素活性を安定化させることができる。
【実施例】
【００１６】
実施例１：フィブリノーゲン４２０及びアルファＥＣドメインタンパク質は、クエン酸合成酵素の変性及び凝集を抑制した
ａ．フィブリノーゲン４２０及びアルファＥＣドメインタンパク質の調製
血液又は臍帯血を精製してフィブリノーゲン混合物を得て、さらにフィブリノーゲン４２０を精製した。詳細は、以下の通りである：
【００１７】
（１）フィブリノーゲン混合物の調製：先ず、プロテアーゼ阻害剤を新鮮血又は臍帯血に添加し、次いで、４℃、２，０００ｒｐｍで遠心分離し、上清から黄色の血漿を得た。次いで、撹拌しながらグリシン乾燥粉末を前記血漿に添加して、グリシンを完全に溶解させ、グリシンの最終濃度を２．１Ｍにし、白色の綿状沈殿物が得られた。５，０００ｒｐｍで１５分間遠心分離した後、得られた沈殿物を、血漿の原体積の１／３の体積であるバッファ（０．１５ＭのＮａＣｌ、０．０１Ｍのリン酸ナトリウム、ｐＨ６．４溶液）に溶解させ、溶解した体積が血漿の原体積の１／１０になるまでこの工程を繰り返した。等体積の水を添加して、希釈した。次いで、希釈溶液を２℃〜５℃で６時間静置し、遠心分離後に沈殿物を除去し、等体積の０．３Ｍ塩化ナトリウム溶液を上清に添加し、次いで、最終濃度８％エタノール（体積比）になるように９５％エタノールを添加し、温度を−３℃に維持しながら、完全に沈殿させ、５，０００ｒｐｍで遠心分離した後の沈殿物を次のフィブリノーゲン４２０精製工程の原料として用いた。
【００１８】
（２）フィブリノーゲン４２０の精製：工程（１）で得られたフィブリノーゲン沈殿物を０．３Ｍの塩化ナトリウム溶液に溶解させ、ｐＨ８．６である０．００５Ｍのトリス−リン酸バッファ（リン酸ラジカルに基づいて計算したモル濃度）を用いて透析を行った。クロマトグラフィーカラムとしてＭｏｎｏ  Ｑ  ＨＲ  １０／１０アニオン交換カラム（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）を用いた。０．００５Ｍのトリス−リン酸バッファから開始して０．２Ｍのトリス−リン酸バッファ（ｐＨ６．０）に急速に推移させるｐＨ段階溶出を用いてサンプルを溶出させ、次いで、０．２Ｍのトリス−リン酸バッファ（ｐＨ６．０）を維持して、カラム体積の１２倍量を溶出させ、最後に、０．５Ｍのトリス−リン酸バッファ（ｐＨ４．２）までの直線勾配を用いてカラム体積の１２倍量を溶出させた。フィブリノーゲン４２０は、直線溶出の最後の工程で得られる。１２５ｍＭの塩化ナトリウム、２５ｍＭのＨＥＰＥＳバッファ（ｐＨ７．４）を用いて透析を行った後、タンパク質を保存した。
【００１９】
アルファＥＣドメインタンパク質は、以下のように得られた：
【００２０】
アルファＥＣドメインタンパク質のリフォールディング及び精製：ヒト肝臓ｃＤＮＡライブラリをテンプレートとして用いてＰＣＲ増幅を行なった。プライマーは、以下の通りである：
５−ＧＧＡＡＴＴＣＣＡＴＡＴＧＧＡＣＴＧＴＧＡＴＧＡＴＧＴＣＣＴＣＣ−３’
５−ＡＣＣＧＣＴＣＧＡＧＣＴＡＴＴＧＧＧＴＣＡＣＡＡＧＧＧＧＣＣ−３’
ＮｄｅＩ及びＸｈｏＩの制限酵素部位がプライマーに組み込まれた。ＰＣＲ増幅のアニーリング温度は、５５℃であった。制限酵素ＮｄｅＩ及びＸｈｏＩで切断した後、αＥＣフラグメントを同じ酵素で二重切断したｐＥＴ−３０ａ発現ベクター（Ｎｏｖａｇｅｎ  Ｉｎｃ．）に連結させた。大腸菌のコンピーテントセルＢＬ２１／ＤＥ３（Ｂｅｉｊｉｎｇ  ＤｉｎｇＧｕｏ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  Ｃｏｍｐａｎｙ）を組換え発現ベクターで形質転換した後、組換え細菌を得た。モノクローナル組換え細菌を１０ｍＬのＬＢ培地（カナマイシン１００μｇ／ｍＬ）に植菌し、一晩培養した。次いで、１ＬのＬＢ培地（カナマイシン１００μｇ／ｍＬ）に移した。菌液の濁度のＯＤ６００が約０．８程度に達するまで、０．５ｍＭのＩＰＴＧを添加して４時間誘導し、遠心分離によって細菌を回収した。細菌を破壊した後、封入体タンパク質を回収した。封入体タンパク質を溶解させ、次いで、アニオン交換カラムによって精製した。サンプルローディングバッファは、以下の通りであった：８Ｍの尿素、２０ｍＭのトリス−ＨＣｌ及びｐＨ８．０、３０ｍＭのＢＭＥ。１ＭのＮａＣｌをローディングバッファに添加して調整したものが溶出バッファである。直線勾配溶出を用いて、段階毎に溶出ピークを回収した。電気泳動によってタンパク質の純度を検出した。純度が８０％超である成分を選択して、リフォールディング実験を行った。リフォールディングするとき、８Ｍの尿素を含有する２０ｍＭのトリス−ＨＣｌバッファ（ｐＨ８．０）を用いてタンパク質濃度を０．２ｍｇ／ｍＬ未満に調整し、次いで、２０ｍＭのトリス−ＨＣｌ、１５０ｍＭのＮａＣｌ、１ｍＭの塩化カルシウム（ｐＨ８．０）を用いて透析を行った。少なくとも４時間間隔で透析液を交換し、少なくとも２回リフォールディング溶液を交換し、一晩十分に透析する。最後に、リフォールディングタンパク質を精製するために２０ｍＭのトリス−ＨＣｌローディングバッファを用いて透析を行った。精製にはアニオン交換カラムを用いた。カラムに添加する前に、サンプルを遠心分離するか、孔径０．２２ミクロンの膜で濾過した。抽出のために直線勾配の塩イオンを用い、段階毎にタンパク質のピークを回収した。オキシドゲル電気泳動によって純度を検出した。
【００２１】
ｂ．フィブリノーゲン４２０及びアルファＥＣドメインタンパク質は、クエン酸合成酵素の熱変性及び凝集を阻害した
クエン酸合成酵素は、ＴＣＡ回路において重要な酵素であるが、その熱安定性は低い。インビトロにおいて、４３℃の温度で変性し、凝集し、沈殿する。クエン酸合成酵素の凝集プロセスは、光散乱の変化により調べることができる。方法は、以下の通りである：
【００２２】
励起光と蛍光の両方を５００ｎｍに、スリット幅を２．５ｎｍに調整した蛍光分析機器ＦＬ４５００（Ｈｉｔａｃｈｉ，Ｌｔｄ）で光散乱のプロセスを検出した。クエン酸合成酵素を４０ｍＭのＨＥＰＥＳバッファ溶液に溶解させ、最終濃度を０．１５μＭにする。同時に、実験群１に０．１５μＭのフィブリノーゲン４２０を添加し、実験群２に０．１５μＭのアルファＥＣドメインタンパク質を添加し、対照群１に等体積のＨＥＰＥＳバッファ溶液を添加し、対照群２に等体積の１．２μＭのウシ血清アルブミンを添加する。サンプルを４３℃の水浴に入れ、光散乱シグナルを検出した。この実験を３回繰り返した。
【００２３】
図１に示す光散乱シグナルの検出結果は、２００秒間の加熱工程中に、対照群１及び２のクエン酸合成酵素が凝集し始め、光散乱シグナルの強度が高まることを示す。しかし、実験群１及び２のクエン酸合成酵素の凝集は、明らかに少ない。実験群２のクエン酸合成酵素の凝集の阻害効果は、実験群１よりもよかった。更に、０．１５μＭのアルファＥＣドメインタンパク質は、等モルのクエン酸合成酵素の４３℃での熱変性及び凝集プロセスを略完全に阻害することができた。
【００２４】
図１において、（○）は、対照群１を表し、（△）は、対照群２を表し、（◇）は、実験群１を表し、（□）は、実験群２を表す。
【００２５】
ｃ．フィブリノーゲン４２０及びアルファＥＣドメインタンパク質は、クエン酸合成酵素の化学変性凝集を阻害した
クエン酸合成酵素は、塩酸グアニジン及び還元剤条件下（６Ｍの塩酸グアニジン、１０ｍＭのＤＴＴ、室温で２時間インキュベート）で完全に変性し、それを４０ｍＭのＨＥＰＥＳバッファで最終濃度０．１５μＭに希釈した。同時に、実験群１に０．３μＭのアルファＥＣドメインタンパク質を添加し、実験群２に０．６μＭのアルファＥＣドメインタンパク質を添加し、対照群１に等体積のＨＥＰＥＳバッファを添加し、対照群２に等体積の１．２μＭのウシ血清アルブミンを添加した。次いで、蛍光分析機器ＦＬ４５００（Ｈｉｔａｃｈｉ，Ｌｔｄ）で各サンプルの光散乱シグナルを検出し、この実験を３回繰り返した。励起波長及び発光波長は５００ｎｍ、スリット幅は２．５ｎｍであった。
【００２６】
図２に示される光散乱シグナルの検出結果は、対照群と比べて、実験群における凝集プロセスが著しく変化することを示す。０．３μＭのアルファＥＣは、凝集プロセスを劇的に阻害し、一方、０．６μＭのアルファＥＣは、凝集を略完全に阻害する。
【００２７】
図２において、（○）は、対照群１を表し、（●）は、対照群２を表し、（△）は、実験群１を表し、（□）は、０．６μＭのアルファＥＣの添加を表す。
【００２８】
実施例２：フィブリノーゲン４２０及びアルファＥＣドメインタンパク質は、クエン酸合成酵素（ＣＳ）の活性を保護した
フィブリノーゲン４２０及びアルファＥＣドメインタンパク質が、ＣＳの熱変性及び不活化を阻害することを示す、下記の実験の方法が実施された：
４０ｍＭのＨＥＰＥＳバッファ溶液にクエン酸合成酵素を溶解させ、最終濃度を０．０７５μＭにした。同時に、実験群１に０．０７５μＭのフィブリノーゲン４２０を添加し、実験群２に０．１５μＭのフィブリノーゲン４２０を添加し、実験群３に０．０７５μＭのアルファＥＣドメインタンパク質を添加し、実験群４に０．１５μＭのアルファＥＣドメインタンパク質を添加し、対照群に等体積のＨＥＰＥＳバッファ溶液を添加した。サンプルを４３℃の水浴に入れ、クエン酸合成酵素の活性の変化を検出し始めた。加熱前のクエン酸合成酵素の活性を１００％と定義した。
【００２９】
クエン酸合成酵素の活性を検出する方法は、以下の通りである：
ＴＥバッファ溶液９３０μＬ（５０ｍＭのトリス、２ｍＭのＥＤＴＡ、ｐＨ８．０）、１０ｍＭのオキサロ酢酸１０μＬ、１０ｍＭのＤＴＮＢ１０μＬ、５ｍＭのアセチル−ＣｏＡ３０μＬを混合し、２０μＬのクエン酸合成酵素を含有する溶液に速やかに添加し、４１２ｎｍの波長における紫外線吸収の動的変化を検出した。吸収度の変化の直線性曲線勾配は、酵素活性を表す。
【００３０】
図６及び７に示すクエン酸合成酵素活性の測定結果は、経時的に、対照群のクエン酸合成酵素の活性は速やかに低下するが、全ての実験群では活性の低下速度を有効に減速させ得ることを示す。
【００３１】
図３において、（○）は、対照群を表し、（△）は、実験群１を表し、（□）は、実験群２を表す。図４において、（○）は、対照群を表し、（△）は、実験群３を表し、（□）は、実験群４を表す。
【００３２】
実施例３：アルファＥＣドメインタンパク質は、変性したクエン酸合成酵素を特異的に認識した
クエン酸合成酵素及びアルファＥＣドメインタンパク質を４３℃で一緒にインキュベートした。４３℃で５分間又は１０分間加熱した後、クエン酸合成酵素及びアルファＥＣドメインタンパク質の抗体をそれぞれ上清に添加して、免疫共沈降法を実施した。対照群では、クエン酸合成酵素及びアルファＥＣドメインタンパク質を室温で一緒にインキュベートし、クエン酸合成酵素及びアルファＥＣドメインタンパク質の抗体をそれぞれ上清に添加して、免疫共沈降法を実施した。
【００３３】
図５に示す結果は、クエン酸合成酵素の抗体を添加した後、変性クエン酸合成酵素は、沈殿することができ、また、アルファＥＣドメインタンパク質も同時に沈殿できることを示す。アルファＥＣドメインタンパク質の抗体を添加した後、アルファＥＣドメインタンパク質及びクエン酸合成酵素の両方が沈殿することができる。上記結果は、加熱後、クエン酸合成酵素及びアルファＥＣドメインタンパク質は複合体を形成することができ、その結果、一方のタンパク質の抗体が他のタンパク質を同時に沈殿させることをできることを示す。対照群では、免疫共沈降は生じない。結果は、アルファＥＣドメインタンパク質は、熱変性したクエン酸合成酵素を特異的に認識し、結合することができることを示した。
【００３４】
図５において、上図は、クエン酸合成酵素の免疫共沈降である。電気泳動後にアルファＥＣドメインタンパク質の抗体で検出した。レーン１は、アルファＥＣのポジティブコントロールである。レーン２は、室温で１０分間インキュベートした後の免疫共沈降を示す。レーン３及びレーン４は、それぞれ、４３℃で５分間及び１０分間加熱した後の免疫共沈降を表す。下図は、電気泳動後にクエン酸合成酵素の抗体で検出した、アルファＥＣドメインタンパク質の抗体による免疫共沈降である。レーン１は、クエン酸合成酵素のポジティブコントロールである。レーン２は、室温で１０分間インキュベートした後の免疫共沈降を示す。レーン３及び４は、それぞれ、４３℃で５分間及び１０分間インキュベートした後の免疫共沈降を示す。図において、「ＣＳ」は、クエン酸合成酵素を示し、「アルファＥＣ」は、アルファＥＣドメインタンパク質を表す。
【００３５】
産業上の利用可能性
本発明は、フィブリノーゲン４２０及びその活性ドメインの新規用途を提供する。生物学的又は診断キットにおいて、特にＥＬＩＳＡ免疫診断キットには、レポーター酵素（例えばセイヨウワサビペルオキシダーゼ、アルカリフォスファターゼ又はルシフェラーゼ）を架橋した抗体の安定性は低下し、フィブリノーゲン４２０又はアルファＥＣドメインタンパク質を添加することによって、製品の有効期及びタンパク質薬剤の安定性が増加し、製品の品質を向上させるという目的を達成する。フィブリノーゲン４２０又はアルファＥＣドメインタンパク質はアンフォールディングと変性しているタンパク質を同定することに用いることができ、従って、タンパク質製品の検出と品質管理にも用いることができる。
【図１】
0005951257.tif 000002
【図２】
0005951257.tif 000003
【図３】
0005951257.tif 000004
【図４】
0005951257.tif 000005
【図５】
0005951257.tif 000006
【配列表】
0005951257000001.app