(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
吸入による肺前処置剤として使用される、酸化型アビジンを含む医薬組成物であって、吸入ステップの後にビオチン化治療剤を投与する、医薬組成物。
【請求項２】
肺の全体を前処置するための、請求項１に記載の医薬組成物。
【請求項３】
前記ビオチン化治療剤が、放射性医薬品、モノクローナル抗体、サイトカイン、ケモカイン、酵素、化学療法剤、ウイルスベクターまたはプラスミドベクターおよび細胞から成る群から選択される、請求項１に記載の医薬組成物。
【請求項４】
前記モノクローナル抗体は、抗ＥＧＦＲ、抗ＣＥＡ、抗ＭＵＣ１、抗ＥｐＣＡＭ、抗ｃＭＥＴ、抗ＣＴＬ４、抗ＩＬ−１７、抗ＩＬ−２３、抗ＩＬ−６、抗ＩＬ−１、抗ＴＮＦ、および抗Ｔｗｅａｋモノクローナル抗体から成る群から選択されるモノクローナル抗体のビオチン化誘導体である、請求項３に記載の医薬組成物。
【請求項５】
前記ビオチン化サイトカインは、ＴＮＦ、Ｔｗｅａｋ、ＴＲＡＩＬ、γインターフェロン、Ｇ−ＣＳＦ、ＧＭ−ＣＳＦ、ＩＬ−２、およびＩＬ−１２から成る群から選択されるサイトカインのビオチン化付加物である、請求項３に記載の医薬組成物。
【請求項６】
前記ビオチン化ケモカインがＣＸＣおよびＣＣケモカインファミリーから成る群から選択されるケモカインのビオチン化付加物である、請求項３に記載の医薬組成物。
【請求項７】
前記ビオチン化酵素が、嚢胞性線維症膜コンダクタンス制御因子タンパク質である、請求項３に記載の医薬組成物。
【請求項８】
前記ビオチン化放射性医薬品が５２Ｆｅ，５２ｍＭｎ，５５Ｃｏ，６４Ｃｕ，６７Ｃｕ，６７Ｇａ，６８Ｇａ，９９ｍＴｃ，１１１Ｉｎ，１２３Ｉ，１２５Ｉ，１３１Ｉ，３２Ｐ，４７Ｓｃ，９０Ｙ，１０９Ｐｄ，１１１Ａｇ，１４９Ｐｍ，１８６Ｒｅ，１８８Ｒｅ，２１１Ａｔ，２１２Ｐｂ，２１２Ｂｉおよび１７７Ｌｕを含む群から選択される放射性同位体で標識されたビオチン−ＤＯＴＡである、請求項３に記載の医薬組成物。
【請求項９】
ａ）酸性ｐＨの無菌緩衝液と、
任意で
ｂ）マンニトール、グリセロール、グルコース、ラクトース、トレハロース、スクロース、プロピレングリコール、ソルビトール、キシリトール、ポリエチレングリコール、エタノールおよびイソプロパノールを含む群から選択される非イオン性物質と、
を含む、吸入するための、請求項１または２に記載の医薬組成物。
【請求項１０】
凍結乾燥された、請求項９に記載の吸入するための医薬組成物。
【請求項１１】
請求項９または１０に記載の医薬組成物を含むキット。
【請求項１２】
請求項９に記載の医薬組成物とネブライザーとを含むキット。
【請求項１３】
ＣＯＰＤ、喘息、肺胞隔炎、および嚢胞性線維症ならびにα−１−アンチトリプシン欠乏症を含む群から選択される肺癌疾患、肺炎症疾患の治療に使用される、請求項９または１０に記載の医薬組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本明細書に記載の発明は、吸入により使用される酸化型アビジンまたはビオチン化治療剤／酸化型アビジン複合体の新しい医薬製剤に関する。さらに本発明は、手術不可能な疾患および／またはびまん性疾患に罹患している哺乳動物の肺を前処置し、この肺を標的とするビオチン化治療薬に関する。
【背景技術】
【０００２】
噴霧された治療剤の吸入は、喘息または肺感染症および他の呼吸器疾患等の肺疾患の治療によく利用される薬物送達方法となっている。このような投与法は通常治療を一日あたり数回繰り返す必要があるが、罹患している疾病または疾病それ自体の重症度によって決まる患者の健康状態に必ずしも適合しているとは限らない。また、治療剤を頻繁に吸入することは、大きな致死的ストレスとなる。β２アゴニストの継続的な噴霧治療は、重い喘息に苦しむ患者には有用な代替療法であることがわかっている（Ｒａａｂｅ  Ｏ．Ｇ．ら，Ａｎｎ．Ａｌｌｅｒｇｙ  Ａｓｔｈｍａ  Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１９９８，８０，４９９）。このような場合であっても、治療には長い時間がかかり、患者の生活を不快なものとしてしまう。
【０００３】
肺癌や嚢胞性線維症などの重篤な肺疾患の大半は、未だ、不幸にも重篤な副作用を伴う全身治療により治療される。
【０００４】
肺の生体構造および生理機能は、肺を保護するため、外来の噴霧物質を処理して排除するようになっている。被験者に治療剤を吸入させて治療剤に曝露した場合、治療剤は素早く除去されるため悪影響を与えることになり、吸入療法の利点を限定してしまうことは良く知られている。
【０００５】
さらに、外部からの攻撃を受けた肺の解毒を目的とした酵素が肺の中に存在していることが良く知られている。肺の中で重要な役目を果たすもののうちのいくつかはタンパク質のスーパーファミリー（すなわちＡＫＲ）に属している。ＡＫＲおよび短鎖脱水素酵素／還元酵素（すなわちＳＤＲ）は生体異物のカルボニル基が関わる酸化還元反応を触媒する主要な酵素である。ＳＤＲスーパーファミリーの中で、カルボニル還元酵素（すなわちＣＢＲ）は、カルボニル基含有生体異物に対して広基質特異性を示す（Ｍａｔｓｕｎａｇａ  Ｔ．ら，Ｄｒｕｇ  Ｍｅｔａｂ．Ｐｈａｒｍａｃｏｋｉｎｅｔ．，２００６，２１，１，１）。
【０００６】
エアロゾルによる化学療法剤の局所送達の試みでは、全身性投与と比較して毒性が減少することが、肺癌の前臨床モデルにおいて最近報告されている（Ｆｕｌｚｅｌｅ，Ｓ．Ｖ．ら，Ｊ．Ｐｈａｒｍ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．，２００６，５８，３，３２７）。
【０００７】
テモゾロミドを吸入するための乾燥粉末製剤が最近報告されている。テモゾロミドには、投薬量の５１％を放出可能とする微粉化と（Ｗａｕｔｈｏｚ  Ｎ．ら、Ｐｈａｒｍ．Ｒｅｓ．，２０１１，２８，７６２），水溶性のテモゾロミド懸濁液を安定させる界面活性物質として、生体適合性および生分解性のリン脂質が必要であった（Ｗａｕｔｈｏｚ  Ｎ．ら，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｐｈａｒｍ．Ｓｃｉ．，２０１０，３９，４０２）。
【０００８】
肺癌患者におけるエアロゾル化した徐放性脂質吸入標的化（ＳＬＩＴ）シスプラチンの安全度および薬動学を研究するため、シスプラチンに関連した第一相試験が行われ、有望な結果が得られた。しかしながら、この試験では極めて多くの副作用（すなわち吐気、嘔吐症状、呼吸困難、疲労および嗄声）が出現した（Ｗｉｔｔｇｅｎ  Ｂ．Ｐ．Ｈ．ら，Ｃｌｉｎ．ＣａｎｃｅｒＲｅｓ．，２００７，１３，２４１４）。
【０００９】
イヌへの５−フルオロウラシルの噴霧では、薬剤が、主に気管へは非常に高い濃度で到達でき、気管支および食道では濃度は下がったものの効果は見られ、気管支レベルのリンパ節では濃度が低下した（すなわち気管に到達した際の濃度の５０分の１）（Ｔａｔｓｕｍｕｒａ  Ｔ．ら，Ｂｒ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ，１９９３，６８，１１４６）。
【００１０】
それでもなお、これらエアロゾル化させた小型化学薬剤の血中への拡散は、これらの分子の肺での半減期が短いために必要となる連続投与の問題と併せて、いまだ重要な課題である。
【００１１】
エアロゾル遺伝子送達は、肺疾患の標的療法において長期にわたって探究されている別の利用である。嚢胞性線維症遺伝子がクローン化された後、エアロゾルによる肺表面へ遺伝子を非侵襲的に送達することに多数の関心が集まった。このアプローチは、手術不可能な肺癌に適用できる可能性もあり、最も初期の試みでは、非ウイルス性ベクター、次には陽イオン性脂質および他の製剤添加剤の利用が注目された（Ｄｅｎｓｍｏｒｅ  Ｃ．Ｌ．ら，Ｊ．ＧｅｎｅＭｅｄ．，１９９９，１，．４，２５１；Ｄｅｎｓｍｏｒｅ  Ｃ．Ｌ．ら，Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．，２０００，１，２，１８０）。しかし噴霧により効力が失われ、遺伝子ベクターの発現が不十分で、エアロゾル化したタンパク質治療薬の肺への取り込みおよび滞留が非効率的であったため、治療効果は芳しくなかった（Ｓｃｈｗａｒｚ，Ｌ．Ａ．ら，Ｈｕｍ．ＧｅｎｅＴｈｅｒ．，１９９６，７，７３１）。したがって、タンパク質を含む生物学的に活性な誘導体をエアロゾルによって肺へ送達することに対する関心は、近年薄らいでいた
【００１２】
治療用タンパク質の吸入が肺の標的療法に対して魅力的な解決法として要求されているならば、タンパク質を噴霧する製剤は検証し続ける価値がある。実際、エアロゾル化した物質を肺に深く浸透させるために、添加剤および粒度（すなわち３μm）の選択に慎重にならざるを得ない製剤は、慎重に調節されなければならない（Ｃｈｏｉ  Ｗ．Ｓ．ら，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，９８，２０，１１１０３）。また、タンパク質の四次構造だけでなく二次、三次構造も噴霧過程で変質させられ得る。この欠陥を克服するために、Ａｒａｋａｗａ  Ｔ．らは、噴霧に先立って前記構造上のコンホメーションを維持するためのポリエチレングリコールおよび／または界面活性物質の利用を開示した（国際公開第１９９５０３０３４号）。
【００１３】
肺を標的とするエアロゾル投与用に設計され、種々の抗癌剤に封入できる様々なグラフト化ナノ粒子も後に報告されているが、炎症が発生するという欠点が報告された（Ｄａｉｌｅｙ  Ｌ．Ａ．ら，Ｔａｘｉｃａｌ．Ａｐｐｌ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．，２００６，２１５，１，１００）。
【００１４】
吸入用の高分子ベースのナノ粒子送達システムが最近開示された（国際公開第２００９１２１６３１号）、同文献では粒子はマウスの気管内への注入により投与されている。
【００１５】
Ｂｏｒｌａｋ  Ｊ．らは、
高分子ベースのナノ粒子と、
マレイミドベースの分子リンカーと、
抗体等の標的化剤と、
低分子量化合物またはタンパク質（リンカーに共有結合的するのが好ましい）、
薬剤と、
から成る改良された肺への薬物送達システムを記載した（欧州特許第２１０６８０６号）。
【００１６】
このようなナノ粒子の平均サイズは、１５０〜１８０ｎｍである。発明者らによれば、このような送達システムは粒子の高分子基質に非共有結合的に固定する親油性の部分、および標的化剤を結合できるマレイミド化合物を含む第二の部分を有する分子リンカーを利用する。また、発明者らによれば、標的化剤はアビジン−ビオチンのような結合性対のメンバーでありえる。しかしながら、アビジン−ビオチンを含む特定の実施形態は、この文献では実現可能な方法で記載されていない。
【００１７】
エタノールベースの製剤は酵素等の生物活性を有するタンパク質の噴霧に適切であると過去に報告されている（Ｃｈｏｉ  Ｗ．Ｓ．ら，Ｐｒｏｃ．Ｎｏｔｉ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，２００１，９８，２０，１１１０３）。しかしながら、長期間の吸入により炎症性の副作用が誘発される得るため、吸入されたエタノールへの曝露は極めて短くなる（すなわち１０分）となることが開示されている。
【００１８】
したがって上記で示唆したように、噴霧には、面積の大きな空気−水界面の形成に関連した固有の物理的ストレスがあるが、これにより多数のタンパク質の構造が不安定化し得る。
【００１９】
胸膜経路による［１１１Ｉｎ］−アビジンおよび［９９ｍＴｃ］−ビオチン−リポソームの投与が開示されており、腹腔内経路よりも肺縦隔リンパ節を標的とするのによりよい経路であることがわかっている（Ｍｅｄｉｎａ  Ｌ．Ａ．ら，Ｎｕｃｌ．Ｍｅｄ．Ｂｉｏｌ．，２００４，３１，１，４１）。しかしながら、胸膜腔への注入は侵襲的手法を意味し、肺組織で均一に分布させるのには適していない。実際、Ｍｅｄｉｎａの研究の意図は縦隔リンパ節を標的にすることであった。さらに、薬物動態および薬力学的な特徴を向上させるためにリポソームで放射能標識されたビオチンを調剤する必要があった。
【００２０】
したがって、
経口投与（例えば薬物透過性問題、初回通過効果）；および／または、
有害な副作用および／または排除量が多いという問題を解決できない場合、過酷な治療に繋がる恐れのある他の全身的な薬物送達ルート；および／または、
その投与経路および／または代謝プロセスによる治療の不安定さ；および／または、
治療剤の毎日複数回の投与、
に関連したボトルネックを回避するため、罹患肺に有効量の治療剤を直接送達する特定の投与方法の提供が医学上強く求められている。
【発明の概要】
【課題を解決するための手段】
【００２１】
意外なことに、吸入により投与された酸化型アビジンは肺上皮細胞の表面から肺胞まで均一に結合し、呼吸器系の上部経路（例えば気管）には意外にも結合しないということが見出された。酸化型アビジンが皮膚、眼または膀胱等の組織表面に損傷が無い場合には結合しなかったため、この発見は完全に予想外のものであった。さらに、そのような投与法がタンパク質の化学的完全性を維持するのは驚くべきことであった。
【図面の簡単な説明】
【００２２】
【図１】眼（液滴付着）、舌（筋肉内注射）、肢（筋肉内注射）、皮膚（液滴付着）、擦過皮膚（液滴付着）における、酸化型アビジン／１１１Ｉｎ−ＳＴ２２１０複合体の組織の滞在時間を示す。
【図２】ヒト表在性膀胱癌（矢印）の除去をシミュレートするため、ブタの膀胱において作成された外科用病変への静脈内に注入した６８−Ｇａ−ＳＴ２２１０の結合を示す。画像は陽電子放射型断層撮影法（ＰＥＴ）により、６８−Ｇａ−ＳＴ２２１０注入後４時間で取得した。
【図３】ｐＨ５．５、賦形剤なしの１００ｍＭ酢酸ナトリウム溶液で１時間噴霧した後の酸化型アビジンの化学的完全性を示す。
【図４】酸化型アビジンまたは溶媒を２４時間前に吸入したマウスの様々な臓器の静脈内に注入した１１１Ｉｎ−ＳＴ２２１０の２時間および２４時間時点における分布を示す。
【図５】酸化型アビジンエアロゾルへの曝露後２４時間の肺部分のマウス抗アビジン抗体での免疫化学を示す。
【図６】２４時間前に酸化型アビジンエアロゾルに曝露し、６４Ｃｕ−ＳＴ２２１０を静脈内に注入したマウスのＰＥＴ画像である。
【図７】５μｇ、０．０５μｇ、０．０５ｎｇおよび０．０５ｐｇ／ｍｌの用量でビオチン化セツキシマブでＰＢＳ中１時間インキュベートしたＥＧＦＲ＋Ａ４３１細胞を示す。（ａ）は酸化型アビジンでの前処置無しの場合、（ｂ）は前処置有りの場合をそれぞれ示す。
【図８】酸化型アビジンでの前処置有り、または無しの場合のビオチン化セツキシマブによるＡ４３１細胞株の増殖の阻害を示す。
【図９】２つの細胞株でのビオチン化セツキシマブによるアポトーシス誘導の細胞蛍光測定法分析を示す。一方は高レベルのＥＧＦＲを発現し（すなわちＡ４３１）、一方は酸化型アビジンでの処置の有無にかかわらず、ＥＧＦＲを発現しない（すなわちＳＫＭｅ１２８）。
【図１０】Ａ４３１、Ａ５４９（すなわちＥＧＦＲ、突然変異ＫＲＡＳを低レベルで発現している肺癌）およびＳＫＭｅｌ２８細胞において、ＡｖｉｄｉｎＯＸで前処置をした場合としなかった場合の、ビオチン化セツキシマブにより誘導された増殖の阻害を示す。
【発明を実施するための形態】
【００２３】
本発明は、酸化型アビジンまたはビオチン化治療剤／酸化型アビジン複合体を含む吸入可能な医薬品組成物に関し、この組成物は肺への吸入によるビオチン化治療薬の標的化送達に用いる。さらに本発明は、肺がん、喘息、結核症、慢性閉塞性肺疾患（ＣＯＰＤ）、肺胞隔炎、嚢胞性線維症およびα−１−抗トリプシン欠乏症の治療に有益なビオチン化治療薬を安定的に結合させるため、肺を前処置するための手段としての酸化型アビジンのエアロゾル送達に関する。
【００２４】
タンパク質、細胞および核酸のビオチン化は当業者に公知の生化学的方法である。これは、異なる基（すなわち一級および二級アミン、スルフヒドリルおよびカルボキシル基、など）と反応する市販されている種々の試薬により行える。ビオチン化試薬は、非常に柔軟で（長いスペーサーで立体障害を減少させる）または遊離可能（活性部分を遊離する）であるように設計され、機能的なビオチン化部分をアビジンファミリーのタンパク質と結合させるために広範囲に使用されている。特に、タンパク質ビオチン化は、モノクローナル抗体および他の機能性タンパク質に幅広く適用されている。（Ｂａｙｅｒ  Ｅ．Ａ．ら，Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｅｎｚｙｍｏｌ，１９９０ｂ，１８４，１３８）。
【００２５】
適切なビオチン化抗癌剤は、例えば、ビオチン化セツキシマブ等の上皮成長因子レセプター（ＥＧＦＲ）に特異的に結合するＩｇＧ１モノクローナル抗体を含む群から選択される（Ｈａｍａ  Ｙ．ら，ＣａｎｃｅｒＲｅｓ．，２００７，６７，３８０９）。さらにビオチン化抗癌剤は例えば、抗ｃ−Ｍｅｔ抗体（Ｓｔｅｌｌａ  Ｇ．Ｍ．ら，Ｅｘｐｅｒｔ．Ｏｐｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔｉｇ．Ｄｒｕｇｓ，２０１０，１９，１１，１３８１）；抗ＨＧＦ（Ｏｋａｍｏｔｏ  Ｗ．ら，Ｍｏｌ．Ｃａｎｃｅｒ  Ｔｈｅｒ．，２０１０，９，１０，２７８５）；抗ＣＴＬＡ４（Ｄｉ  Ｇｉａｃｏｍｏ  Ａ．Ｍ．，ＣａｎｃｅｒＩｍｍｕｎｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒ．，２００９，５８，８，１２９７）；抗ＶＥＧＦ（Ｆｅｒｒａｒａ  Ｎ．ら，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．，２００５，３３３，２，３２８）；抗ＥｐＣＡＭ（Ｋｕｒｔｚ  Ｊ．Ｅ．ら，Ｅｘｐｅｒｔ．Ｏｐｉｎ．Ｂｉｏｌ．Ｔｈｅｒ．，２０１０，１０，６，９５１）；抗ＨＥＲ２モノクローナル抗体（Ｓｍｉｔｈ  Ｂ．Ｌ．ら，Ｂｒ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ，２００４，９１，６，１１９０）；ＴＮＦ（Ｂａｌｋｗｉｌｌ  Ｆ．，Ｎａｔ．Ｒｅｖ．Ｃａｎｃｅｒ，２００９，９，５，３６１），ＴＲＡＩＬ（Ｋｉｍ  Ｔ．Ｈ．ら，Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇ．Ｃｈｅｍ．，２０１１，）または、ＩＬ−２等の他のサイトカイン（Ｈｅｒｂｅｒｍａｎ  Ｒ．，Ｃａｎｃｅｒ  Ｉｎｖｅｓｔ．，１９８９，７，５，５１５；Ｋａｔｅｎ  Ｊ．Ｗ．ら，Ｃｙｔｏｋｉｎｅ，２００３，２４，３，５７）；Ｇ−ＣＳＦ（Ｃａｖａｌｌｏｎｉ  Ｇ．ら，Ａｎｔｉｃａｎｃｅｒ  Ｄｒｕｇｓ，２００８，１９，７，６８９）；ＧＭ−ＣＳＦ（Ｈｅ  Ｑ．ら，Ｃａｎｃｅｒ  Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒ．，２０１１，６０，５，７１５）；ＩＬ−１２（Ｐｅｎｉｃｈｅｔ  Ｍ．Ｌ．ら，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ，２００１，２４８，１−２，９１；Ａｄｒｉｓ  Ｓ．ら，Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．，２０００，６０，２３，６６９６）；γインターフェロン（Ｗｅｉｎｅｒ  Ｌ．Ｍ．，Ｍｏｌ．Ｂｉｏｔｈｅｒ．，１９９１，３，４，１８６）のビオチン化付加物である。そのような治療は、腫瘍細胞の複製を遮断することが知られており、腫瘍細胞の死を誘導しおよび／または、抗癌免疫応答を刺激する。しかしながら、これらは全身にわたって使用されることに関わる有害な副作用がある。したがって、噴霧が、治療剤それ自体、または複合体のいずれかの統合性および生体機能と適合する場合、
酸化型アビジン吸入を伴うビオチン化治療剤のエアロゾル送達、もしくは、
ビオチン化治療剤／酸化型アビジン複合体の吸入；または、
酸化型アビジン吸入を伴うビオチン化治療剤の全身送達（例えば非経口的投与）、
の場合にビオチン化治療剤を肺内で安定的に局在化させることにより、それらの薬用量を減少し、かつ全身への曝露を最小限にでき、したがってそれらの治療指数を向上させられる。本発明は、ビオチン化抗腫瘍エフェクター細胞、ウイルスまたはプラスミドベクターの肺標的化において使用される噴霧された酸化型アビジンを扱う（Ｄ’Ａｔｒｉ  Ｓ．ら，Ｉｍｍｕｎｏｐｈａｒｍａｃｏｌ．，１９９１，２１，３，１９９；Ｄｅｎｓｍｏｒｅ  Ｃ．Ｌ．，Ｃｕｒｒ．Ｃａｎｃｅｒ  Ｄｒｕｇ  Ｔａｒｇｅｔｓ，２００３，３，４，２７５）。
【００２６】
本発明は、抗炎症性ビオチン化治療薬を安定的に結合させるため、肺を前処置するための有益な手段としての酸化型アビジンのエアロゾル送達に関する。適切な抗炎症性ビオチン化治療薬は、例えば、抗ＴＮＦ、抗Ｔｗｅａｋ、抗ＩＬ−６、抗ＩＬ−２３、抗ＩＬ−１７モノクローナル抗体；ＩＬ−Ｉ０または他の抗炎症性のサイトカイン（Ｍａｒｃｈｉ  Ｋら，Ｃｈｅｓｔ，２０１１）または、ケモカイン（Ｆａｒｂｅｒｍａｎ  Ｍ．Ｍ．ら，Ａｍ．Ｊ．Ｒｅｓｐｉｒ．ＣｅｌｌＭｏｌ．Ｂｉｏｌ．，２０１０；Ｔａｕｌｅｒ  Ｊ．ら，Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．，２００９，９，４，３８４；Ｈａｒｔｌ  Ｄ．ら，Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ａｌｌｅｒｇｙ  Ｃｌｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，２００９，９，１，６０；Ｂｒｅｎｎａｎ  Ｓ．ら，Ｅｕｒ．Ｒｅｓｐｉｒ．Ｊ．，２００９，３４，３，６５５）のビオチン化付加物を含み、喘息または肺胞隔炎または他の形態の肺慢性炎の治療に使用する。酸化型アビジン噴霧による肺へのα−１−アンチトリプシン等のビオチン化酵素の送達も、原発性の遺伝性欠損症を治療するために想定され、（Ｂｒａｎｄ  Ｐ．ら，Ｅｕｒ．Ｒｅｓｐｉｒ．Ｊ．，２００９，３４，２，３５４；Ｇｅｌｌｅｒ  Ｄ．Ｋら，Ｊ．Ａｅｒｏｓｏｌ  Ｍｅｄ．Ｐｕｌｍ．Ｄｒｕｇ  Ｄｅｌｉｖ．，２０１０，２３  Ｓｕｐｐｌ  １，Ｓ５５）、同様に、嚢胞性線維症を治療する嚢胞性線維症膜コンダクタンス制御因子（ＣＦＴＣＲ）タンパク質も想定される（Ｓｌｏａｎｅ  Ｐ．Ａ．ら，Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｐｕｌｍ．Ｍｅｄ．，２０１０，１６，６，５９１；ＦｒｉｚｚｅｌｌＲ．Ａ．，Ａｍ．Ｊ．Ｒｅｓｐｉｒ．Ｃｒｉｔ．Ｃａｒｅ  Ｍｅｄ．，１９９５，１５１，Ｓ５４）。
【００２７】
アビジン・ビオチン法は、小分子と生物学的受容体との間の相互作用に関する定性および定量分析に用いる優れた手段として長年知られている。（Ｗｉｌｃｈｅｋ，Ｍ．，Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｅｎｚｙｍｏｌ．，１９９０，１８４，１４）。
【００２８】
アビジンは、家禽の卵白中にある約６８ｋＤａの糖タンパク質であり、ビタミンＨであるビオチンに対して高い親和性を示す。その解離定数（Ｋｄ約１０-１５Ｍ）は自然界で最も低い。（Ｇｒｅｅｎ，Ｎ．Ｍ．，Ａｄｖ．Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｃｈｅｍ．，１９７５，２９，８５；Ｈｙｔｏｎｅｎ  Ｖ．Ｐ．ら，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｊ．，２００３，３７２，Ｐｔ１，２１９）。これは同一のアミノ酸配列の４つのサブユニットからなり、その各々は、潜在的にビオチンの１分子を結合できる。グリコシル化は、その分子量の約１０％を占め、１つのサブユニット当たり、平均４〜５つのマンノースと３つのＮ−アセチルグルコサミン残基を有する（Ｂｒｕｃｈ  Ｒ．Ｃ．ら，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，１９８２，２１，２１，５３３４）。
【００２９】
本出願人の国際公開第２００９０１６０３１号ではＯＸａｖｉｄｉｎＨＡＢＡという名の化学的な酸化型アビジン（以降酸化型アビジンと称する）が初めて報告されたが、これは、酸化型アビジンのアルデヒド基と組織タンパク質のアミノ基の間の化学結合の形成の結果、注入された組織において野生型アビジンと比較して高い耐久性を有していた。患部組織へ前記酸化型アビジンを、単独投与、または、治療剤を有する複合体として直接投与し得るが、単独投与の場合、ビオチン化された活性治療剤を送達するための二次ステップが必要であった。前記文献では、酸化型アビジンは注入により局所的に投与されたが、この注入では肺全体を均一に前処置することは現実的ではなかったことに注意せねばならない。この特許出願は、固形腫瘍癌および退行性疾患または、遺伝子性疾患の局部的治療に有益な新しい解決法を開示することにより、新時代を切り開いた。酸化型アビジンの許容度も最近報告された（Ｐｅｔｒｏｎｚｅｌｌｉ  Ｆ．ら，Ｂａｓｉｃ  Ｃｌｉｎ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｔｏｘｉｃｏｌ．，２０１１，２３３）。
【００３０】
しかしながら、この新しい手段でも、びまん性のおよび／または手術不可能な肺疾患に対応することはできなかった。これは、肺組織は注入によって容易には治療されないという特性があることや、外科手術手順ではアクセス困難な領域の患部組織を扱いづらいという明白な理由があるためである。特に、鱗状の肺癌として知られている細気管支肺胞性癌（ＢＡＣ）は気管支および肺胞の表面に発症する型の腫瘍であり、エアロゾルにより送達された局所療法が役立つ可能性がある（Ａｎａｍｉ  Ｙ．ら，Ｊ．Ｔｈｏｒａｅ．Ｏｎｃｏｌ．，２００９，４，８，９５１）。
【００３１】
上述のように、酸化型アビジンはエアロゾル投与を通じて肺組織に効率的に到達し結合できることが見出された。国際公開第２００９０１６０３１号のデータに基づくと、この結果は予測可能ではなく、さらなる研究により、組織内注入が組織への酸化型アビジン結合のための必要条件であったことが示された。実際、無傷の皮膚または眼での酸化型アビジンの付着は結合を認めるのには十分ではなかった（図１）。酸化型アビジンの結合はさらにブタ膀胱での外科手術により曝露された組織タンパク質上でのみ起こることが確認された（図２）。さらに、噴霧された酸化型アビジンは気管ではなく肺に結合することが見出され、したがって肺において特異的で予測しなかった結合事象が示された（表１）。
【００３２】
「ＡｖｉｄｉｎＯＸ」または「ＡｖｉｄｉｎＯＸ（登録商用）」または「ＯＸａｖｉｄｉｎＨＡＢＡ」という用語は、国際公開第２００９０１６０３１号の実施例１による化学的酸化型アビジンを指す。表現「酸化型アビジン」は国際公開第２００９０１６０３１号に記載の化学的酸化型アビジンを指す。つまり、アビジン分子当たり少なくとも１つのマンノース残基が下式の残基で置換されている酸化型アビジンであり、
【００３３】
【化１】
0006019118.tif 000002
前記酸化型アビジンが約８〜１５のアルデヒド部分を含み、熱安定性が７８°Ｃ以上である。あるいは、表現「酸化型アビジン」はまた、ビオチン結合サイトに関与するトリプトファン残基の酸化を防ぐためリガンドＨＡＢＡの存在下でアビジンの酸化により得られた化合物を指す。
【００３４】
表現「抗癌剤」は、腫瘍と戦える薬剤を意味する。抗癌剤には、化学療法薬、モノクローナル抗体、放射能標識された化合物、エフェクター細胞、トキシン、サイトカイン、ウイルスのおよびプラスミドベクター、ＲＮＡ抑制物質および抗癌性細胞があるが、これらがすべてではない。
【００３５】
用語「エアロゾル」、「エアロゾル化された」「吸入可能な」および「噴霧された」はすべて、小さなエアロゾルの液滴、医療溶液／懸濁液を直接的および効率的に経口で吸引可能なように排出するという同一のコンセプトを指す。
【００３６】
表現「肺を前処置するための」および「肺前処置剤」、「前処置された肺」は、肺細胞が、事前に吸引された酸化型アビジンの相互作用によって、ビオチン化治療剤と相互作用可能であるというコンセプトを指す。
【００３７】
特に発現「肺の実質的に全体を前処置する」とは、投与後に、酸化型アビジンが、肺の少なくとも９５％で検出できることを意味する。
【００３８】
したがって、本発明の目的は、
ａ）請求項１または２に記載の酸化型アビジンと、
ｂ）酢酸ナトリウムであることが好ましい、酸性ｐＨの無菌緩衝液と、
任意で
ｃ）マンニトール、グリセロール、グルコース、ラクトース、トレハロース、スクロース、プロピレングリコール、ソルビトール、キシリトール、ポリエチレングリコール、エタノールおよびイソプロパノールを含む群から選択される非イオン性物質とを含む吸入可能な医薬品組成物にあり、前記医薬品組成物は噴霧後に吸入によって送達される。
【００３９】
好ましい実施形態において、「酸性ｐＨ」は、ｐＨが５．０から６．９の間であることを意味する。
【００４０】
より好ましい実施形態において、「酸性ｐＨ」は、ｐＨが５．０から６．０の間であることを意味する。
【００４１】
さらにより好ましい実施形態において、「酸性ｐＨ」は、ｐＨが５．０から５．５の間であることを意味する。
【００４２】
さらなる実施形態において、吸入可能な医薬品組成物は凍結乾燥される。
【００４３】
好ましい実施形態において、酸化型アビジンは吸入による肺の前処置剤として有用である。
【００４４】
より好ましい実施形態において、前記酸化型アビジンは吸入によって肺の実質的に全体を前処置するのに有用である。
【００４５】
別の実施形態では、酸化型アビジンの送達後に治療剤の投与が続き、前記治療剤はビオチン化されている。
【００４６】
好ましい実施形態では、発明の吸入可能な医薬品組成物は、結核症、慢性閉塞性肺疾患（ＣＯＰＤ）、一般の肺癌、特に細気管支肺胞性（ＢＡＣ）癌）、喘息、肺胞隔炎、肺炎症疾患、嚢胞性線維症およびアルファ−１−アンチトリプシン欠損症の疾患の治療に有益である。
【００４７】
さらに好ましい実施形態において、本発明の吸入可能な医薬品組成物は、多重病巣か転移性の形態の原発性肺癌の治療に有益である。
【００４８】
またさらに好ましい実施形態において、ビオチン化治療剤は抗癌剤のビオチン化付加物である。
【００４９】
さらに好ましい実施形態において、ビオチン化の抗癌剤は、抗ＥＧＦＲ、抗ＣＥＡ、抗ＭＵＣＩ、抗ＥｐＣＡＭ、抗ｃＭＥＴ、抗ＣＴＬ４モノクローナル抗体、ＴＮＦ、ＴＲＡＩＬ、Ｔｗｅａｋ、γインターフェロン、Ｇ−ＣＳＦ、ＧＭ−ＣＳＦ、ＩＬ−２、ＩＬ−１２または化学療法剤を含む群から選択される公知の抗癌剤のビオチン化付加物である。
【００５０】
より好ましい実施形態において、前記抗癌剤が放射能標識されたビオチン−ＤＯＴＡ（ＳＴ２２１０）から成る群から選択される放射性誘導体である。後者は国際公開第２００２０６６０７５号に記載されている。
【００５１】
さらに好ましい実施形態では、ビオチン−ＤＯＴＡを標識するために使用される放射性同位体は、５２Ｆｅ，５２ｍＭｎ，５５Ｃｏ，６４Ｃｕ，６７Ｃｕ，６７Ｇａ，６８Ｇａ，９９ｍＴｃ，１１１Ｉｎ，１２３Ｉ，１２５Ｉ，１３１Ｉ，３２Ｐ，４７Ｓｃ，９０Ｙ，１０９Ｐｄ，１１１Ａｇ，１４９Ｐｍ，１８６Ｒｅ，１８８Ｒｅ，２１１Ａｔ，２１２Ｐｂ，２１２Ｂｉおよび１７７Ｌｕを含む群から選択される。
【００５２】
別のより好ましい実施形態において、前記抗癌薬はウイルスのまたはプラスミドベクター、ＲＮＡ抑制物質または抗腫瘍エフェクター細胞から成る群から選択される公知の抗癌剤のビオチン化付加物である。
【００５３】
別の好ましい実施形態において、ビオチン化薬剤は肺炎症疾患の治療に有益な薬剤で、抗ＴＮＦ、抗Ｔｗｅａｋ、抗ＩＬ−１７、抗ＩＬ−２３、抗ＩＬ−６、抗ＩＬ−１モノクローナル抗体、ＩＬ−１０またはケモカインを含む群から選択された公知の抗炎症剤抗炎症薬のビオチン化付加物である。
【００５４】
肺の遺伝子疾患に関する別の好ましい実施形態において、治療剤は、嚢胞性線維症アルファ−１−アンチトリプシにおいてＣＦＴＣＲ等の既知の欠乏タンパク質のビオチン化付加物である。
【００５５】
さらに好ましい実施形態は、上述の吸入可能な医薬品組成物を含むキットであり、医薬品は無菌緩衝液において冷凍乾燥されるか溶解される。
【００５６】
さらにより好ましい実施形態において、前記キットは上述の吸入可能な医薬品組成物とネブライザーとを含む。
【００５７】
治療効果を達成するために要求される酸化型アビジンの量は、もちろん治療下の患者および治療される特定の疾患または疾病に応じて一様ではないであろう。これは使用されるネブライザーの効率、および肺におけるエアロゾルの液滴の付着性にさらに依存する。噴霧の際の溶液内の酸化型アビジンの適切な濃度は０．００５％から０．５％（ｗ／ｖ）（すなわち０．０５ｍｇ／ｍｌから５ｍｇ／ｍｌ）の範囲にあってもよい。
【００５８】
非イオン性物質は噴霧に対して溶液のオスモル濃度の調整のため使用できる。本発明において使用できる、オスモル濃度を調整するための非イオン性物質は例えば、マンニトール、グリセロール、グルコース、ラクトース、トレハロース、スクロース、プロピレングリコール、ソルビトール、キシリトール、ポリエチレングリコール、エタノールおよびイソプロパノールを含む群から選択される。
【００５９】
上述の非イオン性物質に加え、本発明は１つまたは複数のさらなる適切な賦形剤を含んでいてもよい。挙げられる適切な賦形剤は溶液および任意で保存剤のｐＨの変更のための薬剤を含む。
【００６０】
本発明の製剤は適切な容器、例えば複数回分の小ビン、または好ましくは１回分の用量を投与するための単回用量小ビンで分配されてもよい。本発明の噴霧用の溶液は、第１小ビンの酸化型アビジンを、第２小ビンのｐＨ５．５で無菌の酢酸ナトリウム溶液を付加して溶解させることにより得ることができる。
【００６１】
本発明の製剤は、肺への吸入のため微細な液滴を生成できる適切な装置器具を使用して、噴霧により投与することを目的とする。適切な器具は例えばジェット式ネブライザーまたは超音波ネブライザーである。
【実施例】
【００６２】
実施例１
約２０ｇのＢａｌｂ／ｃマウスの示した部位をアビジンまたは酸化型アビジンの溶液で処置した。溶液は、１１１Ｉｎ−ＳＴ２２１０をあらかじめ混合させ、国際公開第２００９０１６０３１の実施例１で記載された手順（３．０ｍｇ／ｍｌを１００ｍＭ酢酸ナトリウム、ｐＨ５．５に溶解）に従い得た。注入／付着後２４時間たったところで、マウスをＣＯ２で窒息させて、処置した部位をγ計数器によって解析した。データを図１に示す。データは投与量の％／組織１００ｍｇ（％ＩＤ／１００ｍｇ）として表す。結果によると、注入された舌、肢筋肉、および外用で処置した擦過皮膚において、酸化型アビジン／１１１Ｉｎ−ＳＴ２２１０複合体の量が、アビジン／１１１Ｉｎ−ＳＴ２２１０複合体の量と比較して、統計的に有意な高さを示した。しかしながら酸化型アビジン／１１１Ｉｎ−ＳＴ２２１０またはアビジン／１１１Ｉｎ−ＳＴ２２１０複合体の、正常な皮膚上または眼における付着については同様の結果を得られなかった。これは、この複合体が外部の組織表面には結合しないことを示しており、したがって、単独投与でもビオチン化薬剤との複合体として利用された場合でも、酸化型アビジンの結合特性を利用するには、外科手術が要求されることとなる。
【００６３】
実施例２
約４０ｋｇの麻酔雌ブタを外科手術し膀胱壁上に２ｃｍの表層病巣を２つ生成した。その後、３０ｍｌの酸化型アビジン溶液（３．０ｍｇ／ｍｌを１００ｍＭ酢酸ナトリウム、ｐＨ５．５に溶解）をカテーテルによって点滴し、１時間反応させた。その後、生理食塩水で膀胱を洗浄し、０．５μｇの６８−Ｇａ−ＳＴ２２１０を静脈内投与した。４時間後、ブタをＰＥＴ検査した。図２に示した結果によれば、外科手術（すなわち２ｍｍの病変）を受けた領域だけに酸化型アビジンが結合しる一方、無傷な膀胱組織は、酸化型アビジンのアルデヒド成分に全く活性を示さないことがわかった。しかしながら、それらの驚異的なデータは、外科的に損傷を受けていない組織が、酸化型のアビジンに活性を示さないという実施例１のデータと一致している。
【００６４】
実施例３
３．０ｍｇ／ｍｌの濃度で酸化型アビジンを含むｐＨ５．５の１００ｍＭ酢酸ナトリウム溶液を鼻部限定曝露装置（Ｓｃｉｒｅｑ−ＥＭＫＡ  ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）により、室温で１時間噴霧した。タンパク質溶液の中央の粒度は５μｍであった。噴霧した溶液をファルコンチューブに回収し、ＨＰＬＣにより解析した。図３のデータによれば、酸化型アビジン溶液は噴霧前後で同一の溶出プロフィルを示しており、タンパク質の完全な安定性が示されている。多数のタンパク質および核酸に対して噴霧中にこのような薬剤の完全性および能力を維持する条件を選択するために詳細な処方研究が必要とされるため、この結果は当然の結果ではなかった（ＧｅｌｌｅｒＤ．Ｅ．ら，Ｊ．ＡｅｒｏｓｏｌＭｅｄ．Ｐｕｌｍ．ＤｒｕｇＤｅｌｉｖ．，２０１０，２３Ｓｕｐｐｌ１，Ｓ５５；ＭａｒｋｏｖｉｃＳ．Ｎ．ら，Ａｍ．Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｏｎｃｏｌ．，２００８，３１，２，５７３；ＣｈｏｉＷ．Ｓ．ら，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，９８，２０，１１１０３）。
【００６５】
アルデヒド誘導体は、水が存在する場合水和作用を大変受けやすいという事実にも関わらず、このような現象が、酸化型アビジン噴霧過程において認められなかったことは大変興味深かった。１分子当たりのアルデヒド成分の数は、Ｐｕｒｐａｌｄの方法により測定すると（Ｑｕｅｓｅｎｂｅｒｒｙ  Ｍ．Ｓ．ら，Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１９９６，２３４，１，５０）、表１のデータに示されるようにマンニトール賦形剤の有無に関わらず、ｐＨ５．０およびｐＨ５．５の両方において、噴霧前後で（アッセイの不安定性を考慮して）実質的に同じであることが見出された。
【００６６】
【表１】
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【００６７】
実施例４
ラットにおいて噴霧された酸化型アビジンの生物活性および体内分布を調べた。肺および非標的臓器における酸化型アビジン、アビジン（３．０ｍｇ／ｍｌ溶液、０．８ｍｌ／分、１時間の噴霧）または溶媒の吸入曝露後２４時間、静脈内に注入された１１１インジウム放射能標識ビオチンＤＯＴＡ（すなわち１１１Ｉｎ−ＳＴ２２１０）の５μｇの取込みの計測により評価した。
【００６８】
スピローグ・ドーリーラット２０匹を３つの異なる群に分けた。各群は下記の処置を受けた。
第１群（ラット４匹から成る）を噴霧溶媒（すなわちｐＨ５．５の１００ｍＭ酢酸ナトリウム溶液）のみに曝露し、
２４時間後、ラットに０．５ｍｌ生理食塩水中５μｇ１１１Ｉｎ−ＳＴ２２１０を静脈内投与した。
第２群（ラット８匹から成る）をｐＨ５．５の１００ｍＭ酢酸ナトリウム溶液）中アビジン（約１０ｍｇ/ｋｇ）を噴霧して曝露し、
２４時間後、ラットに０．５ｍｌ生理食塩水中５μｇ１１１Ｉｎ−ＳＴ２２１０を静脈内投与した。
第３群（ラット８匹から成る）をｐＨ５．５の１００ｍＭ酢酸ナトリウム溶液）中酸化型アビジン（約１０ｍｇ／ｋｇ）を噴霧して曝露し、２４時間後、ラットに０．５ｍｌ生理食塩水中５μｇ１１１Ｉｎ−ＳＴ２２１０を静脈内投与した。
【００６９】
１１１Ｉｎ−ＳＴ２２１０静脈内投与後２時間でラットをすべて屠殺し、血、脾臓、腎、肝臓、胃、脳、気管、および肺の異なる部分の組織試料のサンプルを採取し、重さを計り、γ計数器（ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ）を利用して解析した。データを投与量の％／組織グラム（％ＩＤ／ｇ）として示した。
【００７０】
表２に示すように、酸化型アビジンの吸入より肺中の１１１Ｉｎ−ＳＴ２２１０濃度の統計的に有意な上昇が可能となるが、一方他の臓器はアビジンまたは溶媒の群と比較して、１１１Ｉｎ−ＳＴ２２１０濃度の統計的な有意差を示さなかった。
【００７１】
【表２】
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【００７２】
実施例５
１１１Ｉｎ−ＳＴ２２１０の肺への取り込みに関する選択性及び安定度の決定を目的とした体内分布実験を行なった。約２０ｇのＢａｌｂ／ｃマウス（マウス５匹／群）を噴霧させたアビジン（３ｍｇ／ｍｌ溶液）または溶媒（３ｍｌ）に１時間曝露させた（すなわち鼻部限定曝露装置、Ｓｃｉｒｅｑ−ＥＭＫＡｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓにより）。これは約９０ｍｇ／ｋｇ用量に対応する１時間の曝露となる。２４時間後に全マウスに１１１Ｉｎ−ＳＴ２２１０を静脈内に投与し（すなわち０．２ｍｌ生理食塩水中１μｇ）、さらに２時間後または２４時間後、ＣＯ２で窒息させて屠殺した。肺および非標的臓器を採取し、重さを計りγ計数器で計数した。データを投与量の％／組織グラムとして示した。
【００７３】
図４に示した結果によれば、酸化型アビジンで前処置された肺においてのみ、１１１Ｉｎ−ＳＴ２２１０の特異的で有意な取込みが見られた。
【００７４】
実施例６
約２０ｇのＢａｌｂ／ｃマウスを実施例３で記載したプロトコルによって噴霧させた酸化型アビジンに曝露し、２４時間後に窒息させて屠殺した。肺を除去し、ホルマリンで固定しパラフィン包埋した。ミクロトームによって得られた連続切片を処理し、ＨＲＰ標識ウサギ抗アビジン抗体（ＧｅｎｅＴｅｘ、ＵＳＡ）でインキュベートし、その後ＤＡＢ基質でインキュベートした。
【００７５】
図５は、気管支上皮レベルから終末細気管支までの酸化型アビジンの存在を示す。この分布はすべての肺コンパートメントにおいて均質であることが見出された。
【００７６】
実施例７
約２０ｇのＢａｌｂ／ｃマウスを実施例５で記載されたプロトコルによって噴霧させた酸化型アビジンまたは溶媒に曝露した。２４時間後、６４Ｃｕ−ＳＴ２２１０、１μｇを静脈内投与した。４時間後、６４Ｃｕ−ＳＴ２２１０の分布をＰＥＴ画像法により評価した。図６は、噴霧された酸化型アビジンで前処置したマウスの肺における放射性の信号の存在を示すが、溶媒で処置したマウスの肺では見られなかった。腎臓と膀胱はマウスの両群において確認できる。この観察はその時点のＳＴ２２１０の生理学上の消失と一致している。さらに、肢１本における放射性信号はマウスの両方の群において可視であるがこれは、実験で内部陽性対照を作成するため、噴霧時には酸化型アビジンを筋肉注射して前処置されていたためである。
【００７７】
実施例８
ヒトＥＧＦＲ＋、表皮癌細胞Ａ４３１を、０．０５ｐｇ／ｍｌから５μｇ／ｍｌまでの範囲の容量の抗ＥＧＦＲモノクローナルビオチン化抗体（すなわちビオチン化セツキシマブ）１ｍｌで１時間ＰＢＳでインキュベートした。各実験では、細胞を酸化型アビジンであらかじめインキュベートしたが、最初の実験においては細胞はビオチン化セツキシマブで処置しただけであった。
【００７８】
洗液後に、ビオチン化セツキシマブ結合を、フィコエリトリン（ＰＥ）で標識したマウス抗ヒト抗体を用いたインキュベーション後に細胞蛍光測定法により検出した。図７で示したように、酸化型アビジン存在下では、０．０５ｎｇおよび０．０５ｐｇ／ｍｌ等の低用量のビオチン化セツキシマブでもＡ４３１細胞への結合が確認できる。
【００７９】
実施例９
図８に報告されたデータによれば、ビオチン化セツキシマブの抗増殖活性（実施例８で報告したように実施した実験）は、膜に結合した酸化型アビジンへの結合により固定化されたために、０．０５ｎｇおよび０．０５ｐｇ／ｍｌの低用量であっても、少なくとも３倍に増大した。増殖阻害はＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏｗアッセイ、Ｐｒｏｍｅｇａにより計測した。データを、酸化型アビジンの非存在下（すなわち白バー）、または存在下（すなわち黒バー）における細胞増殖の阻害％として表す。さらに、過去に報告されたように、（ＰｅｔｒｏｎｚｅｌｌｉＦ．ら，ＢａｓｉｃＣｌｉｎ．Ｐｈａｒｍａｃａｌ．Ｔａｘｉｃａｌ．，２０１１，２３３），酸化型アビジンは培地のみを含む比較実験において確認されたように細胞増殖に影響しなかった（データを示さず）。
【００８０】
実施例１０
ＡｖｉｄｉｎＯＸでの前処置済み、または未処置の状態でのビオチン化セツキシマブによるアポトーシス誘導を、ＥＧＦＲ＋Ａ４３１細胞（高レベルのＥＧＦＲ、野生型ＫＲＡＳを発現する外陰部有棘細胞癌）およびＥＧＦＲ−ＳＫＭｅ１２８細胞（ＥＧＦＲを発現しない）でテストした。ＡｖｉｄｉｎＯＸでの前処置済み、または未処置状態で、細胞をビオチン化セツキシマブ（ｂ−セツキシマブ）で１５分間インキュベートした。洗液後、細胞を完全培地において１８時間インキュベートした。アネキシンＶ陽性細胞を、ＦＩＴＣアネキシンＶアポトーシス検出キットＩ（ＥＤＰｈａｒｍｉｎｇｅｎ）を使用した細胞蛍光測定法により解析した。図９のデータによれば、ＡｖｉｄｉｎＯＸがＥＧＦＲ＋細胞の膜には固着するがＥＧＦＲ−細胞には固着しない場合、ビオチン化セツキシマブのアポトーシス促進効果は、少なくとも３倍増大し、したがって、これはＡｖｉｄｉｎＯＸに固着したビオチン化セツキシマブのアポトーシス促進活性の特異性を示している。
【００８１】
実施例１１
ＡｖｉｄｉｎＯＸでの前処置済み、または未処置の状態でのビオチン化セツキシマブによる増殖の阻害をＡ４３１、Ａ５４９（すなわち肺癌、低ＥＧＦＲ、突然変異ＫＲＡＳ）およびＳＫＭｅ１２８細胞でテストした。細胞増殖に対する固着したビオチン化セツキシマブの効果をテストするため、５ｘ１０５Ａ４３１、Ａ５４９およびＳＫＭｅ１２８細胞を、ＡｖｉｄｉｎＯＸで前インキュベーションし、またはせずに、ＤＭＥＭ、１０％ＦＣＳで９６ウェルマイクロタイタープレート（２ｘ１０３細胞／ウェル）に播種した。固定後に、ビオチン化セツキシマブ１００μｌを、ＤＭＥＭ１％ＦＣＳに、０．０５ｐｇ／ｍｌから５μｇ／ｍｌまでの範囲の３つの組に追加した。細胞を１５分後に洗浄し、ＤＭＥＭ１％ＦＣＳで４８時間培養した。細胞生存度をＣｅｌｌＴｉｔｅｒ−Ｇｌｏｗ（登録商標）（Ｐｒｏｍｅｇａ）により検出した。図１０のデータによれば、ビオチン化セツキシマブは、高レベルのＥＧＦＲ（すなわちヒト外陰部癌Ａ４３１細胞）および低レベルのＥＧＦＲ（すなわち突然変異ＫＲＡＳおよびヒト肺腺癌Ａ５４９細胞）を発現する細胞の増殖を阻害できたが、ＥＧＦＲ−細胞（ＳＫＭｅ１２８）の増殖は阻害できなかった。意外なことに、ビオチン化セツキシマブがこれらＥＧＦＲ＋細胞の細胞表面上でＡｖｉｄｉｎＯＸにより固着された場合、このような効果は著しく向上した。
【図２】
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【図５】
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【図１】
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【図３】
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【図４】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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