(57)【要約】  本発明は、被験者の血液試料を用いることができ、従来の子宮内膜症マーカーであるＣＡ１２５等のみを用いた従来方法よりも高感度かつ高精度で子宮内膜症を判定可能な判定方法と、当該本発明方法を実施するための診断用キットを提供することを目的とする。本発明に係る子宮内膜症の判定方法は、血液試料中における、抗シンタキシン自己抗体、抗ＰＤＩＫ１Ｌ自己抗体および抗エノラーゼ自己抗体から選択される少なくとも１種の発現解析を行う工程；および、上記発現解析結果により、子宮内膜症の発症の有無を判定する工程を含むことを特徴とする。【特許請求の範囲】
【請求項１】
血液試料中における、抗シンタキシン自己抗体、抗ＰＤＩＫ１Ｌ自己抗体および抗エノラーゼ自己抗体から選択される少なくとも１種の発現解析を行う工程；および
上記発現解析結果により、子宮内膜症の発症の有無を判定する工程；
を含むことを特徴とする子宮内膜症の判定方法。
【請求項２】
抗シンタキシン自己抗体、抗ＰＤＩＫ１Ｌ自己抗体および抗エノラーゼ自己抗体から選択される少なくとも１種の発現解析に加え、ＣＡ１２５またはＣＡ１９−９の発現解析を行う請求項１に記載の子宮内膜症の判定方法。
【請求項３】
上記発現解析を免疫測定法により行う請求項１または２に記載の判定方法。
【請求項４】
シンタキシン、ＰＤＩＫ１Ｌ、エノラーゼ、それらの断片ペプチド、それらの変性体、それらの修飾体からなる群より選択される少なくとも一種のペプチド；および
上記ペプチドへ特異的に結合する自己抗体へ結合することができ、且つ標識基を有する二次抗体；
を含むことを特徴とする子宮内膜症の診断用キット。
【請求項５】
上記ペプチドが担体に固定化されている請求項４に記載の子宮内膜症の診断用キット。
【請求項６】
さらに、抗ＣＡ１２５抗体または抗ＣＡ１９−９抗体、および上記抗ＣＡ１２５抗体または抗ＣＡ１９−９抗体へ特異的に結合するＣＡ１２５またはＣＡ１９−９へ結合することができ且つ標識基を有する二次抗体を含む請求項４または５に記載の子宮内膜症の診断用キット。
【請求項７】
上記抗ＣＡ１２５抗体または抗ＣＡ１９−９抗体が担体に固定化されている請求項６に記載の子宮内膜症の診断用キット。
【請求項８】
さらに、上記標識基の検出試薬、正常対照試料または子宮内膜症対照試料のいずれか１以上を含む請求項４〜７のいずれかに記載の診断用キット。
【請求項９】
子宮内膜症を判定するための、抗シンタキシン自己抗体、抗ＰＤＩＫ１Ｌ自己抗体および抗エノラーゼ自己抗体から選択される少なくとも一種の使用。
【請求項１０】
子宮内膜症の診断用キットを作製するための、抗シンタキシン自己抗体、抗ＰＤＩＫ１Ｌ自己抗体および抗エノラーゼ自己抗体から選択される少なくとも一種の使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、子宮内膜症の有無を判定するための方法、子宮内膜症を診断するためのキット、および抗シンタキシン自己抗体等の使用方法に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
子宮内膜症は、子宮内膜様の上皮細胞や間質細胞が、卵巣や卵管、また、腹腔内や直腸の表面など子宮腔内面以外の組織や臓器において、月経周期に従って増殖・出血・再生を繰り返し、組織に障害を及ぼす疾患である。子宮内膜症は、子宮内膜様組織が異所で増殖するなど悪性腫瘍と類似の特徴を有するが、あくまで良性の疾患である。しかし、子宮内膜症の原因は必ずしも明らかとなってはいないが、月経のストレスが原因の一つといわれており、晩婚化や出産年齢の遅延、出産回数の低減などにより、近年、その患者数は増加している。また、子宮内膜症は炎症や痛み、組織の癒着などを引き起こし、高い割合で不妊症を併発するというデータもある。よって、子宮内膜症を早期段階で検出して対処することが重要である。【０００３】
子宮内膜症に対しては、腹腔鏡検査や開腹手術による視診と組織診での確定診断が推奨されている。しかし、これら診断方法は患者に苦痛や負担を与えることから、先ずはより簡便な内診、超音波検査、血液検査などが一般的に行われる。この血液検査では、ＣＡ１２５やＣＡ１９−９というマーカーが用いられる。【０００４】
ところがこれらＣＡ１２５とＣＡ１９−９は、もともと卵巣がんなどの腫瘍マーカーであるので、子宮内膜症に特異的なものではない。また、これらマーカーを用いた診断では真陽性率が低く、且つ偽陽性率が高いという欠点がある。そこで、ＣＡ１２５等にとって代わり得る新たな子宮内膜症診断用マーカーが求められている。【０００５】
ＣＡ１２５等以外の子宮内膜症診断用マーカーとしては、例えば特許文献１にはＮＡＤＨ脱水素酵素などの遺伝子が、特許文献２にはヒスタミン放出因子が、特許文献３には組織因子経路インヒビター（ＴＦＰＩ−２）というタンパク質が、それぞれ開示されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】特表２００３−５３１５８０号公報
【特許文献２】特開２００５−４９３４３号公報
【特許文献３】特表２００７−５０６９６５号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
上述したように、実用化されているＣＡ１２５とＣＡ１９−９以外にも、子宮内膜症の診断用マーカーは種々検討されている。【０００８】
しかし特許文献１〜２に記載されているマーカーは、子宮内膜細胞試料における発現レベルを測定しなければならないので、試料の採取に当たり被験者に苦痛を与えるという問題がある。また、特許文献３のマーカーは、卵巣に発生する子宮内膜症性嚢胞（チョコレート嚢腫）との相関性は実験的に示されているが、卵巣以外で発生した子宮内膜症や、チョコレート嚢腫まで至らないような軽度の子宮内膜症との相関性は不明である。【０００９】
そこで本発明は、被験者の血液試料を用いることができ、従来の子宮内膜症マーカーであるＣＡ１２５等のみを用いた方法よりも高感度かつ高精度で子宮内膜症を判定可能な判定方法、当該本発明方法を実施するための診断用キット、並びに子宮内膜症の判定および子宮内膜症の診断用キットを作製するための抗シンタキシン自己抗体等の使用方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
本発明者らは、前記課題を解決するために鋭意研究を重ね、血液に含まれる成分から子宮内膜症の診断用マーカーとして用いることができるものを探索した。その結果、特定のタンパク質に対する自己抗体が子宮内膜症と有意な相関性を示し、従来の子宮内膜症マーカーよりも正確なマーカーとして有用であることを見出して、本発明を完成した。【００１１】
本発明に係る子宮内膜症の判定方法は；血液試料中における、抗シンタキシン自己抗体、抗ＰＤＩＫ１Ｌ自己抗体および抗エノラーゼ自己抗体から選択される少なくとも１種の発現解析を行う工程；および、上記発現解析結果により、子宮内膜症の発症の有無を判定する工程を含むことを特徴とする。【００１２】
本発明に係る子宮内膜症の診断用キットは、シンタキシン、ＰＤＩＫ１Ｌ、エノラーゼ、それらの断片ペプチド、それらの変性体、それらの修飾体からなる群より選択される少なくとも一種のペプチド、および、上記ペプチドへ特異的に結合する自己抗体へ結合することができ、且つ標識基を有する二次抗体を含むことを特徴とする。【００１３】
本発明に係る抗シンタキシン自己抗体、抗ＰＤＩＫ１Ｌ自己抗体および抗エノラーゼ自己抗体から選択される少なくとも１種は、子宮内膜症の判定と、子宮内膜症の診断用キットを作製するために用いることができる。
【図面の簡単な説明】
【００１４】
【図１】本発明方法に基づいて、子宮内膜症患者、その他の疾患の患者および健常者から得た血清試料における抗α−エノラーゼ自己抗体の相対活性を測定した結果を示す図である。
【図２】本発明方法に基づいて、子宮内膜症患者、その他の疾患の患者および健常者から得た血清試料における抗ＰＤＩＫ１Ｌ自己抗体の相対活性を測定した結果を示す図である。
【図３】本発明方法に基づいて、子宮内膜症患者、その他の疾患の患者および健常者から得た血清試料における抗シンタキシン５自己抗体の相対活性を測定した結果を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００１５】
本発明に係る子宮内膜症の判定方法では、被検者の血液試料中における、抗シンタキシン自己抗体、抗ＰＤＩＫ１Ｌ自己抗体および抗エノラーゼ自己抗体から選択される少なくとも１種の発現解析を行う。
【００１６】
子宮内膜症は、子宮内膜様の上皮細胞や間質細胞が、卵巣や卵管、また、腹腔内や直腸の表面など子宮腔内面以外の組織や臓器において、月経周期に従って増殖・出血・再生を繰り返して組織に障害を及ぼす疾患であり、その重篤度に応じてステージＩからステージＩＶまでの４段階に分けられる。本発明においては、子宮内膜症の重篤度が高いほど、その有無をより高い感度と精度で判定することができる。なお、実用化されている子宮内膜症マーカーであるＣＡ１２５とＣＡ１９−９は卵巣がんなどの腫瘍マーカーでもあるので、偽陽性率が高い。それに対して本発明に係る子宮内膜症マーカーは、本発明者らによる実験によれば、異常値を除き、健常者や他の疾患の患者の偽陽性率が従来マーカーよりも低い。
【００１７】
本発明方法で用いる血液試料の種類は特に制限されず、血液自体、血漿、血清のいずれも含まれる。但し、発現解析の対象である自己抗体は血清に含まれるので、血漿または血清を用いることが好ましく、血清を用いることがより好ましい。なお、血漿や血清を得る方法としては常法を適用すればよく、より具体的には遠心分離や濾過を用いればよい。
【００１８】
本発明方法は、ヒトのみならず他の温血動物に対しても有効であると考えられることから、血液試料としてはヒト由来のもののみならず、他の温血動物由来のものも用いることができる。
【００１９】
本発明方法では血液試料を用いることから、例えば子宮組織などを患者から切除して試料とする必要はなく、血液を採取すればよい。よって、本発明方法では患者に与える苦痛がより低減されている。
【００２０】
シンタキシンは、細胞のエキソサイトーシスに関係するＳＮＡＲＥ複合体を形成する細胞膜結合性タンパク質の一種である。
【００２１】
ＰＤＩＫ１Ｌは、セリン／スレオニンプロテインキナーゼであり、同じくキナーゼであるＣＬＩＫ１と６９％の相同性を示す。ＰＤＩＫ１Ｌのアミノ酸配列は、LINGCHEN GUO，et.al.，Journal of Genetics，vol.82，nos.1 & 2，pp.27-32（2003）（この文献は、参照することにより本明細書に援用されるものとする）に記載されている。
【００２２】
エノラーゼは解糖系に関係する酵素の一つであり、そのアイソザイムとしては、細胞質に偏在するα型、筋肉細胞に偏在するβ型、ニューロンに偏在するγ型がある。
【００２３】
本発明では、被験者の血液試料における上記タンパク質の自己抗体の発現解析を行う。子宮内膜症患者の血液試料において、上記タンパク質の自己抗体の発現量が増加する理由は明らかではないが、これら自己抗体の発現解析により、従来マーカーよりも正確に子宮内膜症の有無を判定することが可能になる。
【００２４】
本発明に係る判定方法においては、抗シンタキシン自己抗体、抗ＰＤＩＫ１Ｌ自己抗体および抗エノラーゼ自己抗体から選択される少なくとも１種の発現解析に加え、ＣＡ１２５またはＣＡ１９−９の発現解析を行うことが好ましい。抗シンタキシン自己抗体等と共にＣＡ１２５またはＣＡ１９−９の発現解析を行うことにより、子宮内膜症をより一層高感度で検出することが可能になる。
【００２５】
発現解析の対象である抗シンタキシン自己抗体としては抗シンタキシン５自己抗体が好ましく、抗エノラーゼ自己抗体としては抗α−エノラーゼ自己抗体が好ましい。
【００２６】
本発明に係る判定方法において、シンタキシン等に対する自己抗体およびＣＡ１２５等の発現解析法は、特に制限されない。例えば、血液試料中におけるこれら自己抗体の絶対量や濃度を測定することに限られず、相対的な量や濃度を測定してもよい。より具体的には、例えば、上記自己抗体等の血液試料中における量、濃度または活性を測定すればよい。
【００２７】
具体的な発現解析方法としては、例えば、ＥＬＩＳＡ、プロテインチップを用いた方法、免疫比濁法、ウェスタンブロッティング法、ＲＩＡ法、化学発光酵素免疫測定法（ＣＬＥＩＡ法）、ラテックス凝集法、電気化学発光免疫測定法（ＥＣＬＩＡ法）、赤血球凝集反応（ＨＡ法）などの免疫測定法を挙げることができる。
【００２８】
これら方法の中でも、上記発現解析を行うための手段としては、免疫測定法が好ましい。免疫測定法は感度や精度が高く、血中における自己抗体濃度のわずかな変化も検出可能である。
【００２９】
ＥＬＩＳＡにより本発明に係る自己抗体の発現解析を行う場合、好適には本発明に係る子宮内膜症の診断用キットを用いることができる。
【００３０】
本発明の診断用キットは、シンタキシン、ＰＤＩＫ１Ｌ、エノラーゼ、それらの断片ペプチド、それらの変性体、それらの修飾体からなる群より選択される少なくとも一種のペプチド、および、上記ペプチドへ特異的に結合する自己抗体へ結合することができ、且つ標識基を有する二次抗体を含む。
【００３１】
上記診断用キットとしては、さらに、抗ＣＡ１２５抗体または抗ＣＡ１９−９抗体、および上記抗ＣＡ１２５抗体または抗ＣＡ１９−９抗体へ特異的に結合するＣＡ１２５またはＣＡ１９−９へ結合することができ且つ標識基を有する二次抗体を含むものが好適である。かかるキットを用いれば、抗シンタキシン自己抗体等の発現解析に加えてＣＡ１２５またはＣＡ１９−９の発現解析を行うことができ、これら解析結果を組合わせることでより一層正確な子宮内膜症の判定が可能になる。
【００３２】
シンタキシン等の断片ペプチドは、シンタキシン等の一部であって、上記自己抗体が特異的に結合できるものをいう。これら断片ペプチドとしては、例えば、シンタキシン等の自己抗体のエピトープ自体や、エピトープを含むペプチドなどを挙げることができる。なお、本発明に係る自己抗体が結合するエピトープは、ＥＬＩスポットアッセイ、細胞内サイトカイン染色法、フローサイトメトリー法、Ｔ細胞増殖アッセイ等の公知方法により決定すればよい。
【００３３】
シンタキシン等の変性体は、上記自己抗体が特異的に結合できるものであって、加熱、凍結、紫外線などの物理的処理や、界面活性剤や変性剤などによる化学的処理を施されたものをいう。例えば、ＳＤＳやＤＴＴにより処理したものを挙げることができる。
【００３４】
シンタキシン等の修飾体は、上記自己抗体が特異的に結合できるものであって、１以上のアミノ酸が修飾されているものをいう。例えば、グルタルアルデヒドを作用させたものを挙げることができる。
【００３５】
本発明では、上記ペプチドとして、シンタキシン等の断片ペプチドであって且つ変性処理されたものや、変性体で且つ化学修飾体であるシンタキシン等も用い得る。
【００３６】
上記ペプチドは、上記自己抗体が特異的に結合できる限りにおいて、１または数個のアミノ酸残基の変異、置換、欠失および／または付加があってもよい。
【００３７】
本発明に係る診断用キットにおいて、上記ペプチドや抗ＣＡ１２５抗体等は、担体に固定化されていてもよい。担体を用いることにより、これらペプチド等を試料から分離し易くなるなどの利点が生じる。上記ペプチド等を固定化すべき担体は、診断用キットにおいて一般的に用いられているものであれば特に制限されない。例えば、担体の素材としてはポリスチレン、ポリアミド、ポリアクリルアミドなどの樹脂；シリカゲル；ガラス；綿などを挙げることができ、担体の形状としては、ビーズ、フィルム、糸、不織布、不定形ゲルなどを挙げることができる。
【００３８】
かかる診断用キットを用いる場合には、上記ペプチド等へ、被験者の血液試料を作用させる。その結果、血液試料中に本発明に係るペプチド等に対する自己抗体やＣＡ１２５等が含まれていれば、ペプチド等へ特異的に結合する。次いで、バッファーなどで非特異的にペプチド等へ結合したタンパク質等を洗浄除去した後、上記二次抗体を作用させる。二次抗体は、上記ペプチド等に結合した上記自己抗体等へ結合する。かかる二次抗体を、標識基に応じた方法で検出する。
【００３９】
上記標識基としては、生化学分野で一般的に用いられるものを用いればよい。例えば、蛍光発色基や、ペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、ルシフェラーゼなどの酵素を挙げることができる。これら酵素は、検出試薬を作用させることにより発光等させることが可能となる。例えば、標識基としてペルオキシダーゼを用いた場合には、ペルオキシダーゼによる酸化で発色する発色試薬や、ペルオキシダーゼの作用で過酸化塩から生じるＯ22-に応じて発色する発色試薬などにより、検出できる。
【００４０】
血液試料に含まれる自己抗体の濃度や量は、発色強度などにより間接的に得られる。得られた測定値を、検量線などにより、相対的または絶対的な濃度、量、活性などに換算してもよい。
【００４１】
本発明の診断用キットとしては、正常対照試料や子宮内膜症対照試料を含むものも好ましい。これら試料が付属していれば、これら試料について同様の実験を行い、その測定値と被検試料の結果とを比較することによって、被験者における子宮内膜症の有無の判定をより客観的に行うことができる。
【００４２】
プロテインチップを用いた方法では、上記ペプチド等が担持されたプロテインチップを用いる。かかるプロテインチップに血液試料を作用させれば、本発明に係る自己抗体が特異的に結合する。次いで、バッファーなどで非特異的に結合したタンパク質等を洗浄除去した後、結合した自己抗体を常法により検出すればよい。
【００４３】
かかる検出方法としては、例えば、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＡＳＳやＳＥＬＤＩ−ＴＯＦ−ＭＡＳＳなどのＴＯＦ−ＭＡＳＳを挙げることができる。ＴＯＦ−ＭＡＳＳチャートから、分子量ピークやその他の断片ピーク、それらの強度などにより、自己抗体の濃度や量を把握できる。その他、ＥＬＩＳＡの場合と同様に、標識基を有し且つ各自己抗体へ結合できる二次抗体を用い、プロテインチップへ選択的に結合した自己抗体を検出することも可能である。
【００４４】
免疫比濁法を利用する場合、血液試料中の本発明に係る自己抗体へ特異的な抗原を結合させた上で特定の光を照射し、生じた不溶性複合体の量に応じた濁度を測定することにより自己抗体の濃度や量を求める。よって、自己抗体の濃度や量は濁度に応じた相対値として得られるが、事前に作成した検量線を用いることによって、絶対的な量や濃度を求めることも可能である。
【００４５】
化学発光酵素免疫測定法（ＣＬＥＩＡ法）の場合、血液試料中の各自己抗体を、フェライト粒子などへ固定化した上記ペプチド等と標識抗体とで挟み、抗原抗体反応複合体を形成する。次いで、発光基質など標識基に応じた検出用化合物などを添加した上で、発光量を測定すればよい。なお、フェライト粒子を用いた場合には、磁石などを使うことにより必要な複合体を精製することが可能である。
【００４６】
本発明方法においては、次いで、得られた発現解析結果から子宮内膜症の発症の有無を判定する。即ち、子宮内膜症が発症していれば、或いはその症状が重いほど、血液中における本発明に係る自己抗体の濃度や量は高まる。よって、本発明に係る自己抗体の発現解析結果より、その発現量が多ければ陽性と判断でき、その発現量が少なければ陰性と判断できる。
【００４７】
実際には、子宮内膜症の定義や重篤度、本発明に係る自己抗体の発現解析方法によって、陽性と陰性の境界、即ちカットオフ値が変わり得る。従って、一般的な基準が無い段階では、本発明方法の実施者が発現解析方法やカットオフ値を予備実験などにより事前に決定した上で、測定を行う必要がある。
【００４８】
さらに本発明方法においては、抗シンタキシン自己抗体等の発現解析と共に、従来マーカーであるＣＡ１２５またはＣＡ１９−９の発現解析を行い、抗シンタキシン自己抗体等とＣＡ１２５等のいずれか一方がそれぞれのカットオフ値を超えた場合に子宮内膜症陽性と判断するようにすれば、子宮内膜症をより一層高感度で検出することが可能になる。
【実施例】
【００４９】
以下、実施例を挙げて本発明をより具体的に説明するが、本発明はもとより下記実施例によって制限を受けるものではなく、前・後記の趣旨に適合し得る範囲で適当に変更を加えて実施することも勿論可能であり、それらはいずれも本発明の技術的範囲に包含される。【００５０】
実施例１  子宮内膜症マーカーの探索
（１）  血清試料の採取
２０〜５０歳の子宮内膜症患者（平均年齢：３４．７±７．６（平均値±標準偏差）歳）５１人、２２〜３４歳女性健常者（平均年齢：２６．４±３．７）１８人、１７〜４８歳の子宮内膜症以外の疾患に罹患している患者（平均年齢：３２．８±９．３）１８人から、血液を採取した。なお、子宮内膜症以外の患者の疾病は、表１に示すとおりである。【００５１】
【表１】
2010101047.tif 000002
【００５２】
採取した各血液を凝血促進剤と共にチューブへ入れ、室温で１〜２時間静置した。次いで、分離した血清部分を取得し、試験に用いるまで−２０℃で保存した。【００５３】
（２）  全タンパク質の取得
ヒト悪性胸膜中皮腫細胞（理化学研究所，ＡＣＣ−Ｍｅｓｏ−１ Ｃｅｌｌｓ）を入手し、１０％ウシ胎仔血清と１００μｇ／ｍＬアミノベンジルペニシリン（１０％ダルベッコ改変イーグル培地溶液）を添加したダルベッコ改変イーグル培地を用い、５％ＣＯ2中、３７℃で培養した。細胞は、一週間に二回、１０％ダルベッコ改変イーグル培地で継代培養した。【００５４】
上記のとおり培養したヒト悪性胸膜中皮腫細胞を集め、８Ｍ尿素、２％ＮｏｎｉｄｅｔＰ−４０（界面活性剤）、２％ ２−メルカプトエタノールおよび１０ｍＭ ＰＭＳＦ（プロテアーゼ阻害剤）を含む４質量倍の可溶化バッファーと混合し、超音波ホモジェナイザー（ブランソン社製，Ｓｏｎｉｆｉｅｒ２５０）を使って溶解した。１０，０００ｒｐｍ、４℃で１２分間遠心分離した後、タンパク質を含む上清を取得し、試験に付すまで−８０℃で保存した。【００５５】
上記上清を室温まで戻した後、その１０〜５０μｇを、０．５％ＩＰＧバッファーとｐＩ３−１０（ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製）を含む可溶化バッファーからなるサンプルローディングバッファーと混合した。次いで、一次元目用電気泳動ゲル（ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社，Immobiline DryStrip，ｐＨ３〜１０，７ｃｍ）をセットした等電点電気泳動装置（ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製，Ettan IPGphor II）に調整試料をロードして電気泳動を行い、次いで二次元目用電気泳動ゲルである１０％アクリルアミドゲル（バイオクラフト社製）を用いて二次元目のＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動を行った。また、別途、細胞溶解物に含まれる全タンパク質の濃度を、Ｄ／Ｃタンパク質アッセイキット（バイオラッド社製）を使って測定した。電気泳動後、ゲル中のタンパク質をＰＶＤＦ膜（ミリポア社製）に移した。非特異的な吸着を防ぐために、５％脱脂乳と０．１％Ｔｗｅｅｎ２０の０．１％ＰＢＳ溶液を用い、当該膜を室温で１時間ブロックした。【００５６】
（３）  子宮内膜症マーカーの決定
上記（１）で得た血清試料のうち、子宮内膜症患者由来の３個の試料と、健常者由来の４個の試料を室温まで温めて、５％ＢＳＡで１０００倍に希釈した。上記ＰＶＤＦ膜を、当該血清希釈試料と、０．１％Ｔｗｅｅｎ２０を０．１％の濃度でＢＳＡの５％ＰＢＳ溶液に溶解した溶液とで、室温で１時間インキュベートした。当該ＰＶＤＦ膜をＴｗｅｅｎ２０の０．１％ＰＢＳ溶液で３回洗浄した後、抗ヒトＩｇＧのＨＲＰ標識体（サンタ・クルーズ・バイオテクノロジー社製）の５％ＢＳＡ−ＰＢＳ溶液中、室温で１時間インキュベートした。４回洗浄した後、ＥＣＬ溶液（ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製）を作用させることにより、血清試料中に含まれる抗体へ特異的に結合されるタンパク質のスポットを発光させ、化学発光用フィルム（ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製，HyperFilm ECL）で撮影した。また、当該二次元電気泳動ゲルは、別途、クーマシーブリリアントブルー（ＣＢＢ）で直接染色した。【００５７】
血液試料に含まれる抗体のうち子宮内膜症患者に特異的なものに結合されたタンパク質を特定するために、ＭＡＬＤＩ ＴＯＦ−ＭＳシステム（アプライドバイオシステム社製，Voyager DE-PRO）を用い、ペプチドマスフィンガープリント法を実施した。ＣＢＢ染色した二次元電気泳動ゲルのスポットのうち子宮内膜症患者に特異的なものを、メスで切除した。炭酸水素アンモニウムを５０％アセトニトリルに溶解して１２．５ｍＭ溶液（ｐＨ８．０）を得、当該溶液（４００μＬ）中、各スポットを室温で１５分間インキュベートした後、上清を吸引除去した。かかる工程を３回繰り返した。次いで、１００％アセトニトリル（４００μＬ）中、各スポットを室温で５分間インキュベートした後、アセトニトリルを吸引除去した。各スポットをエバポレーター（タイテック社製，ＶＣ−３６Ｎ）で乾燥した後、トリプシンを２５ｍＭ炭酸水素アンモニウム溶液に溶解した１５μｇ／ｍＬ溶液（１５〜３０μＬ，ｐＨ８．０，プロメガ社製）に添加混合し、３７℃で一晩インキュベートした。次に、当該スポットゲルを５０％アセトニトリルと５％トリフルオロ酢酸を含む水溶液（２５〜５０μＬ）と混合し、６０分間緩やかに攪拌した。かかる抽出操作を再度繰り返し、得られた溶液を合わせ、減圧濃縮した。得られた残渣を０．１％トリフルオロ酢酸水溶液（１０μＬ）に溶解し、ＺｉｐＴｉｐ Ｃ１８（ミリポア社製）を通した。ＺｉｐＴｉｐと０．１％トリフルオロ酢酸水溶液を使った洗浄を５回繰り返した後、ＺｉｐＴｉｐ内の試料を３０％アセトニトリル（２μＬ）で溶出した。次に、溶出液（０．５μＬ）をＭＡＬＤＩ ＴＯＦ−ＭＳシステム（アプライドバイオシステム社製，Voyager DE-PRO）の試料プレートにロードした。同容量のマトリックス溶液、α−シアノ−４−ヒドロキシケイ皮酸（シグマ社製）の５０％アセトニトリル溶液、５％トリフルオロ酢酸と混合した後、当該試料プレートをエバポレーターで乾燥した。ＭＡＬＤＩ ＴＯＦ−ＭＳシステム（アプライドバイオシステム社製，Voyager DE-PRO）とSequezyme peptide mass standards kit（アプライドバイオシステムズ社製）を使ってＴＯＦ−ＭＳ解析を行った。得られたＴＯＦ−ＭＳデータを、http://trypsin.nichd.nih.gov/ucsfhtml3.2/msfit.htmのプロテイン・インスペクター・ページ中のＮＣＢＩｎｒ．２００５．０１．０６データベースを用い、ＭＳ−Ｆｉｔプログラムソフトウェアプログラムｖｅｒ．３．２．１で、ペプチドマスエラーを１５０ｐｐｍにして解析した。その際、一つのペプチドごとに一つの不完全開裂を考慮し、ｐＩ範囲には制限を設けなかった。ＭＡＬＤＩ ＴＯＦ−ＭＳ解析は、一つの試料につき最低でも３回行った。特定されたタンパク質を以下に示す。【００５８】
【表２】
2010101047.tif 000003
【００５９】
以上の結果のとおり、子宮内膜症患者の血清試料中に特異的に含まれる自己抗体が結合するタンパク質は、α−エノラーゼ、ＰＤＩＫ１Ｌおよびシンタキシン５であることが分かった。【００６０】
実施例２  本発明に係る自己抗体の各血清試料中相対活性値の測定
（１）  組み換えタンパク質の調製
ヒト悪性胸膜中皮腫細胞（理化学研究所，ＡＣＣ−Ｍｅｓｏ−１ Ｃｅｌｌｓ）からｃＤＮＡを調製し、ＰＣＲ反応により、それぞれグルタチオン−Ｓ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）が融合した、α−エノラーゼ、ＰＤＩＫ１Ｌおよびシンタキシン５をコードする遺伝子を増幅した。増幅された遺伝子を大腸菌に導入して形質転換し、ＧＳＴ融合α−エノラーゼ、ＧＳＴ融合ＰＤＩＫ１ＬおよびＧＳＴ融合シンタキシン５を得た。【００６１】
（２）  ＥＬＩＳＡによる血清試料中の各自己抗体の相対活性値の測定
上記で調製したＧＳＴ融合タンパク質を用いたＥＬＩＳＡを実施することにより、上記実施例１（１）の血清試料中におけるα−エノラーゼ、ＰＤＩＫ１Ｌおよびシンタキシン５の自己抗体の相対活性値を測定した。【００６２】
各ＧＳＴ融合タンパク質を０．１Ｍ炭酸バッファー（ｐＨ９．５）で希釈し、当該液の１００μＬをＥＬＩＳＡプレート（コーニング社製，＃３３６９）のウェルへ、最終濃度１μｇ／ｍＬで加えた。当該プレートを４℃で一晩インキュベートして各タンパク質を固定化した後、Ｔｗｅｅｎ２０の０．０５％ＰＢＳ溶液で４回洗浄した。各ウェルへ１％ＢＳＡ−ＰＢＳ（１００μＬ）を加えた。【００６３】
アッセイ開始時に１％ＢＳＡ−ＰＢＳを除去し、１％ＢＳＡ−ＰＢＳで２０００倍に希釈した各血清試料（１００μＬ）をウェルに加え、室温で１時間インキュベートした。次いで、抗ヒトＩｇＧのＨＲＰ標識体（サンタ・クルーズ・バイオテック社製，１００μＬ）を加え、室温で１時間インキュベートした。洗浄後、Ｈ2Ｏ2を０．０１％含有する０．０５Ｍ酢酸ナトリウムバッファー（ｐＨ５．５）にテトラメチルベンジジンを溶解した１０ｍｇ／ｍＬ溶液（１００μＬ）を加え、室温で３０分間インキュベートした。次に、１０％希硫酸（５０μＬ）を加えて反応を停止させた。マルチスキャンＥＬＩＳＡリーダー（ラボシステムズ社製）を使い、４５０／６２０ｎｍの光学密度を測定した。測定は各試料につき３回繰り返し、得られた平均値をデータ解析に用いた。【００６４】
別途、標準的な血清を選択し、１％ＢＳＡ−ＰＢＳで２０００倍に希釈した後、同様に光学密度を測定した。さらに、１２５〜８０００倍希釈の血清とブランクについても、同様に測定した。２０００倍希釈液における各自己抗体の活性を１０００ｕｎｉｔ／ｍＬと仮定し、各自己抗体の相対的な活性値と光学密度について検量線を作成した。【００６５】
各血清試料における、抗α−エノラーゼ自己抗体、抗ＰＤＩＫ１Ｌ自己抗体および抗シンタキシン５自己抗体の相対的な活性値を、光学密度の測定値と上記検量線により求めた。統計的解析は、ウェルチのｔ検定により行い、ＲＯＣ（Receiver Operating Characteristic）プロットを計算した。抗α−エノラーゼ自己抗体の結果を図１に、抗ＰＤＩＫ１Ｌ自己抗体の結果を図２に、抗シンタキシン５自己抗体の結果を図３に示す。【００６６】
図１のとおり、子宮内膜症患者の血清試料中における抗α−エノラーゼ自己抗体の相対活性値は、健常者に比べてｐ＝０．００７９の危険率で有意に高く、子宮内膜症以外の疾患の患者に比べてｐ＝０．０２４の危険率で、有意に高い。【００６７】
また、図２のとおり、子宮内膜症患者の血清試料中における抗ＰＤＩＫ１Ｌ自己抗体の相対活性値は、健常者に比べてｐ＝０．０００２６の危険率で有意に高く、子宮内膜症以外の疾患の患者に比べてｐ＝０．００７１の危険率で、有意に高い。【００６８】
さらに、図３のとおり、子宮内膜症患者の血清試料中における抗シンタキシン５自己抗体の相対活性値は、健常者に比べてｐ＝０．０００７０の危険率で有意に高く、子宮内膜症以外の疾患の患者に比べてｐ＝０．０１４の危険率で、有意に高い。【００６９】
なお、従来の子宮内膜症のマーカーであるＣＡ１２５について、血清試料中における相対活性を、愛媛医療研究所で放射免疫測定法により測定した。その結果、カットオフ値は３５ｕｎｉｔ／ｍＬと低いレベルにあり、特に他の疾患の患者や健常者の血清試料でも当該カットオフ値を超える値を示す場合がかなり多く、偽陽性のケースが見られた。【００７０】
それに対して、上記実験において、それぞれのカットオフ値は、抗α−エノラーゼ自己抗体の場合で４００ｕｎｉｔ／ｍＬ、抗ＰＤＩＫ１Ｌ自己抗体の場合で３１０ｕｎｉｔ／ｍＬ、抗シンタキシン５自己抗体の場合で４７０ｕｎｉｔ／ｍＬとした。図１〜３のとおり、これらカットオフ値を採用すれば、他の疾患の患者と健常者の血清試料の測定値のうち異常値を示す数例を除き、偽陽性のケースは見られない。【００７１】
以上のとおり、本発明に係る方法によれば、従来の方法よりも子宮内膜症の有無をより正確に判定できることが実証された。【００７２】
実施例３  ＣＡ１２５の併用
表３に示す２０〜５０歳の子宮内膜症患者６５人、２２〜５１歳女性健常者（平均年齢：３５．０±３．７）３９人、１７〜５０歳の子宮内膜症以外の疾患に罹患している患者（平均年齢：３３．９±９．３）３１人から、血液を採取し、上記実施例１（１）と同様にして血清試料を得た。なお、子宮内膜症以外の患者の疾病は、表４に示すとおりである。【００７３】
【表３】
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【００７４】
【表４】
2010101047.tif 000005
【００７５】
上記実施例２（２）と同様にして、血清試料に含まれるα−エノラーゼの自己抗体およびＣＡ１２５の相対活性（Ｕ／ｍＬ）を測定し、ウェルチのｔ検定により統計的解析を行った。結果を、下記実施例４の結果と共に表７に示す。【００７６】
また、上記実施例２（２）と同様に、抗α−エノラーゼ自己抗体を子宮内膜症マーカーとする場合は血清試料におけるカットオフ値を４００Ｕ／ｍＬに、ＣＡ１２５の場合はカットオフ値を３５Ｕ／ｍＬに設定し、抗α−エノラーゼ自己抗体がカットオフ値を超えた場合と、α−エノラーゼの自己抗体とＣＡ１２５のいずれか一方がそれぞれのカットオフ値を超えた場合について、感度：（真陽性者数／子宮内膜症患者数）×１００、特異度：［（真陰性者数／（総被験者数−子宮内膜症患者数）］×１００、正診率：［（真陽性者＋真陰性者数）／総被検者数］×１００を算出した。なお、前記式において、「真陽性」とは子宮内膜症患者が陽性を示す場合であり、「真陰性」とは、健常者および子宮内膜症以外の疾患に罹患している患者が陰性を示す場合である。結果を、下記実施例４の結果と共に表８に示す。【００７７】
実施例４  ＣＡ１２５の併用
表５に示す２０〜５１歳の子宮内膜症患者６９人、２２〜５１歳女性健常者（平均年齢：３４．２±９．３）４４人、１８〜４８歳の子宮内膜症以外の疾患に罹患している患者（平均年齢：３４．４±８．２）３８人から、血液を採取し、上記実施例１（１）と同様にして血清試料を得た。なお、子宮内膜症以外の患者の疾病は、表６に示すとおりである。【００７８】
【表５】
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【００７９】
【表６】
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【００８０】
上記実施例２（２）と同様にして、血清試料に含まれるＰＤＩＫ１Ｌおよびシンタキシン５の自己抗体ならびにＣＡ１２５の相対活性（Ｕ／ｍＬ）を測定し、ウェルチのｔ検定により統計的解析を行った。結果を表７に示す。なお、ＣＡ１２５の項においては、上段が実施例３での結果を示し、下段が実施例４での結果を示す。【００８１】
【表７】
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【００８２】
上記結果のとおり、従来のＣＡ１２５をマーカーとした場合、特に子宮内膜症以外の疾患に罹患した患者に対しては、子宮内膜症を有意に検出することができない。それに対して本発明に係るマーカーを指標とする場合、健常者に対してのみならず、子宮内膜症以外の患者に対しても、子宮内膜症を低危険率で有意に検出できることが実証された。【００８３】
また、上記実施例２（２）と同様に、抗ＰＤＩＫ１Ｌ自己抗体を子宮内膜症マーカーとする場合は血清試料におけるカットオフ値を３１０Ｕ／ｍＬに、抗シンタキシン５自己抗体の場合はカットオフ値を４７０Ｕ／ｍＬに、ＣＡ１２５の場合はカットオフ値を３５Ｕ／ｍＬに設定し、抗ＰＤＩＫ１Ｌ自己抗体がカットオフ値を超えた場合、抗シンタキシン５自己抗体がカットオフ値を超えた場合、抗ＰＤＩＫ１Ｌ自己抗体とＣＡ１２５のいずれか一方がそれぞれのカットオフ値を超えた場合および抗シンタキシン５自己抗体とＣＡ１２５のいずれか一方がそれぞれのカットオフ値を超えた場合について、感度、選択性および正確性を算出した。結果を表８に示す。【００８４】
【表８】
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【００８５】
上記結果のとおり、本発明に係るマーカーと従来のＣＡ１２５のいずれか一方を指標とする場合には、本発明マーカーのみを指標とする場合に比して、選択性は低下する傾向にあり、正確性はほぼ同等である一方で、感度は顕著に向上した。かかる結果より、初期の子宮内膜症をできるだけもれなく検出する必要がある場合には、本発明マーカーに加えてＣＡ１２５を併用すれば、より一層感度良く子宮内膜症を検出できることが分かった。
【産業上の利用可能性】
【００８６】
本発明によれば、従来の子宮内膜症マーカーよりも高感度かつ高精度で子宮内膜症の有無を判定可能である。また、本発明においては、子宮組織試料を取得する必要は無く、血液試料で判定できるので、被験者に与える苦痛も少ない。よって本発明は、近年、患者数が増えている子宮内膜症の有無を簡便かつ正確に判定可能なものであり、非常に有用である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【国際調査報告】
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