(57)【要約】  平均粒径が１０００ｎｍ未満である、アミノ酸を抱合したシアノアクリレートポリマー粒子が開示されている。本発明のアミノ酸抱合粒子は、がん細胞に対しアポトーシス様の細胞死を誘導して該細胞を障害できる。該粒子はＴ細胞リンパ腫やＢ細胞リンパ腫等のリンパ腫由来の細胞株に対してとりわけ親和性が高く、また、一部の膵臓癌由来細胞株に対しても増殖抑制効果を発揮できる。従って、本発明の粒子はがんの治療及び／又は予防に有用である。
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
平均粒径が1000nm未満である、アミノ酸を抱合したシアノアクリレートポリマー粒子。
【請求項２】
シアノアクリレートモノマー、糖類及び／又はポリソルベート、並びにアミノ酸の共存下において、前記モノマーをアニオン重合させることにより製造される請求項１記載の粒子。
【請求項３】
前記糖類が、水酸基を有する単糖類及び水酸基を有する多糖類から成る群より選ばれる少なくとも１種の糖類である請求項２記載の粒子。
【請求項４】
前記糖類がデキストランである請求項２記載の粒子。
【請求項５】
前記シアノアクリレートがｎ−ブチルシアノアクリレートである請求項１ないし４のいずれか１項に記載の粒子。
【請求項６】
平均粒径が20nm〜600nmである請求項１ないし５のいずれか１項に記載の粒子。
【請求項７】
請求項１ないし６のいずれか１項に記載の粒子を有効成分として含有するがんの治療及び／又は予防剤。
【請求項８】
前記がんがリンパ腫である請求項７記載の治療及び／又は予防剤。
【請求項９】
前記がんがＴ細胞リンパ腫である請求項８記載の治療及び／又は予防剤。
【請求項１０】
前記粒子に抱合されるアミノ酸がグリシン、アスパラギン酸及びアルギニンから選択される少なくとも１種である請求項９記載の治療及び／又は予防剤。
【請求項１１】
前記がんがＢ細胞リンパ腫である請求項８記載の治療及び／又は予防剤。
【請求項１２】
前記粒子に抱合されるアミノ酸がグリシン、メチオニン、グルタミン酸、アスパラギン酸、リジン、アラニン、バリン、セリン、システイン、フェニルアラニン、ヒスチジン、ロイシン、スレオニン、トリプトファン、プロリン、アスパラギン、及びグルタミンから選択される少なくとも１種である請求項１１記載の治療及び／又は予防剤。
【請求項１３】
前記がんが膵臓癌である請求項７記載の治療及び／又は予防剤。
【請求項１４】
前記粒子に抱合されるアミノ酸がアスパラギン酸及びグリシンから選択される少なくとも１種である請求項１３記載の治療及び／又は予防剤。
【請求項１５】
がんの治療及び／又は予防用の粒子である請求項１ないし６のいずれか１項に記載の粒子。
【請求項１６】
がんの治療及び／又は予防を必要とする動物に対して請求項１ないし６のいずれか１項に記載の粒子の有効量を投与することを含む、がんの治療及び／又は予防方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、アミノ酸を抱合したシアノアクリレートポリマー粒子、及び該粒子を有効成分として含有するがんの治療及び／又は予防剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
Ｔ細胞リンパ腫は難病の非ホジキンリンパ腫のひとつである。細胞毒性の強い抗がん剤による骨髄破壊の後に骨髄を移植するという方法以外に有効な治療法は存在しない。従来の抗がん剤は、強い細胞毒性の故に、目的の抗がん効果と共に正常細胞への毒性が強く生じる。従って、骨髄破壊後の移植ステップにおいて患者の正常細胞が既にダメージを受けていることが主因となり、その予後もしばしば不良である。また、ドナーの条件も厳しく、ドナーを見出すことも容易ではない。【０００３】
膵臓癌は最も生存率の低いがんのひとつである。膵臓癌には特有の初期症状がないため早期発見が非常に困難であり、かなり進行してから発見される場合が多い。有効な治療法が現在でも知られておらず、非常に予後不良である。【０００４】
一方、薬物のデリバリーシステム（ＤＤＳ）や徐放化による薬物の効果向上を目的に、薬剤の微粒子化の研究が進んでおり、例えばシアノアクリレートポリマー粒子に薬剤を抱合させたＤＤＳが公知である（特許文献１〜５及び非特許文献１）。本願発明者らも、現在までに、粒径のばらつきが少ないシアノアクリレートポリマー粒子の製造方法、抗菌剤抱合粒子、及びプラスミド抱合粒子を開示している（特許文献３〜５）。しかしながら、現在までのいずれの研究においても、薬物のＤＤＳと徐放化が目的であり、アミノ酸のようにそれ自体が特別な薬理作用を有するわけではない物質を抱合させたシアノアクリレートポリマー粒子は知られていない。そのような抱合粒子を用いた医薬も全く知られていない。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特表平１１−５０３１４８号公報
【特許文献２】特表２００２−５０４５２６号公報
【特許文献３】特開２００８−１２７５３８号公報
【特許文献４】国際公開第２００８／１２６８４６号公報
【特許文献５】特開２００８−２０８０７０号公報
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】Christine Vauthier et al., Adv. Drug Deliv. Rev., 55, 519-548 (2003)
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
従って、本発明の目的は、がんの治療に有用な新規な手段を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本願発明者らは、鋭意研究の結果、シアノアクリレートモノマーをアミノ酸の共存下でアニオン重合させることにより、アミノ酸を抱合したナノサイズ（平均粒径1000nm未満）のシアノアクリレートポリマー粒子を合成した。そして、該抱合粒子ががん細胞由来の各種細胞株に対しアポトーシス様の細胞死を誘導して該細胞を障害できること、抱合させるアミノ酸の種類を選択することで各種のがんに対応でき、とりわけリンパ腫由来の細胞株に対して高い親和性を発揮できること、さらに、一部の膵臓癌由来細胞株に対して増殖抑制作用があり、有効な治療法が存在しない膵臓癌の治療にも有用であり得ることを見出し、本願発明を完成した。【０００９】
すなわち、本発明は、平均粒径が1000nm未満である、アミノ酸を抱合したシアノアクリレートポリマー粒子を提供する。また、本発明は、上記本発明の粒子を有効成分として含有するがんの治療及び／又は予防剤を提供する。さらに、本発明は、がんの治療及び／又は予防を必要とする人に対して上記本発明の粒子の有効量を投与することを含む、がんの治療及び／又は予防方法を提供する。
【発明の効果】
【００１０】
本発明により、アミノ酸を抱合したナノサイズのシアノアクリレートポリマー粒子が初めて提供された。該アミノ酸抱合粒子は、がん細胞に対してアポトーシス様の細胞死を誘導してがん細胞を障害できるため、がんの治療と予防に有用である。抱合させるアミノ酸の種類を選択することで、各種のがん、例えば上皮系・血液系由来のがん細胞株に対しても親和性を選択できるため、上皮系・血液系由来のがんなど種々のがんの治療・予防に有用である。特に、該抱合粒子は、がん細胞の中でもＴ細胞リンパ腫やB細胞リンパ腫由来の細胞株に対して親和性が高く、従ってリンパ腫の治療にとりわけ有用である。また、一部の膵臓癌由来細胞株の増殖を抑制する作用もあり、有効な治療法が存在しない膵臓癌に対しても治療効果が期待される。実際のがん治療に用いる場合、例えば患者自身のがん細胞に対してin vitroで事前に効果を確認し、抗がん活性が高いアミノ酸抱合粒子を選択して患者に投与すれば、より効果的にがんを治療・予防することができる。すなわち、本発明の治療及び／又は予防剤はテーラーメイド抗がん剤として利用可能である。本発明のアミノ酸抱合粒子は生体に適合性のある材料で作製できるので、人体に対する安全性も高く、既存の抗がん剤と比較して臨床応用上非常に有利である。本発明によれば、細胞毒性の強い抗がん剤やDDSという手段を使用することなくがんを治療できるので、患者のＱＯＬの向上にも貢献できる。
【図面の簡単な説明】
【００１１】
【図１】Lys抱合粒子で処理した各種細胞株の生存率を示す図である。
【図２】Arg抱合粒子で処理した各種細胞株の生存率を示す図である。
【図３】His抱合粒子で処理した各種細胞株の生存率を示す図である。
【図４】Asp抱合粒子で処理した各種細胞株の生存率を示す図である。
【図５】Gly抱合粒子で処理した各種細胞株の生存率を示す図である。
【図６】Ala抱合粒子で処理した各種細胞株の生存率を示す図である。
【図７】Val抱合粒子で処理した各種細胞株の生存率を示す図である。
【図８】Leu抱合粒子で処理した各種細胞株の生存率を示す図である。
【図９】Try抱合粒子で処理した各種細胞株の生存率を示す図である。
【図１０】Phe抱合粒子で処理した各種細胞株の生存率を示す図である。
【図１１】Ser抱合粒子で処理した各種細胞株の生存率を示す図である。
【図１２】Thr抱合粒子で処理した各種細胞株の生存率を示す図である。
【図１３】Met抱合粒子で処理した各種細胞株の生存率を示す図である。
【図１４】アミノ酸非抱合粒子で処理した各種細胞株の生存率を示す図である。
【図１５】Arg抱合粒子で処理したEL-4細胞株についてのAnnexin Vアッセイの結果を示す図である。
【図１６】ヒトB細胞リンパ腫由来細胞株YCUB-2に対する各種アミノ酸抱合粒子の増殖抑制効果を示す図である。
【図１７】ヒトB細胞リンパ腫由来細胞株YCUB-2を各濃度のアミノ酸（Arg, Asp）抱合粒子で４８時間処理した後の細胞の生存率を示す図である。
【図１８】ヒトT細胞リンパ腫由来細胞株H9を各濃度のアミノ酸（Arg, Asp）抱合粒子で２４時間処理した後の細胞の生存率を示す図である。
【図１９】既存の抗がん剤マイトマイシンC（MMC）及びアクチノマイシンD（Act-D）とアミノ酸抱合粒子との間でH9細胞株に対する細胞増殖抑制効果を比較したグラフである。
【図２０】ヒトT細胞リンパ腫由来細胞株H9を各濃度のAsp抱合粒子で1、3、6、24時間処理した場合の細胞の生存率を示す図である。
【図２１】ヒトT細胞リンパ腫由来細胞株H9を各濃度のArg抱合粒子で1、3、6、24時間処理した場合の細胞の生存率を示す図である。
【図２２】ヒトT細胞リンパ腫由来細胞株H9を各種濃度の抗がん剤マイトマイシンC（MMC）又はアクチノマイシンD（ACD）で２４時間処理した後の細胞の生存率を示す図である。
【図２３】３種のアミノ酸抱合粒子（塩基性アミノ酸D70Arg-NP、酸性アミノ酸D70Asp-NP、中性アミノ酸D70Gly-NP）又はアミノ酸非抱合粒子（D70-NP）でH9細胞株を処理した場合の細胞増殖抑制率を示す図である。
【図２４】各種ヒト膵臓癌由来細胞株を用いてアミノ酸抱合粒子（D70Asp-NP、D70Arg-NP、D70Gly-NP）の増殖抑制効果を調べた結果を示す図である。D70-NPはアミノ酸非抱合粒子。
【発明を実施するための形態】
【００１２】
本発明の粒子は、アミノ酸を抱合したシアノアクリレートポリマーから成る粒子であり、その粒子サイズは平均粒径1000nm未満である。なお、粒子サイズの下限は特に限定されないが、例えば後述する方法でアクリレートモノマーの重合によりポリマー粒子を製造する場合には、粒子の粒径は通常7nm程度以上となる。平均粒径は、好ましくは20nm〜600nm、より好ましくは50nm〜550nmである。また、抱合粒子の電荷（ゼータ電位）は、特に限定されないが、通常-40mV〜0mV程度である。なお、ゼータ電位とは、粒子表面の電荷を示すもので、粒子の分散性の指標となる。粒子サイズとゼータ電位は、例えばHe・Neレーザーを用いた市販の装置（例えばMalvern Inst.UK社製のゼータサイザー等）を用いて容易に測定することができる。
【００１３】
アミノ酸の種類は特に限定されないが、通常、天然のタンパク質を構成する２０種のアミノ酸のいずれかである。後述するように、本発明の粒子が抱合するアミノ酸の種類は該粒子の抗がん活性に影響する。抱合するアミノ酸は１種類でもよく、また２種類以上を抱合してもよい。
【００１４】
上記アミノ酸抱合粒子のシアノアクリレートポリマー部分は、シアノアクリレートモノマーをアニオン重合して得られる。用いられるシアノアクリレートモノマーは、アルキルシアノアクリレートモノマー（アルキル基の炭素数は好ましくは１〜８）が好ましく、特に、外科領域において傷口の縫合のための接着剤として用いられている、下記式で表されるn-ブチル-2-シアノアクリレート(nBCA)が好ましい。
【００１５】
【化１】
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【００１６】
前記アニオン重合では、特に限定されないが、重合開始及び重合安定化のために糖類及び／又はポリソルベートを用いることができる。従って、本発明でいう「シアノアクリレートポリマー」には、糖類やポリソルベートのような重合開始及び安定剤を含有するものも包含される。シアノアクリレートポリマー粒子の重合反応において、ポリソルベートを重合開始・安定化剤として使用可能であることは、特許文献４に記載されるように公知である。
【００１７】
糖類は特に限定されず、水酸基を有する単糖類、水酸基を有する二糖類及び水酸基を有する多糖類のいずれであってもよい。単糖類としては、例えばグルコース、マンノース、リボース及びフルクトース等が挙げられる。二糖類としては、例えばマルトース、トレハロース、ラクトース及びスクロース等が挙げられる。多糖類としては、公知のシアノアクリレートポリマー粒子の重合に用いられているデキストランやマンナン（特許文献５参照）等を用いることができる。これらの糖は、環状、鎖状のいずれの形態であってもよく、また、環状の場合、ピラノース型やフラノース型等のいずれであってもよい。また、糖には種々の異性体が存在するがそれらのいずれでもよい。通常、単糖は、ピラノース型又はフラノース型の形態で存在し、二糖は、それらがα結合又はβ結合したものであり、このような通常の形態にある糖をそのまま用いることができる。
【００１８】
ポリソルベートとしては、特に限定されず、ポリオキシエチレンソルビタンモノラウレート（商品名 Tween 20）、ポリオキシエチレンソルビタンモノオレエート（商品名 Tween 80）等の公知のTween系界面活性剤のいずれであってもよい。
【００１９】
単糖類、二糖類及び多糖類並びにポリソルベートは、単独で用いることもできるし、２種以上を組み合わせて用いることもできる。上記した糖類及びポリソルベートのうち、グルコース、デキストラン、Tween 20（商品名）が好ましく、特にデキストランが好ましい。デキストランとしては、平均分子量７万程度以上の重合度であるデキストランが好ましい。デキストランの分子量の上限は特にないが、通常、分子量50万程度以下である。
【００２０】
ポリマー粒子にアミノ酸を抱合させる方法としては、先にポリマー粒子を合成した後に該粒子をアミノ酸溶液中に浸漬する方法や、モノマーのアニオン重合の際にアミノ酸を共存させる方法が挙げられるが、後者の方がアミノ酸を効率良く抱合させることができるので好ましい。アニオン重合の際に２種類以上のアミノ酸を共存させれば、２種類以上のアミノ酸を抱合した粒子を製造することができる。
【００２１】
重合反応の溶媒としては、通常、水が用いられる。アニオン重合は水酸イオンにより開始されるので、反応液のpHは重合速度に影響する。反応液のpHが高い場合には、水酸イオンの濃度が高くなるので重合が速く、pHが低い場合には重合が遅くなる。アミノ酸抱合粒子を製造する場合には、通常、pHが1.5〜3.0程度の酸性下で適度な重合速度が得られる。反応液を酸性にするために添加する酸としては、特に限定されないが、反応に悪影響を与えず、反応後に揮散する塩酸を好ましく用いることができる。塩酸の濃度は、特に限定されないが、0.0005N〜0.5N程度であればよい。例えば、塩基性アミノ酸を抱合させる場合には0.05N程度とし、中性又は酸性アミノ酸を抱合させる場合には0.01N程度とする、というように、アミノ酸の性質に応じて塩酸濃度を適宜選択することができる。
【００２２】
重合反応は、例えば、溶媒中に抱合させるべきアミノ酸並びに上記重合開始・安定剤（すなわち糖類及び／又はポリソルベート）を溶解させた後、撹拌下にてシアノアクリレートモノマーを加え、好ましくは撹拌を続けることにより行なうことができる。反応温度は、特に限定されないが、室温で行なうことが簡便で好ましい。反応時間は、反応液のpH、溶媒の種類及び重合開始・安定剤の濃度に応じて反応速度が異なるため、これらの要素に応じて適宜選択される。特に限定されないが、通常、反応時間は１０分〜４時間程度、好ましくは３０分〜３時間程度である。得られたアミノ酸抱合粒子は、通常、中性の粒子として用いられるので、反応終了後、水酸化ナトリウム水溶液等の塩基を反応液に添加して中和することが好ましい。
【００２３】
反応開始時の重合反応液中のシアノアクリレートモノマーの濃度は、特に限定されないが、通常、0.5v/v％〜2.0v/v％程度、好ましくは0.8v/v％〜1.2v/v％程度である。反応開始時の重合反応液中のアミノ酸の濃度は、特に限定されないが、通常0.02w/v％〜2w/v％程度である。重合反応に糖類及び／又はポリソルベートを用いる場合、反応開始時の重合反応液中の糖類及び／又はポリソルベートの濃度（複数種類用いる場合はその合計濃度）は、特に限定されないが、通常、0.5％〜10％程度、好ましくは0.75％〜7.5％程度である。なお、糖類の濃度はw/v％、ポリソルベートの濃度はv/v％を意味し、例えば糖類を単独で用いる場合には、上記した濃度範囲はそれぞれ「0.5w/v％〜10w/v％」、「0.75w/v％〜7.5w/v％」を意味する。また、糖類を5w/v％、ポリソルベートを1v/v％で併せて用いる場合には、これらの合計濃度を6％というものとする。ただし、単糖類（例えばグルコース）のみを用いる場合には、2.5w/v％〜10w/v％程度で用いることが好ましい。
【００２４】
上記の重合反応によれば、平均粒径が1000nm未満であるナノサイズのアミノ酸抱合粒子を容易に製造することができる。粒子のサイズは、反応液中のシアノアクリレートモノマーの濃度やpH、反応時間を調節することによって調節することができる。また、重合開始・安定剤として糖類及び／又はポリソルベートを用いる場合には、該重合開始・安定剤の濃度や種類を変えることによっても、粒子サイズを調節することができる（特許文献３、４等参照）。一般に、反応液のpHを高めた場合、反応時間を長くした場合、及び反応液の糖濃度を低くした場合には粒子サイズが大きくなり、重合開始・安定剤としてポリソルベートを用いた場合には粒子サイズが小さくなる。これらの反応条件を適宜組み合わせることで、所望のサイズの粒子を製造することができる。例えば、下記実施例に記載されるように、多糖類を1w/v%程度、シアノアクリレートモノマーを1v/v%程度で使用し、pH2程度の条件下で２時間程度重合反応を行なうと、平均粒径が120nm〜500nm程度のサイズの粒子を得ることができる。なお、上記方法により得られる粒子のアミノ酸抱合率は、通常、６％〜６０％程度である。
【００２５】
上記したアミノ酸抱合粒子は、下記実施例に示される通り、各種がん細胞（子宮頚癌、Ｔ細胞リンパ腫、B細胞リンパ腫、単球性白血病、腎癌、膵臓癌など）に対して細胞障害活性を示す。一方で、健常マウスに投与した場合には、マウスに異常は無く、正常細胞に対する細胞毒性は認められない。従って、生体に投与すれば、生体内に存在するがん細胞に対して特異的に障害活性を発揮し得るため、該抱合粒子はがんの治療及び／又は予防剤として有用である。
【００２６】
本発明の治療及び／又は予防剤の対象となるがんは特に限定されず、子宮癌（子宮頚癌等）、リンパ腫（Ｔ細胞リンパ腫、B細胞リンパ腫等の非ホジキンリンパ腫等）、白血病（単球性白血病等）、腎癌、膵臓癌等の各種がんに対して適用可能である。抗がん効果が最も高いアミノ酸抱合粒子の種類は、がんの種類に応じて異なっており、また同一の種類のがんであっても患者ごとに異なり得るので、抱合させるアミノ酸の種類を適宜選択することで各種のがんに対応できる。アミノ酸非抱合の粒子でも処理濃度が高ければがん細胞の増殖を抑制できるが、アミノ酸の抱合によって粒子の抗がん活性が顕著に高まる。とりわけ、リンパ腫由来細胞に対しては、アミノ酸抱合による細胞障害活性の上昇が顕著であるため（下記実施例参照）、本発明の治療及び／又は予防剤はリンパ腫に対して特に効果が高い。
【００２７】
アミノ酸抱合粒子の抗がん活性が抱合アミノ酸の種類に影響されることは、下記実施例に具体的に示されている。
【００２８】
例えば、ヒトのB細胞リンパ腫細胞に対しては、２０種のアミノ酸のほとんどのアミノ酸で強い増殖抑制効果が認められる。具体的には、アルギニンでは10μg/mlまでの濃度範囲では抗がん活性が認められないが、グリシン、メチオニン、グルタミン酸、アスパラギン酸、リジン、アラニン、バリン、セリン、システイン、フェニルアラニン、ヒスチジン、ロイシン、スレオニン、トリプトファン、プロリン、アスパラギン、又はグルタミンを抱合した粒子ではがん細胞の増殖抑制が認められ、中でもグリシン、グルタミン酸、アスパラギン酸又はヒスチジン抱合粒子の抗がん活性が顕著である。
【００２９】
ヒトのT細胞リンパ腫細胞に対しては、例えばアルギニン抱合粒子及びアスパラギン酸抱合粒子は、マイトマイシンＣやアクチノマイシンＤなどの既存の抗がん剤と比較して同等又はそれ以上の増殖抑制効果がある。特に、中性アミノ酸（グリシン、アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、セリン、スレオニン、システイン、メチオニン、フェニルアラニン、トリプトファン、チロシン、プロリン）を抱合した粒子で増殖抑制効果が高く、例えばグリシン抱合粒子の抗がん活性が顕著に高い。
【００３０】
ヒトの膵臓癌細胞に対しては、非抱合粒子でも若干の増殖抑制効果があり、アミノ酸抱合により一部の細胞株に対して増殖抑制効果が高まることから、アミノ酸抱合粒子は一部の膵臓癌に対して有効な治療手段となり得る。具体的には、ヒト膵臓癌細胞株MIA-PaCa2に対してはアスパラギン酸抱合粒子が非抱合粒子よりも増殖抑制効果が高く、また、AsPC-1に対してはグリシン抱合粒子及びアスパラギン酸抱合粒子が非抱合粒子よりも増殖抑制効果が高い。これらの膵臓癌細胞株と同様の特徴（例えば特定の化学物質に対する応答性や特定の遺伝子の発現パターンなど）を有する膵臓癌に対して、上記と同様のアミノ酸抱合粒子が有効であり得る。
【００３１】
下記実施例にあるこれらのデータは、ある特定の種類のがんに対しては特定のアミノ酸抱合粒子が治療手段として確立され得ることのみならず、がんの種類及び患者個々人のがんの性質に合わせて、抱合させるアミノ酸の種類を適宜選択することにより、がんをより効果的に治療できることを示している。例えば、ヒトのＢ細胞リンパ腫に対しては、グリシン、グルタミン酸、アスパラギン酸又はヒスチジンを抱合した粒子が一般的に使用可能な治療及び／又は予防剤として確立し得る。患者ごとにアミノ酸抱合粒子の種類を選択する場合には、例えば、患者のがん病巣から採取したがん細胞を用いて各種アミノ酸抱合粒子の抗がん活性（がん細胞を障害する活性など）を評価し、いずれのアミノ酸抱合粒子が効果が抗がん活性が高いかを調べる。既存の抗がん剤又はアミノ酸を抱合しないコントロールのポリマー粒子と比較して有意に抗がん活性が高いアミノ酸抱合粒子が見出された場合、該アミノ酸抱合粒子をその患者に投与する粒子として選択できる。なお、がんの治療又は予防剤として用いる場合にも、抱合させるアミノ酸の種類は１種類でも２種類以上でもよい。また、異なるアミノ酸を抱合する粒子を混合して使用することもできる。従って、in vitro試験で効果の高いアミノ酸抱合粒子が複数種類見出されれば、それらすべてを同一の又は異なる粒子に抱合させて患者に投与してよい。最も効果が高いと考えられるアミノ酸抱合粒子を選択して投与すれば、患者ごとに治療法を最適化したテーラーメイド治療が可能になる。細胞試料の抗がん活性の評価方法としては各種方法が公知であり、いずれの方法を採用してもよい。例えば、実施例に記載のMTT assay等を採用することができる。
【００３２】
がんの治療及び／又は予防剤の対象となる動物は、特に限定されないが、好ましくは哺乳動物であり、例えばヒト、イヌ、ネコ、ウサギ、ハムスター、サル、マウス、ウマ、ヒツジ、ウシ等が挙げられる。投与対象となるこれらの動物は、通常、がんの治療及び／又は予防を必要とする動物である。例えば、がんと診断された個体はがんの治療が必要な動物であり、これに対してはがんの治療目的で本発明の粒子を投与できる。また、がんの遺伝的要因を有しておりがん発症リスクが高いと考えられる個体や、あるいはがんが一旦治療された個体においては、がんの発症又は再発を防止することが強く望まれるため、そのような動物に対してはがんの予防目的で本発明の粒子を投与できる。
【００３３】
本発明のがんの治療又は予防剤は、上記アミノ酸抱合粒子を有効成分として含むものであるが、該抱合粒子のみからなるものであってもよいし、賦形剤や希釈剤等の公知の担体をさらに含有させて投与形態に適した剤形に調製することもできる。
【００３４】
治療又は予防剤の投与方法としては、皮下、筋肉内、腹腔内、動脈内、静脈内、直腸内等への非経口投与の他、経口投与が挙げられる。全身投与の他、腫瘍及びその近傍に局部投与することもできる。具体的には、例えば、生理緩衝食塩水に抗生物質抱合粒子を懸濁し、注射等により非経口投与することができ、また、カプセル剤やシロップ剤などとして経口投与することができるが、これらに限定されない。
【００３５】
投与量は、腫瘍の大きさや症状等に応じて適宜選択され、特に限定されないが、成人に対し１回当たり粒子の量として通常10mg〜200g程度、特に100mg〜50g程度とすればよい。
【実施例】
【００３６】
以下、本発明を実施例に基づきより具体的に説明する。もっとも、本発明は下記実施例に限定されるものではない。【００３７】
１．アミノ酸抱合ナノ粒子の製造
塩基性アミノ酸（Lys, His, Arg）、酸性アミノ酸（Asp）及び中性アミノ酸（Gly, Ala, Val, Leu, Try, Phe, Ser, Thr, Met）を用いて、各アミノ酸を抱合するシアノアクリレートポリマー粒子を製造した。重合開始・安定化剤としてデキストラン70Kを用いた。【００３８】
塩酸（pH2）10mLにアミノ酸20 mg及びデキストラン70K 100 mgを溶解した。塩酸は、塩基性アミノ酸に対しては0.05N又はその塩酸塩を用いた場合は0.01N、酸性及び中性アミノ酸に対しては0.01Nのものを用いた。溶液を撹拌下、100μLのnBCAを加え、120分間撹拌して重合反応させた。NaOH水溶液を滴下して反応溶液を中和後（pH7.8）、さらに３０分間撹拌した。Centriprep(YM-10)フィルター(MILLIPORE社)を用いて反応溶液を3500rpm/15min遠心濾過した。フィルターを通過しなかった液に蒸留水を加えて再度遠心濾過することにより、重合粒子を洗浄した。この遠心洗浄操作を合計５回行ない、各種アミノ酸を抱合する粒子を得た。得られた粒子の平均粒径及びゼータ電位を市販のゼータサイザー（Malvern Inst.UK社製）により測定した。測定結果を下記表１に示す。【００３９】
【表１】
2010101178.tif 000004
平均粒径の数値は「平均値±標準偏差」を示す。【００４０】
２．アミノ酸抱合ナノ粒子の抗がん活性（その１）
上記で製造したアミノ酸抱合粒子で各種細胞株を処理し、ＭＴＴ法による細胞増殖アッセイを行なうことにより、各種アミノ酸抱合粒子の細胞障害活性を評価した。アッセイにはＭＴＴアッセイキット（ロシュ）を用いた。細胞株としては、RAW267.4（マウス単球性白血病由来細胞株）、HeLa（ヒト子宮頚癌由来細胞株）、HEK293.T（ヒト胎児腎癌由来細胞株）及びEL-4（マウスＴ細胞リンパ腫由来細胞株）を用いた。【００４１】
EL-4はRPMI-1640培地で1×105cell/mLに調整し10mL作成した。RAW267.4、HeLa及びHEK293.TはDMEMで1×105cell/mLに調整し10mL作成した。９６穴細胞培養プレート（CELLSTAR（登録商標））のウェルに細胞懸濁液を100μLずつ滴下し、CO2インキュベーターで37℃、２４時間培養した。次いで、蒸留水で濃度を調整したナノ粒子を各ウェルに10μLずつ滴下し（ナノ粒子終濃度：0, 0.00008, 0.00016, 0.00031, 0.00063, 0.00125, 0.00250, 0.00500, 0.01000w/v%）、さらにCO2インキュベーターで２４時間培養した。10μLのMTT labeling reagentを各ウェルに加え（MTT最終濃度：0.5mg/mL/well）、CO2インキュベーターで４時間培養した。100μLのSolubilization solutionを各wellに加え、CO2インキュベーターで一夜培養した後、吸光度を550nmで測定した。基準波長は700nmとした。結果を図１〜１４に示す。【００４２】
アミノ酸抱合粒子で処理した細胞の生存率（％、粒子非処理の細胞の生存率を100%とした相対評価）を図１〜１３に、アミノ酸非抱合粒子で処理した細胞の生存率（％、同上）を図１４に示す。いずれにおいても、処理濃度に依存して細胞の生存率が低下しており、粒子濃度に依存した細胞障害活性が認められた。アミノ酸抱合粒子の細胞障害活性は、特にEL-4細胞に対して高く、RAW267.4、HeLa及びHEK293.Tに対する活性と比較してEL-4細胞に対する活性は約１００倍高かった。特に、リジン、アルギニン及びメチオニンを抱合した粒子では、他のアミノ酸を抱合した粒子と比較して、EL-4に対する細胞障害活性がより強かった。【００４３】
３．アポトーシスの検出
アポトーシスでは、初期段階において細胞膜の内側にあるホスファチジルセリン（ＰＳ）が細胞膜の外側に表出し、次いで細胞膜の完全性が失われＤＮＡ断片化に至る。従って、ＰＳに親和性の高いAnnexin Vと、死細胞を染色する核染色剤（ヨウ化プロピジウム等）とを用いて、アポトーシス初期段階、アポトーシス後期段階及び死細胞を識別することができる。本実験では、Annexin Vアッセイにより、アルギニン抱合ナノ粒子によるEL-4細胞のアポトーシス誘導を調べた。【００４４】
実験にはAnnexin V-FITC Apoptosis Detection kit I（ＢＤバイオサイエンス社）を用いた。製造者のプロトコールに従い、以下の通りに実験を行なった。
(1) 冷PBS(pH7.4)でEL-4細胞を2回洗浄し、〜1×106細胞/mLの細胞濃度になるように1X Binding bufferに再浮遊した。
(2) 5 mLのFalconチューブに上記細胞浮遊液を100μL（〜1×105細胞）加えた。
(3) 下記表２に従い、各チューブにAnnexin V 試薬（5μL）又はヨウ化プロピジウム(PI)（2μL）を加えた。
(4) チューブを緩やかに混和し、室温、暗所で15分間インキュベートした。
(5) 各チューブに1X Binding bufferを400μL加えた。製造者のプロトコールに従い、下記表２のコントロールサンプル１〜５を用いて機器のコンペンセーション調整を行なった。
(6) テストサンプルのチューブには、1X Binding bufferと共に終濃度100μg/mLのアルギニン抱合粒子を加え、CO2インキュベーターで37℃にてインキュベートした。粒子添加後８時間まで２時間おきにテストサンプルの測定を行なった。測定条件を以下に示す。
Annexin V-FITC：
吸収極大492nm、発光極大520nm
ヨウ化プロピジウム：
吸収極大370nm及び550nm、発光域：560-680nm【００４５】
【表２】
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１〜４：アポトーシスが誘導されたポジティブコントロールには、マイトマイシンあるいはサイクロヘキサミドを用いた。
５：アポトーシス非誘導のネガティブコントロールには、アミノ酸抱合ナノ粒子懸濁用の超純水を用いた。【００４６】
テストサンプルの測定結果を図１５に示す。４分割リージョンの左下が生細胞（Annexin(-), PI(-)）、左上が初期アポトーシス細胞（Annexin(+), PI(-)）、右上が後期アポトーシス細胞（Annexin(+), PI(+)）、右下が死細胞（Annexin(-), PI(+)）である。アミノ酸抱合粒子により、がん細胞にアポトーシス様の反応が生じることが確認できた。【００４７】
４．アミノ酸抱合ナノ粒子の抗がん活性（その２：ヒトB細胞リンパ腫）
上記２と同様にして、公知のヒトB細胞リンパ腫由来細胞株であるYCUB-2を使用し、アミノ酸抱合粒子のヒトB細胞リンパ腫に対する増殖抑制効果をMTTアッセイにより評価した。YCUB-2細胞株を37℃、5%CO2下で培養し、培養液中にアミノ酸抱合粒子（終濃度10μg/ml）を添加した。細胞と粒子を48時間接触させた後の細胞の生存率を図１６に示す。また、抱合粒子の処理濃度を0〜10μg/mlとして48時間処理した後の細胞の生存率を図１７に示す。【００４８】
図１６にある通り、抱合させたアミノ酸の種類により増殖抑制効果に差異があったが、検討したアミノ酸のほとんどで６０％程度以下まで細胞増殖が抑制されていた。アルギニン抱合粒子については、処理濃度10μg/mlでは増殖抑制効果が認められなかった。抗がん活性の濃度依存性を検討したところ、図１７にある通り、B細胞リンパ腫細胞株に対しても、アミノ酸抱合粒子の増殖抑制効果が粒子濃度に依存して高まることが確認された。【００４９】
５．アミノ酸抱合ナノ粒子の抗がん活性（その３：ヒトT細胞リンパ腫）
上記２と同様にして、公知のヒトT細胞リンパ腫由来細胞株であるH9を使用し、アミノ酸抱合粒子のヒトT細胞リンパ腫に対する増殖抑制効果をMTTアッセイにより評価した。H9細胞株を37℃、5%CO2下で培養し、培養液中にアミノ酸抱合粒子を所定の濃度で添加した。細胞と粒子を24〜72時間接触させ、細胞の生存率を調べた。【００５０】
粒子での処理時間を24時間とし、粒子濃度を0〜100μg/mlとして細胞増殖抑制効果の濃度依存性を調べた。結果を図１８に示す。アルギニン抱合粒子よりもアスパラギン酸抱合粒子の方が増殖抑制効果が高かったが、いずれにおいても増殖抑制効果が濃度依存的であることが確認された。【００５１】
アポトーシス誘導能を有する既存の抗がん剤マイトマイシンC（MMC）及びアクチノマイシンD（ACD）とアミノ酸抱合粒子との間で、H9細胞株に対する増殖抑制効果を比較した。図１９中の横軸に示した各濃度で24時間H9細胞株を処理し、MTTアッセイにより生存率を調べた。その結果、図１９にある通り、アスパラギン酸抱合粒子は既存の抗がん剤と比較して増殖抑制効果が顕著に高かった。アルギニン抱合粒子はアスパラギン酸抱合粒子よりも効果が低いものの、既存の抗がん剤と同程度の処理濃度で同レベルの増殖抑制効果を示した。【００５２】
アスパラギン酸抱合粒子を用いてH9細胞株に対する処理濃度と処理時間の影響を調べた。処理濃度は0〜100μg/ml、処理時間は１、３、６、２４時間とした。結果を図２０に示す。処理濃度だけではなく処理時間にも依存して増殖抑制効果が高まっており、数時間の処理でも高い増殖抑制効果が認められた。アルギニン抱合粒子でも同様に処理濃度と処理時間の影響を調べたところ、処理濃度6.3μg/mlまでは処理時間を増やしても増殖抑制に差異は認められなかったが、これ以上の濃度範囲ではアスパラギン酸抱合粒子と同様の傾向が認められた（図２１）。図２２は既存の抗がん剤MMC及びACDで同様の実験を行なった結果である。【００５３】
H9細胞株に対するアミノ酸抱合粒子の抗がん効果をさらに検討すべく、抱合させるアミノ酸を塩基性アミノ酸、酸性アミノ酸、中性アミノ酸に分け、各アミノ酸抱合粒子ごとに細胞増殖抑制効果を評価した。塩基性アミノ酸としてアルギニン、酸性アミノ酸としてアスパラギン酸、中性アミノ酸としてグリシンを用いた。粒子での処理濃度は0.75、1.5、3.0、6.0μg/ml、処理時間は24、48、72時間とした。その結果、粒子濃度0.75、1.5μg/mlではいずれの粒子も抗がん活性を示さなかったが（データ示さず）、3.0、6.0μg/mlでは中性アミノ酸抱合粒子が強く抗がん活性を示した（図２３）。ヒトT細胞リンパ腫に対しては中性アミノ酸を抱合した粒子が効果が高いと推察される。【００５４】
６．アミノ酸抱合ナノ粒子の抗がん活性（その４：ヒト膵臓癌）
上記２と同様にして、公知のヒト膵臓癌由来細胞株を使用し、アミノ酸抱合粒子のヒトT細胞リンパ腫に対する増殖抑制効果をMTTアッセイにより評価した。膵臓癌由来細胞株として、Panc1、MIA-PaCa2、BxPC3、AsPC-1、NOZを用いた。これらの細胞株はいずれもヒト膵臓癌に由来するものであるが、発現プロファイルや化学物質に対する応答等において相違があることが知られている。各細胞株を37℃、5%CO2下で培養し、培養液中にアミノ酸抱合粒子を10μg/mlの濃度で添加して４８時間処理し、MTTアッセイにより増殖抑制効果を調べた。【００５５】
その結果を図２４に示す。非処理細胞の４８時間培養後の生存率を100％として生存率を算出したところ、非抱合粒子でも若干の増殖抑制が認められ、AsPC-1細胞に対するグリシン抱合粒子及びアスパラギン酸抱合粒子の増殖抑制効果が特に顕著であった。これにより、アミノ酸抱合粒子が一部の膵臓癌に対して治療効果を発揮し得ることが示された。【００５６】
７．in vivo毒性の検討
下記２通りにてアミノ酸抱合粒子のin vivo毒性を調べた。
(1)  健常マウス１０匹にアミノ酸抱合ナノ粒子を各１ｇ単回経口投与し、経過を観察した。投与後１ヶ月間の観察においても、マウスに異常は認められず正常に生存していた。
(2)  各種アミノ酸抱合粒子を生理食塩水にて1 mg/mlに調製し、健常マウス5匹に週1回1 ml（粒子として1 mg）を経口、静注又は腹腔内に投与し、これを4週間繰り返した。便や体重等を含め、マウスに何らの毒性も見られなかった。【００５７】
従って、上記で製造したアミノ酸抱合ナノ粒子は、正常細胞を傷害せず、がん細胞に対する特異性が高いと考えられる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【図２０】
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【図２１】
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【図２２】
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【図２３】
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【図２４】
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【国際調査報告】
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