(57)【要約】  移植片組成物に利用可能な、糸による縫合部を最小限に抑えた移植用脱細胞化材料を製造する方法を提供することを目的とする。  上記目的を達成するため、本発明は（ａ）脊椎動物（ドナー）から分枝を有する血管を採取する工程、（ｂ）当該血管を脱細胞化する工程、及び（ｃ）分枝を切除した部分をタンパク質変性処理により接着し閉管する工程を含む、移植用脱細胞化材料の製造方法を提供する。さらに、本発明は当該移植用脱細胞化材料を含む生体適合性材料からなる移植片組成物も提供する。
2018221402.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
（ａ）脊椎動物（ドナー）から分枝を有する血管を採取する工程、
（ｂ）当該血管を脱細胞化する工程、及び
（ｃ）分枝を切除した部分をタンパク質変性処理により接着し閉管する工程
を含む、移植用脱細胞化材料の製造方法。
【請求項２】
前記工程（ａ）の後に、（ｄ）採取した血管の分枝を切除する工程を含む、請求項１に記載の移植用脱細胞化材料の製造方法。
【請求項３】
前記タンパク質変性処理が超音波振動処理である、請求項１又は２に記載の移植用脱細胞化材料の製造方法。
【請求項４】
工程（ｂ）の脱細胞化が超高静水圧処理を含む、請求項１〜３のいずれかに記載の移植用脱細胞化材料の製造方法。
【請求項５】
脊椎動物（ドナー）の分枝が切除された血管からなり、かつタンパク質変性により閉管された分枝切除部を少なくとも１以上有する移植用脱細胞化材料を含む生体適合性材料からなる移植片組成物。
【請求項６】
前記血管が内胸動脈を含む、請求項５に記載の移植片組成物。
【請求項７】
ブタの内胸動脈を含む血管の脱細胞化組織からなり、タンパク質変性により閉管された分枝切除部を有する移植片組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、移植に用いることができる脱細胞化材料の製造方法及び当該材料を含む生体適合性材料からなる移植片組成物に関する。
【背景技術】
【０００２】
他人の生体組織由来の移植片を移植する場合、被移植者側組織による移植片の拒絶反応が問題となる。このような問題の解決方法として、人工組織の開発が期待されている。素材として種々の高分子が試されているが、これら素材と生体組織との適合性が低いため、移植片と生体組織との接合部位における脱落や感染症が発生する場合がある。そこで、生体組織との適合性を向上すべく、生体組織から細胞を除却して残存する支持組織である脱細胞化生体組織を移植片として使用する技術が開発されてきた。【０００３】
脱細胞化材料に求められる性質としては、（ｉ）移植片としての強度、（ｉｉ）拒絶反応を引き起こす脱細胞化組織中のＤＮＡが除去されていること、（ｉｉｉ）移植後に自己細胞が浸潤しやすいこと等が挙げられる。これらを満たす脱細胞化材料を得るため、種々の製造方法が検討されてきた。例えば、界面活性剤を使用する方法（例えば、特許文献１、２を参照）、酵素を使用する方法（例えば、特許文献３を参照）、酸化剤を使用する方法（例えば、特許文献４を参照）、高静水圧処理による方法（例えば、特許文献５〜７を参照）、凍結融解処理による方法（例えば、特許文献８〜９を参照）、高張電解質溶液で処理する方法（例えば、特許文献１０を参照）等が知られている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】特開昭６０−５０１５４０号公報
【特許文献２】特表２００３−５１８９８１号公報
【特許文献３】特表２００２−５０７９０７号公報
【特許文献４】特表２００３−５２５０６２号公報
【特許文献５】特開２００４−０９４５５２号公報
【特許文献６】国際公開第２００８／１１１５３０号
【特許文献７】特表２０１３−５０２２７５号公報
【特許文献８】特開２００５−１８５５０７号公報
【特許文献９】特開２００５−２１１４８０号公報
【特許文献１０】特開２０１０−２２１０１２号公報
【非特許文献】
【０００５】
【非特許文献１】JOURNAL OF BIOMEDICAL MATERIALS RESEARCH A, OCT 2015 Vol.103A, 10
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
一般に、脱細胞化組織としての機能性を維持するためには、表面状態が保たれていること、つまりその組織の形態的な損傷が極力抑えられていることが重要とされ（例えば非特許文献１）、比較的わずかな障害であっても自己細胞の浸潤に影響する。そこで本発明者は脱細胞化組織への損傷がより少ないと考えられた縫合による加工を行ったところ、自己細胞の浸潤を妨げることとなることを知見した。このような結果を踏まえると、生体組織に由来する移植片組成物は、その中に縫合部を必要最小限に収めることが重要であると考えられる。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
具体的に、分枝（分枝血管）を有する血管から得られる脱細胞化組織を移植片組成物として使用する場合は、分枝部分を切除し閉管する必要がある。このような、分枝の切除部を閉管する手段として縫合ではなく、タンパク質変性処理を行うことで閉管すると脱細胞化組織の自己細胞の浸潤が妨げられることなく、移植部の組織が再生されることを見出した。【０００８】
つまり、本発明は、
（ａ）脊椎動物（ドナー）から分枝を有する血管を採取する工程、
（ｂ）当該血管を脱細胞化する工程、及び
（ｃ）分枝を切除した部分をタンパク質変性処理により接着し閉管する工程
を含む、移植用脱細胞化材料の製造方法を提供する。【０００９】
また、本発明の移植用脱細胞化材料の製造方法は、（ａ）工程で採取した血管の分枝部を切除する工程をさらに含んでもよい。【００１０】
また、本発明は、脊椎動物（ドナー）の分枝が切除された血管からなり、かつタンパク質変性により閉管された分枝切除部を少なくとも１以上有する移植用脱細胞化材料を含む生体適合性材料からなる移植片組成物も提供する。
【発明の効果】
【００１１】
本発明の製造方法では、移植後に自己細胞が浸潤しやすい移植片組成物のための移植用脱細胞化材料を提供することができる。そして、本発明の製造方法により得られた移植用脱細胞化材料を少なくとも一部に含む移植片組成物は、移植後の自己細胞が湿潤しやすいため、移植後も正常な生体組織として機能することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１２】
【図１】図１は、分枝を有する血管の概略図を示す。（ｉ）の１は分枝を有する血管、２は分枝部分（分枝血管）及び破線は分枝部分を切除する位置の一例を示す。この破線は血管から１ｍｍ〜２ｍｍ離れていることが好ましい。また、別の実施態様として、この破線の位置は血管から５ｍｍ〜数ｃｍ離れていてもよい。（ｉｉ）の３はタンパク質変性部を示す。
【図２】図２は、実施例において、ブタから採取した分枝部分が切除された内胸動脈片を示す図である。なお、以下の実施例において、図中（３）の内胸動脈片を比較例として用いた。
【図３】図中（α）は、採取されたブタの内胸動脈片をヘマトキシリン・エオシン染色した断面図の拡大写真である。また、（β）は、採取されたブタの内胸動脈片を脱細胞化し、ヘマトキシリン・エオシン染色した移植用脱細胞化材料の断面図の拡大写真である。核酸が存在せず、脱細胞化されていることが確認できる。なお、各スケールバーは１０００μｍを示す。また、以下の実施例において、図中（３）の内胸動脈片を比較例として用いた。
【図４】図４は、移植用脱細胞化材料である脱細胞化ブタ内胸動脈片をウサギに移植して３カ月後のヘマトキシリン・エシオン染色（ＨＥ染色）又はエラスチカ・ワンギーソン染色（ＥＶＧ染色）により染色した切片の拡大写真である。比較例において、円で囲われた部分の矢印が指している白い小さな円はプロリン糸が通っていた痕跡である。プロリン糸は、紙面に対して垂直に通っていた。プロリン糸が通っていた周辺では細胞の浸潤が認められないのが認識できる。なお、各スケールバーは５００μｍを示す。
【図５】左側の図は、移植前の本発明の移植用脱細胞化材料である脱細胞化ブタ内胸動脈片をＨＥ染色した分枝部分の切片の拡大写真である。右側の図は、移植して１カ月後のＨＥ染色した分枝部分の切片の拡大写真である。移植後に細胞の浸潤が認められる。なお、各スケールバーは５００μｍを示す。
【発明を実施するための形態】
【００１３】
本発明の移植用脱細胞材料の製造方法について説明する。
本発明は、分枝を有する血管を脊椎動物（ドナー）から採取する。
ここでいう採取とは、分枝を有する血管をドナーから分離することを意味する。また、「分枝を有する血管」はドナーの中で分枝を有していた血管の意であり、採取する際に分枝が切除されているものも含む。
【００１４】
本発明において、脊椎動物とは特に限定されないが、血管が容易に入手できることが好ましいため、ヒト以外の動物であることが好ましく、特に哺乳類の家畜や鳥類の家畜が好ましい。哺乳類の家畜としては、ウシ、ウマ、ラクダ、リャマ、ロバ、ヤク、ヒツジ、ブタ、ヤギ、シカ、アルパカ、イヌ、タヌキ、イタチ、キツネ、ネコ、ウサギ、ハムスター、モルモット、ラット、リス及びアライグマ等が挙げられる。また、鳥類の家畜としては、インコ、オウム、ニワトリ、アヒル、七面鳥、ガチョウ、ホロホロ鳥、キジ、ダチョウ、エミュー及びウズラ等が挙げられる。この中でも入手の安定性からブタ、ウサギ又はウシが好ましい。
【００１５】
本発明の移植用脱細胞材料の製造方法では、分枝を有する血管を使用する。ここで、分枝を有する血管とは、図１に示す通り、分枝部分（分枝血管）を少なくとも１以上有する血管を言う。
枝分かれした構造の血管を有する血管は複雑な形状であるため、脱細胞化しても加工に適するものではないとされているほか、分枝構造を有するため、移植用血管用途としてもほとんど利用されることはなかった。本発明により、血管の分枝部分を接着させ閉管することで、分枝のない血管として利用できる。従来、利用が困難であった分枝を有する血管を移植片組成物として利用できる意義は極めて大きいものである。
【００１６】
分枝を有する血管としては、具体的に、内胸動脈、腹壁動脈、胃大網動脈、頚動脈、橈骨動脈、肋間動脈、筋横隔動脈、大腿動脈、大腿深動脈、大動脈，尺骨動脈，上腕動脈，前脛骨動脈，後脛骨動脈，腸管膜動脈，脾動脈、内胸静脈、前肋間静脈、奇静脈、半奇静脈、頚静脈、腸管静脈、大腿静脈、伏在静脈、腸管膜静脈，脾静脈等が挙げられる。移植片組成物としての物理的特性（伸び、生体適合性、強度等）を考慮すると、動脈が好ましく、内胸動脈がより好ましい。
【００１７】
分枝を有する血管は、脊椎動物を麻酔または屠殺した後、胸部、腹部、脚部などの身体の一部を切開して、採取の対象となる分枝を有する血管を切除する。麻酔方法や屠殺方法は当業者が従来行っている方法をそのまま用いることができる。
脊椎動物の身体の一部を切開するときは、動物実験や外科用手術で通常用いるメスやハサミ等を使用することが可能である。
【００１８】
同様に、分枝を有する血管を採取する場合は、動物実験や外科用手術で通常用いるメスやハサミ等を使用することが可能である。血管を切除する場合に、超音波メスや電気メスを使用することが好ましい。これらは、血管を切除する箇所に超音波振動又は高周波電流により、血液を凝固させながら血管を切除することが可能である。特に、切除部分のタンパク質の変性の程度が適度であるため、超音波メスを使用することが好ましい。
なお、本明細書においては「超音波メス」と「超音波振動メス」を同義で用いるものとする。
【００１９】
本発明で使用可能な電気メスは、エルベ社製のバイオシリーズや泉工医科工業社製のＳＨＡＰＰＥＲシリーズ社等が挙げられる。本発明で使用可能な超音波メスは、ストライカーメドテック社製のソノペットＵＳＴ−２００１、エチコンエンドサージェリー社製のハーモニックスカルペル等が挙げられる。
【００２０】
（ａ）工程で採取された血管は、既に分枝部分を切除した状態でもよく、分枝部分が十分な長さで残った状態（例えば、５ｍｍ〜数ｃｍ）であってもよい。分枝部分が十分な長さで残っている場合は、適宜これを切除する。
なお、タンパク質変性処理を行う分枝部分の長さは、血管の枝分れ部分から１ｍｍ〜１０ｍｍ離れた位置であることが好ましく、２ｍｍ〜７ｍｍ離れた位置がより好ましく、３〜５ｍｍ離れた位置が最も好ましい。上記範囲でタンパク質変性処理を行うことで、本発明の移植用脱細胞材料を利用する際の変性処理に伴う影響(物性の変化および血流を妨げないことや抗血栓性など)を最小限に抑え、再組織化を促すことができる。
【００２１】
脊椎動物から採取された上記血管は脱細胞化処理が行われる。脱細胞化処理は、界面活性剤処理（Singelyn  J.M.,  et  al.,  Biomaterials,  2009,  30,  5409-5416；Singelyn  J.M,,  et  al.,  J.  Am.  Coll.  Cardiol.,  2012,  59,  751-763；Sonya  B.,  et  al.,  Sci.  Transl.  Med.,  2013,  5,  173ra25）、酵素処理、浸透圧処理、凍結融解処理、酸化剤処理、高静水圧処理（Sasaki  S.,  et  al.,  Mol.  Vis.,  2009,  15,  2022-2028；Yoshihide  H.,  et  al.,  Biomaterials,  2010,  31,  3941-3949；Seiichi  F.,  et  al.,  Biomaterials,  2010,  31,  3590-3595；Negishi  J.,  et  al.,  J.  Artif.  Organs,  2011,  14,  223-231；特許第４０９２３９７号公報；再公表２００８−１１１５３０号公報；特開２００９−５０２９７号公報）及びこれらの組み合わせが例示されるが、高静水圧処理によって脱細胞化処理されることが好ましい。
【００２２】
高静水圧処理を行う際の圧力に関し、脊椎動物であるドナー由来の細胞や病原体が破壊される程度の圧力であればよく、ドナーの動物種や血管の種類に応じて適宜選択することができる。静水圧としては、２〜１，５００ＭＰａが例示される。印加する静水圧が５０ＭＰａよりも高い場合には、血管からの脱細胞化が十分に行われる。そのため、好ましくは、５０〜１,５００ＭＰａ、更に好ましくは８０〜１，３００ＭＰａ、更に一層好ましくは９０〜１，２００ＭＰａ、最も好ましくは９５〜１，１００ＭＰａである。
【００２３】
高静水圧の印加に使用する媒体としては、水、生理食塩水、緩衝液、プロピレングリコール又はその水溶液、グリセリン又はその水溶液、及び糖類水溶液等が挙げられる。緩衝液としては、酢酸緩衝液、リン酸緩衝液、クエン酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、酒石酸緩衝液、トリス緩衝液、ＨＥＰＥＳ緩衝液、及びＭＥＳ緩衝液等が挙げられる。糖類水溶液の糖類としては、エリトロース、キシロース、アラビノース、アロース、タロース、グルコース、マンノース、ガラクトース、エリスリトール、キシリトール、マンニトール、ソルビトール、ガラクチトール、スクロース、ラクトース、マルトース、トレハロース、デキストラン、アルギン酸、及びヒアルロン酸等が挙げられる。
【００２４】
高静水圧処理の媒体の温度は、氷を生成せず、熱による組織へのダメージがない温度であれば、特に限定されない。脱細胞化処理が円滑に行われ、組織への影響も少ないことから０〜４５℃が好ましく、更に好ましくは４〜４０℃、更に一層好ましくは１０〜３７℃、最も好ましくは１５〜３５℃である。
【００２５】
高静水圧処理の時間は、短すぎると脱細胞化処理が十分行われず、長い場合にはエネルギーの浪費につながることから、５分〜１２時間が好ましく、７分〜５時間がより好ましく、１０分〜３時間が更に好ましい。
【００２６】
脱細胞化の適否は、組織学的染色（ヘマトキシリン−エオジン染色）又は残存ＤＮＡ定量で確認することができる。
【００２７】
高静水圧が印加された血管は、組織中の細胞が破壊されており、この細胞成分は洗浄液により除去される。洗浄液は、高静水圧の印加に使用した媒体と同じ液でもよいし、異なる洗浄液でもよく、複数の種類の洗浄液を組み合わせて用いてもよい。洗浄液は、核酸分解酵素、有機溶媒又はキレート剤を含有することが好ましい。核酸分解酵素は、静水圧が印加された血管からの核酸成分について、有機溶媒は脂質について、それぞれの除去効率を向上させることができ、キレート剤は、脱細胞化組織中のカルシウムイオンやマグネシウムイオンを不活性化することにより、脱細胞化組織を患部へ適用した場合の石灰化を防ぐことができる。
【００２８】
本発明では、分枝を切除した部分を、タンパク質変性処理を行って閉管する。ここで、タンパク質を変性する手段として特に限定されないが、作業の簡易性や効率、組織への損傷を少なくするという観点から、超音波メスや電気メスを使用することが好ましく、組織への損傷が少なく，かつ，分枝断端の閉鎖性を確実にする点から超音波メスを使用することが好ましい。
【００２９】
超音波メスは、刃先が機械的超音波振動する構造を有して、刃先が接触した生体組織近傍が摩擦熱を生じ、生体組織内部のタンパク質が変性する。分枝血管を切除して開管している部分は、当該タンパク質が変性することで接着して閉管する。
なお、上記「分枝を切除した部分を、タンパク質変性処理を行って閉管する」とは、「分枝の切除」と「タンパク質変性処理を行って閉管する」ことを同時に行う場合も含むものとする。
【００３０】
上記のように超音波を用いて処理を行う際の周波数は、好ましくは２０ｋＨｚ〜１００ｋＨｚ、より好ましくは約３０ｋＨｚ〜約６０ｋＨｚである。出力は好ましくは５０〜５００ｍＡ、より好ましくは１００〜４００ｍＡ、さらに好ましくは２００〜３００ｍＡである（１００ＶＡＣ利用時）。
【００３１】
超音波処理が行われる時間は周波数や出力に応じて様々であり特に限定されるものではないが、好ましくは０．１秒〜１０分、より好ましくは１秒〜５分、さらに好ましくは３〜６０秒である。
【００３２】
次に、本発明の、
（ａ）脊椎動物（ドナー）から分枝を有する血管を採取する工程、
（ｂ）当該血管を脱細胞化する工程、及び
（ｃ）分枝を切除した部分をタンパク質変性処理により接着し閉管する工程
を含む、移植用脱細胞化材料の製造方法の各工程の順序について説明する。
【００３３】
この実施形態において（ａ）、（ｂ）、（ｃ）のそれぞれ工程は上記の順序に限定されない。
例えば、工程（ａ）、工程（ｂ）及び工程（ｃ）をこの順番で行う他に、工程（ａ）の後に、工程（ｃ）を行い、その後、工程（ｂ）を行ってもよい。また、別の態様として、分枝を有する血管の分枝部分をドナーである脊椎動物から採取する前に切除し、その分枝を切除した部分をタンパク質変性処理して、ドナーから採取し、この後に、工程（ｂ）の脱細胞化を行うことも可能である。つまり、工程（ｃ）、工程（ａ）、工程（ｂ）の順序で含む態様も本発明に包含される。
【００３４】
別の態様として、工程（ａ）で採取された分枝を有する血管の分枝部分が十分な長さで存在する場合（例えば、分枝部分の長さが５ｍｍ〜数ｃｍ）は、この分枝部分を切除する工程（ｄ）をさらに含むことができる。この工程（ｄ）をいつ行うかも特に限定されない。
例えば、工程（ａ）、工程（ｄ）、工程（ｂ）及び工程（ｃ）の順序、工程（ａ）、工程（ｂ）、工程（ｄ）及び工程（ｃ）の順序で行うことも可能である。
本発明においては、分枝血管を見落とすことなく閉管できること、また作業がより効率的となる点で、（ｃ）工程において「分枝の切除」と「タンパク質変性処理を行って閉管する」ことを同時に行い、さらに（ｃ）工程と（ａ）工程を連続的に行うことがより好ましい。なお、この場合であっても（ｂ）工程の前後に再度工程（ｃ）を行ってもよい。
【００３５】
本発明では、脊椎動物（ドナー）の分枝が切除された血管からなり、かつタンパク質変性により閉管された分枝切除部を少なくとも１以上有する移植用脱細胞化材料を含む生体適合性材料からなる移植片組成物も提供する。
【００３６】
本発明の移植片組成物における脊椎動物とは特に限定されないが、血管が容易に入手できることが好ましいため、ヒト以外の動物であることが好ましく、特に哺乳類の家畜や鳥類の家畜が好ましい。ここでの哺乳類の家畜や鳥類の家畜は、本発明の移植用脱細胞化材料の製造方法で使用する哺乳類の家畜や鳥類の家畜の具体例で挙げられている家畜と同じである。この中でも入手の安定性からブタ、ウサギ又はウシが好ましい。
【００３７】
本発明の移植片組成物において、「分枝が切除された血管」とは、本発明の移植用脱細胞化材料を製造するために用いた、分枝を有する血管から分枝部分を切除した血管である。分枝を有する血管としては、上記製造方法で用いた血管と同じものが使用でき、移植片組成物としての物理的特性（伸び、生体適合性、強度等）を考慮すると、動脈が好ましく、内胸動脈がより好ましい。
【００３８】
本発明の移植片組成物に使用される移植用脱細胞化材料はタンパク質変性部を有する。具体的には、分枝部分の切除箇所は開管の状態になっており、タンパク質変性処理を行うことで開管部を塞ぐことができる。
タンパク質変性処理の具体的な方法は、上記の移植用脱細胞化材料と同様に特に限定されないが、超音波メスや電気メスを使用することができる。組織への損傷が少ないことから超音波メスを使用することが好ましい。
【００３９】
本発明の移植片組成物において、タンパク質を変性させるための超音波の周波数及び処理時間に関する条件は、上記の移植用脱細胞化材料の製造方法での超音波の周波数及び処理時間の条件と同じである。
【００４０】
本発明の移植片組成物に使用される移植用脱細胞化材料について、脱細胞化処理は上述の脱細胞化処理と同様の脱細胞化処理を行うことができ、高静水圧処理によって脱細胞化処理されることが好ましい。
高静水圧処理を行う際の圧力に関し、脊椎動物であるドナー由来の細胞や病原体が破壊される程度の圧力であればよく、上記の静水圧の条件と同じ条件で行うことができる。また、高静水圧の印加に使用する媒体としては、水、生理食塩水、緩衝液、プロピレングリコール又はその水溶液、グリセリン又はその水溶液、及び糖類水溶液等が挙げられ、各溶媒の具体例としては、上記の溶媒の具体例と同じ溶媒を使用することができる。
【００４１】
本発明の移植片組成物は、特定の生体適合性材料からなる。ここで、「生体適合性」とは、移植片が被移植組織により受け容れられ、毒性や著しい免疫拒絶を誘発しないことを意味する。
【００４２】
生体適合性材料としては流動性を有さず固体状のものであれば特に限定されるものではないが、非再吸収性ポリマーや吸収性ポリマー、金属類、ガラス類、セラミック類が挙げられる。
【００４３】
上記非再吸収性ポリマーとしては、ポリエチレン、ポリエチレンテレフタラート、ポリブチレン、ポリブチレンテレフタレート、ポリプロピレン、アクリル、ポリアミド−イミド、ポリエーテルエーテルケトン、ポリアリールエーテルケトン、ポリカーボネート、ポリアミド、ポリフッ化ビニル、ポリフッ化ビニリデン、ポリメチルメタクリレート、ならびにこれらの組み合わせ及び等価物が挙げられるが、これらに限定されるものではない。
【００４４】
上記吸収性ポリマーとしては、合成ポリマーであっても天然ポリマーであってもよく、ポリアミノ酸、ポリアミド、脂肪酸ポリエステル、天然ポリマーとしては、コラーゲン、エラスチン、ヒアルロン酸、ラミニン、及びゼラチン、ケラチン、硫酸コンドロイチン、及び脱細胞化組織が挙げられる。
【００４５】
上記金属類としては、タンタル、タンタル合金、ステンレススチール、チタン、チタン合金、コバルト−クロム合金等が挙げられ、従来から医療機器等で用いられている生体適合性金属類を用いることができる。
【００４６】
上記ガラス類又はセラミック類としては、リン酸テトラカルシウム、アルファ−及びベータ−リン酸トリカルシウム、リン酸オクタカルシウム、ヒドロキシアパタイト、置換アパタイト、モネタイト、メタリン酸塩、ピロリン酸塩、リン酸塩ガラス等のリン酸塩、カルシウム及びマグネシウムの炭酸塩、硫酸塩、及び酸化物、ならびにこれらの組み合わせが挙げられるが、これらに限定されるものではない。
【００４７】
本発明の移植片組成物は、特定の移植用脱細胞化材料を少なくとも一部に含む生体適合性材料からなる。ここで、「少なくとも一部に含む」とは、当該移植用脱細胞化材料が生体適合性材料に１以上、複数で存在し得ることを意味する。自己細胞の浸潤がより効果的に達成される点で生体適合性材料は脱細胞化材料のみで構成されることがより好ましい。
【００４８】
本発明の移植片組成物は、移植後生体組織の一部として機能することが可能となる。特に、移植用の血管代用物として機能することができる。
【実施例】
【００４９】
１．脱細胞化ブタ内胸動脈の作製
ブタ内胸動脈の採取（分枝血管の処理）
月齢３〜４か月の食用ブタ（ＳＰＦ（ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｐａｔｈｏｇｅｎ  ｆｒｅｅ）ブタ、メス、体重約５０キロ）を麻酔下で開胸し内胸動脈を露出させた。超音波メス（ハーモニックスカルペルＩＩ、ハーモニックＳＹＮＥＲＧＹ、エチコンエンドサージェリー社）の設定を５５５００Ｈｚ、出力レベル２として分枝血管を接触させ凝固させながら胸壁から内胸動脈を剥離（採取）した。
２頭のブタから４本の内胸動脈を採取した。【００５０】
２．ブタ内胸動脈の観察
採取したブタ内胸動脈４本の長さと内径を測定した。それぞれ（１）長さ：１４０ｍｍ、内径：３．２ｍｍ、（２）長さ：１３５ｍｍ、内径：２．６ｍｍ、（３）長さ：９５ｍｍ、内径：２．９ｍｍ、（４）長さ：１０５ｍｍ、内径：２．８ｍｍであった。図２に得られたブタ内胸動脈（１）〜（４）を示す。また、図３にその断面図（ＨＥ染色）を示す。【００５１】
３．ブタ内胸動脈の脱細胞化処理
［使用試薬］
・ＤＮｓ溶液
ＤＮａｓｅ  Ｉ（Ｒｏｃｈｅ，Ｇｒａｄｅ  ＩＩ） ５０ｍｇ／Ｌ、ＭｇＣｌ2・６Ｈ2Ｏ（Ｗａｋｏ、  試薬特級）２．５５ｇ／Ｌを含有した大塚生理食塩水
・ＥｔＯＨ溶液
局方エタノールと大塚生理食塩水を体積比で８０％となるように調製した溶液
・クエン酸溶液
クエン酸三ナトリウム二水和物（Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ  Ｇｒａｄｅ）とクエン酸無水物 （Ｗａｋｏ、特級）を大塚生理食塩水に加え、ｐＨ７．４に調製した溶液【００５２】
上記のブタ内胸動脈を、水を媒体として超高静水圧装置（Ｄｒ.  Ｃｈｅｆ、神戸製鋼(株)製）で処理した。超高静水圧処理は、印加圧力６００ＭＰａ、昇圧時間９分、圧力維持時間１２０分、降圧時間９分、圧媒温度３０℃の条件で行った。
超高圧処理後５０ｍｇ/Ｌ  ＤＮａｓｅＩ溶液で４日、ＥｔＯＨ溶液で３日、クエン酸溶液で４日洗浄を行い、脱細胞化を完了した。【００５３】
脱細胞化は、ヘマトキシリン・エオシン染色（Ｈｅｍａｔｏｘｙｌｉｎ−Ｅｏｓｉｎ染色、以下、ＨＥ染色ということもある）を行い、ＨＥ染色切片画像に核酸がないことを顕微鏡で確認することで行った。
なお、ＨＥ染色はヘマトキシリンとエオシンの２種類の色素を用いて、細胞核と核以外の組織、成分を染め分ける方法であり、ヘマトキシリンで核を青藍色に、エオシンで細胞質・線維類や赤血球をピンク色に染めることができる。【００５４】
４．耐圧強度の測定
脱細胞化後、各ブタ内胸動脈の片端をクランプで挟み反対側から２０ｍＬシリンジを用いて生理食塩水を送液して、耐圧強度を測定した。上記の（３）を除く（１）、（２）、（４）のブタ内胸動脈を用いた移植用脱細胞化材料では耐圧強度が１５０ｍｍＨｇ以上であった。
また、分枝部分の一部が閉塞されていない（３）では生理食塩水の漏れが確認できた。
なお、耐圧強度の測定は、シリンジポンプ（ＹＳＰ−１０１）で２０ｍＬシリンジから３ｍＬ／ｍｉｎの速度で生理食塩水をブタ内胸動脈内に送液し、そのときの圧力をデジタル圧力計（ＫＤＭ３０）で計測した。
以後の実験において、（１）、（２）、（４）を実施例し、（３）を比較例とする。【００５５】
５．比較例の血管の縫合
（３）の移植用脱細胞材料について、生理食塩水の漏れが確認できた分枝血管を切除した部分を６−０プロリン糸で結紮した。結紮は血管外膜部分に縫合糸を通した後、分枝の管状部分を外側から縛り上げるように行った。【００５６】
６．ウサギ大動脈への脱細胞化ブタ内胸動脈（移植用脱細胞化材料からなる移植片組成物）の長期移植
・移植方法
体重３．７０−４．００ｋｇのウサギ（品種：日本白兎、５ヶ月齢、オス）にペントバルビタールナトリウム塩酸塩（商品名：ソムノペンチル（登録商標）０．２ｍｌ）、生理食塩水（１．８ｍｌ／ウサギ）、塩酸メデトミジン（商品名：ドルベネ注１ｍｌ）を皮下注射した。不動化確認後、腹部皮膚を剃毛した。呼気麻酔としてイソフルラン吸入し（導入時２％、手術時１％）、保定台に保定した後、ポビドンヨード製剤を浸漬させたガーゼで皮膚を消毒した。続いて、生理食塩水３倍希釈リドカイン注射液（商品名：キシロカイン（登録商標））を腹部皮下に注射し、耳の静脈から点滴ラインをとりソリタ（登録商標）Ｔ−３を静注した。電気メス、ハサミを使用し、皮膚、腹膜を切開し腹部大動脈を露出させ、ヘパリン１０００単位（１０００単位／ｍＬヘパリン１ｍＬ）を点滴ラインから静注し、その後ヘパリン静注後３分が経過したのを確認し、腹部大動脈中枢側を遮断した。腹部大動脈にシャントチューブを挿入後、血流遮断を解除した。シャントチューブで血流を確保しながら、８−０プロリン糸を使用し端側吻合法で脱細胞化ブタ内胸動脈と腹部大動脈中枢部を吻合した。続いて同様の方法で脱細胞化ブタ内胸動脈と腹部大動脈末梢部を吻合し、バイパス血管を作製した。加えて、バイパス血管へ血流を向かわせるため中枢吻合部と末梢吻合部の間の腹部大動脈を６−０プロリン糸で結紮した。脱細胞化ブタ内胸動脈移植後は、腹膜を４−０ＰＤＳ糸、筋層を２−０ＰＤＳ、皮膚を４−０ＰＤＳ糸で縫合し腹部を閉じた。抗生剤としてバイトリル（登録商標）を０．５ｍＬ投与、塩酸メデトミジン拮抗剤として塩酸アチパメゾール（商品名：アチパメ注１ｍｌ）を大腿部皮下に注射した。覚醒確認後、飼育ケージにウサギを移した。【００５７】
・剖検
脱細胞化ブタ内胸動脈移植後１カ月或いは３ヶ月のウサギについて剖検を行った。ウサギから点滴ラインはとらず、移植時と同様の方法で腹部大動脈を（移植した脱細胞化ブタ内胸動脈）を露出させた。続いて血管開存評価、血栓形成評価を行った。血管開存評価は、腹部大動脈の末梢側を切断し、放血の有無で判断した。すべてのサンプルで放血を確認し、血管が開存していたことが示された。血管開存評価後、耳静脈にペントバルビタールナトリウム（ソムノペンチル（登録商標）５ｍＬ）を注射し、サクリファイスした。心臓、呼吸停止後、脱細胞化ブタ内胸動脈を取り出した。脱細胞化ブタ内胸動脈内部を生理食塩水で洗浄した後、長軸方向に切開し血栓形成を目視で観察した。脱細胞化ブタ内胸動脈の内腔面へは血栓の付着はなく抗血栓性が高いことが示された。なお「開存」とは、血管の内腔が閉塞することなく、中空の状態が維持されていることをいう。【００５８】
・病理標本作製
移植した脱細胞化ブタ内胸動脈の病理標本の作製は（株）新組織科学研究所が行った。この際、脱細胞化ブタ内胸動脈の超音波メス或いは、６−０プロリン糸で閉塞させた分枝血管部分の組織構造が確認できる部分でＨＥ染色切片、エラスチカ・ワンギーソン染色（Ｅｌａｓｔｉｃａ  ｖａｎ  Ｇｉｅｓｏｎ染色、以下、ＥＶＧ染色ということもある）を行い、ＥＶＧ染色切片の作製を行った。具体的には、血管の長軸方向におよそ５μｍ厚で連続的に切片を作成し、超音波メス或いは、６−０プロリン糸で閉塞させた分枝血管部分の組織構造が確認できる部分で切片を作成した。【００５９】
なお、ＥＶＧ染色は弾性繊維を同定する染色方法であり、結合組織のなかのエラスチンを黒紫色に、コラーゲンを赤紫色に染め分けることができる。【００６０】
実施例サンプルのＨＥ染色像、ＥＶＧ染色像（３ヶ月）、比較例サンプルのＨＥ染色像、ＥＶＧ染色像（３ヶ月）を以下に示す（図４）。実施例サンプルでは、ＥＶＧ染色で黒紫色に染まる脱細胞化ブタ内胸動脈組織部分にも細胞が浸潤していることが分かる。一方、比較例サンプルでは、ＥＶＧ染色で黒紫色に染まる脱細胞化ブタ内胸動脈組織部分に細胞の浸潤が認められなかった。
また実施例サンプルでは、移植後１ヶ月の段階で分枝血管の段差がウサギ細胞で覆われる所見をみだした（図５）。【００６１】
７．
流通食用ブタ由来のブロック肉より、超音波メス（ＥＥＳジェネレーター、ハーモニック  ＳＹＮＥＲＧＹ、ハーモニック ＦＯＣＵＳ＋、＜ブルーハンドピース使用＞、エチコンエンドサージェリー社）の設定を５５５００Ｈｚ、出力レベル５および２として分枝血管を接触させ凝固させながら胸壁から内胸動脈を剥離（採取）した。分枝血管の凝固は血管の枝分かれ部分から３−５ｍｍ離れた位置で行うようにし、５本の内胸動脈を剥離（採取）した。上記「３」記載の方法にて脱細胞化処置を行った後、上記「４」記載の方法にて耐圧強度の測定を行った。その結果、５本のサンプル全てにおいて、耐圧強度は２５０ｍｍＨｇ以上であることを確認した。
【符号の説明】
【００６２】
１：分枝を有する血管、２：分枝部分（分枝血管）、３：タンパク質変性部
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【国際調査報告】
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