(57)【要約】  急性腎不全に対する、非侵襲的で感度のよい、新規な診断方法を提供する。  本発明は、被験体の尿中のアクアポリン２の量を測定するステップを含む、急性腎不全の診断方法に関する。本発明の方法において、典型的には、被験体の尿中のアクアポリン２の量が、対照の尿中のアクアポリン２の量と比較して有意に少ないときに、被験体が急性腎不全に罹患している、あるいは対照と比較してより重度の急性腎不全であると判断される。本発明はまた、アクアポリン２に特異的に結合し得る抗体を含有する、急性腎不全の診断薬、及び急性腎不全の診断用キットにも関する。
2010150613.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
被験体の尿中のアクアポリン２の量を測定するステップを含む、急性腎不全の診断方法。
【請求項２】
以下のステップ：
被験体の尿中のアクアポリン２の量を測定するステップ、及び
被験体の尿中のアクアポリン２の量を、対照の尿中のアクアポリン２の量と比較するステップ
を含み、被験体の尿中のアクアポリン２の量が、対照の尿中のアクアポリン２の量と比較して有意に少ないときに、被験体が急性腎不全に罹患している、又は対照と比較してより重度の急性腎不全であることが示される、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
アクアポリン２の量の測定に用いる尿サンプルが、尿から得られたエキソゾーム画分である、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
被験体がヒトである、請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。
【請求項５】
急性腎不全が薬剤により引き起こされたものである、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
【請求項６】
アクアポリン２の測定が、アクアポリン２に特異的に結合する抗体を用いた免疫学的測定法により行われる、請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法。
【請求項７】
アクアポリン２に特異的に結合し得る抗体を含有する、急性腎不全の診断薬。
【請求項８】
アクアポリン２に特異的に結合し得る抗体を含有する、急性腎不全の診断用キット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、急性腎不全の非侵襲的な早期診断方法に関する。より具体的には、本発明は、被験体中の尿中アクアポリン２の量を測定するステップを含む、急性腎不全の診断方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
急性腎不全（ＡＲＦ）は、ヒトでは死亡率が５０％を超える重篤な疾患で、急激なＧＦＲの低下と窒素代謝物の体内蓄積に特徴付けられる症候群の総称である。現在のところ特異的な治療薬は無く、また、軽度な急性腎不全における早期診断方法も確立していない。ＡＲＦは、出血などによる腎血流量の低下が原因となる腎前性ＡＲＦ、尿細管細胞死を伴う腎実質性ＡＲＦ、及び尿路閉塞による腎後性ＡＲＦの３つに分類される。この中で、腎実質性ＡＲＦの発症原因としては、腎臓が一時的な虚血に陥り、その後血流が再開することによっておきる腎虚血再灌流（ＩＲ）傷害及び薬物などによる尿細管への直接傷害が重要であり、これらの傷害により急性尿細管壊死が引き起こされる。また、壊死した尿細管上皮細胞は基底膜から脱落し、尿細管閉塞の原因ともなる。【０００３】
現在までに確立されている急性腎不全の診断用マーカーとしては、血清クレアチニンが挙げられる。しかし、クレアチニンの急性腎不全に対する特異性は低く、また、クレアチニンを用いて急性腎不全を早期に検出することはできない。近年、いくつかの急性腎不全の早期診断マーカーの候補物質が報告された。そのような物質には、好中球ゼラチナーゼ関連リポカリン（ＮＧＡＬ；Ｎｅｕｔｒｏｐｈｉｌ  ｇｅｌａｔｉｎａｓｅ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  ｌｉｐｏｃａｌｉｎ）、インターロイキン−１８、腎臓傷害分子−１（Ｋｉｄｎｅｙ  ｉｎｊｕｒｙ  ｍｏｌｅｃｕｌｅ−１）、フェツイン−Ａ（Ｆｅｔｕｉｎ−Ａ）などが含まれる。しかしながら、これらの物質はいずれも、腎臓において特異的な機能を担っているタンパク質ではなく、炎症などによって腎臓以外の細胞においても発現量が変化することが知られている。したがって、これらの物質は、他の疾患においてもその尿中排泄量が変化すると考えられ、急性腎不全に対する特異性は低いと予想される。【０００４】
水分子を透過させる膜タンパク質分子として発見されたアクアポリン（ＡＱＰ）は、現在では同じタンパク質分子ファミリーに属する分子種として、水分子のみを透過させる“アクアポリン”（アクアポリン０、アクアポリン１、アクアポリン２、アクアポリン４、アクアポリン５、アクアポリン８）、水分子だけでなくグリセロールなどの中性子も一部透過させる“アクアグリセロポリン”（アクアポリン３、アクアポリン７、アクアポリン９）、水分子以外にも陰イオンを透過させるアクアポリン６、輸送される物質が明らかにされていないアクアポリン１１及びアクアポリン１２の１３種類の分子種が報告されている。“アクアポリン”に属する分子種は、目の水晶体、腎臓、脳、涙腺などに分布し、そこで水分代謝を調節し、“アクアグリセロポリン”は脂肪細胞に分布して脂質代謝に関与していることが明らかにされている。【０００５】
腎臓においては、近位尿細管及びヘンレの細い下行脚の上皮細胞にアクアポリン１が、近位尿細管の上皮細胞にアクアポリン１１が、近位直尿細管（特にＳ３セグメント）の上皮細胞にアクアポリン７が、集合管の主細胞にアクアポリン２、アクアポリン３、及びアクアポリン４が、集合管のα間在細胞にアクアポリン６が、近位尿細管及び集合管の上皮細胞にアクアポリン８がそれぞれ部位特異的に発現していることが知られている。アクアポリン１は近位尿細管上皮細胞の管腔側（尿が面している側）及び基底側（血管と面している側）の両方の細胞膜に発現しており、それぞれの膜における水輸送に関与していると考えられている。アクアポリン２は集合管主細胞の管腔側の細胞膜とその付近の細胞内小胞に発現しており、バソプレシンによって細胞が刺激されると、その管腔側細胞質における発現量が増加し、水分の再吸収が促進する。アクアポリン３及びアクアポリン４は主細胞の基底側の細胞膜に発現しており、アクアポリン２によって細胞内に輸送された水を血管へと輸送すると考えられている。アクアポリン６は集合管のα間在細胞の細胞質内に発現しており、その局在と陰イオンを透過させることから小胞の酸性化に関与しているのではないかと推察されている。アクアポリン８と新規アクアポリンであるアクアポリン１１はそれぞれが発現している上皮細胞の細胞質に、アクアポリン７は近位直尿細管の刷子縁に発現していることが報告されているが、それらの腎における役割は明らかにされていない。またアクアポリン１が欠損しているヒトでは尿の濃縮障害が、アクアポリン１１のノックアウトマウスでは嚢胞腎がおこることが報告されている。【０００６】
本発明者らのグループは、急性腎不全において、尿中に含まれるアクアポリン１タンパク質の尿中排泄量が、非常に早期から特異的に減少することを世界に先駆けて発見し、その診断的価値を見出した（特許文献１）。【０００７】
特許文献２には、薬剤の細胞傷害可能性をｍＲＮＡ量で評価する方法が記載され、腎臓をターゲットにする場合にアクアポリン２を使用することが記載されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００８】
【特許文献１】特開２００８−１７５６３０号公報
【特許文献２】特表２００６−５１２０７４号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
急性腎不全に対する、非侵襲的で感度のよい新規な診断方法が、いまだ所望されている。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
本発明者らは、腎虚血性急性腎不全モデル及び薬剤性急性腎不全モデルで、尿中エキソゾームに含まれるアクアポリン２の排泄量が対照と比較して顕著に変化していることを見出し、本発明を完成させた。【００１１】
すなわち、本発明は、以下の特徴を有する。【００１２】
〔１〕被験体の尿中のアクアポリン２の量を測定するステップを含む、急性腎不全の診断方法。【００１３】
〔２〕以下のステップ：
被験体の尿中のアクアポリン２の量を測定するステップ、及び
被験体の尿中のアクアポリン２の量を、対照の尿中のアクアポリン２の量と比較するステップ
を含み、被験体の尿中のアクアポリン２の量が、対照の尿中のアクアポリン２の量と比較して有意に少ないときに、被験体が急性腎不全に罹患している、又は対照と比較してより重度の急性腎不全であることが示される、上記〔１〕に記載の方法。【００１４】
〔３〕アクアポリン２の量の測定に用いる尿サンプルが、尿から得られたエキソゾーム画分である、上記〔１〕又は〔２〕に記載の方法。【００１５】
〔４〕被験体がヒトである、上記〔１〕〜〔３〕のいずれか１つに記載の方法。【００１６】
〔５〕急性腎不全が薬剤により引き起こされたものである、上記〔１〕〜〔４〕のいずれか１つに記載の方法。【００１７】
〔６〕アクアポリン２の測定が、アクアポリン２に特異的に結合する抗体を用いた免疫学的測定法により行われる、上記〔１〕〜〔５〕のいずれか１つに記載の方法。【００１８】
〔７〕アクアポリン２に特異的に結合し得る抗体を含有する、急性腎不全の診断薬。【００１９】
〔８〕アクアポリン２に特異的に結合し得る抗体を含有する、急性腎不全の診断用キット。【００２０】
本明細書は本願の優先権の基礎である日本国特許出願第２００９−１５２４４８号の明細書及び／又は図面に記載される内容を包含する。
【図面の簡単な説明】
【００２１】
【図１】ヒト、イヌ（予測）、ウシ、ラット及びマウスのアクアポリン２のアミノ酸配列のアライメントを示す。
【図２】虚血性腎不全モデルにおける、モデル作製後の血中クレアチニン濃度の変化。モデル作製後６時間、３０時間、９６時間に採血し、測定した。白カラムが対照群、黒カラムが虚血性腎不全モデル群。＊＊は対照群との間にＰ＜０．０１で有意差があったことを示す。カッコ内の数字は例数を示す。
【図３】虚血性腎不全モデルにおける、モデル作製後の尿中エキソゾームに含まれるアクアポリン２タンパク質排泄量の変化。モデル作製後６時間、３０時間、９６時間、４８０時間に採尿して測定した。黒カラムは対照群に対する％値で表わしている。＊＊は対照群との間にＰ＜０．０１で有意差があったことを示す。
【図４】薬剤性腎不全モデルにおける、モデル作製後の血中クレアチニン濃度の変化。モデル作製後２４時間ごとに、１６８時間まで採血し、測定した。Ｖｅｈが対照群（溶媒投与群）、Ｃｉｓが薬剤性腎不全モデル群。＊、＊＊はそれぞれ対照群との間にＰ＜０．０５、Ｐ＜０．０１で有意差があったことを示す。
【図５】薬剤性腎不全モデルにおける、モデル作製後の尿中エキソゾームに含まれるアクアポリン２タンパク質排泄量の変化。モデル作製後１２時間、それ以降は２４時間ごとに、１６８時間まで採尿して測定した。値は対照群（溶媒投与群）に対する％値で表わしている。＊＊は対照群との間にＰ＜０．０１で有意差があったことを示す。
【図６】慢性腎不全モデルにおける、モデル作製後の尿中タンパク質排泄量の変化。モデル作製後４日以降、１日ごとに、７日まで採尿し、測定した。黒四角が対照群（溶媒投与群）、黒菱形が慢性腎不全モデル群。＊、＊＊はそれぞれ対照群との間にＰ＜０．０５、Ｐ＜０．０１で有意差があったことを示す。
【図７】慢性腎不全モデルにおける、モデル作製後の尿中エキソゾームに含まれるアクアポリン２タンパク質排泄量の変化。値は対照群（溶媒投与群）に対する％値で表わしている。＊は対照群との間にＰ＜０．０５で有意差があったことを示す。
【発明を実施するための形態】
【００２２】
本発明者らは、尿中にタンパク質が排泄される場合に、エキソゾームと呼ばれる小胞に含まれてタンパク質が排泄されている過程があることに着目した（Ｐｉｓｉｔｋｕｎ  Ｔ，Ｓｈｅｎ  ＲＦ，Ｋｎｅｐｐｅｒ  ＭＡ．（２００４）．Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｐｒｏｔｅｏｍｉｃ  ｐｒｏｆｉｌｉｎｇ  ｏｆ  ｅｘｏｓｏｍｅｓ  ｉｎ  ｈｕｍａｎ  ｕｒｉｎｅ．Ｐｒｏｃ  Ｎａｔｌ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  ＵＳＡ．，１０１，１３３６８−１３３７３）。尿に面している細胞に存在するエキソゾームは、直径１００ｎｍ以下で、細胞活動の一つであるエキソサイトーシス機構によって尿中へ排出される。エキソゾームに含まれているタンパク質の種類は、尿全体のタンパク質の種類に比べて少なく、タンパク質の由来はそれらが発現している腎臓の細胞である。本発明者らは、尿中エキソゾームタンパク質を腎臓病の診断に役立てられるのではないかと考え検討した。その結果、腎虚血性急性腎不全モデル及び薬剤性急性腎不全モデルで、尿中エキソゾームに含まれるアクアポリン２の排泄量が対照と比較して顕著に変化していることを見出した。
【００２３】
したがって、本発明は、被験体の尿中のアクアポリン２の量を測定するステップを含む、急性腎不全の診断方法に関する。
【００２４】
本発明において「被験体」とは急性腎不全を発症しうる動物であれば限定されないが、ヒトが特に好ましい。ヒト以外の被験体としては、例えば、サル、チンパンジー等の非ヒト霊長類や、イヌ、ウシ、マウス、ラット、モルモット等の他の哺乳動物が挙げられる。ヒト以外の動物を被験体とした場合に得られる情報（判定結果）は、当該非ヒト動物の急性腎不全の診断にも利用され得るが、むしろそれをヒトの急性腎不全の診断法の確立に利用できる点で有用である。図１に示す通り、アクアポリン２のアミノ酸配列は種を超えて保存性が高い。また、ラットなどの疾患モデル動物で見られた尿中アクアポリン排泄量の変化が、患者においても見られることが報告されている。よって、非ヒト動物での実験結果はヒトに対しても外挿可能であると言える。
【００２５】
本発明の方法では、被験体の尿サンプル又は尿に由来するサンプルを測定対象として用いる。尿サンプルは、被験体から侵襲性なく採取することができる。上記のとおり、本発明者らは急性腎不全モデルの尿中エキソゾームにおいてアクアポリン量が変化することを実証した。したがって、本発明の方法に用いるサンプルとして、被験体の尿から得られたエキソゾーム画分を用いることができる。さらに、本発明者らは、全尿においてもアクアポリン２の測定が可能なことを確認した。したがって、本発明の方法に用いるサンプルとして、全尿も好適に用いることができる。
【００２６】
尿中エキソゾーム画分は、例えば、以下のようにして得ることができる：回収した尿を１，０００ｇで１０分間遠心し、続いてその上清を１７，０００ｇで１５分間遠心し、さらにその上清を２００，０００ｇで６０分間遠心する。得られた沈殿をエキソゾーム画分として分離する。エキソゾーム画分のタンパク質は、４×サンプルバッファー（０．５Ｍ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、８％ＳＤＳ、５０％グリセロール、０．０１％ブロモフェノールブルー、０．２Ｍ  ＤＴＴ）と混合し、３７℃で３０分間インキュベートすることにより可溶化してサンプルとすることができる。
【００２７】
あるいは、例えば以下のようにして得られる尿中タンパク質を、本発明の方法においてサンプルとして用いることができる：氷上で尿にタンパク質分解酵素阻害剤溶液を加えた後、遠心（１，０００ｇ、１０分間、４℃）し上清を得る。上清の一部を１０倍希釈した後、化学分析器を用いて尿中のクレアチニン濃度を測定する。残る上清から、以下に述べる、フィルター法又は超遠心法の２種類の方法を用いて、尿中タンパク質を分離する。
【００２８】
フィルター法：クレアチニン３ｍｇを含む尿を遠心ろ過チューブ（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ．Ｃａｒｒｉｇｔｗｏｈｉｌｌ．ｃｏ．）に入れ、液量が２００μＬ以下になるまで遠心（４，０００ｇ、４℃）する。その後、総計の液量が３００μＬになるように４×Ｌａｅｍｍｌｉサンプルバッファー（６２．５ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、２５％グリセロール、２％ＳＤＳ、０．０１％ブロモフェノールブルー、０．４Ｍ  ＤＴＴ）を加えて、３７℃で３０分間インキュベートしてサンプルとする。
【００２９】
超遠心法：クレアチニン３ｍｇを含む尿を遠心（２００，０００ｇ、６０分間、４℃）する。そのペレットに５倍希釈したタンパク質分解酵素阻害剤溶液５０μＬを加えて溶解し、２５μＬの４×Ｌａｅｍｍｌｉサンプルバッファー（６２．５ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、２５％グリセロール、２％ＳＤＳ、０．０１％ブロモフェノールブルー、０．４Ｍ  ＤＴＴ）と混合後、３７℃で３０分間インキュベートしてサンプルとする。
【００３０】
本明細書においてアクアポリン２とは、典型的にはアクアポリン２の成熟体または完全体であり、糖鎖修飾されたアクアポリン２分子も包含される。糖鎖の種類、結合位置などは限定されない。アクアポリン２のアミノ酸配列は被験体の動物種により若干異なる。一例として、配列表には、配列番号１としてヒト（Ｈｏｍｏ  ｓａｐｉｅｎｓ）由来アクアポリン２を、配列番号２としてイヌ（Ｃａｎｉｓ  ｆａｍｉｌｉａｒｉｓ）由来アクアポリン２を、配列番号３としてウシ（Ｂｏｓ  ｔａｕｒｕｓ）由来アクアポリン２を、配列番号４としてラット（Ｒａｔｔｕｓ  ｎｏｒｖｅｇｉｃｕｓ）由来アクアポリン２を、配列番号５としてマウス（Ｍｕｓ  ｍｕｓｃｕｌｕｓ）由来アクアポリン２を、それぞれ示す。
【００３１】
アクアポリン２の測定は、アクアポリン２に特異的に結合し得る抗体を用いて行なうことが好ましい。このような抗体としては、測定しようとする動物種のアクアポリン２又はその部分配列を含むポリペプチドを抗原として用い、常法により作製された抗体を好適に使用できる。
【００３２】
抗体はポリクローナル抗体であってもモノクローナル抗体であってもよい。また抗体はアクアポリン２に特異的に結合し得る限り断片として使用することもできる。抗体の断片としては、例えば、Ｆａｂ断片、Ｆ（ａｂ’）２断片、単鎖抗体（ｓｃＦｖ）等が挙げられる。
【００３３】
モノクローナル抗体は例えば次の手順で作製することができる。
【００３４】
上記の抗原を、動物に対して、抗原の投与により抗体産生が可能な部位に、それ自体あるいは担体、希釈剤とともに投与する。投与に際して抗体産生能を高めるため、完全フロイントアジュバントや不完全フロイントアジュバントを投与してもよい。用いられる動物としては、例えば、サル、ウサギ、イヌ、モルモット、マウス、ラット、ヒツジ、ヤギなどの哺乳動物が挙げられる。抗血清中の抗体価の測定は常法により行うことができる。
【００３５】
抗原を免疫された動物から抗体価の認められた個体を選択し最終免疫の２〜５日後に脾臓またはリンパ節を採取し、それらに含まれる抗体産生細胞を骨髄腫細胞と融合させることにより、モノクローナル抗体産生ハイブリドーマを調製することができる。融合操作は既知の方法、例えば、Ｎａｔｕｒｅ  ２５６：４９５（１９７５）記載の方法に従い実施することができる。融合促進剤としては、例えば、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）などが挙げられる。骨髄腫細胞としては、例えば、ＮＳ−１、Ｐ３Ｕ１、ＳＰ２／０などが挙げられる。
【００３６】
モノクローナル抗体の選別は、公知の方法あるいはそれに準じる方法に従って行なうことができるが、通常はＨＡＴ（ヒポキサンチン、アミノプテリン、チミジン）を添加した動物細胞用培地などで行なうことができる。選別および育種用培地としては、ハイブリドーマが生育できるものならばどのような培地を用いても良い。ハイブリドーマ培養上清の抗体価は、抗血清中の抗体価の測定と同様にして測定できる。
【００３７】
モノクローナル抗体の分離精製は、通常のポリクローナル抗体の分離精製と同様の、例えば塩析法、アルコール沈殿法、等電点沈殿法、電気泳動法、イオン交換体（例えば、ＤＥＡＥ）による吸脱着法、超遠心法、ゲルろ過法、抗原結合固相あるいはプロテインＡまたはプロテインＧなどを用いた特異的精製法による免疫グロブリンの分離精製法に従って行なうことができる。
【００３８】
一方、ポリクローナル抗体は例えば次の手順で作製することができる。
【００３９】
ポリクローナル抗体は、例えば、抗原とキャリアとの複合体をつくり、上記のモノクローナル抗体の製造法と同様に哺乳動物に免疫を行ない、該免疫動物から活性型ハプトグロビンに対する抗体含有物を採取して、抗体の分離精製を行なうことにより製造できる。ポリクローナル抗体の作製に使用する抗原はモノクローナル抗体の作製におけるのと同様である。抗原とキャリアとの複合体を形成する際に、キャリアの種類および抗原とキャリアとの混合比は、キャリアに架橋させた抗原に対して抗体が効率よくできれば、どの様なものをどの様な比率で架橋させてもよい。キャリアとしては、例えば、ウシ血清アルブミン、ウシサイログロブリン、キーホール・リンペット・ヘモシアニン等が用いられる。また、抗原とキャリアのカップリングには、種々の縮合剤を用いることができ、具体的にはグルタルアルデヒドやカルボジイミド、マレイミド活性エステル、チオール基、ジチオビリジル基を含有する活性エステル試薬等が用いられる。
【００４０】
抗原とキャリアとの複合体は、免疫される動物に対して、抗体産生が可能な部位に、それ自体あるいは担体、希釈剤とともに投与される。投与に際して抗体産生能を高めるため、完全フロイントアジュバントや不完全フロイントアジュバントを投与してもよい。投与は、通常約２〜６週毎に１回ずつ、計約３〜１０回程度行なうことができる。用いられる動物としては、モノクローナル抗体作製の場合と同様の哺乳動物が挙げられる。ポリクローナル抗体は、上記の方法で免疫された動物の血液、腹水など、好ましくは血液から採取することができる。抗血清中のポリクローナル抗体価の測定は、上記の血清中の抗体価の測定と同様にして測定できる。ポリクローナル抗体の分離精製は、上記のモノクローナル抗体の分離精製と同様の手順で行なうことができる。
【００４１】
本発明の方法は、被験体からの尿中のアクアポリン２の量を評価するステップを含む。アクアポリン２の量は、標準サンプルとの比較などにより絶対量を測定してもよい。しかし、必ずしもアクアポリン２の絶対的な量を測定する必要はなく、対照となる尿中のアクアポリン２の量との相対的な関係を明らかにできれば評価としては十分である。
【００４２】
アクアポリン２の量の評価方法としては、典型的には、上記の抗アクアポリン２抗体を用いた免疫学的測定法が挙げられる。免疫学的測定法としては、特に制限はなく、従来公知の方法、例えば酵素免疫測定法（ＥＩＡ法）、ラテックス凝集法、免疫クロマトグラフィー法、ウエスタンブロット法、放射免疫測定法（ＲＩＡ法）、蛍光免疫測定法（ＦＩＡ法）、ルミネッセンス免疫測定法、スピン免疫測定法、抗原抗体複合体形成に伴う濁度を測定する比濁法、抗体固相膜電極を利用し抗原との結合による電位変化を検出する酵素センサー電極法、免疫電気泳動法などを採用することができる。これらの中でもＥＩＡ法またはウエスタンブロット法が好ましい。なお、ＥＩＡ法には、競合的酵素免疫測定法や、サンドイッチ酵素結合免疫固相測定法（サンドイッチＥＬＩＳＡ法）等が包含される。
【００４３】
ウエスタンブロット法を本発明の免疫学的測定法として採用する場合、例えば次のようにして尿中のアクアポリン２を検出することができる。ドデシル硫酸ナトリウム含有ポリアクリルアミドゲル上に検体である尿由来タンパク質サンプルを添加し、一定の電圧をかけて電気泳動を行い、泳動によりゲル上で分離されたタンパク質をＰＶＤＦ（ポリビリニデンジフルオライド）膜のようなブロッティング用メンブレンに電気的にトランンスファーする。このメンブレンをスキムミルク等でブロッキング処理した後に、上記抗アクアポリン２抗体をメンブレンと反応させ、次いで化学発光物質、蛍光物質、あるいは酵素（西洋ワサビペルオキシダーゼ等）で標識した二次抗体を結合させ、更に標識物質に応じた検出操作を行う。メンブレン上にアクアポリン２が存在する場合には検出することができる。なお、ウエスタンブロット法による具体的な検出方法は後記実施例に記載されている。
【００４４】
本発明では尿中のアクアポリン２の量を測定し、かかる量の減少を指標として急性腎不全を診断する。
【００４５】
本発明において「診断」とは、典型的には、被験体が急性腎不全に罹患しているか否かの判定（狭義の診断）を意味するが、これには限定されず、急性腎不全の重症度の判定、治療の効果の判定、および治療後に急性腎不全を再発する危険性が存在するか否かの判定をも包含する概念（広義の診断）である。好ましくは、本発明において「診断」とは、ｉｎ  ｖｉｔｒｏでの急性腎不全の検出を意味する。実施例に示すように尿中のアクアポリン２の量は早期の急性腎不全においても顕著に減少することから、本発明の方法は急性腎不全の早期診断に有用であるといえる（なおこの場合、「診断」は狭義の意味で用いられる）。また尿をサンプルとして使用することから、被験体にとって負荷がほとんどない、非侵襲的な方法であるといえる。
【００４６】
被験体が急性腎不全に罹患しているか否かの判定の際には、健常検体の尿試料中におけるアクアポリン２の量を基準とすることができる。治療の効果の判定の際には、治療前の被験体から採取された尿試料中のアクアポリン２の量を基準値とすることもできる。本発明では、比較対象となるこれらの検体を「対照」と称する。したがって、本発明の方法において対照には、正常個体から得た尿のプール、急性腎不全の発症が疑われる前の当該被験体から得られた尿サンプル、治療前の当該被験体から得られた尿サンプルなどが含まれる。
【００４７】
好ましい態様において、本発明は、被験体の尿中のアクアポリン２の量を測定するステップに加えて、被験体の尿中のアクアポリン２の量を対照の尿中のアクアポリン２の量と比較するステップをさらに含み、ここで、被験体の尿中のアクアポリン２の量が、対照の尿中のアクアポリン２の量と比較して有意に少ないときに、被験体が急性腎不全に罹患している、あるいは対照と比較してより重度の急性腎不全であると判断される。
【００４８】
すなわち、本発明の方法では、典型的には、被験体の尿中のアクアポリン２の量を測定し、当該量と、対照の尿中のアクアポリン２の量とを対比し、前者が後者より少ないときに、被験体が急性腎不全に罹患している、あるいは対照と比較してより重度の急性腎不全患者であると判断される。ここで、急性腎不全に対する治療効果の判定においては、対照として治療前の当該被験体から取得したサンプルを用い、治療後の被験体から得られたサンプル中のアクアポリン２の量が対照（すなわち、治療前）よりも増加していれば、治療効果が認められると判定することができる。
【００４９】
対照の尿中のアクアポリン２の量の測定は、被験体の尿中のアクアポリン２の量の測定と同様の手順で行うことができる。対照の尿中のアクアポリン２の量は、被験体の尿の測定のたびに測定してもよいし、事前に測定しておいてもよい。
【００５０】
好ましい実施形態において、本発明により診断される腎不全は、薬剤により引き起こされたものである。薬剤により引き起こされる腎不全、すなわち薬剤性腎不全は、抗癌剤（例えばシスプラチンなど）、非ステロイド性抗炎症薬、高血圧治療薬、抗生物質、抗菌剤、造影剤などの種々の薬剤により尿細管が傷害されることによって引き起こされる可能性がある。好ましくは、本発明により診断される腎不全は、抗癌剤、特にシスプラチンにより引き起こされたものである。
【００５１】
本発明はまた、アクアポリン２に特異的に結合し得る抗体を含む、急性腎不全の診断薬に関する。
【００５２】
本発明の診断薬は、必要な試薬とともにキット化することもできる。例えば診断キットには、抗アクアポリン２抗体、標識化された二次抗体、検出のための試薬等の必要な構成要素が含まれ得る。
【００５３】
キットにはさらに、バッファー、洗浄液、使用説明書等が含まれていてもよい。
【００５４】
これらの診断薬又は診断キット中の抗体は、本明細書に開示する、尿中のアクアポリン２の量を指標とした急性腎不全の診断方法のために使用される。
【００５５】
本発明を以下の実施例によってさらに具体的に説明するが、本発明の範囲はそれらの実施例によって制限されないものとする。
【実施例】
【００５６】
１．実験方法
（１）虚血性腎不全モデル
ラットを麻酔した後に開腹し、右腎動脈を露出させた。次にその動脈にクリップをかけ、６０分間血流を遮断した後に血液を再灌流させた（虚血性腎不全モデル群）。偽手術群（対照群）では、クリップによる血流遮断以外は同様の手術を行った。【００５７】
（２）薬剤性腎不全モデル
ラットに、抗癌剤であるシスプラチン（７．５ｍｇ／ｋｇ）（ＳＩＧＭＡ−Ａｌｄｒｉｃｈ  ＣＯ．，ＭＯ，ＵＳＡ）を投与し、薬剤性腎不全モデルを作製した。対照群には同容量の生理食塩水を投与した。【００５８】
（３）慢性腎不全モデル
ラットにピューロマイシンアミノヌクレオシド（１５０ｍｇ／ｋｇ）（ＳＩＧＭＡ−Ａｌｄｒｉｃｈ  ＣＯ．，ＭＯ，ＵＳＡ）を投与し、タンパク尿を呈する、慢性腎不全モデルを作製した。対照群には同容量の生理食塩水を投与した。【００５９】
（４）サンプル調製
上述の方法により作製したモデル動物から、任意の時点において（例えば投与前、投与１日後、３日後、７日後など）、採尿および採血を行った。【００６０】
代謝ケージを用いて尿を集め、尿量の測定を行った。その後、エキソゾームの分離を行った。具体的には、集めた尿をまず１，０００ｇで１０分間遠心し、続いてその上清を１７，０００ｇで１５分間遠心し、さらにその上清を２００，０００ｇで６０分間遠心し、得られた沈殿をエキソゾーム画分として分離した。エキソゾーム画分のタンパク質は４×サンプルバッファー（０．５Ｍ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、８％ＳＤＳ、５０％グリセロール、０．０１％ブロモフェノールブルー、０．２Ｍ  ＤＴＴ）と混合し、３７℃で３０分間インキュベートし可溶化してサンプルとした。【００６１】
血液をヘパリンと混濁した後、１２，０００ｒｐｍで１０分間遠心することで血漿を分離した。富士ドライケムスライド（ＣＲＥ−ＰＩＩＩ、富士写真フイルム株式会社、Ｔｏｋｙｏ）を用いて血漿中のクレアチニン値と尿素窒素値を測定した。尿中タンパク質濃度はブラッドフォード・プロテインアッセイキット（Ｂｉｏ  Ｒａｄ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社製、Ｔｏｋｙｏ）により測定し、尿量を乗じて一定時間当たりの総排泄量を求めた。【００６２】
（５）アクアポリン２の測定
尿のエキソゾームサンプルについて、定法に従ってＳＤＳ−ＰＡＧＥを行い、ゲル内のタンパク質をセミドライタイプ（ＫＳ−８４６０、マリソル、Ｔｏｋｙｏ）のブロッティング装置を用いてポリビニリデンジフルオリド（ＰＶＤＦ）メンブレンにトランスファーした。トランスファー後、ＴＢＳ中にてローテーターで振盪しながら洗浄（１５分、２回）し、５％スキムミルク、Ｔｗｅｅｎ−２０を含むＴＢＳ（５％  ＳＭ−ＴＴＢＳ）でブロッキング（一晩、４℃）した。ブロッキング後、１．６％  ＳＭ−ＴＴＢＳで１：４０００に希釈した一次抗体（抗アクアポリン２抗体、Ａｌｏｍｏｎｅ  ｌａｂｓ、Ｉｓｒａｅｌ）を６０分間反応させた（室温）。反応後、ＴＴＢＳで一次抗体を洗浄（５分間、２回）し、１．６％  ＳＭ−ＴＴＢＳで１：４０００に希釈した二次抗体（抗ウサギＩｇＧ抗体）を反応させた後、ＴＴＢＳで洗浄（５分間、４回）し、最後にＴＢＳ（１０分間、１回）で洗浄した。ＳｕｐｅｒＳｉｇｎａｌ（登録商標）Ｗｅｓｔ  Ｆｅｍｔｏ  Ｍａｘｉｍａｍ  Ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ  Ｓｕｂａｔｒａｔｅ（ＰＩＥＲＣＥ社、ＩＬ）を用いてバンドを可視化し、ポラロイドカメラ（ＥＣＬＴＭ−ｍｉｎｉ  Ｃａｍｅｒａ、Ａｍｅｒｓｈａｍ  Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  ｐｌｃ．、Ｔｏｋｙｏ）で撮影した。【００６３】
（６）尿中タンパク質の測定
尿中タンパク質の場合は、一定量の尿中クレアチニンを含有するサンプル中に含まれるタンパク質量を定量化し、対照群の値の平均値を１００％として定量化した。各データは、平均値±標準誤差（ＳＥＭ）で示した。平均値を、スチューデントｔ検定により比較した。【００６４】
２．結果
（１）虚血性腎不全モデルにおける検討
図２にモデル作製後の血中クレアチニン濃度の変化、図３に尿中エキソゾームに含まれるアクアポリン２タンパク質排泄量についての結果をそれぞれ示す。【００６５】
図２のモデル群において血中クレアチニン濃度が有意に増加していたことから、モデル作製が成功していたことがわかる。また、図３に示されているように、腎不全発症後６時間において尿中エキソゾームに含まれるアクアポリン２タンパク質排泄量が有意に減少していた。このことから、尿中エキソゾームに含まれるアクアポリン２タンパク質排泄量が虚血性腎不全の早期診断マーカーになりうる可能性が考えられた。この時、モデル作製後６時間において、腎臓におけるアクアポリン２タンパク質量および遺伝子発現量が減少していたことから（データは示していない）、腎内のタンパク質合成量の減少を反映して、尿中エキソゾームに含まれるアクアポリン２タンパク質排泄量が減少したものと考えられた。【００６６】
（２）薬剤性腎不全モデルにおける検討
図４に、モデル作製後の血中クレアチニン濃度の変化、図５に尿中エキソゾームに含まれるアクアポリン２タンパク質排泄量についての結果をそれぞれ示す。【００６７】
図４のモデル群において、血中クレアチニン濃度は、シスプラチン投与後４８時間以降から次第に増加し、投与後１２０時間にピークを迎え、その後減少した。一方、図５に示されているように、尿中エキソゾームに含まれるアクアポリン２タンパク質排泄量は、投与後２４時間から１６８時間にわたって持続的に減少していた。【００６８】
これらのことから、尿中エキソゾームに含まれるアクアポリン２タンパク質排泄量は、薬剤性腎不全において、早期の診断マーカーになるとともに、その後の回復期においても腎不全が存在していれば、その腎不全を検出できるという非常に有用なマーカーになりうることが考えられた。また、データは示していないが、腎臓におけるアクアポリン２タンパク質量および遺伝子発現量のいずれにおいても、尿中エキソゾームに含まれるアクアポリン２タンパク質排泄量の減少との間には相関関係がみられなかった。【００６９】
（３）慢性腎不全モデルにおける検討
図６にモデル作製後の尿中タンパク質排泄量の変化を示す。ピューロマイシンアミノヌクレオシド投与後、５日目以降に有意なタンパク質排泄量の増加がみられた。データは示していないが、このとき血中クレアチニン濃度は変化していなかった。したがって、今回のモデルは尿中タンパク質排泄量増加を伴う、軽度な慢性腎不全のモデルと考えられた。【００７０】
図７に尿中エキソゾームに含まれるアクアポリン２タンパク質排泄量についての結果を示す。図６から分かるように、ピューロマイシンアミノヌクレオシド投与後５日目に、尿中エキソゾームに含まれるアクアポリン２タンパク質排泄量のわずかな減少が見られたが、他の時点では、有意な変化は見られなかった。以上から、尿中エキソゾームに含まれるアクアポリン２タンパク質排泄量は、尿中タンパク質排泄量増加を伴う軽度な慢性腎不全の診断マーカーになり得るものの、急性腎不全に対してより特異的にマーカーとして用いることができることが示された。【００７１】
（４）結論
上記の結果から、尿中エキソゾームに含まれるアクアポリン２タンパク質排泄量が、虚血性または薬剤性腎不全の有用な診断マーカーになると考えられた。とくに、薬剤性腎不全、その中でもシスプラチン投与に起因する薬剤性腎不全に対しての早期診断マーカーとして有用であることが示された。
【産業上利用可能性】
【００７２】
本発明は、急性腎不全の新規な診断方法に関する。したがって、本発明は、医療・健康科学分野での利用可能性を有する。
【００７３】
本発明によれば、急性腎不全を、非侵襲的に、感度よく、安定して診断するための方法が提供される。
【００７４】
本明細書で引用した全ての刊行物、特許及び特許出願をそのまま参考として本明細書に取り入れるものとする。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【配列表】
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【手続補正書】
【提出日】平成22年12月28日(2010.12.28)
【手続補正１】
【補正対象書類名】特許請求の範囲
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
以下のステップ：
被験体の尿中のアクアポリン２の量を測定するステップ、及び
被験体の尿中のアクアポリン２の量を、対照の尿中のアクアポリン２の量と比較するステップ
を含み、被験体の尿中のアクアポリン２の量が、対照の尿中のアクアポリン２の量と比較して有意に少ないときに、被験体が急性腎不全に罹患している、又は対照と比較してより重度の急性腎不全であることが示される、急性腎不全の診断方法。
【請求項２】
（削除）
【請求項３】
アクアポリン２の量の測定に用いる尿サンプルが、尿から得られたエキソゾーム画分である、請求項１に記載の方法。
【請求項４】
被験体がヒトである、請求項１又は３に記載の方法。
【請求項５】
急性腎不全が薬剤により引き起こされたものである、請求項１，３及び４のいずれか１項に記載の方法。
【請求項６】
アクアポリン２の測定が、アクアポリン２に特異的に結合する抗体を用いた免疫学的測定法により行われる、請求項１及び３から５のいずれか１項に記載の方法。
【請求項７】
アクアポリン２に特異的に結合し得る抗体を含有する、請求項１に記載の方法において用いるための急性腎不全の診断薬であって、被験体の尿中のアクアポリン２の量が、対照の尿中のアクアポリン２の量と比較して有意に少ないときに、被験体が急性腎不全に罹患している、又は対照と比較してより重度の急性腎不全であることを示すラベルを備えた、上記診断薬。
【請求項８】
アクアポリン２に特異的に結合し得る抗体を含有する、請求項１に記載の方法において用いるための急性腎不全の診断用キットであって、被験体の尿中のアクアポリン２の量が、対照の尿中のアクアポリン２の量と比較して有意に少ないときに、被験体が急性腎不全に罹患している、又は対照と比較してより重度の急性腎不全であることを示す使用説明書を備えた、上記キット。
【国際調査報告】
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