(57)【要約】  高コレステロール食を摂餌した非ヒト動物の動脈の内皮の一部を傷害する工程と、当該非ヒト動物にアンギオテンシンIIを持続投与する工程とによって得られる非ヒトモデル動物は、プラークびらんに起因する血栓症を発症する。当該非ヒトモデル動物における血栓症は、血管内腔を閉塞する閉塞性である。また、当該非ヒトモデル動物における血栓症は、血小板血栓及びフィブリン血栓の少なくとも一方が血管内腔に形成される病態を示す。
2013183725.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
プラークびらんに起因する血栓症を発症する、
非ヒトモデル動物。
【請求項２】
前記血栓症は、
血管内腔を閉塞する閉塞性である、
ことを特徴とする請求項１に記載の非ヒトモデル動物。
【請求項３】
前記血栓症は、
血小板血栓及びフィブリン血栓の少なくとも一方が血管内腔に形成される、
ことを特徴とする請求項１又は２に記載の非ヒトモデル動物。
【請求項４】
前記非ヒトモデル動物は、
ウサギである、
ことを特徴とする請求項１乃至３のいずれか一項に記載の非ヒトモデル動物。
【請求項５】
高コレステロール食を摂餌した非ヒト動物の動脈の内皮の一部を傷害する工程と、
前記非ヒト動物に昇圧剤を持続投与する工程と、
を含む、
プラークびらんに起因する血栓症を発症する非ヒトモデル動物の作製方法。
【請求項６】
前記昇圧剤は、
アンギオテンシンIIである、
ことを特徴とする請求項５に記載の非ヒトモデル動物の作製方法。
【請求項７】
前記非ヒト動物は、
ウサギである、
ことを特徴とする請求項５又は６に記載の非ヒトモデル動物の作製方法。
【請求項８】
請求項１乃至４のいずれか一項に記載の非ヒトモデル動物を用いる、
抗血栓症薬のスクリーニング方法。
【請求項９】
前記非ヒトモデル動物に被験物質を投与する工程と、
前記被験物質を投与された前記非ヒトモデル動物と前記被験物質を投与されなかった前記非ヒトモデル動物との間で、血栓症に関連するマーカーを比較する工程と、
を含む、
ことを特徴とする請求項８に記載の抗血栓症薬のスクリーニング方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、非ヒトモデル動物、非ヒトモデル動物の作製方法及び抗血栓薬のスクリーニング方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
日本では、心筋梗塞、脳卒中、末梢動脈疾患等の動脈硬化性疾患の罹患率が増加している。これらの疾患の多くは、動脈硬化巣（プラーク）を素地とした血栓症により発症し、患者の生活の質の低下をもたらし、死因及び寝たきりの主たる原因となっている。【０００３】
動脈硬化性疾患の中でも、急性心筋梗塞症は、患者の生命予後を脅かす最も重篤な疾患である。世界中で年間７００万人が急性心筋梗塞症を含む冠動脈疾患で死亡しており、死因の第１位である（非特許文献１参照）。急性心筋梗塞症の超急性期（発症６−８時間以内）に対する再灌流法の普及及び内科的治療（β遮断薬、ＡＣＥ阻害剤、スタチン等）の標準化により、急性心筋梗塞症の急性期（発症１ヶ月以内）の生命予後は改善している。【０００４】
急性心筋梗塞症を発症した後の生存者が増加する一方で、急性心筋梗塞症を発症した後の心不全等に対する慢性期診療体制の整備が必要となっている。例えば、長期間でみたときの急性心筋梗塞症による死亡率は依然として高いままであり、現行の医療で最善を尽くしても急性心筋梗塞症の患者の長期予後は改善されないという問題がある。急性心筋梗塞症は、冠動脈の不安定プラークに形成される閉塞性血栓に起因することが知られており（非特許文献２参照）、急性心筋梗塞症の発生機序をさらに解明することは、適切な診断、予防又は治療等の対策となりうる。【０００５】
ここに、不安定プラークは、プラークの破綻及びプラークびらんの２つのタイプに分類される。プラークの破綻は、薄い線維性被膜、強い炎症細胞の浸潤、脂質コアを特徴とする。プラークの破綻では、線維性被膜の破綻が血管内膜の剥離、血管内膜下のコラーゲンや組織因子による血中の凝固因子の活性化及び血小板凝集を惹起し、閉塞性血栓が形成されると考えられている（非特許文献３参照）。また、プラークびらんは、血管内膜の剥離を特徴とする。プラークびらんの病理学的特徴は、線維性被膜の破綻がない、新生内膜が主に平滑筋細胞やプロテオグリカンによって形成されている、炎症細胞の浸潤が上記プラークの破綻に比べて少ない等の点でプラークの破綻と相異する（非特許文献４参照）。【０００６】
病態の発生機序を解明する方法として動物モデルを使用する方法がある。最近、ＡｐｏＥ欠損マウス等の高コレステロール血症マウスの腕頭動脈において、血栓は形成されないものの、薄い線維性被膜、炎症細胞の浸潤、脂質コア等のヒトの不安定プラーク及びその破綻に類似した病理像が得られたことが報告された（非特許文献５参照）。また、高コレステロール食を負荷したウサギの大動脈をバルーンカテーテルによって傷害し、自己赤血球を投与すると脂質コアと炎症が惹起され、不安定プラークが生じるとする報告もある（非特許文献６参照）。また、血栓が形成されるモデル動物として、Ｎｉｅｍａｎｎ−Ｐｉｃｋ  Ｃ１及びＡｐｏＥの双方を欠損したマウスが知られている。このマウスでは、大動脈弁付近の上行大動脈に中膜の変性及び破壊と外膜の炎症とを伴う非閉塞性血栓が形成されることが報告されている（非特許文献７参照）。さらに、機械的刺激や薬物負荷によって急性血栓が誘発される動物モデルも報告されている（特許文献１及び非特許文献８参照）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００７】
【特許文献１】特表２００９−５００２９９号公報
【非特許文献】
【０００８】
【非特許文献１】Ｄｅｒｅｋ  Ｍ  ｅｔ  ａｌ．Ｍｙｏｃａｒｄｉａｌ  ｒｅｐｅｒｆｕｓｉｏｎ  ｉｎｊｕｒｙ，Ｎ  Ｅｎｇｌ  Ｊ  Ｍｅｄ，２００７，３５７，１１２１−１１３５
【非特許文献２】Ｖｉｒｍａｎｉ  Ｒ  ｅｔ  ａｌ．Ｐａｔｈｏｌｏｇｙ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｖｕｌｎｅｒａｂｌｅ  ｐｌａｑｕｅ，Ｊ  Ａｍ  Ｃｏｌｌ  Ｃａｒｄｉｏｌ，２００６，４７，１３−１８
【非特許文献３】Ｓｔｅｆｆｅｌ  Ｊ  ｅｔ  ａｌ．Ｔｉｓｓｕｅ  ｆａｃｔｏｒ  ｉｎ  ｃａｒｄｉｏｖａｓｃｕｌａｒ  ｄｉｓｅａｓｅｓ：  ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ  ａｎｄ  ｃｌｉｎｉｃａｌ  ｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ，Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｏｎ，２００６，１１３，７２２−７３１
【非特許文献４】Ａｒｂｕｓｔｉｎｉ  Ｅ  ｅｔ  ａｌ．Ｐｌａｑｕｅ  ｅｒｏｓｉｏｎ  ｉｓ  ａ  ｍａｊｏｒ  ｓｕｂｓｔｒａｔｅ  ｆｏｒ  ｃｏｒｏｎａｒｙ  ｔｈｒｏｍｂｏｓｉｓ  ｉｎ  ａｃｕｔｅ  ｍｙｏｃａｒｄｉａｌ  ｉｎｆａｒｃｔｉｏｎ，Ｈｅａｒｔ，１９９９，８２，２６９−２７２
【非特許文献５】Ｒｏｓｅｎｆｅｌｄ  ＭＥ  ｅｔ  ａｌ．Ａｄｖａｎｃｅｄ  ａｔｈｅｒｏｓｃｌｅｒｏｔｉｃ  ｌｅｓｉｏｎｓ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｉｎｎｏｍｉｎａｔｅ  ａｒｔｅｒｙ  ｏｆ  ｔｈｅ  ＡｐｏＥ  ｋｎｏｃｋｏｕｔ  ｍｏｕｓｅ，Ａｒｔｅｒｉｏｓｃｌｅｒ  Ｔｈｒｏｍｂ  Ｖａｓｃ  Ｂｉｏｌ，２０００，２０，２５８７−２５９２
【非特許文献６】Ｋｏｌｏｄｇｉｅ  ＦＤ  ｅｔ  ａｌ．Ｉｎｔｒａｐｌａｑｕｅ  Ｈｅｍｏｒｒｈａｇｅ  ａｎｄ  Ｐｒｏｇｒｅｓｓｉｏｎ  ｏｆ  Ｃｏｒｏｎａｒｙ  Ａｔｈｅｒｏｍａ，Ｎ  Ｅｎｇｌ  Ｊ  Ｍｅｄ，２００３，３４９，２３１６−２３２５
【非特許文献７】Ｗｅｌｃｈ  ＣＬ  ｅｔ  ａｌ．Ｓｐｏｎｔａｎｅｏｕｓ  ａｔｈｅｒｏｔｈｒｏｍｂｏｓｉｓ  ａｎｄ  ｍｅｄｉｃａｌ  ｄｅｇｒａｄａｔｉｏｎ  ｉｎ  Ａｐｏｅ−／−，  Ｎｐｃ１−／−  ｍｉｃｅ，Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｏｎ，２００７，１１６，２４４４−２４５２
【非特許文献８】Ｙａｍａｓｈｉｔａ  Ａ  ｅｔ  ａｌ．Ｉｎｃｒｅａｓｅｄ  ｖａｓｃｕｌａｒ  ｗａｌｌ  ｔｈｒｏｍｂｏｇｅｎｉｃｉｔｙ  ｃｏｍｂｉｎｅｄ  ｗｉｔｈ  ｒｅｄｕｃｅｄ  ｂｌｏｏｄ  ｆｌｏｗ  ｐｒｏｍｏｔｅｓ  ｏｃｃｌｕｓｉｖｅ  ｔｈｒｏｍｂｕｓ  ｆｏｒｍａｔｉｏｎ  ｉｎ  ｒａｂｂｉｔ  ｆｅｍｏｒａｌ  ａｒｔｅｒｙ，Ａｒｔｅｒｉｏｓｃｌｅｒ  Ｔｈｒｏｍｂ  Ｖａｓｃ  Ｂｉｏｌ，２００４，２４，２４２０−２４２４
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
しかしながら、不安定プラークの表面に血栓が形成されるモデル動物は未だ存在しない。不安定プラークのうち、プラークびらんは、急性心筋梗塞患者の２０〜２５％、心臓突然死患者の３０〜３５％の責任病変であるとされている。このため、プラークびらんに起因する血栓の形成機序の解明に有用な非ヒトモデル動物が臨床的にも求められている。【００１０】
本発明は、上記実情に鑑みてなされたものであり、プラークびらんに起因する血栓症のモデルとして有用な非ヒトモデル動物、当該非ヒトモデル動物の作製方法及び抗血栓薬のスクリーニング方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１１】
本発明の第１の観点に係る非ヒトモデル動物は、
プラークびらんに起因する血栓症を発症する。【００１２】
この場合、前記血栓症は、
血管内腔を閉塞する閉塞性である、
こととしてもよい。【００１３】
また、前記血栓症は、
血小板血栓及びフィブリン血栓の少なくとも一方が血管内腔に形成される、
こととしてもよい。【００１４】
また、上記非ヒトモデル動物は、
ウサギである、
こととしてもよい。【００１５】
本発明の第２の観点に係るプラークびらんに起因する血栓症を発症する非ヒトモデル動物の作製方法は、
高コレステロール食を摂餌した非ヒト動物の動脈の内皮の一部を傷害する工程と、
前記非ヒト動物に昇圧剤を持続投与する工程と、
を含む。【００１６】
この場合、前記昇圧剤は、
アンギオテンシンIIである、
こととしてもよい。【００１７】
また、上記非ヒト動物は、
ウサギである、
こととしてもよい。【００１８】
本発明の第３の観点に係る抗血栓薬のスクリーニング方法は、
上記本発明の第１の観点に係る非ヒトモデル動物を用いる。【００１９】
この場合、抗血栓症薬のスクリーニング方法は、
前記非ヒトモデル動物に被験物質を投与する工程と、
前記被験物質を投与された前記非ヒトモデル動物と前記被験物質を投与されなかった前記非ヒトモデル動物との間で、血栓症に関連するマーカーを比較する工程と、
を含む、
こととしてもよい。
【発明の効果】
【００２０】
本発明によれば、プラークびらんに特徴的な病変を呈する血栓が非ヒト動物に形成される。このため、プラークびらんに起因する血栓症のモデルとして有用な非ヒトモデル動物が得られる。
【図面の簡単な説明】
【００２１】
【図１】実施例１におけるウサギの血管造影画像を示す図（その１）である。
【図２】図１に示すウサギから採取した血管サンプルを示す図である。
【図３】図２に示す血管サンプルの組織染色の結果を示す図である。
【図４】実施例１におけるウサギの血管造影画像を示す図（その２）である。
【図５】図４に示すウサギから採取した血管サンプルを示す図である。
【図６】図５に示す血管サンプルの組織染色の結果を示す図である。
【図７】実施例２におけるウサギの大腿動脈における血栓性閉塞の発生率を示す図である。
【図８】実施例３におけるウサギに対する体表管エコーの画像を示す図である。
【図９】図８に示すウサギの血管造影画像を示す図である。
【図１０】図９に示すウサギから採取した血管サンプルの組織染色の結果を示す図である。
【図１１】実施例４において、閉塞が発生せずに生存したウサギの割合の経時変化を示す図である。
【図１２】実施例４におけるアンギオテンシンII投与群とアンギオテンシンII非投与群のウサギの血管の組織染色の結果を示す図である。
【図１３】実施例４におけるアンギオテンシンII投与群のウサギの大腿動脈の組織染色の結果を示す図である。
【図１４】図１３の大腿動脈に対する各種マーカーに関する免疫組織化学解析の結果を示す図である。
【図１５】閉塞のある動脈及び閉塞のない動脈に対する免疫組織化学解析の結果を示す図である。
【図１６】閉塞部位における平滑筋細胞の分化マーカーに関する免疫組織化学解析の結果を示す図である。
【図１７】実施例５において、閉塞が発生せずに生存したウサギの割合の経時変化を示す図である。
【図１８】実施例５における薬物投与群と薬物非投与群のウサギの血管の組織染色の結果を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００２２】
本発明の実施の形態に係る非ヒトモデル動物は、プラークびらんに起因する血栓症を発症する。プラークとは、動脈における肥厚し硬化した部位、いわゆる動脈硬化巣に存在する内膜の斑状肥厚性病変である。プラークは、中心に粥腫を含み、線維性被膜によって被覆されている。プラークは、その内部にコレステロールエステルからなる脂質コアを有することが多い。プラークを覆う線維性被膜が、脂質コアに達しない傷害によって破綻する病変を、プラークびらんという。プラークびらんには、明らかな脂質コアや薄い線維性被膜がほとんどなく、炎症細胞の浸潤が乏しい。また、プラークびらんは、平滑筋細胞とプロテオグリカンに富むプラークに多く認められる。これに対し、プラークの破綻には、明らかな脂質コア、炎症細胞の浸潤が強い、薄い線維性被膜がある、線維性被膜内の平滑筋細胞が少ない等の特徴がある。
【００２３】
血栓症は、血管内腔に血栓が形成される病態であるが、広くは、形成された血栓に関連する病態をも含む。血栓に関連する病態は、例えば、血栓が形成されたことによる虚血や梗塞、動脈硬化、心筋梗塞、狭心症、脳血栓等である。
【００２４】
本実施の形態に係る非ヒトモデル動物における血栓症は、血管内腔を閉塞する閉塞性であってもよい。閉塞性の血栓症の場合、例えば、上記非ヒトモデル動物の血管内腔の面積の７５％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上が血栓で占められている。血管内腔の面積に占める血栓の割合は、体表管エコーにより得られる血管切断面の画像に基づいて算出することもできる。また、血管サンプルの病理学的解析により、血管内腔の面積に占める血栓の割合を把握することもできる。
【００２５】
本実施の形態に係る非ヒトモデル動物における血栓症は、血小板血栓及びフィブリン血栓の少なくとも一方が血管内腔に形成される。血小板血栓は、白色血栓ともいい、その形成機序に血小板が大きく関与している。フィブリン血栓は、赤色血栓ともいい、主に血液凝固反応によって形成される。ヒトにおける閉塞性血栓症では、血小板血栓が最初に生じて、引き続き、フィブリン血栓によって血管が閉塞されることが知られている。下記実施例において、上記非ヒトモデル動物における血栓症では、血小板血栓が生じた後にフィブリン血栓によって血管が閉塞されることが示唆されている。このため、上記非ヒトモデル動物は、ヒトにおける閉塞性血栓症の経緯を再現している点で、ヒトで自然発生する閉塞性血栓症のモデルとしても有用である。
【００２６】
次に、本実施の形態に係る非ヒトモデル動物の作製方法を説明する。上記非ヒトモデル動物の作製方法は、高コレステロール食を摂餌した非ヒト動物の動脈の内皮の一部を傷害する工程と、当該非ヒト動物に昇圧剤を持続投与する工程とを含む。
【００２７】
非ヒト動物は、ヒトを除く動物であれば特に限定されず、実験動物として用いられる哺乳類動物、鳥類等を用いてもよい。例えば、非ヒト動物として、マウス、ラット、ハムスター、ウサギ、イヌ、ブタ、サル、ニワトリ等を用いることができる。ヒトにおけるプラークびらんに起因する血栓症により近い病態を再現するために、ゲノムがヒトに近いサル等を非ヒト動物として用いるのが好ましい。また、脂質代謝系及び凝固線溶系がヒトに近い非ヒト動物を用いるのがより好ましい。脂質代謝系及び凝固線溶系がヒトに近い非ヒト動物は、例えば、ウサギである。ウサギは、飼育が比較的容易であるという点で非ヒト動物として適している。ウサギの種類は、特に限定されないが、例えば、日本白色種ウサギが挙げられる。
【００２８】
非ヒト動物としてマウス、ラット、ハムスター等を用いる場合は、凝固線溶系において凝固系が線溶系に対して相対的に強くなるように、例えば、凝固系に関連する因子の機能を強めたり、線溶系に関連する因子の機能を弱めたりしたマウス、ラット、ハムスター等を用いればよい。例えば、凝固系に関連する因子の機能を強めるためには、凝固系に関連する因子の遺伝子の発現量が増加するようにした遺伝子改変動物を用いることができる。凝固系に関連する因子の遺伝子は、凝固系を促進するフィブリン、フィブリノーゲン、プロトロンビン、トロンビン、トロンボプラスチン、第VI因子、第VII因子、第VIII因子、第IX因子、第X因子、第XI因子、第XII因子、第XIII因子の凝固因子等の遺伝子である。このような遺伝子改変動物は、遺伝子ノックイン等の公知の遺伝子操作技術によって、あらかじめ作製することができる。このとき、単一の凝固因子等の遺伝子の発現量が増加するようにしてもよいが、複数の凝固因子等の遺伝子の発現量が増加するようにすれば、凝固系が線溶系に対して相対的により強くすることができる。
【００２９】
線溶系に関連する因子の機能を弱めるためには、例えば、線溶系に関連する因子の遺伝子を欠損した、又は線溶系に関連する因子の遺伝子の発現量が低下するようにした遺伝子改変動物を用いることができる。線溶系に関連する因子の遺伝子は、プラスミン、プラスミノゲン、組織型プラスミノゲン活性化因子（ｔ‐ＰＡ）及びウロキナーゼ（ｕ‐ＰＡ）等の遺伝子である。このような遺伝子改変動物は、遺伝子ノックアウト等の公知の遺伝子操作技術によって、作製することができる。なお、線溶系に関連する因子の遺伝子の発現量を低下させるために、ｓｉＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ、アンチセンス核酸等を用いてもよい。また、線溶系に関連する因子の機能を弱めるために、線溶系に関連する因子の機能を阻害する阻害剤、抗体、ＤＮＡアプタマー又はＲＮＡアプタマー等をマウス、ラット、ハムスター等に投与してもよい。
【００３０】
次に、高コレステロール食を摂餌した非ヒト動物の動脈の内皮の一部を傷害する工程について説明する。高コレステロール食は、例えば、用いる非ヒト動物に対する一般的な飼料に、コレステロールを更に添加した飼料である。高コレステロール食のコレステロール含有量は、０．５〜４％、好ましくは１〜３％、より好ましくは１．５％〜２．５％である。
【００３１】
高コレステロール食を非ヒト動物に摂餌させる期間は、特に限定されず、例えば、使用する非ヒト動物の種類、又は高コレステロール食のコレステロール含有量に応じて、適宜選択することができる。例えば、非ヒト動物としてウサギを用いる場合には、コレステロール含有量が好ましくは０．５〜４％、好ましくは１〜３％、より好ましくは１．５％〜２．５％の高コレステロール食を１〜１０週間摂餌させることが好ましく、２〜８週間摂餌させることがより好ましい。高コレステロール食を非ヒト動物に摂餌させることによって、当該非ヒト動物における血液中の総コレステロールの値が１００〜１０００ｍｇ／ｄｌになることが好ましく、３００〜８００ｍｇ／ｄｌになることがより好ましい。なお、当該非ヒト動物における血液中の総コレステロールの値は、１０００ｍｇ／ｄｌ以上になってもよい。
【００３２】
内皮を傷害する動脈の種類は特に限定されない。動脈の種類は、例えば、大動脈、心房動脈、肝動脈、下行動脈等である。ウサギ等の比較的大きな動物では、四肢の動脈等でもよい。より具体的には、大腿動脈末端から総腸骨動脈起始部までの内皮を傷害してもよい。
【００３３】
内皮の傷害は、種々の方法で実施することができる。例えば、内皮を傷害する動脈の部位にバルーンカテーテルを挿入し、バルーンカテーテルに加圧することで内皮を傷害することができる。このとき、バルーンカテーテルの大きさは、傷害する部位の大きさを考慮して、適宜決定すればよい。バルーンカテーテルへの加圧は、用いるバルーンカテーテルの仕様にもよるが、例えば、１〜４ａｔｍ、より好ましくは、１〜２ａｔｍである。
【００３４】
この他、内皮の傷害は、動脈の内皮に対して一定の物理的な負荷を加える手段を適宜選択できる。例えば、縫合糸を用いて動脈を結搾する方法等がある。
【００３５】
次に、上記非ヒト動物に昇圧剤を持続投与する工程について説明する。昇圧剤は、血圧を上昇させる作用を有する限り、化合物、抗体、ペプチド、ＤＮＡアプタマー、ＲＮＡアプタマー、ｓｉＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ、アンチセンス核酸等のいずれでもよい。具体的には、例えば、昇圧剤としては、ノルエピネフリン、ドブタミン等が好ましく、アンギオテンシンIIがより好ましい。アンギオテンシンIIは、昇圧作用を有するポリペプチドである。昇圧剤を持続投与する方法は、特に限定されない。例えば、昇圧剤としてアンギオテンシンIIを用いる場合、アンギオテンシンII溶液を充填した浸透圧ポンプを、上記非ヒト動物の皮下に埋め込むことでアンギオテンシンIIを持続投与することができる。持続投与するアンギオテンシンIIの濃度は、用いる非ヒト動物の種類に応じて、適宜決定される。例えば、非ヒト動物としてウサギを用いた場合、アンギオテンシンIIを毎分１０〜１００ｎｇ／ｋｇ、好ましくは毎分３０〜７０ｎｇ／ｋｇ、より好ましくは毎分４０〜６０ｎｇ／ｋｇ、特に好ましくは毎分４５〜５５ｎｇ／ｋｇで投与すればよい。
【００３６】
なお、上記非ヒト動物の静脈等にアンギオテンシンII溶液を定期的に静脈等に注射することにより、アンギオテンシンIIを持続投与してもよい。
【００３７】
次に、上記非ヒトモデル動物の使用方法を説明する。例えば、上記非ヒトモデル動物を用いて、抗血栓症薬のスクリーニングが可能である。例えば、当該抗血栓症薬のスクリーニング方法は、上記非ヒトモデル動物に被験物質を投与する工程と、被験物質を投与された上記非ヒトモデル動物と被験物質を投与されなかった上記非ヒトモデル動物との間で、血栓症に関連するマーカーを比較する工程とを含む。
【００３８】
上記非ヒトモデル動物への被験物質の投与では、化合物、抗体、ペプチド、ＤＮＡアプタマー、ＲＮＡアプタマー、ｓｉＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ、アンチセンス核酸等の被験物質を、上記非ヒトモデル動物に投与する。投与の方法は、特に限定されないが、被験物質に適切な方法を選択するのが好ましい。例えば、被験物質が化合物の場合には、経口投与であってもよいし、腹腔内投与であってもよい。また、被験物質が抗体、ペプチド、ＤＮＡアプタマー、ＲＮＡアプタマー、ｓｉＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ、アンチセンス核酸等の場合は、静脈注射、皮下注射等であってもよい。被験物質の投与は、単回でもよいし、複数回であってもよい。被験物質の濃度は、被験物質の種類によって適宜決定すればよい。また、被験物質の濃度を数段階希釈した複数の濃度の被験物質を投与してもよい。
【００３９】
血栓症に関連するマーカーは、例えば、血管内腔に形成された血栓の有無であってもよいし、形成された血栓の大きさ等の値であってもよい。血栓の有無は、血管造影、体表管エコー、組織染色等の病理学的解析等を用いて判断できる。また、血栓の大きさ等の値は、血管造影、体表管エコー、組織染色等の病理学的解析において、画像内の血栓に相当する領域の大きさ等から算出できる。この他、血栓症に関連するマーカーは、組織中酸素分圧から得られる組織中酸素飽和度、第X因子等の凝固系に関連する因子の活性、プラスミン等の線溶系に関連する因子の活性等であってもよい。
【００４０】
この他、上記非ヒトモデル動物の使用方法としては、血栓症、特にプラークびらんに起因する血栓症の病態観察、血栓症の診断用の各種マーカーの探索等が挙げられる。なお、上記抗血栓症薬は、血栓症を治療する薬剤、血栓症を予防する薬剤等を含む。
【００４１】
以上詳細に説明したように、本実施の形態に係る非ヒトモデル動物では、下記実施例に示すように、明らかな脂質コアや薄い線維性被膜の所見がなく、血小板血栓が生じて、それに続いてフィブリン血栓が形成される。このように、上記非ヒトモデル動物は、プラークびらんに特徴的な病変を呈する血栓症を発症しており、プラークびらんにおける血栓の形成機序を再現する。このため、本実施の形態に係る非ヒトモデル動物は、プラークびらんに起因する血栓症のモデルとして有用である。
【００４２】
また、本実施の形態に係る非ヒトモデル動物が発症する血栓症は、血管内腔を閉塞する閉塞性であってもよい。冠動脈の不安定プラークに形成される閉塞性血栓症は、動脈硬化性疾患の中でも生命予後を脅かす最も重篤な疾患である急性心筋梗塞症の原因である。このため、本実施の形態に係る非ヒトモデル動物は、急性心筋梗塞症の発症機序の解明、治療薬及び予防薬の探索、予防法の開発に有用である。
【００４３】
また、本実施の形態に係る非ヒトモデル動物が発症する血栓症は、血小板血栓及びフィブリン血栓の少なくとも一方が血管内腔に形成される。これにより、血小板血栓が先行して形成され、フィブリン血栓が続いて形成されるヒトでの閉塞性血栓症と極めて類似した病態を、当該非ヒトモデル動物において再現できる。このため、ヒトでの自然発生に近い閉塞性血栓のモデルが得られる。
【００４４】
また、本実施の形態では、非ヒトモデル動物は、ウサギであってもよいこととした。ウサギは、脂質代謝系及び凝固線溶系がヒトに近いため、遺伝子改変等を加えなくてもプラークびらんに起因する血栓症のモデルが得られる。また、ウサギは、サル等に比べて安価で、かつ飼育が容易なので、被験物質のスクリーニング等に非ヒトモデル動物を利用しやすい。
【００４５】
なお、本実施の形態における非ヒトモデル動物の作製方法によれば、下記実施例に示すように、高い確率で非ヒト動物にプラークびらんに起因する血栓症を発症させることができる。
【００４６】
また、本実施の形態では、昇圧剤としてアンギオテンシンIIを用いるようにした。アンギオテンシンIIは、生体由来の生理活性物質であって生体との適合性が高いため、副作用を回避しつつ、プラークびらんに起因する血栓症を発症させることができる。
【００４７】
また、本実施の形態における非ヒトモデル動物の作製方法では、非ヒト動物は、ウサギであってもよいとした。ウサギは、上述のように脂質代謝系及び凝固線溶系がヒトに近いため、遺伝子改変等を行わずに、プラークびらんに起因する血栓症を発症させることができる。このようにすることで、プラークびらんに起因する血栓症を発症する非ヒトモデル動物を容易に早く確立することができる。
【００４８】
また、本実施の形態における抗血栓薬のスクリーニング方法によれば、プラークびらんに起因する血栓症に対する被験物質の治療効果を確かめられるので、ヒトの血栓症に対して高い治療効果を有する被験物質をより確実に選択することができる。
【実施例】
【００４９】
以下の実施例により、本発明をさらに具体的に説明するが、本発明は実施例によって限定されるものではない。【００５０】
（実施例１：閉塞性血栓症モデルの作製１）
体重２．５〜３．０ｋｇの雄の９匹の日本白色種ウサギに、９２ｇのＬＲＣ４粉末と、２ｇのコレステロールと、６ｇの落花生油とを配合した高コレステロール食（ＬＲＣ４＋２％コレステロール＋６％ピーナッツ油添加飼料、オリエンタル酵母工業株式会社）を８週間に渡って投与した。高コレステロール食の投与開始２週間後に、拡張時の直径が３×１５ｍｍのバルーンカテーテルを用いて、１〜２ａｔｍの加圧によって両側大腿動脈末端から総腸骨動脈起始部に対して内皮傷害を実施した。これと同時にアンギオテンシンIIの投与を開始した。アンギオテンシンII（Ａｎｇｉｏｔｅｎｓｉｎ  II  ｈｕｍａｎ；シグマ‐アルドリッチ社製）は、ウサギ背面皮下に埋め込んだ浸透圧ポンプ（Ａｌｚｅｔ（登録商標）  ｏｓｍｏｔｉｃ  ｍｉｎｉ  ｐｕｍｐ）によって５０ｎｇ／ｋｇ／ｍｉｎの濃度で投与した。アンギオテンシンIIの溶媒には、０．９％生理食塩水を用いた。アンギオテンシンIIの投与は、バルーンカテーテルによる内皮傷害から４週間継続した。
バルーンカテーテルによる内皮傷害の６週間後、ウサギにヘパリンを静脈注射した後にウサギを安楽死させた。安楽死させたウサギの両側腸骨動脈から大腿動脈までの血管サンプルを採取した。血管サンプルを３ｍｍ間隔で輪状に切断し、病理学的解析（ヘナトキシリン‐エオジン染色；ＨＥ染色及びエラスチカ‐ワンギーソン染色；ＥＶＧ染色）を行った。【００５１】
（結果）
安楽死前の血管造影において、実験に用いた９匹のウサギのうち７匹、のべ下肢１８本中９本に大腿動脈の閉塞を認めた。図１は、安楽死前のウサギの血管造影画像の図である。図中の矢印Ａから末端側（矢印Ｂ）に向かって、本来造影される血管が造影されていない。このことから、この部位における血管の閉塞を確認した。【００５２】
図２は、閉塞を有する大腿動脈を輪状に切断した血管サンプルの写真である。図２中の矢印Ａ及び矢印Ｂは、図１中の矢印Ａ及び矢印Ｂにそれぞれ対応する。血管造影によって造影されなかった部位が実際に黒っぽい血栓で閉塞されていることを確認した。【００５３】
図３は、前記切断した血管サンプルに対するＨＥ染色及びＥＶＧ染色の結果を示す。図３では、上から下に向かって中枢端側から末端側の血管の染色画像が配置されている。ＨＥ染色では、鮮明に血管内が赤色に染まった。また、ＥＶＧ染色では、鮮明に血管内が黄色に染まった。これにより、病理所見としてフィブリン血栓による血管閉塞を確認した。このような結果は、大腿動脈の閉塞を認めた７匹のうち２匹において得られた。【００５４】
図４は、図１と異なるウサギの安楽死前の血管造影図である。このウサギにおいても、図中の矢印Ａから末端側（矢印Ｂ）に向かって、血管の一部における閉塞を確認した。図４のウサギから採取した血管サンプルを輪状に切断した写真を図５に示す。図５中の矢印Ａ及び矢印Ｂは、図４中の矢印Ａ及び矢印Ｂにそれぞれ対応する。血管造影によって造影されなかった部位が実際に白っぽい血栓で閉塞されていることを確認した。【００５５】
図６は、前記切断した血管サンプルに対するＨＥ染色及びＥＶＧ染色の結果を示す。ＨＥ染色では、血管内が赤色に染まり、青紫色に染まった領域が散見された。また、ＥＶＧ染色においても、血管内が赤色に染まり、青紫色に染まった領域が散見された。これにより、病理所見として器質化した血小板血栓による血管閉塞を確認した。このような結果は、大腿動脈の閉塞を認めた７匹のうち５匹において得られた。【００５６】
本実験において閉塞した血管の病理所見では、血管壁の新生内膜が著明に肥厚していた。また、炎症細胞の浸潤が新生内膜、中膜に認められた。さらに、外弾性板の変性が認められた。一方、一部に脂質の沈着やコレステロールクリスタルの沈着を認めたが、プラークの破綻の特徴である明らかな脂質コア及び薄い線維性被膜は認められなかった。このことから、本実験で得られたウサギの血管に形成された閉塞性血栓は、プラークの破綻に起因するものではなく、プラークびらんに起因するものであると考えられる。【００５７】
（実施例２：実行可能性試験）
血栓性閉塞の発生率を評価するために、上記実施例１と同様の実験をウサギの匹数ｎ＝８（１６本の大腿動脈を採取）で行った。なお、本実験では、アンギオテンシンIIを投与しない点のみが異なるアンギオテンシンII非投与群（ｎ＝４、８本の大腿動脈を採取）をさらに加えた。【００５８】
（結果）
図７は、ウサギの大腿動脈における血栓性閉塞の発生率を示す。アンギオテンシンII非投与群のウサギでは、血栓性閉塞が発生した大腿動脈はなかった。一方、アンギオテンシンII投与群のウサギでは、３１％の大腿動脈（ｎ＝５）でフィブリン血栓（赤色血栓）と血小板血栓（白色血栓）が混在した新鮮な血栓がみられた。また、アンギオテンシンII投与群のウサギでは、３１％の大腿動脈（ｎ＝５）で器質化した血栓がみられた。すなわち、アンギオテンシンII投与群のウサギでは、６２％の大腿動脈で血栓性閉塞が発生していた。両群の間には、有意な差が認められた（ｐ＝０．００２９）。
この結果から、昇圧剤アンギオテンシンIIを持続投与することで、プラークびらんに起因する血栓性閉塞の発生が促されることが示された。【００５９】
（実施例３：閉塞性血栓症モデルの作製２）
体重２．５〜３．０ｋｇの雄の４匹の日本白色種ウサギに高コレステロール食（ＬＲＣ４＋２％コレステロール＋６％ピーナッツ油添加飼料、オリエンタル酵母工業株式会社）を１０週間に渡って投与した。以下、上記実施例１と同様に、内皮傷害を実施し、アンギオテンシンIIの投与を開始した。アンギオテンシンIIの投与は８週間継続した。なお、アンギオテンシンIIの投与においては、バルーンカテーテルによる内皮傷害から４週間後に浸透圧ポンプを入れ替えた。
バルーンカテーテルによる内皮傷害後より、体表管エコーを用いて大腿動脈における血管の閉塞を週に３回観察した。体表管エコーは、Ｖｉｓｕａｌ  ｓｏｎｉｃｓ社のＶｅｖｏ２１００を使用した。体表管エコーにおけるプローブはＭＳ５５０Ｄで、４０ｍＨｚを条件とした。
また、パルスドップラー法（２５Ｍｈｚ）を用いて大腿動脈末梢側、大腿動脈狭窄部、伏在動脈、膝下動脈の収縮期最高血流速度（ＰＳＶ）及び波形変化を観察した。パルスドップラー法における観察において、血流の消失を認めた場合、０．１ｍｇ／ｍｌの濃度で２ｍｌの硝酸イソソルビドを静脈に注射することによって血管攣縮を抑制した。さらに、最初に観察された血流の消失後２４時間以内に再度、同じ部位において血流の消失を認めた場合、血管閉塞と判断した。血管閉塞を発症したウサギについては、Ｏｘｙｌａｂ  ｐＯ２（登録商標、Ｏｘｆｏｒｄ  Ｏｐｔｒｏｎｉｘ社）を用いて、両下肢の組織中酸素分圧を測定した。さらに血管閉塞を発症したウサギについては、０．１ｍｇ／ｍｌ硝酸イソソルビド添加生理食塩水１００ｍｌ及び固定液（９５％エタノールと５％酢酸）１００ｍｌを１００ｍｍＨｇで還流し、腸骨動脈から大腿動脈までの血管サンプルを採取した。採取した血管サンプルに対して、長軸像の病理学的解析を行った。【００６０】
（結果）
バルーンカテーテルによる内皮傷害後、実験に用いた４匹のウサギ全てについて、７週目までに体表管エコーによる観察において大腿動脈末梢部付近で血管の閉塞を認めた。図８は、体表管エコーにより得られた大腿動脈末梢部付近の血管内腔の画像を示す。画像中の波線で示す動脈において、血管内腔の閉塞を認めた。【００６１】
図９は、体表管エコーにより血管内腔の閉塞を認めたウサギの血管造影図である。図中の矢印Ａから矢印Ｂまでの間に、本来造影される血管が造影されていない。このことから、この部位における血管の閉塞を確認した。【００６２】
図１０は、血管サンプルに対するＨＥ染色及びＥＶＧ染色の結果を示す。ＨＥ染色では、血管内の大部分が赤色に染まったが、青紫色に染まった領域の散在を認めた。また、ＥＶＧ染色では、血管内の大部分が黄色に染まったが、赤色に染まった領域の散在を認めた。病理所見としては、新生内膜の肥厚、散在性の炎症細胞の浸潤を認めた。コレステロールクリスタルの沈着はなく、脂質コア及び薄い線維性被膜は認められなかった。また、外弾性板の変性はほとんど認められなかった。血管の閉塞部分は、中枢端から末梢端まで血栓により閉塞していたが、血栓と血管壁の脂質との連続性は認められなかった。このことから、本実験で得られたウサギの血管に形成された閉塞性血栓は、プラークの破綻に起因するものではなく、プラークびらんに起因するものであると考えられる。【００６３】
上記実施例１及び実施例３において、病理学的解析における病理所見では、いずれの血管サンプルにおいても明らかな脂質コア及び薄い線維性被膜は認められなかった。明らかな脂質コア及び薄い線維性被膜は、プラークの破綻による閉塞性血栓の特徴であって、プラークびらんでは、ほとんどみられない。また、内皮傷害の６週間後にほとんどのウサギにおいて血小板血栓による血管閉塞を確認した。さらに、内皮傷害の７〜８週間後に全てのウサギにおいてフィブリン血栓による血管閉塞を確認した。このように、上記各実施例で得られた非ヒトモデル動物は、ヒトで報告されている閉塞性血栓症のプロセスである血小板血栓が最初に形成され、引き続いてフィブリン血栓が形成される病態を再現している。これらのことは、上記各実施例で得られた非ヒトモデル動物がプラークびらんに起因する血栓症のモデルとして妥当であることを示唆している。【００６４】
（実施例４：アテローム血栓性閉塞の発生率の評価）
アテローム血栓性閉塞の発生について評価するために、上記実施例３と同様の実験をウサギの匹数ｎ＝６で行った。本実験では、アンギオテンシンIIを投与しない点のみが異なるアンギオテンシンII非投与群（ｎ＝５）をさらに加えた。また、バルーンカテーテルによる内皮傷害そのものによる血栓の形成を抑制するために、内皮傷害の前後２週間に渡って、アセチルサリチル酸を２０ｍｇ／日で経口投与した。【００６５】
（結果）
図１１は、閉塞が発生せずに生存したウサギの割合の経時変化を示す。アンギオテンシンII非投与群のウサギでは、１０週間に渡って１匹を除いて閉塞を認めなかった。一方、アンギオテンシンII投与群では、４週目から閉塞を認めるウサギが現れ、９週までにすべてのウサギで閉塞が認められた。【００６６】
図１２は、採取した血管サンプルに対するＨＥ染色の結果を示す。血管内腔が閉塞していないアンギオテンシンII非投与群に対して、アンギオテンシンII投与群では、血管内腔が血栓で閉塞していた。なお、血圧及び心拍数に関して両群に有意な差はなかったため、アテローム血栓性閉塞の形成は、血圧又は心拍数の変化に起因するものではない。
この結果から、昇圧剤アンギオテンシンIIを持続投与することで、アテローム血栓性閉塞を自然発生させることができることが示された。【００６７】
図１３は、アンギオテンシンII投与群から採取したアテローム血栓性閉塞を伴う大腿動脈に対するＨＥ染色及びＥＶＧ染色の結果を示す。血管内には、白色血栓の領域と赤色血栓の領域が観察された。【００６８】
図１４乃至図１６は、上記アテローム血栓性閉塞を伴う大腿動脈に対する免疫組織化学解析の結果を示す。免疫組織化学解析は、ＰＥＣＡＭ−１、α−ｓｍｏｏｔｈ  ｍｕｓｃｌｅ  ａｃｔｉｎ（αＳＭＡ）、Ｒａｂｂｉｔ  ｓｍｏｏｔｈ  ｍｕｓｃｌｅ  ｍｙｏｓｉｎ  ｈｅａｖｙ  ｃｈａｉｎ（ＳＭ１）、ｓｍｏｏｔｈ  ｍｕｓｃｌｅ  ｍｙｏｓｉｎ  ｈｅａｖｙ  ｃｈａｉｎ（ＳＭ２）、Ｒａｂｂｉｔ  ｔｉｓｓｕｅ  ｆａｃｔｏｒ（組織因子）、ｎｏｎｍｕｓｃｌｅ  ｍｙｏｓｉｎ  ｈｅａｖｙ  ｃｈａｉｎ（ＳＭｅｍｂ）、Ｈｕｍａｎ  ｃａｌｐｏｎｉｎ（カルポニン）、及びｒａｂｂｉｔ  ｍａｃｒｏｐｈａｇｅ（ＲＡＭ−１１）について行った。免疫組織化学解析では、固定した腸骨大腿動脈をパラフィンで包埋し、５ｍｍ毎に５μｍの厚さの連続切片サンプルを作製した。サンプルは抗原賦活化のため、クエン酸バッファーで２０分間煮沸し、３％スキムミルクでブロッキングした後、一次抗体を４℃で一晩かけて付着させた。使用した一次抗体は、ＰＥＣＡＭ−１（サンタクルズ社、ｓｃ−１５０６、希釈倍率は１：５０）、αＳＭＡ（シグマ社、Ａ２５４７、希釈倍率は１：１００）、ＳＭ１（ヤマサ醤油社、７６００、希釈倍率は１：１００）、ＳＭ２（ヤマサ醤油社、７６０１、希釈倍率は１：１００）、組織因子（アメリカンダイアグノスティカ社、４５１３、希釈倍率は１：１００）、ＳＭｅｍｂ（ヤマサ醤油社、７６０２、希釈倍率は１：２００）、カルポニン（ダコ社、Ｍ３５５６、希釈倍率は１：５０）、及びＲＡＭ−１１（ダコ社、Ｍ０６３３、希釈倍率は１：１００）である。【００６９】
上記一次抗体に対する陰性対照として、ノーマルマウスＩｇＧ（サンタクルズ社、ｓｃ−２０２５）及びノーマルヒツジＩｇＧ（サンタクルズ社、ｓｃ−２７１７）を使用した。二次抗体としてヒストファインＳＡＢ−ＰＯ（Ｍ）キット（ニチレイバイオサイエンス社、４２４０２２）及びウサギ抗ヒツジＩｇＧ（Ｚｙｍｅｄ（商標）、インビトロジェン社、６１−８６４０）を使用した。なお、発色にはＤＡＢバッファータブレット（メルク社、１０２９２４）を使用した。【００７０】
図１４を参照して、アテローム血栓性閉塞を伴う大腿動脈には、（１）プラークの破綻及び脂質コアはみられず、（２）ＰＥＣＡＭ−１陽性の内皮層はみられず、（３）内膜／血栓の界面に未成熟な平滑筋様の細胞（αＳＭＡ陽性、ＳＭ１陰性、ＳＭ２陰性）が多く存在した。【００７１】
図１５は、閉塞のある動脈及び閉塞のない動脈に対する免疫組織化学解析の結果を比較したものである。αＳＭＡ陽性、ＳＭ１陰性、ＳＭ２陰性の平滑筋様の細胞は、閉塞のある動脈に特異的にみられた。
また、内膜／血栓の界面に見られるαＳＭＡ陽性、ＳＭ１陰性、ＳＭ２陰性の平滑筋様の細胞では、脱分化型平滑筋細胞の分化マーカーであるＳＭｅｍｂ及びカルポニンは発現していなかった（図１６）。
上記のように、内皮層が見られず、血管内膜／血栓の界面にαＳＭＡ陽性、ＳＭ１陰性、ＳＭ２陰性の平滑筋様の細胞が見られるため、当該モデル動物におけるアテローム血栓性閉塞は、プラークびらんに起因して形成されたものであることが示唆された。【００７２】
（実施例５：閉塞性血栓症モデルでの薬効評価）
上記実施例３で作製した閉塞性血栓症モデルを用いて、薬物の抗血栓作用を評価した。上記実施例３と同じ処理を行ったウサギに対して、薬物投与群として内皮傷害の１週前からアセチルサリチル酸を２０ｍｇ／日で経口投与し、内皮傷害時からダビガトランを１０ｍｇ／ｋｇ／日で経口投与した。【００７３】
（結果）
図１７は、閉塞が発生せずに生存したウサギの割合の経時変化を示す。薬物投与群のウサギでは、１０週間に渡って閉塞を認めなかった。一方、薬物非投与群では、３週目から閉塞を認めるウサギが現れ、９週までにすべてのウサギで閉塞が認められ、生存しなかった。両群の間には、有意な差が認められた（ｐ＝０．００３９）。組織染色でも、アセチルサリチル酸とダビガトランの投与によって、アテローム血栓性閉塞の発生が抑制されたことが示された（図１８）。【００７４】
これまで、非ヒトモデル動物として汎用されるマウス、ラット等では、プラークびらんに起因する血栓症を発症する非ヒトモデル動物は、全く得られなかった。上記実施例では、ヒトと脂質代謝系及び凝固線溶系が近いウサギを採用することによって、遺伝子改変等を行わずにプラークびらんに起因する血栓症を発症させることができた。上記実施例で得られたウサギは、遺伝子改変等を加えておらず、内皮傷害をきっかけとして発生するプラークびらん及び閉塞性血栓の病態を再現するため、自然発症に近いプラークびらんに起因する血栓症のモデルとして特に有用である。【００７５】
上記のように、自然発症に近いプラークびらんに起因する血栓症のモデルを用いて、血栓症及びこれに関連する心筋梗塞、脳卒中、末梢動脈疾患等の動脈硬化性疾患の治療又は予防のための薬物のスクリーニングが可能になる。上記モデル動物を用いた薬物のスクリーニングは、当該モデルがプラークびらん及び閉塞性血栓の病態を再現するため、有効性の高い薬物の探索に好適である。【００７６】
本発明は、本発明の広義の精神と範囲を逸脱することなく、様々な実施の形態及び変形が可能とされるものである。また、上述した実施の形態は、本発明を説明するためのものであり、本発明の範囲を限定するものではない。すなわち、本発明の範囲は、実施の形態ではなく、特許請求の範囲によって示される。そして、特許請求の範囲内及びそれと同等の発明の意義の範囲内で施される様々な変形が、本発明の範囲内とみなされる。【００７７】
本出願は、２０１２年６月６日に出願された日本国特許出願特願２０１２−１２９３４０号に基づく。本明細書中に日本国特許出願特願２０１２−１２９３４０号の明細書、特許請求の範囲、図面全体を参照として取り込むものとする。
【産業上の利用可能性】
【００７８】
本発明は、プラークびらんに起因する血栓症の非ヒトモデル動物に好適である。本発明を適用することにより、プラークびらんに起因する血栓症の病態の解明及び血栓症の治療薬等の研究開発が促進される。
【図７】
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【図１１】
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【図１７】
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【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１８】
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【国際調査報告】
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