(57)【要約】  本発明は、エノキタケ子実体をアルコールに浸漬した後に前記アルコールから分離することと、分離した前記エノキタケ子実体を８０℃以上の水に浸漬した後に上澄みを抽出物として得ることと、を備えるエノキタケ抽出物の製造方法等である。
2013172304.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
エノキタケ子実体をアルコールに浸漬した後に前記アルコールから分離することと、
分離した前記エノキタケ子実体を８０℃以上の水に浸漬した後に上澄みを抽出物として得ることと、を備えるエノキタケ抽出物の製造方法。
【請求項２】
前記エノキタケ子実体をアルコールに浸漬する前に、前記エノキタケ子実体を酸性溶液に浸漬しその後に前記酸性溶液から分離することを、備える請求項１に記載のエノキタケ抽出物の製造方法。
【請求項３】
前記酸性溶液はｐＨ１．０〜３．０である請求項２に記載のエノキタケ抽出物の製造方法。
【請求項４】
前記酸性溶液は酢酸溶液である請求項２または３に記載のエノキタケ抽出物の製造方法。
【請求項５】
エノキタケ子実体をアルコールに浸漬した後に前記アルコールから分離し、
分離した前記エノキタケ子実体を８０℃以上の水に浸漬することで抽出されたエノキタケ抽出物。
【請求項６】
請求項５に記載のエノキタケ抽出物を含む食品添加剤。
【発明の詳細な説明】
【関連出願の相互参照】
【０００１】
本願は、日本国特願２０１２−１１２４３８号の優先権を主張し、引用によって本願明細書の記載に組み込まれる。
【技術分野】
【０００２】
本発明は、エノキタケ抽出物の製造方法、エノキタケ抽出物およびエノキタケ抽出物を含む食品添加剤に関する。
【背景技術】
【０００３】
キノコやカビ等の菌類、地衣類等から抽出される抽出物は、粘着性や乳化性を示す低分子タンパク質であるハイドロフォビンを含むことが知られている。このハイドロフォビンを増粘剤、乳化剤、界面活性剤等の各種剤へ利用することが検討されている。
例えば、特許文献１乃至３には、真菌類由来のハイドロフォビンを食品添加剤として使用することが記載されている。【０００４】
特許文献１乃至３には、ハイドロフォビンを得る方法として、真菌からハイドロフォビンをコードする遺伝子を取り出し宿主細胞に導入する遺伝子組み換えの手法によってハイドロフォビンを得ること、及び、真菌の菌糸体からエタノール等でハイドロフォビンを抽出することが記載されている。【０００５】
しかしながら、遺伝子組み換え技術で製造されたハイドロフォビンは、安全性の観点から食品添加剤として食品へ使用することを制限される場合がある。
また、真菌の菌糸体からエタノール等で抽出するという一般的な抽出方法では、抽出量が少なく抽出効率が悪いという問題がある。【０００６】
非特許文献１には、ハイドロフォビンの抽出方法として、ドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）等の薬品で処理することが記載されている。かかる方法によればハイドロフォビンの抽出量は増加する。しかし、かかる抽出方法で抽出されたハイドロフォビンは安全性の観点からみると好ましくない。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００７】
【特許文献１】日本国特開２００８−５０７９５８号公報
【特許文献２】日本国特開２００８−５０７９５９号公報
【特許文献３】日本国特開２０１１−４１５８３号公報
【非特許文献】
【０００８】
【非特許文献１】Interfacial Self-Assembly of Fungal Hydrophobins of the Lichen-Forming Ascomycetes Xanthoria parientina and X. ectaneoides, Fungal Genetics and Biology 30,81-93(2000)
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
本発明は、上記のような点に鑑み、ハイドロフォビンを比較的多く含む安全性の高い抽出物を効率よく得ることができる方法、および安全性の高い抽出物および食品添加剤を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
上記課題を解決すべく、本発明のエノキタケ抽出物の製造方法は、
エノキタケ子実体をアルコールに浸漬した後に前記アルコールから分離することと、
分離した前記エノキタケ子実体を８０℃以上の水に浸漬した後に上澄みを抽出物として得ることと、を備える。【００１１】
本発明は、前記エノキタケ子実体をアルコールに浸漬する前に、前記エノキタケ子実体を酸性溶液に浸漬しその後に前記酸性溶液から分離することを、備えていてもよい。【００１２】
前記酸性溶液はｐＨ１．０〜３．０であってもよい。【００１３】
前記酸性溶液は酢酸溶液であってもよい。【００１４】
本発明のエノキタケ抽出物は、
エノキタケ子実体をアルコールに浸漬した後に前記アルコールから分離し、
分離した前記エノキタケ子実体を８０℃以上の水に浸漬することで抽出される。【００１５】
食品添加剤に係る本発明は、前記エノキタケ抽出物を含む。
【図面の簡単な説明】
【００１６】
【図１】実施例のエノキタケ抽出物の乳化活性を示すグラフ。
【図２】実施例のエノキタケ抽出物の乳化活性を示すグラフ。
【図３】実施例のエノキタケ抽出物のヒドロキシプロピルセルロースに対する結合性を示すＧＰＣクロマトグラフ。
【図４】実施例のエノキタケ抽出物のペクチンに対する結合性を示すＧＰＣクロマトグラフ。
【図５】実施例のエノキタケ抽出物のワキシコーンスターチに対する結合性を示すＧＰＣクロマトグラフ。
【図６】エノキタケ抽出物のタンパク質濃度と各種試料に対する接着性との関係を示すグラフ。
【図７】シャンプーの泡高さを測定した結果を示すグラフ。
【発明を実施するための形態】
【００１７】
本実施形態のエノキタケ抽出物の製造方法は、
エノキタケ子実体をアルコールに浸漬した後に前記アルコールから分離することと、
分離した前記エノキタケ子実体を８０℃以上の水に浸漬した後に上澄みを抽出物として得ることと、を備える。
【００１８】
さらに、必要に応じて、前記エノキタケ子実体をアルコールに浸漬する前に、前記エノキタケ子実体を酸性溶液に浸漬しその後に前記酸性溶液から分離することを、備えていてもよい。
【００１９】
本実施形態で用いる材料としては、エノキタケ（Flammulina velutipes（Curt.:Fr.）Sing）の茎部分と傘部分とからなる子実体の部分が用いられる。
エノキタケは、天然のものあるいは人工栽培したものいずれであってもよく、その産地等も問わない。
【００２０】
尚、本実施形態でいうエノキタケ子実体とは、エノキタケ（Flammulina velutipes（Curt.:Fr.）Sing）の生の子実体、エノキタケ子実体の乾燥体、およびエノキタケ子実体からタンパク質以外の成分を除去する処理を施した処理物を含む。
【００２１】
前記エノキタケ子実体は、凍結乾燥などによる乾燥状態で、あるいはそのまま生の状態で、粉末にして用いることができる。
あるいは、前記エノキタケ子実体から、多糖類等のタンパク質以外の成分を除去する処理を施した処理物を用いてもよい。
【００２２】
菌類の一種であるエノキタケにハイドロフォビンが含まれていることは従来から知られている。エノキタケは安全性の高い材料であるため、エノキタケからハイドロフォビンを抽出することで、安全性の高いハイドロフォビン抽出物が得られる。
【００２３】
〔酸処理工程〕
本実施形態では、前記エノキタケ子実体をアルコールに浸漬する前に、前記エノキタケ子実体を酸性溶液に浸漬した後に前記酸性溶液から分離する酸処理工程を実施してもよい。
尚、酸処理工程の実施は、必須ではない。
【００２４】
前記酸処理工程で使用される酸性溶液としては、例えば、酢酸、クエン酸等の酸の水溶液が挙げられる。
特に、酢酸水溶液を用いることが安全性の面からみて好ましい。
前記酸性溶液のｐＨは、ｐＨ１．０〜３．０、特に好ましくはｐＨ１．０〜２．０程度になるように調整することが好ましい。
前記ｐＨの範囲であれば、効率よくハイドロフォビンを抽出することができる。
【００２５】
酸処理工程では、前記子実体の粉末を前記酸性溶液中に懸濁して、そのまま酸性溶液中に１０分間〜６０分間浸漬させた後に、遠心分離、ろ過、デカンテーション等の公知の分離方法で上澄みと前記エノキタケ子実体である沈殿物とに分離する。
遠心分離によって、前記沈殿物を得る場合には、例えば、８０００×ｇ〜１００００×ｇで、１０分間〜３０分間程度遠心分離することが好ましい。
【００２６】
酸処理工程において、前記エノキタケ子実体を浸漬する前記酸性溶液の量は、例えば、エノキタケ子実体２０ｍｇ（絶乾重量換算）に対して１ｍｌ〜２ｍｌ程度であることが好ましい。
【００２７】
本実施形態の酸処理工程において、前記浸漬と分離とを複数回行なってもよい。すなわち、酸性溶液に浸漬後分離された沈殿物を、さらに酸性溶液中に浸漬して、沈殿物を分離することで不純物の少ない、より多くのハイドロフォビンを含む抽出物が得られる。
【００２８】
〔アルコール処理工程〕
本実施形態では、前記酸処理工程後のエノキタケ子実体をアルコールに浸漬させた後に前記アルコールから分離するアルコール処理工程を実施する。
本実施形態で使用するアルコールとしては、特に限定されるものではないが、例えば、エチルアルコール、メチルアルコール、１−プロパノール等が挙げられる。
中でも、エチルアルコールを使用することが安全性の面から好ましい。
【００２９】
前記酸処理工程で分離されたエノキタケ子実体（沈殿物）を前記アルコール中に懸濁して、そのままアルコール中に浸漬する。この時前記アルコールの温度は、−８０℃〜−１０℃程度の低温であることが、アルコール中へのタンパク質の溶解を抑制する観点から好ましい。
【００３０】
アルコール処理工程において、前記エノキタケ子実体を浸漬する前記アルコールの量は、例えば、エノキタケ子実体２０ｍｇ（絶乾重量換算）に対して１ｍｌ〜２ｍｌ程度であることが好ましい。
【００３１】
前記沈殿物は、前記アルコール溶液中に懸濁後１０分間〜６０分間浸漬させた後に、遠心分離、ろ過、デカンテーション等の公知の分離方法で上澄みとエノキタケ子実体である沈殿物とに分離する。
遠心分離によって、前記沈殿物を得る場合には、例えば、８０００×ｇ〜１００００×ｇで、１０分間〜３０分間程度遠心分離することが好ましい。
【００３２】
本実施形態のアルコール処理工程において、前記浸漬と沈殿物の分離とを複数回行なってもよい。すなわち、アルコールに浸漬後、分離された沈殿物を、さらにアルコール中に懸濁して浸漬し、沈殿物を分離することで不純物が少ない、より多くのハイドロフォビンを含む抽出物が得られる。
【００３３】
本実施形態においては、前記アルコール処理工程の後、沈殿物として得られたエノキタケ子実体中に含まれるアルコール分を除去するため、６０分間〜２４０分間程度の時間、例えば、ドラフトチャンバーのような排気可能な空間に置きアルコールを揮発させてもよい。
【００３４】
〔抽出工程〕
次に、前記アルコール処理工程で分離したエノキタケ子実体（沈殿物）を、８０℃以上の水に浸漬して抽出物を得る抽出工程を実施する。
前記沈殿物を、８０℃以上、好ましくは１００℃の沸騰水中に１０分間〜６０分間、好ましくは２０分間〜４０分間浸漬する。
前記水が８０℃未満、好ましくは３０℃〜４０℃程度になるまで冷却した後、さらに８０００×ｇ〜１００００×ｇ、１０分間〜３０分間、遠心分離等を行った上澄みを、エノキタケ抽出物として得る。
【００３５】
本実施形態の製造方法で得られたエノキタケ抽出物には、ハイドロフォビンが含まれている。
ハイドロフォビンは、ジスルフィド架橋を形成するシステイン残基を含む数１００程度のアミノ酸からなる低分子タンパク質であり、構造的にＳＤＳ可溶性を示すクラスＩＩと、不溶性を示すクラスＩとに分類される。
尚、本実施形態でいう「ハイドロフォビン」は、前記ハイドロフォビン、およびハイドロフォビンに、他のポリペプチド又はポリサッカライド等が融合した融合タンパク質を含むものを指す。
【００３６】
本実施形態で得られるエノキタケ抽出物に含まれるハイドロフォビンはＳＤＳ可溶性を示すクラスＩＩであると考えられている。
前記クラスＩＩのハイドロフォビンは、無機粒子、多糖類、他のタンパク質等に対して結合する結合性及び乳化活性を示すため、食品添加剤、化粧品用添加剤、薬品、接着剤、塗料等各種製品に使用することが考えられる。
【００３７】
本実施形態の製造方法で得られるエノキタケ抽出物は、有害な抽出用の薬品を使用しなくても得られるため、安全性が高い、というメリットがある。
また、本実施形態の製造方法でエノキタケ抽出物を得ることで、抽出される抽出物の量が比較的多く、製造効率がよく、低コストで製造できる、というメリットがある。
【００３８】
本実施形態のエノキタケ抽出物は食品添加剤として利用することができる。
前記エノキタケ抽出物は、例えば、乾燥させた粉末状等の形状や、溶媒中に溶解させた液体状等の形状にして、食品添加剤として製造することができる。
また、必要に応じて、タンパク質や多糖類等の他の成分と混合してもよい。
本実施形態の食品添加剤は、前述のように多糖類や他のタンパク質等に対して結合する結合性及び乳化活性を示すため、増粘性や乳化性を付与する食品添加剤として各種食品に添加することができる。
【００３９】
また、本実施形態のエノキタケ抽出物は、酸化チタン、酸化亜鉛、酸化鉄等の無機粒子表面に付着し、無機粒子の表面特性を変化させうる。
無機粒子表面にエノキタケ抽出物を付着させる方法は特に限定されるものではないが、例えば、無機粒子と、エノキタケ抽出物を含む溶液とを混合することで、エノキタケ抽出物を無機粒子表面に付着させること等が挙げられる。
エノキタケ抽出物が付着した無機粒子は、エノキタケ抽出物によって肌、金属、その他の各種部材の表面への付着性が向上するため、化粧品材料、塗料等の原料として用いることができる。
【００４０】
さらに、本実施形態のエノキタケ抽出物は、界面活性剤等の界面活性作用を向上させうる。
従って、例えば、洗剤、シャンプー、ボディーソープ等の原料として用いることで、洗浄力を向上させることができる。
【００４１】
本発明によれば、ハイドロフォビンを比較的多く含む安全性の高いエノキタケ抽出物を効率よく得ることができる。
【００４２】
すなわち、本発明によれば、エノキタケ子実体をアルコールに浸漬した後に前記アルコールから分離することと、分離した前記エノキタケ子実体を８０℃以上の水に浸漬した後に上澄みを抽出物として得ることと、を備えるため、比較的多くのハイドロフォビンを含む抽出物を有害な薬品を使用しなくても効率よく得ることができる。また、安全性の高いエノキタケ子実体を材料として使用し且つ有害な薬品を使用しなくてもよいため、安全性の高い抽出物を得ることができる。
【００４３】
前記エノキタケ子実体を酸性溶液に浸漬しその後に前記酸性溶液から分離することを、備えることで、より多くのハイドロフォビンを含む抽出物が得られる。
【００４４】
前記酸性溶液が前述のようなｐＨの範囲である場合には、より、多くのハイドロフォビンを含む抽出物が得られる。
【００４５】
前記酸性溶液が酢酸溶液である場合には、安全性が高い酸であるため好ましい。
【００４６】
本発明によれば、安全性が高く、比較的多くのハイドロフォビンを含むエノキタケ抽出物を得ることができる。
【００４７】
さらに、本発明によれば、安全性の高いエノキタケを材料とし且つ有害な薬品を使用しないで得られたハイドロフォビンを含む抽出物を含む、安全性が高い食品添加剤が得られる。
【００４８】
尚、本実施形態にかかるエノキタケ抽出物の製造方法、エノキタケ抽出物および食品添加剤は以上のとおりであるが、今回開示された実施形態はすべての点で例示であって制限的なものではないと考えられるべきである。本発明の範囲は前記説明ではなくて特許請求の範囲によって示され、特許請求の範囲と均等の意味および範囲内でのすべての変更が含まれることが意図される。
【実施例】
【００４９】
以下に、実施例に基づいて本発明をより詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例により何ら限定されるものではない。【００５０】
《抽出物の収量》
（実施例１）
エノキタケの子実体の粉末をヘキサン中に懸濁した後、４℃、１２時間以上放置した懸濁液を濾紙（Ｎｏ．１、ＡＤＶＡＮＴＥＣ社製）で濾過することで得られた固形成分を試料として準備した。
前記試料２ｇを、１０％酢酸溶液２０ｍｌに懸濁させた後に、遠心分離（２５０００×ｇ、４℃、１５分）して沈殿物を得た。かかる沈殿物２．５ｇをさらに１０％酢酸溶液２０ｍｌに懸濁させた後に遠心分離（２５０００×ｇ、４℃、１５分）して沈殿物を得た。
次に、前記沈殿物２．５ｇを、エタノール（−２０℃）２０ｍｌ中に入れ、遠心分離（２５０００×ｇ、１５分間）を２回繰り返して洗浄し、ドラフトチャンバー内で完全にエタノールを揮発させた沈殿物を、１００℃の水の中に３０分間浸漬した後、４０℃になるまで冷却し、混合して、遠心分離（２５０００×ｇ、４℃、１５分）した上澄みをエノキタケ抽出物として得た。【００５１】
（実施例２）
前記実施例１と同様の試料を、酢酸溶液に懸濁させる処理を行なわない以外は、実施例１と同様に処理して得られたエノキタケ抽出物を実施例２とした。【００５２】
（比較例１）
前記実施例１の１０％酢酸溶液を、Ｗａｓｈｉｎｇ  Ｂｕｆｆｅｒ液（０．１Ｍ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ８．０、１０ｍＭ  ＭｇＳＯ４、１ｍＭ  ＰＭＳＦ（フッ化フェニルメチルスルホニル）の超純粋溶液）に５％（質量％）となるようにトリクロロ酢酸を溶解したものに代え、１００℃の水に代えて１００℃のドデシル硫酸ナトリウム水溶液（２質量％）で浸漬した以外は、実施例１と同様の方法で得たエノキタケ抽出液を比較例１とした。【００５３】
（比較例２）
前記実施例１のエタノールによる処理を行わない以外は、実施例１と同様の方法で得たエノキタケ抽出液を比較例２とした。【００５４】
（比較例３）
前記実施例１の１００℃の水による処理を行わない以外は、実施例１と同様の方法で得たエノキタケ抽出液を比較例３とした。【００５５】
（比較例４）
前記実施例１と同様の試料２ｇを１００℃の水の中に３０分間浸漬した後、遠心分離（２５０００×ｇ、４℃、１５分）した上澄みを比較例４のエノキタケ抽出物として得た。【００５６】
前記実施例１、２および比較例１乃至４のエノキタケ抽出液中からタンパク質濃度を以下の方法で測定した。【００５７】
［タンパク質量測定方法］
本実施例においてタンパク質量の測定はＬｏｗｒｙ法に従い測定した。
Ｌｏｗｒｙ法用のキットとしては、ＲＣ  ＤＣプロテインアッセイ（バイオラッド社製）を用いた。
使用試薬は、前記キット中のＤＣプロテインアッセイ試薬のＡ試薬２５０μｌ、同Ｓ試薬５μｌを混合したＡ´試薬を用いた。
前記Ａ´試薬と、実施例１乃至比較例４のエノキタケ抽出液を５０μｌとを、ボルテックスミキサーで１分間混合した後に、さらに前記ＤＣプロテインアッセイ試薬のＢ試薬を２．０ｍｌ添加してボルテックスミキサーで１分間混合した。
この試薬と混合した試料について、分光光度計（Ｕ−２００１  Ｓｐｅｃｔｒｏｐｈｏｔｏｍｅｔｅｒ  日立製作所社製）で７５０ｎｍでの吸光度を測定した。ブランクとして、超純水（Ｍｉｌｌ−Ｑ）を用いた。
標準液としてＢＳＡ（牛血清アルブミン）溶液を用いて検量線を作成し、かかる検量線から実施例１乃至比較例４のタンパク質濃度を算出した。
結果は、以下のとおりであった。【００５８】
実施例１：０．８６        質量％
実施例２：０．３０        質量％
比較例１：１．５０        質量％
比較例２：０．０１８      質量％
比較例３：０．００７９    質量％
比較例４：０．０４６      質量％【００５９】
実施例１、２は、ＳＤＳを用いなくても、比較的多くのタンパク質が抽出されている。特に、実施例１は比較例１と同等程度のタンパク質が抽出されている。
また、比較例２乃至４では、実施例１および２に比べ少量のタンパク質しか抽出されなかった。【００６０】
《乳化活性試験１》
前記実施例１のエノキタケ抽出物の乳化活性を試験した。
乳化活性は、乳化指標（Ｅ２４）を用いた方法で評価を行なった。
まず、前記実施例１で得られたエノキタケ抽出物を、１．００ｍｇ／ｍｌ、０．６３ｍｇ／ｍｌ、０．４２ｍｇ／ｍｌ、０．３１ｍｇ／ｍｌ、０．２１ｍｇ／ｍｌ、０．１６ｍｇ／ｍｌ、０．１３ｍｇ／ｍｌの各濃度になるように超純水で希釈した。
各濃度のエノキタケ抽出物１ｍｌ、ケロシン１ｍｌを、テフロンパッキン付きネジ蓋付き試験管に入れ、ボルテックスミキサーで６０秒間攪拌した。その後、４℃、３０℃、３７℃でそれぞれ２４時間放置後、液面までの全高さと、エマルジョンの高さを測定し、全高さに占めるエマルジョンの高さをＥ２４（乳化活性指標）として算出した。
結果を図１に示す。【００６１】
図１に示すように、実施例１のエノキタケ抽出物はいずれの濃度においてもＥ２４は４０％を超えており、高い乳化活性を示している。【００６２】
《乳化活性試験２》
前記乳化活性試験１のケロシンに代えて、紅花油、米油、コーン油、大豆油、ゴマ油、菜種油、オリーブ油の各油１ｍｌと、前記実施例１で得られたエノキタケ抽出物（濃度０．３１ｍｇ/ｍｌ）１ｍｌとを混合して、前記Ｅ２４を測定した結果を図２に示す。【００６３】
図２に示すように、実施例１のエノキタケ抽出物はいずれの油に対しても、乳化活性を示している。
特に、従来の生物由来系の乳化剤では乳化させにくいオリーブ油に対しても、エノキタケ抽出物は高い乳化活性を示している。【００６４】
《乳化活性試験３》
前記乳化活性試験１のケロシンに代えて、オリーブ油１ｍｌと、前記実施例１で得られたエノキタケ抽出物をタンパク質濃度１７５μｇ/ｍｌになるように希釈したもの１ｍｌとを混合して、前記Ｅ２４を測定した。
エノキタケ抽出物中のタンパク質濃度は前述したタンパク質量の測定方法と同様に測定した。
尚、前記Ｌｏｗｒｙ法で用いたブランクの超純粋（Ｍｉｌｌ−Ｑ）に代えて、希釈に用いた０．３Ｍ  ＮａＣｌを含む２０ｍＭ  ＫＨ２ＰＯ４（ｐＨ７）を用いた。【００６５】
比較として、エノキタケ抽出物に替えて市販の各界面活性剤と、オリーブ油１ｍｌとを混合したものの前記Ｅ２４を同様に測定した。
尚、使用した市販の界面活性剤は以下の３種類である。
［界面活性剤］
界面活性剤１：ポエムＤＬ−１００、理研ビタミン社製  １００μｇ／ｍｌ（ジグリセリンモノラウレート）
界面活性剤２：ポエムＤＰ−１００、理研ビタミン社製  １００μｇ／ｍｌ（グリセリン脂肪酸エステル）
界面活性剤３：ポエムＭ−３００、理研ビタミン社製  １００μｇ／ｍｌ（グリセリン脂肪酸エステル）【００６６】
結果は以下のとおりである。
エノキタケ抽出物：Ｅ２４６２．１％
界面活性剤１：    Ｅ２４０．００％
界面活性剤２：    Ｅ２４０．００％
界面活性剤３：    Ｅ２４０．００％【００６７】
以上のように、エノキタケ抽出物は、市販の界面活性剤では乳化しにくいオリーブ油に対しても高い乳化活性を示している。【００６８】
《多糖類に対する反応性（結合性）試験》
前記実施例１のエノキタケ抽出物の多糖類に対する反応性（結合性）を試験した。
前記実施例１のエノキタケ抽出物（０．１６ｍｇ／ｍｌ）を０．１ｍｌと、多糖類としてヒドロキシプロピルセルロース（ＨＰＣ）、ペクチン、ワキシコーンスターチ（各０．５質量％）をそれぞれ１．０ｍｌとを混合した混合物、エノキタケ抽出物単体、各多糖類単体を、ＧＰＣ装置（ＨＬＣ−８３２０ＧＣＰ（ＲＩ検出器内蔵）、東ソー社製）を用いてＵＶ２８０における分子量のピークを測定した。
使用カラムはＴＳＫｇｅｌＧＭＰＷｘｌ（７．８ｍｍＩ．Ｄ．×３０ｃｍ×２本）を使用し、緩衝液は０．１５ｍＭ  ＮａＣｌと、Ｔｒｉｓ-ＨＣｌとを使用した。流速は１．０ｍｌ／ｍｉｎで測定した。
測定した結果を示すＧＰＣクロマトグラムを図３〜図５に示す。【００６９】
図３〜図５に示すように、いずれのＧＰＣクロマトグラムでも、エノキタケ抽出物単体および多糖類単体と、各多糖類との混合物とでは異なる位置（時間）にピークを示している。
このことから、エノキタケ抽出物は、各多糖類に対する結合性を有しており、各混合物中では多糖類とエノキタケ抽出物との結合体が形成されていることが判る。【００７０】
また、前記乳化活性試験１〜３および多糖類に対する反応性（結合性）試験から、実施例で得られたタンパク質は、乳化活性、および多糖類に対する結合性を示すハイドロフォビンクラスＩＩを含むタンパク質であることが判る。【００７１】
《タンパク質及び無機粒子に対する結合性試験》
以下のような方法で、前記実施例１のエノキタケ抽出物のタンパク質及び無機粒子に対する結合性を試験した。
エノキタケ抽出物との結合性を試験するタンパク質及び無機粒子の試料としては、下記のものを使用した。
［試料］
ケラチン：羊毛、東京化成社製
コラーゲン：ＴｙｐｅＩ、ＳＩＧＭＡ社製
酸化チタン：製造専用品、和光純薬社製
酸化亜鉛：和光純薬社製
酸化第二鉄：和光純薬社製【００７２】
まず、前記実施例１のエノキタケ抽出物中のタンパク質濃度を前述したＬｏｗｒｙ法と同様に測定したところ２０５．２μｇ/ｍｌであった。このエノキタケ抽出物をさらに２、３、４、５倍希釈と５段階の濃度になるようにエノキタケ抽出物を希釈した。
尚、前記Ｌｏｗｒｙ法で用いたブランクの超純粋（Ｍｉｌｌ−Ｑ）に代えて、希釈に用いた０．３Ｍ  ＮａＣｌを含む２０ｍＭ  ＫＨ２ＰＯ４（ｐＨ７）を用いた。【００７３】
次に、前記実施例１のエノキタケ抽出物を１ｍｌと、前記試料用のタンパク質及び無機粒子を含む各試料０．０５ｇとを混合した混合物を、３０℃の恒温室において振盪機（ＮＲ−２、ＴＡＩＴＥＣ社製）で３時間振盪させた。その後、遠心分離機（ＣＦ１６ＲＸ、ＨＩＴＡＣＨＩ社製）を用い１００００×ｇ、１０分間遠心分離し、上澄みを採取した。
採取した上澄み中のタンパク質濃度（Ｂ：単位μｇ／ｍｌ）を前記Ｌｏｗｒｙ法によって測定した。
尚、前記Ｌｏｗｒｙ法で用いたブランクの超純粋（Ｍｉｌｌ−Ｑ）に代えて、希釈に用いた０．３Ｍ  ＮａＣｌを含む２０ｍＭ  ＫＨ２ＰＯ４（ｐＨ７）を用いた。【００７４】
さらに、コントロールとして、エノキタケ抽出物の代わりに、１ｍｌのイオン交換水と各試料０．０５ｇとを混合した混合物を前記と同様の方法で上澄みを採取し、同様にタンパク質濃度（Ｃ：単位μｇ／ｍｌ）を測定した。
さらに、前記実施例１のエノキタケ抽出物１ｍｌを、前記と同様の方法で上澄みを採取し、同様にタンパク質濃度（ｄ：単位μｇ／ｍｌ）を測定した。該エノキタケ抽出物の上澄みのタンパク質濃度（ｄ）とエノキタケ抽出物中のタンパク質濃度（Ａ）との差（Ｄ）を算出した。【００７５】
各測定値及び算出値を以下の算出式にあてはめ、接着率を算出した。
接着率（％）＝［｛Ａ−（Ｃ＋Ｄ）｝−Ｂ］÷｛Ａ−（Ｃ＋Ｄ）｝
【００７６】
前記接着率と、各試料と混合するエノキタケ抽出物の濃度との関係を図６のグラフに示す。
図６に示すように、いずれの試料に対してもエノキタケ抽出物中のたんぱく質は、高い接着率を示した。特に、酸化チタン、酸化亜鉛、酸化鉄に対してはすべての濃度の範囲でも安定して高い接着率を示した。
すなわち、エノキタケ抽出物は、タンパク質及び無機質に対して高い結合性を有していることが明らかである。【００７７】
《界面活性の向上性試験》
前記実施例１のエノキタケ抽出物（タンパク質濃度１００μｇ／ｍｌ）を６．５ｍｌと、市販のシャンプー液（商品名「Ｓｕｐｅｒ  ＭｉＬＤ」、資生堂社製）６．５ｍｌとを、メスシリンダーにいれて２５℃の条件で手動で１分間攪拌し、１０分毎に泡の高さを測定した。
比較として、水６．５ｍｌと、前記シャンプー液とを用いた混合物でも同様に泡の高さを測定した。
泡の高さの測定方法は、メスシリンダーの側方から定規を用いて測定した。
結果を図７のグラフに示す。【００７８】
図７のグラフに示すように、いずれも攪拌時間においても、エノキタケ抽出物と混合した場合、泡の高さは、水と混合するよりも高くなっており、この結果からエノキタケ抽出物はシャンプー液の界面活性作用を向上させることが明らかであった。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【国際調査報告】
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