(57)【要約】  目的の生体器官、組織若しくは部位に存在する細胞のＴＮＦ−Ｒ１とＴＮＦ−Ｒ２の存在バランスを調節する方法を提供する。本発明によって提供される上記調節方法では、（１）目的とする細胞に存在するＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を上昇させるときはＴＮＦ−Ｒ１のシグナルペプチド配列又はその改変アミノ酸配列から実質的に構成される合成ペプチドを該細胞に供給する、また（２）該細胞に存在するＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を低下させるときはＴＮＦ−Ｒ２のシグナルペプチド配列又はその改変アミノ酸配列から実質的に構成される合成ペプチドを該細胞に供給する。
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
生体外において、所定の生体器官、組織若しくは部位に存在する少なくとも１種の１型ＴＮＦ受容体（ＴＮＦ−Ｒ１）及び２型ＴＮＦ受容体（ＴＮＦ−Ｒ２）をいずれも発現可能な細胞の該ＴＮＦ−Ｒ１とＴＮＦ−Ｒ２との存在バランスを調節する方法であって、
（１）該細胞に存在するＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を上昇させるときは、少なくとも１種のＴＮＦ−Ｒ１のシグナルペプチド配列又は該配列中の１個又は数個のアミノ酸残基が置換、欠失及び／又は付加されて形成されたアミノ酸配列から実質的に構成される合成ペプチドを該細胞に供給すること、
（２）該細胞に存在するＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を低下させるときは、少なくとも１種のＴＮＦ−Ｒ２のシグナルペプチド配列又は該配列中の１個又は数個のアミノ酸残基が置換、欠失及び／又は付加されて形成されたアミノ酸配列から実質的に構成される合成ペプチドを該細胞に供給すること、
を特徴とする方法。
【請求項２】
前記合成ペプチドは、総アミノ酸残基数が２５以下である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記ＴＮＦ−Ｒ１のシグナルペプチド配列は、配列番号１〜５のいずれかに示すアミノ酸配列である、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
前記ＴＮＦ−Ｒ２のシグナルペプチド配列は、配列番号６〜８のいずれかに示すアミノ酸配列である、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項５】
前記細胞として神経系を構成する細胞を用いる、請求項１〜４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項６】
少なくとも１種の１型ＴＮＦ受容体（ＴＮＦ−Ｒ１）及び２型ＴＮＦ受容体（ＴＮＦ−Ｒ２）をいずれも発現可能な細胞におけるＴＮＦ−Ｒ２の存在量を増大させる組成物であって、
少なくとも１種のＴＮＦ−Ｒ１のシグナルペプチド配列又は該配列中の１個又は数個のアミノ酸残基が置換、欠失及び／又は付加されて形成されたアミノ酸配列から実質的に構成される合成ペプチドと、
薬学的に許容可能な担体と、
を含む、前記細胞におけるＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を上昇させるための組成物。
【請求項７】
前記ＴＮＦ−Ｒ１のシグナルペプチド配列が配列番号１〜５のいずれかに示すアミノ酸配列である、請求項６に記載の組成物。
【請求項８】
少なくとも１種の１型ＴＮＦ受容体（ＴＮＦ−Ｒ１）及び２型ＴＮＦ受容体（ＴＮＦ−Ｒ２）をいずれも発現可能な細胞におけるＴＮＦ−Ｒ２の存在量を減少させる組成物であって、
少なくとも１種のＴＮＦ−Ｒ２のシグナルペプチド配列又は該配列中の１個又は数個のアミノ酸残基が置換、欠失及び／又は付加されて形成されたアミノ酸配列から実質的に構成される合成ペプチドと、
薬学的に許容可能な担体と、
を含む、前記細胞におけるＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を低下させるための組成物。
【請求項９】
前記ＴＮＦ−Ｒ２のシグナルペプチド配列が配列番号６〜８のいずれかに示すアミノ酸配列である、請求項８に記載の組成物。
【請求項１０】
前記合成ペプチドは、総アミノ酸残基数が２５以下である、請求項６〜９のいずれか一項に記載の組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、対象とする細胞の細胞膜に存在する１型ＴＮＦ受容体（ＴＮＦ−Ｒ１）及び２型ＴＮＦ受容体（ＴＮＦ−Ｒ２）の存在バランスを調節する材料と方法に関する。特に、該調節を行うために用いられる合成ペプチドとその利用に関する。
なお、本出願は２０１２年９月２０日に出願された日本国特許出願２０１２−２０７４１９号に基づく優先権を主張しており、当該日本国出願の全内容は本明細書中に参照として援用されている。
【背景技術】
【０００２】
一般にＴＮＦ（典型的にはＴＮＦ−α、ＴＮＦ−β（ＬＴ−α）、ＬＴ−βの３種）と呼称される腫瘍壊死因子（Tumor Necrosis Factor）は、主として免疫系細胞において産生されるサイトカインである。その代表的存在であるＴＮＦ−αは、主としてマクロファージにおいて産生され、微小な血栓の形成やアポトーシスの誘導等、種々の生理作用を示す。また、ＴＮＦ−αの産生量（発現）が過剰になると関節リウマチ等の疾病を招くことも知られている。
かかるＴＮＦが結合する受容体として、分子量が約５５ｋＤａの１型ＴＮＦ受容体（Tumor Necrosis Factor Receptor 1、以下「ＴＮＦ−Ｒ１」と記載する場合がある。）、及び、分子量が約７５ｋＤａの２型ＴＮＦ受容体（Tumor Necrosis Factor Receptor 2、以下「ＴＮＦ−Ｒ２」と記載する場合がある。）が存在する。【０００３】
これら２種類のＴＮＦ受容体は、それぞれ異なる生理作用を生じさせることが知られている。例えばＴＮＦ−Ｒ１ノックアウトマウスとＴＮＦ−Ｒ２ノックアウトマウスを用いた試験において、上肢における動脈形成及び下肢における血管形成は、ＴＮＦ−Ｒ１ノックアウトマウスでは増進し、逆にＴＮＦ−Ｒ２ノックアウトマウスでは減退することが報告されている（非特許文献１）。また、ＴＮＦ−Ｒ２ノックアウトマウスでは緑内障の進行が野生型マウスと比較して遅くなることが報告されている（S. McKinnonらの口頭発表「Neuroinflammation in glaucoma」、XIX  Biennial Meeting of the International Society for EYE RESEARCH、２０１０年７月１８日〜２３日）。また、網膜剥離による光受容体（Photoreceptor）の変性には、ＴＮＦ−Ｒ２を介したＴＮＦ−αが関与する一方、ＴＮＦ−Ｒ１の欠乏はかかる光受容体の変性にあまり影響しないことが報告されている（非特許文献２）。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００４】
【非特許文献１】アメリカン・ジャーナル・オブ・パソロジー（The American Journal of Pathology）、１６９巻（５号）、２００６年、ｐｐ．１８８６−１８９８
【非特許文献２】インベスティゲイティブ・オフサルモロジー・アンド・ビジュアル・サイエンス(Investigative Ophthalmology & Visual Science)、５２巻（３号）、２０１１年、ｐｐ．１３８４−１３９１
【非特許文献３】ジャーナル・オブ・セルバイオロジー(The Journal ofCell Biology)、１７８巻（５号）、２００７年、ｐｐ．８２９−８４１
【発明の概要】
【０００５】
上記のとおり、ともにＴＮＦの受容体でありながら、ＴＮＦ−Ｒ１とＴＮＦ−Ｒ２とは相互に異なる生理活性を誘起させる受容体である。換言すれば、ＴＮＦ（例えばＴＮＦ−α）が介在して発現する生理作用は、当該ＴＮＦがＴＮＦ−Ｒ１に結合した場合と、ＴＮＦ−Ｒ２に結合した場合とで異なることを示している。
従って、対象とする生体器官、組織若しくは部位（より微視的にいえば該器官、組織若しくは部位に存在する細胞）においてＴＮＦ−Ｒ１とＴＮＦ−Ｒ２の存在量のバランス（例えば発現バランス）を調節することができれば、当該生体器官、組織若しくは部位において望ましい生理作用を発現させる（若しくは増進させる）こと、あるいは、当該生体器官、組織若しくは部位において望ましくない生理作用を発現させない（若しくは抑制させる）こと、が可能である。
【０００６】
例えば、上述した報告例に関しては、目的の組織又は部位に存在する細胞（細胞膜）に存在している（若しくは発現している）ＴＮＦ受容体の存在割合（発現割合）を通常よりもＴＮＦ−Ｒ２の存在率（発現率）が大きくなるように調節することにより、当該組織又は部位における動脈その他の血管形成を増進させることができる。また、網膜剥離等の網膜疾患の場合、網膜に存在する視細胞や神経節細胞におけるＴＮＦ受容体の存在割合（発現割合）を通常よりもＴＮＦ−Ｒ２の存在率（発現率）が小さくなるように調節することにより、視細胞等のアポトーシスを抑制することができる。
また、非特許文献３には、ＴＮＦ−Ｒ１の遺伝子を欠失させたトランスジェニックマウスを用いた実験において、アミロイドβの生成が阻害され、脳中でのアミロイドβのプラーク形成が減少したことが記載されている。このことは、脳内においてＴＮＦ−Ｒ１とＴＮＦ−Ｒ２との存在バランスを変化させ、ＴＮＦ−Ｒ２の存在率（発現率）を特異的に増大させることによってＴＮＦ（主としてＴＮＦ−α）のＴＮＦ−Ｒ１への結合を競合的に阻むことができ、結果、アルツハイマー病の治療や改善に貢献することが期待される。併せてＴＮＦ（主としてＴＮＦ−α）のＴＮＦ−Ｒ１への結合を競合的に阻むことにより、インスリン抵抗性の改善も期待される。
【０００７】
しかしながら、従来、細胞膜に存在するＴＮＦ−Ｒ１とＴＮＦ−Ｒ２との存在バランス（例えば発現バランス）を容易に且つ高効率に調節する方法、薬剤類が存在しなかった。
そこで本発明は、生体内（in vivo）又は生体外（in vitro）において、所望する生体器官、組織若しくは部位に存在する少なくとも１種の細胞におけるＴＮＦ−Ｒ１とＴＮＦ−Ｒ２との存在バランス（例えば発現バランス）を調節する方法と、該方法に用いられる材料（薬剤組成物）を提供することを目的として創出された発明である。
【０００８】
上記の目的を実現するべく、本発明によると、生体（典型的にはヒト、若しくはヒト以外の哺乳動物）内又は生体外において、対象とする所定の生体器官、組織若しくは部位に存在する少なくとも１種の細胞であって１型ＴＮＦ受容体（ＴＮＦ−Ｒ１）及び２型ＴＮＦ受容体（ＴＮＦ−Ｒ２）をいずれも発現可能な細胞の該ＴＮＦ−Ｒ１とＴＮＦ−Ｒ２との存在バランス（即ち該細胞の典型的には細胞膜に存在するＴＮＦ−Ｒ１とＴＮＦ−Ｒ２との量比＝存在比）を調節する方法が提供される。
即ち、ここで開示される調節方法は、（１）所定の生体器官、組織若しくは部位に存在する上記細胞に存在するＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を上昇させるときは、少なくとも１種のＴＮＦ−Ｒ１のシグナルペプチド配列又は該配列中の１個又は数個のアミノ酸残基が置換、欠失及び／又は付加されて形成されたアミノ酸配列（以下、該シグナルペプチド配列についての「改変アミノ酸配列」ともいう。）から実質的に構成される合成ペプチドを該細胞に供給する。
その一方、（２）所定の生体器官、組織若しくは部位に存在する上記細胞に存在するＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を低下させるときは、少なくとも１種のＴＮＦ−Ｒ２のシグナルペプチド配列又は該配列中の１個又は数個のアミノ酸残基が置換、欠失及び／又は付加されて形成されたアミノ酸配列（以下、該シグナルペプチド配列についての「改変アミノ酸配列」ともいう。）から実質的に構成される合成ペプチドを該細胞に供給する。
なお、本発明の調節方法において用いられる上記生体器官、組織、部位には、それぞれ、生体外において該方法を実施するために所定の生体（典型的にはヒト、若しくはヒト以外の哺乳動物）から採取された培養器官（臓器であり得る）、培養組織、培養細胞（例えば培養細胞の分散した培養物や細胞塊）が包含される。
【０００９】
本発明者は、ＴＮＦ受容体を構成するタンパク質のシグナルペプチド配列からなる合成ペプチドを種々の培養細胞に供給したところ、ＴＮＦ−Ｒ１由来のシグナルペプチドと、ＴＮＦ−Ｒ２由来のシグナルペプチドとの間で、ＴＮＦ−Ｒ２の存在量（典型的には発現量）に及ぼす作用が全く異なることを見出し、本発明を完成するに至った。
即ち、ここで開示される調節方法では、上記（１）の処理を施すことにより、対象とする器官、組織、又は部位に存在する細胞のＴＮＦ−Ｒ２の存在量を増大させることができる。その結果、ＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を上昇させることができる。
また、ここで開示される調節方法では、上記（２）の処理を施すことにより、対象とする器官、組織、又は部位に存在する細胞のＴＮＦ−Ｒ２の存在量を減少させることができる。その結果、ＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を低下させることができる。
【００１０】
このように、ここで開示される調節方法では、対象とする細胞のＴＮＦ−Ｒ１とＴＮＦ−Ｒ２との存在バランスを、ＴＮＦ−Ｒ１のシグナルペプチド配列又はその改変アミノ酸配列を主体として構成された合成ペプチド或いはＴＮＦ−Ｒ２のシグナルペプチド配列又はその改変アミノ酸配列を主体として構成された合成ペプチドのいずれかを該細胞に供給することによって、容易に調節（制御）することができる。
このため、ここで開示される調節方法は、ＴＮＦ−Ｒ１とＴＮＦ−Ｒ２の存在バランス、より具体的にはＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比が影響してＴＮＦが関与する種々の疾病や傷害（例えば種々の血管疾患やアルツハイマー病）の治療若しくは改善に資することができる。また、ここで開示される調節方法は、ＴＮＦ−Ｒ１やＴＮＦ−Ｒ２が関与する疾病（障害）を改善させることを目標とした研究開発分野（例えば医学、薬学、遺伝学、生化学、生物学に関連する分野。以下同じ。）において好適に実施することができる。
【００１１】
例えば、ＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を上昇させる上記（１）の処理を施すことにより、目的の組織又は部位（生体外でそのような処理を施した組織や細胞を移植する場合を含む。）における動脈その他の血管形成を増進させることができる。
或いはまた、網膜剥離等の網膜疾患の場合には、網膜に存在する視細胞や神経節細胞に対し、ＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を低下させる上記（２）の処理を施すことにより、視細胞等のアポトーシスを抑制することができる。
或いはまた、脳内や脊髄の中枢神経系細胞（脳や脊髄を構成する神経細胞及び／又はグリア細胞、ならびにこれら細胞に分化する前の神経幹細胞）においてＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を上昇させることによってＴＮＦ（主としてＴＮＦ−α）のＴＮＦ−Ｒ１への結合を競合的に阻み、アルツハイマー病の治療や改善を実現することができる。
このように、ここで開示される調節方法の好適な一態様では、上記細胞として神経系を構成する細胞（典型的には神経細胞、グリア細胞、或いは神経幹細胞）を用いる。
【００１２】
上述の説明から明らかなとおり、本発明はまた、ここで開示される調節方法に用いられる合成ペプチドと該合成ペプチドを成分とする組成物を提供する。
即ち、ここで開示される一つの組成物は、少なくとも１種のＴＮＦ−Ｒ１及びＴＮＦ−Ｒ２をいずれも発現可能な細胞におけるＴＮＦ−Ｒ２の存在量を増大させる組成物であって、少なくとも１種のＴＮＦ−Ｒ１のシグナルペプチド配列又は該配列中の１個又は数個のアミノ酸残基が置換、欠失及び／又は付加されて形成されたアミノ酸配列から実質的に構成される合成ペプチドと、薬学的に許容可能な担体とを含む、上記細胞におけるＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を上昇させるための組成物である。
かかる薬学的組成物（即ち該組成物に含まれる上記合成ペプチド）を用いることによって、上記（１）の処理を行うことができる。
従って、本発明は別の一側面として、かかる薬学的組成物（即ち該組成物に含まれる上記合成ペプチド）を用いて上記（１）の処理を行うことを特徴とする、生体内又は生体外において、所定の生体器官、組織若しくは部位に存在する少なくとも１種のＴＮＦ−Ｒ１及びＴＮＦ−Ｒ２をいずれも発現可能な細胞の該ＴＮＦ−Ｒ２の存在量を増大させる方法を提供する。また、本発明は、かかる薬学的組成物（即ち該組成物に含まれる上記合成ペプチド）を用いて上記（１）の処理を行うことを特徴とする、該ＴＮＦ−Ｒ２の存在量を増大させた細胞の製造方法を提供する。
【００１３】
また、ここで開示される他の一つの組成物は、少なくとも１種のＴＮＦ−Ｒ１及びＴＮＦ−Ｒ２をいずれも発現可能な細胞におけるＴＮＦ−Ｒ２の存在量を減少させる組成物であって、少なくとも１種のＴＮＦ−Ｒ２のシグナルペプチド配列又は該配列中の１個又は数個のアミノ酸残基が置換、欠失及び／又は付加されて形成されたアミノ酸配列から実質的に構成される合成ペプチドと、薬学的に許容可能な担体とを含む、上記細胞におけるＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を低下させるための組成物である。
かかる薬学的組成物（即ち該組成物に含まれる上記合成ペプチド）を用いることによって、上記（２）の処理を行うことができる。
従って、本発明は別の一側面として、かかる薬学的組成物（即ち該組成物に含まれる上記合成ペプチド）を用いて上記（２）の処理を行うことを特徴とする、生体内又は生体外において、所定の生体器官、組織若しくは部位に存在する少なくとも１種のＴＮＦ−Ｒ１及びＴＮＦ−Ｒ２をいずれも発現可能な細胞の該ＴＮＦ−Ｒ２の存在量を減少させる方法を提供する。また、本発明は、かかる薬学的組成物（即ち該組成物に含まれる上記合成ペプチド）を用いて上記（２）の処理を行うことを特徴とする、該ＴＮＦ−Ｒ２の存在量を減少させた細胞の製造方法を提供する。
【００１４】
本発明の実施においては、ＴＮＦ−Ｒ１のシグナルペプチド配列は配列番号１〜５のいずれかに示すアミノ酸配列であることが好ましい。これら、ヒト（配列番号１）、マウス（配列番号２）、ラット（配列番号３）、ウシ（配列番号４）、ブタ（配列番号５）由来のＴＮＦ−Ｒ１のシグナルペプチド配列を用いることによって、上記（１）の処理を好適に行うことができる。
また、本発明の実施においては、ＴＮＦ−Ｒ２のシグナルペプチド配列は配列番号６〜８のいずれかに示すアミノ酸配列であることが好ましい。これら、ヒト（配列番号６）、マウス（配列番号７）、ラット（配列番号８）由来のＴＮＦ−Ｒ２のシグナルペプチド配列を用いることによって、上記（２）の処理を好適に行うことができる。
また、本発明の実施において用いられる合成ペプチドは、総アミノ酸残基数が２５以下の化学合成ペプチドであることが好ましい。
【図面の簡単な説明】
【００１５】
【図１】図１は、抗ＴＮＦ−Ｒ１ポリクローナル抗体及び抗ＴＮＦ−Ｒ２ポリクローナル抗体（一次抗体）と蛍光色素標識二次抗体とを用いて行った蛍光抗体法に基づくマウス由来の培養細胞のＴＮＦ−Ｒ１及びＴＮＦ−Ｒ２の存在バランスを調べた結果を示すグラフである。
【図２】図２は、抗ＴＮＦ−Ｒ１ポリクローナル抗体及び抗ＴＮＦ−Ｒ２ポリクローナル抗体（一次抗体）と蛍光色素標識二次抗体とを用いて行った蛍光抗体法に基づくヒト由来の培養細胞のＴＮＦ−Ｒ１及びＴＮＦ−Ｒ２の存在バランスを調べた結果を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００１６】
以下、本発明の好適な実施形態を説明する。なお、本明細書において特に言及している事項（例えばここで開示される合成ペプチドの一次構造や鎖長）以外の事柄であって本発明の実施に必要な事柄（例えばペプチドの化学合成法、細胞培養技法、ペプチドを成分とする薬学的組成物の調製に関するような一般的事項）は、細胞工学、生理学、医学、薬学、有機化学、生化学、遺伝子工学、タンパク質工学、分子生物学、遺伝学等の分野における従来技術に基づく当業者の設計事項として把握され得る。本発明は、本明細書に開示されている内容と当該分野における技術常識とに基づいて実施することができる。なお、以下の説明では、場合に応じてアミノ酸をIUPAC-IUBガイドラインで示されたアミノ酸に関する命名法に準拠した１文字表記（但し配列表では３文字表記）で表す。
また、本明細書中で引用されている全ての文献の全ての内容は本明細書中に参照として組み入れられている。
【００１７】
本明細書において「合成ペプチド」とは、人為的な化学合成或いは生合成（即ち遺伝子工学に基づく生産）によって製造されるペプチドをいう。
また、本明細書において「ペプチド」とは、複数のペプチド結合を有するアミノ酸ポリマーを指す用語であり、ペプチド鎖に含まれるアミノ酸残基の数によって限定されないが、典型的には全アミノ酸残基数が概ね５０以下（例えば２５以下）のような比較的分子量の小さいものをいう。
また、本明細書において「アミノ酸残基」とは、特に言及する場合を除いて、ペプチド鎖のＮ末端アミノ酸及びＣ末端アミノ酸を包含する用語である。
【００１８】
また、本明細書において所定のアミノ酸配列に対して「改変アミノ酸配列」とは、当該所定のアミノ酸配列が有する機能（即ちＴＮＦ−Ｒ２の存在量（発現量）を増大若しくは減少させる機能）を損なうことなく、１個又は数個（例えば２個又は３個）のアミノ酸残基が置換、欠失及び／又は付加（挿入）されて形成されたアミノ酸配列をいう。例えば、１個又は数個（典型的には２個又は３個）のアミノ酸残基が保守的に置換したいわゆる同類置換（conservative amino acid replacement）によって生じた配列（例えば塩基性アミノ酸残基が別の塩基性アミノ酸残基に置換した配列：例えばリジン残基とアルギニン残基との相互置換）、或いは、所定のアミノ酸配列について１個又は数個（典型的には２個又は３個）のアミノ酸残基が付加（挿入）した若しくは欠失した配列等は、本明細書でいうところの改変アミノ酸配列に包含される典型例である。
従って、ここで開示される調節方法に用いられる、ＴＮＦ−Ｒ２の存在量を増大させ得る合成ペプチド（以下、「ＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド」ともいう。）ならびにＴＮＦ−Ｒ２の存在量を減少させ得る合成ペプチド（以下、「ＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチド」ともいう。）には、以下で説明する各配列番号のアミノ酸配列と同一のアミノ酸配列で構成される合成ペプチドに加え、各配列番号のアミノ酸配列において１個又は数個（典型的には２個又は３個）のアミノ酸残基が置換（例えば上記同類置換）、欠失若しくは付加したアミノ酸配列であって、同様にＴＮＦ−Ｒ２の存在量を増大させるか若しくは減少させる活性があり、ＴＮＦ−Ｒ１とＴＮＦ−Ｒ２の存在バランスを調節し得る改変アミノ酸配列からなる合成ペプチドが包含される。
また、本明細書において「ポリヌクレオチド」とは、複数のヌクレオチドがリン酸ジエステル結合で結ばれたポリマー（核酸）を指す用語であり、ヌクレオチドの数によって限定されない。種々の長さのＤＮＡフラグメント及びＲＮＡフラグメントが本明細書におけるポリヌクレオチドに包含される。
【００１９】
ここで開示される調節方法に用いられる組成物は、上記ＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド或いはＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドを有効成分として含有する組成物である。
上述のとおり、ここで開示されるＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチドは、ＴＮＦ−Ｒ１のシグナルペプチド配列又はその改変アミノ酸配列から実質的に構成される合成ペプチドであるという点において、自然界には存在しない合成ペプチドといえる。同様に、ＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドは、ＴＮＦ−Ｒ２のシグナルペプチド配列又はその改変アミノ酸配列から実質的に構成される合成ペプチドであるという点において、自然界には存在しない合成ペプチドといえる。
ここで開示されるＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド若しくはＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドを構成するアミノ酸配列の好適例を表１に示す。
【００２０】
【表１】
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【００２１】
これら列挙したアミノ酸配列のうち、Ｎｏ．１〜５はＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチドとして好適なＴＮＦ−Ｒ１のシグナルペプチド配列の一例である。また、Ｎｏ．６〜８はＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドとして好適なＴＮＦ−Ｒ２のシグナルペプチド配列の一例である。
具体的には、配列番号１に示すアミノ酸配列は、ヒトのＴＮＦ−Ｒ１のシグナルペプチド配列である。配列番号２に示すアミノ酸配列は、マウスのＴＮＦ−Ｒ１のシグナルペプチド配列である。配列番号３に示すアミノ酸配列は、ラットのＴＮＦ−Ｒ１のシグナルペプチド配列である。配列番号４に示すアミノ酸配列は、ウシのＴＮＦ−Ｒ１のシグナルペプチド配列である。配列番号５に示すアミノ酸配列は、ブタのＴＮＦ−Ｒ１のシグナルペプチド配列である。
他方、配列番号６に示すアミノ酸配列は、ヒトのＴＮＦ−Ｒ２のシグナルペプチド配列である。配列番号７に示すアミノ酸配列は、マウスのＴＮＦ−Ｒ２のシグナルペプチド配列である。配列番号８に示すアミノ酸配列は、ラットのＴＮＦ−Ｒ２のシグナルペプチド配列である。
【００２２】
好ましくは、ここで開示されるＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド及びＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドは、少なくとも一つのアミノ酸残基がアミド化されているものが好ましい。アミノ酸残基（典型的にはペプチド鎖のＣ末端アミノ酸残基）のカルボキシル基のアミド化により、合成ペプチドの構造安定性（例えばプロテアーゼ耐性）を向上させることができる。
また、使用する合成ペプチドとしては、ペプチド鎖を構成する全アミノ酸残基数が５０以下が適当であり、３０以下が望ましく、例えば２５以下が特に好ましい。一般的なＴＮＦ−Ｒ１又はＴＮＦ−Ｒ２のシグナルペプチド配列のアミノ酸残基数はこのような範囲に収まる。ＴＮＦ−Ｒ１若しくはＴＮＦ−Ｒ２のシグナルペプチド配列又はその改変アミノ酸配列のみから成るペプチドは、好適にここで開示される調節方法に用いられる。
なお、ここで開示されるＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド及びＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドは、ＴＮＦ−Ｒ１若しくはＴＮＦ−Ｒ２のシグナルペプチド配列又はその改変アミノ酸配列をペプチド鎖の実質的な構成部分（主体をなす構成部分）とするものであればよく、目的とする生理活性機能を失わない限りにおいてＴＮＦ−Ｒ１若しくはＴＮＦ−Ｒ２のシグナルペプチド配列又はその改変アミノ酸配列以外のアミノ酸残基を含むペプチドであってもよい。
このような鎖長の短いペプチドは、化学合成が容易であり、容易にＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド及びＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドを提供することができる。なお、ペプチドのコンホメーション（立体構造）については、使用する環境下（生体外若しくは生体内）で目的の活性を発揮する限りにおいて、特に限定されるものではないが、免疫原（抗原）になり難いという観点から直鎖状又はへリックス状のものが好ましい。このような形状のペプチドはエピトープを構成し難いという観点からも好適である。
なお、ここで開示されるＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド又はＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドとしては、全てのアミノ酸残基がＬ型アミノ酸であるものが好ましいが、アミノ酸残基の一部又は全部がＤ型アミノ酸に置換されているものであってもよい。
【００２３】
ここで開示される合成ペプチドは、一般的な化学合成法に準じて容易に製造することができる。例えば、従来公知の固相合成法又は液相合成法のいずれを採用してもよい。アミノ基の保護基としてＢｏｃ（t-butyloxycarbonyl）或いはＦｍｏｃ（9-fluorenylmethoxycarbonyl）を適用した固相合成法が好適である。ここで開示される合成ペプチドは、市販のペプチド合成機（例えば、PerSeptive Biosystems社、Applied Biosystems社等から入手可能である。）を用いた固相合成法により、所望するアミノ酸配列、修飾（Ｃ末端アミド化等）部分を有するペプチド鎖を合成することができる。
【００２４】
或いは、遺伝子工学的手法に基づいてＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチドやＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドを生合成してもよい。すなわち、所望するペプチドのアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列（ＡＴＧ開始コドンを含む。）のポリヌクレオチド（典型的にはＤＮＡ）を合成する。そして、合成したポリヌクレオチド（ＤＮＡ）と該アミノ酸配列を宿主細胞内で発現させるための種々の調節エレメント（プロモーター、リボゾーム結合部位、ターミネーター、エンハンサー、発現レベルを制御する種々のシスエレメントを包含する。）とから成る発現用遺伝子構築物を有する組換えベクターを、宿主細胞に応じて構築する。
一般的な技法によって、この組換えベクターを所定の宿主細胞に導入し、所定の条件で当該宿主細胞又は該細胞を含む組織や個体を培養する。このことにより、目的とするＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド又はＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドを細胞内で発現、生産させることができる。
そして、宿主細胞（分泌された場合は培地中）からペプチドを単離し、精製することによって、目的のＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド及びＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドを得ることができる。なお、組換えベクターの構築方法及び構築した組換えベクターの宿主細胞への導入方法等は、当該分野で従来から行われている方法をそのまま採用すればよく、かかる方法自体は特に本発明を特徴付けるものではないため、詳細な説明は省略する。
【００２５】
例えば、宿主細胞内で効率よく大量に生産させるために融合タンパク質発現システムを利用することができる。すなわち、目的のＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド又はＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドのアミノ酸配列をコードする遺伝子（ＤＮＡ）を化学合成し、該合成遺伝子を適当な融合タンパク質発現用ベクター（例えばノバジェン社から提供されているｐＥＴシリーズ及びアマシャムバイオサイエンス社から提供されているｐＧＥＸシリーズのようなＧＳＴ(Glutathione S-transferase)融合タンパク質発現用ベクター）の好適なサイトに導入する。そして該ベクターにより宿主細胞（典型的には大腸菌）を形質転換する。得られた形質転換体を培養して目的の融合タンパク質を調製する。次いで、該タンパク質を抽出及び精製する。次いで、得られた精製融合タンパク質を所定の酵素（プロテアーゼ）で切断し、遊離した目的のペプチド断片（設計したＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド又はＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチド）をアフィニティクロマトグラフィー等の方法によって回収する。このような従来公知の融合タンパク質発現システム（例えばアマシャムバイオサイエンス社により提供されるＧＳＴ／Ｈｉｓシステムを利用し得る。）を用いることによって、本発明のＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド又はＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドを製造することができる。
或いは、無細胞タンパク質合成システム用の鋳型ＤＮＡ（即ちＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド又はＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドのアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を含む合成遺伝子断片）を構築し、ペプチド合成に必要な種々の化合物（ＡＴＰ、ＲＮＡポリメラーゼ、アミノ酸類等）を使用し、いわゆる無細胞タンパク質合成システムを採用して目的のペプチドをインビトロ合成することができる。無細胞タンパク質合成システムについては、例えばShimizuらの論文(Shimizu et al., Nature Biotechnology, 19, 751-755(2001))、Madinらの論文(Madin et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 97(2), 559-564(2000))が参考になる。これら論文に記載された技術に基づいて、本願出願時点において既に多くの企業がペプチドの受託生産を行っており、また、無細胞タンパク質合成用キット（例えば、日本の東洋紡績（株）から入手可能なPROTEIOS（商標）Wheat germ cell-free protein synthesis kit）が市販されている。
【００２６】
ここで開示されるＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド又はＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドをコードするヌクレオチド配列及び／又は該配列と相補的なヌクレオチド配列を含む一本鎖又は二本鎖のポリヌクレオチドは、従来公知の方法によって容易に製造（合成）することができる。すなわち、設計したアミノ酸配列を構成する各アミノ酸残基に対応するコドンを選択することによって、ＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド又はＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドのアミノ酸配列に対応するヌクレオチド配列が容易に決定され、提供される。そして、ひとたびヌクレオチド配列が決定されれば、ＤＮＡ合成機等を利用して、所望するヌクレオチド配列に対応するポリヌクレオチド（一本鎖）を容易に得ることができる。さらに得られた一本鎖ＤＮＡを鋳型として用い、種々の酵素的合成手段（典型的にはＰＣＲ）を採用して目的の二本鎖ＤＮＡを得ることができる。
本発明によって提供されるポリヌクレオチドは、ＤＮＡの形態であってもよく、ＲＮＡ（ｍＲＮＡ等）の形態であってもよい。ＤＮＡは、二本鎖又は一本鎖で提供され得る。一本鎖で提供される場合は、コード鎖（センス鎖）であってもよく、それと相補的な配列の非コード鎖（アンチセンス鎖）であってもよい。
本発明によって提供されるポリヌクレオチドは、上述のように、種々の宿主細胞中で又は無細胞タンパク質合成システムにて、ＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド又はＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチド生産のための組換え遺伝子（発現カセット）を構築するための材料として使用することができる。
【００２７】
ここで開示されるＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド又はＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドは、少なくとも１種のＴＮＦ受容体発現対象細胞（典型的には中枢若しくは抹消の神経系を構成する細胞、或いは免疫系を構成する細胞、血管その他の循環器を構成する細胞、網膜その他の目の組織を構成する細胞）に作用して選択的にＴＮＦ−Ｒ２の存在量（発現量）を増大又は減少させることができる。
このため、上述したＴＮＦ−Ｒ１とＴＮＦ−Ｒ２の存在バランスを適宜調節する組成物（薬学的組成物）の有効成分として好適に使用し得る。なお、これらペプチドは、目的とする生理活性を損なわない限りにおいて、塩の形態であってもよい。例えば、常法に従って通常使用されている無機酸又は有機酸を付加反応させることにより得られ得る該ペプチドの酸付加塩を使用することができる。或いは、他の塩（例えば金属塩）であってもよい。本明細書及び特許請求の範囲に記載の「合成ペプチド」は、かかる塩形態のものを包含する。
【００２８】
ここで開示されるＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を上昇又は低下させるための組成物は、有効成分であるＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド又はＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドの生理活性が失われない状態で保持し得る限りにおいて、使用形態に応じて薬学（医薬）上許容され得る種々の担体を含み得る。希釈剤、賦形剤等としてペプチド医薬において一般的に使用される担体が好ましい。用途や形態に応じて適宜異なり得るが、典型的には、水、生理学的緩衝液、種々の有機溶媒が挙げられる。適当な濃度のアルコール（エタノール等）水溶液、グリセロール、オリーブ油のような不乾性油であり得る。或いはリポソームであってもよい。また、かかる組成物に含有させ得る副次的成分としては、種々の充填剤、増量剤、結合剤、付湿剤、表面活性剤、色素、香料等が挙げられる。
【００２９】
ＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を上昇又は低下させるための組成物の典型的な形態として、液剤、懸濁剤、乳剤、エアロゾル、泡沫剤、顆粒剤、粉末剤、錠剤、カプセル、軟膏、水性ジェル剤等が挙げられる。また、注射等に用いるため、使用直前に生理食塩水又は適当な緩衝液（例えばＰＢＳ）等に溶解して薬液を調製するための凍結乾燥物、造粒物とすることもできる。
なお、ＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド又はＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチド（主成分）及び種々の担体（副成分）を材料にして種々の形態の組成物（薬剤）を調製するプロセス自体は従来公知の方法に準じればよく、かかる製剤方法自体は本発明を特徴付けるものでもないため詳細な説明は省略する。処方に関する詳細な情報源として、例えばComprehensive Medicinal Chemistry, Corwin Hansch監修，Pergamon Press刊(1990)が挙げられる。この書籍の全内容は本明細書中に参照として援用されている。
【００３０】
本発明の調節方法の適用対象とする器官、組織又は部位は、当該適用対象においてＴＮＦ−Ｒ１に加えてＴＮＦ−Ｒ２を発現可能な細胞が存在するのであれば特に制限されない。例えば脳や脊髄といった中枢神経系若しくは末梢神経系の細胞（例えば神経細胞（ニューロン）、グリア細胞）、免疫系の細胞（例えば種々のリンパ球、マクロファージ、好中球、好酸球、好塩基球、単球）、血管を含む循環器系の細胞（例えば心臓を構成する心筋細胞、血管内皮細胞）、網膜の細胞、等に対して本発明を適用することができる。
或いは、各種の腫瘍（癌）に含まれるがん細胞（腫瘍細胞）に対して本発明を適用することができる。
或いはまた、ＥＳ細胞（胚性幹細胞）、ｉＰＳ細胞（人工多能性幹細胞）、脂肪肝細胞、軟骨幹細胞等の間葉系幹細胞、造血幹細胞、神経幹細胞、等の幹細胞に対して本発明を適用することができる。
【００３１】
ここで開示されるＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド又はＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチド（又はこれらのいずれかのペプチドを含む組成物）は、その形態及び目的に応じた方法や用量で使用することができる。
例えば、生体外で培養している細胞（細胞塊）、組織、器官に対しては、対象とする培養細胞（培養組織又は器官）の培地に目的のペプチドを添加するとよい。添加量及び添加回数は、培養物の種類、細胞密度（培養開始時の細胞密度）、継代数、培養条件、培地の種類、等の条件によって異なり得るため特に限定されないが、ヒト或いはヒト以外の哺乳動物の細胞、組織等を培養する場合、培地中のペプチド濃度が概ね０．１μＭ〜１００μＭの範囲内、好ましくは０．５μＭ〜２０μＭ（例えば１μＭ〜１０μＭ）の範囲内となるように、１〜複数回添加することが好ましい。
ここで開示されるＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド又はＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドをインビトロ培養系に添加することにより、当該培養系においてＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を調節することができる。
【００３２】
或いはまた、生体内において所定の器官、組織若しくは部位（或いは所定の部位に移植した組織片若しくは細胞塊）においてＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を調節する場合、即ちＴＮＦ−Ｒ２の存在量を増大させてＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を上昇させたい場合は、ＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチドの適当量を液剤として、静脈内、筋肉内、皮下、皮内若しくは腹腔内への注射によって患者（即ち生体内）に所望する量だけ投与することができる。他方、ＴＮＦ−Ｒ２の存在量を減少させてＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を低下させたい場合は、ＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドの適当量を同様に投与すればよい。
或いは、錠剤等の固体形態のものや軟膏等のゲル状若しくは水性ジェリー状のものを直接所定の組織（即ち該組織を構成している細胞）に投与することができる。なお、添加量及び添加回数は、上記存在バランスを調節したい細胞の種類、該細胞が存在する部位、器官、組織等の条件によって異なり得るため特に限定されない。
【００３３】
以上に記載のとおり、ここで開示されるＴＮＦ−Ｒ１とＴＮＦ−Ｒ２の存在バランスを調節する方法は、上記（１）の処理、又は上記（２）の処理のうちのいずれか一方を実施すればよい。或いは、目的、時期に応じて上記（１）の処理と（２）の処理とを、時期をずらしながら適宜組み合わせて、ＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比の調節を適宜行うこともできる。
以下、本発明に関する試験例を説明するが、本発明をかかる例に示すものに限定することを意図したものではない。
【００３４】
＜試験例１：ペプチド合成＞
上述した表１に示す配列番号１のアミノ酸配列からなる合成ペプチド（ＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド）と、配列番号２のアミノ酸配列からなる合成ペプチド（ＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド）と、配列番号５のアミノ酸配列からなる合成ペプチド（ＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド）と、配列番号６のアミノ酸配列からなる合成ペプチド（ＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチド）と、配列番号７のアミノ酸配列からなる合成ペプチド（ＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチド）とを市販のペプチド合成機（Intavis AG社製品）を用いてマニュアルどおりに固相合成法（Ｆｍｏｃ法）を実施して合成した。合成した各ペプチドを、配列番号に対応させてそれぞれサンプル１、２、５、６、７という。これらペプチドは、全体が２１（サンプル１、２、５に係るＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド）若しくは２２（サンプル６、７に係るＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチド）のアミノ酸残基から成る直鎖状の化学合成ペプチドである。なお、ペプチド合成機の使用態様自体は本発明を特徴付けるものではないため、詳細な説明は省略する。
【００３５】
＜試験例２：マウス由来の細胞株を用いた各合成ペプチドのＴＮＦ−Ｒ２発現促進活性又は抑制活性の評価試験＞
上記試験例１において合成されたサンプル１およびサンプル６のペプチドの性能を、マウス脊髄の神経芽細胞腫由来の培養細胞である細胞株（Ｎｅｕｒｏ２ａ株）を用いて調べた。コントロール区としてペプチド無添加区を設けた。本評価試験の詳細は以下のとおりである。
先ず、上記試験例１で合成した各ペプチドをＰＢＳ（リン酸緩衝生理食塩水）に溶かし、ペプチド濃度が１ｍＭのストック液（少量のジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）を含む。）を調製した。
次に、Ｎｅｕｒｏ２ａ細胞株を８．５×１０４cells／ｍＬの密度に直径６ｃｍの培養ディッシュに播種した。培地は一般的なＤＭＥＭ培地（１０％のＦＢＳ、１％ペニシリンを含有する。）を用い、３７℃、５％ＣＯ２条件下のＣＯ２インキュベータ内で一晩培養した。
その一晩培養後、培地を２％のＦＢＳ、２０μＭのレチノイン酸、１％のペニシリンを含有するＤＭＥＭ培地に交換し、同条件で７日間培養することによってレチノイン酸を用いた誘導を行った。その後、培地を２％のＦＢＳ、２０μＭのレチノイン酸、１％のペニシリンに加えて５μＭとなる量のサンプル１に係るＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド若しくはサンプル６に係るＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドを含有するＤＭＥＭ培地（このときＤＭＳＯを１２．５μＬ含む。）に交換し、同条件で２日間培養を継続した。なお、コントロール区（ペプチド無添加区）においては、ペプチド無しで上記の量のＤＭＳＯだけ加えたＤＭＥＭ培地（２％ＦＢＳ、２０μＭレチノイン酸、１％ペニシリンを含む。）を用いて２日間の培養を行った。
【００３６】
上記培養終了後、各試験区の培養細胞を回収し、細胞数が同じになるようにして所定の試験管に分注した。次いで、以下の蛍光抗体法により、各試験区（ＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド添加区、ＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチド添加区）におけるＴＮＦ−Ｒ１とＴＮＦ−Ｒ２の存在バランスの変化について調べた。
具体的には、各試験区において、ＴＮＦ−Ｒ１の測定は、抗ＴＮＦ−Ｒ１ウサギポリクローナル抗体（Santa Cruz Biotechnology, Inc製品、SC-7895）を最終濃度：４×１０−３ｍｇ／ｍＬとなるように各試験管に添加し、３７℃で所定時間インキュベートした。そして、二次抗体として蛍光色素（Alexa（登録商標）４８８）で標識した抗ウサギＩｇＧ抗体（ヤギ：Invitrogen社製品、A11034）を最終濃度：２×１０−３ｍｇ／ｍＬとなるように試験管に添加し、３７℃で所定時間インキュベートした。
一方、ＴＮＦ−Ｒ２の測定は、抗ＴＮＦ−Ｒ２ヤギポリクローナル抗体（Santa Cruz Biotechnology, Inc製品、SC-1074）を最終濃度：４×１０−３ｍｇ／ｍＬとなるように各試験管に添加し、３７℃で所定時間インキュベートした。そして、二次抗体として蛍光色素（Alexa（登録商標）４８８）で標識した抗ヤギＩｇＧ抗体（ロバ：Invitrogen社製品、A11055）を最終濃度：４×１０−３ｍｇ／ｍＬとなるように試験管に添加し、３７℃で所定時間インキュベートした。
【００３７】
而して、フローサイトメーター（Millipore社製品、Guava（登録商標) easyCyte 8HT）を用いて細胞の蛍光強度を測定した。結果を図１に示す。なお、ＴＮＦ−Ｒ１の蛍光強度及びＴＮＦ−Ｒ２の蛍光強度のいずれについてもコントロール区（ペプチド無添加区）におけるＴＮＦ−Ｒ１又はＴＮＦ−Ｒ２の蛍光強度を１とした相対値で示している。
【００３８】
図１に示すように、サンプル１に係るＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド（ＴＮＦ−Ｒ１のシグナルペプチド）をマウス由来の細胞株（Ｎｅｕｒｏ２ａ株）に添加すると、ＴＮＦ−Ｒ１の存在量はあまり変化ないもののＴＮＦ−Ｒ２の存在量（発現量）が著しく増大した。これにより、ＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を著しく上昇させることができた。
その一方で、サンプル６に係るＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチド（ＴＮＦ−Ｒ２のシグナルペプチド）をマウス由来の細胞株（Ｎｅｕｒｏ２ａ株）に添加すると、ＴＮＦ−Ｒ１の存在量はあまり変化ないもののＴＮＦ−Ｒ２の存在量（発現量）が著しく減少した。これにより、ＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を著しく低下させることができた。
本試験例から明らかなように、ここで開示されるＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド、ＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドを使用し、また使い分けることによって、目的とする細胞種におけるＴＮＦ−Ｒ１とＴＮＦ−Ｒ２との存在バランスを調節することができるとわかった。
【００３９】
＜試験例３：ヒト由来の細胞株を用いた各合成ペプチドのＴＮＦ−Ｒ２発現促進活性又は抑制活性の評価試験＞
上記試験例１において合成した各ペプチドの性能を、ヒトの神経芽細胞腫由来の培養細胞である細胞株（ＳＫ−Ｎ−ＳＨ株）を用いて調べた。コントロール区としてペプチド無添加区を設けた。本評価試験の詳細は以下のとおりである。
先ず、上記試験例１で合成した各ペプチドをＤＭＳＯに溶かし、ペプチド濃度が４ｍＭのストック液を調製した。
次に、ＳＫ−Ｎ−ＳＨ株を１．５×１０５cells／ｍＬの密度に直径６ｃｍの培養ディッシュに４ｍＬ播種した。培地は一般的なＤＭＥＭ培地（１０％のＦＢＳ（Ｈｙｃｌｏｎｅ社製品、ＫＳＤ）、２ｍＭのＬ−グルタミン、５０ユニット／ｍＬのペニシリン、及び５０μｇ／ｍＬのストレプトマイシンを含有する。）を用い、３７℃、５％ＣＯ２条件下のＣＯ２インキュベータ内で一晩培養した。細胞密度が低めであったため、更にもう一日培養を続けた。
その二晩培養後、新しいＤＭＥＭ培地（２％のＦＢＳ、２０μＭのレチノイン酸、２ｍＭのＬ−グルタミン、５０ユニット／ｍＬのペニシリン、及び５０μｇ／ｍＬのストレプトマイシンを含有する。）に交換し、同条件で５日間培養することによってレチノイン酸を用いた誘導を行った。
その後、２％のＦＢＳ、２０μＭのレチノイン酸、２ｍＭのＬ−グルタミン、５０ユニット／ｍＬのペニシリン、５０μｇ／ｍＬのストレプトマイシンに加えて、５μＭとなる量の上記試験例１で合成した各ペプチド（ＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド若しくはＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチド）を含有するＤＭＥＭ培地（このときＤＭＳＯを５μＬ含む。）に交換し、同条件で２日間培養を継続した。
なお、コントロール区（ペプチド無添加区）においては、ペプチド無しで上記の量のＤＭＳＯだけを加えたＤＭＥＭ培地（２％のＦＢＳ、２０μＭのレチノイン酸、２ｍＭのＬ−グルタミン、５０ユニット／ｍＬのペニシリン、及び５０μｇ／ｍＬのストレプトマイシンを含有する。）を用いて２日間の培養を行った。
【００４０】
上記培養終了後、各試験区の培養細胞を回収し、細胞数が同じになるようにして所定の試験管に分注した。次いで、以下の蛍光抗体法により、各試験区（ＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド添加区、ＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチド添加区）におけるＴＮＦ−Ｒ１とＴＮＦ−Ｒ２の存在バランスの変化について調べた。
具体的には、各試験区において、ＴＮＦ−Ｒ１の測定は、抗ＴＮＦ−Ｒ１マウスポリクローナル抗体（Santa Cruz Biotechnology, Inc製品、SC-52739）を最終濃度：２×１０−３ｍｇ／ｍＬとなるように各試験管に添加し、氷冷中で所定時間インキュベートした。そして、二次抗体として蛍光色素（Alexa（登録商標）４８８）で標識した抗マウスＩｇＧ抗体（ヤギ：Invitrogen社製品、A10029）を最終濃度：４×１０−３ｍｇ／ｍＬとなるように試験管に添加し、氷冷中で所定時間インキュベートした。
一方、ＴＮＦ−Ｒ２の測定は、抗ＴＮＦ−Ｒ２ヤギポリクローナル抗体（Santa Cruz Biotechnology, Inc製品、SC-1074）を最終濃度：４×１０−３ｍｇ／ｍＬとなるように各試験管に添加し、氷冷中で所定時間インキュベートした。そして、二次抗体として蛍光色素（Alexa（登録商標）６４７）で標識した抗ヤギＩｇＧ抗体（ドンキー：Invitrogen社製品、A21447）を最終濃度：４×１０−３ｍｇ／ｍＬとなるように試験管に添加し、氷冷中で所定時間インキュベートした。
【００４１】
而して、上記試験例２と同様に、フローサイトメーターを用いて細胞の蛍光強度を測定した。結果を図２に示す。なお、ＴＮＦ−Ｒ１の蛍光強度及びＴＮＦ−Ｒ２の蛍光強度のいずれについてもコントロール区（ペプチド無添加区）におけるＴＮＦ−Ｒ１又はＴＮＦ−Ｒ２の蛍光強度を１とした相対値で示している。
【００４２】
図２に示すように、サンプル１若しくはサンプル２若しくはサンプル５に係るＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド（ＴＮＦ−Ｒ１のシグナルペプチド）をヒト由来の細胞株（ＳＫ−Ｎ−ＳＨ株）に添加すると、ＴＮＦ−Ｒ１の存在量はあまり変化ないもののＴＮＦ−Ｒ２の存在量（発現量）が増大した。これにより、ＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を著しく上昇させることができた。
その一方で、サンプル６若しくはサンプル７に係るＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチド（ＴＮＦ−Ｒ２のシグナルペプチド）をヒト由来の細胞株（ＳＫ−Ｎ−ＳＨ株）に添加すると、ＴＮＦ−Ｒ１の存在量はあまり変化ないもののＴＮＦ−Ｒ２の存在量（発現量）が減少した。これにより、ＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比を著しく低下させることができた。
以上の結果から明らかなように、ここで開示されるＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド、ＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドを使用し、また使い分けることによって、種々の細胞種におけるＴＮＦ−Ｒ１とＴＮＦ−Ｒ２との存在バランスを調節することができる。
【００４３】
＜試験例４：顆粒剤の調製＞
上記各合成ペプチド（ＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド若しくはＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチド）５０ｍｇと結晶化セルロース５０ｍｇ及び乳糖４００ｍｇとを混合した後、エタノールと水の混合液１ｍＬを加え混練した。この混練物を常法に従って造粒し、ここで開示されるＴＮＦ−Ｒ２促進ペプチド若しくはＴＮＦ−Ｒ２抑制ペプチドを主成分とする顆粒剤（顆粒状組成物）を得た。
【産業上の利用可能性】
【００４４】
上述のように、本発明によると、対象とする器官、組織、又は部位に存在する細胞のＴＮＦ−Ｒ１とＴＮＦ−Ｒ２との存在バランスを調節することができる。従って、本発明は、ＴＮＦ−Ｒ１に対するＴＮＦ−Ｒ２の存在比が影響してＴＮＦが関与する種々の疾病や傷害の治療若しくは改善に資することができる。或いはまた、本発明は、ＴＮＦ−Ｒ１やＴＮＦ−Ｒ２が関与する疾病（障害）を改善させることを目標とした研究開発分野において好適に実施することができる。
【配列表フリーテキスト】
【００４５】
【図１】
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【図２】
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【配列表】
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【国際調査報告】
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