(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
希土類元素を集積しうるＦＥＲＭ  Ｐ−１４４９０号であるコマモナス  アシドボランス(Comamonas acidovorans) Ｒ−１株。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【産業上の利用分野】
本発明は、新規な希土類元素集積微生物に関するものである。詳しく述べると、本発明は、効率よく希土類元素を集積する能力を有する希土類元素集積微生物に関するものである。
【０００２】
【従来の技術】
希土類元素は、周期表中では自然界に存在する最大の元素グループであり、原子番号５７番のランタン（Ｌａ）から７１番のルテチウム（Ｌｕ）までの１５元素（ランタノイド）にスカンジウム（Ｓｃ）とイットリウム（Ｙ）を加えた１７個の元素群の総称であり、モナザイト（ｍｏｎａｚｉｔｅ）、バストネサイト（ｂａｓｔｎａｅｓｉｔｅ）  、ゼノタイム（ｚｅｎｏｔｉｍｅ）、ユウクセナイト（ｅｕｘｅｎｉｔｅ）及びガドリナイト（ｇａｄｏｌｉｎｉｔｅ）等の鉱物中に含まれている。これらのうち、主に軽希土（ランタンからユウロピウム）の資源としてモナザイト及びバストネサイトを、また、重希土（ガドリウムからルテリウム）の資源としてゼノタイムを工業的規模で分解精練することによって、それぞれの希土類元素が資源として得られる。
【０００３】
また、希土類元素は、イオンの不完全充填状態の４ｆ電子の挙動に基づく磁気的性質及び色などの光学的性質、さらには希土類独特の化学的性質により様々な広範囲な分野において使用されている。具体的には、４ｆ電子の性質を利用したものとしては、カラーテレビ受像機のブラウン管の赤色蛍光体（ユウロピウム）やクォーツの腕時計やウォークマン等の小型電子機器における磁石（サマリウムやネオジム）が、また、化学的性質を利用したものとしては、ガソリンの製造に使用される触媒（ランタンやセリウム）、酸化物高温超伝導体、水素吸蔵合金、セラミックスおよび原子炉の制御材等がそれぞれ挙げられる。
【０００４】
従来、希土類元素を捕集することができる微生物としては、特開昭５９−１１８，８２５号に記載されている微生物がある。しかしながら、特開昭５９−１１８，８２５号は、活性汚泥を用いてイットリウムを選択的に捕集する方法を開示しているのみであり、具体的に微生物を特定するまでには至っていない。
【０００５】
このため、希土類元素を効率的に集積する特定された微生物については今日まで報告された例はなかった。
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】
したがって、本発明は、希土類元素を効率的に集積することのできる微生物を提供することを目的とするものである。
【０００７】
【課題を解決するための手段】
上記諸目的は、希土類元素を集積しうるコマモナス属（Ｃｏｍａｍｏｎａｓ  ）に属する希土類元素集積微生物によって達成される。
【０００８】
本発明は、希土類元素のうち特にイットリウム、ランタン、セリウム、プラセオジム、ネオジム、テルビウム、ホルミウムおよびエルビウムを効率よく集積する希土類元素集積微生物を示すものである。本発明はまた、マンニトールの利用能が陰性であり、アセトアミドのアルカリ化が陰性である希土類元素集積微生物を示すものである。本発明はさらに、受託番号がＦＥＲＭ  Ｐ−１４４９０号である希土類元素集積微生物を示すものである。
【０００９】
【作用】
本発明による微生物は、コマモナス属（Ｃｏｍａｍｏｎａｓ  ）に属し、希土類元素を効率的に集積することができることを特徴とする微生物であり、この微生物の具体例としては、コマモナス  アシドボランス（Ｃｏｍａｍｏｎａｓ  ａｃｉｄｏｖｏｒａｎｓ  ）Ｒ−１株が挙げられ、この菌株は、以下のスクリーニング方法によって得られたものである。なお、以下のスクリーニング方法では自然界で最も多く存在するイットリウム（Ｙ）を希土類元素として使用して、スクリーニングを行った。
【００１０】
低栄養状態でも増殖できる微生物に希土類を集積する能力を備えた目的とする菌株が存在する可能性が高いとの推測から、スクリーニングは２回に分けて、つまり、一次スクリーニングとして低栄養性細菌の探索を行った後、二次スクリーニングとして培養液中のイットリウム濃度を減少させる菌株の選抜を行った。本発明によるスクリーニング方法を以下に具体的に記載する。
【００１１】
岐阜大学の花壇の土壌から採取した試料をそのままあるいは滅菌水で１０〜１０３  倍に希釈したものを１００μｌずつコンラージ棒で、以下の方法で作製された一次スクリーニング用寒天培地（ｐＨ：７．２〜７．４）に塗抹し、この寒天培地を３０℃で７〜１０日間培養した。次に、寒天培地上に形成されたコロニーを釣菌し、滅菌水１０ｍｌに懸濁してさらにこれを１０２  〜１０４  倍に希釈した後、同様の寒天培地に１００μｌずつ塗抹し、さらにこの操作を数回繰り返して菌株を純化した。このような一次スクリーニングによって、栄養分の稀薄な状態においても増殖可能な細菌が得られた。
一次スクリーニング用寒天培地の作製方法  ：  栄養分１／１００の肉汁培地（ポリペプトン  ０．０１％、肉エキス  ０．０１％、ＮａＣｌ  ０．００５％、ｐＨ  ７．２〜７．４）（以下、１／１００希釈肉汁培地と称する）を調製し、これに寒天１．５％（ｗｔ／ｖ）を添加して高圧滅菌したものをシャーレに約２５ｍｌずつ分注して平板培地とした。
【００１２】
次に、以下の方法で作製された、無菌処理済みの二次スクリーニング用液体培地（５ｍｌ）中に、上記一次スクリーニングで純化した各単離菌を白金耳で一白金耳ずつ接種し、３０℃で７日間振盪培養した。さらに、以下の方法にしたがって培養上清中に残存するイットリウム（Ｙ）濃度を測定し、培養上清中のＹ濃度が初濃度（５ｐｐｍ）の５０％未満となった菌を候補菌として選別した。この際、選別された菌株は再度二次スクリーニング用培地（以下、Ｙ含有培地と称する）に接種して同様の操作を繰り返し、Ｙ濃度減少に関する再現性を確認した。このようにして希土類元素を効率的に集積する菌株をスクリーニングした。
二次スクリーニング用培地の作製方法  ：  肉汁（ポリペプトン  １％、肉エキス  １％、ＮａＣｌ  ０．５％、ｐＨ７．２）を脱塩水で１／１００倍に希釈し、この希釈培地に５％（ｖ／ｖ）の硝酸水溶液（１モル／リットル）を中和するのに相当する量［０．１％（ｖ／ｖ）］の５Ｎ  水酸化ナトリウム溶液を予め加え、この溶液を攪拌しながらｐＨが約７．２になるように硝酸イットリウム溶液を徐々に滴下し、これを脱塩水で１リットルとし、０．２μｍの滅菌済フィルターで濾過滅菌し、これを二次スクリーニング用培地（Ｙ濃度：５ｐｐｍ）とした。なお、この二次スクリーニング用培地は表１の組成を有する。
【００１３】
【表１】
0003591884.tif 000002
【００１４】
また、培養上清中に残存するイットリウム（Ｙ）濃度の測定方法を以下に記載する。
スクリーニングする菌株を接種、培養した後のＹ含有培地１．５ｍｌをエッペンドルフ遠心管に入れ、遠心分離（１２，０００ｒｐｍ、４℃、１０分間）することによって得られた培養上清１ｍｌに、０．５ｍｌ  ０．１％アルセナゾＩＩＩ  （Ａｒｓｅｎａｚｏ  ＩＩＩ）溶液、０．５ｍｌ  塩酸・塩化カリウム緩衝溶液（３０ｍｌ  ０．２Ｍ  ＫＣｌ、２０ｍｌ  ０．２Ｍ  ＨＣｌ及び５０ｍｌ  脱塩水を混合して１００ｍｌに定容し、ｐＨが約１．５となった溶液）および１ｍｌ  脱塩水を加え、この混合溶液の６５５ｎｍの吸光度を測定することによって、標準直線に基づいてイットリウム（Ｙ）の濃度を求めた。なお、この際、イットリウムの標準直線は、原子吸光用の硝酸イットリウム溶液［１モル／リットルの硝酸溶液におけるＹ（ＮＯ３  ）３  濃度＝１．０ｍｇＹ／ｍｌ］（和光純薬製）を使用する以外同様の操作を用いることによって作成した。
【００１５】
上記スクリーニングによって得られた菌株の菌学的性質を以下に示す。
【００１６】
（ａ）形態
１）  細胞の形および大きさ：  かん菌で（０．６〜０．９）μｍ×（３．０〜４．０）μｍ
２）  細胞の多形性の有無：  無し
３）  運動性の有無：  無し
４）  胞子の有無：  無し
（ｂ）培養的性質
１）  肉汁寒天平板培養（３０℃、２４時間）：  コロニーは円形で白色の不透明であり、表面は滑らかで光沢がある。コロニーの大きさは、３０℃で２日間培養した際、直径約２ｍｍである。
２）  肉汁寒天培地（３７℃）：  −
肉汁寒天培地（４５℃）：  −
（ｃ）生理学的性質（３０℃、７２時間）
１）  グラム染色：  −
２）  カタラーゼ：  ＋
３）  オキシダーゼ：  ＋
４）  Ｏ−Ｆテスト：  −
５）  硝酸塩の還元：  ＋
６）  インドールの生成：  −
７）  グルコースからの酸の生成：  −
８）  アルギニンデヒドロラーゼ：  −
９）  ウレアーゼ：  −
１０）  エスクリン加水分解：  −
１１）  ゼラチン加水分解：  −
１２）  β−ガラクトシダーゼ：  −
１３）  グルコース同化：  −
１４）  アラビノース同化：  −
１５）  マンノース同化：  −
１６）  マンニトール同化：  −
１７）  Ｎ−アセチルグリコサミン同化：  −
１８）  マルトース同化：  −
１９）  グルコネート同化：  ＋
２０）  カプレート同化：  ＋
２１）  アジペート同化：  ＋
２２）  マレート同化：  ＋
２３）  シトレート同化：  ＋
２４）  フェニルアセテート同化：  ＋（僅かに）
２５）  チトクロムオキシターゼ：  ＋
（ｄ）生理学的性質の補足（３０℃、７日）
１）  Ｔｗｅｅｎ８０加水分解：  ＋
２）  グルコースＯＦからの酸の生成：  −
３）  フルクトースＯＦからの酸の生成：  ＋
４）  キシロースＯＦからの酸の生成：  −
５）  ３．５％ＮａＣｌ中での生育：  −
６）  ＮＯ３  −Ｎ２  ：  決定できず
７）  ＮＯ２  −Ｎ２  ：  −
８）  アセトアミドのアルカリ化：  −
９）  アラントインのアルカリ化：  ＋
１０）  酒石酸のアルカリ化：  ＋
１１）  ウレアーゼ：  ＋（僅かに）
１２）  グルコースの利用：  −
１３）  マンニトールの利用：  −
１４）  アジペートの利用：  ＋
本菌は、バージーズ  マニュアル  オブ  システマティック  バクテリオロジー（Ｂｅｒｇｅｙ´ｓ  Ｍａｎｕａｌ  ｏｆ  Ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃ  Ｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ  ８ｔｈ  ）では分類不可能であったため、本菌の同定をザ  インターナショナル  コレクション  オブ  インダストリアル  アンド  マリーン  バクテリア  リミテッド（ＮＣＩＭＢ）（Ｔｈｅ  Ｎｔｉｏｎａｌ  Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｉｎｄｕｓｔｒｉａｌ  ａｎｄ  Ｍａｒｉｎｅ  Ｂａｃｔｅｒｉａ  Ｌｉｍｉｔｅｄ）に依頼（参照番号：ＩＤ  ２５９１／ＮＣＩＤ  ３４１５、日付：１９９４年７月１８日の報告書類における菌株Ｂ）したところ、コマモナス  アシドボランス（Ｃｏｍａｍｏｎａｓ  ａｃｉｄｏｖｏｒａｎｓ  ）に近似していることが分かった（参考文献：インターナショナルジャーナル  オブ  システマティック  バクテリオロジー（Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃ  Ｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ）１９９１年４１（３）、４４５〜４５０頁、インターナショナル  ジャーナル  オブ  システマティック  バイオテクノロジー（Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃ  Ｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ）１９９１年４１（３）、４２７〜４４４頁、ジャーナル  オブ  クリニカル  マイクロバイオロジー（Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｃｌｉｎｉｃａｌ  ＭｉｃｒｏＢａｉｏｌｏｇｙ  ）１９８６年２３巻、９２０〜９２３頁）。
【００１７】
従来まで、コマモナス  アシドボランス（Ｃｏｍａｍｏｎａｓ  ａｃｉｄｏｖｏｒａｎｓ  ）が希土類元素を集積するという報告はなく、本菌は明らかに公知の菌種と区別されるため、本発明の微生物を新規な微生物であると判断し、本菌株をコマモナス  アシドボランス  Ｒ−１（Ｃｏｍａｎｏｎａｓ  ａｃｉｄｏｖｏｒａｎｓ  Ｒ−１）（以下、単にＲ−１株と称する）と命名した。また、このＲ−１株は、平成６年８月２６日付で工業技術院生命工学工業技術研究所に寄託され、その受託番号はＦＥＲＭ  Ｐ−１４４９０号である。
【００１８】
本発明の菌株の培養に使用する培地は、固体または液体培地のいずれでもよく、また、本細菌が資化しうる炭素源、適量の窒素源、無機塩及びその他の栄養素を含有する培地であれば、合成培地または天然培地のいずれでもよい。
【００１９】
本発明の菌株の培養において使用できる炭素源としては、本菌株が資化できる炭素源であれば特に制限されない。具体的には、微生物の資化性を考慮して、グルコース、フラクトース、マルトース、ガラクトース、デンプン、デンプン加水分解物、糖蜜、廃糖蜜などの糖類、肉エキス、ペプトン、麦、米などの天然物、グリセロール、メタノール、エタノール等のアルコール類、酢酸、グルコン酸、ピルピン酸、クエン酸等の脂肪酸類、グリシン、グルタミン酸、アスパラギン酸等のアミノ酸などを１種または２種以上選択して使用することができる。
【００２０】
本発明の菌株の培養において使用できる窒素源としては、肉エキス、ペプトン、ポリペプトン、酵母エキス、大豆加水分解物、大豆粉末、ミルクカゼイン、カザミノ酸、各種アミノ酸、コーンスティープリカー、その他の動物、植物、微生物の加水分解物等の有機窒素化合物、アンモニア、硝酸アンモニウム、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウムなどのアンモニウム塩、硝酸ナトリウムなどの硝酸塩、尿素等の無機窒素化合物より使用する微生物の資化性を考慮して、１種または２種以上選択して使用する。
【００２１】
本発明において使用できる無機塩としては、マグネシウム、マンガン、カルシウム、ナトリウム、カリウム、銅、鉄及び亜鉛などのリン酸塩、塩酸塩、硫酸塩及び酢酸塩等から選ばれた１種または２種以上を使用することができる。また、培地中に、必要に応じて、植物油、界面活性剤等を添加してもよい。
【００２２】
本発明の微生物に効率よく希土類元素を集積させるために、培地中に希土類元素、より好ましくはイットリウム、ランタン、セリウム、プラセオジム、ネオジム、テルビウム、ホルミウムおよびエルビウムを、１〜２０ｐｐｍ、より好ましくは２〜１０ｐｐｍの濃度で、添加することが好ましい。この際、添加する希土類元素は２種以上の混合物またはミッシュメタル等の合金であってもよい。
【００２３】
本発明において、培養は、本発明の細菌は好気性であるため、好気的条件下で行われ、その際の培養条件は、培地の組成や培養法によって適宜選択され、本菌株が増殖できる条件であれば特に制限されない。通常は、培養温度が、２０〜７０℃、好ましくは２５〜４０℃であり、また、培養に適当な培地のｐＨは、５〜９、好ましくは６〜８である。
【００２４】
また、本発明において、希土類元素の微生物からの分離、精製方法としては、上記培養条件下で培養を行った後、菌体を瀘過あるいは遠心分離等によって集め、例えば、凍結融解処理、超音波処理、加圧処理、浸透圧差処理、磨砕処理等の物理的手段またはリゾチーム等の細胞壁溶解酵素処理若しくは界面活性剤との接触処理等の化学的処理を単独または組み合わせて行うことにより菌体を破砕し、破砕した菌体から目的とする希土類元素を、分別結晶法、分別沈殿法、イオン交換クロマトグラフィー法および溶媒抽出法等の既知の方法を単独若しくは組み合わせて用いて精製する方法が挙げられる。破砕した菌体からの希土類元素の精製法としては、手間、時間および費用の点から、溶媒抽出法、特に溶媒抽出操作を連続して行う向流多段抽出法が好ましく用いられる。
【００２５】
本発明の微生物は、希土類元素を効率よく集積する特性を有するが、従来、コマモナス属（Ｃｏｍａｍｏｎａｓ  ）に属し、上記特性を有する微生物に関する報告はなかった。
【００２６】
【実施例】
以下、実施例によって本発明をさらに具体的に説明する。
【００２７】
実施例１
０．２μｍのポリサルホン製滅菌済フィルターで濾過滅菌したＹ含有培地（Ｙ濃度：５ｐｐｍ）５ｍｌに斜面培地よりＲ−１株を一白金耳接種して、３０℃で２４時間振盪培養することによって前培養を行った。このようにして得られた培養液５ｍｌを、同様にして瀘過滅菌したＹ含有培地１００ｍｌの入った５００ｍｌの枝付き坂口フラスコに入れ、３０℃で１５日間本培養を行った。この培養期間中、２４あるいは４８時間おきに培養液を５ｍｌずつ採取し、採取した培養液について、作用において記載した測定方法にしたがってＹ濃度を測定すると同時に、６６０ｎｍの波長での濁度（ＯＤ６６０  ）および培養液のｐＨを測定した。なお、濁度については、フラスコの側面にある試験管状部分に培養液を流し込み、ここに測定器を差し込んで計測を行った。
【００２８】
このようして得られた培養時間に対するＲ−１株の培養液のＹ濃度の変化および濁度及びｐＨの変化を図１に示す。これより、Ｒ−１株の培養によってＹ濃度は、最初はなだらかに曲線を描いて減少するが、ある時期（培養開始後５〜７日目位で定常期）を境にＹ濃度が急激に３ｐｐｍも減少する（つまり、菌株内にイットリウムが急激に集積される）ことが分かった。
【００２９】
実施例２
０．２μｍのポリサルホン製滅菌済フィルターで濾過滅菌したＹ含有培地（Ｙ濃度：５ｐｐｍ）５ｍｌにＲ−１株を斜面培地より一白金耳接種し、３０℃で７日間振盪培養した。７日間培養した後のＹ含有培養液１．５ｍｌをエッペンドルフ遠心管に入れ、遠心分離（１２，０００ｒｐｍ、４℃、１０分間）することによって培養上清液を得た。続いて、上記遠心分離によって得られた沈殿（菌体）に１５０ｍＭのＮａＣｌを１ｍｌを加えて懸濁させ、これを再度遠心分離にかけ、上清液を得た。この操作を計３回繰り返し、上清液を合わせて洗浄液とした。
【００３０】
このようにして洗浄された沈殿（菌体）に１５０ｍＭのＮａＣｌを１ｍｌを加えて懸濁させた。この懸濁液を超音波破砕機（ブランソン製（ＢＲＡＮＳＯＮ）、デューティ（Ｄｕｔｙ）：３０、出力：３、３０秒×５回）を用いて破砕処理を行なうことによって菌体を破砕し、０．５ｍｌの１５０ｍＭ  ＮａＣｌをさらに加えて遠心分離し、細胞抽出液を得た。そして遠心後の菌体の残渣に０．５ｍｌの濃硫酸、０．５ｍｌの濃硝酸を加え加熱し酸分解させ、これに１５０ｍＭのＮａＣｌを１ｍｌ加え、菌体の残渣液を得た。
【００３１】
なお、比較として、大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ  ＩＦＯ  １０４１）を用いて同様の評価を行なった。
【００３２】
得られた各画分に含まれるＹ濃度を誘導結合プラズマＩＣＰを用い測定した。その結果を図２に示す。
【００３３】
この結果より明らかなように、大腸菌では全く集積されていなかったＹが、Ｒ−１株では初期濃度の約８０％近くが菌体に集積されていることがわかる。
【００３４】
実施例３
図３に記載の各希土類元素［ランタノイド（Ｌａ〜Ｌｕ）及びイットリウム  （Ｙ）］の硝酸塩溶液を硝酸イットリウム溶液の代わりに用いる以外は表１と同様の培地組成を有する希土類元素含有液体培地を孔径０．２μｍのポリサルホン製滅菌済フィルターで瀘過滅菌した。この希土類元素含有液体培地（各希土類元素濃度：５ｐｐｍ）５ｍｌに、斜面培地よりＲ−１株を一白金耳ずつ接種して、３０℃で７日間振盪培養し、培養液中に含まれる各希土類元素濃度を測定し、初濃度に対する減少率を算出した。なお、各希土類元素の濃度の測定方法は、使用する希土類元素が異なる以外は作用において記載されたイットリウム濃度の測定方法と同様であるが、６５５ｎｍの波長における感度が元素ごとに異なるため、標準曲線を各元素ごとに作成した。
【００３５】
結果を図３に示す。図３に示されるように、原子量の比較的小さいイットリウムからネオジムまでが２０〜４０％の比較的高い減少率を示している。さらに、テルビウム、ホルミウム、エルビウムなどの重希土でも２０％以上の高い減少率を示している。
【００３６】
【発明の効果】
以上述べたように、本発明によるコマモナス属（Ｃｏｍａｍｏｎａｓ  ）に属する微生物は新規な微生物であり、希土類元素を効率よく集積できるものである。
【図面の簡単な説明】
【図１】図１は、本発明の微生物による希土類元素集積能を説明するための培養時間に対する培養液中のイットリウム（Ｙ）濃度の変化、および培養液の濁度及びｐＨの変化を示すものである。
【図２】図２は、Ｙの分布状況を示す図である。
【図３】図３は、本発明の微生物によるランタノイドに対する選択性を示す図である。
【図１】
0003591884.tif 000003
【図２】
0003591884.tif 000004
【図３】
0003591884.tif 000005