(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
１−（５−ブロモフラン−２−イル）−２−ブロモ−２−ニトロエテンを含み、さらに水溶性ポリマーを含有する殺微生物組成物であって、「インビトロ」栽培植物の生産に使用する培養培地を滅菌するための上記組成物。
【請求項２】
使用するポリマーは高分子量ポリエチレングリコールである「請求項１」記載の殺微生物組成物。
【請求項３】
使用する高分子量ポリエチレングリコールは、好ましくは分子量6,000〜20,000である「請求項２」記載の殺微生物組成物。
【請求項４】
前記ポリエチレングリコールはPEG  6000である「請求項３」記載の殺微生物組成物。
【請求項５】
固体分散法を用いる「請求項１」の殺微生物組成物の取得方法。
【請求項６】
組成物は、１−（５−ブロモフラン−２−イル）−２−ブロモ−２−ニトロエテンと水溶性ポリマーとの加熱による融合による分散によって得られる「請求項５」記載の方法。
【請求項７】
組成物は、１−（５−ブロモフラン−２−イル）−２−ブロモ−２−ニトロエテンと水溶性ポリマーとの溶媒を用いる共沈殿によって得られる「請求項４」記載の方法。
【請求項８】
使用する溶媒は極性溶媒である「請求項７」記載の方法。
【請求項９】
使用する溶媒は、エタノール、クロロホルム、メタノールまたはイソプロピルアルコール、その他溶媒である「請求項８」記載の方法。
【請求項１０】
「インビトロ」栽培植物の生産に使用する培養培地の夾雑物の制御のための滅菌剤としての、１−（５−ブロモフラン−２−イル）−２−ブロモ−２−ニトロエテンおよび高分子量ポリエチレングリコールからなる組成物の使用。
【請求項１１】
「インビトロ」栽培植物の生産に使用する培養培地中の、根を成長させるための薬剤としての、１−（５−ブロモフラン−２−イル）−２−ブロモ−２−ニトロエテンおよび高分子量ポリエチレングリコールからなる組成物の使用。
【請求項１２】
１−（５−ブロモフラン−２−イル）−２−ブロモ−２−ニトロエテンおよび高分子量ポリエチレングリコールからなる組成物を滅菌剤として使用する、「インビトロ」栽培植物の生産に使用する培養培地中の滅菌方法。
【請求項１３】
前記滅菌剤は、同時に、「インビトロ」栽培植物の生産に使用する培養培地中の、根を成長させるための薬剤でもある「請求項12」記載の方法。
【請求項１４】
使用する１−（５−ブロモフラン−２−イル）−２−ブロモ−２−ニトロエテンの至適用量は30〜45μg/mlである「請求項12」または「請求項13」に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
技術分野
本発明は，微生物学の分野，とくに活性成分として１−（５−ブロモフラン−２−イル）−２−ブロモ−２−ニトロエテンを含有する殺微生物組成物に関し，それは細菌およびかびの夾雑物質の制御のために培養培地の化学滅菌剤として使用される．
従来技術
たとえば「インビトロ」で栽培される植物の生産における培養培地の夾雑物に対し，即座に汚染を排除できるのはオートクレーブしかないことから，その全体的過程にかなりの損失を生じる．場合により，様々な抗生物質たとえばセフォタキシム，ノボビオシン，およびジヒドロストレプトマイシンが夾雑物質の防止に使用されてきたが，満足できる結果は得られていない．
他方，特許出願WO 89/11793には，広いスペクトルの工業的抗微生物剤として２−（２−ブロモ−２−ニトロエテニル）−フランの使用が記載されている．
化合物,1−（５−ブロモフラン−２−イル）−２−ブロモ−２−ニトロエテンは，以前に記載されていて（Z.N.Nazarova,1972,"Synthesis of some furylnitroolefins,with potential biolbical activity",Khim.Farm.Zh.6（10）:5−８ならびにZ.N.Nazarovaら,1972,"Physicochemical properties and reactivity of furylnitroolefins,Zh.Org.Khim.8（２）:404−11），また強力な抗細菌および抗かび活性を有する物質として知られている（欧州特許出願EP−A 0 678 516）．
発明の開示
本発明は，培養培地中の夾雑物質たとえば細菌またはかびの夾雑物質の制御に有利に使用できる殺微生物組成物を提供する．
固体および液体培養培地の滅菌に使用できるこの技術的解決はとくに，「インビトロ」栽培植物の生産に有利であり，また驚くべきことに，その利用は，従来の培地に要求される穀類インビトロ植物の根づけ過程に必要なホルモンの添加を含めて従来の滅菌方法を完全に置換できることが見出されたのである．
固体培地におけるこの活性成分の滅菌剤としての使用に際しての主な限界は，そのほとんど０に近い水溶性であり，また水性培地における低い溶解速度であった．この問題の解決の可能性には，粒子サイズを分子レベルまで低下させることを可能にする固体の分散が考えられる．
本発明において提案される方法では，滅菌剤として活性成分１−（５−ブロモフラン−２−イル）−２−ブロモ−２−ニトロエテンを含有し，高分子量ポリエチレングリコールおよび他のポリマーによって形成される生理学的に不活性で水に易溶性のマトリックス中における上記化合物の融合または共沈殿による分散物から構成される殺微生物組成物が提供される．
１−（５−ブロモフラン−２−イル）−２−ブロモ−２−ニトロエテンの融合による分散を行うためには，製造方法および温度パラメーターの選択ならびに攪拌時間の選択を活性成分および選ばれたポリマーの融点および熱安定性に基づいて実施した．
化合物,1−（５−ブロモフラン−２−イル）−２−ブロモ−２−ニトロエテンは89〜90℃の温度で分解することなく融解し,110℃まで熱に安定である．
しかしながら，活性成分と融点110℃以上のポリマーの固体分散系の処理は，活性成分の熱安定性に影響し，したがって溶媒中での共沈殿が推薦される．
１−（５−ブロモフラン−２−イル）−２−ブロモ−２−ニトロエテンの融合による分散を行うためには，活性成分とPEG−6000の1:20〜1:1の比率における物理的混合物を60〜80℃で融合するまで加熱し,15分間絶えず攪拌下に維持して完全に均一な融解物を達成する．ついで融解した混合物を冷蔵庫で冷却したステンレス鋼のプレート上に注いで薄い層に広げ，このようにして固化過程の速度を保証する．得られた固体を粉砕機で粉末化し,0.2mm未満の粒子サイズに篩過する．
活性成分とPEG−6000の固体分散物の融点の範囲はその混合物の組成により変動し，組成が活性成分とPEG−6000の二成分系の共融混合物の一致する30％での融合分散による固体分散物については53〜54℃である．
１−（５−ブロモフラン−２−イル）−２−ブロモ−２−ニトロエテンの共沈殿によって分散物を得るためには，活性成分とポリマーの1:20〜1:1の比率での混合物を極性溶媒中,10〜60分間の間隔で40〜60℃の温度範囲に加熱して溶解する．ついで温度を40〜80℃に制御しながらそれを真空中ロータリーエバポレーターで蒸発させる．このようにして得られた固体を粉砕機で粉末化し,0.2mm未満の粒子サイズで篩過する．
１−（５−ブロモフラン−２−イル）−２−ブロモ−２−ニトロエテンを含有する液体培養培地の調製には，この化合物を，張力活性を有する化合物たとえば可溶性II S−15およびとくにCremophoreを用いた水性処方中に包含させる．この組成物は上記化合物の優れた安定性および溶解性，ならびに上記培地中で栽培される生物体に悪影響を与えない濃度を期待して調製された．
上述の方法を用いて１−（５−ブロモフラン−２−イル）−２−ブロモ−２−ニトロエテンを含有する安定な組成物が得られたならば，とくに「インビトロ」栽培植物の増殖に用いられる固体培養培地の滅菌剤として使用する場合の至適用量を知るために様々なアッセイを実施した．植物毒性は，壊死，白化，増殖率および接合部−接合部距離（馬鈴薯について）を考慮して評価した．
これらの培養試験（バナナ，馬鈴薯およびサトウキビ）では,1−（５−ブロモフラン−２−イル）−２−ブロモ−２−ニトロエテンの至適用量は30〜45μg/mlの範囲であった．
以下の実施例は本発明の例示を目的とするものである，本発明の範囲の限定を意図するものではない．
実施例1:融合法によって得られた固体分散物の純度に対する温度および時間の影響．
融合法によって得られた１−（５−ブロモフラン−２−イル）−２−ブロモ−２−ニトロエテン含有組成物の純度に対する温度および時間の影響の試験を実施した．
得られる固体分散中の活性成分の純度は，使用された温度および攪拌時間に依存することが観察された．
表１は,1−（５−ブロモフラン−２−イル）−２−ブロモ−２−ニトロエテンをPEG−6000中（30:70）において融解温度80〜120℃および攪拌時間15〜60分を用いて固体分散した場合に得られるこの化合物の純度百分率を示す．
すべての場合，試験は以下の記載のようにして行った．
80℃の温度および15分の攪拌時間では１−（５−ブロモフラン−２−イル）−２−ブロモ−２−ニトロエテンおよびPEG−6000の物理的混合物（30:70）を融解するまで加熱し，一定の攪拌下に15分間維持し融解物の完全な均一化を達成する．この融解した混合物を冷却したステンレス鋼のシート上に薄い層として注ぐ．このようにして得られた固体を粉砕機で粉末化し,0.2mm未満の粒子サイズに篩過する．
上述の条件下に得られた分散物中の活性物質の純度をガスクロマトグラフィーにより測定したところ，約99.89％であった．
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実施例2:融合または共沈殿による分散過程後のおける１−（５−ブロモフラン−２−イル）−２−ブロモ−２−ニトロエテンの溶解像の測定．
活性成分の水性均一溶液／懸濁液を得るにはその溶解像が重要である．
表２は加湿，微粉化および標準粒子サイズの活性成分ならびの30％のPEG−6000を用いた活性成分の溶解速度間の比較を行った結果である．活性成分の性質がいかに有意に改善され，その培養培地中への分散の速度および均一性が保証されるかに注目すべきである．
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実施例3:PEGな中に希釈／分散された活性成分の化学的安定性の測定．
ポリエチレングリコール中に溶解／分散された活性成分の化学的安定性をその定量分析技術としてガスクロマトグラフィーを用いて試験した．
385日間継続した化学的安定性の試験により分解はないことが証明された．
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実施例4:選択された微生物に対する１−（５−ブロモフラン−２−イル）−２−ブロモ−２−ニトロエテン含有製剤の活性．
製剤試験の完了後，農業有害生物および「インビトロ」培養植物の生産過程において存在する夾雑微生物に対する生成物の活性を測定するために，インビトロアッセイを実施した．細菌に対する試験は試験管中で系列希釈法（Beiley W.R.＆ Scott E.S.,Diagnostic Microbiology 4th Ed.,pp.319−329,The C.V.Mosby Co,St.Louis,1974）のE.Silveriaのよる改良方法（Silveria E.ら,Determination dela minima concentration inhibitoria（M.C.I.）de sustancias bioactivas,Boletin Cientifico ISCM IV（２）,1986）に従い実施し，また，かびに対する作用は，コロニー増殖直径（Casadens II:Metodo de investigaciones fitopatologices,Instituto Ibeeroamericano de Cooperracion para la Agric ultura.San Jose de Costa Rica,1985）により評価した．
生物活性生成物の挙動の評価に用いる濃度は１〜100μg/mlとした．インキュベーションの培養培地，温度および間隔は，アッセイする微生物の条件および特性によって調整した．
LD50はプロビット法（Finney D.J.,Probit analysis.3rd Ed.,Cambridge University Press,1971）によりμg/mlで計算した．
この試験で得られた結果は表４に示す．
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実施例5:「インビトロ」栽培植物の生産に使用される培養培地における１−（５−ブロモフラン−２−イル）−２−ブロモ−２−ニトロエテンの活性の測定．
バナナ，馬鈴薯およびサトウキビのインビトロ栽培におけるかびおよび細菌の夾雑の対する活性成分のインビトロ活性が証明されたのち，本発明者らは以下のように実験を進めた．
インビトロ植物の生産に使用するフラスコおよび蓋の効果的な洗浄は界面活性剤を用いて行い，それらを十分な水で濯ぎ，ついで容器を次亜塩素酸ナトリウムの0.5％溶液に３分以上の間隔で沈めた．ついでフラスコを上下逆さにし,24時間前に完全に乾燥させて使用した．
培養培地が調製され，温度が約60〜80℃に達したならば，組成物の必要な重量を加えて濃度を35μg/mlとし，ついでその所要量を24時間後に植え付け操作に先立って各フラスコに注いだ．
濃度は，試験する培養培地中におけるその有効性および植物毒性作用の欠如に基づいて選択した．
アッセイの範囲は１〜50μg/mlとした．バナナ，馬鈴薯，およびサトウキビのインビトロ栽培における挙動を72時間後および，増殖培地のおける以後の二次培養を実施するためその培養に要する期間中，評価を行った．このような試験は根づけ培養培地中で実施した．
植物毒性は壊死，白化，増殖率および接合部−接合部距離（馬鈴薯の場合）を考慮して評価した.3種の培養の至適用量は約30および45μg/mlとした．
増殖相におけるMusa sp（バナナ樹）の培養に対して２種のスケールアップ試験を実施した.3回のアッセイ時における枯死の百分率は，活性成分を添加して行ったスケールアップ試験では0.18％，標準方法では１％であった．
この試験で得られた結果は表５に示す．
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３つのアッセイから，夾雑物はオートクレ−ブを用いて培養培地の物理的滅菌を使用した対照の場合と同様に挙動し，それらは第11日目から上昇を始めた．さらに，化学的滅菌剤を作用させた場合には，増殖率の上昇が認められた．
オートクレーブ処理も根の誘導を刺激するホルモンの添加も行わない根づけ培地は，より短時間の間により強力でより豊富な根の出現によって標準培地の場合より優れた肉眼で確認可能な効果を示した．検出された夾雑％は，対照と比較して有意ではなかった．
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２つのスケールアップ試験はMusa spに対し実施した．クローンGran nayneおよびFHIA−30を根誘導ホルモン（A.I.A.）を添加しない根づけ培養培地中で試験した．両クローンでは５日後により多量のより強力な根が観察され，一方，標準操作によった対照では同じ期間内に小さな根の発生を示したのみであったことから，化学滅菌を行った変異株よりも良好に挙動した．