(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ブタ不育呼吸器不全症候群ウイルスをサル腎細胞中で培養することを特徴とするブタ不育呼吸器不全症候群ウイルスの増殖方法。
【請求項２】
ブタ不育呼吸器不全症候群ウイルスを接種したサル腎細胞を、細胞変性作用が観察されるまでインキュベートすることを含む請求項１に記載の方法。
【請求項３】
ブタ不育呼吸器不全症候群ウイルスをサル腎細胞で継代することを含む、ブタ不育呼吸器不全症候群ウイルスの弱毒化方法。
【請求項４】
弱毒化されたブタ不育呼吸器不全症候群ウイルスを形成するために、ブタ不育呼吸器不全症候群ウイルスをサル腎細胞で継代することを含む方法であって、前記ウイルスの毒性を有したまま増殖する能力が失われる請求項３に記載の方法。
【請求項５】
前記サル腎細胞がＭＡ‐１０４細胞またはそれに由来する細胞であることを特徴とする、請求項１〜請求項４のいずれかに記載の方法。
【請求項６】
ブタ不育呼吸器不全症候群ウイルスが、ＡＴＣＣ取得番号ＶＲ−２３３２として寄託されたブタ不育呼吸器不全症候群ウイルスである請求項１〜請求項５のいずれかに記載の方法。
【請求項７】
血清を含む培地でブタ不育呼吸器不全症候群ウイルスを接種したサル腎細胞をインキュベートすることを含む請求項１〜請求項６のいずれかに記載の方法。
【請求項８】
血清がウシ胎児血清を含む請求項７に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【従来の技術】
１９８７年以降、養豚産業は未知の病気で、しばしば「ブタミステリー病」（ＭＳＤ、最近は「ブタ不育呼吸器不全症候群」（ＳＩＲＳ）と呼ばれている）と呼ばれる壊滅的伝染病の被害にあっている。これは、研究者らが病原を同定できなかったためである。ＭＳＤは、北アメリカおよび欧州の全域にわたって何十万ものブタに被害を与えてきた。ブタ１頭がＭＳＤに感染すると、３乃至７日以内に群れ全体にＭＳＤが感染する場合もある。１９８７年から１９９１年にかけて、養豚産業はＭＳＤが原因で何百万ドルもの利益を損失してしまった。最近の調査から、ＭＳＤによって棚卸した雌ブタあたり  ２５０ドルから  ５００ドルの財務上の損失が生じたと推定されている。
【０００２】
ＭＳＤは、ブタに複数の症状をもたらす。ブタの飼育群におけるＭＳＤの最初の徴候は、一般に、食欲不振および軽度の発熱である。さらに、この群のブタの特に、耳、乳頭、鼻ならびに頸および肩の前頭部の皮膚に青みがかった変色が見られることがある。感染した皮膚の損傷は、非回復性になることがある。ただし、ＭＳＤの関最も壊滅的な症状は、ブタの飼育群に生じる生殖不全である。ＭＳＤによって、雌ブタは仔ブタを死産したり、呼吸困難の標準より小さい虚弱な仔ブタを産んだり、離乳前に死亡する仔ブタを産んだりする。ＭＳＤ起因のその他の生殖性の徴候には、早産、受胎率の低下、複数の雌ブタにおける周期不全および同腹の仔ブタ総数の減少などがある。生殖不全によるブタの損失数は、年間のブタ生産量の約１０乃至１５％であると推定されている。
【０００３】
このため、研究は、ＭＳＤの病原を単離する方向に向けられてきた。この結果、多くの潜在的細菌病原体が単離されている。ただし、潜在的細菌病原体の型は、養豚場によってきまざまであった。ウイルス調査には、蛍光抗体試験、電子顕微鏡検査、血清学的方法などがある。これらの方法によって、ＭＳＤの病原を追求することはできなかった。その結果、ブタの集団治療に使用することができるワクチンの開発に成功した者はいない。
【０００４】
【発明が解決しようとする課題】
したがって、本発明の目的は、ブタの飼育群に投与した場合に、飼育集団中のＭＳＤの発現を低減することができる血清含有ワクチンを提供することにある。本発明の別の目的は、ブタ母集団をそのワクチンで治療し、そのブタ母集団からＭＳＤを根絶する方法を提供することにある。また、本発明の別の目的は、ＭＳＤ診断方法を提供することにある。
【０００５】
【課題を解決するための手段】
上記のおよび別の目的は、ブタにおけるＭＳＤの予防および治療するための血清含有ワクチンならびにその診断方法に向けられた本発明によって達成することができる。
【０００６】
【発明の実施の形態】
本発明のワクチンは、ブタにＭＳＤを感染させる病原菌由来である。病原菌は、ＭＳＤに感染したブタの調整組織接種材料から得られ、肺組織から得られることが好ましい。病原菌は、ブタ感染組織の接種材料に感染したサル細胞系などのｉｎ ｖｉｔｒｏほ乳類細胞培養生成物であることが好ましい。この接種材料は、大きさが約１．０ミクロン以下の生物学的粒子であることが好ましく、０．５ミクロン以下であることが好ましく０．２ミクロン以下であることが最も好ましい。接種材料は、一般的な抗体で中和することも好ましい。
【０００７】
本発明に従って、ノトバイオートの仔ブタおよび妊娠ブタに鼻腔内接種した場合、ＳＩＲＳ影響下群の仔ブタから得られた組織ホモジネートは、ＳＩＲＳの呼吸性生殖性形態を複製した。ノトバイオートの仔ブタに、未濾過接種材料または濾過接種材料（０．４５、０．２２または０．１μｍ）で同様に接種したところ食欲不振に陥り、ＳＩＲＳ影響下の群れに見られる病変に類似した顕微鏡的肺病変を発現した。同様の接種材料は、ＳＩＲＳ影響下群に見られる生殖的効果と同一の効果も引き起こした。ウイルス因子を組織ホモジネートから検出した。このウイルス因子によって、仔ブタおよび妊娠豚のＳＩＲＳ類似の疾患が生じる。ウイルス因子は、現在まで分類されていない。ただし、ウイルス因子は、選好性非血球凝集外被ＲＮＡウイルスである。ＳＩＲＳを引き起こすウイルス因子は、１９９１年０７月１８日、メリーランド州ロックビル所在のアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション（ＡＴＣＣ）、登録番号ＡＴＣＣ  ＶＲ−２３３２で寄託されている。
【０００８】
感染したブタの治療に用いる血清は、ほ乳類抗体をＭＳＤ病変まで輸送する。これは、上述の病原菌で前処理した（ブタであるか否かを問わず）ほ乳類血漿から得られる。
【０００９】
選択的に、血清をハイブリドーマ法によって生成したＭＳＤに対するモノクロナール抗体から調合する。
【００１０】
ＭＳＤ診断方法は、ＭＳＤに対する免疫特異抗体の使用に基づく。本方法は、肺生検試料の濾過ホモジネートまたは生検試料もしくは他の組織から得た同様の（生検またはホモジネート）試料と免疫特異抗体とを結合させる必要があり、この結合で形成された接合体には既知の検出技術を利用する。接合体の定着または沈殿と、ＥＬＩＳＡ、ＲＩＡ、サザンブロット法、ノーザンブロット法、ウエスタンブロット法などの検出技術を用いることによって、ＭＳＤを診断できる。
【００１１】
本発明によれば、ＭＳＤに対して抗体を使用する治療方法および診断方法には、上述の選好性非血球凝集外被ＲＮＡウイルスに対するモノクロナール抗体（ＩｇＧやＩｇＭ）が必要である。模範的な抗体には、ＳＤＯＷ１２とＳＤＯＷｌ７があり、各々登録番号ＨＢ  １０９９６とＨＢ  １０９９７で１９９２年  ３月２７日付けでアメリカン・タイプ・カルチャーに寄託されている。
【００１２】
発明の詳細な説明
ブタミステリー病（ＭＳＤ）の決定は困難であった。しかし、本発明によって、ＭＳＤを引き起こす病原菌を単離し成長させることができた。本文中に使用するように「病原菌」は、ブタに対して不育症候群および呼吸器症候群を生じさせることができるウイルスを言う。さらに詳述すると、病原菌は、ブタに対して不育と呼吸器疾患とを生じさせる能力がある選好性非血球凝集外被ＲＮＡウイルスおよびその動物病理学的突然変異体である。病原菌の単離は大発見である。この発見によって、ワクチンの生産、感染したブタを治療するための抗体血清の生産および診断方法の確立が可能になる。
【００１３】
ワクチンは、不活性のまたは弱毒化したＭＳＤ病原菌から成り、ＭＳＤの特性的損傷を示すブタ感染肺組織またはその他のブタ組織調整の接種材料由来である。病原菌の機能的誘導体として、サブユニットワクチン、ベクターワクチン、組換体ワクチン、合成ペプチドワクチンなども、考えられる。ＭＳＤワクチンの開発には、複数のステップを踏む方法を利用する。初めに、ＭＳＤ病原菌を感染ブタ組織、好ましくは肺組織から分離および単離することによって接種材料として得る。次に、ＭＳＤ病原菌を既知のワクチン学的技法を使用して処理し、抗ＭＳＤワクチンを生成する。
【００１４】
ＭＳＤ病原菌は、ＭＳＤによって呼吸が急速なブタの肺組織から接種材料として単離することが好ましい（胎児組織などのその他の組織を使用してウイルスを回収することもできる）。このようなブタを殺処分し、肺組織を摘出する。次に、摘出その肺組織を、肺胞腔中にマクロファージ、変性細胞およびデブリの存在によって生じる肥大した肺胞間について調べる。これらの特性は、ＭＳＤ病原菌の存在を示すものである。この種の損傷を示す別のブタ組織を使用して、ＭＳＤ病原菌を単離することもできる。
【００１５】
続いて、（生理的塩類溶液、リンガー溶液、ハンクス均衡塩類溶液、最小必須培地などの）薬学的に耐用し得る水溶液で、肺組織またはその他のブタ組織を均質化して、組織がホモジネートの容量に対して１０％の重量から成るようにする。ホモジネートを、細孔直径が０．０５乃至１０ミクロンまでの、好ましくは０．４５、０．２および  ０．１ミクロンの一連の濾過器にかけて、ＭＳＤ病原菌を含む濾過ホモジネートを生成する。結果的に、濾過ホモジネ−トは、約１．０ミクロン以下の、好ましくす  ０．２−  ０．１ミクロンの大きさの生物学的粒子を含む。ホモジネートをさらにフロインド不完全アジュバンドに混合して、抗体産生をほ乳類への注射時に刺激することができる。この混合物をブタのＭＳＤ発現用接種材料またはＭＳＤ病原菌のさらに進んだ研究用の接種材料として使用することもできる。
【００１６】
病原菌を含む濾過ホモジネートを得た後に、ホルマリンやアセトアルデヒドなどを含むアルデヒド試薬、クレゾールやフェノールなどを含む反応性酸性アルコール、安息香酸やベンゼンスルホン酸などの酸、ベータ−プロピオンラクトンやカプロラクトンなどのラクトン、カルボニルジイミダゾールなどの活性ラクタム、カルボジイミド、カルボニルジヘテロ芳香族化合物などの標準的化学的不活性化剤を含む濾過ホモジネートを処理することによって、病原菌を不活性化または死滅させることができる。紫外線照射やγ線などによる照射を使用して病原菌を不活性化または死滅させることもできる。選択的には、この病原菌をブタ以外のほ乳動物または鳥の起点由来の細胞培養で反復成長させることによって弱毒化し、病原菌が毒性を有して繁殖する能力を失わせることができる。細胞培養による弱毒化技術に関する詳細は、以下に述べる。
【００１７】
死滅または弱毒化した病原菌を、免疫応答刺激用稀釈アジュバント溶液を添加することによって、適切な力価まで稀釈する。力価測定は、ＥＬＩＳＡ、ＲＩＡ、ＩＦＡなどの免疫学的試験または以下に述べる酵素基質検出試験において、ＭＳＤ抗体を測定することによって、達成することができる。
【００１８】
病原菌の精製形態を生成するには、上述の濾過ホモジネートを一連のｉｎ ｖｉｔｒｏ細胞試料に接種することもできる。腎臓、肝臓、心臓などのほ乳類の器官細胞と、脳細胞細胞、肺細胞、脾細胞、精巣細胞、鼻甲介、自血球細胞および赤血球細胞ならびにリンパ節とによる細胞試料のほか、昆虫胚試料および鳥胚試料を使用することができる。これらの細胞試料に適切な培地には、ウシ胎児血清およびウシ胎児寒天、浸出物物寒天、脳−心臓浸出物の肉汁および寒天などほ乳類支持細胞成長因子などを含む。ほ乳類細胞は、サル腎細胞であることが好ましく、アフリカ産ミドリザル腎胚細胞−−サル腎細胞系（ＭＡ−１０４）−−であることが最も好ましい。
【００１９】
濾過ホモジネートを細胞試料に接種し、培養を増殖きせた後、培養細胞から成る個体凝集を細胞含有の無菌培地に収集し再導入する。この系列の最終培養由来の培養液は、毒性病原菌の精製形態を提供する。また、一連の反復収集物を形成した後、培養を育成し、培養液を収集しその液を異なる細胞種を培養するための接種材料として使用することができる。この方法では、病原菌を弱毒化して、異種培養由来の培養液によって弱毒化病原菌の精製形態を提供する。
【００２０】
ポリクローナル抗体血清を、ほ乳類の免役応答を引き起こす抗原物質として病原菌を使用することによって生成することができる。培養液または上述の方法で調整した接種材料を、ウマ、ヤギ、マウス、ウサギなどのブタ以外のほ乳動物に対して刺激アジュバントを投与することができる。抗原刺激を反復した後、血液採取した動物の血清に一般に認められる上述の疾患に特異的な抗体に対して固着した抗体を使用して、血清の一部を取り出して抗原精製をすることができる。さらに、生理的塩類溶液と分子量約１０，０００のタンパク様化合物の収集物とを含む糖ゲルカラムなどによるクロマトグラフィーによって半精製した血清を処理し、治療に用いる精製ポリクローナル血清を生成する。
【００２１】
モノクロナール抗体血清をハイブリドーマ技術によって生成することができる。ＭＳＤ含有細胞培養ライゼートまたは上述の勾配−精製ＭＳＤでマウス、ブタ、ラット、ウサギまたはその他の適切な種を免疫化した後、動物の脾臓を摘出し完全な細胞試料に変換することができる。ＫｏｈｌｅｒおよびＭｉｌｓｔｅｉｎの方法（Ｋｏｈｌｅｒら、Ｎａｔｕｒｅ，２５６，  ４５９−９７（１９７５））に従って、脾臓細胞試料由来の免疫細胞を骨髄腫細胞と融合させて、ハイブリドーマを生成することができる。このハイブリドーマを培養し、病原菌を輸送する培養液または接種材料に対して培養液を試験することによって、ＭＳＤ病原菌に対するモノクロナール抗体を産生するハイブリドーマ培養を単離することができる。このハイブリドーマをホスト種の腹膜に導入することによって、ハイブリドーマを腹膜で増殖させることができる。腹水を収集することによって、病原菌に対するモノクロナール抗体を含む体液を生成することができる。ハイブリドーマ細胞培養由来の細胞培養上澄みを使用することもできる。モノクロナール抗体をマウス誘導ハイブリッド細胞系によって生成することが好ましく、この場合の抗体は、ＩｇＧ型またはＩｇＭ型の免疫グロブリンである。ＳＩＲＳの病原菌に対する模範的モノクロナール抗体は、ＳＤＯＷ１２とＳＤＯＷ１７である。本明細書の別の箇所で述べる使用方法の他に、本発明によるモノクロナール抗体を、診断用組成物および治療用組成物ならびに、受動免疫方法や抗イディオタイプワクチン調整方法などの診断方法および治療方法を利用することができる。
【００２２】
本発明のワクチンは、ブタ母集団に見られるＭＳＤ感染を予防し治癒することができる。ｉｎ ｖｉｖｏにおいて、効果的に予防および抗感染用に使用するために、ワクチンには死滅病原菌または弱毒化病原菌を含んでおり、単独でまたはブタと適合する薬学的担体と組み合わせて投与することができる。このワクチンは、経口、非経口、経鼻腔または経静脈的に誘導することができる。ワクチン容量決定に関連する因子には、年齢、体重および感染したブタの母体抗体レベルなどが含まれる。投与量は、１ｍｌあたりの５０％組織培養感染価で１０３−１０７であり、容量で１ｍｌ乃至５ｍｌで投与することが好ましい。ワクチン投与は、約１４−２８日間で投与して、ブタがＭＳＤ感染に対して確実に免疫を発現させることが望ましい。
【００２３】
ＭＳＤワクチンは、様々な異なる投与形態で投与することができる。死滅または弱毒化させたＭＳＤ病原菌を含む水性培地は、錠剤やカプセルなどの形態をしたラクトース、デンプン、炭酸カルシウム、クエン酸ナトリウムなどの薬学的に耐用し得る不活性賦形剤および緩衝剤で乾燥させて組み合わせることができる。これらの組み合わせは、粉末状にしたり、水溶液に懸濁したりして、この粉末および水溶液またはそのいずれかを動物用飼料や動物用飲料水に添加しても良い。これらのＭＳＤワクチン粉末または溶液をさまざまな既知の薬剤によって、適当な甘味や風味を与えて、ブタが経口でワクチンを摂取するように促進しても良い。
【００２４】
非経口投与を行なうには、死滅または弱毒化させたＭＳＤ病原菌を食塩水、水、プロピレングリコール、などの当業者らには良く知られている薬学的に耐用し得る担体と組み合わせることができる。この形態では、ワクチンを非経口的、経鼻腔的および経口的手段で、獣医学関係の当業者には良く知られる方法によって投与することができる。ＭＳＤワクチンは注射器によって静脈投与することもできる。この場合、食塩水などの薬学的に耐用し得る水性担体と組み合わせる。ＭＳＤワクチンの非経口的および静脈的製剤形態は、乳化剤および懸濁剤またはそのいずれか一方であるが、薬学的に耐用し得る稀釈剤を併用し、ＭＳＤワクチンの誘導および投与量を制御することもできる。
【００２５】
ＭＳＤ診断方法は、上述のポリクローナル抗体血清またはモノクローナル抗体血清を用いて実行することができる。抗体血清または生検組織ホモジネートをポリスチレン表面またはタンパク質を固定する別のポリマー表面に接触させることによって固定することができる。さらに、抗体血清および抗体ホモジネートの残りを添加し、培養し、非固定材料を洗浄などによって除去する。抗体血清用の標識種−特異抗体を加えて、標識の存在および量を測定する。標識測定は、検定する組織にＭＳＤが存在することを示す。この方法の一般的な態様には、酵素結合免疫吸着検定方法（ＥＬＩＳＡ）、ラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）、免疫蛍光検定（ＩＦＡ）、ノーザンブロット免疫検定、サザンブロット免疫検定、ウエスタンブロット免疫検定などがある。
【００２６】
【実施例】
以下の例は、本発明の特異的態様をさらに説明するものである。ただし、以下の例は、上述の開示において十分に特徴づけられた本発明の範囲を限定するものではない  。
【００２７】
例 １
ＭＳＤ病原菌は、接種材料の処理後、ノトバイオートブタに接種して、ＭＳＤ病原菌に病原性が残存するかどうかを測定し、物理化学的特性（大きき、脂質溶剤に対する感受性およびプロテアーゼ感受性）を測定することによって特徴付けることができる。
【００２８】
Ａ．材料
ノトバイオートブタ。  ノトバイオートブタに対する誘導方法および維持方法はＢｅｎｉｆｉｅｌｄら、Ａｍ．  Ｊ．  Ｖｅｔ．  Ｒｅｓ．，  ４９，３３０−３６（１９８８）およびＣｏｌｌｉｎｓら、Ａｍ．  Ｊ．  Ｖｅｔ．  Ｒｅｓ．，  ５０，８２４−３５（１９８９）に記載されている。雌ブタをＭＳＤを含む生殖上の問題がない群れから得ることができる。死産およびミイラ化した胎児またはそのいずれか一方を伴う同腹子は使用してはならない。
【００２９】
ＭＳＤ接種材料（ＭＮ９０−ＳＤ７６−ＧＰ２、本文ではＭＮＳＤ９０  ７６ＬまたはＭＳＮＤ９０  ７６−Ｐを言う）。  気管、肺、鼻甲介、扁桃、肝臓、脳、脾臓をＭＳＤに自然感染したミネソタ州の１群中養育中のブタから得ることができる（Ｃｏｌｌｉｎｓ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｍｉｎｎｅｓｏｔａ  Ｓｗｉｎｅ  Ｃｏｎｆｅｒｅｎｃｅ  ｆｏｒ  Ｖｅｔｅｒｉｎａｒｉａｎｓ，  Ａｂｓｔｒａｃｔ，  ２５４−５５（１９９０））。これらの組織ホモジネート（ＭＮ  ８９−３５４７７）を、抗体を用いずにハンクの塩類溶液で調整し、  ０．５ｍｌを経鼻腔によりＮｅｂｕｌｉｚｅｒ  ガラス（Ｔｅｄ  Ｐｅｌｌａ  Ｃｏ．，  Ｒｅｄｄｉｎｇ，  ＣＡ）を使用して、日齢３日のノトバイオートブタに接種することができる。接種した仔ブタは、自然感染のブタに観察されるのと同様の臨床的徴候および電子顕微鏡的損傷を発現する場合がある。これらのノトバイオートブタから得た肺、肝臓、腎臓、脾臓および脳を、初回接種後８日後収集し、プールして別のホモジネートを調整することができる。その後、第２回目に得られたホモジネートを、ノトバイオート豚にもう一度接種することができる。また、ＭＳＤは肺組織から理想的に増殖させることができるので、肺組織を分離ホモジネートとして調整できる場合以外は、同様組織を収集し均質化しても良い。肺ホモジネートは、ノトバイオートブタの初回接種材料（ＭＮ  ８９−３５４７７）の第２の連続継代に相当する（Ｃｏｌｌｉｎｓら、７１ｓｔ  Ｍｅｅｔｉｎｇ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｃｏｎｆｅｒｅｎｃｅ  ｏｆ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｗｏｒｋｅｒｓ  ｉｎ  Ａｎｉｍａｌ  Ｄｉｓｅａｓｅ，  Ａｂａｓｔｒａｃｔ  Ｎｏ．２（１９９０））。２種の濾液を０．２０μｍフィルター（Ｇｅｌｍａｎ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，  Ａｎｎ  Ａｒｂｏｒ，  ＭＩ）および０．１０μｍフィルター（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ  Ｃｏｒｐ．，  Ｂｅｄｆｏｒｄ，  ＭＡ）を用いて調整することができる。これらの濾液を区分して、−７０℃で保管することができる。すべての濾液は、細菌を有さず、ウイルスは、逆染色調整法を使用しても直接電子顕微鏡検査では観察されないことが望ましい。
【００３０】
対照接種材料。  擬似感染ノトバイオートブタ２例から調整した肺組織ホモジネートを対照ブタの接種材料として使用することができる。この対照接種材料をＭＳＤ接種材料に関して述べたように、０．２０および０．１０μｍの濾液として調整することができる。
【００３１】
剖検方法および組織病理学。  Ｃｏｌｌｉｎｓら、７１ｓｔ  Ｍｅｅｔｉｎｇ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｃｏｎｆｅｒｅｎｃｅ  ｏｆ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｗｏｒｋｅｒｓ  ｉｎ  Ａｎｉｍａｌ  Ｄｉｓｅａｓｅ，  Ａｂｓｔｒａｃｔ  Ｎｏ．２（１９９０）で先述したように、初回接種７日後、ブタを安楽死させる。組織を収集し、中性緩衝ホルマリンで固定し、Ｃｏｌｌｉｎｓら、Ａｎ．  Ｊ．  Ｖｅｔ．  Ｒｅｓ．，  ５０，８２７−３５（１９８９）で述べたように光学的顕微鏡試験で処理することができる。標本を、鼻甲介、扁桃、気管、脳、胸線、肺（根尖葉、噴門側葉、隔膜側葉）、心臓、腎臓、脾臓、肝臓、胃、十二指腸、空腸、回腸、上行結腸、下行結腸、血液、隔膜リンパ結節から収集することができる。これらの組織を処理し、光学顕微鏡を使用して、リンパ単核脳炎、間質性肺炎、リンパプラスマ細胞性鼻炎、タンパ単核心筋炎または門脈性肝炎が存在するか否かを測定する。病変は、ＭＳＤ接種群から得た自然感染ブタに常時認められる（Ｃｏｌｌｉｎｓ  ら、Ｍｉｎｎｅｓｏｔａ  Ｓｗｉｎｅ  Ｃｏｎｆｅｒｅｎｃｅ  ｆｏｒ  Ｖｅｔｅｒｉｎａｒｉａｎｓ，  Ａｂｓｔｒａｃｔ，  ２５４−５５（１９９０））。糞含有物を収集し、先述のＲｉｔｃｈｉｅらによる、Ａｒｃｈ．  Ｇｅｓａｎｔｅ．  Ｖｉｒｕｓ−ｆｏｒｃｓｈｅ，  ２３，  ２９２−９８（１９６８）のように、ウイルス粒子を試験しても良い。血液を免疫検定および免疫組織用に収集し、例３に述べるように細菌用に培養することができる。
【００３２】
Ｂ．病原菌の単離
ＳＩＲＳ感染群中の感染仔ブタから得た肺組織および脳−脾−肝−腎結合組織を個々に均質化した。１０％の組織ホモジネートを用いた。個々のホモジネートを１ｍｌ当たり約  １００μｇでゲンタマイシンを含む最小必須培養液（ＭＥＭ）と混合した。両試料を約２５分間約４０００×ｇで遠心分離にかけた。上澄みを抽出して、０．４５ミクロンのフィルターに通した。組織ホモジネートおよび肺ホモジネートを混合させ、この混合材料を使用してきまざまな組織培養細胞系を感染させた。
【００３３】
１．ｉｎ  ｖｉｔｒｏ試験。  ７５  ｃｍ２プラスチックボトルを使用して２つの実験を行なった。試験番号１では、混合材料を以下に記載した細胞系各々の完全細胞シーツを含むボトル２本に接種した。さらに、各細胞系を含む１ボトルに約  ２．５ｍｇのトリプシンを添加した。残りの条件はすべて、細胞系を含む各ボトルに関して同一であった。血清は、培地に添加しなかった。接種材料は  １ｍｌだった。すべてのボトルを約３４℃で７日間保管した。結果は、７日目の最後に記録した。凍結し解凍した後、試料を同細胞系における第２の継代用に取り出す。残りの材料は、凍結し約  −６０℃で保管した。
【００３４】
試験番号２においては、混合材料を、試験番号１で使用したものと同様の細胞を含む１ボトルに接種した。ただし、細胞シーツは、接種時には  ２０−４０％しか融合していなかった。培地は約１０％のウシ胎児血清を含んでいた。さらに、接種材料は  １ｍｌであり、培養を約７日間約３４℃で培養した。試験番号１および試験番号２の結果を以下にまとめた。
0003566279.tif 000002
【００３５】
細胞変性効果は、評価した細胞系を問わず試験番号１においては認められなかった。ただし、試験番号２においては、ＭＡ−１０４細胞の小凝集が肥大し、ボトルの縁周辺の単層で「ウィーク・ホール」を形成し始めた。液体をボトルから分離し、ＭＡ−１０４細胞（これも  ２０−４０％の細胞シーツである）を含む新たなボトルに継代した後、もう一度継代した。細胞変性効果は、継代を重ねる度に大きくなった。上述の方法を、完全細胞シーツを使用して、ＭＡ−１０４細胞系に対して繰り返した。その後の試験は、ウイルス剤は、３７℃でも繁殖することを示した。血清の存在は、ウイルス剤の初回単離に役立てられる。ＭＡ−１０４細胞系におけるウイルス剤のその後の継代によって、血清を含まないＣＰＥを生じさせることができる。さらに、より際立ったＰＥ効果をＭＡ−１０４細胞系用の増殖培地に血清を用いることで認めることができる。
【００３６】
ウイルス剤をＭＡ−１０４細胞系で８回継代したところ、３日間後の５回目以降の継代では、ＣＰＥは良好だった。得られた力価は対数で約  ５−１／２であった（  １０５．５）。ウイスル剤は、さらにサル細胞系でも増殖することができる。
【００３７】
２．  ｉｎ  ｖｉｖｏ試験。  別の継代収集物を使用して日齢３日のノトバイオート仔ブタに接種した。両仔ブタとも経鼻腔で、一方は  １ｍｌであり、もう一方は  ２ｍｌで暴露した。仔ブタを７日間観察し、安楽死させた。
【００３８】
組織試料を病理組織学的試験用とウイルス剤の回収用に収集した。病理組織学的報告からは、感染仔ブタの肺病変は、ＳＩＲＳにかかったことが判明している仔ブタ由来の肺組織病変と一致することが確認された。組織試料は前述のように処理され、ウシ胎児血清を含むＭＡ−１０４細胞系を  ２０−４０％含む単層と  １００％含む単層上で培養した。ウイルス剤を再び回収した。
【００３９】
別の継代収集物を雌ブタに接種し、疾患の繁殖効果を複製し確認することができることが証明するために使用した。経産雌ブタ２例に、妊娠９３日目に経鼻腔で接種を行なった。この雌ブタは、それぞれ妊娠  １１２日目および  １１４日に５０％死産で同腹子の仔ブタを出産した（死産／生産比は、８／１３と６／１４）。死産仔ブタ７例は、一部ミイラ化しており、生産仔ブタは弱く、強健に育成することはできなかった。このウイルス剤を死産仔ブタの組織から回収した。
【００４０】
ウイルス剤をＳＩＲＳとわかっている３群から回収した。ＡＴＣＣ  ＶＲ−２３３２剤に対する抗体力価は、これらの同じ群で確認された。
【００４１】
臨床的徴候に違い、すなわち、ヨーロッパ産のブタにおける耳、尾、乳房のの皮膚チアノーゼが若干あるが、北アメリカにおける疾患およびヨーロッパにおける疾患は、同一のウイルスすなわちＡＴＣＣ寄託の  ＶＲ−２３３２によって例証されるように選好性非血球凝集外皮ＲＮＡウイルスによって引き起こされるというのが、一般の意見である。
【００４２】
例１Ａ−その他の病原菌特性
Ａ．材料および方法
１．細胞。  ネコ科Ｃｒａｎｄｅｌｌの腎臓（ＣＲＦＫ）およびサル腎臓（ＭＡ−１０４）の細胞を適切な細胞培養フラスコ内で３７℃で育成した。ＣＲＦＫ細胞およびＭＡ−１０４細胞は、  （ＪＲＨ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｌｅｎｅｘａ，ＫＳより人手可能な）１０％のγ線照射ウシ胎児血清（  ＦＢＳ）と１％のペニシリン−ストレプトマイシンと  ２．５μｇ／ｍｌのアムホテリシンＢとを補足した（Ｇｉｂｃｏ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｇｒａｎｄ  ｌｓｌａｎｄ，ＮＹより人手可能な）イーグル最小必須培地（  ＭＥＭ）で増殖させた。ＭＡ−１０４細胞を１０％の  ＦＢＳと５０μｇ／ｍｌのゲンタマイシンで補足同様の培地で増殖させた。  ＦＢＳおよび細胞は、先述のＭａｙｅｒら、Ｖｅｔ．  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．，  １６，  ３０３−３１４  （１９８８）、Ｓｍｉｔｈｉｅｓら、Ｐｒｏｃ．  Ａｎｎｕ．  Ｍｅｅｔ．  Ｕ．Ｓ．  Ａｎｉｍａｌ  Ｈｅａｌｔｈ  Ａｓｓｏｃ．，  ７３，  ５３９−５５０  （１９６９）  および  Ｖｉｃｋｅｒｓら、Ｊ．  Ｖｅｔ．Ｄｉａｇｍ  Ｉｎｖｅｓｔ．，２，３００−３０２（１９９０）による方法で、ウシウイルス性下痢性ウイルスがないことが確認された。
【００４３】
２．  ＶＲ−２３３２単離体ソース（ＳＩＲＳウイルス）。  本例のＳＩＲＳウイルスのソースおよび単離体は、以下記載の通りである。この試験に使用したウイルスは、  １０５乃至  １０６ＴＣＩＤ５０／ｍｌ  の力価のＭＡ−１０４細胞を５乃至７回継代したものに乗せた。
【００４４】
ノトバイオートブタ。閉鎖子宮切開で得たノトバイオートブタを、先述のＭｉｎｉａｔａｓ  Ｏ．Ｐ．ら、Ｃａｎ．  Ｊ．  Ｃｏｍｐ．  Ｍｅｄ．，  ４２，４２８−４３７（１９７８）のようにフレキンブルフィルムアイソレータで覆わせたステンレス鋼タブに保管した。このアイソレータは、周囲温度３０℃で保管され、ブタに１日３回商用ミルク代用品を推奨量摂取させた。実験接種前および剖検時に、糞スワブを収集し、好気雰囲気および嫌気雰囲気中で、ヒツジ血液寒天、ｔｅｒｇｉｔａｌ−ｓｅｖｅｎ寒天、ブリリアントグリーン寒天上に接種した。剖検時に収集した糞も、上述のＲｉｃｈｉｅら、Ａｒｃｈ．  Ｇｅｓａｎｔｅ．  Ｖｉｒｕｓ−Ｆｏｒｓｃｈｅに述べられたように、陰性造影電子顕微鏡検査によって、ウイルスに対する試験を行なった。
【００４５】
接種材料ソース。  Ｗｅｓｔ  Ｃｅｎｔｒａｌ  Ｍｎｎｄｅｓｏｔａの分娩から仕上げまでの  １６０頭の雌ブタの１群が典型的なＭＳＤ症候を有するＭＳＤを発症した。生存雌ブタ、生存新生仔ブタおよび死産ブタ胎児をＭｉｎｎｅｓｏｔａ  Ｖｅｔｅｒｉｎａｒｙ  Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃ  ＬＡｂｏｒａｔｏｒｙに提供し、全身培検、組織病理学的調査および規定の微生物調査を含む試験を行なった。接種材料を臨床的疾患新生仔ブタ由来の複数の組織を用いて実験するために調整した。さらに詳しく述べると、感染した群れから動物間で流行中に日齢７乃至１０日の生存仔ブタおよび死亡仔ブタを各２例ずつ剖検し、試料を診断試験用に収集した。生存仔ブタは、剖検前に安楽死用液を静注し安楽死させた。各ブタからプールした脳、肺および扁桃から成る１０％ホモジネート（ＭＮ８９−３５４７７）を、  １００ＩＵペニシリンと  １００μｇ／ｍｌストレプトマイシンと  ５μｇ／ｍｌアムホテリシンＢとを含むハンクスの平衡塩類溶液（ＨＢＳＳ）を使用して調整した。
【００４６】
実験的媒介。  一連のノトバイオートブタ１４例に、日齢３日目にプールした組織ホモジネートで抗原刺激を行なった。各仔ブタは、経鼻腔で、ブタの外鼻孔前に置いたＮｅｂｕｌｉｚｅｒ  ガラスに取り付けたゴムバルブを使用して、抗原刺激を受けた。最初、ノトバイオート仔ブタ２例に濾過していない接種材料をそれぞれ  ０．５ｍｌ接種し、疾患の臨床的徴候を監視し、暴露後７日後に感電（ＰＥ）させて安楽死させた。
前述のノトバイオート仔ブタからプールした肺の１０％ホモジネート（ＭＮＳＤ−１）を、１例に  ０．５ｍｌの未濾過ホモジネートを投与し、別の１例に０．４５μｍ濾液を投与し、残り１例には０．２２  μｍの濾液を投与したノトバイオート仔ブタ３例各々を  ０．５ｍｌのホモジネートで暴露して、盲目的継代を行なった。仔ブタは、ＰＥによって８日後安楽死させ、組織を組織学的試験用、その後のノトバイオートブタ継代用およびウイルス単離用に収集した。
【００４７】
ＭＮＳＤ−１濾液０．４５μｍ  を接種した仔ブタの肺（  ＭＮＳＤ９０７６−Ｌ）  と脳、肝臓および腎臓（  ＭＮＳＤ９０  ７６−Ｐ）の複合材料とから成る２５％の懸濁液を、カナマイシン、ストレプトマイシン、バンコマイシンをそれぞれ  ０．５  ｍｇ／ｍｌ含むリン酸緩衝塩類溶液を使用して調整した。ノトバイオート仔ブタ６例に肺ホモジネート  ＭＮＳＤ９０  ７６−Ｌを、４例に０．４５μｍｌの濾液を、２例に  ０．１μｍｌの濾液を投与した。未感染対照ノトバイオート仔ブタ３例については、１例にＨＢＳＳに含有の未感染コブタ組織ホモジネート０．４５  μｍを接種し、残り２例にはＨＢＳＳのみを接種した。
【００４８】
ウイルス単離。  組織ホモジネート（ＭＮＳＤ９０  ７６−Ｌおよび  ＭＮＳＤ９０  ７６−Ｐ）を２０分間  ４℃で１５００  ｇで遠心分離した。上澄みを１０μｇ／ｍｌのゲンタマイシンを含む最小必須培地（ＭＥＭ）で稀釈し、Ｖｏｒｔｅｘミキサーを使用して完全に混合し、３０分間４℃で４５００ｇで再び遠心分離にかけた。上澄みを収集し０．４５μｍフィルターで濾過した。肺ホモジネートおよび組織プールホモジネートから得た濾液を混合し、連続的継代細胞系ＭＡ−１０４に接種した。ウイルス単離を１０％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）含有の５０ｍｌＭＥＭ（ｐＨ７．５）を含むＭＡ−１０４細胞の２０−４０％密集単層を伴う  ７５ｃｍ２フラスコで行なった。細胞培養は、７日間３４℃で保持した。細胞変性効果（ＣＰＥ）が７日以内に観察されない場合は、培養を凍結し、融解し、ＭＡ−１０４細胞に接種し、上述のように培養した。
【００４９】
ウイルス滴定。  ウイルス滴定を９６ウェル型平底マイクロタイタ板で行なった。ウイルスの１０回連続稀釈液を２％ＦＢＳを含むＭＥＭで調整した。３日後、細胞育成培地をマイクロタイタ板から排除し、２００μｌのウイルス稀釈液を５つのウェル各々に入れて、プレートを５％Ｃ０２雰囲気中３７℃で培養した。３日後、ＣＰＥがないウェル中の培地を２％ＦＢＳ（ｐＨ７．５）で補足したＭＥＭと取換えて、最終判定を培養５日目に行なった。力価は、ＲｅｅｄらのＡｍ．  Ｊ．  Ｈｙｇ．，  ２７，  ４９３−４９７（１９３８）の方法によって算出された。
【００５０】
３．その他のウイルス。  Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ  ｏｆ  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  ｏｆ  Ｓｏｕｔｈ  Ｄａｋｏｔａ  Ｓｃｈｏｏｌ  ｏｆ  Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，  Ｖｅｒｍｉｌｌｉｏｎ，  ＳＤのＲｏｇｅｒ  Ｋｏｍｅｎｔ博士から得た弱毒化ポリオウイルスをＭＡ−１０４細胞上で  １０８  ＴＣＩＤ５０／ｍｌの力価まで増殖し、Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｖｅｔｅｒｏｎａｒｙ  Ｓｅｒｖｉｃｅｓ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，  Ａｍｅｓ，  ＩＡより得られた仮性狂犬病ウイルスのショープ菌株をＣＲＦＫ細胞上で成長させて、力価１０５−７ＴＣＩＤ５０ｍｌになるまで育成した。これらのウイルスを、試験においてＲＮＡおよびＤＮＡのウイルス対照として使用し、ＳＩＲＳウイルスのＶＲ２３３２分離体の核酸型を決定した。
【００５１】
４．  ＶＲ−２３３２単離体に対する抗血清の調整。  ５回目の継代のＳＩＲＳウイルスの  ＶＲ  ２３３２単離体（力価１０６  ＴＣＩＤ５０／ｍｌ）を０．２５％ホルマリンで不活性化し、フロインドの不完全アジュバントで１対１に混合し、ウサギにこの懸濁液２ｍｌを２週間間隔て６週間皮下注射した。最後の注入２週間後に調整した抗血清は、１対５１２の中和力価を有した。
【００５２】
５．ウイルス中和化試験（ＶＮＴ）。  ＭＡ−１０４細胞をＶＮＴ用の平底の９６ウェル型マイクロタイタ板に接種した。血清（１００μｌ）それぞれの２回連続稀釈液をＭＥＭ稀釈液で調整し、１００−３００  ＴＣＩＤ５０／１００μｌを含む同容量（１００μｌ）単離体  ＶＲ−２３３２と混合した。各混合液を３７℃で１時間培養し、２００μｌの血清ウイルス混合物それぞれを３重ウェルに添加する。マイクロタイタ板をさらに３日間３７℃で培養し、細胞変性効果（ＣＰＥ）について光学的顕微鏡で調査し、終点力価は、ＣＰＥを中和化した最高の血清稀釈液の逆数として表わされた。
以下のポリクローナル抗血清は、別段の記載がない場合、  ＶＲ−２３３２単離体に関して記載されたように調整し、ＶＮＴに使用した。換言すれば、伝染性胃腸炎のミラー株、ブタロタウイルスセロタイプ４（Ｇｏｔｔｆｒｉｅｄ）、ブタロタウイルスセロタイプ５（ＯＳＵ）、ブタレオウイルスセロタイプ１、Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｖｅｔｅｒｉｎａｒｙ  Ｓｅｒｖｉｃｅｓ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，  Ａｍｅｓ．  ＩＡより人手可能なブタエンテロウイルスセロタイプ１乃至８、アメリカン・タイプ・カルチャーＲｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭＤより人手可能なブタパルボウイルスに対するモノクロナール抗体、Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ  ｏｆ  ｃｌｉｎｉｃａｌ  ａｎｄ  Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  ｏｆ  Ｍｉｎｎｅｓｏｔａ  Ｓｔ．  Ｐａｕｌ  ＭＮのＷ．  Ｃｈｒｉｓｔｔａｎｓｏｎ博士より人手可能な脳心筋炎ウイルス、  Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｖｅｔｅｒｉｎａｒｙ  Ｓｅｒｖｉｃｅｓ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ａｍｅｓ  ＩＡより入手可能な仮性狂犬病ウイルス、東部脳炎ウイルス、西部脳炎ウイルスおよびベネズエラ脳炎ウイルス、Ｎａｙｅｒ  らの  Ｖｅｔ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．，  １６，  ３０３−３１４（１９８８）に記載のＢＶＤＶに対するＤ８９モノクロナール抗体、Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｖｅｔｅｒｉｎａｒｙ  Ｓｅｒｖｉｃｅｓ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，  Ａｍｅｓ．，  ＩＡより入手可能なウマ動脈炎ウイルス、風疹ならびにＤｅｐａｒｔｍｅｎｔ  ｏｆ  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  ｏｆ  Ｓｏｕｔｈ  Ｄａｋｏｔａ  Ｓｃｈｏｏｌ  ｏｆ  Ｍｅｄｉｃｉｎｅ  Ｖｅｒｍｉｌｌｉｏｎ，  ＳＤのＷ．  Ｃａｆｒｕｎｙ博士より入手可能な乳酸脱水酵素である。
【００５３】
６．直接電子顕微鏡法（ＤＥＭ）。  セシウムクロライド勾配画分を、ＢｅｎｆｉｅｌｄらのＪ．  Ｃｌｉｎ．  Ｍｉｃｒｏｂｌｏｌ．，  １６，１８６−１９０（１９８２）、Ｈｏｒｚｉｎｅｋ，  Ｎｏｎ−ａｒｔｈｒｏｐｏｄ−ｂｏｒｎｅ  Ｔｏｇａｖｉｒｕｓｅｓ”  （Ａｃａｄ．  Ｐｒｅｓｓ，  Ｌｏｎｄｏｎ，  １９８１）、ＲｉｃｈｉｅらのＡｒｃｈ．  Ｇｅｓａｎｔｅ．  Ｖｉｒｕｓ−ｆｏｒｓｈｅ．  に先述したように、ウイルス粒子に対してＤＥＭによって試験し、７５ｋＶ電圧で電子顕微鏡（Ｈｉｔａｃｈｉ  ＨＵ１２Ａ，  日立、東京、日本）で検査した。
【００５４】
７．免疫電子顕微鏡（ＩＥＭ）。  免疫−金標識化を、ヤギの抗ウサギＩｇＧ金コロイド粒子（５ｎｍ）を使用して行なった。簡潔に述べれば、ウイルスを４℃で３０分間、４０，０００×ｇで濃縮した。ペレットを５０μｌの再懸濁で、２５μｌをパラフィルム１枚の上に置いた。コロジオン炭素被覆グリッドをウイルス滴に１５分間浮かべて、２５μｌのウサギ抗ＳＩＲＳ血清に２分間置いた。グリッドを０．１％のウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）−トリス緩衝液を２回交換して各５分間洗浄し、金標識化抗ウサギ−ＩｇＧ１滴に１５分間浮かべた。各２分間ずつＢＳＡ−トリス緩衝液で６回洗浄し、２回上流水で洗浄した後、ネガティブ染色し、上述のようにＤＥＭに対して試験した。
【００５５】
８．血液凝集反応（ＨＡＴ）。  ヒツジ、ヤギ、ブタ、ウシ、マウス、ラット、ウサギ、モルモット、ヒト「Ｏ」型、カモおよびニワトリの赤血球を血液凝集させるＶＲ−２３３２単離体能力を標準的方法を使用して測定した。  ＶＲ−２３３２単離体の第５乃至第７継代の２回稀釈液をＵ底マイクロタイタ板のリン酸緩衝塩類溶液（ｐＨ７．２−７．４）で調整した。上述の標本それぞれから洗浄赤血球の１％懸濁液を等容量、ウイルス稀釈液に添加して、４℃、２２℃または３７℃で培養し、（ウイルス非含有の）赤血球対照をウェルの底のボタンに沈殿した１−２時間後に判定した。
【００５６】
９．免疫蛍光検査（ＩｍＦ）。  単離体  ＶＲ−２３３２感染および非感染のＭＡ−１０４細胞の間接または直接ＩｍＦ染色を、ＶＮＴで試験したポリクロナール抗体またはモノクロナール抗体を使用して行なった。Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｖｅｔｅｒｉｎａｒｙ  Ｓｅｒｖｉｃｅｓ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，  Ａｍｅｓ，  ＩＡ  （  Ａ型、  Ｈ１Ｎ１）から入手可能なブタインフルエンザおよびＮａｔｉｏｎａｌ  Ｖｅｔｅｒｉｎａｒｙ  Ｓｅｒｖｉｃｅｓ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，  Ａｍｅｓ，  ＩＡも使用した。先述のＢｅｎｆｉｅｌｄらのＪ．  Ｃｌｉｎ．  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．  に記載されているように、細胞単層のスクラップを無菌接種ループＩｍＦ染色を用いた７２時間ＰＩで除去する。陽性対照スライドを雌ブタ由来の回復期抗血清またはＳＩＲＳウイルスのＶＲ−２３３２単離体に対するモノクロナール抗体（本文では、ＳＤＯＷ１２またはＳＤＯＷ１７）の何れかで染色する。
【００５７】
１０．ＶＲ−２３３２の大きさ評価のための濾過試験。  浄化−感染細胞培養上澄みを０．４５μｍ  （Ｓｈｌｅｉｃｈｅｒ  ａｎｄ  Ｓｃｎｅｌｌ，  Ｋｅｅｎｅ，  ＮＨ）、０．２０μｍ  （Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ  Ｐｒｏｄｕｃｔｓ  Ｄｉｖ．，  Ｂｅｄｆｏｒｄ  ＭＡ）および０．０５μｍ（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ  Ｐｒｏｄｕｃｔｓ  Ｄｉｖ．，  Ｂｅｄｆｏｒｄ，  ＭＡ）の各フィルターで濾過した。濾過の前後の感染力価をマイクロタイター検定およびＣｏｔｔｒａｌ，  Ｍａｎｕａｌ  ｏｆ  Ｓｔａｎｄａｒｄｉｚｅｄ  Ｍｅｔｈｏｄｅｓ  ｆｏｒ  Ｖｅｔｅｒｉｎａｒｙ  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，  ｐｐ．８１−８２（Ｃｏｒｎｅｌｌ  Ｕｎｉｖ．  Ｐｒｅｓｓ，  Ｉｔｈａｃａ，  ＮＹ，  １９７８）で先述した方法を使用して測定した。感染力価において、１００倍の減少は有意と見なされた。
【００５８】
１１．  ＶＲ−２３３２単離体の勾配精製。
浄化培養上澄みから得たＳＩＲＳウイルスのＶＲ−２３３２単離体をＴＮＣ緩衝液（１０ｍＭトリス、１００ｍＭＮａｃｌおよび  ２ｍＭＣａＣｌ、ｐＨ  ７．８）中の  ２ｍｌの２０、３０、４０、５０および６５％ショ糖（ｗｔ／ｖｏｌ）を含む非連続ショ糖勾配を介して、２００，０００×ｇ、４℃１６時間で遠心分離（Ｂｅｃｋｍａｎ  ＳＷ  ４１  Ｔｉ  ｒｏｔｏｒ）によって濃縮した。培養上澄みも１，１，２−トリクロロトリフルオロエタン（Ｓｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｃｏ．，  Ｓｔ  Ｌｏｕｉｓ，  ＭＯ）で抽出し、１時間４℃、１００，００×ｇで超遠心分離にかけて、ショ糖勾配に関して述べたように、セシウムクロライド密度勾配（１．２０ｇ／ｍｌ）で精製した。何れかの勾配から得た画分を上部から収集し、屈折計を使用して屈折率を測定し、選択画分を上述のウイルス滴定用ハンクの均衡塩類溶液で稀釈した。
【００５９】
１２．クロロホルムおよびフルオロカーボン培養。
等量のＳＩＲＳウイルス（ＶＲ−２３３２）およびクロロホルムを周囲室温で３０分間定期的に混合し、５００×ｇ、４℃で１５分間遠心分離した。同様に、等量の１，１，２−トリクロロトリフルオロエタンおよびＳＩＲＳウイルスを５分間渦状撹拌し、クロロホルム処理ウイルスに関して述べたように遠心分離した。遠心分離後、各処理試料の水性相を収集し、稀釈し、マイクロタイター検定を使用して、残りのウイルス感染力を測定した。非処理ウイルスと比較し、処理ウイルスの力価が  １００倍減少していることは有意であると見なされた。
【００６０】
１３．  ＶＲ−２３３２単離体に対するＤＮＡウイルス阻害剤の効果。  ５−ブロモ−２−デオキンウリジン（ＢＵＤＲ）  およびマイトマイシンの配合物は、ＤＮＡウイルス複製阻害座として知られているが、レトロウイルス科を除き、ＲＮＡウイルスを阻害することはない（Ｅａｓｔｅｒｎｂｒｏｏｋ，  Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，  １９，  ５０９−５２０）および  Ｒｅｉｃｈら、Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．，  ４７，  １２１２−１２１７（１９６１））。仮性狂犬病およびポリオウイルスを本実験では既知のＤＮＡウイルス対照およびポリオウイルス対照として使用した。細胞（ＣＲＦＫまたはＭＡ−１０４）を９６ウェル型ミクロタイター板に接種し、複製のウェルを仮性狂犬病ウイルス、ポリオウイルスまたはＳＩＲＳウイルス各々の１００μｌの１０倍稀釈液で接種した。３７℃の１時間吸収期後、未吸収ウイルスを含む培地を取り出し、ＭＥＭ（未処理ウイルス対照）、４０もしくは１５０μｇ／ｍｌのＢＵＤＲで補足したＭＥＭまたは２、１０もしくは２０μｇ／ｍｌのマイトマイシンＣを含むＭＥＭと取換えた。マイクロタイター板をさらに４日間３７℃で培養し、ＣＰＥに対して光学的顕微鏡法で調査をして、ウイルスカ価を上述のＣｏｔｔｒａｌの文献（１９７８）による方法で計測した。非処理対照と比較したウイルス感染力価の１０００倍の減少は、有意であると見なされた。
【００６１】
１４． ＳＩＲＳウイルスの温度安定性。  ＭＥＭ中の２ｍｌのアリコートを４度または水槽中で３７度および５６℃で少なくとも５日間培養した。３つの異なる温度で各管から得たアリコートを１５、３０、６０および  １２０分目に収集し、１２乃至１２０時間までは１２時間間隔で収集した。ウイルス試料をＭＥＭで１０倍稀釈し、ウイルスカ価は上述のようになった。
【００６２】
Ｂ．結果。
１．ＭＡ−１０４細胞に対するＶＲ−２３３２単離体の細胞変性効果。  ＣＰＥは小型の細胞球状凝集として発現し、この凝集は未感染単層残物上方に上昇すると考えられた（図１Ｂ）。球状凝集数は増加し、細胞の多くは核凝縮を起こし、２乃至４日ＰＩ以内に単層から剥離した。５乃至６日ＰＩまでに、ＣＰＥは１００％の単層において明らかとなった。感染力価は、ウイルスの連続継代５度目および７度目には、各々１０５乃至１０７ＴｃＩＤ５０／１ｍｌと同様であった。末接種のＭＡ−１０４細胞では、ＣＰＥは観察されなかった（図１Ａ）。
蛍光は非接種ＭＡ−１０４細胞では観察されなかった。図２Ｂは強烈な拡散蛍光が（ＳＩＲＳのＶＲ−２３３２単離体に対して調整した）ブタ回復期血清、ウサギ抗血清またはモノクローナル抗体のいずれかで染色した接種ＭＡ−１０４細胞の細胞質に認められることを示す。
【００６３】
２． ＳＩＲＳウイルス（ＶＲ−２３３２単離体）の感染力に対する脂質溶剤の効果。  クロロホルムによるウイルスの前処理は、感染力を相殺した（１０５から１０１ＴＣＩＤ５０／１ｍｌまで減少）。従って、フルオロカーボン処理には有意な効果はなかった。
【００６４】
３．血球凝集。  ウイルスは、培養温度とは無関係に異なる１１種から得られた赤血球を凝集させなかった。
【００６５】
４．濾過によるＳＩＲＳウイルスの大きさ評価。  ウイルス力価は、０．４５、０．２０および０．１０μｍフィルターによる濾過後も変化しなかった。ただし、感染力価葉、０．０５μｍ  （５０ｎｍ）による継代後には、１０５−１０２ＴＣＩＤ５０／１ｍｌまで）１０００倍減少した。
【００６６】
５． ＳＩＲＳウイルス複製に対するＤＮＡ阻害剤の効果。  仮性狂犬病ＤＮＡウイルスだけは、ＢＵＤＲまたはマイトマイシンＣによって感染力が減少した。ポリオウイルス（ＲＮＡ）対照およびＶＲ−２３３２単離体の複製は、影響を受けず、ＳＩＲＳウイルスのゲノムが恐らくＲＮＡであることが示された（表１および２）。
【００６７】
６．ウイルス精製。  ウイルス帯はショ糖勾配では検出されなかった。ウイルス力価のピーク（１０４ＴＣＩＤ５０／ｍｌ）は、１．１８−１．２３ｇ／ｍｌの浮遊密度を有する画分から発見された。このピークウイルス懸濁液の感染力価（１０７ＴＣＩＤ５０／ｍｌ）  の１０００分の１以下であった。セシウムクロライド勾配によって、単一の僅かなタンパク光帯が１．１８−１．１９ｇ／ｍｌの浮遊密度で生じた。ピークウイルス感染力は、１．３×１０６ＴＣＩＤ５０／１ｍｌであるが、これはショ糖勾配から得られるピーク感染力寄りも１３０倍高く、この可視帯に一致した（図３）。
【００６８】
７．精製ＳＩＲＳウイルス粒子のＤＥＭ。  相似形態であるが主に球状ビリオンがＣｓＣｌ画分中のＤＥＭによって認められた（１．１８−１．１９ｇ／ｍｌ）。ビリオンは、直径４８−８０ｎｍ（平均２５粒子＝６２ｎｍ）であり、薄膜または外皮に囲まれた完全な電子半透明または中空（電子密集中心）粒子から成っていた（図４Ａ）。［長さ約５ｎｍの短い突起を有する直径４０−４５ｎｍのイソサヘドラルヌクレオチドカピドが観察された。］これらの粒子は、直径２５−３５ｎｍの核を含んでいた（図４Ｂ）。ウサギ高度免疫抗血清と金標識化抗−ウサギＩｇＧとを１次および２次抗体として使用した場合には、ビリオンを免疫−金標識化した（図４Ｂ）。ＶＲ−２３３２単離体に対するウサギ高度免疫血清の非存在下では、ビリオンを金標識化しなかった。
【００６９】
８．他のウイルスから得た抗血清に対するＳＩＲＳウイルスの抗原関係。  既知のブタウイルスときまざまなトガウイルスは、感染ＭＡ−１０４細胞中のＳＩＲＳウイルス抗原と中和化したり、反応したりしなかった。回復期のブタ抗血清および高度免疫ウサギ血清は、各々１：２５６と１：５１２の中和化抗体力価を有していた。
【００７０】
９．  ＳＩＲＳウイルスの感染力に対する温度効果。  ＭＡ−１０４細胞に対するウイルス感染力は、１２時間３７℃の培養後５０％減少し、３７℃の４８時間培養および５６℃の４５分間培養後完全に不活性化した（図５）。感染力は（デー夕を示さないが）４℃の１か月培養または４か月の−７０℃培養後は変化しなかった。ＳＩＲＳウイルスに感染しハンクスの均衡塩類溶液で均質化したノトバイォートブタから回収した肺組織は、少なくとも１８か月間ブタに対する感染力を維持する。結果は、  ＶＲ−２３３２単離体は選好性非血球凝集外皮ＲＮＡウイルスであり、未知の属の非節足動物偏狭性トガウイルスに仮説的に分類することができる。
【００７１】
ＳＩＲＳウイルスのＲＮＡゲノムの存在葉、ＤＮＡおよびあるＲＮＡウイルス系統群の複製を阻害しその他のＲＮＡウイルスの複製を阻害しないことが知られる５−ブロモ−２−デオキンウリジンおよびマイトマイシンＣの存在下で継続的に複製するこのウイルスの能力によって確認された（Ｅａｓｔｅｒｂｒｏｏｋ，  上述（１９６２）、Ｒｅｉｃｈ  ら、上述（１９６１）。ＲＮＡウイルスとしてのＳＩＲウイルスの暫定的な著者らの分類は、このウイルスが  ＩｍＦによって検出されるウイルスの存在によって示される細胞の細胞質で複製する観察結果に一致する。
【００７２】
ＳＩＲＳウイルスの  ＶＲ−２３３２単離体は熱に不安定であるが、４℃および  −７０℃では比較的長期間安定である。３７℃でのこのウイルスの熱不安定性は、ウイルスの増殖に対しては実用的であり、このことから３７℃以下の温度での増殖によってウイルスの収率が高くなることが示唆される。短期間のウイルス単離体に対する診断試料の保存には、冷蔵で十分であり、それ以外の場合には、試料を数ヶ月以上冷凍することができる。
【００７３】
例２
例１における実験から測定されたように、ＭＳＤ病原菌を含む接種材料の最も純粋な形態を使用してＭＳＤ病原菌を妊娠ブタに伝達し、病徴の複数形態を複製することができる。
【００７４】
考察。  最近、（当分野においてＭＳＤの顕著な臨床的徴候である）一過性食欲不振および早期分娩は、ノトバイオートブタに呼吸器系疾患による病変を生じさせる同一のＭＳＤ接種材料を接種した雌ブタ２例中２例に生じた。また、２９例中１５例（５２％）のブタは死産で、残り１４例は衰弱し、十分に乳飲することができなかった。肉眼的病変または顕微鏡的病変は、死産ブタには観察されなかったが、微生物剤を検出する胎盤処理および単離処理が現在進歩している。従って、以下の試験はＭＳＤの複数形態が経鼻腔で雌ブタに伝達されうるか否かと、胎児生存度の干渉は胎児ではなく母系組織の複製から生じるのか否かを述べた実験である。
【００７５】
例１の実験から、どのように接種材料を処理（フィルターの大きさ、組織培養の抽出およびプロテアーゼ診断またはそのいずれか一方）するかに関する情報が提供され、接種材料（すなわちウイルス剤）に対するＭＳＤ因子の最も純粋な形態が提供される。ＭＳＤ因子には若いブタに対する呼吸器形態とブタ成体の複数形態とがあるので、症候群の後者の形態を複製し、さらに病原菌がＭＳＤの理論上の原因であることを証明しなければならない  。
【００７６】
ＭＳＤ病原菌を接種したブタに流産を実験的に誘導することは可能であるので、妊娠９３日目のブタを実験動物として使用する。雌ブタは、生殖上の問題がなく、ＭＳＤにかかっていない商用群から購入すれば良い。この群の完全な免疫学的記録をコンピュータ処理すると、妊娠期間、同腹子の大きさ、死産児数の平均を比較研究に利用することができる。３例の雌ブタから成るグループそれぞれに妊娠９３日目に０．２０μｍｌの濾液（陽性対照）、病原性であるが、例１の結果によって示される修飾接種材料、接種材料の０．２０μｍ  の濾液（陰性対照）または例１の実験結果より示されるように修飾した対照接種材料の何れかを経鼻腔で接種することができる。各グループのブタを個別隔離室に収容し、出産するまでの間毎日調査を行なう。温度および（食欲不振や、咳、クシャミ、浅息呼吸、呼吸数の増加などの呼吸器系統の問題など）臨症的徴候を毎日記録する。ブタのサンプリングは、血清学上分娩前後の血液試料に限定される。実際の分娩日を記録し、死産児、ミイラ化した胎児、生産「衰弱」ブタおよび生産「正常ブタ」を決定する。胎児に例１に述べたように肉眼的病変および顕微鏡的病変について調べ、例３で述べるように、胎児組織を微生物学的方法で処理する。胎児血清によってガンマグロブリンおよび  ＰＰＶならびにＥＭＣＶの存在について調査することもできる（  Ｊｏｅら、Ｉｎ  Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｍｙｓｔｅｒｙ  Ｓｗｉｎｅ  Ｄｉｓｅａｓｅ  Ｃｏｍｉｔｔｅｅ  Ｍｅｅｔｉｎｇ，  ６２−６６（１９９０）、Ｋｉｍら、Ｊ．  Ｖｅｔ．  Ｄｉａｇｎ．  Ｉｎｖｅｓｔ．，  １，  １０１−４（１９９０））。生産したブタを１週間観察し、罹患率および死亡率を記録し、ブタを安楽死させた後、胎児について述べたように、光学顕微鏡検査および微生物学的検査用に組織を収集した。
【００７７】
ＭＳＤ接種材料から成る０．２μｍの濾液および修飾した濾液は、ブタに対して病原性があり、食欲不振や、時には微熱、各同腹子の多数が死産か衰弱している早期分娩を誘導する。これは、接種材料がＭＳＤ因子を含む証拠である。対照接種材料を接種した雌ブタは、予定日近くに分娩したが、この群の利用可能な疫学的データベースから分かるように、元の群の標準範囲内の同腹子を出産している。死産ブタの病変は認められず、生存衰弱ブタにおいては生後１週間以内の致死率が高いことがわかった。
【００７８】
例  ３
ＭＳＤ接種材料で接種し、接種後さまざまな時期に安楽死させたノトバイオート仔ブタから収集した組織試料を使用して、ＭＳＤの病原菌を単離同定し、病変の連続的発達を測定し、ＭＳＤ因子が免疫抑制的であることを確認する。
【００７９】
凍結組織および接種細胞培養に対する免疫蛍光検査法。  凍結組織および細胞スクラップに対する免疫蛍光検査をＢｅｎｆｉｅｌｄら、Ｊ．  Ｃｌｉｎ．  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．，  １６，１８６−１９０（１９８２）およびＢｅｎｆｉｅｌｄら、Ａｍ．  Ｊ．  Ｖｅｒ．  Ｒｅｓ．，  ４９，  ３３０−３６（１９８８）に先述したような方法で実行する。凍結組織および細胞スクラップを  ＰＰＶ、ＥＭＣＶ（頭字語については例４参照）およびＭＳＤ因子についてスクリーニングを行なった。  ＰＰＶおよびＥＭＣＶに対する接合体は、Ｓｏｕｔｈ  Ｄａｋｏｔａ  Ａｎｉｍａｌ  Ｄｉｓｅａｓｅ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  ａｎｄ  Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙで入手できる。ノトバイオートブタにおける高度免疫血清をＭＳＤ接種材料の最も純粋な形態から調整する。ブタ２例を経鼻腔接種し、初回接種２週間後および４週間後にフロインドの不完全アジュバント中の接種材料を皮下経由で追加抗原刺激する。血清を最後の追加抗原刺激２週間後にこのブタから収集する。対照血清も、対照接種材料とＭＳＤ接種材料に関して述べた同一の免疫化プロトコルを用いてノトバイオートブタ２例について調整する。これらの血清を一次抗体として使用し、フルオレセインイソシオチアン酸塩で接合したヤギまたはウサギの抗ブタ免疫グロブリンを二次抗体として使用し、凍結組織片および細胞培養中のＭＳＤ抗原を検出することができる。
【００８０】
血清学的検査。  対照ブタまたは接種ブタから収集した血清について、  ＰＰＶおよび  ＳＩＶ（血球凝集阻害）、レプトスピラ（微細凝集）、ならびにＥＭＣＶ（ウイルス中和化）に対する抗体が存在するか否かを検査する（頭字語については例４参照）。以前の結果は、他の一般の微生物学的因子に対する血清学的検査には陰性であったことが示されている  （Ｃｏｌｌｉｎｓ  ら、７１ｓｔ  Ｍｅｅｔｉｎｇ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｃｏｎｆｅｒｅｎｃｅ  ｏｆ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｗｏｒｋｅｒｓ  ｉｎ  Ａｎｉｍａｌ  Ｄｉｓｅａｓｅ，Ａｂｓｔｒａｃｔ  Ｎｏ．２（１９９０））。
【００８１】
免疫学的検査。  組織および血液をＭＳＤ接種ブタおよび対照ブタから収集し、免疫学的状態を測定する。ブタ白血球をＰｅｓｃｏｖｉｔｚ  ら、Ｊ．  ｉｍｍｕｎｏ１．，  １３４，  ３７−４４（１９８５）によって示されるように、Ｈｉｓｔｏｐａｑｕｅ  １０７７にかけて、単回不連続勾配浮遊法によって末梢血から単離する。リンパ結節、脾臓および胸腺から得た細胞を、生成細胞懸濁液の組織および収集物を適度にミンスすることによって、単細胞に分解する（Ｈｕｒｌｅｙら、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．  ４７，  ３７２９−３５（１９８７））  。
【００８２】
ブタ白血球表現型をアメリカン・タイプ・カルチャーコレクションおよびＪｏａｎ  Ｌｕｎｎｅｙ（ＵＳＤＡ  Ｂｅｌｔｓｖｉｌｌｅ，ＭＤ）経由で入手できるモノクローナルパネルを使用して決定することができる。これらには、Ｔ細胞、ｐＣＤ２（ＭＳＡ４；Ｈａｍｍｅｒｂｅｒｇら、Ｖｅｒ．  Ｉｍｍｕｎｏｌ．  Ｉｍｍｕｎｏｐａｔｈｏｌ．，  １１，  １０７−２１（１９８６）、ヘルパー／クラスＩＩ  ＭＨＣ依存Ｔ細胞、  ｐＣＤ４（７４−１２−；  Ｌｕｎｎｅｙら  、  Ｖｅｒ．  Ｉｍｍｎｕｎｏｌ．  Ｉｍｍｕｎｏｐａｔｈｏｌ．，１７，  １３５−１４４（１９８７））細胞傷害性−サプレッサー／クラスＩ  ＭＨＣ依存Ｔ細胞、ｐＣＤ  ８（７４−２−１１；  Ｉｂｉｄ）、マクロファージおよび顆粒細胞（７４−２２−１５Ａ：  Ｉｂｉｄ）、ヒトＤＲｗと等価のブタＭＨＣ  クラスＩＩ抗原（ＭＳＡ３；  Ｈａｍｍｅｒｂｅｒｇら、Ｖｅｔ．  Ｉｍｍｕｎｏｌ．  Ｉｍｍｕｎｏｐａｔｈｏｌ．，  １１，  １０７−２１  （１９８６）ならびにＤＱｗ（  ＴＨ２１Ａ）およびその他ＶＲＭＤ、Ｐｕｌｌｍａｎ、ＷＡ；  Ｄａｖｉｓら、Ｈｙｂｒｉｄｏａｍ  Ｔｅｃｈｏｎｏｌｏｇｙ  ｉｎ  Ａｇｒｉｃａｌｔｕｒｅ  ａｎｄ  Ｖｅｔｅｒｉｎａｒｙ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ．  Ｒｏｗｍａｎ  ａｎｄ  Ａｌｌａｎｈｅｌｄ，  １２１−５０（１９８４））などがある。ブタ免疫グロブリンに対するイソタイプ−特異モノクローナル抗体も利用可能であり（  Ｐａｕｌら、Ｊ．  Ｖｅｔ．  Ｒｅｓ．，  ５０，  ４７１−７９（１９８９））、末梢血、リンパ結節およびパイエル板から得た白血球を間接蛍光染色するために２度に分けて最小飽和濃度で使用することができる（Ｖｅｔ．  Ｉｍｍｕｎｏｌ．  Ｉｍｍｕｎｏｐａｔｈｏｌ．，  ２５，  １７７−９３（１９９０））。２色検査を実行するためには、ビオチン（Ｐｉｅｒｃｅ  ｋｉｔ  ＃２１３３３）抗体で標識化した後、ｒＰＥ−標識化アビジンで細胞を染色すれば良い。細胞をフローサイトメトリーまたは２色解析蛍光顕微鏡（  ＰＴＩ  ＦＳＣＡＮシステム）で解析する。フローサイメトリー時の  ４８８ｎｍレーザー光線での相互検出または二重蛍光顕微鏡法の使用を容易に行なうことができる。細胞性蛍光強度および陽性細胞の百分率も測定する。
【００８３】
コンカナバリンＡ、アメリカヤマゴボウマイトジェン（  ＰＷＭ）および植物性血球凝集素（  ＰＨＡ）を用いるレクチン有糸分裂法などのｉｎ  ｖｉｔｒｏ機能検査法をＨａｍｍｅｒｂｅｒｇら、Ａｍ．  Ｊ．  Ｖｅｔ．  Ｒｅｓ．，  ５０，  ８６８−７４（１９８９）に記載のように実行する。リゾチームに対する抗原特異ｉｎ  ｖｉｔｒｏＴ細胞反応を、それらの技術実行後にモデル化することができる。Ｂ細胞増殖検査を大腸菌およびネズミチフス菌  ＬＰＳまたは抗免疫グロブリンによって、Ｓｙｍｏｎｓら、Ｉｎｔ．  Ａｒｃｈｓ．    Ａｌｌｅｒｇｙ  Ａｐｐｌ．  Ｉｍｍｕｎ．，  ５４，  ６７−７７  （１９７７）において報告されているように行なうことができる。ＰＷＭを用いて誘導されるｉｎ  ｖｉｔｒｏ抗体生成は、Ｈａｍｍｅｒｂｅｒｇら、Ａｍ．  Ｊ．  Ｖｅｒ．  Ｒｅｓ．，  ５０，  ６６８−７４  （１９８９）に述べられているように達成され定量される。大腸菌  ＬＰＳに対する４８時間暴露後のＩ１−１のマクロファージ生成をマウス胸腺細胞検査で測定することができる（Ｍｉｚｅｌ，Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｒｅｖ．，  ６３，  ５１−７２（１９８２））。ＰＨＡ−刺激リンパ球によるＩ１−２の生成を、Ｓｔｏｔｔら、Ｖｅｔ．  Ｉｍｍｕｎｏｌ．  Ｉｍｍｕｎｏｐａｔｈｏｌ．，  １３，  ３１−３８（１９８６））に記載のように測定することができる。イソタイプ−特異抗リゾチームＥＬＩＳＡ  をブタ免疫グロブリンイソタイプに対するモノクローナル抗体を用いて行なうことができる（Ｐａｕｌら、Ａｍ．  Ｊ．  Ｖｅｔ．  Ｒｅｓ．，  ５０，４７１−７９（１９８９））。
【００８４】
ｉｎ  ｖｉｖｏ抗体生成を評価するためには、ＭＳＤ感染の仔ブタ３例および対照接種材料接種３例に対し、ヒツジ赤血球の２％懸濁液およびウシ血清アルブミンの１０μｇ／ｍｌ溶液を別々の部位に、初回接種５、７、１０、１４および２４日後に注入すれば良い。初回接種２４日後にブタを安楽死させて、例１に述べたように組織病理学用に収集し、血液を収集し、抗体検査をする。全抗体濃度および各抗原に対する特異ＩｇＧおよびＩｇＭ反応を抗原特異放射免疫拡散法またはＥｌＩＳＡで測定する。抗原−特異プラーク検査を脾細胞に対して実行し、感染ブタおよび対照ブタのＢ細胞クローンの頻度を評価する（Ｋａｐｐｌｅｒ，  Ｊ．  Ｉｍｍｕｎｏｌ．，  １１２，  １２７１−８５  １９７４））。
【００８５】
例  ４
目的。  本実験の目的は、ＭＳＤ単離体に対するノトバイオートブタの高度免疫抗血清を調整し、診断試薬として使用して、ＭＳＤの抗原特性を特徴化することにある。
【００８６】
背景。  ミネソタ大学協力のサウスダコタ州立大学におけるノトバイオートブタの先行研究により、現場症例ＭＮ−８９３５４７７より得たプール組織ホモジネートがノトバイオートブタの肺病変を誘導したことが示された。これらのブタ由来のプール組織ホモジネートは、その後、日齢３日のノトバイオートブタの臨床的疾患および呼吸器系統病変の特性を生じさせるために使用されている（Ｃｏ１ｌｉｎｓ  ら、７１ｓｔ  Ｍｅｅｔｉｎｇ  ｏｆ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｗｏｒｋｅｒｓ  ｉｎ  Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｄｉｓｅａｓｅｓ．，  Ａｂｓｔｒａｃｔ  Ｎｏ．２（１９９０））およびＣｏｌｌｉｎｓら、  Ｍｉｎｎｅｓｏｔａ  Ｓｗｉｎｅ  Ｃｏｎｆｅｒｅｎｃｅ  ｆｏｒ  Ｖｅｔｅｒｉｎａｉａｎｓ，Ａｂｓｔｒａｃｔ，２４５−５５（１９９０））。肺ホモジネートおよび組織ホモジネートをノトバイオートブタ（９０×７５）の初回接種材料の第２継代から調整し、第２の接種材料を生成した。第２の接種材料を接種材料および抗原として、この実験の高度免疫血清を生成するために使用することができる。
【００８７】
目的を達成するための方法。
ノトバイオートブタ。ノトバイオートブタを先述のＢｅｎｅｆｉｅｌｄら、Ａｍ．  Ｊ．  Ｖｅｔ．  Ｒｅｓ．，  ４９，３３０−３６（１９８８）およびＣｏｌｌｉｎｓら、Ａｍ．  Ｊ．  Ｒｅｓ．，  ５０  ８２７−８３５（１９８９）に記載のように誘導し維持することができる。
【００８８】
高度免疫血清接種。  高度免疫血清を上述のようにノトバイオートブタ１例に初回接種することによって調整することができる。その後、ブタには１ｍｌの第の接種材料および１ｍｌのフロインドの不完全アジュバントを含む追加抗原を初回接種１４および２１日後に投与する（ＨａｒｌｏｗおよびＬａｎｎｅ，  １９８８）。このブタは、最終接種後１４日以後に安楽死させることが望ましい。血清を回収し、適切なアリコートに調整し、−２０℃で凍結することが望ましい。
【００８９】
血清学的検査。  大半の診断研究所で一般に行なうように、高度免疫血清についてブタ共通の病原体に対する抗体があるか試験をする。この血清をヘモフィルス、ブルセラ、レプトスピラ（６血液型亜型）、仮性狂犬病ウイルス（ＰＲＶ）、パルボウイルス（ＰＰＶ）、脳心筋炎ウイルス（ＥＭＣ）およびブタインフルエンザウイルス（ＳＩ）に対する抗体について検査することができる。
【００９０】
結果。  抗血清調整用のブタは、ブタ  ＃４Ｂ（実験番号  ９０ｘ２３８）であった。このブタは１９９０年１１月  １日に接種し、１９９０年１１月２９日殺処分するまで毎日臨床的徴候について観察した。臨床的徴候は、表１にまとめた。残念ながら、ブタの連続変性条件は、１９９０年１１月１３日の僅か１回の追加免疫後に安楽死させることであった。初回追加免疫１６日後の１９９０年１１月２９日にブタを安楽死させた。
【００９１】
血清学的結果は、１６，３８４の力価を有するＰＰＶ以外の上述の因子はすべて陰性だった（表２参照）。このブタの滴定前の血清は処理しなかった。
【００９２】
肺、心臓、脳、腎臓、結腸、小腸、鼻甲介、脾臓、胃および気管をブタ剖検時に収集した。これらの試料を評価し、ブタ由来の肺がＭＳＤの現場症例を伴って典型的にみられるその重篤な肺炎に関する病変を有することがわかった。
【００９３】
この実験結果は、病原菌は、ＭＳＤの自然症例に典型的に見られる臨床的疾患および病変を誘導するので、病原菌が第２の接種材料に存在するとする初期の試験を確証するものである。
【００９４】
【表１】
0003566279.tif 000003
0003566279.tif 000004
0003566279.tif 000005
【００９５】
【表２】
接種ブタの抗体試験
１．ブタインフルエンザ  −  陰性
２．ブタ脳心筋炎  −  陰性
３．ブタＡＰＰ  −  陰性
４．ブタＰＲＶ  −  陰性
５．ブタＰＰＶ  −  陰性
６．ブタブルセラ  −  陰性
７．ブタレプトスピラ  −  陰性
８．ブタＥＰＩ  −  陰性
【００９６】
例４Ａ―モノクローナル抗体調整
マウス免疫化。  ハイブリドーマ融合の８日前、ＢＡＬＢ／Ｃ  ＡｎＮマウスにフロインドの完全アジュバント（ＣＦＡ）に抗原を含む１：１の懸濁液をＩＰ接種した。使用する抗原の量は、抗原の免疫原性および毒性によって異なる。１マウス当たり、最大０．３ｍｌのＣＦＡを使用する。融合１週間前は、塩類溶液に含めた抗原でマウスをＩＰ免疫する。融合２日前は、マウスＩＶを塩類溶液に含めた抗原を接種する。
【００９７】
骨髄腫細胞。  １０％のウシ胎児血清を含むダルベッコの調整イーグル培地上で、マウス骨髄腫細胞（Ｐ３．ＮＳ−１−Ａｇ４−１（ＡＴＣＣ  ＴＩＢ  １８））を維持する。約１０７−１０８個の細胞を、模範的なマウスの１脾臓から得られたＢ細胞に融合する。ハイブリドーマ融合直前に、５０ｍｌの遠心分離管に対数期培養から骨髄腫細胞を収集し、５分間の２００×ｇ遠心分離によってペレット細胞を収集する。上澄みを抽出し、細胞を２度無血清ＤＭＥＭで洗浄し、上述のように遠心分離にかける。（１０７−１０８個の細胞を含む）ペレットを１ｍｌの無血清ＤＭＥＭで再懸濁する。
【００９８】
脾臓リンパ球の単離。  頸部脱臼によってマウスを安楽死させ、７分間７０％のエタノールに浸漬する。無菌処理によって脾臓を摘出し、  ５ｍｌの低温無血清ＤＭＥＭを含む無菌ペトリ皿に移す。メスを使用し、長軸に沿って脾臓を切れ目を入れ、脾臓の縦方向にそって徐々に解体して、脾細胞を培地に放出する。ピペットを使用して遊離細胞および培地を１５ｍｌの遠心分離管に移すが、脾臓ケーシングは残す。管の組織デブリを５分間放置し、単細胞懸濁液を新たな管に移す。細胞を５分間２００×ｇで遠心分離し、上澄みを捨て、ペレットを低温無血清ＤＭＥＭで洗浄する。細胞を１ｍｌの無血清ＤＭＥＭで再懸濁し、融合するまで氷上で保管する。
【００９９】
融合。  脾細胞を骨髄腫細胞を含む遠心分離管に添加し、５分間５００×ｇ遠心分離する。上澄みをすべて除去し、管の側面を軽く叩くことによって細胞ペレットを解す。すべての試薬および細胞を３７℃に維持し、  １ｍ１５０％のポリエチレングリコール溶液（ＰＥＧ  ４０００，  Ｇｉｂｃｏ，  Ｇｒａｎｄ  ｌｓｌａｎｄ，  ＮＹ）を滴状で穏やかに混ぜながら１分間かけて添加する。３７℃で１分間混合物を放置する。  １ｍｌの中温無血清ＤＭＥＭを穏やかに混ぜながら滴状に１分間かけて添加する。最後２０ｍｌの無血清ＤＭＥＭを４分間滴状添加して、すぐに２００×ｇで５分間細胞を遠心分離にかける。上澄みを除去し、２０％のウシ胎児血清、０．２単位／ｍｌのインシュリン、０．５ｍＭのピルビン酸ナトリウム、  １ｍＭのオキザロ酢酸、  ２ｍＭのＬ−グルタミン、非必須アミノ酸および１０％のＮＣＴＣ−１０９リンパ球培地を含む４７ｍｌのＤＭＥＭで細胞を再懸濁する。  １ｍｌ容量の細胞再懸濁を２４−ウェル型平底組織培養板２枚のウェルに添加する。骨髄腫細胞の対照ウェルを含ませ、板を３７℃および１０％Ｃ０２（ＳＤＭＥＭ）で培養する。
【０１００】
１晩培養した後、各ウェルから０．５ｍｌの培地を細胞層を動揺させずに取り出す。１×１０−４Ｍのヒポキサンチン、４×１０−７Ｍのアミノプテリンおよび１．６×１０−５Ｍのチミジン（ＨＡＴ）を、各ウェルに添加し、３７℃および１０％Ｃ０２で培養を続ける。２−３週間週に３回、  １ｍｌの使用培地を１ｍｌの新鮮なＤＭＥＭ＋ＨＡＴを継続して取り替える。有意なクローン増殖が見られた場合、ＥＬＩＳＡ、間接ＦＡまたはその他の適切な検定システムで特異抗体がウェルに存在するか否かを検査する。
【０１０１】
クローニング。  特異抗体に対して陽性試験を行なう一次ウェルを、サブクローニングして直ちに安定した細胞系を得て、その他のクローンによる過剰増殖を避けることが望ましい。選択した一次ウェル細胞を再懸濁して、トリパンブルー染色法および血球計数器で細胞数を計測する。細胞を稀釈し、ＳＥＭＥＭ＋ＨＴ中約  ２細胞／ｍｌの最終濃度を得る。非接種マウスから得た標準脾細胞を  １００ｍｌ培地当たり５０μｌの濃縮細胞を添加することによって支持細胞層として用いる。
【０１０２】
２５０μｌの細胞懸濁液を  ９６−ウェル型板の各ウェルに添加し、  ３７℃１０％Ｃ０２  で培養する。  クローンは、２−３週間後には肉眼視できることが望ましく、単クローンを含むウェルから得た上澄みは、有意な増殖が認められた場合に検査する。特異抗体に対する陽性試験を行なうウェルでクローニング処理を繰り返す。選択クローンを組織培養フラスコに徐々に拡大し、さらに特徴化し凍結保存する。
【０１０３】
腹水生成。  ハイブリドーマ細胞接種の２週間前、ＢＡＬＢ／ｃ  ＡｎＮマウスに０．５ｍｌのプリスタンのＩＰ投与で初回抗原刺激を行なう。ハイブリドーマ細胞を収集し、ハンクスの均衡塩類溶液で１回洗浄する。ＨＢＳＳで細胞を再懸濁し、初回抗原刺激を受けたマウスに  １０４−１０６の生存可能細胞を接種する。腹水生成が明らかである場合（通常は、接種１−２週間後）、鼠径部に１６  Ｇ  １−１／２”ニードルを腹側挿入して抽出する。ニードルのハブを遠心分離管上で固定し、腹水を管に排出する。腹水液を２００×ｇで遠心分離し、０．２ｎｍのフィルターで濾過し、凍結保管する。
【０１０４】
例４−ＳＩＲＳモノクローナル抗体
（ＳＤＯＷ１２およびＳＤＯＷ１７）
ＳＩＲＳウイルスに対するモノクローナル抗体ＳＤＯＷ１２（ＡＴＣＣ    Ｎｏ．  ＨＢ  １０９９６）およびＳＤＯＷ１７  （ＡＴＣＣ  Ｎｏ．  ＨＢ  １０９９７）を上述の標準モノクローナル抗体生成プロトコルを用いて調整した。マウス免疫化に使用した抗原をＢｏｅｈｒｉｎｇｅｒ  ｌｎｇｅｌｈｅｉｍ  Ａｎｉｍａｌ  Ｈｅａｌｔｈ（ＢＩＡＨ）から得たＭＡ−１０４で育成した６回継代のＳＩＲＳウイルス（ＶＲ−２３３２）であった。各免疫化には、マウスに力価１０６ＴＣＩＤ５０／１００μｌを含む０．３ｍｌの勾配生成ウイルスを接種した。
【０１０５】
間接蛍光抗体（ＩＦＡ）検査を用いて、ハイブリドーマ一次ウェルおよびクローンウェル中の特異抗体を検出した。  ９６−ウェル型組織培養板におけるアセトン固定ウイルス感染および非感染の細胞単層をＩＦＡに用いた。これらのハイブリドーマ由来の細胞培養上澄みおよび腹水液によって、ＳＩＲＳ感染細胞中に明るい頼粒細胞質蛍光が生じた。
【０１０６】
これらのモノクローナル抗体の予備的特性化には、免疫グロブリンイソタイピングやＳＩＲＳウイルスタンパク質の放射性免疫沈殿解析などがある。モノクローナル抗体ＳＤＯＷ１２およびＳＤＯＷ１７は、ｌｇＧ１イソタイプである。両抗体は、１５ｋＤのウイルスタンパク質に放射性免疫沈殿解析時に結合した。
【０１０７】
例５
３つの予備試験について説明する。ノトバイオートブタ試験は、現場材料を使用して、ノトバイオートブタにおける症候群の呼吸器系成分に感染し、それを誘発することができることを示すために意図された。一般の離乳ブタを使用する第２の試験は、ノトバイオートブタに見られる呼吸器疾患が一般のブタに再生されうるか否かを判定するために意図された。最後に、妊娠ブタ試験は、症候群の再生不全成分を実験的に複製できるか否かを判定するために意図された。
【０１０８】
材料および方法
現場症例。    例１Ａの接種材料ソースを参照。
ノトバイオートブタ試験。    子宮摘出誘導のノトバイオート仔ブタ６例に日齢３日目に現場接種材料（きまざなまな組織を含む１０％ホモジネート）を接種した。濾過（０．２２  μｍ）および非濾過の接種材料を使用した。対照仔ブタ２例には培地のみ接種した。臨床的徴候を毎日監視し高度免疫血清生成に保持するブタ１例を除いて、接種後８日目に安楽死させた。ウイルス単離および組織学的検査に用いる組織を剖検時に血清とともに収集し、血清をレプトスピラ、クラミジア、エぺリスロゾーン、アウジェスキー病ウイルス、ブタパルボウイルス、脳心筋炎ウイルス、血球凝集性脳炎ウイルス、ブタインフルエンザウイルス、ウシＲＳウイルス、犬ジステンパーウイルス、ウシ性下痢ウイルスおよびブタコレラに対する抗体について、血清のスクリーニングを行なった。初回接種材料は、ノトバイオート仔ブタを連続的に３回継代するために初代細胞系に接種した。さらに、直接免疫電子顕微鏡検査を行なった。
【０１０９】
通常飼育ブタ試験。    ＭＳＤ病歴のない農場から入手した通常飼育の日齢２８日の離乳ブタ３例に、感染ノトバイオート仔ブタ由来の１０％肺ホモジネートを経鼻腔接種した。陰性ノトバイオートブタからの肺ホモジネートを対照用の接種材料として用いた。仔ブタの臨床的徴候について毎日監視し、接種８日後に剖検した。血清／組織を上述の方法で処理した。
【０１１０】
妊娠ブタ試験。  ＭＳＤのない農場から得た過去の出産日がわかっている経産雌ブタ８例を本試験に使用した。予定分娩日の３週間前、雌ブタ６例に感染ノトバイオート肺ホモジネートを経鼻腔で接種し、２例には陰性肺ホモジネートを接種した。毎日、臨床的徴候を監視した。雌ブタには自然分娩させ、可能であれば、分娩に立ち会い、生産ブタから乳飲前の血清を収集した。雌ブタおよび生産ブタを分娩後間もなく安楽死させ、組織病理学用およびウイルス単離用に収集した。血清または胸部液も収集した。
【０１１１】
結果
現場試験。  肉眼的病変は剖検時には見られなかった。養生ブタの顕微鏡的試験から、壊死性間質性肺炎およびリンパ球単核脳炎があきらかになった。胎児には病変がなかったが、雌ブタには軽度の脳炎があった。顕微鏡的試験では決定的な結果は出なかった。
【０１１２】
ノトバイオート試験。  接種後、仔ブタの食欲は減退し、毛皮が荒くなった。対照動物は正常を維持した。顕微鏡的病変が濾過または非濾過の材料を接種した当該のブタに認められた。病変は現場症例に類似し、壊死性間質性肺炎（  ６／６［仔ブタ６例中６例］）、リンパ球形質細胞性鼻炎（４／６）、リンパ球単核脳炎（２／６）および心筋炎（１／６）を含んでいた。病因学的因子は、接種前後の血清学的検査によっても接種材料／組織試験によっても同定されなかった。
【０１１３】
通常飼育離乳ブタ試験。  臨床的には、当該のブタが接種２日後に鈍くなり食欲不振となった。これらのブタは、温度を十分に提供していてさえも、身震いをしているように感じられた。１例の体温は、接種６日後に上昇していた（４１．５℃）。間質性肺炎、脳炎および心筋炎は、当該のブタには認められたが、対照には認められなかった。
【０１１４】
妊娠ブタ試験。  臨床的には、２例に限っては、が接種後３または５日後、若干の体温上昇があった（  １．５℃）。ただし、食欲減退は、  ４／６の雌ブタについて接種４または５日後に認められた。３例は最大７日早く分娩し、３例は予定通り分娩した。感染雌ブタの胎児の５０％以上が死産であったが、対照は正常な同腹子を産んだ。実験室的所見は、決定的ではなく、特異因子は同定されず、病変は現在まで認められていない。
【０１１５】
原因的微生物は同定されなかったが、所見からＭＳＤは、（１農場からの現場組織を使用して）実験的にノトバイオートブタおよび通常飼育ブタに伝達され得ることが示唆された。ＭＳＤに対する呼吸器系形態および生殖的形態は、再生された。当該因子は、伝染性で０．２２μｍにおいて濾過性があると思われるほか、外見上選好性である。
【０１１６】
考察
米国だけではなく世界中でＭＳＤは重要で新種の疾患である。調整した環境において疾患を研究するには、ノトバイオートブタには、ＭＳＤの臨床的徴候を経験している農場から得た組織ホモジネートを用いて日齢３日目に経鼻腔接種した。壊死性間質性肺炎を含む現場症例に類似しているが、リンパ球形質細胞性鼻炎、リンパ球単核脳炎または心筋炎にはあまり類似性が少ない顕微鏡的病変は、実験動物には見られたが対照には見られなかった。ノトバイオートブタから得た肺ホモジネートを使用した場合、通常飼育の生後４週目の離乳ブタは同様の病変を引き起こした。経産の妊娠ブタにも分娩日の３週間前にノトバイオートの肺ホモジネートを接種した。臨床的には、これらの雌ブタはある期間食欲不振になり、最大７日間前までに分娩した。５０％以上の胎児は死産または初期の段階でミイラ化しているかのいずれかだった。これらの所見は、病減菌に関する病気を単離し、実験的に現場組織を用いてノトバイオートブタに伝達させることができ、ノトバイオートのブタから通常飼育のブタまたは妊娠ブタに伝達させることができる。本研究は、疾患の呼吸器的形態および生殖的形態のモデルを提供するので、ＭＳＤの発生病理および診断方法をさらに調査することができる。
【０１１７】
本発明は、以下の〔１〕〜〔３７〕に記載された態様を含む。
〔１〕ブタミステリー病の予防に使用するために適したワクチンにおいて、
薬学的担体と組み合わせた、ブタミステリー病感染組織由来の不活性化または弱毒化した病原菌を有することを特徴とするワクチン。
〔２〕前記病原菌をブタミステリー病感染のブタ肺組織を含む濾過ホモジネートから成る接種材料から得ることを特徴とする〔１〕記載のワクチン。
〔３〕ホモジネートが、血友病、プルセラ症、レプトスピラ症、パルボウイルス症、仮性狂犬病、脳心筋炎、エンテロウイルス症、ブタインフルエンザおよびその組み合わせからなるグループから選択したブタの疾患に対する血清を用いて中和化することによって精製されていることを特徴とする〔２〕記載のワクチン。
〔４〕病原菌が、ブタ不育および呼吸器系症候群疾患を有することが知られているブタ肺組織から単離した病原菌で一次的または継続的に処理したin vitro培養の鳥類、昆虫またはほ乳類の器官細胞を含む細胞培地から得られることを特徴とする〔１〕記載のワクチン。
〔５〕濾過ホモジネートが1.0ミクロン以下の大きさの生物学的粒子を含むことを特徴とする〔２〕記載のワクチン。
〔６〕大きさが5ミクロン以下であることを特徴とする〔５〕記載のワクチン。
〔７〕病原菌がウイルスであることを特徴とする〔１〕記載のワクチン。
〔８〕前記ウイルスが選好性非血球凝集外皮ＲＮＡウイルスであることを特徴とする〔７〕記載のワクチン。
〔９〕病原菌がブタ不育および呼吸器系症候群ウイルスATCC VR-2332とその動物発生病理的変異株とから成る生物学的に純粋な培養であることを特徴とする〔１〕記載のワクチン。
〔１０〕ウイルスが勾配または連続細胞培養によって精製されていることを特徴とする〔７〕記載のワクチン。
〔１１〕ブタミステリー病感染のブタを治療するのに適した血清であり、
ブタミステリー病感染のブタ由来の病原菌を接種したほ乳類の半精製血清を含むことを特徴とする血清。
〔１２〕病原菌がブタミステリー病に感染したブタ肺組織の濾過ホモジネートから成る接種材料から得られることを特徴とする〔１１〕記載の血清。
〔１３〕病原菌がブタミステリー病に感染した肺組織から得た接種材料で処理したin vitro培養の鳥類、昆虫またはほ乳類の器官細胞を含む細胞培地から得られることを特徴とする〔１１〕記載の血清。
〔１４〕前記培養ほ乳類器官細胞がサル細胞系であることを特徴とする〔１３〕記載の血清。
〔１５〕ブタのブタミステリー病の診断方法において、
ブタから肺組織試料を得て、
試料の液体ホモジネートを生成し、
液体ホモジネートを容器に添加し、ウイルス材料を固定し、固定混合物を生成させ、
ブタミステリー病に対する非ブタほ乳類抗体血清を固定混合物に添加し、複合体を生成させ、
標識化抗種抗体を添加し、複合体を検出する
ことを特徴とするブタミステリー病の診断方法。
〔１６〕非ブタほ乳類抗体がモノクローナル抗体であることを特徴とする〔１５〕記載のブタミステリー病の診断方法。
〔１７〕標識化抗種抗体が放射性または呈色酵素標識を輸送することを特徴とする〔１５〕記載のブタミステリー病の診断方法。
〔１８〕前記モノクローナル抗体がSDOW12またはSDOW17であることを特徴とする〔１６〕記載のブタミステリー病の診断方法。
〔１９〕ブタのブタミステリー病診断方法において、ブタから得たブタミステリー病病原菌組織試料を有している疑いがある試料の液体ホモジネートを生成し、
ブタミステリー病ウイルスに対して免疫特異である免疫反応性抗体を液体ホモジネートに添加し、
抗体一抗原複合体の沈殿の存在を検出することを特徴とするブタミステリー病の診断方法。
〔２０〕前記抗体がSDOW12であることを特徴とする〔１９〕記載のブタミステリー病の診断方法。
〔２１〕前記抗体がSDOW17であることを特徴とする〔１９〕記載のブタミステリー病の診断方法。
〔２２〕不活性または弱毒化したＭＳＤ病原菌を含むＭＳＤワクチンを生成するワクチン生成方法において、
肥大肺胞問、変性細胞および肺胞間中のデブリを有するブタ肺組織を同定し、
薬学的に耐用し得る水溶液でブタ組織を同質化し、混合物を生成し、
一連のフィルターで混合物を濾過し、ＭＳＤ病原菌を含む濾過ホモジネートを生成し、濾過ホモジネート中のＭＳＤ病原菌を不活性化または弱毒化してＭＳＤワクチンを生成する
ことを特徴とするワクチンに生成方法。
〔２３〕ホモジネートを濾過し、約1.0ミクロン以下の粒子を含有させることを特徴とする〔２２〕記載のワクチン生成方法。
〔２４〕ホモジネートを濾過し、約0.5ミクロン以下の粒子を含有させることを特徴とする〔２２〕記載のワクチン生成方法。
〔２５〕ホモジネートを濾過し、約0.1ミクロン以下の粒子を含有させることを特徴とする〔２２〕記載のワクチン生成方法。
〔２６〕選好性非血球凝集外皮ＲＮＡウイルスの生物学的に純粋な培養において、前記培養がその発生病理的変異株すべてを伴い、ブタにおけるブタ不育および呼吸器系疾患に影響を与えることができることを特徴とする培養。
〔２７〕ネズミ誘導ハイブリッド細胞系によって生成されるモノクローナル抗体において、前記抗体がブタに対してブタ不育および呼吸基疾患を生じさせる選好性非血球凝集ＲＮＡウイルスの抗原決定基の少なくとも１つと特異的に結合することができるモノクローナル抗体。
〔２８〕前記抗体がIgGまたはIgM型の免疫グロプリン分子であることを特徴とする〔２７〕記載のモノクローナル抗体。
〔２９〕SDOW12であることを特徴とする〔２７〕記載のモノクローナル抗体。
〔３０〕SDOW17であることを特徴とする〔２７〕記載のモノクローナル抗体。
〔３１〕ブタ不育および呼吸器系症候群ウイルスすなわちATCC VR-2332の生物学的に純粋な培養において、前記培養が、その発生病理的変異株すべてを伴い、ブタに対してブタ不育および呼吸器系疾患に作用することができることを特徴とする培養。
〔３２〕修飾された生きたブタ不育および呼吸器系症候群ウイルスすなわちATCC VR-2332と、ウイルスがブタに対して非発生病理的になるように修飾された薬学的に耐用し得る担体と、を含むことを特徴とするワクチン組成物。
〔３３〕死滅または不活性のブタ不育および呼吸器症候群すなわちATCC VR-2332および薬学的に耐用し得る担体を含むことを特徴とするワクチン組成物。
〔３４〕〔３２〕に記載したワクチン組成物をブタに投与することを特徴とするブタ不育および呼吸器症候群に対するブタの免疫化方法。
〔３５〕〔３３〕に記載したワクチン組成物をブタに投与することを特徴とするブタ不育および呼吸器症候群に対するブタの免疫化方法。
〔３６〕ブタ不育および呼吸器系症候群ウイルスすなわちATCC VR-2332の増殖単離方法において、適切な増殖培地中の血清存在下でサル細胞の完全または部分的シーツにウイルスを接種し、ＣＰＥが認められるまでの間、約34℃乃至37℃で接種細胞シーツを培養することを特徴とする増殖単離方法。
〔３７〕サル細胞系がMA-104であることを特徴とする〔３６〕記載の増殖単離方法。
【図面の簡単な説明】
【図１】図１は、ＳＩＲＳウイルスＶＲ−２３３２によって観察される細胞変性効果を示す。図１Ａは、非感染未染色細胞単層である。図１Ｂは、小型顆粒状成熟変性細胞に感染した単層であり、該ＳＩＲＳウイルスの６回目の継代を伴う接種３日後に観察された。
【図２】図２は、ＳＩＲＳウイルス感染ＭＡ−１０４細胞の直接免疫蛍光染色を示す。図２Ａは、非感染細胞単層である。図２Ｂは、強度で、しばしば接種後３日後観察される顆粒状細胞質蛍光を有する感染細胞である。
【図３】図３は、ＣｓＣｌ密度勾配にかけて精製したＳＩＲＳウイルスの密度勾配プロフィルである。ウイルスの感染力は１．１８−１．１９ｇ／ｍｌで最大になる。
【図４】図４は、密度１．１８−１．１９ｇ／ｍｌのＣｓＣｌ勾配画分に観察きれるウイルス粒子の電子顕微鏡写真を示す。図４Ａは、これら４粒子が直径  ６０−６５ｎｍの球形であることを示す。２粒子は、「中空」であり、高電子密度核であることを示し（矢印）、残り２粒子は完全である。棒線の長さは１００ｎｍである。図４Ｂは、ウサギ高度免疫血清および金粒子で標識化した抗ウサギＩｇＧを用いたＳＩＲＳウイルスの免疫−金電子顕微鏡検査の結果を示す。このビリオン内に直径約２５−３０ｎｍの核粒子が存在することに注目されたい。棒線の長さは、５０ｎｍである。
【図５】図５は、ＳＩＲＳウイルスの４℃（黒三角）、３７℃（黒丸）、５６℃（白丸）における温度安定性を示す。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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