(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
細胞外ドメイン、膜貫通セグメント、および、CAMLに対して結合アフィニティを有する細胞質ドメインを含み、Ｂリンパ細胞において細胞内オルガネラと直接に相互作用する細胞膜レセプターであって、配列番号１に記載の配列のコード配列と高いストリンジェンシーハイブリダイゼーション条件でハイブリダイズするヌクレオチド配列によってコードされる、単離された膜貫通活性化因子およびCAML相互作用（TACI）タンパク質であって、前記高いストリンジェンシーハイブリダイゼーション条件が50％ホルムアミド中65℃および5xSSCを使用する条件である、前記TACIタンパク質。
【請求項２】
以下の１以上の特徴を有する、請求項１に記載のTACIタンパク質：
（ａ）約295アミノ酸からなる１以上のモノマーを含む；
（ｂ）配列番号11のアミノ酸配列を含む、１以上のTNFR_NGFRモチーフを含む；
（ｃ）配列番号２のアミノ酸配列、または、少なくとも１つの保存的アミノ酸置換を含む配列番号２のアミノ酸配列、を含む。
【請求項３】
以下のａ）〜ｆ）からなる群より選ばれる、配列番号２に記載のアミノ酸配列を有するタンパク質の断片：
ａ）配列番号２に記載のアミノ酸配列のＮ−末端151アミノ酸からなる配列；
ｂ）配列番号６に記載のアミノ酸配列からなる配列；
ｃ）配列番号２に記載のアミノ酸配列のＣ−末端126アミノ酸からなる配列；
ｄ）配列番号２に記載のアミノ酸配列のＣ−末端110アミノ酸からなる配列；および、
ｅ）配列番号４に記載のアミノ酸配列。
【請求項４】
以下のａ）またはｂ）から選ばれるアミノ酸配列をコードする、連続する少なくとも36個のヌクレオチドを含むヌクレオチド配列によってコードされる単離ペプチドであって、リガンド結合活性を有し、配列番号２のアミノ酸33−66番に記載のアミノ酸配列を有するTNFR_NGFRモチーフおよび配列番号２のアミノ酸70−104番に記載のアミノ酸配列を有するTNFR_NGFRモチーフからなる群より選ばれる少なくとも一つのアミノ酸配列を含む、前記単離ペプチド：
ａ）配列番号２に記載のアミノ酸配列；および
ｂ）配列番号２に記載のアミノ酸配列において少なくとも１つの保存的アミノ酸置換を含むアミノ酸配列。
【請求項５】
請求項１または２に記載の単離されたTACIタンパク質のＮ−末端断片であって、リガンド結合活性を有し、以下のａ）およびｂ）からなる群より選ばれるアミノ酸配列を少なくとも一つ含む、前記Ｎ−末端断片：
ａ）配列番号２のアミノ酸33−66番に記載のアミノ酸配列を有するTNFR_NGFRモチーフ；および、
ｂ）配列番号２のアミノ酸70−104番に記載のアミノ酸配列を有するTNFR_NGFRモチーフ。
【請求項６】
配列番号６のアミノ酸配列を有する、あるいは、少なくとも１つの保存的アミノ酸置換を含む配列番号６のアミノ酸配列を有する、請求項５に記載の単離ポリペプチド。
【請求項７】
請求項１または２に記載のTACIタンパク質のＣ−末端断片を含む単離ポリペプチドであって、前記Ｃ−末端断片がCAMLと結合し、請求項１または２記載のTACIタンパク質のアミノ酸95−130番を含む、前記単離ポリペプチド。
【請求項８】
Ｃ−末端断片が更に以下の１以上の特徴を有する請求項７に記載の単離ポリペプチド：
（ａ）TACIタンパク質のＣ−末端の約126アミノ酸を含む；
（ｂ）配列番号４のアミノ酸配列、または、少なくとも１個の保存的アミノ酸置換を有する配列番号４のアミノ酸配列を含む。
【請求項９】
（ａ）請求項１または２に記載のTACIタンパク質、または
（ｂ）請求項３に記載のタンパク質分解断片、または
（ｃ）請求項４〜８のいずれか１項に記載の単離ポリペプチド
を含むキメラタンパク質。
【請求項１０】
更に免疫グロブリンのFc領域を含む、請求項９に記載のキメラタンパク質。
【請求項１１】
（ａ）請求項１または２に記載のTACIタンパク質または、
（ｂ）請求項３に記載のタンパク質分解断片、または
（ｃ）請求項４〜８のいずれか１項に記載の単離ポリペプチド、または
（ｄ）請求項９または10に記載のキメラタンパク質、
に対する抗体。
【請求項１２】
キメラ抗体またはモノクローナル抗体である、請求項11に記載の抗体。
【請求項１３】
請求項12に記載の抗体を産生する不死細胞株。
【請求項１４】
請求項１または２に記載のTACIタンパク質コードするが前記TACIタンパク質を機能可能に発現させることの出来ない第１のアレル、および、請求項１または２に記載のTACIタンパク質コードし、かつ前記TACIタンパク質を機能可能に発現させることのできる第２のアレルを含むノックアウトマウス。
【請求項１５】
請求項１または２に記載のTACIタンパク質をコードする２つのアレルを有し、前記２つのアレルは機能性TACIタンパク質を発現させることが出来ず、それにより機能性TACIタンパク質を発現しないノックアウトマウス。
【請求項１６】
（ａ）配列番号１の核酸配列、または配列番号１のコード領域を含む単離核酸、または
（ｂ）請求項１または２に記載のTACIタンパク質をコードする核酸、または、
（ｃ）請求項３のタンパク質分解断片をコードする核酸、または、
（ｄ）請求項４〜８の単離ポリペプチドをコードする核酸、または、
（ｅ）請求項９または10のキメラタンパク質をコードする核酸。
【請求項１７】
標準的なハイブリダイゼーション方法の下で、配列番号１の核酸とハイブリダイズする、少なくとも18ヌクレオチドからなる単離核酸。
【請求項１８】
（ａ）請求項１または２に記載のTACIタンパク質、または
（ｂ）請求項３に記載のタンパク質分解断片、または、
（ｃ）請求項４〜８に記載の単離ポリペプチド、または、
（ｄ）請求項９または10に記載のキメラタンパク質、
を作製する方法であって、TACIタンパク質、タンパク質分解断片、またはキメラタンパク質をコードする核酸を含む発現ベクターを宿主細胞に導入し、前記TACIタンパク質、タンパク質分解断片、またはキメラタンパク質を前記宿主細胞内で発現させる、前記方法。
【請求項１９】
さらにTACIタンパク質、タンパク質分解断片、単離ポリペプチド、またはキメラタンパク質を精製することを含む、請求項18に記載の方法。
【請求項２０】
TACIタンパク質のリガンドを同定する方法であって、
（ａ）請求項５または６に記載のＮ−末端細胞外ポリペプチドまたは前記Ｎ−末端細胞外ポリペプチドを有するキメラタンパク質を候補分子と接触させること；および、
（ｂ）Ｎ−末端細胞外ポリペプチドと前記候補分子との結合の検出を行ない、前記Ｎ−末端細胞外ポリペプチドと前記候補分子との結合によって前記候補分子をリガンドとして同定すること
を含む、前記方法。
【請求項２１】
Ｎ−末端細胞外ポリペプチドが機能性TACIタンパク質上に存在し、候補分子の結合が、
（ａ）AP−１経路の活性化；
（ｂ）CAML経路の活性化；
（ｃ）NF−AT転写因子の活性化；
（ｄ）NF−KB経路の活性化；および、
（ｅ）NF−AT依存転写の活性化、
からなる群より選ばれる過程の細胞活性化を検出することによって決定される、請求項20に記載の方法。
【請求項２２】
（ａ）TACIタンパク質が酵母２−ハイブリッドスクリーニングにおいて発現されること；または
（ｂ）TACIタンパク質がNF−ATプロモーターの制御下にあるレポーター遺伝子を含むJurkat細胞中で発現されること、
を特徴とする、請求項21に記載の方法。
【請求項２３】
成熟Ｔ細胞に影響を与えずにＢリンパ細胞の作用を選択的に阻害する免疫抑制剤を同定する方法であって、
（ａ）第１のリンパ細胞を可能性のある薬剤と接触させるステップであって、前記第１のリンパ細胞が請求項１および２のTACIタンパク質および第１のマーカータンパク質を含み、前記第１のマーカータンパク質はTACIタンパク質が候補薬剤の非存在下で刺激されると転写されるものである、前記ステップ；
（ｂ）TACIタンパク質を刺激するステップ；
（ｃ）転写された前記第１のマーカータンパク質が検出できる条件下における前記第１のマーカータンパク質を検出するステップであって、前記薬剤は前記第１のマーカータンパク質が検出できない場合に候補薬剤として選択される、前記ステップ；
（ｄ）第２のリンパ細胞を候補薬剤と接触させるステップであって、前記第２のリンパ細胞がＴ細胞レセプターおよび第２のマーカータンパク質を有し、前記第２のマーカータンパク質は、前記Ｔ細胞レセプターが免疫抑制剤の存在下でも非存在下でも刺激された場合に転写されるものである、前記ステップ；
（ｅ）Ｔ細胞レセプターを刺激するステップ；
（ｆ）転写された前記第２のマーカータンパク質が検出可能である条件下で前記第２のマーカータンパク質の検出を行ない、第２のマーカータンパク質が検出される場合に候補薬剤が免疫抑制剤として同定されるステップ、
を含む、前記方法。
【請求項２４】
TACIタンパク質の刺激がTACIタンパク質に対する抗体によって行なわれる、請求項23に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
研究支援
本発明に至る研究は米国国立衛生研究所の癌センターCORE助成金CA−21765によって一部支援されたものである。本発明についてアメリカ政府はある種の権利を有することがある。本発明に対する補助はまたAMERICAN LEBANESE SYRIAN ASSOCIATED CHARITIESおよび米国癌学会助成金BT−234、James McDonnell基金助成金、JSMF93−40−03によって与えられた。
発明の分野
本発明は一般にリンパ細胞における転写の制御、それに関与するタンパク質、その抗体、そのタンパク質をコードする核酸およびその核酸、抗体およびタンパク質の使用に関する。
発明の背景
研究者達は外因性要因に対する細胞応答を制御しているメカニズムの解明を始めたばかりである。そのようなメカニズムの多くについての基本的な特徴の一つは外因性要因、例えばリガンドの細胞表面タンパク質、すなわちレセプターへの初期結合である。リガンドのそのレセプターへの結合は通常多数の事象のカスケードによって細胞変化に影響を与える。これらの事象は一般にプロテインキナーゼ、プロテインホスファターゼ、JAKタンパク質、Statタンパク質および／またはＧタンパク質のような他のタンパク質が関与する。加えて、特定のDNA制御配列に結合し、それによって１以上の特定の遺伝子の転写を開始させる転写因子が一般に細胞の核内に必要とされる。
しばしば他の因子も関与する。例えば抗原刺激リンパ細胞活性化において、カルシウム（Ca2+）流入も最終的なDNA転写の開始に必要である。上昇した細胞質カルシウム濃度は外部流入に起因することもあれば内部貯蔵の放出に起因することもある。カルシウム依存性プロテインホスファターゼカルシニューリンを活性化するカルシウム濃度の上昇は他の作用因子と一緒になって転写開始のシグナルとして働く。カルシウム流入を含む経路は細胞の活性化と増殖に関与する多数の過程に必須であることが明らかである。
細胞内カルシウムレベルは多数の異なる活性を有する多数の異なるタイプの細胞において主要な機能を果たす。カルシウム流入による遺伝子転写の誘導に加えて、筋収縮（心筋および骨格筋の両方において）、（好中球およびマクロファージの感染に対する応答、あるいは抗原刺激に対する好塩基球の応答、あるいは神経によるアセチルコリン放出におけるような）小胞顆粒消失、および細胞間ギャップジャンクションの閉鎖の過程で起こるような、他の多くのカルシウム依存性事象が細胞制御の機会を提供する。細胞周期もカルシウム流を伴う。細胞内カルシウム濃度を変化させる細胞内キレート剤は細胞周期が進行するのを抑制し、それにより細胞分裂を停止させる［Rabinovichら、J.of Immunol.137:952−961（1986）］。従って、カルシウムの制御は正常細胞および疾患細胞において細胞分裂を調節するのに効果的であり得る。
リンパ細胞は免疫系の細胞性兵器（cellular arm）の主要な構成部分である。リンパ細胞の特定のタイプ、Ｔ細胞の活性化は、例えばＴ細胞レセプター（TCR）の抗原提示細胞によって提示された抗原への結合によって、Ｔ細胞レセプターの刺激を通して生じ得る。この刺激は2a2+依存性ホスファターゼ、カルシニューリンの活性化を生じさせる。活性化したカルシニューリンは今度はNF−ATを活性化するが、NF−ATは随伴転写因子（companion trascription factor）AP−１と共に誘導性Ｔ細胞増殖因子インターロイキン２（IL−２）の発現に影響を与えるリンパ細胞特異的転写因子である。AP−１の活性化はプロテインキナーゼＣを含むカルシウム非依存性の過程であり、実験的に酢酸ミリスチン酸ホルボル（PMA）の添加で達成し得る。免疫抑制剤サイクロスポリンＡ（CsA）はサイクロフィリンに結合しサイクロフィリンのプロリルイソメラーゼ活性を阻害し、生じる薬剤−イソメラーゼ複合体が酵素の活性部位付近と直接相互作用することによりカルシニューリンを不活性化する［Liuら、Cell,66:807−15（1991）］；［CipstoneとCrabtree,Nature,357:695−７（1992）］；［O'Keefeら、Nature,357:692−４（1992）］。NF−KBはリンパ細胞の活性化に重要な第３のキー転写因子であり、Ｔ細胞またはＢ細胞抗原レセプターの刺激に続いて活性化される。
カルシウムシグナル調節サイクロフィリンリガンド（CAML）は最近同定されたリンパ細胞のカルシウムシグナル経路に関係する別のタンパク質である［Bram,R.J.とCrabtree,G.R.,DNA Encoding Calcium−Signal Modulating Cyclophilin Ligand,米国特許第5,523,227、1996年６月４月発行、全体が引用により本明細書に含まれるものとする］。CAMLはサイクロフィリンＢに妥当な特異性をもって結合する。すなわちCAMLはサイクロフィリンＡまたはＣには結合しない。しかしながら、サイクロスポリンＡ−サイクロフィリン複合体と異なり、CAML−サイクロフィリンＢ複合体は直接カルシニューリンに結合しない。従ってCAMLはCa2+流入の制御を通してカルシニューリンに影響を与えるようである。予期されるように、CsAはカルシニューリンを阻害することによりCAMLの転写活性効果を間接的に阻害することができる。加えて、CAMLはAP−１の活性化に全く影響を与えないようであり、NF−ATのCAML依存性活性化は実験的にはPMAの添加を必要とする。
CAMLは外来性シグナルの下流ではあるがカルシニューリンの上流で働く。CAMLが細胞質小胞中に局在することはこれが細胞内Ca2放出を調節することによりCa2+流入を制御し得ることを示唆している。しかしながら、外部シグナルを細胞CAMLへと伝達する本来の因子（あるいは因子群）を決定する必要性が残っている。さらに、CAMLが制御の助けとなる重要な細胞過程をどのようにうまく制御するかを知るために、CAMLがどのようにこれらの因子と相互作用するかを、理解する必要がある。シグナル伝達分子の異なるクラスは細胞表面レセプターのTNFRファミリーである［Smithら、Cell 76:959−62（1994）］。これらのレセプターは細胞内シグナルを開始し細胞の増殖、し、エフェクター機能の獲得の開始へ導く。
発明の概要
新規なリンパ細胞レセプター、そのDNA配列、およびカルシウム活性化経路における役割が記載される。タンパク質、あるいは遺伝的に操作されたこれをコードする構築物はリンパ細胞応答を増強するため、またはタンパク質レセプターのリガンドを同定するために使用することができる。可溶性の細胞外ドメインは細胞活性化を阻害するために使用することができる。このタンパク質に対する抗体を診断または治療に使用するために作ることができる。このタンパク質およびDNAは診断目的およびカルシウム誘導活性化経路を調節するための作用物質を同定するためにも使用することができる。コード配列の知識により細胞を操作してCAMLがその一部であるメカニズムを解明することができる。
本発明の特別な利点は、すべてのＢ細胞上に見られるがＴ細胞のあるサブセット上にしか見られないレセプターに関するリンパ細胞活性化を提供することである。従って、このレセプターは成熟Ｔ細胞活性化に影響を与えることなくＢ細胞応答を特異的に制御するための標的になり得る。このようなターゲティング特異性は常に利点であり、特に細胞性免疫応答に無関係な抗体産生の増大または減少が望まれる場合、例えば、感染の際（増大）または免疫複合体沈着併発症（リューマチ性関節炎、糸球体腎炎および他の自己免疫状態）を避けるために望まれる場合はそうである。
本発明の新規な細胞表面レセプターの架橋はＢ細胞およびＴ細胞のある集団を活性化する。これらの細胞の活性化は免疫活性化を増強する。一方、本発明の新規な細胞表面レセプターの阻害または抑制は免疫抑制を生じさせる。レセプター活性化の内在レベルに依存して（これは本発明の抗体または核酸を用いて評価することができる）、レセプター活性は増強または抑制されて望みの結果を達成することができる。本発明の新規な細胞表面レセプターの機能の活性化または阻害のいずれもＴ細胞およびＢ細胞の癌の治療に使用することができる。
本発明は、細胞表面シグナリングタンパク質として機能し、細胞外ドメイン、膜貫通セグメント、および細胞質ドメインを含む、単離した膜貫通活性化因子およびCAML−相互作用因子（TACI）タンパク質を含む。ひとつの実施態様では、TACIタンパク質は細胞外ドメインがタンパク質のＮ−末端部にあり細胞質ドメインがタンパク質のＣ末端部にある細胞質膜レセプターである。TACIタンパク質のＮ−末端部はリガンドに対する結合部位として機能し、TACIタンパク質のＣ−末端部のCAMLのＮ−末ドメインへの結合を誘導することにより細胞の活性化を刺激する。CAMLは細胞質小胞に局在する膜結合タンパク質であるため、TACIタンパク質はリンパ細胞中で細胞内オルガネラと直接に相互作用する細胞膜レセプターである。
ひとつの実施態様では、単離TACIタンパク質の単量体型は約295のアミノ酸からなっている。好ましい実施態様では、膜貫通活性化因子およびCAML−相互作用因子（TACI）タンパク質は280から310アミノ酸を有する。より好ましい実施態様では、TACIタンパク質の単量体型は290から296アミノ酸を含んでいる。以下に例示する具体的な実施態様においては、TACIタンパク質の単量体型は293アミノ酸を有している。
単離TACIタンパク質の一つの実施態様は二つのTNFRスーパーファミリーシステインリッチ反復を有している［Bairoch,Nucl.Acids Res.,21:3097−3103（1993）］。好ましい実施態様においては、in situで例えばリガンドまたは抗−TACI抗体によって適切に刺激されるTACIタンパク質はCa2+依存性経路およびCa2+非依存性経路の組み合わせを通して転写因子の活性化を開始する。
本発明は配列番号１と少なくとも60％の類似性を有するヌクレオチド配列、あるいは、配列番号１のコード配列と少なくとも60％の類似性を有するヌクレオチド配列の少なくとも18ヌクレオチドからなる単離核酸を含む。このヌクレオチド配列はCAMLに対する結合アフィニティーを有するTACIタンパク質をコードする。そのような実施態様の一つにおいては単離ヌクレオチド配列はTACIタンパク質をコードする。
本発明の好ましい実施態様においては、このヌクレオチド配列は配列番号１と少なくとも75％の類似性を有し、あるいは、配列番号１のコード配列と少なくとも75％の類似性を有する。より好ましい実施態様においては、このヌクレオチド配列は配列番号１と少なくとも90％の類似性を有し、あるいは、配列番号１のコード配列と少なくとも90％の類似性を有する。更に好ましい実施態様においては、ヌクレオチド配列は配列番号１と95〜98％の類似性を有し、あるいは、配列番号１のコード配列と95〜98％の類似性を有している。特に好ましい実施態様においては、このヌクレオチド配列は配列番号１である。以下に例示する関連する実施態様においては、単離核酸は配列番号１のヌクレオチド配列を有する。関連する実施態様においては、単離核酸は配列番号１のコード配列からなる。
別の関連する実施態様においては、本発明は少なくとも18ヌクレオチドを含み配列番号１にハイブリダイズする、または、より具体的には配列番号１のコード配列にハイブリダイズする単離核酸を含む。そのような実施態様の一つでは、このハイブリダイゼーションは中程度のストリンジェンシーの下で行われる。別の実施態様においては、このハイブリダイゼーションは標準的なハイブリダイゼーション条件の下で行われる。さらに３つめの実施態様では、このハイブリダイゼーションはストリンジェントなハイブリダイゼーション条件の下で行われる。
さらに別の関連する実施態様では、本発明は、配列番号２または１以上の保持的置換を含む配列番号２のアミノ酸配列を有するTACIタンパク質をコードするヌクレオチド配列の少なくとも18ヌクレオチドを含む単離核酸を含む。このタイプの実施態様の一つにおいては、単離核酸はTACIタンパク質の細胞外ドメインに対するＮ−末端断片をコードする。別の実施態様では、この単離核酸はCAMLのＮ−末端146アミノ酸に結合するに足るTACIタンパク質のＣ−末端断片をコードする。更に別の実施態様では、この単離核酸はTACIタンパク質の膜貫通部をコードする。さらにまた別の実施態様においては、単離核酸は完全長TACIタンパク質をコードする。
本発明の好ましい実施態様では、単離核酸は少なくとも24ヌクレオチドからなる。より好ましい実施態様では、この単離核酸は少なくとも30ヌクレオチドからなる。さらに好ましい実施態様においては単離核酸は少なくとも36ヌクレオチドからなる。本発明のオリゴヌクレオチドは核酸プローブ、PCRプライマー、アンチセンス核酸その他、として診断および治療目的に使用することができる。
本発明の一つの実施態様において、単離核酸はCAMLのＮ−末端146アミノ酸に結合するに十分なTACIタンパク質のＣ−末端断片をコードする。この型の具体的な一つの実施態様においては、このＣ−末端断片は約126アミノ酸を有している。この型の別の実施態様においては、このＣ−末端断片は配列番号４または１以上の保存的置換を含む配列番号４のアミノ酸配列を有している。
別の実施態様においては、単離核酸はCAML−結合タンパク質の細胞外ドメインに対応するＮ−末端断片をコードする。この型の具体的な実施態様においては、Ｎ−末端断片は配列番号６または１以上の保存的置換を含む配列番号６のアミノ酸配列を有している。
好ましい実施態様においては、この単離核酸はCAMLに対する結合アフィニティーを有するTACIタンパク質をコードする。そのようなTACIタンパク質がin situで適切に刺激されると、TACIタンパク質はCa2+依存性経路とCa2+非依存性経路との組み合わせを通じて転写因子の活性化を開始させる。より好ましい実施態様においては、単離核酸は配列番号２のアミノ酸配列を有するTACIタンパク質をコードしている。
本発明はまた、発現制御配列に機能可能に結合された組換えDNAである、本発明の単離核酸を含むDNA構築物も含む。発現制御配列はSV40またはアデノウイルスの初期または後期プロモーター、lac系、trp系、TAC系、TRC系、λファージの主要オペレーターおよびプロモーター領域、fdコートタンパク質の制御領域、３−ホスホグリセレートキナーゼのプロモーター、酸性ホスファターゼのプロモーターおよび酵母α−接合因子のプロモーターからなる群より選ぶことができる。
好ましい実施態様においては、発現制御配列は標準的なtet誘導性プロモーター、メタロチオネインプロモーターまたはエクジソンプロモーターのいずれかである。より好ましい実施態様では、発現制御配列はSRαプロモーターである。
本発明はまた本発明の組換えDNA構築物で形質転換した単細胞宿主も含む。ひとつの実施態様においては、この単細胞宿主は原核生物である。別の実施態様においては、この単細胞宿主は真核生物である。好ましくは、この真核性宿主は哺乳動物細胞、例えば、COS、CHOまたはJurkatT細胞であり、これらはTACIタンパク質の活性を評価するために、または調節作用物質を同定するために有用であり得る。
本発明は、本発明の核酸によってコードされるポリペプチド、それらの断片、およびそれらの融合タンパク質を含む。一つの実施態様においては、このポリペプチド断片は細胞外調節ドメインに対応するTACIタンパク質のＮ−末端断片からなる。特定の実施態様においては、このＮ−末端断片は配列番号６または１以上の保存的置換を含む配列番号６のアミノ酸配列を有している。
別の実施態様では、このポリペプチド断片はCAMLのＮ−末端146アミノ酸に結合するに十分なTACIタンパク質のＣ−末端断片からなる。そのような実施態様の一つにおいて、Ｃ−末端断片は95から130のアミノ酸を含んでいる。特定の実施態様においては、このＣ−末端断片は配列番号２のＣ−末端126アミノ酸を含んでいる。また別の実施態様においては、TACIタンパク質のＣ−末端断片は約110アミノ酸を含んでいる。この型の好ましい実施態様の一つにおいて、Ｃ−末端断片は107アミノ酸を含んでおり、配列番号４のアミノ酸配列を有している。
本発明はまた、TACIタンパク質の細胞外部分の組換え型の調製、それによる優性−ネガティブまたは阻害作用物質を作り出すことも含む。この成分は架橋してTACIタンパク質を活性化する役割を果たす正常な内在性リガンドを横取りしする。このようなポリペプチドの投与は免疫系を抑制するように働く。そのような投与は自己免疫疾患または移植に伴う移植片拒絶若しくは移植片対個体反応疾患の治療または予防に有用である。
本発明のキメラTACIタンパク質は他のレセプター分子の細胞外ドメインをTACIタンパク質の膜貫通ドメインおよび細胞内ドメインと結合することによって作られるタンパク質であってよい。別の実施態様においては、TACIタンパク質の細胞外ドメインは他のレセプター分子の膜貫通ドメインおよび細胞内ドメインと結合されることがある。膜貫通ドメインはTACIタンパク質の膜貫通ドメイン、他のレセプターの膜貫通ドメイン、または異なる膜貫通ドメインであってよい。膜貫通ドメインはキメラ細胞の細胞外ドメインと同じタンパク質成分からのものであるのが好ましい。
好ましい実施態様において、このポリペプチドは本発明の核酸によってコードされる、CAMLに対する結合アフィニティーを有し、適切にin situで刺激されるとCa2+依存性経路とCa2+非依存性経路との組み合わせを通じて転写因子の活性化を開始させるTACIタンパク質である。
本発明はまた、本発明のTACIタンパク質をコードするmRNAに生理的条件でハイブリダイズするアンチセンス核酸を含む。そのようなアンチセンス核酸はアンチセンス遺伝子からの転写RNAであっても、外因的に（発現又は化学合成により）作られたRNAまたはDNAであってもよい。好ましくは、急速な加水分解を防止し、そうして実効半減期を伸ばすために天然には現れない結合を有する合成アンチセンス核酸が調製される。
ノックアウト動物も本発明の一部である。ノックアウト動物は天然ではそれぞれが機能可能なTACIタンパク質をコードし発現する第１および第２のアレルを含んでいるが、２つのアレルの少なくとも１つに欠陥があり、そのためその動物は十分な量のTACIタンパク質を発現するのが妨げられている。この型の実施態様の一つにおいて、第１のアレルはいかなる機能的TACIタンパク質をも発現するのを妨げる欠陥を有している。好ましい実施態様においては、ノックアウト動物は欠陥第１アレルおよび欠陥第２アレルの両方を有している。これらの欠陥アレルのために動物は機能的なTACIタンパク質を発現することができない。好ましい実施態様においては、このノックアウト動物はノックアウトマウスである。
本発明はまた本発明の全ての核酸およびポリヌクレオチドに対する抗体を含む。特定の実施態様においては、この抗体は配列番号２のアミノ酸配列を有するTACIタンパク質、またはその抗原性断片に対して調製される。本発明の抗体はモノクローナル抗体またはポリクローナル抗体の何れでもよい。一つの実施態様においては抗体はキメラ抗体であるモノクローナル抗体である。
本発明のモノクローナル抗体を産生する不死細胞株も本発明の一部である。この不死細胞株の具体的な実施態様においては、モノクローナル抗体は配列番号２のアミノ酸配列を有するTACIタンパク質またはその抗原性断片に対して調製される。
本発明はまたTACI−１のＣ−末端126アミノ酸に結合するために十分なCAMLのＮ−末端断片をも含む。そのような一つの実施態様において、CAMLのＮ−末端断片は146アミノ酸を含んでいる。このCAMLのＮ−末端断片はTACI−CAML結合の阻害因子として働くことができる。
本発明はTACIタンパク質、その断片およびその融合タンパク質を作成する方法を含む。一つの実施態様において、この方法はTACIタンパク質またはその断片、あるいはその融合タンパク質であるポリペプチドをコードする核酸を含む発現ベクターを宿主細胞に導入し、コードしているポリペプチドを発現させることを含む。好ましい実施態様では、発現されたポリペプチドはCAMLに対して結合アフィニティーを有している。より好ましい実施態様においては、このポリペプチドはin situで適切に刺激されるとCa2+依存性およびCa2+非依存性経路の組み合わせを通じて転写因子活性化を開始させる。この型の最も好ましい実施態様においては、発現されるポリペプチドは配列番号２のアミノ酸配列を有するTACIタンパク質である。
TACIタンパク質コードする発現されたポリペプチド、その断片およびその融合タンパク質の精製方法も本発明の一部であり、精製された発現ポリペプチド自身もそうである。
本発明はまたTACIタンパク質のリガンドを同定する方法をも含む。そのような方法の一つの実施態様はTACIタンパク質のＮ−末端細胞外ポリペプチドを候補分子と接触させ、Ｎ−末端細胞外ポリペプチドとその候補分子の結合を検出することを含む。Ｎ−末端細胞外ポリペプチドと候補分子との結合はその候補分子がリガンドであることを示す。
TACIタンパク質のリガンドを同定するための別の方法においては機能性（functional）TACIタンパク質が使用される。この型の好ましい実施態様において、機能性TACIタンパク質はTACI−１である。機能性TACIタンパク質の候補分子との結合はその候補分子がリガンドであることを示す。そのような一つの実施態様において、候補分子の機能性TACIタンパク質への結合は、AP−１経路の活性化のレベルの関数として細胞活性化を検出することにより測定される。別の実施態様においては、候補分子の機能性TACIタンパク質への結合はCAML経路の活性化レベルの関数として細胞活性化を検出することによって測定される。
別の実施態様においては候補分子の機能性TACIタンパク質への結合はNF−AT転写因子の濃度のレベルの関数として細胞活性化を検出することにより測定される。さらに別の実施態様においては候補分子の機能的TACIタンパク質への結合はNF−KB経路の活性化のレベルの関数として細胞活性化を検出することにより測定される。さらに別の実施態様においては候補分子の機能的TACIタンパク質への結合はNF−ATの活性化のレベルの関数として細胞活性化を検出することにより測定される。この場合は、NF−ATの活性化のレベルはNF−ATの細胞質から核への移動、NF−ATの相対的脱リン酸、および／またはNF−AT依存性の転写を示すことを含む方法によって測定することができる。
好ましい実施態様においては上述の１以上の細胞活性化の測定が行われ、行われた測定の全てが候補分子のTACIタンパク質への結合を示す場合に候補分子がリガンドとして同定される。最も好ましい実施態様においては上述の細胞活性化の測定の全てが行われ、それらの全ての測定が候補分子のTACIタンパク質への結合を示すときにその候補分子はリガンドとして同定される。
TACIタンパク質のリガンドを同定するための方法はTACIタンパク質が発現し得る多数の発現系においてなされても良い。一つの実施態様ではTACIタンパク質を「ベイト（bait）」として使用する酵母の２−ハイブリッド発現系（two−hybrid expression system）を用いる。別の実施態様においては、大腸菌（E.coli）発現ライブラリーからのインターラクションクローニング（interaction cloning）が用いられることもある。さらに別の実施態様においては、哺乳動物細胞におけるTACIタンパク質の機能的発現クローニング（functional expression cloning）を利用することができる。好ましい実施態様では、哺乳動物細胞はバーキットリンパ腫、EBV−不死化細胞株、または多数のミエローマ細胞株のようなＢ細胞由来株である。この型のより好ましい実施態様においては、TACIタンパク質はNF−ATプロモーターの制御下のレポーター遺伝子を有するJurkat T細胞中で発現される。そのような実施態様の一つにおいては、このレポーター遺伝子は分泌アルカリホスファターゼ（SEAP）をマーカーとしてコードしている。
本発明はまた、Ｂ細胞の活性化を成熟Ｔ細胞の活性化を抑制するよりも強く抑制する免疫抑制剤のスクリーニング方法をも含む。この型の好ましい実施態様においては、免疫抑制剤はＢ細胞の活性化を阻害するが、成熟Ｔ細胞の活性化を阻害しない。そのような方法はJurkat T細胞のように、TACIタンパク質を発現するように遺伝的に操作され得るトランスフォームしたＴ細胞にて行われることがある；あるいは、天然にTACIタンパク質を発現しているＢ細胞にて行われてもよい。本発明はまた、Ｂ細胞の活性化を阻害するが成熟Ｔ細胞の活性化を阻害しない、同定された免疫抑制剤も含む。
本発明は、成熟Ｔ細胞に影響を与えずにＢリンパ細胞の働きを選択的に阻害する免疫抑制剤を同定する方法を含む。そのような実施態様の一つは、第１のリンパ細胞を可能性のある薬剤と接触させることを含むが、ここでその第１のリンパ細胞はTACIタンパク質および第１のマーカータンパク質を含んでいる。第１のマーカータンパク質はTACIタンパク質が候補薬剤の非存在下で刺激されると転写される。TACIタンパク質が刺激され、第１のマーカータンパク質はそれが転写されると検出可能である条件下で検出される。第１のマーカータンパク質が検出できない場合に可能性のある薬剤が候補薬剤として選択される。次に、第２のリンパ細胞がこの候補薬剤と接触させられるが、ここでこの第２のリンパ細胞はＴ細胞レセプターおよび、免疫抑制剤の非存在下でも存在下でもそのＴ細胞レセプターが刺激されると転写される第２のマーカータンパク質を有している。Ｔ細胞レセプターが刺激され、第２のマーカータンパク質が、それが転写されれば検出できる条件下で検出される。候補薬剤は第２のマーカータンパク質が検出された場合に免疫抑制剤として同定される。なぜなら、免疫抑制剤はTACIタンパク質が関与する経路（またはその側面）に干渉するが、Ｔ細胞レセプターが関与する経路（またはその側面）に干渉しないからである。
ひとつの実施態様では、第１および第２のリンパ細胞はTACIタンパク質を発現するように改変したJurkat T細胞である。そのような特定の実施態様のひとつにおいて、この方法は第１のJurkat T細胞を可能性のある薬剤と接触させることを含むが、ここで第１のJurkat T細胞はTACIタンパク質および第１のレポーター遺伝子を発現するように遺伝的に改変されている。第１のレポーター遺伝子はNF−ATプロモーターによって制御されており、第１のマーカータンパク質をコードするものである。TACIタンパク質が活性化され、第１のマーカータンパク質の発現量が定量される。薬剤の存在下で発現される第１のマーカータンパク質の量がその薬剤の非存在下で発現する量に比べて減少する場合に、可能性のあるその薬剤が候補薬剤として選択される。次にこの候補薬剤はＴ細胞レセプターと第２のレポーター遺伝子を有する第２のJurkat T細胞と接触させられる。第２のレポーター遺伝子はNF−ATプロモーターによって制御されており第２のマーカータンパク質をコードする。Ｔ細胞レセプターが活性化され、第２のマーカータンパク質の発現量が定量され、次に候補薬剤の非存在下で発現される第２のマーカータンパク質の量と比較される。候補薬剤の存在下で第２マーカータンパク質の発現量低下がないか、または候補薬剤の存在下で第１のマーカータンパク質の発現の減少よりも第２のマーカータンパク質の発現の減少が測定できるほど少ない場合に、その候補薬剤は免疫抑制剤として同定される。
ここに記載したマーカータンパク質のいずれも本発明のこの特徴に使用してよく、SEAP、LacZまたはルシフェラーゼが含まれる。第１および第２のマーカータンパク質は同じタンパク質でも２つの異なるタンパク質であってもよい。TACIタンパク質はTACIタンパク質に対して生じた抗体、またはその活性な断片、またはその融合タンパク質で活性化されることがある。好ましい実施態様においてはTACIタンパク質はTACI−１である。レポーター遺伝子を制御するために上述したNF−ATおよびAP−１プロモーターを含めて幾つかのプロモーターが使用できる。潜在的薬剤は現在利用できるどんな薬剤ライブラリーからも、およびここに記載した化学ライブラリーおよびファージライブラリーからも得ることができる。
本発明のこれらの特徴および他の特徴は以下の図面及び詳細な説明を参照することにより、よりよく理解できるであろう。
【図面の簡単な説明】
図1:TACI−１の組織分布、タンパク質配列および他の顕著な特徴。図１はTACI−1cDNAでプロービングした、示した組織のノーザンブロットを表す。プロービングした他の組織には、心臓、脳，胎盤、肺、肝臓、骨格筋、腎臓および膵臓が含まれ、それらの何れもTACI−1 mRNA発現を全く示さなかった。
図2aはTACI−１のアミノ酸配列を示す。提示した膜貫通ドメインをボックス中に示し、Prosite TNFR_NGFRモチーフを下線で示した。図2bはKyte−Doolittle疎水性プロットおよび推定される膜貫通ドメイン（黒）およびTNFR_NGFRモチーフ（点描）の位置を示したTACI−１の概略図を記載したものである。図2cはTACIタンパク質および他のTNFRファミリーメンバーのシステイン残基を示したものである。
図3:TACI−１は細胞表面タンパク質である。図3aはTACI−１発現プラスミドおよびトランスフェクションマーカーpHook（Invitrogen）、またはトランスフェクションマーカーpHook単独で一過性トランスフェクションしたTag Jurkat T細胞のフローサイトメトリーを示したものである。TACI−１およびトランスフェクションマーカータンパク質HA−Hookの細胞表面発現は免疫アフィニティー精製抗−TACI−１ポリクローナル抗体および12CA5モノクローナル抗体を用いた間接免疫蛍光によって検出した。記載したデータはトランスフェクションマーカーについてゲートを開いたTACI−１細胞の染色を表している。図3bはＮ−末端FLAGタグのついたTACI−１を一過性に発現しているCos−７細胞の表面染色、M2（抗−FLAG）抗体および蛍光抗−マウスIgG抗体［BramとCrabtree,Nature,371:355−358（1994）］による染色、の顕微鏡写真を示したものである。表面染色は細胞をディタージェントで透過性にしたか否かに拘わらず存在した。
図4:TACI−１はNF−AT特異的転写活性化において機能するシグナリングタンパク質である。図4aはNF−AT駆動アルカリホスファターゼレポーターの活性化を記述したものである。SXNFATレポーター［Bramら、Mol.Cell.Biol.,13:4760−4769（1993）］およびTACI−１コードcDNA（黒三角）を含むまたは何も含まない発現プラスミドpBJ5［Takebe,Y.ら、Mol.Cell.Biol.,8:466−472（1988）］でコトランスフェクションしたTAg Jurkat T細胞を、免疫精製抗−TACI−１ポリクローナル抗体でコーティングした磁気ビーズの存在下（閉鎖シンボル）および非存在下（開放シンボル）において、50ng/mlのPMAおよび示した量のイオノマイシンで処理した。図4bは抗体架橋TACI−１によるNF−ATの活性化を示したもので、サクロスポリンＡ（CsA）またはFK506によって阻害される。NF−AT活性化は、SXNFATおよびpBJ5（−TACI−１、左）でコトランスフェクションし、またはpBJ5−TACI−１（＋TACI−１、右）でコトランスフェクションし、抗−TACI−１抗体コーティングビーズの存在下で、PMA（50ng/ml）、イオノマイシン（２μＭ）、CsA（100ng/ml）およびFK506（500pg/ml）の示した組み合わせで処理したJurkat T細胞で測定した（'NS'、無刺激）。図4cは抗体架橋TACI−１によるNF−AT活性化は細胞外カルシウムを必要とすることを示す。NF−AT活性化はTACI−１を過剰発現しているJurkat T細胞においてEGTA存在下で測定された。処理は、架橋抗体抗−TACI−１（丸）、Ｃ−末端を切断したカルシウム非依存性カルシニューリンＡサブユニットでのトランスフェクション（三角）、TCR刺激性抗体OKT3（四角）による活性化を含む。全ての細胞はPMAを50ng/mlまで添加することにより共刺激した。図4dはAP−１駆動分泌アルカリホスファターゼレポーターの活性化を示す。AP−１活性化は、マウスメタロチオネインAP−１−SEAPレポーター［Bramら、1991、上述］およびインサートを含まないpBJ5（−TACI−１、左）またはTACI−1 cDNA（＋TACI−１、右）を含むpBJ5AgでコトランスフェクションしたJurkat T細胞で測定した。細胞は架橋抗−TACI−１抗体の非存在下、および、段階的に増加させた量の前記抗体の存在下でインキュベーションした。トランスフェクション効率を制御するため、ルシフェラーゼ（EF−Luc）の発現を駆動する構成的プロモーターを含むプラスミドを含めた。
図5:CAMLとのTACI−１の相互作用はCa2+シグナリングに不可欠である。図5aは酵母２−ハイブリッド相互作用を示す。TACI−１の完全長cDNAおよび示した欠失変異体およびCAMLを酵母発現プラスミドpACTおよび／またはpAS1にクローン化し、示した組み合わせの相互作用について酵母２−ハイブリッド系でテストした（‘＋’、陽性相互作用；‘−’、陰性相互作用；‘ND'、テストせず）。図5bはCAMLとTACI−１との共免疫沈降を表す。293T細胞を、CAML、Ｎ−末端FLAGタグ付きTACI−１、CAMLのＮ−末端146アミノ酸（CLX9）のcDNAを有する発現プラスミドpBJ5またはインサートのない発現プラスミドpBJ5の示した組み合わせでトランスフェクションした。48時間インキュベーション後、細胞を溶解し（１％ドデシルマルトシド、20mM HEPES pH7.4、150mM NaCl、10％グリセロール、2mM MgSO4、1mM CaCl2、1mM PMSF）、遠心によりライセートを透明にした。FLAGタグ付きTACI−１および関連タンパク質を抗−FLAGモノクローナル抗体結合アガロースビーズで免疫沈降し、標準的プロトコルでウエスタンブロッティングにかけた。ウェスタンブロットを免疫アフィニティー精製抗−CAMLポリクローナル抗体で探査し、続いて化学蛍光検出（Amersham）を行った。各々のサンプルについて並行して行ったウェスタンブロットによりTACI−１、CAMLまたは切り詰めたCAML変異体の予想された発現が全てのトランスフェクションにおいて確認された。図5cはCAMLのＮ−末端半分の過剰発現はTACI−１−誘導NF−AT活性化に対して優性ネガティブの効果を有していることを示している。NF−AT活性化はpBJ5単独、pBJ5−TACI−１＋対照プラスミド、または等価量のCLX91を伴うpBJ5−TACI−１でトランスフェクションし、続いてTACI−１特異的抗体（最上段）で処理したTAg Jurkat細胞において測定した。これらのトランスフェクションにおいて、TACI−１発現は抗−TACI−１ポリクローナル抗体を用いたウェスタンブロッティングによって測定した（最下段）。図5dはTACI−1/CAMLシグナルトランスダクションモデルの概略図を示したものである（‘SOS'、貯蔵−作動（stores−operated）カルシウムチャンネル）。
発明の詳細な説明
本発明は、その最も広い側面において、Ｂリンパ細胞に通常存在し、かつ未熟Ｔリンパ細胞にずっと低い程度で存在する新規な細胞表面レセプターを提供する。この細胞表面レセプター、膜貫通活性化因子およびCAML−相互作用因子（TACI）タンパク質の役割はリンパ細胞機能を活性化または制御する別の経路あるいは共刺激性経路へ関与することである。これらの機能には、感染または癌、移植片拒絶、移植片対宿主反応における外来抗原に対するリンパ細胞応答が含まれる。さらに、リンパ細胞シグナリングの活性化はリンパ細胞発生の過程における重要な役割を果たし、従って、機能性リンパ細胞のポジティブ選択と自己反応性クローンに対するネガティブ選択を可能とするものである。活性化されると、TACIタンパク質はリンパ細胞内のカルシウム流入を刺激する。そのようなカルシウム流入は特定の環境下では、プログラムされた細胞死（アポトーシス）の開始につながる。
用語「膜貫通活性化因子およびCAML−相互作用因子」タンパク質、すなわち「TACI」あるいは「TACIタンパク質」は本明細書で「膜貫通CAML結合タンパク質」または「TCB」または「TCBタンパク質」と互換的に使用され、Ｂリンパ細胞上に通常存在する新規な細胞表面レセプターとして働く、単一または複数のタンパク質を含むタンパク質性物質を言う。この細胞表面レセプターは本明細書に記載した活性特性を有する。従って、本質的に等価または改変された活性を示すタンパク質も同様に意図されている。これらの改変は例えば部位特異的変異誘発によって得られる改変のように意図的なものであってもよく、またはそのタンパク質を産生する宿主の突然変異によって得られる改変のように偶発的なものであることもある。これらの用語の範囲には本明細書に具体的に列挙したタンパク質およびそれらの本質的に相同なアナログおよびアレル変異が含まれる。
ひとつの実施態様においては、膜貫通活性化因子およびCAML−相互作用因子はヒトの相同物、TACI−１である。以下の実施例に示すように、TACI−１は、これまでに検出されていなかった、細胞表面刺激を細胞内シグナリング分子CAMLに直接結びつけるシグナルトランスダクション機構を起動する。従って、TACI−１は、免疫応答を調節し、従って正の方向にも負の方向にも免疫系を制御する道具として利用できるかもしれない、リンパ細胞特異的細胞表面レセプターの新規なクラスのメンバーである。具体的な実施態様においては、TACI−１は配列番号２に記載したアミノ酸配列を有している。
本明細書で使用する場合、特定の核酸が本発明のタンパク質またはポリペプチドをコードしているというときは、そのタンパク質またはポリペプチドをコードする配列からなる特定の核酸部分が同定されていることを意味する。例えば、配列番号１のコード領域はヌクレオチド14から、3'末端の３ヌクレオチド翻訳停止コドンを含めて、ヌクレオチド895までである。
多くの目的のために、リンパ細胞の活性化を選択的に阻害できること、あるいは、その活性化を選択的に増強できることに大きな関心がある。例えば、リンパ細胞媒介自己免疫疾患、移植片拒絶症候群および移植片宿主疾患について、これに関与するリンパ細胞の活性化の阻害はこれらの疾患に対して実効可能な、または必要な処置である。さらに、骨髄腫、リンパ腫および白血病、特にＢ細胞または未熟Ｔ細胞のもの、の場合には癌細胞の増殖を遅くすることに関心があり、これは現在の治療ほど宿主に対して破壊的でない治療を可能にするかもしれない。一方、感染または抗−腫瘍免疫応答に関しては、病原体に関してより迅速な応答をするようにリンパ細胞を活性化できることに関心があるであろう。従って、本発明は、これまで未知であったリンパ細胞活性化経路における重要な構成要素を提供することにより、有用な薬剤、例えば、リンパ細胞を活性化および／または不活性化できる合成有機化合物を選択することを可能とする。
加えて、この活性化経路をより完全に理解すれば、特定の細胞集団あるいは細胞集団の特定のサブセットに選択的な作用物質を提供するように、この経路をより効果的に調節できる。多くの場合に、活性化は共刺激を必要とするため、細胞に利用できる作用物質群を扱うことができることはそのような細胞活性化を可能とする。この流れにおいて、CAML媒介活性化経路のような特定の経路を調節する薬剤の開発に使用できる標的タンパク質の同定は医師が特定の免疫状態を、そうしなければうまく機能している免疫系の他の微妙な側面を過剰刺激あるいは過剰抑制せずに個々に治療することを可能にするであろう。そのような標的を定めた刺激はIL−２のような免疫刺激因子の効果を特異的に増幅するために使用する事ができ、従って、免疫刺激因子の使用用量を少なくすることができ副作用を低減することができる。
さらに、本発明は、CAML媒介活性化経路中の特定の中間物の存在または不存に対して選択的評価および制御を可能とすることによって、CAML媒介活性化経路が理解される点で重要な利点がある。このことは、相同組換えを利用したノックアウトマウス、アンチセンス配列を提供する遺伝子の組込み、誘導性プロモータを含む発現構築物の導入その他を利用して達成され得る。特定の遺伝子がいつ発現されるかまたは沈黙するのか、そのタンパク質が発現されている細胞の性質、その他、を決定することができることにも関心がある。従って、活性化経路の理解、その経路の選択的調節、および標的タンパク質への結合について活性であるかもしれない薬剤の開発を可能とするために、細胞の経路の特異的な構成要素を同定することに大きな関心がある。このようにして、そのような特異的経路を阻害する薬剤がスクリーニング可能である。
本発明のひとつの具体的な特徴には、TACIをＢリンパ細胞特異的免疫抑制剤の開発のための道具として使用する薬剤スクリーニングが含まれる。そのような免疫抑制剤はＢリンパ細胞の働きを選択的に抑えるであろうが、ウイルス病原体から患者を保護するためＴ細胞は無傷のまま残す。これらの薬剤は全身性エリテマトーデス、Ｂリンパ細胞応答の過剰な活性化による疾病、または多発性骨髄腫（例えば、ベンス−ジョーンズ骨髄腫）のような疾病の治療に有用であろう。
TACIタンパク質の架橋はカルシウム流入を活性化し、かつ、おそらく他の２次メッセンジャーを活性化する。その作用様式はCAMLによって調節され得る。CD4、CD8、TCRおよびCD3のようなＢ細胞またはＴ細胞に特異的な既知の細胞表面シグナル分子と異なり、本発明の新規な細胞表面レセプターは物理的にCAMLと相互作用する。加えて、本発明の新規な細胞表面レセプターとこれらの既知のリンパ細胞表面シグナリング分子、またはいかなる他の細胞表面シグナリング分子との間に配列相同性は全くない。
TACIタンパク質およびポリペプチド
広い実施態様として、本発明はTACIタンパク質を提供する。そのようなタンパク質は細胞外ドメイン、膜貫通ドメイン、および細胞質ドメインを含んでいる。細胞外ドメインはリガンドと結合する。リガンドが結合すると、細胞質ドメインがCAMLに結合し、そうしてCa2+依存性活性化経路を開始させる。レセプターの重合化（例えば、リガンドまたは抗−レセプター抗体との結合による）も非Ca2+依存性活性化経路を開始させる。
TACIタンパク質の単量体型は約295アミノ酸を有している。ここで用いる「約295アミノ酸」とは265から325アミノ酸、すなわち、およそ10％プラスまたはマイナスをいう。
本発明は、TACIの機能的に活性なポリペプチド成分に関する。ひとつの特徴において、TACIの機能的に活性な成分は抗原性断片、例えば、抗−TACI抗体と反応するペプチド、またはキャリアーと結合した場合に抗−TACI抗体を生成するために使用し得るペプチドである。別の機能的に活性な断片にはリガンドと結合する細胞外ドメインが含まれる。この細胞外ドメインはTACIのＮ−末端断片、例えば成熟TACIの最初のアミノ酸残基から膜貫通ドメインまで、に相当する。具体的な実施態様においては、この細胞外ドメインは配列番号６の約１番残基から約166番残基に相当する。TACIのリガンド結合領域は細胞外ドメインに対応するＮ−末端断片の細断片（sub−fragment）である。
さらに別の機能的に活性な断片は細胞質ドメイン、例えば膜貫通ドメインのＣ−末端からTACIのＣ−末端まで、である。TACIの細胞質ドメインはCa2+依存性およびCa2+非依存性機構によってシグナルトランスダクションを媒介する。
細胞質ドメインはTACIのCAML結合領域を含む。特に、このドメインはCAMLのＮ−末端146アミノ酸に対応するポリペプチドに結合する。具体的な実施態様においては、細胞質ドメインは配列番号２の約187番アミノ酸残基から約293番アミノ酸残基に相当する。
さらに別の実施態様においては、本発明はTACIタンパク質のタンパク質分解断片を提供する。そのような断片は、酵素消化、例えばパパイントリプシン中のSaureusポリペプチドV8、キモトリプシン、カテプシン、コラゲナーゼ、エンテロペプチダーゼ、トロンビン、または線維素溶解性または凝固酵素により；化学的切断、例えばシアン化臭素、または水酸化ホウ素ナトリウムにより；その他、により調製され得る。
具体的な実施態様においては、TACIタンパク質は配列番号２に残基番号１から残基番号293に示したアミノ酸配列を有するレセプタータンパク質である。本発明はTACIのアレル変異体、他の生物種からの相同TACIタンパク質、およびTACIアナログ、例えば遺伝的操作によるか化学合成によるかの何れにしろ保存的アミノ酸置換により調製されるもの、を考慮している。本発明のTACIアナログには、例えばキャリアータンパク質への架橋を容易とするための末端システイン残基を有する、TACI抗原性断片をも含む。
TACI−１の配列と密接に関連するDNA配列の報告は無い。TACI−１中のプロサイト（Prosite）モチーフの検索は、Ｃ−ｘ（4,6）−［FYH］−ｘ（5,10）−Ｃ−ｘ（0,2）−Ｃ−ｘ（2,3）−Ｃ−ｘ（7,11）−Ｃ−ｘ（4,6）−［DNEQSKP］−ｘ（２）−ＣからなるTNFR_NGFRパターンをこのタンパク質のＮ−末半分中に一つ明らかにした（ここで、例えば、Ｃ−ｘ（4,6）−［FYH］はシステイン残基で始まり4,5または６個の未特定のアミノ酸が続き、さらにフェニルアラニン、チロシン、またはヒスチジンのいずれかが続くことを示している。）。このモチーフは多数のタンパク質中に見られ、その大部分は増殖因子のレセプターである。これらのタンパク質のいくつかはこのモチーフを１コピー有している。TACI−１タンパク質配列を自身と比較すると残基33番−66番と残基70番−104番にTNFR_NGFRモチーフの顕著な反復が明らかになった。この解析は、これらの領域を囲む２つのTNFR型システインリッチドメインが存在することに注意を向けさせた。これはTACI−１がTNFRレセプターのスーパーファミリーのメンバーであることを示すものである。
合成TACIポリペプチド：
用語「ポリペプチド」は広い意味で使用され、２以上のサブユニットアミノ酸、アミノ酸アナログの化合物、または擬ペプチド（peptidomimetics）をいう。このサブユニットはペプチド結合によって結合していてよい。別の実施態様では、このサブユニットは他の結合、例えばエステル、エーテルその他によって結合していることもある。本明細書で用いる「アミノ酸」とは天然および／または非天然アミノ酸、あるいは合成アミノ酸をいい、グリシンおよびＤまたはＬ光学変異体、およびアミノ酸アナログおよび擬ペプチドを含む。３以上のアミノ酸のペプチドはそのペプチドの鎖が短い場合は通常オリゴペプチドと呼ばれる。ペプチド鎖が長い場合は、そのペプチドは通常ポリペプチドまたはタンパク質と呼ばれる。本発明により、抗原性断片のようなTACI断片、または完全長TACIでさえも合成的に調製され得る。
よく知られた固相技術、液相技術またはペプチド縮合技術、またはそれらの一切の組み合わせを用いて調製した合成ポリペプチドは天然および非天然のアミノ酸を含み得る。ペプチド合成に使用されるアミノ酸は、Merrifield［J.Am.Chem.Soc.,85:2149−2154（1963）］の固相法原法の標準的な脱保護、中和、カップリングおよび洗浄プロトコルを伴った標準的なBoc（Ｎ  α−アミノ保護Ｎ  α−ｔ−ブチルオキシカルボニル）アミノ酸レジンであっても、CarpinoとHan［J.Org.Chem.,37:3403−3409（1972）］によって最初に記載された、塩基不安定性Ｎ  α−アミノ保護９−フルオレニルメトキシカルボニル（Fmoc）アミノ酸であってもよい。FmocおよびBoc N  αアミノ保護アミノ酸のどちらもFluka、Bachem、Advanced Chemtech、Sigma、Cambridge Research  Biochemical、BachemまたはPeninsula Labsあるいはこの分野に携わる者がよく知っている他の化学会社から入手できる。加えて、本発明の方法は当業者によく知られた他のＮ  α−保護基と共に使用することができる。固相ペプチド合成は当業者によく知られた技術により行われてよく、例えばStewartとYoung、1984,Solid Phase Synthesis,第２版、Pierce Chemical Co.,Rockford,IL;Fields and Noble,1990,Int.J.Pept.Protein Res.35:161−214に記載されており、またはABSによって販売されている自動合成機を用いて行われてもよい。このように、本発明のポリペプチドは、特別な特性を与えるため、Ｄ−アミノ酸、Ｄ−およびＬ−アミノ酸、および種々の「デサイナー」アミノ酸（例えば、β−メチルアミノ酸、CNα−メチルアミノ酸、Ｎα−メチルアミノ酸、その他）を含むことがある。合成アミノ酸にはリジンの代わりにオルニチン、フェニルアラニンの代わりのフルオロフェニルアラニン、およびロイシン又はイソロイシンの代わりのノルロイシンが含まれる。さらに、特定のアミノ酸を特定のカップリング段階で割り当てることにより、α−ヘリックス、βターン、βシート、γターン、およびサイクリックペプチドが生成され得る。
さらなる実施態様において、有用な化学的および構造的特性を与えるペプチドのサブユニットが選ばれる。例えば、Ｄ−アミノ酸を含むペプチドはin vivoにおいてＬ−アミノ酸特異的プロテアーゼに抵抗性であろう。加えて、本発明は、よりはっきりとした構造的特性を有するペプチドを調製すること、および擬ペプチド、および、エステル結合のような擬ペプチド結合を利用して新規な特性を有するペプチドを調製することを想定している。別の実施態様において、ペプチドは還元されたペプチド結合、すなわち、R1−CH2−NH−R2（式中R1とR2はアミノ酸残基または配列）を取り込んでいることもある。還元ペプチド結合はジペプチド単位として導入されて良い。そのような分子はペプチド結合加水分解、例えばプロテアーゼ活性に抵抗性であろう。そのようなペプチドは、代謝的分解あるいはプロテアーゼ活性に抵抗性であることによるin vivoにおける延長された半減期のような、特有の機能と活性を有するリガンドを提供するであろう。さらに、ある系においては拘束されたペプチド（constrained peptide）は増強された機能活性を示すことがよく知られている［Hruby,Life Sciences,31:189−199（1982）］；［Hrubyら、Biochem J.,268:249−262（1990）］；本発明は他の全ての位置にランダム配列を取り込んでいる拘束されたペプチドを作成する方法を提供する。
コンフォメーション拘束を導く非古典的アミノ酸：
以下の非古典的アミノ酸が特定のコンフォメーションモチーフを導入するために取り込まれることがある:1,2,3,4−テトラヒドロイソキノリン−３−カルボキシレート［Kazmierskiら、J.Am.Chem.Soc.,113:2275−2283（1991）］；（2S,3S）−メチル−フェニルアラニン、（2S,3R）−メチル−フェニルアラニン、（2R,3S）−メチルフェニルアラニンおよび（2R,3R）−メチル−フェニルアラニン［KazmierskiとHruby,Tetrahedron Lett.,（1991）］;2−アミノテトラヒドロナフタレン−２−カルボン酸［Landis,Ph.D.Thesis,University of Arizona,（1989）］；ヒドロキシ−1,2,3,4−テトラヒドロイソキノリン−３−カルボキシレート［Miyakeら、J.Takeda Res.Labs.,43:53−76（1989）］；β−カルボリン（ＤおよびＬ）［Kazmierski,Ph.D.Thesis,University of Arizona,（1988）］;HIC（ヒスチジンイソキノリンカルボン酸）［Zechelら、Int.J.Pep.Protein Res.,43（1991）］；およびHIC（ヒスチジン環状尿素）（Dharanipragada）。
以下のアミノ酸アナログおよび擬ペプチドは特定の好ましい二次構造を導くために取り込まれることがある:LL−Acp（LL−３−アミノ−２−プロペニドン−６−カルボン酸）、β−ターン誘導ジペプチドアナログ［Kempら、J.Org.Chme.,50:5834−5838（1985）］；β−シート誘導アナログ［Kempら、Tetrahedron Lett.,29:5081−5082（1988）］；β−ターン誘導アナログ［Kempら、Tetrahedron Lett.,29:5057−5060（1988）］；α−ヘリックス誘導アナログ［Kempら、Tetrahedron Lett.,29:4935−4938（1988）］；γ−ターン誘導アナログ［Kempら、J.Org.Chem.,54:109−115（1989）］；および以下の文献によって提供されるアナログ:NagaiとSato,Tetrahedron Lett.,26:647−650（1985）;DiMaioら、J.Chem.Soc.Perkin Trans.,p.1687（1989）；またはGly−Alaターンアナログ［Kahnら、Tetrahedron Lett.,30:2317（1989）］；アミド結合イソエステル［Jonesら、Tetrahedron Lett.,29:3853−3856（1988）］；テトラゾール［Zabrockiら、J.Am.Chem.Soc.,110:5875−5880（1988）］:DTC［Samanenら、Into.J.Protein Pep.Res.,35:501:509（1990）］；およびOlsonら、J.Am.Chem.,Sci.,112:323−333（1990）およびGarveyら、J.Org.Chem.,56:436（1990）に教示されるアナログ。コンフォメーション的に拘束された擬βターンおよびβバルジ（bulge）、およびそれらを有するペプチドは1995年８月８日にKahnに与えられた米国特許第5,440,013号に記載されている。
タンパク質誘導体
タンパク質へのペプチド−炭水化物結合に２つの主要なクラスがある。第１は、エーテル結合がセリンまたはスレオニン水酸基を糖の水酸基に結合する。第２は、アミド結合がグルタミン酸またはアスパラギン酸カルボキシル基を糖のアミノ基に結合する。アセタールおよびケタール結合も炭水化物をペプチドに結合することがある。
一般にTACIタンパク質、またはＮ−末端細胞外ドメイン断片またはＣ−末端細胞質CAML結合ドメイン断片のような断片は１以上の化学部分（chemical moiety）をタンパク質部分に結合させることにより誘導体化されることがある。生物学的に活性な成分の化学的修飾はある状況下では、安定性およびその成分の循環時間の増大および免疫原性の低減のような付加的な利点を与えることがある。1979年12月８日発行の、Davisらの米国特許第4,179,337号を参照せよ。総説としては、Abuckowskiら、Enzymes as Drugs［J.S.HolcerbergとJ.Roberts,編集、pp.367−383（1981）］を参照せよ。タンパク質修飾および融合タンパク質を記載した総説記事はFrancis,Focus on Growth Factors,3:4−10（1992）,Mediscript:Mountview Court,Friern Barnet Lane,London N20,Old.UKである。
誘導体化のために適切な化学部分は水可溶性ポリマーおよび水不溶性ポリマーから選ばれて良く、水可溶性ポリマーが好ましい。選択するポリマーはそれが結合する成分が生理的環境のような水性環境で沈殿しないように、水可溶性であることとが好ましい。好ましくは、最終産生調製物の治療的使用のために、このポリマーは製薬的に許容できるものであるだろう。当業者は、ポリマー／成分結合物が治療的に使用されるかどうか、および、そうであるならば、望まれる用量、循環時間、タンパク質分解に対する耐性および他の事柄の考慮に基づいて所望のポリマーを選択することができるであろう。この成分に関して、これらは本明細書で提供されるアッセイを用いて確かめられるであろう。
標識TACIタンパク質
本発明のTACIタンパク質およびその断片は標識されることがある。適切な標識には、酵素、蛍光団（例えば、いくつかの蛍光団を列挙すれば、蛍光イソチオシアネート（FITC）、フィコエリスリン（PE）、テキサスレッド（TR）、ローダミン、遊離またはキレート化ランタノイド系列塩、特にEU3+）、発色団、放射性同位元素、キレート剤、染色剤、コロイド状金、ラテックス粒子、リガンド（例えばビオチン）および化学発光試薬が含まれる。コントロールマーカーが使用される場合は、テストサンプルとコントロールマーカーに同じ標識が使用されても異なる標識が使用されてもよい。
同位元素3H、14C、32P、35S、36Cl、51Cr、57Co、58Co、59Fe、90Y、125I、131Iおよび186Reのような放射活性標識が使用される場合は、現在利用可能な既知の計測方法が使用されてよい。標識が酵素である場合は、検出はこの技術分野で知られた現在利用されている熱量測定技術、分光測光技術、蛍光分光測光技術、電流測定技術、ガス分析技術によって行ってよい。
直接標識は本発明で使用し得る標識の一例である。直接標識は、通常の状態で肉眼または光学フィルターおよび／または蛍光を促すための例えばUV照射の助けによって容易に視覚化される実体物として定義されている。本発明に利用できる発色標識の例には以下が含まれる：金属ゾル粒子、例えば、Leuvering（米国特許第4,313,734号）に記載されたような金ゾル粒子;Gribnauら（米国特許第4,373,932号）およびMayら（WO 88/08534）に記載されたような色素ゾル粒子;Mya、上述、Snyder（EP−A 0 280 559および0 281 327）に記載されたような染色ラテックス；またはCambellら（米国特許第4,703,017号）に記載されたようなリポソーム封入色素。その他の直接ラベルには、放射性ヌクレオチド、蛍光分子部分（fluorescent moiety）または発光分子部分が含まれる。これらの直接標識考案物に加えて、酵素を含む間接標識も本発明によって使用することができる。種々のタイプの酵素結合免疫アッセイがこの技術分野でよく知られており、例えば、アルカリホスファターゼおよびホースラディッシュペルオキシダーゼ、リゾチーム、グルコース−６−リン酸デヒドロゲナーゼ、乳酸デヒドロゲナーゼ、ウレアーゼがあり、これらおよび他のものはEva EngvallによってEnzyme Immunoassay ELISA and EMIT、Methods in Enzymology,70:419−439（1980）および米国特許第4,857,453号に詳細に論じられている。適切な酵素には、アルカリホスファターゼおよびホースラディッシュペルオキシダーゼが含まれるが、これらに限定されない。
本発明で使用される他の標識には磁気ビーズまたは磁気共鳴イメージングラベルが含まれる。
別の実施態様では、例えばPestkaの欧州特許第0372707号（出願番号89311108.8）またはFoxwellに与えられた1995年10月17日発行の米国特許第5,459,240号に記載されたように、32P標識のためのリン酸化部位を本発明の抗体上に形成することができる。
本明細書で例示したように、タンパク質は抗体を含めて代謝標識によって標識することができる。代謝標識はそのタンパク質を発現している細胞を、［35S］−メチオニンまたは［32P］−オルトリン酸のような代謝標識物を補足した培地の存在下でin vitroインキュベーションする間に生じる。［35S］−メチオニンによる代謝的（または生合成的）標識に加えて、本発明はさらに［14C］−アミノ酸および（非−変動性（non−labile）部位におけるトリチウム置換を有する）［3H］−アミノ酸を考慮している。
キメラTACIタンパク質
本発明のキメラTACIタンパク質は、リガンド結合ドメインまたはCAML−結合ドメインのようなTACIタンパク質の機能性ドメインを他のタンパク質、例えば別のレセプターの相補的ドメインと結合させることによって作製されてよい。キメラ構築物はまたTACIタンパク質の機能的活性断片および他の機能的活性分子で調製することもできる。TACIタンパク質の細胞外ドメインはイムノグロブリンのFcドメインに結合されてもよい。あるいはTACIタンパク質の細胞質ドメインはトランスフェリンまたはホルモンのようなレセプターリガンドに細胞内ターゲッティングのために結合されてもよい。さらに別の実施態様においては、TACIドメインは特異的にＢ細胞をターゲッティングするための抗−免疫グロブリン重鎖または軽鎖分子のような（例えば、抗体のFv部分）他のターゲッティング分子に結合することもできる。さらにまた別の実施態様では、TACIタンパク質の機能的に活性な断片、好ましくはＮ−末端細胞外ドメインは、グリコシルホスホイノシトールのようなグリコシルリン脂質、アンカーシグナル配列に、好ましくはTACI断片のＣ−末端位置において結合させることができ、それによって、糖脂質がついたタンパク質が生成される［Cross,Anuu.Rev.Cell Bio.,6:1−39（1990）;Low,Biochem.J.,244:1−13（1987）］。
キメラTACIレセプターは他のレセプター分子の細胞外ドメインとTACIタンパク質の膜貫通ドメインおよび細胞内ドメインとを結合することによって調製することができる。別の実施態様では、TACIの細胞外ドメインは他のレセプター分子の膜貫通ドメインおよび細胞内ドメインと結合させることができる。この膜貫通ドメインはTACIタンパク質の膜貫通ドメインでもよく、他のレセプターの膜貫通ドメインでもよく、あるいは異なる膜貫通ドメインでもよい。好ましくは、膜貫通ドメインはキメラの細胞外ドメインと同じタンパク質成分からのものである。キメラレセプターは［国際公開番号WO96/23814;WO96/23881;およびWO96/24671］に記載されている。キメラ抗原レセプターは記載があり［Caponら、米国特許第5,359,046、1994年10月25日発行］、IgαおよびIgβシグナルトランスダクション鎖をIgMに融合させることによってＢ細胞中で［Sanchezら、J.Exp.Med.,178:1049−1055（1993）］およびＴ細胞中で［Burkhardtら、Mol.Cell.Biol.14:1095−1103（1994）］作り出された機能性抗原特異的レセプターが含まれる。インターフェロン−α、インターフェロン−β、インターフェロン−γ、インターロイキン−１、インターロイキン−２、インターロイキン−３、インターロイキン−４、インターロイキン−６、インターロイキン−８、インターロイキン−10、インターロイキン−12、エリスロポイエチン、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（CSF）、顆粒球−CSF、マクロファージ−CSF、α−ケモカインレセプター、およびβ−ケモカインレセプターを含む種々のＩ型およびII型サイトカインレセプターがTACIタンパク質の機能的な活性断片を含むキメラレセプター中で相補的構成部分を提供することができる。
当業者が理解できるように、膜貫通ドメインは一般に膜にタンパク質をつなぎとめることについて機能的に等価である。しかしながら、膜貫通ドメインに特定のアミノ酸残基があることが、マルチタンパク質レセプター複合体におけるように、レセプターの相互作用、例えば２量体化、または他の膜結合タンパク質との結合に影響を与え得る。従って、膜貫通ドメインの選択は膜貫通ドメインによって発揮される制御機能が望まれるかまたは必要であるかに依存する。
TACIタンパク質コード核酸
本発明は、一切の動物の、特に哺乳動物、より好ましくはヒト起源の完全長TACIタンパク質すなわち天然に生じるTACIタンパク質型、およびその一切の抗原性断片をコードする遺伝子の単離を考慮している。本明細書で用いる「遺伝子」はポリペプチドをコードするヌクレオチドの集合をいい、cDNAおよびゲノムDNA核酸が含まれる。
本発明により、この技術分野の範囲にある従来の分子生物学、微生物学および組換えDNA技術が使用されるかもしれない。そのような技術は文献に完全に説明されている。例えば、Sambrook,Fritsch＆ Maniatis,Molecular Cloning:A laboratory Manual,第２版（1989）Cold Sporing Harbor Laboratory Press,Cold Spring Harbor,New York（ここでは"Sambrookら、1989"という）;DNA Cloning:A Practical Approach,第１巻および第２巻（D.N.Glover編集1985）;Oligonucleotide Synthesis（M.J.Gait編集、1984）;Nucleic Acid Hybridization［B.D.Hames＆S.J.Higgins編集（1985）］;Transcriptio and Translation［B.D.Hames＆ S.J.Higgins編集（1984）］;Animal Cell Culture［R.I.Freshney編集（1986）］;Immobilized Cells And Enzymes［IRL Press,（1986）］;B.Perbal,A Pracical Guide to Molecular Cloning（1984）;F.M.Ausubelら、編集、Current Protocols in Molecular Biology,John Wiley ＆ Sons Inc.（1994）を参照せよ。
従って、本明細書中に現れる場合は、以下の用語は以下の定義を有する。
「ベクター」とは、プラスミド、ファージ、コスミドのようなレプリコンであり、他のDNAセグメントがその断片の複製を生じさせるように接続されていてもよい。「レプリコン」とはin vivoでDNA自己複製単位として機能する、すなわち自分自身の制御下に複製することができる遺伝的要素（例えば、プラスミド、染色体、ウイルス）をいう。
「カセット」とは、特異的な制限部位においてベクター中に挿入することのできるDNA断片をいう。このDNA断片は注目しているポリペプチドをコードし、カセットおよび制限部位は、転写および翻訳のために適切なリーディングフレーム内にそのカセットが挿入されることが保証されるように設計される。
外来性あるいは異種性DNAが細胞内に導入された場合に細胞は外来性あるいは異種性DNAによって「トランスフェクション」されている。トランスフェクションしたDNAが表現型の変化を与える場合に、細胞は外来性あるいは異種性DNAによって「トランスフォーム」されている。好ましくはトランスフォームDNAは染色体中に組み込まれ（共有結合する）、細胞のゲノムを構成する。
「異種」DNAとは天然ではその細胞、または細胞の染色体部位内に位置しないDNAをいう。好ましくは異種DNAは細胞に対して外来性の遺伝子を含む。
「核酸分子」とはリボヌクレオシド（アデノシン、グアノシン、ウリジンまたはシチジン；「RNA分子」）またはデオキシリボヌクレオシド（デオキシアデノシン、デオキシグアノシン、デオキシチミジン、またはデオキシシチジン；「DNA分子」）のリン酸エステル重合型、またはホスホロチオエートおよびチオエステルのようなそのいかなるホスホエステルアナログをもいい、１本鎖あるいは２本鎖ヘリックスのいずれをもいう。２本鎖DNA−DNA、DNA−RNAおよびRNA−RNAが可能である。用語核酸分子、特にDNAまたはRNA分子は分子の１次構造および２次構造のみをいい、いかなる特定の３次構造を限定するものではない。従って、この用語は、特に直鎖状または環状DNA分子（例えば制限断片）、プラスミドおよび染色体において見られる２本鎖DNAを含む。特定の２本鎖DNA分子の構造を議論する場合、本明細書では配列はDNAの非−転写鎖（すなわち、mRNAに相補的な配列を持つ鎖）の5'から3'方向に配列のみを与える通常の慣習に従って記載されるであろう。「組換えDNA分子」とは、分子生物学的操作を受けたDNA分子を言う。
核酸分子は、その核酸分子の１本鎖型が他の核酸分子に適当な温度および溶液イオン強度（Sambrookら、上述、を参照せよ）の下でアニーリングし得る場合に、cDNA、ゲノムDNAまたはRNAのような他の核酸分子に「ハイブリダイズ可能」である。相同な核酸の予備的なスクリーニングのために、55℃のTmに対応する低ストリンジェントハイブリダイゼーション条件、例えば、5xSSC、0.1％ SDS、0.25％ミルク、ホルムアミドなし；または30％ホルムアミド、5xSSC、0.5％ SDS、を使用することができる。中程度のストリンジェンシーハイブリダイゼーション条件（例えば、40％ホルムアミド、5xまたは6xSSC）は、より高いTmに対応するに対応する。高いストリンジェンシーハイブリダイゼーション条件は最も高いTmに対応する（例えば、50％ホルムアミド、5xまたは6xSSC）。ハイブリダイゼーションは２つの核酸が相補的な配列を含むことを必要とするが、ハイブリダイゼーションのストリンジェンシーに依存して、塩基間のミスマッチもあり得る。核酸をハイブリダイズさせるための適切なストリンジェンシーは核酸の長さおよび相補の程度、この技術でよく知られた変数に依存する。２つのヌクレオチド配列間の類似性または相同性の程度が大きいほど、それらの配列を有する核酸のハイブリッドのTmは高くなる。核酸ハイブリダイゼーションの相対的安定性（より高いTmに対応）は以下の順に減少する;RNA:RNA、DNA:RNA、DNA:DNA。長さ100ヌクレオチドおりも大きなハイブリッドについては、Tmを計算する式が記載されている（Sambrookら、上述、9.50−0.51を参照せよ）。より短い核酸、すなわちオリゴヌクレオチドでのハイブリダイゼーションについては、ミスマッチの位置がより重要となり、オリゴヌクレオチドの長さがその特異性を決定する（Sambrokkら、上述、11.7−11.8を参照せよ）。ハイブリダイズ可能な核酸の最小の長さは、少なくとも10ヌクレオチド；好ましくは少なくとも18ヌクレオチド；より好ましくは長さが少なくとも24ヌクレオチドであり、最も好ましくは少なくとも30ヌクレオチド長である。特定の実施態様では、本発明のハイブリダイズ可能な核酸は、少なくとも12ヌクレオチド、好ましくは少なくとも18ヌクレオチド、より好ましくは少なくとも24ヌクレオチド、最も好ましくは少なくとも30ヌクレオチドの長さの、配列番号１、あるいは、より具体的には配列番号１のコード配列に対応する配列を有している。
特定の実施態様においては、用語「標準的ハイブリダイゼーション条件」とは55℃のTmをいい、上述した条件を使用するものである。好ましい実施態様では、Tmは60℃であり；より好ましい実施態様ではTmは65℃である。
本明細書で使用する用語「オリゴヌクレオチド」は一般には少なくとも18ヌクレオチドの、TACIタンパク質をコードするゲノムDNA分子、cDNA分子またはmRNA分子にハイブリダイズ可能な核酸を言う。オリゴヌクレオチドは例えば32P−ヌクレオチドまたはビオチンのような標識が共有結合的に結合したヌクレオチドで標識することができる（TACIポリペプチドの標識に関する上述の議論を参照せよ）。ひとつの実施態様では、標識オリゴヌクレオチドはTACIタンパク質をコードする核酸の存在を検出するためのプローブとして使用することができる。別の実施態様では、オリゴヌクレオチド（その１つまたは双方が標識されている）はPCRプライマーとして使用することができ、完全長またはTACIタンパク質の断片のクローニングのため、またはTACIタンパク質をコードする核酸の存在を検出するために使用することができる。さらなる実施態様においては、本発明のオリゴヌクレオチドはTACI DNA分子と３本らせんを形成することができる。一般には、オリゴヌクレオチドは合成的に調製され、好ましくは核酸合成機で合成される。従って、オリゴヌクレオチドはチオエステル結合等の、天然に現れないホスホエステルアナログ結合を含めて調製することができる。
「相同組換え」とはベクターの外来DNA配列の染色体への挿入を言う。好ましくはベクターの相同組換えのために染色体の特異的部位を標的とする。特異的な相同組換えのため、ベクターは、相補的な結合および染色体へのベクターの取り込みが可能となるように、染色体の配列に相同な充分に長い領域を有しているであろう。より長い相同領域、および配列類似性のより大きな程度は相同組換えの効率を増加させるであろう。
DNA「コード配列」とは、適当な制御配列下に置かれるとin vitroまたはin vivoで転写されポリペプチドに翻訳される２本鎖DNA配列である。コード配列の境界は5'（アミノ）末端の開始コドンおよび3'（カルボキシ）末端の翻訳停止コドンによって決定される。コード配列は原核生物性配列、真核性mRNAからのcDNA、真核性（例えば哺乳動物）DNAからのゲノムDNA配列、および合成DNA配列すらも含み得るが、これらに限定されない。コード配列が真核細胞内で発現されることが意図されるならば、通常ポリアデニル化シグナルおよび転写終結配列がコード配列の3'に位置するであろう。特定の実施態様においては、本発明のTACIコード配列は配列番号１に表したヌクレオチド配列を有している。
転写および翻訳制御配列は、プロモーター、エンハンサー、ターミネーターその他のような、宿主細胞内でコード配列の発現を与えるDNA制御配列である。真核細胞においてはポリアデニル化シグナルは制御配列である。
「プロモーター配列」とは細胞内でRNAポリメラーゼに結合することができ下流の（3'方向）コード配列の転写を開始させることができるDNA制御領域である。本発明を定義する目的で、プロモーター配列はその3'末端において転写開始部位によって区切られており、上流（5'方向）に向かって伸び、バックグラウンドを越えて検出できるレベルに転写を開始させるために必要な最小数の塩基または要素を含む。プロモーター配列内に転写開始部位（例えばS1ヌクレアーゼマッピングによって簡便に明らかにされる）およびRNAポリメラーゼの結合に関与するタンパク質結合ドメイン（コンセンサス配列）が見つかるであろう。
コード配列は、RNAポリメラーゼがこのコード配列をmRNAに転写し、次にこのmRNAがトランス−RNAスプライシングされてそのコード配列によってコードされるタンパク質に翻訳される場合、細胞内で転写および翻訳制御配列の「制御下」にある。
細胞の表面に発現されるべきタンパク質のコード配列の初めに「シグナル配列」が含まれることがある。この配列はポリプチドのトランスロケーションを宿主細胞に指令するシグナルペプチド（成熟ポリペプチドのＮ−末端にある）をコードする。用語「トランスロケーションシグナル配列」は本明細書ではこの種のシグナル配列をいう。トランスロケーションシグナル配列は真核生物および原核生物に本来的な種々のタンパク質と関連して見いだすことができ、両方のタイプの生物でしばしば機能する。興味深いことに、本発明のTACIは切断されるシグナル配列の存在無しにＮ−末端が細胞外になるように輸送される。したがって、この膜貫通タンパク質はIII型の膜貫通タンパク質である［Wilson−Rawlsら、Virology,201:66−76（1994）］。従って、本発明の構築において（上記で論じたキメラ構築物を含む）は、構築物のＮ−末端部分がTACIのＮ−末端をコードするならば、膜貫通TACIタンパク質の発現を得るためにシグナルペプチドは必要とされないであろう。
本明細書で用いる用語「配列相同性」はその文法的な形式において、スーパーファミリーのタンパク質（例えば免疫グロブリンスーパーファミリー）および異なる種の相同なタンパク質（例えば、ミロシン軽鎖、その他）を含む、「共通の進化的起源」を有するタンパク質間の関係をいう［Reeck、Cell,50:667（1987）］。本発明はヒトTACIタンパク質のホモログは本発明の範囲に入るものと当然に考えている。
従って、用語「配列類似性」はその文法的な形式において、それらが共通の進化的起源を有しようと有しまいと核酸配列またはアミノ酸配列間の同一性または一致の程度をいう。一般的な使用法では、用語「相同な」は「高度に」のような副詞で修飾された場合は配列類似性をいい、共通の進化的起源をいうのではない。
特定の実施態様において、２つのDNA配列は、少なくとも約50％（好ましくは少なくとも約75％、最も好ましくは少なくとも約90％または95％）のヌクレオチドがDNA配列の特定の長さにわたってマッチする場合に「本質的に相同」または「本質的に類似」である。本質的に相同な配列は配列データバンクから入手可能な標準的ソフトウエアを用いて配列を比較することにより、または例えば、その特定の系について定められるストリンジェントな条件下でのサザンハイブリダイゼーション実験において同定することができる。適切なハイブリダイゼーション条件を明らかにすることは技術範囲内である。例えば、Maniatis、上述、;DNA Cloning,第ＩおよびII巻、上述;Nucleic Acid Hubridization,上述、を参照せよ。本発明は配列番号１に50％類似のヌクレオチド、好ましくは60％類似、より好ましくは75％類似の配列（またはその相補配列）を意図している。好ましくは、そのような本質的に類似の核酸は相同である。
同様に、特定の実施態様において、２つのアミノ酸配列は、そのアミノ酸の30％より多くが同一である、または約60％より多くが類似（機能的に同一）である場合に「本質的に相同」または「本質的に類似」である。好ましくは、類似または相同な配列は例えばGCG（Genetics Compputer Group,Program Manula ofr the GCG Package,Ver.7,Madison,Winsconsin）パイルアッププログラムを用いて整列させることにより同定される。
用語「対応する」とは、類似性または相同性が測定される分子と正確な位置が同一であるか異なるかによらず、類似または相同な配列をいう。従って、用語「対応する」とは配列類似性をいい、アミノ酸残基または核酸塩基の番号を言うものではない。
TACIタンパク質をコードする遺伝子は、ゲノムDNAであってもcDNAであってもいかなる供給源からも、特にヒトcDNAまたはゲノムライブラリーから単離することができる。TACIタンパク質遺伝子を得る方法はこの技術分野でよく知られており、上述したとおりである（例えば、Sambrookら、1989、上述）。
従って、いかなる動物細胞もTACIタンパク質遺伝子の分子クローニングのための核酸供給源として働き得る可能性がある。DNAはこの技術で知られた標準的な手順によってクローン化DNA（例えばDNA「ライブラリー」）から得てもよく、このタンパク質を高レベルで発現している組織から調製したcDNAライブラリー（例えば胸腺cDNAライブラリー、なぜなら末消血細胞、特にリンパ細胞はTACIタンパク質の最も高い発現レベルを有しているようだからである）から得るのが好ましく、化学合成によって、cDNAクローニングによって、または所望の細胞から精製されたゲノムDNAあるいはそれらの断片のクローニングによって得てもよい（例えば、Sambrokkら、1989、上述;Glover,D.M.編集、1985、DNA Cloning:A practical Approach,MRL Press Ltd.,Oxford,U.K.第Ｉ、II巻）。ゲノムDNA由来のクローンはコード領域に加えて制御領域およびイントロンDNA領域を有していることがあり;cDNA由来のクローンはイントロン配列を含まないであろう。供給源が何であろうと、遺伝子はその遺伝子を増やすための適切なベクターに分子クローニングされなければならない。
ゲノムDNAからの遺伝子の分子クローニングにおいて、DNA断片が作製され、そのいくつかは所望の遺伝子をコードしているであろう。このDNAは種々の制限酵素を用いて特異的な部位で切断されるかもしれない。あるいは、このDNAを断片化するためマンガン存在下でDNaseを使用してもよく、またはこのDNAを例えば超音波処理によって物理的に剪断してもよい。次に直線状DNAをアガロースおよびポリアクリルアミドゲル電気泳動およびカラムクロマトグラフィーを含む（但し、これらに限定されない）標準的な技術によってサイズに従って分離することができる。
ひとたびDNA断片が生成されると、所望のTACIタンパク質遺伝子を含む特定のDNA断片の同定は種々の方法で達成してよい。例えば、TACIタンパク質遺伝子の一部またはその特異的RNA、またはそれらの断片を精製し標識することができ、生成されたDNA断片は標識されたプローブに対する核酸ハイブリダイゼーションによってスクリーニングすることができる［BentonとDavis,Science,196:180（1977）;GrunsteinとHogness,Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,73:3961（1975）］。例えば、TACIタンパク質について得られた部分アミノ酸配列情報に対応するオリゴヌクレオチドの組を調製することができ、TACIタンパク質をコードするDNAのプローブとして使用することができ、またはcDNAまたはmRNAのためのプライマーとして使用することができる（例えば、RT−PCRのためのポリＴプライマーと共に）。好ましくは、本発明のTACIタンパク質に極めて固有の断片が選択される。プローブに対して本質的に相同なDNA断片がハイブリダイズするであろう。上述したように、相同性の程度が高くなるほど、よりストリンジェントなハイブリダイゼーション条件を使用することができる。特定の実施態様において、相同なTACIタンパク質遺伝子を同定するためにストリンジェンシーハイブリダイゼーション条件が使用される。
例えば、本明細書で開示したTACIタンパク質の等電点的、電気泳動的アミノ酸組成、またはTACIタンパク質部分アミノ酸配列を有するタンパク質産物を遺伝子がコードしている場合は、その遺伝子の特性に基づいてさらなる選抜を行うことができる。従って、その遺伝子の存在はその発現産物の物理的、化学的または免疫学的特性に基づくアッセイにより検出されることがある。例えば、TACIタンパク質について知られているのと類似または同一の特性、例えば、電気泳動度、等電焦点または非平衡pH電気泳動挙動、タンパク質分解マップまたは抗原特性、を有するタンパク質を産生する、適切なmRNAをハイブリッド−選抜するcDNAクローンまたはDNAクローンが選抜できる。
TACIタンパク質遺伝子はmRNA選抜、すなわち核酸ハイブリダイゼーションおよびそれに続くin vitro翻訳によって同定することができる。この方法では、ヌクレオチド断片がハイブリダイゼーションによる相補的mRNA単離のために使用される。そのようなDNA断片は利用可能な精製TACIタンパク質DNAを表すこともあれば部分アミノ酸配列情報から設計された合成オリゴヌクレオチドのこともある。単離mRNA産物のin vitro翻訳産物の免疫沈降解析または機能アッセイ（例えばCAML結合特性）によりそのmRNAが同定され、従って所望の配列を有する相補的DNA断片が同定される。加えて、本明細書に記載した抗−ヒトTACIタンパク質ウサギポリクローナル抗体のようなTACIタンパク質に特異的な個体化抗体に対する、細胞から単離したポリソームの吸着によって特異的mRNAが選択されることがある。
放射標識TACIタンパク質cDNAは（吸着ポリソームから）選択したmRNAを鋳型として合成することができる。放射標識mRNAまたはcDNAは次に他のゲノムDNA断片から相同なTACIタンパク質DNA断片を同定するためのプローブとして使用してよい。
本発明はまた本発明のTACIタンパク質と同じまたは相同な機能活性を有するTACIタンパク質のアナログおよび誘導体、および他の種由来のそのホモログをコードする遺伝子を含むクローニングベクターに関する。TACIタンパク質に関連する誘導体およびアナログの生産および使用は本発明の範囲内である。特定の実施態様においては、誘導体またはアナログは機能的に活性、すなわち本発明の完全長野生型TACIタンパク質と関連した１以上の機能活性を示すことができる。他の実施態様では、TACIタンパク質は異なる細胞質ドメイン（例えば、CAMLに結合できないが、なおAP−１の活性を調節することができるもの）を有している。他の側面で、本発明のTACIタンパク質は、レクチンドメインまたは、マクロファージのマンノースレセプター若しくは筋肉上のホスホリパーゼレセプターのような他のタンパク質のドメインを付けて調製することができる。
TACIタンパク質誘導体は、これをコードする核酸配列を、機能的に同等の分子を与える置換、付加または欠失によって改変することにより作製することができる。好ましくは、天然のTACIタンパク質に対して増強された又は減少した機能活性を有する誘導体が作製される。あるいは、そのような誘導体は本発明のTACIタンパク質の天然のリガンドに対して同じまたは強いアフィニティーを有するTACIタンパク質細胞外ドメインの可溶性断片をコードすることもある。そのような可溶性誘導体はTACIタンパク質へのリガンド結合の強力な阻害因子となるかもしれない。
ヌクレオチドコード配列の縮退のため、TACIタンパク質遺伝子と本質的に同じアミノ酸配列をコードする他のDNA配列も本発明の実施に使用されてよい。これらには対立遺伝子、他の種からの相同遺伝子、配列内のアミノ酸と同じアミノ酸をコードする異なるコドンによる置換によって改変され、従って、サイレントな変化を生じているTACIタンパク質遺伝子の全部又は部分を含む核酸配列が含まれるが、これらに限定されない。同様に、本発明のTACIタンパク質誘導体は、配列内の機能的に等価なアミノ酸残基が配列内の残基を置換し、保存的アミノ酸の置換を生じさせるているような改変配列を含む、TACIタンパク質のアミノ酸配列の全部またはその部分を１次アミノ酸配列として有するものが含まれるが、これらに限定されない。従って、そのような置換は保存的置換として定義される。
例えば、配列内の１以上のアミノ酸残基は機能的に等価物として働く類似の極性の別のアミノ酸で置換することができ、サイレント変異を生じさせる。配列内のアミノ酸に対する置換体はそのアミノ酸が属するクラスと異なるクラスのメンバーから選ばれることもある。例えば、非極性（疎水性）アミノ酸にはアラニン、ロイシン、イソロイシン、バリン、プロリン、フェニルアラニン、トリプトファン、およびメチオニンが含まれる。芳香族環構造を含むアミノ酸フェニルアラニン、トリプトファン、およびチロシンである。極性の中性アミノ酸には、グリシン、セリン、スレオニン、システイン、チロシン、アスパラギンおよびグルタミンが含まれる。正に荷電した（塩基性）アミノ酸にはアルギニン、リジンおよびヒスチジンが含まれる。負に荷電した（酸性）アミノ酸にはアスパラギン酸およびグルタミン酸が含まれる。そのような改変はポリアクリルアミドゲル電気泳動によって決定される見かけの分子量、または等電点に影響を与えないと期待される。
特に好ましい置換は以下の通り：
−正の電荷が維持されるような、Argの代わりのLysおよびその逆；
−負の電化が維持されるような、Aspの代わりのGluおよびその逆；
−遊離の−OHが維持されるような、Thrの代わりのSer;および
−遊離のNH2が維持されるような、Asnの代わりのGln。
アミノ酸置換は特定の好ましい特性を有するアミノ酸に置換するために導入されることがある。例えば、Cysは他のCysとジスルフィドの結合の可能性のある部位に導入されることがある。Hisは特定の触媒部位として導入されることがある（すなわち、Hisは酸としても塩基としても作用することができ、生化学的触媒における最も一般的なアミノ酸である。）。Proはその特別な平面構造ゆえに導入されることがあり、タンパク質の構造にβ−ターンを導入する。
本発明のTACIタンパク質誘導体およびアナログをコードする遺伝子はこの技術分野で知られた種々の方法によって作製することができる。その作製に至る操作は遺伝子レベルまたはタンパク質レベルで行ってよい。例えば、クローン化TACIタンパク質遺伝子配列はこの技術分野で知られた多数のストラテジーのいずれによっても改変することができる（Sambrookら、1989、上述）。この配列は適当な部位で制限酵素によって切断し、次に所望であればさらに酵素的改変を行い、単離し、in vitroでライゲーションすることができる。TACIタンパク質の誘導体またはアナログをコードする遺伝子の作製において、改変遺伝子がTACIタンパク質遺伝子と同じ翻訳リーディングフレーム内にあって、所望の活性がコードされている遺伝子領域において翻訳停止コドンによって中断されていないことが保証されるように注意しなければならない。
さらに、TACIタンパク質をコードする核酸配列はin vitroまたはin vivoで変異させることができ、翻訳、開始、および／または終結配列を生成および／または破壊し、あるいは、コード領域に変異を起し、および／または新しい制限酵素部位を形成しまたは既存のものを破壊し、異なるin vitro改変を容易にすることができる。好ましくは、そのような変異は変異TACIタンパク質遺伝子産物の機能活性を増強する。この技術分野で知られた変異導入のためのどの方法も使用することができ、in vitro部位特異的変異導入法［Hutchinson,C.ら、J.Biol.Chem.,253:6551（1978）］；［ZollerとSmith,DNA,3:479−488（1984）］；［Oliphantら、Gene,44:177（1986）］：［Hutchinsonら、Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,83:710（1986）］、TAB▲Ｒ▼リンカーの使用（Pharmacia）等が含まれるが、これらに限定されない。PCR技術は部位特異的変異導入のために好ましい（Higuchi,“Using PCR to Engineer DNA",PCR Technology:Principles and Applications for DNA Amplification,H.Erlich編集、Stockton Press,第６章,pp.61−70（1989））。
同定および単離された遺伝子は適切なクローニングベクターに挿入することができる。この技術分野で知られた非常に多くのベクター−宿主系が用いられてよい。可能なベクターには、プラスミドまたは変異ウイルスが含まれるがこれらに限定されないが、ベクター系は使用する宿主細胞と共存可能でなければならない。ベクターの例としては、大腸菌の、λファージ誘導体のようなバクテリオファージ、pBR322誘導体またはpUCプラスミド誘導体のようなプラスミド、例えばpGEXベクター、pmal−ｃ、pFLAGなどが含まれるがこれらに限定されない。クローニングベクターへの挿入は、例えば接着末端を有するベクター中へDNA断片をライゲーションすることによって達成することができる。しかしながら、DNAを断片化するのに使用した制限部位に相補的な部位がクローニングベクターに存在しない場合はDNA分子の末端を酵素的に修飾してもよい。あるいは、所望のどんな部位もヌクレオチド配列（リンカー）をDNA末端にライゲーションすることにより作製することができる；こうしたライゲーションされたリンカーは制限エンドヌクレアーゼ認識配列をコードする特異的な化学合成オリゴヌクレオチドを含んでいてよい。組換え分子はトランスフォーメーション、トランスフェクション、インフェクション、エレクトロポレーションその他によって宿主細胞に導入することができ、多数の遺伝子配列のコピーが作られる。好ましくは、クローン化遺伝子は、クローニング細胞、例えば大腸菌内での拡大と、必要であればその後の適切な発現細胞株への挿入のための精製を容易にするシャトルベクタープラスミドに含まれる。例えば、シャトルベクターは、１以上のタイプの生物中で複製することができるベクターであるが、これは大腸菌および酵母の両方での複製のために大腸菌プラスミドの配列と酵母２μプラスミドの配列とを結合することによって調製することができる。
別の方法では、所望の遺伝は適切なクローニングベクターに「ショットガン」アプローチで挿入された後に同定され単離されることもある。所望の遺伝子の濃縮は、例えばサイズ分画による濃縮は、クローニングベクターへの挿入前に行うことができる。
膜貫通活性化因子およびCAML−相互作用因子ポリペプチドの発現
TACIタンパク質、その抗原性断片、その誘導体またはアナログ、または機能的に活性な誘導体（そのキメラタンパク質を含む）をコードするヌクレオチド配列は適切な発現ベクター、すなわち、挿入したタンパク質コード配列の転写および翻訳に必要な要素を含むベクターに挿入することができる。そのような要素はここでは「プロモーター」と称される。従って、本発明のTACIタンパク質をコードする核酸は場合により本発明の発現ベクターのプロモーターと機能的に結合している。cDNAおよびゲノム配列のどちらもそのような制御配列の制御下でクローン化および発現され得る。発現ベクターはまた複製起点を有するのが好ましい。
必要な転写および翻訳シグナルは組換え発現ベクター上で提供され得るが、また、TACIタンパク質をコードする天然の遺伝子および／またはその外側領域によって供給されてもよい。
上記で示したように、TACIタンパク質のあり得るキメラ対応物には、マクロファージのマンノースレセプターのような天然に現れる多価レクチンレセプター由来、天然レクチン、又は他の供給源、あるいは置換細胞質ドメイン由来の、シグナルトランスダクションを媒介することができる、又はエンドサイトーシスプロセッシングを修飾することができるレクチンドメインを有するものが含まれる。
可能性のある宿主−ベクター系にはウイルス（例えばアクシニアウイルス、アデノウイルスその他）に感染した哺乳動物細胞系；ウイルス（例えば、バキュロウイルス）に感染した昆虫細胞系；酵母ベクターを含む酵母のような微生物；バクテリオファージDNA、プラスミドDNAまたはコスミドDNAで形質転換されたバクテリアが含まれるがこれらに限定されない。ベクターの発現要素はその強さと特異性の点で様々である。使用する宿主−ベクター系に依存してたくさんの適切な転写および翻訳要素のいずれが使用されてもよい。
本発明の組換えTACIタンパク質、またはその機能的断片、誘導体、キメラ構築物およびアナログは組換えによるそのコード配列の組込みによって染色体上で発現されることがある。この点については、安定な遺伝子発現を高レベルで達成するために多数の増幅系のいずれを使用してもよい（Sambrokk,1989,上述、を参照せよ）。
TACIタンパク質をコードする核酸を含む組換えベクターを有する細胞は適切な細胞培養培地中で、細胞によるTACIタンパク質発現の発現を生じさせる条件下で培養される。
適切な転写／翻訳制御シグナルおよびタンパク質コード配列からなる遺伝子を含む発現ベクターを構築するために、DNA断片のクローニングベクターへの挿入に関して以前に記載されたいずれの方法を使用してもよい。これらの方法にはin vitro組換え技術および合成技術およびin vivo組換え（遺伝的組換え）が含まれるであろう。
TACIタンパク質の発現はこの技術分野で既知のどのプロモーター／エンハンサー要素によって制御してもよいが、それらの制御要素は発現のために選択した宿主内で機能しなければならない。TACIタンパク質遺伝子発現の制御に使用されるかもしれないプロモーターには、SV40初期プロモーター領域［BenoistとChambon,Nature,290:304−310（1981）］、ラウス肉腫ウイルスの3'末端反復配列に含まれるプロモーター［Yamamotoら、Cell,22:787−797（1980）］、ヘルペスチミジンキナーゼプロモーター［Wagnerら、Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,78:1441−1445（1981）］、メタロチオネイン遺伝子の制御配列［Brinsterら、Nature,296:39−42（1982）］；β−ラクタマーゼプロモーターのような原核生物用発現ベクター［Villa−Kamaroffら、Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,75:3727−3731（1978）］またはtacプロモーター［Deboerら、Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,80:21−25（1983）,Scientific American,242:74−94（1980）の"Useful Proteins from recombinant bacteria"も参照せよ］;Gal4プロモーター、ADC（アルコールデヒドロゲナーゼ）プロモーター、PGK（ホスホグリセロールキナーゼ）プロモーター、アルカリホスファターゼプロモーターのような酵母又は他の菌のプロモーター要素；および組織特異性を示し、トランスジェニック動物に使用されている動物の転写制御領域：膵臓腺房細胞で活性なエラスターゼＩ遺伝子制御領域［Swiftら、Cell,38:639−646（1984）］；［Ornitzら、Cold Sporing Harbor Symp.Quant.Biol.,50:399−409（1986）］；［MacDonald,Hepatology,7:425−515（1987）］；膵臓β細胞で活性なインシュリン遺伝子制御領域［Hanahan,Nature,315:115−122（1985）］、リンパ細胞で活性な免疫グロブリン遺伝子制御領域［Grosschedlら、Cell,38:647−658（1984）］；［Adamesら、Nature,318:533−538（1985）］；［Alexanderら、Mol.Cell.Biol.7:1436−1444（1985）］、精巣、乳腺、リンパ細胞およびマスト細胞で活性なマウス乳癌ウイルス制御領域［Lederら、Cell,45:485−495（1986）］、肝臓で活性なアルブミン遺伝子制御領域［Pinkertら、Genes and Devel.,1:268−276（1987）］、肝臓で活性なα−フェトプロテイン遺伝子制御領域［Krumlaufら、Mol.Cell.Biol.,5:1639−1648（1985）］；［Hammerら、Science,235:53−58（1987）］、肝臓で活性なα１−アンチトリプシン遺伝子制御領域［Kelseyら、Genes and Devel.,1:161−171（1987）］、骨髄細胞で活性なβ−グロビン遺伝子制御領域［Mogramら、Nature,315:338−340（1985）］；［Kolliasら、Cell,46:89−94（1986）］、脳の乏突起神経膠細胞（oligodendrocyte cell）で活性なミエリン塩基性タンパク質遺伝子制御領域［Readheatら、Cell,48:703−712（1987）］、骨格筋で活性なミオシン軽鎖−２遺伝子制御領域［Sani,Nature,314:283−286（1985）］］、および視床下部で活性なゴナドトロピン放出ホルモン遺伝子制御領域［Masonら、Science,234:1372−1378（1986）］が含まれるが、これらに限定されない。
本発明のTACIタンパク質をコードする核酸を含む発現ベクターは以下の４つの一般的アプローチにより同定することができる：（ａ）所望のプラスミドDNAまたは特定のmRNAのPCR増幅、（ｂ）核酸ハイブリダイゼーション、（ｃ）選抜マーカー遺伝子機能の存在または非存在、および（ｄ）挿入配列の発現。第１のアプローチにおいては、核酸は増幅産物の検出のためにPCRによって増幅される。第２のアプローチにおいては、発現ベクター中に挿入された外来遺伝子の存在はその挿入されたマーカー遺伝子に相同な配列を含むプローブを用いた核酸ハイブリダイゼーションによって検出することができる。第３のアプローチでは、組換えベクター／宿主系が、ベクターへの外来遺伝子の挿入によって引き起こされる特定の「選抜マーカー」遺伝子機能（例えば、β−ガラクトシダーゼ活性、チミジンキナーゼ活性、抗生物質耐性、形質転換表現型、バキュロウイルス内の閉鎖体（occlusion body）形成、その他）の存在または非存在に基づいて同定され選ばれ得る。別の例では、TACIタンパク質をコードする核酸がベクターの「選抜マーカー」遺伝子配列内に挿入されるならば、TACIタンパク質インサートを有する組換え体はTACIタンパク質遺伝子機能が存在しないことによって同定され得る。第４のアプローチでは、組換え発現ベクターは、発現されるタンパク質が機能的に活性なコンフォメーションをとることを条件に、その組換え体によって発現される遺伝子産物の活性、生化学的または免疫学的特性に関するアッセイによって同定され得る。
広範囲の宿主／発現ベクターの組み合わせが本発明のDNA配列を発現させるために使用されてよい。有用な発現ベクターは、例えば、染色体DNA配列、非染色体DNA配列および合成DNA配列からなっていてよい。適切なベクターにはSV40の誘導体および既知のバクテリアプラスミド、例えば、大腸菌プラスミドcol E1,pCR1,pBR322,pMal−C2,pET,PGEX［Smithら、Gene,67:31−40（1988）］、pMB9およびそれらの誘導体、RP4のようなプラスミド；ファージDNA、例えば、λファージの沢山の誘導体、例えばNM989、および他のファージ、例えばM13および繊維状１本鎖ファージDNA;2μプラスミドのような酵母プラスミドまたはそれらの誘導体；昆虫または哺乳動物細胞で有用なベクターのような真核細胞で有用なベクター；ファージDNAまたは他の発現制御配列を使用するように改変されたプラスミドのような、プラスミドとファージDNAとの組み合わせから由来するベクター；その他、が含まれる。
例えば、バキュロウイルス発現系においては、pVL941（BamH Iクローニング部位;Summers）、pVL1393（BamH I,Sma I,Xba I,EcoR I,Not I,Xma III,Bgl II,およびPst Iクローニング部位;Invtrogen）、pVL1392（Bgl II,Pst I,Not I,Xma III,EcoR I,Xba I,Sma IおよびBamH Iクローニング部位;SummersおよびInvitrogen）およびpBlueBac III（BamH I,Bgl II,Pst I,Nco IおよびHind IIIクローニング部位；青／白組換え体スクリーニング可能;Invitrogen）のような（ただしこれらに限定されない）非融合トランスファーベクター、およびpAc700（BamH IおよびKpn Iクローニング部位、BamH I認識部位は開始コドンから始まる;Summers）、pAc701およびpAc702（pAc700と同様だが異なるリーディングフレームを有する）、pAc360（ポリヘドリン開始コドンの36塩基対下流にBamH Iクローニング部位;Invitrogen（195））、およびpBlueBacHis A,B,C（３つの異なるリーディングフレーム、BamH I,Bgl II,Pst I,Nco IおよびHind IIIクローニング部位、ProBond精製のためのＮ−末端ペプチド、およびプラークの青／白組換え体スクリーニング;Invitrogen（220））のような（但しこれらに限定されない）融合トランスファーベクターを使用することができる。
本発明における使用が考慮されている哺乳動物発現ベクターには、ジヒドロ葉酸レダクターゼ（DHFR）プロモーターのような誘導可能プロモーターを備えたベクター、例えば、DHFRを備えた一切の発現ベクター、または、pED（Pst I,Sal I,Sba IおよびEcoR Iクローニング部位、このベクターはクローン化遺伝子とDHFRの双方を発現する;Kaufman,Current Protocols in Molecular Biology,16.12（1991）を参照せよ）のようなDHFR/メトトレキセート共−増幅ベクターが含まれる。あるいは、pEE14（Hind III,Xba I,Sma I,Sba I,Ecor IおよびBcl Iクローニング部位、このベクターはグルタミンシンターゼとクローン化した遺伝子を発現する;Celltech）のようなグルタミンシンターゼ／メチオニンスルフォキシミン共−増幅ベクター。別の実施態様では、pREP4（BamH I,Sfi I,Xho I,Not I,Nhe I,Hind III,Nhe I,Pvu IIおよびKpn Iクローニング部位、構成的RSV−LTRプロモーター、ハイグロマイシン選抜マーカー;Invitrogen）、pCEP4（BamH I,Sfi ,Xho I,Not I,Hind III,Nhe I,Pvu II,およびKpn Iクローニング部位、構成的hCMV前初期遺伝子、ハイグロマイシン選抜マーカー;Invitrogen）、pMEP4（Kpn I,Pvu I,Nhe I,Hind III,Not ,Xho I,Sfi I,BamH Iクローニング部位、誘導体メタロチオネインII a遺伝子プロモーター、ハイグロマイシン選抜マーカー:Invitrogen）、pREP8（BamH I,Xho I,Not I,Hind III,Nhe IおよびKpn Iクローニング部位、RSV−LTRプロモーター、ヒスチジノール選抜マーカー;Invitrogen）、pREP9（Kpn I,Nhe I,Hind III,Not I,Xho I,Sfi IおよびBamH Iクローニング部位、RSV−LTR、G418選抜マーカー;Invitrogen）、およびpEBVHis（RSV−LTRプロモーター、ハイグロマイシン選抜マーカー、ProBondレシンで精製可能でエンテロキナーゼで切断されるＮ−末端ペプチド;Invitrogen）のような、エプスタインバールウイルスの制御下でエピソーム的発現を指令するベクターを使用することができる。本発明に使用するための選択可能な哺乳動物発現ベクターには、pRc/CMV（Hind III,BstX I,Not I,Sba I,およびApa Iクローニング部位、G418選抜;Invitrogen）、pRc/RSV（Hind III,Spe I,BstX I,Not I,Xba Iクローニング部位、G418選抜;Invitrogen）その他が含まれる。本発明の使用のためのワクシニアウイルス哺乳動物発現ベクター（Kaufman、1991、上述、を参照せよ）には、pSC11（Sma Iクローニング部位、TO−およびβ−gal選抜）、pMJ601（Sal I,Sma I,Afl I,Nar I,BspM II,BamH I,Apa I,Nhe I,Sac II,Kpn IおよびHind IIIクローニング部位;TK−およびβ−gal選抜）およびpTKgptF1S（EcoR I,Pst I,Sal I,Acc I,Hind II,Sba I,BamH IおよびHpaクローニング部位、TK又はXPRT選抜）が含まれるが、これらには限定されない。
酵母発現系も本発明によってTACIタンパク質を発現させるために使用できる。例えば、２つだけ挙げれば、非−融合pYES2ベクター（Xba I,Sph I,Sho I,Not I,Gst XI,EcoR I,Bst XI,BamH I,Sac I,Kpn IおよびHind IIIクローニング部位;Invitrogen）または融合pYESHisA,B,C（Xba I,Sph I,Sho I,Not I,Bst I,EcoR I,BamH I,Sac I,Kpn IおよびHind IIIクローニング部位、ProBondレシンで精製できエンテロキナーゼで切断されるＮ−末端ペプチド;Invitrogen）が本発明により使用できる。
ひとたび特定の組換えDNA分子が同定され単離されると、これを増やすためのいくつかの既知の方法が使用されることがある。適切な宿主系と増殖条件が確立すると、組換え発現ベクターを量的に増やして調製することができる。前に説明したように、使用できる発現ベクターは以下のベクターまたはその誘導体を含むが、それらに限定されない：少しだけ挙げると、ワクシニアウイルスまたはアデノウイルスのようなヒトまたは動物のウイルス；バキュロウイルスのような昆虫ウイルス；酵母ベクター；バクテリオファージベクター（例えばλ）およびプラスミドおよびコスミドDNAベクター。
加えて、挿入した配列の発現を調節する、あるいは特定の所望の様式で遺伝子産物を修飾およびプロセッシングする宿主細胞株が選択されてよい。異なる宿主細胞はタンパク質の翻訳後プロセッシングおよび修飾（例えば、グリコシル化、例えばシグナル配列の切断）の特徴的かつ特異的なメカニズムを有している。発現された外来タンパク質の所望の修飾およびプロセッシングを保証するために適切な細胞株または宿主系を選ぶことができる。例えば、バクテリアの系における発現は非グリコシル化コアタンパク質を生産するために使用することができる。
ベクターはこの技術分野で知られた方法、例えばトランスフェクション、エレクトロポレーション、マイクロインジェクション、トランスダクション、細胞融合、DEAEデキストラン、リン酸カルシウム沈殿、リポフェクション（リソソーム融合）、遺伝子銃、またはDNAベクタートランスポーターにより所望の宿主細胞に導入される（Wuら、J.Biol.Chem.267:963−967（1992）;WuとWu,J.Biol.Chem.,263:14621−14624（1988）;Hartmutら、カナダ特許出願第2,012,311号、1990年３月15日出願）。
遺伝子治療およびトランスジェニックベクター
TACIタンパク質の遺伝的欠損は遺伝性免疫不全に関与する沢山の要因の１つとなり得る。本発明は膜貫通活性化因子およびCAML−相互作用因子遺伝子に遺伝的欠陥を有する患者において正常なリンパ細胞機能を回復させるTACIタンパク質cDNAによる遺伝子治療を含む。本発明はまた、骨髄移植レジームの一部として患者に再インフュージョンするために用意される血液幹細胞に導入することによる遺伝子治療手段として使用されるべきTACIの改変型を含む。ひとつの実施態様では、患者に特異的な抗体を注射することにより骨髄移植に由来するリンパ細胞のみを選択的に活性化する手段としてエピトープタグ−TACI誘導体が使用される。別の実施態様において、低下した応答性を有する比較的無害なリンパ細胞を作り出すために、細胞内部分を欠くTACI遺伝子が使用される。この実施態様はＢ細胞の活性化が関与する自己免疫疾患に有用である。
一つの実施態様において、TACIタンパク質またはそのポリペプチドドメイン断片をコードする遺伝子がin vivoでウイルスベクターに導入される。そのようなベクターには、単純ヘルペスウイルス（HSV）、パピローマウイルス、エプスタインバールウイルス（EBV）、アデノウイルス、アデノ随伴ウイルス（AAV）、その他のような、弱毒化ウイルスまたは欠損DNAウイルスが含まれるが、これらに限定されない。ウイルス遺伝子の全体またはほとんど全体を欠く欠損ウイルスが好ましい。欠損ウイルスは細胞に導入しても感染性でない。欠損ウイルスベクターの使用は、そのベクターが他の細胞に感染し得ることを考慮せずに、細胞に対する特異的、局所的な投与を可能とする。従って、リンパ細胞は特異的に標的となり得る。具体的なベクターの例には、欠損ヘルペスウイルスＩ型（HSVI）ベクター［Kaplitら、Molec.Cell.Neurosci.,2:320−330（1991）］、Stratford−Perricaudet I［J.Clin.Invest.,90:626−630（992）］に記載されたような弱毒化アデノウイルス、および欠損アデノ随伴ウイルスベクター［Samulskiら、J.Virol.,61:3096−3101（1987）］；［Samulskiら、J.Virol.,63:3822−3828（1989）］が含まれるが、これらに限定されない。
好ましくは、in vivo投与については、ウイルスベクターおよびトランスフェクションされた細胞の免疫−不活性化を避けるため、適切な免疫抑制処置がウイルスベクター、例えばアデノウイルスベクターと組み合わせて使用される。例えば、インターロイキン−12（IL−12）、インターフェロン−γ（IFN−γ）のような免疫抑制性サイトカイン、または抗−CD4抗体はウイルスベクターに対する液性または細胞性免疫応答を阻害するために投与することができる［例えば、Wilson,Nature Medicine（1995）を参照せよ］。加えて、最少の抗原を発現すべく操作されたウイルスベクターを用いることが有利である。
別の実施態様において、この遺伝子は例えばAndersonら、米国特許第5,399,346号;Mannら、1983,Cell 33:153;Teminら、米国特許第4,650,764号;Teminら、米国特許第4,980,289号;Markowitzら、J.Virol.,62:1120（1988）;Teminら、米国特許第5,124,263号;Doughertyらの国際公開WO95/07358、1995年３月16日公開；およびKuoら、Blood,82:845（1993）に記載されたようにレトロウイルスベクターに導入することができる。
遺伝子ターゲッティングデリバリーは国際公開WO 95/28494,1995年10月公開、に記載されている。
あるいは、ベクターはin vivoでリポフェクチンによって導入することもできる。過去10年間in vitroの核酸の封入及びトランスフェクションに関するリポソームの使用が増加してきている。リポソーム媒介トランスフェクションに伴う困難性と危険性を限定するために設計された合成カオチン性脂質をマーカーをコードする遺伝子のin vivoトランスフェクションのためのリポソームを調製するために使用することができる［Felgnerら、Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,84:7413−7417（1987）;Mackeyら、Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,85:8027−8031（1988）を参照せよ］。カチオン性脂質の使用は負の電荷を持つ核酸の封入を促進し、また負の電荷を持つ細胞膜との融合を促進するかもしれない［FelgnerとRingold,Science,337:387−388（1989）］。外来遺伝子を特定の器官にin vivoで導入するためのリポフェクチンの使用はある種の実用的な利点を有する。リポソームを特定の細胞に対して分子的標的とすることは利点の一つの範囲を表すものである。特定の細胞に対してトランスフェクションを行うことは、膵臓、肝臓、腎臓および脳のような細胞の不均一性を有する組織において特に有利であろう。脂質は標的化を目的として他の分子に化学的にカップリングされていてもよい［Mackeyら、上述、を参照せよ］。標的とされるペプチド、例えばホルモンまたは神経伝達物質、および抗体のようなタンパク質、または非−ペプチド分子はリポソームに化学的にカップリングすることができる。
in vivoでベクターを裸のDNAプラスミドとして導入することもできる。遺伝子治療のための裸のDNAベクターは所望の宿主細胞にこの技術分野で知られた方法、例えば、トランスフェクション、エレクトロポレーション、マイクロインジェクション、トランスダクション、細胞融合、DEAEデキストラン、リン酸カルシウム沈殿、遺伝子銃の使用またはDNAトランスポーターの使用［Wuら、J.Biol.Chem.,267:963−967（1992）;WuとWu,J.Biol.Chem.,263:14621−14624（1988）;Hartmutら、カナダ特許出願2,012,311、1990年３月15日出願、を参照せよ］によって所望の宿主細胞に導入することができる。
本発明の好ましい実施態様において、上述した遺伝子治療ベクターはベクター中に導入したTACIタンパク質の配列に機能可能に結合した転写制御配列を使用する。すなわち、本発明の特異的発現ベクターを遺伝子治療に使用することができる。
遺伝子ターゲッティング
本明細書で使用する「遺伝子ターゲッティング」とはゲノムDNA断片が哺乳動物細胞に導入されその断片が内在性相同配列中に位置しそれと組換えを起こすときに生じる相同組換えの一種である。
本明細書で使用する「ノックアウトマウス」は、そのゲノム中に遺伝子ターゲッティング法によって不活性化された特定の遺伝子を有するマウスである。ノックアウトマウスにはヘテロ接合マウス（すなわち、１個の欠損アレルおよび１個の野生型アレル）およびホモ接合変異体（すなわち、２個の欠損アレル）が含まれる。
本明細書で使用する「マーカー遺伝子」は、集団中の頻度の低いトランスフェクション細胞を多数の処理細胞から単離することを容易にする選抜マーカーである。そのようなマーカーの非包括的なリストには、ネオマイシンホスホトランスフェラーゼ、ハイグロマイシンＢホスホトランスフェラーゼ、キサンチン／グアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ、単純ヘルペスチミジンキナーゼ、およびジフテリア毒素が含まれる。
膜貫通活性化因子およびCAML−相互作用タンパク質の機能活性はトランスジェニック的に評価される。これについて、トランスジェニックマウスモデルを使用することができる。膜貫通活性化因子およびCAML−相互作用タンパク質遺伝子はトランスジェニックマウスを用いた相補性試験において使用することができる。候補遺伝子の野生型遺伝子座に対応するウイルスベクターまたはコスミドクローン（あるいはファージクローン）を含むトランスジェニックベクターを、単離したTACIタンパク質遺伝子を用いて構築することができる。コスミドは公表されている方法［Jaenisch,Science,240:1468−1474（1988）］を用いてトランスジェニックマウスに導入することができる。遺伝学的意味で、導入遺伝子はサプレッサー変異として作用する。
あるいは、TACIタンパク質遺伝子発現が破壊されているトランスジェニック動物モデルを使用することができる。遺伝子発現は、本発明によればいかなる機能性タンパク質も発現されないときに破壊されている。遺伝子産物の表現型効果を評価するひとつの標準的な方法はその遺伝子を欠失させるノックアウト技術の使用である。あるいは、ナンセンス変異またはアンバー変異、または不活性タンパク質の発現を導く変異、のような変異を導入するために組換え技術を使用することができる。別の実施態様において、TACIタンパク質遺伝子は野生型動物においてアンチセンス方向に発現された場合の表現型効果を調べることによってテストすることができる。このアプローチでは、野生型アレルの発現が抑制され、それにより変異表現型が生ずる。RNA−RNA二重鎖形成（アンチセンス−センス）はmRNAの正常な取り扱いを阻害し、野生型遺伝子効果の部分的または完全な消滅を生じさせる。この技術は組織培養においてTK合成を阻害するため、および、DrosophilaのKrupple変異の表現型を作り出すため、およびマウスのShiverer変異を作製するために使用されている［Izantら、Cell,36:1007−1015（1984）;Greenら、Annu.Rev.Biochem.,55:569−597（1986）;Katsukiら、Science,241:593−595（1988）］。このアプローチの重要な利点は、同起源のmRNA全体の発現を効果的に阻害するために遺伝子の小さな部分が発現されることしか必要とされないことである。アンチセンス導入遺伝子はそれ自身のプロモーターの制御下または正しい細胞型において発現している他のプロモーターの制御下に置かれ、SV40ポリＡ部位の上流に置かれるであろう。この導入遺伝子は遺伝子ノックアウト技術を用いてトランスジェニックマウスを作製するために使用されるであろう。
従って、本発明は、TACIタンパク質の発現と翻訳レベルで相互作用させるために使用するアンチセンスヌクレオチドおよびリボザイムの調製にまで広がる。このアプローチは、mRNAをアンチセンス核酸でマスクするまたはリボザイムでこれを切断することにより特定のmRNAの翻訳を阻害するためのアンチセンス核酸およびリボザイムを使用する。TACI mRNA特異的アンチセンス核酸またはリボザイムは、例えば、「遺伝子治療」について上述したような技術を用いて導入することができる。あるいは、合成アンチセンスオリゴヌクレオチドまたはリボザイムオリゴヌクレオチドを調製することができる。
アンチセンス核酸は特定のmRNAの少なくとも一部に相補的なDNAまたはRNA分子である［Marcus−Sekura,Anal.Biochem.,172:298（1988）を参照せよ］。細胞内で、それらはそのmRNAにハイブリダイズし、二本鎖分子を形成する。細胞はその二本鎖型のmRNAを翻訳しない。従って、アンチセンス核酸はmRNAのタンパク質への発現に干渉する。約15ヌクレオチドのオリゴマーおよびAUG開始コドンとハイブリダイズする分子は特に効果的であろう。なぜなら、それらは合成が容易であり、かつ、生物の細胞に導入した場合に、より大きな分子よりも抱える問題が少ないと思われるからである。アンチセンス法はin vitroで多くの遺伝子の発現を抑制する為に使用されている［Maucus−Sekura,1988,上述;Hamborら、J.Exp.Med.,168:1237（1988）］。好ましくは、合成アンチセンスヌクレオチドは、天然のホスホエステル結合ではなく、ホスホロチオレート、またはチオエステルのようなホスホエステルアナログを含む。そのようなホスホエステル結合アナログは分解に対してより抵抗性であり、安定性が増大し、従って、アンチセンス核酸の効率を増加させる。
リボザイムは、他の一本鎖RNA分子をDNA制限酵素にいくぶん類似した様式で特異的に切断する能力を有するRNA分子である。研究者らは２つのタイプのリボザイム、すなわち、テトラヒメナ型および「ハンマーヘツド型」を同定している。ハンマーヘツド型リボザイムは特異的mRNA種を不活性化するためにテトラヒメナ型リボザイムよりも好ましく、より短い認識配列については18塩基認識配列が好ましい。
したがって、ここに記載され実現されたTACIタンパク質をコードするDNA配列はTACIタンパク質に対するアンチセンス分子を調製するため、およびTACIタンパク質のmRNAを切断するリボザイムを調製するために使用することができ、それらは樹状細胞による免疫刺激のレベル、またはリンパ上皮細胞に媒介されるクローン検出（clonal detection）レベルを低下させるであろう。
胚性幹細胞における遺伝子ターゲッティングは、in vivoにおける正確な遺伝子操作を可能とする比較的新しい技術である。この技術は一切の任意の遺伝子構造における特定の変異を有するマウスの作製を可能とする。所定の変異を作製することができることにより研究者は、ショウジョウバエ（Deosophila）およびセンチュウ（C.elegans）のような生物について神経系に適用して成功したように、遺伝学の力を複雑なヒトの免疫系へ応用することができるようになる。
多くの異常についての治療法を発見するための鍵は適切な動物モデルの開発であった。本発明は、天然では機能性TACIタンパク質をコードし発現する遺伝子の、非−機能アレルを含むノックアウトマウスを含む。本発明のこの側面には、天然では機能性TACIタンパク質をコードし発現する２つの遺伝子の非−機能アレルを含む、従って、機能性TACIタンパク質を発現できないノックアウトマウスが含まれる。
非−機能性アレルはこの技術分野でよく知られたどんな方法によっても作製することができ、その全ては本発明で使用されてよい。ある実施態様では、非−機能性アレルTACIタンパク質アレルのコード領域へ外来DNAを挿入することにより欠損させられる。好ましい実施態様において、この挿入はTACIタンパク質遺伝子の第１エクソン中に置かれる。より好ましい実施態様において、この挿入物はTACIタンパク質をコードするアレルの転写領域の前に転写を終結させるシグナルを含んでいる。これらの実施態様において、TACIタンパク質のコード領域の初めのDNA部分を除去し、これを上記の挿入物で置換することが更に好ましい。本発明はまた本発明のノックアウトマウスを作製するための方法を含み、その方法は以下を含む:TACIタンパク質をコードするゲノムDNAを得て、前記ゲノムDNAおよびマーカー遺伝子を含み、前記マーカー遺伝子が前記ゲノムDNAのエクソン内に置かれているベクターを構築すること。このベクターを胚性幹細胞にエレクトロポレーションし、そのベクターをゲノム中に組み込んだ胚性幹細胞を選抜することであって、選抜された細胞がマーカー遺伝子をマウスゲノム中のTACIタンパク質の遺伝子の内在部位中に組み込んだものであること。この細胞をマウス胚盤胞に注入し、胚盤胞を次に偽妊娠メスマウスに再移植することであって、このマウスがその生殖細胞にTACIタンパク質の欠損アレルを有するキメラマウスを産むこと。このキメラマウスを標準近交系マウスと交配しヘテロ接合ノックアウトマウスを作り出す。二匹のヘテロ接合マウスを繁殖させホモ接合ノックアウトマウス子孫を作る。好結果を与える遺伝子ターゲティングの詳細な手順はこの技術分野でよく知られており、例えばJoyner,A.L.（1993）Gene Targeting:A Practical Approach,The Practical Approachシリーズ（Rickwood,D.とHames,B.D.編集）、IRL Press,Oxfordに記載されている。この文献はそっくり本明細書に含まれるものとする。
本発明の他の特徴は免疫抑制剤として使用可能な治療剤の選抜方法であり、可能性のある治療剤を本発明のノックアウトマウスに投与し、免疫不全に関連すると考えられるかもしれない何らかの表現型的特徴に対するその想定した治療剤の効果を測定および／または決定することを含む。
本発明のこの側面の好ましい実施態様には、可能性のある治療剤を本発明のノックアウトマウスに投与し、ここで、治療剤が存在しない場合にそのノックアウトマウスの通常の応答は野生型マウスの応答と特徴的に異なるものであって、ノックアウトマウスのテスト応答を測定することが含まれる。テスト応答と通常応答間で統計的な有意性があるかに基づいて可能性のある治療剤が選ばれる。測定／決定された特徴に有意な変化を示す潜在的治療剤が選ばれる。
好ましい実施態様において、治療剤の非存在下におけるノックアウトマウスの通常の応答は、野生型マウスの応答よりも特徴的に低いという点で特徴的に異なっており、選ばれた治療剤はその特徴の応答性を上げるように作用する。
可能性のある治療剤は、薬品化学会社から入手できるものを含むどんな数の薬剤またはペプチドライブラリーからも得られるかもしれない。
TACIタンパク質およびそのホモログの精製
本発明のTACIタンパク質およびそのホモログは既知の精製ステップを広範囲に含むどんな数の手法によっても精製することができる。当業者ならばより詳細かつ広範囲には、Methods of Enzymologyシリーズのような文献を参照すべきことを知っているであろう。本発明のタンパク質を精製するための最初のステップは以下のようである：硫酸アンモニウム分画におけるような、塩溶（salting in）または塩析（salt out）；溶媒排除分画（solvent exclusion fractionation）、例えばエタノール沈殿;Triton X−100、Tween−20、その他、のような界面活性剤を用いた、膜結合タンパク質を遊離させる界面活性剤抽出；あるいは高塩抽出。タンパク質の可溶化はジメチルスルホキシドおよびヘキサメチルホスホルアミドのような中性溶媒を用いても達成されるかもしれない。加えて、高速遠心が単独で、または他の抽出技術と組み合わせて使用されることがある。
一般には、優れた２次的単離または精製ステップには、リン酸カルシウムゲルまたはヒドロキシアパタイトを利用した固相吸着または固相結合が含まれる。固相結合は、ジメチルアミノエチル（DEAE）、またはジエチル［２−ヒドロキシプロピル］アミノエチル（QAE）セファデック若しくはセルロースのような陰イオン交換体；または、カルボキシメチル（CM）またはスルホプロピル（SP）セファデックス若しくはセルロースのような陽イオン交換体の何れによるにしろ、イオン結合によって達成されることがある。固相結合の別の方法には、疎水性相互作用の利用、例えば、フェニルセファロースのような固体支持相および高塩バッファーの利用；アフィニティー結合、例えば活性化支持体に結合したCAML（またはそのTACI−結合断片）の利用；免疫結合、例えば活性化支持体に結合したTACIタンパク質に対する抗体の利用；および、特定の色素またはレクチンその他を有するものを含めた他の固体支持相の利用が含まれる。精製手順の最後にしばしば使用される更なる固相支持体技術は、セファデックスおよびセファロースゲルのようなサイズ分画によるもの、または、サイズ分画膜フィルターを用いた加圧若しくは遠心膜技術によるものである。
固相支持体分離は一般に低速遠心によるバッチ法またはカラムクロマトグラフィーによって行われる。高性能液体クロマトグラフィー（HPLC）は、FPLCと関連する技術を含めて、現在液体クロマトグラフィーを行うもっとも一般的な手段である。サイズ分画技術は低速遠心の助けによって行われることもある。
加えて、ゲル電気泳動技術のようなサイズ透過（size permeation）技術が使用されることもある。これらの技術は一般にチューブ、スラブまたはキャピラリー電気泳動によって行われる。
タンパク質精製に関するほとんど全てのステップは生物学的バッファーをpKaに近いpHで使用する。典型的なバッファーは大部分の生化学カタログから購入することができ、Tris、ピロリン酸塩、一リン酸塩、および二リン酸塩またはMes、Hepes、Mops、トリシンおよびChesのようなGoodバッファー［Good,N.E.ら、Biochemistry,5:467（1966）］；［Good,N.E.とIzawa,S.,Meth.Enzymol.24,Part B,53（1972）］；および［Fergunson,W.J.とGood.N.E.,Anal.Biochem.,104:300（1980）］が含まれる。
これらの技術を遂行するための材料はSt.Louis,MissouriのSigma Chwemical Companyのような種々の供給源から入手できる。
TACIタンパク質に対する抗体
本発明は特異的な膜貫通活性化因子およびCAML−相互作用タンパク質、TACIのタンパク質配列および特性を開示し、それによってそのレセプターの細胞外部分に対して特異的な抗体試薬の開発を可能とするものである。多価抗体試薬はTACIに作用して架橋し、リンパ細胞におけるTACIシグナリングを活性化する。これは増強されたリンパ細胞応答が有益である状況において有用な過程である。そのような状況には、例えば先天的または後天的な免疫不全、例えばAIDSの治療におけるものが含まれる。加えて、これらの抗体試薬は、免疫系が腫瘍細胞の根絶の助けとなり得る場合に癌におけるアジュバント治療として使用されることがある。同様に、一価抗体試薬はリンパ細胞におけるTACIのアクセスを阻害することができ、この過程は器官移植の際のような抑制されたリンパ細胞応答性が有益である場合に有用である。
本発明により、天然に生産されたTACIタンパク質、組換え的または化学合成的に生産されたTACIタンパク質、およびその断片または他の誘導体またはアナログ、および融合タンパク質はTACIタンパク質を認識する抗体を生成するための免疫原として使用されることがある。そのような抗体には、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、キメラ抗体、１本鎖抗体、Fab断片およびFab発現ライブラリーが含まれるがこれらに限定されない。本発明の抗−TACIタンパク質抗体は交差反応性かもしれない。例えば、それらは異種のTACIタンパク質を認識するかもしれない。ポリクローナル抗体はより交差反応性である可能性が高い。あるいは、本発明の抗体はTACIタンパク質の単一の型に特異的であることもある。好ましくは、そのような抗体はヒトTACIタンパク質に特異的である。本発明の抗体はTACIタンパク質およびポリペプチドについて上述したように標識することができる。
TACIタンパク質またはその誘導体またはそのアナログに対するポリクローナル抗体の作製のためにこの技術で知られた種々の方法が使用されてよい。抗体産生のために種々の宿主動物をTACIタンパク質またはその誘導体（例えば断片または融合タンパク質）を注射することにより免疫することができる。宿主動物には、ウサギ、マウス、ラット、ヒツジ、ヤギその他が含まれるが、これらに限定されない。ひとつの実施態様では、TACIタンパク質またはその断片は免疫原性担体、例えばウシ血清アルブミン（BSA）またはキーホールリンペットヘモシアニン（KLH）に結合することができる。免疫学的応答を増強するために宿主に応じて種々のアジュバントが使用できる。それらのアジュバントには、フロイントの（完全または不完全）アジュバント、水酸化アルミニウムのような無機物ゲル、リゾレシチン、プルロニックポリオール、ポリアニオン、ペプチド、油エマルジョン、キーホールリンペットヘモシアニン、ジニトロフェノールおよびBCG（カルメット−ゲラン杆菌,bacille Calmette−Guerin）およびコリネバクテリウム−パルバム（Corynebacterium parvum）のような潜在的に有用なヒトアジュバントが含まれるがこれらに限定されない。
TACIタンパク質またはその断片、アナログまたは誘導体に対するモノクローナル抗体の調製のため、細胞株の連続培養による抗体分子産生に必要なものを提供するいずれの技術が使用されてもよい。これらには、KohlerとMilstein［Nature,256:495−497（1975）］によって最初に開発されたハイブリドーマ技術、およびトリオーマ技術、ヒトＢ細胞ハイブリドーマ技術［Kozborら、Immunology Today,4:72（1983）］；［Coteら、Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,80:2026−2030（1983）］、およびヒトモノクローナル抗体を作製するためのEBV−ハイブリドーマ技術［Coleら、Monoclonal Antibodies and Cancer Therapy,Alan,R.Liss,Inc.,pp.77−96（1985）］が含まれるが、これらに限定されない。本発明の更なる実施態様において、モノクローナル抗体は最近の技術［PCT/US90/02545］を利用して無菌動物で作られ得る。実際、本発明により、TACIタンパク質に特異的なマウス抗体分子の遺伝子を適当な生物学的活性のヒト抗体分子の遺伝子につなぐことによって、「キメラ抗体」の作製のために開発された技術［Morrisonら、J.Bactriol.,159:870（1984）;Neubergerら、Nature,312:604−608（1984）;Takedaら、Nature,314:452−454（1985）］を使用することができる；そのような抗体は本発明の範囲内である。そのようなヒト抗体またはヒト化キメラ抗体はヒトの疾病または異常（上述）の治療に使用するのに好ましい。なぜなら、ヒト抗体またはヒト化抗体はそれ自身は異種抗体に比べて免疫応答、特にアレルギー応答をずっと誘導しにくいと考えられるからである。
本発明により、１本鎖抗体の作製に関して記載された技術［Hustonの米国特許第5,476,786号および第5,132,405号；米国特許第4,946,778号］をTACIタンパク質特異的１本鎖抗体の作製に適合させることができる。本発明の更なる実施態様では、TACIタンパク質またはその誘導体またはアナログの所望の特異性を有するモノクローナルFab断片の迅速かつ容易な同定を可能とするため、Fab発現ライブラリの構築について記載された技術［Huseら、Science,246:1275−1281（1989）］を利用する。
抗体分子のイディオタイプを有する抗体断片は既知の技術によって作ることができる。例えば、そのような断片には抗体分子のペプシン消化によって作られ得るＦ（ab'）２断片;F（ab'）２断片のジスルフィド結合を還元することによって作られ得るFab'断片、および抗体分子をパパインおよび還元剤で処理することによって作られ得るFab断片が含まれるが、これらに限定されない。
抗体作製において、所望の抗体に対するスクリーニングはこの分野で知られた技術、例えば、ラジオイムノアッセイ、ELISA（酵素結合免疫吸着アッセイ）、「サンドイッチ」免疫アッセイ、イムノラジオメトリックアッセイ、ゲル拡散沈降反応、免疫拡散アッセイ、in situ免疫アッセイ（例えば金コロイド、酵素、または放射性同位元素標識を使用）、ウエスタンブロット、沈降反応、凝集アッセイ（例えば、ゲル凝集アッセイ、赤血球凝集反応アッセイ）、補体結合アッセイ、免疫蛍光アッセイ、プロテインＡアッセイ、免疫電気泳動アッセイその他、によって達成することができる。ひとつの実施態様では、抗体結合は１次抗体上の標識を検出することにより検出される。別の実施態様において、１次抗体は１次抗体に対する２次抗体または試薬の結合を検出することによって検出される。さらなる実施態様では、２次抗体は標識されている。免疫アッセイにおいて結合を検出するための多数の方法がこの分野で知られており、それらは本発明の範囲内である。例えば、TACIタンパク質の特異的なエピトープを認識する抗体を選抜するため、そのようなエピトープを有するTACIタンパク質断片に結合する産物に関して、作製されたハイブリドーマをアッセイしてよい。特定の動物種からのTACIタンパク質に特異的な抗体の選抜に関して、その動物種の細胞によって発現されている、あるいはその動物種の細胞から単離されたTACIタンパク質との陽性結合に基づいて選ぶことができる。
TACIタンパク質の局在および活性に関する、この技術分野で知られた方法、例えば、ウエスタンブロッティング、in situにおけるTACIタンパク質のイメージング、適当な生理学的サンプルにおけるそのレベル測定、その他、において、上述した検出方法または技術的に知られた検出方法のいずれかを利用して、上述の抗体を使用することができる。
特定の実施態様では、TACIタンパク質の活性をアゴナイズ（agonize）またはアンタゴナイズ（antagonaize）する抗体が作られ得る。そのような抗体は以下に記載したリガンド同定のためのアッセイを用いてテストすることができる。
TACIタンパク質に対するリガンド
TACIタンパク質の内在性リガンドの正体は知られていない。TACIタンパク質は内在性リガンドを明らかにする目的でクローンをスクリーニングするために使用することができる。このリガンドは免疫系の制御に関与しているようであり、従って、本明細書で記載した用途と類似の、または相補的な用途を有するはずである。TACI−１リガンドに対するスクリーニングは以下を含む：（ｉ）TACI−１を「ベイト」とした酵母２−ハイブリッド系の使用、例えば、Chienら、Proc.Natl.Sciene,USA,88:9578−9582（1991）およびDurfeeら、Genes Dev.,7:555−69（1993）によるもの；（ii）上述したような大腸菌発現ライブラリーの相互作用クローニング；および（iii）上述したような、哺乳動物細胞における機能発現クローニング。
本発明のTACIタンパク質をコードする遺伝子の同定および単離は、その量において天然の供給源から単離し得るものよりも多いTACIタンパク質発現またはその断片の発現、または、細胞のトランスフェクション若しくはトランスフォーメーションの後に発現されるTACIタンパク質によって制御されるように特別に操作された細胞におけるTACIタンパク質またはその断片の発現に必要なものを提供する。したがって、TACIタンパク質の構造に基づくアゴニストおよびアンタゴストの合理的な設計に加えて、本発明はこの技術で知られた種々のスクリーニングアッセイを利用したTACIタンパク質の特異的リガンドを同定する別の方法を企図している。
この技術で知られたどのスクリーニング技術もTACIタンパク質アゴニストまたはアンタゴニストのスクリーニングのために使用することができる。本発明は小さなリガンド分子またはリガンドアナログおよび疑似物（mimics）に対するスクリーニングを企図しており、in vivoでTACIタンパク質に結合する天然のリガンドおよびTACIタンパク質のアゴニストまたはアンタゴニストに対するスクリーニングを企図している。例えば、本発明のアッセイを利用してTACIタンパク質の活性をアゴナイズまたはアンタゴナイズする分子、あるいは、TACIの細胞外ドメインまたは細胞質ドメインに結合する分子に関して天然産物ライブラリーをスクリーニングすることができる。
TACIタンパク質の１次配列、およびその配列と機能既知のタンパク質との類似性の知見は、このタンパク質の阻害因子すなわちアンタゴニストとしての最初の糸口を与えるものである。このタンパク質の構造的特徴を、例えばＸ線結晶解析、中性子回折、核磁気共鳴スペクロトメトリー、および構造決定のための他の技術を用いて決定することにより、アンタゴニストの同定およびスクリーニングは更に容易になる。これらの技術はアゴニストまたはアンタゴニストの合理的な設計または同定に必要なものを提供する。
別のアプローチは大きなライブラリーを作製するために組換えバクテリオファージを使用する。「ファージ法」［ScottとSmith,Science,249:386−390（1990）;Cwirlaら、Proc.Natl.Acad.Sci.,87:6378−6382（1990）;Devlinら、Science,249:404−406（1990）］を使用することにより非常に大きなライブラリを構築することができる（106−108化学的実体（chemical entity））。第２のアプローチは主として化学的な方法を使用するものであり、Geysen法［Geysenら、Molecular Immunology,23:709−715（1986）;Geysenら、J.Immunologic Method,102:259−274（1987）］およびFodorらの方法［Science,251:767−773（1991）］はその例である。Furkaら、［14th International Congress of Biochemistry,第５巻、抄録FR:013（1988）;Int.J.Peptide Protein Res.,37:487−493（1991）］、Houghton［米国特許第4,631,211号、1986年12月発行］およびRutterら［米国特許第5,010,175、1991年４月23日発行］にはアゴニストまたはアンタゴニストとしてテストできるペプチド混合物を作製する方法が記載されている。
別の側面において、合成ライブラリー［Needelsら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA,90:10700−４（1993）;Ohlmeyerら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 90:10922−10926（1993）;Lamら、国際公開WO92/00252;Kocisら、国際公開WO9428028,これらは本明細書にそっくり含まれるものとする］その他を本発明によってTACIタンパク質リガンドのスクリーニングに使用することができる。
あるいは、TACI N−末端細胞外ドメインの組換え型を発現している細胞に対する可溶性リガンドの結合に関するアッセイを行うことができる。可溶性リガンドは組換えまたは合成ポリペプチドとして容易に供給することができる。
スクリーニングはTACIタンパク質またはその断片を発現している組換え体細胞で、あるいは、上述したように組換え的に生産された精製タンパク質を用いて行うことができる。例えば、標識された、可溶性または可溶化TACIタンパク質断片がリガンドに結合できることは、上述の参照文献に記載されているように、ライブラリーをスクリーニングするために使用することができる。
新規な免疫抑制剤のスクリーニング
ある種の疾病はＢリンパ細胞応答の過剰活性化によって生じる。一つの例は、全身性エリテマトーデス（SLE）であり、これは患者に天然に存在する抗原（タンパク質、DNAその他）に反応する抗体が作られるものである。この抗体は抗原と複合体を形成し、反応性タンパク質塊として循環する。これらの複合体は種々の器官に沈着し、腎不全、神経性症状、および死を含めたSLEの多くの症状をもたらす。現行の治療は、Ｔ細胞およびＢ細胞の両方の応答を抑制するサイクロスポリンＡまたはステロイドのような比較的非特異的な免疫抑制剤の使用を含む。それらはしばしばSLEを効果的に治療するものの、患者は機能性Ｔ細胞を欠くために、重大な感染を引き起こすという過剰免疫抑制の大きな危険性がある。Ｂリンパ細胞の働きを選択的に阻害し、一方患者をウイルス病原体から保護するためにＴ細胞を無傷で残す免疫抑制剤はこれらの疾病を治療するために極めて有用であろう。従って、TACI−１はＢリンパ細胞に特異的な免疫抑制剤の開発のための新規な道具として利用できる。
TACIタンパク質は成熟Ｔリンパ細胞またはJurkat T細胞（成熟Ｔ細胞の表現型の特徴を有する細胞株）において通常存在しない。実際、TACIタンパク質発現の最も高いレベルは末消Ｂリンパ細胞においてであり、一方、末消Ｔ細胞はTACIタンパク質を発現していない。しかしながら、Jurkat T細胞はTACI発現プラスミドでトランスフェクションすることができ、発現されたTACIはTACI特異的抗体への架橋によって容易に刺激することができる。この刺激は初期Ｔ細胞転写因子NF−ATを刺激するのに必要かつ十分な１対の２次メッセンジャー経路の活性化につながる。
特定の実施態様において、Jurkat T細胞はTACI−１発現プラスミドおよびNF−ATレポータープラスミドでトランスフェクションされる。Jurkat T細胞は天然でＴ細胞レセプター（TCR）を発現している。この細胞はTACI−１に対する抗体、TCRに対する抗体、または両方に対する抗体の添加によって刺激される。候補薬剤はJurkat T細胞と一緒に混合され、それらの薬剤の効果が測定される。上述したファージライブラリーおよび化学ライブラリーは薬剤候補の供給源として使用されてよい。
これらの候補薬剤は次にTACI−１に対する抗体の代わりにTCRに対する抗体が使用される並行的実験に適用される。候補薬剤が抗体依存性TCR活性化によるSEAPシグナル刺激に全く効果がないならば、その候補薬剤はTACI−１活性化による応答に選択的阻害性を有するとして同定される。そのように選抜された薬剤には、Ｂ細胞の（抗体産生）応答を選択的に阻害することができるが、Ｔ細胞媒介（細胞性）免疫が進行するのを許す薬剤クラスが含まれる。そのように選抜された薬剤は上述した自己免疫疾患の治療に使用することができる。TACI−１は新規なメカニズムにより（すなわちCAMLとの直接接触により）リンパ細胞を活性化するので、CAML依存経路と干渉し得るがＴ細胞レセプターを通した通常のシグナリングを無傷で残す、相当な数の薬剤が発見可能であると考えられる。
このタイプの好ましい実施態様において、NF−ATレポータープラスミドはSEAPレポーターを有している。このシグナルは活性化阻害の程度を測定するために使用される。SEAPレポーターアッセイはロボットスクリーニング装置で行えるようにスケールアップすることができる。SEAPレポーターアッセイによる測定でTACI−１の活性を阻害するがTCRの活性を阻害しない薬剤はTACI−１で活性化される応答に対する選択適阻害性を有するとして同定される。
あるいは、ファージライブラリを使用することができる。宿主大腸菌に感染させるとおよそ10から15アミノ酸のランダムペプチド配列を生産するファージライブラリが構築されている［ParmleyとSmith,Gene,73:305−318（1988）,ScottとSmith,Science,249:386−249（1990）］。具体的には、ファージライブラリーは低希釈で許容大腸菌と低融点LB寒天中で混合され、次にLB寒天プレート上に注がれる。このプレートを37℃にて一定時間インキュベーションすると、活性なファージの増殖と大腸菌の溶菌を表す小さな透明なプラークが大腸菌ローン上に形成される。寒天プレートの上に乾いたフィルターを載せることにより、これらのファージの代表的なものをナイロンフィルター上に吸着させることができる。フィルターは方向付けのために印をつけられ、残っている吸着部位をブロックするため洗浄溶液中に置くことができる。次にこのフィルターは、例えばＮ−末端細胞外ドメインを有するTACIタンパク質の放射活性断片、例えばヒトTACI−１に関してはこれは配列番号６のアミノ酸配列を有するペプチドであるが、これを含む溶液中に置くことができる。特定のインキュベーション期間の後、このフィルターを完全に洗浄し、オートラジオグラフィーにかけることができる。こうして、放射活性Ｎ−末端細胞外ドメインに結合するファージを含むプラークを同定することができる。これらのファージは更にクローニングし、上述したように、抗−TACI抗体によってTACIの刺激を阻害するがTCRの対応する刺激を阻害しないという能力に関して再テストすることができる。
ひとたびファージが精製されると、ファージに含まれる結合配列は標準的なシーケンシング技術により決定され得る。ひとたびDNA配列が知られると、それらの配列を表す合成ペプチドを作製することができる。
効果的なペプチドはin vivoモデルに使用し、次に例えばヒトにおいて免疫抑制剤として使用するために大量に合成することができる。合成ペプチド生産は比較的労力が多くなく、容易に製造でき、品質管理ができるものであり、従って、大量の所望の産物を極めて安価に製造できることは強調しておかねばなるまい。同様な大量生産合成ペプチドの組み合わせが大きな成功裡のうちに最近使用されている［Patarroyo,Vaccine,10:175−178（1990）］。
治療方法および治療用組成物
本発明の膜貫通活性化因子およびCAML−相互作用タンパク質は、細胞増殖及び分裂の開始に通常使用される２つのシグナルを活性化することができる。このレセプターはリンパ腫または白血病においてＴまたはＢリンパ細胞の悪性形質転換に関与していると思われる。従って、TACI−１の優性ネガティブ型はそのような癌細胞の増殖抑制に有用である。あるいは、TACI−１過剰刺激はプログラムされた細胞死を引き起こすことができる。この性質を利用して、TACI−１細胞表面発現をしている白血病またはリンパ腫はそうした過剰刺激によって死へ誘導されることがある。抗体または架橋によるTACIタンパク質の活性化はアポトーシスへつながる内在経路を活性化するかもしれない。抗体の単量体型またはリガンドアナログとの結合はTACIタンパク質関連内在経路を阻害し増殖刺激と干渉し得る。
TACI活性の治療的刺激
上記で議論したように、本発明はTACI活性をアゴナイズすることにより免疫系を選択的に刺激するために必要なものを提供する。TACIアゴニストにはTACIリガンドまたは上記に記載したように発見されたリガンドおよびこのレセプターを架橋する抗体が含まれる。リガンドアゴニストまたは抗体アゴニストは以下に記載したように免疫刺激、特にＢ細胞の刺激が望まれる患者の治療のために投与することができる。
Ｂ細胞応答は特にバクテリア感染、ウイルス感染、原虫感染および寄生虫感染を含む感染性疾患（ただし、これらに限定されない）との戦いにおいて重要であり得る。感染性微生物に対する抗体は、抗原に対する結合とそれに続く補体攻撃または細胞媒介攻撃によって迅速にこの生物を動けなくする。従って、本発明のTACIアゴニストは感染に苦しむ患者に液性免疫応答をブーストするために患者に与えることができる。TACIアゴニストは特に、感染性生物による攻撃に際して、ワクチン接種後の免疫応答をブーストするために有用であるかもしれない。従って、インフルエンザのような、感染性疾患の危険の特にある患者は、流行性感冒の季節の間ワクチン接種または記憶免疫をTACIアゴニストで補足することができる。同等な免疫ブーストを、マラリアのような感染性風土病の地域に入った、あるいは入ろうとしている患者に使用することができる。
加えて、Ｂ細胞応答は腫瘍特異的抗原を発現している腫瘍に対する免疫応答を増幅することにおいて重要であるかもしれない。従って、内在性抗−腫瘍抗体が検出されるところにTACIアゴニストが供給されてよい。実際、パニングなどにより抗−腫瘍細胞免疫グロブリンを発現しているＢ細胞またはプラズマ細胞を選ぶことができ、その抗体産生の増幅を許すようにTACIでトランスデュースすることができる。
有益な免疫応答の増幅に加えて、本TACIアゴニスト、例えばリガンドおよび抗体は、Ｂ細胞腫瘍（多発性骨髄腫、リンパ腫および白血病）、未熟Ｔ細胞腫瘍（白血病および胸腺腫）および自己免疫または炎症細胞のような細胞を過剰刺激するために、およびそのような細胞にアポトーシスを誘導し、それにより癌または自己免疫／炎症状態を低減または消滅させるために使用することができる。
細胞性免疫応答をブーストするための治療法
TACIは未熟Ｔ細胞のサブセットにしか見出されないものの、細胞性免疫応答を増幅するために成熟Ｔ細胞をin vivoまたはex vivoで機能的TACIレセプターを発現すべくトランスフェクションまたはトラスデュースすることができる。好ましくは、腫瘍浸潤性細胞がそのようなブーストのために選ばれ、より激しい腫瘍に対する戦いのために患者に再導入される。
TACI活性をアンタゴナイズすることによる治療法
上記で論じたように、本発明はTACI活性を種々の方法で阻害することを意図しており、遊離のＮ−末端細胞外ドメインの利用；シグナル伝達ドメインを欠く非−機能性細胞外ドメイン、例えばGPI−結合Ｎ−末端TACI、の発現;TACIの発現を抑制するためのアンチセンスまたはリボザイム技術の使用；およびTACIアンタゴニストリガンドまたは抗体の使用が含まれるが、これらに限定されない。
TACI活性の抑制は、自己免疫および炎症性疾患、移植拒絶、移植片対宿主（GVH）疾患を含む、望ましくない免疫応答の治療に有用である。自己免疫および炎症性疾患には、免疫複合体−誘導脈管炎［Cochrane,Springer Seimar Immunopathol.,7:263（1984）］、糸球体腎炎［Couserら、Kidney Inst.,29:879（1985）］、溶血性貧血［SchreiberとFrank,J.Clin.Invest.,51:575（1972）］、重症筋無力症［Lennonら、J.Exp.Med.,147:973（1978）;BieseckerとGomez,J.Immunol.,142:2654（1989）］、II型コラーゲン−誘導関節炎［WatsonとTownes,J.Exp.Med.,162:1878（1985）］；実験的アレルギー性超急性移植片拒絶［Knechtleら、J.Heart Transplant,4（５）:541（1985）;Guttman,Transplantation,17:383（1974）;Adachiら、Trans.Proc.,19（１）:1145（1987）］；リューマチ性関節炎、および全身性エリテマトーデス（SLE）が含まれる。
別の実施態様においては、骨髄腫、リンパ腫、または白血病のようなリンパ細胞癌がTACIを発現しており、TACIは癌の増殖に寄与しているが、その実施態様では本発明のTACIアンタゴニストが癌細胞増殖を抑制するために使用し得る。
従って、本発明の多価抗体または一価抗体のような治療用組成物の成分は非経口的、経壁的、例えば経口的、経鼻的（nassaly）に、あるいは経腸的、または経皮的に導入されてよい。投与は非経口的、例えば、静脈内注射によるのが好ましく、また、関節内、筋肉内、皮内、皮下、腹腔内、心室内および頭蓋内投与も含まれるが、これらに限定されない。
別の実施態様において、治療化合物は小胞内、特にリポソーム内でデリバリーすることができる［Langer,Science,249:1527−1533（1990）;Treatら、Liposome in the Therapy of Infectious Disease and Cancer,Lopez−BeresteinとFidler（編集）、Liss:New York,pp.353−365（1989）;Lopez−Berestein,同書、pp.317−327を参照せよ；一般に同書を参照のこと］。全身性の副作用を低減させるため、これはTACI投与のための好ましい方法かもしれない。
更に別の実施態様において、治療用化合物は制御放出システムでデリバリーすることができる。例えば、抗体のような、本発明の膜貫通結合タンパク質のアゴニストまたはアンタゴニストは静脈内インフュージョン、埋込式浸透圧ポンプ、貼付け剤、リポソーム、または他の投与方法を利用して投与されてもよい。ひとつの実施態様では、ポンプが使用されるであろう［Langer,上述;Sefton,CRC Crit.Ref.Biomed.Eng.,14:201（1987）;Buchwaldら、Surgery,88:507（1980）;Saudekら、N.Engl.J.Med.,321:574（1989）を参照せよ］。別の実施態様において、ポリマー物質を使用することができる［Medical Applications of Controlled Release,LangerとWise（編集）、CRC Press:Boca Raton,Florida（1974）;Controlled Drug Bioavailability,Drug Product Design and Performance,Smolenとball（編集）,Wiley:New York（1984）;RangerとPeppas,J.Macromol.Sci.Rev.Macromol.Chem.,23,61（1983）を参照せよ；またLevyら、Science,228:190（1985）;Duringら、Ann.Neurol.,25:351（1989）;Howardら、J.Nerosurg.,71:105（1989）も参照せよ］。さらに別の実施態様においては、制御放出システムは治療標的、すなわち脳、の近くに置くことができ、全身用量のごく僅かが要求されるだけである［Goodson,Medical Applications of Controlled Release,上述，第二巻、pp.115−138（1984）を参照せよ］。好ましくは、制御放出装置は患者の不適当な免疫活性部位または腫瘍部位の近くに導入される。
他の制御放出システムはLangerによる総説（Science,249:1527−1533（1990））で論じられている。
さらなる側面において、TACIタンパク質遺伝子でトランスフォームされ、高レベルのポリペプチドを発現している組換え体細胞はTACIタンパク質を必要としている患者に移植することができる。好ましくは、拒絶を避けるためTACIタンパク質でトランスフォームされた自家細胞が移植される。
本発明の治療用化合物は静脈内投与経路、動脈内投与経路、腹腔内投与経路、筋肉内投与経路または皮下投与経路によってデリバリーすることができる。あるいは、これらの化合物は適切に製剤化され、鼻経路または経口投与によって投与することができる。治療上効果的な用量（すなわち、患者に代謝的変化を誘導するに効果的な用量）を必要な間隔で、例えば毎日、12時間毎にその他で与えることによりこれらの治療用化合物の定常的な供給を保証することができる。これらのパラメーターは治療すべき疾病状態の重篤度、食餌制限のような行われている他の処置、患者の体重、年齢、性別、その他の基準に依存するであろう。これらは当業者によって標準的な優れた医療行為に従って容易に決定できるであろう。
これらの治療薬剤の投与が免疫不全疾患の効果的な治療方法である患者は好ましくはヒトであるが、どの動物であってもよい。従って、当業者に容易に理解できるように、本発明の方法および医薬組成物は動物に投与するために特に適しており、特に哺乳動物が適しており、ネコまたはイヌ（これらに限定されない）の患畜のような家畜、ウシ、ウマ、ヤギ、ヒツジおよびブタ（これらに限定されない）患畜のような家畜、野生動物（野生にいるか動物園にいるかにかかわらず）、マウス、ラット、ウサギ、ヤギ、ヒツジ、ブタ、イヌ、ネコその他のような研究動物、ニワトリ、七面鳥、鳴鳥等のトリ類が含まれ、すなわち、獣医医学的用途に適している。
以下の実施例はより完全に本発明の好ましい実施態様を説明するために提示されるものである。しかしながら、これらは発明の広い範囲を限定するものとして解釈してはならない。
実施例
CAMLによって媒介されるリンパ細胞表面レセプターによるカルシウムシグナリング
序
Ca2+流入は抗原刺激リンパ細胞活性化のキー制御因子である［Imbodenら、Immunol.,134:663−665（1985）］；［CrabtreeとClipstone,Annu.aRev.Biochem.,63:1045−1083（1994）］；［WeissとLittman,Cell,76:263−274（1994）］。CAMLタンパク質は、リンパ細胞転写因子NF−ATの活性化に必要であるが充分ではない、Ca2+シグナリングの制御因子として知られている（BramとCrabtree,1994,上述）。CAMLが細胞質小胞い局在することはそれが細胞内Ca2+放出を調節することによってCa2+流入を制御していることと一致する。ここにＢリンパ細胞によって発現される、細胞表面シグナル伝達分子として作用する新規なヒトCAML−相互作用レセプターが開示される。このレセプターTACI（膜結合活性化CAML相互作用因子、Ｔransmenbrane Ａctivotor ＣAML Ｉnteracor）は抗体と架橋するとNF−ATのCa2+依存性活性化を引き起こす。ここで示したように、TACIタンパク質はまた独立にAP−１転写因子を活性化し、従って、リンパ細胞活性化に必要な両方のシグナルを提供する。TACIタンパク質は直接に細胞表面刺激を細胞内シグナル伝達分子CAMLに結びつける新規なシグナル伝達機構を起動し、それにより免疫応答を調節するリンパ細胞特異的細胞表面レセプターの新規なクラスを規定する。さらに、TACIタンパク質は正または負のどちらの方向にも免疫系を制御するために使用できる新規な道具である。TACI−１はTACIのヒトのホモログであり、実施例に説明した。
材料と方法
分子クローニングおよびスクリーニング
ヒトＢリンパ細胞cDNAライブラリーを２−ハイブリッド系によって［Fields ＆ Song,Nature,340:245−246（1989）］；［Durfeeら、Genes Dev.,7:555−569（1993）］CAMLの完全長コード領域をベイトとして用いてスクリーニングした。ヒトCAML cDNAを酵母２−ハイブリッドベイトベクターpAS1に挿入した。この構築物は完全長CAMLタンパク質配列に融合したGAL4−DNA結合ドメインの発現を指令する。プラスミドpACTに入ったＢリンパ細胞ライブラリーを酵母Y153に導入し、ヒスチジンを欠くが３−アミノトリアゾールを含む培地上のコロニーの増殖によって相互作用の可能性のあるプラスミドを同定した。
８つの１次陽性体からひとつのクローン（TACI−１）が同定された。TACI−1 cDNAを、発現されるタンパク質のアミノ末端にエピトープタグを付加する哺乳動物発現プラスミドにサブクローン化した。この構築物を次にJurkat Tリンパ細胞株、COS細胞またはNIH3T3細胞にトランスフェクションした。それぞれの場合に、TACIタンパク質の細胞表面発現が示された。タンパク質の方向は、細胞膜を透過性にしなくてもエピトープが特異的抗体との反応に利用可能であるので、Ｎ−末端を細胞の外側にしている。この結果は本明細書に記載した機能研究を容易にした。
２次スクリーニングはJurkat T細胞における陽性クローンの強制的な過剰発現、およびNF−AT活性化に関するアッセイによる（Bramら、1993,上述）。タグ付きTACI−１構築物およびNFATレポータープラスミドで一過性にトランスフェクションしたJurkat T細胞をエピトープ特異的モノクローナル抗体を含む培地中でインキュベーションした。TACI−１の架橋を最大にするため、細胞懸濁液に添加する前に抗体をビーズに結合させた。24時間インキュベーション後、NFATレポーターの活性を測定した。細胞をこのように刺激するとNFATレポーター活性の劇的な誘導が見られた。TACI−１無しの対照トランスフェクションはそのような処理に伴う活性化を示さなかった。同様に、関連のない表面分子（CD8）のトランスフェクションに続く抗−CD8刺激はそれらの細胞においてNFATを活性化しなかった。活性化の程度はホルボルエステルとイオノマイシンの添加によるそれらのJurkat T細胞において達成される最大刺激の70〜80％であった。
TACI−1 cDNA（酵母２−ハイブリッドベクターから切り出す）による多数の組織のノーザンブロットのスクリーニング（Clontechh）をすると、ヒト胎児脾臓cDNAライブラリー（Stratagene）から一つの独立のTACI−１クローンが得られた。5'−末端コード領域を、"Marathon−ready"ヒト脾臓cDNAライブラリー（Clontech）、入れ子（nested）TACI−１特異的プライマー（5'−TCTGAATTGTTTTCAACTTCTC−3'および5'−CAGCAGAGGATCCCAGTACTGCTC−3'）およびPfuポリメラーゼ（Stratagene）を用い、製造業者の推奨に従ってcDNA末端迅速増幅（RACE）によって確かめた。
抗血清
CAMLのＮ−末端146アミノ酸残基をコードするcDNAおよびTACI−１のＮ−末端151残基をコードするcDNAをそれぞGST融合バクテリア発現ベクター（Pharmacia）にクローン化した。ウサギポリクローナル抗血清を精製GST融合タンパク質［Smith ＆ Johnson,Gene,67:31−40（1988）］に対して生じさせ、アガロースに結合させた精製タンパク質（Pierce）上の免疫アフィニティクロマトグラフィーによって、標準的な技術を用いて特異的抗体を精製した。免疫アフィニティ精製した抗−TACI−１ポリクローナル抗体を抗−ウサギIgG抗体結合磁気ビーズ（PerSeptive Diagnostics）と共にインキュベーションし、架橋抗−TACI−１を調製した。
新規な免疫抑制剤同定のためのスクリーニング
Jurkat T細胞をTACI−１発現プラスミドおよびNF−ATレポータープラスミドでトランスフェクションした。Jurkat T細胞は天然にＴ細胞レセプター（TCR）を発現している。この細胞をTACI−１に対する抗体、TCRに対する抗体、あるいはその両方に対する抗体によって刺激した。候補薬剤をJurkat T細胞と混合しこれらの薬剤の効果を測定した。
NF−ATレポータープラスミドはSEAPレポーターを含む。このシグナルを活性阻害の程度を測定するために使用する。SEAPレポーターアッセイをロボットスクリーニング装置で行えるようにスケールアップする。SEAPレポーターアッセイによる測定でTACI−１の活性化を阻害するがTCRの活性化を阻害しない薬剤をTACI−１活性化応答の選択的阻害性を有するとして同定した。
結果と考察
CAMLと相互作用し得るタンパク質をCAMLをベイトとして２−ハイブリッドスクリーニング（Fields＆Song,1989、上述）；（Durfeeら、1993,上述）によって同定した。そのようにして同定したCAML結合タンパク質のひとつがＴ細胞におけるCa2+シグナリングに影響を与え得るかどうかを決定するために、Ca2+依存性転写因子NF−ATの活性を調節する能力を調べた［Trunehら、Nature,313:318−321（1985）］；［Verweijら、J.Biol.Chem.,265:15788−15795（1990）］；［Karttunen ＆ Shastri,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,88:3972−3976（1991）］；［Emmelら、Science,246:1617−1620（1989）］。Jurkat T細胞における２−ハイブリッドクローンの強制過剰発現は（TACI−１タンパク質をコードする）ひとつのクローンがCa2+流入に対する要求に置き代わることが示され、そのことはTACI−１がCAMLと同じシグナル経路に位置することを示している。TACI−1 mRNAに対するノーザンブロット解析は脾臓、小腸、胸腺および末消血液リンパ細胞でのみ1.4kb mRNAが発現していることを示し、TACI−１の限定された発現を示唆した（図１）。観察されたパターンは末消血細胞で支配的であるというTACI−１の発現と一致する。なぜなら末消血細胞、特にリンパ細胞はこれらのすべての器官（小腸にあるパイエル板を含む）に存在し得るからである。さらに、大腸、精巣、卵巣または前立腺では発現は全く検出されなかった。加えて、TACI−１タンパク質は特異的抗体染色を用いて、全ての正常末消Ｂリンパ細胞では検出されなかった。末消Ｔ細胞、単球または好中球では検出可能なタンパク質発現はなかった。
単離したDNAの両方の鎖からのDNA配列決定により、1325塩基対の完全なオープンリーディングフレームが明らかになり、これは293アミノ酸のタンパク質をコードすることが予想された。TACI−１の推定されるアミノ酸配列（図2a）は膜通過セグメントの特徴を有する単一の疎水性領域（167番残基から186番残基）を含んでいる（図2b）。Siposの方法によるタンパク質配列の解析［Sipos ＆ von Heijne,Eur.J.Biochem.,213:1333−1340（1993）］；［Claros ＆ von Heijne,Comput.Appl.Biosci.,10:685−686（1994）］はＮ−末端の細胞外露出およびＣ−末端の細胞質露出を予測した。TACI−１はＮ−末端シグナル配列を欠くが、上流の停止コドンの存在は完全なオープンリーディングフレームがこのクローン内に含まれていることを示すものである。TACI−１は比較的システイン残基に富んでいるが、開示されている他のいかなるタンパク質と類似または相同な意味のある配列は存在しない。TACI−１中のPrositeモチーフの検索は推定される膜貫通領域のＮ−末端に一つのTNFR_NGFRモチーフ［Bairoch,Nucleic.Acids.Res.,21:3097−3103（1993）］（33番残基〜71番残基）を明らかにした。これはこのタンパク質のＮ−末端半分においてＣ−ｘ（4,6）−［FYH］−ｘ（5,10）−Ｃ−ｘ（0,2）−Ｃ−ｘ（2,3）−Ｃ−ｘ（7,11）−Ｃ−ｘ（4,6）−［DNEQSKP］−ｘ（２）−Ｃからなっている。このモチーフは多数のタンパク質に見られ、そのいくつかは増殖因子のレセプターである。それらのタンパク質のいくつかはこのモチーフを１コピー有している。TACI−１タンパク質配列をそれ自身と比較すると残基番号33−66および残基番号70−104においてTNFR NGFRモチーフ間の重要な反復が明らかになった。この解析によって、２つのTNFR型システインリッチドメインがこれらの領域を囲んでいることが注目され、そのことはTACI−１がTNFRレセプタースーパーファミリーのメンバであることを示している（図2c）。
TACI−１が膜貫通タンパク質であることを確かめるため、TACI−１コードプラスミドでトランスフェクションしたJurkat T細胞におけるその発現をフローサイトメトリーを用いて調べた。TACI−１でトランスフェクションした細胞はTACI−１のＮ−末端12キロダルトン部分を含む融合タンパク質に対するウサギポリクローナル抗体での染色性を示した（図3a）。TACI−１が細胞表面に局在するという更なる証拠が免疫蛍光顕微鏡検査から得られた。そこでは、Ｎ−末端FLAGエピトープタグ付きTACI−１発現プラスミドでトランスフェクションされたインタクト細胞の表面染色が観察された（図3b）。切断されるシグナル配列なしにTACI−１のＮ−末端は細胞外にあるので、これはIII型膜貫通タンパク質である［Wilson−Rawlsら、Virology,201:66−76（1994）］。
Ｔ細胞におけるTACI−１のNF−AT活性に対する効果を評価するため、このタンパク質をIL−２プロモーターのNF−AT結合配列によって駆動される分泌アルカリホスファターゼレポーターと共にTAg Jurkat T細胞中で一過性に発現された（Bram ＆ Crabtree,1994,上述）［Fieringら、Genes Dev.,4:1823−1834（1990）］；（Bramら、1993,上述）。このアッセイにおいてTACI−１過剰発現はイオノマイシンに対する要求を部分的に置き換えることができた。細胞への抗−TACI−１抗体の添加はNF−AT活性化を更に増強し（２倍より高く、図4aを参照せよ）。TACI−１が細胞表面の架橋に応答したことを示した。NF−AT活性化の程度はトランスフェクション効率のため異なる実験で変動したが、典型的にはPMAとイオノマイシンによる対応する細胞処理に対する最大応答の40〜50％であった。サイクロスポリンＡまたはFK506のような免疫抑制剤の存在下でNF−AT活性が失われることによって示されるように、TACI−１媒介NF−AT活性化はカルシニューリンに依存する［Friedman ＆ Weissman,Cell,66:799−806（1991）］；（Luiら、1991,上述）（図4b）。
NF−ATのTACI−１媒介活性化におけるCa2+の必要性を調べるために、EGTAの濃度を上げつつ添加することによって細胞外カルシウムを除去することができる。これによって、Ｔ細胞レセプター媒介活性化について以前に示されてきたように、TACI−１媒介NF−AT活性化の阻害が生じた（図4c）。対照として、構成的に活性なカルシウム非依存性カルシニューリンＡ変異体［Hubbard ＆ Klee,Biochemistry,28:1868−74（989）］；（O'Keefeら,1992,上述）；（Clipstone ＆ Crabtree,1993,上述）を細胞内で発現させることの効果を調べた。予想されたように、これらの細胞ではNF−AT活性化はEGTAの存在下でも見られた（図4c）。従って、Ｔ細胞では、TACI−１は細胞外Ca2+の流入を開始させることによる（最もありそうなのは、容量性Ca2+流入経路とそれに伴う細胞内貯蔵の消耗を通じた）NF−AT活性化のカルシニューリン依存性の側面を媒介する［Putney ＆ Bird,Cell,75:199−201（1993）］;Hoth ＆ Prenner,Physiol.,465:359−386（1993）］；［Zweifach ＆ Lewis,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,90:6295−6299（1993）］；［Premackら、J.Immunol.,152:5226−5240（1994）］。
CAMLによるNF−ATの活性化はホルボルエステルの添加によるプロテインキナーゼＣの外因性刺激を必要とする（Bram ＆ Crabtree,1994,上述）。しかしながら、抗体架橋TACI−１はPMAまたはイオノマイシンの何れの非存在下においてもNF−ATを活性化することができる（図4b、黒棒）。TACI−１の過剰発現によるAP−１レポーターの活性化を調べる実験はAP−１活性化がTACI−１トランスフェクションされたJurkat T細胞において上昇している（４倍以上）ことを示した。この結果は架橋抗TACI−１抗体の添加によって更に増強された（図4d）。従って、TACI−１はCa2+流入を開始させ、次にこれがカルシニューリンを活性化させ、および、刺激に続くAP−１経路を活性化させ、これによりNF−ATの活性化に必要な両方の充足を媒介する。
TACI−１がCAMLと相互作用することのさらなる確認を２−ハイブリッド逆入れ換え実験における特異的な相互作用によって示すことができる（Durfeeら、1993,上述）（図5a）。この相互作用に関与する極めて重要なアミノ酸残基を明らかにするためにTACI−１およびCAMLの両方の欠失変異体をその物理的会合能力についてテストした（図5a）。TACI−１のＣ−末端126アミノ酸はCAMLのＮ−末端146アミノ酸に結合するために十分であることが分かった。in vivoにおけるTACI−１とCAMLの結合の追加的な証拠は、細胞ライセートから完全長CAMLおよびCAMLの146個のＮ−末端アミノ酸残基を含む変異体がTACI−１と共に免疫共沈降した実験によって与えられる（図5b）。従って、TACI−１の細胞質Ｃ−末端尾部はCAMLのＮ−末端半分と物理的に結合できると結論してよい。
TACI−１シグナリングがTACI−１とCAMLの結合に依存しているかを調べるため、CAMLの相互作用ドメイン（残基番号１〜146）を、そのドメインがTACI−１誘導NF−AT活性化を優性ネガティブに阻害することができるかを測定するためにテストした。変異型CAML（１−146）発現プラスミドのコトランスフェクションはJurkat T細胞において、TACI−１誘導NF−AT活性化を完全に消滅させた。一方、PMA＋イオノマイシン−誘導NF−AT活性に対しては全く阻害的効果がなく、非特異的毒性効果は除外される。CAML（１−146）の共発現もウェスタンブロット解析による検出ではTACI−１タンパク質の蓄積に影響を与えなかった（図5c）。CAML（１−146）はCa2+流入活性に必要な疎水性膜貫通ドメインを欠いている［Holloway ＆ Bram,Biol.Chem.,271:8549−8552（1996）］。よって、これらの細胞におけるNF−AT誘導活性の消滅は、内在性完全長CAMLとの結合を阻害する、CAML（１−146）断片のTACI−1C−末端細胞内部分への結合のためであるとすることができる。
CAMLは細胞質小胞に局在する膜結合タンパク質である（Bram ＆ Crabtree,1994,上述）。欠失変異体の解析により、このタンパク質のＣ−末端半分にある疎水性領域が活性に必須であること（Holloway ＆ Bram,1966,上述）、および、このタンパク質の親水性Ｎ−末端半分は制御的役割を有しているかもしれないことが示された。トリプシン分解実験は、この分子のＮ−末半分が細胞質内にあることを更に証明した。ここで、TACI−１とCAMLの相互作用がJurkat T細胞におけるTACI−１媒介NF−AT活性化に必要であることが証明された。これらを考え合わせると、これらのデータは細胞質膜のTACI−１と細胞内のCAML含有小胞との物理的相互作用がカルシウム流入シグナルを開始させることができることを示している（図5d）。これらの発見は、リンパ細胞における細胞表面レセプターと細胞内オルガネラとの直接の情報伝達に関する初めての証拠を与えるものである。このメカニズムは、一つの分子の刺激が直接に他の分子の活性を調節することができるという筋肉細胞におけるジヒドロピリジン−リアノジンレセプターモデルにやや類似しているかもしれない［Martyら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA,91:2270−2274（1994）］；［Shamら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA,92:121−125（1995）］；［Nakaiら、Nature,380:72−75（1996）］。
他の細胞表面タンパク質がリンパ細胞機能を活性化することが示されており、それらにはCD3 T細胞レセプター、CD2、CD20およびThy−１が含まれる。これらのタンパク質はTACI−１と配列相同性が全くなく、これらは異なる細胞外シグナルに対する応答の点で、および／またはリンパ細胞上の発現発生段階の点で互いに異なる役割を果たすようである。TACI−１はリンパ細胞の機能調節において別の、および／または共促進性経路において重要な役割も果たしているに違いない。従って、新規なシグナリング機構を規定していることに加えて、TACI−１はＴ細胞を活性化できる新規なリンパ細胞特異的レセプターである。
以下は上記の開示、特に実験手法および考察に関連する文献のリストである。これらの文献および上記で引用した全ての文献はそっくり本明細書に含まれるものとする。
0003594975.tif 000002
0003594975.tif 000003
すぐ上に述べたものに加えて種々の刊行物が本明細書で引用されており、それらの開示はそっくり本明細書に含まれるものとする。いかなる参考文献の引用もそのような文献が本発明の先行技術として利用可能であることを認めたものと考えてはならない。
本発明を特定の実施態様、様々の特定材料、方法および実施例を参照して記述かつ説明してきたが、本発明がこの目的のために選ばれた特定の材料、方法の特定の具体的な組み合わせに限定されるものではないことは言うまでもない。実際、上記の説明および添付の図面によって、ここに記載したものに加えて種々の変形が当業者に明らかとなるであろう。そのような改変は付属の請求の範囲の範囲内であると考えられる。
核酸またはポリペプチドについて示した全ての塩基サイズまたはアミノ酸サイズ、および全ての分離用または分子質量値は近似値であって、説明のために示したものであるのは勿論である。
配列表
（２）配列：配列番号１
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）配列の長さ:1377塩基対
（Ｂ）配列の型：核酸
（Ｃ）鎖の数：二本鎖
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類:cDNA
（iii）ハイポセティカル:NO
（vi）起源：
（Ａ）生物名:Homo sapiens
（xi）配列：配列番号１
0003594975.tif 000004
0003594975.tif 000005
（２）配列：配列番号２
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）配列の長さ:293アミノ酸
（Ｂ）配列の型：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：一本鎖
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：タンパク質
（iii）ハイポセティカル:NO
（ｖ）フラグメント型:N末端フラグメント（Ｎ−terminal fragment）
（vi）起源：
（Ａ）生物名:Homo sapiens
（xi）配列：配列番号２
0003594975.tif 000006
0003594975.tif 000007
0003594975.tif 000008
（２）配列：配列番号３
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）配列の長さ:321塩基対
（Ｂ）配列の型：核酸
（Ｃ）鎖の数：二本鎖
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類:cDNA
（iii）ハイポセティカル:NO
（vi）起源：
（Ａ）生物名:Homo sapiens
（xi）配列：配列番号３
0003594975.tif 000009
（２）配列：配列番号４
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）配列の長さ:107アミノ酸
（Ｂ）配列の型：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：一本鎖
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（iii）ハイポセティカル:NO
（ｖ）フラグメント型:C−terminal
（vi）起源：
（Ａ）生物名:Homo sapiens
（xi）配列：配列番号４
0003594975.tif 000010
0003594975.tif 000011
（２）配列：配列番号５
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）配列の長さ:498塩基対
（Ｂ）配列の型：核酸
（Ｃ）鎖の数：二本鎖
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類:cDNA
（iii）ハイポセティカル:NO
（vi）起源：
（Ａ）生物名:Homo sapiens
（xi）配列：配列番号５
0003594975.tif 000012
0003594975.tif 000013
（２）配列：配列番号６
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）配列の長さ:166アミノ酸
（Ｂ）配列の型：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：一本鎖
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（iii）ハイポセティカル:NO
（ｖ）フラグメント型:N末端フラグメント（Ｎ−terminal fragment）
（vi）起源：
（Ａ）生物名:Homo sapiens
（xi）配列：配列番号６
0003594975.tif 000014
0003594975.tif 000015
（２）配列：配列番号７
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）配列の長さ:60塩基対
（Ｂ）配列の型：核酸
（Ｃ）鎖の数：二本鎖
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類:cDNA
（iii）ハイポセティカル:NO
（vi）起源：
（Ａ）生物名:Homo sapiens
（xi）配列：配列番号７
0003594975.tif 000016
（２）配列：配列番号８
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）配列の長さ:20アミノ酸
（Ｂ）配列の型：アミノ酸
（Ｃ）鎖の数：一本鎖
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：ペプチド
（iii）ハイポセティカル：なし
（ｖ）フラグメント型：中間部フラグメント
（vi）起源：
（Ａ）生物名:Homo sapiens
（xi）配列：配列番号８
0003594975.tif 000017
（２）配列：配列番号９
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）配列の長さ:22塩基対
（Ｂ）配列の型：核酸
（Ｃ）鎖の数：一本鎖
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：他の核酸
（Ａ）DESCRIPTION:/desc＝”プライマー”
（iii）ハイポセティカル:NO
（xi）配列：配列番号９
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（２）配列：配列番号10
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）配列の長さ:24塩基対
（Ｂ）配列の型：核酸
（Ｃ）鎖の数：一本鎖
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：他の核酸
（Ａ）DESCRIPTION:/desc＝”プライマー”
（iii）ハイポセティカル:NO
（xi）配列：配列番号10
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0003594975.tif 000020
【図１】
0003594975.tif 000021
【図２Ａ】
0003594975.tif 000022
【図２Ｂ】
0003594975.tif 000023
【図２Ｃ】
0003594975.tif 000024
【図３】
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【図４】
0003594975.tif 000026
【図５】
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