(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
固体培地上にフザリウム属(Fusarium)菌を植菌して培養し気生菌糸および基底菌糸を生長させる第１の工程と、
基底菌糸を切断するとともにその切断面を大気に露出させる第２の工程と、
その後さらに培養してスポロドキアを得る第３の工程とを有するスポロドキアの形成方法。
【請求項２】
前記第１の工程で前記気生菌糸を前記固体培地の実質的全面を覆うように生長させる請求項１のスポロドキアの形成方法。
【請求項３】
前記第１および第３の工程で前記培養を暗所で行う請求項１または２のスポロドキアの形成方法。
【請求項４】
前記第２の工程で前記気生菌糸を除去する請求項１〜３のいずれかのスポロドキアの形成方法。
【請求項５】
前記第２の工程で前記固体培地表面をかきとって前記基底菌糸を切断し、かつ前記気生菌糸を除去する請求項１〜４のいずれかのスポロドキアの形成方法。
【請求項６】
前記固体培地が天然ジャガイモ寒天培地、ポテト・デキストロース寒天（ＰＤＡ）培地またはポテト・サッカロース寒天（ＰＳＡ）培地である請求項１〜５のいずれかのスポロドキアの形成方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【産業上の利用分野】
本発明は、フザリウム属（Ｆｕｓａｒｉｕｍ）菌のスポロドキアの形成方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
フザリウム属菌は、自然条件下の枯死枝葉や土壌中などに広く存在する糸状菌の一種であり、形態的に類似する病原性の菌と非病原性の菌とが雑居していることが多い。
【０００３】
病原性のフザリウム属菌は多くの植物に感染して萎ちょう病や萎黄病等の植物疾病を引き起こす。このため、いち早く病原性のフザリウム属菌の存在を知り、対策を講ずることが重要となるが、感染の予防あるいは感染の有無のチェックには、分析可能な量に達するまで病原性のフザリウム属菌を培養して調べる必要がある。また、病原性フザリウム属菌の殺菌剤や病原性フザリウム属菌に対して耐性のある品種を開発研究するにしても大量培養が必要である。
【０００４】
一方、非病原性のフザリウム属菌は、病原性のフザリウム属菌に対する拮抗作用を有することから、拮抗作用を利用した土壌改良剤としての用途が期待できる。さらに、一般には、化学農薬に代わる、環境汚染の少ない生物防除剤や化学農薬では防除が困難な土壌病害防除剤への応用が試みられている。従って、このような用途においても、フザリウム属菌の大量培養が必要となってくる。
【０００５】
このように、フザリウム属菌は、病原性、非病原性にかからわず、上記のような利用法が種々存在するため、大量培養することが望まれており、例えば特開平４−２３７４９０号公報には、糖蜜を含む液体培地でフザリウム属微生物の芽胞を大量培養する方法が開示されている。
【０００６】
しかし、フザリウム属菌のなかには、胞子が形成しにくいものがあり、上記公報に開示される方法では培養がうまくいかないものもある。
【０００７】
このように胞子が形成しにくいフザリウム属菌では、例えばフザリウム属菌の宿主となりうるカーネーションを用い、水に溶解した寒天に乾燥カーネーションの葉片を入れた平板培地（ＣＬＡ培地）など特定の培地を作製し、この培地に植菌し、１２時間周期での明期（２５℃）、暗期（２０℃）の繰り返し条件下の培養によって分生子を形成させている［Ｆｕｓａｒｉｕｍ  Ｓｐｅｃｉｅｓ  Ａｎ  Ｉｌｌｕｓｔｒａｔｅｄ  Ｍａｎｕａｌ  ｆｏｒ  Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ  Ｎｅｌｓｏｎ，Ｔｏｕｓｓｏｕｎ  ａｎｄ  Ｍａｒａｓａｓ  Ｔｈｅ  Ｐｅｎｎｓｙｌｖａｎｉａ  Ｐｒｅｓｓ  ｐ１２−１８（１９８３）  ］。
【０００８】
このような方法で分生子を形成する場合、分生子の粘塊であるスポロドキアが形成されるまでに要する時間は、植菌後４〜６週間程度であるが、上記の乾燥カーネーションの葉片を入れた平板培地を作製するに際し、培地成分としてのカーネーションの葉片の乾燥と乾燥後の保存に手間取り、またこのような操作には技術を要し、効率がよくない。さらに、培養条件も明期、暗期を要し、温度管理も必要なことから、それに応じ、照明手段、温度制御手段および時間制御手段（タイマー）を備えた特殊な培養装置が必要となる。
【０００９】
従って、胞子の培養がしにくいフザリウム属菌においても、胞子の大量培養を容易に行うことができる生産効率の高い方法の開発が望まれている。
【００１０】
【発明が解決しようとする課題】
本発明の目的は、特にフザリウム属菌において、簡易かつ効率よくスポロドキアの形成を行うことができるスポロドキアの形成方法を提供することにある。
【００１１】
【課題を解決するための手段】
このような目的は、下記（１）〜（６）の構成によって達成される。
（１）  固体培地上にフザリウム属(Fusarium)菌を植菌して培養し気生菌糸および基底菌糸を生長させる第１の工程と、
基底菌糸を切断するとともにその切断面を大気に露出させる第２の工程と、
その後さらに培養してスポロドキアを得る第３の工程とを有するスポロドキアの形成方法。
（２）  前記第１の工程で前記気生菌糸を前記固体培地の実質的全面を覆うように生長させる上記（１）のスポロドキアの形成方法。
（３）  前記第１および第３の工程で前記培養を暗所で行う上記（１）または（２）のスポロドキアの形成方法。
（４）  前記第２の工程で前記気生菌糸を除去する上記（１）〜（３）のいずれかのスポロドキアの形成方法。
（５）  前記第２の工程で前記固体培地表面をかきとって前記基底菌糸を切断し、かつ前記気生菌糸を除去する上記（１）〜（４）のいずれかのスポロドキアの形成方法。
（６）  前記固体培地が天然ジャガイモ寒天培地、ポテト・デキストロース寒天（ＰＤＡ）培地またはポテト・サッカロース寒天（ＰＳＡ）培地である上記（１）〜（５）のいずれかのスポロドキアの形成方法。
【００１２】
【作用】
本発明では、フザリウム属（Ｆｕｓａｒｉｕｍ）菌を固体培地に植菌し、気生菌糸と基底菌糸とが生長するまで培養し、その後基底菌糸を切断して切断面を大気中に露出させたのち、さらに培養を継続する。このためフザリウム属菌の菌糸生育用寒天培地をそのまま使用して、暗所で、照明設備やタイマーなどの特別な装備を必要としない通常の培養装置を用いて、植菌時から約５週間程度の時間でスポロドキアを形成することができる。
【００１３】
従来、このようなスポロドキアの形成は、例えば乾燥カーネーションの葉片を入れた寒天を固めたＣＬＡ培地等に代表される特定の平板培地を用い、一定温度に設定した明期（２５℃）、暗期（２０℃）を１２時間周期で繰り返す培養条件により行っていたが、このような方法に比べ、本発明の方法は格段と簡便な方法である。また、要する培地量で比較した場合、スポロドキアの形成個数も本発明の方が多い。
【００１４】
【具体的構成】
以下、本発明の具体的構成について詳細に説明する。
【００１５】
本発明では、まず第１の工程で、固体培地上にフザリウム属（Ｆｕｓａｒｉｕｍ）菌を植菌して培養し、気生菌糸および基底菌糸を生長させる。このように気生菌糸および基底菌糸を生長させることによって、培地中の栄養分のうち菌糸生長に必要な栄養分が摂取された状態になり、分生子形成に有利な培地状態となる。
【００１６】
この場合、気生菌糸が固体培地の実質的全面を覆うように生長伸長させることが好ましく、これにより、菌糸生長のスペースもなくなるなど、培地条件が分生子形成により好適なものとなる。
【００１７】
ここで、「実質的全面」とは固体培地表面積の９０％以上であることをいう。さらには９５〜１００％であることが好ましい。
【００１８】
気生菌糸および基底菌糸の伸長は、植菌時から１日以内（８〜１２時間程度）に観察され、全面を覆うようになるまでに植菌時から１週間程度の時間を要する。
【００１９】
このように気生菌糸および基底菌糸が盛んに伸長しているときには、固体培地には分生子は存在しないと考えられる。
【００２０】
ここで、「基底菌糸」とは、培地または宿主に入りこみ、栄養分を摂取する菌糸をいい、「気生菌糸」とは、大気中にのびる菌糸をいう。ただし、基底菌糸であっても、本発明に用いる菌は嫌気性ではないので、培地の極表面でのみ生長し、基底菌糸の存在する培地体積は全培地体積の１５％程度である。
【００２１】
なお、植菌は、公知の方法によればよく、例えば白金耳やコルクボーラーなどを用い一定量の菌糸を一部の培地ごとかきとり、そのまま培地上に植え付けるなどする。通常、直径９０ｍｍ程度のシャーレに培地を２０ｍｌ程度分注して用いるが、その場合の植菌量は周辺の寒天培地を含めて０．２ｇ  程度の量とすればよい。
【００２２】
上記のように第１の工程で気生菌糸および基底菌糸を生長させたのち、本発明では、第２の工程で基底菌糸を切断するとともにその切断面を大気に露出させる。
【００２３】
このように栄養分を摂取し生長伸長したのちの基底菌糸を切断し、切断面を大気に露出させることによって、栄養源の枯渇および菌糸の損傷と乾燥がもたらされ、分生子の形成が促進される。
【００２４】
この基底菌糸の切断とともに、気生菌糸の大部分（気生菌糸の培地における占有面積全体の９０％以上）、好ましくは全てを除去すると分生子の形成が促進される。気生菌糸の除去の方法には特に制限はないが、通常は切断した気生菌糸を培養容器から取り出す。
【００２５】
より具体的な手段としては、培地をこそぎ落とすように少量ずつかきとり、気生菌糸を除去し、同時にかきとった基底菌糸の一部も除去し、同時にその切断と露出とを行えばよい。さらに、この際には気生菌糸の全てを除去し、また基底菌糸の大部分を除去することが好ましい。このように、気生菌糸の全て、基底菌糸の大部分を除去することによって、分生子形成に一層有利な培地状態が実現する。また、基底菌糸を一部残すのは、その切断面から分生子が形成されるからであり、全部除去したのでは分生子が形成されなくなる。従って、基底菌糸は、基底菌糸が存在する培地体積で表示して、基底菌糸がもともと存在した全培地体積の８〜１２％程度を残すようにすることが好ましい。培地全体の体積を基準にすれば３〜７％程度が除去され、９３〜９７％程度が残存することになる。
【００２６】
このような切断操作は、通常、白金耳やセルスクレーパー（プラスチック製のへら）等を用いてかきとること、あるいはカミソリやメスの刃の腹等でこそぎ落とすこと、などにより行えばよい。
【００２７】
上記において、培地表面の基底菌糸の切断面は、通常、切断後、大気にずっと露出された状態にある。しかし、場合によっては、培地表面から内部に至るキズを入れたり、スリットを形成したりしてもよく、この場合も基底菌糸の切断面は大気に露出している状態である。この他、切断方法については種々の方法が可能である。
【００２８】
上記のような切断操作を行う第２の工程ののち、第３の工程では、そのままの培地を用いて培養を続行する。この引き続き行う培養は、この切断操作の時点から２〜４週間程度の時間、すなわち植菌時から５〜８週間程度の時間とすればよい。
【００２９】
このような培養によってスポロドキアが形成される。この場合、植菌時から５〜８週間程度の時間でスポロドキアの形成が肉眼で認識され始め、その全体的な大きさにはさほどの変化はないが、徐々にその一つ一つの膨らみが増していくとともに、数も増大していくのが観察される。そして、その後一週間程度で安定化する。この場合スポロドキアは培地１ｍｌ当り５〜１０個形成される。
【００３０】
ここで、「スポロドキア」とは、分生子の粘塊をいい、培地表面および表面部（培地の表面領域であって、培地全体の１５体積％程度に相当する部分であり、通常培地表面からの深度で１ｍｍ程度の部分）に形成される。また、その形状はほぼ球状であり、直径１ｍｍ程度の大きさのものである。そしてこのような大きさになったときに肉眼で認識できるようになる。スポロドキアを構成する「分生子」は、大型のもので２０〜１００μｍ  ×２〜６μｍ  程度の大きさであり、小型のもので４〜２０μｍ  ×２〜４μｍ  程度の大きさであり、通常、大型のものは隔壁が形成される。
【００３１】
なお、スポロドキアは、通常植菌時から５〜８週間程度で形成されるが、場合によっては栄養分の枯渇や乾燥等のために２週間程度で分生子が形成されることがある。
【００３２】
本発明に用いる固体培地には特に制限はなく、通常諸種の寒天培地を用いることができる。特に、天然じゃがいも寒天培地、この天然ジャガイモ寒天培地にデキストロースまたはサッカロースを添加したポテト・デキストロース寒天（ＰＤＡ）培地やポテト・サッカロース寒天（ＰＳＡ）培地等を用いることが好ましい。このような天然培地を用いることによってスポロドキアの形成効率が向上する。
【００３３】
天然ジャガイモ培地は、ジャガイモ２００ｇ  程度を適当量の水で煮た煮汁をガーゼで濾した後、蒸留水を加えて１リットル程度としたジャガイモ煎汁液を用い、この煎汁に対し粉末寒天を１５ｇ  程度添加して得られたものである。
【００３４】
またＰＤＡ培地、ＰＳＡ培地は、上記のようにして得られたジャガイモ煎汁液にデキストロースまたはサッカロースを２ｗｔ％  程度となるように添加して同様にして得られたものである。
【００３５】
培地には、このほか、必要に応じ、リン塩酸、カリウム塩、マグネシウム塩等の無機塩類を添加してもよい。
【００３６】
このように本発明では、菌糸生育用に用いられている培地をそのまま用いることができる。
【００３７】
本発明における培養条件は、気生菌糸および基底菌糸の生長伸長までの培養、基底菌糸の切断および大気露出後の培養のいずれにおいてもかわりはなく、特に制限はない。培養温度の管理の必要はなく、室温（２２〜２８℃）で行えばよい。また、暗所、明所、さらには明暗交替のいずれで培養してもよく、特に制限はない。このため例えば暗所のみとすることもできる。なお、湿度条件については寒天培地が乾燥しないように配慮するほかは特に管理する必要はないが、極端な乾燥や加湿は好ましくないので、通常１０〜９０％ＲＨ程度とする。
【００３８】
従って、本発明における培養は、照明設備やタイマーなどの装備がない汎用の恒温機能をもつ培養装置を用いて行うことができる。
【００３９】
本発明において植菌に供するフザリウム属（Ｆｕｓａｒｉｕｍ）菌としては種々のものであってよく、特に制限はない。このようなものとしては、例えばフザリウム属ロゼウム種（Ｆ．ｒｏｓｅｕｍ）、フザリウム属オキシスボラム種（Ｆ．ｏｘｙｓｐｏｒｕｍ）  、フザリウム属ソラニ種（Ｆ．ｓｏｒａｎｉ）、フザリウム属モニリフォルメ種（Ｆ．ｍｏｎｉｌｉｆｏｒｍｅ）  、フザリウム属ニバレ種（Ｆ．ｎｉｖａｌｅ）、フザリウム属ラテリチウム種（Ｆ．ｌａｔｅｒｉｔｉｕｍ）、フザリウム属スプレンデンス種（Ｆ．ｓｐｌｅｎｄｅｎｓ）  等の菌が挙げられる。
【００４０】
このようなフザリウム属菌のなかで、病原性のフザリウム属菌と宿主植物（感染植物）との関係を例示すれば以下のようになる。
【００４１】
（１）  Ｆ．  ｒｏｓｅｕｍ
ムギ類（コムギ、オオムギ等）、ストック、カーネーション、チューリップ、カラマツ、アカマツ、アルファルファ、アカクローバー、イネ科牧草、リンドウ（なお、本発明者等によりトルコキキョウへの感染も確認された。）
（２）  Ｆ．  ｏｘｙｓｐｏｒｕｍ
サツマイモ、ナガイモ、トマト、ナス、スイカ、メロン、キュウリ、ヘチマ、ユウガオ、キャベツ、ダイコン、イチゴ、タマネギ、ネギ、ラッキョウ、アスパラガス、ゴボウ、ハス、ホウレンソウ、レタス、ミツバ、カーネーション、アスター、シクラメン、チューリップ、スイセン、グラジオラス、カラマツ、アカマツ、アルファルファ、赤クローバー、イネ、ダイズ、トルコキキョウ、カナリーヤシ、クロッカス（サフラン）、サトイモ、マーガレット、キク、ゴマ、タバコ、ジャガイモ、ワタ、アマ、ササゲ、インゲンマメ、ソラマメ、ルービン、エンドウ、クローバ、ネムノキ、イチゴ、テンサイ
（３）  Ｆ．  ｓｏｌａｎｉ
インゲン、サツマイモ、ジャガイモ、ナガイモ、コンニャクイモ、チョウセンニンジン、クワ、ハス、ウド、ヤマゴボウ、カラマツ、アカマツ、アルファルファ、アカクローバ、トルコキキョウ、マーガレット
（４）  Ｆ．  ｍｏｎｉｌｉｆｏｒｍｅ
イネ、ダイズ
（５）  Ｆ．  ｎｉｖａｌｅ
イネ、ムギ類
（６）  Ｆ．  ｌａｔｅｒｉｔｉｕｍ
クワ、ケイトウ、カラマツ、アカマツ、アカシア
（７）  Ｆ．  ｓｐｌｅｎｄｅｎｓ
ネム
【００４２】
また、これらのフザリウム属菌の感染によって引き起こされる病気としては萎黄病、萎ちょう病、茎腐れ病等が挙げられる。
【００４３】
本発明の方法は、フザリウム属菌のなかでも一般に胞子を形成しにくいとされるものに用いることが好ましく、このようなフザリウム属菌においてもスポロドキアの形成を行うことができる。
【００４４】
本発明の方法は、フザリウム属菌において有効であるが、このほかの不完全菌に対しても用いることができ、特に胞子形成がしにくい不完全菌を対象にして効果が大きい。
【００４５】
本発明のスポロドキアの形成方法は、病原性フザリウム属菌においては、スポロドキアを容易に得ることができ、その種等の識別により、植物への感染予防や感染対策を講じやすくなる。
【００４６】
また、分生子の大量生産が可能になり、病原性のフザリウム属菌においては、この菌の殺菌剤や抵抗性の植物品種の開発・研究を行うときに使用することができる。一方、非病原性のフザリウム属菌においては、病原性のものに対する拮抗作用を利用した土壌改良剤、あるいは生物防除剤や土壌病害防除剤等としての用途が期待できる。
【００４７】
【実施例】
以下、本発明の実施例を比較例、実験例とともに示し、本発明を具体的に説明する。
【００４８】
実施例１
フザリウム属菌の菌糸生育用寒天培地である天然ジャガイモ培地に植物病原性フザリウム属ロゼウム種の菌を植菌した。
【００４９】
植菌に用いた菌は、トルコキキョウから分離したもので、フザリウム属ロゼウム種と同定されるものであり、日本植物病理学会報，ｖｏｌ．  ５７，  Ｎｏ．  １，  Ｊａｎｕａｒｙ，  ｐ．１２３  （１９９１）  に記載のものと同じである。また、この菌は、トルコキキョウに感染して茎腐れ病を引き起こすことも確認されている。
【００５０】
天然ジャガイモ培地は、２００ｇ  のジャガイモを用いて前記のようにして得られたジャガイモ煎汁液１リットルを用い、この液１リットルに対し寒天１５ｇ  の割合で添加して作製し、殺菌したペトリ皿にて固化して用いた。この場合、直径９０ｍｍのペトリ皿に約２０ｍｌの培地を流し込み、約７ｍｍ強の厚さの固形培地を作った。
【００５１】
植菌は、上記のフザリウム属ロゼウム種の菌の菌糸を白金耳で一定量培地上に植え付けることによって行った。植菌に用いた菌糸量は培地２０ｍｌに対して、培地を含む菌叢の重量で０．２ｇ  とした。
【００５２】
上記のように植菌したのち暗所で２５℃（２０％ＲＨ）の条件下で培養した。１週間培養すると、気生菌糸が培地全面を覆うように生長しており、気生菌糸と基底菌糸とからなる菌糸体の形成がみられた。この段階で気生菌糸の全てと基底菌糸の大部分を除去した。すなわち、培地表面を白金耳でこそぎ落とし、一部の培地とともに菌糸をかき取って除去した。このとき、基底菌糸は切断されて切断面は大気に露出された状態となった。また、この操作により、操作前にて基底菌糸がもともと存在した培地に対し、１０体積％程度の培地に存在する基底菌糸を最終的に残した。
【００５３】
こののち、さらに培養を継続し、植菌時から約５週間後にスポロドキアの形成をみた。なお、スポロドキアの数は徐々に増えていくものであり、その形成が肉眼で観察でき始めるのは、前述のように、スポロドキアの大きさがおよそ１ｍｍ位になった時点である。そして、その後一週間程度で安定した。
【００５４】
このように最終的に形成されたスポロドキアの個数は、培地１ｍｌ当り５〜１０個であった。
【００５５】
実施例２
実施例１において、天然ジャガイモ寒天培地の代わりに、ＰＤＡ培地を用いたが、同様にスポロドキアの形成がみられた。なお、ＰＤＡ培地は、実施例１の天然ジャガイモ寒天培地において、ジャガイモ煎汁液に対し、２ｗｔ％  の割合でデキストロースを添加した液を用いて同様に、作製したものである。
【００５６】
スポロドキアの培地１ｍｌ当りの形成個数は実施例１と同等であった。
【００５７】
実施例３
実施例１において、天然ジャガイモ寒天培地の代わりに、ＰＳＡ培地を用いたが、同様にスポロドキアの形成がみられた。なお、ＰＳＡ培地は、実施例１の天然ジャガイモ寒天培地において、ジャガイモ煎汁液に対し、２ｗｔ％  の割合でサッカロースを添加した液を用いて同様に、作製したものである。
【００５８】
スポロドキアの培地１ｍｌ当りの形成個数は実施例１と同等であった。
【００５９】
比較例１
殺菌したペトリ皿（実施例１と同じ大きさ）に２ｗｔ％  の寒天溶液を流し込み、その表面に乾燥カーネーションの葉片（５ｍｍ角の大きさ）を４〜５枚浮かせた後、完全に固化させ、ＣＬＡ培地を作製した。
【００６０】
このＣＬＡ培地を用いて、実施例１と同様に植菌し、１２時間周期で明期、暗期を繰り返し、培養した。明期での温度は２５℃（１５％ＲＨ）、暗期での温度は２０℃（１２％ＲＨ）とした。
【００６１】
このようにして植菌時から４〜６週間でスポロドキアの形成をみた。スポロドキアの培地１ｍｌ当りの形成個数は１〜２個であった。
【００６２】
以上の結果から、実施例１〜３の本発明の方法は、比較例１の従来法に比べ、培地作製が容易であり、培養条件の管理も容易である。また、同培地量におけるスポロドキアの形成個数が多い。従来法では培地における葉片数に限度があり、またスポロドキアの形成が葉片の周囲に限定され、しかも葉片が存在しても必ずしもスポロドキアが形成されるとは限らないことから、上記のような好条件を選択しても本発明の方法に比べスポロドキアの形成個数が少なくなると考えられる。
【００６３】
実験例１
実施例１〜３で各々得られたスポロドキアと従来法で得られたスポロドキアの感染特性を調べた。
【００６４】
このときの病原性試験の方法は以下のとおりである。
【００６５】
分離したスポロドキアから菌糸を発芽させた。発芽した菌糸をＰＤＡ培地に移植し、その上に滅菌したガーゼ（２．５ｃｍ×４ｃｍ）をおいて、１０日間培養した。供試菌が付着したガーゼを開花前の成長したトルコキキョウの茎に巻き付け、有傷接種と無傷接種とを行った。有傷接種は、巻き付けたガーゼの上から針を茎に突き刺して傷を付けることで行った。接種部位はいずれの場合もラップで包み、乾燥を防いだ。茎１本について、接種は同一の方法で３ケ所行った。無菌ガーゼを巻き付けたコントロールと比較しながら病徴を毎日観察し、約１週間後のものについて調べた。葉が萎れたり、茎が褐変した場合を病徴とみなした。
【００６６】
１０本ずつの処理による結果、本発明の方法によるものでも、従来法によるものでも、有傷接種ではいずれも１００％が発病し、無傷接種では９０％の発病率だった。
【００６７】
従って、本発明の方法でスポロドキアを形成したものも、従来法と同等の感染力が維持されることがわかった。
【００６８】
【発明の効果】
本発明によれば、特にフザウリウム属菌において、スポロドキアの形成を簡易かつ効率よく行うことができる。また、菌の特質を保持できる。これより、分生子の大量培養が可能になる。