(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
チオール基のアルキル化剤を含み、免疫学的手法による結核菌に特異的な抗原の有無の検査においてチオール基を有する化合物を添加した喀痰の前処理に用いられる、前処理剤。
【請求項２】
前記アルキル化剤が、ハロカルボン酸、ハロカルボン酸の誘導体及び活性二重結合を有する化合物からなる群より選択される少なくとも１種を含む、請求項１に記載の前処理剤。
【請求項３】
前記ハロカルボン酸又は前記ハロカルボン酸の誘導体がモノハロ酢酸又はモノハロ酢酸アミドである、請求項２に記載の前処理剤。
【請求項４】
前記モノハロ酢酸又は前記モノハロ酢酸アミドがヨード酢酸ナトリウム又はヨードアセトアミドである、請求項３に記載の前処理剤。
【請求項５】
前記活性二重結合を有する化合物がマレイミド化合物である、請求項２に記載の前処理剤。
【請求項６】
前記マレイミド化合物がＮ−メチルマレイミド及びＮ−エチルマレイミドの少なくともいずれかである、請求項５に記載の前処理剤。
【請求項７】
前記チオール基を有する化合物がＮ−アセチル−Ｌ−システインを含む、請求項１〜請求項６のいずれか１項に記載の前処理剤。
【請求項８】
前記免疫学的手法がイムノクロマト法である、請求項１〜請求項７のいずれか１項に記載の前処理剤。
【請求項９】
前記抗原がＭＰＴ６４である、請求項８に記載の前処理剤。
【請求項１０】
請求項１〜請求項９のいずれか１項に記載の前処理剤と、チオール基を有する化合物と、を備える前処理キット。
【請求項１１】
請求項１〜請求項９のいずれか１項に記載の前処理剤又は請求項１０に記載の前処理キットと、抗原検査デバイスと、を備える抗原検査キット。
【請求項１２】
検体にチオール基を有する化合物を添加する工程と、前記チオール基を有する化合物を添加した前記検体に請求項１〜請求項９のいずれか１項に記載の前処理剤を添加する工程と、前記前処理剤を添加した前記検体が抗原を含むか否かを免疫学的手法で検査する工程と、を備える抗原検査方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、前処理剤、前処理キット、抗原検査キット及び抗原検査方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
従来より結核の検査においては、被験者から採取した喀痰をスライドガラスに塗抹し、染色した後に顕微鏡で観察して結核菌が属する抗酸菌が存在するかどうかを確認する塗抹検査が広く行われている。しかし、この方法では抗酸菌の存在が確認できてもそれが結核菌であるか否かの判別ができない。また、塗抹検査で安定的で正確な結果を得るためには、スライドガラスへの喀痰の塗抹や染色を行うための技術の習得が必要である。そこで、喀痰中の結核菌が存在するかどうかを直接的に判別することができ、かつ検査者の技術の習熟度に左右されずに検査結果が得られる方法として、免疫学的手法であるイムノクロマト法によって結核菌群に特異的な抗原であるＭＰＴ６４を検出する方法が検討されている（例えば、特許文献１及び特許文献２参照）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００３】
【特許文献１】特許第６２１６２９９号
【特許文献２】特開２００２−０６２２９９号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
イムノクロマト法によって抗原を検出する方法では、試験片に喀痰を浸透させ、抗体が固定化されている検出ラインまで十分量を展開する必要がある。しかしながら、喀痰は粘性が高くそのままでは展開することができないため、ＮＡＬＣ（Ｎ−アセチル−Ｌ−システイン）等のチオール基を有する化合物を添加して粘性を低下させるための前処理が行われている。しかしながら、チオール基を有する化合物を添加した検体は、充分な検出感度が得られない場合がある。
【０００５】
本発明は上記事情に鑑み、抗原の検出感度に優れる検体の前処理剤、前処理キット及び抗原検査キットを提供することを課題とする。本発明はまた、抗原の検出感度に優れる抗原検査方法を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
上記課題を解決するための手段には、以下の実施態様が含まれる。
＜１＞チオール基のアルキル化剤を含み、免疫学的手法による検査においてチオール基を有する化合物を添加した検体の前処理に用いられる、前処理剤。
＜２＞前記アルキル化剤が、ハロカルボン酸、ハロカルボン酸の誘導体及び活性二重結合を有する化合物からなる群より選択される少なくとも１種を含む、＜１＞に記載の前処理剤。
＜３＞前記ハロカルボン酸又は前記ハロカルボン酸の誘導体がモノハロ酢酸又はモノハロ酢酸アミドである、＜２＞に記載の前処理剤。
＜４＞前記モノハロ酢酸又は前記モノハロ酢酸アミドがヨード酢酸ナトリウム又はヨードアセトアミドである、＜３＞に記載の前処理剤。
＜５＞前記活性二重結合を有する化合物がマレイミド化合物である、＜２＞に記載の前処理剤。
＜６＞前記マレイミド化合物がＮ−メチルマレイミド及びＮ−エチルマレイミドの少なくともいずれかである、＜５＞に記載の前処理剤。
＜７＞前記チオール基を有する化合物がＮ−アセチル−Ｌ−システインを含む、＜１＞〜＜６＞のいずれか１項に記載の前処理剤。
＜８＞前記免疫学的手法がイムノクロマト法である、＜１＞〜＜７＞のいずれか１項に記載の前処理剤。
＜９＞前記検査が結核菌に特異的な抗原の有無の検査である、＜１＞〜＜８＞のいずれか１項に記載の前処理剤。
＜１０＞前記抗原がＭＰＴ６４である、＜９＞に記載の前処理剤。
＜１１＞＜１＞〜＜１０＞のいずれか１項に記載の前処理剤と、チオール基を有する化合物と、を備える前処理キット。
＜１２＞＜１＞〜＜１０＞のいずれか１項に記載の前処理剤又は＜１１＞に記載の前処理キットと、抗原検査デバイスと、を備える抗原検査キット。
＜１３＞検体にチオール基を有する化合物を添加する工程と、前記チオール基を有する化合物を添加した前記検体に＜１＞〜＜１０＞のいずれか１項に記載の前処理剤を添加する工程と、前記前処理剤を添加した前記検体が抗原を含むか否かを免疫学的手法で検査する工程と、を備える抗原検査方法。
【発明の効果】
【０００７】
本発明によれば、抗原の検出感度に優れる検体の前処理剤、前処理キット及び抗原検査キットが提供される。また本発明によれば、抗原の検出感度に優れる抗原検査方法が提供される。
【図面の簡単な説明】
【０００８】
【図１】前処理剤を添加した検体と前処理剤を添加していない検体に含まれる抗原の検出精度を比較するグラフである。
【図２】前処理剤を添加した検体と前処理剤を添加していない検体に含まれる抗原の検出精度を比較するグラフである。
【図３】前処理剤を添加した検体と前処理剤を添加していない検体に含まれる抗原の検出精度を比較するグラフである。
【発明を実施するための形態】
【０００９】
以下、本発明を実施するための形態について詳細に説明する。本明細書において「工程」との語は、独立した工程だけではなく、他の工程と明確に区別できない場合であってもその工程の目的が達成されれば、本用語に含まれる。また本明細書において「〜」を用いて示された数値範囲は、「〜」の前後に記載される数値をそれぞれ最小値及び最大値として含む範囲を示す。
【００１０】
＜前処理剤＞
本開示の前処理剤は、チオール基のアルキル化剤を含み、免疫学的手法による検査においてチオール基を有する化合物（以下、チオール化合物とも称する）を添加した検体の前処理に用いられる、前処理剤である。
【００１１】
本発明者らの検討の結果、上記前処理剤を含む検体は、上記前処理剤を含まない検体に比べ、検体中の抗原の有無を検査する際の検出精度に優れていることがわかった。その理由は、例えば、以下のように考えることができる。
【００１２】
ＮＡＬＣ等のチオール化合物を喀痰等の粘稠性の検体に添加すると、粘稠性の原因であるタンパク質分子間のジスルフィド結合（−Ｓ−Ｓ−）とチオール化合物のチオール基との交換反応が生じ、タンパク質分子間のジスルフィド結合が切断されて、粘性が低下する。しかしながら一方で、チオール化合物は検体の抗原抗体反応（酵素標識抗体を使用している場合は抗体抗原反応）及び酵素反応を阻害するように作用する。この阻害作用は、検体中に未反応のまま残存したり、チオール化合物とジスルフィド結合との反応過程で新たに生じたチオール基が原因となって起きると考えられ、検出感度が低下する要因となっている。
【００１３】
ここで、チオール化合物を添加した検体にチオール基のアルキル化剤を含む前処理剤を添加すると、チオール基のアルキル化剤により検体中のチオール基のアルキル化が生じて検体中のチオール基量が減少する。その結果、チオール基に起因する検出感度の低下が抑制され、良好な検出感度が維持されると考えられる。
【００１４】
チオール化合物を添加した検体中のチオール基量を減少させる方法としては、検体をバッファで希釈してチオール基の濃度を下げる方法も考えられるが、この場合は検出対象である抗原の濃度もあわせて低下するため、充分な検出感度が得られないおそれがある。本開示の前処理剤によれば、抗原の濃度を低下させずに検出感度の低下を抑制でき、良好な検出感度を維持することができる。
【００１５】
また、本発明者らの検討の結果、上記前処理剤をチオール化合物を添加した検体に添加しても、チオール化合物により低下した検体の粘性は変化しないことがわかった。その理由は、例えば、以下のように考えることができる。
【００１６】
チオール化合物を粘性のある検体に添加すると、上述のように粘性が低下する。ここにチオール基のアルキル化剤を添加すると、検体中に未反応のまま残存したり、チオール化合物とジスルフィド結合との反応過程で新たに生じたチオール基とアルキル化剤とが結合（アルキル化）する。しかしそれによって、タンパク質分子間のジスルフィド結合やその他の高次構造は生じず、粘性は低い状態に維持されると考えられる。
【００１７】
さらに、前処理剤を添加することで、チオール化合物との反応により切断されたタンパク質分子間のジスルフィド結合が酸化により再度形成され、粘性が回復するのを抑制する効果も期待できる。
【００１８】
本開示においてチオール基のアルキル化剤とは、チオール基と反応してチオール基のアルキル化を生じる化合物を意味する。前処理剤に含まれるチオール基のアルキル化剤の種類は、特に制限されない。また、前処理剤に含まれるチオール基のアルキル化剤は、１種でも２種以上であってもよい。チオール基のアルキル化剤は、ナトリウム塩等の塩の状態であってもよい。
【００１９】
チオール基のアルキル化剤としては、チオール基にアルキル基のみを導入する化合物の他、リンカーを介してアルキル基を導入するものも含む。また、ヨード酢酸、α−ヨードプロピオン酸等のように、チオール基に−ＣｎＨ２ｎ−を導入するものも含む。
【００２０】
チオール化合物のアルキル化剤の中でも、ハロカルボン酸、ハロカルボン酸の誘導体、及び活性二重結合を有する化合物が好ましい。
【００２１】
ハロカルボン酸は、ハロゲン原子を含有するカルボン酸化合物であれば特に制限されない。ハロカルボン酸の誘導体としては、例えば、ハロカルボン酸のアミド化合物が挙げられる。ハロゲン原子としては、例えば、ヨウ素、臭素、塩素が挙げられる。
【００２２】
ハロカルボン酸としては、ハロゲン原子を１個含有するカルボン酸化合物（モノハロカルボン酸）が挙げられる。具体的には、例えば、ヨード酢酸、ブロモ酢酸、クロロ酢酸等のモノハロ酢酸（ハロゲン原子を１個含有する酢酸化合物）、α−ヨードプロピオン酸、α−ブロモプロピオン酸、α−クロロプロピオン酸等のモノハロプロピオン酸（ハロゲン原子を１個含有するプロピオン酸化合物）などが挙げられる。ハロカルボン酸の誘導体としては、例えば、ヨードアセトアミド、ブロモアセトアミド、クロロアセトアミド等のモノハロカルボン酸のアミド化合物が挙げられる。
【００２３】
活性二重結合を有する化合物は、分極したり、あるいは容易に分極可能な二重結合を持つ化合物であれば特に制限されない。活性二重結合を有する化合物としては、例えば、Ｎ−メチルマレイミド、Ｎ−エチルマレイミド、Ｎ−フェニルマレイミド等のマレイミド化合物（マレイミド骨格を有する化合物）、アクリロニトリル、アクリルアミド、アクリル酸エチル、アクロレイン、無水マレイン酸、ビニルスルフォン、２−メチル−１，４−ナフトキノン等が挙げられる。
【００２４】
ハロカルボン酸、ハロカルボン酸の誘導体、及び活性二重結合を有する化合物に該当しないチオール基のアルキル化剤としては、例えば、ヨウ化メチル、β−ヨードエチルアミン、β−ブロモエチルアミン、β−クロロエチルアミン、クロロアセトフェノン、エチレンイミン、エチレンオキシド、Ｏ−メチルイソ尿素、メチル−ｐ−ニトロベンゼンスルホン酸ナトリウム、１−フルオロ−２，４−ジニトロベンゼン、１−クロロ−２，４−ジニトロベンゼン、２，４，６−トリニトロベンゼン−１−スルホン酸等が挙げられる。
【００２５】
前処理剤は、チオール基のアルキル化剤のみからなってもよく、チオール基のアルキル化剤以外の成分を含んでいてもよい。例えば、バッファ等の溶媒、ｐＨ調整剤等を含んでいてもよい。前処理剤は、固体の状態であっても液体の状態であってもよい。
【００２６】
チオール化合物を含む検体への前処理剤の添加量は特に制限されず、検体に含まれるチオール基の量や、減少させたいチオール基の量に応じて調節できる。
具体的には、例えば、チオール基のアルキル化剤の量が検体に含まれるチオール基１モルに対して０．８モル以上となる添加量が好ましく、１モル以上となる添加量がより好ましく、１．５モル以上となる添加量がさらに好ましい。
【００２７】
前処理剤を添加する対象である検体の種類は、特に制限されない。例えば、喀痰、唾液、鼻汁、胸水等の生体から採取した物質が挙げられる。生体はヒトであっても、ヒト以外の動物であってもよい。
【００２８】
前処理剤は、これを添加する検体中の抗原の有無を検査するために好適に用いられるが、その他の目的に用いるものであってもよい。したがって、前処理剤が添加される検体は抗原を含むものであっても抗原を含まないものであってもよい。
【００２９】
＜前処理キット＞
本開示の前処理キットは、上述した前処理剤と、チオール化合物と、を備える。
前処理キットの具体的な構成は特に制限されない。例えば、前処理剤を収容した容器と、チオール基を有する化合物を収容した容器との組合せであってよい。この場合、前処理剤を収容した容器と、チオール基を有する化合物を収容した容器とは分離していても一体化していてもよい。
【００３０】
ある実施態様では、前処理キットは、前処理剤を収容する収容部と、チオール化合物を収容する収容部と、をそれぞれ備え、使用時に前処理剤とチオール化合物を検体にそれぞれ添加できるような構成（前処理デバイス）であってもよい。
【００３１】
前処理キットに含まれるチオール化合物の種類は、特に制限されない。例えば、ＮＡＬＣ、システイン、２−メルカプトエタノール、メルカプトエタノールアミン、ジチオトレイトール、チオグリコール酸、アセチルシステイン、システアミン、チオグリセリン等が挙げられる。前処理キットに含まれるチオール化合物は、１種でも２種以上であってもよい。前処理キットに含まれるチオール化合物は、固体の状態であっても液体の状態であってもよい。
【００３２】
＜抗原検査キット＞
本開示の抗原検査キットは、上述した前処理剤又は前処理キットと、抗原検査デバイスと、を備える。
抗原検査デバイスの具体的な構成は特に制限されないが、免疫学的手法による検査に用いるものであることが好ましい。例えば、イムノクロマト法による検査に一般的に使用される試験片であってもよく、その他の構成を有するデバイスであってもよい。
【００３３】
抗原検査キットの具体的な構成は、特に制限されない。例えば、前処理剤又は前処理キットと抗原検査デバイスとが分離した状態であっても、前処理剤又は前処理キットと抗原検出デバイスとが一体化した状態であってもよい。
【００３４】
前処理剤又は前処理キットと抗原検出デバイスとが一体化した状態の具体的な構成としては、抗原検出デバイスに前処理剤が含まれた構成（例えば、試験片の一部に前処理剤が仕込まれている）が挙げられる。
【００３５】
＜抗原検査方法＞
本開示の抗原検査方法は、検体にチオール化合物を添加する工程と、前記チオール化合物を添加した前記検体に上述した前処理剤を添加する工程と、前記前処理剤を添加した前記検体が抗原を含むか否かを免疫学的手法で検査する工程と、を備える。
【００３６】
本開示の抗原検査方法では、チオール化合物以外の検体の粘性を低下させる物質をチオール化合物と併用してもよい。このような物質としては、ＮａＯＨ等のアルカリ性物質、界面活性剤、糖、プロテアーゼ等が挙げられる。これらの中でもアルカリ性物質が好ましく、ＮａＯＨがより好ましい。
【００３７】
チオール化合物を添加した検体に前処理剤を添加するときの検体の液性は特に制限されないが、チオール基との反応性の観点からは、前処理剤を添加するときの検体は中性又はアルカリ性であることが好ましく、アルカリ性（例えば、ｐＨ７〜１４）であることがより好ましい。
【００３８】
一方、抗原の検出精度の観点からは、検体が抗原を含むか否かを検査する工程を実施するときの検体は中性又は中性に近い状態（例えば、ｐＨ６〜１０）であることが好ましい。このため、前処理剤を検体に添加した後の検体がアルカリ性である場合は、検体に中和剤を添加して中和することが好ましい。中和剤の種類は特に制限されないが、ＮａＨ２ＰＯ４等の抗原抗体反応に及ぼす影響が小さい物質を用いることが好ましい。
【００３９】
検体にチオール化合物を添加する工程と、チオール化合物を添加した検体に前処理剤を添加する工程とは、同時に行っても順次行ってもよいが、検出精度の観点からは検体にチオール化合物を添加する工程と、チオール化合物を添加した検体に前処理剤を添加する工程をこの順に行うことが好ましい。
【００４０】
検体にチオール化合物を添加する工程と、前処理剤を検体に添加する工程を実施する手法は、特に制限されない。例えば、検体にチオール化合物又は前処理剤を添加してもよく、チオール化合物又は前処理剤に検体を添加してもよい。添加はピペット、分注装置等を用いて行ってもよい。
【００４１】
検体にチオール化合物を添加する工程と、検体に前処理剤を添加する工程では、必要に応じて撹拌、遠心分離、ろ過等の処理を実施してもよい。
【００４２】
前処理剤を添加した検体が抗原を含むか否かを検査するための免疫学的手法は、特に制限されない。例えば、イムノクロマト法であってもよい。イムノクロマト法による検査は、一般的に使用される試験片を用いて行ってもよく、その他の構成を有するデバイスを用いて行ってもよい。
【００４３】
一般的なイムノクロマト法では、アルカリホスファターゼ（ＡＬＰ）等で標識された抗体（標識抗体）を仕込んだニトロセルロース膜等の試験片に検体を供給する。検体の供給は、浸漬、滴下等により行うことができる。試験片は、検出対象の抗原と反応する抗体（キャプチャー抗体）を仕込んだ部位（検出ライン）を備えている。試験片に供給した検体は、毛細管現象によって試験片内を移動する。検体が抗原を含む場合は、検体が検出ラインに達すると、抗原がキャプチャー抗体と結合して標識抗体とともに検出ラインに捕捉される。
【００４４】
次いで、抗体の標識に用いた物質の発色基質を試験片に供給する。抗体をＡＬＰで標識した場合の発色基質としては、５−ブロモ−４−クロロ−３−インドリルりん酸ナトリウム（ＢＣＩＰ）等）が挙げられる。検体が検出対象の抗原を含む場合は、発色基質が検出ラインに到達すると発色する。例えば、ＢＣＩＰが検出ラインに到達すると標識抗体のＡＬＰにより加水分解されて不溶化し、青色に発色する。この発色の有無により、検体が抗原を含むか否かを判別することができる。発色の有無の判別は目視で行っても、イムノクロマトリーダー等の装置を用いて行ってもよい。
【００４５】
本開示の抗原検査方法において検出対象とする抗原の種類は、特に制限されない。例えば、ＭＰＴ６４等の結核菌群に特異的な抗原を検出するものであってもよく、他の抗原を検出対象とするものであってもよい。
【実施例】
【００４６】
以下、実施例を参照して本開示の実施態様をさらに具体的に説明する。ただし、本開示はこれらの実施例に制限されない。
【００４７】
＜比較例１＞
抗酸菌が含まれていないことを確認した健常人の喀痰に、ＭＰＴ６４抗原（１６０ｎｇ／ｍＬ）を添加して検体を作製した。この検体（３０μＬ）に、０．５％（ｗ／ｖ）のＮＡＬＣと、５０ｍＭのクエン酸ナトリウムと、０．１Ｍ  ＮａＯＨとを含む水溶液（７５μＬ）を加え、ボルテックスミキサーで数秒間混合し、５分間静置した。このときの検体のｐＨは１２であった。その後、検体にＮａＨ２ＰＯ４（１．６８Ｍ）を加えてｐＨが７．２となるように中和し、遠心分離して上清を得た。
【００４８】
得られた上清９０μＬに、マウス由来抗ＭＰＴ６４モノクローナル抗体のＳＨ基にＡＬＰを標識した標識抗体（１０μＬ）を加えてボルテックスミキサーで数秒混合し、１分間静置して、検体と標識抗体の混合液を得た。標識抗体は、市販のＡＬＰ標識試薬（同仁化学社製、Ａｌｋａｌｉｎｅ  Ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ  Ｌａｂｅｌｉｎｇ  Ｋｉｔ−ＳＨ）を用いて、マウス由来抗ＭＰＴ６４モノクローナル抗体のＳＨ基にＡＬＰを標識して作製した。
【００４９】
得られた混合液の全量を９６穴プレートのウェルに加え、このウェルにイムノクロマト試験片を差し込んで１０分間静置した。１０分後、新たなウェルにＢＣＩＰ溶液を加え、混合液に浸漬したイムノクロマト試験片をこれに差し込んで１０分間静置した。ＢＣＩＰ溶液は、ＢＣＩＰ（１ｍｇ／ｍＬ）をバッファ（１００ｍＭ  ＣＡＰＳＯ、１ｍＭ  ＭｇＣｌ２、ｐＨ１０）に溶解して調製した。
【００５０】
その後、試験片の検出ラインの発色の度合いをイムノクロマトリーダーを用いて評価した。具体的には、イムノクロマトリーダーを用いて測定された検出ラインにおける吸光度の値が大きいほど検出ラインの発色の度合いが大きい（すなわち、抗原の検出感度が高い）と評価した。
【００５１】
吸光度の測定は、浜松ホトニクス社製のイムノクロマトリーダー（Ｃ１００６６−１０）を用いて実施した。具体的には、青色に発色するテストラインの吸光度を測定するため、イムノクロマト試験片に光を照射し、試験片上で反射された反射光をディテクターで検出した。試験片の検出ラインで吸光されて弱まった反射光と、検出ラインの周辺の反射光の強度をグラフ化した。検出ラインの近隣を基点にベースラインを引き、このベースラインを基に、下記式により、検出ラインにおける吸光度を計算した。下記式においてａはベースラインの反射光の強度であり、ｂは検出ラインにおける反射光の強度である。
吸光度（ＡＢＳ）＝ｌｏｇ（ａ／ｂ）
なお、１ＡＢＳは１０００ｍＡＢＳである。
【００５２】
試験に用いるイムノクロマト試験片は、下記のようにして作製した。
ニトロセルロース膜（Ｉｍｍｕｎｏｐｏｒｅ  ＲＰ、ＧＥヘルスケアジャパン社）を２５ｍｍ×３００ｍｍのサイズに切断した。次いで、２％（ｗ／ｖ）のスクロースを含むリン酸バッファ（ｐＨ７．４）で１．０ｍｇ／ｍＬになるように、標識抗体の作製に用いた抗体と異なるマウス由来抗ＭＰＴ６４モノクローナル抗体を希釈して、検出ライン用の抗体溶液を調製した。この抗体溶液を、ニトロセルロース膜の長辺の一端から１２ｍｍの位置に、１μＬ／ｃｍの塗布量となるように塗布して検出ラインを作製した。
【００５３】
次いで、２％（ｗ／ｖ）のスクロースを含むリン酸バッファ（ｐＨ７．４）で０．５ｍｇ／ｍＬになるようにウサギ由来抗マウスポリクローナル抗体を希釈して、コントロールライン用の抗体溶液を調製した。この抗体溶液を、ニトロセルロース膜の長辺の一端から１６ｍｍの位置に、１μＬ／ｃｍの塗布量となるように塗布して検出ラインを作製した。４０℃で２０分間乾燥させた後、ニトロセルロース膜をブロッキング試薬でブロッキングした。
【００５４】
片面に両面テープが貼り付けられたプラスチック製シートを５０ｍｍ×３００ｍｍのサイズに裁断した。同様に、ガラス繊維及びコットン混合のろ紙からなる吸収パッドを２９ｍｍ×３００ｍｍのサイズに切断した。プラスチック製シートの長辺側の一端と、上記で得たニトロセルロース膜の長辺側の一端とが合致するように、プラスチック製シートにニトロセルロース膜を両面テープで貼り付けた。次いで、プラスチック製シートの長辺側の他の一端と、吸収パッドの長辺側の一端とが合致するように、プラスチック製シートに吸収パッドを両面テープで貼り付けた。その後、裁断機で幅が４ｍｍとなるように裁断し、イムノクロマト試験片とした。
【００５５】
＜実施例１＞
比較例１において、ＮＡＬＣを添加して５分間静置した後の検体にヨード酢酸ナトリウム（ナカライテスク株式会社）０．５１ｍｇを加えてさらに５分間静置したこと以外は比較例１と同様にして得た上清を用いてイムノクロマト試験を行った。
【００５６】
＜実施例２＞
比較例１において、ＮＡＬＣを添加して５分間静置した後の検体にヨードアセトアミド（和光純薬工業株式会社）０．４５ｍｇを加えてさらに５分間静置したこと以外は比較例１と同様にして得た上清を用いてイムノクロマト試験を行った。
【００５７】
＜実施例３＞
比較例１において、ＮＡＬＣを添加して５分間静置した後の検体にＮ−メチルマレイミド（東京化成工業株式会社）０．５３ｍｇを加えてさらに５分間静置したこと以外は比較例１と同様にして得た上清を用いてイムノクロマト試験を行った。
【００５８】
＜実施例４＞
比較例１において、ＮＡＬＣを添加して５分間静置した後の検体にＮ−エチルマレイミド（東京化成工業株式会社）０．６ｍｇを加えてさらに５分間静置したこと以外は比較例１と同様にして得た上清を用いてイムノクロマト試験を行った。結果を図１に示す。
【００５９】
図１に示すように、実施例１〜４は比較例１に比べて検出ラインにおける吸光度の値が大きく、発色の度合いが大きかった。このことから、チオール基のアルキル化剤を添加した検体は、チオール基のアルキル化剤を添加していない検体に比べて抗原の検出感度に優れていることがわかった。
また、実施例１〜４のいずれにおいてもＮＡＬＣの添加により低下した検体の粘性は再び上昇せず、比較例１と同程度の十分量の検体を検出ラインまで展開することができた。
【００６０】
＜比較例２＞
比較例１において、抗体のＳＨ基にＡＬＰを標識した標識抗体に替えて抗体のＮＨ２基にＡＬＰを標識したＡＬＰ標識抗体（１０μＬ）を使用したこと以外は比較例１と同様にして、検体のイムノクロマト試験を行った。ＡＬＰ標識抗体は、市販のＡＬＰ標識試薬（同仁化学社のＡｌｋａｌｉｎｅ  Ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ  Ｌａｂｅｌｉｎｇ  Ｋｉｔ−ＮＨ２）を用いて、マウス由来抗ＭＰＴ６４モノクローナル抗体のＮＨ２基にＡＬＰを標識して作製した。
【００６１】
＜実施例５＞
比較例２において、ＮＡＬＣを添加して５分間静置した後の検体にヨード酢酸ナトリウム（ナカライテスク株式会社）０．５１ｍｇを加えてさらに５分間静置したこと以外は比較例２と同様にして得た上清を用いてイムノクロマト試験を行った。
【００６２】
＜実施例６＞
比較例２において、ＮＡＬＣを添加して５分間静置した後の検体にヨードアセトアミド（和光純薬工業株式会社）０．４５ｍｇを加えてさらに５分間静置したこと以外は比較例２と同様にして得た上清を用いてイムノクロマト試験を行った。
【００６３】
＜実施例７＞
比較例２において、ＮＡＬＣを添加して５分間静置した後の検体にＮ−メチルマレイミド（東京化成工業株式会社）０．５３ｍｇを加えてさらに５分間静置したこと以外は比較例２と同様にして得た上清を用いてイムノクロマト試験を行った。
【００６４】
＜実施例８＞
比較例２において、ＮＡＬＣを添加して５分間静置した後の検体にＮ−エチルマレイミド（東京化成工業株式会社）０．６ｍｇを加えてさらに５分間静置したこと以外は比較例２と同様にして得た上清を用いてイムノクロマト試験を行った。結果を図２に示す。
【００６５】
図２に示すように、実施例５〜８は比較例２に比べて検出ラインにおける吸光度の値が大きく、発色の度合いが大きかった。このことから、チオール基のアルキル化剤を添加した検体は、チオール基のアルキル化剤を添加していない検体に比べて抗原の検出感度に優れていることがわかった。
また、実施例５〜８のいずれにおいてもＮＡＬＣの添加により低下した検体の粘性は再び上昇せず、比較例２と同程度の十分量の検体を検出ラインまで展開することができた。
【００６６】
＜比較例３＞
抗酸菌が含まれていないことを確認した健常人の喀痰に、ＭＰＴ６４抗原（３０ｎｇ／ｍＬ）を添加して検体を作製した。この検体（４０μＬ）に、０．５％（ｗ／ｖ）のＮＡＬＣと、５０ｍＭのクエン酸ナトリウムと、０．１Ｍ  ＮａＯＨとを含む水溶液（１００μＬ）を加え、ボルテックスミキサーで数秒間混合し、５分間静置した。このときの検体のｐＨは１２であった。その後、実施例９及び実施例１０の検体と体積を等しくするためにリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）を１６．２μＬ添加して５分間静置した。その後、検体にＮａＨ２ＰＯ４（１．６８Ｍ）を加えてｐＨが７．２となるように中和し、遠心分離して上清を得た。得られた上清９０μＬを用いて検体を４種（検体Ａ〜Ｄ）準備し、比較例１と同様にしてイムノクロマト試験を行った。結果を図３に示す。
【００６７】
＜実施例９＞
検体にＮａＨ２ＰＯ４を加える前に、ＰＢＳに替えて、ＰＢＳに溶解したヨード酢酸ナトリウム（２００ｍＭ、ナカライテスク株式会社）を１６．２μＬ添加（チオール基１モルに対して１モル）して５分間静置したこと以外は比較例３と同様にしてイムノクロマト試験を行った。
【００６８】
＜実施例１０＞
検体にＮａＨ２ＰＯ４を加える前に、ＰＢＳに替えて、ＰＢＳに溶解したヨード酢酸ナトリウム（４００ｍＭ、ナカライテスク株式会社）を１６．２μＬ添加（チオール基１モルに対して２モル）して５分間静置したこと以外は比較例３と同様にしてイムノクロマト試験を行った。
【００６９】
図３に示すように、検体Ａ〜Ｄのいずれにおいても実施例９、１０は比較例３に比べて検出ラインにおける吸光度の値が大きく、発色の度合いが大きかった。このことから、チオール基のアルキル化剤を添加した検体は、チオール基のアルキル化剤を添加していない検体に比べて抗原の検出感度に優れていることがわかった。
また、検体Ａ〜Ｄのいずれにおいても実施例９、１０でＮＡＬＣの添加により低下した検体の粘性は再び上昇せず、比較例３と同程度の十分量の検体を検出ラインまで展開することができた。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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