(57)【要約】  本発明は、がん細胞特異的に発現するポドカリキシンに対する抗体の製造方法であって、がん細胞特異的糖鎖構造を発現する細胞に、ポドカリキシンの全部又は一部をコードする核酸を導入してがん細胞特異的ポドカリキシン又はその一部を発現させる工程と、当該がん細胞特異的ポドカリキシン又はその一部で非ヒト哺乳動物を免疫して抗体を得る工程と、当該抗体を、精製したがん細胞特異的ポドカリキシン又はその一部を用いた一次スクリーニングで精製する工程と、を含む方法を提供する。
2016129660.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
がん細胞特異的に発現するポドカリキシンに対する抗体の製造方法であって、
がん細胞特異的糖鎖構造を発現する細胞に、ポドカリキシンの全部又は一部をコードする核酸を導入してがん細胞特異的ポドカリキシン又はその一部を発現させる工程と、
前記がん細胞特異的ポドカリキシン又はその一部で非ヒト哺乳動物を免疫して抗体を得る工程と、
前記抗体を、精製したがん細胞特異的ポドカリキシン又はその一部を用いた一次スクリーニングで精製する工程と、を含む方法。
【請求項２】
前記一次スクリーニングの後、さらに、がん細胞又は組織と、正常細胞又は組織とに対する抗体の反応性を比較し、がん細胞又は組織に対する反応性が、正常細胞又は組織に対する反応性より優位に高い抗体を選択する工程を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記がん細胞特異的糖鎖構造を発現する細胞が、がん細胞である、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
前記がん細胞が、膠芽腫細胞株ＬＮ２２９由来細胞である、請求項３に記載の方法。
【請求項５】
前記がん細胞特異的糖鎖構造を発現する細胞が、糖鎖転移酵素を導入し、がん細胞特異的糖鎖構造を発現するように人工的に改変した細胞である、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項６】
前記がん細胞又は組織に反応し、前記正常細胞又は組織に反応しない抗体を選択する工程は、免疫組織染色又は免疫細胞染色によって行われる、請求項２から５のいずれか１項に記載の方法。
【請求項７】
以下（ｉ）〜（ｉｉｉ）のいずれかのがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメント：
（ｉ）以下の６つのＣＤＲの少なくとも１つを有する
重鎖ＣＤＲ１：ＧＦＮＦＮＴＮＡＭＮ（配列番号：２）
重鎖ＣＤＲ２：ＬＩＲＳＫＳＮＮＹＡＴＹＹＡＤＳＶＫＤ（配列番号：３）
重鎖ＣＤＲ３：ＧＹＧＳＹ（配列番号：４）
軽鎖ＣＤＲ１：ＫＡＳＱＳＶＮＮＤＶＡ（配列番号：５）
軽鎖ＣＤＲ２：ＦＡＳＮＲＹＴ（配列番号：６）
軽鎖ＣＤＲ３：ＱＬＤＹＮＳＴＷＴ（配列番号：７）；
（ｉｉ）（ｉ）の重鎖ＣＤＲ１〜３及び軽鎖ＣＤＲ１〜３において、１から数個のアミノ酸の付加、置換、又は欠失を含む重鎖ＣＤＲ１〜３及び軽鎖ＣＤＲ１〜３の少なくとも１つを有する；及び
（ｉｉｉ）重鎖ＣＤＲ１〜３及び軽鎖ＣＤＲ１〜３の少なくとも１つが、（ｉ）の重鎖ＣＤＲ１〜３及び軽鎖ＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列と８０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を有する。
【請求項８】
配列番号：１０で表されるアミノ酸配列を含む重鎖；
配列番号：１０で表されるアミノ酸配列において、１から数個のアミノ酸の付加、置換、又は欠失を含むアミノ酸配列を含む重鎖；又は、
配列番号：１０で表されるアミノ酸配列と８０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含む重鎖を含むがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメント。
【請求項９】
配列番号：８で表されるアミノ酸配列を含む軽鎖；
配列番号：８で表されるアミノ酸配列において、１から数個のアミノ酸の付加、置換、又は欠失を含むアミノ酸配列を含む軽鎖；又は、
配列番号：８で表されるアミノ酸配列と８０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含む軽鎖を含むがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメント。
【請求項１０】
Ｆｃ領域に１以上のＮ−結合型糖鎖が結合し、該Ｎ−結合型糖鎖の還元末端のＮ−アセチルグルコサミンにフコースが結合していない、請求項７から９のいずれか１項に記載のがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメント。
【請求項１１】
請求項７に記載の重鎖ＣＤＲ１〜３及び軽鎖ＣＤＲ１〜３のいずれか１つをコードする核酸。
【請求項１２】
請求項８に記載された重鎖、並びに請求項９に記載された軽鎖のいずれか１つをコードする核酸。
【請求項１３】
請求項１１又は１２に記載の核酸を含む発現ベクター。
【請求項１４】
請求項１３に記載の発現ベクターを含む形質転換体。
【請求項１５】
請求項１４に記載の形質転換体で抗体を発現させる工程と、
前記抗体を回収する工程と、を含むがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体の製造方法。
【請求項１６】
請求項７から１０のいずれか１項に記載のがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメントを有効成分として含む医薬組成物。
【請求項１７】
抗がん活性を有する物質を結合させた請求項７から１０のいずれか１項に記載のがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメントを有効成分として含む医薬組成物。
【請求項１８】
がんの予防又は治療剤である、請求項１６又は１７に記載の医薬組成物。
【請求項１９】
被検者から採取したサンプル中のがん細胞特異的ポドカリキシンを、請求項１から６のいずれか１項に記載された方法で製造されたがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は請求項７〜１０のいずれか１項に記載のがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体若しくはその抗原結合フラグメントを用いて、測定する工程を含む、がんの検査方法。
【請求項２０】
請求項１から６のいずれか１項に記載された方法で製造されたがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は請求項７〜１０のいずれか１項に記載のがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体若しくはその抗原結合フラグメントを含む、がんの検査用キット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、がん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体とその製造方法、及びがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体を含む医薬組成物等に関する。
【背景技術】
【０００２】
ポドカリキシンは、腎糸球体の上皮細胞（ｐｏｄｏｃｙｔｅ；たこ足細胞）で発見されたＩ型膜貫通タンパク質である（非特許文献１）。ポドカリキシンは５５８残基のアミノ酸からなり、造血幹細胞マーカーであるＣＤ３４と高い相同性をもつ。ポドカリキシンは、細胞外領域にＮ結合型糖鎖付加部位、グリコサミノグリカン付加部位、及び、末端にシアル酸が多く付加したＯ結合型糖鎖付加部位（ムチンドメイン）を有し、高度に糖鎖付加されたシアロムチンである。発現している組織によって糖鎖付加が異なるため分子量も異なるが、１５０−２００ｋＤａにも達する。ポドカリキシンは細胞の接着性、形態形成、がんの進行等に関与する。【０００３】
ポドカリキシンはシアル酸や硫酸基等の糖鎖付加によって負に荷電し、細胞接着を阻害する。一方、ポドカリキシンは細胞骨格タンパク質等と結合して腎臓のろ過機能に密接に関わっており、接着分子としても機能する（非特許文献２）。近年、ＭＤＣＫＩＩ細胞において、低分子量Ｇタンパク質Ｒａｂとそのエフェクター分子によってポドカリキシンは極性輸送され、その負電荷によって管腔形成に関わっていることが明らかになってきた（非特許文献３）。ポドカリキシンは、精巣腫瘍（非特許文献４）、乳がん（非特許文献５）、前立腺がん（非特許文献６）、卵巣がん（非特許文献７）、大腸がん（非特許文献８）、膵がん（非特許文献９）において高発現しており、悪性度や予後不良のマーカーであることが報告された。がん細胞に発現するポドカリキシン上の糖鎖は内皮細胞上に発現するＥ−、Ｐ−、Ｌ−セレクチンのリガンドとなり、がん細胞の接着・浸潤・転移に関与している（非特許文献９、１０）。【０００４】
また、ポドカリキシンは未分化細胞に発現しており、近年、未分化細胞のマーカーであるＴＲＡ−１−６０やＴＲＡ−１−８１は、ポドカリキシン上のケラタン硫酸をエピトープとする抗体であるが、細胞を分化誘導させると、ポドカリキシンへの反応性が消失することが報告された（非特許文献１１）。また、Ｂｕｒｋｈｏｌｄｅｒｉａ  ｃｅｎｏｃｅｐａｃｉａから精製されたレクチンであるＢＣ２Ｌ−Ｃは未分化細胞マーカーであるが、ポドカリキシン上のＯ型糖鎖に特異的に結合する（非特許文献１２）。これらのことから、ポドカリキシン上の糖鎖修飾は、未分化細胞の分化や、がん細胞における悪性度等を反映していると考えられる。【０００５】
がん細胞に発現しているポドカリキシンのみに特異的に結合する抗体があれば、医薬、診断薬、試薬等として有用であると考えられる。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】Ｋｅｒｊａｓｃｈｋｉ  Ｄ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ  Ｃｌｉｎ  Ｉｎｖｅｓｔ．  １９８６；  ７８（５）：  １１４２−１１４９．
【非特許文献２】Ｔａｋｅｄａ  Ｔ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ  Ｃｌｉｎ  Ｉｎｖｅｓｔ．  ２００１；  １０８（２）：  ２８９−３０１．
【非特許文献３】Ｙａｓｕｄａ  Ｋ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｍｏｌ  Ｂｉｏｌ  Ｃｅｌｌ．  ２０１２；  ２３（１６）：  ３２２９−３２３９．
【非特許文献４】Ｓｃｈｏｐｐｅｒｌｅ  ＷＭ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｂｉｏｃｈｅｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ  Ｒｅｓ  Ｃｏｍｍｕｎ．  ２００３；  ３００（２）：  ２８５−２９０．
【非特許文献５】Ｓｏｍａｓｉｒｉ  Ａ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．  ２００４;  ６４（１５）：  ５０６８−５０７３．
【非特許文献６】Ｃａｓｅｙ  Ｇ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｈｕｍ  Ｍｏｌ  Ｇｅｎｅｔ．  ２００６；  １５（５）：  ７３５−７４１．
【非特許文献７】Ｃｉｐｏｌｌｏｎｅ  ＪＡ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｃｌｉｎ  Ｅｘｐ  Ｍｅｔａｓｔａｓｉｓ．  ２０１２；  ２９（３）：  ２３９−２５２．
【非特許文献８】Ｌａｒｓｓｏｎ  Ａ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｂｒ  Ｊ  Ｃａｎｃｅｒ．  ２０１１；  １０５（５）：  ６６６−６７２．
【非特許文献９】Ｄａｌｌａｓ  ＭＲ  ｅｔ  ａｌ．，  Ａｍ  Ｊ  Ｐｈｙｓｉｏｌ  Ｃｅｌｌ  Ｐｈｙｓｉｏｌ．２０１２；  ３０３（６）：  Ｃ６１６−Ｃ６２４．
【非特許文献１０】Ｔｈｏｍａｓ  ＳＮ  ｅｔ  ａｌ．，  Ａｍ  Ｊ  Ｐｈｙｓｉｏｌ  Ｃｅｌｌ  Ｐｈｙｓｉｏｌ．  ２００９；  ２９６（３）：  Ｃ５０５−Ｃ５１３．
【非特許文献１１】Ｓｃｈｏｐｐｅｒｌｅ  ＷＭ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ．  ２００７；  ２５（３）：  ７２３−７３０．
【非特許文献１２】Ｔａｔｅｎｏ  Ｈ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ  Ｔｒａｎｓｌ  Ｍｅｄ．  ２０１３；  ２（４）：  ２６５−２７３．
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本発明が解決しようとする課題は、がん細胞特異的に発現するポドカリキシンに対する抗体の製造方法を提供することである。また、本発明が解決しようとする課題は、がん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメントを提供することである。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明者らは、上記の事実より、がん細胞においては、糖鎖付加によってポドカリキシンの立体構造が変化することが予想されることから、変化した立体構造を有するポドカリキシンを認識する抗体を樹立することにより、がん細胞特異的に発現するポドカリキシンに対する抗体の樹立が可能であると考えた。
そこで、本発明者らは、上記課題を解決するために、がん細胞特異的糖鎖構造を発現する細胞にがん細胞特異的ヒトポドカリキシン又はその一部を発現させ、発現させたがん細胞特異的ヒトポドカリキシン又はその一部を非ヒト哺乳動物に免疫することで、がん細胞特異的に発現するポドカリキシンに対する抗体の樹立に成功した。【０００９】
すなわち、本発明は、
〔１〕がん細胞特異的に発現するポドカリキシンに対する抗体の製造方法であって、
がん細胞特異的糖鎖構造を発現する細胞に、ポドカリキシンの全部又は一部をコードする核酸を導入してがん細胞特異的ポドカリキシン又はその一部を発現させる工程と、
前記がん細胞特異的ポドカリキシン又はその一部で非ヒト哺乳動物を免疫して抗体を得る工程と、
前記抗体を、精製したがん細胞特異的ポドカリキシン又はその一部を用いた一次スクリーニングで精製する工程と、を含む方法；
〔２〕前記一次スクリーニングの後、さらに、がん細胞又は組織と、正常細胞又は組織とに対する抗体の反応性を比較し、がん細胞又は組織に対する反応性が、正常細胞又は組織に対する反応性より優位に高い抗体を選択する工程を含む、上記〔１〕に記載の方法；
〔３〕前記がん細胞特異的糖鎖構造を発現する細胞が、がん細胞である、上記〔１〕又は〔２〕に記載の方法；
〔４〕前記がん細胞が、膠芽腫細胞株ＬＮ２２９由来細胞である、上記〔３〕に記載の方法；
〔５〕前記がん細胞特異的糖鎖構造を発現する細胞が、糖鎖転移酵素を導入し、がん細胞特異的糖鎖構造を発現するように人工的に改変した細胞である、上記〔１〕又は〔２〕に記載の方法；
〔６〕前記がん細胞又は組織に反応し、前記正常細胞又は組織に反応しない抗体を選択する工程は、免疫組織染色又は免疫細胞染色によって行われる、上記〔２〕から〔５〕のいずれかに記載の方法；
〔７〕以下（ｉ）〜（ｉｉｉ）のいずれかのがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメント：
（ｉ）以下の６つのＣＤＲの少なくとも１つを有する
重鎖ＣＤＲ１：ＧＦＮＦＮＴＮＡＭＮ（配列番号：２）
重鎖ＣＤＲ２：ＬＩＲＳＫＳＮＮＹＡＴＹＹＡＤＳＶＫＤ（配列番号：３）
重鎖ＣＤＲ３：ＧＹＧＳＹ（配列番号：４）
軽鎖ＣＤＲ１：ＫＡＳＱＳＶＮＮＤＶＡ（配列番号：５）
軽鎖ＣＤＲ２：ＦＡＳＮＲＹＴ（配列番号：６）
軽鎖ＣＤＲ３：ＱＬＤＹＮＳＴＷＴ（配列番号：７）；
（ｉｉ）（ｉ）の重鎖ＣＤＲ１〜３及び軽鎖ＣＤＲ１〜３において、１から数個のアミノ酸の付加、置換、又は欠失を含む重鎖ＣＤＲ１〜３及び軽鎖ＣＤＲ１〜３の少なくとも１つを有する；及び
（ｉｉｉ）重鎖ＣＤＲ１〜３及び軽鎖ＣＤＲ１〜３の少なくとも１つが、（ｉ）の重鎖ＣＤＲ１〜３及び軽鎖ＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列と８０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を有する；
〔８〕配列番号：１０で表されるアミノ酸配列を含む重鎖；
配列番号：１０で表されるアミノ酸配列において、１から数個のアミノ酸の付加、置換、又は欠失を含むアミノ酸配列を含む重鎖；又は、
配列番号：１０で表されるアミノ酸配列と８０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含む重鎖
を含むがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメント；
〔９〕配列番号：８で表されるアミノ酸配列を含む軽鎖；
配列番号：８で表されるアミノ酸配列において、１から数個のアミノ酸の付加、置換、又は欠失を含むアミノ酸配列を含む軽鎖；又は、
配列番号：８で表されるアミノ酸配列と８０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含む軽鎖
を含むがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメント；
〔１０〕Ｆｃ領域に１以上のＮ−結合型糖鎖が結合し、該Ｎ−結合型糖鎖の還元末端のＮ−アセチルグルコサミンにフコースが結合していない、上記〔７〕から〔９〕のいずれかに記載のがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメント；
〔１１〕上記〔７〕に記載の重鎖ＣＤＲ１〜３及び軽鎖ＣＤＲ１〜３のいずれか１つをコードする核酸；
〔１２〕上記〔８〕に記載された重鎖、並びに上記〔９〕に記載された軽鎖のいずれか１つをコードする核酸；
〔１３〕上記〔１１〕又は〔１２〕に記載の核酸を含む発現ベクター；
〔１４〕上記〔１３〕に記載の発現ベクターを含む形質転換体；
〔１５〕上記〔１４〕に記載の形質転換体で抗体を発現させる工程と、
前記抗体を回収する工程と、を含むがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体の製造方法；
〔１６〕上記〔７〕から〔１０〕のいずれかに記載のがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメントを有効成分として含む医薬組成物；
〔１７〕抗がん活性を有する物質を結合させた上記〔７〕から〔１０〕のいずれかに記載のがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメントを有効成分と
して含む医薬組成物；
〔１８〕がんの予防又は治療剤である、上記〔１６〕又は〔１７〕に記載の医薬組成物；
〔１９〕被検者から採取したサンプル中のがん細胞特異的ポドカリキシンを、上記〔１〕から〔６〕のいずれかに記載された方法で製造されたがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は上記〔７〕〜〔１０〕のいずれかに記載のがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体若しくはその抗原結合フラグメントを用いて、測定する工程を含む、がんの検査方法；
〔２０〕上記〔１〕から〔６〕のいずれかに記載された方法で製造されたがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体若しくはその抗原結合フラグメント、又は上記〔７〕〜〔１０〕のいずれかに記載のがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体若しくはその抗原結合フラグメントを含む、がんの検査用キット、
に関する。
【発明の効果】
【００１０】
本発明に係る抗体の製造方法によれば、がん細胞特異的に発現するポドカリキシンに対する抗体を得ることができる。
がん細胞特異的に発現するポドカリキシンに対する抗体によれば、抗体による抗腫瘍活性をがん細胞特異的に発揮することができ、副作用の低減された医薬を得ることができる。また、がん細胞を標的とする薬剤の送達にも有用であり、診断薬や試薬としての有用性も高い。
本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体は、研究用試薬、診断薬、医薬品候補として有用である。
【図面の簡単な説明】
【００１１】
【図１】図１は、ポドカリキシンに対する細胞特異的モノクローナル抗体（Ｃａｎｃｅｒ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｍＡｂ：  ＣａｓＭａｂ）であるＰｃＭａｂ−６と、がん特異的でない抗ポドカリキシン抗体ＰｃＭａｂ−４７の、乳がん細胞株ＭＣＦ−７、皮膚微小血管の欠陥内皮細胞、及び腎上皮細胞由来のＨＥＫ−２９３Ｔに対するフローサイトメトリーの結果を示す。
【図２】図２は、ポドカリキシンに対するＣａｓＭａｂであるＰｃＭａｂ−６と、抗ポドカリキシン抗体（ポリクローナル抗体）の、乳がん組織アレイを用いた免疫組織染色の結果を示す。
【図３】図３は、ポドカリキシンに対するＣａｓＭａｂであるＰｃＭａｂ−６と、抗ポドカリキシン抗体ＰｃＭａｂ−４７の、乳がん組織アレイを用いた免疫組織染色の結果を示す。
【図４】図４は、ポドカリキシンに対するＣａｓＭａｂであるヒトキメラ型抗体ｃｈＰｃＭａｂ−６と、ヒトキメラ型抗ポドカリキシン抗体ｃｈＰｃＭａｂ−４７の、膠芽腫細胞株ＬＮ２２９、ＬＮ２２９細胞にヒトポドカリキシンを強制発現させた細胞（ＬＮ２２９／ｈＰＯＤＸＬ）、悪性中皮腫細胞株ＭＳＴＯ−２１１Ｈ、ＮＣＩ−Ｈ２２６、乳がん細胞株ＭＣＦ−７、骨肉腫細胞株Ｕ２−ＯＳ、血管内皮細胞株に対するフローサイトメトリーの結果を示す。
【図５】図５は、ＬＮ２２９／ＰＯＤＸＬに対するｃｈＰｃＭａｂ−６のＡＤＣＣ活性を測定した結果を示す。
【図６】図６は、ｃｈＰｃＭａｂ−６のｉｎ  ｖｉｔｒｏでの活性評価を示す。
【図７】図７は、ｃｈＰｃＭａｂ−６とｃｈＰｃＭａｂ−４７のｉｎ  ｖｉｖｏでの活性評価を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１２】
本発明に係るがん細胞特異的に発現するポドカリキシンに対する抗体の製造方法は、
がん細胞特異的糖鎖構造を発現する細胞に、ポドカリキシンの全部又は一部をコードする核酸を導入してがん細胞特異的ポドカリキシン又はその一部を発現させる工程と、
前記がん細胞特異的ポドカリキシン又はその一部を非ヒト哺乳動物に免疫して抗体を得る工程と、
前記抗体を、精製したがん細胞特異的ポドカリキシン又はその一部を用いた一次スクリーニングで精製する工程と、を含む。
【００１３】
本明細書において「がん細胞特異的に発現するポドカリキシンに対する抗体」は、がん細胞に発現するポドカリキシンとの反応性の方が、正常細胞に発現するポドカリキシンとの反応性より有意に高い抗体を意味する。一態様において、「がん細胞特異的に発現するポドカリキシンに対する抗体」は、がん細胞に発現するポドカリキシンと反応し、正常細胞に発現するポドカリキシンとはまったく反応しない。一態様において、「がん細胞特異的に発現するポドカリキシンに対する抗体」は、がん細胞に発現するポドカリキシンとの反応性が著しく高い一方、正常細胞に発現するポドカリキシンともある程度反応する。
本明細書においては、「がん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体」は、「がん細胞特異的に発現するポドカリキシンに対する抗体」と同義である。
【００１４】
ポドカリキシンは、精巣腫瘍、乳がん、前立腺がん、卵巣がん、大腸がん、膵がん等に高発現している一方、正常細胞にも発現している。
ヒトポドカリキシン（ＢＣ１４３３１８，  ＮＭ＿００１０１８１１１）は、配列番号：１で表されるタンパク質であるが、本明細書において「ポドカリキシン」という場合、その機能的な変異体も含まれる。
【００１５】
本明細書において「抗体」は、一対のジスルフィド結合で安定化された２本の重鎖（Ｈ鎖）と２本の軽鎖（Ｌ鎖）が会合した構造をとる。重鎖は、重鎖可変領域ＶＨ、重鎖定常領域ＣＨ１、ＣＨ２、ＣＨ３、及びＣＨ１とＣＨ２の間に位置するヒンジ領域からなり、軽鎖は、軽鎖可変領域ＶＬと軽鎖定常領域ＣＬとからなる。この中で、ＶＨとＶＬからなる可変領域断片（Ｆｖ）が、抗原結合に直接関与し、抗体に多様性を与える領域である。また、ＶＬ、ＣＬ、ＶＨ、ＣＨ１からなる抗原結合領域をＦａｂ領域と呼び、ヒンジ領域、ＣＨ２、ＣＨ３からなる領域をＦｃ領域と呼ぶ。
可変領域のうち、直接抗原と接触する領域は特に変化が大きく、相補性決定領域（ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｉｔｙ−ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ  ｒｅｇｉｏｎ：  ＣＤＲ）と呼ばれる。ＣＤＲ以外の比較的変異の少ない部分をフレームワーク（ｆｒａｍｅｗｏｒｋ  ｒｅｇｉｏｎ：  ＦＲ）と呼ぶ。軽鎖と重鎖の可変領域には、それぞれ３つのＣＤＲ（重鎖ＣＤＲ１〜３、及び軽鎖ＣＤＲ１〜３）が存在する。
【００１６】
本明細書において「がん細胞特異的糖鎖構造を発現する細胞」は、がん細胞特異的糖鎖構造を発現する細胞であればどのような細胞であってもよい。例えば、がん細胞であってもよいし、非がん細胞に必要な糖転位酵素を導入し、がん細胞特異的糖鎖構造を発現するように人工的に改変した細胞であってもよい。「がん細胞特異的糖鎖構造を発現する細胞」としては、例えば以下の細胞が挙げられる。
−膠芽腫細胞株ＬＮ２２９由来細胞。
本発明者らは、これまでに、脳腫瘍では悪性度に応じてケラタン硫酸修飾が亢進することを確認し（Ｋａｔｏ  Ｙ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｂｉｏｃｈｅｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ  Ｒｅｓ  Ｃｏｍｍｕｎ．  ２００８；  ３６９（４）：  １０４１−１０４６．）、脳腫瘍細胞株の中から高度にケラタン硫酸修飾の起こっているＬＮ２２９細胞を発見している（Ｈａｙａｔｓｕ  Ｎ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｂｉｏｃｈｅｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ  Ｒｅｓ  Ｃｏｍｍｕｎ．  ２００８；  ３６８（２）：  ２１７−２２２．）。また、ａｓｔｒｏｃｙｔｉｃ  ｔｕｍｏｒにおいてポドカリキシンが悪性度と相関して高発現していることを報告している（Ｈａｙａｔｓｕ  Ｎ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｂｉｏｃｈｅｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ  Ｒｅｓ  Ｃｏｍｍｕｎ．  ２００８；  ３７４（２）：  ３９４−３９８．）。さらに、ＬＮ２２９細胞により発現させたタンパク質には、シアル酸ががん細胞特異的に付加することを報告している（Ｋａｔｏ  Ｙ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｃｉ  Ｒｅｐ．  ２０１４；  ４：  ５９２４）。
−膠芽腫細胞株ＬＮ４６４細胞に糖転移酵素のＫＳＧａｌ６ＳＴを遺伝子導入した細胞（Ｈａｙａｔｓｕ  Ｎ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｂｉｏｃｈｅｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ  Ｒｅｓ  Ｃｏｍｍｕｎ.  ２００８；  ３６８：  ２１７−２２２．）。本発明者らは、この文献において、膠芽腫細胞株ＬＮ４６４細胞に糖転移酵素のＫＳＧａｌ６ＳＴを遺伝子導入すると、脳腫瘍組織で高発現することが知られているケラタン硫酸の高発現株ができることを報告している。
−子宮頸がん細胞（ＨｅＬａ細胞）や白血病細胞（Ｎａｍａｌｗａ細胞）に糖転移酵素を遺伝子導入した細胞（Ｋｉｍｕｒａ  Ｈ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｂｉｏｃｈｅｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ  Ｒｅｓ  Ｃｏｍｍｕｎ．  １９９７  Ａｕｇ  ８；  ２３７（１）：  １３１−１３７．）。この文献では、本発明者らが、子宮頸がん細胞（ＨｅＬａ細胞）や白血病細胞（Ｎａｍａｌｗａ細胞）に糖転移酵素を遺伝子導入し、どのような糖鎖を付加するかを詳細に見ている。
−Ｎａｍａｌｗａ細胞に糖転移酵素を遺伝子導入した細胞（Ｋａｎｅｋｏ  Ｍ  ｅｔ  ａｌ．，  ＦＥＢＳ  Ｌｅｔｔ．  １９９９；  ４５２（３）：  ２３７−２４２．）。この文献では、本発明者らが、Ｎａｍａｌｗａ細胞に糖転移酵素を遺伝子導入し、どのような糖鎖を付加するかを詳細に見ている。
−サル腎臓細胞（ＣＯＳ１細胞）に糖転移酵素を導入した細胞（Ｋａｎｅｋｏ  Ｍ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｂｌｏｏｄ．  １９９７；  ９０（２）：  ８３９−８４９．）。
−ハムスター卵巣細胞（ＣＨＯ−Ｌｅｃ１細胞）に糖転移酵素を導入した細胞（Ｋａｎｅｋｏ  Ｍ  ｅｔ  ａｌ．，  ＦＥＢＳ  Ｌｅｔｔ．  ２００３；  ５５４（３）：  ５１５−５１９．）。
【００１７】
本明細書において「がん細胞特異的糖鎖構造を発現する細胞に、ポドカリキシンの全部又は一部をコードする核酸を導入して発現させる工程」は、常法に従って当業者が行うことができるが、本発明に係るがん細胞特異的に発現するポドカリキシンに対する抗体の製造方法においては、がん細胞にポドカリキシンの全部又は一部をコードする核酸を導入して強制発現させることにより得られたがん細胞特異的ポドカリキシン又はその一部を抗原として用いることを特徴とする。ポドカリキシンの一部をコードする核酸としては、がん細胞特異的糖鎖が結合しているポドカリキシンの部分をコードする核酸を用いることができる。がん細胞特異的糖鎖が結合しているポドカリキシンの部分をコードする核酸としては、ポドカリキシンの細胞外領域をコードする核酸が挙げられる。本明細書において核酸は目的のタンパク質を発現できる限りどのような核酸であってもよいが、ＤＮＡ、ＲＮＡ、又はＤＮＡ／ＲＮＡキメラ、人工核酸等が挙げられる。
【００１８】
一態様において、ポドカリキシンの全部又は一部を分泌型として発現させる。これは、ポドカリキシンの細胞外領域をコードする核酸を、がん細胞特異的糖鎖構造を発現する細胞に導入することにより行うことができる。分泌型として発現されたポドカリキシンは、がん細胞特異的糖鎖構造を発現する細胞の培養上清から精製することができる。例えば、ポドカリキシンを適当なタグをつけた状態で発現させ、かかるタグを利用して精製してもよい。
【００１９】
本明細書において「がん細胞特異的ポドカリキシン又はその一部を非ヒト哺乳動物に免疫して抗体を得る工程」は、がん細胞特異的ポドカリキシン又はその一部を非ヒト哺乳動物に投与することによって行うことができる。精製したがん細胞特異的ポドカリキシン又はその一部を用いてもよい。
免疫は、例えば、がん細胞特異的ポドカリキシン又はその一部を、必要に応じてアジュバントと共に、皮下、皮内、筋肉内、静脈内、又は腹腔内に注射して行うことができる。
【００２０】
非ヒト哺乳動物の免疫工程は、がん細胞特異的ポドカリキシンを分泌型として発現させず、膜タンパク質として発現させ、細胞ごと非ヒト哺乳動物に投与して行ってもよい。
免疫は、常法に従って行うことができるが、例えば１×１０７〜１×１０９の細胞を腹腔内に、１０日に１回ずつ、複数回投与することにより行うことができる。
【００２１】
本明細書において、非ヒト哺乳動物とは、典型的にはマウスであるが特に限定されず、ラット、ハムスター、ウサギ、ネコ、イヌ、サル、ヤギ、ヒツジ、ウシ、ウマ等が挙げられる。
【００２２】
本明細書において「抗体の一次スクリーニング」とは、抗体産生細胞から目的の抗体を同定していく過程における最初のスクリーニングをいい、例えば、モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマの培養上清を用いたスクリーニングをいう。
抗体の一次スクリーニングにおいては、モノクローナル抗体を取得する工程及びモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを特定する工程を含むことが好ましい。
本発明における抗体の一次スクリーニングは、概して以下のように行われる。
まず、がん細胞特異的糖鎖構造を発現する細胞にポドカリキシン又はその一部をアフィニティータグ（ＦＬＡＧタグ、Ｈｉｓタグ、Ｍｙｃタグ、ＰＡタグ、等）と共に発現させ、当該アフィニティータグを用いて精製を行う。こうして精製したがん細胞特異的ポドカリキシン又はその一部をＥＬＩＳＡプレートに固相化し、ここに抗体産生細胞から得られた抗体を加え、反応するウェルを選択する。この方法により、スクリーニングの初期の段階で、がん細胞特異的抗体を選択することができる。
精製したがん細胞特異的ポドカリキシン又はその一部とは、精製タンパク質又はその一部であれば特に限定されるものではなく、強制発現されたタンパク質を精製したものであってもよく、内在性のタンパク質を精製したものであってもよい。
【００２３】
本発明に係るがん細胞特異的に発現するポドカリキシンに対する抗体の製造方法は、一次スクリーニングの後、がん細胞又は組織と、正常細胞又は組織とに対する抗体の反応性を比較し、がん細胞又は組織に対する反応性が、正常細胞又は組織に対する反応性より優位に高い抗体を選択する工程を含んでいてもよい。
がん細胞又は組織としては、脳腫瘍、前立腺がん、精巣腫瘍、腎がん、甲状腺がん、膀胱がん、乳がん、卵巣がん、大腸がん、膵がん、悪性中皮腫、骨肉腫における細胞又は組織が挙げられ、正常細胞としては、血管内皮細胞及び、腎上皮細胞等が挙げられる。また、正常組織としては、全身の血管及び腎臓等が挙げられる。
がん細胞又は組織としては、１）腺がん（肺腺がん、肝臓腺がん、膵臓腺がん、リンパ腺がん、子宮腺がん、精のう腺がん、胃腺がん等）、２）基底細胞がん（皮膚がん等）、３）扁平上皮がん（口腔がん、舌がん、咽頭がん、食道がん、咽頭がん、子宮頚部がん等）、４）肉腫（リンパ管肉腫、カポジ肉腫、悪性骨肉腫等）、５）造血器腫瘍（急性・慢性骨髄性白血病、急性前骨髄性白血病、及び急性・慢性リンパ性白血病などの白血病、ホジキンリンパ腫及び非ホジキンリンパ腫などのリンパ腫、並びに多発性骨髄腫等）、６）その他、腎細胞がん等の細胞又は組織であってもよい。
【００２４】
本明細書において、「がん細胞又は組織と、正常細胞又は組織とに対する前記抗体の反応性を比較する工程」は、がん細胞又は組織と一次スクリーニングで得られた抗体とを反応させ、結合の有無を検出し、一方で、正常細胞又は組織と一次スクリーニングで得られた抗体とを反応させ、結合の有無を調べる工程を意味する。この工程は、フローサイトメトリー、免疫組織染色（ＩＨＣ）、免疫細胞染色（ＩＣＣ）等により行うことができる。
【００２５】
がん細胞又は組織と抗体の反応性、正常細胞又は組織と抗体の反応性を比較した後、がん細胞又は組織に対する反応性が、前記正常細胞又は組織に対する反応性より有意に高い抗体を選択することにより、がん細胞特異的抗体を得ることができる。
選択されたがん細胞特異的抗体は、その後さらに精製することができる。
【００２６】
本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体は、モノクローナル抗体であっても、ポリクローナル抗体であってもよい。また、本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体は、ＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥのいずれのアイソタイプであってもよい。マウス、ラット、ハムスター、モルモット、ウサギ、ニワトリ等の非ヒト動物に免疫して作製したものであってもよいし、組換え抗体であってもよく、キメラ抗体、ヒト化抗体、完全ヒト化抗体等であってもよい。キメラ抗体とは、異なる種に由来する抗体の断片が連結された抗体をいう。
「ヒト化抗体」とは、非ヒト由来の抗体に特徴的なアミノ酸配列で、ヒト抗体の対応する位置を置換した抗体を意味し、例えば、マウスに免疫して作製した抗体の重鎖ＣＤＲ１〜３及び軽鎖ＣＤＲ１〜３を有し、重鎖及び軽鎖のそれぞれ４つのフレームワーク領域（ＦＲ）を含むその他のすべての領域がヒト抗体に由来するもの等が挙げられる。かかる抗体は、ＣＤＲ移植抗体と呼ばれる場合もある。用語「ヒト化抗体」は、ヒトキメラ抗体を含む場合もある。
【００２７】
本明細書において、抗ポドカリキシン抗体の「抗原結合フラグメント」とは、抗ポドカリキシン抗体のフラグメントであって、ポドカリキシンに結合するフラグメントをいう。具体的には、ＶＬ、ＶＨ、ＣＬ及びＣＨ１領域からなるＦａｂ；２つのＦａｂがヒンジ領域でジスルフィド結合によって連結されているＦ（ａｂ’）２；ＶＬ及びＶＨからなるＦｖ；ＶＬ及びＶＨを人工のポリペプチドリンカーで連結した一本鎖抗体であるｓｃＦｖのほか、ｄｉａｂｏｄｙ型、ｓｃＤｂ型、ｔａｎｄｅｍ  ｓｃＦｖ型、ロイシンジッパー型等の二重特異性抗体等が挙げられるが、これらに限定されない。
【００２８】
本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメントの一態様は、以下の６つのＣＤＲの少なくとも１つを有する。これらのＣＤＲは、ＰｃＭａｂ−６のＣＤＲ配列である。
重鎖ＣＤＲ１：ＧＦＮＦＮＴＮＡＭＮ（配列番号：２）
重鎖ＣＤＲ２：ＬＩＲＳＫＳＮＮＹＡＴＹＹＡＤＳＶＫＤ（配列番号：３）
重鎖ＣＤＲ３：ＧＹＧＳＹ（配列番号：４）
軽鎖ＣＤＲ１：ＫＡＳＱＳＶＮＮＤＶＡ（配列番号：５）
軽鎖ＣＤＲ２：ＦＡＳＮＲＹＴ（配列番号：６）
軽鎖ＣＤＲ３：ＱＬＤＹＮＳＴＷＴ（配列番号：７）
【００２９】
本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメントは、本発明の効果を奏する限り、６つのＣＤＲのうちいくつを含むものであってもよいが、例えば、２以上、３以上、４以上、５以上、又は６つ含むものとすることができ、含む数が多い方が好ましい。
【００３０】
本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメントは、配列番号：２で表されるアミノ酸配列に、１から数個のアミノ酸の付加、置換、又は欠失を含んだ重鎖ＣＤＲ１；配列番号：３で表されるアミノ酸配列に、１から数個のアミノ酸の付加、置換、又は欠失を含んだ重鎖ＣＤＲ２；配列番号：４で表されるアミノ酸配列に、１から数個のアミノ酸の付加、置換、又は欠失を含んだ重鎖ＣＤＲ３；配列番号：５で表されるアミノ酸配列に、１から数個のアミノ酸の付加、置換、又は欠失を含んだ軽鎖ＣＤＲ１；配列番号：６で表されるアミノ酸配列に、１から数個のアミノ酸の付加、置換、又は欠失を含んだ軽鎖ＣＤＲ２；配列番号：７で表されるアミノ酸配列に、１から数個のアミノ酸の付加、置換、又は欠失を含んだ軽鎖ＣＤＲ３の少なくとも１つを含むものであってもよい。
【００３１】
本明細書において「アミノ酸」は、その最も広い意味で用いられ、天然アミノ酸に加え、人工のアミノ酸変異体や誘導体を含む。アミノ酸は慣用的な一文字表記又は三文字表記で示される場合もある。本明細書においてアミノ酸又はその誘導体としては、天然タンパク質性Ｌ−アミノ酸；非天然アミノ酸；アミノ酸の特徴である当業界で公知の特性を有する化学的に合成された化合物等が挙げられる。非天然アミノ酸の例として、主鎖の構造が天然型と異なる、α，α−二置換アミノ酸（α−メチルアラニンなど）、Ｎ−アルキル−α−アミノ酸、Ｄ−アミノ酸、β−アミノ酸、α−ヒドロキシ酸や、側鎖の構造が天然型と異なるアミノ酸（ノルロイシン、ホモヒスチジンなど）、側鎖に余分のメチレンを有するアミノ酸（「ホモ」アミノ酸、ホモフェニルアラニン、ホモヒスチジンなど）、及び側鎖中のカルボン酸官能基がスルホン酸基で置換されるアミノ酸（システイン酸など）等が挙げられるがこれらに限定されない。
【００３２】
本明細書において「１から数個のアミノ酸の付加、置換又は欠失を有する」という場合、欠失、置換等されるアミノ酸の個数は、結果として得られるポリペプチドがＣＤＲとしての機能を保持する限り特に限定されないが、例えば、１個、２個、３個、４個、５個、６個、７個、８個、９個、又は１０個とすることができ、１個、２個、３個又は４個とすることが好ましい。置換又は付加されるアミノ酸は、天然のタンパク質性アミノ酸に加えて、非天然のアミノ酸又はアミノ酸アナログであってもよい。アミノ酸の欠失、置換又は付加の位置は、ＣＤＲとしての機能が保持される限り、もとのＣＤＲ配列のどこであってもよい。
【００３３】
本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメントにおいては、配列番号：２で表されるアミノ酸配列と８０％以上の同一性を有するアミノ酸配列からなる重鎖ＣＤＲ１；配列番号：３で表されるアミノ酸配列と８０％以上の同一性を有するアミノ酸配列からなる重鎖ＣＤＲ２；配列番号：４で表されるアミノ酸配列と８０％以上の同一性を有するアミノ酸配列からなる重鎖ＣＤＲ３；配列番号：５で表されるアミノ酸配列と８０％以上の同一性を有するアミノ酸配列からなる軽鎖ＣＤＲ１；配列番号：６で表されるアミノ酸配列と８０％以上の同一性を有するアミノ酸配列からなる軽鎖ＣＤＲ２；配列番号：７で表されるアミノ酸配列と８０％以上の同一性を有するアミノ酸配列からなる軽鎖ＣＤＲ３の少なくとも１つを含むものであってもよい。
【００３４】
本明細書において、「８０％以上の同一性を有する」とは、それぞれ元の配列と変異した配列を有する二つのポリペプチドのアミノ酸配列の一致が最大になるようにアライメントしたときに、共通するアミノ酸残基の数が、元の配列のアミノ酸数の８０％以上であることを意味する。
同一性は８０％以上であって、ＣＤＲとしての機能を保持する限り何％であってもよく、例えば８５％以上、９０％以上、９１％以上、９２％以上、９３％以上、９４％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上、９９％以上とすることができる。
【００３５】
重鎖ＣＤＲ１〜３及び軽鎖ＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列にアミノ酸を付加、置換、又は欠失させたアミノ酸配列からなるＣＤＲや、重鎖ＣＤＲ１〜３及び軽鎖ＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列と８０％以上の同一性を有するＣＤＲは、部位特異的変異導入法、ランダム変異導入法、チェーンシャフリング法、ＣＤＲウォーキング法等の公知の方法を用いて作製され得る。これらの方法によれば、ファージディスプレイ法によってＣＤＲに種々の変異を有する抗体又は抗体断片をファージ表面に提示させ、抗原を使用してスクリーニングすることにより、より親和性が成熟したＣＤＲを得られることが当業者によく知られている（例えば、Ｗｕ  ｅｔ  ａｌ．，  ＰＮＡＳ．  １９９８；  ９５：  ６０３７−６０４２．；  Ｓｃｈｉｅｒ  Ｒ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ．  Ｍｏｌ．  Ｂｉｏ．  １９９６；  ２６３：  ５５１−５６７．；  Ｓｃｈｉｅｒ  Ｒ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ．  Ｍｏｌ．  Ｂｉｏｌ．  １９９６;  ２５５：  ２８−４３．；  Ｙａｎｇ  ＷＰ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ．  Ｍｏｌ．  Ｂｉｏｌ．  １９９５；  ２５４：  ３９２−４０３．）。
【００３６】
本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメントの別の一態様は、
配列番号：８で表されるアミノ酸配列を含む軽鎖；
配列番号：８で表されるアミノ酸配列において、１から数個のアミノ酸の付加、置換、又は欠失を含むアミノ酸配列を含む軽鎖；又は、
配列番号：８で表されるアミノ酸配列と８０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含む軽鎖
を含む。
配列番号：８で表されるアミノ酸配列は、ＰｃＭａｂ−６の軽鎖のアミノ酸配列である。
【００３７】
本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメントの一態様は、
配列番号：１０で表されるアミノ酸配列を含む重鎖；
配列番号：１０で表されるアミノ酸配列において、１から数個のアミノ酸の付加、置換、又は欠失を含むアミノ酸配列を含む重鎖；又は、
配列番号：１０で表されるアミノ酸配列と８０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含む重鎖
を含む。
配列番号：１０で表されるアミノ酸配列は、ＰｃＭａｂ−６の重鎖のアミノ酸配列である。
本明細書において、重鎖又は軽鎖のアミノ酸配列において、１から数個のアミノ酸の付加、置換、又は欠失という場合、付加、置換、又は欠失するアミノ酸の数は、例えば、１個、２個、３個、４個、５個、６個、７個、８個、９個、又は１０個とすることができる。その他の用語は、上述したとおりである。
【００３８】
本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体は、Ｆｃ領域に１以上のＮ−結合型糖鎖が結合し、該Ｎ−結合型糖鎖の還元末端のＮ−アセチルグルコサミンにフコースが結合していない抗体であってもよい。
例えばＩｇＧ抗体のＦｃ領域には、Ｎ−結合型糖鎖の結合部位が２ヶ所存在し、この部位に複合型糖鎖が結合している。Ｎ−結合型糖鎖とは、Ａｓｎ−Ｘ−Ｓｅｒ／Ｔｈｒ配列のＡｓｎに結合する糖鎖をいい、共通した構造Ｍａｎ３ＧｌｃＮＡｃ２−Ａｓｎを有する。非還元末端の２つのマンノース（Ｍａｎ）に結合する糖鎖の種類により、高マンノース型、混成型、及び複合型等に分類される。
Ｎ−結合型糖鎖の還元末端のＮ−アセチルグルコサミン（ＧｌｃＮＡｃ）にはフコースが結合しうるが、このフコースが結合していない場合、結合している場合に比較してＡＤＣＣ活性が著しく上昇することが知られている。このことは例えば、国際公開第２００２／０３１１４０号に記載されている。
ＡＤＣＣ活性が著しく向上することにより、抗体を医薬として用いる場合に投与量を少なくすることができるので、副作用を軽減させることが可能であると共に、治療費も低減させることができる。
【００３９】
本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体は、抗がん活性を有する物質を結合させて用いてもよい。
本明細書において、「抗がん活性を有する物質」とは、腫瘍サイズの低下（遅延又は停止）、腫瘍の転移の阻害、腫瘍増殖の阻害（遅延又は停止）、及びがんと関連する一つ又は複数の症状の緩和、の少なくとも１つを生じさせる物質を意味する。具体的には、毒素、抗がん剤、ラジオアイソトープを挙げることができるがこれらに限定されない。
【００４０】
抗がん活性を有する毒素としては、例えば、緑膿菌外毒素（ＰＥ）又はその細胞障害性フラグメント（例えばＰＥ３８）、ジフテリア毒素、リシンＡ等が挙げられる。抗がん活性を有する毒素は、抗ポドカリキシン抗体と共に毒素が取り込まれる細胞、即ちポドカリキシンを発現しているがん細胞のみに毒性を発揮するので、周囲の細胞に悪影響を与えず、特異的に効果を得られるという利点がある。特に、本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体は、がん細胞に発現する抗ポドカリキシンに特異的に結合するので、有用である。
【００４１】
抗がん剤としては、例えば、アドリアマイシン、ダウノマイシン、マイトマイシン、シスプラチン、ビンクリスチン、エピルビシン、メトトレキセート、５−フルオロウラシル、アクラシノマイシン、ナイトロジェン・マスタード、サイクロフォスファミド、ブレオマイシン、ダウノルビシン、ドキソルビシン、ビンクリスチン、ビンブラスチン、ビンデシン、タモキシフェン、デキサメタゾン等の低分子化合物や、免疫担当細胞を活性化するサイトカイン（例えば、ヒトインターロイキン２、ヒト顆粒球マクロファージコロニー刺激因子、ヒトマクロファージコロニー刺激因子、ヒトインターロイキン１２）等のタンパク質が挙げられる。
【００４２】
抗がん活性を有するラジオアイソトープとしては、３２Ｐ、１４Ｃ、１２５Ｉ、３Ｈ、１３１Ｉ、２１１Ａｔ、９０Ｙ等が挙げられる。ラジオアイソトープは、抗ポドカリキシン抗体が結合する細胞、即ちポドカリキシンを発現している細胞の周囲の細胞にも毒性を発揮する。一般に、がん細胞は均一ではなく、すべてのがん細胞がポドカリキシンを発現しているわけではないので、周囲のポドカリキシン陰性のがん細胞を殺すためにラジオアイソトープは有用である。なお、ラジオアイソトープを結合させる場合、がん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体はＦａｂやｓｃＦｖ等の低分子抗体としてもよい。
【００４３】
上記抗がん活性を有する物質は、公知の方法によってがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体に直接結合させることができる。また、例えばリポソーム等の担体に封入してがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体に結合させてもよい。
【００４４】
上記抗がん活性を有する物質が蛋白質やポリペプチドの場合は、本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体をコードする核酸（後述）と抗がん活性を有する物質をコードするＤＮＡを連結し、適当な発現ベクターに挿入することにより、抗がん活性を有する物質とがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体との融合タンパク質として発現させてもよい。
【００４５】
（核酸）
本発明は、本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体をコードする核酸も包含する。核酸は、天然の核酸であっても人工の核酸であってもよく、例えば、ＤＮＡ、ＲＮＡ、ＤＮＡとＲＮＡのキメラが挙げられるがこれらに限定されない。がん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体をコードする核酸の塩基配列は、当業者が公知の方法又はそれに準ずる方法に従って決定することができ、公知の方法又はそれに準ずる方法で調製することができる。
本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体をコードする核酸としては、例えば、配列番号：１０で表されるＰｃＭａｂ−６の重鎖をコードするＤＮＡ（配列番号：１１）、配列番号：８で表されるＰｃＭａｂ−６の軽鎖をコードするＤＮＡ（配列番号：９）が挙げられるがこれらに限定されない。
ＰｃＭａｂ−６のＣＤＲのそれぞれをコードする核酸は、これらの配列番号で示されるＤＮＡ配列に含まれている。
【００４６】
（発現ベクター）
本発明は、本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体をコードする核酸を含む発現ベクターも包含する。発現ベクターは、使用する宿主細胞にあわせて適宜選択することができ、例えば、プラスミド、レトロウイルスベクター、アデノウイルスベクター、アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）ベクター、カリフラワーモザイクウイルスベクターやタバコモザイクウイルスベクターなどの植物ウイルスベクター、コスミド、ＹＡＣ、ＥＢＶ由来エピソーム等が挙げられる。これらの発現ベクターには、公知の方法（制限酵素を利用する方法等）で、本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体をコードする核酸を挿入することができる。
【００４７】
本発明に係る発現ベクターは、さらに、抗体遺伝子の発現を調節するプロモーター、複製起点、選択マーカー遺伝子等を含むことができる。プロモーター及び複製起点は、宿主細胞と発現ベクターの種類によって適宜選択することができる。
【００４８】
（形質転換体）
本発明は、本発明に係る発現ベクターを含む形質転換体を包含する。形質転換体は、本発明に係る発現ベクターを適切な宿主細胞にトランスフェクトすることによって得ることができる。宿主細胞としては、例えば、哺乳類細胞（ＣＨＯ細胞、ＣＯＳ細胞、ミエローマ細胞、ＨｅＬａ細胞、Ｖｅｒｏ細胞など）、昆虫細胞、植物細胞、真菌細胞（サッカロミセス属、アスペルギルス属など）といった真核細胞や、大腸菌（Ｅ．Ｃｏｌｉ）、枯草菌等の原核細胞を用いることができる。
【００４９】
（抗体の製造方法）
本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体は、以下に記載する方法によっても製造することができる。
がん細胞特異的抗ポドカリキシンモノクローナル抗体は、がん細胞特異的ポドカリキシン又はその一部を免疫した非ヒト哺乳動物から抗体産生細胞を単離し、これを骨髄腫細胞等と融合させてハイブリドーマを作製し、このハイブリドーマが産生した抗体を精製することによって得ることができる。また、がん細胞特異的抗ポドカリキシンポリクローナル抗体は、がん細胞特異的ポドカリキシン又はその断片を免疫した動物の血清から得ることができる。
【００５０】
本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体を遺伝子組換え法で作製する場合、例えば、本発明に係る核酸を含む発現ベクターで適当な宿主を形質転換し、この形質転換体を適当な条件で培養して抗体を発現させ、公知の方法に従って単離精製すればよい。
単離精製方法としては、例えば、プロテインＡ／Ｇ／Ｌ等を用いたアフィニティカラム、その他のクロマトグラフィーカラム、フィルター、限外濾過、塩析、透析が挙げられ、これらを適宜組み合わせることができる。
【００５１】
所定のエピトープの配列に結合する抗体は、当業者が公知の方法又はそれに準ずる方法で作製することができる。例えば、エピトープ配列を含むペプチドを固相担体に固定し、当該ペプチドと複数の抗体の結合を検出することにより、同エピトープに特異的に結合する抗体を得ることができる。
ここで、「複数の抗体」としては、動物に抗原タンパク質又はその部分ペプチドを免疫することによって得たものを用いてもよいし、ファージディスプレイ法によって作製した抗体ライブラリ又は抗体フラグメントライブラリを用いてもよい。ファージディスプレイ法によるライブラリを用いる場合、エピトープ配列を含むペプチドを固相担体に固定しパニングを繰り返すことによって、同エピトープに特異的に結合する抗体を得ることもできる。
【００５２】
ヒトキメラ抗体及びヒトＣＤＲ移植抗体は、ヒト以外の動物の抗体を産生するハイブリドーマのｍＲＮＡから抗体遺伝子をクローン化し、これをヒト抗体遺伝子の一部と遺伝子組換え技術で連結することによって作製することができる。
例えば、ヒト型キメラ抗体の場合、マウス抗体を産生するハイブリドーマのｍＲＮＡから逆転写酵素によりｃＤＮＡを合成し、重鎖可変領域（ＶＨ）及び軽鎖可変領域（ＬＨ）をＰＣＲでクローニングして配列を解析する。次に、一致率の高い抗体塩基配列から、リーダー配列を含む５’プライマーを作製し、５’プライマーと可変部３’プライマーによって上記ｃＤＮＡから、シグナル配列から可変領域の３’末端までをＰＣＲでクローニングする。一方で、ヒトＩｇＧ１の重鎖及び軽鎖の定常領域をクローニングし、重鎖と軽鎖それぞれについて、マウス抗体由来可変領域と、ヒト抗体由来定常領域とをＰＣＲによるＯｖｅｒｌａｐｐｉｎｇ  Ｈａｎｇｉｎｇ法で連結し、増幅する。得られたＤＮＡを適当な発現ベクターに挿入し、これを形質転換して、ヒト型キメラ抗体を得ることができる。
【００５３】
ＣＤＲ移植抗体の場合、使用するマウス抗体可変部と最も相同性の高いヒト抗体可変部を選択してクローン化し、メガプライマー法を用いた部位選択的突然変異導入により、ＣＤＲの塩基配列を改変する。フレームワーク領域を構成するアミノ酸配列をヒト化すると抗原との特異的な結合ができなくなる場合には、フレームワークの一部のアミノ酸をヒト型からラット型に変換してもよい。
元の配列において、１から数個の、好ましくは１又は２個のアミノ酸の欠失、置換又は付加を有するアミノ酸配列からなるＣＤＲや、元の配列に８０％以上の同一性を有するアミノ酸配列からなるＣＤＲは、部位特異的変異導入法、ランダム変異導入法、チェーンシャフリング法、ＣＤＲウォーキング法等の公知の方法を用いて作製され得る。
これらの方法により、ファージディスプレイ法によってＣＤＲに種々の変異を有する抗体又は抗体断片をファージ表面に提示させ、抗原を使用してスクリーニングすることにより、より親和性が成熟したＣＤＲを得られることが当業者によく知られている（例えば、Ｗｕ  ｅｔ  ａｌ．，  ＰＮＡＳ．  １９９８；  ９５：  ６０３７−６０４２．；  Ｓｃｈｉｅｒ  Ｒ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ．  Ｍｏｌ．  Ｂｉｏ．  １９９６；  ２６３：  ５５１−５６７．；  Ｓｃｈｉｅｒ  Ｒ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ．  Ｍｏｌ．  Ｂｉｏｌ．  １９９６；  ２５５：  ２８−４３．；  Ｙａｎｇ  ＷＰ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ．  Ｍｏｌ．  Ｂｉｏｌ．  １９９５；  ２５４：  ３９２−４０３．）。本発明は、このような方法で成熟させたＣＤＲを含む抗体も包含する。
【００５４】
がん細胞特異的糖鎖構造を発現する細胞として、トリコスタチンＡ処理ニワトリＢ細胞由来ＤＴ４０細胞株を用いてもよく、抗体の製造方法として、トリコスタチンＡ処理ニワトリＢ細胞由来ＤＴ４０細胞株から抗体産生株を取得するＡｄｌｉｂ法（Ｓｅｏ  Ｈ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｎａｔ．  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．  ２００２；  ６：  ７３１−７３６．）を用いてもよい。また、非ヒト哺乳動物として、マウス抗体遺伝子が破壊されヒト抗体遺伝子が導入されたマウスであるＫＭマウスを用いてもよく、抗体の製造方法として、ＫＭマウスに免疫してヒト抗体を作製する方法（Ｉｔｏｈ  Ｋ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊｐｎ．  Ｊ．  Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．  ２００１；  ９２：  １３１３−１３２１．；Ｋｏｉｄｅ  Ａ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ．  Ｍｏｌ．  Ｂｉｏｌ．  １９９８；  ２８４：  １１４１−１１５１．）等を用いてもよい。
【００５５】
本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体の抗原結合フラグメントは、当該フラグメントをコードするＤＮＡを用いて上述の方法で発現させてもよいし、また、全長の抗体を得てからパパイン、ペプシン等の酵素で処理して断片化してもよい。
【００５６】
本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体は、作製方法や精製方法により、アミノ酸配列、分子量、等電点、糖鎖の有無、形態等が異なり得る。しかしながら、得られた抗体が、がん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体として同等の機能を有している限り、本発明に含まれる。例えば、本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体を、大腸菌等の原核細胞で発現させた場合、本来の抗体のアミノ酸配列のＮ末端にメチオニン残基が付加される。本発明は、かかる抗体も包含する。
【００５７】
本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体が、還元末端のＮ−アセチルグルコサミンにフコースが結合していないＮ−結合型糖鎖を有する抗体である場合、かかる抗体は公知の方法又はそれに準ずる方法に従って製造することができる。かかる抗体の製造方法は、例えば、国際公開第２００２／０３１１４０号、特開２００９−２２５７８１号公報に記載されている。
具体的には、例えば、本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体をコードするＤＮＡを含む発現ベクターを用いて、ＧＤＰ−フコースの合成に関与する酵素の活性、又はα−１，６−フコシルトランスフェラーゼの活性が低下又は欠失した細胞を形質転換し、得られた形質転換体を培養した後、目的とするがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体を精製することによって得ることができる。
ＧＤＰ−フコースの合成に関与する酵素としては、例えば、ＧＤＰ−ｍａｎｎｏｓｅ  ４，６−ｄｅｈｙｄｒａｔａｓｅ（ＧＭＰ）、ＧＤＰ−ｋｅｔｏ−６−ｄｅｏｘｙｍａｎｎｏｓｅ  ３，５−ｅｐｉｍｅｒａｓｅ，４−ｒｅｄｕｃｔａｓｅ（Ｆｘ）、ＧＤＰ−ｂｅｔａ−Ｌ−ｆｕｃｏｓｅ  ｐｙｒｏｐｈｏｓｐｈｏｒｙｌａｓｅ（ＧＦＰＰ）が挙げられる。
ここで、細胞は特に限定されないが、哺乳動物細胞が好ましく、例えば上記酵素活性を低下又は欠失されたＣＨＯ細胞を用いることができる。
上記方法によって得られる抗体組成物は、還元末端のＮ−アセチルグルコサミンにフコースが結合している抗体を含む場合もあるが、フコースが結合している抗体の割合は、抗体全体の２０重量％以下、好ましくは１０重量％以下、さらに好ましくは５重量％以下、最も好ましくは３重量％以下である。
【００５８】
また、還元末端のＮ−アセチルグルコサミンにフコースが結合していないＮ−結合型糖鎖を有する抗体は、本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体をコードするＤＮＡを含む発現ベクターを昆虫卵に導入し、孵化させて昆虫を成長させ、必要に応じて交配を行ってトランスジェニック昆虫を作製し、当該トランスジェニック昆虫又はその分泌物からがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体を抽出することによっても得ることができる。昆虫としてはカイコを用いることができ、その場合、繭から抗体を抽出することができる。
この方法によって得られる抗体組成物も、還元末端のＮ−アセチルグルコサミンにフコースが結合している抗体を含む場合もあるが、フコースが結合している抗体の割合は、抗体全体の２０重量％以下、好ましくは１０重量％以下、さらに好ましくは５重量％以下、最も好ましくは３重量％以下である。
【００５９】
（本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体の活性）
抗体医薬の薬効メカニズムは、抗体が有する２つの生物活性に基づいている。１つは標的抗原特異的な結合活性であり、結合することによって標的抗原分子の機能を中和する活性である。標的抗原分子の機能の中和はＦａｂ領域を介して発揮される。
【００６０】
もう１つは、エフェクター活性と呼ばれる抗体の生物活性である。エフェクター活性は、抗体のＦｃ領域を介して、抗体依存性細胞障害活性（ａｎｔｉｂｏｄｙ−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ  ｃｅｌｌｕｌａｒ  ｃｙｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ；ＡＤＣＣ）、補体依存性細胞障害活性（ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ  ｃｙｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ；ＣＤＣ）、アポトーシスの直接誘導等の態様で発揮される。
本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体の活性は、以下の方法で測定することができる。
【００６１】
（１）結合活性
抗体の結合活性は公知の方法、例えば、ＥＬＩＳＡ（酵素結合免疫吸着検定法）、ＥＩＡ（酵素免疫測定法）、ＲＩＡ（放射免疫測定法）、蛍光抗体法、ＦＡＣＳ法等で、測定することができる。
【００６２】
（２）ＡＤＣＣ活性
ＡＤＣＣ活性とは、標的細胞の細胞表面抗原に本発明の抗体が結合した際、そのＦｃ部分にＦｃγ受容体保有細胞（エフェクター細胞）がＦｃγ受容体を介して結合し、標的細胞に障害を与える活性を意味する。
ＡＤＣＣ活性は、ポドカリキシンを発現している標的細胞とエフェクター細胞と本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体を混合し、ＡＤＣＣの程度を測定することによって知ることができる。エフェクター細胞としては、例えば、マウス脾細胞、ヒト末梢血や骨髄から分離した単球核を利用することができる。標的細胞は、例えばポドカリキシン陽性がん細胞とすることができる。標的細胞をあらかじめ５１Ｃｒ等で標識し、これに本発明の抗体を加えてインキュベーションし、その後標的細胞に対して適切な比のエフェクター細胞を加えてインキュベーションを行う。インキュベーション後、上清を採取し、上清中の上記標識をカウントすることにより、測定することが可能である。
【００６３】
（３）ＣＤＣ活性
ＣＤＣ活性とは、補体系による細胞障害活性を意味する。
ＣＤＣ活性は、ＡＤＣＣ活性の試験において、エフェクター細胞に代えて補体を用いることにより測定することができる。
【００６４】
（４）腫瘍増殖抑制活性
腫瘍増殖抑制活性は、腫瘍モデル動物を利用して測定することができる。例えば、マウスの皮下に腫瘍を移植し、本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体を投与する。非投与群と投与群における腫瘍組織の体積を比較することにより、腫瘍増殖抑制効果を測定することができる。
なお、腫瘍増殖抑制活性は、個々の細胞の増殖を抑制する結果生じるものであっても、細胞死を誘導する結果生じるものであってもよい。
【００６５】
（医薬組成物）
本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメントは、ポドカリキシンを発現するがんの予防又は治療に用いてもよい。本発明に係る医薬組成物の一態様は、本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメントを有効成分として含み、さらに薬学的に許容できる担体や添加物を含む。
【００６６】
本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメントは、がん細胞を標的とする薬物の送達に用いてもよい。本発明に係る医薬組成物の別の一態様は、上述した抗がん活性を有する物質やその他の抗がん剤を結合させたがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメントを含み、さらに薬学的に許容できる担体や添加物を含む。
【００６７】
担体及び添加物の例としては、水、食塩水、リン酸緩衝液、デキストロース、グリセロール、エタノール等薬学的に許容される有機溶剤、コラーゲン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、カルボキシビニルポリマー、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ポリアクリル酸ナトリウム、アルギン酸ナトリウム、水溶性デキストラン、カルボキシメチルスターチナトリウム、ぺクチン、メチルセルロース、エチルセルロース、キサンタンガム、アラビアゴム、カゼイン、寒天、ポリエチレングリコール、ジグリセリン、グリセリン、プロピレングリコール、ワセリン、パラフィン、ステアリルアルコール、ステアリン酸、ヒト血清アルブミン、マンニトール、ソルビトール、ラクトース、界面活性剤等が挙げられるがこれらに限定されない。
【００６８】
本発明に係る医薬組成物は、様々な形態、例えば、液剤（例えば注射剤）、分散剤、懸濁剤、錠剤、丸剤、粉末剤、坐剤等とすることができる。好ましい態様は、注射剤であり、非経口（例えば、静脈内、経皮、腹腔内、筋内）で投与することが好ましい。
【００６９】
本発明に係る医薬組成物は、ポドカリキシンが関連する疾患、特にがんの治療に有効である。
ポドカリキシンが関連するがんとしては、例えば、脳腫瘍、前立腺がん、精巣腫瘍、腎がん、甲状腺がん、膀胱がん、乳がん、卵巣がん、大腸がん、膵がん、悪性中皮腫、骨肉腫等が挙げられるがこれらに限定されない。本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体は、これらのがんに特に有用である。
【００７０】
本発明は、本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメントを治療有効量投与することを含むポドカリキシンが関連する疾患の治療方法も包含する。
本明細書において、治療有効量とは、治療する疾患の一つ又は複数の症状が、それによりある程度緩和される作用物質の量を意味する。抗がん剤の場合、腫瘍サイズの低下；腫瘍の転移の阻害（遅延又は停止）；腫瘍増殖の阻害（遅延又は停止）、及びがんと関連する一つ又は複数の症状の緩和、の少なくとも１つを示す量を意味する。
具体的には、本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体又はその抗原結合フラグメントの投与量は、例えば、０．０２５〜５０ｍｇ／ｋｇ、好ましくは０．１〜５０ｍｇ／ｋｇであり、より好ましくは０．１〜２５ｍｇ／ｋｇ、さらに好ましくは０．１〜１０ｍｇ／ｋｇ又は０．１〜３ｍｇ／ｋｇとすることができるが、これに限定されない。
【００７１】
（検査方法、検査薬、検査キット）
上述のとおり、ポドカリキシンは特定のがん細胞において高発現している。従って、本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体は、がん、特に脳腫瘍、前立腺がん、精巣腫瘍、腎がん、甲状腺がん、膀胱がん、乳がん、卵巣がん、大腸がん、膵がん、悪性中皮腫、骨肉腫等のポドカリキシンが高発現するがんの診断に有用である。本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体は、がん細胞特異的に結合するので、診断に特に有用である。
本発明は、本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体を含むがんの検査薬、がんの検査のための抗体の使用、本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体を用いるがんの検査方法をも包含する。
【００７２】
本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体をがんの検査方法に用いる場合、検査に用いられるサンプルは、例えば、対象から採取されたがんが疑われる組織、血清、髄液、尿、体液（唾液、汗など）とすることができる。ポドカリキシンは、膜タンパク質であるが、血清中に分泌されることが知られている。
【００７３】
検査方法としては、例えば、イムノアッセイ、凝集法、比濁法、ウエスタンブロッティング法、表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）法等が挙げられるが、これらに限定されない。
中でも、検出可能に標識した本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体と、サンプル中のがん細胞特異的ポドカリキシンとの抗原抗体反応を利用してがん細胞特異的ポドカリキシンの量を測定するイムノアッセイが好ましい。
【００７４】
イムノアッセイは、検出可能に標識したがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体、又は、検出可能に標識したがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体に対する抗体（二次抗体）を用いる。抗体の標識法により、エンザイムイムノアッセイ（ＥＩＡ又はＥＬＩＳＡ）、ラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）、蛍光イムノアッセイ（ＦＩＡ）、蛍光偏光イムノアッセイ（ＦＰＩＡ）、化学発光イムノアッセイ（ＣＬＩＡ）等に分類され、これらのいずれも本発明の方法に用いることができる。
ＥＬＩＳＡ法では、ペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ等の酵素、ＲＩＡ法では、１２５Ｉ、１３１Ｉ、３５Ｓ、３Ｈ等の放射性物質、ＦＰＩＡ法では、フルオレセインイソチオシアネート、ローダミン、ダンシルクロリド、フィコエリトリン、テトラメチルローダミンイソチオシアネート、近赤外蛍光材料等の蛍光物質、ＣＬＩＡ法では、ルシフェラーゼ、ルシフェリン、エクオリン等の発光物質で標識した抗体が用いられる。その他、金コロイド、量子ドット等のナノ粒子で標識した抗体を検出することもできる。
また、イムノアッセイでは、がん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体をビオチンで標識し、酵素等で標識したアビジン又はストレプトアビジンを結合させて検出することもできる。
【００７５】
イムノアッセイの中でも、酵素標識を用いるＥＬＩＳＡ法は、簡便且つ迅速に抗原を測定することができて好ましい。
ＥＬＩＳＡ法には競合法とサンドイッチ法がある。競合法では、マイクロプレート等の固相担体にがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体を固定し、サンプルと酵素標識したがん特異的ポドカリキシンを添加して、抗原抗体反応を生じさせる。いったん洗浄した後、酵素基質と反応、発色させ、吸光度を測定する。サンプル中のポドカリキシンが多ければ発色は弱くなり、サンプル中のポドカリキシンが少なければ発色が強くなるので、検量線を用いてポドカリキシン量を求めることができる。
【００７６】
サンドイッチ法では、固相担体にがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体を固定し、サンプルを添加し、反応させた後、さらに酵素で標識した別のエピトープを認識するがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体を添加して反応させる。洗浄後、酵素基質と反応、発色させ、吸光度を測定することにより、ポドカリキシン量を求めることができる。サンドイッチ法では、固相担体に固定したがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗トとサンプル中のがん特異的ポドカリキシンを反応させた後、非標識抗体（一次抗体）を添加し、この非標識抗体に対する抗体（二次抗体）を酵素標識してさらに添加してもよい。
酵素基質は、酵素がペルオキシダーゼの場合、３，３’−ｄｉａｍｉｎｏｂｅｎｚｉｄｉｎｅ（ＤＡＢ）、３，３’，５，５’−ｔｅｔｒａｍｅｔｈｙｌｂｅｎｚｉｄｉｎｅ（ＴＭＢ）、ｏ−ｐｈｅｎｙｌｅｎｅｄｉａｍｉｎｅ（ＯＰＤ）等を用いることができ、アルカリホスファターゼの場合、ｐ−ｎｉｔｒｏｐｈｅｎｙ  ｐｈｏｓｐｈａｔｅ（ＮＰＰ）等を用いることができる。
【００７７】
本明細書において「固相担体」は、抗体を固定できる担体であれば特に限定されず、ガラス製、金属性、樹脂製等のマイクロタイタープレート、基板、ビーズ、ニトロセルロースメンブレン、ナイロンメンブレン、ＰＶＤＦメンブレン等が挙げられ、標的物質は、これらの固相担体に公知の方法に従って固定することができる。
【００７８】
また、上記イムノアッセイの中で、微量のタンパク質を簡便に検出できる方法として凝集法も好ましい。凝集法としては、例えば、抗体にラテックス粒子を結合させたラテックス凝集法が挙げられる。
ラテックス粒子にがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体を結合させてサンプルに混合すると、がん特異的ポドカリキシンが存在すれば、抗体結合ラテックス粒子が凝集する。そこで、サンプルに近赤外光を照射して、吸光度の測定（比濁法）又は散乱光の測定（比朧法）により凝集塊を定量し、抗原の濃度を求めることができる。
【００７９】
本明細書において「検査」は、診断に必要な情報を得るために、被検者から採取した試料を調べることを意味し、本発明の検査方法は、例えば検査会社等で実施され得る。
【００８０】
本発明に係る検査方法の一態様は、被検者のサンプル中のがん特異的ポドカリキシンが、非がん患者のがん特異的ポドカリキシンより多いか否かを分析する工程を含む。非がん患者のサンプルと比較して、被検者のサンプル中のがん特異的ポドカリキシン量が有意に多い場合に、該被検者はがんに罹患している可能性が高いと判定される。
【００８１】
本発明に係る検査方法の一態様は、がんの治療を受けた後の患者のサンプル中のがん特異的ポドカリキシンを経時的に測定し、がん特異的ポドカリキシン量の変動を分析する工程を含む。ポドカリキシン量が経時的に増加する傾向にある場合、当該患者におけるがんの再発又は転移の可能性が高いと判定される。
【００８２】
本発明は、本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体を含むがんの診断薬、がんの診断のための本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体の使用、本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体を用いるがんの診断方法をも包含する。本明細書において「診断」とは、医師等の医療行為者が、被検者ががんに罹患している可能性や、がんが再発、転移している可能性を判断することを意味する。
【００８３】
［がんの検査用キット］
本発明に係るがんの検査用キットは、上述した検査方法を使用してがんの検査を行うためのキットであり、がん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体を含む。
本発明に係る検査用キットは、がん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体とがん特異的ポドカリキシンとの抗原抗体反応を利用するイムノアッセイによって、ポドカリキシン量を測定するために必要な試薬や装置を含む。
【００８４】
検査用キットの一態様は、サンドイッチ法によってがん特異的ポドカリキシンを測定するためのものであり、マイクロタイタープレート；捕捉用のがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体；アルカリホスファターゼ又はペルオキシダーゼで標識したがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体；及び、アルカリホスファターゼ基質（ＮＰＰ等）又はペルオキシダーゼの基質（ＤＡＢ、ＴＭＢ、ＯＰＤ等）、を含む。
捕獲抗体と標識抗体は、異なるエピトープを認識する。
このようなキットでは、まず、マイクロタイタープレートに捕獲抗体を固定し、ここにサンプルを適宜希釈して添加した後インキュベートし、サンプルを除去して洗浄する。次に、標識した抗体を添加した後インキュベートし、基質を加えて発色させる。マイクロタイタープレートリーダー等を用いて発色を測定することにより、がん特異的ポドカリキシン量を求めることができる。
【００８５】
検査用キットの別の態様は、二次抗体を使用してサンドイッチ法によりがん特異的ポドカリキシンを測定するためのものであり、マイクロタイタープレート；捕捉用のがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体；一次抗体として、がん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体；二次抗体として、アルカリホスファターゼ又はペルオキシダーゼで標識した、がん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体；及び、アルカリホスファターゼ（ＮＰＰ等）又はペルオキシダーゼの基質（ＤＡＢ、ＴＭＢ、ＯＰＤ等）、を含む。
捕獲抗体と一次抗体は、異なるエピトープを認識する。
このようなキットでは、まず、マイクロタイタープレートに捕獲抗体を固定し、ここにサンプルを適宜希釈して添加した後インキュベートし、サンプルを除去して洗浄する。続いて、一次抗体を添加してインキュベート及び洗浄を行い、さらに酵素標識した二次抗体を添加してインキュベートを行った後、基質を加えて発色させる。マイクロタイタープレートリーダー等を用いて発色を測定することにより、がん特異的ポドカリキシン量を求めることができる。二次抗体を用いることにより、反応が増幅され検出感度を高めることができる。
【００８６】
また、検査用キットの別の態様は、マイクロタイタープレート；一次抗体としてのがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体；アルカリホスファターゼ又はペルオキシダーゼで標識した、がん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体；及び、アルカリホスファターゼ又はペルオキシダーゼの基質、を含む。
かかるキットによれば、まず、適当な濃度に希釈したサンプルでマイクロタイタープレートをコーティングし、一次抗体を添加する。インキュベート及び洗浄を行った後、酵素標識した二次抗体を添加し、インキュベート及び洗浄を行い、基質を加えて発色させる。
マイクロタイタープレートリーダー等を用いて発色を測定することにより、がん特異的ポドカリキシン量を求めることができる。
【００８７】
各検査用キットは、さらに、必要な緩衝液、酵素反応停止液、マイクロプレートリーダー等を含むことも好ましい。
【００８８】
標識抗体は、酵素標識した抗体に限定されず、放射性物質（２５Ｉ、１３１Ｉ、３５Ｓ、３Ｈ等）、蛍光物質（フルオレセインイソチオシアネート、ローダミン、ダンシルクロリド、フィコエリトリン、テトラメチルローダミンイソチオシアネート、近赤外蛍光材料等）、発光物質（ルシフェラーゼ、ルシフェリン、エクオリン等）、ナノ粒子（金コロイド、量子ドット）等で標識した抗体であってもよい。また標識抗体としてビオチン化抗体を用い、キットに標識したアビジン又はストレプトアビジンを加えることもできる。
【００８９】
本発明に係る検査用キットのさらに別の態様として、ラテックス凝集法によってがん特異的ポドカリキシンを測定するためのものも挙げられる。このキットは、がん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体感作ラテックスを含み、サンプルとがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体とを混合し、光学的方法で集塊を定量する。キットに凝集反応を可視化する凝集反応板が含まれていることも好ましい。
【００９０】
本発明に係る検査用キットは、診断用キットとして用いることもできる。なお、本発明に係るがんの検査方法、診断方法、がんの検査用キット、診断用キットには、本発明に係るがん細胞特異的抗ポドカリキシン抗体に代えて、その抗原結合フラグメントを用いても
よい。
【００９１】
本明細書において引用されるすべての特許文献及び非特許文献の開示は、全体として本明細書に参照により組み込まれる。
【実施例】
【００９２】
以下、本発明を実施例に基づいて具体的に説明するが、本発明は何らこれに限定されるものではない。当業者は、本発明の意義を逸脱することなく様々な態様に本発明を変更することができ、かかる変更も本発明の範囲に含まれる。【００９３】
＜方法＞
１．リコンビナントタンパク質のマウスへの免疫とスクリーニング
ヒト脳腫瘍細胞株のＬＮ２２９細胞（ＡＴＣＣから購入）を用いてヒトポドカリキシンの細胞外領域（配列番号１における２６番目から４２６番目のアミノ酸）をリポフェクション法（ライフテクノロジー社）にて導入し、Ｇ４１８（ライフテクノロジー社）による薬剤選抜を行って分泌型ヒトポドカリキシンの安定発現株（ＬＮ２２９／ｓｏｌ−ｈＰＯＤＸＬ）を樹立した。分泌型ヒトポドカリキシンのＣ末端には、発明者らが開発したＰＡ  ｔａｇ（Ｆｕｊｉｉ  Ｙ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｅｘｐｒ  Ｐｕｒｉｆ．  ２０１４；  ９５：  ２４０−２４７．）を付加した。ＬＮ２２９／ｓｏｌ−ｈＰＯＤＸＬを１０％ウシ胎児血清（ＦＢＳ；ライフテクノロジー社）を添加したＤＭＥＭ培地（和光純薬株式会社）で大量培養し、その上清を回収した。回収した上清を０．２２μｍフィルター（ミリポア社）でろ過し、ＰＡ  ｔａｇシステムを用いて分泌型ポドカリキシンの精製を行った。分泌型ポドカリキシンの溶出には、０．１ｍｇ／ｍＬのＰＡ  ｔａｇペプチド（ｈｐｐ４０５１：１２アミノ酸のペプチド）を用いた。吸光度０Ｄ２８０をナノドロップライト（サーモサイエンティフィック社）を用いて計測した。【００９４】
精製した分泌型ポドカリキシンを、Ｂａｌｂ／ｃマウス（メス、５週齢；クレア社）に免疫した。１回あたり１００μｇを０．５ｍＬのＰＢＳで懸濁したものを腹腔投与し、７〜１４日の間隔をおいて５回免疫を行った。１回目の免疫のみ、アジュバントとして０．５ｍＬのＩｍｊｅｃｔＡｌｕｍ（サーモサイエンティフィック社）と混合して免疫を行った。最終免疫から４８時間後に、免疫したマウスから脾臓を採取し、脾細胞を抽出した。脾細胞はマウスミエローマのＰ３Ｕ１細胞（ＡＴＣＣから購入）とポリエチレングリコール１，５００（シグマアルドリッチ社）を用いて融合させ、ヒポキサンチン・アミノプテリン・チミジン（ＨＡＴ；ライフテクノロジー社）を添加した１０％ＦＢＳ／ＲＰＭＩ培地（和光純薬株式会社）を用いて、１０日間培養を行った。分泌した抗体について、ＥＬＩＳＡ法による一次スクリーニングを行った。【００９５】
ＥＬＩＳＡの抗原として、分泌型ヒトポドカリキシンを固相化した。分泌型ヒトポドカリキシンを１μｇ／ｍＬでマキシソープ（サーモサイエンティフィック社）へ固相化し、ブロッキングは１％ＢＳＡ／ＰＢＳで行った。ハイブリドーマ培養上清を一次抗体液とし、ａｎｔｉ−ｍｏｕｓｅ  ＩｇＧ−ＨＲＰ（ダコ社）を二次抗体液とした。抗原抗体反応は全て室温で行い、プレート洗浄は０．０５％Ｔｗｅｅｎ−２０を含むＰＢＳで行った。検出は１−Ｓｔｅｐ  Ｕｌｔｒａ  ＴＭＢ−ＥＬＩＳＡ（サーモサイエンティフィック社）を使用し、６５５ｎｍの吸光度をマイクロプレートリーダー（バイオラッド社）にて測定した。【００９６】
２．フローサイトメトリー
二次スクリーニングには内在的にヒトポドカリキシンの発現しているＬＮ２２９細胞、及びＬＮ２２９細胞にヒトポドカリキシンを強制発現させた細胞を用いて反応性を検討した。樹立したモノクローナル抗体の評価には上記細胞の他に、膠芽腫細胞株ＬＮ２２９（ＡＴＣＣより購入）、乳がん細胞株ＭＣＦ−７（ＡＴＣＣより購入）、骨肉腫細胞株Ｕ２−ＯＳ（ＡＴＣＣより購入）、血管内皮細胞株（Ｃａｍｂｒｅｘ社より購入）を用いた。１反応あたり１ｘ１０５細胞を使用した。細胞に培養上清を添加し、氷上で１時間、一次抗体を１０μｇ／ｍＬの濃度で反応させた。０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳで洗浄した後、Ａｌｅｘａ４８８標識抗マウスＩｇＧ抗体（１／１，０００希釈、ライフテクノロジー社）を添加し、氷上で３０分、二次抗体反応を行った。０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳで洗浄した後、Ｃｅｌｌ  Ａｎａｌｙｚｅｒ  ＥＣ８００  （ソニー社）で解析を行った。各種がん細胞株に反応し、血管内皮細胞に反応しないクローン（ＰｃＭａｂ−６）、及び両者に反応するクローン（ＰｃＭａｂ−４７）を含む、多数のクローンを樹立した。【００９７】
３．免疫組織染色
各種パラフィン切片を、キシレンとエタノールの系列を使って脱パラフィンした。ｐＨ６．０のクエン酸バッファー（ダコ社）を用いて、オートクレーブにより抗原賦活化を行った。３％Ｈ２Ｏ２を用いて内在性のペルオキシダーゼを不活性化した。ＳｕｐｅｒＢｌｏｃｋ（サーモフィッシャー社）を用いて、室温、１０分、ブロッキングを行い、一次抗体を５−１０μｇ／ｍＬの濃度で室温で１時間反応させた。ＬＳＡＢ  ｋｉｔ（ダコ社）、ＬＳＡＢ２（ダコ社）、あるいは、Ｅｎｖｉｓｉｏｎ＋（ダコ社）で増幅後、ＤＡＢ（ダコ社）で発色した。【００９８】
４．  ＰｃＭａｂ−６、ＰｃＭａｂ−４７抗体のアミノ酸配列及び塩基配列の決定
ＰｃＭａｂ−６ハイブリドーマ細胞及びＰｃＭａｂ−４７ハイブリドーマ細胞１×１０６からＱＩＡＧＥＮ  ＲＮｅａｓｙ  ｍｉｎｉ  ｋｉｔを使用してトータルＲＮＡを抽出した。トータルＲＮＡ５μｇからＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔ  ＩＩＩ  Ｆｉｒｓｔ−Ｓｔｒａｎｄ  Ｓｙｎｔｈｅｓｅｓ  ｋｉｔを使用してｃＤＮＡ合成を行った。以下の実験にｃＤＮＡを鋳型として使用した。【００９９】
Ｈ鎖の増幅に以下のプライマーを使用した。
ＨｉｎｄＩＩＩ−ＰｃＭａｂ６ＨＦ１ａｔｇ：gctaagcttAACATGCTGTTGGGGCTGAAG（配列番号：１２）
ｍＩｇＧ１ｔｅｒＮｏｔＩ：ggcggccgcTCATTTACCAGGAGAGTGGGA（配列番号：１３）
ＩｎＦ．ＨｉｎｄＩＩＩ−Ｐｃ４７Ｈ：CGGTATCGATAAGCTTAACATGGAAAGGCACTGG（配列番号：１４）
ＩｎＦ．Ｐｃ４７ＨｔｅｒＮｏｔＩ：TCTAGAGTCGCGGCCGCTCATTTACCAGGAGAGT（配列番号：１５）
ＰＣＲ反応にはＱＩＡＧＥＮ  ＨｏｔＳｔａｒ  ＨｉＦｉｄｅｌｉｔｙ  ＤＮＡ  ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅを使用した。温度条件は、最初に９５℃５分、次に９４℃１５秒、５０℃１分、７２℃１分を３５サイクル、最後に７２℃１０分とした。増幅したＰＣＲ産物はＦａｓｔＧｅｎｅ  Ｇｅｌ／ＰＣＲ  Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎにて精製した。ＰｃＭａｂ６Ｈ鎖ＰＣＲ産物は、制限酵素ＨｉｎｄＩＩＩ，ＮｏｔＩにて３７℃で１時間処理し、再度ＦａｓｔＧｅｎｅ  Ｇｅｌ／ＰＣＲ  Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ  ｋｉｔにて精製した。同じく制限酵素ＨｉｎｄＩＩＩ，ＮｏｔＩにて酵素処理し、同ｋｉｔにて精製したｐＣＡＧ  ｖｃｔｏｒにＬｉｇａｔｉｏｎ  Ｈｉｇｈを用いてサブクローニングし、ベクタープライマーから塩基配列の確認を行った。ＰｃＭａｂ４７Ｈ鎖ＰＣＲ産物については、ＰＣＲ産物をＦａｓｔＧｅｎｅ  Ｇｅｌ／ＰＣＲ  Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ  ｋｉｔにて精製後、ＨｉｎｄＩＩＩ，ＮｏｔＩ処理し、同ｋｉｔにて精製したｐＣＡＧ  ｖｅｃｔｏｒにＩｎＦｕｓｉｏｎ  ＨＤ  ｃｌｏｎｉｎｇ  ｋｉｔにてサブクローニングし、ベクタープライマーから塩基配列の決定を行った。【０１００】
Ｌ鎖の増幅に以下のプライマーを使用した。
ＨｉｎｄＩＩＩ−ＰｃＭａｂ６Ｌ．Ｆ１ａｔｇ：gcgaagcttAAGATGAAGTCACAGACCCAG（配列番号：１６）
ｍＩｇＣＫｔｅｒＮｏｔＩ：ggcggccgcCTAACACTCATTCCTGTTGAA（配列番号：１７）
ＩｎＦ．ＨｉｎｄＩＩＩ−Ｐｃ４７Ｌ：CGGTATCGATAAGCTTAAAATGGATTTTCAGGTGCA（配列番号：１８）
ＩｎＦ．ｍＩｇＣＫｔｅｒＮｏｔＩ：TCTAGAGTCGCGGCCGCCTAACACTCATTCCTGT（配列番号：１９）
ＰＣＲ反応にはＱＩＡＧＥＮ  ＨｏｔＳｔａｒ  ＨｉＦｉｄｅｌｉｔｙ  ＤＮＡ  ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅを使用した。温度条件は、最初に９５℃５分、次に９４℃１５秒、５０℃１分、７２℃１分を３５サイクル、最後に７２℃１０分とした。増幅したＰＣＲ産物はＦａｓｔＧｅｎｅ  Ｇｅｌ／ＰＣＲ  Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎにて精製した。
ＰｃＭａｂ６Ｌ鎖ＰＣＲ産物は、制限酵素ＨｉｎｄＩＩＩ，ＮｏｔＩにて３７℃で１時間処理し、再度ＦａｓｔＧｅｎｅ  Ｇｅｌ／ＰＣＲ  Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ  ｋｉｔにて精製した。同じく制限酵素ＨｉｎｄＩＩＩ，ＮｏｔＩにて酵素処理し、同ｋｉｔにて精製したｐＣＡＧ  ｖｃｔｏｒにＬｉｇａｔｉｏｎ  Ｈｉｇｈを用いてサブクローニングし、ベクタープライマーから塩基配列の確認を行った。
ＰｃＭａｂ４７Ｌ鎖ＰＣＲ産物については、ＰＣＲ産物をＦａｓｔＧｅｎｅ  Ｇｅｌ／ＰＣＲ  Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ  ｋｉｔにて精製後、ＨｉｎｄＩＩＩ，ＮｏｔＩ処理し、同ｋｉｔ  にて精製したｐＣＡＧ  ｖｅｃｔｏｒにＩｎＦｕｓｉｏｎ  ＨＤ  ｃｌｏｎｉｎｇ  ｋｉｔにてサブクローニングし、ベクタープライマーから塩基配列の決定を行った。【０１０１】
ＰｃＭａｂ−６のＨ鎖をコードするＤＮＡの塩基配列は配列番号：１１に、ＰｃＭａｂ−６のＬ鎖をコードするＤＮＡの塩基配列は配列番号：９に示すとおりであった。ＰｃＭａｂ−４７のＨ鎖をコードするＤＮＡの塩基配列は配列番号：２３に、ＰｃＭａｂ−４７のＬ鎖をコードするＤＮＡの塩基配列は配列番号：２１に示すとおりであった。
塩基配列からアミノ酸配列を予測した。ＰｃＭａｂ−６のＨ鎖アミノ酸配列は配列番号：１０に、ＰｃＭａｂ−６のＬ鎖アミノ酸配列は配列番号：８に示すとおりであった。ＰｃＭａｂ−４７のＨ鎖アミノ酸配列は配列番号：２２に、ＰｃＭａｂ−４７のＬ鎖アミノ酸配列は配列番号：２０に示す
とおりであった。【０１０２】
５．ＣＤＲの決定
決定した塩基配列より以下のＵＲＬのホームページ（ａｂＹｓｉｓ）に提供されているイムノグロブリンの配列予測ソフトにてＣＤＲの部位を特定した。
（http://www.bioinf.org.uk/abysis/sequence_input/key_annotation/key_annotation.html）
ＰｃＭａｂ−６の重鎖ＣＤＲ１〜３及び軽鎖ＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列は、それぞれ配列番号：２〜７に示されるように特定された。
ＰｃＭａｂ−４７の重鎖ＣＤＲ１〜３及び軽鎖ＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列は、それぞれ配列番号：２４〜２９に示されるように特定された。【０１０３】
６．  ヒトキメラ型ＰｃＭａｂ−６抗体（ｃｈＰｃＭａｂ−６），ヒトキメラ型ＰｃＭａｂ−４７抗体（ｃｈＰｃＭａｂ−４７）の作製
ヒトキメラ型ＰｃＭａｂ−６抗体（ｃｈＰｃＭａｂ−６）及びヒトキメラ型ＰｃＭａｂ−４７抗体（ｃｈＰｃＭａｂ−４７）を作製するために、ＰｃＭａｂ−６、ＰｃＭａｂ−４７のＶＨ領域をコードするＤＮＡをＰＣＲで増幅し、ヒトＩｇＧ１のＣＨ１、ヒンジ領域、ＣＨ２、ＣＨ３領域をコードするＤＮＡを保持したｐＣＡＧベクターに組み込んだ（ｐＣＡＧ−ｈＩｇＧ１ｈＧ２ｂ／ＰｃＭａｂ−６ＨＶＨ，ｐＣＡＧ−ｈＩｇＧ１ｈＧ２ｂ／ＰｃＭａｂ−４７ＨＶＨ）。
ＰｃＭａｂ−６のＶＨ領域はｐＣＡＧ／ＰｃＭａｂ−６Ｈプラスミドを鋳型として、以下のプライマーにより増幅した。
ＨｉｎｄＩＩＩ−ＰｃＭａｂ−６ＶＨＦ１ａｔｇ：gctaagcttAACATGCTGTTGGGGCTGAAG（配列番号：１２）
ＰｃＭａｂ６ＶＨＲ−ＢａｍＨＩ：gccggatccTGAGGAGACTGTGAGAGTGGT（配列番号：３０）
ＰｃＭａｂ−４７のＶＨ領域はｐＣＡＧ／ＰｃＭａｂ−４７Ｈプラスミドを鋳型として、以下のプライマーに
より増幅した。
ＩｎＦ．ＨｉｎｄＩＩＩ−Ｐｃ４７Ｈ：CGGTATCGATAAGCTTAACATGGAAAGGCACTGG（配列番号：１４）
ＩｎＦｒ．ＰｃＭａｂ４７ＶＨＲ−ＢａｍＨＩ：GGCCCTTGGTGGATCCTGCAGAGACAGTGACCA（配列番号：３１）【０１０４】
ＰｃＭａｂ−６のＬ鎖は、ＰｃＭａｂ−６のＶＬ領域をコードするＤＮＡをＰＣＲで増幅し、ＰｃＭａｂ−４７のＬ鎖は、ＰｃＭａｂ−４７のＶＬ領域をコードするＤＮＡをＰＣＲで増幅し、ヒトＩｇＧのκ鎖のＣＬ領域をコードするＤＮＡを保持したｐＣＡＧベクターに組み込んだ（ｐＣＡＧ−ｈＩｇＣＫ／ＰｃＭａｂ−６Ｌ，ｐＣＡＧ−ｈＩｇＣＫ／ＰｃＭａｂ−４７Ｌ）。
ＰｃＭａｂ−６のＶＬ領域をコードするＤＮＡは、ｐＣＡＧ／ＰｃＭａｂ−６Ｌプラスミドを鋳型として、以下のプライマーにより増幅した。
ＨｉｎｄＩＩＩ−ＰｃＭａｂ６Ｌ．Ｆ１ａｔｇ：gcgaagcttAAGATGAAGTCACAGACCCAG（配列番号：１６）
ＰｃＭａｂ６ＬＶＬ−ＢａｍＨＩ：gccggatccCCGTTTGATTTCCAGCTTGGT（配列番号：３２）
ＰｃＭａｂ−４７のＶＬ領域をコードするＤＮＡは、ｐＣＡＧ／ＰｃＭａｂ−４７Ｌプラスミドを鋳型として、以下のプライマーにより増幅した。
ＩｎＦ．ＨｉｎｄＩＩＩ−Ｐｃ４７Ｌ：CGGTATCGATAAGCTTAAAATGGATTTTCAGGTGCA（配列番号：１８）
ＩｎＦ．ＰｃＭａｂ４７ＬＶＬ−ＳｐｅＩ：CAGCCACAGTACTAGTCCGTTTCAGCTCCAGCT（配列番号：３３）【０１０５】
ｐＣＡＧ−ｈＩｇＧ１ｈＧ２ｂ／ＰｃＭａｂ−６ＨＶＨ（Ｇ４１８）／ｐＣＡＧ−ｈＩｇＣＫ／ＰｃＭａｂ−６ＬＶＬ（ｚｅｏｃｉｎ）又はｐＣＡＧ−ｈＩｇＧ１ｈＧ２ｂ／ＰｃＭａｂ−４７ＨＶＨ（Ｇ４１８）／ｐＣＡＧ−ｈＩｇＣＫ／ＰｃＭａｂ−４７ＬＶＬ（ｚｅｏｃｉｎ）を、それぞれ２．５μｇを混合し、Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎ  ＬＴＸの方法に従って、ＣＨＯ細胞１ｘ１０５（６ウェルプレートの１ウェルに相当）に形質導入した。２４時間後からＺｅｏｃｉｎ  ５００μｇ／ｍＬ、Ｇ４１８  １ｍｇ／ｍＬ入りの培地で形質導入細胞の選択をした。ポドカリキシンを強制発現させたＬＮ２２９細胞（ＬＮ２２９／ｈＰＯＤＸＬ）に対して、選択細胞の培養上清の反応性をフローサイトメトリーにて確認した。【０１０６】
ｃｈＰｃＭａｂ−６抗体の高発現株を、無血清培地（ライフテクノロジー社）を用いて培養し、培養上清を回収した。培養上清をプロテインＧカラム（ＧＥヘルスケア社）に通し、ｃｈＰｃＭａｂ−６抗体を精製した。ｃｈＰｃＭａｂ−６抗体は、配列番号：３４で示すアミノ酸配列からなる重鎖と、配列番号：３６で示すアミノ酸配列からなる軽鎖で構成されている。重鎖をコードするＤＮＡの塩基配列を配列番号：３５に、軽鎖をコードするＤＮＡの塩基配列を配列番号：３７に示す。重鎖は、ＰｃＭａｂ−６抗体のＶＨ領域と、ヒトＩｇＧ１に由来するＣＨ１、ヒンジ領域、ＣＨ２、ＣＨ３からなる。軽鎖は、ＰｃＭａｂ−６抗体のＶＬ領域と、ヒトｋａｐｐａに由来するＣＬとからなる。【０１０７】
同様に、ｃｈＰｃＭａｂ−４７抗体の高発現株を、無血清培地（ライフテクノロジー社）を用いて培養し、培養上清を回収した。培養上清をプロテインＧカラム（ＧＥヘルスケア社）に通し、ｃｈＰｃＭａｂ−４７抗体を精製した。ｃｈＰｃＭａｂ−４７抗体は、配列番号：３８で示すアミノ酸配列からなる重鎖と、配列番号：４０で示すアミノ酸配列からなる軽鎖で構成されている。重鎖をコードするＤＮＡの塩基配列を配列番号：３９に、軽鎖をコードするＤＮＡの塩基配列を配列番号：４１に示す。重鎖は、ＰｃＭａｂ−４７抗体のＶＨ領域と、ヒトＩｇＧ１に由来するＣＨ１、ヒンジ領域、ＣＨ２、ＣＨ３からなる。軽鎖は、ＰｃＭａｂ−４７抗体のＶＬ領域と、ヒトｋａｐｐａに由来するＣＬとからなる。【０１０８】
７．  ポドカリキシンに対するｃｈＰｃＭａｂ−６抗体の反応性
ｃｈＰｃＭａｂ−６抗体がポドカリキシンに対して反応を示すことを確認した。ヒトポドカリキシンの発現している膠芽腫細胞株ＬＮ２２９（ＡＴＣＣより購入）、ＬＮ２２９細胞にヒトポドカリキシンを強制発現させた細胞（ＬＮ２２９／ｈＰＯＤＸＬ）、悪性中皮腫細胞株ＭＳＴＯ−２１１Ｈ、ＮＣＩ−Ｈ２２６、乳がん細胞株ＭＣＦ−７（ＡＴＣＣより購入）、骨肉腫細胞株Ｕ２−ＯＳ（ＡＴＣＣより購入）、血管内皮細胞株（Ｃａｍｂｒｅｘ社より購入）を用いた。１反応あたり１ｘ１０５細胞を使用した。細胞に培養上清を添加し、氷上で１時間、一次抗体を１０μｇ／ｍＬの濃度で反応させた。０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳで洗浄した後、ＦＩＴＣ標識抗ヒトＩｇＧ抗体（１／１，０００希釈ライフテクノロジー社）を添加し、氷上で３０分、二次抗体反応を行った。０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳで洗浄した後、Ｃｅｌｌ  Ａｎａｌｙｚｅｒ  ＥＣ８００（ソニー社）で解析を行った。
結果を図４に示す。図に示す通り、ｃｈＰｃＭａｂ−６抗体は、ポドカリキシンを発現した細胞株に対し、いずれも良く反応した。一方、正常細胞である血管内皮細胞には反応しなかった。ネガティブコントロールとして、それぞれの二次抗体のみを用いた。【０１０９】
８．  ポドカリキシン陽性細胞（ＬＮ２２９／ＰＯＤＸＬ）に対するｃｈＰｃＭａｂ−６のＡＤＣＣ活性の測定
ヒト単核球（Ｅｆｆｅｃｔｏｒ細胞）をＲＰＭＩ１６４０（Ｐｈｅｎｏｌ  ｒｅｄ  ｆｒｅｅ；タカラバイオ社）に浮遊させ、細胞数を１ｘ１０７ｃｅｌｌｓ／ｍＬに調整した。Ｃａｌｃｅｉｎ−ＡＭ（ＰｒｏｍｏＣｅｌｌ社）で標識したＬＮ２２９／ＰＯＤＸＬ（Ｔａｒｇｅｔ細胞）を１ｘ１０５ｃｅｌｌｓ／ｍＬとなるように調整し、ｃｈＰｃＭａｂ−６を終濃度が１０μｇ／ｍＬの濃度になるように添加した。コントロールとしては、ＰＢＳを用いた。９６ｗｅｌｌ  ｐｌａｔｅにヒト単核球とＬＮ２２９／ＰＯＤＸＬのＥｆｆｅｃｔｏｒ／Ｔａｒｇｅｔ（Ｅ／Ｔ）比が１００となるように混合して播種した。陽性対照（完全放出）には、ヒト単核球の代わりに０．１％に希釈したＴｒｉｔｏｎＸ−１００を、陰性対象（自然放出）には、ヒト単核球の代わりにＲＰＭＩ１６４０培地を添加した。３７°Ｃ、５％ＣＯ２の条件下で４時間インキュベートし、反応後の上清１００μＬを蛍光測定用黒色プレートに分取後、蛍光プレートリーダーで蛍光強度（励起波長：４８５ｎｍ，検出波長：５３５ｎｍ）を測定した。
細胞障害活性（％）は、以下の式にて計算した。
％  Ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｌｙｓｉｓ（Ｃｙｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ）＝（Ｅ／Ｔ比の平均値−陰性対照の平均値）／（陽性対照の平均値−陰性対照の平均値）х１００【０１１０】
＜結果＞
１）抗ポドカリキシン抗体の樹立
分泌型ポドカリキシンを免疫したマウスから抽出した脾細胞とマウスミエローマのＰ３Ｕ１細胞をＰＥＧ法にて細胞融合を行い、９６ｗｅｌｌプレート５枚へ播種した。一次スクリーニングは分泌型ヒトポドカリキシンを固相化したＥＬＩＳＡで行った。６５５ｎｍの吸光度で０．４５以上のものが４８０ウェル中４９ウェルあり、２４ｗｅｌｌプレートへ拡大培養した。細胞の増殖が確認できた培養上清４８ウェルを用いて二次スクリーニングを行った。分泌型ヒトポドカリキシンを固相化したＥＬＩＳＡで、６５５ｎｍの吸光度で０．２以上の値のものが４８ウェル中４０ウェルであった。さらに内在性のヒトポドカリキシンを発現するＬＮ２２９細胞を用いてフローサイトメトリーによる解析を行った。ＬＮ２２９細胞に対して陽性のものは１８／４８ウェルであった。ＥＬＩＳＡ、フローサイトメトリーともに陽性は４８ウェル中１５ウェルであり、これらについて限界希釈法によるシングルクローン化を行った。シングルクローンは９個樹立できた。フローサイトメトリーによる解析から、ＬＮ２２９細胞、及びＬＮ２２９細胞／ヒトポドカリキシン安定発現株に対して反応性を示し、ＬＮ２２９／ヒトポドカリキシンに対する反応性が、内在性のポドカリキシンを発現するＬＮ２２９に対する反応性よりも高いという結果になった。【０１１１】
２）マウス抗体によるフローサイトメトリー（図１）
新規に樹立した抗体の中で、ＰｃＭａｂ−６（ＩｇＧ１，ｋａｐｐａ）は、膠芽腫細胞株ＬＮ２２９、ＬＮ２２９／ＰＯＤＸＬ、悪性中皮腫細胞株ＭＳＴＯ−２１１Ｈ、ＮＣＩ−Ｈ２２６、乳がん細胞株ＭＣＦ−７、骨肉腫細胞株Ｕ２−ＯＳに高反応性を示したが、血管内皮細胞株にはほとんど反応性を示さなかった。一方、別のクローンであるＰｃＭａｂ−４７は、ＬＮ２２９、ＬＮ２２９／ＰＯＤＸＬ、悪性中皮腫細胞株ＭＳＴＯ−２１１Ｈ、ＮＣＩ−Ｈ２２６、ＭＣＦ−７、Ｕ２−ＯＳ、血管内皮細胞株のすべてに反応することがわかった。これらの結果から、ＰｃＭａｂ−６が、がん特異的抗体（ｃａｎｃｅｒ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｍＡｂ：ＣａｓＭａｂ）であることがわかった。【０１１２】
３）免疫組織染色（図２、図３）
ポドカリキシンは乳がんに高発現していることが知られている。よって、ＰｃＭａｂ−６及び抗ポドカリキシン抗体（ポリクローナル抗体；Ｒ＆Ｄ社）を乳がん組織アレイ（ＵＳ  Ｂｉｏｍａｘ社）に５μｇ／ｍＬの濃度で反応させた。その結果、ポリクローナル抗体は、乳がん組織のがん細胞だけでなく、血管内皮細胞に高反応性を示した。一方、ＰｃＭａｂ−６は、がん細胞だけに反応し、血管内皮細胞にはほとんど反応性を示さないことがわかった。同様に、ＰｃＭａｂ−６とＰｃＭａｂ−４７の乳がんに対する反応性の違いを検討した。ＰｃＭａｂ−４７（５μｇ／ｍＬ）の濃度では、乳がん組織のがん細胞だけでなく、血管内皮細胞に高反応性を示した。一方、ＰｃＭａｂ−６（１０μｇ／ｍＬ）は、がん細胞だけに反応し、血管内皮細胞にはほとんど反応性を示さなかった。以上より、ＰｃＭａｂ−６は免疫組織染色においても、ＣａｓＭａｂであることが確認された。【０１１３】
４）ヒトキメラ型抗体によるフローサイトメトリー（図４）
ヒトキメラ型抗体ｃｈＰｃＭａｂ−６（ＩｇＧ１，ｋａｐｐａ）は、ＰｃＭａｂ−６と同様に、膠芽腫細胞株ＬＮ２２９、ＬＮ２２９／ＰＯＤＸＬ、悪性中皮腫細胞株ＭＳＴＯ−２１１Ｈ、ＮＣＩ−Ｈ２２６、乳がん細胞株ＭＣＦ−７、骨肉腫細胞株Ｕ２−ＯＳに高反応性を示したが、血管内皮細胞株にはほとんど反応性を示さなかった。一方、ヒトキメラ型抗体ｃｈＰｃＭａｂ−４７は、ＬＮ２２９、ＬＮ２２９／ＰＯＤＸＬ、悪性中皮腫細胞株ＭＳＴＯ−２１１Ｈ、ＮＣＩ−Ｈ２２６、ＭＣＦ−７、Ｕ２−ＯＳ、血管内皮細胞株のすべてに反応することがわかった。これらの結果から、ｃｈＰｃＭａｂ−６もＰｃＭａｂ−６と同様に、ＣａｓＭａｂであることがわかった。【０１１４】
５）ｃｈＰｃＭａｂ−６のＡＤＣＣ活性
図５に示す通り、ｃｈＰｃＭａｂ−６はＬＮ２２９／ＰＯＤＸＬに対し、ＡＤＣＣ活性を示した。【０１１５】
・ポドカリキシン陽性細胞（ＬＮ２２９／ＰＯＤＸＬ）に対するｃｈＰｃＭａｂ−６のＡＤＣＣ活性の測定?２（ＮＫ細胞）
ヒトＮＫ細胞（Ｅｆｆｅｃｔｏｒ細胞）をＲＰＭＩ１６４０  （Ｐｈｅｎｏｌ  ｒｅｄ  ｆｒｅｅ；  タカラバイオ社）に浮遊させ、細胞数を１ｘ１０７ｃｅｌｌｓ／ｍＬに調整した。Ｃａｌｃｅｉｎ−ＡＭ（ＰｒｏｍｏＣｅｌｌ社）で標識したＬＮ２２９／ＰＯＤＸＬ（Ｔａｒｇｅｔ細胞）を１ｘ１０５ｃｅｌｌｓ／ｍＬとなるように調整し、ｃｈＰｃＭａｂ−６を終濃度が１０μｇ／ｍＬ、２０μｇ／ｍＬの濃度になるように添加した。コントロールとしては、ＰＢＳを用いた。９６  ｗｅｌｌ  ｐｌａｔｅにヒト単核球とＬＮ２２９／ＰＯＤＸＬのＥｆｆｅｃｔｏｒ／Ｔａｒｇｅｔ（Ｅ／Ｔ）比が１００となるように混合して播種した。陽性対照（完全放出）には、ヒト単核球の代わりに０．１％に希釈したＴｒｉｔｏｎＸ−１００を、陰性対象（自然放出）には、ヒト単核球の代わりにＲＰＭＩ１６４０培地を添加した。３７°Ｃ、５％ＣＯ２の条件下で４時間インキュベートし、反応後の上清１００μＬを蛍光測定用黒色プレートに分取後、蛍光プレートリーダーで蛍光強度（励起波長：４８５ｎｍ，検出波長：５３５ｎｍ）を測定した。
細胞障害活性（％）は、以下の式にて計算した。
％  Ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｌｙｓｉｓ（Ｃｙｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ）＝（Ｅ／Ｔ比の平均値−陰性対照の平均値）／（陽性対照の平均値−陰性対照の平均値）х１００【０１１６】
・コアフコース欠損ヒトキメラ型ＰｃＭａｂ−６（ｃｈＰｃＭａｂ−６ｆ）の作製
ＣＨＯ−ｓ細胞（サーモサイエンティフィック社）に、コアフコースを転移する糖転移酵素（Ｆｕｔ−８）のＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓプラスミドを導入し、ＣＨＯ−ｓ−  ｆｕｔ８−ｋｎｏｃｋ  ｏｕｔ細胞を樹立した。ｐＣＡＧ−ｈＩｇＧ１ｈＧ２ｂ／ＰｃＭａｂ−６ＨＶＨ（Ｇ４１８）／ｐＣＡＧ−ｈＩｇＣＫ／ＰｃＭａｂ−６ＬＶＬ（ｚｅｏｃｉｎ）又はｐＣＡＧ−ｈＩｇＧ１ｈＧ２ｂ／ＰｃＭａｂ−４７ＨＶＨ（Ｇ４１８）／ｐＣＡＧ−ｈＩｇＣＫ／ＰｃＭａｂ−４７ＬＶＬ（ｚｅｏｃｉｎ）を、それぞれ２．５μｇを混合し、Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎ  ＬＴＸの方法に従って、ＣＨＯ−ｓ／ｆｕｔ８−ｋｎｏｃｋ  ｏｕｔ細胞１ｘ１０５個（６ウェルプレートの１ウェルに相当）に形質導入した。２４時間後からＺｅｏｃｉｎ  ５００μｇ／ｍＬ、Ｇ４１８  １ｍｇ／ｍＬ入りの培地で形質導入細胞の選択をした。ポドカリキシンを強制発現させたＬＮ２２９細胞（ＬＮ２２９／ｈＰＯＤＸＬ）に対して、選択細胞の培養上清の反応性をフローサイトメトリーにて確認した。
ｃｈＰｃＭａｂ−６ｆ抗体の高発現株を、無血清培地（サーモサイエンティフィック社）を用いて培養し、培養上清を回収した。培養上清をプロテインＧセファロース４  ＦＦ（Ｆａｓｔ  Ｆｌｏｗ）（ＧＥヘルスケア社）に通し、ｃｈＰｃＭａｂ−６ｆ抗体を精製した。ｃｈＰｃＭａｂ−６ｆ抗体は、配列番号：３４で示すアミノ酸配列からなる重鎖と、配列番号：３６で示すアミノ酸配列からなる軽鎖で構成されている。重鎖をコードするＤＮＡの塩基配列を配列番号：３５に、軽鎖をコードするＤＮＡの塩基配列を配列番号：３７に示す。重鎖は、ＰｃＭａｂ−６抗体のＶＨ領域と、ヒトＩｇＧ１に由来するＣＨ１、ヒンジ領域、ＣＨ２、ＣＨ３からなる。軽鎖は、ＰｃＭａｂ−６抗体のＶＬ領域と、ヒトｋａｐｐａ鎖に由来するＣＬとからなる。【０１１７】
・抗ポドカリキシン抗体による抗腫瘍効果の検討
ＣＨＯ細胞にヒトポドカリキシンを高発現させた細胞株（ＣＨＯ／ｈＰＯＤＸＬ）を、１８匹のヌードマウスの皮下に移植した。腫瘍移植から１日後、４日後、１１日後、１８日後に、ｃｈＰｃＭａｂ−６抗体、ｃｈＰｃＭａ４７抗体、ヒト正常ＩｇＧを１００μｇ／ｍｏｕｓｅで腹腔内投与を行った。腫瘍移植から４日後に、すべてのマウスに対し、腫瘍周辺にヒトＮＫ細胞を８．２５ｘ１０５／ｍｏｕｓｅ投与、腫瘍移植から１１日後に、すべてのマウスに対し、腫瘍周辺にヒトＮＫ細胞を９．１２５ｘ１０５／ｍｏｕｓｅ投与した。腫瘍の大きさを、腫瘍移植から、４日後、７日後、１０日後、１４日後、１７日後、２４日後、２８日後、３０日後に測定した。腫瘍移植から３０日後に、すべてのマウスを解剖した。【０１１８】
結果
図６に示す通り、ｃｈＰｃＭａｂ−６はＬＮ２２９／ＰＯＤＸＬに対し、ＡＤＣＣ活性を示した。ｃｈＰｃＭａｂ−６の濃度が１０μｇ／ｍＬと２０μｇ／ｍＬで有意差がないことから、１０μｇ／ｍＬの濃度で十分であることがわかった。また、図５の単核球を用いた検討と比べ、ｃｈＰｃＭａｂ−６によるＡＤＣＣ活性が増強した。
【配列表フリーテキスト】
【０１１９】
配列番号：１は、ヒトポドカリキシンのアミノ酸配列を表す。
配列番号：２〜４は、それぞれＰｃＭａｂ−６の重鎖ＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列を表す。
配列番号：５〜７は、それぞれＰｃＭａｂ−６の軽鎖ＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列を表す。
配列番号：８、９は、それぞれＰｃＭａｂ−６の軽鎖のアミノ酸配列とＤＮＡ配列を表す。
配列番号：１０、１１は、それぞれＰｃＭａｂ−６の重鎖のアミノ酸配列とＤＮＡ配列を表す。
配列番号：１２は、プライマーＨｉｎｄＩＩＩ−ＰｃＭａｂ６ＨＦ１ａｔｇのＤＮＡ配列を表す。
配列番号：１３は、プライマーｍＩｇＧ１ｔｅｒＮｏｔＩのＤＮＡ配列を表す。
配列番号：１４は、プライマーＩｎＦ．ＨｉｎｄＩＩＩ−Ｐｃ４７ＨのＤＮＡ配列を表す。
配列番号：１５は、プライマーＩｎＦ．Ｐｃ４７ＨｔｅｒＮｏｔＩのＤＮＡ配列を表す。
配列番号：１６は、プライマーＨｉｎｄＩＩＩ−ＰｃＭａｂ６Ｌ．Ｆ１ａｔｇのＤＮＡ配列を表す。
配列番号：１７は、プライマーｍＩｇＣＫｔｅｒＮｏｔＩのＤＮＡ配列を表す。
配列番号：１８は、プライマーＩｎＦ．ＨｉｎｄＩＩＩ−Ｐｃ４７ＬのＤＮＡ配列を表す。
配列番号：１９は、プライマーＩｎＦ．ｍＩｇＣＫｔｅｒＮｏｔＩのＤＮＡ配列を表す。
配列番号：２０、２１は、それぞれＰｃＭａｂ−４７の軽鎖のアミノ酸配列とＤＮＡ配列を表す。
配列番号：２２、２３は、それぞれＰｃＭａｂ−４７の重鎖のアミノ酸配列とＤＮＡ配列を表す。
配列番号：２４〜２６は、それぞれＰｃＭａｂ−４７の重鎖ＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列を表す。
配列番号：２７〜２９は、それぞれＰｃＭａｂ−４７の軽鎖ＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列を表す。
配列番号：３０は、プライマーＰｃＭａｂ６ＶＨＲ−ＢａｍＨＩのＤＮＡ配列を表す。
配列番号：３１は、プライマーＩｎＦｒ．ＰｃＭａｂ４７ＶＨＲ−ＢａｍＨＩのＤＮＡ配列を表す。
配列番号：３２は、プライマーＰｃＭａｂ６ＬＶＬ−ＢａｍＨＩのＤＮＡ配列を表す。
配列番号：３３は、プライマーＩｎＦ．ＰｃＭａｂ４７ＬＶＬ−ＳｐｅＩのＤＮＡ配列を表す。
配列番号：３４、３５は、それぞれｃｈＰｃｍａｂ−６の重鎖のアミノ酸配列とＤＮＡ配列を表す。
配列番号：３６、３７は、それぞれｃｈＰｃｍａｂ−６の軽鎖のアミノ酸配列とＤＮＡ配列を表す。
配列番号：３８、３９は、それぞれｃｈＰｃｍａｂ−４７の重鎖のアミノ酸配列とＤＮＡ配列を表す。
配列番号：４０、４１は、それぞれｃｈＰｃｍａｂ−４７の軽鎖のアミノ酸配列とＤＮＡ配列を表す。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【配列表】
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【国際調査報告】
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