(57)【要約】  Ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ（ＩＬ）−１α、Ｖａｓｃｕｌａｒ  ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ（ＶＥＧＦ）−Ｃ、Ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ  ａｃｔｉｖａｔｏｒ  ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ（ＰＡＩ）−１及びＨｅａｔ  ｓｈｏｃｋ  ｐｒｏｔｅｉｎ（ＨＳＰ）９０αからなる群より選択される、褥瘡発生予測マーカー。【特許請求の範囲】
【請求項１】
Ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ（ＩＬ）−１α、Ｖａｓｃｕｌａｒ  ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ（ＶＥＧＦ）−Ｃ、Ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ  ａｃｔｉｖａｔｏｒ  ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ（ＰＡＩ）−１及びＨｅａｔ  ｓｈｏｃｋ  ｐｒｏｔｅｉｎ（ＨＳＰ）９０αからなる群より選択される、褥瘡発生予測マーカー。
【請求項２】
ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＰＡＩ−１又はＨＳＰ９０αのｃＤＮＡを増幅するためのプライマーセット、
ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＰＡＩ−１又はＨＳＰ９０αのｍＲＮＡに特異的にハイブリダイズするプローブ、又は
ＩＬ−１αタンパク質、ＶＥＧＦ−Ｃタンパク質、ＰＡＩ−１タンパク質又はＨＳＰ９０αタンパク質に対する特異的結合物質、を備える、褥瘡発生予測キット。
【請求項３】
患者の対象領域に由来する試料中の、ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＰＡＩ−１又はＨＳＰ９０αの発現量を測定する工程を備える、褥瘡発生予測方法。
【請求項４】
前記試料が、水、生理食塩水又は緩衝液で湿らせた、極性を有するメンブレンを、患者の対象領域の皮膚に貼付し、所定時間放置後に回収したメンブレン試料であり、
ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＰＡＩ−１又はＨＳＰ９０αの発現量を測定する前記工程が、前記メンブレン試料中の、ＩＬ−１αタンパク質、ＶＥＧＦ−Ｃタンパク質、ＰＡＩ−１タンパク質又はＨＳＰ９０αタンパク質の存在量を測定する工程である、請求項３に記載の褥瘡発生予測方法。
【請求項５】
ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ又はＰＡＩ−１の発現量が対照と比較して増加していた場合に、前記対象領域に褥瘡が発生すると予測する工程を更に備える、請求項３又は４に記載の褥瘡発生予測方法。
【請求項６】
前記対象領域に発赤が認められ、且つＨＳＰ９０αの発現量が対照と同等である場合に、前記対象領域に褥瘡が発生すると予測する工程を更に備える、請求項３又は４に記載の褥瘡発生予測方法。
【請求項７】
患者由来の血液試料中の、ＰＡＩ−１タンパク質の存在量を測定する工程と、
ＰＡＩ−１タンパク質の存在量が対照と比較して増加していた場合に、前記患者は褥瘡を発生すると予測する工程と、を備える、褥瘡発生予測方法。
【請求項８】
非ヒト動物の皮膚をつまみ、１３３．３２２ｋＰａの圧力を６時間印加する工程を含む、褥瘡モデル非ヒト動物の製造方法。
【請求項９】
前記非ヒト動物がマウスであり、前記皮膚が背部皮膚である、請求項８に記載の褥瘡モデル非ヒト動物の製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、褥瘡発生予測マーカー及びその使用に関する。より具体的には、褥瘡発生予測マーカー、褥瘡発生予測キット、褥瘡発生予測方法、褥瘡モデル非ヒト動物の製造方法に関する。本願は、２０１６年１月１４日に、米国に仮出願されたＵＳ６２／２７８，４５４に基づき優先権を主張し、その内容をここに援用する。
【背景技術】
【０００２】
褥瘡は、高齢の患者の生命を脅かすことが特に懸念される疾患であるが、その発症を完全に防止することはできていない（例えば、非特許文献１を参照）。【０００３】
褥瘡は、阻血性障害、再灌流傷害、リンパ系機能障害及び機械的変形の４つの経路により形成されることが知られている。また、褥瘡の重症度は一般的に「深さ（深達度）」によって分類される。代表的な分類法は、米国褥瘡諮問委員会：Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｐｒｅｓｓｕｒｅ  Ｕｌｃｅｒ  Ａｄｖｉｓｏｒｙ  Ｐａｎｅｌ（ＮＰＵＡＰ）が提唱するものである。この分類法によれば、褥瘡の重症度は、カテゴリーＩ（消退しない発赤）、カテゴリーＩＩ（部分欠損）、カテゴリーＩＩＩ（全層皮膚欠損）、カテゴリーＩＶ（骨、腱、筋肉の露出を伴う全層組織欠損）に分類されている。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００４】
【非特許文献１】Allman, R. M., Pressure ulcers among the elderly, N. Engl. J. Med., 320 (13), 850-853, 1989.
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
褥瘡の発生を予測することができれば、適切な処置を行って褥瘡の発生を予防することができると考えられる。褥瘡の発生を予測するためには、圧力の印加に対する組織の応答を分子レベルで直接検出することが必要である。しかしながら、現在、褥瘡の発生を予測することができる有効なマーカーは知られていない。そこで、本発明は、褥瘡の発生を予測する技術を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明は以下の態様を含む。
［１］Ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ（ＩＬ）−１α、Ｖａｓｃｕｌａｒ  ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ（ＶＥＧＦ）−Ｃ、Ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ  ａｃｔｉｖａｔｏｒ  ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ（ＰＡＩ）−１及びＨｅａｔ  ｓｈｏｃｋ  ｐｒｏｔｅｉｎ（ＨＳＰ）９０αからなる群より選択される、褥瘡発生予測マーカー。
［２］ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＰＡＩ−１又はＨＳＰ９０αのｃＤＮＡを増幅するためのプライマーセット、ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＰＡＩ−１又はＨＳＰ９０αのｍＲＮＡに特異的にハイブリダイズするプローブ、又はＩＬ−１αタンパク質、ＶＥＧＦ−Ｃタンパク質、ＰＡＩ−１タンパク質又はＨＳＰ９０αタンパク質に対する特異的結合物質、を備える、褥瘡発生予測キット。
［３］患者の対象領域に由来する試料中の、ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＰＡＩ−１又はＨＳＰ９０αの発現量を測定する工程を備える、褥瘡発生予測方法。
［４］前記試料が、水、生理食塩水又は緩衝液で湿らせた、極性を有するメンブレンを、患者の対象領域の皮膚に貼付し、所定時間放置後に回収したメンブレン試料であり、ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＰＡＩ−１又はＨＳＰ９０αの発現量を測定する前記工程が、前記メンブレン試料中の、ＩＬ−１αタンパク質、ＶＥＧＦ−Ｃタンパク質、ＰＡＩ−１タンパク質又はＨＳＰ９０αタンパク質の存在量を測定する工程である、［３］に記載の褥瘡発生予測方法。
［５］ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ又はＰＡＩ−１の発現量が対照と比較して増加していた場合に、前記対象領域に褥瘡が発生すると予測する工程を更に備える、［３］又は［４］に記載の褥瘡発生予測方法。
［６］前記対象領域に発赤が認められ、且つＨＳＰ９０αの発現量が対照と同等である場合に、前記対象領域に褥瘡が発生すると予測する工程を更に備える、［３］又は［４］に記載の褥瘡発生予測方法。
［７］患者由来の血液試料中の、ＰＡＩ−１タンパク質の存在量を測定する工程と、ＰＡＩ−１タンパク質の存在量が対照と比較して増加していた場合に、前記患者は褥瘡を発生すると予測する工程と、を備える、褥瘡発生予測方法。
［８］非ヒト動物の皮膚をつまみ、１３３．３２２ｋＰａの圧力を６時間印加する工程を含む、褥瘡モデル非ヒト動物の製造方法。
［９］前記非ヒト動物がマウスであり、前記皮膚が背部皮膚である、［８］に記載の褥瘡モデル非ヒト動物の製造方法。
【発明の効果】
【０００７】
本発明によれば、褥瘡の発生を予測する技術を提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【０００８】
【図１】実験例１において、マウスに圧力を印加している様子を示す写真である。
【図２】実験例２において、各群のマウスの皮膚を肉眼で観察した結果を示す代表的な写真である。
【図３】（ａ）〜（ｆ）は、実験例３における各群のマウスの皮膚組織の組織学的な解析結果を示す代表的な写真である。
【図４】実験例４において、ＨＩＦ−１αタンパク質の発現を免疫染色により検出した代表的な結果を示す写真である。
【図５】実験例４において、８−ＯＨｄＧを免疫染色により検出した代表的な結果を示す写真である。
【図６】実験例４において、ＬＹＶＥ−１タンパク質を免疫染色により検出した代表的な結果を示す写真である。
【図７】実験例４において、組織切片をヘマトキシリン及びエオシンで染色した代表的な結果を示す写真である。
【図８】実験例５において、ＰＡＩ−１タンパク質の発現を検出した代表的な結果を示す写真である。
【図９】実験例５において、ＩＬ−１αタンパク質の発現を検出した代表的な結果を示す写真である。
【図１０】実験例５において、ＶＥＧＦ−Ｃタンパク質の発現を検出した代表的な結果を示す写真である。
【図１１】実験例５において、ＨＳＰ９０αタンパク質の発現を検出した代表的な結果を示す写真である。
【図１２】実験例６において、ＰＡＩ−１タンパク質の発現を検討した結果を示すグラフである。
【図１３】実験例６において、ＩＬ−１αタンパク質の発現を検討した結果を示すグラフである。
【図１４】実験例６において、ＶＥＧＦ−Ｃタンパク質の発現を検討した結果を示すグラフである。
【図１５】実験例６において、ＨＳＰ９０αタンパク質の発現を検討した結果を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【０００９】
［褥瘡発生予測マーカー］
１実施形態において、本発明は、ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＰＡＩ−１及びＨＳＰ９０αからなる群より選択される、褥瘡発生予測マーカーを提供する。
【００１０】
実施例において後述するように、発明者らは、ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＰＡＩ−１の発現量の増加が、褥瘡の発生と関連することを明らかにした。また、発明者らは、ＨＳＰ９０αの発現量が対照と同等であり、皮膚に発赤が認められる場合においても褥瘡の発生を予測することができることを明らかにした。
【００１１】
したがって、ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＰＡＩ−１又はＨＳＰ９０αは、褥瘡発生予測マーカーであるということができる。本実施形態の褥瘡発生予測マーカーは、タンパク質レベルで検出してもよいし、遺伝子レベルで検出してもよい。
【００１２】
本実施形態の褥瘡発生予測マーカーにより、従来予測することが困難であった褥瘡の発生を、正確に予測することが可能になる。
【００１３】
実施例において後述するように、特に、スキンブロッティングによりタンパク質レベルでこれらの褥瘡発生予測マーカーを検出することにより、非侵襲的に褥瘡の発生を予測することができる。
【００１４】
なお、スキンブロッティングとは、ニトロセルロース膜、ＰＶＤＦ膜等の膜（メンブレン）を皮膚に所定時間貼付後回収し、回収された膜に捕捉されたタンパク質を免疫染色等により解析する方法である。所定時間としては、特に限定されず、例えば、１分間〜２４時間が挙げられる。スキンブロッティングによれば、非侵襲的にタンパク質の発現及び分泌を検出することができる。
【００１５】
［褥瘡発生予測キット］
１実施形態において、本発明は、ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＰＡＩ−１又はＨＳＰ９０αのｃＤＮＡを増幅するためのプライマーセット、ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＰＡＩ−１又はＨＳＰ９０αのｍＲＮＡに特異的にハイブリダイズするプローブ、又はＩＬ−１αタンパク質、ＶＥＧＦ−Ｃタンパク質、ＰＡＩ−１タンパク質又はＨＳＰ９０αタンパク質に対する特異的結合物質、を備える、褥瘡発生予測キットを提供する。
【００１６】
本実施形態のキットにより、ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＰＡＩ−１又はＨＳＰ９０αの発現をタンパク質レベル又は遺伝子レベルで検出し、褥瘡の発生を予測することができる。
【００１７】
（プライマーセット）
プライマーセットとしては、ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＰＡＩ−１又はＨＳＰ９０α遺伝子のｃＤＮＡを増幅することができるものであれば特に限定されない。ヒトＩＬ−１α遺伝子のＲｅｆＳｅｑ  ＩＤはＮＭ＿０００５７５であり、マウスＩＬ−１α遺伝子のＲｅｆＳｅｑ  ＩＤはＮＭ＿０１０５５４である。また、ヒトＶＥＧＦ−Ｃ遺伝子のＲｅｆＳｅｑ  ＩＤはＮＭ＿００５４２９であり、マウスＶＥＧＦ−Ｃ遺伝子のＲｅｆＳｅｑ  ＩＤはＮＭ＿００９５０６である。また、ヒトＰＡＩ−１遺伝子のＲｅｆＳｅｑ  ＩＤはＮＭ＿０００６０２であり、マウスＰＡＩ−１遺伝子のＲｅｆＳｅｑ  ＩＤはＮＭ＿００８８７１である。また、ヒトＨＳＰ９０α遺伝子のＲｅｆＳｅｑ  ＩＤはＮＭ＿００１０１７９６３であり、マウスＨＳＰ９０α遺伝子のＲｅｆＳｅｑ  ＩＤはＮＭ＿０１０４８０である。
【００１８】
（プローブ）
プローブとしては、ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＰＡＩ−１又はＨＳＰ９０α遺伝子のｍＲＮＡに特異的にハイブリダイズするものであれば特に限定されない。プローブは、担体上に固定されてＤＮＡマイクロアレイ等を構成していてもよい。
【００１９】
（特異的結合物質）
特異的結合物質としては、例えば、抗体、抗体断片、アプタマー等が挙げられる。抗体は、例えば、マウス等の動物に対象タンパク質又はその部分ペプチドを抗原として免疫することにより作製してもよい。あるいは、ファージライブラリー等の抗体ライブラリーのスクリーニング等により作製することもできる。また、抗体断片としては、Ｆｖ、Ｆａｂ、ｓｃＦｖ等が挙げられる。上記の抗体又は抗体断片は、ポリクローナルであってもよく、モノクローナルであってもよい。
【００２０】
アプタマーとは、標識物質に対する特異的結合能を有する物質である。アプタマーとしては、核酸アプタマー、ペプチドアプタマー等が挙げられる。対象タンパク質に特異的結合能を有する核酸アプタマーは、例えば、systematic evolution of ligand by exponential enrichment（ＳＥＬＥＸ）法等により選別することができる。また、対象タンパク質に対する特異的結合能を有するペプチドアプタマーは、例えば酵母を用いたＴｗｏ−ｈｙｂｒｉｄ法等により選別することができる。
【００２１】
特異的結合物質は、対象タンパク質に特異的に結合することができれば特に制限されず、市販のものであってもよい。また、特異的結合物質は、担体上に固定されてプロテインチップ等を構成していてもよい。
【００２２】
［褥瘡発生予測方法］
１実施形態において、本発明は、患者の対象領域に由来する試料中の、ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＰＡＩ−１又はＨＳＰ９０αの発現量を測定する工程を備える、褥瘡発生予測方法を提供する。
【００２３】
本実施形態の褥瘡発生予測方法において、患者としては、褥瘡の発症が疑われる患者が挙げられる。また、対象領域としては、褥瘡の発症が疑われる皮膚の領域が挙げられる。また、試料としては、生検組織、血液、スキンブロッティングにより回収した試料等が挙げられる。
【００２４】
ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＰＡＩ−１又はＨＳＰ９０αの発現量の測定は、ｍＲＮＡレベルで行ってもよく、タンパク質レベルで行ってもよい。
【００２５】
ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＰＡＩ−１又はＨＳＰ９０αの発現量をｍＲＮＡレベルで検出する場合、例えば、生検試料、血液等の生体試料から抽出した全ＲＮＡ又はｍＲＮＡをサンプルとしたＲＴ−ＰＣＲ等を行うことにより、上記のマーカー遺伝子の発現を検出することができる。遺伝子の発現の検出は、例えば定性的なＰＣＲにより行ってもよいし、例えばリアルタイム定量ＰＣＲ等の定量性のある遺伝子増幅法により行ってもよいし、ＬＡＭＰ法等の定温で反応が進行する遺伝子増幅法等により行ってもよい。あるいは、例えばＤＮＡマイクロアレイ等を用いてマーカー遺伝子の発現を検出してもよい。
【００２６】
タンパク質レベルでマーカー遺伝子の発現を検出する場合には、例えば、生検組織、血液、スキンブロッティングにより回収した試料等をサンプルとした、免疫染色、イムノブロッティング、ＥＬＩＳＡ等により、マーカータンパク質の存在を検出すればよい。
【００２７】
本実施形態の褥瘡発生予測方法において、試料が、水、生理食塩水又は緩衝液で湿らせた、極性を有するメンブレンを、患者の対象領域の皮膚に貼付し、所定時間放置後に回収したメンブレン試料であり、ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＰＡＩ−１又はＨＳＰ９０αの発現量を測定する工程が、メンブレン試料中の、ＩＬ−１αタンパク質、ＶＥＧＦ−Ｃタンパク質、ＰＡＩ−１タンパク質又はＨＳＰ９０αタンパク質の存在量を測定する工程であってもよい。
【００２８】
すなわち、本実施形態の褥瘡発生予測方法はスキンブロッティングにより好適に行うことができる。これにより、非侵襲的に褥瘡発生を予測することができる。
【００２９】
ここで、極性を有するメンブレンとしては、例えば、ニトロセルロース膜、ＰＶＤＦ膜等が挙げられる。また、所定時間としては、特に限定されず、例えば、１分間〜２４時間が挙げられる。
【００３０】
本実施形態の褥瘡発生予測方法においては、ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ又はＰＡＩ−１の発現量が対照と比較して増加していた場合に、前記対象領域に褥瘡が発生すると予測してもよい。ここで、対照としては、同一患者由来の、褥瘡が発生しないことが明らかな領域から採取した試料、褥瘡を有しない健常人由来の試料等を用いることができる。
【００３１】
あるいは、本実施形態の褥瘡発生予測方法において、患者の対象領域に発赤が認められ、且つＨＳＰ９０αの発現量が対照と同等である場合に、対象領域に褥瘡が発生すると予測してもよい。ここで、対照としては、同一患者由来の、褥瘡が発生しないことが明らかな領域から採取した試料、褥瘡を有しない健常人由来の試料等を用いることができる。
【００３２】
あるいは、本実施形態の褥瘡発生予測方法は、患者由来の血液試料中の、ＰＡＩ−１タンパク質の存在量を測定する工程と、ＰＡＩ−１タンパク質の存在量が対照と比較して増加していた場合に、前記患者は褥瘡を発生すると予測する工程と、を備えるものであってもよい。ここで、対照としては、褥瘡発生前の同一患者由来の血液試料、褥瘡を有しない健常人由来の血液試料等を用いることができる。
【００３３】
組織から分泌されたＰＡＩ−１タンパク質は血液中に流入しやすいため、血液中のＰＡＩ−１タンパク質を測定することにより、褥瘡の発生を予測することができる。
【００３４】
［褥瘡モデル非ヒト動物の製造方法］
１実施形態において、本発明は、非ヒト動物の皮膚をつまみ、１３３．３２２ｋＰａの圧力を６時間印加する工程を含む、褥瘡モデル非ヒト動物の製造方法を提供する。非ヒト動物としては、特に限定されず、例えば、ネコ、イヌ、ウマ、サル、ウシ、ヒツジ、ブタ、ヤギ、ウサギ、ハムスター、モルモット、ラット、マウス等が挙げられる。
【００３５】
本実施形態の製造方法において、例えば、非ヒト動物がマウスであり、圧力を印加する皮膚が背部皮膚であってもよい。
【００３６】
実施例において後述するように、本実施形態の製造方法により得られた褥瘡モデル非ヒト動物は、肉眼による皮膚の観察、組織学的解析、免疫組織化学的解析の結果、カテゴリーＩの褥瘡動物モデルとして妥当であることが確認されている。この褥瘡モデル非ヒト動物は容易に作製することができるため、褥瘡の発生機序の解析、褥瘡の予防法又は治療法の開発に好適に用いることができる。
【実施例】
【００３７】
以下、実施例により本発明を説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。【００３８】
［実験例１］
（褥瘡動物モデルの作製）
９週齢のＩＣＲマウス（ＳＬＣジャパン）を用いて、カテゴリーＩの褥瘡動物モデルを作製した。実験は東京大学動物実験委員会によって承認されたプロトコールにしたがって行った。【００３９】
まず、マウスを１週間飼育して馴化させた。続いて、麻酔下で除毛クリームを使用して背部の毛を除去した。これにより、毛包が皮下まで伸びている領域の毛の成長期を誘導させた。毛の成長期には、より深い皮膚の層から分泌されたタンパク質が、経毛包経路を通じて表皮に移動するため、スキンブロッティングで捕捉することができる。【００４０】
続いて、毛の除去によって生じ得る炎症の影響を排除するために、実験開始まで１週間飼育して回復させた。続いて、麻酔下で背部の皮膚を剃り、圧力印加装置を使用して１３３．３２２ｋＰａ（１０００ｍｍＨｇ）の圧力を印加した。図１は、圧力を印加している様子を示す写真である。【００４１】
６時間圧力を印加したマウスの群、１時間圧力を印加したマウスの群を作製した。また、圧力を印加しなかったマウスを対照群とした。【００４２】
［実験例２］
（褥瘡動物モデルの肉眼による評価）
各群のマウスについて、マウスへの圧力の印加の前、圧力の印加が終了した直後、３０分、６０分、９０分、１２０分、２４時間及び４８時間後に、発赤又は紫斑の肉眼による評価を行った。【００４３】
図２は、各群のマウスの皮膚を肉眼で観察した結果を示す代表的な写真である。マウスへの圧力の印加の前、圧力の印加が終了した直後、３０分、６０分、９０分、１２０分、２４時間及び４８時間後の結果を示す。スケールバーは５ｍｍを示す。６時間圧力を印加したマウスの群はｎ＝６であり、それ以外の群はｎ＝５であった。【００４４】
その結果、１時間圧力を印加したマウスの群では、圧力の印加が終了した直後から６０分後までの間、発赤が観察された。一方、６時間圧力を印加したマウスの群では、圧力の印加が終了した直後から少なくとも１２０分後までの間、発赤が観察された。更に、圧力の印加が終了してから４８時間後に、褥瘡様の紫斑が認められた。【００４５】
以上の結果は、１時間圧力を印加したマウスが消退可能な発赤動物モデルとして妥当であることを示す。また、６時間圧力を印加したマウスがカテゴリーＩの褥瘡動物モデルとして妥当であることを示す。【００４６】
［実験例３］
（褥瘡動物モデルの組織学的な解析）
マウスへの圧力の印加が終了した６０分後及び４８時間後に皮膚組織を採取し、組織の損傷を評価するための組織学的な解析を行った。【００４７】
まず、採取した皮膚組織を４℃で一晩４％パラホルムアルデヒド溶液中で固定した。続いて、エタノール及びキシレンを用いて脱水し、パラフィン包埋した。続いて、厚さ３．５μｍの組織切片を作製し、ヘマトキシリン及びエオシン染色した。【００４８】
図３（ａ）〜（ｆ）は各群のマウスの皮膚組織の組織学的な解析結果を示す代表的な写真である。図３（ａ）及び（ｂ）は対照群のマウスの結果である。図３（ａ）は対照群以外の群のマウスへの圧力の印加が終了してから６０分後に採取した皮膚組織の結果を示す。図３（ｂ）は対照群以外の群のマウスへの圧力の印加が終了してから４８時間後に採取した皮膚組織の結果を示す。図３（ａ）及び（ｂ）中、（１）の領域の拡大写真を（１’）に示し、（２）の領域の拡大写真を（２’）に示す。スケールバーは２００μｍを示す。【００４９】
図３（ｃ）及び（ｄ）は１時間圧力を印加したマウスの群の結果である。図３（ｃ）はマウスへの圧力の印加が終了してから６０分後に採取した皮膚組織の結果を示す。図３（ｄ）はマウスへの圧力の印加が終了してから４８時間後に採取した皮膚組織の結果を示す。図３（ｃ）及び（ｄ）中、（１）の領域の拡大写真を（１’）に示し、（２）の領域の拡大写真を（２’）に示す。スケールバーは２００μｍを示す。黒矢印は血栓様の赤血球の凝集を示す。【００５０】
図３（ｅ）及び（ｆ）は６時間圧力を印加したマウスの群の結果である。図３（ｅ）はマウスへの圧力の印加が終了してから６０分後に採取した皮膚組織の結果を示す。図３（ｆ）はマウスへの圧力の印加が終了してから４８時間後に採取した皮膚組織の結果を示す。図３（ｅ）及び（ｆ）中、（１）の領域の拡大写真を（１’）に示し、（２）の領域の拡大写真を（２’）に示す。スケールバーは２００μｍを示す。黒矢印は血栓様の赤血球の凝集を示す。白矢印は炎症により壊死した細胞の破片に浸潤した炎症細胞を示す。灰色の矢印は出血を示す。【００５１】
その結果、図３（ａ）及び（ｂ）に示すように、対照群のマウスの組織切片は正常な組織構造を示していた。また、図３（ｅ）及び（ｆ）に示すように、６時間圧力を印加したマウスの群の組織切片は、１時間圧力を印加したマウスの群の組織切片で認められた症状に加えて、炎症細胞の高頻度の浸潤が認められた。更に、マウスへの圧力の印加が終了してから４８時間後には、炎症により壊死した細胞の破片及び出血が認められた。【００５２】
以上の結果は、１時間圧力を印加したマウスが消退可能な発赤の動物モデルとして妥当であり、６時間圧力を印加したマウスがカテゴリーＩの褥瘡の動物モデルとして妥当であることを更に支持するものである。【００５３】
［実験例４］
（褥瘡動物モデルの免疫組織化学的な解析）
作製したカテゴリーＩの褥瘡動物モデルが、褥瘡の形成に関連する、阻血性障害、再灌流傷害、リンパ系機能障害及び機械的変形の４つの経路による組織の損傷を有しているか否かを検討するために、免疫組織化学的解析を行った。試料としては、実験例３と同様にして作製した各群のマウスの組織切片を用いた。【００５４】
具体的には、阻血性障害が生じたか否かを検討するために、ｈｙｐｏｘｉａ  ｉｎｄｕｃｉｂｌｅ  ｆａｃｔｏｒ（ＨＩＦ）−１αタンパク質を検出した。また、再灌流傷害が生じたか否かを検討するために、８−ｈｙｄｒｏｘｙ−２’−ｄｅｏｘｙｇｕａｎｏｓｉｎｅ（８−ＯＨｄＧ）を検出した。また、リンパ系機能障害が生じたか否かを検討するために、ｌｙｍｐｈａｔｉｃ  ｖｅｓｓｅｌ  ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ  ｈｙａｌｕｒｏｎａｎ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ（ＬＹＶＥ）−１タンパク質を検出した。また、線維芽細胞の形態の変化を観察することにより、細胞の機械的変形を評価した。【００５５】
圧力が印加された組織で阻血性障害が生じた場合、低酸素状態が誘導され、ＨＩＦ−１αの発現上昇及びそれに続く活性化されたＨＩＦ−１αタンパク質の核への移動が生じる。そこで、ＨＩＦ−１αを阻血性障害のマーカーに用いた。【００５６】
また、発明者らの以前の検討において、虚血状態を形成したマウスと比較して、虚血及び再灌流傷害を形成したマウスでは、８−ＯＨｄＧの上昇が認められた。そこで、本実験例においても再灌流障害が生じた指標として８−ＯＨｄＧを使用した。【００５７】
また、発明者らの以前の検討において、圧力を印加したマウスの皮膚ではＬＹＶＥ−１陽性のリンパ管の減少及びリンパ排液の障害が認められた。そこで、本実験例においてもリンパ系機能障害の指標としてＬＹＶＥ−１タンパク質を使用した。【００５８】
８−ＯＨｄＧ以外の免疫染色においては、組織切片を０．３％過酸化水素水／２０％メタノール溶液中で３０分間静置することにより、組織切片中の内在性のペルオキシダーゼ活性を消失させた。【００５９】
また、ＨＩＦ−１α染色においては、各組織切片を１０ｍＭクエン酸ナトリウム溶液中、１００℃で２０分間煮沸することにより抗原を賦活化した。【００６０】
ＬＹＶＥ−１染色においては、０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０（ｐＨ６．０）を添加した１０ｍＭクエン酸ナトリウム溶液中で、１００℃で２０分間煮沸することが必要であった。【００６１】
また、８−ＯＨｄＧ染色においては、１０ｍＭクエン酸ナトリウム溶液（ｐＨ６．０）中で１２１℃、１５分間オートクレーブすることが必要であった。【００６２】
免疫染色に用いた１次抗体は次の通りであった。抗ＨＩＦ−１α抗体（１：１００希釈、Ｎｏｖｕｓ  Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｓ社）、抗８−ＯＨｄＧ抗体（１：１００希釈、ＪａＩＣＡ社）、抗ＬＹＶＥ−１抗体（１：１００希釈、ＲｅｌｉａＴｅｃｈ社）。【００６３】
また、ＨＩＦ−１α及び８−ＯＨｄＧ染色における２次抗体には、ビオチン標識抗ウサギＩｇＧ抗体（１：１０００希釈、Ｊａｃｋｓｏｎ  Ｉｍｍｕｎｏ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ社）を使用した。【００６４】
また、ＬＹＶＥ−１染色における２次抗体には、ペルオキシダーゼ標識抗ウサギＩｇＧ抗体（１：１０００希釈、Ｊａｃｋｓｏｎ  Ｉｍｍｕｎｏ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ社）を使用した。【００６５】
《ＨＩＦ−１αタンパク質の発現の検討》
まず、阻血性障害を評価するためにＨＩＦ−１αタンパク質の発現を検討した。図４はＨＩＦ−１αタンパク質の発現を免疫染色により検出した代表的な結果を示す写真である。図４中、黒矢印は、ＨＩＦ−１α陽性の細胞を示す。また、白矢印はＨＩＦ−１αタンパク質の核への移行を示す。【００６６】
その結果、対照群のマウスの組織では、ＨＩＦ−１α陽性の細胞はほとんど観察されなかった。これに対し、１時間圧力を印加したマウスの群及び６時間圧力を印加したマウスの群の組織では、マウスへの圧力の印加が終了してから６０分後に、皮下脂肪及び筋組織の細胞質中にＨＩＦ−１αタンパク質が検出された。また、６時間圧力を印加したマウスの群の組織では、マウスへの圧力の印加が終了してから４８時間後に、ＨＩＦ−１αタンパク質の核への移行が観察された。【００６７】
《８−ＯＨｄＧの存在の検討》
続いて、再灌流障害を評価するために８−ＯＨｄＧの存在を検出した。図５は８−ＯＨｄＧを免疫染色により検出した代表的な結果を示す写真である。図５中、黒矢印は、８−ＯＨｄＧ陽性の細胞を示す。【００６８】
その結果、対照群のマウスの組織では、８−ＯＨｄＧ陽性の細胞はほとんど観察されなかった。これに対し、１時間圧力を印加したマウスの群及び６時間圧力を印加したマウスの群の組織では、マウスへの圧力の印加が終了してから６０分後に、８−ＯＨｄＧが豊富に存在する線維芽細胞が観察された。【００６９】
更に、６時間圧力を印加したマウスの群の組織では、マウスへの圧力の印加が終了してから４８時間後においても、表皮組織及び脂肪組織において８−ＯＨｄＧ陽性の細胞が観察された。【００７０】
《ＬＹＶＥ−１タンパク質の発現の検討》
続いて、リンパ系機能障害を評価するためにＬＹＶＥ−１タンパク質を染色した。図６はＬＹＶＥ−１タンパク質を免疫染色により検出した代表的な結果を示す写真である。図６中、黒矢印は、ＬＹＶＥ−１タンパク質の存在を示す。【００７１】
その結果、対照群のマウスの組織では、真皮上層にＬＹＶＥ−１陽性の管が観察された。これに対し、１時間圧力を印加したマウスの群の組織では、マウスへの圧力の印加が終了してから６０分後に、リンパ管の拡張が頻繁に観察された。しかしながら、マウスへの圧力の印加が終了してから４８時間後には、リンパ管の拡張は対照群のマウスにおけるものと同程度となった。【００７２】
一方、６時間圧力を印加したマウスの群の組織では、マウスへの圧力の印加が終了してから６０分後にはＬＹＶＥ−１陽性の管がほとんど観察されなかった。しかしながら、マウスへの圧力の印加が終了してから４８時間後には、リンパ管の拡張が明確に観察された。【００７３】
続いて、線維芽細胞の形態の変化を観察することにより、細胞の機械的変形を評価した。図７は、組織切片をヘマトキシリン及びエオシンで染色した代表的な結果を示す写真である。図７中、灰色の矢印は膨張した線維芽細胞を示す。【００７４】
その結果、対照群のマウスの組織では、ほとんど全ての線維芽細胞が典型的な紡錘状の形状をしていた。これに対し、１時間圧力を印加したマウスの群の組織では線維芽細胞の膨張が認められ、６時間圧力を印加したマウスの群の組織では線維芽細胞の膨張が更に高頻度に観察された。【００７５】
以上の結果は、１時間圧力を印加したマウスが消退可能な発赤の動物モデルとして妥当であり、６時間圧力を印加したマウスがカテゴリーＩの褥瘡の動物モデルとして妥当であることを更に支持するものである。【００７６】
［実験例５］
（褥瘡動物モデルにおける褥瘡発生予測マーカーの発現の免疫組織化学的な解析）
続いて、発明者らは、実験例３と同様にして作製した各群のマウスの組織切片を用いて、褥瘡発生予測マーカーの発現を免疫染色により検討した。褥瘡発生予測マーカーとして、ＰＡＩ−１、ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ及びＨＳＰ９０αタンパク質の発現を検討した。【００７７】
まず、各組織切片を０．３％過酸化水素水／２０％メタノール溶液中で３０分間静置することにより、組織切片中の内在性のペルオキシダーゼ活性を消失させた。【００７８】
ＰＡＩ−１及びＩＬ−１α染色においては、各組織切片を１０ｍＭクエン酸ナトリウム溶液中、１００℃で２０分間煮沸することにより抗原を賦活化した。【００７９】
また、ＶＥＧＦ−Ｃ及びＨＳＰ９０α染色においては、１０ｍＭクエン酸ナトリウム溶液（ｐＨ６．０）中で１２１℃、１５分間オートクレーブすることが必要であった。【００８０】
免疫染色に用いた１次抗体は次の通りであった。抗ＰＡＩ−１抗体（１：１００希釈、Ｎｏｖｕｓ  Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｓ社）、抗ＩＬ−１α抗体（１：２００希釈、ＰｒｏｔｅｉｎＴｅｃｈ  Ｇｒｏｕｐ社）、抗ＶＥＧＦ−Ｃ抗体（１：１００希釈、サンタクルーズ社）及び抗ＨＳＰ９０α抗体（１：２００希釈、Ｌａｂ  Ｖｉｓｉｏｎ社）。【００８１】
また、ＶＥＧＦ−Ｃ染色における２次抗体には、ビオチン標識抗ウサギＩｇＧ抗体（１：１０００希釈、Ｊａｃｋｓｏｎ  Ｉｍｍｕｎｏ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ社）を使用した。【００８２】
また、ＰＡＩ−１、ＩＬ−１α及びＨＳＰ９０α染色における２次抗体には、ペルオキシダーゼ標識抗ウサギＩｇＧ抗体（１：１０００希釈、Ｊａｃｋｓｏｎ  Ｉｍｍｕｎｏ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ社）を使用した。【００８３】
《ＰＡＩ−１タンパク質の発現の検討》
図８はＰＡＩ−１タンパク質の発現を検出した代表的な結果を示す写真である。図８中、黒矢印は、ＰＡＩ−１陽性の細胞を示す。【００８４】
その結果、６時間圧力を印加したマウスの群の組織において、マウスへの圧力の印加が終了してから４８時間後に、炎症により壊死した細胞の破片に浸潤した炎症細胞中にＰＡＩ−１タンパク質の強い発現が認められた。【００８５】
ＰＡＩ−１タンパク質の発現は、１時間圧力を印加したマウスの群及び６時間圧力を印加したマウスの群の組織切片において、炎症細胞、線維芽細胞、血管内皮細胞等の様々な種類の細胞に認められた。【００８６】
《ＩＬ−１αタンパク質の発現の検討》
図９はＩＬ−１αタンパク質の発現を検出した代表的な結果を示す写真である。図９中、黒矢印は、ＩＬ−１α陽性の細胞を示す。【００８７】
その結果、６時間圧力を印加したマウスの群の組織において、マウスへの圧力の印加が終了してから４８時間後に、炎症により壊死した細胞の破片に浸潤した炎症細胞中にＩＬ−１αタンパク質の強い発現が認められた。【００８８】
ＩＬ−１αの発現は、１時間圧力を印加したマウスの群及び６時間圧力を印加したマウスの群の、マウスへの圧力の印加が終了してから６０分後の組織切片において、表皮細胞及び血管内皮細胞に認められた。【００８９】
《ＶＥＧＦ−Ｃタンパク質の発現の検討》
図１０はＶＥＧＦ−Ｃタンパク質の発現を検出した代表的な結果を示す写真である。図１０中、黒矢印は、ＶＥＧＦ−Ｃ陽性の細胞を示す。【００９０】
その結果、６時間圧力を印加したマウスの群の組織において、炎症により壊死した細胞の破片に浸潤した炎症細胞中、表皮中及び毛包中にＶＥＧＦ−Ｃタンパク質の強い発現が認められた。１時間圧力を印加したマウスの群の組織においては、毛包中のみにＶＥＧＦ−Ｃタンパク質の発現が認められた。【００９１】
《ＨＳＰ９０αタンパク質の発現の検討》
図１１はＨＳＰ９０αタンパク質の発現を検出した代表的な結果を示す写真である。その結果、いずれのマウスの群の組織においても、ＨＳＰ９０αタンパク質の発現は認められなかった。【００９２】
以上の結果から、ＰＡＩ−１、ＩＬ−１α又はＶＥＧＦ−Ｃタンパク質の発現を検出することにより、褥瘡発生を予測できることが明らかとなった。【００９３】
［実験例６］
（褥瘡動物モデルにおける褥瘡発生予測マーカーの発現のスキンブロッティングによる解析）
スキンブロッティングにより、非侵襲的に褥瘡発生予測マーカーを検出できるか否かを検討した。褥瘡発生予測マーカーとして、ＰＡＩ−１、ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ及びＨＳＰ９０αタンパク質の発現を検討した。【００９４】
まず、ニトロセルロース膜（１×１ｃｍ、バイオラッド社）を５０μＬの生理食塩水に浸し、マウスの皮膚の圧力を印加した領域に１０分間付着させた。この結果、表皮組織、真皮組織及び皮下組織から漏出した可溶性タンパク質が経皮的、経毛包的な経路を通じてニトロセルロース膜に捕捉された。回収したニトロセルロース膜は解析するまで４℃で保存した。【００９５】
続いて、ニトロセルロース膜を免疫染色した。まず、ニトロセルロース膜を０．３％過酸化水素水／２０％メタノール溶液中でインキュベートして内在性のペルオキシダーゼ活性を消失させた。続いて、ブロッキング溶液（型式「Ｂｌｏｃｈｉｎｇ  Ｏｎｅ」、ナカライテスク）でブロッキングした。【００９６】
続いて、各ニトロセルロース膜を４つに切断し、各断片を抗ＰＡＩ−１抗体（１：２００希釈、Ｎｏｖｕｓ  Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｓ社）、抗ＩＬ−１α抗体（１：２００希釈、ＰｒｏｔｅｉｎＴｅｃｈ  Ｇｒｏｕｐ社）、抗ＶＥＧＦ−Ｃ抗体（１：２００希釈、サンタクルーズ社）及び抗ＨＳＰ９０α抗体（１：２００希釈、Ｌａｂ  Ｖｉｓｉｏｎ社）でそれぞれ染色した。【００９７】
２次抗体には、ペルオキシダーゼ標識抗ウサギＩｇＧ抗体（１：１０００希釈、Ｊａｃｋｓｏｎ  Ｉｍｍｕｎｏ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ社）を使用した。【００９８】
検出には化学発光基質（型式「Ｌｕｍｉｎａｔａ  Ｆｏｒｔｅ」、メルクミリポア社）を使用し、化学発光検出装置（型式「ＬｕｍｉＣｕｂｅ」、Ｌｉｐｏｎｉｃｓ社）を使用した。【００９９】
スキンブロッティングの解析は、ニトロセルロース膜の周縁を除く膜全体の化学発光のシグナル強度の平均値を算出して行った。また、化学発光のシグナル強度の相対値（以下、「相対的なシグナル強度の平均値」という場合がある。）は、試験結果を対照マウスの結果で除算することにより求めた。統計学的な解析はＴｕｒｋｅｙ’ｓ  ｔｅｓｔを用いて行った。０．０５未満のｐ値を統計学的に有意であると判断した。【０１００】
《ＰＡＩ−１タンパク質の発現の検討》
図１２はＰＡＩ−１タンパク質の発現を検討した結果を示すグラフである。その結果、ＰＡＩ−１タンパク質の発現は、いずれの時間においても有意な差を示さなかった。【０１０１】
《ＩＬ−１αタンパク質の発現の検討》
図１３はＩＬ−１αタンパク質の発現を検討した結果を示すグラフである。図１３中、「†」は対照群対６時間圧力を印加したマウスの群でｐ値が０．０５未満であることを示し、「‡」は１時間圧力を印加したマウスの群対６時間圧力を印加したマウスの群でｐ値が０．０５未満であることを示す。【０１０２】
その結果、ＩＬ−１αタンパク質の発現は、６時間圧力を印加したマウスの群の、マウスへの圧力の印加が終了してから９０分後、１２０分後及び２４時間後の試料において、対照群と比較して有意に高いことが明らかとなった。ｐ値は、それぞれ０．０４６、０．０４９及び０．０１１であった。【０１０３】
更に、ＩＬ−１αタンパク質の発現は、６時間圧力を印加したマウスの群の、マウスへの圧力の印加が終了してから１２０分後及び２４時間後の試料において、６時間圧力を印加したマウスの群と比較して有意に高いことが明らかとなった。ｐ値は、それぞれ０．０１６及び０．０１８であった。【０１０４】
《ＶＥＧＦ−Ｃタンパク質の発現の検討》
図１４はＶＥＧＦ−Ｃタンパク質の発現を検討した結果を示すグラフである。図１４中、「†」は対照群対６時間圧力を印加したマウスの群でｐ値が０．０５未満であることを示し、「‡」は１時間圧力を印加したマウスの群対６時間圧力を印加したマウスの群でｐ値が０．０５未満であることを示す。【０１０５】
その結果、ＶＥＧＦ−Ｃタンパク質の発現は、６時間圧力を印加したマウスの群の、マウスへの圧力の印加が終了してから３０分後の試料において、対照群及び１時間圧力を印加したマウスの群と比較して有意に高いことが明らかとなった。ｐ値は、それぞれ０．００８及び０．０１３であった。【０１０６】
《ＨＳＰ９０αタンパク質の発現の検討》
図１５はＨＳＰ９０αタンパク質の発現を検討した結果を示すグラフである。図１５中、「‡」は１時間圧力を印加したマウスの群対６時間圧力を印加したマウスの群でｐ値が０．０５未満であることを示す。【０１０７】
その結果、ＨＳＰ９０αタンパク質の発現は、１時間圧力を印加したマウスの群の、マウスへの圧力の印加が終了してから６０分後及び１２０分後の試料において、６時間圧力を印加したマウスの群と比較して有意に高いことが明らかとなった。ｐ値は、それぞれ０．０４７及び０．０４１であった。【０１０８】
以上の結果から、ＩＬ−１α、ＶＥＧＦ−Ｃ又はＨＳＰ９０αタンパク質の発現をスキンブロッティングで検出することにより、非侵襲的に褥瘡発生を予測できることが明らかとなった。
【産業上の利用可能性】
【０１０９】
本発明によれば、褥瘡の発生を予測する技術を提供することができる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【国際調査報告】
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