(57)【要約】【課題】本発明の目的は、診断の現場で正確、簡便かつ迅速に測定試料中の成分を比色定量するための多層試験片を提供する。【解決手段】測定試料中の成分を比色定量するための生化学分析用多層試験片であって、少なくとも２以上の層からなり、少なくとも１以上の層に酵素および／または酸化還元系発色試薬を含み、かつ少なくとも１組の隣接する２層間が垂直方向に複数個の貫通孔を有する粘着シートにより接合されてなることを特徴とする生化学分析用多層試験片。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
測定試料中の成分を比色定量するための生化学分析用多層試験片であって、少なくとも２以上の層からなり、少なくとも１以上の層に酵素および／または酸化還元系発色試薬を含み、かつ少なくとも１組の隣接する２層間が垂直方向に複数個の貫通孔を有する粘着シートにより接合されてなることを特徴とする生化学分析用多層試験片。
【請求項２】
前記粘着シートの開口率が２０〜８０％であることを特徴とする請求項１に記載の生化学分析用多層試験片。
【請求項３】
前記粘着シートの平均孔面積が０．００５〜１ｍｍ２であることを特徴とする請求項１または２に記載の生化学分析用多層試験片。
【請求項４】
前記粘着シートがアクリル樹脂またはウレタン樹脂からなることを特徴とする請求項１から３のいずれかに記載の生化学分析用多層試験片。
【請求項５】
測定試料が全血検体であることを特徴とする請求項１から４のいずれかに記載の生化学分析用多層試験片。
【請求項６】
測定成分がグルコースであり、酵素が少なくともグルコースオキシダーゼ、およびペルオキシダーゼであり、かつ酸化還元系発色試薬がトリンダー試薬であることを特徴とする請求項１から５のいずれかに記載の生化学分析用多層試験片
【請求項７】
測定成分が糖化ヘモグロビンであり、酵素が少なくともプロテアーゼ、糖化アミノ酸オキシダーゼ、およびペルオキシダーゼであり、かつ酸化還元系発色試薬がロイコ型色素であることを特徴とする請求項１から５のいずれかに記載の生化学分析用多層試験片。
【請求項８】
請求項１から７のいずれかに記載の多層試験片を含むプロダクト。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、診断の現場で正確、簡便かつ迅速に測定試料中の成分を比色定量するための生化学分析用多層試験片に関する。
【背景技術】
【０００２】
臨床検査分野において、医療従事者が被験者の傍らで行う検査のことをＰＯＣＴ（Ｐｏｉｎｔ  ｏｆ  ｃａｒｅ  ｔｅｓｔｉｎｇ）という。臨床検査は検査結果に基づいて後の治療を行うことから、高い正確さと簡便さと迅速さとが求められる。ＰＯＣＴはリアルタイムな臨床検査であるため、検査結果をその場で知ることができ、迅速な治療が行えることから注目を集めている。近年、ＰＯＣＴ機器は小型化、軽量化が進んでおり、大規模な医療機関のみならず、大きな検査室を持たない診療所や訪問診療の場など、さまざまな医療の現場で利用されている。
【０００３】
生体試料中の微量な分析対象物を定量する方法として、ドライケミストリーが有用である。ドライケミストリーとは分析対象物を測定するために必要な試薬が基材や容器内に乾燥した状態で置かれており、分析対象物を含む生体試料が添加されることにより、試薬が溶解し、反応が完結する分析素子のことである（例えば、特許文献１〜３）。ドライケミストリーでは測定試薬は全て乾燥状態にあるため、反応に必要な水分は測定試料中の水分を利用している。
【０００４】
ドライケミストリーを利用した多層スライドでは、測定試料が各層に担持された試薬を溶かしながら次の層へと順次展開していく際の展開挙動に差異が生じやすく、再現性に問題があった。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特開昭５９−１０８９４２
【特許文献２】特開昭６０−８２８５９
【特許文献３】特開昭６０−２２２７７０
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ４３：１２  ２３９０−２３９６（１９９７）
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本発明は、かかる従来技術の課題を背景になされたものである。すなわち、本発明の目的は、診断の現場で正確、簡便かつ迅速に測定試料中の成分を比色定量するための生化学分析用多層試験片を提供することにある。詳しくは、測定の再現性が向上した生化学分析用多層試験片を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明者らが鋭意検討した結果、多層試験片の層間の空隙により、測定試料の展開斑が生じ、測定の再現性が著しく低下することを見出した。そこで本発明者らは、多層試験片を構成する層同士を垂直方向に複数個の貫通孔を有する粘着シートにより接合することで、測定の再現性が向上することを見出し、本発明に至った。さらに、前記垂直方向に複数個の貫通孔を有する粘着シートの開口率、平均孔面積を調整することで、測定試料の展開斑が抑制できることはもちろん、測定試料の展開速度をも調整できることを見出し、本発明を完成させた。
【０００９】
すなわち、本発明は、以下の構成からなる。
１． 測定試料中の成分を比色定量するための生化学分析用多層試験片であって、少なくとも２以上の層からなり、少なくとも１以上の層に酵素および／または酸化還元系発色試薬を含み、かつ少なくとも１組の隣接する２層間が垂直方向に複数個の貫通孔を有する粘着シートにより接合されてなることを特徴とする生化学分析用多層試験片。
２．前記粘着シートの開口率が２０〜８０％であることを特徴とする１．の生化学分析用多層試験片。
３．前記粘着シートの平均孔面積が０．００５〜１ｍｍ２であることを特徴とする１．または２．の生化学分析用多層試験片。
４．前記粘着シートがアクリル樹脂またはウレタン樹脂からなることを特徴とする１．から３．いずれかの生化学分析用多層試験片。
５．測定試料が全血検体であることを特徴とする１．から４．いずれかの生化学分析用多層試験片。
６．測定成分がグルコースであり、酵素が少なくともグルコースオキシダーゼ、およびペルオキシダーゼであり、かつ酸化還元系発色試薬がトリンダー試薬である１．から５．いずれかの生化学分析用多層試験片
７．測定成分が糖化ヘモグロビンであり、酵素が少なくともプロテアーゼ、糖化アミノ酸オキシダーゼ、およびペルオキシダーゼであり、かつ酸化還元系発色試薬がロイコ型色素である１．から５．いずれかの生化学分析用多層試験片。
８．１．から７．いずれかの多層試験片を含むプロダクト。
【発明の効果】
【００１０】
本発明により、測定検体の展開斑を抑制し、測定の再現性が向上した生化学分析用多層試験片を提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１１】
【図１】試験片を上下から挟んで固定するための治具。
【発明を実施するための形態】
【００１２】
以下、本発明を詳述する。
（測定対象物）
本発明における測定対象物としては、特に限定されないが、例えば生化学検査における一般検査項目（血中グルコース、血中糖化ヘモグロビン（典型的には、血中ヘモグロビンＡ１ｃ）、血中ヘモグロビン、血中クレアチニン、血中アンモニア、血中尿素、血中窒素、血中総コレステロール、血中ＨＤＬコレステロール、血中中性脂肪、血中ビリルビン、血中カルシウム、血中無機リン、血中マグネシウム、血中総タンパク質、血中アルブミン、血中ＣＲＰ、血中Ｎａ、血中Ｋ、血中Ｃｌ、血中酵素活性、尿中Ｎａ、尿中Ｋ、尿中Ｃｌ）が挙げられる。
【００１３】
（測定試料）
本発明における測定試料としては、特に限定されないが、例えば全血、血球、血漿、血清、髄液、汗、尿、涙液、唾液、皮膚、粘膜、毛髪等の生体試料（すなわち生体から採取された試料）や、飲料水、調味料等の食品類が挙げられる。また、生体試料はヒト由来に限らず、イヌ、ネコ、ウシ等の哺乳類動物由来の生体試料も対象である。
【００１４】
本発明における測定試料の量は、特に限定されないが、例えば１〜５０μＬが好ましく、１〜４０μＬがより好ましく、１〜３０μＬがさらに好ましい。測定試料量が１μＬより少ないと、多層試験片の最上層から最下層まで展開できない恐れがある。一方、測定試料量が５０μＬより多いと、例えば測定試料が血液の場合、患者の負担が大きくなるため好ましくない。
【００１５】
（測定原理）
本発明における測定原理は、酵素反応を測定試料中の水分によって行う（いわゆる、ドライケミストリー）ことで多層試験片を呈色させ、その呈色の程度を反射光測定によって検知する方法（いわゆる、酵素比色法）によって行なわれる。前記測定原理を用いることで、装置の小型・軽量・低価格化が可能となる。また、正確、簡便かつ迅速な測定が可能となる。
【００１６】
（多層試験片）
本発明の多層試験片は、少なくとも２以上の高分子基材（以下、層ともいうことがある。）と、垂直方向に複数個の貫通孔を有する粘着シート（以下、多孔性粘着シートともいうことがある。）とからなる。
前記多層試験片の層数は、実施形態に合わせて変化し得るが、２〜７層が好ましく、２〜６層がより好ましく、２〜５層がさらに好ましい。なお、層数には、測定試料を展開するための展開層や透明支持層なども含むが、多孔性粘着シートは含まない。層数が１層だと、例えばプロテアーゼと酵素、またはペルオキシダーゼと酸化還元系発色試薬のような試薬の組み合わせを同一層に担持せざるを得なくなり、プロテアーゼによる酵素の失活・分解や、酸化還元系発色試薬の自己発色が生じる恐れがある。つまり、多層試験片の保存安定性が著しく低下する恐れがある。一方、層数が７層より多いと、最上層から最下層まで展開するのに必要な測定試料量が多くなるため、好ましくない。
さらに、前記高分子基材の少なくとも１組の隣接する２層間には、前記多孔性粘着シートを配する必要がある。多孔性粘着シートを配さないと、多層試験片の層間に空隙が生じ、測定試料の展開斑が生じ、測定の再現性が著しく低下する恐れがある。
【００１７】
（多孔性粘着シート）
前記多孔性粘着シートとしては、垂直方向（シート面に対して垂直方向）に複数個の貫通孔を有し、垂直方向に測定試料を透過する構造である必要がある。なお、粘着シートとは表面タック性を有する素材であればよく、例えば接着シートのＢステージ（半硬化状態に制御した素材）等も含む。また、粘着シートは支持体として紙、布、フィルム、発泡体、ゴムシートを含んでもよいが、上層から最下層まで展開するのに必要な測定試料量を低減するために、基材レス（基材を使用しないで粘着層部分が形成されている状態）であることが好ましい。
【００１８】
前記多孔性粘着シートの開口率は、２０〜８０％が好ましく、２５〜７５％がより好ましく、３０〜７０％がさらに好ましい。開口率が２０％より小さいと、垂直方向への測定試料の透過が不十分となり、最下層まで測定試料が到達せず、測定不能となる恐れがある。また、測定時間が長くなる恐れがある。一方、開口率が８０％より大きいと、層間の粘着力が不十分となり、測定の再現性が低下する恐れがある。また、多層スライド製造時に粘着シートのハンドリングが困難となり、歩留まりが低下する恐れがある。
前記多孔性粘着シートの平均孔面積は、０．００５〜１ｍｍ２が好ましく、０．００５〜０．５ｍｍ２がより好ましく、０．００５〜０．１ｍｍ２がさらに好ましい。平均孔面積が０．００５ｍｍ２より小さい貫通孔の形成は、非常に困難である。一方、平均孔面積が１ｍｍ２より大きいと、層間の粘着力が不十分となり、測定の再現性が低下する恐れがある。また、多層スライド製造時に粘着シートのハンドリングが困難となり、歩留まりが低下する恐れがある。
【００１９】
前記多孔性粘着シートの孔形状は、特に限定されないが、例えば正方形、長方形、円形、楕円形等が挙げられる。これらの中でも、測定試料の展開の均一性、孔の加工性の観点から、円形が好ましい。
【００２０】
前記多孔性粘着シートにおける貫通孔の形成法は、特に限定されるものではなく、樹脂自体の発泡、プラズマエッチングなどの放電処理、アルカリエッチングなどの薬液処理、ブラストまたはレーザーなどの物理処理、ドリルなどの機械加工などが挙げられる。これらの中でも、微細孔加工に適している点から、ドリル加工やレーザー加工が好ましく、微細加工性と加工コストを両立する点から、炭酸ガスレーザー、ＵＶレーザー、エキシマーレーザーがより好ましい。
【００２１】
前記多孔性粘着シートの厚みは、１〜５００μｍが好ましく、１〜２００μｍがより好ましく、１〜１００μｍがさらに好ましい。厚みが１μｍより小さいと、層間の粘着力が不十分となり、測定の再現性が低下する恐れがある。また、多層スライド製造時に粘着シートのハンドリングが困難となり、歩留まりが低下する恐れがある。一方、厚みが５００μｍより大きいと、最上層から最下層まで展開するのに必要な測定試料量が多くなるため、好ましくない。
【００２２】
前記多孔性粘着シートの組成としては、ゴム、アクリル樹脂、シリコーン樹脂、ウレタン樹脂等が挙げられる。これらの中でも、粘着力、垂直方向への測定試料の透過性の観点からアクリル樹脂、またはウレタン樹脂が好ましい。
【００２３】
（高分子基材）
本発明の多層試験片を構成する高分子基材としては、酵素、または酸化還元系発色試薬等の試薬を必要量担持でき、かつ測定試料を水平方向および垂直方向に適切に展開できれば、いかなる形態、組成のものを用いてもよい。以下に高分子基材の形態、組成の具体例を示すが、本発明を何ら限定するものではない。
【００２４】
（形態）
前記高分子基材の形態としては、ろ紙、繊維構造体、多孔質膜（メンブレンフィルター）、フィルム等  が挙げられる。
【００２５】
（組成）
前記高分子基材の組成としては、ポリエステル樹脂であるポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）、ポリブチレンテレフタレート（ＰＢＴ）、ポリエチレンナフタレート（ＰＥＮ）、ポリブチレンナフタレート（ＰＢＮ）等、オレフィン樹脂であるポリエチレン（ＰＥ）、ポリプロピレン（ＰＰ）、ポリブテン等、ビニル樹脂であるポリ塩化ビニル（ＰＶＣ）、ポリ塩化ビニリデン、ポリ酢酸ビニル等、アクリル樹脂、アクリレート樹脂、フッ素樹脂であるポリテトラフルオロエチレン（ＰＴＦＥ）、ポリビニリデンフルオライド（ＰＶＤＦ）等、ポリカーボネート樹脂、ポリエーテル樹脂であるポリオキシメチレン（ＰＯＭ）、ポリフェニレンオキシド（ＰＰＯ）、ポリエーテルケトン（ＰＥＫ）、ポリエーテルエーテルケトン（ＰＥＥＫ）、ポリフェニレンスルフィド（ＰＰＳ）、ポリスルホン（ＰＳＵ）、ポリエーテルスルホン（ＰＥＳ）、ポリエーテルイミド（ＰＥＩ）等、ポリアミド樹脂であるナイロン、アラミド等、セルロース類であるセルロースアセテート、ニトロセルロース、再生セルロース等が挙げられる。
【００２６】
（形状）
前記高分子基材の形状は、特に限定されないが、例えば正方形、長方形、円形、楕円形等の薄板状が挙げられる。
前記高分子基材の面積は、装置の小型・軽量・低価格化の観点から小さければ小さいほどよいが、例えば１〜１０００ｍｍ２が好ましく、２〜５００ｍｍ２がより好ましく、５〜２００ｍｍ２がさらに好ましい。
前記高分子基材の（１層の）厚みは、測定試料の展開性、および試薬の反応性の観点から、例えば１０〜２０００μｍが好ましく、２０〜１０００μｍがより好ましく、５０〜５００μｍがさらに好ましい。
【００２７】
前記多層試験片は、任意の手順を用いて作製することができる。典型的には、複数の層を別個に、一種以上の酵素、または酸化還元系発色試薬等の試薬溶液に浸漬し、乾燥する慣用の手順を用いることにより作製し、次いで最終的な試験片に組み立てることができる。 
【００２８】
（生化学分析）
本発明の生化学分析用多層試験片に適用する生化学分析方法は、測定対象に応じて種々の方法が既に当該技術分野において確立されている。よって、その知見を本発明に適用して、各種液体試料中の測定対象成分の量または濃度を測定することができ、その態様は特に制限されない。
そのようなものとして、酵素法による生体成分測定方法であって、特に酸化酵素−ペルオキシダーゼ−発色剤系による方法、すなわち検体中の分析対象物質を特異的に酵素反応させて過酸化水素を発生させ、これをペルオキシダーゼの存在下で発色剤と反応させて比色定量する方法を利用する方法が例示できる。
【００２９】
（酵素）
本発明の生化学分析用多層試験片に含まれる酵素としては、酸化酵素およびペルオキシダーゼが挙げられる。酸化酵素は、測定対象と反応して過酸化水素を発生させるものであれば特に限定されない。たとえば測定対象がグルコースの場合、グルコースオキシダーゼが例示できる。
測定対象と反応して過酸化水素を発生させる適当な酵素がない場合は、複数の酵素を用いて多段階の酵素反応（いわゆる共役反応）を適宜設計することにより、過酸化水素を発生させることができる。たとえば、ＨｂＡ１ｃを測定する場合は、プロテアーゼと糖化アミノ酸オキシダーゼを共役させれば良い。このような場合、酸化酵素である糖化アミノ酸オキシダーゼと、ペルオキシダーゼのほかに、プロテアーゼも多層試験片に含有させなければならない。
また、測定を妨害する物質を消去する目的で、別の酵素を加えてもよい。たとえば、アスコルビン酸の影響を排除するために、アスコルビン酸オキシダーゼを多層試験片に添加することができる。
これらの酵素の配置は特に限定されない。１つの層に１つの酵素を配しても良いし複数の酵素を配しても良い。また、同一の酵素を複数の層に配しても良い。
【００３０】
（グルコースの測定原理）
本発明の多層試験片を用いてグルコースを測定することができる。
以下に測定試料中のグルコースを測定する場合の反応について例示するが、本発明を何ら限定するものではない。
（１）測定試料中のグルコースとグルコースオキシダーゼを反応させ、過酸化水素を生成させる工程。
（２）ペルオキシダーゼ存在下で、前記過酸化水素と酸化還元系発色試薬を反応させ、発色させる工程。
（３）前記発色から測定試料中のグルコース量を比色定量する工程。
【００３１】
（グルコースオキシダーゼ）
本発明でグルコースを測定する際に用いるグルコースオキシダーゼとしては、グルコースに特異的に作用し、過酸化水素を生成する酵素であれば、いかなる種類の酵素を用いてもよく、例えばＡｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ属由来のグルコースオキシダーゼ  ＧＬＯ−２０１（東洋紡社製）を用いることができる。
【００３２】
前記グルコースオキシダーゼの濃度は、特に限定されないが、０．０１〜１０００Ｕ／ｃｍ２であることが好ましく、０．１〜１００Ｕ／ｃｍ２がより好ましい。グルコースオキシダーゼ濃度が０．０１Ｕ／ｃｍ２より少ないと、反応性の低下により測定時間が長くなるため好ましくない。一方、グルコース濃度が１０００Ｕ／ｃｍ２より多いと、バッククラウンドの上昇や、高価格化の恐れがある。
前記グルコースオキシダーゼの反応を行う際のｐＨは、無調整でもよいが、使用するグルコースオキシダーゼの至適ｐＨとなるよう適当なｐＨ調整剤、例えば下記の緩衝剤によって調整するのが好ましい。
【００３３】
（ペルオキシダーゼ）
本発明でグルコースを測定する際に用いるペルオキシダーゼとしては、過酸化水素と酸化還元系発色試薬との反応を触媒する酵素であれば、いかなる種類の酵素を用いてもよく、例えば植物由来、細菌由来、担子菌由来のペルオキシダーゼが挙げられる。これらの中でも、純度、入手の容易性、価格等の理由から、西洋ワサビ、イネ、大豆由来のペルオキシダーゼが好ましく、西洋ワサビ由来のペルオキシダーゼがより好ましい。市販品としては、ＰＥＯ−１３１（東洋紡社製）、ＰＥＯ−３０１（東洋紡社製）、ＰＥＯ−３０２（東洋紡社製）等が好適に用いられる。
【００３４】
前記ペルオキシダーゼの濃度は、特に限定されないが、０．０１〜１０００Ｕ／ｃｍ２であることが好ましく、０．１〜１００Ｕ／ｃｍ２がより好ましい。ペルオキシダーゼ濃度が０．０１Ｕ／ｃｍ２より少ないと、反応性の低下により測定時間が長くなるため好ましくない。一方、ペルオキシダーゼ濃度が１０００Ｕ／ｃｍ２より多いと、バッククラウンドの上昇や、高価格化の恐れがある。
前記ペルオキシダーゼの反応を行う際のｐＨは、無調整でもよいが、使用するペルオキシダーゼの至適ｐＨとなるよう適当なｐＨ調整剤、例えば下記の緩衝剤によって調整するのが好ましい。
【００３５】
（酸化還元系発色試薬）
本発明でグルコースを測定する際に用いる酸化還元系発色試薬としては、過酸化水素と反応して呈色するものであれば、いかなる種類の色素を用いてもよく、例えば水素供与体とカップラー（以下、トリンダー試薬ともいうことがある。）、ロイコ体（以下、ロイコ色素ともいうことがある。）等が挙げられる。なお、水素供与体とカップラーを用いた代表例は、水素供与体とカップラーとをペルオキシダーゼの存在下に過酸化水素によって酸化縮合させて色素を形成させるトリンダー（Ｔｒｉｎｄｅｒ）法である。
以下に酸化還元系発色試薬の具体例を示すが、本発明を何ら限定するものではない。
【００３６】
（水素供与体）
水素供与体としては、フェノール、フェノール誘導体、アニリン誘導体、ナフトール、ナフトール誘導体、ナフチルアミン、ナフチルアミン誘導体等が挙げられる。具体的には、Ｎ−エチル−Ｎ−（３−スルホプロピル）アニリン（ＡＬＰＳ）、Ｎ−エチル−Ｎ−（３−スルホプロピル）−３−メチルアニリン（ＴＯＰＳ）、Ｎ−エチル−Ｎ−（３−スルホプロピル）−３−メトキシアニリン（ＡＤＰＳ）、Ｎ−エチル−Ｎ−（３−スルホプロピル）−３，５−ジメチルアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−（３−スルホプロピル）−３，５−ジメトキシアニリン、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）アニリン（ＡＬＯＳ）、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３−メトキシアニリン（ＴＯＯＳ）、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３，５−ジメチルアニリン（ＭＡＯＳ）、Ｎ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３，５−ジメトキシアニリン（ＤＡＯＳ）、Ｎ−エチル−Ｎ−（３−メチルフェニル）−Ｎ’−アセチルエチレンジアミン、Ｎ−エチル−Ｎ−（３−メチルフェニル）−Ｎ’−サクシニルエチレンジアミン、Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−２，５−ジメチルアニリン、Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３，５−ジメトキシアニリン（ＨＤＡＯＳ）、Ｎ−スルホプロピルアニリン、Ｎ−スルホプロピル−３，５−ジメトキシアニリン等が挙げられる。
【００３７】
（カップラー）
カップラーとしては、４−アミノアンチピリン（４ＡＡ）、アミノアンチピリン誘導体、バニリンジアミンスルホン酸、メチルベンズチアゾリノンヒドラゾン（ＭＢＴＨ）、スルホン化メチルベンズチアゾリノンヒドラゾン（ＳＭＢＴＨ）等が挙げられる。
【００３８】
（ロイコ体）
ロイコ体としては、トリフェニルメタン誘導体、フェノチアジン誘導体、ジフェニルアミン誘導体等が挙げられる。具体的には、４，４’−ベンジリデンビス（Ｎ，Ｎ−ジメチルアニリン）、４，４’−ビス［Ｎ−エチル−Ｎ−（３−スルホプロピルアミノ）−２，６−ジメチルフェニル］メタン、１−（エチルアミノチオカルボニル）−２−（３，５−ジメトキシ−４−ヒドロキシフェニル）−４，５−ビス（４−ジエチルアミノフェニル）イミダゾール、４，４’−ビス（ジメチルアミノ）ジフェニルアミン、Ｎ−（カルボキシメチルアミノカルボニル）−４，４’−ビス（ジメチルアミノ）ジフェニルアミン塩（ＤＡ６４）、１０−（カルボキシメチルアミノカルボニル）−３，７−ビス（ジメチルアミノ）フェノチアジン塩（ＤＡ６７）等が挙げられる。
【００３９】
これらの中でも、モル吸光係数、極大吸収波長、保存安定性等の理由から、トリンダー試薬が好ましく、４−アミノアンチピリン（４ＡＡ）とＮ−エチル−Ｎ−（２−ヒドロキシ−３−スルホプロピル）−３，５−ジメチルアニリン（ＭＡＯＳ）の組み合わせがより好ましい。  
【００４０】
上記の酸化還元発色試薬の配置は特に限定されない。１つの層に１つの試薬を配しても良いし複数の試薬を配しても良い。また、同一の試薬を複数の層に配しても良い。さらに、試薬の配置に関して、酵素との組合せも特に限定されない。
【００４１】
前記酸化還元系発色試薬の濃度は、特に限定されないが、０．０００１〜１０ｍｇ／ｃｍ２であることが好ましく０．００１〜１ｍｇ／ｃｍ２がより好ましい。酸化還元系発色試薬濃度が０．０００１ｍｇ／ｃｍ２より少ないと、感度が低下する恐れがある。一方、酸化還元系発色試薬濃度が１０ｍｇ／ｃｍ２より多いと、バッククラウンドの上昇や、高価格化の恐れがある。
【００４２】
（糖化ヘモグロビンの測定原理）
本発明の多層試験片を用いて糖化ヘモグロビンを測定することができる。
以下に全血の糖化ヘモグロビンを測定する場合の反応について例示するが、本発明を何ら限定するものではない。
（１）測定試料中の赤血球と界面活性剤を反応させ、溶血させ、糖化ヘモグロビンを取り出す工程。
（２）前記糖化ヘモグロビンとプロテアーゼを反応させ、糖化ヘモグロビンの糖化されたβ鎖Ｎ末端から糖化アミノ酸および／または糖化ペプチドを切り出す工程。
（３）前記糖化アミノ酸および／または糖化ペプチドと糖化アミノ酸オキシダーゼを反応させ、過酸化水素を生成させる工程。
（４）ペルオキシダーゼ存在下で、前記過酸化水素と酸化還元系発色試薬を反応させ、発色させる工程。
（５）前記発色から測定試料中の糖化ヘモグロビン量を比色定量する工程。
【００４３】
（プロテアーゼ）
本発明に用いるプロテアーゼとしては、糖化ヘモグロビンの糖化されたβ鎖Ｎ末端に作用して糖化アミノ酸および／または糖化ペプチドを切り出すものであれば、いかなる種類のプロテアーゼを用いてもよく、例えば動物、植物、微生物由来のプロテアーゼ等が挙げられる。以下にプロテアーゼの具体例を示すが、本発明を何ら限定するものではない。
【００４４】
（動物由来プロテアーゼ）
動物由来のプロテアーゼとしては、ファクターＸａ（ｆａｃｔｏｒＸａ）、プラスミン（ｐｌａｓｍｉｎ）、スロンビン（ｔｈｒｏｍｂｉｎ）、ペプシン（ｐｅｐｓｉｎ）、ロイシンアミノペプチダーゼ（ｌｅｕｃｉｎａｍｉｎｏｐｅｐｔｉｄａｓｅ）、パンクレアチン（ｐａｎｃｒｅａｔｉｎ）、エラスターゼ（ｅｌａｓｔａｓｅ）、トリプシン（ｔｒｙｐｓｉｎ）、キモトリプシンＡ（ｃｈｙｍｏｔｒｙｐｓｉｎＡ）、アミノペプチダーゼＭ（ａｍｉｎｏｐｅｐｔｉｄａｓｅＭ）、カルボキシペプチダーゼＡ（ｃａｒｂｏｘｙｐｅｐｔｉｄａｓｅＡ）、カルボキシペプチダーゼＢ（ｃａｒｂｏｘｙｐｅｐｔｉｄａｓｅＢ）、カルパイン（ｃａｌｐａｉｎ）、カテプシンＢ（ｃａｔｈｅｐｓｉｎＢ）、カテプシンＣ（ｃａｔｈｅｐｓｉｎＣ）、カテプシンＤ（ｃａｔｈｅｐｓｉｎＤ）、エンドプロテイナーゼＡｒｇ−Ｃ（ｅｎｄｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅＡｒｇ−Ｃ）等が挙げられる。 
【００４５】
（植物由来プロテアーゼ）
植物由来のプロテアーゼとしては、カルボキシペプチダーゼＷ（ｃａｒｂｏｘｙｐｅｐｔｉｄａｓｅＷ）、カリクレイン（ｋａｌｌｉｋｒｅｉｎ）、フィシン（ｆｉｃｉｎ）、パパイン（ｐａｐａｉｎ）、キモパパイン（ｃｈｉｍｏｐａｐａｉｎ）、ブロメライン（ｂｒｏｍｅｌａｉｎ）等が挙げられる。
【００４６】
（微生物由来プロテアーゼ）
微生物由来のプロテアーゼとしては、ズブチリシン（ｓｕｂｔｉｌｉｓｉｎ）、サーモリシン（ｔｈｅｒｍｏｌｙｓｉｎ）、ディスパーゼ（ｄｉｓｐａｓｅ）、プロテイナーゼＮ（ｐｒｏｔｅｉｎａｓｅＮ）等に代表されるバチルス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）由来プロテアーゼ、ＩＰ酵素等に代表されるアスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）由来プロテアーゼ、プロナーゼ（ｐｒｏｎａｓｅ）等に代表されるストレプトマイセス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ）由来プロテアーゼ、プロテイナーゼＫ（ｐｒｏｔｅｉｎａｓｅＫ）等に代表されるトリチラチウム（Ｔｒｉｔｉｒａｃｈｉｕｍ）由来プロテアーゼ、ペプチダーゼＲ（ｐｅｐｔｉｄａｓｅＲ）等に代表されるリゾバス（Ｒｈｉｚｏｐｕｓ）由来プロテアーゼ、カルボキシペプチダーゼＰ、（ｃａｒｂｏｘｙｐｅｐｔｉｄａｓｅＰ）、ＰＤ酵素等に代表されるペニシリウム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ）由来プロテアーゼ、エンドプロテイナーゼＧｌｕ−Ｃ（ｅｎｄｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅＧｌｕ−Ｃ）等に代表されるスタフィロコッカス（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ）由来プロテアーゼ、クロストリパイン（ｃｌｏｓｔｒｉｐａｉｎ）等に代表されるクロストリジウム（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ）由来プロテアーゼ、エンドプロテイナーゼＬｙｓ−Ｃ（ｅｎｄｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅＬｙｓ−Ｃ）等に代表されるリソバクター（Ｌｙｓｏｂａｃｔｅｒ）由来プロテアーゼ、メタロエンドペプチダーゼ（ｍｅｔａｌｌｏｅｎｄｏｐｅｐｕｔｉｄａｓｅ）等に代表されるグリフォラ（Ｇｒｉｆｏｌａ）由来プロテアーゼ、カルボキシペプチダーゼＹ（ｃａｒｂｏｘｙｐｅｐｔｉｄａｓｅＹ）、プロテイナーゼＡ（ｐｒｏｔｅｉｎａｓｅＡ）等に代表される酵母（Ｙｅａｓｔ）由来プロテアーゼ、アミノペプチダーゼＴ（ａｍｉｎｏｐｅｐｔｉｄａｓｅＴ）等に代表されるサーマス（Ｔｈｅｒｍｕｓ）由来プロテアーゼ、エンドプロテイナーゼＡｓｐ−Ｎ（ｅｎｄｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅＡｓｐ−Ｎ）等に代表されるシュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎｕｓ）由来プロテアーゼ、リジルエンドペプチダーゼ（ｌｙｓｙｌｅｎｄｏｐｅｐｕｔｉｄａｓｅ）、アクロモペプチダーゼ（ａｃｈｒｏｍｏｐｅｐｕｔｉｄａｓｅ）等に代表されるアクロモバクター（Ａｃｈｒｏｍｏｂａｃｔｅｒ）由来プロテアーゼ等が挙げられる
【００４７】
これらの中でも、安定性、反応性（ヘモグロビンの切断速度）、入手の容易性、価格等の理由から、微生物由来のプロテアーゼが好ましく、バチルス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）由来プロテアーゼ、アスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）由来プロテアーゼ、ストレプトマイセス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ）由来プロテアーゼ、およびトリチラチウム（Ｔｒｉｔｉｒａｃｈｉｕｍ）由来プロテアーゼからなる群より選ばれた１種以上であることがより好ましい。市販品としては、バチルス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）由来プロテアーゼのトヨチームＮＥＰ（東洋紡社製）、Ｔｙｐｅ−Ｘ（シグマ社製）、Ｔｙｐｅ−ＸＸＩＶ（シグマ社製）、サーモリシン（大和化成社製）、サモアーゼＰＣ１０（大和化成社製）、アスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）由来プロテアーゼのＴｙｐｅ−ＸＩＩＩ（シグマ社製）、Ｔｙｐｅ−ＸＸＩＩＩ（シグマ社製）、ストレプトマイセス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ）由来プロテアーゼのＴｙｐｅ−ＸＩＶ、トリチラチウム（Ｔｒｉｔｉｒａｃｈｉｕｍ）由来プロテアーゼのプロテイナーゼＫ（ロシュ社製）等が好適に用いられる。
【００４８】
これらの中でも、糖化ヘモグロビン測定の観点から、バチルス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）由来プロテアーゼのトヨチームＮＥＰ（東洋紡社製）、Ｔｙｐｅ−Ｘ（シグマ社製）、Ｔｙｐｅ−ＸＸＩＶ（シグマ社製）、サーモリシン（大和化成社製）、サモアーゼＰＣ１０（大和化成社製）、ストレプトマイセス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ）由来プロテアーゼのＴｙｐｅ−ＸＩＶがより好適に用いられる。
【００４９】
前記プロテアーゼの濃度は、特に限定されないが、０．１〜１００００Ｕ／ｃｍ２であることが好ましく、１〜１０００Ｕ／ｃｍ２がより好ましい。プロテアーゼ濃度が０．１Ｕ／ｃｍ２より少ないと、反応性の低下により測定時間が長くなるため好ましくない。一方、プロテアーゼ濃度が１００００Ｕ／ｃｍ２より多いと、バッククラウンドの上昇や、高価格化の恐れがある。
前記プロテアーゼの反応を行う際のｐＨは、無調整でもよいが、使用するプロテアーゼの至適ｐＨとなるよう適当なｐＨ調整剤、例えば下記の緩衝剤によって調整するのが好ましい。
【００５０】
（糖化アミノ酸オキシダーゼ）
本発明で糖化アミノ酸を測定する際に用いる糖化アミノ酸オキシダーゼ（以下、ＦＡＯＤともいうことがある。）としては、糖化アミノ酸および／または糖化ペプチドに特異的に作用し、過酸化水素を生成する酵素であれば、いかなる種類の酵素を用いてもよい。以下に糖化アミノ酸オキシダーゼの具体例を示すが、本発明を何ら限定するものではない。
【００５１】
糖化アミノ酸オキシダーゼとしては、ギベレラ（Ｇｉｂｂｅｒｅｌｌａ）由来酵素、アスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）由来酵素、ペニシリウム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ）由来酵素、フサリウム（Ｆｕｓａｒｉｕｍ）由来酵素、コリネバクテリウム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ）由来酵素、コニオカエタ（Ｃｏｎｉｏｃｈａｅｔａ）由来酵素、ユウペニシリウム（Ｅｕｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ）由来酵素、アカエトミエラ（Ａｃｈａｅｔｏｍｉｅｌｌａ）由来酵素、カエトミウム（Ｃｈａｅｔｏｍｉｕｍ）由来酵素、大腸菌由来酵素、酵母属デバリオマイゼス（Ｄｅｂａｒｙｏｍｙｃｅｓ）由来酵素、カーブラリア（Ｃｕｒｖｕｌａｒｉａ）由来酵素、ネオコスモスポラ（Ｎｅｏｃｏｓｍｏｓｐｏｒａ）由来酵素、クリプトコッカス（Ｃｒｙｐｔｏｃｏｃｃｕｓ）由来酵素、ファエオスフェリア（Ｐｈａｅｏｓｐｈａｅｒｉａ）由来酵素、カンジダ（Ｃａｎｄｉｄａ）由来酵素、アクレモニウム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）由来酵素等が挙げられる。
【００５２】
これらの中でも、安定性、反応性（糖化アミノ酸および／または糖化ペプチドの酸化速度）、入手の容易性、価格等の理由から、コニオカエタ（Ｃｏｎｉｏｃｈａｅｔａ）由来酵素、ユウペニシリウム（Ｅｕｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ）由来酵素、カーブラリア（Ｃｕｒｖｕｌａｒｉａ）由来酵素、ネオコスモスポラ（Ｎｅｏｃｏｓｍｏｓｐｏｒａ）由来酵素、アスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）由来酵素、クリプトコッカス（Ｃｒｙｐｔｏｃｏｃｃｕｓ）由来酵素、ファエオスフェリア（Ｐｈａｅｏｓｐｈａｅｒｉａ）由来酵素からなる群より選ばれた１種以上であることが好ましく、コニオカエタ（Ｃｏｎｉｏｃｈａｅｔａ）由来酵素、アスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）由来酵素、クリプトコッカス（Ｃｒｙｐｔｏｃｏｃｃｕｓ）由来酵素、ファエオスフェリア（Ｐｈａｅｏｓｐｈａｅｒｉａ）由来酵素からなる群より選ばれた１種以上であることがより好ましい。
【００５３】
これらの中でも、糖化ヘモグロビン測定の観点から、コニオカエタ（Ｃｏｎｉｏｃｈａｅｔａ）由来酵素、ファエオスフェリア（Ｐｈａｅｏｓｐｈａｅｒｉａ）由来酵素からなる群より選ばれた１種以上であることがさらに好ましい。
【００５４】
前記糖化アミノ酸オキシダーゼの濃度は、特に限定されないが、０．０１〜１０００Ｕ／ｃｍ２であることが好ましく、０．１〜１００Ｕ／ｃｍ２がより好ましい。糖化アミノ酸オキシダーゼ濃度が０．０１Ｕ／ｃｍ２より少ないと、反応性の低下により測定時間が長くなるため好ましくない。一方、糖化アミノ酸オキシダーゼ濃度が１０００Ｕ／ｃｍ２より多いと、バッククラウンドの上昇や、高価格化の恐れがある。
前記糖化アミノ酸オキシダーゼの反応を行う際のｐＨは、無調整でもよいが、使用する糖化アミノ酸オキシダーゼの至適ｐＨとなるよう適当なｐＨ調整剤、例えば下記の緩衝剤によって調整するのが好ましい。
【００５５】
（ペルオキシダーゼ）
ペルオキシダーゼ、酸化還元系発色試薬については、上述のグルコースの測定原理で述べた事柄が、糖化ヘモグロビンの測定においても同様にあてはまる。
【００５６】
（酸化還元系発色試薬）
糖化ヘモグロビン測定用の酸化還元系発色試薬としては、上述のグルコースの測定原理で列挙した酸化還元系発色試薬の中でも、モル吸光係数、極大吸収波長等の理由から、ロイコ体が好ましく、Ｎ−（カルボキシメチルアミノカルボニル）−４，４’−ビス（ジメチルアミノ）ジフェニルアミン塩（ＤＡ６４）、１０−（カルボキシメチルアミノカルボニル）−３，７−ビス（ジメチルアミノ）フェノチアジン塩（ＤＡ６７）がより好ましい。
【００５７】
前記酸化還元系発色試薬の濃度は、特に限定されないが、０．０００１〜１０ｍｇ／ｃｍ２であることが好ましく０．００１〜１ｍｇ／ｃｍ２がより好ましい。酸化還元系発色試薬濃度が０．０００１ｍｇ／ｃｍ２より少ないと、感度が低下する恐れがある。一方、酸化還元系発色試薬濃度が１０ｍｇ／ｃｍ２より多いと、バッククラウンドの上昇や、高価格化の恐れがある。
【００５８】
本発明の多層試験片には、上記のほか、目的に応じて、緩衝液成分、防腐剤、塩類、酵素安定化剤、色原体安定化剤、界面活性剤などを添加してもよい。その使用量や添加の形態などについては特に限定されない。これらはいずれも、市販品などを入手することができる。
緩衝液成分、界面活性剤については後に詳述する。
防腐剤としては、アジ化物、キレート剤、抗生物質、抗菌剤などが挙げられる。
キレート剤としては、エチレンジアミン四酢酸およびその塩等が挙げられる。
抗生物質としては、ゲンタマイシン、カナマイシン、クロラムフェニコール等が挙げられる。
抗菌剤としては、メチルイソチアゾリノン、イミダゾリジニルウレア等が挙げられる。
塩類としては塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化アルミニウム等が挙げられる。
酵素安定化剤としては、シュークロース、トレハロース、シクロデキストリン、グルコン酸塩、アミノ酸類等が挙げられる。
色原体安定化剤としては、エチレンジアミン四酢酸およびその塩等のキレート剤、シクロデキストリン等が挙げられる。
【００５９】
（界面活性剤）
本発明でグルコースまたは糖化アミノ酸を測定する際に用いることができる界面活性剤は、特に限定されない。
特に、糖化アミノ酸を測定する際には、界面活性剤を溶血剤として用いることが好ましい。界面活性剤としては、溶血剤として作用すれば、いかなる種類の界面活性剤を用いてもよい。
前記界面活性剤としては、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル（Ｔｒｉｔｏｎ（登録商標）系界面活性剤等）、ポリオキシエチレンアルキルエーテル（Ｂｒｉｊ（登録商標）系界面活性剤等）、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル（Ｔｗｅｅｎ（登録商標）系界面活性剤等）、ポリオキシエチレン脂肪酸エステル、ソルビタン脂肪酸エステル、アルキルグルコシド、ショ糖脂肪酸エステル等の非イオン性界面活性剤が挙げられる。これらの中でも、溶血剤としての反応性（溶血の速度）、プロテアーゼ反応促進剤としての作用性、価格等の理由からポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル（Ｔｒｉｔｏｎ（登録商標）系界面活性剤等）が好ましい。市販品としては、ＴｒｉｔｏｎＸ（登録商標）−１００（ナカライテスク社製）、ＴｒｉｔｏｎＸ（登録商標）−１１４（ナカライテスク社製）、Ｎｏｎｉｄｅｔ（登録商標）Ｐ−４０（ナカライテスク社製）等が好適に用いられる。また、前記界面活性剤は単独で用いても、二種以上を組み合わせて用いてもよい。
【００６０】
前記界面活性剤の濃度は、特に限定されないが、０．０００１〜１０ｍｇ／ｃｍ２であるとこが好ましく０．００１〜１ｍｇ／ｃｍ２がより好ましい。界面活性剤濃度が０．０００１ｍｇ／ｃｍ２より少ないと、十分な溶血効果が得られない恐れがある。一方、界面活性剤濃度が１０ｍｇ／ｃｍ２より多くしても、効果の向上は見られない。
【００６１】
（緩衝剤）
本発明でグルコースまたは糖化アミノ酸を測定する際に用いることができる緩衝剤としては、目的とするｐＨ範囲において充分な緩衝能力を有していれば、いかなる種類の緩衝剤を用いてもよく、例えば、トリス、リン酸、フタル酸、クエン酸、マレイン酸、コハク酸、シュウ酸、ホウ酸、酒石酸、酢酸、炭酸、グッドバッファー（ＭＥＳ、ＡＤＡ、ＰＩＰＥＳ、ＡＣＥＳ、コラミン塩酸、ＢＥＳ、ＴＥＳ、ＨＥＰＥＳ、アセトアミドグリシン、トリシン、グリシンアミド、ビシン）等が挙げられる。
【００６２】
これらの中でも、本発明に用いるプロテアーゼ、糖化アミノ酸オキシダーゼ、およびペルオキシダーゼの至適ｐＨ範囲である６．０〜８．５（好ましくは６．０〜７．５）において充分な緩衝能力を有する等の理由から、トリス、リン酸、ＭＥＳ、ＰＩＰＥＳ、ＴＥＳ、ＨＥＰＥＳが好ましく、ＭＥＳ、ＰＩＰＥＳがより好ましい。
【００６３】
前記緩衝剤の濃度は、特に限定されないが、多層試験片作製時の試薬に対して５０〜１００ｍＭ程度が好ましい。
【００６４】
（検出）
反応の検出には、発色した多層試験片に対して光（入射光）をあて、その反射光を検出することが最も簡便であるが、これ以外の方法を用いても良い。光源としては、特に限定されないが、例えばＵＶランプ、キセノンランプ、クリプトンランプ、水銀ランプ、重水素ランプ、タングステンランプ、ハロゲンランプ、発光ダイオード（ＬＥＤ）、レーザー等が挙げられる。これらの中でも、光波長の制御の容易さ、および装置の小型・軽量・低価格化の観点から、発光ダイオード（ＬＥＤ）が好ましい。前記入射光の角度（入射角）は、特に限定されず、任意の角度を用いることができる。一方、反射光の検出は、特に限定されないが、検出面に対して垂直が好ましい。なお、検出には、フォトダイオードや積分球等を用いれば簡便に行う事ができる。 
【００６５】
（多層試験片を含むプロダクト）
本発明のプロダクトは、上記の多層試験片を含むものであれば、その構成、組成などは特に限定されない。
なお、本明細書において「プロダクト」とは、使用者が糖化ヘモグロビン量を定量する目的で用いる１セットのうち一部または全部を構成する製品であって、本発明の多層試験片を含むものを意味する。
【実施例】
【００６６】
以下に実施例を示して本発明を具体的に説明するが、本発明は実施例に限定されるものではない。なお、明細書中の評価法は以下の通りである。
［各種評価法］
【００６７】
＜１．グルコースオキシダーゼの活性測定＞
グルコースオキシザーゼの活性は、ペルオキシダーゼ存在下で、β−Ｄ−グルコースとグルコースオキシダーゼとの反応で生成した過酸化水素とトリンダー試薬（４ＡＡ−ＴＯＯＳ）を反応させ、５５５ｎｍにおける吸光度変化から算出した。ここで、グルコースオキシダーゼの至適ｐＨ（ｐＨ＝５．７）で、３７℃−1分あたり、１．０μｍｏｌの過酸化水素を生成する酵素量を１Ｕと定義した。
【００６８】
＜２．プロテアーゼの活性測定＞
プロテアーゼの活性は、Ｆｏｌｉｎ−Ｃｉｏｃａｌｔｅｕ試薬を用いたカゼインフォリン法により算出した。ここで、プロテアーゼの至適ｐＨで、３７℃−１分あたり、カゼインを加水分解し、１．０μｍｏｌのチロシンに相当する呈色を生ずる酵素量を１Ｕと定義した。
【００６９】
＜３．糖化アミノ酸オキシダーゼの活性測定＞
糖化アミノ酸オキシダーゼの活性は、ペルオキシダーゼ存在下で、糖化バリルヒスチジンと糖化アミノ酸オキシダーゼとの反応で生成した過酸化水素と酸化還元系発色試薬を反応させ、その吸光度変化から算出した。ここで、糖化アミノ酸オキシダーゼの至適ｐＨ（ｐＨ＝６．５）で、３７℃−1分あたり、１．０μｍｏｌの過酸化水素を生成する酵素量を１Ｕと定義した。
【００７０】
＜４．ペルオキシダーゼの活性測定＞
ペルオキシダーゼの活性は、ペルオキシダーゼ存在下で、過酸化水素とピロガロール（Ｐｙｒｏｇａｌｌｏｌ）とを反応させ、生成したプルプロガリン（Ｐｕｒｐｕｒｏｇａｌｌｉｎ）に由来する吸光度の変化から算出した。ここで、ペルオキシダーゼの至適ｐＨ（ｐＨ＝６．０）で、２０℃−２０秒あたり、１．０ｍｇのプルプロガリン（Ｐｕｒｐｕｒｏｇａｌｌｉｎ）に相当する呈色を生ずる酵素量を１Ｕと定義した。
【００７１】
＜５．多孔性粘着シートの開口率測定、平均孔面積測定＞
粘着シートは単独ではハンドリングできないため、通常  粘着シート／剥離ライナーの２層構造、または剥離ライナー／粘着シート／剥離ライナーの３層構造で構成される。
多孔性粘着シートの開口率は、前記２層構造の場合は粘着シート面を、前記３層構造の場合は剥離ライナーを剥がした後の粘着シート面を、それぞれ走査型電子顕微鏡（ＳＥＭ）で倍率５０倍にて観察し、得られた画像を二次元ＣＡＤ（ＪＷ−ＣＡＤ）の面積測定モードで粘着シート部分の面積（Ａ）と剥離ライナー部分の面積（Ｂ）を測定し、｛Ｂ／（Ａ＋Ｂ）｝×１００の式により開口率を算出した。（ｎ＝１０の平均値）。
また、多孔性粘着シートの平均孔面積は、前記剥離ライナー部分の面積（Ｂ）である。（ｎ＝１０の平均値）。
なお、二次元ＣＡＤの面積測定モードにおける粘着シート部分、剥離ライナー部分の判別には、ＳＥＭ−ＥＤＸ（Ｅｎｅｒｇｙ  Ｄｉｓｐｅｒｓｉｖｅ  Ｘ−ｒａｙ  Ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ）を用い、粘着シート由来の元素が検出された場合は粘着シート部分（Ａ）と、剥離ライナー由来の元素が検出された場合は剥離ライナー部分（Ｂ）とそれぞれ判別した。
【００７２】
＜６．グルコースの測定＞
本発明のグルコース測定用多層試験片を、治具（図１参照）で上下から挟んで固定し、グルコース標準液（一般社団法人  検査医学標準物質機構社製）２０μＬを１層目に点着し、プログラム低温恒温器  ＩＮ６０４（ヤマト科学社製）にて３７℃−１分間インキュベート後、測定試料点着面とは反対面の反射率を、下記条件１で測定した。
＜条件１＞
測定試料        ：  グルコース標準液
０、５０、１００、２００、５００ｍｇ／ｄＬ
装置名          ：  分光光度計  ＵＶ−２４５０（島津製作所社製）
付属装置名      ：  積分球  ＩＳＲ−２２００（島津製作所社製）
標準白板        ：  硫酸バリウム標準白板
測定波長        ：  ６３０ｎｍ
入射角          ：  ０°
スリット幅      ：  ２．０ｎｍ
光束寸法        ：  ３ｍｍ×５ｍｍ
温度            ：  ２５℃
【００７３】
得られた６３０ｎｍでの反射率から、式（１）のＫｕｂｅｌｋａ−Ｍｕｎｋ変換により６３０ｎｍでのＫ／Ｓ値を得た。式（１）中の％Ｒは反射率を意味する。
Ｋ／Ｓ値＝（１−％Ｒ）２／（２×％Ｒ）  式（１）
得られた６３０ｎｍでのＫ／Ｓ値と、グルコース標準液の濃度０、５０、１００、２００、５００ｍｇ／ｄＬとのピアソン相関係数：ｒを算出し、ｒ＞０．９８を◎（Ｅｘｃｅｌｌｅｎｔ）、０．９８≦ｒ＜０．９５を○（Ｇｏｏｄ）、０．９５≦ｒ＜０．９０を△（Ｎｏｔ  Ｂａｄ）、ｒ≦０．９０を×（Ｂａｄ）として、相関性を評価した。
【００７４】
次いで、本発明のグルコース測定用多層試験片を、治具（図１参照）で上下から挟んで固定し、健常者全血、または糖尿病患者全血  ２０μＬを１層目に点着し、プログラム低温恒温器  ＩＮ６０４（ヤマト科学社製）にて３７℃−１分間インキュベート後、測定試料点着面とは反対面の反射率を、下記条件２で測定した。なお、健常者血液、および糖尿病患者血液は、市販の自動分析機：日立自動分析機  ７１８０（日立ハイテク社製）、市販の血糖値測定試薬を用いて、通法に従い測定を実施し、グルコース濃度を算出した。
＜条件２＞
測定試料        ：  健常者血液  １水準  グルコース濃度＝１００ｍｇ／ｄＬ
糖尿病患者血液  １水準  グルコース濃度＝１５０ｍｇ／ｄＬ
装置名          ：  分光光度計  ＵＶ−２４５０（島津製作所社製）
付属装置名      ：  積分球  ＩＳＲ−２２００（島津製作所社製）
標準白板        ：  硫酸バリウム標準白板
測定波長        ：  ６３０ｎｍ
入射角          ：  ０°
スリット幅      ：  ２．０ｎｍ
光束寸法        ：  ３ｍｍ×５ｍｍ
温度            ：  ２５℃
【００７５】
得られた６３０ｎｍでの反射率から、上式（１）のＫｕｂｅｌｋａ−Ｍｕｎｋ変換により６３０ｎｍでのＫ／Ｓ値を得た。得られた６３０ｎｍでのＫ／Ｓ値と、前項で得られた検量線から、グルコース濃度を算出した。得られたグルコース濃度のｎ＝１０でのＣＶを算出し、０％≦ＣＶ＜３％を◎（Ｅｘｃｅｌｌｅｎｔ）、３％≦ＣＶ＜５％を○（Ｇｏｏｄ）、５％≦ＣＶ＜８％を△（Ｎｏｔ  Ｂａｄ）、８％≦ＣＶを×（Ｂａｄ）として、ばらつきを評価した。
【００７６】
＜７．糖化ヘモグロビンの測定＞
本発明のヘモグロビンＡ１ｃ測定用多層試験片を、治具（図１参照）で上下から挟んで固定し、ＨｂＡ１ｃ測定性能評価用試料  ＱＲＭ  ＨｂＡ１ｃ  ２００７−１（一般社団法人  検査医学標準物質機構社製）２０μＬを１層目に点着し、プログラム低温恒温器  ＩＮ６０４（ヤマト科学社製）にて３７℃−１０分間インキュベート後、測定試料点着面とは反対面の反射率を、下記条件３で測定した。
＜条件３＞
測定試料        ：  ＨｂＡ１ｃ測定性能評価用試料  ＱＲＭ
ＬＥＶＥＬ１、２、３、４、５
装置名          ：  分光光度計  ＵＶ−２４５０（島津製作所社製）
付属装置名      ：  積分球  ＩＳＲ−２２００（島津製作所社製）
標準白板        ：  硫酸バリウム標準白板
測定波長        ：  ４８０ｎｍ、６６６ｎｍ
入射角          ：  ０°
スリット幅      ：  ２．０ｎｍ
光束寸法        ：  ３ｍｍ×５ｍｍ
温度            ：  ２５℃
【００７７】
得られた４８０ｎｍでの反射率、および６６６ｎｍでの反射率から、上式（１）のＫｕｂｅｌｋａ−Ｍｕｎｋ変換により４８０ｎｍでのＫ／Ｓ値、および６６６ｎｍでのＫ／Ｓ値を得た。次いで、得られた４８０ｎｍでのＫ／Ｓ値と、６６６ｎｍでのＫ／Ｓ値から、下式（２）のＫ／Ｓ比を算出した。なお、Ｋ／Ｓ比とヘモグロビンＡ１ｃ値が比例することは公知である。（非特許文献１参照）式中のＫ／Ｓ値（４８０ｎｍ）は４８０ｎｍでのＫ／Ｓ値を、Ｋ／Ｓ値（６６６ｎｍ）は６６６ｎｍでのＫ／Ｓ値をそれぞれ意味する。
Ｋ／Ｓ比＝Ｋ／Ｓ値（６６６ｎｍ）  ／  Ｋ／Ｓ値（４８０ｎｍ）  式（２）
【００７８】
得られたＫ／Ｓ比と、ＨｂＡ１ｃ測定性能評価用試料  ＱＲＭで規定されているＨｂＡ１ｃ値（ＬＥＶＥＬ１＝４．６７％、ＬＥＶＥＬ２＝５．２９％、ＬＥＶＥＬ３＝６．９６％、ＬＥＶＥＬ４＝９．０８％、ＬＥＶＥＬ５＝１０．７９％）とのピアソン相関係数：ｒを算出し、ｒ＞０．９８を◎（Ｅｘｃｅｌｌｅｎｔ）、０．９８≦ｒ＜０．９５を○（Ｇｏｏｄ）、０．９５≦ｒ＜０．９０を△（Ｎｏｔ  Ｂａｄ）、ｒ≦０．９０を×（Ｂａｄ）として、相関性を評価した。
【００７９】
次いで、本発明のヘモグロビンＡ１ｃ測定用多層試験片を、治具（図１参照）で上下から挟んで固定し、健常者全血、または糖尿病患者全血  ２０μＬを１層目に点着し、プログラム低温恒温器  ＩＮ６０４（ヤマト科学社製）にて３７℃−１０分間インキュベート後、測定試料点着面とは反対面の反射率を、下記条件４で測定した。なお、健常者血液、および糖尿病患者血液は、市販の自動分析機：日立自動分析機  ７１８０（日立ハイテク社製）、市販のヘモグロビンＡ１ｃ測定試薬：ノルディアＮ  ＨｂＡ１ｃ（積水メディカル社製）を用いて、通法に従い測定を実施し、ヘモグロビンＡ１ｃ値を算出した。
＜条件４＞
測定試料        ：  健常者血液  １水準  ＨｂＡ１ｃ値＝５．０％
糖尿病患者血液  １水準  ＨｂＡ１ｃ値＝８．８％
装置名          ：  分光光度計  ＵＶ−２４５０（島津製作所社製）
付属装置名      ：  積分球  ＩＳＲ−２２００（島津製作所社製）
標準白板        ：  硫酸バリウム標準白板
測定波長        ：  ４８０ｎｍ、６６６ｎｍ
入射角          ：  ０°
スリット幅      ：  ２．０ｎｍ
光束寸法        ：  ３ｍｍ×５ｍｍ
温度            ：  ２５℃
【００８０】
得られた４８０ｎｍでの反射率、および６６６ｎｍでの反射率から、上式（１）のＫｕｂｅｌｋａ−Ｍｕｎｋ変換により４８０ｎｍでのＫ／Ｓ値、および６６６ｎｍでのＫ／Ｓ値を得た。次いで、得られた４８０ｎｍでのＫ／Ｓ値と、６６６ｎｍでのＫ／Ｓ値から、上式（２）のＫ／Ｓ比を算出した。得られたＫ／Ｓ比と、前項で得られた検量線から、ヘモグロビンＡ１ｃ値を算出した。得られたヘモグロビンＡ１ｃ値のｎ＝１０でのＣＶを算出し、０％≦ＣＶ＜３％を◎（Ｅｘｃｅｌｌｅｎｔ）、３％≦ＣＶ＜５％を○（Ｇｏｏｄ）、５％≦ＣＶ＜８％を△（Ｎｏｔ  Ｂａｄ）、８％≦ＣＶを×（Ｂａｄ）として、ばらつきを評価した。
【００８１】
［多孔性粘着シートの作成］
アクリル樹脂粘着シート  ＮＯ．５９１９（日東電工社製）を、ドリル加工機（ＮＤ−６Ｎ２１０、日立ビアメカニクス社製）、およびドリル（ＳＳＤ、京セラ社製）を用い、所定の貫通孔を等間隔に複数個あけ、多孔性粘着シートＡ１〜Ａ１０を作成した。
得られた多孔性粘着シートＡ１〜Ａ１０の物性値を表１、２に示す。
多孔性粘着シートＡ１〜Ａ５、Ａ７〜Ａ１０は問題なく加工することができた。一方、多孔性粘着シートＡ６は加工不良が生じ、ハンドリングも不可能であった。
【００８２】
アクリル樹脂粘着シート  ＮＯ．５９１９（日東電工社製）を、３ｍｍφ用ベルトポンチ（ＴＲＵＳＣＯ社製）を用い、所定の貫通孔を等間隔に複数個あけ、多孔性粘着シートＡ１１を作成した。
得られた多孔性粘着シートＡ１１の物性値を表２に示す。
多孔性粘着シートＡ１１は問題なく加工することができた。
【００８３】
アクリル樹脂粘着シート  ＮＯ．５９１９（日東電工社製）を、レーザー加工機（ＨＩＰＰＯ、Ｓｐｅｃｔｒａ−Ｐｈｙｓｉｃｓ社製）を用い、所定の貫通孔を等間隔に複数個あけ、多孔性粘着シートＡ１２を作成した。
得られた多孔性粘着シートＡ１２の物性値を表２に示す。
多孔性粘着シートＡ１２は問題なく加工することができた。
【００８４】
【表１】
2014187980.tif 000002
【００８５】
【表２】
2014187980.tif 000003
【００８６】
ウレタン樹脂粘着シート  ＴＳＵ００４１（東洋インキ社製）、シリコーン樹脂粘着シート  シリコーン粘着基材レステープ（リンテック社製）を、ドリル加工機（ＮＤ−６Ｎ２１０、日立ビアメカニクス社製）、およびドリル（ＳＳＤ、京セラ社製）を用い、所定の貫通孔を等間隔に複数個あけ、多孔性粘着シートＢ、Ｃを作成した。
得られた多孔性粘着シートＢ、Ｃの物性値を表３に示す。
多孔性粘着シートＢ、Ｃは問題なく加工することができた。
【００８７】
【表３】
2014187980.tif 000004
【００８８】
［多層試験片の作成］
［実施例１］ 
８ｍｍφの桐山ろ紙  ＮＯ．５Ａ（東京硝子器械社製）に、下記試薬１を１０μＬ滴下し、次いで別の８ｍｍφの桐山ろ紙  ＮＯ．５Ａ（東京硝子器械社製）に、下記試薬２を１０μＬ滴下し、それぞれ遮光デシケーター  ３９０９−０４（東京硝子器械社製）にて２５℃−２時間乾燥させ、単層試験片を２種作製した。
他方、８ｍｍφ用ベルトポンチ（ＴＲＵＳＣＯ社製）で８ｍｍφに打ち抜いた後、剥離ライナーを剥がした多孔性粘着シートＡ３を介して、得られた２種の単層試験片を、積層することで、ヘモグロビンＡ１ｃ測定用多層試験片を作製した。なお、担持された界面活性剤濃度は０．１ｍｇ／ｃｍ２、プロテアーゼ濃度は５Ｕ／ｃｍ２、糖化アミノ酸オキシダーゼ濃度は２．５Ｕ／ｃｍ２、ペルオキシダーゼ濃度は１０Ｕ／ｃｍ２、酸化還元系発色試薬濃度は０．１ｍｇ／ｃｍ２である。
＜試薬１＞
１００ｍＭ  ＰＩＰＥＳ（同仁化学研究所社製）  ｐＨ６．５
５．０ｍｇ／ｍＬ  Ｎｏｎｉｄｅｔ（登録商標）Ｐ−４０（ナカライテスク社製）
２５０Ｕ／ｍＬ  プロテアーゼ  Ｔｙｐｅ−ＸＩＶ（シグマ社製）
５００Ｕ／ｍＬ  ペルオキシダーゼ  ＰＥＯ−３０２（東洋紡績社製）
＜試薬２＞
１００ｍＭ  ＰＩＰＥＳ（同仁化学研究所社製）  ｐＨ６．５
５．０ｍｇ／ｍＬ  Ｎｏｎｉｄｅｔ（登録商標）Ｐ−４０（ナカライテスク社製）
１２５Ｕ／ｍＬ  糖化アミノ酸オキシダーゼ  ＦＰＯ−３０１（東洋紡績社製）
５．０ｍｇ／ｍＬ  ＤＡ６７（和光純薬工業社製）
【００８９】
［実施例２〜１０］
多孔性粘着シートＡ３の代わりに、多孔性粘着シートＡ２、Ａ４、Ａ５、Ａ７〜Ａ１０、Ａ１２、Ｂを用いる以外は、実施例１と同様にして、ヘモグロビンＡ１ｃ測定用多層試験片を作製した。
【００９０】
［比較例１〜３］
多孔性粘着シートＡ３の代わりに、多孔性粘着シートＡ１、Ａ１１、Ｃを用いる以外は、実施例１と同様にして、ヘモグロビンＡ１ｃ測定用多層試験片を作製した。
【００９１】
［比較例４］
多孔性粘着シートＡ３の代わりに、アクリル樹脂粘着シート  ＮＯ．５９１９（日東電工社製）を用いる以外は、実施例１と同様にして、ヘモグロビンＡ１ｃ測定用多層試験片を作製した。
【００９２】
［比較例５］
多孔性粘着シートＡ３を用いない以外は、実施例１と同様にして、ヘモグロビンＡ１ｃ測定用多層試験片を作製した。
【００９３】
＜ヘモグロビンＡ１ｃ値検量線の作成＞
実施例１〜１０、比較例１〜５のヘモグロビンＡ１ｃ測定用多層試験片を用い、ＨｂＡ１ｃ値の検量線を作成し、相関性を評価した。
得られた評価結果を表４、５に示す。
【００９４】
＜ヘモグロビンＡ１ｃ値の測定＞
実施例１〜１０、比較例１〜５のヘモグロビンＡ１ｃ測定用多層試験片を用い、前項で得られたＨｂＡ１ｃ値の検量線を用い、ＨｂＡ１ｃ値を算出した。
得られた評価結果を表４、５に示す。
実施例１〜１０の多層試験片は、生化学自動分析装置を用いた方法と同等の再現性（ＣＶ＜５％）、正確性（自動分析装置の測定値±５％）を有する。
比較例１の多層試験片は、開口率が小さいため、測定試料の展開が遅く、かつ不均一となり、再現性、正確性が低下した。
比較例２の多層試験片は、孔面積が大きいため、測定試料の展開が不均一となり、再現性、正確性が低下した。
比較例３の多層試験片は、シリコーンの疎水性により、測定試料の展開が遅く、かつ不均一となり、再現性、正確性が低下した。
比較例４の多層試験片は、水が最下層へ展開できないため、測定不可能であった。
比較例５の多層試験片は、多孔性粘着剤を配していないため、測定試料の展開が不均一となり、再現性、正確性が低下した。
【００９５】
【表４】
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【００９６】
【表５】
2014187980.tif 000006
【００９７】
［多層試験片の作成］
［実施例１１］ 
８ｍｍφの桐山ろ紙  ＮＯ．５Ａ（東京硝子器械社製）に、下記試薬３を１０μＬ滴下し、次いで別の８ｍｍφの桐山ろ紙  ＮＯ．５Ａ（東京硝子器械社製）に、下記試薬４を１０μＬ滴下し、それぞれ遮光デシケーター  ３９０９−０４（東京硝子器械社製）にて２５℃−２時間乾燥させ、単層試験片を２種作製した。
他方、８ｍｍφ用ベルトポンチ（ＴＲＵＳＣＯ社製）で８ｍｍφに打ち抜いた後、剥離ライナーを剥がした多孔性粘着シートＡ３を介して、得られた２種の単層試験片を、積層することで、グルコース測定用多層試験片を作製した。なお、担持された界面活性剤濃度は０．１ｍｇ／ｃｍ２、グルコールオキシダーゼ濃度は４０Ｕ／ｃｍ２、ペルオキシダーゼ濃度は４０Ｕ／ｃｍ２、酸化還元系発色試薬濃度は０．１５ｍｇ／ｃｍ２（内、水素供与体０．０９ｍｇ／ｃｍ２、カップラー０．０６ｍｇ／ｃｍ２）である。
＜試薬３＞
１００ｍＭ  ＰＩＰＥＳ（同仁化学研究所社製）  ｐＨ６．５
５．０ｍｇ／ｍＬ  Ｎｏｎｉｄｅｔ（登録商標）Ｐ−４０（ナカライテスク社製）
＜試薬４＞
１００ｍＭ  ＰＩＰＥＳ（同仁化学研究所社製）  ｐＨ６．５
５．０ｍｇ／ｍＬ  Ｎｏｎｉｄｅｔ（登録商標）Ｐ−４０（ナカライテスク社製）
２０００Ｕ／ｍＬ  グルコースオキシダーゼ  ＧＬＯ−２０１（東洋紡社製）
２０００Ｕ／ｍＬ  ペルオキシダーゼ  ＰＥＯ−３０２（東洋紡績社製）
３．０ｍｇ／ｍＬ  ４−アミノアンチピリン（ナカライテスク社製）
４．５ｍｇ／ｍＬ  ＭＡＯＳ（同仁化学研究所社製）
【００９８】
［比較例６］
多孔性粘着シートＡ３を用いない以外は、実施例１１と同様にして、グルコース測定用多層試験片を作製した。
【００９９】
＜グルコース濃度検量線の作成＞
実施例１１、比較例６のグルコース測定用多層試験片を用い、グルコース濃度の検量線を作成し、相関性を評価した。
得られた評価結果を表６に示す。
【０１００】
＜グルコース濃度の測定＞
実施例１１、比較例６のグルコース測定用多層試験片を用い、前項で得られたグルコース濃度の検量線を用い、グルコース濃度を算出した。
得られた評価結果を表６に示す。
実施例１１のグルコース測定用多層試験片は、生化学自動分析装置を用いた方法と同等の再現性（ＣＶ＜５％）、正確性（自動分析装置の測定値±５％）を有する。
比較例６の多層試験片は、多孔性粘着剤を配していないため、測定試料の展開が不均一となり、再現性、正確性が低下した。
【０１０１】
【表６】
2014187980.tif 000007
【０１０２】
以上の結果より、本発明の多層試験片を用いて測定したグルコース、およびヘモグロビンＡ１ｃ値は、正確性・再現性に優れていると言える。
【産業上の利用可能性】
【０１０３】
本発明の多層試験片を用いることにより、診断の現場で正確、簡便かつ迅速に測定試料中の成分を比色定量することができることから、予防医学に基づく臨床検査分野、診断医療分野、製薬分野および保健医学分野をはじめ、生命科学分野の産業界に大きく寄与することが期待される。
【図１】
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