(57)【要約】【課題】マイクロキャビティの開口部を覆う脂質二分子膜の安定性をより向上させることが可能な基板、その基板を生体分子の機能測定に使用する方法、及びその基板の製造方法の提供。【解決手段】［１］マイクロキャビティ２０を有する基板本体１０と、前記マイクロキャビティの開口部２５を覆う支持層１１とが少なくとも備えられ、前記支持層を貫通する複数の微小孔２１が設けられている基板。［２］前記支持層及び前記複数の微小孔の上に、脂質二分子膜３０が配置されている前記基板。［３］前記脂質二分子膜の前記複数の微小孔を覆っている部分に、膜タンパク質３１が含まれている前記基板。［４］前記マイクロキャビティ内に蛍光物質が配置されている前記基板。［５］前記マイクロキャビティ内に電極が配置されている前記基板。［６］前記基板を生体分子の機能測定に使用する方法。【選択図】図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
マイクロキャビティを有する基板本体と、
前記マイクロキャビティの開口部を覆う支持層とが少なくとも備えられ、
前記支持層を貫通する複数の微小孔が設けられていることを特徴とする基板。
【請求項２】
前記支持層及び前記複数の微小孔の上に、脂質二分子膜が配置されていることを特徴とする請求項１に記載の基板。
【請求項３】
前記脂質二分子膜の前記複数の微小孔を覆っている部分に、膜タンパク質が含まれていることを特徴とする請求項２に記載の基板。
【請求項４】
前記マイクロキャビティ内に蛍光物質が配置されていることを特徴とする請求項２又は３に記載の基板。
【請求項５】
前記マイクロキャビティ内に電極が配置されていることを特徴とする請求項１〜４のいずれか一項に記載の基板。
【請求項６】
請求項１〜５のいずれか一項に記載の基板を生体分子の機能測定に使用する方法。
【請求項７】
請求項１に記載の基板の製造方法であって、
基板本体の第一面に支持層を積層し、
前記支持層のうち、前記基板本体に形成されるマイクロキャビティが接する領域に複数の微小孔を形成し、
前記複数の微小孔を通して、前記基板本体の第一面をエッチングすることにより、前記複数の微小孔の直下に前記マイクロキャビティを形成することを特徴とする基板の製造方法。
【請求項８】
請求項１に記載の基板の製造方法であって、
基板本体の第一面の上部に導電層を積層し、
前記導電層が配置された前記基板本体の第一面上に絶縁層及び支持層をこの順で積層し、
前記支持層のうち、前記絶縁層に形成されるマイクロキャビティが接する領域に複数の微小孔を形成し、
前記複数の微小孔を通して、前記絶縁層の上面をエッチングすることにより、前記複数の微小孔の直下に前記マイクロキャビティを形成し、
前記マイクロキャビティの底部に前記導電層の少なくとも一部を露出させることを特徴とする基板の製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、生体分子の機能測定に有用な基板、前記基板を生体分子の機能測定に使用する方法、及び前記基板の製造方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
基板に、タンパク質、核酸、糖鎖、脂質、細胞等を備えたバイオチップが、新薬探索（Drug Discovery）や創薬において盛んに利用されている。タンパク質の中でも、細胞膜においてレセプターやチャネルとして機能する膜タンパク質が、創薬標的として非常に注目されている。２０００年度の米国における医薬の売り上げトップ２０のうち、膜タンパク質（ＧＰＣＲ，イオンチャネルを含む）を標的とする医薬が約５０％を占めている（非特許文献１参照）。膜タンパク質の重要性は今後も益々高まると考えられ、種々の膜タンパク質の機能測定を行うことが可能な実験系やバイオチップの開発は非常に重要である。
【０００３】
しかしながら、創薬標的となるような膜タンパク質は巨大で複雑な構造を有しており、細胞膜（脂質二分子膜）の中でのみ本来の機能を示す。このため、正常な機能を維持した状態で膜タンパク質をバイオチップ等のin vitro測定系に組み込むための技術開発が進められている。この測定系の一例として、脂質分子をｎ−デカンなどの有機溶媒に溶解し、水溶液中でその有機溶媒をプラスチック板等に設けられた小穴に塗りつけることにより黒膜を形成し、形成した黒膜に膜タンパク質を融合させた測定系を準備し、この測定系において、膜タンパク質の電解質溶液中におけるイオン透過性の変化を電流の変化として計測する技術が知られている（例えば非特許文献２）。
【０００４】
しかしながら、上述の黒膜化法では下記のような問題がある。
１）脂質分子を溶解している有機溶媒は高沸点であるため、膜形成後も残留してしまう。
２）小穴に塗りつけた脂質溶液の自発的膜形成に頼るため、形成された膜は脂質二分子膜とその周囲を取り囲む環状バルク層との混合状態であり、小穴全面を均一な脂質二分子膜で覆うことが困難である。
３）測定のたびに小穴を手作業で作成する必要があるため、穴の径が不均一で、測定結果にばらつきが生じてしまう。
【０００５】
通常、細胞膜は全面が脂質二分子膜で形成されており、その中で膜タンパク質は機能している。残留有機溶媒や脂質二分子膜の不均一性は、膜タンパク質の機能又は形態に影響を与える可能性がある。このため、膜タンパク質の機能を正確に測定するためには、従来よりも細胞膜に近い状態、つまり、全面が脂質二分子膜で覆われた系における測定が必要である。また、測定毎の結果のばらつきを解消するためには、均一な穴径の小穴を複数作製することが望ましい。それによって、一度の測定で多点計測が可能になり、測定結果のばらつきを容易に平均化することが可能になる。
【０００６】
そこで、本発明者らは、基板に設けた微小穴（マイクロキャビティ）の開口部をオーバーハング形状にして、その開口部を覆うように、膜タンパク質を含む脂質二分子膜を展開した構成を、上記問題を改善する技術として過去に提案している（特許文献１）。この構成を作製するため脂質二分子膜の材料として、均一な脂質二分子膜から成る巨大ベシクルを用いているため、残留溶媒や膜の不均一性の問題が解決されている。また、基板上に複数の微小穴をアレイ化しているため、測定結果を平均化することが可能であり、迅速かつ高感度な測定が可能になる。このような基板は、in vivoに類似した条件下でのin vitro測定系を実現するものとして期待されている（例えば、特許文献１、非特許文献３）。また、固体基板上に微小穴を有する構造は、膜タンパク質の機能を利用するバイオセンサへの応用も期待されている（例えば、非特許文献４）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００７】
【特許文献１】特開２００８−２７５４８１号公報
【非特許文献】
【０００８】
【非特許文献１】Drews J. Science, 287: 1960-1964 (2000)
【非特許文献２】「新パッチクランプ実験技術法」岡田泰伸 編 (2001年，吉岡書店）
【非特許文献３】K. Sumitomo et al. Applied Physics Express Vol. 3, 107001 (2010)
【非特許文献４】K. Sumitomo et al. NTT Technical Review Vol. 4, No.9 pp40-47
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
特許文献１に示すような基板を用いて、少量の膜タンパク質の機能を、感度良く、定量的に測定するためには、マイクロキャビティを覆う脂質二分子膜をより安定化する必要がある。また、基板に配置された脂質二分子膜に膜タンパク質を効率よく挿入するとともに、S/N比を向上させるためには、マイクロキャビティの開口部のサイズが大きい方が望ましい。しかしながら、その開口部のサイズを大きくすると脂質二分子膜の被覆効率や安定性が低下してしまうという問題点がある。
【００１０】
本発明は、上記事情に鑑みてなされたものであり、マイクロキャビティの開口部を覆う脂質二分子膜の安定性をより向上させることが可能な基板、その基板を生体分子の機能測定に使用する方法、及びその基板の製造方法の提供を目的としている。
【課題を解決するための手段】
【００１１】
［１］  マイクロキャビティを有する基板本体と、前記マイクロキャビティの開口部を覆う支持層とが少なくとも備えられ、前記支持層を貫通する複数の微小孔が設けられていることを特徴とする基板。
前記基板には、マイクロキャビティの開口部に微小孔（以下、ナノホールと呼ぶことがある。）を有する支持層が存在する。このマイクロキャビティの開口部のサイズ（直径）が従来よりも大きい場合においても、支持層が脂質二分子膜を支持するため、前記開口部を被覆する脂質二分子膜を安定化することができる。また、当該支持層によって脂質二分子膜を充分に支持することにより、脂質二分子膜を配置した基板におけるマイクロキャビティ内外の浸透圧変化や当該基板を運搬する際の振動等の影響も受け難くなる。
【００１２】
［２］  前記支持層及び前記複数の微小孔の上に、脂質二分子膜が配置されていることを特徴とする前記［１］に記載の基板。
この構成によれば、前記基板のマイクロキャビティ上で脂質二分子膜が支持層に支えられていることにより、当該脂質二分子膜の安定性が向上している。更に、当該支持層によって支えられた脂質二分子膜は、細胞膜を模した均一な膜構造を形成し易い。このように優れた特性を有する脂質二分子膜は、細胞膜の様にマイクロキャビティの内部と外部を隔てることができるため、例えば膜タンパク質の機能解析に有用である。
【００１３】
［３］  前記脂質二分子膜の前記複数の微小孔を覆っている部分に、膜タンパク質が含まれていることを特徴とする前記［２］に記載の基板。
この構成によれば、膜安定性が向上した脂質二分子膜において、当該膜タンパク質の機
能を生理的な状態で解析することができる。
【００１４】
［４］  前記マイクロキャビティ内に蛍光物質が配置されていることを特徴とする前記［２］又は［３］に記載の基板。
この構成によれば、脂質二分子膜でシールされたマイクロキャビティ内の状態を当該蛍光物質によって調べることができる。また、当該脂質二分子膜により、当該蛍光物質がマイクロキャビティの外部へ流出することを抑制できる。
【００１５】
［５］  前記マイクロキャビティ内に電極が配置されていることを特徴とする前記［１］〜［４］のいずれか一項に記載の基板。
この構成によれば、脂質二分子膜でシールされたマイクロキャビティ内の状態を当該電極によって、マイクロキャビティ内外の電位差又は電流値の変化として検出することができる。
【００１６】
［６］  前記［１］〜［５］のいずれか一項に記載の基板を生体分子の機能測定に使用する方法。
この使用方法においては、前記基板の脂質二分子膜が支持層により安定化されているため、当該脂質二分子膜に配置した生体分子の機能測定を従来よりも容易に、高感度で行うことができる。また、従来よりもサイズが大きい脂質二分子膜を使用できるため、測定データのＳ／Ｎ比を向上させることができる。
【００１７】
［７］  前記［１］に記載の基板の製造方法であって、基板本体の第一面に支持層を積層し、前記支持層のうち、前記基板本体に形成されるマイクロキャビティが接する領域に複数の微小孔を形成し、前記複数の微小孔を通して、前記基板本体の第一面をエッチングすることにより、前記複数の微小孔の直下に前記マイクロキャビティを形成することを特徴とする基板の製造方法。
この製造方法によれば、予めマイクロキャビティが形成された基板表面に支持層を形成する場合と比べて、支持層の形成が容易である。また、この製造方法によれば、支持層に形成した微小孔（ナノホール）の直下にマイクロキャビティを形成することが可能であり、微小孔とマイクロキャビティの位置がずれたり、微小孔が非貫通孔になることがない。この結果、当該基板の製造効率を向上させることができる。
【００１８】
［８］  前記［１］に記載の基板の製造方法であって、基板本体の第一面の上部に導電層を積層し、前記導電層が配置された前記基板本体の第一面上に絶縁層及び支持層をこの順で積層し、
前記支持層のうち、前記絶縁層に形成されるマイクロキャビティが接する領域に複数の微小孔を形成し、前記複数の微小孔を通して、前記絶縁層の上面をエッチングすることにより、前記複数の微小孔の直下に前記マイクロキャビティを形成し、前記マイクロキャビティの底部に前記導電層の少なくとも一部を露出させることを特徴とする基板の製造方法。
この製造方法によれば、マイクロキャビティの底部に電極として機能可能な導電層が配置された基板を容易に製造することができる。また、この製造方法によれば、予めマイクロキャビティが形成された基板表面に支持層を形成する場合と比べて、支持層の形成が容易である。また、この製造方法によれば、支持層に形成した微小孔（ナノホール）の直下にマイクロキャビティを形成することが可能であり、微小孔とマイクロキャビティの位置がずれたり、微小孔が非貫通孔になることがない。この結果、当該基板の製造効率を向上させることができる。
【発明の効果】
【００１９】
本発明の基板によれば、マイクロキャビティの第一面（上面）に微小孔（ナノホール）を有する支持層が存在するため、マイクロキャビティの開口部のサイズ（直径）が従来よりも大きい場合においても、当該開口部を脂質二分子膜で被覆することができる。また、当該支持層によって脂質二分子膜を充分に支持することにより、脂質二分子膜の安定性が向上し、浸透圧やｐＨ等の化学的な変化や、振動等の物理的な衝撃に対する脂質二分子膜の耐性を向上させることができる。膜安定性が向上した脂質二分子膜に、例えば膜タンパク質を配置することによって、当該膜タンパク質の機能解析を安定に行えるようになり、信頼性の高いデータを得ることができる。
【図面の簡単な説明】
【００２０】
【図１】本発明にかかる脂質二分子膜基板の第一実施形態の模式的な上面図および断面図である。
【図２】本発明にかかる脂質二分子膜基板の第二実施形態の模式的な断面図である。
【図３】本発明にかかる脂質二分子膜基板の第三実施形態の模式的な断面図である。
【図４】ナノホールを有する支持層が設けられたマイクロキャビティの開口部の一部を上方から観察した電子顕微鏡像である。
【図５】ナノホールを有する支持層が設けられたマイクロキャビティの断面を観察した電子顕微鏡像である。
【図６】ナノホールを有する支持層が設けられたマイクロキャビティの断面を観察した電子顕微鏡像である。
【図７】実施例１で作製した脂質二分子膜基板の上面の蛍光観察像である。
【発明を実施するための形態】
【００２１】
以下、好適な実施の形態に基づき、図面を参照して本発明を説明するが、本発明はかかる実施形態に限定されない。
【００２２】
＜第一実施形態＞
図１に示すように、本発明の第一実施形態の基板として、脂質二分子膜基板１が挙げられる。脂質二分子膜基板１においては、基板本体１０にマイクロキャビティ２０が設けられ、マイクロキャビティ２０の開口部２５及び基板本体の第一面１０ａ（上面１０ａ）が支持層１１によって覆われ、更に支持層１１が脂質二分子膜３０によって覆われている。
【００２３】
マイクロキャビティの開口部２５を覆う支持層１１には、支持層１１の厚み方向に貫通する複数の微小孔２１（ナノホール２１）が設けられている。ナノホール２１はマイクロキャビティ２０の内部と外部を連通しているが、脂質分子膜３０及び膜タンパク質３１によって前記内部と外部とが隔てられている。
【００２４】
マイクロキャビティの開口部２５を覆う支持層１１に設けられるナノホール２１の数は、マイクロキャビティ１個当たり、１個でもよいが、２個以上であることが好ましい。図１の例では、１個の開口部２５を覆う支持層１１に２０個のナノホール２１が設けられている。ナノホール２１の数は、開口部２５の面積とナノホール２１の大きさ（口径）に応じて適宜設定すればよく、通常、２〜４００個／μｍ２程度が好ましく、５〜１００個／μｍ２程度がより好ましく、１０〜２５個／μｍ２程度が更に好ましい。また、１個のマイクロキャビティの開口部２５の口径面積に対する複数のナノホール２１の合計の口径面積が占める割合は特に制限されないが、例えば１〜６０％が好ましく、１０〜４０％がより好ましく、２０〜２５％が更に好ましい。
【００２５】
１個のナノホール２１の口径は特に制限されないが、極端に小さいと、マイクロキャビティ２０の内部に測定用の溶液２２（マイクロキャビティ充填用水溶液２２）等を注入することが困難になる。また、ナノホール２１の口径が極端に大きいと、当該ナノホール２１を有する支持層１１の構造的強度が弱まる可能性がある。このような事情と脂質二分子膜の形成の容易さを考慮して、通常、ナノホール２１の口径は、１５ｎｍ〜１００００ｎｍが好ましく、３０ｎｍ〜５００ｎｍがより好ましく、１００ｎｍ〜３００ｎｍが更に好ましい。なお、１個のマイクロキャビティの開口部２５に配置される複数のナノホール２１の口径は、全て同一であってもよいし、それぞれ独立に異なっていてもよい。
【００２６】
ナノホール２１の開口部（開口）の形状は特に制限されず、通常は、製造が容易な略円形又は略楕円形で構わない。複数のナノホール２１の開口部の形状は、全て同一であってもよいし、それぞれ独立に異なっていてもよい。
【００２７】
ナノホール２１の長さ、即ちナノホールを設ける支持層１１の厚さは特に制限されず、例えば１ｎｍ〜１０００ｎｍが好ましく、５０ｎｍ〜３００ｎｍがより好ましく、１００〜１５０ｎｍが更に好ましい。
ナノホール２１が形成される支持層１１の厚さは薄いほど好ましい。この理由は、マイクロキャビティの内部に注入した蛍光物質を励起するために、ナノホール２１を通してマイクロキャビティの外部から内部へ励起光を照射する場合、ナノホール２１の口径が励起光の波長よりも小さくても、支持層１１の厚さが薄い場合には、当該励起光の少なくとも一部をマイクロキャビティの内部へ透過させることができるからである。励起光が減衰しつつもナノホールを透過可能であることは、本発明者らが実験的に確認している。
ただし、支持層１１の厚さが極端に薄くなると、その構造的強度が弱まる可能性がある。このような事情を考慮すると、上述した厚さの範囲が好ましい。
【００２８】
ナノホール２１を形成する支持層１１の材料は特に制限されず、従来公知のスパッタ法、ＣＶＤ法等の成膜の技術分野で用いられる材料が適用可能である。このような材料としては、例えば、酸化シリコン、窒化シリコン、酸化タンタル等が挙げられる。また、支持層１１は、基板本体１０の表面を酸化させることによって形成された層であってもよい。このような支持層は、例えば基板本体の材料としてシリコン基板を用い、その第一面（上面）を熱酸化させることにより形成できる。
【００２９】
本実施形態において、マイクロキャビティ２０の開口部２５の形状は特に限定されない。
開口部２５を上面側から見た場合の形状としては、例えば円形、楕円形、三角形、矩形、多角形等の形状が挙げられる。
【００３０】
マイクロキャビティ２０の開口部２５の口径（直径）または開口部２５を構成する多角形の一辺は特に制限されないが、０．１μｍ〜１０μｍ程度が好ましい。
上記範囲の下限値０．１μｍ以上とすることにより、脂質二分子膜３０内に充分な量の膜タンパク質３１を配置し、当該膜タンパク質の機能をより容易に測定することができる。また、支持層１１が設けられていない場合（従来の基板）では、脂質二分子膜３０が自重によって開口部２５からマイクロキャビティ２０の内部へ落ち込む可能性があるために、開口部２５の口径を３μｍ以上にすることが困難であった。しかし、本実施形態においては開口部２５を覆う支持層１１が設けられているため、脂質二分子膜３０の落ち込みが防止されているので、開口部２５の口径を従来よりも大きくすることができる。この結果、脂質二分子膜３０内の膜タンパク質３１の機能測定をより容易に高感度で行うことができる。
【００３１】
マイクロキャビティ２０の深さは特に制限されず、開口部２５のサイズやマイクロキャビティ２０の内部に充填する実験用の溶液２２の体積に応じて適宜設計すればよい。前記深さは、例えば０．１μｍ〜１０μｍとすることができる。
【００３２】
基板本体１０の材料は特に制限されず、例えば、シリコン、ガラス、プラスチックなどが挙げられる。また、基板本体１０の厚みや形状は用途に応じて適宜調整すればよい。
【００３３】
脂質二分子膜３０の脂質分子の種類は、脂質二分子膜（脂質二重膜）を形成できるものであれば特に制限されず、例えばホスファチジルコリン（PC）、ホスファチジルエタノールアミン（PE）、ホスファチジルセリン（PS）、ホスファチジルイノシトール（PI）、ホスファチジルイノシトールホスフェイト（PIP）、ホスファチジン酸（PA）、ホスファチジルグリセロール（PG）、スフィンゴ脂質などが挙げられる。これらの脂質は、１種類のみを用いてもよく、２種類以上を併用してもよい。
【００３４】
脂質二分子膜３０の形成方法としては、例えば、その直径が１０μm以上の巨大脂質ベシクルを支持層１１上で展開する方法が挙げられる。
【００３５】
ベシクルを形成する代表的な従来手法としては、静置水和法やエレクトロスウェリング法（電解形成法）が例示できる。ベシクルの作製手法は特に限定されないが、巨大ベシクルを作製しやすく、反応時間や反応プロセスが簡易であるという観点から、電解形成法を採用することが好ましい。電解形成法は、酸化インジウムスズ（ITO）などの電極上に、リン脂質を薄膜化した後、交流電場をかけて水溶液中に巨大ベシクルを形成する手法である。サイズのそろったベシクルを得るためには、ITO基板上に厚さ数十nm〜数μmの均一なリン脂質分子の膜を形成することが好ましく、また、交流電場は数百mV〜２Ｖ程度の印加条件が好ましい。
【００３６】
本実施形態においては、マイクロキャビティ２０の開口部２５を覆う支持層１１の上を被覆する脂質二分子膜３０に、膜タンパク質３１が配置されているため、脂質二分子膜基板１は膜タンパク質固定化基板１と読み換えてもよい。脂質二分子膜３０はマイクロキャビティ２０の外部にある外部溶液Ｌによって覆われている。例えば、外部溶液Ｌに医薬候補物質等を添加することにより、膜タンパク質３１の機能を解析することができる。
【００３７】
脂質二分子膜３０に、機能測定の対象である膜タンパク質３１を再構成する方法は、公知の方法を用いることができる。例えば、ベシクルフュージョン法が挙げられる。具体的には、プロテオリポソームと呼ばれる膜タンパク質３１を含有するベシクルを、脂質二分子膜３０上に添加することにより、プロテオリポソームと脂質二分子膜３０が融合し、膜タンパク質３１を脂質二分子膜３０中に再構成することができる。
【００３８】
脂質二分子膜３０に融合する膜タンパク質３１としては、脂質二分子膜３０に保持され、かつ、当該脂質二分子膜３０を境界として、マイクロキャビティ２０の内部と外部のイオン濃度を変化させる機能を有する膜タンパク質が好ましい。このような膜タンパク質３１としては、例えば、イオンチャネル型受容体が挙げられる。
【００３９】
イオンチャネル型受容体としては、例えば、細胞間情報伝達や温度の感受、炎症や痛み
に関与するTRP（transient receptor potential）チャネル、細胞間情報伝達や痛みに関与するATP受容体、細胞間情報伝達や情動に関与するセロトニン受容体、細胞間情報伝達や興奮性神経伝達に関与するNMDA受容体、細胞間情報伝達や興奮性神経伝達に関与するAMPA受容体、細胞間情報伝達や興奮性神経伝達に関与するカイニン酸受容体、細胞間情報伝達や抑制性神経伝達に関与するGABA受容体等が挙げられる。
【００４０】
マイクロキャビティ２０の内部および外部に電解質溶液を配置する場合、その電解質溶液は、膜タンパク質３１を埋め込んだ脂質二分子膜３０が安定に保持されるものが好ましい。前記電解質溶液としては、例えば、100mM NaCl, 5mM KCl, 2mM CaCl2, 10mM Tris-HCl (pH7.4)を含む水溶液などが挙げられる。前記内部と外部に配置する電解質溶液の組成は、同じであってもよく、異なってもよい。  
【００４１】
＜第二実施形態＞
図２に示すように、本発明の第二実施形態の基板として、脂質二分子膜基板２が挙げられる。脂質二分子膜基板２は、第一実施形態の構成に加えて、マイクロキャビティ２０の内部に蛍光物質２３（蛍光分子２３）が含まれている。
この構成以外は、前述した第一実施形態の脂質二分子膜基板１（膜タンパク質固定化基板１）と同様であるので、同一部分に同一符号を付して説明を省略する。
以下に、第二実施形態の脂質二分子膜２が第一実施形態の脂質二分子膜基板１と相違する点を説明する。
【００４２】
蛍光物質２３は、マイクロキャビティ２０の内部の状態変化が起こった場合に蛍光を発する水溶性の蛍光分子であることが好ましい。前記蛍光分子としては、マイクロキャビティ２０の内部のイオン濃度の変化に伴って、その蛍光強度が変化する蛍光分子がより好ましい。具体的には、例えば、カルシウムイオン濃度変化を検出可能なFluo-4、Fura-2、Fluo-3等を例示できる。
【００４３】
蛍光分子２３を用いることによって、例えば脂質二分子膜３０にイオン透過性の膜タンパク質３１を配置して、その膜タンパク質３１を介してマイクロキャビティ２０の内外へイオンが流入又は流出した際、マイクロキャビティ２０内の蛍光分子２３の蛍光強度が変化したことを蛍光顕微鏡等によって検出することができる。
【００４４】
上記の様に、マイクロキャビティ２０の開口部２５を覆っている脂質二分子膜３０に膜タンパク質３１を配置し、マイクロキャビティ２０内の蛍光強度の変化を測定することによって、脂質二分子膜３０に配置された膜タンパク質３１の機能をマイクロキャビティ２０内の蛍光強度の変化として検出することができる。
【００４５】
＜第三実施形態＞
図３に示すように、本発明の第三実施形態の基板として、脂質二分子膜基板３が挙げられる。脂質二分子膜基板３は、第一実施形態の構成に加えて、マイクロキャビティ２０の中に電極４０を備え、マイクロキャビティ２０の外部溶液Ｌの中に対向電極４１を備えている。
この構成以外は、前述した第一実施形態の脂質二分子膜基板１（膜タンパク質固定化基板１）と同様であるので、同一部分に同一符号を付して説明を省略する。
以下に、第三実施形態の脂質二分子膜基板３が第一実施形態の脂質二分子膜基板１と相違する点を説明する。
【００４６】
第三実施形態の脂質二分子膜基板３は、電気生理的手法を用いて膜タンパク質３１の機能測定を行う目的に好適な膜タンパク質固定化基板３である。
膜タンパク質３１の機能測定に際しては、マイクロキャビティ２０の外部溶液Ｌに対向電極４１を配置することが好ましい。電極４０および対向電極４１は、パッチクランプ測定装置に接続して使用することが好ましい。
【００４７】
例えば、膜タンパク質３１としてイオンチャンネル型タンパク質を配置した場合には、イオンチャンネル型タンパク質を透過したイオン電流を電気計測計で計測することにより、膜タンパク質３１の機能測定を行うことができる。
【００４８】
この例のように、マイクロキャビティ２０の開口部２５を覆っている脂質二分子膜３０に膜タンパク質３１を配置し、マイクロキャビティ２０の内部と外部の電位差又は、マイクロキャビティの内部と外部の間に流れる電流を測定することによって、脂質二分子膜３０に配置された膜タンパク質３１の機能をマイクロキャビティ２０内外の電位差又は電流値の変化として検出することができる。
【００４９】
電極４０の配置方法としては、例えば、脂質二分子膜基板３の製造時に、スパッタリング等の成膜法によって金属層４０を形成し、エッチング等により金属層４０を適宜パターニングして、当該金属層４０のうちマイクロキャビティ２０の内部に露出する部分を除く領域を絶縁層１３（第二の絶縁層１３）で被覆することによって、電極４０をマイクロキャビティ２０の内部に露出するように埋め込んで配置することができる。ここで、金属層４０を基板本体１０に埋め込んで形成する場合、当該基板本体は絶縁性であることが必要である。この場合、基板本体の材料としては、シリコン酸化物やシリコン窒化物、アルミナ、酸化タンタル、レジスト膜等を用いることができる。また、基板本体１０が半導体又は導電体である場合は、当該基板本体１０の上面１０ａに第一の絶縁層１２（基板絶縁層１２）を形成し、その第一の絶縁層の上面１２ａに金属層４０を配置すればよい。第一の絶縁層１２及び第二の絶縁層１３（堆積絶縁層１３）の材料は特に制限されず、例えばシリコン酸化物やシリコン窒化物、アルミナ、酸化タンタル等が挙げられる。第一の絶縁層１２と第二の絶縁層１３を構成する材料は、同じであってもよいし、異なっていてもよい。
電極４０の材料としては、銀、塩化銀や、金、白金などが例示できる。
【００５０】
＜脂質二分子膜基板の製造方法＞
本発明にかかる基板に脂質二分子膜を配置することによって、脂質二分子膜基板を製造することができる。その好適な方法を、図１を参照して説明する。
当該製造方法としては、充填工程及び脂質二分子膜形成工程を、この順で行う方法が好ましい。なお、本発明の趣旨を逸脱しない限り、ここで挙げた２つの工程以外の他の工程を追加しても良い。
【００５１】
［充填工程］
充填工程は、支持層の上面１１ａに水溶液を注いで、基板本体１０に設けられたマイクロキャビティ２０の中に前記水溶液を充填する工程である。
支持層の上面１１ａに注ぐ前記水溶液の組成は特に制限されず、例えば、グルコースと塩化カルシウムを含む水溶液Ｌが挙げられる。
支持層の上面１１ａに注ぐ水溶液Ｌの量は、マイクロキャビティ２０を充填できる量であれば特に制限されないが、上面１１ａの上方に水溶液Ｌを溜めることが可能な量を注ぐことが好ましい。
支持層の上面１１ａに水溶液Ｌを注ぐ方法は特に制限されず、ピペット等で上面１１ａに前記水溶液を滴下した後、必要に応じて当該基板本体１０および滴下した水溶液Ｌを超音波処理又は真空処理等することによって、マイクロキャビティ２０から気泡を排出させて、マイクロキャビティ２０の内部に当該水溶液Lを充填することができる。
【００５２】
［脂質二分子膜形成工程］
脂質二分子膜工程は、支持層の上面１１ａ上にある水溶液Lに巨大ベシクルを添加し、前記巨大ベシクルを支持層１１の上面１１ａに沈降させ、マイクロキャビティ２０の近傍で前記巨大ベシクルを展開し、マイクロキャビティ２０の開口部２５及び該開口部２５を覆う支持層１１に設けられたナノホール２１を脂質二分子膜３０で覆う工程である。
巨大ベシクルは、前述のとおり公知の方法で調製したものを使用できる。巨大ベシクルの大きさ（直径）は、マイクロキャビティの開口部２５よりも充分に大きいものであることが好ましく、例えば１０μｍ以上の直径を有する巨大ベシクルを使用することができる。また、例えば１０μｍ〜１００μｍの大きさの巨大ベシクルを使用できるが、この大きさの範囲に限定されず、他の大きさの巨大ベシクルを使用しても構わない。
【００５３】
巨大ベシクルを支持層の上面１１ａ上にある水溶液Lに添加する方法は特に制限されず、例えば、巨大ベシクルを含むベシクル分散液を調製して、これをピペット等を用いて添加する方法が挙げられる。
前記ベシクル分散液における巨大ベシクルの濃度の目安としては、添加した巨大ベシクルが、支持層の上面１１ａの広い領域、例えば上面１１ａの８０％以上の領域、を占有して拡がる程度の濃度であることが好ましい。例えば、０．１ｍＭ〜１０ｍＭの濃度で巨大ベシクルを含むベシクル分散液を使用することができるが、この濃度範囲に限定されず、他の濃度のベシクル分散液を使用しても構わない。
【００５４】
上記の様に、本発明にかかる基板の上面１１ａにある溶液に巨大ベシクルを添加し、前記巨大ベシクルを沈降させ、マイクロキャビティ２０の近傍で前記巨大ベシクルを展開し、マイクロキャビティ２０の開口部２５を脂質二分子膜３０で覆う方法によって、マイクロキャビティ２０のサイズに依存せずに開口部２５を均一な脂質二分子膜３０で覆った脂質二分子膜基板を製造することができる。
また、当該脂質二分子膜３０に膜タンパク質３１を配置することにより、当該膜タンパク質３１の機能を高感度で測定可能な膜タンパク質固定化基板を製造することができる。
【実施例】
【００５５】
次に、実施例により本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれらの例によって限定されるものではない。
【００５６】
［実施例１］
図２で模式的に表された第二実施形態の脂質二分子膜基板２（膜タンパク質固定化基板２）の作製例を具体的に説明する。
【００５７】
＜マイクロキャビティの形成＞
基板本体１０として、シリコン基板（Si(001)基板）を用いた。基板本体１０の上面１０ａに、１２０ｎｍの厚さの酸化シリコンからなる支持層１１を熱酸化膜法により形成した。
次に、EB（電子線）リソグラフィ法によって、支持層１１のナノホール２１を形成する領域を改質し、その改質部をドライエッチング法によって除去して、開口が円形状のナノホール２１を複数形成し、４×５個に配列したグリッドパターンを形成した（図１参照）。各ナノホール２１の開口の直径は、約１００ｎｍ、約２００ｎｍ又は約３００ ｎｍの何れかのサイズであった。各ナノホール２１を形成するための前記ドライエッチングは、基板本体の上面１０ａに到達するまで行った。
【００５８】
次に、複数のナノホール２１からなる前記パターンをマスクとして機能させて、SF6を用いたドライエッチングにより基板本体の上面１０ａに深さ２μｍの円柱状の井戸を形成した。続いて、KOH水溶液（１０重量％、６０℃）に当該基板本体を浸漬させて、１０分間、シリコンからなる基板本体１０を選択的にウェットエッチングすることにより、前記井戸を幅方向及び縦方向に拡張した。この結果、複数のナノホール２１からなる前記パターンが設けられた支持層１１の下部に、１個のマイクロキャビティ２０を形成した。このマイクロキャビティ２０のサイズは、上面から見ると縦４μｍ、横４μｍの四角形であり、側面（基板本体の厚さ方向に切った断面）から見た高さ（深さ）は最大で約４μｍであった。また、その側面から見たマイクロキャビティ２０の輪郭は変形した五角形（図５参照）または六角形（図６参照）であった。
【００５９】
図５，６の電子顕微鏡写真から理解されるように、マイクロキャビティ２０の最深部の断面の輪郭は前記五角形（図５）であり、最深部を外れた位置の断面の輪郭は前記六角形（図６）であった。マイクロキャビティ２０の全体の立体形状は、正八面体からその上端の頂点を含む三角錐を切り取った様な（上端が欠けた様な）変形した九面体であった。この九面体の下端の頂点がマイクロキャビティ２０の最深部に相当する。よって、最深部の頂点を含む前記断面の輪郭は前記五角形となり、その頂点を含まない断面の輪郭は前記六角形になる。本発明にかかる製造方法によって形成したマイクロキャビティ２０の立体形状は、通常、ここで説明したような変形した九面体になる傾向がある。
【００６０】
このように、ナノホール２１が形成された支持層１１をマスクとして機能させて、ドライエッチング法及びウェットエッチング法を組み合わせて用いることにより、ナノホール２１の下部の基板本体１０を選択的にエッチングして、ナノホール２１が形成された支持層１１で覆われたマイクロキャビティ２０を形成することができた。
【００６１】
本発明にかかる基板の具体的な作製例について、ナノホール２１が設けられたマイクロキャビティ２０の開口部を上方から観察した電子顕微鏡像を図４に示す。図４において、７個のナノホール２１が支持層１１に形成されている様子がわかる。
また、複数のナノホール２１が備えられたマイクロキャビティ２０の断面を観察した電子顕微鏡像を図５に示す。
【００６２】
＜巨大ベシクルの準備＞
脂質二分子膜３０は巨大ベシクルを支持層１１の上で展開することで形成した。脂質二分子膜の展開に用いた巨大ベシクルは、以下のようにして形成した。
ジフィタニルホスファチジルコリン（ＤＰｈＰＣ）（８０モル％）とコレステロール（２０モル％）の混合クロロホルム溶液（濃度２．５ｍＭ）を調製した。続いて、表面に膜厚１００ｎｍのITOが薄膜化されたガラス基板（サイズ４０×４０ｍｍ、５０〜１００Ω／ｃｍ）上に、前記クロロホルム溶液２００μＬを均一に塗布した。この基板を、室温で２時間、減圧乾燥して、クロロホルム溶媒を完全に除去することによって、均一なリン脂質薄膜をITO基板上に形成した。次に、そのリン脂質薄膜の上に、窓部を有するシリコーンゴムを密着して配置した。この窓部は、外寸３０×３０ｍｍ、厚さ１ｍｍのシリコーンゴムを２０×２０ｍｍのサイズでくり貫いて形成されている。続いて、この窓部に２００ｍＭのスクロース水溶液を４００μＬ滴下し、さらに、そのスクロース水溶液の上部にITO基板を配置し、シリコーンゴムの窓部にある溶液を２枚のITO基板で挟み込んで密閉した。続いて、各ITO基板にクリップ電極を接続し、６０℃のホットプレート上で、交流電場（正弦波、１Ｖ、１０Ｈｚ）を２時間印加することによって、電界形成法により巨大ベシクルを作製した。
【００６３】
＜脂質二分子膜の形成＞
マイクロキャビティ２０を充填するための水溶液２２として、塩化カルシウムを含む２００ｍＭグルコース水溶液を準備した。この充填用水溶液２２を支持層の上面１１ａに滴下し、マイクロキャビティ２０の内部に充填するとともに、支持層の上面１１ａの上部にも充分に溢れさせた。溢れさせた充填用水溶液２２中に巨大ベシクルを添加し、更に巨大ベシクルを支持層１１の上面１１ａに沈降させて、その上面１１ａ上に巨大ベシクルを展開することにより脂質二分子膜３０を形成した。
【００６４】
上記方法により、図２に示すマイクロキャビティ２０を有する、脂質二分子膜基板２を作製した。なお、脂質二分子膜３０に膜タンパク質３１を配置した場合、本発明にかかる脂質二分子膜基板を膜タンパク質固定化基板と読み換えることができる。膜タンパク質３１を脂質二分子膜３０へ配置する方法は、前述した公知の方法を適用できる。
【００６５】
マイクロキャビティ２０の内部に蛍光分子２３としてカルセインを充填し、カルセインとは異なる色の蛍光を示すローダミンを含む脂質二分子膜３０を基板１０の支持層の上面１１ａに展開した場合の蛍光観察結果を、図７に示す。
ほぼ全面にローダミン由来の蛍光が観察されたことから、脂質二分子膜３０が支持層の上面１１ａのほぼ全面に形成されていることがわかる。更に、マイクロキャビティ２０aからは、カルセイン由来の蛍光が観察された。一方で、脂質二分子膜３０で覆われていないマイクロキャビティ２０ｂからは、カルセイン由来の蛍光は観察されなかった。
【００６６】
以上から、ナノホールを備えたマイクロキャビティ２０の開口部が脂質二分子膜３０で覆われたとき、マイクロキャビティ２０の内部に蛍光色素２３が保持されることが示された。図７の例における、脂質二分子膜３０によるマイクロキャビティ２０の被覆効率に関しては、１個のマイクロキャビティ２０ｂが被覆されなかった以外は、７×７個のマイクロキャビティ配列の被覆（シール）に成功している。このことから、高効率かつ安定に脂質二分子膜３０による複数のマイクロキャビティ２０の被覆を実現していることがわかる。上記の方法で作製した脂質二分子膜基板に膜タンパク質を配置することによって、膜タンパク質固定化基板を作製することができる。
【００６７】
［実施例２］
第二実施形態の脂質二分子膜基板２（膜タンパク質固定化基板２）の別の作製例を、図２の模式図を参照して具体的に説明する。
本実施例においては、膜タンパク質３１としてα−ヘモリシンを脂質二分子膜３０に配置した。また、この膜タンパク質固定化基板２のマイクロキャビティ２０の内部に、イオンの流入により蛍光強度が変化する蛍光分子２３を配置した。これらの構成以外は、前述した実施例１と同様であるので、同一部分に同一符号を付して説明を省略する。
以下に、実施例２の膜タンパク質固定化基板２が実施例１の膜タンパク質固定化基板２と相違する点を説明する。
【００６８】
マイクロキャビティ２０の内部には、カルシウムイオンの濃度によって蛍光強度が変化する蛍光色素Fluo4を最終濃度で１０μMとなるように含む水溶液を充填し、脂質二分子膜３０をナノホール２１を備えたマイクロキャビティの開口部２５に展開し、脂質二分子膜基板２を得た。
得られた脂質二分子膜基板２を用いて、脂質二分子膜３０にα−ヘモリシンを配置することによって、カルシウムイオンが透過する膜貫通チャネル（膜タンパク質３１）を形成させた膜タンパク質固定化基板２を得た。これを用いて、マイクロキャビティ２０の外部の水溶液Ｌを１ｍＭ塩化カルシウム水溶液に置換したときのFluo4の蛍光強度変化を測定することにより、α−ヘモリシンを介したカルシウムイオンの膜透過を定量的に検出することができた。
【００６９】
［実施例３］
第三実施形態の脂質二分子膜基板３（膜タンパク質固定化基板３）の作製例を、図３の模式図を参照して具体的に説明する。
本実施例においては、イオンの流入を電気生理的手法によって検出するために、マイクロキャビティ２０の内部に電極４０を配置し、外部に対向電極４１を配置した。この構成以外は、前述した実施例１及び実施例２と同様であるので、同一部分に同一符号を付して説明を省略する。
以下に、実施例３の膜タンパク質固定化基板３が実施例１及び実施例２の膜タンパク質固定化基板２と相違する点を説明する。
【００７０】
まず、基板本体１０（Siウエハー）の上面１０ａを被覆する厚さ２００ｎｍの熱酸化膜からなる第一の絶縁層１２（基板絶縁層１２）の上に、チタン、金、白金の順に堆積させた金属層を形成して、フォトリソグラフィ法により所定の電極形状にパターニングすることによって、厚さ約６０ｎｍの電極４０（電極層４０）を形成した。この電極４０は、例えば約３００μｍ四方の十分に大きなサイズのパッド部（不図示）を介して、外部の電気生理測定装置（不図示）へ接続することができる。
【００７１】
つぎに、電極４０を形成した基板本体１０の上に、第二の絶縁層１３（堆積絶縁層１３）として厚さ１μｍのシリコン酸化膜をスパッタ法により成膜した。この第二の絶縁層１３の上に、支持層１１として厚さ１００ｎｍのシリコン窒化膜を熱ＣＶＤ法により成膜した。
【００７２】
続いて、EBリソグラフィ法とドライエッチング法を組み合わせて、開口の直径が約１００ｎｍの複数のナノホール２１が２０×２０個配列したナノホールアレイを形成した。支持層１１にナノホールアレイを形成する際のドライエッチングは、当該ナノホールの先端が第二の絶縁層１３（シリコン酸化膜）に到達するまで行った。さらに、フッ酸（濃度１５％）を用いて、ナノホールアレイの下部の第二の絶縁層１３をウェットエッチングすることによって、マイクロキャビティ２０を形成した。このウェットエッチングは、マイクロキャビティ２０の底面が電極４０に到達するまで行った。このウェットエッチングの過程において、シリコン窒化膜（支持層１１）とシリコン酸化膜（堆積絶縁層１３）の間のエッチング選択性を利用することによって、マイクロキャビティ２０の上面にナノホール２１を構成する支持層１１ｂを形成した。
【００７３】
本実施例において、マイクロキャビティ２０と電極４０の個数比は、１：１である。
本実施例の変形例として、１つの電極４０に対して複数のマイクロキャビティ２０を設けてもよいが、この構成の場合、当該１つの電極４０で測定する際に、全てのマイクロキャビティ２０を脂質二分子膜３０で覆う必要があるため、測定準備や測定条件が煩雑となる。従って、一つの電極４０には、一つのマイクロキャビティ２０を形成することが望ましい。
【００７４】
次に、実施例１と同様に、マイクロキャビティ２０の内部に水溶液２２を充填し、支持層の上面１１ａにある水溶液２２中に巨大脂質膜ベシクルを展開することにより、マイクロキャビティ２０の開口部２５及びナノホールアレイを脂質二分子膜３０で覆った。さらに実施例２と同様に、支持層１１上の脂質二分子膜３０に膜タンパク質３１としてα−ヘモリシンを配置して、膜タンパク質固定化基板３を得た。この基板を用いて、電極４０と対向電極４１の間に電圧を印加した時にその間に流れる電流を計測することで、α−ヘモリシンを介したイオンの膜透過を定量的に検出することができた。
【００７５】
以上で説明した各実施形態における各構成及びそれらの組み合わせ等は一例であり、本発明の趣旨を逸脱しない範囲で、構成の付加、省略、置換、およびその他の変更が可能である。また、本発明は各実施形態によって限定されることはなく、請求項（クレーム）の範囲によってのみ限定される。
【産業上の利用可能性】
【００７６】
本発明にかかる基板は、生体分子の機能測定の分野に広く適用可能である。
【符号の説明】
【００７７】
１〜３…基板（脂質二分子膜基板、膜タンパク質固定化基板）、１０…基板本体、１０ａ…基板本体の第一面（上面）、１１…支持層、１１ａ…支持層の上面、１１ｂ…マイクロキャビティ上面の支持層、１２…第一の絶縁層、１２ａ…第一の絶縁層の上面、１３…第二の絶縁層、２０…マイクロキャビティ、２０ａ…脂質二分子膜で覆われたマイクロキャビティ、２０ｂ…脂質二分子膜で覆われていないマイクロキャビティ、２１…微小孔（ナノホール）、２２…マイクロキャビティ充填用水溶液、２３…蛍光物質、２５…マイクロキャビティの開口部（開口）、３０…脂質二分子膜、３１…膜タンパク質、４０…電極、４１…対向電極、Ｌ…外部溶液
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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