(57)【要約】【課題】  水生生物に対して外傷を負わすことなく有用成分を効率良く取り込ませることができ、かつ取り込み後の斃死の可能性をも低減し得る、水生生物体内への有用成分の取り込み方法を提供すること。【解決手段】  本発明の方法は、水生生物の体内に有用成分を取り込ませるための方法であって、水生生物をプロテアーゼ水溶液に浸漬する工程；およびその後、水生生物を有用成分を含有する液体に浸漬する工程；を包含する。本発明によれば、大多数の水生生物に対しても低コストで効率的に有用成分を取り込ませることが可能である。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
水生生物の体内に有用成分を取り込ませるための方法であって、
（Ａ）水生生物をプロテアーゼ水溶液に浸漬する工程；および
（Ｂ）該（Ａ）工程の後、該水生生物を、有用成分を含有する液体に浸漬する工程；
を包含する、方法。
【請求項２】
前記有用成分が水溶性成分である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記有用成分が、薬剤、栄養強化剤、色素、旨み成分、鮮度保持剤、腐敗防止剤、酸化防止剤、消臭剤、および香料からなる群から選択される少なくとも１種の成分である、請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
前記水生生物が魚である、請求項１から３のいずれかに記載の方法。
【請求項５】
さらに、（Ｃ）前記（Ｂ）工程の後、０．５重量％から２重量％の塩化ナトリウム濃度を有する塩水で飼育する工程を包含する、請求項１から４のいずれかに記載の方法。
【請求項６】
水生生物の体内に有用成分を取り込ませるための方法であって、
（Ａ’）水生生物を、プロテアーゼと有用成分とを含有する液体に浸漬する工程；
を包含する、方法。
【請求項７】
前記有用成分が水溶性成分である、請求項６に記載の方法。
【請求項８】
前記有用成分が、薬剤、栄養強化剤、色素、旨み成分、鮮度保持剤、腐敗防止剤、酸化防止剤、消臭剤、および香料からなる群から選択される少なくとも１種の成分である、請求項６または７に記載の方法。
【請求項９】
前記水生生物が魚である、請求項６から８のいずれかに記載の方法。
【請求項１０】
さらに、（Ｃ’）前記（Ａ’）工程の後、０．５重量％から２重量％の塩化ナトリウム濃度を有する塩水で飼育する工程を包含する、請求項６から９のいずれかに記載の方法。
【請求項１１】
請求項１から５のいずれかに記載の方法により得られた水生生物。
【請求項１２】
請求項６から１０のいずれかに記載の方法により得られた水生生物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、水生生物体内に有用成分を取り込ませる方法、およびそれを用いて得られた水生生物に関し、より詳細には、水生生物の体内に目的とする有用成分を効率良く取り込ませるための方法、および当該方法により得られた水生生物に関する。
【背景技術】
【０００２】
養殖魚などの水生生物の体内に体表から目的の物質（有用成分）を効率よく取り込ませることができれば、その水生生物に対して様々な効果を期待することができる。例えば、水生生物の体内に抗原を取り込むことができれば感染症に対する免疫力が高まる、罹患した水生生物の体内に種々の薬効成分を取り込むことができれば回復が早まる、などである。
【０００３】
水生生物の体内に有用成分を取り込ませるために、従来よりいくつかの方法が知られている。例えば、有用成分を餌に混ぜて摂取させる方法、飼育水に混ぜて体表および／または鰓から取り込ませる方法、注射などにより個体ごとに強制的に注入する方法が挙げられる。
【０００４】
ただし、これらの方法はいずれも実質的な効率性の観点から見て、未だ不充分と言わざるを得ない。
【０００５】
例えば、餌に混ぜて摂取させる方法は、大量の水生生物を処理するには一見効率的でありかつコストを低く抑えることができるとも考えられる。しかし、水生生物の有用成分の取り込みは餌の摂取量に影響されるため、個体ごとの活性の相違によって、有用成分の摂取量にばらつきが生じやすい。さらに摂取された有用成分の全てが確実に体内に吸収されるものでもない。
【０００６】
飼育水に混ぜて体表および／または鰓から取り込ませる方法についても、一見大量の水生生物を一度に処理することができ、コストを低く抑えることができるとも考えられる。しかし、水生生物の体表の保護層により、有用成分を効率的に体内に浸透させることは困難である。
【０００７】
体内への取り込みにあたり最も確実な方法は、注射などで強制的に注入する方法である。しかし、水生生物の一尾ずつに注入操作を必要とする点、および対象の水生生物が小さい場合には、作業が特に煩雑となる点、大量の尾数を処理するには高コストとならざるを得ない点が懸念される。さらに注入自体も体に外傷を負わすものであるため、注入後に斃死する場合もある。
【０００８】
生きている水生生物に有用成分を効率良く取り込ませる方法として、例えば、ワクチン成分を溶解した飼育水に水生生物を浸漬し、その環境下にて超音波を照射するとにより、水生生物の体表や鰓から直接ワクチン成分を体内に取り込ませる方法も知られている（特許文献１）。しかし、この方法は大量の魚を処理する場合に超音波の分布が偏ることがある。
【０００９】
このように水生生物への有用成分のさらに効率的な取り込みを可能にする技術の開発が所望されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１０】
【特許文献１】特許第４９１０１８８号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１１】
本発明は、上記問題の解決を課題とするものであり、その目的とするところは、水生生物に対して外傷を負わすことなく有用成分を効率良く取り込ませることができ、かつ取り込み後の斃死の可能性をも低減し得る、水生生物体内に有用成分を取り込ませる方法、およびそれを用いて得られた水生生物を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１２】
本発明者らは、生きている水生生物の体表および鰓表面にプロテアーゼを作用させることにより、その体表および鰓表面に存在する保護組織を一時的に除去し、有用成分を当該体表および鰓表面から効率良く取り込ませることを見出し、本発明を完成させた。
【００１３】
本発明は、水生生物の体内に有用成分を取り込ませるための方法であって、
（Ａ）水生生物をプロテアーゼ水溶液に浸漬する工程；および
（Ｂ）該（Ａ）工程の後、上記水生生物を、有用成分を含有する液体に浸漬する工程；
を包含する、方法である。
【００１４】
１つの実施形態では、上記有用成分は水溶性成分である。
【００１５】
さらなる実施形態では、上記有用成分は、薬剤、栄養強化剤、色素、旨み成分、鮮度保持剤、腐敗防止剤、酸化防止剤、消臭剤、および香料からなる群から選択される少なくとも１種の成分である。
【００１６】
１つの実施形態では、上記水生生物は魚である。
【００１７】
１つの実施形態では、本発明の上記方法は、さらに、（Ｃ）上記（Ｂ）工程の後、０．５重量％から２重量％の塩化ナトリウム濃度を有する塩水で飼育する工程を包含する。
【００１８】
本発明はまた、水生生物の体内に有用成分を取り込ませるための方法であって、
（Ａ’）水生生物を、プロテアーゼと有用成分とを含有する液体に浸漬する工程；
を包含する、方法である。
【００１９】
１つの実施形態では、上記有用成分は水溶性成分である。
【００２０】
さらなる実施形態では、上記有用成分は、薬剤、栄養強化剤、色素、旨み成分、鮮度保持剤、腐敗防止剤、酸化防止剤、消臭剤、および香料からなる群から選択される少なくとも１種の成分である。
【００２１】
１つの実施形態では、上記水生生物は魚である。
【００２２】
１つの実施形態では、本発明の上記方法は、さらに（Ｃ’）上記（Ａ’）工程の後、０．５重量％から２重量％の塩化ナトリウム濃度を有する塩水で飼育する工程を包含する。
【００２３】
本発明はまた、上記方法により得られた水生生物である。
【発明の効果】
【００２４】
本発明によれば、淡水魚および海水魚の区別なく水生生物に対し、ワクチン成分などの所望の有用成分を効率良く取り込ませることができる。さらに、この取り込みにあたり、当該水生生物には何ら外傷を与えることがないため、本発明の方法によって水生生物が斃死する可能性も著しく低減することができる。本発明の方法は、水生生物の個体毎に操作を必要とすることなく、一度に大量の水生生物に対して有用成分の取り込みを行うことができる。さらに本発明の方法によれば、有用成分の取り込みにあたり個々の水生生物に対してより均質な環境を提供することができる。これにより、有用成分で強化された水生生物を大量に生産することができる。
【図面の簡単な説明】
【００２５】
【図１】実施例１ならびに比較例１および２で行ったアユにおける冷水病ワクチンの効果を試験した際の、各試験区における累積死亡率（％）の経時変化を示したグラフである。
【図２】参考例１および２ならびに参考比較例１で行ったアユにおける冷水病感染に対する効果を試験した際の、各試験区における累積死亡率（％）の経時変化を示したグラフである。
【図３】実施例２ならびに比較例３および４で行ったヒラメにおけるレンサ球菌症ワクチンの効果を試験した際の、各試験区における累積死亡率（％）の経時変化を示したグラフである。
【図４】参考例３および４ならびに参考比較例２で行ったヒラメにおけるレンサ球菌症感染に対する効果を試験した際の、各試験区における累積死亡率（％）の経時変化を示したグラフである。
【図５】実施例３および比較例５および６で行ったアユにおけるレンサ球菌症ワクチンの効果を試験した際の、各試験区における抗体価測定のためのＥＬＩＳＡ吸光度（４９２ｎｍ）の平均値を示したグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００２６】
まず、本発明の水生生物の体内に有用成分を取り込ませるための第一の方法について説明する。
【００２７】
本発明の方法では、工程（Ａ）として、水生生物がプロテアーゼ水溶液に浸漬される。
【００２８】
本発明において対象となる水生生物は、生きている状態の生物であって水中に生息するもの全般を指して言う。水生生物は、淡水魚または海水魚のように、淡水または海水のいずれに生息するものであってもよく、例えば、海洋、河川、湖沼、池などの自然水域に生育するもの、および養殖筏、養殖施設、水槽などの人工水域にて生育するもののいずれをも包含する。水生生物としては、必ずしも限定されないが、例えば、アユ、コイ、キンギョ、ヒラメ、マダイ、マグロ、カンパチ、ブリ、フグ、サケ、マスなどの硬骨魚類；エイ、サメなどの軟骨魚類；エビ、カニなどの甲殻類；イカ、タコ、貝類などの軟体動物；ならびにナマコ、ウニなどの棘皮動物；が挙げられる。
【００２９】
本発明に用いられるプロテアーゼは、タンパク質を分解する任意の酵素であってよく、例えば、エンドペプチフダーゼおよびエキソペプチダーゼのいずれであってもよく、例えば、アミノペプチダーゼおよびカルボキシペプチダーゼのいずれであってもよい。さらに、実用的にはコスト、入手しやすさ、安全性に優れているなどの観点から、例えば食品加工用に使用されるプロテアーゼを用いてもよい。プロテアーゼの例としては、パパイン、ブロメライン、アクチナーゼ、トリプシンが挙げられる。例えば、パパイン製剤は、新日本化学工業株式会社よりスミチームＰ、天野エンザイム株式会社よりパパインｗ−４０などの商品名で市販されている。
【００３０】
本発明において、プロテアーゼは、飼育水（例えば、海水、河川水、水道水、およびイオン交換水）に所定量を溶解させることにより、プロテアーゼ水溶液が調製される。
【００３１】
また、プロテアーゼは種類によってその作用が異なるため、水生生物の体表および／または鰓の表面に存在する保護組織を一時的に効率よく除去するためには、複数のプロテアーゼを組み合わせることによって、プロテアーゼ水溶液を調製してもよい。
【００３２】
このプロテアーゼ水溶液におけるプロテアーゼの含有量（濃度）は、水生生物の種類、成長段階、個体数または密度などの条件によって変動するため必ずしも限定されないが、例えば、上記パパイン製剤などのプロテアーゼを使用する場合に調製される濃度は、好ましくは０．０１ｍｇ／ｍｌ〜１０ｍｇ／ｍｌ、より好ましくは０．１ｍｇ／ｍｌ〜５ｍｇ／ｍｌである。プロテアーゼの濃度が０．０１ｍｇ／ｍｌ未満であると、水生生物に対して、その体表または鰓の保護層に当該プロテアーゼが充分に機能せず、後述する有用成分の取り込みが充分に達成されない場合がある。一方、プロテアーゼの濃度が１０ｍｇ／ｍｌを上回ると、水生生物の体表等の保護層への影響が大きくなり、当該水生生物が斃死に至る場合がある。あるいは、例えば、上記パパイン製剤などのプロテアーゼを使用する場合に調製される濃度は、好ましくは４ユニット（Ｕ）／ｍｌ〜４０００ユニット（Ｕ）／ｍｌ、より好ましくは４０ユニット（Ｕ）／ｍｌ〜２０００ユニット（Ｕ）／ｍｌである。
【００３３】
プロテアーゼ水溶液には、必要に応じて、水生生物の生育に必要な他の添加剤（例えば、ブドウ糖）が含有されていてもよい。さらに、プロテアーゼ水溶液には、浸漬の間の水生生物の活性を低下させないために、エアーポンプなどの当該分野にて周知の手段を用いて充分な酸素が予めおよび／または浸漬の間供給されていてもよい。さらにヒーター等を用いて、当該水生生物の生育に通常要求される水温に予め設定がなされていてもよい。
【００３４】
このようなプロテアーゼ水溶液への水生生物の浸漬は、例えば、所定容量の水槽中で１個体毎に行われてもよく、あるいは複数個体を一括して行ってもよい。作業効率性を勘案すれば、複数個体を一括して浸漬することが好ましい。
【００３５】
水生生物の浸漬時間もまた、水生生物の種類、成長段階、個体数および密度、ならびにプロテアーゼ水溶液の調製濃度などによって変動するため必ずしも限定されないが、好ましくは１分〜３０分、より好ましくは５分〜２０分である。
【００３６】
プロテアーゼ水溶液への浸漬によって、水生生物の体表および／または鰓の表面に存在する保護層のタンパク質が分解される。その結果、後述する有用成分の取り込みが一層容易な環境が水生生物に形成される。
【００３７】
浸漬後、水生生物はプロテアーゼ水溶液から取り出される。取り出された水生生物は、特に水洗等が行われることなく、そのまま次の工程に供される。
【００３８】
上記プロテアーゼ水溶液への浸漬の後、水生生物は有用成分を含有する液体に浸漬される。
【００３９】
本発明に用いられる有用成分は、水生生物の成長促進、病気等の予防または治療、商品としての価値向上等の目的で、通常、給餌、注射その他任意の手法を用いて水生生物の体内に取り込みが行われる物質、または当該物質を含有する材料を包含する。このような有用成分の例としては、薬剤（ワクチン成分、ホルモン成分を包含する）、栄養強化剤、色素、旨み成分、鮮度保持剤、腐敗防止剤、酸化防止剤、消臭剤、および香料、ならびにこれらの組合せが挙げられる。有用成分は水溶性のものであることが好ましい。
【００４０】
本発明において、有用成分は、飼育水（例えば、海水、河川水、水道水、およびイオン交換水）に所定量を溶解または懸濁させることにより、有用成分を含有する液体（以下、「有用成分液」という）が調製される。このような有用成分液は、含有される有用成分の種類に応じて、水溶液または懸濁液のいずれかである。
【００４１】
この有用成分液における有用成分の含有量（濃度）は、水生生物の種類、成長段階、個体数または密度などの条件によって変動するため必ずしも限定されず、有用成分の種類に応じて当業者が任意の濃度を調製することができる。
【００４２】
有用成分液には、必要に応じて、他の有用成分および／または水生生物の生育に必要な他の添加剤（例えば、ブドウ糖）が含有されていてもよい。さらに、有用成分液には、浸漬の間の水生生物の活性を低下させないために、エアーポンプなどの当該分野にて周知の手段を用いて充分な酸素が予めおよび／または浸漬の間供給されていてもよい。さらにヒーター等を用いて、当該水生生物の生育に通常要求される水温に予め設定がなされていてもよい。
【００４３】
このような有用成分液への水生生物の浸漬もまた、例えば、所定容量の水槽中で１個体毎に行われてもよく、あるいは複数個体を一括して行ってもよい。作業効率性を勘案すれば、複数個体を一括して浸漬することが好ましい。
【００４４】
水生生物の浸漬時間もまた、水生生物の種類、成長段階、個体数および密度、ならびに有用成分液の調製濃度などによって変動するため必ずしも限定さえないが、好ましくは１分〜６０分、より好ましくは５分〜３０分である。
【００４５】
このような浸漬後、水生生物は有用成分液から取り出される。
【００４６】
なお、本発明においては、上記有用成分液への浸漬の後、水生生物を当該生物の体液と等張の飼育水、あるいは０．５重量％から２重量％の塩化ナトリウム濃度を有する塩水（例えば、河川水、水道水および／またはイオン交換水を用いて希釈した海水、あるいは当該濃度範囲になるように人工的に調製した食塩水であって、水生生物の体液と等張またはほぼ等張の飼育水）で飼育してもよい。上記プロテアーゼ水溶液への浸漬によって、除去または弱められた水生生物の体表等の保護層をより早期に回復させるためである。
【００４７】
このような飼育は保護層の回復のために一時的に行われる。飼育期間は、水生生物の種類、成長段階、個体数および密度等によって変動するため必ずしも限定されないが、例えば、１日〜３日程度である。
【００４８】
このようにして水生生物の体内に有用成分を取り込ませることができる。
【００４９】
次に、本発明の水生生物の体内に有用成分を取り込ませるための第二の方法について説明する。
【００５０】
本発明の第二の方法では、水生生物が、プロテアーゼと有用成分とを含有する液体（以下、「プロテアーゼ−有用成分液」という）に浸漬される。このようなプロテアーゼ−有用成分液は、含有される有用成分の種類に応じて、水溶液または懸濁液のいずれかである。
【００５１】
上記第一の方法と異なり、浸漬される液体は１種類であり、当該液体に上記プロテアーゼおよび有用成分が共存する。本発明の第二の方法で使用され得るプロテアーゼの種類および調製濃度、有用成分の種類および調製濃度、その他添加可能な材料等は上記第一の方法と同様である。
【００５２】
水生生物の浸漬時間は、水生生物の種類、成長段階、個体数および密度、ならびに有用成分水溶液の調製濃度などによって変動するため必ずしも限定されないが、好ましくは１分〜６０分、より好ましくは５分〜３０分である。
【００５３】
これにより、水生生物の体表および／または鰓の保護層におけるタンパク質の分解と、当該体表および／または鰓からの有用成分の取り込みが一度の浸漬操作によって達成され得る。
【００５４】
所定時間の浸漬の後、水生生物はプロテアーゼ−有用成分液から取り出される。
【００５５】
なお、本発明においては、上記プロテアーゼ−有用成分液への浸漬の後、水生生物を０．５重量％から２重量％の塩化ナトリウム濃度を有する塩水（例えば、河川水、水道水および／またはイオン交換水を用いて希釈した海水、あるいは当該濃度範囲になるように人工的に調製した食塩水であって、水生生物の体液と等張またはほぼ等張の飼育水）で飼育してもよい。このような飼育手法および飼育手段は上記第一の方法と同様のものが当業者によって適宜選択される。
【００５６】
このようにして水生生物の体内に有用成分を取り込ませることができる。
【００５７】
本発明の上記第一または第二の方法を経て取り出された水生生物は、特に水洗等が行われることなく、例えば、元の飼育環境（例えば、海洋、河川、湖沼、池、養殖筏、養殖施設、水槽など）に戻される。あるいは、当該水生生物を水産加工食品として使用する場合は、水産加工のための次の工程に移されてもよい。
【００５８】
なお、上記第一の方法および第二の方法では、生きている水生生物を用いた場合の例について説明したが、本発明は必ずしも上記に限定されない。すなわち、有用成分の取り込みは、例えば、水産加工を目的として水揚げ後、すでに死んでいる状態である水生生物に対しても適用することができる。
【実施例】
【００５９】
以下、実施例を挙げて本発明を詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
【００６０】
（実施例１：アユへの冷水病ワクチンの取り込み）
ワクチン作製用の菌株として、２００４年に広島県内の養殖場の冷水病のアユから分離されたＦｌａｖｏｂａｃｔｅｉｒｕｍ  ｐｓｙｃｈｒｏｐｈｉｌｕｍ  ＰＨ−０４２４株を、ＣＧＹ培地（０．２５重量％カシトン、０．１５重量％ゼラチン、および０．０５重量％酵母エキスを含有）を用い、対数増殖後期まで１５℃にて振盪培養（１１０ｒｐｍ）したものに、０．３（ｖ／ｖ）％となるようにホルマリンを添加して不活化させることにより、冷水病ワクチンを得た。
【００６１】
平均体重２．０ｇの人工生産されたアユ３０尾を実験区の１区として用いた。パパイン製剤（新日本化学工業株式会社製スミチームＰ）１ｇを５Ｌの淡水に溶解した水溶液を水槽に仕込み、この水槽に当該区のアユを１４．０℃で１５分間浸漬した。その後、全てのアユを水槽から取り出し、これらのアユを、淡水で容量比１／１０まで希釈した上記冷水病ワクチン懸濁液５Ｌに１４．０℃で１５分間浸漬した。
【００６２】
全てのアユをワクチン懸濁液から取り出し、通常の飼育水槽に移して１５日間飼育した。
【００６３】
上記ワクチン処理から１５日経過後、この実験区の全てのアユを、冷水病菌培養液（ＰＨ−１０３７株培養液；１０６．８ＣＦＵ／ｍＬ）に３０分間浸漬した。なお、当該ＰＨ−１０３７株は、２０１０年に広島県内の養殖場で発生した冷水病のアユから分離されたＦ．ｐｓｙｃｈｒｏｐｈｉｌｕｍである。
【００６４】
その後アユを通常の飼育環境に戻し、このまま１４日間アユの飼育を継続し、その期間における死亡したアユの個体数をカウントした。この死亡した個体数について、飼育期間の累積死亡数の割合として算出したものを図１に示す。
【００６５】
（比較例１：アユへの冷水病ワクチンの取り込み）
パパイン製剤を溶解した水溶液への浸漬を行わず、ワクチン懸濁液への浸漬のみを行ったこと以外は実施例１と同様にしてアユの飼育を行った。その後、実施例１と同様にしてアユを冷水病菌培養液にて浸漬し、その後アユを通常の飼育環境に戻した状態で飼育し、その期間における死亡したアユの個体数をカウントした。この死亡した個体数について、飼育期間の累積死亡数の割合として算出したものを図１に示す。
【００６６】
（比較例２：対照区（非免疫区））
対照区として、パパイン製剤を溶解した水溶液への浸漬を行わず、かつワクチン懸濁液への浸漬も行わなかったこと以外は実施例１と同様にしてアユの飼育を行った。その後、実施例１と同様にしてアユを冷水病菌培養液にて浸漬し、その後アユを通常の飼育環境に戻した状態で飼育し、その期間における死亡したアユの個体数をカウントした。この死亡した個体数について、飼育期間の累積死亡数の割合として算出したものを図１に示す。
【００６７】
図１に示すように、１４日後の累積死亡率は比較例２の対照区で６３．３％，ワクチンのみで処理した比較例１の実験区で７３．３％、プロテアーゼ処理かつワクチン処理した実施例１の実験区４４．８％となり、ワクチン処理前にプロテアーゼ水溶液で処理することにより、該当する実験区のアユに対してワクチンの効果が高まっていたことがわかる。
【００６８】
（参考例１：アユへのプロテアーゼ処理の効果）
平均体重４．７ｇの人工生産されたアユ２０尾を実験区の１区として用いた。パパイン製剤（新日本化学工業株式会社製スミチームＰ）０．５ｇを１０Ｌの淡水に溶解した水溶液を水槽に仕込み、この水槽に当該区のアユを１５．５℃で３０分間浸漬した。
【００６９】
全てのアユをパパイン水溶液から取り出し、この実験区の全てのアユを、冷病菌培養液（ＰＨ−０４２４株培養液；１０６．９ＣＦＵ／ｍＬ）に１時間浸漬した。
【００７０】
その後アユを通常の飼育環境に戻し、このまま１４日間アユの飼育を継続し、その期間における死亡したアユの個体数をカウントした。この死亡した個体数について、飼育期間の累積死亡数の割合として算出したものを図２に示す。
【００７１】
（参考例２：アユへのプロテーゼ処理および回復処理の効果）
参考例１と同様にしてプロテアーゼ水溶液によるアユの浸漬処理を行った。全てのアユをプロテアーゼ水溶液から取り出して、１日間淡水中で飼育した（回復処理）。
【００７２】
その後、参考例１と同様にしてアユを冷水病菌培養液にて浸漬し、その後アユを通常の飼育環境に戻した状態で飼育し、その期間における死亡したアユの個体数をカウントした。この死亡した個体数について、飼育期間の累積死亡数の割合として算出したものを図２に示す。
【００７３】
（参考比較例１：対照区（非免疫区））
対照区として、パパイン製剤を溶解した水溶液への浸漬を行わなかったこと以外は参考例１と同様にしてアユの飼育を行った。その後、参考例１と同様にしてアユを冷水病菌培養液にて浸漬し、その後アユを通常の飼育環境に戻した状態で飼育し、その期間における死亡したアユの個体数をカウントした。この死亡した個体数について、飼育期間の累積死亡数の割合として算出したものを図２に示す。
【００７４】
図２に示すように、１４日後の累積死亡率は参考比較例１の対照区で４５％、プロテアーゼ処理のみを行った参考例１の実験区で７０％、プロテアーゼ処理と回復処理とを行った参考例２の実験区で２０％となった。このことから、プロテアーゼ処理によって、アユは、実施例１のようなワクチンだけでなく、水溶液中の細菌を取り込みやすくなっており、むしろ参考例１と参考比較例１とを比較した場合は、プロテアーゼ処理を行った参考例１の方が冷水病菌の取り込みが増大されたことがわかる。これに対し、プロテアーゼ処理と回復処理とを行った参考例２の実験区では、プロテアーゼ処理で失われた体表粘液が１日後には回復していることがわかる。
【００７５】
（実施例２：ヒラメへのレンサ球菌症ワクチンの取り込み）
平均体重２８．５ｇの人工生産されたヒラメ２０尾を実験区の１区として用いた。パパイン製剤（新日本化学工業株式会社製スミチームＰ）５ｇを１Ｌの海水に溶解した水溶液を水槽に仕込み、この水槽に当該区のヒラメを１９．０℃で１５分間浸漬した。その後、全てのヒラメを水槽から取り出し、これらのヒラメを、海水で容量比１／１０まで希釈したレンサ球菌ワクチン（Ｍバックイニエ；共立製薬株式会社製）を含有する懸濁液１Ｌに１９．０℃で３０分間浸漬した。
【００７６】
全てのヒラメをワクチン懸濁液から取り出し、通常の飼育水槽に移して１４日間飼育した。
【００７７】
上記ワクチン処理から１４日経過後、この実験区の全てのヒラメを、トリプトソーヤブイヨン（日水製薬株式会社製）で培養したＳｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ  ｉｎｉａｅ  Ｐｓｉ４０２株（松岡ら、魚病研究、２００７年、第４２号、ｐｐ．１８１−１８９）を１０４．１ＣＦＵ／個体となるようにそれぞれ腹腔内注射した。
【００７８】
その後ヒラメを通常の飼育環境に戻し、このまま１３日間ヒラメの飼育を継続し、その期間における死亡したヒラメの個体数をカウントした。この死亡した個体数について、飼育期間の累積死亡数の割合として算出したものを図３に示す。
【００７９】
（比較例３：ヒラメへのレンサ球菌症ワクチンの取り込み）
パパイン製剤を溶解した水溶液への浸漬を行わず、ワクチン懸濁液への浸漬のみを行ったこと以外は実施例２と同様にしてヒラメの飼育を行った。その後、実施例２と同様にしてＰｓｉ４０２株の腹腔内注射を行い、その後ヒラメを通常の飼育環境に戻した状態で飼育し、その期間における死亡したヒラメの個体数をカウントした。この死亡した個体数について、飼育期間の累積死亡数の割合として算出したものを図３に示す。
【００８０】
（比較例４：対照区（非免疫区））
対照区として、パパイン製剤を溶解した水溶液への浸漬を行わず、かつワクチン懸濁液への浸漬も行わなかったこと以外は実施例２と同様にしてヒラメの飼育を行った。その後、実施例２と同様にしてＰｓｉ４０２株の腹腔内注射を行い、その後ヒラメを通常の飼育環境に戻した状態で飼育し、その期間における死亡したヒラメの個体数をカウントした。この死亡した個体数について、飼育期間の累積死亡数の割合として算出したものを図３に示す。
【００８１】
図３に示すように、１３日後の累積死亡率は比較例４の対照区で９５．０％、ワクチンのみで処理した比較例３の実験区で４５．０％、プロテアーゼ処理かつワクチン処理した実施例２の実験区で２０．０％となりワクチン処理前にプロテアーゼ水溶液で処理することにより、該当する実験区のヒラメに対してワクチンの効果が高まっていたことがわかる。
【００８２】
（参考例３：ヒラメへのプロテアーゼ処理の効果）
平均体重２８．５ｇの人工生産されたヒラメ１０尾を実験区の１区として用いた。パパイン製剤（新日本化学工業株式会社製スミチームＰ）２ｇを溶解させ、かつ容量比で１／４にまで淡水で希釈した海水２Ｌで構成される水溶液を水槽に仕込み、この水槽に当該区のヒラメを２６．５℃で１５分間浸漬した。
【００８３】
全てのヒラメをパパイン水溶液から取り出し、この実験区の全てのヒラメを、レンサ球菌培養液（Ｐｓｉ４０２株培養液；１０８．１ＣＦＵ／ｍＬ）に３０分間浸漬した。
【００８４】
その後ヒラメを通常の飼育環境に戻し、このまま２週間ヒラメの飼育を継続し、その期間における死亡したヒラメの個体数をカウントした。この死亡した個体数について、飼育期間の累積死亡数の割合として算出したものを図４に示す。
【００８５】
（参考例４：ヒラメへの酵素処理および回復処理の効果）
参考例３と同様にしてパパイン水溶液によるヒラメの浸漬処理を行った。全てのヒラメをパパイン水溶液から取り出して、１日間海水中で飼育した（回復処理）。
【００８６】
その後、参考例３と同様にしてヒラメをレンサ球菌培養液にて浸漬し、その後ヒラメを通常の飼育環境に戻した状態で飼育し、その期間における死亡したヒラメの個体数をカウントした。この死亡した個体数について、飼育期間の累積死亡数の割合として算出したものを図４に示す。
【００８７】
（参考比較例２：対照区（非免疫区））
対照区として、パパイン製剤を溶解した水溶液への浸漬を行わなかったこと以外は参考例３と同様にしてヒラメの飼育を行った。その後、参考例１と同様にしてヒラメをレンサ球菌培養液にて浸漬し、その後ヒラメを通常の飼育環境に戻した状態で飼育し、その期間における死亡したヒラメの個体数をカウントした。この死亡した個体数について、飼育期間の累積死亡数の割合として算出したものを図４に示す。
【００８８】
図４に示すように、２週間後の累積死亡率は、参考比較例２の対照区で１０％、プロテアーゼ処理のみを行った参考例３の実験区で９０％、プロテアーゼ処理と回復処理とを行った参考例４の実験区で１０％となった。このことから、プロテアーゼ処理によって、ヒラメは、実施例２のようなワクチンだけでなく、水溶液中の細菌を取り込みやすくなっており、むしろ参考例３と参考比較例２とを比較した場合は、プロテアーゼ処理を行った参考例３の方がレンサ球菌の取り込みが増大されたことがわかる。これに対し、プロテアーゼ処理と回復処理とを行った参考例４の実験区では、プロテアーゼ処理で失われた体表粘液が１日後には回復していることがわかる。
【００８９】
（実施例３：アユへのレンサ球菌症ワクチンの取り込み）
平均体重１２．５ｇの人工生産されたアユ２５尾を実験区の１区として用いた。パパイン製剤（新日本化学工業株式会社製スミチームＰ）０．４ｇを２Ｌの淡水に溶解した水溶液を水槽に仕込み、この水槽に当該区のアユを２０．０℃で１５分間浸漬した。その後、全てのアユを水槽から取り出し、これらのアユを、淡水で容量比１／１０まで希釈したレンサ球菌ワクチン（Ｍバックイニエ；共立製薬株式会社製）を含有する懸濁液１Ｌに２０．０℃で１０分間浸漬した。
【００９０】
全てのアユをワクチン懸濁液から取り出し、通常の飼育水槽に移して１３日間飼育した。
【００９１】
上記ワクチン処理から１３日経過後、この実験区から５尾のアユを取り出し、それぞれ尾部血管から採血し、血液を遠心分離（５０００ｇ、５分間）にかけて血清を回収した。得られた血清から、抗体価を、抗アユＩｇＭモノクローナル抗体（フナコシ株式会社製）を用いたＥＬＩＳＡ法によって測定した。得られた結果を図５に示す。
【００９２】
（比較例５：アユへのレンサ球菌症ワクチンの取り込み）
パパイン製剤を溶解した水溶液への浸漬を行わず、ワクチン懸濁液への浸漬のみを行ったこと以外は実施例３と同様にしてアユの飼育を行った。その後、実施例３と同様にして血清を得、抗アユＩｇＭモノクローナル抗体を用いたＥＬＩＳＡ法によって抗体価を測定した。得られた結果を図５に示す。
【００９３】
（比較例６：対照区（非免疫区））
対照区として、パパイン製剤を溶解した水溶液への浸漬を行わず、かつワクチン懸濁液への浸漬も行わなかったこと以外は実施例３と同様にしてアユの飼育を行った。その後、実施例３と同様にして血清を得、抗アユＩｇＭモノクローナル抗体を用いたＥＬＩＳＡ法によって抗体価を測定した。得られた結果を図５に示す。
【００９４】
図５に示すように、抗体価は、プロテアーゼ処理かつワクチン処理した実施例３のアユの場合に最も高くなっており、プロテアーゼ処理によってワクチン成分の取り込みが促進されていたことがわかる。
【産業上の利用可能性】
【００９５】
本発明によれば、水生生物の体内に有用成分を効率良く取り込ませることができる。このことにより、大多数の水生生物に対しても低コストで効率的に有用成分を取り込ませることが可能である。さらに、本発明は、水生生物の成長段階に関わらず適用可能なため、例えば、従来では注射による取り込みが困難であった稚魚に対しても適用することができる。このように本発明は、例えば水産分野等において有用である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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