(57)【要約】【課題】生体に適用でき、生体温度により自己組織化することが可能で、伸縮性を有し、かつ細胞を包埋させ生育させることが可能な、細胞培養用のエラスチンゲルを提供する。【解決手段】生体から加水分解により抽出したアイソタイプ型エラスチン、水溶性架橋剤、凝集促進剤および細胞混合液を、適当な鋳型に入れ生体温度に静置するだけで、自己組織化し安全に細胞を包埋し、且つ該構造体が伸縮性を伴うため静的または動的何れの細胞培養も可能であることを特徴とするエラスチンゲルにより課題を解決する。【選択図】図２
2014183886.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
少なくとも凝集特性の異なる２種類の水溶性エラスチンと、水溶性架橋剤と、細胞懸濁液と、凝集促進剤とを含み、
前記凝集特性の異なる２種類の水溶性エラスチンと、前記水溶性架橋剤と、前記細胞懸濁液と、を４０℃以下で混合した後、前記凝集促進剤を混合して得られるエラスチンゲルの弾性組織様構造体で、該エラスチンゲルの弾性組織様構造体が細胞を包埋し、かつ該細胞が移動できる細孔を有することを特徴とするエラスチンゲルの弾性組織様構造体および、その製造方法。
【請求項２】
前記水溶性エラスチンが分子量１〜５万のアイソタイプ型エラスチンのうちの２種類を選択し、総エラスチン濃度が２０〜４０重量％で、
前記水溶性架橋剤が親水性の活性エステル基を両端に持ち中央部に疎水性分子を有する二官能性カルボン酸エステル架橋剤であり、且つ、遊離アミノ基のモル数に対して０．５〜２倍量で混合し、該細胞懸濁液に用いる細胞は弾性組織内に存在する接着性細胞で、血管平滑筋細胞、肺線維芽細胞、皮膚線維芽細胞、靭帯線維芽細胞、間葉系幹細胞、骨芽細胞、軟骨細胞から一つまたは複数選択し、
前記凝集促進剤が炭酸水素ナトリウムで、混合液の最終ｐＨを６〜９の範囲とすることを特徴とする請求項１に記載のエラスチンゲルの弾性組織様構造体および、その製造方法。
【請求項３】
前記アイソタイプ型エラスチンのうち1種類を凝集性の強い分画エラスチンＡ、エラスチンＢ、エラスチンＣおよびエラスチンＤから選択し、他の1種類を凝集性の弱い分画エラスチンＥを選択し、４０℃以下で混合して得られるエラスチンゲルの弾性組織様構造体で、細胞が移動可能な孔径1〜１０マイクロメートルの連続的な多孔質構造を有することを特徴とする請求項１に記載のエラスチンゲルの弾性組織様構造体および、その製造方法。
【請求項４】
前記エラスチンゲルの弾性組織様構造体を欠損した生体弾性組織に充填して用いることを特徴とする組織再生用弾性組織充填材料。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、細胞培養または組織培養のための弾性組織様構造を有する三次元培養器材で、培養する細胞に培養液とエラスチンを含むゲル化溶液を同時に混合し、通常の培養条件下に静置することで自己組織化し、細胞を包埋した三次元の弾性組織様ゲルを形成させる技術に関する。
【背景技術】
【０００２】
細胞培養・組織培養法は生命現象の解明や疾患の原因解明、創薬などの治療法開発などにおいて重要な知見を与えてくれる研究方法として、バイオ関連技術に欠くことのできない基本技術である。また近年では、臓器不全などの疾患に対し従来では治療が困難であった領域に対して、未分化細胞を始め多能性幹細胞などの多種・多様な細胞を用いて組織を再生することで、治療を目指す再生医療技術が提案・開発されている。この生体組織を再生する技術開発あるいは再生現象の科学的な知見のための研究にも、多くの細胞培養・組織培養技術が利用されている。
【０００３】
従来用いられている細胞培養技術は、その多くが培養フラスコや培養シャーレといった二次元平面的なプラスチック製表面に細胞を接着させて培養する方法が一般的である。しかしながら、生体組織は三次元的な構造を有し、二次元的な環境から得られる情報では限界がある。そのため、三次元的な細胞足場材料を用いた細胞培養法が考案され、それに伴い利用可能な多くの材料や技術が開発されている。
【０００４】
例えば酸性抽出した水溶性コラーゲンを中和し、低温下で細胞培地および血清などと組み合わせ０．３〜１．０ｍｇ/ｍｌの濃度に調整し、５％ＣＯ２インキュベーター内で３７℃に静置することで、自己組織化ゲルを作成して三次元的に培養する方法（非特許文献１）、アガロースゲル中で軟骨細胞を三次元培養して分化表現型を維持させる方法（非特許文献２）、アルギン酸溶液に、２価カチオンであるカルシウムを添加することでゲル化することを利用した細胞封入型培養方法（非特許文献３）などの天然高分子を用いる方法が知られ、現在でも多くの研究実験で用いられている。
【０００５】
また合成高分子においても多くの種類が試みられ、特に繊維メッシュや発泡体に加工した三次元構造体のポリ乳酸（ＰＬＡ）およびポリグリコール酸（ＰＧＡ）（非特許文献４，５）や、ポリビニルアルコール（ＰＶＡ）（非特許文献６）などを用いた細胞培養方法が報告され、組織再生の足場として利用されている。
【０００６】
特に古くから多くの研究に用いられているコラーゲンゲルは、コラーゲンの濃度が１％程度の低い状態で利用するために、細胞を包埋した状態で培養すると、ゲルの体積収縮が生じ、形状を維持することが難しいという問題が知られている。一般に、細胞懸濁液と混同し作成した初期の自己組織化コラーゲンゲルの体積の約３０倍以上も収縮し、培養中の形状を維持できない。
【０００７】
アガロースゲルではゲル化させる際に一般的には６０℃以上の高温が必要である点に加えて、ゲル内部の細孔が小さく分解されにくいため、培養中の細胞の移動や生育が困難になる。アルギン酸は、ゲル化させる際のカルシウム濃度による細胞障害が生じる点と、培地中にカルシウムが拡散することで、徐々にゲル強度が低下し最終的には溶解するという問題等がある。
【０００８】
更に、ポリ乳酸などの合成高分子系の足場材料では、一般的に細胞をほとんど付着・接着させることが出来ないため、本質的に細胞足場材としての機能が果たせない。そこで細胞接着を高めるために、細胞表面と相互作用を有することで知られるコラーゲンや、細胞接着ペプチドとして知られるＲＧＤ（アルギニン―グリシン―アスパラギン酸）配列を有するペプチドを、合成材料表面にコーティングや、化学的に結合させるなどの改質による工夫が施されてはじめて三次元細胞培養器材として利用可能になる。しかしながら、このようにして作成された細胞足場は、生体内環境を再現した足場材料とは言い難く、特に組織再生研究においては誤った研究結果を導く危険性がある。
【０００９】
通常、細胞はその細胞膜表面に存在する受容体分子（レセプター）と足場材料との結合反応を利用して、接着・伸展・遊走および増殖・分化などの主要な細胞活動を開始する。本来、生体に存在しないまたは接着性を有しない材料中での細胞培養は、単に物理的に三次元空間に留めて培養しているにすぎず、あるいは生体における接着経験の無い異物としての材料との接触を続けながら培養する、いわば非生理環境を提供していることになる。
【００１０】
一方で、生体組織は細胞と細胞外基質とよばれる環境物質から構成され、細胞は三次元的な細胞外基質内に接着・結合して高度に複雑に組織化している。この細胞外基質の骨格を構成する重要なタンパク質は、膠原繊維の主成分であるコラーゲンと弾性線維の主成分であるエラスチンである。その他にも直接構造には関与しないが細胞外基質成分として存在する接着分子、例えばフィブロネクチン、テネイシン、ラミニンなどのタンパク質や、ヒアルロン酸、コンドロイチン、ヘパラン硫酸などを含むプロテオグリカン類から構成されていることが知られる。
【００１１】
多くの細胞ではこうした細胞外基質分子を認識するレセプターが細胞表面に発現しているため、どのような足場環境で細胞が接着し培養させるかが、生体組織を再生させる研究を左右する基幹技術になることが充分予想される。
【００１２】
生体内に存在する細胞外基質分子を用いた例では、先述したようにゲル形状は縮小するがコラーゲンゲルによる三次元培養による毛細血管構造の再生の例（非特許文献７）などが知られ、三次元培養ならではの組織再生効果が確認されている。生体組織のコラーゲンは主に骨や腱などの剛性を担う組織に多い。それに対して生体組織の弾性や伸縮性を担う部分にはエラスチンを多く含む。例えば、脈拍の動きに連動する血管の中膜、尿を貯蔵する際に拡張する膀胱壁、呼吸運動を担う肺包、関節の安定した動きを調節する靭帯など「生体の動き」に重要な弾性組織には、エラスチンの存在比率が多いことが知られている。
【００１３】
一般に多くの生体組織は何らかの運動を伴う生命活動を行うため、細胞を取り巻く環境にはコラーゲンのみではなく伸縮性・弾性をになうエラスチンの存在も重要と考えられている。しかしながら、従来三次元培養を行う場合の一般的な選択肢は、コラーゲンゲルと前述した生体には存在しない天然ハイドロゲルか合成高分子を、いわば細胞外基質の代用品として用いてきた。即ち、エラスチンによる三次元細胞培養ゲルは存在しなかった。ただし、ここで述べる三次元ゲルとは、細胞を包埋した状態でゲル化させ、更に生体組織と同様な足場の伸縮性までを再現する自己組織化型の弾性組織様のゲルを限定している。
【００１４】
つまりエラスチンを基本とした自己組織化型のゲルは、現在の細胞培養研究には必要不可欠の素材であるにもかかわらず、その技術は達成されていない。
【００１５】
これまでにエラスチンが材料化されなかった大きな理由の一つとして、本申請者らはエラスチンの生体組織からの抽出と水溶化が困難な点と、再度ゲルとして材料化する際の架橋方法が困難であった点にあると考えている。エラスチンは多くの場合生体組織の中でもその含有率が高い部位、例えば靭帯、血管等から抽出することで水溶性エラスチンとして得られるが、エラスチン独特の凝集現象であるコアセルベーションの性質が残存する方法によって抽出された素材のみが、自己組織化ゲルに適し、抽出の際に分解が進みすぎると、水溶性は向上するが、自己組織化ゲルには適さない素材にしかならない。
【００１６】
またゲル化する際には、一般的に用いられる方法として化学架橋法が知られる。例えば、水溶性カルボジイミド（ＷＳＣ）法、グルタルアルデヒド等によるシッフ塩基による架橋法またはエポキシ化合物による架橋法が選択しやすく、また架橋剤も入手しやすく扱いやすい。しかしながら、こうした架橋剤の多くはエラスチンの伸縮性を再現させるためには不向きで、逆に硬化することが知られていた。
【００１７】
本発明者らはこれまでに、エラスチンを生体組織から抽出する際に、できるだけ分解を抑えることで高分子性を残した水溶性エラスチンを作成し、さらにその物性による分画精製を行い、材料化が容易なアイソタイプ型エラスチンを得ることに成功している。更に特許文献１では、伸縮性を維持させた状態で架橋可能な化学架橋剤を作成し、これによりエラスチンを用いた弾性組織様ゲルの作成方法を開示している。
【００１８】
しかしながら、このエラスチン成形体は５０℃以上の高温で加熱した条件でゲル化させる方法であることから、ゲル中に細胞を含ませた状態での包埋化には向いていない。
【００１９】
また、特許文献２にはエラスチン架橋体が開示されているが自己組織化ゲルではない。特許文献３にはエラスチンを模倣した温度応答性のポリマーが開示されているが、類似ペプチドでありエラスチンでなく且つ細胞包埋ゲルでない。
【００２０】
一方細胞包埋ゲルでは特許文献４でヒト線維芽細胞がコラーゲンゲル内に包埋された細胞包埋コラーゲンゲルが開示され、特許文献５では自己組織化によりグリコサミノグリカンにプロテオグリカン、コラーゲンが凝集し網目構造が構築される方法が開示されているが、いずれもコラーゲンを主体とした自己組織化ゲルで、エラスチンを主体とする細胞包埋可能な弾性組織様構造物では無い。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００２１】
【特許文献１】ＷＯ２００２/９６９７８
【特許文献２】特開２０１１−５０５９６８
【特許文献３】特開２０１１−１０４５６３
【特許文献４】特開２００７−２８７６５８
【特許文献５】特開２０１２−１１８６４７
【特許文献６】特開２００９−０４０７１３
【非特許文献】
【００２２】
【非特許文献１】Bell, E ら  Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A. 76, 1274 (1979) Production of tissue-likestructure by contraction of collagen lattices by human fibroblasts of differentproliferative potential in vitro.
【非特許文献２】Benya,P.D.ら  Cell(Cambridge, Mass.) 30, 215-224 (1982)Dedifferentiated chondrocytes reexpress the differentiated collagen phenotypewhen cultured in agarose gels.
【非特許文献３】Lim,Fら  Science 210, 908-910 (1980) Microencapulated islers as bioartificialendocrine pancreas.
【非特許文献４】Mikos,A.G.ら  J. Biomed.Mater.Res. 27, 183-189 (1993) Preparation ofpoly(glycolic acid) bonded fiber structures for cell attachment andtransplantation.
【非特許文献５】Lo.Hら  J.Biomed.Matter.Res.30, 475-484 (1996) Poly(l-lactic acid) foamswith cell seeding and controlled release capacity.
【非特許文献６】Cascone,Mら  J.Mater.Sci.:Mater.Med. 6, 71-75 (1995) Evaluationof poly(vinyl alcohol) hydrogels as a component of hybrid artificial tissues.
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００２３】
これまでに、細胞にダメージを与えずに、細胞を包埋した状態で、なおかつ細胞が移動できる連続的なマクロな孔が存在し、三次元培養が可能な自己組織化型の弾性組織様ゲルを作成する方法に関しては知られていない。
【００２４】
本発明において解決しようとする課題は、上述の公知の技術が抱える問題点を解決することであり、具体的には、伸縮性のある弾性組織の細胞外環境をその主成分であるエラスチンの成形体を用いることで再現し、細胞培養条件下で細胞を安全に包埋でき、細胞が移動できるスペースを確保した連続的な孔を有した状態で、長期間にわたり三次元的に培養することが可能な弾性組織様構造体およびこれを含む医薬組成物を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００２５】
本発明者は上記の課題を解決するため、本発明者が従来から研究開発している水溶性エラスチン（特許文献１）を基本技術として、加えてこれを改良することにより本発明に達した。ちなみに本基本技術は、水溶性エラスチンに対し水溶性架橋剤を加え、８０℃以上の高温で加熱することでコアセルベーションを起こさせ、弾性特性を有するゲルを短時間で作成する方法であった。
【００２６】
しかしながら、この方法では弾性特性を有するエラスチンゲルを作成することはできるものの、形成されたゲルには多数の貫通していない孔があるスポンジ状構造であることから、細胞の移動や侵入が非常に困難な培養用器材であった。またゲル化に必要な最低条件として温度を５０℃と細胞が生育できない環境まで上げないといけないため、細胞包埋状態で三次元的に培養する器材にはならない。
【００２７】
本発明者らの他の技術である特許文献６においては、エラスチンをファイバー上に成形加工することで材料内部に細胞を侵入させることを可能にしているが、細胞を包埋した状況でゲル化させる方法では無く、加えて形状が維持できない。
【００２８】
また弾性的物性を考慮しないのであれば、グルタルアルデヒドやジエポキシ化合物などの一般的な化学架橋剤により低温でエラスチンゲルが作成できる。しかしながら、グルタルアルデヒドやジエポキシ化合物によるゲル化は、伸縮性がない（最大伸長率が５０％以下）エラスチンゲルが作成されることが知られており、弾性組織を再現する材料（最大伸長率が１００％以上）とは言えない。加えてこれらの架橋剤では細胞毒性も指摘されている。
【００２９】
そこで、本発明者らは従来のゲル化条件であるエラスチン濃度が４０重量％では、８０℃以上の高温で生じるエラスチンが自己組織化するコアセルベーション現象に注目し、この凝集現象のエネルギーを低下させる、即ちコアセルベーション温度を低下させる工夫を行うことで、発明者らがこれまで高温でしか達成できなかった伸縮性・弾性のあるエラスチンゲル化を４０％の濃度でも３７℃の体温環境下で進行することを見出した。
【００３０】
加えて、本発明者らの発明であるアイソタイプ型水溶性エラスチンを２種類以上用いることで（例えばエラスチンＡとエラスチンＥ）、混合した溶液中にミクロな相転移現象を引き起こしながらゲル化し、材料中にゲル化する場所とゲル化しない場所を形成させ、その結果ゲル化後に、ゲル化していない部分を洗浄することでエラスチンゲル内部に細胞の移動が可能な程度の孔を形成することが分かり、以上の２つの技術を組み合わせることで本発明を完成させた。
【００３１】
また本発明は、細胞を包埋し、細胞の増殖・移動が可能な連続的な細孔を有するエラスチンゲルを形成でき、かつ細胞培養が可能であることから、弾性組織様構造を作成することが可能で、動脈や肺、靭帯などの弾性組織修復材料や弾性組織代替材料などの医療用材料としての応用が期待できる。
【発明の効果】
【００３２】
弾性組織由来細胞を包埋した状態で作成した細胞包埋型エラスチンゲルを用いて、細胞培養することで弾性組織様構造を生体外で作成でき、その結果、事故や病気等で失われた弾性組織の修復用組織や代替用組織としての利用が期待できる。
【図面の簡単な説明】
【００３３】
【図１】エラスチンゲル化前溶液（ゲル化前の透明なエラスチンＡプレゲル溶液、液面が傾いている）。
【図２】エラスチンゲル化後溶液（ゲル化後のエラスチンＡプレゲル溶液で、コアセルベーションにより透明性が無くなり液面の傾きがなくなっている）。
【発明を実施するための形態】
【００３４】
本発明の第一の主題は、細胞が生存できる４０℃以下の温度条件下において、弾性組織の細胞外基質成分が自己組織化し３次元的にゲル化する技術に関する。そのひとつの方法として、水溶性エラスチンの持つ凝集能すなわちコアセルベーション挙動を利用することで効果的に達成させることが可能である。具体的には凝集特性の異なる水溶性エラスチンを、不溶性エラスチンを酸分解する際に、順次分画することにより凝集温度が高い分画（エラスチンＥ）から凝集温度が低い分画（エラスチンＡ）に分類して回収することか可能で、その結果以下の５種類のアイソタイプ型エラスチンを製造できる。
【００３５】
各アイソタイプ型エラスチンの1重量％における凝集温度は以下のとおりである。なお、凝集温度とは溶液に対する光の透過率が１０℃における透過率を基準とした場合、その５０％が減少する温度を定義している。エラスチンＡで２２．５℃以下、エラスチンＢで２２．６〜２５℃、エラスチンＣで２５．１〜３０℃、エラスチンＤで３０．１〜３５℃およびエラスチンＥで３５．１℃以上の凝集温度である。このうち、エラスチンゲルが作成できるのがエラスチンＡ〜Ｄ、ゲル化できないのがエラスチンＥである。ゲル化するために必要なエラスチン濃度は約２０〜４０重量％である。通常、凝集温度はエラスチン濃度とともに上昇し、この濃度条件ではエラスチンＡ〜Ｄの凝集温度は約６０〜８０℃以上になる。またエラスチンＥでは凝集温度は１００℃以上になる。
【００３６】
自己組織化を促しゲル化させるためには、凝集すなわちコアセルベーションすることが必要である。細胞にダメージを与えない温度で且つ、凝集を促進するために種々の添加物の影響を検討した結果、炭酸ナトリウムをゲル溶液に添加することで、凝集温度を低下させることができることがわかった。また凝集温度を低下させるのみの目的であれば、トリエチルアミンなどの塩基性試薬でも同様の効果をもたらす事が可能であるが、細胞を包埋した状況では、アミン系試薬は細胞毒性が強く細胞へのダメージが大きく使用できない。
【００３７】
更に本発明において用いられる水溶性エラスチンを、架橋剤で架橋するエラスチン架橋体は、特許文献１に記載の方法で製造できる。好適な水溶性エラスチンの架橋剤は、下記の一般式で表される。
【化１】
2014183886.tif 000003
式中、  Ｒ1、Ｒ3は下記の構造式で表される＜Ａ＞または＜Ｂ＞の何れかであり、Ｒ1とＲ3とは同じであっても異なっていてもよく、
【化２】
2014183886.tif 000004
Ｒ4、Ｒ5はＨ、ＣＨ3、Ｃ2Ｈ5のいずれかであり、Ｒ4とＲ5とは同じであっても異なっていてもよい。
【化３】
2014183886.tif 000005
Ｒ2は下記の構造式で表される＜Ｃ＞または＜Ｄ＞の何れかで表される化合物であり、
【化４】
2014183886.tif 000006
ｎは１〜２０までの整数である。
【化５】
2014183886.tif 000007
ｍ、ｌは０〜１５までの整数であり、Ｘ、Ｙは、ＣＨ2またはＯの何れかであり、ＸとＹとは同じであっても異なっていてもよく、ＺはＣまたはＮの何れかであり、Ｒ6、Ｒ7、Ｒ8、Ｒ9は、Ｈ、ＣＨ3、Ｃ2Ｈ5の何れかであり、それぞれ同じであっても異なっていても良い。
【００３８】
本発明の第二の主題は、細胞包埋型エラスチンゲル内部に細胞が移動可能な、連続貫通型の細孔を有する弾性組織様構造体の作成技術に関する。本発明で用いるアイソタイプ型水溶性エラスチンは、凝集温度が異なるがもともとは同じ不溶性エラスチンから派生した分解産物であるため、一部エラスチン同士の相互作用が生じる。一般的には、凝集性質の異なる２種類のタンパク質の混合ではミクロ相分離現象が生じる。本発明においてエラスチンのコアセルベーション時に、同一のクラス内での凝集（エラスチンＡとエラスチンＡ）および異なるクラス内（エラスチンＡとエラスチンＥ）での凝集が生じると考えられる。
【００３９】
そのため、エラスチンＡとエラスチンＥの２種類を選択し混合した場合は、エラスチンＡの組成比がエラスチンＥより多い場合は、エラスチンＡの海にエラスチンＥの島状構造体がある海島構造の分離状況で、エラスチンＥが多い場合はこの逆状況が発生する。この状態でのエラスチンＥの組成濃度は１０〜５０％程度、より好適には１０〜２０％程度である。相分離したエラスチンＥの凝集部分は、水溶性エラスチンの架橋剤を用いたゲル化反応が生じない分画であるため、エラスチンＡの領域が自己組織化型ゲルになり、全体的にゲルが生じる。エラスチンＥの部分は、ゲル化後の洗浄中にゲルのミクロな網目構造から拡散で除去できる。これにより、連続した貫通孔が発生する。
【００４０】
本発明の第三の主題は、上述のように作成した細胞包埋型エラスチンゲルの細胞培養器材として使用する技術に関する。水溶性エラスチンの中でも、特に分子内にデスモシン構造などの架橋部位濃度が少ないエラスチンＥあるいはエラスチンＤでは、細胞表面上のエラスチンレセプターとの結合性が大きく、エラスチンの産生刺激を与えやすい。エラスチンの細胞表面への接着領域としてＶal−Ｇly−Ｖal−Ａla−Ｐro−Ｇly（バリン―グリシン―バリン―アラニン―プロリン―グリシン）などのエラスチン上のアミノ酸配列が知られている。一方で、分子内架橋構造が多いエラスチンＡでは、立体的な拘束のため、こうした特定アミノ酸配列と細胞表面レセプターの結合ができない状況にあると考えられ、これはすなわち本技術により、細胞を包埋した状況下は弾性組織中のネイティブなエラスチン構造を再現しているとみなせる。
【００４１】
なぜなら、エラスチンは細胞内ではトロポエラスチンとして生合成され、細胞外でリシルオキシターゼなどの酵素による媒介で、デスモシン架橋構造が形成されマイクロフィブリルと呼ばれる微細線維上で繊維化し、弾性組織に変換され成熟したエラスチン組織になる。新陳代謝や炎症時には周辺細胞からのエラスチンの産生が促され、同時に、周辺組織や炎症細胞からのエラスチンの分解酵素の産生を活発にし、エラスチン分解産物を弾性組織内部に蓄える。つまり、細胞包埋型のエラスチンゲルには、本来のこうした通常に近い生体内弾性組織環境を再現していると考えられ、このことが再生医療研究や弾性組織再生の研究を行う上で従来にない重要な培養器材になりうる点である。
【００４２】
上述のようにして、弾性組織様のゲル上構造物を、欠損した組織の組織修復用材料として利用したり、組織代替用材料として利用する手法としては、種々の形態が考えられるが、例えば動脈血管の弾性組織部分である中膜構造を再建し、内側に血管内皮細胞を播種した状態で人工血管として用いる方法や、やけどや怪我などで欠損した皮膚真皮層に充填して弾性組織を修復する方法が考えられる。
【実施例】
【００４３】
以下、実施例をもって本発明を詳細に説明するが、以下によって示される方法は、作用確認において用いたものであり、これに限定されるものではなく、その要旨を変更することなく様々に改変して実施することができる。
【００４４】
製造例１：水溶性エラスチンの作製
豚大動脈由来の不溶性エラスチン（ＥＣＭＬ社製）１０ｇに対し０.２５Ｍシュウ酸を４５ｍｌ加え１００℃で１時間加熱した。分解反応液を氷水で冷やした後３，０００ｒｐｍで１０分間遠心分離し不溶部分を集めた。この不溶部分に０．２５Ｍシュウ酸を３０ｍｌ加え１００℃で1時間加熱した。加熱後に溶液を冷却し、遠心分離した後不溶部分を集めた。以上の操作を繰り返し、不溶部分がシュウ酸水溶液を含み膨潤する状態になるまで、可溶部分を除いた。５〜６回程度でこの状態になる。その状態に再度０．２５Ｍシュウ酸を加え１００℃に加熱することで分解した分画を、同様に冷却後、遠心分離して上澄み液を集め、更に１０％水酸化ナトリウムでｐＨが５〜６程度になるまで中和した。中和の際に発生する沈殿を除去した後、カットオフ分子量が１０,０００〜１４,０００の透析チューブを用い、４℃に冷却した脱イオン水に対し透析を行い、シュウ酸および低分子化したエラスチン分解物を除去した。以上の操作を加熱処理ごとに分けてその分画を精製し、凝集温度の測定によりクラス分けを行った。透析後の溶液を孔サイズが０．４５μｍのフィルターで吸引ろ過し、ろ液を凍結乾燥して水溶性エラスチンを得た。精製した水溶性エラスチンは、１％水溶液の凝集温度により表１の条件で分類した。
【００４５】
凝集温度は光学用測定セルに溶液をいれ１０℃から１℃/分で上昇させ、６２０nmのレーザー光を照射しその透過光強度が５０％になる温度と定義した。
【表１】
2014183886.tif 000008
【００４６】
各水溶性エラスチンの数平均分子量はＨＰＬＣシステム（トーソー社製）により算出した。またエラスチンＡを用いてエラスチン濃度を１％から５０％まで変化させて同様に凝集温度を測定した結果を表２に示した。濃度が上昇するに伴い、凝集温度が上昇した。３０％以上から凝集温度が上昇し４０％濃度では４０℃以上になることが分かった。また６０％を超えると１００℃においても凝集しなかった。
【表２】
2014183886.tif 000009
【００４７】
製造例２：水溶性架橋剤の製造
水溶性エラスチンを用いてエラスチン構造体を作製するための化学架橋剤を以下のように作製した。この方法は、ドデカンジカルボン酸（ＤＯＤＥ）のカルボキシル基を４−ヒドロキキシフェニルジメチル−スルホニウムメチルサルフェート（以下ＤＳＰ）により活性エステル化させるものである。具体的には１モルのドデカンジカルボン酸と２モルのＤＳＰおよび２モルのジシクロヘキシルカルボジイミド（以下ＤＣＣＤ）をアセトニトリルに溶解し２５℃で５時間撹拌し反応させる。反応過程で生じたジシクロヘキシル尿素をガラスフィルターで除去した。更に反応溶液（ろ液）をエーテルに滴下して固化させた。該固形物を減圧乾燥して目的の架橋剤（ＤＯＤＥ−ＤＳＰ）を得た。化学構造および純度は1Ｈ−ＮＭＲにより確認した。
【００４８】
実施例１：自己組織化型ゲルの製造−１（水溶液および添加物濃度の影響）
自己組織化型とはコアセルベーション現象（凝集）を伴うことを意味する。その状態でゲル化させる方法は以下のように行った。３０％の水溶性エラスチンＡの水溶液に、製造例２にて作成したＤＯＤＥ−ＤＳＰ架橋剤をエラスチンの総アミノ基モル数に対して３倍で添加し撹拌する。その際、反応促進・凝集促進のために炭酸２ナトリウム（Ｎａ２ＣＯ３）またはトリエチルアミン（ＴＥＡ）を加え、細胞培養用１２穴プレートに流し込み、３７℃インキュベーター内に静置した。溶液の流動性が消失した時点をゲル化と定義し、その時間をゲル化時間とした。ゲル化前の溶液の状態を図１に示す。液面が傾いているのがわかる。ゲル化後の溶液の状態を図２に示す。凝集してゲル化したために透明では無くなり液面も傾いていないのがわかる。
【００４９】
表３に溶液の濃度条件に対しての、ｐＨ、凝集温度およびゲル化に要した時間の結果を示す。添加物の濃度が高くなることで、溶液のｐＨが上昇し、それに伴い凝集温度も上昇することがわかった。溶液のｐＨが上昇するに伴い、ゲル化時間は短縮されていくことが分かる。
【表３】
2014183886.tif 000010
【００５０】
実施例２：自己組織化型ゲルの製造−２（培地および添加物濃度の影響）
ダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ）細胞培養液で３０％のエラスチンＡを作成し、製造例２にて作成したＤＯＤＥ−ＤＳＰ架橋剤をエラスチンの総アミノ基モル数に対して３倍で添加し撹拌する。その際、反応促進・凝集促進のためにＮａ２ＣＯ３またはＴＥＡを加え、細胞培養用１２穴プレートに流し込み、３７℃インキュベーター内に静置し，その時間をゲル化時間とした。表４にその濃度条件およびゲル化に要した時間の結果を示す。添加物の濃度が高くなることで、ゲル化時間は短縮されていくことが分かる。この結果から最短時間10分でゲル化する条件がわかった。
【表４】
2014183886.tif 000011
【００５１】
実施例３：自己組織化型プレゲル溶液の浸透圧
細胞を包埋した条件下での使用を想定するため浸透圧の確認を行った。ＤＭＥＭ細胞培養液で３０％の水溶性エラスチンＡを作成し、反応促進・凝集促進のためにトレハロースまたはＮａ２ＣＯ３を加え、この溶液の浸透圧（ｍＯｓｍ）を凝固点降下法による測定から算出した。表５にその濃度条件に対する浸透圧および凝集温度を示す。添加物の濃度が高くなることで、浸透圧と凝集温度が上昇することが分かった。トレハロースの添加効果は、濃度が高くなるとＮａ２ＣＯ３とは大きく異なり、浸透圧は上昇したが凝集温度が低下することがわかった。
【表５】
2014183886.tif 000012
【００５２】
実施例４：自己組織化型ゲルの製造−３（架橋剤濃度の影響）
ＤＭＥＭ細胞培養液で３０％のエラスチンＡを作成し、製造例２にて作成したＤＯＤＥ−ＤＳＰ架橋剤をエラスチンの総アミノ基モル数に対して０．０５〜１倍で添加し撹拌する。反応促進・凝集促進のためにＮａ２ＣＯ３を８６．５ｍＭ加えた。表６に架橋剤濃度条件に対するゲル化時間を示す。架橋剤濃度が高くなることでゲル化時間が短縮することが分かった。
【表６】
2014183886.tif 000013
【００５３】
実施例５：自己組織化型ゲルの製造−４（弾性率測定）
ＤＭＥＭ細胞培養液で３０％のエラスチンＡを作成し、ＤＯＤＥ−ＤＳＰ架橋剤をエラスチンの総アミノ基モル数に対して３倍で添加し撹拌する。反応促進・凝集促進のためにＮａ２ＣＯ３を８６．５ｍＭおよびトレハロース３００または６００ｍＭ加えた。ゲル化時間は１時間とし、ゲル化後の弾性率を、引っ張り試験機にて測定した。測定条件は、試験片が直径１ｍｍ長さ1〜２ｃｍで、引っ張り速度を０．１ｍｍ/secで行い、応力ひずみ曲線の比例関係の部分から傾きを求めることで算出するヤング率を測定した。表７に結果を示す。６００ｍＭのトレハロースにより凝集温度を低下させた架橋剤濃度条件に対するゲル化時間を示す。トレハロース濃度が高くなることでゲルの弾性率が増加することが分かった。
【表７】
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【００５４】
実施例６：自己組織化型ゲルの製造−５（ミクロ相分離型ゲル）
エラスチンゲルの内部にスポンジ様の孔を有する基材を作成するために、エラスチンＡに添加物を加え溶液内部でミクロ相分離を生じさせた状態で自己組織化する方法を行った。添加物はエラスチンＥ、ヒアルロン酸およびトレハロースを用いた。エラスチンＥは単独ではゲル化しないが、エラスチン間の相互作用が期待でき、ヒアルロン酸およびトレハロースは水和体積の大きさが多孔質化に寄与するものと考えられる。３０％のエラスチン溶液になるようにエラスチンＡとエラスチンＥ１：１で混合した溶液を作成し、ＤＯＤＥ−ＤＳＰ架橋剤をエラスチンの総アミノ基モル数に対して０．５倍量添加し撹拌する。反応促進・凝集促進のためにＮａ２ＣＯ３を４０ｍＭ加えた。ゲル化時間は１時間とした。
【００５５】
また３０％エラスチンＡに対しトレハロースを０．１〜０．５ｍＭ加えたゲルおよび、３０％エラスチンＡに対しヒアルロン酸を０．３〜１．５％加えたゲルも作製した。ＤＯＤＥ−ＤＳＰ架橋剤をエラスチンの総アミノ基モル数に対して０．５倍量添加し撹拌する。反応促進および凝集促進のためにＮａ２ＣＯ３を４０ｍＭ加えた。ゲル化時間は１時間とした。
【００５６】
作成した各エラスチンゲルをリン酸緩衝液（ＰＢＳ）で洗浄後、２．５％グルタルアルデヒドＰＢＳ溶液で2時間固定処理を行い、ＰＢＳによる洗浄を４℃で数回行った。その後、１％四酸化オスミウムＰＢＳ溶液で１．５時間固定処理を行った。ＰＢＳで洗浄後、エタノールによる段階的脱水処理を行い、ｔ−ブチルアルコールで置換を行い、凍結乾燥した。
【００５７】
観察用試料は真空金蒸着を行い、走査型電子顕微鏡（ＳＥＭ）観察を行った。ＳＥＭ観察によりゲル内部の平均孔径を測定した。表８に各種自己組織化型ゲルの作成条件と平均孔径を示す。
【表８】
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【００５８】
表８の結果より、添加物を入れることによりゲル内部の孔径が変化することが分かる。エラスチンＡのみのゲルでは孔径が小さく孔数も少ないのに対し、添加物を含む物では多孔質の形状になっている。特にエラスチンＥを混合することにより、エラスチン溶液内部で相分離構造が生じエラスチンＡのみのゲル構造に比べて、相分離部分のエラスチンＥが締めていた領域が除去され、その部分が孔化している様子が観察される。ヒアルロン酸およびトレハロースに関しても添加濃度が高くなると平均孔径が増加する傾向がみられる。通常の細胞のサイズはおよそ３〜１０μｍ程度の直径であり、線維芽細胞や筋細胞等の繊維性組織の紡錘形細胞であれば１〜５μｍ程度の直径があれば、細胞骨格を変形させることで孔内に侵入することが可能と考えられる。
【００５９】
実施例７：血管平滑筋細胞を用いた細胞毒性試験
自己組織化型エラスチンゲルを作成するために用いる添加物のＮａ２ＣＯ３およびＴＥＡ、更には架橋反応を行うＤＯＤE-ＤＳＰ架橋剤の細胞毒性試験を、血管平滑筋細胞を用いて行った。細胞はヒト大動脈血管平滑筋細胞（Ｃｅｌl  Ｓｙｓｔｅｍｓ社製）を、ＣＳ−Ｃ培地を用い、３７℃、５％ＣＯ２インキュベーター内で培養したもの（継代数Ｐ５〜Ｐ９）を用いた。細胞を２４穴プレートに播種し、１０％ＦＢＳを含んだＣＳ−Ｃ培地でインキュベーター内で24時間静置し、接着させた。その後、各テスト溶液を添加し、経時的に位相差顕微鏡で観察し細胞が剥がれる状況を測定した。テスト溶液添加から２４時間後に接着細胞の半数以上が剥離した条件を細胞毒性ありの判断で行った。結果を表９に示した。
【表９】
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【００６０】
表９の結果より凝集促進剤として用いるＮａ２ＣＯ３の８６．３ｍＭおよびＴＥＡでは細胞毒性が観察された。Ｎａ２ＣＯ３の４３．３ｍＭでは毒性は全く観察されなかった。即ちＮａ２ＣＯ３の０〜４３．３ｍＭの濃度条件においては、細胞を包埋した状態で使用が可能であることがわかった。これは表３のｐＨ８．２以上での条件が細胞にダメージを与えるものと考えられる。またＴＥＡでは低濃度でも毒性があることがわかり、包埋した条件での使用はできないことがわかった。
【００６１】
架橋剤に関しては1mMまでは全く毒性が無く、それ以上の濃度においても培地中での不溶化が生じ観察不能になったが、細胞毒性は強く見られない程度の結果であった。ただし、ＤＳＰの高濃度１７３ｍＭに関しては毒性があったため、架橋剤の濃度に関しては総合して１〜１０ｍＭ程度の濃度であれば問題ないと言える。これは３０％エラスチンゲルを作成する場合、エラスチンのアミノ基に対して、モル比で約０．５倍の条件に相当する。
【００６２】
実施例８：自己組織化エラスチンゲル下およびゲル内での細胞増殖試験
エラスチンゲル内での細胞培養を行うに当たり、細胞の増殖性を評価した。試験方法は細胞培養皿に播種した細胞に対して、その上部からエラスチン溶液を添加し培養皿内で自己組織化ゲルを作成する方法と、エラスチンプレゲル溶液と細胞懸濁液を混同した状態で、培養皿内で自己組織化させた細胞包埋ゲルの2種類の条件に対して行った。前者をゲル下、後者をゲル内培養として区別する。増殖試験に用いた細胞はヒト大動脈血管平滑筋細胞で、ＣＳ−Ｃ培地ＣＳＣ培地（血管平滑筋細胞用専用培地）を用いて培養した。細胞は９６穴プレートに播種し２４時間、３７℃でＣＯ２インキュベーター内で培養した後、各濃度のＤＯＤＥ−ＤＳＰ架橋剤（０．０５倍〜３倍）、凝集促進剤として４３．３ｍＭ  Ｎａ２ＣＯ３を加えた３０％エラスチン溶液を注入し、細胞上でゲル化させ、その後２４時間インキュベーター内で培養を行った。包埋ゲルの場合は、同様の溶液中に細胞密度が２．４×１０４cell/ｍｌになるように調整して、９６穴プレートに各１００μｌ播種してインキュベーター内に静置してエラスチンゲルの自己組織化を行った。
【００６３】
細胞増殖試験はＢｒＤＵ試験を行うことで評価した。ＰＢＳ洗浄後ＢｒＤＵ固定液を２００μｌ加え、−２０℃にて３０分静置した。その後ヌクレアーゼ溶液を１００μｌ加え、３７℃３０分インキュベートし、ＰＢＳにて洗浄した。その後ａｎｔｉ-ＢｒＤＵ-ＰＯＤ抗体溶液を１００μｌ加え、３７℃３０分インキュベートし、洗浄後ＰＯＤ基質を加え４０５ｎｍでの吸光度を測定し、４９０ｎｍでの吸光度で規格化した。吸収量が大きいほど１本化ＤＮＡの量が多いことを示すため、細胞の増殖活性を示す指標になる。ＢｒＤＵ測定は培養１日目と３日目に行った。ゲル下細胞培養で架橋剤倍率を変化させた条件での増殖能試験の結果を表１０に示した。またゲル内細胞培養で架橋剤倍率を変化させた条件での増殖能試験の結果を表１１に示した。
【表１０】
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【表１１】
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【００６４】
表１０および表１１の結果から、ゲル下細胞培養およびゲル内細胞培養における増殖能はコントロールとほぼ同様であることがわかり、特に増殖性を向上させることはなかった。また細胞毒性により死滅することもなく、安定した培養が可能であることがわかった。
【００６５】
実施例９：自己組織化エラスチンゲル内での動的細胞培養試験
ゲル内での動的細胞培養を行うために以下の操作を行った。細胞はヒト大動脈血管平滑筋細胞で、ＣＳ−Ｃ培地を用いて培養し厚さ１ｍｍのシリコンゴムで直径１０ｍｍの鋳型に注入し、ＣＯ２インキュベータ内に３７℃で２時間静置し自己組織化させた。ゲル条件はＤＯＤＥ−ＤＳＰ架橋剤（０．５倍）、４３．４ｍＭ  Ｎａ２ＣＯ３を加えた３０％エラスチン溶液を用いた。細胞密度は２．４×１０４cell/ｍｌになるように調整した。ゲル化後にゲルの中央部を直径４ｍｍで孔をくりぬき、リング状に加工した。２４時間インキュベーター内で培養後、リングの両端を引っ掛ける形でセットした伸展培養装置を用いて、１軸方向に連続的な伸展刺激を加えて動的培養を行った。伸展条件は、３００μｍ/secで３秒間９００μｍまで引っ張り、そこで5秒停止し、逆方向に３００μｍ/secで最初の位置まで戻り、５秒停止する。以上の１６秒サイクルを２４時間繰り返して動的培養を行った。以上の運動によりゲルのひずみは７％と計算できる。その際のゲル内の細胞を共焦点顕微鏡にて観察し、３次元ゲル内の任意の場所の細胞を選択し、細胞の長軸と短軸の長さの比率を測定した。この値は細胞の伸張性を示し長軸/短軸が１の場合は球形を示し、１より大きくなるにつれて楕円形であることを示す。結果を表１２に示した。またその際のエラスチンゲルの弾性率を細胞培養状態で測定した。即ち、培養後24時間のゲル弾性率の変化になる。その結果を表１３に示す。
【表１２】
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【表１３】
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【００６６】
表１２の結果より、エラスチンゲル内に包埋された細胞は、静置培養と伸展培養を比較すると、伸展培養で楕円形すなわち細長く変形していることが分かる。平滑筋細胞は生体組織内では筋肉部分の組織として本来細長い形態をとる。そうした構造に近い状態を伸展運動の刺激で生じさせたことが分かる。また表１３の結果から、伸展刺激を１２時間繰り返して培養しても、ゲルの弾性率に変化が見られないことから、ゲルの繰り返し刺激による劣化は見られなかった。  
【産業上の利用可能性】
【００６７】
本発明により提供される自己組織化型エラスチンゲルは、三次元細胞培養基材、組織再生用研究のための実験試薬などの医療研究支援に利用できる。また再生医療技術のための細胞注入用保持材料、血管や肺などを構成する弾性組織再生用の足場材料などの先端医療材料への利用が可能である。
【図１】
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【図２】
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