(57)【要約】【課題】微生物汚染状態を迅速に判定でき、それによって在庫の圧縮が可能となり、また、貧栄養条件であっても、微生物汚染を確実に検出できる貧栄養食品の微生物試験方法を提供する。【解決手段】水分およびミネラルを含有する貧栄養食品の微生物試験方法であって、前記貧栄養食品に酵母エキスを添加する添加工程と、前記酵母エキスを添加した前記貧栄養食品を所定条件で保温する保温工程と、前記保温工程の終了後に、前記貧栄養食品の相対発光量をＡＴＰ法で測定する測定工程と、前記貧栄養食品の微生物汚染状態を前記相対発光量で判定する判定工程と、を含み、前記判定工程において、前記相対発光量が２００ＲＬＵ以下であるときに前記貧栄養食品に微生物汚染がないと判定し、かつ、前記相対発光量が２００ＲＬＵを超えるときに前記貧栄養食品が微生物汚染されていると判定することを特徴とする。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
水分およびミネラルを含有する貧栄養食品の微生物試験方法であって、
前記貧栄養食品に酵母エキスを添加する添加工程と、
前記酵母エキスを添加した前記貧栄養食品を所定条件で保温する保温工程と、
前記保温工程の終了後に、前記貧栄養食品の相対発光量をＡＴＰ法で測定する測定工程と、
前記貧栄養食品の微生物汚染状態を前記相対発光量で判定する判定工程と、を含み、
前記判定工程において、前記相対発光量が２００ＲＬＵ以下であるときに前記貧栄養食品に微生物汚染がないと判定し、かつ、前記相対発光量が２００ＲＬＵを超えるときに前記貧栄養食品が微生物汚染されていると判定することを特徴とする貧栄養食品の微生物試験方法。  
【請求項２】
前記貧栄養食品１００ｇ当たり、前記水分の配合量が９０．０〜９９．０ｇおよび前記ミネラルの配合量が１ｍｇ以上であることを特徴とする請求項１に記載の貧栄養食品の微生物試験方法。
【請求項３】
前記貧栄養食品が、前記水分、前記ミネラルに加えて、炭水化物をさらに含有することを特徴とする請求項１または請求項２に記載の貧栄養食品の微生物試験方法。
【請求項４】
前記貧栄養食品１００ｇ当たり、前記炭水化物の配合量が１．０〜３．０ｇであることを特徴とする請求項３に記載の貧栄養食品の微生物試験方法。
【請求項５】
前記貧栄養食品は、その形態がゼリー状またはとろみのついた半固形食品であることを特徴とする請求項１ないし請求項４のいずれか一項に記載の貧栄養食品の微生物試験方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、栄養補給を目的として医療現場で使用される貧栄養食品の微生物試験方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
高齢者あるいは病後の人など喫食量の少ない人や嚥下能力が低下している人、嚥下機能訓練患者、水分制限患者において、経口摂取が不十分な低栄養患者などには、液状の栄養食品に限らずゲル状の栄養食品も用いられている。すなわち、咀嚼力が弱っている場合は、食材を細かく刻んだり、つぶしたりした形態とし、嚥下機能が弱っている場合は、ゼリー状やペースト状の形態と咀嚼力、嚥下機能の程度によって食べられる食事形態が異なってくるので、液状もしくはゲル状など、栄養を必要としている人に対して様々な形態の栄養食品が広く用いられている。
【０００３】
このような栄養食品として、特許文献１には、蛋白質、糖質、脂質を主成分とし、ビタミンならびにミネラル等を含有する栄養食品が提案されている。また、患者の状況に合わせて、このような栄養食品と併用して、水分補給用食品が用いられることも多い。ミネラル等の栄養素により、消化器内で吸収されやすい組成となっており、お茶や水を飲用するよりも効率がよい。この場合には、患者によって必要な栄養素が異なるのに合わせて様々な組み合わせで使用が可能になると良い。そのため、水分補給用の食品においては、熱量や栄養素を控え、水分やミネラルを中心とした組成である貧栄養食品が好まれる。
【０００４】
また、このような貧栄養の食品は液体であることが多いが、ゼリー状やとろみの付いた半固形の形状も好んで使用される。半固形の形状は、横たわった状態でも口に含みやすく少量ずつ摂取しやすいため、水分がむせやすい場合にも水分経口摂取が可能となる。チューブを介して栄養食品を投与する際には、逆流しにくいという利点もあり、食品等の逆流は消化器官の炎症、誤嚥性肺炎の原因になることから安全性の観点からも好まれている。また、併用する栄養食品を注入した後から貧栄養食品を注入してチューブに付着した併用食品を一緒に流し込む効果もある。
【０００５】
一方、これまでは手術前の患者には、絶飲食し点滴による栄養補給が行われていたが、近年医療安全や患者ストレス軽減策が見直され、水分補給用食品の経口補水療法（oral rehydration  therapy;ＯＲＴ）が増加している。点滴手技が不要となり患者の痛み軽減および医療機関の業務負担軽減等の効果に加えて、これまで術前８時間は水分が制限されていたが、手術直前まで水を飲めることになり、ストレス軽減になるといわれる。また、状況に応じてゼリー状の食品が選択出来れば空腹感もまぎれるという効果がある。今後ますますこれらの食品の使用が増加すると考えられ、衛生管理が徹底した商品が提供できればさらに適応対象を広げられると期待できる。
【０００６】
また、水分補給を目的とした貧栄養食品については体力低下のある病人や老人に利用されることが多く、品質管理は重要な課題である。なかでも微生物の増殖は下痢や食中毒の原因となり得、上記のような患者の場合は症状が重篤化しやすい。保管条件を保ち、微生物の増殖を抑えて品質を維持することも必要であるが、製造直後の微生物量混入が抑制されていることが重要である。従って、このような栄養食品製造時は微生物汚染について慎重に検査・判断され、微生物汚染がないことを確認した後、出荷されている。
【０００７】
従来、貧栄養食品を含め、栄養食品の微生物汚染のないことの確認方法としては、食品衛生検査指針に記載されている培養法が広く用いられている。培養法における微生物（一般生菌数）測定法では、標準培地を用いて一般的な微生物の３５℃〜２４℃の温度条件下で４８時間以内に繁殖する微生物を対象として、微生物の検出を行うものであり、微生物の増殖が認めらない場合は、微生物が混入していないとされる。
【０００８】
培養法の問題点として、増殖条件が想定される条件外、すなわち低温、高温、標準培地に適応しない場合の微生物は検出されない危険性が指摘されており、必ずしも十分とは言えない。従って近年、食品の微生物測定にあたっては、対象とする食品の状況に適合した条件で培養、測定を行うことが求められている。これまで、培養法によって微生物繁殖が見過ごされてきた可能性は高くないが、環境の変化などの要因や誤作動により、発見されるべき異常が見過ごされる危険も予想でき、より確実な試験方法で検査することは有意と考えられる。
【０００９】
一方、貧栄養食品においては、一般的な微生物が増殖しにくい条件であり、上記の様な問題はないと考えられる。しかし、近年高まる安全性への関心に伴い、微生物汚染状態をより正確に示すべく、酸性条件下で増殖する微生物を検出する試験方法が求められている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１０】
【特許文献１】特開２００４−９１４８５号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１１】
培養法を用いた従来の微生物試験方法は、製品を保温する工程と、保温後の製品から所定量の試料を採取し、その試料を培地と混釈し、その培地を用いて培養する工程と、培養後の培地に発育した微生物のコロニー数を計測する工程と、計測されたコロニー数によって製品の微生物汚染状態を判定する工程とを含む。そして、従来方法では、微生物汚染状態の判定結果、すなわち、出荷の判定結果を得るまでに長時間を要していた。したがって、従来方法には、微生物汚染状態の判定までの所要時間が長くなるため、栄養食品の微生物汚染状態の判定手法、工程管理手法として迅速性を欠くという問題がある。
【００１２】
また、従来方法では、出荷判定までの所要時間が長くなるため、在庫が増加するという問題がある。その結果、在庫の増加に伴う倉庫スペースの拡大が必要となり、ロットや品種ごとに製品を管理することから管理工数や手間も比例して増大する。空間的・金銭的な損失に加えて管理の複雑化に伴う混乱もが生じうる。
【００１３】
そこで、本発明は、このような問題を解決すべく創案されたもので、その課題は、微生物汚染状態を迅速に判定でき、それによって在庫の圧縮が可能となり、また、貧栄養条件であっても微生物汚染を確実に検出できる貧栄養食品の微生物試験方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１４】
前記課題を解決するために、本発明に係る貧栄養食品の微生物試験方法は、水分おいよびミネラルを含有する貧栄養食品の微生物試験方法であって、前記貧栄養食品に酵母エキスを添加する添加工程と、前記酵母エキスを添加した前記貧栄養食品を所定条件で保温する保温工程と、前記保温工程の終了後に、前記貧栄養食品の相対発光量（相対発光強度、発光量とも呼ばれる）をＡＴＰ法（ Adenosine triphosphate：アデノシン三リン酸）で測定する測定工程と、前記貧栄養食品の微生物汚染状態を前記相対発光量で判定する判定工程と、を含み、前記判定工程において、前記相対発光量が２００ＲＬＵ以下であるときに前記貧栄養食品に微生物汚染がないと判定し、かつ、前記相対発光量が２００ＲＬＵを超えるときに前記貧栄養食品が微生物汚染されていると判定することを特徴とする。
【００１５】
本発明の貧栄養食品の微生物試験方法は、従来の試験方法で行っていた微生物のコロニー数での微生物汚染状態の判定に変えて、ＡＴＰ法で測定される相対発光量で微生物汚染状態を判定する判定工程を含む。そして、ＡＴＰ法では、微生物数の増大に比例して相対発光量が大きくなるが、少ない微生物数であっても相対発光量を測定できる。したがって、本発明では、微生物汚染状態を確認するために、従来のように貧栄養食品から採取した試料を培地で長時間培養して微生物数を増大させる必要がない。その結果、本発明では、微生物汚染状態の判定に要する時間を短縮できる。
【００１６】
一方、従来の試験方法においては、規定の培地上で増殖しない微生物が、食品内に混入していた場合でも試験時には検出されなかった。酵母エキスを含有する貧栄養食品の保温の際に生じた微生物の増殖状態のバラツキが、培養によって発育する微生物のコロニー数に影響を与え、微生物汚染状態の判定に影響を与えていた。しかしながら、本発明の試験方法においては、培地上で増殖させるのではなく、食品中で増殖させること、および、微生物増殖に必要となる養分を追加すること等の改善点により、混入した微生物が増殖しやすい環境を作る。また、微生物の種類に寄らず検出が可能なＡＴＰ反応試薬を用いるため、発生微生物を確実に検出できる。さらに、簡便なＡＴＰ法で相対発光量を測定するため、測定回数を考慮することによって増殖状態のバラツキの影響を少なくでき、微生物汚染状態の判定の信頼性が向上する。さらに、微生物汚染状態の判定のために相対発光量の閾値を設定することによって、微生物汚染された貧栄養食品を簡便かつ確実に取り除くことが可能となる。
【００１７】
本発明の貧栄養食品の微生物試験方法は、水分、ミネラルおよび炭水化物を所定範囲で配合した貧栄養食品において、好適に用いられる。また、液状に限らず、ゼリー状やとろみの付いた貧栄養食品においても、好適に用いられる。  
【発明の効果】
【００１８】
本発明に係る貧栄養食品の微生物試験方法によれば、培養法を用いた従来の試験方法に比べて、微生物汚染状態を迅速に判定でき、微生物汚染状態の判定日数を削減できる。それによって在庫の圧縮、管理の簡便化が期待できる。また、微生物汚染状態がより正確に示され、信頼性の更なる向上が期待できる。
【図面の簡単な説明】
【００１９】
【図１】菌数と相対発光量の相関を示し、その相関直線を記載した図である。
【発明を実施するための形態】
【００２０】
本発明に係る貧栄養食品の微生物試験方法（以下、貧栄養食品を製品、微生物試験方法を試験方法と称することがある）の実施形態について、詳細に説明する。
本発明の試験方法は、添加工程と、保温工程と、測定工程と、判定工程と、を含むものである。
【００２１】
（添加工程）
添加工程は、微生物増殖時に必要とされる栄養分を酵母エキスとして貧栄養食品に添加する工程である。酵母エキスの添加量は、最終濃度が０．２〜０．６Ｗ／Ｖ％となるように調整することが好ましい。酵母エキスの添加濃度が０．２Ｗ／Ｖ％未満であると微生物数の増加が期待し難く、酵母エキスの添加濃度が０．６Ｗ／Ｖ％を超えても微生物数の著しい増加が現れず、過剰な酵母エキスを含有することとなり、コスト高となる。
【００２２】
使用される酵母エキスは、特に限定されないが、ＹＥＡＳＴ ＥＸＴＲＡＣＴ,ＢＤ社製の酵母エキス、オリエンタル酵母社製のパン酵母エキス、和光純薬工業社製の粉末酵母エキスＳＨ等が好適に使用される。これらの酵母エキスから１０Ｗ／Ｖ％程度の水溶液を作製し、適切な濃度になるように添加される。また、酵母エキスに加えて、その他の栄養素が適宜添加されても良い。
【００２３】
（保温工程）
保温工程は、製品の微生物汚染を後記する工程で測定、判定するために、製品を所定条件で保温して、製品に混入した微生物（細菌または真菌）を増殖させる（微生物数を増加させる）工程である。
【００２４】
保温工程での保温条件としては、細菌の菌汚染を確認する際は３２〜３７℃で６日以上、真菌の菌汚染を確認する際は２０〜２５℃で６日以上が好ましい。保温温度または保温日数が下限値未満であると菌数が検出限界に達する菌数まで増殖する前に測定されてしまい、試験の結果が偽陰性となる危険性がある。また、保温時間の減少によって保温場所や管理工数の削減が期待される為、過剰に保温日数を設定することが不適であることは言うまでもない。
【００２５】
（測定工程）
測定工程は、製品の相対発光量をＡＴＰ法で測定する工程である。ここで、ＡＴＰ法とは、微生物内のＡＴＰを抽出し、そのＡＴＰに応じて試薬を発光させ、その相対発光量が微生物内のＡＴＰ量（微生物数）と比例することに基づいて、微生物汚染を測定する方法である。そして、試薬の相対発光量は、微生物の種類に寄らず、少ない微生物数であっても測定可能であるため、多様な微生物について、微生物数の少ない初期段階で微生物汚染を測定できることに特徴がある。ＡＴＰ法では、具体的には、ルシフェラーゼおよびＡＴＰ（微生物内）の存在下でルシフェリンを酸化させ、その酸化によって生じる発光の量を測定する。このようなＡＴＰ法には、市販のルミテスターＣ−１００Ｎ、ルシフェールＡＴ１００（販売元：キッコーマンバイオケミファ株式会社）が好適に使用される。
【００２６】
（判定工程）
判定工程は、前記測定工程で測定した相対発光量で製品の微生物汚染状態を判定する工程である。そして、相対発光量が２００ＲＬＵで以下あるときに、製品に微物汚染がないと判定し、かつ、相対発光量が２００ＲＬＵを超えるときに、製品が微生物汚染されていると判定する。このように、製品の微生物汚染状態を判定するために、相対発光量に閾値を設定することによって、微生物汚染された製品を取り除くことが可能となる。
【００２７】
また、判定工程では、相対発光量が１５０ＲＬＵ以下であるときに製品に微生物汚染がないと判定し、かつ、相対発光量が１５０ＲＬＵを超えるときに、製品が微生物汚染されていると判定することがさらに好ましい。このように、相対発光量の閾値を２００ＲＬＵよりも小さい値に設定することにより、微生物汚染状態の判定の信頼性が向上する。この時の閾値の設定は培養法に基づいて微生物数を測定し、同サンプルをＡＴＰ法において相対発光量を測定して相関性を計算することからも求められる。このとき、両測定値から相関直線を求め、検出限界が計算される。検出限界以上であれば、培養法に対してＡＴＰ法は信頼性があるとされる。さらに、培養法で微生物汚染状態が確認できるサンプルを用いてブランク測定を行い、閾値を設定する手法でも良く、これはより事実を反映した閾値と考えられる。
【００２８】
（貧栄養食品）
つぎに、本発明の試験方法において、貧栄養食品とは、水分およびミネラルを含有し、蛋白質、脂質量の含有量が非常に低量に抑えられた栄養組成物である。また、本発明の試験方法に好適に使用される貧栄養食品は、熱量：２０〜３０ｋｃａｌ、質量：１００〜４００ｇ、比重：１．００〜１．２０、ｐＨ：４．０未満である。また、貧栄養食品は、その形態がゼリー状またはとろみのついた半固形食品であっても良い。貧栄養食品は、容器等に充填された状態にあるものも含まれ、その場合、食品を予め加熱殺菌した後に無菌的に容器に充填する方法、および、容器に充填した後に容器ごと加熱殺菌される方法の何れも採用可能である。
【００２９】
前者の場合には、食品中に直接水蒸気を吹き込むスチームインジェクション式や食品を水蒸気中に噴射して加熱するスチームインフュージョン式等の直接加熱方法や、表面熱交換機器を用いる間接加熱方法によって加熱殺菌された食品がアセプティック充填法等で容器内に充填される。いずれの加熱条件も１３０〜１５０℃、２〜１２０秒程度の加熱処理が好ましい。
【００３０】
後者の場合には、レトルト法、ボイル殺菌法などが用いられる。レトルト法による殺菌は１１０℃〜１２５℃、４〜３０分程度の加熱条件が好ましく、ボイル殺菌法ではｐＨ４．６以下の貧栄養食品においては７０〜９５℃、５〜２０分程度の加熱処理が好ましい。また、加熱殺菌は必要に応じて窒素などの不活性ガス雰囲気内で行うこともできる。
【００３１】
貧栄養食品を充填する容器としては特に限定されないが、患者が摂取しやすい形態が好ましく、プラスチック、ペットボトル、カート缶、テトラパック等の紙容器、またはアルミパウチ、金属缶などが挙げられる。
【００３２】
使用する容器の素材としては、可逆化塩化ビニル樹脂、ポリウレタン系樹脂、ポリエチレン（ＰＥ）系樹脂、ポリプロピレン（ＰＰ）系樹脂、エチレン−酢酸ビニル（ＥＶＡ）共重合体、エチレン−α−オレフィン共重合体等の各種ポリオレフィン樹脂、ポリフルオロカーボン、ポリイミド等の軟質合成樹脂かあげられ、これらにより形成された密封型で、加熱殺菌可能な軟質容器が好適である。
【００３３】
また、容器の内側面側にポリエチレンなどの合成樹脂また紙にアルミ箔などをラミネートした素材により形成された容器も用いることができ、とくにアセプティック充填法に好適とされる。
【００３４】
その他にも医療用容器等とされる樹脂も適宜選択されており、ポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）、ポリエチレンナフタレート（ＰＥＮ）、エチレン・ビニルアルコール共重合体（ＥＶＯＨ）、ポリ塩化ビニリデン（ＰＶＤＣ）、ポリアクリロニトリル、ポリビニルアルコール、ポリアミド、ポリエステル等のガスバリア性樹脂層や、アルミ箔、アルミ蒸着フィルム、酸化珪素皮膜、酸化アルミ皮膜等のガスバリア性を有する層をフィルムの層成分として貧栄養食品の容器として用いられている。
【００３５】
貧栄養食品（以下、製品と称することがある）の栄養素について、説明する。
【００３６】
（水分）
水分の配合量は、製品１００ｇ当たり、９０．０〜９９．０ｇが好ましい。ゼリー状やとろみの付けられた貧栄養食品の場合には、滑らかで喉越しがよく飲みやすいため体力低下した患者やお年寄りにも好適であるが、水分の配合量が製品１００ｇ当たり９０．０ｇ未満であると、製品を滑らかに調整することが難しくなる。水分配合量は食品全体の栄養素比率、液粘度、浸透圧をそれぞれ最適に保つべく調整される。患者や症状に応じて適宜設定された食品とすると良い。
【００３７】
（ミネラル）
ミネラルとしては、ナトリウム、カリウム、カルシウム、マグネシウムおよびリン等が挙げられ、これらの１種でもよいし、２種以上を組み合わせてもよい。ミネラルの配合量は、製品１００ｇ当たり、１ｍｇ以上が好ましい。これらのミネラルが適宜添加されることによって、体内での水分の吸収効率が向上し、より良い。
【００３８】
ミネラルの配合比としては、１００ｇあたり、ナトリウムは５〜６０００ｍｇ、好ましくは１０〜３５００ｍｇ、カリウムは１〜３５００ｍｇ、好ましくは２５〜１８００ｍｇ、マグネシウムは１〜７４０ｍｇ、好ましくは２５〜３００ｍｇ、カルシウムは１０〜２３００ｍｇ、好ましくは２５０〜６００ｍｇ、リンは１〜３５００ｍｇ、好ましくは２０〜１５００ｍｇの範囲が適当である。
【００３９】
本発明の試験方法に使用される好適な貧栄養食品は、前記栄養素に加えて、微量元素、ビタミンをさらに含有することが好ましい。上記の通り、使用時に他栄養食品と組み合わされて使用する場合を考慮すると、微量元素、ビタミンは必ずしも添加されなくても良い。
【００４０】
（微量元素）
微量元素としては、鉄、銅、亜鉛、マンガン、セレン、ヨウ素、クロム、およびモリブデン等が挙げられる。
【００４１】
微量元素の配合比としては、製品１００ｇ当たり、鉄は０．１〜５５ｍｇ、好ましくは１〜１０ｍｇ、銅は０．０１〜１０ｍｇ、好ましくは０．１〜６．０ｍｇ、亜鉛は０．１〜３０ｍｇ、好ましくは１〜１５ｍｇ、マンガンは０．０１〜１１ｍｇ、好ましくは０．１〜４ｍｇ、セレンは０．１〜４５０μｇ、好ましくは１〜３５μｇ、クロムは０．１〜４０μｇ、好ましくは１〜３５μｇ、ヨウ素は０．１〜３０００μｇ、好ましくは１〜１５０μｇ、モリブデンは０．１〜３２０μｇ、好ましくは１〜２５μｇの範囲が適当である。
【００４２】
（ビタミン）
ビタミンとしては、ビタミンＢ１、ビタミンＢ２、ビタミンＢ６、ビタミンＢ１２、ビタミンＣ、ナイアシン、パントテン酸、葉酸、ビチオン、ビタミンＡ、ビタミンＥ、ビタミンＤ、ビタミンＫ等が挙げられる。
【００４３】
ビタミンの配合比としては、製品１００ｇ当たり、ビタミンＢ１は０．１〜４０ｍｇ、好ましくは０．３〜２５ｍｇ、ビタミンＢ２は０．１ｍｇ〜２０ｍｇ、好ましくは０．３３〜１２ｍｇ、ビタミンＢ６は０．１〜６０ｍｇ、好ましくは０．１〜１０ｍｇ、ビタミンＢ１２は０．１〜１００μｇ、好ましくは０．６〜６０μｇ、ナイアシンは１〜３００ｍｇＮＥ、好ましくは３．３〜６０ｍｇＮＥ、パントテン酸は０．１〜５５ｍｇ、好ましくは１．６５〜３０ｍｇ、ビオチンは１〜１０００μｇ、好ましくは１４〜５００μｇ、葉酸は１０〜１０００μｇ、好ましくは６０〜２００μｇ、ビタミンＣは１０〜２０００ｍｇ、好ましくは２４〜１０００ｍｇ、ビタミンＡは１０〜３０００μｇＲＥ、好ましくは１３５〜６００μｇＲＥ、ビタミンＤは０．１〜５０μｇ好ましくは１．５〜５．０μｇ、ビタミンＥは０．１〜８００ｍｇ、好ましくは２．４〜１５０ｍｇ、ビタミンＫは０．５〜１０００μｇ、好ましくは２〜７００μｇの範囲が適当である。上記の通り、貧栄養食品は他栄養食品と併用される場合も考慮して処方されることが望ましく、適宜調整されると良い。
【００４４】
なお、前記した各種のミネラルは、無機塩または有機塩として配合され、例えば、塩化ナトリウム、塩化カリウム、クエン酸カリウム、グルコン酸カルシウム、塩化マグネシウム、リン酸三カルシウム、クエン酸鉄、グルコン酸銅、グルコン酸亜鉛、等が挙げられる。微量元素については、高濃度の微量元素培地を用いて培養された酵母等の微生物を利用した微量元素含有微生物菌体、例えばマンガン酵母、セレン酵母、モリブデン酵母、クロム酵母などを用いても良い。
【００４５】
本発明の試験方法に使用される好適な貧栄養食品は、前記栄養素に加えて、炭水化物をさらに含有することが好ましい。
【００４６】
（炭水化物）
炭水化物は、糖質とおよび食物繊維からなる。糖質としては、澱粉、加工澱粉、デキストリン、乳糖、ショ糖、グルコース、フルクトース、マルトース、粉飴等が挙げられ。これらの１種でもよいし、２種以上を組み合わせてもよい。炭水化物の配合量は、製品１００ｇ当たり、１．０〜３．０ｇが好ましい。炭水化物の配合量が製品１００ｇ当たり１．０ｇ未満であると、炭水化物による栄養効果を挙げることが難しくなる。また、炭水化物の配合量が多くなりすぎると製品を滑らかに調整することが難しくなるという問題がある。さらに、本試験対象の貧栄養食品の使用の際に想定される、他栄養食品との併用について、組み合わせにより栄養素過多となることを防止するため、比較的低濃度とすることが望ましい。
【００４７】
また、貧栄養食品は、製品の栄養効果の妨げにならない範囲で、必要に応じて、ｐＨ調整剤、酸味料、乳化剤、香料、スクラロース、アセスルファムカリウム等の甘味料を配合してもよい。製造方法は、特に限定される必要はなく、上記に説明した組成に基づいて適宜製造が選択され、製造される。
【実施例】
【００４８】
つぎに、本発明の試験方法の実施例について、説明する。
＜実験１：微生物汚染のない状態の確認試験＞
表１に示す栄養素からなる貧栄養食品を調製し、試料を作製する。まず調合水を８０℃以上に加温し、炭水化物、ミネラルを添加する。熱水を添加して全量を調整した後、均一な状態となるまで溶解分散させた。この溶液を２００ｍＬずつ口栓付きのアルミパウチに充填し、９０℃で１０分間の容器殺菌処理を行い、試料１Ａとした。この試料１Ａ５００ｍｌを１０００ｍｌの耐熱ビン（１２１℃で２０分間加熱滅菌したもの）に入れ、さらに酵母エキス（ＢＤ社製）２０ｍｌ（最終濃度０．４Ｗ／ｖ％）を添加した。なお、酵母エキスは、酵母エキス１０ｇを１００ｍｌの純水に溶解後、１２１℃で２０分間加熱滅菌したものを使用した。
【００４９】
つぎに、酵母エキスを含有した試料１Ａ：５００ｍｌについて、細菌確認用として３５℃で６日間保温し、真菌確認用として２３℃で６日間保温した。保温後の試料１Ａ〜３Ａの各々から０．１ｍｌを採取して、以下の分析装置、測定キットを用いてＡＴＰ法で相対発光量を測定した。その結果を表２に示す。
（分析装置）
ルミタスターＣ−１００Ｈ（販売元：キッコーマンバイオケミファ株式会社）
（測定キット）
ルシフェーノールＡＴ１００（販売元：キッコーマンバイオケミファ株式会社）
【００５０】
なお、保温後の試料１Ａの細菌数を確認するため、試料１Ａについて１ｍｌを標準寒天培地と混釈し、混釈後の培地を３５℃で６日間培養した。培養後、発育したコロニー数を計測し、細菌の菌数（１ｍｌ当たりに換算）を求めた。その結果を表２に示す。また、保温後の試料１Ａの真菌数を確認するため、試料１Ａ：１ｍｌをＰＤＡ培地と混釈し、混釈後の培地を２３℃で６日間培養した。培養後、発育したコロニー数を計測し、真菌の菌数（１ｍｌ当たりに換算）を求めた。その結果を表２に示す。
【００５１】
【表１】
2014200179.tif 000002
【００５２】
【表２】
2014200179.tif 000003
【００５３】
表２の結果から、相対発光量が２００ＲＬＵ以下の試料１Ａは、微生物汚染のない状態であることが確認できた。
【００５４】
＜実験２：微生物汚染のある状態の確認＞
実験１で用いた試料１Ａに、以下の手順で調製した菌懸濁液０．５ｍｌを接種した（試料１Ｂ）。つぎに、接種後の試料１Ｂの菌数が３０〜３００個／ｍｌになるように段階希釈した。
（菌懸濁液の調製）
細菌として乳酸菌（菌種：Lactobacillus plantarum NBRC 3070）を使用し、真菌として酵母（菌種：Saccharomyces cerevisiae NBRC 0565）を使用した。乳酸菌は標準寒天培地上で３５℃、２４時間発育させたものから、酵母はＰＤＡ培地上で２３℃、２４時間発育させたものから各々１白金耳（菌数：約１０７個）取り、１０ｍｌ滅菌生理食塩水に懸濁した。
【００５５】
保温、接種、稀釈後の試料１Ｂについて、実験１と同様にして、６日間保温して、保温後の試料１Ｂについて、ＡＴＰ法で相対発光量を測定した。その結果を表３に示す。
また、保温、接種、稀釈後の試料１Ｂの乳酸菌および酵母の菌数を確認するため、実験１と同様にして培養して、培養後の試料１Ｂの菌数（１ｍｌ当たりに換算）を求めた。その結果を表３に示す。
【００５６】
【表３】
2014200179.tif 000004
【００５７】
表３の結果から、相対発光量が２００ＲＬＵを超える試料１Ｂは、微生物汚染がある状態であることが確認された。
よって、表２、３の結果から、本発明の試験方法、すなわち、貧栄養食品を所定条件で６日間保温後、ＡＴＰ法で相対発光量を測定する方法においては、相対発光量：２００ＲＬＵを閾値として微生物汚染状態の判定が可能であることが確認できた。
従来の試験方法においては、貧栄養食品を７日間保温後にさらに培養を５日間行って、培養後、発育したコロニー数を計測して、微生物汚染状態の判定を行っている。したがって、本発明の試験方法においては、製品の保温後に所定の培養を行う必要がないため、微生物汚染状態の判定日数を短縮できることが確認された。
【００５８】
次に、酵母エキスを含有した試料１Ａに乳酸菌および酵母を１白金耳接種し、乳酸菌は３２〜３７℃、酵母は２０〜２５℃で約２４〜４８時間培養した液を同じ接種した製品で段階希釈して、ＡＴＰ法及び混釈法（培養法）で相対発光量および菌数を求め、横軸（Ｘ軸）に菌数の対数、縦軸（Ｙ軸）に相対発光量（ＲＬＵ）の対数を取り、各菌数（繰り返し３回平均）における相対発光量（繰り返し３回平均）をプロットして菌数と相対発光量の相関直線を求めた。図１に、試料１Ａの乳酸菌における相関直線を示す。求めた相関直線から相対発光量の検出限界を以下の式で算出した。
検出限界＝（３．３×σ）／相関直線の傾き
ここで、σは、測定された相対発光量の標準偏差とする。そして、試料１Ａの乳酸菌における検出限界は１０（ＲＬＵ）、酵母における検出限界は１０（ＲＬＵ）であった。
【００５９】
図１の通り、菌数とＡＴＰ法で測定した相対発光量とは相関性が高く、設定された条件下では貧栄養食品におけるＡＴＰ法は有効な微生物試験方法であることが確認された。また、相関直線から算出した検出限界は、実験１で求めた微生物汚染のない状態での相対発光量よりも低値であった。本測定の範囲内において検出範囲が十分であり、測定法として問題ないことが確認された。
【図１】
2014200179.tif 000005