(57)【要約】【課題】治療薬送達のための可溶性疎水性コア担体組成物、およびその製造・使用方法の提供。【解決手段】本発明は、（i）直鎖高分子主鎖、（ii）直鎖高分子主鎖に共役的に結合し吊り下がった複数の親水性高分子保護鎖、および（iii）直鎖高分子主鎖に共役結合し吊り下がった少なくとも1つの疎水性部分を有する、可溶性の疎水性コア担体組成物に関連する。特定の実施例では、担体中の疎水性部分に対する親水性保護鎖の重量比は少なくとも15:1である。他の実施例では、高分子主鎖残基の少なくとも90％が親水性高分子保護鎖または疎水性部分に結合している。他の実施例では、組成物はさらに（iv）担体の疎水性部分に解離結合した疎水性負荷分子を有する。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
本願明細書に記載された発明。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
相互参照
本出願は米国特許出願第11/971,482号（2008年1月9日出願）の利益を主張し、その出願は参照により本書に組み込まれる。
【０００２】
政府認可権
本書に記載された研究は一部、国立糖尿病・消化器病・腎臓病研究所（National  Institute  of  Diabetes  and  Digestive  and  Kidney  Diseases、NIDDK）から授与された政府支援5  R43  DK069727により行なわれた。米国政府は本書に記載された表題の件について一定の権利を持つ場合がある。
【背景技術】
【０００３】
発明の背景
生理的に活性なペプチドおよびタンパク質の投与のための新薬、製剤および他のシステム、および他の疎水性薬剤または治療薬の開発は、望ましい生理的効果の達成ニーズによって推進される。ペプチドおよびタンパク質は血液中および胃腸管内で不安定であることが観察されており、そのため送達前に安定化または保護し、胃腸管または循環器系内でも引き続き保護する必要がある場合がある。活性医薬品が一旦、体循環に入ると、低分子量のものは腎臓を経て体循環から効率的に排除されるために、生物学的半減期が短い傾向がある。さらに、単球／マクロファージによる認識により、または補体成分によるオプソニン化の結果として、それらの一部分も網内系吸収を介して排除され得る。それらはまた、プロテアーゼまたは他の酵素により生体内で活性を失い得る。
【０００４】
既存の薬物送達システムは、ある程度これらの望ましくない効果を回避し、生体内でのペプチドおよびタンパク質送達に有用であり得るが、記載のように一定の欠点がある。まず、ポンプによる薬物の連続的体内注入が利用できる。この戦略は、臨床診療において効率的であることが証明されているが、高い移動レベルを必要とする外来患者にとっては実用的でない場合があり、生活の質および静脈（I.V.）ラインの感染の可能性という不利益を伴う。
【０００５】
次に、ペプチドおよびタンパク質は、例えば望ましい放出速度で薬物を拡散させる膜を持つカプセルから成る埋め込み型ポンプに含めることができる。これらのカプセルの容量は限られているため、ペプチドおよびタンパク質はしばしば濃縮製剤として使用され、このため凝集による溶解性の喪失および特定活性の喪失の可能性が生じる。ほとんどの場合、薬物は通常、細胞外空間に放出されリンパ管に分布する。ペプチドまたはタンパク質の全体的濃度は、局所リンパ節活性および埋め込み部位のリンパ節廃液効果の影響を受ける場合がある。また、カプセル材料への宿主反応の可能性もあるが、一般的にこの副作用はそれほど頻繁ではない。
【０００６】
第三に、この薬物送達システムは、例えば高分子基質、粒子または膜小胞（リポソーム）などの生分解性薬物送達媒体または担体へのカプセル化または包含により、生分解性にすることができる。これらの送達システムは通常、埋め込み可能か注入可能である。埋め込み可能な薬物送達システムは、周囲細胞の生物活性によって（すなわち、これらのインプラントを結び付けている化学結合を分解する酵素の放出によって）システムの成分が通常ゆっくりと分解する部位の皮下にしばしば配置される。
【０００７】
ポリリシンおよび他のポリアミノ酸は、過去にリン脂質基の付加により変化を起こされ、DNAトランスフェクションに使用されている（非特許文献１および非特許文献２）。ポリリシンはまた、ポリエチレングリコールなどの親水性基、保護基（非特許文献３）、およびさまざまな糖類（非特許文献４および非特許文献５）の付加によっても変化を引き起こしているが、明確な疎水部分はない。さらに、さまざまな薬物（非特許文献６）およびトランスフェリンなどの標的残基（非特許文献７）、アシアロ糖タンパク質（非特許文献８）およびモノクローナル抗体（非特許文献９）がポリリシンと抱合されている。
【０００８】
Bogdanovらの特許文献１では、高分子担体、高分子担体に結合した保護鎖、担体または担体と保護鎖に結合したレポーター基、および可逆的に結合したPt（II）化合物を含む、診断用の生体適合性グラフト共重合体付加物を開示している。
【０００９】
Bolotinの特許文献２では、両側に2つの金属結合分子が並ぶ金属架橋を含む生体適合性グラフト共重合体を開示しており、ここで金属結合分子の1つは、治療薬の一部となっているか、またはこれに共有結合している。  架橋は、担体と結合可能な治療薬を結合する。
【００１０】
Uchegbuの特許文献３では、MPEG、脂肪酸およびコレステロールでグラフト化されたポリリシンを含むポリアミノ酸小胞を開示している。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１１】
【特許文献１】米国特許第5,871,710号明細書
【特許文献２】米国特許第7,138,105号明細書
【特許文献３】米国特許第6,576,254号明細書
【非特許文献】
【００１２】
【非特許文献１】Zhou,  X  H  et  al  (1991)  Biochem.  Biophys.  Acta  1065:  8-14
【非特許文献２】Zhou,  X  h,  Huang  L  (1994)  Biochem.  Biophys  Acta  1189:  195-203
【非特許文献３】Dash  P  R,  et  al  (1997)  J.  Contr.  Rel.  48:  269-276
【非特許文献４】Kollen  W  J  W,  et  al,  (1996)  Human  Gene  Ther.  13:  1577-1586
【非特許文献５】Erbacher  P,  et  al  (1997)  Biochimica  Biophysica  Acta  1324:  27-36
【非特許文献６】Hudecz  F.  et  al  (1993)  Bioconjugate  chemistry  4:  25-33
【非特許文献７】Wagner,  E  (1994)  Adv.  Drug  Delivery  Rev.  14:  113-135
【非特許文献８】Chowdhury,  N  R  et  al  (1993)  J.  Biol.  Chem.  268:  11265-11271
【非特許文献９】Chen,  J  B  et  al  (1994)  Febs  Lett  338:  167-169
【発明の概要】
【課題を解決するための手段】
【００１３】
本発明は、例えば、以下を提供する：
（項目１）
可溶性の疎水性コア担体組成物であって：
（i）直鎖高分子主鎖、
（ii）約400〜約20,000ダルトンの間の分子量を有し、上記高分子主鎖に共役結合し、吊り下がっている複数の親水性高分子保護側鎖、および
（iii）上記高分子主鎖に共役結合し吊り下がっている少なくとも1つの疎水性部分を有し、
上記親水性高分子保護側鎖と上記疎水性部分の重量比は、上記組成物が水に溶解するように選択される組成物。
（項目２）
上記親水性高分子保護側鎖と上記疎水性部分の重量比が少なくとも15:1、少なくとも17:1、少なくとも20:1、少なくとも50:1、または少なくとも100:1である、項目1に記載の組成物。
（項目３）
上記高分子主鎖の残基の少なくとも90％が親水性保護鎖または疎水性部分で誘導体化されている、項目1に記載の組成物。
（項目４）
上記保護側鎖がポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール、ポリエチレングリコール共重合体、ポリプロピレングリコール共重合体、多糖類、またはそのアルコキシ誘導体を含有する、項目1に記載の組成物。
（項目５）
上記アルコキシ誘導体がメトキシポリエチレングリコール、メトキシポリプロピレングリコール、メトキシル化共重合体ポリエチレングリコールおよびポリプロピレングリコール、またはエトキシ化多糖体である、項目4に記載の組成物。
（項目６）
上記直鎖高分子主鎖がポリリシン、ポリアスパラギン酸、ポリグルタミン酸、ポリセリン、ポリトレオニン、ポリシステイン、ポリグリセロール、天然サッカリド、アミノ化多糖類、アミノ化オリゴ糖、ポリアミドアミン、ポリアクリル酸、ポリアルコール、スルホン化多糖類、スルホン化オリゴ糖、カルボキシル化多糖類、カルボキシル化オリゴ糖、アミノカルボキシル化多糖類、アミノカルボキシル化オリゴ糖、カルボキシメチル化多糖類、およびカルボキシメチル化オリゴ糖から成るグループから選択される、項目1に記載の組成物。
（項目７）
さらに以下を含有する項目1に記載の組成物：
（iv）上記主鎖の上記疎水性部分に解離結合した負荷分子。
（項目８）
上記親水性保護側鎖がメトキシポリエチレングリコールを含む、項目7に記載の組成物。
（項目９）
上記高分子主鎖がポリリシンを含む、項目8に記載の組成物。
（項目１０）
上記疎水性部分が脂肪酸を含む、項目9に記載の組成物。
（項目１１）
上記負荷分子が治療薬である、項目10に記載の組成物。
（項目１２）
上記治療薬が疎水性ペプチド、疎水性タンパク質、または疎水性薬物である、項目11に記載の組成物。
（項目１３）
上記治療薬がGLP-1である、項目11に記載の組成物。
（項目１４）
上記治療薬がGLP-2、レプチン、膵島アミロイドポリペプチドおよび血管作動性腸管ペプチドから選択される、項目11に記載の組成物。
（項目１５）
上記直鎖高分子主鎖がポリリシンである、項目7に記載の組成物。
（項目１６）
上記疎水性部分が、6炭素脂肪酸から36炭素脂肪酸の範囲から選択された脂肪酸を含む、項目7に記載の組成物。
（項目１７）
上記疎水性部分が少なくとも1つの二重結合を持つ脂肪酸を含む、項目7に記載の組成物。
（項目１８）
複数の脂肪酸を含む部分を有する、項目7に記載の組成物。
（項目１９）
上記疎水性部分が芳香環を含む部分を有する、項目7に記載の組成物。
（項目２０）
上記治療薬が疎水性ペプチド、疎水性タンパク質、および疎水性薬物である、項目7に記載の組成物。
（項目２１）
上記治療薬がGLP-1、GLP-2、レプチン、膵島アミロイドポリペプチドおよび血管作動性腸管ペプチドから選択される、項目7に記載の組成物。
（項目２２）
上記保護側鎖に共有結合した標的分子をさらに含む、項目7に記載の組成物。
（項目２３）
上記標的分子が、抗体、抗体断片、キメラ抗体、レクチン、受容体リガンド、タンパク質、酵素、ペプチド、サッカリド、酵素の擬似基質、細胞表面結合化合物、および細胞外基質結合化合物から成るグループから選択される、項目22に記載の組成物。
（項目２４）
上記疎水性部分に共有結合した第二の一連の保護鎖をさらに含む、項目7に記載の組成物。
（項目２５）
上記負荷分子が治療薬である、項目7〜24に記載の任意の1つの組成物を含む医薬組成物。
（項目２６）
組成物製造方法であって：
（a）pH  7〜8の水性緩衝液中の遊離アミノ基を含有する残基を含む高分子主鎖を溶解して溶液Aを取得し、
（b）pH  3〜7の酸性緩衝液中、カルボジイミド試薬と混合することにより、保護鎖カルボキシル基またはアルキルカルボキシル基を活性化して溶液Bを取得し、
（c）溶液Bを溶液Aに加えて、共有結合した保護鎖を持つ高分子主鎖を含み、pHが7以上である溶液Cを得るステップを有する方法。
（項目２７）
組成物製造方法であって：
（a）保護鎖に共有結合した高分子主鎖を含有する成分を第三アミンを含む非水溶媒に溶解し、ここで高分子主鎖は遊離アミノ基を含む残基を含むが、これにより溶液Eを取得し、
（b）遊離カルボキシル基を含む疎水性分子を非水溶媒に溶解し、カルボジイミド試薬を加えてカルボキシル基を活性化して溶液Fを取得し、
（c）溶液Fを溶液Eに加えて溶液Gを得て、活性化カルボキシル基と遊離アミン基との  間に共有結合を形成するが、ここで、少なくとも90％の残基が保護鎖または疎水性基に結合するまで、溶液Eを溶液Gに加えるステップを有する方法。
（項目２８）
組成物製造方法であって：
（a）保護鎖に共有結合した高分子主鎖を含む成分をｐH  7〜9の部分的水性溶媒に溶解し、ここで高分子主鎖は遊離アミノ基を含有する残基を含むが、これにより溶液Eを取得し、
（b）遊離カルボキシル基を含有する疎水性分子をpH  3〜7の部分的水性溶媒に溶解し、カルボジイミド試薬を加えてカルボキシル基を活性化して溶液Fを取得し、
（c）混合物のpHを7〜8に保ちながら、溶液Fを溶液Eに加えて溶液Gを取得し、活性化カルボキシル基と遊離アミン基との間に共有結合を形成するが、ここで、少なくとも90％の残基が保護鎖または疎水性基に結合するまで、溶液Eを溶液Gに加えるステップを有する方法。
（項目２９）
組成物負荷方法であって：
（a）以下を含む可溶性の疎水性コア担体組成物を、水性または部分的水性溶媒Aに溶解するステップを有する方法：（i）直鎖高分子主鎖、（ii）分子量は約400〜約20,000ダルトンの間であり、高分子主鎖に共役結合し吊り下がっている複数の親水性高分子保護鎖、（iii）親水性高分子保護側鎖と疎水性部分の重量比は、組成物が水に溶解するように選択され、これによって溶液Aが得られる高分子主鎖に共役結合し吊り下がっている少なくとも1つの疎水性部分。
（b）負荷分子を水性または部分的水性溶媒に溶解して、溶液Bを取得し、
（c）溶液Aを溶液Bに混合して溶液Cを取得し、溶液Cを30分以上インキュベートして凍結乾燥または溶媒蒸発し、適切な溶媒に溶解することができる負荷担体を取得するステップを有する方法。
（項目３０）
被験者に治療用分子を投与する方法であって：
以下を含む組成物を被験者に投与する方法：
（i）直鎖高分子主鎖、
（ii）分子量は約400〜約20,000ダルトンの間であり、高分子主鎖に共役結合し、吊り下がっている複数の親水性高分子保護側鎖、
（iii）高分子主鎖に共役結合し吊り下がっている少なくとも1つの疎水性部分、
（iv）主鎖の疎水性部分に解離結合した治療用分子、
ここで、親水性高分子保護側鎖と疎水性部分の重量比は、組成物が水に溶解するように選択される。
（項目３１）
上記組成物が皮下または筋肉内投与される、項目30に記載の方法。
（項目３２）
医薬品組成物であって：
（a）以下を含む組成物：
（i）直鎖高分子主鎖、
（ii）分子量は約400〜約20,000ダルトンの間であり、高分子主鎖に共役結合し、吊り下がっている複数の親水性高分子保護側鎖、
（iii）高分子主鎖に共役結合し、吊り下がっている少なくとも1つの疎水性部分、
（iv）主鎖の疎水性部分に解離結合した治療用分子、
ここで、親水性高分子保護側鎖と疎水性部分の重量比は、組成物が水に溶解するように選択される組成物と、
（b）薬学的に許容される担体、
とを有し、組成物は単位用量形態である組成物。
発明の概要
本発明は、新規薬物送達システムおよびその製造・使用方法に向けたものである。本発明は、持続放出能力があり、安全で、生体適合性があり、既知の化学および化合物から容易に作成され、その放出速度を単純なメカニズムにより容易に調整でき、ペプチド、タンパク質および他の疎水性薬物などさまざまな治療薬に適している治療薬用送達システムを提供することを目的としている。本発明は、反復ユニット（残基と呼ばれる）でできた直線状高分子主鎖（骨格）を持つ新しい保護グラフト高分子担体を提供し、残基は好ましくは30〜500の間で、修飾可能な官能基（アミノ、カルボキシ基、水酸基、硫黄、およびリン酸塩など）を持ち、少なくとも1つの疎水性部分と高分子主鎖から吊り下がった複数の親水性保護基を、組成物が水中で溶解する重量比および皮下送達ができるサイズで含むように修飾される。多数の保護基は、負荷分子が解離による放出の前に担体表面にさらされないように保護するための盾の役割を果たす。
【００１４】
本発明は、患者の体内の疎水性ペプチド、疎水性タンパク質および疎水性薬物を、小胞を使用せずに制御された方法で送達する手段を提供する。制御された方法とは、循環中の活性治療用分子のレベルが、望ましい期間、毒性レベルを超えたり治療効果のあるレベルを下回ったりしないことを意味する（図7参照）。循環中の遊離負荷分子のレベルが治療効果レベルを下回った時に、本発明の担体が遊離して活性な治療薬、またはさらに広い意味では「負荷分子」を放出する能力は容易に調整することができる。本発明の担体は、アルキル鎖がより一般的に使用される疎水性部分の長さ、数および密度を制御することにより、高負荷能力を持ちかつ放出速度が調整可能なように作成し得る。放出速度は、担体のサイズによっても制御できる。本発明の担体は、担体の免疫原性のより高いコアを遮る複数の非免疫原性保護鎖が存在するため、安全で非免疫原性である。
【００１５】
一態様では、この発明は可溶性の疎水性コア担体組成物を提供し、以下を含む：（i）直鎖高分子主鎖、（ii）各保護側鎖は約400〜約20,000ダルトンの間の分子量を有し、高分子主鎖に共役結合し、吊り下がっている複数の親水性高分子保護鎖、（iii）高分子主鎖に共役結合し吊り下がっている少なくとも1つの疎水性部分であって、親水性高分子保護側鎖と疎水性部分の重量比は、組成物が水に溶解するように選択される。1つの実施例では、親水性高分子保護側鎖と疎水性部分の重量比は少なくとも15:１、少なくとも17:1、少なくとも20:1、少なくとも50:1、または少なくとも100:1である（表2参照）。別の実施例では、高分子主鎖の残基の少なくとも90％が、親水性保護鎖または疎水性部分のいずれかで誘導体化されている。別の実施例では、保護側鎖は、ポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール、ポリエチレングリコール共重合体、ポリプロピレングリコール共重合体、多糖類、またはそのアルコキシ誘導体を有する。別の実施例では、アルコキシ誘導体は、メトキシポリエチレングリコール、メトキシポリプロピレングリコール、メトキシル化共重合体ポリエチレングリコールおよびポリプロピレングリコール、またはエトキシ化多糖体である。別の実施例では、直鎖高分子主鎖は、ポリリシン、ポリアスパラギン酸、ポリグルタミン酸、ポリセリン、ポリトレオニン、ポリシステイン、ポリグリセロール、天然サッカリド、アミノ化多糖類、アミノ化オリゴ糖、ポリアミドアミン、ポリアクリル酸、ポリアルコール、スルホン化多糖類、スルホン化オリゴ糖、カルボキシル化多糖類、カルボキシル化オリゴ糖、アミノカルボキシル化多糖類、アミノカルボキシル化オリゴ糖、カルボキシメチル化多糖類、およびカルボキシメチル化オリゴ糖から成るグループから選択される。
【００１６】
別の態様において、この発明は前述の可溶性の疎水性コア担体組組成物を提供し、さらに主鎖の疎水性部分に解離結合した負荷分子を含む。1つの実施例では、親水性保護側鎖はメトキシポリエチレングリコールを含有する。1つの実施例では、親水性保護側鎖はメトキシポリエチレングリコールを含有し、高分子主鎖はポリリシンを含有する。別の実施例では、親水性保護側鎖はメトキシポリエチレングリコールを含有し、高分子主鎖はポリリシンを含有し、疎水性部分は脂肪酸を含有する。別の実施例では、親水性保護側鎖はメトキシポリエチレングリコールを含有し、高分子主鎖はポリリシンを含有し、疎水性部分は脂肪酸を含有し、負荷分子は治療薬である。1つの実施例では、治療薬は疎水性ペプチド、疎水性タンパク質、または疎水性薬物である。別の実施例では、治療薬はGLP-1である。別の実施例では、治療薬はGLP-2、レプチン、膵島アミロイドポリペプチドおよび血管作動性腸管ペプチドから選択される。
【００１７】
別の態様において、この発明は、前述の可溶性の疎水性コア担体組組成物を提供し、直鎖高分子主鎖がポリリシンであるところの主鎖の疎水性部分に解離結合している負荷分子を含む。1つの実施例では、疎水性部分は、炭素数6〜36の脂肪酸から選択された脂肪酸を含有する。別の実施例では、疎水性部分は、少なくとも1つの二重結合を持つ脂肪酸を含有する。別の実施例では、疎水性部分は、複数の脂肪酸を含む部分を有する。別の実施例では、疎水性部分は、芳香環を含む部分を有する。
【００１８】
一部の実施例では、溶解性を促進し、または親水性保護鎖と疎水性部分の重量比が15:1を上回るようにし、それによって小胞形成および析出が回避されるように、担体は、疎水性部分に共有結合する第二の保護鎖を任意に含む。
【００１９】
さまざまな実施例では、負荷分子は治療薬または造影剤である場合がある。1つの実施例では、治療薬は疎水性ペプチド、疎水性タンパク質、または疎水性薬物である。別の実施例では、治療薬は、治療薬はGLP-2、レプチン、膵島アミロイドポリペプチド（IAPP、アミリンとしても知られる）および血管作動性腸管ペプチド（VIP）であり得る。1つの実施例では、治療薬は疎水性ポリヌクレオチド、疎水性ペプチド、疎水性タンパク質、または疎水性薬物である場合がある。疎水性ペプチド／タンパク質は、ペプチドアプタマー、グルカゴン様ペプチド、グルカゴン様ペプチド誘導体、エクセナチド、レプチン、レプチン断片、ペプチドYY、α-メラノサイト刺激ホルモン、アジポネクチン、オベスタチン、胃抑制ポリペプチド（GIP）、上皮成長因子（EGF）受容体リガンド、EGF、形質転換成長因子-α（TGF-α）、ベタセルリン、ガストリン／コレシストキニン受容体リガンド、ガストリン、コレシストキニン、インターフェロン、インターフェロンγ、インターフェロンβ、インターフェロンα、インターロイキン-1、インターロイキン-2、インターロイキン-4、インターロイキン-6、インターロイキン-8、インターロイキン-10、インターロイキン-12、腫瘍壊死因子、腫瘍壊死因子α、腫瘍壊死因子β、インスリン、インスリン様成長因子、成長ホルモン、神経成長因子、脳由来神経栄養因子、酵素、エンドスタチン、アンジオスタチン、トロンボスポンジン、ウロキナーゼ、ストレプトキナーゼ、血液凝固因子VII、血液凝固因子VIII、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（GM-CSF）、顆粒球コロニー刺激因子（G-CSF）、トロンボポエチン、カルシトニン、副甲状腺ホルモン（PTH）およびその断片、エリスロポエチン、心房性ナトリウム利尿因子、モノクローナル抗体、モノクローナル抗体断片、ソマトスタチン、プロテアーゼ阻害剤、副腎皮質刺激ホルモン、ゴナドトロピン放出ホルモン、オキシトシン、黄体形成ホルモン放出ホルモン、卵胞刺激ホルモン、グルコセレブロシダーゼ、トロンボポエチン、フィルグラスチン、テリプレシン、および血管作動性腸管ペプチド（VIP）である場合がある。
【００２０】
さらなる実施例では、本発明は、保護基の遠位端に共有結合した標的部分をさらに含む前述の組成物すべてに関連する。標的部分は、抗体、抗体の断片、キメラ抗体、レクチン、受容体リガンド、タンパク質、酵素、ペプチド、サッカリド、酵素の擬似基質、細胞表面結合化合物、および細胞外基質結合化合物である場合がある。
【００２１】
別の態様では、この発明は、負荷分子が治療薬であって、上記の組成物から選択された任意の1つの組成物を含む医薬組成物を提供する。
【００２２】
別の態様では、この発明は組成物の製造方法を提供し、以下の方法を含む：（a）pH  7〜8の水性緩衝液に遊離アミノ基から成る残基を含む高分子主鎖を溶解して溶液Aを得て、（b）pH  3〜7の酸性緩衝液中、カルボジイミド試薬と混合することにより、保護鎖のカルボキシル基またはアルキルカルボキシル基を活性化して溶液Bを得て、（c）溶液Bを溶液Aに加えて、そのpHが7以上で、共有結合した保護鎖を持つ高分子主鎖を含む溶液Cを得る。
【００２３】
別の態様では、この発明は組成物の製造方法を提供し、以下の方法を含む：（a）保護鎖に共有結合した高分子主鎖を有する成分を、第三アミンを含む非水溶媒に溶解し、ここで高分子主鎖は遊離アミノ基から成る残基を有するが、これにより溶液Eを得て、（b）非水溶媒に、遊離カルボキシル基を含む疎水性分子を溶解して、カルボジイミド試薬を添加することによりカルボキシル基を活性化して溶液Fを得て、（c）溶液Fを溶液Eに加えて溶液Gを得て、活性化されたカルボキシル基と遊離アミン基の間に共役結合を形成するが、ここで溶液Eは、少なくとも残基の90％が保護鎖または疎水性基に結合されるまで溶液Gに加えられる。
【００２４】
別の態様では、この発明は組成物の製造方法を提供し、以下の方法を含む：（a）保護鎖に共有結合した高分子主鎖を有する成分をpH  7〜9の部分的水性溶媒に溶解し、ここで高分子主鎖は遊離アミノ基から成る残基を有するが、これにより溶液Eを得て、（b）pH  3〜7の部分的水性溶媒に、遊離カルボキシル基を含む疎水性分子を溶解して、カルボジイミド試薬を添加することによりカルボキシル基を活性化して溶液Fを得て、（c）混合物のpHを7〜8に保ちながら溶液Fを溶液Eに加えて溶液Gを得て、活性化されたカルボキシル基と遊離アミン基の間に共役結合を形成するが、ここで溶液Eは、少なくとも90％の残基が保護鎖または疎水性基に結合されるまで溶液Gに加えられる。
【００２５】
別の態様では、この発明は組成物の負荷方法を提供し、以下の方法を含む：（a）以下から成る可溶性の疎水性コア担体組成物を、水性または部分的水性溶媒Aに溶解する：（i）直鎖高分子主鎖、（ii）各保護側鎖は約400〜約20,000ダルトンの間の分子量を有し、高分子主鎖に共有結合し、吊り下がっている複数の親水性高分子保護鎖、（iii）高分子主鎖に共有結合し吊り下がっている少なくとも1つの疎水性部分、ここで親水性高分子保護側鎖と疎水性部分の重量比は、組成物が水に溶解するように選択されるが、これにより溶液Aを調製する。（b）負荷分子を水性または部分的水性溶媒に溶解して溶液Bを調製し、（c）溶液Aと溶液Bを混合して溶液Cを調製し、溶液Cを30分間以上インキュべートしてその後凍結乾燥または溶媒蒸発して、適切な溶媒に溶解する準備のできている負荷担体を得る。
【００２６】
別の態様では、この発明は、被験者に治療分子を投与する方法を提供するが、これは以下から成る組成物を被験者に投与することを含む：（i）直鎖高分子主鎖、（ii）各保護側鎖は約400〜約20,000ダルトンの間の分子量を有し、高分子主鎖に共役結合し吊り下がっている親水性高分子保護鎖、（iii）高分子主鎖に共役結合し吊り下がっている少なくとも1つの疎水性部分、（iv）親水性高分子保護側鎖と疎水性部分の重量比は、組成物が水に溶解するように選択され、主鎖の疎水性部分に解離結合した治療分子。1つの実施例では、組成物は皮下または筋肉内投与される。
【００２７】
別の態様では、この発明は医薬組成物を提供し、組成物は以下を含む：（a）以下を含む組成物：（i）直鎖高分子主鎖、（ii）各保護側鎖は約400〜約20,000ダルトンの間の分子量を有し、高分子主鎖に共役結合し、吊り下がっている親水性高分子保護鎖、（iii）高分子主鎖に共役結合し吊り下がっている少なくとも1つの疎水性部分、（iv）親水性高分子保護側鎖と疎水性部分の重量比は、組成物が水に溶解するように選択され、主鎖の疎水性部分に解離結合した治療分子、（b）組成物は単位用量形態である薬学的に許容される担体。
【図面の簡単な説明】
【００２８】
【図１】図1は、本発明の疎水性コア組成物の1つの実施例の略図を示す：直鎖高分子主鎖、高分子主鎖に共有結合した保護側鎖、高分子コアに共有結合した疎水性部分、および直径3nmの疎水性負荷分子。担体の大きさも、これは4nm糸球体ろ過カットオフよりも大きいが、担体および疎水性負荷分子は一緒でもこのカットオフを下回ることを強調するために示されている。以下はタンパク質およびその直径の例である：siRNA（直径  <  3nm）、水和アルブミン（直径  =  7.2nm）、水和成長ホルモン（直径  =  3nm）、糸球体ろ過直径  <  4nm、β-2マクログロブリン（直径  =  3.2nm）、ミオグロビン（直径  =  3.9nm）、ヘモグロビン（直径  =  6.5nm）、γグロブリン（直径  =  11.1nm）、およびベンス・ジョーンズタンパク質（直径  =  5.5nm）。
【図２】図2は、本発明の組成物を作るために有用なアミド結合を作るためのさまざまな化学反応の略図を示す。R1は疎水性分子であり得、R2はポリリシンまたはポリリシンPEGであり得る。または、R1はPEGカルボキシルであり得、R2はポリリシン、疎水性分子ポリリシンであり得る。また、R1はポリグルタミン酸またはポリアスパラギン酸であり得、R2はPEGアミン、疎水性分子（C6〜C36のアルキルアミンなど）であり得る。R1はポリグルタミン酸PEGまたはポリアスパラギン酸PEGであり得、R2はアルキルアミンであり得る。EDCはDCCの水溶性バージョンで、両方とも反応を行うために使用することができる。
【図３】図3は、イソチオシアネート、サクシニイミジルエステル、またはスルホニルクロリドなどの官能基を含む担体（R1）に疎水性アミン（R2）を結合するさまざまな化学反応の略図を示す。担体R1は任意の主鎖ポリマーでよい。ポリマーR1は、ポリグルタミン酸、ポリアスパラギン酸、ポリグルタミン酸PEGまたはポリアスパラギン酸PEGであり得る。
【図４】図4は、PEG保護基、その類似体または誘導体を、アミノ基を含む高分子主鎖に付加するために使用できる化学反応の一部を示す。
【図５】図5は、アルデヒドPEG誘導体を、アミノ基を含む高分子主鎖に付加するために使用できる化学反応の一部を示す。これらは2段階の縮合‐還元反応である（aとb）。
【図６】図６は、PEG保護基、その類似体または誘導体を、水酸基を含む高分子主鎖に付加するために使用できる化学反応の一部を示す。
【図７】図7は、自然半減期が20分の血中の仮想遊離疎水性負荷分子（ペプチド、タンパク質または疎水性薬物）である。担体がないと、疎水性負荷分子の濃度に著しい変動がある。担体があると、疎水性負荷分子は治療濃度に維持される。担体のnM濃度は、半減期20時間で減少する。A）本発明の担体なしで1日3回5mg/kgを注射した時の疎水性負荷分子レベル、この負荷分子の血中半減期は20分である、B）負荷分子を持つ担体の半減期は20時間である、C）担体によって維持される遊離負荷分子の治療レベル。
【図８】図8は、PLPEG（ポリリシン・ポリエチレングリコール共重合体）のアミノ基/mgの量とポリリシンの％アミノ基飽和との間の理論上および実際の関係を示すグラフである。これはPLPEGの組成物の二次的確認として非常に有用である。このポリエチレングリコール化プロセスは完全に再生可能で、TNBSアミノ基分析を反応中のフィードバックガイドとして使用して、望ましい％のポリエチレングリコール化が達成されるまで反応を継続することによって合成中に調整可能である。収率は出発物質の約50〜80%（5〜8gr）である。理論的予想は以下の式を用いて計算された：X=  [100x(C--Y)]/5YC+C]、ここでXは飽和％、YはTNBSで決定されたPLPEGグラム当たりのmmol  NH2、CはTNBSで決定されたPL（ポリリシン）のグラム当たりのNH2のmmolである。式中の5YC中の5は、使用されたPEGのサイズ（このケースでは5  kDa）を表し、従って5YCである。10  kDa  PEGが使用された場合、これは10  YCとなる。一旦PLPEG生成物が生成されると、ポリリシンのアミノ基の飽和パーセントは、最終生成物の単一TNBS分析によってさらに確認されて、Yが決定され、それからXを計算できるため、これは有用である。
【図９】図9  これらは100  kDa  MWCO膜（Amersham  Biosciences、マサチューセッツ州ニーダム）を通した、浄化前後の反応生成物のゲルろ過クロマトグラムで、すべての未反応PEGが除去されていることを示す。使用されたカラムはUltrahydrogel  linear（0.78  x  30cm,  Waters)で、流速0.6ml/分で15%アセトニトリルを含んだPBSで溶出された。物質は屈折率検出器を用いて検出した。パネルAは、未反応の5  kDa  PEGの浄化前の20PLPEG555（20  kDaポリリシン、アミノ基の55％は分子量5  kDaのコハク酸PEGと反応した）である。パネルBは5  kDa  PEGのみである。パネルCは、浄化後の20PLPEG555である。
【図１０】図10  これらは既知のストークス半径のタンパク質を持つさまざまな担体のストークス半径である。これらは、Ultrahydrogel  Linearカラム（直径0.78cm  x  長さ30cm）で、移動相に15％アセトニトリルを含むPBSを使って流速0.6ml/分で分析された。20PL-PEG555（20  kDaポリリシンでアミノ基の55％は分子量5  kDaのコハク酸PEGと反応した）、40PL-PEG530（40  kDaポリリシンで、アミノ基の30％は分子量5  kDaのコハク酸PEGと反応した）、40PL-PEG551（40  kDaポリリシンで、アミノ基の51％は分子量5  kDaのコハク酸PEGと反応した）、および40PL-PEG527（40  kDaポリリシンで、アミノ基の27％は分子量5  kDaのコハク酸PEGと反応した）は、直径が4nm（40オングストローム)（または半径20オングストローム）を上回る糸球体ろ過カットオフより大きい。チログロブリン（669  kDa、ストークス半径85.5オングストローム）、カタラーゼ（248  kDa、ストークス半径52.2オングストローム）、およびBSA（67  kDa、ストークス半径35.5オングストローム）を含む、既知のストークス半径を持つタンパク質が参照として使用された。
【図１１】図11  20  kDaポリリシン主鎖を有する担体へのドキソルビシンHC1の結合について、アミノ残基の55％は5  kDaコハク酸MPEGに共有結合されており、残りはステアリン酸で飽和されていた。担体の10mg/ml（30uM）にさまざまな濃度のドキソルビシンを負荷する。この特定の担体はドキソルビシンと結合するが、結合の親和性は強くなかった。スキャッチャードプロットを使用した場合、見かけ上のKdは315uMである。本発明の目的で強いとみなすにはKdは100uM未満でなければならないので、これは強い結合とは見なされない。ドキソルビシンの相対的親水性は、他の試験負荷分子と比較した逆相HPLCカラムの保持時間（以下表3）から明らかである。
【図１２】図12  20  kDaポリリシン主鎖を有する担体へのノシセプチンの結合について、アミノ残基の55％は5  kDaコハク酸MPEGに共有結合されており、残りはステアリン酸で飽和されていた。担体の10mg/ml（30uM）に0.2mg/m1（111uM）のノシセプチンを負荷する。この特定の担体はノシセプチンと結合するが、結合の親和性は強くなかった。その親水性および、同一の逆相HPLCカラム（SynergiMaxRP  4x20mm、Phenomenex）でのGLP-1の保持時間（2.5分、下記表3参照）と比較したHPLCの早い保持時間（1.43分、下記表3参照）と一致する結合はほとんど見られない。カラムは流速1.5ml/分で、溶媒AからBへのグラジエント（1〜5分でBを25〜50%）を使用して溶出された。ここで、Aは0.1%トリフルオロ酢酸（TFA）/5  %アセトニトリルを含む水であり、溶媒Bは0.1%  TFAを含むアセトニトリルである。
【図１３】図13  20  kDaポリリシン主鎖を有する担体への膵島アミロイドポリペプチドまたはIAPPの結合について、アミノ残基の55％は5  kDaコハク酸MPEGに共有結合されており、残りはステアリン酸で飽和されていた。担体の10mg/ml（30uM）にさまざまな量のIAPPを負荷する（方法については例9を参照）。この担体は強い親和性でIAPPと結合し、担体と共に投与された時の、IAPPまたはその誘導体の血液循環半減期を延長させるのに有用である。スキャッチャードプロットで分析すると、結合は900nMのKdを持つ。逆相HPLCの保持時間に基づいたIAPPの相対的疎水性を以下の表3に示す。
【図１４】図14  20  kDaポリリシン主鎖を有する担体へのテルリプレシンの結合について、アミノ残基の55％は5  kDaコハク酸MPEGに共有結合されており、残りはステアリン酸で飽和されていた。担体の10mg/ml（30uM）にさまざまな量のテルリプレシンを負荷する（方法については例9参照）。この担体のテルリプレシンとの結合親和性は強くない。逆相HPLCの保持時間に基づいたテルリプレシンの相対的疎水性を以下の表3に示す。
【図１５】図15  20  kDaポリリシン主鎖を有する担体への血管作動性腸管ペプチド（VIP）の結合について、アミノ残基の55％は5  kDaコハク酸MPEGに共有結合されており、残りはステアリン酸で飽和されていた。担体の10mg/ml（30uM）にさまざまな量のVIPを負荷する（方法については例9を参照）。この担体は強い親和性でVIPと結合し、担体と共に投与された時の、VIPの血液循環半減期を延長させるのに有用である。以下の表3に示されるように、逆相HPLCの保持時間に基づいたVIPの相対的疎水性はヒト成長ホルモンよりも大きくない。成長ホルモンが強い親和性で担体と結合しなかったのに対し、疎水性のより低いVIPが強い親和性で結合したことは驚きである。さらなる調査によると、脂質（またはおこらく本発明の担体）の存在下、中性pHでは、VIPは疎水性αへリックス構造をより多くとる。このようなポリペプチドは、酸性HPLC条件では、この一般的傾向に従わないので、予測性を向上するには中性の非変性HPLC条件で分析する必要がある。
【図１６】図16  20  kDaポリリシン主鎖を有する担体への組み換えヒト成長ホルモン（hGH）の結合について、アミノ残基の55％は5  kDaコハク酸MPEGに共有結合されており、残りはステアリン酸で飽和されていた。担体の10mg/ml（30uM）にさまざまな量のhGHを負荷する（方法については例9参照）。この担体のhGHとの結合親和性は強くない。
【図１７】図17  20  kDaポリリシン主鎖を有する担体へのレプチンの結合について、アミノ残基の55％は5  kDaコハク酸MPEGに共有結合されており、残りはステアリン酸で飽和されていた。担体の33mg/ml（10uM）にさまざまな量のレプチンを負荷する（方法については例9を参照）。担体はレプチンと強い親和性で結合し、スキャッチャードプロットで分析した時、結合のKdは700nMである。この担体は、担体と共に投与された時のレプチンの血液循環半減期を延長するのに有用である。
【図１８】図18  PEGタプシン酸生成物および開始アミノPEGの薄層クロマトグラフィー分析。TLC移動相は、5:1ジクロロメタン／メタノールである。固定相はアルミニウムシート上のシリカゲル60  F254である。TLCはブロモクレゾールブルーおよびニンヒドリンで染色した。ブロモクレゾールブルーはPEGを持つ物質を青く染色する。5KアミノPEG（s.m.）のRf  =  0.76、生成物タプシン酸・アミノPEG共役体（脂肪PEG、生成物）=  0.63。開始物質および生成物は両方ともブロモクレゾールブルーで染色され、5KアミノPEGはニンヒドリンで陽性染色されるが、生成物は染色されない。
【図１９】図19  不溶性担体は皮膚壊死を生じるが、可溶性担体は生じない。不溶性担体（A）にPEGを脂肪酸重量比10未満で加えたもの、および可溶性担体（B）にPEGを脂肪酸重量比10以上で加えたものを皮下注射した後3週間のラットの皮膚の写真を示す。Aの矢印は、皮下注射された米国特許第6,576,254号の不溶性組成物15mgは3週間後に壊死を起こす（矢印A）ことを示すが、本発明の可溶性担体の類似量を投与された動物では壊死は見られない（矢印B）。
【図２０】図20  処方VIP（VIPを2重量%含む20PLPEG555C18）皮下投与後の血中総VIP。処方に使用された20PLPEG555C18は20  kDaポリリシンで、アミノ基の55％は5  kDa分子量のコハク酸PEGと反応し、残りのアミノ基はステアリン酸またはC18と反応した。単独投与されたVIPの排出半減期はわずか数分であるのに対し（グラフでは見えない）、処方VIPの半減期は20時間を超える。オスのウィスター系ラットに、リン酸緩衝生理食塩水中、1mg  VIPのみまたは20PLPEG555C18処方（N=7）で1mg  VIPを皮下注射した。所定時間に尾から採血し、プロテアーゼ阻害剤カクテルを添加した（Calbiochem、カタログ番号539131、カリフォルニア州ラホーヤ）。総VIP（20PLPEG555C18結合および非結合）をPeninsula社（カリフォルニア州サンカルロス）のElisaキットで測定し、ラット血清のバックグラウンド信号をすべてのデータ点から差し引いた。
【発明を実施するための形態】
【００２９】
発明の詳細な説明
定義
便宜上、本発明をさらに説明する前に、明細書、例および添付の請求項に使用される特定の用語をここに収集する。これらの定義は、本開示の残りを踏まえて読まれるべきであり、当業者により理解されるべきである。別に定義されない限り、本書に使用される技術的・科学的用語はすべて、当業者によって一般的に理解されている意味と同じ意味を持つ。
【００３０】
「a」および「an」という冠詞は、記事の文法的目的語の1つまたは複数（すなわち、少なくとも1つ）を指すために使用される。例としては、「a  protective  chain（保護鎖）」は、１つの保護鎖または複数の保護鎖を意味する。
【００３１】
「アプタマー」という用語は、特定の折り畳みを通して特定の標的分子に結合するオリゴ核酸またはペプチド分子を意味する。本発明の実施例の1つは、疎水性部分を持つ担体を提供して、疎水性ペプチドアプタマーを送達するものである。アプタマーは通常、大きなランダム配列から選択することにより作成されるが、天然アプタマーもリボスイッチに存在する。アプタマーは、基礎研究と臨床目的の両方で高分子薬物として使用され得る。アプタマーは、リボザイムと組み合わせて、その標的分子の存在下、自己開裂させることができる。これらの化合物分子には、追加的な研究、産業および臨床的用途がある。アプタマーは、一般的に使用されている生体分子つまり抗体に匹敵する分子認識特性を示すため、バイオテクノロジーおよび治療用途の利用が可能である。これは、認識部位を作る特定の折り畳みを通して可能となる。この折り畳みは、担体への結合によって妨げらる可能性があるが、担体から一旦離れると再折り畳みが起こり、生物学的または治療的に活性な正しい折り畳みを持つアプタマーを提供する。その判別認識に加えて、アプタマーは試験管内で完全に設計でき、化学合成で容易に製造され、好ましい保存特性を持ち、治療用途において免疫原性をほとんどまたは全く生じないため、抗体よりも利点がある。アプタマーは、その本質的に低い分子量の結果、主に分解と腎臓による体内からのクリアランスによって数分から数時間の半減期で血流中から迅速に排除される。ペプチドアプタマーは、細胞内の他のタンパク質相互作用を妨げるために設計されたタンパク質である。それらは、タンパク質主鎖の両端に付属したさまざまなペプチドループから成る。この二重構造の制約は、ペプチドアプタマーの結合親和性を、抗体に匹敵するレベル（ナノモルの範囲）まで大きく増加させる。可変ループ長は、一般に10〜20のアミノ酸を含み、主鎖は良好な溶解性（本発明の目的では、好ましくは疎水性）およびコンパクトな特性を持つ任意のタンパク質であってよい。これらのペプチドアプタマーは、疎水性相互作用によって本発明に負荷できるよう疎水性を増加させるため、脂肪酸を含むように作ることができる。アプタマーは、本発明の担体に負荷される時、保護鎖シールドの高い密度によって分解から保護される。
【００３２】
本書では「誘導体」または「類似体」という用語は、そのコア構造が、親化合物のコア構造と同様または非常に類似しているが、異なる基または付加的基など、化学的または物理的変化があるものを指す。この用語はまた、親ペプチドと少なくとも50％の配列同位性（すなわちアミノ酸代用物は50％未満）があるものも含む。この用語はまた、親ペプチドと比べて、元の親ペプチドの質量を超えない脂肪酸および／またはアミノ酸などの付加的基が結合されたペプチドも含む。この用語はまた、保護基の場合ではアルコシキ基など、親ポリマーと比べて、追加的な基が結合しているポリマーも含む。この用語はまた、親化合物の保護鎖と比べて、付加的メトキシまたはエトキシ基がそれに結合しているメトキシ化またはエトキシ化された保護鎖も含む。
【００３３】
本書では「疎水性部分」という用語は、非極性で、周りの水環境を避けるために負荷分子が相互作用する疎水性環境を提供する主鎖に結合した分子または分子部分を指す。疎水性部分は、正または負の電荷を持たず、疎水性相互作用により分子に結合できる脂肪族炭化水素鎖および／または環状化合物である場合がある。疎水性部分は、一般に水素と炭素およびわずかな酸素と窒素から成る分子の部分である。疎水性部分は、相互結合した6個以上の炭素を持つ1つの分子の連続的な単一部分である場合があり、この部分に結合した窒素と酸素の合計数は炭素原子数の3分の1以下である。また、当然ながら疎水性部分は、高分子主鎖とは別のものとして見なされ、例えば、高分子主鎖がポリアミノ酸である場合、本発明ではポリアミノ酸上の天然R基は疎水部分としては見なされない。例えば、疎水性部分は、アミン基からのアミド生成でポリリシン主鎖に付加される場合がある。
【００３４】
本書では「負荷分子」という用語は、担体に高い親和性で結合する任意の分子（親和定数（Ka）が0.01百万／モルより大きいか、または解離定数（Kd）が100マイクロモルより小さいもの）で、担体に負荷できるものを含む。親和定数または解離定数は、当業者なら容易に確認できる。本発明の目的では、これらの負荷分子には、疎水性ペプチド（50以下のアミノ酸）、疎水性タンパク質（50を超えるアミノ酸）、疎水性部分を追加したまたは負電荷のポリリン酸主鎖を中性化する薬剤を追加したポリヌクレオチド（RNA、DNAまたはその類似体）、および他の疎水性分子が含まれる。
【００３５】
本書では「非タンパク性ポリアミノ酸」という用語は、ヒトによる遺伝子組み換えで作られない限り、生物によって自然には作られないポリアミノ酸を指す。これらの非限定的例は、ポリ-(Lおよび／またはD)-リシン、ポリ-(Lおよび／またはD)-グルタミン酸、ポリ-(Lおよび／またはD)-グルタミン酸、ポリ-(Lおよび／またはD)-アスパラギン酸、ポリ-(Lおよび／またはD)-セリン、ポリ-(Lおよび／またはD)-トレオニン、ポリ-(Lおよび／またはD)-チロシン、およびポリ-(Lおよび／またはD)-アルギニンである。また非タンパク性ポリアミノ酸には、天然にはないが、保護基および/またはオリゴヌクレオチドの結合用の修飾可能な反復官能基（30〜1000の官能基）を提供できる、カルボキシル、アミノ、水酸基またはチオール基を含む、R基を持ったポリアミノ酸も含まれる。非タンパク性ポリアミノ酸は、本発明の可能性のある主鎖成分に含まれる。
【００３６】
本書では「親水性保護側鎖」という用語は、この鎖への水の過剰な連結または結合による他の高分子との接触から担体コアと負荷分子を保護する分子を指す。水分子とのこの過剰な結合のため、保護鎖も組成物の水への溶解度を増加させる。保護基は著しい電荷を持たないが、水溶性である。一般的に、この基は非免疫原性である。これはまた、保護鎖が組成物に親水性特性を提供することも意味する。「保護側鎖」という用語は、「保護基」および「保護鎖」という用語と同じ意味で使用される。本組成物の保護鎖は、ポリオキシエチレングリコール（ポリエチレングリコールとも呼ばれる）およびその誘導体を含む。本組成物の保護鎖はまた、非荷電ポリサッカリド、およびエトキシ化またはメトキシ化ポリサッカリドなど、その誘導体も含む。この文脈では、非荷電とは鎖の本体が正または負の電荷を持たないことを意味する。
【００３７】
「標的部分」「標的分子」または「標的基」という用語は、特定の標的領域を局在化させ、標的細胞に入り、および／または標的受容体に結合する上で、組成物の構築を支援する任意の分子構造を指す。例えば、脂質（疎水性、中性、およびステロイド性脂質を含む）、抗体、抗体断片、キメラ抗体、レクチン、リガンド、受容体リガンド、糖、サッカリド、ステロイド、ホルモン、栄養素、ペプチド、タンパク質、酵素、酵素の擬似基質、細胞表面結合化合物、および細胞外基質結合化合物は、標的部分の役割を果たす場合がある。標的部分は、好ましくは、担体の保護鎖の遠位端に結合している。
【００３８】
本書では「治療薬」という用語は、生物学的、生理的、または薬理学的に活性で、被験者内で局所的または全身的に作用する任意の化学物質を指す。本発明の目的では、担体に負荷される治療薬は、疎水性ペプチドおよびタンパク質などのように疎水性であるか、または脂肪酸または芳香環などのような疎水性部分修飾を持つと理解される。著しい疎水性部分を持つか、または脂肪酸に共有結合することにより著しい疎水性部分を持つように改善され得る治療薬（「薬物」とも呼ばれる）の例には、グルカゴン様ペプチド、グルカゴン様ペプチド誘導体、エクセナチド、グルカゴン様ペプチド-1、グルカゴン様ペプチド-2、レプチン断片、胃抑制ポリペプチド（GIP）、上皮成長因子（EGF）受容体リガンド、EGF、形質転換成長因子-α（TGF-α）、ベタセルリン、ガストリン／コレシストキニン受容体リガンド、ガストリン、コレシストキニン、リソスタフィン、インターフェロン、インターフェロンγ、インターフェロンβ、インターフェロンα、インターロイキン-1、インターロイキン-2、インターロイキン-4、インターロイキン-6、インターロイキン-8、インターロイキン-10、インターロイキン-12、アウリスタチン、ニシン、インスリン、インスリン様成長因子1、成長ホルモン、成長ホルモン放出ホルモン（GHRH）、神経成長因子、脳由来神経栄養因子、酵素、エンドスタチン、アンジオスタチン、トロンボスポンジン、ウロキナーゼ、ストレプトキナーゼ、血液凝固因子VII、血液凝固因子VIII、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（GM-CSF）、顆粒球コロニー刺激因子（G-CSF）、トロンボポエチン、カルシトニン、副甲状腺ホルモン（PTH）およびその断片、エリスロポエチン、心房性ナトリウム利尿因子、モノクローナル抗体、モノクローナル抗体断片、ソマトスタチン、プロテアーゼ阻害剤、副腎皮質刺激ホルモン、ゴナドトロピン放出ホルモン、オキシトシン、黄体形成ホルモン放出ホルモン、卵胞刺激ホルモン、グルコセレブロシダーゼ、トロンボポエチン、フィルグラスチン、プロスタグランジン、エポプロステノール、プロスタサイクリン、シクロスポリン、バゾプレシン、テリプレシン、デスモプレシン、クロモリンナトリウム（クロモグリク酸ナトリウムまたはクロモグリク酸二ナトリウム）および血管作動性腸管ペプチド（VIP）が含まれる。任意の疎水性分子を上述の治療薬に結合させて、負荷を促進または担体への親和性を向上させることができる場合がある。  治療薬に結合した疎水性部分は任意の脂肪酸または他の類似物であり得る。治療薬は、非免疫原性であるが、担体の保護なしでは分解および排出の影響を受けやすい天然の疎水性ペプチドである場合がある。
【００３９】
本書では「治療効果のある量」という用語は、患者に治療上の利益を提供する組成物の量を指す。特定の実施例では、この用語は、本発明の疎水性コア担体組成物に負荷され、患者に投与された時、任意の薬物療法に適切な妥当な利益／リスク比で、いくらかの好ましい効果を生む治療薬の量を指す。効果のある量は、治療している疾患または状態、投与されている特定の構造、被験者のサイズおよび／または疾患または状態の重症度によって異なる場合がある。当業者であれば、過度の実験をすることなく、特定の化合物の治療効果のある量を経験的に決定することがある。特定の実施例では、この用語は本書に記載された表題組成物の使用に必要な量または十分な量を指す。肥満の治療では、治療効果のある量は、レプチンなど（これに限定されない）食欲および／または体重を減少させる対応する負荷分子を持つ本発明の組成物の量である。肥満の治療では、治療効果のある量は、PYYなど（これに限定されない）食欲および／または体重を減少させる対応する負荷分子を持つ本発明の組成物の量である。インスリンが不十分な糖尿病の治療では、治療効果のある量は、患者のグルコースの恒常性を改善するか、または血糖値を正常化する、および／または膵臓のβ-膵島細胞を再生する対応する負荷分子を持つ本発明の組成物の量である。β-膵島細胞の再生は、血中の血糖値、ヘモグロビンA1cレベル、Cペプチドレベル、またはインスリンレベルをモニターすることにより間接的に測定できる。
【００４０】
本発明の成分の説明
この発明は、親水性側鎖を持つ直鎖高分子主鎖または担体およびそれに付加された疎水性側鎖を有する可溶性組成物を提供する。このような組成物は、とりわけ、治療分子などの疎水性分子の担体として有用である。疎水性分子は疎水性側鎖に親和結合している。被験者への投与に際して、組成物は可溶性で、結合力学および局所濃度の関数として疎水性負荷分子を放出する。本発明の組成物は、組成物が水に溶解するような親水性側鎖と疎水性側鎖の重量比を持っており、つまり組成物は50mg/mlの濃度で水に可溶性であり、析出したり溶液が混濁することはない。一般的に、親水性側鎖の疎水性側鎖に対する重量比は少なくとも15:1である。さまざまな実施例において、重量比は17:1より大きい、20:1より大きい、25:1より大きい、50:1より大きい、または100:1より大きい。他の実施例では、重量比は15:1〜60:1、20:1〜45:1または25:1〜40:1である。
【００４１】
例8は、さまざまな長さのポリリシンおよび異なるMPEG：脂肪酸比の組成物の溶解度を示す。MPEG：脂肪酸比が14:1より大きい場合、組成物は50mg/mlの濃度で可溶性である。10.5:1〜13.7:1の比では、組成物は「部分的に可溶性」である。
【００４２】
特定の実施例では、本発明の組成物は、少なくとも4つの成分で構成されている：a）直鎖高分子主鎖、b)高分子主鎖および/または疎水性部分に共有結合した数個の親水性保護鎖、c）直鎖高分子主鎖に共有結合し吊り下がっている（主鎖の横に結合した）数個の疎水性部分、d）疎水性ペプチド（アミノ酸50個以下）、疎水性タンパク質（アミノ酸が50を超える）、または疎水性部分に解離結合した疎水性薬物。好ましい疎水性ペプチド、タンパク質および疎水性分子は、その立体構造状態の1つにおいて、以下のHPLC条件下で、保持時間が2分より長い：A逆相HPLCカラム（SynergiMaxRP;  2.5um、4x20mm;  Phenomenex）を流速1.5ml/分で溶媒AからBへのグラジエントを使用して溶出する（1〜5分でBを25〜50%）。ここでAは0.1%トリフルオロ酢酸（TFA）/5  %アセトニトリルで、溶媒Bは0.1%  TFAを含むアセトニトリルである。この条件でのGLP-1の保持時間は2.56分で、VIPは1.63分であるが、α構造の少量は2.56分で、レプチンは4.9分である。VIPは、担体にさらされた時、疎水性α構造をより多くとると考えられ、予想されたより多くの結合が生じた（以下の表2参照）。高度に疎水性でない他のペプチドおよびタンパク質は、脂肪酸を結合させることにより疎水性にすることができ、このような修飾プロセスは当技術分野ではよく知られている。本発明の保護鎖は、酵素および細胞による分解から負荷分子を守るために重要である。
【００４３】
高分子主鎖
高分子主鎖は、反復アミノ基またはカルボキシル基を持つ非タンパク性ホモまたはヘテロポリマーであり、天然または合成品であり得る。好ましくは、高分子主鎖は、DまたはLキラリティーのどちらかまたは両方を持つポリアミノ酸であり、より好ましくは直鎖のホモポリマーである。好ましい直鎖ホモポリマーには、ポリリシンとポリオルニチン、ポリアルギニン、ポリグルタミン酸、ポリアスパラギン酸、ポリセリン、ポリトレオニン、ポリチロシンまたはアミノ酸から作られた任意のアミド結合へモロポリマーを含む。直鎖ポリエチレンイミンも高分子主鎖として使用し得る。高分子主鎖がポリアミノ酸、非タンパク性であることが好ましく、これは活性に関連する三次元構造を持つ、生物によって作られたタンパク質でないことを意味する。高分子主鎖の分子量は、約600〜1,000,000、好ましくは3,000〜100,000であり得る。また、30〜1000の修飾可能な官能基を持つことが好ましい。反復するチオール基、リン酸基、および水酸基を持つものなど、他の反復する修飾可能な官能基を持つ高分子主鎖も使用し得る。炭水化物ポリマーおよび他の合成ポリマーでモノマーが非生物学的なものも、高分子主鎖として使用し得る。高分子主鎖は、疎水性鎖と親水性保護鎖が結合できる複数の部位を提供する。特定の実施例では、高分子主鎖の残基の少なくとも80％、少なくとも90％、少なくとも95％、または少なくとも99％が、親水性または疎水性側鎖で誘導化される。
【００４４】
疎水性部分
疎水性部分は、疎水性アルキル基を有することがあり、これは一般式[CxHyOz]（xは6〜36、yは2〜71、zは1〜4）で表される。z  =  1であることが好ましく、これは高分子主鎖のアミノ基とのアミド結合形成のために最低限必要である。しかし開始分子（高分子主鎖への結合前）では、アミド結合形成前にzが1より大きい場合がある。疎水性部分はまた、一般式が[-OC(CH2)xC0-]または[-OC(CH2)xCN-]（xは6〜36）の2つの末端疎水性アルキル基（一端が高分子主鎖に結合）を有する場合があり、さらに、疎水性部分の第一の末端に共有結合した保護基を持ち、第二の末端は高分子主鎖に共有結合していることがある。
【００４５】
1つの実施例では、疎水性部分の高分子主鎖への化学結合はアミド結合を含む。別の実施例では、疎水性部分の高分子主鎖への化学結合はエーテル結合を含む。別の実施例では、疎水性部分の高分子主鎖への化学結合はエステル結合を含む。別の実施例では、疎水性部分の高分子主鎖への化学結合はジスルフィド結合を含む。1つの実施例では、高分子主鎖に結合した疎水性部分は、脂肪酸から得られるアルキルアシル、または芳香族アルキル酸から得られる芳香族アルキルアシルを含み、これは一般式[CxHyOz]（xは6〜36、yは2〜71、zは1〜4）で表される。z  =  1であることが好ましいが、高分子主鎖との結合生成前は、開始分子のzは1より大きい場合がある。
【００４６】
親水性保護基または保護鎖
好ましくは「親水性保護基」または「保護鎖」は非イオン性で、分子量が約2000〜20,000、好ましくは5,000〜10,000である。組成物の保護鎖は好ましくは、エチレンオキシド（またはポリオキシエチレングリコールとも呼ばれるポリエチレングリコール）、すなわちPEGまたはポリエチレングリコールのモノメトキシエーテル（すなわちMPEG）である。以下の理由から保護鎖は有用である：1）高い薬物総重量を維持しながら組成物の溶解性を確実にする、2）負荷分子（疎水性ペプチド、疎水性タンパク質および他の疎水性治療薬）が体内の他の高分子、酵素（ヌクレアーゼおよびプロテアーゼ）および細胞と結合または相互作用するのを防ぐステアリン酸バリアの形成を保護鎖が支援する、3）保護鎖は負荷分子（疎水性ペプチド、疎水性タンパク質および疎水性薬物）の循環時間または生体内での生物学的半減期を長くし（例えば、腎臓の糸球体ろ過を減少させ、腎臓と肝臓の再吸収を減少させ、マクロファージ再吸収を低下させて）循環貯蔵庫を作る、4）保護鎖は、担体または疎水性ペプチド、疎水性タンパク質および疎水性薬物などの負荷分子の好ましくない免疫原性を減少させる、5）保護鎖は担体のサイズを増加させて、腫瘍血管の異常透過性を利用し、腫瘍または炎症部位での負荷分子を持つ担体の蓄積を助け、負荷分子または抗腫瘍化合物を腫瘍に送達するが、これは腫瘍および体内の高度血管新生領域の治療に対して特に有用である。
【００４７】
疎水性コア担体組成物の保護鎖は、ポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール、メトキシポリエチレングリコール、メトキシポリプロピレングリコール、ポリエチレングリコールとポリプロピレングリコールの共重合体、またはそのアルコキシ誘導体であり得る。保護鎖は、メトキシポリエチレングリコール、メトキシポリプロピレングリコール、またはメトキシポリエチレングリコールとメトキシポリプロピレングリコールの共重合体の中の1つであることが好ましい。保護鎖はまた、ポリエチレングリコールモノアミン、メトキシポリエチレングリコールモノアミン、メトキシポリエチレングリコールヒドラジン、メトキシポリエチレングリコールイミダゾリドまたはポリエチレングリコール二酸でもよい。保護鎖は、高分子主鎖および／または高分子主鎖から吊り下がっている疎水性部分に、好ましくは単結合で結合している。アルコキシル化は免疫原性を低減または排除し、従って改良された保護基として働くため、メトキシ化またはエトキシ化ポリサッカリドも、本発明の保護鎖として使用できる。
【００４８】
疎水性負荷分子
疎水性負荷分子は、好ましくは疎水性ペプチドとタンパク質、脂質、および疎水性薬物である。これらの中には、疎水性造影剤および疎水性治療薬が含まれる。疎水性ペプチドとタンパク質には、サイトカイン、リンフォカイン、ホルモン、および酵素が含まれる。
【００４９】
本発明の負荷分子はまた、疎水性部分を含むように誘導体化され、治療薬または天然の疎水性治療薬を含む。これらには、siRNA、アンチセンスDNA、アンチセンスRNA、グルカゴン様ペプチド、グルカゴン様ペプチド誘導体、エクセナチド、グルカゴン様ペプチド1、グルカゴン様ペプチド2、レプチン、レプチン断片、胃抑制ポリペプチド（GIP）、上皮成長因子（EGF）受容体リガンド、EGF、形質転換成長因子α（TGF-α）、ベタセルリン、ガストリン／コレシストキニン受容体リガンド、ガストリン、コレシストキニン、リソスタフィン、インターフェロン、インターフェロンγ、インターフェロンβ、インターフェロンα、インターロイキン-1、インターロイキン-2、インターロイキン-4、インターロイキン-6、インターロイキン-8、インターロイキン-10、インターロイキン-12、腫瘍壊死因子、腫瘍壊死因子α、腫瘍壊死因子β、アウリスタチン、ニシン、インスリン、インスリン様成長因子、成長ホルモン、成長ホルモン放出ホルモン（GHRH）、神経成長因子、脳由来神経栄養因子、酵素、エンドスタチン、アンジオスタチン、トロンボスポンジン、ウロキナーゼ、ストレプトキナーゼ、血液凝固因子VII、血液凝固因子VIII、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（GM-CSF）、顆粒球コロニー刺激因子（G-CSF）、トロンボポエチン、カルシトニン、副甲状腺ホルモン（PTH）およびその断片、エリスロポエチン、心房性ナトリウム利尿因子、モノクローナル抗体、モノクローナル抗体断片、ソマトスタチン、プロテアーゼ阻害剤、副腎皮質刺激ホルモン、ゴナドトロピン放出ホルモン、オキシトシン、黄体形成ホルモン放出ホルモン、卵胞刺激ホルモン、グルコセレブロシダーゼ、トロンボポエチン、フィルグラスチン、プロスタグランジン、エポプロステノール、プロスタサイクリン、シクロスポリン、バゾプレシン、テリプレシン、デスモプレシン、クロモリンナトリウム（クロモグリク酸ナトリウムまたはクロモグリク酸二ナトリウム）、血管作動性腸管ペプチド（VIP）、バンコマイシン、抗生物質、ポリミキシンb、抗真菌剤、抗ウイルス剤、エンフュービルタイド、ドキソルビシン、エトポシド、フェンタニル、ケタミン、およびビタミン類を含む。疎水性を増加させるために、治療ペプチドおよびタンパク質に結合する好ましい疎水性部分は、炭素数6〜36の脂肪酸であり、形成中に担体への負荷を促進するという意図がある。
【００５０】
各成分からの担体の化学的組み立て
高分子主鎖のアミノ基への保護鎖の結合：本発明は、保護鎖および疎水性部分をさらに有する高分子主鎖に関連する。アミノ基を含む高分子主鎖の修飾は、メトキシポリエチレングリコールを含む保護鎖のアミド共有結合である。高分子主鎖のアミノ基修飾の非限定的例は、アシルメトキシポリオキシエチレングリコール（MPEG）を有する保護鎖の結合である。疎水性鎖が付いている、または付いていない保護鎖の例は（本発明の範囲を限定することを意図しない）、アシルPEG、次の式で表されるその類似体または誘導体である：-CO(CH2)nCOOCH2CH2-A-OR3または-COCH2-A-OR3、ここでnは2〜22（疎水性部分を表す）、A（保護鎖を表す）は[OCH2CH2]xまたは[OCH2CH2]xまたは[OCHCH3CH2]x、ここでxは17〜500、または[OCH2CH2]、[OCH2CH2]および／または[OCHCH3CH2]のさまざまな組み合わせで合計ユニットは17〜500、R3はH、(CH2)pCH3または(CH2)pCOOHで、pは0〜7である。
【００５１】
本発明の別の目的は、アミノ基を含む高分子主鎖への保護鎖の結合方法を提供することである。修飾はアミド結合形成によって行うことができる。例としては（本発明の範囲を限定することを意図しない）、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)-カルボジイミドまたはジシクロヘキシルカルボジイミドなどのカルボジイミドを含む試薬を使用して、カルボキシルを含む保護鎖を高分子主鎖のアミノ基に結合することができる（図2参照）。カルボジイミド試薬は、式N=C=Nから成る官能基を含む。結合反応のプロセス中、N-ヒドロキシスクシンイミドを使ってN-ヒドロキシスクシンイミドエステルを形成することにより、活性化されたカルボキシル基（O-アシルイソウレア中間体）を安定化できる。この比較的安定な中間体は、ポリリシンまたはチトサンなどの担体のアミノ基と反応してアミノ・アシル結合またはアミド結合を形成することができる。アルデヒドを含む保護基を担体のアミノ基と反応させることにより、類似の結果を達成することもできる。このアルデヒドは、ポリリシンまたはチトサンなどの担体のアミノ基と反応してアミノ・アシル結合またはアミド結合を形成することができる。
【００５２】
高分子主鎖のカルボキシル基への保護鎖の結合：本発明は、保護鎖および疎水性部分をさらに有する高分子主鎖に関連する。カルボキシル基を含む高分子主鎖の修飾は、アミノ・メトキシポリオキシエチレングリコール（MPEG）を有する保護鎖を含むアミノ基のアミド共有結合である。例としては（本発明の範囲を限定することを意図しない）、疎水性部分を持つ、または持たない保護鎖はアミノPEGである場合があり、これは次の式で表される：-NH(CH2)nNHCOCH  2-A-OR3、-NH(CH2)nNHCO(CH2)nCOOCH2CH2-A-OR3、ここでnは2〜22（疎水性部分を表す）、A（保護基を表す）は[OCH2CH2]xまたは[OCH2CH2]xまたは[OCHCH3CH2]x、ここでxは17〜500、または[OCH2CH2]、[OCH2CH2]、および/または[OCHCH3CH2]のさまざまな組み合わせで、合計17〜500ユニット、R3はH、(CH2)pCH3または(CH2)pCOOHで、pは0〜7である。
【００５３】
本発明の別の目的は、高分子主鎖への保護鎖の結合方法を提供することである。これらの修飾はアミド結合形成によって行うことができる。例としては（本発明の範囲を限定することを意図しない）、高分子主鎖のカルボキシル基を活性化して、保護鎖のアミノ官能基と反応させることができる（図2参照）。活性化は1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)-カルボジイミドまたはジシクロヘキシルカルボジイミドなどの試薬を含むカルボジイミドを使って達成し得る。カルボジイミド試薬は、式N=C=Nから成る官能基を含む。活性化のプロセス中、カルボキシ基は、N-ヒドロキシスクシンイミドにより安定化され得るO-アシルイソウレア中間体を形成して、N-ヒドロキシスクシンイミドエステルを形成する。この比較的安定な中間体は、保護分子のアミノ基と反応できる。担体に導入する必要のある保護基または分子がアミノ基を持たない場合、この分子に非常に簡単にアミノ基を導入することができ、このプロセスは当業者には良く知られている。
【００５４】
高分子主鎖の水酸基への保護鎖の結合：本発明は、保護鎖および疎水性部分をさらに有する高分子主鎖に関連する。水酸基を含む高分子主鎖の修飾は、メトキシポリエチレングリコールを有する保護鎖とのエステルまたはエーテル結合形成である。高分子主鎖の水酸基の修飾は、アシルメトキシポリエチレングリコールを有する保護基とのエステル結合形成による。例としては（本発明の範囲を限定することを意図しない）、保護基は-COで表されるアシルまたはカルボニルを持つPEGである場合があり、担体の水酸基のOに結合してエステルを形成する。疎水性基を持つ、または持たないアシルPEGまたはその誘導体は次の式で表される：-CO(CH2)nNHCOCH2-A-OR3、-COCH2CH2-A-OR3、または-COCH2-A-OR3、ここでnは2〜22（疎水性部分を表す）、A（保護鎖を表す）は[OCH2CH2]xまたは[OCH2CH2]xまたは[OCHCH3CH2]x、ここでxは17〜500、または[OCH2CH2]、[OCH2CH2]および／または[OCHCH3CH2]のさまざまな組み合わせで合計ユニットは17〜500、R3はH、(CH2)pCH3または(CH2)pCOOHで、pは0〜7である。
【００５５】
水酸基の修飾は、保護鎖のアシルハロゲン化物の合成によって促進できる。アシルハロゲン化物の合成は、保護鎖のカルボン酸部分とジクロロスルホキシド（SOC12）または当業者に知られている他の試薬との反応によって行うことができる。結果得られるアシルハロゲン化物は、セリン、トレオニン、およびポリアミノ酸のチロシン残基を含むアルコールと反応する。反応によりエステル結合形成が起こり、基本的に保護基または分子を担体に結合する。PEGエポキシド、PEGイソシアネート、PEG-PNC（PEG-ニトロフェニルカルボキシエステル）は、水酸基を修飾してエーテル、エステルおよびウレタン結合をそれぞれ保護基と担体の間に形成するために使用され得るPEG類似体である。
【００５６】
高分子主鎖のアミノ基への疎水性部分の結合：本発明は、保護鎖および疎水性部分をさらに有する高分子主鎖に関連する。一旦、高分子主鎖が保護鎖を含むと、疎水性分子（脂肪酸など）内のカルボキシル基を活性化することにより疎水性部分を結合して、高分子主鎖の残りのアミノ酸と反応させることができる（図3参照）。本発明の別の目的は、長さに沿ったアミノ基を持つ高分子主鎖に疎水性部分を結合する方法を提供することである。例として（本発明の範囲を限定することを意図しない）、修飾は、無水脂肪酸とのアミド結合形成によっても行うことができる。別の方法は、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)-カルボジイミドまたはジシクロへキシルカルボジイミドなどのカルボジイミドを含む試薬を使用して、カルボキシル基を含む疎水性分子を活性化する方法である。カルボジイミド試薬は、式N=C=Nから成る官能基を含む。結合反応のプロセス中、N-ヒドロキシスクシンイミドを使ってN-ヒドロキシスクシンイミドエステルを形成することにより、活性化されたカルボキシル基（O-アシルイソウレア中間体）を随意に安定化できる。この比較的安定な中間体は、高分子主鎖のアミノ基と反応してアミノ・アシル結合またはアミド結合を形成することができる。代替的に、疎水性部分は、脂肪酸アシルハロゲン化物を使用してアミノ基を含む高分子主鎖に導入できる。アシルハロゲン化物の合成は、カルボン酸部分とジクロロスルホキシド（SOC12）または当業者に知られている他の試薬との反応によって行うことができる。結果得られるアシルハロゲン化物は、高分子主鎖に存在するアミノ官能基と反応する。反応によってアミド結合形成が生じ、疎水性部分または分子を高分子主鎖に結合する。
【００５７】
高分子主鎖のカルボキシル基への疎水性部分の結合：本発明は、保護鎖および疎水性部分を含むように誘導体化された、反復するカルボキシル基を持つ高分子主鎖に関連する。一旦、高分子主鎖が保護鎖を含むと（上記参照）、カルボキシル基を活性化して、アルキルアミンを含む6〜36炭素ユニットまたはその誘導体など、アミノを含む疎水性分子と反応させることにより、疎水性部分を結合することができる。代替的に、活性化された高分子主鎖は、ホスファチジルアミンまたはホスファチジルエタノールアミンなどのジアルキル疎水性分子と反応することができる。本発明の別の目的は、長さにそってカルボキシル基を持つ高分子主鎖に疎水性部分を結合する方法を提供することである。例として（本発明の範囲を限定することを意図しない）、修飾は、疎水性分子とのアミド結合形成によって行うことができる。1-エチル--3-(3-ジメチルアミノプロピル)-カルボジイミドまたはジシクロヘキシルカルボジイミドなどのカルボジイミドを含む試薬を使用して、カルボキシルを含む高分子主鎖を疎水性部分のアミノ基に結合することができる。カルボジイミド試薬は、式N=C=Nから成る官能基を含む。結合反応のプロセス中、N-ヒドロキシスクシンイミドを使ってN-ヒドロキシスクシンイミドエステルを形成することにより、活性化されたカルボキシル基（O-アシルイソウレア中間体）を随意に安定化できる。この比較的安定な中間体は、疎水性分子のアミノ基と反応してアミノ・アシル結合またはアミド結合を形成することができる。
【００５８】
高分子主鎖の水酸基への疎水性部分の結合：本発明は、保護鎖および疎水性部分をさらに有する高分子主鎖に関連する。一旦、高分子主鎖が保護鎖を含むと（上記参照）、高分子主鎖の残りの水酸基をカルボキシルを含む基にまず修飾して、無水コハク酸または他の無水物を含む分子と反応させることにより（これに限定されない）、疎水性部分を結合することができる。一旦、水酸基がカルボキシル基に変換されると、カルボキシル基を活性化して、6〜36の炭素ユニットを含むアルキルアミンまたはその誘導体などの、アミノ基を含む疎水性分子と反応させることができる。代替的に、活性化された高分子主鎖は、ホスファチジルアミンまたはホスファチジルエタノールアミンなどのジアルキル疎水性分子と反応することができる。本発明の別の目的は、長さにそって水酸基を持つ高分子主鎖に疎水性部分を結合する方法を提供することである。例として（本発明の範囲を限定することを意図しない）、修飾は、環状無水物分子とのエステル結合形成の後、疎水性分子とのアミド結合形成によって行うことができる。水酸基のカルボキシル基への修飾の後、1-エチル--3-(3-ジメチルアミノプロピル)-カルボジイミドまたはジシクロヘキシルカルボジイミドなどのカルボジイミドを含む試薬を使用して、この新しいカルボキシル高分子主鎖を疎水性部分のアミノ基に結合することができる。カルボジイミド試薬は、式N=C=Nから成る官能基を含む。  結合反応のプロセス中、N-ヒドロキシスクシンイミドを使ってN-ヒドロキシスクシンイミドエステルを形成することにより、活性化されたカルボキシル基（O-アシルイソウレア中間体）を随意に安定化できる。この比較的安定な中間体は、疎水性部分のアミノ基と反応してアミノ・アシル結合またはアミド結合を形成することができる。
【００５９】
保護基を含む疎水性分子の高分子主鎖への結合：本発明は、主鎖から吊り下がっている保護鎖、主鎖から吊り下がっている疎水性部分、および疎水性部分に共有結合している第二の保護鎖をさらに有する高分子主鎖に関連する。タプシン酸などの2つの末端を持つ疎水性分子は、アミノ基を含む保護鎖に簡単に結合できる。ほとんどの分子が1つずつ活性化されるように、タプシン酸に対して活性化の制限を行うことができる。これは、タプシン酸と比較して、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)-カルボジイミドまたはジシクロヘキシルカルボジイミドなどの、カルボジイミドを含む試薬の0.5モル当量（タプシン酸と比較して）を使用することにより行うことができる。カルボジイミド試薬は、式N=C=Nから成る官能基を含む。結合反応のプロセス中、N-ヒドロキシスクシンイミド（タプシン酸に対して1モル当量）を使ってN-ヒドロキシスクシンイミドエステルを形成することにより、活性化されたカルボキシル基（O-アシルイソウレア中間体）を随意に安定化できる。一旦活性化されて安定化されると、タプシン酸はほぼ1つずつ活性化された末端を持ち、これは次にアミノを含む保護鎖と反応させることができる。保護鎖または分子がアミノ基を持たない場合、この分子に非常に簡単にアミノ基を導入することができ、この化学は当業者には良く知られている。さまざまな実施例の組成物の合成の更なる詳細はまた、米国特許出願第11/613,183号にも見られ、これは参照により本書に組み込まれ、これに対してこの出願は優先権を主張する。
【００６０】
疎水性部分および保護基の結合に使用される化学結合のタイプは、複合体および複合体と関係する治療薬の望ましい生物学的半減期に依存する。長い半減期が望まれる場合は、アミド結合が好ましいが、短い半減期、または生体液や組織中での安定性が必要な担体に対しては、エステル結合が使用される。  特定の治療薬を送達するために望ましい安定性を達成するために、両方の化学結合の混合物を使用することができる。その治療的および診断的目的に対して利益のある担体の望ましい特性を達成するために、S-S結合を使用し得る。
【００６１】
本発明のこれらの実施例、他の実施例、ならびにその機能および特徴は、以下の説明、図、請求項から明らかとなる。
【実施例】
【００６２】
例証
合成方法の概要
本発明の疎水性コア担体は、中心の高分子主鎖、疎水性部分、保護基、および随意に疎水性部分および／または標的基を含む。各基は相互に共有結合しており、疎水性部分基は、疎水性ペプチド／タンパク質、疎水性薬物およびその誘導体などの疎水性負荷分子（治療薬または診断薬）と可逆的結合（疎水性相互作用）を形成することができる。担体と負荷分子の間の可逆的結合には、疎水性負荷分子と担体の疎水性部分との間の疎水性相互作用を含む。
【００６３】
アミノ基、カルボキシル基、水酸基、またはチオール基を含む高分子主鎖からの疎水性コア担体の合成は、一般に3つの合成ステップを伴う：1）保護鎖での主鎖の共有的修飾、2）疎水性部分でのステップ1の生成物の修飾、3）ステップ2の生成物と例えばレプチンなどの負荷分子をインキュベートし、小胞を形成することなく疎水性コア担体レプチン複合体の形成を達成する。
【００６４】
例1
MPEG-ポリ-L-リシン（5000、40,000、27%、40PLPEG527）の合成：試薬、MPEG-スクシンイミジル-コハク酸およびポリリシンは市販されており、その合成は当技術分野ではよく知られている。ポリ-L-リシン（200mg、ポリリシン臭化水素酸塩、Sigma  chemical  Co.、DPvis:264、MWvis:  55,200、DPmalls:190、MWmalls:39,800、0.7mmolesアミノ基（TNBS分析による）、Sparado  et  al.  Anal  Biochem  96:  317,  1979）を200mlの0.1M炭酸塩緩衝液pH  8.35に溶解し、1150mgのMPEG-スクシンイミジル-コハク酸（事前活性化5kDa  PEG、NOF、東京）を加えて、ボルテックスし、室温で一晩インキュベーションした。翌日、一定分量を取り、トリニトロベンゼンスルホン酸を使って残りのアミノ基を定量した（Sparado  et  al.  Anal  Biochem  96:317,  1979）。結果は73％のアミノ基が残っていることを示した。溶液（200ml）を100  kDaカットオフ膜（UFP-100-E-3A、GE-Amersham  Biosciences  Corp、マサチューセッツ州ウェストボロー）を通して、10回水を換えて超ろ過洗浄した。結果得られたPLPEG複合体を凍結乾燥して秤量したところ、収量は860mgであった。結果得られた生成物の予測分子量は310  kDaであり、これはMPEGによって誘導体化されたアミノ基の数に基づく。最終生成物のmg当たりの遊離アミノ基の数は0.43umole/mgである（図9）。
【００６５】
例2
MPEG-ポリ-L-リシン（5kDa  PEG、40kDa  PL、アミノ基の飽和55%、40PLPEG555）の合成：試薬、MPEG-スクシンイミジル-コハク酸およびポリリシンは市販されており、その合成は当技術分野ではよく知られている。40PLの1g（ポリリシン臭化水素酸塩、Sigma  chemical  Co.、DPvis:  264、MWvis:  55,200、DPmalls:190、MWmalls:39,800、1gに3.0mmolのアミノ基を含む）を190mlの200mM  HEPESに溶解した。5g（1mmol）のMPEG-スクシニルイミジル-コハク酸（事前活性化5kDa  PEG、NOF、東京）を40PL溶液に加え、反応させた。2時間後、さらに5gのMPEG-スクシニルイミジル-コハク酸を上記のように添加し、週末の間反応させた。アミノ基の含量をTNBSで測定したところ（Sparado  et  al.  Anal  Biochem  96:317,  1979）、合計1.4mmolで、アミノ基の飽和が53%であることを示していた。溶液（200ml）を100  kDaカットオフ膜（UFP-100-E-5A、GE-Amersham  Biosciences  Corp、マサチューセッツ州ウェストボロー）を通して、10回水を換えてろ過洗浄した。結果得られたPLPEG複合体を凍結乾燥して秤量したところ、収量は8.6gであった。結果得られた生成物の予測分子量は570  kDaであり、これはMPEGによって誘導体化されたアミノ基の数に基づく。最終生成物のmg当たりの遊離アミノ基の数は0.20umole/mgである（図9）。
【００６６】
例3
MPEG-ポリ-L-リシン（5kDa  PEG、40kDa  PL、アミノ基の飽和22%、40PLPEG522）の合成：試薬、MPEG-スクシンイミジル-コハク酸およびポリリシンは市販されており、その合成は当技術分野ではよく知られている。ポリ-L-リシン（200mg、ポリリシン臭化水素酸塩、Sigma  chemical  Co.、DPvis:264、MWvis:55,200、DPmalls:190、MWmalls:  39,800、0.7mmolesアミノ基（TNBS分析による）、Sparado  et  al.  Anal  Biochem  96:317,  1979）を10mlの0.2M  HEPES緩衝液pH  7.35に溶解し、500mgのMPEG-スクシンイミジル-コハク酸（事前活性化5kDa  PEG、NOF、東京）を加えて、ボルテックスし、これを繰り返して（さらに500mg）室温で一晩インキュベーションした。翌日、一定分量を取り、トリニトロベンゼンスルホン酸を使って残りのアミノ基の量を定量した（Sparado  et  al.  Anal  Biochem  96:  317,  1979）。結果は、22％のアミノ基がMPEGに共役したことを示した。溶液を100  kDaカットオフ膜（UFP-100-E-3A、GE-Amersham  Biosciences  Corp、マサチューセッツ州ウェストボロー）を通して、10回水を換えて超ろ過洗浄した。結果得られたPLPEG複合体を凍結乾燥して秤量したところ、収量は820mgであった。結果得られた生成物の予測分子量は260  kDaであり、これはMPEGによって誘導体化されたアミノ基の数に基づく。最終生成物のmg当たりの遊離アミノ基の数は0.40umole/mgである（図9）。
【００６７】
例4
20PLPEG555  DA（5kDa  MPEGカルボキシル、20kDa  PL、アミノ基の飽和55%、20PLPEG555DA）の合成。この合成に使用されたMPEGは、エステル結合を持たないカルボキシルMPEGで、MPEGとコハク酸塩との間の結合がエステル結合である上記のコハク酸エステルMPEGとは異なるエステル結合を持たない高分子主鎖への直接アミド（DA）結合を生じる。1gの20PL（P7890  Sigmaロット番号065K5101、1gに2.4mmolのアミノ基を含む）を50mlの200mM  HEPESに溶解した。15mlの10mM  MES  pH=4.7中の5g（1mmol）のMPEGカルボキシル（事前活性化したが活性の一部を失った、NOF、東京）を、250mgのNHSS（mw=217.14、1.15mmol）に続いて500mgのEDC（mw=191.71、2.6mmol）を加えることにより、再活性化した。活性化は20分間継続させる。活性化されたMPEGカルボキシルを20PL溶液に加えて反応させた。2時間後、さらに5gのMPEGカルボキシルを活性化して上記のように添加し、週末の間反応させた。アミノ基の含量をTNBSで測定したところ（Sparado  et  al.  Anal  Biochem  96:317,  1979）、合計1.05mmolで、アミノ基の飽和が56%であることを示していた。これは、TosohG4000WXLを使用したサイズ排除クロマトグラフィーで保持時間が12.35分（17nm）であったことにより確認された。溶液を100  kDaカットオフ膜（UFP-100-E-5A、GE-Amersham  Biosciences  Corp、マサチューセッツ州ウェストボロー）を通して、超ろ過洗浄し、凍結乾燥した（9.9g）。動物における担体Cmax（血中最高濃度）とTmax（血中最高濃度の時間）の測定のために1gをFITCで飽和し、エタノール、水で洗浄し、凍結乾燥した（960mg）。残りの8.9gの20PLPEG555DAを2つに分け（それぞれ53m1のDCM中）、1つを活性化C22（2:1のDMF:DCMの30ml中2.5mmol）で飽和し、もう一方は以下のC18（2:1のDMF:DCMの30ml中2.5mmol）で飽和した。
【００６８】
例5
20PLPEG555DAC18および20PLPEG555DAC22の合成。20PLPEG555DAの残り8.9gを2つに分け（それぞれ53m1  DCM中）、1つを活性化ベヘン酸で飽和し、もう一方は活性化ステアリン酸で飽和した。ベヘン酸またはC22（2:1  DMF:DCMの30ml中に0.851gまたは2.5mmol）に、290mgのNHS（Mw=115、2.5mmol）と1mlのDCC（Mw=206、1m1=1.3g=6.3mmol）を加えて、1時間インキュベートして、活性化した。尿素沈殿物を遠心分離で除去し、上清を200u1  TEAと共に20PLPEG555DA溶液に加えて反応させた。これを2回繰り返し、一晩反応させた。生成物を37°Cで回転蒸発させ、80%エタノールに溶解して沈殿を遠心分離で除去した。上清（200ml）は3リットルの80%エタノール洗浄の後、1リットルの水で洗浄した。これを、200nmフィルターを使ってろ過滅菌して凍結乾燥し、2.9gを得た。不溶性組成物は次のろ過滅菌を通り抜けないことに注意されたい：PEG/脂肪酸の重量比が14未満の組成物（表2参照）および小胞を形成するもの。組成物の直径は19.8nmで、G4000PWXLカラム（0.78x30cm、TSK  Gel、Tosoh  Biosep、ペンシルベニア州モンゴメリービル）を使用して15%アセトニトリルを含むPBSで流速0.6m1/分で流出させたゲル浸透クロマトグラフィーでの保持時間は12分である。アミノ基の含量は18nmol/mgである（非常に少ない）。組成物は100mg/mlで水溶性であり、濁りのない黄色真溶液を形成する。組成物は、コレステロールを加えた時に小胞を形成しない。
【００６９】
ステアリン酸またはC18（2:1  DMF:DCMの30ml  中に0.7gまたは2.5mmol）に、290mgのNHS（Mw=115、2.5mmol）と1mlのDCC（Mw=206、1m1=1.3g=6.3mmol）を加えて、1時間インキュベートして、活性化した。尿素沈殿物を遠心分離で除去し、上清を200u1  TEAと共に20PLPEG555DA溶液に加えて反応させた。これを2回繰り返し、一晩反応させた。生成物を37°Cで回転蒸発させ、80%エタノールに溶解して沈殿物を遠心分離で除去した。上清は2リットルの80%エタノール洗浄の後、水で洗浄した。これを、200nmフィルターを使ってろ過滅菌して凍結乾燥し、3.35gを得た。不溶性組成物、特に小胞を形成するものはこのろ過滅菌を通り抜けないことに注意されたい。直径は19.4nmで保持時間は12.05分である。アミノ基の含量は6nmol/mgである（非常に少ない）。組成物は100mg/mlで水溶性であり、濁りのない黄色真溶液を形成する。組成物は、コレステロールを加えた時に小胞を形成しない。
【００７０】
例6
20PLPEG555C18合成の再現性：20  kDaポリリシン（Sigma  Chemical  Co.製、多分散性の程度は1.2）でできている担体20PLPEG555C18を製造した。ここで、TNBS反応性アミノ基の55％が5  kDa  MPEG-エステル-コハク酸と反応し、残りの44〜45％のTNBS反応性アミノ基はステアリン酸と共役した。これを作るために、1gの20PL（P7890  Sigmaロット番号065K5101、1gmに2.4mmol  NH2を含む）を50mlの200mM  HEPESに溶解した。250mgのNHSS（mw=217.14、1.15mmol）に続いて500mg  EDC（mw=191.71、2.6mmol）を加えて、15mlの10mM  MES  pH=4.7中の5gのMPEG-コハク酸（1mmol）を活性化した。活性化は20分間継続させる。活性化されたMPEGコハク酸を20PL溶液に加えて反応させた。2時間後、さらに5gのMPEGコハク酸を活性化して上記のように添加し、週末の間反応させた。アミノ基を測定したところ1.017mmolであり、アミノ基の飽和が57%であることを示した。これは、TosohG4000WXL（流速0.6ml/分、15%アセトニトリルを含むPBS）を使ったサイズ排除クロマトグラフィーで保持時間が12.9分（14nm）であることにより確認され、また合計添加PEGの組み込みは90%であることを示した。20PLPEG555を含む反応混合物を凍結乾燥して50m1  DCMに溶解し、沈殿物を遠心分離で除去した。沈殿物をDCMで洗浄し、集めた上清（合計200ml）に400u1  TEAを加えた後、活性化C18で飽和させた。これを行うために、ステアリン酸（C18、1:2  DMF:DCMの30ml中に0.7gまたは2.5mmol）に、290mgのNHS（Mw=115、2.5mmol）と0.5mlのDCC（Mw=206、0.5m1=0.65g=3.2mmol）を加えて、1時間インキュベートして活性化した。尿素沈殿物をろ過で除去し、活性化脂肪酸を20PLPEG555溶液に加えて反応させた。これを2回繰り返して一晩反応させた後、反応混合物を回転蒸発させて50％のエタノール水に溶解し、遠心分離で沈殿物と一番上の脂肪酸層を除去した。沈殿物を50％エタノールで2回洗浄し、上清すべてを集めて80％エタノールにし、溶液を透明化して超ろ過した。集められた上清は、超ろ過装置（100,000  MWCO  Ultra-filtration  cartridge、UFP-100-E-5A、GE-Amersham）を用いて200mlに濃縮し、同じ超ろ過装置内で10倍容量の80％エタノールで洗浄後、10倍容量の水で洗浄し、150mlに濃縮して収集した。カートリッジ内の残りの物質を水2  x  50mlで洗浄し、サンプルと一緒に集めた。サンプル（20PLPEG555C18）を、0.2umフィルター（ポリスルホン膜、Nalgene）を用いてろ過し、凍結乾燥した（合計8.9g）。不溶性物質および0.2umより大きな物質はこのフィルターを通過しないことに注意すべきである。担体の分子直径は、TosohG4000WXL（流速0.6ml/分、15%アセトニトリルを含むPBS）を使用したサイズ排除クロマトグラフィーで測定したところ、保持時間は12分であり、球状タンパク標準を使った19nmに相当した。1mg/mlの20PLPEG555C18をTNBSで分析したところ、6  +/-5uM  NH2または6nmol/mgが含まれており、飽和は90%より大きいことが示された。
【００７１】
上記の合成をさらに2回繰り返して、再現性を測定した。結果得られた担体は水溶性であり、直径は19nmで、親和性によって負荷分子を保持している。酸消化およびアミノ酸分析では、組成物の全体的リシン含量は重量で4.8〜5%であることが示された。使用された酸消化は、タンパク質で行われた分析と類似であり、当業者には知られている。以下の表は、担体の3重合成の結果を示し、合成の再現性を示している。
【００７２】
【表１】
2014156486.tif 000002
例7
以下の実験は、ポリリシン／脂肪酸／MPEG共役体のさまざまな組成物の溶解特性を測定するために行われた。50mg/mlで水溶性になる移行は、MPEG:脂肪酸の重量比が約12:1〜14:1になったとき起こり始めた。MPEG:脂肪酸の重量比が少なくとも14:1のすべての組成物は、水溶性である。これは、水性溶媒または部分的水性溶媒と混合したとき、コレステロール不在で可溶性であり、コレステロールが存在する場合でも小胞を形成しない組成物を提供する。表2に示されている以下の組成物の合成方法は、例6に示す通りである。組成物中のMPEGのパーセントを変化させるために、合成でのMPEG量を比例して変化させ、望ましいアミノ基飽和が達成されるまで、アミノ基測定の合間に少量ずつ加えた。C8とC12を除いて、脂肪酸はNHSとDCCで活性化された。C8、C12、C16については、カプリル酸、ラウリル酸、パルミチン酸を活性化する代わりに、無水カプリル、無水ラウリル、無水パルミチン試薬を使用した。各組成物では、溶解度を50mg/mlで記録し、そのデータを表2に示す。
【００７３】
【表２】
2014156486.tif 000003
例8
MPEG-タプシン酸の合成：5  kDa  MPEG-タプシン酸を作るために、タプシン酸（1.15g、4mmol、Sigma-Aldrich、ミズーリ州セントルイス）を50mLのジメチルホルムアミド（DMF、Sigma-Aldrich）に、1.4mLのトリエチルアミン（TEA、10mmol、Fisher、マサチューセッツ州ウォルサム）と1.65gのN,N'-ジシクロヘキシルカルボジイミド（DCC、8mmol、Pierce、イリノイ州ロックフォード）と共に溶解した。溶液を15分間撹拌し、N-ヒドロキシスクシンイミド（NHS、920mg、8mmol、Fisher）を加えてさらに15分間撹拌した。MPEGアミン（5g、1mmolの5  kDa、Sunbio、韓国）をわずかに加熱して45mLのDMFに溶解し、活性化タプシン酸溶液に15分間かけてゆっくりと加え、一晩撹拌した。反応が完了したかどうかを判定するために、250uLの一定量を採取し、MPEGを5mLのジエチルエーテルで沈殿させ、1mLの1N  NaOHに溶解してHCLで酸性化し、ジクロロメタン（〜2mL）で抽出して下層を回収して空気流で濃縮し、ジエチルエーテル（5mL）に加えて沈殿させた。沈殿物を回収し、1mLのジクロロメタンに溶解して、薄層クロマトグラフィー（TLC）で分析した。TLC移動相は、5:1ジクロロメタン／メタノールである。固定相はアルミニウムシート上のシリカゲル60  F254である。以下のTLCスポットをブロモクレゾールブルーおよびニンヒドリンで可視化した。ブロモクレゾールブルーはPEGを持つ物質を青く染色する。5KアミノPEG（s.m.）のRfは0.76で、生成物タプシン酸-アミノPEG共役体（脂肪PEG、生成物）は0.63であった。開始物質および生成物は両方ともブロモクレゾールブルーで染色され、5KアミノPEGはニンヒドリンで陽性に染色されるが、生成物はされない（図18参照）。反応が完了したら、MPEG-タプシン酸をエーテルで沈殿させ（撹拌棒付き1Lビーカーに800mL）、真空ろ過（Q8、ろ紙、Fisherbrand）で回収し、ろ紙上の沈殿物をさらにジエチルエーテル（50mL）で洗浄した。粗製MPEG-タプシン酸を1N  NaOH（20mL）に溶解して過剰の活性化カルボン酸を除去し、HC1を用いてpHを酸性に戻し、50mlの水で希釈して、MPEG-タプシン酸をジクロロメタン（100mL）で3回抽出した。合わせたジクロロメタン溶液を硫酸マグネシウム（50g）で乾燥して、ガラスフィルター漏斗（中間フリット）でろ過し、減圧下、回転蒸発して濃縮した（浴温〜50°C）。攪拌中のジエチルエーテル（撹拌棒付き1Lビーカーに800mL）に残渣を加え、MPEG-タプシン酸固体をろ紙（Q8、定性、Fisherbrand、エーテルで予備洗浄）を付けたブフナー漏斗で減圧ろ過した。MPEG-タプシン酸生成物をエタノール（50m1）に溶解し、3K  MWCU超ろ過カートリッジ（GE-Amersham、UFP-3-E-3MA、バッチ番号3-1067）を使用して超ろ過することにより10倍容量の80%エタノールで洗浄し、その後10倍容量の水で洗浄した。0.2urnポリスルホンフィルター（Nalgene、ニューヨーク州ロチェスター）を使用して生成物をろ過滅菌して凍結乾燥し、3.5gの物質を得た。
【００７４】
例9
20PLC16PEGFの合成：この担体は20  kDaポリリシン（多分散性度1.2）でできており、90〜99％のTNBS反応性アミノ基が5  kDa  MPEG-タプシン酸と反応した（例8参照）。25mgのポリリシン（Mw＝20  kDa、アミノ基含量=  3.1mmol/g、TNBS分析による。カタログ番号P7890、DPVIS=115、バッチ番号017k5101、Sigma）を50mlの200mM  HEPESに溶解し、40〜50°Cのオイル温浴内で撹拌して、暖かいポリリシン撹拌溶液を調製した。別に、MPEG-タプシン酸（320mg、0.060mmol）、N-ヒドロキシスルホスクシンイミドのナトリウム塩（NHSS、26.4mg、0.12mmol、Fluka）とN-(3-ジメチルアミノプロピル)-N'-エチルカルボジイミド（EDC、23.2mg、0.12mmol）を8mlの10mM  MES中に入れた。混合物をボルテックスして20分間インキュベートした。活性化MPEG-タプシン酸をポリリシン溶液に加え、60分間撹拌した。類似量のMPEG-タプシン酸の活性化およびポリリシン溶液への添加を、約60分間隔でさらに4回繰り返し、混合物を一晩撹拌した。反応混合物は、100k  MWCU超ろ過カートリッジ（GE-Amersham、UFP-100-E-3MA）付き超ろ過装置を用いて、10倍容量の80％エタノールで洗浄後、10倍容量の水で洗浄した。洗浄した生成物は滅菌ろ過し（0.2ミクロン、115mL、Nalgene）、凍結乾燥して400〜500mgの20PLC16PEGFを得た。最終物質のTNBS分析（1mg/mL）では、アミン含量が7〜10nmol/mg（TNBS分析）であり、ポリリシンにはアミノ基はほとんど残されていないことが示された。TosohG4000WXLを使って、15％CANを含むPBSで流速0.6mL/分で溶出させたGPC分析では、保持時間が11.9分であり、直径21nmの構造を示唆した。プロセスの再現性を判断するために、この合成を3回繰り返した。以下の表は、担体の3重合成の結果を示し、合成の再現性を示している。
【００７５】
【表３】
2014156486.tif 000004
例10
これらの担体に負荷できる負荷分子のタイプを完全に特徴付けるために、酸性条件（0.1%  TFA）での相対的疎水性を反映する逆相HPLCカラムでのさまざまな分子の相対保持時間を表に示す。結果は一般的なガイドラインであり、VIPで見られるのと同等に絶対であると解釈されるべきではない。ほとんどの治療薬は、合成後（または生合成）の精製中または分析目的のどちらかで、逆相HPLCカラムで分析された。従って、HPLCカラムでの保持時間を測定するこのプロセスは、本出願に開示された発明を可能にするための不当な実験ではない。実証目的で、負荷分子候補は、逆相HPLCカラム（SynergiMaxRP  4x20mm、Phenomenex、カリフォルニア州トーランス）から流速1.5  ml/分で、溶液AとBのグラジエント（1〜5分でBを25〜50%）を使用して溶出された。ここで、Aは0.1%トリフルオロ酢酸（TFA）/  5%アセトアニリドを含む水であり、溶媒Bは0.1%  TFAを含むアセトアニリドである。図11〜17の結合研究に基づくと、上記のHPLC条件で保持時間が2.5分を超えるものは、下記（表4）の疎水性コア担体に対して高い結合親和性を示す可能性が高い。
【００７６】
【表４】
2014156486.tif 000005
この条件で保持時間が2分を超える負荷分子は、ほとんどの場合担体に対して高い親和性（Kdが100uM未満）を持ち、これらの分子の循環半減期を延長する上で担体が十分に役立つと推定することは、ある程度合理的だと認められる。担体への親和性を予測するためにHPLCを使うルールの1つの例外は、血管作動性腸管ペプチドである。このペプチドは、その保持時間が1.64分であるからもわかるように、酸性条件（0.1%  TFA）でかなり親水性である。しかし、脂質の存在下の中性pHでは、疎水性脂質環境とより相溶性のあるαへリックス構造をとることが知られている。担体（20PLPEG555C18）に対しての高い親和性は、より疎水性のαへリックスの形成による可能性がある。本発明の疎水性コア担体に結合する負荷分子の能力をより良く予測するために、HPLCを中性pHで行うことはできるが、この条件では逆相HPLCのピークが幅広くなるため、これは若干困難である。しかし、これはかなり適正で、それでも正確な予想が可能である。逆相HPLCは当技術分野では標準的で普遍的な実務であるので、このプロセスは不当な実験ではない。HPLCに加えて、本組成物に対する担体の結合の分析は、図11〜17の例に示されるように、当業者によって容易に実施され得る。
【００７７】
例11
20PLPEG555C18への負荷分子の結合：ポリプロピレンミクロ遠心管を3部用意した。一定分量（25ul）の担体ストック（20PLPEG555C18;  100mg/mlまたは33mg/ml）をポリエチレンミクロ遠心管に入れ、対応するコントロールに25  ulの水を入れた。負荷分子の相当重量が担体重量の2〜30％の間になるように、さまざまな濃度の負荷分子を遠心管に加えた。各遠心管に25ulの10  x  リン酸緩衝生理食塩水を加えて、溶液の合計容量を250ulにした。溶液を2時間インキュベートして、再生セルロース製の100  kDa分子量カットオフフィルター（Microcon  Ultracell  YM-100、Millipore、マサチューセッツ州ベッドフォード）でろ過した。上記の条件を使用した逆相HPLCでろ液中の遊離の未結合負荷分子を分析して表3を作成した。負荷された負荷分子の合計量またはコントロールは、担体のない溶液のろ液によって表される。担体に結合した負荷分子量は、担体のないろ液と担体のあるろ液の間の負荷分子量の差で表される。この分析前に、バックグラウンドのフィルター結合が測定され、著しいフィルター結合が見られた場合はいつもこれが考慮された。図11〜17はこのように作成された。
【００７８】
前述の発明は、理解を明確にする目的での説明および例によって詳細に説明されているが、当業者であれば、添付の請求項の精神と範囲を逸脱することなく特定の変更と修正を実施できることを容易に理解する。
【００７９】
参照による組み込み
本書に引用されたすべての特許および出版物は、ここに参照して組み込まれる。
【００８０】
同等物
当業者であれば、通常の実験以上のものを用いずに、本書に記載された本発明の特定の実施例との多くの同等物を認識、または突き止めることができる。このような同等物は、以下の請求項によって包含されるものとする。
【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図９】
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【図１０】
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【図１９】
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【図２０】
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【図１】
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【図８】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【外国語明細書】
2014156486000001.pdf