(57)【要約】【課題】抗TNF-α抗体を簡易操作且つ高回収率で回収できるペプチドカラムを提供する。【解決手段】抗TNF-α抗体をゲルに固定化させた抗TNF-α抗体固相化ゲルと、TNF-αを酵素により断片化させたTNF-α由来ペプチド断片と、を混合させ、抗TNF-α抗体に結合しないTNF-α由来ペプチド断片の一部を除去し、抗TNF-α抗体に結合したTNF-α由来ペプチド断片の残部を回収することにより得られる。この抗TNF-α抗体親和性ペプチドをリンカーを介して多孔質担体表面に固定してなるペプチドカラムである。【選択図】図４
2014136688.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
抗TNF-α抗体をゲルに固定化させた抗TNF-α抗体固相化ゲルと、TNF-αを酵素により断片化させたTNF-α由来ペプチド断片と、を混合させ、前記抗TNF-α抗体に結合しない前記TNF-α由来ペプチド断片の一部を除去し、前記抗TNF-α抗体に結合した前記TNF-α由来ペプチド断片の残部を回収することにより得られることを特徴とする抗TNF-α抗体に親和性を有する抗TNF-α抗体親和性ペプチド。
【請求項２】
前記抗TNF-α抗体に親和性を有するペプチドは、IAVSYQTKであることを特徴とする請求項１に記載の抗TNF-α抗体親和性ペプチド。
【請求項３】
吸着対象のペプチドに特異的に結合する官能基を多孔質担体の表面に固定してなるペプチドカラムであって、
請求項１記載の抗TNF-α抗体親和性ペプチドが前記官能基に結合されていることを特徴とするペプチドカラム。
【請求項４】
請求項１記載の抗TNF-α抗体親和性ペプチドのN-末端にリンカーが付加されており、前記リンカーを介して前記抗TNF-α抗体親和性ペプチドが前記官能基に結合されていることを特徴とする請求項３記載のペプチドカラム。
【請求項５】
前記リンカーは、CGSGSGSであることを特徴とする請求項４に記載のペプチドカラム。
【請求項６】
前記官能基はトレシル基であることを特徴とする請求項３乃至５の何れか１項に記載のペプチドカラム。
【請求項７】
抗TNF-α抗体をゲルに固定化させて抗TNF-α抗体固相化ゲルを作製する工程と、
TNF-αを酵素により断片化させてTNF-α由来ペプチド断片を作製する工程と、
前記抗TNF-α抗体固相化ゲルと前記TNF-α由来ペプチド断片とを混合させて、前記抗TNF-α抗体に結合しない前記TNF-α由来ペプチド断片の一部を除去し、前記抗TNF-α抗体に結合した前記TNF-α由来ペプチド断片の残部を回収する工程と、
を有することを特徴とする抗TNF-α抗体に親和性を有する抗TNF-α抗体親和性ペプチドのスクリーニング方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、抗TNFα抗体親和性ペプチド、ペプチドカラム、及び抗TNFα抗体親和性ペプチドのスクリーニング方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
TNF-α(Tumor necrosis factor alpha)は、炎症性免疫応答に関わる細胞によって産生されるサイトカインであり、抗TNF-α抗体は、リウマチ、クローン病、潰瘍性大腸炎等に対する薬剤として使用される。抗TNF-α抗体は、TNF-αを異種動物（通常マウス）に免疫し、その動物が産生した抗体分子（IgG）から作製される。抗TNF-α抗体の主な作用機序は、標的分子であるTNF-αに特異的に結合し、その生物学的作用を阻害することである。そのほかに、単球等のTNF-α産生細胞の表面に発現された膜型TNF-α分子とも結合し、これら産生細胞を傷害してTNF-α産生を抑制している。
【０００３】
この抗TNF-α抗体の回収方法は、例えば特許文献１に記載されているように、アフィニティークロマトグラフィーの使用によりなされる。また抗TNF-α抗体の他の回収方法として、硫酸アンモニウム若しくはエタノール沈殿、酸抽出、陰イオン若しくは陽イオン交換クロマトグラフィー、ホスホセルロースクロマトグラフィー、ヒドロキシルアトパタイトクロマトグラフィー等による方法が挙げられる。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】特表２０１２−５０６３８３号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
しかし、上述の抗TNF-α抗体の回収方法は、操作の簡易性又は回収率において不十分であるという問題点を有する。
【０００６】
本発明はかかる問題点に鑑みてなされたものであって、抗TNF-α抗体を簡易操作且つ高回収率で回収するのに有益な抗TNF-α抗体親和性ペプチドを提供することを目的とする。また、抗TNF-α抗体を簡易操作且つ高回収率で回収できるペプチドカラムを提供することを目的とする。また、抗TNFα抗体に親和性を有する抗TNF-α抗体親和性ペプチドを簡易操作且つ効率よくスクリーニングできるスクリーニング方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明にかかる抗TNF-α抗体親和性ペプチドは、抗TNF-α抗体をゲルに固定化させた抗TNF-α抗体固相化ゲルと、TNF-αを酵素により断片化させたTNF-α由来ペプチド断片と、を混合させ、前記抗TNF-α抗体に結合しない前記TNF-α由来ペプチド断片の一部を除去し、前記抗TNF-α抗体に結合した前記TNF-α由来ペプチド断片の残部を回収することにより得られることを特徴とする。
【０００８】
また、本発明にかかるペプチドカラムは、吸着対象のペプチドに特異的に結合する官能基を多孔質担体の表面に固定してなるペプチドカラムであって、請求項１記載の抗TNF-α抗体親和性ペプチドが前記官能基に結合されていることを特徴とする。
【０００９】
また、本発明にかかるスクリーニング方法は、抗TNF-α抗体をゲルに固定化させて抗TNF-α抗体固相化ゲルを作製する工程と、TNF-αを酵素により断片化させてTNF-α由来ペプチド断片を作製する工程と、前記抗TNF-α抗体固相化ゲルと前記TNF-α由来ペプチド断片とを混合させて、前記抗TNF-α抗体に結合しない前記TNF-α由来ペプチド断片の一部を除去し、前記抗TNF-α抗体に結合した前記TNF-α由来ペプチド断片の残部を回収する工程と、を有することを特徴とする。
【発明の効果】
【００１０】
本発明によれば、抗TNF-α抗体を簡易操作且つ高回収率で回収するのに有益な抗TNF-α抗体親和性ペプチドが得られる。また、抗TNF-α抗体を簡易操作且つ高回収率で回収できるペプチドカラムが得られる。また、抗TNF-α抗体に親和性を有する抗TNF-α抗体親和性ペプチドを簡易操作且つ効率よくスクリーニングできるスクリーニング方法が得られる。
【図面の簡単な説明】
【００１１】
【図１】図１（ａ）はアダリムマブ由来の親和性ペプチドのトータルイオンカレントクロマトグラムであり、図１（ｂ）はインフリキシマブ由来の親和性ペプチドのトータルイオンカレントクロマトグラムであり、図１（ｃ）はゴリムマブ由来の親和性ペプチドのトータルイオンカレントクロマトグラムである。
【図２】図２（ａ）は、ペプチド１のMSスペクトルであり、図２（ｂ）はペプチド１のMS/MSスペクトルである。
【図３】図３は、リンカー配列を付加させた抗TNF-α抗体親和性ペプチドの模式図である。
【図４】図４は、抗TNF-α抗体親和性ペプチドカラムの作製工程の概略図である。
【図５】図５（ａ）はアダリムマブを添加したヒト血漿を試料とした場合の洗浄及び溶出画分の電気泳動図であり、図５（ｂ）はインフリキシマブを添加したヒト血漿を試料とした場合の洗浄及び溶出画分の電気泳動図であり、図５（ｃ）はゴリムマブを添加したヒト血漿を試料とした場合の洗浄及び溶出画分の電気泳動図であり、図５（ｄ）はヒト血漿を試料とした場合の洗浄及び溶出画分の電気泳動図である。図５（ｅ）はヒト血漿を試料としてProteinAカラムを用いた場合の洗浄及び溶出画分の電気泳動図である。
【図６】図６（ａ）はゴリムマブを添加した培地を試料とした場合の洗浄及び溶出画分の電気泳動図であり、図６（ｂ）はインフリキシマブを添加した培地を試料とした場合の洗浄及び溶出画分の電気泳動図であり、図６（ｃ）はゴリムマブを添加した培養上清を試料とした場合の洗浄及び溶出画分の電気泳動図であり、図６（ｄ）はインフリキシマブを添加した培養上清を試料とした場合の洗浄及び溶出画分の電気泳動図である。
【図７】図７（ａ）は回収前のゴリムマブのLC/MSにより得られたデコンボリューションマススペクトルであり、図７（ｂ）は回収後のゴリムマブのLC/MSにより得られたデコンボリューションマススペクトルである。
【発明を実施するための形態】
【００１２】
以下、添付の図面を参照して本発明の実施形態について具体的に説明するが、当該実施形態は本発明の原理の理解を容易にするためのものであり、本発明の範囲は、下記の実施形態に限られるものではなく、当業者が以下の実施形態の構成を適宜置換した他の実施形態も、本発明の範囲に含まれる。
【００１３】
（１）抗TNF-α抗体親和性ペプチド
本実施形態にかかる抗TNF-α抗体親和性ペプチドは、下記の方法により得られる。即ち、抗TNF-α抗体をゲルに固定化させて抗TNF-α抗体固相化ゲルを作製する抗体固相化ゲル作成工程と、TNF-αを酵素により断片化させてTNF-α由来ペプチド断片を作製するペプチドライブラリー作製工程と、抗体固相化ゲル作製工程で得られた抗TNF-α抗体固相化ゲルと、ペプチドライブラリー作製工程で得られたTNF-α由来ペプチド断片と、を混合して、抗TNF-α抗体に結合しないTNF-α由来ペプチド断片の一部を除去し、抗TNF-α抗体に結合したTNF-α由来ペプチド断片の残部を回収する選別工程と、を有する方法である。選別工程において、抗TNF-α抗体に結合したTNF-α由来ペプチド断片が、抗TNF-α抗体に親和性を有する抗TNF-α抗体親和性ペプチドである。
【００１４】
抗体固相化ゲル作製工程において、ゲルに固定化させる抗TNF-α抗体は、例えばアダリムマブ、インフリキシマブ、ゴリムマブ等の市販の抗体を用いることができる。また、抗TNF-α抗体を固定化させるゲルは、特に限定されるものではないが、例えばシリカ基材のゲルを使用することができる。
【００１５】
ペプチドライブラリー作製工程において、TNF-αを断片化させる酵素は、特に限定されるものではないが例えばトリプシンを使用することができる。
【００１６】
選別工程では、抗体固相化ゲル作製工程で得られた抗TNF-α抗体固相化ゲルと、ペプチドライブラリー作製工程で得られたTNF-α由来ペプチド断片と、を混合して、抗TNF-α抗体に結合しないTNF-α由来ペプチド断片を除去する。抗TNF-α抗体に結合しないTNF-α由来ペプチド断片の除去は、例えば酢酸アンモニウム等によりゲルを洗浄することにより行われる。ゲルを洗浄した後は、抗TNF-α抗体に結合したTNF-α由来ペプチド断片を酸で溶出させることにより、抗TNF-α抗体に親和性を有する抗TNF-α抗体親和性ペプチドが回収できる。
【００１７】
回収した抗TNF-α抗体親和性ペプチドに対して、質量分析により同定を行うことが可能である。同定を行うことにより、得られた抗TNF-α抗体親和性ペプチドがTNF-αの所定位置に相当するペプチドであることを確認することができる。
【００１８】
（２）ペプチドカラム
本実施形態にかかるペプチドカラムは、官能基を多孔質担体の表面に固定してなるペプチドカラムであって、前述の抗TNF-α抗体親和性ペプチドがこの官能基に結合されている構造を有している。
【００１９】
ペプチドカラムは、例えばシリカ基材等の多孔質担体を基材とする。多孔質担体表面の官能基は、抗TNF-α抗体親和性ペプチドを特異的に結合可能とするものであれば特に限定されるものではないが、例えばトレシル基とすることが可能である。
【００２０】
抗TNF-α抗体親和性ペプチドのN末端にリンカーを付加させ、このリンカーを介して抗TNF-α抗体親和性ペプチドが官能基に結合されていることがより好ましい。抗TNF-α抗体親和性ペプチドと多孔質担体表面の官能基とを直接結合させると、立体障害により、抗TNF-α抗体親和性ペプチドの結合部位付近に抗TNF-α抗体がアクセスしにくくなることが考えられるからである。
【００２１】
（３）スクリーニング方法
本実施形態にかかるスクリーニング方法は、抗TNF-α抗体をゲルに固定化させて抗TNF-α抗体固相化ゲルを作製する抗体固相化ゲル作製工程と、TNF-αを酵素により断片化させてTNF-α由来ペプチド断片を作製するペプチドライブラリー作製工程と、抗体固相化ゲル作製工程で得られた抗TNF-α抗体固相化ゲルと、ペプチドライブラリー作製工程で得られたTNF-α由来ペプチド断片と、を混合して、抗TNF-α抗体に結合しないTNF-α由来ペプチド断片の一部を除去し、抗TNF-α抗体に結合したTNF-α由来ペプチド断片の残部を回収する選別工程と、を有する。選別工程において、抗TNF-α抗体に結合したTNF-α由来ペプチド断片が、抗TNF-α抗体に親和性を有する抗TNF-α抗体親和性ペプチドである。
【実施例】
【００２２】
（実施例１）
(1)実施例１では、抗TNF-α抗体親和性ペプチドを作製した。
【００２３】
(1-1)抗体固定化ゲルの作製
３種類の抗TNF-α抗体（アダリムマブ（アボットジャパン，Tokyo, Japan），インフリキシマブ（田辺製薬，Osaka, Japan），及びゴリムマブ（ヤンセンファーマ，Tokyo, Japan））を0.5Mリン酸水素二カリウム緩衝液(pH7.5)に溶解した(1.0μg/μL)。その抗TNF-α抗体溶液（100μL）をゲル(TSKgel Tresyl-5PW, 10mg)(東ソー, Tokyo, Japan)に加え、室温で一晩振とうさせた。なお、ゲルの官能基はトレシル基であり、リガンドのアミノ基又はチオール基と反応するものであった。200μLの0.5M NaClでゲルを洗浄した後、100μLの0.1M Tris-HCl 緩衝液(pH8.0)で未反応の活性基をブロッキングし、抗TNF-α抗体固相化ゲルを作製した。
【００２４】
(1-2)ペプチドライブラリーの作製
精製水で1.0μg/μLに調製したTNF-α(10μL)( TNF-α(Miltenyi Biotech, Tokyo, Japan))にトリプシン(Trypsin Gold (Massspectrometry Grade) (Promega,Madison, WI, USA))(1μL)を加え、37℃で16時間インキュベートし、得られたTNF-α由来ペプチドをペプチドライブラリーとした。
【００２５】
(1-3)抗体と結合するペプチドの選別
ペプチドライブラリーを乾燥後、精製水(100μL)で再溶解した後、抗TNF-α抗体固相化ゲルに加え、室温で一晩振とうさせた。抗TNF-α抗体に結合しないペプチドを除去するために、400μLの25mM 酢酸アンモニウム(pH7.0)でゲルを洗浄した。抗TNF-α抗体固相化ゲルに結合しているペプチドを300μLの0.5M酢酸(pH2.5)で溶出・乾燥させて、抗TNF-α抗体に親和性を示す抗TNF-α抗体親和性ペプチドを得た。
【００２６】
(1-4)抗TNF-α抗体親和性ペプチドの同定
抗TNF-α抗体親和性ペプチドを40μLの精製水に溶解させ、質量分析用の試料とした。以下に示す条件の液体クロマトグラフィー/質量分析(LC/MS)により、抗TNF-α抗体親和性ペプチドのMS/MSスペクトルを取得した後、データベース検索により一次構造を決定した。
【００２７】
LC/MSの条件は下記に示すものであった。
【００２８】
(1-4-1)LC
装置：Paradigm MS4 (Michrom Bioresources, Auburn, CA, USA) 
トラップカラム：L-column ODS (0.3 × 5 mm, 5μm, 化学物質評価研究機構) 
分析カラム：L-column ODS (0.075 × 150 mm, 3 μm, 化学物質評価研究機構)
移動相：バッファーA, 0.1%ギ酸/5%アセトニトリル
バッファーB, 0.1%ギ酸/90%アセトニトリル
グラジェント条件：5−65% (B バッファー) 45分間
流速：300 nL/min
(1-4-2)MS
装置：LTQ-FT(Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA) 
スプレー電圧：2.5 kV
電極：ポジティブイオンモード
MSスペクトルの取得：フルスキャンモード（測定範囲：m/z 400-2,000）
MS/MS スペクトルの取得:データ依存的なプロダクトイオンスキャンモード
(1-4-3)データベース検索
検索ソフト：BioWorks 3.1 (Thermo Fisher Scientific)
データベース：UniProtデータベース
図１（ａ）はアダリムマブ由来の親和性ペプチドのトータルイオンカレントクロマトグラムであり、図１（ｂ）はインフリキシマブ由来の親和性ペプチドのトータルイオンカレントクロマトグラムであり、図１（ｃ）はゴリムマブ由来の親和性ペプチドのトータルイオンカレントクロマトグラムである。その結果、図１（ａ）〜（ｃ）に示されるように、ペプチド１〜５が検出された。
【００２９】
下記表１は、ペプチド１〜５の同定結果である。表１に示されるように、ペプチド1,2,3,4,及び5は、それぞれTNF-αの83-90，7-32，33-44,16-31,及び91-98番目のアミノ酸配列に相当するペプチドと同定された。
【００３０】
【表１】
2014136688.tif 000003
【００３１】
同定したペプチド１〜５のうち、全ての抗体で認められ且つ回収量の最も多いピーク１に由来するペプチド１を、以降の実験に使用する抗TNF-α抗体親和性ペプチドに用いた。図２（ａ）は、このペプチド１のMSスペクトルであり、図２（ｂ）はペプチド１のMS/MSスペクトルである。
【００３２】
（実施例２）
(2)実施例２では、抗TNF-α抗体に対する親和性が高いペプチドカラムを作製した。
【００３３】
(2-1)ペプチド1を用いた抗TNF-α抗体親和性ペプチドの作製
抗TNF-α抗体親和性ペプチド(ペプチド1)のN-末端側にリンカー配列を付加させた。リンカー配列はCGSGSGGSとし、図３に示すように、リンカー配列−ペプチド１を親和性ペプチドカラム用ペプチドとして化学合成（東レリサーチセンター(Kanagawa, Japan)）した。
【００３４】
(2-2)抗TNF-α抗体親和性ペプチドカラムの作製
図４は、抗TNF-α抗体親和性ペプチドカラムの作製工程の概略図である。図４に示されるように、まず、TSKgelTresyl-5PWカラム(2×35 mm, 東ソー)を500μLの0.5M リン酸水素二カリウム溶液(pH7.5)で洗浄した。
【００３５】
次に、上記の化学合成ペプチドを0.5M リン酸水素二カリウム溶液(pH7.5)で溶解させた後（1.0 μg/μL）、その100μLをカラムに注入し、４℃で一晩放置した。
【００３６】
次に、200μL の0.2MTris-HCl(pH8.0)を注入し、室温で１時間、未反応の活性基をブロッキングした。
【００３７】
次に、500μLの25 mMの酢酸アンモニウム(pH7.0)でカラムを洗浄して、未反応の合成ペプチドを除去した。これにより、抗TNF-α抗体親和性ペプチドカラムを作製した。
【００３８】
（実施例３）
(3)実施例３では、実施例２で作成した抗TNF-α抗体親和性ペプチドカラムを用いて、ヒト血漿中からの抗TNF-α抗体の回収の確認を行った。
【００３９】
(3-1)ヒト血漿中からの抗TNF-α抗体の回収
抗TNF-α抗体（アダリムマブ、インフリキシマブ、及びゴリムマブ）を精製水に溶解した（1.0μg/μL）。
【００４０】
次に、これらの抗TNF-α抗体溶液（10μL）を90μLのヒト血漿（KACcorporation (Kyoto, Japan)）で希釈した後、実施例２で作成した抗TNF-α抗体親和性ペプチドカラムに注入した。
【００４１】
次に、1 mLの25 mMの酢酸アンモニウム(pH7.0)でカラム洗浄した。
【００４２】
次に、300μLの0.1M Tris-NaOH(pH11.5)でカラムから吸着物を溶出させた。
【００４３】
次に、洗浄及び溶出画分を乾燥後、10μLの精製水に溶解させた（1.0 μg/μL）。
【００４４】
(3-2)SDS-PAGE
各画分を試料として、下記条件でSDS-PAGEを行い、本件発明ペプチドカラムの特異性を検証した。
【００４５】
SDS-PAGEの条件
グラジュエントゲル：e-PAGEL (18ウェル, 厚さ1.0mm, グラジュエント5−20%; ATTOCorporation, Tokyo, Japan)
ローディングバッファー：0.5M Tris -HCl(pH6.8) 1.25 mL, SDS(Wako Osaka Japan)0.2g, グリセロール(Wako Osaka Japan)2mL, ブロモフェノールブルー(WakoOsaka Japan)少量/10 mL 精製水
泳動バッファー：Tris (Sigma Aldrich Tokyo Japan) 3g, グリシン(WakoOsaka Japan)14.4g, SDS (Wako) 1g/ 1L 精製水
サンプル調製：9 μLのローディングバッファーに2μLのサンプル溶液を添加して、100℃,3分間の加熱処理を行ったものをサンプルとした。
【００４６】
ゲル染色：SYPRO Rudy Protein Gel Stain (Invitrogen)
検出：Typhoon 9400(GE Healthcare)でバンド確認
図５（ａ）はアダリムマブを添加したヒト血漿を試料とした場合の洗浄及び溶出画分の電気泳動図であり、図５（ｂ）はインフリキシマブを添加したヒト血漿を試料とした場合の洗浄及び溶出画分の電気泳動図であり、図５（ｃ）はゴリムマブを添加したヒト血漿を試料とした場合の洗浄及び溶出画分の電気泳動図であり、図５（ｄ）はヒト血漿を試料とした場合の洗浄及び溶出画分の電気泳動図であり、図５（ｅ）はヒト血漿を試料としてProteinAカラム（ＧＥヘルスケアバイオサイエンス製、HiTrap ProteinAHP 1mL）を用いた場合の洗浄及び溶出画分の電気泳動図である。各図において、コントロールは、抗TNF-α抗体水溶液を試料とした場合の電気泳動である。
【００４７】
図５（ａ）〜（ｃ）に示されるように、その結果、いずれの抗体を添加したヒト血漿を試料としても、コントロールと溶出画分の泳動パターンは類似していた。また、ヒト血漿を試料としたときに、溶出画分の泳動像にバンドは認められなかった。図５（ｅ）に示されるように、ProteinAカラムでは血漿中の抗体が溶出画分に検出され、ProteinAカラムでは特異的に回収できなかった。本件発明にかかる抗TNF-α抗体親和性ペプチドカラムを用いることにより、血漿中の内因性抗体等の非特異的な結合や交差反応の影響を受けることなく、抗TNF-α抗体を高収率且つ特異的に回収することができた。
【００４８】
（実施例４）
(4)実施例４では、実施例２で作成した抗TNF-α抗体親和性ペプチドカラムを用いて、培養液又は培養上清からの抗TNF-α抗体の回収の確認を行った。
【００４９】
(4-1) 培養液又は培養上清からの抗TNF-α抗体の回収
抗TNF-α抗体（アダリムマブ、インフリキシマブ、及びゴリムマブを精製水に溶解した（1.0μg/μL）。
【００５０】
次に、これらの抗TNF-α抗体溶液（10μL）を90μLの培養液又は培養上清で希釈した後、実施例２で作成した抗TNF-α抗体親和性ペプチドカラムに注入した。培地は、FreeStyleTM CHOExpression Medium (Invitrogen, Tokyo, Japan)であった。細胞培養上清は、CHO-S細胞を培養した培養上清であった。
【００５１】
次に、500μLの25 mMの酢酸アンモニウム(pH7.0)でカラム洗浄した。
【００５２】
次に、300μLの0.1M Tris-NaOH(pH 11.5)でカラムから吸着物を溶出させた。
【００５３】
次に、洗浄及び溶出画分を乾燥後、10μLの精製水に溶解させた（1.0 μg/μL）。
【００５４】
(4-2)SDS-PAGE
次に、各画分を試料として、実施例３と同じ条件でSDS-PAGEを行い、本ペプチドカラムの特異性を検証した。
【００５５】
図６（ａ）はゴリムマブを添加した培地を試料とした場合の洗浄及び溶出画分の電気泳動図であり、図６（ｂ）はインフリキシマブを添加した培地を試料とした場合の洗浄及び溶出画分の電気泳動図であり、図６（ｃ）はゴリムマブを添加した培養上清を試料とした場合の洗浄及び溶出画分の電気泳動図であり、図６（ｄ）はインフリキシマブを添加した培養上清を試料とした場合の洗浄及び溶出画分の電気泳動図である。各図において、コントロールは、抗TNF-α抗体水溶液を試料とした場合の電気泳動である。
【００５６】
図６（ａ）〜（ｄ）に示されるように、その結果、いずれの抗体においても、培地成分や宿主細胞由来タンパク質の影響を受けることなく、抗TNF-α抗体のみを高収率且つ特異的に回収することができた。
【００５７】
（実施例５）
(5)実施例５では、プロセス解析工学(PAT)として、抗TNF-α抗体親和性ペプチドカラムからの抗TNF-α抗体の回収前後で、抗TNF-α抗体の糖鎖不均一性が変化しないことを検証した。
【００５８】
(5-1) プロセス解析工学
近年、医薬品の品質管理戦略の重心は、最終原薬/製品で品質を保証する手法から、重要中間体の管理又は工程内管理により保証する手法に移ろうとしているところ、本実施例にかかるプロセス解析工学(PAT)は、医薬品の原料、中間体の特性や工程を遅滞なく測定できる。
【００５９】
実施例２で作成した抗TNF-α抗体親和性ペプチドカラムと逆相系カラムによる脱塩を連続して実施可能なカラムスイッチングシステム（J Pharm Biomed Anal. 2012, 67-68, 1-9.参照）を構築した。脱塩カラムは、MassPREPTM Micro desalting column (2.1 × 5.0 mm, 20 μm; Waters, Milford,MA, USA)であった。このシステムを液体クロマトグラフィー−質量分析装置（LC-MS）に接続して、試料の精製・脱塩・質量測定をオンラインで行った。CHO-S細胞の培養上清に1.0μg/μLになるようゴリムマブを添加した溶液を試料溶液とし、6μLをカラムスイッチングLC-MSに注入した。実施例２で作成した抗TNF-α抗体親和性ペプチドカラムにより回収する前後の抗TNF-α抗体（ゴリムマブ）について、以下に示す条件のLC/MSにより糖鎖不均一性の比較を行った。
【００６０】
(5-2) 糖鎖不均一性の比較
まず、抗TNF-α抗体（ゴリムマブ）を添加した培養液を試料として、溶出画分を回収した。
【００６１】
そして、回収前後の抗体試料を用いて、以下に示す条件のLC/MSにより得られたデコンボリューションマススペクトルのパターンを比較した。
【００６２】
LC/MSの条件は下記に示すものであった。
【００６３】
(5-2-1) LC
装置：Paradigm MS4 
カラム：作製したPeptide column, MassPREPTM Micro desalting column (2.1 × 5.0 mm, 20μm; Waters, Milford, MA, USA)
移動相：バッファーA, 0.1%ギ酸/5%アセトニトリル
バッファーB, 0.1%ギ酸/90%アセトニトリル
グラジェント条件：10−80% (B バッファー) 30分間
流速：600 nL/min
(5-2-2) MS
装置： QSTAR Elite Qq-TOF mass spectrometer (AB Sciex, MA, USA)
スプレー電圧：4.0 kV
電極：ポジティブイオンモード
MSスペクトルの取得：フルスキャンモード（測定範囲：m/z 800-4,000）
マススペクトルのデコンボリューションするためのソフト：BioanalystTM software(AB Sciex)
図７（ａ）は回収前のゴリムマブのLC/MSにより得られたデコンボリューションマススペクトルであり、図７（ｂ）は回収後のゴリムマブのLC/MSにより得られたデコンボリューションマススペクトルである。
【００６４】
その結果、回収前後のゴリムマブで同様の質量及び糖鎖不均一性が確認されたことから、本カラムは、糖鎖不均一性をモニタリングするためのPATシステムに利用できることが実証された。
【産業上の利用可能性】
【００６５】
抗体を簡易操作且つ高回収率で回収するのに有益である。
【配列表フリーテキスト】
【００６６】
配列番号６：リンカー
【図３】
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【図４】
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【図１】
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【図２】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【配列表】
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【手続補正書】
【提出日】平成25年8月23日(2013.8.23)
【手続補正１】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】配列表
【補正方法】変更
【補正の内容】
【配列表】
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