(57)【要約】【課題】本発明は、化学架橋剤を含まない、生体内において徐放性の薬物送達を可能とするゼラチンゲル及びその製造方法を提供することを目的とする。【解決手段】ゼラチンゲルの製造方法であって、（ｉ）ゼラチンに疎水基が導入されてなるゼラチン誘導体を有機溶媒に溶解する工程；（ｉｉ）工程（ｉ）で得られた、該ゼラチン誘導体が溶解した有機溶媒を凍結乾燥して乾燥物を得る工程；及び（ｉｉｉ）工程（ｉｉ）で得られた乾燥物に水性溶媒を加えて膨潤及びゲル化させ、ゼラチンゲルを得る工程、を含む、上記方法。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
ゼラチンゲルの製造方法であって、
（ｉ）ゼラチンに疎水基が導入されてなるゼラチン誘導体を有機溶媒に溶解する工程；
（ｉｉ）工程（ｉ）で得られた、該ゼラチン誘導体が溶解した有機溶媒を凍結乾燥して乾燥物を得る工程；及び
（ｉｉｉ）工程（ｉｉ）で得られた乾燥物に水性溶媒を加えて膨潤及びゲル化させ、ゼラチンゲルを得る工程、
を含む、上記方法。
【請求項２】
疎水基が炭素数４〜２０のアルキル基である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
ゼラチン誘導体１ｇ（乾燥重量）あたり、１×１０−５〜１×１０−２ｍｏｌの疎水基がゼラチン誘導体に導入されている、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
工程（ｉ）において、ゼラチン誘導体を０．１〜５０％（ｗ／ｖ）の濃度となるように有機溶媒に溶解する、請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。
【請求項５】
有機溶媒がジメチルスルホキシドである、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
【請求項６】
さらに、（ｉｖ）工程（ｉｉｉ）で得られたゼラチンゲルに薬物を含む水性溶媒を加える、請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法。
【請求項７】
薬物が細胞増殖因子である、請求項６に記載の方法。
【請求項８】
薬物が塩基性線維芽細胞増殖因子である、請求項６又は７に記載の方法。
【請求項９】
請求項１〜８のいずれか１項に記載の方法により製造される、ゼラチンゲル。
【請求項１０】
疎水性相互作用により互いに結合している、ゼラチンに疎水基が導入されてなるゼラチン誘導体を含んでなり、かつ化学架橋剤を含まない、ゼラチンゲル。
【請求項１１】
疎水基が炭素数４〜２０のアルキル基である、請求項１０に記載のゼラチンゲル。
【請求項１２】
ゼラチン誘導体１ｇ（乾燥重量）あたり、１×１０−５〜１×１０−２ｍｏｌの疎水基がゼラチン誘導体に導入されている、請求項１０又は１１に記載のゼラチンゲル。
【請求項１３】
ゼラチン誘導体を０．１〜５０％（ｗ／ｖ）の量で含む、請求項１０〜１２のいずれか１項に記載のゼラチンゲル。
【請求項１４】
さらに薬物を含む、請求項１０〜１３のいずれか１項に記載のゼラチンゲル。
【請求項１５】
薬物が細胞増殖因子である、請求項１４に記載のゼラチンゲル。
【請求項１６】
薬物が塩基性線維芽細胞増殖因子である、請求項１４又は１５に記載のゼラチンゲル。
【請求項１７】
請求項１６に記載のゼラチンゲルを含む、血管新生促進剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、化学架橋剤を含まない、生体内において徐放性の薬物送達を可能とするゼラチンゲル及びその製造方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
近年、病巣部位へ薬物や栄養成分等を効果的な濃度で長期間に亘って送達するために、ゼラチンゲルを担体として用いた薬物送達システムが研究・開発されている（特許文献１−３、非特許文献１）。ゼラチンゲルを用いた薬物送達システムは、生体適合性、生体吸収性に優れたゼラチンを基材としてなり、生体内においてゼラチンが種々の酵素の働きにより分解されることにより、ゲル内に固定されていた薬物や栄養成分等が徐々に放出される。
【０００３】
ゼラチンゲルは、ゼラチンを水溶性溶媒に溶解し、それを冷却することにより製造することが可能であるが、そのゼラチンゲルは体温（約３７℃）条件下において溶解するために、当該条件下に付すだけで（すなわち、酵素の働きに関係なく）ゲルの状態を維持することができなくなる。そこで従来的に、徐放性薬物送達のために利用されるゼラチンゲルの製造においては、化学架橋剤を添加してゼラチンを架橋し、これにより体温条件下においてもゲルの状態を維持できるようにしている。化学架橋剤としてはグルタルアルデヒド、水溶性カルボジイミド、プロピレンオキサイド、ジエポキシ化合物等が用いられている（特許文献３）。
【０００４】
しかしながら、一般的に化学架橋剤は生体組織や細胞に対して強い毒性を示すことから、生体への投与に関して、ゼラチンゲルに含まれる化学架橋剤の存在が問題となっていた。当該分野においては、化学架橋剤を使用することなく、体温条件下においてゲルの状態を維持することができ、徐放性薬物送達のための担体として利用可能なゼラチンゲル及びその製造方法が求められていた。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特開２００４−２７７３４８号公報
【特許文献２】特開２００８−１３７９７５号公報
【特許文献３】特開２００９−６７７３２号公報
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】Ｍａ  Ｊ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ  Ｓｃｉｅｎｃｅ：Ｐｏｌｙｍｅｒ  Ｅｄｉｔｉｏｎ，１３，６７−８０，２００２
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本発明は、化学架橋剤を含まない、生体内において徐放性の薬物送達を可能とするゼラチンゲル及びその製造方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明者らは上記課題を解決すべく鋭意検討した結果、ゼラチンに疎水基が導入されてなるゼラチン誘導体をゲル製造のための基材として利用することによって、ゼラチン誘導体は疎水性相互作用により疎水基を介して相互に架橋されるために、化学架橋剤を用いることなく、体温条件下においてゲルの状態を維持することができ、生体内において徐放性の薬物送達を可能とするゼラチンゲルを製造できることを見出し、本発明を完成させるに至った。
【０００９】
すなわち、本発明は以下の発明を包含する。
[１]  ゼラチンゲルの製造方法であって、
（ｉ）ゼラチンに疎水基が導入されてなるゼラチン誘導体を有機溶媒に溶解する工程；
（ｉｉ）工程（ｉ）で得られた、該ゼラチン誘導体が溶解した有機溶媒を凍結乾燥して乾燥物を得る工程；及び
（ｉｉｉ）工程（ｉｉ）で得られた乾燥物に水性溶媒を加えて膨潤及びゲル化させ、ゼラチンゲルを得る工程、
を含む、上記方法。
[２]  疎水基が炭素数４〜２０のアルキル基である、[１]の方法。
[３]  ゼラチン誘導体１ｇ（乾燥重量）あたり、１×１０−５〜１×１０−２ｍｏｌの疎水基がゼラチン誘導体に導入されている、[１]又は[２]の方法。
[４]  工程（ｉ）において、ゼラチン誘導体を０．１〜５０％（ｗ／ｖ）の濃度となるように有機溶媒に溶解する、[１]〜[３]のいずれかの方法。
[５]  有機溶媒がジメチルスルホキシドである、[１]〜[４]のいずれかの方法。
[６]  さらに、（ｉｖ）工程（ｉｉｉ）で得られたゼラチンゲルに薬物を含む水性溶媒を加える、[１]〜[５]のいずれかの方法。
[７]  薬物が細胞増殖因子である、[６]の方法。
[８]  薬物が塩基性線維芽細胞増殖因子である、[６]又は[７]の方法。
[９]  [１]〜[８]のいずれかの方法により製造される、ゼラチンゲル。
[１０]  疎水性相互作用により互いに結合している、ゼラチンに疎水基が導入されてなるゼラチン誘導体を含んでなり、かつ化学架橋剤を含まない、ゼラチンゲル。
[１１]  疎水基が炭素数４〜２０のアルキル基である、[１０]のゼラチンゲル。
[１２]  ゼラチン誘導体１ｇ（乾燥重量）あたり、１×１０−５〜１×１０−２ｍｏｌの疎水基がゼラチン誘導体に導入されている、[１０]又は[１１]のゼラチンゲル。
[１３]  ゼラチン誘導体を０．１〜５０％（ｗ／ｖ）の量で含む、[１０]〜[１２]のいずれかのゼラチンゲル。
[１４]  さらに薬物を含む、[１０]〜[１３]のいずれかのゼラチンゲル。
[１５]  薬物が細胞増殖因子である、[１４]のゼラチンゲル。
[１６]  薬物が塩基性線維芽細胞増殖因子である、[１４]又は[１５]のゼラチンゲル。
[１７]  [１６]のゼラチンゲルを含む、血管新生促進剤。
【発明の効果】
【００１０】
本発明によれば、化学架橋剤を含まない、生体内において徐放性の薬物送達を可能とするゼラチンゲル及びその製造方法を提供することができる。
【００１１】
本発明のゼラチンゲルは化学架橋剤を含まないために、従来公知のゼラチンゲルと比べて細胞毒性が低く、徐放性の薬物送達を行うための担体として好適に利用することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１２】
【図１】図１は、アルキル基が導入されたゼラチン誘導体の作製方法を示す。
【図２】図２は、ゼラチンゲルの模式的構造図を示す。ゼラチンゲルにおいて、ゼラチン誘導体は疎水性相互作用により疎水基を介して相互に架橋されている。
【図３】図３は、ゼラチンゲルの細胞毒性を解析した結果を示す写真図を示す。
【図４】図４は、ゼラチンゲルの生体内安定性を解析した結果を示す。（Ａ）ＧＤ１ゼラチンゲル；（Ｂ）ＧＤ３ゼラチンゲル；（Ｃ）ＧＤ５ゼラチンゲル；（Ｄ）ＧＤ８ゼラチンゲル。
【図５】図５は、ゼラチンゲルのシトクロームＣ吸着率の解析結果を示す。
【図６】図６は、ゼラチンゲルの分解率とシトクロームＣ放出率の解析結果を示す。
【図７】図７は、ｂＦＧＦ含有ゼラチンゲルによる血管新生の解析結果を示す。（Ａ）ｂＦＧＦ含有ゼラチンゲル；（Ｂ）ｂＦＧＦを含有しないゼラチンゲル（対照）。
【図８】図８は、ｂＦＧＦ含有ゼラチンゲルによる血管新生（ヘモグロビン量）の解析結果を示す。ｂＦＧＦ（＋）：ｂＦＧＦ含有ゼラチンゲル；ｂＦＧＦ（−）ｂＦＧＦを含有しないゼラチンゲル（対照）。
【発明を実施するための形態】
【００１３】
本発明のゼラチンゲルは、ゼラチンに疎水基が導入されてなるゼラチン誘導体を基材として製造することができる。
【００１４】
「ゼラチン」は、動物（例えば、哺乳類、鳥類、魚類など）の器官・組織より採取されるコラーゲンを、アルカリ加水分解、酸加水分解、酵素分解することによって得ることができる。また、化学合成、微生物を用いた発酵法、遺伝子組換え操作等の手法を用いて得られたゼラチンも利用することができる。ゼラチンは市販のものも利用することができ、本発明において例えば、ウシ皮膚由来酸性ゼラチン（シグマ社製）を使用することができる。
【００１５】
本発明において使用するゼラチンは、酸性ゼラチン及び塩基性ゼラチンのいずれであってもよい。「酸性ゼラチン」とは、コラーゲンをアルカリ処理することによって得られるゼラチンであり、等電点が２．０〜７．０、好ましくは４．０〜６．５、より好ましくは４．５〜５．５であるものが意図される。「塩基性ゼラチン」とは、コラーゲンを酸処理することによって得られるゼラチンであり、等電点が７．０〜１３．０、好ましくは７．５〜１０．０、より好ましくは８．５〜９．５であるものが意図される。酸性ゼラチン及び塩基性ゼラチンの選択は、ゼラチンゲルの用途やゼラチンゲルに配合される薬物の性質に応じて適宜決定することができる。たとえば、塩基性線維芽細胞増殖因子（以下、「ｂＦＧＦ」と記載する）のような生体内と同じ中性域（約ｐＨ７）において正に帯電する薬物をゼラチンゲルに配合する場合には、中性域において負に帯電する酸性ゼラチンを用いることが好ましい。一方、骨形成タンパク質（以下、「ＢＭＰ」と記載する）のような中性域において負に帯電する薬物をゼラチンゲルに配合する場合には、中性域において正に帯電する塩基性ゼラチンを用いることが好ましい。
【００１６】
「疎水基」は、アルキル基、アシル基、フェニル基、ベンジル基などが挙げられ、好ましくはアルキル基である。本発明において「アルキル基」とは炭素数４〜２０個の直鎖状のものを指し、特に好ましくはウンデシル基（炭素数１１個）である。
【００１７】
「ゼラチン誘導体」は、ゼラチンの官能基に対して疎水基を直接又はリンカーを介して間接的に結合させることによって得ることができる。ゼラチン誘導体の製造に利用可能なゼラチンの官能基としては、アミノ基、ヒドロキシ基、カルボン酸基、チオール基、エステル基、アミド基、ケトン基、アルデヒド基等が挙げられるが、好ましくはアミノ基である。ゼラチンの官能基に対する疎水基の結合は公知の手法によって行うことができる。例えば、疎水基としてアルキル基を利用する場合においては（図１）、ゼラチンを適当な溶媒（例えば、水等）に溶解し、ここに適当な直鎖飽和脂肪族アルデヒドを加える。直鎖飽和脂肪族アルデヒドは、ゼラチンのアミノ基との縮合反応によりシッフ塩基を形成する。続いて、シッフ塩基を還元することによって、アルキル基が結合したゼラチンを得ることができる。反応に用いるゼラチンと疎水基を付与する物質（上記アルキル基の例でいえば、直鎖飽和脂肪族アルデヒド）の量比を適宜変更することによって、最終的に得られるゼラチン誘導体における疎水基の導入量を調節することができる。ゼラチン誘導体における疎水基の導入量を増加させることによって、当該ゼラチン誘導体を用いて得られるゼラチンゲルの架橋度を高めることができ、ゼラチンゲルの安定性を高め、分解されにくくすることができる。本発明においては、ゼラチン誘導体１ｇ（乾燥重量）あたり、１×１０−５〜１×１０−２ｍｏｌの疎水基が導入されていることが好ましい。
【００１８】
特に好ましくは、本発明において「ゼラチン誘導体」とは、ゼラチン誘導体１ｇ（乾燥重量）あたり、炭素数１１の直鎖アルキル基が１×１０−４〜９×１０−４ｍｏｌ導入されているものを指す。
【００１９】
本発明のゼラチンゲルは、ゼラチン誘導体を有機溶媒に溶解してゼラチン誘導体溶液とし、続いてゼラチン誘導体溶液を凍結乾燥して乾燥物を得て、当該乾燥物を適当な水性溶媒で膨潤及びゲル化させることによって製造することができる。
【００２０】
ゼラチン誘導体を溶解するための有機溶媒としては、上記ゼラチン誘導体を溶解できるものであれば良く、特に限定はされないが、例えば、ジメチルスルホキシド（以下、「ＤＭＳＯ」と記載する）、エタノール、プロパノール、グリセリン等が挙げられ、好ましくはＤＭＳＯである。
【００２１】
ゼラチン誘導体は有機溶媒に、０．１〜５０％（ｗ／ｖ）、好ましくは５〜２０％（ｗ／ｖ）の濃度で溶解させる。当該濃度によって、ゼラチンゲルにおけるゼラチン誘導体の密度を調節することができる。ゼラチンゲルにおけるゼラチン誘導体の密度を増加させることによって、得られるゼラチンゲルの架橋度を高めることができ、ゼラチンゲルの安定性を高め、分解されにくくすることができる。
【００２２】
ゼラチン誘導体溶液の凍結乾燥は公知の手法により行うことができる。すなわち、ゼラチン誘導体溶液を−１９６℃〜−２０℃程度で急速に凍結し、真空条件下にて溶媒を昇華して乾燥させる。凍結乾燥を用いることによって、乾燥物をゼラチン誘導体が疎水性相互作用により疎水基を介して相互に架橋された、多孔質体として得ることができる。凍結乾燥の結果得られた乾燥物は、使用するまで−１９６℃〜室温で保存することができる。
【００２３】
乾燥物の膨潤及びゲル化は、乾燥物に水性溶媒を含浸させることによって行うことができる。すなわち、乾燥物に水性溶媒を含浸させることによって、多孔質体である乾燥物の内部（すなわち、間隙）に水が保持され膨潤しゲル状になる。また、ゼラチン誘導体は疎水性相互作用により疎水基を介して相互に架橋されているためにゲルの状態を保つことができる（図２）。
【００２４】
乾燥物の膨潤及びゲル化に用いられる水性溶媒としては、例えば、水や生理食塩水、あるいはこれらに緩衝剤(リン酸塩、クエン酸塩、炭酸塩、酢酸塩等)を添加したものが挙げられる（これらに限定はされない）。乾燥物の膨潤及びゲル化は、水性溶媒を乾燥物に対して滴下するか、水性溶媒中に乾燥物を浸漬することによって行うことができる。乾燥物の膨潤及びゲル化の工程は、水性溶媒が乾燥物内部まで均一に浸潤するのに十分な時間行えば良く、乾燥物の大きさや含まれるゼラチン誘導体量によって異なるが、１分〜２４時間程度行えば良い。乾燥物の膨潤及びゲル化に際しては、必要に応じて、脱気処理を行うことができ、これにより効率的に水性溶媒を乾燥物内部まで均一に浸潤させることができる。
【００２５】
本発明のゼラチンゲルは、５０〜９９．９ｗ／ｗ％、好ましくは７５〜９５ｗ／ｗ％の含水率を有する（すなわち、本発明のゼラチンゲルは、ゼラチン誘導体を０．１〜５０％（ｗ／ｗ）、好ましくは５〜２５ｗ／ｗ％の量で含む）。含水率とは、ゼラチンゲル中の水性溶媒の重量パーセントで表わされる。含水率は上記したゼラチン誘導体における疎水基の導入量、及び／又は、ゼラチンゲルにおけるゼラチン誘導体の密度（すなわち、ゼラチン誘導体の溶媒に対する溶解濃度）によって、調節することができる。ゼラチン誘導体における疎水基の導入量が少ないほど、また、ゼラチンゲルにおけるゼラチン誘導体の密度が少ないほど、含水率を増加させることができる。
【００２６】
本発明のゼラチンゲルの形状及び大きさは、特に限定されることなく、意図する用途に応じて適宜選択することができる。形状としては、円柱状、角柱状、シート状、ディスク状、球状、ペースト状等が挙げられるが、円柱状、角柱状、シート状、ディスク状であれば、生体内に容易に埋殖することができる。ゼラチンゲルの形状及び大きさの調整は、ゼラチンゲル作製時において、上記ゼラチン誘導体溶液を所望の形状及び大きさを有する鋳型に流しこみ、凍結乾燥させることによって行うこともできるし、上記乾燥物又はゼラチンゲルを所望の形状及び大きさに適宜切断・裁断することによって行うこともできる。
【００２７】
本発明のゼラチンゲルは、基材であるゼラチン誘導体が疎水性相互作用により疎水基を介して相互に架橋されてなり、従来的に用いられているゼラチンゲルと異なり、化学架橋剤（例えば、ホルムアルデヒドやグルタルアルデヒドなど）を包含しない。故に、本発明のゼラチンゲルは、細胞、組織、器官に対して、毒性を示すことなく、又は低い毒性にて、適用することができる。
【００２８】
本発明のゼラチンゲルは、薬物を含めることによって、徐放性製剤として利用することができる。徐放性製剤においては、生体内においてゼラチンが種々の酵素の働きにより分解されるに伴い、ゲル中に包含される薬物が徐々に放出される。薬物の放出速度は、ゼラチンゲルの分解速度によって調節することができる。
【００２９】
ゼラチンゲルの分解速度は、ゼラチンゲル作製時における、ゼラチンに対する疎水基の導入量、上記ゼラチン誘導体溶液におけるゼラチン誘導体の濃度、またはそれらの組み合わせを調節し、ゼラチンゲルにおける架橋の程度を調節することにより行うことができる。
【００３０】
「薬物」としては、例えば、抗腫瘍剤、抗菌剤、抗炎症剤、抗ウイルス剤、抗エイズ剤、ホルモン、細胞増殖因子、核酸等が挙げられ、１０，０００〜１００，０００程度の分子量を持つものが好ましい。中でも、細胞増殖因子が好ましい。「細胞増殖因子」としては、線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ）（好ましくはｂＦＧＦ）、肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）、神経成長因子（ＮＧＦ）、骨形成タンパク質（ＢＭＰ）、上皮成長因子(ＥＧＦ)、トランスフォーミング成長因子（ＴＧＦ）、血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ）、インスリン様増殖因子（ＩＧＦ）、血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）等が挙げられる（これらに限定はされない）。下記実施例にて詳述するとおり、ｂＦＧＦを含む本発明のゼラチンゲルは、血管新生促進剤として利用することができる。
【００３１】
薬物はゼラチンゲルとの物理化学的相互作用（例えば、疎水性相互作用、水素結合、クーロン力など）や配位結合を利用して、ゼラチンゲル内に固定することができる。例えば、薬物が細胞増殖因子等のタンパク質である場合、薬物の等電点が７以下であれば上記塩基性ゼラチンより作製されたゼラチンゲルを利用することにより、薬物をゼラチンゲル内に好適に固定することができ、薬物の等電点が７以上であれば上記酸性ゼラチンより作製されたゼラチンゲルを利用することにより、薬物をゼラチンゲル内に好適に固定することができる。
【００３２】
薬物は、適当な溶媒、好ましくは水性溶媒に溶解した後、ゼラチンゲルの一方の面から薬物を含む溶液を滴下するか、又は薬物を含む溶液中にゼラチンゲルを浸漬することによって、ゼラチンゲル中に薬物を含めることができる。あるいは、薬物を、上記乾燥物を膨潤及びゲル化するための水性溶媒中に含めることによって、ゼラチンゲル中に薬物を含めることができる。
【００３３】
ゼラチンゲル中に含める薬物の量は、患者の年齢、体重、疾患の重篤度、投与するゼラチンゲルの大きさなどの要因によって変化し得るが、０．０１μｇ〜１０００μｇ、好ましくは０．１μｇ〜１００μｇの範囲から適宜選択される量を含めることができる。
【００３４】
ゼラチンゲルには、薬物に加えて、必要に応じて、安定化剤、保存剤、可溶化剤、ｐＨ調整剤、増粘剤等を含めることができる。
【００３５】
薬物を含むゼラチンゲルは任意の方法で生体に投与することができるが、目的とする部位において持続的に薬物を放出させるために、局所投与が好ましい。薬物を含むゼラチンゲルの投与量は、必要とされる薬物の投与量に応じて、適宜選択することができる。
【実施例】
【００３６】
以下に、実施例を挙げて本発明をさらに具体的に説明するが、本発明の範囲は、それらの実施例によって制限されないものとする。
実施例１：ゼラチンゲルの調製
（１−１）ゼラチン誘導体の合成
ウシ皮膚由来酸性ゼラチン（シグマ社製）を８ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．４）に３％（ｗ／ｖ）の濃度で溶解して水溶液とした。得られた水溶液に、その水溶液量の０．７倍量の９９．９％エタノールを加えた。得られた水溶液に１−ドデカナールを加え、ゼラチンのアミノ基との縮合反応（２５℃、６時間）によりシッフ塩基を形成させた。得られた反応物に、シアノ水素化ホウ素ナトリウムを加え、還元的アミノ化反応により、アルキル基を導入したゼラチン誘導体を作製した（図１）。
【００３７】
ゼラチンに対するアルキル基の導入量は、反応に用いるゼラチンと１−ドデカナールとの量比によって調整することができ、ゼラチン中のアミノ基の総物質量を１として、０．１、０．５、１．０（、５．０（ＧＤ８）の物質量の１−ドデカナールをゼラチン水溶液に加え、上記反応によりゼラチン誘導体を作製した。
【００３８】
結果、ゼラチン誘導体１ｇ（乾燥重量）あたり、１．１×１０−４ｍｏｌのアルキル基が導入されたゼラチン誘導体（以下、「ＧＤ１」と記載）、２．９×１０−４ｍｏｌのアルキル基が導入されたゼラチン誘導体（以下、「ＧＤ３」と記載）、４．８×１０−４ｍｏｌのアルキル基が導入されたゼラチン誘導体（以下、「ＧＤ５」と記載）、及び８．３×１０−４ｍｏｌのアルキル基が導入されたゼラチン誘導体（以下、「ＧＤ８」と記載）を得、以下の実験に用いた。
【００３９】
（１−２）ゼラチンゲルの調製
ＧＤ１、ＧＤ３、ＧＤ５、ＧＤ８の各ゼラチン誘導体の乾燥粉末０．１２５ｇを蒸留水またはジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）１０ｍＬに加え、８０℃で１５分攪拌した後、溶解したゼラチン誘導体の量を測定した。対照として、アルキル基未導入の同量のゼラチンを用いた。
結果を以下の表１に示す。
【００４０】
【表１】
2014005211.tif 000002
【００４１】
ゼラチン誘導体は、導入されたアルキル基の増加に伴い、蒸留水への溶解度が減少した。すなわち、ゼラチン誘導体は導入されたアルキル基の増加に伴い、疎水性が向上したことが示された。以下、ゼラチン誘導体を溶解するための有機溶媒として、ＤＭＳＯを使用した。
【００４２】
ＧＤ１、ＧＤ３、ＧＤ５、ＧＤ８のゼラチン誘導体の乾燥粉末をそれぞれＤＭＳＯに１０％（ｗ／ｖ）の濃度で溶解し、１２穴ウェルプレートに１ｍＬずつ入れ、凍結−真空乾燥を行った。得られた乾燥物を８ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．４）に浸しながら、１分〜１０分間程度、脱気処理することにより、乾燥物の内部までリン酸緩衝液を浸透させ、各ゼラチン誘導体からなるゼラチンゲルを得た。なお以下、ＧＤ１から作製したゼラチンゲルをＧＤ１ゼラチンゲル、ＧＤ３から作製したゼラチンゲルをＧＤ３ゼラチンゲル、ＧＤ５から作製したゼラチンゲルをＧＤ５ゼラチンゲル、及びＧＤ８から作製したゼラチンゲルをＧＤ８ゼラチンゲル、と記載する。
【００４３】
実施例２：ゼラチンゲルの生体内温度での安定性
上記実施例１で得られた各ゼラチン誘導体から作製したゼラチンゲル（乾燥重量０．１ｇ）を８ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．４）に浸し３７℃、１００ｒｐｍで振とうし、ゼラチンゲルが完全に溶解するまでの時間を測定した。対照として、アルキル基未導入のゼラチンより、実施例１に記載の方法と同様に作製したゼラチンゲルを用いた
結果を以下の表２に示す。
【００４４】
【表２】
2014005211.tif 000003
【００４５】
ゼラチン誘導体に導入されたアルキル基の増加に伴い、ゼラチンゲルの３７℃における安定性が向上した。ＧＤ８ゼラチンゲルは実験開始から１６日経過しても、ほとんど溶解していなかった。
【００４６】
実施例３：ゼラチンゲルの細胞毒性
上記実施例１で得られた各ゼラチン誘導体から作製したゼラチンゲルを一部に塗布した細胞培養用プレートを作製し、当該プレートにＬ９２９線維芽細胞を播種し、従来公知の手法に基づいて培養を行った。
培養開始から５日目の結果を図３に示す。
【００４７】
図３の結果より明らかなとおり、ＧＤ１ゼラチンゲル又はＧＤ８ゼラチンゲルと近接している領域においても細胞の増殖が確認され、当該ゼラチンゲルが細胞に与える影響（すなわち、細胞毒性）は低いことが示された。
【００４８】
実施例４：ゼラチンゲルの生体内における安定性
上記実施例１で得られた各ゼラチン誘導体から作製したゼラチンゲル（乾燥重量０．０２５ｇ）をＤＤＹマウス（６週齢）の背部皮下に埋殖し、１週間後のゼラチンゲルの大きさを確認した。
結果を図４に示す。
【００４９】
図４の結果より明らかなとおり、ＧＤ１とＧＤ３はほとんど分解しており、ＧＤ５は約半分ほど分解していた。一方、ＧＤ８はほとんど分解していなかった。
【００５０】
すなわち、ゼラチン誘導体に導入されたアルキル基の増加に伴い、ゼラチンゲルの生体内における安定性が向上した。
【００５１】
実施例５：ｂＦＧＦのモデルタンパク質の吸着及び放出
（５−１）シトクロームＣの吸着
ｂＦＧＦ及びシトクロームＣの分子量及び等電点を以下の表３に示す。
【００５２】
【表３】
2014005211.tif 000004
【００５３】
シトクロームＣはｂＦＧＦと同程度の分子量および等電点を有するために、シトクロームＣはｂＦＧＦのモデルタンパク質として用いた。
【００５４】
シトクロームＣ水溶液（０．１５ｍｇ／ｍｌ）中に、上記実施例１で得られたＧＤ３ゼラチンゲル（乾燥重量０．０２５ｇ）を加え、３７℃、４００ｒｐｍで振とうした。所定の時間において水溶液の一部を採取して、水溶液中のシトクロームＣ量を測定し、ゼラチンゲルに吸着されたシトクロームＣ量を調べた。結果を、図５に示す。なお、図中の吸着率（％）とは、以下の式により求めることができる。
【００５５】
【数１】
2014005211.tif 000005
【００５６】
図５の結果より明らかなとおり、シトクロームＣは経時的にゼラチンゲルに吸着され、実験開始から６０分後には水溶液中に含まれる全てのシトクロームＣがゼラチンゲルに吸着された。
【００５７】
（５−２）シトクロームＣの放出
シトクロームＣ水溶液（０．１５ｍｇ／ｍｌ）中に、上記実施例１で得られたＧＤ３ゼラチンゲル（乾燥重量０．０２５ｇ）を加え、３７℃、４００ｒｐｍにて６０分間振とうし、シトクロームＣ吸着したゼラチンゲルを調製した。ゼラチン分解酵素であるパパインを８ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．４）に溶解（０．１ｍｇ／ｍｌ）し、ここに上記シトクロームＣ吸着したゼラチンゲルを加え、３７℃、２００ｒｐｍで振とうした。所定の時間において水溶液の一部を採取して、水溶液中のシトクロームＣ量を測定し、水溶液中に放出されたシトクロームＣ量を調べた。結果を、図６に示す。なお、図中のシトクロームＣ放出率（％）とは、以下の式により求めることができる。
【００５８】
【数２】
2014005211.tif 000006
【００５９】
また、所定の時間において残存するゼラチンゲルの重量を測定し、ゼラチンゲルの分解率（％）を調べた。
【００６０】
図６の結果より明らかなとおり、ゼラチンゲルの分解と、水溶液中のシトクロームＣ量には相関関係が見られた。この結果は、ゼラチンゲルの分解により、吸着されていたシトクロームＣが放出されることを示す。
【００６１】
以上の結果より、ゼラチンゲルはシトクロームＣと同様にｂＦＧＦを吸着することが可能であり、またゼラチンゲルの分解により、吸着していたｂＦＧＦを放出することができることを示す。
【００６２】
実施例６：ゼラチンゲルを用いた血管新生の誘導
上記実施例１で得られたＧＤ３のゼラチン誘導から作製したゼラチンゲルの上面にｂＦＧＦを１０μｇを含む水溶液２０μＬを滴下して、３７℃にて１時間静置して、ゼラチンゲルにｂＦＧＦを吸着させた。
【００６３】
ｂＦＧＦを吸着させたゼラチンゲル（乾燥重量０．０２５ｇ）をＷｉｓｔａｒラット（雄、６週齢）の背部皮下に埋殖した。対照として、ｂＦＧＦ水溶液に変えて、ｂＦＧＦを含まない精製水２０μＬを滴下した以外は同様に調製したゼラチンゲルを用いた。
【００６４】
埋殖後３日目のゼラチンゲル周辺組織の写真図を図７に示す。図７の結果より明らかなとおり、対照ゼラチンゲルを埋殖した場合と比べて、ｂＦＧＦを吸着させたゼラチンゲルを埋殖した場合には、ゼラチンゲル周辺において顕著に多数の血管が形成されていた。
【００６５】
続いて、埋殖後３日目のゼラチンゲル周辺組織のヘモグロビン量を測定した。結果を図８に示す。
【００６６】
図８の結果より明らかなとおり、対照ゼラチンゲルを埋殖した場合と比べて、ｂＦＧＦを吸着させたゼラチンゲルを埋殖した場合には、ゼラチンゲル周辺において顕著に大量のヘモグロビンが存在することが明らかとなった。この結果は、ｂＦＧＦを吸着させたゼラチンゲル周辺において顕著に多数の血管が形成されていることを示す。
【図１】
2014005211.tif 000007
【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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