(57)【要約】【課題】ＨＣＶを効率的に培養できる培養細胞、及び、ＨＣＶを培養できる細胞系を構築する細胞系構築方法を提供する。【解決手段】ヒト肝細胞由来の培養細胞は、Ｈｕｈ７細胞にステルスｓｉＲＮＡが導入され、インポーチンα遺伝子、インポーチンβ遺伝子又はトランスポーチン遺伝子がノックダウンされ、この遺伝子の発現が抑制されている。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
インポーチンα遺伝子、インポーチンβ遺伝子又はトランスポーチン遺伝子をノックダウンさせた、Ｃ型肝炎ウイルスを培養するためのヒト肝細胞由来の培養細胞。
【請求項２】
前記インポーチンα遺伝子、前記インポーチンβ遺伝子又は前記トランスポーチン遺伝子を、ステルスｓｉＲＮＡ又はｓｉＲＮＡによりノックダウンさせたことを特徴とする請求項１に記載の培養細胞。
【請求項３】
前記インポーチンα遺伝子は、インポーチンα１遺伝子、インポーチンα３遺伝子、又は、インポーチンα５遺伝子であることを特徴とする請求項１又は２に記載の培養細胞。
【請求項４】
前記ヒト肝細胞は、Ｈｕｈ７細胞、Ｈｕｈ７．５細胞、又は、Ｈｕｈ７．５．１細胞であることを特徴とする請求項１乃至３の何れか１項に記載の培養細胞。
【請求項５】
宿主培養細胞におけるインポーチン分子又はトランスポーチン分子の発現を抑制することにより、Ｃ型肝炎ウイルスを培養する細胞系を構築することを特徴とする細胞系構築方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、培養細胞、及び、細胞系構築方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
Ｃ型肝炎ウイルス（以下「ＨＣＶ」と記載する）は非Ａ非Ｂ型肝炎の原因ウイルスとして１９８９年に発見同定された。ＨＣＶは、エンベロープを有するＲＮＡウイルスである。ゲノムは一本鎖プラス鎖ＲＮＡで、フラビウイルス科のHepacivirus属に分類される。同じ肝炎ウイルスであっても、ＤＮＡウイルスであるＢ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）は、免疫能の未熟な新生児、乳幼児期以外では、たとえ感染しても免疫機構により排除され急性感染で終わる。それと比較して、ＨＣＶは、未だ明らかではない原因により宿主の免疫機構を回避する。そのため免疫機構の発達した大人に感染した場合でも、持続性感染に移行することが多い。
【０００３】
ＨＣＶ感染により引き起こされる肝炎（Ｃ型肝炎）は、その後二十数年の経過のなかで肝硬変、そして最終的に肝癌に至る可能性がある。肝癌は、手術で癌を摘出しても、非癌部で引き続き起こる炎症のため肝癌が再発する患者も多いことが知られている。また、ＨＣＶ感染が慢性蕁麻疹、偏平苔癬、クリオグロブリン血症性紫斑等の皮膚疾患に関与するとの報告も見られる（日皮会誌, 111(7), 1075-81, 2001参照）。
【０００４】
ＨＣＶ感染者は日本国内で約２００万人、世界で約２億人いると推定されている。また、ＨＣＶに感染していることを自覚していないいわゆる無症候性キャリアーも多数存在している。現在、日本国内では、肝細胞癌による犠牲者は年間約３．５万人となっており、その８割はＨＣＶ感染によるものである。
【０００５】
現在、ＨＣＶ感染症に対しては、インターフェロンとリバビリン（Ｒｉｂａｖｉｒｉｎ：１−β−Ｄ−リボフラノシル−１Ｈ−１，２，４−トリアゾール−３−カルボキサミド）の併用療法が一般的である。しかしながら、この併用療法は、患者全体の５０％にしか有効ではなく、また、血球減少症・溶血性貧血など重篤な副作用をおこすことが知られている。
【０００６】
係る事情の下、薬効の優れているＨＣＶ阻害剤やＨＣＶの予防に有効なワクチンを作製することが求められている。ＨＣＶ阻害剤やワクチンを作製するためには、ＨＣＶを培養、増殖し、これを標的とする必要がある。非特許文献１、２には、チンパンジーをＨＣＶに感染させ、感染させたチンパンジーの肝臓においてＨＣＶを増殖させる方法が開示されている。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００７】
【非特許文献１】Beard MR. et al., "An infectious molecular clone of a Japanese genotype 1b hepatitis C virus", Hepatology 30: 316-24, 1999
【非特許文献２】Yanagi M. et al., "an infectious molecular clone of a second major genotype (2a) and lack of viability of intertypic 1a and 2a chimeras", Virology 262: 250-63, 1999
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
ＨＣＶを増殖させるためにチンパンジーを用いると、チンパンジーの飼育や飼育施設が必要である。しかし、チンパンジーの飼育施設には莫大な費用がかかり、また、実験に使用できるようなチンパンジーを飼育するには時間と手間がかかる。このため、ＨＣＶを効率的に培養できる新たな手法が求められている。
【０００９】
本発明は、上記事情に鑑みてなされたものであり、ＨＣＶを効率的に培養できる培養細胞、及び、ＨＣＶを培養できる細胞系を構築する細胞系構築方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
上記の目的を達成するため、本発明の第１の観点に係る培養細胞は、
インポーチンα遺伝子、インポーチンβ遺伝子又はトランスポーチン遺伝子をノックダウンさせた、Ｃ型肝炎ウイルスを培養するためのヒト肝細胞由来の培養細胞である。
【００１１】
前記インポーチンα遺伝子、前記インポーチンβ遺伝子又は前記トランスポーチン遺伝子を、ステルスｓｉＲＮＡ又はｓｉＲＮＡによりノックダウンさせてもよい。
【００１２】
前記インポーチンα遺伝子は、インポーチンα１遺伝子、インポーチンα３遺伝子、又は、インポーチンα５遺伝子であってもよい。
【００１３】
前記ヒト肝細胞は、Ｈｕｈ７細胞、Ｈｕｈ７．５細胞、又は、Ｈｕｈ７．５．１細胞であってもよい。
【００１４】
本発明の第２の観点に係る細胞系構築方法は、
宿主培養細胞におけるインポーチン分子又はトランスポーチン分子の発現を抑制することにより、Ｃ型肝炎ウイルスを培養する細胞系を構築することを特徴とする。
【発明の効果】
【００１５】
本発明によれば、ＨＣＶを効率的に培養できる。
【図面の簡単な説明】
【００１６】
【図１】培養細胞のＨＣＶ分泌量を比較した図である。
【図２】培養細胞内のＨＣＶゲノムＲＮＡ量を比較した図である。
【図３】培養細胞内のＨＣＶタンパク質の検出結果を比較した図である。
【発明を実施するための形態】
【００１７】
（１．培養細胞）
本明細書において「培養細胞」、「培養細胞系」とは、ＨＣＶを培養できる細胞である。培養細胞は、細胞のインポーチン遺伝子又はトランスポーチン遺伝子の発現が抑制されており、ＨＣＶを効率的に培養できる状態にある。
【００１８】
培養細胞のもととなる細胞（宿主培養細胞）は、ヒト肝細胞由来のＨｕｈ７系細胞である。培養細胞では、例えば、Ｈｕｈ７細胞、Ｈｕｈ７．５細胞、Ｈｕｈ７．５．１細胞のインポーチン遺伝子又はトランスポーチン遺伝子がノックダウンされ、インポーチン遺伝子又はトランスポーチン遺伝子の発現が抑制されている。
【００１９】
宿主培養細胞は、ヒト肝細胞由来のＨｕｈ７系細胞以外であっても、ＨＣＶの感染・増殖性を示すヒト肝培養細胞株（例えば、Ｌｉ２３細胞（Kato N. et al. Virus Res. 486, 146, 41-50 (2009）参照)、ＨｕＳ−Ｅ／細胞（Aly H.H. et al. J. Hepatol. 46, 26-36(2007)参照）であってもよく、また、各種の市販の初代ヒト肝細胞や、初代ヒト肝細胞をマウスに移植したヒト肝臓キメラマウス細胞（例えば、PXBマウス細胞（フェニックスバイオ社製））であってもよい。
【００２０】
ノックダウンする遺伝子は、インポーチンα１（Importin α1）遺伝子、インポーチンα３（Importin α3）遺伝子、インポーチンα５（Importin α5）遺伝子、インポーチンβ（Importin β）遺伝子、トランスポーチン（Transportin）遺伝子の何れであってもよい。
【００２１】
（２．ＨＣＶ株）
上記の培養細胞に感染させるＨＣＶ（ＨＣＶ株）としては特に限定されず、少なくとも感染能及び複製能を有するＨＣＶであればよい。具体的には、遺伝子型2aのJFH1株が挙げられる。また、JFH1株のキメラ体（例えば、H77C/JFH1株（遺伝子型1aとのキメラ）、J4/JFH1株（遺伝子型1bとのキメラ）、J6/JFH1株（他の遺伝子型2aとのキメラ）、J8/JFH1株（遺伝子型2bとのキメラ)、S52/JFH1株（遺伝子型3aとのキメラ）、ED43/JFH1株（遺伝子型4aとのキメラ）、SA13/JFH1株（遺伝子型5aとのキメラ）、HK6a/JFH1株（遺伝子型6aとのキメラ）、QC69/JFH1株（遺伝子型7aとのキメラ）（Gottwein J. M. et al. Hepatology 49, 364-377(2008)参照））であってもよく、また、他のすべての遺伝子型のＨＣＶ株であってもよい。
【００２２】
（３．培養細胞系の構築方法）
ヒト肝細胞由来の細胞にステルスsiRNAを導入し、インポーチン遺伝子又はトランスポーチン遺伝子をノックダウンすることにより、この遺伝子の発現量が減少した培養細胞を作製する。
【００２３】
培養細胞を作製するための増殖用培養液、培地は、細胞を培養するために一般的に用いられている培養液、培地であれば、特に限定されるものではない。また、増殖用培養液、培地には、細胞を培養するために一般的に用いられる抗生物質（例えば、ペニシリン、ストレプトマイシン）、抗真菌剤（例えば、ファンギゾン）を添加してもよく、さらに他の成分を含むことができる。培養条件は、細胞を培養するための公知の条件を採用することができる。例えば、約５％ＣＯ２存在下、約３７℃で、１〜４日間、培養することにより、培養細胞を作製できる。
【００２４】
培地の組成としては特に限定されず、細胞に合わせて適宜公知の培地を用いることができる。また、培養方法としても特に限定されず、用いる細胞に合わせて適宜公知の方法を用いることが可能である。
【００２５】
培養時間としては特に限定されないが、ＨＣＶが細胞に対して十分な傷害を与えることができる程度の時間であることが好ましい。具体的には、培養時間は、培地上清中にＨＣＶのＲＮＡが検出可能な時間であることが好ましい。
【００２６】
遺伝子の発現量を減少させる方法は、ステルスsiRNAに限定されず、siRNA、shRNA、microRNAなど任意である。また、ステルスsiRNA以外であってもインポーチン分子又はトランスポーチン分子の発現を抑制するものであれば、インポーチン又はトランスポーチンの輸送阻害剤やインポーチン又はトランスポーチンの活性ドミナントネガティブ体のようなものであってもよい。また、遺伝子をノックアウトしてもよく、また、タンパク質の発現をノックダウンしてもよい。
【００２７】
培養細胞にＨＣＶを感染させる感染方法は、適宜選択することができる。また、ＨＣＶに感染した培養細胞から、ＨＣＶ量（例えば、分泌量、ゲノムＲＮＡ量、タンパク質量）を検出する検出方法は、適宜選択することができる。例えば、ＨＣＶの特異的なタンパク質の検出方法としては、公知の生化学的または免疫化学的な方法を用いることができる。特に制限されないが、特異的な標識抗体を用いる方法（染色法、フローサイトメトリー、ＥＬＩＳＡなど）、ＲＴ−ＰＣＲ法、ハイブリダイゼーション解析などが挙げられる。特異的な抗体は市販されており、容易に使用することができる。
【００２８】
培養細胞内でＨＣＶを増殖複製させる増殖方法は、適宜選択することができる。例えば、ＨＣＶのレプリコンシステムを用いて、ＨＣＶを培養細胞内で増殖複製することができる（Lohmann V et al, "Replication of subgenomic hepatitis C virus RNAs in a hepatoma cell line", Science. 285:110-3, 1999参照）。
【００２９】
上述したように、インポーチン遺伝子又はトランスポーチン遺伝子の発現が抑制された培養細胞は、ＨＣＶを培養することができる。また、ヒト肝細胞由来のＨｕｈ７系細胞にステルスsiRNAを導入し、インポーチン遺伝子又はトランスポーチン遺伝子をノックダウンすることにより、培養細胞を作製することができる。これにより、ＨＣＶの増殖、培養を評価するための培養細胞系（実験系）を提供することができる。また、本発明に係る培養細胞を利用することにより、ＨＣＶに感染させた培養細胞を標的とした様々な薬剤、例えば、抵抗性改善薬及び代謝改善薬、を従来の実験動物等を用いた方法と比較して簡易にスクリーニングすることができる。
【００３０】
以下、実施例を用いて本発明をより詳細に説明するが、実施例は本発明を限定するものでない。
【実施例】
【００３１】
（培養細胞の作製）
ヒト培養肝細胞にステルスsiRNAを導入し、インポーチンβ遺伝子をノックダウンさせた培養細胞を作製した。培養細胞を作製するための操作は、すべてClass IIA安全キャビネット（日立社製 SCV-1303ECIIA）中で行った。まず、コラーゲンコート48穴プレート（コーニング社製NCO3548）に、ヒト肝由来培養細胞株のHuh7.5.1細胞を5 × 104 cells/well(500μｌ)で播き込んだ。培地は、10% Fetal Bovine Serum（Cell Culture Bioscience社171012 lot. 8E0582）, non-essential amino acid（Hyclone社製SH30238.01）, penicillin/streptomycin（Wako社製168-23191）含有D-MEM（Wako社製044-29765）を用いた（以下、この培地を培地Aという）。37℃、1日間、5% CO2インキュベータ（ASTEC社製 SCA-165DS）中で培養した。ステルスsiRNA導入には、Lipofectamine RNAiMAX Transfection Reagent（Life technologies社製13778150）を用い、この製品マニュアルに従って行った。１well当たり、A液（0.28μｌのLipofectamine RNAi MAX＋20μｌのOpti-MEM I reduced serum medium(Life technologies社製31985)、B液（6pmolの各siRNA+ 20μｌのOpti-MEM I reduced serum medium）を用意し、A液とB液とを混合後15から20分間放置し、siRNA溶液を調製した。細胞の培養液を200μｌの抗生物質（penicillin/streptomycin）を含まない培地Aに置換し、siRNA溶液を添加した（終濃度30nM）。そのまま37℃、2日間培養した。全く同じsiRNA導入操作を再度行った。最後に、37℃、1日間培養することにより、培養細胞を作製した。
【００３２】
また、上述した培養細胞の作製方法を用いて、ヒト肝由来培養細胞株のHuh7.5.1細胞のインポーチンα１遺伝子、インポーチンα３遺伝子、インポーチンα５遺伝子、及び、トランスポーチン遺伝子を、ノックダウンさせた培養細胞を同様に作製した。これらの培養細胞を用いて、以下のＨＣＶ感染操作を行った。
【００３３】
なお、ヒト培養肝細胞に導入したステルスsiRNAは以下の通りである。Importin siRNAsについては、Nitahara-Kasahara, Y. et al. J. Virol. 81, 5284-5293(2007)を参照した。
（１）Control siRNA: Stealth RNAi Negative Control Duplex Low GC Duplex (Invitrogen社製 12935-300)、以下に示す図中の「Cont. siRNA(L)」に対応。
（２）HPRT siRNA: Stealth siRNA Duplex (human HPRT-S1) (Invitrogen社製 10620312) 、Sense鎖: UUUCAAAUCCAACAAAGUCUGGCUU、以下に示す図中の「HPRT」に対応。
（３）Importin α1 siRNA: Stealth siRNA Duplex (Invitrogen社製custom ordered)、Sense鎖: CCAAGCUACUCAAGCUGCCAGGAAA、以下に示す図中の「importin α1」に対応。
（４）Importin α3 siRNA: Stealth siRNA Duplex (Invitrogen社製custom ordered)、Sense鎖: CAGUGAUCGAAAUCCACCAAUUGAU、以下に示す図中の「importin α3」に対応。
（５）Importin α5 siRNA: Stealth siRNA Duplex (Invitrogen社製custom ordered)、Sense鎖: CCGGAAUGCAGUAUGGGCUUUGUCU、以下に示す図中の「importin α5」に対応。
（６）Importin β siRNA: Stealth siRNA Duplex (Invitrogen社製custom ordered)、Sense鎖: CAGUCUGGCUGAAGCUGCUUAUGAA、以下に示す図中の「importin β」に対応。
（７）Transportin siRNA: Stealth siRNA Duplex (Invitrogen社製custom ordered)、Sense鎖: CACAGCACUGCAGUCUGGAUUCCUU、以下に示す図中の「transportin」に対応。
【００３４】
（ＨＣＶの感染）
siRNAを導入した培養細胞から培地を除き、培養細胞を500μｌの培地Aで2回洗浄した。500μｌのHCV-JFH1株（ＨＣＶコアタンパク質濃度として1.56pmol/L, MOI:〜0.5に相当）を含む培地Aを添加し、37℃、2から3時間培養した。培養細胞を500μｌの培地Aで3回洗浄後、500μｌの培地Aを添加し、37℃、4から5日間培養した。その後、インポーチンα１遺伝子、インポーチンα３遺伝子、インポーチンα５遺伝子、インポーチンβ遺伝子、トランスポーチン遺伝子をノックダウンさせたそれぞれの培養細胞におけるＨＣＶ量を測定した。
【００３５】
なお、用いたHCV-JFH1溶液は、論文（Murakami Y. et al. Antiviral Res. 83, 112-117(2009)）に従って調製し、当該濃度に培地Aで希釈して用いた。
また、培養上清中のＨＣＶ濃度については、ＨＣＶコアタンパク質の濃度をELISA法（オーソ社製HCV抗原ELISAテスト 601002）により測定した。濃度の測定方法は製品マニュアルに従った。
【００３６】
図１は、インポーチンの発現を抑制させたHuh7.5.1細胞（培養細胞）に、ＨＣＶ（JFH1株）を感染させたときの、細胞外へのＨＣＶの分泌量（ＨＣＶ量）を比較した図である。同図に示すように、インポーチンα１、α３遺伝子をステルスsiRNAによりノックダウンさせた培養細胞（図中では、importin α1, importin α3）は、ネガティブコントロールを導入した培養細胞（図中では、Cont. siRNA(L)）と比べて、ＨＣＶを有意に増加させないことが示された。インポーチンα５遺伝子をノックダウンさせた培養細胞では、ＨＣＶ量が倍増していた。また、インポーチンβ遺伝子、トランスポーチン遺伝子をステルスsiRNAによりノックダウンさせた培養細胞（図中では、importin β, transportin）は、ネガティブコントロールを導入した培養細胞と比べて、ＨＣＶ量が約１０倍になった。
【００３７】
以上の結果から、インポーチンα５遺伝子、インポーチンβ遺伝子、トランスポーチン遺伝子をステルスsiRNAによりノックダウンさせた培養細胞は、ＨＣＶの産生を顕著に上昇させることが示された。
【００３８】
（ＨＣＶゲノムＲＮＡ量の測定）
ＨＣＶに感染させた培養細胞中のＨＣＶゲノムＲＮＡ量を測定した。培養細胞を500μｌのPBSで洗浄後、NucleoSpin（登録商標）RNA II（Takara Bio社製U0955C）を用い、この製品のマニュアルに従い全RNAを精製した。100から200 ngの全RNAを使用し、LightCycler（登録商標） RNA Master SYBR Green I（Roche社製 03 064 760 001）を用いて、qRT-PCR法によりＨＣＶゲノムＲＮＡの定量を行った。測定は製品マニュアルに従った。ＨＣＶゲノム検出用のDNAプライマーは、"AGGAAGACTTCCGAGCG"および"GGGTGACAGGAGCCATC"を合成し、用いた。
【００３９】
図２は、インポーチンの発現を抑制させたHuh7.5.1細胞（培養細胞）に、ＨＣＶ（JFH1株）を感染させたときの、細胞内のＨＣＶゲノムＲＮＡ量を比較した図である。同図に示すように、インポーチンα１、α３、α５遺伝子をステルスsiRNAによりノックダウンさせた培養細胞（図中では、importin a1, importin a3, importin a5）は、ネガティブコントロールを導入した培養細胞（図中では、Cont. siRNA(L)）と比べて、細胞内のＨＣＶゲノムＲＮＡ量を増加させることが示された。また、インポーチンβ遺伝子、トランスポーチン遺伝子をステルスsiRNAによりノックダウンさせた培養細胞（図中では、importin β, transportin）は、ネガティブコントロールを導入した培養細胞と比べて、細胞内のＨＣＶゲノムＲＮＡ量を約１００倍増加させることが示された。
【００４０】
以上の結果から、インポーチンα１、α３、α５遺伝子、インポーチンβ遺伝子、トランスポーチン遺伝子（特に、インポーチンα５遺伝子、インポーチンβ遺伝子、トランスポーチン遺伝子）をステルスsiRNAによりノックダウンさせた培養細胞は、ＨＣＶの産生を顕著に上昇させることが示された。
【００４１】
（ＨＣＶタンパク質量の測定）
ＨＣＶに感染させた培養細胞中のＨＣＶタンパク質（コアタンパク質、ＮＳ３タンパク質）を、イムノブロット法により検出（測定）した。検出方法は、Novex（登録商標） NuPAGE（登録商標） Gel Electrophoresis-XCell II Blot Module（Invitrogen社製）システム、及び、SNAP i.d.吸引式免疫反応システム（Millipore社製）を用いて行った。ＨＣＶに感染させた培養細胞を500μｌのPBSで洗浄後、100μｌのNuPAGE LDS Sample Buffer (4X)（NP0007）に溶解し、13μｌをNuPAGE 4-12% Bis-Tris Gel 1.0 mm, 17 well（NP0329PK2）にて分離した。Invitrogen社マニュアルに従いPVDF膜に転写後、Millipore社マニュアルに従い免疫反応を行った。抗HCV core抗体（Mouse Anti-HCV Core Protein Monoclonal Antibody[B2], ANOGEN社製MO-I40015B）を2,000倍希釈、抗HCV NS3抗体（Mouse monoclonal [8G-2] to Hepatitis C Virus NS3, Abcam社製ab65407）を1,000倍希釈、抗GAPDH抗体（Mouse monoclonal [6C5] to GAPDH, Abcam社 ab8245）を20,000倍希釈、二次抗体（HRP-conjugated AffiniPure Goat Anti-Mouse IgG(H+L), Jackson Immuno Research社製115-035-003）を2,000倍希釈で用いた。シグナルの検出は、ECL（登録商標）試薬（GE Healthcare社製RPN2106）を用いて、この製品マニュアルに従い行った。
【００４２】
図３は、インポーチンの発現を抑制させたHuh7.5.1細胞（培養細胞）に、ＨＣＶ（JFH1株）を感染させたときの、感染培養細胞中のＨＣＶタンパク質量を比較した図である。イムノブロット法により、感染培養細胞中のコアタンパク質及びＮＳ３タンパク質の量を比較した。同図に示すように、インポーチンα５遺伝子をステルスsiRNAによりノックダウンさせた培養細胞（図中では、importin a5）では、ネガティブコントロールを導入した培養細胞（図中では、Cont. siRNA(L)）と比べて、コアタンパク質（図中では、HCV core）をより多く検出できた。また、インポーチンβ遺伝子、トランスポーチン遺伝子をステルスsiRNAによりノックダウンさせた培養細胞（図中では、importin β, transportin）では、ネガティブコントロールを導入した培養細胞と比べて、コアタンパク質（図中では、HCV core）及びＮＳ３タンパク質（図中では、HCV NS3）をより多く検出できた。
【００４３】
以上の結果から、インポーチンα５遺伝子、インポーチンβ遺伝子、トランスポーチン遺伝子をステルスsiRNAによりノックダウンさせた培養細胞は、ＨＣＶの産生を顕著に上昇させることが示された。
【００４４】
上述したように、インポーチン遺伝子、トランスポーチン遺伝子の発現が抑制された培養細胞では、ＨＣＶを効率的に培養することができた。これにより、ＨＣＶの増殖、培養を評価するための実験系を提供することができる。また、培養細胞を標的とすることにより、従来の実験動物等を用いた方法と比較して、ＨＣＶ阻害剤を簡易に作製（スクリーニング）することができる。また、本発明の培養細胞により効率的に全粒子ウイルスを作製できるため、ワクチン産生のための効率的な全粒子ウイルス抗原の作製が可能になる。
【産業上の利用可能性】
【００４５】
以上説明したように、本発明に係る培養細胞は、ＨＣＶを増殖複製できるため、ＨＣＶ感染の培養細胞を標的としたＨＣＶ阻害剤を作製するために有用である。また、効率的なワクチン産生においても有用である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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