(57)【要約】      （修正有）【課題】尿検体中にあるタンパク質の免疫測定の感度を上げる方法を提供する。【解決手段】尿検体に変性剤として、還元剤、カオトロピック試薬及び界面活性剤からなる化合物の１種又は２種を添加し、尿検体をこれらの化合物を用いて前処理することで免疫測定系の感度、すなわち測定対象物である尿中のタンパク質の測定感度を向上させる。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
尿検体中のタンパク質を測定する免疫測定方法であって、変性剤を尿検体に混合することにより尿検体を前処理して免疫測定を行い、前記タンパク質の測定感度を向上させる、免疫測定方法。
【請求項２】
タンパク質が尿中濃度が低いタンパク質である、請求項１記載の免疫測定方法。
【請求項３】
変性剤が還元剤である、請求項１又は２に記載の免疫測定方法。
【請求項４】
尿検体中に還元剤を0.0127〜64mMの濃度で添加して尿検体の前処理を行う、請求項３記載の免疫測定方法。
【請求項５】
還元剤がグルタチオンである、請求項３又は４に記載の免疫測定方法。
【請求項６】
尿検体中にグルタチオンを0.0127〜13mMの濃度で添加して尿検体の前処理を行う、請求項５記載の免疫測定方法。
【請求項７】
還元剤がシステインである、請求項３又は４に記載の免疫測定方法。
【請求項８】
尿検体中にシステインを0.0625〜16mMの濃度で添加して尿検体の前処理を行う、請求項７記載の免疫測定方法。
【請求項９】
還元剤がペニシラミンである、請求項３又は４に記載の免疫測定方法。
【請求項１０】
尿検体中にペニシラミンを0.0625〜64mMの濃度で添加して尿検体の前処理を行う、請求項９記載の免疫測定方法。
【請求項１１】
２種類の変性剤を組み合わせて前処理を行なう、請求項１又は２に記載の免疫測定方法。
【請求項１２】
変性剤の組合せが還元剤とカオトロピック試薬である、請求項１１記載の免疫測定方法。
【請求項１３】
還元剤がグルタチオンであり、カオトロピック試薬が尿素である、請求項１２記載の免疫測定方法。
【請求項１４】
還元剤がシステインであり、カオトロピック試薬が尿素である、請求項１２記載の免疫測定方法。
【請求項１５】
還元剤がペニシラミンであり、カオトロピック試薬が尿素である、請求項１２記載の免疫測定方法。
【請求項１６】
変性剤の組合せが還元剤と界面活性剤である、請求項１１記載の免疫測定方法。
【請求項１７】
還元剤がグルタチオンであり、界面活性剤がn-ドデシルベンゼンスルホン酸ナトリウム（SDBS）である、請求項１６記載の免疫測定方法。
【請求項１８】
還元剤がシステインであり、界面活性剤がn-ドデシルベンゼンスルホン酸ナトリウム（SDBS）である、請求項１６記載の免疫測定方法。
【請求項１９】
還元剤がペニシラミンであり、界面活性剤がn-ドデシルベンゼンスルホン酸ナトリウム（SDBS）である、請求項１６記載の免疫測定方法。
【請求項２０】
尿検体中に尿素を5〜320mMの濃度で添加して尿検体の前処理を行う、請求項１３〜１５のいずれか１項に記載の免疫測定方法。
【請求項２１】
尿検体中にn-ドデシルベンゼンスルホン酸ナトリウム（SDBS）を1.43〜5.74mMの濃度で添加して尿検体の前処理を行う、請求項１７〜１９のいずれか１項に記載の免疫測定方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、尿を前処理することにより免疫測定系の感度を上げる方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
尿中にあるタンパク質の測定はさまざまな疾患及び病状の診断に有用である。しかし、これらのタンパク質を測定する時には緩衝液で高度に希釈して測定に用いていた。ところが最近注目を集めているタンパク質のなかには、尿中濃度が低いために従来のように高度に希釈したのでは検出が困難なものがある。
【０００３】
腎疾患に関連している物質として尿中のメガリンがあり、尿中メガリンを測定することによる、簡便な腎障害の検査手段が開示されている（特許文献１及び２）。
【０００４】
Glycoprotein330(gp330)あるいはLow Density Lipoprotein(LDL)-receptor relate protein 2(LRP2)としても知られるメガリン(Megalin)は、腎臓の近位尿細管上皮細胞に発現する分子量が約600kDaの糖タンパク質である（非特許文献１及び２）。
【０００５】
メガリンは腎臓の近位尿細管上皮細胞を用いた細胞培養実験において、膜結合型の完全長メガリンと、細胞内領域を欠いたSoluble-Form（細胞外領域含有フラグメント）の二種類が存在していることが知られており（非特許文献３）、尿中の完全長ヒトメガリン、細胞外領域、細胞内領域を測定する方法も報告されている（特許文献３）。
【０００６】
尿中メガリン濃度は低濃度であるため高度に希釈すると測定が難しくなるので、高度に希釈せずに測定するか感度を上げて測定する必要がある。高度に希釈せずに測定する方法は既に公知であるが(特許文献４)、感度を上げる方法は存在しない。感度を上げる方法が開発されれば特許文献４の方法と組み合わせることで、より低濃度の尿中タンパク質を検出することが可能となり、病気の早期発見につながり医療経済上有益である。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００７】
【特許文献１】国際公開ＷＯ２００２／０３７０９９号
【特許文献２】国際公開ＷＯ２０１０／１２６０５５号
【特許文献３】国際公開ＷＯ２０１０／１２６０４３号
【特許文献４】国際公開ＷＯ２００９／０４１５７７号
【非特許文献】
【０００８】
【非特許文献１】Christensen E.I. , Willnow T.E. (1999) J. Am. Soc. Nephrol. 10 , 2224-2236
【非特許文献２】Zheng G , McCluskey R.T. et al. (1994) J. Histochem. Cytochem. 42 , 531-542
【非特許文献３】Flavia F.J. , Julie R.I. et al. (1998) Kidney. International. 53 , 358-366
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
本発明は免疫測定系の感度を上げる方法を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
本発明者らは上記課題を解決するために、尿に還元剤、カオトロピック試薬及び界面活性剤からなる化合物の１種又は２種を添加し、尿をこれらの化合物を用いて前処理することで免疫測定系の感度、すなわち測定対象物である尿中のタンパク質の測定感度が上がることを見出し、本発明を完成させた。
【００１１】
すなわち、本発明は以下のとおりである。
[１]  尿検体中のタンパク質を測定する免疫測定方法であって、変性剤を尿検体に混合することにより尿検体を前処理して免疫測定を行い、前記タンパク質の測定感度を向上させる、免疫測定方法。
[２]  タンパク質が尿中濃度が低いタンパク質である、[１]の免疫測定方法。
[３]  変性剤が還元剤である、[１]又は[２]の免疫測定方法。
[４]  尿検体中に還元剤を0.0127〜64mMの濃度で添加して尿検体の前処理を行う、[３]の免疫測定方法。
[５]  還元剤がグルタチオンである、[３]又は[４]の免疫測定方法。
[６]  尿検体中にグルタチオンを0.0127〜13mMの濃度で添加して尿検体の前処理を行う、[５]の免疫測定方法。
[７]  還元剤がシステインである、[３]又は[４]の免疫測定方法。
[８]  尿検体中にシステインを0.0625〜16mMの濃度で添加して尿検体の前処理を行う、[７]の免疫測定方法。
[９]  還元剤がペニシラミンである、[３]又は[４]の免疫測定方法。
[１０]  尿検体中にペニシラミンを0.0625〜64mMの濃度で添加して尿検体の前処理を行う、[９]の免疫測定方法。
[１１]  ２種類の変性剤を組み合わせて前処理を行なう、[１]又は[２]の免疫測定方法。
[１２]  変性剤の組合せが還元剤とカオトロピック試薬である、[１１]の免疫測定方法。
[１３]  還元剤がグルタチオンであり、カオトロピック試薬が尿素である、[１２]の免疫測定方法。
[１４]  還元剤がシステインであり、カオトロピック試薬が尿素である、[１２]の免疫測定方法。
[１５]  還元剤がペニシラミンであり、カオトロピック試薬が尿素である、[１２]の免疫測定方法。
[１６]  変性剤の組合せが還元剤と界面活性剤である、[１１]の免疫測定方法。
[１７]  還元剤がグルタチオンであり、界面活性剤がn-ドデシルベンゼンスルホン酸ナトリウム（SDBS）である、[１６]の免疫測定方法。
[１８]  還元剤がシステインであり、界面活性剤がn-ドデシルベンゼンスルホン酸ナトリウム（SDBS）である、[１６]の免疫測定方法。
[１９]  還元剤がペニシラミンであり、界面活性剤がn-ドデシルベンゼンスルホン酸ナトリウム（SDBS）である、[１６]の免疫測定方法。
[２０]  尿検体中に尿素を5〜320mMの濃度で添加して尿検体の前処理を行う、[１３]〜[１５]のいずれかの免疫測定方法。
[２１]  尿検体中にn-ドデシルベンゼンスルホン酸ナトリウム（SDBS）を1.43〜5.74mMの濃度で添加して尿検体の前処理を行う、[１７]〜[１９]のいずれかの免疫測定方法。
【発明の効果】
【００１２】
本発明により、従来の尿検体を用いた免疫測定方法で測定が困難であった低濃度の尿中タンパク質でも測定することが可能となる。
【図面の簡単な説明】
【００１３】
【図１】還元剤の有無による尿中メガリンの測定値比較の結果を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００１４】
以下、本発明を詳細に説明する。
【００１５】
本発明は尿を前処理することにより、検体として尿を用いて尿中のタンパク質を測定する免疫測定系の測定感度を上げる方法である。
【００１６】
検体である尿は、いかなる被験者から得られたものであってもよい。すなわち、健常人から採取した尿も、特定の疾患に罹患している被験者あるいは特定の健康状態にある被験者から採取した尿も対象となり得る。尿の採取方法は問わないが、早朝尿又は随時尿を用いることが好ましい。また、本発明の方法に必要な尿量は10〜200μＬ程度である。
【００１７】
測定する尿中タンパク質として、例えば、メガリン、ポドカリキシン、β２-ミクログロブリン、α1-ミクログロブリン、N-アセチル-β−D−グルコサミニダーゼ、Neutrophil gelatinase-associated lipocalin、Kidney Injury Molecule-1、ミッドカイン、L型脂肪酸結合蛋白、インターロイキン18、IV型コラーゲンなどが挙げられるが、これらに限定するものではなく、今後、発見されるタンパク質であってもよい。
【００１８】
これらのタンパク質は、被験者が特定の疾患に罹患しているとき、あるいは被験者が特定の健康状態にあるときに尿中の濃度が上昇するか、又は減少する、特定の疾患や特定の健康状態に関連したタンパク質である。
【００１９】
例えば、メガリン、ポドカリキシン、β２-ミクログロブリン、α1-ミクログロブリン、N-アセチル-β−D−グルコサミニダーゼ、Neutrophil gelatinase-associated lipocalin、Kidney Injury Molecule-1、ミッドカイン、L型脂肪酸結合蛋白、インターロイキン18、IV型コラーゲンは腎機能疾患に関連したタンパク質であるため、高感度な測定が可能になれば腎障害を早期に発見することが可能となり患者にとりとても有益である。
【００２０】
これらのタンパク質のあるものは、尿中の濃度が低く、通常の免疫測定法では測定感度が低く、測定することが困難である。本発明の方法によれば、尿検体を用いてこれらの尿中で低濃度のタンパク質を免疫測定系により測定する際の測定感度を上げることができ、尿中濃度が低いタンパク質でも正確に定量することができる。
【００２１】
本発明の方法で測定感度を上げることができる測定系は、測定対象であるタンパク質に対する抗体を用いた抗原抗体反応を利用した測定系である。
【００２２】
尿の前処理は、採取された尿に所望の処理を行うことができる処理液を添加して混合することにより行うことができる。本発明においては、尿検体に処理液を添加して混合し、尿検体あるいは尿検体中の測定対象であるタンパク質を処理液により一定の処理を行うことを尿検体の前処理という。
【００２３】
処理としては、尿のpH調整、尿沈渣のマスキング、並びに尿中タンパク質を可溶化又は変性させることが上げられ、処理液としては、尿のpH調整、尿沈渣のマスキング、並びに尿中タンパク質を可溶化又は変性させることが可能な処理液が挙げられる。好ましくは、尿中タンパク質を可溶化又は変性させることが可能な処理液を用いる。
【００２４】
このような処理液として、緩衝液に、変性剤を添加した溶液が例示される。緩衝液は、通常免疫測定に用いられる緩衝液を用いることができ、pH6〜9程度のリン酸緩衝液、トリス緩衝液等を用いればよい。
【００２５】
本発明において、変性剤は、タンパク質を変性させ、あるいはタンパク質を可溶化する化合物であり、界面活性剤、カオトロピック試薬及び還元剤を含む。
【００２６】
界面活性剤としては、陰イオン系界面活性剤、陽イオン系界面活性剤、両性界面活性剤、非イオン界面活性剤が挙げられるが、陰イオン界面活性剤を用いることが好ましい。具体的には、例えば、カルボン酸型、スルホン酸型、硫酸エステル型、リン酸エステル型が挙げられる。さらに具体的にはn-ドデシルベンゼンスルホン酸ナトリウム（SDBS）、ドデシル硫酸ナトリウム（SDS）、オクタン酸ナトリウム、デカン酸ナトリウム、ラウリン酸ナトリウム、ミリスチン酸ナトリウム、パルミチン酸ナトリウム、ステアリン酸ナトリウム、ペルフルオロノナン酸、N-ラウロイルサルコシンナトリウム、アルファスルホ脂肪酸メチルエステル塩、1-ヘキサンスルホン酸ナトリウム、1-オクタンスルホン酸ナトリウム、1-デカンスルホン酸ナトリウム、1-ドデカンスルホン酸ナトリウム、ペルフルオロブタンスルホン酸、トルエンスルホン酸ナトリウム、クメンスルホン酸ナトリウム、オクチルベンゼンスルホン酸ナトリウム、ナフタレンスルホン酸ナトリウム、ナフタレンジスルホン酸二ナトリウム、ナフタレントリスルホン酸三ナトリウム、ブチルナフタレンスルホン酸ナトリウムミリスチル硫酸ナトリウム、ラウレス硫酸ナトリウム、ポリオキシエチレンアルキルフェノールスルホン酸ナトリウム、ラウリル硫酸アンモニウム、ラウリルリン酸、ラウリルリン酸ナトリウム、ラウリルリン酸カリウム等が挙げられる。
【００２７】
カオトロピック試薬とは、疎水性分子の水溶性を増加させ、疎水性相互作用を低下させる物質をいう。カオトロピック試薬としては、チオシアン酸グアニジン、過塩素酸ナトリウム、チオシアン酸ナトリウム、グアニジン塩酸塩、尿素、ヨウ化物イオンなどが挙げられるが公知のものであればいかなるものでもよい。
【００２８】
還元剤としては、グルタチオン、システイン、ペニシラミン、トリス（２-カルボキシエチル） ホスフィン、アミノエタンチオール、メルカプトプロパンスルホン酸、メルカプトコハク酸、チオ乳酸、メルカプトピリミジン、メルカプトエタノール、ジチオトレイトールなど挙げられるが公知のものであればいかなるものでもよい。
【００２９】
また、上記の変性剤は1種類で使用しても、２種類以上を組み合わせて使用してもよい。例えば、少なくとも１種類の還元剤と少なくとも１種類のカオトロピック試薬の組合せ、少なくとも１種類の還元剤と少なくとも１種類の界面活性剤の組合せ、少なくとも１種類のカオトロピック試薬と少なくとも１種類の界面活性剤の組合せが挙げられる。また、２種類以上の還元剤のみ、２種類以上のカオトロピック試薬のみ、２種類以上の界面活性剤のみを用いてもよい。
【００３０】
界面活性剤、カオトロピック試薬及び還元剤の尿検体に処理液として添加したときの尿検体中の最終濃度は適宜決定することができるが、例えば、0.01〜500mMの範囲で決定すればよい。変性剤が還元剤の場合、例えば、0.0127〜64mMの濃度で添加すればよい。
【００３１】
また、界面活性剤、カオトロピック試薬及び還元剤として用いる具体的な物質についての濃度、具体的な組合せと濃度は以下のとおりである。変性剤として、還元剤であるグルタチオンを用いた場合は、尿中の濃度が0.01〜20mM、好ましくは0.01〜15mM、さらに好ましくは0.01〜13mM、特に好ましくは0.0127〜13mMである。変性剤として、還元剤であるシステインを用いた場合は、尿中の濃度が0.05〜25mM、好ましくは0.05〜20mM、さらに好ましくは0.01〜16mM、特に好ましくは0.0625〜16mMである。変性剤として、還元剤であるペニシラミンを用いた場合は、尿中の濃度が0.05〜100mM、好ましくは0.05〜75mM、さらに好ましくは0.05〜64mM、特に好ましくは0.0625〜64mMである。
【００３２】
また、上記の還元剤とカオトロピック試薬である尿素又は界面活性剤であるn-ドデシルベンゼンスルホン酸ナトリウム（SDBS）を組合せて用いる場合、上記の濃度範囲の還元剤に、例えば、１〜1000mM、好ましくは５〜500mM、さらに好ましくは5〜320mMの尿素を組合せて用いることができ、あるいは上記の濃度範囲の還元剤に、0.5〜20mM、好ましくは１〜10mM、さらに好ましくは1.43〜5.74mMのSDBSを組合せて用いることができる。
【００３３】
具体的な処理液としては、例えば400mM Tris-HCl（pH8.0）に、40mM EDTA、2％（Vol./Vol.）TritonX-100、1.625mM グルタチオンを含む溶液が例示される。このような処理液を、等量の尿検体に添加して混合することにより、尿試料溶液を得ることが可能である。例えば、処理液50μＬを、尿検体50μＬに添加して混合して用いればよい。
【００３４】
尿検体を上記の変性剤で処理することにより、測定しようとする尿中の抗原タンパク質の物理化学的特性が変化し、該タンパク質に対する抗体との接触頻度が上がり、抗原抗体反応が促進される。また、上記の変性剤で処理することにより、非特異的な結合を低下させることもできる。この結果、尿中のタンパク質の測定感度を上げることができる。ここで、尿中のタンパク質の測定感度を上げるとは、免疫測定系における該タンパク質の存在に基づいて発せられるシグナルの強度を上げることをいう。また、同時にバックグラウンドのシグナルを低下させ、結果的に前記タンパク質の存在に基づいて発せられるシグナルの強度を上げることも含む。免疫測定系では、標識物質で標識した抗体を測定対象である抗原タンパク質と結合させ、標識物質から発せられるシグナルを測定して、抗体と結合したタンパク質を検出することにより、試料中に存在する抗原タンパク質を測定する。シグナルとは、このような標識物質から発せされるシグナルをいう。標識物質としては、蛍光物質、酵素、重金属、照射性同位元素等が挙げられる。
【００３５】
本発明は、尿検体中のタンパク質を測定する免疫測定方法であり、変性剤を尿検体に混合することにより尿検体を前処理して免疫測定を行い、前記タンパク質の測定感度を向上させる、免疫測定方法であり、また、尿検体中のタンパク質を測定する免疫測定方法において、変性剤を尿検体に混合することにより尿検体を前処理して免疫測定を行うことにより、免疫測定系の感度、すなわち、タンパク質の測定感度を上げる方法でもある。
【００３６】
以下、測定するタンパク質がメガリンである場合の測定方法について詳述する。他のいかなるタンパク質もメガリン測定法に基づいて、測定することができる。
【００３７】
尿試料溶液からメガリンを検出する方法は様々な方法が考えられる。メガリンの検出方法の一例として、免疫学的手法が挙げられる。免疫学的手法は、例えば、免疫染色法（蛍光抗体法、酵素抗体法、重金属標識抗体法、放射性同位元素標識抗体法を含む）、電気泳動法による分離と蛍光、酵素、放射性同位元素などによる検出方法とを組み合わせた方法（ウエスタンブロット法、蛍光二次元電気泳動法を含む）、酵素免疫測定吸着法（ELISA）、ドット・ブロッティング法、ラテックス凝集法（LA：Latex Agglutination-Turbidimetric Immunoassay）、イムノクロマト法などにより行うことができるが、ELISA法またはLA法を用いることが好ましい。定量性の観点からELISA法のうちサンドイッチ法を用いることが好ましい。サンドイッチ法では、抗メガリン抗体を固相化したマイクロタイタープレートに尿試料溶液を添加し、抗原・抗体反応をさせ、さらに酵素標識した抗メガリン抗体を添加し、抗原・抗体反応をさせ、洗浄後、酵素基質と反応・発色させ、吸光度を測定して尿中のメガリンを検出すると共に、その測定値から尿中メガリン濃度を算出することができる。また、蛍光標識した抗メガリン抗体を用いて、抗原・抗体反応をさせた後に蛍光を測定してもよい。
【００３８】
免疫学的手法において用いられる抗メガリン抗体は、ヒトメガリンを検出し得る抗体であればよい。本発明において用いられる抗メガリン抗体は、公知のものであってもよく、また今後開発される抗体であってもよい。特に限定されないが、抗メガリン抗体として、例えばモノクローナル抗体でも、ポリクローナル抗体でもよく、キメラ抗体やヒト化抗体、あるいはこれらの結合活性断片などが挙げられる。これらの抗体は酵素や蛍光色素で標識化されていてもよい。また、２種類以上の抗メガリン抗体を用いてもよい。２種類以上の抗メガリン抗体は、上記のサンドイッチ法に用いられ、互いに異なるエピトープを認識する抗体であることが好ましい。
【実施例】
【００３９】
以下に本発明の実施例を示し、本発明をさらに具体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではなく、本発明の技術的思想を逸脱しない範囲内で種々の応用が可能である。
【００４０】
（実施例１）  還元剤の有無による尿中メガリン測定感度の比較
（１）  非還元処理尿を用いた尿中メガリンの測定法
ヒトメガリン細胞外領域に対するモノクローナル抗体（抗細胞外領域メガリンモノクローナル抗体）を用いてヒトメガリン細胞外領域を含有するフラグメント（細胞外領域メガリン）を測定した。抗細胞外領域メガリンモノクローナル抗体とは、配列番号２に示すアミノ酸配列の配列番号26番目のアミノ酸から314番目のアミノ酸の間の領域（LBD1）に存在するエピトープを認識するマウスモノクローナル抗体である。LBD1中の異なる二つのエピトープを認識する抗ヒトメガリンLBD1モノクローナル抗体Ａと抗ヒトメガリンLBD1モノクローナル抗体Ｂを用いて測定評価した。抗ヒトメガリンLBD1モノクローナル抗体Ａ固相化マイクロタイタープレートと、ALP標識化抗ヒトメガリンLBD1モノクローナル抗体Ｂを用いて、尿中のヒトメガリン細胞外領域含有フラグメントを測定した。先ず、尿50μLと処理液A(400mM Tris-HCl,40mM Ethylenediamine-N,N,N’,N’-tetraacetic acid(以下、Ethylenediamine-N,N,N’,N’-tetraacetic acidをEDTAと略す),2%(vol./vol.) Polyethylene Glycol Mono-p-isooctylphenyl Ether（以下、Polyethylene Glycol Mono-p-isooctylphenyl EtherをTriton X-100と称する）、pH8.0溶液)50μLを混合し、該混合液100μLを抗ヒトメガリンLBD1モノクローナル抗体Ａ固相化マイクロタイタープレート（FluoroNunc（商標） Module F16 Black-Maxisorp（商標） Surface plate , Nalge Nunc International社製）のウェルへ加えた。37℃で1時間放置し、その後、ウェルに加えておいた尿サンプル溶液をデカンテーションにより除去し、そのマイクロタイタープレートのウェルへ、TBS-Tを200μL/ウェルで添加し、デカンテーションによるTBS-Tの除去を行い、洗浄を行った。この洗浄工程を計３回行った。その後、ALP標識化抗ヒトメガリンLBD1モノクローナル抗体Ｂ(0.5ng/mL)溶液を100μL/ウェルで加えた。ALP標識化抗ヒトメガリンLBD1モノクローナル抗体Ｂは標識抗体希釈液にて調製した。37℃で1時間放置し、その後、ウェルに加えておいたALP標識化抗体溶液をデカンテーションにより除去し、そのマイクロタイタープレートのウェルへ、TBS-Tを200μL/ウェルで添加し、デカンテーションによるTBS-Tの除去を行い、洗浄を行った。この洗浄工程を計4回行った。その後、そのマイクロタイタープレートのウェルへ、Assay Bufferを200μL/ウェルで添加し、デカンテーションによるAssay Bufferの除去を行い、洗浄を行った。この洗浄工程を計2回行った。次に、ウェルへCDP-Star（登録商標） Chemiluminescent Substrate for Alkaline Phosphatase Ready-to-Use (0.4mM) with Emerald-II(商標) Enhancer(ELISA-Light(商標) System：Applied Biosystems社製)をALP酵素反応基質溶液として、100μL/ウェルで加え、37℃、30分遮光放置した。その後直ちに、本ウェルの1秒間の積算発光強度を測定し、測定値を尿中メガリンの測定評価の指標とした。化学発光強度の測定には、Microplate Luminometer Centro LB960とMicroWin2000 software(Berthold社製)を用いた。
【００４１】
（２）  還元剤を含む処理液で処理した尿を用いた尿中メガリンの測定法
上記の処理液Aに1.625mMグルタチオンを含む処理液を処理液B、上記の処理液Aに2mMシステインを含む処理液を処理液C、上記の処理液Aに2mMペニシラミンを含む処理液を処理液Dとした。処理液B、C又はD 50μLと尿検体50μLを混合した混合液を尿試料溶液として尿中メガリンを測定した。測定方法は実施例1に従って行った。
【００４２】
（３）  還元剤の有無による尿中メガリンの測定感度の比較
尿検体として、健常人2例由来の尿検体を用いて上記（１）及び（２）の方法で尿中メガリンを測定し、還元剤の有無での尿中メガリン測定値の比較を行った。その結果を図１に示す。図１中、縦軸はRLU(Relative Light Unit)を示す。図１より還元剤を使用することで尿中メガリンの測定感度が上がることが分かった。つまり、還元剤を使用することで測定感度を上げることが可能となり、低濃度の尿中メガリンの測定が可能となる。
【００４３】
(実施例２)  還元剤の有効濃度の検討
健常人2例（検体A及び検体B）を用いて実施例１で使用した還元剤の有効濃度を検討した。還元剤はグルタチオン：0〜13mM、システイン：0〜16mM、ペニシラミン：0〜64mMの範囲で検討した。グルタチオン、システイン及びペニシラミンについての結果を、それぞれ表1、2及び3に示す。
【００４４】
【表１】
2014085208.tif 000002
【００４５】
【表２】
2014085208.tif 000003
【００４６】
【表３】
2014085208.tif 000004
【００４７】
表1よりグルタチオン濃度が0.0127〜13mM、表2よりシステイン濃度が0.0625〜16mM、表3よりペニシラミン濃度が0.0625〜64mMの範囲で、還元処理した尿を用いた尿中メガリン測定において、非還元処理尿における尿中メガリン測定より感度が上がることが分かった。
【００４８】
（実施例３）  還元剤とカオトロピック試薬を組み合わせた処理液の測定感度に対する効果
（１）  還元剤と尿素を組み合わせた処理液で処理した尿を用いた尿中メガリン測定
実施例１(2)の還元剤として1.625mMグルタチオンを含む処理液Bに、さらに640mM尿素を含む処理液を処理液E、実施例1(2)の還元剤として2mMシステインを含む処理液Cに、さらに640mM尿素を含む処理液を処理液F、実施例1(2)の還元剤として2mMペニシラミンを含む処理液Dに、さらに640mM尿素を含む処理液を処理液Gとした。処理液E,F又はG  50μLと尿50μLを混合した混合液を尿試料溶液として尿中メガリンを測定した。測定方法は実施例1に従って行った。
【００４９】
（２）  還元剤と界面活性剤であるn-ドデシルベンゼンスルホン酸ナトリウム(SDBS)を組み合わせた処理液で処理した尿を用いた尿中メガリン測定
実施例1(2)の還元剤として1.625mMグルタチオンを含む処理液Bに、さらに2.87mM SDBSを含む処理液を処理液H、実施例1(2)の還元剤として2mMシステインを含む処理液Cに、さらに2.87mM SDBSを含む処理液を処理液I、実施例1(2)の還元剤として2mMペニシラミンを含む処理液D、さらに2.87mM SDBSを含む処理液を処理液Jとした。処理液H,I又はJ  50μLと尿50μLを混合した混合液を尿試料溶液として尿中メガリンを測定した。測定方法は実施例1に従って行った。
【００５０】
（３）  カオトロピック試薬又は界面活性剤を含む処理液で処理した尿を用いた尿中メガリン測定
実施例1(1)の処理液Aにカオトロピック試薬である640mM尿素を含む処理液を処理液K、実施例1(1)の処理液Aに界面活性剤である2.87mM SDBSを含む処理液を処理液Lとした。処理液K又はL  50μLと尿検体50μLを混合した混合液を尿試料溶液として尿中メガリンを測定した。測定方法は実施例1に従って行った。
【００５１】
（４）  還元剤とカオトロピック試薬又は界面活性剤を組み合わせた処理液の効果
尿検体として、健常人1例由来の尿検体を用いて実施例1(1)及び実施例3(1)〜(3)の方法で尿中メガリンを測定し、還元剤とカオトロピック試薬である尿素又は界面活性剤であるSDBSを組み合わせた処理液の効果を検討した。表4、5、6、7、8及び9に、それぞれ、グルタチオンと尿素を組み合わせた処理液を用いた場合、システインと尿素を組み合わせた処理液を用いた場合、ペニシラミンと尿素を組み合わせた処理液を用いた場合、グルタチオンとSDBSを組み合わせた処理液を用いた場合、システインとSDBSを組み合わせた処理液を用いた場合、及びペニシラミンとSDBSを組み合わせた処理液を用いた場合の効果を示す。表4〜9より、還元剤、カオトロピック試薬又は界面活性剤のいずれか1種類を含む処理液よりも、還元剤とカオトロピック試薬又は界面活性剤の両方を含む処理液を用いる事により測定感度が上がるこが分かった。つまり、還元剤とカオトロピック試薬又は界面活性剤の両方を含む処理液を使用することで測定感度を上げることが可能となり、低濃度の尿中メガリンの測定が可能となる。
【００５２】
【表４】
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【００５３】
【表５】
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【００５４】
【表６】
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【００５５】
【表７】
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【００５６】
【表８】
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【００５７】
【表９】
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【００５８】
(実施例４)  還元剤とカオトロピック試薬又は界面活性剤を組み合わせたときのカオトロピック試薬又は界面活性剤の有効濃度検討
尿検体として、健常人1例由来の尿検体を用いて実施例３(1)、(2)で使用したカオトロピック試薬又は界面活性剤の有効濃度の検討を行った。尿検体中の還元剤濃度は、グルタチオンが0.8125mM、システインが1mM、ペニシラミンが1mMであった。尿検体中のカオトロピック試薬である尿素又は界面活性剤であるSDBS濃度は尿素：0〜320mM、SDBS：0〜5.74mMの範囲で検討した。その結果を表10及び11に示す。表10より還元剤存在下で、尿素濃度が5〜320mM、表11よりSDBS濃度が1.43〜5.74mMの範囲で、還元剤とカオトロピック試薬又は界面活性剤を組合せて尿を処理して、尿中メガリンを測定することにより、還元剤のみで尿を処理して尿中メガリン測定を行うよりも測定感度が上がることが分かった。
【００５９】
【表１０】
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【００６０】
【表１１】
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【図１】
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【配列表】
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