(57)【要約】【課題】優れた一酸化窒素の産生抑制作用を発揮する一酸化窒素産生抑制剤、及び優れた抗炎症作用を発揮する抗炎症剤を提供する。【解決手段】本発明の誘導型一酸化窒素合成酵素を介した一酸化窒素産生抑制剤は、還元型スキトネミン及びスキトネミンから選ばれる少なくとも一種を有効成分として含有する。また、本発明の抗炎症剤は、還元型スキトネミン及びスキトネミンから選ばれる少なくとも一種を有効成分として含有することを特徴とする。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
還元型スキトネミン及びスキトネミンから選ばれる少なくとも一種を有効成分として含有することを特徴とする誘導型一酸化窒素合成酵素を介した一酸化窒素産生抑制剤。
【請求項２】
還元型スキトネミン及びスキトネミンから選ばれる少なくとも一種を有効成分として含有することを特徴とする抗炎症剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、還元型スキトネミン又はスキトネミンを有効成分として含有する誘導型一酸化窒素合成酵素を介した一酸化窒素産生抑制剤及び抗炎症剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
一般的に、一酸化窒素（ＮＯ）は、不対電子を有するため反応性が高く、生体内で様々な反応系に関わっていることが知られている。ＮＯは、生体内において、ＮＯ合成酵素によりアルギン酸と酸素から合成される。ＮＯ合成酵素には、神経型（nNOS）、誘導型（iNOS）及び内皮型（eNOS）の３つのアイソフォームが知られている。これらの中でiNOSは、感染等によって誘導されたインターフェロン−γ（IFNγ）及びインターロイキン−１（IL-1）等により転写レベルでその発現が誘導され、炎症反応に重要な役割を果たす一酸化窒素を合成するとともに、一連の生体防御機構を活性化させる。
【０００３】
通常、炎症反応は、IFNγ及びIL-1の他、リポ多糖（LPS）及びプロスタグランジン（ＰＧ）等のメディエーターによって制御される。しかしながら、慢性炎症又は微生物感染等による急性炎症は組織にとって有害であり、細胞障害を引き起こすおそれがある。例えば非特許文献１に開示されるように、iNOSの持続的な発現によるＮＯの過剰生産は、敗血症、心血管疾患、関節リウマチ、気管支炎、及び癌等の炎症性疾患、並びに自己免疫疾患を引き起こすおそれがある。現在、iNOSを介する炎症性疾患等の疾患の悪化に対する予防薬や治療薬の開発が急務となっている。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００４】
【非特許文献１】Heo S.J., Yoon W.J., Kim K.N., Ahn G. N., Kang S.M., Kang D.H., Affan A., Chulhong O., Jung W.K., Jeon Y. J. (2010). Evaluation of anti-inflammatory effect of fucoxanthin isolated from brown algae in lipopolysaccharide-stimulated RAW 264.7 macrophages . Fo od. Chem.Toxicol., 48, 2045-2051.
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特表２００７−５２６７６８号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
ところで、校庭の土壌などの表面に肉眼的な大きさのコロニーを作る藻類としてイシクラゲが知られている。例えば特許文献１に開示されるように、イシクラゲはコレステロール低下作用、抗ウイルス作用、抗がん作用等の生体に有用な作用を発揮することが実証されている。
【０００７】
本発明者らは、鋭意研究の結果、イシクラゲから単離した還元型スキトネミン及びスキトネミンについて、優れた一酸化窒素産生抑制作用を有することを見出した。
この発明は、上記の知見に基づいてなされたものであり、本発明の目的は、優れた一酸化窒素の産生抑制作用を発揮する一酸化窒素産生抑制剤、及び優れた抗炎症作用を発揮する抗炎症剤を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
上記の目的を達成するために請求項１に記載の発明の誘導型一酸化窒素合成酵素を介した一酸化窒素産生抑制剤は、還元型スキトネミン及びスキトネミンから選ばれる少なくとも一種を有効成分として含有する。
【０００９】
請求項２に記載の発明の抗炎症剤は、還元型スキトネミン及びスキトネミンから選ばれる少なくとも一種を有効成分として含有する。
【発明の効果】
【００１０】
本発明の一酸化窒素産生抑制剤によれば、優れた一酸化窒素の産生抑制作用を発揮することができる。また、本発明の抗炎症剤によれば、優れた抗炎症作用を発揮することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１１】
【図１】還元型スキトネミンの単離工程の説明図。
【図２】スキトネミンの単離工程の説明図。
【図３】還元型スキトネミン及びスキトネミンによるLPS/IFNγ誘導RAW264細胞のＮＯ産生への影響を示すグラフ。
【図４】（ａ）還元型スキトネミンのLPS/IFNγ誘導RAW264細胞におけるiNOSとCOX-2発現への影響を示すウエスタンブロット解析の結果。（ｂ）還元型スキトネミンのLPS/IFNγ誘導RAW264細胞におけるiNOS mRNA発現に対する影響を示すRT-RCR後の電気泳動の結果。
【図５】（ａ）還元型スキトネミンのLPS/IFNγ誘導RAW264細胞におけるＮＯ産生に伴う細胞内シグナル伝達において、MAPキナーゼ（p38, SAPK/JNK, ERK）のウエスタンブロット解析の結果。（ｂ）還元型スキトネミンのLPS/IFNγ誘導RAW264細胞におけるＮＯ産生に伴う細胞内シグナル伝達において、IκBα及びSTAT1のウエスタンブロット解析の結果。
【図６】還元型スキトネミンのLPS/IFNγ誘導RAW264細胞における炎症シグナルにおいて、MAPキナーゼ（p38、JNK、ERK）、Iκ-B、STAT1等の影響を示す図。
【発明を実施するための形態】
【００１２】
以下、本発明の一酸化窒素産生抑制剤を具体化した実施形態を詳細に説明する。
本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤に有効成分として含有される還元型スキトネミン（Reduced scytonemin）及びスキトネミン（Scytonemin）は、それぞれ下記一般式（１）及び一般式（２）に示される構造を有する。これらの中で、一酸化窒素産生抑制作用の優れる還元型スキトネミンが好ましい。
【００１３】
【化１】
2014024812.tif 000002
【化２】
2014024812.tif 000003
また、一酸化窒素産生抑制剤に含有される還元型スキトネミン及びスキトネミンとしては、例えば天然素材由来の精製品、生化学品、及び化学合成品を適用することができる。天然素材からの精製品を適用する場合、天然素材原料としては、例えば、シアノバクテリア（藍色細菌）、ネンジュモ科ネンジュモ属の陸生藍藻の一種であるイシクラゲ（Nostoc commune）を挙げることができる。そして、還元型スキトネミン及びスキトネミンは、イシクラゲを原料として抽出工程及び単離工程を行うことにより得ることができる。以下、イシクラゲから還元型スキトネミン及びスキトネミンを得る方法について記載する。
【００１４】
原料となるイシクラゲは、天然に自生する藻体であってもよいし、人工的に培養した藻体であってもよい。なお、安定供給が可能である点や品質保持が容易である点から、人工的に培養した藻体を用いることが工業的に好適である。また、原料としてのイシクラゲは採取したままの状態、採取後に破砕処理した状態、採取後に乾燥処理した状態、並びに採取後に破砕処理及び乾燥処理した状態のいずれの状態であってもよい。
【００１５】
抽出工程は、イシクラゲから還元型スキトネミン及びスキトネミンを含む抽出物を抽出する工程である。抽出工程に用いる抽出溶媒としては、水、親水性有機溶媒、又は水と親水性有機溶媒との混合溶媒を用いることができる。親水性有機溶媒としては、例えば、メタノールやエタノール等の低級アルコール類、アセトン、及び酢酸エチルが挙げられる。抽出方法としては、公知の抽出方法、例えば冷水抽出、温水抽出、熱水抽出、及び蒸気抽出のいずれの方法を用いてもよい。
【００１６】
抽出操作としては、抽出溶媒中にイシクラゲを所定時間浸漬させる。抽出操作においては、抽出効率を高めるべく、必要に応じて攪拌処理、加圧処理、及び超音波処理等の処理をさらに行ってもよい。抽出操作後、例えばろ過や遠心分離等の公知の分離法を用いて固液分離操作を行うことにより、抽出液と原料の残渣とを分離する。このとき、必要に応じて得られた抽出液（抽出物）の濃縮を行う。
【００１７】
単離工程は、抽出工程にて得られた抽出物中に含まれる還元型スキトネミン及びスキトネミンを単離・精製する工程である。還元型スキトネミン及びスキトネミンは、上記抽出物を１又は２以上のクロマトグラフィを用いて精製することにより単離される。クロマトグラフィとしては、公知のクロマトグラフィ、例えば液体クロマトグラフィ、超臨界流体クロマトグラフィ、及び薄層クロマトグラフィを用いることができる。液体クロマトグラフィとしては、例えばカラムクロマトグラフィを用いることができ、より具体的には高速液体クロマトグラフィ（ＨＰＬＣ）及びオープンカラムクロマトグラフィを挙げることができる。クロマトグラフィ担体としては、例えばイオン交換クロマトグラフィ、分配クロマトグラフィ（順相・逆相クロマトグラフィ）、吸着クロマトグラフィ、及び分子排斥クロマトグラフィが挙げられる。分配クロマトグラフィとして、より具体的にはシリカゲル担体やＯＤＳ担体を用いることが分離効率の観点から好ましい。
【００１８】
上記各種クロマトグラフィを適宜組み合わせて、公知の使用方法で上記還元型スキトネミン及びスキトネミンを単離・精製することができる。上記各種クロマトグラフィの使用方法としては、公知の方法を適宜採用することができる。上記還元型スキトネミン及びスキトネミンの同定は、構造決定により、又は精製品を指標とすることにより行うことができる。
【００１９】
本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤の具体的な配合形態として、例えば健康食品や食品等の飲食品等の添加剤、医薬品、医薬部外品、皮膚外用剤、及び化粧品が挙げられる。飲食品の形態としては、特に限定されず、液状、粉末状、ゲル状、固形状等のいずれであってもよく、また剤形としては、錠剤、カプセル剤、顆粒剤、ドリンク剤のいずれであってもよい。前記飲食品としては、その他の成分としてゲル化剤含有食品、糖類、香料、甘味料、油脂、基材、賦形剤、食品添加剤、副素材、増量剤等を適宜配合してもよい。
【００２０】
医薬品として使用する場合は、服用（経口摂取）、血管内投与、経皮投与、腹腔内投与の他、患部に塗布又は直接患部に投与する方法等のあらゆる投与方法を採用することが可能である。剤形としては、各投与方法に適した剤形を適宜採用することができるが、例えば、散剤、粉剤、顆粒剤、錠剤、カプセル剤、丸剤、坐剤、液剤、注射剤、皮膚外用剤等が挙げられる。また、必要により、添加剤として賦形剤、基剤、乳化剤、溶剤、安定剤等を配合してもよい。
【００２１】
本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤を化粧料に適用する場合、化粧料基材に配合することにより製造することができる。化粧料の形態は、乳液状、クリーム状、粉末状等のいずれであってもよい。このような化粧料を肌に適用することにより、一酸化窒素産生抑制の効果を得ることができる。化粧料基剤は、一般に化粧料に共通して配合されるものであって、例えば、油分、精製水及びアルコールを主要成分として、界面活性剤、保湿剤、酸化防止剤、増粘剤、抗脂漏剤、血行促進剤、美白剤、ｐＨ調整剤、色素顔料、防腐剤及び香料から選択される少なくとも一種が適宜配合される。尚、本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤を皮膚外用剤、化粧料、及び飲食品として適用する場合は、従来品と区別するために、上記作用・効果を得ることを目的とする旨の表示を付すことが好ましい。
【００２２】
次に、上記のように構成された一酸化窒素産生抑制剤の作用を説明する。
本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、有効成分として配合される還元型スキトネミン又はスキトネミンにより、高い一酸化窒素産生抑制作用を発揮する。より具体的には、誘導型一酸化窒素合成酵素を介した一酸化窒素の産生抑制作用を発揮する。還元型スキトネミン及びスキトネミンは、誘導型一酸化窒素合成酵素に対応するｍＲＮＡの発現を抑制し、誘導型一酸化窒素合成酵素量を減少させる。
【００２３】
誘導型一酸化窒素合成酵素の持続的な発現による一酸化窒素の過剰生産は、敗血症、心血管疾患、関節リウマチ、気管支炎、及び癌等の炎症性疾患、並びに自己免疫疾患を引き起こすことが知られている。したがって、本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、敗血症、心血管疾患、関節リウマチ、気管支炎、及び癌等の炎症性疾患、並びに自己免疫疾患の予防薬や治療薬として好ましく適用できる。
【００２４】
また、本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、LPS/INFγ誘導一酸化窒素産生に伴う細胞内シグナル伝達によって活性化されるMAPキナーゼ（p38，SAPK/JNK，ERK）、IκBα、STAT1について、各活性を抑制する。それにより、炎症反応を起こす一酸化窒素の産生を減少させる。よって、本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、抗炎症剤として好ましく適用することができる。
【００２５】
次に、本実施形態における効果について以下に記載する。
（１）本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、還元型スキトネミン又はスキトネミンを有効成分として含有する。したがって、還元型スキトネミン又はスキトネミンの適用により誘導型一酸化窒素合成酵素を介した一酸化窒素の産生抑制作用を有効に発揮することができる。
【００２６】
（２）本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、有効成分である還元型スキトネミン又はスキトネミンにより、誘導型一酸化窒素合成酵素を介した一酸化窒素の産生抑制作用を発揮する。したがって、誘導型一酸化窒素合成酵素を介した一酸化窒素の過剰生産が関連する敗血症、心血管疾患、関節リウマチ、気管支炎、及び癌等の炎症性疾患、並びに自己免疫疾患の予防薬や治療薬に好適に用いることができる。
【００２７】
（３）本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、好ましくは、有効成分である還元型スキトネミン又はスキトネミンがイシクラゲ由来である。したがって、より副作用が少なく、生体に対してより安全に適用することができる。
【００２８】
なお、本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、次のように変更して具体化することも可能である。
・本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、有効成分である還元型スキトネミン又はスキトネミンにより、一酸化窒素の産生抑制作用を発揮する。それにより、一酸化窒素が関連する炎症の抑制効果を有効に発揮することができる。したがって、還元型スキトネミン又はスキトネミンを有効成分とする抗炎症剤として構成してもよい。
【００２９】
・本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、有効成分である還元型スキトネミン又はスキトネミンにより、LPS/INFγ誘導一酸化窒素産生に伴う細胞内シグナル伝達によって活性化されるMAPキナーゼ（p38，SAPK/JNK，ERK）、IκBα、STAT1の各活性を抑制する。したがって、還元型スキトネミン又はスキトネミンを有効成分とするMAPキナーゼ、IκBα、又はSTAT1の活性抑制剤として構成してもよい。
【００３０】
・本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、例えば誘導型一酸化窒素合成酵素を介した一酸化窒素の過剰生産が関連する炎症性疾患及び自己免疫疾患の患者に好ましく適用される。しかしながら、治療の用途のみならず、健常者がこれらの各種症状の予防のために摂取してもよい。
【００３１】
・本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤は、ヒト以外の動物、例えば、ウマ、ウシ、ブタのような家畜（非ヒト哺乳動物）、ニワトリ等の家禽、或いは犬、猫、ラット及びマウス等のペット（各種飼養動物）に投与してもよい。
【００３２】
・本実施形態の一酸化窒素産生抑制剤を実験用・研究用試薬として適用してもよい。一酸化窒素の産生が関係する生理作用のメカニズムの解明等を目的として用いることができる。
【００３３】
次に、上記実施形態及び別例から把握できる技術的思想について記載する。
（イ）  還元型スキトネミン又はスキトネミンを有効成分とするMAPキナーゼ、IκBα、又はSTAT1の活性抑制剤。
【００３４】
（ロ）  還元型スキトネミン又はスキトネミンを有効成分として含有する自己免疫疾患の治療又は予防薬。
（ハ）  一酸化窒素産生抑制剤又は抗炎症剤の製造方法であって、水、親水性有機溶媒、又は水と親水性有機溶媒の混合溶媒を用いてイシクラゲから前記還元型スキトネミン又はスキトネミンを含む抽出物を抽出する抽出工程と、前記抽出物から前記還元型スキトネミン又はスキトネミンを単離する単離工程とを有する一酸化窒素産生抑制剤又は抗炎症剤の製造方法。
【実施例】
【００３５】
次に、実施例を挙げて上記実施形態をさらに具体的に説明する。
＜１．還元型スキトネミン及びスキトネミンの抽出・単離＞
イシクラゲの乾燥粉体（４００ｇ）にエタノール（４Ｌ）を添加して、室温にて２時間攪拌するとともに３０分間静置した後、上清を回収した。また、沈殿物に対して、エタノール（４Ｌ）を添加して、室温にて２時間攪拌するとともに３０分間静置した後、上清を回収した。この沈殿物に対する再抽出操作を合計１０回繰り返した。得られた全ての上清をろ紙によりろ過するとともに、そのろ液を減圧濃縮することにより、イシクラゲ抽出物（２０ｇ）を得た。
【００３６】
イシクラゲ抽出物に対して、複数のクロマトグラフィによる分画を組み合わせて行うことにより還元型スキトネミン及びスキトネミンの単離を行った。図１を参照して、還元型スキトネミン及びスキトネミンの単離工程について説明する。
【００３７】
イシクラゲ抽出物（１８ｇ）について、中性シリカゲルを用いた吸引液体クロマトグラフィを行うことにより８画分に分画し、ＴＬＣによる標品との比較に基づいて還元型スキトネミン及びスキトネミンが含有される画分（ＮＣ−５）を回収した。画分ＮＣ−５について、中性シリカゲルを用いた液体カラムクロマトグラフィを行うことにより５画分に分画し、ＴＬＣによる標品との比較に基づいて還元型スキトネミン及びスキトネミンが含有される画分（ＮＣ−５−４、ＮＣ−５−５）を回収した。
【００３８】
画分ＮＣ−５−４について、更に中性シリカゲルを用いた液体カラムクロマトグラフィを行うことにより６画分に分画した。また、画分ＮＣ−５−５について、更に中性シリカゲルを用いた液体カラムクロマトグラフィを行うことにより４画分に分画した。そして、ＴＬＣによる標品との比較に基づいて還元型スキトネミン及びスキトネミンが含有される画分（ＮＣ−５−４−４，ＮＣ−５−４−５，ＮＣ−５−５−３）を回収するとともに、これらを一つに合わせて画分ＮＣ−５―Ａとした。
【００３９】
画分ＮＣ−５―Ａについて、Ｓｅｐｈａｄｅｘ ＬＨ−２０を用いた液体カラムクロマトグラフィを行うことにより８画分に分画した。そして、ＴＬＣによる標品との比較に基づいて還元型スキトネミンが含有される画分（ＮＣ−５−Ａ−７）を回収するとともに、その画分ＮＣ−５―Ａ−７について、ＯＤＳ担体を用いた液体カラムクロマトグラフィを行うことにより還元型スキトネミンを単離した。
【００４０】
スキトネミンは、図２に示されるように、ＮＣ−５−Ａ−１の分画からさらに精製処理を行った。まず、ＮＣ−５―Ａ−１（１９．８ｍｇ）を、Ｓｅｐｈａｄｅｘ ＬＨ−２０カラムクロマトグラフィで２画分（ＮＣ−５−Ａ−１−１，ＮＣ−５−Ａ−１−２）に分画した。そのうち、ＮＣ−５−Ａ−１−１について、ＮＭＲスペクトル測定及びＴＬＣ試験により精製度を確認しながら、Ｓｅｐｈａｄｅｘ ＬＨ−２０カラムクロマトグラフィにより分画した。さらに、ＯＤＳ Ｃ１８カラムクロマトグラフィを繰り返し行い、スキトネミンを単離した。
【００４１】
本実施例では、イシクラゲより単離した上記還元型スキトネミン及びスキトネミンの抗炎症作用について細菌感染時のマクロファージ（マウスマクロファージ細胞株 RAW264細胞株）をモデルとしたLPS/IFNγ誘導炎症反応系を用いて検討した。
【００４２】
＜２．細胞培養＞
マウスマクロファージRAW264細胞は、理化学研究所（茨城県つくば市）より入手した。RAW264細胞は、１０％牛胎児血清、１００Ｕ／ｍＬペニシリン、１００μｇ／ｍＬストレプトレマイシン（以上Invitrogen, CA, USA）を含んだDMEM（Dulbecco’s modified Eagle’s medium; Thermo Fisher Scientifics, K. K, MA, USA）にて、９５％空気−５％ＣＯ２環境下で培養した。
【００４３】
＜３．還元型スキトネミン及びスキトネミンによるRAW264細胞への影響＞
前記RAW264細胞を２×１０５ｃｅｌｌｓ／ｍＬに調製し、２４ウェルマルチプレート（Thermo Fisher Scientifics）に５００μＬずつ播種した。播種後、還元型スキトネミン及びスキトネミンを終濃度がそれぞれ０．５μＭ，１μＭ，２．５μＭとなるように、各濃度で添加し、２時間前培養を行った。前処理の後、LPS（終濃度:２００ｎｇ／ｍＬ）とIFNγ（終濃度:２５ｎｇ／ｍＬ）を加え２４時間処理した。２４時間後、産生した一酸化窒素（ＮＯ）をGriess試薬（Promega, WI, USA）により発色させ、吸光度計（コロナ電気、茨城県）により、５４０ｎｍにより検出した。結果を図３に示す。尚、データは平均±標準誤差で表した。２群間の比較にはStudent’s t-検定を行った。５％有意を＊、１％有意を＊＊とした。また、図中、LPS及びIFNγの欄において、＋が添加有り、−が添加なしを示す。
【００４４】
図３に示されるように、還元型スキトネミン処理は各濃度処理においてスキトネミン処理よりも有意にＮＯの産生を抑制した。
＜４．ウエスタンブロッティング＞
還元型スキトネミンのLPS/IFNγ誘導ＮＯ産生に伴う細胞内シグナル伝達に対する影響をウエスタンブロット法により検討した。LPS/IFNγ誘導によるＮＯ産生シグナルにおいてiNOS及び炎症関連遺伝子の核内転写因子であるCOX-2について検討した。
【００４５】
＜４−１．細胞溶解サンプルの回収＞
細胞数を２×１０５ｃｅｌｌｓ／ｍＬに調製し、６ウェルマルチプレートに１ｍＬずつ播種した。一晩培養後、還元型スキトネミンを終濃度が１μＭとなるようにそれぞれ添加し、２時間前培養を行った。前処理の後、LPS（終濃度:２００ｎｇ／ｍＬ）とIFNγ（終濃度:２５ｎｇ／ｍＬ）を加え２４時間処理した。刺激２４時間後にプレートをPBS(-)で洗浄し（０．５ｍＬ×２回）、２％Protease inhibitor、２％Phosphatase含有, RIPA Buffer（２５ｍＭ Tris-HCl ｐＨ７．６, １５０ｍＭ ＮａＣｌ, １％NP-40, １％Sodium deoxycholate, ０．１％ＳＤＳ）を用いて細胞を溶解後、セルスクレーパーにて細胞を回収した。サンプル溶液中のタンパク質濃度は、Bio Rad DC プロテインアッセイキット（Bio Rab, Hercules, CA, USA）により測定した。タンパク濃度を調整したサンプル溶液に、１０％メルカプトエタノール含有サンプルバッファーを加えて９８℃で５分間加熱し、ウエスタンブロッティングに供した。
【００４６】
＜４−２．ＳＤＳ−ＰＡＧＥ＞
泳動槽に１２％ゲルをセットし、泳動バッファー（Bio Rad Tris/Glycine Buffer）を泳動槽の３分の１まで入れた。ゲルの各レーンに１０μＬずつサンプルをアプライし（先頭の使用しないレーンには、等量のタンパク質分子量マーカーをアプライ）、１２０Ｖで１〜１．５時間泳動してサンプルのタンパク質を分離した。
【００４７】
＜４−３．ウエスタンブロッティング＞
泳動後、ガラスプレートからゲルを慎重に外し、不要な濃縮ゲルを切り取り、１０％ブロッティングバッファー（Tris/Glycine Buffer, Bio Rad）、２０％メタノール、及び７０％超純水からなる溶液に浸したろ紙の上へ移した。PVDF（Polyvinylidene difluoride）膜（Santa Cruz Biotechnology, CA, USA）は、メタノールに１分間浸し、親水化処理後、ブロッティングバッファーに浸して平衡化した。ブロッティングバッファーをよく染み込ませたスポンジとろ紙にSDS-PAGEで得たゲルと、PVDF膜を挟み、泳動槽にセット後、氷水で冷やしながら、６０Ｖで９０分間泳動し、タンパク質をPVDF膜に転写した。
【００４８】
ブロッティング終了後、PVDF膜を５％脱脂粉乳（Difco Laboratories Inc, MI, USA）−０．１％Tween 20含有トリス緩衝化生理食塩水（T-TBS）溶液に浸して１時間ブロッキング処理した。PVDF膜をT-TBSで５分間、３回洗浄後、iNOS及びCOX-2に対応する各モノクローナル抗体（一次抗体）を含有する溶液に浸して４℃で一晩振とうした。翌日、T-TBSで振とう洗浄し（１０分間×３回）、二次抗体（５％脱脂粉乳含有T-TBS溶液）に浸して１時間振とうした。その後、PVDF膜をT-TBSにて洗浄し（１０分間×３回）、ECL Plus（GE Healthcare UK Ltd, Amersham Place , England）を用い、化学発光検出装置（Davinch-Chemi, 和光純薬工業社製、大阪）により検出した。尚、β−アクチンが、本実験において蛋白質発現量の標準マーカーとして用いられた。結果を図４（ａ）に示す。尚、図中、LPS/IFNγの欄及びR-scytonemin欄において、＋が添加有り、−が添加なしを示す。
【００４９】
＜５．iNOSのmRNA発現＞
還元型スキトネミンのLPS/IFNγ誘導ＮＯ産生に伴う細胞内シグナル伝達に対するiNOS mRNAの影響をRT-PCR法により検討した。
【００５０】
＜５−１．総RNAの抽出及びPCR＞
２×１０５ｃｅｌｌｓ／ｍＬに調整したRAW264細胞を６ウェルマルチプレートに播種し、１２時間前培養した。その後、LPS/IFNγで１２時間刺激後、PBS(-)で3度洗浄した。洗浄後、Trizol（invitogen）を１ｍＬ／ウェル加え細胞を溶解後、１．５ｍＬのエッペンチューブに移した。次に２００μＬのクロロホルムを加え、３０秒ボルテックス後、１１５００ｒｐｍ、１５分間、４℃で遠心し、上澄みを再び新しい１．５ｍＬエッペンチューブに移した後、２−プロパノールを加え、１０分間静置させた。１０分後、１１５００ｒｐｍ、１０分間、４℃で遠心し、上澄みを慎重に除去し、ペレットを５００μＬの７５％EtOHで洗浄した。ペレットを９０００ｒｐｍ、５分間、４℃にて遠心することで回収し、洗浄液を慎重に捨て、３０分間風乾させた。３０分後、１８０μＬのDEPC水（invitrogen）、２０μＬの１０×Buffer（Takara bio, Ohtsu, Japan）、２μＬのDNase1を加え、３７℃で１時間反応させた。その後、４０μＬの酢酸ナトリウム（日本ジーン社、東京、３Ｍ、ｐＨ５．２）と１５０μＬのフェノールクロロホルム溶液（invitrogen）を加え、ボルテックスした。フェノールクロロホルム・サンプル溶液の入ったチューブを１５０００ｒｐｍ、５分間遠心後、上清を新しい１．５ｍＬエッペンチューブに移し、８００μＬのエタノールにて総RNAを抽出した。その後１５０００ｒｐｍ、３０分間、４℃にて遠心し、総RNAを回収した。最後に上清を捨て、風乾後、DNase-RNaseフリー水に溶解させ、試験に供した。尚、GAPDHが、本実験においてmRNA発現量の標準マーカーとして用いられた。
【００５１】
バイオフォトメーターでサンプルの総RNA量を測定後、それぞれのRNAサンプルを１００ｎｇ／μＬに調整した。タカラバイオPrime Script RT regent kitを用いて逆転写反応を行った。PCR条件は、熱変性９４℃：５分と、熱変性９４℃：０．５分、アニーリング５５℃：０．５分、及び伸長反応７２℃：０．５分からなる一連の工程を３０サイクルと、伸長反応７２℃：７分と、保存４℃:無限とした。PCRに使用したプライマーとして、iNOS：配列番号１（forward）、iNOS：配列番号２（reverse)、GAPDH：配列番号３（forward）、及びGAPDH：配列番号４（reverse）を使用した。
【００５２】
逆転写反応で得たサンプルDNAを下記表１の反応溶液を用いて半定量的RT-PCR反応を行った（条件：表１参照）。その後、１×TAE−２％アガロースゲル電気泳動法により、iNOSのmRNA発現を検討した。結果を図４（ｂ）に示す。尚、図中、LPS/IFNγの欄及びR-scytonemin欄において、＋が添加有り、−が添加なしを示す。
【００５３】
【表１】
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＜６．ウエスタンブロットとmRNA発現の結果＞
図４（ａ）に示されるように、還元型スキトネミン処理することで、LPS/IFNγ誘導iNOS及びCOX-2のタンパク発現が無処理の細胞（LPS/IFNγ誘導処理あり）と比較して有意に低下した。また、図４（ｂ）に示されるように、還元型スキトネミンのiNOS mRNA発現に対する影響を半定量的RT-PCR法にて検討したところ、還元型スキトネミン処理することにより、iNOS mRNA発現が有意に低下した。以上により、還元型スキトネミンはiNOS mRNA発現を抑制し、iNOSタンパクの発現量を低下させることで炎症反応を引き起こすＮＯ産生を減少させたと推察された。
【００５４】
＜７．還元型スキトネミンの細胞内ＮＯ産生シグナルに対する影響＞
還元型スキトネミンのLPS/IFNγ誘導ＮＯ産生に伴う細胞内シグナル伝達に対する影響をウエスタンブロット法により検討した。LPS/IFNγ誘導によるＮＯ産生シグナルにおいて活性化されるMAPキナーゼ（p38, SAPK/JNK, ERK）、IκBα、STAT1について検討した。ウエスタンブロット法は、MAPキナーゼ等に対応する市販の各モノクローナル抗体を使用するとともに、上記＜４．ウエスタンブロッティング＞欄に記載の方法に従った。尚、β−アクチンが、本実験において蛋白質発現量の標準マーカーとして用いられた。結果を図５（ａ）（ｂ）に示す。尚、図５の各レーン（０，１５，３０，６０）は、LPS/IFNγを添加してからの処理時間（分）を示す。
【００５５】
図５（ａ）（ｂ）に示されるように、還元型スキトネミンは、LPS/IFNγ誘導炎症シグナルにおいてMAPキナーゼ、IκBα、及びSTAT1の活性化を有意に抑制した。例えば、図６に示されるように、還元型スキトネミンはMAPキナーゼ、Iκ-B、STAT1の活性化を阻害し、下流となるAP-1の活性化やNFκ-Bの核移行を抑制することにより、iNOS発現を減少させ、最終的にNO産生を低下させたと推察された。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【配列表】
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