(57)【要約】【課題】短期間でかつ強固に骨と結合できるチタンまたはチタン合金からなる部材を提供すること。【解決手段】チタンまたはチタン合金からなる基材の表面に、リン酸化タンパク質またはその部分ペプチドを含むリン酸化タンパク質含有層を形成する。リン酸化タンパク質含有層は、オステオポンチン（ＯＰＮ）、骨シアロタンパク質（ＢＳＰ）、象牙質マトリックスタンパク質−１（ＤＭＰ１）、マトリックス細胞外リン酸化糖タンパク質（ＭＥＰＥ）、象牙質リンタンパク質（ＤＰＰ）および象牙質シアロタンパク質（ＤＳＰ）からなる群から選択される１または２以上のリン酸化タンパク質またはその部分ペプチドを含むことが好ましい。【選択図】図３
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
チタンまたはチタン合金からなる基材と、
リン酸化タンパク質またはその部分ペプチドを含み、前記基材の表面の少なくとも一部を被覆するリン酸化タンパク質含有層と、
を有する、チタン−タンパク質複合体。
【請求項２】
前記リン酸化タンパク質は、オステオポンチン、骨シアロタンパク質、象牙質マトリックスタンパク質−１、マトリックス細胞外リン酸化糖タンパク質、象牙質リンタンパク質または象牙質シアロタンパク質である、請求項１に記載のチタン−タンパク質複合体。
【請求項３】
前記リン酸化タンパク質含有層は、前記リン酸化タンパク質のリン酸化セリンを含む部分ペプチドを含む、請求項１または請求項２に記載のチタン−タンパク質複合体。
【請求項４】
請求項１〜３のいずれか一項に記載のチタン−タンパク質複合体を含む、生体インプラント。
【請求項５】
請求項１〜３のいずれか一項に記載のチタン−タンパク質複合体を含む、細胞培養基材。
【請求項６】
前記基材は、チタンまたはチタン合金からなるメッシュまたは平板である、請求項５に記載の細胞培養基材。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、チタン−タンパク質複合体、生体インプラントおよび細胞培養基材に関する。
【背景技術】
【０００２】
１９５０年代〜１９６０年代にかけて、スウェーデンのブローネマルクによって、生体内において骨とチタンとが強固に結合する現象（オッセオインテグレーション）が発見された。骨とチタンとが強固に結合する生化学的メカニズムは完全には解明されていないが、オッセオインテグレーションの利用価値は非常に大きい。実際、現在使用されているすべての人工骨および人工歯根は、オッセオインテグレーションを利用しているといえる。
【０００３】
しかしながら、現在使用されている人工骨および人工歯根には、骨とチタンとの結合に時間がかかるという問題がある。たとえば、人工歯根では、埋入してから定着するまで３ヶ月かかることもある。また、骨量が少ない場合、人工骨または人工歯根が骨に定着しにくいという問題もある。
【０００４】
このような問題を解消するべく、骨とチタンとの結合を促進させるために、チタン表面に各種コーティングを施したり、チタン表面を粗面化したりすることが提案されている。たとえば、特許文献１には、チタン製の人工歯根の表面をハイドロキシアパタイトでコーティングした人工歯根が開示されている。また、特許文献２には、チタン製の人工歯根の表面にチタン繊維からなる不織布を固定した人工歯根が開示されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特開２００６−１３１４６９号公報
【特許文献２】特開２００４−６７５４３号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
上記のように、これまでも、骨とチタンとの結合を促進させる技術が数多く提案されているが、現時点において医療技術者および患者の要望をすべて満たしているとはいえない。そこで、本発明者は、従来技術とは異なる視点から骨とチタンとの結合を促進させる技術を開発することを試みた。
【０００７】
本発明は、かかる点に鑑みてなされたものであり、短期間でかつ強固に骨と結合できるチタンまたはチタン合金からなる部材を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明者は、リン酸化タンパク質でチタンまたはチタン合金からなる基材の表面を被覆することで上記課題を解決できることを見出し、さらに検討を加えて本発明を完成させた。
【０００９】
すなわち、本発明は、以下のチタン−タンパク質複合体、生体インプラントおよび細胞培養基材に関する。
［１］チタンまたはチタン合金からなる基材と、リン酸化タンパク質またはその部分ペプチドを含み、前記基材の表面の少なくとも一部を被覆するリン酸化タンパク質含有層と、を有する、チタン−タンパク質複合体。
［２］前記リン酸化タンパク質は、オステオポンチン、骨シアロタンパク質、象牙質マトリックスタンパク質−１、マトリックス細胞外リン酸化糖タンパク質、象牙質リンタンパク質または象牙質シアロタンパク質である、［１］に記載のチタン−タンパク質複合体。
［３］前記リン酸化タンパク質含有層は、前記リン酸化タンパク質のリン酸化セリンを含む部分ペプチドを含む、［１］または［２］に記載のチタン−タンパク質複合体。
［４］［１］〜［３］のいずれか一項に記載のチタン−タンパク質複合体を含む、生体インプラント。
［５］［１］〜［３］のいずれか一項に記載のチタン−タンパク質複合体を含む、細胞培養基材。
［６］前記基材は、チタンまたはチタン合金からなるメッシュまたは平板である、［５］に記載の細胞培養基材。
【発明の効果】
【００１０】
本発明によれば、例えば、短期間でかつ強固に骨と結合できる生体インプラントや、骨芽細胞などの培養に好適な細胞培養基材を提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１１】
【図１】ウシ大腿骨の抽出液についてのチタンクロマトグラフィーの溶出パターン（クロマトグラム）である。
【図２】Stains-all染色法で染色されたゲルの写真である。
【図３】埋植４週間後のインプラント周囲の組織像（ＨＥ染色切片）である。
【図４】埋植１週間後のインプラント周囲の組織像（ＨＥ染色切片）である。
【図５】リン酸化タンパク質（ＴｉＢＰ）の効果を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００１２】
本発明のチタン−タンパク質複合体は、チタンまたはチタン合金からなる基材と、前記基材の表面の少なくとも一部を被覆するリン酸化タンパク質含有層とを有する。本発明のチタン−タンパク質複合体は、例えば生体インプラントや細胞培養基材などに適用されうる。生体インプラントの例には、人工股関節用ステム、人工膝関節、人工椎体、人工椎間板、骨補填材、骨プレート、骨スクリュー、人工歯根などが含まれる。
【００１３】
基材は、チタンまたはチタン合金からなる部材である。基材の形状は、特に限定されず、本発明のチタン−タンパク質複合体の用途に応じて適宜選択すればよい。たとえば、本発明のチタン−タンパク質複合体を生体インプラントに適用する場合、基材の形状の例には、柱状（ロッド状）、板状、シート状、ブロック状、ワイヤ状、繊維状、粉末状などが含まれる。また、本発明のチタン−タンパク質複合体を細胞培養基材に適用する場合、基材の形状の例には、メッシュ状（不織布を含む）、平板状などが含まれる。
【００１４】
リン酸化タンパク質含有層は、リン酸化タンパク質またはその部分ペプチド（天然タンパク質由来のペプチドまたは合成ペプチド）を含み、基材表面の少なくとも一部を被覆する層である。リン酸化タンパク質は、リン酸を含有する複合タンパク質であり、チタンに吸着しやすい性質を有する。本発明者は、チタン粒子を充填したカラムを使用したカラムクロマトグラフィーによりチタンに吸着しやすいタンパク質を調べたところ、オステオポンチン（osteopontin：ＯＰＮ）、骨シアロタンパク質（bone sialoprotein：ＢＳＰ）、象牙質マトリックスタンパク質−１（dentin matrix protein 1：ＤＭＰ１）、マトリックス細胞外リン酸化糖タンパク質（matrix extracellular phosphoglycoprotein：ＭＥＰＥ）、象牙質リンタンパク質（dentin phosphoprotein：ＤＰＰ；ホスホホリン）、象牙質シアロタンパク質（dentin sialoprotein：ＤＳＰ）、α−カゼイン、ホスビチンなどのリン酸化タンパク質がチタンに吸着しやすいことを見出した。また、これらのリン酸化タンパク質は、骨に含まれる各種細胞とも容易に結合する。したがって、基材の表面にリン酸化タンパク質含有層を形成することで、基材と骨に含まれる各種細胞との親和性を顕著に向上させることができる。
【００１５】
リン酸化タンパク質含有層に含有されるリン酸化タンパク質（またはその部分ペプチド）の種類は、特に限定されないが、骨に含まれるオステオポンチン、骨シアロタンパク質、象牙質マトリックスタンパク質−１、マトリックス細胞外リン酸化糖タンパク質、象牙質リンタンパク質または象牙質シアロタンパク質が好ましい。これらのリン酸化タンパク質は、いずれも骨または象牙質に含まれる非コラーゲン性タンパク質であり、酸性糖タンパク質である。これらのリン酸化タンパク質またはその部分ペプチドは、単独で使用してもよいし、２種以上を組み合わせて使用してもよい。
【００１６】
オステオポンチン（ＯＰＮ）は、骨に含まれる代表的なリン酸化タンパク質であり、細胞接着に関与するＲＧＤ配列およびシアル酸を含有する糖鎖を有する。ＲＧＤ配列は、Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐの３残基よりなる配列であり、細胞のαＶβ３インテグリンにより認識される。オステオポンチンは、骨芽細胞や象牙芽細胞、破骨細胞などにおいて産生される。オステオポンチンの機能としては、破骨細胞の接着誘導などが注目されており、オステオポンチンは、様々な条件下における骨の代謝に関与していると考えられている。
【００１７】
骨シアロタンパク質（ＢＳＰ）は、骨に含まれるもう一方のシアロタンパク質であり、ＲＧＤ配列を有する。骨シアロタンパク質は、インビトロにおいて骨芽細胞や破骨細胞などを基質に接着させることが報告されている。骨シアロタンパク質は、骨芽細胞や象牙芽細胞などにおいて産生される。骨シアロタンパク質は、骨の形成や石灰化に関与していると考えられている。
【００１８】
象牙質マトリックスタンパク質−１（ＤＭＰ１）は、象牙芽細胞のｃＤＮＡライブラリーから発見されたが、その後骨にも存在することが明らかになったリン酸化タンパク質である。象牙質マトリックスタンパク質−１もＲＧＤ配列を有している。象牙質マトリックスタンパク質−１は、インビトロにおいてアパタイト結晶の核形成を誘導できることが報告されている。象牙質マトリックスタンパク質−１は、骨芽細胞や象牙芽細胞、骨細胞などにおいて産生される。
【００１９】
マトリックス細胞外リン酸化糖タンパク質（ＭＥＰＥ）は、骨芽細胞および骨細胞によって産生されるリン酸化タンパク質である。マトリックス細胞外リン酸化糖タンパク質の発現は、石灰化の進行とともに増加する。
【００２０】
象牙質リンタンパク質（ＤＰＰ；ホスホホリン）は、象牙質に特有のタンパク質であり、ヒドロキシアパタイトおよびコラーゲンに親和性を有している。象牙質リンタンパク質は、分化した象牙芽細胞において産生される。
【００２１】
象牙質シアロタンパク質（ＤＳＰ）も、象牙質に特有のタンパク質であり、コラーゲンに結合してアパタイトの核形成を行うとともに、象牙芽細胞の分化を促進すると考えられている。象牙質シアロタンパク質も、分化した象牙芽細胞において産生される。
【００２２】
リン酸化タンパク質の部分ペプチドは、天然タンパク質由来のペプチドであってもよいし、合成ペプチドであってもよい。また、リン酸化タンパク質の部分ペプチドは、リン酸化タンパク質のリン酸化されたアミノ酸（すなわち、リン酸化セリン）を含む部分ペプチドであることが好ましい。
【００２３】
リン酸化タンパク質の準備方法は、特に限定されず、骨からリン酸化タンパク質を分離、精製してもよいし、遺伝子組み換え技術を利用して特定のリン酸化タンパク質またはその部分ペプチド（有効なリン酸を含む活性ペプチド）を調製してもよい。たとえば、以下の手順により、骨からリン酸化タンパク質を得ることができる。
【００２４】
（リン酸化タンパク質の分離方法）
まず、ウシまたはブタの大腿骨から、公知の方法により精製骨粉を調製する。骨粉を蒸留水に加えて、骨粉懸濁液を調製する。骨粉を脱灰するために、懸濁液に６Ｎの塩酸を少しずつ添加して、懸濁液のｐＨを２に維持する。脱灰を行っている間は、懸濁液の温度を４〜１０℃に維持する。脱灰が完了した後、上清と脱灰骨粉とを分離する。
【００２５】
脱灰骨粉を２Ｍ尿素／０.０５Ｍトリス緩衝液（ｐＨ７.４）に加え、４℃で２４時間抽出する。この抽出工程は、２回繰り返し行う。次いで、抽出後の残渣を４Ｍグアニジン／０.０５Ｍトリス緩衝液（ｐＨ７.４）に加え、４℃で２４時間抽出する。この抽出工程も、２回繰り返し行う。２Ｍ尿素抽出液は、この後のクロマトグラフィーにおいてそのままサンプルとして使用される。一方、４Ｍグアニジン抽出液は、２Ｍ尿素／０.０５Ｍトリス緩衝液（ｐＨ７.４）で繰り返し透析をされ、サンプルとして使用される。このようにして得られたサンプルには、骨の有機基質中に存在する非コラーゲン性タンパク質の大部分が含まれていると考えられる。
【００２６】
直径４５μｍのチタン粒子を詰めたカラムを準備する。カラムの大きさ（容量）は、特に限定されず、サンプルの量に応じて適宜設定される。たとえば、直径１６〜５０ｍｍ、高さ５〜１０ｃｍのカラムを使用すればよい。２Ｍ尿素／０.０５Ｍトリス緩衝液（ｐＨ７.４）で平衡化したカラムにサンプルを添加した後、２Ｍ尿素／０.０５Ｍトリス緩衝液（ｐＨ７.４）を流して非吸着成分を溶出させる。次いで、２５ｍＭ水酸化ナトリウム水溶液を流して、吸着成分（リン酸化タンパク質）を溶出させる。得られたリン酸化タンパク質は、透析脱塩および凍結乾燥された後、−２０℃で保存される。
【００２７】
以上の手順により得られるリン酸化タンパク質は、オステオポンチン（ＯＰＮ）、骨シアロタンパク質（ＢＳＰ）、象牙質マトリックスタンパク質−１（ＤＭＰ−１）およびマトリックス細胞外リン酸化糖タンパク質（ＭＥＰＥ）を含む（例えば、電気泳動法およびリン酸化タンパク質染色法により確認できる）。本発明者は、これらのリン酸化タンパク質がチタンに吸着されること、およびチタンカラムを用いて精製されうることを初めて見出した。
【００２８】
リン酸化タンパク質含有層を基材の表面に形成する方法は、特に限定されない。たとえば、以下の手順により、リン酸化タンパク質含有層を基材の表面に形成することができる。
【００２９】
（リン酸化タンパク質含有層の形成方法）
以下の操作は、すべて無菌条件下のクリーンベンチ内で行われる。終濃度が０.１〜１.０％となるようにリン酸化タンパク質またはその部分ペプチドを生理的緩衝液（例えば、ダルベッコ生理的緩衝液）に溶解させた後、無菌ろ過して、タンパク質溶液を調製する。基材の表面にタンパク質溶液を塗布するか、基材をタンパク質溶液に浸漬して、基材の表面にリン酸化タンパク質またはその部分ペプチドを吸着させる。次いで、過剰量の液体を吸引除去した後、基材の表面を乾燥させる。リン酸化タンパク質が吸着した基材（本発明のチタン−タンパク質複合体）は、無菌容器内において、乾燥状態かつ１０℃以下で保存される。
【００３０】
リン酸化タンパク質含有層は、リン酸化タンパク質などに加え、用途に応じてコラーゲンなどの他の成分を含んでいてもよい。この場合であっても、リン酸化タンパク質の効果を十分に発揮させるためには、リン酸化タンパク質含有層中のリン酸化タンパク質の量は、５０質量％以上であることが好ましく、９０質量％であることがより好ましい。
【００３１】
本発明のチタン−タンパク質複合体では、チタンまたはチタン合金からなる基材の表面がチタンおよび骨に含まれる各種細胞の両方に対して親和性が高いリン酸化タンパク質またはその部分ペプチドでコートされている。したがって、本発明のチタン−タンパク質複合体を生体インプラント（例えば、人工骨や人工歯根など）として使用した場合には、短期間でかつ強固に骨と結合させることができる。また、本発明のチタン−タンパク質複合体を細胞培養基材として使用した場合には、骨に含まれる各種細胞を好適に培養することができる。
【実施例】
【００３２】
以下、本発明を実施例を参照して詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例により限定されない。
【００３３】
［実施例１］
１．リン酸化タンパク質の分離
まず、ウシの大腿骨または中足骨から、公知の方法により精製骨粉を調製した。骨粉を蒸留水に加えて、骨粉懸濁液を調製した。骨粉を脱灰するために、懸濁液に６Ｎの塩酸を少しずつ添加して、懸濁液のｐＨを２に維持した。脱灰を行っている間は、懸濁液の温度を１０℃以下に維持した。脱灰が完了した後、上清と脱灰骨粉とを分離した。
【００３４】
脱灰骨粉を２Ｍ尿素／０.０５Ｍトリス緩衝液（ｐＨ７.４）に加え、４℃で２４時間抽出した。この抽出工程は、２回繰り返し行った。次いで、抽出後の残渣を４Ｍグアニジン／０.０５Ｍトリス緩衝液（ｐＨ７.４）に加え、４℃で２４時間抽出した。この抽出工程も、２回繰り返し行った。２Ｍ尿素抽出液は、この後のクロマトグラフィーにおいてそのままサンプルとして使用した。一方、４Ｍグアニジン抽出液は、５倍量の２Ｍ尿素／０.０５Ｍトリス緩衝液（ｐＨ７.４）で５回透析をしたものをサンプルとして使用した。
【００３５】
直径４５μｍのチタン粒子（株式会社大阪チタニウムテクノロジーズ）を詰めたカラム（内径１６ｍｍ×高さ５ｃｍまたは内径２６ｍｍ×高さ１０ｃｍ）を準備した。２Ｍ尿素／０.０５Ｍトリス緩衝液（ｐＨ７.４）で平衡化したカラムにサンプルを添加した後、２Ｍ尿素／０.０５Ｍトリス緩衝液（ｐＨ７.４）を流して非吸着成分を溶出させた。次いで、２５ｍＭ水酸化ナトリウム水溶液を流して、吸着成分（リン酸化タンパク質）を溶出させた。図１は、溶出パターンを示すクロマトグラムである。左側のピークは、２Ｍ尿素／０.０５Ｍトリス緩衝液（ｐＨ７.４）によって溶出した非吸着成分を示しており、右側のピークは、２５ｍＭ水酸化ナトリウム水溶液によって溶出した吸着成分を示している。得られた吸着成分は、透析脱塩および凍結乾燥した後、−２０℃で保存した。
【００３６】
上記手順により得られた吸着成分（約１００μｇ）を定法に従って還元およびＳＤＳで変性させた後、１５％ポリアクリルアミドゲルを用いて電気泳動を行った（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）。泳動後のゲルを、リン酸化タンパク質を特異的に青く染めるStains-all染色法（Campbell, K. P., et al., J. Biol. Chem., Vol.258, pp.11267-11273.）で染色した。
【００３７】
図２は、染色後のゲルの写真である。図２Ａは、カラー写真（赤色の成分、緑色の成分および青色の成分を含む）をグレースケールに変換した写真であり、図２Ｂは、カラー写真に含まれる青色の成分のみをグレースケールで表示した写真であり、図２Ｃは、カラー写真に含まれる赤色の成分のみをグレースケールで表示した写真である。これらの写真に示されるように、典型的なリン酸化タンパク質であるウシβカゼイン（分子量４万）は、青色に染色され、主としてアルブミン（分子量４.５万）からなるウシ血清は、赤色に染色された。同一条件で染色された吸着成分では、少なくとも４本の青色に染色されたバンドが確認された（下側４つの矢印参照）。このことから、吸着成分は、オステオポンチン（ＯＰＮ）、骨シアロタンパク質（ＢＳＰ）、象牙質マトリックスタンパク質−１（ＤＭＰ−１）およびマトリックス細胞外リン酸化糖タンパク質（ＭＥＰＥ）を含むと考えられる。なお、一番上の矢印は、これらのリン酸化タンパク質を含むタンパク質の会合体を指している。これらの会合体は、分子量が非常に大きいため、ゲル内に入り込むことができず、導入箇所に留まっている。また、前述のカラムクロマトグラフィーで得られた非吸着成分（図１の左側のピーク）は、Stains-all染色法では染色されなかった。
【００３８】
なお、上記吸着成分のうち、オステオポンチンについては、ウエスタンブロットによりその存在を別途確認している。また、飛行時間型質量分析法（ＴＯＦＭＳ）により吸着成分を分析した結果、質量数８６，８１，７５，７０，６０，５３，５０，４８，４２，３６ｋＤａの顕著なピークが確認された。これらのピークは、それぞれ、マトリックス細胞外リン酸化糖タンパク質（ＭＥＰＥ、アミノ酸配列数５５４）、象牙質マトリックスタンパク質−１（ＤＭＰ−１、アミノ酸配列数５１０）、骨シアロタンパク質（ＢＳＰ、アミノ酸配列数３１０）およびオステオポンチン（ＯＰＮ、アミノ酸配列数２７８）、あるいはこれらの断片であると推定される。
【００３９】
２．リン酸化タンパク質でコーティングされた生体インプラント
直径５０μｍのチタン細繊維からなるチタン製不織布を、直径２ｍｍ、高さ３ｍｍの円柱状に成形した。また、リン酸化タンパク質（上記吸着成分）をＰＢＳに溶解させて、０.１％タンパク質溶液を調製した。チタン製不織布の成形体をタンパク質溶液に一定時間浸漬した後、乾燥させて、各チタン細繊維の表面をリン酸化タンパク質でコーティングした（リン酸化タンパク質含有層を形成した）。以上の手順により、実施例の生体インプラントを準備した。なお、タンパク質溶液には少量の塩類を除いてはリン酸化タンパク質（上記吸着成分）のみを添加しているため、リン酸化タンパク質含有層中のリン酸化タンパク質の量は、９０質量％以上であると考えられる。一方、比較例の生体インプラントとして、リン酸化タンパク質でコーティングしていないチタン製不織布の成形体も準備した。
【００４０】
生後８週齢のウイスター系ラットに８％抱水クロラールを腹腔内投与して麻酔した。歯科用ドリルを用いて脛骨に直径２.８ｍｍの穴をあけ、実施例および比較例のインプラントを埋植した。埋植３週間後および６週間後に、インプラントおよびその周辺部を摘出した。得られたサンプルの切片を作製し、コールのヘマトキシリン・エオジン染色で染色し、インプラント周囲の骨の形成量を比較した。その結果、比較例のインプラントに比べ、実施例のインプラントの方が、チタン不織布内に新生骨が旺盛に形成されており、良好な結果であった。
【００４１】
３．リン酸化タンパク質でコーティングされた細胞培養基材
直径５０μｍのチタン細繊維からなるチタン製不織布を、直径１３ｍｍ、厚さ１.５ｍｍの円板状に成形した。また、リン酸化タンパク質（上記吸着成分）をＰＢＳに溶解させて、０.１％タンパク質溶液を調製した。チタン製不織布の成形体をタンパク質溶液に一定時間浸漬した後、乾燥させて、各チタン細繊維の表面をリン酸化タンパク質でコーティングした（リン酸化タンパク質含有層を形成した）。なお、この場合も、リン酸化タンパク質含有層中のリン酸化タンパク質の量は、９０質量％以上であると考えられる。以上の手順により、実施例の細胞培養基材を準備した。一方、比較例の細胞培養基材として、リン酸化タンパク質でコーティングしていないチタン製不織布の成形体も準備した。
【００４２】
２４穴マルチウェルプレートの各ウェルに、実施例または比較例の細胞培養基材を入れた。次いで、各ウェルに骨芽細胞（ＭＣ３Ｔ３−Ｅ１）を５万個播種した。３７℃、５％ＣＯ２、湿度１００％の環境下において、各細胞をイーグルＭＥＭ培地中で培養した。培養開始から３日後および７日後に、ＭＴＴ法により各ウェルの細胞数を測定した。その結果、比較例の細胞培養基材に比べ、実施例の細胞培養基材では、細胞数は減少するものの、細胞の分化が進行しているのが観察された。
【００４３】
［実施例２］
１．リン酸化タンパク質の分離
実施例１と同様の手順で、ウシの中足骨からリン酸化タンパク質（チタン結合性骨タンパク質（titanium-binding bone proteins）；以下「ＴｉＢＰ」ともいう）を分離した。ＴｉＢＰは、オステオポンチン（ＯＰＮ）、骨シアロタンパク質（ＢＳＰ）、象牙質マトリックスタンパク質−１（ＤＭＰ−１）およびマトリックス細胞外リン酸化糖タンパク質（ＭＥＰＥ）を含むと考えられる。
【００４４】
２．ＴｉＢＰでコーティングされた生体インプラント
（１）生体インプラントの作製
直径５０〜８０μｍのチタン細繊維からなるチタン製不織布（Titanium web；以下「ＴＷ」ともいう）を、縦２ｍｍ、横３ｍｍ、高さ３ｍｍの長方形状に成形した（１個約８ｍｇ）。また、ＴｉＢＰをＰＢＳに溶解させて、ＴｉＢＰ溶液（１ｍｇ／５００ｍＬ）を調製した。ＴＷの成形体をＴｉＢＰ溶液に一定時間浸漬した後、乾燥させて、各チタン細繊維の表面をＴｉＢＰでコーティングした（リン酸化タンパク質含有層を形成した）。以上の手順により、実施例の生体インプラント（チタン−タンパク質複合体；ＴＷ／ＴｉＢＰ）を準備した。なお、この場合も上述した理由により、リン酸化タンパク質含有層中のリン酸化タンパク質の量は、９０質量％以上であると考えられる。一方、比較例の生体インプラントとして、ＴｉＢＰでコーティングしていないＴＷの成形体も準備した。
【００４５】
（２）生体インプラントの埋植
生後８週齢の雄のウイスター系ラット（２００〜２３０ｇ）に、体重１００ｇ当たり３.６ｍｇのペントバルビタールナトリウム（ネンブタールＲ；大日本住友製薬株式会社）を腹腔内投与して麻酔した。歯科用ドリルを用いて頭蓋骨に形成された穴、および頭蓋骨と骨膜との間に、実施例のインプラント（ＴＷ／ＴｉＢＰ）および比較例のインプラント（ＴＷ）をそれぞれ埋植した。埋植１週間後および４週間後に、インプラントおよびその周辺部を摘出した。
【００４６】
（３）組織学的観察
得られたサンプルを１０％中性ホルムアルデヒドで固定し、ポリエステル樹脂に包埋して、厚さ８０μｍの切片を作製した。得られた切片を、コールのヘマトキシリン・エオジン染色で染色した後、光学顕微鏡で観察した。
【００４７】
図３は、ラット頭蓋冠において硬膜と骨膜との間にＴＷまたはＴＷ／ＴｉＢＰ複合体を埋植して４週間経過した後の、インプラント周囲の組織像である。図３Ａ，Ｂは、比較例のインプラント（ＴＷ）周囲の組織像であり、図３Ｃ〜Ｆは、実施例のインプラント（ＴＷ／ＴｉＢＰ）周囲の組織像である。図３Ａ〜Ｂ、および図３Ｃ〜Ｆは、それぞれ倍率が異なる。
【００４８】
図３Ａ，Ｂに示されるように、比較例のインプラント（ＴＷ）の周囲では、コラーゲン繊維の凝集が観察されたが、骨の新生もわずかに観察された。一方、図３Ｃ〜Ｆに示されるように、実施例のインプラント（ＴＷ／ＴｉＢＰ）の周囲では、多数の血管が形成されているとともに（図３Ｄ，Ｅの矢印参照）、新生骨には活性状態の骨芽細胞が付着しており（図３Ｆの矢印参照）、活発な骨新生が誘導されていた。
【００４９】
図４は、ラット頭蓋冠において硬膜と骨膜との間にＴＷまたはＴＷ／ＴｉＢＰ複合体を埋植して１週間経過した後の、インプラント周囲の組織像である。図４Ａ〜Ｄは、比較例のインプラント（ＴＷ）周囲の組織像であり、図４Ｅ〜Ｈは、実施例のインプラント（ＴＷ／ＴｉＢＰ）周囲の組織像である。図４Ａ〜Ｄ、および図４Ｅ〜Ｈは、それぞれ倍率が異なる。図４Ｆに示される矢印は、新生骨表面に位置する活性状態の骨芽細胞を示している。
【００５０】
比較例のインプラント（ＴＷ）の周囲では、低倍率では明確には見えなかったが（図４Ａ参照）、高倍率ではＴＷと既存の骨との境界で骨のような構造が観察された（図４Ｂ〜Ｄ参照）。一方、実施例のインプラント（ＴＷ／ＴｉＢＰ）周囲では、明確な細胞集団がＴＷに囲まれた空間において観察された（図４Ｅ，Ｆ参照）。これは、豊富な細胞外マトリックス（図４Ｈにおいて矢印で示す）に付随する未成熟細胞の集団であると考えられる。興味深いことに、化学誘因作用によるものかのように、チタン細繊維に近いほど細胞密度が高くなっていた。この時点では明瞭な骨の新生は観察できなかったが、実施例のインプラント（ＴＷ／ＴｉＢＰ）と比較例のインプラント（ＴＷ）とで、組織の状態は大きく異なっていた。
【００５１】
（４）骨新生に対するＴｉＢＰの効果の評価
埋植して４週間経過した後の骨新生の進行度合を、実施例のインプラント（ＴＷ／ＴｉＢＰ）と比較例のインプラント（ＴＷ）とにより詳細に比較した。具体的には、それぞれ５つの切片の写真について、ＴＷの断面およびＴＷに囲まれている空間の合計面積に対する新生骨およびその前駆組織の合計面積の割合を測定した。図４に示した写真において、ＴＷの断面は、黒色で示された部分であり、ＴＷに囲まれている空間は、白色で示された部分と、濃い赤色および薄い赤色で染色された部分との合計部分である。新生骨は、濃い赤色で染色され、骨の前駆組織は、薄い赤色で染色されている。ここで「新生骨」とは、マトリックスがぎっしり詰まっており、平坦な骨芽細胞により覆われている骨を意味し、「骨の前駆組織」とは、マトリックスおよび血管が多いが、緩んだ状態の組織を意味する。面積の測定は、画像結合ソフトウェア（NIS-Elements；株式会社ニコン インストルメンツカンパニー）を用いて実施した。
【００５２】
図５は、ＴＷの断面およびＴＷに囲まれている空間の合計面積に対する新生骨およびその前駆組織の合計面積の割合を示すグラフである。図５に示されるように、実施例のインプラント（ＴＷ／ＴｉＢＰ）を埋植した場合の骨の前駆組織の形成量は、比較例のインプラント（ＴＷ）を埋植した場合よりも５.２倍多かった。また、実施例のインプラント（ＴＷ／ＴｉＢＰ）を埋植した場合の全骨（新生骨およびその前駆組織）の形成量は、比較例のインプラント（ＴＷ）を埋植した場合よりも７倍多かった。さらに、実施例のインプラント（ＴＷ／ＴｉＢＰ）を埋植した場合の新生骨の形成量は、比較例のインプラント（ＴＷ）を埋植した場合よりも３２０倍多かった。
【００５３】
以上の結果から、リン酸化タンパク質（ＴｉＢＰ）は、チタンの骨形成作用を有意に促進させて、チタン製の生体インプラントと骨との結合を速められることがわかる。
【産業上の利用可能性】
【００５４】
本発明によれば、例えば、短期間でかつ強固に骨と結合できる生体インプラントや、骨芽細胞などの培養に好適な細胞培養基材を提供することができる。
【図１】
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【図５】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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