(57)【要約】【課題】ユーザーに負担を与えることなく、肌のストレスの蓄積度を評価し、さらに敏感肌かどうかを簡便かつ確実に評価することができる生化学的指標を用いた新規な評価方法を提供することを課題とする。【解決手段】皮膚角層をテープストリッピング法などによって採取し、その中に含有されるＤＪ−１の発現量を測定することでストレスの蓄積度を評価する。【選択図】図１６
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
皮膚角層のＤＪ−１の発現量をあらかじめ又は同時に測定した正常なヒト皮膚のＤＪ−１の発現量と対比することを特徴とする、ヒト皮膚のストレス蓄積度の評価方法。
【請求項２】
被験者の評価対象部位の角層を採取する採取工程と、前記採取工程で採取された角層におけるＤＪ−１の発現量を測定する測定工程と、前記測定工程で測定されたＤＪ−１の発現量を、健常肌を有する人の前記評価対象部位の角層のＤＪ−１の発現量と比較する比較工程と、を備えた請求項１記載の評価方法。
【請求項３】
被験者の評価対象部位の角層を採取する採取工程と、前記採取工程で採取された角層におけるＤＪ−１の発現量を測定する測定工程と、前記測定工程で測定されたＤＪ−１の発現量を標本集団の前記評価対象部位の角層のＤＪ−１の発現量分布と比較する比較工程と、を備えた請求項１または請求項２に記載の評価方法。
【請求項４】
皮膚の角層を採取する工程がテープストリッピング法によるものである請求項１〜３のいずれかに記載の評価方法。
【請求項５】
ヒト皮膚のストレス蓄積度が、紫外線障害または酸化によるストレス蓄積度である請求項１〜４のいずれかに記載の評価方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ヒト皮膚のストレス蓄積度の評価方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ヒトの皮膚は常に外界と接触しており、さまざまな刺激を受けている。その刺激の代表的なものは紫外線である。紫外線は、外見上は大きな変化を肌に与えていない場合であっても、皮膚細胞のＤＮＡの切断やコラーゲンの変性などを誘発し、皮膚老化の原因となって、常に肌にストレスを与え続けている。また女性にとっては、洗顔や化粧といった日常的な行為も皮膚に刺激を与えており、これらの刺激が肌には潜在的なストレスとして蓄積される。そしてこれらの刺激（ストレス）に対する抵抗性がなんらかの原因で減少すると敏感肌として認識されることとなる。このような紫外線や酸化等による皮膚の外的刺激の蓄積度を本発明では皮膚のストレス蓄積度という。一方敏感肌とは、明らかな皮膚病変はないが不利、有害な反応が起こりやすい肌として捉えられている。そしてこのような敏感肌の原因としてストレスの蓄積が一定レベルに到達し、肌の感受性が高まるためとも言われている。また敏感肌は、健常肌より外的刺激に対する抵抗性が低く、容易に皮膚トラブルを生ずる肌とも言える。近年、敏感肌を意識する女性が増加する傾向にあり、化粧品等についてもより刺激の少ないものが要望されるようになってきている。
【０００３】
化粧品の販売現場では美容専門家による問診を行い、肌ストレスの蓄積状況や敏感肌か否かを評価して肌に与えるストレス（刺激）の少ない化粧品を選択してきた。しかし近年通信販売など、化粧品専門家の不在な販売方法が普及し、このため、肌のストレス状態を見極め、また敏感肌のレベルを専門家でなくとも簡便に評価することが望まれてきた。これが可能となれば、美容専門家の問診によらずとも、ユーザーの肌のストレス状態や敏感肌であるかどうかを評価して、適切な化粧品を自ら選択することが可能となる。またユーザーの肌に、より適した化粧品やケミカルピーリング剤を簡単に選択することができ、それによって、皮膚の炎症等の肌トラブルや副作用を回避し、化粧品によるスキンケアやケミカルピーリングの施術等の有益性をより高めることができる。上記のように、美容専門家の問診によらずとも、皮膚の外的刺激暴露履歴（肌ストレスの蓄積度）を評価し、さらに敏感肌であるかどうかを客観的に判別する方法が求められている。
【０００４】
特許文献１には、皮膚に化粧料を塗布して、その後剥離してくる皮膚角層を回収して観察し、皮膚の敏感性を評価する方法が開示されている。しかしこの方法は、化粧品ごとにすべて検査しなければならず、またユーザーの肌ストレスの蓄積度は評価できない。
【０００５】
特許文献２には、カプシノイドのような刺激性物質を皮膚に塗布して、敏感肌であるかどうかを評価する方法が開示されている。しかしカプシノイドのような刺激性の強い物質を用いる試験方法は、被験者にとっても好ましいものではない。
【０００６】
特許文献３には、顔の角層のカルロプロテクチン存在量を測定して、敏感肌か否か評価する方法が開示されている。
【０００７】
本出願人は、抗酸化作用を有するＤＪ−１タンパク質（別名ＰＡＲＫ-７タンパク質）がアトピー性皮膚炎マーカーとして有用であることを見出して特許出願した（特許文献４）。一方、近年このＤＪ−１タンパク質が各種疾患のマーカーとして利用可能であることが徐々に明らかになってきている。特許文献４には酸化型ＤＪ−１タンパク質を特異的に認識する抗体が開示されている。そして、この抗体を用いて酸化型ＤＪ−１を測定することで、アルツハイマー病やパーキンソン病を診断する方法が提案されている。また特許文献５には、脳脊髄液や血液などのＤＪ−１タンパク質を測定することで脳障害性の疾患を診断する方法が開示されている。また特許文献６には、ＤＪ−１タンパク質を測定することで糖尿病性網膜症を診断する方法と試薬が提案されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００８】
【特許文献１】特開平１０−２９５６４８号公報
【特許文献２】特開２００５−２９６００７号公報
【特許文献３】特許第４４６９７６２号公報
【特許文献４】ＷＯ２００７／０４６４６３号公報
【特許文献５】特表２００７−５０６０８６号公報
【特許文献６】特開２００９−１６８８１９号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
上述したように、紫外線や酸化等による肌ストレスの蓄積度を評価し、敏感肌であるかどうかを客観的に評価する方法が望まれている。その評価方法は、外科的に皮膚を摘出したり、皮膚に刺激を与える等のユーザーに負担を与える方法ではないことが望ましい。本発明は、ユーザーに負担を与えることなく、肌のストレスの蓄積度を評価できる生化学的指標を用いた新規な評価方法を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
本発明は以下の構成である。
（１）皮膚角層のＤＪ−１の発現量をあらかじめ又は同時に測定した正常なヒト皮膚のＤＪ−１の発現量と対比することを特徴とする、ヒト皮膚のストレス蓄積度の評価方法。
（２）被験者の評価対象部位の角層を採取する採取工程と、前記採取工程で採取された角層におけるＤＪ−１の発現量を測定する測定工程と、前記測定工程で測定されたＤＪ−１の発現量を、健常肌を有する人の前記評価対象部位の角層のＤＪ−１の発現量と比較する比較工程と、を備えたことを特徴とする（１）記載の評価方法。
（３）被験者の評価対象部位の角層を採取する採取工程と、前記採取工程で採取された角層におけるＤＪ−１の発現量を測定する測定工程と、前記測定工程で測定されたＤＪ−１の発現量を標本集団の前記評価対象部位の角層のＤＪ−１の発現量分布と比較する比較工程と、を備えたことを特徴とする（１）または（２）に記載の評価方法。
（４）皮膚の角層を採取する工程がテープストリッピング法によるものである（１）〜（３）のいずれかに記載の評価方法。
（５）ヒト皮膚のストレス蓄積度が、紫外線障害または酸化によるストレス蓄積度である（１）〜（４）のいずれかに記載の評価方法。
【発明の効果】
【００１１】
本発明の評価方法によれば、肌ストレスの蓄積度を、角層におけるＤＪ−１の発現量を測定することで評価できる。さらに、本発明の評価方法は、テープストリッピング法など簡便な操作方法で評価試料を採取するため、被験者の負担が少なく、だれでも簡単に評価することが可能となる。また生化学的な試験方法であり、誰が測定しても同一の結果が得られるため、従来のような専門家の面談方式によるカウンセリングを必要としない敏感肌の評価が可能になる。
【図面の簡単な説明】
【００１２】
【図１】ＨａＣａＴ細胞に過酸化水素による酸化ストレスを負荷し、細胞内タンパク量を測定した結果を示すグラフである。
【図２】ＨａＣａＴ細胞に過酸化水素による酸化ストレスを負荷し、細胞内ＤＪ−１量を測定した結果を示すグラフである。
【図３】ＨａＣａＴ細胞に過酸化水素による酸化ストレスを負荷したとき培養液中に放出されるＤＪ−１量を測定した結果を示すグラフである。
【図４】ＢＳＯによるタンパク産生に及ぼす影響を検討したグラフである。
【図５】ＢＳＯによる培養ヒト表皮角化細胞のグルタチオン産生濃度を検討したグラフである。
【図６】グルタチオン産生抑制剤であるＢＳＯと過酸化水素によるストレスを負荷したヒト表皮角化細胞の細胞培養液中に分泌されたＬＤＨ量を示すグラフである。
【図７】グルタチオン産生抑制剤であるＢＳＯと過酸化水素によるストレスを負荷したヒト表皮角化細胞の細胞内タンパク量を示すグラフである。
【図８】グルタチオン産生抑制剤であるＢＳＯと過酸化水素によるストレスを負荷したヒト表皮角化細胞の細胞内ＤＪ−１量を示すグラフである。
【図９】グルタチオン産生抑制剤であるＢＳＯと過酸化水素によるストレスを負荷したヒト表皮角化細胞の細胞培養液中に分泌されたＤＪ−１量を示すグラフである。
【図１０】培養表皮角化細胞にＵＶＢを照射した２４時間後の細胞内タンパク量を示し、ＵＶＢ照射量に応じてタンパク量が減少していることを示すグラフである。
【図１１】培養表皮角化細胞にＵＶＢを照射した２４時間後の細胞内のＤＪ−１量を示し、ＵＶＢ照射量に応じてＤＪ−１量が増加していることを示すグラフである。
【図１２】培養表皮角化細胞にＵＶＢを照射した２４時間後の培養上清中のＤＪ−１量を示し、ＵＶＢ照射量に応じてＤＪ−１量が増加していることを示すグラフである。
【図１３】ヒト背部にＵＶＢを照射した（ストレス負荷）後のＤＪ−１の測定結果を示し、照射によるストレスが皮膚角層に残存し続けていることを意味するグラフである。
【図１４】肌質のアンケート結果とＤＪ−１量の対応を示すグラフである。
【図１５】習慣的に紫外線を浴びた経験のアンケート結果とＤＪ−１量の対応を示すグラフである。
【図１６】無作為に選出した女性２０５名の皮膚のＤＪ−１の分布を示すグラフである。棒グラフはＤＪ−１の角層タンパク当たりの濃度及び人数を示す。折れ線グラフは、その人数の累計を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１３】
以下、本発明について詳細に説明する。
本発明の評価方法は、皮膚角層におけるＤＪ−１の存在量を指標とすることを特徴としている。
【００１４】
ＤＪ−１は、分子質量２１ｋＤａの細胞内タンパク質である。上述した通り、パーキンソン病に関係したタンパク質として同定されたが、その後皮膚の創傷治癒過程での再上皮化（ｒｅ−ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌｉｚａｔｉｏｎ）に関与することが明らかになった。また、その立体構造からプロテアーゼとしても働いている可能性が示唆されている。
【００１５】
本発明では、敏感肌、健常肌という用語を使用する。敏感肌とは、明らかな皮膚病変はないが不利、有害な反応が起こりやすい肌を言う。また、健常肌より外的刺激に対する抵抗性が低く、容易にかぶれや肌荒れなどの皮膚トラブルを生ずる肌とも言える。一方、健常肌とは、上記のような敏感肌の性質を示さない健康で正常な肌を言う。
【００１６】
また、角層は、皮膚の一番上にある組織をいう。角層は、体の外からの異物や刺激から皮膚を守る働きを有している。
【００１７】
本発明における評価対象部位は、角層が入手できる部分であれば、いかなる部位をも包含しうるが、主な部位としては顔面、頚部、上腕部を挙げられ、従来の方法に従い、これらの部位の皮膚由来の角層を得ることができる。しかし、前述のように、外科的に皮膚を摘出する等の方法は、ユーザーに負担を与えるため、テープストリッピング、擦過等の簡便に角層を得られる方法が好ましい。
【００１８】
こうして用意した各試料におけるＤＪ−１の発現量は、従来から知られている方法で測定することができる。例えば、ＤＪ−１に対する抗体との反応に基づくエンザイムイムノアッセイ、ラジオイムノアッセイ、ウエスタンブロッティング等の方法を用いることができる。
【００１９】
各試料からＤＪ−１をそれ自体既知の生化学的方法、たとえば凍結融解法、超音波破砕法、ホモジュネート法等を介して可溶性画分を調製し、抽出後、速やかに測定する。
【００２０】
ストレスが蓄積された肌や敏感肌は、健常肌にくらべて角層におけるＤＪ−１の発現量が有意に高いため、角層におけるＤＪ−１の発現量の多寡を指標として、簡便にストレスの蓄積度又は肌が敏感肌であるかどうかを評価できる。本発明に用いる角層は、テープストリッピング等により角層の表層部分のみを角質テープで採取する簡単な方法で採取することができる。また、本発明は、皮膚に紫外線や化学物質等の刺激を与えることなくＤＪ−１の発現量を測定できる。このため、ユーザーに負担を与えることなく、ユーザーの肌のストレス蓄積度を評価することができる。特に、ユーザーの肌に、より適した化粧品やケミカルピーリング剤を簡単に選択することができ、それによって、皮膚の炎症等の肌トラブルや副作用を回避し、化粧品によるスキンケアなどに活用できる。
【００２１】
本発明の評価方法は、角層を採取する採取工程と、前記採取工程で採取された角層におけるＤＪ−１の発現量を測定する測定工程と、前記測定工程で測定されたＤＪ−１の発現量を健常肌の角層におけるＤＪ−１の発現量と比較する比較工程から構成される。又は、本発明の評価方法は、角層を採取する採取工程と、前記採取工程で採取された角層におけるＤＪ−１の発現量を測定する測定工程と、前記測定工程で測定されたＤＪ−１の発現量を標本集団の角層におけるＤＪ−１の発現量の分布と比較する比較工程から構成される。以下にこの評価方法について説明する。
【００２２】
まず、上記のようにして測定されたＤＪ−１の発現量を健常肌の角層におけるＤＪ−１の発現量と比較する。また、被験者のある評価対象部位の角層におけるＤＪ−１の発現量を測定し、測定されたＤＪ−１の発現量を、健常肌を有する人の同一評価対象部位の角層におけるＤＪ−１の発現量と比較してもよい。健常肌を有する人の角層のＤＪ−１の発現量は、複数人の健常肌を有する人からのデータの平均値を使用することによって、より客観的な評価ができる。
又は、被験者のある評価対象部位の角層におけるＤＪ−１の発現量を測定し、測定されたＤＪ−１の発現量を、標本集団の同一評価対象部位の角層におけるＤＪ−１の発現量の分布と比較してもよい。標本集団のＤＪ−１の発現量の分布を使用することによって、より客観的な評価ができる。
【００２３】
このように比較した結果、測定されたＤＪ−１の発現量が、健常肌のＤＪ−１の発現量より有意に大きい場合、又は、標本集団のＤＪ−１の発現量分布と比較して、ＤＪ−１の発現量が大きいと判断される場合には、ストレスの蓄積が大きいと評価することができる。この健常肌の試料は、ＤＪ−１を測定する者から採取してもよく、ＤＪ−１を測定する者と異なる者から採取してもよい。また、この標本集団は、統計的に有効な規模で、無作為に抽出することが好ましいが、目的に応じて、例えば、性別、年齢別に標本集団を抽出することも好ましい。
【００２４】
また、被験者のある評価対象部位の角層におけるＤＪ−１の発現量が、健常肌を有する人の同一評価対象部位の角層におけるＤＪ−１の発現量より有意に大きい場合、又は、標本集団の同一評価対象部位の角層におけるＤＪ−１の発現量分布と比較して、ＤＪ−１の発現量が大きいと判断される場合にも、ストレスの蓄積が大きいと評価する。またこの数値が顕著に高い場合に敏感肌を有すると評価する。
【００２５】
すなわち、測定されるＤＪ−１の発現量の程度により、ストレスの蓄積度合の程度を評価できる。測定されるＤＪ−１の発現量が健常肌、又は、標本集団の発現量分布と比較して著しく多いと判断される場合は、その肌は、敏感肌の性質を強く示し、健常肌又は、標本集団の平均より外的刺激に対する抵抗性が顕著に低く、きわめて容易に皮膚トラブルを生ずる可能性が高い。
【００２６】
本発明を試験例、実施例によって説明する。なお本発明は下記の実施例に限定されるものではない。
【実施例】
【００２７】
試験例１
酸化ストレスによる皮膚由来細胞中のＤＪ−１量の変化を測定した。ＤＪ−１の機能を確認するためＤＪ−１遺伝子をノックダウンさせた細胞を作成して、酸化ストレス負荷試験を行った。
ヒト由来の細胞株であるＨａＣａＴ細胞（J.Cell Biol. 106:761-771 (1988).）（DKFZ(Deutsches Krebsforschungszentrum)より購入）を用いて、酸化ストレスとＤＪ−１タンパクの関係を確認した。またsiRNAによりＤＪ−１遺伝子の発現を抑制し（ノックダウン）、ＤＪ−１タンパク発現量の変化を確認した。
【００２８】
（１）HaCaT細胞培養および過酸化水素（H2O2）処理による酸化ストレスの負荷ならびに siRNA処理によるＤＪ−１遺伝子のノックダウン操作
HaCaT細胞をPBS(-)にて洗浄後、トリプシン処理により細胞を剥離し、1200rpmで3min遠心し、細胞を得た。培養は10%FBS含有DMEM培地を用い、5000cells/cm2の密度でフラスコに播種し、2〜3日置きにサブコンフルエントの状態で継代した。
HaCaT細胞を10%FBS含有DMEM培地にて12ウェルプレートに2.1×105cells / well播種し24時間培養後、siRNA（終濃度3nM、Hs_PARK7_6 FlexiTube siRNA, SI02662107, Qiagen社製）、トランスフェクション試薬（2μl/well、HiPerFect Transfection Reagent, 301707, Qiagen社製）を前記培養培地と混合し、室温に10分放置した。ついでこの混合液を、100μl/wel添加した。未処理の細胞をコントロールとした。
また、ノックダウン操作のネガティブコントロールとして、AllStars Negative Control siRNA (Qiagen社製)を用いて同様に操作した。
48時間培養後に、H2O2 (Wako製)を0、250、500、750、1000μM添加し、24時間後に培養上清を回収し、細胞をPBS(-)で洗浄後、Cell lysis buffer (50mM Tris-HCl , 1mM Na3VO4 , 0.4% NP-40 , 120mM NaCl)を100μl/well添加し、細胞溶解液を得た。
【００２９】
（２）細胞タンパク量の測定
細胞溶解液のタンパク量をBCA  protein kit (Thermo Scientific社製)を用いて測定した。測定はキットプロトコールに従った。
【００３０】
（３）ＤＪ−１発現量の測定
上清中および細胞溶解液中のＤＪ−１量をDouSet Park7/ＤＪ−１ ELISA kit  (R&D社製）を用いて測定した。測定はキットプロトコールに従った。
【００３１】
（４）結果
過酸化水素（H2O2）によってストレス負荷した各細胞の細胞タンパク量を図1に示した。また、培養上清中のＤＪ-１量、細胞溶解液（細胞内）のＤＪ−１量を、それぞれ図２、図３に示した。なお測定結果は３ウエル当たりの平均値±標準偏差（S.D.）で表した。
【００３２】
H2O2は濃度依存的に細胞内タンパク量を減少させた。
またH2O2は、強いストレスとして細胞に影響することを確認できた。
さらにまた、培養液のH2O2濃度が750μMの条件下において、ＤＪ−１siRNAで処理したノックダウン細胞はNegative Controlと比較し細胞内タンパク量が有意に減少した。（図1）。
【００３３】
細胞中のＤＪ−１量は、どの細胞においても、培養液中のH2O2 濃度が1000μMのとき、増加した。
一方培養上清中のＤＪ−１量は、培養液中のH2O2が低濃度の場合においても増加した。
過酸化水素による酸化ストレスは、細胞内外でＤＪ−１を増加させることが確認できた(図2、3）。
さらにまた、ネガティブコントロールの細胞（非ノックダウン細胞）は培養液中のH2O2の有無に関わらず、コントロールに比べて細胞内ＤＪ−１量が増加していた。これはトランスフェクション処理による影響が出ていると考えられた。
ＤＪ−１siRNA処理により、細胞中のＤＪ−１量はネガティブコントロールと比較して約40%低下していた。
以上の試験から、ヒト皮膚由来HaCaT細胞において、ストレスに対応してＤＪ−１が産生され、その産生量はsiRNAの干渉によって抑制されることが明らかになった。
【００３４】
試験例２
試験例１によりＤＪ−１遺伝子はストレスに対応してＤＪ−１を発現することが確認された。次にヒト表皮角化細胞（ケラチノサイト）初代培養細胞を用いて酸化ストレスによるＤＪ−１量の変化を測定した。また、酸化による細胞の障害を改善するグルタチオン産生能を低下させた、ストレス抵抗性の低下した角化細胞のＤＪ−１量の変化を測定した。
（１）グルタチオン合成阻害剤による酸化ストレス抵抗性の低下した細胞の作製
ヒト表皮角化細胞（Lonza社）をPBS(-)にて洗浄後、トリプシン処理により細胞を剥離し、1200rpmで3min遠心し、細胞を得た。培養はEpiLife培地（Life Technologies）を用い、5000〜7000cells/cm2の密度でフラスコに播種し、4〜7日置きにサブコンフルエントの状態で継代した。
ヒト表皮角化細胞をEpiLife培地（Gibco社）にて1×105 cells / 35mm dishに播種し、約5割の細胞密度になるまで培養した。
グルタチオン合成阻害剤L-Buthionine-sulfoximine（BSO: Sigma-Aldrich社)を用いてまずグルタチオン合成阻害を誘起する最適なBSO濃度決定を行った。
BSOを細胞培養液に添加し、24時間後に細胞をトリプシン処理で回収し、グルタチオン測定を行った。グルタチオンが検出されなくなるBSO濃度を次の酸化ストレス試験条件とした。
【００３５】
（２）過酸化水素（H2O2）による酸化ストレス負荷試験の実施
ヒト表皮角化細胞（Gibco社）をEpiLife培地（Gibco社）にて1×105 cells / 35mm dishに播種し、約5割の細胞密度になるまで培養した。次いで、上記（１）で決定したBSO濃度（５０μMまたは１００μM）になるようBSOを添加し、さらに24時間経過後に過酸化水素を０、０．５、１ｍMになるように添加した。過酸化水素添加後、さらに24時間培養し、培養上清を回収した。また細胞をPBS(-)で洗浄後、cell lysis buffer 100μlで回収した。
得られた培養上清および細胞を用いてLDH（乳酸脱水素酵素）量、タンパク量、ＤＪ−１量を測定した。
【００３６】
（３）タンパク定量
細胞溶解液のタンパク量をBCA  protein kit (Thermo Scientific社製)を用いて測定した。
【００３７】
（４）LDHの測定
培養上清中のLDHをCytotoxicity Detection Kit PLUS (LDH) (Roche Applied Science社) を用いて測定した。測定はキットプロトコールに従い、490nmにおける吸光度で表した。
【００３８】
（５）ＤＪ−１発現量の測定
上清中および細胞溶解液中のＤＪ−１量をDuoSet Park7/ＤＪ-1 ELISA kit  (R&D社製）を用いて測定した。測定はキットプロトコールに従った。
【００３９】
（６）グルタチオン測定
トリプシン処理により回収した細胞を、PBS(-)で洗浄し、MES buffer 100μlで再懸濁した。超音波処理1分により細胞溶解液としGluthathione Assay Kit (Cayman Chemical社) を用いてグルタチオン量を測定した。測定はキットプロトコールに従った。
【００４０】
（７）結果
BSOを添加した細胞中のタンパク量を図４、グルタチオン量を図5に示した。
また、過酸化水素添加によるストレス負荷した細胞培養上清中のLDH量を図６、ＤＪ-1量を図７に示した。
また同じく細胞中のタンパク量を図８に、ＤＪ−１量を図９に示した。
タンパク質産生に影響を与えないでグルタチオン産生を阻害するＢＳＯ濃度は、５０μMまたは１００μMであることが明らかとなった。そしてこの濃度において、グルタチオン産生が阻害された細胞は、過酸化水素による酸化ストレスによってLDH放出が促進され（図６）、タンパク質量が減少している（図７）ことが明らかとなった。
またＤＪ−１も、過酸化水素の濃度に依存して上昇することが確認された（図８、図９）。
【００４１】
以上の試験例１、試験例２の結果からＤＪ-１はヒト表皮の酸化に伴うストレスを反映しており、その産生量はグルタチオン産生能や、遺伝子の干渉による複製低下に影響されることが明らかとなった。また、酸化ストレス抵抗性のない細胞ほどＤＪ−１が産生されることがわかった。すなわち、細胞の抵抗性が低下するとＤＪ−１が増加するものと判断した。
【００４２】
試験例３
試験例２と同様に、ヒト表皮角化細胞（ケラチノサイト）初代培養細胞を用いて紫外線照射によるＤＪ−１量の変化を測定した。
（１）ヒト表皮角化細胞の培養及び紫外線の照射方法
ヒト表皮角化細胞（Gibco社）をEpiLife培地（Gibco社）にて1×105 cells / 35mm dishに播種し、培養3日目に細胞をPBS(-)で洗浄後、PBS(-)1mlを入れ、三共電気製ランプを用いて、UVBを0.2 mW/cm2の強度で、10、20、30 mJ/cm2照射した。照射後に培養培地に置換し、24時間培養後に培養上清を回収し、細胞はcell lysis buffer  200μlで回収し、試験例１、試験例２と同様にタンパク定量、ＤＪ−１量測定を行った。
【００４３】
（２）結果
培養上清中のタンパク量を図１０に示す。また培養細胞中のＤＪ−１量を図１１に、上清中のＤＪ−１量を図1２、示す。
ヒト表皮角化細胞にUVBを照射し、24時間後のＤＪ−１量はUVBの照射線量依存的に障害を受け、タンパク量が減少した。一方細胞内、細胞外ともにＤＪ−１量は増加し、特に培養上清中で増加量が大きかった。
以上の試験例１〜３により、ヒト表皮角化細胞のＤＪ−１の値はストレスのレベルを反映することが明らかとなった。
【００４４】
試験例４
試験例１〜３で、ヒト表皮角化細胞では、ＤＪ−１がストレスを反映していることが明らかとなったため、ヒトの実際の皮膚ストレスを反映するか試験した。すなわちヒト皮膚にストレスとして紫外線を直接照射し、ＤＪ−１の発現量の変化を観察、測定した。
（１）試験方法
＜紫外線照射＞
健常肌を有する男性10名の背部にデルマレイ（テルモ・クリニカルサプライ社製）を用いて20、40、60、80、100mJ/cm2紫外線を照射した。照射翌日の紅斑より、最小紅斑量（Minimum Erythema Dose : MED）を決定した。その値を用いて背部に0、0.5、1.0MED相当の紫外線を照射し、照射7、14日後に角層チェッカー（アサヒバイオメッド社）を用いてテープストリッピング法により角層を採取した。
【００４５】
＜角層中ＤＪ−１測定＞
ガラスビーズとT-PERバッファー（Thermo scientific社）500μlの入ったチューブに角層を採取した角層チェッカーを入れ、25分ボルテックスミキサーにて振とうし、角層タンパクを抽出した。各サンプルのタンパク量はBCA protein Assay Kit (Thermo Scientific社)で測定した。測定には角層サンプルを10μlに reagentA: reagentB=50:1で混和した液200μlを加え、60℃30分でインキュベーションしたのち、562nmの吸光度で測定した。同時にウシ血清アルブミン（BSA）で検量線を作成した。この検量線と吸光度の値からタンパク量を算出した。
角層抽出液中に含まれるＤＪ−１量はHuman Park7/ＤＪ−１ DuoSet  (R&D systems社)を用いて定量した。
【００４６】
（２）結果
タンパク当たりのＤＪ−１測定結果を図１３に示す。紫外線照射７、１４日後において非照射部位と比較し、0.5、1.0MEDの紫外線を照射した部位では有意に角層中ＤＪ−１量が増加した。
ヒトにおける皮膚ストレスの状態をＤＪ−１の測定で確認できることが明らかとなった。
【００４７】
試験例５
試験例１〜３で、ヒト表皮角化細胞では、ＤＪ−１がストレスを反映していることが明らかとなったため、ヒトの実際の皮膚ストレスを反映するか試験した。すなわちアンケートにより肌質（敏感性）を質問し、その回答と頬中ＤＪ−１量を比較した。
（１）試験方法
＜アンケート＞
健常肌を有する女性575名に肌質（敏感性）を質問し、「非敏感」、「やや敏感」、「敏感」のいずれかを回答させた。
＜角層採取＞
アンケートをした健常肌を有する女性575名の頬部から、角層チェッカー（アサヒバイオメッド社）を用いてテープストリッピング法により角層を採取した。
【００４８】
＜角層中ＤＪ−１測定＞
ガラスビーズとT-PERバッファー（Thermo scientific社）500μlの入ったチューブに角層を採取した角層チェッカーを入れ、25分ボルテックスミキサーにて振とうし、角層タンパクを抽出した。各サンプルのタンパク量はBCA protein Assay Kit (Thermo Scientific社)で測定した。測定には角層サンプルを10μlに reagentA: reagent=50:1で混和した液200μlを加え、60℃30分でインキュベーションしたのち、562nmの吸光度で測定した。同時にウシ血清アルブミン（BSA）で検量線を作成した。この検量線と吸光度の値からタンパク量を算出した。
角層抽出液中に含まれるＤＪ−１量はHuman Park7/ＤＪ−１ DuoSet  (R&D systems社)を用いて定量した。
【００４９】
（２）結果
アンケートの結果、非敏感：281名、やや敏感：193名、敏感：101名であった。アンケート回答者ごとのタンパク当たりのＤＪ−１測定結果を図１４に示す。敏感であるほどＤＪ−１量が高いことが分かった。
【００５０】
試験例６
試験例１〜３で、ヒト皮膚角化細胞では、ＤＪ−１がストレスを反映していることが明らかとなったため、ヒトの実際の皮膚ストレスを反映するか試験した。すなわちアンケートにより過去にマリンスポーツ等習慣的に紫外線を浴びた経験があるかどうかを質問し、その回答と頬中ＤＪ−１量を比較した。
（１）試験方法
＜アンケート＞
健常肌を有する女性386名に過去にマリンスポーツ等習慣的に紫外線を浴びた経験があるかどうかを質問し、「無し」、「有り」のいずれかを回答させた。
＜角層採取＞
アンケートをした健常肌を有する女性386名の頬部から、角層チェッカー（アサヒバイオメッド社）を用いてテープストリッピング法により角層を採取した。
【００５１】
＜角層中ＤＪ−１測定＞
ガラスビーズとT-PERバッファー（Thermo scientific社）500μlの入ったチューブに角層を採取した角層チェッカーを入れ、25分ボルテックスミキサーにて振とうし、角層タンパクを抽出した。各サンプルのタンパク量はBCA protein Assay Kit (Thermo Scientific社)で測定した。測定には角層サンプルを10μlに reagentA: reagentB=50:1で混和した液200μlを加え、60℃30分でインキュベーションしたのち、562nmの吸光度で測定した。同時にウシ血清アルブミン（BSA）で検量線を作成した。この検量線と吸光度の値からタンパク量を算出した。
角層抽出液中に含まれるＤＪ−１量はHuman Park7/ＤＪ−１ DuoSet  (R&D systems社)を用いて定量した。
【００５２】
（２）結果
アンケートの結果、無し：223名、有り：163名であった。アンケート回答者ごとのタンパク当たりのＤＪ−１測定結果を図１５に示す。習慣的に紫外線を浴びた経験のある回答者ほどＤＪ−１量が高いことが分かった。
【００５３】
試験例７
ヒトにおける皮膚のストレス蓄積状態を把握するため、多数の被験者を対象として角層のＤＪ−１を測定した。
（１）試験方法
１）試験試料の採取
無作為に選抜した女性205名を対象として、頬よりテープストリッピング法によって角層サンプルを採取した。サンプルは1部位より1枚採取した。
【００５４】
２）皮膚角層中ＤＪ−１測定方法
試験例４と同様の方法で行った。
ガラスビーズとT-PERバッファー（Thermo scientific社）500μlの入ったチューブに角層を採取した角層チェッカーを入れ、25分ボルテックスミキサーにて振とうし、角層タンパクを抽出した。各サンプルのタンパク量はPierce BCA protein Assay Kit (Thermo Scientific社)で測定した。測定には角層サンプルを10μlに reagentA: reagentB=50:1で混和した液200μlを加え、60℃30分でインキュベーションしたのち、562nmの吸光度で測定した。同時にウシ血清アルブミン（BSA）で検量線を作成した。この検量線と吸光度の値からタンパク量を算出した。
角層抽出液中に含まれるＤＪ−１量はHuman Park7/ＤＪ-1 DuoSet  (R&D systems, DY3995E)を用いて定量した。
【００５５】
（２）結果
測定結果を図１６に示す。
図１６に示したとおり、ＤＪ−１の発現量は、0.3pg/μg total proteinから5.0pg/μg total proteinを超える値までの広い範囲で分布している。平均値は2.6pg/μg total proteinであった。この度数分布と比較して、ＤＪ−１の発現量が大きいと判断する基準は、自由に設定することが可能であるが、例えば、平均値である2.６pg/μg total protein 以上の値をＤＪ−１の発現量が大きいと判断する。あるいはまた、2.3pg/μg total proteinの累積度数が約50％なので、2.3pg/μg total protein を超える値を、ＤＪ−１の発現量が大きいと判断することもできる。そして、ＤＪ−１の発現量が大きいほど、ヒト皮膚のストレス蓄積度は大きいと判断できる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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