(57)【要約】【課題】生体内組織により近い状態のインビトロ３次元培養組織を提供する。【解決手段】細胞を含む支持体層の水平方向の収縮を阻害することで細胞に生体と同じように張力を付加するとともに常時一定の流速で新鮮な培養液を供給することにより、体液循環環境に似せて細胞を培養できることを見出し、培養液灌流方式３次元培養組織を作製した。この３次元培養組織では、生体内組織により近い状態で長期に細胞を維持することが可能となる。【選択図】図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
細胞を含む支持体層に培養液を灌流させ製造することを特徴とする３次元培養組織。
【請求項２】
培養液の灌流が、培養液を支持体に挿入したチューブを通じて、細胞を含む支持体層に加圧送液して行われることを特徴とする請求項１記載の３次元培養組織。
【請求項３】
培養液の送液が、支持体層の下部より行われることを特徴とする請求項２記載の３次元培養組織。
【請求項４】
培養液の送液速度が、支持体１ｃｍ３当たり０．１〜１０μL／分であることを特徴とする請求項２〜３いずれか記載の３次元培養組織。
【請求項５】
細胞が、線維芽細胞である請求項１〜４いずれか記載の３次元培養組織。
【請求項６】
支持体層がコラーゲンである請求項１〜５いずれか記載の３次元培養組織。
【請求項７】
支持体層の下部及び側面が培養皿に接着していることを特徴とする請求項１〜６いずれか記載の３次元培養組織。
【請求項８】
支持体層を調製する培養皿が線維化コラーゲンコートされていることを特徴とする請求項１〜７いずれか記載の３次元培養組織。
【請求項９】
請求項１〜８いずれか記載の３次元培養組織を得るための装置。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、生体内に類似した３次元培養組織に関し、更に詳しくは、細胞を含む支持体層に培養液を灌流させることを特徴とする３次元培養組織に関する。
【背景技術】
【０００２】
ヒト細胞を体から分離して人工環境（インビトロ）で培養することによってその細胞の体の中（インビボ）での性質を科学的に調査する方法として、細胞培養法は有用な技術であり、研究者の間で広く利用されて来た。代表的な方法は２次元的広がりを持つプラスチック培養皿の表面に培養する方法で平面培養と呼ばれる。この技術は多くの変法があるが基本技術は公知である。
【０００３】
平面培養に比べて、３次元的広がりを持つ支持体（細胞の足場、マトリックス）の中で培養する方法を立体培養と呼ぶ。立体培養は平面培養に比べてよりインビボに近い環境を細胞に与え、この様に培養された細胞を含む支持体は３次元培養組織と呼ばれる。立体培養法にも多くの変法（特許文献１〜２、非特許文献１〜３）がある。流布している多くの立体培養はその培養液を必要に応じて新鮮な培養液で置換させるものであり、静置立体培養と呼ぶ。
【０００４】
３次元培養組織は、医薬品や化粧品の安全性評価、有効性評価に有用な生体のモデルであり、近年、動物愛護の観点から動物実験の代替としてもその利用が広がっている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特開２００９−１１２２７７
【特許文献２】特表２００８−５１９５９８
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】Ｙｏｓｈｉｚａｔｏ  Ｋ  ｅｔ  ａｌ，ＢｉｏｍｅｄｉｃａｌＲｅｓ，６：２８７−２９６，１９８５．
【非特許文献２】Ｋａｗａｄａ  Ｎ  ｅｔ  ａｌ，Ｂｉｏｃｈｅｍ  ＢｉｏｐｈｙｓＲｅｓ  Ｃｏｍｍｕｎ，２６６（２）：２９６−３００，１９９９．
【非特許文献３】Ｈｕ  Ｔ  ｅｔ  ａｌ，Ｔｏｘｉｃｏｌ  Ｉｎ  Ｖｉｔｒｏ，２４（５）：１４５０−１４６３，２０１０．
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本発明は、生体内により近い状態の３次元培養組織を提供することを課題とする。
【０００８】
生体に近似の３次元培養組織の培養法として「コラーゲンゲル培養法」がある。この方法は、細胞を水和化したゲル状のコラーゲン線維格子内に３次元的に封入して培養するものであるが、インビボの状態を正確に反映できないという基本的問題が存在していた。１つはゲル内部に酸素や栄養素が十分浸透しないために細胞が壊死化する問題、他の１つは、ゲルが収縮して体積を減じ、生体内では見られない凝集体化することである。生体内組織は張力付加状態にあり、かつ血管が隅々まで発達していることにより、この様な問題は起きていない。
【０００９】
さらに、生体の細胞は、単独でその機能を果たしているのではなく，直接的或いは間接的に近隣或いは遠隔地の細胞の影響を受けながらその機能を発揮できる。このような体内における細胞間のネットワークは、体液循環に依存するところが大きいが、インビトロ培養法による３次元培養組織は細胞間のネットワークを除去した組織であって、当該細胞のインビボ機能を再現出来ていない。
【００１０】
また、これまでの培養法では、３次元培養組織の培養可能期間は１０日程であり、それ以上に長期間培養すると細胞機能が低下或いは細胞死してしまう。そこで、生体に類似の細胞機能を長期間維持するための細胞培養デバイス（特許文献２）が開示されているが、培養液の供給がデバイスのチャネル（溝）を流れる液からの拡散によること、細胞が複数の突起によって確定されるチャンバに保持されており、細胞外マトリックスとの相互作用により、生体と同じような張力が負荷されないことなど、インビボの状態との違いがある。したがって、長期間培養可能で、且つインビボの状態により類似した細胞を含む３次元培養組織の開発が求められている。
【課題を解決するための手段】
【００１１】
生体の細胞は体液循環系の中に取り込まれており、絶えず流体力学的影響と栄養素/酸素の供給を受けている。また、細胞外マトリックスとの相互作用により張力が付加されている。本発明者等は、鋭意検討を重ねた結果、細胞を含む支持体の水平方向の収縮を阻害することで細胞に生体と同じように張力を付加するとともに常時一定の流速で新鮮な培養液を供給することにより、体液循環環境に似せて細胞を培養できることを発見し、本発明を完成するに至った。
【００１２】
すなわち、本発明は、
［１］細胞を含む支持体層に培養液を灌流させ製造することを特徴とする３次元培養組織。
［２］培養液の灌流が、培養液を支持体に挿入したチューブを通じて、細胞を含む支持体層に加圧送液して行われることを特徴とする［１］記載の３次元培養組織。
［３］培養液の送液が、支持体層の下部より行われることを特徴とする［２］記載の３次元培養組織。
［４］培養液の送液速度が、支持体１ｃｍ３当たり０．１〜１０μL／分であることを特徴とする［２］、［３］いずれか記載の３次元培養組織。
［５］細胞が、線維芽細胞である［１］〜［４］いずれか記載の３次元培養組織。
［６］支持体層がコラーゲンである［１］〜［５］いずれか記載の３次元培養組織。
［７］支持体層の下部及び側面が培養皿に接着していることを特徴とする［１］〜［６］いずれか記載の３次元培養組織。
［８］［１］〜［７］いずれか記載の３次元培養組織を得るための培養方法及びその装置。
に関する。
【発明の効果】
【００１３】
本発明の３次元培養組織は、細胞を含む支持体の水平方向の収縮を阻害することで細胞に生体と同じように張力を付加するとともに培養液を灌流させることにより、そこに含まれる細胞をインビボにより近い状態で維持することができる。
【００１４】
本法は、細胞とマトリックスが本来的に有する自己組織能にしたがって、生体内組織に類似の組織構築を促進させることを特色とする培養法である。つまり、従来法のような人工的な鋳型を使用せず、細胞自身による自然の組織構築能（ｓｅｌｆ−ａｓｓｅｍｂｌｙ）を利用することから、生体内により近い組織形成となっていることが期待できる。
【図面の簡単な説明】
【００１５】
【図１】本発明の３次元培養組織の培養装置を示す図である。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１６】
本発明の３次元培養組織は、細胞を含む支持体層に培養液を灌流させることを特徴とする。ここで、灌流とは、一般的には、人為的に臓器に血液を送ることをいうが、本発明では、人為的に管等を用いて、培養液を培養基質に送液することをいう。培養液の灌流は、プラスチック培養皿の培養表面に小穴を開け、その小穴に、送液ポンプに連結してある細いチューブを挿入することにより行われる。この培養皿に細胞を封入した支持体を作製後、ポンプを駆動させ新鮮培養液を支持体内に一定速度で加圧送液することにより、培養液は支持体内を底面から徐々に均一に広がり、支持体内全域を通過して支持体上面から支持体を離れる。このようにして、支持体内に分布している細胞に満遍なく緩慢な流速で移動する新鮮培養液を供給することができる。
【００１７】
インビボにおける支持体は、収縮とそれに反発する緊張が掛かった状態にある。収縮は細胞が周辺の支持体を足場として引き寄せることで起こる。緊張は、支持体が細胞による引力に反発することにより起こる。本発明では、この緊張を再現するために細胞に起因した支持体の収縮に任せるのではなく、支持体をプラスチック培養皿に接着させ、細胞を含む支持体の水平方向の収縮を阻害することにより、細胞に生体と同じように張力を付加し、インビボにより類似した細胞培養環境をつくることを特徴とする。プラスチック培養皿への支持体の接着性は、線維化コラーゲンコーティングを培養皿底部及び壁前面に対して行うことで高めることができる。また、培養皿底面内部に突出または傷を付けて支持体と培養皿が接する面積を増やし、繋留効率を上げることもできる。
【００１８】
本発明の３次元培養組織の支持体には、コラーゲン、ゼラチン、エラスチン、多糖類（ヒアルロン酸、コンドロイチン硫酸、キチン、キトサン等）、人工合成ポリマー（ポリ乳酸、ペプチド、ポリエステル類等）、フィブリン等を用いることができ、その性状としては、ゲル、スポンジ、シート等がある。
【００１９】
支持体の大きさ及び形は、特に限定されず、培養皿に合わせて作製することができるが、１０〜１００ｍｍの円形培養皿に合わせて作製することが好ましく、３５〜６０ｍｍの円形培養皿に合わせて作製することが特に好ましい。支持体を構築する成分の濃度も特に限定されないが、０．０５〜５％が好ましく、０．１〜０．５％が特に好ましい。
【００２０】
本発明の３次元培養組織に用いられる細胞としては、例えば皮膚線維芽細胞、血管内皮細胞、リンパ内皮細胞、上皮細胞、色素細胞、脂肪細胞、神経細胞、肝臓星細胞、毛包細胞、網膜視細胞等が挙げられる。
【００２１】
細胞の密度及び分散状態は、特に限定されないが、１×１０３〜１×１０７個／ｍLの密度が好ましく、１×１０５〜２×１０６個／ｍLの密度が特に好ましい。また、均一に分散されていることが好ましい。
【００２２】
培養皿に挿入したチューブは、プラスチック培養皿底面の厚みを利用して培養皿に固定する。挿入する送液用チューブの本数は、特に限定されないが、１〜１０本が好ましい。送液用チューブを挿入する位置は、特に限定されないが、１本の場合は、プラスチック培養皿の培養表面中央が好ましく、複数の場合は、培養表面を均等にカバーできる位置が好ましい。送液用チューブの材質としては、フッ素樹脂、シリコンゴム、ポリイミド、ポリカーボネート、アクリル、プラスチック、ポリプロピレン、塩化ビニル樹脂等が挙げられる。その内径は、０．５〜２ｍｍが好ましい。
【００２３】
本発明の３次元培養組織に用いられる培養液は、特に限定されず、用いる細胞の培養に適した培養液及び添加物を利用することができる。例えば１０％牛胎児血清を含むＤｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  Ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｅａｇｌｅ  Ｍｅｄｉｕｍ（ＤＭＥＭ）等がある。
【００２４】
培養液の送液速度は、支持体１ｃｍ３当たり０．１〜１０μＬ／分が好ましく、特には、支持体１ｃｍ３当たり１〜３μＬ／分が好ましい。
【００２５】
培養液の送液は、培養皿に挿入したチューブのもう一方の端にポンプを繋ぎ、そのポンプを稼動させることにより行う。ポンプとしては、シリンジ用ポンプ、点滴用ポンプ、血液循環用ポンプ、ペリスタポンプ、ＨＰＬＣ用ポンプ等を用いることができる。例えば、チューブのもう一方の端に培養液を注入したシリンジを繋ぎ、そのシリンジを送液ポンプに装着し、送液ポンプを稼動することにより培養液を送液することができる。この場合、用いるシリンジとしては、医療用のポリプロピレン製シリンジが好ましい。送液ポンプとしては、市販のシリンジ用ポンプを用いることができる。
【００２６】
支持体上面から支持体を離れた培養液の回収は、プラスチック培養皿の上部壁面に小穴を開け、チューブを挿入する。チューブの反対側の端をシリンジに接続しポンプで小穴の高さまで上昇した培養液を送液速度よりも遅い速度で吸引し回収する。または、培養皿よりも低い位置にチューブを垂らし、廃液用のタンクに接続し、高低差を利用して培養液の回収を行なう。チューブの素材としては、送液用チューブと同様のものを用いることができる。
【００２７】
本発明の３次元培養組織は、生体内組織に類似した性質を有しており、しかもその状態を維持して１ヶ月以上の長期間培養も可能である。したがって、生体内組織における細胞の本来的性質をインビトロで調べることが可能であり、生体内組織に対する被検物質の影響評価に用いることができる。医薬品や化粧品素材の生体内組織に対する安全性評価に用いることができる。また、医薬品や化粧品素材の生体組織内の特定の細胞機能に対する有効性評価に用いることができる。さらに、医薬品等の長期処理によって生じる慢性疾患のインビトロモデルとしても利用できる。
【００２８】
本発明の３次元培養組織は、生体への移植用組織として用いることができる。移植用組織の用途としては、皮膚移植、毛包移植、肝臓移植等が挙げられる。
【００２９】
本発明を詳細に説明するため、実施例として３次元培養組織の製造例及び実験例を挙げるが、本発明はこれに限定されるものではない。
【実施例１】
【００３０】
製造例１  培養液灌流方式３次元培養皮膚１の作製
図１に概略した方法で培養装置を作製した。直径２ｍｍのドリルをアルコールランプで炙った。これを使用するプラスチック培養皿の底面中央に当て皿に垂直に立てて貫通させた。熱で柔らかくなったプラスチックが冷えて固まったらドリルを廻して皿に孔を開け、そこに６０ｃｍ長のフッ素樹脂（ＰＦＡ）チューブを差し込んだ。チューブの他端を５ｃｍ長のシリコンチューブと繋ぎ、シリコンチューブの他端はルアーフィッティング（サンプラテック、ＦＴＬＬ２１０−６）と繋いでパラフィルムで固定した。皿に差し込んだチューブは、エポキシ系接着剤（アラルダイトラピッド、ニチバン）で固定した。皿とチューブを繋いだままドラフト内に置き２時間程風乾した。エポキシ系接着剤が乾いた後、パラフィルム（Ｐｅｃｈｉｎｅｙ  Ｐｌａｓｔｉｃ  Ｐａｃｋａｇｉｎｇ  Ｃｏｍｐａｎｙ）で固定防水した。ルアーフィッティングにシリンジ（ＴＥＲＵＭＯ  １０ｍＬ）を繋ぎ７０％エタノールで消毒した。ＤＭＥＭ（ＧＩＢＣＯ）、１０％（ｖ／ｖ）牛胎児血清、２５ｍＭのＨＥＰＥＳ及び抗生物質（ペニシリン、ストレプトマイシン）をシリンジにて通液させた。
培養皿底部及び壁前面の線維化コラーゲンコーティングを行った。コーティングの方法は、クリーンベンチ内で、０．１％コラーゲン（Ｉ）をプラスチック培養皿に満杯に注ぎ、抜き取った。ＰＢＳをプラスチック培養皿に満杯に注ぎ、３７℃の炭酸ガスインキュベータ内に1時間置いた後、ＰＢＳを取り除いた。クリーンベンチ内で、プラスチック培養皿の蓋を開けて、培養皿内部を乾燥させた。
０．６ｍＬの５倍濃度のＤＭＥＭ、０．３ｍＬの牛胎児血清、０．９ｍＬの滅菌水及び１．２ｍＬの０．５％ａｔｅｌｏｃｏｌｌａｇｅｎ（ＩＰＣ−５０  ＫＯＫＥＮ）を氷冷下にて混合しゾルを作製した。合計３ｍＬのゾルを事前に遠心して沈殿させた皮膚線維芽細胞（６×１０5ｃｅｌｌｓ）に加えて細胞が均一になるまで懸濁し、細胞懸濁ゾル（細胞密度２×１０5ｃｅｌｌｓ／ｍＬ）３ｍＬを培養装置の３５ｍｍ培養皿に注いだ。３７℃の炭酸ガスインキュベータ内にて２時間静置することによりゲル化させた。
ゲルよりも上部の培養皿壁面に、底面の場合と同様に穴を開け、６０ｃｍ長のフッ素樹脂（ＰＦＡ）チューブを孔に差し込み、チューブの端をパラフィルムで固定した。チューブの他端を５ｃｍ長のシリコンチューブ、ルアーフィッティング、シリンジの順に繋いだ。培養装置の培養皿の底面に接続してあるチューブの先に繋いだシリンジを送液ポンプ（アイシス社、ＣＸＦ１０２０  ヒュージョン２００）の架台に装着し、０．７μＬ／分の速度で送液した。同時に培養皿の壁面に接続してあるチューブの先に繋いだシリンジを別の送液ポンプの架台に装着し、送液よりも遅い速度で支持体上面の培養液を回収した。この方法で６日間培養した。
【００３１】
製造例２  培養液灌流方式３次元培養皮膚２の作製
製造例１において、３０日間培養したものを培養液灌流方式３次元培養皮膚２とした。
【００３２】
比較例１  従来の３次元培養皮膚１
製造例１において、１０％牛胎児血清を含むＤＭＥＭを通液せず、培養皿内の培養液を１日１回交換したものを従来の３次元培養皮膚１とした。
【００３３】
比較例２  従来の３次元培養皮膚２
製造例２において、１０％牛胎児血清を含むＤＭＥＭを通液せず、培養皿内の培養液を１日１回交換したものを従来の３次元培養皮膚２とした。
【実施例２】
【００３４】
実験例１  細胞突起数の測定
製造例１の培養液灌流方式３次元培養皮膚１内の皮膚線維芽細胞と比較例１の従来の３次元培養皮膚１内の皮膚線維芽細胞をゲルごと中性ホルマリン固定し、常法に従いパラフィン切片を作製後、ＨＥ染色した。その後、顕微鏡下で細胞1個当たりの細胞突起数を測定した。
【００３５】
実験結果を表１に示した。培養液灌流方式３次元培養皮膚１内の皮膚線維芽細胞では、従来の培養液を灌流しない３次元培養皮膚１内の皮膚線維芽細胞に比べ、より多くの細胞突起が認められた。生体内組織において、線維芽細胞は多数の突起を介しコラーゲン線維等のマトリックス成分と結合し、相互作用を及ぼしあっている。したがって、今回の結果は、培養液灌流方式３次元培養皮膚１内の皮膚線維芽細胞が生体内組織における細胞により近い状態にあることを示す。
【００３６】
【表１】
2014113118.tif 000003
【００３７】
実験例２  生細胞率の測定
製造例２の培養液灌流方式３次元培養皮膚２内の皮膚線維芽細胞と比較例２の従来の３次元培養皮膚２内の皮膚線維芽細胞をゲルごと中性ホルマリン固定し、常法に従いパラフィン切片を作製後、ＨＥ染色した。その後、顕微鏡下で生細胞と死細胞をカウントし、生細胞率を求めた。
【００３８】
実験結果を表２に示した。培養液灌流方式３次元培養皮膚２内の皮膚線維芽細胞の生細胞率は、従来の培養液を灌流しない３次元培養皮膚２内のそれに比べ、高値を示した。生体内組織において、線維芽細胞は長期間生存する。したがって、今回の結果は、培養液灌流方式３次元培養皮膚２が生体内組織により近い状態にあることを示す。
【００３９】
【表２】
2014113118.tif 000004
【００４０】
実験例３  コラーゲン及びヒアルロン酸生成能の測定
皮膚線維芽細胞におけるコラーゲン及びヒアルロン酸生成能を１型コラーゲン、３型コラーゲン及びヒアルロン酸合成酵素ＨＡＳ−２のｍＲＮＡ発現量を指標として測定した。すなわち、製造例１の培養液灌流方式３次元培養皮膚１及び比較例１の従来の３次元培養皮膚１のコラーゲンゲルをコラゲナーゼにより分解し、残った細胞から総ＲＮＡの抽出を行った。総ＲＮＡの抽出には、ＲＮＡｉｓｏ  Ｐｌｕｓ（タカラバイオ）及びＲＮｅａｓｙ  Ｍｉｎi  Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ）を用いた。抽出した総ＲＮＡを基にＲＴ−ＰＣＲ法により１型コラーゲン、３型コラーゲン及びＨＡＳ−２  ｍＲＮＡ発現量の測定を行った。ＲＴ−ＰＣＲ法にはＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔ  ＩＩＩ  Ｐｌａｔｉｎｕｍ  Ｔｗｏ−Ｓｔｅｐ  ｑＲＴ−ＰＣＲ  Ｋｉｔ  ｗｉｔｈ  ＳＹＢＲ  Ｇｒｅｅｎ（インビトロジェン）を用いた。ＰＣＲ反応は、９５℃にて２分間初期変性を行った後、９５℃：１５秒、６０℃：３１秒を１サイクルとして４０サイクル行った。内部標準としては、ＧＡＰＤＨを用いた。１型コラーゲン、３型コラーゲン及びＨＡＳ−２  ｍＲＮＡ発現量は、ＧＡＰＤＨ  ｍＲＮＡ発現量に対する割合として求めた。なお、測定に使用したプライマーは以下の通りである。
【００４１】
１型コラーゲン用のプライマーセット
ＡＧＧＡＣＡＡＧＡＧＧＣＡＴＧＴＣＴＧＧＴＴ（配列番号１）
ＴＴＧＣＡＧＴＧＧＴＡＧＧＴＧＡＴＧＴＴＣＴＧ（配列番号２）
【００４２】
３型コラーゲン用のプライマーセット
ＴＣＣＴＴＧＣＴＧＴＧＧＴＧＧＴＧＴＴＧ（配列番号３）
ＧＧＣＡＡＡＡＣＣＧＣＣＡＧＣＴＴ（配列番号４）
【００４３】
ＨＡＳ−２用のプライマーセット
ＴＧＧＡＴＧＡＣＣＴＡＣＧＡＡＧＣＧＡＴＴＡ（配列番号５）
ＧＣＴＧＧＡＴＴＡＣＴＧＴＧＧＣＡＡＴＧＡＧ（配列番号６）
【００４４】
ＧＡＰＤＨ用のプライマーセット
ＴＧＡＡＣＧＧＧＡＡＧＣＴＣＡＣＴＧＧ（配列番号７）
ＴＣＣＡＣＣＡＣＣＣＴＧＴＴＧＣＴＧＴＡ（配列番号８）
【００４５】
実験結果を表３に示した。培養液灌流方式３次元培養皮膚１内の皮膚線維芽細胞では、従来の培養液を灌流しない３次元培養皮膚１内の皮膚線維芽細胞に比べ、１型コラーゲン、３型コラーゲン及びＨＡＳ−２  ｍＲＮＡ発現量の増加がみられた。生体内組織において、線維芽細胞はコラーゲンやヒアルロン酸合成酵素を生成し、細胞外マトリックスを構築している。したがって、今回の結果は、培養液灌流方式３次元培養皮膚１内の皮膚線維芽細胞が生体内組織における細胞により近い状態にあることを示す。
【００４６】
【表３】
2014113118.tif 000005
【産業上の利用可能性】
【００４７】
本発明の細胞を含む支持体層に培養液を灌流させることを特徴とする３次元培養組織は、組織形態が生体に近いインビトロ培養組織である。この３次元培養組織は、化粧品素材や医薬品等の生体組織に及ぼす影響をインビトロにてより正確に評価するために利用できる。
【図１】
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【配列表】
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