(57)【要約】      （修正有）【課題】大腸内でＨ２を発生させ、有害な酸化物質を除去し、生活習慣病の予防に重要な働きを示すと期待される成分を含む食品等を提供する。【解決手段】フラクタン（イヌリンまたはフラクトオリゴ糖）を有効成分として含む大腸内水素ガス発生剤、それを含む飲食品または飼料、および医薬組成物とする。従来知られていたペクチンや難消化デンプンよりも、より多くの大腸Ｈ２を発生させることができる。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
フラクタンを有効成分として含む、大腸内水素ガス発生剤。
【請求項２】
フラクタンが、イヌリンまたはフラクトオリゴ糖である、請求項１記載の大腸内水素ガス発生剤。
【請求項３】
イヌリンが、ＤＰ分布２〜５５のイヌリンである、請求項２記載の大腸内水素ガス発生剤。
【請求項４】
イヌリンが、平均ＤＰ８〜２８のイヌリンである、請求項２または３記載の大腸内水素ガス発生剤。
【請求項５】
イヌリンが、チコリ由来である、請求項１〜４のいずれか一項記載の大腸内水素ガス発生剤。
【請求項６】
飲食品添加剤または飼料添加剤である、請求項１〜５のいずれか一項記載の大腸内水素ガス発生剤。
【請求項７】
請求項１〜６のいずれか一項記載の大腸内水素ガス発生剤を、０．１〜１００Ｗ／Ｗ％含む、飲食品または飼料。
【請求項８】
脂肪と共にまたは別個に摂取される、請求項７記載の飲食品または飼料。
【請求項９】
脂肪が、飲食品または飼料に対し１〜８０Ｗ／Ｗ％である、請求項８記載の飲食品または飼料。
【請求項１０】
脂肪が、飲食品または試料に対しエネルギー比で５０％以上である、請求項８または９記載の飲食品または飼料。
【請求項１１】
さらに、甘味料、防腐剤、着色料、酸化防止剤および香料からなる群から選択される一つまたは複数の成分を含む、請求項７〜１０のいずれか一項記載の、飲食品または飼料。
【請求項１２】
請求項１〜５のいずれか一項記載の大腸内水素ガス発生剤を含む、医薬組成物。
【請求項１３】
さらに、薬学的に許容しうる賦形剤、医薬活性物質、治療活性物質および薬剤からなる群から選択される一つまたは複数の成分を含む、請求項１２記載の医薬組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、フラクタンを有効成分として含む大腸内水素ガス発生剤、それを含む飲食品または飼料、および医薬組成物に関する。
【背景技術】
【０００２】
近年、水素（Ｈ２）ガスは生体内で生ずる有害な酸化物質を除去することが見出され、酸化反応を起因とする生活習慣病の予防に重要な働きを示すと期待されている。例えば、日本医科大学大学院太田成男らは、２００７年5月7日英国科学誌Nature Medicineに投稿した（非特許文献１）。水素ガスは、酸化反応に起因とする生活習慣病予防に効果があることが知られている。前記太田成男らは、Biochemical and Biophysical Research Communicationsにおいて、Ｈ２ガスの吸引によって酸化ストレスが軽減し、肝臓の虚血再灌流障害が軽減されることも示した（非特許文献２）。
【０００３】
本願発明者である名寄市立大学西村直道らは、食物繊維のペクチンや難消化性デンプンを用い、大腸発酵によりＨ２を発生させたことを、英国のBritish Journal of Nutritionに発表した（非特許文献３）。しかしながら、例えばペクチンを用いて大腸で発生されるＨ２の門脈水素濃度は、高くとも５μmol/L程度であった。
【０００４】
「ルミナコイド」とは、食物繊維、オリゴ糖、糖アルコール、難消化性デキストリンなどを含む広い概念である。水素を発生しないルミナコイドは多くあり、どのようなルミナコイドでもＨ２を発生するというわけではない。例えばセルロースやリン酸架橋デンプンはＨ２を発生しないと考えられる。すなわち、ルミナコイドの生体内での挙動は未だ解明されておらず、ルミナコイドの性質はそれぞれ大いに異なるので、その挙動を予測することはできない。
【０００５】
一般的に大腸発酵により発生したＨ２は、ヒトの場合その約１４％が大腸から吸収され、門脈を経由して肝臓に至る。吸収されたＨ２は、肝臓からさらに心臓、肺に至り、肺からは呼気に混じり排出される。大腸から吸収されなかったＨ２はオナラとともに排出される。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】特表２００３−５２２８２２および左記の分割出願である特開２０１０−１２０９４５；「発明の名称：栄養性の改良されたイヌリン製品」；易発酵性イヌリン成分と難発酵性イヌリンの特別の混合物からなる新規イヌリン含有製品を開示する。
【非特許文献】
【０００７】
【非特許文献１】Nature Medicine(2007),13,688-689  日本医科大学大学院太田成男ら、Hydrogen acts as a therapeutic antioxidant by selectively reducing cytotoxic oxygen radicals. 水素分子（Ｈ２）が抗酸化剤として疾患の予防と治療に応用できることを科学的に証明した最初の論文。水素分子は活性酸素種の中で最も反応性の高いヒドロキシラジカルを選択的に還元し、細胞を酸化ストレスから防御することを示し、さらにラットにＨ２ガスを吸引させることで脳の虚血再還流障害が抑制できることを示した。
【非特許文献２】Biochemical and Biophysical Research Communications (2007),361,670-674日本医科大学大学院太田成男ら、Inhalation of hydrogen gas suppresses hepatic injury caused by ischemia/reperfusion through reducing oxidative stress.  Ｈ２ガスの吸入によって酸化ストレスが軽減し、肝臓の虚血再灌流障害が軽減されることを示した。
【非特許文献３】British Journal of Nutrition (2012),107,485-492  西村直道（名寄市立大学）ら、Pectin and high cornstarch increase caecal hydrogen production and relieve hepatic ischemia-reperfusion injury in rats．ルミナコイドとして難消化性吸収性糖質であるペクチン、難消化性デンプン（ＲＳ）を用い、大腸で発生したＨ２を測定した。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
本発明は、大腸内でＨ２を発生させることを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
上記課題を解決するため、本発明者らは鋭意研究の結果、フラクタン、好ましくはイヌリンまたはフラクトオリゴ糖を有効成分として含む大腸内水素ガス発生剤を摂取することにより、大腸発酵による水素（Ｈ２）ガス生成が亢進されることを見出した。
【００１０】
すなわち、本発明は以下に関する。
【００１１】
（１）  フラクタンを有効成分として含む、大腸内水素ガス発生剤。
（２）  フラクタンが、イヌリンまたはフラクトオリゴ糖である、（１）記載の大腸内水素ガス発生剤。
（３）  イヌリンが、ＤＰ分布２〜５５のイヌリンである、（２）記載の大腸内水素ガス発生剤。
（４）  イヌリンが、平均ＤＰ８〜２８のイヌリンである、（２）または（３）記載の大腸内水素ガス発生剤。
（５）  イヌリンが、チコリ由来である、（１）〜（４）のいずれか記載の大腸内水素ガス発生剤。
（６）  飲食品添加剤または飼料添加剤である、（１）〜（５）のいずれか記載の大腸内水素ガス発生剤。
（７）  （１）〜（６）のいずれか記載の大腸内水素ガス発生剤を、０．１〜１００Ｗ／Ｗ％含む、飲食品または飼料。
（８）  脂肪と共にまたは別個に摂取される、（７）記載の飲食品または飼料。
（９）  脂肪が、飲食品または飼料に対し１〜８０Ｗ／Ｗ％である、（８）記載の飲食品または飼料。
（１０）  脂肪が、飲食品または試料に対しエネルギー比で５０％以上である、（８）または（９）記載の飲食品または飼料。
（１１）  さらに、甘味料、防腐剤、着色料、酸化防止剤および香料からなる群から選択される一つまたは複数の成分を含む、（７）〜（１０）のいずれか記載の、飲食品または飼料。
（１２）  （１）〜（５）のいずれか記載の大腸内水素ガス発生剤を含む、医薬組成物。
（１３）  さらに、薬学的に許容しうる賦形剤、医薬活性物質、治療活性物質および薬剤からなる群から選択される一つまたは複数の成分を含む、（１２）記載の医薬組成物。
【発明の効果】
【００１２】
従来知られていたペクチンや難消化デンプンによる大腸内でのＨ２発生よりも、フラクタン、好ましくはイヌリンまたはフラクトオリゴ糖は、より多くの大腸Ｈ２を発生させることができる。イヌリンの重合度（ＤＰ）分布の違いにより、大腸で発生するＨ２量が異なる。フラクタン、好ましくはイヌリンまたはフラクトオリゴ糖を用いて大腸で発生したＨ２は、門脈におけるその濃度を高くし、効率的に生体内での酸化ストレスの軽減することができる。また、高脂肪食下では特にＨ２発生量が多く、門脈でのＨ２濃度も高い。本発明によれば、非常に多量に、そして安定的かつ持続的に大腸内でＨ２を発生させることができ、しかも発生したＨ２は効率的に門脈を介して肝臓に到達する。フラクタン、好ましくはイヌリンまたはフラクトオリゴ糖を含む大腸内Ｈ２発生剤は、酸化ストレスの軽減に効果がある。
【図面の簡単な説明】
【００１３】
【図１】図１は、種々のルミナコイドの全Ｈ２排出量の比較を示す図である。
【図２】図２は、種々のルミナコイドの門脈Ｈ２濃度の比較を示す図である。
【図３】図３は、実施例２で用いたイヌリンのＤＰ分布を示す図である。
【図４】図４は、ＤＰ分布の異なるイヌリン摂取時の門脈Ｈ２濃度を示す図である。
【図５】図５は、脂肪下でのイヌリンとＦＯＳの全Ｈ２排出量の比較を示す図である。
【図６】図６は、脂肪下でのイヌリンとＦＯＳの門脈Ｈ２濃度の比較を示す図である。
【図７】図７は、イヌリン摂取時のＨ２生成を示す図である。
【図８】図８は、高脂肪誘導肝障害に及ぼすイヌリンの影響を示す図である。
【図９】図９は、高脂肪食負荷ラットおけるイヌリンおよびペクチンの大腸内Ｈ２生成に及ぼす影響を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００１４】
本発明で用いられるフラクタンは、フラクトース分子の重合体を意味する。フラクタンには、３つのタイプがある。１つ目は、イヌリン−β（２→１）グリコシド結合の直鎖状フラクタン、２つ目は、レバン−β（２→６）グリコシド結合の直鎖状フラクタン、３つ目は、グラミナン−β（２→１）およびβ（２→６）グリコシド結合の分岐状フラクタンである。本明細書では、イヌリンをイヌリン型フラクタン（ＩＦ）ともいう。本発明で用いられるフラクタンは、好ましくはイヌリンまたはフラクトオリゴ糖である。
【００１５】
本明細書における「イヌリン」は、フラクタンの１つである。イヌリンは、グルコースにフラクトースの数（ｎ）が２〜６０程度結合したもので、フラクトオリゴ糖を含む。本発明で用いられるイヌリンは、重合度（ＤＰ）分布２〜５５、より好ましくはＤＰ分布２〜５４、さらに好ましくは２〜４０のイヌリンである。また、本発明で用いられるイヌリンは、平均重合度（ＤＰ）８〜２８、より好ましくは平均ＤＰ１０〜２４、さらに好ましくは平均ＤＰ１０〜１６である。イヌリンは、例えばチコリまたは菊芋等を原料として得ることができ、またはスクロースを原料として酵素合成により生成することもできる。チコリ等の植物から抽出されるイヌリンには、分子量が小さいものから大きいものまで分布している。一方、酵素合成に生成されるイヌリンは、比較的分子量の小さいものから中程度のものが主である。菊芋中のイヌリンは、分子量が高いものが多いが、直鎖状ではなく分岐状のものが多い。日本では、チコリの葉の部分がサラダ等に利用されており、これは極少ない地域で栽培されているに留まっている。チコリから抽出されるイヌリンはチコリの根部に含有されるもので、北海道で栽培されている甜菜根と形状が非常に似ている。日本でチコリからイヌリンを多量生産する場合は、北海道の広い台地が適している。現在は、ヨーロッパ等の外国から多く輸入されている。
【００１６】
本明細書における「フラクトオリゴ糖」は、グルコースに２〜４個のフルクトースが結合した難消化性オリゴ糖である。
【００１７】
本発明の大腸内水素ガス発生剤は、飲食品添加剤または飼料添加剤として飲食品または飼料に使用することもできるし、活性物質として医薬組成物に使用することもできる。飲食品添加剤または飼料添加剤、または活性物質である大腸内水素ガス発生剤は、粉末、顆粒、錠剤、ペーストまたは液体のいずれの形態で存在してもよい。本発明の大腸内水素ガス発生剤を、飲食品または飼料、または医薬組成物に含ませる場合は、０．１〜１００Ｗ／Ｗ％、好ましくは５〜１００W／W％の割合であればよい。
【００１８】
イヌリンを使用すると、品質物理特性として、乳製品のボディおよび舌触りの改良、泡の安定性、パン、パスター等の質感の改良、伸展性および保湿性、乳化物の安定性、熱抵抗性、離水防止、肉製品の脂肪の代用、質感安定性、食物繊維の付与等の多くの付帯効果が得られる。
【００１９】
本発明が適用される飲食品としては、ハム、ソーセージ、フランクフルト等の肉製品、チーズ、バター、アイスクリーム、ヨーグルト等の乳製品、パン、ピザ、麺類、クッキー、油脂を含むドレッシング、マヨネーズ等の加工食品、サプリメント、スムージー、ドリンクヨーグルト等の飲料、乳幼児用の食品または介護用食品があげられるが、これらに限定されるものではない。本発明が適用される飼料としては、家畜用または愛玩動物用飼料、大型動物用または小動物用飼料があげられるが、これらに限定されるものではない。本発明が適用される医薬組成物は、粉末剤、顆粒剤、錠剤、ペーストまたは液剤のいずれの形態でもよく、経口投与または直腸投与される。またその際、さらに甘味料、防腐剤、着色料、酸化防止剤および香料からなる群から選択される一つまたは複数の成分を加えてもよい。
【００２０】
本発明の大腸内水素ガス発生剤は、脂肪と共にまたは別個に、同時にまたは逐次的に、飲食品または飼料、または医薬組成物に含まれてまたは含まれずに摂取するとよい。大腸内水素ガス発生剤と共にまたは別個に摂取される脂肪は、好ましくは高脂肪成分、例えばラード、生クリーム、バターであり、飲食品または飼料、または医薬組成物に対し１〜８０Ｗ／Ｗ％、好ましくは２〜５０Ｗ／Ｗ％、最も好ましくは３〜３３Ｗ／Ｗ％であり、エネルギー比で５０％以上の脂肪であることが好ましい。
【００２１】
以下、本発明の実施例について述べるが、本発明はこれらの実施例のみに限定されるものではない。
【実施例１】
【００２２】
種々のルミナコイド（ＨＡＳ、ＦＯＳ、ＩＤ、Inulin、ＨＤＰＩ、Pectin）のＨ２発生効果の比較
方法：
ＳＤ系雄ラット（８週齢）を下記の７群（８匹／群）に分け、予備飼育を１０日間行なった後、試験飼育を２８日間行なった。
第１群：    標準脂肪コントロール飼料（Ｃ）
第２群：    Ｃ＋１０％ＨＡＳを含む飼料（ＨＡＳ）
第３群：    Ｃ＋５．３７％ＦＯＳを含む飼料（ＦＯＳ）
第４群：    Ｃ＋５．７％ＩＤを含む飼料（ＩＤ）
第５群：    Inulin : Ｃ＋５．２％イヌリンを含む飼料（Inulin）
第６群：    ＨＤＰＩ:Ｃ＋５．２％ＨＤＰＩを含む飼料（ＨＤＰＩ）
第７群：    Ｃ＋５％ペクチンを含む飼料（Pectin）
略称については、以下に記載する通りである。
ＨＡＳ：    高アミロースデンプン（high amylose cornstarch）
ＦＯＳ：    フラクトオリゴ糖 （fructooligosaccharide）
ＩＤ：      難消化性デキストリン（indigestible dextrin）
Inulin：    イヌリン（ＤＰ分布２〜５５、平均ＤＰ１５）
ＨＤＰＩ：  高重合度のイヌリン（high degree of polymerization inulin、
平均ＤＰ２４）
Pectin：    ペクチン（太陽化学株式会社製；Z4A-618）
用いた試験飼料の組成は、下記表１の通りである。
【００２３】
【表１】
2014124100.tif 000002
【００２４】
なお、上記飼料中ＨＡＳ添加量を１０％としたのは、実際には大腸に流れ込むのはその半分程度であることを考慮したことによる。
【００２５】
各群のラットの全Ｈ２排出量（μmol/5min）、門脈Ｈ２濃度(μmol/L)を測定した。それぞれの測定方法は、下記の通りである。
全Ｈ２排出量＜（呼気＋放屁）Ｈ２排出量＞：
一定容量の密閉容器にラットを置き、５分後に容器から一定量のガスを採取し、ガスクロマトグラフィー（バイオガスアナライザー、ＢＡＳ−1000、有限会社ミトレーベン）を用いて、Ｈ２量を測定した。密閉容器中のスペース容量を考慮し、５分間あたりに呼気および放屁として排出されるＨ２量を求めた。
門脈Ｈ２濃度：
一定容量のヘパリン処理したセプタム付バイアル瓶に、採取した門脈血をただちにセプタムを通じて注入した。十分混合した後、ヘッドスペース部分のガスを一定量採取し、ガスクロマトグラフィー（バイオガスアナライザー、ＢＡＳ−1000、有限会社ミトレーベン）でＨ２量を測定した。ヘッドスペース容量と採取血液量を考慮し、門脈Ｈ２濃度を算出した。
【００２６】
結果：
結果を図１および２に示す。結果の統計処理は、ノンパラメトリック法であるSteel-Dwass testにより行った。
【００２７】
ＦＯＳ、Inulin、ＨＤＰＩの全Ｈ２排出量が高く、また門脈Ｈ２濃度も高かった。グルコースを構成糖とするより、フルクトースを構成糖とするオリゴ糖や多糖の投与により、Ｈ２生成が高くなることがわかった。
ただし、これは標準脂肪食による結果である。なお、ハイアミローススターチも水素生成亢進があるが、スターチの場合、生で摂取するとヒトでは浸透圧性の下痢を起こす可能性があり、加熱調理をするとスターチの構造が変化するという不都合が生じる。
【実施例２】
【００２８】
ＤＰ分布の異なるイヌリンを与えた場合の大腸におけるＨ２発生効果の比較
方法：
ＳＤ系雄ラット（８週齢）を下記の４群（６匹／群）に分け、予備飼育を３〜４日間行なった後、試験飼育を７日間行なった。
第１群：    コントロール飼料（ＮＦ−Ｃ）
第２群：    ＤＰ分布２〜４０、平均ＤＰ１０のイヌリン（オラフティＧＲ、オラフ
ティ社）を含む飼料（ＩＦ−Ｌ）
第３群：    ＤＰ分布２〜５５、平均ＤＰ１５のイヌリンを含む飼料（ＩＦ−ＬＨ                ）
第４群：    ＤＰ分布２〜５４、平均ＤＰ２３のイヌリン（オラフティＨＲ、オラフ
ティ社）を含む飼料（ＩＦ−Ｈ）
用いたイヌリンのＤＰ分布を、図３に表す。
用いた試験飼料の組成は、下記表２の通りである。
【００２９】
【表２】
2014124100.tif 000003
【００３０】
試験最終日に全Ｈ２排出量を測定後、門脈血及び盲腸を採取し、門脈血中のＨ２濃度を測定した。全Ｈ２排出量および門脈血中Ｈ２濃度の測定方法は、実施例１の通りである。
【００３１】
結果：
イヌリンを含む飼料を与えた第２群、第３群および第４群の全てにおいて、コントロールである第１群と比べ、摂取量は有意に低下したが、体重増加量および飼料効率は４群で有意差はなかった。イヌリンを含む飼料を与えた第２群、第３群および第４群の全てにおいて、コントロールである第１群と比べ、全Ｈ２排出量および門脈Ｈ２濃度も増加した。第２群の全Ｈ２排出量は、第４群の２．１倍に達した。結果を、図４に示す。低いＤＰ分布のイヌリンは、Ｈ２生成を促進すると考えられる。
【実施例３】
【００３２】
高脂肪（２２W/W％）下でのイヌリンとＦＯＳ（フラクトオリゴ糖）の比較
方法：
ＳＤ系雄ラット（８週齢）を下記の４群（８匹／群）に分け、予備飼育を１０日間行った後、試験飼育を２８日間行った。
第１群：    標準脂肪コントロール飼料（ＮＦＣ）
第２群：    高脂肪コントロール飼料（ＨＦＣ）
第３群：    ＨＦＣ＋５％イヌリン飼料（ＨＦＩ）
第４群：    ＨＦＣ＋５％ＦＯＳ飼料（ＨＦＦ）
用いた試験試料の組成は、下記表３の通りである。
用いたイヌリンのＤＰ分布は２〜５４、平均ＤＰは１５であった。
【００３３】
【表３】
2014124100.tif 000004
【００３４】
全Ｈ２排出量および門脈血中Ｈ２濃度の測定方法は、実施例１の通りである。
【００３５】
結果：
結果を、図５および６に示す。尚、結果については統計処理を行った。Steel-Dwass test（高脂肪食群間）、Student's t-test（ＮＦＣ対ＨＦＣ）を用いて統計処理を行った。低重合度のフラクトオリゴ糖を投与したラットのほうが、Ｈ２発生量が多い傾向であった。また、この実施例における脂肪は、それまでに行なった実施例での脂肪含量と異なり、エネルギー比で５０％であり、このような条件では、フラクトースを構成糖とするオリゴ糖や多糖はＨ２生成を亢進することがわかった。
【実施例４】
【００３６】
高脂肪食誘導酸化ストレスに及ぼすイヌリン摂取の影響
方法：
ＳＤ系雄ラット（８週齢）を下記の４群（６匹／群）に分け、予備飼育を３〜４日間行なった後、試験飼育を７日間行なった。
第１群：    標準脂肪コントロール飼料（ＮＦＣ）
第２群：    ＮＨＣ＋イヌリン飼料（ＮＦ−ＩＦ）
第３群：    高脂肪コントロール飼料（ＨＦＣ）
第４群：    ＨＦＣ＋イヌリン飼料（ＨＦ−ＩＦ）
用いたイヌリンのＤＰ分布は２〜５５、平均ＤＰは１５であった。
用いた試験試料の組成は、下記表４の通りである。
【００３７】
【表４】
2014124100.tif 000005
【００３８】
試験最終日に、全Ｈ２排出量、門脈Ｈ２濃度、肝脂質、肝還元型グルタチオン（ＧＳＨ）および酸化型グルタチオン（ＧＳＳＧ）濃度、および血漿ＡＬＴ活性について分析を行った。結果については、二元分散分析、多重比較検定（Tukey-Kramer）による統計解析を行った。また、全Ｈ２排出量および門脈血中Ｈ２濃度の測定方法は、実施例１の通りである。
肝脂質：ホルヒ法により肝臓中の脂質を抽出した後、重量法で測定した。
肝ＧＳＨおよびＧＳＳＧ濃度：ＧＳＨとＧＳＳＧはAndersonの方法によって測定した。肝組織 １gを５％スルホサリチル酸９ｍｌでホモジナイズし、遠心分離した後、得られた上清を５，５’−ジチオビス（２−ニトロ安息香酸）−グルタチオンレダクターゼリサイクリングアッセイ（5,5'-dithiobis(2-nitrobenzoic acid)-glutathione reductase recycling assay）によって総グルタチオン量とＧＳＳＧ量を測定した。ＧＳＨ量、は総グルタチオン量からＧＳＳＧ量を差し引いて求めた（Anderson ME (1985) Determination of glutathione and glutathione disulfide in biological samples. Methods Enzymol 113, 548-555.）。
血漿ＡＬＴ活性：門脈血から遠心分離によって血漿を得た。この血漿をトランスアミナーゼCIIテストワコー（和光純薬工業株式会社）によって測定した。
【００３９】
結果：
４群の体重増加量および摂取量に有意差はなかった。全Ｈ２排出量は、他の３群と比べ、第４群（ＨＦ−ＩＦ）で有意に増加し、門脈Ｈ２濃度はイヌリン摂取により有意に増加した。肝脂質は、高脂肪飼料を与えた群が標準脂肪飼料を与えた群と比べ、高い傾向であった。血漿ＡＬＴ活性は、イヌリン摂取により低く、高脂肪摂取により高くなる傾向を示した。肝ＧＳＨおよびＧＳＳＧ濃度、ＧＳＨ／ＧＳＳＧは、群間で有意差はなかった。結果を、図７および８に示す。
以上より、イヌリン摂取によりＨ２生成量が増大し、肝障害を抑制する効果が示唆された。
【実施例５】
【００４０】
高脂肪食時の大腸内Ｈ２生成促進におけるイヌリンとペクチンの違い
方法：
ＳＤ系雄ラット（７週齢）を下記の３群（８匹／群）に分け、標準脂肪コントロール試料を与えて予備飼育を４〜５日間行った後、試験試料を与えて試験飼育を１４日間行った。
第１群：    高脂肪コントロール飼料（ＨＦＣ）
第２群：    ＨＦＣ＋イヌリン飼料（ＨＦＩ）
第３群：    ＨＦＣ＋ペクチン飼料（ＨＦＰ）
用いた試験試料の組成は、下記表５の通りである。
用いたイヌリンのＤＰ分布は２〜５４、平均ＤＰは１５であった。
【００４１】
【表５】
2014124100.tif 000006
【００４２】
標準脂肪および高脂肪食下におけるイヌリンとペクチンが大腸Ｈ２生成に与える影響を比較した。全Ｈ２排出量および門脈血中Ｈ２濃度の測定方法は、実施例１の通りである。なお、ペクチンは３種類の多糖類の混合物で、主成分のペクチン酸にアラビノース単位が分岐鎖状になったアラバンとガラクトースの重合体であるガラクタンが混在している。ガラクツロン酸がグリコシド結合で２００以上重合したものをペクチン酸といい、ペクチン酸の一部がメチルエステル化したものがペクチンである。
【００４３】
結果：
結果を、図９に示す。全排出Ｈ２量は、高脂肪下ではイヌリンがペクチンに比べて多く、また門脈Ｈ２濃度は、イヌリンがペクチンに比べて高かった。
【実施例６】
【００４４】
イヌリンを使用したアイスクリーム
生乳１５００ｇ、生クリーム１５０ｇ、スキムミルク５０ｇ、小豆餡２００ｇ、グラニュー糖２７０ｇ、卵黄８０ｇ、イヌリン粉末（水分１５％、オラフテイー社）８ｇの原材料を用いた。生乳を３０℃に加熱後、グラニュー糖およびイヌリン粉末を添加し、７５℃に加熱溶解後、生クリームを加え、７５℃で１５秒間殺菌し、１５℃以下に急冷し、エージングを４℃で行い、撹拌・凍結したあと、硬化させて、アイスクリームを製造した。このアイスクリームは、大腸内発酵Ｈ２ガス亢進効果のある製品であると考えられる。
【実施例７】
【００４５】
イヌリンを使用したフランクフルト
豚の肩ロース肉８００ｇ、豚背油１３０ｇ、イヌリン７０ｇ、粗塩小さじ３、牛乳大匙１、コーンスターチ大匙２、固形スープの素２個、玉ねぎ１/２個、卵白１個、ホワイトペパー、ナツメグ、オールスパイス、シナモン、各少々をフードプロセッサーに入れて良く混ぜ合わせてペースト状にした。ソーセージ用の押し出し器を用意し、押し出し器の口金にソーセージ用ケーシングを温かいお湯に戻し、押し出し器の根元まで巻き込み、空気の入らないように端を結んだ。押し出し器に上記ペーストを空気の入らないように入れる。ペーストが詰まったらもう一端を結び、適当な長さになるように４〜５回同じ方向にひねっておいた。全部出来上がったらスモーカーに吊るして６０℃で３０〜４０分燻製し、後で鍋に入れて７５℃で３０分ボイルした。冷水で冷まして、冷蔵庫に保管した。
【実施例８】
【００４６】
高脂肪食事の際のイヌリン入り紙製スティックの内容物の摂取
イヌリン粉末（平均ＤＰ１４．７〜１５．２、水分５．１〜６．５％、３ｇ）を紙製スティックに充填した製品を作成し、高脂肪食の食事の際、被験者に３スティック摂取させた。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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