(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
転移能を有する移植した原発性腫瘍の転移を阻害するための候補となるプロトコルまたは薬物を評価するための方法であって、ここで該原発性腫瘍は、肺、肝臓、膵臓、胃、乳房、卵巣、前立腺、骨髄、脳および悪性腫瘍に感受性の他の組織を含む部位に移植されており、該方法は、以下：
該原発性腫瘍がもとの移植部位から遠位の部位に転移した場合に、励起により緑色光を維持された高レベルで安定に放出する緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）を発現するように改変されている該原発性腫瘍を含む、実験のためのヒト以外の動物に該プロトコルまたは薬物を投与する工程であって、該動物が、該腫瘍に対して免疫無防備であるかまたは同系である、工程；
該動物を、Ｄ425／60帯域のフィルタを用いて励起することができ、かつＧＦＰによって吸収される光で照射して、GC475長径フィルタを通過できる該ＧＦＰからの緑色の蛍光を生じさせる工程；
該処置された動物における種々の位置にて、該転移による該蛍光の存在、非存在または強度を観察することによって該転移の進行をモニターする工程；
緑色蛍光タンパク質を発現する細胞を含む同様な腫瘍を含むヒト以外のコントロール動物において該処置された動物における種々の位置にて、転移による蛍光の存在、非存在または強度を観察することによって該転移の進行を同様にモニターする工程；
該コントロール動物における該転移の進行と、該処置された動物における該転移の進行とを比較する工程；
該観察はインタクトで生きているヒト以外の動物全体においてリアルタイムで行われ、該動物の画像はコンピュターによって捕捉されるか、またはビデオ出力を通じて連続的に捕捉される工程；
を包含しそれによって、該コントロール動物と比較したときの、該処置された動物における該転移の進行の減少が、転移の阻害において有効であるとして該プロトコルまたは薬物を同定する、方法。
【請求項２】
該原発性腫瘍が、外科同所移植により移殖され、そして該原発性腫瘍の細胞が該ＧＦＰの発現系を含有する請求項１記載の方法。
【請求項３】
該動物がウサギ、ラットまたはマウスである、請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
転移能を有する移植した原発性腫瘍の転移の阻害のための候補となるプロトコルまたは薬物を評価するための方法であって、ここで該原発性腫瘍は、肺、肝臓、膵臓、胃、乳房、卵巣、前立腺、骨髄、脳および悪性腫瘍に感受性の他の組織を含む部位に移植されており、該方法が、以下：
原発性腫瘍を含有するように改変されている、実験のためのヒト以外の動物に該プロトコルまたは薬物を投与する工程であって、該腫瘍がもとの移植部位から遠位の部位に転移した場合に、該腫瘍の細胞は、励起により緑色光を維持された高レベルで安定に放出する緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）を発現し、かつ該動物が、該腫瘍に対して免疫無防備であるかまたは同系である該工程；
該動物を、Ｄ425／60帯域のフィルタを用いて励起することができ、かつＧＦＰによって吸収される光で照射して、GC475長径フィルタを通過できる該ＧＦＰから緑色の蛍光を生じさせる工程；
該処置された動物における種々の位置にて、転移による該蛍光の存在、非存在または強度を観察することによって該転移の進行をモニターする工程；
を包含し、それによって、該処置された動物における該転移の進行の減少が、転移の阻害において有効であるとして該プロトコルまたは薬物を同定し、かつ該観察はインタクトで生きているヒト以外の動物全体においてリアルタイムで行われ、かつ該動物の画像はコンピュターによって捕捉されるか、またはビデオ出力を通じて連続的に捕捉される、方法。
【請求項５】
該原発性腫瘍が、外科同所移植により移殖され、そして該原発性腫瘍の細胞が該ＧＦＰの発現系を含有する請求項４記載の方法。
【請求項６】
該動物がウサギ、ラットまたはマウスである、請求項４または５に記載の方法。
【請求項７】
転移能を有する移植した原発性腫瘍を含有するように改変されている、インタクトなヒト以外の実験のための動物における該原発性腫瘍の転移をモニターするための方法であって、ここで該腫瘍がもとの移植部位から遠位の部位に転移した場合に、該腫瘍の細胞は、励起により緑色光を維持された高レベルで安定に放出する緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）を発現し、かつ該動物が、該腫瘍に対して免疫無防備であるかまたは同系であり、該方法は、以下：
原発性腫瘍とは遠位の部位への転移の進行をモニターする工程；
該動物を、Ｄ425／60帯域のフィルタを用いて励起することができ、かつＧＦＰによって吸収される光で照射して、GC475長径フィルタを通過できる該ＧＦＰから緑色の蛍光を生じさせる工程；
該動物における該転移の進行は、該インタクトで生きている、動物全体における種々の位置にて、時間の関数として、転移による蛍光の存在、非存在または強度を観察することによってモニターされ、該観察はインタクトなヒト以外の動物全体においてリアルタイムで行われ、該動物の画像はコンピュターによって捕捉されるか、またはビデオ出力を通じて連続的に捕捉される工程；
を包含する、方法。
【請求項８】
該原発性腫瘍が、外科同所移植により移殖され、そして該原発性腫瘍の細胞が該ＧＦＰの発現系を含有する請求項７記載の方法。
【請求項９】
該動物がウサギ、ラットまたはマウスである、請求項７または８に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
（技術分野）
本発明は、腫瘍進行の研究に関する。具体的には、本発明は、脊椎動物系における腫瘍の転移を研究するためのモデル系、ならびに候補となる薬物を評価するためのモデルおよび方法に関する。
【０００２】
（背景技術）
腫瘍組織が転移する能力は、悪性疾患の生命を脅かす局面の主要な部分を構成することが長く認識されてきた。転移は、原発性腫瘍とは異なる部位での続発性腫瘍の増殖である。従って、原発性腫瘍の外科的除去にもかかわらず、この状態の進行を停止させることは可能ではないかもしれない。転移が生じる機構の理解は、続発性腫瘍の増殖が制御され得るプロトコルの開発に重要である。転移の機構を理解するために、多くの宿主細胞のバックグランドに対する少数の腫瘍細胞の同定を可能にし、その結果、続発性腫瘍塞栓および微小転移が、リアルタイムの経過にわたって観察され得る、モデルを提供することが必要である。
【０００３】
他の研究者らは、外部が蛍光標識された腫瘍細胞を使用して、インビトロでの腫瘍転移における管外遊出および初期の播種工程を実証した。Ｋｈｏｋｈａ，Ｒ．ら、Ｃａｎｃｅｒ  Ｍｅｔａｓｔａｓｉｓ  Ｒｅｖ（１９９５）１４：２７９〜３０１；Ｋｏｏｐ，Ｓ．ら、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ（１９９５）５５：２５２０〜２５２３。さらに、Ｍａｒｇｏｌｉｓ，Ｌ．Ｂ．ら、Ｉｎ  Ｖｉｔｒｏ  Ｃｅｌｌ  Ｄｅｖ  Ｂｉｏｌ（１９９５）３１：２２１〜２２６は、組織培養における宿主マウス肺において、外部が蛍光標識された肺腫瘍細胞の移動を可視化し得た。しかし、全ての場合、長期の観察は、外因性蛍光標識の限界に起因して可能ではなかった。緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）遺伝子のレトロウイルス移入は、インビトロで、ヒト癌細胞の安定なトランスフェクト体（Ｌｅｖｙ．Ｊ．Ｐ．ら、Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ（１９９６）１４：６１０〜６１４）ならびに造血細胞の安定なトランスフェクト体（Ｇｒｉｇｎａｎｉ，Ｆ．ら、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ（１９９８）５８：１４〜１９およびＣｈｅｎｇ，Ｌ．ら、Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒａｐｙ（１９９７）４：１０１３〜１０２２によって）を生じることが示されている。
【０００４】
β−ガラクトシダーゼ遺伝子をマーカーとして使用して、このようなモデルを提供しようとする試みがなされている（Ｌｉｎ，Ｗ．Ｃ．ら、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ（１９９０）５０：２８０８〜２８１７；Ｌｉｎ，Ｗ．Ｃ．ら、Ｉｎｖａｓｉｏｎ  ａｎｄ  Ｍｅｔａｓｔａｓｉｓ（１９９２）１２：１９７〜２０９）。しかし、このマーカーは、満足のいくものであることが証明されていなかった。なぜなら、新鮮な組織または処理された組織が、使用され得ないからである。本発明は、生きている新鮮な組織における腫瘍の侵襲および微小転移形成の可視化を可能にするマーカーを提供する。さらに、適切な対比（ｃｏｎｔｒａｓｔ）媒体を提供することによって、本発明の方法は、樹立されかつ増殖している腫瘍における脈管形成を可視化するために適応され得る。本発明の方法は、腫瘍の増殖および転移のモデルに適用され得るのみではなく、レトロウイルスベクターの使用を通して、腫瘍を保有するヒト被験体における臨床データを得るためにもまた用いられ得る。
【０００５】
本発明は、マーカーとして緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）を利用する。融合ＤＮＡの発現を主にモニターする、このタンパク質の異種発現は、米国特許第５，４９１，０８４号に開示された。この文献は、Ｅ．ｃｏｌｉおよびＣ．ｅｌｅｇａｎｓにおけるＧＦＰの発現を記載し、そして一般的な細胞がＧＦＰを発現するように改変され得ることを想定する。この文献に従う、このような発現は、融合ＤＮＡの発現をモニターするための方法のみではなく、細胞内のタンパク質局在化をモニターする手段もまた可能にする。
【０００６】
転移モデルを提供する本発明の局面が、一連の刊行物において報告および記載されている。Ｃｈｉｓｈｉｍａ，Ｔ．ら、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ（１９９７）５７：２０４２〜２０４７は、ヒト化緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）およびジヒドロ葉酸レダクターゼ（ＧＨＦＲ）の遺伝子を含む二重シストロン性（ｄｉｃｉｓｔｒｏｎｉｃ）ベクターの構築を記載している。このベクターは、クローン３８を得るためにＣＨＯ−Ｋ１細胞にトランスフェクトされた。クローン３８は、安定なＧＦＰ発現を示し、この発現は、メトトレキサート（ＭＴＸ）の存在下で維持された。クローン３８細胞は、腫瘍フラグメントを得るためにマウス中に注入され、このフラグメントは、次いで、ヌードマウスにおける卵巣漿膜上に外科的同所移殖（ＳＯＩ）によって移植された。このモデルにおいて転移が続いて起こり得る。
【０００７】
Ｃｈｉｓｈｉｍａ，Ｔ．ら、Ｐｒｏｃ  Ｎａｔｌ  Ａｃｅｄ  Ｓｃｉ  ＵＳＡ（１９９７）９４：１１５７３〜１１５７６は、Ｃｌｏｎｔｅｃｈから入手した、コドンを最適化したｈＧＦＰ−Ｓ６５Ｔクローンを、Ａｎｉｐ９７３ヒト肺腺癌細胞にトランスフェクトすることによる、クローン２６の調製を記載している。クローン２６が、ヌードマウスに静脈内に注入され、そして得られた腫瘍が、組織培養された。
【０００８】
Ｃｈｉｓｈｉｍａ．Ｔ．ら、Ｃｌｉｎ  Ｅｘｐ  Ｍｅｔａｓｔａｓｉｓ（１９９７）１５：５４７〜５５２およびＣｈｉｓｈｉｍａ，Ｔ．ら、Ａｎｔｉｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ（１９９７）１７：２３７７〜２３８４は、クローン２６を用いる同様の研究を記載しており、この研究では、この細胞は、ヌードマウスの皮下に接種され、これにより、可視化された腫瘍を生じ、次いで、この腫瘍は、ＳＯＩによってヌードマウスの内臓胸膜に移殖された。転移は、このモデルにおいて同様に観察された。
【０００９】
Ｃｈｉｓｈｉｍａ，Ｔ．ら、Ｉｎ  Ｖｉｔｒｏ  Ｃｅｌｌ  Ｄｅｖ  Ｂｉｏｌ（１９９７）３３：７４５〜７４８は、クローン２６の組織培養物、およびＧＦＰにより放射される蛍光を使用する増殖の可視化を記載している。
【００１０】
Ｙａｎｇ，Ｍ．ら、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ（１９９８）５８：４２１７〜４２２１は、安定な高ＧＦＰ発現クローンを得るために、増強されたＧＦＰを含むレトロウイルス発現ベクターを用いるヒト肺癌細胞株Ｈ４６０の形質導入を記載している。この細胞株由来の細胞は、ヌードマウスに注入され、そして得られる皮下で増殖している標識された腫瘍は、ＳＯＩによって、ヌードマウスの左肺に移殖された。次いで、蛍光は、側副（ｃｏｌｌａｔｅｒａｌ）肺、胸膜および骨格系全体における転移から観察され得た。
【００１１】
Ｙａｎｇ，Ｍ．ら、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ（印刷中）は、前立腺腫瘍についてのモデルを使用し、かつヌードマウスにおける骨格系の全体で蛍光を示す、同様の研究を報告している。
【００１２】
前述の刊行物の内容は、本明細書中に参考として援用される。
【００１３】
前述に加えて、Ｃｈｅｎｇ，Ｌ．ら、Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒａｐｙ（１９９７）４：１０１３〜１０２２は、レトロウイルスプロモーターの制御下でＧＦＰ遺伝子を使用する、造血幹細胞の改変を記載している。この著者らは、ヒト幹細胞が増強された形態のＧＦＰを使用することによる困難性のみを伴って、この系でトランスフェクトされることを記述しているが、満足のいく明るさが達成され得る。
【００１４】
さらに、Ｇｒｉｇｎａｎｉ，Ｆ．ら、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ（１９９８）５８：１４〜１９は、ヒト造血前駆細胞への高効率遺伝子移入をもたらすＧＦＰを発現するハイブリッドＥＢＶ／レトロウイルスベクターの使用を報告している。
【００１５】
種々の色を提供するために種々の改変形態のＧＦＰを含むベクターが、Ｃｌｏｎｔｅｃｈにより市販されている。哺乳動物細胞での発現に意図されるＣｌｏｎｔｅｃｈベクターは、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）プロモーターの制御下にＧＦＰを配置している。
【００１６】
（発明の開示）
本発明は、現実的かつリアルタイムの設定において原発性腫瘍からの転移の形成の詳細な研究を可能にするモデルを提供する。安定かつ容易な可視化マーカーとして緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）を使用することによって、このような転移の進行が、モデル化され得、そして機構が、インタクトな動物において解明され得る。
【００１７】
従って、１つの局面において、本発明は、原発性腫瘍の転移の進行に従う方法に関し、この方法は、リアルタイム蛍光光学腫瘍画像化（ＦＯＴＩ）によって脊椎動物（この動物は、ＧＦＰを発現する腫瘍細胞を含むように改変されている）の全体において蛍光を可視化することを包含する。
【００１８】
脊椎動物は、モデル系（例えば、免疫無防備な動物または同系の動物）を構成し得、ここで緑色蛍光タンパク質を発現するように改変された腫瘍細胞または腫瘍が、動物に導入されている。このモデル系は、転移を阻害するそれらの能力について、候補となる薬物またはプロトコルを評価するために使用され得る。あるいは、被験体は、ヒトまたは他の脊椎動物の被験体であり得、腫瘍を天然に含むが、腫瘍がウイルス感染、またはレトロウイルスベクターでのトランスフェクションに供されており、上記ＧＦＰを生成する。このような患者または被験体に投与された薬物の効力は、疾患の経過が評価され得ると同様に、被験体の転移を解明することによって評価され得る。
【００１９】
本発明はまた、固形腫瘍における脈管形成を観察しかつ追跡する方法を含み、この方法は、被験体において、ＧＦＰを発現するように改変される上記腫瘍を観察することを包含し、ここでは、この被験体が、この観察を可能にする対比色素を投与されている。
【００２０】
（発明の実施の形態）
本発明は、腫瘍一般の転移の機構を研究するため、および固形腫瘍における新脈管形成を研究するためのモデル系を提供する。腫瘍細胞を標識するための可視的なマーカーである緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）を利用して、その結果、腫瘍に遠位の組織におけるその移動および局在化後に、移動および局在化の進行が追跡され得る。さらに、対比色素（例えば、ローダミン）を被験体に投与することにより、ＧＦＰで標識された固形腫瘍中の血管の増殖がまた、観察され得る。
【００２１】
インタクトな動物において蛍光細胞の移動を観察するのに十分な強度が達成され得るので、転移の進行は、インタクトな被験体においてリアルタイムで観察され得る。動物が開口（切開）されるこの方法のいずれかを使用して、可能性のある抗転移薬物の効力である、モデル系での評価における、転移を観察し得る。潜在的に転移性の癌を有する患者に提供された処置の成功または失敗もまた、本発明の材料および方法を用いて追跡され得る。
【００２２】
本発明の種々の局面において用いられる標識は、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）である。このタンパク質をコードするネイティブな遺伝子は、生物発光クラゲ（ｊｅｌｌｙｆｉｓｈ）であるＡｅｑｕｏｒｅａ  ｖｉｃｔｒｉａ（Ｍｏｒｉｎ，Ｊ．ら、Ｊ  Ｃｅｌｌ  Ｐｈｙｓｉｏｌ（１９７２）７７：３１３〜３１８）からクローニングされた。この遺伝子の利用可能性は、遺伝子発現のためのマーカーとしてＧＦＰを用いることを可能にした。ＧＦＰ自体は、２７ｋＤの分子量を有する２８３アミノ酸のタンパク質である。それは、そのネイティブな供給源からさらなるタンパク質を必要とせず、また蛍光発光するためにそのネイティブな供給源においてのみ利用可能な基質または補因子も必要としない。（Ｐｒａｓｈｅｒ、Ｄ．Ｃ．ら、Ｇｅｎｅ（１９９２）１１１：２２９〜２３３；Ｙａｎｇ，Ｆ．ら、Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ（１９９６）１４：１２５２〜１２５６；Ｃｏｄｙ，Ｃ．Ｗ．ら、Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ（１９９３）３２：１２１２〜１２１８）。ＧＦＰ遺伝子の変異体は、発現を増強するために、そして励起および蛍光を改変するために有用であることが見出されている。ＧＦＰ−Ｓ６５Ｔ（ここで、６５のセリンはトレオニンと置換されている）は、本発明において特に有用であり、そして４９０ｎｍで単一の励起ピークを有する。（Ｈｅｉｍ，Ｒら、Ｎａｔｕｒｅ（１９９５）３７３：６６３〜６６４）；米国特許第５，６２５，０４８号）。他の変異体がまた、Ｄｅｌａｇｒａｄｅ，Ｓら、Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（１９９５）１３：１５１〜１５４；Ｃｏｒｍａｃｋ、Ｂら、Ｇｅｎｅ（１９９６）１７３：３３〜３８およびＣｒａｍｅｒ、Ａら、Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ（１９９６）１４：３１５〜３１９に開示されている。さらなる変異体がまた、米国特許第５，６２５，０４８号に開示されている。適切な改変により、ＧＦＰにより放射される光のスペクトルが変更され得る。従って、用語「ＧＦＰ」が、本出願において使用されるが、この定義の中に含まれるタンパク質は、必ずしも外見が緑ではない。ＧＦｐの種々の形態が緑以外の色を示し、そしてこれらは、また、「ＧＦＰ」定義内に含まれ、そして本発明の方法および材料において有用である。さらに、本明細書において、「ＧＦＰ」の定義内にはいる緑色蛍光タンパク質は、他の生物体（例えば、ウミシイタケ（ｓｅａ  ｐａｎｓｙ）であるＲｅｎｉｌｌａ  ｐｅｒｉｆｏｒｍｉｓ）から単離されている。ＧＦＰ遺伝子の任意の適切かつ便利な形態は、本発明のモデルにおいて有用な腫瘍細胞を改変するために、および内因性腫瘍のレトロウイルスによる形質転換のために用いられ得る。特定のヒト化されたｈＧＦＰ−Ｓ６５Ｔクローンが例示のために以下に記載される実施例に用いられる。
【００２３】
一般に、ＧＦＰを用いる、細胞を標識するための技術は、米国特許第５，４９１，０８４号（前出）に開示されている。
【００２４】
１つの適用において、本発明の方法は、腫瘍の転移的増殖に対する、種々の治療候補のプロトコルおよび物質の効果を研究するためのモデル系を提供する。
【００２５】
一般的に、このモデルは、腫瘍組織を含むように、脊椎動物（好ましくは、哺乳動物）を改変する工程を包含する。ここでこの腫瘍細胞は、それ自体が、ＧＦＰについての発現系を含むように改変されている。この腫瘍細胞は、細胞株から生じ得る。ここで腫瘍細胞は、ＧＦＰおよび必要に応じて不死化因子（例えば、ＳＶ４０  Ｔ抗原）についての発現系を含むように改変されている。腫瘍は、ＧＦＰ発現系を含む形質転換された細胞を投与する工程、およびこれらの形質転換細胞が腫瘍を形成することを可能にする工程により、このような脊椎動物系において形成され得る。代表的には、このような投与は、皮下であり、そしてこの腫瘍は固形物体として形成される。このように形成された腫瘍は、任意の適切な宿主組織に移植され得、そして進行、転移および発達させられ得る。
【００２６】
従って、最初の腫瘍を増殖するための適切な手順は、ＧＦＰを産生する腫瘍細胞：例えば、ＣＨＯ細胞株、ＨｅＬａ細胞株、癌性細胞株および肉腫細胞株、十分に樹立された細胞株（例えば、ヒト肺腺癌株Ａｎｉｐ  ９７３、または肺癌細胞株Ｈ４６０）、ならびにＧＦＰ含有ヒト乳癌株ＭＤＡ−ＭＢ４６８およびＭＤＡ−ＭＢ４３５；ヒト前立腺癌株ＰＣ３およびＤＵ−１４５，ヒトグリア芽細胞腫株３２４、マウス黒色腫Ｂ１６および当該分野で利用可能になり得る他の細胞、ならびに本発明の方法により不死化される細胞、の経皮注射を包含する。投与される細胞は、ＧＦＰのための発現系を含むように改変されている。投与後、固形腫瘍は、代表的には皮下注射の部位で、一般に発達する。これらの細胞が移植される動物は、免疫無防備状態かまたは移植された細胞と同系であるかのいずれかであるべきである。次いで、これらの腫瘍（それ自体が蛍光性である）は、取り出され、そしてモデルの脊椎動物への移植に用いられる。
【００２７】
脊椎動物（特に哺乳動物）への、固形腫瘍（いま、ＧＦＰで標識されている）の移植のための技術は、所望の部位、代表的には腫瘍細胞が由来する部位への外科的同所移植（ＳＯＩ）による直接移植を含む。適切な部位としては、肺、肝臓、膵臓、胃、乳房、卵巣、前立腺、骨髄、脳および悪性腫瘍に感受性の他の組織が挙げられる。再度、この被験体は、免疫無防備状態であるかまたは腫瘍と同系であるかのいずれかであるべきである。一旦、この固形腫瘍が移植されれば、この脊椎動物は、転移を研究するためのモデル系となる。従って、腫瘍は進行および発達され、そしてこの脊椎動物は、もとの移植部位から遠位の部位でＧＦＰ標識細胞の出現についてモニタリングされる。このモニタリングは、脊椎動物全体においてリアルタイムで行われる。なぜなら、この腫瘍は、十分に明るく、動物を開口（切開）することが必要でないからである（その腫瘍は、皮膚を通じて直接、見られ得、同様に転移位置でもみられ得る）。ＧＦＰ裸眼で可視であり、この組織を染色する発色系は必要ない。薬物モニタリングプロトコルにおけるモデル系のために、インタクトな動物における観察が好ましいが、この動物は切開され得、そして／または組織は、所望の場合切り出され得る。コントロール動物との比較もまた所望される。
【００２８】
蛍光光学腫瘍画像化（ＦＯＴＩ）を通じて、インタクトな動物における腫瘍細胞の移動を可視化することが特に便利である。これは、特に、可能性のある抗転移薬物の評価において、モデル系における、連続的な転移の進行のリアルタイムの観察およびモニタリングを可能にする。従って、薬物を投与されなかったコントロールに比較して、候補薬物を投与された試験動物において直接観察された転移の相対的な欠失は、この候補の有効性およびその処置としての可能性を示す。癌が処置される被験体において、ＦＯＴＩの有効性により、プロトコルを改変するかまたは改変しないことの適否という情報を連続的に受けるべき本発明の処置プロトコルが可能になる。
【００２９】
モデルとしての使用に適切な脊椎動物被験体は、好ましくは哺乳動物被験体、最も好ましくウサギ、ラット、マウスなどのような都合の良い実験動物である。ヒト被験体へのより緊密な類似のために、霊長類も用いられ得る。有用な被験体は、障害された免疫系を有する被験体（例えば、ヌードマウスまたはＳＣＩＤマウス）のような、特に腫瘍発達に感受性である被験体である。免疫系の無防備状態は、薬物の投与、または当該分野で一般に公知の他の技術により任意の脊椎動物において達成され得る。任意の適切な脊椎動物被験体が用いられ得る。選択は、最終的な目的のシステムに対する便利さおよび類似性により主に決定される。
【００３０】
移植されるべき腫瘍細胞において作動可能である適切な発現系が用いられ得る。種々の型の腫瘍細胞において発現をもたらす多数のベクターが市販されている。ベクターの性質は、腫瘍の性質および腫瘍の起源を見出す脊椎動物によって変化し得る。しかし、ＧＦＰがモデル系における転移を可視化するために用いられる場合、レトロウイルスまたはこのモデルの性質を複雑にし得る他のウイルスプロモーターを使用しないベクターを利用することが好ましい。
【００３１】
これらのモデル系のために腫瘍を樹立することにおいて有用である細胞株を提供するために、ＳＶ４０Ｔ抗原を有する細胞を提供する発現ベクターを使用することがまたしばしば、利点がある。この抗原の存在は、培養物の不死化を保証する。従って、本発明において特に有用なのは、ＧＦＰおよびＳＶ４０Ｔ抗原の両方の産生を生じる発現系を含むベクターである。
【００３２】
腫瘍生成に効果的である形質転換細胞をトランスフェクトおよび改変するために、任意の適切なトランスフェクション方法（例えば、リポソーム、リン酸カルシウム沈殿、エレクトロポレーションおよび遺伝子銃の使用）が用いられ得る。リポフェクチンが好ましい。
【００３３】
対照的に、本発明の方法を使用して、ヒト癌患者のような被験体において天然に存在する腫瘍における転移を可視化する場合、レトロウイルスプロモーターまたは他のウイルスプロモーターを使用するベクターが好ましい。そのようなベクターの使用は、ＧＦＰについての発現系の、既に存在する腫瘍への挿入を可能にする。さらに、その発現系は、転移の診断および処置を同時に可能にする治療タンパク質のような、他の有用なタンパク質をコードするヌクレオチド配列を含み得る。そのような適切なタンパク質の中には、メチオニナーゼが含まれる（例えば、ＰＣＴ／ＵＳ９３／１１３１１およびＰＣＴ／ＵＳ９６／０９９３５を参照のこと）。そのようなタンパク質は、ＧＦＰとの融合物としてか、または独立して、ジシストロン性発現系もしくは独立の発現系のいずれか（一方は、治療タンパク質について、そして他方はＧＤＰについて）を用いて、産生され得る。
【００３４】
ＧＦＰのための発現系に基づくレトロウイルス（ベクター）は、すでに、Ｇｒｉｇｉｎａｎｉ，Ｆら、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ（１９９８）５８：１４−１９およびＣｈｅｎｇ，Ｌ．ら、Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒａｐｙ（１９９７）４：１０１３−１０２２によって記載されている。これらの報告において、そのレトロウイルス発現系自体を使用して、造血前駆細胞をトランスフェクトするか、またはパッケージング細胞を用いてウイルス含有上清を提供した。この上清を直接哺乳動物細胞の感染に用い得る。従って、本発明の方法において、脊椎動物被験体に含まれる腫瘍は、代表的に、改変され、そしてパッケージングされてＧＦＰについての発現系を含ませたウイルスを用いて感染される。ウイルスでのインサイチュ感染によって、その腫瘍がＧＦＰおよび実際、標識自体を生成する能力がもたらされる。
【００３５】
哺乳動物細胞においてタンパク質を産生するにおいて有用な種々のレトロウイルス系は、当該分野において公知である。例としては、市販のベクターおよびパッケージ系（例えば、Ｃｌｏｎｔｅｃｈ，Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ，Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａにより販売されるもの（そのＲｅｔｒｏ−ＸベクターｐＬＮＣＸおよびｐＬＸＳＮを含む。これらは、種々のプロモーターの下で、複数のクローニング部位へと挿入することによってＧＦＰの発現を可能にする。これらのベクターは、Ψ＊（拡張されたウイルスパッケージングシグナルを含む）および選択のための抗生物質耐性遺伝子を含む。多数のこれらの系が遺伝子治療において使用するために開発されており、これらには、レトロウイルス供給源に由来する５’と３’とのＬＴＲの間にサンドウィッチされた複数クローニング部位を提供し、それゆえヒト患者の腫瘍を標識するに置いて有用であるベクターが含まれる。
【００３６】
従って、レトロウイルスベクターベースのベクター（例えば、図１ａ〜１ｂに示されるもの）は、パッケージング細胞中にトランスフェクトされ得、そして標的化された癌細胞に直接移入され得るか、またはパッケージング細胞由来の上清を用いて、そのレトロウイルスを腫瘍細胞に感染させ得る。レトロウイルス細胞およびパッケージング細胞の好ましい組み合わせとしては、ＰＴ−６７パッケージング細胞中のＧＦＰレトロウイルスベクターｐＬＥＩＮが挙げられる。そのパッケージング細胞の結腸癌細胞との同時培養物は、ＧＦＰレトロウイルスのその癌細胞への移入を生じる。
【００３７】
組織培養技術およびＰＴ−６７パッケージング細胞生成ＧＦＰ−ｐＬＥＩＮウイルス由来の上清を用いて、ヒト癌細胞組織をＧＦＰに関連する蛍光を表示させる首尾よい改変が実証されている。インビボでの使用のために、そのウイルスが投与され、好ましくは、その腫瘍へ局所的に投与され、これが、パッケージング細胞またはウイルス含有上清のいずれかの注射後数時間以内に観察され得る。悪性細胞を、その緑色で識別し得、ときに、これは、その腫瘍が皮膚を通してみることができるのに充分明るい。
【００３８】
モデル系または脊椎動物、代表的には哺乳動物、およびより代表的にはヒトの被験体（すでに、腫瘍に罹患している）のいずれかにおける腫瘍転移および増殖の直接の観察に加えて、本発明の方法は、固形腫瘍における新脈管形成を観察するために適合され得る。その腫瘍は、それ自体が、上記のようにＧＦＰで標識される。次いで、その被験体に、対比色素を、代表的には注射、好ましくは静脈注射によって投与し、これによって、腫瘍における血管が観察されることを可能にする。適切な色素としては、ローダミンおよび他の対比色素が挙げられる。ＧＦＰの緑色と対照色を形成する任意の色素が使用され得る。好ましくは、その色素は、ポリエチレングリコールのような不活性ポリマーに結合されて、その色素が血管に滞留する時間を延長する。充分な量の色素が提供されて、容易な可視化を可能にする：必要とされる色素の量は、色素の選択、腫瘍の位置、バックグラウンドＧＦＰの性質、および観察に使用される方法に依存する。数分以内に、腸間膜、結腸壁および網ような領域内の固形腫瘍へと成長する血管が観察され得る。観察は、実質的な時間をかけて継続され得る；例えば、数時間後の新脈管形成がなお、この方法を用いることによって観察される。
【００３９】
以下の実施例は、本発明を例示することを意図するが、限定は意図しない。
【００４０】
（実施例１：ＧＦＰを生成する腫瘍細胞の調製）
Ｚｏｌｏｔｕｋｈｉｎ、Ｓ．ら、Ｊ  Ｖｉｒｏｌ．（１９９６）７０：４６４６−４６５４に記載されるヒト化ｈＧＦＰ−Ｓ６５Ｔクローンを、緑色蛍光タンパク質をコードする配列として使用した。このコドン最適化された遺伝子を、Ｃｌｏｎｔｅｃｈ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．（Ｐａｌｏ  Ａｌｔｏ，ＣＡ）から購入し、そしてＧｅｎｅｔｉｃｓ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ，Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ，ＭＡから購入し、そしてＫａｕｆｍａｎ，Ｒ．Ｊ．ら，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ（１９９１）１９：４４８５−４４９０に記載されるジシストロン性発現ベクター（ｐＥＤ−ｍｔｘ’）へと連結した；ｈＧＦＰ−Ｓ６５ＴをＨｉｎｄＩＩＩで消化し、そして平滑末端化した。ｈＧＦＰコード領域全体を、ＸｂａＩで切り出し、次いで、ＰｓｔＩで消化し、平滑末端化し次いでＸｂａＩでさらに消化したｐＥＤ−ｍｔｘl中に単一の方向にサブクローニングした。
【００４１】
ＣＨＯ−Ｋ１細胞を、１０％仔ウシ血清、２ｍＭ  Ｌ−グルタミンおよび１００μＭ非必須アミノ酸を含むＤＭＥＭ中で培養した。ほぼコンフルエントな細胞を、ＬｉｐｏｆｅｃｔＡＭＩＮＥTM試薬（ＧＩＢＣＯ）および飽和量のプラスミドの沈降混合物とともに６時間インキュベートし、次いで新鮮な培地を補充した。細胞を、４８時間後にトリプシン／ＥＤＴＡによって採集し、そして１：１５で１．５μＭのメトトレキサート（ＭＴＸ）を含む選択培地中へと継代培養した。安定に組み込まれたプラスミドを有する細胞を、ＭＴＸ含有培地中で選択し、そしてクローニングシリンダ（Ｂｅｌ−Ａｒｔ  Ｐｒｏｄｕｃｔｓ，Ｐｅｑｕａｎｎｏｃｋ，ＮＪ）を用いてＥＤＴＡによって単離した。増殖および移入の後、クローン３８を、その高い強度のＧＦＰ蛍光および安定性のために選択した。
【００４２】
類似の様式において、Ｈａｒｂｉｎ  Ｍｅｄｉｃａｌ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｃｈｉｎａから得たヒト肺癌細胞株であるＡｎｉｐ  ９７３細胞を、ＤＭＥＭの代わりにＲＰＭＩ１６４０（ＧＩＢＣＯ）を用いることを除いて上記のＣＨＯＫ１細胞についてと同様に培養した。トランスフェクション、選択および増殖および移入を上記のように行った。クローン２６を、その高い強度のＧＦＰ蛍光および安定性のために選択した。
【００４３】
（実施例２：標識された腫瘍細胞株のＧＦＰおよび調製のためのレトロウイルス発現ベクターの構築）
図１ａおよび１ｂは、ＳＶ４０プロモーターの制御下にあるＧＦＰのための発現ベクターの構築を示す。この構築物は、Ｃｌｏｎｔｅｃｈから入手可能な市販のｐＥＧＦＰシリーズのベクターを使用する。細菌発現ベクターおよび哺乳動物発現ベクターの両方は、さらなるタンパク質およびＧＦＰの産生を、融合タンパク質としてかまたはジシストロン性系においてのいずれかで産生し得るものが利用可能である。図１ａは、メチオニナーゼとのＧＦＰの融合物についての、発現ベクターｐＧＦＰ／Ｍｅｔの構築を示す。図１ｂは、ＳＶ４０Ｔ抗原とＧＦＰとの融合タンパク質の産生のためのｐＧＦＰ／ＳＶ４０の構築を示す。
【００４４】
実施例６に記載されるベクターｐＬＥＩＮ系を用いる所望のスペクトル特性のＧＦＰコード配列を含む市販のベクターを、ヒト乳癌、ヒト前立腺癌、ヒト神経膠芽腫およびマウス黒色腫のような腫瘍由来の細胞株へとトランスフェクトした。この様式で、緑色蛍光タンパク質で標識した、ヒト乳癌細胞株ＭＦ−７、ＭＤＡ−ＭＢ４６８およびＭＤＡ−ＭＢ４３５、ヒト前立腺癌細胞株ＰＣ３およびＤＵ１４５、ヒト神経膠芽腫細胞株３２４、ヒト肺癌細胞Ａｎｉｐ−７３およびＨ４６０、ヒト結腸癌細胞株Ｃｏｌｏ−２０５、ＨＣＴ１５およびＷｉＤｒ、ヒト胃癌細胞株ＮＶＧＣ−４、ヒト腎臓癌細胞株ＳＮ１２Ｃ、ヒト舌癌細胞株ＳＣＣ−２５、ヒト黒色腫ＬＯＸおよびＳＫ−ｍｅｌ−５、細胞株ＣＨＯ−Ｋ１からの標識されたチャイニーズハムスター卵巣細胞およびマウス黒色腫細胞株Ｂ１６が樹立された。
【００４５】
ＳＶ４０  Ｔ抗原タンパク質は、恒久細胞株を確立するために培養された細胞を不死化するために有用である。従って、ベクターｐＧＦＰ／ＳＶ４０は、一連の主要細胞株培養物へとトランスフェクトされて、蛍光不死化された細胞株を提供する。
【００４６】
（実施例３：樹立された腫瘍のインビボ標識）
ヒト肺癌細胞株Ａｎｉｐ９７３から得られた標識されていない腫瘍を、マウス中で以下のとおりに樹立した。腫瘍を、０．４ｍｌの単回用量の１０7のＡｎｉｐ９７３細胞を、トリプシン処置および冷血清含有培地を３回用いて洗浄を行うことによって４０分の採取内に皮下注射した６週齢Ｂａｌｂ／Ｃ  ｎｕ／ｎｕ雄性マウス中で増殖させた。この細胞を、注射の前に氷上に維持した。この動物を、腫瘍がおよそ１．２ｃｍ直径に達したときに屠殺した。１．２ｃｍ腫瘍は、約５週間後の形成された。
【００４７】
腫瘍片（１ｍｍ3）を、ＳＯＩによってＡｓｔｏｕｌ，Ｐ．ら，Ａｎｔｉｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ（１９９４）１４：８５−９２；Ａｓｔｏｕｌ，Ｐ．Ｊ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｃｈｅｍ（１９９４）５６：９−１５（この両方が本明細書において参考として援用される）に記載されるような８匹のマウスの左の肺胸膜移植した。手短には、そのマウスを、イソフルラン吸入によって麻酔し、肋間の空間の４番目を介して、小さな１ｃｍにわたる切り込みを左の側方の胸に作製し、完全な肺の虚脱を引き起こす。５つの腫瘍片を、７−０ナイロン外科用縫合糸を用いて縫い合わせ、１つの結び目を作製することによって固定した。肺をピンセットで取り出し、そして腫瘍を１つの縫合糸で肺の下部に縫い合わせ、その後、肺を胸腔に返し、そして筋肉および皮膚を６−０絹縫合糸の単一層を用いて封着した。肺を２３ゲージの針を用いて胸腔から空気を取り出すことによって、再膨張させた。次いで、マウスにＰＴ６７細胞に含まれるレトロウイルスベクターＧＦＰレトロウイルスｐＬＥＩＮ１を含む１×１０7のパッケージング細胞を注射した。このウイルスパッケージング系は、Ｃｌｏｎｔｅｃｈ，Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ，Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａから入手可能である。ｐＬＥＩＮは、ＥＧＦＰ（哺乳動物においてより明るい蛍光およびより高い発現について最適化された野生型ＧＦＰの赤方偏移改変体）のコード配列の挿入物を含む。これは、４８８ｎｍにおいて最大励起、および５０７ｎｍにおいて最大発光を有する。この変異体は、６４位においてＰｈｅからＬｅｕへの、６５位においてＳｅｒからＴｈｒの二連のアミノ酸置換を含む。これは、Ｃｏｍａｃｋ、Ｂら、Ｇｅｎｅ（１９９６）１７３；３１−３８において記載されている。Ｈａａｓ  Ｊ．ら、Ｃｕｒｒ  Ｂｉｏｌ（１９９６）６：３１５−３２４によって記載されるようなヒトコドン慣用選択を最大化する１９０を超えるサイレントな塩基変化が存在する。従って、ｐＬＥＩＮは、ｐＬＸＩＮの複数クローニング部位に挿入された上記のＧＦＰコード配列を含み、ジシストロン性発現系を得、それによって、ＧＦＰおよびネオマイシン耐性の調和された翻訳を可能にする。マウスの腹腔へのその細胞の注射後３日で、腫瘍細胞を、明野顕微鏡および蛍光顕微鏡の下で、精嚢中に見ることができた。
【００４８】
（実施例４：新脈管形成の観察）
１×１０7のクローン３８細胞を含む懸濁物（実施例１に記載される）を、マウスの腹腔に注射した。５日後、マウスの尻尾にローダミンを注射し、次いでそのマウスを麻酔し、そして腹腔を充分に開口して腫瘍を可視化させた。この手術からの回復はすぐであった。いくつかの場合において、開腹は、不要である。なぜなら、腹腔内の腫瘍が生の皮膚を通して可視化され得るからである。腫瘍は、腹腔において可視化され、そして新脈管形成が、ローダミン蛍光によって同定されるように明らかになった。類似の結果が、小腸壁における網および腸間膜において増殖する腫瘍中に見られた。
【００４９】
類似の実験において、１×１０7細胞のクローン２６を含む懸濁物（実施例１に記載される）を、マウスの腹腔中に注射した。１日後、腫瘍が腸間膜中および結腸壁に出現した。これらを、マウスを麻酔することおよび腹を最小限開口することによって観察した。類似の処置をしたマウスの３日目の観察によって、小腸の壁および網ならびに結腸壁および腸間膜における腫瘍を示した。５日目に、類似の処置をしたマウスの尻尾に、１００μｌの２×１０-3Ｍのローダミンを注射し、そして数本の血管が、腸間膜中に成長する腫瘍においてみることができた。６０日後、多数の血管が、結腸壁において成長する腫瘍において見られた。
【００５０】
（実施例５：転移モデルの構築）
実施例２に記載される標識されたヒト癌細胞株を用いて、種々の型の癌についてのマウスモデルを樹立した。この細胞株を、１０7ＧＦＰ発現ヒト腫瘍細胞を単回用量で６週齢のｎｕ／ｎｕ雌性マウスに移植し、これを、トリプシン処置によって採集し、そして冷血清含有培地で３回洗浄し、次いで氷上に維持した。採集の４０分以内に０．４ｍｌの総容量で動物の側腹部中の皮下空間に注射する。このヌードマウスを腫瘍細胞注射から３週間後に屠殺して、腫瘍断片を採集する。次いで、これらの腫瘍断片を、レシピエントとしてのヌードマウスにおいて、対応する組織（外科的歯科矯正術移植（ＳＯＩ））中への外科的移植のために使用する。
【００５１】
レシピエントマウスをまず麻酔し、次いで樹立されたＳＯＩ技術を用いて皮下で成長した結腸癌、肺癌、乳癌、前立腺癌または黒色腫の断片を移植する。多くの場合、この黒色腫を除いて、この断片のサイズは、１ｍｍ3であり；黒色腫について０．０２５ｍｍ3断片をヒト黒色腫ＬＯＸ−ＧＦＰ皮下腫瘍から調製し、そして５〜６断片を移植した。次いで、転移の進行を、水銀ランプ供給源を有するＬｅｉｃａ  Ｓｔｅｒｅｏｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ  ＭＺ１２を備えるＦＯＴＩを用いて観察する。ＧＦＰを、Ｄ４２５／６０帯域のフィルタおよび４７０ＤＣＸＲ二色性鏡を用いて切り出し；蛍光は、ＧＧ４７５長径フィルタ（Ｃｈｒｏｍａ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｂｒａｔｔｌｅ−ｂｏｒｏ，ＶＴ）を通じて発光され、そして１３１７ｘ１０３５ピクセルチップを備える、熱電気学的に冷却されたＳＴ−１３３  Ｍｉｃｒｏｍａｓｓ  Ｈｉｇｈ−Ｓｐｅｅｄ  Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ  Ｃａｍｅｒａ−−ＴＥＡ／ＣＣＤ−１３１７Ｋ１（Ｐｒｉｎｃｅｔｏｎ  Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ，Ｔｒｅｎｔｏｎ，ＮＪ）によって収集する。画像をＩｍａｇｅＰｒｏ+  ３．１  Ｓｏｆｔｗａｒｅ（Ｍｅｄｉａ  Ｃｙｂｅｒｎｅｔｉｃｓ，Ｓｉｌｖｅｒ  Ｓｐｒｉｎｇ，ＭＤ）を用いて処置および分析する。高解像度の画像を、コンピュータによって捕捉するか、またはビデオ出力を通じてビデオテープに連続的に捕捉する。
【００５２】
結腸癌モデルにおいて、小中線切込みを、腹に作製し、そして腸の結腸直腸部分を外部に出した。漿膜を取り出し、そして８−１５の腫瘍断片の片を移植した。８−０外科用縫合糸を用いて、小さな腫瘍片を貫通させ、それらを腸壁へと縫い合わせた。腸を腹腔に戻し、そして腹壁を封着した。次いで、この動物を、転移について観察した。
【００５３】
肺癌モデルについて、小さな１ｃｍにわたる切込みを、肋間の第四空間を介して左の側方の胸に作製し；肺の完全な虚脱がもたらされる。８−０ナイロン外科的縫合糸を用いて縫い合わされた５つの腫瘍片を、１つの結び目を作製することによって固定する；肺をピンセットによって取り出し、そして腫瘍を肺の下部へと１つの縫合糸で縫い合わせる。肺を胸腔へと戻した後、胸の筋肉および皮膚を封着する。肺を、２３ゲージの針を用いて胸の腔から空気を取り出すことによって再膨張させる。次いで、この動物を、ＦＯＴＩによるか、または種々の組織を切り出すことによるかのいずれかで転移について観察し得る。
【００５４】
乳癌について、１．５ｍの切り込みを、乳頭の中線側に沿って作製し、そして平滑末端切除の後、脂肪パッドを暴露させる。小さな切込みを作製し、そして小さなポケットを形成させて、腫瘍組織の２つの断片を収容させる；８−０縫合糸をそのポケットの付近へとやる。次いで皮膚層を封着する。次いで、この動物を、ＦＯＴＩまたは組織切り出しによって観察する。
【００５５】
前立腺癌について、開口を恥骨結合の上で作製して、前立腺を露出させる。前立腺の背側部分および前立腺の背側の側方の葉の周りの筋膜を、小さな切込みによって分離する。５つの無作為化した断片を切り込み中に８−０ナイロン縫合糸を用いて作製する。分離された葉の２つの部分を縫い合わせ、そして周りの筋膜を用いて前立腺のこの部分を包んでその切込みを合同させた。次いで、腹を閉じ、そして動物を観察のために維持する。
【００５６】
黒色腫について、１３×１／４の癌移植針（Ｐｏｐｐｅｒ  ＆  Ｓｏｎｓ，Ｎｅｗ  Ｈｙｄｅ  Ｐａｒｋ，ＮＹ）を用いて、５〜６断片を側腹部へ皮下に移植する。
【００５７】
画像は上記のように得ることができ、その動物における種々の位置への転移が示される。
【００５８】
次いで、上記のように処置した動物を用いて、癌の処置および転移の阻害のための可能なプロトコルを評価する。このプロトコルで投与された動物における蛍光腫瘍の転移の進行は、処置を受けない類似の動物と比較する。次いで、このプロトコルの効力が直接観察され得る。
【図面の簡単な説明】
【図１Ａ】  図１ａは、本発明に有用な発現ベクターの構築を示す。
【図１Ｂ】  図１ｂは、本発明に有用な発現ベクターの構築を示す。
【図１Ａ】
0003709343.tif 000002
【図１Ｂ】
0003709343.tif 000003