(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
配列番号１のアミノ酸配列、または配列番号１のアミノ酸配列において１〜10個のアミノ酸の付加、欠失もしくは保存的な置換を有するアミノ酸配列からなり、かつMIP−１αと結合し、トランスフェクションされた293細胞内にCa2+流を生じさせることができるポリペプチド。
【請求項２】
請求項１に記載の単離されたＣ−C CKR−１ポリペプチドを含有し、該ポリペプチドの供給源である動物種の夾雑ポリペプチドを含まない組成物。
【請求項３】
請求項１に記載のＣ−C CKR−１ポリペプチドに特異的に結合する抗体。
【請求項４】
配列番号１のアミノ酸配列、または配列番号１のアミノ酸配列において１〜10個のアミノ酸の付加、欠失もしくは保存的な置換を有するアミノ酸配列からなり、かつMIP−１αと結合し、トランスフェクションされた293細胞内にCa2+流を生じさせることができるポリペプチドをコードする核酸分子。
【請求項５】
配列番号８に記載の核酸分子の、25塩基以上の断片を含むDNA。
【請求項６】
核酸分子に機能的に結合しているプロモーターをも含む請求項４に記載の核酸分子。
【請求項７】
プロモーターがＣ−C CKR−１に対して異種である請求項６に記載の核酸分子。
【請求項８】
請求項４に記載の核酸分子を含む発現ベクターであって、該ベクターで形質転換された宿主細胞により認識される制御配列に機能的に結合されているベクター。
【請求項９】
請求項８に記載のベクターを用いて形質転換された宿主細胞。
【請求項１０】
Ｃ−C CKR−１核酸の存在を測定する方法であって、配列番号８の連続する25塩基以上の核酸配列またはその相補配列を有する核酸を、核酸試験サンプルにハイブリダイズさせてＣ−C CKR−１核酸の存在を決定することからなる方法。
【請求項１１】
核酸試験サンプルを増幅する方法であって、配列番号８の連続する25塩基以上の核酸配列またはその相補配列を有する核酸を用いて核酸ポリメラーゼ反応をプライミングすることを含む方法。
【請求項１２】
請求項１に記載のＣ−C CKR−１ポリペプチドと、薬学的に許容し得る担体を含み、サイトカイン−介在性炎症の治療に用いるための医薬組成物。
【請求項１３】
請求項３に記載の抗体および薬学的に許容し得る担体を含み、抗炎症薬として、または他のPF4スーパーファミリー介在性疾患の治療に用いるための医薬組成物。
【請求項１４】
Ｃ−C CKR−１に対して異種のポリペプチドに融合された請求項１に記載のＣ−C CKR−１ポリペプチドを含む単離されたポリペプチド。
【請求項１５】
以下の（ａ）および（ｂ）から選択される、単離されたDNA。
（ａ）配列番号８に記載のヌクレオチド配列を有するDNA。
（ｂ）上記（ａ）に記載のヌクレオチド配列からなるDNAと相補的なヌクレオチド配列からなるDNAとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、MIP−１αと結合し、トランスフェクションされた293細胞内にCa2+流を生じさせることができるポリペプチドをコードする単離されたDNA。
【請求項１６】
単離されたDNAの供給源由来の別のポリペプチドをコードするゲノムDNAを含まない、請求項15に記載の単離されたDNA。
【請求項１７】
配列番号１ に記載のアミノ酸配列を有するポリペプチドをコードするものである、請求項15に記載の単離されたDNA。
【請求項１８】
配列番号８に記載のDNAによりコードされているポリペプチドまたは該ポリペプチドから１〜10個のアミノ酸の付加、欠失もしくは保存的な置換により誘導されるポリペプチドであって、かつMIP−１αと結合し、トランスフェクションされた293細胞内にCa2+流を生じさせることができるポリペプチド。
【請求項１９】
cDNAである、請求項15に記載の単離されたDNA。
【請求項２０】
ゲノムDNAである、請求項15に記載の単離されたDNA。
【請求項２１】
請求項４に記載の核酸分子で宿主細胞を形質転換し、宿主細胞を培養してその表面にレセプターを発現させ、細胞を採収し、該細胞をＣ−Ｃケモカイン変異体と接触させ、レセプター上で変異体の生物学的活性を測定することからなる、Ｃ−C CKR−１に対するＣ−Ｃケモカイン変異体の生物学的活性を測定する方法。
【発明の詳細な説明】
本発明は、サイトカインレセプター、それらの抗体ならびに診断および治療薬としてのそれらの使用の分野に関する。
発明の背景
サイトカインは、炎症性および免疫関連のエフェクター細胞に影響を与える生物学的分子である。炎症性サイトカインまたは「ケモカイン」は、選択的白血球走化性および活性化を含む様々な生物学的性質を有する。これらケモカインは、最初の２つの保存性システイン残基が介在アミノ酸により分離されているかどうか（Ｃ−Ｘ−Ｃまたはα）、またはそれらが隣接しているかどうか（Ｃ−Ｃまたはβ）に基づいて２つのクラスに分けられるスーパーファミリー（また、文献中でPF4スーパーファミリーまたはインタークライン（intercrine）として示される）を形成する。Ｃ−Ｘ−Ｃクラス構成員には、例えばインターロイキン−８（IL−８）、メラニン細胞成長刺激因子（MGSA）、および血小板因子４（PF4）が含まれるが、Ｃ−ＣクラスにはRANTES（活性化における調節、正常Ｔ発現および分泌）および単球走化性ペプチド−１（MCP−１）が含まれる。Ｃ−Ｘ−Ｃクラスは主に好中球上でのそれらの作用を通じて前炎症活性を発揮するが、Ｃ−Ｃクラスは単球化学誘引物質であると考えられる。
このスーパーファミリーにおけるレセプター／リガンド相互作用に大きな注意が集められており、Ｃ−ＣよりもＣ−Ｘ−Ｃケモカイン結合に利用可能なデータが多く存在する。標的炎症細胞上でケモカインレセプター／リガンド相互作用が厳密に調節されるようであることが明らかになっている。例えば、単球または好中球のどちらにおいても、Ｃ−Ｘ−ＣまたはＣ−Ｃ分科の構成員の間に結合部位に対するいかなる交差競合も観察されておらず［Leonard,E.J.ら，Immunol.Today 11:97−101（1990）;Samanta,A.K.ら，J.Exp.Med.,169:1185−1189（1989）;Yoshimura,T.ら，J.Immunol.,145:292−７（1990）］、これら２細胞型に対して示差的な化学誘引物質作用と一致する。Ｃ−Ｃケモカインについての直接的な結合データは驚くほど乏しい。ヒトMCP−１は、単球に約2nMの親和性で結合するが、好中球上では検出可能ないかなる部位も存在しないことが報告されている［Valente,A.J.ら，Biochem.Biophys.Res.Commun.,176:309−14（1991）;Yoshimura,T.ら，J.Immunol.,145:292−７（1990）］。１つの報告は、PBMC上の7,000〜45,000の部位に7.8〜12nMの親和性で結合するヒトAct−２、ヒトMIP−１β（HuMIP−１β）変異体を示している［Napolitano,M.ら，J.Exp.Med.,172:285−289（1990）］。Kwonらは、ネズミＴ細胞およびマクロファージセルライン上でのネズミMIP−１αの結合を特性化し、各々のKdが1.5および0.9nMであることを見いだした［Oh,K.O.ら，J.Immunol.,147:2978−83（1991）］。
白血球運動性に関する分子の詳細のほとんどは解明すべきものとして残されている。しかし、最近、アナフィラトキシンC5aに対するレセプター［Gerard,N.P.ら，Nature,349:614−７（1991）］、細菌性ホルミル化トリペプチドfMLP［Boulay,F.ら，Biochemistry,29:11123−11133（1990）］、およびＣ−Ｘ−ＣケモカインIL−８［Holmes,W.E.ら，Science 253:1278−80（1991）;Murphy,P.M.ら，Science,253:1280−３（1991）］が分子手法を用いてクローン化された。これらレセプターの全ては、一連の細胞内および細胞外ループにより結合されている７−トランスメンブラン−伸張セグメントを含有している構造に従うことが予想されるアミノ酸配列を示す。これらレセプターの一次配列は、細胞運動性に関係したレセプターにおいて保存されているが、他の７−トランスメンブラン−伸張−レセプターにおいは保存されていないドメインを明らかにした。
従って、本発明の目的は、治療または診断試薬として用いるための単離されたＣ−Ｃケモカインレセプター（Ｃ−C CKR−１）を提供することである。
本発明の別の目的は、アンタゴニストまたはアゴニストとして用いるためのＣ−C CKR−１の変異体を作成することである。
本発明の別の目的は、診断または治療薬として用いるためのＣ−C CKR−１に対する抗体を生成させることである。
本発明の別の目的は、新規なケモカインレセプターを同定するための方法を提供することである。
発明の要旨
本発明の１つの態様は、新規なケモカインレセプター、Ｃ−C CKR−１の単離である。
別の態様において本発明は、Ｃ−C CKR−１が由来する動物種の夾雑物としてのポリペプチドを含まないＣ−C CKR−１を含む組成物を提供する。
本発明の別の態様において、Ｃ−C CKR−１またはそのフラグメント（化学的方法により合成することもできる）を免疫原性ポリペプチドに融合し（組換え発現またはインビトロ共有結合法により）、次いでこの融合ポリペプチドを用いて動物を免疫し、Ｃ−C CKR−１エピトープに対する抗体を産生させる。抗−Ｃ−C CKR−１抗体を免疫動物の血清から回収する。また、通常の様式で免疫動物の細胞からモノクローナル抗体を調製する。
本発明の別の態様は、（不溶性マトリックス上に固定させた場合に）それに結合するケモカインレセプターの精製または（インビトロまたはインビボでの）診断における抗Ｃ−C CKR−１抗体の使用である。
本発明の別の態様は、特にＣ−C CKR−１もしくはその抗体の診断の目的のための、またはＣ−C CKR−１抗体自体のアフィニティー精製のための、固定化Ｃ−C CKR−１およびラベル化Ｃ−C CKR−１を調製するためのインビトロでのＣ−C CKR−１の誘導体化である。
本発明の別の態様は、特に治療的使用のための生理学的に許容し得る媒体へのＣ−C CKR−１、その誘導体、またはその抗体の製剤化である。このような媒体には、Ｃ−C CKR−１の持続放出製剤が含まれる。
さらに別の態様において本発明は、Ｃ−C CKR−１をコードする単離された核酸分子であってラベル化または非ラベル化分子、およびＣ−C CKR−１をコードする核酸配列に相補的であるまたは規定された条件下で該配列にハイブリダイズする核酸配列を提供する。
さらに本発明は、ベクターにより形質転換された宿主により認識される制御配列に機能的に結合されてるＣ−C CKR−１をコードする核酸分子を含む複製可能なベクター；ベクターを用いて形質転換された宿主細胞；およびＣ−C CKR−１をコードする核酸分子を用いてＣ−C CKR−１の産生をもたらす方法であって、形質転換された宿主細胞の培養において該核酸分子を発現させ、宿主細胞培養物からＣ−C CKR−１を回収することからなる方法を提供する。また、該核酸配列はＣ−C CKR−１核酸に対するハイブリダイゼーションアッセイにおいて有用である。
本発明の別の態様は、非天然グリコシル化を有する変異体を含む、Ｃ−C CKR−１アミノ酸および／またはグリコシル残基の置換、欠失または挿入変異体である。これら変異体をインビトロまたは組換え法により調製する。配列変異体を、所望によりＣ−C CKR−１との免疫交差反応性についておよびＣ−C CKR−１アンタゴニストまたはアゴニスト活性についてスクリーニングする。
本発明の別の態様は、新規なＣ−Ｃケモカインレセプターを同定するための方法である。
本発明の別の態様は、Ｃ−C CKR−１に対するＣ−Ｃケモカイン変異体の生物学的活性を測定するための方法であって、Ｃ−C CKR−１をコードしているDNAで宿主細胞を形質転換し、宿主細胞を培養してその表面にレセプターを発現させ、細胞を採収し、細胞をＣ−Ｃケモカイン変異体と接触させ、レセプター上での変異体の生物学的活性を測定することによる方法である。
さらに別の態様において、本発明は、別の種由来のＣ−C CKR−１を含むトランスジェニック動物、Ｃ−C CKR−１が通常見られない組織において発現される動物またはＣ−C CKR−１が例えば遺伝子破壊により不活性化されている動物を提供する。
【図面の簡単な説明】
図１（配列番号:1〜７）は、Ｃ−C CKR−１の推定アミノ酸配列およびHUMSTSR（Genbank受け入れ番号M99293）、IL8rA［Holmes,W.E.ら，Science,253:1278−80（1991）］、IL8rB［Murphy,P.M.ら，Science,253:1280−３（1991）］、C5aレセプター［Gerard,N.P.ら，Nature,349:614−７（1991）］、fMLPレセプター［Boulay,F.ら，Biochemistry,29:11123−11133（1990）］およびサイトメガロウイルスの読み取り枠、US28と推定アミノ酸配列の整列を示す。７つの推定トランスメンブラン伸張ドメインに上線を引いている。グリコシル化部位を配列上の黒丸で示す。ジスルフィド結合に関与する２つのシステイン残基を星印で示す。プロテインキナーゼＣリン酸化のための共通部位を「＋」で示す。整列中に２回より多く現れる保存性アミノ酸を枠で囲んでいる。
図２は、Ｃ−C CKR−１でプローブした造血細胞由来のRNAのノーザンブロット分析を示す。示したセルライン由来の５μｇのぽりA+または20μｇの全RNAを、１％ホルムアルデヒド−アガロース上でサイズ分画し、ニトロセルロースに移し、放射性ラベルしたＣ−C CKR−1 cDNAとハイブリダイズさせた。フィルターを0.5X SSC、0.1％SDSを用いて55℃で洗浄し、オートラジオグラフィーは増強スクリーンを用いた−70℃で４〜６時間の露光後に現像した。またRNA分子量マーカーをゲル上で流し、端に示す。
図3Aおよび3Bは、Ｃ−C CKR−１でプローブしたヒトゲノムDNAのサザンブロット分析を示す。図3Aにおいて、示した制限酵素を用いて10μｇのゲノムDNAを消化し、0.6％アガロースゲル上に流し、GenescreenR上にブロットして放射性ラベル化Ｃ−C CKR−1 cDNAとハイブリダイズさせた。フィルターは0.5X SSC、0.1％SDSを用いて55℃で洗浄し、オートラジオグラフィーは増強スクリーンを用いた−70℃で一晩の暴露後に現像した。またRNA分子量マーカーをゲル上で流し、端に示す。図3Bにおいて、同じブロットを0.2X SSC、0.1％SDSを用いて60℃で一層ストリンジェントに洗浄し、オートラジオグラフィーを上で示したように行った。
図4Aおよび4Bは、Ｃ−C CKR−1 cDNAでトランスフェクションされ、ヒトMIP−１α（HuMIP−１α）およびRANTESで刺激された293細胞の細胞内Ca++濃度を示すグラフである。図4Aにおいて、50％集密的細胞をカルシウム−リン酸塩沈殿法により10〜20μｇのプラスミドDNAでトランスフェクトした。12〜24時間の一過性発現後に、細胞を採収し、カルシウムプローブINDO−1 AMを付加して分光蛍光法により37℃で連続的に攪拌しながらアッセイした。示したような様々な濃度のHuMIP−１αを12秒後に加えた。Ca++の細胞内濃度は開示されているように測定した［Naccache,P.H.ら，J.Immunol.,142:2438−44（1989）］。図4Bにおいて、示したように様々な濃度のRANTESを用いたこと以外の詳細は図4Aについてのものと同じであった。
図5A〜5Dは、Ｃ−C CKR−１を一過性発現している293細胞による同じまたは異なるリガンドの刺激に反応した感度抑制を示すグラフである。詳細は図４において記載したものと同じである。トランスフェクト細胞を12秒に100nMのHuMIP−１αまたは250nMのRANTESで最初に刺激し、次いで70秒に示した順に同じ濃度のリガンドで刺激した。
図6Aおよび6Bは、Ｃ−C CKR−1 cDNAでトランスフェクトされた293細胞上での125I−HuMIP−１αおよび125I−RANTESの結合を示すグラフである。図6Aにおいて、ヒト胎児腎臓細胞（293細胞）を図４で記載したように10〜20μｇのプラスミドDNAでトランスフェクトした。トランスフェクト細胞を上昇濃度の非ラベル化HuMIP−１αの存在下で125I−HuMIP−１αと共に４℃で２時間インキュベートした。挿入図は結合データのスキャッチャード分析を示し、Ｃ−C CKR−１に対する125I−MIP−１αのKdが5.1±0.3nMであることを明らかにした。図6Bは、Ｃ−C CKR−1 cDNAでトランスフェクトされた293細胞上での非ラベル化HuMIP−１αを用いた125I−RANTESの置換を示す。結合データのスキャッチャード分析は、Ｃ−C CKR−１に対する125I−RANTESの置換についてのKdが7.6±1.5nMであることを明らかにした。
図７は、Ｃ−C CKR−1 cDNAでトランスフェクトされた293細胞に対する125I−HuMIP−１α結合の置換を示すグラフである。図４において概説したように細胞をトランスフェクトし、上昇濃度の交差競合リガンド、HuMIP−１α、ネズミMIP−１α、HuMIP−１β、MCP−１およびIL−８の存在下、125I−HuMIP−１αと共に４℃で２時間インキュベートした。左下隅に示したKdおよび部位の数は、結合データのスキャッチャード分析により決定した。
図８は、Ｃ−C CKR−１を一過性発現しており、HuMIP−１α、RANTES、HuMIP−１βおよびMCP−１で刺激された293細胞の細胞内Ca++濃度を示すグラフである。詳細は図４において記載した通りである。
図９（配列番号:8）は、Ｃ−C CKR−１およびその3'非コード領域のヌクレオチド配列である。
図10は、サイトメガロウイルス（CMV）ゲノムにおける読み取り枠US28のコード領域でトランスフェクトされた293細胞に対する放射性ラベルしたHuMIP−１αの結合を示すグラフである。293細胞を、US28のコード配列を含む発現構築物を用いてセンスまたはアンチセンス配向でトランスフェクトした。12時間後、細胞を採収し、非ラベル化HuMIP−１α、ネズミMIP−１β、MCP−１、RANTESまたはIL−８のいずれかの１μＭと組み合わせた0.9nMの125I−HuMIP−１αと共にインキュベートした。あらゆるコールドリガンドの不在下で結合した125I−HuMIP−１αの量を、コールドリガンドの存在下で結合した量から引くことにより、置換可能な125I−HuMIP−１αの量を測定した。バックグラウンドは、US28のアンチセンス配向でトランスフェクトされた細胞から得た数値を示す。
発明の詳細な説明
A.定義
通常、以下の用語または語句は、説明、実施例および請求の範囲において用いた場合には以下に示す定義を有する。
「Ｃ−C CKR−１」は、そのアミノ酸配列または細胞性類似体、対立遺伝子、予め決定されたアミノ酸配列突然変異体、グリコシル化変異体および共有結合修飾と共に以下に記載するケモカインレセプターである。Ｃ−C CKR−１の態様は、特に上記の背景の部に示した既知のケモカインレセプター、およびこのようなケモカインレセプターから法的に明らかであるケモカインレセプターを除外する。
「オーファン（orphan;親のない）レセプター」は、既知のサイトカインレセプター核酸配列またはサイトカインレセプターに対して構造的類似性を有するようである他の既知の配列から設計されたプローブに低ストリンジェンシー条件下でハイブリダイズする核酸、またはこのように設計されたPCRプライマーにより検出可能な核酸によりコードされる推定ポリペプチドであって、当分野で以前に知られていない推定ポリペプチドとして定義される。
「Ｃ−C CKR−１質的生物学的活性」は、精製されたＣ−C CKR−１の少なくとも１個のエピトープとの免疫学的交差反応性として定義される。
「免疫学的交差反応性」とは、天然のＣ−C CKR−１に対して産生させたポリクローナル抗体または抗血清の各々に対する天然のＣ−C CKR−１の結合を候補ポリペプチドが競合的に阻害し得ることを意味すると解釈される。
「単離されたＣ−C CKR−１核酸またはポリペプチド」とは、天然において通常伴われる少なくとも１の夾雑物（各々、核酸またはポリペプチド）から、例えばＣ−C CKR−１核酸またはポリペプチドのヒト供給源から同定および分離されたＣ−C CKR−１核酸またはポリペプチドである。好ましい態様においてＣ−C CKR−１は、その供給源種のタンパク質に関して純度が薬学的に許容し得るレベルまで単離されるであろう。好ましい態様において、Ｃ−C CKR−１タンパク質は、（１）タンパク質重量が95％以上、そして最も好ましくは重量99％以上まで、（２）本明細書の提出日に市販品として入手可能なアミノ酸配列決定装置によりＮ末端または内部アミノ酸配列の少なくとも15残基を得るのに十分な程度まで、または（３）クーマシー・ブルーまたは好ましくは銀染色を用いる通常の非還元SDSポリアクリルアミドゲル電気泳動（SDS−PAGE）による均一性まで精製されるであろう。少なくとも１成分のＣ−C CKR−１天然環境はこの場合存在しないであろうから、単離されたＣ−C CKR−１は通常は該Ｃ−C CKR−１を発現しない組換え細胞内のインサイトゥにおけるＣ−C CKR−１を含む。単離されたＣ−C CKR−１は、Ｃ−C CKR−１の供給源種とは別種の組換え細胞培養物中のＣ−C CKR−１を含むが、なぜならこのような環境におけるＣ−C CKR−１は供給源ポリペプチドを含まないであろうからである。しかし、通常、単離されたＣ−C CKR−１は少なくとも１つの精製工程により調製されるであろう。
単離されたＣ−C CKR−１核酸は、Ｃ−C CKR−１核酸の天然の供給源において通常伴われる少なくとも１の包含核酸から同定および分離される核酸を包含する。このようにして単離されたＣ−C CKR−１核酸は天然に見られるものとは異なる形または配置で存在する。しかし、Ｃ−C CKR−１をコードしている単離された核酸には、核酸が天然細胞の染色体位置とは異なる位置にあるか、または他の場合には天然に見られるDNA配列とは異なる配列と境界を接しているＣ−C CKR−１を通常発現している細胞中のＣ−C CKR−１核酸が含まれる。
核酸またはポリペプチドを、診断的アッセイの議論において以下にさらに説明および定義するようなラベルを用いて診断的およびプローブの目的のためにラベルしてもよい。
「Ｃ−C CKR−１核酸」は、（ａ）Ｃ−C CKR−１をコードする少なくとも25塩基のゲノムまたはcDNA配列を含有する、（ｂ）Ｃ−C CKR−１をコードするゲノムまたはcDNA配列に相補的である、（ｃ）このような核酸にハイブリダイズしてストリンジェントな条件下でそれに安定に結合し続ける、または（ｄ）ポリペプチドの全長にわたってＣ−C CKR−１のアミノ酸配列と少なくとも50％、好ましくは少なくとも60％、さらに好ましくは少なくとも70％の配列同一性を共有するポリペプチドであって少なくとも１つのＣ−Ｃケモカインに結合する能力を有するポリペプチドをコードするRNAまたはDNAとして定義される。好ましくは、ハイブリダイズするRNAまたはDNAは、以下に記載するＣ−C CKR−１をコードする配列に同一である少なくとも25、より好ましくは40、そしてさらに好ましくは60塩基を含む。最適には、Ｃ−C CKR−１核酸は、Ｃ−C CKR−１をコードする配列またはこのような配列の相補体のみから本質的になる。
ハイブリダイゼーションのための「ストリンジェンシー」条件は、ハイブリダイゼーション反応後の洗浄条件により規定される。通常、ハイブリダイゼーション条件は、20％ホルムアミド、５×SSC（150mM NaCl、15mMクエン酸三ナトリウム）、50mMリン酸ナトリウム（pH7.6）、５×Denhardt溶液、10％硫酸デキストラン、および20μg/mlの変性剪断サケ精子DNAからなる溶液中、42℃で一晩のインキュベーションを用いる条件として規定される。洗浄のための「高ストリンジェンシー」条件は、0.2×SSC、0.1％SDSを55℃で通常用いる条件として定義され、洗浄のための「低ストリンジェンシー」条件は、0.5×SSC、１％SDSを42℃で通常用いる条件として定義される。これらの条件は当分野で周知である。例えば、「分子生物学における最近のプロトコール」,Ausubelら編,Greene Publishing Associates,NY（1989）を参照。
「制御配列」の用語は、特定の宿主生物における機能的に結合されたコード配列の発現に必要なDNA配列を意味する。原核生物に適した制御配列には、例えばプロモータ、所望によりオペレーター配列およびリボソーム結合部位が含まれる。真核細胞は、プロモーター、ポリアデニル化シグナルおよびエンハンサーを使用することが知られている。
核酸は、別の核酸配列と機能的な関係になるよう配置されているとき、「機能的に結合」されている。例えば、プレ配列または分泌リーダーのためのDNAは、それがポリペプチドの分泌に関係するプレタンパク質として発現されるならポリペプチドのためのDNAに機能的に結合されており；プロモーターまたはエンハンサーは、それが配列の転写に影響を及ぼすならコード配列に機能的に結合されており；また、リボソーム結合部位は、それが翻訳を容易にするよう配置されているならコード配列に機能的に結合されている。「機能的に結合」とは、通常、結合されたDNA配列が隣接しており、分泌リーダーの場合には隣接しており読み取り相内にあることを意味する。しかし、エンハンサーは隣接している必要はない。結合は都合のよい制限部位でのライゲーションにより行う。そのような部位が存在しないならば、合成オリゴヌクレオチドアダプターまたはリンカーを常法に従い用いる。
本発明を実施するために用いる出発プラスミドは、市販品として入手可能であるか、非制限的基盤の上で一般に入手可能であるかまたは、公開されている方法に従いこのような入手可能なプラスミドから構築することができる。さらに、他の同等なプラスミドは当分野で知られており、当業者には明らかであろう。制限酵素消化、DNAの回収または単離、ハイブリダイゼーション分析およびライゲーションのための方法は通常のものであり、現在は当業者に周知である。同様に、本発明の実施に用いるセルラインは、市販品として入手可能であるかまたは非制限的基盤の上で一般に入手可能である。
所望の遺伝子を入手するための別法は、Engelsら［Agnew,Chem.Int.Ed.Engl.28:716−734（1989）］が開示している方法のいずれかを用いてそれを化学的に合成する方法である。これらの方法にはトリエステル、亜リン酸エステル、ホスホロアミダイトおよびＨ−ホスホネート法が含まれるが、通常は固相支持体上でのオリゴヌクレオチド合成により進行する。
制限消化物から得られたDNAフラグメントの「回収」または「単離」は、電気泳動によるポリアクリルアミドまたはアガロースゲル上での消化物の分離、その移動度と既知の分子量を有するマーカーDNAフラグメントの移動度の比較による所望のフラグメントの同定、所望のフラグメントを含有しているゲル部分の除去およびDNAからのゲルの分離を意味する。この方法は一般的に知られている。例えば、Sambrookら，「分子クローニング：実験室マニュアル」,Cold Spring Harbor Laboratory Press,Cold Spring Harbor,NY 1989を参照。
アミノ酸は、それらの通常の３文字IUPAC省略形により示す。
B.本発明を実施するための一般的方法
1.天然のＣ−C CKR−１核酸の調製
Ｃ−C CKR−１についての単数冠詞「the」の使用は、１つのDNA配列のみがＣ−C CKR−１をコードすることを示唆しようとするものではない。実際、以下に記載する予め決定された配列変異体、対立遺伝子およびプロセシング中間体は、配列が天然のＣ−C CKR−１をコードするDNAから変化するであろうことが予想される。さらにＣ−C CKR−１は、高度の配列相同性を有するが、対立遺伝子を構成しないことについて十分に変化するケモカインレセプターのサブファミリー内に含まれるであろう。これら配列の全ては、Ｃ−C CKR−１核酸の範囲内に含まれる。
Ｃ−C CKR−１をコードしているDNA配列は、ゲノム性であるかまたはcDNAであってよい。以下に記載するプローブを用いてあらゆる代表的なゲノムライブラリーをスクリーニングすることができる。ゲノムDNA調製およびcDNAライブラリー構築のための方法は、当分野で周知である。例えば、Sambrookら（上記）を参照。
2.Ｃ−C CKR−１のアミノ酸配列変異体
Ｃ−C CKR−１のアミノ酸配列変異体は、適当なヌクレオチド変化をＣ−C CKR−1 DNAに導入することにより、または所望のＣ−C CKR−１ポリペプチドのインビトロ合成により調製する。このような変異体には、例えば天然Ｃ−C CKR−１のアミノ酸配列内の残基からの欠失体、または該残基の挿入体または置換体が含まれる。最終の構築物が所望の特徴を有しているならば、欠失、挿入、および置換の任意の組み合わせを行って最終の構築物に到達することができる。
さらにアミノ酸変化により、Ｃ−C CKR−１の翻訳後プロセシングの改変、例えばグリコシル化部位の数もしくは位置の変化またはその膜アンカー特性の改変などが可能である。
Ｃ−C CKR−１のアミノ酸配列変異体の設計において、突然変異部位の位置および突然変異の性質は、修飾すべきＣ−C CKR−１特性に依存するであろう。突然変異のための部位は、個々にまたは連続して、例えば（１）最初に保存的アミノ酸選択物と置換し、次いで達成される結果に依存してより根本的な選択物と置換する、（２）標的残基を欠失させる、または（３）位置する部位に隣接して同じまたは異なるクラスの残基を挿入する、または選択肢１〜３の組み合わせにより修飾することができる。
突然変異誘発のための好ましい位置であるＣ−C CKR−１ポリペプチドの特定の残基または領域を同定するための有用な方法は、CunninghamおよびWells［Science,244:1081−1085（1989）］が開示している「アラニン・スキャニング突然変異誘発」と称される。これによると、標的残基の１残基または１群を同定し（例えば、arg、asp、his、lysおよびgluなどの電荷を有する残基）、細胞内または細胞外においてとりまく水性環境とアミノ酸の相互作用に影響を及ぼすために中性または負の電荷を有するアミノ酸（最も好ましくはアラニンまたはポリアラニン）と置換する。次いで置換に対して機能的感受性を示しているドメインを、置換部位にまたは置換部位のために、追加のまたは他の変異体を導入することにより改良する。このようにして、アミノ酸配列変異体を導入するための部位は予め決定するが、突然変異の性質は本質的に予め決定する必要はない。例えば、特定部位での突然変異の実行を最も効果的にするために、標的コドンまたは領域でアラニン・スキャニングまたはランダム突然変異誘発を行い、所望の活性を有する最適な組み合わせについて、発現されたＣ−C CKR−１変異体をスクリーニングする。
Ｃ−C CKR−１変異体は、少なくとも親配列の生物学的活性、例えばケモカイン結合または抗原活性を呈するであろう。好ましくは、抗原的に活性なＣ−C CKR−１は、その天然コンホメーション［「天然コンホメーション」とは通常、カオトロピック物質、熱またはポリペプチドの三次元構造を実質的に修飾する他の処理により変性されていない（これは、例えば非還元、非変性化サイジングゲル上での移動により測定することができる）天然に見られるポリペプチドを意味する］にあるポリペプチドに対して産生された抗体に結合するポリペプチドである。抗原活性の測定に用いる抗体は、天然の非ウサギポリペプチドを完全フロイントアジュバント中に製剤化し、この製剤を皮下注射し、製剤の腹腔内注射により抗−ポリペプチド抗体の力価がプラトーに達するまで免疫応答を高めることにより産生させたウサギポリクローナル抗体である。
アミノ酸配列欠失は、通常約１〜30残基、より好ましくは約１〜10残基の範囲であり、隣接しているのが普通である。好ましくは、欠失はＣ−C CKR−１アミノ酸配列を他のケモカインレセプターと比較した場合に最も保存性が低いタンパク質の領域中に作成する。このような欠失はおそらく、他の場所でなされる欠失より有意にポリペプチドの生物学的活性を修飾するであろう。連続的な欠失の数は、影響されるドメインにおいてＣ−C CKR−１の三次構造、例えばβプリーツシートまたはαヘリックスを保存するよう選択されるであろう。
アミノ酸配列挿入体には、１残基から100またはそれ以上の残基を有するポリペプチドまでの範囲の長さのアミノおよび／またはカルボキシル末端融合物、ならびに１または多数のアミノ酸残基の配列内挿入体が含まれる。配列内挿入体（すなわち、Ｃ−C CKR−１配列内の挿入体）は、通常、約１〜10残基の範囲にあり、より好ましくは１〜５、最も好ましくは１〜３であろう。
Ｃ−C CKR−１の挿入変異体またはその細胞外セグメントには、免疫原性ポリペプチド、例えばβラクタマーゼまたはE.coli trp遺伝子座によりコードされる酵素などの細菌性ポリペプチド、または酵母タンパク質のＣ−C CKR−１のＮまたはＣ末端への融合物、および例えば免疫グロブリンのVHまたはVCドメインの代わりに定常領域、アルブミン、またはフェリチンなどを含む長い半減期を有するタンパク質とのＣ末端融合物が含まれる［例えば、WO 89/02922（1989年４月６日公開）に開示されている］。
変異体の別の群はアミノ酸置換変異体である。これら変異体では、Ｃ−C CKR−１分子中の少なくとも１個のアミノ酸残基が除去されて、異なる残基がその場所に挿入されている。置換突然変異誘発に対して最も大きな興味のある部位には、Ｃ−C CKR−１の活性部位として同定される部位、および様々な種由来のＣ−C CKR−１において見られるアミノ酸が側鎖の大きさ、電荷および／または疎水性の点で大きく異なる部位が含まれる。
興味のある他の部位は、他のケモカインレセプターと比較した場合にＣ−C CKR−１の特定残基が保存されている部位である。これらの位置は、Ｃ−C CKR−１の生物学的活性のために重要であるかもしれない。これらの部位、特に少なくとも３つの他の同一に保存された部位の配列内にある部位は、比較的保存的な様式で置換される。このような保存的置換を、好ましい置換という表題の下に表Ｉに示す。このような置換の結果、生物学的活性における変化が起こるなら、次いで表Ｉに例示的置換と称するまたはアミノ酸クラスについて以下にさらに説明するさらに本質的な変化を導入して生成物をスクリーニングする。
0003664176.tif 000002
Ｃ−C CKR−１の機能または免疫学的同一性における実施的な修飾は、（ａ）置換領域内のポリペプチドの背骨構造、例えばシートまたはヘリックスのコンホメーションなど、（ｂ）標的部位の分子の電荷または疎水性、または（ｃ）側鎖の大きさを維持することに対するそれらの効果が有意に異なる置換基を選択することにより行う。天然に存在する残基は、側鎖の一般特性に基づいて次の群に分けられる：
（１）疎水性：ノルロイシン、met、ala、val、leu、ile;
（２）中性の親水性:cys、ser、thr;
（３）酸性:asp、glu;
（４）塩基性:asn、gln、his、lys、arg;
（５）鎖の配向に影響を与える残基:gly、pro;および
（６）芳香族性:trp、tyr、phe。
非保存的置換は、これらのクラスのいずれかの構成員と別のクラスの構成員の交換を必然的に伴うであろう。このような置換残基は、他のケモカインレセプターと相同なＣ−C CKR−１の領域中に、またはより好ましくは該分子の非相同な領域中に導入することができる。
Ｃ−C CKR−１の適正なコンホメーションの維持に関与しない任意のシステイン残基は、該分子の酸化的安定性を改善して異常な架橋を妨げるために通常、セリンと置換することができる。
Ｃ−C CKR−１のアミノ酸配列変異体をコードしているDNAは、当技術分野で知られている様々な方法により調製する。これらの方法には、天然源からの単離（天然に存在するアミノ酸配列変異体の場合）またはオリゴヌクレオチド−介在性（または部位指向性）突然変異誘発による調製、PCR突然変異誘発、およびＣ−C CKR−１の初期に調製された変異体または非変異体のカセット突然変異誘発が含まれるが、これらに限定されない。これらの方法ではＣ−C CKR−１核酸（DNAまたはRNA）、またはＣ−C CKR−１核酸に相補的な核酸を使用することができる。オリゴヌクレオチド−介在性突然変異誘発は、Ｃ−C CKR−1 DNAの置換、欠失および挿入変異体を調製するための好ましい方法である。この方法は当分野で周知である［例えば、Adelmanら［DNA,2:183（1983）］が開示しているものを参照］。さらにPCR突然変異誘発は、Ｃ−C CKR−１のアミノ酸変異体を作成するのに適している［Erlich,上記,pp.61−70を参照］。変異体を調製するための別法、カセット突然変異誘発は、Wellsらが開示している方法に基づいている［Gene 34:315−323（1985）］。
3.クローニング媒体へのDNAの挿入
天然または変異体Ｃ−C CKR−１をコードしているcDNAまたはゲノムDNAを、一層のクローニング（DNAの増幅）または発現を行うために複製可能なベクターに挿入する。多くのベクターが利用可能であり、適当なベクターの選択は、１）DNA増幅に用いるのかまたはDNA発現のために用いるのか、２）ベクターに挿入すべきDNAのサイズ、３）ベクターにより形質転換すべき宿主細胞に依存するであろう。各々のベクターは、その機能（DNAの増幅またはDNAの発現）および適合性である宿主細胞に依存する様々な成分を含む。通常のベクター成分には、以下に示す１またはそれ以上の成分が含まれるがそれらに限定はされない：シグナル配列、複製起点、１またはそれ以上のマーカー遺伝子、エンハンサー要素、プロモーターおよび転写終結配列。
a.シグナル配列成分
通常、シグナル配列はベクターの成分であってよいし、また、ベクター中に挿入されるＣ−C CKR−1 DNAの一部であってもよい。
b.複製起点成分
発現およびクローニングベクターの両方は、１またはそれ以上の選択された宿主細胞中でのベクターの複製を可能にする核酸配列を含む。通常、クローニングベクターにおいて、この配列は宿主染色体DNAとは独立したベクターの複製を可能にする配列であり、複製起点または自立的に複製する配列を含む。このような配列は、様々な細菌、酵母およびウイルスについて周知である。プラスミドpBR322由来の複製起点は、大部分のグラム陰性菌のために適しており、２μプラスミド起点は酵母のために適しており、様々なウイルス起点（SV40、ポリオーマ、アデノウイルス、VSVまたはBPV）は哺乳動物細胞におけるクローニングベクターのために有用である。通常、複製起点成分は哺乳動物発現ベクターのためには必要ではない（通常、初期プロモーターを含むという理由だけでSV40起点を使用することがある）。
大部分の発現ベクターは「シャトル」ベクターであり、すなわちそれらは少なくとも１クラスの生物において複製し得るが発現のために別の生物中にトランスフェクションされ得るベクターである。例えば、ベクターをE.coli中でクローン化し、次いで同じベクターを、たとえそれが宿主細胞染色体とは独立して複製することができないものであっても発現用の酵母または哺乳動物細胞中にトランスフェクションさせる。
さらにDNAを宿主ゲノム中への挿入により増幅させることができる。これは宿主としてBacillus種を用いて、例えばBacillusゲノムDNAにおいて見られる配列に相補的なDNA配列をベクター中に含有させることにより容易に行われる。このベクターを用いたBacillusのトランスフェクションの結果、ゲノムおよびＣ−C CKR−1 DNAの挿入体による相同組換えが生じる。しかし、Ｃ−C CKR−１をコードしているゲノムDNAの回収は、Ｃ−C CKR−1 DNAを切除するために制限酵素消化が必要であるから外因的に複製されたベクターの回収より一層複雑である。
c.選択遺伝子成分
発現およびクローニングベクターは選択遺伝子（選択可能なマーカーとも称される）を含むべきである。この遺伝子は、選択的培養培地中で増殖させる形質転換された宿主細胞の生存または増殖のために必要なタンパク質をコードする。選択遺伝子を含んでいるベクターで形質転換されていない宿主細胞は、該培養培地中で生存しないであろう。通常の選択遺伝子は、（ａ）抗生物質または他の毒素、例えばアンピシリン、ネオマイシン、メトトレキセート、またはテトラサイクリンに対する耐性を与えるタンパク質、（ｂ）栄養要求性欠失を補足するタンパク質、または（ｃ）複合培地から得られない重要な栄養素を供給するタンパク質、例えばBacilliに対するＤ−アラニンラセマーゼをコードしている遺伝子を供給するタンパク質をコードする。
選択系の１例は、宿主細胞の増殖を抑止する薬物を用いるものである。異種の遺伝子による形質転換に成功した細胞は、薬物耐性を与えるタンパク質を発現し、ゆえに選択処方に対して生存する。このような優性選択の例は、薬物ネオマイシン［Southernら，J.Molec.Appl.Genet.,1:327−341（1982）］、ミコフェノール酸［Mulliganら，Science,209:1422−1427（1980）］またはハイグロマイシン［Sugdenら，Mol.Cell.Biol.,5:410−413（1985）］を使用するものである。上に挙げた３例は、適当な薬物G418またはネオマイシン（ゲネチシン）、xgpt（ミコフェノール酸）、またはハイグロマイシンの各々に対する耐性を伝達するために、真核性制御の下に細菌遺伝子を使用するものである。
哺乳動物細胞のための適当な選択可能なマーカーの別の例は、Ｃ−C CKR−１核酸の取り込みに対してコンピテントな細胞の同定を可能にするマーカー、例えばジヒドロ葉酸レダクターゼ（DHFR）またはチミジンキナーゼである。哺乳動物細胞の形質転換体を、形質転換体のみがマーカーを取り込んでいるために唯一生存に適合しているという選択圧の下に置く。選択圧は、培地中の選択薬物の濃度が連続的に変化する条件下で形質転換体を培養することにより賦課し、それにより選択遺伝子およびＣ−C CKR−１をコードするDNAの両方の増幅が導かれる。増幅は、増殖に必須なタンパク質の生産をさらに大きく要求する遺伝子が組換え細胞の次の世代の染色体内に直列して反復する過程である。増大した量のＣ−C CKR−１が増幅されたDNAから合成される。
例えばDHFR選択遺伝子で形質転換された細胞は、まずDHFRの競合的アンタゴニストであるメトトレキセート（Mtx）を含む培養培地中で全ての形質転換体を培養することにより同定される。野生型DHFRを用いた場合の適当な宿主細胞はチャイニーズハムスター卵巣（CHO）セルラインであり、これはDHFR活性を欠失しており、UrlaubおよびChasin［Proc.Natl.Acad.Sci.USA,77（７）:4216−4220（1980）］が開示しているように調製し、増殖させる。次いでこの形質転換細胞を、増加濃度のメトトレキセートに暴露する。これによりDHFR遺伝子の多数のコピー、および同時に、発現ベクターを含む他のDNA、例えばＣ−C CKR−１をコードしているDNAの多数のコピーの合成が導かれる。例えばMtxに対して耐性が高い突然変異DHFR遺伝子を用いるときには、内因性DHFRの存在にもかかわらず、この増幅法を任意の他の点では適当な宿主、例えばATCC No.CCL61 CHO−K1と共に用いることができる（EP 117,060）。別法では、Ｃ−C CKR−１、野生型DHFRタンパク質、およびアミノグリコシド3'ホスホトランスフェラーゼ（APH）などの別の選択可能なマーカーをコードしているDNA配列を用いて形質転換または同時形質転換した宿主細胞（特に内因性DHFRを含有する野生型宿主）をアミノグリコシド系抗生物質、例えばカナマイシン、ネオマイシンまたはG418などの選択可能なマーカーのための選択薬物を含んでいる培地中での細胞増殖により選択することができる。
酵母において使用するための適当な選択遺伝子は、酵母プラスミドYRp7に存在するtrp1遺伝子である［Stinchcombら，Nature,282:39−43（1979）;Kingsmanら，Gene,7:141−152（1979）；またはTschemperら，Gene,10:157−166（1980）］。このtrp1遺伝子はトリプトファン中で増殖する能力を欠いている酵母の変異体株、例えばATCC No.44076のための選択マーカーを提供する。次いで、酵母宿主細胞ゲノムにおけるtrp1損傷の存在は、トリプトファン不在下の増殖による形質転換の検出のための効果的な環境を提供する。同様に、Leu2欠失酵母株（ATCC 20,622または38,626）は、Leu2遺伝子を有している既知のプラスミドにより補足される。
e.プロモーター成分
発現ベクターは、通常、宿主生物により認識されてＣ−C CKR−１核酸に機能的に結合されるプロモーターを含有する。プロモーターは、それらが機能的に結合している特定の核酸配列、例えばＣ−C CKR−１の転写および翻訳を制御する構造遺伝子の出発コドンの上流（5'）（通常約100〜1000bp以内）に位置する非翻訳配列である。このようなプロモーターは、通常は２つのクラス、誘導性プロモーターおよび構成性プロモーターに分類される。誘導性プロモーターとは、培養条件における若干の変化、例えば栄養素の存在もしくは不在または温度変化に応じて、それらの制御下にDNAからの増大レベルの転写を開始させるプロモーターである。現在、様々な可能性ある宿主細胞により認識される多数のプロモーターが周知である。これらのプロモーターは、制限酵素消化によりDNA源からプロモーターを取り、単離されたプロモーター配列をベクターに挿入することにより、Ｃ−C CKR−１をコードしているDNAに機能的に結合される。天然のＣ−C CKR−１プロモーター配列および多くの異種プロモーターの両方を用いて、Ｃ−C CKR−1 DNAの増幅および／または発現を指令することができる。しかし、異種プロモーターは通常、天然のＣ−C CKR−１プロモーターに比べて、より大きな転写および発現されるＣ−C CKR−１のより高い収量を可能にするので好ましい。
原核性宿主と共に使用するために適したプロモーターには、β−ラクタマーゼおよびラクトースプロモーター系［ChangらNature,275:617−624（1978）；およびGoeddelら，Nature,281:544−548（1979）］、アルカリホスファターゼ、トリプトファン（trp）プロモーター系［Goeddelら，Nucleic Acids Res.,8（18）:4057−4074（1980）およびEP 36,776］およびtacプロモーターなどの雑種プロモーター［deBoerら，Proc.Natl.Acad.Sci.USA,80:21−25（1983）］が含まれる。しかし、他の既知の細菌性プロモーターも適している。これらのヌクレオチド配列は公開されており、それにより、当業者は任意の必要な制限部位を供給するためのリンカーまたはアダプターを用いてＣ−C CKR−１をコードしているDNAにこれらを機能的にライゲートすることが可能である［Siebenlistら，Cell,20:269−281（1980）］。また、細菌系において使用するためのプロモーターは、通常、Ｃ−C CKR−１をコードしているDNAに機能的に結合されるShine−Dalgarno（S.D.）配列を含むであろう。
酵母宿主と共に使用するための適当なプロモーター配列には、３−ホスホグリセリン酸キナーゼ［Hitzemanら，J.Biol.Chem.,255（24）:12073−80（1980）］または他の解糖酵素［Hessら，J.Adv.Enzyme Reg.,7:149−67（1968）；およびHolland,Biochemistry,17:4900−4907（1978）］、例えばエノラーゼ、グリセルアルデヒド−３−リン酸デヒドロゲナーゼ、ヘキソキナーゼ、ピルビン酸脱炭素酸酵素、ホスホフルクトキナーゼ、グルコース−６−リン酸イソメラーゼ、３−ホスホグリセリン酸ムターゼ、ピルビン酸キナーゼ、トリオースリン酸イソメラーゼ、ホスホグルコースイソメラーゼ、およびグルコキナーゼに対するプロモーターが含まれる。
増殖条件により転写が制御される付加的な利点を有する誘導性プロモーターである他の酵母プロモーターは、アルコールデヒドロゲナーゼ２、イソチトクロムＣ、酸性ホスファターゼ、窒素代謝に関連する分解酵素、メタロチオネイン、グリセルアルデヒド−３−リン酸デヒドロゲナーゼ、およびマルトースおよびガラクトース利用を担う酵素のためのプロモーター領域である。酵母の発現において使用するための適当なベクターおよびプロモーターは、さらにHitzemanら（EP 73,657A）が開示している。また、酵母エンハンサーは酵母プロモーターと共に有利に用いられる。
真核生物のためのプロモーター配列は知られている。実質的に全ての真核性遺伝子は転写が開始される部位から約25〜30塩基上流に位置するAT−豊富な領域を有する。多くの遺伝子の転写開始部位から70〜80塩基上流に見られる別の配列は、CXCAAT（Ｘはどのヌクレオチドであってもよい）領域である。ほとんどの真核性遺伝子の3'末端にはコード配列の3'末端へのポリＡ尾部の添加のためのシグナルであり得るAATAAA配列が存在する。これら全ての配列を哺乳動物発現ベクター中に適当に挿入する。
哺乳動物宿主細胞におけるベクターからのＣ−C CKR−１の転写は、ウイルス、例えばポリオーマウイルス、ニワトリポックスウイルス［UK 2,211,504（1989年７月５日発行）］、アデノウイルス（アデノウイルス２など）、ウシパピローマウイルス、トリ肉腫ウイルス、サイトメガロウイルス、レトロウイルス、肝炎Ｂ型ウイルスおよび最も好ましくはシミアン・ウイルス40（SV40）のゲノムから、異種の哺乳動物プロモーター、例えばアクチンプロモーターまたは免疫グロブリンプロモーターから、熱ショックプロモーターから、そしてＣ−C CKR−１配列に通常伴われるプロモーターから得られるプロモーターにより、これらのプロモーターが宿主細胞系と適合性であるなら制御される。
SV40ウイルスの初期および後期プロモーターは、通常、SV40ウイルス性複製起点も含むSV40制限フラグメントとして得られる［Fiersら，Nature 273:113−120（1978）;MulliganおよびBerg,Science,209:1422−1427（1980）;Pavlakisら，Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,78:7398−7402（1981）］。ヒトサイトメガロウイルスの即時型初期プロモーターは、Hind III E制限フラグメントとして好都合に得られる［Greenawayら，Gene,18:355−360（1982）］。哺乳動物宿主においてウシパピローマウイルスをベクターとして用いてDNAを発現させるための系が、U.S.4,419,446に開示されている。この系の修飾はU.S.4,601,978に開示されている。さらにサル細胞における免疫性インターフェロンをコードしているcDNAの発現についてはGrayら，Nature 295:503−508（1982）、マウス細胞における単純ヘルペスウイルス由来のチミジンキナーゼプロモーターの制御下のヒトβインターフェロンcDNAの発現についてはReyesら，Nature,297:598−601（1982）、培養されたマウスおよびウサギ細胞におけるヒトインターフェロンβ１遺伝子の発現についてはCanaaniおよびBerg,Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,79:5166−5170（1982）、そしてCV−１サル腎臓細胞、ニワトリ胚繊維芽細胞、チャイニーズハムスター卵巣細胞、HeLa細胞、およびマウスNIH−3T3細胞においてプロモーターとしてラウス肉腫ウイルスLTRを使用する細菌性CAT配列の発現についてはGormanら，Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,79:6777−6781（1982）を参照。
f.エンハンサー要素成分
本発明のＣ−C CKR−１をコードしているDNAの高等真核生物による転写は、エンハンサー配列をベクター中に挿入することにより増大することが多い。エンハンサーはDNAのcis作用成分であり、通常約10〜300bpであり、プロモーターに対してその転写を増大させるように作用する。エンハンサーは比較的、配向および位置に無関係であり、転写単位に対して5'［Laiminsら，Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,78:464−８（1981）］および3'［Luskyら，Mol.Cell Bio.,3（６）:1108−1122（1983）］で見いだされており、イントロン内［Banerjiら，Cell,33:729−740（1983）］ならびにコード配列自体の中［Osborneら，Mol.Cell Bio.,4（７）:1293−1305（1984）］に見いだされている。哺乳動物遺伝子（グロビン、エラスターゼ、アルブミン、α−フェトプロテインおよびインスリン）由来の多くのエンハンサー配列が現在知られている。しかし、通常は真核細胞ウイルス由来のエンハンサーが使用されるであろう。その例には、複製起点の後期側のSV40エンハンサー（bp100〜270）、サイトメガロウイルス初期プロモーターエンハンサー、複製起点の後期側のポリオーマエンハンサーおよびアデノウイルスエンハンサーが含まれる。また真核性プロモーターの活性化のためのエンハンサー要素についてはYaniv,Nature,297:17−18（1982）を参照。該エンハンサーは、Ｃ−C CKR−1 DNAに対して5'または3'の位置でベクター中にスプライスされ得るが、プロモーターから5'の部位に位置させるのが好ましい。
g.転写終結成分
真核宿主細胞（酵母、菌類、昆虫、植物、動物、ヒト、または他の多細胞生物由来の有核細胞）において用いられる発現ベクターもまた転写終結のためおよびmRNAを安定化するために必要な配列を含有するであろう。このような配列は、通常、真核性またはウイルス性DNAまたはcDNAの5'および時には3'非翻訳領域から入手可能である。これらの領域は、Ｃ−C CKR−１をコードしているmRNAの非翻訳部分においてポリアデニル化フラグメントとして転写されるヌクレオチドセグメントを含む。さらに3'非翻訳領域は、転写終結部位を含む。
１またはそれ以上の上に列挙した成分、所望のコード配列および制御配列を含む適当なベクターは、通常のライゲーション法を用いて構築する。単離したプラスミドまたはDNAフラグメントを切断し、加工し、そして必要なプラスミドを得るために望ましい形態に再ライゲートする。
構築されたプラスミド中の正しい配列を確認するための分析のために、ライゲーション混合物を用いてE.coli K12株294（ATCC 31,446）を形質転換し、成功した形質転換体をアンピシリンまたはテトラサイクリン耐性の適当な方で選択する。形質転換体由来のプラスミドを調製し、制限エンドヌクレアーゼ消化により分析し、さらに／またはMessingら［Nucleic Acids Res.,9（２）:309−321（1981）］の方法によりまたはMaxamら［Methods in Enzymology,65:499−560（1980）］の方法により配列決定する。
Ｃ−C CKR−１をコードしているDNAの哺乳動物細胞における一過性発現を与える発現ベクターは本発明の実施において特に有用である。通常、一過性の発現には宿主細胞において効率的に複製し得る発現ベクターの使用が含まれ、それにより宿主細胞は発現ベクターの多くのコピーを蓄積し、次いで発現ベクターによりコードされる高レベルの所望のポリペプチドを合成する。適当な発現ベクターおよび宿主細胞を含む一過性発現系は、クローン化DNAによりコードされるポリペプチドの好都合かつ明確な同定、ならびに所望の生物学的または物理学的性質についての該ポリペプチドの迅速なスクリーニングを可能にする。従って、一過性発現系は、Ｃ−C CKR−１様活性を有するＣ−C CKR−１の類似体および変異体を同定する目的のために、およびＣ−C CKR−１に対するケモカイン変異体の結合作用の分析のために本発明において特に有用である。
組換え脊椎動物細胞培養物におけるＣ−C CKR−１の合成に適応させるために適した他の方法、ベクター、および宿主細胞は、Gethingら，Nature,293:620−625（1981）;Manteiら，Nature,281:40−46（1979）;EP 117,060;およびEP 117,058に開示されている。哺乳動物細胞培養物のＣ−C CKR−１の発現のために特に有用なプラスミドは、pRK5（EP pub.no.307,247）またはpSVI6B［U.S.Ser.No.07/441,574（1989年11月22日出願）］である。
4.宿主細胞の選択および形質転換
Ｃ−C CKR−１発現ベクターのクローニングまたは発現のために適した宿主細胞は、原核生物、酵母、または上記の高等真核細胞である。適当な原核生物には、ユーバクテリア、例えばグラム陰性またはグラム陽性生物、例えばE.coli、B.subtilisなどのBacilli、P.aeruginosaなどのPseudomonas種、SalmonellatyphimuriumまたはSerratia marcescensが含まれる。１つの好ましいE.coliクローニング宿主はE.coli 294（ATCC 31,446）であるが、他の株、例えばE.coli B、E.coli x1776（ATCC 31,537）、およびE.coli W3110（ATCC 27,325）も適している。これらの例は説明のための例であって限定しようとするものではない。宿主細胞が極小量のタンパク質分解酵素を分泌するのが好ましい。別法では、インビトロクローニング法、例えばPCRまたは他の核酸ポリメラーゼ反応が適している。
原核生物に加えて、真核微生物、例えば糸状菌または酵母はＣ−C CKR−1 DNAを含有するベクターのための適当な宿主である。Saccharomyces cerevisiaeまたは通常のパン酵母が下等真核宿主微生物の中で最も一般的に用いられる。しかし、他の数多くの属、種および株が一般に入手可能であり、本発明の実施に有用である。これらは、例えば、S.pombe［BeachおよびNurse,Nature,290:140−143（1981）］;Kluyveromyces lactis［Louvencourtら，J.Bacteriol.,154（２）:737−742（1983）］、Pichia pastoris［EP 183,070］、Trichoderma reesia［EP 244,234］、Neurospora crassa［Caseら，Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,76:5259−5263（1979）］、およびAspergillus宿主、例えばA.nidulans［Ballanceら，Biochem.Biophys.Res.Commun.,112:284−289（1983）;Tilburnら，Gene,26:205−221（1983）;Yeltonら，Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,81:1470−1474（1984）］およびA.niger［KellyおよびHynes,EMBO J.,4:475−479（1985）］である。
グリコシル化されたＣ−C CKR−１ポリペプチドの発現のための適当な宿主細胞は多細胞生物から得られる。このような宿主細胞は複雑なプロセシングおよびグリコシル化活性が可能である。主に、脊椎動物または無脊椎動物培養物由来の任意の高等真核細胞培養物を用いることができる。無脊椎動物細胞の例には植物および昆虫細胞が含まれる。多くのバキュロウイルス株および変異株およびSpodoptera frugiperda（イモムシ）、Aedes aegypti（カ）、Aedes albopictus（カ）、Drosophila melanogaster（ショウジョウバエ）、およびBombyx mori宿主細胞などの宿主由来の対応する許容される昆虫宿主細胞が同定されている。例えば、Luckowら，Bio/Technology,6:47−55（1988）;Millerら，Genetic Engineering,Setlow,J.K.ら,8:277−279（Plenum Publishing,1986）；およびMaedaら，Nature,315:592−594（1985）を参照。このような様々なウイルス株、例えばAutographa californica NPVのＬ−１変異株およびBombyx mori NPVのBm−５株は一般に入手可能であり、このようなウイルスは、本発明に従うウイルスとして特にSpodoptera frugiperda細胞のトランスフェクションのために用いることができる。
ワタ、トウモロコシ、ジャガイモ、大豆、ペチュニア、トマトおよびタバコの植物細胞培養物を宿主として用いることができる。通常、植物細胞を、Ｃ−C CKR−1 DNAを含有するように予め操作された細菌Agrobacterium tumefaciensの特定株とインキュベートすることによりトランスフェクションする。植物細胞培養物のA.tumefaciensとのインキュベーション中に、Ｃ−C CKR−１をコードしているDNAは植物細胞宿主に移動し、これにより植物細胞宿主はトランスフェクションされて、適当な条件下でＣ−C CKR−1 DNAを発現する。さらに、植物細胞と適合性である調節およびシグナル配列、例えばノパリンシンターゼプロモーターおよびポリアデニル化シグナル配列が利用可能である。Depickerら，J.Mol.Appl.Gen.,1:561−573（1982）。さらに、Ｔ−DNA 780遺伝子の上流領域から単離されたDNAセグメントは、組換えDNA−含有植物組織において植物−発現可能な遺伝子の転写レベルを活性化または増大させることができる。EP 321,196（1989年６月21日公開）を参照。
しかし、脊椎動物細胞への興味が最も大きくなっており、培養物（組織培養物）における脊椎動物細胞の増殖は近年、通常の方法となっている［Tissue Culture,Academic Press,KruseおよびPatterson編，（1973）］。有用な哺乳動物宿主セルラインの例には、SV40により形質転換されたサル腎臓CVI系統（COS−7,ATCC CRL 1651）；ヒト胎児腎臓系統［293または懸濁培養における増殖のためにサブクローニングされた293細胞、Grahamら，J.Gen.Virol.,36:59−72（1977）］；ベビーハムスター腎臓細胞（BHK、ATCC CCL 10）；チャイニーズハムスター卵巣細胞／−DHFR［CHO、UrlaubおよびChasin,Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,77（７）:4216−4220（1980）］；マウスセルトリ細胞［TM4、Mather,Biol.Reprod.,23:243−251（1980）］；サル腎臓細胞（CV1 ATCC CCL 70）；アフリカミドリザル腎臓細胞（VERO−76、ATCC CRL−1587）；ヒト頚癌細胞（HeLa、ATCC CCL 2）；イヌ腎臓細胞（MDCK、ATCC CCL 34）；バッファローラット肝臓細胞（BRL 3A、ATCC CRL 1442）；ヒト肺細胞（W138、ATCC CCL 75）；ヒト肝臓細胞（Hep G2、HB 8065）；マウス乳腫瘍（MMT 060562、ATCC CCL 51）;TRI細胞［Matherら，Annals N.Y.Acad.Sci.,383:44−68（1982）］;MRC 5細胞;FS4細胞；およびヒト肝癌セルライン（Hep G2）が含まれる。好ましい宿主細胞は、ヒト胎児腎臓293およびチャイニーズハムスター卵巣細胞である。
また、発現のために選択される宿主は多細胞生物、例えばトランスジェニック動物であってもよい。このような動物は、異種DNAによる微生物細胞、体細胞または胚のトランスフェクション、トランスフェクション細胞の適当な移植および異種DNAを含有する成体動物へ細胞を成熟させるまたは安定に組込むことにより産生されている。このような動物の繁殖可能な割合が、血液または血清を含む組織において同定し得るタンパク質として異種DNAを転写して発現する。トランスジェニック動物の作成に適した方法は、米国特許4,396,601およびPalmiterら，Nature 300:611−615（1982）に開示されている。
宿主細胞は、上記の本発明の発現またはクローニングベクターを用いてトランスフェクションおよび好ましくは形質転換し、プロモーターの誘導、形質転換体の選択、または所望の配列をコードしている遺伝子の増幅のために適当に修飾された通常の栄養培地中で培養する。
トランスフェクションは、任意のコード配列が実際に発現されるか否かを問わず、宿主細胞による発現ベクターの取り込みを意味する。多くのトランスフェクション法、例えばCaPO4および電気穿孔法は当業者に知られている。このベクターの作用の任意の徴候が宿主細胞内に発生した場合に、通常、トランスフェクションの成功が認められる。
形質転換は、DNAが複製可能となるように、DNAを染色体外成分としてまたは染色体組込みにより生物に導入することを意味する。用いられる宿主細胞に依存して該細胞に適当な常法を用いて形質転換を行う。Sambrookら（上記）のセクション1.82に開示されている塩化カルシウムを用いたカルシウム処理を、原核生物または強固な細胞壁障壁を有する他の細胞のために通常用いる。Shawら［Gene,23:315−330（1983）］およびWO 89/05859（1989年６月29日公開）により開示されているように、Agrobacterium tumefaciensによる感染を特定の植物細胞の形質転換のために用いる。このような細胞壁をもたない哺乳動物細胞のためには、Sambrookら（上記）のセクション16.30〜16.37に開示されているリン酸カルシウム沈殿法が好ましい。哺乳動物細胞宿主系形質転換の通常の態様は、Axel［U.S.4,399,216（1983年８月16日登録）］により開示されている。通常、酵母への形質転換は、Van Solingnら［J.Bacteriol.,130（２）:946−947（1977）］およびHsiaoら［Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,76（８）:3829−3833（1979）］の方法に従い行う。しかし、DNAを細胞中に導入するための他の方法、例えば核注入、電気穿孔、またはプロトプラスト融合による方法も用いることができる。
5.宿主細胞の培養
本発明のＣ−C CKR−１ポリペプチドを産生させるために用いる原核細胞は、Sambrookら（上記）により一般的に開示されている適当な培地中で培養する。
本発明のＣ−C CKR−１を生産するために用いられる哺乳動物宿主細胞は、様々な培地中で培養することができる。市販品として入手可能な培地、例えばハムのF10（Sigma）、最少必須培地（MEM、Sigma）、RPMI−1640（Sigma）およびダルベッコの改良イーグル培地（DMEM、Sigma）が宿主細胞を培養するのに適している。さらに、HamおよびMcKeehan,Meth.Enz.58:44−93（1979）;BarnesおよびSato,Anal,Biochem.102:255−270（1980）、U.S.4,767,704;4,657,866;4,927,762;または4,560,655;WO 90/03430;WO 87/00195;米国特許Re.30,985;または米国5,122,469に開示されているいずれかの培地を宿主細胞のための培養培地として用いることができる。これら全ての培地には、必要に応じてホルモンおよび／または他の増殖因子（例えばインスリン、トランスフェリン、または上皮増殖因子）、塩（例えば塩化ナトリウム、カルシウム、マグネシウム、およびリン酸塩）、緩衝剤（例えばHEPES）、ヌクレオチド（例えばアデノシンおよびチミジン）、抗生物質（例えばゲンタマイシンTM薬物）、微量元素（通常マイクロモル範囲の最終濃度で存在する無機化合物として定義される）、およびグルコースまたは同等のエネルギー源を追加することができる。さらに他のあらゆる必要な追加物質を、当業者に既知であろう適当な濃度で含有させることができる。培養条件、例えば温度、pH等は、発現用に選択した宿主細胞について既に用いられている条件であり、当業者には明白であろう。
本明細書中で言及される宿主細胞には、インビトロ培養における細胞ならびに宿主動物内の細胞が包含される。
6.遺伝子増幅／発現の検出
遺伝子の増幅および／または発現は、例えばmRNAの転写の定量のための通常のサザンブロット法、ノーザンブロット法［Thomas,Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,77:5201−5205（1980）］、ドットブロット法（DNA分析）またはin situハイブリッド形成法により、適当にラベルしたプローブを用いて、サンプル中で直接測定することができる。様々なラベルを用いることができるが、最も一般的には放射性同位元素、特に32Pを用いる。しかし、例えばポリヌクレオチド中への導入のためにビオチン−修飾ヌクレオチドを用いる他の方法もまた用いることができる。次いで、ビオチンはアビジンまたは抗体への結合のための部位として働き、広範な種類のラベル、例えば放射性核種、蛍光物質、酵素などを用いてラベル化することができる。
別法では、DNA二本鎖、RNA二本鎖、およびDNA−RNA雑種二本鎖またはDNA−タンパク質二本鎖を含む特異的な二本鎖を認識し得る抗体を用いることができる。次いで抗体をラベルし、表面上に二本鎖が形成された上で二本鎖に結合された抗体の存在を検出することができるように二本鎖が表面に結合している場所でアッセイを行うことができる。
別法では、遺伝子の発現は、遺伝子産物の発現を直接定量するために、免疫学的方法、例えば組織切片の免疫組織化学的染色および細胞培養物または体液のアッセイにより測定することができる。免疫組織化学的染色法を用いて、細胞サンプルを通常、脱水および固定化、次いで結合された遺伝子産物に特異的なラベルした抗体との反応により調製する（該ラベルは通常は視覚的に検出可能なラベル、例えば酵素ラベル、蛍光ラベル、発光ラベルなどである）。本発明における使用に適した特に感度の高い染色法は、Hsuら［Am.J.Clin.Path.,75:734−738（1980）］が開示している。
免疫組織化学的染色および／またはサンプル液のアッセイのために有用な抗体は、モノクローナルまたはポリクローナルのどちらであってもよく、あらゆる哺乳動物において調製することができる。通常、該抗体は、天然または合成のＣ−C CKR−１ポリペプチドまたはその変異体に対して調製することができる。
7.Ｃ−C CKR−１ポリペプチドの精製
Ｃ−C CKR−１は、細胞膜を洗剤中で可溶化することにより細胞培養物から回収する。
ヒトＣ−C CKR−１をヒト起源の細胞以外の組換え細胞中に発現させた場合、Ｃ−C CKR−１はヒト起源のタンパク質またはポリペプチドを全く含まない。しかし、Ｃ−C CKR−１に関するタンパク質による実質的に均一な調製物を得るために、Ｃ−C CKR−１を組換え細胞タンパク質またはポリペプチドから精製することが必要である。第一の工程として、細胞を遠心分離してそれらを培養培地から分離し、次いでイムノアフィニティーまたはイオン交換カラムによる分画；エタノール沈殿；逆層HPLC;シリカ上またはDEAEなどの陽イオン交換樹脂によるクロマトグラフィー；等電点クロマトグラフィー;SDS−PAGE;硫酸アンモニウム沈殿；例えばSephadex G−75を使用するゲル濾過などの適当な精製法に供する。
残基が欠失、挿入または置換されているＣ−C CKR−１変異体は、変異により引き起こされた性質のあらゆる実質的変化を考慮した上で、天然のＣ−C CKR−１と同じ様式で回収する。例えば、別のタンパク質またはポリペプチド、例えば細菌性またはウイルス性抗原を用いたＣ−C CKR−１融合物の調製は、精製を容易にし、その抗原に対する抗体を含有しているイムノアフィニティーカラムを用いて融合物を吸着させることができる。ウサギポリクローナル抗Ｃ−C CKR−１カラムなどのイムノアフィニティーカラムを用いて、Ｃ−C CKR−１変異体を少なくとも１個の残存免疫性エピトープに結合させることにより吸着させることができる。またフェニルメチルスルホニルフルオリド（PMSF）などのプロテアーゼ阻害物質は、精製中のタンパク質分解による減成を阻害するために有用であることもあり、付随的な汚染物の増殖を防ぐために抗生物質を包含させてもよい。天然のＣ−C CKR−１に適した精製法は、組換え細胞培養中の発現の際のＣ−C CKR−１またはその変異体の性質の変化を考慮して、修飾を必要とすることもあることを当業者は認めるであろう。
8.Ｃ−C CKR−１ポリペプチドの共有結合修飾
Ｃ−C CKR−１ポリペプチドまたはそのグリコシル置換体の共有結合修飾は、本発明の範囲内に含まれる。天然のＣ−C CKR−１およびＣ−C CKR−１のアミノ酸配列変異体の両方を共有結合修飾することができる。Ｃ−C CKR−１、そのフラグメントまたはそれに対する抗体の共有結合修飾は、Ｃ−C CKR−１、そのフラグメントまたはＣ−C CKR−１抗体の標的アミノ酸残基を、選択された側鎖またはＮまたはＣ末端残基と反応し得る有機誘導化物質と反応させることにより該分子中に誘導される。最も一般的には、Ｃ−C CKR−１およびその抗体を、診断において用いられる検出可能な基、例えば酵素、放射性同位元素、スピンラベル、抗原、蛍光または化学発光基などに共有結合させる。
システイニル残基は、最も一般的にはα−ハロアセテート（および対応するアミン）、例えばクロロ酢酸またはクロロアセトアミドと反応させて、カルボキシメチルまたはカルボキシアミドメチル誘導体を得る。またシステイニル残基は、ブロモトリフルオロアセトン、α−ブロモ−β−（５−イミダゾール）プロピオン酸、クロロアセチルリン酸、Ｎ−アルキルマレイミド、３−ニトロ−２−ピリジルジスルフィド、メチル２−ピリジルジスルフィド、ｐ−クロロメルクリベンゾエート、２−クロロメルクリ−４−ニトロフェノール、またはクロロ−７−ニトロベンゾ−２−オキサ−1,3−ジアゾールとの反応により誘導化される。
ヒスチジル残基は、pH5.5〜7.0でのジエチルピロカルボネートとの反応により誘導化されるが、これは比較的この物質がヒスチジル側鎖に特異的であることによる。さらに臭化パラ−ブロモフェナシルが有用であるが、該反応は好ましくは0.1Mカコジル酸ナトリウム中、pH6.0で行う。
リシニルおよびアミノ末端残基は、コハク酸または他のカルボン酸無水物と反応させる。これらの物質による誘導化は、リシニル残基の電荷を逆転させる効果を有する。α−アミノ−含有残基を誘導化するための他の適当な試薬には、イミドエステル、例えばメチルピコリンイミデート；ピリドキサールリン酸；ピリドキサール；クロロボロヒドリド；トリニトロベンゼンスルホン酸;O−メチルイソ尿素;2,4−ペンタンジオン；およびグリオキシレートを用いるトランスアミナーゼ−触媒反応が含まれる。
アルギニル残基は、１またはいくつかの通常の試薬を用いる反応により修飾するが、それらの試薬にはフェニルグリオキサール、2,3−ブタンジオン、1,2−シクロヘキサンジオン、およびニンヒドリンが含まれる。アルギニン残基の誘導化は、グアニジン官能基の高いpKaのために反応をアルカリ条件下で行うことが必要とされる。さらに、これら試薬はリシン基ならびにアルギニンのε−アミノ基と反応させることができる。
チロシル残基の特異的な修飾は、芳香族ジアゾニウム化合物またはテトラニトロメタンとの反応により行うことができるが、これはチロシル残基中に分光ラベルを導入するのに特に重要である。最も一般的には、Ｎ−アセチルイミジゾールおよびテトラニトロメタンを用いてＯ−アセチルチロシル種および３−ニトロ誘導体の各々を得る。チロシル残基を125Iまたは131Iを用いてヨウ素化して、適切であると上に記したラジオイムノアッセイ、クロラミンＴ法において使用するためのラベルしたタンパク質を調製する。
カルボキシル側基（アスパルチルまたはグルタミル）は、カルボジイミド（R'−Ｎ＝Ｃ＝Ｎ−R'）（ＲおよびR'は異なるアルキル基）、例えば１−シクロヘキシル−３−（２−モルホリニル−４−エチル）カルボジイミドまたは１−エチル−３−（４−アゾニア−4,4−ジメチルペンチル）カルボジイミドとの反応により選択的に修飾される。さらに、アスパルチルおよびグルタミル残基を、アンモニウムイオンとの反応によりアスパラギニルおよびグルタミニル残基に変換する。
二官能性物質による誘導化は、抗Ｃ−C CKR−１抗体を精製するための方法において使用するための水不溶性支持マトリックスまたは表面にＣ−C CKR−１、そのフラグメントまたは抗体を架橋するために、およびその逆のために有用である。通常用いられる架橋剤には、例えば1,1−ビス（ジアゾアセチル）−２−フェニルエタン、グルタルアルデヒド、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドエステル、例えば４−アジドサリチル酸とのエステル、ホモ二官能性イミドエステル［3,3'−ジチオビス（スクシンイミジルプロピオネート）などのジスクシンイミジルエステルを含む］およびビス−Ｎ−マレイミド−1,8−オクタンなどの二価性マレイミドが含まれる。メチル−３−［（ｐ−アジドフェニル）ジチオ］プロピオイミデート等の誘導化剤により、光の存在下で架橋を形成し得る、光活性化が可能な中間体が得られる。別法では、臭化シアン−活性化炭水化物などの反応性の水不溶性マトリックスおよび米国3,969,287;3,691,016;4,195,128;4,247,642;4,229,537;および4,330,440に開示されている反応性基質を、タンパク質の固定化に用いる。
グルタミニルおよびアスパラギニル残基は、対応するグルタミルおよびアスパルチル残基へと各々脱アミド化されることが多い。別法では、これら残基を穏やかな酸性条件下で脱アミド化する。これら残基のどちらの形態も本発明の範囲内にある。
他の修飾には、プロリンおよびリシンのヒドロキシル化、セリルまたはトレオニル残基のヒドロキシル基のリン酸化、リシン、アルギニン、およびヒスチジン側鎖のα−アミノ基のメチル化［T.E.Creighton,「タンパク質：構造および分子の性質」,W.H.Freeman ＆ Co.,San Francisco,pp.79−86（1983）］、Ｎ末端アミンのアセチル化および任意のＣ末端カルボキシル基のアミド化が含まれる。
本発明の範囲内に含まれるＣ−C CKR−１ポリペプチドの共有結合修飾の別の型は、該ポリペプチドの天然のグリコシル化型を改変させることからなる。「改変」とは、天然のポリペプチドに見られる１またはそれ以上の炭水化物部分の欠失、および／または天然のポリペプチドに存在しない１またはそれ以上のグリコシル化部位の付加を意味する。
ポリペプチドのグリコシル化は、通常Ｎ−結合性またはＯ−結合性のどちらかである。Ｎ−結合性とは、アスパラギン残基の側鎖への炭水化物部分の結合を指す。トリペプチド配列、アスパラギン−Ｘ−セリンおよびアスパラギン−Ｘ−トレオニン（式中、Ｘはプロリンを除く任意のアミノ酸である）が、アスパラギン側鎖への炭水化物部分の酵素的な結合のための認識配列である。ゆえに、ポリペプチド中のこれらいずれかのトリペプチド配列の存在が可能なグリコシル化部位を創製する。Ｏ−結合性グリコシル化は、Ｎ−アセチルガラクトサミン、ガラクトースまたはキシロースの糖のうちの１つのヒドロキシアミノ酸への結合を意味し、このアミノ酸は通常、セリンまたはトレオニンであることがほとんどであるが、５−ヒドロキシプロリンまたは５−ヒドロキシリシンを用いてもよい。
通常、Ｃ−C CKR−１ポリペプチドへのグリコシル化部位の付加は、１またはそれ以上の上記のトリペプチド配列を有するようにアミノ酸配列を改変することにより行う（Ｎ−結合性グリコシル化部位のために）。またこの改変は、天然のＣ−C CKR−１配列への１またはそれ以上のセリンまたはトレオニン残基の付加、またはこれらによる置換により行うことができる（Ｏ−結合性グリコシル化部位のために）。容易にするために、Ｃ−C CKR−１アミノ酸配列は、好ましくはDNAレベルでの変化により、特に所望のアミノ酸へと翻訳されるであろうコドンが得られるように予め選択された塩基でＣ−C CKR−１ポリペプチドをコードしているDNAを突然変異させることにより改変させる。このDNA突然変異は「Ｃ−C CKR−１ポリペプチドのアミノ酸配列変異体」の表題の下に記述した上記の方法を用いて行うことができる。
Ｃ−C CKR−１ポリペプチド上の炭水化物部分の数を増大させる別の方法は、該ポリペプチドへのグリコシドの化学的または酵素的な結合によるものである。これらの方法は、Ｎ−およびＯ−結合性グリコシル化のためのグリコシル化能力を有する宿主細胞における該ポリペプチドの生産を必要としない点において有利である。用いられる結合様式により、糖を（ａ）アルギニンおよびヒスチジン、（ｂ）遊離カルボキシル基、（ｃ）遊離スルフヒドリル基、例えばシステインの遊離基、（ｄ）遊離ヒドロキシル基、例えばセリン、トレオニンまたはヒドロキシプロリンの遊離基（ｅ）芳香族残基、例えばフェニルアラニン、チロシン、またはトリプトファンの遊離基、または（ｆ）グルタミンのアミド基に結合させることができる。これらの方法は、WO 87/05330（1987年９月11日公開）ならびにAplinおよびWriston［CRCCrit.Rev.Biochem.,pp.259−306（1981）］に開示されている。
天然のＣ−C CKR−１ポリペプチド上に存在する炭水化物部分の除去は、化学的または酵素的に行うことができる。化学的な脱グリコシル化は、化合物トリフルオロメタンスルホン酸または同等の化合物への該ポリペプチドの暴露を必要とする。この処理の結果、結合している糖（Ｎ−アセチルグルコサミンまたはＮ−アセチルガラクトサミン）を除く大部分または全部の糖が切断され、ポリペプチドは無傷のまま残る。化学的な脱グリコシル化は、Hakimuddinら［Arch.Biochem.Biophys.,259:52−57（1987）］およびEdgeら［Anal.Biochem.,118:131−137（1981）］により開示されている。ポリペプチド上の炭水化物部分の酵素的な切断は、Thotakuraら［Meth.Enzymol.,138:350−359（1987）］が開示しているように様々なエンド−およびエキソ−グリコシダーゼの使用により達成することができる。
可能性あるグリコシル化部位のグリコシル化は、Duskinら［J.Biol.Chem.,257:3105−3109（1982）］が開示しているように化合物ツニカマイシンの使用により妨げることができる。ツニカマイシンは、タンパク質−Ｎ−グリコシド結合の形成をブロックする。
またＣ−C CKR−１を、例えばコアセルベーション法または界面重合により調製されたマイクロカプセル（各々例えば、ヒドロキシメチルセルロースまたはゼラチン−マイクロカプセルおよびポリ−［メチルメタシレート］マイクロカプセル）中、コロイド状薬物供給システム（例えば、リポソーム、アルブミンミクロスフェア、マイクロエマルジョン、ナノ−粒子およびナノカプセル）中、またはマクロエマルジョン中に捕捉することができる。このような方法はRemington's Pharmaceutical Sciences，第16版,Osol,A.編（1980）に開示されている。
さらにＣ−C CKR−１調製物は、抗体の生成において、Ｃ−C CKR−１のためのアッセイにおける標準としての使用に（例えば、ラジオイムノアッセイ、酵素結合イムノアッセイ、またはラジオレセプターアッセイにおいて標準として使用するためのＣ−C CKR−１のラベルすることによる）、アフィニティー精製法において、そして放射性ヨウ素、酵素、蛍光団（fluorophore）、スピンラベルなどを用いてラベルした場合に競合型レセプター結合アッセイにおいて有用である。
変異体Ｃ−C CKR−１の特性を予め予測することは困難であることが多いから、回収された変異体のある種のスクリーニングが最適の変異体を選択するために必要となることは理解されるであろう。例えば、Ｃ−C CKR−１分子の免疫学的な性質、例えば与えられた抗体に対するアフィニティーの変化を、競合型イムノアッセイにより測定する。該変異体は、同じアッセイにおいて天然のＣ−C CKR−１について観察された活性に対する比較により、その活性の抑制または増強における変化についてアッセイする。タンパク質またはポリペプチドの性質、例えば酸化還元または熱安定性、疎水性、タンパク質分解に対する感受性、または担体との凝集または多量体への凝集に対する傾向などの他の可能な修飾を、当技術分野で周知の方法によりアッセイする。
9.Ｃ−C CKR−１の治療的組成物および投与
Ｃ−C CKR−１（そのＣ−C CKR−１結合フラグメントを含む）またはそれに対する抗体の治療的製剤は、所望の純度を有するＣ−C CKR−１を所望の生理学的に許容し得る担体、賦形剤または安定化剤（Remington's Pharmaceutical Sciences,上記）と混合することにより、凍結乾燥ケーキまたは水溶液の形態で貯蔵用に調製する。許容可能な担体、賦形剤または安定化剤は、用いられる投薬量および濃度で受容者に対して非毒性であって、緩衝剤、例えばリン酸、クエン酸および他の有機酸；アスコルビン酸を含む抗酸化物質；低分子量（約10残基未満）のポリペプチド；タンパク質、例えば血清アルブミン、ゼラチンまたは免疫グロブリン；親水性ポリマー、例えばポリビニルピロリドン；アミノ酸、例えばグリシン、グルタミン、アスパラギン、アルギニンまたはリシン；単糖、二糖およびグルコース、マンノース、またはデキストリンを含む他の炭水化物；キレート剤、例えばEDTA;糖アルコール、例えばマンニトールまたはソルビトール；塩形成対イオン、例えばナトリウム；および／または非イオン性界面活性剤、例えばTween、Pluronicsまたはポリエチレングリコール（PEG）を含む）。
インビボ投与のために用いられるＣ−C CKR−１または抗体は無菌性でなければならない。無菌性は、凍結乾燥および再組成の前または後の無菌性濾過膜での濾過により容易になし遂げられる。Ｃ−C CKR−１は、通常、凍結乾燥形態または溶液で貯蔵される。
通常、治療用のＣ−C CKR−１または抗体の組成物は、無菌性利用口を有する容器、例えば皮下注射用の注射針により貫通可能なストッパーを有するバイアルまたは静脈内溶液バッグ中に入れる。
Ｃ−C CKR−１または抗体の投与経路は、既知の方法、例えば静脈内、腹腔内、大脳内、筋肉内、眼内、動脈内、または病変内経路による、または以下に記載するような持続放出系による注射または注入に従う。
持続放出調製物の適当な例には、例えばフィルムまたはマイクロカプセルなどの成形品の形態の半透性ポリマーマトリックスが含まれる。持続放出マトリックスには、ポリエステル、ヒドロゲル、ポリラクチド（米国3,773,919、EP 58,481）、Ｌ−グルタミン酸とγエチル−Ｌ−グルタメートの共重合体［Sidmanら，Biopolymers,22:547−556（1983）］、ポリ（２−ヒドロキシエチルメタクリレート）［Langerら，J.Biomed.Mater.Res.,15:167−277（1981）;Langer,Chem.Tech.,12:98−105（1982）］エチレンビニルアセテート［Langerら，上記］またはポリ−Ｄ−（−）−３−ヒドロキシ酪酸（EP 133,988）が含まれる。さらに持続放出Ｃ−C CKR−１または抗体組成物には、リポソームにより捕捉されたＣ−C CKR−１または抗体が含まれる。Ｃ−C CKR−１または抗体を含有するリポソームは、本質的に既知の方法:DE 3,218,121;Epsteinら，Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,82:3688−3692（1985）;Hwangら，Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,77:4030−4034（1980）;EP 52,322;EP 36,676;EP 88,046;EP 143,949;EP 142,641;日本特許出願83−118008;U.S.4,485,045および4,544,545;およびEP 102,324により調製される。リポソームは、通常、脂質含量が約30モル％コレステロールより大きい、小さな（約200〜800オングストローム）単層型を有しており、最適なＣ−C CKR−１または抗体治療のために選択比率が調節される。
治療的に用いられるＣ−C CKR−１または抗体の有効量は、例えば治療目的、投与経路および患者の病状に依存するであろう。例えば、サイトカイン−介在性炎症の治療においてＣ−C CKR−１が治療的に有効であろうことが予測される。従って、治療専門家は最適な治療効果を得るために必要な投薬量を滴定し、投与経路を修正する必要があろう。通常、臨床医は所望の効果を達成する投薬量に達するまでＣ−C CKR−１または抗体を投与するであろう。この治療の進行は通常のアッセイにより容易にモニターされる。
10.Ｃ−C CKR−１抗体調製
Ｃ−C CKR−１に対するポリクローナル抗体は通常、動物においてＣ−C CKR−１およびアジュバントの複数の皮下（sc）または腹腔内（ip）注射により産生させる。Ｃ−C CKR−１で形質転換した組換え細胞（ヒトＣ−C CKR−１で形質転換したマウスまたはCHO細胞）による免疫で十分であるかもしれないが、あるいはＣ−C CKR−１を分離してＣ−C CKR−１または標的アミノ酸配列を含有しているフラグメントを、免疫すべき種において免疫原性を有するタンパク質、例えば鍵穴カサガイ（keyhole limpet）ヘモシアニン、血清アルブミン、ウシチログロブリン、または大豆トリプシンインヒビターに、二官能性薬物または誘導化剤、例えばマレイミドベンゾイル・スルホスクシンイミド・エステル（システイン残基を介するコンジュゲート化）、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド（リシン残基を介する）、グルタルアルデヒド、無水コハク酸、SOCl2、またはR1N＝Ｃ＝NR（ＲおよびR1は異なるアルキル基）を用いてコンジュゲート化することが有用であるかもしれない。
動物は、通常1mgまたは１μｇのＣ−C CKR−１を完全フロイントアジュバントと混合して複数の部位に溶液を皮内注射することにより、細胞または免疫原性コンジュゲートまたは誘導体に対して免疫する。１か月後に、その動物に完全フロイントアジュバント中のコンジュゲートの元の量の1/5から1/10を複数の部位に皮下注射することにより追加免疫する。７〜14日後に動物から採血し、その血清を抗Ｃ−C CKR−１力価についてアッセイする。力価がプラトーに達するまで動物を追加免疫する。好ましくは、同じＣ−C CKR−１であるが異なるタンパク質にコンジュゲート化および／または異なる架橋剤を介してコンジュゲート化されたコンジュゲートを用いて該動物を追加免疫する。さらに結合物は組換え細胞培養物中にタンパク質融合物として製造することができる。また、アルミニウムなどの凝集剤を用いて免疫応答を増強することができる。
別の選択肢は、組合わせの可変ドメインライブラリーおよび所望の抗Ｃ−C CKR−１抗体を同定するためのスクリーニング法を用いるものである。
モノクローナル抗体は、免疫された動物から脾細胞を回収し、細胞を通常の様式、例えばミエローマ細胞との融合またはエプスタイン・バール（EB）ウイルス形質転換により不死化し、所望の抗体を発現しているクローンについてスクリーニングすることにより調製する。
モノクローナル抗体は、各標的Ｃ−C CKR−１ポリペプチドに特異的であるのが好ましい。抗体は、アゴニスト的、アンタゴニスト的であるよう、またはＣ−C CKR−１の活性または結合にいかなる影響も及ぼさないよう選択される。
11.Ｃ−C CKR−１核酸および抗体の使用
Ｃ−C CKR−１をコードしている核酸を、組織特異的型検査のための診断法として用いることができる。例えば、in situハイブリダイゼーションおよびノーザンおよびサザンブロッティングおよびPCR分析などの方法を用いて、Ｃ−C CKR−１をコードしているDNAおよび／またはRNAが、評価される細胞型に存在するか否かを測定することができる。
単離されたＣ−C CKR−１ポリペプチドを、定量的診断アッセイにおいて標準または対照（これに対して未知量のＣ−C CKR−１を含有する例えば赤血球などのサンプルを比較することができる）として用いることができる。例えばIL−８アッセイにおいて好中球を用いるのと同じ様式で、Ｃ−C CKR−１リガンドに対するアッセイにおいてＣ−C CKR−１を発現する組換え細胞を用いることができる。またＣ−C CKR−１ポリペプチド、フラグメントまたは細胞（そのまま、または誘導化）をＣ−C CKR−１に対する抗体の産生における免疫原として、または腹水もしくは組換え細胞培養培地からのこのような抗体の精製のために用いることができる。
Ｃ−C CKR−１抗体は、特定の細胞または組織におけるＣ−C CKR−１発現に対する診断的アッセイにおいて有用であり、ここでは該抗体を上に記載したＣ−C CKR−１と同じ様式でラベルし、さらに／または不溶性マトリックス上に固定化する。さらにＣ−C CKR−１抗体は、組換え細胞培養物または天然の供給源からのＣ−C CKR−１のアフィニティー精製のために有用である。他のケモカインレセプターと検出可能な交差反応を行わないＣ−C CKR−１抗体を用いて、他の相同なケモカインレセプターを含まない各々のＣ−C CKR−１を精製することができる。PF4スーパーファミリーアンタゴニストであるＣ−C CKR−１抗体は、抗炎症薬としてまたは他のPF4スーパーファミリー介在性疾患の治療において有用である。
Ｃ−C CKR−１およびその抗体のための適当な診断的アッセイは、本質的に周知である。このようなアッセイには、競合およびサンドイッチアッセイ、および立体阻害アッセイが含まれる。競合およびサンドイッチ法は、方法の不可欠な部分として相−分離工程を用いるが、立体阻害アッセイは単一の反応混合物中で行う。基本的に、Ｃ−C CKR−１のアッセイのためおよびＣ−C CKR−１に結合する基質のための同じ方法を用いるが、アッセイされる基質の分子量に依存して特定の方法が好都合であろう。従って、試験すべき基質はその状態に無関係に分析物と称し、それ以外では抗原または抗体と称し、そして分析物に結合するタンパク質は、抗体、細胞表面レセプターまたは抗原であるかにかかわらず結合パートナーと称する。
Ｃ−C CKR−１またはその抗体のための分析方法は全て、１またはそれ以上の次に示す試薬を用いる：ラベルした分析物類似体、固定化分析物類似体、ラベル化結合パートナー、固定化結合パートナーおよび立体的コンジュゲート。また、ラベル化試薬は「トレーサー」として知られている。
用いられるラベル（さらにこれはプローブとして用いるためのＣ−C CKR−１核酸をラベルするために有用である）は、分析物およびその結合パートナーの結合に干渉しない任意の検出可能な官能基である。多くのラベル（例えば、蛍光色素、化学発光、および放射性ラベルなどの直接検出し得る部分、ならびに検出されるよう反応させるかまたは誘導化しなければならない酵素などの部分を含む）がイムノアッセイにおける使用のために知られている。このようなラベルの例には、放射性同位元素である、32P、14C、125I、3Hおよび131I、蛍光団、例えば希土類キレートまたはフルオレセインおよびその誘導体、ローダミンおよびその誘導体、ダンシル、ウンベリフェロン、ルセリフェラーゼ、例えばホタルルシフェラーゼおよび細菌性ルシフェラーゼ（米国特許番号4,737,456）、ルシフェリン、2,3−ジヒドロフタラジンジオン、ホースラディッシュペルオキシダーゼ（HRP）、アルカリホスファターゼ、β−ガラクトシダーゼ、グルコアミラーゼ、リソザイム、サッカリドオキシダーゼ（例えばグリコースオキシダーゼ、ガラクトースオキシダーゼおよびグルコース−６−リン酸デヒドロゲナーゼ）、HRP、ラクトペルオキシダーゼ、またはマイクロペルオキシダーゼなどの染色前駆体を酸化するために過酸化水素を用いる酵素と結合させた複素環式オキシダーゼ（例えばウリカーゼおよびキサンチンオキシダーゼ）、ビオチン／アビジン、スピンラベル、バクテリオファージラベル、安定な遊離ラジカルなどが含まれる。
これらのラベルを共有結合によりタンパク質またはポリペプチドに結合させるために、通常の方法が利用可能である。例えば、ジアルデヒド、カルボジイミド、ジマレイミド、ビス−イミデート、ビス−ジアゾ化ベンジジンなどの結合試薬を用いて、抗体を上記の蛍光、化学発光および酵素ラベルで標識することができる。例えば、米国特許番号3,940,475（蛍光測定法）および3,645,090（酵素）;Hunterら，Nature,194:495−496（1962）;Davidら，Biochemistry,13:1014−1021（1974）;Painら，J.Immunol.Methods,40:219−230（1981）；およびNygren,J.Histochem.and Cytochem.,30:407−412（1982）を参照。好ましいラベルはホースラディッシュペルオキシダーゼおよびアルカリホスファターゼなどの酵素である。
酵素を含むこのようなラベルの抗体へのコンジュゲート化は、イムノアッセイ法における通常の技術者にとって標準的な操作法である。例えば、O'Sullivanら，「酵素イムノアッセイにおける使用のための酵素−抗体コンジュゲートの調製方法」，Methods in Enzymology,J.J.LangoneおよびH.Van Vunakis編,Vol.73（Academic Press,New York,New York,1981）中,pp.147−166を参照。このような結合法は、Ｃ−C CKR−１またはその抗体（それらの全てはタンパク質性である）と共に使用するのに適している。
試薬の固定化は、ある種のアッセイ法のために必要である。固定化は、溶液中に遊離のままである任意の分析物から、結合パートナーを分離することを必然的に伴う。これは通常、結合パートナーまたは分析物類似体のどちらかをアッセイ工程の前に不溶化することにより、例えば、水不溶性マトリックスまたは表面に吸着させることにより［Bennichら,U.S.3,720,760］、共有結合（例えば、グルタルアルデヒド架橋を用いる）により、もしくは後のパートナーまたは類似体の不溶化、例えば免疫沈降により行う。
競合またはサンドイッチアッセイとして知られる他のアッセイ法は良く確立されており、商業的な診断法産業において広く使用されている。
競合アッセイは、通常の結合パートナー上の限定数の結合部位に対して試験サンプル分析物と競合するトレーサー類似体の能力に依存する。通常、結合パートナーを競合の前または後に不溶化し、次いで結合パートナーに結合したトレーサーおよび分析物を未結合のトレーサーおよび分析物から分離する。この分離はデカンテーションにより（結合パートナーが予め不溶化されていた場合）、または遠心分離により（結合パートナーが競合反応の後に沈殿した場合）行う。マーカー物質の量により測定したときに、試験サンプル分析物の量は結合したトレーサーの量と逆比例する。既知量の分析物を用いた用量−反応曲線を作成して試験結果と比較し、試験サンプル中に存在する分析物の量を定量的に測定する。これらのアッセイは、検出可能なマーカーとして酵素を用いる場合にはELISA系と称される。
別種の競合アッセイである「均一」アッセイと称されるアッセイは、相分離を必要としない。ここでは、分析物と酵素のコンジュゲートを調製して、抗分析物が分析物に結合するときには抗分析物の存在が酵素活性を修飾するように用いる。この場合において、Ｃ−C CKR−１またはその免疫学的に活性なフラグメントを、ペルオキシダーゼなどの酵素に二官能性有機架橋を用いてコンジュゲート化する。コンジュゲートは、抗Ｃ−C CKR−１の結合がラベルの酵素活性を阻害または強化するように抗Ｃ−C CKR−１と共に使用するために選択する。この方法は、それ自体EMITの名称の下に広く実施されている。
均一アッセイのための立体障害法において立体的コンジュゲートを用いる。これらのコンジュゲートは、ハプテンに対する抗体が実質的に抗分析物と同時にコンジュゲートに結合することができないように、低分子量のハプテンを小さな分析物に共有結合させることにより合成する。このアッセイ法の下で試験サンプル中に存在する分析物は抗分析物に結合し、それにより抗ハプテンは該コンジュゲートに結合することができ、その結果コンジュゲートハプテンの性質の変化、例えばハプテンがフルオロフォアである場合には蛍光における変化が生じる。
サンドイッチアッセイは、特にＣ−C CKR−１またはＣ−C CKR−１抗体の測定に有用である。連続サンドイッチアッセイにおいては、固定化された結合パートナーを用いて試験サンプル分析物を吸着させ、試験サンプルを洗浄などにより除去し、結合した分析物を用いてラベルした結合パートナーを吸着させ、次いで結合した物質を残りのトレーサーから分離する。結合したトレーサーの量は、試験サンプル分析物に直接比例する。「同時」サンドイッチアッセイにおいては、試験サンプルはラベルした結合パートナーの添加の前に分離しない。一方の抗体として抗Ｃ−C CKR−１モノクローナル抗体を用い、さらに他方の抗体としてポリクローナル抗Ｃ−C CKR−１抗体を用いる連続サンドイッチアッセイは、Ｃ−C CKR−１活性についてのサンプルの試験において有用である。
以上の記載は、Ｃ−C CKR−１および抗体のための診断的アッセイの例にすぎない。これら分析物の測定のために現在ある他の方法または今後開発される方法は、上記のバイオアッセイと共に本発明の範囲内に包含される。
以下に挙げる実施例は、説明のために提供するものであって、限定しようとするものではない。
C.実験例
実施例Ｉ オーファンレセプターの単離
Ｃ−ＣケモカインレセプターをコードしているcDNAを単離する試みにおいて「オーファンレセプター」クローニング法を用いた。化学誘引物質C5a［Gerard,N.P.ら，Nature,349:614−７（1991）］、細菌性トリペプチドfMLP［Boulay,F.ら，Biochemistry,29:11123−11133（1990）］に対する細胞表面レセプターならびにＣ−Ｘ−ＣケモカインIL−８レセプターＡおよびＢ（IL8rAおよびIL8rB）に対する２つのレセプターが最近クローン化されて［Holmes,W.E.ら，Science,253:1278−80（1991）;Murphy.P.M.ら，Science,253:1280−３（1991）］、細胞膜を７回横切ると予想される構造を有するレセプタータンパク質のスーパーファミリーに属することが見いだされた［Ddohlman,H.G.ら，Annu.Rev.Biochem.,60:653−88（1991）］。７−トランスメンブラン−伸張分子は、通常、百日咳毒素により阻害され得る機能を有するＧ−タンパク質に結合しており、本発明者らはＣ−Ｃケモカインクラスのタンパク質に対するレセプターも７トランスメンブラン構造を共有するであろうと仮定した。従って、IL8rA、C5aおよびfMLPレセプターの２つのトランスメンブラン領域（TM）における保存性アミノ酸配列に対応する２つの縮重オリゴヌクレオチドを合成した。第一のオリゴヌクレオチドは、TM2における領域に対応しており:LNLA（L/V）AD（L/F）（L/G）（配列番号:9）、第二のオリゴヌクレオチドはTM7における領域に対応していた:NP（I/M）（I/L）Ｙ（A/V）（F/V）（I/M/A）GQ（配列番号:10）。
次いでこれらオリゴマーを、末梢血単核細胞（PBMC）、およびセルラインU937、HL60およびTHP−１を含む、Ｃ−Ｃケモカインに反応することが知られている異なる造血細胞型由来のcDNA基質を用いるRT−PCR実験におけるプライマーとして用いた。PCRは以下の様に行った。異なる造血セルライン由来の全RNA（１〜２μｇ）を、RT−PCR［Larrick,J.W.,Trends Biotech.,10:146−152（1992）］における基質として供給者（Perkin Elmer,Norwalk,CT）により推奨されているように用いた。化学誘引物質レセプターの保存領域に対応している縮重オリゴヌクレオチドをPCRにおいて用いた。PCR条件は次の通りである:94℃で0.5分、50〜55℃で0.5分、72℃で0.5〜１分、30サイクル。既に開示されているように［Nguyen,T.ら，Gene,109:211−８（1991）］、PCR産物をpBS（Stratagene.LaJolla,CA）のSma I部位に平滑末端クローン化した。Quiagenキット（Quiagenn Inc.,Chatsworth,CA）を供給者が推奨しているように用いてプラスミドDNAを単離した。配列決定は、Sequenaseキット（USBC,Cleveland,OH）を用いて、供給者が推奨しているように行った。
PCR産物のサブクローニングおよび配列決定により、IL8rA、IL8rB、C5aレセプターならびに７−トランスメンブラン−セグメントレセプターの特徴および２つのIL−８レセプターに対する著しい類似性を有する２つの新規クローンの存在が明らかになった。これらオーファンレセプターの部分的な機能的特徴は、それらがHuMIP−１αに結合しないことを示した。しかし、他の７−トランスメンブラン−伸張レセプターよりもIL−８レセプターに関連しているこれら２つのクローンは、TM3の末端に新しい保存性アミノ酸モティーフ、DRYLAIVHA（配列番号:11）（これはC5aおよびfMLPレセプターを除外するIL−８レセプター関連の７−トランスメンブラン−伸張分子のサブファミリーを規定するようである）を保持することが示された。ゆえに、TM2縮重オリゴヌクレオチドおよびDRYLAIVHA（配列番号:11）縮重オリゴヌクレオチドを用いてRT−PCR/オーファンクローニングの第二回を行った。さらに、Ｃ−Ｃケモカインレセプターを得る機会を増大させるために、放射性ラベル化HuMIP−１αに結合する培養ヒト単球から、および走化性によりHuMIP−１αに反応するＢ細胞からcDNAを得てPCR反応において用いた。これらPCR産物のクローニングおよび配列決定により、さらに数個の独特な７−トランスメンブラン−伸張レセプターが示された。
当分野で一般的に知られている常法により単球を培養した。要約すると、軟膜細胞をFicoll勾配上で分離した。界面から回収した単核細胞を繰り返し遠心分離して、血小板を除去した。単球は、それらを組織培養皿に付着させることにより他の単核細胞から分離された。非付着細胞を洗浄し、次いで付着した単球を使用するまで48〜72時間培養した。
また、上記のオリゴマーに対する、または７−トランスメンブラン伸張タンパク質のクローンDNAから設計されたプローブに対する通常のサザンブロットハイブリダイゼーションにより、ゲノムまたはcDNAをオーファンレセプター遺伝子の存在についてスクリーニングすることができた。
実施例II Ｃ−C CKR−1 DNAの特性化
PMA（ホルボール 12−ミリステート 13−アセテート）処理されたHL60細胞から作成したλgt10 cDNAライブラリーを、32P−ラベルした制限フラグメントを用いてスクリーニングすることにより、１つのクローン、JOSH1に対応するcDNAを単離した。ファージDNAを単離してλgt10クローンの挿入体をPCR［供給者により推奨されているように、挿入体と境界を接するプライマーおよび酵素Pfu DNAポリメラーゼ（Stratagene,LaJolla,CA）を用いて20サイクルを行う］により得た。上記の様にPCR産物をpRK5のSma I部位にサブクローン化した。
JOSH1のヌクレオチド配列は、355アミノ酸のタンパク質をコードしている1065塩基の読み取り枠を示した（図１および９）。Ｃ−Ｃケモカインレセプター１（Ｃ−C CKR−１）として既に示した推定アミノ酸配列は、７−トランスメンブラン−伸張レセプタースーパーファミリーのＧ−タンパク質−結合レセプターに関連した重要な特徴を有している。例えば、これは細胞膜に伸張すると予想される７つの疎水性領域およびジスルフィド結合の形成に関係する第一および第二の細胞外ループにおいてシステイン残基を有している（図１）。しかし、予想Ｃ−C CKR−１タンパク質のある種の特徴は、それを従来の７−トランスメンブラン−伸張レセプターとは異なるものにしている。カルボキシ末端は比較的短く、パルミトイル化部分により膜固定に関与するシステイン残基［O'Dowd,B.F.ら，J.Biol.Chem.,264:7564−９（1989）］を欠如しており、トランスメンブランドメイン間のセグメントは比較的短く、特徴は他の化学誘引レセプターと一致している［Boulay,F.ら，Biochemistry,30:2993−９（1991）;Boulay,F.ら，Biochemistry,29:11123−11133（1990）;Gerard,N.P.ら，Nature,349:614−７（1991）;Holmes,W.E.ら，Science,253:1278−80（1991）;Murphy,P.M.ら，Science,253:1280−３（1991）］。Ｃ−C CKR−１には３つの可能性あるグリコシル化部位が存在し（図１）、１つはＮ末端に、１つは最初の細胞質ループに、そして３番目はTM6に存在する。この最後の部位は、細胞膜に埋め込まれていると予想されるのでグリコシル化されないようである。最後に、プロテインキナーゼＣリン酸化部位のための共通配列が位置192に存在するが、この位置は細胞外であると予想される。
Ｃ−C CKR−１の推定アミノ酸配列を、他のＧ−タンパク質結合化学誘引物質レセプターと比較した（図１）。IL8rAおよびIL8rBは、Ｃ−C CKR−１に対して約32％の配列同一性を示したが、C5aおよびfMLPレセプターは約23％の同一性を示した（図１）。FedersspielらによりGenbank（受け入れ番号M99293）に最近寄託された推定７トランスメンブラン伸張分子、HUMSTSRは、Ｃ−C CKR−１と約31％の同一性を有することが見いだされた。この分子の配列は、上記のRT−PCRクローニングに対する本発明者らの最初の試みにおいて単離された推定レセプターのうちの１つと同一である。HUMSTSRに対するリガンドは、未だ同定されていない。Ｃ−C CKR−１に同様に密接に関連しているレセプターの第二グループは、神経ペプチドＹおよびアンギオテンシンIIレセプターである（データは示さず）。最後に、サイトメガロウイルスゲノムにおける読み取り枠（US28と称される）は、Ｃ−C CKR−１と約33％の同一性を有し、TM1以前のＮ末端領域においてＣ−C CKR−１と約60％の同一性を有している。
実施例III Ｃ−C CKR−１のノーザンおよびサザン分析
ノーザンブロット分析を用い、造血セルラインの限定パネルにおいてＣ−C CKR−１の発現を評価した。ノーザンブロットハイブリダイゼーションを以下のように行った。グアニジニウムイソチオシアネート−CsCl法［Sambrookら（1989）］またはRNAzol法を供給者により推奨されているように用いて全RNAを単離した。DynabeadsオリゴdT（DYNAL,Great Neck,NY）を供給者により推奨されているように用いてポリA+ RNAを単離した。本明細書中で［HL60−Ｃ］と称されるHL60 mRNAをClontech（Palo Alto,CA）から入手した。全RNA（20μｇ）またはポリA+ RNA（５μｇ）をホルムアルデヒド−アガロ−スゲル上で分画し、ニトロセルロース膜にブロットし、Ｃ−C CKR−1 cDNAとハイブリダイズさせた［Korneluk,R.G.ら，J.Biol.Chem.,261:8407−8413（1986）］。
前単球セルライン、例えば未分化または分化U937およびHL60細胞において約3kbの単一バンドが検出された（図２）が、HL60 RNAの市販品として入手可能な調製物においては検出されなかった（HL60−Ｃ、図２）。さらに比較的低レベルのmRNAがＢセルライン1788およびDaudiにおいて検出されたが、K562細胞においてはRNAはほとんどまたは全く検出されなかった（図２）。PMA−処理されたTHP−１細胞において最も高いレベルが検出され、そこでは全RNA（20mg）を分析した場合に強いシグナルが得られた（図２）。
サザンブロットハイブリダイゼーションを以下のように行った。Clontech（Palo Alto,CA）から得たヒトゲノムDNAを制限消化し、GenescreenR（Dupont）上にブロットしてＣ−C CKR−1 cDNAとハイブリダイズさせた［Neote,K.ら，J.Clin.Invest.,86:1524−31（1990）］。ハイブリダイゼーションパターンは、Ｃ−C CKR−１遺伝子がイントロンを含まないであろうことを示した。さらに、該パターンは第二の関連遺伝子あるいは恐らく偽遺伝子の存在を示唆した。図3Aおよび3Bは、数個の制限酵素で消化されたヒトゲノムDNAの同じブロットの低および高ストリンジェンシー洗浄を示す。高ストリンジェンシー条件下で（図3B）、ゲノムDNAをBamH I、Hind IIIまたはSac Iにより消化した場合に、Ｃ−C CKR−1 cDNAにハイブリダイズしている１個の制限フラグメントがcDNA配列から予想されたように検出され、EcoR IおよびPst Iで消化されたDNAにおいては２つのフラグメントが検出される。しかし、低ストリンジェンシーハイブリダイゼーションは、Ｃ−C CKR−1 cDNAにハイブリダイズする別のバンドの存在を示し、例えば約7kb Pst Iフラグメントおよび約1.6kb Hind IIIフラグメントが検出された（図3A）。ブロットを高ストリンジェンシー条件下で洗浄した場合にこれらバンドは消失したが、他のバンドは２洗浄の間で変化しないままであった。
実施例IV HuMIP−１αおよびRANTESに反応したＣ−C CKR−１によるシグナル化
MCP−１、RANTES、HuMIP−１αおよびHuMIP−１βは、ヒト単球における細胞内Ca++の急速および一過性の上昇を誘導する［Rollins,B.J.ら，Blood,78:1112−６（1991）;Sozzaniら，J.Immunol.,147:2215−21（1991）］。Ｃ−C CKR−１が機能的Ｃ−Ｃケモカインレセプターであるか否かを測定するために、Ｃ−C CKR−１をヒト腎臓293細胞において一過性発現させて異なるＣ−Ｃケモカインに反応する細胞内Ca++レベルを測定した。
組換えRANTESをE.coliにおいて発現させてKunaら［J.Immunol.,149:636−42（1992b）］が開示しているように精製した。HuMIP−１αおよびHuMIP−１βをE.coliにおいて発現させて、Rotら［J.Exp.Med.，印刷中］が開示しているように精製した。HuMIP−１αをクロログリコルリル法によりヨウ素化して［Frakerら，Biochem.Biophys.Res.Comm.,80:849−857（1978）］、最初の比活性を472Ci/mmolにした。ゲル濾過および逆層HPLCの組み合わせによりラベルしたHuMIP−１αを精製した。125I−ラベルしたRANTES、比活性2200Ci/mmolをDupont/NEN（Boston,MASS）から入手した。組換えMCP−１およびネズミMIP−１αをPeprotech（Rocky Hill,NJ）から入手した。
開示されている［Schall,T.J.ら，Eur.J.Immunol.,22:1477−81（1992）］カルシウム−リン酸法または改良カルシウムリン酸法［Chen,C.ら，Mol.Cell.Biol.,7:2745−2752（1987）］により、ヒト胎児腎臓293細胞をプラスミドDNA（10〜20μｇ）でトランスフェクションした。12〜24時間の一過性発現後に、トランスフェクション細胞をアッセイした。
細胞内Ca++測定は、本質的に開示されている［Naccache,P.H.ら，J.Immunol.,142:2438−44（1989）］ようにSLM 8000C上で小さな修飾（IND0−１−AMを最終濃度20mg/mlで用い、１アッセイ当たり２〜４×106細胞を用いた）と共に行った。
RANTES、HuMIP−１α、HuMIP−１βおよびMCP−１の100nM用量を、最大生理学的関連濃度の最初の近似値として始めに用いた。カルシウムプローブINDO−１−AMを付加したトランスフェクション細胞をHuMIP−１αまたはRANTESのどちらかの100nMで刺激した場合に、細胞内Ca++の急速な上昇が観察された（図４）。同じ用量のMCP−１またはHuMIP−１βでの刺激は、検出可能なCa++流をほとんど生じなかった（データは示さず）。ベクターのみまたは反対（非コード）配向でＣ−C CKR−１を含有しているベクターでトランスフェクションされた対照細胞は、どのリガンドにも反応しなかった（データは示さず）。シグナル化反応は用量依存性であり、10nMのHuMIP−１αおよび100nMのRANTESは最大または最大に近い反応を与えるのに十分であった（図4Aおよび4B）。
同じリガンドに対する急速、連続的な暴露は、Ｇタンパク質結合レセプターのシグナル化能力の感度を減少させることが知られている［Schild,H.O.（1973），「特にβ−アドレナリンレセプターに関するレセプター分類」，Drug Receptors,H.P.Rang編，（University Press）,pp.29−36］。さらに、２つの異なるアゴニストが同じレセプターによりシグナルを送る場合に、感度抑制が起こり得る。HuMIP−１αをトランスフェクション細胞に連続して２回加えた場合に、HuMIP−１αは、第二のCa++シグナルを送るＣ−C CKR−１レセプターの能力を明らかにブロックする（図5A）。同様に、RANTESは同じ濃度で第二刺激に対する反応をブロックする（図5B）。HuMIP−１αを最初に加えた場合には、HuMIP−１αはRANTESに対する反応をブロックし、これは完全な感度抑制が起こったことを示す（図5C）。しかし、250nM RANTESを用いたＣ−C CKR−1 cDNAトランスフェクション細胞の刺激は、100nM HuMIP−１αの添加により続いて起こるCa++流を妨げず（図5D）、これはレセプター感度抑制が起こらなかったことを示す。しかし、HuMIP−１αにより続いて起こるCa++流は約70nM（図5AおよびＣ）から約40nM（図5D）の細胞内Ca++変化へと減少し、これは部分的感度抑制が起こったことを示唆した。
実施例Ｖ Ｃ−C CKR−１に対するHuMIP−１αおよびRANTESの結合
クローン化Ｃ−C CKR−１に対するHuMIP−１αおよびRANTESの相互作用をさらに調べるために、125I−ラベルしたリガンドを用いた直接結合実験を行った。
結合アッセイは既に開示されているように［Horuk,R.ら，J.Biol.Chem.,262:16275−16278（1987）］行った。トランスフェクション細胞（1ml当たり２×106細胞）を、放射性ラベル化リガンドおよび変化濃度の非ラベル化リガンドと４℃で２時間インキュベートした。細胞懸濁物からその一部を分取し、既に開示されているように［Robb,R.J.ら，J.Exp.Med.,160:1126−1146（1984）］、シリコン／パラフィン油混合物による遠心分離により緩衝液から細胞を分離することによりインキュベートを終了した。１μＭの非ラベル化リガンドの存在下で非特異的結合を測定した。少なくとも３つの異なる実験を表す個々のアッセイ測定値をプロットした。結合データは、IBM PC用に修正された［McPherson,G.A.,Comp.Prog.Biomed.,17:107−114（1983）］コンピュータープログラムLIGAND［Munson,P.J.ら，Anal.Biochem.,107:220−239（1980）］を用いて曲線適合させて親和性（Kd）、部位の数および非特異的結合を測定した。示された曲線は、LIGANDにより決定された結合等温線である。
このようにして、Ｃ−C CKR−１を一過性発現している293細胞を125I−HuMIP−１αおよび増大濃度の非ラベル化HuMIP−１αとインキュベートした場合に、Ｃ−C CKR−１に対する125I−HuMIP−１αの置換可能な結合が観察された（図6A）。スキャッチャード分析は、5.1±0.3nMの解離定数（Kd）および約130000部位／細胞を示した。このKdは、ヒト単球へのHuMIP−１α結合について測定されたKdの範囲内にあり、Ｃ−C CKR−１は単球上に存在するHuMIP−１αレセプターのうちの少なくとも１つのであることを示唆している。しかし、Ｃ−C CKR−１に対するRANTESの直接結合を行うことができなかった（すなわち、125I−RANTESは非ラベル化RANTESにより置換することができなかった）。興味深いことに、結合アッセイにおいて非ラベル化RANTESの量を上昇させた場合に、細胞に結合した125I−RANTESの同時に生ずる上昇が観察された（データは示さず）。Ｃ−C CKR−１はRANTESに反応してシグナル（Ca++を移動させる）を変換するから（図４）、従って該リガンドはクローン化レセプターに結合していなければならないが、125I−RANTESについて観察される普通でない結合グラフに対する理由は明らかでない。RANTESに反応する他の標的細胞を用いた場合に同様の結合現象が得られる。興味深いことに、Ｃ−C CKR−１を一過性発現している293細胞上で非ラベル化HuMIP−１αにより125I−RANTESを置換することができた（図6B）。この異種置換のスキャッチャード分析により、7.6±1.5nMのKd（約350000部位／細胞）が示唆され、上記のHuMIP−１α結合データのKdと一致する。これらの観察は、Ｃ−C CKR−１がHuMIP−１αおよびRANTESに結合し、次いで細胞内Ca++レベルを上昇させることによりシグナルを変換することを本発明者らに最初に示唆した。
実施例VI 異種ケモカインによるHuMIP−１αの置換
Ｃ−C CKR−１の結合特性をさらに特性化し、特にクローン化Ｃ−C CKR−１に対するRANTES結合のKdを明らかにする試みのために、125I−HuMIP−１αの異種置換をRANTESおよびさらにHuMIP−１β、MCP−１、IL−８およびネズミMIP−１αを用いて行った。興味深いことに、全てのＣ−Ｃケモカイン（RANTES、MIP−1bおよびMCP−１）は125I−HuMIP−１αを置換したが、Ｃ−Ｘ−ＣケモカインIL−８は置換しなかった（図７）。スキャッチャード分析から決定されたRANTES、HuMIP−1bおよびMCP−１、およびネズミMIP−１αのKdは、各々468±280、232±70.1、122±39.3および4.2±2.7nMであり、各場合において約250000〜350000部位／細胞が存在する（図７）。これらの結果は、結合における種特異性のある種の欠如を含むＣ−C CKR−１の広いリガンド特異性を明らかにした。さらに重要なことには、これによりリガンドとレセプターの間の結合親和性はその相互作用の結果生じるシグナル化効力を予想しないことが示唆された。すなわち、HuMIP−１βおよびMCP−１は比較的高い親和性で結合し、RANTESもそうであるが、100nMのMIP−１βまたはMCP−１はクローン化レセプターを通じてシグナルを伝達しないのに対して、RANTESは伝達する（図４）。
実施例VII HuMIP−１βおよびMCP−１に反応したカルシウム流動化
Ｃ−C CKR−１に対するHuMIP−１βおよびMCP−１結合の関連を測定するために、Ｃ−C CKR−1 cDNAトランスフェクトした293細胞を高用量のHuMIP−１βおよびMCP−１で刺激し、細胞内Ca++レベルを測定した。Ca++流を生じさせるために組換えMCP−１の1mMの濃度を用いなければならなかった。しかし、このCa++流はHuMIP−１αまたはRANTESにより得た最大反応の約20％にすぎなかった（図８）。比較的低い濃度は、ほとんど非検出可能な流動を与えた（データは示さず）。THP−１細胞および50〜100nMのMCP−１を用いた対照実験は、予測された強いCa++流を与えた（200〜300nM Ca++の一過性上昇；データは示さず）。同様に、Ｃ−C CKR−１を一過性発現している293細胞内でCa++流を生じさせるためにHuMIP−１βの250nMが必要であり、このCa++流はHuMIP−１αまたはRANTESにより得た最大シグナルの約20％であった（図８）。これらの結果は、HuMIP−１βおよびMCP−１の結合親和性がそれらのシグナル化能力を反映しないという示唆を支持した。
実施例VIII US28によりコードされるタンパク質を発現している293細胞に対するHuMIP−１αの結合
Ｃ−C CKR−１のアミノ酸配列は、US28と称されるヒトCMVゲノムにおける読み取り枠に約35％同一であるから、本発明者らはこの読み取り枠によりコードされるタンパク質がHuMIP−１αに結合するか否かを測定しようとした。PCRおよび熱安定性DNAポリメラーゼPfuを用いて、コード領域と境界を接するプライマーによりTowne株サイトメガロウイルスの貯蔵物（Dr.Philip Dormitzerの厚意いよる贈与物）からUS28読み取り枠を増幅した。PCR産物を発現ベクターpRK5中にサブクローン化し、その同一性を配列決定により確認した。センス配向および反対のアンチセンス配向でUS28を含有しているプラスミドDNAを293細胞にトランスフェクションした。次いでトランスフェクション細胞を用いて放射性ラベルしHuMIP−１αの結合を測定した。センス配向のUS28コード配列でトランスフェクションした293細胞は125I−HuMIP−１αに結合したが、アンチセンス配向でトランスフェクションした細胞においてはごくわずかな結合が得られた（図10）。放射性ラベル化HuMIP−１αは、１μＭのネズミMIP−１α、HuMIP−１β、RANTESおよびMCP−１で置換することができたが、Ｃ−Ｘ−Ｃケモカイン、IL−８によっては置換されなかった（図10）。これらの結果は、US28によりコードされるタンパク質がＣ−Ｃケモカインに特異的に結合し、Ｃ−Ｘ−Ｃケモカインには結合しないことを示している。
配  列  表
（１）  一般的情報
（ｉ）  特許出願人：ジェネンテク，インコーポレイテッド
（ii）  発明の名称:CC−ケモカインレセプター
（iii）  配列の数:11
（iv）  連絡先：
（Ａ）  名宛人：ジェネンテク，インコーポレイテッド
（Ｂ）  通り：ポイント・サン・ブルーノ・ブールバード460番
（Ｃ）  市：サウス・サン・フランシスコ
（Ｄ）  州：カリフォルニア
（Ｅ）  国：アメリカ合衆国
（Ｆ）  ZIP:94080
（ｖ）  コンピューター解読書式：
（Ａ）  媒体型:5.25インチ、360Kbフロッピーディスク
（Ｂ）  コンピューター:IBM PC適合
（Ｃ）  オペレーティング・システム:PC−DOS/MS−DOS
（Ｄ）  ソフトウエア:patin（ジェネンテク）
（vi）  本出願のデータ：
（Ａ）  出願番号：
（Ｂ）  出願日：
（Ｃ）  分類：
（vii）  優先権主張出願のデータ：
（Ａ）  出願番号：
（Ｂ）  出願日：
（viii）  弁理士／代理人  情報：
（Ａ）  氏名：フィッツ，レニー・エー
（Ｂ）  登録番号:35,136
（Ｃ）  参照／整理番号:806
（ix）  電話連絡先情報：
（Ａ）  電話番号:415/225−1489
（Ｂ）  ファックス番号:415/952−9881
（Ｃ）  テレックス番号:910/371−7168
（２）  配列番号１の情報
（ｉ）  配列の特徴：
（Ａ）  長さ:355アミノ酸
（Ｂ）  型：アミノ酸
（Ｃ）  トポロジー：直鎖状
（xi）  配列：配列番号1:
0003664176.tif 000003
0003664176.tif 000004
0003664176.tif 000005
（２）  配列番号２の情報
（ｉ）  配列の特徴：
（Ａ）  長さ:352アミノ酸
（Ｂ）  型：アミノ酸
（Ｃ）  トポロジー：直鎖状
（xi）  配列：配列番号2:
0003664176.tif 000006
0003664176.tif 000007
0003664176.tif 000008
（２）  配列番号３の情報
（ｉ）  配列の特徴：
（Ａ）  長さ:350アミノ酸
（Ｂ）  型：アミノ酸
（Ｃ）  トポロジー：直鎖状
（xi）  配列：配列番号3:
0003664176.tif 000009
0003664176.tif 000010
0003664176.tif 000011
（２）  配列番号４の情報
（ｉ）  配列の特徴：
（Ａ）  長さ:355アミノ酸
（Ｂ）  型：アミノ酸
（Ｃ）  トポロジー：直鎖状
（xi）  配列：配列番号4:
0003664176.tif 000012
0003664176.tif 000013
0003664176.tif 000014
（２）  配列番号５の情報
（ｉ）  配列の特徴：
（Ａ）  長さ:350アミノ酸
（Ｂ）  型：アミノ酸
（Ｃ）  トポロジー：直鎖状
（xi）  配列：配列番号5:
0003664176.tif 000015
0003664176.tif 000016
0003664176.tif 000017
（２）  配列番号６の情報
（ｉ）  配列の特徴：
（Ａ）  長さ:350アミノ酸
（Ｂ）  型：アミノ酸
（Ｃ）  トポロジー：直鎖状
（xi）  配列：配列番号6:
0003664176.tif 000018
0003664176.tif 000019
0003664176.tif 000020
（２）  配列番号７の情報
（ｉ）  配列の特徴：
（Ａ）  長さ:323アミノ酸
（Ｂ）  型：アミノ酸
（Ｃ）  トポロジー：直鎖状
（xi）  配列：配列番号7:
0003664176.tif 000021
0003664176.tif 000022
（２）  配列番号８の情報
（ｉ）  配列の特徴：
（Ａ）  長さ:1495塩基
（Ｂ）  型：核酸
（Ｃ）  鎖の数：一本鎖
（Ｄ）  トポロジー：直鎖状
（xi）  配列：配列番号8:
0003664176.tif 000023
0003664176.tif 000024
0003664176.tif 000025
0003664176.tif 000026
（２）  配列番号９の情報
（ｉ）  配列の特徴：
（Ａ）  長さ:9アミノ酸
（Ｂ）  型：アミノ酸
（Ｃ）  トポロジー：直鎖状
（xi）  配列：配列番号9:
0003664176.tif 000027
（２）  配列番号10の情報
（ｉ）  配列の特徴：
（Ａ）  長さ:10アミノ酸
（Ｂ）  型：アミノ酸
（Ｃ）  トポロジー：直鎖状
（xi）  配列：配列番号10:
0003664176.tif 000028
（２）  配列番号11の情報
（ｉ）  配列の特徴：
（Ａ）  長さ:9アミノ酸
（Ｂ）  型：アミノ酸
（Ｃ）  トポロジー：直鎖状
（xi）  配列：配列番号11:
0003664176.tif 000029
【図２】
0003664176.tif 000030
【図１Ａ】
0003664176.tif 000031
【図１Ｂ】
0003664176.tif 000032
【図１Ｃ】
0003664176.tif 000033
【図３Ａ】
0003664176.tif 000034
【図３Ｂ】
0003664176.tif 000035
【図４Ａ】
0003664176.tif 000036
【図４Ｂ】
0003664176.tif 000037
【図５Ａ】
0003664176.tif 000038
【図５Ｂ】
0003664176.tif 000039
【図５Ｃ】
0003664176.tif 000040
【図６Ａ】
0003664176.tif 000041
【図５Ｄ】
0003664176.tif 000042
【図６Ｂ】
0003664176.tif 000043
【図７】
0003664176.tif 000044
【図８】
0003664176.tif 000045
【図９Ａ】
0003664176.tif 000046
【図９Ｂ】
0003664176.tif 000047
【図１０】
0003664176.tif 000048