(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ＩＬ−４受容体（ＩＬ−４Ｒ）またはＩＬ−４Ｒの細胞外領域を含有するＴＨ２型Ｔ−ヘルパー細胞の産生増大を生じる嚢尾虫（キスチケルクス）またはカンジダによる感染症の治療または予防剤。
【請求項２】
カンジダがカンジダアルビカンスである請求項１記載の剤。
【請求項３】
ＩＬ−４受容体またはＩＬ−４Ｒの細胞外領域が融合蛋白質の構成成分である請求項１記載の剤。
【請求項４】
融合蛋白質がＩＬ−４受容体またはＩＬ−４Ｒの細胞外領域および抗体のＦｃ部分を含有する請求項３記載の剤。
【請求項５】
ＩＬ−４ＲまたはＩＬ−４Ｒの細胞外領域とγ−インターフェロンとを含有する配合製品からなる請求項１〜４のいずれか１項に記載の剤。
【請求項６】
ＩＬ−４ＲまたはＩＬ−４Ｒの細胞外領域と可溶性のＣＤ４０表面分子とを含有する配合製品からなる請求項１〜４のいずれか１項に記載の剤。
【請求項７】
局所投与用である請求項１〜４のいずれかに記載の剤。
【請求項８】
皮内、皮下、経皮、経鼻または経肺投与用である請求項７記載の剤。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
多くのアレルギー性、ウイルス性、寄生虫性および細菌性疾患の治療および予防には重大な問題が残されている。本発明は、このような疾患の治療、予防および診断のためのＩＬ−４受容体またはその誘導体の使用に関する。
【０００２】
ある種の寄生虫性、ウイルス性および細菌性疾患の経過において、リンパ球および単球細胞の亜集団に変化があることは知られている。これは例えば、いわゆる２型のＴ−ヘルパー細胞（以下、ＴＨ２細胞という）の増大と関連する。Ｔ細胞は一般に、表面マーカーおよびそれらの機能に基づいて亜集団に分割することができる。すなわち、たとえばＴ−ヘルパーリンパ細胞はＣＤ４表面分子をもち、それらが活性化されるとサイトカインが分泌される。
【０００３】
健康なマウスまたは同種細胞で刺激されたマウスからのクローン化Ｔ−ヘルパー細胞のサイトカインパターンの分析により、これらの細胞はインターロイキン−２、インターロイキン−４、γ−インターフェロン、インターロイキン−５、インターロイキン−６、インターロイキン−１０およびリンホトキシンを産生することが明らかにされた（いわゆるＴＨＯ型のＴ−ヘルパー細胞）。
【０００４】
マウスを、たとえば細菌性抗原、ウシ流産菌（Brucella abortus）または結核菌（Mycobacterium tuberculosis）で刺激したのち、とくにＴ−ヘルパー細胞のクローニング後に見出されるクローンは、リンホトキシン、γ−インターフェロンおよびインターロイキン−２を分泌するが、インターロイキン−４、インターロイキン−５、インターロイキン−６およびインターロイキン−１０はほとんどまたは全く分泌されない（いわゆるＴＨ１型のＴ−ヘルパー細胞）。
【０００５】
たとえば、感受性マウスの、リーシュマニアメージャー（Leishmania major）のような寄生性病原体による感染後に、とくにＴ−ヘルパー細胞のクローニングに際して生じるクローンにおいては、インターロイキン−４、インターロイキン−５およびインターロイキン−１０の産生が増大するが、インターロイキン−２およびγ−インターフェロンの産生は低下するか、検出不可能な量になる（ＴＨ２型のＴ−ヘルパー細胞）（Mosmannら、Immunological Reviews, 1991, No.123, 209−229；S．Romagnani, Immunology Today, 256-257、Vol, 12, No. 8, 1991)。
【０００６】
このＴＨ２リンパ球の存在の増加は既に、動物およびヒトの一部の感染性疾患で検出され（Else ＆ Grencis,  Parasitology Today, Vol. 7, No. 11, 1991, pp.313−316；Parasitology Today, Vol. 7, No. 10, 1991, p.261）、これは二次パラメーターにも反映している。すなわち、リーシュマニアメージャーに感染したマウスは一般に、γ−インターフェロンの産生低下、血清ＩｇＥの著しい上昇および好酸球増多症を示した。
【０００７】
たとえば、癩腫癩、リーシュマニア症および住血吸虫症ならびに結核菌感染症の患者では、一般に、血清中のＩｇＥ濃度が、正常対象の血清の場合に比べて、著しく高いことが見出されている。寄生虫感染症では、その疾患の経過中、好酸球増多症を認めることが多い。
【０００８】
即時型のＩｇＥ仲介アレルギー反応ならびにアトピー性皮膚炎および喘息も、この種類の調節障害によって特徴づけられる。たとえば、アトピー性皮膚炎患者の皮膚バイオプシーから得られる抗原特異的Ｔ−細胞クローンはとくにＴＨ２型である（Kapsenbergら、Immunology Today,  Vol. 12, No.11, 1991, 392−395）。
【０００９】
今回、ＴＨ２型のＴ−ヘルパー細胞の産生増大によって特徴づけられる疾患は、ＩＬ−４Ｒまたはその誘導体を使って診断ならびに治療的および／または予防的処置が可能であることが見出された。
【００１０】
したがって、本発明は、ＴＨ２型Ｔ−ヘルパー細胞の産生増大を生じる疾患の治療および／または予防のための医薬の製造またはその疾患の確認のための診断剤の製造のためのＩＬ−４受容体またはその誘導体の使用に関する。
【００１１】
ＩＬ−４Ｒの「誘導体」とは、本発明の目的においては、ＩＬ−４Ｒの機能的に均等な部分、突然変異体または変異体を意味し、とくにＩＬ−４Ｒの細胞外部分、またとくに、ヒトＩＬ−４受容体の成熟蛋白質のアミノ酸１〜約２０９ならびにそのグリコシル化変異体である。また、本発明による受容体の使用に際しては、ＩＬ−４Ｒまたはその誘導体および他の蛋白質または蛋白質の部分を含有する融合蛋白質、好ましくは抗体のＦｃ部分を含有する融合蛋白質（ＩＬ−４Ｒ／Ｆｃ融合蛋白質）の採用も可能である。さらに、ＩＬ−４Ｒ、その誘導体または融合蛋白質を、上記疾患の治療および／または予防処置用の配合製品中に、好ましくはγ−インターフェロンと配合して使用することもできる。
【００１２】
精製アレルゲンまたはその部分との配合による治療、特に、たとえばアレルギー性鼻炎患者の特異的免疫療法（脱感作）における精製アレルゲンとの配合による脱感作も有利である。
【００１３】
γ−インターフェロン、および／または細胞表面分子ＣＤ４０とそのリガンドとの相互作用を遮断する物質、細胞表面分子ＣＤ４０リガンド、好ましくはＣＤ４０表面分子自体の可溶性変異体、たとえば以下に述べるようなＣＤ４０／Ｉｇ融合蛋白質もしくはその誘導体との配合による治療も有利である。
【００１４】
ＣＤ４０表面分子の可溶性変異体の「誘導体」とは、本発明の目的においては、細胞性ＣＤ４０の細胞表面分子ＣＤ４０リガンドとの相互作用を遮断する、それらの機能的に均等な部分または変異体を意味する。
【００１５】
疾患としては、アレルギーおよび感染症、とくにウイルス性、細菌性および寄生虫性感染症、ならびにかび感染症が包含される。とくにヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）、マイコバクテリアとくに癩菌（Mycobacterium leprae）、リステリア（listeria）、とくにリーシュマニア属（Leishmania）およびプラスモジウム属（Plasmodium）の原生動物（protozoa）、とくに住血吸虫属（Schistosoma）、寄生性鉤虫属（Nippostrongylus）、ヘリグモソモイデス属（Heligmosomoides）の蠕虫、鞭虫（Trichurida）、旋毛虫（Trichinella）、嚢尾虫（Taenia）（キスチケルクス、Cysticercus）、カンジダ（Candida）、ならびにアスペルギルス（Aspergillus）による感染症を挙げることができる。しかしながら、即時型のアレルギー反応、とくにＩｇＥ仲介反応の診断、処置または予防的処置も可能である。これらには、とくにアトピー性皮膚炎および喘息が包含される。
【００１６】
投与形態は一般に、疾患によって異なる。すなわち、一部の疾患では、たとえば局所投与が有利である。有益な例としては、喘息に対しては吸入による投与、結膜炎に対しては点眼剤での投与、アトピー性皮膚炎には経皮または皮内投与がある。病原性ＴＨ２細胞はとくに局所的に検出されるからである。
【００１７】
ヒトＩＬ−４受容体は、合計８２５個のアミノ酸から構成されることが報告されている（Idzerda, R. J. ら、1990, J. Exp. Med. 171, 861−873)。Idzerdaらによれば、２５Ｎ−末端アミノ酸はシグナルペプチドとして機能し、成熟ヒトＩＬ−４受容体は８００個のアミノ酸からなり、1) 細胞外ドメイン（２０７アミノ酸）、2) 膜通過領域（約２４アミノ酸）、3) 細胞質内ドメイン（５６９アミノ酸）の３つのドメイン構造を有する。遺伝子工学によるＩＬ−４受容体の製造は、治療に必要な大量の物質の直接製造を可能にするので、殊に有利である。
【００１８】
ＩＬ−４Ｒは、たとえば、国際特許出願ＷＯ90／05183号に記載されているようにして製造できる。この方法によれば、ｃＤＮＡ遺伝子バンクをたとえばＴ細胞系Ｔ22から作成し、ＩＬ−４Ｒ特異的ＤＮＡに対するプローブでスクリーニングした。プローブとして、ＷＯ90／05183号に記載されたマウス細胞系のハイブリッド減数ｃＤＮＡを用いることが可能である。しかしながら、ｃＤＮＡバンクのスクリーニングには、ＩＬ−４Ｒ特異的ハイブリダイゼーションプローブ、たとえば約２０ヌクレオチド長の１個または２個以上の、たとえば位置１９３〜２１０のプローブも使用できる。陽性クローンを、たとえば配列決定により、ＩＬ−４Ｒ特異的ｃＤＮＡについて照合したのち、見出されたＩＬ−４Ｒ ＤＮＡを適当な発現ベクターたとえばｐＣＡＶ／ＮＯＴ（ＷＯ90／05183号）にクローン化し、適当な宿主細胞たとえばＣＯＳ−７、ＢＨＫ−２１またはＣＨＯ細胞中で完全にまたは部分的に発現させることができる。ＩＬ−４受容体の細胞外領域をコードするｃＤＮＡ部分のみが発現に使用される場合には、インターロイキン−４受容体の細胞外領域は、一般に、トランスフェクトされた細胞により培養培地中に分泌される。この目的では、本技術分野の技術水準に相当する遺伝子工学方法により、受容体の細胞外領域のコード配列またはその所望の部分の後に停止コドンを導入するような方法でｃＤＮＡを変換し、こうして変換されたｃＤＮＡを適当な発現ベクター中にクローン化する（Maliszewskiら、1990, J. Immunol., 144, 3028−3033；Dowerら、1989, J. Immunol.，142, 4314）。多くの場合、たとえばマウスＩＬ−４受容体の場合は、単離されたｃＤＮＡは天然に生じる分泌型の受容体をコードする（Mosleyら、1989, Cell 59, 335）。これらのｃＤＮＡはついで、発現ベクターの製造に直接使用できる。分泌された蛋白質はたとえばリガンドアフィニティークロマトグラフィーまたは、特異的モノクローナル抗体（Maliszewskiら、1990, J. Immunol., 144, 3028−3033）を用いるイムノアフィニティークロマトグラフィーによって培養培地から精製できる。さらに欧州特許出願EP−A1−0 464 533号に記載のように遺伝子工学的手段により、ＩＬ−４Ｒまたはその誘導体と、他の蛋白質たとえば免疫グロブリン部分たとえば抗体分子のＦｃ部分との融合蛋白質（以下、ＩＬ−４Ｒ／Ｆｃという）を製造し、それを発現させることができる。このような融合蛋白質の利点は、半減期が延長され、プロテインＡ−セファロースアフィニティークロマトグラフィーによる濃縮および精製が単純化されることである。
【００１９】
アフィニティークロマトグラフィーによる問題のない精製およびファーマコキネティックスの性質の改良可能性が、ＩＬ−４受容体溶解型の免疫グロブリンとの融合蛋白質としての合成が特に有利であることを意味する。
【００２０】
ＣＤ４０はI型膜蛋白質であり、すなわち、（アミノ末端）細胞外領域、膜通過領域および（カルボキシ末端）細胞質内領域から構成される。ＣＤ４０をコードするｃＤＮＡは、たとえば、ラージ細胞のｃＤＮＡバンクからパニング法を用いて（Stamenkovic. I. ら、1989, EMBO J., Vol. 8, pp．1403−1410）単離できる。通常は膜に会合している蛋白質を溶解型として発現させるためには、熟練した研究者によく知られている様々なオプションがある。たとえば、突然変異原付与プライマーを用いるポリメラーゼ連鎖反応において、細胞外領域をコードするｃＤＮＡ配列の末端に停止コドンを導入することが可能である。この方法によって変換させたｃＤＮＡは膜アンカーを欠くので、他の分泌蛋白質と同様に細胞によって分泌されるＣＤ４０蛋白質をコードすることになる（Fanslow、W. C. ら、1992. J. Immunol., pp．655−660）。可溶性組換え免疫グロブリン融合蛋白質を使用するのも有利である。その製造はたとえばEP−A−0 464 533号に記載されている。とくに、ＣＤ４０／Ｉｇ融合蛋白質はまた文献に開示されている（Fanslowら、1992, J. Immunol., Vol. 149, pp．655−660およびNoelleら、1992, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, Vol. 89, pp.6550-6554)。両報告とも、ヒト免疫グロブリンＧ１分子のＨ鎖の蝶番部、ＣＨ２およびＣＨ３ドメインに融合したＣＤ４０の細胞外領域からなるＣＤ４０／Ｉｇ融合蛋白質を記載している。相当するＤＮＡ構築体の製造には、ＣＤ４０ｃＤＮＡに適当な制限切断部位を、突然変異原付与プライマーを使用するポリメラーゼ連鎖反応によって導入するか（Fanslowら、1992, J. Immunol., Vol. 149, pp．655−660)、あるいはＣＤ４０ｃＤＮＡ中に天然に存在する制限切断部位を利用した（Noelleら、1992, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, Vol. 89, pp．6550−6554)。
【００２１】
溶解型ＣＤ４０は、組換え蛋白質として既知の原核生物または真核生物系中で発現させることができるが、哺乳動物培養細胞中で発現させることが好ましく、培養液上清または細胞溶解物から慣用方法によって精製できる。可溶性ＣＤ４０分子の直接的な遺伝子療法への使用の可能性は別として、可溶性ＣＤ４０分子はさらに、膜会合ＣＤ４０およびＣＤ４０リガンドの相互作用を遮断する、したがって、同様に治療的可能性を有する他の物質の確認にも使用できる。これはたとえば、可溶性ＣＤ４０分子が固相上に存在し可溶性ＣＤ４０リガンドの結合は適当な標識または抗体を用いて追跡する、細胞を含まない受容体結合アッセイ（EP−A−O 488 170号）によって実施できる。この種のアッセイは、その自動化が可能であることから、ＣＤ４０／ＣＤ４０リガンドとの相互作用についての大量の物質の検討方法（受容体スクリーニング）を提供する。
【００２２】
以下に詳述する実施例においては、Idzerdaら（1990, J. Exp. Med., 171, 861−873）およびMaliszewskiら（1990, J. Immunol., 144, 3028−3033)によって定義された細胞外領域および天然に生じる溶解型のヒトおよびマウスＩＬ−４受容体（以下、それぞれｈｕＩＬ−４ＲおよびｍｕＩＬー４Ｒと称す）を、メトトレキセートおよびＧ418（EP−A 0330 977号）による二重選択後、それを安定に発現するＢＨＫ細胞によって可溶性蛋白質として培養培地中に分泌させて、イムノアフィニティークロマトグラフィーによって精製された。また、ヒトもしくはマウスＩＬ−４受容体の細胞外領域、およびヒトＩｇＧ１またはマウスＩｇＧ２ｂ分子の蝶番部、ＣＨ２およびＣＨ３ドメイン（Zettlmeisslら、1990, DNA Cell Biol. 9, 347−353）から構成される（以下、それぞれ、ｈｕＩＬ−４Ｒ／ＦｃおよびｍｕＩＬ−４Ｒ／Ｆｃと称す）受容体／免疫グロブリン融合蛋白質（EP−A1−0 464 533号）も使用され、ＢＨＫ細胞中で同様に発現後、プロテインＡ−セファロースアフィニティークロマトグラフィーによって精製された。
【００２３】
ＩＬ−４ＲおよびＩＬ−４Ｒ／Ｆｃは、各場合とも同種のインターロイキン−４のバイオアッセイにおける中和に等しく有効である（実施例１）。さらに、ｈｕＩＬ−４Ｒ／ＦｃによるＴＨ２型のヒトＴ−細胞クローンの阻害の検出はインビトロでも可能であった。これらのクローンによってインビトロで形成されたＩＬ−４はｈｕＩＬ−４Ｒ／Ｆｃによって中和された。これは増殖の低下を生じた。ＴＨ１型の対照クローンの成長はｈｕＩＬ−４Ｒ／Ｆｃによって影響されなかった（実施例４）。
【００２４】
さらに、ｈｕＩＬ−４Ｒ／Ｆｃは、ＩＬ−４によって誘導される合成をインビトロで抑制することができて（実施例２）、また驚くべきことに、ヒト末梢血単核細胞によるＩｇＥの抗原特異的合成を抑制できる（実施例３）ことが見出された。驚くべきことに、たとえば、マウスリステリア症の動物モデル、嚢尾虫（Cysticercus crassiceps）感染症の動物モデル（マウス）、全身エリテマトーデスの動物モデル（ＭＲＬ／１マウス）、慢性移植片対宿主反応の動物モデル（マウス）およびアレルゲン誘発喘息の動物モデル（マウス）におけるマウス可溶性インターロイキン−４受容体に対する例証で明らかにできたように（実施例５）、感染症および免疫系の異常に対して治療または予防的効果を示す。
【００２５】
実施例 １
ＩＬ−４ＲおよびＩＬ−４Ｒ／Ｆｃのヒトおよびマウス変異体の生物活性
生物活性はバイオアッセイで測定した。ＩＬ−４は、ＩＬ−４受容体に厳密に種特異的に結合する。この理由のため、マウス起源であり、マウスＩＬ−４受容体が膜に会合している細胞系を使用した。この細胞系を、ヒトインターロイキン−４受容体の完全遺伝子でトランスフェクトした。マウスおよびヒト膜会合受容体はこの細胞系によって同時に機能的に発現され、細胞系の増殖はマウスおよびヒト両ＩＬ−４に依存する（Mosleyら、Cell, Vol. 59, 335−348, 1989年10月20日)。
【００２６】
ｍｕＩＬ−４ＲおよびｍｕＩＬ−４Ｒ／Ｆｃの検出にはマウスＩＬ−４を使用した（表１）。細胞系の増殖はマウスＩＬ−４に依存する（表１）。インターロイキン−４の常時使用およびｍｕＩＬ−４ＲまたはｍｕＩＬ−４Ｒ／Ｆｃの同時添加により、インターロイキン−４の濃度依存性中和を生じた。細胞系が利用可能なインターロイキン−４が減少するので増殖は低下する。同じＦｃ部分を有する対照蛋白質はこの効果を示さない。表１の濃度依存性阻害におけるｍｕＩＬ−４ＲとｍｕＩＬ−４Ｒ／Ｆｃの間の差は分子量の差によるものである。
【００２７】
表２は、ヒトインターロイキン−４の生物活性および、表１に相当するｈｕＩＬ−４ＲおよびｈｕＩＬ−４Ｒ／Ｆｃの特異的中和作用を示す。濃度依存性阻害におけるｈｕＩＬ−４ＲとｈｕＩＬ−４Ｒ／Ｆｃの間の差は分子量の差によるものである。
【００２８】
実施例 ２
ｈｕＩＬ−４Ｒ／ＦｃによるＩＬ−４Ｒ誘発ＩｇＥ合成の抑制
ヒト末梢血単核細胞を単離し、５％ＦＣＳ含有Iscove培養培地中、２４ウエルプレートにおいて、培養ウエルあたり細胞数１×１０6細胞、培養容量１ｍｌで、４８時間培養した。培地に、３００ｎｇ／ｍｌのヒトインターロイキン−４を添加した。既に存在した膜結合ＩｇＥがこの前刺激時に培養培地中に放出された。４８時間後、細胞を洗浄して放出されたＩｇＥを除去した。細胞をついで、５％ＦＣＳ含有Iscove培養培地中、９６ウエル平底培養プレートにおいて、細胞濃度１×１０5細胞、培養容量２００μｌで培養した。培地に、０ｎｇ／ｍｌ、３ｎｇ／ｍｌおよび３０ｎｇ／ｍｌのインターロイキン−４を添加した。このバッチを、さらに添加物を加えないで、または各回３μｇ／ｍｌのｈｕＩＬ−４Ｒ／ＦｃもしくはｈｕＣＤ４／Ｆｃを加えて実施した。ｈｕＣＤ４／ＦｃはＩＬ−４Ｒ／ＦｃのＦｃ部分の対照として使用されたもので、EP−A2−0 325 262号の記載に従って調製された。ｈｕＣＤ４／ＦｃとｈｕＩＬ−４Ｒ／ＦｃのＦｃ部分は同一である（ＩｇＧ１）。１０日の培養期間後に培養培地を分離し、ヒトＩｇＥをＥＬＩＳＡでアッセイした。表３はこの試験の結果を示す。ＩＬ−４誘導ＩｇＥ合成はｈｕＩＬ−４Ｒ／Ｆｃの添加によって特異的に抑制された。
【００２９】
実施例  ３
ヒト末梢血単核細胞を単離した。９６−ウエル培養プレートにおいて、ウエルあたり５０００個の細胞を、１０％ＦＣＳ含有Iscove培養培地２００μｌ中で１４日間培養した。培養開始時にはほかに何も添加しないか、または１００ＳＱ単位（製造業者による）の精製ダニ抗原（Derm. Pt., 注文番号 Sq 503, Scherax, Hamburgより入手）単独またはダニ抗原と３μｇ／ｍｌのｈｕＩＬ−４Ｒ／Ｆｃを添加した。ダニ抗原と３μｇ／ｍｌのＴＷ１の混合物はＦｃ対照として使用した。ＴＷ１は狂犬病抗原に対して特異性を有し、ｈｕＩＬ-４Ｒ／Ｆｃと同じアイソタイプをもつヒトモノクローナル抗体である。ＴＷ１はEP−0 445 625 A1の記載に従って製造された。ついで、上清を分離し、ヒトＩｇＥをＥＬＩＳＡでアッセイした。抗原誘導ＩｇＥの産生は、ｈｕＩＬ−４Ｒ／Ｆｃにより特異的に抑制されることが明らかにされた（表４）。
【００３０】
実施例  ４
ＴＨ２サブタイプＴ細胞クローンの抗原誘発増殖の阻害
Ｔ細胞クローンをアトピー性皮膚炎患者の皮膚から単離した。大部分のクローンはインビトロでの刺激後にＴＨ２型のサイトカインを分泌し、小部分のクローンのみにＴＨ１型が見出された。増殖アッセイは、１×１０4のクローン化Ｔ細胞およびスティミュレーター細胞として１×１０5の放射線照射同種ＰＢＬを用い、４％ヒトＡＢ血清含有Iscove培養培地中、９６−ウエルマイクロタイタープレートにおいて実施した。培養は、０.５μＣｉ／培養ウエルの3Ｈ-チミジンの存在下ＣＯ2を通じながら、インキュベーター中３７℃で１８時間実施した。１８時間後に、チミジンの取り込みによって細胞の増殖を測定した。上清中のサイトカインの産生については、１×１０6／ｍｌのクローン化Ｔ細胞を２４−ウエル培養プレート中Iscove、１０％ＦＣＳおよび１０μｇ／ｍｌのコンカナバリンＡで刺激した。ＣＯ2を通じながら、インキュベーター（３７℃）中で２４時間培養したのち、上清を分離した。培養上清について、ヒトインターロイキン−２およびヒトインターロイキン−４の含量をバイオアッセイで検定した。バイオアッセイは、その増殖がそれぞれヒトインターロイキン−２およびヒトインターロイキン−４に依存する細胞系に基づくものである（Mosleyら、 Cell, Vol. 59, 335−348, 1989年10月20日）。一つのＴＨ２クローンの上清中にはＩＬ−２は検出できなかったが大量のＩＬ−４が検出された。４９ｎｇ／ｍｌのＩＬ−４に対して、３μｇのｈｕＩＬ−４Ｒ／Ｆｃを添加した場合には、わずかに１０ｎｇ／ｍｌのＩＬ−４しか検出できなかった。ＴＨ１クローンの上清は，比較的大量のＩＬ−２を含んだが、ＩＬ−４はわずかであった。ＴＨ１クローンの上清中のインターロイキン−２の濃度は、培養時のｈｕＩＬ−４Ｒ／Ｆｃの添加では有意な影響を受けなかった。増殖実験から、３μｇ／ｍｌのｈｕＩＬ−４Ｒ／Ｆｃの添加により、ＴＨ２クローンの増殖は抑制されるがＴＨ１クローンの増殖は抑制されないことを明らかにすることができた（表５）。さらに、ダニ特異的ＴＨ２クローンの抗原特異的増殖はｈｕＩＬ−４Ｒ／Ｆｃの添加により抑制されるが、ＴＨ１の場合は抑制されないことを示すことができた。さらに別の実験的アプローチで、ＴＨ２クローンと同じドナーからの自己Ｂリンパ球の混合物中においてダニ抗原によって誘導されたＩｇＥ合成はｈｕＩＬ−４Ｒ／Ｆｃの添加で抑制できることの例証が可能であった。
【００３１】
実施例  ５
マウスの肺アレルギー化後のｍｕＩＬ−４Ｒ処理による皮膚試験反応および他のパラメーターの阻害
ＰＢＳ中オバルブミン溶液（５００μｇ／７ｍｌ）のエアゾルの吸入によって、Ｂａｌｂ／ｃマウスをオバルブミンで感作した。操作はRenzら、1992, J. Allergy Clin. Immunol. 89：112に記載されている。エアゾルは、超音波アトマイザー（PulmoSonic 25型，The De Vilbiss Co., Somerest, PA）中で製造した。
生成した粒子の９０％以上はサイズ１〜５μｍであった。動物を、日１、７、１４および２１のそれぞれに２０分間オバルブミン含有エアゾルに暴露した。このモデルにおける可溶性ｍｕＩＬ−４Ｒの効果を調べるため、１５０μｇ／注射のｍｕＩＬ−４Ｒ（i.p.)、ＰＢＳおよび１１Ｂ１１（マウスＩＬー４に対するラットモノクローナル抗体、Ohara, J. & W. E. Paul, 1985, Nature 315：333）を、日−２、−１、１、２、７、８、１４、１５、２１および２２のそれぞれに投与した。
【００３２】
実験日２３に、オバルブミン（ＯＶＡ）による皮膚試験を各群について実施した。操作はSalogaら、1993, J. Clin. Invest., 91：133−140に記載されている。
結果は表６にまとめる。陽性皮膚試験反応を呈する動物の数は８３.３％から２２.２％に明瞭に低下した。
【００３３】
ＯＶＡ−特異的ＩｇＥおよびこれらの動物の単離気管の気管収縮に対するｍｕＩＬ−４Ｒの効果を、同じ実験系で検討した。その検討方法は、Renz, H.ら、1992, J. Allergy Clin. Immunology, 89：112およびLarsenら, 1992, J. Clin. Invest., 89：747に記載されている。実験は、本例において上述したのと同じオバルブミンおよびｍｕＩＬ−４Ｒ投与計画ならびに同じ投与量で実施した。結果は表７にまとめる。気管収縮は、電場における刺激により生体外から実施した（ES50単位でのデータ）。ＩｇＥ濃度は血清からＥＬＩＳＡで測定した（抗ＯＶＡ高力価のマウス対照血清を基準とした比較単位でのデータ）。血清は実験日２３に採取した。結果は、２.４７から３.４ＥＳ５０への気管機能の明らかな正常化、およびＩｇＥ力価の低下を示す。ＯＶＡ−特異的ＩｇＧ１を平行して測定したが同様に低下する（詳細は示していない）。同時にＩｇＧ２ａの増加が観察される。
【００３４】
オバルブミンによる肺感作後（投与計画、投与量および方法は同例に上述した通りである）の皮膚試験反応およびｍｕＩＬ−４Ｒによる肺処置を、上述と同じ実験系で平行して試験した。この実験では、オバルブミン法と同様に、７ｍｌのＰＢＳ中、５００μｇのｍｕＩＬ−４Ｒを、日−２、−１、１、２、７、８、１４、１５、２１および２２のそれぞれに、超音波アトマイザーでエアゾルに微粒子化した。動物は密閉容器中でエアゾルに２０分間暴露した（噴霧１回あたり動物４匹）。超音波で微粒化してもｍｕＩＬ−４Ｒ蛋白質の生物活性が保持されることは、予備試験で保証された。また、動物が総量５００μｇのｍｕＩＬ−４Ｒの約０.５〜５％を吸入することも確立された。皮膚試験は上述のように、実験日２３に実施した。結果は表８に示す。局所投与による皮膚試験での効果は、動物あたりのｍｕＩＬ−４Ｒ投与量は少量であるにもかかわらず（最終吸入量：ｍｕＩＬ−４Ｒ １２５μｇ／動物の０.５〜５％）、腹腔内処置（１５０μｇ／動物）の場合とほぼ同じであることが認められる。
【００３５】
実施例  ６
誘発慢性移植片対宿主病（cGvHD）に対するインターロイキン−４の効果
体重１５〜１８ｇの雌性Ｂ６Ｄ２Ｆ１ハイブリッド動物（親株Ｃ５７Ｂ１／ｇおよびＤＢＡ／２）に、４週連続して、１回あたりＤＢＡ／２マウスからの脾臓細胞１×１０8個を４回静注し、ｃＧｖＨＤを誘発した。発症した蛋白尿をN−Combur試験（Boehringer Mannheim GmbH, Mannheim, Germany）でモニタリングした。各群１０匹の動物を使用した。一群には日２７、２８、２９、３０および３１のそれぞれに、２ｍｇ／ｋｇのマウスインターロイキン−４受容体（ｍｕＩＬ−４Ｒ／Ｆｃ）を投与し、他の群は対照蛋白質としてのヒトインターロイキン−４受容体（ｈｕＩＬ−４Ｒ／Ｆｃ）の同投与量および同投与計画で処置し、そして一対照群はＰＢＳで処置した。表９には、群内の動物の分数として生存動物を示し、表１０は各群内動物の尿中平均蛋白レベルの変動を示す。生存数および蛋白尿の両者で、ｍｕＩＬ−４Ｒの有意な効果が認められる。別の実験を上述のｃＧｖＨＤの誘発とともに実施した。群分けは同じにしたが、処置は糸球体腎炎の出現後、日６３、６４、６５、６６および６７に、すなわち治療的に（これらの各実験日に２ｍｇ／ｋｇのｈｕＩＬ−４Ｒ／ＦｃまたはｍｕＩＬ−４Ｒ／Ｆｃを静注）実施した。生存動物の分数および動物の尿中の蛋白レベルはそれぞれ表１１および１２に示す。同じｃＧｖＨＤの誘導および同じ群分けでのさらに別の実験では、モノマーｍｕＩＬ−４ＲまたはモノマーｈｕＩＬ−４Ｒを、実験日２４に開始して３日毎に５回、各注射あたり２ｍｇ／ｋｇを静脈内投与した。この場合も本例の前の実験と同様に、ｍｕＩＬ−４Ｒ処置群で、ｃＧｖＨＤのパラメーターの有意な抑制および動物の生存率の増加が観察された。この実験では、実験時に動物から血液を採取した。これらの血清中のマウス免疫グロブリンＥ（ＩｇＥ）はＥＬＩＳＡで測定した。このＩｇＥ濃度は疾患時に増加し、記載された実験の日５９における測定後に再び低下する。ｍｕＩＬ−４Ｒ処置を行うと、この低下は早期に、日４５における測定後に始まる。ｍｕＩＬ−４Ｒ処置群および対照群（ＰＢＳ処置）から無作為に選んだ３匹の動物の平均ＩｇＥ濃度の変化を表１３に示す。
【００３６】
実施例  ７
ヒト全身エリテマトーデスに類似するＭＲＬ／１マウスの自然発症自己免疫疾患の処置
約１２週齢のＭＲＬ／Ｍｐ−Ｌｐｒ−Ｌｐｒ（ＭＲＬ／１）マウスに対して、各５連続日に、緩衝液対照（ＰＢＳ）、マウスインターロイキン−４受容体−Ｆｃ融合蛋白質（ｍｕＩＬ−４Ｒ／Ｆｃ）または対照蛋白質としてのヒトインターロイキン−４受容体−Ｆｃ融合蛋白質（ｈｕＩＬ−４Ｒ／Ｆｃ）を静脈内投与（i.v.）した。動物を週２５に屠殺した。脾臓、リンパ節および血液を採取した。
脾臓およびリンパ節の重量を測定し、血液または血清からの各種パラメーターを測定した。二重鎖ＤＮＡ（ｄｓＤＮＡ）に対する抗体ならびにリウマチ因子（ＲＦ）を、Schorlemmerら（Int. J. Immunotherapy, 7：169, 1991）の記載に従いＥＬＩＳＡで測定した。生存率の変化を表１４に、また週２５における他のパラメーターを表１５に示す。この疾患に対するｍｕＩＬ−４Ｒ／Ｆｃの明らかな効果が、生存動物数の変化および週２５における他のパラメーターの両者から証明される。
【００３７】
実施例  ８
マウスにおける嚢尾虫（Cysticercus (Taenia) crassiceps）感染症のマウスインターロイキン−４受容体による処置
この実験では、日０に、体重１５〜２５ｇのＮＭＲIマウスに、各マウスあたり嚢尾虫（Cysticercus (Taenia) crassiceps）ＭＲ−１株のメタケストーデス５匹を１ｍｌのＰＢＳに取って腹腔内注射で感染させた。各実験群あたり１０匹の動物を使用した。一つの対照群は感染させなかった（メタケストーデスを含まないＰＢＳの注射）。一群は感染させたが，処置を行わなかった。一群は感染させ、日−１、０、１、７、１４、２０、３０、３５、４０、４５、５０、５５および６３のそれぞれに、１００μｇのｍｕＩＬ−４Ｒを腹腔内注射で処置した。
他の群は感染させ、ｍｕＩＬ−４Ｒ処置の場合と同様にして、対照蛋白質としてのｈｕＩＬ−４Ｒで処置した。日７６に、動物の体重を測定し、解剖した。腹腔内にメタケストーデスが認められる動物を決定した。陽性動物については、各動物に見出されたメタケストーデスの湿重量を測定した。マウスインターロイキン−４受容体による処置群では、メタケストーデスの総重量に明らかな低下が認められた（表１６）。
【００３８】
実施例  ９
マウスカンジダアルビカンス感染に対するｍｕＩＬ−４Ｒの効果
雌性ハイブリッドマウス（ＢＡＬＢ／ｃＣｒ×ＤＢＡ／２Ｃｒ）Ｆ１（ＣＤ２Ｆ１）を病原性の高いカンジダアルビカンスＣＡ−６株（５×１０4細胞、静脈内）で感染させた（試験日０）。感染の24時間前に開始し、動物に、２５０μｌのＰＢＳ中１００μｇのｍｕＩＬ−４Ｒを、日−１に１回、日０および１にそれぞれ２回、日２および３にそれぞれ１回、腹腔内投与した。それに代えて対照動物には、同じ投与計画を用いて、精製マウス血清アルブミン（ＭＳＡ）、ｈｕＩＬ−４ＲまたはＰＢＳを投与した。マウス血清アルブミン（１６匹）、ｈｕＩＬ−４Ｒ（１６匹）およびＰＢＳ（２４匹）処置動物はすべて、進行性のカンジダ感染症を発症し、平均生存時間は感染後１４〜１７日であった。ｍｕＩＬ−４Ｒ処置動物（２４匹）の９１.６％は生存した。これらの生存動物は、感染８週後に、カンジダアルビカンス（１０6細胞）で再感染させた。すべての動物がこの再感染後も生存した。通常の非処置動物では、この感染は致死感染を招き、生存時間は感染後２〜３日である。
【００３９】
【表１】
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【００４０】
【表２】
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【００４１】
【表３】
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【００４２】
【表４】
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【００４３】
【表５】
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【００４４】
【表６】
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【００４５】
【表７】
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【００４６】
【表８】
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【００４７】
【表９】
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【００４８】
【表１０】
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【００４９】
【表１１】
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【００５０】
【表１２】
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【００５１】
【表１３】
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【００５２】
【表１４】
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【００５３】
【表１５】
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【００５４】
【表１６】
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