(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
液体試料を毛細管作用により移動させうるストリップを備え、
前記ストリップの上流側に液体試料を添加する試料添加部を設け、
前記ストリップにおいて前記試料添加部よりも下流側に検出区域を設け、
前記検出区域に第一の試薬を固定化し、
液体試料中に検出物質が存在する場合、
この検出物質と、標識試薬と、前記第一の試薬に対して生物学特異的な親和活性を持つ第二の試薬とを含む、免疫複合物を生じさせ、
かつ、この免疫複合物を前記ストリップの下流側に移動させ得るように、
前記ストリップにおいて、前記試料添加部から前記検出区域までの位置に、前記標識試薬と、前記第二の試薬とを、乾燥状態で保持させる検出装置であって、
前記検出区域には、互いに異なる複数種別の第一の試薬が、間隔をあけて固定化されており、
前記第二の試薬は、前記互いに異なる複数種別の第一の試薬のいずれか一つのみに対し生物学特異的な親和活性を持つ互いに異なる複数種別の試薬を含んでなり、かつ、前記第二の試薬の種別ごとの存在割合は、互いに異なるように設定されていることを特徴とする検出装置。
【請求項２】
免疫クロマトグラフィー測定法を用いて、液体試料中の検出物質を検出又は測定する検出装置であって、
１）ストリップの検出区域に、異なった生物学特異的な親和活性をそれぞれ有する複数の第一の試薬（第一の試薬（１）、第一の試薬（２）・・・第一の試薬（ｎ））を、それぞれ間隔をあけて固定化し、
２）前記検出区域の上流側に前記第一の試薬と同数であり、かつ、前記第一の試薬と相補的に結合出来る生物学特異的な親和活性を有する第二の試薬（第一の試薬（１）に対する第二の試薬（１）、第一の試薬（２）に対する第二の試薬（２）・・・第一の試薬（ｎ）に対する第二の試薬（ｎ））と前記検出物質に特異的な第一の反応物質との直接或いは間接的な結合体と、前記検出物質に特異的な標識された第二の反応物質とを乾燥状態で保持し、
３）液体試料との接触により、前記検出物質と、前記第二の試薬と前記第一の反応物質の結合体と、前記標識された第二の反応物質とを含む、免疫複合物を生じさせながら、
毛細管作用により前記免疫複合物を検出区域へ移動させ、
４）前記免疫複合物を前記第二の試薬と前記第一の反応物質との結合体のそれぞれの存在割合に応じて第一の試薬により分配し、
５）それぞれの前記第一の試薬に捕捉された検出可能な標識試薬をもとに、第一の試薬の総数（ｎ）と実際に標識試薬によって検出された数との対比を検出物質の存在量に関連付けて、検出物質を半定量する
ことを特徴とする検出装置。
【請求項３】
前記第二の試薬と前記第一の反応物質の結合体とは、化学結合を介して直接結合していることを特徴とする請求項２記載の検出装置。
【請求項４】
前記第二の試薬と前記第一の反応物質の前記結合体とは、第三の試薬を介在して結合していることを特徴とする請求項２記載の検出装置。
【請求項５】
前記第三の試薬は、ラテックス、多糖類、水溶性ポリマーまたはタンパク質のうち一種又は二種以上からなることを特徴とする請求項４記載の検出装置。
【請求項６】
前記第一の試薬は、抗体であり、前記第二の試薬は、前記抗体に対する抗原である請求項１から５記載の検出装置。
【請求項７】
前記第二の試薬は、ハプテンである請求項６記載の検出装置。
【請求項８】
前記ハプテンは、２，４−ジニトロフェニル基（ＤＮＰ）、２，４，６−トリニトロフェニル基（ＴＮＰ）、フルオレッセインイソチオシアネート基（ＦＩＴＣ）、ビオチン或いはその誘導体のうち、一種又は二種以上からなることを特徴とする請求項７記載の検出装置。
【請求項９】
前記第二の試薬は抗体であり、前記第一の試薬は、前記抗体に対する抗原であることを特徴とする請求項１から５記載の検出装置。
【請求項１０】
前記第二の試薬と前記第一の反応物質の前記結合体は、二特異性抗体であることを特徴とする請求項２または３記載の検出装置。
【請求項１１】
前記標識は、コロイド粒子標識である請求項２から１０記載の検出装置。
【請求項１２】
前記コロイド粒子標識は、金コロイド標識である請求項１１記載の検出装置。
【請求項１３】
前記標識は、着色ラテックス標識である請求項２から１０記載の検出装置。
【請求項１４】
免疫クロマトグラフィー測定法を用いて、液体試料中の検出物質を検出又は測定する検出方法であって、
１）ストリップの検出区域に、異なった生物学特異的な親和活性をそれぞれ有する複数の第一の試薬（第一の試薬（１）、第一の試薬（２）・・・第一の試薬（ｎ））を、それぞれ間隔をあけて固定化し、
２）前記検出区域の上流側に前記第一の試薬と同数であり、かつ、前記第一の試薬と相補的に結合出来る生物学特異的な親和活性を有する第二の試薬（第一の試薬（１）に対する第二の試薬（１）、第一の試薬（２）に対する第二の試薬（２）・・・第一の試薬（ｎ）に対する第二の試薬（ｎ））と前記検出物質に特異的な第一の反応物質との直接或いは間接的な結合体と、前記検出物質に特異的な標識された第二の反応物質とを乾燥状態で保持し、
３）液体試料との接触により、前記検出物質と、前記第二の試薬と前記第一の反応物質の結合体と、前記標識された第二の反応物質とを含む、免疫複合物を生じさせながら、
毛細管作用により前記免疫複合物を検出区域へ移動させ、
４）前記免疫複合物を前記第二の試薬と前記第一の反応物質との結合体のそれぞれの存在割合に応じて第一の試薬により分配し、
５）それぞれの前記第一の試薬に捕捉された検出可能な標識試薬をもとに、第一の試薬の総数（ｎ）と実際に標識試薬によって検出された数との対比を検出物質の存在量に関連付けて、検出物質を半定量する
ことを特徴とする検出方法。
【請求項１５】
前記第二の試薬と前記第一の反応物質の結合体とは、化学結合を介して直接結合していることを特徴とする請求項１４記載の検出方法。
【請求項１６】
前記第二の試薬と前記第一の反応物質の前記結合体とは、第三の試薬を介在して結合していることを特徴とする請求項１４記載の検出方法。
【請求項１７】
前記第三の試薬は、ラテックス、多糖類、水溶性ポリマーまたはタンパク質のうち一種又は二種以上からなることを特徴とする請求項１６記載の検出方法。
【請求項１８】
前記第一の試薬は、抗体であり、前記第二の試薬は、前記抗体に対する抗原である請求項１３から１７記載の検出方法。
【請求項１９】
前記第二の試薬は、ハプテンである請求項１８記載の検出方法。
【請求項２０】
前記ハプテンは、２，４−ジニトロフェニル基（ＤＮＰ）、２，４，６−トリニトロフェニル基（ＴＮＰ）、フルオレッセインイソチオシアネート基（ＦＩＴＣ）、ビオチン或いはその誘導体のうち、一種又は二種以上からなることを特徴とする請求項１９記載の検出方法。
【請求項２１】
前記第二の試薬は抗体であり、前記第一の試薬は、前記抗体に対する抗原であることを特徴とする請求項１３から１７記載の検出方法。
【請求項２２】
前記第二の試薬と前記第一の反応物質の前記結合体は、二特異性抗体であることを特徴とする請求項１４または１５記載の検出方法。
【請求項２３】
前記標識は、コロイド粒子標識である請求項１４から２２記載の検出方法。
【請求項２４】
前記コロイド粒子標識は、金コロイド標識である請求項２３記載の検出方法。
【請求項２５】
前記標識は、着色ラテックス標識である請求項１４から２２記載の検出方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、液体試料（尿や血液など）内における検出物質（生体成分）の量を、簡便に半定量できる検出装置及び検出方法に関するものである。
【０００２】
【従来の技術】
液体試料、特に生体成分中の検出物質を定性或いは定量的に分析する技術として、測定感度および特異性の面から、免疫学的測定法が多用されている。
【０００３】
特に、検出物質を定量的に測定することは、診断或いは治療についての重要な情報をもたらす場合が多い。
【０００４】
例えば、尿中のアルブミンを定量的に測定すると、腎機能或いは腎障害の程度を判定できる。また、心筋マーカーとして有用なトロポニンＴの定量は、心筋梗塞の有効な指標となる。同じく、黄体形成ホルモンの定量は、排卵時期の特定に有効である。
【０００５】
一般に、これらを定量的に測定しようとした場合、複雑な幾つかの操作手順、訓練された特殊な、高価な或いは特殊な分析装置が必要となる。
【０００６】
生体成分中の検出物質の測定を専門に行っている施設においては、このようなことは雑作も無い事である。
【０００７】
しかしながら、そのような専用の装置を有していない一般病院、開業医、或いは、更に特別な技術も測定する手段も有していない一般大衆に販売される、一般大衆薬（ＯＴＣ）について、これらの技術、システムは有効ではない。
【０００８】
単に検出物質が存在するかしないかという所謂定性分析においては、何処でも簡便に特殊な分析装置を必要とせず、更に特殊な技術を要しないイムノクロマトグラフィーの原理を利用した体外診断用検査薬が、緊急検査、ベッドサイドテスト或いは一般大衆薬として、既に多く供給されている。
【０００９】
しかし現在まだ有効な、イムノクロマトグラフィーを用いた一般大衆向けの定量試薬は、商品化されていない。
【００１０】
イムノクロマトグラフィーは、試料を添加するだけで誰でも簡単に検査ができる利点があるが、現在商品化されているものは、リーダーなど特殊な測定機器を利用した物以外は、全て定性分析に属する。
【００１１】
イムノクロマトグラフィーの技術を用いて定量ができれば更に利用範囲が広がるはずである。
【００１２】
そのような中で、商品化までは至っていないがイムノクロマト法を利用した検出物質の定量或いは半定量法として、多数の技術が開示されている。
【００１３】
例えば、特許文献１（特開昭５９−２８６６２号公報）、特許文献２（特開平２−４９１６１号公報）に記載の技術がある。
【００１４】
これらの技術は、主として検出物質の量と検出区域において結合した標識物質の量（この場合は展開方向の距離）を関連付けるものである。
【００１５】
しかし、これらの技術は、主として酵素標識を使用したもので、その標識量を検出するために、更に煩雑な操作が必要であり、一般大衆用の検査キットとしては展開不可能である。
【００１６】
これらの変法として、特許文献３（特開平４−９７６０号公報）に記載の技術があるが、それぞれ検出物質としての抗原若しくは抗体に対する検出感度が異なる少なくとも二種の固相を採用しているのみで、骨子は、先の技術と殆ど変わらない。
【００１７】
さらに進んだ技術として、特許文献４（特開平１−２４４３７０号公報）、特許文献５（特開平７−１５９３９８号公報）、特許文献６（特開平８−２７８３０５号公報）に記載の技術がある。
【００１８】
これらの技術は、出現したラインの数或いは展開方向に移動した標識物の距離と検出物質の濃度を関連付けるものであり、それぞれのライン或いは領域に固定化する検出物質に特異的に結合可能な物質の担持量が展開方向に段階的に増加するもの（特許文献５）、或いは特に制限がないもの（特許文献４、同６）等多少の違いがあるものの、特別に検出のための装置を必要とせず、目視可能な標識試薬を使用している為、直接に目視による判定ができる。
【００１９】
しかしながら、これらの技術においては、標識試薬の展開時間の変動によって結果が変わるという欠点がある。
【００２０】
即ち基本的には、標識試薬と検出物質が、まず最初に免疫複合物を形成し、形成された免疫複合物が検出領域の固定化された検出物質に特異的に結合する物質に捕捉されるのだが、一部免疫複合物を形成していない検出物質単体も、この固相領域で捕捉され、捕捉された検出物質に標識試薬が結合する場合がある。これらの反応は検出領域における標識試薬の通過時間と関係する。
【００２１】
したがって、通過時間が長いと一般に検出感度が高くなり、標識試薬の通過時間をある程度制御しないと定量化は難しくなる。
【００２２】
これらクロマト的な流れに関する改良が、特許文献７（特開平５−５７４３号公報）、特許文献８（特開平７−３１８５６０号公報）に記載されている。
【００２３】
これらの技術のポイントは、不溶物などによる目詰まりに起因する流れ不良に対処したもの（特許文献７）、検出物質を含む試料と標識試薬を同期してクロマト材上を移動させるもの（特許文献８）である。
【００２４】
しかしながら、これらの技術でも、先の技術と同様な欠点を有している。
【００２５】
まず、検出区域全面を検出物質に特異的に結合可能な物質で固定化した場合、はっきりとした標識試薬による境界が出現しにくい。
【００２６】
また、ライン或いはドットとした場合は、比較的確認しやすくなるが、基本的に最初のラインでトラップ出来なかった検出物質を次のラインでトラップし、更にあふれた検出物質を次のラインでトラップする。即ち、オーバーフローを利用し、検出物質の量が多くなるとラインの数が増えるはずである、という理屈に準じている。
【００２７】
この場合、各ラインでトラップされる検出物質の量が常に一定であれば、再現性良く測定できるが、様々な要因でそのトラップ率は変動するので、商業生産上不利である。
【００２８】
更に別の面からの取り組みとして、特許文献９（特開平４−３５１９６２号公報）、特許文献１０（特開平６−３４１９８９号公報）がある。これらの技術に特徴的なのは、ユニット形式の検出装置及び方法である。
【００２９】
また測定系に特定物質を存在させ、該特定物質の存在により、検出物質量の指標として測定される標識試薬量を小さくすること（特許文献９）、或いは所定量で固定化されて存在する検出物質に対する抗体により、固定化された抗体量に対応する試料中の検出物質の一定量を捕捉し、免疫化学的定性分析に付される検出物質濃度を減少させる事（特許文献１０）をも特徴としている。しかしこれらの技術は簡素化およびコストの面においてまだ考慮すべき問題が存在する。
【００３０】
イムノクロマトの進化系として、特許文献１１（特表２００１−５００２４９号公報）がある。
【００３１】
本公報には、ＲＡＭＰ装置をプラットホームとし、測定装置を含めたシステムとして検出物質を定量的に測定する技術が開示されているが、ＯＴＣ向けの診断薬としては展開できない。
【特許文献１】
特開昭５９−２８６２２号公報
【特許文献２】
特開平２−４９１６１号公報
【特許文献３】
特開平４−９７６０号公報
【特許文献４】
特開平１−２４４３７０号公報
【特許文献５】
特開平７−１５９３９８号公報
【特許文献６】
特開平８−２７８３０５号公報
【特許文献７】
特開平５−５７４３号公報
【特許文献８】
特開平７−３１８５６０号公報
【特許文献９】
特開平４−３５１９６２号公報
【特許文献１０】
特開平６−３４１９８９号公報
【特許文献１１】
特公表２００１−５００２４９号公報
【発明が解決しようとする課題】
そこで本発明は、検出のための特別な機材・装置を必要とせず、高感度に、短時間で、更に特別な訓練を受けなくとも簡便に半定量的に免疫学的に検出物質を測定可能な、検出装置及び検出方法を提供することを目的とする。
【００３２】
【課題を解決するための手段】
本発明者は、上記課題を解決するために鋭意研究を行った結果、
免疫クロマトグラフィー測定法を用いて、液体試料中の検出物質を検出又は測定する検出方法であって、
１）ストリップの検出区域に、異なった生物学特異的な親和活性をそれぞれ有する複数の第一の試薬（第一の試薬（１）、第一の試薬（２）・・・第一の試薬（ｎ））を、それぞれ間隔をあけて固定化し、
２）検出区域の上流側に第一の試薬と同数であり、かつ、第一の試薬と相補的に結合出来る生物学特異的な親和活性を有する第二の試薬（第一の試薬（１）に対する第二の試薬（１）、第一の試薬（２）に対する第二の試薬（２）・・・第一の試薬（ｎ）に対する第二の試薬（ｎ））と検出物質に特異的な第一の反応物質との直接或いは間接的な結合体と、検出物質に特異的な標識された第二の反応物質とを乾燥状態で保持し、
３）液体試料との接触により、検出物質と、第二の試薬と第一の反応物質の結合体と、標識された第二の反応物質とを含む、免疫複合物を生じさせながら、
毛細管作用により免疫複合物を検出区域へ移動させ、
４）免疫複合物を第二の試薬と第一の反応物質との結合体のそれぞれの存在割合に応じて第一の試薬により分配し、
５）それぞれの第一の試薬に捕捉された検出可能な標識試薬をもとに、第一の試薬の総数（ｎ）と実際に標識試薬によって検出された数との対比を検出物質の存在量に関連付けて、検出物質を半定量すること
により、上記課題を達成し得ることを見出し、本発明を完成した。
【００３３】
【発明の実施の形態】
第１の発明に係る検出方法は、免疫クロマトグラフィー測定法を用いて、液体試料中の検出物質を検出又は測定する検出方法であって、
１）ストリップの検出区域に、異なった生物学特異的な親和活性をそれぞれ有する複数の第一の試薬（第一の試薬（１）、第一の試薬（２）・・・第一の試薬（ｎ））を、それぞれ間隔をあけて固定化し、
２）検出区域の上流側に第一の試薬と同数であり、かつ、第一の試薬と相補的に結合出来る生物学特異的な親和活性を有する第二の試薬（第一の試薬（１）に対する第二の試薬（１）、第一の試薬（２）に対する第二の試薬（２）・・・第一の試薬（ｎ）に対する第二の試薬（ｎ））と検出物質に特異的な第一の反応物質との直接或いは間接的な結合体と、検出物質に特異的な標識された第二の反応物質とを乾燥状態で保持し、
３）液体試料との接触により、検出物質と、第二の試薬と第一の反応物質の結合体と、標識された第二の反応物質とを含む、免疫複合物を生じさせながら、
毛細管作用により免疫複合物を検出区域へ移動させ、
４）免疫複合物を第二の試薬と第一の反応物質との結合体のそれぞれの存在割合に応じて第一の試薬により分配し、
５）それぞれの第一の試薬に捕捉された検出可能な標識試薬をもとに、第一の試薬の総数（ｎ）と実際に標識試薬によって検出された数との対比を検出物質の存在量に関連付けて、検出物質を半定量する。
【００３４】
この構成により、所望の濃度ステップを設定できるし、任意のライン数を設定でき、検出物質を半定量できる。
【００３５】
第２の発明に係る検出方法は、第二の試薬と第一の反応物質の結合体とは、化学結合を介して直接結合している。
【００３６】
この構成により、第一の反応物質の反応性をほどんど損なわない程度に、結合体を容易に作製できる。
【００３７】
第３の発明に係る検出方法は、第二の試薬と第一の反応物質の結合体とは、第三の試薬を介在して結合している。
【００３８】
この構成により、直接結合に比べて、第三の試薬を適時適切に選択することにより、応用範囲が広くなる。
【００３９】
第４の発明に係る検出方法は、第三の試薬は、ラテックス、多糖類、水溶性ポリマーまたはタンパク質のうち一種又は二種以上からなる。
【００４０】
この構成により、第三の試薬と多数の第二の試薬と第一の反応物質を結合でき、反応性および検出感度を上げることができる。
【００４１】
第５の発明に係る検出方法は、第一の試薬は、抗体であり、第二の試薬は、抗体に対する抗原である。
【００４２】
この構成により、特異性良く、容易に検出区域で分配できる。
【００４３】
第６の発明に係る検出方法は、第二の試薬は、ハプテンである。
【００４４】
この構成により、第一の反応物質の反応性を損なわず、結合体を構成できる。
【００４５】
第７の発明に係る検出方法は、ハプテンは、２，４−ジニトロフェニル基（ＤＮＰ）、２，４，６−トリニトロフェニル基（ＴＮＰ）、フルオレッセインイソチオシアネート基（ＦＩＴＣ）、ビオチン或いはその誘導体のうち、一種又は二種以上からなる。
【００４６】
この構成により、安価に特別の工夫なしに作製できる。
【００４７】
第８の発明に係る検出方法は、第二の試薬は抗体であり、第一の試薬は、抗体に対する抗原である。
【００４８】
この構成により、特異性良く検出区域で分配できる。
【００４９】
第９の発明に係る検出方法は、第二の試薬と第一の反応物質の結合体は、二特異性抗体である。
【００５０】
この構成により、結合体のバリュエーションを増やすことができる。
【００５１】
第１０の発明に係る検出方法は、標識は、コロイド粒子標識である。
【００５２】
この構成により、特別な装置や分析機を必要とせず、目視での判定、半定量が可能になる。
【００５３】
第１１の発明に係る検出方法は、コロイド粒子標識は、金コロイド標識である。
【００５４】
この構成により、安価に再現性良く、容易に標識試薬を作製できる。
【００５５】
第１２の発明に係る検出方法は、標識は、着色ラテックス標識である。
【００５６】
この構成により、容易に作製可能となり、かつ目視による半定量が可能となる。
【００５７】
本発明は、イムノクロマトグラフィー測定法を用いて液体試料内における検出物質の量を半定量することを含む、検出装置及び検出方法に関する。
【００５８】
該装置は、ニトロセルロース或いはナイロンなどから作製される所謂メンブレンフィルターと称されるもの、ガラス繊維、ろ紙などの適当な材料でできたストリップであり、検出物質を含む液体試料に対して濡れ性を有し、且つ内部に充分な空隙率があり、毛細管作用により試薬を移動させる事ができるストリップを含む。
【００５９】
ストリップは、液体試料を添加する試料添加部、試薬保持部、検出区域、吸水部を有する。
【００６０】
ストリップは取扱い上、プラスチックシート等補強材で裏打ちする事も可能である。
【００６１】
本発明では、液体試料中の検出物質に対する特異的な免疫活性を有する第一の反応物質を、第一の反応物質の免疫学的な活性を損なわない方法で区分する事、及び区分された第一の反応物質をある存在割合で混合し、自由溶液中で検出物質と反応させ、その存在割合に従って検出物質との免疫複合物を生じさせ、検出区域において第一の反応物質を区分に従って分離し、各々の最低検出感度差で半定量を行う。
【００６２】
本発明の基本は、検出物質と、検出物質に特異的な標識された第二の反応物質と、第二の試薬と検出物質に特異的な第一の反応物質との結合体とを、自由溶液中で反応させ、これら三者による免疫複合物を生成させる点にある。即ち、免疫複合物は、検出物質と、標識試薬と、第一の試薬に対して生物学特異的な親和活性を持つ第二の試薬とを含む。
【００６３】
この時、結合体について、第二の試薬が異なるものを、複数種別用意し、各種の結合体の存在割合を、互いに異ならしめる。
【００６４】
検出区域に固定化されている第一の試薬と、免疫複合物の第二の試薬とは、生物学的親和性を持つので、免疫複合物は、対応する第一の試薬にトラップされる。
【００６５】
このとき、第二の試薬が異なっても第一の反応物質の反応性が殆ど変わらない状態で、検出物質と反応させる。
【００６６】
すると、検出物質およびそれを含む免疫複合物は、第二の試薬の存在割合に従い、統計学的に分配される。
【００６７】
そして、第一の試薬の各種別についての、呈色の有無を調べる事により、検出物質を半定量できる。
【００６８】
以上の点を、図を用いてさらに詳しく説明する。
【００６９】
図１（ａ）は、液体試料中に存在するであろう検出物質１を示す。検出物質１は、抗原或いは抗体である。なお、以降の説明では、簡単のため、検出物質１が抗原の場合を説明するが、検出物質１が抗体の場合についても、置き換え適用可能である。
【００７０】
図１（ｂ）は、第二の試薬２と第一の反応物質３の結合体４を示しており、第二の試薬２の種別を、Ａ、Ｂ、Ｃ、・・・ｎで表している。第二の試薬２の種別Ａ，Ｂ，Ｃ・・・ｎは、半定量に必要なラインの本数分だけ用意する。これらの種別の存在割合は、ｋａ，ｋｂ，ｋｃ，・・・ｋｎであり、各存在割合は互いに異なる。
【００７１】
結合体４は、ただ一種類の第一の反応物質３に対して、それぞれ別個の第二の試薬２（種別は、Ａ，Ｂ，Ｃ・・・ｎ）を結合させて作製される。第一の反応物質３は、検出物質１に対する抗体、検出物質１そのもの、或いはその誘導体の中から適時選択される。
【００７２】
図１（ｃ）は、標識された第二の反応物質７を示す。この物質７は、第二の反応物質５を、標識６により標識したものであり、上述した種別の数によらず、一種類、十分な量ストリップ８に存在する。
【００７３】
第二の反応物質５は、検出物質１に対する抗体、検出物質１そのもの、或いは検出物質１の誘導体の中から適時選択される。
【００７４】
第一の反応物質３及び第二の反応物質５の選択の仕方により、所謂サンドイッチ反応、或いは競合反応での測定系となる。
【００７５】
図１（ｄ）は、ストリップ８の検出区域９に固定化される第一の試薬１０（種別はＡ’、Ｂ’、Ｃ’、・・・ｎ’）を示す。第二の試薬２（種別は、Ａ、Ｂ、Ｃ、・・・ｎ）について、第一の試薬種別Ａ’と第二の試薬種別Ａ、第一の試薬種別Ｂ’と第二の試薬種別Ｂ、第一の試薬種別Ｃ’と第二の試薬種別Ｃ、・・・が、互いに相補的な組み合わせであり、これらの組み合わせに限り、生物学特異的な親和活性がある。第一の試薬１０も呈色の有無を判別するために、ストリップ８に十分な量用意される。
【００７６】
図１（ｅ）は、検出物質１、第二の試薬２と第一の反応物質３の結合体４、標識された第二の反応物質７との免疫複合物１１を示す。
【００７７】
この反応の時点で、第二の試薬２の種別の存在割合（ｋａ，ｋｂ，ｋｃ・・・ｋｎ）に基づいて、免疫複合物１１が分配されることになる。
【００７８】
図１（ｆ）は、それぞれ第二の試薬の存在割合に基づいて分配された検出区域における反応模式図である。
第一の試薬種別Ａ’により第二の試薬種別Ａがトラップされる。
第一の試薬種別Ｂ’により第二の試薬種別Ｂがトラップされる。
第一の試薬種別Ｃ’により第二の試薬種別Ｃがトラップされる。
・・・
第一の試薬種別ｎ’により第二の試薬種別ｎがトラップされる。
【００７９】
このようにして、同一条件で生じた免疫複合物１１が、第二の試薬の種類別の存在割合（ｋａ，ｋｂ，ｋｃ・・・ｋｎ）により、検出区域９で分配されることになる。この存在割合（ｋａ，ｋｂ，ｋｃ・・・ｋｎ）に基づく最低検出感度差により、半定量が可能となる。
【００８０】
このシステムが有効に機能する為の条件は、基本的に第二の試薬２を結合された第一の反応物質３の免疫学的活性が、その結合により殆ど変化しない事である。
【００８１】
このことにより、検出物質１と第一の反応物質３は、第二の試薬２の種別Ａ、Ｂ、Ｃ、・・・ｎと結合していても、殆ど等価に検出物質１と免疫複合物１１を生じる。生成した免疫複合物１１が、検出区域９で分配され、標識６の呈色パターンが確認されることで、半定量が可能となる。
【００８２】
実際の検出物質と第一の反応物質との反応の場においては、結合体４のトータル量は充分あり、免疫反応自体は至適な条件で行うことができ、その後の系においてその存在量に従って分配するのみであるので、測定系に無理がなく、再現性良く測定できる。
【００８３】
以上の点について、さらに具体例を挙げて説明する。この例では、ストリップ８の検出区域９に、種別Ａ（Ａ’）、Ｂ（Ｂ’）、Ｃ（Ｃ’）の３ライン（各ラインは、固定化された第一の試薬１０から構成される）を、互いに間隔をあけて設ける。
【００８４】
「１単位」を、分子数に比例する適当な量として定義し、ｋａ：ｋｂ：ｋｃ＝１：１０：１００とする。即ち、この例では、ｋａ＜ｋｂ＜ｋｃである。
【００８５】
さらに、各ラインは、標識６が１０００単位以上存在すれば、呈色あり（＋検出）とし、そうでないとき呈色なし（−検出）とする。なお、簡単のため、±検出については考慮しないものとし、検出結果は、Ａ（Ａ’）、Ｂ（Ｂ’）、Ｃ（Ｃ’）の順に、「＋」又は「−」で表示する。
【００８６】
（１）検出物質の数が１１１０単位
ならば、Ａ（Ａ’）ラインは１０単位で−検出、Ｂ（Ｂ’）ラインは１００単位で−検出、Ｃ（Ｃ’）ラインは１０００単位で＋検出となる。したがって、検出結果は、「−−＋」となる。
【００８７】
（２）検出物質の数が１１１０単位未満
ならば、Ａ（Ａ’）ラインは１０単位未満で−検出、Ｂ（Ｂ’）ラインは１００単位未満で−検出、Ｃ（Ｃ’）ラインは１０００単位未満で−検出となる。したがって、検出結果は、「−−−」となる。
【００８８】
（３）検出物質の数が１１１００単位
ならば、Ａ（Ａ’）ラインは１００単位で−検出、Ｂ（Ｂ’）ラインは１０００単位で＋検出、Ｃ（Ｃ’）ラインは１００００単位で＋検出となる。したがって、検出結果は、「−＋＋」となる。
【００８９】
（４）検出物質の数が１１１０００単位以上
ならば、Ａ（Ａ’）ラインは１０００単位以上で＋検出、Ｂ（Ｂ’）ラインは１００００単位以上で＋検出、Ｃ（Ｃ’）ラインは１０００００単位以上で＋検出となる。したがって、検出結果は、「＋＋＋」となる。
【００９０】
以上（１）〜（４）を総合すると、以下のように、検出物質１の半定量を行えることが理解されよう。
検出結果「−−−」→検出物質数は１１１０単位未満
検出結果「−−＋」→検出物質数は１１１０単位以上１１１００単位未満
検出結果「−＋＋」→検出物質数は１１１００単位以上１１１０００単位未満
検出結果「＋＋＋」→検出物質数は１１１０００単位以上
【００９１】
以上は単なる例示であるから、本発明は、以上の数値例に限定されない。また原理的に、Ａ（Ａ’）、Ｂ（Ｂ’）、Ｃ（Ｃ’）のラインの順序（上流側から下流側に向けての）は、任意である。この点、従来の技術の項で述べた、「オーバーフロー」を利用する技術は、ラインの順序に拘束されることだけからみても、本発明は従来技術に対して、大きな相違を持つことが理解されよう。
【００９２】
次に、各物質について詳しく説明する。まず始めに、第一の試薬１０と第二の試薬２について説明する。
【００９３】
第一の試薬１０と第二の試薬２は、お互いに生物学的親和性結合能力を有する、例えば抗原と抗体、相補的核酸配列、エフェクターとレセプター、アビジンとビオチン、ＩｇＧ分子のＦｃ部とプロテインＡ或いはプロテインＧ、特定の糖鎖とレクチン、の組合せの内から選択できるが、好ましくは抗原と抗体の結合ペアー、更に抗原としてはハプテンが良い。
【００９４】
これら特異的な結合ペアーで様々な組合せが可能であるが、例えば、第一の試薬１０を抗原とした場合、第二の試薬２は結合ペアーの他方である抗体が選択される。勿論、その逆もまた可能である。
【００９５】
第二の試薬２と第一の反応物質３の結合体４は、本発明の性格上、第一の反応物質３の免疫学的活性を低下させないように、第二の試薬２を結合しなければならない。
【００９６】
そのための一つの方法として、第一の反応物質３に直接第二の試薬２を結合し、結合体４を作製する場合、第一の反応物質３に比べ、比較的小さな試薬が選択されるべきである。また第一の反応物質３に結合する第二の試薬２の数も多すぎてはいけない。
【００９７】
このような意味で、好ましくは、第二の試薬２はハプテンが好都合であり、また１分子の第一の反応物質３に結合する第二の試薬２の数も、好ましくは１０個以下、好適には１〜３個がよい。
【００９８】
別の方法として、直接の結合体４として、第一の反応物質が抗体の場合、所謂二特異性抗体を使用することができる。
【００９９】
二特異性抗体を作製する方法は、数々開示されているが、好ましくは、Ｍａｕｒｅｅｎ  Ｂｒｅｎｎａｎらの方法（Ｓｃｉｅｎｃｅ、Ｖｏｌ．２２９、Ｐａｇｅ  ８１−８３、または特表昭６０−５０１４１８号公報参照）が好結果が得られる。
【０１００】
その作製法の概略は、次のとおりである。
抗体（ＩｇＧ）をペプシンで消化しＦ（ａｂ’）2とする。
第二の試薬となるＦ（ａｂ’）2をメルカプトエチルアミンなどで還元しＦａｂ’とする。
続いてＳＨ基の保護のためにＤＴＮＢ（５，５’−ジチオビス（２−ニトロ安息香酸））を用いて、Ｆａｂ’−ＴＮＢとする。
第一の反応物質であるＦ（ａｂ’）2も同様にメルカプトエチルアミンなどの還元剤で処理し、Ｆａｂ’とする。
作製したＦａｂ’とＦａｂ’−ＴＮＢの再結合により二特異性抗体が作製可能である。
【０１０１】
しかしながら、二特異性抗体は作製法が煩雑であり、経済的な面よりあまりメリットはない。もう一つの方法として、図２（ａ）、（ｂ）に示すように、第三者を介して結合体を作製する方法がある。つまり、タンパク、多糖類、水溶性のポリマー、ラテックスなどに第一の反応物質と第二の試薬を結合する方法である。これらの中でラテックスの使用が好結果が得られる。
【０１０２】
第一の反応物質と第二の試薬をラテックスに結合する方法は、共有結合、物理的吸着等あるが操作性の面から物理吸着が簡単である。
【０１０３】
更にラテックスを使用する場合は、検出物質によってはラテックスを免疫的に凝集させるものもあるので、凝集の抑制の為にイオン性のラテックス、例えばカルボキシモデファイドラテックス（ＣＭＬ）の使用が好結果が得られる場合がある。この時表面の電荷密度が最適なものを選択する必要がある。
【０１０４】
ここで使用する標識された第二の反応物質における標識物は、酵素、蛍光、発光、金属コロイド、リポゾーム、着色ラテックス、色指示薬、等種々使用可能であるが、検出するための更なる処理操作、工程を必要としない、直接目視可能な金属コロイド、着色ラテックスが好ましい。
【０１０５】
また第二の試薬と第一の反応物質の結合体、標識された第二の反応物質は検出区域より展開方向に向かって上流側に位置し、試料中の検出物質と共に検出区域に向かって毛細管現象により展開しながら免疫複合物を生じるように保持しなければならない。
【０１０６】
この場合、第二の試薬と第一の反応物質の結合体、標識された第二の反応物質は混合されて、同一の場所に保持しても良いし、別々に保持しても良い。
【０１０７】
以下、試験材の製法について、説明する。
【０１０８】
例１（抗ＬＨマウスモノクローナル抗体（ＩｇＧ１、Ｎｏ．４１）へのＦＩＴＣ（フルオレッセインイソチオシアネート）の導入）
セファデックスＧ２５を用いて、抗ＬＨマウスモノクローナル抗体溶液を５００ｍＭ炭酸緩衝液（ｐＨ＝９．５）に置換する。
この時混在しているアジ化ナトリウムを完全に取り除く。
ＩｇＧ  １ｍｇ／ｍｌ濃度の２８０ｎｍにおける吸光度を１．４、分子量を１５０，０００として、抗体濃度を吸光度により測定する。
抗体濃度を４ｍｇ／ｍｌ（０．０２７μｍｏｌ）に調製する。
１０ｍｇ（２５．７μｍｏｌ）のＦＩＴＣをＤＭＦ（Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド）１ｍｌで溶解する。
抗体溶液を１ｍｌ遮光容器に用意する。
抗体溶液に２０μｌのＦＩＴＣ溶液を加え、よく混合する。
緩やかに攪拌を続けながら、室温で１時間インキュベートする。
反応終了後、ＦＩＴＣ結合抗体と未反応のＦＩＴＣをセファデックスＧ２５カラムで分離し、限外濾過用フィルターを用いて濃縮する。
０．２μｍのメンブレンフィルターでろ過し、４ｍｇ／ｍｌ濃度に調製後、遮光下冷蔵保存する。
１分子の抗体に結合したＦＩＴＣの結合数は、約３であった。
結合数は次の式により求めた。
結合数（ｎ）＝３．１＊（１／［Ａ２８０／Ａ４９５−０．３１］）
Ａ２８０：抗体溶液の２８０ｎｍにおける吸光度
Ａ４９５：抗体溶液の４９５ｎｍにおける吸光度
【０１０９】
例２（抗ＬＨマウスモノクローナル抗体（ＩｇＧ１、Ｎｏ．４１）へのＤＮＰ（ジニトロフェニル）基の導入）
セファデックスＧ２５を用いて、抗ＬＨマウスモノクローナル抗体溶液を５００ｍＭ炭酸緩衝液（ｐＨ＝９．５）に置換する。
この時混在しているアジ化ナトリウムを完全に取り除く。
抗体濃度を吸光度により測定し、４ｍｇ／ｍｌ（０．０２７μｍｏｌ）に調製する。
５０ｍｇ（１８５μｍｏｌ）のＤＮＢＳ（ジニトロベンゼンスルホン酸ナトリウム塩）を炭酸緩衝液０．５ｍｌで溶解する。
抗体溶液を１ｍｌ遮光容器に用意する。
５００μｌのＤＮＢＳ溶液を加え、よく混合する。
緩やかに攪拌を続けながら、室温で３時間インキュベートする。
未反応物をセファデックスＧ２５を用いて分離し、限外濾過用フィルターを用いて濃縮する。
０．２μｍのメンブレンフィルターでろ過し、４ｍｇ／ｍｌ濃度に調製後、遮光下冷蔵保存する。
１分子の抗体に結合したＤＮＰの結合数は、約３であった。
結合数は次の式により求めた。
結合数（ｎ）＝１２．０７＊（１／［Ａ２８０／Ａ３６０−０．３２］）
Ａ２８０：抗体溶液の２８０ｎｍにおける吸光度
Ａ３６０：抗体溶液の３６０ｎｍにおける吸光度
【０１１０】
例３（抗ＬＨマウスモノクローナル抗体（ＩｇＧ１、Ｎｏ．４１）へのＢｉｏｔｉｎの導入）
セファデックスＧ２５を用いて、抗ＬＨマウスモノクローナル抗体溶液を１００ｍＭ炭酸緩衝液（ｐＨ＝８．４）に置換する。
この時混在しているアジ化ナトリウムを完全に取り除く。
抗体濃度を吸光度により測定し、４ｍｇ／ｍｌ（０．０２７μｍｏｌ）に調製する。
１０ｍｇ（２２μｍｏｌ）のＢｉｏｔｉｎ（ビオチンアミドカプロエートＮハイドロオキシサクシイミドエステル）をＤＭＦ  １ｍｌで溶解する。
抗体溶液を１ｍｌ遮光溶液に用意する。
３０μｌのＢｉｏｔｉｎ溶液を加え、よく混合する。
緩やかに攪拌を続けながら、室温で４時間インキュベートする。
未反応物をセファデックスＧ２５を用いて分離し、限外濾過用フィルターを用いて濃縮する。
０．２μｍのメンブレンフィルターでろ過し、４ｍｇ／ｍｌ濃度に調製後、遮光下冷蔵保存する。
【０１１１】
例４（抗ＬＨマウスモノクローナル抗体（ＩｇＧ１、Ｎｏ．１８）感作金コロイドの作製法）
粒径３０ｎｍの金コロイドをＧ．Ｆｒｅｎｓ（Ｎａｔｕｒｅ，２４１，２０，１９７３）法に従い作製した。
金コロイド溶液９０ｇに５０ｍＭ  ＰＩＰＥＳ緩衝液（ｐＨ＝６．８）を１０ｇ加えてよく混合し、最終ｐＨを６．８とする。
０．５ｍｇの抗ＬＨマウスモノクローナル抗体（ＩｇＧ１、Ｎｏ．１８）を金コロイド溶液に加え、穏やかに混合後、２５℃で２時間以上インキュベートする。１０％ＢＳＡ溶液を１ｍｌ加えて更に３０分以上インキュベートし、ブロッキング処理を完結させる。
遠心洗浄により未吸着の抗体を除く。
５ｍＭ濃度のＥＰＰＳ緩衝液に分散させて、最終的に４．５ｇ（２０倍濃縮）量とする。
冷蔵保存する。
【０１１２】
例５（ＦＩＴＣ結合ＢＳＡ（ウシ血清アルブミン）の作製）
２００ｍｇのＢＳＡを０．５Ｍ炭酸ナトリウム−炭酸水素ナトリウム緩衝液（ｐＨ＝９．０）１０ｍｌに溶かし、攪拌下に１０ｍｇのＦＩＴＣを加える。
遮光下、３０℃で緩やかに攪拌を続けながら６時間反応させる。
ＦＩＴＣ−ＢＳＡと未反応物をセファデックスＧ２５を用いて分離し、限外濾過用フィルターを用いて濃縮する。
０．２μｍのメンブレンフィルターでろ過し、遮光下冷蔵保存する。
【０１１３】
例６（ＤＮＰ結合ＢＳＡの作製）
ＢＳＡ  ２０ｍｇと炭酸カリウム２０ｍｇを精製水に溶解し１ｍｌとする。
この溶液に２，４ジニトロベンゼンスルホン酸ナトリウム（ＤＮＢＳ）を２０ｍｇ加え、３７℃で遮光下に緩やかに攪拌しながら２４時間反応させる。
反応終了後、ＤＮＰ−ＢＳＡと未反応のＤＮＢＳ及び分解物のジニトロフェノールをセファデックスＧ２５カラムで分離し、限外濾過用フィルターを用いて濃縮する。
０．２μｍのメンブレンフィルターでろ過し、遮光下冷蔵保存する。
【０１１４】
例７（Ｂｉｏｔｉｎ結合ＢＳＡの作製）
２０ｍｇのＢＳＡを１００ｍＭ炭酸緩衝液（ｐＨ＝８．４）に溶解する。
２０ｍｇ／ｍｌ−ＤＭＦ濃度のＢｉｏｔｉｎを５００μｌ添加し、遮光下緩やかに攪拌しながら１時間、２５℃でインキュベートする。
例６、例７と同様にカラム精製後、濃縮する。
０．２μｍのメンブレンフィルターでろ過し、遮光下冷蔵保存する。
【０１１５】
例８（ＣＭＬへの抗ＦＩＴＣウサギポリクローナル抗体及び抗ＬＨマウスモノクローナル抗体（ＩｇＧ１、Ｎｏ．４１）の固定化）
ＣＭＬ（０．１２０μｍ，ＰＡ＝６０，１０ｗｔ％  ｓｏｌｉｄ）を５０μｌ採り、遠心機を用いてラテックスを沈殿させて、上清を除く。
精製水を加えて、ソニケーションによりラテックスを再分散させて、更に遠心洗浄を繰り返す。
最終的に０．５ｗｔ％になるように５０ｍＭ  クエン酸緩衝液（ｐＨ＝４．０）に分散させる。
このラテックス溶液に抗ＦＩＴＣウサギポリクローナル抗体２００μｇと抗ＬＨマウスモノクローナル抗体（ＩｇＧ１、Ｎｏ．４１）２００μｇを同時に添加し、よく混合後、緩やかに攪拌させながら２５℃で２時間以上インキュベートする。
１０％ＢＳＡ溶液を１００μｌ加えて、ブロッキング処理をする。
更に３０分以上インキュベートし、ブロッキング処理を完結させる。
遠心洗浄により未吸着成分を除く。
最終的に０．５ｗｔ％濃度のラテックス溶液として、５ｍＭ濃度のＥＰＰＳ緩衝液に分散させて、冷蔵保存する。
【０１１６】
例９（ＣＭＬへの抗ＤＮＰウサギポリクローナル抗体及び抗ＬＨマウスモノクローナル抗体（ＩｇＧ１、Ｎｏ．４１）の固定化）
ＣＭＬ（０．１２０μｍ，ＰＡ＝６０，１０ｗｔ％  ｓｏｌｉｄ）を５０μｌ採り、例８と同様に洗浄操作終了後、最終的に０．５ｗｔ％になるように５０ｍＭクエン酸緩衝液（ｐＨ＝４．０）に分散させる。
このラテックス溶液に抗ＤＮＰウサギポリクローナル抗体２００μｇと抗ＬＨマウスモノクローナル抗体（ＩｇＧ１、Ｎｏ．４１）２００μｇを同時に添加し、よく混合後、緩やかに攪拌させながら２５℃で２時間以上インキュベートする。１０％ＢＳＡ溶液を１００μｌ加えて、ブロッキング処理をする。
更に３０分以上インキュベートし、ブロッキング処理を完結させる。
遠心洗浄により未吸着成分を除く。
最終的に０．５ｗｔ％濃度のラテックス溶液として、５ｍＭ濃度のＥＰＰＳ緩衝液に分散させて、冷蔵保存する。
【０１１７】
例１０（ＣＭＬへの抗Ｂｉｏｔｉｎウサギポリクローナル抗体及び抗ＬＨマウスモノクローナル抗体（ＩｇＧ１、Ｎｏ．４１）の固定化）
ＣＭＬ（０．１２０μｍ，ＰＡ＝６０，１０ｗｔ％  ｓｏｌｉｄ）を５０μｌ採り、洗浄操作終了後、最終的に０．５ｗｔ％になるように５０ｍＭ  クエン酸緩衝液（ｐＨ＝４．０）に分散させる。
このラテックス溶液に抗Ｂｉｏｔｉｎウサギポリクローナル抗体２００μｇと抗ＬＨマウスモノクローナル抗体（ＩｇＧ１、Ｎｏ．４１）２００μｇを同時に添加し、よく混合後、緩やかに攪拌させながら２５℃で２時間以上インキュベートする。
１０％ＢＳＡ溶液を１００μｌ加えて、ブロッキング処理をする。
更に３０分以上インキュベートし、ブロッキング処理を完結させる。
遠心洗浄により未吸着成分を除く。
最終的に０．５ｗｔ％濃度のラテックス溶液として、５ｍＭ濃度のＥＰＰＳ緩衝液に分散させて、冷蔵保存する。
【０１１８】
【実施例】
以下に実施例をあげて本発明をより詳細に説明するが、勿論、以下の実施例は例示に過ぎず、本発明はこの実施例により限定されるものではない。なお、以下の実施例１および実施例２における、液体試料は尿である。
【０１１９】
（実施例１）
【０１２０】
抗ＦＩＴＣウサギポリクローナル抗体、抗ＤＮＰウサギポリクローナル抗体、抗Ｂｉｏｔｉｎウサギポリクローナル抗体を、それぞれリン酸生理緩衝液（ＰＢＳ）に溶解し、１ｍｇ／ｍｌ濃度とした。
【０１２１】
ＢＩＯ  ＤＯＴ  ＸＹＺ３０００塗布機（米国ＢＩＯ  ＤＯＴ  ＩＮＣＯＲＰＯＲＡＴＥＤ社の商標）を用いて、Ｉｍｍｕｎｏｐｏｒｅ  ＦＰニトロセルロースメンブレンフィルター（英国Ｗｈａｔｍａｎ社製）に、０．４μｌ／ｃｍで上流側より抗Ｂｉｏｔｉｎ抗体、抗ＤＮＰ抗体、最後に抗ＦＩＴＣ抗体となるよう２ｍｍの間隔を持たせて塗布し、自然乾燥させて固定化し、テストラインとした。
【０１２２】
また反応の確認のためのレファレンスラインとして０．３ｍｇ／ｍｌ濃度の抗マウス抗体を同様に０．４μｌ／ｃｍで抗ＤＮＰ抗体塗布ラインの下流側１０ｍｍの位置に塗布し、自然乾燥させて固定化した。
【０１２３】
ガラスフィルターＧＦＦ（米国Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社製）に６％マルトース、例１で作製したＦＩＴＣ結合抗ＬＨ抗体を５６ｎｇ／ｔｅｓｔ、例２のＤＮＰ結合抗ＬＨ抗体を１６ｎｇ／ｔｅｓｔ、例３のＢｉｏｔｉｎ結合抗ＬＨ抗体を８ｎｇ／ｔｅｓｔ、例４の抗ＬＨ感作金コロイドを３μｌ／ｔｅｓｔ、少量の塩及びタンパク質、安定化剤、２０ｍＭ  ＥＰＰＳ緩衝液（ｐＨ＝８．０）の混合溶液を塗布し、凍結乾燥してコンジュゲートパッドを作製した。
【０１２４】
これらを用いて、図３、図４に示す検出装置（ＬＨ半定量用検査キット）を作製した。
【０１２５】
図３は、採尿部のＷｉｃｋ用のキャップを外したところの外観を示す。
【０１２６】
２１はハウジングであり、２２は検出部で結果がＬＨ濃度の段階的なレベルにより、０〜３本ライン（Ｌ１〜Ｌ３）として金コロイドの赤紫のラインが確認される。
【０１２７】
ラインが無い場合はＬＨ濃度は検出レベル以下であり、一本の場合はＬＨが低い濃度であることを意味し、順次ラインの数が増えるに従い高濃度であることを意味している。
【０１２８】
２３は反応の確認用のレファレンス部で、反応がうまくいった場合は常に金コロイドのラインＬＲが確認される。２４は採尿部のＷｉｃｋである。
【０１２９】
ここで使用しているＷｉｃｋは、ＴＲＡＮＳＯＲＢ  Ｗｉｃｋ（米国Ｆｉｌｔｒｏｎａ社製）を界面活性剤を含んだ緩衝液成分で処理したものである。
【０１３０】
図４は、ＬＨ検出用のストリップ８を示す。
【０１３１】
２５は、第二の試薬２と第一の反応物質３の結合体４としてのラベル化抗ＬＨ抗体（ＦＩＴＣ結合抗ＬＨ抗体、ＤＮＰ結合抗ＬＨ抗体、Ｂｉｏｔｉｎ結合抗ＬＨ抗体の混合物）及び抗ＬＨ抗体感作金コロイドを含んだコンジュゲートパッドである。
【０１３２】
２６は吸水部でＷｈａｔｍａｎ社の３ＭＭｃｈｒ（商標）を使用した。
【０１３３】
２７はニトロセルロースメンブレンフィルターであり、コンジュゲートパッド２５と吸水部２６の間の検出区域２２に、抗ＦＩＴＣウサギポリクローナル抗体２８、抗ＤＮＰウサギポリクローナル抗体２９、抗Ｂｉｏｔｉｎウサギポリクローナル抗体３０を固定化し、更にその下流側に抗マウス抗体３１を固定化した。
【０１３４】
各種濃度のＬＨコントロール液を作製し、採尿部に１ｍｌ添加して反応を開始し、１０分後の検出部の金コロイドによるラインの呈色強度を調べた。
結果を次表に示す。あわせて、図７も参照されたい。
【表１】
0003718510.tif 000002
ここで金コロイドによる赤紫色のラインが明瞭に認められたときを「＋」、微かに認められたときを「±」、認められなかったときを「−」とした。
【０１３５】
（実施例２）
【０１３６】
例５、６、７で作製したＦＩＴＣ結合ＢＳＡ、ＤＮＰ結合ＢＳＡ、Ｂｉｏｔｉｎ結合ＢＳＡをＢＩＯ  ＤＯＴ  ＸＹＺ３０００塗布機（米国ＢＩＯ  ＤＯＴ  ＩＮＣＯＲＰＯＲＡＴＥＤ社の商標）を用いて、Ｉｍｍｕｎｏｐｏｒｅ  ＲＰニトロセルロースメンブレンフィルター（英国Ｗｈａｔｍａｎ社製）に０．４μｌ／ｃｍで上流側よりＢｉｏｔｉｎ結合ＢＳＡ、ＤＮＰ結合ＢＳＡ、ＦＩＴＣ結合ＢＳＡとなるよう２ｍｍの間隔を持たせて塗布し、自然乾燥させて固定化し、テストラインとした。
【０１３７】
また反応の確認のためのレファレンスラインとして０．３ｍｇ／ｍｌ濃度の抗マウス抗体を同様に０．４μｌ／ｃｍでＤＮＰ結合ＢＳＡ塗布ラインの下流側１０ｍｍの位置に塗布し、自然乾燥させて固定化した。
【０１３８】
ガラスフィルターＧＦＦ（米国Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社製）に１０％ショ糖、例８で作製した抗ＦＩＴＣ抗体及び抗ＬＨ抗体感作ラテックスを２．８μｌ／ｔｅｓｔ、例９の抗ＤＮＰ抗体及び抗ＬＨ抗体感作ラテックスを０．８μｌ／ｔｅｓｔ、例１０の抗Ｂｉｏｔｉｎ抗体及び抗ＬＨ抗体感作ラテックスを０．４μｌ／ｔｅｓｔ、例４の抗ＬＨ感作金コロイドを３μｌ／ｔｅｓｔ、少量の塩及びタンパク質、安定化剤、２０ｍＭ  ＥＰＰＳ緩衝液（ｐＨ＝８．０）の混合溶液を塗布し、凍結乾燥してコンジュゲートパッドを作製した。
【０１３９】
これらを用いて、図５、図６に示す検出装置（ＬＨ半定量用検査キット）を作製した。
【０１４０】
図５は、採尿部のＷｉｃｋ用のキャップを外したところの外観を示す。
【０１４１】
４１はハウジングであり、４２は検出部で結果がＬＨ濃度の段階的なレベルにより、０〜３本ライン（Ｌ１〜Ｌ３）として金コロイドの赤紫のラインが確認される。
【０１４２】
ラインが無い場合はＬＨ濃度は検出レベル以下であり、一本の場合はＬＨが低い濃度であることを意味し、順次ラインの数が増えるに従い高濃度であることを意味している。
【０１４３】
４３は反応の確認用のレファレンス部で、反応がうまくいった場合は常に金コロイドのラインが確認される。
【０１４４】
４４は採尿部のＷｉｃｋである。
【０１４５】
ここで使用しているＷｉｃｋはＴＲＡＮＳＯＲＢ  Ｗｉｃｋ（米国Ｆｉｌｔｒｏｎａ社製）を界面活性剤を含んだ緩衝液成分で処理したものを使用した。
【０１４６】
図６は、ＬＨ検出用のストリップ８を示す。
【０１４７】
４５は第二の試薬２と第一の反応物質３である抗ラベル抗体及び抗ＬＨ抗体感作ラテックス（抗ＦＩＴＣ抗体及び抗ＬＨ抗体感作ラテックス、抗ＤＮＰ抗体及び抗ＬＨ抗体感作ラテックス、抗Ｂｉｏｔｉｎ抗体及び抗ＬＨ抗体感作ラテックスの混合物）及び抗ＬＨ抗体感作金コロイドを含んだコンジュゲートパッドである。
【０１４８】
４６は吸水部でＷｈａｔｍａｎ社の３ＭＭｃｈｒ（商標）を使用した。
【０１４９】
４７はニトロセルロースメンブレンフィルターであり、コンジュゲートパッド４５と吸水部４６の間の検出区域４２に、ＦＩＴＣ結合ＢＳＡ４８、ＤＮＰ結合ＢＳＡ４９、Ｂｉｏｔｉｎ結合ＢＳＡ５０を固定化し、更にその下流側に抗マウス抗体５１を固定化した。
【０１５０】
各種濃度のＬＨコントロール液を作製し、採尿部に１ｍｌ添加して反応を開始し、１０分後の検出部の金コロイドによるラインの呈色強度を調べた。
【０１５１】
結果を次表に示す。あわせて、図８も参照されたい。
【表２】
0003718510.tif 000003
ここでの判定結果も実施例１と同じ方法で示した。
【０１５２】
【発明の効果】
本発明によれば、検出のための特別な機材・装置を必要とせず、高感度に、短時間で、更に特別な訓練を受けなくとも、簡便かつ半定量的に、検出物質を測定できる。
【図面の簡単な説明】
【図１】（ａ）本発明の一実施の形態における検査法の過程説明図
（ｂ）同過程説明図
（ｃ）同過程説明図
（ｄ）同過程説明図
（ｅ）同過程説明図
（ｆ）同過程説明図
【図２】（ａ）同他の結合体を用いる検査法の過程説明図
（ｂ）同過程説明図
【図３】本発明の実施例１に係る検出装置の平面図
【図４】同検出装置の側面図
【図５】本発明の実施例２に係る検出装置の平面図
【図６】同検出装置の側面図
【図７】本発明の実施例１に係る検出結果の説明図
【図８】本発明の実施例２に係る検出結果の説明図
【符号の説明】
１  検出物質
２  第二の試薬
３  第一の反応物質
４  結合体
５  第二の反応物質
６  標識
７  標識された第二の反応物質
８  ストリップ
９  検出区域
１０  第一の試薬
１１  免疫複合物
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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