(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記式（１）：
【化１】
0003610422.tif 000016
で表されるＦＵ４０Ａ物質。
【請求項２】
ノカルジオプシス（Ｎｏｃａｒｄｉｏｐｓｉｓ）属に属し、請求項１に記載のＦＵ４０Ａ物質を生産する能力を有する菌を培地に培養し、培養物中に該化合物を生成、蓄積せしめ、これを採取することを特徴とする請求項１に記載のＦＵ４０Ａ物質の製造法。
【請求項３】
菌がノカルジオプシス エスピー．３３３８−Ａ１（Ｎｏｃａｒｄｉｏｐｓｉｓ ｓｐ．３３３８−Ａ１）株又はその変異株である請求項２に記載のＦＵ４０Ａ物質の製造法。
【請求項４】
請求項１に記載のＦＵ４０Ａ物質を有効成分とする医薬。
【請求項５】
抗腫瘍剤である請求項４に記載の医薬。
【請求項６】
有効量の請求項１に記載のＦＵ４０Ａ物質及び薬学的に許容される担体を含有する医薬組成物。
【請求項７】
腫瘍治療用である請求項６に記載の医薬組成物。
【請求項８】
ＦＵ４０Ａ物質を産生する能力を有する、ノカルジオプシス エスピー．３３３８−Ａ１（Ｎｏｃａｒｄｉｏｐｓｉｓ ｓｐ．３３３８−Ａ１）株又はその変異株。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は抗菌作用又は抗腫瘍作用を有し、医薬として有用な、新規なＦＵ４０Ａ物質に関する。
【０００２】
【従来の技術及び発明が解決しようとする課題】
従来より、微生物が、広範な化学構造上の特徴を有し、抗菌性、抗腫瘍性等の薬理活性を有する種々の物質を生産することが知られている。
【０００３】
本発明は、微生物を用いて、更に優れた薬理活性を有する物質を得ることを目的とするものである。
【０００４】
【課題を解決するための手段】
斯かる実情に鑑み、本発明者らは、天然土壌より多くの微生物を分離し、有用な薬理活性を有する物質の生産能について検索を行った結果、ノカルジオプシス（Ｎｏｃａｒｄｉｏｐｓｉｓ）属に属する微生物のノカルジオプシス  エスピー．３３３８−Ａ１（Ｎｏｃａｒｄｉｏｐｓｉｓ  ｓｐ．３３３８−Ａ１）株が優れた抗菌性、抗腫瘍性を示す新規物質ＦＵ４０Ａを生産することを見出し、その活性物質を単離し、その理化学的性状及び構造を確定することにより本発明を完成させた。本発明の化合物は抗菌剤、抗真菌剤、抗ウイルス剤、抗腫瘍剤等の医薬として有用である。
【０００５】
すなわち、本発明は次の式（１）で表されるＦＵ４０Ａ物質に係わるものである。
【０００６】
【化２】
0003610422.tif 000002
【０００７】
また、本発明はノカルジオプシス属に属し、上記ＦＵ４０Ａ物質を生産する能力を有する微生物を培養し、培養物中に該化合物を生成し、蓄積せしめ、これを採取することを特徴とするＦＵ４０Ａ物質の製造法にも係るものである。
【０００８】
また、本発明は該ＦＵ４０Ａ物質を有効成分とする医薬並びに抗腫瘍剤に係るものである。
【０００９】
また、本発明は上記ＦＵ４０Ａ物質及び薬学的に許容される担体とを含有する医薬組成物に係るものである。
【００１０】
更に、本発明は上記ＦＵ４０Ａ物質を産生する能力を有する菌に係るものである。
【００１１】
本発明のＦＵ４０Ａ物質は上記式（１）で表され、不斉炭素原子に基づく異性体が存在するが、本発明にはこれら各異性体及びその混合物のいずれもが含まれる。また、本発明物質は水和物の形態で存在してもよく、本発明には当該水和物も含まれる。
【００１２】
ＦＵ４０Ａ物質の物理化学的性質を以下に示す。
【００１３】
（１）形  状：無色の粉末
（２）実験式：Ｃ５８Ｈ９６Ｏ２１（計算値  １１５１．６３４２）
（３）分子量：１１５１．６３５７（ファーストアトミックボンバードメントマススペクトロメトリー法による）
（４）比施光度：［α］Ｄ２１＝−５．２°（Ｃ＝１．０，  メタノール中）
（５）紫外吸収スペクトル（図１）：メタノール溶液中、λｍａｘ  （ｎｍ）  （ε）：２３４  （２８，３００）、３２０（２２，０００）。
（６）赤外吸収スペクトル（図２）：ＫＢｒ錠剤法、νｍａｘ（ｃｍ−１）、３４４０，１６６５。
【００１４】
（７）核磁気共鳴スペクトル：重メタノール溶液中で測定した４００ＭＨｚ  １Ｈ−ＮＭＲスペクトル（図３）及び１００ＭＨｚ  １３Ｃ−ＮＭＲスペクトル（図４）の化学シフト値を表１〜表３に示す。
【００１５】
【表１】
0003610422.tif 000003
【００１６】
【表２】
0003610422.tif 000004
【００１７】
【表３】
0003610422.tif 000005
【００１８】
（８）溶解性：メタノール、エタノール、アセトン、ジメチルスルホキシド、酢酸エチル及びクロロホルムに良く溶け、水に少し溶け、ヘキサンに難溶である。
【００１９】
（９）融  点：１２８−１３０  ℃
【００２０】
【発明の実施の形態】
本発明のＦＵ４０Ａ物質は、例えば、本物質の生産能力を有する菌株（以下ＦＵ４０Ａ物質生産菌と称する場合がある。）を適当な条件下で培養することによって製造することができる。
【００２１】
ＦＵ４０Ａ物質生産菌としては、ノカルジオプシス（Ｎｏｃａｒｄｉｏｐｓｉｓ）属に属する菌株が挙げられる。本発明はノカルジオプシス（Ｎｏｃａｒｄｉｏｐｓｉｓ）属に属する菌を培養し、培養物を回収することによって得ることができる上記ＦＵ４０Ａ物質も包含する。
【００２２】
ノカルジオプシス（Ｎｏｃａｒｄｉｏｐｓｉｓ）属に属する菌株の一例としては、ノカルジオプシス  エスピー．３３３８−Ａ１（Ｎｏｃａｒｄｉｏｐｓｉｓｓｐ．３３３８−Ａ１）株が例示できる。この菌株は、本発明者らが群馬県草津の土壌から新たに分離したノカルジオプシス属に属する菌株であり、通商産業省工業技術院生命工学工業技術研究所に、１９９７年３月１３日に、微生物の表示（寄託者が付した識別のための表示）「Ｓｔｒａｉｎ  ３３３８−Ａ１」、（受託番号）「ＦＥＲＭ  ＢＰ−５８７１」として寄託されている。
【００２３】
本菌株ノカルジオプシス  エスピー．３３３８−Ａ１株について、「特許庁産業別審査基準」に記載の方法に準じて検討した菌学的性質は次の通りである。
【００２４】
（ａ）形態：
本菌株をイースト・麦芽寒天培地、グリセリン・アスパラギン寒天培地又は無機塩・スターチ寒天培地中で、２７℃、１４日間培養し、観察した結果を以下に示す。
【００２５】
胞子形成菌糸の分枝法；
形態性状：本菌株の基生菌糸は幅０．３〜０．８  μｍで、分枝しながら長く伸張し、時には特徴的なジグザグ状を呈し、短い桿状に分断する。気菌糸は主軸を長く伸ばし、少ない分枝がレイス状に絡まり、全菌糸が分節・分断して胞子鎖を形成する。１０〜５０個またはそれ以上からなる曲状又はループ状の胞子鎖を形成し、成熟するとややジグザグ状を呈する。分節胞子は円筒形、幅０．３〜０．４  μｍ長さ１．５〜１．８  μｍで、胞子表面は平滑、非運動性である。菌核、胞子のう、その他の特殊形態は観察されない。
【００２６】
（ｂ）各種培地における生育状態：
各種培地における生育状態を表４に示す。分類色名は財団法人日本色彩研究所監修「標準色彩図表Ａ，１９８１年」で示した。なお、詳細な色はコンテイナー・コーポレーション・オブ・アメリカ（Ｃｏｎｔａｉｎｅｒ  Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  Ａｍｅｒｉｃａ）の「ザ・カラー・ハーモニー・マニュアル（Ｔｈｅ  Ｃｏｌｏｒ  Ｈａｒｍｏｎｙ  Ｍａｎｕａｌ），第４版，１９５８年」の色コードで（）内につけ加えた。
【００２７】
【表４】
0003610422.tif 000006
【００２８】
（ｃ）生理的性質：本菌株の生理的性状を表５に示す。
【００２９】
【表５】
0003610422.tif 000007
【００３０】
（ｄ）化学分類学的性質：本菌株は全菌体アミノ酸としてメゾ・ジアミノピメリン酸、糖としてガラクトース、マンノース、グルコースを含み、細胞壁化学型はＩＩＩＣ型である。主要メナキノンはＭＫ−１０（Ｈ４，Ｈ６）である。
【００３１】
（ｅ）本菌株の分類的位置：上述の諸性状を基に「バージェイ氏細菌系統分類学便覧４巻」、（Ｂｅｒｇｅｙ’ｓ  Ｍａｎｕａｌ  ｏｆ  Ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃ  Ｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ，  Ｖｏｌ．  ４．）により本菌株の分類学的位置を検索した。本菌株の属レベルの特徴を要約すると、ノカルデイオフォームの形態を示し、細胞壁化学型はＩＩＩＣ型であり、主要メナキノンは、  ＭＫ−１０（Ｈ４，Ｈ６）型である。これらの特徴を持つ属はノカルジオプシス（Ｎｏｃａｒｄｉｏｐｓｉｓ）のみである。よって本菌株３３３８−Ａ１はノカルジオプシス（Ｎｏｃａｒｄｉｏｐｓｉｓ）属に位置される。最近、同属の種は多数報告され分類学的に議論されて整理されつつあるため、目下それらの種とも比較、同定を行っている。従って、同定が完了するまでの間、本菌株をノカルジオプシス  エスピー．３３３８−Ａ１（Ｎｏｃａｒｄｉｏｐｓｉｓ  ｓｐ．３３３８−Ａ１）株と呼称する。本菌株と近縁放線菌属との比較を表６に示す。
【００３２】
【表６】
0003610422.tif 000008
【００３３】
本発明のＦＵ４０Ａ物質は、例えば、ノカルジオプシス（Ｎｏｃａｒｄｉｏｐｓｉｓ）属に属し、ＦＵ４０Ａ物質を生産する能力を有する菌を培地に培養し、培養物中に該化合物を生成、蓄積せしめ、これを採取することにより、具体的には、上記３３３８−Ａ１株又はその変異株等のノカルジオプシス（Ｎｏｃａｒｄｉｏｐｓｉｓ）属に属する各種のＦＵ４０Ａ物質生産菌を適当な培地で培養し、次に培養物から本発明物質を含む粗抽出物を分離し、更に粗抽出物からＦＵ４０Ａ物質を単離、精製することにより製造することができる。
【００３４】
上記微生物の培養は原則的に一般微生物の培養に準じて行われるが、通常液体培養による振盪培養法、通気撹拌培養法等の好気的条件下で行うのが好ましい。
【００３５】
培養に用いられる培地としては、  ＦＵ４０Ａ物質生産菌が利用できる栄養源を含有する培地であればよく、各種の合成培地、半合成培地、天然培地等をいずれも用いることができる。培地の炭素源としてはグルコース、シュークロース、フラクトース、グリセリン、デキストリン、澱粉、糖蜜、コーン・スティープ・リカー、有機酸等を単独又は２種以上組み合わせたものが；窒素源としてはファーマメディア、ペプトン、肉エキス、酵母エキス、大豆粉、カゼイン、アミノ酸、尿素等の有機窒素源、硝酸ナトリウム、硫酸アンモニウム等の無機窒素源を単独又は２種以上組み合わせたものが用いられる。また、培地にはナトリウム塩、カリウム塩、マグネシウム塩、リン酸塩、その他の重金属塩等が必要に応じて適宜添加される。
【００３６】
なお、培養中発泡の著しい時は、例えば大豆油、亜麻仁油等の植物油、オクタデカノール、テトラデカノール、ヘプタデカノール等の高級アルコール類、各種シリコン化合物等の消泡剤を適宜培地中に添加することもできる。
【００３７】
培地のｐＨは中性付近とするのが好ましい。培養温度はＦＵ４０Ａ物質生産菌が良好に生育する温度、通常２０〜３７  ℃、特に好ましくは２５〜３０  ℃付近に保つのがよい。培養時間は、液体振盪培養及び通気撹拌培養のいずれの場合も４〜７日間が好ましい。
【００３８】
上述した各種の培養条件は使用微生物の種類や特性、外部条件等に応じて適宜変更でき、またそれぞれに応じて上記範囲から最適条件を選択、調節できる。
【００３９】
培養液からのＦＵ４０Ａ物質を含む粗抽出物の分離は、発酵生産物を採取する一般的な方法に準じて行うことができ、例えば溶媒抽出、分配及び吸着クロマトグラフィー、結晶化等の手段を単独で、又はこれらの手段の２種以上を任意の順序に組み合わせて用いることができる。より詳しくは、上記培養により生産されるＦＵ４０Ａ物質は主として培養菌体中に存在するので、常法に従い、まず濾過、遠心分離等を行って、培養濾液と菌体固形分とを分離し、得られたＦＵ４０Ａ物質を含む菌体固形分についてメタノール、アセトン等の溶媒を用いてＦＵ４０Ａ物質の溶出を行い、次いで、減圧下に溶媒を留去すればＦＵ４０Ａ物質を含む粗濃縮液を得ることができる。この粗濃縮液に酢酸エチル、クロロホルム、ブタノール等の水と混合しない有機溶媒を加えてＦＵ４０Ａ物質を有機溶媒層に転溶させ、得られた溶媒層に芒硝を加えて脱水した後、溶媒を減圧下で留去すればＦＵ４０Ａ物質を含む粗抽出物を得ることができる。必要に応じて水酸化ナトリウム又は塩酸にてｐＨを調節したり、また工業用食塩を加えることにより、抽出効率を高くしたり、エマルジョン生成防止などの方法を講じることができる。
【００４０】
更に、粗抽出物からＦＵ４０Ａ物質を単離、精製するためには通常の脂溶性低分子物質の単離、精製手段、例えばシリカゲル、アルミナ、マクロポーラス非イオン系吸着樹脂等の吸着剤による種々の吸着クロマトグラフィー及びＯＤＳ−結合型シリカゲル等を用いる逆相クロマトグラフィーが使用できる。これらのうち、溶出溶媒にクロロホルム、クロロホルム／メタノール、クロロホルム／メタノール／ベンゼン、トルエン／メタノール等の混合溶媒系を用いるシリカゲルクロマトグラフィー及びアセトニトリル／水、メタノール／水等の混合溶媒系を溶出に用いる逆相クロマトグラフィーが特に好ましい。また、更に精製を必要とする場合には上記クロマトグラフィーを繰り返し行うか又は溶出溶媒としてクロロホルム、メタノール等を用いたセファデックスＬＨ−２０（ファルマシア社製）によるゲル濾過クロマトグラフィーなどを適宜組み合わせて行うことにより、高純度のＦＵ４０Ａ物質を得ることができる。
【００４１】
なお、精製工程中のＦＵ４０Ａ物質の確認は、本物質により増殖抑制作用の認められるアデノウイルス１２型のＥ１Ａ遺伝子を導入したラットグリア細胞に対する殺細胞効果を調べる方法及び高速液体クロマトグラフィーを用いて検出する方法とを併用して行うのがよい。殺細胞効果を調べる具体的方法は、試験例中に記載する。
【００４２】
本発明のＦＵ４０Ａ物質は形質転換細胞に対して優れた抗腫瘍活性を有するので、腫瘍治療剤としての有効性が確認された。
【００４３】
以上のようにして精製したＦＵ４０Ａ物質を医薬組成物として使用する際の薬学的投与形態としては、目的に応じて各種の薬学的投与形態を広く採用でき、該形態としては、具体的には、錠剤、被覆錠剤、丸剤、散剤、顆粒剤、細粒剤、カプセル剤、液剤、懸濁剤、乳剤等の経口剤；注射剤、坐剤、軟膏剤、硬膏剤、貼付剤、エアゾール剤、点眼剤等の非経口剤のいずれでもよく、これら投与形態は、それぞれ当業者に公知慣用の製造方法により製造できる。
【００４４】
錠剤の形態に成形するに際しては、担体として例えば乳糖、白糖、塩化ナトリウム、ブドウ糖、尿素、デンプン、炭酸カルシウム、カオリン、結晶セルロース、ケイ酸等の賦形剤、単シロップ、ブドウ糖液、デンプン液、ゼラチン溶液、カルボキシメチルセルロース、シェラック、メチルセルロース、リン酸カリウム、ポリビニルピロリドン等の結合剤、乾燥デンプン、アルギン酸ナトリウム、カンテン末、ラミナラン末、炭酸水素ナトリウム、炭酸カルシウム、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル類、ラウリル硫酸ナトリウム、ステアリン酸モノグリセリド、デンプン、乳糖等の崩壊剤、白糖、ステアリン酸、カカオバター、水素添加油等の崩壊抑制剤、第４級アンモニウム塩基、ラウリル硫酸ナトリウム等の吸収促進剤、グリセリン、デンプン等の保湿剤、デンプン、乳糖、カオリン、ベントナイト、コロイド状ケイ酸等の吸着剤、精製タルク、ステアリン酸塩、ホウ酸末、ポリエチレングリコール等の滑沢剤等を使用できる。更に錠剤は必要に応じ通常の剤皮を施した錠剤、例えば糖衣錠、ゼラチン被包錠、腸溶被錠、フィルムコーティング錠、二重錠、多層錠等とすることができる。
【００４５】
丸剤の形態に成形するに際しては、担体として例えばブドウ糖、乳糖、デンプン、カカオ脂、硬化植物油、カオリン、タルク等の賦形剤、アラビアゴム末、トラガント末、ゼラチン等の結合剤、ラミナラン、カンテン等の崩壊剤等を使用できる。
【００４６】
カプセル剤は常法に従い通常本発明の化合物を上記で例示した各種の担体と混合して硬化ゼラチンカプセル、軟質カプセル等に充填して調整される。
【００４７】
経口用液体製剤を調製する場合は、本発明の有効成分に矯味剤、緩衝剤、安定化剤、矯臭剤等の担体を加えて常法により内服液剤、シロップ剤、エリキシル剤等を製造することができる。この場合矯味剤としては白糖、橙皮、クエン酸、酒石酸等が使用でき、緩衝剤としてはクエン酸ナトリウム等が、安定化剤としてはトラガント、アラビアゴム、ゼラチン等が使用できる。
【００４８】
注射剤として調整される場合、液剤、乳剤及び懸濁剤は殺菌され、且つ血液と等張であるのが好ましく、これらの形態に成形するに際しては、希釈剤として例えば水、エチルアルコール、マクロゴールプロピレングリコール、エトキシ化イソステアリルアルコール、ポリオキシ化イソステアリルアルコール、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル類等を使用できる。なお、この場合等張性の溶液を調整するに十分な量の食塩、ブドウ糖あるいはグリセリンを医薬製剤中に含有せしめてもよく、また、ｐＨ調整剤、緩衝剤、安定化剤、局所麻酔剤等を添加し、常法により静脈内、筋肉内、皮下、皮内並びに腹腔内用注射剤を製造できる。ｐＨ調整剤及び緩衝剤としてはクエン酸ナトリウム、酢酸ナトリウム、リン酸ナトリウム等が、安定化剤としてはピロ亜硫酸ナトリウム、エチレンジアミン四酢酸、チオグリコール酸、チオ乳酸等が使用できる。局所麻酔剤としては塩酸プロカイン、塩酸リドカイン等が使用できる。
【００４９】
坐剤を調整する場合には、本発明の有効成分に基剤、更に必要に応じて界面活性剤等を加えた後、常法により坐剤を製造することができる。基剤としては、例えばマクロゴール、ラノリン、カカオ油、脂肪酸トリグリセライド、ウィテップゾール（ダイナマイトノーベルズ社製）等の油性基剤を用いることができる。
【００５０】
軟膏剤を調整する場合は、本発明化合物に通常使用される基剤、安定剤、湿潤剤、保存剤等の担体が必要に応じて配合され、常法により混合、製剤化される。基剤としては流動パラフィン、白色ワセリン、サラシミツロウ、オクチルドデシルアルコール、パラフィン等が挙げられる。保存剤としてはパラオキシ安息香酸メチル、パラオキシ安息香酸エチル、パラオキシ安息香酸プロピル等が挙げられる。
【００５１】
貼付剤を製造する場合には、通常の支持体に前記軟膏、ペースト、クリーム、ゲル等を常法により塗布すればよい。支持体としては綿、スフ、化学繊維からなる織布、不織布や軟質塩化ビニル、ポリエチレン、ポリウレタン等のフィルムあるいは発泡体シートが適当である。
【００５２】
更に上記各製剤には、必要に応じて着色剤、保存剤、香料、風味剤、甘味剤等や他の医薬品を医薬製剤中に含有せしめてもよい。
【００５３】
本発明の医薬製剤中に含有されるべきＦＵ４０Ａ物質の量としては、特に制限されず広範囲に適宜選択されるが、通常医薬製剤中１〜７０重量％とするのがよい。
【００５４】
上記医薬製剤の投与方法は特に制限はなく、各種製剤形態、患者の年齢、性別、その他の条件、疾患の程度等に応じて適宜決定される。例えば錠剤、丸剤、顆粒剤、カプセル剤、液剤、懸濁剤、乳剤は経口投与される。注射剤は単独であるいはブドウ糖、アミノ酸等の通常の補液と混合して静脈内投与され、更に必要に応じて単独で筋肉内、皮内、皮下もしくは腹腔内投与される。坐剤は直腸内投与される。軟膏剤は皮膚、口腔内粘膜等に塗布される。
【００５５】
上記の各投与単位形態中に配合されるべきＦＵ４０Ａ物質の有効成分の量は、これを適用すべき患者の症状によりあるいはその剤型等により一定ではないが、一般に投与単位形態あたり経口剤では約０．０１〜１００ｍｇ、注射剤では約０．０１〜５０ｍｇ、坐剤では０．０５〜１００ｍｇとするのが望ましい。
【００５６】
また、上記投与形態を有する薬剤の１日あたりの投与量は、患者の症状、体重、年齢、性別、その他の条件等に応じて適宜選択されるが、通常成人１日あたり約０．０１〜１００ｍｇ／ｋｇとすれば良く、これを１日１回又は２〜４回程度に分けて投与することができる。
【００５７】
ＦＵ４０Ａ物質を有効成分とする医薬を投与することによって治療できる悪性腫瘍としては、特に制限はなく、例えば、頭頸部癌、食道癌、胃癌、結腸癌、直腸癌、肝臓癌、胆嚢・胆管癌、膵臓癌、肺癌、乳癌、卵巣癌、膀胱癌、前立腺癌、睾丸腫瘍、骨・軟部肉腫、悪性リンパ種、白血病、子宮頸癌、皮膚癌、脳腫瘍等が挙げられる。
【００５８】
【実施例】
以下に実施例及び試験例を挙げて更に具体的に本発明を説明するが、本発明はこれらの実施例によって限定されるものではない。
【００５９】
実施例１  本発明ＦＵ４０Ａ物質の製造：
（ａ）培養工程
可溶性澱粉  １．０％、廃糖蜜  １．０％、ポリペプトン  １．０％、肉エキス１．０％よりなる培地（ｐＨ  ７．２）１５  ｍｌを５０  ｍｌの大型試験管に分注し、滅菌後、本菌株を一白金耳量接種し、２７℃にて２日間振盪培養した。次に、グリセロール  ２．０％、廃糖蜜  １．０％、カゼイン  ０．５％、ポリペプトン  １．０％、炭酸カルシウム  ０．４％よりなる培地（ｐＨ  ７．２）を１００  ｍｌずつ５００  ｍｌの三角フラスコに分注し、滅菌後、上記の種菌  ２  ｍｌを添加し、ロータリーシェーカーにて２７  ℃、５日間回転培養した。
【００６０】
（ｂ）分離、単離、精製工程
上記工程で得られた培養液（２  Ｌ）を採取し、遠心分離、濾過後、培養菌体にアセトン（１  Ｌ）を加え抽出した。このアセトン抽出液を減圧濃縮し、培養上清と合わせ、酢酸エチル（２  Ｌ）で２回抽出した。得られた有機溶媒層を濃縮した後、この濃縮物をシリカゲルカラム（内径３  ｃｍ×２０  ｃｍ）にかけ、クロロホルム／メタノール（ｖ／ｖ  １０：１）にてクロマトグラフィーを行った。活性成分をさらにセファデックスＬＨ−２０（ファルマシア社製）カラムクロマトグラフィー（内径２０  ｃｍ×５０  ｃｍ，  メタノール）にて精製した。更に、ワイエムシイ社製  ＹＭＣ−Ｐａｃｋ  Ｄ−ＯＤＳ−７カラムを用い、７０％メタノールにて高速液体クロマトグラフィーを行い、活性画分を濃縮することによりＦＵ４０Ａ物質の無色粉末２１８  ｍｇを得た。
【００６１】
得られたＦＵ４０Ａ物質の物理化学的性質を以下に示す。
【００６２】
（１）形  状：無色の粉末
（２）実験式：Ｃ５８Ｈ９６Ｏ２１（計算値  １１５１．６３４２）
（３）分子量：１１５１．６３５７（ファーストアトミックボンバードメントマススペクトロメトリー法による）
（４）比施光度：［α］Ｄ２１＝−５．２°（Ｃ＝１．０，  メタノール中）
（５）紫外吸収スペクトル（図１）：メタノール溶液中、λｍａｘ  （ｎｍ）  （ε）：２３４  （２８，３００）、３２０（２２，０００）。
（６）赤外吸収スペクトル（図２）：ＫＢｒ錠剤法、νｍａｘ（ｃｍ−１）、３４４０，１６６５。
【００６３】
（７）核磁気共鳴スペクトル：重メタノール溶液中で測定した４００ＭＨｚ  １Ｈ−ＮＭＲスペクトル（図３）及び１００ＭＨｚ  １３Ｃ−ＮＭＲスペクトル（図４）の化学シフト値を表７〜表９に示す。
【００６４】
【表７】
0003610422.tif 000009
【００６５】
【表８】
0003610422.tif 000010
【００６６】
【表９】
0003610422.tif 000011
【００６７】
（８）溶解性：メタノール、エタノール、アセトン、ジメチルスルホキシド、酢酸エチル及びクロロホルムに良く溶け、水に少し溶け、ヘキサンに難溶である。
【００６８】
（９）融  点：１２８−１３０  ℃
試験例１
Ｗｉｓｔａｒラットの１８日胚の脊髄より初代培養したラット正常グリア細胞にアデノウイルス１２型のＥ１Ａ癌遺伝子を導入した細胞、またはＥ１Ａ，  Ｅ１Ｂ癌遺伝子双方を導入した細胞（Ｊ．  Ａｎｔｉｂｉｏｔｉｃｓ  ４９，  ９７４−９７９，  １９９６）及び正常ラットグリア細胞に対するＦＵ４０Ａ物質の細胞増殖阻害効果を比較した。
【００６９】
これらの細胞の培養には、１％のグルコースと１０％の牛胎児血清を含むダルベッコ改変イーグル培地を用いた。５０％飽和密度の各培養細胞を０．２５％トリプシン／１ｍＭ  ＥＤＴＡ液により分散し、遠心洗浄後、上記培地で１／１０細胞密度に希釈して９６ウエルマイクロプレート（ＧＩＢＣＯ）にウエルあたり０．１  ｍｌ添加後、ＣＯ２インキュベーターで３７℃で培養した。翌日上記培地にて各種濃度に調整したＦＵ４０Ａ物質を含む液を０．１  ｍｌ添加し、更に３日間培養した。
【００７０】
その後、終濃度０．５  ｍｇ／ｍｌになるように３−（４，５−ジメチルチアゾール−２−イル）−２，５−ジフェニルテトラゾリウムを添加し、４時間３７℃で培養した後、形成されたファルマザンをジメチルスルホキシドで抽出し、マイクロプレートリーダーにて５７０  ｎｍでの吸光度を測定した。薬剤未添加の細胞での吸光度を１００％としてＦＵ４０Ａ物質のＩＣ５０値（５０％細胞増殖阻害濃度）を算出した。Ｅ１Ａ癌遺伝子を導入したラットグリア細胞、またはＥ１Ａ，  Ｅ１Ｂ癌遺伝子双方を導入したラットグリア細胞でのＩＣ５０値は、それぞれ１１  ｎｇ／ｍｌ及び１０  ｎｇ／ｍｌであった。一方、同条件で正常ラットグリア細胞を培養した時のＩＣ５０値は１００  μｇ／ｍｌ以上であった。
【００７１】
試験例２
種々のヒト臓器癌細胞および正常細胞に対するＦＵ４０Ａ物質の細胞増殖阻害効果を市販の抗悪性腫瘍剤アドリアマイシン（協和発酵社製）と比較した。
【００７２】
ヒト正常血管内皮細胞ＨＵＶＥＣの培養には、５％の牛胎児血清を含むＭＣＤＢ１０４培地（日水製薬）で、その他の癌細胞株は、１０％の牛胎児血清を含むＲＰＭＩ１６４０培地を用いた。
【００７３】
各細胞を１万〜３万個／ｍｌに調整した細胞浮遊液を調整し、９６ウエルマイクロプレート（ＧＩＢＣＯ）にウエルあたり０．１  ｍｌ添加後、ＣＯ２インキュベーターで３７℃で培養した。翌日上記培地にて各種濃度に調整したＦＵ４０Ａ物質を含む液又はアドリアマイシン液を０．１  ｍｌ添加し、更に３日間培養した。
【００７４】
その後、０．０２  ｍｌの２５％グルタルアルデヒド水溶液を添加し、１０分間細胞を固定し、水洗後、２０％メタノールに溶解した０．０５％クリスタルバイオレット染色液で１５分間染色した。更に水洗後、細胞に結合した染色剤をエタノール／５０  ｍＭ  ＮａＨ２ＰＯ４の１：１混合液にて抽出し、マイクロプレートリーダーにて４１５  ｎｍでの吸光度を測定した。薬剤未添加の細胞での吸光度を１００％としてＦＵ４０Ａ物質とアドリアマイシンのＩＣ５０値（５０％細胞増殖阻害濃度）を算出した。
【００７５】
結果を表１０に示す。
【００７６】
【表１０】
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【００７７】
ＦＵ４０Ａ物質はアドリアマイシンと同様に広範な腫瘍株に細胞増殖阻害作用を示した。アドリアマイシンは正常血管内皮細胞に対しても同程度の細胞増殖阻害作用を示すのに対し、ＦＵ４０Ａの作用は極めて弱いものであった。
【００７８】
試験例１及び２から明らかなように、本発明のＦＵ４０Ａ物質は、悪性転換細胞に対し、強い殺細胞作用を示すが、正常細胞に対しては高濃度でも殺細胞作用を示さなかった。一方、アドリアマイシンは正常細胞にも同程度に殺細胞作用を示した。
【００７９】
0003610422.tif 000013
上記配合割合で、常法に従いカプセル剤を調整した。
【００８０】
0003610422.tif 000014
上記配合割合で、常法に従い注射剤を調整した。
【００８１】
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上記配合割合で、常法に従い坐剤を調整した。
【００８２】
【発明の効果】
本発明のＦＵ４０Ａ物質は、形質転換細胞に対し優れた抗腫瘍活性を有し、腫瘍の治療薬として有用である。
【図面の簡単な説明】
【図１】図１は、実施例１で得られた本発明物質の紫外吸収スペクトル図である。
【図２】図２は、実施例１で得られた本発明物質の赤外吸収スペクトル図である。
【図３】図３は、実施例１で得られた本発明物質の１Ｈ−ＮＭＲスペクトル図である。
【図４】図４は、実施例１で得られた本発明物質の１３Ｃ−ＮＭＲスペクトル図である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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