(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ホスファチジルイノシトール−３，４，５−三リン酸のイノシトール部位とグリセロール骨格とによって構成される抗原決定基を認識する抗体、またはその可変領域を含む抗体の断片。
【請求項２】
抗体がモノクローナル抗体である、請求項１の抗体、またはその可変領域を含む抗体の断片。
【請求項３】
モノクローナル抗体が、以下に記載の重鎖可変領域と軽鎖可変領域によって構成されることを特徴とする請求項２に記載の抗体、またはその可変領域を含む抗体の断片。
それぞれ次のアミノ酸配列からなるCDRを含む重鎖の可変領域：および
重鎖CDR1：配列番号：５
重鎖CDR2：配列番号：６
重鎖CDR3：配列番号：７
それぞれ次のアミノ酸配列からなるCDRを含む軽鎖の可変領域：
軽鎖CDR1：配列番号：８
軽鎖CDR2：配列番号：９
軽鎖CDR3：配列番号：１０
【請求項４】
モノクローナル抗体の重鎖可変領域が、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなることを特徴とする請求項３に記載の抗体、またはその可変領域を含む抗体の断片。
【請求項５】
モノクローナル抗体の軽鎖可変領域が、配列番号：４に記載のアミノ酸配列からなることを特徴とする請求項４に記載の抗体、またはその可変領域を含む抗体の断片。
【請求項６】
抗体、またはその可変領域を含む抗体の断片と、試料中に存在するホスファチジルイノシトール−３，４，５−三リン酸と反応させ、両者の免疫学的な反応に基づく結合を検出する工程を含む免疫学的測定方法であって、前記抗体がホスファチジルイノシトール−３，４，５−三リン酸のイノシトール部位とグリセロール骨格とによって構成される抗原決定基を認識する抗体である免疫学的測定方法。
【請求項７】
抗体が、モノクローナル抗体である請求項６に記載の免疫学的測定方法。
【請求項８】
モノクローナル抗体が、以下に記載の重鎖可変領域と軽鎖可変領域によって構成されるモノクローナル抗体である、請求項７に記載の免疫学的測定方法。
それぞれ次のアミノ酸配列からなるCDRを含む重鎖の可変領域：および
重鎖CDR1：配列番号：５
重鎖CDR2：配列番号：６
重鎖CDR3：配列番号：７
それぞれ次のアミノ酸配列からなるCDRを含む軽鎖の可変領域：
軽鎖CDR1：配列番号：８
軽鎖CDR2：配列番号：９
軽鎖CDR3：配列番号：１０
【請求項９】
モノクローナル抗体の重鎖可変領域が、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなることを特徴とする請求項８に記載の免疫学的測定方法。
【請求項１０】
モノクローナル抗体の軽鎖可変領域が、配列番号：４に記載のアミノ酸配列からなることを特徴とする請求項９に記載の免疫学的測定方法。
【請求項１１】
抗体またはその可変領域を含む抗体の断片と、それが認識する抗原決定基との免疫学的な反応が、試料中に存在するホスファチジルイノシトール−３，４，５−三リン酸によって阻害される程度を観察する請求項６に記載の免疫学的測定方法。
【請求項１２】
抗体またはその可変領域を含む抗体の断片を含む、ホスファチジルイノシトール−３，４，５−三リン酸の免疫学的測定用キットであって、前記抗体がホスファチジルイノシトール−３，４，５−三リン酸のイノシトール部位とグリセロール骨格とによって構成される抗原決定基を認識する抗体であるキット。
【請求項１３】
抗体が、モノクローナル抗体である請求項１２に記載のキット。
【請求項１４】
モノクローナル抗体が、以下に記載の重鎖可変領域と軽鎖可変領域によって構成されるモノクローナル抗体である、請求項１３に記載のキット。
それぞれ次のアミノ酸配列からなるCDRを含む重鎖の可変領域：および
重鎖CDR1：配列番号：５
重鎖CDR2：配列番号：６
重鎖CDR3：配列番号：７
それぞれ次のアミノ酸配列からなるCDRを含む軽鎖の可変領域：
軽鎖CDR1：配列番号：８
軽鎖CDR2：配列番号：９
軽鎖CDR3：配列番号：１０
【請求項１５】
モノクローナル抗体の重鎖可変領域が、配列番号：２に記載のアミノ酸配列からなることを特徴とする請求項１４に記載のキット。
【請求項１６】
モノクローナル抗体の軽鎖可変領域が、配列番号：４に記載のアミノ酸配列からなることを特徴とする請求項１５に記載のキット。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【産業上の利用分野】
本発明は、ホスァチジルイノシトール−３，４，５−三リン酸に対するモノクローナル抗体、および該抗体を利用するＰＩＰ３の免疫学的測定方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
人間を含めた多細胞生物の生存のための基本的なメカニズムとして、細胞外の情報を細胞内に伝えて、必要な細胞応答を起こす「細胞内情報伝達システム」が存在する。このシステムの異常から、細胞の癌化などの不適切な細胞応答に起因する病態が引き起こされていることが明らかとなりつつある。種々の生体膜に存在するリン脂質であるホスファチジルイノシトール（以下ＰＩと省略する）は、細胞外の刺激により活性化された酵素群の働きでイノシトール環のリン酸化状態を変化させて、細胞外の情報を細胞内に伝える。なかでも、イノシトール環の３位がリン酸化された化合物であるホスァチジルイノシトール−３，４，５−三リン酸は、種々の増殖・分化因子刺激に活性化されたホスファチジルイノシトール−３−キナーゼ  （以下ＰＩ３Ｋと省略する）によりホスファチジルイノシトール−４，５−二リン酸（以下ＰＩ−４，５−Ｐ２と省略する）から生成され、細胞核への情報伝達のほか、細胞骨格の構築、物質の小胞輸送などの多面的かつ基本的な細胞応答に関与していることが明らかとなっている（Ｆｕｋｕｉ，Ｙ．ｅｔ  ａｌ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１２４，１−７，１９９８）。なお本明細書において、ホスァチジルイノシトール−３，４，５−三リン酸は原則としてＰＩＰ３と省略し、特にリン酸化部位の区別が必要な場合にはＰＩ−３，４，５−Ｐ３と表記する。以下にＰＩＰ３の構造を模式的に示す。
【化１】
化学式１
0003620696.tif 000002
【０００３】
細胞内、生体内でのＰＩＰ３の動態を知ることは、基本的な細胞内情報伝達システムの解明に役立つばかりでなく、種々の疾病の病態解明の糸口となる可能性がある。これまで、ＰＩＰ３の細胞内での役割に関する研究は、主にＰＩ３Ｋの阻害剤またはＰＩ３Ｋの活性化型、非活性型などの変異体を用いるといった間接的手法により行われていた。またＰＩＰ３に対する直接的なアプローチとして、ＰＩＰ３の定量系が確立されている。しかし公知のＰＩＰ３定量方法は、ラジオアイソトープを用いるため特別な設備の元でなければ実施することができなかった。そのうえ定量系そのものも、複雑な抽出操作や何段階ものクロマトグラフィーを含む時間のかかるもので、より簡便な測定技術が望まれている。
【０００４】
たとえばＰＩＰ３を認識する抗体は、その研究を進める上で重要なツールとなる。抗体が提供されれば、ＰＩＰ３の精製や免疫測定、あるいはＰＩＰ３の阻害剤として有用である。ところが、一般にリン脂質抗原は免疫原性が低く、抗体を得るのは難しいとされている。更にＰＩＰ３の場合には、ＰＩＰ３を大量に得ることが難しいという問題も伴っていた。あるいは、アジュバントの工夫によって抗体産生に成功した試みが報告されてはいるものの、得られた抗体の多くはＰＩのリン酸化状態の識別能に劣っていた。つまり、ＰＩとＰＩ−４，５−Ｐ２等の間で相互の識別が難しく、交差反応してしまうケースが多く見られた。
【０００５】
たとえばＰＩ−４，５−Ｐ２については、ウサギへの免疫によってポリクローナル抗体を得た報告（Ｍｏｌｅｃ．Ｉｍｍｕｎ．１６，１９３−１９６，１９７９）がある。この抗体は、ホスファチジルイノシトール−４−一リン酸（以下ＰＩ−４−Ｐと省略する）や、カルジオリピン（以下ＣＬと省略する）等の他のリン脂質抗原との交差反応を示した。ＰＩ−４−Ｐについては、リポソーム免疫によってモノクローナル抗体が得られている（Ｍｏｌｅｃ．Ｉｍｍｕｎ．２１，８６３−８６８，１９８４）。しかし、この抗体も他のリン脂質との交差反応が確認されている。すなわち、補体依存性のリポソーム溶解検定によってＰＩ−４，５−Ｐ２との交差性が報告されている。
【０００６】
一方、ＰＩ−４，５−Ｐ２においては、ホスファチジルコリンやメチル化ＢＳＡとのサスペンジョンとしたＰＩ−４，５−Ｐ２を免疫原としてモノクローナル抗体が作成された（Ｐｒｏｃ．Ｊａｐａｎ  Ａｃａｄ．５９，２８−３２，１９８３）。このモノクローナル抗体は、ＰＩ−４−ＰやＰＩのような酸性のリン脂質と交差反応することがＥＬＩＳＡによって確かめられた。更にサルモネラ菌菌体をアジュバントに利用して、ＰＩ−４，５−Ｐ２に対して特異性を持ち、他のリン脂質抗原に対する交差性の低いモノクローナル抗体が得られている（Ｍｉｙａｚａｗａ  Ａ．，Ｍｏｌｅｃ．Ｉｍｍｕｎ．２６，１０２５−１０３１，１９８８）。しかしＰＩＰ３については、十分な特異性を備え他のリン脂質抗原に対する交差性を持たない抗体は未だに得られていない。そのため、ＰＩＰ３の免疫学的な測定方法は現在のところ実現していない。免疫学的な測定方法は、簡便な操作で高い感度と精度を達成することが可能な優れた分析手法であり、情報伝達の研究を更に進めるためにＰＩＰ３の免疫学的な測定を実現することが強く望まれている。
【０００７】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、ＰＩＰ３を特異的に認識する抗体、および該抗体を利用する免疫学的測定方法の提供を課題とする。より具体的には、ＰＩＰ３を特異的に認識する新規な抗体の提供を通じて、たとえば酵素免疫測定法のような、特殊な設備を要求せず、簡便で高感度なＰＩＰ３の定量系の実現を課題とする。
【０００８】
【課題を解決するための手段】
抗ＰＩＰ３抗体の作製は、抗原を大量に得ることが困難であること、また、リン脂質であるため抗原性が低く、抗体価の高い抗体を得ることが難しいなどの問題があった。本発明者らは、ＰＩＰ３を有機合成によって大量に合成し前者の問題を解決し、更に抗原性の低さについてはサルモネラ死菌菌体にＰＩＰ３を吸着させた免疫原を使って抗原性を上昇させることで克服し、ＰＩＰ３に対し特異的に結合するモノクローナル抗体の作製に成功した。この抗体を用いれば、生体のＰＩＰ３に特異的な免疫学的測定方法が可能となる。本発明者らはさらに、該抗体の可変領域を構成するアミノ酸配列をコードする遺伝子を単離し、その塩基配列を決定した。これにより、組み換え抗体の作製が可能となった。また、本発明による抗体を利用して、ＰＩＰ３の細胞内局在の同定や、ＰＩＰ３の機能の特異的な阻害剤の開発が可能であることを見出した。
【０００９】
すなわち本発明は、以下の抗体、あるいはその可変領域、ならびにそれを利用する免疫学的測定方法に関する。
（１）ホスファチジルイノシトール−３，４，５−三リン酸を特異的に認識する抗体。
（２）抗体がモノクローナル抗体である、（１）の抗体。
（３）ホスファチジルイノシトール−３，４，５−三リン酸のイノシトール部位とグリセロール骨格とによって構成される抗原決定基を認識する（２）の抗体。
（４）ホスファチジルイノシトール−４，５−二リン酸と交差しない（１）−（３）のいずれかの抗体。
（５）配列番号：２に示すアミノ酸配列、または１もしくは複数のアミノ酸が置換、欠失、もしくは付加したアミノ酸配列からなる、ホスファチジルイノシトール−３，４，５−三リン酸に特異的に結合するイムノグロブリン重鎖の可変領域。
（６）配列番号：４に示すアミノ酸配列、または１もしくは複数のアミノ酸が置換、欠失、もしくは付加したアミノ酸配列からなる、ホスファチジルイノシトール−３，４，５−三リン酸に特異的に結合するイムノグロブリン軽鎖の可変領域。
（７）配列番号：５に示すアミノ酸配列、または１もしくは複数のアミノ酸が置換、欠失、もしくは付加したアミノ酸配列からなる、ホスファチジルイノシトール−３，４，５−三リン酸に特異的に結合するイムノグロブリン重鎖のＣＤＲ１。
（８）配列番号：６に示すアミノ酸配列、または１もしくは複数のアミノ酸が置換、欠失、もしくは付加したアミノ酸配列からなる、ホスファチジルイノシトール−３，４，５−三リン酸に特異的に結合するイムノグロブリン重鎖のＣＤＲ２。
（９）配列番号：７に示すアミノ酸配列、または１もしくは複数のアミノ酸が置換、欠失、もしくは付加したアミノ酸配列からなる、ホスファチジルイノシトール−３，４，５−三リン酸に特異的に結合するイムノグロブリン重鎖のＣＤＲ３。
（１０）配列番号：８に示すアミノ酸配列、または１もしくは複数のアミノ酸が置換、欠失、もしくは付加したアミノ酸配列からなる、ホスファチジルイノシトール−３，４，５−三リン酸に特異的に結合するイムノグロブリン軽鎖のＣＤＲ１。
（１１）配列番号：９に示すアミノ酸配列、または１もしくは複数のアミノ酸が置換、欠失、もしくは付加したアミノ酸配列からなる、ホスファチジルイノシトール−３，４，５−三リン酸に特異的に結合するイムノグロブリン軽鎖のＣＤＲ２。
（１２）配列番号：１０に示すアミノ酸配列、または１もしくは複数のアミノ酸が置換、欠失、もしくは付加したアミノ酸配列からなる、ホスファチジルイノシトール−３，４，５−三リン酸に特異的に結合するイムノグロブリン軽鎖のＣＤＲ３。
（１３）サルモネラ死菌をアジュバントとしてホスファチジルイノシトール−３，４，５−三リン酸と混合した、（１）−（４）のいずれかに記載の抗体を得るための免疫原組成物。
（１４）（１３）の免疫原組成物を免疫し、（１）−（４）のいずれかに記載の抗体を得る方法。
（１５）（１）−（４）のいずれかの抗体、またはその可変領域と、試料中に存在するホスファチジルイノシトール−３，４，５−三リン酸と反応させ、両者の免疫学的な反応に基づく結合を検出する工程を含む免疫学的測定方法。
（１６）抗体またはその可変領域と、それが認識する抗原決定基との免疫学的な反応が、試料中に存在するホスファチジルイノシトール−３，４，５−三リン酸によって阻害される程度を観察する（１５）の免疫学的測定方法。
（１７）（１）−（４）のいずれかの抗体またはその可変領域を含む、ホスファチジルイノシトール−３，４，５−三リン酸の免疫学的測定用キット。
【００１０】
【発明の実施の形態】
本発明の抗体は、ＰＩＰ３を特異的に認識し、ＰＩ−４，５−Ｐ２とは交差しない。本発明においてＰＩＰ３に特異的とは、ＰＩＰ３のリン酸化の状態を認識し他のリン酸化化合物から免疫学的に識別しうることを意味する。このような抗体は、以下のような免疫操作によって得ることができる。すなわち、ＰＩＰ３をサルモネラ死菌菌体とのサスペンジョンとし、これを免疫原とするのである。リポ多糖を取り除いたサルモネラ死菌（Ｇａｌａｎｏｓ  Ｃ．，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．２４，１１６−１２２，１９７１）に、ＰＩＰ３をコートして免疫原用サスペンジョンとする（Ｕｍｅｄａ  Ｍ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎ．１３７．３２６４−３２６９）。ＰＩＰ３は細胞から精製したものであっても良いし、化学的に合成することもできる。ＰＩＰ３の合成方法は公知である（Ｓａｗａｄａ  Ｔ．，Ｂｉｏｏｒｇａｎｉｃ  ＆  Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  Ｌｅｔｔｅｒｓ，５，２２６３−２２６６，１９９５）。これを適当な免疫動物に免疫し、抗体価の上昇を確認したところで抗体を回収する。抗体はポリクローナル抗体としても良いが、モノクローナル抗体とすることによって特異性に優れた抗体を選択することが可能となる。また、後に述べるように望ましい結合活性を備えたモノクローナル抗体の可変領域を構成するアミノ酸配列をコードするｃＤＮＡのクローニングが、モノクローナル抗体の樹立によって可能となる。
【００１１】
モノクローナル抗体は、抗体産生細胞をクローニングすることによって得ることができる。一般的には、免疫動物から回収した抗体産生細胞を適当な融合パートナーと細胞融合させることによってハイブリドーマとし、産生される抗体の活性を指標としてスクリーニングを行う（Ｇｕｌｆｒｅ  Ｇ．，Ｎａｔｕｒｅ  ２６６．５５０−５５２，１９７７）。マウスを免疫動物とするときには、融合パートナーとしては、Ｐ３−Ｘ６３−Ａｇ．６５３等のマウス由来のミエローマ細胞が好適である。ＨＡＴセレクションによって選択されたハイブリドーマは、まずＰＩＰ３に対する結合活性を指標としてスクリーニングを行う。次いでＰＩＰ３への結合活性を持つ抗体を産生するものについては、交差性の試験を行う。すなわち、他のリン脂質抗原等への結合活性を調査して許容できるものを選択する。許容できる交差性とは、目的とする抗体の用途において、無視しうる程度の交差性を意味する。たとえば、免疫学的な測定に用いるためのモノクローナル抗体であれば、最終的な測定系において交差反応によるシグナルがバックグランドレベルに押さえられれば、事実上交差反応しないということができる。
【００１２】
ＰＩＰ３への反応性や、他のリン脂質抗原との反応性を確認するには、ＥＬＩＳＡやリポソーム溶解検定を利用すると有利である。ＥＬＩＳＡでは、反応性を観察すべき抗原を感作したマイクロプレートを用意し、これにハイブリドーマの培養上清を適当に希釈した試料を加えて反応させる。十分に反応させた後にウエルを洗浄し、イムノグロブリンに対する２次抗体を更に反応させる。最終的にウエルに結合した２次抗体を測定すれば、培養上清中に存在する抗体の抗原に対する結合活性を定量的に知ることができる。脂質抗原を使った抗体のＥＬＩＳＡは公知（Ｕｍｅｄａ  Ｍ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎ．１３６，２５６２−２５６７，１９８６）である。
【００１３】
一方、リポソーム溶解検定とは、抗原を感作したリポソームに抗体が反応すると、補体の作用によってリポソームが溶解する現象を利用している。補体の作用を利用していることから、補体依存性のリポソーム溶解検定（ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ  ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ  ｌｉｐｏｓｏｍｅ  ｌｙｓｉｓ  ａｓｓａｙ）と呼ばれている。リポソームは、たとえばジセチルホスフェート（ｄｉｃｅｔｙｌ−ｐｈｏｓｐｈａｔｅ；以下ＤＣＰと省略する）、ジミリストイルホスファチジルコリン（ｄｉｍｙｒｉｓｔｏｙｌ−ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｃｈｏｌｉｎｅ；以下ＤＭＰＣと省略する）、コレステロールに加えて試験すべきリン脂質抗原から構成される。これらの脂質成分を適当な有機溶媒で溶解後に乾燥させてリピッドフィルムとし、水系溶媒に加えて強く撹拌すると、多層ラメラ構造のリポソームを生じる。こうして調製されたリポソームでは、膜の構成成分としてリン脂質抗原が取りこまれる。そのため現実の細胞膜に存在する形に近い状態で抗原構造が提示されることが期待できるので、モノクローナル抗体のスクリーニングには好適である。リポソーム内部には、その溶解のマーカーとなる蛍光色素を封入しておくのが有利である。蛍光色素には、４−メチルウンベリフェロン（４−ｍｅｔｈｙｌ−ｕｍｂｅｌｌｉｆｅｒｙｌ  ｐｈｏｓｐｈａｔｅ）やカルセイン等が用いられる。補体の存在下でこのリポソームを構成するリン脂質抗原に抗体が結合すると、リポソームは破壊され内部の蛍光色素が流出して液相の蛍光増大として観察される。ＰＩ−４，５−Ｐ２のようなリン脂質抗原を使った補体依存性のリポソーム溶解検定は公知（Ｍｏｌｅｃ．Ｉｍｍｕｎ．２６，１０２５−１０３１，１９８８）である。交差性を確認すべきリン脂質には、構造的に類似するリン脂質抗原を挙げることができる。あるいは、部分構造が共通な類似物質についても交差性を確認しておくと良い。具体的には、次のような物質を示すことができる。これらの物質については、実施例などを通じてその構造的な特徴を図示する。
【００１４】
ＰＣ（ホスファチジルコリン）
ＰＳ（ホスファチジルセリン）
ＰＡ（ホスファチジルジン酸）
ＰＩ（ホスファチジルイノシトール）
ＣＬ（カルジオリピン）
ＰＥ（ホスファチジルエタノールアミン）
ＰＩ−４，５−Ｐ２（ホスファチジルイノシトール−４，５−二リン酸）
ＩＰ３（１，４，５−イノシトール三リン酸）
ＩＰ４（１，３，４，５−イノシトール四リン酸）
ＩＰ６（１，２，３，４，５，６−イノシトール六リン酸）
【００１５】
ＥＬＩＳＡにしろリポソーム溶解検定にしろ、ＰＩＰ３を抗原として調製した反応系を使って他の脂質抗原に対する抗体の交差性の確認が可能である。すなわち、反応特異性を試験すべき抗体とＰＩＰ３との反応の場に、交差性を確認すべき他の抗原を共存させれば、両者の競合状態を観察することによって交差性の確認を行うことができる。競合阻害の原理を利用したこのような交差性の確認方法は、すべての抗原について反応系を調製する必要がないのでスクリーニングを迅速に行うことができる。
【００１６】
以上のようにして、ＰＩＰ３に対する結合活性を持ち、かつＰＩ−４，５−Ｐ２等の構造的に類似した抗原を免疫学的に識別しうる本発明による抗体を得ることができる。そして更に本発明は、ＰＩＰ３に対する望ましい結合活性を備えた新規な抗体について、その可変領域を構成するアミノ酸配列とそれをコードする塩基配列を提供する。すなわち本発明は、配列番号：２および配列番号：４に示すアミノ酸配列を含むイムノグロブリン可変領域を提供する。あるいは本発明は、配列番号：１および配列番号：３に示す塩基配列を含むイムノグロブリン可変領域をコードするｃＤＮＡを提供する。配列番号：１および配列番号：２は、イムノグロブリン重鎖由来、配列番号：３および配列番号：４はイムノグロブリン軽鎖のものである。これらアミノ酸配列、あるいはｃＤＮＡの塩基配列は、必ずしも同一である必要は無く、ＰＩＰ３との特異的な結合活性を維持する限り変異を含むことができる。後に述べるように、特にＣＤＲに相当する部分については変異性が高く、この領域においてはアミノ酸の変異が許容されるケースもある。
【００１７】
一般にイムノグロブリンは、分子量の大きな重鎖及び分子量の小さな軽鎖から構成されている。重鎖と軽鎖は、ともにＮ末端から約１１０残基において可変領域と称される分子間でアミノ酸配列の異なる領域を有しており、重鎖の可変領域はＶＨ、軽鎖の可変領域はＶＬと表される。この重鎖の可変領域ＶＨと軽鎖の可変領域ＶＬが相対して静電的に結合して２量体を形成することにより、抗原結合部位が形成される。可変領域は、３つのＣＤＲ（ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｉｔｙ  ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ  ｒｅｇｉｏｎ：相補性決定部位）と４つのフレームワークで構成される。なお、ＣＤＲとは、抗原分子と相補的な立体構造を形成し抗体の特異性を決定する部位であり、ＣＤＲの立体構造の維持に働いている４つのＦＲ（Ｆｒａｍｅｗｏｒｋ  ｒｅｇｉｏｎ：枠組み構造領域）に挟まれて３つのＣＤＲが可変領域中にモザイク状に存在する（Ｅ．  Ａ．  Ｋａｂａｔ  ｅｔ  ａｌ．，「免疫学的観点におけるタンパク質の配列（Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ  ｏｆ  ｐｒｏｔｅｉｎｓ  ｏｆ  ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ  ｉｎｔｅｒｅｓｔ）」，ｖｏｌ  Ｉ，第５版，ＮＩＨ  ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎ  （１９９１））。ＦＲのアミノ酸配列は良く保存されているのに対して、ＣＤＲの変異性は高く、超可変領域（ｈｙｐｅｒ  ｖａｒｉａｂｌｅ  ｒｅｇｉｏｎ）とも呼ばれる。本発明においては、ＰＩＰ３を特異的に認識する抗体のアミノ酸配列のうち抗原との結合活性を決定しているＣＤＲを明らかにした。すなわち、本発明は以下に示すＣＤＲ（配列番号：１または３におけるＮ末端のアミノ酸を１とする位置で示したもの）をも提供するものである。なおカッコ内に記載した数字は配列番号に対応する。
【００１８】
0003620696.tif 000003
【００１９】
本発明によるイムノグロブリンの可変領域をコードする塩基配列を持ったｃＤＮＡは、前記ＰＩＰ３に対するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマからクローニングすることができる。具体的には、可変領域遺伝子のシグナル配列と定常領域側の塩基配列を利用してＰＣＲを行い、増幅生成物を適当なクローニングベクターに挿入して増幅し、可変領域遺伝子のライブラリーとする。上記ＣＤＲに相当する部分は本発明による可変領域に特異的な配列といえるので、これをプローブとして前記可変領域のライブラリーをもとにポジティブクローンをスクリーニングする。得られたｃＤＮＡは、軽鎖と重鎖の可変領域遺伝子を適当なリンカーで連結してファージに組み込み、１本鎖抗体（いわゆるｓｃＦＶ）として発現させることができる。あるいは、公知のイムノグロブリン発現用ベクターに組み込むことにより、イムノグロブリンの産生に利用することができる。イムノグロブリン発現ベクターとしては、例えばＳＶ４０  ｖｉｒｕｓ  ｂａｓｅｄベクター、ＥＢ  ｖｉｒｕｓ  ｂａｓｅｄベクター、ＢＰＶ（パピローマウイルス）  ｂａｓｅｄベクターなどを用いることができるが、特にこれらに限定されない。たとえばＢＰＶベクターの１種である「ＢＣＭＧＳ  Ｎｅｏベクター」（烏山一「ウシパピローマウイルスベクター」，村松正実および岡山博人編，実験医学別冊：遺伝子工学ハンドブック，羊土社，ｐｐ．２９７−２９９  （１９９１））は、ＣＯＳ７細胞などに形質転換することによって外来遺伝子を効率良く発現する望ましいベクターである。
【００２０】
あるいは、上記ＣＤＲを任意のイムノグロブリンのフレームワークに組み込むことにより、本発明による抗体の特異性を人為的に再構成することもできる。このような技術は、ＣＤＲグラフト抗体（Ｐ．Ｔ．Ｊｏｎｅｓ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｎａｔｕｒｅ  ３２１，  ５２２  （１９８６））と呼ばれ、マウスのイムノグロブリンをヒト化するための技術として既に確立されている。本発明によるＣＤＲは、完全に同一のもののみならず、ＰＩＰ３に対する特異性を維持する限り変異を含むものであることもできる。すなわち、本発明において、前記ＣＤＲ領域の配列を１個または数個改変したアミノ酸配列も、ＰＩＰ３に対する結合特異性が保持される限り、ＣＤＲ領域のアミノ酸配列として利用することができる。ＣＤＲ領域のアミノ酸配列の中で変換するアミノ酸は、好ましくは全体のＣＤＲの３０％以下であり、更に好ましくは全体の２０％以下であり、更に好ましくは全体の１０％以下である。前記ＣＤＲを組み込むべきＦＲは、任意のものとすることができる。本発明によるＣＤＲはもともとマウスのイムノグロブリンに由来するが、マウスのみならず他の種のイムノグロブリンのＦＲとすることも可能である。構築された可変領域をコードするｃＤＮＡは、前記ベクターに組み込むことにより発現可能となる。
【００２１】
ＣＤＲへの変異の導入にあたり、前記ファージベクターを利用することができる。ファージベクターは、抗体活性を速やかに発現することから、変異体のスクリーニングを迅速に行うことができる。またスクリーニングに十分な量の抗体分子を宿主細菌の表面にもたらす。ＣＤＲへの変異の導入により抗体の結合活性を著しく増大した例も知られていることから、本発明によって提供されるＣＤＲに基づいて更に結合活性に優れる１本鎖抗体を得られる可能性がある。
【００２２】
本発明によって提供される可変領域、または本発明に基づくＣＤＲを組み込んだ可変領域は、そのまま発現させても良いし、定常領域をコードする遺伝子と連結して完全なイムノグロブリン分子として発現させることもできる。
【００２３】
上記ｃＤＮＡをそのまま組み込んだベクター、あるいはＣＤＲのみを任意のＦＲに連結したインサートを含むベクターによる可変領域の発現にあたり、重鎖可変領域と軽鎖可変領域とを同じ宿主細胞中で発現させて重鎖／軽鎖からなる２量体として産生させるのが有利である。そのためには、軽鎖発現ベクター及びヒト化重鎖発現ベクターにより細胞を共形質転換し、この形質転換細胞から本発明による抗体を得ることができる。形質転換の宿主としては、ＣＨＯ細胞（チャイニーズハムスター卵巣）（Ａ．Ｗｒｉｇｈｔ  ＆  Ｓ．Ｌ．Ｍｏｒｒｉｓｏｎ，  Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１６０，  ３３９３−３４０２  （１９９８））、ＳＰ２／０細胞（マウスミエローマ）（Ｋ．Ｍｏｔｍａｎｓ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｅｕｒ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ  Ｐｒｅｖ．５，５１２−５１９  （１９９６），Ｒ．Ｐ．Ｊｕｎｇｈａｎｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．５０，１４９５−１５０２  （１９９０））などが好適に用いられる。また、形質転換には、リポフェクチン法（Ｒ．Ｗ．Ｍａｌｏｎｅ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  ８６，６０７７  （１９８９），  Ｐ．Ｌ．Ｆｅｌｇｎｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  ８４，７４１３  （１９８７）、エレクトロポレーション法、リン酸カルシウム法（Ｆ．Ｌ．Ｇｒａｈａｍ  ＆  Ａ．Ｊ．ｖａｎ  ｄｅｒ  Ｅｂ，Ｖｉｒｏｌｏｇｙ  ５２，４５６−４６７（１９７３））、ＤＥＡＥ−Ｄｅｘｔｒａｎ法等が好適に用いられる。
【００２４】
なお発現産物である可変領域が定常領域を伴っていれば、プロテインＡカラム、プロテインＧカラム、抗イムノグロブリン抗体アフィニティーカラム等を用いて精製することにより精製タンパク質として回収することができる。もしも可変領域のみを発現させた場合にはこれらの精製方法が適用できないので、適当な精製方法を応用することになる。たとえば、そのＣ末端にヒスチジンタグなどの精製に有利なタンパク質を融合させた構造として発現させれば、対応するリガンドを利用したアフィニティクロマトグラフィーによって精製することが可能である。
【００２５】
本発明は、このようして得られたモノクローナル抗体、あるいはその可変領域に基づいて、ＰＩＰ３の免疫学的な測定方法を実現するものである。従来はＰＩＰ３に特異的な抗体そのものが提供されておらず、免疫学的な測定方法は不可能であった。本発明の抗体はＰＩＰ３に対する特異性に優れ、ＰＩＰ３の理想的な免疫学的測定方法を実現する。
【００２６】
ＰＩＰ３と本発明による抗体（可変領域を含む）との結合が、測定対象試料に由来するＰＩＰ３によって阻害されることを利用し、この阻害の程度を観察すればＰＩＰ３を測定することができる。このような測定原理を実現するひとつの方法は、固相化ＰＩＰ３を利用した測定方法である。すなわち、マイクロプレートのような容器にＰＩＰ３を吸着させておき、これにまず測定試料を加える。ＰＩＰ３はホスファチジルコリンのような適当なキャリアーに溶解して容器壁に物理吸着させることができる。次いで本発明による抗体を加えると、容器側のＰＩＰ３と試料中のＰＩＰ３とが本発明の抗体に対して競合する。抗体を適当な手段で標識しておけば、固相に結合した（またはしなかった）抗体を簡単に測定することができる。予め標準試料で測定しておいた結果と照合すれば、どの程度のＰＩＰ３が試料に含まれていたのかを決定することができる。抗体の標識には、酵素、蛍光標識、あるいは発光標識等を利用すると良い。ＰＩＰ３の測定は、組織、培養細胞、あるいは血液や血清等の体液等の生体試料を対象に行われる。同様の競合的測定方法は、本発明の抗体を容器側に固定しておくことによっても達成することができる。この場合は、標識したＰＩＰ３をＰＩＰ３含有試料と共に抗体に反応させることになる。
【００２７】
免疫学的測定方法のための試料は、前記の液状のもののみならず固体試料であっても良い。たとえば、組織標本を対象として、免疫染色を行ってＰＩＰ３の有無や局在を観察することができる。望ましい態様によれば、本発明の抗体はＰＩＰ３のイノシトール部位とグリセロール骨格とによって構成されるエピトープを認識する。このエピトープは細胞膜の表面に露出しているものと推測されるので、組織標本の染色に有利な抗体ということができる。このとき、たとえばＰＩ−４，５−Ｐ２を特異的に認識する抗体と組み合わせて、複数のリン脂質の局在を同一の試料中で観察することもできる。異なる抗体を波長の異なる蛍光色素で標識しておき、同一の試料を染色する二重染色の手法（ｄｏｕｂｌｅ  ｓｔａｉｎ）は公知である。
【００２８】
本発明は、これら免疫学的な測定方法を実施するためのキットを提供する。すなわち、本発明による抗体をはじめとして、標識の検出に必要な基質、陽性対照や陰性対照、あるいは試料の希釈や洗浄に用いる緩衝液等を組み合わせてキットとすることができる。以下に本発明を実施例によりさらに詳細に説明するが、本発明はこれら実施例に制限されるものではない。
【００２９】
【実施例】
［実施例１］抗ＰＩＰ３モノクローナル抗体の作製
抗ＰＩＰ３抗体の作製にあたり、合成ＰＩＰ３をアジュバント（Ａｄｊｕｂａｎｔ）としてサルモネラ死菌体にコートし免疫原とした。Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ  ｍｉｎｅｓｏｔａを一晩培養し、菌体を回収した。菌体は蒸留水で２回遠心洗浄し、更にジエチルエーテルで１回洗浄後に真空乾燥した。洗浄後の菌体を１％酢酸水溶液に分散させ、１００℃で２時間加熱してリポ多糖類に結合したオリゴサッカライドを除去した（Ｇａｌａｎｏｓ  Ｃ．，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．２４，１１６−１２２，１９７１）。処理後の菌体を洗浄し、５０μｇの菌体に対して４μｇのＰＩＰ３を添加してコートし、懸濁させたものを免疫原（１回分）とした（Ｕｍｅｄａ  Ｍ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎ．１３７．３２６４−３２６９）。ＰＩＰ３は公知の方法（Ｓａｗａｄａ  Ｔ．，Ｂｉｏｏｒｇａｎｉｃ  ＆  Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  Ｌｅｔｔｅｒｓ，５，２２６３−２２６６，１９９５）により化学的に合成したものを用いた。この免疫原をマウス（Ｂａｌｂ／ｃ）の尾静脈に１週間おきに数回免疫し、抗体価の上昇したマウスについて、その脾臓細胞をミエローマ細胞Ｐ３−Ｘ６３−Ａｇ．６５３と融合しハイブリドーマを作製した。
【００３０】
ＨＡＴセレクションの後、生存しているハイブリドーマの培養上清中に含まれる抗体のＰＩＰ３に対する結合活性を指標にスクリーニングを行った。抗体の結合活性はリポソーム溶解検定によってスクリーニングするとともに、陽性クローンが産生する抗体については間接法ＥＬＩＳＡによって交差反応性の試験も行った。
【００３１】
リポソーム溶解検定ではまずＰＩＰ３（１％）、ホスファチジルコリン（４０％）、コレステロール（４０％）、ジセチルホスフェート（９％）をクロロホルムに溶解し、減圧乾固してリピットフィルムを作製した。これに蛍光色素であるカルセインの高濃度水溶液を加えて強く撹拌し、カルセイン封入多重膜リポソームを調製した。このリポソームに培養上清を補体とともに加え、抗体の抗原への結合により補体が活性化されて膜に穴を開ける反応を起こさせた。培養上清にＰＩＰ３に結合する抗体が存在すれば、リポソーム内の高濃度のカルセインが流出して濃度が下がり蛍光を発するようになる。この蛍光の強さを測定することによって、抗体の抗原への活性を測定した。
【００３２】
一方、間接法ＥＬＩＳＡは以下のよう行った。まず、プレートに５μｇ／ｍＬのホスファチジルコリン（キャリアー）に溶かした１００ｎｇ／ｍＬのＰＩＰ３を入れ、一晩室温で静置してコーティングを行い、その後乾燥させた。次に、ブロッキングバッファー（１％  牛血清アルブミン（ＢＳＡ）、１０  ｍＭ  Ｈｅｐｅｓ−ｂｕｆｆｅｒｅｄ  ｓａｌｉｎｅ  （ＨＢＳ，  ｐＨ  ７．６））で３０分間室温でインキュベートした。ブロッキング処理した抗原感作プレートは、洗浄後に密封して使用時まで冷蔵保存した。
【００３３】
抗原感作プレートのウエルに、ＰＩ−４，５−Ｐ２、ＩＰ３、ＩＰ４、およびＩＰ６（０．５％  ＢＳＡ／ＨＢＳで１００−１０４ｎｇ／ｍＬに段階希釈したもの）１００μＬとハイブリドーマの培養上清１００μＬを加え、室温で２時間インキュベートした。反応液を除去し、ＨＢＳで洗浄して第２抗体（アルカリホスファターゼ標識抗マウスＩｇＧ３または抗マウスＩｇＭ；０．５％  ＢＳＡ／ＨＢＳで１／２０００に希釈したもの）を加え、室温で２時間インキュベートした。第２抗体の反応後、未反応の抗体を除去して再度ＨＢＳで洗浄し、ｐ−ニトロフェニルフォスフェート（ｐ−Ｎｉｔｒｏｐｈｅｎｙｌｐｈｏｓｐｈａｔｅ；ＰＮＰＰ）を加えてウエルに残ったアルカリホスファターゼの活性を測定した。培養上清に含まれる抗体がＰＩＰ３に特異的なものであれば、共存する各種化合物の競合阻害を受けることなくＰＩＰ３との免疫反応が進み、固相には高いアルカリフォスファターゼ活性が保持される。一方、培養上清中に抗体が含まれなかったり、あるいは共存する各種の抗原に対して交差性を持った抗体では、競合阻害のために固相のＰＩＰ３と反応する抗体の数が減るので、結果として固相に保持されるアルカリフォスファターゼ活性は低いものとなる。間接法ＥＬＩＳＡによるハイブリドーマＡＰ３−１１の培養上清の測定結果を図１に示した。ＡＰ３−１１はＰＩＰ３のみと反応する抗体を産生するので、ＰＩＰ３に対してのみ濃度依存的に結合％（培養上清のみを添加したときの吸光度測定値を１００とする％）の低下が起きている。
【００３４】
このスクリーニングの結果、ＰＩＰ３のみに反応する抗体を産生する２クローンと、ＰＩＰ３およびＰＩ−４，５−Ｐ２共に反応する抗体を産生する２クローンを樹立した。各クローンの名称を以下にまとめる。ＡＰ３−１６の抗原結合活性はカルシウム依存性であった。これらクローンのうち、ＰＩＰ３に特異的でＰＩ−４，５−Ｐ２との交差反応性を示さなかったＡＰ３−１１が産生する抗体（以下、特に断りのないときにはＡＰ３−１１はモノクローナル抗体を指すものとする）について、更にその反応性を詳細に検討した。
クローン  クラス    特異性      備考
ＡＰ３−１１      ＩｇＧ３      ＰＩＰ３
ＡＰ３−１６      ＩｇＭ        ＰＩＰ３      Ｃａ２＋依存性
ＡＰ２３−４      ＩｇＧ３  ＰＩＰ３／ＰＩ−４，５−Ｐ２
ＡＰ２３−５      ＩｇＧ３  ＰＩＰ３／ＰＩ−４，５−Ｐ２
【００３５】
［実施例２］抗ＰＩＰ３モノクローナル抗体ＡＰ３−１１  （ＩｇＧ３）の特異性の検討
実施例１で得られた抗体の中で、ＰＩＰ３のみに反応し最も特異性の高かったＡＰ３−１１についてリポソーム溶解検定により、更に検討を行った。検討に先だって、ハイブリドーマＡＰ３−１１をプリスタン処理したマウスの腹腔に接種し、その腹水から硫安分画によりイムノグロブリンを精製しモノクローナル抗体ＡＰ３−１１とした。リポソーム溶解検定に用いた脂質抗原は以下のとおりである。
ホスファチジルコリン（ＰＣ）
ホスファチジルセリン（ＰＳ）
ホスファチジン酸（ＰＡ）
ホスファチジルイノシトール（ＰＩ）
カルジオリピン（ＣＬ）
ホスファチジルエタノールアミン（ＰＥ）
【００３６】
リポソームは５０％コレステロール、４０％ホスファチジルコリンを主成分とし残りの１０％をそれぞれ違った脂質に変えたものを用意した。脂質の組成が異なる他は、同様の操作でリポソームを調製した。このリポソームに対して抗体濃度を１００−１０６ｐｇ／ｍＬに変えてＡＰ３−１１の結合活性を検定したところ、ＰＩＰ３（ＰＩ−３，４，５−Ｐ３）を含むリポソームでのみ濃度依存的にリポソームの溶解が起こった。一方、ＰＣ、ＰＳ、ＰＡ、ＰＩ、ＣＬ、あるいはＰＥといった、細胞膜を構成する他のリン脂質を含むリポソームでは用意した最高の抗体濃度の溶液（１０６ｐｇ／ｍＬ）を用いても溶解は観察されなかった（図２）。なお図中、リポソーム溶解（％）とは、反応させたすべてのリポソームが溶解したときの蛍光強度を１００とする％を意味する。これらのことから、ＡＰ３−１１がリン脂質の中からＰＩＰ３のみに反応することが確認された。ＡＰ３−１１が認識するエピトープについて更に詳細な情報を得ることを目的として、ホスファチジルイノシトールの各種リン酸化誘導体抗原との交差反応性を検討した。
【００３７】
５０％コレステロール、４０％ホスファチジルコリン、９％ジセチルホスフェートを主成分とし、残りの１％を以下のホスファチジルイノシトールのリン酸化誘導体としたリポソームを用意した。加えて、これらの化合物をＰＩＰ３に代えて固相化したマイクロプレートによる直説法ＥＬＩＳＡも行った。
ＰＩ−３，４，５−Ｐ３
ＰＩ−３，４−Ｐ２
ＰＩ−４，５−Ｐ２
ＰＩ
【００３８】
抗体濃度を１００−１０６ｐｇ／ｍＬに変えてアッセイしたところ、ＰＩＰ３（ＰＩ−３，４，５−Ｐ３）に対しては先の実験と同様濃度依存的に溶解が起こったが、ＰＩ、ＰＩ−４，５−Ｐ２に対しては、用意した最高の抗体濃度の溶液を用いても反応しなかった。またＰＩ−３，４−Ｐ２に対してはＰＩＰ３の１／１００分程度の交差反応性を示した（図３）。同様の結果は、直接法ＥＬＩＳＡでも確認された（図４）。すなわち、ＰＩ−３，４−Ｐ２に対してＰＩＰ３の１／１００分程度の交差反応性が観察された。以上のことから、ＡＰ３−１１の抗原の認識にはイノシトール部の３位のリン酸基が最も重要であり５位のリン酸基もエピトープ構造に関与していると考えられた。
【００３９】
［実施例３］抗ＰＩＰ３モノクローナル抗体  ＡＰ３−１１  （ＩｇＧ３）  のエピトープの検討
ＡＰ３−１１の抗体の認識部位を探るためＰＩＰ３のイノシトール部分と構造の似たイノシトールポリリン酸１００−１０４ｎＭを競合剤として先に述べた間接法ＥＬＩＳＡを行った。イノシトールポリリン酸としては、次の化合物を用意した。
イノシトール−１，４，５−三リン酸（ＩＰ３）
イノシトール−１，３，４，５−四リン酸（ＩＰ４）
イノシトール−１，２，３，４，５，６−六リン酸（ＩＰ６）
【００４０】
その結果、競合剤としてフリーのＰＩＰ３を加えた時は固相化されたＰＩＰ３との競合により吸光度が濃度依存的に減少したが、他のイノシトール−１，４，５−三リン酸（ＩＰ３）、イノシトール−１，３，４，５−四リン酸（ＩＰ４）、イノシトール−１，２，３，４，５，６−六リン酸（ＩＰ６）では影響は見られなかった（図５）。
【００４１】
これらの結果から、抗体の認識部位にはグリセロール骨格も含まれていることが示唆された。次に、ＰＩＰ３のグリセロール骨格が抗体の認識部位を構成しているのかどうかを調べるために、ビーズに固定したＰＩＰ３のアナログを用いた実験を行った。ＰＩＰ３のアナログとして、次の化合物を用いた。構造式からわかるように、用いたアナログのうちＩＰ３−ＡＰＢはＰＩＰ３のイノシトール環の構造のみを持ち、ＰＩＰ３−ＡＰＢはＰＩＰ３のイノシトール環とともにグリセロール骨格の一部を保持した構造となっている。
【化２】
ＩＰ３−ＡＰＢ
0003620696.tif 000004
【化３】
ＰＩＰ３−ＡＰＢ
0003620696.tif 000005
【００４２】
これらのＰＩＩＰ３アナログをそれぞれビーズに固定し、ＡＰ３−１１と反応させた。次いでビーズごとＳＤＳ−ＰＡＧＥで泳動し、ＣＢＢ染色により抗体の重鎖を検出した。その結果、ＡＰ３−１１はビーズ自身やＩＰ３−ＡＰＢビーズには結合せず、ＰＩＰ３−ＡＰＢビーズには結合することが判明した。またＰＩＰ３−ＡＰＢビーズと抗体の混合時に競合剤として合成ＰＩＰ３を加えたものは、ビーズヘの結合の阻害が起こることが確認された（図６）。以上の結果から、ＡＰ３−１１はＰＩＰ３のグリセロール骨格を含む図７に示した部分をエピトープとし、特にイノシトール部の３位のリン酸基が重要と考えられた。
【００４３】
なお、ＰＩＰ３、ＰＩ−４，５−Ｐ２共に反応するモノクローナル抗体ＡＰ２３−４の実験結果も図６に合わせて示した。ＡＰ２３−４の場合にはＩＰ３−ＡＰＢビーズヘの結合も見られることから、イノシトール環部分のみで抗原を認識していると考えられた。
【００４４】
更にＰＩＰ３の添加濃度に依存して吸光度が減少していることから明らかなように、本発明の抗体はＰＩＰ３の競合的原理に基づく免疫測定を可能とする。しかも他の類似の構造を持った種々の化合物の影響をほとんど受けないことから、ＰＩＰ３に対する特異性に優れた測定系を容易に実現するものである。
【００４５】
［実施例４］抗ＰＩＰ３モノクローナル抗体の超可変領域（ＣＤＲ）の特定
本発明によるＰＩＰ３を特異的に認識するモノクローナル抗体ＡＰ２３−１１について、その可変領域をコードするｃＤＮＡのクローニングを試みた。ハイブリドーマから抽出したＲＮＡにシグナルペプチド、コンスタントリージョン（定常領域）の配列をプライマーとしてＲＴ−ＰＣＲを行い、可変領域をコードするｃＤＮＡを増幅した。まず、ハイブリドーマＡＰ２３−１１を、ＤＭＥＭ／１０％ＦＣＳで培養し、ポリＡ＋ＲＮＡを調製した。そのポリＡ＋ＲＮＡ  ５μｇより、一本鎖ｃＤＮＡを合成した。続いて９４℃１分、５５℃２分、７２℃２分を１サイクルとし、ＰＣＲを３０サイクル行った。用いたプライマーの５’側には、クローニングベクターであるｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔのクローニングサイトに合わせた制限酵素の認識配列がそれぞれ付加されている。
【００４６】
得られた増幅生成物から、アガロースゲル電気泳動によって約４００ｂｐの長さを持つバンドを分離し、クローニングベクターｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔに組み込んだ。クローニングの後にベクターを回収した。インサートの塩基配列は、ベクタープライマーと［α−３２Ｐ］ｄＡＴＰを用いたジデオキシ法（Ｆ．Ｓａｎｇｅｒ，  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２１４，  １２０５−１２１０  （１９８１））により確認した。
こうして得た遺伝子がコードするアミノ酸配列を導出し、構造予測法（コーティアのナンバーリングスキーム）により超可変領域ＣＤＲを特定した（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｂｉｏｃｈｅｍ．ｕｃｌ．ａｃ．ｕｋ／￣ｍａｒｔｉｎ／ａｂｓ／ＧｅｎｅｒａｌＩｎｆｏ．ｈｔｍｌ＃ｋａｂａｔｎｕｍ，  Ａｌ−Ｌａｚｉｋａｎｉ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｍｏｌｅｃ．Ｂｉｏｌ．，２７３，９２７−９４８，１９９７）。特定された重鎖ならびに軽鎖の可変領域を構成するアミノ酸配列、そしてＣＤＲを図８に示した。図中に矢印で示した部分のアミノ酸は、抗体のデータベースによると、通常の抗体ではこの場所にほとんどあらわれないアミノ酸であり、特にＣＤＲ内のこれらのアミノ酸が特異性に関与しているものと考えられる。したがって、このアミノ酸配列に基づいて変異体を得るには、このアミノ酸を含むような配列を選択するのが望ましい。
【００４７】
【発明の効果】
本発明によって、ＰＩＰ３に対し特異的に結合するモノクローナル抗体が提供された。また本発明によって、この抗体を用いた免疫学的測定方法が提供された。この抗体はＰＩＰ３のイノシトール部位のみならずグリセロール骨格もエピトープとして認識していると考えられ、他のイノシトール化合物とＰＩＰ３を識別することが可能である。
また本発明は、この抗体の可変領域をコードする遺伝子も取得し、組み換え抗体の作成が可能となった。この抗体を用いることでそのＰＩＰ３への特異的な結合を利用して、例えば細胞内でのＰＩＰ３の存在場所を特定や、ＰＩＰ３の下流への情報伝達を阻害して影響を調べるといった、従来の解析法ではできなかった研究を行うことが可能となる。
【００４８】
【配列表】
0003620696.tif 000006
0003620696.tif 000007
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【図面の簡単な説明】
【図１】ＡＰ３−１１の各種イノシトールポリリン酸に対する交差反応性を確認するための間接法ＥＬＩＳＡの結果を示すグラフである。図中、縦軸はＡＰ３−１１の結合（％）を、横軸は競合化合物の濃度（Ｌｏｇ  ｎｇ／ｍＬ）を示す。
【図２】ＡＰ３−１１の各種リン脂質に対する結合活性を確認するためのリポソーム溶解検定の結果を示すグラフである。図中、縦軸はリポソームの溶解（％）を、横軸は抗体濃度（ｐｇ／ｍＬ）を示す。
【図３】ＡＰ３−１１の各種ホスファチジルイノシトールポリリン酸に対する結合活性を確認するためのリポソーム溶解検定の結果を示すグラフである。図中、縦軸はリポソームの溶解（％）を、横軸は抗体濃度（ｐｇ／ｍＬ）を示す。
【図４】ＡＰ３−１１のＰＩＰ３およびＰＩ−３，４−Ｐ２に対する結合活性を確認するためのＥＬＩＳＡの結果を示すグラフである。図中、縦軸は吸光度を、横軸は抗体濃度（ｐｇ／ｍＬ）を示す。
【図５】ＡＰ３−１１の各種イノシトールポリリン酸に対する交差反応性を確認するための間接法ＥＬＩＳＡの結果を示すグラフである。図中、縦軸は吸光度を、横軸は競合化合物であるポリリン酸化合物の濃度（ｎＭ）を示す。
【図６】ＡＰ３−１１の各種ＰＩＰ３アナログに対する結合活性を表すＳＤＳ−ＰＡＧＥのＣＢＢ染色による結果を示す写真である。書き入れた数字は、抗体の吸収のためのＰＩＰ３添加量（μＭ）である。
【図７】モノクローナル抗体ＡＰ３−１１のエピトープを構成する部分を示す模式図。
【図８】モノクローナル抗体ＡＰ３−１１の軽鎖および重鎖の可変領域中の、予測される超可変（ＣＤＲ）領域を示す図である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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