(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
真核細胞内において機能しうるプロモーター領域を有し、かつそのプロモーターによって支配される異種蛋白質構造遺伝子を導入するためのマルチクローニングサイトをそのプロモーター領域の下流に有するベクターであり、そのベクターのマルチクローニングサイト先端部分における異種蛋白質構造遺伝子を導入するための制限酵素認識部位が、５’側から−ＡＣＡＴＧＴ−なる配列を有する制限酵素認識部位であることを特徴とするマルチクローニングベクター。
【請求項２】
真核細胞内において機能しうるプロモーター領域、およびそのプロモーター領域下流にそのプロモーターによって支配された異種蛋白質構造遺伝子を有し、異種蛋白質構造遺伝子先端部分が５’側から−ＡＣＡＴＧＮ−（Ｎは任意の塩基）なる配列を有し、この配列におけるＡＴＧが異種蛋白質構造遺伝子の翻訳開始部位であり、しかもこの配列がベクターに異種蛋白質構造遺伝子が導入された際の制限酵素認識部位に由来する配列であることを特徴とする発現ベクター。
【請求項３】
−ＡＣＡＴＧＮ−なる配列が、−Ａなるベクター側末端とＣＡＴＧＮ−なる異種蛋白質構造遺伝子側先端との連結によって、または、−ＡＣＡＴＧなるベクター側末端とＮ−なる異種蛋白質構造遺伝子側先端との連結によって、形成された配列である、請求項２に記載の発現ベクター。
【請求項４】
プロモーター末端と異種蛋白質構造遺伝子の翻訳開始部位との間に非翻訳領域を有し、その非翻訳領域の長さが２０〜２００ｂｐである、請求項２または３に記載の発現ベクター。
【請求項５】
真核細胞内において機能しうるプロモーター領域を有するベクターのプロモーター領域下流にそのプロモーターによって支配される異種蛋白質構造遺伝子を導入する方法において、５’側から−ＡＣＡＴＧＴ−なる配列を有する制限酵素認識部位で切断したベクター末端に５’側から−Ｎ’ＣＡＴＧＮ−（Ｎは任意の塩基、Ｎ’はＮに相補的な塩基）なる配列を有する制限酵素認識部位で切断した異種蛋白質構造遺伝子の先端を連結して−ＡＣＡＴＧＮ−なる配列の連結部分を形成し、その連結部分のＡＴＧを異種蛋白質構造遺伝子の翻訳開始部位とし、しかもベクター側の制限酵素認識切断部末端と異種蛋白質構造遺伝子側の制限酵素認識切断部先端の組合せによりＡＴＧの次の塩基をＡ、Ｔ、Ｇ、およびＣから選ばれる任意の塩基とすることを特徴とする真核細胞内で発現しうる発現ベクターの構築方法。
【請求項６】
ベクター側制限酵素認識部位を切断する制限酵素がＡｆｌ  ＩＩＩまたはＮｓｐ  Ｉであり、異種蛋白質構造遺伝子側制限酵素認識部位を切断する制限酵素がＮｃｏ  Ｉ、Ｂｓｐ  ＨＩ、Ａｆｌ  ＩＩＩ、Ｎｓｐ  Ｉ、またはＳｐｈ  Ｉである、請求項５に記載の発現ベクターの構築方法。
【請求項７】
複製開始点を有しない請求項２、３または４に記載の発現ベクターを複製開始点を有する酵母ベクターと人為的にあるいは酵母内で自動的に組換えて複製開始点を有する発現ベクターを構築する、発現ベクターの構築方法。
【請求項８】
請求項２、３または４に記載の発現ベクターまたはその発現ベクターと複製開始点を有する酵母ベクターとの組換え体を保持するシゾサッカロミセス・ポンベからなる形質転換体。
【請求項９】
請求項８に記載の形質転換体を培養し、培養物中に異種蛋白質を生成蓄積させ、これを採取することを特徴とする異種蛋白質の製造法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【産業上の利用分野】
本発明は、分裂酵母シゾサッカロミセス・ポンベ（Schizosaccharomyces pombe 、以下Ｓ．ｐｏｍｂｅという）による異種蛋白質の生産を可能とするマルチクローニングベクター、それに異種蛋白質遺伝子を導入した発現ベクター、その発現ベクターの構築方法、その発現ベクターを保持したＳ．ｐｏｍｂｅ形質転換体、およびその形質転換体を用いた異種蛋白質の製造法に関する。本発明により種々の異種蛋白質の遺伝子の発現を効率化し、産生するペプチドまたは蛋白質の製造コストを低下させることができる。
【０００２】
【従来の技術】
遺伝子組換え技術を用いた異種蛋白質の生産は、エシェリキア・コリ（Escherichia coli、以下Ｅ．ｃｏｌｉという）、サッカロミセス・セレビシエ（Saccharomyces cerevisiae）、あるいはバチルス（Bacillus）属等の微生物、動物細胞（昆虫細胞を含む）、植物細胞を用いて盛んに行われてきた。様々な生物由来のポリペプチドが対象と考えられ、既に多くのものが工業的に生産され、医薬品等に用いられている。
【０００３】
しかし、原核生物を用いる方法では必ずしも全てのポリペプチドに対して有効ではなく、真核生物由来の蛋白質の複雑な翻訳後修飾あるいは天然体と同じ立体構造を再現することは必ずしも容易ではない。実際、原核細胞にて生産された生産物の構造および活性が不均一であるために医薬品等への利用が拒まれているものも知られている(Proc.Natl.Acad.Sci.USA,86,3428-3432(1989)) 。またＥ．ｃｏｌｉには特有のエンドトキシンが存在し、最終製品の夾雑物になる可能性がある。
【０００４】
動物細胞や植物細胞を用いる方法は扱いが微生物より難しく、培養にコストがかかり、得られる細胞濃度が低いために、生産効率が悪い。このため異種蛋白質、特に真核生物由来のポリペプチドを生産するために最も理想的な生物は、微生物でありかつ真核生物である酵母が最もよいとされている。酵母は、培養方法も確立しており、真核生物の遺伝情報を発現させるという点でも都合がよい。さらに、従来より醗酵並びに食品工業で用いられており、人体に関する安全性も確立され、またエンドトキシンも含まないという特徴も有する。
【０００５】
【発明が解決しようとする課題】
酵母類のなかでもＳ．ｐｏｍｂｅはサッカロミセス・セレビシエよりも動物細胞に近い性質を持つと考えられている。このため、異種蛋白質を発現させる宿主としてＳ．ｐｏｍｂｅを用いることによって、動物細胞の場合と同様の、より天然体に近い遺伝子産物が得られることが期待される。培養方法も酵母類で共通の点が多く、他の酵母で知られている知見を容易に応用しうる。したがって、微生物学の方法と組換えＤＮＡ技術を用いて、Ｓ．ｐｏｍｂｅを用いた異種蛋白質生産法を用いることが有利であるのは明白である。
【０００６】
ところが、Ｓ．ｐｏｍｂｅを用いた遺伝子組換えに関する研究はＥ．ｃｏｌｉやサッカロミセス・セレビシエに比べてかなり遅れており、特に遺伝子発現に関する研究は少ない。たとえば、特開昭６１−１８１３９７号公報、特開平２−２８３２８８号公報、および特開平４−６３５９６号公報等があるにすぎない。この原因は強力なプロモータを持ち、菌体内に安定に存在し、かつ遺伝子を導入するのに最適かつ簡便な発現ベクターが存在しないためである。
【０００７】
本発明者らは、上記問題を解決しうる発現ベクターを提案した（特開平５−１５３８０号公報参照）。しかし、この発現ベクターを用いて異種蛋白質遺伝子を過不足なく発現するにはいまだ必ずしも充分といえるものではなく、発現ベクターのさらなる改良が求められている。
【０００８】
【課題を解決するための手段】
本発明者は以上の点に鑑み検討を行った結果、異種蛋白質遺伝子の翻訳開始部位を制限酵素認識部位に改変することによって、目的とする異種蛋白質遺伝子を過不足なく発現することが可能な発現ベクターを構築するに至った。本発明は、Ｓ．ｐｏｍｂｅによる異種蛋白質の生産を可能とするマルチクローニングベクター、それに異種蛋白質遺伝子を導入した発現ベクター、その発現ベクターの構築方法、その発現ベクターを保持したＳ．ｐｏｍｂｅ形質転換体、およびその形質転換体を用いた異種蛋白質の製造法に関する、下記の発明である。
【０００９】
（１）真核細胞内において機能しうるプロモーター領域を有し、かつそのプロモーターによって支配される異種蛋白質構造遺伝子を導入するためのマルチクローニングサイトをそのプロモーター領域の下流に有するベクターであり、そのベクターのマルチクローニングサイト先端部分における異種蛋白質構造遺伝子を導入するための制限酵素認識部位が、５’側から−ＡＣＡＴＧＴ−なる配列を有する制限酵素認識部位であることを特徴とするマルチクローニングベクター。
【００１０】
（２）真核細胞内において機能しうるプロモーター領域、およびそのプロモーター領域下流にそのプロモーターによって支配された異種蛋白質構造遺伝子を有し、異種蛋白質構造遺伝子先端部分が５’側から−ＡＣＡＴＧＮ−（Ｎは任意の塩基）なる配列を有し、この配列におけるＡＴＧが異種蛋白質構造遺伝子の翻訳開始部位であり、しかもこの配列がベクターに異種蛋白質構造遺伝子が導入された際の制限酵素認識部位に由来する配列であることを特徴とする発現ベクター。
【００１１】
（３）真核細胞内において機能しうるプロモーター領域を有するベクターのプロモーター領域下流にそのプロモーターによって支配される異種蛋白質構造遺伝子を導入する方法において、５’側から−ＡＣＡＴＧＴ−なる配列を有する制限酵素認識部位で切断したベクター末端に５’側から−Ｎ’ＣＡＴＧＮ−（Ｎは任意の塩基、Ｎ’はＮに相補的な塩基）なる配列を有する制限酵素認識部位で切断した異種蛋白質構造遺伝子の先端を連結して−ＡＣＡＴＧＮ−なる配列の連結部分を形成し、その連結部分のＡＴＧを異種蛋白質構造遺伝子の翻訳開始部位とし、しかもベクター側の制限酵素認識切断部末端と異種蛋白質構造遺伝子側の制限酵素認識切断部先端の組合せによりＡＴＧの次の塩基をＡ、Ｔ、Ｇ、およびＣから選ばれる任意の塩基とすることを特徴とする真核細胞内で発現しうる発現ベクターの構築方法。
【００１２】
（４）上記の発現ベクターまたはその発現ベクターと複製開始点を有する酵母ベクターとの組換え体を保持するシゾサッカロミセス・ポンベからなる形質転換体。
【００１３】
（５）上記の形質転換体を培養し、培養物中に異種蛋白質を生成蓄積させ、これを採取することを特徴とする異種蛋白質の製造法。
【００１４】
Ｓ．ｐｏｍｂｅにおいて機能しうるマルチクローニングベクターに異種蛋白質構造遺伝子を導入するにあたり、異種蛋白質構造遺伝子を含む遺伝子とマルチクローニングベクターをそれぞれ制限酵素で処理して切断し、両者を連結（ライゲーション）して発現ベクターを構築する。本発明では、このとき、異種蛋白質構造遺伝子を含む遺伝子とマルチクローニングベクターの制限酵素認識部位はそれぞれＡＴＧを含み、切断後異種蛋白質構造遺伝子を含む遺伝子の先端（５’末端）とマルチクローニングベクターの末端（３’末端）を連結し、いずれかの末端部分に存在するＡＴＧを異種蛋白質構造遺伝子の翻訳開始部位とする。たとえば、異種蛋白質構造遺伝子を含む遺伝子の先端がＡＴＧを含む場合、それに対応するマルチクローニングベクターの末端のアンチコード鎖部分にはＴＡＣを含む。逆に、マルチクローニングベクターの末端がＡＴＧを含む場合、それに対応する異種蛋白質構造遺伝子を含む遺伝子の先端のアンチコード鎖部分にはＴＡＣを含む。
【００１５】
種々の異種蛋白質構造遺伝子の導入を可能とするためには、上記ＡＴＧの次の塩基がＡ、Ｔ、Ｇ、Ｃのいずれであっても上記構築手段が適用できることが好ましい。このため、マルチクローニングベクター側の制限酵素認識切断部と異種蛋白質構造遺伝子側の制限酵素認識切断部との組合せを選択して、ＡＴＧの次の塩基をＡ、Ｔ、Ｇ、Ｃの任意のものとする手段の採用が好ましい。このような手段が適用できる、種々の異種蛋白質構造遺伝子の導入が可能なマルチクローニングベクターは、異種蛋白質構造遺伝子導入部位であるマルチクローニングサイトを有する。
【００１６】
本発明におけるマルチクローニングベクターの異種蛋白質構造遺伝子導入部位となる制限酵素認識部位は、５’側から−ＡＣＡＴＧＴ−なる制限酵素認識部位である。この制限酵素認識部位を５’側から−Ａあるいは−ＡＣＡＴＧなる末端を形成する制限酵素で切断し、その末端に対応する先端を有する異種蛋白質構造遺伝子を連結する。このための制限酵素としては、Ａｆｌ  ＩＩＩまたはＮｓｐＩが用いられる。また、ベクター側の連結部位に−ＡＣＡＴＧＴ−なる配列を形成するには、これ以外の種々の連結部位を有するベクターの改変により（たとえばＰＣＲ法を用いて）行うことができる。
【００１７】
ベクター側末端に対応する先端を有する異種蛋白質構造遺伝子は、異種蛋白質構造遺伝子を含む遺伝子より制限酵素で切り出されたもので、その制限酵素は−Ａあるいは−ＡＣＡＴＧなるベクター側末端に対応する先端を形成しうる制限酵素である。異種蛋白質構造遺伝子を切断する制限酵素は、−Ｎ’ＣＡＴＧＮ−（Ｎは任意の塩基、Ｎ’はＮに相補的な塩基）なる制限酵素認識部位を認識し、ＣＡＴＧＮ−あるいはＮ−なる先端を形成する制限酵素である。このための制限酵素としては、Ｎｃｏ  Ｉ、Ｂｓｐ  ＨＩ、Ａｆｌ  ＩＩＩ、Ｎｓｐ  Ｉ、またはＳｐｈ  Ｉが用いられる。この制限酵素認識部位が異種蛋白質構造遺伝子の先端部分に存在しない場合は、たとえば部位特異的変異導入法やＰＣＲ法を用いて異種蛋白質構造遺伝子の先端部分にこの制限酵素認識部位を配置することができる。
【００１８】
上記ベクター側末端−Ａと異種蛋白質構造遺伝子側先端ＣＡＴＧＮ−の組合せ、または、上記ベクター側末端−ＡＣＡＴＧと異種蛋白質構造遺伝子側先端Ｎ−の組合せ、を連結することにより、−ＡＣＡＴＧＮ−なる連結部が形成される。その配列の内のＡＴＧが異種蛋白質構造遺伝子の翻訳開始部位となる。しかもＡＴＧの次のＮは、上記したような制限酵素の組合せにより任意のものとすることができ、これにより使用し得る異種蛋白質構造遺伝子の制約が全くなくなる。このための制限酵素の組合せとしては特に下記の組合せが好ましい。
【００１９】
ベクターを切断する制限酵素としてＡｆｌ  ＩＩＩまたはＮｓｐ  Ｉを用い、異種蛋白質構造遺伝子を含む遺伝子を切断する制限酵素としてＮｃｏ  Ｉ、Ｂｓｐ  ＨＩ、Ａｆｌ  ＩＩＩ、Ｎｓｐ  Ｉ、またはＳｐｈ  Ｉを用い、これらを組合せてＡＴＧの次の塩基をＡ、Ｔ、Ｇ、Ｃの任意のものとする手段の例を表１に示す。これらの制限酵素はいずれも６塩基パリンドローム配列を認識し、この認識部位のセンス鎖の５’端から１番目と２番目の塩基の間または５番目と６番目の塩基の間、および、アンチコード鎖の３’端から１番目と２番目の塩基の間または５番目と６番目の塩基の間で切断する制限酵素の１種である。この場合、表１の連結後の構造に示すように、連結部６塩基の配列は５’−ＡＣＡＴＧＮ−３’からなり、組合せを選択することによりその翻訳開始コドンＡＴＧの次のＮをＡ、Ｔ、Ｇ、Ｃの任意の塩基とすることができる。なお、表１中においてもＮはＡ、Ｔ、Ｇ、Ｃのいずれかを表す（ただし、表中のアンチコード鎖のＮはコード鎖のＮに対応するものを表すものとする）。
【００２０】
【表１】
0003689920.tif 000002
【００２１】
本発明のマルチクローニングベクターおよび発現ベクターは、導入される（あるいは導入された）異種蛋白質構造遺伝子の発現を制御するプロモーター領域を含む。このプロモーターはその下流に導入された前記異種蛋白質構造遺伝子の発現を支配する。このプロモーターは真核細胞内において機能しうるものであり、具体的にはＳ．ｐｏｍｂｅ細胞内において機能しうる必要がある。
【００２２】
上記プロモーターはＳ．ｐｏｍｂｅ内で機能できるものであり、かつ導入された異種蛋白質構造遺伝子の転写を促進するものである。このプロモーターとしては、たとえば、アルコールデヒドロゲナーゼ遺伝子プロモーター、ヒトサイトメガロウィルス遺伝子プロモーター、ヒトコリオニックゴナドロピンα遺伝子プロモーター等がある。特に動物細胞ウィルス由来のプロモーターなどの転写を強力に促進するもの（R.Toyama et al.,FEBS Lett,268,217-221(1990) ）であることが好ましい。このような好ましいプロモーターとしては、動物細胞ウィルス由来のプロモーター、特にヒトサイトメガロウィルス遺伝子のプロモーターがある。
【００２３】
本発明のベクターは、さらに必要により、抗生物質耐性遺伝子などの薬剤耐性遺伝子、異種蛋白質を細胞外に分泌させるためのシグナルペプチドコード遺伝子、その他の種々の遺伝子を有していてもよい。また、Ｅ．ｃｏｌｉなどの原核細胞内で機能しうるプロモーターや薬剤耐性遺伝子等を組み込んでシャトルベクターとすることもできる。
【００２４】
発現ベクターが細胞内で発現するためには複製開始点を有することが必要である。しかし、上記本発明のマルチクローニングベクターや発現ベクターは必ずしも複製開始点を有している必要はない。複製開始点は発現ベクター構築後に導入することができる。また、複製開始点を有しない発現ベクターを細胞内に入れ込んだ後細胞内でその発現ベクターに自動的に複製開始点を導入できる。これらの複製開始点導入手段は公知である。たとえば酵母内で機能し得る複製開始点を有するベクター（以下酵母ベクターという）を本発明の発現ベクターに組み込むことができる（特開平５−１５３８０号公報参照）。また、本発明の発現ベクターと酵母ベクターを１つの細胞内に入れ込み、細胞内で自動的に両者を融合させることができる。このような複製開始点導入手段を採用できることより、本発明の発現ベクターは複製開始点を有していてもよく、有していなくてもよい。同様に本発明のマルチクローニングベクターも複製開始点を有していてもよく、有していなくてもよい。ただし、いかなる場合でも細胞内で発現ベクターの発現が起こるためには、最終的にはベクターに複製開始点が必要である。
【００２５】
ベクターに抗生物質耐性遺伝子などの薬剤耐性遺伝子を組み込むことはクローニングのためやマーカーとして用いるために通常必須である。本発明のベクターにおいても抗生物質耐性遺伝子とその転写を促進するプロモーター（以下第２のプロモーターという）を有していることが好ましい。この第２のプロモーターは、前記異種蛋白質構造遺伝子の転写を促進するプロモーターに比較してそれよりも転写促進活性の低いものであることが好ましい。しかもこの第２のプロモーターとしては、動物細胞ウィルス由来のプロモーター、特にＳＶ４０初期プロモーターが好ましい。この第２のプロモーターに支配される抗生物質耐性遺伝子としては、通常のものであってよいが、特に本発明においてはネオマイシン耐性遺伝子が好ましい。
【００２６】
本発明においては、抗生物質耐性遺伝子を有する発現ベクターを使用することによって異種蛋白質発現量を増大させることが可能となる。このためには第２のプロモーターは前記異種蛋白質構造遺伝子を支配するプロモーターよりも転写促進活性が低い必要がある。たとえば上記のようなＳＶ４０初期プロモーターとそれによって支配されるネオマイシン耐性遺伝子とを有する発現ベクターを保持するＳ．ｐｏｍｂｅを培養する場合を例にとって説明する。このＳ．ｐｏｍｂｅ形質転換体をＧ４１８（ネオマイシン）含有培地で培養すると、培地中のＧ４１８濃度に依存して菌体内で発現ベクターのコピー数が増す。したがって、Ｇ４１８濃度を高くすることにより菌体内で発現ベクターのコピー数を多くすることができ、その結果異種蛋白質発現量を増大させることができる。この際、第２のプロモーターの活性が異種蛋白質構造遺伝子を支配するプロモーターよりも高活性であると、発現ベクターのコピー数が少なくても充分なネオマイシン耐性蛋白質（酵素）が生産されるために発現ベクターのコピー数を増やす必要がなくなり、目的とする異種蛋白質発現量を増大させることができない。
【００２７】
図４に本発明のマルチクローニングベクターの例として実施例で作成したｐＴＬ２Ｍの制限酵素切断地図を示す。このｐＴＬ２Ｍは大略５，０００ｂｐ（より正確には約５，０００±２００ｂｐ）の大きさで、ヒトサイトメガロウィルス遺伝子（ｈＣＭＶ）のプロモーター領域、プロモーター領域とマルチクローニングサイト（ＭＣＳ）を連結する非翻訳領域（５’−ＵＴＲ）、および異種蛋白質構造遺伝子を導入するためのＭＣＳを時計回り方向にこの順に有する。ＭＣＳ先端に前記した特定の制限酵素認識部位が存在する。一方さらに、上記ｈＣＭＶプロモーター領域先端付近から反時計方向回りに、ＳＶ４０プロモーター領域、およびネオマイシン耐性遺伝子（ＮｍR ）をこの順に有する。また、さらにＮｍR の下流域に前記したように、Ｅ．ｃｏｌｉなどの原核細胞内で機能しうる薬剤耐性遺伝子であるアンピシリン耐性遺伝子（ＡｐR ）を有し、また図示されているようにＳＶ４０ターミネーター（２か所）、原核細胞内で機能する複製開始点（Ｏｒｉ）、および下流側非翻訳領域（３’−ＵＴＲ）を有する。
【００２８】
上記非翻訳領域（５’−ＵＴＲ）は、プロモーター領域の末端（通常ＴＡＴＡなる配列）と翻訳開始コドンＡＴＧの間に存在する配列である。この非翻訳領域の長さが翻訳活性に影響することが少なくない。本発明におけるベクターのこの部分の長さは２０〜２００ｂｐであることが好ましい。より好ましくは３０〜１００ｂｐである。図示したｐＴＬ２Ｍでは約５６ｂｐである。
【００２９】
図示したｐＴＬ２Ｍ自体は真核細胞内で機能し得る複製開始点を有していない。このｐＴＬ２Ｍを使用するにあたっては真核細胞内で機能し得る複製開始点を導入する必要がある。真核細胞内で機能し得る複製開始点を有する配列やその配列を有するベクターは公知であり、これを用いてｐＴＬ２Ｍに複製開始点を導入することができる。Ｓ．ｐｏｍｂｅ細胞内で機能し得る複製開始点を有す公知のベクターとしては、たとえばｐＡＵ５やｐＡＬ７がある（K.Okazaki et.al.,Nucleic Acids Res.,18,6485-6489(1990)、K.Okayama et.al.,Molecular Cellular Biol.,3,280-289(1983) ）。これら酵母ベクターは自動複製配列（ａｒｓ）と安定化配列（ｓｔｂ）を有し、さらに選択マーカーや抗生物質耐性遺伝子を有する。この酵母ベクターをｐＴＬ２Ｍに組み込むことにより、Ｓ．ｐｏｍｂｅ細胞内で複製し得るマルチクローニングベクターが得られる。同様に、マルチクローニングベクターに異種蛋白質構造遺伝子を導入した発現ベクターにこの酵母ベクターを組み込むことにより、Ｓ．ｐｏｍｂｅ細胞内で複製し得る発現ベクターが得られる。この酵母ベクターを組み込んで発現ベクターを構築する方法については、上記文献のほか、本発明者らの発明にかかわる特開平５−１５３８０号公報に記載されている。
【００３０】
一般に、大きなベクターを細胞に入れ込むことは困難なことが少なくない。上記ｐＴＬ２Ｍ自体比較的大きなベクターであり、これに上記酵母ベクターを組み込んで酵母細胞に入れ込むことは比較的困難である。これを解決する手段としては上記酵母ベクター（通常は制限酵素で切断した線状のＤＮＡを用いる）と本発明のマルチクローニングベクターないし発現ベクターとを別々に同一の細胞に入れ込む方法がある。この場合、酵母ベクターは細胞内で自動的にマルチクローニングベクターないし発現ベクターに組み込まれ、上記したような複製開始点を有するベクターが自動的に構築される。後述実施例ではこの方法を用いてＳ．ｐｏｍｂｅの形質転換を行った。
【００３１】
マルチクローニングベクターおよび発現ベクターを構築するための一般的手法は公知であり、たとえば文献「J.Sambrook et al., "Molecular Cloning 2nd ed.", Cold Spring Harbor Laboratory Press(1989) 」に記載されている。本発明のマルチクローニングベクターおよび発現ベクターはこの一般的手法を用い前記した方法で構築することができる。発現ベクターの宿主として本発明で用いるＳ．ｐｏｍｂｅの菌株としては、たとえばＡＴＣＣ  ３８３９９（ｌｅｕ１−３２ｈ−）またはＡＴＣＣ  ３８４３６（ｕｒａ４−２９４ｈ−等が挙げられ、これらは、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション(American Type Culture Collection)から入手可能である。
【００３２】
発現ベクターを用いてＳ．ｐｏｍｂｅを形質転換する方法は公知であり、たとえば酢酸リチウム法（K.Okazaki et al.,Nucleic Acids Res.,18,6485-6489(1990)) 等によって、Ｓ．ｐｏｍｂｅの形質転換体が得られる。形質転換体を培養するための培地は公知であり、ＹＰＤ培地等の栄養培地（M.D.Rose et al.,"Methods In Yeast Genetics",Cold Spring Harbor Laboratory Press(1990))あるいはＭＢ培地等の最少培地（K.Okazaki et al.,Nucleic Acids Res.,18,6485-6489(1990)) 等を用いることができる。形質転換体の培養は、通常１６〜４２℃、好ましくは２５〜３７℃で、８〜１６８時間、好ましくは４８〜９６時間行う。振盪培養と静置培養のいずれも可能であるが、必要に応じて撹拌や通気を加えてもよい。
【００３３】
培養物中に産生した蛋白質の単離・精製法としては、公知の、塩析または溶媒沈澱法等の溶解度の差を利用する方法、透析、限外濾過またはゲル電気泳動法等の分子量の差を利用する方法、イオン交換クロマトグラフィー等の荷電の差を利用する方法、アフィニティークロマトグラフィー等の特異的親和性を利用する方法、逆相高速液体クロマトグラフィー等の疎水性の差を利用する方法、等電点電気泳動法等の等電点の差を利用する方法等が挙げられる。
【００３４】
単離・精製した蛋白質の確認方法としては、公知の、ウエスタンブロッティング法または活性測定法等が挙げられる。また精製された蛋白質は、アミノ酸分析、アミノ末端分析、一次構造解析などによりその構造を明らかにすることができる。
【００３５】
【実施例】
以下実施例によって、本発明をより具体的に説明する。ただし、本発明はこれらの実施例によりその技術範囲が限定されるものではない。
【００３６】
なお、以下において、実施例１は本発明ベクター構築の元となるベクターｐＲＬ２Ｍの作製を示し、実施例２はそのｐＲＬ２Ｍを使用した異種蛋白質構造遺伝子導入前のベクターｐＴＬ２Ｍの作製を示す。このベクターｐＴＬ２Ｍは本発明のマルチクローニングベクターであり、以下の実施例はこのベクターｐＴＬ２Ｍに種々の異種蛋白質構造遺伝子を導入してその発現を試験した例である。また、実施例３はこのベクターｐＴＬ２Ｍを含むＳ．ｐｏｍｂｅ形質転換体の製造を示し、実施例４はこの形質転換体細胞抽出液の調製（コントロール用）を示す。実施例５では特にヒトリポコルチンＩの生産について種々の試験を行った例を示す。実施例６以下は種々の蛋白質の発現例を示す。
【００３７】
［実施例１］
［ベクターｐＲＬ２Ｍの作製］
公知の方法で調製したプラスミドｐｃＤ４Ｂ（特開平５−１５３８０号公報参照）を制限酵素Ｓａｃ  Ｉで消化後、末端をＴ４  ＤＮＡポリメラーゼで平滑化し、さらに制限酵素Ｂａｍ  ＨＩで消化した後、フェノール抽出およびエタノール沈殿によって核酸分画を回収した。さらにアガロースゲル電気泳動後、ガラスビーズ法（旭硝子（株）製「ＤＮＡ  ＰＲＥＰ」（商品名）使用、以下同様）によって約４５００塩基対に相当するＤＮＡを精製した。
【００３８】
別に、やはり公知の方法で調製した、ヒトリポコルチンＩ遺伝子（ｃＤＮＡ）を含むベクターｐｃＤ４ｌｉｐｏＩ（特開平５−１５３８０号公報参照）を制限酵素Ｘｍｎ  ＩおよびＢａｍ  ＨＩで消化した後、フェノール抽出およびエタノール沈澱によって核酸分画を回収した。さらにアガロースゲル電気泳動後、ガラスビーズ法によって約１３００塩基対に相当するＤＮＡを精製した。
【００３９】
両ＤＮＡを、ライゲーションキット（宝酒造（株）販売）でライゲーションした後、大腸菌ＤＨ５（東洋紡（株）販売）を形質転換した。得られた形質転換体よりベクターを調製し、目的とするベクターｐＲＬ２Ｌ（図１）を持った形質転換体をスクリーニングした。部分塩基配列の確認および制限酵素地図の作製から目的のベクターであることを確認した。
【００４０】
このリポコルチンＩ発現ベクターｐＲＬ２Ｌを制限酵素Ｅｃｏ  ＲＩおよびＨｉｎｄ  ＩＩＩで消化し、フェノール抽出、エタノール沈澱の後、アガロースゲル電気泳動により約５０００塩基対に相当するバンドを切り出し、ガラスビーズ法で精製した。別に、公知のプラスミドｐＵＣ１９を制限酵素Ｅｃｏ  ＲＩおよびＨｉｎｄ  ＩＩＩで消化し、フェノール抽出、エタノール沈澱の後、ポリアクリルアミドゲル電気泳動より約６０塩基対に相当するバンドを切り出し、ゲルから抽出精製した。
【００４１】
これら両者の断片をライゲーションの後、大腸菌ＤＨ５を形質転換して目的とするベクターｐＲＬ２Ｍ（図２）をスクリーニングした。部分塩基配列の確認および制限酵素地図の作製から目的のベクターであることを確認した。
【００４２】
［実施例２］
［ベクターｐＴＬ２Ｍの作製］
ｐＲＬ２Ｍをテンプレートとし、オリゴデオキシリボヌクレオチド 5'-TTGACTAGTTATTAATAGTA-3' およびオリゴデオキシリボヌクレオチド 5'-CTAGAATTCACATGTTTGAAAAAGTGTCTTTATC-3' を合成プライマーとして、Ｔａｑポリメラーゼを用いたＰＣＲによって目的断片を増幅した。制限酵素Ｓｐｅ  ＩおよびＥｃｏ  ＲＩで末端を調節し、フェノール抽出、エタノール沈澱の後、アガロースゲル電気泳動により約６００塩基対に相当するバンドを切り出し、ガラスビーズ法で精製した。
【００４３】
別に、ｐＲＬ２Ｍを制限酵素Ｓｐｅ  ＩおよびＥｃｏ  ＲＩで消化し、フェノール抽出、エタノール沈澱の後、アガロースゲル電気泳動より約４５００塩基対に相当するバンドを切り出し、ガラスビーズ法で精製した。これら両者の断片をライゲーションの後、大腸菌ＤＨ５を形質転換して目的とするベクターｐＴＬ２Ｍ（図３）をスクリーニングした。部分塩基配列の確認および制限酵素切断地図の作製から目的のベクターであることを確認した。ｐＴＬ２Ｍの制限酵素切断地図を図４に示す。
【００４４】
［実施例３］
［ｐＴＬ２Ｍの酵母への導入］
Ｓ．ｐｏｍｂｅのロイシン要求性株、ＡＴＣＣ  ３８３９９（ｌｅｕ１−３２ｈ−）を最少培地で０．８×１０7 細胞数／ｍｌになるまで生育させた。集菌、洗菌後１０9 細胞数／ｍｌになるように０．１モル酢酸リチウム（ｐＨ５．０）に懸濁し、３０℃で６０分間インキュベートした。その後、上記懸濁液１００μｌにｐＡＬ７をＰｓｔ  Ｉで切断したＤＮＡの１μｇ、実施例１で得たベクターｐＴＬ２Ｍの２μｇをＴＥ（ＥＤＴＡを含んだトリスバッファー）１５μｌに溶かして加え、５０％ＰＥＧ４０００を２９０μｌ加えよく混合したのち３０℃で６０分間、４３℃で１５分間、室温で１０分間の順にインキュベートした。遠心によりＰＥＧ４０００を除去し、培養液１ｍｌに懸濁した。
【００４５】
このうち１００μｌを分取し、９００μｌの培養液を加えて、３２℃、３０分間インキュベートした。うち３００μｌを最少寒天培地にスプレッドした。３２℃で３日間インキュベートし、形質転換体をＧ４１８を含むプレートに移し、さらに３２℃で５日間培養した。得られたものは、目的とする形質転換体であった。
【００４６】
［実施例４］
［形質転換体の培養および細胞抽出液の調製］
実施例３で得た形質転換体を２％グルコース、１％イースト抽出液、２％ペプトン、およびＧ４１８を２００μｇ／ｍｌを含む液体培地５０ｍｌで３２℃、３日間培養した。その培養液から１０8 細胞程度の菌体を集菌、洗菌し、５０ミリモルトリス塩酸緩衝液（ｐＨ７．５）に懸濁し、超音波破砕を行った。遠心によって細胞抽出液（上清）を得た。この細胞抽出液をＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＴＥＦＣＯ社製  ４〜２０％ポリアクリルアミドゲル、以下ＳＤＳ−ＰＡＧＥという）にて行う解析の陰性対象（コントロール）として以下の実施例について用いた。
【００４７】
［実施例５］
［ヒトリポコルチンＩの発現］
公知（特開平５−１５３８０号公報参照）のリポコルチンＩｃＤＮＡ全長をベクターｐｃＤ４ｌｉｐｏＩをテンプレートとし、オリゴデオキシリボヌクレオチド 5'ーATGCCATGGCAATGGTATCAGAATT-3'およびオリゴデオキシリボヌクレオチド 5'-AGCCAGTATACACTCCGCTA-3' を合成プライマーとして、Ｔａｑポリメラーゼを用いたＰＣＲによって目的断片を増幅した。制限酵素Ｎｃｏ  ＩおよびＢａｍ  ＨＩで末端を調節し、フェノール抽出、エタノール沈澱の後、アガロースゲル電気泳動により約１４００塩基対に相当するバンドを切り出し、ガラスビーズ法で精製した。
【００４８】
別に、ｐＴＬ２Ｍを制限酵素Ａｆｌ  ＩＩＩおよびＢａｍ  ＨＩで消化し、フェノール抽出、エタノール沈澱の後、アガロースゲル電気泳動より約５０００塩基対に相当するバンドを切り出し、ガラスビーズ法で精製した。これら両者の断片をライゲーションの後、大腸菌ＤＨ５を形質転換して目的とするベクターｐＴＬ２Ｌ（図５）をスクリーニングした。部分塩基配列の確認および制限酵素地図の作製から目的のベクターであることを確認した。
【００４９】
実施例３と同様にＳ．ｐｏｍｂｅを形質転換し、実施例４と同様に細胞抽出液を調製した。この際細胞抽出液にプロテアーゼ（１２マイクルモルＰＭＳＦ、２５マイクロモル  ロイペプチン、５マイクロモルＥ−６４）を存在させておく。ＳＤＳ−ＰＡＧＥにて調べたところ、分子量３６，０００の位置にコントロールｐＴＬ２Ｍを導入した酵母抽出液には見られないバンドが確認され、抗ヒトリポコルチンＩ抗体（ウサギ）を用いてウエスタンブロットを行なったところ、このバンドのみが特異的に染色された（図６）。図６はヒトリポコルチンＩの発現を示すＳＤＳ−ＰＡＧＥ観察図（図６；１、２）およびウエスタンブロット観察図（図６；３、４）であり、図における１〜４は下記のものを表す。
【００５０】
１；Ｓ．ｐｏｍｂｅ（ｐＴＬ２Ｍ）細胞抽出液、
２；Ｓ．ｐｏｍｂｅ（ｐＴＬ２Ｌ）細胞抽出液、
３；Ｓ．ｐｏｍｂｅ（ｐＴＬ２Ｍ）細胞抽出液、
４；Ｓ．ｐｏｍｂｅ（ｐＴＬ２Ｌ）細胞抽出液。
【００５１】
また、 125Ｉ−プロテインＡを二次抗体としてウエスタンブロットを行い、天然体のリポコルチンＩを標準として定量をしたところ、発現されたリポコルチンは全可溶性蛋白質の５０ｗｔ％を占めていることがわかった。
【００５２】
［分裂酵母で発現したヒトリポコルチンＩの精製］
上記で得た粗抽出液をヒトリポコルチンＩのカルシウム結合型のみを認識するモノクローナル抗体をリガンドとしたアフィニテイーカラムに１ミリモル塩化カルシウム、５０ミリモルトリス塩酸（ｐＨ７．５）、０．１５モル塩化ナトリウムにて吸着させ２ミリモルＥＧＴＡ、５０ミリモルトリス塩酸（ｐＨ７．５）、０．１５モル塩化ナトリウムにて溶出させることにより、ＳＤＳ−ＰＡＧＥにおいて単一なバンドをなす組換えヒトリポコルチンＩを得た（図７）。図７はヒトリポコルチンＩの精製を示すＳＤＳ−ＰＡＧＥ観察図であり、図におけるＡおよびＢは下記のものを表す。
【００５３】
Ａ；Ｓ．ｐｏｍｂｅ（ｐＴＬ２Ｌ）粗抽出液、
Ｂ；精製ヒトリポコルチンＩ。
【００５４】
［ホスホリパーゼＡ２（ＰＬＡ２）阻害活性］
上記実施例にて精製した組換えヒトリポコルチンＩによるＰＬＡ２阻害活性をB.Rothhut らの方法(B.Rothhut,et al,Biochem.Biophys.Res.Commun.117,878-884(1983))にて測定した。すなわち、トリチウムを含むオレイン酸で標識した大腸菌を基質として、ハチ毒ＰＬＡ２の活性に対するヒトリポコルチンＩの阻害活性を調べた。この結果を図８に示した。この結果より、ヒト胎盤由来リポコルチンＩの示す阻害活性と、阻害の程度、阻害様式が一致していることがわかった。図８は蛋白質量とＰＬＡ２の活性の関係を示すグラフである。
【００５５】
［F-アクチンとの結合能］
上記実施例で得た精製ヒトリポコルチンＩが、カルシウム存在下にてＦ−アクチンに結合するかどうかをH.Hayashi らの方法 (H.Hayashi et al,Biochem.Biophys.Res.Commun.146,912-919(1987)) にて検討した。ヒト胎盤由来リポコルチンＩと同様、１ミリモルカルシウム存在下にて５０ｗｔ％のヒトリポコルチンＩがＦ−アクチンと結合し、１ミリモルＥＧＴＡ存在下では全く結合は見られなかった（図９）。図９はアクチン結合活性を示すＳＤＳ−ＰＡＧＥ観察図であり、図における１〜４は以下のものを示す。
【００５６】
１；１ミリモルＥＧＴＡ存在下の遠心残渣、
２；１ミリモルＥＧＴＡ存在下の遠心上清、
３；１ミリモル塩化カルシウム存在下の遠心残渣、
４；１ミリモル塩化カルシウム存在下の遠心上清。
【００５７】
［アミノ酸組成］
上記実施例で得た組換えヒトリポコルチンＩのアミノ酸組成をアミノ酸分析機（ＪＥＯＬ  ＪＬＣ−３６０）により分析した。その結果を表２に示す。ＤＮＡ塩基配列から予想される組成と一致していることがわかった。
【００５８】
【表２】
0003689920.tif 000003
【００５９】
［アミノ末端アミノ酸配列］
上記実施例で得た組換えヒトリポコルチンＩのアミノ末端からのアミノ酸配列の決定を気相法シークエンサー（ＳＨＩＭＡＤＺＵ  ＰＳＱ−１）にて行ったが、ＰＴＨ−アミノ酸は検出されなかった。そこで組換えヒトリポコルチンＩをＶ８プロテアーゼ（ベーリンガー社）により完全分解し、ＯＤＳ  Ｃ１８カラム（ＨＰＬＣ）にて各フラグメントを分取し、各フラグメントのアミノ酸組成を調べることによりアミノ末端フラグメントを選んだ。次に、そのペプチドにアシルアミノ酸遊離酵素を作用させた。その結果を図１０に表す。
【００６０】
図１０はＨＰＬＣによる溶出量を表すグラフであり、図１０ａはアミノ末端フラグメントの溶出量を表すグラフであり、図１０ｂはそのアミノ末端フラグメントにアシルアミノ酸遊離酵素を作用させた後のフラグメントの溶出量を表すグラフである。図１０ｂに示すように溶出時間の早いところにピークがあらわれ、またアミノ末端フラグメントの溶出位置は移動した。
【００６１】
前者のピークを分取し加水分解してアミノ酸組成を調べたところAla であり、またアセチルAla をＨＰＬＣにて溶出させると、図１０ｂのようにこのピークと一致する。また後者のピークをシークエンサーにて解析するとMet-Val-Ser-Glu であることがわかった。したがって、組換えヒトリポコルチンＩのアミノ末端アミノ酸配列は天然体と同様Acetyl-Ala-Met-Val-Ser-Gluであると考えられる。
【００６２】
［ヒトリポコルチンＩ発現ベクターのコピー数の確認］
実施例で作製した形質転換体を培養し、５×１０7 個の細胞を得た。培地中のＧ４１８濃度を各々０、２５、５０、１００、２００μｇ／ｍｌの５種類に対して行った以外は、培養方法は実施例４と同じ方法で行った。ガラスビーズ、ＳＤＳおよびフェノールを用いて菌体を破砕し、全ＤＮＡを抽出した。制限酵素Ｅｃｏ  ＲＩおよびＨｉｎｄ  ＩＩＩで消化した後、０．８％アガロースゲル電気泳動後、ナイロンメンブレンに転写し、ヒトリポコルチンＩ遺伝子のＥｃｏ  ＲＩ−Ｈｉｎｄ  ＩＩＩ断片をプローブとしてサザンハイブリダイゼーションを行った。この結果を図１１に示す。図１１はＧ４１８濃度とｐＴＬ２Ｌのコピー数と関係を示すグラフである。図に示すように、培地中のＧ４１８濃度に依存して菌体内のベクターコピー数が増加し、最大２００コピー程度まで上昇することがわかった。
【００６３】
［実施例６］
［ラットアルギナーゼの発現］
熊本大学医学部森正敬教授より供与を受けた、ラット肝臓アルギナーゼｃＤＮＡ全長を含むベクターｐＡＲＧｒ−２［S.Kawamoto et al.,Biochem. Biophis. Res.Commun.,136,955-961(1986) ］より、インサートを制限酵素Ｅｃｏ  ＲＩおよびＰｓｔ  Ｉで切り出し、市販のベクターであるブルースクリプトのＥｃｏ  ＲＩ−Ｐｓｔ  Ｉ部位にサブクローニングした。
【００６４】
このベクターをテンプレートとし、オリゴデオキシリボヌクレオチド 5'-GACTCATGAGCTCCAAGCCAAAGCC-3'およびオリゴデオキシリボヌクレオチド 5'-TTCCCAGTCACGACGTTGTA-3' を合成プライマーとして、Ｔａｑポリメラーゼを用いたＰＣＲによって目的断片を増幅した。制限酵素Ｂｓｐ  ＨＩおよびＸｂａ  Ｉで末端を調節し、フェノール抽出、エタノール沈澱の後、アガロースゲル電気泳動により約１３００塩基対に相当するバンドを切り出し、ガラスビーズ法で精製した。
【００６５】
別に、ｐＴＬ２Ｍを制限酵素Ａｆｌ  ＩＩＩおよびＸｂａ  Ｉで消化し、フェノール抽出、エタノール沈澱の後、アガロースゲル電気泳動より約５０００塩基対に相当するバンドを切り出し、ガラスビーズ法で精製した。これら両者の断片をライゲーションの後、大腸菌ＤＨ５を形質転換して目的とするベクターｐＴＬ２Ｒ（図１２）をスクリーニングした。部分塩基配列の確認および制限酵素地図の作製から目的のベクターであることを確認した。
【００６６】
実施例３と同様にＳ．ｐｏｍｂｅを形質転換し、実施例４と同様に細胞抽出液を調製した。ＳＤＳ−ＰＡＧＥによって発現を確認したところ、ラットアルギナーゼに相当する分子量３５，０００付近の位置にコントロールｐＴＬ２Ｍには見られない明瞭なバンドが検出できた。その発現量は、デンシトメーターにて測定したところ全菌体蛋白質の３０〜５０ｗｔ％であった。また、ラットアルギナーゼ特異的な抗体を用いてウエスタンブロッティングを行い、ラットアルギナーゼであることを確認した。
【００６７】
［実施例７］
［ヒトＩＬ−６の発現］
ヒトＩＬ−６ｃＤＮＡ全長を含む公知のベクターｐＵＣ１９をテンプレートとし、オリゴデオキシリボヌクレオチド 5'-ATCGCATGCCAGTACCCCCAGGAGAAGA-3' およびオリゴデオキシリボヌクレオチド 5'-TGAAAATCTTCTCTCATCCG-3' を合成プライマーとして、Ｔａｑポリメラーゼを用いたＰＣＲによって目的断片を増幅した。制限酵素Ｓｐｈ  ＩおよびＨｉｎｄ  ＩＩＩで末端を調節し、フェノール抽出、エタノール沈澱の後、アガロースゲル電気泳動により約１０００塩基対に相当するバンドを切り出し、ガラスビーズ法で精製した。
【００６８】
別に、ｐＴＬ２Ｍを制限酵素Ａｆｌ  ＩＩＩおよびＨｉｎｄ  ＩＩＩで消化し、フェノール抽出、エタノール沈澱の後、アガロースゲル電気泳動より約５０００塩基対に相当するバンドを切り出し、ガラスビーズ法で精製した。これら両者の断片をライゲーションの後、大腸菌ＤＨ５を形質転換して目的とするベクターｐＴＬ２６ｍ（図１３）をスクリーニングした。部分塩基配列の確認および制限酵素地図の作製から目的のベクターであることを確認した。
【００６９】
実施例３と同様にＳ．ｐｏｍｂｅを形質転換し、実施例４と同様に細胞抽出液を調製した。ＳＤＳ−ＰＡＧＥによって発現を確認したところ、ヒトＩＬ−６に相当する分子量２１，０００付近の位置にコントロールｐＴＬ２Ｍには見られない明瞭なバンドが検出できた。その発現量は、デンシトメーターにて測定したところ全菌体蛋白質の10wt% 程度であった。また、ヒトＩＬ−６特異的な抗体を用いてウエスタンブロッティングを行い、ヒトＩＬ−６であることを確認した。
【００７０】
［実施例８］
［ラットＮＤＰキナーゼα体の発現］
東京都老人研究所木村成道博士より供与を受けた、ラットＮＤＰキナーゼα体ｃＤＮＡ全長を含むベクターｐＮＤＰＫαを制限酵素Ｎｃｏ  ＩおよびＨｉｎｄＩＩＩで消化し、フェノール抽出、エタノール沈澱の後、アガロースゲル電気泳動により約６００塩基対に相当するバンドを切り出し、ガラスビーズ法で精製した。別に、ｐＴＬ２Ｍを制限酵素Ａｆｌ  ＩＩＩおよびＨｉｎｄ  ＩＩＩで消化し、フェノール抽出、エタノール沈澱の後、アガロースゲル電気泳動より約５０００塩基対に相当するバンドを切り出し、ガラスビーズ法で精製した。
【００７１】
これら両者の断片をライゲーションの後、大腸菌ＤＨ５を形質転換して目的とするベクターｐＴＬ２−Ｎα（図１４）をスクリーニングした。部分塩基配列の確認および制限酵素地図の作製から目的のベクターであることを確認した。
【００７２】
実施例３と同様にＳ．ｐｏｍｂｅを形質転換し、実施例４と同様に細胞抽出液を調製した。ＳＤＳ−ＰＡＧＥによって発現を確認したところ、ラットＮＤＰキナーゼα体に相当する分子量１７，０００付近の位置にコントロールｐＴＬ２Ｍには見られない明瞭なバンドが検出できた。その発現量は、デンシトメーターにて測定したところ全菌体蛋白質の３０〜５０ｗｔ％であった。また、ラットＮＤＰキナーゼα体特異的な抗体を用いてウエスタンブロッティングを行い、ラットＮＤＰキナーゼα体であることを確認した。
【００７３】
［実施例９］
［ラットＮＤＰキナーゼβ体の発現］
東京都老人研究所木村成道博士より供与を受けた、ラットＮＤＰキナーゼβ体ｃＤＮＡ全長を含むベクターｐＮＤＰＫβを制限酵素Ｎｃｏ  ＩおよびＥｃｏ  ＲＩで消化し、フェノール抽出、エタノール沈澱の後、アガロースゲル電気泳動により約７００塩基対に相当するバンドを切り出し、ガラスビーズ法で精製した。
【００７４】
別に、ｐＴＬ２Ｍを制限酵素Ａｆｌ  ＩＩＩおよびＥｃｏ  ＲＩで消化し、フェノール抽出、エタノール沈澱の後、アガロースゲル電気泳動より約５０００塩基対に相当するバンドを切り出し、ガラスビーズ法で精製した。これら両者の断片をライゲーションの後、大腸菌ＤＨ５を形質転換して目的とするベクターｐＴＬ２−Ｎβ（図１５）をスクリーニングした。部分塩基配列の確認および制限酵素地図の作製から目的のベクターであることを確認した。
【００７５】
実施例３と同様にＳ．ｐｏｍｂｅを形質転換し、実施例４と同様に細胞抽出液を調製した。ＳＤＳ−ＰＡＧＥによって発現を確認したところ、ラットＮＤＰキナーゼβ体に相当する分子量１７，０００付近の位置にコントロールｐＴＬ２Ｍには見られない明瞭なバンドが検出できた。その発現量は、デンシトメーターにて測定したところ全菌体蛋白質の３０〜５０ｗｔ％であった。また、ラットＮＤＰキナーゼβ体特異的な抗体を用いてウエスタンブロッティングを行い、ラットＮＤＰキナーゼβ体であることを確認した。
【００７６】
［実施例１０］
［ヒト血清アルブミンの発現］
国立予防衛生研究所遺伝子バンクより供与を受けた、ヒト血清アルブミンｃＤＮＡを含むベクターｐＩＬＭＡＬＢ５をテンプレートとし、オリゴデオキシリボヌクレオチド 5'-AGACCATGGATGCACACAAGAGTGAGGT-3' およびオリゴデオキシリボヌクレオチド 5'-CAGGAAACAGCTATGACCAT-3' を合成プライマーとして、Ｔａｑポリメラーゼを用いたＰＣＲによって目的断片を増幅した。制限酵素Ｎｃｏ  ＩおよびＨｉｎｄ  ＩＩＩで末端を調節し、フェノール抽出、エタノール沈澱の後、アガロースゲル電気泳動により約１８００塩基対に相当するバンドを切り出し、ガラスビーズ法で精製した。
【００７７】
別に、ｐＴＬ２Ｍを制限酵素Ａｆｌ  ＩＩＩおよびＨｉｎｄ  ＩＩＩで消化し、フェノール抽出、エタノール沈澱の後、アガロースゲル電気泳動より約５０００塩基対に相当するバンドを切り出し、ガラスビーズ法で精製した。これら両者の断片をライゲーションの後、大腸菌ＤＨ５を形質転換して目的とするベクターｐＴＬ２Ｂｍ（図１６）をスクリーニングした。部分塩基配列の確認および制限酵素地図の作製から目的のベクターであることを確認した。
【００７８】
実施例３と同様にＳ．ｐｏｍｂｅを形質転換し、実施例４と同様に細胞抽出液を調製した。ＳＤＳ−ＰＡＧＥによって発現を確認したところ、ヒト血清アルブミンに相当する分子量６９，０００付近の位置にコントロールｐＴＬ２Ｍには見られない明瞭なバンドが検出できた。その発現量は、デンシトメーターにて測定したところ全菌体蛋白質の３０ｗｔ％程度であった。また、ヒト血清アルブミン特異的な抗体を用いてウエスタンブロッティングを行い、ヒト血清アルブミンであることを確認した。
【００７９】
【発明の効果】
本発明では、あらゆる蛋白質を高発現量で発現することができるため、異種蛋白質生産の効率を大幅に上昇させることが可能である。また上述のヒトリポコルチンＩの場合に見られるようにその発現量は菌体蛋白質の５０ｗｔ％を占め、その分子量、アミノ酸組成、アミノ末端近傍のアミノ酸配列、などがヒト胎盤由来リポコルチンＩ(Nature 320,77-81(1986))における各々と同一であり、またＰＬＡ２阻害活性の程度やアクチンとの結合能などについても上記天然型と同様であることから、本発明により分裂酵母を用いて天然型とほぼ同一と思われる蛋白質をきわめて効率よく得られることが可能となった。
【図面の簡単な説明】
【図１】ベクターｐＲＬ２Ｌの構成図
【図２】ベクターｐＲＬ２Ｍの構成図
【図３】ベクターｐＴＬ２Ｍの構成図
【図４】ベクターｐＴＬ２Ｍの制限酵素切断地図
【図５】発現ベクターｐＴＬ２Ｌの構成図
【図６】ＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびウエスタンブロット観察図
【図７】ＳＤＳ−ＰＡＧＥ観察図
【図８】ＰＬＡ２阻害活性を示すグラフ
【図９】ＳＤＳ−ＰＡＧＥ観察図
【図１０】ＨＰＬＣ溶出を示すグラフ
【図１１】ｐＴＬ２Ｌのコピー数の変化を示すグラフ
【図１２】発現ベクターｐＴＬ２Ｒの構成図
【図１３】発現ベクターｐＴＬ２６ｍの構成図
【図１４】発現ベクターｐＴＬ２−Ｎαの構成図
【図１５】発現ベクターｐＴＬ２−Ｎβの構成図
【図１６】発現ベクターｐＴＬ２Ｂｍの構成図
【図１】
0003689920.tif 000004
【図２】
0003689920.tif 000005
【図３】
0003689920.tif 000006
【図４】
0003689920.tif 000007
【図５】
0003689920.tif 000008
【図６】
0003689920.tif 000009
【図７】
0003689920.tif 000010
【図８】
0003689920.tif 000011
【図９】
0003689920.tif 000012
【図１０】
0003689920.tif 000013
【図１１】
0003689920.tif 000014
【図１２】
0003689920.tif 000015
【図１３】
0003689920.tif 000016
【図１４】
0003689920.tif 000017
【図１５】
0003689920.tif 000018
【図１６】
0003689920.tif 000019