(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
微生物が存在する試料中のポリメラーゼ反応阻害物質を除去し、該微生物を生菌として回収するポリメラーゼ反応阻害物質の除去方法であって、
微生物を磁性体粒子に吸着させ、磁石を利用した磁気分離により試料中の非吸着画分に存在するポリメラーゼ反応の阻害物質を除去する吸着・磁気分離工程、
塩化物イオン、硝酸イオンおよび硫酸イオンの少なくとも１種を有し、かつ、これらの塩化物イオン、硝酸イオンおよび硫酸イオンの濃度の和が１０ｍｍｏｌ／Ｌ以下である塩溶液を用いて微生物を吸着した磁性体粒子を洗浄する洗浄工程、及び、
上記磁性体粒子に吸着した微生物をリン酸塩溶液を脱離処理液として用いて該磁性体粒子から生存した状態で脱離させる脱離工程
を有することを特徴とするポリメラーゼ反応阻害物質の除去方法。
【請求項２】
上記脱離処理液のリン酸塩濃度が０．１ｍｍｏｌ／Ｌ以上であることを特徴とする請求項１に記載のポリメラーゼ反応阻害物質の除去方法。
【請求項３】
上記脱離処理液のリン酸塩濃度が１０ｍｍｏｌ／Ｌ以上であることを特徴とする請求項１に記載のポリメラーゼ反応阻害物質の除去方法。
【請求項４】
上記脱離処理液のｐＨが５．５以上８．５以下であることを特徴とする請求項１ないし請求項３のいずれかに記載ポリメラーゼ反応阻害物質の除去方法。
【請求項５】
上記脱離処理液のｐＨが６．５以上７．５以下であることを特徴とする請求項１ないし請求項３のいずれかに記載のポリメラーゼ反応阻害物質の除去方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、試料中の原生生物（原核原生生物および真核原生生物）（本発明では「微生物」と云う）の核酸の一部をポリメラーゼを用いて合成・増幅する（本発明では「ポリメラーゼ反応」と云う）際に、その阻害物質を除去するために、前処理としておこなうポリメラーゼ反応阻害物質の除去方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
１９８５年のＤＮＡポリメラーゼの伸張反応を利用したポリメラーゼ連鎖反応（以下、「ＰＣＲ」とも云う）に関するＫ．Ｍｕｌｌｉｓ等による最初の報告以来、その非常に高い感度と特異性が着目され、微生物研究分野や臨床検査分野等において、微生物検出へのＰＣＲ技術の応用が盛んに進められて来た。
【０００３】
このポリメラーゼ連鎖反応技術を応用して、空調冷却水等の環境試料や食品、尿、血液等の生物試料等の検体から微生物検出をおこなう場合、このような試料中にはＰＣＲに使用されるポリメラーゼによる合成反応を阻害する物質（本発明において「ポリメラーゼ反応阻害物質」と云う）が含まれている場合が多く、ターゲット核酸が存在するにもかかわらず、ＰＣＲが陰性（偽陰性）となる誤った結果が得られる場合がある。
【０００４】
このようなポリメラーゼ反応阻害物質としてどのような物質があるかについてはいまだ完全には解明されていないが、ポリメラーゼ反応阻害物質の除去には種々の異なる方法が提案されている。例えば、試料中の阻害物質が水溶性であれば、試料を遠心分離して微生物を沈殿させ、洗浄操作を繰り返すことにより、上清画分に存在する阻害物質を簡単に除去できる。また、阻害物質が不溶性の無機金属である場合は、核酸抽出後の試料を塩酸酸性にして、核酸を沈殿させ、そのときの上清画分の無機金属成分を除去することができる。
【０００５】
一方、阻害物質が既知のものであればその濃度を測定し、ポリメラーゼ反応阻害を受けない程度の濃度となるまで試料を希釈してＰＣＲを利用した微生物検出をおこなうことができる。また、試料中のターゲット核酸を有機溶媒処理により阻害を受けない程度までに精製してＰＣＲを利用した微生物検出をおこなう方法もある。
【０００６】
しかしながら、ポリメラーゼ反応を応用した微生物検出において、空調冷却水等の環境水や食品、尿、血液等の生物試料等を検体として用いる場合、水溶性のポリメラーゼ反応阻害物質のみならず、不溶性のポリメラーゼ反応阻害物質が同時に含まれることが多い。
【０００７】
この場合、従来の物理的方法のみでは、微生物と不溶性阻害物質を分離することが困難なため、先ず遠心分離等で水溶性の阻害物質を除去し、その沈澱画分からＤＮＡ抽出液を調製した後、ポリメラーゼ反応阻害物質を除去することが必要であった。
【０００８】
しかし、これら不溶性のポリメラーゼ反応阻害物質はＤＮＡと同じ挙動を示すものが多い。すなわち、ＤＮＡ抽出前は不溶性でありながらＤＮＡ抽出後には可溶性画分に移行してＰＣＲによる微生物検出を阻害する。そのため上記の除去操作を組み合わせてＤＮＡを精製することが困難であった。また、不溶性の阻害物質を除去する操作では、核酸の回収率が低下し、ＰＣＲによる微生物検出の結果が偽陰性となる等の問題もあった。
【０００９】
このように、試料中の微生物をＰＣＲにより検出する方法において、正確な測定結果を得るため、試料中に含まれるポリメラーゼ反応阻害物質除去が不可欠であるにもかからず、このような阻害物質を除去できる簡便な方法は知られていなかった。
【００１０】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、このような従来技術の問題点に鑑みてなされたものであって、その目的とするところは、試料中に含まれるポリメラーゼ反応阻害物質を磁気分離という簡単な操作で除去できる精度の高いポリメラーゼ反応阻害物質の除去方法を提供することにある。
【００１１】
【課題を解決するための手段】
本発明者等は上記従来の問題点について鋭意検討をおこなったところ、微生物が磁性体粒子に吸着するのにもかかわらず、不溶性のポリメラーゼ反応阻害物質は磁性体粒子に吸着しないことを見出し本発明に至った。
【００１２】
すなわち、本発明のポリメラーゼ反応阻害物質の除去方法は上記課題を解決するため、請求項１に記載の通り、微生物が存在する試料中のポリメラーゼ反応阻害物質を除去し、該微生物を生菌として回収するポリメラーゼ反応阻害物質の除去方法であって、微生物を磁性体粒子に吸着させ、磁石を利用した磁気分離により試料中の非吸着画分に存在するポリメラーゼ反応の阻害物質を除去する吸着・磁気分離工程、塩化物イオン、硝酸イオンおよび硫酸イオンの少なくとも１種を有し、かつ、これらの塩化物イオン、硝酸イオンおよび硫酸イオンの濃度の和が１０ｍｍｏｌ／Ｌ以下である塩溶液を用いて微生物を吸着した磁性体粒子を洗浄する洗浄工程、及び、上記磁性体粒子に吸着した微生物をリン酸塩溶液を脱離処理液として用いて該磁性体粒子から生存した状態で脱離させる脱離工程を有するポリメラーゼ反応阻害物質の除去方法である。
【００１３】
このような本願発明特有の構成により、従来、ＰＣＲによる微生物の検出において、不溶性のポリメラーゼ反応阻害物質の存在のため偽陰性となりやすかった試料であっても正確な検出が可能となり、かつ、容易におこなうことができる。また、ＰＣＲによる微生物検出に限らず、試料中の原生生物の核酸をポリメラーゼを用いて合成、増幅する際にポリメラーゼ反応の阻害物質を容易に除去することが可能となる。
【００１４】
【発明の実施の形態】
本発明のポリメラーゼ反応阻害物質の除去方法において、用いる磁性体粒子の粒径は小さい程、相対的に磁性体粒子重量当りの微生物に対する吸着面積が増えて好ましいが、０．１μｍ以下では磁石への吸着力が低下するため、０．１μｍ以上、１００μｍ以下であることが好ましい。
このような磁性体粒子としてはフェライト粒子があるが、その中で、特に四三酸化鉄（Ｆｅ3Ｏ4）が入手しやすく、取り扱いが容易である。
【００１５】
また、本発明における吸着・磁気分離工程において、微生物とともに磁性体粒子に付着したポリメラーゼ反応阻害物質を洗浄・除去する際には、吸着した微生物を脱離或いは死滅させない条件を選択する必要がある。そのため、洗浄には塩化物イオン、硝酸イオンおよび硫酸イオンの少なくとも１種を有し、かつ、これらの塩化物イオン、硝酸イオンおよび硫酸イオンの濃度の和が１０ｍｍｏｌ／Ｌ以下である塩溶液を用いることが望ましく、洗浄に用いるこれら塩溶液には、後述するようなリン酸塩、エチレンジアミン四酢酸塩などの、吸着した微生物を脱離させる物質が、含有されていないことが望ましく、微生物を脱離させる性質が発現する濃度より充分低いことが必要である。なお、洗浄に用いる塩溶液の陽イオンは磁性体粒子に吸着した微生物に影響がないように適宜選択する。
【００１６】
このように磁性体粒子に微生物を吸着させた後、磁石を利用して微生物を吸着した磁性体粒子を、その他の不溶性成分と分離（磁気分離）する。例えば、磁性体の入った容器の外側から磁石を近づけて容器内壁に微生物を吸着した磁性体を集めておいて、ピペットで液相を吸い取ることにより、容易に非吸着画分を除くことができる。
【００１７】
このように吸着・磁気分離工程により取り出した微生物を吸着した磁性体粒子から微生物を生存した状態（以後、「生菌」とも云う）で脱離させる生菌脱離工程を有することにより既に死んでいる菌のＤＮＡを生菌のものとしてカウントする誤差の発生のおそれもなく、ＰＣＲによる微生物検出を精度良く容易におこなうことができる。
【００１８】
このような生菌脱離工程で、磁性体粒子に吸着した微生物を生菌として脱離させる際には、リン酸塩溶液、硫酸イオンを含有する塩溶液、エチレンジアミン四酢酸塩溶液などを用いることができるが、なかでもリン酸塩溶液を脱離処理液として用いることにより、特異的に極めて回収率の高い脱離が可能となる。このときの脱離処理液中のリン酸塩濃度は０．１ｍｍｏｌ／Ｌ以上であると充分な脱離が可能となるが、特に１０ｍｍｏｌ／Ｌ以上であると非常に高い回収率での脱離が可能となる。リン酸塩濃度の上限としては、検出目的の微生物が死滅しない濃度であることが必要である。
なお、上記脱離処理液のｐＨは５．５以上８．５以下であることが好ましく、特に好ましい範囲は６．５以上７．５以下である。
【００１９】
このようにして上記の吸着・磁気分離工程および生菌脱離工程操作により微生物を脱離させた後は、たとえば、通常の操作に従い、核酸抽出をおこなって試料中の核酸をポリメラーゼを用いて合成・増幅することが可能であり、ＰＣＲによる微生物の検出をおこなうことにより、試料中の目的とする微生物を検出できる。
【００２０】
なお、吸着・磁気分離工程に先だって、従来おこなわれていた可溶性ポリメラーゼ反応阻害物質除去をおこなっても良いが、これら可溶性ポリメラーゼ反応阻害物質が磁性体粒子に吸着しないことが明らかな場合には可溶性ポリメラーゼ反応阻害物質の除去工程を省くことができる。
【００２１】
【実施例】
以下に本発明のポリメラーゼ反応阻害物質の除去方法についてＰＣＲの例を挙げて具体的に説明する。
【００２２】
〔従来技術による比較例〕
Ａ．まず、試料作成・ＰＣＲ条件について示す。
（試料の採取・前処理）
空調用冷却塔から採取した試料水４００ｍＬを６０００ｒｐｍ・３０分間の条件で遠心分離して、得られた沈殿を４ｍＬの滅菌蒸留水に懸濁させ、ＰＣＲによる微生物検出の試料（以下、「微生物検出試料」と略す）とした。
【００２３】
（ＤＮＡ抽出）
微生物検出試料からのＤＮＡ抽出は、以下の操作方法でおこなった。
（１）微生物検出試料１ｍＬを１．５ｍＬエッペンドルフチューブにとり、１２０００ｒｐｍ・１５分間の条件で遠心分離し、上清９５０μＬを捨てる。
（２）５０ｍｍｏｌ／Ｌ・ＮａＯＨ水溶液を５０μＬ添加し、ポルテックスミキサーで良く攪拌する。
（３）沸騰水浴中で１５分間、加熱する。
（４）１Ｍトリス塩酸緩衝液（ｐＨ７．０）を１０μＬ添加し、中和する。
【００２４】
（ＰＣＲによる検出）
ＰＣＲの操作は、常法に従い下記の手順でおこなった。
（１）ＰＣＲ用チューブに以下の組成で反応液を調製した。
【００２５】
【表１】
────────────────────────────────────
蒸留水                                              ：  ５．５μＬ
１０ｘＰＣＲバッファー                              ：  ２．０μＬ
ｄＮＴＰストック溶液（１０ｍｍｏｌ／Ｌ・ストック）  ：  １．６μＬ
プライマー１（１０ｐｍｏｌ／μＬ）                  ：  ０．４μＬ
プライマー２（１０ｐｍｏｌ／μＬ）                  ：  ０．４μＬ
Ｔａｑ  ＤＮＡポリメラーゼ（５Ｕ／μＬ）            ：  ０．１μＬ
ＤＮＡ抽出液（上記方法で調整したもの）              ：１０．０μＬ
────────────────────────────────────プライマー１：ＬＥＧ４４８−Ａ  （５’−ＧＡＧ  ＧＧＴ  ＴＧＡ  ＴＡＧ
ＧＴＴ  ＡＡＧ  ＡＧＣ−３’）  （配列番号１）
プライマー２：ＬＥＧ８５４−Ｂ  （５’−ＣＧＧ  ＴＣＡ  ＡＣＴ  ＴＡＴ
ＣＧＣ  ＧＴＴ  ＴＧＣ  Ｔ−３’）  （配列番号２）
【００２６】
（２）ＰＣＲ条件
表２にその条件を簡単に示す。
【００２７】
【表２】
──────────────────
熟変性：９４℃×３０秒
↓
アニーリング：６５℃×３０秒
↓
伸長反応：７２℃×１分
サイクル数：４０サイクル
──────────────────
【００２８】
（３）ＰＣＲ生成物の分析
アガロースゲル電気泳動によった。
【００２９】
Ｂ．結果および考察
空調用冷却塔から採取した試料３１検体について、レジオネラ属細菌を検出するため、上記の（１）〜（３）に示した方法に従い、ＰＣＲによる検出をおこなった。
【００３０】
レジオネラ属細菌の検出プライマーとして、１６Ｓリボソーム遺伝子の塩基配列を持つ２種類の合成オリゴヌクレオチドプライマー（それぞれの塩基配列は、配列表の配列番号１及び２参照）を使用した。なお、対照として、ＷＹＯα培地でレジオネラ属細菌のコロニー数を計測した。
その結果を表３および表４に示した。コロニー計測によりレジオネラ属細菌が検出された検体の中で、８検体の試料がＰＣＲの結果が陰性、すなわち偽陰性であった。
【００３１】
【表３】
0003691363.tif 000002
【００３２】
【表４】
0003691363.tif 000003
【００３３】
ここで、上記の表３および表４で偽陰性を示した８検体の中に、ポリメラーゼ反応阻害物質が存在すると考え、ＤＮＡ抽出前の菌体を蒸留水で洗浄したが効果がなく、不溶性の成分が主たる阻害物質であることが判明した。
【００３４】
次にこれら８検体につき、抽出されたＤＮＡを常法に従い、フェノール／クロロホルム処理及びイソプロピルアルコール沈殿をおこなって精製した後、ＰＣＲによる検出をおこなった。
【００３５】
上記８検体中３検体はＰＣＲ陽性となったが、残りの５検体はＰＣＲ陰性となり、有機溶媒による処理によっても阻害物質を除去することができなかった。
さらに、塩酸溶液（０．１Ｎ）処理やＤＭＳＯ（ジメチルスルホキシド）処理についても検討したが、すべて効果がなかった。
【００３６】
〔本発明による実施例〕
（微生物の磁性体粒子への吸着の確認）
磁性体粒子（キシダ化学（株）製「四三酸化鉄」、３２５メッシュ。以下、「マグネタイト」と略す）に対する各種細菌の吸着性を評価した。
（１）供試細菌：表５参照
【００３７】
【表５】
0003691363.tif 000004
【００３８】
（２）実験方法：５０ｍＬ平底フラスコに、蒸留水３０ｍＬとマグネタイト６０ｍｇ（０．２％）を入れ、１２１℃・１５分条件でのオートクレーブ滅菌をおこない、上記供試菌株を培養して調製した菌体懸濁液を菌数が約１０4ＣＦＵ／ｍＬとなるように添加して、振盪培養器（１６０ｒｐｍ、室温）で振盪し、磁気分離により経時的に非吸着画分を採取して、残存する細菌数を計測した。
【００３９】
（３）結果を図１に示したが、いずれの細菌も１０分間の接触で殆ど１００％吸着された。従って、マグネタイトへの細菌の吸着は、グラム陽性及び陰性の菌に共通の現象であることが認められた。（図１中Ｒｅａｃｔｉｏｎ  ｔｉｍｅ）
【００４０】
（磁性体粒子からの生菌としての脱離の検討）
大腸菌を用いて、マグネタイトに吸着した細菌を生菌として回収する脱離処理液の組成について試験をおこなった。
【００４１】
（１）マグネタイトへの吸着：上記の実験方法に同じ。
（２）マグネタイトからの大腸菌の回収：大腸菌を吸着したマグネタイトを磁気分離により回収した後、蒸留水３０ｍＬで１回洗浄した。次に、３０ｍＬの脱離処理液を加え、充分に攪拌した後、磁気分離により非吸着画分を採取し、コロニー法にて生菌数を計測した。その結果を表６に示した。
【００４２】
【表６】
0003691363.tif 000005
【００４３】
（３）結果：リン酸濃度として１０ｍｍｏｌ／Ｌ以上のリン酸緩衝液（ＫＨ2ＰＯ4／Ｎａ2ＨＰＯ4、ｐＨ７．０）の濃度の希釈溶液を用いた場合、ほぼ全て生菌として回収できた。
一方、食塩（ＮａＣｌ）水溶液、或いは、硝酸ナトリウム（ＮａＮＯ3）水溶液では濃度を５０ｍｍｏｌ／Ｌ〜２５０ｍｍｏｌ／Ｌ間で変化させても殆ど脱離せず、また硫酸ナトリウム（Ｎａ2ＳＯ4）水溶液の場合、濃度が１０ｍｍｏｌ／Ｌ以下では殆ど脱離しなかった。
【００４４】
また、エチレンジアミン四酢酸四ナトリウム水溶液の場合、濃度が１０ｍｍｏｌ／Ｌでは、約４０％が回収できたが、５０ｍｍｏｌ／Ｌ以上の濃度では逆に回収率が低下する傾向が見られた。これは、エチレンジアミン四酢酸塩（ＥＤＴＡ）の濃度が高くなると、微生物の細胞膜や細胞壁の構成成分であるマグネシウムなどの金属がＥＤＴＡによって除去され、その結果生菌としての回収率が低下するものと考えられる。
【００４５】
これらの結果から、微生物を吸着したマグネタイトの洗浄には塩化物イオン、硝酸イオンおよび硫酸イオンの中から少なくとも一つの負イオンを有し、かつ、これらの塩化物イオン、硝酸イオンおよび硫酸イオンの濃度の和が１０ｍｍｏｌ／Ｌ以下である塩溶液を用いるのが好ましく、一方、マグネタイトに吸着した微生物の脱離には１０ｍｍｏｌ／Ｌ以上のリン酸イオンを含む塩溶液が特に有効であることが判った。
【００４６】
なお、上記金属イオンを有する溶液とは別に、吸着した細菌を脱離させるのに有効と考えられる界面活性剤による細菌の脱離について検討した。
検討は界面活性剤のうち、最も細菌に対して影響が少ないと思われる非イオン性界面活性剤であるポリオキシエチレンソルビタンモノオレート（Polyoxyethylene Sorbitan Monooleate）をさまざまな濃度で希釈して検討したが、いずれの濃度であってもリン酸塩溶液に比して低い回収率であり、満足できる値ではなかった。
【００４７】
（ｐＨの影響の検討）
大腸菌を用いて、マグネタイトに吸着した細菌を生菌として回収する脱離処理液のｐＨの影響について試験した。
（１）マグネタイトへの吸着：上記の実験方法に同じ。
【００４８】
（２）マグネタイトからの大腸菌の回収：ｐＨ４．０〜８．５の１０ｍｍｏｌ／Ｌ・リン酸緩衝液を使用して、上記と同様にして、マグネタイトから脱離・回収される大腸菌の生菌数を計測した。
（３）結果：ｐＨが５．５以上８．５以下の場合で６０％以上の回収、ｐＨが６．５以上７．５以下でほぼ完全に生菌として回収された。
【００４９】
（レジオネラ属細菌での確認）
上記で大腸菌を用いて検討して得られたマグネタイトからの回収条件をレジオネラ属細菌で確認した。
Ｌｅｇｉｏｎｅｌｌａ ｂｏｚｅｍａｎｉｉ  ＧＩＦＵ９１４０（レジオネラボゼマニイ）をマグネタイトに吸着させて実験をおこなった結果、大腸菌と同様にリン酸濃度が１０ｍｍｏｌ／Ｌ以上のリン酸緩衝液でほぼ完全に生菌として回収できた。
【００５０】
（実際の空調用冷却水系水での確認）
空調用冷却塔から採取した試料水（冷却水）で、レジオネラ属細菌がコロニー法で検出され、かつ、従来の前処理方法を伴うＰＣＲによる検出で結果が偽陰性であった試料も含めて１０検体について、次のように磁性体吸着／洗浄／脱離の処理後、ＤＮＡを抽出し、ＰＣＲによる検出をおこなった。
その結果を表７に示した。
【００５１】
【表７】
0003691363.tif 000006
【００５２】
（１）磁性体粒子吸着
１ｍＬの微生物検出試料（比較例と同様の方法で調製）を１．５ｍＬマイクロチューブにとり、遠心分離（１００００ｒｐｍ、１５分）をおこなった後、沈殿に１ｍＬの１０ｍｍｏｌ／Ｌ・ＮａＣｌ水溶液を加えて懸濁させ、５０μＬのマグネタイト懸濁液（２００ｍｇ／ｍＬ蒸留水）を添加し、３０分間、充分に転倒混和させた。次いで、磁石を用いて磁気分離し、非吸着画分を捨て、該マグネタイトに１０ｍｍｏｌ／Ｌ・ＮａＣｌ水溶液ｌｍＬを加えて洗浄した。再度、磁気分離をおこない、非吸着画分を除去し、微生物を吸着させたマグネタイトにリン酸塩濃度が１０ｍｍｏｌ／Ｌになるよう希釈調整したリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）１ｍＬを加え、良く攪拌し、微生物を脱離させた。磁気分離をおこない、得られた液（脱離した微生物が存在する液）は別のマイクロチューブに移した。マグネタイトにリン酸塩濃度が１０ｍｍｏｌ／Ｌとなるように調整したリン酸緩衝液１ｍＬを加えて洗浄をおこない、脱離した微生物が存在する液と洗浄液を合わせ、ＤＮＡ抽出用試料を調製した。
【００５３】
（２）ＤＮＡ抽出
上記のＤＮＡ抽出用試料を遠心分離（１００００ｒｐｍ、１５分）し、上清画分９５０μＬを取り除いた後、５０μＬの５０ｍｍｏｌ／Ｌ・ＮａＯＨ水溶液を添加、沸騰浴水中で１５分間保持し、ＤＮＡを抽出した。次いで、１Ｍトリス塩酸緩衝液（ｐＨ７．０）１０μＬを添加して中和した。このうち１０μＬをＰＣＲ用試料とした。
（３）ＰＣＲ：従来例同様の方法に従って、レジオネラ属細菌の検出をおこなった。
【００５４】
（４）結果：吸着・磁気分離工程により、ポリメラーゼ反応阻害物質が除去され、偽陰性を示した試料もすべてＰＣＲ陽性となり、コロニー法の結果と一致した。
なお、コロニー法では検出下限以下であったためレジオネラ属細菌が検出できなかった２検体からもＰＣＲによってレジオネラ属菌の存在が検出された。このことからも本発明にかかるポリメラーゼ反応阻害物質の除去方法によれば、検出感度が著しく向上することが証明された。
【００５５】
なお、上記においては本発明のポリメラーゼ反応阻害物質の除去方法をＰＣＲによる微生物検出について応用した例について説明したが、本発明はＰＣＲによる微生物検出のみならず、その他のポリメラーゼ反応を応用する技術、たとえば鎖置換型ＤＮＡポリメラーゼを用いる遺伝子増幅法（Ｔｓｕｇｕｎｏｒｉ  Ｎｏｔｏｍｉ等：Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓａｅｒｃｈ、２８（１２），２０００）、ＲＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼを用いるＲＮＡ鎖に相補的なＤＮＡ合成、及びファージＳＰ６のＲＮＡポリメラーゼを用いるＤＮＡ鎖からのＲＮＡ合成（三浦謹一郎等編・著：「タンパク質工学」、Ｐ６０〜Ｐ８６、１９８８年発行、啓学出版）などに応用可能である。
【発明の効果】
本発明のポリメラーゼ反応阻害物質の除去方法は、微生物を磁性体粒子に吸着させ、磁石を利用した磁気分離により試料中の非吸着画分に存在するポリメラーゼ反応阻害物質を除去する吸着・磁気分離工程を有するポリメラーゼ反応阻害物質の除去方法であって、容易な操作で極めて精度の高い優れたポリメラーゼ反応阻害物質の除去方法である。
【００５６】
【配列表】
0003691363.tif 000007
0003691363.tif 000008
【図面の簡単な説明】
【図１】マグネタイトに対する各種細菌の吸着性を示す図である。
【図１】
0003691363.tif 000009