(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
いもち病菌におけるAvr-Pish遺伝子の一部若しくは全部及び/又は当該Avr-Pish遺伝子に隣接して連鎖する、配列番号１の塩基配列及び配列番号２の塩基配列により挟み込まれる領域を含むDNA断片を特異的に増幅するプライマーセットを用いて、ポリメラーゼ連鎖反応を行うことを特徴とするイネいもち病菌非病原性遺伝子検出方法。
【請求項２】
上記プライマーセットは、配列番号１の塩基配列又は該塩基配列に相補的な塩基配列を含む第1のプライマーと、配列番号２の塩基配列又は該塩基配列に相補的な塩基配列を含む第２のプライマーとを含むことを特徴とする請求項１記載のイネいもち病菌非病原性遺伝子検出方法。
【請求項３】
上記プライマーセットは、以下のI群から選ばれる第１のプライマーと、以下のII群から選ばれる第２のプライマーとからなることを特徴とする請求項１記載のイネいもち病菌非病原性遺伝子検出方法。
I群：
配列番号３の塩基配列
配列番号３の塩基配列に相補的な塩基配列
配列番号４の塩基配列
配列番号４の塩基配列に相補的な塩基配列
II群：
配列番号５の塩基配列
配列番号５の塩基配列に相補的な塩基配列
配列番号６の塩基配列
配列番号６の塩基配列に相補的な塩基配列
【請求項４】
いもち病菌におけるAvr-Piks遺伝子の一部若しくは全部及び/又は当該Avr-Piks遺伝子に隣接して連鎖する、配列番号７の塩基配列及び配列番号８の塩基配列により挟み込まれる領域を含むDNA断片を特異的に増幅するプライマーセットを用いて、ポリメラーゼ連鎖反応を行うことを特徴とするイネいもち病菌非病原性遺伝子検出方法。
【請求項５】
上記プライマーセットは、配列番号７若しくは配列番号８の塩基配列又は該塩基配列に相補的な塩基配列を含む第1のプライマーと、配列番号８の塩基配列又は該塩基配列に相補的な塩基配列を含む第２のプライマーとを含むことを特徴とする請求項４記載のイネいもち病菌非病原性遺伝子検出方法。
【請求項６】
上記プライマーセットは、以下のIII群から選ばれる第１のプライマーと、配列番号１２の塩基配列及び/又は配列番号１２の塩基配列に相補的な塩基配列を含む第2のプライマーとからなることを特徴とする請求項４記載のイネいもち病菌非病原性遺伝子検出方法。
III群：
配列番号９の塩基配列
配列番号９の塩基配列に相補的な塩基配列
配列番号１０の塩基配列
配列番号１０の塩基配列に相補的な塩基配列
配列番号１１の塩基配列
配列番号１１の塩基配列に相補的な塩基配列
【請求項７】
いもち病菌におけるAvr-Pish遺伝子の一部若しくは全部及び/又は当該Avr-Pish遺伝子に隣接して連鎖する、配列番号１の塩基配列及び配列番号２の塩基配列により挟み込まれる領域を含むDNA断片を特異的に増幅するプライマーセット。
【請求項８】
配列番号１の塩基配列又は該塩基配列に相補的な塩基配列を含む第1のプライマーと、配列番号２の塩基配列又は該塩基配列に相補的な塩基配列を含む第２のプライマーとを含むプライマーセット。
【請求項９】
以下のI群から選ばれる第1のプライマーと、以下のII群から選ばれる第2のプライマーとを含むプライマーセット。
I群：
配列番号３の塩基配列
配列番号３の塩基配列に相補的な塩基配列
配列番号４の塩基配列
配列番号４の塩基配列に相補的な塩基配列
II群：
配列番号５の塩基配列
配列番号５の塩基配列に相補的な塩基配列
配列番号６の塩基配列
配列番号６の塩基配列に相補的な塩基配列
【請求項１０】
いもち病菌におけるAvr-Piks遺伝子の一部若しくは全部及び/又は当該Avr-Piks遺伝子に隣接して連鎖する、配列番号７の塩基配列及び配列番号８の塩基配列により挟み込まれる領域を含むDNA断片を特異的に増幅するプライマーセット。
【請求項１１】
配列番号７若しくは配列番号８の塩基配列又は該塩基配列に相補的な塩基配列を含む第1のプライマーと、配列番号８の塩基配列又は該塩基配列に相補的な塩基配列を含む第２のプライマーとを含むプライマーセット。
【請求項１２】
以下のIII群から選ばれる第1のプライマーと、配列番号１２の塩基配列及び/又は配列番号１２の塩基配列に相補的な塩基配列を含む第2のプライマーとを含むプライマーセット。
III群：
配列番号９の塩基配列
配列番号９の塩基配列に相補的な塩基配列
配列番号１０の塩基配列
配列番号１０の塩基配列に相補的な塩基配列
配列番号１１の塩基配列
配列番号１１の塩基配列に相補的な塩基配列
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、イネにいもち病を生じさせるイネいもち病菌非病原性遺伝子検出方法に関し、また、このイネいもち病菌非病原性遺伝子検出方法に使用するプライマーセットに関する。
【０００２】
【従来の技術】
イネがいもち病菌に対して抵抗性を発揮するか否かは、イネ品種といもち病菌の病原性系統（レース）との組み合わせによって決定される。いもち病菌の新たなレースの出現によって、長年の努力で育成されたいもち病抵抗性品種が罹病化する現象が知られており、いもち病に影響されない安定な稲作を維持させるためには、いもち病菌の病原性変異機構の解明とともに、栽培地域に依存するレースの動向を常に把握しておく必要がある。
【０００３】
現在、いもち病菌の病原性レースは、接種した菌株に対するイネ苗の反応型によって検定されており、日本における体系では、9或いは12のレースが判別可能である。しかし、イネの病斑型は、苗の生育状態や環境条件によって変動するため、判定には熟練を要することが多い。さらに、接種胞子の調製や判別品種苗の準備にも多大な労力と時間とを必要とする。このため、レースを正確に、そしてより迅速に判定するための簡易推定法の開発が望まれている。
【０００４】
いもち病菌の病原性レースは、判別品種がもつそれぞれのいもち病抵抗性遺伝子に特異的に対応する菌の非病原性遺伝子によって決まることが知られている。従って、非病原性遺伝子のそれぞれが単離され、それらを特異的に検出する方法が確立されれば、レースの簡易推定法の開発に繋がるものと考えられている。さらに、非病原性遺伝子の単離とその機能の解析は、いもち病菌の病原性変異機構の解明にとどまらず、画期的いもち病防除法の開発やイネ品種育成の方向付けにも大きく貢献する研究分野として期待されている。
【０００５】
これまで、海外において、幾つかの非病原性遺伝子のクローニングに関しての報告があるが、塩基配列情報はAvr-Pita（Orbach, M.J., Farrall, L., Sweigard, J.A., Chumley, F.G. and Valent, B. The Plant Cell 12: 2019 - 2032 (2000))のみに限られている。また、各国・地域別に栽培イネ品種群の構成を反映していもち病菌レースの判別体系が異なるため、対象とされる非病原性遺伝子の種類は様々である。
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】
そこで、本発明は、上述したような実状に鑑み、イネいもち病菌のレースを高精度に且つ迅速に判別するための手法を確立することを可能とする、イネいもち病菌の非病原性遺伝子のうち所定の遺伝子を検出する方法及び、このイネいもち病菌非病原性遺伝子検出方法に用いるプライマーセットを提供することを目的とする。
【０００７】
【課題を解決するための手段】
以上の目的を達成するために、本発明者が鋭意検討した結果、イネいもち病菌の非病原性遺伝子のうちAvr-Pish領域及びAvr-Piks領域を含むDNA断片を特異的に増幅する複数のプライマーを設計し、これらのプライマーを用いて増幅した断片を検出することによって、イネいもち病菌における非病原性遺伝子の存在を検出できることを見出し、本発明を完成するに至った。
【０００８】
すなわち、本発明は、以下を包含する。
（１）いもち病菌におけるAvr-Pish遺伝子の一部若しくは全部及び/又は当該Avr-Pish遺伝子に隣接して連鎖する領域を含むDNA断片を特異的に増幅するプライマーセットを用いて、ポリメラーゼ連鎖反応を行うことを特徴とするイネいもち病菌非病原性遺伝子検出方法。
【０００９】
（２）上記プライマーセットは、配列番号１の塩基配列及び配列番号２の塩基配列により挟み込まれる領域を増幅するように設計することを特徴とする（１）記載のイネいもち病菌非病原性遺伝子検出方法。
【００１０】
（３）上記プライマーセットは、配列番号１の塩基配列又は該塩基配列に相補的な塩基配列に基づいて設計した第1のプライマーと、配列番号２の塩基配列又は該塩基配列に相補的な塩基配列に基づいて設計した第２のプライマーとを含むことを特徴とする（１）記載のイネいもち病菌非病原性遺伝子検出方法。
【００１１】
（４）上記第1のプライマーは以下のI群から選ばれ、上記第2のプライマーは以下のII群から選ばれることを特徴とする（３）記載のイネいもち病菌非病原性遺伝子検出方法。
I群：
配列番号３の塩基配列
配列番号３の塩基配列に相補的な塩基配列
配列番号４の塩基配列
配列番号４の塩基配列に相補的な塩基配列
II群：
配列番号５の塩基配列
配列番号５の塩基配列に相補的な塩基配列
配列番号６の塩基配列
配列番号６の塩基配列に相補的な塩基配列
【００１２】
（５）いもち病菌におけるAvr-Piks遺伝子の一部若しくは全部及び/又は当該Avr-Piks遺伝子に隣接して連鎖する領域を含むDNA断片を特異的に増幅するプライマーセットを用いて、ポリメラーゼ連鎖反応を行うことを特徴とするイネいもち病菌非病原性遺伝子検出方法。
【００１３】
（６）上記プライマーセットは、配列番号７の塩基配列及び配列番号８の塩基配列により挟み込まれる領域を増幅するように設計することを特徴とする（５）記載のイネいもち病菌非病原性遺伝子検出方法。
【００１４】
（７）上記プライマーセットは、配列番号７若しくは配列番号８の塩基配列又は該塩基配列に相補的な塩基配列に基づいて設計した第1のプライマーと、配列番号８の塩基配列又は該塩基配列に相補的な塩基配列に基づいて設計した第２のプライマーとを含むことを特徴とする（５）記載のイネいもち病菌非病原性遺伝子検出方法。
【００１５】
（８）上記第1のプライマーは以下のIII群から選ばれ、上記第2のプライマーは配列番号１２の塩基配列及び/又は配列番号１２の塩基配列に相補的な塩基配列を含むものであることを特徴とする（７）記載のイネいもち病菌非病原性遺伝子検出方法。
III群：
配列番号９の塩基配列
配列番号９の塩基配列に相補的な塩基配列
配列番号１０の塩基配列
配列番号１０の塩基配列に相補的な塩基配列
配列番号１１の塩基配列
配列番号１１の塩基配列に相補的な塩基配列
【００１６】
（９）配列番号１の塩基配列又は該塩基配列に相補的な塩基配列に基づいて設計した第1のプライマーと、配列番号２の塩基配列又は該塩基配列に相補的な塩基配列に基づいて設計した第２のプライマーとを含むプライマーセット。
【００１７】
（１０）上記第1のプライマーが以下のI群から選ばれるものであり、上記第2のプライマーが以下のII群から選ばれるものであることを特徴とする（９）記載のプライマーセット。
I群：
配列番号３の塩基配列
配列番号３の塩基配列に相補的な塩基配列
配列番号４の塩基配列
配列番号４の塩基配列に相補的な塩基配列
II群：
配列番号５の塩基配列
配列番号５の塩基配列に相補的な塩基配列
配列番号６の塩基配列
配列番号６の塩基配列に相補的な塩基配列
【００１８】
（１１）配列番号７若しくは配列番号８の塩基配列又は該塩基配列に相補的な塩基配列に基づいて設計した第1のプライマーと、配列番号８の塩基配列又は該塩基配列に相補的な塩基配列に基づいて設計した第２のプライマーとを含むプライマーセット。
【００１９】
（１２）上記第1のプライマーが以下のIII群から選ばれるものであり、上記第2のプライマーが配列番号１２の塩基配列及び/又は配列番号１２の塩基配列に相補的な塩基配列を含むことを特徴とする（１１）記載のプライマーセット。
III群：
配列番号９の塩基配列
配列番号９の塩基配列に相補的な塩基配列
配列番号１０の塩基配列
配列番号１０の塩基配列に相補的な塩基配列
配列番号１１の塩基配列
配列番号１１の塩基配列に相補的な塩基配列
【００２０】
【発明の実施の形態】
以下、本発明に係るイネいもち病菌非病原性遺伝子検出方法を詳細に説明する。
本方法は、イネいもち病菌の非病原性遺伝子を検出する方法である。本方法において、判別対象となるイネいもち病菌は、完全世代であるMagnaporthe grisea、不完全世代であるPyricularia griseaまたは Pyricularia. oryzaeを意味する。
【００２１】
本方法は、イネいもち病菌における非病原性遺伝子であるの一つであるAvr-Pish遺伝子及び/又はAvr-Piks遺伝子の存在を検出する方法である。本方法は、Avr-Pish遺伝子領域及び/又はAvr-Piks遺伝子領域をポリメラーゼ連鎖反応（以下、PCR）によって増幅する。本方法においては、Avr-Pish遺伝子領域及びAvr-Piks遺伝子領域のいずれか一方を検出しても良いし、両方を逐次又は同時に検出しても良い。
【００２２】
ここで、Avr-Pish遺伝子領域とは、Avr-Pish遺伝子の一部又は全部を含むDNA断片、或いは、Avr-Pish遺伝子の近傍に位置して当該Avr-Pish遺伝子と密接に連鎖する領域を含むDNA断片を意味する。Avr-Piks遺伝子領域も、同様にAvr-Piks遺伝子の一部又は全部を含むDNA断片、或いは、Avr-Piks遺伝子の近傍に位置して当該Avr-Piks遺伝子と密接に連鎖する領域を含むDNA断片を意味する。
【００２３】
本方法においては、Avr-Pish遺伝子及び/又はAvr-Piks遺伝子の全長を増幅する必要はなく、少なくとも当該遺伝子の一部をPCRによって増幅するか又は当該遺伝子の近傍のDNA断片を増幅することによって、Avr-Pish遺伝子及び/又はAvr-Piks遺伝子の存在を検出することができる。
【００２４】
これらAvr-Pish遺伝子領域及び/又はAvr-Piks遺伝子領域を検出するPCRには、Avr-Pish遺伝子及びAvr-Piks遺伝子について分子連鎖地図を作成し、この分子連鎖地図を基にそれぞれの遺伝子と密接に連鎖するマーカーをクローニングして塩基配列の一部を決定し、マーカーの塩基配列に基づいて設計したプライマーを使用する。
【００２５】
ここで、分子連鎖地図は、通常の方法を適用して作成することができる。例えば、分子連鎖地図は、Avr-Pish遺伝子及びAvr-Piks遺伝子の存在が同定されているイネいもち病菌の交配親系統及び交配後代を用いて、各遺伝子と連鎖するマーカーを検索することによって作成することができる。マーカーとしては、AFLP（Amplified restriction Fragment Length Polymorphism）マーカー、RAPD（Random Amplified Polymorphism DNA）マーカー等を用いることができる。
PCRに使用するプライマーは、分子連鎖地図上におけるAvr-Pish遺伝子に密接に連鎖するマーカー及びAvr-Piks遺伝子に密接に連鎖するマーカーをそれぞれクローニングし、それぞれのマーカーの塩基配列情報に基づいて設計することができる。
【００２６】
例えば、Avr-Pish遺伝子に密接に連鎖するマーカーとしては、配列番号１に示す201bpからなるE1F及び、配列番号２に示す173bpからなるE1Rを例示することができる。すなわち、Avr-Pish遺伝子の存在を検出するためには、これらE1Fから第1のプライマー及びE1Rから第2のプライマーを設計することができる。
【００２７】
Avr-Pish遺伝子の存在を検出するための第1のプライマーとしては、限定されないが例えば、
5’-ACG CAC AAC CGA TCC AAC CGC -3’（配列番号３：以下、PshF1と呼ぶ）
5’-TGC CGC ATC ACC TCG GTG TAT -3’（配列番号４：以下、PshF4と呼ぶ）
を挙げることができる。また、Avr-Pish遺伝子の存在を検出するための第２のプライマーとしては、限定されないが例えば、
5’-ACG CAC AAC CAA CAA ATT AGG -3’（配列番号５：以下、PshR1と呼ぶ）
5’-ATA TAC AGG TAG ACC AGA GTC -3’（配列番号６：以下、PshR4と呼ぶ）
を挙げることができる。
なお、配列番号１の塩基配列の相補的な塩基配列から設計した第1のプライマーと配列番号２の塩基配列の相補的な塩基配列から設計した第2のプライマーとを組み合わせてPCRに使用しても、Avr-Pish遺伝子の存在を検出することができる。
【００２８】
具体的に、PshF1及びPshR1を用いてPCRを行うと、Avr-Pish遺伝子が存在する可能性が高い場合には約4000bpの塩基配列が増幅される。PshF1及びPshR4を用いてPCRを行うと、Avr-Pish遺伝子が存在する可能性が高い場合には約3900bpの塩基配列が増幅される。PshF4及びPshR1を用いてPCRを行うと、Avr-Pish遺伝子が存在する場合には約3900bpの塩基配列が増幅される。PshF4及びPshR4を用いてPCRを行うと、Avr-Pish遺伝子が存在する場合には約3700bpの塩基配列が増幅される。
【００２９】
一方、Avr-Pish遺伝子が存在しない場合には、PshF1及びPshR1を用いてPCRを行うと約2300bpの塩基配列が増幅されるか又はDNA断片が増幅されない。Avr-Pish遺伝子が存在しない場合には、PshF4及びPshR4を用いてPCRを行うと約2000bpの塩基配列が増幅されるか又はDNA断片が増幅されない。
【００３０】
また、Avr-Piks遺伝子に密接に連鎖するマーカーとしては、配列番号７に示す200bpからなるH1F及び、配列番号８に示す171bpからなるH1Rを例示することができる。すなわち、Avr-Piks遺伝子の存在を検出するためには、これらH1F若しくはH1Rから第1のプライマー及びH1Rから第2のプライマーを設計することができる。
【００３１】
Avr-Piks遺伝子の存在を検出するための第1のプライマーとしては、限定されないが例えば、
5’-CTC AGC TGG CAG CCG TGG TAC -3’（配列番号９：以下、PksF1と呼ぶ）
5’-ACC GAT TCT TTC TGT CGT GTT -3’（配列番号１０：以下、PksF2と呼ぶ）
5’-CCA CTA CTC CGT ATG TTT CGG -3’（配列番号１１：以下、PksF3と呼ぶ）
を挙げることができる。Avr-Piks遺伝子の存在を検出するための第２のプライマーとしては、限定されないが例えば、
5’-CTC AGC TGG GTG GTG TAA GAT -3’（配列番号１２：以下、PksR1と呼ぶ）
を挙げることができる。
なお、配列番号７の塩基配列の相補的な塩基配列から設計した第1のプライマーと配列番号８の塩基配列の相補的な塩基配列から設計した第2のプライマーとを組み合わせてPCRに使用しても、Avr-Piks遺伝子の存在を検出することができる。
【００３２】
具体的に、PksF1及びPksR1を用いてPCRを行うと、Avr-Piks遺伝子が存在する可能性が高い場合には約1200bp又は約4700bpの塩基配列が増幅される。PksF2及びPksR1を用いてPCRを行うと、Avr-Piks遺伝子が存在する可能性が高い場合には約1000bp又は約2600bpの塩基配列が増幅される。PksF3及びPksR1を用いてPCRを行うと、Avr-Piks遺伝子が存在する可能性が高い場合には約168bpの塩基配列が増幅される。ここで、PksF1及びPksR1を用いて約1200bpの塩基配列が増幅される場合には、PksF2及びPksR1を用いた場合に約1000bpの塩基配列が増幅される。PksF1及びPksR1を用いて約4700bpの塩基配列が増幅される場合には、PksF2及びPksR1を用いた場合に約2600bpの塩基配列が増幅される。
【００３３】
上述したようにPCRに使用するプライマーの組み合わせによって、イネいもち病菌の非病原性遺伝子の存在様式に応じて異なる長さのDNA断片が増幅されるか又は全くDNA断片が増幅されない。本方法では、所定のプライマーセットを用いた場合のDNA断片の長さを測定することによって、イネいもち病菌におけるAvr-Pish遺伝子及び/又はAvr-Piks遺伝子の存在を判定することができる。
【００３４】
PCRに使用する鋳型DNAは、対象となるイネいもち病菌から抽出されたゲノムDNAや、ゲノムDNA用いて調製したゲノムDNAライブラリー、対象となるイネいもち病菌全RNAから調製したcDNAライブラリー等をいずれも使用することができる。
このような鋳型DNAは、Dioh, W., Tharreau, D., Notteghem, J. L., Orbach, M. and Lebrun, M-H, Mol. Plant-Microbe Interact. 13(2): 217-227 (200)等に記載されるように、定法に従って調製することができる。
【００３５】
PCRによって増幅されたDNA断片を検出する際には、例えば、アガロースゲル電気泳動、ポリアクリルアミドゲル電気泳動等の手法を使用することができる。PCRによって増幅されたDNA断片を検出することによって、判別対象のイネいもち病菌におけるAvr-Pish遺伝子及び/又はAvr-Piks遺伝子の存在を判定することができる。具体的には、電気泳動等の手法を用いることによって、DNA断片の有無や、増幅したDNA断片の長さ等を検出し、その結果に基づいてイネいもち病菌におけるAvr-Pish遺伝子及び/又はAvr-Piks遺伝子の存在を判定することができる。
【００３６】
【実施例】
以下、実施例を用いて本発明を更に詳細に説明するが、本発明の技術範囲は以下の実施例に限定されるものではない。
実施例１
本例では、日本産および中国産の併せて15菌株について非病原性遺伝子Avr-Pish遺伝子の存在を判定した。先ず、これらのイネいもち病菌をPDB（potato dextrose broth）培地を用いて25℃、96時間静置培養し、ろ紙上に新鮮な菌体を回収した。回収した菌体はセルラーゼ及びノボザイムを含む酵素液に懸濁してプロトプラスト化した後、遠心操作によって再び回収した。そして、回収した菌体を抽出用緩衝液（50mM トリス塩酸緩衝液(pH8.0)、50mM エチレンジアミン四酢酸、3% ドデシル硫酸ナトリウム、1% 2-メルカプトエタノール）に懸濁して粗DNA液を得た。粗DNA液をリボヌクレアーゼAで処理した後、フェノール、クロロホルムおよびセチルトリメチルアンモニウムブロミドで順次精製した。次に、精製したDNA液に含まれるDNAをイソプロパノールによって沈澱させ、遠心して得られたペレットを70％エタノールで洗浄後乾燥し、適当量のTE（10mM トリス塩酸緩衝液(pH8.0)、1mM エチレンジアミン四酢酸）緩衝液に溶解した。
【００３７】
PCRに際しては、0.1×TE緩衝液を用いて得られたDNA溶液を10ng/μlの濃度に希釈した。このようにして得られたDNA溶液に対して、宝酒造株式会社製のEx Taq DNAポリメラーゼと添付バッファー（10×Buffer、20mM Mg2+ plus）を用いて、10ng/μl DNA溶液 2μl、10×Buffer 2μl、各2.5mM dNTP ミクスチャー（dATP、dGTP、dCTP、dTTP）1.6μl、一対のプライマー（1μMのPshF4及び1μMのPshR4）各2.5μl、蒸留水、Ex Taq DNAポリメラーゼ 0.5ユニットを加えて総量20μlの反応液とした。そして、反応液を94℃で3分間熱変性を行い、さらに94℃・1分、62℃・1分、72℃・2分の3段階の温度時間変化の操作を25回繰り返し、最後に72℃・５分の伸長反応を付加することでPCRを行った。これらの操作はパーキンエルマー社のDNAサーマルサイクラー（GeneAmp PCR System 9600）を用いて行った。
【００３８】
PCR終了後、反応液3μlを1％アガロースゲル電気泳動に供し、臭化エチジウムで染色後、紫外線を照射して増幅したDNA断片を検出した。DNA断片の長さは、同時に泳動した分子量マーカーとの相対泳動度の比較により算出した。結果を図１に示す。図１に示すように、15菌株中３菌株で約2,700bpのDNA断片が検出された。
【００３９】
いもち病抵抗性遺伝子Pi-shをもつイネ品種は、約2,700bpのDNA断片が検出された菌株に対して抵抗性を示した。この結果から、PshF4及びPshR4を用いてPCRを行うことによって、イネいもち病非病原性遺伝子Avr-Pishが存在するか否かを判定できることが明らかとなった。
【００４０】
実施例２
本例では、PCRに際して1μMのPksF3及び1μMのPksR1を用いた以外は実施例１と同様にPCRを行った。PCR終了後、反応液3μlを2％アガロースゲル電気泳動に供し、臭化エチジウムで染色後、紫外線を照射して増幅したDNA断片を検出した。結果を図２に示す。図2に示すように、15菌株中9菌株で約170bpの断片が検出された。
【００４１】
いもち病抵抗性遺伝子Pi-ksをもつイネ品種は、約170bpのDNA断片が検出された菌株に対して抵抗性を示した。この結果から、PksF3及びPksR1を用いてPCRを行うことによって、イネいもち病非病原性遺伝子Avr-Piksが存在するか否かを判定できることが明らかとなった。
【００４２】
【発明の効果】
以上詳細に説明したように、本発明によれば、イネいもち病菌における非病原性遺伝子の存在を高精度に且つ迅速に判定することができるイネいもち病菌非病原性遺伝子検出方法を提供することができる。本発明に係るイネいもち病菌非病原性遺伝子検出方法を用いることによって、対象となるイネいもち病菌に非病原性遺伝子が存在するか否かを正確に且つより迅速に判定することができ、イネいもち病菌レースの簡易推定方法の開発に繋がるとともに栽培地域に存在するレースの動向等の把握に利用することができる。また、本発明に係るイネいもち病菌非病原性遺伝子検出方法は、非病原性遺伝子の存在を判定できるため、非病原性遺伝子を離する際にも適用することができる。
【００４３】
【配列表】
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【００４４】
【配列表フリーテキスト】
配列番号３〜６：合成プライマー。
配列番号９〜１２：合成プライマー。
【図面の簡単な説明】
【図１】  PshF4及びPshR4を用いてPCRを行った結果を示す1％アガロースゲル電気泳動写真である。
【図２】  PksF3及びPksR1を用いてPCRを行った結果を示す2％アガロースゲル電気泳動写真である。
【図１】
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【図２】
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