(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
非加熱の生麦を納豆菌によって発酵することで生産されることを特徴とする高機能性麦。
【請求項２】
前記高機能麦を乾燥、粉末化して得られる高機能麦粉。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【産業上の利用分野】
本発明は、納豆菌によって発酵することで生産される発酵生成物に関する。
【０００２】
【従来の技術】
麦は、全世界的に生産され、食用に供されるものである。しかし、麦自体の栄養価はそれほど高いものではない。麦を発酵させて生産される食品の代表がパンである。パンの製造に際しては、小麦粉に食塩、砂糖等を加えてイースト菌で発酵させてパン生地を作ることが第１段階である。この過程で、アミラーゼの作用により小麦粉の生デンプンが加水分解されてマルトースができ、それにイースト菌が働いて二酸化炭素とアルコールを生じる。これによって、生地に含まれるグルテンとあいまって海綿状にふくれるわけである。
【０００３】
ところで、麦や大豆等は納豆菌によって発酵可能であることが知られている。そのうち、納豆菌による大豆の固体培養は、一般の納豆製造に用いられる。また、納豆菌によっておからを発酵させて飼料を生産する方法が既に提案されている。更に、オートクレーブ処理した大麦又は蒸煮した大麦を納豆菌によって発酵できる事については既に報告されている。
【０００４】
【発明が解決しようとする課題】
しかしながら、オートクレーブ処理、蒸煮等の加熱処理を施した麦を納豆菌で発酵させる場合には、発酵生成物としての麦の用途が限定されてしまう。すなわち、生麦の状態では主成分はβ−デンプンであり酵素の作用を受け難く、消化も悪いが、それを成形後、加熱するとパンなどに加工できる。一方、オートクレーブ処理、蒸煮等の加熱を行って生じたα−デンプンは冷えると糊化してしまい、パンや菓子への成形ができない。
【０００５】
従って、本発明の目的は、幅広い用途に利用できる新規な高機能性麦を提供することにある。
【０００６】
【課題を解決するための手段】
本発明に係る高機能性麦は、非加熱の生麦を納豆菌で発酵させることによって生産される。本発明においては、ナットウキナーゼ活性を指標にして納豆菌による数種類の麦類での固体培養を試験した。特に、大麦及び小麦はオートクレーブ等の加熱処理をしたもの以外に、生の状態でも発酵可能なことを見いだした。また、生の麦を納豆菌で発酵することにより、ビタミンＫが生産されること及び遊離アミノ酸含量も大きく変化することなどが同時に確認された。
【０００７】
納豆菌によって発酵させることによって生産される本発明の高機能性麦は、通常の麦に比べ、ナットウキナーゼ，ビタミンＫ２の他に、Ｐｈｅ（フェニルアラニン），Ｌｙｓ（リジン），ＧＡＢＡ（γ−アミノ酪酸）が飛躍的に増加する。すなわち、本発明者は、今まで存在しなかった極めて高機能の麦を生産することに成功したのである。
【０００８】
また、発酵させた麦は生であるため、オートクレーブ処理、蒸煮等の加熱処理を施した麦のように用途が限定されることなく、通常の麦と同様に扱うことが可能となる。
【０００９】
【発明の実施の形態】
以下、本発明の実施の形態について、納豆菌による各種麦の固体培養を行った際の実験結果を基に説明する。実験は、オートクレーブ処理をした麦と、生の麦との両方に対して行った。
【００１０】
実験材料・方法
１）供試材料
使用する麦類としては、大粒大麦、小粒大麦、はだか麦(山陽精麦株式会社  倉敷)、普通小麦、ビール大麦、普通はだか麦(岡山食糧事務所  倉敷)、オーストラリア産小麦(半鐘屋  岡山)、大麦(丸麦)は（プロフーズ  岡山）を使用した。
納豆菌 (Bacillus natto NB-1 株)は、目黒研究所(大阪)より提供された生菌数４×１０１１個／ｇのものを使用した。牛血漿フィブリノーゲンは、Sigma社（米国）製のものを使用した。トロンビンは、持田製薬社（東京）のものを使用した。Suc-A1a-A1a-Pro-Phe-pNAは、Sigma社（米国）製のものを使用した。塩酸(アミノ酸自動分析計用)は、ナカライのものを使用した。その他用いた試薬類は全て特級品である。
【００１１】
２）納豆菌による固体培養
それぞれの麦類１０ｇを水道水(室温)に浸漬後、シャーレ内で１２０℃、１５分間のオートクレーブ処理を行ったもの、及び同量の生の状態のものに、０．１ｇの目黒菌を接種して攪拌後、３７℃で、１〜１０日間の固体培養を行なった。
【００１２】
３）ナットウキナーゼ活性の測定
ナットウキナーゼ活性は、人工血栓(フィブリン平板)溶解法で測定した。フィブリン平板の調製に用いるフィブリノーゲンは、終濃度０．６％のものを使用し、トロンビンの添加は２．５Ｕ／０．５ｍｌで行った。活性測定に際しては、試料として発酵物を５０℃で乾燥後、粉末化したもの０．１ｇに対して０．９ｍｌの生理食塩水を加え攪拌した。これを遠心分離（６０００ｒｐｍ、１０分）し、得られた上清３０μｌをフィブリン平板上にのせて３７℃で、４〜１８時間インキュベーションした。これによって生じる溶解窓の面積(長径×短径  ｍｍ２)を測定した。また、その面積を臨床用の血栓溶解剤ウロキナーゼ(吉富製薬、東京)での検量線からウロキナーゼの国際単位（ＩＵ）に換算した。
【００１３】
合成アミド基質分解能は、ナットウキナーゼの基質として知られているSuc-A1a-A1a-Pro-Phe-pNAを用いて遊離して生じるパラニトロアニリン（ｐＮＡ）の吸光度４０５ｎｍで測定した。基質は、５×１０−３ＭになるようにＤＭＳＯに溶解した。吸光度の測定は９６穴we11p1ate 内に試料を３０μｌ、０．１Ｍのリン酸緩衝液−生理食塩水、ｐＨ７．４を２４０μｌ加えた。試料は、発酵物を５０℃で乾燥後、粉末にしたもの０．１ｇに対して生理食塩水０．９ｍｌを加え、攪拌し、遠心分離（６０００ｒｐｍ、１０分）して得られた上清を１０倍（酵素活性の強いものは１００倍）に希釈したものを用いた。
【００１４】
その後、基質３０μｌを加えて最終基質濃度５×１０−４Ｍとし、これを３７℃でインキュベーションした。これによって起こる１分間当りの吸光度の変化よりｐＮＡ量(ｎ  ｍｏｌｅ)を算出した。この方法は、「Claeson. G, Friberger. P, Kno. M, and Eriksson. E:Heamotosis, 7: 76 (1978)」に示されている。
【００１５】
４）ナットウキナーゼ阻害活性の測定
フィブリン平板法でのナットウキナーゼに対する阻害活性の測定に際しては、最初に、試験管に純化したナットウキナーゼ（２６００Ｆｕ／ｇ）を生理食塩水５０倍に希釈した液０．１ｍと；生の丸麦を５０℃で乾燥した後、粉末にしたもの０．１ｇと、生理食塩水０．９ｍｌを攪拌し遠心分離(６０００ｒｐｍ  １０分)して得られた上清の希釈液０．３ｍｌと；ｐＨ７．４の０．１Ｍリン酸緩衝液−生理食塩水０．６ｍｌとを攪拌した。その後、３７℃で３０分間のプレインキュベーションを行なった後、この反応液３０μｌをフィブリン平板にのせ、３７℃で４〜１８時間のインキュベーションを行って測定した。
【００１６】
合成基質分解能でのナットウキナーゼに対する影響の検証に際しては、最初に、ナットウキナーゼ（２６００Ｆｕ／ｇ）の１００００倍希釈液３０μｌと；丸麦の生理食塩水抽出物の希釈液１０μｌと；ｐＨ７．４の０．１Ｍリン酸緩衝液−生理食塩水２３０μｌと；を９６穴 well plate 内に入れ、３７℃で３０分プレインキュベーションした。その後、同様にSuc-A1a-A1a-Pro-Phe-pNA を加えて、３７℃でインキュベーションした後、吸光度４０５ｎｍを測定した。
【００１７】
５）ビタミンＫ２の分析
発酵物を５０℃で乾燥して粉末化したもの１ｇに対して、１００ｍｌのメタノールを用い、ソックスレーの抽出装置で抽出を行った。この抽出液０．５ｍｌに蒸留水０．５ｍｌ、イソプロパノール１．５ｍｌを混和し、ヘキサン５．０ｍｌを加えて撹幹した。その後、２０℃、１０分間１．７１０×ｇで遠心分離し、上清のヘキサン画分４ｍｌをエバポレーターで濃縮し、１００μｌのエタノールで溶解したものを試料として既に報告されているＨＰＬＣ法によって分析した。ＨＰＬＣ法については、「須見洋行、柳沢泰任、岸本憲明:日本農会誌, 73: 599(1999)」に示されている。
【００１８】
６）アミノ酸の分析
麦類およびその発酵物を０．０２Ｎ塩酸でホモジナイス後、０．２μｍメンブランフィルターで濾過したものを試料として、高速アミノ酸分析計(日立８３５型、日立Ｄ−７００型インテグレーション)で分析した。
【００１９】
実験結果
１）大麦（丸麦）
図１は、大麦をオートクレーブ処理したものを納豆菌で発酵させた場合の発酵日数とフィブリン溶解活性及び発酵物のｐＨとの関係を示すグラフであり、３７℃でナットウキナーゼのフィブリン分解活性を調べる際のフィブリン平板のインキュベーション時間を４時間、１８時間とした場合に分けて示す。大麦のオートクレーブ処理物の発酵によるフィブリン溶解活性のピークは、３７℃で１日目であった。その後、活性は徐々に減少し、１０日目になるとほとんどが消失した（図１）。
【００２０】
図２は、生（非処理）の大麦を納豆菌で発酵させた場合の発酵日数とフィブリン溶解活性及び発酵物のｐＨとの関係を示すグラフであり、３７℃でナットウキナーゼのフィブリン分解活性を調べる際のフィブリン平板のインキュベーション時間を４時間、１８時間とした場合に分けて示す。生状態の発酵においても、３７℃で１日目に活性のピークが認められた。その後、活性は２日目より急激に消失した（図２）。
【００２１】
両条件下（生、オートクレーブ処理）でのフィブリン溶解活性のピーク値は、オートクレーブ処理物では、１６９ｍｍ２／３０μｌ／３７℃、４ｈｒｓであった。一方、生の状態では、３９ｍｍ２／３０μｌ／３７℃、４ｈｒｓであった。ウロキナーゼを標準として国際単位（ＩＵ）に換算すると、各々１００ｇ当り約４０万ＩＵ及び約３万ＩＵに相当した。
【００２２】
図３は、大麦をオートクレーブ処理したものを納豆菌で発酵させた場合の発酵日数と合成アミド分解活性（Ａｂｓ４０５）との関係を示すグラフであり、３７℃で活性を調べる際のインキュベーション時間を１時間、２時間、４時間とした場合に分けて示す。図４は、生の大麦を納豆菌で発酵させた場合の発酵日数と合成アミド分解活性（Ａｂｓ４０５）との関係を示すグラフであり、３７℃でのインキュベーション時間を１時間、２時間、４時間とした場合に分けて示す。
【００２３】
図５は、ナットウキナーゼ活性の漸減現象について、尿素の濃度とフィブリン溶解活性及びｐＨとの関係を示すグラフであり、３７℃で測定する際のインキュベーション時間を４時間、１８時間とした場合に分けて示す。図６は、ナットウキナーゼ活性の変化について、尿素の濃度と合成アミド分解活性（Ａｂｓ４０５）との関係で示すグラフであり、３７℃で測定する際のインキュベーション時間を１時間、２時間、４時間とした場合に分けて示す。図７は、２Ｍの尿素を共存させた場合のナットウキナーゼ活性の変化について、発酵日数とフィブリン溶解活性及び発酵物のｐＨとの関係を示すグラフであり、３７℃で活性測定する際のインキュベーション時間を４時間、１８時間とした場合に分けて示す。図８は、２Ｍの尿素を共存させた場合の発酵日数と合成アミド分解活性（Ａｂｓ４０５）との関係を示すグラフであり、３７℃で活性測定する際のインキュベーション時間を１時間、２時間、４時間とした場合に分けて示す。
【００２４】
合成基質分解能は、オートクレーブ処理物では吸光度４０５ｎｍの変化量から計算すると、約６９０ｎ  ｍｏｌｅ／ｍｉｎ／ｍｌであった（図３）。一方、生の状態では、約１００ｎ  ｍｏｌｅ／ｍｉｎ／ｍｌであった（図４）。なお、ピーク後、これらのナットウキナーゼ活性の漸減現象は、３日間の固体培養時に０．５〜２Ｍの尿素を共存させることによって消失することが分かった（図５〜図８）
【００２５】
図９は、大麦の生理食塩水抽出液のナットウキナーゼ活性阻害について、希釈度とフィブリン溶解活性に対する阻害及び発酵物のｐＨとの関係を示すグラフであり、３７℃でのインキュベーション時間を４時間、１８時間とした場合に分けて示す。また、図１０は、大麦抽出液のナットウキナーゼ活性阻害について、希釈度と合成アミド分解活性（Ａｂｓ４０５）に対する影響の関係を示すグラフであり、３７℃で活性測定する際のインキュベーション時間を１時間、２時間、４時間とした場合に分けて示す。
【００２６】
生の丸麦中にある酵素阻害物質の活性を測った結果（図９，図１０）、純化したナットウキナーゼ（２６００Ｆｕ／ｇ）に各種濃度の丸麦の生理食塩水抽出液を添加するとフィブリン溶解活性及び合成基質分解の両活性がともに強力に阻害されることが分かった。
【００２７】
図１１は、納豆菌発酵麦中のビタミンＫ２（メナキノン−７）の含有量を示すグラフであり、１Ｍ尿素存在下で１０日発酵後の試料を用いたＨＰＬＣパターンで示す。なお、矢印はメナキノン−７のリテンション時間（約１８分目）を示す。納豆菌による大麦の発酵により、元々存在しなかったビタミンＫがメナキノン−７（ビタミンＫ２）として、１００ｇ当たり約９．５ｍｇという高含有量で検出された（図１１）。
【００２８】
２）小麦
図１２は、小麦をオートクレーブ処理したものを納豆菌で発酵させた場合の発酵日数とフィブリン溶解活性及び発酵物のｐＨとの関係を示すグラフであり、３７℃で活性測定する際のインキュベーション時間を４時間、１８時間とした場合に分けて示す。また、図１３は、生（非処理）の小麦を納豆菌で発酵させた場合の発酵日数とフィブリン溶解活性及びｐＨとの関係を示すグラフであり、３７℃で活性測定する際のインキュベーション時間を４時間、１８時間とした場合に分けて示す。納豆菌による小麦発酵でのフィブリン溶解活性のピーク値は、オートクレーブ処理物では２６４ｍｍ２／３０μｌ／３７℃  ４ｈｒｓ、生の状態では、３３２ｍｍ２／３０μｌ／３７℃  ４ｈｒｓであった（図１２，図１３）。各々ウロキナーゼ換算すると、１００ｇ当り約１７０万ＩＵ及び約３６０ＩＵに相当した。
【００２９】
図１４は、小麦をオートクレーブ処理したものを納豆菌で発酵させた場合の発酵日数と合成アミド分解活性（Ａｂｓ４０５）との関係を示すグラフであり、３７℃で活性測定する際のインキュベーション時間を１時間、２時間、４時間とした場合に分けて示す。また、図１５は、生の小麦を納豆菌で発酵させた場合の発酵日数と合成アミド分解活性（Ａｂｓ４０５）との関係を示すグラフであり、３７℃で活性測定する際のインキュベーション時間を１時間、２時間、４時間とした場合に分けて示す。納豆菌による小麦発酵での合成基質分解能は、ｐＮＡ変化量から計算して、オートクレーブ処理物では約１２６０ｎ  ｍｏｌｅ／ｍｉｎ／ｍｌであった。生の状態では、４日目で約１３０ｎ  ｍｏｌｅ／ｍｉｎ／ｍｌであった（図１４，図１５）。
【００３０】
生小麦発酵物のビタミンＫ２濃度を調べた結果を図１６に示す。ＨＰＬＣパターンの変化により、納豆菌発酵でメナキノン−７が生産されることが分かった。その含有量は、乾燥物１００ｇ当たり、図の上から順に、発酵前が０ｍｇであったのに対して、発酵１日目が０．０３ｍｇ、２日目が０．１７ｍｇ、４日目が０．３１ｍｇ、６日目が１．５１ｍｇであった。１０日目は、再び減少して０．０３ｍｇであった。一般の納豆が１００ｇ当たり８７０μｇ（科学技術庁：日本食品分析表  医歯薬出版、１９９１年）であることを考えると、最大値はその約２倍であり、ＦＤＡで推奨されている成人男子の１日の必要量８０μｇを摂るには、この発酵物５ｇで良いことを意味する。
【００３１】
３）他の麦類での検討
図１７は、各種の麦をオートクレーブ処理したものを納豆菌で発酵させた場合の発酵日数とフィブリン溶解活性との関係を示すグラフであり、３７℃で測定する際のインキュベーション時間を４時間、１８時間とした場合に分けて示す。図１８は、生（非加熱処理）の各種の麦を納豆菌で発酵させた場合の発酵日数とフィブリン溶解活性との関係を示すグラフであり、３７℃で測定する際のインキュベーション時間を４時間、１８時間とした場合に分けて示す。図１９は、各種の麦をオートクレーブ処理したものを納豆菌で発酵させた場合の発酵日数と合成アミド分解活性（Ａｂｓ４０５）との関係を示すグラフであり、３７℃で測定する際のインキュベーション時間を１時間、２時間、４時間とした場合に分けて示す。図２０は、生の各種の麦を納豆菌で発酵させた場合の発酵日数と合成アミド分解活性（Ａｂｓ４０５）との関係を示すグラフであり、３７℃で測定する際のインキュベーション時間を１時間、２時間、４時間とした場合に分けて示す。
【００３２】
７種類の麦(大粒大麦、小粒大麦、はだか麦、オーストラリア産小麦など)での固体培養を試みた結果、活性に差はあるものの、オートクレーブ処理物及び生の全てにフィブリン分解及び合成アミド基質分解の両活性が認められた（図１７〜２０）。
【００３３】
図２１は、７種類の納豆菌発酵麦中のフェニルアラニン含有量を示すグラフであり、３７℃で６日間発酵させて得られた発酵物中の遊離アミノ酸を自動分析機にかけて分析したものである。数値は、各々非発酵物であるコントロール、生での発酵物及び加熱処理（オートクレーブ処理）後の発酵物を示す。図２２は、７種類の納豆菌発酵麦中のリジン含有量を示すグラフであり、３７℃で６日間発酵させて得られた発酵物中の遊離アミノ酸を自動分析機にかけて分析したものである。数値は、各々非発酵のコントロール、生での発酵物及び加熱処理（オートクレーブ処理）発酵物を示す。
【００３４】
発酵物の遊離アミノ酸量をアミノ酸自動分析装置で分析した結果、特にPhe,Lysの増加することが分かった。最高値は各々１４５ｍｇ／１００ｇ及び１１６ｍｇ／１００ｇであった。すなわち、発酵前の約２９０倍及び３５倍に増加したことになる（図２１，図２２）。Ｐｈｅ（フェニルアラニン）の増加により、麦の栄養価が著しく高まった。Ｌｙｓ（リジン）は、米を主食とするときに欠乏しやすい必須アミノ酸であり、通常の麦には微量しか含まれていない。
【００３５】
図２３は、７種類の納豆菌発酵麦中のＧＡＢＡ（γ−アミノ酪酸）含有量を示すグラフであり、３７℃で６日間発酵させて得られた発酵物中の遊離アミノ酸類を自動分析機にかけて分析したものである。数値は、各々非発酵物のコントロール、生での発酵物及び加熱処理（オートクレーブ処理）後の発酵物を示す。
【００３６】
グルタミン酸の誘導体であるＧＡＢＡ(γ−アミノ酪酸)量については、特に生の発酵物では著しく増加し、最高値を示したオーストラリア産小麦では、非発酵物の２．１ｍｇ／１００ｇに比べて８６．７ｍｇ／１００ｇと約４０倍の増加であった(図２３)。ＧＡＢＡは、精神安定、リラクゼーション効果、血圧降下作用などがあると言われている。なお、ＧＡＢＡは、全ての麦類でオートクレーブ処理物で非発酵物より減少した。
【００３７】
考察
ナットウキナーゼ活性を指標として納豆菌による麦類の発酵を試験し、全ての固体培養で成功した。また、今回初めて麦類が生の状態でも発酵可能であることを明らかにした。その際、大麦(丸麦)発酵物はフィブリン溶解活性のピークが３７℃、１日目という、一過性の活性発現であることか分かった。
【００３８】
上述したように、殆どの麦において、ナットウキナーゼ活性が確認され、抽出されたナットウキナーゼの今後の活用が期待される。特に、小麦はパン製造など世界の主要穀類として用いられているため、今回の発明は重要な意味を持つと思われる。
【００３９】
ビタミンＫ２は、骨細胞の一種のカルシウム結合性タンパクとして重要なオステオカルシンの合成に必要な成分である。このため、今日の社会的問題になっている老人性痴呆症などの血栓性疾患あるいは骨組髭症の予防に効く新しい食品素材として応用可能である。
【００４０】
以上説明したように、本発明による高機能性麦は、生麦を納豆菌によって発酵させることによって生産される。その結果、ナットウキナーゼ，ビタミンＫ２の他に、Ｐｈｅ（フェニルアラニン），Ｌｙｓ（リジン），ＧＡＢＡ（γ−アミノ酪酸）が飛躍的に増加する。すなわち、本発明者は、今まで存在しなかった極めて高機能の麦を生産することに成功したのである。
【００４１】
以上、本発明の実施例（実施形態、実施態様）について説明したが、本発明はこれらの実施例に何ら限定されるものではなく、特許請求の範囲に示された技術的思想の範疇において変更可能なものである。
【図面の簡単な説明】
【図１】図１は、大麦をオートクレーブ処理したものを納豆菌で発酵させた場合の発酵日数とフィブリン溶解活性及び発酵物のｐＨとの関係を示すグラフであり、３７℃でのインキュベーション時間を４時間、１８時間とした場合に分けて示す。
【図２】図２は、生（非処理）の大麦を納豆菌で発酵させた場合の発酵日数とフィブリン溶解活性及び発酵物のｐＨとの関係を示すグラフであり、３７℃でのインキュベーション時間を４時間、１８時間とした場合に分けて示す。
【図３】図３は、大麦をオートクレーブ処理したものを納豆菌で発酵させた場合の発酵日数と合成アミド分解活性（Ａｂｓ４０５）との関係を示すグラフであり、３７℃でのインキュベーション時間を１時間、２時間、４時間とした場合に分けて示す。測定は、Suc-Ala-Ala-Pro-Phe-pNAを基質とした比色法で行われた。
【図４】図４は、生の大麦を納豆菌で発酵させた場合の発酵日数と合成アミド分解活性（Ａｂｓ４０５）との関係を示すグラフであり、３７℃でのインキュベーション時間を１時間、２時間、４時間とした場合に分けて示す。測定は、Suc-Ala-Ala-Pro-Phe-pNAを基質とした比色法で行われた。
【図５】図５は、尿素の濃度とナットウキナーゼのフィブリン溶解活性及び発酵物のｐＨとの関係を示すグラフであり、３７℃でのインキュベーション時間を４時間、１８時間とした場合に分けて示す。
【図６】図６は、尿素の濃度とナットウキナーゼの合成アミド分解活性（Ａｂｓ４０５）との関係を示すグラフであり、３７℃でのインキュベーション時間を１時間、２時間、４時間とした場合に分けて示す。
【図７】図７は、２Ｍの尿素を共存させた場合のナットウキナーゼ活性への影響について、発酵日数とフィブリン溶解活性及び発酵物のｐＨとの関係を示したグラフであり、３７℃でのインキュベーション時間を４時間、１８時間とした場合に分けて示す。
【図８】図８は、２Ｍの尿素を共存させた場合のナットウキナーゼ活性への影響について、発酵日数と合成アミド分解活性（Ａｂｓ４０５）との関係を示したグラフであり、３７℃でのインキュベーション時間を１時間、２時間、４時間とした場合に分けて示す。
【図９】図９は、大麦抽出液のナットウキナーゼ活性阻害について、希釈度とフィブリン溶解活性及び発酵物のｐＨとの関係を示すグラフであり、３７℃でのインキュベーション時間を４時間、１８時間とした場合に分けて示す。
【図１０】図１０は、大麦抽出液のナットウキナーゼ活性阻害について、希釈度と合成アミド分解活性（Ａｂｓ４０５）との関係を示すグラフであり、３７℃でのインキュベーション時間を１時間、２時間、４時間とした場合に分けて示す。
【図１１】図１１は、納豆菌発酵麦中のビタミンＫ２（メナキノン−７）の含有量を示すグラフであり、１Ｍ尿素存在下で１０日発酵後の試料を用いた場合のＨＰＬＣパターンで示す。なお、矢印はメナキノン‐７のリテンション時間（約１８分目）を示す。
【図１２】図１２は、小麦をオートクレーブ処理したものを納豆菌で発酵させた場合の発酵日数とフィブリン溶解活性及び発酵物のｐＨとの関係を示すグラフであり、３７℃でのインキュベーション時間を４時間、１８時間とした場合に分けて示す。
【図１３】図１３は、生（非処理）の小麦を納豆菌で発酵させた場合の発酵日数とフィブリン溶解活性及び発酵物のｐＨとの関係を示すグラフであり、３７℃でのインキュベーション時間を４時間、１８時間とした場合に分けて示す。
【図１４】図１４は、小麦をオートクレーブ処理したものを納豆菌で発酵させた場合の発酵日数と合成アミド分解活性（Ａｂｓ４０５）との関係を示すグラフであり、３７℃でのインキュベーション時間を１時間、２時間、４時間とした場合に分けて示す。
【図１５】図１５は、生の小麦を納豆菌で発酵させた場合の発酵日数と合成アミド分解活性（Ａｂｓ４０５）との関係を示すグラフであり、３７℃でのインキュベーション時間を１時間、２時間、４時間とした場合に分けて示す。
【図１６】図１６は、生の小麦を納豆菌で発酵させた場合のビタミンＫ２濃度の変化をＨＰＬＣパターンによって示すグラフである。なお、メナキノン−７はリテンション時間約１８分目のピークとして溶出される。
【図１７】図１７は、各種の麦をオートクレーブ処理したものを納豆菌で発酵させた場合の発酵日数とフィブリン溶解活性との関係を示すグラフであり、３７℃でのインキュベーション時間を４時間、１８時間とした場合に分けて示す。
【図１８】図１８は、生（非処理）の各種の麦を納豆菌で発酵させた場合の発酵日数とフィブリン溶解活性との関係を示すグラフであり、３７℃でのインキュベーション時間を４時間、１８時間とした場合に分けて示す。
【図１９】図１９は、各種の麦をオートクレーブ処理したものを納豆菌で発酵させた場合の発酵日数と合成アミド分解活性（Ａｂｓ４０５）との関係を示すグラフであり、３７℃でのインキュベーション時間を１時間、２時間、４時間とした場合に分けて示す。
【図２０】図２０は、生の各種の麦を納豆菌で発酵させた場合の発酵日数と合成アミド分解活性（Ａｂｓ４０５）との関係を示すグラフであり、３７℃でのインキュベーション時間を１時間、２時間、４時間とした場合に分けて示す。
【図２１】図２１は、７種類の納豆菌発酵麦中のフェニルアラニン含有量を示すグラフであり、３７℃で６日間発酵させて得られた発酵物中の遊離アミノ酸を自動分析機にかけて分析したものである。数値は、各々非発酵物であるコントロール、生での発酵物及び加熱処理（オートクレーブ処理）発酵物を示す。
【図２２】図２２は、７種類の納豆菌発酵麦中のリジン含有量を示すグラフであり、３７℃で６日間発酵させて得られた発酵物中の遊離アミノ酸を自動分析機にかけて分析したものである。数値は、各々非発酵物であるコントロール、生での発酵物、および加熱処理（オートクレーブ処理）後の発酵物を示す。
【図２３】図２３は、７種類の納豆菌発酵麦中のＧＡＢＡ（γ−アミノ酪酸）含有量を示すグラフであり、３７℃で６日間発酵させて得られた発酵物中の遊離アミノ酸を自動分析機にかけて分析したものである。数値は、各々非発酵物であるコントロール、生での発酵物、および加熱処理（オートクレーブ処理）発酵物を示す。
【図１】
0003639273.tif 000002
【図２】
0003639273.tif 000003
【図３】
0003639273.tif 000004
【図４】
0003639273.tif 000005
【図５】
0003639273.tif 000006
【図６】
0003639273.tif 000007
【図７】
0003639273.tif 000008
【図８】
0003639273.tif 000009
【図９】
0003639273.tif 000010
【図１０】
0003639273.tif 000011
【図１１】
0003639273.tif 000012
【図１２】
0003639273.tif 000013
【図１３】
0003639273.tif 000014
【図１４】
0003639273.tif 000015
【図１５】
0003639273.tif 000016
【図１６】
0003639273.tif 000017
【図１７】
0003639273.tif 000018
【図１８】
0003639273.tif 000019
【図１９】
0003639273.tif 000020
【図２０】
0003639273.tif 000021
【図２１】
0003639273.tif 000022
【図２２】
0003639273.tif 000023
【図２３】
0003639273.tif 000024