(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
少なくともその糖結合部位が改変されたレクチンを少なくとも１つ以上含むレクチン群により構成されているか、或いは所定の糖鎖を有する細胞若しくは擬細胞体に対してパニングすることにより選別したレクチンを少なくとも１つ以上含むレクチン群により構成されるレクチンライブラリを使用した糖鎖解析方法。
【請求項２】
前記糖結合部位の改変が遺伝子工学的手法により行われることを特徴とする請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記少なくともその糖結合部位が改変されたレクチンがMaackia amurensis hemagglutinin由来である請求項２に記載の方法。
【請求項４】
請求項１乃至３のいずれか一項に記載の糖鎖解析方法を用いることを特徴とする細胞の分類及び／又は同定方法。
【請求項５】
前記細胞の分類及び／又は同定においてクラスター解析を利用することを含む請求項４に記載の方法。
【請求項６】
前記レクチンライブラリ内のレクチンを所定の分布で固定した固体支持体を用いることを特徴とする請求項１乃至５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項７】
前記固体支持体において、レクチンが細胞の分類及び／又は同定のための適切な順列で配列されていることを特徴とする請求項６に記載の方法。
【請求項８】
前記固体支持体上で糖鎖の識別パターンを表示させることを含む請求項６又は７に記載の方法。
【請求項９】
前記固体支持体がチップの形態である請求項６乃至８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１０】
表示された糖鎖の識別パターンをクラスター解析することで細胞の分類及び／又は同定を行うことを特徴とする請求項８に記載の方法。
【請求項１１】
糖鎖解析に基づく疾病診断用ツールの製造における請求項１に記載のレクチンライブラリの使用。
【請求項１２】
前記疾病診断用ツールが前記レクチンライブラリ内のレクチンを所定の分布で固定したチップの形態である請求項１１に記載の使用。
【発明の詳細な説明】
技術分野
本発明は、レクチンを用いて細胞表面等にある糖鎖を解析する技術に関する。特に、糖鎖を解析するレクチンを使用した糖鎖解析用ライブラリ及びサブライブラリ、並びに、当該糖鎖解析用ライブラリ及びサブライブラリを使用して糖鎖を解析する方法に関する。また、本発明は、所定の細胞に対してその種類の同定を簡易かつ確実に行ない得る、レクチンを使用した細胞同定用ライブラリ及びサブライブラリ、並びに当該細胞同定用ライブラリ及びサブライブラリを使用して細胞の種類の同定を行う方法に関する。
背景技術
近年、糖鎖に書き込まれた暗号を解読することができれば、生物学に新しい地平が開かれるといわれている。多様な糖鎖を解析するためのツールとして、また生体内で暗号を読みとっている分子候補として、糖結合蛋白質（レクチン）が挙げられる。しかし、糖鎖の多様性との対応を適切にさせるため、ひとつひとつのレクチンではマクロな情報はえられない。
即ち、糖鎖の多様性に適切に対応できる多種類のレクチンを必要数得ることができれば、多様な糖鎖を解析するためのツールとして大いに期待できることになる。
発明の開示
本発明では、以上のような課題に鑑み、複数種類のレクチンを含むレクチンライブラリから、糖鎖解析に必要なレクチンを選択し、レクチンサブライブラリを形成する。また、形成したレクチンサブライブラリを用いて糖鎖を持つ細胞の同定を行う。更に、細胞同定が簡便に行える表示方法を提供する。即ち、1種類のレクチンで糖鎖を特定することは困難であるが、種類の異なるレクチンを組合わせたレクチンサブライブラリでは、糖鎖の特定も可能である。また、たとえ糖鎖の特定ができなくとも糖鎖の違いとして現れる細胞の違い（種類、正常・異常の区別等を含む）や糖蛋白質の糖修飾の違いや糖鎖をマーカーのようにぶら下げた物質の識別等の糖鎖識別ツールとして用いることができる。逆に、細胞の違いや糖蛋白の糖修飾の違いや糖鎖マーカーとの対応が明確であれば、糖鎖の構造に触れることなく、レクチンライブラリとの関係から、上述の細胞の違いや糖蛋白の糖修飾の違いや糖鎖マーカーを識別できることになる。
特に、本発明においては以下のようなものを提供する。
（１）所定の部位が予め改変されることにより作成された一連のレクチン群により構成されているか、若しくは、所定の糖鎖を有する細胞若しくは擬細胞体を使用してパニングされた複数の種類のレクチンにより構成される糖鎖解析レクチンサブライブラリ。ここで、パニングは、複数の種類のレクチンから構成されるレクチンライブラリに対して行ってよい。尚、サブライブラリの構成要素の一部が欠けていたとしても、全体としてサブライブラリの機能が保たれる場合は、サブライブラリに含むことができる。レクチンライブラリについても同様にライブラリの構成要素の一部が欠けていたとしても、全体としてライブラリの機能が保たれる場合は、ライブラリに含むことができる。
（２）所定の部位が予め改変されることにより作成された一連のレクチン群により構成されているか、若しくは、所定の糖鎖を有する細胞若しくは擬細胞体を使用してパニングされた複数の種類のレクチンにより構成される細胞同定レクチンサブライブラリを使用した糖鎖解析方法。
（３）上記（１）に記載されたレクチンサブライブラリを用いた疾病診断用ツール。
（４）糖鎖識別を行うために選別されたレクチンを含むレクチン固定部が、糖鎖識別を行うのに適切な順列で配列された固体支持体。ここで、レクチン固定部は、ウェルのようなようなものであってよく、単なるスポット（外的なものによる境界が特に設けられていない場所等）であってもよく、それ以外のレクチンを固定できる部分や場所であってよい。また、固体支持体は、チップであってもよく、プレートであってもよく、その他の固体のものであってレクチン固定部を含むことができるものであってよい。
（５）前記選別されたレクチンは、所定のレクチンを生成する遺伝子の一部を改変することによって得られたレクチンであることを特徴とする上記（４）に記載の固体支持体。
（６）前記所定のレクチンが、ＭＡＨレクチンであることを特徴とする上記（５）に記載の固体支持体。
（７）糖鎖識別を行うために選別されたレクチンを含むレクチン固定部が、糖鎖識別を行うのに適切な順列で配列された固体支持体を用いて細胞識別パターンを表示させる方法。
（８）前記選別されたレクチンは、所定のレクチンを生成する遺伝子の一部を改変することによって得られたレクチンであることを特徴とする上記（７）に記載の表示方法。
（９）前記所定のレクチンが、ＭＡＨレクチンであることを特徴とする上記（８）に記載の表示方法。
（１０）細胞表面の糖鎖に対して特異的に結合し得る異なる種類のレクチンを所定の分布で固定した糖鎖解析用固体支持体。
（１１）  少なくとも２種類の糖鎖と結合性がわかっている複数のレクチンの内、前記２種類の糖鎖との結合性の相対差が大きいレクチンのうち少なくとも１つを用いた糖鎖識別ツール及び方法。ここで、結合性の相対差は、例えば、あるレクチンと１の種類の糖鎖との結合性をＡとし、もう１つの種類の糖鎖との結合性をＢとした場合であって、ＡがＢより大きい場合に、（Ａ−Ｂ）／（（Ａ＋Ｂ）／２）で表すことができる。結合性の相対差が大きいというのは、例えば、結合性の相対差を前記複数のレクチンの全てのレクチンに対して行った場合、相対差の全平均よりも大きいとしてもよく、また、相対差を大きい順に並べた場合に大きいものから所定の順番（例えば、１、２、３、４、等）までのものをそのように表現してもよい。ここで、糖鎖識別ツールは、糖鎖識別を行うのに適切な順列（分布）で配列された固体支持体を含んでよい。
（１２）前記２種類の糖鎖との結合性の相対差が小さいレクチンのうち少なくとも１つを更に用いた上記（１１）に記載の糖鎖識別ツール及び方法。ここで、相対差が小さいというのは、例えば、結合性の相対差を前記複数のレクチンの全てのレクチンに対して行った場合、相対差の全平均よりも小さいとしてもよく、また、相対差を小さい順に並べた場合に小さいものから所定の順番（例えば、１、２、３、４、等）までのものをそのように表現してもよい。
一般に、レクチンは、糖鎖を特異的に認識し、結合する蛋白質の総称で、大きく動物レクチンと植物レクチンに大別される。植物レクチンのなかではマメ科のレクチンが大きなレクチンファミリーを形成している。分子量３万のサブユニットの２量体または４量体からなる。サブユニットあたり、一つの糖鎖認識部位を持つ。また、レクチンは、「酵素や抗体を除く多価の糖結合性タンパク質、もしくは糖タンパク質」と狭義に定義づけられることがあり、「糖鎖を特異的に認識して結合、架橋形成するタンパク質」とより広く定義することも可能であり、糖鎖の多くの種類を実質的に識別できる可能性を有する。特に糖鎖の多様性は、それを作った細胞の多様性に通じるものがあり、糖鎖の識別を通して細胞の識別をすることができると考える。
レクチンは、抗体と異なり特定の器官や組織に限定されずほとんどすべての生物の中に見出されている。また、抗体は類似な構造を持っているのに対して、レクチンは構造的に多様である。
本願では、このような多種多様なレクチンの一例として、マメ科のレクチンを取り上げ、本願発明を完成させた。従って、同様な手法により、マメ科以外のレクチンを用いて同様なことをすることができ、本願の発明の内容は、かかるマメ科のレクチンに限られるものでないことは言うまでもない。
例えば、ある糖鎖に対して所定の特異な結合性を有するレクチンを分離等し、それをそのままレクチンライブラリに提供してもよく、或いは分離されたレクチンの糖結合部位に関連する部分の少なくとも一部を遺伝子工学的手法でランダムに改変し、このようにランダムに改変された複数のレクチンを含むレクチンライブラリを提供してもよい。ここで、「ある糖鎖に対して」という意味は、具体的には与えられた糖鎖の少なくとも一部について、糖鎖自体が定義づけられた場合であってもよく、また、たとえ糖鎖自身の構造がわからなくても糖鎖を生成する方法によって糖鎖が特定される場合であってもよい。また、糖蛋白質の糖修飾の程度に違い（又は異常）がある場合等もレクチン又はレクチンライブラリの特異な結合性に違いが生じることもあり、これも「ある糖鎖に対して」特異な結合性を有している例としてよい。また、例えば、ある細胞が生成する糖鎖は、その細胞を特定することにより糖鎖が特定され、ひいては、細胞の種類により糖鎖が異なることから、「ある細胞に対して」と読み替えても良い場合がある。更に、同一細胞であっても、その糖鎖を生成する環境により糖鎖に差異が生じるならば、同一細胞のある時期（例えば分化前段階や分化状態）を特定するものとしてよい場合もある。疾患や加齢等によって細胞表面や糖蛋白質の糖修飾の程度に違い（又は異常）があることがあるからである。
「特異な結合性を有するレクチン」とあるのは、全てのレクチンが同一の糖鎖に特異な結合性を有するとは限らないからである。つまり、ここで親レクチンは「特異な結合性を有する」ので、改変によって得られる複数の子レクチンも同様に「特異な結合性を有する」可能性が高いと考えられる。但し、改変された複数のレクチンは、相互にその結合性が異なると考えられ、親とも結合性が異なると考えられる。即ち、同一の糖鎖に対して結合性の異なる複数のレクチンが得られることになるであろう。
「その糖結合部位に関連する部分の少なくとも一部」とあるのは、レクチンは、糖結合部位に関連して糖鎖の種類を認識するからで、また、レクチンの分子全体と限らず、レクチンのある部分で糖鎖を認識するからである。「少なくとも一部」とされるのは、全てを改変する必要が必ずしもないからである。
「遺伝子工学的手法で」とあるのは、レクチンの改変は完成したレクチンを化学的に改変するのは、困難であるばかりか効率も良くないため、レクチンの「その糖結合部位に関連する部分」を生成する遺伝子を特定し、遺伝子的に改変を加えた後に当該遺伝子を大腸菌のような適当なホストに移植し、改変されたレクチンを生成させる手法をいう。また、「ランダムに改変」とあるのは、遺伝子的にランダムに改変される場合であってもよく、結果として得られるレクチンがランダムになるように、所定の遺伝子を改変する場合であってもよい。尚、ここで改変には、遺伝子の長さが変わらず各塩基の種類が変更されることだけでなく、遺伝子の長さが長くなったり、短くなったりすることを含む。このことは、生成された改変レクチンにおいて同様である。
このようにして得られた複数のレクチンを含むレクチンの集合体をレクチンライブラリと呼んでよい。複数のレクチンを含むのは、一種類では、多様な糖鎖を識別するのに十分ではないからである。
レクチンライブラリのレクチンの改変位置を所定のところにしたのは、糖鎖を認識する部位がレクチン全体とは限らずある特定の部位であり、そのような効果的な部位を改変することにより、好ましいレクチンライブラリを得ることができると考えられるからである。但し、レクチンライブラリの効果は、実験結果から判断できる場合もあると考えられ、改変部位をそのような位置に限定しなければならないとは限らない。
レクチンライブラリを用いて糖鎖を同定（又はある糖鎖を持つ細胞を同定）する方法とは、上述のようなレクチンライブラリから、所定の糖鎖と複数種のレクチンとの結合性（くっつきやすさ）を調べ、結合性有り（くっつく）と無し（くっつかない）の２種類又はその中間を足した３種類、或いは、より程度を増やした多段階評価（若しくはアナログ評価）で分類し、糖鎖の種類を複数種のレクチンとの結合性で識別する方法のことをいう。また。結合性の識別をパターンで解析することを含んでよい。
結合性の判定法は種々考えられるが、例えば、標準サンプルを作っておき、それとの比較により、判断してよい。
ここで、「所定の糖鎖を有する細胞若しくは擬細胞体」は、基本的には細胞表面に発現されている糖鎖若しくはこれの擬似体を含むことができる。例えば、Ａという細胞についてレクチンサブライブラリを作成する場合は、通常Ａ若しくはＡ擬似体が含まれうる。また、「糖鎖解析」とは、糖鎖を有する細胞の同定、血清蛋白質の糖修飾（グライコフォーム）の診断、疾病診断、その他の解析を含み、「糖鎖解析方法」は、これらのことを行う方法を含む。所定の部位が予め改変されることにより作成された一連のレクチン群により構成されているか、若しくは、所定の糖鎖を有する細胞若しくは擬細胞体を使用してパニングされることにより選別された複数種類の複数レクチンにより構成される糖鎖解析レクチンサブライブラリを用いた疾病診断用ツールとは、疾病（又は健康）状態により細胞の糖鎖の構造（又は状態）や糖蛋白質の糖修飾等に違いが現れる場合であって、このような違いに対して該レクチンサブライブラリとの結合性の違いの対応がとれている場合に、該糖鎖等と該レクチンサブライブラリとの結合性の変化を調べることができ、疾病（又は健康）状態を判別することができるツール（診断薬、診断装置、等）のことであってよい。このとき、糖鎖の構造（又は状態）を認定することは、必ずしも必要としない。
また、「糖鎖識別を行うために選別されたレクチンを含むレクチン固定部が、糖鎖識別を行うのに適切な順列で配列された」というのは、「細胞識別を行うために選別されたレクチンを含むウェル又はスポットが、細胞識別を行うのに適切な順列で配列された」を含む広い概念であり、「細胞識別を行うために選別されたレクチンを含むウェル又はスポットが、細胞識別を行うのに適切な順列で配列された」とあるのは、視覚的にパターンを認識しやすくなるように、予め決められた位置に選別されたレクチンを含むウェル（well）又はスポットを配列することを含み、標準パターンを作成した場合は、その標準パターンに準じた位置に上記ウェル又はスポットを配列することを含む。ここで、「表示させる」は、直接・間接のいずれであってもよい。また、同チップを用い視覚的にいうなれば、パターン情報に該当する情報を得、それを基に細胞同定をすることができる。但し、視覚的にいうなればパターン情報であっても、その数が膨大である場合は、肉眼その他の方法での目視では不十分なことが多く、コンピュータを用いて、クラスター解析等により、細胞同定を行ってもよい。クラスター解析では、どの部分に比較したいもの（例えば、標準と検討対象物、又は、コントロールと比較物）の違いが大きく出ているかをコンピュータを利用して調べることであってよく、一般のクラスター解析ソフトを用いることもできる。
「異なる種類のレクチンを所定の分布で固定した糖鎖解析用固体支持体」の「所定の分布で固定」とは、異なる種類のレクチンを固定する位置が目的の細胞若しくは疾病診断により決めてよいことを意味する。また、異なる細胞若しくは疾病診断を対象とする時は、これらの所定の分布は異なっていてよい。同様に、上記「細胞識別を行うために選別されたレクチンを含むウェルが、細胞識別を行うのに適切な順列で配列されたチップ」では、目的の細胞若しくは疾病診断により適切な配列が種々存在していてもよく、逆に、目的の目的の細胞若しくは疾病診断に合わせて配列を最適化すると好ましい。固体支持体は、チップであってもよく、プレートであってもよく、その他の固体のものであってレクチン固定部を含むことができるものであってよい。即ち、「糖鎖解析用固体支持体」は、「糖鎖解析用試験プレート」を含んでよい。「糖鎖解析用試験プレート」は、ろ紙のような紙を使った試験紙を含み、ガラス板やその他の材質の基材の上に所定のレクチンを固定したものも含んでよい。ここで、その他の材質の基材は、合成樹脂（プラスチックを含む）、金属（白金、銀、銅、金、シリコン、等を含む）、雲母、及び、これらの混合物を含んでよい。このような「糖鎖解析用試験プレート」は、診断薬としても用いることが可能である。
【図面の簡単な説明】
第１図は、ＭＡＨ糖鎖認識ドメインの変異の生成を示す図である。
第２図は、イソプロピルチオガラクトシドにより誘発された形質転換大腸菌での組換えＭＡＨ変異レクチンの発現を示す図である。
第３図は、１６個の変異ＭＡＨクローンの糖鎖認識ドメインのアミノシークエンスを導出した結果を示す図である。
第４図は、１６個の変異レクチン（変異ＭＡＨレクチン）の異種動物の赤血球に対する赤血球凝集活性を示す図である。
第５図は、ＭＡＨ糖結合部位の変異状態を示す図である。
第６図は、野生型ＭＡＨを発現しているファージの抗ＭＡＨ抗体に対する結合性を示す図である。
第７図は、野生型ＭＡＨを発現しているファージのヒトグライコフォリンに対する結合性を示す図である。
第８図は、パニングにより得られたヒト赤血球に特異的なクローンの糖鎖特異性を示す図である。
第９図は、各クローン（１〜１８）のＣａｃｏ−２細胞への結合活性を通常のｃｅｌｌ−ＥＬＩＳＡ法で測定した結果を示す図である。
第１０図は、各クローン（１９〜３５）のＣａｃｏ−２細胞への結合活性を通常のｃｅｌｌ−ＥＬＩＳＡ法で測定した結果を示す図である。
第１１図は、分化型および未分化型Ｃａｃｏ−２細胞のレクチンライブラリにおける結合パターンを示す図である。
第１２図は、異なる細胞の市販レクチンに対する結合パターンを示す図である。
第１３図は、レクチンチップの一例およびその使用方法（ＩｇＡについて）を示す図である。
第１４図は、レクチンチップの一例およびその使用方法（骨芽細胞の分化度プロファイリングについて）を示す図である。
発明の詳細な説明
以下具体的な例を基に、より詳しく本願の発明を説明する。
シアル酸を含む糖鎖に特異的なマメ科レクチンであるMaackia amurensis hemagglutinin（ＭＡＨ）の糖結合部位に関連すると思われる部分の少なくとも一部を遺伝子工学的手法でランダムに改変し、ランダムに改変したレクチンから複数の種類の異なる糖鎖のバリエーションを見分けられる人工のレクチンのライブラリを作製した。また、２）得られた人工レクチンライブラリを利用して、種類の異なる細胞への結合パターンから細胞の種類の違いを見分けることを試みた。そして、３）人工レクチンライブラリから、生物学的に重要な糖鎖に特異的なレクチンを選別するための、スクリーニング系を確立することができた。
ここで、哺乳類の細胞には、わずかな構造上の差異を有する多様な複合糖質が存在していることが知られている。また、このように多様な構造を識別できるレクチンを生成することは非常に有用である。
これらのレクチンは、Maackia amurensis hemagglutinin（ＭＡＨ）から遺伝子工学的手法により得ることができる。
このレクチンは、糖鎖がシアル酸残基、即ち、Neu5Acα2-3Galβ1-4GlcNAc(5)からなる炭化水素配列を認識することができる。また、別のイソレクチンエンジニアリングであるMaackia amurensis leukoagglutinin（ＭＡＬ）は、Neu5Acα2-3Galβ1-3(Neu5Acα2-6)GalNAc(4)配列を特異的に認識することができ、この両者のレクチンは、マメ科植物（legume）や他のレクチンの間でも独特なものである。
ＭＡＨは、相対分子量（relative molecular mass）29,000であり、サブユニットのダイマーからなる。
ＭＡＨにエンコードされたcDNAのヌクレオチド配列及びそれから導き出されたアミノ酸配列では、ＭＡＨは287のアミノ酸からなり、30のアミノ酸シングルペプチドを含んでいることを示している。
推定されているＭＡＨの糖鎖認識ドメインは、そのアミノ酸シーケンスを他のマメ科植物（legume）のレクチン(7)のアミノ酸シーケンスと比較すること、及び、ＭＡＨにその結合特性を賦与するこれらのアミノ酸により定義されるこのドメインの遺伝的変異の古くからの研究により同定された。
また、Neu5Acα2-3Galβ1-3(Neu5Acα2-6)GalNAc(8)を含むＭＡＨの３次元構造のコンピューターモデルから、これらの観察が確認された。
第１図のＡ〜Ｃは、ＭＡＨ糖鎖認識ドメインの変異の生成を示す図である。Ａは、変異を導入する部分的重複延長法（overlap extension method）を示す概略図である。Ｂは、ＭＡＨの糖鎖認識ドメインの変異の生成を示す図である。Ｃは、アガロースゲル電気泳動による変異ＭＡＨのＤＮＡの同定を示す図である。Ｃにおいて、レーン１は生成物ＡＢ（〜400bp）、レーン２は生成物ＣＤ（〜400bp）、レーン３は生成物ＡＤ（〜800bp）、レーン４は野生種のＭＡＨのＤＮＡ（〜800bp）、ＭはＤＮＡマーカー（100bp DNA Ladder，ライフテクノロジーズインクMD USA（Life Technologies, Inc., Md, USA））である。
第２図は、イソプロピルチオガラクトシド（isopropyl hiogalactoside）により誘発された形質転換大腸菌（transformed E. coli）での組換えＭＡＨ変異レクチンの発現を示す図である。Ａは、組換え変異ＭＡＨレクチンのポリアクリルアミドゲル電気泳動分析の結果を示す図である。Ｂは、組換え変異ＭＡＨレクチンとアンチ−ＭＡＨポリクローナル抗体とのウエスタン−ブロッティング分析の結果を示す図である。第２図において、レーンＮはpGEX-2Tプラスミドを含む大腸菌（E. coli）、レーンＰはpGEX-2T-野生種MAHプラスミドを含む大腸菌（E. coli）、レーン１〜１６はpGEX-2T-変異ＭＡＨプラスミド（それぞれクローン１〜１６に対応する）を含む大腸菌（E. coli）である。また、相対分子量（relative molecular masses）を左側に示し、矢じり状のものは組換えＭＡＨ変異レクチンを示している。
第３図は、１６個の変異ＭＡＨクローンの糖鎖認識ドメインのアミノ酸配列を導出した結果を示す図である。
第４図は、１６個の変異レクチンの異種動物の赤血球に対する赤血球凝集活性を示す図である。活性は、最大赤血球凝集活性を１として、それぞれの変異レクチンの最小赤血球凝集濃度（minimum hemagglutination concentration）の相対値により示される。番号１〜１６はクローン１〜１６を示し、番号１７はネガティブコントロール（ＧＳＴ）を示している。
＜実施例１＞
［人工レクチンライブラリの作製］
種々のマメ科レクチンのアミノ酸配列と糖結合部位の構造から得られた情報に基づき、ＭＡＨレクチンの285個のアミノ酸のうち、糖結合部位である127番目から137番目の部分の塩基配列を合成オリゴヌクレオチドをプライマーとして用いてオーバーラップエクステンションＰＣＲによりランダム化した。ただし、シアル酸との相互作用に必須と考えられるアスパラギン酸135、また金属イオンとの配位に必須と考えられるアスパラギン酸127とヒスチジン132は固定した（第５図）。ダイターミネーター法でＤＮＡ配列を決定したところ、変異ＭＡＨの場合、最初に固定した３つのアミノ酸を除いてすべて異なり、ランダム化が達成されていることがわかった。
［レクチンライブラリを用いた細胞の分別同定］
作製したレクチンライブラリをpGEXベクターに組み込んで大腸菌にＧＳＴ融合蛋白質として発現させた。ランダムに50個のクローンをとり、そのうち、タンパクを発現していると思われる16個のクローンを得た。抗ＭＡＨポリクローナル抗体でウエスタンブロッティング（Western blotting）を行ったところ、すべてのクローンが反応性を示した。これらのクローンのＤＮＡ配列を決定したところ、糖結合部位のアミノ酸配列は、固定したアミノ酸を除いてすべてのクローンで異なることがわかった。
得られた16クローンの糖結合特異性の違いを利用して、シアル酸を含むが、構造の異なる糖鎖をその表面に発現していると思われる、異種動物の赤血球の分別同定を試みた。第４図は、各々の赤血球に対する最大凝集力価をフルスケール1とし、16クローンの異なるレクチンによる凝集力価を比較しグラフで表わした結果である。各々の赤血球が16種の変異レクチンによる凝集力価の相対強度に関して固有な特性を示すことがわかった。
この実験から、複数のレクチンを利用することによって結合パターンにより細胞の種類の違いを見分けることができることが示唆された。
［ファージライブラリの作製］
人工レクチンライブラリの応用のひとつとして、生物学的に有用な糖鎖に特異的なレクチンを選別することが考えられる。選別を行うためには発現クローニングができ、多数のライブラリを扱うことのできる系を用いる必要がある。そこで、ファージディスプレイシステムを導入した。発現ベクターであるλfoo、次にT7ファージディスプレイシステムを試みた。しかし、レクチンを発現させたファージが遺伝子をもたないファージに比べ増殖が遅くなり、パニングによる目的ファージの濃縮は困難であることが判明した。（但し、このことは、発現ベクターであるλfoo又はT7ファージディスプレイシステムが本発明から排除されることを意味するとは限らない。）
ここで、パニングとは、ファージ上に発現した蛋白質を、その蛋白質が結合する物質（例えば抗原と抗体、レクチンと糖鎖、レセプターとリガント、等）との結合能を利用してファージを回収する手法のことをいい、例えば、ファージに発現させた蛋白質との結合する相手物質をプレートに固定し、ファージ溶液を加えて、発現した蛋白質、ファージ、その他の物質を結合させ、前記ファージ溶液を流し出した後に、結合した発現した蛋白質、ファージ、その他の物質を回収する方法である。この回収したファージを大腸菌に感染させて増幅し、再びパニング（上述）を行って結合性の高いファージを回収していくことができる。
そこでファージミド系であるpComb3とpComb8を試みることにした。まず野生型ＭＡＨを発現することにより、ファージの表面に発現させたレクチンが活性を有するかを調べた。野生型ＭＡＨを発現していると思われる両ファージの抗ＭＡＨ抗体に対する活性を調べたところ、両者とも抗ＭＡＨ抗体に特異的に結合した。複数のＭＡＨ蛋白質を表面に発現したpComb8の方が単一のＭＡＨ蛋白質を表面に発現したpComb3より強い結合性を示した（第６図）。
次に、ファージ上に発現された野生型ＭＡＨが糖鎖結合活性を保っているかを赤血球凝集能を指標に検討した。野生型ＭＡＨを発現していると思われる両ファージは無処理の赤血球を凝集したが、シアリダーゼ処理した赤血球は凝集しなかった。赤血球凝集に必要なファージの最低Titerは両者とも約１×１０10cfuであった。このことにより、ＭＡＨの活性が保たれ、pCombファージミド系ファージに糖鎖結合性をもつＭＡＨが発現したことが明らかになった。
両ファージの活性をシアル酸を含む糖蛋白質であるヒトグライコフォリンに対する結合性でさらに詳しく調べたところ、予想に反し、ファージ1個あたり単一のMAH蛋白質を発現しているpComb3の方がより強い活性を持つことがわかった（第７図）。ELISAを用いたヒトグライコフォリンに対する結合性により検出できるpComb3ファージの最低Titerは約１×１０7cfuであった。
［ファージライブラリから特定レクチンの選別］
以上の結果に基づき、１次構造を改変したレクチンライブラリの作製はpComb3のファージミドを用いて行うことにした。実現可能な範囲のライブラリの作製のため、ＭＡＨの糖結合部位のアミノ酸の内、シアル酸との相互作用と金属イオンとの配位に必須と考えられる3つのアミノ酸以外に、他のマメ科レクチンで保存性が高い2個のアミノ酸をさらに固定し、6つのアミノ酸だけをランダムに改変した。その結果、理論的に予想される6.25×107をカバーしていると思われる約1×108のライブラリを作製できた。
次に、pComb3ファージのレクチンライブラリを用いたパニング系を確立することを目標として、野生型ＭＡＨが強い結合性をもっているヒト赤血球に対するパニングを試みた。1回目のパニングに比べ3回目においてはその回収率が約10倍に増加し、ヒト赤血球に対する結合性を持つファージが濃縮されていることが判明した。3回目のパニングによって得られたファージから、ヒト赤血球を特異的に凝集するが、異なる糖結合特異性を持つ、いくつかのクローンが得られた（第８図）。以上より、1次構造に変異を導入したレクチンライブラリから生物学的に重要な糖鎖に特異的なレクチンを選別するための、スクリーニング系が確立できた。
［ＭＡＨの糖鎖認識部位の変異誘発］
重複延伸による部位指定突然変異誘発（９、１０）を実施してＭＡＨの糖鎖認識部位をランダム化した。重複延伸には四種類のプライマーを使用した。
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ＭＡＨｃＤＮＡの断片はプライマーa及びb或いはc及びdとAmpliTaq Gold DNAポリメラーゼ（パーキンエルマー社）を用いてＰＣＲにより増殖した。標準のＰＣＲ条件を用いた。即ち、最初に９５℃で９分間と９４℃で１分間インキュベートした後、９４℃で１分間、５４℃で１分間、及び７２℃で１分間のサイクルを３０回繰り返し、次いで７２℃で１０分間のサイクルを１回おこなって、確実にすべての増幅された断片が完全に３‘−末端まで延長されているようにした。ＰＣＲ生成物の３‘−末端はpfu DNAポリメラーゼ(Stratagene La Jollaカリフォルニア)によってポリッシュした。ＰＣＲ生成物は調製用アガロースゲル電気泳動により精製して定量した。等モル量の二つのＰＣＲ断片を、９４℃で１分間および６３℃で４分間のサイクルを７回繰り返して結合した。生成物は、プライマーa及びdを用いる第二の反応における鋳型ＤＮＡとして使用し完全長の突然変異MAH cDNAを作成した。
[ＧＳＴ融合蛋白質の発現と精製]
完全長の突然変異ＭＡＨｃＤＮＡを含むＰＣＲ生成物をＢａｍＨＩ及びＥｃｏＲＩで消化してＢａｍＨＩ及びＥｃｏＲＩで消化されたpGEX-2Tに連結した。適当な発現プラスミドを含むE. coli BL21株を２ｘ酵母−トリプトン培地にて、この培地にはアンピシリン50μg/mlが補充されており、３７℃で６６０ｎｍにおける吸光度が０．８に達するまで培養した。ＧＳＴ融合蛋白質の発現はイソプロピルβ−Ｄ−チオガラクトシド（最終濃度  １ｍＭ）を添加して誘導し、３７℃におけるインキュベーションを３〜４時間継続した。細菌細胞のペレットをトリス緩衝生理的食塩水（ＴＢＳ）に再懸濁し次いで懸濁液を超音波により破砕した。不溶性画分をＴＢＳで２回洗浄してＴＢＳ中８Ｍの尿素に溶解した。可溶化された封入体をTBS/1mM MnCl2/1mM CaCl2で５０倍に希釈して再生した。上清をグルタチオン−セファロース４Ｂカラム（アマーシャム  ファルマシア  バイオテック  ＵＫ  Ｌｔｄ．，イングランド）に載せＧＳＴ融合タンパク質を製造業者の指示に従って精製した。
［ＧＳＴタンパク質のウエスターンブロット分析による検出］
細菌の溶解物（0.5μgタンパク質/ml）をドデシル硫酸ナトリウム−ポリアクリルアミドゲル電気泳動により分離し、ニトロセルロース膜に移し、ポリクローナルの抗ＭＡＨ抗体で探索し次いでアルカリホスファターゼに結合した抗ウサギＩｇＧ抗体（ＺＹＭＥＤ、サンフランシスコ、カリフォルニア）とインキュベートした。結合した抗体は、製造業者の指示書に従い、アルカリホスファターゼの基質キットＳＫ−５２００（ベクター  ラボラトリーズ社、バーリンガム、カリフォルニア）により可視化した。
［組換えＭＡＨ突然変異体のＤＮＡ配列決定］
無差別に選ばれた１６のクローンのＤＮＡ配列をセンスプライマー5'-ttcttgcaccacctgattctc-3'及びアンチセンスプライマー  5'-ccgccgttaatccaatcccat-3'を用い、ABI PRISMTM Dye Terminator Cycle Sequencing Ready Reaction Kit（Applied Biosystems,カルフォルニア、米国）を使用して決定した。
［赤血球の調製］
ヒトのＯ型静脈血を血液提供者から予めヘパリン処理でした注射器に採取した。ヘパリン処理した血液をガラスシリンダーに移し、赤血球が重力で沈殿する間、放置した。白血球に富む血しょう及びバッフィコートを除去した後、赤血球層をりん酸バッファ食塩水（140mM NaCl, 2.7mM KCl, 10mM Na2HPO4, 1.8mM KHPO4(pH7.3)）で遠心により３回洗浄し、そのたびに注意深く細胞の最上層を除去した。このようにして得られた赤血球は白血球及び細胞残渣は含まれていないことが判明した。ウシ、ウマ、ブタおよびニワトリの赤血球は同様に調製された。
［赤血球凝集アッセイ］
１６種の突然変異体のレクチンから精製した組換えタンパク質をＵ型底のプレート(Nunc, NY, USA)に２倍に希釈して入れ、各希釈溶液（０．０５ｍｌ）に同容量の２％の赤血球懸濁液を加えた。混合物を１時間室温に放置し，次いで血球凝集を検査した。
上記実験結果を基にして、以下のような結果が得られた。
［ＭＡＨの糖鎖認識部位の突然変異誘発］
重畳延伸法（９，１０）を用いてＭＡＨの糖鎖認識部位に突然変異を導入した。この方法の要領（作戦）は第１図に示されている。
pGEX-2TにクローンされたMAH cDNAをＰＣＲ増幅の鋳型として用い二つの別個のＤＮＡ断片（ＡＢ及びＣＤ）を生成した。断片ＡＢはプライマーaとbで増幅した。Asp135，Asp127及びHis132はすべてＭＡＨのシアル酸への結合に関与しているように思われるので、プライマーbはAsp127，His132及びAsp135残基はそのままにしてＭＡＨの糖鎖認識部位に配列の変化を導入するように設計された（第１図Ｂ）。
断片ＣＤはプライマーｃ及びｄを用いて増幅された。プライマーｃの５‘末端は断片ＡＢの３’末端に見出された１２ｂｐの配列を持っている。この共通の１２ｂｐの配列により断片ＡＢとＣＤが重畳延伸法により連結されて突然変異体であるＭＡＨｃＤＮＡを含むＡＤ生成物となることを可能にしている。突然変異体であるＭＡＨｃＤＮＡの長さ（−８００ｂｐ）はアガロースゲル電気泳動により確認された（第１図Ｃ）。
［ＭＡＨ突然変異レクチンの発現と特性解明］
突然変異のＭＡＨｃＤＮＡを、挿入部位の上流にグルタチオン−Ｓ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）の遺伝子を含む大腸菌の発現ベクターｐＧＥＸ−２ＴのBamHI及びEcoRI部位（サイト）に挿入した。ＧＳＴを含む突然変異のレクチンの融合タンパク質は大腸菌ＢＬ２１を宿主株に用いて生成された。５０種の無差別に選択されたクローンをその組換え突然変異レクチン合成能についてポリアクリルアミドゲル電気泳動により解析した。１６クローンのＧＳＴ突然変異レクチンの融合タンパク質はみかけの分子量５５，６００に相当する位置まで泳動し、これはＧＳＴ−突然変異レクチンの融合生成物に予想される分子量に一致した（第１図Ａ）。
１６クローンのプラスミドＤＮＡはダイデオキシチェインターミネーター法（１１）により配列決定された。第３図はこれらクローンの糖鎖認識部位の推定アミノ酸配列を示す。１６種すべてのクローンの部位はAsp127，His132及びAsp135残基の部位を除き、予想通りに、一つ一つ異なっている。これらの差異にも拘わらず、ＭＡＨに特異的な抗体を用いたウエスターンブロット解析は１６すべての突然変異レクチンを検出した（第１図Ｂ）。
１６種の突然変異レクチンの融合タンパク質はグルタチオン−セファロースカラム上のアフィニティクロマトグラフィーで精製された。濃度はウシ血清アルブミンを標準物質としてＢＣＡタンパク質アッセイキットにより決定した。ＳＤＳ存在下のポリアクリルアミドゲル電気泳動後の精製融合タンパク質のプロフィールは１６すべての融合タンパク質が分子量５５，６００を有することを示唆している。このタンパク質は赤血球凝集アッセイに使用された。
［突然変異体レクチンの赤血球凝集活性］
１６種の突然変異体レクチンと野生タイプのＭＡＨ間の糖鎖特異性に相当な差異のあることが、ヒト、ウシ、ウマ、ブタ及びニワトリの赤血球を用いた赤血球凝集アッセイにより明らかとなった（表１）。これら赤血球の表面上の糖鎖は、突然変異体レクチンによる認識の個別なパターンを互いに比較すると明確に示されているように、その構造，量、及びその表現パターンに違いがある（第４図）。これらのレクチンを使用すると、各タイプの赤血球の同定がこのように容易となる。
第４図の自転車のスポークのような放射状のグラフは、１６種類の異なるレクチン及びブランクを同じ長さの直線で表し、これらの直線が一点を中心に等角度で３６０度並べたものである。第４図では、１つの種類の動物の赤血球に対して１つの放射状のグラフを構成し、このグラフは当該赤血球のレクチンによる識別（又は特徴）を視覚的に表したものである。即ち、最大凝集力価がフルスケール１で表されており、グラフでは一番外側にプロットされる。各種のレクチンに対して同様にプロットされ、各プロットは、両隣のプロットと直線で結びつけられている。このような表現をとれば、単なるプロットに比べ、プロット位置がわかりやすく、かつ、結果として得られる水がきのような図形では、視覚的な当該赤血球のレクチンによる識別（又は特徴）の認識が容易に行える。１６種類のレクチンの並べ方は、「似たものをなるべく隣同士にする」、「対照的なものを１８０度離れたところに置く」、等、色々考えられるが、把握すべき糖鎖に合わせて適宜選択することが好ましい。また、今回は１６全てを表示したが、判別にあまり有用でないものを除いて１６より少ない数、若しくは、追加して１６より多い数だけ表示することも可能である。このようなレクチンの更なる選別には、例えば、目的とする糖鎖との結合性の観点を用いることができる。第４図について言えば、ウシの赤血球（Bovine Erythrocyte）と人の赤血球（Human Erythrocyte）を判別したい場合には、クローン１５を選別することができる。クローン１５はヒトの赤血球との結合性が高いがウシの赤血球との結合性が低く、相対差が大きいからである。更に、クローン１３を選別してもよい。クローン１３はヒトの赤血球との結合性とウシの赤血球との結合性が同程度で相対差が小さいからである。相対差の大きいものと小さいものに対応するレクチンを選別して用いれば、未知の赤血球試料に対する判別がより容易にかつ確実に行われると考えられるからである。
多細胞生物における細胞の生命周期は細胞外環境からの刺激によって制御されており、このような刺激は部分的には少なくとも糖とその認識分子によって仲介されている。細胞表面の糖鎖の構造の種類は、適応免疫系における抗原に特異的な受容体の種類と同様に広範にわたると考えられてはいるが、これらの糖鎖を認識できるレクチンの多様性には限りがある。
本研究においては、我々は多様な特異性を持つ多数の新規なレクチン（新規なレクチンライブラリ）の調製を可能にする方法を記述している。我々は１６種類の突然変異体であるＭＡＨレクチンを生成し、我々はそれらの糖鎖特異性の特徴を完全には解明していないが、突然変異体がヒト及び家畜動物の赤血球を高度に特異的なパターンで凝集出来ることは注目に値する。このような異種動物からの赤血球を区別する特異性は、特異的的抗体の使用を例外としてこれまでには得られなかったことである。本研究は、多様な特異性を持つ遺伝子操作されたレクチンのパネルが異なった細胞のタイプを区別するのに有用であることを証明するものである。
過去数年間に新しい技術が遺伝子発現をプロフィールすることを通じて異なった細胞のタイプを区別するためのＤＮＡアレイを確立した（１５）。しかしながら、細胞の表現形は遺伝子発現によってのみ決定されるものではない。糖鎖付加による翻訳後の修正及びタンパク質の局在化の調節は特定の細胞タイプのある分化の段階の実体の決定に必須であると考えられている。従って、異なった細胞は細胞表面のグリカンの様子を描き出すことによって区別されるべきである。多様な特異性を持つレクチンのパネルの使用はこれを達成するための最も便利で効果的な手段である。新規のレクチンのライブラリの開発はレクチンの利用度をおおいに拡大し、究極的には細胞の同定を正確で信頼性のあるもににすることを可能にするものである。糖鎖発現は微量であり、構造も複雑であるが、本発明にかかるレクチンライブラリ及び／又はレクチンサブライブラリを用いると臨床現場でも使用できる簡便な識別（又は同定）方法を提供できる。
＜実施例２＞
［Ｃａｃｏ−２細胞を標的細胞とする細胞分別同定］
ＭＡＨ改変レクチンからなるレクチンライブラリ（ループＤをランダマイズしたレクチンライブラリ）について標準細胞である分化型Ｃａｃｏ−２細胞に対してパニング（panning）操作を行い、Ｃａｃｏ−２細胞を標的細胞とする細胞分別同定用のプローブに用いるクローンを回収した。２回目のパニングの後に、結合性クローンの濃縮が不十分と考えられたため、３回目のパニングでは、細胞をグルタルアルデヒド（glutaraldehyde）で固定して、パニング操作で反応させる時間をｏ／ｎに変更した。
［回収クローンのＤＮＡ配列決定］
３回目のパニングの後に６４個のクーロンをランダムに拾い、シークエンス解析を行った。６４クローンの内訳は、改変（mutation）が正しく入ったもの３５個、stop codonが入ったもの７個、frame-shiftを起こしたもの１７個、そして、解析できなかったもの５個である。改変が正しく入った３５個のクローンの中には、野生型（wild-type）と同じ配列を持つものは存在せず、また互いに共通する配列を持つものも存在しなかった（表２）。
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野生型と異なるクローンが多数回収されたことから、これら３５個のクローンが細胞分別同定用のプローブとして利用可能である。一方で、各クローン間に共通配列が検出されなかったこと、およびstop codonが入ったものや、frame-shiftを起こしたものが回収されていることから、パニング操作の濃縮効率が低いとも考えられる。
［回収クローンの活性測定］
各クローンのライセート（lysate）を用いて、Ｃａｃｏ−２細胞への結合活性を通常のｃｅｌｌ−ＥＬＩＳＡ法で測定した（第９図、第１０図）。３５個のクローンは全て分化型、未分化型を問わずＣａｃｏ−２細胞に結合活性を有していた。各クローンの結合活性に基づく分化型、未分化型Ｃａｃｏ−２細胞への結合パターンを作成したところ、Ｃａｃｏ−２細胞特異的と思われるパターンがそれぞれ得られ、分化型と未分化型でもわずかではあるがパターンの違いがみられた（第１１図）。このように、同種の細胞であっても、本発明のレクチンライブラリを用いると、分化型と未分化型の差異をみることができる。このグラフでは、２つの細胞の結果を１つにまとめており、微妙な差を判別するのに優れている。
＜実施例３＞
市販の精製レクチン（ＰＮＡ、ＡＢＡ、ＶＶＡ−Ｂ４、ＳＮＡ、ＵＥＡ−Ｉ、ＷＧＡ、ＰＨＡ−Ｌ４）を用い、これらを直接ウェル（well）に固定し、サンプル細胞を結合させてその結合を検出する方法（Reverse Cell-ELISA法）により、各種細胞のプロファイリングを行った（第１２図）。各細胞特有の結合パターンが得られ、市販の既知のレクチンを用いて自転車のスポークのような放射状のグラフで表現することにより細胞の特徴が把握できることがわかる。尚、このグラフのプロットの仕方は、上述の第４図、第１１図の場合と同様である。
［ＩｇＡグライコフォームの識別］
上述のレクチンライブラリをＩｇＡグライコフォーム識別法に適用する場合の１例を以下に順序をおって説明する。
１）ＭＡＨレクチン（イヌエンジュマメレクチン）糖認識部位のアミノ酸配列を改変した遺伝子改変レクチンライブラリーを作成する。
２）ＩｇＡ腎症患者ＩｇＡに親和性の高いレクチンをパニング法により選択し、レクチンサブライブラリーを作製する。
３）上記の２）で得られたレクチンサブライブラリーの中から必要に応じＩｇＡ腎症患者と健常人のＩｇＡの違いをよく反映するレクチンを選び、マイクロタイタープレートに固定したレクチンプレートを作製する。
４）ＩｇＡのグライコフォームのレクチンライブラリーによる識別ＩｇＡ腎症患者と健常人の血清ＩｇＡのレクチンプレートへの結合パターンの比較・解析を行う。
５）血清診断アッセイ条件の検討市販健常人ＩｇＡに糖鎖を酵素的・化学的に付加し、人工ＩｇＡを作製する。健常人血清に人工ＩｇＡを混合し、レクチンプレートを用いたパターン解析を行う。血清中に存在する他の血清蛋白質の影響を検討し、アッセイ条件の最適化を行う。
ここで、ＩｇＡ腎症とは腎臓糸球体にＩｇＡが沈着する疾患であるが、ＩｇＡ分子のヒンジ部の糖鎖構造が患者と健常人で異なり、その糖鎖構造の解析には従来血清ＩｇＡを精製、トリプシン処理によってヒンジ部を含むペプチド片にして分離し、その質量を質量分析計で測定することにより構造解析が行われている。ここで、ヒンジ部とは、免疫グロブリン分子を構造する２つのＨ鎖定常ドメインの間にある領域のことをいい、ＩｇＡ腎症患者ではＩｇＡのこの領域のＯ（オウ）−結合型糖鎖に異常が起きるとされている。また、Ｏ（オウ）−結合型糖鎖とは、N−アセチルガラクトサミン(GalNAc)、ガラクトース(Gal)および最外側のシアル酸から構成された構造を基本骨格とするＯ（オウ）−結合型糖鎖はムチン型糖鎖ともいわれ、細胞の浸潤、接着など細胞間の相互作用や挙動に大きく影響する糖鎖構造である。
本方法のメカニズムをより詳しく説明すれば、IgA腎症患者でＯ（オウ）−結合型糖鎖の糖鎖異常が見られるIgAヒンジ部分のアミノ酸配列のうち、Ｏ（オウ）−結合型糖鎖を付加できるのはセリンまたはスレオニン残基のある５箇所であり、Ｏ（オウ）−結合型糖鎖のパターンは６種類あるので、ヒンジ部分Ｏ（オウ）−結合型糖鎖の位置と糖鎖構造は理論上６5通り、つまり７，７７６通りあることになる。ひとつひとつの可能性を従来から行われている煩雑な糖鎖解析によって調べることは困難であるが、Ｏ（オウ）−結合型糖鎖を認識するレクチンへのON/OFFによってパターン解析を行うことができると考える。ひとつのレクチンに対するON/OFFでは２通りの糖鎖結合様式を調べることができ、ｎ個のレクチンでは２n通りのパターン認識が行えるはずである。したがって、計算上はヒンジ部分の糖鎖異常７，７７６通りを解析するために必要なレクチン数は１３個である。実際には糖鎖構造および糖鎖の位置情報を顕著に示すことのできるレクチンがあっての理論上の数字ではあるが、基質にブロットできる数百個のレクチンからの情報でIgAヒンジ部分の糖鎖構造と位置を解析できる可能性が高い。有用なレクチンライブラリーを得るために、患者血清IgAと健常人血清IgAの違いをもっとも大きく反映するレクチン群をクラスター解析によって取得することができ、有効なレクチンライブラリーを構築することができる。そのレクチンライブラリーを用いて、IgA腎症患者と健常人血清IgAのグライコフォームの違いをパターンにより解析する（第１３図）。第１３図では、複数のＯ−グリカンを含む糖蛋白質であるＩｇＡ１のプロファイリングを簡単に行うようすが示してある。慢性腎不全状態になっているような重症患者との違いのほか、IgA腎症と診断されていない軽症患者予備軍の早期診断への適用可能性もある。
［骨芽細胞亜集団の識別方法］
上述のレクチンライブラリを骨芽細胞の識別や分化ステージの異なる亜集団を検出する方法に適用する場合の１例を以下に順序をおって説明する。
１）ＭＡＨレクチン（イヌエンジュマメレクチン）糖認識部位のアミノ酸配列を改変した遺伝子改変レクチンライブラリーを作成する。
２）レクチンライブラリーの作製骨芽細胞に親和性の高いレクチンをパニング法により選択し、レクチンサブライブラリーを作製する。
３）上記の２）で得られたレクチンサブライブラリーの中から必要に応じ分化のステージをよく反映するレクチンを選び、マイクロタイタープレートに固定化したレクチンプレートを作製する。
４）骨芽細胞の分化誘導とレクチンライブラリーによる識別培養した間葉系幹細胞を培養・分離する。より具体的には、間葉系幹細胞を培養後、骨芽細胞に分化させ、分化開始から５日目、１０日目、１５日目、２０日目の細胞を分離する。
５）分化過程の各時点で分離した細胞をレクチンプレートにて分析し、細胞表面糖鎖構造と骨形成能との相関を検討する。骨形性能の測定には骨型アルカリフォスファターゼ活性の測定およびオステオカルシン含有量の測定を行う（標準の作成）。即ち、分離した細胞を骨芽細胞を足場となるb-TCPブロックとの複合体の形でラット背部皮下に移植し、移植後4週、8週において摘出後、(i)オステオカルシン含有量と（ii）骨型アルカリファスファターゼ活性を測定する。
６）分化過程が不明の細胞をレクチンプレートで分析し、標準と比較する（第１４図参照）。第１４図では、骨芽細胞の分化度のプロファイリングを簡単に行うようすが示してある。
ここで、間葉系幹細胞とは、組織や臓器に成長する元となる細胞である幹細胞のうち、骨髄の中に存在するものをいい、間葉系幹細胞は骨、軟骨、脂肪、心臓、神経、肝臓などの細胞に分化することが確認されており、ほとんどすべての組織にも分化することのできる胚性幹細胞（ＥＳ細胞）に近い能力を秘めている。間葉系幹細胞は、ｂ−ＴＣＰ（b-tricalcium phosphate）というリン酸カルシウムを主成分として生体内に優れた親和性、吸収性および骨伝導性を有する人工材料を培養する足場として用いる。
本発明により、レクチンライブラリが細胞の分別同定に有用であることがわかった。
そして、この新しい方法で細胞表面の糖鎖を分析することにより、遺伝子発現だけに依存していた細胞の同定が正確に行えることを意味し、細胞移植や細胞治療の開発に役立つと考える。また、本研究では人工レクチンライブラリをファージミド系ファージの表面に発現させることに成功した。改変レクチンライブラリから特異性の異なるものを選別する方法が確立したので、この系を用いて既存のレクチンやモノクローナル抗体にはない、新規な糖鎖特異性を有するものを得ることができると期待される。
更に、本発明のレクチンライブラリを用いるとＩｇＡのグライコフォームの検出や骨芽細胞亜集団の分別・同定するツールを提供することができる。即ち、ＩｇＡを含む各種血清蛋白質のグライコフォームの解析を簡便・迅速に診断する対外診断薬を提供することも可能であり、再生医療や細胞医療を実用化段階に移行させるために必要な細胞の品質保証を行う規格設計ツールを提供することも可能である。例えば、リウマチや自己免疫疾患時の免疫グロブリンのグライコシレーション、癌患者のある特定のホルモン（卵巣癌における絨毛性性腺刺激ホルモンの糖鎖変化）や蛋白質のグライコシレーション(肝炎から肝癌に至る際のアルファ−フェトプロテインの糖鎖変化)など、疾病の早期発見、病態の正確な把握、治療薬、予防薬への適用できる。
種差に由来して産生されるのが抗体の特徴であるので、線維芽細胞に対する特異的抗体を作製することが困難なため、骨髄由来の線維芽細胞にはいわゆる細胞表面マーカーが存在せず、骨芽細胞を直接アッセイする方法はなく、現在のところ動物を用いたバイオアッセイもしくは骨芽細胞の活性度を反映する間接的なアッセイ法が主として用いられている分野においても、本発明のレクチンライブラリを用いたレクチンチップで、骨芽細胞の識別・同定、とくに分化ステージの異なる亜集団を識別・同定することができると考えられる。同様のアプローチで骨髄由来樹状細胞および骨髄由来血管内皮細胞へ応用できる可能性がきわめて高く、再生医療で用いる細胞の品質確保のスタンダードツールとなりえる。
現在の癌遠隔診断ネットワークにおいては病理診断が主体であるが、遺伝子発現情報を追加することが検討されており、Ｏ（オウ）−結合型糖鎖が細胞間相互作用、細胞の浸潤、接着などに深く関与している知見も鑑み、糖鎖情報を追加することによって、より詳細な癌遠隔診断についての検討が可能となる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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