(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
酵素活性測定用試薬と検体とを混合し、次いで、４００〜４５０ｎｍの波長域で、得られる混合物の吸光度変化を測定することにより、該検体中の特定の酵素の活性を測定する方法において、該酵素活性測定用試薬がスルホキシ無機塩系還元剤を含み、該スルホキシ無機塩系還元剤は二亜硫酸塩、亜硫酸水素塩、亜硫酸塩又は亜二チオン酸塩であることを特徴とする該酵素活性を測定する方法。
【請求項２】
特定の酵素がγ−グルタミルトランスフェラーゼである請求項１記載の該酵素活性を測定する方法。
【請求項３】
スルホキシ無機塩系還元剤が二亜硫酸塩、亜硫酸水素塩又は亜硫酸塩である請求項１又は２の該酵素活性を測定する方法。
【請求項４】
検体中の特定の酵素活性を測定するために、４００〜４５０ｎｍの波長域で吸光度を測定する、酵素活性測定用試薬において、該試薬がスルホキシ無機塩系還元剤を含み、該スルホキシ無機塩系還元剤は二亜硫酸塩、亜硫酸水素塩、亜硫酸塩又は亜二チオン酸塩であることを特徴とする試薬。
【請求項５】
特定の酵素がγ−グルタミルトランスフェラーゼである請求項４記載の試薬。
【請求項６】
スルホキシ無機塩系還元剤が二亜硫酸塩、亜硫酸水素塩又は亜硫酸塩である請求項４又は５の試薬。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【産業上の利用分野】
本発明は、血清等の検体に存在する酵素活性を測定するための方法及び試薬に関する。さらに詳しくは、検体内のヘモグロビンの影響を回避可能な血清等の検体に存在する酵素活性を測定するための方法及び試薬に関する。
【０００２】
【従来の技術】
生体試料等の検体中に存在する酵素活性の測定は、医学的診断や病態の解明を行う上で、さらに、種々の治療の経過を判定する上で重要な役割を果たしている。測定すべき酵素がγ−グルタミルトランスフェラーゼ（以下、γーＧＴＰと記載することもある）、α−アミラーゼ等である場合、酵素活性測定用試薬と検体とを混合し、次いで、４００  〜４５０  ｎｍの波長域で、得られる混合物の吸光度変化を測定することにより、該検体中の酵素活性を測定する方法が、通常、用いられている。
【０００３】
しかし、この場合、検体中にヘモグロビン及びその誘導体等が存在するときは、それらが測定干渉物質となり、検体中の酵素活性を正確に測定できないことがおきる。すなわち、酵素活性測定用試薬と検体とを混合すると、検体中のヘモグロビン等が光や熱により分解され、４００  〜４５０  ｎｍの波長域で経時的に混合物の吸光度の減少が起こり、その結果、酵素活性の測定値に負誤差を生じさせるという問題があった。
【０００４】
【発明が解決しようとする課題】
本発明の目的は、上記の従来技術における問題点に鑑み、４００  〜４５０  ｎｍの波長域で吸光度を測定して、検体中の酵素活性を測定するとき、発生する測定値の誤差を抑制し、より正確な測定値を得るための方法及び試薬を提供することである。
【０００５】
【課題を解決するための手段】
本発明は、酵素活性測定用試薬と検体とを混合し、次いで、４００  〜４５０  ｎｍの波長域で、得られる混合物の吸光度変化を測定することにより、該検体中の特定の酵素の活性を測定する方法において、該酵素活性測定用試薬がスルホキシ無機塩系還元剤を含むことを特徴とする該酵素活性を測定する方法である。
【０００６】
すなわち、本発明は、検体中の特定の酵素活性を測定するために、４００  〜４５０  ｎｍの波長域で吸光度を測定する、酵素活性測定用試薬において、該試薬がスルホキシ無機塩系還元剤を含むことを特徴とする試薬を用いて実施することができる。
【０００７】
本発明においては、酵素活性測定用試薬の調製並びにそれを用いて酵素活性を測定する方法は、試薬にスルホキシ無機塩系還元剤を含む以外は、慣用されている技術を、通常、そのまま、使用することができる。
【０００８】
本発明においては、検体とは、生物体内由来の試料をいう。例えば、血漿、血清、尿、又はそれらの希釈液を例示できる。ヘモグロビンの影響を特に受けやすい検体、すなわち、血清に本発明は特に効果を有する。
【０００９】
本発明は、酵素活性測定用試薬中に、スルホキシ無機塩系還元剤を含むことを特徴とする。本明細書において、スルホキシ無機塩系還元剤とは、スルホキシ化合物であり、かつ、無機塩である還元剤をいう。本発明において、スルホキシ無機塩系還元剤は、アスコルビン酸塩より大きな還元電位を持つ、還元力を有することが好ましい。還元電位が小さすぎると、ヘモグロビンの影響を排除しにくい。また、還元電位が大きすぎると、測定すべき酵素の活性を阻害することもあり好ましくない。スルホキシ無機塩系還元剤としては、適度な還元力と試薬安定性とから、二亜硫酸塩、亜硫酸水素塩、亜硫酸塩、亜二チオン酸塩が好ましく、二亜硫酸塩、亜硫酸水素塩、亜硫酸塩がさらに好ましい。塩としては、溶解性からナトリウム塩、カリウム塩が好ましく、ナトリウム塩が特に好ましい。
【００１０】
スルホキシ無機塩系還元剤の濃度は、還元剤の種類、検体の種類、測定方法、その他の要因により適宜、調整される。一般に、試薬中、０．０１〜０．５  重量％  が好ましい。濃度が大きすぎると、測定すべき酵素の活性を阻害することもあり好ましくない。濃度が小さすぎると、ヘモグロビンの影響を排除しにくい。例えば、二亜硫酸塩の場合、０．０５〜０．２  重量％  の濃度がさらに好ましい。
【００１１】
本発明では、酵素活性測定用試薬としては、合成基質試薬を例示できる。この場合、例えば、合成基質試薬と検体とを混合することにより試薬中の合成基質と検体中の酵素とを反応させ、その結果、その合成基質を開裂させ、ついで、生成する色素に由来する、４００  〜４５０  ｎｍの波長域での吸光度変化を、測定する方法を用いる。なお、本明細書において、合成基質とは、色素と特定物質とが結合された化合物であって、かつ、その結合が特定の酵素の作用により開裂され、色素を生成させるものをいう。
【００１２】
本発明において、特定の酵素は、検体と酵素活性測定用試薬とを混合した後、４００  〜４５０  ｎｍの波長域で吸光度変化を測定して該酵素活性を測定できるものであれば特に限定しない。そのような酵素としては、γ−グルタミルトランスフェラーゼ、α−アミラーゼを例示できる。γ−グルタミルトランスフェラーゼの場合、酵素活性測定用試薬中の合成基質試薬としては、４−ニトロアニリン、３−カルボキシ−４−  ニトロアニリン等の４００  〜４５０  ｎｍに吸光度を有する色素と、グルタミン酸とを結合させた物質が用いられる。すなわち、式１に示すように、合成基質として、Ｇｌｕ−４−ＮＡ、Ｇｌｕ−ＣＮＡ  を使用できる。
【００１３】
【式１】
0003614951.tif 000002
【００１４】
本発明において、酵素活性測定用試薬と検体とを混合するときは、検体に該試薬を加えても良いし、また、該試薬に検体を加えても良いが、混合することにより、混合物の４００  〜４５０  ｎｍでの波長域で吸光度の増減が起こる。例えば、酵素活性測定用試薬が合成基質試薬の場合、該試薬と検体とを混合することにより、検体中の特定の酵素が該試薬中の合成基質に作用して色素を生成させ、そのため、４００  〜４５０  ｎｍの波長域で吸光度の増加が起こる。その結果、吸光度測定により、経時的に測定することより、その際の単位時間あたりの吸光度の増加速度を求めることができる。そして、以下の式により、酵素活性（Ｕ／ｌ  ）を求めることができる。
【００１５】
【式２】
0003614951.tif 000003
【００１６】
試薬中の合成基質と検体中の酵素とを反応させるときの温度は、酵素の種類、安定性及び反応性により異なるが、通常、２０〜４０℃である。生化学自動分析装置を使用するときは、２５〜３８℃の温度で反応することが必要となるが、本発明では、この条件で用いても、ほとんど、溶血によるヘモグロビンの影響を受けずに、検体中の酵素活性を正確に測定できる。
【００１７】
また、生化学自動分析装置を使用するときは、処理時間も１  〜１５分で行うことが必要であるが、本発明では、この条件で、ほとんど、溶血によるヘモグロビンの影響を受けずに、検体中の酵素活性を正確に測定できる。
【００１８】
【実施例】
酵素活性測定用試薬Ｇｌｕ−ＣＮＡ  溶液と溶血血清とを混合し、その溶血血清中のγ−  ＧＴＰ活性を求めた。そのＧｌｕ−ＣＮＡ  溶液中にスルホキシ無機塩系還元剤を含む場合、以下に示すように、正確に測定できることを確認した。
【００１９】
（Ａ）Ｇｌｕ−ＣＮＡ  溶液の調製
グリシルグリシン            １５３．０  ｍＭ
Ｇｌｕ−ＣＮＡ                          ６．１２ｍＭ
アジ化ナトリウム              ０．１  ％
二亜硫酸ナトリウム            ０．０８％
（ｐＨ７．９  、３０℃）
【００２０】
（Ｂ）検体の調製
γ−  ＧＴＰ活性３６Ｕ／ｌ  の血清Ｈ０  に、溶血血清を加え、ヘモグロビン濃度５００  ｍｇ／ｄｌ  で、かつ、γ−  ＧＴＰ活性３６Ｕ／ｌ  の溶血血清Ｈ５  を調製した。さらに、Ｈ５  をＨ０  で希釈し、ヘモグロビン濃度が各々１００  、２００  、３００  、４００  ｍｇ／ｄｌ  であり、かつ、γ−  ＧＴＰ活性３６Ｕ／ｌ  の溶血血清を調製し、それぞれ、Ｈ１  、Ｈ２  、Ｈ３  、Ｈ４  検体とした。
【００２１】
実施例１
前記のＧｌｕ−ＣＮＡ溶液Ａ３．５  ｍｌに、検体Ｈ０を０．０７  ｍｌ  混合し、得られる混合液の吸光度変化を求めた。吸光度変化は、３７℃で波長４１５  ｎｍにおける経時的な吸光度の１分間あたりの上昇度を測定することにより求めた。その１分間あたりの上昇度の値を次式に代入し、γ−  ＧＴＰ活性を求めた。
【００２２】
【式３】
0003614951.tif 000004
【００２３】
実施例２〜１０
検体Ｈ１  〜Ｈ５  を検体Ｈ０  の代わりに用いた以外は、実施例１と同様に操作した後、γ−  ＧＴＰ活性を計算し、それぞれ、実施例２〜６とした。
また、検体Ｈ１  又はＨ５  を検体Ｈ０  の代わりに用い、かつ、亜硫酸水素ナトリウム（実施例７）、亜硫酸ナトリウム（実施例８）、又は亜二チオン酸ナトリウム（実施例９，１０）を二亜硫酸ナトリウムの代わりに用いた以外は、実施例１と同様に操作した後、γ−  ＧＴＰ活性を計算した。なお、亜二チオン酸ナトリウムを含むＧｌｕ−ＣＮＡ  溶液は、試薬調製のときに着色しやすく、そのため、測定値に誤差を生じやすい。
実施例１〜１０の結果を表１に示す。
【００２４】
【表１】
0003614951.tif 000005
【００２５】
実施例１１〜１６
汎用の自動分析装置である日立７１５０を用い、実施例１〜６と同様、検体中のγ−  ＧＴＰ活性を測定した。実施例１〜６に用いたＧｌｕ−ＣＮＡ  溶液Ａ３５０  μｌ  と、検体Ｈ０〜Ｈ５の７  μｌ  とを３７℃で混合し、その後、１．５  〜３．５  分経過の混合液の吸光度変化を求めた。すなわち、波長４０５  ｎｍにおける経時的な吸光度の１分間あたりの上昇度を求めた。その１分間あたりの上昇度より、γ−  ＧＴＰ活性を求め、それぞれ、実施例１１〜１６とした。なお、自動分析装置の場合、これらの操作及び計算は、すべて、自動的に行われる。
【００２６】
比較例１〜６
実施例１〜６で使用したＧｌｕ−ＣＮＡ  溶液Ａの代わりに、そのＡの成分中から二亜硫酸ナトリウムのみを除いた組成からなる溶液（溶液Ａ´）を用いた以外は、実施例１〜６と同様に操作してγ−  ＧＴＰ活性を求め、それぞれ、比較例１〜６とした。
また、検体Ｈ１  又はＨ５  を検体Ｈ０  の代わりに用い、かつ、還元型グルタチオンを二亜硫酸ナトリウムの代わりに用いた以外は、実施例１と同様に操作した後、γ−  ＧＴＰ活性を計算し、比較例７又は比較例８とした。
【００２７】
【発明の効果】
本発明の方法によれば、４００  〜４５０  ｎｍの波長域で吸光度変化を測定して、検体中の特定の酵素活性を測定する場合、検体内のヘモグロビン由来の測定誤差を回避できる。
【図面の簡単な説明】
図１は実施例１〜６及び比較例１〜６におけるヘモグロビンの影響を見た図であり、実施例は−○−で、比較例は−●−で示されている。縦軸にγ−ＧＴＰ活性測定値（Ｕ／ｌ  ）、横軸にヘモグロビン濃度（ｍｇ／ｄｌ  ）を示す。二亜硫酸ナトリウムを含む合成基質試薬を用いた場合（実施例１〜６）は、含まない場合（比較例１〜６）と比べ、γ−  ＧＴＰ活性を正確に測定できる。
【図１】
0003614951.tif 000006