(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
式:
【化１】
0003683606.tif 000025
(式中、Ｒは−Ｃ（ＣＨ３）２−ＣＨ２−ＣＨ３または−ＣＨ（ＣＨ３）−ＣＨ２−ＣＨ３;
Ｚは式:
【化２】
0003683606.tif 000026
の開鎖成分基または式:
【化３】
0003683606.tif 000027
のラクトン基;および
Ｒ2は水素である)
の化合物(Ｉ)の製造法であって、式:
【化４】
0003683606.tif 000028
(式中、Ｒ,ＺおよびＲ2は式Ｉの場合と同意義である)
の化合物(ＩＩ)を、該化合物(ＩＩ)のヒドロキシル化を触媒して、上記化合物(Ｉ)を形成しうる微生物と、または該微生物から誘導される酵素あるいは該酵素の構造を有する酵素と接触せしめ、次いでヒドロキシル化を行う工程から成り、
上記微生物はアミコラータ属、サッカロポリスポラ属、アミコラトプシス属、サッカロスリックス属またはジルベールテラ属から選ばれ、但し、化合物(ＩＩ)がコンパクチンのとき、微生物はアミコラータ属でないことを特徴とする製造法。
【請求項２】
Ｚが開鎖成分基である請求項１に記載の製造法。
【請求項３】
式:
【化５】
0003683606.tif 000029
の化合物を製造する請求項１に記載の製造法。
【請求項４】
化合物(ＩＩ)を微生物と接触せしめる請求項１に記載の製造法。
【請求項５】
微生物が、アミコラータ・オートトロフィカＡＴＣＣ３５２０４、アミコラトプシス・メディターラネイＡＴＣＣ２１４１１、サッカロスリックス・オストラリエンシスＡＴＣＣ３１４９７、ジルベールテラ・ペルシカリアＡＴＣＣ３８５９１、サッカロポリスポラ・ヒルスタＡＴＣＣ２７８７５、サッカロポリスポラ・ヒルスタＡＴＣＣ２７８７６、サッカロポリスポラ・ヒルスタＡＴＣＣ２０５０１またはサッカロポリスポラ・エリスラＡＴＣＣ１１６３５である請求項４に記載の製造法。
【請求項６】
微生物が、アミコラータ・オートトロフィカＡＴＣＣ３５２０４またはサッカロポリスポラ・ヒルスタＡＴＣＣ２０５０１である請求項５に記載の製造法。
【請求項７】
化合物(ＩＩ)を水またはアルコールに溶解した後、微生物または酵素と接触せしめる請求項１に記載の製造法。
【請求項８】
化合物(ＩＩ)と微生物または酵素との接触工程を、水性培地中で行う請求項１に記載の製造法。
【請求項９】
水性培地１ml当りに約０.５〜３mgの化合物(ＩＩ)を含ませる請求項８に記載の製造法。
【請求項１０】
水性培地のpＨが約６.０〜７.５である請求項８に記載の製造法。
【請求項１１】
水性培地の温度が約２７〜４０℃である請求項８に記載の製造法。
【請求項１２】
水性培地の温度が約２８〜３４℃である請求項１１に記載の製造法。
【請求項１３】
化合物(ＩＩ)と微生物または酵素との接触工程を、約２.５〜７２時間続行する請求項１に記載の製造法。
【請求項１４】
Ｚがラクトン基である請求項１に記載の製造法。
【請求項１５】
化合物(ＩＩ)を微生物または酵素と接触せしめる前に、加水分解しておく請求項１４に記載の製造法。
【請求項１６】
化合物(Ｉ)をＨＭＧ−ＣoＡリダクターゼ抑制剤の製造に用いる請求項１に記載の製造法。
【請求項１７】
請求項１に記載の方法に従って、化合物(ＩＩ)をヒドロキシル化して、化合物(Ｉ)を得る工程から成ることを特徴とするＨＭＧ−ＣoＡリダクターゼ抑制剤の製造法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【産業上の利用分野】
本発明はＨＭＧ−ＣoＡリダクターゼ抑制剤およびその中間体の酵素ヒドロキシル化製造法、更に詳しくは、ＨＭＧ−ＣoＡリダクターゼ抑制剤としておよび／またはＨＭＧ−ＣoＡリダクターゼ抑制の製造の中間体として有用な化合物の酵素ヒドロキシル化法による製造法に関する。
【０００２】
【発明の構成と効果】
本発明は、式:
【化６】
0003683606.tif 000002
(式中、Ｒは−Ｃ（ＣＨ３）２−ＣＨ２−ＣＨ３または−ＣＨ（ＣＨ３）−ＣＨ２−ＣＨ３;
Ｚは式:
【化７】
0003683606.tif 000003
の開鎖成分基または式:
【化８】
0003683606.tif 000004
のラクトン基;および
Ｒ２は水素である)
の化合物(Ｉ)の製造法であって、式:
【化９】
0003683606.tif 000005
(式中、Ｒ,ＺおよびＲ２は上記式Ｉの場合と同意義である)
の化合物(ＩＩ)を、該化合物(ＩＩ)のヒドロキシル化を触媒して、上記化合物(Ｉ)を形成しうる微生物と、または該微生物から誘導される酵素あるいは該酵素の構造を有する酵素と接触せしめ、次いでヒドロキシル化を行う工程から成り、
上記微生物はアミコラータ(Ａmycolata)属、サッカロポリスポラ(Ｓaccharopolyspora)属、アミコラトプシス(Ａmycolatopsis)属、サッカロスリックス(Ｓaccaharothrix)属またはジルベールテラ(Ｇilbertella)属から選ばれ、但し、化合物(ＩＩ)がコンパクチン(compactin)のとき、微生物はアミコラータ属でないことを特徴とする製造法を提供するものである。
【０００３】
本発明の酵素ヒドロキシル化法(製造法)は、それ自体がＨＭＧ−ＣoＡリダクターゼ抑制活性を呈しうる、および／または他のＨＭＧ−ＣoＡリダクターゼ抑制剤の製造の中間体として使用しうる、化合物(Ｉ)を得る有効な手段を付与する。すなわち、本発明のヒドロキシル化法を採用することにより、副生物の減少または削除が達成され、またこのヒドロキシル化法は、穏やかな反応条件下で行うことができる。
以下、本発明方法について詳述する。
【０００４】
定義
本明細書において、単独または他の基の一部として用いる各種語句の定義は、以下の通りである。
「酵素法」とは、酵素または微生物を用いる方法を意味する。
「アルキル」とは、ノルマル鎖の炭素数１〜１２、好ましくは１〜６の、必要に応じて置換された直鎖および分枝鎖炭化水素基の両方を意味し、たとえばメチル、エチル、プロピル、イソプロピル、ブチル、t−ブチル、イソブチル、ペンチル、ヘキシル、イソヘキシル、ヘプチル、４,４−ジメチルペンチル、オクチル、２,２,４−トリメチルペンチル、ノニル、デシル、ウンデシル、ドデシル、これらの各種分枝鎖異性体等が挙げられる。置換基の具体例としては、ハロ(特にクロロ)、トリハロメチル、アルコキシ(たとえば２つのアルコキシ置換基がアセタールを形成する場合)、非置換アリール(たとえばフェニル)、アルキル−アリールまたはハロアリールなどのアリール、非置換シクロアルキルまたはアルキル−シクロアルキルなどのシクロアルキル、ヒドロキシまたは保護されたヒドロキシ、カルボキシル、アルキルオキシカルボニル、アルキルアミノ、ジメチルアミノなどのジアルキルアミノ、アセチルアミノなどのアルキルカルボニルアミノ、アミノ、アリールカルボニルアミノ、ニトロ、シアノ、チオール、およびアルキルチオの群から選ばれる少なくとも１つの基が包含される。好ましいアルキルの置換基は、ヒドロキシ基である。
【０００５】
「アルケニル」とは、アルキルの場合に上述した、必要に応じて置換された直鎖または分枝鎖炭化水素基であって、少なくとも１つの炭素−炭素二重結合を有するものを意味する。
「シクロアルキル」とは、好ましくは１〜３つの環およびホモ環式環１つ当り３〜１２、好ましくは３〜８つの炭素を有する、必要に応じて置換された飽和ホモ環式炭素環系を意味し、たとえばシクロプロピル、シクロブチル、シクロペンチル、シクロヘキシル、シクロヘプチル、シクロオクチル、シクロデシル、シクロドデシル、およびアダマンチルが挙げられる。任意の置換基の具体例としては、上記アルキル基の少なくとも１つ、またはアルキルの置換基で上述した基の少なくとも１つが包含される。
【０００６】
「アリール」とは、環部の炭素数６〜１２のモノ環式またはジ環式置換または非置換芳香族基を意味し、たとえばフェニル、ビフェニル、ナフチル、置換フェニル、置換ビフェニルまたは置換ナフチルが挙げられる。置換基(好ましくは３つもしくはそれ以下)の具体例としては、非置換アルキル、ハロアルキルまたはシクロアルキルアルキルなどのアルキル、ハロゲン、非置換アルコキシまたはハロアルコキシなどのアルコキシ、ヒドロキシ、フェニルまたはハロフェニルなどのアリール、フェノキシなどのアリールオキシ、アルキルカルボニルオキシまたはアロイルオキシ、アリル、アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、アルキルカルボニルアミノまたはアリールカルボニルアミノなどのアミド、アミノ、ニトロ、シアノ、アルケニル、チオール、アルキルカルボニルまたはアリールカルボニル、またはメチレンジオキシ(ここで、メチレン基は低級アルキル基、すなわち、上述の炭素数１〜６のアルキル基、アリールアルケニル基および／またはアルキルチオ基で置換されていてもよい)の群から選ばれる少なくとも１つの基が包含される。
【０００７】
「ハロ」または「ハロゲン」とは、塩素、フッ素、臭素または沃素を意味する。
「塩」とは、酸性塩および／または無機および／または有機塩基によって形成される塩基性塩を指称する。非毒性の医薬的に許容しうる塩が好ましい。医薬的に許容しうる塩の具体例としては、ナトリウム、カリウム、アルミニウム、カルシウム、リチウム、マグネシウム、亜鉛およびテトラメチルアンモニウムなどのカチオンから形成される塩並びにアンモニア、エチレンジアミン、Ｎ−メチルグルカミン、リシン、アルギニン、オルニチン(ornitine)、コリン、Ｎ,Ｎ'−ジベンジルエチレンジアミン、クロロプロカイン、ジエタノールアミン、プロカイン、Ｎ−ベンジルフェネチルアミン、１−p−クロロベンジル−２−ピロリジン−１'−イル−メチルベンズイミダゾール、ジエチルアミン、ピペラジンおよびトリス(ヒドロキシメチル)アミノメタンなどのアミンから形成される塩が包含される。
【０００８】
「医薬的に許容しうるカチオン」とは、たとえば上述の、医薬的に許容しうる塩を形成する陽カウンターイオンを意味する。
「ＡＴＣＣ」とは、微生物寄託所の、メリーランド州２０８５２、ロックビル、パークラウン・ドライブ１２３０１のザ・アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション(the  Ａmerican  Ｔype  Ｃulture  Ｃollection)の受入番号を指称する。
【０００９】
出発物質
本発明のヒドロキシル化法で使用すべき化合物(ＩＩ)は、当業者に公知の方法によって得ることができる。かかる化合物(ＩＩ)は、たとえばＵ.Ｓ.特許Ｎo.４４５０１７１に開示されている。
【００１０】
好ましい化合物
下記式Ｉaを有する化合物(Ｉ)が好ましい。
【化１０】
0003683606.tif 000006
(式中、ＲおよびＲ２は式Ｉの記載と同意義である)
特に好ましい具体例は、式:
【化１１】
0003683606.tif 000007
のメチルプラバスタチンである。
【００１１】
下記式ＩＩaを有する化合物(ＩＩ)が、出発物質としての使用に好適である。
【化１２】
0003683606.tif 000008
(式中、ＲおよびＲ２は式ＩＩの記載と同意義である)
特に好ましい具体例は、式:
【化１３】
0003683606.tif 000009
のメチルコンパクチンである。
【００１２】
二重結合が存在しない、化合物(Ｉ)、または本明細書に記載のいずれの化合物も、かかる二重結合が存在する対応化合物を、当業者に公知の方法に従って水素化することによって得ることができる。
本発明方法のいずれの生成物も、公知の方法、たとえば細胞または細胞性物質の濾去により、適当な場合には、抽出、結晶化、薄層またはカラムクロマトグラフィー、高性能液体クロマトグラフィー等によって単離および精製しうる。
【００１３】
本明細書において、上記メチルコンパクチンおよびメチルプラバスタチンで示される構造を、これらの化合物の酸型と称す。これらの化合物のカルボキシル基がアルカリ金属塩の形状にある場合、該化合物を塩型と称す。
以下で説明するように、本発明のヒドロキシル化法を行うのに水性媒体の使用が好ましい。従って、Ｚが上述の開鎖成分基である化合物を製造したり、あるいは出発物質として用いることが好ましい。何故なら、かかる化合物は、Ｚがラクトン基である対応化合物より水溶性が比較的に大きいためである。Ｚがラクトン基である化合物(ＩＩ)は、たとえば、本発明方法での使用に先立ち、加水分解することによって開鎖型にすることができる。
【００１４】
酵素および微生物
本発明方法で用いる酵素または微生物は、起源または純度に拘らず、上述の変換を触媒する能力を有するものであれば、いずれの酵素または微生物であってもよい。触媒酵素の源として適当な微生物の属としては、アミコラータ、サッカロポリスポラ、アミコラトプシス、サッカロスリックスまたはジルベールテラが包含される。
本発明の使用に好適な具体種としては、アミコラータ・オートトロフィカ(Ａmycolata  autotrophica)(たとえばＡＴＣＣ３５２０４)、アミコラトプシス・メディターラネイ(Ａmycolatopsis  mediterranei)(たとえばＡＴＣＣ２１４１１)、サッカロスリックス・オストラリエンシス(Ｓaccharothrix  australensis)(たとえばＡＴＣＣ３１４９７)、ジルベールテラ・ペルシカリア(Ｇilbertella  persicaria)(たとえばＡＴＣＣ３８５９１)、サッカロポリスポラ・ヒルスタ(Ｓaccharopolyspora  hirsuta)(たとえばＡＴＣＣ２７８７５、２７８７６または２０５０１)、サッカロポリスポラ・エリスラ(Ｓaccharopolyspora  erythraea)(たとえばＡＴＣＣ１１６３５)等が挙げられる。特に好ましいのは、アミコラータ・オートトロフィカ(たとえばＡＴＣＣ３５２０４)およびサッカロポリスポラ・ヒルスタ(たとえばＡＴＣＣ２０５０１)である。
【００１５】
微生物の使用に関し、上述の変換を触媒する能力を有するいずれの微生物細胞性物質をも使用して、本発明方法を実施しうる。細胞は、元の状態の湿潤細胞、あるいは凍結乾燥、噴霧乾燥または加熱乾燥などによる乾燥細胞の状態で使用しうる。また細胞は、破壊細胞または細胞抽出物などの処理細胞物質の状態でも使用しうる。細胞または細胞性物質、たとえば単離真菌菌糸体は、フリー状態で、または物理的吸着あるいは閉じ込めなどによって支持体に固定して使用することができる。本発明方法の実施に際し、少なくとも１種の微生物を使用しうる。
【００１６】
本発明方法は、使用する微生物の生長に続いて実施されてよく、たとえば出発物質である化合物(ＩＩ)の存在下あるいは非存在下で微生物を生長させ、微生物物質を回収し、好ましくは洗浄し(たとえば水で)、次いで得られる微生物物質を出発物質である化合物(ＩＩ)と接触せしめる。また本発明方法は、現場での発酵および反応によって、すなわち、活発に生長する微生物存在下の反応によっても実施することができる。
反応は、静かな(静止)状態下、または撹拌を用いて行うことができる。出発物質の化合物(ＩＩ)を活発に生長する培養物に加えるときは、フラスコ振盪培養あるいは通気兼撹拌などの撹拌の使用が好ましい。かかる場合に、消泡剤を使用しうる。
【００１７】
微生物の生長は、当業者によって、たとえば炭素および窒素源などの栄養素および微量元素を含有する適当な培地の使用によって達成される。同化しうる炭素源の具体例としては、グルコース、グリセロール、マルトース、デキストリン、スターチ、ラクトース、スクロース、糖密、大豆油、綿実油等が挙げられる。同化しうる窒素源の具体例としては、大豆ミール、ピーナッツミール、綿実ミール、魚ミール、コーン浸出液、ペプトン、米ぬか、肉エキス、酵母、酵母エキス、硝酸ナトリウム、硝酸アンモニウム、硫酸アンモニウム等が挙げられる。かかる培地に、塩化ナトリウム、リン酸塩、炭酸カルシウムなどの無機塩を加えてもよい。また少量の金属塩または重金属を加えてもよい。
【００１８】
微生物の生長の種々の段階で、同一または異なる培地を使用しうる。微生物の生長に好ましい培地は、後記実施例に記載のもので、該培地は本発明方法で採用する微生物の生長に使用しうる。
酵素を用いるとき、上述の微生物から誘導される酵素が好ましく、あるいは合成または他の方法で製造したものでもよい。たとえば、これらの酵素は遺伝子工学設計の宿主細胞から誘導しうる。遺伝子工学設計の宿主細胞自体、あるいは他の方法で変性された細胞の使用も意図されるが、この場合、かかる細胞は上記列挙した属の微生物から誘導される酵素の構造を有する酵素を産生しうることが条件である。
【００１９】
反応条件
本発明方法は、水性培地(たとえば緩衝水性培地)で行ってよい。水性相は便宜上、水、好ましくは脱イオン水、あるいは適当水性緩衝剤溶液、特にリン酸塩緩衝剤溶液である。本発明のヒドロキシル化法にあっては、水性培地の使用が好ましい。
【００２０】
また本発明での反応は、有機培地または有機培地と水性培地の混合物である培地で行ってもよい。有機または有機／水性培地の使用は、出発物質として水溶性の小さい化合物(ＩＩ)、たとえばＺがラクトン基である化合物(ＩＩ)の可溶化を高めうる。水溶性の小さい出発物質は、たとえばメチルまたはエチルアルコールなどの有機溶剤に溶解し、該溶液を変換用の水性培地に加えることができる。かかる有機培地を形成する液体は水に不混和性であってよく、あるいは好ましくは、水に混合性のものであってよい。有機培地の具体例としては、トルエン、ヘキサン、ベンゼン、アセトン、ジメチルスルホキシド、シクロヘキサン、キシレン、トリクロロトリフルオロエタン、メチルもしくはエチルアルコールまたはブタノールなどのアルカノール等が挙げられる。
【００２１】
出発物質は、反応培地に加えるに先立ち、たとえば水またはアルコールに溶解することが好ましい。
反応培地は、液体培地１ml当り、約０.５〜３mgの化合物(ＩＩ)(出発物質)を含有することが好ましい。反応培地のpＨは、約６.０〜７.５が好ましい。
本発明のヒドロキシル化反応を実施するため、水または有機アルコール(たとえばメチルもしくはエチルアルコールなどのアルカノール)を加えてもよい。これらの物質は、化合物(ＩＩ)(出発物質)に対してモル過剰、好ましくは多大モル過剰をもたらす量で使用することが好ましい。
【００２２】
本発明方法で微生物細胞を用いる場合、その添加量は、化合物(ＩＩ)(出発物質)１mg当り約１０〜１０００mgの量が好ましい。本発明方法で酵素を用いる場合、その添加量は、化合物(ＩＩ)(出発物質)１mg当り約１〜１００mgの量が好ましい。
反応培地は、約２７〜４０℃の温度に保持することが好ましく、最も好ましくは、約２８〜３４℃に保持する。反応時間は、微生物細胞によって産生される酵素の量、あるいは微生物細胞の使用量、およびその比活性に応じて、適当に変えることができる。反応時間の典型例は、約２.５〜７２時間である。なお、反応時間は、反応温度の上昇および／または反応溶液に加える酵素量の増大によって、縮小してもよい。
【００２３】
ＨＭＧ−ＣoＡリダクターゼ抑制剤の製造
ＨＭＧ−ＣoＡリダクターゼ(３−ヒドロキシ−３−メチルグルタリル補酵素Ａリダクターゼ、ＥＣ１.１.１.３４)は、コレステロール生合成の基本酵素である。この酵素の抑制剤は、抗コレステロール血症剤として、すなわち、血漿コレステロール量の低下または維持の用途が認められる。ＨＭＧ−ＣoＡリダクターゼ抑制剤は、高コレステロール血症の治療や予防に加えて、アテローム硬化症、高リポタンパク血症、および／または高リピド血症の治療や予防の用途も認められる。
【００２４】
上記化合物(ＩＩ)は(たとえばメチルコンパクチン)それ自体、ＨＭＧ−ＣoＡリダクターゼ抑制活性を呈することができ、および／またはＨＭＧ−ＣoＡリダクターゼ抑制活性を有する他の化合物の製造の中間体として使用しうる。後者の場合、本発明はさらに、上記本発明方法に従ってヒドロキシル化を行った後、形成されるヒドロキシル化生成物をＨＭＧ−ＣoＡリダクターゼ抑制剤の製造に用いる(たとえば各種基を脱保護、付加または他の方法で変性する)方法から成る方法を提供する。好ましくは、このようにして製造した抑制剤は、その製造原料のヒドロキシル化生成物が有しうるようなＨＭＧ−ＣoＡリダクターゼ抑制活性と比べて該活性が増大している。
【００２５】
本発明方法に従って得られるＨＭＧ−ＣoＡリダクターゼ抑制剤は、たとえば、当業者にとって公知の方法に従い選ばれた方式および用量で、哺乳動物(特にヒト)に投与することができる。
【００２６】
本発明のＨＭＧ−ＣoＡリダクターゼ抑制剤の特に好ましい製造法は、
(Ａ)Ｒが
【化１４】
0003683606.tif 000010
である化合物(ＩＩa)を、アミコラータ・オートトロフィカ(ＡＴＣＣ３５２０４)またはサッカロポリスポラ・ヒルスタの亜種コベンシス(kobensis)(ＡＴＣＣ２０５０１)でヒドロキシル化して、式:
【化１５】
0003683606.tif 000011
の構造を有するメチルプラバスタチンを得ることから成る。
【００２７】
【実施例】
次に挙げる実施例は、本発明の好ましい具体例を示すが、特許請求の範囲に記載の技術的範囲または精神を限定するものではない。これらの実施例（本発明対象外の微生物の使用を含む）で用いる培地の成分は、以下の通りである。
0003683606.tif 000012
【００２８】
培地 培地組成
Ｍ１２４    セレロース１０g／Ｌ、ＮＺアミンＢ  １５g／Ｌ、酵母エキス１０g／Ｌ、ＮaＣl  ５g／Ｌ、ＣaＣＯ3  １g／Ｌ、全体を水道水で１Ｌ(オートクレーブによる滅菌処理の前にpＨ６.８〜７.０  に調整)
ブイヨン１  ビーフインフュージョン３００g／Ｌ、カザミノ酸，テクニカル
(注１)      １７.５g／Ｌ、スターチ１.５g／Ｌ、全体を蒸留水または脱イ  オン水で１Ｌ(沸とう加熱して完全溶解、最終pＨ７.４)
ブイヨン２  トリプチケース・ペプトン１７g／Ｌ、フィトン・ペプトン３g／
(注２)      Ｌ、ＮaＣl  ５g／Ｌ、Ｋ2ＨＰＯ4２.５g／Ｌ、デキストロース２.５g／Ｌ、全体を蒸留水で１Ｌ(アートクレーブ中滅菌)
Ｙ１７      酵母窒素ベース６.７g／Ｌ、グルコース５０g／Ｌ、シグマ(Ｓigma)アデニンＨＣl  ０.０９g／Ｌ、シグマ１−チロシン０.０  ６g／Ｌ、ディフコ(Ｄifco)カザミノ酸２g／Ｌ(沸とう加熱およびミックス)、寒天２０g／Ｌ、全体を蒸留水で１Ｌ(オートクレーブ中滅菌)
注１)ミューラー−ヒントン(Ｍueller−Ｈinton)ブイヨン(ディフコ商標)
注２)トリプチケースソイブイヨン(ＢＢＬ商標)
【００２９】
実施例１
１本の凍結バイアルのアミコラータ・オートトロフィカ(ＡＴＣＣ３５２０４)および１本の凍結バイアルのサッカロポリスポラ・ヒルスタ亜種コベンシス(ＡＴＣＣ２０５０１)を解凍し、これらを別々のそれぞれ１００mlのＦ４培地を含有する５００mlフラスコへ接種するのに用いる。各フラスコを約２８０rpm，２５℃の振盪器に設置し、７２時間振盪する。７２時間Ａ.オートトロフィカ培養ブイヨンの各２.５mlアリコートを用い、５０mlのＦ７培地含有の６つの２５０mlフラスコおよび５０mlのＫ２８培地含有の６つの２５０mlフラスコへ接種する。同様に、７２時間Ｓ.ヒルスタ培養ブイヨンの各２.５mlアリコートを用い、５０mlのＦ７培地含有の６つの２５０mlフラスコおよび５０mlのＫ２８培地含有の６つの２５０mlフラスコへ接種する。この結果、トータル２４のフラスコが存在する。２４全てのフラスコを振盪器に設置し、約２８０rpm，２５℃で振盪する。
２４時間の振盪後、それぞれ培養した３つのＦ７フラスコおよび３つのＫ２８フラスコに、フィルター滅菌した５mg／mlのメチルコンパクチン塩溶液１mlを無菌的に加える。(塩溶液はラクトンから、該ラクトンを最小量のエタノールに溶解し、約１５mlの水を加え[幾つかの沈澱物が生成]、pＨを約１１.８に調整し、沈澱物が溶解するまで６５℃ウォーターバスで培養し、次いでpＨを注意深く７.５まで降下せしめることによって製造する。蒸留水を加えて、計算濃度を５mg／mlに調整する。)この時点で、新しい２つのフラスコを追加し、各培地の非接種フラスコに塩を投入して、非生物学的変性の対照とする。以後、これらのフラスコに、接種したフラスコと同じ処理を行う。
【００３０】
同様に、それぞれ培養した３つのＦ７フラスコおよび３つのＫ２８フラスコに、滅菌５００＋μg／ml用量のコンパクチンを加える。新しい２つのフラスコを追加し、各培地の非接種フラスコに、コンパクチンを投入する。(接種コンパクチンフラスコの使用目的は、コンパクチンのヒドロキシル化が正常に起っていることを示す、陽性対照としての役目を果すことである。非接種フラスコは、基質の可能性のある非生物学的変化のための対照として役立つ。)
振盪をさらに２４時間再開する。次いで全てのフラスコに、前に投入したものと同じ２回目用量の塩を入れる。さらにまた振盪を２４時間再開した後、それぞれ培地−基質組合せにつき１つを含む、８つのフラスコの培養物を回収する(時間Ｔ1にて)。回収フラスコのブイヨンを、基質およびヒドロキシル化生成物のアッセイに付す。
さらに２４時間の振盪後、１０メチルコンパクチン塩サンプルおよび１０コンパクチンサンプルを含む、残った２０のフラスコの培養物を回収する(時間Ｔ2にて)。これらのブイヨンを適当な基質−生成物アッセイに付す。
【００３１】
結果を下記表１および２に示す。
【表１】
0003683606.tif 000013
【表２】
0003683606.tif 000014
【００３２】
実施例２
１本の凍結バイアルのサッカロポリスポラ・ヒルスタ亜種コベンシス(ＡＴＣＣ２０５０１)を解凍し、これを１００mlのＦ４培地を含有する５００mlフラスコへ接種するのに用いる。フラスコを約２８０rpm，２５℃の振盪器に設置し、７２時間振盪する。
７２時間ブイヨンのアリコートを用い、４５mlのＫ２８培地含有の２つの２５０mlフラスコに接種する。２つのフラスコを振盪器に設置し、約２８０rpm，２５℃で振盪する。
２４時間の振盪後、メチルコンパクチン塩を水に溶解して溶液を得、これをフィルター滅菌する。この溶液の一部を、１つのＫ２８フラスコに加える。６時間後、同フラスコに上記溶液の同量部を加える。第２Ｋ２８フラスコにも、第３非接種Ｋ２８フラスコと同様に一部の溶液を入れる。３つ全てのフラスコを振盪器に設置し、振盪を１８時間再開する。
【００３３】
次いで第１フラスコに、３回目用量を入れる。６時間後、第１フラスコに４回目用量(最終)を入れ、第２フラスコに２回目用量(最終)を入れ、そして非接種フラスコに２回目用量(最終)を入れる。
さらに４２時間の振盪後、３つのフラスコの培養物を回収し、かかる全てのブイヨンをメチルコンパクチンおよびメチルプラバスタチンのアッセイに付す。結果を下記表３に示す。
【表３】
0003683606.tif 000015
【００３４】
実施例３
それぞれ１本の凍結バイアルのアミコラータ・オートトロフィカ(ＡＴＣＣ３５２０４)、ストレプトミセス・カリホルニカス(ＡＴＣＣ１５４３６)、アミコラータ・ハイドロカーボンオキシダンス(Amycolata hydrocarbonoxydans)(ＡＴＣＣ１５１０４)、アミコラトプシス・メディターラネイ(ＡＴＣＣ２１４１１)、アミコラトプシス・ファスティディオーサ(Amycolatopsis fastidiosa)(ＡＴＣＣ３１１８１)およびサッカロポリスポラ・ヒルスタ亜種コベンシス(ＡＴＣＣ２０５０１)を解凍し、これらを１００mlのＦ７培地を含有する５００ml発芽フラスコへ接種するのに用いる。全てのフラスコを約２８０rpm，２５℃の振盪器に設置し、７２時間振盪する。
各発芽フラスコの１０mlアリコートを用い、それぞれ１２０mlのＫ２８培地含有の別々のフラスコに接種する。次いで、全てのフラスコを振盪器へ戻す。
２４時間後、各フラスコに５００μg／mlのフィルター滅菌したコンパクチン(酸型)を加える。再度、フラスコを振盪器へ戻す。
さらに２４時間後、各フラスコから１５mlアリコートを取出し、後のアッセイのため凍結する(Ｔ1)。２回目５００μg／ml用量の滅菌酸型コンパクチンを各フラスコに加え、該フラスコを振盪器へ戻す。
その２４時間後に、各フラスコから２回目の１５mlアリコートを取出し、後のアッセイのため凍結する(Ｔ2)。さらに２４時間後、各フラスコから最終１５mlアリコートを取出し、後のアッセイのため凍結する(Ｔ3)。
【００３５】
全てのサンプルを解凍し、アッセイに付す。結果を下記表４〜６に示す。
【表４】
0003683606.tif 000016
【表５】
0003683606.tif 000017
【表６】
0003683606.tif 000018
【００３６】
実施例４
４６時間培養のサッカロポリスポラ・ヒルスタ亜種コベンシス(ＡＴＣＣ２０５０１)(２８℃で生長)およびアミコラータ・オートトロフィカ(ＡＴＣＣ３５２０４)(２５℃で生長)を用い、各種培地のフラスコ(５０ml培地／２５０mlフラスコ)に接種する。フラスコ１つに、５mlの接種物を用いる。
以下の培地：Ｆ７、Ｆ４６、Ｋ２８、Ｍ１２４、ブイヨン１(ミューラー−ヒントン)、ブイヨン２[トリプチケースソイブイヨン(ＴＳＢ)]またはＹ１７のそれぞれを含有する２つの別々のフラスコに、Ｓ.ヒルスタを接種する。各培地の一方のフラスコを約２８０rpm，２５℃の振盪器に設置し、各培地の他方のフラスコを約２８０rpm，２８℃の振盪器に設置する。別途Ｆ７培地およびＫ２８培地のそれぞれのフラスコに接種し、３２℃のウォーターバス振盪器に置く。
【００３７】
それぞれＦ７培地およびＫ２８培地の２つの別々のフラスコに、Ａ.オートトロフィカを接種する。各培地の一方の接種フラスコを約２８０rpm，２５℃の振盪器に設置し、各培地の他方の接種フラスコを約２８０rpm，２８℃の振盪器に設置する。
２４時間後、各フラスコに５００μg／g用量のフィルター滅菌したコンパクチン(酸型)を加える。これらのフラスコを、同温度の振盪器へ戻す。
さらに２４時間後、各フラスコから１０mlアリコートを取出し、後のアッセイのため凍結する(Ｔ1)。各フラスコに、２回目の５００μg／g用量の滅菌酸型コンパクチンを加え、これらのフラスコを再度、同温度の振盪器へ戻す。
さらに４８時間後、２回目の１０mlアリコートを採取する(Ｔ2)。Ｔ1サンプルを解凍し、Ｔ2サンプルと共にアッセイに付す。結果を下記表７〜９に示す。
【００３８】
【表７】
0003683606.tif 000019
【表８】
0003683606.tif 000020
【表９】
0003683606.tif 000021
【００３９】
実施例５
２５℃のＦ４培地で生長した６７時間培養の各種微生物を用い、これらを５０mlのＦ７培地含有の２５０mlフラスコ、および５０mlのＫ２８培地含有の２５０mlフラスコに接種する。フラスコ１つに、５mlの接種物を用いる。用いた微生物は、セルロモナス・セルランス(Cellumonas cellulans)(ＡＴＣＣ１２８３０)、エルスコビア・サンシネオリティカ(Oerskovia xanthineolytica)(ＡＴＣＣ２７４０２)、プロミクロモノスポラ・シトレ(Promicromonospora citrea)(ＡＴＣＣ１５９０８)、サッカロモノスポラ・ビリディス(Saccharomonospora viridis)(ＡＴＣＣ１５７３６)、サッカロポリスポラ・ヒルスタ(ＡＴＣＣ２７８７５)、サッカロスリックス・オストラリエンシス(ＡＴＣＣ３１４９７)およびストレプトミセス・ハルステジィ(Streptomyces halstedii)(ＡＴＣＣ１３４４９)である。
サッカロモノスポラ・ビリディスおよびＳ.ヒルスタ(ＡＴＣＣ２７８７５)変換フラスコを約２８０rpm，２８℃の振盪器に設置し、他の培養物は約２８０rpm，２５℃の振盪器に設置する。なお、サッカロポリスポラ・ヒルスタ亜種コベンシス(ＡＴＣＣ２０５０１)対照を、２５℃と２８℃の両方で用いる。
【００４０】
２４時間後、各フラスコに５００μg／g用量のコンパクチンを加える。
さらに２４時間後に、各フラスコに２回目の５００μg／g用量のコンパクチンを加える。
９６時間後、各フラスコから１５mlアリコートを取出し、後のアッセイのため−５０℃で凍結する。
これらのサンプルを解凍し、アッセイに付す。結果を下記表１０および１１に示す。
【００４１】
【表１０】
0003683606.tif 000022
【表１１】
0003683606.tif 000023
【００４２】
実施例６
８つのＡＴＣＣムコラレス(Mucorales、ケカビ目)真菌および１つのスタウロホマ(Staurophoma)種ＡＴＣＣ１４２８８を、よく生長した斜面培養から、Ｆ４培地の発芽フラスコ(１００mlのＦ４培地／５００mlフラスコ)に接種し、２５℃のスロー振盪器(約２００rpm)に設置する。８つのムコラレス真菌は、アブシディア・ラモサ(Absidia ramosa)(ＡＴＣＣ１１６１３)、シルシネラ・ムスカ(Circinella muscae)(ＡＴＣＣ１６００８)、カニングハメラ・エチヌラタ(Cunninghamella echinulata)変異菌エチヌラタ(ＡＴＣＣ３６１９０)、カニングハメラ・エチヌラタ変異菌エレガンス(elegans)(ＡＴＣＣ８６８８Ａ)、ジルベールテラ・ペルシカリア(ＡＴＣＣ３８５９１)、リゾムーコル・ミエヘイ(Rhizomucor miehei)(ＡＴＣＣ２６９１２)、リゾプス・オリゴスポラス(Rhizopus oligosporus)(ＡＴＣＣ２２９５９)およびリゾプス・ストロニファー(Rhizopus stolonifer)(ＡＴＣＣ１４０３７)である。
７２時間の振盪後、全ての発芽フラスコ内の生長は、１つの大きな固体真菌集団であるＣ.エチヌラタ変異菌エチヌラタブイヨンの場合を除き、良好である。この真菌集団を捨てる。残りの７つのムコラレスフラスコ、および１つのスタウロホマフラスコをそれぞれ用い、Ｆ７培地およびＫ２８培地の生変換フラスコ(２５０mlフラスコ当り５０ml培地を含有)に接種する。フラスコ１つに、２mlの接種物を用いる。全てのフラスコを２５℃の一定スピード(約２８０rpm)振盪器に設置する。
【００４３】
２４時間後、２つの非接種フラスコ、Ｆ７培地およびＫ２８培地の各１つを含む、全てのフラスコに、５００μg／ml用量のコンパクチンを入れる。全てのフラスコを、２８０rpm，２５℃の振盪器へ戻す。
さらに２４時間後、全てのフラスコに２回目の５００μg／ml用量のコンパクチンを入れ、次いで振盪器へ戻す。
さらに４８時間後、各フラスコから１５〜２０mlのサンプルを取り、アッセイに付す。結果は、以下の通りである。
ジルベールテラ・ペルシカリアＦ７−コンパクチン６２１μg／g；プラバスタチン２７４μg／g；プラバスタチン：副生物の比２.３：１；および
Ｋ２８−コンパクチン８２２μg／g；プラバスタチン５４μg／g；プラバスタチン：副生物の比３.４：１。
他の培養物の２つは、せいぜい、痕跡量のプラバスタチンが認められる(アブシディアおよびリゾプス・オリゴスポラス)。他の全てはプラバスタチンに対して陰性であった。
【００４４】
実施例７
Ｆ４培地中２日、３日および４日経過したサッカロポリスポラ・ヒルスタ亜種コベンシス(ＡＴＣＣ２０５０１)接種物を用い(１００mlのＦ４培地／５００mlフラスコ、それぞれ凍結バイアルで接種)、Ｋ２８培地の生変換フラスコ(５０mlのＫ２８／２５０mlフラスコ)に接種する。５mlの接種物を用い、各発芽フラスコから３つのＫ２８培地フラスコに接種する。３日経過の発芽フラスコの接種物を用い、異なる容量の接種物で３回Ｋ２８培地フラスコに接種する。詳しくは、０.２５ml、１.０ml、２.５ml、７.５mlおよび１０ml容量を用いた。全てのフラスコを約２８０rpm，２８℃の振盪器に設置する。
２４時間後、各フラスコに５００μg／ml用量のコンパクチンナトリウム塩を加える。
さらに２４時間後に、各フラスコに１０００μg／ml用量のコンパクチンナトリウムを加える。
４８時間後に、２５のフラスコの培養物を回収し、アッセイに付す。結果は、下記表１２の通りである。
【表１２】
0003683606.tif 000024
注＊)６７２μg／gコンパクチンの１つのフラスコと、痕跡量を示す２つのフラスコを平均した結果
＊＊)２つのフラスコの平均；汚染の可能性がある３ツ目のフラスコは無視