(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
アツモリソウ属植物を種子から培養する際に用いられ、水に添加物を添加した水溶液をゲル化剤によりゲル状にしたアツモリソウ属植物用培地において、
上記水溶液１０００ｍｌ中に添加物として、
窒素，リン及びカリウムを含有する肥料１〜３ｇと、
ぺプトン１〜３ｇと、
糖類１０〜３０ｇと、
植物活性剤であって、粗タンパク質０．０５〜０．１５重量％、粗脂肪０．３〜０．５重量％、無機質として、Ｎａ３５〜４５ｍｇ／ｌ、Ｃａ３０〜３５ｍｇ／ｌ、Ｆｅ１．５〜２．０ｍｇ／ｌ、Ｍｇ３．０〜４．０ｍｇ／ｌ、Ｓｉ７．０〜８．０ｍｇ／ｌ、Ｎ９０〜１００ｍｇ／ｌを備えた植物活性剤０．２〜１．０ｍｌと、
ビタミン類１６〜７０ｍｇとを含有したことを特徴とするアツモリソウ属植物用培地。
【請求項２】
上記植物活性剤の替わりにポテトキューブを培地５０ｍｌ中０．５〜１．５ｇ添加することを特徴とする請求項１記載のアツモリソウ属植物用培地。
【請求項３】
上記水溶液をｐＨ５．５〜６．０とすることを特徴とする請求項１または２記載のアツモリソウ属植物用培地。
【請求項４】
上記糖類をサッカロースとしたことを特徴とする請求項１，２または３記載のアツモリソウ属植物用培地。
【請求項５】
上記ビタミン類を塩酸チアミンで構成したことを特徴とする請求項１，２，３または４記載のアツモリソウ属植物用培地。
【請求項６】
上記ビタミン類を、塩酸チアミンを５〜２０ｍｇ含有して構成したことを特徴とする請求項１，２，３または４記載のアツモリソウ属植物用培地。
【請求項７】
上記ビタミン類をニコチン酸で構成したことを特徴とする請求項１，２，３または４記載のアツモリソウ属植物用培地。
【請求項８】
上記ビタミン類を、ニコチン酸を１〜１０ｍｇ含有して構成したことを特徴とする請求項１，２，３，４または６記載のアツモリソウ属植物用培地。
【請求項９】
上記ビタミン類を塩酸ピリドキシンで構成したことを特徴とする請求項１，２，３または４記載のアツモリソウ属植物用培地。
【請求項１０】
上記ビタミン類を、塩酸ピリドキシンを５〜２０ｍｇ含有して構成したことを特徴とする請求項１，２，３，４，６または８記載のアツモリソウ属植物用培地。
【請求項１１】
上記ビタミン類をミオイノシトールで構成したことを特徴とする請求項１，２，３または４記載のアツモリソウ属植物用培地。
【請求項１２】
上記ビタミン類を、ミオイノシトールを５〜２０ｍｇ含有して構成したことを特徴とする請求項１，２，３，４，６，８または１０記載のアツモリソウ属植物用培地。
【請求項１３】
上記ゲル化剤としてゲランガムを用いたことを特徴とする請求項１，２，３，４，５，６，７，８，９，１０，１１または１２記載のアツモリソウ属植物用培地。
【請求項１４】
上記水溶液中に添加物として活性炭を併用して添加したことを特徴とする請求項１，２，３，４，５，６，７，８，９，１０，１１，１２または１３記載のアツモリソウ属植物用培地。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、ラン科のアツモリソウ属植物を大量に増殖させ、生育させるためのアツモリソウ属植物用培地に関する。
【０００２】
【従来の技術】
一般に、アツモリソウ属植物とは、ラン（蘭）科の一種で、シプリペジュウム属とも言われ、例えば、その種類として、アツモリソウ，ホテイアツモリソウ，レブンアツモリソウ，カラフトアツモリソウ等が知られている。
アツモリソウ属植物は幻の山野草と言われ、特にアツモリソウは、乱獲のため、絶滅の危機に瀕していて絶滅のおそれのある野生動植物の譲渡の規制等に関する法律によって希少野生動植物に登録されている植物である。また、アツモリソウ属植物は、増殖しにくい植物であり、その理由のひとつに発芽率が低いということが挙げられる。自然界での発芽率は、１０万分の１とも言われる。これは、普通の草花では、葉や根に成長する部分や発芽に必要な栄養分が含まれる胚乳が存在しているが、アツモリソウの種子にはそれらがなく、胚があるのみで、この種子の構造から発芽率が低いと考えられている。
そのため、近年、このアツモリソウ属植物の種の保存を図るため、バイオテクノロジー技術を利用して発芽率を向上させて増殖させる研究が行なわれている。
尚、国の許可を受けアツモリソウの培養に取り組んでいる研究施設は、現在の所、国内で１２カ所ある。
【０００３】
従来、アツモリソウ属植物の培養方法としては、例えば、無菌播種により、寒天質の培地上に滅菌水を流し込み種子を散らすという方法が知られている。滅菌水としては、例えば、次亜塩素酸ナトリウムを添加した水溶液等が知られている（例えば、特開平５−１４８１１５号公報掲載）。
【０００４】
【発明が解決しようとする課題】
ところで、このような従来のアツモリソウ属植物の培養方法にあっては、必ずしも満足できる発芽率を達成できていないという問題があった。本願発明者らは、平成７年から研究に取り組んでおり、その間、１００数種類前後の培地を用い、これらの培地上に上記の次亜塩素酸ナトリウムを添加した滅菌水を使用して種子を広げて試験を行なったが、発芽率が延びないことが分かった。
また、このアツモリソウ属植物では発芽しても苗に育つ前に植物が褐変死する確率が高いという問題もあった。褐変死は、植物体が黒色に変化したフェノール物質を出して褐変して死んでしまう現象である。
従って、従来の培養方法，培地，培養液では発芽率の向上は難しく、また、発芽しても培養中に植物が褐変死することが多く大きな問題となっている。
【０００５】
本発明は、このような問題点に鑑みてなされたもので、発芽率を向上させ、また、発芽後の培養中の褐変死の発生を抑えて生存率を高め一度に大量の苗を生産することができるアツモリソウ属植物用培地を提供することを目的とする。
【０００６】
【課題を解決するための手段】
このような課題を解決するため本願発明者らは、播種する際、培地上に種子を広げるために使っていた滅菌水の代替用として栄養素を含んだ培養液を用いることを研究し、その開発に取り組み、褐変の発生を抑え、発芽率を向上させることのできる以下のアツモリソウ属植物用培養液，アツモリソウ属植物用培地及びアツモリソウ属植物の培養方法を開発した。
本発明のアツモリソウ属植物用培地は、アツモリソウ属植物を種子から培養する際に用いられ、水に添加物を添加した水溶液をゲル状にしたアツモリソウ属植物用培地において、上記水溶液１０００ｍｌ中に添加物として、窒素，リン及びカリウムを含有する肥料１〜３ｇと、ぺプトン１〜３ｇと、糖類１０〜３０ｇと、植物活性剤０．２〜１．０ｍｌと、ビタミン類１６〜７０ｍｇとを含有している。
上記植物活性剤は、粗タンパク質０．０５〜０．１５重量％、粗脂肪０．３〜０．５重量％、無機質として、Ｎａ３５〜４５ｍｇ／ｌ、Ｃａ３０〜３５ｍｇ／ｌ、Ｆｅ１．５〜２．０ｍｇ／ｌ、Ｍｇ３．０〜４．０ｍｇ／ｌ、Ｓｉ７．０〜８．０ｍｇ／ｌ、Ｎ９０〜１００ｍｇ／ｌを備えている。
この培地を無菌播種に用いることにより、プロトコーム形成の促進を図るので発芽率を向上させることができる。植物活性剤の添加により、栄養バランスが良く、発芽の促進させる効果を発揮させる。
【０００７】
また、必要に応じ、上記植物活性剤の替わりにポテトキューブを培地５０ｍｌ中０．５〜１．５ｇ添加する構成とした。
そして、必要に応じ、上記水溶液をｐＨ５．５〜６．０とする構成とした。ｐＨをアツモリソウの自生地のｐＨに近い値とすることにより、発芽及び培養の環境を最適にでき、発芽率の向上と生育良好とすることができる。
【０００８】
また、必要に応じ、上記糖類をサッカロースとした構成としている。
更に、必要に応じ、上記ビタミン類を塩酸チアミンで構成している。また、上記ビタミン類を、塩酸チアミンを５〜２０ｍｇ含有して構成したことが有効である。
更にまた、必要に応じ、上記ビタミン類をニコチン酸で構成している。また、上記ビタミン類を、ニコチン酸を１〜１０ｍｇ含有して構成したことが有効である。
また、必要に応じ、上記ビタミン類を塩酸ピリドキシンで構成している。また、上記ビタミン類を、塩酸ピリドキシンを５〜２０ｍｇ含有して構成したことが有効である。
更に、必要に応じ、上記ビタミン類をミオイノシトールで構成している。また、上記ビタミン類を、ミオイノシトールを５〜２０ｍｇ含有して構成したことが有効である。
ラン科植物の培養ではビタミン類が培養を促進させる効果があることが多く、その選択は重要であるが、上記のビタミンを添加することにより、発芽及び継代培養中、植物体にビタミンがバランス良く有効に作用する。
【０００９】
そして、必要に応じ、上記ゲル化剤としてゲランガムを用いた構成とした。このことにより、発芽及び発育に効果がある。
また、必要に応じ、上記水溶液中に添加物として活性炭を併用して添加した構成とした。活性炭を添加することにより、発芽後の継代培養中において植物体の褐変の発生を抑えるので褐変死させることなく生育させて生存率を高めることができる。
この場合、上記活性炭を０．５〜３ｇ含有したことが有効である。
【００１０】
次に、本発明のアツモリソウ属植物用培地の研究過程で開発されたアツモリソウ属植物用培養液を挙げる。
このアツモリソウ属植物用培養液は、アツモリソウ属植物を種子から培養する際に用いられ水に添加物を添加してなるアツモリソウ属植物用培養液において、当該培養液１０００ｍｌ中に、添加物として、糖類０〜１０ｇと、木酢液０．１〜２．０ｍｌと、ビタミン類８〜４５ｍｇと、植物活性剤０．１〜１．０ｍｌとを含有した構成とした。
上記植物活性剤は、粗タンパク質０．０５〜０．１５重量％、粗脂肪０．３〜０．５重量％、無機質として、Ｎａ３５〜４５ｍｇ／ｌ、Ｃａ３０〜３５ｍｇ／ｌ、Ｆｅ１．５〜２．０ｍｇ／ｌ、Ｍｇ３．０〜４．０ｍｇ／ｌ、Ｓｉ７．０〜８．０ｍｇ／ｌ、Ｎ９０〜１００ｍｇ／ｌを備えている。
この培養液を無菌播種に用いると、木酢液，ビタミン類及び植物活性剤の相互作用によって、種子が栄養分を吸収し易くなり、プロトコーム形成の促進が図られ、発芽率が大幅に向上させられる。また、発芽後の継代培養中に添加することにより植物体の褐変の発生が抑えられ、褐変死させることが抑制され、更に植物体が栄養分を良く吸収して順調に生育させられ、生存率が大幅に向上させられる。植物活性剤の添加により、栄養バランスが良く、発芽を促進させる効果を発揮させる。
【００１１】
そして、必要に応じ、上記培養液をｐＨ５．５〜６．０とすることが有効である。ｐＨをアツモリソウの自生地のｐＨに近い値にすることにより、発芽及び培養の環境を最適にでき、発芽率の向上と生育良好とすることができる。
また、必要に応じ、上記添加物として糖類を併用した構成とした。この場合、上記培養液１０００ｍｌ中に糖類を１〜１０ｇ含有したことが有効である。そして、必要に応じ、上記糖類をサッカロースとした。
【００１２】
そしてまた、必要に応じ、上記ビタミン類を塩酸チアミンで構成した。また、上記ビタミン類を、塩酸チアミンを１〜１０ｍｇ含有して構成したことが有効である。
また、必要に応じ、上記ビタミン類をニコチン酸で構成した。また、上記ビタミン類を、ニコチン酸を１〜５ｍｇ含有して構成したことが有効である。
また、必要に応じ、上記ビタミン類を塩酸ピリドキシンで構成した。また、上記ビタミン類を、塩酸ピリドキシンを１〜１０ｍｇ含有して構成したことが有効である。
更にまた、必要に応じ、上記ビタミン類をミオイノシトールで構成した。また、上記ビタミン類を、ミオイノシトールを５〜２０ｍｇ含有して構成したことが有効である。
ラン科植物の培養ではビタミン類が培養を促進させる効果があることが多く、その選択は重要であるが、上記のビタミンを添加することにより、発芽及び継代培養中、植物体にビタミンがバランス良く有効に作用する。
【００１３】
次にまた、本発明のアツモリソウ属植物用培地の研究の際に開発されたアツモリソウ属植物の培養方法について挙げる。
このアツモリソウ属植物の培養方法は、アツモリソウ属植物を種子から培養するアツモリソウ属植物の培養方法において、選別して使用する種子を得る種子選別工程と、得られた種子を培養液を用いて無菌的に固形培地に播種する無菌播種工程と、播種後、発芽するまで培養する発芽培養工程と、発芽し器官分化したものを培地を替えて継代培養する継代培養工程と、培養苗がある一定の大きさに生育したら低温の環境下にさらす低温処理工程と、低温処理終了後、用土に植え替える鉢上げ工程とを備えた構成とした。
これにより、培地に種子を播種した後、プロトコームが形成され発芽率が驚異的に向上する。培地に種子を播種して無菌播種から栄養、温度、湿度等の条件を理想的な状態で生育して苗まで成長させたアツモリソウ属植物を自然の栽培環境に移す鉢上げ前に低温処理が行なわれ、苗が環境の変化に対して丈夫になり順化が順調に行なわれる。
【００１４】
そして、必要に応じ、上記培養液を培地とは異なる組成の培養液とする構成とした。このことにより、培地の成分による要素だけでなく、培養液の成分の要素も加わるので栄養が豊富となり、発芽を促進させることができる。
また、必要に応じ、上記発芽培養工程において、播種した培地を暗黒下において培養する構成とした。アツモリソウ属植物は光に敏感で、光に当てると褐変が発生して褐変死してしまう。
また、必要に応じ、上記発芽培養工程において、播種した培地を１０〜２５℃の環境において培養する構成とした。アツモリソウ属植物の培養において最適な温度であり、２５℃より高いと褐変が発生して褐変死してしまう。また、１０℃に満たない温度では、生育が遅く、褐変も発生して褐変死してしまう。
【００１５】
そして、必要に応じ、上記継代培養工程において、培地に培養液を添加する構成とした。種子や発芽直後の植物体及び幼い苗において乾燥に耐えることができず死んでしまう危険性が高いが、培養液を添加することにより乾燥することなく、また、液体のため栄養素を吸収し易く、更には発芽後の培養中の褐変死の発生を抑えて生存率を高めることができる。
また、必要に応じ、上記継代培養工程において、培地を１０〜２５℃の環境において培養する構成とした。アツモリソウ属植物の培養において最適な温度であり、２５℃より高いと褐変が発生して褐変死してしまう。また、１０℃に満たない温度では、生育が遅く、褐変も発生して褐変死してしまう。
【００１６】
そして、必要に応じ、上記低温処理工程において、低温処理期間を３０〜９０日とした構成とした。
この場合、望ましくは、上記低温処理工程において、低温処理期間を６０日±５日としたことが有効である。アツモリソウ属植物において、培養によって順調に生育した苗を自然環境においても生育させるために低温下に置く春化処理が９０日以上必要とされている。しかし、本培養方法では、６０日±５日程度の低温処理工程において春化処理と同様の効果が得られる。
【００１７】
更にまた、必要に応じ、上記低温処理工程において、低温処理温度を０〜１０℃とした構成とした。０℃より低温であると、幼苗が凍り、壊死してしまう。また、１０℃より温度が高くなると、低温処理の効果が見られず順調に成長しない。
この場合、望ましくは、上記低温処理工程において、低温処理温度を３〜５℃としたことが有効である。
【００１８】
また、この培養方法において用いる培養液及び培地としては、上述の培養液及び培地を用いることが望ましい。この場合、発芽率が８０％以上になり、発芽後の生存率も７０％以上となり、アツモリソウ属植物の大量増殖が可能となり、鉢上げ後の苗を供給できる。
【００１９】
【発明の実施の形態】
以下、添付図面に基づいて本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物用培地を説明する。アツモリソウ属植物用培地はアツモリソウ属植物の培養方法において用いられるので、この培養方法の説明において説明する。
【００２０】
アツモリソウ属植物の培養方法は、図１乃至３に示すように、選別して使用する種子を得る種子選別工程（１）と、得られた種子を無菌的に固形培地に播種する無菌播種工程（２）と、播種後、発芽するまで培養する発芽培養工程（３）と、発芽し器官分化したものを培地を替えて継代培養する継代培養工程（４）と、培養苗がある一定の大きさに生育したら低温の環境下にさらす低温処理工程（５）と、低温処理終了後、用土に植え替える鉢上げ工程（６）からなる。
以下に各工程を詳しく説明する。
【００２１】
（１）種子選別工程
先ず、無菌播種に使用する培養に適した優良なアツモリソウの種子を以下のようにして得る。
▲１▼人工交配
開花から３０日以内、望ましくは開花から１週間以内までの花を選び花粉を採取して交配先となる株の受精先に花粉を受粉させ交配を完了させる。
▲２▼さやの保護
人工交配終了後、交配が確認できたら直ちに病害虫による被害から防ぐためさや全体を袋で覆う。また、袋で覆わない場合には、定期的に殺菌剤をさやにかける。
▲３▼さやの採取時期
人工交配終了後、４０〜１２０日までのさや、望ましくは、６０〜８０日のさやを採取し無菌播種の材料として使用する。
ここで、アツモリソウでは胚の形成が始まる交配後６０日前後の種子が最も発芽率が高く、望ましい。交配後４０日に満たないと胚が充分に形成されておらず、交配後８０日を過ぎると発芽率が低下する。
▲４▼種子選別
採取したさやを殺菌処理した後、さやから種子を取出し、顕微鏡にて種子内部にある胚を観察し選別する。種子は、発芽能力が高いものの特徴である胚の形状が丸みを帯びていて、かつ、胚の色が白又は黄色のものを選ぶ。胚の色が白又は黄色のものは、発芽抑制物質の影響を受けていないため、発芽し易い。逆に胚の形状が細く、米状のものは発芽能力が低い。また、胚の色が茶色又は黒っぽいものは発芽能力が極めて低い。
【００２２】
（２）無菌播種工程
選別した種子を培養液に入れて、無菌的に発芽の際に用いる発芽用培地に播種する。培養液中の種子を培地に流し入れて種子が培地全体に広がるように拡散する。このときフラスコ内の種子は約３００〜１０００個である。
【００２３】
ここで用いる培養液は、サッカロース０〜１０ｇと、木酢液０．１〜２．０ｍｌと、ビタミン類として塩酸チアミン１〜１０ｍｇ，ニコチン酸１〜５ｍｇ，塩酸ピリドキシン１〜１０ｍｇ及びミオイノシトール５〜２０ｍｇと、植物活性剤０．１〜１．０ｍｌとを用い、これらの添加物に蒸留水を加え、０．１Ｎの塩酸や０．１Ｎの水酸化ナトリウムを用いてｐＨ５．５〜６．０に調整した培養液１０００ｍｌを得た。その後、オートクレーブで高圧殺菌し、無菌室内で放冷する。
植物活性剤は、粗タンパク質０．０５〜０．１５重量％、粗脂肪０．３〜０．５重量％、無機質として、Ｎａ３５〜４５ｍｇ／ｌ、Ｃａ３０〜３５ｍｇ／ｌ、Ｆｅ１．５〜２．０ｍｇ／ｌ、Ｍｇ３．０〜４．０ｍｇ／ｌ、Ｓｉ７．０〜８．０ｍｇ／ｌ、Ｎ９０〜１００ｍｇ／ｌを備えている。例えば、植物活性剤としては、市販されている商品であるＨＢ１０１（株式会社フローラ社製）やメネデール（株式会社メネデール化学研究所社製）が用いられる。
【００２４】
また、ここで用いる培地は、本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物用培地であり、窒素が６．５，リン酸が６及びカリウムが１９の比率（重量％）で含有されている肥料（市販されている商品名「ハイポネックス」（株式会社ハイポネックス社製））１〜３ｇと、ペプトン１〜３ｇと、サッカロース１０〜３０ｇと、ビタミン類として塩酸チアミン５〜２０ｍｇ，ニコチン酸１〜１０ｍｇ，塩酸ピリドキシン５〜２０ｍｇ及びミオイノシトール５〜２０ｍｇと、植物活性剤０．１〜１．０ｍｌとを用い、これらの添加物に蒸留水を加え、０．１Ｎの塩酸や０．１Ｎの水酸化ナトリウムを用いてｐＨ５．５〜６．０に調整して１０００ｍｌの水溶液を得る。そして、この水溶液に、ゲル化剤としてゲランガム３〜４ｇを加え、その後、攪拌しながら加熱してゲランガムを溶かし、フラスコに約５０ｍｌずつ分注し、オートクレーブで高圧殺菌して、無菌室内で放冷して、凝固させる。植物活性剤としては、上述したと同様の成分を有し、例えば、市販されている商品であるＨＢ１０１（株式会社フローラ社製）やメネデール（株式会社メネデール化学研究所社製）が用いられる。
尚、培地に含まれるビタミン類は上述した培養液の２倍の重量となる。
【００２５】
（３）発芽培養工程
無菌播種終了後、室温を１５〜２０℃に設定し暗黒下に置き培養を開始する。
尚、培養を暗黒下で行なうのは、光に当たると種子が褐変して死滅してしまうためである。
播種後、約２〜３カ月で、ＰＬＢ（プロトコーム）が見られ発芽する。その後、器官分化が見られるまで、培養する。
（４）継代培養工程
発芽し器官分化したものを培地を替えて継代培養する。ここで用いる培地は、発芽用培地に活性炭を０．５〜３．０ｇ加えた組成の継代培養用培地である。
活性炭を加えた継代培養用培地にピンセットを使い移して、培地上に培養液を培地５０ｍｌ中に約０．５〜１．０ｍｌ添加した後、暗黒下に置き、室温を１０〜２５℃に設定して培養を開始する。
継代培養は１〜６カ月行なう。この間、培地の植え替えを上記と同様に１〜５回行ない、その際に培養液も添加する。
ここで、培養苗の生育を進めたいとき、茎葉部の発生が見られたらごくわずかな光（光量は、０〜２０００ｌｕｘ（ルクス））を照射しても差支えない。
【００２６】
（５）低温処理工程
培養苗が約１０ｍｍ以上に成長したら、温度を３〜５℃に設定して６０日以上、低温の環境に置く。
アツモリソウ属植物において、培養によって順調に生育した苗を自然環境においても生育させるために低温下に置く春化処理が９０日以上必要とされている。
しかし、本培養方法では、６０日以上の低温処理工程において９０日以上の春化処理と同様の効果が得られる。
（６）鉢上げ工程
低温処理終了後、用土に植え替えて鉢上げする。
鉢上げは、培地上で生育した培養苗をピンセットを使い取り出し、水又は殺菌剤を加えた水に浸けて苗を充分に湿らせる。
次に、予め準備した鉢に用土を加え、その土中に深さ約１ｃｍ程度の穴をつくり苗全体が埋没するように（植物体を外に出さないようにする）植えつけて鉢上げする。
栽培開始後、土から植物体が伸長し、生育を開始する。
【００２７】
従って、この培養方法によれば、発芽率が著しく高く、また、培養中に褐変の発生を抑えて生育させることができるので生存率も高くアツモリソウ属植物の大量増殖を図ることができる。
また、鉢上げ工程を春に行なうように培養を行なうと、アツモリソウの生育サイクルと季節が一致して鉢上げ後もアツモリソウを順調に成長させることができる。
【００２８】
【実施例】
（Ａ）培養液（「遠野培養液」と命名）
アツモリソウ属植物の培養方法に係る培養液は、図４に示すように、サッカロース１０ｇと、木酢液１．０〜２．０ｍｌと、ビタミン類として塩酸チアミン５ｍｇ，ニコチン酸２．５ｍｇ，塩酸ピリドキシン５ｍｇ及びミオイノシトール１０ｍｇとを用い、これらの添加物に蒸留水を加えるとともに、植物活性剤としてのＨＢ１０１（株式会社フローラ社製）を０．１〜１．０ｍｌ適宜に滴下し、更に、０．１Ｎの塩酸や０．１Ｎの水酸化ナトリウムを用いてｐＨ５．６５に調整して、１０００ｍｌの培養液を得た。この植物活性剤としてのＨＢ１０１は、粗タンパク質０．１％、粗脂肪０．４％、無機質として、Ｎａ４１ｍｇ／ｌ、Ｃａ３３ｍｇ／ｌ、Ｆｅ１．８ｍｇ／ｌ、Ｍｇ３．３ｍｇ／ｌ、Ｓｉ７．４ｍｇ／ｌ、Ｎ９７ｍｇ／ｌを備えている。水素イオン濃度（原液）は、ｐＨ４．０である。
その後、オートクレーブで高圧殺菌し、無菌室内で放冷した。
【００２９】
（Ｂ）発芽用培地（「遠野培地」と命名）
本発明の実施例に係る培地は、図５に示すように、肥料として「ハイポネックス」（株式会社ハイポネックス社製）を用いた。ここで、「ハイポネックス」は、窒素が６．５，リン酸が６及びカリウムが１９の比率（重量％）で含有されている肥料である。そして、「ハイポネックス」２ｇと、ペプトン２ｇと、サッカロース２０ｇと、ビタミン類として塩酸チアミン１０ｍｇ，ニコチン酸５ｍｇ，塩酸ピリドキシン１０ｍｇ及びミオイノシトール２０ｍｇとを用い、これらの添加物に蒸留水を加えるとともに、植物活性剤としてのＨＢ１０１（株式会社フローラ社製）０．１〜１．０ｍｌを適宜に滴下し、更に、０．１Ｎの塩酸及び０．１Ｎの水酸化ナトリウムを用いてｐＨ５．６５に調整して、１０００ｍｌの水溶液を得た。
この状態の水溶液に、ゲル化剤としてゲランガム３〜４ｇを、攪拌しながら加熱して溶かし、フラスコに約５０ｍｌずつ分注し、オートクレーブで高圧殺菌して、無菌室内で放冷して、凝固させる。
（Ｃ）継代培養用培地（「遠野培地」と命名）
本発明の実施例に係る継代培養用培地は、上記水溶液中に添加物として活性炭を０．５〜３．０ｇ含有させた組成のものを用いた。
【００３０】
培養方法は、上述した方法に従って行なった。尚、継代培養工程（４）において、継代培養は１〜６カ月で、培地の植え替えを１〜５回行ない、培養苗を約１０ｍｍ以上に成長させた。そして茎葉部が発生しても光を照射することなく培養した。
また、低温処理工程（５）においては、苗を温度を３〜５℃に設定して暗所に６０日間、低温の環境に置いた。
【００３１】
【実験例】
（Ｉ−Ｉ）発芽用培地の実験
先ず、本発明の実施例に係る培地（Ｂ）について比較例とともに以下の実験をした。
発芽用培地の比較例として、ＭＳ培地，ハイポネックス培地，ＭＴ培地，ナドソンＢ培地，ナドソンＣ培地，リングマイヤー・スクーグ培地，ホワイト培地，ベーシン・ベント培地，ウインバー培地，Ｂｕｒｇｅｆｔ．Ｈ．Ｅｇ−１培地，カーチス．Ｊ培地，山田培地，バナナ蜂蜜（唐澤）培地，フイツシュ・ソリュブル培地，洋ラン用タマネギ培地，ＧＳ培地，京都ソリューション培地，Ｂｕｒｇｅｆｔ  Ｎ3 Ｆ培地，ガンボーグＢ５培地，ハーバース培地の計２０種類の培地を用いた。
これらの培地に、アツモリソウの種子を無菌播種した。尚、播種の際に種子の拡散のために用いたのは滅菌水のみであり、他の工程は、上述した培養方法と同様である。
結果を図６に示す。この結果、本発明の培地は調整が比較的簡易に行なうことができ、発芽，生育ともに良好であった。
【００３２】
（Ｉ−ＩＩ）発芽用培地及び継代培養用培地の実験
各培地による発芽と生育の違いを調べるため、本発明の実施例に係る培地（Ｂ）及び（Ｃ）について比較例とともに以下の実験をした。
発芽用培地及び継代培養用培地の比較例として、本発明の培地の成分を１／２にして作成した培地（本発明の培地の濃度の１／２の培地），ハーバース培地，ＭＴ培地，ＭＳ培地の計４種類の培地にアツモリソウの種子を無菌播種した。尚、播種用培地、継代培養用培地以外は、上述した培養方法と同様に行なった。そして、播種から２カ月後，４カ月後，６カ月後の生育した苗の高さを測定した。
結果を図７及び８に示す。本発明の培地（Ｂ）及び（Ｃ）を順に使用した最終の発芽率は８２．６％と最も高く、本発明の培地の成分を１／２にして作成した培地の発芽率は７１．０％，ハーバース培地の発芽率は７０．５％，ＭＴ培地の発芽率は１．４％，ＭＳ培地の発芽率は０．６％であった。
また、図８において、播種から２カ月後，４カ月後，６カ月後の生育した苗の高さは、苗２０〜３０個の平均の値である。この結果、本発明の培地で培養したアツモリソウの苗は播種から６カ月後に平均値で５０ｍｍとなり、他の培地で培養した苗の平均値より生育したことが分かる。
【００３３】
（ＩＩ）培養液の実験
各培養液による発芽と生育の違いを調べるため、本培養方法に係る培養液について比較例とともに以下の実験をした。
▲１▼滅菌水とサッカロースにＨＢ１０１を添加した液，▲２▼滅菌水とサッカロースに木酢液を添加した液，▲３▼滅菌水とサッカロースにＨＢ１０１と木酢液を添加した液，▲４▼滅菌水とサッカロースに木酢液とビタミンを添加した液の培養液を用いて、培養を行なった。また、▲１▼の液においてＨＢ１０１の添加濃度を変えた液でも調べてみた。尚、培養液以外は、上述した培養方法と同様に行なった。
結果を図９に示す。この結果から、滅菌水とサッカロースにＨＢ１０１と木酢液とビタミンを添加した本培養方法に係る培養液が最も褐変の発生を抑え、生育が良好であった。
【００３４】
（ＩＩＩ）培養温度の実験
各培養温度による影響を調べるため、本培養方法の発芽培養工程（３）において、培養温度を変えた比較例として以下の実験をした。
培養は、１０℃，１５℃，２０℃，２５℃，３０℃の各温度で行ない、各温度の試験数は５０個として、培養中に褐変が発生して発芽しない割合（褐変死率）を調べた。尚、培養温度以外は、上述した培養方法と同様に行なった。
結果は図１０に示すように、２５℃の培養では約７０％、３０℃の培養では約９５％が褐変して死んでしまい、播種後の培養温度は１０〜２０℃で行なうことが最適であることが分かった。
【００３５】
（ＩＶ−Ｉ）低温処理の効果を調べる実験
低温処理の効果を調べるため、本培養方法と低温処理を行なわない比較例として以下の実験をした。
低温処理を行なわないで２０℃の暗所で６０日間置いて鉢上げした苗と２０℃の明所で６０日間置いて鉢上げした苗の生存率を調べた。
実施例において低温処理は、苗を３〜５℃の暗所で６０日間であるが、この低温処理工程において明所においた場合の苗の鉢上げした後の生存率及びその後の生育も調べた。尚、低温処理以外の条件は上述した培養方法と同様に行なった。
低温処理を行なわないで鉢上げしたときの苗の生存率の結果は、図１１に示すように、暗所での生存率が７％でかなり低く、明所でも１３％で生存率が低い。
これに対し、低温処理したものは、暗所、明所ともに８０％以上の高い生存率であり、わずかに明所での生存率が高かった。
また、低温処理の暗所と明所のその後の生育の結果は、図１２に示すように、暗所は明所と比較して生育は劣るが褐変は発生せず、明所では、茎葉部の色が薄くなったが生育は進んだ。しかし明所ではわずかに褐変が発生した。
【００３６】
（ＩＶ−ＩＩ）低温処理を行なうアツモリソウの成長状態の実験
次に、低温処理を行なうアツモリソウの成長状態を調べるために、本培養方法と低温処理を行なわない比較例として以下の実験をした。
実施例では、苗が１０ｍｍ以上に成長した状態で低温処理を行なった。比較例では、発芽直後のプロトコーム，苗が５ｍｍ程度に成長した状態で低温処理を行なった後の状態及びその後の生育を調べた。低温処理以外の条件は上述した培養方法と同様に行なった。
結果は図１２に示すように、プロトコームでは生育が止まり褐変死したものが見られ、５ｍｍ程度の植物体では生育に変化が見られず、１０ｍｍ以上の植物体（苗）では生育が順調に進んだ。
【００３７】
（ＩＶ−ＩＩＩ）低温処理を行なう期間の実験
次に、低温処理を行なう期間を調べるために、本培養方法と低温処理を行なわない比較例として以下の実験をした。
本発明の実施例では６０日間低温処理を行なったが、比較例として、１５日，３０日，６０日，９０日の各期間、約１０ｍｍの植物体（苗）を暗所で３〜５℃で低温処理を行なった。
結果は図１３に示すように、６０日間，９０日間の低温処理を行なった苗の生育が良好であったことから、６０日以上行なうと低温処理の効果が見られる。
【００３８】
上記低温処理に関する各実験から、低温処理は１０ｍｍ以上に生育した苗を３〜５℃で６０日以上行なうことが最適であり、明るさは、暗所、明所どちらでも構わないということが分かった。
【００３９】
尚、上記実施の形態において、培地に植物活性剤を添加したが、植物活性剤を添加することなく、ポテトキューブを用いても良い。
【００４０】
【発明の効果】
以上説明したように、本発明のアツモリソウ属植物用培地によれば、アツモリソウ属植物を種子から培養する際に用いられ水に添加物とゲル化剤を添加してゲル状にしたアツモリソウ属植物用培地において、窒素，リン及びカリウムを含有する肥料１〜３ｇと、ぺプトン１〜３ｇと、糖類１０〜３０ｇと、植物活性剤０．２〜１．０ｍｌと、ビタミン類１６〜７０ｍｇとを用い、これらの添加物を水に混合して１０００ｍｌとした水溶液をゲル状としたので、この培地を無菌播種に用いることにより、プロトコームを形成させて発芽率を向上させることができる。
また、植物活性剤の替わりにポテトキューブを培地５０ｍｌ中０．５〜１．５ｇ添加する場合には、ポテトの養分を種子に与えることができる。
そして、培地をｐＨ５．５〜６．０とした場合には、発芽及び培養の環境を最適にでき、発芽率の向上と生育を良好にすることができる。
【００４１】
そしてまた、糖類をサッカロースとし、ビタミン類において、塩酸チアミンを５〜２０ｍｇ、ニコチン酸を１〜１０ｍｇ、塩酸ピリドキシンを５〜２０ｍｇ、ミオイノシトールを５〜２０ｍｇ含有した場合には、アツモリソウ属植物の発芽率を向上させ、生育を促進させることができる。
更にまた、活性炭を添加した場合には、発芽後の継代培養において植物体の褐変の発生を抑えるので褐変死させることなく生育させて生存率を高めることができる。
【図面の簡単な説明】
【図１】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物用培地が用いられるアツモリソウ属植物の培養方法を示す工程図である。
【図２】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物用培地が用いられるアツモリソウ属植物の培養方法を示す工程図である。
【図３】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物用培地が用いられるアツモリソウ属植物の培養方法を示す工程図である。
【図４】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物用培地が用いられるアツモリソウ属植物の培養方法において、これに使用されるアツモリソウ属植物用培養液の組成を示す表図である。
【図５】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物用培地の組成を示す表図である。
【図６】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物用培地に係り他の培地での発芽を比較した結果を示す表図である。
【図７】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物用培地に係り他の培地での発芽率を示す図である。
【図８】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物用培地に係り他の培地で培養した苗の生育状況を示す図である。
【図９】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物用培地が用いられるアツモリソウ属植物の培養方法において、これに使用されるアツモリソウ属植物用培養液に係り他の培養液による生育状況を示す図である。
【図１０】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物用培地が用いられるアツモリソウ属植物の培養方法に係り、培養温度による褐変の発生状況を示す図である。
【図１１】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物用培地が用いられるアツモリソウ属植物の培養方法に係り、低温処理の効果を示す図である。
【図１２】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物用培地が用いられるアツモリソウ属植物の培養方法に係り、低温処理を行なう時期を変えた場合の生育状況を示す図である。
【図１３】本発明の実施の形態に係るアツモリソウ属植物用培地が用いられるアツモリソウ属植物の培養方法に係り、低温処理を行なう期間を変えた場合の生育状況を示す図である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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