(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ｂＦＧＦを担持したゼラチンハイドロゲルを含むｂＦＧＦ徐放性ゼラチンハイドロゲル粒子を含有し、前房内へ、ｂＦＧＦ投与量として１つの眼あたり３０〜３００ｎｇ投与されることを特徴とする、角膜血管新生を生じさせずに角膜内皮細胞の増殖を促進するための剤。
【請求項２】
ｂＦＧＦを担持したゼラチンハイドロゲルを含むｂＦＧＦ徐放性ゼラチンハイドロゲル粒子を含有し、前房内へ、ｂＦＧＦ投与量として１つの眼あたり３０〜３００ｎｇ投与されることを特徴とする、角膜血管新生を生じさせずに角膜内皮損傷を治療するための剤。
【請求項３】
角膜内皮損傷が水疱性角膜症における角膜内皮損傷である、請求項２記載の剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）徐放性ゼラチンハイドロゲルの、角膜内皮細胞増殖促進及び角膜内皮損傷に関連する疾患の治療のための使用に関する。
【背景技術】
【０００２】
角膜は上皮、実質及び内皮の三層からなり、角膜内皮は角膜の一番内側に存在する単一の細胞層で、角膜の含水率を保持し、透明性を維持している。角膜内皮細胞はｉｎ  ｖｉｖｏでの増殖能力に乏しく、一度損傷を受けると近隣の細胞が伸展することで、損傷部位が埋められる。このため損傷を受けると角膜内皮細胞の密度が低くなり、透明性が維持できなくなる。このような病態を水疱性角膜症とよび、重篤な視力障害を引き起こす。【０００３】
増殖能力の少ない角膜内皮細胞を増殖させる因子としてはｂＦＧＦが知られており、ｉｎ  ｖｉｔｒｏでの角膜内皮細胞培養に用いられている。過去の文献でｉｎ  ｖｉｖｏでのｂＦＧＦ溶液の前房内投与による角膜内皮細胞増殖促進効果を試みた報告がされている（非特許文献１）。しかし、房水は、常に産生・排出されており、１時間で２０％の房水が入れ替わっている。角膜内皮細胞へｂＦＧＦを長期的に作用させるには、薬物を徐放させる適切な担体が必要となる。一方、ｂＦＧＦは種々の臓器で強力な血管新生因子として作用することも知られているため、角膜内皮再生医療においては、そのような種々の副作用を最小限に抑制し且つ治療効果が最大となるような、ｂＦＧＦの適切な投与方法や投与量を確立することが求められている。【０００４】
本発明者らは、タンパク質を徐放し得る優れた担体としてゼラチンハイドロゲル（架橋ゼラチンゲル）が有用であることを見出し、この担体を用いたｂＦＧＦ徐放性ゼラチンハイドロゲル（ｂＦＧＦ含有架橋ゼラチンゲル）製剤を既に開発している。このｂＦＧＦ徐放性ゼラチンハイドロゲル製剤は、血管新生の促進や、骨折の治療に極めて有用であるが、角膜内皮細胞の増殖促進への適用についてはこれまでに何ら報告はない（特許文献１〜４、非特許文献２及び３）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特開２００５−１０４９１０号公報
【特許文献２】国際公開第０３／００７９８２号
【特許文献３】国際公開第９４／２７６３０号
【特許文献４】国際公開第２００６／０８５６５３号
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】Ｃｕｒｒ  Ｅｙｅ  Ｒｅｓ．Ｖｏｌ．１１，ｐｐ．１１６１−７２，１９９２
【非特許文献２】Ａｄｖａｎｃｅｄ  Ｄｒｕｇ  Ｄｅｌｉｖｅｒｙ  Ｒｅｖｉｅｗｓ，ｖｏｌ．３１，ｐｐ．２８７−３０１，１９９８
【非特許文献３】Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｏｎ，ｖｏｌ．１１０，ｐｐ．３３２２−３３２８，２００４
【発明の概要】
【０００７】
（発明が解決しようとする課題）
本発明は、角膜内皮細胞の増殖を促進し、角膜内皮損傷に関連する疾患の治療に有用なｂＦＧＦ製剤を提供することを課題とする。
【０００８】
（課題を解決するための手段）
本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意検討した結果、ｂＦＧＦを担持させたゼラチンハイドロゲルを含むｂＦＧＦ徐放性ゼラチンハイドロゲル粒子を前房内に投与することにより、角膜内皮細胞の増殖を持続的に促進し得ることを見出し、本発明を完成させるに至った。
【０００９】
すなわち、本発明は以下を提供するものである。
〔１〕ｂＦＧＦを担持したゼラチンハイドロゲルを含むｂＦＧＦ徐放性ゼラチンハイドロゲル粒子を含有し、前房内へ投与されることを特徴とする、角膜内皮細胞増殖促進剤。
〔２〕ｂＦＧＦの投与量が１つの眼あたり３０〜３００ｎｇである、〔１〕記載の剤。
〔３〕ｂＦＧＦを担持したゼラチンハイドロゲルを含むｂＦＧＦ徐放性ゼラチンハイドロゲル粒子を含有し、前房内へ投与されることを特徴とする、角膜内皮損傷に関連する疾患の治療剤。
〔４〕ｂＦＧＦの投与量が１つの眼あたり３０〜３００ｎｇである、〔３〕記載の剤。
〔５〕角膜内皮損傷に関連する疾患が水疱性角膜症である、〔３〕記載の剤。
〔６〕ｂＦＧＦを担持したゼラチンハイドロゲルを含むｂＦＧＦ徐放性ゼラチンハイドロゲル粒子の有効量を対象の前房内へ投与することを含む、角膜内皮細胞の増殖促進方法。
〔７〕ｂＦＧＦの投与量が１つの眼あたり３０〜３００ｎｇである、〔６〕記載の方法。
〔８〕ｂＦＧＦを担持したゼラチンハイドロゲルを含むｂＦＧＦ徐放性ゼラチンハイドロゲル粒子の有効量を対象の前房内へ投与することを含む、角膜内皮損傷に関連する疾患の治療方法。
〔９〕ｂＦＧＦの投与量が１つの眼あたり３０〜３００ｎｇである、〔８〕記載の方法。
〔１０〕角膜内皮損傷に関連する疾患が水疱性角膜症である、〔８〕記載の方法。
〔１１〕対象の前房内へ投与する角膜内皮細胞の増殖促進剤の製造のための、ｂＦＧＦを担持したゼラチンハイドロゲルを含むｂＦＧＦ徐放性ゼラチンハイドロゲル粒子の使用。
〔１２〕ｂＦＧＦの投与量が１つの眼あたり３０〜３００ｎｇである、〔１１〕記載の使用。
〔１３〕対象の前房内へ投与する角膜内皮損傷に関連する疾患の治療剤の製造のための、ｂＦＧＦを担持したゼラチンハイドロゲルを含むｂＦＧＦ徐放性ゼラチンハイドロゲル粒子の使用。
〔１４〕ｂＦＧＦの投与量が１つの眼あたり３０〜３００ｎｇである、〔１３〕記載の使用。
〔１５〕角膜内皮損傷に関連する疾患が水疱性角膜症である、〔１３〕記載の使用。
【００１０】
（発明の効果）
本発明によれば、角膜内皮細胞の増殖を持続的に促進し、角膜内皮損傷に関連する疾患を治療することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１１】
【図１】正常ウサギにＣ−ＭＳ又はＦＧＦ−ＭＳ−ａを投与して６日目の前眼部写真を示す。
【図２】正常ウサギにＣ−ＭＳを投与後の眼圧の経時的な変化を示す。
【図３】角膜内皮障害モデルにＣ−ＭＳ、ＦＧＦ−ＭＳ−ｂ、ＦＧＦ−ＭＳ−ｃ、ＦＧＦ−ＭＳ−ｅを投与した翌日の写真を示す。
【図４】Ｃ−ＭＳ投与群、ＦＧＦ−ＭＳ−ｅ投与群及び未治療群での角膜内皮欠損面積を示す。
【図５】Ｃ−ＭＳ、ｂＦＧＦ−ｓｏｌｕｔｉｏｎ、ＦＧＦ−ＭＳ−ｅを投与２日後の角膜内皮欠損面積を示す。
【図６】Ｃ−ＭＳ投与群の欠損面積を１００％としたときの他検体投与群の角膜内皮欠損面積の割合を示す。
【図７】Ｃ−ＭＳ又はＦＧＦ−ＭＳ−ｅ投与２日後の前眼部の写真を示す。
【図８】Ｃ−ＭＳ又はＦＧＦ−ＭＳ−ｅ投与２日後のアリザリン染色した角膜内皮面を示す。
【図９】Ｃ−ＭＳ投与群での角膜内皮欠損面積を１００％としたときのＦＧＦ−ＭＳ−ｅ投与群での角膜内皮欠損面積の割合を示す。
【図１０】Ｃ−ＭＳ又はＦＧＦ−ＭＳ−ｅ投与２日後のＫｉ６７染色した角膜内皮面を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１２】
本発明は、ｂＦＧＦを担持したゼラチンハイドロゲルを含むｂＦＧＦ徐放性ゼラチンハイドロゲル粒子（ｂＦＧＦ徐放性ゼラチンマイクロスフェアー）を含有し、前房内へ投与されることを特徴とする剤に関する。本発明の剤は、角膜内皮細胞増殖促進剤や角膜内皮損傷に関連する疾患の治療剤として有用である。
【００１３】
ｂＦＧＦは公知のサイトカインであり、そのアミノ酸配列等も公知である。本発明で使用されるｂＦＧＦは、脳下垂体、脳、網膜、黄体、副腎、腎、胎盤、前立腺、胸腺などのｂＦＧＦを発現する臓器より抽出されるもの、組換えＤＮＡ技術などの遺伝子工学的手法で製造されるもの、さらにこれらの修飾体であって角膜内皮細胞の増殖を促進し得るものを含む。ｂＦＧＦの修飾体としては、例えば前記抽出により得られた又は遺伝子工学的手法で得られたｂＦＧＦのアミノ酸配列においてアミノ酸が付加されたもの、アミノ酸の一部が他のアミノ酸で置換されたもの、又はアミノ酸の一部が欠損したものなどが挙げられる。本発明においては、これらのｂＦＧＦ又はその修飾体は単独で用いられても良いし、これらの混合物として用いられても良い。
【００１４】
本発明で使用されるｂＦＧＦは、通常哺乳動物由来である。哺乳動物としては、例えば、マウス、ラット、ハムスター、モルモット等のげっ歯類やウサギ等の実験動物、ブタ、ウシ、ヤギ、ウマ、ヒツジ、ミンク等の家畜、イヌ、ネコ等のペット、ヒト、サル、カニクイザル、アカゲザル、マーモセット、オランウータン、チンパンジーなどの霊長類を挙げることができる。
【００１５】
前記ｂＦＧＦとしては、好ましくは、例えば国際公開第８７／０１７２８号（特表昭６３−５００８４３号公報）、国際公開第８９／０４８３２号（特表平２−５０４４６８号公報）、国際公開第８６／０７５９５号（特表昭６３−５０００３６号公報）、国際公開第８７／０３８８５号（特表昭６３−５０１９５３号公報）、欧州特許出願公開第２３７９６６号明細書（特開昭６３−２２６２８７号公報）、欧州特許出願公開第２８１８２２号明細書（特開平２−１９３号公報）、欧州特許出願公開第３２６９０７号明細書（特開平２−９０９８９４号公報）、欧州特許出願公開第３９４９５１号明細書（特開平３−６１４９４号公報）、欧州特許出願公開第４９３７３７号明細書（特開平５−１２４９７５号公報）などに記載のものが挙げられる。
【００１６】
これらのｂＦＧＦのうち、国際公開第８７／０１７２８号に記載の遺伝子工学的手法で製造した国際公開第９４／２７６３０号に記載のアミノ酸配列を有するポリペプチドが、安定性及び材料として必要な量を常時供給することが容易であるという点から好ましい。国際公開第９４／２７６３０号に記載のアミノ酸配列を有するｂＦＧＦは、具体的には国際公開第８７／０１７２８号の実施例に記載されているように、ヒトの腎臓のｍＲＮＡから調製されたλｇｔ１０ｃＤＮＡライブラリーからウシの１．４ｋｂ塩基性副断片を用いてヒトのｂＦＧＦのｃＤＮＡクローンを調製し、発現ベクターを構築して前記クローンを発現することによって得られる。
【００１７】
本発明で使用されるゼラチンは、ｂＦＧＦの徐放を可能とする限り特にその種類は限定されないが、ｂＦＧＦは塩基性のタンパク質であるので、これと安定に複合体を形成できる酸性ゼラチンが好ましい。酸性ゼラチンの等電点は、通常約５（４．９〜５．０）である。酸性ゼラチンを使用した場合、ゲル中で、ゼラチンヒドロゲルを構成するゼラチンとｂＦＧＦとが複合体を形成するため、前房内へ移入した際のｂＦＧＦの急速な放出が抑制される。
【００１８】
酸性ゼラチンは、ウシやブタを始めとする各種の動物種の皮膚・腱・骨などの部分或いはコラーゲンからアルカリ処理して得ることができる。本発明で使用されるゼラチンは、好ましくは、ウシ又はブタのコラーゲン（好ましくはＩ型コラーゲン）をアルカリ処理して調製した酸性ゼラチンである。酸性ゼラチンは、新田ゼラチン株式会社の試料ＩＥＰ５．０等として入手することもできる。
【００１９】
本発明で使用されるゼラチンハイドロゲルは、上記ゼラチンを種々の化学的架橋剤で架橋することにより得ることができる（例えば国際公開第９４／２７６３０号参照）。化学的架橋剤としては、例えばグルタルアルデヒド、１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩、１−シクロヘキシル−３−（２−モリホリノエチル）カルボジイミド−メト−ｐ−トルエンスルホナート等の水溶性カルボジイミド、ビスエポキシ化合物、ホルマリン等が好ましく、グルタルアルデヒド、及び１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩が特に好ましい。本発明においては、グルタルアルデヒドをとりわけ好適に使用することができる。
【００２０】
本発明において、ゼラチンハイドロゲルの化学的架橋は、所望の形状、大きさに成形したゼラチンハイドロゲルを、溶液中で上記架橋剤と反応させることにより行なうことができる。なお、上記成形は、容器にゼラチン水溶液を流し込むことなどにより行なうことができる。架橋剤としてグルタルアルデヒドを使用する場合であれば、ゼラチン水溶液（たとえば、２５ｍｇゼラチン／２５ｍＬ蒸留水）に異なる容積の２５重量％のグルタルアルデヒド水溶液を添加し、撹拌、静置することにより架橋を行なうことができる。上記グルタルアルデヒド水溶液の添加容積としては、通常、２５ｍｇゼラチン／２５ｍＬ蒸留水に対して、１〜１０００μＬ、好ましくは２．５〜４０μＬ、さらに好ましくは３〜２０μＬである。グルタルアルデヒドの添加容積が１０００μＬより多いと、ハイドロゲルの架橋密度が高すぎて、房水中に投与したときに分解速度が遅すぎる場合があり、好ましくない。また、グルタルアルデヒドの添加容積が１μＬより少ないと、十分な架橋密度が得られず、房水中に投与した場合に分解速度が速すぎるため、所望の徐放作用が得られない場合があり好ましくない。なお、ゼラチンハイドロゲルの架橋は、成形前のゼラチン溶液を架橋剤水溶液と混合することにより行ってもよい。
【００２１】
グルタルアルデヒド溶液には、可溶化剤等の適宜な添加剤を添加していてもよい。前記可溶化剤としては、例えば、ポリオキシエチレンソルビタンモノアレートなどのエステル−エーテル型界面活性剤を例示することができる。可溶化剤の添加量としては０．０１〜１重量％（例えば、０．１重量％）が好ましい。架橋反応時間としては、冷却下（約４℃）で架橋反応を行なう場合であれば、通常０．５〜９６時間、好ましくは３〜４８時間（例えば、２４時間）の範囲である。室温（約２４℃）で架橋反応を行なう場合であれば、通常０．２〜４８時間、好ましくは２〜３０時間である。
【００２２】
架橋反応終了後は、適宜な反応停止剤を添加することにより架橋反応を停止するのが好ましい。反応停止剤は架橋剤の種類に応じて適宜選択すればよいが、架橋剤としてグルタルアルデヒドを使用する場合であれば、グリシン、アラニン、アルギニン等のアミノ酸類を使用することができる。これらのなかで、グリシンを好適に使用できる。具体的には、グルタルアルデヒド溶液とゼラチンハイドロゲルとを遠心分離等の方法により分離し、回収したゼラチンハイドロゲルをグリシン水溶液中に再懸濁して撹拌すればよい。架橋反応停止に使用するグリシン水溶液の濃度は、通常２５〜２００ｍＭ（例えば、１００ｍＭ）であり、ゼラチンハイドロゲルをグリシン水溶液中に再懸濁して撹拌する際のグリシン水溶液の好ましい温度は４〜４０℃であり、０．５〜１２時間程度撹拌することが好ましい。このようにして得られたゼラチンハイドロゲルはグルタルアルデヒドのアルデヒド残基をブロックし、房水中に投与してｂＦＧＦを徐放するための担持体として好適に使用できる。
【００２３】
また、ゼラチンは熱処理又は紫外線、電子線、γ線等のエネルギー線照射によっても架橋できる。
【００２４】
本発明で使用されるゼラチンハイドロゲル粒子は、例えば国際公開第９４／２７６３０号に記載された方法、すなわち、ゼラチン水溶液にオリーブオイルなどの油剤を加えて２００〜６００ｒｐｍで撹拌してＷ／Ｏエマルジョンとし、これに化学的架橋剤水溶液（以下、架橋溶液ともいう）を添加する方法、或いは、予め２００〜６００ｒｐｍで撹拌した油剤中にゼラチン水溶液を滴下してＷ／Ｏエマルジョンとした後、遠心分離などによってゼラチン粒子を回収、乾燥し、乾燥ゼラチン粒子を化学的架橋剤水溶液に懸濁させてゼラチンハイドロゲル粒子を得る方法により製造することができる。得られたゼラチンハイドロゲル粒子は減圧乾燥、好ましくは凍結乾燥して使用に供する。製法や原料の相違により、分子量、含水率などの物性において異なる場合があるが、そのいずれでもよい。
【００２５】
ゼラチンハイドロゲル粒子の粒子径は、前房内への投与が可能であり、投与対象の視界を妨げたり、眼圧上昇を招く等のリスクを回避する観点から、膨潤時に約２〜約５０μｍ（好ましくは約１２〜約２０μｍ）となるものが好ましい。粒子の直径が約２μｍより小さいと房水とともに前房内から流出する場合があるため好ましくない。約５０μｍより大きい粒子は、眼圧上昇を招く場合があるため好ましくない。膨潤度は、ゼラチンハイドロゲル粒子の含水率や架橋度によって決まるから、膨潤時に約２〜約５０μｍとなる粒子は、前記製法によって得られたゼラチンハイドロゲル粒子から、含水率や架橋度に応じて、膨潤時に約２〜約５０μｍとなる適宜所望の粒子径を選定し、これをふるい分けなどの手法によって分別取得するか、或いは、前記製法を、所期の膨潤度に対応する架橋度（含水率）が得られるような条件下に実施して、さらにふるい分けなどの手法によって分別取得することによって得ることができる。
【００２６】
本明細書において粒子径とは、通常の方法で、水で膨潤した粒子の顕微鏡写真から最低４００個以上の粒子の粒子径を測定して平均を算出することにより得られる値をいう。
【００２７】
ゼラチンハイドロゲル粒子の形状は、真球ないし略球形であることが望ましいが、長球状、円筒状、或いは不整形であってもよい。
【００２８】
前房内に投与されたゼラチンハイドロゲル粒子は、前房水をとりまく眼組織に付着し、加水分解酵素等によって徐々に分解されるものと考えられる。これにより、ゼラチンハイドロゲルに予め担持されたｂＦＧＦが、ゼラチンハイドロゲルの分解とともに徐放される。その分解速度は主としてゲルの含水率によって調節される。含水率とは、湿潤時のゲル全重量に対するゼラチンハイドロゲル中の水分重量の割合をいい、これが大きいほどゼラチンハイドロゲルの架橋度が小さく、ゼラチンハイドロゲル粒子は分解吸収されやすくなる。通常約８０〜約９９．９ｗ／ｗ％の範囲のものを用いることができるが、より好ましくは、約９０〜約９９．８ｗ／ｗ％、特に好ましくは約９５〜約９８ｗ／ｗ％である。粒子の含水率が約８０ｗ／ｗ％より小さいとゼラチンハイドロゲル粒子の分解に長時間を要しｂＦＧＦの徐放速度が遅くなり十分なｂＦＧＦ濃度が維持できない場合がある。また、粒子の含水率が約９９．９ｗ／ｗ％より大きいと、粒子の形状を保つことができなかったり、ｂＦＧＦが徐放されなかったりする場合がある。角膜内皮細胞の増殖促進或いは角膜内皮損傷に関連する疾患の治療を目的とする場合、約１日〜２月程度の範囲で、ゼラチンハイドロゲルの分解及びこれに伴うｂＦＧＦの徐放期間を制御することが可能であるが、例えば、およそ２週間以内に分解する程度のものが好ましい。
【００２９】
ゼラチンハイドロゲルにｂＦＧＦを担持させるには、ｂＦＧＦ水溶液をゼラチンハイドロゲルに滴下して含浸させるか、ゼラチンハイドロゲルをｂＦＧＦ水溶液中に懸濁して再膨潤させる。本明細書において「担持」とは、ｂＦＧＦが、ゼラチンハイドロゲル分子とｂＦＧＦとの間の、クーロン力、水素結合、疎水性相互作用、静電気等の相互作用によりゼラチンハイドロゲルに固定され、ゼラチンハイドロゲル中にｂＦＧＦが分散して含まれることを意味する。
【００３０】
ゼラチンハイドロゲルに含有させることができるｂＦＧＦの量は、ゼラチンハイドロゲルの含水率等により異なるが、ゼラチンハイドロゲル１ｍｇ（乾燥重量）あたり約０．１２〜約０．９８μｇが可能である。本発明においては、好ましくはゼラチンハイドロゲル１ｍｇあたり約０．２０〜約０．８０μｇとなるように調製される。
【００３１】
本発明で使用されるｂＦＧＦ徐放性ゼラチンハイドロゲル粒子は、必要に応じて医薬として許容し得る一般的な添加剤（安定化剤、保存剤、可溶化剤、ｐＨ調整剤、増粘剤等）とともに製剤化されて、角膜内皮細胞増殖促進剤又は角膜内皮損傷に関連する疾患の治療剤として使用される。該添加剤は公知のものが使用できる。さらに、徐放効果を調節する各種添加剤（アミノ酸、アミノ基或いはリン酸基、硫酸基、ＳＨ基、カルボキシル基などを持つ糖、脂質などの低分子物質或いは高分子物質など）やｂＦＧＦの効果を高める作用やｂＦＧＦの分解・失活を抑制する作用などを有する他の活性成分も含ませることができる。このような他の活性成分としては、当該作用を有する限り特に制限されず、多糖、脂質、糖脂質、タンパク質、糖タンパク質、ペプチド、薬物として利用できる各種低分子化合物又は高分子化合物などのいかなる低分子物質或いは高分子物質でもよい。
【００３２】
本発明の剤の剤型は、前房内に投与可能であるものである限り特に制限されるものではないが、通常は、ｂＦＧＦ徐放性ゼラチンハイドロゲル粒子そのもの、或いはｂＦＧＦ徐放性ゼラチンハイドロゲル粒子の懸濁物として製剤化される。後者の場合、ｂＦＧＦ徐放性ゼラチンハイドロゲル粒子が、医薬として許容し得る無菌の水性溶媒（注射用水、生理食塩水、各種緩衝液（例えば、リン酸緩衝液、炭酸緩衝液、ＨＥＰＥＳ緩衝液、Ｔｒｉｓ緩衝液等）等）中に分散される。当該製剤中のｂＦＧＦ徐放性ゼラチンハイドロゲル粒子の濃度は、前房内に投与可能であるものである限り特に制限されず、治療目的の疾患、患者の年齢、体重、投与量等に応じて適宜調整することができるが、好ましくは製剤全体におけるｂＦＧＦの濃度として、約０．００１〜約５００μｇ／ｍＬの範囲、より好ましくは約０．１〜約２００μｇ／ｍＬの範囲とすることができる。
【００３３】
本発明の剤は、安全であり、哺乳動物に対して投与することができる。哺乳動物としては、上述のものを例示することができる。
【００３４】
本発明の剤は、前房内に投与されることを特徴とする。前房内へ投与することにより、前房内へｂＦＧＦが徐放され、角膜内皮細胞へｂＦＧＦが持続的に供給され、角膜内皮細胞の増殖が促進される。また、前房内へ投与することにより、角膜以外の臓器へのｂＦＧＦの影響を最小限に抑制することも可能となる。前房内への投与は、通常注射により行われる。前房の体積は比較的小さい（房水の体積としてヒトでは約３５０μＬ（約３００〜約４００μＬ）、ウサギでは約２５０μＬ（約２００〜約３００μＬ））ので、前房内への投与に際しては、好ましくはまず前房から注射器で一定量の房水を抜き取り、その後、抜き取った房水と同等の体積の本発明の剤を前房内に注入する。眼の機能に悪影響がない投与量であれば、前房から房水を抜き取らずに本発明の剤を注入することもできる。
【００３５】
本発明の剤は、角膜内皮細胞増殖促進剤や角膜内皮損傷に関連する疾患の治療剤として有用である。ここで、角膜内皮損傷に関連する疾患としては、例えば、水疱性角膜症（例えば内眼手術後、レーザー虹彩切開術後、ぶどう膜炎後、又は外傷後の水疱性角膜症）、先天性遺伝性角膜内皮ジストロフィー、フックス角膜内皮ジストロフィー、滴状角膜、後部多形性角膜ジストロフィー、虹彩角膜内皮症候群又は角膜移植後の移植不全等を挙げることができる。なかでも、水疱性角膜症の治療剤として有用である。
【００３６】
本発明の角膜内皮細胞増殖促進剤又は角膜内皮損傷に関連する疾患の治療剤の投与量は、治療目的の疾患、患者の年齢、体重等により適宜調整することができるが、ｂＦＧＦとして、通常成人患者１つの眼あたり通常約２０〜約６００ｎｇ、好ましくは約３０〜約３００ｎｇ、より好ましくは４５〜１００ｎｇ（例えば約７０ｎｇ）である。投与量が約２０ｎｇ以下であると、角膜内皮細胞増殖を促進する効果が十分に発揮されない可能性があり、また投与量が約１０００ｎｇ以上であると角膜の混濁、血管新生、炎症等の副作用が生じるリスクが高くなる。ｂＦＧＦの投与量を房水体積に基づいて換算すると、ヒトであれば房水１μＬにつき、ｂＦＧＦとして約０．０６〜約１．７ｎｇ、好ましくは約０．０８６〜約０．８６ｎｇ、より好ましくは約０．１３〜約０．２９ｎｇである。上述のように、ヒトの房水体積は約３００〜約４００μＬであるので、１つの眼あたりｂＦＧＦとして約７０ｎｇの用量は、房水１μＬにつき約０．１８〜約０．２３ｎｇの用量に相当する。１回の投与で効果が不十分であった場合は、該投与を複数回行うことも可能である。
【００３７】
以下、実施例を示して本発明をより具体的に説明するが、本発明は以下に示す実施例によって何ら限定されるものではない。
なお、下記実施例で、ＰＢＳ（リン酸緩衝生理食塩水）は、日水製薬株式会社製ダルベッコＰＢＳ（−）粉末を指定の使用方法に従って調製、処理したものである。
【実施例】
【００３８】
（調製例１）ゼラチンハイドロゲル粒子の調製
牛骨由来のＩ型コラーゲンをアルカリ処理して得られた等電点４．９、分子量９９０００ｋＤａであるゼラチン（新田ゼラチン株式会社製）を使用し、下記の手順によりゼラチン粒子を調製した。【００３９】
予め４０℃に加温したゼラチン水溶液（１０重量％、１０ｍＬ）を、４０℃に加温したオリーブオイル（和光純薬株式会社製、３００ｍＬ）中に、４００ｒｐｍの速度で撹拌下１０分間かけて分散させて油中水乳剤を得た。得られた油中水乳剤を氷で急冷し、さらに３０分間撹拌した。【００４０】
次いで、遠心分離によりオリーブオイルを除き、ゼラチン粒子をアセトンに再懸濁した。遠心分離（５０００ｒｐｍ、４℃、５分間）により回収し、目開き７５μｍのステンレスメッシュを通した後、目開き３０μｍのステンレスメッシュを使用して粒径により分画した。次に、４℃にて風乾し、ゼラチン粒子を得た。【００４１】
０．１重量％ポリオキシエチレンソルビタンモノオレアート（東京化成工業株式会社製：商品名『Ｔｗｅｅｎ８０』）／ＤＤＷにグルタルアルデヒドを最終濃度０．１２５重量％となるように加え、４℃に冷却することにより架橋溶液を調製した。【００４２】
風乾後のゼラチン粒子（２５ｍｇ）を架橋溶液（２５ｍＬ）中に分散し、２５重量％グルタルアルデヒド水溶液（６２．５１２５μＬ）を加え、４℃にて２４時間撹拌してゼラチン粒子を化学架橋した。遠心分離（５０００ｒｐｍ、４℃、５分間）により架橋溶液を除いてゼラチンハイドロゲル粒子を回収し、１００ｍＭグリシン／超純水中１ｍｇ／ｍＬとなるように再懸濁し、３７℃で１時間激しく撹拌し、グルタルアルデヒドのアルデヒド残基をブロックした。【００４３】
上記のようにして得られたゼラチンハイドロゲル粒子を蒸留水５０ｍＬで３回洗浄し、遠心分離により回収し、凍結乾燥した。【００４４】
光学顕微鏡による観察により測定された凍結乾燥後のゼラチンハイドロゲル粒子（以下、ＭＳともいう）の形状は球状であり、平均粒子径は１５μｍであった。また、マウス背部皮下におけるゼラチンハイドロゲル粒子のｉｎ  ｖｉｖｏ分解吸収性を調べたところ、２週間で分解吸収されていた。【００４５】
（実施例１）正常ウサギへの投与
（ｂＦＧＦ含有ゼラチンハイドロゲル粒子ＰＢＳ懸濁液（検体）の調製）
ｂＦＧＦ（２ｍｇ）にＰＢＳ（１ｍＬ）を加え、０．２重量％のｂＦＧＦ／ＰＢＳ溶液を調製した。調製例１で調製したＭＳ（２ｍｇ）に、上記ｂＦＧＦ／ＰＢＳ溶液（１０μＬ）を加え、室温で２時間膨潤させｂＦＧＦ含有ゼラチンハイドロゲル粒子とした。その後、ｂＦＧＦ含有ゼラチンハイドロゲル粒子をＰＢＳ（１９９０μＬ）で懸濁し、検体とした。以下、こうして得られたｂＦＧＦ含有ゼラチンハイドロゲル粒子の懸濁液をＦＧＦ−ＭＳ−ａ（ＦＧＦ−ＭＳ）と称す。【００４６】
（コントロールゼラチンハイドロゲル粒子ＰＢＳ懸濁液の調製）
調製例１で調製したＭＳ（２ｍｇ）をＰＢＳ（２０００μＬ）で懸濁し、検体とした。以下Ｃ−ＭＳ（コントロールＭＳ）と称す。【００４７】
（投与方法）
全身麻酔下で、手術用顕微鏡を用いてＣ−ＭＳとＦＧＦ−ＭＳ−ａの各検体（１００μＬ）を３０Ｇ針で正常日本白色ウサギ（２〜２．５ｋｇ、５匹）の前房内に投与した。投与後２、４、６、８及び１０日に、細隙灯顕微鏡を用いた前眼部の観察及び圧平式眼圧計（ニューマトノメーター  モデル３０クラシック、ライカート社製）で眼圧測定を行った。Ｃ−ＭＳ投与群とＦＧＦ−ＭＳ−ａ投与群とに投与された１眼あたりのｂＦＧＦとＭＳの量を表１に示す。【００４８】
【表１】
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【００４９】
（結果）
図１に、正常ウサギに各検体を投与して６日目の前眼部写真を示す。ＦＧＦ−ＭＳ−ａ投与群では投与翌日から強い眼表面炎症が認められ、３日後には角膜混濁、血管新生が認められた。このことから、該投与群では高濃度のｂＦＧＦが徐放されていたと考えられる。またＣ−ＭＳ投与群では、特記すべき所見はなかった。【００５０】
図２に、正常ウサギにＣ−ＭＳ投与後の眼圧の経時的な変化を示す。投与後の眼圧上昇は認められなかったので、前房内に投与されたゼラチンハイドロゲル粒子は線維柱帯への目詰まりすることのない安全な薬物担体であると考えられた。【００５１】
（調製例２）
ｂＦＧＦとＰＢＳの使用量を下記表２に示す量に変えた他は、実施例１の（ｂＦＧＦ含有ゼラチンハイドロゲル粒子ＰＢＳ懸濁液（検体）の調製）と同じ操作を行い、ＦＧＦ−ＭＳ−ｂ、ＦＧＦ−ＭＳ−ｃ、ＦＧＦ−ＭＳ−ｄ、ＦＧＦ−ＭＳ−ｅ、ＦＧＦ−ＭＳ−ｆ、およびＦＧＦ−ＭＳ−ｇを調製した。【００５２】
【表２】
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【００５３】
（実施例２）至適投与量の検討
（方法）
検体として調製例２で調製したＦＧＦ−ＭＳ−ｂ、ＦＧＦ−ＭＳ−ｃ及びＦＧＦ−ＭＳ−ｅ、並びに実施例１で調製したＣ−ＭＳを用いた。【００５４】
全身麻酔下で、ヘパリンを１０００ＩＵ／ｋｇ体重となるように正常日本白色ウサギ（２〜２．５ｋｇ、６匹）に耳静脈より投与した。投与２０分後、液体窒素で冷却したステンレスプローブ（直径７ｍｍ）を角膜表面へ１５秒接触させ、経角膜冷凍凝固による角膜内皮障害モデルを作成した。その後、実施例１と同様にして各検体を前房内に投与した。各検体中、１眼あたりの投与量に含まれるｂＦＧＦの量は上記表２に示す通りである。また、ＭＳの投与量は、ｂＦＧＦ投与群、Ｃ−ＭＳ投与群とも０．１ｍｇ／眼である。【００５５】
投与２日後に細隙灯顕微鏡を用いて前眼部の観察を行った。その後、ウサギを安楽死させ、眼球を摘出した。角膜を採取し、アリザリン染色を行った。【００５６】
（結果）
図３に、角膜内皮障害モデルにＣ−ＭＳ、ＦＧＦ−ＭＳ−ｂ、ＦＧＦ−ＭＳ−ｃ、ＦＧＦ−ＭＳ−ｅを投与した翌日の写真を示す。また、表３及び表４に各群の角膜内皮欠損面積を示す。図４に、Ｃ−ＭＳ投与群、ＦＧＦ−ＭＳ−ｅ投与群、及び未治療群での角膜内皮欠損面積を示す。表３、４及び図４から明らかなように、ｂＦＧＦ含有ゼラチンハイドロゲル粒子の投与により欠損面積が減少した。この結果からｂＦＧＦ含有ゼラチンハイドロゲル粒子の角膜内皮損傷に対する有効性が明らかになった。【００５７】
【表３】
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【００５８】
【表４】
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【００５９】
（実施例３）ゼラチンハイドロゲル粒子の有用性の検討
（方法）
実施例２と同様に角膜内皮障害モデルを作成し、実施例１と同様にして下記検体をそれぞれ前房内に投与した。
Ｃ−ＭＳ：ｂＦＧＦを含有しないゼラチンハイドロゲル粒子投与ｂＦＧＦ−ｓｏｌｕｔｉｏｎ：担持体を使用せず、３０ｎｇ／眼のｂＦＧＦ（溶液）を前房内に投与した。
ＦＧＦ−ＭＳ−ｅ：調製例２で調整したＦＧＦ−ＭＳ−ｅを前房内に投与した。【００６０】
投与２日後にウサギを安楽死させ、眼球を摘出した。角膜を採取し、アリザリン染色を行った。【００６１】
（結果）【００６２】
【表５】
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【００６３】
表５に、Ｃ−ＭＳ、ｂＦＧＦ−ｓｏｌｕｔｉｏｎ、ＦＧＦ−ＭＳ−ｅ投与群の角膜内皮欠損面積及びその平均値を示す（単位ｍｍ２）。図５は、その平均値±Ｓ．Ｄ．を示す。この結果から、ｂＦＧＦをゼラチンハイドロゲル粒子に担持させることにより角膜内皮損傷に対する治療効果が増強されることが示唆された。【００６４】
（実施例４）至適投与量範囲の検討
（方法）
４５ｎｇ／眼、７０ｎｇ／眼及び１００ｎｇ／眼の用量におけるｂＦＧＦゼラチンハイドロゲル粒子の角膜内皮損傷に対する効果を検討した。実施例２と同様に角膜内皮障害モデルを作成した。その後、調製例２で調製した、ＦＧＦ−ＭＳ−ｂ、ｆ、ｇ及び実施例１で調製したＣ−ＭＳを実施例１と同様にして各検体を前房内に投与した。また、投与２日後、ウサギを安楽死させ、眼球を摘出した。角膜を採取し、アリザリン染色を行った。【００６５】
（結果）
図６には、Ｃ−ＭＳ投与群の欠損面積を１００％としたときの他検体投与群の角膜内皮欠損面積の割合を示す。図６から明らかなように、ｂＦＧＦの用量依存的にｂＦＧＦゼラチンハイドロゲルは角膜内皮創傷の治癒を促進した。【００６６】
（実施例５）角膜内皮創傷治癒促進効果
（方法）
調製例２で調製したＦＧＦ−ＭＳ−ｅ及びＣ−ＭＳを検体とした。全身麻酔下で、ヘパリンを１０００ＩＵ／ｋｇ体重となるように正常日本白色ウサギ（２〜２．５ｋｇ、４匹）に耳静脈より投与した。投与２０分後、液体窒素で冷却したステンレスプローブ（直径７ｍｍ）を角膜表面へ１５秒接触させ、経角膜冷凍凝固による角膜内皮障害モデルを作成した。その後、実施例１と同様にして各検体の前房内投与を行った。【００６７】
投与２日後に細隙灯顕微鏡を用いた前眼部の観察を行った。その後、ウサギを安楽死させ、眼球を摘出した。角膜はＰＦＡ（パラホルムアルデヒド）固定した後、アリザリン染色及びＫｉ６７免疫染色を行った。【００６８】
（結果）
図７に、各検体投与２日後の前眼部の写真を示す。Ｃ−ＭＳ投与群では角膜の混濁が認められ、瞳孔縁が非常に不明瞭であった。一方、ＦＧＦ−ＭＳ−ｅ投与群では角膜混濁は認められず、瞳孔縁がはっきりと認識できた。またスリット光を斜め前方から照射してできた光学切片の観察から、Ｃ−ＭＳ投与群では角膜の厚みが増しており、角膜浮腫を起こしていると思われた。これと比較して、ＦＧＦ−ＭＳ−ｅ投与群では角膜の厚みは薄く、角膜浮腫は認められなかった。また、各群において角膜血管新生は認められなかった。図８に、各検体投与２日後のアリザリン染色した角膜内皮面を示す。Ｃ−ＭＳ投与群に比べてＦＧＦ−ＭＳ−ｅ投与群では角膜内皮の損傷部位が小さくなっていた。図９に、Ｃ−ＭＳ投与群の角膜内皮欠損面積を１００％としたときのＦＧＦ−ＭＳ−ｅ投与群の角膜内皮欠損面積の割合を示す。解析の結果、Ｃ−ＭＳ投与群と比較し、ＦＧＦ−ＭＳ−ｅ投与群で有意な修復促進効果が認められた。図１０には、各検体投与２日後のＫｉ６７染色した角膜内皮面を示す。ＦＧＦ−ＭＳ−ｅ投与群の角膜内皮欠損部付近にＫｉ６７陽性細胞が認められ、角膜内皮細胞が増殖していることが示唆された。【００６９】
実施例１〜５より、角膜内皮障害を起こした患者に対し、ｂＦＧＦ含有ゼラチンハイドロゲル粒子（０．２ｍｇ）を前房内投与することで、角膜内皮欠損部位の早期修復が可能であることが明らかになった。角膜内皮欠損部位付近にはＫｉ６７陽性の角膜内皮細胞が確認できたことから、角膜内皮欠損修復時に細胞が増殖していることが示唆された。ゼラチンハイドロゲル投与による眼圧上昇を認めなかった。
【産業上の利用可能性】
【００７０】
本発明によれば、角膜内皮細胞の増殖を持続的に促進することができる。本発明によれば、角膜内皮損傷に関連する疾患の治療に有用なｂＦＧＦ製剤を提供することができる。
【図２】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図９】
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【図１】
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【図３】
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【図７】
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【図８】
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【図１０】
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