(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
アルツハイマー病治療用医薬の製造における有効成分としてのα−マンゴスチンの使用。
【請求項２】
前記医薬は、経口で投与されることを特徴とする請求項１に記載の使用。
【請求項３】
前記α−マンゴスチンの１回投与量が５０ｎｇ／ｋｇ〜２００μｇ／ｋｇであることを特徴とする請求項２に記載の使用。
【請求項４】
前記α−マンゴスチンの１回投与量が５００ｎｇ／ｋｇ〜５０μｇ／ｋｇであることを特徴とする請求項３に記載の使用。
【請求項５】
前記医薬は、注射により投与されることを特徴とする請求項１に記載の使用。
【請求項６】
前記医薬は、錠剤、粒剤、カプセル剤、粉末注射剤のうちのひとつであることを特徴とする請求項１に記載の使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、薬理学及び化学生物学分野に関するもので、具体的には、アルツハイマー病治療用医薬の製造におけるＡβ凝集阻害剤としてのα−マンゴスチン（Ｍａｎｇｏｓｔｉｎ）の使用に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
アルツハイマー病（Ａｌｚｈｅｉｍｅｒ’ｓ  ｄｉｓｅａｓｅ，ＡＤ）は、進行性に発展する致死的退行性神経疾患であり、その臨床症状は、認知及び記憶機能の低下、日常生活能力の進行性減退、並びに各種の神経精神症状及び行為障害がある。
【０００３】
Ａβ凝集沈着は、アルツハイマー病発展の重要な病理過程である。Ａβ凝集沈着の進行に従って、強い神経毒作用のあるＡβオリゴマー、及びアルツハイマー病の重要な病理症状となる銀親和性老人斑が形成される。研究によれば、凝集状態のＡβの注射によって、マウスなどにアルツハイマー病の症状を発生させることができ、Ａβの凝集沈着の抑制によって、臨床前（細胞モデル、動物モデル）及び臨床治療の研究においてアルツハイマー病患者の病況発展の抑制、病理症状及び学習記憶能力の改善などの作用が積極的に現れた。したがって、Ａβ凝集沈着抑制剤は、アルツハイマー病の治療の希望として見られ、このような抑制剤の開発がアルツハイマー病の研究の重要な課題となっている。
【０００４】
α−マンゴスチン（α−ｍａｎｇｏｓｔｉｎ）は、東南アジアの現地薬であるマンゴスチン（ｍａｎｇｏｓｔｅｅｎ）からの抽出物であって、主にマンゴスチンの果皮に存在しており、現在、人工で合成することもできる。α−マンゴスチンの構造式は、以下のとおりである。
【０００５】
【化１】
0005552575.tif 000002
α−マンゴスチンは、所定の作用濃度で酸性スフィンゴミエリナーゼに対して抑制作用があり、トポイソメラーゼＩ及びＩＩに対しても抑制作用があるとともに、エルガミン（ｅｒｇａｍｉｎｅ）Ｈ１受容体の競合的拮抗剤であり、臨床において、エルガミンの放出による過敏性疾病を治療できることが公開されている。
【０００６】
現時点では、Ａβ凝集沈着の抑制及びアルツハイマー病用医薬の製造におけるα−マンゴスチンの使用に関する報告はまだない。
【発明の概要】
【０００７】
本発明の目的は、従来技術における問題を解決し、α−マンゴスチンの医学上の新用途を提供すること、即ち、アルツハイマー病用医薬の製造におけるα−マンゴスチンの使用を提供することにある。
【０００８】
本発明において、前記α−マンゴスチンは、天然抽出物でもよく、人工合成化学品でもよい。α−マンゴスチンをＡβとともにインキュベートすることにより、Ａβの凝集沈着が明らかに抑制されることを見出した。Ａβオリゴマーの形成前又は形成後にα−マンゴスチンを投与したところ、いずれもＡβオリゴマーの含有量が低減された。哺乳動物の神経細胞にα−マンゴスチンを投与したところ、α−マンゴスチンは、神経保護作用を有し、Ａβオリゴマーによる神経毒作用に効果的に対抗でき、哺乳動物の神経細胞の正常生理機能を強化でき、哺乳動物の神経細胞の正常細胞形態を維持できることを見出した。実験結果によると、細胞機能を示す細胞膜透過性、ミトコンドリア膜電位及び細胞核形態などの指標が改善されたことが明らかになった。哺乳動物に供給する任意の医薬製剤にα−マンゴスチンを含ませて、アルツハイマー病にかかった哺乳動物に投薬すると、哺乳動物の学習記憶能力を著しく改善でき、アルツハイマー病症状の治療作用を発揮した。
【０００９】
一つの好ましい実施形態において、α−マンゴスチン治療薬は経口で投薬される。人間に用いられるα−マンゴスチンの投与量範囲は、５０ナノグラム／キログラム体重（５０ｎｇ／ｋｇ）から２００マイクログラム／キログラム体重（２００μｇ／ｋｇ）までである。好ましい投与量範囲は、５００ナノグラム／キログラム体重（５００ｎｇ／ｋｇ）から５０マイクログラム／キログラム体重（５０μｇ／ｋｇ）までである。本発明の開示を参照すると、当業者は、人間に適合する本開示のいかなる製剤の投与量範囲も、人の投与量≒マウス投与量／１２という公式を参考にできると理解できるだろう。エルガミンＨ１の受容体拮抗作用作用濃度（一般に＞１０−６モル／リットル）よりも低い場合、α−マンゴスチンはＡβ凝集沈着の抑制特性が現れ、アルツハイマー病の病理過程に対する干渉及び病理症状の改善を実現できた。
【００１０】
本発明のα−マンゴスチン治療薬は、注射により投薬でき、皮下注射及び静脈注射を含む。
本発明の医薬は、錠剤、粒剤、カプセル剤、粉末注射剤のうちのひとつであってもよく、徐放性ドラッグデリバリーの任意の剤型である。
【００１１】
α−マンゴスチンは、全く新しい作用濃度でＡβ凝集沈着の抑制特性が現れ、それとともに、神経保護作用を有し、Ａβオリゴマーによる神経毒作用に効果的に対抗でき、哺乳動物神経細胞の正常な生理機能を強化でき、哺乳動物の神経細胞の正常細胞形態を維持でき、アルツハイマー病の病理過程に対する干渉及び病理症状の改善を実現できた。アルツハイマー病の治療のために新しい道を提供した。
【００１２】
本発明に記載されたアルツハイマー病の用語、例えば、Ａβ、Ａβ凝集沈着、Ａβオリゴマー、神経保護作用、神経毒作用、学習記憶能力改善（逃避潜伏時間及び遊泳距離）及び吸光度、直線関係、正の相関関係、統計学的意義などは、本分野で一般的に使用される用語である。したがって、これらの用語は、本発明において一般的な科学用語であり、本発明の範囲を限定するものではない。
【００１３】
以下、本発明の具体的実施形態を添付図面に従って詳しく説明する。
【図面の簡単な説明】
【００１４】
【図１】α−マンゴスチンとＡβとのドッキングモデル図である。ここで、α−マンゴスチンの３位におけるフェノール性ヒドロキシル基及び６、７位におけるフェノール性ヒドロキシル基がそれぞれＡβの第２３位におけるアスパラギン酸（Ａｓｐ２３）及び第１６位におけるリシン（Ｌｙｓ１６）と水素結合を形成し、さらに、α−マンゴスチンが第１９位におけるフェニルアラニン（Ｐｈｅ１９）及び第２２位におけるグルタミン酸（Ｇｌｕ２２）と直接相互作用し、その作用力は主にベンゼン環間π−π共役及びファンデルワールス力である。
【図２】α−マンゴスチンと結合したＡβがαヘリックス配座を保持する図である。
【図３】各種の抑制剤によりＡβの凝集沈着を抑制した実験結果図である。ここで、Ａβの凝集沈着程度を、蛍光染料としてのチオフラビンＴ（Ｔｈｉｏｆｌａｖｉｎ−Ｔ）により表現した。蛍光強度が強ければ強いほど、凝集沈着程度が高い。レスベラトロール、クルクミン、ヨウ化プロピジウムは、周知のＡβ凝集沈着抑制剤であり、Ａβモル濃度１：１、インキュベート条件（摂氏３７度）の場合、α−マンゴスチンは、前記周知の抑制剤に比べて、Ａβ凝集析出に対する抑制能力がより優れており、２４時間に亘り、Ａβの凝集沈着がほぼ完全に抑制された。
【図４】Ａβオリゴマー濃度と吸光度との直線関係図である。ここで、Ａβオリゴマー濃度は、酵素免疫測定法（ｅｎｚｙｍｅ−ｌｉｎｋｅｄ  ｉｍｍｕｎｏｓｏｒｂｅｎｔ  ａｓｓａｙ）により測定した。所定の濃度範囲において、Ａβオリゴマー濃度と測定された吸光度（ＯＤ４５０）とが直線関係にあり、決定係数のＲ２乗値が０．９８に等しい。
【図５】α−マンゴスチンによるＡβオリゴマーの低減を示すグラフである。Ａβのインキュベート開始時にα−マンゴスチンを加えることによって、Ａβオリゴマーの形成が明らかに抑制され、その抑制程度と加えたα−マンゴスチンの量とは正の相関関係となる。形成されたＡβオリゴマーにα−マンゴスチンを加えると、オリゴマー状態が破壊されて単体状態に戻り、Ａβオリゴマーの低減程度と加えたα−マンゴスチンの量とが正の相関関係となる。
【図６】α−マンゴスチンの神経保護作用を示す実験結果図。ここで、Ａβオリゴマーの神経毒作用は、神経細胞核の大きさ、細胞膜透過性、ミトコンドリア膜電位などの指標に対する影響として現れる。α−マンゴスチンは、神経細胞の前記機能、形態指標を一定の程度に回復でき、その効果がα−マンゴスチンの投薬濃度とベル型曲線関係にある。＃は、モデル群が正常群に比べてＰ＜０．０５になることを示し、＊は、α−マンゴスチン投薬群がモデル群に比べてＰ＜０．０５になることを示し、＊＊は、α−マンゴスチン投薬群がモデル群に比べてＰ＜０．０１になることを示す。
【図７】α−マンゴスチンにより、アルツハイマー病にかかったモデルマウス（ＳＡＭ−Ｐ８）の学習記憶機能を改善した実験結果図である。ここで、ＳＡＭ−Ｐ８品系のマウスは、現在、認められているアルツハイマー病の治療薬の効果を評価する動物モデルである。所定の時間（６ヶ月齢以上）飼育されたマウスにアルツハイマー病の症状が明らかに現れ、行動学的水迷路実験において表現される。正常のマウスに比べて、逃避台に行くまでの逃避潜伏時間及び遊泳距離が明らかに増えた。α−マンゴスチンは、このような症状を明らかに改善できる。＃は、モデル群が正常群に比べてＰ＜０．０５になることを示し、＃＃は、モデル群が正常群に比べてＰ＜０．０１になることを示し、＊は、α−マンゴスチン投薬群がモデル群に比べてＰ＜０．０５になることを示し、＊＊は、α−マンゴスチン投薬群がモデル群に比べてＰ＜０．０１になることを示す。
【発明を実施するための形態】
【００１５】
以下、実施例により、本発明の治療薬の製造、使用及び評価の方法を当業者に公開するが、本発明を限定するものではない。本発明の範囲は、それに限定されない。本発明に係る実施例は、できるだけデータ（たとえば、数量、濃度など）の正確性を保持しようとするものであるが、ある実験において誤差や変動が存在することも許容される。
【００１６】
実験材料及び方法
本発明では、８ヶ月齢のＳＡＭ−Ｐ８雌マウスを動物モデルとする。すべての実験マウスに係る実験プロセスは、米国国立衛生院の実験動物規則に従って行われ、具体的には、特殊の無菌環境における飼育、温度を摂氏２３〜２５度に、湿度を５５±５％に制御し、１２時間間隔の照光などを含む。
【００１７】
本実験で使用した哺乳動物の神経細胞は、１５日齢のＳＤラットの脳海馬領域の神経細胞から培養して得られ、神経細胞培養に使用した培養基は、専用の神経細胞培養液で、Ｎｅｕｒｏｂａｓａｌ、２％のＢ２７及び１％のグルタミンを含むが、いずれも市販品であり、製造会社から提供された取扱説明書に従って使用した。
【００１８】
本発明で使用したα−マンゴスチンは、植物から抽出したもの又は化学合成により得られたもので、その製造場所は、ＧＭＰ製造資格を持っている。Ａβは、Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ中国支社から購入した純品であり、高効率液相検出純度＞９８％である。また、その他の材料も市販品であり、製造会社から提供された取扱説明書に従って使用した。
【００１９】
各実験群の投薬濃度、投与量は、使用したモデルに応じて調整できる。分子実験において、α−マンゴスチン濃度によりＡβ濃度を確定し、モル濃度単位で調整し、公知のＡβ凝集阻害剤と比較した。細胞実験において、α−マンゴスチン濃度を依然としてモル濃度単位で調整し、提供される選択濃度範囲は５０ピコモル／リットル（５０ｐｍｏｌ／Ｌ）から５００ナノモル／リットル（５００ｎｍｏｌ／Ｌ）である。動物実験において、慣例によれば、α−マンゴスチンの濃度を重量／動物体重で調整する。提供される投与量の範囲は、低、中、高の３つのレベルに分け、それぞれ、１マイクログラム／キログラム体重、１０マイクログラム／キログラム体重、及び１００マイクログラム／キログラム体重であり、経口ｏ．ｐ．（固体粒子剤）形態で投薬する。
【００２０】
実施例１
α−マンゴスチンとＡβとの結合モデルのコンピュータによるシミュレーション
タンパク質構造のデーターベースＰＤＢからＡβ１−４０の核磁気共鳴ＮＭＲ構造（ＰＤＢ：１ＢＡ４）を分子シミュレーションソフトＭＯＥに取り込んだ。水分子及びその他の核磁気共鳴実験時に加えた雑分子を除去し、核磁気共鳴実験時に脱落した水素原子を埋め込んだ後に、ＭＯＥソフトにおける荷電平衡プログラム及びエネルギー最適化プログラムによりＡβ１−４０の３次元シミュレーション構造を作り上げた。
【００２１】
分子シミュレーションソフトＭＯＥにおいてα−マンゴスチンの２次元シミュレーション構造を作り上げ、ＭＯＥソフトにおける荷電平衡プログラム及びエネルギー最適化プログラムにより分子の３次元シミュレーション構造を作り上げた。
【００２２】
Ａβ１−４０の３次元シミュレーション構造において特定の配座を有さない領域（第１から１３位まで）を除去し、ＭＯＥソフトにおける自動ドッキングプログラムにより、α−マンゴスチン分子の３次元シミュレーション構造をＡβ１−４０の３次元シミュレーション構造にドッキングし、可能な結合モデルを２０個優先的に選択した。荷電平衡及びエネルギー最適化後に、最適化の結合モデルが得られた。
【００２３】
実験結果は、図１に示すように、α−マンゴスチンがＡβ表面の第１６から２３位までの領域に結合している。この領域は、極性アミノ酸の集中する領域であって、Ａβ配座がαヘリックスからβヘアピンへ変換するキーとなるβターン領域である。α−マンゴスチンは、その分子の表面の３位におけるフェノール性ヒドロキシル基及び６、７位におけるフェノール性ヒドロキシル基でそれぞれＡβの第２３位のアスパラギン酸（Ａｓｐ２３）及び第１６位のリシン（Ｌｙｓ１６）と水素結合を形成する。α−マンゴスチンの母核キサンテンにおける一つのベンゼンがＡβの第１９位のフェニルアラニン（Ｐｈｅ１９）とπ−π共役を形成する。これらの結合により、α−マンゴスチンがＡβ配座変換のキー領域に嵌め込まれ、αヘリックス配座の維持又はβヘアピン配座からαヘリックス配座への変換を実現でき（図２を参照）、未結合のＡβのαヘリックス配座とほぼ一致し（ＲＳＭＤ値が０．９１Åである）、両者の結合自由エネルギーは−６８．７６キロカロリー／モルである。
【００２４】
実施例２
Ａβの凝集沈着に対するα−マンゴスチンの抑制作用の蛍光動力学法による測定
１ミリグラムのＡβを５００マイクロリットルのヘキサフルオロイソプロパノールに溶解し、室温で１２０分間置き、間欠的に振動させた。そして、高純度の窒素によりヘキサフルオロイソプロパノールを乾燥させた後に、１００マイクロリットルのジメチルスルホキシドを加え、２．３ミリモル／リットルのＡβ原液を調製し、摂氏−２０度で保存した。Ａβ原液をジメチルスルホキシドで希釈した後に、２マイクロリットル取って１６マイクロリットルの０．２１５モル／リットル、ｐＨ値８．０のリン酸ナトリウム緩衝液に加えることで、最終的には、１００マイクロリットルの体系においてＡβ濃度が２５マイクロモル／リットルになるようにした。そして、２５マイクロモル／リットルのα−マンゴスチン又はその他の抑制剤又は対応するブランク溶剤を２マイクロリットル加え、３０分間インキュベートしてから、１０マイクロモル／リットルのチオフラビンＴを含む５０ミリモル／リットル、ｐＨ８．５のグリシン−水酸化ナトリウム溶液を８０マイクロリットル加えた後、蛍光検出マイクロウェルプレートに移転し、多機能マイクロプレートリーダーに入れて蛍光動力学検出を行った。検出プログラムは、計器の温度を摂氏３７度に保持し、振動頻度を２４０回／分に、半径を２ナノメートルに、レーザー光波長を４４６ナノメートルに、発射光の波長を４８５ナノメートルに、検出帯域幅を５ナノメートルに、検出頻度を１回／３０分間に設定した。蛍光強度を記録し、集計図を作成した。
【００２５】
実験結果は、図３に示すように、蛍光動力学曲線が、潜伏期、凝集期及び安定期の特徴を示す。ここで、単独にインキュベートされたＡβは、４時間インキュベートされた後（曲線の出発点）に、凝集期に入り、蛍光強度が著しく上昇した。そして、２４時間のインキュベーションにおいて、安定期が現れていない。例えば、レスベラトロール、クルクミンなどの国内外でアルツハイマー病の臨床治療研究に入ったＡβ凝集阻害剤を加えた場合、Ａβ凝集の潜伏期が１〜２時間延長され，５〜６時間インキュベートされた後に凝集期に入り、約１５時間インキュベートされた後に凝集の安定期に入った。最大の蛍光強度は、Ａβを単独でインキュベートした場合に比べて、それぞれ６０％〜５０％まで低下した。ヨウ化プロピジウムの作用により、Ａβは２４時間のインキュベーションにおいて少量の凝集が現れ、６時間インキュベート後に凝集期に入るが、１０時間後に安定期になり、最大の蛍光強度が１０％まで低下した。α−マンゴスチンは、Ａβ凝集に対する抑制能力がヨウ化プロピジウムよりもさらに優れる。Ａβは、α−マンゴスチンにより、インキュベーションの２４時間内で明らかな凝集期が現れていない。
【００２６】
実施例３
α−マンゴスチンによるＡβオリゴマーの削減の酵素免疫測定法による測定
１ミリグラムのＡβを５００マイクロリットルのヘキサフルオロイソプロパノールに溶解し、室温に置いた。１００マイクロリットルの溶液を取って清浄な１．５ミリリットルの遠心分離管に移し、９００マイクロリットルの滅菌脱イオン水を加えた後に、室温で静置した。遠心分離した後に、上清を取って別の清浄な１．５ミリリットルの遠心分離管に移し、高純度の窒素によりヘキサフルオロイソプロパノールを穏やかに乾燥させた。その後に、溶液にマイクロ撹拌子を設置し、摂氏２２度、５００回／分の条件で撹拌し、４８時間インキュベートしてから、得られた生成物を所定の体積取って、Ａβオリゴマーが１マイクロモル／リットルになるまで希釈した。ここで、最終濃度がそれぞれ５マイクロモル／リットル、２マイクロモル／リットル、１マイクロモル／リットル、０．５マイクロモル／リットル及び０．２マイクロモル／リットルのα−マンゴスチンを加えて、摂氏２２度、５００回／分の条件で引き続き振動させて１２時間インキュベートした。または、インキュベート前に、最終濃度がそれぞれ５マイクロモル／リットル、２マイクロモル／リットル、１マイクロモル／リットル、０．５マイクロモル／リットル及び０．２マイクロモル／リットルのα−マンゴスチンを加えた。溶液にマイクロ撹拌子を設置し、摂氏２２度、５００回／分の条件で撹拌し、４８時間インキュベートした。
【００２７】
得られた溶液を、予め１００マイクロリットルのＡβモノクローナル抗体（６Ｅ１０）で被覆された９６穴のマイクロウェルプレートに移転し、摂氏３７度で１時間インキュベートしてから、洗浄緩衝液で３回洗浄した後に、１００マイクロリットルのオリゴマー特異抗体（Ａ１１）を加えた。洗浄緩衝液で５回洗浄した後、１００マイクロリットルの西洋ワサビペルオキシダーゼ結合ヒツジ抗ウサギ二次抗体（ｌｇＧ−ＨＲＰ）を加えた。洗浄緩衝液で５回洗浄した後に、１５分間着色した。着色終止後に、マイクロプレートリーダーによりデータを読み込み、集計、作図及び計算を行った。
【００２８】
実験結果は、図４乃至図５に示すように、Ａβオリゴマー濃度が１０−９〜１０−６モル／リットルの範囲にある場合、その濃度が酵素免疫測定法による吸光度と直線関係にあり、決定係数のＲ２乗値が０．９８に等しい。この濃度範囲において、酵素免疫測定法でα−マンゴスチンによるＡβオリゴマーの削減を測定することは、科学的に可能である。α−マンゴスチンは、濃度依存的に、Ａβオリゴマーの形成を抑制、分解できる。ここで、α−マンゴスチンとＡβオリゴマーとのモル比率が５：１になる場合、即ち、５マイクロモル／リットルのα−マンゴスチンを加えた場合、Ａβオリゴマーの生成を１４．１５±２．８６％までに低減できるとともに、形成されたＡβオリゴマーを元の３９．５８±３．２５％までに低減できた。Ａβオリゴマーの生成を抑制するα−マンゴスチンの半数阻害濃度ＩＣ５０は、１．０９±０．５４マイクロモル／リットルであり、Ａβオリゴマーを分解する半数阻害濃度ＩＣ５０は、１．５９±０．８２マイクロモル／リットルである。
【００２９】
実施例４
α−マンゴスチンの神経保護作用に対するハイコンテントアナリシス
生まれてから１５日目のＳＤラットに、マウス用エーテルを注射して、腹を切開し、解剖液を収容した無菌の平皿に胎芽を移した。胎芽の頭を取り出して、予め冷却された解剖液を収容した平皿に入れた。そして、眼科用の湾曲鉗子及び直線鉗子を１本ずつ用意し、直線鉗子を両眼窩のところから差し込んで、頭部を固定し、湾曲鉗子を頭部の矢状縫合に沿って挿入し、前から後ろに向けて、脳膜及び頭蓋骨を引き裂き、脳を取り出した。脳の海馬を取って、予め冷却された解剖液を収容した平皿に入れ、７５％のアルコールにより消毒したはさみで細かく切断した。細かく切断した組織を平皿からマーク付きの１５ミリリットルのプラスチック遠心分離管に移行し、管の底部まで自然沈降させた後に、管内の液体を吸い取った。さらに、０．０５％のトリプシンを２ミリリットル加えて、試験管を数回反転した後に、摂氏３７度の培養器に入れて５分間消化させた後（２分ごとに取り出して均一になるように揺動した）、消化を終止し、細口のガラスストロー管により細胞を分散させるように吹きつけた。そして、５分間静置してから、遠心分離管の底部の少量の結合組織沈降物を吸い取った。上清を遠心分離した後に取り除き、残った沈降物を穏やかにタッピングした。そして、１０％のウシ胎仔血清を含むＤＭＥＭ緩衝液を２ミリリットル加え、沈降物と培養液とを均一に混合するように吹きつけ、０．１マイクロリットル吸い取って、顕微鏡により計数した。希釈し、プレートに植え付けてから、５％二酸化炭素の細胞培養器に置いて、摂氏３７度で培養した。植え付けてからの２日目に新鮮な神経細胞培養液１ミリリットルを交換した。
【００３０】
ハイコンテント多毒性検出キットＩＩにおける活細胞染料保存液を作用濃度まで希釈した。５０マイクロリットル／穴の比率で、調製された活細胞染料作用液を９６穴プレート培養の初代培養神経細胞に加え、摂氏３７度、５％の二酸化炭素の培養器に置いて３０分間培養した。上清を穏やかに除去してから、予め摂氏３７度に加熱された固定液を加えた。上清を穏やかに除去してから、１００マイクロリットル／穴の洗浄液で洗浄した。上清を穏やかに除去してから、１００マイクロリットル／穴の細胞核染料を加え、室温で光を避けて１０分間培養した。１００マイクロリットル／穴の洗浄液で洗浄した後に、２００マイクロリットル／穴の洗浄液を加えた。プレートを密封した後に、ハイコンテント計器により検出した。検出後の結果をハイコンテント細胞健康性状プログラム（Ｃｅｌｌ  Ｈｅａｌｔｈ  Ｐｒｏｆｉｌｉｎｇ  ＢｉｏＡｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ）により分析を行った。
【００３１】
実験結果は、図６に示すように、１マイクロモル／リットルのＡβオリゴマーが初代培養神経細胞に対して大きな毒性作用を生じ、神経細胞の形態を明らかに変えたほか、神経細胞の機能にも直接的な影響を与えた。具体的には、神経細胞核の大きさ、細胞膜透過性、ミトコンドリア膜電位などの指標に対する影響として現れた。α−マンゴスチンは、濃度依存（ベル型曲線特徴）的にＡβオリゴマーによる神経毒に対抗でき、神経保護作用を発揮した。例えば、５０ナノモル／リットルのα−マンゴスチンは、細胞膜透過性を損傷時の１７３．７５±  ６．８２％から１０７．７５±  ９．３９％までに低下させ、ミトコンドリア膜電位を損傷時の７０．２５±  ６．９７％から１０５．２５±  ５．８４％までに向上させ、損傷したモデル群に比べて顕著な統計学的差異があり（Ｐ  ＜０．０１）、正常対照群に比べて統計学的差異がない（Ｐ  ＞０．０５）。
【００３２】
実施例５
α−マンゴスチンによるＳＡＭ−Ｐ８マウスの学習記憶機能の改善作用の水迷路実験による評価
ＳＡＭ−Ｐ８マウスを秤量してから、ランダムにモデル群、α−マンゴスチンの低、中、高（１マイクログラム／キログラム体重、１０マイクログラム／キログラム体重及び１００マイクログラム／キログラム体重）３つの投与量群、陽性対照群であるレスベラトロール１０ミリグラム／キログラム体重ｇ群との５つの群に分けた。正常群は、ＳＡＭ−Ｒ１マウスを使用した。薬剤を餌に混入して、群分け後の３日目（６ヶ月齢になる）から実験完了まで投薬した。また、正常群、モデル群には、同量の餌を供給した。
【００３３】
ＳＡＭ−Ｐ８マウスは、８ヶ月齢になったら、Ｍｏｒｒｉｓ水迷路位置決め航行実験を行った。実験において、水温度を摂氏２２±０．５度に制御し、頭を壁に向けるとともに背を水面に向けるように実験動物を入水点に投入し、１００秒以内で入水点から逃避台までに行く軌跡をコンピュータにより自動的に記録して、逃避台までの時間を記録した（すなわち、逃避潜伏時間）。１００秒内に逃避台まで行けなかった場合、マウスを直線方向に沿って逃避台まで泳ぐようにガイドし、逃避台に３０秒間立たせた。６時間間隔をあけて、毎日２回テストし、連続３日間テストした。位置決め航行実験完了後に、１日あけて、逃避台を撤去し、マウスを入水点から水に投入し、初めて元の逃避台までに行く時間、及び元の逃避台を通過した回数を測定した。
【００３４】
実験結果は、図７に示すように、訓練の進行に従い、モデル群を含めてすべてのマウスの逃避潜伏時間及び遊泳経路が漸次に短くなり、正常群に比べて、モデル群のマウスの逃避潜伏時間及び遊泳経路が明らかに増加した（Ｐ＜０．０５及びＰ＜０．０１）。α−マンゴスチンにより、逃避潜伏時間及び遊泳経路が明らかに短くなり、特に２日目の実験において、α−マンゴスチンは、陽性薬剤としてのレスベラトロールに比べて、逃避潜伏時間の短縮作用において明らかに優れていた。１０マイクログラム／キログラム体重のα−マンゴスチン投薬群は、逃避潜伏時間が４６．１６±５．５１秒まで短縮され、モデル群の７２．１７±１０．０９秒に比べて、統計学的差異を有し（Ｐ＜０．０５）、正常群に比べて統計学的差異がなかった。
【００３５】
３日目の実験後には、レスベラトロールによっても良好な学習記憶能力の改善が現れ、モデル群に比べて逃避潜伏時間及び遊泳経路が著しく短縮され、統計学的意義があった。α−マンゴスチンは、その効果がより優れ、１０マイクログラム／キログラム体重のα−マンゴスチン投薬群の逃避潜伏時間がそれぞれ４０．０２±４．１６秒及び１９．０５±３．２７秒に短縮され、モデル群の５５．６６±５．５１秒及び３９．９３±４．１２秒に比べて、統計学的差異があり（Ｐ＜０．０５及びＰ＜０．０１）、正常群に比べて統計学的差異がなかった。遊泳距離もそれぞれ４３８．７８±４６．０２センチメートル及び２２３．１５±  ３１．２９センチメートルまでに短縮され、モデル群の７７３．０６±  ６５．５４秒及び５４３．１３±  ５６．７２秒に比べて統計学的差異を有し（Ｐ＜０．０１）、正常群に比べて統計学的差異がない。
【００３６】
現在、レスベラトロールは、米国でアルツハイマー病治療の臨床ＩＩＩ、ＩＶ期研究に入っている。その主な薬理作用のメカニズムは、Ａβ凝集に対する抑制作用にある。それとともに、実験において使用したＳＡＭ−Ｐ８品系マウスは、現在認められているアルツハイマー病治療用薬物の薬効を評価する動物モデルである。したがって、α−マンゴスチンの具体的実施例で現れたＡβ凝集の抑制、神経保護作用及び学習記憶能力の改善などは、アルツハイマー病制御の病理過程の治療作用と見なすことができる。
【図１】
0005552575.tif 000003
【図２】
0005552575.tif 000004
【図３】
0005552575.tif 000005
【図４】
0005552575.tif 000006
【図５】
0005552575.tif 000007
【図６】
0005552575.tif 000008
【図７】
0005552575.tif 000009