(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
コアグラーゼ陽性ブドウ球菌の培養および検出のための培地であって、
コアグラーゼ陽性ブドウ球菌の少なくとも１つの酵素活性または代謝活性の検出を可能にする少なくとも１つの天然または合成の特異的基質と、
コアグラーゼ陽性ブドウ球菌の培養および検出を妨げる能力のある、バシラス属胞子の発芽を抑制または遅延する少なくとも１つの化合物とを含む培地であって、
前記化合物はＤ−アラニン、ジフェニルアミン、式ＣｎＨ２ｎ＋２Ｏ（式中、ｎは６〜１２）のアルコール類、トリプシン型酵素に対する阻害剤および／またはそれらの混合物から成る群から選択される化合物であり、
前記培地は培養条件下において、培地に接触させた試料中にコアグラーゼ陽性ブドウ球菌が存在する場合にはその増殖を可能にするけれども、試料中の任意のバシラス属胞子の発芽を抑制または遅延させるための培地。
【請求項２】
前記式ＣｎＨ２ｎ＋２Ｏ（式中、ｎは６〜１２）のアルコール類は、オクタノール、ノナノール、またはデカノールである請求項１に記載の培養培地。
【請求項３】
前記培地中の胞子発芽を抑制または遅延する化合物の量が０．０１〜１ｍｏｌ／ｌ、又は０．０５〜０．１ｍｏｌ／ｌである請求項１または２に記載の培養培地。
【請求項４】
基質の消費を明らかにするためのｐＨ指示薬をさらに含む、請求項１から３のいずれか１項に記載の培養培地。
【請求項５】
前記ｐＨ指示薬が発色団または発蛍光団である、請求項４に記載の培養培地。
【請求項６】
基質は、明らかにされる酵素活性または代謝活性に特異的な第１の部分と、色原体標識として作用する第２の部分を含む、請求項１から５のいずれか１項に記載の培養培地。
【請求項７】
基質は、明らかにされる酵素活性または代謝活性に特異的な第１の部分と、蛍光標識として作用する第２の部分を含む、請求項１から５のいずれか１項に記載の培養培地。
【請求項８】
前記コアグラーゼ陽性ブドウ球菌は、黄色ブドウ球菌である、請求項１から７のいずれか１項に記載の培養培地。
【請求項９】
試料中に存在する可能性のあるコアグラーゼ陽性ブドウ球菌の検出のための方法であって、
ａ）請求項１から８のいずれか１項に記載の培養培地と前記試料とを接触させる工程と、
ｂ）微生物の細胞増殖に適する条件下で、前記培養培地をインキュベーションする工程と、
ｃ）前記コアグラーゼ陽性ブドウ球菌の存在を検出する工程とを含む方法。
【請求項１０】
工程ｃ）は、蛍光読取り器を用いた培養培地中の蛍光のレベルの変動を測定することを含んで成り、この変動は前記培養培地のｐＨの変動に対応する、請求項９に記載の方法。
【請求項１１】
工程ｃ）は、コロニーの同定を含んで成る、請求項９に記載の方法。
【請求項１２】
工程ｃ）は、小さなコロニーと大きなコロニーを区別することを含んでなる、請求項９に記載の方法。
【請求項１３】
試料は食品または環境試料である請求項９から１２のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１４】
コアグラーゼ陽性ブドウ球菌を計数する別の工程を含む請求項９から１３のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１５】
請求項１から８のいずれか１項に記載の培養培地の調製ための、バシラス属胞子の発芽を抑制または遅延する少なくとも１つの化合物の使用。
【請求項１６】
コアグラーゼ陽性ブドウ球菌を同定することを対象とした請求項１から８のいずれか１項に記載の培養培地の調製のためのＤ−アラニンの使用。
【請求項１７】
前記コアグラーゼ陽性ブドウ球菌は黄色ブドウ球菌である、請求項１６に記載の使用。
【請求項１８】
コアグラーゼ陽性ブドウ球菌を検出、同定、又は計数さえもするための請求項１から８のいずれか１項に記載の培養培地の使用。
【請求項１９】
前記コアグラーゼ陽性ブドウ球菌は黄色ブドウ球菌である、請求項１８に記載の使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明の分野は、臨床用または産業用の微生物試験の分野である。さらに詳細には、本発明は、試料中に、さらに詳細には、食品または環境に存在する可能性のある標的微生物の培養のための培地に実質的に関し、前記培地は、少なくとも１つの胞子発芽を抑制または遅延する化合物を含む。
【背景技術】
【０００２】
本発明は、乾燥製品に関して詳細に以下に記載されるが、この構成は本発明の限定するものとはならない。
【０００３】
品質および安全性が世界中の食品加工業の最大の関心事項である。出発原料および最終製品中の微生物叢を検出し、同定し、定量することが、そしてしたがって、その製造からその消費まで、製品の価値を保証することが、可能なはずである。このことから、製品の品質指標が分析され、大腸菌、コアグラーゼ陽性ブドウ球菌、シュードモナス菌、桿菌、酵母菌、カビなどの腸内細菌のうち、改質細菌叢による全体の汚染レベルを示す。特に、粉乳中のコアグラーゼ陽性ブドウ球菌の調査が今日、不可欠になっている。
【０００４】
コアグラーゼ陽性ブドウ球菌のなかでは、黄色ブドウ球菌が最も病原性の強いブドウ球菌属の種類であるが、ヒトに共生している。特に、黄色ブドウ球菌は、食中毒、化膿性の限局性感染、および、ある極端な場合では、移植を受けた、または人工心臓を有する特定のヒトの敗血症の原因となる。
【０００５】
コアグラーゼ陽性ブドウ球菌の特異的な計数を可能にする培地を開発する難しさは、
この培地にとって、前記培地に存在するコアグラーゼ陽性ブドウ球菌（約１０コロニー形成単位（ＣＦＵ）／ｇ）のきわめて低い汚染の検出を可能にする、良好な感度をもたせる必要性があるからだけでなく、
他の微生物、特にコアグラーゼ陽性ブドウ球菌に表現型的に近いバシラス属微生物などの微生物の時にはきわめて高くなる濃度を抑制できる必要性もある。
【０００６】
これは、実際バシラス属微生物に関して、選択剤によってコアグラーゼ陽性ブドウ球菌とバシラス属とを識別することが特に困難であることがわかっており、このような細菌のうち１つに対して効果のある抑制剤のほとんどが他の細菌に対しても概して効果があるからである。こうして、Ｂａｉｒｄ−Ｐａｒｋｅｒ−ＲＰＦ（家兎血漿＋ウシフィブリノーゲン）タイプの従来の培地がバシラス属を効果的および系統的に抑制できないことが観察されてきた。
【０００７】
さらに、食品加工分野では、製造業者が製品を生産するための処理を乾燥に頼ることが多く、この条件は一般に、特にその栄養型の微生物のほとんどを除去することを可能にする。しかし、バシラス属の細菌には、胞子を形成する能力によって、乾燥時に用いられるような過酷な条件に耐えることができる。バシラス属の細菌はこのため、乾燥させた製品中に発見される。こうして、粉乳中のバシラス属汚染の濃度は高くなり得ることが観察されている。
【０００８】
さらに、培地の調製に必要な出発原料のほとんどが、それ自体脱水型（粉末）であることが多い。
【０００９】
このような乾燥出発原料はまた、上記のように、乾燥条件に耐えるこのようなバシラス属微生物によって通常は汚染されている。
【００１０】
その結果、偽陽性の試験結果が、粉乳などの乾燥製品の微生物学的試験の中で頻繁に観察されており、バシラス属の細菌が、誤って、コアグラーゼ陽性ブドウ球菌として分析される事実による。
【００１１】
逆に、偽陰性のリスクが同じく高く、大量のバシラス属が頻繁にみられ、常に、コアグラーゼ陽性ブドウ球菌の量よりも相当多く、後者の存在を隠してしまうことが多いためである。
【００１２】
このことから、大量のバシラス属があると、コアグラーゼ陽性ブドウ球菌などの標的細菌を同定、または計数をも目的とする培地の開発の大きな妨げとなり、食品試料などの分析試料中に存在するこのような微生物の存在の不正確な評価になりうるということが明らかであることは容易に理解できる。試料は、分析のため実体から単離された小さな部分または少量として定義される。
【００１３】
コアグラーゼ陽性ブドウ球菌の特異的な計数のための培地を開発することを目的として、種々の方法が試験されてきたが、バシラス属の影響を抑えることに関しては、期待されたような成果は得られていない。
【００１４】
このため、抗生物質などの選択剤が、コアグラーゼ陽性ブドウ球菌に対して良好な感度を維持しながら、バシラス属微生物に対して良好な選択性を併せもつことができない。
【００１５】
数十年前に遡る２報の文献が、胞子発芽に対するＤ−アラニンの作用を引用している。
【００１６】
こうして、Ｍ．Ｈａｌｍａｎｎ，Ａ．Ｋｅｙｎａｎ、１９６２年、「Ｓｔａｇｅｓ  ｉｎ  ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｓｐｏｒｅ  ｏｆ  Ｂａｃｉｌｌｕｓ  Ｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓ」、Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．８４：１１８７−１１９３による文献から、Ｌ−アラニンデヒドロゲナーゼがバシラス・リケニフォルミスの胞子発芽の最初の生化学的ステップに必要であり、この最初のステップがＤ−アラニン、種々の塩類、ピルビン酸エチルおよびオクタノールによって抑制されうることが知られている。
【００１７】
また、Ｙｏｋｏ  Ｙａｓｕｓａ−Ｙａｓａｋｉら、１９７８年、「Ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｂａｃｉｌｌｕｓ  ｓｕｂｔｉｌｉｓ  Ｓｐｏｒｅ  Ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ  ｂｙ  Ｖａｒｉｏｕｓ  Ｈｙｄｒｏｐｈｏｂｉｃ  Ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ：Ｄｅｍｏｎｓｔｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｈｙｄｒｏｐｈｏｂｉｃ  Ｃｈａｒａｃｔｅｒ  ｏｆ  Ｌ−ａｌａｎｉｎｅ  Ｒｅｃｅｐｔｏｒ  Ｓｉｔｅ」、Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ、第１３６巻、Ｎｏ２、ｐ．４８４−４９０による文献のなかで、発芽の開始に関与するＬ−アラニンの抑制剤が、
バシラス・リケニフォルミスおよびバシラス・セレウスに対するオクタノール、
巨大菌に対するフェニルエチルアルコール、
巨大菌、バシラス・セレウスおよび枯草菌に対する８−ヒドロキシキノリン、
バシラス・セレウスに対するエタノールおよびジシクロヘキシルカルボジイミドであることが言及されている。
【００１８】
その後発表された試験は、微生物の胞子形成型の発芽機序の特性決定に実質的に焦点を当てており、このうちバシラス属が一例である。
【００１９】
前記試験が実際、発芽過程に関与する種々のステップを記載している。
【００２０】
発芽機序の知見は、実質的にこれまで、微生物の胞子、特にバシラスの胞子の発芽促進に用いられており、次の目的による。
発芽を加速し、これにより培地中の増殖／検出を改善する。
その栄養型の微生物を除去するための発芽を促進し、これが、培地中には抗生物質の形状で、あるいは、ある産業の洗浄工程において、洗剤または殺菌剤の形状で存在する阻害剤に対して高い感度であり、他の工程では、その部分が、高温処理に基づく。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００２１】
本発明は、前述した短所を、すでに明らかになった短所に対して挑む解決法を提供することによって改善することを提案し、胞子の発芽を促進させないが、逆に、これを阻止するか、少なくともこれを遅延することを含む。
【００２２】
本発明は、さらに、抗生物質の使用に代わる全く好都合なものであり、この抗生物質の抗菌スペクトルは概して、コアグラーゼ陽性ブドウ球菌などの標的微生物と、前記標的微生物の検出、同定または計数をも妨害する能力のある、バシラス属などの微生物との識別に必要なスペクトルには適合しない。
【００２３】
本発明はまた、培地の栄養価を変えないという利点を有し、これによって上記の特異性の問題の回避と、乾燥製品のようなバシラス属の濃度が高い製品の分析用に特に適する開発された培地の作製を可能にする。
【００２４】
その結果、本発明の実質的な目的の１つが、標的微生物の、特に細菌中の培養のための培地の使用にあり、分析される試料に含まれる可能性のある胞子の発芽を阻止、または少なくとも遅延する能力があり、前記標的微生物の増殖に影響がないものである。
【課題を解決するための手段】
【００２５】
このため、本発明の第１の主題は、標的微生物の培養および検出のための培地から成り、
前記標的微生物の少なくとも１つの酵素活性または代謝活性の検出を可能にする少なくとも１つの天然または合成した特異的基質と、
前記標的微生物の培養および検出を妨害する能力のある、標的微生物以外の微生物の胞子発芽を抑制または遅延する少なくとも１つの化合物を含む培地である。
【００２６】
好ましくは、標的微生物は、黄色ブドウ球菌を含むコアグラーゼ陽性ブドウ球菌のうち、細菌である。
【００２７】
本発明の目的のために、基質は、炭素または窒素源などの代謝基質であってよく、基質の製品劣化によってｐＨが変動し、前記変動は、ｐＨ指示薬を用いることによって検出可能である。ｐＨ指示薬は、微生物の増殖によるｐＨの変化に従って、色が変化する化学物質である。発色団の例として、ニュートラルレッド、アニリンブルーおよびブロモクレゾールブルーに言及する。第２の実施形態では、ｐＨ指示薬は発蛍光団（例えば、４−メチルウンベリフェロン、アミノクマリン誘導体またはレゾルフィン誘導体）である。
【００２８】
基質はまた、加水分解され、探索される微生物に特異的な酵素活性の直接的または間接的な検出を可能にする製品になるあらゆる基質から選択されたものでよい。直接的な検出の場合、基質は酵素活性の特異的な第１の部分と、色素産生性または蛍光性である標識物として作用する第２の部分とから成る。
【００２９】
本発明の主題である培地は、粉末の形状、ゲルの形状または溶液の形状でもよく、すぐ使用でき、言わば、試験管またはフラスコの中またはシャーレ上にすぐ植菌できる。ゲル培地の場合には、微生物の培養のための微生物学では寒天が従来のゲル化剤であるが、ゼラチンまたはアガロースも使用できる。最後に、培地は自動化細菌学的検査機器用の特別なボトル、カートリッジまたはカード（例として、Ｖｉｔｅｋ（登録商標）カード、Ｔｅｍｐｏ（登録商標）カードおよびＢａｃＴ／ＡＬＥＲＴ（登録商標）ボトルに言及し、出願人によって販売されている）にパッケージされてもよい。この場合、遅延または抑制させる化合物は、その使用の前に培地に添加されることが意図される単独の溶液の形状中にあってよい。
【００３０】
食品を原料とする試料の間には、全部ではないが、粉乳、穀類、粉末だしまたはケーキ調合剤などの乾燥製品の試料があると言ってもよい。これは、ペストリーの例でもある。最後に、食品試料には、特に動物の餌などの動物飼料に由来するものも可能である。
【００３１】
表面試料、水試料または大気試料などの環境に関連する試料が作製されることに言及する。
【００３２】
本発明の好ましい実施形態の１つには、バシラス属胞子の発芽を抑制または遅延する前記抑制または遅延する化合物がある。
【００３３】
胞子発芽を抑制または遅延する化合物は、Ｄ−アラニン、ジフェニルアミン、式ＣｎＨ２ｎ＋２Ｏ（式中、ｎは６〜１２）のアルコール類、好ましくは、オクタノール、ノナノールまたはデカノール、トリプシン型酵素に対する阻害剤および／またはそれらの混合物から成る群から有利に選択される。
【００３４】
好ましい一実施形態によれば、前記培地中の胞子発芽を抑制または遅延する化合物の濃度は０．０１〜１ｍｏｌ／ｌであり、好ましくは、０．０５〜０．１ｍｏｌ／ｌである。
【００３５】
培地はまた、基質の消費を明らかにするためのｐＨ指示薬を含んでもよく、前記ｐＨ指示薬は好ましくは、発色団または発蛍光団である。
【００３６】
通常、基質は、明らかにされる酵素活性または代謝活性に特異的な第１の部分と、蛍光標識として作用する第２の部分を含む。
【００３７】
あるいは、基質は、明らかにされる酵素活性または代謝活性に特異的な第１の部分と、色原体標識として作用する第２の部分を含む。
【００３８】
本発明のもう１つの主題は、試料中に存在する可能性のある標的微生物の検出のための方法に関し、
ａ）本発明による培地と前記試料を接触させる工程と、
ｂ）微生物の細胞増殖に適する条件下で、前記培地をインキュベーションする工程と、
ｃ）前記標的微生物の存在の検出する工程とを含む。
【００３９】
特定の一実施形態によれば、本発明による方法は、前記標的微生物の培養および検出を妨害する能力のある、標的微生物以外の微生物の胞子出芽を抑制または遅延する化合物を少なくとも１つ含む溶液を、前記培地に添加することから成る工程を工程ａ）の前に含むことができることから成る。
【００４０】
本発明による方法の工程ｃ）は、蛍光リーダーを用いて培地中の蛍光のレベルの変動を測定することから成る方法で、この変動は、例えば、前記培地のｐＨの変動に対応する。
【００４１】
あるいは、工程ｃ）はコロニーを同定することから成る。この場合、本発明による培地は通常固体であり、特にシャーレ内では寒天培地の形態である。胞子の出芽が遅れるため、対象の細菌は、他の細菌よりも優先され、他の細菌より前に培地上で増殖する。このため、シャーレの初めの読み取りでは（例えば、植菌１６時間後）、対象の細菌のコロニーだけが見える。後の読み取りでは（例えば、植菌２４時間後）、前記読み取りは小さなコロニーから大きなコロニーを識別することから成る。胞子出芽によって得られる細菌のコロニーは、標的細菌のものよりもサイズが小さく、それ自体、正常に発育している。こうして、標的微生物とそれ以外の微生物を容易に識別できる。
【００４２】
特定の一実施形態によれば、本発明による方法は、標的微生物を計数する別の工程を含むことができる。このような計数工程は、最確数（ＭＰＮ）法に従って実施されるのが好ましい。この方法は、出願者名の欧州特許第１１０５４５７号明細書に説明されている。
【００４３】
本発明の別の主題は、培地の調製のために、微生物の胞子の発芽を遅延または抑制する少なくとも１つの化合物に関する。
【００４４】
全体的に好ましいのは、本発明は黄色ブドウ球菌などのコアグラーゼ陽性ブドウ球菌を同定することを対象とした培地の調製のためのＤ−アラニンの使用に関する。
【００４５】
本発明の最後の主題は、コアグラーゼ陽性ブドウ球菌の検出、同定またはさらに計数のための培地の使用に関する。
【００４６】
抗生物質とは異なり、胞子発芽を抑制または遅延する化合物が概して幅広い温度で安定していることを考慮すれば、本発明による培地の調製は、培地を生産するための方法に関する従来の条件と全面的に両立できるという利点を有する。さらに、このような化合物は、低価格であることが多い。
【００４７】
本発明の目的および利点は、図と併せて次の実施例に照らしてみると、さらに明確に理解される。
【図面の簡単な説明】
【００４８】
【図１】Ｄ−アラニン有りおよび無しの培地で試験される試料とのインキュベーション後に得られた蛍光のレベルに対するＣＶの分布を示す度数分布のグラフである。
【発明を実施するための形態】
【実施例】
【００４９】
以下に記載される実施例はバシラス型（バシラス・リケニフォルミス、バシラス・チューリンゲンシス／セレウスなど）の微生物の胞子に対するＤ−アラニンの抑制作用を記載する。
【００５０】
これを実施するために、バシラス微生物を含む傾向があり、また黄色ブドウ球菌で汚染されていない粉乳製品の５９の試料を試験した。
【００５１】
Ｄ−アラニンの抑制効果を試験するために、２種類の培地を試験した。
培地１  Ｄ−アラニン無しの培地
培地２  培地中に０．０５〜０．１ｍｏｌ／ｌの最終濃度（培地中の最終濃度）でＤ−アラニンが存在する培地
【００５２】
前記培地の成分は次の通りである（ｇ／ｌで表記、Ｄ−アラニン有りまたは無しの培地中の最終濃度）。
動物（ウシおよびブタ）および植物性ペプトン  １２．５
糖類および増殖サプリメント                  １１
バッファー系                                １０
選択剤（抗生物質、塩類）                    １０．２５
蛍光ｐＨ指示薬                                ０．０６
消泡剤                                        ０．４
【００５３】
試料は、次のステップに従って、ＩＳＯ国際標準規格８２６１：２００１（「牛乳および乳製品に関し、微生物学的検査を目的とする保存懸濁液および１０倍希釈の試験試料調製のための一般的ガイドライン」に関する）に従って調製した。
ａ）試料の１０ｇを秤量し、Ｓｔｏｍａｃｈｅｒ（登録商標）バッグに入れ、
ｂ）試料の最初の１／１０希釈を得るために、４５℃にあらかじめ加温したトリプトン塩の希釈液９０ｍｌを添加し、
ｃ）Ｓｔｏｍａｃｈｅｒ（登録商標）機を用いて１分間の擦りつぶしを実施し、
ｄ）このＳｔｏｍａｃｈｅｒ（登録商標）バッグを水浴に入れ、４５℃で５分間攪拌し、
ｅ）試料の１ｍｌ（１／１０に希釈）を取り、１／４０希釈が得られるよう３ｍｌの培地に入れ、
ｆ）３７℃で２４〜２７時間でインキュベーションを実施し、
ｇ）培地は蛍光によって読み取り、最確数法によって試料の微生物汚染レベルを測定した。
【００５４】
培地の蛍光の測定から成る読み取りはインキュベーション後に得た。蛍光値の大きな変動は、培地の酸性化を裏づけており、前記酸性化自体は、１つ以上の微生物の増殖から得られる。
【００５５】
蛍光値のＣＶは試験した試料に基づいて算出した（黄色ブドウ球菌により汚染されていなかった）。
【００５６】
ＣＶが高くなると、培地の酸性化が大きくなり、これにより培地中に存在する微生物が増殖したことを裏付けている。逆に、ＣＶが低くなると、酸性化が小さくなり、これにより微生物の増殖が少なくなることを反映している。このことから、培地の特異性が優れており、このことから、偽陽性のリスクは低い（偽陽性の結果が黄色ブドウ球菌以外の微生物の細菌による培地の酸性化と関係がある）。
【００５７】
この実施例で試験した試料は黄色ブドウ球菌で汚染されていないため、観察された酸性化は、黄色ブドウ球菌以外の種々の微生物の非特異的増殖に関連し、バシラス属（バシラス・リケニフォルミス、バシラス・チューリンゲンシス／セレウス）に属すると同定された。
【００５８】
度数分布の形状から得られ、提示されたたプロファイルは、図１に示したように、２つの培地間のＣＶの分布がかなり異なることを示している。
【００５９】
培地１（Ｄ−アラニン無し）により得られたＣＶは０〜２４の値に分布するのに対して、培地２（Ｄ−アラニン有り）により得られた全ての値は６未満で、大部分は３未満である（わずかに酸性化）。
【００６０】
培地中でのＤ−アラニンの使用によって、培地のインキュベーション後に得られるＣＶ値を大幅に低下させることが可能になる。ＣＶは、試験したこの例では、非特異的な酸性化に関係があることから、培地へのＤ−アラニンの添加によって、前記培地が胞子形成した試料のこのタイプに存在するバシラス属に関して優れた特異性をもたらす。
【００６１】
以下の表１は、培地中にＤ−アラニン有りまたは無しで得られたカウントを要約している。
0005647114.tif 000002
【００６２】
試験した５９の試料では、培地１は得られたカウントの結果が５０．８５％と良好な特異性を維持したことに留意する（ＭＰＮ＜１０）。結果の４９．１５％が偽陽性であり、バシラス属の増殖によるもので、５０ＣＦＵ／ｇを上回るカウント結果をもたらしたものが６．７８％あった。
【００６３】
Ｄ−アラニンの培地への添加によって＜１０の結果の比率を５０．８５％から８９．８３％に改善することが可能となった。そこで、偽陽性の結果の比率は、４９．１５％から１０．１７％に低下し、Ｄ−アラニンの使用によって、５０ＣＦＵ／ｇを上回る偽陽性の結果は得られなかった。
【図１】
0005647114.tif 000003