(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
分泌シグナルペプチドをコードするポリヌクレオチドと、塩基性アミノ酸に富むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドと、目的タンパク質をコードするポリヌクレオチドとを、この順に含有するポリヌクレオチドを用いてタンパク質を発現させ、
分泌シグナルペプチドが、大腸菌の外膜タンパク質Ａ由来の分泌シグナルペプチド（ＯｍｐＡ）であり、
塩基性アミノ酸に富むポリペプチドがポリヒスチジンであり、
目的タンパク質が、アポイクオリン、アポクライチィン、アポオベリンおよびアポマイトロコミンからなる群より選択されるいずれかであり、
タンパク質の発現が宿主細胞であるグラム陰性菌内で行われる
ことを特徴とする前記目的タンパク質を可溶性タンパク質として製造する方法。
【請求項２】
グラム陰性菌が大腸菌属の細菌である請求項１記載の方法。
【請求項３】
塩基性アミノ酸に富むポリペプチドが５〜１２アミノ酸残基からなるポリペプチドである請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
目的タンパク質の発現が、該目的タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含有する発現ベクターを用いて行われる請求項１〜３のいずれかに記載の方法。
【請求項５】
グラム陰性菌の分泌シグナルペプチドをコードするポリヌクレオチドと、５ないし１２個の塩基性アミノ酸残基からなるポリペプチドをコードするポリヌクレオチドと、目的タンパク質をコードするポリヌクレオチドとを、この順に含有するポリヌクレオチドを用いてグラム陰性菌内でタンパク質を発現させ、
グラム陰性菌の分泌シグナルペプチドが、大腸菌の外膜タンパク質Ａ由来の分泌シグナルペプチド（ＯｍｐＡ）であり、
５ないし１２個の塩基性アミノ酸残基からなるポリペプチドがポリヒスチジンであり、
目的タンパク質が、アポイクオリン、アポクライチィン、アポオベリンおよびアポマイトロコミンからなる群より選択されるいずれかである
ことを特徴とする前記目的タンパク質を可溶性タンパク質として製造する方法。
【請求項６】
ＯｍｐＡをコードするポリヌクレオチドと、ポリヒスチジンをコードするポリヌクレオチドと、目的タンパク質をコードするポリヌクレオチドとを、この順に含有するポリヌクレオチドを用いて大腸菌属の細菌内でタンパク質を発現させ、
目的タンパク質が、アポイクオリン、アポクライチィン、アポオベリンおよびアポマイトロコミンからなる群より選択されるいずれかである
ことを特徴とする前記目的タンパク質を可溶性タンパク質として製造する方法。
【請求項７】
（ａ）分泌シグナルペプチドをコードする第１コード領域、
（ｂ）塩基性アミノ酸に富むポリペプチドをコードする第２コード領域、および
（ｃ）目的タンパク質をコードする第３コード領域
を、この順に含有し、
分泌シグナルペプチドが、大腸菌の外膜タンパク質Ａ由来の分泌シグナルペプチド（ＯｍｐＡ）であり、
塩基性アミノ酸に富むポリペプチドがポリヒスチジンであり、
目的タンパク質が、アポイクオリン、アポクライチィン、アポオベリンおよびアポマイトロコミンからなる群より選択されるいずれかである
ことを特徴とする発現ベクター。
【請求項８】
塩基性アミノ酸に富むポリペプチドが５〜１２アミノ酸残基からなるポリペプチドである請求項７に記載の発現ベクター。
【請求項９】
（ａ）グラム陰性菌由来の分泌シグナルペプチドをコードする第１コード領域、
（ｂ）５ないし１２個の塩基性アミノ酸残基からなるポリペプチドをコードする第２コード領域、および
（ｃ）目的タンパク質をコードする第３コード領域
を、この順に含有し、
グラム陰性菌由来の分泌シグナルペプチドが、大腸菌の外膜タンパク質Ａ由来の分泌シグナルペプチド（ＯｍｐＡ）であり、
５ないし１２個の塩基性アミノ酸に富むポリペプチドがポリヒスチジンであり、
目的タンパク質が、アポイクオリン、アポクライチィン、アポオベリンおよびアポマイトロコミンからなる群より選択されるいずれかである
ことを特徴とする発現ベクター。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、目的タンパク質を可溶性タンパク質として製造する方法に関する。より詳し
くは、分泌シグナルペプチドと塩基性アミノ酸に富むペプチドとを用いて目的タンパク質
を可溶性タンパク質として製造する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
これまでに、細菌、酵母、昆虫、トランスジェニック動物、トランスジェニック植物な
どの宿主内での組換えタンパク質発現系、無細胞翻訳系などの多くの組換えタンパク質発
現系が開発されている。なかでも大腸菌は高密度に増殖させることが容易であり、しかも
宿主ベクター系の研究が進んでいることから、異種タンパク質の発現系として広く利用さ
れている。
一方、これらの組換えタンパク質発現系で目的タンパク質を発現させた場合、発現され
たタンパク質が正確に折り畳まれないためにそのタンパク質本来の機能を発現できなかっ
たり、封入体と呼ばれる不溶性の凝集体が形成されることが少なくない。このような場合
、例えば封入体を変性（可溶化）した後、再折り畳みを行っても、必ずしも正常に折り畳
まれた本来の機能を有するタンパク質が得られるとは限らない。また、本来の機能を発現
するタンパク質が得られたとしても、満足な回収率が得られないことも多い。
このような背景において、現在まで発現組換え目的タンパク質の封入体の形成を抑制す
る方法は、確立されていない。その代法として、可溶性の高い分子量４万のマルトース結
合タンパク質またはグルタチオンＳトランスフェラーゼ（ＧＳＴ）と不溶性目的タンパク
質とを融合させることにより可溶性蛋白として発現さすることが試みられている（非特許
文献１：Fox,J.D.and Waugh, D.S. (2003) Maltose-binding protein as a solubility e
nhancer. Methods Mol. Biol.205:99-117、非特許文献２：Ausubel, F.M. et al. eds. (
1996) Current Protocols in Molecular Biology, Vol. 2, 16.0.1）。しかし、可溶性タ
ンパクが本来の活性を示さないこと、マルトース結合タンパク質またはＧＳＴを削除した
場合、目的タンパク質が不溶化する等の問題があった。
【０００３】
レニラルシフェリン結合タンパク質（以下ＲＬＢＰと略記する）は、ウミシイタケ（Re
nilla reniformis）由来のカルシウム誘発ルシフェリン結合タンパク質(Calcium-trigger
ed luciferin-bindihg protein)として知られている。ＲＬＢＰはアポタンパク質（アポ
ＲＬＢＰ）とセレンテラジン（ルシフェリン）の非共有結合複合体である（非特許文献３
：J. Biol. Chem. 254, 769-780 (1979)）。ＲＬＢＰがカルシウムイオンと結合すると、
セレンテラジンが放出される。放出されたセレンテラジンは、セレンテラジンを発光基質
とするレニラルシフェラーゼ、エビルシフェラーゼ、ガウシアルシフェラーゼ等によるル
シフェリン−ルシフェラーゼの発光反応に用いられる。
【０００４】
大腸菌Ｌ−アスパラギナーゼ遺伝子をｐｅｌＢリーダー配列およびＮ末端６×ヒスチジ
ンタグと融合させることにより、組換え大腸菌Ｌ−アスパラギナーゼを菌体外である培養
ろ液に発現させ、Ｎｉ−ＮＴＡアフィニティークロマトグラフィーで精製する方法が報告
されている（非特許文献４：Protein Express. Purif. 38, 29-36 (2004)）。
【非特許文献１】Fox,J.D.and Waugh, D.S. (2003) Maltose-binding protein as a solubility enhancer. Methods Mol. Biol.205:99-117
【非特許文献２】Ausubel, F.M. et al. eds. (1996) Current Protocols in Molecular Biology, Vol. 2, 16.0.1
【非特許文献３】J. Biol. Chem. 254, 769-780 (1979)
【非特許文献４】Protein Express. Purif. 38, 29-36 (2004)
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
上記状況において、組換えタンパク質発現系を用いて、目的タンパク質を可溶性タンパ
ク質として製造することが、有用タンパク質の生産のために産業上強く望まれている。ま
た、タンパク質の機能や構造の研究といった研究分野においても強い要望がある。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意研究を重ねた結果、シグナルペプチドを
コードするポリヌクレオチドと塩基性アミノ酸に富むポリペプチドをコードするポリヌク
レオチドを目的タンパク質をコードするポリヌクレオチドと結合させたポリヌクレオチド
を含有する発現ベクターを用いて、グラム陰性菌中で目的タンパク質を発現させると、目
的タンパク質が可溶性タンパク質として発現されることを見出した。さらに、このように
して得られた目的タンパク質は、本来の機能を有していることが確認された。これらの知
見に基づいてさらに検討を重ねた結果、本発明を完成するに至った。
【０００７】
すなわち、本発明は、
（１）  分泌シグナルペプチドをコードするポリヌクレオチドと、塩基性アミノ酸に富む
ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドと、目的タンパク質をコードするポリヌクレ
オチドとを、この順に含有するポリヌクレオチドを用いてタンパク質を発現させることを
特徴とする前記目的タンパク質を可溶性タンパク質として製造する方法、
（２）  タンパク質の発現が宿主細胞内で行われる上記（１）記載の方法、
（３）  宿主細胞がグラム陰性菌である上記（２）記載の方法、
（４）  グラム陰性菌が大腸菌属の細菌である上記（３）記載の方法、
（５）  分泌シグナルペプチドがグラム陰性菌由来の分泌シグナルペプチドである上記（
１）〜（４）のいずれかに記載の方法、
（６）  グラム陰性菌由来の分泌シグナルペプチドが、通性嫌気性桿菌由来の分泌シグナ
ルペプチドである上記（５）記載の方法、
（７）  グラム陰性菌由来ののシグナルペプチドが、大腸菌の外膜タンパク質Ａ由来の分
泌シグナルペプチド（ＯｍｐＡ）またはコレラ菌由来コレラトキシン由来の分泌シグナル
ペプチドである上記（５）記載の方法、
（８）  塩基性アミノ酸に富むポリペプチドが５〜１２アミノ酸残基からなるポリペプチ
ドである上記（１）〜（７）のいずれかに記載の方法、
（９）  塩基性アミノ酸に富むポリペプチドにおける塩基性アミノ酸の含有率が６０％以
上である上記（１）〜（８）のいずれかに記載の方法、
（１０）  塩基性アミノ酸に富むポリペプチドにおける塩基性アミノ酸がヒスチジン、ア
ルギニンおよびリジンから選択される上記（１）〜（９）のいずれかに記載の方法、
（１１）  塩基性アミノ酸に富むポリペプチドがポリヒスチジンである上記（１）〜（９
）のいずれかに記載の方法、
（１２）  目的タンパク質の発現が、該目的タンパク質をコードするポリヌクレオチドを
含有する発現ベクターを用いて行われる上記（１）〜（１１）のいずれかに記載の方法、
（１３）  グラム陰性菌の分泌シグナルペプチドをコードするポリヌクレオチドと、５な
いし１２個の塩基性アミノ酸残基からなるポリペプチドをコードするポリヌクレオチドと
、目的タンパク質をコードするポリヌクレオチドとを含有するポリヌクレオチドを用いて
グラム陰性菌内でタンパク質を発現させることを特徴とする前記目的タンパク質を可溶性
タンパク質として製造する方法、
（１４）  ＯｍｐＡをコードするポリヌクレオチドと、ポリヒスチジンをコードするポリ
ヌクレオチドと、目的タンパク質をコードするポリヌクレオチドとを含有するポリヌクレ
オチドを用いて大腸菌属の細菌内でタンパク質を発現させることを特徴とする前記目的タ
ンパク質を可溶性タンパク質として製造する方法、
（１５）  目的タンパク質が異種タンパク質である上記（１）〜（１４）のいずれかに記
載の方法、
（１６）  目的タンパク質が、アポＲＬＢＰ、アポイクオリン、アポクライチィン、アポ
オベリンおよびアポマイトロコミンからなる群より選択されるいずれかである上記（１）
〜（１４）のいずれかに記載の方法、
（１７）  目的タンパク質がアポＲＬＢＰである上記（１６）記載の方法、
（１８）  グラム陰性菌の分泌シグナルペプチドをコードするポリヌクレオチドと、５な
いし１２個の塩基性アミノ酸残基からなるポリペプチドをコードするポリヌクレオチドと
、アポＲＬＢＰをコードするポリヌクレオチドとを含有するポリヌクレオチドを用いてグ
ラム陰性菌内でタンパク質を発現させることを特徴とするアポＲＬＢＰの製造方法、
（１９）  ＯｍｐＡをコードするポリヌクレオチドと、ポリヒスチジンをコードするポリ
ヌクレオチドと、アポＲＬＢＰをコードするポリヌクレオチドとを含有するポリヌクレオ
チドを用いて大腸菌内でタンパク質を発現させ、発現されたタンパク質をペリプラズムス
ペースに蓄積させることを特徴とするアポＲＬＢＰの製造方法、
（２０）  上記（１７）〜（１９）のいずれかに記載の製造方法によって製造されたアポ
ＲＬＢＰとセレンテラジンまたはその誘導体とを接触させることを特徴とするＲＬＢＰの
製造方法、
（２１）  上記（１７）〜（１９）のいずれかに記載の製造方法によって製造されたアポ
ＲＬＢＰとセレンテラジンまたはその誘導体とを接触させてＲＬＢＰを調製することを特
徴とする、セレンテラジンまたはその誘導体の保存方法、
（２２）  上記（１７）〜（１９）のいずれかに記載の製造方法によって製造されたアポ
ＲＬＢＰとセレンテラジンまたはその誘導体とからなるＲＬＢＰ、
（２３）（ａ）分泌シグナルペプチドをコードする第１コード領域、
（ｂ）塩基性アミノ酸に富むポリペプチドをコードする第２コード領域、および
（ｃ）目的タンパク質をコードする第３コード領域を挿入することができる少なくとも１
つの制限酵素サイト
を含有することを特徴とする発現ベクター、
（２３ａ）  前記第１コード領域がプロモーターに有効に連結している上記（２３）記載
の方法、
（２３ｂ）  前記第１コード領域、前記第２コード領域および前記制限酵素サイトが同じ
読み枠内にある上記（２３）記載の方法、
（２３ｃ）  前記第２コード領域が前記第１コード領域の下流にあり、前記制限酵素サイ
トが前記第２コード領域の下流にある上記（２３）記載の方法、
（２３ｄ）  前記制限酵素サイトがマルチクローニングサイトである上記（２３）記載の
方法、
（２４）  分泌シグナルペプチドがグラム陰性菌由来の分泌シグナルペプチドである上記
（２３）記載の発現ベクター、
（２５）  グラム陰性菌由来の分泌シグナルペプチドが通性嫌気性桿菌由来の分泌シグナ
ルペプチドである上記（２４）記載の発現ベクター、
（２６）  グラム陰性菌由来の分泌シグナルペプチドが、大腸菌の外膜タンパク質Ａ由来
の分泌シグナルペプチド（ＯｍｐＡ）またはコレラ菌由来コレラトキシン由来の分泌シグ
ナルペプチドである上記（２４）記載の発現ベクター、
（２７）  塩基性アミノ酸に富むポリペプチドが５〜１２アミノ酸残基からなるポリペプ
チドである上記（２３）〜（２６）のいずれかに記載の発現ベクター、
（２８）  塩基性アミノ酸に富むポリペプチドにおける塩基性アミノ酸の含有率が６０％
以上である上記（２３）〜（２７）のいずれかに記載の発現ベクター、
（２９）  塩基性アミノ酸に富むポリペプチドにおける塩基性アミノ酸がヒスチジン、ア
ルギニンおよびリジンから選択される上記（２３）〜（２８）のいずれかに記載の発現ベ
クター、
（３０）  塩基性アミノ酸に富むポリペプチドがポリヒスチジンである上記（２３）〜（
２７）のいずれかに記載の発現ベクター、
（３１）（ａ）グラム陰性菌由来の分泌シグナルペプチドをコードする第１コード領域、
（ｂ）５ないし１２個の塩基性アミノ酸残基からなるポリペプチドをコードする第２コー
ド領域、および
（ｃ）目的タンパク質をコードする第３コード領域を挿入することができる少なくとも１
つの制限酵素サイト
を含有することを特徴とする発現ベクター、
（３２）（ａ）ＯｍｐＡをコードする第１コード領域、
（ｂ）ポリヒスチジンをコードする第２コード領域、および
（ｃ）目的タンパク質をコードする第３コード領域を挿入することができる少なくとも１
つの制限酵素サイト
を含有することを特徴とする発現ベクター
などを提供する。
【発明の効果】
【０００８】
本発明によれば、目的タンパク質を組換えタンパク質発現系を用いて製造する場合に、
目的タンパク質を可溶性タンパク質として製造することができるので、目的タンパク質を
変性（可溶化）させる必要がない。よって、本発明によれば、目的タンパク質を効率的に
、高い回収率で得ることができる。
したがって、本発明は有用タンパク質や、機能や構造の解析対象となるタンパク質など
のタンパク質の製造方法として極めて有用である。
【発明を実施するための最良の形態】
【０００９】
本発明は、分泌シグナルペプチドをコードするポリヌクレオチドと、塩基性アミノ酸に
富むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドと、目的タンパク質をコードするポリヌ
クレオチドとを含有するポリヌクレオチドを用いてタンパク質を発現させることを特徴と
する前記目的タンパク質の製造方法、前記製造方法に使用することができる発現ベクター
などを提供する。本発明の製造方法によれば、分泌シグナルペプチドおよび塩基性アミノ
酸に富むポリペプチドと融合された状態で目的タンパク質を発現させることにより、目的
タンパク質が正常に折り畳まれずに封入体などを形成することを防止して、目的タンパク
質を可溶化された状態で、正常に折り畳まれた本来の機能を有するタンパク質として製造
することができる。
以下、本発明の目的タンパク質の製造方法などについて詳細に説明する。
【００１０】
１．目的タンパク質の製造方法
本発明は、（１）分泌シグナルペプチドをコードするポリヌクレオチドと、（２）塩基
性アミノ酸に富むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドと、（３）目的タンパク質
をコードするポリヌクレオチドとを、この順に含有するポリヌクレオチドを用いてタンパ
ク質を発現させることを特徴とする目的タンパク質の製造方法を提供する。以下、より詳
細に説明する。
（１）分泌シグナルペプチド
分泌シグナルペプチドとは、当該分泌シグナルペプチドに結合されたタンパク質または
ポリペプチドを、細胞膜透過させる役割を担うペプチド領域を意味する。このような分泌
シグナルペプチドのアミノ酸配列およびそれをコードする核酸配列は、当技術分野におい
て周知であり、報告されている（例えばvon Heijine G (1988) Biochim. Biohys. Acra 9
47: 307-333、von Heijine G (1990) J. Membr. Biol. 115: 195-201など参照。
分泌シグナルペプチドは、通常１０〜５０個程度のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列
を有し、そのアミノ酸残基の多く（通常５５〜６０％程度）は疎水性である。本発明で用
いられる分泌シグナルペプチドとしては、好ましくは原核生物由来、より好ましくはグラ
ム陰性菌由来、さらに好ましくは通性嫌気性桿菌由来、特に好ましくは大腸菌属、緑膿菌
属、サルモネラ菌属またはコレラ菌属の細菌由来の分泌シグナルペプチドが好ましい。ま
た、分泌シグナルペプチドとしては、例えばvon Heijine G & Abrahmsen, L. (1989) FEB
S Lett. 244:439-446.  Tjalsma, H. et al. (2000) Microbiol.Mol Rev. 515-547などに
記載されてるものなども挙げられ、とりわけ大腸菌の外膜タンパク質Ａ由来の分泌シグナ
ルペプチド（ＯｍｐＡ）（Ghrayeb, J. et al. (1984) EMBO J. 3:2437-2442）、コレラ
菌由来コレラトキシン由来の分泌シグナルペプチドなどが好ましい。
本発明で用いられる分泌シグナルペプチドは、当該分泌シグナルペプチドに結合された
タンパク質またはポリペプチドを細胞膜透過させる活性を有していればよいので、変異体
であってもよい。変異体としては、分泌シグナルペプチドのアミノ酸配列において、1も
しくは複数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入および／または付加したアミノ酸配列からな
り、かつ当該分泌シグナルペプチドに結合されたタンパク質またはポリペプチドを、細胞
膜透過させる活性を有するペプチドなどが挙げられる。このようなペプチドとしては、分
泌シグナルペプチドのアミノ酸配列において、例えば、１〜10個、１〜9個、１〜8個、１
〜7個、１〜6個（1〜数個）、１〜5個、１〜4個、１〜3個、１〜2個、１個のアミノ酸残
基が欠失、置換、挿入および／または付加されたアミノ酸配列からなり、かつ当該ペプチ
ドに結合されたタンパク質またはポリペプチドを細胞膜透過させる活性を有するペプチド
が挙げられる。上記アミノ酸残基の欠失、置換、挿入および／または付加の数は、一般的
には小さい程好ましい。欠失、置換、挿入及び付加のうち2種以上が同時に生じてもよい
。また、このようなタンパク質としては、目的タンパク質のアミノ酸配列と80％以上、85
％以上、90％以上、93％以上、95％以上、97％以上、98％以上、99％以上、99.5％以上99
.8％以上99.9％以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、かつ当該ペプチドに結合され
たタンパク質またはポリペプチドを細胞膜透過させる活性を有するペプチドが挙げられる
。上記相同性の数値は一般的に大きい程好ましい。
分泌シグナルペプチドは、一般的には、膜透過に伴ってシグナルペプチダーゼによって
切断される切断部位を有する。本発明で用いられる分泌シグナルペプチドとしては、シグ
ナルペプチダーゼによる切断部位を有しなくてもよいが、切断部位を有するのが好ましい
。切断部位としては、目的タンパク質の発現に用いられる宿主（例えば、大腸菌など）の
分泌シグナルペプチダーゼによって切断されうるものが好ましく用いられる。
【００１１】
（２）塩基性アミノ酸に富むポリペプチド
本発明で用いられる塩基性アミノ酸に富むポリペプチドとしては、塩基性アミノ酸を含
み、目的タンパク質のＮ末端側に融合させて発現させた場合に目的タンパク質の溶解性を
増大しうるものであればよい。塩基性アミノ酸に富むポリペプチドとしては、例えば、等
電点が生理的ｐＨよりアルカリ側にあるポリペプチド、ポリペプチドを構成する全アミノ
酸残基に対する塩基性アミノ酸残基の数の割合（含有率）が３０％以上であるポリペプチ
ドなどが挙げられる。塩基性アミノ酸残基の含有率は、６０％以上であるのが好ましく、
さらに８０％以上であるのが好ましく、特に１００％であるのが好ましい。
本発明で用いられる塩基性アミノ酸に富むポリペプチドに含まれるアミノ酸残基数とし
ては、３〜２０残基であるのが好ましく、さらに５〜１２残基であるのが好ましく、特に
５〜８残基であるのが好ましく、とりわけ６残基であるのが好ましい。
塩基性アミノ酸とは、塩基性側鎖を有するアミノ酸を意味する。塩基性アミノ酸として
は、例えば、ヒスチジン、アルギニン、リジンなどが挙げられる。本発明で用いられる塩
基性アミノ酸としては、ヒスチジン、アルギニン、リジンが好ましく、特にヒスチジンが
好ましい。
塩基性アミノ酸に富むポリペプチドに含まれる塩基性アミノ酸残基に対するヒスチジン
残基の数の割合（含有率）としては、６０％以上であるのが好ましく、さらに８０％以上
であるのが好ましく、特に１００％であるのが好ましい。
本発明で用いられる塩基性アミノ酸に富むポリペプチドとしては、なかでもポリヒスチ
ジンが好ましい。ポリヒスチジンに含まれるヒスチジン残基数としては、５〜１２残基で
あるのが好ましく、さらに５〜８残基であるのが好ましく、特に６残基（ヒスチジンヘキ
サマー）であるのが好ましい。
【００１２】
（３）目的タンパク質
本発明の製造方法における目的タンパク質には特に制限はない。例えば、組換えタンパ
ク質発現系で発現させた場合に封入体を形成しやすいタンパク質も可溶性タンパク質とし
て製造しうるので、好ましく用いることができる。また、目的タンパク質は、アポタンパ
ク質、すなわちホロタンパク質のタンパク質部分であってもよい。アポタンパク質として
は、例えば、アポＲＬＢＰ（FEBS Lett. 268, 287-290 (1990)など参照）、アポイクオリ
ン（Proc. Natl. Acad. Sci. USA 82, 3154-3158 (1985)など参照 ）、アポクライチィン
（FEBS Lett. 315, 343-346 (1993)など参照）、アポマイトロコミン（FEBS Lett. 333, 
301-305 (1993)など参照）、アポオベリン（Gene 153,273-274 (1995)など参照）などが
挙げられる。アポＲＬＢＰのアミノ酸配列を配列番号：１に示す。
また、Ｂ型肝炎ウィルス、Ｃ型肝炎ウィルス、ＨＩＶ、インフルエンザなどの病原性ウ
ィルスゲノムにコードされる、外被タンパク質、コアタンパク質、プロテアーゼ、逆転写
酵素、インテグラーゼなどのタンパク質（ウィルス抗原）；抗体のＦａｂ、（Ｆａｂ）2
；血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ）、幹細胞成長因子（ＳＣＦ）、肝細胞成長因子（ＨＧ
Ｆ）、トランスフォーミング成長因子（ＴＧＦ）、神経成長因子（ＮＧＦ）、上皮細胞増
殖因子（ＥＧＦ)、線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ）、インスリン様成長因子（ＩＧＦ）な
どの増殖因子；腫瘍壊死因子、インターフェロン、インターロイキンなどのサイトカイン
類；エリスロポエチン、顆粒球コロニー刺激因子、顆粒球マクロファージコロニー刺激因
子、マクロファージコロニー刺激因子、トロンボポエチンなどの造血因子；黄体形成ホル
モン放出ホルモン（ＬＨ−ＲＨ）、甲状腺刺激ホルモン放出ホルモン（ＴＲＨ）、インス
リン、ソマトスタチン、成長ホルモン、プロラクチン、副腎皮質刺激ホルモン（ＡＣＴＨ
）、メラノサイト刺激ホルモン（ＭＳＨ）、甲状腺刺激ホルモン（ＴＳＨ）、黄体形成ホ
ルモン（ＬＨ）、卵胞刺激ホルモン（ＦＳＨ）、バソプレシン、オキシトシン、カルシト
ニン、副甲状腺ホルモン（ＰＴＨ）、グルカゴン、ガストリン、セクレチン、パンクレオ
ザイミン、コレシストキニン、アンジオテンシン、ヒト胎盤ラクトーゲン、ヒト絨毛性ゴ
ナドトロピン（ＨＣＧ）、セルレイン、モチリンなどのペプチドホルモン；エンケファリ
ン、エンドルフィン、ディノルフィン、キョウトルフィンなどの鎮痛性ペプチド；スーパ
ーオキシドディスミュターゼ（ＳＯＤ）、ウロキナーゼ、ティシュープラスミノーゲンア
クティベーター（ＴＰＡ）、アスパラギナーゼ、カリクレインなどの酵素；ボムベシン、
ニュウロテンシン、ブラジキニン、サブスタンスＰなどのペプチド性神経伝達物質；アル
ブミン；コラーゲン；プロインスリン；レニン；α１アンチトリプシンなども挙げられる
が、これらに限定されない。
【００１３】
本発明の目的タンパク質には、上記タンパク質の変異体も含まれる。そのような変異体
としては、例えば、上記タンパク質のアミノ酸配列において、１もしくは複数個のアミノ
酸が欠失、置換、挿入および／または付加したアミノ酸配列からなり、かつ目的タンパク
質と同質の活性を有するタンパク質も含まれる。このようなタンパク質としては、上記タ
ンパク質のアミノ酸配列において、例えば、１〜100個、１〜90個、１〜80個、１〜70個
、１〜60個、１〜50個、１〜40個、１〜30個、１〜20個、１〜10個、１〜9個、１〜8個、
１〜7個、１〜6個（1〜数個）、１〜5個、１〜4個、１〜3個、１〜2個、１個のアミノ酸
残基が欠失、置換、挿入および／または付加されたアミノ酸配列からなり、かつ目的タン
パク質と同質の活性を有するタンパク質が挙げられる。上記アミノ酸残基の欠失、置換、
挿入および／または付加の数は、一般的には小さい程好ましい。欠失、置換、挿入及び付
加のうち2種以上が同時に生じてもよい。本明細書において、アポＲＬＢＰとは、配列番
号：１で表されるアミノ酸配列を有するタンパク質のみならず、その変異体をも意味する
。
【００１４】
本発明の目的タンパク質には、目的タンパク質の「部分ペプチド」も含まれる。タンパ
ク質の部分ペプチドとしては、目的タンパク質のアミノ酸配列の一部の連続するアミノ酸
配列からなる部分ペプチドが挙げられ、目的タンパク質の活性と同質の活性を有するもの
が好ましい。例えば、目的タンパク質のアミノ酸配列において、少なくとも２０個、好ま
しくは少なくとも５０個のアミノ酸残基からなるアミノ酸配列を有するポリペプチドなど
が挙げられる。好ましくは、これらのポリペプチドは、目的タンパク質の活性に関与する
部分に対応するアミノ酸配列を含有する。また、本発明で使用される部分ペプチドは、上
記のポリペプチドにおいて、そのアミノ酸配列中の１または複数個（例えば、１〜２０個
程度、より好ましくは１〜１０個程度、さらにより好ましくは１〜５個程度）のアミノ酸
残基が欠失、付加、置換、または挿入により変更されているものでもよい。
本発明で用いられる部分ペプチドは抗体作成のための抗原としても用いることができる
。
【００１５】
（４）本発明で用いられるポリヌクレオチド
本発明で用いられるポリヌクレオチドとしては、前述した分泌シグナルペプチド、塩基
性アミノ酸に富むポリペプチドまたは目的タンパク質をコードする塩基配列を含有するも
のであればいかなるものであってもよいが、好ましくはＤＮＡである。ＤＮＡとしては、
ゲノムＤＮＡ、ゲノムＤＮＡライブラリー、細胞・組織由来のｃＤＮＡ、細胞・組織由来
のｃＤＮＡライブラリー、合成ＤＮＡなどが挙げられる。本発明の目的タンパク質をコー
ドするポリヌクレオチドの例として、アポＲＬＢＰをコードする合成ＤＮＡの塩基配列を
配列番号：２に示す。
ライブラリーに使用するベクターは、特に制限はなく、バクテリオファージ、プラスミ
ド、コスミド、ファージミドなどいずれであってもよい。また、前記した細胞・組織から
totalＲＮＡまたはｍＲＮＡ画分を調製したものを用いて直接 Reverse Transcription Po
lymerase Chain Reaction（以下、RT-PCR法と略称する）によって増幅することもできる
。
本発明で用いられる分泌シグナルペプチドをコードするポリヌクレオチドと、塩基性ア
ミノ酸に富むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドと、目的タンパク質をコードす
るポリヌクレオチドとを含有するポリヌクレオチド（ＤＮＡ）は、目的タンパク質をコー
ドするポリヌクレオチドと、分泌シグナルペプチドをコードするポリヌクレオチドまたは
塩基性アミノ酸に富むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドとの間に、さらに切断
可能なペプチドリンカーをコードするポリヌクレオチドを有していてもよい。切断可能な
ペプチドリンカーとは、酵素的または化学的切断物質により切断することができるペプチ
ド配列を意味する。酵素（プロテアーゼ）または化学物質により切断されるペプチド配列
は多数知られている（例えば、Harlow and Lane, Antibodies：A Laboratory Manual, Co
ld Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY (1988)；Walsh, Protein
s Biochemistry and Biotechnology, John Wiley & Sons, LTD., West Sussex, England 
(2002)など参照）。切断物質とは、ポリペプチドにおける切断部位を認識し、ポリペプチ
ド内の結合の切断によりポリペプチドを２つのポリペプチドに分割する化学物質または酵
素である。切断物質としては、例えば、化学物質、プロテアーゼなどが挙げられる。
【００１６】
（５）目的タンパク質の製造
本発明の目的タンパク質は、具体的には、例えば分泌シグナルペプチドをコードするポ
リヌクレオチドと、塩基性アミノ酸に富むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドと
、目的タンパク質をコードするポリヌクレオチドとを、この順に含有するポリヌクレオチ
ド（ＤＮＡ）（以下、目的タンパク質の製造の説明においては、「本発明で用いられるポ
リヌクレオチド」と称することがある。）を連結（導入）した発現ベクターを用いて目的
タンパク質を発現させ、生成した目的タンパク質を分離・精製することによって製造する
ことができる。発現ベクターを用いた目的タンパク質の発現は、宿主細胞内、無細胞翻訳
系などのタンパク質発現系で行うことができる。目的タンパク質の発現は、前記した発現
ベクターの導入によって形質転換された宿主細胞（形質転換体）内で行うのが好ましい。
前記形質転換体を、導入された発現ベクターに連結（導入）された本発明で用いられるポ
リヌクレオチド（ＤＮＡ）が発現可能な条件下で培養し、目的タンパク質を精製・蓄積さ
せ、分離・精製することによって製造することができる。宿主細胞としては、グラム陰性
菌が好ましく、特に大腸菌が好ましく用いられる。グラム陰性菌を宿主細胞として用いた
場合には、発現された目的タンパク質は、好ましくは、分泌シグナルペプチドによって細
胞内膜を透過し、ペリプラズムスペースまたは外膜を通過し培養上清中に分泌される。こ
こで、本発明の目的タンパク質は、異種タンパク質であってもよい。異種タンパク質とは
、宿主細胞などのタンパク質発現系において、天然には産生されないタンパク質を意味す
る。
以下、本発明の目的タンパク質の製造方法について、さらに詳細に説明する。
【００１７】
（発現ベクターの作成）
本発明で用いられる発現ベクターは、本発明で用いられるポリヌクレオチドを含有する
。  本発明の組換えベクターは、適当なベクターに本発明で用いられるポリヌクレオチド
（ＤＮＡ）を連結(挿入)することにより得ることができる。より具体的には、精製された
本発明で用いられるポリヌクレオチド（ＤＮＡ）を適当な制限酵素で切断し、適当なベク
ターの制限酵素サイトまたはマルチクローニングサイトに挿入して、ベクターに連結する
ことにより得ることができる。本発明で用いられるポリヌクレオチドを挿入するためのベ
クターは、宿主中で複製可能なものであれば特に限定されず、例えば、プラスミド、バク
テリオファージなどが挙げられる。プラスミドとしては、例えば、大腸菌由来のプラスミ
ド（例えばpUC8, pUC118, pUC119, pBR322, pBR325等）などがあげられる。バクテリオフ
ァージとしては、例えば、λファージなどがあげられる。
【００１８】
本発明のポリヌクレオチドは、通常、適当なベクター中のプロモーターの下流に、発現
可能なように連結される。用いられるプロモーターとしては、宿主中で発現可能なものが
好ましい。より具体的には、例えば、形質転換する際の宿主が大腸菌属の細菌である場合
は、ｌｐｐプロモーター、Ｔｒｐプロモーター、Ｔ７プロモーター、ｌａｃプロモーター
、ｒｅｃＡプロモーター、λＰＬプロモーターなどが好ましい。
本発明の組換えベクターには、以上の他に、所望によりリボソーム結合配列（SD配列）
、選択マーカーなどを含有しているものを用いることができる。選択マーカーとしては、
例えば、ジヒドロ葉酸還元酵素遺伝子、アンピシリン耐性遺伝子、ネオマイシン耐性遺伝
子などがあげられる。
【００１９】
（形質転換体の作成）
本発明で用いられる形質転換体には、本発明で用いられるポリヌクレオチド（ＤＮＡ）
が発現可能なように、本発明で用いられる発現ベクターが導入されている。上述したよう
にして得られた本発明で用いられるポリヌクレオチド（ＤＮＡ）を含有する発現ベクター
を、適当な宿主中に導入することによって、形質転換体を作成することができる。宿主と
しては、本発明で用いられるポリヌクレオチド（ＤＮＡ）を発現できるものであれば特に
限定されるものではなく、例えば、グラム陰性菌が挙げられる。グラム陰性菌としては、
例えば、通性嫌気性桿菌などが挙げられる。通性嫌気性桿菌としては、例えば、大腸菌属
、緑膿菌属またはサルモネラ菌属の細菌などがあげられる。大腸菌属の細菌としては、例
えば、大腸菌などがあげられる。緑膿菌属の細菌としては、例えば、緑膿菌などがあげら
れる。サルモネラ菌属の細菌としては、例えば、サルモネラ菌などがあげられる。宿主と
しては、なかでも、グラム陰性菌が好ましく、通性嫌気性桿菌がより好ましく、さらに大
腸菌属の細菌が好ましく、特に大腸菌が好ましい。
【００２０】
発現ベクターの宿主への導入方法およびこれによる形質転換方法は、一般的な各種方法
によって行うことができる。発現ベクターの宿主細胞への導入方法としては、例えば、リ
ン酸カルシウム法（Virology, 52, 456-457 (1973)）、エレクトロポレーション法（EMBO
J., 1, 841-845 (1982)）などがあげられる。大腸菌属の細菌の形質転換方法としては、
例えば、Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 69, 2110 (1972)、Gene, 17, 107 (1982)などに
記載の方法などがあげられる。緑膿菌属の細菌の形質転換方法としては、例えば、エレク
トロポレーション法などがあげられる。サルモネラ菌属の細菌の形質転換方法としては、
例えば、エレクトロポレーション法などがあげられる。
このようにして、本発明で用いられるポリヌクレオチド（ＤＮＡ）を含有する発現ベク
ターで形質転換された形質転換体を得ることができる。
（形質転換体の培養）
本発明で用いられる形質転換体の培養は、宿主の培養に用いられる通常の方法に従って
行うことができる。該培養によって、形質転換体によって目的タンパク質が生成され、ペ
リプラズムスペースまたは培養液中などに目的タンパク質が蓄積される。
【００２１】
宿主が大腸菌属、緑膿菌属またはサルモネラ菌属の細菌である形質転換体を培養する培
地としては、該形質転換体の生育に必要な炭素源、窒素源、無機塩類等を含有し、形質転
換体の培養を効率的に行うことができる培地であれば、天然培地、合成培地のいずれを用
いてもよい。炭素源としては、グルコース、フラクトース、スクロース、デンプンなどの
炭水化物、酢酸、プロピオン酸などの有機酸、エタノール、プロパノール等のアルコール
類が用いられる。窒素源としては、アンモニア、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、
酢酸アンモニウム、リン酸アンモニウムなどの無機酸もしくは有機酸のアンモニウム塩ま
たはその他の含窒素化合物のほか、ペプトン、肉エキス、コーンスティープリカーなどが
用いられる。無機塩類としては、リン酸第一カリウム、リン酸第二カリウム、リン酸マグ
ネシウム、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、硫酸第一鉄、硫酸マンガン、硫酸銅、炭
酸カルシウムなどが用いられる。培養中は必要に応じてアンピシリンやテトラサイクリン
等の抗生物質を培地に添加してもよい。プロモーターとして誘導性のプロモーターを用い
た発現ベクターで形質転換した形質転換体を培養する場合は、必要に応じてインデューサ
ーを培地に添加してもよい。例えば、Lacプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換
した形質転換体を培養するときにはイソプロピル-β-D-チオガラクトピラノシド(IPTG)な
どを、trpプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した形質転換体を培養するとき
にはインドールアクリル酸(IAA)などを培地に添加してもよい。
【００２２】
宿主が大腸菌属、緑膿菌属またはサルモネラ菌属の細菌の場合、培養は通常約１５〜４
３℃で約３〜２４時間行い、必要により、通気や撹拌を加える。
【００２３】
（目的タンパク質の分離・精製）
上記培養物から、目的タンパク質を分離・精製することによって、本発明の目的タンパ
ク質を得ることができる。ここで、培養物とは、培養液、培養菌体もしくは培養細胞、ま
たは培養菌体もしくは培養細胞の破砕物のいずれをも意味する。目的タンパク質の分離・
精製は、通常の方法に従って行うことができる。
【００２４】
具体的には、目的タンパク質がペリプラズムスペース中に蓄積される場合には、培養終
了後、通常の方法（例えば浸透圧ショック法など）により目的タンパク質を含む抽出液を
得ることができる。目的タンパク質が培養液中に蓄積される場合には、培養終了後、通常
の方法（例えば、遠心分離、ろ過など）により菌体もしくは細胞と培養上清とを分離する
ことにより、本発明のタンパク質を含む培養上清を得ることができる。目的タンパク質が
培養菌体内もしくは培養細胞内に蓄積される場合には、培養後、通常の方法（例えば、超
音波、リゾチーム、凍結融解など）で菌体もしくは細胞を破砕した後、通常の方法（例え
ば、遠心分離、ろ過など）により目的タンパク質の抽出液を得ることができる。
【００２５】
このようにして得られた抽出液もしくは培養上清中に含まれる目的タンパク質の精製は
、通常の分離・精製方法に従って行うことができる。分離・精製方法としては、例えば、
硫酸アンモニウム沈殿、ゲルろ過クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、
アフィニティークロマトグラフィー、逆相高速液体クロマトグラフィー、透析法、限外ろ
過法などを単独で、または適宜組み合わせて用いることができる。
【００２６】
目的タンパク質がアポタンパク質である場合には、通常の方法、例えば、得られたアポ
タンパク質と非タンパク質成分とを接触させることにより、ホロタンパク質を製造するこ
とができる。例えば、上記のようにして得られたアポタンパク質がセレンテラジンを結合
するルシフェリン結合タンパク質のアポタンパク質（例えば、アポＲＬＢＰ、アポイクオ
リン、アポクライチィンなど）である場合には、該アポタンパク質をセレンテラジンまた
はその誘導体（例えば、h-セレンテラジン、e-セレンテラジン、Bis-セレンテラジンなど
）と接触させることにより、該ルシフェリン結合タンパク質のホロタンパク質（例えば、
ＲＬＢＰ、アポＲＬＢＰ、アポイクオリンなど）を得ることができる。より具体的には、
ＲＬＢＰは、Charbonneau, H. and Cormier, M. J. Ca2+ -induced bioluminescence in 
Renilla reniformis. Purification and characterization of a calcium-triggered luc
iferin-binding protein. (1979) J.Biol.Chem. 254, 769-780などに記載の製造方法に従
って製造することができる。イクオリンは、例えば、Shimomura, O. and Inouye, S. (19
99) The in situ regeneration and extraction of recombinant aequorin from Escheri
chia coli cells and the purification of extracted aequorin. Protein Expression a
nd Purification. 16: 91-95などに記載の製造方法に従って調製することができる。
セレンテラジンおよびセレンテラジン誘導体は溶液中では不安定であるが、本発明の製
造方法によって得られるルシフェリン結合タンパク質のホロタンパク質中に結合した状態
では安定である。したがって、本発明の製造方法によって得られるアポＲＬＢＰなどのル
シフェリン結合タンパク質のアポタンパク質は、セレンテラジンおよびその誘導体などの
ルシフェリンを安定に保存するために好適に使用することができる。
本明細書において、ルシフェリン結合タンパク質のホロタンパク質とは、ルシフェリン
結合タンパク質のアポタンパク質とルシフェリン（例えば、セレンテラジンなど）とから
なるものを含み、さらにルシフェリン結合タンパク質のアポタンパク質とルシフェリン誘
導体（例えば、ｈ−セレンテラジン、ｅ−セレンテラジン、Ｂｉｓ−セレンテラジンなど
のセレンテラジン誘導体など）とからなるものも含む。ＲＬＢＰとは、アポＲＬＢＰとセ
レンテラジンとからなるものを含み、さらにアポＲＬＢＰとセレンテラジン誘導体とから
なるものも含む。
【００２７】
２．本発明の発現ベクター
さらに、本発明は、（ａ）分泌シグナルペプチドをコードする第１コード領域、（ｂ）
塩基性アミノ酸に富むポリペプチドをコードする第２コード領域、および（ｃ）目的タン
パク質をコードする第３コード領域を挿入することができる少なくとも１つの制限酵素サ
イトを含有することを特徴とする発現ベクターも提供する。本発明の発現ベクターは、（
ｃ）目的タンパク質をコードする第３コード領域を挿入することができる少なくとも１つ
の制限酵素サイトに、上述の目的タンパク質をコードするポリヌクレオチドを連結（挿入
）することにより、上述の目的タンパク質の製造に好適に使用することができる。
（ａ）分泌シグナルペプチドをコードする第１コード領域にコードされるシグナルペプ
チドとしては、上述の目的タンパク質の製造方法に記載されているものと同様のものが挙
げられる。
（ｂ）塩基性アミノ酸に富むポリペプチドをコードする第２コード領域にコードされる
塩基性アミノ酸に富むポリペプチドとしては、上述の目的タンパク質の製造方法に記載さ
れているものと同様のものが挙げられる。
（ｃ）目的タンパク質をコードする第３コード領域を挿入することができる少なくとも
１つの制限酵素サイトは、目的タンパク質をコードする第３コード領域を挿入することが
できる制限酵素認識部位を有するポリヌクレオチドを含有するものである。前記制限酵素
サイトとしては、目的タンパク質をコードする第３コード領域を挿入することができれば
よく、特に制限はないが、いわゆるマルチクローニングサイトであるのが好ましい。マル
チクローニングサイトなどの制限酵素サイトは、当技術分野において周知であり、報告さ
れている（例えば、Yanisch-Perron, C., Vieira, J. and Messing, J. Gene 33 (1985) 
103-119、Improved M13 phage cloning vectors and host strains: Nucleotide sequenc
es of the M13mp18 and pUC19 vectors. Gene 33 (1985) 103-119など参照）。
目的タンパク質としては、上述の目的タンパク質の製造方法に記載されているものと同
様のものが挙げられる。
【００２８】
本発明の発現ベクターは、宿主中で複製可能なものであれば特に限定されず、例えば、
プラスミド、バクテリオファージなどが挙げられる。プラスミドとしては、例えば、大腸
菌由来のプラスミド（例えばpUC8, pUC118, pUC119, pBR322, pBR325等）などがあげられ
る。バクテリオファージとしては、例えば、λファージなどがあげられる。上述の目的タ
ンパク質の製造で用いられる宿主としてグラム陰性菌が好ましく、通性嫌気性桿菌がより
好ましく、さらに大腸菌属、緑膿菌属またはサルモネラ菌属の細菌が好ましく、特に大腸
菌属の細菌であるのが好ましいので、本発明の発現ベクターとしては、これらの細菌中で
複製可能なものが好ましく、さらに大腸菌属の細菌中で複製可能なものが好ましく、特に
大腸菌由来のプラスミドが好ましい。
【００２９】
本発明の発現ベクターにおいては、通常、前記第１コード領域は、プロモーターに有効
に連結している。用いられるプロモーターとしては、宿主が大腸菌属の細菌である場合は
、ｌｐｐプロモーター、Ｔｒｐプロモーター、Ｔ７プロモーター、ｌａｃプロモーター、
ｒｅｃＡプロモーター、λＰＬプロモーターなどが好ましい。上述の目的タンパク質の製
造で用いられる宿主として、グラム陰性菌が好ましく、通性嫌気性桿菌がより好ましく、
さらに大腸菌属、細菌が好ましく、特に大腸菌であるのが好ましいので、用いられるプロ
モーターとしては、これらの細菌中で発現可能なものが好ましく、さらに大腸菌属の細菌
中で発現可能なものが好ましく、特に大腸菌中で発現可能なものが好ましい。より具体的
には、ｌｐｐプロモーター、Ｔｒｐプロモーター、Ｔ７プロモーター、ｌａｃプロモータ
ー、ｒｅｃＡプロモーター、λＰＬプロモーターなどが好ましい。
【００３０】
前記第１コード領域、前記第２コード領域および前記制限酵素サイトは、同じ読み枠内
にあるように配置される。前記第２コード領域は、前記第１コード領域の下流にあるのが
好ましい。前記制限酵素サイトは、前記第２コード領域の下流にあるのが好ましい。
本発明の発現ベクターとしては、前記制限酵素サイトに、目的タンパク質をコードする
ポリヌクレオチドを含有する第３コード領域が組み込まれているものも好ましい。
また、前記タンパク質をコードする第３コード領域を挿入することができる少なくとも
１つの制限酵素サイトと、前記第１コード領域または前記第２コード領域との間に、さら
に切断可能なペプチドリンカーをコードする領域を有していてもよい。切断可能なペプチ
ドリンカーとは、上述の目的タンパク質の製造方法に記載されているものと同様の意味を
表す。プロテアーゼまたは化学物質で処理して切断可能なペプチドリンカーの切断部位を
切断することにより、第３コード領域にコードされる目的タンパク質を切り離すことがで
きる。
【００３１】
発明を実施するための最良の形態及び実施例に特に説明がない場合には、J. Sambrook,
E. F. Fritsch & T. Maniatis (Ed.), Molecular cloning, a laboratory manual (3rd 
edition), Cold Spring Harbor Press, Cold Spring Harbor, New York (2001); F. M. A
usubel, R. Brent, R. E. Kingston, D. D. Moore, J.G. Seidman, J. A. Smith, K. Str
uhl (Ed.), Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons Ltd.などの
標準的なプロトコール集に記載の方法、あるいはそれを修飾したり、改変した方法を用い
る。また、市販の試薬キットや測定装置を用いる場合には、特に説明が無い場合、それら
に添付のプロトコールを用いる。
なお、本発明の目的、特徴、利点、及びそのアイデアは、本明細書の記載により、当業
者には明らかであり、本明細書の記載から、当業者であれば、容易に本発明を実施できる
。発明を実施するための最良の形態及び具体的な実施例などは、本発明の好ましい実施態
様を示すものであり、例示又は説明のために示されているのであって、本発明をそれらに
限定するものではない。本明細書で開示されている本発明の意図ならびに範囲内で、本明
細書の記載に基づき、様々に修飾ができることは、当業者にとって明らかである。
【実施例】
【００３２】
以下に実施例により本発明を説明するが、実施例は本発明を制限するものではない。
［材料と方法］
まず、本実施例で用いた材料と方法について説明する。
（１）材料
セレンテラジンおよびセレンテラジン誘導体は市販品を用いた。セレンテラジン（チッ
ソ株式会社製）、h-セレンテラジン（チッソ株式会社製）、e-セレンテラジン（和光純薬
工業社製）、Bis-セレンテラジン（チッソ株式会社製）。
Renilla reniformisの組換えRenillaルシフェラーゼは文献記載の方法に従って調製し
た（Biochem. Biophys. Res. Commun. 233, 249-353 (1997)参照）。以下の材料は市販の
ものを用いた：キレート・セファロース・ファーストフロー、セファデックスG25（スー
パーファイングレード）（アマシャム・バイオサイエンス）；イミダゾール、ジチオスレ
イトール（DTT）、エチレンジアミン四酢酸（EDTA）、硫酸ニッケル六水塩（和光純薬工
業）。
（２）質量分析
マトリックス支援レーザーイオン化飛行時間型質量分析（MALDI-TOF-MS）をオートFLEX
（ブルーカー・ダルトニクス）上で、マトリックスとしてシナピン酸（アルドリッチ−シ
グマ）を用いて、Anal. Biochem. 316, 216-222 (2003)に記載の方法に従って測定した。
データはポジティブリフレクターモードで得た。時間−質量変換をアポミオグロビン（ウ
マ、m/z = 16952.6）を標準に用いた外部較正により行った。分子量の計算値をプログラ
ムExPASy PeptideMass（http://www.expasy.ch/cgi-bin/peptide-mass.pl）を用いて得た
。
（３）  タンパク質濃度をブラッドフォードの色素結合法（Anal. Biochem. 72, 248-254
(1976)）により、市販のキット（バイオラド）および標準物質としてウシ血清アルブミ
ン（ピアス）を用いて測定した。SDS-PAGE分析を還元条件下で、12％分離ゲル（テフコ）
を用いて、Laemmli法（Nature 227, 680-658 (1970)）に従って行った。
【００３３】
参考例１
（アポイクオリン発現ベクターｐｉＰ−ＨＥの構築）
ＯｍｐＡをコードする配列を有し、塩基性アミノ酸に富むポリペプチドをコードする配
列を有さないアポイクオリン発現ベクターｐｉＰ−ＨＥは、Proc. Natl. Acad. Sci. USA
82, 3154-3158 (1985)、J. Biochem. 105, 473-477 (1989)、特開昭６３−１０２６９５
号公報などに記載の方法に従って構築した。具体的には、以下のようにして構築した。
（１）ｐｉＱ８−ＨＥの作成
高コピーのクローニングベクターｐＵＣ８のEcoRI-HindIII部分を、それぞれの制限酵
素で消化後、その部分に特開昭６１−１３５５８６号公報に記載の方法に従って得たcDNA
クローンｐＡＱ４４０より得られたイクオリンcDNAのEcoRI-HindIIIフラグメントを、サ
ブクローニングを行うことによりｐｉＱ８−ＨＥを作成した。
（２）ｐｉＰ−ＨＥの作成
ｐｉＱ８−ＨＥをScaI-HindIIIで消化後、その部分にpIN-III 113 ompA-1から切り出し
たリポプロテインのプロモーター（lpp）、lacオペレーターおよびompA遺伝子を含むScaI
-HindIIIフラグメントを挿入し、ｐｉＰ−ＨＥを作成した。
【００３４】
参考例２
（アポイクオリン発現ベクターｐｉＰ−Ｈｉｓ６−ＨＥの構築）
ＯｍｐＡおよびヒスチジンヘキサマーをコードする配列を有するアポイクオリン発現ベ
クターｐｉＰ−Ｈｉｓ−ＨＥは、以下のようにして構築した。
参考例１記載の方法に従って得られたアポイクオリン分泌発現ベクターｐｉＰ−ＨＥよ
り、カルボキシ末端側のEcoRIをKlenow fragmentでfill-inすることにより削除したpiP-H
EΔ2Eを使用し、piP-HEΔ2EのHindIII-EcoRI サイトに、６個のヒスチジンからなる配列
をコードするオリゴヌクレオチド(Eco-His6-Hind Linker: 5' AAT-TCC-CAC-CAT-CAC-CA-T
-CAC-CAT-GGT 3'（配列番号：３）、および  Eco-His6-Hind Linker: 5'-AG-CTT-ACC-ATG
-GTG-ATG-GTG-GG 3'（配列番号：４）を挿入してｐｉＰ−Ｈｉｓ６−ＨＥを作製した。
【００３５】
参考例３
（アポＲＬＢＰをコードする遺伝子の設計および化学合成）
アポＲＬＢＰのcDNAは未だ単離されていないので、ＰＣＲ手順を用いたオリゴヌクレオ
チドアセンブリ法によってアポＲＬＢＰをコードする遺伝子を化学合成した。
アポＲＬＢＰ（１８４アミノ酸残基）をコードする遺伝子は、ＤＮＡＳＩＳソフトウェ
アＶｅｒ．３．７（日立ソフトウェアエンジニアリング）を用いてデザインした。この際
、大腸菌で好ましいコドンを用いず、アポＲＬＢＰの５５２ヌクレオチドの配列中に１１
の制限酵素部位を導入した。２０ヌクレオチドが重複するオリゴヌクレオチド（40 mer×
28、35 mer×1）をミリポアＤＮＡシンセサイザー（モデルＥｘｐｅｄｉｔｅ）を用いた
ホスホアミデート法により50 nmolスケールで合成し、ゲル精製法により精製し、真空乾
燥した。遺伝子アセンブリーを以下のようなＰＣＲ法（Gene 164, 49-53 (1995)）を用い
て行った；乾燥したオリゴを蒸留水に約3.3 μg/μlの濃度（250 mM）で再懸濁し、内部
オリゴの溶液各1 μlを合わせ、混合液（0.4 μl）を各0.25 mMのｄＮＴＰ、５単位のＥ
ｘＴａｑポリメラーゼ（宝酒造）および4 μlの１０×ＥｘＴａｑ緩衝液（緩衝液組成は
製品添付書には示されていない）を含有する40 μlのＰＣＲ反応混合液に添加した。ＰＣ
Ｒプログラムとして、９４℃−３０秒、５０℃−３０秒、７２℃−６０秒を５５サイクル
行った（パーキン・エルマー）。アセンブリー反応混合液（2.5 μl）を、両者外側のプ
ライマーセット（3.3 μg）；HindIII部位を下線で示した15NL  5' GGCAAGCTT-CCA-GAA-G
TT-ACT-GCC-AGC-GAA-CGT-GCT-TAC-C 3'（配列番号：５）とBam HI部位を下線で示した33R
L  5' GCCGGATCC-TTA-TAA-TAA-ATC-ACC-ATA-AAA-TGC-ATT-AGC-C 3'（配列番号：６）によ
る増幅に用いた（９４℃−３０秒、５０℃−３０秒、７２℃−６０秒を３０サイクル）。
１．２％アガロースゲル上の増幅断片（約５５０塩基対）を6 M NaIを用いて溶出し、Ｐ
ＣＲ精製キット（キアゲン）を用いて精製した。分離した断片をHindIIIとBamHIで消化し
、HindIII-BamHI断片を得た。得られた合成アポＲＬＢＰ遺伝子のHindIII-BamHI断片は、
１８４アミノ酸残基に対応し、５１２ヌクレオチド中に１１個の制限酵素認識部位を有し
ていた（図１）。このようにして得たHindIII-BamHI断片をpUC9-2（Gene 30, 247-250 (1
984)）のHindIII/BamHI部位に連結し、ｐ９２−ＲＬＢＰを得た。ＤＮＡ配列をアプライ
ドシステムズＤＮＡシーケンサー（モデル３７７および３１０）を用いて決定した。
【００３６】
参考例４
（ＯｍｐＡを有し、塩基性アミノ酸に富むポリペプチドを有さない組換えアポＲＬＢＰの
大腸菌での発現）
（１）ｐｉＰ−ＲＬＢＰの構築
参考例１で得られたｐｉＰ−ＨＥ中のアポイクオリンcDNAのHindIII-BamHI断片を、参
考例３で得られたｐ９２−ＲＬＢＰのHindIII-BamHI断片と置換することによって、Ｏｍ
ｐＡのシグナルペプチドを有するアポＲＬＢＰの発現プラスミドｐｉＰ−ＲＬＢＰを構築
した（図２）。用いた宿主は大腸菌BL21株（アマシャム・バイオサイエンス）であった。
（２）組換えアポＲＬＢＰの大腸菌での発現
上記（１）で得られた発現プラスミドｐｉＰ−ＲＬＢＰを有する細菌株の種培養をアン
ピシリン（50 μg/ml）を含む5 mlのルリア−ベルターニ培地で、30℃で16時間行い、500
mlの坂口フラスコ中の80 mlのLB培地に添加した。16時間、37℃の培養の後、細胞を5000
g、5分間の遠心により回収し、20 mlの50 mM Tris-HCl (pH7.6)に懸濁し、氷中でブラブ
ソン・モデル250  ソニファイヤーを用いた超音波破砕を行った。SDS-PAGE分析の結果、
ヒスチジンを持たないアポＲＬＢＰの発現が確認された。しかしながら、発現されたアポ
ＲＬＢＰは、菌体中に封入体として存在していた（図３Ａ、レーン４）。
【００３７】
実施例１
（ＯｍｐＡおよびヒスチジンヘキサマーを有する組換えアポＲＬＢＰの大腸菌での発現）
（１）ｐｉＰ−Ｈｉｓ−ＲＬＢＰの構築
参考例２で得られたｐｉＰ−Ｈｉｓ６−ＨＥのアポイクオリンcDNAのHindIII-BamHI断
片を、参考例３で得られたｐ９２−ＲＬＢＰのHindIII-BamHI断片と置換することによっ
て、ＯｍｐＡのシグナルペプチドおよびヒスチジンヘキサマーを有するアポＲＬＢＰの発
現プラスミドｐｉＰ−Ｈｉｓ−ＲＬＢＰを構築した（図２Ａ）。用いた宿主は大腸菌BL21
株（アマシャム・バイオサイエンス）であった。
（２）組換えアポＲＬＢＰの大腸菌での発現および精製
上記（１）で得られた発現プラスミドｐｉＰ−Ｈｉｓ−ＲＬＢＰを有する細菌株の種培
養をアンピシリン（50 μg/ml）を含む5 mlのルリア−ベルターニ培地で、30℃で16時間
行い、500 mlの坂口フラスコの80 mlのLB培地に添加した。16時間、37℃の培養の後、細
胞を5000g、5分間の遠心により回収し、20 mlの50 mM Tris-HCl (pH7.6)に懸濁し、氷中
でブラブソン・モデル250  ソニファイヤーを用いた超音波破砕を行った。
SDS-PAGE分析の結果piP-His-RLBP発現ベクターを用いて可溶性タンパク質として発現さ
れていることを確認した（図３Ａ、レーン３）。次に、培養細胞の超音波破砕物を12000g
、10分間遠心して得られた上清（20 ml）を50 mM Tris-HCl (pH7.6)で平衡化したニッケ
ル−キレートカラム（1.5×4 cm）にアプライした。カラムを50 mlの50 mM Tris-HCl (pH
7.6)で洗浄し、吸着したタンパク質を0.05 M、0.1 M、0.3 M、0.5 M、および1 Mのイミダ
ゾールを含む50 mM Tris-HCl (pH7.6)を各20 mlのステップワイズにより溶出した。ヒス
チジンタグのついたアポＲＬＢＰの画分を0.1-0.3 M濃度のイミダゾールで溶出し、SDS-P
AGEで解析した。アポＲＬＢＰ画分を合わせ、4 Lの50 mM重炭酸アンモニウム（pH8.3）に
透析し、-80℃で保存した。精製アポＲＬＢＰの収量は80 mlの培養した細胞から18.2 mg
であった。
熱処理および還元条件下でのSDS-PAGE分析により、精製アポＲＬＢＰは95％以上の純度
で、分子量24 kDaを示した（図３Ｂ、レーン２）。この結果は、大腸菌細胞におけるアポ
ＲＬＢＰの発現量が細菌細胞から抽出される全タンパク質の10％以上であることを示唆し
ている。これは、本発明の製造方法が、大量の目的タンパク質を、可溶性タンパク質とし
て製造できることを示している。
精製アポＲＬＢＰにおいて、OmpAシグナルペプチドが正確に切断されていること及びヒ
スチジンヘキサマーを有するアポＲＬＢＰを確認するために、MALDI-TOF-MSを用いて質量
分析を行った。[M+H]+に対するm/z 21931.7および[M+2H]2＋に対するm/z 10965.9の質量
値が観察された。これらの値はOmpAシグナルペプチドをもたないヒスチジンヘキサマーを
有するアポＲＬＢＰに対する計算平均質量21932.9によく一致していた。この結果は、ヒ
スチジンヘキサマーを有するアポＲＬＢＰのＯｍｐＡシグナルペプチドが、大腸菌細胞中
で細胞質からペリプラズム部分への移行中に正しく切断されたことを示している。
【００３８】
実施例２
（アポＲＬＢＰからのＲＬＢＰの調製）
実施例１で得られた精製アポＲＬＢＰ（1 mg = 46 nmol）を10 mM EDTAおよび0.66 mM 
DTTを含む30 mM Tris-HCl (pH7.6)  5 mlに溶解し、アポＲＬＢＰからＲＬＢＰへの変換
をセレンテラジン（20 μg = 47 nmol）を添加することにより開始した。16時間、4℃で
静置した後、混合液を遠心フィルター（アミコン・ウルトラ、分子量カット：10000）を
用いて、4℃で、0.5 mlまで濃縮し、黄緑色の溶液を得た。結合していないセレンテラジ
ンを除去するために、この溶液を10 mM EDTAを含む30 mM Tris-HCl (pH7.6)で平衡化した
セファデックスG-25カラム（1×6 cm）にかけ、同緩衝液で溶出した。画分（0.5 ml）を1
分あたり0.5 mlの流速で回収し、280 nmと446 nmの吸収でモニターした。ＲＬＢＰの主画
分を0.5 mlから1.0 mlで溶出した。タンパク質の回収率は80％であった。得られた精製Ｒ
ＬＢＰの、熱処理および還元条件下でのSDS-PAGE分析の結果を図３Ｂのレーン３に示す。
精製ＲＬＢＰの純度は、天然のＲＬＢＰの吸収スペクトルのデータ（J. Biol. Chem. 254
, 769-780 (1979)）と比較することにより、95％以上であると推測された。
この結果は、実施例１で得られたアポＲＬＢＰが、天然のＲＬＢＰと同様に、セレンテ
ラジンと結合してホロタンパク質であるＲＬＢＰを形成することを示している。これによ
り、実施例１で得られた組換えアポＲＬＢＰが、本来の機能を有していることが確認され
た。
【００３９】
実施例３
（組換えＲＬＢＰのスペクトル分析）
精製した組換えＲＬＢＰの吸収スペクトルを2 mM EDTAまたは10 mM CaCl2を含む20 mM 
Tris-HCl (pH7.6)中で、ジャスコ（東京）V-560  分光光度計（バンドパス  0.5 nm；応
答  Quick；スキャン速度  100 nm/分）、25℃で、石英キュベット（10 mm光路）を用い
て測定した。カルシウムイオンの存在下および非存在下での組換えＲＬＢＰの吸収スペク
トルを図４に示す。組換えＲＬＢＰは、475 nmに肩のある、277 nmと446 nmに二つの特徴
的な最大吸収を有し、これは天然のＲＬＢＰのスペクトルとほとんど一致している（J. B
iol. Chem. 254, 769-780 (1979)）。277 nmと446 nmにおける組換えＲＬＢＰの吸光係数
（ε）はそれぞれ、24900（E0.1% = 1.13）および9300（E0.1% = 0.42）であった。組換
えＲＬＢＰの277 nm/446 nmの吸収比は2.68であり、天然のＲＬＢＰの277 nm/446 nm比の
2.7から2.8（J. Biol. Chem. 254, 769-780 (1979)）に近い。10 mMのカルシウムイオン
存在下で、組換えＲＬＢＰの277 nmと446 nmのピークは265 nmと434 nmにシフトし、天然
のRLBPに類似した特性を示した（J. Biol. Chem. 254, 769-780 (1979)）。10 mM EDTAを
含む同一の緩衝液中のセレンテラジンの420 nm（ε= 9300）の吸収ピークは、10 mMのカ
ルシウムイオン存在下で432 nm（ε= 10000）にシフトした。この吸収ピークは、10 mMの
カルシウムイオン存在下での組換えＲＬＢＰの434 nmに近かった。
また、蛍光スペクトルをジャスコ  FP-6500 W  蛍光分光光度計（発光および励起バン
ドパス  5 nm；応答  0.5秒；スキャン速度  100 nm/分）を用いて測定した。446 nmで励
起したＲＬＢＰの蛍光スペクトルは、1/2のバンド幅  86 nmで、530 nmにおいて発光ピー
クを示し、発光ピークの強度はカルシウムイオンの添加により、4倍に増加した。
これらのスペクトル変化のデータは、組換えＲＬＢＰは天然のＲＬＢＰと同様な高次構
造をとっていることを示し、正常に折り畳まれていることをも示唆している。
吸収スペクトルの変化がないことから判断すると、組換えＲＬＢＰの溶液は、4℃およ
び-80℃で6ヶ月以上安定であった。このことは、一般にセレンテラジンの中性付近の水溶
液を4℃で保存した場合、半減期は約３日であるが、組換えＲＬＢＰを使用することより
安定に保存可能であることも示している。
【００４０】
実施例４
（ＲＬＢＰとRenillaルシフェラーゼによる発光反応）
50 mM Tris-HCl (pH7.6)、10 mM CaCl2および実施例３で得られた組換えＲＬＢＰ5 μg
を含む反応混合液（100 μl）に、Renillaルシフェラーゼ（0.08 μg）を添加し、発光活
性を光電子倍増管（R4220P、浜松ホトニクス）を装備したルミノメーター（AB2200、アト
ー社製（東京））を用いて測定したところ、連続的な発光が観察された（図５）。これは
、カルシウムイオンがＲＬＢＰに結合することよって、ＲＬＢＰ分子内に内包していたセ
レンテラジンが放出され、放出されたセレンテラジンがRenillaルシフェラーゼの基質と
なり触媒作用によって酸化されたた結果、発光したことを示している。この結果は、実施
例２で得られたＲＬＢＰ（実施例１で得られたアポＲＬＢＰとセレンテラジンが結合した
もの）が、カルシウムイオンによってセレンテラジンを放出することを示している。これ
により、実施例１で得られた組換えアポＲＬＢＰおよび実施例３で得られた組換えＲＬＢ
Ｐが、本来の機能を有していることが確認された。
【００４１】
実施例５
（アポＲＬＢＰとセレンテラジン誘導体からのＲＬＢＰの調製）
実施例２で記載したアポＲＬＢＰとセレンテラジンによるＲＬＢＰの調製法と同様にし
て、セレンテラジン誘導体を用いて新規ＲＬＢＰを調製した。セレンテラジン誘導体とし
て、h-セレンレたジン、e-セレンテラジン、Bis-セレンテラジンを用いて、対応するＲＬ
ＢＰ、すなわちｈ−ＲＬＢＰ、ｅ−ＲＬＢＰ、Ｂｉｓ−ＲＬＢＰを得た。アポＲＬＢＰ、
セレンテラジンおよび上記のようにして得られたＲＬＢＰの、カルシウムイオン（Ｃａ2+
）非存在下および存在下における吸収スペクトルデータを表１に示した。吸収スペクトル
は、2 mM EDTAまたは10 mM CaCl2を含む50 mM Tris-HCl (pH7.6)中で、実施例３と同様に
して測定した。得られたＲＬＢＰを4℃および-80℃で6ヶ月以上保存しても、これらの吸
収スペクトルには、ほとんど変化が認められなかった。この結果は、組換えＲＬＢＰの溶
液は、4℃および-80℃で6ヶ月以上安定であることを示している。すなわち、セレンテラ
ジンと同様に、セレンテラジン誘導体も溶液中では不安定であるが、アポＲＬＢＰを使用
することより安定に保存可能であることが示された。
【表１】
0005637180.tif 000002
【００４２】
実施例６
（アミノ末端にヒスチジン配列を持つ分泌タンパク質を発現するための新規基本ベクター
、ｐｉＰ−Ｈ６−Ｍ（１１）、の構築）
目的タンパク質を可溶性タンパク質として発現させるための基本ベクター、ｐｉＰ−Ｈ
６−Ｍ（１１）、は以下の手順で構築した。出発となるベクターｐｉＰ−Ｈｉｓ６−ＨＥ
は、参考例２に記載の方法に従って作製した。さらに、ｐｉＰ−Ｈｉｓ６−ＨＥベクター
のHindIII-BamHI サイトに、マルチクローニングサイト（NcoI/  HindIII/  NdeI/  SacI
/  KpnI/  XhoI/  BamHI/  EcoRI/  SalI/  PstI/  XbaI）をもつリンカーを挿入し、ｐ
ｉＰ−Ｈ６−Ｍ（１１）を構築した。基本ベクターｐｉＰ−Ｈ６−Ｍ（１１）は、大腸菌
のリポプロテインのプロモーター、ラクトースのオペレーターに制御され、分泌のための
OmpA配列、６個のヒスチジンからなる配列、マルチクローニングサイト（EcoRI/  NcoI/ 
HindIII/  NdeI/  SacI/  KpnI/  XhoI/  BamHI/  EcoRI/SalI/  PstI/  XbaI/  BamHI
）を有する（図６）。
【産業上の利用可能性】
【００４３】
本発明の目的タンパク質の製造によれば、目的タンパク質を可溶性タンパク質として製
造することができるので、目的タンパク質を変性（可溶化）させる必要がない。よって、
本発明によれば、目的タンパク質を効率的に、高い回収率で得ることができる。したがっ
て、本発明は有用タンパク質や、機能や構造の解析対象となるタンパク質などのタンパク
質の製造方法として極めて有用である。
また、本発明の発現ベクターは、目的タンパク質をコードする遺伝子を制限酵素サイト
に挿入して発現させることによって、目的タンパク質を可溶性タンパク質として製造する
ことができるので、有用タンパク質など所望のタンパク質の製造に好適に用いることがで
きる。
【図面の簡単な説明】
【００４４】
【図１】図１は、参考例３で得られた合成アポＲＬＢＰ遺伝子の塩基配列および制限酵素認識部位、並びにアポＲＬＢＰのアミノ酸配列を示す。（Ａ）制限酵素地図を示す。斜線部分はＥＦハンドモチーフのループ領域を示す。（Ｂ）合成アポＲＬＢＰ遺伝子の塩基配列を示す。四角で囲まれた部分はＥＦハンドモチーフのループ領域を示す。
【図２】図２は、実施例１で得られたＯｍｐＡのシグナルペプチドおよびヒスチジンヘキサマーを有するアポＲＬＢＰの発現ベクターｐｉＰ−Ｈｉｓ−ＲＬＢＰおよび参考例４で得られたＯｍｐＡのシグナルペプチドを有するアポＲＬＢＰの発現ベクターｐｉＰ−ＲＬＢＰを示す。（Ａ）ｐｉＰ−Ｈｉｓ−ＲＬＢＰの制限酵素地図を示す。（Ｂ）ｐｉＰ−Ｈｉｓ−ＲＬＢＰおよびｐｉＰ−ＲＬＢＰのアミノ末端のアミノ酸配列、およびシグナルペプチド配列の切断部位を示す。
【図３】図３は、実施例１で得られた組換えアポＲＬＢＰ、実施例２で得られた組換えＲＬＢＰおよび参考例４で得られた組換えアポＲＬＢＰのＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析の結果を示す。各レーンの試料は次の通りである。（Ａ）レーン１：タンパク質分子量マーカー（テフコ社）：β−ガラクトシダーゼ（116,000）、ホスホリパーゼＢ（97,400）、ウシ血清アルブミン（69,000）、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ（55,000）、乳酸デヒドロゲナーゼ（36,500）、炭酸脱水素酵素（29,000）、トリプシンインヒビター（20,100）；レーン２：実施例１における培養細胞ｐｉＰ−Ｈｉｓ−ＲＬＢＰ／ＢＬ２１（40μl）の超音波破砕物を遠心して得られた沈殿；レーン３：実施例１における培養細胞ｐｉＰ−Ｈｉｓ−ＲＬＢＰ／ＢＬ２１（40μl）の超音波破砕物を遠心して得られた上清；レーン４：参考例４における培養細胞ｐｉＰ−ＲＬＢＰ／ＢＬ２１（40μl）の超音波破砕物を遠心して得られた沈殿；レーン５：参考例４における培養細胞ｐｉＰ−ＲＬＢＰ／ＢＬ２１（40μl）の超音波破砕物を遠心して得られた上清。（Ｂ）レーン１：タンパク質分子量マーカー；レーン２：実施例１で得られたヒスチジンヘキサマーが結合した精製アポＲＬＢＰ（2.2μg）；レーン３：実施例２で得られたヒスチジンヘキサマーが結合した精製ＲＬＢＰ（3.5μg）。
【図４】図４は、実施例３におけるカルシウムイオンの非存在下および存在下での組換えＲＬＢＰの吸収スペクトルを示す。実線および破線は、それぞれカルシウムイオン非存在下および存在下の吸収スペクトルを示す。タンパク質濃度は0.45 mg/mlであった。
【図５】図５は、実施例４における、実施例３で得られた組換えＲＬＢＰとRenillaルシフェラーゼによる発光反応を示す。挿入図は、矢印で示した部分を拡大したものを示す。
【図６】図６は、実施例６で得られた発現ベクターｐｉＰ−Ｈ６−Ｍ（１１）を示す。
【配列表フリーテキスト】
【００４５】
［配列番号：１］アポＲＬＢＰのアミノ酸配列を示す。
［配列番号：２］アポＲＬＢＰをコードする合成ＤＮＡの塩基配列を示す。
［配列番号：３］参考例２および実施例６で用いられた６個のヒスチジンからなる配列を
コードするオリゴヌクレオチドの塩基配列を示す。
［配列番号：４］参考例２および実施例６で用いられた６個のヒスチジンからなる配列を
コードするオリゴヌクレオチドの塩基配列を示す。
［配列番号：５］参考例３で用いられたプライマーの塩基配列を示す。
［配列番号：６］参考例３で用いられたプライマーの塩基配列を示す。
【図１】
0005637180.tif 000003
【図２】
0005637180.tif 000004
【図３】
0005637180.tif 000005
【図４】
0005637180.tif 000006
【図５】
0005637180.tif 000007
【図６】
0005637180.tif 000008
【配列表】
0005637180000001.app