(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
リガンドが結合されたＬ４−ＰＨＡ（Ｐｈｙｔｏｈｅｍａｇｇｌｕｔｉｎｉｎ−Ｌ４）とリガンド受容体が付着されたグリカンビードを反応させてＬ４−ＰＨＡ−グリカンビード複合体を製造し、
試料に含まれたタンパク質を還元させて塩を除去し、
前記の製造されたＬ４−ＰＨＡ−グリカンビード複合体に前記還元及び塩除去段階を経た試料を加えて反応させて洗浄し、
前記反応から得られた糖タンパク質−Ｌ４−ＰＨＡ−グリカンビード複合体をＳＤＳゲル電気泳動で最小に展開し、
展開されたゲルの中のタンパク質が含まれた部分を切断し、
前記の切断された部分にタンパク質分解酵素を加えてゲル内部で切断（ｉｎ−ｇｅｌ  ｄｉｇｅｓｔｉｎｇ）し、
ゲル内部で切断されたタンパク質を質量分析することを含む糖タンパク質の分析方法。
【請求項２】
前記グリカンビードは、アガロースビード及びセファロースビードからなる群から選択されることを特徴とする、請求項１に記載の糖タンパク質の分析方法。
【請求項３】
前記リガンド及び前記リガンド受容体は、ビオチン及びアビジンであることを特徴とする、請求項１に記載の糖タンパク質の分析方法。
【請求項４】
前記還元は、ベータ−メルカプトエタノール、ヨード酢酸及びヨードアセトアミドからなる群から選択された少なくとも１つによって実施されることを特徴とする、請求項１に記載の糖タンパク質の分析方法。
【請求項５】
リガンドが結合されたＬ４−ＰＨＡ（Ｐｈｙｔｏｈｅｍａｇｇｌｕｔｉｎｉｎ−Ｌ４）とリガンド受容体が付着されたグリカンビードを反応させてＬ４−ＰＨＡ−グリカンビード複合体を製造し、
分析対象試料と対照区に含まれたタンパク質を還元させて塩を除去し、
前記の製造されたＬ４−ＰＨＡ−グリカンビード複合体に前記還元及び塩除去段階を経た分析対象試料と対照区をそれぞれ加えて反応させて洗浄し、
前記反応から得られた糖タンパク質−Ｌ４−ＰＨＡ−グリカンビード複合体をＳＤＳゲル電気泳動で最小に展開し、
展開されたゲル中のタンパク質が含まれた部分を切断し、
前記の切断された部分にタンパク質分解酵素を加えてゲル内部で切断（ｉｎ−ｇｅｌ  ｄｉｇｅｓｔｉｎｇ）し、
ゲル内部で切断されたタンパク質を質量分析及び比較することを含む、β１，６−Ｎ−アセチルグルコサミンのグリカン構造に差を示す糖タンパク質を探知する方法。
【請求項６】
リガンドが結合されたＬ４−ＰＨＡ（Ｐｈｙｔｏｈｅｍａｇｇｌｕｔｉｎｉｎ−Ｌ４）とリガンド受容体が付着されたグリカンビードを反応させてＬ４−ＰＨＡ−グリカンビード複合体を製造し、
正常血清と試験用血清にそれぞれ含まれたタンパク質を還元させて塩を除去し、
前記の製造されたＬ４−ＰＨＡ−グリカンビード複合体に前記還元及び塩除去段階を経た正常血清と試験用血清をそれぞれ加えて反応させて洗浄し、
前記反応から得られた糖タンパク質−Ｌ４−ＰＨＡ−グリカンビード複合体をＳＤＳゲル電気泳動で最小に展開し、
展開されたゲル中のタンパク質が含まれた部分を切断し、
前記の切断された部分にタンパク質分解酵素を加えてゲル内部で切断（ｉｎ−ｇｅｌ  ｄｉｇｅｓｔｉｎｇ）し、
ゲル内部で切断されたタンパク質を質量分析及び比較することを含む、β１，６−Ｎ−アセチルグルコサミンのグリカン構造に差を示す糖タンパク質を探知する方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、腫瘍発生及び癌転移過程でグリコシル化の変化を示す糖タンパク質を検出する方法であって、より詳細には、癌の発生及び進行の間に修飾されるＮ−連結型糖タンパク質の質量分析方法に基づく同定に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
２次元電気泳動は、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ（Ｍａｔｒｉｘ  Ａｓｓｉｓｔｅｄ  Ｌａｓｅｒ  Ｄｅｓｏｒｐｔｉｏｎ／Ｉｏｎｉｚａｔｉｏｎ  Ｔｉｍｅ−ｏｆ−Ｆｌｉｇｈｔ）質量分析機及びアミノ酸配列分析機などの非常に複雑な分析機器と連係すれば、容易にかつ高い処理率でタンパク質を確認して特徴付けることができ、このような発展は、「ポストゲノム、プロテオミクス時代」を可能にした。しかし、プロテオミクス的接近は、生物学的力動性を示すより、プロテオームの停止状態を示すという限界があった。実際に、細胞内の信号伝達経路は、一般的にタンパク質の発現水準及び翻訳後修飾（ｐｏｓｔ−ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎａｌ  ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎ）面で力動性を示す。
さらに、タンパク質が細胞内に少量しか存在していないので、信号伝達経路上のタンパク質を２次元ゲル上にディスプレイしてモニタすることはしばしば難しい。タンパク質のグリコシル化は、このような限界を克服し、細胞を力動性に基づいて観察することを可能にする。特定レクチンでグリコシル化の変化を追跡すれば、単純染色では識別不可能なタンパク質水準の変化が容易にモニタされる。
最近、このような「グリコミクス」と呼ばれる方法は、伝統的なプロテオミクスの限界を克服し、有望な分野として注目されている。グリコミクスは、主に翻訳後修飾の主要な種類であるタンパク質のグリコシル化での変化を追跡することに基づいている。
生物学的撹乱のうち一つがタンパク質の異常グリコシル化（ａｂｅｒｒａｎｔ  ｇｌｙｃｏｓｙｌａｔｉｏｎ）であって、これは、特定の腫瘍遺伝子の信号によって誘導された後、細胞接着、細胞−細胞認識で機能障害を引き起こし、結果として、癌発生及び腫瘍悪化を引き起こす（Ｈａｋｏｍｏｒｉ  ａｎｄ  Ｋａｎｎａｇｉ，１９８３，Ｊ．Ｎａｔｌ．Ｃａｎｃｅｒ  Ｉｎｓｔ．，７１：２３１−２５１；Ｆｅｉｚｉ，１９８５，Ｎａｔｕｒｅ，３１４：５３−５７１）。成熟されたｍＲＮＡは、小胞体上で翻訳され、小胞体でＮ−連結型グリコシル化の基本的な糖鎖部分が作られる。その後、糖タンパク質は、ゴルジ体に移動し、図１に示すような糖転移酵素によって追加的な糖鎖が付着される。各糖転移酵素は、ｒａｓ、ｒａｆなどの特定の腫瘍遺伝子によって発現される信号によって活性化される。注目される糖転移酵素のうち一つがＦＵＴ８であるが、これは、Ｎ−糖鎖の基本Ｎ−アセチルグルコサミン（ＧｌｃＮＡｃ）にフコースを付加することを触媒する。アルファ−フェトプロテイン（アルファ−ｆｅｔｏｐｒｏｔｅｉｎ；ＡＦＰ）とアンチトリプシン（ａｎｔｉｔｒｙｐｓｉｎ）は、腫瘍悪性化でフコシル化の重要性を実証するものとして広く知られている（Ｍｉｙｏｓｈｉ，Ｅ．，Ｋｏ，Ｊ．Ｈ．ｅｔ  ａｌ．（１９９９）Ｂｉｏｃｈｉｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ  １４７３：９−２０）。フコシル化を担当するＦＵＴ８は、日本の谷口（Ｎ．Ｔａｎｉｇｕｃｈｉ）研究チームによって精製され、そのｃＤＮＡがクローン化された。また、ｆｕｔ８−細胞感染されたＨｅｐ３Ｂ（Ｈｅｐ３Ｂ−ＦＴ）を免疫欠乏マウス（ａｔｈｙｍｉｃ  ｎｕｄｅ  ｍｉｃｅ）の脾臓に注射したとき、母体細胞に比べて肝での腫瘍発生が著しく抑制された（Ｍｉｙｏｓｈｉ，Ｅ．，Ｋｏ，Ｊ．Ｈ．ｅｔ  ａｌ．（１９９９）Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  ５９：２２３７−２２４３）。レンズマメレクチン（ＬＣＡ）は、Ｎ−糖鎖の最も内側のＧｌｃＮＡｃに付着されたフコースに結合され、ＣｏｎＡのように基本Ｎ−糖鎖にも結合される。
Ｎ−アセチルグルコサミン転移酵素Ｖ（ＧｎＴ−Ｖ）によって誘導される異常グリコシル化は、腫瘍の侵潤と転移に関与するタンパク質修飾の代表的な例である（Ｄｅｎｎｉｓ ｅｔ  ａｌ．１９８７，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２３６：５８２−５８５３)。小胞体上で基本糖鎖の付着後に付加される糖鎖は、主に６種類のＮ−アセチルグルコサミン転移酵素 （Ｉ−VI）によってゴルジ体で付加される。これらのうち、ＧｎＴ−Ｖは、標的糖タンパク質を修飾し、腫瘍細胞の認識及び細胞付着特性を変化させることによって、腫瘍細胞の転移能力に関与するものと知られている。
ＧｎＴ−Ｖは、ベータ１，６側鎖が腫瘍組織の成長又は転移時に著しく発生するというデニスなど（１９８７）の報告で初めて知られた（Ｄｅｎｎｉｓ  ｅｔ  ａｌ．１９８７，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２３６：５８２−５８５３)。細胞表面タンパク質ｇｐ１３０は、ＧｎＴ−Ｖの一つの又は主要な標的タンパク質であって、ベータ１，６−Ｎ−アセチルグルコサミンを加えたときに高い腫瘍転移活性を示す。胚性幹細胞株においてＧｎＴ−Ｖが欠損したＧｎｔ−Ｖノックアウトマウスを構築し、癌を誘発させるために、ポリオーマウイルスの中型Ｔ抗原（以下、「ＰｙＭＴ」と称する）ウィルス性腫瘍遺伝子を導入した。結果として、ＰｙＭＴによって誘導された腫瘍の成長及び転移は、ＰｙＭＴのみが過剰発現された他の正常マウスグループと比べたとき、ＧｎＴ−Ｖノックアウトマウスでは著しく抑制され（Ｇｒａｎｏｖｓｋｙ  ｅｔ  ａｌ．２０００，Ｎａｔｕｒｅ  Ｍｅｄ．，６：３０６−３１２)、乳房癌マウスでのベータ１，６側鎖の成長は、特に高い転移の原因となった。上述したように、ＧｎＴ−Ｖは、多様な組織で腫瘍転移に関与し、高い腫瘍転移活性を示す。ＧｎＴ−Ｖは、ヒトの肺腫瘍細胞及びマウスの腎臓で精製され、ｃＤＮＡがクローン化され、プロモータ及び遺伝子構造が明らかになった（Ｇｕ  ｅｔ  ａｌ．１９９３，Ｊ  Ｂｉｏｃｈｅｍ，１１３：６１４−６１９；Ｓｏｒｅｉｂａｈ  ｅｔ  ａｌ．，１９９３，Ｊ  Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２６８：１５３８１−１５３８５；Ｋａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２７１：２６７０６−２６７１２)。本発明者は、転写酵素ｅｔｓ−１がＧｎＴ−Ｖの発現に関与すると報告した（Ｋｏ，ｅｔ  ａｌ．１９９９，Ｊ  Ｂｉｏｌ．ｃｈｅｍ．，２７４（３３）：２２９４１−２２９４８)。薬剤を基本にする腫瘍治療の限界は、腫瘍に対する医学研究分野で治療可能な段階の早期発見へとパラダイムの変化を引き起こし、異常グリコシル化は、腫瘍早期発見マーカーとしての利用可能性が試験されている。
これによって、本発明者らは、ＧｎＴ−Ｖが過剰発現される腫瘍細胞から２次元電気泳動及び質量分析を用いてＧｎＴ−Ｖによってベータ１，６−ＧｌｃＮＡｃを有する候補タンパク質の目録を報告した（Ｋｉｍ  ｅｔ  ａｌ．，２００４，Ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ，４（１１）：３３５３−３３５８；Ｋｉｍ  ｅｔ  ａｌ．，２００６，Ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ，６（４）:１１８７−１１９１）。しかし、従来のゲルに基づいた分析方法によれば、少量のタンパク質を同定するにおいて、本質的に偽陽性（ｆａｌｓｅ−ｐｏｓｉｔｉｖｅ）が起こる確率が高い。これを克服するために、本発明者らは、同定のためにＬ−ＰＨＡレクチンを用いてベータ１，６−ＧｌｃＮＡｃを有する糖タンパク質を濃縮することによって本発明を完成した。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００３】
本発明の目的は、発癌及び腫瘍転移に関与する異常糖タンパク質と呼ばれる変化した糖構造を獲得した糖タンパク質を高精度で同定する方法を提供することである。
本発明の他の目的は、発癌及び腫瘍転移に関与する異常糖タンパク質をより簡単な方法で探知して同定することである。
【課題を解決するための手段】
【０００４】
前記目的を達成するために、本発明者らは、ベータ１，６−Ｎ−アセチルグルコサミン部分を有するＮ−連結型糖タンパク質を認識するレクチンであるＬ−ＰＨＡを用いて調査することによって、ベータ１，６−Ｎ−アセチルグルコサミンを有する異常糖タンパク質を探知する方法を開発した。
【発明の効果】
【０００５】
本発明は、腫瘍発生及び転移に関与するベータ１，６−Ｎ−アセチルグルコサミンを有する異常糖タンパク質をレクチン沈殿で濃縮する方法を提供することによって、少量のタンパク質も探知することができる。そして、本発明は、全ての腫瘍に適用することができ、尿及び血液を含む生体材料に適用することができる。
本発明は、レクチン沈殿法を用いて癌の発生及び転移に関与する異常グリコシル化を探知する分析方法を提供し、腫瘍診断マーカー候補として異常糖タンパク質の目録を提供する
【図面の簡単な説明】
【０００６】
【図１】多様な糖転移酵素によって形成されるＮ−連結型糖鎖連結構造及びＬ−ＰＨＡが結合されるベータ１，６−Ｎ−アセチルグルコサミン部位を示す図である。
【図２】実施例１に記載された方法の概略図である。
【図３】実施例１の方法によって同定されたタンパク質を示すもので、非糖タンパク質が多く、陽性対照群ＴＩＭＰ−1が探知されていないことを示す図である。
【図４】実施例２に記載された方法の概略図である。
【図５】実施例２の方法によって同定されたタンパク質を示すもので、低いスコア値の糖タンパク質が比較的多く、ＴＩＭＰ−１が依然として探知されていないことを示す図である。
【図６】実施例３に記載された方法の概略図である。
【図７】実施例３の方法によって同定されたタンパク質を示すもので、ＴＩＭＰ−1を含む多くの糖タンパク質が高いスコア値で現れたことを示す図である。
【図８】実施例３の方法と従来のレクチンブロット分析で共通的に確認されるタンパク質を示す図である。
【図９】実施例３の方法で確認され、従来のレクチンブロット分析では確認されていないタンパク質を示す図である。
【図１０】実施例２及び実施例３の結果を比較したもので、質量分析ピークが３４.３６分の滞留時間で実施例３の方法のみによって探知されることを示す図である。
【図１１】多重反応モニタリング（ＭＲＭ）の結果として、ＴＩＭＰ−１ペプチドが実施例３のみで探知されることを示す図である。
【発明を実施するための形態】
【０００７】
本発明は、癌の発生及び転移に関与する異常グリコシル化を有する糖タンパク質をレクチン沈殿法で高精度で分析する方法に関するものである。
前記癌の種類は、大腸癌、胃癌、肺癌、肝癌、子宮癌、乳房癌及び膵臓癌からなる群から選択されるが、上述した癌のみに限定されることはなく、癌の全ての種類に拡大することができる。
本発明は、癌細胞からベータ１，６−Ｎ−アセチルグルコサミン部分を獲得したＮ−連結型糖タンパク質を同定する高精度な分析方法を提供する。ベータ１，６−Ｎ−アセチルグルコサミンの形成を触媒するＧｎＴ−Ｖは、多様な腫瘍組織で幅広く発現され、その病理現象に関与する。ベータ１，６−Ｎ−アセチルグルコサミンがフィトヘマグルチニン−Ｌ４(以下、「Ｌ４−ＰＨＡ」又は「Ｌ−ＰＨＡ」と略称する)によって認識されるので、ビオチン標識されたＬ−ＰＨＡは、アビジン−アガロースビードに非共有結合で結合される。この複合体は、タンパク質の調合液からベータ１，６−Ｎ−アセチルグルコサミンを有する糖タンパク質を濃縮するのに用いられる。
本発明の一側面は、タンパク質をトリプシン処理し、７−テスラのフーリエ変換イオン共鳴型質量分析機（Ｆｏｕｒｉｅｒ  Ｔｒａｎｓｆｏｒｍ  Ｉｏｎ  Ｃｙｃｌｏｔｒｏｎ  Ｒｅｓｏｎａｎｃｅ；ＦＴＩＣＲ）を用いたアミノ酸配列決定に適用し、ベータ１，６−Ｎ−アセチルグルコサミンを有する少量の糖タンパク質を同定する方法を提供する。
本発明は、リガンドが結合されたＬ４−ＰＨＡをリガンド受容体が付着されたグリカンビードに反応させ、Ｌ４−ＰＨＡ−グリカンビード複合体を形成する段階と、糖タンパク質を得るために、試料を前記Ｌ４−ＰＨＡ−グリカンビード複合体と反応させる段階と、前記糖タンパク質をゲル電気泳動で展開する段階と、前記糖タンパク質を含む結果物のゲルをペプチドにゲル内部で（ｉｎ−ｇｅｌ）切断する段階と、前記切断されたペプチドを質量分析機で分析する段階とを含む糖タンパク質の分析方法を提供する。
本発明の他の側面は、前記グリカンビードがアガロースビード及びセファロースビードで構成されたグループから選択される前記方法を提供する。
本発明の他の側面は、前記リガンド及びリガンド受容体がビオチン及びアビジンである前記方法を提供する。
本発明の他の側面は、前記試料が自然状態又は変性形態である前記方法を提供する。
本発明の他の側面は、前記変性形態がベータ−メルカプトエタノール、ヨード酢酸及びヨードアセトアミドからなるグループから選択された少なくとも一つによって生成される前記方法を提供する。
本発明の他の側面は、対照区及び実験区の培養細胞株を、リガンドが結合されたＬ４−ＰＨＡをリガンド受容体が付着されたグリカンビードに結合することによって形成されるＬ４−ＰＨＡ−グリカンビード複合体にそれぞれ加え、ベータ１，６−Ｎ−アセチルグルコサミンに対するグリカン構造において差を示す糖タンパク質を探索する方法を提供する。
本発明の他の側面は、正常な血液及び実験区の血液を、リガンドが結合されたＬ４−ＰＨＡをリガンド受容体が付着されたグリカンビードに結合することによって形成されるＬ４−ＰＨＡ−グリカンビード複合体にそれぞれ加え、ベータ１，６−Ｎ−アセチルグルコサミンに対するグリカン構造において差を示す糖タンパク質を探索する方法を提供する。
本発明の更に他の側面は、アルブミン、グロブリン及びトランスフェリンのような血液内に豊富に存在するタンパク質によって、最小化した阻害を有する従来に発見された腫瘍バイオマーカー候補を確定する同定方法を提供し、確認効率を最大化するためにＳＩＳＣＡＰＡ（Ｓｔａｂｌｅ  Ｉｓｏｔｏｐｅ  Ｓｔａｎｄａｒｄｓ  ａｎｄ  Ｃａｐｔｕｒｅ  ｂｙ  Ａｎｔｉ−ｐｅｐｔｉｄｅ  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ｐｅａｒｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ，２００４，Ｊ．ｒｏｔｅｏｍｅ  Ｒｅｓ．３，２３５−４４）方法と組み合わせることができる。
腫瘍の転移は、細胞認識及び接着の機能障害から発生し、数多くの膜タンパク質又は分泌タンパク質がこの過程に関与している。これは、バイオマーカーが存在する血液及び尿などの体液をバイオマーカー探知用試料として利用できることを示す。大腸癌−特異的バイオマーカーを探すために、本発明者らはグリコミクス研究を行い、ＧｎＴ−Ｖ遺伝子は、ＧｎＴ−Ｖ発現水準の低い大腸癌細胞株であるＷｉＤｒ内に安定的に浸透された。培養培地で得たタンパク質は、２次元電気泳動ゲル上で展開するが、これらは、クーマシーブリリアントブルー又はレクチンブロット分析で染色され、対照群及び浸透ＷｉＤｒ細胞間に異なるグリカン構造を示すタンパク質が選択された（表１参照)。しかし、レクチンブロット分析自体が非特異的結合又はゲル内の汚染タンパク質を含む可能性があるので、付加的な確認段階が必要である。さらに、２次元電気泳動ゲルは分解能に限界を有しており、結果として、少量のタンパク質は、ゲルに基づいたシステム下では確認が難しい。このような限界を克服するために、本発明者らは、ベータ１，６−Ｎ−アセチルグルコサミンが含まれた糖タンパク質を特定レクチンを用いて直接探知できる方法を発明した。
［表１−１］
0005544640.tif 000002
［表１−２］
0005544640.tif 000003
【０００８】
ａ；配列範囲は、質量分析機で確認されたペプチドの百分率を意味する。
ｂ；総値は、個別ペプチドから得られたスコア値の合計である。スコアは−１０ｘＬｏｇ（Ｐ）であって、Ｐは、観察された符合が偶然の事件である確率である。これは、ＭＳ／ＭＳデータとしてＭＡＳＣＯＴサーチプログラムを用いたＮＣＢＩｎｒデータベースに基づく。
ｃ；分子量Ｍｒ及び等電点ｐＩは、グリカン残基を計算に考慮していないときの理論値である。
Ｌ−ＰＨＡは、ベータ１，６−Ｎ−アセチルグルコサミンが含まれた糖タンパク質に非常に特異的に結合されるが、利用可能な溶出方法がないので、結合されたタンパク質を剥がすことが難しかった。この問題を解決するために、本発明者らは、Ｌ−ＰＨＡ−結合されたタンパク質をＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル上に最小に展開し、ゲルは、切断し、タンパク質同定のためにトリプシン処理した。
【０００９】
以下、本発明の多様な側面と具体例を下記の実施例を通してより具体的に説明する。
【実施例１】
【００１０】
レクチンを用いたベータ１，６−Ｎ−アセチルグルコサミンが含まれた糖タンパク質の濃縮
ＧｎＴ−Ｖ発現の低いＷｉＤｒ：ｍｏｃｋ細胞及びＧｎＴ−Ｖを浸透させたＷｉＤｒ：ＧｎＴ−Ｖをモデル細胞株として構築し、調節された無血清培地を細胞株から収去した。腫瘍の転移が細胞認識及び接着の機能障害によって起こること（Ｅｇｅｂｌａｄ  ｅｔ  ａｌ．，２００２，Ｎａｔｕｒｅ  Ｒｅｖ．２：１６１−１７４；Ｋａｎｎａｇｉ  ｅｔ  ａｌ．，２００４，Ｃａｎｃｅｒ  Ｓｃｉ．９５（５）：３７７−３８４）と、多くの膜タンパク質又は分泌タンパク質がこの過程に関与することが知られている。ＧｎＴ−Ｖによって生成されるベータ１，６−Ｎ−アセチルグルコサミンが含まれた糖タンパク質を培地から精製した。収集された培地は濃縮し、１ｍｇのタンパク質をアビジン−アガロースビードに結合させ非特異的に結合するタンパク質を予め除去した。非特異的に結合したタンパク質を予め除去したタンパク質は、Ｌ−ＰＨＡ−ビオチン−アビジン−アガロースビード複合体と一晩中４℃で反応させた。マンノース−１，６−Ｎ−アセチルグルコサミンがＬ−ＰＨＡ結合タンパク質を剥がすのに用いられるが、この二糖類は価格面や効率面で証明されていない。ある研究チームでは、酸性溶出方法で剥がすことを試みたが、この方法も証明されておらず、低いｐＨはタンパク質の完全性に損傷を与える。このような理由により、タンパク質は、複合体に結合された状態で切断した。このために、タンパク質複合体を過量のＰＢＳ（Ｐｈｏｓｐｈａｔｅ  ｂｕｆｆｅｒｅｄ  ｓａｌｉｎｅ）緩衝液で洗浄し、１０Ｕのトリプシン（Ｐｒｏｍｅｇａ社）で一晩中３７℃でトリプシン処理した。切断されたペプチドは、蒸留水とアセトニトリルで抽出し、真空乾燥し、７テスラのＦＴＩＣＲ／ＬＴＱ質量分析機で質量分析した。タンパク質は、Ｍａｓｃｏｔサーチプログラム（バージョン２．０）でペプチド配列を決定して確認した（図２及び図３）。
サーチデータベースは、ＮＣＢＩｎｒ  ２００５１２１２（ｔａｘｏｎｏｍｙ；ｈｕｍａｎ、ｅｎｔｒｉｅｓ；１０３、９１３  ｈｕｍａｎ  ｓｅｑｕｅｎｃｅ  ｅｎｔｒｉｅｓ）であった。その結果、ペプチドは、効果的に配列が決定されておらず、完全なタンパク質がトリプシンによって充分に切断されていないと考えられる。ＴＩＭＰ−1（Ｔｉｓｓｕｅ  ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ  ｏｆ  ｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ  １）は、ＧｎＴ−Ｖの標的タンパク質として既に確認されており、変更されたグリカン構造が質量分析で決定され、参考分子としてＴＩＭＰ−1が用いられる。しかし、ＴＩＭＰ−1は、この方法では確認されておらず、その代わりに、糖タンパク質でない多くのタンパク質が確認された。
【実施例２】
【００１１】
レクチンを用いたベータ１，６−Ｎ−アセチルグルコサミンが含まれた糖タンパク質の濃縮段階以前のタンパク質還元及び脱塩
実施例１に示された非特異的結合を減少させて敏感性を増大させるために、収集された培地から得たタンパク質を１％（ｖ／ｖ）ベータ−メルカプトエタノールに還元させ、未反応ベータ−メルカプトエタノール及び塩は、ゲルろ過カラムで除去した（図４）。１ｍｇのタンパク質を沈殿させ、実施例１に記載したように確認した。結果は、より多くの糖タンパク質が確認されたことを示すが、スコア値が低く、ＴＩＭＰ−１も確認されなかった。
【実施例３】
【００１２】
ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルで最大化されたタンパク質切断及びレクチン沈殿以後、ベータ１，６−Ｎ−アセチルグルコサミンが含まれた糖タンパク質確認
実施例１に記載されたように培養培地から収集されたタンパク質を、実施例２に記載されたように１％（ｖ／ｖ）ベータ−メルカプトエタノールに還元させ、未反応ベータ−メルカプトエタノール及び塩は、ゲルろ過カラムで除去した。１ｍｇのタンパク質をアビジン−アガロースビードと１時間反応させて先に精製し、先に精製されたタンパク質は、Ｌ−ＰＨＡ−ビオチン−アビジン−アガロースビード複合体と一晩中４℃で反応させた。ＰＢＳで洗浄した後、結合されたタンパク質に１×ＳＤＳ−ＰＡＧＥ変性緩衝液を加えて少しの間沸騰させてビード複合体から分離した。タンパク質は、８％ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル上で分離され、ゲル内でトリプシンで切断された。切断されたペプチドは、ゲルで溶出され、アジレント１１００ナノフローシステム（Ａｇｉｌｅｎｔ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）を用いて分析され、７テスラのＦＴ−ＬＴＱ質量分析機（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｅｌｅｃｔｒｏｎ）と連結されたＳｕｒｖｅｙｏｒシステムで配列が分析された。ペプチドは、１０ｃｍのＲｅｐｒｏＳｉｌ−Ｐｕｒ  Ｃ１８−ＡＱ樹脂（Ａｍｍｅｒｂｕｃｈ−Ｅｎｔｒｉｎｇｅｎ）で充填されたシリカカラム（７５ｍｍ）上で結合されて分離された。ペプチド混合物は、１００ｍｍ−Ｃ１８カラム（５μｍ）上にオートサンプラ（Ｓｕｒｖｅｙｏｒ）で２０ｍｌ／分の速度でローディングされた。移動相ＡとＢは、それぞれ０％及び１００％のＡＣＮで構成され、それぞれ０．１％のギ酸を含む。濃度勾配は、１５分間５％Ｂから初めて、３分間２０％Ｂ、４７分間５０％Ｂ、最終的に９５％に上昇した。溶出されたペプチドは、直接質量分析機にエレクトロスプレーした。質量分析機は、Ｘｃａｌｉｂｕｒソフトウェア（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｅｌｅｃｔｒｏｎ  Ｖｅｒｓｉｏｎ  １．４ＳＲ１）で制御した。図７は、一つの結果を示す。この実施例によれば、１）高いスコア値（Ｐ＜０．０５）を有する糖タンパク質を確認することができ、２）図７のようにＴＩＭＰ−１を探知することができ、３）従来のレクチンブロットに基づいた同定方法で確認されたタンパク質を再び確認することができ（図８）、４）高いスコア値を有しながら低く発現されるタンパク質を探知することができた（図９）。
【実施例４】
【００１３】
レクチン沈殿法に基づいて同定されたタンパク質を質量分析方法で確認した。
実施例２と実施例３を比較するために、既に探知されたＴＩＭＰ−１ペプチド、ＧＦＱＡＬＧＤＡＡＤＩＲを質量分析機でモニタした。図１０のように、ＧＦＱＡＬＧＤＡＡＤＩＲは、実施例３では、分子量が約１２３２Ｄａであって、２電荷を帯びた状態で６１７．３１ｍ／ｚであった。実施例３では、ペプチドは滞留時間３４分で探知されたが、実施例２では探知されず、ペプチド配列はＧＦＱＡＬＧＤＡＡＤＩＲであった。また、図３によれば、実施例３では、ｍ／ｚ６１７．３１で探知されるペプチドの親イオン及びｍ／ｚ  ７１７．３６のフラグメントイオンが示されるが、実施例２ではこれが全く探知されておらず、これは、トリプシン切断と抽出がよく行われていないことに起因すると予想される。
したがって、本発明は、グリコシル化で変化を示す少量のタンパク質を確認するための２次元電気泳動に基づいたより敏感な方法を提供する。
【産業上の利用可能性】
【００１４】
本発明によれば、正常対照群と試験試料との間に水準及び構造の差を示す糖タンパク質を区分することによって、早期に癌を容易に診断することができる。
（配列目録テキスト）
<110> Korea Research Institute of Bioscience and Biotechnology
<120> An identification method of glycoproteins using a specific lectin precipitation
<130> jhko-0711-lectinaffi2
<150> KR10-2007-100916
<151> 2007-10-08
<160> 1
<170> KopatentIn 1.71
<210> 1
<211> 12
<212> PRT
<213> Homo sapiens
<400> １
Gly Phe Gln Ala Leu Gly Asp Ala Ala Asp Ile Arg
1                5                  10
【図１】
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【図２】
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【図３】
0005544640.tif 000006
【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【配列表】
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