(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
１または複数の被検化合物からなる被検化合物群の中から、抗酸菌の菌体内においてＣＤＰ−ジアシルグリセロールとイノシトール１−リン酸とからホスファチジルイノシトールリン酸（ＰＩＰ）を合成する反応を選択的に阻害する被検化合物をスクリーニングし、抗酸菌生育阻害剤の候補化合物として選定することを特徴とする抗酸菌生育阻害剤の候補化合物のスクリーニング方法。
【請求項２】
前記被検化合物の存在下および非存在下で前記反応を触媒する酵素の活性を測定し、それぞれの場合における酵素活性の比から、各被検化合物について前記阻害活性の有無を判定することを特徴とする請求項１記載のスクリーニング方法。
【請求項３】
前記被検化合物による、ＣＤＰ−ジアシルグリセロールおよび／またはイノシトール１−リン酸と前記酵素との結合阻害の有無を測定することを特徴とする請求項２記載のスクリーニング方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、抗酸菌生育阻害剤の候補化合物をスクリーニングする技術に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
抗酸菌は、マイコバクテリウム科マイコバクテリウム属に属する真正細菌の総称であり、その呼称は、細胞壁に多量の脂肪酸を含むためグラム染色法等の通常の染色法に対し難染性を示すが、強力に染色された後は、酸アルコール処理による脱色に抵抗性を示すことに因んでいる。抗酸菌の中には、ヒトや動物に対する病原性を有するものが多数存在し、その代表例としては、結核菌（Mycobaterium tuberculosis）、らい菌（Mycobacterium leprae）、非結核性抗酸菌（病原性のものとしては、Mycobacterium avium、Mycobacterium kansasii等）が挙げられる。抗酸菌により引き起こされる疾患には、根治が困難なものや、最悪の場合には死に至るものも多いため、有効な薬剤の開発が重要な課題である。
【０００３】
従来、結核の治療には、ストレプトマイシン、カナマイシン等の抗結核薬が用いられている。非結核性抗酸菌感染症の治療には、抗結核薬と、イソニコチン酸ヒドラジド、リファンピシン、エタンブトール等の一般抗生物質とを組み合わせた多剤併用療法が用いられている。しかし、これらの薬剤療法には、薬剤耐性の発現、副作用等の問題がある。また、適用可能な薬剤の種類が限定されているため、副作用が生じた場合に代替可能な薬剤がなく、減感作を行いながら投与を続行せざるを得ないという問題が生じる場合もある。
【０００４】
抗酸菌の細胞壁の構成成分であるリポアラビノマンナン（ＬＡＭ）ならびにその前駆体であるホスファチジルイノシトールマンノシド（ＰＩＭ）およびホスファチジルイノシトール（ＰＩ）が、抗酸菌の生育や宿主への感染の成立において重要な役割を果たしていることが近年の研究で明らかになった（例えば、非特許文献１および２参照）。そこで、抗酸菌におけるこれらの細胞壁構成リン脂質の生合成を阻害する化合物が、抗酸菌に由来する疾患の新規な治療薬として注目を集めている。
【０００５】
例えば、特許文献１には、抗酸菌の細胞壁の構成成分であるリポマンナン（ＬＭ）および／またはリポアラビノマンナン（ＬＡＭ）の生合成を阻害する物質をスクリーニングする物質のスクリーニング方法が開示されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】特開２００７−１８５１６３号公報
【非特許文献】
【０００７】
【非特許文献１】Morita, Y. S., Patterson, J. H., Billman-Jacobe, H., and McConville, M. J. Biochem J 378, 589-597 (2004)
【非特許文献２】Morita, Y. S., Velasquez, R., Taig, E., Waller, R. F., Patterson, J. H., Tull, D., Williams, S. J., Billman-Jacobe, H., and McConville, M. J. J Biol Chem 280, 21645-21652 (2005)
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
ＬＭおよび／またはＬＡＭの生合成経路は複数の反応からなるが、特許文献１記載のスクリーニング方法では、特定の反応に限定せず、そのいずれかを阻害する物質全般を広くスクリーニング対象としているため、スクリーニング効率が低いという課題が存在する。  また、ＬＭおよびＬＡＭの前駆体であるホスファチジルイノシトール（ＰＩ）の生合成経路には、抗酸菌と真核生物に共通する反応も存在するため、特許文献１記載のスクリーニング方法で得られる化合物の中には、治療対象である真核生物の生理機能にも悪影響を及ぼすものが含まれるおそれがある。
【０００９】
本発明は上記課題に鑑みてなされたものであり、抗酸菌の生育を選択的に阻害し、ヒト等の真核生物に対しては無害である抗酸菌生育阻害剤の候補化合物を高効率でスクリーニングする方法および該方法により得られる抗酸菌生育阻害剤を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
本発明者は、抗酸菌におけるホスファチジルイノシトールの生合成経路について鋭意検討を行った結果、真核生物におけるそれとは一部異なる反応経路を有することを新たに見いだし、その反応をターゲットとすることにより、真核生物の生理機能に悪影響を与えることなく抗酸菌の生育を選択的に阻害する抗酸菌生育阻害剤の候補化合物を高効率でスクリーニングする方法を完成するに至った。
【００１１】
すなわち、本発明は、次の態様に係るものである。
（１）  １または複数の被検化合物からなる被検化合物群の中から、抗酸菌の菌体内においてＣＤＰ（シチジン二リン酸）−ジアシルグリセロールとイノシトール１−リン酸とからホスファチジルイノシトールリン酸（ＰＩＰ）を合成する反応を選択的に阻害する被検化合物をスクリーニングし、抗酸菌生育阻害剤の候補化合物として選定する抗酸菌生育阻害剤の候補化合物のスクリーニング方法。
（２）  前記被検化合物の存在下および非存在下で前記反応を触媒する酵素の活性を測定し、それぞれの場合における酵素活性の比から、各被検化合物について前記阻害活性の有無を判定する前記（１）記載の抗酸菌生育阻害剤の候補化合物のスクリーニング方法。
（３）  前記被検化合物による、ＣＤＰ−ジアシルグリセロールおよび／またはイノシトール１−リン酸と前記酵素との結合阻害の有無を測定する前記（２）記載の抗酸菌生育阻害剤の候補化合物のスクリーニング方法。
【００１２】
なお、本発明において「スクリーニング」には、人工的に構築した酵素反応系等のアッセイ系を用いて試験管内（in vitro）で行うスクリーニング、培養細胞等を用いて生体内（in vivo）で行うスクリーニング、および酵素の反応中心や阻害活性を有することが知られている既知の化合物の立体構造等に基づいてコンピュータを用いて（in silico）行われるスクリーニングの全てが含まれる。
また、本発明における「被検化合物群」には、単一の被検化合物のみからなるものも含まれる。
【発明の効果】
【００１３】
本発明によれば、ヒト等の真核生物に対しては無害であり、抗酸菌の生育を選択的に阻害する抗酸菌生育阻害剤の候補化合物を高効率でスクリーニングする方法が提供される。  また、本発明によると、ヒト等の真核生物に対しては無害であり、抗酸菌の生育を選択的に阻害する抗酸菌生育阻害剤およびそれを有効成分とする医薬組成物が提供される。
【図面の簡単な説明】
【００１４】
【図１】E.smegmatis細胞壁および組換え大腸菌を酵素標品とした酵素反応系における［14Ｃ］標識された生成物のＴＬＣ（薄層クロマトグラム）である。
【図２】E.smegmatis細胞壁を酵素標品とした酵素反応系におけるＰＩＰおよびＰＩの濃度の経時変化を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００１５】
本発明の第１の実施の形態に係る抗酸菌生育阻害剤の候補化合物のスクリーニング方法（以下、「スクリーニング方法」と略称する場合がある。）について説明する。
本実施の形態に係るスクリーニング方法において、１または複数の被検化合物からなる被検化合物群の中から、抗酸菌の菌体内においてＣＤＰ（シチジン二リン酸）−ジアシルグリセロールとイノシトール１−リン酸とからホスファチジルイノシトールリン酸（ＰＩＰ）を合成する反応を選択的に阻害する被検化合物をスクリーニングし、抗酸菌生育阻害剤の候補化合物として選定する。
【００１６】
従来、抗酸菌におけるホスファチジルイノシトールの生合成経路は、真核生物におけるホスファチジルイノシトールの生合成経路と同様、下記の（１）〜（３）の反応（化１参照）からなると信じられていた（例えば、Salman, M., Lonsdale, J. T., Besra, G. S., and Brennan, P. J., Biochim. Biophys. Acta 1436, 437-450 (1999)参照）。
（１）グルコース６−リン酸  →  １Ｌ−ｍｙｏ−イノシトール１−リン酸
（２）１Ｌ−ｍｙｏ−イノシトール１−リン酸  →
ｍｙｏ−イノシトール＋リン酸
（３）ｍｙｏ−イノシトール＋ＣＤＰ−ジアシルグリセロール  →
ホスファチジルイノシトール（ＰＩ）＋ＣＭＰ
【００１７】
【化１】
0005590545.tif 000002
【００１８】
なお、式中、Ｒ1およびＲ2は、それぞれ飽和または不飽和炭化水素基を表す。生体内において、ジアシルグリセロールはホスファチジン酸を経由して合成されるため、通常、Ｒ1は飽和炭化水素基であり、Ｒ2は不飽和炭化水素基である。
【００１９】
しかしながら、本発明者は、抗酸菌におけるホスファチジルイノシトールの生合成経路について再検討を行った結果、正しくは、下記の（１）、（２’）および（３’）の反応（化２参照）からなることを見いだした。
（１）グルコース６−リン酸  →  １Ｌ−ｍｙｏ−イノシトール１−リン酸
（２’）１Ｌ−ｍｙｏ−イノシトール１−リン酸＋ＣＤＰ−ジアシルグリセロール  →        ホスファチジルイノシトールリン酸（ＰＩＰ）＋ＣＭＰ
（３’）ＰＩＰ  →  ホスファチジルイノシトール（ＰＩ）＋リン酸
【００２０】
【化２】
0005590545.tif 000003
【００２１】
上記のうち反応（２’）は、抗酸菌に特有なもので真核生物に存在しないため、これを選択的に阻害することにより、真核生物に何ら悪影響を及ぼすことなく抗酸菌の生育のみを特異的に阻害することが可能となる。また、スクリーニングの対象が上記反応に限定されているため、効率よくスクリーニングを行うことができる。
【００２２】
抗酸菌生育阻害剤の標的となる抗酸菌の種類について特に制限はないが、好ましくは、ヒトや動物に対し病原性を有するものであり、その具体例としては、結核菌（Mycobaterium tuberculosis）、らい菌（Mycobacterium leprae）、非結核性抗酸菌（Mycobacterium avium、Mycobacterium kansasii等）が挙げられる。
【００２３】
被検化合物群を構成する被検化合物の数についても特に制限はなく、１または複数のいずれであってもよい。被検化合物は、天然に存在するものおよび人工的に合成されたものであってもよく、低分子および高分子（合成高分子、ペプチド、多糖、オリゴヌクレオチド等）のいずれであってもよい。また、被検化合物はランダムに選択されたものであってもよく、コンビナトリアルケミストリー等の手法を用いて系統的に得られる一連の類縁体であってもよい。
【００２４】
ＣＤＰ−ジアシルグリセロールとイノシトール１−リン酸とからホスファチジルイノシトールリン酸（ＰＩＰ）を合成する反応に対する阻害様式については、真核生物における生理活性を阻害しない限りにおいて特に制限はなく、例えば、該反応を触媒するＰＩＰ合成酵素の阻害、ＰＩＰ合成酵素をコードする遺伝子の発現阻害のいずれであってもよい。  
【００２５】
前者の場合において、酵素活性の阻害様式については特に制限はなく、拮抗阻害、非拮抗阻害のいずれであってもよく、例えば、ＣＤＰ−ジアシルグリセロールおよび／またはイノシトール１−リン酸とＰＩＰ合成酵素との結合を阻害するものであってもよい。
また、後者の場合における遺伝子の発現阻害の様式についても特に制限はなく、ｓｉＲＮＡを用いたＲＮＡ干渉および他の発現阻害のいずれであってもよい。
【００２６】
スクリーニングの方法について特に制限はなく、通常医薬分野において用いられる任意のスクリーニング方法を用いることができる。スクリーニング方法の具体例としては、人工的に構築した酵素反応系等のアッセイ系を用いて試験管内（in vitro）で行うスクリーニング、培養細胞等を用いて生体内（in vivo）で行うスクリーニング、および酵素の反応中心や阻害活性を有することが知られている既知の化合物の立体構造等に基づいてコンピュータを用いて（in silico）行われるスクリーニングが挙げられる。
【００２７】
好ましいスクリーニング方法の一例としては、被検化合物の存在下および非存在下で上記の反応（２’）を触媒する酵素（ＰＩＰ合成酵素）の活性を測定し、それぞれの場合における酵素活性の比から、各被検化合物についてＰＩＰ合成酵素に対する阻害活性の有無を判定する方法が挙げられる。
【００２８】
上記の反応（２’）を触媒するＰＩＰ合成酵素は、抗酸菌に特有なもので、真核生物に存在し、上記の反応（３）を触媒するＣＤＰ−ジアシルグリセロール−イノシトール３−ホスファチジルトランスフェラーゼ（ＥＣ  ２．７．８．１１）とは異なるものである。  したがって、上記の反応（２’）を触媒する酵素についての阻害活性の有無に基づいて、抗酸菌生育阻害剤の候補化合物を効率よく選定することが可能となる。
【００２９】
被検化合物によるＰＩＰ合成酵素の阻害機構に特に制限はなく、酵素・基質複合体に結合して反応の進行を阻害する基質阻害、基質結合部位に競合的に結合して反応開始を妨げる拮抗阻害、酵素または酵素・基質複合体の、基質と別の部位に結合して反応の進行を阻害する非拮抗阻害、酵素・基質複合体のみの、基質と別の部位に結合して反応の進行を阻害する不拮抗阻害、これらのうち任意の２以上の組み合わせにより反応の進行を阻害する混合型阻害のいずれであってもよい。これらのうち特に好ましいのは、被検化合物がＰＩＰ合成酵素の基質結合部位に競合的に結合し、ＣＤＰ−ジアシルグリセロールおよび／またはイノシトール１−リン酸とＰＩＰ合成酵素との結合を阻害する拮抗型阻害である。したがって、本実施の形態に係るスクリーニング方法は、被検化合物による、ＣＤＰ−ジアシルグリセロールおよび／またはイノシトール１−リン酸とＰＩＰ合成酵素との結合阻害の有無を測定するものであることが好ましい。
【００３０】
被検化合物の阻害活性をin vitroでスクリーニングするための評価系（アッセイ系）に用いられるＰＩＰ合成酵素は、抗酸菌の菌体から単離精製したものであってもよく、菌体をホモジナイズしたものをそのまま用いてもよく、あるいは、ＰＩＰ合成酵素をコードする遺伝子を大腸菌等に導入し発現させたものを用いてもよい。
抗酸菌としては、治療対象となる疾患の原因となる抗酸菌を用いてもよいが、M. smegmatis等の病原性を有しない抗酸菌を用いてもよい。
【００３１】
酵素活性（反応速度）または被検化合物の阻害活性は、一定時間後に反応液中に含まれる基質濃度または生成物（ＰＩＰ）濃度により求めることができる。被検化合物の存在下および非存在下にLineweaver-Brukプロットの比較より、被検化合物の阻害機構を判定することもできる。
基質濃度または生成物濃度は、基質にラジオアイソトープを用いた生成物の放射能測定、高速液体クロマトグラフィー等の任意の公知の手段を用いて行うことができる。
【００３２】
ＰＩＰ合成酵素の阻害活性に基づいて、被検化合物が上記式（２’）の反応を阻害する活性を判定する場合、例えば、被検化合物の存在下および非存在下でＰＩＰ合成酵素の活性を測定し、それぞれの場合における酵素活性の比、すなわち、後者に対する前者の比が所定の値以下の場合に、被検化合物は上記式（２’）の反応を阻害すると判定し、候補化合物として選定することができる。
【００３３】
次に、本発明の第２の実施の形態に係る抗酸菌生育阻害剤について説明する。本発明の第２の実施の形態に係る抗酸菌生育阻害剤は本発明の第１の実施の形態に係るスクリーニング方法を用いて得られ、抗酸菌の菌体内においてＣＤＰ−ジアシルグリセロールとイノシトール１−リン酸とからホスファチジルイノシトールリン酸（ＰＩＰ）を合成する反応に対する選択的な阻害活性を有する。
【００３４】
ＣＤＰ−ジアシルグリセロールとイノシトール１−リン酸とからホスファチジルイノシトールリン酸（ＰＩＰ）を合成する反応に対する阻害様式については、真核生物における生理活性を阻害しない限りにおいて特に制限はなく、ＰＩＰ合成酵素の阻害、ＰＩＰ合成酵素をコードする遺伝子の発現阻害のいずれであってもよいが、好ましくは、本実施の形態に係る抗酸菌生育阻害剤は、ＰＩＰ合成酵素の活性を阻害するものである。
【００３５】
ＰＩＰ合成酵素の阻害機構に特に制限はなく、前述の拮抗阻害、非拮抗阻害、不拮抗阻害、および混合型阻害のいずれであってもよい。しかし、これらのうち特に好ましい抗酸菌生育阻害剤は、ＰＩＰ合成酵素の基質結合部位に競合的に結合し、ＣＤＰ−ジアシルグリセロールおよび／またはイノシトール１−リン酸とＰＩＰ合成酵素との結合を阻害する拮抗型阻害によりＰＩＰ合成酵素の活性を阻害する化合物である。
【００３６】
本実施の形態に係る抗酸菌生育阻害剤の具体例としては、抗酸菌生育阻害剤におけるｍｙｏ−イノシトールの１−位のヒドロキシル基が、ヒ酸エステル基（−Ｏ−Ａｓ（＝Ｏ）（ＯＨ）2）、硫酸エステル基（−Ｏ−Ｓ（＝Ｏ）2−ＯＨ）、チオリン酸エステル基（−Ｏ−Ｐ（＝Ｓ）（ＯＨ）2）、リン酸チオエステル基（−Ｓ−Ｐ（＝Ｏ）（ＯＨ）2）、ホスホロチオエート基（−Ｏ−Ｐ（＝Ｏ）（ＯＨ）（ＯＳ））、ホスフィン酸基（−Ｐ（＝Ｏ）（ＯＨ）2）、および亜ホスホン酸基（−Ｐ（ＯＨ）2）からなる群より選択される官能基で置換された化合物、すなわち、下記の式に示す構造を有する化合物が挙げられる。
【００３７】
【化３】
0005590545.tif 000004
【００３８】
これらの化合物は、ＰＩＰ合成酵素の基質の１つであるイノシトール１−リン酸と類似の構造を有しており、いずれも任意の公知の反応を用いて合成することができる。
【実施例】
【００３９】
本発明の作用効果を確認するために行った実施例について説明する。本実施例では、抗酸菌類におけるホスファチジルイノシトール（ＰＩ）の生合成経路を検証するために、ＣＤＰ−ジアシルグリセロール、［14Ｃ］イノシトール１−リン酸および［3Ｈ］イノシトールを基質として抗酸菌の一種であるM. smegmatisおよびM. bovis, BCGに由来する酵素を作用させ、生成物である脂溶性画分に［14Ｃ］および［3Ｈ］のいずれの放射性ラベルが取り込まれるかについて、液体シンチレーションカウンターによる放射能測定により検討した。これらの基質のうち、［3Ｈ］イノシトールについては市販のものを使用した。
【００４０】
（１）ＣＤＰ−ジアシルグリセロールの調製
市販のホスファチジン酸（1,2-Dioleoyl-sn-glycero-3-phosphate）から、CMP-morpholidateを用いてＣＤＰ−ジアシルグリセロールを有機合成した。
【００４１】
（２）［14Ｃ］イノシトール１−リン酸の調製
１Ｌ−［14Ｃ］イノシトール１−リン酸は市販されていないので、［14Ｃ］グルコース６−リン酸からメタン生成古細菌のホモジネートの上清を用いて酵素的に調製した（Morii, H., Kiyonari, S., Ishino, Y., Koga, Y. A novel biosynthetic pathway of archaetidyl-myo-inositol via archaetidyl-myo-inositol 1-phosphate from CDP-archaeol and D-glucose 6-phosphate in methanoarchaeon Methanothermobacter thermautotrophicus cells. J. Biol. Chem. Vol.284, 30766-30774 (2009)参照）。
【００４２】
（３）ＰＩＰ合成酵素の調製
M. smegmatisを培養し、菌体を５０ｍＭ  ＭＯＰＳ緩衝液（ｐＨ７．９）、５μＭ  ２−メルカプトエタノールに懸濁し、超音波で破砕してホモジネートを調製し、遠心（27,000×ｇ、１５ｍｉｎ）した。その沈殿物からＰｅｒｃｏｌｌ密度勾配遠心により細胞壁画分を得た。上清は超遠心（100,000×ｇ、１ｈ）し、超遠心上清と粗細胞膜標品に分けた。また、ホモジネートの遠心沈殿物を緩衝液で懸濁し、軽く遠心（3,000ｒｐｍ、１０ｍｉｎ）して得られる上清（細胞壁を含む）を、ＰＩＰ合成酵素の標品として使用した。
【００４３】
（４）遺伝子組換え操作によるＰＩＰ合成酵素の発現
メタン菌のＡＩＰ合成酵素とホモロガスな抗酸菌タンパク質の遺伝子AAG17336（M.smegmatis）、NP_856290（M. bovis, BCG）を組み込んだプラスミド（pET21a-AAG17336、pET21a-NP_856290）を構築し、これを大腸菌（E.coli）に導入し、ＰＩＰ合成酵素を発現させた。
【００４４】
（５）酵素活性測定
ＣＤＰ−ジアシルグリセロールと［14Ｃ］イノシトール１−リン酸または［3Ｈ］イノシトールに緩衝液を加え、酵素としてM. smegmatisの細胞壁またはＰＩＰ合成酵素を発現させたE.coliのホモジネートを加えて反応させた後、有機溶媒可溶性生成物の放射能を測定した。
【００４５】
（６）ＰＩＰ合成酵素活性測定
０．２ｍＭ  ＣＤＰ−ジアシルグリセロール、０．１ｍＭ  ［14Ｃ］イノシトール１−リン酸（４Ｃｉ／ｍｏｌ）（１９ｎｍｏｌ、２８００Ｂｑ／アッセイ）、５０ｍＭ  ＭＯＰＳ緩衝液（ｐＨ７．９）、５μＭ  ２−メルカプトエタノール、１０ｍＭ  ＭｇＣｌ2、０．４％ＣＨＡＰＳ、酵素溶液（タンパク量１００μｇまたは２００μｇ）（全容量０．２ｍｌ）を３７℃で１時間反応させた。（脂質基質は［14Ｃ］イノシトール１−リン酸と０．４％ＣＨＡＰＳと酵素溶液以外の反応溶液中で室温、２０分間超音波処理して懸濁した。）反応後、０．１Ｍ  ＨＣｌ／メタノールと１Ｍ  ＭｇＣｌ2（ｐＨ２）を加え、Ｂｌｉｇｈ−Ｄｙｅｒ法の比率で水層とクロロホルム層に分画し、クロロホルム可溶性生成物の放射能を測定した。
【００４６】
（７）ＰＩ合成酵素活性測定
上記のＰＩＰ合成酵素活性測定の０．１ｍＭ  ［14Ｃ］イノシトール１−リン酸を２．５μＭ  ［3Ｈ］イノシトール（４Ｃｉ／ｍｍｏｌ）（０．５ｎｍｏｌ、７４ｋＢｑ／アッセイ）に代え、さらに０．１ｍＭ  ＡＴＰ、５ｍＭグルコースを反応溶液中に加えて、上記（６）と同様に測定した。
【００４７】
（８）生成物の分離
酵素反応生成物をシリカゲルＴＬＣで展開後、ＩＰプレート（富士フイルム製ＢＡＳ−ＭＳ２０２５またはＢＡＳ−ＴＲ２０２５）を用いて放射線強度に比例する蛍光イメージを取得し、イメージングアナライザー（富士フイルム製ＦＬＡ５０００）を用いてＰＩＰとＰＩの量比を求めた。
【００４８】
＜結果と考察＞
（１）ＰＩＰ合成酵素活性
M. smegmatisの細胞壁を酵素標品として、［14Ｃ］イノシトール１−リン酸と、ＣＤＰ−ジアシルグリセロールを反応させると、［14Ｃ］のラベルが脂質画分に取り込まれた。この生成物をＴＬＣで調べると２つのスポットが検出された（図１のレーン１参照）。Ｒｆ値の高いスポットはＰＩとＲｆ値が一致し、Ｒｆ値の低いスポットはイノシトール１−リン酸とＣＤＰ−ジアシルグリセロールが反応して生成したホスファチジルイノシトールリン酸（ＰＩＰ）と考えられる。ＰＩとＰＩＰ濃度の経時変化を図２に示した。
【００４９】
［14Ｃ］ＰＩＰをＴＬＣで精製して、M. smegmatisのホモジネートとインキュベートすると［14Ｃ］ＰＩが生成した。表１にM. smegmatis細胞壁および組換え大腸菌を用いた場合における、脂質（ＰＩＰおよびＰＩ）への［14Ｃ］イノシトール１−リン酸および［3Ｈ］イノシトールの取り込みについての結果を示す。メタン菌のＡＩＰ合成酵素とホモロガスな抗酸菌タンパク質の遺伝子AAG17336（M. smegmatis）とNP_856290 (M. bovis, BCG)を大腸菌で発現させた株を用いて調べると、ＰＩＰ合成酵素の高い活性が検出された（表１参照）。なお、上記遺伝子を組み込まないプラスミドのみを導入した大腸菌のホモジネートがＰＩＰ合成活性を殆ど示さなかったことから、ＰＩＰ合成酵素は大腸菌およびプラスミドそのものの発現産物に由来するものではないことが確認された。
【００５０】
各スポットの放射線強度より求めた各生成物の生成量比は、ＰＩＰが９５％、ＰＩが５％であった（図１のレーン２、３参照）。M. smegmatisの細胞壁以外の画分、ホモジネートの超遠心上清と粗細胞膜標品のＰＩＰ合成活性を表２に示した。
【００５１】
【表１】
0005590545.tif 000005
【００５２】
【表２】
0005590545.tif 000006
【００５３】
（２）ＰＩ合成酵素活性
M. smegmatisの細胞壁を酵素標品とした場合、［3Ｈ］イノシトールの脂質への取り込み活性が観測されたが、その活性は［14Ｃ］イノシトール１−リン酸の取り込み活性の約１／１０００に過ぎなかった（表２参照）。また、メタン菌のＡＩＰ合成酵素とホモロガスな抗酸菌タンパク質の遺伝子AAG17336 (M. smegmatis)、NP_856290 (M. bovis, BCG)を大腸菌で発現させた株を酵素標品として使用した場合、［3Ｈ］イノシトールは脂質へほとんど取り込まれなかった（表１参照）。粗細胞壁を酵素とした場合、［3Ｈ］ラベルの生成物をＴＬＣで調べると２つのスポットが検出された。Ｒｆ値の高いスポットはＰＩとＲｆ値が一致し、Ｒｆ値の低いスポットは、ＰＩＰ合成酵素活性測定の生成物［14Ｃ］ＰＩＰとＲｆ値が一致した。活性測定混合物中のＡＴＰ濃度を１０倍の１ｍＭにすると、活性は１．６倍高くなった。しかし、ＡＴＰを加えなくても高い活性が検出された。ＣＤＰ−ジアシルグリセロールを加えなくても活性があった。
【００５４】
M. smegmatisの細胞壁による［3Ｈ］イノシトールの脂質への取り込み機構は不明である。しかし、その取り込み量は［14Ｃ］イノシトール１−リン酸の約１／１０００と非常に低いこと、並びに大腸菌の遺伝子組み換え体はイノシトール１−リン酸のみを利用することから、抗酸菌のＰＩの主要生合成経路は、既に報告されている経路（真核生物と同じ経路）ではなく、古細菌類と同様の中間体（ＰＩＰ）を経由する経路であると考えられる。
【００５５】
以上の結果は、ラジオアイソトープを用いた上記アッセイ系が、抗酸菌におけるＰＩの合成経路の確認に有効であることのみならず、ＰＩＰ合成酵素の活性のアッセイにも有用であることを示している。
【図２】
0005590545.tif 000007
【図１】
0005590545.tif 000008