(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
以下：
（ａ）ヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の構成性及び生体異物誘導性発現のために提供され得、且つ該遺伝子の転写部位のイニシエーション（ｉｎｉｔｉａｔｉｏｎ）から１３，０００ヌクレオチド上流に及ぶヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子のヌクレオチド配列と同一であるヌクレオチド配列を含む、調節核酸分子；および
（ｂ）該調節核酸分子によるレポーター核酸分子の転写の調節を示すための検出可能な量のレポーター分子を産生するためのレポーター核酸分子
（ここで、該レポーターおよび調節核酸分子は、該調節核酸分子が該レポーター核酸分子の転写を調節し得るよう配置される）
を含むマウス及びラットから選択される哺乳動物：
ここで該哺乳動物は、ある化合物がヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子を誘導し得るかどうかを決定するために、マウス又はラットの肝臓及び消化管において検出可能な該レポーター分子の構成性及び生体異物誘導性組織発現パターンを有することを特徴とし、
該調節核酸分子が配列番号３に示される配列を含む。
【請求項２】
以下：
（ａ）ヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の構成性及び生体異物誘導性発現のために提供され得、且つ配列番号１に示される配列を含む、調節核酸分子；および
（ｂ）該調節核酸分子によるレポーター核酸分子の転写の調節を示すための検出可能な量のレポーター分子を産生するためのレポーター核酸分子
（ここで、該レポーターおよび調節核酸分子は、該調節核酸分子が該レポーター核酸分子の転写を調節し得るよう配置される）
を含む、マウス及びラットから選択される哺乳動物：
ここで該哺乳動物は、ある化合物がヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子を誘導し得るかどうかを決定するために、マウス又はラットの肝臓及び消化管において検出可能な該レポーター分子の構成性及び生体異物誘導性組織発現パターンを有することを特徴とする。
【請求項３】
前記調節核酸分子が配列番号２に示される配列を含む、請求項１に記載の哺乳動物。
【請求項４】
請求項１〜３のいずれかに記載の哺乳動物であって、さらに以下を含む：
ヒト遺伝子の転写を調節し得るさらなる調節核酸分子；および
さらなる調節核酸分子によるさらなるレポーター核酸分子の転写の調節を示すための検出可能な量のさらなるレポーター分子を産生するためのさらなるレポーター核酸分子、
ここで、該さらなるレポーターおよびさらなる調節核酸分子は、該さらなる調節核酸分子が該さらなるレポーター核酸分子の転写を調節し得るよう配置される。
【請求項５】
前記少なくとも１つのさらなる調節核酸分子が配列番号４に示される配列を含む、請求項４に記載の哺乳動物。
【請求項６】
前記少なくとも１つのさらなる調節核酸分子が配列番号５に示される配列を含む、請求項４に記載の哺乳動物。
【請求項７】
前記レポーター核酸分子がホタルルシフェラーゼ、β−ガラクトシダーゼ、アルカリホスファターゼ、緑色蛍光タンパク質またはクロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼからなるレポーター分子の群より選択されるレポーター分子を生産し得る、請求項１〜６のいずれかに記載の、哺乳動物。
【請求項８】
前記哺乳動物がマウスである、請求項１〜７のいずれかに記載の、哺乳動物。
【請求項９】
請求項１〜８のいずれかに記載の哺乳動物の組織。
【請求項１０】
前記組織が請求項１〜８のいずれかに記載の哺乳動物を生産し得る胚である、請求項９に記載の組織。
【請求項１１】
ある化合物がヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の転写に影響を及ぼし得るか否かを決定する方法であり、以下の工程を包含する方法：
（ａ）該化合物を請求項１〜８のいずれかに記載の哺乳動物へ投与すること、および
（ｂ）レポーター分子が該哺乳動物におけるレポーター核酸分子によって産生されるか否かを決定すること。
【請求項１２】
前記レポーター分子の産生が、前記化合物がヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の転写に影響し得ることを示す、請求項１１に記載の方法。
【請求項１３】
ある化合物がヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の転写に影響を及ぼし得るか否かを、以下の工程を包含する方法により決定するための、請求項１〜８のいずれかに記載の哺乳動物の使用：（ａ）該化合物を請求項１〜８のいずれかに記載の哺乳動物へ投与すること、および
（ｂ）レポーター分子が該哺乳動物におけるレポーター核酸分子によって産生されるか否かを決定すること。  
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、トランスジェニック動物の作製、および化合物（特に、生体異物（ｘｅｎｏｂｉｏｔｉｃｓ）またはステロイド（これらに限定されない））のヒトにおけるＰ４５０遺伝子の発現の調節に及ぼす影響を決定するための動物の使用に関する。
【背景技術】
【０００２】
多くの内因性および外因性化合物は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏでの薬剤開発試験において治療的効果を有することが観察される。しかしながら、意図される治療効果はしばしば、例えば化合物が同時投与される場合、特定の化合物がＣＹＰ３Ａ４遺伝子の発現を誘導するため、臨床的実施において実現されない。この誘導は、各化合物の意図される治療的効果が実現され得る前に化合物を代謝するＣＹＰ３Ａ４シトクロムＰ４５０分子を生成する。従って、ＣＹＰ３Ａ４遺伝子の発現の誘導は、意図される投薬を妨害し、治療の失敗または最適以下の治療をもたらす。
【０００３】
ＣＹＰ３Ａ４遺伝子発現の誘導は、時間、資源、および費用を特定の疾患状態の治療のための候補薬物の開発（これは、臨床的実施において最終的に失敗するか、または最適以下で行われるであろう）に浪費させるので、薬剤開発にとって重大な問題である。
【０００４】
薬剤開発の初期段階において、候補薬物がヒトにおいて意図される治療効果を達成するようであるか否かが決定され得る薬剤開発試験における使用のための動物モデルを有することは、有益である。
【０００５】
このような動物モデルは、ヒトにおけるＣＹＰ３Ａ４遺伝子発現（特に、組織特異的発現）の調節の少なくともいくつかの局面が再現されない限り、有用ではない。これは、ヒトにおいて、治療の目的のために投与された際に多くの化合物が必然的に接触する特定の組織（肝臓および小腸を含む）において、ＣＹＰ３Ａ４遺伝子が発現されるからである。従って、ヒトにおいて観察されるＣＹＰ３Ａ４遺伝子の構成性および生体異物誘導された組織特異的発現を再現しないモデルでの臨床的実施において、候補となる薬物のバイオ−アベイラビリティーが意図される治療効果を達成するのに十分であるか否かを決定することはできない。
【０００６】
ＷＯ９９／６１６２２およびＧｏｏｄｗｉｎら、１９９９は、生体異物化合物に応答してＣＹＰ３Ａ４遺伝子の転写を調節するＣＹＰ３Ａ４遺伝子の転写部位のイニシエーションから８ｋｂ上流に局在する核酸分子を開示する。これらの文献は、ヒトにおいて観察されるＣＹＰ３Ａ４遺伝子の構成性および生体異物的誘導性組織特異的および発生的発現を調節するためのエレメントを開示していない。
【０００７】
ある化合物（例えば、薬剤開発試験において同定されたもの）が、ＣＹＰ３Ａ４を誘導し、それゆえ薬物−薬物相互作用または研究下における薬物の代謝の自己誘導を引き起こしそうであるか否かを決定するために、ヒトにおけるＣＹＰ３Ａ４遺伝子の発現の少なくともいくつかの局面を再現する動物モデルの必要性が存在する。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００８】
ＷＯ９９／６１６２２
【発明の概要】
【０００９】
発明の説明
本発明は、上記で特定された必要性に取り組むことに努め、また第１の局面において、以下：
（ａ）ヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の転写を調節し得、且つその遺伝子の転写部位のイニシエーションとその部位から少なくとも１３，０００ヌクレオチド上流に位置づけられる位置との間に局在するヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の配列と一致するヌクレオチド配列を含む、調節核酸分子；および
（ｂ）該調節核酸分子によるレポーター核酸分子の転写の調節を示すための検出可能な量のレポーター分子を産生するためのレポーター核酸分子、
（ここで、このレポーター核酸分子および調節核酸分子は、調節核酸分子がレポーター核酸分子の転写を調節し得るよう配置される）
を含む非−ヒト動物を提供する。
【００１０】
本明細書中に記載されるように、本発明者らは、遺伝子の転写部位のイニシエーションと転写部位のイニシエーションの１３，０００ヌクレオチド上流の位置との間に位置づけられるヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の領域の動物モデルへの取り込みが、ヒトにおいて観察されるＣＹＰ３Ａ４遺伝子の構成性および生体異物的誘導された組織特異的発現を再現するために十分な遺伝情報をその動物に提供することを見出した。より具体的には、本発明者らは、この領域を含むトランスジーンを含む動物モデルを作製し、そしてこれらのモデルが、ヒトにおいて観察されるＣＹＰ３Ａ４の組織特異的発現を再現する組織パターンにおけるトランスジーンの構成性および生体異物的誘導性発現を提供することを観察した。重要なことに、構成性発現のレベルは、化合物（例えば、生体異物またはステロイド）の動物への投与が組織特異的トランスジーン発現の調節に及ぼす影響を観察し得るのに十分である。
【００１１】
さらに、本発明者らは、本明細書中に記載される動物モデルがまた、ヒトにおいて観察されるＣＹＰ３Ａ４遺伝子の構成性および生体異物的誘導性の発生的発現の局面を再現することを観察した。
【００１２】
本発明以前には、ヒトにおいて観察されるＣＹＰ３Ａ４遺伝子の構成性および生体異物的誘導された組織特異的または発生的発現を刺激するのに必要な遺伝情報が遺伝子の転写部位のイニシエーションと転写部位のイニシエーションの１３，０００ヌクレオチド上流の位置との間のヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の領域内に含まれるという示唆が存在しなかったことから、これらの発見は予測不可能である。
【００１３】
さらに、本発明以前には、マウスＣＹＰ３Ａ１１およびヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の誘導プロフィールにおける相違が観察されており、さらにマウス転写因子（特に、ＰＸＲおよびＣＡＲ）およびヒトＰＸＲおよびＣＡＲのリガンド結合プロフィールにおいてもまた、相違が観察されていた。従って、非−ヒト動物がヒトにおいて観察されるＣＹＰ３Ａ４の構成性および生体異物的誘導された組織特異的または発生的発現を再現するためのＣＹＰ３Ａ４遺伝子の領域と相互作用するのに十分な因子を有するという示唆は、存在しなかった。
【００１４】
さらに、本発明以前には、トランスジェニックモデルへ組み込まれる転写エンハンサーエレメントが、ヒトにおいて観察される遺伝子発現の調節を再現し得る程度を制限した遺伝子サイレンシングおよびモザイクトランスジーン発現のようなトランスジーンの組込みに関するメカニズムが観察されてきた。従って、ヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の領域がヒトにおいて観察されるＣＹＰ３Ａ４遺伝子の発現の調節を再現し得るという示唆は、存在しなかった。しかしながら、本明細書中に記載されるように、本発明者らは、トランスジーンの発現がヒトにおいて観察されるＣＹＰ３Ａ４遺伝子発現の局面を再現することを、２つの異なる初代系統（２  ｓｅｐａｒａｔｅ  ｆｏｕｎｄｅｒ  ｌｉｎｅｓ）において示した。
【００１５】
従って、第２の局面において、本発明は、以下；
（ａ）遺伝子の転写部位のイニシエーションから約１３，０００ヌクレオチド上流に及ぶヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子のヌクレオチド配列と同一であるヌクレオチド配列を含む調節核酸分子；および
（ｂ）調節核酸分子によるレポーター核酸分子の転写の調節を示すための検出可能な量のレポーター分子を産生するためのレポーター核酸分子、
（ここで、このレポーター核酸分子および調節核酸分子は、この調節核酸分子がレポーター核酸分子の転写を調節し得るよう配置される。）
を含む非ヒト哺乳動物を提供する
１つの実施形態において、この調節核酸分子は、配列番号１に示される配列を含む。
【００１６】
さらに、本明細書中に記載されるように、本発明者らは、転写部位のイニシエーションと転写部位のイニシエーションの約３，２００ヌクレオチド上流の位置との間のヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の領域を含むトランスジェニック動物を作製し、そしてこれらの動物においてトランスジーンが生体異物により誘導可能でないか、または構成性に発現されないことを観察した。従って、本発明者らは、ヒトにおいて観察されるＣＹＰ３Ａ４の構成性および生体異物的誘導された組織特異的および発生的発現を再現するために必要な遺伝情報が、該遺伝子の転写部位のイニシエーションの約３，２００ヌクレオチド上流に位置づけられる位置と転写部位のイニシエーションの１３，０００ヌクレオチド上流の位置との間のヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の領域内に含まれることを見出した。
【００１７】
従って第３の局面において、本発明は、以下；
（ａ）遺伝子の転写部位のイニシエーションより約３，０００ヌクレオチド上流の位置から約８，０００ヌクレオチド上流に及ぶヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の配列と同一であるヌクレオチド配列を含む調節核酸分子；および
（ｂ）調節核酸分子によるレポーター核酸分子の転写の調節を示すための検出可能な量のレポーター分子を産生するためのレポーター核酸分子、
（ここで、このレポーター核酸分子および調節核酸分子は、この調節核酸分子がレポーター核酸分子の転写を調節し得るよう配置される。）
を含む非−ヒト哺乳動物を提供する
１つの実施形態において、この調節核酸分子は、配列番号２に示される配列を含む。
【００１８】
第４の局面において、本発明は、以下：
（ａ）ヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の転写を調節し得、且つ該遺伝子の転写部位のイニシエーションの約７，２００ヌクレオチド上流の位置から約６００ヌクレオチド上流に及ぶヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の配列と同一であるヌクレオチド配列を含む、調節核酸分子；および
（ｂ）該調節核酸分子によるレポーター核酸分子の転写の調節を示すための検出可能な量のレポーター分子を産生するためのレポーター核酸分子、
（ここで、レポーター核酸分子および調節核酸分子は、この調節核酸分子がレポーター核酸分子の転写を調節し得るよう配置される。）
を包含する非−ヒト動物を提供する。
【００１９】
１つの実施形態において、この調節核酸分子は、配列番号３に示される配列を含む。
【００２０】
別の実施形態において、調節核酸分子はＣＹＰ３Ａ４遺伝子の以下のフラグメントのいずれか１つの配列を有する：
（ｉ）ヌクレオチド位置−１３，０００〜＋５３から成るフラグメント；
（ｉｉ）−８，０００〜＋５３に隣接するヌクレオチド位置−１３，０００〜−１２，７００からなるフラグメント；
（ｉｉｉ）−１，２００〜＋５３に隣接するヌクレオチド位置−１３，０００〜−５，１００からなるフラグメント；
（ｖ）−３６２〜＋５３に隣接するヌクレオチド位置−７，８００〜−６，０００からなるフラグメント；
（ｖｉ）−３６２〜＋５３に隣接するヌクレオチド位置−７，５００〜−６，０００からなるフラグメント；。
【００２１】
−３６２〜＋５３に隣接するヌクレオチド位置−７８３６〜−７２０７からなるフラグメントの配列を有する調節核酸分子は、この構築物がヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の転写を調節するために必要な最小配列（より具体的には、生体異物に応答するエレメント（「生体異物応答エレメントモジュール」または「ＸＲＥＭ」）およびＣＹＰ３Ａ４遺伝子の近位のプロモーター）を含む場合、特に好ましい。
【００２２】
本発明の調節核酸分子は、代表的に、核レセプターと接触する際にヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の転写を調節し得る少なくとも１つのエンハンサーを含む。このようなエンハンサーの例は、生体異物またはステロイドのようなリガンドへ結合する核レセプターと接触する際に、ヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の転写を調節し得るものである。他の例は、ＰＸＲ（プレグナンＸレセプター（別名としては、ＳＸＲ（ステロイドおよび生体異物レセプター）として知られる））およびＲＸＲ（９−ｃｉｓ  レチノイン酸レセプター）、またはＣＡＲ（構成性アンドロスタンレセプター−β）およびＲＸＲのへテロダイマーからなる核レセプターと接触する際に、ヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の転写を調節し得るものである。
【００２３】
本発明者らは、本発明の調節核酸分子と実質的に同じヌクレオチド配列を有する特定の核酸分子もまた、ヒトにおいて観察されるＣＹＰ３Ａ４遺伝子の構成性および生体異物的誘導された組織特異的および発生的発現を再現するための十分な遺伝情報を有すると考えている。従って、ヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の転写を調節する分子の能力を著しく制限することなく、ヌクレオチドが調節核酸分子の領域（より具体的には、上記のもののようなエンハンサーを含まない領域）において改変または欠失され得ることは理解されるであろう。
【００２４】
本発明者らは、他のヒト遺伝子（具体的には、治療のために使用される外因性および内因性化合物の治療活性を改変または調節し、薬物−薬物相互作用を引き起こす産物をコードするそれらの遺伝子（例えば、シトクロムＰ４５０遺伝子またはＡＢＣトランスポータースーパーファミリー遺伝子（例えば、Ｐ−グリコプロテイン（別名として、ＭＤＲ−１として知られる））の発現をさらに再現し得る動物モデルを提供することが有益であることを認識している。これらの遺伝子のいくつかの構成性および生体異物誘導される組織特異的発現を調節する領域が知られ、そしていくつかの場合において、非−ヒト動物モデルが作製された。本発明者らは、これらの動物の遺伝的バックグラウンドが、例えば慣用的な交配技術によって、本発明の非−ヒト哺乳動物へ組み込まれ得ることを認識している。
【００２５】
従って第５の局面において、本発明は、本発明の第１から第４の局面のいずれか１つの非−ヒト哺乳動物を提供し、さらに以下：
（ｃ）ヒト遺伝子の転写を調節し得るさらなる調節核酸分子；および
（ｄ）さらなる調節核酸分子によるさらなるレポーター核酸分子の転写の調節を示すための検出可能な量のさらなるレポーター分子を産生するためのさらなるレポーター核酸分子、
（ここで、このさらなるレポーター核酸分子および調節核酸分子は、さらなる調節核酸分子がさらなるレポーター核酸分子の転写を調節し得るよう配置される。）
を包含する。
【００２６】
１つの実施形態において、少なくとも１つのさらなる調節核酸分子は、配列番号４に示される配列を有する。別の実施形態において、少なくとも１つのさらなる調節核酸分子は、配列番号５に示される配列を有する。
【００２７】
本明細書中に記載される本発明の調節核酸分子は、ヒトにおいて観察されるＣＹＰ３Ａ４遺伝子の構成性組織特異的および発生的発現を再現するために十分であるが、本発明者らは、ヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の転写を調節するための調節核酸分子と相互作用し得る少なくとも１つのヒト転写因子を組み込むことによって、遺伝子の生体異物誘導性（ｉｎｄｕｃｉｂｉｌｉｔｙ）の局面が動物においてより良く再現し得ることを認識している。このような因子の例は、核レセプターである。これらのレセプターは、該レセプターが生体異物またはステロイドのようなリガンドへ結合される際に、ヒトにおいてＣＹＰ３Ａ４遺伝子転写を調節し得るものであり得る。このようなレセプターの１つの例は、ヒトＰＸＲ（プレグナンＸレセプター（別名としては、ＳＸＲ（ステロイドおよび生体異物レセプター）として知られる））である。別の適切なレセプターは、ヒトＣＡＲ（構成性アンドロスタンレセプター−β）である。ヒトＰＸＲまたはＣＡＲレセプターを含む非−ヒト動物が知られている。本発明者らは、これらの動物の遺伝的バックグラウンドが、例えば慣用的な交配技術によって、本発明の非−ヒト哺乳動物へ組み込まれ得ることを認識している。
【００２８】
従って第６の局面において、本発明の非−ヒト動物はさらに、ヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の転写を調節するための少なくとも１つのヒト転写因子を含む。好ましくは、この転写因子は核レセプターである。好ましくは、この核レセプターは、ヒトＰＸＲ（プレグナンＸレセプター（別名としては、ＳＸＲ（ステロイドおよび生体異物レセプター）として知られる））およびヒトＲＸＲ（９−ｃｉｓ  レチノイン酸レセプター）、またはヒトＣＡＲ（構成性アンドロスタンレセプター−β）およびヒトＲＸＲのへテロダイマーである。
【００２９】
該レポーター核酸分子が転写される場合、結果として該レポーター核酸分子は、検出され得る任意の分子であり得る。例えば、該レポーター核酸分子は、ＣＹＰ３Ａ４シトクロム、またはシトクロムを産生するよう翻訳されるｍＲＮＡ転写物であり得る。ホタルルシフェラーゼ、β−ガラクトシダーゼ、アルカリホスファターゼ、緑色蛍光タンパク質またはクロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼを含む市販のレポーター分子が使用され得る。
【００３０】
それゆえ、１つの実施形態において、このレポーター核酸分子は、ホタルルシフェラーゼ、β−ガラクトシダーゼ、アルカリホスファターゼ、緑色蛍光タンパク質またはクロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼからなるレポーター分子の群より選択されるレポーター分子を生産し得る。
【００３１】
以下に例示される本発明の非−ヒト哺乳動物はマウスであるが、本発明者らは、任意の他の非−ヒト哺乳動物（特に、標準的なトランスジェニック技術が開発されているもの（例えば、ラットおよびウサギを含む））が本発明において使用され得ると考えている。しかしながら、代表的には、非−ヒト哺乳動物はマウスである。
【００３２】
別の局面において、本発明は、本発明の非−ヒト哺乳動物の組織を提供する。
【００３３】
１つの実施形態において、この組織は、本発明の非−ヒト哺乳動物を生産し得る胚である。
【００３４】
さらなる局面において、本発明は、ある化合物がヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の転写に影響を及ぼし得るか否かを決定する方法を提供し、この方法は以下の工程を包含する：
（ａ）該化合物を本発明に従う非ヒト哺乳動物へ投与すること、および
（ｂ）レポーター分子が哺乳動物におけるレポーター核酸分子によって産生されるか否かを決定すること。
【００３５】
１つの実施形態において、レポーター分子の産生は、結合する化合物がヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の転写に影響し得ることを示唆する。
【００３６】
あらゆる化合物がこの方法において試験され得るが、好ましい化合物は生体異物またはステロイド化合物である。
【００３７】
本発明者らは、ある化合物がヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の転写を調節し得るか否かを決定するための方法において、ＣＹＰ３Ａ４遺伝子の５’フランキング領域を含むが−７８３６から−７２０７までの領域について欠失する非ヒト動物がネガティブコントロールとして有用であると認識している。
【図面の簡単な説明】
【００３８】
【図１】トランスジェニックマウスを作製するために使用されるＣＹＰ３Ａ４／ｌａｃＺトランスジーン構築物。ヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の上流領域は白色のボックス（ｏｐｅｎ  ｂｏｘ）で示され、ＣＹＰ３Ａ４遺伝子の約−７．５ｋｂにおけるＸＲＥＭの位置は網目模様で示される。５’−フランキング領域は、転写開始部位の５６ｂｐ下流から−３ＣＹＰ３Ａ４／ｌａｃＺと称される構築物中の−３，２１３におけるＨｉｎｄＩＩＩ部位まで、および構築物−１３ＣＹＰ３Ａ４／ｌａｃＺ中の−１２，９２６におけるＫｐｎＩ部位まで及んだ。真核生物翻訳開始および終結シグナル、転写終結およびポリアデニル化部位を含むＥ．ｃｏｌｉ  ｌａｃＺ遺伝子のコーディング領域は、黒ベタのボックス（ｓｏｌｉｄ  ｂｏｘ）で表される。
【図２】肝臓トランスジーン発現の生体異物誘導。−１３ＣＹＰ３Ａ４／ｌａｃＺトランスジーンを有する９／４系統由来の雌マウスは、様々な試薬で処理された。Ｘ−ｇａｌを用いる肝臓スライスの組織化学的染色は、コーン油処理マウスと比べ、リファンピシン、フェノバルビタールおよびプレグネノロン  １６α−カルボニトリルでの処理後に、β−ガラクトシダーゼ含有青色染色細胞の拡大された領域を示した。
【図３】マウスＣｙｐ３ａ１１遺伝子と−１３ＣＹＰ３Ａ４／ｌａｃＺトランスジーンの生体異物誘導プロフィールの比較。９／４系統由来のトランスジェニックマウスは、ある範囲の生体異物試薬および天然に存在するステロイドで処理された。Ａ．トランスジーン発現は、ＯＮＰＧアッセイを用いて、全肝臓溶解物におけるβ−ガラクトシダーゼ活性を測定することによって評価された。β−ガラクトシダーゼ活性の単位は、Ａ420／ｍｇ肝臓／分として示された。デキサメタゾンおよびプレグネノロン  １６α−カルボニトリルは、−１３ＣＹＰ３Ａ４／ｌａｃＺトランスジーンの最も強力な生体異物活性化因子であったが、一方リファンピシン処理は、比較的低いレベルをもたらした。ステロイド類プレグネノロンおよび１７α−プロゲステロンは、非常に弱い誘導物質である。Ｂ．ノーザン分析によって、内因性マウスＣｙｐ３ａ１１遺伝子の肝臓発現が同マウスにおいて試験された。ＣＹＰ３Ａ４／ｌａｃＺトランスジーンに対する誘導の類似するパターンが、生体異物および内因性調節因子の両方について観察された。このデータは、３匹の動物について平均＋／−標準偏差として表される。
【図４】デキサメタゾンを用いた処理後の−１３ＣＹＰ３Ａ４／ｌａｃＺトランスジーン発現の用量応答。Ａ．９／４系統由来の雄マウスは、１から１００ｍｇ／ｋｇのデキサメタゾンで処理された。より高い用量のデキサメタゾンは、（図３において記載されるように肝臓溶解物において測定された）β−ガラクトシダーゼ活性の増加をもたらした。Ｂ．デキサメタゾンの用量を増加させることに伴うトランスジーン発現の領域の拡大。凍結肝臓切片のＸ−ｇａｌ染色は、１、１０および１００ｍｇ／ｋｇデキサメタゾンを用いた処理後に、トランスジーン−由来β−ガラクトシダーゼ活性を含むより多くの数の肝細胞を示した。低い用量においては、中心静脈に直接隣接するトランスジーン−発現細胞の数が限られていた。より高い用量では、肝小葉を越えて門脈管へ広がるトランスジーン発現に関係したより多くの細胞が存在した。
【図５】（配列番号１）−１３ＣＹＰ３Ａ４／ｌａｃＺ構築物において誘導されるＣＹＰ３Ａ４  ５’−フランキング領域の配列。この配列は、ＣＹＰ３Ａ４遺伝子の転写開始部位に対して−１２，９２６から＋５６までの塩基対に相当する。
【図６】（配列番号２）−１２，９２６から−３，２１３までの塩基対に及び、さらに−１３ＣＹＰ３Ａ４／ｌａｃＺと−３ＣＹＰ３Ａ４／ｌａｃＺ構築物との間の配列において相違を表すＣＹＰ３Ａ４遺伝子の５’−フランキング領域の配列。
【図７】（配列番号３）ヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の「生体異物−応答性エンハンサーモジュール」（ＸＲＥＭ）。この領域は、ＣＹＰ３Ａ４遺伝子の転写開始部位に対する−７８３６から−７２０７までの塩基対を含む。
【図８】（配列番号４）ヒトＣＹＰ３Ａ７遺伝子の５’−フランキング領域（Ｇｅｎｂａｎｋアクセス番号ＡＦ３２９９００）。この配列の範囲は、ＣＹＰ３Ａ７遺伝子の転写開始部位に対する−１１，１３３から＋５２までの塩基である。
【図９】（配列番号５）ＭＤＲ１遺伝子の転写開始部位に対する−１０，０００から＋２００までの塩基対を含むヒトＭＤＲ１遺伝子（ｐ−グリコプロテイン遺伝子）の５’−フランキング領域の配列。Ｇｅｎｂａｎｋ配列アクセス番号ＡＣ００２４５７内に由来する配列。
【発明を実施するための形態】
【００３９】
ここで、本発明の実施形態は、以下の実施例（これは、単に例示するためであり、本発明の範囲を制限するためでないと理解されるであろう）において記載される。
【実施例】
【００４０】
物質および方法
トランスジーン構築物。Ｅ．ｃｏｌｉ  ｌａｃＺレポーター遺伝子に結合されるヒトシトクロムＰ４５０  ＣＹＰ３Ａ４遺伝子の上流５’フランクを用いて、２つのトランスジーン構築物を合成した（図１）。第１の構築物（−３ＣＹＰ３Ａ４／ｌａｃＺと称する）は、転写開始部位に関係する−３２１３ｂｐにおけるＨｉｎｄＩＩＩ部位から転写開始部位の下流ヌクレオチド＋５６ｂｐまでのＣＹＰ３Ａ４遺伝子の領域を含んでいた。他の構築物（−１３ＣＹＰ３Ａ４／ｌａｃＺと称する）は、転写開始部位の上流−１２，９２６ｂｐにおけるＫｐｎＩ部位から下流＋５６ｂｐまでのＣＹＰ３Ａ４遺伝子の領域を含んでいた。これは、ＣＹＰ３Ａ４遺伝子の近位プロモーターに加え、−７８３６と−７２０８との間に局在するＸＲＥＭ領域のＤＮＡ配列を含む。−１０４６８ｂｐと＋９０６ｂｐとの間のＣＹＰ３Ａ４遺伝子のＤＮＡ配列を決定し、アクセス番号ＡＦ１８５５８９のもとにＧｅｎＢａｎｋ／ＥＭＢＬ／ＤＤＪＢデータベースに寄託した。公にアクセス可能なＧｅｎｂａｎｋファイルから、−１０，４６９ｂｐから−１２，９２６ｂｐまでの領域をカバーするさらなる配列情報を得た。Ｅ．ｃｏｌｉ  ｌａｃＺ  レポーター遺伝子は、真核生物翻訳開始および終結シグナル、ＳＶ４０転写終結およびポリアデニル化シグナルならびにイントロンについてのＤＮＡ配列に隣接する細菌酵素β−ガラクトシダーゼについてのコーディング領域を含む。ＣＹＰ３Ａ４／ｌａｃＺトランスジーン構築物を、ベクター配列から離し、アガロースゲルにて精製し、マイクロインジェクションした。
【００４１】
トランスジェニックマウス系統の作製。ＦＶＢ／Ｎ株マウスから回収した接合体の前核へのＤＮＡ構築物のマイクロインジェクションによって、ＣＹＰ３Ａ４／ｌａｃＺトランスジーンを有するマウスを作製した。マイクロインジェクションおよび胚の操作を標準的な技術により行った。サザン分析によって同定したトランスジェニック初代（ｆｏｕｎｄｅｒｓ）から繁殖させることによって、安定なトランスジェニックマウス系統を確立した。
【００４２】
マウスへの生体異物の投与。−３ＣＹＰ３Ａ４／ｌａｃＺおよび−１３ＣＹＰ３Ａ４／ｌａｃＺトランスジーンについての８−１０週齢の雄および雌マウスの半接合体を使用して、ある範囲の生体異物およびホルモンのトランスジーン−由来β−ガラクトシダーゼの発現を活性化する能力を試験した。４日間毎日１回の腹腔内注射によって、マウスへ以下の試薬およびビヒクルを投与した：リファンピシン／コーン油；デキサメタゾンホスフェート／Ｈ2Ｏ；プレグネノロン  １６α−カルボニトリル／Ｈ2Ｏ中の２％  Ｔｗｅｅｎ２０；フェノバルビタール／Ｈ2Ｏ；クロトリマゾール／２％  Ｔｗｅｅｎ２０；フェニトイン／２％  Ｔｗｅｅｎ２０；１７α−ＯＨ  プロゲステロン／２％  Ｔｗｅｅｎ２０；プレグネノロン／２％  Ｔｗｅｅｎ２０。Ｆａｕｌｄｉｎｇ（Ｍｕｌｇｒａｖｅ，  Ａｕｓｔｒａｌｉａ）から得られたデキサメタゾンホスフェートおよびＵｐｊｏｈｎ  Ｃｏ．（Ｋａｌａｍａｚｏｏ，  ＭＩ）からのプレグネノロン  １６α−カルボニトリルを除いて、全ての試薬はＳｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｃｏ．（Ｓｔ  Ｌｏｕｉｓ，  ＭＯ）によって供給された。トランスジーンの誘導について試験するために全ての試薬について使用された用量は、１００ｍｇ／ｋｇ体重であった。雄半接合体トランスジェニックマウスを用いて、１−１００ｍｇ／ｋｇの範囲において、用量応答研究を行った。
【００４３】
トランスジーンおよびマウスＣｙｐ３ａ遺伝子発現の分析。Ｘ−ｇａｌ（５−ブロモ−４−クロロ−３−インドリル−β−Ｄ−ガラクトピラノシド）を用いる染色により、肝臓および他の組織のスライス（ｓｌｉｃｅｓ）および凍結切片（ｓｅｃｔｉｏｎｓ）において、β−ガラクトシダーゼ活性を視覚化した。組織を、０．２５％  グルタルアルデヒド、０．１Ｍ  リン酸緩衝液（ｐＨ７．３）、５ｍＭ  ＥＧＴＡ、２ｍＭ  ＭｇＣｌ2中で固定化し：０．１Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ７．３）、０．０１％デオキシコール酸ナトリウム、０．０２５％ＮＰ４０、２ｍＭ  ＭｇＣｌ2中で洗浄し、そして１ｍｇ／ｍｌ  Ｘ−ｇａｌ、５ｍＭ  フェリシアン化カリウム、および５ｍＭ  フェロシアン化カリウムを補った洗浄溶液中での３７℃におけるインキュベーションによって染色した。標準的な技術に従って、Ｏ−ニトロフェニル−β−Ｄ−ガラクトピラノシド（ＯＮＰＧ）アッセイを用いて、全肝臓ホモジェネート［１００ｍｇ  新鮮な組織／ｍｌ  ０．２５Ｍ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．３）］において、β−ガラクトシダーゼ活性のレベルを測定した。適切な希釈の後、ホモジェネートをβ−ガラクトシダーゼアッセイ試薬（０．１Ｍ  リン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ７．３）／１ｍＭ  ＭｇＣｌ2／５０ｍｍｏｌ  β−メルカプトエタノール／０．８８ｍｇ／ｍｌ  ＯＮＰＧ）と共に３７℃にてインキュベーションし、１Ｍ  Ｎａ2ＣＯ3の添加によってクエンチし（ｑｕｅｎｃｈｅｄ）、そして４２０ｎｍでの吸光度を測定した。β−ガラクトシダーゼ活性の単位は、Ａ420／ｍｇ肝臓／分として示される。
【００４４】
マウスＣｙｐ３ａ１１  ｃＤＮＡのヌクレオチド８５２−１０６１に相補的なリボプローブを用いるノーザン分析によって、内因性マウスＣｙｐ３ａ  ｍＲＮＡ発現のレベルを測定した。フィルターをはがし、そして負荷量（ｌｏａｄｉｎｇ）を標準化するために１８Ｓ  ｒＲＮＡオリゴヌクレオチドを用いて再プローブした。
【００４５】
結果
ｌａｃＺへ結合するヒトＣＹＰ３Ａ４遺伝子の−３．２ｋｂ領域を含む構築物を用いて、４つのトランスジェニック系統を作製した。トランスジーン−由来β−ガラクトシダーゼ活性は、マウス由来の腎臓、大および小腸、脾臓、肺および肝臓組織において、ビヒクルまたは生体異物で処理した全ての４つの−３ＣＹＰ３Ａ４／ｌａｃＺトランスジェニック系統について、検出されなかった（表１）。対照的に、−１３ＣＹＰ３Ａ４／ｌａｃＺ構築物を有する４系統のうち３つにおいて、トランスジーンの発現が容易に検出された。系統９／４は肝臓において非常に低い構成性レベルを有し、β−ガラクトシダーゼは主要な血管に隣接した単離肝細胞においてのみ検出された。生体異物の投与は、中心静脈のまわりの細胞の領域において強い発現をもたらした（図２）。９／４系統の未処理マウスにおけるトランスジーン発現の基本レベルが極めて低いので、誘導は明らかであり、そして本質的にオフ／オン・プロセス（ｏｆｆ／ｏｎ  ｐｒｏｃｅｓｓ）である。９／４系統に由来するマウスにおける他の組織内での発現は、消化管（大部分は、小腸の絨毛において）に制限された。
【００４６】
９／４系統由来のマウスの肝臓溶解物におけるトランスジェニックβ―ガラクトシダーゼ活性を測定することによって、ある範囲の生体異物に対する誘導の相対的程度を分析した（図３Ａ）。デキサメタゾンおよびプレグネノロン  １６α−カルボニトリルは最も強力な誘導物質であり、一方リファンピシンはトランスジーンを相対的に大きくないレベルまで活性化した。フェノバルビタール、クロトリマゾールおよびフェニトインは中程度の誘導物質であった。９／４系統におけるトランスジーンの誘導プロフィールは、同マウスにおける内因性Ｃｙｐ３ａ１１遺伝子について観察されたものと類似しており（図３Ｂ）、ヒトＰＸＲよりもむしろマウスの活性化プロフィールを反映するようである。天然に存在するプレグネノロンおよび１７α−プロゲステロンのようなステロイドを用いてトランスジーンの活性化が観察されたが、その誘導は生体異物と比べて弱かった。肝臓トランスジーン発現において著しい性差があり、殆どの試薬について、雄よりも雌においてより低いレベルが観察された。このような雄−優性パターンは、マウスＣｙｐ３ａ１１遺伝子の誘導プロフィールにおいては顕著でなかった。実際に、リファンピシンおよびプレグネノロン  １６α−カルボニトリルを用いた処理の後に、雄よりも雌においてより高いレベルのＣｙｐ３ａ１１  ｍＲＮＡを観察した。性−関連トランスジーン発現パターンにおけるこの明らかな逆転（ｒｅｖｅｒｓａｌ）についての理由は、知られていない。しかしながら、Ｃｙｐ３ａ１１  ｍＲＮＡは、マウスのＦＶＢ／Ｎ株の雄においてのみ唯一検出可能であり、これは、雌に比べて雄におけるマウスＣｙｐ３ａ１１遺伝子の誘導の程度が相対的に大きかったことに帰するかも知れない（図３Ｂ）。
【００４７】
有意なトランスジーン発現を示した他の系統−１５／１０は、未処理マウスにおける肝臓および小腸の両方において、より高い構成性レベル（ｃｏｎｓｔｉｔｕｔｉｖｅ  ｌｅｖｅｌ）を有した。発現は他の臓器において検出されず、９／４系統において観察される組織特異性を確かなものにした。同じセットの試薬が、９／４系統由来のマウスと同じレベルまで、肝臓および腸のトランスジーン発現を増大させ得た。しかしながら誘導の全体的な程度は、１５／１０系統における高い基本レベルに起因して、９／４系統において観察された程大きくなかった。誘導プロフィールも類似しており、デキサメタゾンが最も強力な活性化剤であり、またリファンピシンが最も弱かった（データを示さない）。
【００４８】
生体異物誘導の用量応答。デキサメタゾンによる９／４系統におけるトランスジーン発現の活性化は、範囲１〜１００ｍｇ／ｋｇにわたり用量−依存的であった（図４Ａ）。増大する用量のデキサメタゾンで処理されたマウスに由来する肝臓ホモジェネートにおけるより高いトランスジーン−由来β−ガラクトシダーゼ活性は、Ｘ−ｇａｌによって染色された細胞の拡大された領域に関連していた。低用量のデキサメタゾンでは、中心静脈のまわりのわずか１−２細胞厚の肝細胞の輪（ａ  ｒｉｎｇ  ｏｆ  ｈｅｐａｔｏｃｙｔｅ）がトランスジーンを発現した（図４Ｂ）。１００ｍｇ／ｋｇ  デキサメタゾンを用いると、Ｘ−ｇａｌ陽性肝細胞の領域が１０細胞に至るまで（中心静脈と門脈三管との間のほぼ中程）増大した。トランスジーンを発現する肝細胞の類似する用量−依存的拡大（ｅｘｐａｎｓｉｏｎ）が、他の試薬を用いて、また−１３ＣＹＰ３Ａ４／ｌａｃＺ構築物も含む１５／１０系統においても観察された。
【００４９】
【表１】
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【図１】
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【図２】
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【図３Ａ】
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【図３Ｂ】
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【図４Ａ】
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【図４Ｂ】
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【図５−１】
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【図５−２】
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【図５−３】
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【図５−４】
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【図５−５】
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【図６−１】
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【図６−２】
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【図６−３】
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【図６−４】
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【図７】
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【図８−１】
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【図８−２】
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【図８−３】
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【図９−１】
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【図９−２】
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【図９−３】
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