(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
共焦点様光学系を用いて蛍光信号の時間経過を計測することにより、試料溶液中の１点でウイルスまたは／およびウイルス感染細胞由来ウイルス関連物質、あるいはウイルス粒子の一部または全部の物理的または化学的破砕物と蛍光標識物質とを結合させた粒子状態の蛍光性物質を検出する方法において、該試料溶液中に物理的振動若しくは超音波による混合、又は、熱、圧力、電荷若しくは濃度差により対流を生じさせることで流れを生じさせて、計測する際のシグナル頻度を向上させることを特徴とする検出方法。
【請求項２】
粒子状物質の平均粒子直径が、短径１〜１０００ｎｍ、長径５〜１００００ｎｍであることを特徴とする、請求項１記載の方法。
【請求項３】
ウイルスがインフルエンザウイルスである、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
試料溶液中の流れが流速０．１〜１０ｍｍ／秒であることを特徴とする、請求項１〜３のいずれかに記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、試料中の蛍光性物質を検出するための迅速、高感度で、且つ正確な試験方法、および試料中の蛍光性物質を検出するための機器、システムに関する。
【背景技術】
【０００２】
共焦点光学系は、従来より顕微鏡（共焦点顕微鏡）に用いられている技術であり、蛍光相関分光分析（ＦＣＳ）法などに応用されている。ＦＣＳは、蛍光分子を励起するレーザ部、共焦点光学系、蛍光検出部、演算と解析を行うデジタル相関器の４つの部分を有する。ＦＣＳは、抗原−抗体反応、ＳＮＰタイピング、ＤＮＡ−タンパク質相互作用、低分子−タンパク質相互作用などの分子状物質の検出に応用された例がある（例えば、特許文献１，２，３，４，５，６，７，８，９，１０，１１，１２，１３参照）。
【０００３】
しかしながら、蛍光の相関から拡散時間を求める従来の方法では、測定対象の蛍光物質の濃度が低い場合、蛍光シグナル数が少なくなるため、高感度に蛍光物質を測定することが困難であった。一方、ウイルスやポリマー粒子などの粒子状物質の検出に応用する際にも、従来のＦＣＳでは蛍光測定を行う共焦点領域に比較し、粒子状物質の体積が大きいため、正確な拡散時間の計測が困難という欠点があった。
【０００４】
すなわち、分子状の蛍光性物質はもとより、粒子状の蛍光性物質を共焦点光学系で検出する際の課題は感度と精度（正確性）であり、種々の蛍光性物質を高感度で、且つ正確に検出できる系が望まれていた。
【特許文献１】特開２００６−１０５９２８
【特許文献２】特開２００５−３４５３１１
【特許文献３】特開２００５−２３７３３４
【特許文献４】特開２００５−１７２４６０
【特許文献５】特開２００５−８３９８２
【特許文献６】特開２００５−８０５３５
【特許文献７】特開２００５−４３３１７
【特許文献８】特開２００５−６５６６
【特許文献９】特開２００４−１９１１８２
【特許文献１０】特開２００３−５２３９６
【特許文献１１】特開２００１−２７５６９９
【特許文献１２】特開２００１−２６９１９９
【特許文献１３】特開２００１−２６９１９８
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
したがって本発明は、試料中の蛍光性物質を高感度で短時間、且つ精度良く検出する方法を考案し、該方法に基づく検出装置を製作し、迅速で高感度、かつ信頼度の高い計測系を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明者らは、試料中の蛍光性物質を簡単なシステムで迅速、高感度、且つ精度良く検出可能な試験方法を開発するために鋭意研究を重ね、共焦点様光学系を用いて蛍光信号の時間経過を直接計測する方法と、試料溶液に流れを生じさせる手段とを組み合わせることにより、迅速で高感度、かつ信頼度の高い蛍光性物質検出が可能となることを見出し、本発明を完成するに至った。
【０００７】
すなわち本発明は、以下の通りである。
１．共焦点様光学系を用いて蛍光信号の時間経過を計測することにより、試料溶液中の蛍光性物質を検出する方法において、該試料溶液中に流れを生じさせて計測することを特徴とする検出方法。
２．蛍光性物質が粒子状態である、項１記載の方法。
３．粒子状物質の平均粒子直径が、短径１〜１０００ｎｍ、長径５〜１００００ｎｍであることを特徴とする、項２記載の方法。
４．粒子状物質がウイルスまたは／およびウイルス感染細胞由来ウイルス関連物質、あるいはウイルス粒子の一部または全部の物理的または化学的破砕物である、項３記載の方法。
５．ウイルスがインフルエンザウイルスである、項４記載の方法。
６．試料溶液中に流れを生じさせる手段として、該試料溶液の吸引および／または吐出を行うことができる流路を設けることを特徴とする、項１〜５のいずれかに記載の方法。
７．該試料溶液の吸引および／または吐出を、ノズル、ライン、シリンジまたはピペットからなる系で行うことを特徴とする、請求項６記載の方法。
８．試料溶液中の流れが流速０．１〜１０ｍｍ／秒であることを特徴とする、項１〜７のいずれかに記載の方法。
８．試料溶液の吸引および／または吐出を行うことができる流路と共焦点様光学系を含む、蛍光性物質の検出システム。
１０．ノズル、ライン、シリンジまたはピペットからなる系と、蛍光波長が３５０〜８００ｎｍ、共焦点領域または励起光の照射される領域が１０−１６〜１０−１０リットルである共焦点様光学系とを含む、蛍光性物質の検出システム。
１１．測定対象がウイルスであることを特徴とする、項９または１０記載のシステム。
１２．測定対象のウイルスがインフルエンザウイルスであることを特徴とする、項１１記載のシステム。
【発明を実施するための最良の形態】
【０００８】
本発明は、共焦点様光学系を用いて蛍光信号の時間経過を計測することにより試料溶液中の蛍光性物質を検出する方法であって、該試料溶液中に流れを生じさせて計測することを特徴とする。
【０００９】
本発明の方法によれば、蛍光性を持つ幅広い物質を、迅速かつ高感度に、そして正確に検出することができる。
【００１０】
本発明の検出方法において検出され得る蛍光性物質は、蛍光性を持つ物質または蛍光性物質と相互作用する物質などであれば、特に限定されない。
【００１１】
本発明で使用する共焦点様光学系は、共焦点光学系そのものの他、共焦点光学系と同様に微小な空間に蛍光性物質を計測するに十分な励起光を照射し得る光学系、すなわち微小空間照射系、微小域照射系と呼べる光学系を含む。例えば、数μｍの微小な幅で照射が可能なレーザシステムなども、本発明の共焦点様光学系に含まれる。
【００１２】
本発明で使用する共焦点様光学系は、共焦点領域または励起光の照射される領域が、１０−１６〜１０−１０リットル程度、好ましくは１０−１６〜１０−１３リットル程度の微小空間である光学系が好ましい。
【００１３】
以下、共焦点光学系を例に挙げて、具体的に説明する。
【００１４】
本発明の検出方法で使用し得る共焦点光学系は、従来より顕微鏡（共焦点顕微鏡）に用いられている技術であり、蛍光相関分光分析（ＦＣＳ）法などに応用されている。ＦＣＳは、蛍光分子を励起するレーザ部、共焦点光学系、蛍光検出部、演算と解析を行うデジタル相関器の４つの部分を有する。分子状の蛍光性物質はもとより、粒子状の蛍光性物質を共焦点光学系で検出する際の課題は感度と精度（正確性）であるが、本発明の検出方法によれば、分子状の蛍光性物質はもとより、粒子状の蛍光性物質を高感度で、且つ精度良く検出することができる。
【００１５】
共焦点光学系として、共焦点（レーザ）顕微鏡が使用できるが、レーザをスキャンする機能は必ずしも必要ではなく、溶液中の１点（例えばサブフェムトリットル領域）の蛍光強度を計測できればよい。
【００１６】
本発明の検出方法において、共焦点光学系による測定は、以下の手順(i)〜(v)で行うことができる。
(i)試料中の測定対象物質と結合する物質を、予め蛍光標識する（以下、当該物質を蛍光標識物質ともいう）。ただし、測定対象物質が蛍光性を有する場合はこの操作を省くこともできる。
(ii)レーザ光を対物レンズでフェムトリットル以下の領域まで焦点を絞る。
(iii)分子がレーザの焦点領域を通過するミリ秒以下の時間内に、数百〜数千個のフォトンが発生する。
(iv)試料溶液中の測定対象物質と蛍光標識物質とを結合させ、測定対象物質を蛍光性物質にする。こうすることにより分子サイズが大きくなるために、溶液中の移動速度が遅くなる。
(v)(iv)の蛍光性物質の共焦点領域における蛍光強度の時間変化を、検出器にて測定する。
【００１７】
本発明の蛍光性物質の検出方法は、上記の測定手順において、試料溶液中に流れを生じさせて計測することを特徴とする。
【００１８】
本発明において、「流れ」とは、特定の方向に対する流れのみを指すのではなく、ランダムな方向に対する流れ、及び局所的に試料溶液が動いている状態などをも含むものである。
【００１９】
ここで、試料溶液中に流れを生じさせる手段としては、特に限定されないが、例えば、試料溶液の吸引および／または吐出を行うことができる流路を設けること、試料溶液を物理的振動や超音波などで混合すること、熱や圧力、電荷、濃度差などで試料溶液中に対流を生じさせること、ポンプやキャピラリー浸透を利用する等が挙げられる。
【００２０】
試料溶液の吸引および／または吐出は、例えば、ノズル、ライン、シリンジまたはピペットからなる系；フローセルとポンプからなる系；あるいはラインとモータを利用する系などで行うことができる。
【００２１】
試料溶液中に生じさせる流れは、流速０．１〜２０ｍｍ／秒、好ましくは０．２〜１０ｍｍ／秒ほどであり、マイクロシリンジを用いて流れを生じさせる場合、シリンジのポンピング速度を適切に設定することなどにより、試料溶液中の流れを調節することが可能である。流速が２０ｍｍ／秒より速くなると、励起光領域を通過する時間が短くなり過ぎて検出感度が却って悪くなり、また、ポンピングにより気泡が発生し、ノイズの原因となる可能性があるため好ましくない。０．１ｍｍ／秒より遅くなると、生じる流れが効果を与えるに十分でなく、特に、試料溶液の粘性が高い場合はなおさら効果が減少する結果となるため好ましくない。
【００２２】
本発明の測定対象となる試料としては、単一物質の水溶液、或いは粒子状物質の懸濁液、各種物質が混合して存在する水溶液、有機溶媒の混合液、有機溶媒に脂溶性物質が溶解した液、有機溶媒に粒子状物質が懸濁した液などが挙げられるが、特に限定されない。
【００２３】
試料溶液中の測定対象物質は、特に限定されず、ＤＮＡ、ＲＮＡ、抗体やレセプター、酵素などのタンパク質、糖質、脂質、抗原などの分子状物質または粒子状物質が対象となる。このうち、本発明の方法の効果がより顕著に見られる測定対象物質としては、粒子状物質が挙げられる。そのような粒子状物質としては、ウイルスまたは／およびウイルス感染細胞由来ウイルス関連物質、バクテリオファージ、細菌、生体試料、環境由来の試料、蛍光分子を含むもしくは結合させた蛍光性ポリマー、蛍光性金属粒子などが挙げられる。
【００２４】
とりわけ、本発明の測定方法によれば、インフルエンザウイルスが高精度で測定され、インフルエンザウイルスであればＡ型、Ｂ型などタイプを問わず僅かな量で、迅速に検出が可能である。本発明の方法によりインフルエンザウイルスを検出する場合、反応時間が０分であっても十分な検出が可能となる。
【００２５】
生体試料の例としては、血液、血清、血漿、唾液、脳脊髄液、尿、便、糞、リンパ液、精液、涙液、および各種臓器などの哺乳類（ヒト、ウシ、ウマ、ブタ、イノシシ、ヒツジ、ウサギ、特にヒト）、鳥類（ニワトリ、アヒル、ウズラ、七面鳥、カモ、キジなど）、無脊椎動物（昆虫；カイコ、ハチ、アリ、クワガタ、カブトムシなど、甲殻類；エビ、カニなど）、植物（桑、小豆、ソラマメ、トマト、ナス、キュウリ、メロン、タバコ、菊、ユリ、バラなど）の生体由来の試料が挙げられる。また、環境由来の試料としては、食品（卵、牛乳、大豆、小麦、米などの穀類、魚介類、或いは加工食品など）、河川、土壌、大気（溶媒を通すことで対象物質が液中に補足される）なども例示される。
【００２６】
試料は、超音波処理、界面活性剤処理などにより破砕後に測定に供してもよい。このようにすることで、測定対象物質の測定感度を向上させることが可能な場合がある。
【００２７】
ポリマー粒子やウイルスまたはそれらの破砕物の平均粒子直径は、短径１〜１０００ｎｍ、長径５〜１００００ｎｍ程度、好ましくは短径１０〜２００ｎｍ、長径１０〜１０００ｎｍ程度である。ポリマー粒子やウイルスまたはそれらの破砕物の平均粒子直径が小さすぎると検出感度が低下し、大きすぎると検出が困難になる。
【００２８】
試料溶液中の測定対象物質の量は、特に制限はなく、例えば１×１０３〜１×１０15pfu(粒子)/ml程度が例示される。
【００２９】
試料中の測定対象物質と結合する物質としては、測定対象物質に特異的に結合するものであれば特に限定されず、当該物質の性質に応じて適宜選択され得る。例えば、糖、抗体、タンパク質（糖蛋白を含む）、ペプチド、核酸、脂質（糖脂質を含む）、低分子化学物質などが広く例示される。より具体的な例示としては、例えば、インフルエンザウイルスの検出などの場合には、ウイルス結合性物質としてフェチュインや特異抗体、糖鎖などが好ましく使用できる。好ましいウイルス結合性物質は、ウイルスに特異的な抗体、或いはフェチュインなどのタンパク質、シアル酸などの糖鎖、ガングリオシドＬｙｓｏＧＭ３などの糖脂質が挙げられる。ウイルスに特異的な抗体を用いる場合は、複数の抗体を使用することで測定の精度がより高くなる。
【００３０】
測定対象物質と結合する物質は、単独で使用して蛍光標識されてもよく、また、当該結合物質をポリマー(例えば、キトサン、ポリビニルアルコール、ポリアクリル酸、ポリメタクリル酸などの親水性ポリマー)あるいは微粒子(例えば量子ドットなどのナノ粒子)に多数結合させて高分子の結合物質とし、該ポリマーあるいはポリマー／微粒子に結合された結合物質をさらに蛍光標識してもよい。微粒子は、一定時間懸濁可能である限り、大きさは特に限定されず、また微粒子の素材も、ポリマー微粒子のような有機微粒子、あるいは量子ドットなどの無機微粒子のいずれでもよい。測定対象物質と結合する物質は、ポリマー、微粒子に吸着させてもよく、必要に応じてスペーサーを介して共有結合により連結してもよい。
【００３１】
蛍光標識としては、蛍光強度が強く安定したものが好ましい。例えばＡｌｅｘａ，ローダミン各種（ローダミン６Ｇ，ローダミングリーン、ＴＭＲ，ＴＡＭＲＡ）、Bodipy、Cy5、R6G、FAM、JOE、ROX、EDANS、蛍光性タンパク質などが好ましく使用できるが、これらに限定されない。
【００３２】
蛍光標識は、常法に従い行われるが、その具体的な方法としては、ハロゲン化アルキル、アジリジン、マレイミドを持つ蛍光化合物と標識対象物質のチオール基に結合させる方法、あるいは、コハク酸イミドエステル、イソチオシアネート、塩化スルホニル、NBD-ハロゲン化物、ケトン、ジクロロトリアジンとアミン基の結合反応により蛍光化合物と標識対象物質を結合させる方法などが挙げられる。あるいは、他の組合せとしてカルボシキシル基又は水酸基を還元又は酸化することでアルデヒド又はケトンとして他方のヒドラジンと反応させる、あるいはアジド基を持つ場合に光励起により結合反応を行わせる、ジアゾメタン、カルボジイミドとカルボン酸基により結合反応を行わせることで蛍光化合物と標識対象物質を結合させてもよい。さらに蛍光化合物と標識対象物を直接に結合させる他に、抗体やイムノグロブリン結合性をもつプロテインA、GやL、さらにビオチン-アビジンあるいはビオチン-ストレプトアビジン結合性などを利用した間接的な蛍光標識法を利用することも出来る。
【００３３】
蛍光標識試薬の蛍光波長は、３５０〜８００ｎｍ程度が例示される。蛍光標識試薬の分子量は特に規定されないが、２００００以下が好ましく、より好ましくは１２０〜８００００である。
【実施例】
【００３４】
以下に実施例を挙げて、本発明をより具体的に説明する。ただし、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
【００３５】
本実施例にて用いた蛍光微粒子用ビーズ、蛍光微粒子およびウイルス液の調製法、ウイルスの感染力価の測定法、ウイルスの部分精製法、ウイルス粒子の破砕法は以下の通りである。
【００３６】
＜蛍光微粒子用ビーズの調製法＞
蛍光微粒子に用いた単分散ポリスチレンラテックス製のビーズはPolyscience社から購入した。粒径0.2 μmのアミノ基型ビーズ（polybead amino microspheres, 2.5％ Solids-Latex）を使用した。このビーズ250 μlを蒸留水250 μlで希釈し、遠心機（HITACHI CR15T, 12000×g,15min.）を用いて沈殿、上清除去を2回行う操作にて、ビーズを蒸留水で洗浄した。
【００３７】
＜蛍光微粒子の調製法＞
洗浄済みビーズ250 μlに蒸留水200 μl 、1 M sodium bicarbonate buffer(pH 8.3)を50 μl加えた。DMSOに溶解したAlexa（Molecular Probe社）をビーズに対して1対10から1対1,000の割合の分子数になるよう蒸留水で希釈し、ビーズに25μL添加して振盪しながら遮光状態・室温で1時間反応させた。その後、遠心操作（HITACHI CR15T, 12000g×15min.）によりビーズと反応後のAlexa溶液を得た。ビーズはさらに1度蒸留水で洗浄し、さらに４回0.02% Tween20溶液で洗浄した。
【００３８】
＜ウイルス液の調製法＞
A/New Caledonia/20/99 (H1N1)およびA/Hyogo/73/2002 (H1N1)株について、組織培養細胞を用いてウイルス液を調製した。MDCK(Madin-Darby canine kidney)細胞の単層培養にウイルスをMultiplicity of Infection (M.O.I.)が0.01（計算上0.1％の細胞が感染する）になるよう接種し、5μg/mlトリプシン（Sigma製）添加、血清非添加Minimum Essential Medium（MEM、Sigma製）で34度、3〜5日間培養した。培養上清を2,500gで10分間遠心し、上清をウイルス液として-80℃で保存した。
A/Puerto Rico/8/34 (H1N1)について、発育鶏卵を用いてウイルス液を調製した。種ウイルスを1x103〜104倍希釈して（感染価にして1x103〜104CIU/ml）発育鶏卵10日卵の漿尿膜腔へ200μl接種し、34℃で転卵しながら2〜3日培養した。採取した漿尿液を2,500gで10分間遠心し、上清をウイルス液として-80度で保存した。
CIU（Cell Infecting Unit）は感染性ウイルス粒子の数の単位で、1CIUは、理論上1感染性粒子に等しい。
【００３９】
＜感染力価の測定法＞
MDCK細胞に4倍段階希釈したウイルス液を接種、34℃で14時間培養し、エタノールで感染細胞を固定した。一次抗体として抗インフルエンザウイルスウサギポリクローナル抗体（大阪府立公衆衛生研究所、奥野良信博士より分与）、続いて二次抗体としてFITC結合抗ウサギIgGヤギ血清（医学生物学研究所製）を用いた間接蛍光抗体法で感染細胞を標識した後、蛍光顕微鏡（Zeiss製）で観察し、画像解析により計数して感染力価を算出した。
結果：
A/New Caledonia/20/99 (H1N1)：3.9x106 CIU/ml
A/Hyogo/73/2002 (H1N1)：5.6x107CIU/ml
A/Puerto Rico/8/34 (H1N1)：1.1x108CIU/ml
【００４０】
＜ウイルスの部分精製法＞
A/New Caledonia/20/99 (H1N1)について、部分精製ウイルスを作製した。上記方法にて調製したウイルス液を、60%グリセロールphosphate buffered saline（PBS）に20%グリセロールPBSを積み重ねた上に重層し、113,000g、4度で1時間遠心（日立製超遠心機使用）した。60%グリセロールPBSと20%グリセロールの間のウイルス層を採取し、100%グリセロールクッションの上に重層、113,000g、4度で1時間遠心（日立製超遠心機使用）して濃縮し、部分精製ウイルスとした。この操作により、ウイルス液を約100倍の濃度に精製濃縮した。
【００４１】
＜ウイルス粒子の破砕法＞
A/New Caledonia/20/99 (H1N1)のウイルス液を超音波（日本精機製作所）で5秒間処理、あるいは、等量の1% polyoxyethylene(10) octylphenol ether（Triton X-100、和光純薬）と混合し（最終濃度0.5%）、ウイルス粒子を破砕した。
【００４２】
[実施例１]サンプル混合条件での蛍光微粒子の検出
蛍光微粒子を０．０２％Ｔｗｅｅｎ２０水溶液中に懸濁し、２．８×１０12粒子／ｍｌより希釈系列を作成した。それぞれの懸濁液３０μｌを用いて、ＦＣＳ−１０１（東洋紡製）により微小空間蛍光強度を測定した。測定の際、サンプル混合手段として図１に示すマイクロシリンジの自動吐出システムを用いた。本システムは、シリンジのピストン駆動を一定速度で行い、微小内径のチューブ（内径０．５１４ｍｍ、内径面積０．２０７ｍｍ２）を通してサンプルを測定ステージの容器に送液することにより、容器上のサンプルを混合できる。マイクロシリンジのポンピング速度は、約１μＬ／秒に設定した（この速度で、流速は４．８３ｍｍ／秒となる）。
【００４３】
[比較例１]通常条件での蛍光微粒子の検出
サンプル混合を行わないこと以外は、実施例１と同じサンプル、同じ条件で蛍光微粒子のＦＣＳ−１０１による微小空間蛍光強度の測定を実施した。
［結果］
実施例１および比較例１の測定結果を、図２に示す。両者の結果を比較することにより、明らかに実施例１の方法で測定精度、測定感度が向上していることが見てとれる。実施例１の方法では２．８×１０8粒子／ｍｌまで測定可能であるのに対し、比較例１の方法では２．８×１０9粒子／ｍｌでも測定データのバラツキが大きく、測定可能とはいいがたい。したがって、サンプル混合条件で検出を行うことにより、蛍光物質の微小空間蛍光強度の測定による検出を高精度、高感度に行うことが可能である。
【００４４】
[実施例２]粘性の高いサンプルを対象としたサンプル混合条件での蛍光微粒子の検出
蛍光微粒子を、４０％グリセロールを含む０．０２％Ｔｗｅｅｎ２０水溶液中に懸濁し、２．８×１０12粒子／ｍｌより希釈系列を作成した。それぞれの懸濁液３０μｌを用いて、ＦＣＳ−１０１により微小空間蛍光強度を測定した。測定の際、サンプル混合手段として図１に示すマイクロシリンジの自動吐出システムを用いた。混合条件は、実施例１と同様に実施した。
【００４５】
[比較例２]粘性の高いサンプルを対象とした通常条件での蛍光微粒子の検出
サンプル混合を行わないこと以外は、実施例２と同じサンプル、同じ条件で蛍光微粒子のＦＣＳ−１０１による微小空間蛍光強度の測定を実施した。
［結果］
実施例２および比較例２の測定結果を、図３に示す。両者の結果を比較することにより、明らかに実施例１の方法で測定精度、測定感度が向上していることが見てとれる。実施例２の方法では２．８×１０9粒子／ｍｌまで測定可能であるのに対し、比較例２の方法では２．８×１０10粒子／ｍｌでも測定データのバラツキが大きく、測定可能とはいいがたい。実施例１と実施例２の結果、および比較例１と比較例２の結果から、粘性の高い溶液での測定感度は低くなる傾向にあるが、このような高粘性サンプルでも、サンプル混合条件で検出を行うことにより、蛍光物質の微小空間蛍光強度の測定による検出を高精度、高感度に行うことが可能である。
【００４６】
[実施例３]サンプル混合条件での蛍光標識糖タンパク質プローブによるインフルエンザウイルスの検出
糖タンパク質の一種であるフェチュインは、インフルエンザウイルスが結合しうる糖鎖構造を表面に複数持つことが一般的に知られている。インフルエンザウイルス（ニューカレドニア株）とフェチュインを混合し、遠心操作でインフルエンザウイルス粒子を沈殿させると、ウイルス粒子に結合したフェチュインが共沈することから、溶液中でウイルス粒子とフェチュインが複合体を形成することからもこれは明らかである。そこで、フェチュインに蛍光色素ローダミンを導入し、インフルエンザウイルス検出プローブとすることとした。フェチュインは、精製されたものが市販されている（例えば和光純薬）。フェチュインの蛍光基の導入には、ローダミン−N−ヒドロキシスクシンイミドエステル誘導体を用いた。ローダミン−N−ヒドロキシスクシンイミドエステル誘導体は、既知の方法により調製でき、また市販もされている（例えば、Molecular Probe社）。ローダミン−N−ヒドロキシスクシンイミドエステル誘導体５ｍｇ／ｍｌ濃度でＤＭＳＯに溶解し、８０μｌを１０ｍｇ／ｍｌ濃度のフェチュイン４００μｌと混合し、次いで１Ｍ重炭酸ナトリウム溶液を４０μｌ加えた。１時間室温で攪拌したのち、ゲルろ過法により反応後のフェチュインから過剰の蛍光標識試薬の除去を行った。蛍光基の導入量は、紫外可視光分光光度計により波長５７０ｎｍの吸収を測定することにより確認した。
ローダミン標識フェチュインをインフルエンザウイルス（Ｈｙｏｇｏ株）とリン酸バッファー生理食塩水（ＰＢＳ）中で混合し、ウイルス濃度１０７粒子／ｍｌより希釈列を作成した。１時間のインキュベーションの後、混合液３０μｌを用いてＦＣＳ−１０１により微小空間蛍光強度を測定した。測定の際、サンプル混合手段として図１に示すマイクロシリンジの自動吐出システムを用いた。混合条件は、実施例１と同様に実施した。
【００４７】
[比較例３]通常条件での蛍光標識糖タンパク質プローブによるインフルエンザウイルスの検出
サンプル混合を行わないこと以外は、実施例３と同じサンプル、同じ条件で蛍光微粒子のＦＣＳ−１０１による微小空間蛍光強度の測定を実施した。
［結果］
実施例３および比較例３の測定結果を図４に示す。横軸に蛍光測定時間、縦軸に蛍光強度を示している。両者の結果を比較することにより、明らかに実施例３の方法でシグナル頻度が向上していることが見てとれる（図４では、蛍光強度２００以上のシグナルが、比較例３は０に対し、実施例３は２シグナル。）。したがって、ウイルス溶液のような検体でも、サンプル混合条件で検出を行うことにより、蛍光物質の微小空間蛍光強度の測定による検出を高精度、高感度に行うことが可能である。
【００４８】
[実施例４]サンプル混合条件での蛍光標識抗体プローブによるインフルエンザウイルスの検出
ローダミン標識フェチュインの代わりに蛍光標識抗体を用い、ウイルス濃度１０８粒子／ｍｌより希釈列を作成したこと以外は、実施例３と同様に検討を実施した。インフルエンザウイルスは、ニューカレドニア株を用い、ＦＣＳ−１０１により微小空間蛍光強度を測定した。測定の際、サンプル混合手段として図１に示すマイクロシリンジの自動吐出システムを用いた。混合条件は、実施例１と同様に実施した。
【００４９】
[比較例４]通常条件での蛍光標識糖タンパク質プローブによるインフルエンザウイルスの検出
サンプル混合を行わないこと以外は、実施例４と同じサンプル、同じ条件で蛍光微粒子のＦＣＳ−１０１による微小空間蛍光強度の測定を実施した。
［結果］
実施例４および比較例４の測定結果を、図５に示す。横軸に蛍光測定時間、縦軸に蛍光強度を示している。両者の結果を比較することにより、明らかに実施例４の方法でシグナル頻度が向上していることが見てとれる（図５では、蛍光強度２００以上のシグナルが、比較例４は０に対し、実施例４は２シグナル。）。したがって、抗体を用いたウイルスの検出においても、サンプル混合条件で検出を行うことにより、蛍光物質の微小空間蛍光強度の測定による検出を高精度、高感度に行うことが可能である。
【００５０】
[実施例５]蛍光標識抗体プローブによるインフルエンザウイルスの検出II
一次抗体として、あらゆるインフルエンザウイルスを広範囲に漏れなく検出する目的で、抗A＆B型インフルエンザウイルスポリクローナル抗体(rabbit)を使用した。また、抗体の重鎖の不変領域に吸着する蛋白であるProteinAを蛍光物質Alexa546で標識したAlexa 546標識Protein A（インビトロジェン製）を０．６５μｍのフィルターで濾過し、非特異的高分子複合体を除去して使用した。インフルエンザウイルス（ニューカレドニア株）を10倍段階希釈して抗A&B型rabbitポリクローナル抗体を加えて室温で1時間反応させた後、Alexa 546標識Protein Aを加えて更に室温で1時間反応させ、実施例１と同様の混合条件にて測定した。
データ解析方法として、実施例５以降は以下の手法を採用した。
まず、測定時間１０秒で１ミリ秒毎の積算データを取得する。更に、測定を６回繰り返し、合計６万のデータを取得する。そして、全てのデータをカウント（数値）の大きい順に並べ替え、大きい数値よりトップ５０を選択し棒グラフを作成する。このグラフより、閾値を越えるデータが明瞭となる。
［結果］
サンプル混合条件において、図６に示す通り、ウイルス濃度１０４粒子／ｍｌまでの検出が可能となった。すなわち、抗A&B型インフルエンザウイルス抗体-Alexa 546標識Protein A複合体を検出プローブとした場合においても、サンプル混合条件で検出を行うことにより、蛍光物質の微小空間蛍光強度の測定による検出を高精度、高感度に行うことが可能である。
【００５１】
[実施例６]蛍光標識抗体プローブによるインフルエンザウイルスの検出III
現在、臨床現場で広く使用されているイムノクロマト法によるインフルエンザウイルス検出法では、通常、結果を得るまでに15ないし30分を必要とする。本発明の方法においては、インフルエンザウイルスとプローブの反応は瞬間的に起こるので、検出に要する時間を短縮できる可能性がある。そこで、本発明の方法が実際にどの程度の反応時間で測定可能か検討した。ウイルス濃度１０７粒子／ｍｌの濃度のインフルエンザウイルス（ニューカレドニア株）と抗A&B型rabbitポリクローナル抗体-Alexa 546標識Protein A複合体を混合し、６０、３０、１５および５分反応させた後、あるいは混合して即座に（反応時間０分）測定した。
［結果］
結果として、図７に示すように、反応時間が短くなるにつれてシグナルの強度は減少したが、反応時間０分でも十分に検出可能であることが明らかとなった。これは、迅速性が要求される診療現場において、本発明の方法によるウイルス検出の大きな優位点となりうる。
【００５２】
[実施例７]蛍光標識抗体プローブによるインフルエンザウイルスの検出IV
ProteinAの代わりに、ProteinGを蛍光物質Alexa546で標識したAlexa 546標識ProteinG（インビトロジェン製）を0.65 μm のフィルターで濾過し、非特異的高分子複合体を除去して使用し、それ以外は実施例５と同様の方法で、種々のインフルエンザウイルスの検出を試みた。
［結果］
結果として、図８に示すように、A型のH1N1亜型およびB型のウイルスはウイルス濃度１０５粒子／ｍｌまで、A型のH3N2亜型のウイルスについてはウイルス濃度１０４粒子／ｍｌまで検出が可能であった。
【００５３】
[実施例８]蛍光標識抗体プローブによるインフルエンザウイルスの検出Ｖ
インフルエンザが疑われる患者の鼻腔拭い液を得て、本発明の方法によるウイルスの検出を行なった。プローブとして抗A&B型rabbitポリクローナル抗体-Alexa 488標識Protein G複合体を用い、実施例６と同様の方法で、種々の実検体からインフルエンザウイルスの検出を試みた。
［結果］
細胞培養によりウイルスが分離された検体（陽性検体）、および分離されなかった検体（陰性検体）について、本方法で検出の可否を確認した。その結果をまとめて図９に示した。A型インフルエンザウイルスが分離されたすべての陽性検体について、本発明の方法でウイルス検出が可能であった。一方、すべての陰性検体について、ウイルスは検出されなかった。
【００５４】
[実施例９]蛍光標識抗体プローブによるインフルエンザウイルスの検出VI
本発明の方法によるウイルス検出に対し、実施例５〜８ではインフルエンザウイルスを漏れなく検出することを目標として抗A&B型rabbitポリクローナル抗体を使用してきた。イムノクロマト法を応用した市販のインフルエンザウイルス検出キットでは、ウイルスの型判定が可能な製品も開発されている。本発明の方法は、測定に必要な検体量が数十μｌと微量であることが特長の一つで、同じ臨床検体を複数のプローブを使用して測定し、精度を高めると同時にウイルスの型別判定が可能であると期待される。そこで、型および亜型特異的に反応するインフルエンザウイルス抗体を用い、ウイルスの識別測定を試みた。
抗A＆B型インフルエンザウイルスポリクローナル抗体(rabbit)の他に、抗A型インフルエンザウイルスポリクローナル抗体(goat)、抗B型インフルエンザウイルスポリクローナル抗体(goat)、抗A型H1亜型HA蛋白モノクローナル抗体(mouse)、抗A型H3亜型HA蛋白モノクローナル抗体(mouse)、抗B型(Victoria type)HA蛋白モノクローナル抗体(mouse)および抗B型(Yamagata type)HA蛋白モノクローナル抗体(mouse)にAlexa 488標識Protein Gを結合させプローブを作製し、A型のH1およびH3亜型のヒトからの分離株、H5およびH7のトリ由来ウイルス（弱毒株）、さらにヒトから分離されたB型ウイルスに対する反応性を調べた。
［結果］
以下の表１に示したように、抗A型、抗B型のポリクローナル抗体は、A型、B型のいずれのウイルスも検出したが、同じ型のウイルスに対してより強い反応性を示した。H1、H3いずれのHA蛋白に対する抗A型モノクローナル抗体もB型は検出せず、B型HA蛋白に対するモノクローナル抗体は抗Victoria type、抗Yamagata typeともに、同じ型のウイルスを感度良く検出した。抗A型H1亜型HA蛋白モノクローナル抗体がH1型のウイルスを検出できず、H5およびH7型ウイルスを検出したが、モノクローナル抗体は、そのエピトープ内の1アミノ酸が変異するだけで反応性を喪失することがあり、特異性が高い一方で、プローブとしての使用には注意を要することを示唆している。
【００５５】
【表１】
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【００５６】
(-は「反応なし」、+は「反応有り」、++は「強い反応あり」、ndは「測定せず」を示す。)
以上の結果により、使用する抗体を精査選定し、複数の抗体を使用することで、本発明の方法によるインフルエンザウイルスの型・亜型識別が可能であることを確認した。
【００５７】
[実施例１０]蛍光標識抗体プローブによるインフルエンザウイルスの検出VII
本発明による抗体を用いたインフルエンザウイルスの検出において、更なる感度の向上を目指し、測定時間をこれまでの設定の1分より延長し5分として測定を行なった。
［結果］
図１０に示すように、プローブとして抗A&B型rabbitポリクローナル抗体-Alexa 488標識Protein G複合体を用い、インフルエンザウイルス（ニューカレドニア株）を10倍段階希釈して検出限界を調べたところ、ウイルス濃度１０３粒子／ｍｌのウイルスが十分に検出可能であることが明らかとなった。
【図面の簡単な説明】
【００５８】
【図１】マイクロシリンジ自動吐出システムを用いた本発明の蛍光性物質検出システムの一例。図中の番号は：１．シリンジポンプ、２．中空チューブ３．共焦点光学系、４．共焦点様部位のイラスト、５．ＰＣシステムとモニターを示す。
【図２】実施例１および比較例１における、蛍光微粒子のＦＣＳ−１０１による微小空間蛍光強度の測定結果（□：実施例１、◆：比較例１）。バラツキの指標として標準偏差の幅をバーで示した。
【図３】実施例２および比較例２における、粘性の高い蛍光微粒子のＦＣＳ−１０１による微小空間蛍光強度の測定結果（□：実施例２、◆：比較例２）。バラツキの指標として標準偏差の幅をバーで示した。
【図４】実施例３および比較例３における、蛍光標識糖タンパク質（フェチュイン）とインフルエンザウイルスを混合した場合のＦＣＳ−１０１による微小空間蛍光強度の測定結果（蛍光強度の時間変動）。
【図５】実施例４および比較例４における、蛍光標識抗体プローブとインフルエンザウイルスを混合した場合のＦＣＳ−１０１による微小空間蛍光強度の測定結果（蛍光強度の時間変動）。
【図６】実施例５におけるインフルエンザウイルス測定結果。
【図７】実施例６におけるインフルエンザウイルス測定結果。
【図８】実施例７におけるインフルエンザウイルス測定結果。
【図９】実施例８におけるインフルエンザウイルス測定結果。
【図１０】実施例１０におけるインフルエンザウイルス測定結果。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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