(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
Ｇａｌ ４をコードする遺伝子、及びＵＡＳの下流に配列番号１〜４から選ばれる塩基配列のボツリヌス毒素をコードする遺伝子が組み込まれた配列が導入されており、ボツリヌス毒素をコードする遺伝子の発現に基づく麻痺又は運動障害の表現型を生じるトランスジェニックゼブラフィッシュ。
【請求項２】
請求項１記載のトランスジェニックゼブラフィッシュ又はその胚に、被検物質を作用させ、麻痺又は運動障害の程度を検出することを特徴とするボツリヌス毒素活性調節剤のスクリーニング方法。
【請求項３】
酵母転写因子Ｇａｌ ４をコードする遺伝子が導入されたトランスジェニックゼブラフィッシュ由来の受精卵に、ＵＡＳ配列の下流に配列番号１〜４から選ばれる塩基配列のボツリヌス毒素をコードする遺伝子を組み込んだプラスミドを注入することを特徴とする請求項１記載のトランスジェニックゼブラフィッシュの作製方法。
【請求項４】
酵母転写因子Ｇａｌ ４をコードする遺伝子が導入されたトランスジェニックゼブラフィッシュと、ＵＡＳ配列の下流に配列番号１〜４から選ばれる塩基配列のボツリヌス毒素をコードする遺伝子が導入されたトランスジェニックゼブラフィッシュとをかけあわせることを特徴とする請求項１記載のトランスジェニックゼブラフィッシュの作製方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ボツリヌス毒素遺伝子を有するトランスジェニックフィッシュ及びその利用に関する。
【背景技術】
【０００２】
ボツリヌス毒素は分子量が１５万ほどの蛋白質で、ボツリヌス菌が産生する毒素である。ボツリヌス毒素は神経筋接合部などでアセチルコリンの放出を妨げる働きをするが、作用は末梢性に限られ、筋弛緩・鎮痛作用などが確認されている。
その作用を利用して、医療用医薬品としてＡｌａｎ  Ｂ．Ｓｃｏｔｔにより、斜視に対し極めて微量のＡ型毒素が使用されたのを初め、多くの国で様々な疾患に用いられている。日本国内においてはＡ型ボツリヌス毒素製剤が注射剤として、１９９６年に眼瞼痙攣、２０００年に片側顔面痙攣、２００１年に痙性斜頸、２００９年には２歳以上の小児脳性麻痺患者における下肢痙縮に伴う尖足の適応で承認されている。また、２００６年まで、Ｂ型ボツリヌス毒素の臨床試験も行われていた。米国においては、斜視、痙性斜頸、眼瞼痙攣に加え、多汗症の適応に承認されている。
【０００３】
近年では医療用としてだけでなく、美容外科領域において筋弛緩作用を応用した「皺取り」や「輪郭補正（エラ取り）」の目的で使用されていることが多く、日本国内においても使用されている。
また、過活動性膀胱やアカラシアの治療にもボツリヌストキシンの局所注射が有効というデータがある。
【０００４】
ボツリヌス毒素には、Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、Ｅ、Ｆ及びＧの７種類の血清型があり、動物種により、その毒性、強度等が相違し、それぞれの毒性を検出する必要がある（非特許文献１、特許文献１参照）。ボツリヌス毒素の検出方法としては、マウスの腹腔内に毒素を投与し、その死亡を確認する方法、酵素抗体法（ＥＬＩＳＡ法）、イムノＰＣＲ法及び改良エンドペプチダーゼ法が知られている。しかし、マウス試験法は、多数のマウス実験施設が必要である等多くの労力と費用を要するとともに、死亡の確認であるため精度が低い。また酵素抗体法やエンドペプチダーゼ法は、感度の高い抗体が必要であることに加え、蛋白質を検出できるが毒素活性自体を検出できないという欠点がある（特許文献２）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特開２００５−３３６２０１号公報
【特許文献２】特開２００９−１３２６８６号公報
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】Ｊ．ＴＯＸＩＣＯＬ．−ＴＯＸＩＮ  ＲＥＶＩＥＷＳ，１８（１），１７−３４（１９９９）
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
従って、本発明の課題は、ボツリヌス毒素の蛋白質や抗体等ではなく、ボツリヌス毒素活性、すなわち神経筋接合部におけるアセチルコリン放出抑制作用を直接検出することのできる動物モデルを提供しようとするものである
【課題を解決するための手段】
【０００８】
そこで本発明者は、下等動物であり、１回の産卵で多数の個体を採取できる魚類に着目し、ボツリヌス毒素遺伝子の導入を試みたところ、該遺伝子が導入できるとともに、胚及び個体においてボツリヌス毒素遺伝子の発現に基づく、麻痺又は運動障害の表現型が明確に生じることを見出し、本発明を完成した。
【０００９】
すなわち、本発明は、ボツリヌス毒素をコードする遺伝子が導入され、該遺伝子が発現していることを特徴とするトランスジェニックフィッシュを提供するものである。
【００１０】
また、本発明は、上記のトランスジェニックフィッシュ又はその胚に、被検物質を作用させ、麻痺又は運動障害の程度を検出することを特徴とするボツリヌス毒素活性調節剤のスクリーニング方法を提供するものである。
【００１１】
また、本発明は、酵母転写因子Ｇａｌ４をコードする遺伝子が導入されたトランスジェニックフィッシュ由来の受精卵に、ＵＡＳ配列の下流にボツリヌス毒素をコードする遺伝子を組み込んだプラスミドを注入することを特徴とする上記のトランスジェニックフィッシュの作製方法を提供するものである。
さらに、本発明は、酵母転写因子Ｇａｌ４をコードする遺伝子が導入されたトランスジェニックフィッシュと、ＵＡＳ配列の下流にボツリヌス毒素をコードする遺伝子が導入されたトランスジェニックフィッシュとをかけあわせることを特徴とする上記のトランスジェニックフィッシュの作製方法を提供するものである。
【発明の効果】
【００１２】
本発明のトランスジェニックフィッシュは、ボツリヌス毒素活性の本体である末梢性の麻痺又は運動障害を発現するので、これを用いれば導入した遺伝子の毒素活性自体を正確かつ簡便に検出することができる。また、ボツリヌス毒素活性自体を抑制する物質あるいは当該毒素活性を増強する物質（調節物質）をスクリーニングすることができる。
【図面の簡単な説明】
【００１３】
【図１】コドンをゼブラフィッシュ向けに最適化したボツリヌス毒素軽鎖遺伝子の構築を示す図である。
【図２】ゼブラフィッシュ型ボツリヌス毒素をもつプラスミドＤＮＡをＧａｌ４を母性発現する胚に微量注入により導入する手法を示す図である。
【図３】本発明トランスジェニックフィッシュの運動性（Ａ）及びボツリヌス毒素遺伝子の最適化の有無によるＧＦＰ発現性及び毒素活性発現性（Ｂ）を示す図である。
【図４】神経細胞でＧａｌ４を発現するトランスジェニックフィッシュの作製（ＵＡＳ：ＧＦＰリポーターフィッシュとかけあわせることにより視覚化）を示す図である。
【図５】神経細胞でＧａｌ４を発現するトランスジェニックフィッシュとＵＡＳの下流にゼブラフィッシュ型ボツリヌス毒素遺伝子をもつトランスジェニックフィッシュをかけあわせて二重トランスジェニックを作製することを示す図である。
【図６】二重トランスジェニックフィッシュの運動障害又は麻痺の状態を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００１４】
本発明のトランスジェニックフィッシュは、ボツリヌス毒素をコードする遺伝子が導入されており、該遺伝子が発現していることを特徴とする。本発明においてトランスジェニックフィッシュには、ボツリヌス毒素遺伝子の発現に基づく麻痺又は運動障害等の表現型を生じている限り、ボツリヌス毒素をコードする遺伝子がゲノム中に導入されている場合、及びプラスミド等のような形態で細胞内に一過性に保持している場合も含まれる。
【００１５】
ボツリヌス毒素（Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ  ｔｏｘｉｎ）は、分子量が１５万ほどの蛋白質で、ボツリヌス菌が産生する毒素である。ＡからＧまで７種類の異なるタイプが知られている。図１はタイプＢ蛋白質の構造を示している。これらボツリヌス毒素は、軽鎖（ｌｉｇｈｔ  ｃｈａｉｎ）（Ｂの場合は、１番目から４４０番目のアミノ酸まで）と重鎖（ｈｅａｖｙ  ｃｈａｉｎ）からなる。Ｌｉｇｈｔ  ｃｈａｉｎは細胞内で、ｓｙｎａｐｔｏｂｒｅｖｉｎ、ｓｙｎｔａｘｉｎ、ＳＮＡＰ２５などの蛋白質の切断活性をもつ。Ｈｅａｖｙ  ｃｈａｉｎは毒素蛋白質が細胞内へ侵入する際に必要とされる。
本発明に用いられる遺伝子としては、タイプＡからタイプＧのいずれの蛋白質をコードする遺伝子でもよいが、これらの蛋白質をコードする遺伝子のうち、その機能から、少なくとも軽鎖をコードする遺伝子を含むものが好ましい。
タイプＡ〜Ｇの蛋白質をコードする遺伝子は、公知である。
【００１６】
ボツリヌス毒素をコードする遺伝子は、細菌由来であり、そのままでは魚類で発現しないことがある。そこで、発現させるアミノ酸配列は変更させずに、同じアミノ酸をコードするコドンを魚類型に最適化するのが、望ましい。当該最適化は常法により行うことができる。タイプＡ、Ｂ、Ｃ及びＥのゼブラフィッシュ型に最適化した遺伝子を配列番号１〜４に示す。
【００１７】
ボツリヌス毒素をコードする遺伝子は、効率良く発現させるために、Ｇａｌ４−ＵＡＳシステム発現制御系、すなわち、転写制御因子Ｇａｌ４とその認識配列ＵＡＳとからなる遺伝子の発現制御下にあるのが好ましい。より詳細には、ボツリヌス毒素をコードする遺伝子は認識配列ＵＡＳの下流に組み込むのが好ましい。この融合遺伝子をＧａｌ４を発現するフィッシュに導入することにより、Ｇａｌ４−ＵＡＳシステム発現系によりボツリヌス毒素が発現するトランスジェニックフィッシュが作製できる。このトランスジェニックフィッシュには、Ｇａｌ４をコードする遺伝子と、ＵＡＳの下流にボツリヌス毒素をコードする遺伝子とが導入されている。
【００１８】
本発明のトランスジェニックフィッシュは、ボツリヌス毒素遺伝子が発現している点が重要である。ボツリヌス毒素遺伝子の発現の形態としては、胚又は個体において麻痺又は運動障害が生じる。より具体的には、運動性が損なわれる。従って、ボツリヌス毒素活性自体が簡便かつ適確に判断できる。
【００１９】
本発明のトランスジェニックフィッシュとしては、魚類であれば特に限定されないが、飼育がしやすく、１回の産卵数が多い魚類が好ましく、小型の魚類がより好ましく、飼育の容易性から小型の淡水魚が好ましく、特にゼブラフィッシュ、メダカが好ましい。
【００２０】
本発明のトランスジェニックフィッシュの作製方法は、特に限定されないが、転写制御因子であるＧａｌ４をコードする遺伝子と、ＵＡＳ配列の下流にボツリヌス毒素をコードする遺伝子を組み込んだ融合遺伝子とを導入する方法が好ましく、例えば（ａ）酵母転写因子Ｇａｌ４をコードする遺伝子が導入されたトランスジェニックフィッシュ由来の受精卵に、ＵＡＳ配列の下流にボツリヌス毒素をコードする遺伝子を組み込んだプラスミドを注入する方法；又は（ｂ）酵母転写因子Ｇａｌ４をコードする遺伝子が導入されたトランスジェニックフィッシュと、ＵＡＳ配列の下流にボツリヌス毒素をコードする遺伝子が導入されたトランスジェニックフィッシュとをかけあわせる方法が好ましい。
【００２１】
Ｇａｌ４をコードする遺伝子が導入されたトランスジェニックフィッシュは、例えばＧｅｎｅｔｉｃ  ｄｉｓｓｅｃｔｉｏｎ  ｏｆ  ｎｅｕｒａｌ  ｃｉｒｃｕｉｔｓ  ｂｙ  Ｔｏｌ２  ｔｒａｎｓｐｏｓｏｎ−ｍｅｄｉａｔｅｄ  Ｇａｌ４  ｇｅｎｅ  ａｎｄ  ｅｎｈａｎｃｅｒ  ｔｒａｐｐｉｎｇ  ｉｎ  ｚｅｂｒａｆｉｓｈ  Ａｓａｋａｗａ，Ｋ．，Ｓｕｓｔｅｒ，Ｍ．Ｌ．，Ｍｉｚｕｓａｗａ，Ｋ．，Ｎａｇａｙｏｓｈｉ，Ｓ．，Ｋｏｔａｎｉ，Ｔ．，Ｕｒａｓａｋｉ，Ａ．，Ｋｉｓｈｉｍｏｔｏ，Ｙ．，Ｈｉｂｉ，Ｍ．，ａｎｄ  Ｋａｗａｋａｍｉ，Ｋ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  １０５，１２５５−１２６０（２００８）（非特許文献２）に記載してある遺伝子トラップ法及びエンハンサートラップ法により作製できる。
【００２２】
一方、ＵＡＳの下流にボツリヌス毒素をコードする遺伝子を組み込んだプラスミドとしては、例えばトランスポゾン転移ベクター（図１）が挙げられる。このとき、ボツリヌス毒素をコードする遺伝子は、前記のように、フィッシュ型に最適化するのが好ましい。また、遺伝子の発現を確認するために、ＧＦＰ、ＲＦＰ等の蛍光蛋白質をコードする遺伝子と同時に組み込んでもよい。
【００２３】
前記受精卵へのプラスミドの注入は、通常のマイクロインジェクション法により行うのが好ましい。
【００２４】
また、（ｂ）法に用いるＵＡＳ配列の下流にボツリヌス毒素をコードする遺伝子が導入されたトランスジェニックフィッシュは、例えば、前記ＵＡＳ配列の下流にボツリヌス毒素をコードする遺伝子を組み込んだトランスポゾン転移ベクターを、通常のフィッシュの受精卵に注入することにより作製できる。
【００２５】
（ｂ）法における、酵母転写因子Ｇａｌ４をコードする遺伝子が導入されたトランスジェニックフィッシュと、ＵＡＳ配列の下流にボツリヌス毒素をコードする遺伝子が導入されたトランスジェニックフィッシュとのかけあわせは、魚類であるから、体外受精でよい。
【００２６】
（ｂ）法の場合には、両方のトランスジェニックフィッシュをそれぞれ作製して飼育しておけば、必要に応じて、これらの雄と雌を用いて本発明のボツリヌス毒素遺伝子を発現するフィッシュを作製することができる。
【００２７】
作製された本発明のトランスジェニックフィッシュは、胚及び個体においてボツリヌス毒素活性に基づく麻痺や運動障害を生じるので、肉眼で簡便かつ正確に、ボツリヌス毒素活性の有無が確認できる。また魚は、１回の産卵数が多く、マウス等に比べて数多くの実験が可能である。
【００２８】
本発明のトランスジェニックフィッシュ又はその胚に、被検物質を作用させ、麻痺又は運動障害の程度を検出すれば、ボツリヌス毒素活性調節剤のスクリーニングが可能である。ここで被検物質は、胚やフィッシュの飼育液に添加すればよく、添加時期は制限されない。麻痺又は運動障害が軽減又は消失する場合には、その被検物質はボツリヌス毒素活性抑制作用を有すると判定できる。一方、麻痺又は運動障害が増強する場合には、その被検物質はボツリヌス毒素活性増強作用を有すると判定できる。
【００２９】
本発明トランスジェニックフィッシュに導入する遺伝子を、ボツリヌス毒素遺伝子ｔｙｐｅ  Ｂあるいはｔｙｐｅ  Ｃのアミノ酸を改変することにより、活性が変わった（強くあるいは弱く）ボツリヌス毒素をスクリーニングすることができる。
【実施例】
【００３０】
次に実施例を挙げて本発明を詳細に説明する。
【００３１】
実施例１
（１）ｔｙｐｅ  Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｅのｌｉｇｈｔ  ｃｈａｉｎをコードするＤＮＡを合成した。その際に、ゼブラフィッシュにおいて最大限効率よく翻訳されるように、それら遺伝子のコドンをゼブラフィッシュに最適化した。具体的には、配列番号１〜４のように改変した。このゼブラフィッシュ最適化ボツリヌス毒素のｌｉｇｈｔ  ｃｈａｉｎ遺伝子をＧＦＰと融合した。これは毒素蛋白質の発現を蛍光で可視化するためである。その融合蛋白質遺伝子を酵母転写因子Ｇａｌ４の認識配列（ＵＡＳ）の下流に組み込んだプラスミドを作製した（図１）。
【００３２】
（２）トランスポゾン転移ベクターを用いた、前記の非特許文献２に記載の方法により、メスの生殖細胞でＧａｌ４を発現するトランスジェニックフィッシュ系統を作製した。この系統のメスをかけあわせて得られる受精卵中には、Ｇａｌ４ｍＲＮＡ及び蛋白質が存在する。この受精卵に、上記のプラスミドを微量注入した。微量注入された胚や稚魚においては、Ｇａｌ４によりＵＡＳ下流につないだゼブラフィッシュに最適化してボツリヌス毒素ＧＦＰ融合遺伝子が発現される（図２）。コントロールとしてコドンを最適化していないボツリヌス菌由来のものをそのまま微量注入した。
【００３３】
（３）ゼブラフィッシュ最適化ボツリヌス毒素ＧＦＰ融合遺伝子が発現した胚及び稚魚は麻痺の表現型を示した（図３Ａ）。タイプＡ、Ｂ、Ｃ、Ｅともにコドンを細菌型からゼブラフィッシュ型に最適化することにより、ゼブラフィッシュ胚及び稚魚における発現が増加した（図３Ｂ中の緑色のバー）。また、ｔｙｐｅ  Ｂとｔｙｐｅ  Ｃが、非常に有効で、強く麻痺及び運動障害を引き起こすことを発見した（図３Ｂ中の黒いバー）。
【００３４】
実施例２
上述の方法では、その都度、プラスミドＤＮＡの受精卵への微量注入を必要とする。ゼブラフィッシュ受精卵への微量注入は習熟した者ならば、１日に数百個の受精卵に行うことは可能であるが、それでもある程度の労力を必要とする。この問題を回避するために、上述の改変型ｔｙｐｅ  Ｂあるいはｔｙｐｅ  Ｃ遺伝子を、ゲノムに組み込んだトランスジェニックフィッシュを、Ａ  ｔｒａｎｓｐｏｓｏｎ−ｍｅｄｉａｔｅｄ  ｇｅｎｅ  ｔｒａｐ  ａｐｐｒｏａｃｈ  ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｓ  ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｔａｌｌｙ  ｒｅｇｕｌａｔｅｄ  ｇｅｎｅｓ  ｉｎ  ｚｅｂｒａｆｉｓｈ．Ｋａｗａｋａｍｉ，Ｋ．，Ｔａｋｅｄａ，Ｈ．，Ｋａｗａｋａｍｉ，Ｎ．，Ｋｏｂａｙａｓｈｉ，Ｍ．，Ｍａｔｓｕｄａ，Ｎ．，ａｎｄ  Ｍｉｓｈｉｎａ，Ｍ．Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｌ  Ｃｅｌｌ  ７，１３３−１４４（２００４）に記載のトランスポゾン転移ベクターを用いる方法で作製した。同時に、神経細胞においてＧａｌ４を発現するトランスジェニックフィッシュ系統を、トランスポゾン転移ベクターを用いた、前記の非特許文献２に記載の方法で作製した（図４：Ｇａｌ４−ｄｅｌｔａＡ、Ｇａｌ４−２３３Ａ、Ｇａｌ４−８１Ｂ、Ｇａｌ４−１６４Ｂ、Ｇａｌ４−１５５Ａ、Ｇａｌ４−３９Ａ）。これらＧａｌ４発現系統とＵＡＳの下流に改変型ｔｙｐｅ  Ｂあるいはｔｙｐｅ  Ｃ遺伝子を組み込んだトランスジェニックフィッシュ系統をかけあわせて得られた胚あるいは稚魚において神経特異的にゼブラフィッシュ最適化ボツリヌス毒素が発現される（図５）。
図６は、二重トランスジェニック胚における運動障害、麻痺の表現型を示す。異なるＧａｌ４発現トランスジェニックフィッシュ系統とかけあわせることにより、さまざまな程度の運動障害、麻痺の表現型が観察されることを見いだした。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【配列表】
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