(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
緩衝化された体液増量剤溶液であって、外科的処置または治療によりヒトまたは動物の身体を治療するための方法に使用される、緩衝化された体液増量剤溶液において、前記緩衝化された体液増量剤溶液は、
ｉ）、Ｎ，Ｎ−ビス（２−ヒドロキシエチル）−２−アミノエタンスルホン酸と、
ｉｉ）５：１〜１：１のモル濃度比のカルシウムイオンおよびマグネシウムイオンと、を含んでなり、
前記緩衝化された体液増量剤溶液は血漿増量剤を含んでいない、緩衝化された体液増量剤溶液。
【請求項２】
緩衝化された体液増量剤溶液であって、対象者の細胞外液の損失の治療において使用される、緩衝化された体液増量剤溶液において、前記緩衝化された体液増量剤溶液は、
ｉ）、Ｎ，Ｎ−ビス（２−ヒドロキシエチル）−２−アミノエタンスルホン酸と、
ｉｉ）５：１〜１：１のモル濃度比のカルシウムイオンおよびマグネシウムイオンと、を含んでなり、前記緩衝化された体液増量剤溶液は血漿増量剤を含んでいない、緩衝化された体液増量剤溶液。
【請求項３】
緩衝化された体液増量剤溶液であって、血液量減少症の治療において使用するための、熱傷の治療において使用するための、血液量増量剤として使用するための、再灌流傷害の防止もしくは軽減のうち少なくともいずれか一方において使用するための、体液補給治療薬として使用するための、外科的処置を受けている対象者の腹腔の灌流において使用するための、治療薬、検査薬、もしくは相助作用剤のうち少なくともいずれかを対象者への血管内または血管外送達において使用するための、又は、治療薬、検査薬、もしくは相助作用剤のうち少なくともいずれかを対象者のリンパ系に送達する際に使用するための、緩衝化された体液増量剤溶液において、前記緩衝化された体液増量剤溶液は、
ｉ）、Ｎ，Ｎ−ビス（２−ヒドロキシエチル）−２−アミノエタンスルホン酸と、
ｉｉ）５：１〜１：１のモル濃度比のカルシウムイオンおよびマグネシウムイオンと、を含んでなり、前記緩衝化された体液増量剤溶液は血漿増量剤を含んでいない、緩衝化された体液増量剤溶液。
【請求項４】
送達は、血管内、腹腔内、皮内、経口、筋肉内または局所経路を介した投与によって行われる、請求項３に記載の緩衝化された体液増量剤溶液。
【請求項５】
ｉ）、Ｎ，Ｎ−ビス（２−ヒドロキシエチル）−２−アミノエタンスルホン酸と、
ｉｉ）５：１〜１：１のモル濃度比のカルシウムイオンおよびマグネシウムイオンと、を含んでなり、血漿増量剤を含んでいない緩衝化された体液増量剤溶液であって、
（ａ）熱傷を負った対象者の細胞外液および間質液の損失の治療、
（ｂ）外科的処置を受けている対象者の腹部もしくは胸部の臓器もしくは組織のｉｎ  ｓｉｔｕにおける洗浄、または
（ｃ）急性腎不全もしくは急性毒性症状を有する対象者の腹膜透析中の腹腔の灌流、
において使用するための緩衝化された体液増量剤溶液。
【請求項６】
前記Ｎ，Ｎ−ビス（２−ヒドロキシエチル）−２−アミノエタンスルホン酸は、１〜１２ｍｍｏｌ／Ｌの濃度で存在する、請求項１乃至５のいずれか一項に記載の緩衝化された体液増量剤溶液。
【請求項７】
クエン酸緩衝剤および乳酸緩衝剤を含まない、請求項１〜６のいずれか一項に記載の緩衝化された体液増量剤溶液。
【請求項８】
カルシウムイオンおよびマグネシウムイオンのモル濃度比は４：１〜２：１である、請求項１〜７のいずれか一項に記載の緩衝化された体液増量剤溶液。
【請求項９】
０．１〜２．５ｍｍｏｌ／Ｌのカルシウムイオン、または０．４〜２５ｍｍｏｌ／Ｌのマグネシウムイオンを含んでなる、請求項１〜８のいずれか一項に記載の緩衝化された体液増量剤溶液。
【請求項１０】
１．１〜１．４ｍｍｏｌ／Ｌのカルシウムイオンと、０．２〜０．６ｍｍｏｌ／Ｌのマグネシウムイオンと、を含んでなる、請求項１乃至９のいずれか一項に記載の緩衝化された体液増量剤溶液。
【請求項１１】
血清または血清抽出物を含まない、請求項１〜１０のいずれか一項に記載の緩衝化された体液増量剤溶液。
【請求項１２】
２１〜３５ｍｍｏｌ／Ｌの炭酸水素イオンを含んでなる、請求項１〜１１のいずれか一項に記載の緩衝化された体液増量剤溶液。
【請求項１３】
（ａ）１００〜１５０ｍｍｏｌ／Ｌのナトリウムイオン、
（ｂ）２．５〜６．２ｍｍｏｌ／Ｌのカリウムイオン、
（ｃ）９６〜１２６ｍｍｏｌ／Ｌの塩化物イオン、
（ｄ）２〜１１ｍｍｏｌ／Ｌのグルコース、
（ｅ）５０〜１５０μｍｏｌ／Ｌのグリセロール、
（ｆ）７〜１５μｍｏｌ／Ｌのコリン、
（ｇ）５〜４００μｍｏｌ／Ｌのグルタミン酸、
（ｈ）５〜２００μｍｏｌ／Ｌのアスパラギン酸、
（ｉ）１００〜２０００μｍｏｌ／Ｌのグルタミン、
（ｊ）１５〜２１５μｍｏｌ／Ｌのピログルタミン酸、
（ｋ）２０〜２００μｍｏｌ／Ｌのアルギニン、
（ｌ）１〜１２０ｎｍｏｌ／Ｌのチアミンピロリン酸、
（ｍ）４０〜７０μｍｏｌ／ＬのＤ−もしくはＤＬもしくはＬ−カルニチン、および
（ｎ）５〜２００ｍＩ．Ｕ．／Ｌのブタもしくはヒトのインスリン
のうちの１以上をさらに含んでなる、請求項１〜１３のいずれか一項に記載の緩衝化された体液増量剤溶液。
【請求項１４】
抗生物質成分を含んでなる、請求項１〜１３のいずれか１項に記載の緩衝化された体液増量剤溶液。
【請求項１５】
抗生物質成分は１０〜１５０ｍｇ／Ｌのクロラムフェニコールである、請求項１４に記載の緩衝化された体液増量剤溶液。
【請求項１６】
４〜３８℃の温度範囲においてｐＨが７．０５〜７．５である、請求項１〜１５のいずれか１項に記載の緩衝化された体液増量剤溶液。
【請求項１７】
前記溶液は代用血液又は血管外液代用物である、請求項１〜１６のいずれか一項に記載の緩衝化された体液増量剤溶液。
【請求項１８】
前記溶液は腹膜液代用物である、請求項１７に記載の緩衝化された体液増量剤溶液。
【請求項１９】
請求項１〜１８のいずれか一項に記載の緩衝化された体液増量剤溶液の濃縮貯蔵溶液であって、該濃縮貯蔵溶液は１〜５０倍に濃縮されている、濃縮貯蔵溶液。
【請求項２０】
炭酸水素イオンを含まない、請求項１９に記載の濃縮貯蔵溶液。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、概して体液増量剤に関する。特に本発明は、血液または血管外体液の体積を増量、維持または補給する際に使用される生理学的液体媒体に関する。本発明は静脈内および血管外（例えば腹膜）への注入手法を含む様々な医学的適用における利用が見出されるであろうと想定される。
【背景技術】
【０００２】
血液量減少症（ｈｙｐｏｖｏｌｅｍｉａ）としても知られる血液量の損失は、例えば、物理的傷害、外科手術、内出血または熱傷を含む多くの原因から生じうる。血液量減少症はまた、利尿剤および血管拡張剤のような薬物の摂取によって引き起こされる場合もある。
【０００３】
血液量減少症に起因する大幅な血液量の損失は、迅速に治療しなければ致命的となりうる。そのような失血は、血圧の低下、ならびに重要な臓器および組織への血液（およびそれに伴う酸素）の不可欠な供給の低減に結びつく。従って、血液量減少症は、虚血、多臓器不全、腎臓損傷、脳損傷、および最終的には死亡につながる可能性がある。
【０００４】
血液量減少症は、出血を伴う事態の後で、失われた血液の代用として結晶状またはコロイド状の液体を用いて対象者を灌流することにより治療される。これらの代用体液は、血液量を増し、再水和を引き起こし、血圧を正常化するように作用する。
【０００５】
目下知られている代用血液または血液量増量剤の例には、乳酸加リンゲル液、ハルトマンの溶液、ＨＥＳ（ヒドロキシエチルスターチ）および等張食塩水（塩化ナトリウム）が含まれる（非特許文献１〜４）。
【０００６】
現在の血液量増量剤は、その血液量を回復する能力にもかかわらず、再灌流傷害として知られる重篤かつ多くの場合致命的な症状を防止するという点では有効でない。この現象は、重篤な血液量減少症となった人において観察され、重要な臓器（肺、腎臓、肝臓など）の損傷という形で現われる。再灌流傷害の有害な影響は、通常は血液量増量剤を用いた灌流後１〜３日の間に観察される。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００７】
【非特許文献１】Ｃｈｉａｒａ  ｅｔ  ａｌ．；Ｃｒｉｔ  Ｃａｒｅ  Ｍｅｄ．２００３；３１（７）：１９１５−２２
【非特許文献２】Ｒｈｅｅ  ｅｔ  ａｌ．；Ｊ．Ｔｒａｕｍａ．１９９８；４４（２）：３１３−３１９
【非特許文献３】Ｊｅｒｎｉｇａｎ  ｅｔ  ａｌ．；Ａｍ  Ｓｕｒｇ．２００４；７０（１２）：１０９４−８
【非特許文献４】Ｖｉａ  ｅｔ  ａｌ．；Ｊ．Ｔｒａｕｍａ．２００１；５０：１０７６−８２
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
本発明者らは、失血、ならびに血液量減少症および重篤な熱傷に起因する間質液および細胞外液の損失を補うことができる、さらなる溶液を開発する必要を認めている。さらに、血液量減少症の対象者における再灌流傷害の発生を防止または低減するという点で有効な治療を開発する必要もある。
【０００９】
上記に加えて、十分な量の血管外間質液を維持する必要もある。細胞を浸しかつ取り囲むこの液体は、組織および臓器のホメオスタシス維持にとって不可欠であり、また、とりわけ細胞に物質を送達し、代謝廃棄物を除去し、かつ有効な細胞間通信を促進する手段として機能する。
【００１０】
本発明はさらに、代用体液治療が身体臓器内部の浮腫状態をもたらすことによって簡単に再灌流傷害の発生を増大させてしまうという重大かつ重要な問題に取り組むものである。本発明は、あらゆる局面において、ただし最も重要なこととしては張性および浸透圧重量モル濃度の点で間質液の組成に適合し、かつ、リンパ系と協力して血管外腔と間質相との間のより自然な動的流体交換を促進することによって周囲組織における浮腫の発生を防止するであろう、生理学的に平衡状態の液体を提供することに関する。
【課題を解決するための手段】
【００１１】
１つの態様では、本発明は、非無機リン酸で緩衝化された体液増量剤溶液、すなわち緩衝剤が無機リン酸緩衝剤以外の生理学的に許容可能な緩衝剤である緩衝化された体液増量剤溶液であって、５：１〜１：１の濃度比でカルシウムイオンおよびマグネシウムイオンを含んでなる溶液、を提供する。
【００１２】
別の態様では、本発明は、生理学的に許容可能なＮ−置換アミノスルホン酸緩衝剤、特に２０℃で７．１〜７．５の水溶液中ｐＫａ値を有するものから成る群から選択される、最も好ましくはＮ−トリス（ヒドロキシメチル）メチル−２−アミノエタンスルホン酸（ＴＥＳ）、３−（Ｎ−モルホリノ）プロパンスルホン酸（ＭＯＰＳ）、Ｎ，Ｎ−ビス（２−ヒドロキシエチル）−２−アミノエタンスルホン酸（ＢＥＳ）およびこれらの組み合わせから成る群から選択される非リン酸緩衝剤を含んでなる、体液増量剤溶液を提供する。
【００１３】
さらに別の態様では、本発明は、５：１〜１：１の濃度比でカルシウムイオンおよびマグネシウムイオンを含んでなり、かつ生理学的に許容可能なＮ−置換アミノスルホン酸緩衝剤、特に２０℃で７．１〜７．５の水溶液中ｐＫａ値を有するものから成る群から選択される、最も好ましくはＴＥＳ、ＭＯＰＳ、ＢＥＳおよびこれらの組み合わせから成る群から選択される非リン酸緩衝剤をさらに含んでなる、体液増量剤溶液を提供する。
【００１４】
１つの実施形態では、非リン酸緩衝剤は１〜１２ｍｍｏｌ／Ｌ、好ましくは約５ｍｍｏｌ／Ｌの濃度で存在する。
本発明の体液増量剤溶液は、４：１〜２：１、より好ましくは約３：１の濃度比でカルシウムイオンおよびマグネシウムイオンを含んでなることが好ましい。
【００１５】
好ましくは、本発明の体液増量剤溶液は、０．１〜２．５ｍｍｏｌ／Ｌのカルシウムイオンまたは０．４〜２５ｍｍｏｌ／Ｌのマグネシウムイオンのうち少なくともいずれか一方を含んでなる。２５ｍｍｏｌ／Ｌ近くの高濃度のマグネシウムイオンは、心筋保護の目的で溶液を改変するために有用であるが、体液増量剤溶液としての通常の使用には、以下に示す濃度が推奨される。
【００１６】
１つの実施形態では、体液増量剤溶液は、１．０〜２．５ｍｍｏｌ／Ｌ、好ましくは１．１〜１．４ｍｍｏｌ／Ｌ、より好ましくは１．２〜１．３ｍｍｏｌ／Ｌ、さらにより好ましくは約１．２５ｍｍｏｌ／Ｌの濃度のカルシウムイオンを含んでなる。
【００１７】
本発明の体液増量剤溶液は、好ましくは０．２〜０．６ｍｍｏｌ／Ｌの濃度のマグネシウムイオンを含んでなり、より好ましくは０．３〜０．５ｍｍｏｌ／Ｌ、さらにより好ましくは約０．４５ｍｍｏｌ／Ｌのマグネシウムイオンを含んでなる。
【００１８】
１つの実施形態では、カルシウムイオンおよびマグネシウムイオンは、それぞれ約１．２５ｍｍｏｌ／Ｌおよび約０．４５ｍｍｏｌ／Ｌの濃度で存在する。
１つの実施形態では、本発明の体液増量剤溶液は、血液量の増量または補給のうち少なくともいずれか一方を行うための代用血液である。さらに別の実施形態では、体液増量剤は血管外液代用物、例えば間質液代用物である。
【００１９】
上記に加えて、本発明はさらに、本明細書中で定義される溶液の濃縮形態も包含する。例えば１〜５０×、好ましくは５〜２０×濃縮物が含まれる。１×濃度すなわち作業濃度の溶液を提供するためには、５×、１０×、２０×および５０×の濃縮物にはそれぞれ、濃縮物１体積に加えるための４、９、１９および４９体積の水と、希釈された１×溶液１リットル当たり２．１ｇ相当の炭酸水素ナトリウムとが必要である。
【００２０】
別の態様では、本発明は、医薬および血液量増量剤として使用するための本明細書中で定義されるような溶液を提供する。
さらなる態様では、本発明は、血液量減少症または熱傷のうち少なくともいずれか一方の治療における使用、および再灌流傷害の防止または軽減のうち少なくともいずれか一方における使用のための、本明細書中で定義されるような溶液を提供する。
【００２１】
さらに別の態様では、本発明は、（ａ）補液療法、（ｂ）外科的処置を受けている対象者の体腔（例えば腹腔または胸腔）の灌流、または（ｃ）治療薬、検査薬、もしくは相助作用剤のうち少なくともいずれかの、対象者への血管内もしくは血管外送達、のうち少なくともいずれかにおいて使用するための本明細書中で定義されるような溶液を提供する。
【００２２】
本発明はさらに、例えば、血液量減少症の治療用、または熱傷を負った対象者の細胞外液および間質液の損失の治療用の、医薬および血液量増量剤を製造するための、本明細書中で定義されるような溶液の使用法も包含する。
【００２３】
本発明はさらに、（ａ）熱傷を負った対象者の間質液の損失の治療、（ｂ）対象者における呼吸性アシドーシスまたは代謝性アシドーシスのうち少なくともいずれか一方の治療、（ｃ）急性腎不全もしくは急性毒性症状を有する対象者の腹膜透析中の腹腔の灌流、または（ｃ）再灌流傷害の防止もしくは軽減のうち少なくともいずれか一方、のための医薬を製造するための、本明細書中で定義されるような溶液の使用法を提供する。
【００２４】
さらに別の態様では、本発明は、治療薬、検査薬、もしくは相助作用剤のうち少なくともいずれか、例えば少なくとも１つの幹細胞、ペプチドもしくはゲノム由来のタンパク質のような生物学的作用物質、を対象者に送達するための、本発明の溶液の使用法を包含する。
【００２５】
好ましい実施形態では、送達は、血管内、腹腔内、皮内、経口、筋肉内または局所経路を介した投与によって行われる。任意選択で、送達は対象者のリンパ系への投与によって行われる。
【００２６】
さらに別の態様では、本発明は、血液量減少症または熱傷のうち少なくともいずれか一方を治療する方法、および再灌流傷害の防止もしくは軽減のうち少なくともいずれか一方を行う方法を包含し、これらの方法は、該方法を必要とする対象者に、有効な量の本明細書中で定義されるような溶液を投与することを含んでなる。
【００２７】
好ましい実施形態では、血液量減少症は脱水または熱傷または出血のうち少なくともいずれかに起因する。別の実施形態では、血液量減少症は薬物誘導性である。
さらなる態様では、本発明は、対象者に対して行なわれる外科的処置の間に組織または臓器のうち少なくともいずれか一方の生理的ホメオスタシスをｉｎ  ｓｉｔｕで維持する方法であって、前記組織または臓器を、本明細書中で定義されるような溶液で灌流することを含んでなる方法を提供する。
【００２８】
上記方法の１つの実施形態では、前記組織または臓器のうち少なくともいずれか一方が前記溶液で灌流された時に低体温状態に維持されるように、溶液は４〜２０℃の温度に維持される。
【００２９】
上記方法のさらに別の実施形態では、外科的処置は、組織または臓器のうち少なくともいずれか一方を、続いてレシピエント対象者に移植するためにドナー対象者から取り出すために行われる。
【００３０】
さらに別の態様では、本発明は、治療薬、検査薬、もしくは相助作用剤のうち少なくともいずれかを、本発明の溶液を使用して対象者に送達する方法を包含する。好ましい実施形態では、前記薬剤は、少なくとも１つの幹細胞、ペプチドまたはゲノム由来のタンパク質のような生物学的作用物質である。
【００３１】
好ましい実施形態では、送達は、血管内、腹腔内、皮内、経口、筋肉内または局所経路を介した投与によって行われる。任意選択で、送達は対象者のリンパ系への投与によって行われる。
【００３２】
別の態様では、本発明は、（ａ）急性腎不全もしくは急性毒性症状を有する対象者の腹腔の透析；または（ｂ）外科的処置を受けている対象者の腹部臓器もしくは胸部臓器のうち少なくともいずれか一方の洗浄、のうち少なくともいずれか一方のための本明細書中で定義されるような溶液の使用法を提供する。
【００３３】
さらに別の態様では、本発明は、医薬として使用するための、無機リン酸をほとんど含まない緩衝化された溶液、特にクエン酸緩衝剤および乳酸緩衝剤のうち少なくとも一方についてもほとんど含まないものを包含する。
【図面の簡単な説明】
【００３４】
【図１】使用した蘇生溶液に応じた経時的なラット生存の評価について示す図。ラットから血液を定期的に採取した。ラットは以下のような３つの実験治療群すなわち（１）血液の代わりに生理食塩水を補給；（２）血液の代わりに本明細書中でＲＳ−Ｉ溶液またはＲＳ−Ｉと呼ばれる本発明の好ましい溶液を補給；および（３）失血分の補給なし、に分けた。様々な群の各々におけるラットの生存をモニターし、データを図１に示した。
【図２】上記の図１に関して定義された研究治療群の各々について採取した血液の総体積の比較を示す図。血液は、以下の実施例４に述べるようにしてラットから採取した。
【図３】図１に関して定義された様々な研究治療群における経時的なラットの呼吸数の評価について示す図。
【図４Ａ】ＲＳ−Ｉを用いて様々な時間にわたって灌流したブタの血液プロファイルの評価について示す図。ブタに、１．０ＬのＲＳ−Ｉ溶液を３日間毎日注入し、血液試料を様々な時点で採取した。血液試料を、とりわけ、完全血球算定、血清生化学測定、電解質、グルコース、乳酸、浸透圧重量モル濃度、血清酵素（血清グルタミン酸−オキサロ酢酸トランスアミナーゼ／アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ［ＳＧＯＴ／ＡＳＴ］、血清グルタミン酸−ピルビン酸トランスアミナーゼ／アラニンアミノトランスフェラーゼ［ＳＧＰＴ／ＡＬＴ］、クレアチンキナーゼ［ＣＫ］および乳酸脱水素酵素［ＬＤＨ］）、凝固因子およびフィブリノゲンのレベルに関して試験した。さらに、血液をインターロイキン６（ＩＬ−６）および腫瘍壊死因子α（ＴＮＦ−α）について計測した。
【図４Ｂ】ＲＳ−Ｉを用いて様々な時間にわたって灌流したブタの血液プロファイルの評価について示す図。ブタに、１．０ＬのＲＳ−Ｉ溶液を３日間毎日注入し、血液試料を様々な時点で採取した。血液試料を、とりわけ、完全血球算定、血清生化学測定、電解質、グルコース、乳酸、浸透圧重量モル濃度、血清酵素（血清グルタミン酸−オキサロ酢酸トランスアミナーゼ／アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ［ＳＧＯＴ／ＡＳＴ］、血清グルタミン酸−ピルビン酸トランスアミナーゼ／アラニンアミノトランスフェラーゼ［ＳＧＰＴ／ＡＬＴ］、クレアチンキナーゼ［ＣＫ］および乳酸脱水素酵素［ＬＤＨ］）、凝固因子およびフィブリノゲンのレベルに関して試験した。さらに、血液をインターロイキン６（ＩＬ−６）および腫瘍壊死因子α（ＴＮＦ−α）について計測した。
【図４Ｃ】ＲＳ−Ｉを用いて様々な時間にわたって灌流したブタの血液プロファイルの評価について示す図。ブタに、１．０ＬのＲＳ−Ｉ溶液を３日間毎日注入し、血液試料を様々な時点で採取した。血液試料を、とりわけ、完全血球算定、血清生化学測定、電解質、グルコース、乳酸、浸透圧重量モル濃度、血清酵素（血清グルタミン酸−オキサロ酢酸トランスアミナーゼ／アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ［ＳＧＯＴ／ＡＳＴ］、血清グルタミン酸−ピルビン酸トランスアミナーゼ／アラニンアミノトランスフェラーゼ［ＳＧＰＴ／ＡＬＴ］、クレアチンキナーゼ［ＣＫ］および乳酸脱水素酵素［ＬＤＨ］）、凝固因子およびフィブリノゲンのレベルに関して試験した。さらに、血液をインターロイキン６（ＩＬ−６）および腫瘍壊死因子α（ＴＮＦ−α）について計測した。
【図４Ｄ】ＲＳ−Ｉを用いて様々な時間にわたって灌流したブタの血液プロファイルの評価について示す図。ブタに、１．０ＬのＲＳ−Ｉ溶液を３日間毎日注入し、血液試料を様々な時点で採取した。血液試料を、とりわけ、完全血球算定、血清生化学測定、電解質、グルコース、乳酸、浸透圧重量モル濃度、血清酵素（血清グルタミン酸−オキサロ酢酸トランスアミナーゼ／アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ［ＳＧＯＴ／ＡＳＴ］、血清グルタミン酸−ピルビン酸トランスアミナーゼ／アラニンアミノトランスフェラーゼ［ＳＧＰＴ／ＡＬＴ］、クレアチンキナーゼ［ＣＫ］および乳酸脱水素酵素［ＬＤＨ］）、凝固因子およびフィブリノゲンのレベルに関して試験した。さらに、血液をインターロイキン６（ＩＬ−６）および腫瘍壊死因子α（ＴＮＦ−α）について計測した。
【図４Ｅ】ＲＳ−Ｉを用いて様々な時間にわたって灌流したブタの血液プロファイルの評価について示す図。ブタに、１．０ＬのＲＳ−Ｉ溶液を３日間毎日注入し、血液試料を様々な時点で採取した。血液試料を、とりわけ、完全血球算定、血清生化学測定、電解質、グルコース、乳酸、浸透圧重量モル濃度、血清酵素（血清グルタミン酸−オキサロ酢酸トランスアミナーゼ／アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ［ＳＧＯＴ／ＡＳＴ］、血清グルタミン酸−ピルビン酸トランスアミナーゼ／アラニンアミノトランスフェラーゼ［ＳＧＰＴ／ＡＬＴ］、クレアチンキナーゼ［ＣＫ］および乳酸脱水素酵素［ＬＤＨ］）、凝固因子およびフィブリノゲンのレベルに関して試験した。さらに、血液をインターロイキン６（ＩＬ−６）および腫瘍壊死因子α（ＴＮＦ−α）について計測した。
【図４Ｆ】ＲＳ−Ｉを用いて様々な時間にわたって灌流したブタの血液プロファイルの評価について示す図。ブタに、１．０ＬのＲＳ−Ｉ溶液を３日間毎日注入し、血液試料を様々な時点で採取した。血液試料を、とりわけ、完全血球算定、血清生化学測定、電解質、グルコース、乳酸、浸透圧重量モル濃度、血清酵素（血清グルタミン酸−オキサロ酢酸トランスアミナーゼ／アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ［ＳＧＯＴ／ＡＳＴ］、血清グルタミン酸−ピルビン酸トランスアミナーゼ／アラニンアミノトランスフェラーゼ［ＳＧＰＴ／ＡＬＴ］、クレアチンキナーゼ［ＣＫ］および乳酸脱水素酵素［ＬＤＨ］）、凝固因子およびフィブリノゲンのレベルに関して試験した。さらに、血液をインターロイキン６（ＩＬ−６）および腫瘍壊死因子α（ＴＮＦ−α）について計測した。
【図４Ｇ】ＲＳ−Ｉを用いて様々な時間にわたって灌流したブタの血液プロファイルの評価について示す図。ブタに、１．０ＬのＲＳ−Ｉ溶液を３日間毎日注入し、血液試料を様々な時点で採取した。血液試料を、とりわけ、完全血球算定、血清生化学測定、電解質、グルコース、乳酸、浸透圧重量モル濃度、血清酵素（血清グルタミン酸−オキサロ酢酸トランスアミナーゼ／アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ［ＳＧＯＴ／ＡＳＴ］、血清グルタミン酸−ピルビン酸トランスアミナーゼ／アラニンアミノトランスフェラーゼ［ＳＧＰＴ／ＡＬＴ］、クレアチンキナーゼ［ＣＫ］および乳酸脱水素酵素［ＬＤＨ］）、凝固因子およびフィブリノゲンのレベルに関して試験した。さらに、血液をインターロイキン６（ＩＬ−６）および腫瘍壊死因子α（ＴＮＦ−α）について計測した。
【図５ａ】正常血液量のブタモデルにおける血清中電解質レベルの分析について示す図。
【図５ｂ】正常血液量のブタモデルにおける血清中電解質レベルの分析について示す図。
【図５ｃ】正常血液量のブタモデルにおける血清中電解質レベルの分析について示す図。
【図５ｄ】正常血液量のブタモデルにおける血清中電解質レベルの分析について示す図。
【図５ｅ】正常血液量のブタモデルにおける血清中電解質レベルの分析について示す図。
【図５ｆ】正常血液量のブタモデルにおける血清中電解質レベルの分析について示す図。
【図５ｇ】正常血液量のブタモデルにおける血清中電解質レベルの分析について示す図。
【図６ａ】正常血液量のブタモデルにおける血清中代謝物質レベルの分析について示す図。
【図６ｂ】正常血液量のブタモデルにおける血清中代謝物質レベルの分析について示す図。
【図６ｃ】正常血液量のブタモデルにおける血清中代謝物質レベルの分析について示す図。
【図６ｄ】正常血液量のブタモデルにおける血清中代謝物質レベルの分析について示す図。
【図７ａ】正常血液量のブタモデルにおける血清中酵素レベルの分析について示す図。
【図７ｂ】正常血液量のブタモデルにおける血清中酵素レベルの分析について示す図。
【図７ｃ】正常血液量のブタモデルにおける血清中酵素レベルの分析について示す図。
【図７ｄ】正常血液量のブタモデルにおける血清中酵素レベルの分析について示す図。
【図８ａ】正常血液量のブタモデルにおける血球プロファイルの分析について示す図。
【図８ｂ】正常血液量のブタモデルにおける血球プロファイルの分析について示す図。
【図８ｃ】正常血液量のブタモデルにおける血球プロファイルの分析について示す図。
【図８ｄ】正常血液量のブタモデルにおける血球プロファイルの分析について示す図。
【図８ｅ】正常血液量のブタモデルにおける血球プロファイルの分析について示す図。
【図９ａ】正常血液量のブタモデルにおける血液凝固パラメータの分析について示す図。
【図９ｂ】正常血液量のブタモデルにおける血液凝固パラメータの分析について示す図。
【図９ｃ】正常血液量のブタモデルにおける血液凝固パラメータの分析について示す図。
【図９ｄ】正常血液量のブタモデルにおける血液凝固パラメータの分析について示す図。
【図１０】寒冷静置（ＣＳ）群および温暖静置（ＷＳ）群のブタ腎臓における、６時間の常温灌流の前後のＡＤＰ：ＡＴＰ（アデノシン二リン酸：アデノシン三リン酸）比の比較を示す図。
【図１１】自家血液、ＲＳ−Ｉ液および乳酸加リンゲル生理食塩水における蘇生後の平均動脈圧の変化を示す図。
【図１２】自家血液、ＲＳ−Ｉ液および乳酸加リンゲル生理食塩水における蘇生後の心拍出量を示す図。
【図１３】自家血液、ＲＳ−Ｉ液および乳酸加リンゲル生理食塩水における蘇生後の活性化プロトロンボプラスチン時間（ａＰＴＴ）を示す図。
【発明を実施するための形態】
【００３５】
本明細書中で使用される用語「体液増量剤」、「体液増量剤溶液」または「代用体液」は、体液の補給もしくは増量、または十分量の体液の維持のうち少なくともいずれかにおける使用が意図されている生理学的液状溶液を意味する。本発明の溶液による増量、補給、維持の対象として意図される体液には、血管内液（例えば血漿のような血液成分）、または別例として血管外液（例えば間質液）が挙げられる。
【００３６】
用語「体液増量剤」および「体液増量剤溶液」はさらに、治療薬、検査薬、もしくは相助作用剤のうち少なくともいずれかを、前記薬剤を必要とする対象者の体内に、または該薬剤を試験すべき環境、例えばヒト以外の対象に送達する媒体としての使用が意図される生理学的液体媒体も包含する。
【００３７】
用語「対象者」は、必要に応じて、ヒト対象者およびヒト以外の動物対象者、例えば哺乳類の対象者、例えば実験研究上の必要に応じてげっ歯動物、ブタ、サル、イヌなど、および獣医療において対象となりうるウシ、ウマなどを包含する。
【００３８】
「非リン酸緩衝剤」および「リン酸をほとんど含まない」のような用語は、無機リン酸イオンを実質的に欠いている液体の実施形態を包含するように意図される。
本明細書中で使用される用語「血液量増量剤」または「血液量増量剤溶液」または「代用血液」は、血液量の補給、増量、または維持における使用が意図されている生理学的液状溶液を意味する。したがってこれらの溶液は、血液量減少症に起因する血液量の損失分の代用における利用が見出される。
【００３９】
本明細書中で使用される用語「血液量減少症」は、血液量が減少した状態、またはより具体的には、血漿体積が減少した状態を意味する。血液量減少症の一般的な原因には、脱水、熱傷、出血（例えば、大出血）、または利尿剤および血管拡張剤のようなある種の薬物の摂取が挙げられる。
【００４０】
本明細書中で使用される用語「再灌流傷害」は、血液量減少症およびその後の従来の血液量増量剤を用いた灌流の後に、身体の重要な臓器に生じる傷害を意味する。
本発明は、従来の血液量増量剤が細胞、組織および臓器の生存率および生存力の維持にとって有害であり、従って再灌流傷害の発生に寄与する可能性があるという本発明者の認識から生じている。
【００４１】
一部には、本発明は、血液量増量剤（および生理学的媒体全般）の組成は、各々の細胞を取り囲んでいる間質ゲル相内のイオン種の活量係数についての明確な知識に基づくべきであるという認識から生じている。これらの活量係数は計算済みであり、本発明の溶液はこれらの計算に従って設計された。
【００４２】
本発明の溶液は、過剰量のリン酸イオンが灌流される細胞、組織および臓器の生存力および機能的完全性に対して有害となりうるという認識に基づき、非リン酸緩衝剤を使用する。リン酸イオンは、解糖、酸化的リン酸化（Ｂｅｒｍａｎ  ａｎｄ  Ｓａｎｄｅｒｓ；Ｃｉｒｃｕｌ．Ｒｅｓ．，１９５５；３，５５９−５６３）、クレアチンキナーゼ活性（Ｈａｌｌ  ａｎｄ  ＤｅＬｕｃａ；Ａｄｖ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．Ｂｉｏｌ．１９８６；１９４，７１−８２）および酸素フリーラジカル捕捉に関与する酵素（Ｄｅ  Ｆｒｉｅｔａｓ  ａｎｄ  Ｖａｌｅｎｔｉｎｅ；Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  １９８４；２３：２０７９）を阻害する。これらの酵素は、細胞レベルでアポトーシス性の変化を引き起こし、最終的には損傷を受けているかまたは異常な細胞、組織および臓器系のネクローシス（すなわち死）をもたらす上で重要である。
【００４３】
本質的には、非リン酸塩で緩衝化された溶液の使用により、ｐＨ７．２を超えると不安定であるという点における従来のリン酸緩衝溶液の非効率性が回避される。特に、従来の溶液中の無機リン酸イオンは、時間とともに、不溶性のカルシウムリン酸塩の形で沈殿する（Ｐｅｄｅｒｓｅｎ，ＭＤ  Ｔｈｅｓｉｓ，Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  ｏｆ  Ａｒｈｕｓ，Ｄｅｎｍａｒｋ．Ｐｕｂｌ．Ｓ  Ａ  Ｍｏｌｌｅｒ  Ｃｈｒｉｓｔｅｎｓｅｎ  Ａ／Ｓ．１９７３；４１−５１）。この問題は、溶液が使用される温度範囲内での変動によって増強され、したがって、そのような従来の緩衝化溶液は臨床的有用性に限界を有する。さらに、多くの他の非リン酸緩衝物質、例えばクエン酸塩、ある種のアミノ酸の組み合わせ、および乳酸加溶液は、哺乳類生物種において作用している天然または生理学的ｐＨ緩衝剤とは異なり、ｅｘ  ｖｉｖｏ（実施例６を参照）およびｉｎ  ｖｉｖｏ（実施例８を参照）の常温状態における臓器機能の保存においては無効であることが分かっている。これに対し、本発明の溶液は、体液増量剤として使用される場合、すべての哺乳動物に見出される天然の緩衝システムすなわちｐＣＯ２／炭酸水素システムを利用することができるので、高い性能を有している。
【００４４】
本明細書には、血液量減少症の対象者における血液の損失、または重篤な熱傷に関連した間質液および細胞外液の損失のいずれかを、その組成ゆえに補うことができる体液増量剤溶液について記載されている。本発明の体液増量剤溶液は、間質液のイオン環境、基質環境および生物物理学的環境を模倣する生理学的液体媒体を提供する（例えば、下記の表ＩＩを参照）。そのため、これらの溶液については、万能灌流媒体および保存媒体としての利用が見出されるであろうと考察される。イオン種の濃度から、哺乳類細胞の周囲の間質ゲル相内における個々のイオン種の活量係数が分かる。このことは、多くの従来の媒体がその濃度の根拠を完全な血清の濃度に置いているのとは対照的である。
【００４５】
米国特許第６，９４６，２４１号明細書（参照によって本願に組込まれる）では、本発明者は非リン酸塩で緩衝化された液体細胞培地について述べている。現在では、有効な血液量増量剤溶液および体液増量剤溶液全般がこれらの培地の組成を基にすることができることが認識されている。本発明の溶液は血液量減少症に関連した失血を補うだけでなく、さらに再灌流傷害の発生を低減または防止するであろうと考察される。本明細書中で定義される溶液は、様々な外科的処置の際に露出されるようになる臓器および組織のｉｎ  ｓｉｔｕでの維持における適用を有するであろうとも考察される。
【００４６】
本発明の体液増量剤溶液は、好ましくは血清または血清成分を含まない。従って該溶液は、動物由来の血清タンパク質およびその他の混入物質を含まず、不確定の外来の血清タンパク質が存在しないようになっている。血清が存在しないことは、該溶液が従来の血清に基づいた溶液よりも十分に「化学的に」明確であるという長所を有する。さらに、血清および血清由来成分が存在しないことにより、ｉｎ  ｖｉｖｏでこの材料を使用することに関連した感染症（例えばヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）およびクロイツフェルト−ヤコブ病（ＣＪＤ）の感染可能性に対する懸念が回避される。
【００４７】
上述の理由から、本発明の体液増量剤溶液（特にヒトでの使用が意図された該溶液）は、外来または動物由来の抗原、発熱性物質、タンパク質なども含まないことが好ましい。しかしながら、ある状況（例えば人工透析）では、敏感な患者は、腎臓透析または腹膜透析の際に失われると報告されているタンパク質の補完手段として特定のペプチドまたはタンパク質由来の成分の存在を必要とする場合もある。本発明の溶液は、患者にそのような成分を送達する際の使用に有効なビヒクルを提供することができる。
【００４８】
摘出した組織および臓器の灌流実験において本発明の溶液に類似の溶液を用いた研究の際に導き出された主な発見は、該溶液が、すべての哺乳類生物で観察される天然のｐＨ緩衝化メカニズム、すなわち赤血球が存在しない状態でも血液中でなされる二酸化炭素分圧［ｐＣＯ２］および炭酸水素イオン濃度［ＨＣＯ３−］の自動調節を利用することができるということである。ヘモグロビンのイミダゾール／ヒスチジン部分によって与えられる相互関係の解離定数［ｐＫａ］が、本発明において使用される適切な緩衝剤、最も好ましくはＢＥＳ緩衝剤によってシミュレートされるようであり、ＢＥＳ緩衝剤は、２０℃で有用なｐＫａ（７．１５）および−ΔｐＫ／℃（０．０１６）を有するため、ＲＳ−Ｉ溶液のｐＨ値を１０〜３７℃の温度範囲にわたって７．１８〜７．４５に自動的に維持し、したがって、低体温および常温のいずれの生理学的条件下でも哺乳類生物種とともに使用する本発明の溶液における緩衝剤として特に適切となる。
【００４９】
先に述べたように、本発明の体液増量剤は天然の生理学的緩衝系の利点を採用し利用するものである。好ましくは、この緩衝系は、ＮａＨＣＯ３／ｐＣＯ２（炭酸水素ナトリウム／溶解ＣＯ２）を両性イオンのグッドの緩衝液であるＢＥＳ（Ｎ，Ｎ−ビス［２−ヒドロキシエチル］−２−アミノエタンスルホン酸（Ｇｏｏｄ  ｅｔ  ａｌ．；Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  １９６６；５：４６７−４７７）、参照によって本願に組み込まれる）と組み合わせた形態であり、１０〜３７℃の温度範囲におけるその理想的なｐＫａのおかげで、細胞の保護にとって重要な必要条件である安定したｐＨを提供するように作用する。ＢＥＳは、長期にわたる研究で培養哺乳類細胞に対して無毒であることが示されており、かつカルシウムイオンまたはマグネシウムイオンとの結合は無視できるものであり、したがって従来の炭酸水素／リン酸または二リン酸緩衝液を使用する場合に生じる二価イオンの沈澱生成という潜在的危険が除かれる。実際に、１０×濃度の本発明の溶液は１４か月を越える保管寿命（３〜８℃で保管）を有することが実験的に示されている。ＢＥＳを使用する代わりとして、モルホリノプロパンスルホン酸（ＭＯＰＳ）またはＮ−トリス−（ヒドロキシメチル）メチル−２−アミノエタンスルホン酸（ＴＥＳ）を使用することも可能である。さらに、ＴＥＳ、ＢＥＳおよびＭＯＰＳのうち１つ以上の組み合わせを使用することも考えられる。
【００５０】
他の生理学的に許容可能なＮ−置換アミノスルホン酸緩衝剤を特定の必要条件に応じて選ぶことも可能であり、次の表は、有力候補および該候補の２０℃における水溶液中のｐＫａ値を一覧にしている。
【００５１】
【表１】
0005624462.tif 000002
任意選択で、非リン酸緩衝剤（好ましくはＴＥＳ、ＭＯＰＳもしくはＢＥＳ、またはこれらの組み合わせ）は、１〜１２ｍｍｏｌ／Ｌ、好ましくは３〜７ｍｍｏｌ／Ｌ、より好ましくは４〜６ｍｍｏｌ／Ｌ、さらにより好ましくは約５ｍｍｏｌ／Ｌの濃度で存在する。任意選択で、炭酸水素イオンは、２１〜３５ｍｍｏｌ／Ｌ、好ましくは２３〜２６ｍｍｏｌ／Ｌ、より好ましくは約２５ｍｍｏｌ／Ｌの濃度で存在する。
【００５２】
本発明の好ましい実施形態では、使用される非リン酸緩衝系は、その独自のｐＫａ域から、本発明の溶液のｐＨを４℃〜３８℃の温度範囲にわたって７．０５〜７．５に自動的に調整する能力を可能にする。本発明のこの特徴は、従来の緩衝系で見られるものとは異なり、１０〜３８℃の温度範囲にわたってｐＨを７．１３〜７．５±０．５の値に調整する際に、他のいかなる介入も必要としない。好ましくは、本発明の溶液は、約３７．４℃の温度で約７．４６のｐＨを有する。溶液を、該溶液の投与を必要とする対象者に投与した後、ｉｎ  ｖｉｖｏで上記のｐＨ値が維持されることが好ましい。
【００５３】
本明細書中で議論されるように、本発明の溶液は血管内および血管外のいずれの注入処置にも使用可能である。該溶液は、摘出された動物およびヒトの臓器を常温条件下で灌流するために使用することも可能である。溶液が摘出臓器を灌流するために使用される場合、該溶液をカルボゲン（ｃａｒｂｏｇｅｎ）ガス（９５％酸素／５％二酸化炭素）で通気することが望ましい。
【００５４】
本発明の体液増量剤溶液はさらに、下記成分：１００〜１５０（好ましくは約１３５）ｍｍｏｌ／Ｌのナトリウムイオン、２．５〜６．２（好ましくは約５）ｍｍｏｌ／Ｌのカリウムイオン、０．１〜２．５（好ましくは約１．２５）ｍｍｏｌ／Ｌのカルシウムイオン、０．４〜２５．０（好ましくは約０．４５）ｍｍｏｌ／Ｌのマグネシウムイオン、９６〜１２６（好ましくは約１１８）ｍｍｏｌ／Ｌの塩化物イオン、２〜１１（好ましくは約１０）ｍｍｏｌ／Ｌのグルコース（好ましくはＤ−グルコース）、５０〜１５０（好ましくは約１１０）μｍｏｌ／Ｌのグリセロール、７〜１５（好ましくは約１０）μｍｏｌ／Ｌのコリン、５〜４００（好ましくは約３００）μｍｏｌ／Ｌのグルタミン酸（好ましくはＬ−グルタミン酸）、５〜２００（好ましくは約２０）μｍｏｌ／Ｌのアスパラギン酸（好ましくはＬ−アスパラギン酸）、１００〜２０００（好ましくは約４００）μｍｏｌ／Ｌのグルタミン（好ましくはＬ−グルタミン）、１５〜２１５（好ましくは約６０）μｍｏｌ／Ｌのピログルタミン酸、２０〜２００（好ましくは約１００）μｍｏｌ／Ｌのアルギニン（好ましくはＬ−アルギニン）、１〜１２０（好ましくは約４０）ｎｍｏｌ／Ｌのチアミンピロリン酸（ＴＰＰ）、４０〜７０（好ましくは約５０）μｍｏｌ／ＬのＤ−もしくはＤＬもしくはＬ−カルニチン（好ましくはＬ−カルニチン）、および５〜２００（好ましくは約２８）ｍＩ．Ｕ．／Ｌのブタもしくはヒトのインスリン（好ましくはヒトインスリン）、を任意の組み合わせで、１以上、２以上、３以上、４以上、５以上、６以上、７以上、８以上、９以上、１０以上、１１以上、１２以上、１３以上、１４以上、またはすべて含むこともできる。
【００５５】
塩化物イオンは、存在する場合、ナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム塩およびマグネシウム塩として提供されることが好ましい。コリンは、存在する場合、塩化物として提供されることが好ましい。
【００５６】
本発明に包含される溶液は、組織および臓器の代謝系ホメオスタシスを保持するいくつかの基質を含んでなる。グルコースおよびグリセロールは、生理的濃度のインスリンが含まれることにより、問題の臓器（例えば心臓）の好ましい基質でない場合さえ、摘出された組織および臓器のエネルギー需要を満たすのに申し分ないことが示されている。その被代謝能とは別に、グリセロールおよびグルコースはさらにフリーラジカルを捕捉しかつ膜を安定化する特性をも有しており、該特性は、組織および臓器の生理学的生存力の維持において非常に重要であることが示されている。
【００５７】
トリカルボン酸（ＴＣＡ）サイクル中間体を補充して酸化的代謝を増強することにより虚血発作の際でも高エネルギーリン酸レベルを維持するように、上述のようにアスパラギン酸およびグルタミン酸を本発明の溶液に含めることもできる。同様に、グルタミン酸は細胞内酸化還元電位の維持に関与する。アスパラギン酸−リンゴ酸シャトルおよびグリセロールリン酸シャトルの最適化によって、細胞は最適なＮＡＤ／ＮＡＤＨ（ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド／還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド）バランスを維持し、その結果としてアデニンヌクレオチドレベルを保持するであろうと考察される。さらに、グルタミン酸およびグルタミンは、中間代謝産物として作用してピログルタミン酸を形成し、かつその後γ−グルタミル回路に参加して、移植前のドナー臓器の保存時および血液量補充療法後における哺乳動物の組織および臓器での再灌流傷害の発生に関連する毒性の酸素ラジカルの発生防止に有益な物質である、グルタチオンを合成することができる。
【００５８】
チアミンはα−ケト酸の酸化（チアミンコカルボキシラーゼの作用による）に重要な役割を果たし、かつピルビン酸および毒性のピルビン酸アルデヒドの蓄積を防ぐことによって、細胞のアポトーシスならびにこれに伴う組織および関連臓器のネクローシスを最小限とする。
【００５９】
ＴＣＡ回路においては、本発明の好ましい溶液に含まれるチアミンピロリン酸（ＴＰＰ）は、酸化的脱炭酸によってサクシニル補酵素Ａを形成するかまたは還元的アミノ化によってグルタミン酸を形成するａ−ケトグルタル酸代謝の補因子である。本質的には、ＴＰＰは、多数の相互に関係した生化学的経路、特にペントースリン酸経路および解糖経路に関与する。チアミンは、チアミンピロリン酸、チアミン二リン酸またはチアミンジアミドとして使用される場合がある。本発明の溶液はチアミンピロリン酸クロリドとしてチアミンを含むことが好ましい。
【００６０】
さらに、本発明の溶液の配合にチアミンピロリン酸を含めることは、腹膜透析患者にはリン酸イオンの枯渇および石灰化を防ぐために必要であるようにも思われる。というのも、チアミンピロリン酸は血液透析膜（ＭＷ−１７５ドルトン）を横切って容易に透析可能であり、血漿中のリン酸および／またはピロリン酸レベルを補充するために静脈内に、または血液透析溶液もしくは腹膜透析溶液を介して、以前から投与されているからである。
【００６１】
ビタミノイド（ｖｉｔａｍｉｎｏｉｄ）のカルニチンは、単純に酸化的代謝を最適化することによるほか、例えば代替基質の利用を促進することによって、心臓機能の改善に多面効果を有することが報告されており、またその上冠血流を改善する可能性もある。Ｌ−カルニチンは、アセチル補酵素Ａ／遊離脂肪酸代謝の阻害を引き起こさないのでＤ−またはＤＬ異性体よりも好ましい。好ましくは、該ビタミノイド成分は５０μｍｏｌ／Ｌの［−］−β−ヒドロキシ−γ−トリメチルアミノ酪酸塩酸塩（Ｌ−カルニチン）を含んでなる。本発明では、カルニチンのＬ−異性体を優先的に含めるのは、細胞質ゾルからミトコンドリア基質内のβ−酸化の場への長鎖脂肪酸の輸送を最適化し、その結果として、カルニチンアセチルトランスフェラーゼからのアセチルカルニチンの合成を刺激することでミトコンドリア内のアセチルＣｏＡ／ＣｏＡ比（ここでＣｏＡは補酵素Ａである）を緩衝化することが意図されている。このアセチルＣｏＡ／ＣｏＡ比の低下は、ピルビン酸デヒドロゲナーゼの刺激およびグルコース酸化の脂肪酸による阻害の軽減を伴ったミトコンドリアからのアセチルカルニチンの流出をもたらすことになる。根本的にはエネルギー源としての遊離脂肪酸の利用の最適化はすべての種類の細胞にとって不可欠であるが、解糖に関与する酵素、例えば、ヘキソキナーゼ、グルコキナーゼ、ホスホフクルトキナーゼの最適化された機能による炭水化物（グルコース）利用を保持しながら行われなければならない。
【００６２】
上述のように、本発明の溶液はさらにインスリンを含んでもよい。組換えヒトインスリン（例えば、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）または出芽酵母（Ｓ．ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）で発現されたもの）の使用は、他の哺乳類または動物の供給源に由来するインスリンの場合に起こりうる、レシピエントの細胞／組織／臓器への抗原またはウイルスの混入のリスクを排除するだけでなく、ヒトインスリン受容体の構造に対するインスリン分子のより良好な適合をもたらす。受容体特異性は、細胞内プロセスにおけるインスリンの多くの関連機能を保持するように最適化されることになる。
【００６３】
本質的に、インスリンの生物学的作用は、単に炭水化物代謝およびグルコースを細胞内へ循環させる促進輸送を調節する能力に関するだけでなく、（ｉ）細胞内グルコキナーゼ活性およびタンパク質中へのアミノ酸取り込みの増強、（ｉｉ）ＤＮＡ（デオキシリボース核酸）のタンパク質への翻訳の促進、（ｉｉｉ）脂質合成の増大、および（ｉｖ）ナトリウム、カリウムおよび無機リン酸の細胞膜を横切る輸送の促進、をもたらす能力にも関係する。
【００６４】
本発明の好ましい実施形態では、正常なヒト血清中インスリンレベルが利用されてきた。これに対し、従来の既知の灌流製剤は、インスリンが組み込まれる場合にはこのホルモンを不自然なレベル（例えば１０〜５０×１０６ｍＩＵ／Ｌ；本発明の溶液中に見出されるインスリンの約１００万倍の濃度）で使用してきた。この理由は、そのような濃度ではごく少量のインスリンだけが単一分子として存在するという事実に関係している。残りのインスリンは、インスリン受容体の刺激には無効であり従って生物学的に不活性である、大きな凝集体の形で存在する。本発明の溶液は、凝集体形成を防ぐため処方時にインスリンを酸性化することにより正常なヒト血清中インスリンレベルを達成し、したがって個々の活性を有するインスリン分子種がｐＨ７．３±０．２の溶液に存在するのを可能にしている。
【００６５】
本発明の溶液中のイオン種の濃度から、単なる該イオン種全体の血清中濃度ではなく個々のイオン種の活量係数が分かる。例えば、カルシウムイオンおよびマグネシウムイオンの血清結合は、これらのイオンの実際の遊離状態にあるイオン化レベルとは区別されなければならない。マグネシウムイオンは多くの重大な細胞反応において重要であり、該イオンが細胞外に存在すると、ミトコンドリアの呼吸活性を刺激し、かつ迅速なカルシウム流入およびカリウム流出の効果を調整することが報告されている。同様に、適切なカルシウムイオン濃度は、循環血中に存在するこのイオンの遊離レベルを維持するのに重要である。
【００６６】
本発明の溶液のイオン伝導度は、ヒト血清のイオン伝導度、すなわち１２．０±０．３ｍＳ  ｃｍ−１に匹敵し、かつそのようなものとして細胞膜のイオン化状態および酵素部分の活性を維持することが好ましい。
【００６７】
したがって、上記を踏まえて、本発明の溶液は、ヒト血清（約２９０ミリオスモル／Ｌ）に等浸透性であり、摘出されたラットの心臓および内臓神経−筋肉調製物の長時間（すなわち４〜５２時間）の低温灌流の際に水和にごく僅かな変化（約８％）しか生じないという事実によって実証されるように、血漿増量剤を含める必要はないようである。このことは、細胞膜が９９％ゲル状の間質相と連続しており、したがって細胞膜を隔てた過度のドナンのイオン平衡交換に対して天然のコロイド性緩衝作用を提供するという事実によって説明可能である。浸透圧の大部分はナトリウムイオンおよびこれに伴う陰イオンによって提供され、ごく一部（約０．５％）だけが血漿タンパク質に起因しうる。この溶液中に血清中濃度の代謝物質（グリセロール）を含めることにより、各細胞を取り囲んでいる間質液接触面における浸透性の緩衝作用、特に経毛細管的なネットワークに関与するものに寄与することもできる。
【００６８】
現実に膠質物質を含めるのは、カルシウムイオンおよびマグネシウムイオンに対する該物質の親和性からさらに困難となり、カチオンの組成を乱さないように新鮮な溶液で予め透析する必要がある。ポリペプチド増量剤の不安定な性質も、機械的変性を起こしやすいことからポリペプチド増量剤を非実用的にしている。不運にも、これらのコロイド性増量剤は本質的に無毒であるにもかかわらず、その使用は例えば（１）粘度上昇により細胞のまわりの「かき混ぜられない（ｕｎｓｔｉｒｒｅｄ）」層の厚さが増し、代謝物質の拡散を妨げる、（２）表面膜生体電位が変化して細胞の代謝および受容体の活性を混乱させる、（３）タンパク質性増量剤の抗原性、（４）赤血球（ＲＢＣ）の凝集反応および溶血作用、ならびに（５）微小血管系の遮断および虚血、という点で禁忌である。
【００６９】
本発明の溶液は、特定の医療目的に応じて追加成分を加えることができる基本の組成物として全般的な利用が見出されるであろうと考察される。例えば、人工血液を生成させるために、本発明の溶液に例えば赤血球（ＲＢＣ）、血漿または血小板のうち少なくともいずれかを補足するということもあり得ると想定される。そのような血液成分は天然のものであっても人工的なものであってもよい。このように、追加の化学物質を、必要に応じて必要な場合に基本の組成物に添加することができる。したがって、本発明の溶液は、医学的有用性から、ｐＫａがヘモグロビン（ｐＫａ：７．０）のイミダゾール／ヒスチジン部分のｐＫａと厳密に一致しかつ同様に作用する緩衝剤を用いた体液の増量、補給、維持または補足のうち少なくともいずれかが必要とされ、したがってクエン酸塩（ｐＫａ：３．０９）、乳酸塩（ｐＫａ：３．８５）または任意の同様に不適当なｐＫａの緩衝剤ならびに生化学的プロセスおよび生理学的プロセスに対する有害な影響が報告されている無機リン酸イオンの使用は排除される場合の、基本の組成物として広い適用可能性が見出されるであろうと意図される。
【００７０】
本発明の溶液は、血液量減少症、または重篤な熱傷を負った対象者において引き起こされた間質液および細胞外液の損失を治療する方法において利用が見出される。さらに、本発明の溶液は再灌流傷害の防止または軽減のうち少なくともいずれか一方を行う方法において適用可能である。したがって、本発明の溶液は医薬品としての使用が見出される。血液量減少症の治療および再灌流傷害の防止／軽減については、本発明の溶液をビーナル内（ｉｎｔｒａｖｅｎａｌ）経路により全身投与することが望ましい。そのような場合、患者は安定に臥位に置かれ、従来の臨床上の手順に沿ってその特定の医薬品のビーナル内投与のための臨床上の準備が行われることになる。前記医薬品の患者への送達は、治療の完了が達成されるまで、制御かつ管理された状態の下で実行されることになる。
【００７１】
しかしながら、血液量を補給、維持または増量することに加えて、本発明の溶液は、その他の利用、例えば；外科的処置の際にｉｎ  ｓｉｔｕで組織および臓器を維持、保存および洗浄するため、急性腎不全または急性毒性状態にある対象者の腹腔を灌流するため、またドナーの組織および臓器をドナー患者から取り出すための外科的処置の際にｉｎ  ｓｉｔｕで保存するため、の利用も見出されるであろうと考察される。したがって、血管内経路を介して投与可能であると同様に、本発明の溶液は、他の経路、例えば腹腔内、皮内、筋肉内、局所または経口経路を使用して投与される場合もある。急性腎不全または急性毒性の患者では、患者に麻酔下で外科的介入の準備が施され、前記外科的介入によってカニューレが腹腔に挿入され、常温下で該溶液を用いた連続洗浄が確実に行える位置に固定されることになる。患者の血液化学分析において正常状態が達成されたならば、外科的条件下で腹膜のカニューレの除去が行なわれることになる。
【００７２】
熱傷の治療については、熱傷部位自体への局所適用によって該溶液を局部的に投与することが望ましい。しかしながら、さらに、重篤な熱傷の結果引き起こされた脱水を、該溶液の全身投与を通じて治療することができる。そのような状況では、患者は安定に臥位に置かれ、従来の臨床上の手順に沿ってその特定の医薬のビーナル内投与のための臨床上の準備が行われることになる。熱傷波及の部位および程度は、該溶液のビーナル内投与、およびさらなる感染のリスクに基づいた追加の治療薬の必要性の点から、評価されることになる。この治療的処置方法は結果として、該溶液を外側の血管外に流して毒性または感染性の動物性滲出物の蓄積を取り除くことになり、従って縫合剤の常時モニタリングを必要とすることになる。好ましい実施形態では、本発明の方法、溶液および医薬は、ヒトおよびヒト以外の哺乳類対象者、例えばヒトを治療する際に使われる。
【００７３】
上述のように、本明細書中で定義される溶液の１つの適用は、ドナーの臓器を、ドナーから該臓器を取り出すための外科的処置の前、処置中および処置後にｉｎ  ｓｉｔｕで保存するためであることが想定されている。この点に関する本発明の溶液の使用は、例えば、ドナーの死体から採取されつつあるドナーの腎臓、心臓、肝臓を含めた全身輸液（体外膜型酸素供給（Ｅｘｔｒａ  Ｃｏｒｐｏｒｅａｌ  Ｍｅｍｂｒａｎｅ  Ｏｘｙｇｅｎａｔｉｏｎ）［ＥＣＭＯ］法）とその後の摘出臓器の常温再灌流を対象とすることが考えられる。予備的研究（本明細書中では示さない）から、本明細書中で定義されるＲＳ−Ｉ（実施例を参照）は、低温で保存された死体のヒト臓器を蘇生させて、その臓器を基礎医学的な薬物バイオアッセイ試験に使用できるようにすることによって、動物モデルでのｉｎ  ｖｉｔｒｏおよびｉｎ  ｖｉｖｏの薬物評価を使用して報告される副作用（ＡＤＲ）の問題に取り組む能力を有している。
【００７４】
本発明の溶液については、薬剤を、必要としている対象者に、または該薬剤を試験しようとする環境、例えばヒト以外の対象者に、効率的に送達するための媒体としての利用が見出されるであろうとも想定される。例えば、本発明の溶液は、治療薬、検査薬、もしくは相助作用剤の送達、または別例として幹細胞、ペプチドもしくはゲノム由来のタンパク質の送達を、必要としている対象者に対して行うための賦形剤としての利用が見出されうる。幹細胞の送達は、例えば、該幹細胞を本明細書中で定義される媒体に懸濁することと、得られた懸濁液を必要な場合は組織または臓器に直接送達することとにより行われることが考えられる。この治療方法の下では、患者は、派生型の幹細胞、例えば心筋細胞、肝細胞の外科的切除を受けることになり、該細胞は次いで本発明の溶液に懸濁されて１２〜１８時間プレインキュベーションされる。この幹細胞型のさらなる増殖が、現在の培地技術を使用して行われ、その後該細胞は溶液に再懸濁され、治療の実施に先立って低温またはやや低温の条件下で患者の枕元に運ばれることになる。患者は、幹細胞療法の投与経路に応じて局所麻酔または全身麻酔、例えば心筋細胞の心筋内投与については局所麻酔を施され、該療法の投与は医薬品の臨床実験の実施に関する基準（ｇｏｏｄ  ｃｌｉｎｉｃａｌ  ｐｒａｃｔｉｃｅ）に従って常温（平熱）温度で実施される。別例として、送達がリンパ系への懸濁液の投与によって行われる場合もある。
【００７５】
当然ながら、本発明の溶液を使用する場合、当分野で既知の血液量増量剤を投与する一般的な方法を適用することができる。特に、特定の状況において必要とされる投与レベルを（例えば、適切な血圧および循環器機能の維持を参考にして）調節する方法を、最先端技術に注意を払いながら、当業者が利用可能な情報を使用して適用することができる。
【００７６】
さらに当然のことであるが、本発明の溶液を利用する場合、外科的処置の際にｉｎ  ｓｉｔｕで組織および臓器の浸漬および洗浄を行うための、また体腔の透析のための、当分野で既知の標準的な灌流技術を適用することができる。
【００７７】
本発明は、本発明の溶液の特定の構成成分を個々にまたは任意の組み合わせとして使用することができることを想定している。
本発明の特定の実施形態について、次の実施例を用いて下記に述べる。実施例は本発明の実施形態を例証するために提供されるものであり、どのようにも限定するものと見なすべきものではない。
【実施例１】
【００７８】
ＲＳ−Ｉ溶液の製剤化
製剤
以下の調製物においては、エンドトキシンを含まないＭｉｌｌｉ−Ｑ（登録商標）精製水（米国マサチューセッツ州ミルフォード所在のミリポア社（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ  Ｃｏｒｐ））または同等品のＡＳＴＭタイプＩ水［比抵抗は２５℃でわずか１８．０ＭΩ・ｃｍ］を、最初の混合および最後の希釈のいずれにおいても全面的に使用した。以後、用語「精製水」はこの品質の水を示すために用いられる。
【００７９】
チアミンピロリン酸（コカルボキシラーゼ）のシグマ（Ｓｉｇｍａ）Ｃ４６５５を、精製水中で０．４ｍｇ／ｍＬの貯蔵溶液として調製し、暗色のガラスバイアル中で凍結保存した。塩化コリン（シグマＣ７５２７）を、精製水中で１７．５ｍｇ／ｍＬの貯蔵溶液として調製し、ガラスバイアル中で凍結保存した。組換えヒトインスリン（シグマＩ０２５９／Ｉ２６４３）を、０．１２Ｎ塩酸でｐＨ２．４に酸性化した精製水中で０．５Ｉ．Ｕ．／ｍＬの貯蔵溶液として調製し、ガラスバイアル中で凍結保存した。
【００８０】
ＲＳ−Ｉ溶液の１０×濃縮溶液の調製については、ステンレス鋼のコンテナに８リットルの精製水を注ぎ、以下の材料を秤量して、絶えず撹拌しながら以下の順に添加した：６４２．９６グラムの塩化ナトリウム（ＣＦＫ０４８４）、３７．２８グラムの塩化カリウム（ＢＤＨ１０１９８）、１８．３８グラムの塩化カルシウム二水和物（ＢＤＳ１０１１７）、９．１４グラムの塩化マグネシウム６水化物（ＢＤＨ１０１４９４）および１０６．６１グラムのＢＥＳ遊離酸（シグマＢ６２６６）、１．８４ミリグラムのチアミンピロリン酸（シグマＣ９６５５）（貯蔵溶液４．６ｍＬを使用）、０．９８９９グラムのＬ−カルニチン（シグマＣ０２３８）、８ｍｌの貯蔵溶液として０．１３９７グラムの塩化コリン（シグマ７５２７）、１．０１３グラムのグリセロール（シグマＧ２０２５）、２．８Ｉ．Ｕ．の組換えヒトインスリン（５ｍｌの貯蔵溶液）、０．３１０グラムのＬ−アスパラギン酸ナトリウム塩（シグマＡ６６８３）、１８０．２グラムの無水Ｄ−グルコース（シグマＧ７０２１）、５．０７グラムのＬ−グルタミン酸ナトリウム塩（シグマＧ５８８９）および５．８４グラムのＬ−グルタミン（シグマＧ５７６３）。完全に溶解するまで全体を撹拌し、次に、精製水をさらに加えることにより最終体積を１０リットルとした。
【００８１】
この１０×ＲＳ−Ｉ溶液を、Ｓａｒｔｏｂｒａｎ（登録商標）ＰＨ２Ｏカートリッジ／０．２マイクロメートルフィルタ（米国所在のザルトリウス社（Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ  Ｃｏｒｐ．））を通してろ過滅菌し、１００ｍＬの滅菌密封ガラスボトルに入れた。
【００８２】
このＲＳ−Ｉ溶液は使用するための溶液の１０倍濃縮物であるが、炭酸水素ナトリウムは添加されていない。必要時には、１０×ＲＳ−Ｉ溶液を適正量の精製水で希釈し、炭酸水素ナトリウムを加えることができる。
【００８３】
１×ＲＳ−Ｉ溶液の調製については、上記の約１０倍濃縮のＲＳ−Ｉ溶液１００ｍｌを９００ｍＬの精製水で希釈して１リットルにするとともにエンドトキシンを含まない炭酸水素ナトリウム（シグマＳ４０１９）２．１ｇを添加し、使用するまで８〜１０℃で保管すればよい。炭酸水素イオンを含有する濃縮物の長期保管は炭酸カルシウムの析出を引き起こす可能性があるので、濃縮溶液を保管する前には該溶液に炭酸水素ナトリウムを添加しないことが好ましい。短期間保存用の１×貯蔵溶液は炭酸水素ナトリウムを含んでいてもよい。
【００８４】
体液増量剤溶液として使用するために、該溶液１リットルにつき、細菌感染のリスクを防止するために１００ｍｇ／Ｌのクロラムフェニコール（シグマＣ３１７５）またはその他の従来の抗生物質もしくは抗真菌物質が含まれていてもよい。
【００８５】
溶液を調製する場合には、下記の要素を考慮に入れるべきである。
１）溶液の構築方法、具体的には；
２）すべての貯蔵溶液および本発明に従って製造される溶液の１０倍濃縮ボトルを作製するために上記に指定される精製水を使用すること；
３）本発明の滅菌貯蔵溶液および濃縮物を調製する方法は、オートクレーブ滅菌またはγ線照射を伴うべきではないこと。例えば、滅菌を達成するために溶液を照射すると、グルタミン、グルコース、インスリンおよびチアミンピロリン酸の諸成分が破壊されることになる；
４）すべての１０倍貯蔵濃縮物溶液の保存にガラスボトルを使用すること；
５）ｐＨ２．４に酸性化して可溶化インスリンを調製することに加え、インスリン材料および貯蔵溶液を−２０℃で保存すること；
６）チアミンピロリン酸およびＴＰＰの貯蔵溶液を調製し、暗条件下にて−２０℃で保管すること（下記の理由を参照）；
７）塩化コリン貯蔵溶液を調製し、−２０℃で保管すること；
８）塩化マグネシウム６水化物（すなわち６Ｈ２Ｏ）を使用すること。これは、無水物塩を使用すると水を吸着し、正確なマグネシウムイオン含量を算出するために使用される重量に誤差を生じるからである。この誤差は、正確なマグネシウムイオンおよびカルシウムイオン濃度という点でクレブス（Ｋｒｅｂｓ）液を誤って作製する共通の理由である。
【００８６】
本実施例で述べるような、すべての好ましい成分を含めることにより、これらの成分が相助的に働いて全体的にバランスのとれた生理学的作用を生じることが可能となる。
製造の詳説
１．貯蔵溶液：本発明の溶液の様々な貯蔵用濃縮物、すなわち１×、１０×および長期保存用の２０×が調製されているが、好ましい貯蔵用濃縮物は、暗条件下３〜８℃で保存するための、精製水を使用した１０×濃縮物をろ過滅菌して１００ｍＬの密封ボトルに入れたものである。貯蔵溶液は、１０×濃縮物の貯蔵溶液１００ｍＬを精製水９００ｍＬに加え、最終的なｐＨを２０℃で７．２２±０．０４とするために２．１ｇの炭酸水素ナトリウムを添加することによって、１×溶液として使用するために再構成される。本発明による溶液の無菌の貯蔵用１０×濃縮物はｐＨ４．６±０．２であり、最大で１０年間、無菌でかつ沈殿を生じないことが示されている。本発明の溶液の１０×貯蔵用濃縮物について推奨される製造時保管寿命は、暗条件下３〜８℃で保管される場合は１４か月である。
【００８７】
２．コカルボキシラーゼ：チアミンピロリン酸クロリド（コカルボキシラーゼ）の貯蔵溶液を、エンドトキシンを含まない精製水を使用して１８．４ｇ／ｍＬに調製し、ろ過滅菌してチアミンピロリン酸の光分解を防止するために暗色の密封バイアルに入れ、本発明の溶液の１０×貯蔵用濃縮物に含めるまでは凍結保存する。
【００８８】
３．インスリン：組換えヒトインスリンを、エンドトキシンを含まない精製水を使用して０．５ｍＩ．Ｕ．／ｍＬの酸性化（ｐＨ２．４）貯蔵用濃縮溶液として調製し、ろ過滅菌して密封バイアルに入れ、本発明の溶液の貯蔵用濃縮物に含めるまでは凍結保存する。
【００８９】
４．コリン：塩化コリンの貯蔵溶液を、エンドトキシンを含まない精製水を使用して１７．４５ｍｇ／ｍＬに調製し、本発明の溶液の貯蔵用濃縮物に含めるまでは密封バイアル中で凍結保存する。
【００９０】
５．クロラムフェニコールは本発明の溶液の必須成分ではないが、保存用に、または、保存バイアルの開封後に、該溶液が長く大気に曝露される間の無菌性を保証しかつ本発明の体液増量剤溶液で治療される対象者への感染のリスクを低下させるために、添加されることが好ましい。
【実施例２】
【００９１】
ＲＳ−Ｉ溶液の最終組成
次の表は、体液増量剤として使用するためのＲＳ−Ｉ溶液の組成をまとめたものである。
【００９２】
【表２】
0005624462.tif 000003
実施例１および２で述べた、本明細書中ではＲＳ−Ｉと呼ばれる溶液は、本発明による体液増量剤溶液の好ましい形態を表わす。
【実施例３】
【００９３】
ＲＳ−Ｉ、ヒト血清およびヒト間質液の化学的成分の比較
現時点では、また当分野で一般的な考え方によれば、保存用溶液、灌流用溶液および血液量補給用溶液の製剤は、細胞内または血管外の環境のいずれかの組成を採用するという強い傾向がある。しかしながら、既に本明細書中で述べたように、多くの問題が依然未解決のままである。細胞膜の超微細構造を考慮する際に、本発明者は現行の考え方から離れ、異なる手法、すなわち、細胞膜に直接隣接している環境すなわち間質液相を実際的な人工的方式で模倣し、細胞膜ならびに関連する受容体および酵素部分のホメオスタシスおよび機能的動態を可能な限り維持するように、生理溶液を製剤化する手法をとった。その結果得られた、本明細書中で実施例６および７において実証される、動物種およびヒト由来の単離された細胞、組織および臓器の細胞機能の良好な保存は、この手法の成功を例証している。
【００９４】
表ＩＩにおいて以下に示すように、本実施例は、ヒト血清、ヒト間質液およびＲＳ−Ｉ溶液に存在する成分の様々な濃度の比較を提示している。
【００９５】
【表３】
0005624462.tif 000004
【実施例４】
【００９６】
ラット出血モデルを用いたＲＳ−Ｉ溶液の静脈内注入の影響を調べる研究
動物実験室における外科処置
この処置は、体重１００グラムあたり０．１ｃｃのＸｙｌｏｃａｉｎｅ（登録商標）＋０．２ｃｃのケタミンの筋肉内（ＩＭ）注射を用いた完全麻酔誘導後の無菌条件下における正中部下方の腹壁切開で構成された。これに続いて、ラットの大動脈を、２４ゲージのａｎｇｉｏｃａｔｈ（登録商標）を使用して直視下で切開してカニューレを挿入した。これにより、大量採血ならびに溶液の投与のために直接アクセスすることが可能となる。維持量として、０．２ｃｃのケタミンのＩＭ注射を２５分ごとにすべてのラットに行う。実験全体を通じて動物を自然に呼吸させ、呼吸数を常時モニターする。実験の間ラットを平常体温に保つために保温器を使用する。正中部下方の腹壁切開の結果、腸が露出されて腹部の血管が現れるようになる。水分の損失を最小限にするために濡れガーゼ（生理食塩水に浸漬したもの）で腸を覆い包む。実験の完了時には、ラットを麻酔下で屠殺するか、または、大動脈のカテーテル部位の穴を、６−０Ｐｒｏｌｅｎｅ（登録商標）の８の字縫合を使用して修復し、腹壁切開を、２層の２−０Ｖｉｃｒｙｌ（登録商標）縫合糸を使用して閉鎖する。研究の生存役として選ばれたラットには筋肉内投与で抗生物質を与え、手術後は食物を自由摂取させた。本実施例の処置は、ラット１匹当たり完了までに２５〜３０分を要する。
【００９７】
動物および実験上の群分け
同じような週齢（１０〜１２週）および体重（２８０〜３２０ｇ）の１９匹のスピローグ・ドーリー（Ｓｐｒａｇｕｅ−Ｄａｗｌｅｙ）ラットを実験に使用した。ラットを、乱数割当によって無作為化して３つの治療群すなわち（１）血液量を等体積の生理食塩水で補給（ラット５匹）；（２）血液量を、等体積の上記に定義されるようなＲＳ−Ｉ溶液で補給（ラット７匹）；または（３）失血分の補給なし（ラット７匹）、のうち１つに割り当てた。この研究の第一の終点は呼吸循環停止を裏付けとする動物の死亡とした。
【００９８】
出血および蘇生のプロトコール
ラットから、３０分ごとに２ｃｃずつ連続的に採血した（制御された出血をシミュレート）。各採血の終わりに、０．１ｍｌのヘパリン化溶液（２０ｍｌの正常な生理食塩水中に１０００ユニット）を注入し、血液凝固を回避するためのヘパリンロックとした。ラットを、上記に定義される３つの治療群のうちの１つに無作為に割り当てた。
【００９９】
観察および回収されたデータは以下すなわち：
ａ．採血の回数（従って出血量）
ｂ．呼吸数（１０分ごとに計測）
ｃ．死亡までの時間（出血が始まってからの生存期間（分））
ｄ．目に見える身体的変化
ｅ．病理
である。
【０１００】
統計データ
生存の定義を、最初の採血から心肺停止が記録されるまでの時間とした。ｐ値が０．０５未満（ｐ＜０．０５）である場合に、差が統計的に有意であるとみなした。値はすべて平均±標準偏差（ＳＤ）として表した。解析は、ＳＰＳＳソフトウェアのバージョン１３．０（米国イリノイ州シカゴ所在のＳＰＳＳ社（ＳＰＳＳ，Ｉｎｃ．））を使用して実施した。
【０１０１】
研究の結果
まとめ：蘇生「なし」治療群のラットは、生存期間が最も短く、最小の採血量であった。生存期間および平均採血量は、正常な生理食塩水またはＲＳ−Ｉのいずれかを添加することによって著しく改善された。生理食塩水と比較してＲＳ−Ｉは統計上優位の生存期間を示し（ｐ＜０．０１）、より大量の採血を可能にした（ｐ＜０．０１）。
【０１０２】
生存期間：使用した蘇生溶液に応じたラットの経時的生存を図１に示す。蘇生「なし」治療群のラットは最短の生存期間であった。生存期間は、生理食塩水による失血分の補給またはＲＳ−Ｉによる補給のいずれかを加えることにより著しく改善された。いずれの溶液も、蘇生なしのラットの生存期間と比較すると有意差を示した。すなわち、ＲＳ−Ｉ群と蘇生「なし」群との間の平均の差は８９±１３．１３分（ｐ＜０．０１）、生理食塩水群と蘇生「なし」群との間の平均の差は５７±１５．８７分（ｐ＜０．０５）であった。ＲＳ−Ｉは生理食塩水よりも優れており、生存期間において統計的に有意な増大をもたらした。ＲＳ−Ｉで治療したラットと生理食塩水で治療したラットとの間の生存期間の平均差は、４３．４０±６．９０分で有意であった（ｐ＜０．０１）。
【０１０３】
採血量：各研究治療群についての総採血量を図２に示す。液体で蘇生を行ったラットのいずれの群も、蘇生「なし」の対照治療群と比較して採血量の有意な差を示した（ＲＳ−Ｉは蘇生「なし」に対して５．７３±０．６２ｍｌ、生理食塩水は蘇生「なし」に対して３．６４±０．７０ｍｌ、いずれもｐ＜０．０１）。ＲＳ−Ｉで蘇生を行ったラットと生理食塩水で蘇生を行ったラットとの比較から得られた、採血量の平均差は、２．８２±０．４５ｍｌで統計的に有意である（ｐ＜０．０１）ことが分かった。
【０１０４】
呼吸数：図３は、様々な研究治療群における経時的なラットの呼吸数を示す。ＲＳ−Ｉで蘇生を行ったラットは最も長期間生存し、最初に（最初の１００分間に）呼吸数の急速な降下が認められたものの、全体として緩慢な呼吸数の低下を示した。生理食塩水で蘇生を行ったラットの全体的な呼吸数は、ＲＳ−Ｉを注入されたラットよりも速く低下し、この低下は輸液を受けなかったラットよりもさらに速かった。
【０１０５】
結論
ＲＳ−Ｉは、制御された出血性ショックのラットモデルにおける生存期間および失血量に関して、生理食塩水よりも有効な代用血漿であると思われる。
【実施例５】
【０１０６】
静脈内（ＩＶ）液としてＲＳ−Ｉを投与することの安全性を調べる研究
研究の目的
この研究は、静脈内（ＩＶ）注入剤として大型動物モデル（ブタ）に投与された場合のＲＳ−Ｉの安全性を評価するための、試験的研究として設計された。
【０１０７】
方法
雌雄両方の、体重２７〜３５ｋｇの６匹のブタを、この研究治療群に使用した。このブタを動物管理施設に収容し、実験前夜は一晩ＮＰＯ（絶食）を保った。ブタをそれぞれ個別ケージに収容した。
【０１０８】
第０日目には、ケタミン（１５〜２０ｍｇ／ｋｇ）の筋肉内注射を使用して最初に各々のブタを鎮静させた後、麻酔導入および子宮内膜挿管を行った。麻酔は、心拍数の低下を伴わずに外科刺激に対する反応が欠如するように、ハロタンを用いて維持された。各々のブタに、ゲンタマイシン１０％（１ｃｃ／１０ｋｇ）の筋肉内注射により術前の抗生物質の予防投与を行った。
【０１０９】
各々のブタの左内頚静脈に、厳密な無菌条件下で、直接的カウントダウンによって中心静脈カテーテルを外科的に配置した。この中心静脈ラインは、ブタの皮下組織中で、ブタ頚部の側面上および背面上の出口部位へと延びるトンネル状とし、その場に固定した。これは２つの目的すなわち；カテーテルの事故抜去の防止、およびラインに関連した感染のリスクの最小化、のために行った。その後、動物をケージに戻して麻酔から回復させた。
【０１１０】
第１日目には、各々のブタを、ケタミン（３５ｍｇ／ｋｇ）およびキシラジン（７ｍｇ／ｋｇ）の筋肉内注射を使用して鎮静させた。ベースラインの血液試料を無菌法で中心静脈ラインから採取し、即座に分析のため実験室へ送った。得られた血液プロファイルを、完全血球算定、血清生化学測定：電解質、浸透圧重量モル濃度、ｐＨ、グルコース、乳酸、クレアチニン、血液尿素性窒素（ＢＵＮ）、血清酵素（アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ［ＳＧＯＴ／ＡＳＴ］、アラニンアミノトランスフェラーゼ［ＳＧＰＴ／ＡＬＴ］、総クレアチンキナーゼ［ＣＫ］および乳酸脱水素酵素［ＬＤＨ］）、凝固因子およびフィブリノゲンのレベルに関して試験した。さらに、炎症性の活性、例えば好中球活性化、インターロイキン６（ＩＬ−６）および腫瘍壊死因子α（ＴＮＦ−α）の計測のために血液を採取し、後で評価するために試料を遠心分離処理して−８０℃で保管した。
【０１１１】
血液を採取した後、各々のブタに、中心静脈ラインを介して１〜２時間かけて徐々に１．０ＬのＲＳ−Ｉ（室温）を注入した。このブタを、健康障害の何らかの徴候または異常な行動／兆候について、注入時に直接観察した。その後、ブタを通常の居住域へ戻し、健康障害の何らかの徴候または異常な行動／兆候について、動物舎の獣医が観察した。
【０１１２】
第１日目に実施したのと同じ手順を第２日目および第３日目に繰り返した。ＲＳ−Ｉの各注入に先立って、ＲＳ−Ｉの投与に関係する何らかの悪影響について評価するために同じ血液プロファイル（下記）を得た。その後、ブタを７日間観察し、ケタミンを用いた鎮静下での塩化カリウム溶液の静脈内投与によって第７日目に人道的に安楽死させた。安楽死に先立って、最後の血液試料（第７日目）を回収した。ＴＮＦ−αおよびＩＬ−６を測定するための血液試料も採取した。これらの試料を２０００ｒ．ｐ．ｍ．［２０℃］で５分間遠心分離処理し、次に、市販のブタＥＬＩＳＡアッセイを使用して後日処理するために−８０℃で保管した。検視検査をすべてのブタについて実施し、臓器（脳、肺、肝臓および腎臓）を摘出し、後日の組織学的検査およびアポトーシス試験のためにホルムアルデヒド中に保管するかまたは−８０℃で冷凍した。
【０１１３】
結果
６匹のブタ全てを１週間観察し、全てが正常な範囲内の行動および食性を示した。
血液の結果を、図４に示し、また図５〜９にグラフで表す。これらの血液結果は、この体重区分のブタの正常範囲内にあった。
【０１１４】
血液プロファイル区分の分析
１．電解質および生物物理学的パラメータ：
７日間の実験期間の間の血清中電解質または浸透圧重量モル濃度には、ベースライン（「対照」）の値と比較して有意差（ｐ＜０．０５）は観察されなかった（図４Ｇ、表１；図５ａ〜ｇ）。４８時間後には、ブタ番号２および５において、既報の範囲の値へのナトリウムイオンレベルの上昇が観察されたが、第７日までにベースライン値に戻った（図５ａ）。ブタ番号６だけは実験期間の間に漸進的な上昇を示したがこの場合も、全体的な傾向レベルと同じように、最大値１５０ｍｍｏｌ／Ｌの範囲内にあった（図４Ｇ、表１；図５ａ）。
【０１１５】
酸塩基平衡（すなわち炭酸水素レベル；図５ｆ）または塩化物レベル（図４Ｇ、表１；図５ｅ、ｆ）の有意な変化は同じ実験期間には観察されなかった。
２．血清代謝物質：
血清代謝物質のベースライン値はすべて外科的徒手操作の外傷後の第１日目に当然上昇したが、（乳酸を除く）すべてが第７日目までに正常血清の値の範囲内に戻る傾向を示した（図６）。第２日目および第３日目には、乳酸レベルが基準値を下回り（図６）、統計的には有意な傾向を伴わないが乳酸レベルのかなりの変動があった。
【０１１６】
３．血清酵素：
外科的徒手操作の外傷後には検査したすべての血清酵素の上昇が認められたが（図７）、（ＳＧＰＴ［ＡＬＴ］；図７ｂ、を除く）すべてが第７日目までに許容可能な血清値まで低下して、心臓、肝臓、肺および腎臓の機能的完全性の復旧を示した。ＳＧＰＴ［ＡＬＴ］について観察された上昇は、正常血清の値の５０パーセンタイルの範囲内にあり、この場合も第７日目までの心臓および肺の機能的完全性を示している群データの範囲内または該データ内で統計的な差はなかった（Ｐ＜０．２６）。
【０１１７】
４．血液成分：
正常血液量（ｎｏｒｍｏｖｏｌｅｍｉｃ）のブタはそれぞれ、１．８〜２．３Ｌ（６７ｍＬ／ｋｇ）の推定総血液量を有し、各々のブタに７２時間の間に総体積３ＬのＲＳ−Ｉを投与した。第７日目まで、ＲＢＣ数の血液希釈は観察されず、ヘマトクリット（Ｈｃｔ）値およびヘモグロビン（Ｈｇ）レベルは正常範囲を維持していた（図８ａ、ｂ、ｃ）。同様に、リンパ球数は調査した７日間でベースライン値に戻り（図８ｄ）、白血球（ＷＢＣ）数のみが第７日目までに軽微な有意でない上昇を示した（図８ｅ）。
【０１１８】
調査した血液凝固パラメータの面では、ブタ番号２だけが血小板について例外的なベースライン値を示したが、これは第７日目までに正常に回復した（図９ａ）。血液凝固パラメータ、すなわちプロトロンビン凝固指数（ＩＮＲ）および活性化部分プロトロンボプラスチン時間（ａＰＴＴ）（図９ｂ、ｃを参照）は一定を維持し、かつ既報の範囲内であった。フィブリノゲンレベルは、７日間の実験期間の間下降傾向を示すように見えた（図９ｄ）が、この場合も値はブタ生物種の許容限度内に留まった。
【０１１９】
４８時間かけてＲＳ−Ｉを注入した後は、第７日目までに全体的な傾向として、炎症性作用の欠如を示唆するＷＢＣのベースラインレベルの回復（図８ｅ）およびリンパ球レベルの減少（図８ｄ）がみられた。
【０１２０】
推論
ブタ類に関する多数の調査研究から血液および血清のプロファイル値における大きな多様性が示されていることは、広く認められているはずである。本研究では、これらの値は検査したブタ類の中では一貫しており、良好な統計的相関を有していた。
【０１２１】
実験期間中にＲＳ−Ｉ溶液を注入された正血液量性のブタでは、血液希釈は生じていないようである（図４Ｇ、表１）。
特徴的には、量補充療法は、投与される血液補給液の製剤に使用される様々な添加剤の抗原性および／または毒性に関係するようである、炎症症状、アナフィラキシー症状、過剰凝血症状を生じやすい。このことは、得られた血球プロファイルデータの分析からは、ＲＳ−Ｉ溶液の静脈内投与に当てはまるようには見えない。
【０１２２】
この試験的研究において重要なのは、ＲＳ−Ｉ溶液の静脈内投与の安全面、および、量補給用液を用いた臨床業務における共通の知見である高塩素血症性（代謝性）アシドーシスが発生しないこと、を評価することである。酸塩基平衡の乱れは、炭酸水素イオンおよび塩化物イオンのレベルの保持によって証明されるように、７日間にわたって検査されたブタでは観察されなかった。
【０１２３】
第２日目および第３日目までのＲＳ−Ｉ溶液の注入時に調べたすべてのブタにおいて、ベースラインの血清中乳酸レベルの抑制が生じたという一時的観察（図６ｂ）から示唆されるように思われるのは、ＲＳ−Ｉを注入された正常血液量性のブタでは：
ａ）血清乳酸レベルを維持するためのピルビン酸の代謝（解糖）；
ｂ）ＡＴＰを生成するための組織乳酸の異化、および
ｃ）グルコースまたはグリコーゲンを形成するための肝臓による再合成（コリ回路）
を最適化する条件が揃っていることである。
【０１２４】
研究対象としたブタはすべて、実験期間の間、乳酸／ピルビン酸代謝と密接に関連し、かつ再灌流傷害の際には組織および臓器から特徴的に放出される酵素である血清乳酸デヒドロゲナーゼ（ＬＤＨ）の漸落を示した。
【０１２５】
この研究で特に興味深いのは、静脈用注射液の再灌流時に損傷を受けた臓器（例えば心臓、肺、肝臓、腎臓）に関連した酵素（例えばＣＰＫ（クレアチンホスホキナーゼ）、ＳＧＯＴ、ＳＧＰＴ）の放出が、最初は生体の機能をモニターするために必要な外科的処置（「方法」を参照）による外傷後の第１日目に上昇する一方で、徐々に減少して正常な既報のレベルの範囲内になるという観察であった（図４Ｇ、表１）。
【０１２６】
結論
ブタに１．０ＬのＲＳ−Ｉを３日間毎日ＩＶ注入する、上記に詳述した研究は、成功裡に終わった。得られた結果に基づいて結論付けられることは、ＲＳ−Ｉは、静脈内投与される場合、臨床的に許容可能な条件下でブタを飼育するのに明白な安全上の問題点を持たないということである。
【実施例６】
【０１２７】
ＲＳ−Ｉを使用して保存した後の摘出腎臓の機能に関する研究
方法
心停止ドナー（ＮＨＢＤ）のブタ腎臓を、ＲＳ−Ｉまたは市販の低温保存溶液であるＳｏｌｔｒａｎ（登録商標）もしくはＵＷ（ウィスコンシン大学）のうちいずれかの中で「寒冷」（０℃〜４℃）静止（ＣＳ）条件下で２時間、あるいは「温暖」（３１℃）静止（ＷＳ）条件下で保存した。この腎臓をその後、自家血液／乳酸加リンゲル液の５０：５０灌流混合物を用いて常温条件下で６〜８時間再灌流した。
【０１２８】
結果
自家血液を用いた６時間の常温灌流後の摘出ブタ腎臓において測定された機能的パラメータを、以下の表ＩＩＩに示すが、表中、「ｎ」は試験した腎臓の数を表している。
【０１２９】
【表４】
0005624462.tif 000005
本研究から、自家血液中での腎臓蘇生後に評価されるような腎機能の維持において、ＲＳ−Ｉが他の保存溶液より著しく優れた性能を有することが明らかとなった。再灌流期間の間に得られたデータの分析から、ＲＳ−Ｉ中に４℃で保存された腎臓は、（１）酸素消費量の増加、（２）クレアチンクリアランス率の上昇、（３）腎血流量［ＲＢＦ］の増加、（４）尿排出量の増加、（５）腎血管抵抗［ＲＶＲ］の低下、（６）重量増加の減少（すなわち浮腫の低減）、（７）安定した血液ｐＨおよび酸塩基平衡の保持［炭酸水素イオンレベル］、ならびに（８）無視できる程度の細胞内Ｋ＋の損失、を示した。
【０１３０】
特に重要なのは、血液ｐＨの安定性および中間的な酸塩基平衡の保持（Ｈ＋／ＨＣＯ３−）が観察されたことである。このように観察された安定性から、ＲＳ−Ｉで保存された腎臓では、主要なｐＨ緩衝系すなわちグルタミン−アンモニアシャトルが、他の２つの市販の保存溶液で観察されたような影響をうけなかったことが示される（上記の表ＩＩＩを参照）。加えて重要なことは、ＡＱＩＸ（登録商標）ＲＳ−Ｉの中で「温暖」（ＷＳ）虚血条件下で２時間保存された腎臓では、その後の６〜８時間の再灌流でＡＤＰ：ＡＴＰバランスが回復したという観察であった（図１０を参照）。
【０１３１】
ＡＤＰ：ＡＴＰ比のレベルは灌流前の生検において最も高く、ＣＳ／ＷＳ保管期間中に受けた虚血性障害の指標となった（図１０）。しかしながら、６時間の灌流後、この比は細胞機能の回復を示している両群において改善したものの、腎臓のＣＳ群およびＷＳ群の間では有意差は観察されなかった（ｐ＝０．７１）（ＭＤ  Ｋａｙ  ｅｔ  ａｌ．，２００６；Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔ  Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  ２０（１），８８−９２）。
【実施例７】
【０１３２】
摘出された哺乳類の臓器および組織調製物の生存能力を様々な保存期間にわたって維持するＲＳ−Ｉの能力の評価
方法
哺乳類の組織および臓器調製物の機能的生存能力を、ＲＳ−Ｉ溶液中で様々な期間について組織／臓器を保管／灌流した後に評価した。生存能力は、様々な機能的指標、例えば細胞膜電位の維持、神経伝達物質の生産量、筋原性、膜受容体感受性、酵素機能、組織学的変化などを使用して評価した。
【０１３３】
結果
下記の表ＩＶは、ＲＳ−Ｉ溶液が様々な哺乳動物およびヒトの組織および臓器調製物の機能的な生存能力を、様々な長さの保存期間（０．３〜１０日間）にわたって維持する能力を提示している。
【０１３４】
【表５】
0005624462.tif 000006
【実施例８】
【０１３５】
出血性ブタモデルで静脈内投与された場合のＲＳ−Ｉ液体の有効性を自家血液および生理食塩水と比較する前臨床試験
研究の目的
ブタの出血性外傷後の、蘇生（増量）溶液としてのＲＳ−Ｉの有効性ならびに組織再灌流傷害の低減におけるＲＳ−Ｉの有効性を、自家血液、または臨床応用に一般に用いられている血液量増量溶液である乳酸加リンゲル液（ＬＲ）を用いた補給と比較して調査する。
【０１３６】
方法
この研究では、２３匹の無作為に選択された非同系の畜豚を、４つの実験群において、すなわち３匹を「シャム」（対照）、６匹を自家血液、６匹をＲＳ−Ｉ溶液、６匹をＬＲ溶液の実験群に使用した。標準化された全身麻酔条件下で、すべての血行動態プロファイルを十分計測できるように動物に機器を装備した。その後、ブタの大腿動脈から、ＭＡＰが３０ｍｍＨｇに達するまで急速に出血させた。出血は、ＭＡＰを３０±２ｍｍＨｇに４５分間維持するのに必要なだけ継続させた。出血させた血液を、ＡＣＤ処理されたバッグに回収し、その正味重量を、出血させた血液量を概算するために使用した。
【０１３７】
４５分間のショック期間の終了時に、動物に、出血させた血液量の３〜４倍に匹敵する乳酸加リンゲル液（ＬＲ）もしくはＲＳ−Ｉ溶液を与えるか、出血させた自家全血を与えるか、または蘇生を行わないか（「シャム」対照群）のいずれかとした。
【０１３８】
蘇生用液は、ＭＡＰを６０±２ｍｍＨｇに維持するように、２時間かけて動的な方法で漸増的に与えた。すべての血行動態パラメータを、ベースライン；４５分間のショック期間の開始時、ショックの３０分時点；ショックの４５分時点（完了時）；ならびに蘇生の３０、６０、９０および１２０分時点、において計測した。血液ガス分析、乳酸測定、完全血球算定、血清生化学測定：電解質、グルコース、浸透圧モル濃度、血清酵素（アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ［ＳＧＯＴ／ＡＳＴ］、アラニンアミノトランスフェラーゼ［ＳＧＰＴ／ＡＬＴ］、総クレアチンキナーゼ［ＣＫ］および乳酸脱水素酵素［ＬＤＨ］）および凝固プロファイルのための血液試料を、同じ時間間隔で採取した。
【０１３９】
好中球活性化のレベルは、ミロペルオキシダーゼ（ｍｙｌｏｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ）酵素法、ならびにアポトーシス（細胞死）現象の指標としてのＴＮＦ−αおよびＩＬ−６のレベルを介して測定した。
【０１４０】
蘇生の後、毎日の採血用の頚部静脈カテーテルを残して、動物からカニューレを取り除いた。術後７日間の間、動物を任意の行動変化について観察し、手術後第１、２および７日目に採血を行った。その後、動物を術後第７日目に人道的に屠殺して、脳、腎臓、肺および肝臓における再灌流傷害の何らかの病理学的証拠について検査した。
【０１４１】
結果
概略：
生存している３つの実験群の全１８匹のブタを１週間観察すると、すべて正常な範囲内の行動および食性を示した。
【０１４２】
血行動態：
ＲＳ−Ｉ群のブタの平均動脈圧（図１１を参照）、中心静脈圧、肺動脈閉塞圧の、蘇生の最初の６０分間における回復時間が最も速く、自家血液群のブタに匹敵したが、ＬＲ群のブタでは最も遅かった。心拍出量の回復は、自家血液群およびＬＲ群のブタのいずれと比較してもＲＳ−Ｉ群のブタで有意に速くかつ大きかった（図１２を参照）。
【０１４３】
血液プロファイル：
術後第７日までの血清中電解質濃度は、ＬＲ群のブタにおけるナトリウムイオン濃度の上昇を除いてすべての実験群について正常レベルの範囲内に回復した。アニオンギャップおよび強イオン濃度較差は、術後第７日までにすべての群のブタで正常な範囲内にあった。
【０１４４】
酵素レベルは術後第１日および第２日に上昇したが、術後第７日までにはベースライン値に戻った。血液凝固パラメータの著しい変化は７日の実験期間には観察されなかった（図１３を参照）。
【０１４５】
病理：
術後第７日では、再灌流傷害の証拠は、ＲＳ−Ｉ群および自家血液群のいずれのブタにおいても肺および肝臓には存在せず、腎臓では軽微であったが、ＬＲ群のブタではこれら３種の臓器に顕著かつ広範囲な特徴がみられた（図１３を参照）。
【図１】
0005624462.tif 000007
【図２】
0005624462.tif 000008
【図３】
0005624462.tif 000009
【図４Ａ】
0005624462.tif 000010
【図４Ｂ】
0005624462.tif 000011
【図４Ｃ】
0005624462.tif 000012
【図４Ｄ】
0005624462.tif 000013
【図４Ｅ】
0005624462.tif 000014
【図４Ｆ】
0005624462.tif 000015
【図４Ｇ】
0005624462.tif 000016
【図５ａ】
0005624462.tif 000017
【図５ｂ】
0005624462.tif 000018
【図５ｃ】
0005624462.tif 000019
【図５ｄ】
0005624462.tif 000020
【図５ｅ】
0005624462.tif 000021
【図５ｆ】
0005624462.tif 000022
【図５ｇ】
0005624462.tif 000023
【図６ａ】
0005624462.tif 000024
【図６ｂ】
0005624462.tif 000025
【図６ｃ】
0005624462.tif 000026
【図６ｄ】
0005624462.tif 000027
【図７ａ】
0005624462.tif 000028
【図７ｂ】
0005624462.tif 000029
【図７ｃ】
0005624462.tif 000030
【図７ｄ】
0005624462.tif 000031
【図８ａ】
0005624462.tif 000032
【図８ｂ】
0005624462.tif 000033
【図８ｃ】
0005624462.tif 000034
【図８ｄ】
0005624462.tif 000035
【図８ｅ】
0005624462.tif 000036
【図９ａ】
0005624462.tif 000037
【図９ｂ】
0005624462.tif 000038
【図９ｃ】
0005624462.tif 000039
【図９ｄ】
0005624462.tif 000040
【図１０】
0005624462.tif 000041
【図１１】
0005624462.tif 000042
【図１２】
0005624462.tif 000043
【図１３】
0005624462.tif 000044