(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記の一般化学構造式（Ｉ）の化合物またはその塩の感染症治療用の薬剤組成物の製造のための使用。
【化１】
0005478264.tif 000005
式中、Ｒ１とＲ２はＯまたはＮであり、同一または異なっており、
Ｒ３はＳであり、
Ｒ４はＨまたはアルキル基（Ｃ１−Ｃ６）であり、
Ｒ５はＮＯ２であり、
ｎは０から３である。
【請求項２】
Ｒ４はアルキル基（Ｃ１−Ｃ３）である、請求項１記載の使用。
【請求項３】
Ｒ４はメチルである、請求項１または２に記載の使用。
【請求項４】
Ｒ１は窒素であり、Ｒ２は酸素である、請求項１から３のいずれかに記載の使用。
【請求項５】
ｎは１である、請求項１から４のいずれかに記載の使用。
【請求項６】
上記一般化学構造式（Ｉ）の化合物は、下記の化学構造式（ＩＩ）の構造を有する、請求項１から５のいずれかに記載の使用。
【化２】
0005478264.tif 000006
【請求項７】
感染症はヘリコバクターによって引き起こされるものである、請求項１から６のいずれかに記載の使用。
【請求項８】
感染症はヘリコバクターピロリによって引き起こされるものである、請求項１から７のいずれかに記載の使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、フラボドキシンを阻害でき、感染症、特にヘリコバクターによって引き起こされる感染症の治療のための薬剤組成物として利用される一般化学構造式（Ｉ）の化合物に関する。
【０００２】
【化１】
0005478264.tif 000002
【背景技術】
【０００３】
ヘリコバクターピロリによる感染症は今日の最も一般的な慢性疾患の１つである。事実、このバクテリアは５０％以上の人の胃粘膜にコロニーを形成していることが見出されている。
【０００４】
ヘリコバクターピロリはグラム陰性かん菌（バシラス）であり、慢性胃炎、胃潰瘍および十二指腸潰瘍を引き起こし、ＭＡＬＴリンパ腫や腺ガン（最も多発する致命的ガンの１種）の発症に関わる危険因子である。
【０００５】
ヘリコバクターピロリ感染症の根治に利用される従来の治療法は２つの広域抗生物質とプロトンポンプ阻害物質の利用で成る。従って、この病気の特定治療法は存在せず、現行治療法の治療成功率は８０％を超えないため、現行治療法は特に効果的であるとは言えない。加えて、従来の抗生物質に対する、ますます増強する耐性による高い突然変異的変性は従来治療法の効果を低下させている。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明は薬剤組成物として利用する新規な化合物を提供する。さらに、本発明は感染症、特にヘリコバクターピロリによって引き起こされる病気の治療のための、それら化合物の利用法を提供する。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
従って、本発明の第１の特徴的形態は、薬剤組成物として利用される以下の一般化学構造式（Ｉ）の化合物またはその塩である化合物（本発明化合物）の利用に関する。
【０００８】
【化２】
0005478264.tif 000003
式中、Ｒ１、Ｒ２、Ｒ３、Ｒ４およびＲ５並びにｎは以下のものである。
【０００９】
Ｒ１とＲ２は酸素（Ｏ）、硫黄（Ｓ）および窒素（Ｎ）の原子から選択されるものであり、同一または異なるものである。好適にはＲ１はＮであり、Ｒ２はＯである。
【００１０】
Ｒ３は硫黄（Ｓ）と酸素（Ｏ）の原子から選択さる。好適にはＲ３はＳである。
【００１１】
Ｒ４は水素（Ｈ）の原子と、アルキル基（Ｃ１−Ｃ６）から選択され、直鎖状、枝状または環状のものである。好適にはＲ４はアルキル基（Ｃ１−Ｃ３）であり、さらに好適にはＲ４はメチル基である。
【００１２】
Ｒ５はＮＯ２、ＣＯＯＲ’、およびＳＯ３Ｒ’の基から選択される基である。ここでＲ’は水素原子（Ｈ）またはアルキル基（Ｃ１−Ｃ６）である。好適にはＲ５はＮＯ２、ＣＯＯＨまたはＳＯ３Ｈの基であり、さらに好適にはＮＯ２である。
【００１３】
ｎはＲ３基に、対応する芳香族環の炭素を並べる脂肪族鎖の炭素原子数であり、０から３であり、好適には１である。
【００１４】
“アルキル”は直鎖状、枝状または環状の炭化水素基に関係し、炭素原子と水素原子とで構成され、不飽和状態であり、１から６の炭素原子を有し、好適には１から４の炭素原子を有し、例えば、メチル、エチル、プロピル、ｎ−ブチル、ｔ−ブチル、等々の単純連結による分子の残り部分に連結する基に関係する。
【００１５】
好適実施形態では、本発明化合物は以下の化学構造式（ＩＩ）の構造を有している。
【００１６】
【化３】
0005478264.tif 000004
【００１７】
本発明の別な好適実施形態は薬剤組成物の生成のために一般化学構造式（Ｉ）の化合物を利用することを含む。この組成物は感染症の治療のために利用される。
【００１８】
一部の感染症はヘリコバクターバクテリアの場合と同様にグラム陰性バクテリアによって引き起こされる。
【００１９】
これら特定タイプの病気の治療のための効果的な治療標的はフラボドキシンであり、α/βの構造を有した酸化還元タンパク質であり、その機能は様々な代謝経路を介した電子移動である。ヘリコバクターピロリでは、フラボドキシンは、ピルビン酸塩酸化脱炭酸化経路で酵素ピルビン酸塩：フラボドキシンオキシドレダクターゼ（ＰＦＯＲ）から電子を受領し、ピルビン酸塩をアセチルＣｏＡに変換する。電子仲介物質としてこの機能を果たすためにフラボドキシンは非共有結合的に結合したフラビンモノヌクレオチド（ＦＭＮ）分子を運搬する。他の種のフラボドキシンに対するその構造類似性にも拘わらず、ヘリコバクターピロリの構造はＦＭＮ結合部位に非常に大きな相違を付与する。この部位ではアラニンの残基が他のフラボドキシンの特徴であるトリプトファンを置換する。この理由で、それは補因子結合部位に隣接して弱部位を発生させる。そこは生物活性の可能な阻害物質である分子の結合には適した部位である。なぜなら、それら阻害物質はＰＦＯＲへのＦＭＮ酸化還元電位阻害電子移動を変性するか、あるいはそれらが単に２つのタンパク質の結合を阻止するからである。ピルビン酸塩酸化経路の遮断はバクテリアを死滅に導く。
【００２０】
よってフラボドキシンはこのバクテリアの生存には必須であり、人体内には存在せず、前述したように、感染症に関係する病気の根治のための治療的に適した標的を構成する。
【００２１】
本発明の化合物は、ヘリコバクターピロリのフラボドキシンが関与するピルビン酸塩の酸化を阻害することによってミクロモル濃度範囲でヘリコバクターピロリバクテリアを完全に阻害することは実証済みである（実施例参照）。
【００２２】
従って、本発明の１好適実施形態は、ヘリコバクター属のバクテリア、特にヘリコバクターピロリ種により引き起こされる感染症の治療のための一般化学構造式（Ｉ）の化合物の利用を含む。
【００２３】
従って、これら化合物はそれら病気の治療のための薬剤または薬剤組成物の製造に使用が可能である。これらの化合物に加えて、それら薬剤組成物は薬学的に利用可能な賦形剤、添加剤、等々を含むことができる。
【００２４】
よって、フラボドキシンを阻害することができるこれら化合物は、感染症、特にヘリコバクターにより引き起こされる病気、その中でも特にヘリコバクターピロリによって引き起こされる病気の治療の非常に良好な代替物となるであろう。
【００２５】
本発明が提供する一般化学構造式（Ｉ）の化合物の利用は、これら化合物がフラボドキシンタンパク質に対する特異的な阻害物質であるため、この病原菌に対する特異的治療の不在を補うであろう。また人体内における同相タンパク質の欠如は、これら阻害物質を特異的分子治療剤とし、宿主生物に対する副作用を皆無か、あるいは限定的とする。
【００２６】
ヘリコバクターピロリにより引き起こされる感染症は、慢性胃炎、胃潰瘍または十二支潰瘍、リンパ腫および胃ガン等の胃腸病に関するものである。従って、さらに好適な実施形態は、慢性胃炎、胃潰瘍及び/又は十二支潰瘍、リンパ腫および胃ガン等の感染症の治療のために本発明化合物を利用することを含む。
【００２７】
本明細書と「請求の範囲」を通じて“含む”なる表現は他の特徴、追加要素、成分または工程を排除するものではない。この分野の専門家であれば、本発明の他の目的、利点および特徴は本明細書の説明と本発明の実施により明らかとなろう。よって以下の実施例と図面は本発明の説明のために提供されており、本発明を限定するものではない。
【図面の簡単な説明】
【００２８】
【図１】図１は、５０μＭの濃度の化学構造式（ＩＩ）の化合物の存在下および不在下におけるヘリコバクターピロリの基本的反応での生成物産生曲線を比較するグラフである。時間（秒）（ｔ）に対する３４０ｎｍにおける吸光度（Ａ）の測定値（ＡＵは吸光度単位）を示す。
【発明を実施するための形態】
【００２９】
本発明は、フラボドキシン阻害物質の特殊性および効果を示す、発明者によって実施された実験を利用して以下において解説される。
【実施例１】
【００３０】
組み換えフラボドキシンのための遺伝子の複製
ヘリコバクターピロリのゲノムＤＮＡはＱＩＡａｍｐ  ＤＮＡ  Ｓｔｏｏｌ  Ｍｉｎｉ  Ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ）を使用して抗原陽性患者から単離された。
【００３１】
フラボドキシンのためのＤＮＡ配列コードは制限酵素Ｎｃｏ（ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．１）と、制限酵素ＢａｍＨＩ（ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．２）とＴａｑ  ＤＮＡポリメラーゼ（Ｍａｄｇｅｎ）を使用してＰＣＲにより増幅された。
【００３２】
増幅後に、６００程度のヌクレオチドの破断片が、フラボドキシン遺伝子の破断片（６１３のヌクレオチド）に対応して検出された。
【００３３】
これら破断片は精製され、標準技術を利用してｐＥＴ２８ａ（Ｎｏｖａｇｅｎ）発現ベクターのＮｃｏｌ−ＢａｍＨＩ部位にクローン化された。遺伝子の注入、その方向性および一体性は、バクテリオファージＴ７促進物質を使用してプラスミドのＤＮＡ配列によって審査された。
【実施例２】
【００３４】
ヘリコバクターピロリ組み換えフラボドキシンの発現および精製
Ｅ．ｃｏｌｉ  ＢＬ２１コンピテント細胞が挿入物を含んだｐＥＴ２８ａプラスミドで変質あるいはガン化され、カナマイシン（３０μｇ/ｍｌ）の存在下、３７℃にて１０ｍｌのＬＢ培地内において培養された。
【００３５】
培養液は同一条件にて１０倍に希釈され、６００ｎｍで光学濃度（吸光度）が０．８となるまで成長が継続された。それらはＩＰＴＧ（最終濃度１ｍＭ）で誘導され、それら細胞は３〜４時間、成長が継続された。
【００３６】
その後、培養液は遠心分離され、細胞が採取された。それらは０．１５ＭのＮａＣｌで洗浄された。
【００３７】
遠心分離後、それら細胞は５０ｍＭのトリスＨＣｌバッファ（ｐＨ８）、１ｍＭのβメルカプトエタノール、１ｍＭのＥＤＴＡおよび１ｍＭのＰＭＳＦ内で再縣濁された。
【００３８】
それら細胞は超音波サイクルで粉砕され、細胞破断片は遠心分離（１８００ｒｐｍで４５分間、４℃）によって除去された。
【００３９】
得られた未処理抽出物は６５％の飽和硫酸アンモニウムで沈殿され、遠心分離された。上澄み液は、６５％の硫酸アンモニウムにて５０ｍＭのトリス−ＨＣｌ（ｐＨ８）で平衡化処理されたＤＥＡＥ  ＤＥ−５２セルロースカラム上に装填された。
【００４０】
タンパク質は６５％から０％の（ＮＨ４）２ＳＯ４の浸透である逆相勾配で溶離された。
【００４１】
５０ｍＭのトリスＨＣｌバッファ（ｐＨ８）でのタンパク質の透析後、それは同一バッファで平衡化された別ＤＥＡＥ  ＤＥ−５２セルロースカラム上に充填された。
【００４２】
タンパク質は０から１ＭのＮａＣｌの勾配で溶離された。タンパク質の（補因子のない）アポ形態と（補因子を有する）ホロ形態とを分離するには、サンプルをＥＰＬＣシステムでＭｏｎｏＱ１０/１０カラムを通過させることが必要であるものの、このカラム通過後に精製されたタンパク質が得られた。
【００４３】
得られたタンパク質は−２０℃で保存された。
【実施例３】
【００４４】
阻害試験
ヘリコバクターピロリは、ピルビン酸塩の酸化脱炭酸作用からエネルギーを得るための基本的反応に関与するため、フラボドキシンはヘリコバクターピロリの生存に必須である。この反応では、フラボドキシンはＰＦＯＲ酵素とＦｑｒＢ酵素との間で電子を移動させ、電子をＮＡＤＰ＋に放出する。
【００４５】
以下の実施例では、ｐＢＳ（ＫＳ）ベクターに挿入されたＰＦＯＲ酵素の遺伝子とｐＥＴ２９ｂベクターに挿入されたＦｑｒＢ酵素の遺伝子に対応するｃＤＮＡが利用された。
【００４６】
それら両方の組み換え酵素は溶解性フラクションとして発現され、レダクターゼ（ｎｓｆＡおよびｎｆｓＢ）が欠落したＥ．ｃｏｌｉ  ＪＶＱ２コンピテント細胞内のＰＦＯＲ並びにＢＬ２１（ＤＥ３）コンピテント細胞内のＦｑｒＢとして発現される。
【００４７】
これら細胞は３７℃のＬＢ培地内で成長し、ＪＶＱ２の場合にはアンピシリンに対する抵抗性で選択され、ＢＬ２１の場合にはカナマイシンに対する抵抗性で選択される。
【００４８】
その後、それらはＩＰＴＧで誘導され、３時間の誘導（光密度約０．８）後に−８０℃で保存された。
【００４９】
ＦｑｒＢ酵素は、ニッケルアフィニティクロマトグラフィによって精製されるようにアミノ酸配列のＮ端末にて６個のヒスチジン残基の末尾で発現される。よって、細胞は破砕バッファ（５０ｍＭの燐酸ナトリウム、３００ｎＭのＮａＣｌ（ｐＨ８）、１０ｍＭのイミダゾール）内で再縣濁され、１分間隔の１０秒間の超音波サイクルによって破砕された。
【００５０】
残った細胞は４℃の３０分間にわたる１００００ｒｐｍの遠心分離によって排除され、上澄み液は破砕バッファで既に平衡化されていたニッケルアフィニティカラム（Ｎｉ−ＮＴＡアガロース、Ｑｉａｇｅｎ）上に充填された。２０ｍＭ、４０ｍＭおよび６０ｍＭのイミダゾールで３回の洗浄が実施され、他のタンパク質とのマトリックスの非特定相互作用が排除され、ＦｑｒＢ酵素は２５０ｍＭのイミダゾールの勾配でカラムから溶離された。
【００５１】
最後に酵素は１０％のグリコールでＰＢＳ保存バッファ内にて透析された。試験された酵素に対して、それが活性に影響を及ぼさないことが理解されたため、ヒスチジンの末尾は除去されなかった。
【００５２】
ＰＦＯＲ酵素は空気に曝露することで不活性化され（酸素で不活性化）、窒素流が前に通過し、接続部が密封されたシステムで純化された。
【００５３】
細胞は５０ｍＭのトリスＨＣｌ（ｐＨ７．４）と１ｍＭのＭｇＣｌ、１ｍＭのＤＴＴおよび１０％のグリセロールで再縣濁され、１分間隔の１０秒間超音波サイクルによって超音波処理され、１０分間の４℃における８０００ｒｐｍの遠心分離で処理され、細胞破断片が除去された。その後にさらに高速（２時間、２４０００ｒｐｍ）で遠心分離され、タンパク質の濃度はブラッドフォードアッセイによって決定された。
【００５４】
無処理抽出液はタンパク質濃度が２５ｍｇ/ｍｌとなるまで以前のバッファで希釈された。タンパク質は０から０．５Ｍの塩化ナトリウムの勾配のＤＥＡＥ  ＤＥ−５２カラム内で部分的に精製された。酵素を含有する破断片は、２５μｌの反応バッファ（５００ｍＭのピルビン酸塩、１０ｍＭのＣｏＡおよび１００ｍＭのベンジルビオロゲン）に加えられた５０から１００μｌの破断片と、無色から青色に変色した酵素を含有する破断片とで成る好気条件の急速エッセイによって所在確認された。
【００５５】
その後に、酵素を含有する破断片は保存バッファ（細胞を再縣濁したものと同一）で透析された。その後の精製ステップは産量を相当程度減少させ、特定酵素活性は不純物によって変化したとは確認されなかったので、これらの試験のために酵素は前述のように部分的に精製された。
【００５６】
ピルビン酸塩、ＰＦＯＲ、フラボドキシン、ＦｑｒＢおよびＮＡＤＰ＋（活性アッセイ）の間の電子移動の連続的反応後に、ＮＡＤＰＨの形成を伴う３４０ｎｍの信号の出現が分光的に続いた。その反応混合物は１００ｍＭの燐酸カリウム（ｐＨ７）、１０ｍＭのピルビン酸塩、０．１８ｍＭのＣｏＡ、１ｍＭのＭｇＣｌ、０．３ｍＭのＮＡＤＰ＋、０．０９、ｇ/ｍｌのＰＦＯＲ、１０μＭのＦｌｄおよび０．１５μＭのＦｑｒＢを含んだ。ＣｏＡを除外した混合物は嫌気性条件に合わせて特に設計されたキュベットに入れられた。酸素は真空とアルゴンを交互に５分間の交互に流すサイクルによって除去された。反応はそのキュベットの内側の小部屋に保持されていた０．１８ｍＭのコエンザイムＡ（ＣｏＡ）の追加によって開始された。ＣｏＡ試薬を加えた後、反応は１５分で完了した。どの反応成分の欠落もＮＡＤＰＨの形成には結びつかなかった。すなわち全成分が、ピルビン酸塩とＮＡＤＰ＋との間の電子の移動のために不可欠であることが解った。
【００５７】
阻害アッセイは前述の活性アッセイと同一条件下で実施され、一般化学構造式（ＩＩ）の本発明化合物が５０μＭ、反応キュベットにさらに加えられた。
【００５８】
図１で示すように、阻害はこの濃度でほぼ全面的であった。
【実施例４】
【００５９】
阻害物質の結合エネルギー
本発明の阻害物質のヘリコバクターピロリのフラボドキシンに対する特異結合は等温適定熱量計（ＩＴＣ）により確認された。この技術は標的タンパク質に対するそれぞれの化合物の親和性を測定するだけではなく、結合のエンタルピー成分およびエントロピー成分の貢献度をも測定する。
【００６０】
結合実験は７％のＤＭＳＯを含んだ５０ｍＭのＥＰＰＳバッファ（ｐＨ９）内で実施された。３００から５００μＭの濃度の阻害物質が注射器内に入れられ、約２０μＭのタンパク質が測定セル内に収容された。
【００６１】
阻害物質の親和定数は約１μＭであり、（ミクロモル濃度でピルビン酸塩の脱炭酸化を完全に阻害する）阻害アッセイ内で得られた結果と一致した。
【００６２】
特に、一般化学構造式（ＩＩ）の化合物はフラボドキシンに対する親和定数が３．０（±１．０）μＭである。
【図１】
0005478264.tif 000007
【配列表】
0005478264000001.app