(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
８−ヒドロキシ−２'−デオキシグアノシン（８−ＯＨｄＧ）の分離に用いられるカラム充填剤であって、
官能基として炭素数６以上３０以下の直鎖の炭化水素基を有し、担体の炭素含有量が元素比で１８％以下である材料により構成された充填剤を含み、
前記充填剤が、フロー式粒子像分析装置で測定される円相当径０．５μｍ以上１０μｍ以下の粒子を粒子数として４累積％以上１３累積％以下含むカラム充填剤。
【請求項２】
請求項１に記載のカラム充填剤において、
前記充填剤が、前記官能基として炭素数８以上２２以下の直鎖の前記炭化水素基を有する、カラム充填剤。
【請求項３】
請求項１に記載のカラム充填剤において、
前記炭素含有量が元素比で１５％以下であるカラム充填剤。
【請求項４】
請求項１に記載のカラム充填剤において、
円相当径０．５μｍ以上１０μｍ以下の粒子を前記粒子数として６累積％以上１３累積％以下含む、カラム充填剤。
【請求項５】
請求項１に記載のカラム充填剤において、
さらに、前記フロー式粒子像分析装置で測定される円相当径２０μｍ以上１００μｍ以下の粒子を粒子数として６５累積％以上９９累積％以下含む、カラム充填剤。
【請求項６】
請求項１に記載のカラム充填剤において、
さらに、前記フロー式粒子像分析装置で測定される円相当径２０μｍ以上１００μｍ以下の粒子を粒子数として７８累積％以上９９累積％以下含む、カラム充填剤。
【請求項７】
請求項５に記載のカラム充填剤において、
前記円相当径２０μｍ以上１００μｍ以下の粒子を粒子数として６８累積％以上９５累積％以下含む、カラム充填剤。
【請求項８】
請求項５に記載のカラム充填剤において、
前記円相当径２０μｍ以上１００μｍ以下の粒子を粒子数として７８累積％以上９３累積％以下含む、カラム充填剤。
【請求項９】
請求項５に記載のカラム充填剤において、
前記円相当径２０μｍ以上１００μｍ以下の粒子を粒子数として８５累積％以上９１累積％以下含む、カラム充填剤。
【請求項１０】
請求項１乃至９のいずれか一項に記載のカラム充填剤において、
前記充填剤の前記材料が、オクタデシル基を有するシリカゲルである、カラム充填剤。
【請求項１１】
請求項１０に記載のカラム充填剤において、
前記オクタデシル基を有する前記シリカゲルにおけるシリル化剤の結合様式が、前記シリカゲル中のシラノール基と１対１で結合している、モノメリックな結合様式である、カラム充填剤。
【請求項１２】
請求項１乃至１１のいずれか一項に記載のカラム充填剤において、
前記フロー式粒子像分析装置で測定したときに、前記充填剤の、円相当径３５μｍ以上６０μｍ以下の粒子と円相当径１０μｍ以上３５μｍ以下の粒子との重量比が、８０：２０〜９５：５の範囲にある、カラム充填剤。
【請求項１３】
請求項１２に記載のカラム充填剤において、
前記充填剤の、円相当径４０μｍ以上６０μｍ以下の粒子と円相当径１０μｍ以上３０μｍ以下の粒子との重量比が、９０：１０であるカラム充填剤。
【請求項１４】
請求項１乃至１３のいずれか一項に記載のカラム充填剤を含む、カラム。
【請求項１５】
請求項１乃至１３のいずれか一項に記載のカラム充填剤を用いて８−ＯＨｄＧを分離する方法であって、
前記カラム充填剤に液体試料を接触させて、前記８−ＯＨｄＧを前記カラム充填剤に吸着させるステップと、
前記ステップの後、前記カラム充填剤に溶出液を接触させて、前記カラム充填剤に吸着した前記８−ＯＨｄＧを溶出し、回収するステップと、
を含む、分離方法。
【請求項１６】
請求項１５に記載の分離方法において、
８−ＯＨｄＧを溶出し、回収する前記ステップで得られた溶出液を、陽イオン交換カラムに導入するステップと、
陽イオン交換カラムに導入する前記ステップの後、前記陽イオン交換カラムに液体を流すことで、前記陽イオン交換カラムへの吸着物を溶出させ、前記８−ＯＨｄＧを含む溶出液を得るステップと、
をさらに含む、分離方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、カラム充填剤、これを用いたカラムおよび分離方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
８−ヒドロキシ−２'−デオキシグアノシン（８−ＯＨｄＧ）は、酸化ストレスマーカーとして知られ、酸化的ＤＮＡ損傷のマーカーとして広く用いられている。細胞中のＤＮＡ構成成分である２−デオキシグアノシンが酸化ストレスに曝されると、活性酸素種・フリーラジカルと反応し、反応生成物として８−ＯＨｄＧが、体液中、特に尿中に排泄される。
【０００３】
体液中の８−ＯＨｄＧ濃度の上昇は、一般的には、環境化学物質、紫外線、電離放射線等による外因性の活性酸素発生と、ガンや生活習慣病を引き起こすライフスタイルの乱れ等による内因性の活性酸素発生とによって引き起こされることが知られている。具体的事例としては、大腸ガン、肺ガン、小児ガン、糖尿病、慢性肝炎、冠動脈疾患、アルツハイマー病、アトピー性皮膚炎、喫煙、飲酒に関して、８−ＯＨｄＧ濃度の増加が報告されている。これに対して、ビタミンＥ、ビタミンＣ、β−カロチン、クルクミン、緑茶、赤ワイン、トマトソース、芽キャベツ摂取による８−ＯＨｄＧ濃度の低下が報告されている。その他、運動による活性酸素生成に伴うＤＮＡ損傷の程度を検出する目的での研究も進められている。
【０００４】
８−ＯＨｄＧの測定方法としては、高速液体クロマトグラフィー（high performance liquid chromatography：ＨＰＬＣ）に接続した電気化学検出器（electrochemical detector：ＥＣＤ）による測定（ＨＰＬＣ−ＥＣＤ法）が挙げられる。
また、ＨＰＬＣ−ＥＣＤ法による８−ＯＨｄＧの測定に先立ち、試料中の８−ＯＨｄＧを分離、濃縮する技術として、特許文献１に記載のものがある。同文献には、カラムクロマトグラフィー法を用いて８−ＯＨｄＧを分離・濃縮することが記載されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特開２００７−１２１２７１号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
ところが、体液等の試料中からクロマトグラフィー法を用いて８−ＯＨｄＧを分析する技術について本発明者がさらに検討したところ、試料によっては、カラムクロマトグラフィー後のＨＰＬＣ−ＥＣＤ測定において、８−ＯＨｄＧのピークが他成分のピークと重なる場合があることが明らかになった。
【０００７】
本発明は、試料中に含まれる８−ＯＨｄＧと夾雑物とをさらに簡便で確実に分離する技術を提供する。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明によれば、
８−ヒドロキシ−２'−デオキシグアノシン（８−ＯＨｄＧ）の分離に用いられるカラム充填剤であって、
官能基として炭素数６以上３０以下の直鎖の炭化水素基を有し、担体の炭素含有量が元素比で１８％以下である材料により構成された充填剤を含み、
前記充填剤が、フロー式粒子像分析装置で測定される円相当径０．５μｍ以上１０μｍ以下の粒子を粒子数として４累積％以上１３累積％以下含むカラム充填剤が提供される。
【０００９】
また、前記に記載の８−ヒドロキシ−２'−デオキシグアノシン（８−ＯＨｄＧ）の分離に用いられるカラム充填剤であって、
さらに、フロー式粒子像分析装置で測定される円相当径２０μｍ以上１００μｍ以下の粒子を粒子数として６５累積％以上９９累積％以下含む、カラム充填剤、または、フロー式粒子像分析装置で測定される円相当径２０μｍ以上１００μｍ以下の粒子を粒子数として７８累積％以上９９累積％以下含む、カラム充填剤が提供される。
【００１０】
また、本発明によれば、前記本発明におけるカラム充填剤を含む、カラムが提供される。
【００１１】
本発明においては、８−ＯＨｄＧ分離用のカラム充填剤として、官能基として炭素数６以上３０以下の直鎖の炭化水素基を有するとともに担体すなわち当該充填剤の炭素（Ｃ）の割合が、全体に含まれる元素の合計に対する元素比で１８％以下である材料により構成された充填剤を用いる。この充填剤は、フロー式粒子像分析装置で測定される円相当径０．５μｍ以上１０μｍ以下の粒子を特定の割合で含むように構成されている。または、前記フロー式粒子像分析装置で測定される円相当径０．５μｍ以上１０μｍ以下の粒子と円相当径２０μｍ以上１００μｍ以下の粒子とを特定の割合で含むように構成されている。これにより、試料中に含まれる８−ＯＨｄＧと夾雑物とを簡便で確実に分離し、分析の際に８−ＯＨｄＧのピーク近傍に当該夾雑物のピークが重なってしまうことを抑制できる。
円相当径２０μｍ以上１００μｍ以下の粒子の割合を粒子数として６５累積％以上９９累積％以下とすることにより、試料中の８−ＯＨｄＧを吸着剤に確実に吸着させ、分離を効率よく行うことができる。
また、円相当径０．５μｍ以上１０μｍ以下の粒子の割合を粒子数として４累積％以上１３累積％以下とすることにより、カラム充填剤の比表面積を適度に増加させることができるため、８−ＯＨｄＧと夾雑物との分離を効率よく行うことができる。
【００１２】
本発明のカラム充填剤において、フロー式粒子像分析装置で測定したときに、前記充填剤が、円相当径３５μｍ以上６０μｍ以下の粒子と円相当径１０μｍ以上３５μｍ以下の粒子との重量比が、８０：２０〜９５：５の範囲にあってもよい。こうすることにより、８−ＯＨｄＧの回収率をさらに向上させることができる。
【００１３】
なお、分離された８−ＯＨｄＧの測定方法に特に制限はないが、たとえば、電気化学的反応を利用することができる。
【００１４】
また、これらの各構成の任意の組み合わせや、本発明の表現を方法、装置などの間で変換したものもまた本発明の態様として有効である。
たとえば、本発明によれば、上述した本発明のカラム充填剤を用いて８−ＯＨｄＧを分離する方法であって、
前記充填剤に液体試料を接触させて、前記８−ＯＨｄＧを前記充填剤に吸着させるステップと、
前記ステップの後、前記充填剤に溶出液を接触させて、前記充填剤に吸着した前記８−ＯＨｄＧを溶出し、回収するステップと、
を含む、分離方法が提供される。
【発明の効果】
【００１５】
以上説明したように本発明によれば、試料中に含まれる８−ＯＨｄＧを簡便で確実に分離することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１６】
【図１】実施例における８−ＯＨｄＧの分離手順を説明する図である。
【図２】実施例における８−ＯＨｄＧの分離手順を説明する図である。
【図３】実施例における８−ＯＨｄＧの分離に用いた充填剤のフロー式粒子像分析装置による測定結果を示す図である。
【図４】実施例における８−ＯＨｄＧの測定結果を示す図である。
【図５】実施例における８−ＯＨｄＧの測定結果を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００１７】
以下、本発明の実施形態について図面を参照して説明する。なお、すべての図面において、共通の構成要素には同じ符号を付し、適宜説明を省略する。
【００１８】
（第一の実施形態）
本実施形態においては、カラム充填剤について説明する。
本実施形態におけるカラム充填剤は、８−ＯＨｄＧの分離に用いられる。このカラム充填剤は、官能基として炭素数６以上３０以下の直鎖の炭化水素基を有し、担体の炭素（Ｃ）の割合が元素比で１８％以下である材料により構成された充填剤を含む。この充填剤は、官能基として炭素数６以上３０以下の直鎖の炭化水素基を有するとともに、担体の炭素（Ｃ）の割合（以下、「Ｃ％」とも呼ぶ。）が元素比で１８％以下である材料により構成されているため、８−ＯＨｄＧを吸着して捕捉する疎水性吸着体として機能する。
【００１９】
本実施形態において、充填剤により一層好適な８−ＯＨｄＧ保持力を持たせる観点から、炭化水素基の炭素数は６以上３０以下、好ましくは８以上２２以下、さらに好ましくは１０以上２０以下とする。
【００２０】
充填剤は、たとえば逆相系充填剤であり、その材料として、さらに具体的には、オクタデシル（ＯＤＳ）基を化学結合させたシリカゲルが挙げられる。このとき、オクタデシル（ＯＤＳ）基を化学結合させたシリカゲルにおけるシリル化剤の結合様式は、シリル化剤がシリカゲル中のシラノール基と１対１で結合している様式、つまりモノメリックな結合様式とするとよい。これにより、逆相系充填剤が過度に疎水性とならないようにすることができる。
また、充填剤をさらに好適な疎水性を有する逆相系充填剤とする観点から、Ｃ％は、１８％以下、好ましくは１５％以下とする。
【００２１】
また、本実施形態における充填剤は、フロー式粒子像分析装置で測定される円相当径０．５μｍ以上１０μｍ以下の粒子を粒子数として１累積％以上２０累積％以下含む。また、さらに上記装置で測定される円相当径２０μｍ以上１００μｍ以下の粒子を粒子数として６５累積％以上９９累積％以下含んでいてもよく、もしくは、７８累積％以上９９累積％以下含んでいてもよい。円相当径０．５μｍ以上１０μｍ以下の粒子を特定の割合で配合すること、または、円相当径が０．５μｍ以上１０μｍ以下の粒子と円相当径２０μｍ以上１００μｍ以下の粒子とを上記特定の割合で配合することにより、試料中に、８−ＯＨｄＧと近接する位置にピークが出現する夾雑物、つまり、分子量や性質等の性状が８−ＯＨｄＧとわずかに異なる夾雑物が含まれている場合にも、これらを簡便で確実に分離することができる。このため、８−ＯＨｄＧ測定の確度を向上させることができる。この理由としては、粒子径が異なる粒子を特定の比率で配合することにより、大きな粒子の間に小さな粒子が入り込み、単位体積あたりの充填剤の表面積が最大となり、８−ＯＨｄＧの吸着効率が向上することが考えられる。
【００２２】
８−ＯＨｄＧの分離を効率よく行う観点から、円相当径２０μｍ以上１００μｍ以下の粒子の割合を６５累積％以上とする。また、８−ＯＨｄＧを確実に分離する観点では、円相当径２０μｍ以上１００μｍ以下の粒子の割合を９９累積％以下とする。
また、充填剤の比表面積を増加させて８−ＯＨｄＧを確実に分離する観点では、円相当径０．５μｍ以上１０μｍ以下の粒子の割合を１累積％以上とする。また、分離に要する時間を短縮し、分離を効率よく行う観点から、円相当径０．５μｍ以上１０μｍ以下の粒子の割合を２０累積％以下とする。
【００２３】
さらに８−ＯＨｄＧの分離を効率よく行う観点から、フロー式粒子像分析装置で測定される円相当径０．５μｍ以上１０μｍ以下の粒子を粒子数として含む割合は、好ましくは４累積％以上１９累積％以下、さらに好ましくは４累積％以上１３累積％以下、特に好ましくは６累積％以上１３累積％以下である。また、上記装置で測定される円相当径２０μｍ以上１００μｍ以下の粒子を粒子数として含む割合は、好ましくは６８累積％以上９５累積％以下、さらに好ましくは７８累積％以上９３累積％以下、特に好ましくは８５累積％以上９１累積％以下である。
【００２４】
なお、フロー式粒子像分析装置は、測定対象の粒子を含む試料が流れるフローセルにストロボ光等の光を照射して、通過中の粒子の画像を取得し、画像解析により円相当径等の粒子形状を示すパラメータを算出する装置である。実際には隋円形などに崩れた粒子が存在するため、円相当径とは、実際に測定した粒子の粒子投影面積と同じ投影面積を持つ球を想定し、その球の直径と定義している。フロー式粒子像分析装置の具体例としては、シスメックス社製ＦＰＩＡ−３０００が挙げられる。
【００２５】
また、フロー式粒子像分析装置で測定したときに、円相当径３５μｍ以上６０μｍ以下の粒子と円相当径１０μｍ以上３５μｍ以下の粒子との重量比が、８０：２０〜９５：５の範囲にあってもよい。このようにすれば、８−ＯＨｄＧの回収率をさらに向上させることができる。円相当径４０μｍ以上６０μｍ以下の粒子と円相当径１０μｍ以上３０μｍ以下の粒子との重量比は、８−ＯＨｄＧの回収率と分離時間とのバランスを向上させる観点から、好ましくは９０：１０とする。
【００２６】
（第二の実施形態）
本実施形態においては、第一の実施形態に記載のカラム充填剤を含むカラムについて説明する。
本実施形態におけるカラムは、第一の実施形態に記載のカラム充填剤を所定の方法で充填することにより得られる。たとえば、粒径２０μｍの粒子と粒径５０μｍの粒子を、９０：１０等の重量比で均質になるように混合し、充填してもよい。
【００２７】
また、充填の際に、フロー式粒子像分析装置を用いて粒度分散性の評価を行い、充填剤が均一に混合していることを確認してもよい。こうすれば、カラム中に粒子径の異なる粒子を充填する場合にも、混合状態のばらつきを抑制することができる。よって、粒径の異なる粒子の配合比率が一定のカラムを安定的に得ることができる。得られたカラムは、８−ＯＨｄＧの分離カラムとして好適に用いられる。また、８−ＯＨｄＧの定量に用いられる前処理カラムとしても好適に用いられる。
【００２８】
以下、本実施形態のカラムを用いた８−ＯＨｄＧの分離方法を説明する。
この分離方法は、本実施形態のカラムに液体試料を導入し、８−ＯＨｄＧを充填剤に吸着させるステップと、上記ステップの後、カラムに溶出液を導入し、充填剤に吸着した８−ＯＨｄＧを溶出させて、回収するステップと、を含む。この方法は、具体的には以下のステップ１１およびステップ１２の手順で行われる。
【００２９】
さらに、本実施形態では、クロマトグラフィーの組み合わせにより、試料中の８−ＯＨｄＧを分離および濃縮する。この分離方法は、逆相クロマトグラフィー（以下のステップ１１〜１２）および陽イオン交換クロマトグラフィー（以下のステップ１３〜１４）を順次行う方法であって、以下のステップを含む。
ステップ１１：液体試料を、第一の実施形態におけるカラム充填剤を含むカラム（第一カラム）に導入し、カラム充填剤に接触させる。
ステップ１２：第一カラムに所定の液体を流してカラム充填剤への吸着物を溶出させ、８−ＯＨｄＧを含む溶出液を得る。
ステップ１３：ステップ１２で得られた溶出液を陽イオン交換カラム（第二カラム）に導入する。
ステップ１４：第二カラムに所定の液体を流し陽イオン樹脂への吸着物を溶出させ、８−ＯＨｄＧを含む溶出液を得る。
【００３０】
ステップ１１で用いる液体試料の具体例としては、尿、血液、唾液等の体液が挙げられる。以下、試料が尿である場合を例に説明する。採取する尿の量は、測定をより確実に行う観点から、たとえば０．５ｍＬ以上５０ｍＬ以下、好適には１．０ｍＬ以上１０ｍＬ以下、より好適には１．５ｍＬ以上５．０ｍＬ以下とする。採取された原尿そのものを使うことが可能である。また、実施例（図１）で後述するように、尿を所定の緩衝液または水で希釈して用いてもよい。尿は採取後直ちに濃縮されることが好ましいが、数時間から数日後であってもよい。
【００３１】
ステップ１１では、第一カラムの充填剤の材料と移動相との組み合わせとして、たとえばオクタデシル（ＯＤＳ）基を化学結合させたシリカゲルと水−アセトニトリル混合溶媒の組み合わせが用いられる。なお、逆相クロマトグラフィーは、固定相が移動相より、極性の小さい系であり、この系では、溶質は疎水性結合により固定相に捕捉され、疎水性の大きい溶質ほど遅れて溶出する。本実施形態において、予めコンディショニングされた充填剤と体液サンプル（尿）とを接触させる。充填剤のコンディショニングは、水およびアルコールで充分に行う。
【００３２】
その後、所定の緩衝液等を洗浄液として第一カラムに流し、非捕捉物質の洗い流しを行う。なお、非捕捉物質としては、第一カラムの充填剤に捕捉されない夾雑物、または、８−ＯＨｄＧの測定を阻害する夾雑物が挙げられる。洗浄液のｐＨは、たとえば５．５以上８．５以下、好ましくは６以上８以下、より好ましくは６．５以上７．５以下とする。洗浄液は、上記ｐＨ範囲に調節された緩衝液（たとえば、リン酸緩衝液）であって、たとえば０％（Ｗ／Ｖ）以上５％以下、好ましくは１％以上４％以下、より好ましくは１％以上３％以下の溶媒を含む。溶媒の具体例としては、エタノール、アセトニトリル、メタノール等が挙げられる。また、洗浄液の量は、カラムの大きさやサンプル濃度に応じて適宜設定されるが、非捕捉物質をより確実に除去する観点から、たとえば１ｍＬ以上１００ｍＬ以下、好ましくは１ｍＬ以上５０ｍＬ以下、より好ましくは１ｍＬ以上２０ｍＬ以下の液量とする。
【００３３】
洗浄後、ステップ１２において、所定の緩衝液等を溶出液として第一カラムに流し、溶出液中に充填剤への吸着物を溶出させる。これにより、目的物質である８−ＯＨｄＧが溶出した液体が得られる。溶出液は、たとえば洗浄液の例として前述した緩衝液であって、エタノール、アセトニトリル、メタノール等を５％（Ｗ／Ｖ）濃度以上に含有する。溶出液（緩衝液）の濃度は、たとえば５％（Ｗ／Ｖ）以上２０％以下、好ましくは６％以上１０％以下とする。溶出液としては、たとえば２．５ｍＬ以上１０ｍＬ以下の量を第一カラムを通液させ、１．５ｍＬから２．５ｍＬにかけて溶出する１ｍＬを回収する。なお、溶出液量および回収液量は使用するカラムの大きさ、サンプル量等に応じて、実験的に設定することができ、適宜増減可能である。
【００３４】
ステップ１３では、回収された８−ＯＨｄＧを含むサンプルを陽イオン交換カラム（第二カラム）に導入する。第二カラムは、好ましくは強酸性陽イオン交換体とする。サンプル中の夾雑物を第二カラム中の陽イオン交換体に吸着させ、目的の８−ＯＨｄＧを回収する。陽イオン交換体としては、公知のイオン交換体を利用でき、特に限定されるものではない。好適な陽イオン交換体としては、強酸性陽イオン交換体が挙げられ、さらに具体的には、スルフォン酸基を導入した交換体が挙げられる。スルフォン酸基の具体例として、たとえばベンゼンスルフォン酸基等が挙げられる。
【００３５】
サンプルと陽イオン交換体との接触方法は特に限られず、バッチ法でもカラム法でもよいが、少量のサンプルの場合にも効率よく８−ＯＨｄＧを濃縮する観点から、カラム法が好適である。第一カラムから溶出された８−ＯＨｄＧを含むサンプル（たとえば、１ｍＬ程度）を、第二カラム中の陽イオン交換体と接触させる。陽イオン交換体は、予めコンディショニングされ、充分な水およびアルコールでの処理、所定の緩衝液で平衡化しておく。緩衝液として、たとえばｐＨ５．５以上８．５以下、好ましくは６．０以上８．０以下、より好ましくは６．５以上７．５以下に調節されたリン酸緩衝液が挙げられる。また、この緩衝液は、たとえば６％（Ｗ／Ｖ）以上、好ましくは７％以上、より好ましくは８％の溶媒を含有する。溶媒としては、エタノール、メタノール等のアルコール類や、アセトニトリルが挙げられる。溶媒（たとえば、エタノール）の濃度は、第一カラムからの溶出液中のエタノール等の濃度以上とする。すなわち、その濃度は、たとえば５％以上４０％以下、好ましくは６％以上３０％以下、より好ましくは７％以上３０％以下が一般的である。
【００３６】
カラム法の場合、ステップ１３でコンディショニングされた陽イオン交換体にサンプルを流し、ステップ１４で展開液によって展開を行う。展開液として、たとえば上記コンディショニングに用いられる溶液と同じもの、または略同一のものが用いられる。展開液の使用量は、たとえば１ｍＬ以上１０ｍＬ以下とし、このとき、０．５ｍＬから２．０ｍＬにかけて溶出する選択された約１．５ｍＬを回収する。なお、展開液の量および回収液の量は、使用するカラムの大きさ、サンプル量等に応じて実験的に設定でき、適宜増減できる。
【００３７】
回収された液体中には、８−ＯＨｄＧが濃縮されており、８−ＯＨｄＧの定量に供することができる。なお、８−ＯＨｄＧの定量前に回収液中の溶媒を、適宜除去してもよい。
また、ここでは、サンプルを流した後、ステップ１４で展開液を流して８−ＯＨｄＧを回収する手順を例示したが、実施例で後述するように、第二カラムについても、サンプルを流した後、洗浄および溶出により、８−ＯＨｄＧを回収してもよい。
【００３８】
次に、８−ＯＨｄＧの定量方法を説明する。定量方法の具体例としては、ＨＰＬＣによる測定が挙げられ、電気化学的反応を利用して８−ＯＨｄＧを検出する。具体的には、電気化学的反応により、８−ＯＨｄＧの酸化または還元に伴う電流を検出し、８−ＯＨｄＧの濃度を算出する。検出装置に特に制限はなく、たとえば、電流検出型化学センサを用いてもよい。センサの作用極は、たとえば白金やカーボンなどの導電体電極とし、参照極の材料は、銀／塩化銀電極等とする。作用極と参照極との間に所定の電位を印加すると、８−ＯＨｄＧ量に応じた電流が発生する。このときの測定条件は、作用極、対極の二電極測定が好ましく、より正確な測定をするためには作用極、対極、参照極の三電極測定が特に好ましい。
【００３９】
以上の手順により、試料中の８−ＯＨｄＧを分離および濃縮し、定量することができる。本実施形態では、第一の実施形態で前述した充填剤を含むカラムを第一カラムとして用いるため、ＨＰＬＣ分画において、８−ＯＨｄＧのピークが単一ピークとして確認でき、夾雑物のピークと重ならないようにすることができる。
【００４０】
なお、以上においては、尿中の８−ＯＨｄＧを測定する場合を例に説明したが、血清中の８−ＯＨｄＧ測定の場合は、８−ＯＨｄＧの正常値が尿中の１００分の１程度であるため、ステップ１４の後、定量前に、濃縮操作を行ってもよい。たとえば、血清サンプルを５０℃のヒートブロックにセットし、窒素気流下で溶媒を飛ばすなど、１００倍の濃縮操作を追加することで、測定時に血清中の８−ＯＨｄＧのピークが明瞭に観察できる。
【００４１】
以上、図面を参照して本発明の実施形態について述べたが、これらは本発明の例示であり、上記以外の様々な構成を採用することもできる。
【００４２】
たとえば、以上の実施形態におけるカラム充填剤の使用態様は、カラムに充填して用いられる場合には限られず、バッチ法による分離等に用いることもできる。以上の実施形態における充填剤を用いた分離方法は、充填剤に液体試料を接触させて、８−ＯＨｄＧを前記充填剤に吸着させるステップと、上記ステップの後、充填剤に溶出液を接触させて、充填剤に吸着した前記８−ＯＨｄＧを溶出し、回収するステップと、を含む。
また、以上の実施形態における充填剤は、性質が異なるカラム担体（たとえば、ＯＤＳとシリカゲル）を二種類以上配合したＣ−１８カラムや、強陽イオンカラムによる固相抽出カラム等にも適用することができる。
【実施例】
【００４３】
以下の実施例では、第二の実施形態に記載の方法を用いて尿中の８−ＯＨｄＧの分離を行った。このとき、フロー式粒子像分析装置で測定される円相当径３５μｍ以上６０μｍ以下の粒子とフロー式粒子像分析装置で測定される円相当径１０μｍ以上３５μｍ以下の粒子との配合比の異なる充填剤を準備し、分離への影響を評価した。図１および図２は、８−ＯＨｄＧの分離手順を説明する図である。図１および図２に示した手順においては、以下のＢｕｆｆｅｒを用いた。
Ｂｕｆｆｅｒ１：８０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０、４ｍＭ  ＥＤＴＡ）
Ｂｕｆｆｅｒ２：１０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）
【００４４】
（第一カラム）
第一カラムの充填剤として、粒径５０μｍの粒子と粒径２０μｍの粒子との配合比の異なる以下の４種類の充填剤（例１〜例４）を準備した。粒径５０μｍの粒子と粒径２０μｍの粒子として、それぞれ、ＹＭＣ社製ＯＤＳ−ＡＱの５０μｍおよび２０μｍサイズを用いた。これらを、例１〜例４に記載の重量比で均質になるように混合して、例１〜例４の充填剤を得た。
例１  ５０μｍ：２０μｍ＝１００：０
例２  ５０μｍ：２０μｍ＝９５：５
例３  ５０μｍ：２０μｍ＝９０：１０
例４  ５０μｍ：２０μｍ＝８０：２０
【００４５】
ここで、前記第一カラムの充填剤の粒径の測定方法は、以下のとおりである。一般的に本カラムの充填剤のような材料は、沈降法もしくはコールター法によって粒径を測定する。沈降法とは、所定の粘性の溶媒中に粒子を懸濁し、重力加速度もしくは遠心力による大きな加速度を利用してセル内で粒子サイズごとに沈降分離して、光検出系でセル全体を走査し、位置による粒子濃度分布パターンから経時変化による沈降パターンを解析し、粒径を求める方法である。一方、コールター法は、電気抵抗を利用した粒子測定原理で、粒子が細孔を通過する際に生じる、２電極間の電気抵抗の変化を測定する。この電気抵抗は、通過する粒子の体積に正確に比例している。細孔を通して流れるサンプル懸濁液の量は精密に制御されていて、粒子の正確な体積から粒径と濃度を測定することができる。実際には、粒径の大きさに適した測定方法が選択されており、本実施例の場合は５０μｍの粒径の場合が沈降法、２０μｍの粒径の場合はコールター法が選択されている。
【００４６】
例１〜例４の充填剤は、いずれも、フロー式粒子像分析装置で測定される円相当径０．５μｍ以上１０μｍ以下の粒子を粒子数として１累積％以上２０累積％以下含み、上記装置で測定される円相当径２０μｍ以上１００μｍ以下の粒子を粒子数として６５累積％以上９９累積％以下含んでいた。充填剤のフロー式粒子像分析結果の例として、例３の充填剤の測定結果を図３に示す。図３は、例３の充填剤のフロー式粒子像分析結果の円相当径と累積％との関係を示す図である。また、下記表１に例１〜例４の測定結果を示す。
【００４７】
【表１】
0005504513.tif 000002
【００４８】
例１〜例４の充填剤について、それぞれ充填剤を８００ｍｇ充填したカラムを準備した。
【００４９】
（逆相カラム（第一カラム）による尿の分離）
図１は、第一カラムを用いた尿の分離手順を説明する図である。例１〜例４の各第一カラムについて、エタノール、水の順で通液し、活性化を行なった。このカラムに、０．５ｍＬの尿と０．５ｍＬのＢｕｆｆｅｒ１と１ｍＬの純水を混ぜ合わせた合計２ｍＬのサンプルを導入した。そして、洗浄液として、２％エタノールを含有するＢｕｆｆｅｒ２を６．５ｍＬ通液させた。
続いて、溶出液として、８％エタノールを含有するＢｕｆｆｅｒ２を０．９７ｍＬ通液させた部分を捨て、その後０．９７ｍＬから１．５７ｍＬにかけて溶出する０．６ｍＬを８−ＯＨｄＧ含有フラクションとして回収した。得られたフラクションを、後述する陽イオン交換カラムに供した。
【００５０】
（陽イオン交換カラム（第二カラム）による８−ＯＨｄＧの回収）
図２は、第二カラムを用いた分離手順を説明する図である。第二カラムとして陽イオン交換体（Ｖａｒｉａｎ社製、ＳＣＸ）を２５０ｍｇ充填したカラムを準備し、エタノール、水、８％エタノールを含有するＢｕｆｆｅｒ２を通液し活性化を行なった。
【００５１】
上述の手順で得られた８−ＯＨｄＧ含有フラクション（０．６ｍＬ）を第二カラムへ添加した。その後、洗浄液として、８％エタノールを含有するＢｕｆｆｅｒ２を０．３ｍＬ通液させてカラム内を洗浄した。そして、８％エタノールを含有するＢｕｆｆｅｒ２を０．９ｍＬ通液させ、その部分すべてを８−ＯＨｄＧフラクションとして回収した。
【００５２】
（８−ＯＨｄＧの測定）
以上により回収された８−ＯＨｄＧフラクションをＨＰＬＣシステムへ注入し、８−ＯＨｄＧの定量を行った。ＨＰＬＣシステムは、東ソー社製ＨＰＬＣシステムのように脱気装置（ＳＤ−８０２２）、グラジエント可能なポンプ（ＣＣＰＭ−ＩＩ）、オートサンプラー（ＡＳ−８０２０）、カラムオーブン（ＣＯ−８０２０）、ＵＶ検出器（ＵＶ−８０２０）、電気化学検出器（ＥＣ−８０２０）（ＥＣＤ）で構成され、分離カラムとして逆相カラムＨｙｄｒｏｓｐｈｅｒｅ  Ｃ１８（４．６×１５０ｍｍ、５μｍ、ＹＭＣ社製）を使用した。移動相としては、１０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ  ７．０、１ｍＭ  ＥＤＴＡ、２％アセトニトリルを終濃度として含む）、および同様のリン酸緩衝液で８％アセトニトリルを含有した緩衝液を使用した。この２種類の緩衝液のリニアグラジエントで分析を行なった。８％アセトニトリル溶液が、０分から５分が０％、５分から２０分が１００％、２０分から２５分が１００％、２５分から３０分が０％になるようにグラジエントプログラムを行なった。流速は１ｍＬ／分、ＵＶ検出器の波長は２５４ｎｍ、ＥＣＤの印加電圧は＋５００ｍＶ、カラムオーブンは３５℃で測定を行なった。なお１測定の時間は洗浄を含めて５０分であった。
【００５３】
逆相カラムの充填剤として例１〜例４を用いた場合のそれぞれについて、８−ＯＨｄＧの測定結果を図４に示す。なお、図４中の「前処理時間」は、第一および第二カラムによる処理に要した時間の合計である。
また、逆相カラムの充填剤として例３を用いた場合のＨＰＬＣ−ＥＣＤ測定結果を図５に示す。
【００５４】
図４より、例１〜例４の充填剤は、いずれも、フロー式粒子像分析装置で測定される円相当径０．５μｍ以上１０μｍ以下および円相当径２０μｍ以上１００μｍ以下の粒子を特定の割合で含むため、８−ＯＨｄＧを高い回収率で分離することができた。また、例２〜例４のように、粒径２０μｍの粒子と粒径５０μｍの粒子を特定の割合で配合することにより、ＣＶ（coefficient of variation：変動係数）をさらに小さくすることができた。
【００５５】
また、図５より、円相当径０．５μｍ以上１０μｍ以下および円相当径２０μｍ以上１００μｍ以下の粒子を特定の割合で含む例３の充填剤を用いた場合には、夾雑物のピークが現れず、８−ＯＨｄＧのピークが単独で測定された。
【図１】
0005504513.tif 000003
【図２】
0005504513.tif 000004
【図３】
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【図４】
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【図５】
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