(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
pcDNA3.1(+)またはpcDNA3.1(-)において、
SV40oriとSV40pA付加配列との間に位置するネオマイシン耐性遺伝子を含む領域であって、その５’末端が当該遺伝子の５’末端とSV40oriとの間のSmaI認識部位であり、かつその３’末端が当該遺伝子の３’末端とSV40pA付加配列との間のNaeI認識部位である領域が除去されており、
当該領域が、５’末端にSmaI認識部位が付加され、かつ３’末端にNaeI認識部位が付加されたピューロマイシン耐性遺伝子またはブラストシジンＳ耐性遺伝子を含むDNA断片によって置換されていることを特徴とする、
マルチクローニングサイトを有する動物細胞用発現ベクター。
【請求項２】
前記マルチクローニングサイトがpcDNA3.1(+)またはpcDNA3.1(-)におけるマルチクローニングサイトの各制限酵素認識部位と共通する制限酵素認識部位を有し、かつ該部位がpcDNA3.1(+)またはpcDNA3.1(-)と同一の順序で配置されていることを特徴とする、請求項１に記載の動物細胞用発現ベクター。
【請求項３】
前記ピューロマイシン耐性遺伝子を含むDNA断片が、両端にSmaI認識部位を有する配列番号４で示される塩基配列からなるDNA断片をNaeI消化させた断片を含むことを特徴とする、請求項１又は２に記載の動物細胞用発現ベクター。
【請求項４】
前記ブラストシジンＳ耐性遺伝子を含むDNA断片が、両端にSmaI認識部位を有する配列番号３で示される塩基配列からなるDNA断片をNaeI消化させた断片を含むことを特徴とする、請求項１又は２に記載の動物細胞用発現ベクター。
【請求項５】
配列番号１に示される塩基配列からなるプラスミドベクターであることを特徴とする請求項３に記載の動物細胞用発現ベクター。
【請求項６】
配列番号２に示される塩基配列からなるプラスミドベクターであることを特徴とする請求項４に記載の動物細胞用発現ベクター。
【請求項７】
請求項１〜６のいずれかに記載の動物細胞用発現ベクターの製造方法であって、以下の工程（１）〜（４）を含む方法；
（１）ピューロマイシン耐性遺伝子またはブラストシジンＳ耐性遺伝子の5’末端にSmaI認識部位が付加されるとともに、3’末端にNaeI認識部位が付加され、さらに、該NaeI認識部位外側にSmaI認識部位が付加されている２本鎖のDNA断片を用意する工程、
（２）上記DNA断片を、SmaIにより開裂させたpcDNA3.1(+)またはpcDNA3.1(-)にリガーゼにより連結する工程、
（３）工程（２）で得られたプラスミドをNaeIで消化後、生じた４種類のDNA断片をそれぞれ分離する工程、
（４）得られた４種類のDNA断片のうちのピューロマイシン耐性遺伝子またはブラストシジンＳ耐性遺伝子及びSV40oriを含む断片と、pcDNA3.1(+)またはpcDNA3.1(-)由来のSV40pA付加配列を含む断片とを連結する工程。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、細胞、特に動物細胞に遺伝子導入する際に用いる発現ベクターに関する。
【背景技術】
【０００２】
哺乳類細胞に遺伝子を導入する際に用いられる発現ベクターは多数存在する。これらは、１)挿入配列を導入するためのマルチクローニングサイト(MCS)、２)挿入配列を発現するためのプロモーター及びポリA付加配列、３)遺伝子が導入された細胞を選択するための薬剤耐性マーカー遺伝子とこれを発現するためのプロモーター及びポリA付加配列、４)原核細胞内で複製されるためのori配列、５)原核細胞での薬剤選択用の抗生物質耐性遺伝子、等から構成されている。
同一細胞に複数の外来遺伝子を導入するにあたっては、異なる薬剤耐性マーカー遺伝子をもつベクターを利用することが一般的であり、それぞれの外来遺伝子は、それぞれのベクターが有するMCSに合わせて挿入配列を調製することが必要である。
【０００３】
しかしながら、複数の外来遺伝子を導入する際には、挿入配列と薬剤選択マーカーの組合せを様々に変化させることが一般的である。従来は、同一ベクター、すなわち同一のMCSを有し、かつ異なる薬剤耐性マーカー遺伝子を有するベクターの例は、数少なかったため、そのたびに、異なる配列を有するMCSへ挿入配列を導入する必要が有り、このために、リンカーを付加したり、挿入配列全体を調製し直す等、手間がかかる作業が必要であった。
数少ない例外として、ネオマイシン耐性遺伝子を有するpcDNA3.1があり、これと同一のMCSを有したベクターでありながら、ハイグロマイシン耐性遺伝子を有するpcDNA3.1/Hygroやゼオシン耐性遺伝子を有するpcDNA3.1/Zeoが市販されている。
これら、pcDNA3.1、pcDNA3.1/Hygro、pcDNA3.1/Zeoは共通のMCSを有するため、相互に挿入配列の交換が可能であり、このため、薬剤選択マーカーの交換も容易である。しかし、これらpcDNA3.1/Hygro、pcDNA3.1/Zeoの製造法は明らかにされてはいない。
【０００４】
一方、近年、ネオマイシン、ハイグロマイシン、ゼオシン以外にも、より安価で効率よく遺伝子導入細胞を選択できる抗生物質が開発されており、ピューロマイシンやブラストシジンＳはその例である。しかし、これらに対する耐性を有する発現ベクターは、背景となる配列が全く異なるベクターであり、このため、MCS配列も全く異なる。このため、pcDNA3.1に挿入していた外来遺伝子を、ピューロマイシン耐性やブラストシジンＳ耐性を指標にしてその導入細胞を選択するには、新規にベクター構築を図る必要があり、このため、そのMCSに適した末端配列を有する挿入配列を新たに構築する必要があった。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
そこで、本発明の課題は、pcDNA3.1、pcDNA3.1/Hygro、pcDNA3.1/Zeoベクターと共通するマルチクローニングサイト(MCS)を有し、かつ薬剤選択マーカーをネオマイシン耐性でなく、新たにピューロマイシン耐性やブラストシジンＳ耐性とした発現ベクターを構築し、このような共通するMCSを有する発現ベクターにおいて使用可能な薬剤選択マーカーの種類を広げ、pcDNA3.1系の動物細胞用発現ベクターを使用する際の利便性を向上させることにある。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
上記課題を解決するため、本発明者等はpcDNA3.1よりネオマイシン耐性遺伝子を除去し、代わりに、ピューロマイシン耐性やブラストシジンＳ耐性遺伝子の導入を試みた。
しかし、pcDNA3.1からネオマイシン耐性遺伝子のみを除去し、その前後に存在し、ネオマイシン耐性遺伝子の発現を制御するプロモーター領域(SV40ori)やポリＡ付加配列(SV40pA)に損傷を与えないための有効な制限酵素部位は存在しない。そこで、本発明者らは、pcDNA3.1ベクターのネオマイシン耐性遺伝子のプロモーターとして作用するSV40oriとネオマイシン耐性遺伝子との間に存在するユニークなSmaI認識部位と、ネオマイシン耐性遺伝子の下流でSV40pA付加配列との間に存在するNaeI認識部位に着目し、さらに鋭意研究した結果、上記SV40oriとSV40pAにより発現制御されるネオマイシン耐性遺伝子を、ピューロマイシン耐性遺伝子あるいはブラストシジンＳ耐性遺伝子に置換することに初めて成功し、本発明を完成させるに至ったものである。
【０００７】
すなわち、本発明は以下(１)〜(８)に示すとおりである。
（１）SV40oriとSV40pAによって発現が制御される薬剤選択マーカー遺伝子を有し、かつマルチクローニングサイトを有する動物細胞用発現ベクターであって、薬剤選択マーカー遺伝子がピューロマイシン耐性遺伝子、またはブラストシジンＳ耐性遺伝子であることを特徴とする、動物細胞用発現ベクター。
（２）上記マルチクローニングサイトが、pcDNA3.1(+)またはpcDNA3.1(-)におけるマルチクローニングサイトの各制限酵素認識部位と共通する制限酵素認識部位を有し、かつ該部位がpcDNA3.1(+)またはpcDNA3.1(-)と同一の順序で配置されていることを特徴とする、上記(１)に記載の動物細胞用発現ベクター
（３）ピューロマイシン耐性遺伝子の3’末端及び5’末端にSmaI認識配列がそれぞれ付加されるとともに、3’末端に付加されるSmaI認識配列の内側にNaeI認識配列が配置されていること特徴とする、ＤＮＡ断片。
（４）配列番号４で示される塩基配列を有することを特徴とする、上記(３)に記載のＤＮＡ断片。
（５）ブラストシジンＳ耐性遺伝子の3’末端及び5’末端にSmaI認識配列がそれぞれ付加されるとともに、3’末端に付加されるSmaI認識配列の内側にNaeI認識配列が配置されていること特徴とする、ＤＮＡ断片。
（６）配列番号３で示される塩基配列を有することを特徴とする、上記(５)に記載のＤＮＡ断片。
（７）配列番号１に示される塩基配列を有することを特徴とするプラスミドベクター。
（８）配列番号２に示される塩基配列を有することを特徴とするプラスミドベクター。
【発明の効果】
【０００８】
本発明は、マルチクローニングサイト(MCS)を有する動物細胞用ベクターにおいて、SV40oriとSV40pAにより発現制御される薬剤耐性遺伝子を、ピューロマイシン耐性遺伝子あるいはブラストシジンＳ耐性遺伝子に置換したものであり、これにより、外来遺伝子組換え細胞の選択において、使用可能な薬剤選択マーカーの種類が広がり、より効率的な遺伝子導入試験が可能となる。
また、特に、本発明のpcDNA3.1(+)のネオマイシン耐性遺伝子をピューロマイシン耐性遺伝子に置換したベクター(pcDNA3.1(+)-PUR)及び同じくブラストサイジンＳ耐性遺伝子に置換したベクター(pcDNA3.1(+)-BSD)は、既存のベクターであるpcDNA3.1(+)、pcDNA3.1/Hygro(+)、pcDNA3.1/Zeo(+)と共に、共通のMCSを有している。このため、相互に挿入配列の交換が可能である。したがって、本発明によれば、薬剤選択マーカーの交換が格段に容易となり、その選択の幅も広がる。
【図面の簡単な説明】
【０００９】
【図１】pcDNA3.1(+)-BSDベクターの構築手法の概略を示す模式図である。
【図２】は、pcDNA3.1(+)、pcDNA3.1(+)-PUR、pcDNA3.1(+)-BSDによる安定発現細胞    を、各種抗生物質の存在下で６日間培養後の結果を示す写真である。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
マルチクローニングサイト(MCS)を有し、かつSV40oriとSV40pAにより発現制御される薬剤耐性遺伝子を有する動物細胞用ベクターの具体例としては、pcDNA3.1(+)が挙げられる。
このpcDNA3.1(+)の構造は図１(Ｂ)に示され、pcDNA3.1(+)は、マルチクローニングサイト(MCS)を有し、薬剤耐性遺伝子として、アンピシリン耐性遺伝子(Ａｍｐ)及びネオマイシン耐性遺伝子(Ｎｅｏ)を有する。このうちネオマイシン耐性遺伝子は、ネオマイシン耐性遺伝子のプロモーターとして作用するSV40oriとSV40pA付加配列の間に配置され、これらにより発現制御される。
マルチクローニングサイト(MCS)は、複数の制限酵素認識部位により構成されており、制限酵素切断部位は、プロモーターからＢＧＨ  ｐＡ方向に向けて、順にNhe I，Pme I，Afl II，Hind III，Asp718 I，Kpn I，BamH I，BstX I，EcoR I，EcoR V，BstX I，Not I，Xho I，Xba I，Dra II，Apa I，Pme Iのように配置されている。
【００１１】
同様に、pcDNA3.1(-)の場合には、制限酵素切断部位は、プロモーターからＢＧＨ  ｐＡ方向に向けて、順にNhe I，Pme I，Dra II，Apa I，Xba I，Xho I，Not I，BstX I，EcoR V，EcoR I，BstX I，BamH I，Asp718 I，Kpn I，Hind III，Afl II，Pme I,のように配置されている。
本願発明におけるベクターは、具体的には、上記pcDNA3.1(+)またはpcDNA3.1(-)におけるネオマイシン耐性遺伝子が、ピューロマイシン耐性遺伝子あるいはブラストシジンＳ耐性遺伝子に置換され、上記マルチクローニングサイトにおける各制限酵素認識部位と共通する認識部位を有し、かつ同一の順序で配置されているものである。
しかし、共通する制限酵素認識部位及び同一の順序といっても、このことはマルチクローニングサイトの全領域に亘って完全に塩基配列が一致することを意味するものではない。
【００１２】
以下に、本発明の動物細胞用ベクターの構築法について、図１を参照して、ブラストシジンＳ耐性遺伝子を使用する場合を例にして具体的に説明する。
pcDNA3.1(+)においては、ネオマイシン耐性遺伝子下流側でSV40pA付加配列との間にNaeI認識部位が存在し、また、SV40oriとネオマイシン耐性遺伝子の間にユニークなSmaI認識部位が存在する。このSmaI認識部位を利用して、ブラストシジンＳ耐性遺伝子の両末端にSmaI認識部位を付加して、リガーゼにより連結すれば、ブラストシジンＳ耐性遺伝子をpcDNA3.1(+)に導入できる。しかし、pcDNA3.1(+)においては、ネオマイシン耐性遺伝子を除去するための適当な制限酵素切断部位がなく、ネオマイシン耐性遺伝子を除去することは、困難である。
すなわち、pcDNA3.1(+)においては、ネオマイシン耐性遺伝子下流側でSV40pA付加配列との間にNaeI認識部位が存在するが、上記NaeIはユニークなものではなく，SV40oriの上流にも存在するので、Naeで切断するだけでは、SV40oriが除去されて、充分な薬剤耐性が期待できない。
【００１３】
そこで、本発明においては、まず、導入するブラストシジンＳ耐性遺伝子の5’末端にSmaI認識部位を付加すると共に、3’末端にSmaI認識部位及びその内側にNaeI認識部位を付加したＤＮＡを作成する(図１(Ａ))。このＤＮＡの塩基配列は、配列表の配列番号３に示される。この後、このＤＮＡを２本鎖にした後、SmaIで開裂したpcDNA3.1(+)にリガーゼで連結する(図１(Ｂ))。次いで、このように連結され、ブラストシジンS耐性遺伝子が挿入されたpcDNA3.1(+)をNaeIで消化する。これにより、上記制限酵素認識部位が付加されたブラストシジンＳ耐性遺伝子は、NaeI認識部位で切断され、NaeI切断末端を有するブラストシジンＳ耐性遺伝子を含む断片が生成するが、このとき、ブラストシジンＳ耐性遺伝子を含む断片の他にも、ネオマイシン耐性遺伝子の前半と後半に由来する断片、あるいはpcDNA3.1(+)に由来する断片も生成する(図１(Ｃ))。このような断片は、それぞれ分子長が異なるため、アガロースゲル電気泳動により、上記ブラストシジンＳ耐性遺伝子を含む断片を分離する。
【００１４】
この後、分離されたNaeI切断末端を有するブラストシジンS耐性遺伝子は、上記ネオマイシン耐性遺伝子下流側でSV40pA付加配列の間にあるNaeI認識部位に由来する切断末端で連結されるとともに、ネオマイシン耐性遺伝子は除去され、ブラストシジンS耐性遺伝子に置換されたベクター、pcDNA3.1(+)-BSD(配列番号１)が得られる(図１(Ｄ))。
【００１５】
また、ピューロマイシン耐性遺伝子の導入においては、導入するピューロマイシン耐性遺伝子の5’末端にSmaI認識部位を付加すると共に、3’末端にSmaI認識部位及びその内側にNaeI認識部位を付加したＤＮＡ(配列番号４)を作成し、ブラストシジンＳ耐性遺伝子の上記導入手法と同様の操作を行うことにより、pcDNA3.1(+)におけるネオマイシン耐性遺伝子がピューロマイシン耐性遺伝子に置換されたベクターpcDNA3.1(+)-ＰＵＲ(配列番号２)が得られる。
【００１６】
本発明で新たに構築したpcDNA3.1(+)-BSD及びpcDNA3.1(+)-PURベクターは、既存のベクターであるpcDNA3.1(+)やpcDNA3.1/Hygro(+)、pcDNA3.1/Zeo(+)と全く同一のMCSを有する。このため、一度、挿入配列を構築すれば、いずれのベクターにも挿入することが可能であり、また、いずれかのベクターに挿入された挿入配列を切り出して他のベクターに挿入することも容易である。このため、一つの挿入配列遺伝子を、異なる薬剤耐性マーカー遺伝子を有するベクターに入れ替えることが容易となり、複数の遺伝子の作用を解析する上で、非常に有用なツールとなりうる。
【００１７】
例えば、動物細胞の糖鎖生合成の場合には、糖ヌクレオチド輸送体、糖転移酵素、糖分解酵素など、複数の遺伝子産物(蛋白質)の協調作用によって、最終的な機能性産物(糖蛋白質)が作られる。また、近年、複数の遺伝子産物が細胞内で複合体を形成して初めて機能を発揮する例も報告されている。このような対象の全体像を把握するためには、複数の遺伝子を様々な組合せで宿主細胞に導入し、その効果を検証することが必要である。本発明で得られたベクターのパネルは、このような研究において、有用なツールとなる。
【００１８】
本発明のブラストシジンＳ耐性遺伝子(BSD)あるいはピューロマイシン耐性遺伝子(PUR)を含む、ベクター(それぞれ配列番号１、２のＤＮＡ配列を有する)は、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに寄託番号FERM P-20732及びFERM P-20733にて、ともに平成17年12月9日に寄託されている。
【実施例】
【００１９】
〔実施例１〕
１．BSDの構築
ブラストシジンＳ耐性遺伝子(BSD)は、これを含むベクターpMAM2-BSDを鋳型としPCRで構築した。センスプライマーとして、その5’-末端にSmaI部位を付加したオリゴヌクレオチドを用い、アンチセンスプライマーとして、その5’-末端にSmaI+ NaeI部位を付加したオリゴヌクレオチドを用いた。具体的には、センスプライマーとして、#872(5’-tcc ccc ggg tca ata tgc ctt tgt ctc a-3’)(配列番号５)を、アンチセンスプライマーとして、#891(5’-taa ccc ggg ccg gct ggt gct tag ccc tcc c-3’)(配列番号６)を用い、耐熱性ポリメラーゼKOD-plus-を用いて、特異的にBSDを増幅した(図１(Ａ))。
【００２０】
得られたＤＮＡ断片は、Zero Blunt TOPO PCR Cloning Kitを用いて、pCR-Blunt II-TOPOベクターにクローニングした。ポジティブクローンを選択し、挿入配列に予期しない変異が入っていないことを確認した後、そのプラスミドを調製し、SmaIで消化した。４１５塩基対のＤＮＡ断片をアガロース電気泳動で、分離抽出し、以降のライゲーション反応に用いた。
【００２１】
２．PURの構築
ピューロマイシン耐性遺伝子(PUR)は、これを含むベクターpPURを鋳型としPCRで構築した。センスプライマーとして、その5’-末端にSmaI部位を付加したオリゴヌクレオチドを用い、アンチセンスプライマーとして、その5’-末端にSmaI+ NaeI部位を付加したオリゴヌクレオチドを用いた。さらに、PURの5’-端近くに内在するSmaI部位を破壊する目的で、センスプライマーには変異を導入した。具体的には、センスプライマーとして、#874’(5’-tcc ccc ggg aag ctt acc atg acc gag tac aag ccc acg gtg cgc ctc gcc acc cgc gac gac gtc ccc agg-3’) (配列番号７)を、アンチセンスプライマーとして、#892(5’-taa ccc ggg ccg gcg tca ggc acc ggg ctt g-3’)(配列番号８)を用い、耐熱性ポリメラーゼKOD-plus-を用いて、特異的にPURを増幅した。
得られたDNA断片は、Zero Blunt TOPO PCR Cloning Kitを用いて、pCR-Blunt II-TOPOベクターにクローニングした。ポジティブクローンを選択し、挿入配列に予期しない変異が入っていないことを確認した後、そのプラスミドを調製し、SmaIで消化した。６２１塩基対のＤＮＡ断片をアガロース電気泳動で、分離抽出し、以降のライゲーション反応に用いた。
【００２２】
３．pcDNA3.1(+)のSmaI部位への挿入
pcDNA3.1(+)ベクターをSmaIで消化し、５４２８塩基対の線状ＤＮＡ断片をアガロース電気泳動で分離抽出した。さらに、CIAPにより脱リン酸処理を行った後、以降のライゲーション反応に用いた。
SmaIで消化したpcDNA3.1(+)ベクターに、上記の通り調製したPURあるいはBSDのＤＮＡ断片を、Ligation Convenience Kitを用いてライゲーションした(図１(Ｂ))。ポジティブクローンは、挿入部位の前後にデザインしたプライマー(#893(5’-gtg tgg tgg tta cgc gca-3’)(配列番号９)及び#894(5’-cac aac tag aat gca gtg a-3’)(配列番号１０)を用いたダイレクトPCRによりスクリーニングし、さらにこれらのプライマーと挿入配列を構築した際のプライマー(#872，#891，#874’，#892)とを組合せたPCRにより、挿入配列の方向を決定した。最終的に得られたクローンについては、ベクターと挿入配列の結合部位のＤＮＡ配列を確認した。
【００２３】
４．NaeI処理によるneoの除去
上記で得られたクローンをNaeIで消化して、BSDの場合には、3804，1062，694，283bpの、PURの場合には、3804，1268，694，283 bpのＤＮＡ断片がそれぞれ得られる。これらはそれぞれ、ベクター(pcDNA3.1(+))に由来する断片、BSD若しくはPUR耐性遺伝子に由来する断片、ネオマイシン耐性遺伝子の前半と後半に由来する断片に相当する(図１(Ｃ))。そこで、ベクターに由来する断片、及び、BSD若しくはPUR耐性遺伝子に由来する断片をアガロースゲル電気泳動により、分離・抽出し、ライゲーション反応に供することによって、ネオマイシン耐性遺伝子を除去した(図１(Ｄ))。
【００２４】
クローンの選択は、上記同様、#893と#894や挿入配列を構築した際のプライマー(#872，#891，#874’，#892)を用いたダイレクトPCRにより、方向も含めてポジティブなクローンを選択した。最終的に得られたクローンについては、ベクターと挿入配列の結合部位のDNA配列を確認し、pcDNA3.1(+)-PUR(配列番号２)、pcDNA3.1(+)-BSD(配列番号１)を得た。
【００２５】
〔実施例２〕
薬剤耐性試験
pcDNA3.1(+)及び、本発明で新たに構築したpcDNA3.1(+)-PUR、pcDNA3.1(+)-BSDを、FuGENE6を用いてChinese hamster卵巣細胞(CHO細胞)に遺伝子導入し、それぞれ、ネオマイシン(1mg/ml)、ピューロマイシン(10micro-gram/ml)、ブラストシジンＳ(5micro-gram/ml)の共存下で生存する細胞を選択した。
得られたそれぞれの薬剤耐性細胞を、抗生物質を含まない培地(alpha-MEM，10% FCS)で、2.0×105個ずつ6-ウェルプレートに播種し、７時間後、ネオマイシン(1mg/ml)、ピューロマイシン(10micro-gram/ml)、ブラストシジンＳ(5micro-gram/ml)を含む培地に交換した。３日後に、培地交換を行い浮遊する死細胞を除去した。さらに３日後、同様の操作で洗浄した上で、写真を撮影した(図２)。
【００２６】
これによれば、抗生物質を含まない培地では、いずれの細胞も十分な増殖が観察された(パネルＡ，Ｂ，Ｃ)。元来pcDNA3.1(+)はネオマイシン耐性遺伝子を有しているため、pcDNA3.1(+)を導入した細胞ではネオマイシン(G418)の存在下でも生存・増殖したが(パネルＤ)、ピューロマイシンやブラストシジンＳの存在下では死滅した(パネルＧ,Ｊ)。
新規なベクターであるpcDNA3.1(+)-PUR及びpcDNA3.1(+)-BSDは、共にネオマイシン耐性遺伝子を除去されているため、これらを導入した細胞はネオマイシン耐性を有しておらず、ネオマイシン(G418)の存在下では死滅した(パネルＥ,Ｆ)。一方、これらのベクターは、それぞれピューロマイシン、ブラストシジンＳに対する耐性遺伝子を有しているため、これらを導入した細胞は、それぞれピューロマイシン存在下(パネルＨ)、ブラストシジンＳ存在下(パネルＬ)でも生存・増殖した。
【図１】
0005504510.tif 000002
【図２】
0005504510.tif 000003
【配列表】
0005504510000001.app