(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
配列番号１のアミノ酸配列からなるペプチドまたは薬学的に許容可能なその塩。
【請求項２】
請求項１のペプチドまたは薬学的に許容可能なその塩を含む、退行性ディスク疾患の治療および予防用組成物。
【請求項３】
請求項１のペプチドまたは薬学的に許容可能なその塩を含む、人体器官の線維症、癌または糸球体硬化症の治療用組成物。
【請求項４】
前記人体器官の線維症、癌または糸球体硬化症の治療は、ＴＧＦ−β１シグナル抑制によるものである、請求項３に記載の組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は退行性ディスク疾患治療および／または予防、人体器官の線維症の治療、癌治療、糸球体硬化症の治療などに有効な新規ペプチドに関するものである。
【背景技術】
【０００２】
退行性ディスク疾患（ｄｅｇｅｎｅｒａｔｉｖｅ  ｄｉｓｃ  ｄｉｓｅａｓｅ：ＤＤＤ）は、慢性腰痛の原因のうち一つであり、年齢と共にディスクの脱水現象（特に髄核で）によりディスク変性があったり、ディスクの高さが減少し、ディスクにひびが入り、かつ亀裂が生じたりして腰痛を伴うものである。変性したディスクには非正常の神経と血管の生成が増加されており、細胞の数と機能が変化（ｃｌｕｓｔｅｒ  ｆｏｒｍａｔｉｏｎ、ｎｅｃｒｏｓｉｓ、ａｐｏｐｓｏｓｉｓなど）されている。退行性ディスクの重要な分子的特徴のうち一つはアグリカン（ａｇｇｒｅｃａｎ）の減少である。ディスクが荷重を耐えられるようにする重要な役割を担当するアグリカンが減少することによってディスクの浸透圧が落ち、これ以上水分を維持することができなくなり、既存の線維輪をはじめとする既存のディスクの退行を加速化させ、面関節（ｆａｃｅｔ  ｊｏｉｎｔ）および黄色靱帯（ｌｉｇａｍｅｎｔｕｍ  ｆｌａｖｕｍ）の変性および肥大化させるように他の脊椎構造と機能に大きな影響を及ぼす。
【０００３】
現在このような退行性ディスク疾患をはじめとする病的な慢性腰痛に対する医学的治療は、鎮痛剤を含む薬品治療と運動リハビリ治療などがあるが、しばしば再発が起こり、長い時間と努力が必要であり、また長期間の投薬による合併症の発病可能性がある。
【０００４】
このような長期間の保存的な治療後にも効果がない場合、手術的な治療をするようになり、代表的な方法として損傷したディスク組織を完全に除去した後、骨片を移植して固定する姑息的な腰椎固定術（ｌｕｍｂａｒ  ｆｕｓｉｏｎ ｓｕｒｇｅｒｙ）と最近の人工ディスク挿入術がある。しかし、この手術法は、費用が比較的多くかかり、また手術による初期および後期の合併症の併発の可能性が常にあり、腰椎固定術は、隣接部の変性により周期的な再手術を要する場合が多く、これを減らすために開発された人工ディスクは、長期追跡による臨床評価（ｌｏｎｇ−ｔｅｒｍ  ｆｏｌｌｏｗ−ｕｐ  ｓｔｕｄｙ）の結果が良くなく、最近ではあまり施行されない傾向である。このように退行性ディスク疾患による慢性腰痛はその治療において多くの難点があるのが実情である。これに伴い、保全的な治療および手術的な治療の代案としてディスク自体の変性を最小化し、再生をさせようとする様々な実験的な治療法が試みられている。
【０００５】
最近ディスク変性を治療するための生物学的治療方法として重要なマトリックス蛋白質｛例、アグリカン（ａｇｇｒｅｃａｎ）｝の生産を上向き調節（ｕｐ−ｒｅｇｕｌａｔｅ）するかまたは炎症性サイトカイン（ｐｒｏ−ｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙ  ｃｙｔｏｋｉｎｅｓ）｛例、インターロイキン−１（ＩＬ−１）、腫瘍壊死因子−アルファ（ＴＮＦ−α）｝によって誘導される異化作用を下向き調節（ｄｏｗｎ−ｒｅｇｕｌａｔｅ）させる方法を試みている（Ａｈｎ，  ＳＨ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｐｉｎｅ  ２７：９１１−９１７，  ２００２；  Ｂｕｒｋｅ  ＪＧ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｐｉｎｅ  ２８：２６８５−２６９３，  ２００３；  Ｋａｎｇ  ＪＤ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｐｉｎｅ  ２１：２７１−２７７，  １９９６；  Ｗｅｉｌｅｒ  Ｃ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｐｉｎｅ  ３０：４４−５３，  ２００５；  Ｉｇａｒａｓｈｉ  Ｔ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｐｉｎｅ  ２５：２９７５−２９８０，  ２０００；  Ｏｌｍａｒｋｅｒ  Ｋ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｐｉｎｅ  ２３：２５３８−２５４４，  １９９８；  Ｌｅ  Ｍａｉｔｒｅ  ＣＬ  ｅｔ  ａｌ．，  Ａｒｔｈｒｉｔｉｓ  Ｒｅｓ  Ｔｈｅｒ  ７：Ｒ７３２Ｒ７４５，  ２００５；  Ｓｅｇｕｉｎ  ＣＡ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｐｉｎｅ  ３０：１９４０−１９４８，  ２００５）
このような生物学的な治療法は、主に国外で行われているが、骨形成タンパク質（Ｂｏｎｅ  ｍｏｒｐｈｏｇｅｎｉｃ  ｐｒｏｔｅｉｎ、ＢＭＰ）をディスク内に直接投入するかあるいは治療遺伝子を注入させたディスク細胞を移植する方法が脚光を浴びている（Ｍａｓｕｄａ  Ｋ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｐｉｎｅ  ３１：７４２−７４５，  ２００６；  Ｉｍａｉ  Ｙ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｐｉｎｅ  ３２：  １１９７−１２０５，  ２００７；  Ｚｈａｎｇ  Ｙ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｐｉｎｅ  ３３：８３１−８３８，  ２００８）。しかし、この方法は、物理的な再生によりディスク構造を物理的に変化させるだけの方法であり、患者の痛みを緩和させたり、除去したりする方法ではなく、場合によって過度に増殖する場合、神経の圧迫による神経学的症状が悪化する可能性がある。
【０００６】
一方、ＴＧＦ−β１シグナル（ＴＧＦ−ｂｅｔａ１  ｓｉｇｎａｌｉｎｇ）は、線維症（Ｆｉｂｒｏｓｉｓ）、アポトーシス（Ａｐｏｐｔｏｓｉｓ）、血管新生（Ａｎｇｉｏｇｅｎｅｓｉｓ）、腫瘍細胞浸潤（Ｔｕｍｏｒ  ｃｅｌｌ  ｉｎｖａｓｉｏｎ）および転移（ｍｅｔａｓｔａｓｉｓ）などに関与するものであって、それを抑制すると、人体器官の線維症、癌、および／または糸球体硬化症の治療が可能であることが知られている（Ｐｒｕｄ'ｈｏｍｍｅ  ＧＪ，  Ｌａｂ  Ｉｎｖｅｓｔ  ８７：１０７７−１０９１，  ２００７）。
【０００７】
したがって、ディスク自体の変性を最小化してディスク再生を促進し、退行性ディスク疾患に効果的であり、ＴＧＦ−β１シグナルを抑制して人体器官の線維症、癌、糸球体硬化症などを治療できる生物学的新物質の開発が必要である。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
本発明が解決しようとする課題は、ディスク自体の変性を最小化してディスク再生を促進できる新規ペプチドを提供することにある。
【０００９】
また、本発明が解決しようとする課題は、人体器官の線維症、癌、または糸球体硬化症の治療に効果的な組成物を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
本発明は、配列番号１のアミノ酸配列（ＬＱＶＶＹＬＨ）を含むペプチド、その変異体または薬学的に許容可能なその塩を提供する。
【００１１】
前記アミノ酸配列のＬはロイシン（Ｌｅｕ）、Ｑはグルタミン（Ｇｌｎ）、Ｖはバリン（Ｖａｌ）、Ｙはタイロシン（Ｔｙｒ）、Ｈはヒスチジン（Ｈｉｓ）を意味する。
【００１２】
前記ペプチドを構成するアミノ酸にはＬ−体、Ｄ−体、ＤＬ−体が存在し、本発明のペプチドを構成するアミノ酸はこれらをいずれも含む。
【００１３】
前記変異体は、自然的変異または人工的変異によって主要活性に変化を与えなく、本発明ペプチド構造の一部が変異したものあり、例えば、配列番号１のアミノ酸のうちグルタミン、タイロシン、ヒスチジンに位置するアミノ酸のうち一つ以上が異なるアミノ酸に置換されたものであり得、好ましくは配列番号１のアミノ酸のうちグルタミンがアスパラギンに置換され、タイロシンがフェニルアラニンまたはトリプトファンに置換され、および／またはヒスチジンがリジンまたはアルギニンに置換されたものである。グルタミンとアスパラギンは、末端アミド基を有するアミノ酸群に含まれて、タイロシン、フェニルアラニンおよびトリプトファンは芳香族側鎖を有するアミノ酸群に属する。ヒスチジン、リジンおよびアルギニンは高親水性を持たせる高い極性の側鎖を有する塩基性アミノ酸群に属する。同一群のアミノ酸は同一または類似の生化学的特性（サイズ、形状、電荷（ｃｈａｒｇｅ）、水素結合能、化学反応性）を有するものと見なされる。
【００１４】
前記ペプチドまたはその変異体は一般式Ｉを有し得る。
【００１５】
Ｌ−Ｘ１−ＶＶ−Ｘ２−Ｌ−Ｘ３
前記式でＸ１はＱまたはＮ；Ｘ２はＹ、Ｆ、またはＷ；Ｘ３はＨ、ＫまたはＲ；Ｌはロイシン、Ｑはグルタミン、Ｎはアスパラギン、Ｖはバリン、Ｙはタイロシン、Ｆはフェニルアラニン、Ｗはトリプトファン、Ｈはヒスチジン、ＫはリジンでＲはアルギニンである。
【００１６】
前記薬学的に許容可能な塩は、例えば、塩酸塩、硫酸塩、リン酸塩、乳酸塩、マレイン酸塩、フマル酸塩、シュウ酸塩、メタンスルホン酸塩、ｐ−トルエンスルホン酸塩などが挙げられる。
【００１７】
本発明は、 本発明のペプチド、その変異体または薬学的に許容可能なその塩の医薬用途を提供し、前記医薬用途は、退行性ディスク疾患（ｄｅｇｅｎｅｒａｔｉｖｅ  ｄｉｓｃ  ｄｉｓｅａｓｅ）の治療および／または予防用途、人体器官の線維症（ｂｏｄｙ  ｏｒｇａｎ  ｆｉｂｒｏｓｉｓ）治療用途、癌治療用途、および糸球体硬化症（ｇｌｏｍｅｒｕｌｏｓｃｌｅｒｏｓｉｓ）の治療用途を含む。前記人体器官の線維症、癌、糸球体硬化症の治療は、ＴＧＦ−β１（Ｔｒａｎｓｆｏｒｍｉｎｇ  Ｇｒｏｗｔｈ  Ｆａｃｔｏｒ−ｂｅｔａ１、ＴＧＦ−β１）シグナル（ｓｉｇｎａｌｉｎｇ）抑制によるものである。
【００１８】
ＴＧＦ−βは、アポトーシス制御（ａｐｏｐｔｏｓｉｓ  ｃｏｎｔｒｏｌ）、血管新生（ａｎｇｉｏｇｅｎｅｓｉｓ）、創傷治癒（ｗｏｕｎｄ  ｈｅａｌｉｎｇ）、免疫調節（ｉｍｍｕｎｅ  ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ）、腫瘍生物学（ｔｕｍｏｒ  ｂｉｏｌｏｇｙ）に重要であり、高い多面発現性（ｐｌｅｉｏｔｒｏｐｉｃ）を有するサイトカイン（Ｃｙｔｏｋｉｎｅ）として知られている。
【００１９】
ＴＧＦ−βには３つのアイソフォーム（ｉｓｏｆｏｒｍｓ）が存在する。すなわち、ＴＧＦ−β１、ＴＧＦ−β２、ＴＧＦ−β３であり、３ついずれも同じ受容体（ｒｅｃｅｐｔｏｒ）を使用する。ＴＧＦ−β受容体は３つで構成されている。すなわち、タイプ１（ＲＩまたはＡＬＫ５）、タイプ２（ＲII）、タイプ３（ＲIIIまたはｂｅｔａｇｌｙｃａｎ）である。ＴＧＦ−β（すべてのアイソフォーム）がＲIIIに結合するとＲIIを引き込み、その次にＲＩをリン酸化させてヘテロテトラマーセリン／トレオニンキナーゼ複合体（ｈｅｔｅｒｏｔｅｔｒａｍｅｒｉｃ  ｓｅｒｉｎｅ／ｔｈｒｅｏｎｉｎｅ  ｋｉｎａｓｅ  ｃｏｍｐｌｅｘ）を形成する。その次にＲＩがＳｍａｄ２とＳｍａｄ３をリン酸化させて（ｒｅｃｅｐｔｏｒ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  Ｓｍａｄｓ  （Ｒ−Ｓｍａｄｓ））、Ｓｍａｄ２とＳｍａｄ３はＳｍａｄ４と結合して異種複合体（ｈｅｔｅｒｏｍｅｒｉｃ  ｃｏｍｐｌｅｘ）を形成する。前記複合体（ｃｏｍｐｌｅｘ）が核に移動してＤＮＡに結合することによって転写（ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ）を調節する（Ｐｒｕｄ'ｈｏｍｍｅ  ＧＪ，  Ｌａｂ  Ｉｎｖｅｓｔ  ８７：１０７７−１０９１，  ２００７）。
【００２０】
ＴＧＦ−β１シグナル抑制は、ＴＧＦ−β１がその受容体に結合できないため、Ｓｍａｄ２とＳｍａｄ３がリン酸化されず、Ｓｍａｄ４と複合体を形成できないため、核に移動し、また転写（ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ）調節ができないことを意味する。
【００２１】
したがって、本発明は、本発明のペプチド、その変異体または薬学的に許容可能なその塩を含む退行性ディスク疾患治療および／または予防用組成物を提供する。
【００２２】
本発明は、また本発明のペプチド、その変異体または薬学的に許容可能なその塩を含む人体器官の線維症治療用組成物を提供する。
【００２３】
本発明は、また本発明のペプチド、その変異体または薬学的に許容可能なその塩を含む癌治療用組成物を提供する。
【００２４】
本発明は、また本発明のペプチド、その変異体または薬学的に許容可能なその塩を含む糸球体硬化症の治療用組成物を提供する。
【００２５】
本発明のペプチドは、ペプチド化学において通常使用している方法によって製造することができる。例えば、ペプチドをＳｃｈｒｏｄｅｒ  ａｎｄ  Ｌｕｂｋｅ著、「Ｔｈｅ  Ｐｅｐｔｉｄｅｓ」第１券、Ａｃａｄｍｅｉｃ  Ｐｒｅｓｓ、Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ  （１９６５）などに記載された方法により製造することができ、液相合成または固相合成二つのうち一つによって製造することができる。
【００２６】
ペプチド結合を形成するための方法の例としては、アジド法、酸クロライド法、対称的な無水物法、混合無水物法、カルボジイミド法、カルボジイミド−付加物法、活性エステル法、カルボジイミダゾール法、酸化−還元法、およびＷｏｏｄｗａｒｄ試薬Ｋを使用する方法などがあり、ペプチドの合成において、本発明のペプチドを形成するアミノ酸であるシスチン部位を、シスチン誘導体を使用することによってまたはペプチド鎖を形成させた後、ペプチドのシステイン残基を通常の方法によってシスチン残基に転換することによって形成することができる。
【００２７】
縮合反応を行う前に、反応に関与しないカルボキシル基、アミノ基、グアニジノ基、ヒドロキシル基などを保護することができ、縮合反応に関与するカルボキシル基およびアミノ基を当分野で公知された方法により活性化することができる。
【００２８】
カルボキシル基を保護する基の例は、メチル、エチル、ベンジル、ｐ−ニトロベンジル、ｔ−ブチルおよびシクロヘキシルのようなエステル−形成基が挙げられる。
【００２９】
アミノ基を保護する基の例は、ベンジルオキシカルボニル、ｔ−ブトキシカルボニル、イソボルニルオキシカルボニル、および／または９−フルオレニルメチルオキシカルボニルなどが挙げられる。
【００３０】
グアニジノ基を保護する基の例は、ニトロ、ベンジルオキシカルボニル、トシル、ｐ−メトキシベンゼンスルホニルおよび／または４−メトキシ−２，３，６−トリメチルベンゼンスルホニルなどが挙げられる。
【００３１】
ヒドロキシル基を保護する基の例は、ｔ−ブチル、ベンジル、テトラヒドロピラニルおよび／またはアセチルなどが挙げられる。
【００３２】
カルボキシル基の活性形態の例は、対称的な無水物、アジドおよび活性エステル［アルコール（例えば、ペンタクロロフェノール、２，４−ジニトロフェノール、シアノメチルアルコール、ｐ−ニトロフェノール、Ｎ−ヒドロキシ−５−ノルボルネン２，３−ジカルポキシイミド、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド、Ｎ−ヒドロキシフタルイミドおよび１−ヒドロキシベンゾトリアゾール）とのエステル］などが挙げられる。
【００３３】
活性化アミノ基の例は、リン酸アミド（ａｍｉｄｅ  ｐｈｏｓｐｈａｔｅ）である。
【００３４】
反応をクロロホルム、ジクロロメタン、エチルアセテート、Ｎ、Ｎ−ジメチルフォルムアミド、ジメチルスルホキシド、ピリジン、ジオキサン、テトラヒドロフラン、水、メタノールおよびこれらの混合物のような溶媒で行う。
【００３５】
反応温度は、反応に通常使用される約−３０℃〜５０℃の範囲でありうる。
本発明のペプチド保護基を除去する反応は、保護基の種類によって異なるが、ペプチド結合にいかなる影響を与えず、保護基を離脱させるものでなければならない。
【００３６】
保護基を酸処理、例えば、塩化水素、臭化水素、フッ化水素、メタンスルホン酸、トリフルオロメタンスルホン酸、トリフルオロ酢酸およびこれら酸の混合物で処理することによって除去することができる。また、液体アンモニアでナトリウム金属を使用する還元またはパラジウム−炭素を使用する触媒性還元を使用することができる。
【００３７】
前記酸処理で保護基を除去する反応を行う際、アニソール、フェノールおよびチオアニソールなどを添加することができる。
【００３８】
反応完了後、本発明の製造されたペプチドを通常のペプチド精製方法、例えば、抽出、分配、再沈殿、再結晶またはカラムクロマトグラフィーにより回収することができる。
【００３９】
また、本発明のペプチドを通常の方法により前述したその変異体または薬学的に許容可能なその塩に転換することができる。
【００４０】
本発明によるペプチドは、自動ペプチド合成器によって合成することができ、遺伝子操作技術によっても生産することができる。例えば、遺伝子操作により、融合パートナーと本発明のペプチドになった融合蛋白質をコーディングする融合遺伝子を製造し、それで宿主微生物を形質転換した後、宿主微生物から融合蛋白質の形態で発現させた後、蛋白質分解酵素または化合物を利用して融合蛋白質から本発明のペプチドを切断、分離して所望するペプチドを生産することができる。
【００４１】
本発明で使用したアミノ酸配列は、ＩＵＰＡＣ＿ＩＵＢ命名法により次のように略語で記載した。
【００４２】
アラニンＡ、アルギニンＲ、アスパラギンＮ、アスパラギン酸Ｅ、システインＣ、グルタミン酸Ｄ、グルタミンＱ、グリシンＧ、ヒスチジンＨ、イソロイシンＩ、ロイシンＬ、リジンＫ、メチオニンＭ、フェニルアラニンＦ、プロリンＰ、セリンＳ、トレオニンＴ、トリプトファンＷ、タイロシンＹ、バリンＶ
前記ペプチド、その変異体または薬学的に許容可能なその塩の投与量は、非経口投与時５０μｇ／日〜１ｍｇ／日であり、好ましくは０．５ｍｇ／日〜１ｍｇ／日である。経口投与の場合、投与量は非経口投与量の１．２〜１．５倍であり、直腸投与の場合、投与量は非経口投与量の２〜５倍である。本発明のペプチドを主に非経口的投与方法で、例えば、局所注射（退行性ディスクの場合はディスク内注射、その他の人体器官の線維症および癌場合は局所病変内注射）、静脈／筋肉または皮下注射、脳室内または髄腔内投与、あるいは経鼻投与および直腸内投与により投与する。また、場合によって経口的に投与することができる。
【００４３】
本発明のペプチドまたは組成物は薬学的に許される担体と共に製剤化して注射剤、座剤、粉末、点鼻剤、顆粒、錠剤などの形態で作ることができる。
【００４４】
薬学的に許される担体は、当業者に周知の様々な因子により製造され得るが、例えば、利用した特定の生理活性物質、これの濃度、安全性および意図的な生体利用性；治療しようとする疾患および疾病または状態；治療を受ける個体、年齢、サイズおよび一般的な状態；組成物を投与することに利用する経路、例えば、鼻腔、口腔、眼球、局所、経皮および筋肉などの要因を考慮しなければならないが、これに制限されない。一般的には経口投与の経路以外の生理活性物質の投与に利用する薬剤学的に利用可能な担体にはＤ５Ｗ（水の中で５％ブドウ糖）、デキストロースおよび生理学的塩を容積の５％以内で含む水溶液などを含み、病巣内の局所注射の場合、治療効果を増進させて持続時間を増加させるために様々な注射可能なヒドロゲル（ｈｙｄｒｏｇｅｌ）を使用することができる。また薬学的に利用可能な担体には保存剤および抗酸化剤のような活性成分の安全性を補強できる追加成分を含み得る。本発明のペプチドまたは組成物は、該当分野の適切な方法により製造することができ、例えば、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ'ｓ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅ、Ｍａｃｋ  Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ  Ｃｏｍｐａｎｙ、Ｅａｓｔｏｎ  ＰＡ（最新版）などに開示されている方法を参照して各疾患によってまたは成分によって好ましく製剤化することができる。
【００４５】
本発明のペプチドを生理食塩水溶液で保存することができ、マンニトールまたはソルビトールの添加した後、アンプル（ａｍｐｌｅ）に凍結乾燥させることができ、これを投与するために使用する際には生理食塩水などに溶解させることができる。
【００４６】
本発明は、また本発明のペプチド、その変異体または薬学的に許容可能なその塩の退行性ディスク疾患、人体器官の線維症、癌、および／または糸球体硬化症の治療剤および／または予防剤の製造のための用途を提供する。
【００４７】
本発明は、また本発明のペプチド、その変異体または薬学的に許容可能なその塩の投与を必要とする対象者（人間を含む哺乳類）に投与する段階を含む退行性ディスク疾患、人体器官の線維症、癌、および／または糸球体硬化症の治療および／または予防法を提供する。
【００４８】
前記人体器官の線維症、癌、および／または糸球体硬化症の治療はＴＧＦ−β１シグナル抑制によるものであり得る。
〔有利な効果〕
本発明の新規のペプチド、その変異体または薬学的に許容可能なその塩は、退行性ディスク疾患、人体器官の線維症、癌、および／または糸球体硬化症の治療および／または予防に効果的であり、ＴＧＦ−β１シグナル抑制に効果的である。
【図面の簡単な説明】
【００４９】
【図１】正常ディスク組織、ＤＭＳＯを投与した退行したディスク組織、および実施例１のペプチドを投与した退行したディスク組織を染色した後に撮影した写真である。
【図２】ディスク変性モデルでＤＭＳＯ投与ディスク群および実施例１のペプチド投与ディスク群において、正常ディスク群を基準にアグリカン遺伝子発現量を対比して示すグラフである。
【図３】無処理ＨｅｐＧ２細胞、ＴＧＦ−β１処理細胞、ＴＧＦ−β１とＳＢ４３１５４２処理細胞、ＴＧＦ−β１と、実施例１のペプチド処理細胞、ＴＧＦ−β１とＤＭＳＯ処理細胞で発現されたリン酸化−Ｓｍａｄ２を確認するためのウエスタンブロット法の結果である。
【発明を実施するための形態】
【００５０】
本発明の理解を高めるために実施例を提示する。下記の実施例は、本発明をより理解しやくするためにのみ提供するものであり、実施例によって本発明の内容が限定されるものではない。
【実施例１】
【００５１】
ペプチドの製造
配列番号１のアミノ酸配列を有するペプチド（ＬＱＶＶＹＬＨ：配列番号１）をＰｅｐｔｒｏｎ  Ｉｎｃ（韓国）に依頼して製造した。具体的には自動合成器（ＡＳＰ４８Ｓ、Ｐｅｐｔｒｏｎ  Ｉｎｃ）を使用してＦｍｏｃ  ＳＰＰＳ（９−Ｆｌｕｏｒｅｎｙｌｍｅｔｈｙｌｏｘｙｃａｒｂｏｎｙｌ  ｓｏｌｉｄ  ｐｈａｓｅ  ｐｅｐｔｉｄｅ  ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ）方法を利用してＣ−末端から一つずつカップリング（ｃｏｕｐｌｉｎｇ）した。
【００５２】
ペプチドのＣ−末端の最初のアミノ酸が樹脂（ｒｅｓｉｎｅ）に付着（ａｔｔａｃｈｅｄ）されたＮＨ２−Ｈｉｓ（Ｔｒｔ）−２−ｃｈｌｏｒｏ−Ｔｒｉｔｙｌ  Ｒｅｓｉｎを使用した。ペプチド合成に使用したすべてのアミノ酸原料はＮ−末端がＦｍｏｃで保護され、残基はいずれも酸で除去されるトリチル（Ｔｒｔ）、ｔ−ブチルオキシカーボニル（Ｂｏｃ）、ｔ−ブチル（ｔ−Ｂｕ）などで保護されたものを使用した。カップリング試薬（Ｃｏｕｐｌｉｎｇ  ｒｅａｇｅｎｔ）としては、ＨＢＴＵ（２−（１Ｈ−Ｂｅｎｚｏｔｒｉａｚｏｌｅ−１−ｙｌ）−１，１，３，３−ｔｅｔｒａｍｅｔｈｙｌｕｒｏｎｉｕｍ  ｈｅｘａｆｌｕｏｒｏｐｈｏｓｐｈａｔｅ）／ＨＯＢｔ（Ｈｙｄｒｏｘｘｙｂｅｎｚｏｔｒｉａｚｏｌｅ）／ＮＭＭ（Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｍｏｒｐｈｏｌｉｎｅ）を使用した。（１）Ｐｒｏｔｅｃｔｅｄ  ａｍｉｎｏ  ａｃｉｄ  （８当量）とカップリング試薬ＨＢＴＵ（８当量）／ＨＯＢｔ（８当量）／ＮＭＭ（１６当量）をＤＭＦ（Ｄｉｍｅｔｈｙｌｆｏｒｍａｍｉｄｅ）に溶かして添加した後、常温で２時間の間反応した。（２）Ｆｍｏｃの除去は、２０％ｐｉｐｅｒｉｄｉｎｅ  ｉｎ  ＤＭＦを加えて常温で５分間２回反応した。（１）と（２）の反応を繰り返し、ペプチドの基本骨格を作った後、ＴＦＡ（ｔｒｉｆｌｕｏｒｏａｃｅｔｉｃ  ａｃｉｄ）／ＥＤＴ（１，２−ｅｔｈａｎｅｄｉｔｈｉｏｌ）／Ｔｈｉｏａｎｉｓｏｌｅ／ＴＩＳ（ｔｒｉｉｓｏｐｒｏｐｙｌｓｉｌａｎｅ）／Ｈ２Ｏ＝９０／２．５／２．５／２．５／２．５を使用してペプチドを樹脂から分離した。Ｖｙｄａｃ  Ｅｖｅｒｅｓｔ  Ｃ１８  ｃｏｌｕｍｎ（２５０ｍｍ ２２ｍｍ、１０μｍ）を使用して逆相ＨＰＬＣ（ｒｅｖｅｒｓｅ  ｐｈａｓｅ  ＨＰＬＣ）方法で精製した後、０．１％  （ｖ／ｖ）トリフルオロ酢酸（ｔｒｉｆｌｕｏｒｏａｃｅｔｉｃ  ａｃｉｄ）を含んでいる水／アセトニトリルリニアグラジエント（ｗａｔｅｒ−ａｃｅｔｏｎｉｔｒｉｌｅ  ｌｉｎｅａｒ  ｇｒａｄｉｅｎｔ）（１０〜７５％  （ｖ／ｖ）  ｏｆ  ａｃｅｔｏｎｉｔｒｉｌｅ）方法で分離した。精製されたペプチドの分子量はＬＣ／ＭＳ（Ａｇｉｌｅｎｔ  ＨＰ１１００  ｓｅｒｉｅｓ）を使用して確認し、凍結乾燥した。
【実施例２】
【００５３】
ディスク再生効果の確認
２−１．ディスク変性モデル動の物準備および実験用ディスクの採取
体重３−３．５ｋｇのウサギ（Ｎｅｗ  Ｚｅａｌａｎｄ  ｗｈｉｔｅｓ  ｒａｂｂｉｔｓ、Ｏｒｉｅｎｔ  Ｂｉｏ  Ｉｎｃ．）を雄雌に関係なく３０匹を準備した。
【００５４】
準備したウサギにキシラジン（ｘｙｌａｚｉｎｅ，  Ｒｏｍｐｕｎ、Ｂａｙｅｒ）５ｍｇ／ｋｇと塩酸ケタミン（ｋｅｔａｍｉｎｅ  ｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ，  Ｋｅｔａｌａｒ、Ｐｆｉｚｅｒ）３５ｍｇ／ｋｇを筋肉注射して麻酔させた。施術前、蛍光透視装置（東芝、ｍｏｄｅｌ  ＶＰＸ−２００）で側部平面（ｌａｔｅｒａｌ  ｐｌａｉｎ）のＸ−ｒａｙを得、椎間板の注射前ベースライン（ｂａｓｅｌｉｎｅ）の高さを定めた。前記ベースラインコントロールは、ディスク間隔測定のための基準を意味する。ウサギを実験台上に位置させた後、前記装置でＬ２３，Ｌ３４，Ｌ４５，Ｌ５６ディスクレベルを確認した後、Ｌ２３，Ｌ４５，およびＬ５６レベルに１８Ｇ針（ｎｅｅｄｌｅ）で線維輪（ａｎｕｌｕｓ  ｆｉｂｒｏｓｕｓ）をディスクの後外側（ｐｏｓｔｅｒｏｌａｔｅｒａｌ  ｓｉｄｅ）から刺し入れた。麻酔から回復した後にはケージで飼育した。飼育条件は、温度２０〜２５℃、湿度１０％〜５０％、明暗周期（照明時間）午前８時〜午後８時であり、餌は一日に一回供給した。最初の施術後、それから２週後と４週後それぞれＸ−ｒａｙを撮影した。Ｘ−ｒａｙの撮影は麻酔をした後で行った。Ｘ−ｒａｙの結果から椎間板の高さ（ＩＶＤ  ｈｅｉｇｈｔ；Ｉｎｔｅｒｖｅｒｔｅｂｒａｌ  Ｄｉｓｃ  ｈｅｉｇｈｔ）を測定した。測定結果からディスクの変性有無とその程度を定量化し、Ｌｕなど（Ｌｕ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｐｉｎｅ．  ２２：１８２８−３４，  １９９７）の方法を変更して利用した。
【００５５】
その後、ＤＭＳＯを投与した対照群と実施例１のペプチドを投与した実験群に分けて実験を行った後、立てておいたスケジュールのとおり、ケタミン（２５ｍｇ／ｋｇ）とペントバルビタールナトリウム（ｓｏｄｉｕｍ  ｐｅｎｔｏｂａｒｂｉｔａｌ，  Ｎｅｍｂｕｔａｌ、Ｏｖａｔｉｏｎ）１．２ｇ／ｋｇを利用してウサギを安楽死させた後、病理および生化学実験用ディスクをそれぞれ摘出した。
【００５６】
２−２．ディスク組織の染色法によるディスク再生効果の測定  
前記２−１でディスクが変性したウサギを二群に分け、それぞれの群に対してＤＭＳＯ（ｄｉｍｅｔｈｙｌ  ｓｕｌｆｏｘｉｄｅ）と実施例１のペプチド（０．５ｍＭ／個体）を局所的なディスク注射方法で二回投与した。それぞれの群に対する投与時期は、最初にディスク変性をさせた後、４週経過時とその後さらに２週経過したときであり、２番目の投与後、それぞれ２週、４週、８週間さらに飼育した。実施例１のペプチドとＤＭＳＯそれぞれを最初の投与した時期から４週目、６週目、１０週目にそれぞれ該当ディスク組織を摘出してホルマリン固定を行った。固定されたディスク組織をパラフィンに包埋して矢状面に沿って４ ｍ厚さの連続切片を作り、これらのうち二つの正中矢状切片（ｔｗｏ  ｍｉｄ−ｓａｇｉｔｔａｌ  ｓｅｃｔｉｏｎｓ）をヘマトキシリンとエオシン（Ｈ＆Ｅ）で染色した。正常ディスク組織と対照するため、変性させていないウサギを使用し、前述した同一方法でディスクを摘出して処理し、染色した。
【００５７】
１０週目に摘出して染色したそれぞれのディスク組織を顕微鏡で撮影した結果を図１に示す。図１のＡ、Ｂは正常ディスク組織、Ｃ、ＤはＤＭＳＯを投与した退行したディスク組織、Ｅ、Ｆは実施例１のペプチドを投与した退行したディスク組織を示し、Ａ、Ｃ、Ｅは４０倍、Ｂ、Ｄ、Ｆは４００倍拡大した写真である。４００倍の写真で矢印はディスクの細胞核を示す。
【００５８】
その結果正常ディスク組織では、髄核と線維輪の部分が明確に区分され、細胞外基質成分が豊富に存在していることが観察された（図１のＡ、Ｂ）。また、正常ディスク組織の髄核部分に細胞核が明確に染色されていることが観察された（図１のＢ）。
【００５９】
これとは異なり、ＤＭＳＯを投与したディスク組織ではディスクのサイズが減少されており、線維輪と髄核部分の区分が曖昧で、細胞外基質成分が欠乏していることが観察された（図１のＣとＤ）。そして、髄核部分で染色された細胞核を見つけることが難しかった（図１のＤ）。すなわち、このような結果は髄核に存在していた細胞が死滅したことを意味する。退行性ディスク変性による細胞死滅はすでに知られているとおりであり、細胞がないため、細胞外基質成分を作ることができなく、さらにディスク変性が悪化するものと見られる。
【００６０】
実施例１のペプチドを投与したディスク組織を参照すると、ディスクのサイズがＤＭＳＯを投与したものに比べて増加しており、髄核と線維輪部分の区分を識別することが可能であり、細胞外基質成分が豊富に存在していることが観察された（図１のＥ、Ｆ）。そして、髄核部分に細胞核が明確に染色されていることが観察された（図１のＦ）。
【００６１】
前記結果から、実施例１のペプチドはディスク変性による細胞外基質成分の減少と細胞死滅を防いでディスクを治療する効果があることが確認された。
【実施例３】
【００６２】
ディスク組織のうちアグリカン遺伝子発現の増加確認
ディスク組織のうち代表的な細胞外基質成分であるアグリカン遺伝子発現度を調べるためにリアルタイムＰＣＲを実施した。
【００６３】
実施例２−１と同様の方法により動物を準備し、二群に分け、それぞれの群に対してＤＭＳＯと実施例１のペプチド（０．５ｍＭ／個体）を局所的なディスク注射方法で投与した。それぞれの群に対する投与時期は、最初にディスク変性をさせた後、４週経過したときと、その後さらに２週経過したときであり、２番目の投与後、それぞれ２週、４週、８週間さらに飼育した。実施例１のペプチドとＤＭＳＯそれぞれを最初に投与した時期から４週目、６週目、１０週目にそれぞれ該当ディスク組織を摘出して髄核と線維輪部分を分離してそれぞれチューブに入れて液体窒素で急速冷凍させた後、−７０℃超低温冷凍庫に保管した。急速冷凍して保管したディスク組織からトリゾル試薬（Ｔｒｉｚｏｌ  ｒｅａｇｅｎｔ，  Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を利用してｔｏｔａｌ  ＲＮＡを分離した。分離したｔｏｔａｌ  ＲＮＡ（２μｇ）をｏｌｉｇｏ  ｄＴとＭＭＬＶ−Ｒｅｖｅｒｓｅ  Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を利用してｃＤＮＡを合成した。
【００６４】
ＰｏｗｅｒＳＹＢＲ  Ｇｒｅｅｎ  ＰＣＲ  Ｍａｓｔｅｒ  Ｍｉｘ（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ  Ｉｎｃ）を利用してＰｒｉｓｍ  ７９００ＨＴ（ＡＢＩ）でＧＡＰＤＨ、アグリカンのｍＲＮＡ量を調べた。２５ｎｇ  ｃＤＮＡと３ｕｌの１０ｕＭ  Ｐｒｉｍｅｒｓ、２Ｘ  ＰｏｗｅｒＳＹＢＲ  Ｇｒｅｅｎ  ＰＣＲ  Ｍａｓｔｅｒ  Ｍｉｘを混合して合計１０ｕｌを作った。Ｒｅａｌ  Ｔｉｍｅ  ＰＣＲ反応条件は５０℃で２分、９５℃で１０分のあいだ酵素の活性を誘導し、９５℃１５秒、６０℃１分を４５回繰り返し、それぞれのＣＴ（ｔｈｒｅｓｈｏｌｄ  ｃｙｃｌｅ）値を測定した。ＧＡＰＤＨを参照遺伝子（ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ  ｇｅｎｅ）として選択して参照遺伝子とアグリカン遺伝子（ａｇｇｒｅｃａｎ  ｇｅｎｅ）のＣＴ値の差（△ＣＴ）を計算し、再び正常ディスクと実施例１のペプチドを投与したディスク（またはＤＭＳＯを投与したディスク）のＣＴ値の差（△△ＣＴ）を計算した。そして２（−△△ＣＴ）を計算して正常ディスク値に対する百分率で表記した。
【００６５】
Ｒｅａｌ−Ｔｉｍｅ  ＰＣＲ結果を図２に示す。図２は、ディスク変性モデルで、ＤＭＳＯ投与ディスク群および実施例１のペプチド投与ディスク群において、正常ディスク群を基準にアグリカン遺伝子発現量を対比し、処理時間別に示すグラフである。前記グラフを見ると、４週目に実施例１のペプチドを投与したディスク組織でアグリカン遺伝子発現がＤＭＳＯに比べて増加していることが分かる。６週と１０週では実施例１のペプチドがＤＭＳＯと類似の発現量を示していることは、実施例１のペプチドを０週目と２週目にのみ投与し、その以後にはそのまま置いたため、４週目は実施例１のペプチドの薬効によってアグリカン遺伝子が増加されたものと見られ、６週目と１０週目までアグリカン遺伝子発現を維持できなかったものと見られる。前記結果から本発明のペプチドは、ディスク再生に必須のディスク組織のうち代表の細胞外基質成分であるアグリカン遺伝子発現を増加させることによってディスク再生効果を示し、アグリカン遺伝子発現の増加効果の持続時間が過度に長くないため、過度な増加による副作用を排除できることが分かる。
【実施例４】
【００６６】
ＴＧＦ−β１シグナルの抑制確認
実施例１のペプチドがＴＧＦ−β１シグナルを抑制することを下記の実験方法で確認した。
【００６７】
ＨｅｐＧ２  ｃｅｌｌにＴＧＦ−β１を処理するとアポトーシス（ａｐｏｐｔｏｓｉｓ）が起き、その過程で一番最初にＳｍａｄ２がリン酸化されることが知られている（Ｐａｒｋ  ＴＪ．  ｅｔ  ａｌ．，  Ｍｏｌ  Ｃａｒｃｉｎｏｇ．  ４７：７８４−７９６，  ２００８；  Ｇｒｅｓｓｎｅｒ  ＡＭ．  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ  Ｈｅｐａｔｏｌ．  ２６：１０７９−１０９２，  １９９７）。このような性質を利用して下記のように実験した。ＨｅｐＧ２  ｃｅｌｌ（ＡＴＣＣ；Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｔｙｐｅ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ）を６０ｍｍ  ｄｉｓｈに１ｘ１０６個を植えて一晩中（ｏｖｅｒ−ｎｉｇｈｔ）安定化させた後、２４時間の間無血清培地（ｓｅｒｕｍ  ｆｒｅｅ  ｍｅｄｉａ：ＳＦＭ）で栄養分を枯渇させた。実施例１のペプチドを細胞に処理する前にＴＧＦ−β１（ＰｒｏｍｏＫｉｎｅ、ドイツ）５ｎｇ／ｍｌと前記ペプチド（１，５，２５ｕＭ）を３７℃で１時間の間プレインキュベーション（ｐｒｅ−ｉｎｃｕｂａｔｉｏｎ）した。ＤＭＳＯ（２ｕｌ／ｍｌ）もＴＧＦ−β１（５ｎｇ／ｍｌ）と３７℃で１時間の間プレインキュベーションした。そしてプレインキュベーションした溶液を細胞に３０分間処理した後、蛋白質を抽出（ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ）した。また、ＴＧＦ−β受容体の阻害剤（ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ）であるＳＢ４３１５４２（ＴＯＣＲＩＳ、米国）１０μＭのみ細胞にあらかじめ処理して１時間インキュベーション（ｉｎｃｕｂａｔｉｏｎ）した後、ＴＧＦ−β１（５ｎｇ／ｍｌ）を３０分間処理した後、細胞をＲＩＰＡ（Ｒａｄｉｏｉｍｍｕｎｏｐｒｅｃｉｐｉｔａｔｉｏｎ）Ｌｙｓｉｓ  Ｂｕｆｆｅｒ（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社）｛５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．４）、１５０ｍＭ  ＮａＣｌ、０．２５％  ｄｅｏｘｙｃｈｌｏｉｃ  ａｃｉｄ、１％  ＮＰ−４０，１ｍＭ  ＥＤＴＡ（ｅｔｈｙｌｅｎｅｄｉａｍｉｎｅｔｅｔｒａ  ａｃｅｔｉｃ  ａｃｉｄ）、１ｍＭ  ＰＭＳＦ（ｐｈｅｎｙｌｍｅｔｈｙｌｓｕｌｆｏｎｙｌ  ｆｌｕｏｒｉｄｅ）、４０ｍＭ  ＮａＦ、１ｍＭ  Ｎａ３ＶＯ４，１ｍＭ  ＤＴＴ（ｄｉｔｈｉｏｔｈｒｅｉｔｏｌ）｝で氷の上で均質化した。均質液をＢＲＡＮＳＯＮ  ＳＯＮＩＦＩＥＲ  ４５０を使用してＯｕｔｐｕｔ  ｃｏｎｔｒｏｌ  ２．５６，Ｄｕｔｙ  ｃｙｃｌｅ（％）  ２０，Ｔｉｍｅｒ  ６で超音波粉砕を５回繰り返した。粉砕液を４℃で、１２，０００ｒｐｍで１０分間遠心分離して上層液をウエスタンブロットに使用した。蛋白質濃度はブラッドフォード（Ｂｒａｄｆｏｒｄ）法を使用して定量し、３０ｕｇの蛋白質を２−メルカプトエタノール（２−ｍｅｒｃａｐｔｏｅｔｈａｎｏｌ）が含まれたＳＤＳサンプルバッファーに入れて９５℃で５分間放置後、１０％ＳＤＳ−ＰＡＧＥで分画した後ウエスタンブロットを実施した。ウエスタンブロットは、分画された蛋白質はニトロセルロースメンブレン（ｎｉｔｒｏｃｅｌｌｕｌｏｓｅ  ｍｅｍｂｒａｎｅ（Ｂｉｏ−Ｒａｄ  Ｌａｂ））に転移させた後、５％Ｓｋｉｍ  ｍｉｌｋ  ｉｎ  ＰＢＳ−Ｔを利用して遮断させ、１次抗体を５％Ｓｋｉｍ  ｍｉｌｋ  ｉｎ  ＰＢＳ−Ｔに１：３，０００に希釈して入れて４℃で翌日まで反応させた。次にＰＢＳ−Ｔで５分間３回洗浄してＨＲＰ（ｈｏｒ���ｅｒａｄｉｓｈ−ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ）が付いているａｎｔｉ−ｒａｂｂｉｔ  ２次抗体（Ｂｉｏ−Ｒａｄ  Ｌａｂ、１７０６５１５）を５％Ｓｋｉｍ  ｍｉｌｋ  ｉｎ  ＰＢＳ−Ｔに１：５，０００に希釈して入れて室温で１時間の間、処理した後、ＥＣＬ  （Ａｍｅｒｓｈａｍｐｈａｍａｃｉａ）を利用して発色させた後、現像した。ＴＧＦ−β１とＴＧＦ−β受容体の結合と共に一番最初にＳｍａｄ２がリン酸化されるため、リン酸化されたＳｍａｄ２を検出できるｐｈｏｓｐｈｏ−Ｓｍａｄ２（ｓｅｒ４６５／４６７）  ａｎｔｉｂｏｄｙ（Ｃｅｌｌ  Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ、３１０１，８）を１次抗体として使用した。
【００６８】
その結果を図３に示す。図３は、ウエスタンブロット結果であり、１レーンは無処理ＨｅｐＧ２細胞、２レーンはＴＧＦ−β１処理細胞、３レーンはＴＧＦ−β１とＳＢ４３１５４２処理細胞、４，５，６レーンはそれぞれＴＧＦ−β１とペプチド１，５，２５ｕＭ処理細胞、７レーンはＴＧＦ−β１とＤＭＳＯ処理細胞で発現されたリン酸化−Ｓｍａｄ２を示す。図３の「＋」は、該当物質の処理を、「−」は、該当物質未処理を意味する。図３の下部は、ウエスタンブロットに使用されたメンブレイン（ｍｅｍｂｒａｎｅ）をクマシーブルーで染色したものであって全体レーンの蛋白質量が同一であることを示す。
【００６９】
図３を参照すると、１レーンは無処理ＨｅｐＧ２  ｃｅｌｌから抽出した（ｅｘｔｒａｃｔｅｄ）蛋白質であって非常に少量だけがリン酸化されており、２レーンはＴＧＦ−β１によって多量リン酸化されていることが観察された。そして３レーンではＳＢ４３１５４２によってリン酸化が完全に抑制されたことが観察された。実施例１のペプチドを１μＭ、５μＭ、２５μＭ処理したとき、濃度依存的にリン酸化の程度が減少したことが確認された。ＤＭＳＯを処理した７レーンではＴＧＦ−β１を処理したものと同様の様相が見られた。
【００７０】
前記結果から本発明のペプチドは、濃度依存的にＴＧＦ−β１シグナルを抑制するため、前記抑制によって治療が可能な疾患すなわち、人体器官の線維症、癌、および／または糸球体硬化症の治療が可能であることが分かる（Ｐｒｕｄ'ｈｏｍｍｅ  ＧＪ，  Ｌａｂ  Ｉｎｖｅｓｔ  ８７：１０７７−１０９１，  ２００７）。また、実施例１のペプチドはＳＢ４３１５４２のようにＴＧＦ−β１シグナルを完全に抑制しないことが分かる。ＴＧＦ−β１シグナルは人間の身体で重要な調節機構であるため、ＳＢ４３１５４２のように完全に抑制すると、副作用が生じることがあるが、本発明のペプチドは濃度依存的にＴＧＦ−β１シグナルを減少させるため、関連する疾病の治療のために使用する際には濃度を調節することができるため、副作用を減らすことができるという長所を有する。
【産業上の利用可能性】
【００７１】
本発明の新規のペプチド、その変異体または薬学的に許容可能なその塩は退行性ディスク疾患、人体器官の線維症、癌、および／または糸球体硬化症の治療および／または予防に効果的であり、ＴＧＦ−β１シグナル抑制に効果的であるため、産業上利用の可能性を有する。
【図１】
0005475131.tif 000002
【図２】
0005475131.tif 000003
【図３】
0005475131.tif 000004
【配列表】
0005475131000001.app