(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
糖尿病、肥満症、心血管、またはアテローム性動脈硬化症から選択される代謝異常疾患を治療および予防するための、クルクリゴラティフォリア（Ｃｕｒｃｕｌｉｇｏ  ｌａｔｉｆｏｌｉａ（Ｃ．  ｌａｔｉｆｏｌｉａ））抽出物を含む医薬。
【請求項２】
前記抽出物は、果実、根または葉から選択される、Ｃ．ラティフォリア（Ｃ．  ｌａｔｉｆｏｌｉａ）の植物の異なる部分から個々にまたはこれらの任意の組合せで抽出されることを特徴とする請求項１に記載の医薬。
【請求項３】
前記抽出物が、Ｃ．ラティフォリアの新鮮で乾燥した果実、根または葉から、蒸留水で抽出されることを特徴とする、請求項１または２に記載の医薬。
【請求項４】
治療および予防を必要とする対象における、糖尿病、肥満症、心血管、またはアテローム性動脈硬化症から選択される代謝異常疾患を治療および予防するための医薬の製造における、有効量のＣ．ラティフォリア抽出物の使用。
【請求項５】
前記対象が糖尿病を罹患していることを特徴とする、請求項４に記載の使用。
【請求項６】
前記糖尿病がＩ型またはＩＩ型糖尿病であることを特徴とする、請求項５に記載の使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、クルクリゴラティフォリア（Ｃｕｒｃｕｌｉｇｏ  ｌａｔｉｆｏｌｉａ）（Ｃ．ｌａｔｉｆｏｌｉａ）抽出物の使用に関する。
【背景技術】
【０００２】
２型糖尿病などの不均一な代謝異常（ｈｅｔｅｔｏｇｅｎｅｏｕｓ  ｍｅｔａｂｏｌｉｃ  ｄｉｓｏｒｄｅｒ）は、インスリンを産生するβ細胞が、末梢組織、例えば、肝臓、脂肪、および筋肉組織などにおいて起こっている需要およびインスリン抵抗性に追随するのが不十分であることによって主に生じる。それは別として、座りがちな生活様式、不健康な食習慣、および遺伝学的素因の組合せが、この問題の主な理由である。状態が制御されない場合、これは、肥満症、心血管疾患、腎不全、および失明などの他の健康問題に至る場合がある。
【０００３】
最近、ハイポアディポネクチン（ｈｙｐｏａｄｉｐｏｎｅｃｔｉｎ）、インスリン抵抗性、およびグルコース取込み活性における欠陥が、２型の病因における主要な問題となっている。アディポネクチンは、脂肪細胞分化の間に脂肪組織によってもっぱら分泌されているサイトカインである。これは、代謝において、インスリン感受性、糖耐性、および脂質プロファイルの改善に役割を果たす。しかし、糖尿病の状況では、アディポネクチンレベルは減少し、これは、インスリン抵抗性および高インスリン血症の発生の一因となり得る。インスリン抵抗性は、末梢組織である標的組織中へのインスリンで媒介されるグルコースクリアランスとして定義することができる。正常なシナリオでは、インスリンは、細胞の表面でインスリン受容体タンパク質に結合することによって、これらの組織におけるグルコースの取込みを誘発する。次いでインスリンは、細胞内の一連のタンパク質を活性化し、ＧＬＵＴ４を細胞表面上に移動させて、血流から細胞内にグルコースを取り込むが、２型糖尿病の状態では、グルコース取込み活性を欠いており、グルコースは血流中に残る。これらの機序は、ハイポアディノペクチン（ｈｙｐｏａｄｉｎｏｐｅｃｔｉｎ）、高インスリン血症、およびハイパーグルコセミア（ｈｙｐｅｒｇｌｕｃｏｓｅｍｉａ）は、２型糖尿病の症状であることを強調する。
【０００４】
民族植物（ｅｔｈｏｂｏｔａｎｉｃａｌｓ）は、東アジア諸国、主に発展途上国において長年にわたって広く使用されている。その一方で、西洋諸国において、ハーブ系サプリメントの使用は、この数十年にわたって着実に増加している。しかし、これらの民族植物の効力について、報告されている科学的証拠は限られている。最近、糖尿病治療における民族植物の使用が活発に増加している。この新たな興味は、抗糖尿病剤としての潜在性を有する可能性のある植物を探索および研究するための、科学者の間での協同的な仕事に導いた。多くの研究により、いくつかの民族植物は、２型糖尿病患者における血糖値を改善し、また糖尿病に関連する長期の合併症を予防する可能性があることが示された。さらなる研究により、これらの植物成分中の抗糖尿病剤は、末梢組織におけるインスリン感作および／または膵臓β細胞からのインスリン分泌作用の特性を示すことが実証された。
【０００５】
Ｃ．ラティフォリア（Ｃ．  ｌａｔｉｆｏｌｉａ）は、西マレーシアで成長する無茎のハーブであり、その果実は、甘味料として原住民によって使用されている。興味深いことに、甘味は、単離されたタンパク質、すなわち、Ｃ．ラティフォリアの果実中に存在するクルクリンに由来する。このタンパク質は、甘味活性および味覚修飾活性の両方を示す。しかし、糖尿病患者のための抗糖尿病剤としても、人工甘味料としてもその潜在的な用途についての適切な研究はまったくなく、その理由は、Ｃ．ラティフォリアの果実が、スクロースより９０００倍甘いことが示されているためである。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】Levin et. al.（1989）
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
現在では、いくつかの研究により、サッカリン、アスパルテーム、およびシクラメートなどの人工甘味料を摂取すると、副作用、例えば、心理学的な問題、精神障害、膀胱癌、心不全、および脳腫瘍などが生じることが示された。この問題を克服するために、天然源に由来する非炭水化物甘味料の探索により、人工甘味料を越える、多くの強烈に甘味のあるものが発見された。これらは天然であるため、これらは、アスパルテームおよび他の甘味料より安全となり得る。これは、糖尿病、肥満症、および他の代謝異常の潜在的な治療への新しいアプローチである。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
したがって、本発明は、クルクリゴラティフォリア（Ｃ．  ｌａｔｉｆｏｌｉａ）抽出物であって、植物の異なる部分、例えば、果実、根および葉などから、個々に、およびこれらの任意の組合せで、抽出され、代謝異常疾患、例えば、糖尿病、肥満症、心血管、およびアテローム性動脈硬化症などを治療および予防するための薬剤として使用されることを特徴とする抽出物を提供する。
【０００９】
本発明は、いくつかの新規の特徴、ならびに添付の説明および図面において以下に完全に記載および例示される部分の組合せからなり、細部における様々な変更を、本発明の範囲から逸脱することも、本発明のいずれの利点も犠牲にすることなく行うことができることが理解される。
【図面の簡単な説明】
【００１０】
本発明は、本明細書で以下に提供される詳細な説明、および添付の図面から完全に理解されるが、これらは、例としてのみ提供され、したがって本発明を限定するものではない。
【図１ａ】ＢＲＩＮ−ＢＤ１１膵細胞株の生存能に対する、Ｃ．ラティフォリア抽出物の効果を示す図である。
【図１ｂ】３Ｔ３−Ｌ１脂肪細胞株の生存能に対する、Ｃ．ラティフォリア抽出物の効果を示す図である。
【図１ｃ】Ｌ６筋管細胞株の生存能に対する、Ｃ．ラティフォリア抽出物の効果を示す図である。
【図２】３０分の処置後のインスリン分泌における、ＢＲＩＮ−ＢＤ１１細胞に対する、Ｃ．ラティフォリア抽出物の効果を示す図である。
【図３ａ】インスリンの存在および非存在下での、分化した３Ｔ３−Ｌ１脂肪細胞におけるグルコース取込み活性に対する、Ｃ．ラティフォリアの果実抽出物の効果を示す図である。
【図３ｂ】インスリンの存在および非存在下での、分化した３Ｔ３−Ｌ１脂肪細胞におけるグルコース取込み活性に対する、Ｃ．ラティフォリアの根抽出物の効果を示す図である。
【図３ｃ】インスリンの存在および非存在下での、分化した３Ｔ３−Ｌ１脂肪細胞におけるグルコース取込み活性に対する、Ｃ．ラティフォリアの葉（熱水）抽出物の効果を示す図である。
【図３ｄ】インスリンの存在および非存在下での、分化した３Ｔ３−Ｌ１脂肪細胞におけるグルコース取込み活性に対する、Ｃ．ラティフォリアの葉抽出物の効果を示す図である。
【図４ａ】インスリンの存在および非存在下での、分化したＬ６筋管細胞におけるグルコース取込み活性に対する、Ｃ．ラティフォリアの果実抽出物の効果を示す図である。
【図４ｂ】インスリンの存在および非存在下での、分化したＬ６筋管細胞におけるグルコース取込み活性に対する、Ｃ．ラティフォリアの根抽出物の効果を示す図である。
【図４ｃ】インスリンの存在および非存在下での、分化したＬ６筋管細胞におけるグルコース取込み活性に対する、Ｃ．ラティフォリアの葉（熱水）抽出物の効果を示す図である。
【図４ｄ】インスリンの存在および非存在下での、分化したＬ６筋管細胞におけるグルコース取込み活性に対する、Ｃ．ラティフォリアの葉抽出物の効果を示す図である。
【図５】インスリンの非存在下で３０分処置した後のアディポネクチン分泌における、分化した３Ｔ３−Ｌ１脂肪細胞に対するＣ．ラティフォリア抽出物の効果を示す図である。
【図６】インスリンの存在下で３０分処置した後のアディポネクチン分泌における、分化した３Ｔ３−Ｌ１脂肪細胞に対するＣ．ラティフォリア抽出物の効果を示す図である。
【図７ａ】高脂肪を与えた食餌および低用量のＳＴＺで誘発された糖尿病ラットの体重に対する、Ｃ．ラティフォリア抽出物の効果を示す図である。
【図７ｂ】高脂肪を与えた食餌で誘発された糖尿病ラットにおける、空腹時血糖に対する、Ｃ．ラティフォリア抽出物の効果を示す図である。
【図７ｃ】高脂肪を与えた食餌で誘発された糖尿病ラットにおける、インスリンレベルに対する、Ｃ．ラティフォリア抽出物の効果を示す図である。
【図７ｄ】高脂肪を与えた食餌で誘発された糖尿病ラットにおける、アディポネクチンレベルに対する、Ｃ．ラティフォリア抽出物の効果を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００１１】
本発明は、クルクリゴラティフォリア（Ｃ．ラティフォリア）抽出物の使用に関する。以下、本明細書は、本発明の好適な実施形態によって本発明を説明する。しかし、本発明の好適な実施形態に説明を限定することは、単に本発明の考察を促進するためであることが理解されるべきであり、当業者は、添付の特許請求の範囲から逸脱することなく、様々な改変および等価物を考案することができることが想定される。
【００１２】
より具体的には、本発明は、血糖、グルコース取込み活性、インスリンおよびアディポネクチンレベルを回復させるための方法に関する。治療方法は、Ｃ．ラティフォリア抽出物の投与を伴う。
【００１３】
したがって、本発明の目的は、対象に有効量のＣ．ラティフォリア抽出物を投与することによって糖尿病を調節することができるＣ．ラティフォリア抽出物であって、この量のＣ．ラティフォリア抽出物により、糖尿病の症状が調節される抽出物を提供することである。
【００１４】
上記目的を実現するために、インビトロおよびインビボでの広範な試験を行った。インビトロにおいて、有効量のＣ．ラティフォリア抽出物を、細胞株：ＢＲＩＮ−ＢＤ１１、３Ｔ３−Ｌ１脂肪細胞、およびＬ６筋管細胞において試験した。その一方で、インビボにおいて、Ｃ．ラティフォリア抽出物を対象に経口投与した。
【００１５】
したがって、これは、Ｃ．ラティフォリア抽出物で処置されたＢＲＩＮ−ＢＤ１１、３Ｔ３−Ｌ１脂肪細胞、およびＬ６筋管細胞の細胞毒性の方法であって、この量のＣ．ラティフォリア抽出物が、これらの細胞株に対して無毒性であることが見出される方法である。
【００１６】
本発明の好適な実施形態は、Ｃ．ラティフォリア抽出物で処置された３Ｔ３−Ｌ１脂肪細胞、およびＬ６筋管細胞の細胞株におけるグルコース取込みの方法であって、この量のＣ．ラティフォリア抽出物が、３Ｔ３−Ｌ１脂肪細胞、およびＬ６筋管細胞の細胞株におけるグルコース取込み活性を増大させることが見出される方法である。
【００１７】
さらなる実施形態は、Ｃ．ラティフォリア抽出物で処置されたＢＲＩＮ  ＢＤ１１細胞株内のインスリン、および３Ｔ３−Ｌ１脂肪細胞株内のアディポネクチンの分泌の方法であって、この量のＣ．ラティフォリア抽出物が、ＢＲＩＮ  ＢＤ１１細胞株内のインスリン、および３Ｔ３−Ｌ１脂肪細胞内のアディポネクチンの分泌を増大させることが見出される方法である。
【００１８】
上記目的によれば、対象は、高脂肪食（ＨＦＤ）、および低用量のストレプトゾトシン（ＳＴＺ）の組合せによって糖尿病を発症させるように誘発された。
【００１９】
糖尿病は、インスリン非依存性糖尿病（ＮＩＤＤＭ）である。糖尿病の症状は、高血糖、肥満症、インスリンレベルの増加、多食症、煩渇多飲症、および多尿症を示す群から選択することができる。
【００２０】
なおさらに、対象は、１日当たり、体重１ｋｇ当たり約１００ｍｇである有効用量で経口投与された。より具体的には、対象は、３０日間投与された。
【００２１】
本発明の一実施形態は、有効量のＣ．ラティフォリア抽出物を投与することによって、糖尿病対象における血糖を低減する方法である。
【００２２】
本発明の血糖値を回復させるための方法によれば、空腹時血糖および経口糖耐性（ｏｒａｌ  ｇｌｕｃｏｓｅ  ｔｏｌｅｒａｎｃｅ）がモニターされる。
【００２３】
Ｃ．ラティフォリア抽出物は、対象において、血糖値を低減し、インスリンおよびアディポネクチンレベルを増大させることが想定される。
【００２４】
Ｃ．ラティフォリア抽出物は、対象における経口糖耐性を増加させることが、本試験でさらに想定される。
【００２５】
なおさらに、Ｃ．ラティフォリア抽出物は、対象における食物摂取および体重を増加させたことが別に想定される。
【００２６】
本発明によるＣ．ラティフォリア抽出物は、以下のプロセスに従って調製することができる。
【実施例１】
【００２７】
植物抽出物の調製
Ｃ．ラティフォリアの果実抽出物
新鮮なＣ．ラティフォリアの果実を蒸留水で洗浄した。次いで、Ｃ．ラティフォリアの果実５０ｇを、５ｌのビーカー中で蒸留水２ｌを用いて、室温で連続的に撹拌しながら２４時間抽出した。この抽出物を、Ｗｈａｔｍａｎ  ｎｏ．１濾紙に通して濾過した。次いで濾液を収集し、凍結乾燥した。凍結乾燥した試料は、使用するまで−８０℃に維持した。
【００２８】
Ｃ．ラティフォリアの葉抽出物
使用される２つの型の抽出物
【００２９】
（１）熱水抽出物
Ｃ．ラティフォリアの葉の粉末５グラムを、沸騰（蒸留）水２００ｍｌ中に入れた。次いでこれを熱源から取り出し、１５分間煎じさせた。この懸濁液を、Ｗｈａｔｍａｎ  ｎｏ．１濾紙を用いて濾過した。次いで濾液を収集し、凍結乾燥した。凍結乾燥した試料は、使用するまで−８０℃に維持した。
【００３０】
（２）通常水抽出物
Ｃ．ラティフォリアの葉の粉末５グラムを、蒸留水２００ｍｌを用いて抽出し、室温で連続的に撹拌しながら２４時間浸漬した。この抽出物を、Ｗｈａｔｍａｎ  ｎｏ．１濾紙に通して濾過した。次いで濾液を収集し、凍結乾燥した。凍結乾燥した試料は、使用するまで−８０℃に維持した。
【００３１】
Ｃ．ラティフォリアの根抽出物
Ｃ．ラティフォリアの根の粉末５グラムを、蒸留水２００ｍｌを用いて抽出し、室温で連続的に撹拌しながら２４時間浸漬した。この抽出物を、Ｗｈａｔｍａｎ  ｎｏ．１濾紙に通して濾過した。次いで濾液を収集し、凍結乾燥した。凍結乾燥した試料は、使用するまで−８０℃に維持した。
【実施例２】
【００３２】
３Ｔ３−Ｌ１脂肪細胞、Ｌ６−筋管細胞、およびＢＲＩＮ−ＢＤ１１膵細胞株に対して試験したＣ．ラティフォリア抽出物のインビトロ細胞毒性試験
【００３３】
細胞培養
５％のＣＯ2の加湿雰囲気中で、３７℃で、１０％のウシ胎児血清、１％のペニシリン−ストレプトマイシン、および１％のグルタミンを補充したＲＰＭＩ１６４０培地中で、ＢＲＩＮ−ＢＤ１１細胞株を培養し、維持した。その一方で、３Ｔ３脂肪細胞およびＬ６筋管細胞を、ストレプトマイシン／ペニシリン抗生物質、および１０％のウシ胎児血清を補充したダルベッコ変法イーグル培地（ＤＭＥＭ）中で培養した。両細胞を、５％のＣＯ2加湿雰囲気中で、３７℃に維持した。培養フラスコから細胞を剥離するために、トリプシン−ＥＤＴＡを使用して約８０％のコンフルエンスで、２から３日毎に細胞を継代培養（ｓｕｂｃｕｌｔｕｒｅ）した。血球計数器を使用して細胞計数を行った。分化のために、コンフルエンスになって４〜６日後に、２％のウシ胎児血清を含むＤＭＥＭにＬ６細胞を移した。分化の程度は、細胞の多核細胞化を観察することによって確認し、筋原細胞の筋管細胞への９０％超の融合を考慮した。その一方で、３Ｔ３前脂肪細胞の分化をプレート内で増大させることによって、３日でコンフルエンスに到達させた。この時点（０日目）で、細胞を、分化培地（ＤＭＥＭ、１０％のＦＢＳ、０．２５μＭのデキサメタゾン、０．２５ｍＭのＩＢＭＸ、および１μｇ／ｍｌのインスリン）に３日間切り替え、その間に１回培地交換を行った。３日目で、デキサメタゾンおよびＩＢＭＸを除去し、細胞上にインスリンをさらに４日間残し、培地を２日毎に交換した。その後、元の増殖ＤＭＥＭ中で細胞を維持し、使用するまで２〜３日毎に培地を交換した。細胞が９０％超分化したプレートを、誘発して９日から１２日後の間に実験に使用した。
【００３４】
細胞生存能アッセイ
これまでに、生存能細胞を測定するために、様々な方法が開発され、導入されてきた。ＣｅｌｌＴｉｔｅｒ  ９６（登録商標）水性非放射性細胞増殖アッセイ（Ｐｒｏｍｅｇａ、Ｍａｄｉｓｏｎ、ＷＩ）はこれらのうちの１つである。培地培養液１００μｌ中で、２×１０5細胞／ウェルの濃度で、９６ウェルプレート上に細胞を播種し、２４時間付着させた。細胞単層を、リン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）で洗浄することによって、付着しなかった細胞を除去し、様々な濃度のＣ．ラティフォリアの果実、葉、および根の抽出物を含む新鮮な無血清培地中で、付着した細胞を７２時間インキュベートした。次いで、テトラゾリウム塩溶液２０μｌを用いて、細胞を４時間インキュベートした。マイクロプレートリーダー（Ｏｐｓｙｓ  ＭＲ、Ｔｈｅｒｍｏｌａｂｓｙｓｔｅｍｓ）を使用して各ウェルの吸光度を４９０ｎｍで測定し、ホルマゾン（ｆｏｒｍａｚｏｎ）生成物を定量化した。培養液中の生細胞数は、存在するホルマゾン生成物の量に比例する。
【００３５】
図１ａ、１ｂ、および１ｃはそれぞれ、ＢＲＩＮ  ＢＤ１１、３Ｔ３−Ｌ１脂肪細胞、およびＬ６筋管細胞の細胞株に対するＣ．ラティフォリア抽出物の効果を示す。
【実施例３】
【００３６】
インビトロでのインスリン分泌
ＢＲＩＮ−ＢＤ１１細胞株を使用し、インスリン分泌を評価した。インスリン分泌活性は、２４ウェルプレートを使用して決定した。１０％のウシ胎児血清、１％の抗生物質、および１％のグルタミンを含有するするＲＰＭＩ１６４０中で、２×１０5細胞／ウェルの濃度で細胞を播種し、一晩付着させた。次いで、クレブス−リンガー重炭酸塩緩衝液（ＫＲＢ；１１５ｍＭのＮａＣｌ、４．７ｍＭのＫＣｌ、１．２８ｍＭのＣａＣｌ２、１．２ｍＭのＫＨ2ＰＯ4、１．２ｍＭのＭｇＳＯ4、２４ｍＭのＮａＨＣＯ3、１０ｍＭのＨｅｐｅｓを含まない酸、１ｇ／ｌのウシ血清アルブミン、１．１ｍＭのグルコース；ｐＨ７．４）で細胞を３回洗浄し、ＫＲＢ緩衝液中で、３７℃で４０分間プレインキュベートした。次いで、陽性対照として、Ｃ．ラティフォリア抽出物およびグリベンクラミドの非存在および存在下で、ＫＲＢ緩衝液１ｍｌを用いて３０分間細胞をインキュベートした。アリコートを各ウェルから取り出し、−２０℃で貯蔵して、後にインスリンアッセイを行った。
【００３７】
インスリンアッセイ
インスリン濃度を定量化するために、インビトロ試験におけるインスリン分泌からのアリコートを使用し、アッセイは、Ｍｅｒｃｏｄｉａ  Ｒａｔ  Ｉｎｓｕｌｉｎ  ＥＬＩＳＡ（Ｕｐｐｓａｌａ、スウェーデン）プロトコールを使用して行った。各ウェルの吸光度を、マイクロプレートリーダー（Ｏｐｓｙｓ  ＭＲ、Ｔｈｅｒｍｏｌａｂｓｙｓｔｅｍｓ）を使用して４５０ｎｍで測定することによって、インスリン濃度を定量化した。
【００３８】
図２は、３０分の処置後のインスリン分泌における、ＢＲＩＮ−ＢＤ１１細胞に対するＣ．ラティフォリア抽出物の効果を示す。
【実施例４】
【００３９】
２−デオキシ−Ｄ−［１−3Ｈ］グルコース（２−ＤＯＧ）取込み
グルコース取込みを、完全に分化したＬ６筋管細胞および３Ｔ３脂肪細胞において測定した。クレブスリンガーＨＥＰＥＳ緩衝液（ｐＨ７．４）で細胞を３回すすいだ後、インスリン（１００ｎＭ）の存在および非存在下で、Ｃ．ラティフォリア抽出物を用いて処置した。この処置を３０分間進行させた。３０分後、１μＣｉ／ｍｌの２−デオキシ−Ｄ−［１−3Ｈ］グルコースを添加し、３０分間インキュベートさせた。細胞を消化する前に、培地をバイアルに収集し、アディポネクチン分析のために−２０℃で凍結させたが、この収集プロセス（ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ  ｐｒｏｃｅｓｓ）は氷床上で行った。次いで、氷冷したＫＲＨ緩衝液でプレートを３回洗浄し、０．１％のＳＤＳを用いて細胞を消化した。アリコートを使用し、シンチレーションカクテルとしてＵｌｔｉｍａ  Ｇｏｌｄ（商標）ＬＬＴ（Ｐｅｒｋｉｎ  Ｅｌｍｅｒ、Ｂｏｓｔｏｎ、ＭＡ、ＵＳＡ）を使用して、シンチレーションカウンター（Ｔｒｉ−Ｃａｒｂ  ２３００ＴＲ、Ｐｅｒｋｉｎ  Ｅｌｍｅｒ  Ｌｉｆｅ  ａｎｄ  Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ  Ｓｅｒｖｉｃｅｓ、Ｂｏｓｔｏｎ、ＭＡ、ＵＳＡ）を使用することにより放射能を測定した。グルコース取込みは、壊変毎分（ｄｐｍ）として表した。
【００４０】
図３ａ、３ｂ、３ｃ、および３ｄはそれぞれ、分化した３Ｔ３脂肪細胞におけるグルコース取込み活性に対するＣ．ラティフォリア抽出物の効果を示し、一方、図４ａ、４ｂ、４ｃ、および４ｄはそれぞれ、分化したＬ６筋管細胞におけるグルコース取込み活性に対するＣ．ラティフォリア抽出物の効果を示す。
【実施例５】
【００４１】
アディポネクチンアッセイ
ＢｉｏＶｉｓｉｏｎ  Ｒａｔ  Ａｄｉｐｏｎｅｃｔｉｎ  ＥＬＩＳＡアッセイ（Ｍｏｕｎｔａｉｎ  Ｖｉｅｗ、ＵＳＡ）を使用し、Ｃ．ラティフォリア抽出物をスクリーニングして、分化した３Ｔ３脂肪細胞におけるアディポネクチン分泌を増強した。
【００４２】
グルコース取込みアッセイから収集したアリコートを使用し、アッセイは、キットの手順に従って行った。
【００４３】
図５は、インスリンの非存在下での分化した３Ｔ３脂肪細胞におけるアディポネクチン分泌活性に対するＣ．ラティフォリア抽出物の効果を示し、一方、図６は、インスリンの存在下での分化した３Ｔ３脂肪細胞におけるアディポネクチン分泌活性に対するＣ．ラティフォリア抽出物の効果を示す。
【実施例６】
【００４４】
動物
合計４２匹のオスのスプラーグドーリー（ＳＤ）ラット（１６０〜２００ｇ）を、この試験に使用した。これらは、ポリプロピレンケージ内に個々に収容し、１２：１２時間の明暗周期で、制御された室温（２２±２℃）および湿度（５５±５％）下に維持した。すべてのラットに、水および市販のラット用通常パレット（ｐａｌｌｅｔ）（ＮＰＤ）への自由なアクセスを提供した後、周期に順応させた。動物の管理および使用についてのすべての実験プロトコールは、Ｆａｃｕｌｔｙ  ｏｆ  Ｍｅｄｉｃｉｎｅ  ａｎｄ  Ｈｅａｌｔｈ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｉ  Ｐｕｔｒａ  Ｍａｌａｙｓｉａの動物管理使用委員会（ＡＣＵＣ）によって認可された。
【００４５】
実験設計
フェーズＩ
高脂肪（ＨＦ）食餌の調製
ＨＦ食餌は、非特許文献１によって提供された組成物に基づいて処方した。これは、５０％の通常のラット用固形飼料パレット、２４％のトウモロコシ油（Ｍａｚｏｌａブランド）、２０％の全乳粉（ＮｅｓｔｌｅからのＮｅｓｐｒａｙブランド）、および６％の糖の混合物から調製される。
【００４６】
ＨＦＤを与え、低用量のＳＴＺで処置した２型糖尿病ラットの開発
ラットは、食事のレジメン、すなわちＮＰＤおよびＨＦＤに基づいて２つの群に割り当て、これらに１カ月間給餌した。いずれかの食餌で１カ月の後、ＨＦＤを採用したラットを、一晩絶食させた後、ジエチルエーテルを用いて麻酔し、次いでＳＴＺ（３５ｍｇ／ｋｇ）を静脈内注射した。ＳＴＺを注射した後、ラットに元の食餌（固形飼料または脂肪）および水を継続した。ＳＴＺを注射して７日後に、糖尿病状態を、煩渇多飲症、多尿症によって、および空腹時血糖値を測定することによって同定し、１７０ｍｇ／ｄｌ超のグルコースレベルをこの試験に含めた。
【００４７】
体重、食物消費量、および空腹時血糖を、毎週測定した。
【００４８】
フェーズＩＩ
動物を、それぞれ３匹の動物の７つの群にランダムに分けた。
−  群１：正常な対照（通常のペレット食餌、非糖尿病、未処置）ラット
−  群２：糖尿病の対照（高脂肪を与えた食餌、糖尿病、未処置）ラット
−  群３：糖尿病の対照（高脂肪を与えた食餌、ＳＴＺで誘発、糖尿病、未処置）ラット
−  群４：糖尿病の試験ラット（高脂肪を与えた食餌、ＳＴＺで誘発、糖尿病、処置した）、体重当たりグリベンクラミド６００μｇで処置
−  群５：糖尿病の試験ラット（高脂肪を与えた食餌、ＳＴＺで誘発、糖尿病、未処置）、体重当たりＣ．ラティフォリアの果実抽出物１００ｍｇで処置
−  群６：糖尿病の試験ラット（高脂肪を与えた食餌、ＳＴＺで誘発、糖尿病、未処置）、体重当たりＣ．ラティフォリアの根抽出物１００ｍｇで処置
−  群７：糖尿病の試験ラット（高脂肪を与えた食餌、ＳＴＺで誘発、糖尿病、未処置）、体重当たりＣ．ラティフォリアの根および果実の抽出物の組合せ１００ｍｇで処置
体重、食物消費量、および空腹時血糖を、毎週測定した。
【００４９】
経口糖耐性試験（ＯＧＴＴ）
各ラットの空腹時血糖値を、ゼロ時間（水に自由にアクセスさせて一晩絶食させた後）に測定した。Ｃ．ラティフォリア抽出物またはグリベンクラミドを経口投与して３０分後に、グルコース（体重１ｋｇ当たり２ｇ）を経口投与した。血糖濃度は、試験試料を経口投与する直前、ならびに経口投与して３０分、６０分、および１２０分後に測定した。
【００５０】
生物学的アッセイ
処置のすべてのフェーズの最後に血液試料を収集した。心穿刺によって血漿を収集して、様々な生物学的アッセイを行った。体重、食物摂取、血漿グルコース、インスリンおよびアディポネクチンレベルの変化などの物理学的および生化学的パラメータを得た。インスリンレベルは、標準物質としてラットインスリンを用いたＩｎｓｕｌｉｎ  ＥＬＩＳＡキット（Ｍｅｒｃｏｄｉａ  ＡＢ、Ｕｐｐｓａｌａ、Ｓｗｅｅｄｅｎ）を使用して測定した。アディポネクチンレベルは、ＢｉｏＶｉｓｉｏｎ  Ｒａｔ  Ａｄｉｐｏｎｅｃｔｉｎ  ＥＬＩＳＡアッセイ（Ｍｏｕｎｔａｉｎ  Ｖｉｅｗ、ＵＳＡ）を使用して測定する。
【００５１】
図７ａは、高脂肪を与えた食餌および低用量のＳＴＺで誘発された糖尿病ラットにおける体重に対するＣ．ラティフォリア抽出物の効果を示し、一方、図７ｂは、高脂肪を与えた食餌で誘発された糖尿病ラットにおける空腹時血糖に対するＣ．ラティフォリア抽出物の効果を示す。
【００５２】
一方、図７ｃは、高脂肪を与えた食餌で誘発された糖尿病ラットにおける、インスリンレベルに対するＣ．ラティフォリア抽出物の効果を示し、一方、図７ｄは、高脂肪を与えた食餌で誘発された糖尿病ラットにおける、アディポネクチンレベルに対するＣ．ラティフォリア抽出物の効果を示す。
【図１ａ】
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【図１ｂ】
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【図１ｃ】
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【図２】
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【図３ａ】
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【図３ｂ】
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【図３ｃ】
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【図３ｄ】
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【図４ａ】
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【図４ｂ】
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【図４ｃ】
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【図４ｄ】
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【図５】
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【図６】
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【図７ａ】
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【図７ｂ】
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【図７ｃ】
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【図７ｄ】
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