(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ピーナッツの渋皮及び/又はその抽出物を有効成分として含有し、脳神経疾患治療、脳神経疾患予防、及び脳機能改善から成る群から選ばれる１以上を用途とし、
前記脳神経疾患は、うつ症状、不安症状、及び記憶障害から成る群から選ばれる１以上であることを特徴とする医薬組成物。
【請求項２】
ピーナッツの渋皮及び/又はその抽出物を有効成分として含有し、脳神経疾患治療、脳神経疾患予防、及び脳機能改善から成る群から選ばれる１以上を用途とし、
前記脳機能改善とは、記憶学習能改善であることを特徴とする医薬組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、医薬組成物に関する。
【背景技術】
【０００２】
我が国では、高齢化に伴い、アルツハイマー病やパーキンソン病などの認知・記憶障害や、様々なストレスに起因するうつ病など脳神経疾患患者が増加し、社会問題となっている。
【０００３】
うつ病患者は１９９９年の４４万人から２００２年には７１万人に増加した。うつ病は治療せずに放置すると自殺につながる可能性が高いことも問題になっている。自殺者は２００６年まで９年連続で３万人を越えるなど大きな社会問題となっており、その背景にはうつ病が密接に関係していると言われている。
【０００４】
不安障害を併発したうつ病患者も少なくない。不安障害は症状によって強迫性障害、パニック障害、広場恐怖、急性ストレス障害、全般性不安障害などに分けられるが、代表的な不安障害であるパニック障害は、世界各国で生涯有病率１．５〜３．３％であり、約３割が抑うつを併発しており、パニック障害患者のうつ病生涯有病率は５０％以上である。
【０００５】
また、高齢化社会に突入し、認知症患者も増加の一途をたどっている。認知症の一つであるアルツハイマー病は６５歳以上で４〜６％、８０歳以上で１５％以上がかかるとされ、現在国内における患者数は６０万人に上る。
【０００６】
ところで、近年、脳の高次機能にはＭＡＰキナーゼのシグナル伝達経路が重要な役割を果たすことが明らかになってきた。脳でＭＡＰキナーゼを活性化する脳由来神経栄養因子（ＢＤＮＦ）の遺伝子多型が見出され、その解析から、ＢＤＮＦの機能異常は、うつ病、アルツハイマー病、記憶障害等の危険因子になることも明らかにされた（非特許文献１）。すなわち、脳の健康を保つ上でＭＡＰキナーゼの働きが重要と考えられる。
【０００７】
ＭＡＰキナーゼの活性化には、キナーゼサブドメイン７、８の間に存在するスレオニン残基とチロシン残基の両方がリン酸化されることが必要である。うつ病モデル動物を使った実験では、海馬や前頭葉皮質においてリン酸化ＭＡＰキナーゼが減少しているという報告があり（非特許文献２）、短期記憶を長期記憶へと定着させるのに役立つと考えられている長期増強（ｌｏｎｇ−ｔｅｒｍ  ｐｏｔｅｎｔｉａｔｉｏｎ；  ＬＴＰ）の発現にもＭＡＰキナーゼが関与しているという報告もある（非特許文献３、非特許文献４）。このように、うつや記憶障害といった脳神経疾患とＭＡＰキナーゼには深い関係があると考えられる。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００８】
【非特許文献１】Ｃｅｌｌ．２００３  Ｊａｎ  ２４；１１２（２）：２５７−６９．
【非特許文献２】Ｂｅｈａｖ．Ｂｒａｉｎ  Ｒｅｓ．２００６  Ｄｅｃ  １５；１７５  （２）：２３３−４０．
【非特許文献３】Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．２０００  Ｊｕｎ  １５；２０（１２）：４５６３−７２．
【非特許文献４】Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．２００２  Ｊｕｌｙ  １；２２（１３）：５４３２−４１．
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
うつ病の治療薬は既にいくつか開発されているが問題点も多い。新世代薬の登場で改善されつつあるとはいえ、現在臨床で使用されているうつ病薬には胃腸障害、肝障害などの副作用があるほか、共通して即効性に乏しく、効果が現れるまでにある程度の期間（２〜３週間）が必要といった問題がある。不安障害の治療にはベンゾジアゼピン系抗不安薬などが用いられるが、眠気、ふらつき、依存性などの問題点もある。アルツハイマー病の治療薬としては、種々の合成医薬品の開発が進められているものの、その一つであるアセチルコリンエステラーゼ阻害薬には、肝障害などの副作用が報告されており、確固たる治療薬は未だ作られていないのが現状である。
【００１０】
本発明は以上の点に鑑みなされたものであり、脳神経疾患の治療や予防、脳機能改善に用いることができ、副作用が少なく、長期にわたって服用しても安全性が高い医薬組成物を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１１】
本発明は、ピーナッツの渋皮及び/又はその抽出物を有効成分として含有し、脳神経疾患治療、脳神経疾患予防、及び脳機能改善から成る群から選ばれる１以上を用途とする医薬組成物を要旨とする。
【００１２】
本発明の医薬組成物は、ピーナッツの渋皮、ピーナッツの渋皮の抽出物、又はそれらの両方を有効成分として含有することにより、脳神経疾患治療作用、脳神経疾患予防作用、脳機能改善作用を有する。本発明の医薬組成物は、その有効成分がＢＤＮＦ類似の活性を示し、脳神経細胞のＭＡＰキナーゼ活性化亢進作用を有することにより、上記の作用を奏すると考えられる。また、本発明の医薬組成物は、有効成分として安全性の高い天然物を用いているので、副作用が少なく、長期にわたって服用しても安全性が高い。
【００１３】
前記脳神経疾患とは、うつ症状、不安症状、及び記憶障害から成る群から選ばれる１以上である。
【００１４】
前記脳機能改善とは、記憶学習能改善である。
【００１５】
本発明の医薬組成物は、ＢＤＮＦ類似の作用を有し、更にはＢＤＮＦの遺伝子発現亢進作用を有する。ＢＤＮＦはアルツハイマー病やうつ症状を改善する作用があることが知られている。よって、本発明の医薬組成物を用いれば、アルツハイマー病やうつ症状を改善することができる。
本発明に係る医薬組成物の利用形態として、剤形・形態は任意であり、カプセル、粉末、顆粒、固形、液体、ゲル等の形態で利用できる。例えば、ドリンクや製剤等の形態を有する医薬品とすることができる。
【００１６】
本発明におけるピーナッツ（Ａｒａｃｈｉｓ  ｈｙｐｏｇａｅａ  ＬＩＮＮＥ）は、マメ科ラッカセイ属に属する植物であり、南京豆や落花生、唐人豆とも呼ばれる。ピーナッツの渋皮は薄皮、甘皮とも呼ばれるものであるが、一般にピーナッツを各種加工食品に加工する際、ほとんどが除去されており、大部分は廃棄処分されている。本発明はこの未利用資源である渋皮を有効利用し、付加価値の高い組成物（例えば医薬品や健康食品など）を生み出すものであり、その点からも非常に意義深いものと言える。
【００１７】
本発明におけるピーナッツは、ラッカセイ属に属する植物であればその種類は問わないが、一般に広く食用に供されているピーナッツ（Ａ．ｈｙｐｏｇａｅａ）が、原料入手が容易である点から好ましい。また、ピーナッツの産地、収穫時期等についてもなんら制限されない。さらに、渋皮はピーナッツ加工食品を製造する際の脱皮工程で発生するものを利用することができる。その際の渋皮の状態は乾燥状態、湿潤状態のいずれも、原料として使用するには問題がない。しかし、その後の加工で渋皮粉砕品とする場合には、粉砕工程を考慮すると、乾燥状態である方が望ましいが、一旦湿潤状態で渋皮を取り出した後、乾燥させてもなんら問題はない。また、加熱工程や焙煎工程などの加工処理が施された後に脱皮された渋皮を用いても構わない。また、脱皮工程の方法として、殻をはずした後、湯に浸漬することによって渋皮を膨潤させてから脱皮を行う場合がある。その際用いられた湯には有効成分が溶け出していることから、この湯を本発明に係る組成物の原料として使用することも可能である。すなわち、湯を必要に応じてフィルター等で濾過した後、減圧濃縮法、常圧濃縮法、薄膜蒸留法などの濃縮手段を用いて濃縮後、凍結乾燥法、噴霧乾燥法などの粉末化手段を用いて粉末化することができる。さらに必要に応じて、後述するエタノールなどの溶媒を用いて抽出精製を行っても良い。さらに後述する吸着樹脂などを用いた精製手段を組み合わせても良い。
【００１８】
ピーナッツから得られた渋皮を粉砕することで粉砕物を得ることができ、この乾燥粉砕物を本発明における有効成分として使用することができる。この際の乾燥方法は、熱風乾燥、真空乾燥、凍結乾燥、流動乾燥など一般に乾燥手段として用いられている方法を用いることができ、特にその方法は限定されるものではない。また、粉砕方法には乾式粉砕、湿式粉砕、ジェットミルなど一般に粉砕手段として用いられる方法を用いることができ、特にその方法は限定されるものではない。
【００１９】
一方、渋皮抽出物を本発明の有効成分として使用することができる。剥いた渋皮をそのまま抽出しても良いが、適当な粒度に粉砕したものを原料として抽出する方が抽出効率を高めるためには望ましい。抽出に用いる溶媒としては、例えば、メタノール、エタノール、プロピルアルコール、イソプロピルアルコール、ブタノール、イソブタノール等、ブチレングリコール、プロピレングリコール、グリセリン、アセトン、ジエチルエーテル、酢酸エチル等の群から選ばれる単独の溶媒、または２種類以上の溶媒の任意の混合溶媒のいずれであってもよいが、抽出物が最終的に食品などに配合される場合は、安全性の点で、水、エタノール、またはこれらの混合溶媒を用いるのが好ましい。また、抽出率を向上させるため、抽出は複数回実施するようにしても良い。抽出の際の原料（渋皮）と溶媒との比率は特に限定されるものではないが、原料１部に対して溶媒２〜１０００部とすることが好ましく、特に抽出操作、効率の点で、原料１部に対して溶媒５〜１００部を用いることが好ましい。また、抽出温度は特に限定される物ではないが、室温から溶媒の沸点の範囲とするのが便利である。抽出時間は抽出温度などによって異なるが、３０分〜２４時間の範囲とするのが好ましい。
【００２０】
このようにして得られた抽出物から、必要に応じて、カラムクロマトグラフィーなどの分離手法を用い、有効成分を精製した分画物を分離しても良い。分離の手段としては、カラムや薄層等によるクロマトグラフィーや膜分離法を用いることができ、ゲル浸透、ゲル濾過等のサイズ排除クロマトグラフィー、分配クロマトグラフィー、吸着クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー等の方法を用いることができる。具体的には、ピーナッツ渋皮抽出物を少量の水、含水メタノール、含水エタノールなどの溶媒に溶解し、セファデックスＬＨ−２０（商品名、ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製）、ダイアイオンＨＰ−２０（商品名、三菱化学製）などの吸着樹脂を充填したカラムに通液し、有効成分を吸着樹脂に吸着させた後、水で十分洗浄し、さらに、有効成分を溶出させるに充分な濃度と量のメタノール、エタノール、アセトンなどの親水性溶媒、あるいはこれらと水との混合溶媒で有効成分を溶出させればよい。
【００２１】
更に、抽出物や分画物は、減圧濃縮法、常圧濃縮法、薄膜蒸留法などの濃縮手段を用いて濃縮液とした後、凍結乾燥法、噴霧乾燥法などの粉末化手段を用いて粉末化することができる。
【図面の簡単な説明】
【００２２】
【図１】マウス海馬及び前頭葉皮質におけるＭＡＰキナーゼリン酸化に及ぼすピーナッツ渋皮抽出物の亢進効果の評価を示すグラフである。
【図２】試験に用いるマウスの選別における尾懸垂試験の結果を示すグラフである。
【図３】ピーナッツ渋皮抽出物あるいはＰＢＳをうつ様モデルマウスに３週間反復経口投与した後の尾懸垂試験の結果を示すグラフである。
【図４】ピーナッツ渋皮抽出物あるいはＰＢＳをうつ様モデルマウスに３週間反復経口投与した後のガラス玉覆い隠し試験の結果を示すグラフである。
【図５】高架式十字迷路の概要を示す説明図である。
【図６】ピーナッツ渋皮抽出物あるいはＰＢＳをうつ様モデルマウスに３週間反復経口投与した後の高架式十字迷路試験の結果を示すグラフである。
【図７】ピーナッツ渋皮抽出物あるいはＰＢＳをうつ様モデルマウスに３週間反復経口投与した後のオープンフィールド試験の結果を示すグラフである。
【図８】ピーナッツ渋皮抽出物あるいはＰＢＳを正常マウスに１週間反復経口投与した後のY字型迷路試験の結果を示すグラフである。
【図９】ピーナッツ渋皮抽出物あるいはＰＢＳを正常マウスに２週間反復経口投与した後の新規物質認識試験の結果を示すグラフである。
【図１０】ピーナッツ渋皮抽出物あるいはＰＢＳをＴＭＴとともにマウスに投与した後のY字型迷路試験の結果を示すグラフである。
【図１１】ＲＴ−ＰＣＲ法によるＢＤＮＦ遺伝子発現解析結果を表すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００２３】
以下に実施例をあげて本発明を詳細に説明する。
【実施例１】
【００２４】
１．ピーナッツ渋皮抽出物の製造
乾燥ピーナッツの渋皮１０００ｇに、１６Ｌの６０％エタノールを加え、４０℃にて１時間攪拌抽出した後、ろ過し、１回目の抽出液を得た。抽出残渣に再度２Ｌの６０％エタノールを加え、４０℃にて３０分攪拌抽出した後、ろ過し、２回目の抽出液を得た。１回目の抽出液と２回目の抽出液とを合わせ、４０℃にて減圧濃縮し、約１／５０容量まで濃縮後、ダイアイオンＨＰ−２０（商品名、三菱化学製）５Ｌに有効成分を吸着した。１５Ｌの水で水洗し、糖質などを除去した後、４０％エタノール１０Ｌで有効成分を溶出させ、有効成分を含む画分を集め、４０℃にて約１／５０容量まで減圧濃縮した。濃縮物を凍結乾燥し、ピーナッツ渋皮抽出物１１５．８ｇを得た。
【００２５】
２．マウスの海馬におけるＭＡＰキナーゼリン酸化に及ぼすピーナッツ渋皮抽出物の亢進効果の検証
（１）試験方法
被験動物として、６週齢の雄ｄｄＹマウス（日本ＳＬＣ製）であって、体重２９〜３１ｇのもの４匹を使用した。ピーナッツ渋皮抽出物をＰＢＳ（２．７ｍＭ  塩化カリウム、１．５ｍＭ  リン酸二水素カリウム、１３７ｍＭ  塩化ナトリム、１０ｍＭ  リン酸水素二ナトリム；ｐＨ７．４）に溶解し、ピーナッツ渋皮抽出物のＰＢＳ溶液を調製した。ピーナッツ渋皮抽出物の投与量が、それぞれ、３０μｇ／ｋｇ、３００μｇ／ｋｇ、３０００μｇ／ｋｇ体重となるように、上記溶液を上記４匹のマウスのうちの３匹に腹腔内投与した。また、残りの１匹のマウスに、ＰＢＳのみを投与し、対照(Ｃｏｎｔｒｏｌ)群とした。
【００２６】
各濃度のサンプル投与１時間後にマウスの海馬を摘出し、その海馬をＲＩＰＡバッファー（１５０ｍM 塩化ナトリウム、２０ｍM トリス；ｐH７．４、２ｍM エチレンジアミン四酢酸、１％ＩＧＥＰＡＬ＠ＣＡ−６３０、１％デオキシコール酸ナトリウム、０．１％ＳＤＳ；ドデシル硫酸ナトリウム、５０ｍM フッ化ナトリウム、１ｍM バナジン酸ナトリウム、１ｍＭ  フッ化フニルメチルスルホニル、１０μｇ／ｍｌ  ロイペプチンヘミ硫酸塩一水和物、１０μｇ／ｍｌ  アプロチニン）中に移し、氷冷下、超音波破砕して細胞溶解液とした。これを遠心分離(１２，０００ｒｐｍ、２０分)した上清をＳＤＳ化した後、ポリアクリルアミドゲルにてタンパク質を分離し、ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル（１０％（ｗ／ｖ）アクリルアミド）に装填した。ゲルをポリフッ化ビニリデン（ＰＶＤＦ）膜に転写した。そのＰＶＤＦ膜を５％スキムミルクでブロッキングした後、リン酸化ＭＡＰキナーゼ及びＭＡＰキナーゼの抗体(ｃｅｌｌ  ｓｉｇｎａｌｉｎｇ製)を用いて成分検索した。
（２）試験結果
図１は、ピーナッツ渋皮抽出物を腹腔内投与した時のマウスの海馬におけるリン酸化ＭＡＰキナーゼの亢進効果の結果である。なお、縦軸はリン酸化ＭＡＰキナーゼと全ＭＡＰキナーゼの割合を示す。ピーナッツ渋皮抽出物を投与したマウスの海馬は、ＰＢＳのみを投与したマウス（コントロール）の海馬と比べ、投与量が３００μｇ／ｋｇのもので約４．２倍、投与量が３０００μｇ／ｋｇのもので約２．７倍、ＭＡＰキナーゼのリン酸化が亢進されていることが確認できた。
【００２７】
３．ピーナッツ渋皮抽出物の抗うつ作用及び抗不安作用の検証
（１）被験動物の用意
被験動物として、６週齢の雄のｄｄＹマウス(日本ＳＬＣ)を購入した。マウスは６群に分け、飼育室であるプラスチックゲージ(幅２８０ｍｍ×深さ４４０ｍｍ×高さ１８０ ｍｍ)内で自由飲食にて飼育した。飼育室は、室温２５±１℃に保ち、７時から１９時まで点灯した。
【００２８】
マウスの購入後、５日間飼育してから、後述の尾懸垂試験を行い、無動化時間が２０秒以下のもの、或いは２分以上のものは排除した。選別に残ったマウスを、無動化時間の平均が同等になるように、Ａ群〜Ｆ群の６群（各群それぞれ６匹）に振り分けた。図２に、各群の無動化時間を示す。なお、図２の縦軸は無動化時間を表し、図２では各群６匹の平均値±標準誤差で表示している。
（２）ストレスの付加方法
６群のうち、Ａ群、Ｃ群、Ｅ群を、ストレスをかけない正常マウスの群（コントロール群）とした。一方、Ｂ群、Ｄ群、Ｆ群を、ストレスをかけうつ状態にしたマウスの群（ストレス群）とした。
【００２９】
Ｂ群、Ｄ群、Ｆ群のマウスにストレスをかける方法は、伊藤ら(Ｐｈｙｔｏｍｅｄｉｃ
ｉｎｅ．２００６；１３：６５８−６７．)のマイルドストレス法を一部改良して用い、以下のように行った。なお、マイルドストレスの負荷は前述の尾懸垂試験による選別の二日後から開始した。Ｂ群、Ｄ群、Ｆ群のマウスに対し、まず１５分間の強制水泳を行った。その４８時間後から傾斜ケージで４８時間、汚物ケージで２４時間、振とうケージで２４時間飼育した。なお、各種ストレスをかけ終わって２４時間はストレスをかけずにマウスを休ませた。傾斜ケージ以降のストレスを三回り繰り返した。
（３）サンプルの投与方法
サンプルの投与方法は、以下のようにした。各群のマウスに対し、前述のマイルドストレスの負荷における強制水泳の４８時間後から１日１回、３週間、反復経口投与により、サンプルを投与した。投与するサンプルは、Ｃ群、Ｄ群、Ｅ群、Ｆ群については、ピーナッツ渋皮抽出物をＰＢＳに溶解したものとした。投与量は、Ｃ群、Ｄ群については、１ｍｇ／ｋｇ体重となるように調整し、Ｅ群、Ｆ群については、３ｍｇ／ｋｇ体重となるように調整した。Ａ群、Ｂ群については、ＰＢＳのみを投与した。
（４）尾懸垂試験の方法
サンプルを３週間反復経口投与した後、各群のマウスに対し、尾懸垂試験を、以下のように実施した。尻尾の先端から約１ｃｍの所を指先で摘み、床から１０ｃｍの高さで固定し、逆さ吊りした。マウスは始めの内は激しく動き抵抗するが、次第に諦め無動化する。尾懸垂開始から６分以内の無動化時間が長いマウスほど、うつの症状が重いという指標とし、投与したピーナッツ渋皮抽出物の抗うつ効果を評価した。この尾懸垂試験の評価は１９時から２２時までの時間帯に実施した。
（５）尾懸垂試験の結果
図３は、尾懸垂試験の結果を表す。なお縦軸は無動化時間を示し、各群６匹の平均値±標準誤差で表示している。図中の＃＃マークは、ＰＢＳのみを投与したコントロール群（Ａ群）と、ＰＢＳのみを投与したストレス群（Ｂ群）との間に、試験値における有意な差（＃＃＜０．０１）があることを示す。また。＊マークは、ＰＢＳのみを投与したストレス群（Ｂ群）と、３ｍｇ／ｋｇのピーナッツ渋皮抽出物を投与したストレス群（Ｆ群）との間に、の無動化時間における有意な差（ｐ＜０．０５）があることを示す。
【００３０】
１ｍｇ／ｋｇのピーナッツ渋皮抽出物を投与したストレス群（Ｄ群）は、ＰＢＳのみを投与したストレス群（Ｂ群）に対し、試験値における有意な差はなかったが、無動化時間を低下させた。また、３ｍｇ／ｋｇのピーナッツ渋皮抽出物を投与したストレス群（Ｆ群）は、無動化時間を有意に低下させた。このことから、３ｍｇ／ｋｇのピーナッツ渋皮抽出物の投与により抗うつ効果が認められた。
（６）ガラス玉覆い隠し試験の方法
サンプルを３週間反復経口投与した後、各群のマウスに対し、ガラス玉覆い隠し試験を、以下のように実施した。透明なアクリル製の板で作成したケージ（幅３００ｍｍ×深さ３００ｍｍ×高さ３００ｍｍ）にチップを厚さ５ｃｍになるように敷き詰め、その上に直径２ｃｍの透明なガラス玉を２５個、間を縦横５ｃｍずつ空けて置いた。このケージにマウスを放ち、１５分間自由行動させた後、３分の２以上がチップで覆い隠されたガラス玉の数を数えた。隠されたガラス玉の数における減少を指標として、投与したピーナッツ渋皮抽出物の抗不安あるいは抗強迫性障害、抗パニック障害効果を評価した。このガラス玉覆い隠し試験は、８時から１１時までの時間帯に実施した。
（７）ガラス玉覆い隠し試験の結果
図４は、ガラス玉覆い隠し試験の結果を表す。なお、縦軸は隠したガラス玉の個数を示し、各群６匹の平均値±標準誤差で表示している。図中の＃マークは、ＰＢＳのみを投与したコントロール群（Ａ群）と、ＰＢＳのみを投与したストレス群（Ｂ群）との間に、試験値における有意な差（＃＜０．０５）があることを示す。また。＊マークは、ＰＢＳのみを投与したストレス群（Ｂ群）と、３ｍｇ／ｋｇのピーナッツ渋皮抽出物を投与したストレス群（Ｆ群）との間に、試験値における有意な差（＊：ｐ＜０．０５）があることを示す。
【００３１】
ＰＢＳのみを投与したストレス群（Ｂ群）に対し、ピーナッツ渋皮抽出物３ｍｇ／ｋｇを投与したストレス群（Ｆ群）では、隠したガラス玉の数が有意に減少した。このことより、３ｍｇ／ｋｇのピーナッツ渋皮抽出物の投与による抗不安あるいは抗強迫性障害、抗パニック障害効果を確認した。
（８）高架式十字迷路試験の試験方法
サンプルを３週間反復経口投与した後、各群のマウスに対し、高架式十字迷路試験を、以下のように実施した。図５に示すような、高架式十字迷路床を用意した。すなわち、床から高さ６０ｃｍの所に、中央で直角に交差した十字の板（幅５ｃｍ×長さ６５ｃｍ）を設置し、片方向の板（クローズドアーム）については、高さ１０ｃｍの透明なアクリル製の板で両側を仕切った。この十字路にマウスを放ち、５分間自由行動させ、アクリル製の板で仕切られてないアーム（オープンアーム）にいた時間とアクリル製の板で仕切られた板（クローズドアーム）に入った回数とを計測した。オープンアームにいた時間の長短を指標として、投与したピーナッツ渋皮抽出物の抗不安効果を評価した。また、クローズドアームに入った回数を指標として、投与したピーナッツ渋皮抽出物の行動量への影響の評価とした。この高架式十字迷路試験は９時から１１時までの時間帯に実施した。
（９）高架式十字迷路試験の結果
図６は、高架式十字迷路試験において、各群のマウスがオープンアームにいた時間を示す。なお、縦軸はオープンアームにいた時間を示し、各群６匹の平均値±標準誤差で表示している。図中の＃マークは、ＰＢＳのみを投与したコントロール群（Ａ群）と、ＰＢＳのみを投与したストレス群（Ｂ群）との間に、試験値における有意な差（＃＜０．０５）があることを示す。また。＊マークは、ＰＢＳのみを投与したストレス群（Ｂ群）と、３ｍｇ／ｋｇのピーナッツ渋皮抽出物を投与したストレス群（Ｆ群）との間に、試験値における有意な差（＊：ｐ＜０．０５）があることを示す。
【００３２】
ＰＢＳのみを投与したストレス群（Ｂ群）に対し、ピーナッツ渋皮抽出物を３ｍｇ／ｋｇ投与したストレス群（Ｆ群）では、オープンアームにいる時間が有意に増加した。このことから３ｍｇ／ｋｇのピーナッツ渋皮抽出物の投与には抗不安効果があることが示された。また、ＰＢＳのみを投与したストレス群（Ｂ群）と、ピーナッツ渋皮抽出物を３ｍｇ／ｋｇ投与したストレス群（Ｆ群）との間で、クローズドアームに入った回数において有意な差が無かったことから、ピーナッツ渋皮抽出物は行動量に影響しないことが分かった。
（１０）オープンフィールド試験の試験方法
サンプルを３週間反復経口投与した後、各群のマウスに対し、オープンフィールド試験を、以下のように実施した。幅×深さ×高さが各４０ｃｍである白色のアクリル板製のケージの床に、縦４本横４本等間隔に線を引き、床を１６等分した。このケージにマウスを放ち、５分間自由行動させ、その間に中央の４マスにいた時間と、マウスが動いていた時間とをそれぞれ測定した。中央にいた時間の長短を指標として、投与したピーナッツ渋皮抽出物の抗不安効果を評価した。また、マウスが動いていた時間を指標として、投与したピーナッツ渋皮抽出物の活動量に与える効果を評価した。このオープンフィールド試験は８時から１０時の時間帯に実施した。
（１１）オープンフィールド試験の結果
図７は、オープンフィールド試験において、各群のマウスが中央の４マスにいた時間を表す。なお、縦軸は中央の４マスにいた時間を示し、各群６匹の平均値±標準誤差で表示している。図中の＃＃マークは、ＰＢＳのみを投与したコントロール群（Ａ群）と、ＰＢＳのみを投与したストレス群（Ｂ群）との間に、試験値における有意な差（＃＃＜０．０１）があることを示す。また。＊＊マークは、ＰＢＳのみを投与したストレス群（Ｂ群）と、３ｍｇ／ｋｇのピーナッツ渋皮抽出物を投与したストレス群（Ｆ群）との間に、試験値における有意な差（＊＊：ｐ＜０．０１）があることを示す。
【００３３】
ＰＢＳのみを投与したストレス群（Ｂ群）に対し、ピーナッツ渋皮抽出物を３ｍｇ／ｋｇ投与したストレス群（Ｆ群）では、中央の４マスにいる時間が有意に増加した。高架式十字迷路試験の試験結果に続き、この試験結果からも、３ｍｇ／ｋｇのピーナッツ渋皮抽出物の投与には抗不安効果があることが示された。また、マウスが動いていた時間はいずれも有意な差が無かったことから、ピーナッツ渋皮抽出物は行動量に影響しないことが分かった。
【００３４】
４．ピーナッツ渋皮抽出物の記憶力改善作用の検証（その１）
（１）被験動物の準備
６週齢の雄のｄｄＹマウス（日本ＳＬＣ）を使用した。マウスはコントロール群、ピーナッツ渋皮抽出物１ｍｇ／ｋｇ投与群、３ｍｇ／ｋｇ投与群、１０ｍｇ／ｋｇ投与群の４群に分け、飼育室であるプラスチックゲージ（幅２８０ｍｍ×深さ４４０ｍｍ×高さ１８０ｍｍ）内で自由飲食にて一週間飼育した。飼育室は、室温２５±１℃に保ち、７時から１９時まで点灯した。
（２）サンプル投与方法
ピーナッツ渋皮抽出物をＰＢＳに溶解し、ピーナッツ渋皮抽出物のＰＢＳ溶液を調製した。ピーナッツ渋皮抽出物の投与量が、それぞれ、１ｍｇ／ｋｇ、３ｍｇ／ｋｇ、１０ｍｇ／ｋｇ体重となるように、上記溶液を、１ｍｇ／ｋｇ投与群、３ｍｇ／ｋｇ投与群、１０ｍｇ／ｋｇ投与群のマウスに、一日一回、反復経口投与した。なお、コントロール群には、上記溶液の代わりに、ＰＢＳのみを投与した。
（３）Y字迷路試験の試験方法
サンプルを２週間反復経口投与した後、各群のマウスに対し、Y字迷路試験を、以下の
ように実施した。アームの全長が４０ｃｍ、壁の高さが３０ｃｍ、床の幅が５ｃｍで、３本のアームがそれぞれ１２０度の角度で接続されたY字迷路を使用した。マウスを、最後
のサンプル投与から１２時間後に、Y字迷路のいずれかのアームの先端に置き、８分間迷
路内を自由探索させ、マウスが選択したアームを、選択した順に記録した。マウスが測定時間内に各アームを選択した回数を記録し、これを総アーム選択数とした。次に、この中から連続して異なる３本のアームを選択した組み合わせを調べ、この数を交替行動数とした。交替行動数を、総アーム選択数から２を引いた数で割り、その値に１００をかけて交替行動率を求めた。交替行動率が高いほど作業記憶が改善されたことを示している。なお、Y迷路試験は８：００から１１：００の時間帯に実施した。
（４）Y字迷路試験の結果
図８は、Y字迷路試験における交替行動率を表す。なお縦軸は交替行動率を示し、各群６匹の平均値±標準誤差で表示している。図中の＃マークは、コントロール群と、３ｍｇ／ｋｇ投与群との間に、試験値における有意な差（＃＜０．０５）があることを示している。ピーナッツ渋皮抽出物を３ｍｇ／ｋｇ投与した群では、コントロール群に比べ、交替行動率が有意に増加した。このことからピーナッツ渋皮抽出物による作業記憶の改善作用が確認された。また、ピーナッツ渋皮抽出物を過剰量投与した（１０ｍｇ／ｋｇ）群には改善作用が認められなかった。
（５）新規物質認識試験の試験方法
各群のマウスに対し、新規物質認識試験を、以下のように実施した。幅、深さ、高さがいずれも３０ｃｍの白色のアクリル板製のケージを使用した。１３日目のサンプル投与終了から１２時間後に、試験に用いるケージに1時間マウスを放ち、ケージに慣れさせた。
次に、１４日目のサンプル投与終了から１２時間後に、形が同じ二つの木製の白色球体（直径３ｃｍ）を、壁から１０ｃｍの所に互いに１０ｃｍの間隔を空けて置いた前述のケージにマウスを１５分間放ち、二つの球体を記憶させた。更にその２４時間後、今度は二つの球体の内一つを黒色の立方体(縦×横×高さいずれも３ｃｍ)に置き換え、マウスを１０分間ケージに放ち、新しく置いた立方体（新規物質）を探している時間と記憶させた球体を探している時間とをそれぞれ測定した。新規物質を探している時間と記憶させた球体を探している時間とを足した時間を総探索時間とし、新規物質探索時間を総探索時間で割り、その値に１００をかけて新規物質認識指数を求めた。新規物質認識指数が高いほど、少なくとも２４時間の記憶保持を有する物質認識記憶が改善されたことを示している。なお、新規物質認識試験は８：００から１２：００の時間帯に実施した。
（６）新規物質認識試験の結果
図９は、新規物質認識試験における新規物質認識指数を表す。なお、縦軸は新規物質認識指数を示し、各群５匹の平均値±標準誤差で表示している。図中の＃マークは、コントロール群と１ｍｇ／ｋｇ投与群との間に、試験値における有意な差（＃＜０．０５）があることを示す。また、図中の＃＃マークは、コントロール群と３ｍｇ／ｋｇ投与群との間に、試験値における有意な差（＃＃＜０．０１）があることを示す。ピーナッツ渋皮抽出物を１ｍｇ／ｋｇ投与した群と３ｍｇ／ｋｇ投与した群とでは、コントロール群に比べ、新規物質認識指数が有意に増加した。特に、ピーナッツ渋皮抽出物を３ｍｇ／ｋｇ投与した群では、顕著に新規物質認識指数が増加していた。このことからピーナッツ渋皮抽出物による作業記憶の改善作用が確認された。また、ピーナッツ渋皮抽出物を過剰量投与した（１０ｍｇ／ｋｇ）群では、改善作用が認められなかった。
【００３５】
５．ピーナッツ渋皮抽出物の記憶力改善作用の検証（その２）
（１）被験動物の準備
７週齢の雄のｄｄＹマウス（日本ＳＬＣ製）を使用した。マウスを、それぞれ８匹ずつから成るＸ、Ｙ、Ｚ群に分け、プラスチックケージ（幅２８０ｍｍ×深さ４４０ｍｍ×１８０ｍｍ）内で自由飲食にて１週間飼育した。
（２）サンプル投与
Ｘ群のマウスには、１週間の間、滅菌したＰＢＳに溶解したピーナッツ渋皮抽出物を１日１回腹腔内投与した。ピーナッツ渋皮抽出物の１回あたりの投与量は３００μｇ／ｋｇ体重とした。Ｙ群とＺ群のマウスには、１週間の間、滅菌したＰＢＳ（Ｘ群に投与したものと同量）を１日１回腹腔内投与した。
（３）トリメチルスズ（ＴＭＴ）の投与
Ｘ群、及びＹ群のマウスに対し、滅菌した生理食塩水に溶解したＴＭＴ（塩化トリメチルスズ）を、前記（２）の腹腔内投与のうちの最後の投与の翌日に腹腔内投与した。ＴＭＴの投与量は、２．５ｍｇ／ｋｇ体重とした。なお、ＴＭＴは、ヒトアルツハイマー病態に類似した記憶障害を惹起することが知られており（薬学雑誌．２００７  １２７（３）：４５１−４６１）、アルツハイマー病の有用なモデルを形成する。Ｚ群のマウスに対しては、滅菌した生理食塩水のみを投与した。
（４）再度のサンプル投与
Ｘ群のマウスに対し、前記（３）のＴＭＴ投与の翌日と２日後において、滅菌したＰＢＳに溶解したピーナッツ渋皮抽出物を１日１回腹腔内投与した。ピーナッツ渋皮抽出物の１回あたりの投与量は３００μｇ／ｋｇ体重とした。また、Ｙ群とＺ群のマウスに対し、前記（３）のＴＭＴ投与の翌日と２日後において、滅菌したＰＢＳ（Ｘ群に投与したものと同量）を１日１回腹腔内投与した。
（５）試験結果
Ｘ、Ｙ、Ｚ群のマウスについて、前記（４）における最後のサンプル投与から１時間後に、前述のＹ字迷路試験を行った。その結果を図１０に示す。なお、図１０における縦軸は交替行動率を示し、各群８匹の平均値±標準誤差で表示している。
【００３６】
Ｙ群（ＴＭＴを投与し、ピーナッツ渋皮抽出物は投与していない群）は、Ｚ群（ＴＭＴ無投与群）に比べて、有意に交替行動率が低下しており、記憶障害が惹起されている。Ｘ群（ＴＭＴとピーナッツ渋皮抽出物の両方を投与した群）は、ピーナッツ渋皮抽出物を投与することにより、Ｙ群に比べて、有意に交替行動率が増加しており、記憶障害が改善されている。
なお、図１０中の＃マークは、Ｙ群とＺ群との間に、試験値における有意な差（＃＜０．０５）があることを示す。また、＊マークは、Ｘ群とＹ群との間に、試験値における有意な差（＊＜０．０５）があることを示す。
【００３７】
６．ＢＤＮＦ遺伝子発現亢進作用の検証
（１）試験方法
Ｗｉｓｔａｒ系妊娠ラット（妊娠１７日目；日本ＳＬＣ製）から取り出した胎仔の大脳皮質神経細胞（以下、単に神経細胞ともいう）を、ポリ−ＤＬ−オルニチンコーティングした６穴プレートに収容した。この神経細胞を、培地１（５％ＦＢＳ、亜セレン酸ナトリウム、抗生物質入りのＤｕｌｂｅｃｃｏｓ‘ｓ  Ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｅａｇｌｅ’ｓ  Ｍｅｄｉｕｍ（ＤＭＥＭ；Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ製））を用い、１×１０5細胞／ｃｍ2の密度で２４時間培養した。その後、培地１を培地２（２％Ｂ２７サプリメント、１ｍＭピルビン酸ナトリウム、抗生物質、２ｍＭグルタミン入りのＮｅｕｒｏｂａｓａｌ  Ｍｅｄｉｕｍ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ製））に交換した。
６穴プレートにおける穴を第１の群、第２の群、第３の群に区分し、培地を交換した三日後に、第１の群には、滅菌ＰＢＳに溶解したピーナッツ渋皮抽出物を３０μｇ／ｍＬ添加し、第２の群には、滅菌ＰＢＳに溶解したピーナッツ渋皮抽出物を１００μｇ／ｍＬ添加し、第３の群には、滅菌ＰＢＳのみを添加した。
上記の添加の３時間後に培地２を除き、氷冷した滅菌ＰＢＳで神経細胞を洗浄した。次に、ＴＲＩｚｏｌ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて神経細胞からＲＮＡを抽出し、その１μｇを逆転写酵素（Ｐｒｉｍｅ  Ｓｃｒｉｐｔ  ＲＴａｓｅ、ＴａＫａＲａ製）とｃＤＮＡ合成プライマーによりＤＮＡへ逆転写した。
その後、ＢＤＮＦ（３５０ｂｐ）のプライマーを用いて標的遺伝子の増幅を行った。増幅する際の条件は、変性を９４℃で４５秒、アニーリングを６１℃で４５秒、伸長を７２℃で３０秒で３２サイクルとし、最終的なＰＣＲ産物は２%アガロースゲルにて３０分間電気泳動を行った。バンドの強度はＦＬＡ−５１００（ＦＵＪＩＦＩＬＭ製）を用いて解析した。内部標準としては、β−ａｃｔｉｎ（５４２ｂｐ）を用いた。
（２）試験結果
図１１に、ＲＴ−ＰＣＲ法によるＢＤＮＦ遺伝子発現解析結果を表す。なお、縦軸はＢＤＮＦとβ−アクチンの割合を示す。
ピーナッツ渋皮抽出物を３０μｇ／ｍＬ又は１００μｇ／ｍＬ添加した神経細胞では、ＰＢＳのみを添加した神経細胞に比べて、ＢＤＮＦのｍＲＮＡ発現量が有意に増加していることが確認できた。
なお、図１１中の＊マーク及び＊＊マークは、ピーナッツ渋皮抽出物を添加した神経細胞と、ＰＢＳのみ添加した神経細胞との間に、試験値における有意な差（＊：ｐ＜０．０５、＊＊：ｐ＜０．０１）があることを示している。
（参考例２）
【実施例２】
【００３８】
実施例１により得たピーナッツ渋皮抽出物を使用して、以下の配合で錠菓（食品）を製造した。
【００３９】
グラニュー糖 ８５重量部
濃縮果汁 ５重量部
クエン酸 ６重量部
香料 ２重量部
ピーナッツ渋皮抽出物 ２重量部
（参考例３）
【実施例３】
【００４０】
実施例１で作製したピーナッツ渋皮抽出物０．１重量部に対し、大麦若葉の乾燥粉末を１０重量部加え、青汁のもとを製造した。この粉末３ｇに対し、１５０ｍｌの水を加えることで、ピーナッツ渋皮抽出物を含有した青汁（食品）を製造した。
（参考例４）
【実施例４】
【００４１】
実施例１で作成したピーナッツ渋皮抽出物５３重量部に対し、乳糖１７重量部、結晶セルロース２７重量部、ショ糖脂肪酸エステル３重量部を撹拌混合した。この攪拌混合したもの３４０ｍｇを圧縮成形して直径１０ｍｍの錠剤（食品、医薬品）を製造した。
（参考例５）
【実施例５】
【００４２】
実施例1により得たピーナッツ渋皮抽出物を使用して、以下の配合でドリンク（食品）
を製造した。
【００４３】
ピーナッツ渋皮抽出物           ５０ｍｇ
ビタミンB１                    ３０ｍｇ
ビタミンC                       ５０ｍｇ
クエン酸                        ３００ｍｇ
エチルアルコール                ５００ｍｇ
果糖                            ３０００ｍｇ
香料                            １００ｍｇ
水                              合計で１００ｍｌとした
（参考例６）
【実施例６】
【００４４】
実施例１により得たピーナッツ渋皮抽出物を使用して、以下の配合でペットフードを製造した。
【００４５】
ピーナッツ渋皮抽出物            １０重量部
トウモロコシ                    ５８重量部
トウモロコシグルテン            ５．５重量部
チキンミール                    ２２重量部
乾燥チコリー                    ２．５重量部
残りは塩、ビタミン及びミネラルから成る。
【００４６】
尚、本発明は前記実施例になんら限定されるものではなく、本発明を逸脱しない範囲において種々の態様で実施しうることはいうまでもない。
【００４７】
例えば、前記実施例では、ピーナッツの渋皮の抽出物ではなく、ピーナッツの渋皮（例えばその粉末）を用いても良い。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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