(57)【要約】  眼組織神経突起形成促進剤、および当該促進剤の医薬としての用途の提供。  Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩を含有する眼組織神経突起形成促進剤、ならびにＮ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩を含有する、角膜神経突起形成促進剤および網膜神経突起形成促進剤。本発明の角膜神経突起形成促進剤は、角膜知覚の改善、ドライアイの治療または角膜上皮障害の治療に用いられる。本発明の網膜神経突起形成促進剤は、視覚機能障害の改善に用いられる。【特許請求の範囲】
【請求項１】
Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩を含有する眼組織神経突起形成促進剤。
【請求項２】
Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩を含有する角膜神経突起形成促進剤。
【請求項３】
角膜知覚の改善、ドライアイの治療または角膜上皮障害の治療に用いられるものである請求項２記載の剤。
【請求項４】
Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩を含有する網膜神経突起形成促進剤。
【請求項５】
視覚機能障害の改善に用いられるものである請求項４記載の剤。
【請求項６】
眼組織神経突起形成促進剤を製造するための、Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩の使用。
【請求項７】
角膜神経突起形成促進剤を製造するための、Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩の使用。
【請求項８】
角膜神経突起形成促進剤が角膜知覚の改善、ドライアイの治療または角膜上皮障害の治療に用いられるものである請求項７記載の使用。
【請求項９】
網膜神経突起形成促進剤を製造するための、Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩の使用。
【請求項１０】
網膜神経突起形成促進剤が視覚機能障害の改善に用いられるものである請求項９記載の使用。
【請求項１１】
眼組織神経突起の形成の促進を必要とする対象に、Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩の有効量を投与することを含む、眼組織神経突起の形成を促進させる方法。
【請求項１２】
角膜神経突起の形成の促進を必要とする対象に、Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩の有効量を投与することを含む、角膜神経突起の形成を促進させる方法。
【請求項１３】
角膜知覚の改善、ドライアイまたは角膜上皮障害の治療に用いられるものである請求項１２記載の方法。
【請求項１４】
網膜神経突起の形成の促進を必要とする対象に、Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩の有効量を投与することを含む、網膜神経突起の形成を促進させる方法。
【請求項１５】
視覚機能障害の改善に用いられるものである請求項１４記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、神経突起形成促進剤に関する。詳しくは、アミド化合物の神経突起形成促進作用による角膜知覚改善剤または視覚機能改善剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
レーザー屈折矯正角膜切除術（ＰＲＫ）、レーザー角膜切削形成術（レーシック；ＬＡＳＩＫ）、レーザー上皮角膜曲率形成術（ラセック；ＬＡＳＥＫ）、角膜移植などの角膜手術後には、角膜神経が切断されるため、通常約３週間から１年間角膜知覚機能の低下症状が起きると言われている。例えば、ＬＡＳＩＫ後には明らかに角膜神経が切断されていること（非特許文献１）、また、ＬＡＳＩＫ後には神経像が認められないか、あるいは神経線維束が短く連結していない角膜領域において、角膜の知覚が低下することが報告されている（非特許文献２）。
ＰＲＫおよびＬＡＳＩＫ後の角膜知覚の低下が涙腺応答低下、涙液減少の原因であることが示唆されている（非特許文献３）。この角膜知覚機能低下のため、角膜手術後の患者では瞬目回数が減少し、ドライアイ症状が認められることが問題となっている。一方、ドライアイ患者では涙液分泌の減少が角膜上皮の病理学的変化と角膜知覚の低下を導くことが示唆されている（非特許文献４）。すなわち、角膜知覚の低下が涙液分泌を減少させ、角膜表面の症状を重篤化させることが問題となっている。また、ＰＲＫおよびＬＡＳＩＫにより引き起こされたドライアイによって角膜創傷治癒が障害されたり（非特許文献３）、ＬＡＳＩＫの術後に再発性の角膜糜爛が認められたりしたとの報告もある（非特許文献５）。【０００３】
しかし、現在、角膜手術後の低下した角膜知覚の回復は自然回復に委ねられ、またドライアイの治療においても角膜知覚を回復させるための積極的治療は施されていないのが現状である。また、神経麻痺性角膜症、角膜潰瘍、糖尿病性角膜症などの角膜神経変性を伴う疾患でも角膜知覚低下が引き起こされるが、適切な治療法はない。また、角膜の神経に関して、三叉神経節で分岐する第１枝（ophthalmic branch）由来の神経のほとんどが角膜に分布し、角膜の術後知覚回復、角膜上皮の修復などに深く関わっていることが報告されている（非特許文献４）。
網膜神経節細胞は網膜の出力細胞であり、その神経突起は視神経線維とも呼ばれ、網膜内層、神経線維層（最も硝子体に近い側）を走行し、視神経乳頭に集合の後、眼球を出て視神経を形成し視覚情報を大脳皮質に伝達する役割を担っている。様々な網膜疾患や眼圧上昇（緑内障）等が視神経を萎縮、変性を引き起こし、視覚機能障害を招くことが知られている。これらの視覚機能障害には、網膜内の視覚情報伝達経路の機能を回復することができる薬剤、特に網膜神経細胞の神経突起の新生や伸長促進が可能な薬剤が有用と考えられる。【０００４】
Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドは、コリン作用活性の強化作用を有する化合物である（特許文献１）。このアミド化合物は、哺乳類の中枢神経系における障害、より詳しくは、健忘症や認知症などの治療に有用であることが予想される化合物である。また、このアミド化合物は、ラット海馬スライスを用いた実験でソマトスタチンのリリースを高めること、ラット海馬ニューロンにおいて、ソマトスタチンが誘発するカルシウムの流入抑制を阻害すること、およびソマトスタチン神経伝達システムの活性化を介して認知性機能障害を改善することが示唆されている（非特許文献６、特許文献２）。また、Ｎ−（１−アセチルピペラジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドが神経栄養因子産生促進剤として用いられることが知られている（特許文献３）。【０００５】
ソマトスタチンは、in vitro実験においてウサギ三叉神経細胞の神経突起の形成を促進すること、また、ウサギを用いたin vivo試験において、ソマトスタチンの点眼投与は、角膜知覚機能を改善することが知られている（特許文献４、特に試験例２、試験例３）。しかしながら、Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドが眼組織の神経細胞においてソマトスタチンのリリースを高めるかどうかについては知られておらず、さらには、このアミド化合物が神経突起形成を促進することについても知られていない。
【特許文献１】国際公開第２０００／０４２０１１号パンフレット
【特許文献２】国際公開第２０００／０７２８３４号パンフレット
【特許文献３】国際公開第２００３／０８４５４２号パンフレット
【特許文献４】国際公開第２００４／０３９４０３号パンフレット
【非特許文献１】Tuuli, U. L. et al., Experimental Eye Research 1998, 66, pp.755-763
【非特許文献２】Tuuli, U. L. et al., Investigative Ophthalmology & Visual Science 2000, 41, pp.393-397
【非特許文献３】Ang, R. T. et al., Current Opinion in Ophthalmology 2001, 12, pp.318-322
【非特許文献４】Xu, K.-T. et al., Cornea 1996，15，pp.235-239
【非特許文献５】Solomon, R. et al., The Ocular Surface 2004, 2, pp.34-42
【非特許文献６】Tokita, K. et al., European Journal of Pharmacology 2005, 527, pp.111-120
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明の目的は、眼組織神経突起形成促進剤の提供である。また、本発明の目的は、眼組織神経突起形成促進剤の医薬としての用途を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者らは、上記問題点に鑑み、鋭意検討した結果、三叉神経細胞または網膜神経細胞における作用が全く知られていなかったＮ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドが意外にも神経突起の形成を促進することを見出し、このような作用を通じて、角膜知覚の低下などの眼組織の神経障害に伴う疾患に有用であることを見出し、本発明を完成するに至った。即ち、本願発明は、以下に示す通りである。【０００８】
〔１〕Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩を含有する眼組織神経突起形成促進剤。
〔２〕Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩を含有する角膜神経突起形成促進剤。
〔３〕角膜知覚の改善、ドライアイの治療または角膜上皮障害の治療に用いられるものである前記〔２〕記載の剤。
〔４〕Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩を含有する網膜神経突起形成促進剤。
〔５〕視覚機能障害の改善に用いられるものである前記〔４〕記載の剤。
〔６〕眼組織神経突起形成促進剤を製造するための、Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩の使用。
〔７〕角膜神経突起形成促進剤を製造するための、Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩の使用。
〔８〕角膜神経突起形成促進剤が角膜知覚の改善、ドライアイの治療または角膜上皮障害の治療に用いられるものである前記〔７〕記載の使用。
〔９〕網膜神経突起形成促進剤を製造するための、Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩の使用。
〔１０〕網膜神経突起形成促進剤が視覚機能障害の改善に用いられるものである前記〔９〕記載の使用。
〔１１〕眼組織神経突起の形成の促進を必要とする対象に、Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩の有効量を投与することを含む、眼組織神経突起の形成を促進させる方法。
〔１２〕角膜神経突起の形成の促進を必要とする対象に、Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩の有効量を投与することを含む、角膜神経突起の形成を促進させる方法。
〔１３〕角膜知覚の改善、ドライアイまたは角膜上皮障害の治療に用いられるものである前記〔１２〕記載の方法。
〔１４〕網膜神経突起の形成の促進を必要とする対象に、Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩の有効量を投与することを含む、網膜神経突起の形成を促進させる方法。
〔１５〕視覚機能障害の改善に用いられるものである前記〔１４〕記載の方法。
【発明の効果】
【０００９】
本発明のＮ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩を含有する医薬は、三叉神経細胞の神経突起形成促進作用を有することから、１）角膜神経の損傷によって引き起こされる角膜知覚低下の改善に有用であり、２）角膜上皮障害またはドライアイに伴う角膜知覚低下の改善に有用である。また、本発明のＮ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩を含有する医薬は、網膜神経細胞の神経突起形成促進作用を有することから、視覚機能障害の改善に有用である。
【図面の簡単な説明】
【００１０】
【図１】図１は、全細胞数中に占める神経突起形成細胞の比率（％）を示す。縦軸は、全細胞に占める神経突起形成細胞の割合を示す。図中＊はコントロール群に対する有意差（ｐ＜０．００５）を示す。
【図２】図２は、抗ニューロフィラメント抗体で染色された網膜神経細胞の写真である。
【図３】図３は、角膜フラップ作製後の角膜知覚の経時的推移を示すグラフである。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１１】
本発明は、Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩を含有する眼組織神経突起形成促進剤を提供する。また、本発明は、Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩を含有する、角膜神経突起形成促進剤および網膜神経突起形成促進剤を提供する。眼組織神経突起形成促進剤、角膜神経突起形成促進剤、角膜知覚改善剤、網膜神経突起形成促進剤および視覚機能障害改善剤をまとめて、本発明の医薬と称する。【００１２】
本発明における「眼組織神経」とは、眼組織に存在するあらゆる神経をいい、角膜神経、網膜神経、動眼神経、毛様体神経節を始めとする様々な神経を含む。
本発明における「角膜神経」とは、知覚神経である三叉神経の支配を受け角膜周囲に形成される輪状神経叢、角膜実質に網目状に分布する実質内神経叢、ボーマン膜直下で形成される上皮下神経叢、ボーマン膜を貫通したところで形成される基底細胞神経叢および神経線維をいう。本発明における「網膜神経」とは、神経節細胞から形成される神経線維（視神経）および神経伝達に関与する視細胞、双極細胞、水平細胞、アマクリン細胞から形成される神経線維をいう。本発明における「神経突起」とは、ニューロン（神経細胞）の細胞体から出る突起（樹状突起および軸索）をいい、「形成」とは、細胞体から前記神経突起が生成および／または伸長することをいう。本発明における「形成促進」とは、下記有効成分によって細胞体から前記神経突起が生成および／または伸長することをいう。【００１３】
本発明の医薬に有効成分として含まれるＮ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミド（「ＦＫ９６２」ＣＡＳ  Ｎｏ．２８３１６７−０６−６）は、国際公開第２０００／０４２０１１号パンフレット（特に実施例６）に記載されたアミド化合物である。このアミド化合物の薬学的に許容される塩は、慣用の無毒性の塩であって、酸付加塩、たとえば無機酸付加塩（例えば、塩酸塩、臭化水素酸塩、硫酸塩、燐酸塩など）、有機酸付加塩（例えば、蟻酸塩、酢酸塩、トリフルオロ酢酸塩、マレイン酸塩、酒石酸塩、メタンスルホン酸塩、ベンゼンスルホン酸塩、トルエンスルホン酸塩など）、アミノ酸との塩（例えば、アスパラギン酸塩、グルタミン酸塩など）、金属塩、たとえばアルカリ金属塩（例えば、ナトリウム塩、カリウム塩など）およびアルカリ土類金属塩（例えば、カルシウム塩、マグネシウム塩など）などがあげられる。【００１４】
Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩は、国際公開第２０００／０４２０１１号パンフレット（特に実施例６）の記載に準じて合成することができる。【００１５】
本発明の医薬は、哺乳動物（例えば、ヒト、マウス、ラット、ハムスター、ウサギ、ネコ、イヌ、ウシ、ヒツジ、サルなど）において、角膜神経、網膜神経などの眼組織における神経突起形成促進剤として有用である。【００１６】
本発明の医薬は、角膜神経突起の形成を促進させることによって、角膜神経の損傷、切断または欠損によって引き起こされる角膜知覚低下を改善することができる。すなわち、本発明の医薬は、角膜知覚改善剤として有用である。
本発明の医薬は、角膜神経の損傷、切断または欠損を伴う疾患、例えば、角膜上皮障害、ドライアイ（涙液減少症；涙液蒸発亢進型ドライアイ；シェーグレン症候群；スティーブンス−ジョンソン症候群；角膜上皮糜爛、眼瞼縁炎、眼類天疱瘡、春季カタル、アレルギー性結膜炎、ビタミンＡ欠乏症などに伴うドライアイなど）、神経麻痺性角膜症、角膜潰瘍、糖尿病性角膜症、角結膜炎（流行性角結膜炎、単純ヘルペス角膜炎）、円錐角膜、角膜変性症等に伴う角膜知覚の低下を改善する治療薬として有用である。ここで言う角膜上皮障害とは、角膜潰瘍、角膜上皮剥離、乾性角結膜炎、慢性表層角膜炎、角膜糜爛、遷延性角膜上皮欠損などの内因性疾患、薬剤性、外傷、コンタクトレンズ装着等による外因性疾患、または物理的もしくは化学的障害によって、角膜上皮が損傷を受けることを意味する。また、本発明の医薬は、白内障手術、硝子体手術やＰＲＫ、ＬＡＳＩＫ、ＬＡＳＥＫまたは角膜移植手術などの角膜手術に伴う角膜知覚の低下を改善する治療薬として有用である。
角膜知覚の低下およびその改善は、コシュ・ボネ（Cochet-Bonnet aesthesiometer）角膜知覚計等の知覚計を用いて常法により測定することができる。【００１７】
ドライアイ患者では涙液機能の低下が、角膜知覚の低下をもたらし、この角膜知覚低下がさらなる涙液機能の低下を導くことが知られている。この悪循環が、ドライアイ症状を亢進させ、さらには角膜上皮障害を引き起こすことが報告されている。例えば、Mathersの論文（CLAO J. 2000, 26, 159.）には、涙腺と角膜は、疾病の発症において密接に一体化したものであり、涙腺の疾病は眼表面に影響し、眼表面の疾病は涙腺に影響する「corneal lacrimal gland feedback model」が記載されている。そして、角膜知覚低下が涙液分泌低下を招き、次いで角膜障害へと導き、その結果として、涙腺障害を引き起こし、これらが悪循環することが示されている（特に161頁、右カラムの39〜45行目）。Angらの論文（Curr Opin Ophthalmol. 2001, 12, 318.）には、点状表層角膜症等の角膜上皮障害の主な原因が角膜知覚の低下であり、その結果として涙腺へのフィードバックが低下し、涙液の産生が減少することが述べられている。また、Xuらの論文（Cornea 1996, 15, 235.）には、涙液の減少が角膜上皮の形態学的変化を引き起こし、角膜知覚の低下を引き起こすことが述べられている（例えば238頁、右カラムの44〜47行目）。一方、Fujishimaらの論文（Cornea 1996, 15, 368.）では、アルドース還元酵素阻害薬を用いた研究において、涙液動態の改善が角膜知覚の改善の結果であることが示唆されている。したがって、本発明の医薬は、角膜知覚の低下を改善することによって角膜知覚低下と涙液機能低下との悪循環を改善することから、ドライアイまたは角膜上皮障害の治療剤としても有用である。特に、本発明の医薬は、角膜知覚の低下に伴うドライアイまたは角膜上皮障害の治療剤として有用である。【００１８】
本発明の医薬は、網膜神経突起を形成させることによって、網膜神経が損傷、切断、変性または欠損によって引き起こされる視覚機能障害を改善する治療薬として有用である。すなわち、本発明の医薬は、視覚機能障害改善剤として有用である。本発明における視覚機能障害とは、網膜神経および視神経の損傷、変性等による網膜神経節細胞および視神経線維の減少；視神経萎縮、神経線維の軸索消失、視神経の神経線維髄鞘の脱落、視神経の欠損等により生じる、視力喪失、視力の低下、視野狭窄、色覚異常および霧視；ならびに網膜電図および視覚誘発電位の異常等の諸症状を呈する視力障害をいう。
本発明の医薬は、視神経炎、視神経乳頭毛細血管腫、虚血性視神経症、網膜神経線維層欠損、網膜性視神経萎縮、視神経断裂、外傷性視神経症、うっ血乳頭、視神経乳頭欠損、視神経低形成、中毒性視神経萎縮、緑内障等に伴う視覚機能障害を改善する治療薬として有用である。【００１９】
本発明の医薬は、網膜神経疾患、網膜血管閉塞症、網膜静脈周囲炎、Ｅａｌｅｓ病、虚血性眼症候群、網膜細動脈瘤、高血圧および腎疾患ならびに血液疾患による網膜症、糖尿病性網膜症、網膜ジストロフィー、黄斑ジストロフィー、網脈絡膜症、黄斑変性、黄斑浮腫、網膜色素上皮剥離、変性網膜分離症、網膜芽細胞腫、網膜色素上皮腫等の網膜の炎症に伴う視覚機能障害を改善する治療薬として有用である。さらに、網膜移植時における網膜神経節細胞をはじめとする視細胞の生育と機能維持、視神経移植時における視神経再生に有効である。【００２０】
本発明の医薬は、患者に対して経口的又は非経口的に投与することができ、投与形態としては、経口投与、眼局所投与（点眼投与、硝子体内投与、結膜下投与、テノン嚢下投与等）、静脈内投与、経皮投与等などが挙げられ、必要に応じて、製薬学的に許容され得る添加剤と共に、投与に適した剤型に製剤化される。経口投与に適した剤型としては、例えば、錠剤、カプセル剤、顆粒剤、散剤などが挙げられ、非経口投与に適した剤型としては、例えば、点眼剤、眼軟膏、注射剤、貼付剤、ローション剤、クリーム剤などが挙げられる。これらは当該分野で汎用されている通常の技術を用い、調製することができる。また、本化合物はこれらの製剤の他に眼内インプラント用製剤やマイクロスフェアー等のＤＤＳ（ドラッグデリバリーシステム）化された製剤にすることもできる。本発明の医薬は、上述の治療効果を奏する限りその投与経路は特に限定されないが、好ましくは眼局所投与される。眼局所投与用剤形には、例えば、点眼剤や眼軟膏剤が挙げられる。【００２１】
本発明の医薬の投与対象としては、哺乳動物（例えば、ヒト、マウス、ラット、ハムスター、ウサギ、ネコ、イヌ、ウシ、ヒツジ、サル等）が挙げられる。【００２２】
例えば、本発明の医薬を点眼剤または眼軟膏剤として用いる場合、安定剤（例えば、亜硫酸水素ナトリウム、チオ硫酸ナトリウム、エデト酸ナトリウム、クエン酸ナトリウム、アスコルビン酸、ジブチルヒドロキシトルエンなど）、溶解補助剤（例えば、グリセリン、プロピレングリコール、マクロゴール、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油など）、懸濁化剤（例えば、ポリビニルピロリドン、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ヒドロキシメチルセルロース、カルボキシメチルセルロースナトリウムなど）、乳化剤（例えば、ポリビニルピロリドン、大豆レシチン、卵黄レシチン、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油、ポリソルベート８０など）、緩衝剤（例えば、リン酸緩衝液、酢酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、炭酸緩衝液、クエン酸緩衝液、トリス緩衝液、グルタミン酸、イプシロンアミノカプロン酸など）、粘稠剤（例えば、メチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、カルボキシメチルセルロースなどの水溶性セルロース誘導体、コンドロイチン硫酸ナトリウム、ヒアルロン酸ナトリウム、カルボキシビニルポリマー、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、マクロゴールなど）、保存剤（例えば、塩化ベンザルコニウム、塩化ベンゼトニウム、グルコン酸クロルヘキシジン、クロロブタノール、ベンジルアルコール、デヒドロ酢酸ナトリウム、パラオキシ安息香酸エステル類、エデト酸ナトリウム、ホウ酸など）、等張化剤（例えば、塩化ナトリウム、塩化カリウム、グリセリン、マンニトール、ソルビトール、ホウ酸、ブドウ糖、プロピレングリコールなど）、ｐＨ調整剤（例えば、塩酸、水酸化ナトリウム、リン酸、酢酸など）、清涼化剤（例えば、ｌ−メントール、ｄ−カンフル、ｄ−ボルネオール、ハッカ油など）、軟膏基剤（白色ワセリン、精製ラノリン、流動パラフィン、植物油（オリーブ油、椿油、落花生油など）など）などを添加剤として加えることができる。これら添加剤の添加量は、添加する添加剤の種類、用途などによって異なるが、添加剤の目的を達成し得る濃度を添加すればよい。【００２３】
本発明の医薬を点眼剤または眼軟膏剤とする場合、製剤分野で通常用いられている方法に従って製造すればよく、例えば第１５改正日本薬局方、製剤総則、点眼剤の項および眼軟膏剤の項に記載された方法に基づき製造することができる。【００２４】
本発明は、本発明の医薬を製造するため、Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩の使用も提供する。【００２５】
本発明の医薬の投与量は、対象となる疾患により異なり、一概には言えないが、効果を発揮させる標的組織中の薬物濃度が０．００１ｎＭ（Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドとして０．２６ｐｇ／ｍＬ、以下同じ）〜１０００ｎＭ（２６０ｎｇ／ｍＬ）であり、好ましくは０．００１ｎＭ（０．２６ｐｇ／ｍＬ）〜１０ｎＭ（２．６ｎｇ／ｍＬ）、より好ましくは０．０１ｎＭ（０．００２６ｎｇ／ｍＬ）〜１ｎＭ（０．２６ｎｇ／ｍＬ）、さらにより好ましくは０．０５ｎＭ（０．０１３ｎｇ／ｍＬ）〜０．５ｎＭ（０．１３ｎｇ／ｍＬ）となるように設定することができる。【００２６】
本発明の医薬を角膜知覚改善剤として成人の眼に局所的に使用する場合には、０．０１ｎＭ（０．００２６ｎｇ／ｍＬ）〜１００ｎＭ（２６ｎｇ／ｍＬ）、好ましくは０．１ｎＭ（０．０２６ｎｇ／ｍＬ）〜１０ｎＭ（２．６ｎｇ／ｍＬ）、より好ましくは０．５ｎＭ（０．１３ｎｇ／ｍＬ）〜５ｎＭ（１．３ｎｇ／ｍＬ）の有効成分を含有する点眼液を、１回約２０〜約５０μＬ、１日あたり１〜８回、好ましくは１〜５回点眼するのがよい。【００２７】
本発明の医薬は眼組織神経突起形成の促進、角膜神経突起形成の促進または網膜神経突起形成の促進作用を有することから、本発明は、かかる促進を必要とする対象に、Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩の有効量を投与することを含む、眼組織神経突起の形成、角膜神経突起の形成または網膜神経突起の形成の促進方法も提供する。【００２８】
本発明の促進方法の対象としては、哺乳動物（例えば、ヒト、マウス、ラット、ハムスター、ウサギ、ネコ、イヌ、ウシ、ヒツジ、サルなど）があげられ、好ましくはヒトである。【００２９】
本発明の促進方法における有効成分Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミドまたはその薬学的に許容される塩の投与方法、投与剤型および投与量については、上記本発明の医薬の記載に準じて適宜設定される。【００３０】
本発明の角膜神経突起形成の促進方法は、角膜知覚の改善、ドライアイの治療または角膜上皮障害の治療に用いられることが好ましい。【００３１】
本発明の網膜神経突起形成の促進方法は、視覚機能障害の改善に用いられることが好ましい。
【実施例】
【００３２】
以下に、実施例を挙げて本発明をさらに詳しく説明するが、本発明はこれらに限定されない。【００３３】
試験例１：培養ウサギ三叉神経細胞の神経突起形成促進作用
１．使用動物
オリエンタル酵母工業株式会社より購入した日本白色種ウサギ（生後４日目、オス）を使用した。
２．被験物質
Ｎ−（１−アセチルピペリジン−４−イル）−４−フルオロベンズアミド（以下、化合物Ａと称する）を使用した。
３．試験方法
Ａ)細胞培養
ウサギ三叉神経細胞の単離はChanらの報告にしたがって行った（Kwan Y. Chan and Richard H. Haschke. Exp. Eye Res. 41: 687-699, 1985）。すなわち、ウサギに、ペントバルビタールナトリウム注射液（大日本住友製薬）麻酔下で、生理食塩水で心臓灌流を施した後、その三叉神経節を切り出した。切り出した三叉神経節をＨａｎｋｓ’  ｂａｌａｎｃｅｄ  ｓａｌｔ  ｓｏｌｕｔｉｏｎ（ＨＢＳＳ、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）で洗浄後、３００μｇ／ｍＬのコラゲナーゼ・ディスパーゼ（Ｒｏｃｈｅ）で３７℃、４０分間処理し、１２０×ｇで５分間遠心分離して細胞を回収した。最終濃度０．１％ＥＤＴＡを添加したＮｅｕｒｏｂａｓａｌ（登録商標、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）で酵素反応を停止させ、培養液で懸濁後、１２０×ｇで５分間遠心分離し、三叉神経細胞を調製した。【００３４】
調製した細胞を、ポリリジン／ラミニンコーティング済みの８ウェルチャンバースライド（ファルコン）上に約3×10３細胞／ウェルとなるよう播種し、播種後２４時間培養した。２４時間後、培養液中に化合物Ａ（最終濃度０．１ｎＭ（０．０２６ｎｇ／ｍＬ））、陽性対照としてＮＧＦ（最終濃度１μｇ／ｍＬ）、またはコントロールとしてＰＢＳをそれぞれ添加した。添加後、さらに４８時間培養した。
培養液は、ＮｅｕｒｏｂａｓａｌにＢ２７サプリメント（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）（最終濃度２％（ｖ／ｖ））およびＬ−グルタミン（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）（最終濃度１ｍＭ）およびシトシン−１−β−Ｄ（＋）アラビノフラノシド（最終濃度１０μＭ）を含むものを用いた。培養条件は、二酸化炭素濃度５％、空気濃度９５％、湿度１００％、温度３７℃とした。【００３５】
Ｂ）染色
添加４８時間培養後のウサギ三叉神経細胞を、１０％中性緩衝ホルムアルデヒド液に、室温にて２０分浸して固定した。神経細胞体および神経突起を構成するニューロフィラメントを特異的に認識する抗ニューロフィラメント２００抗体（シグマアルドリッチ）を用いて固定した標本を蛍光染色し、染色された細胞を蛍光顕微鏡（オリンパス）下で観察した。染色された細胞像は蛍光顕微鏡からコンピュータに画像として取り込んだ。【００３６】
Ｃ）画像解析
培養ウサギ三叉神経細胞の神経突起形成の程度を評価するために、コンピュータに取り込んだ染色細胞の画像において、細胞体直径および神経突起長を画像解析ソフト（Ｉｍａｇｅ−Ｐｒｏ Ｐｌｕｓ Ｖｅｒ．４．５．１, メディアサイバネティクス）を用いて計測した。細胞体直径の2倍以上長さの神経突起を有する細胞を神経突起形成細胞として、その細胞数の全細胞数に占める比率（％）を算出した(Otori Y, Wei JY, Barnstable CJ. Invest. Ophthalmol Vis Sci (1998) 39, 972-981)。【００３７】
４．試験結果
図１は、全細胞数中に占める神経突起形成細胞の比率(％)を示すグラフである。神経突起形成細胞の比率は、コントロール群で２９．５±８．７％、０．１ｎＭ  化合物Ａ添加群で６３．３±５．２％、ＮＧＦ添加群で７０．０±１７．６％であった。統計学的解析の結果、０．１ｎＭ  化合物Ａ、ＮＧＦ添加群はいずれもコントロール群に対して有意な突起形成促進作用が認められた（Ｎ＝６、５、５（順同）、平均値±標準偏差、＊：ｐ＜０．００５；Ｄｕｎｎｅｔｔの多重比較検定）。
以上の結果より、化合物Ａは培養ウサギ三叉神経細胞の神経突起形成促進作用を有することが明らかにされた。さらに、化合物Ａは、一般的にポジティブコントロールとして用いられるＮＧＦ（１μｇ／ｍＬ）よりも低濃度で三叉神経細胞の神経突起形成促進作用を示した。【００３８】
試験例２：ウサギ網膜細胞の神経突起形成促進作用
１．使用動物
オリエンタル酵母工業株式会社より購入した日本白色種ウサギ（生後４日目、オス）を使用した。
２．被験物質
化合物Ａを使用した。
３．試験方法
１）細胞培養
ペントバルビタールナトリウム注射液（大日本住友製薬）麻酔下で、生理食塩水で心臓灌流を施した後、ウサギから眼球を摘出し網膜を単離した。Ｈａｎｋｓ’  ｂａｌａｎｃｅｄ  ｓａｌｔ  ｓｏｌｕｔｉｏｎ（ＨＢＳＳ、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）に懸濁させたパパイン溶液（１ｍｇ／ｍＬ、シグマアルドリッチジャパン株式会社）に単離した網膜を入れ、３７℃で３０分間酵素消化を行った。以後、試薬の調製にＬｅｉｂｏｖｉｔｚ’ｓ  Ｌ−１５  Ｍｅｄｉｕｍ（Ｌ−１５、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いた。静置後、上清を捨て、３ｍＬのトリプシンインヒビター溶液（２ｍｇ／ｍＬトリプシンインヒビター、０．００４％ＤＮａｓｅ、１ｍｇ／ｍＬ  Ｂｏｖｉｎｅ  Ｓｅｒｕｍ  ＡｌｂｕｍｉｎをＬ−１５に溶解、ｐＨ７．４）を加えピペッティングした。静置した後、上清を捨て、さらに３ｍＬのトリプシンインヒビター溶液を加えピペッティングし、この操作をさらにもう１回繰り返し、１２０×ｇで５分間遠心分離し上清を除いた。高濃度のトリプシンインヒビター溶液（１０ｍｇ／ｍＬトリプシンインヒビター、１０ｍｇ／ｍＬ  Ｂｏｖｉｎｅ  Ｓｅｒｕｍ  ＡｌｂｕｍｉｎをＬ−１５に溶解、ｐＨ７．４）を２ｍＬ加えてピペッティングし、１２０×ｇで５分間遠心分離し上清を捨てた。細胞は０．０５％  Ｂｏｖｉｎｅ  Ｓｅｒｕｍ  Ａｌｂｕｍｉｎ（ＢＳＡ）を含むＬ−１５溶液（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）１０ｍＬに懸濁し、抗マクロファージ抗体を添加した（最終濃度１μｇ／ｍＬ）。室温で２０分間インキュベートした後、１２０×ｇで５分間遠心分離して上清を捨て、２０ｍＬの０．０５％ＢＳＡ／Ｌ−１５に懸濁し、あらかじめ二次抗体（抗マウスＩｇＧ抗体、日本ケミコン）でコートしておいたディッシュに播種した。３７℃で４０分間インキュベートした後、浮遊している細胞溶液を１２０×ｇで５分間遠心分離することにより細胞を回収した。その細胞をポリリジン／ラミニンコーティング済みの８ウェルチャンバースライド（ファルコン）上に約3×10３細胞／ウェルとなるよう播種し、播種後２４時間培養した。２４時間後、培養液中に、化合物Ａ（最終濃度０．１ｎＭ（０．０２６ｎｇ／ｍＬ））、陽性対照としてＮＧＦ（最終濃度１μｇ／ｍＬ）、またはコントロールとしてＰＢＳをそれぞれ添加した。添加後、さらに４８時間培養した。培養液は、ＮｅｕｒｏｂａｓａｌにＢ２７サプリメント（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）（最終濃度 ２％（ｖ／ｖ））およびＬ−グルタミン（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）（最終濃度１ｍＭ）およびシトシン−１−β−Ｄ（＋）アラビノフラノシド（最終濃度１０μＭ）を含むものを用いた。培養条件は、二酸化炭素濃度５％、空気濃度９５％、湿度１００％、温度３７℃とした。
２）染色
細胞の染色は試験例１と同様の方法で行った。
４．試験結果
結果を図２に示す。図２は、抗ニューロフィラメント抗体で染色された網膜神経細胞の写真である。化合物Ａを添加した細胞で顕著な神経突起の形成が確認された。【００３９】
製剤例１  点眼剤
化合物Ａ                                                ０．０２６μｇ
ポリソルベート８０                                        ０．１ｇ
リン酸二水素ナトリウム                                  ０．１ｇ
塩化ナトリウム                                            ０．９ｇ
塩化ベンザルコニウム                                  ０．００５ｇ
水酸化ナトリウム                                              適量
滅菌精製水                                                    適量
全量  １００ｍＬ（ｐＨ７．０）
以上を混和して点眼剤とする。【００４０】
製剤例２  眼軟膏剤
化合物Ａ                                                        １μｇ
精製ラノリン                                                    １０ｇ
白色ワセリン                                                  １００ｇ
以上を混和して眼軟膏剤とする。【００４１】
試験例３  培養ウサギ三叉神経細胞の神経突起形成促進作用
１．使用動物
オリエンタル酵母工業株式会社より購入した日本白色種ウサギ（生後４日目、オス）を使用した。
２．被験物質
化合物Ａを使用した。
３．試験方法
Ａ)細胞培養
ウサギ三叉神経細胞の単離は、Chanらの報告にしたがって行った（Kwan Y. Chan and Richard H. Haschke. Exp. Eye Res. 41: 687-699, 1985）。すなわち、ウサギに、ペントバルビタールナトリウム注射液（大日本住友製薬）麻酔下で、生理食塩水で心臓灌流を施した後、三叉神経節を切り出した。切り出した三叉神経節をＨａｎｋｓ’ｂａｌａｎｃｅｄ  ｓａｌｔ  ｓｏｌｕｔｉｏｎ（HBSS、Invitrogen）で洗浄後、３００μｇ／ｍＬのコラゲナーゼ・ディスパーゼ（Roche）で３７℃、４０分間処理し、１２０×ｇで５分間遠心分離して細胞を回収した。最終濃度０．１％ＥＤＴＡを添加したＮｅｕｒｏｂａｓａｌ（登録商標、Invitrogen）で酵素反応を停止させ、培養液で懸濁後、１２０×ｇで５分間遠心分離し、三叉神経細胞を調製した。【００４２】
調製した細胞を、ポリリジン／ラミニンコーティング済みの８ウェルチャンバースライド（ファルコン）上に約３×１０３細胞／ウェルとなるよう播種し、播種後２４時間培養した。２４時間後、培養液中に化合物Ａ（最終濃度:０．００１ｎＭ(０．０００２６ｎｇ／ｍＬ)、０．１ｎＭ(０．０２６ｎｇ／ｍＬ)、１０ｎＭ(２．６ｎｇ／ｍＬ)、１０００ｎＭ(２６０ｎｇ／ｍＬ))、陽性対照としてＮＧＦ（最終濃度１μｇ／ｍＬ）、またはコントロールとしてＰＢＳをそれぞれ添加した。添加後、さらに４８時間培養した。
培養液は、ＮｅｕｒｏｂａｓａｌにＢ２７サプリメント（Invitrogen）（最終濃度２％(ｖ／ｖ)）およびＬ−グルタミン（Invitrogen）（最終濃度１ｍＭ）およびシトシン−１−β−Ｄ(＋)アラビノフラノシド（最終濃度１０μＭ）を含むものを用いた。培養条件は、二酸化炭素濃度５％、空気濃度９５％、湿度１００％、温度３７℃とした。【００４３】
Ｂ）染色
４８時間培養後のウサギ三叉神経細胞を、１０％中性緩衝ホルムアルデヒド液に、室温にて２０分浸して固定した。神経細胞体および神経突起を構成するニューロフィラメントを特異的に認識する抗ニューロフィラメント２００抗体（シグマアルドリッチ）を用いて固定した標本を蛍光染色し、染色された細胞を蛍光顕微鏡（オリンパス）下で観察した。染色された細胞像は蛍光顕微鏡からコンピュータに画像として取り込んだ。【００４４】
Ｃ）画像解析
培養ウサギ三叉神経細胞の神経突起形成の程度を評価するために、コンピュータに取り込んだ染色細胞の画像において、細胞体直径および神経突起長を画像解析ソフト（Image-Pro Plus Ver.4.5.1、メディアサイバネティクス）を用いて計測した。細胞体直径の２倍以上長さの神経突起を有する細胞を神経突起形成細胞として、その細胞数の全細胞数に占める比率（％）を算出した（Otori Y, Wei JY, Barnstable CJ. Invest. Ophthalmol Vis Sci (1998) 39, 972-981）。【００４５】
４．試験結果
表１に細胞数中に占める神経突起形成細胞の比率（％）を示す。０．００１ｎＭ、０．１ｎＭ、１０ｎＭ、１０００ｎＭの化合物Ａ添加群の神経突起形成細胞の比率（％）は、いずれもコントロールに対して高かった。また、統計学的解析の結果、０．１ｎＭ化合物Ａ、ＮＧＦ添加群はいずれもコントロール群に対して有意な突起形成促進作用が認められた（平均値±標準偏差、*:ｐ＜０．０５；Dunnettの多重比較検定）。
以上の結果より、化合物Ａは０．１ｎＭを至適濃度とし、一般的にポジティブコントロールとして用いられるＮＧＦ（１μｇ／ｍＬ）よりも低濃度で三叉神経細胞の神経突起形成促進作用を示した。【００４６】
【表１】
2008133198.tif 000002
【００４７】
試験例４  ウサギ角膜知覚低下に対する改善効果
１．使用動物
北山ラベスより購入した体重２．５〜３．０ｋｇの日本白色種ウサギを使用した。動物は、入荷後から試験終了日まで、室温２３±３℃、湿度５５±１０％、１２時間照明（８：００点灯、２０：００消灯）に設定された飼育室内で１ケージあたり１匹収容して飼育した。動物には固型飼料（ラボＲストック、日本農産工業）を１日１００〜１２０ｇ制限給餌し、水道水を自由に摂取させた。
２．被験物質
被験物質として化合物Ａを用いた。被験物質は以下に示す基剤に１ｎＭ（０．００００００２６％）となるように溶解し点眼液を調製した。対照群には被験物質を含まない下記基剤を点眼投与した。
基剤処方：
リン酸二水素ナトリウムニ水和物            ０．１ｇ
塩化ナトリウム                                  ０．９ｇ
水酸化ナトリウム                                適量
精製水                                          適量
１００ｍＬ（ｐＨ７．０）【００４８】
３．試験方法
１）群分け
フラップ作製の前日に動物の前眼部肉眼観察とフルオレセインによる角膜染色斑の観察を行ない、それらに異常が認められないウサギを選定し、コシュ・ボネ角膜知覚計（Luneau社製）を用いて角膜知覚の初期値を測定した。角膜知覚の初期値が均一になるようにＳＡＳ前臨床パッケージ（Version 5.0、SASインスティテュートジャパン）を用いて単変数完全無作為化割付け手法により群分けした。
２）角膜フラップの作製
動物にセラクタール（2％キシラジン：バイエルジャパン）とケタラール（５％ケタミン筋注用：第一三共）の混合液（０．５：１）を筋肉内注射（０．９ｍＬ／ｋｇ）することで全身麻酔を施した。眼球を十分に露出したのち、ウサギ眼用アダプターを装着したマイクロケラトーム（MK-2000、ニデック社）を用い（Arbelaez MC. et al. J. Refract Surg. 2002 May-Jun; 18（3 Suppl）:S357−60）、１３０μｍ厚で直径８．５ｍｍの角膜フラップを作製した。顕微鏡下でフラップを確実に元の位置に戻し、フラップの位置が動かないように動物を観察しながら麻酔から覚醒させた。覚醒後は０．３％ガチフロキサシン点眼液（ガチフロ点眼液、千寿製薬）を投与した。
３）投与
フラップ作製翌日にフラップの剥がれを認めない個体に被験物質点眼液または基剤を６週間点眼投与した。点眼投与は、手術眼に対して２時間間隔で１日４回、マイクロピペットを用いて１回あたり５０μＬずつとした。手術後６日間は被験物質点眼液または基剤の点眼の前に、０．３％ガチフロキサシン点眼液を投与した。
４）角膜知覚測定
コシュ・ボネ角膜知覚計を用いて、手術後１週、２週、４週または６週の角膜知覚を測定した。なお、測定者には測定するウサギがいずれの投与群に属するか分からないよう、ブラインドで測定した。【００４９】
５．試験結果
図３は角膜フラップ作製後の角膜知覚の経時的推移を示した。基剤点眼群は、角膜フラップ作製１週後で全個体が知覚を消失した後、６週後にかけて経時的に知覚が回復した。それに対し、薬液点眼群も角膜フラップ作製1週後で全個体が知覚を消失したが、４週後以降は基剤点眼群よりも知覚が回復する傾向を示した。また、角膜フラップ作製後初めて知覚が確認できた時期（知覚消失に対して知覚の測定値が５ｍｍフィラメント長以上を示した最初の時期）を比較したところ、基剤点眼群で平均５．５週だったのに対し、薬液点眼群では平均４．１週だった。以上のことより、薬液点眼群の方がフラップ作製後の角膜知覚低下に対し、早期回復することがわかった。
【産業上の利用可能性】
【００５０】
本発明の医薬は、１）角膜神経の損傷によって引き起こされる角膜知覚低下の改善、および２）角膜上皮障害またはドライアイに伴う角膜知覚低下の改善に有用である。また、本発明の医薬は、視覚機能障害の改善に有用である。【００５１】
本出願は、日本で出願された特願２００７−１１２２４８（出願日：２００７年４月２０日）を基礎としており、その内容は本明細書に全て包含されるものである。
【図３】
2008133198.tif 000003
【図１】
2008133198.tif 000004
【図２】
2008133198.tif 000005
【国際調査報告】
2008133198.tif 000006
2008133198.tif 000007
2008133198.tif 000008
2008133198.tif 000009
2008133198.tif 000010
2008133198.tif 000011