(57)【要約】  抗原性物質を封入した、連続した複数個のアルギニン残基を含むペプチドを表面に有するリポソーム。本発明のリポソームは、抗原提示細胞に対してＭＨＣクラスＩ分子を介した抗原提示を選択的に行わせることが出来、細胞性免疫を特異的に誘導することができる。また本発明のリポソームは、成熟化した樹状細胞に対しても抗原提示を誘起することができる。【特許請求の範囲】
【請求項１】
抗原性物質を封入した、連続した複数個のアルギニン残基を含むペプチドを表面に有するリポソーム。
【請求項２】
前記ペプチドが連続した４〜２０個のアルギニン残基を含む、請求項１に記載のリポソーム。
【請求項３】
前記ペプチドがアルギニン残基のみからなる、請求項１又は２記載のリポソーム。
【請求項４】
前記ペプチドが疎水性基又は疎水性化合物で修飾されており、前記疎水性基又は前記疎水性化合物が脂質二重層に挿入され、前記ペプチドが前記脂質二重層から露出している請求項１〜３のいずれかに記載のリポソーム。
【請求項５】
前疎水性基がステアリル基である請求項４に記載のリポソーム。
【請求項６】
請求項１〜５の何れかに記載のリポソームを有効成分とする、細胞性免疫誘導剤。
【請求項７】
抗原性物質が腫瘍抗原である、請求項６に記載の細胞性免疫誘導剤。
【請求項８】
悪性新生物を治療するための、請求項７に記載の細胞性免疫誘導剤。
【請求項９】
腫瘍抗原を封入した請求項１〜５のいずれかに記載のリポソームを有効成分とする、悪性新生物治療用ワクチン。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、細胞性免疫を誘導することのできるリポソームに関し、該リポソームは各種の感染症や癌に対するワクチンとなり得る。
【背景技術】
【０００２】
ウイルスやガンなどに対する免疫治療、すなわち患者個体に対してウイルス感染細胞や癌細胞を異物として認識させ排除させるためには、細胞性免疫を誘起することが重要である。この細胞性免疫において、ウイルス感染細胞や癌細胞を特異的に認識し、選択的に殺傷する細胞は、抗原特異的な細胞傷害性Ｔ細胞（ＣＴＬと呼ばれる）である。ＣＴＬは、ウイルス感染細胞や癌細胞を、Ｔ細胞レセプターなどを介して特異的に認識して攻撃する。【０００３】
ＣＴＬのＴ細胞レセプターは、ウイルス感染細胞や癌細胞の表面に発現されている特異抗原を直接認識して活性化されるのではなく、マクロファージ、樹状細胞といった抗原提示細胞が提示するＭＨＣクラスＩ分子／抗原特異的オリゴペプチド複合体によって活性化される。具体的には、抗原提示細胞に取り込まれた特異抗原は細胞内のプロテアーゼ複合体（プロテアゾームと呼ばれる）により分解されてオリゴペプチドとなり、その一部である９〜１０アミノ酸残基程度のオリゴペプチドが小胞体膜に存在する輸送タンパク質（Ｔｒａｎｓｐｏｒｔｅｒ ｉｎ ａｎｔｉｇｅｎ ｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ、ＴＡＰ）により細胞質から小胞体膜内に輸送され、さらにＭＨＣクラスＩ分子との親和性の高い抗原特異的オリゴペプチドがＭＨＣクラスＩ分子と結合して、ＭＨＣクラスＩ分子／抗原特異的オリゴペプチドとして抗原提示細胞表面に提示される。【０００４】
従って、癌、ウイルス疾患または自己免疫疾患の治療または予防を目的として患者の細胞性免疫を誘導するためには、特異抗原を発現する癌細胞もしくはウイルス感染細胞それ自身で生体を免疫するか、または特異抗原またはそれ由来のオリゴペプチドを投与して、抗原提示細胞内での上記の経路を経て提示されるＭＨＣクラスＩ分子／抗原特異的オリゴペプチド複合体を発現させて、抗原特異的なＣＴＬを活性化することが重要である。しかし、特異抗原は、抗原提示細胞に取り込まれた後、ＭＨＣクラスＩI分子／抗原特異的オリゴペプチド複合体として抗原提示細胞の表面に提示され、体液性免疫反応を誘起するのが通常である。【０００５】
そのため、ＭＨＣクラスＩ分子／抗原特異的オリゴペプチドを抗原提示細胞表面に提示させるためには、菌体抽出成分やマンナン被覆リポソーム（特許文献１）などのアジュバントで抗原提示細胞を処理して、抗原のクロスプレゼンテーションを誘導する方法が一般的である。また、抗原特異的オリゴペプチドをインビトロ実験で特定し、これを直接投与して細胞性免疫を誘導する方法も行われている。【０００６】
しかしこの方法には、菌体抽出成分などのアジュバント自体が毒性を有するという問題を伴う他、クロスプレゼンテーションは、抗原提示細胞をアジュバント処理することで、もともとＭＨＣクラスＩＩ分子／抗原特異的オリゴペプチド複合体の提示を、無理やりＭＨＣクラスＩ分子／抗原特異的オリゴペプチドの提示に変更させる方法であることから、抗原提示をＭＨＣクラスＩＩ分子からＭＨＣクラスＩ分子に完全に切り替えることは困難である。実際に、ｐＨ感受性リポソームや膜融合性リポソームなどの従来のリポソームを用いて抗原提示細胞内に抗原を送達しても、ＭＨＣクラスＩI分子を介した抗原提示が誘起され、ＭＨＣクラスＩ分子を介した抗原提示のみを選択的に誘起することは困難である。【０００７】
また、抗原特異的オリゴペプチドの投与では、逆に抗原特異的な免疫抑制が引き起こされる、あるいは十分かつ持続した細胞免疫応答が得にくい、等の問題を伴う（非特許文献１）。【０００８】
さらに、様々な刺激によって成熟化した抗原提示細胞は、未成熟状態の抗原提示細胞に比べて著しく高い抗原提示能力（断片化抗原の細胞表面提示効率および提示期間）を有するが、一方で細胞内への抗原物質の取り込み機構が遮断されてしまう。成熟化した抗原提示細胞に新たに抗原を導入することは、より高効率かつ持続的に細胞性免疫を誘導できると期待されるが、その様な技術はまだ報告されていない。【０００９】
本発明者らは、細胞の核内にＤＮＡ等を運搬するという細胞性免疫誘導とは全く別の目的の下に、連続した複数個のアルギニン残基を含むペプチドを表面に有するリポソームを開発した（特許文献２）。特許文献２には、当該リポソームの細胞性免疫誘導能については全く記載されていない。
【非特許文献１】Ｒｏｓｅｎｂｅｒｇら、Ｎａｔ． Ｍｅｄ．、１９９８年、第４巻、第３２１−３２７頁
【特許文献１】国際特許出願公開第ＷＯ９２／４８８７号パンフレット
【特許文献２】国際特許出願公開第ＷＯ２００５／０３２５９３号パンフレット
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【００１０】
本発明は、菌体抽出成分などのアジュバントの利用を必要とせず、選択的に細胞性免疫を誘導することのできる新たな医薬を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【００１１】
本発明者らは、意外なことに、連続した複数個のアルギニン残基を含むペプチドを表面に有するリポソームで抗原性物質を封入し、これを投与することで、抗原提示細胞に対してＭＨＣクラスＩ分子特異的な抗原提示を促し、細胞性免疫を選択的に誘導することができることを見いだし、下記の各発明を完成した。【００１２】
（１）抗原性物質を封入した、連続した複数個のアルギニン残基を含むペプチドを表面に有するリポソーム。【００１３】
（２）前記ペプチドが連続した４〜２０個のアルギニン残基を含む、（１）に記載のリポソーム。【００１４】
（３）前記ペプチドがアルギニン残基のみからなる、（１）又は（２）記載のリポソーム。【００１５】
（４）前記ペプチドが疎水性基又は疎水性化合物で修飾されており、前記疎水性基又は前記疎水性化合物が脂質二重層に挿入され、前記ペプチドが前記脂質二重層から露出している（１）〜（３）のいずれかに記載のリポソーム。【００１６】
（５）前記疎水性基がステアリル基である（４）に記載のリポソーム。【００１７】
（６）（１）〜（５）の何れかに記載のリポソームを有効成分とする、細胞性免疫誘導剤。【００１８】
（７）抗原性物質が腫瘍抗原である、（６）に記載の細胞性免疫誘導剤。【００１９】
（８）悪性新生物を治療するための、（７）に記載の細胞性免疫誘導剤。【００２０】
（９）腫瘍抗原を封入した（１）〜（５）のいずれかに記載のリポソームを有効成分とする、悪性新生物治療用ワクチン。
【図面の簡単な説明】
【００２１】
【図１】本発明のリポソームによって、選択的にＭＨＣクラスＩ分子を介した抗原提示が誘起されることを示すグラフである。
【図２】本発明のリポソームの取込能、及びＭＨＣクラスＩ分子を介した抗原提示を誘起する作用を、オクタリジン（Ｋ８）リポソームと比較したグラフである。
【図３ａ】マクロピノサイトーシス阻害剤であるアミロライドによって、本発明のリポソームの取込が阻害されることを示す顕微鏡写真である。左の写真が阻害剤無し、右の写真が阻害剤ありの結果を示す。
【図３ｂ】マクロピノサイトーシス阻害剤であるアミロライドによって、Ｋ８リポソームの取込が阻害されることを示す顕微鏡写真である。左の写真が阻害剤無し、右の写真が阻害剤ありの結果を示す。
【図４】本発明のリポソームに封入された物質が細胞質に放出されていることを示す顕微鏡写真である。左がオクタアルギニンペプチド（Ｒ８）リポソーム、右がＫ８リポソームを示す。
【図５】本発明のリポソームが成熟化した樹状細胞（ＤＣ）に取り込まれることを示すグラフである。
【図６】本発明のリポソームが成熟化したＤＣに対しても、ＭＨＣクラスＩ分子を介した抗原提示を誘起することを示すグラフである。
【図７】本発明のリポソームが投与されたマウスにおける細胞傷害活性の上昇を示すグラフである。
【図８】腫瘍抗原を封入した本発明のリポソームが投与されたマウス（ｎ＝４）において、移植された腫瘍細胞の増殖が抑制されることを示すグラフである。図中、■はリポソーム未投与コントロールを、○は腫瘍抗原が封入されていないＲ８リポソーム投与群を、●は腫瘍抗原が封入されたＲ８リポソーム投与群を、それぞれ表す。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２２】
本発明のリポソームは、抗原性物質を封入した、連続した複数個のアルギニン残基を含むペプチド（以下、ポリアルギニンペプチドと表す）を表面に有するリポソームである。【００２３】
本発明におけるポリアルギニンペプチドを表面に有するリポソームは、前記特許文献２に記載されているリポソームである。その形態は、脂質二重層膜構造を有する閉鎖小胞である限り、脂質二重層の数は特に限定されるものではなく、多重膜リポソーム（ＭＬＶ）であってもよいし、ＳＵＶ（ｓｍａｌｌ ｕｎｉｌａｍｅｌｌａ ｖｅｓｉｃｌｅ）、ＬＵＶ（ｌａｒｇｅ ｕｎｉｌａｍｅｌｌａ ｖｅｓｉｃｌｅ）、ＧＵＶ（ｇｉａｎｔ ｕｎｉｌａｍｅｌｌａ ｖｅｓｉｃｌｅ）等の一枚膜リポソームであってもよい。また、本発明のリポソームのサイズは特に限定されるものではないが、直径５０〜８００ｎｍであることが好ましく、直径８０〜１５０ｎｍであることがさらに好ましい。【００２４】
本発明のリポソームにおいて、脂質二重層を構成する脂質の種類は特に限定されるものではなく、その具体例としては、ホスファチジルコリン（例えば、ジオレオイルホスファチジルコリン、ジラウロイルホスファチジルコリン、ジミリストイルホスファチジルコリン、ジパルミトイルホスファチジルコリン、ジステアロイルホスファチジルコリン等）、ホスファチジルグリセロール（例えば、ジオレオイルホスファチジルグリセロール、ジラウロイルホスファチジルグリセロール、ジミリストイルホスファチジルグリセロール、ジパルミトイルホスファチジルグリセロール、ジステアロイルホスファチジグリセロール）、ホスファチジルエタノールアミン（例えば、ジオレオイルホスファチジルエタノールアミン、ジラウロイルホスファチジルエタノールアミン、ジミリストイルホスファチジルエタノールアミン、ジパルミトイルホスファチジルエタノールアミン、ジステアロイルホスファチジエタノールアミン）、ホスファチジルセリン、ホスファチジルイノシトール、ホスファチジン酸、カルジオリピン等のリン脂質又はこれらの水素添加物；スフィンゴミエリン、ガングリオシド等の糖脂質が挙げられ、これらのうち１種又は２種以上を使用することができる。リン脂質は、卵黄、大豆その他の動植物に由来する天然脂質（例えば、卵黄レシチン、大豆レシチン等）、合成脂質又は半合成脂質のいずれであってもよい。【００２５】
脂質二重層には、脂質二重層を物理的又は化学的に安定させたり、膜の流動性を調節したりするために、例えば、コレステロール、コレステロールコハク酸、ラノステロール、ジヒドロラノステロール、デスモステロール、ジヒドロコレステロール等の動物由来のステロール；スチグマステロール、シトステロール、カンペステロール、ブラシカステロール等の植物由来のステロール（フィトステロール）；チモステロール、エルゴステロール等の微生物由来のステロール；グリセロール、シュクロース等の糖類；トリオレイン、トリオクタノイン等のグリセリン脂肪酸エステルのうち、１種又は２種以上を含有させることができる。その含有量は特に限定されるものでないが、脂質二重層を構成する総脂質に対して５〜４０％（モル比）であることが好ましく、１０〜３０％（モル比）であることがさらに好ましい。【００２６】
脂質二重層には、トコフェロール、没食子酸プロピル、パルミチン酸アスコルビル、ブチル化ヒドロキシトルエン等の抗酸化剤、ステアリルアミン、オレイルアミン等の正荷電を付与する荷電物質、ジセチルホスフェート等の負電荷を付与する荷電物質、膜表在性タンパク質、膜内在性タンパク質等の膜タンパク質を含有させることができ、その含有量は適宜調節することができる。【００２７】
本発明のリポソームは、ポリアルギニンペプチドを表面に露出している。ここにいう「露出」は、ペプチドあるいはペプチド部分が脂質二重層に埋包されていない状態を意味する。またポリアルギニンペプチドは、疎水性基又は疎水性化合物で修飾されている場合もいない場合も含め、脂質二重層の外表面に露出して存在していることが好ましい。また、多重膜からなるリポソームの場合、ポリアルギニンペプチドは各脂質膜の外表面に露出して存在することが好ましい。ただしいずれの場合も、ポリアルギニンペプチドが脂質膜の内側にも露出して存在することを妨げない。【００２８】
ポリアルギニンペプチドにおける連続したアルギニン残基の個数は、複数個である限り特に限定されるものではないが、通常４〜２０個、好ましくは６〜１２個、さらに好ましくは７〜１０個である。ポリアルギニンペプチド全体を構成するアミノ酸残基の個数は特に限定されるものではないが、通常４〜３５個、好ましくは６〜３０個、さらに好ましくは８〜２３個である。ポリアルギニンペプチドは、連続した複数個のアルギニン残基のＣ末端及び／又はＮ末端に付加された任意のアミノ酸配列を含んでいてもよいが、アルギニン残基のみからなることが好ましい。もっとも好ましいポリアルギニンペプチドは、８個のアルギニン残基のみからなるオクタアルギニンペプチド（Ｒ８）である。【００２９】
連続した複数個のアルギニン残基のＣ末端又はＮ末端に付加され得るアミノ酸配列は、剛直性を有するアミノ酸配列（例えば、ポリプロリン）であることが好ましい。ポリプロリンは、柔らかくて不規則な形をとっているポリエチレングリコール（ＰＥＧ）と異なり、直線的で、ある程度の堅さを保持している。【００３０】
本発明のリポソームの表面に存在するポリアルギニンペプチドの量は、脂質二重層を構成する総脂質に対して通常０．１〜３０％（モル比）、好ましくは１〜２５％（モル比）、さらに好ましくは２〜２０％（モル比）である。本発明のリポソームの表面に存在するポリアルギニンペプチドの量が、脂質二重層を構成する総脂質に対して２％（モル比）未満、好ましくは１．５％（モル比）未満、さらに好ましくは１％（モル比）未満であると、本発明のリポソームは、主にエンドサイトーシスを介して細胞内へ移行することができる。このときのポリアルギニンペプチド量の下限値は、脂質二重層を構成する総脂質に対して通常０．１％（モル比）、好ましくは０．５％（モル比）、さらに好ましくは０．７％（モル比）である。本発明のリポソームの表面に存在するポリアルギニンペプチドの量が、脂質二重層を構成する総脂質に対して２％（モル比）以上、好ましくは３％（モル比）以上、さらに好ましくは４％（モル比）以上であると、本発明のリポソームは、主にマクロピノサイトーシスを介して細胞内へ移行することができる。このときのポリアルギニンペプチド量の上限値は、脂質二重層を構成する総脂質に対して通常３０％（モル比）、好ましくは２５％（モル比）、さらに好ましくは２０％（モル比）である。【００３１】
本発明のリポソームの細胞内移行経路がエンドサイトーシスに依存する場合、脂質二重層はその主要成分としてカチオン性脂質を含む必要があるが、本発明のリポソームの細胞内移行経路は、エンドサイトーシスにのみ依存するわけではないので、脂質二重層にカチオン性脂質が含まれている必要はない。すなわち、本発明のリポソームの脂質二重層は、カチオン性脂質及び非カチオン性脂質のいずれか一方で構成されていてもよいし、両方で構成されていてもよい。但し、カチオン性脂質は細胞毒性を有するので、本発明のリポソームの細胞毒性を低減させる点からは、脂質二重層に含まれるカチオン性脂質の量を出来る限り少なくすることが好ましく、脂質二重層を構成する総脂質に対するカチオン性脂質の割合は０〜４０％（モル比）であることが好ましく、０〜２０％（モル比）であることがさらに好ましい。【００３２】
カチオン性脂質としては、例えば、ジオクタデシルジメチルアンモニウムクロライド（ｄｉｏｃｔａｄｅｃｙｌｄｉｍｅｔｈｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ ｃｈｌｏｒｉｄｅ、ＤＯＤＡＣ）、Ｎ−（２，３−オレイルオキシ）プロピル−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリメチルアンモニウム（Ｎ−（２，３−ｄｉｏｌｅｙｌｏｘｙ）ｐｒｏｐｙｌ−Ｎ，Ｎ，Ｎ−ｔｒｉｍｅｔｈｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ、ＤＯＴＭＡ）、ジドデシルアンモニウムブロミド（ｄｉｄｏｄｅｃｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ ｂｒｏｍｉｄｅ、ＤＤＡＢ）、１，２−ジオレイルオキシ−３−トリメチルアンモニウムプロパン（１，２−ｄｉｏｌｅｏｙｌｏｘｙ−３−ｔｒｉｍｅｔｈｙｌａｍｍｏｎｉｏ ｐｒｏｐａｎｅ、ＤＯＴＡＰ）、３β−Ｎ−（Ｎ’，Ｎ’−ジメチルアミノエタン）カルバモールコレステロール（３β−Ｎ−（Ｎ’，Ｎ’，−ｄｉｍｅｔｈｙｌ−ａｍｉｎｏｅｔｈａｎｅ）−ｃａｒｂａｍｏｌ ｃｈｏｌｅｓｔｅｒｏｌ、ＤＣ−Ｃｈｏｌ）、１，２−ジミリストイルオキシプロピル−３−ジメチルヒドロキシエチルアンモニウム（１，２−ｄｉｍｙｒｉｓｔｏｙｌｏｘｙｐｒｏｐｙｌ−３−ｄｉｍｅｔｈｙｌｈｙｄｒｏｘｙｅｔｈｙｌ ａｍｍｏｎｉｕｍ、ＤＭＲＩＥ）、２，３−ジオレイルオキシ−Ｎ−［２（スペルミンカルボキサミド）エチル］−Ｎ，Ｎ−ジメチル−１−プロパンアンモニウムトリフルオロアセテート（２，３−ｄｉｏｌｅｙｌｏｘｙ−Ｎ−［２（ｓｐｅｒｍｉｎｅｃａｒｂｏｘａｍｉｄｏ）ｅｔｈｙｌ］−Ｎ，Ｎ−ｄｉｍｅｔｈｙｌ−１−ｐｒｏｐａｎａｍｉｎｕｍ ｔｒｉｆｌｕｏｒｏａｃｅｔａｔｅ、ＤＯＳＰＡ）等が挙げられる。【００３３】
「非カチオン性脂質」とは、中性脂質又はアニオン性脂質を意味し、中性脂質としては、例えば、ジアシルホスファチジルコリン、ジアシルホスファチジルエタノールアミン、コレステロール、セラミド、スフィンゴミエリン、セファリン、セレブロシド等が挙げられ、アニオン性脂質としては、例えば、カルジオリピン、ジアシルホスファチジルセリン、ジアシルホスファチジン酸、Ｎ−スクシニルホスファチジルエタノールアミン（Ｎ−スクシニルＰＥ）、ホスファチジン酸、ホスファチジルイノシトール、ホスファチジルグリセロール、ホスファチジルエチレングリコール、コレステロールコハク酸等が挙げられる。【００３４】
本発明のリポソームの好ましい態様として、ポリアルギニンペプチドが疎水性基又は疎水性化合物で修飾されており、疎水性基又は疎水性化合物が脂質二重層に挿入され、ポリアルギニンペプチドが脂質二重層から露出しているリポソームを例示することができる。ここにいう「ポリアルギニンペプチドが脂質二重層から露出している」には、ポリアルギニンペプチドが脂質二重層の外表面又は内表面のいずれか一方から露出している場合、両方から露出している場合が含まれる。【００３５】
疎水性基又は疎水性化合物は、脂質二重層に挿入され得る限り特に限定されるものでない。疎水性基としては、例えば、ステアリル基等の飽和又は不飽和の脂肪酸基、コレステロール基又はその誘導体等が挙げられるが、これらのうち特に炭素数１０〜２０の脂肪酸基（例えば、パルミトイル基、オレイル基、ステアリル基、アラキドイル基等）が好ましい。また、疎水性化合物としては、例えば、上記に例示したリン脂質、糖脂質又はステロール、長鎖脂肪族アルコール（例えば、ホスファチジルエタノールアミン、コレステロール等）、ポリオキシプロピレンアルキル、グリセリン脂肪酸エステル等が挙げられる。【００３６】
本発明のリポソームは、例えば、水和法、超音波処理法、エタノール注入法、エーテル注入法、逆相蒸発法、界面活性剤法、凍結・融解法等の公知の方法を用いて作製することができる。例えば水和法の場合、脂質二重層の構成成分である脂質と、疎水性基又は疎水性化合物で修飾されたポリアルギニンペプチドとを有機溶剤に溶解した後、有機溶剤を蒸発除去することにより脂質膜を得た後、脂質膜を水和させ、攪拌又は超音波処理することにより、ポリアルギニンペプチドを表面に有するリポソームを製造することができる。また、脂質二重層の構成成分である脂質を有機溶剤に溶解した後、有機溶剤を蒸発除去することにより脂質膜を得、この脂質膜を水和させ、攪拌又は超音波処理することによりリポソームを製造する。次いで、このリポソームの外液に、疎水性基又は疎水性化合物で修飾されたポリアルギニンペプチドを添加することにより、リポソームの表面にポリアルギニンペプチドを導入することができる。【００３７】
上記の方法において、有機溶媒として、例えば、ペンタン、ヘキサン、ヘプタン、シクロヘキサン等の炭化水素類、塩化メチレン、クロロホルム等のハロゲン化炭化水素類、ベンゼン、トルエン等の芳香族炭化水素類、メタノール、エタノール等の低級アルコール類、酢酸メチル、酢酸エチル等のエステル類、アセトン等のケトン類等を、単独で又は２種以上を組み合わせて使用することができる。【００３８】
また、所定のポアサイズのフィルターを通過させることにより、一定の粒度分布を持ったリポソームを得ることができる。また、公知の方法に従って、多重膜リポソームから一枚膜リポソームへの転換、一枚膜リポソームから多重膜リポソームへの転換を行うことができる。【００３９】
上記のリポソームに封入される抗原性物質は、本発明のリポソームを利用して誘導される細胞性免疫のターゲットとなる抗原性物質を意味する。好ましくは抗原性タンパク質であり、種々の腫瘍抗原、ウイルスタンパク質、感染性微生物由来のタンパク質、毒素タンパク質、病原性タンパク質などを好適な例として挙げることができる。【００４０】
抗原性物質が水溶性である場合には、リポソームの製造にあたり脂質膜を水和する際に使用される水性溶媒に抗原性物質を添加することにより、リポソーム内部の水相に抗原性物質を封入することができる。また、抗原性物質が脂溶性である場合には、リポソームの製造にあたり使用される有機溶剤又は界面活性剤溶液に抗原性物質を添加することにより、リポソームの脂質二重層に抗原性物質を封入することができる。【００４１】
本発明のリポソームは、例えば、分散液の状態で使用することができる。分散溶媒としては、例えば、生理食塩水、リン酸緩衝液，クエン緩衝液，酢酸緩衝液等の緩衝液を使用することができる。分散液には、例えば、糖類、多価アルコール、水溶性高分子、非イオン界面活性剤、抗酸化剤、ｐＨ調節剤、水和促進剤等の添加剤を添加して使用してもよい。【００４２】
本発明のリポソームは、分散液を乾燥（例えば、凍結乾燥、噴霧乾燥等）させた状態で使用することもできる。乾燥させたリポソームは、生理食塩水、リン酸緩衝液，クエン緩衝液，酢酸緩衝液等の緩衝液を加えて分散液とすることができる。【００４３】
本発明のリポソームは、ｉｎ ｖｉｖｏ及びｉｎ ｖｉｔｒｏのいずれにおいても使用することもできる。本発明のリポソームをｉｎ ｖｉｖｏにおいて使用する場合、投与経路としては、例えば、静脈、腹腔内、皮下、経鼻等の非経口投与が挙げられ、投与量及び投与回数は、リポソームに封入された抗原性物質の種類や量等に応じて適宜調節することができる。本発明のリポソームは、０〜４０℃という広範な温度域（効果的な温度域は４〜３７℃）において細胞内移行性を発揮することができるので、目的に応じた温度条件を設定することができる。本発明のリポソームの表面に存在するポリアルギニンペプチドの量が脂質二重層を構成する総脂質に対して２％（モル比）以上、好ましくは３％（モル比）以上、さらに好ましくは４％（モル比）以上であると、本発明のリポソームは、低温（通常４〜１０℃、好ましくは４〜６℃）において細胞内移行性を効果的に発揮することができる。このときのポリアルギニンペプチド量の上限値は、脂質二重層を構成する総脂質に対して通常３０％（モル比）、好ましくは２５％（モル比）、さらに好ましくは２０％（モル比）である。【００４４】
本発明のリポソームは、後の実施例に示すように、抗原提示細胞に対してＭＨＣクラスＩ分子を介した抗原提示のみを選択的に誘起することから、細胞性免疫誘導剤として使用することができる。ＭＨＣクラスＩ分子を介した抗原提示は、その後のヘルパーＴ細胞等が関与する細胞性免疫応答を誘導し、ＭＨＣクラスＩ分子と共に提示された抗原を有する細胞や異物等を免疫的に攻撃する。従って、本発明のリポソームを有効成分とする細胞性免疫誘導剤は、リポソームに封入された抗原性物質を有する細胞、例えば腫瘍細胞やウイルス等に感染した細胞、あるいは感染性微生物などに向けられた細胞性免疫応答を誘導し、リポソームを投与された生体の前記細胞等に対する免疫的攻撃能を高めることが出来る。【００４５】
また本発明のリポソームは、外来物質の取り込み機構が遮断されている成熟化した樹状細胞にも効率よく取り込まれる性質を有している。そのため、本発明のリポソームは、未成熟の抗原提示細胞のみならず、成熟化した抗原提示細胞に対しても、高効率かつ持続的な抗原提示を誘起させ、細胞性免疫を誘導することが出来る。
以下、非限定的な実施例を示して本発明をさらに詳細に説明する。
【実施例】
【００４６】
１）抗原性物質を封入したオクタアルギニン修飾リポソームの調製
１．１１６ｍｇ のＤＯＰＥ、９７．３４μｇのＥＰＣ及び０．２４ｍｇのＣＨＥＭＳ（ＤＯＰＥ：ＥＰＣ：ＣＨＥＭＳ＝７．５：１．５：１）を０．２ｍＬのクロロホルムに溶解した溶液をガラス試験管に分取し、窒素ガスを吹き付けて蒸発乾固させ、脂質膜を形成させた。疑似抗原性物質である卵白アルブミン（ＯＶＡ）１０００μｇを１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ緩衝液に溶解してＯＶＡ溶液１ｍｇを脂質膜に添加し、室温で１０分間放置することによって水和させた。水和後、超音波槽で超音波処理（数秒間）することにより、ＯＶＡが封入されたリポソームを調製した。このリポソームに２ｍｇ／ｍＬの ステアリル化オクタアルギニン溶液を総脂質の５モル％となるように添加し、室温で３０分間放置することにより、リポソームの表面にオクタアルギニン（Ｒ８）を導入して、本発明のリポソーム（Ｒ８リポソーム）を得た。また、ステアリル化オクタアルギニンの代わりにステアリル化オクタリジン溶液を用いて、リポソームの表面にオクタリジン（Ｋ８）ペプチドを有し、Ｒ８リポソームと同じ脂質組成（ＤＯＰＥ／ＣＨＥＭＳ／ＥＰＣ）からなるＯＶＡ封入リポソーム（Ｋ８リポソーム）を調製した。さらに、ＤＯＰＥに代えて等量のＤＯＴＡＰを用いてＲ８もＫ８も持たないコントロールリポソームを調製した。【００４７】
２）樹状細胞へのリポソームの取込と抗原提示能の確認
Ｃ５７ＢＬ／６マウスの骨髄から単離した樹状細胞（ＤＣ）（１×１０６cells）に、１）で調製したＲ８リポソーム、コントロールリポソーム及びリポソームに封入されていないＯＶＡ（それぞれ１．２μｇのＯＶＡに相当する量）をそれぞれ添加し、１０ｎｇ／ｍＬ ＧＭ−ＣＳＦを含む無血清培地で２時間培養後に、１０ｎｇ／ｍＬ ＧＭ−ＣＳＦを含む血清培地を１．５ｍＬ添加し、さらに３時間培養した。培養後、細胞を回収し、同じ組成の培地で２回洗浄した後、回収したＤＣ（２×１０５cells）とＴ細胞（Ｂ３Ｚ、ＯＴＩＩＺ、１×１０５cells）を９６ウェルプレートで混合（培地容量０．２ｍＬ）し、１５時間培養した。培養後、ＰＢＳで細胞を洗浄し、シャストリらの方法（Ｓｈａｓｔｒｉ Ｎ．、 Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ．ＵＳＡ、１９９２年、第８９巻、第６０２０−６０２４頁）に従い、塩化マグネシウムを含む４ｍＭ ＣＰＲＧ （ＮＰ−４０）を０．１ｍＬ添加して３７℃で４時間インキュベートした後、５９５ｎｍの吸光度を測定し、各リポソームを取り込んだＤＣ細胞の表面における、ＭＨＣクラスＩ分子及びＭＨＣクラスＩI分子の抗原提示効率を評価した（図１）。【００４８】
その結果、本発明のリポソームの場合にはＭＨＣクラスＩ分子を介した抗原提示のみが認められ、ＭＨＣクラスＩI分子を介した抗原提示は殆ど認められなかった（図１の各グラフの左）。一方、コントロールの場合には、ＭＨＣクラスＩ分子を介した弱い抗原提示と、ＭＨＣクラスＩI分子を介した強力な抗原提示が確認された。【００４９】
３）オクタアルギニンペプチドの特異性の確認
１．１１６ｍｇのＤＯＰＥ、０．３８ｍｇのＥＰＣ、０．６０８μｇのＣＨＥＭＳ（ＤＯＰＥ：ＥＰＣ：ＣＨＥＭＳ =７５：２３．７５：１．２５）を０．２ｍＬのクロロホルムに溶解した溶液２００μＬをガラス試験管に分取し、窒素ガスを吹き付けて蒸発乾固させ、脂質膜を形成させた。疑似抗原性物質である卵白アルブミン（ＯＶＡ）５ｍｇ／ｍＬ及び１０ｍＭスルホローダミンＢ（Ｓｕｌｆｏｒｈｏｄａｍｉｎｅ Ｂ）を含む１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ緩衝液０．２ｍＬを脂質膜に添加し、室温で１０分間放置することによって水和させた。水和後、超音波槽で超音波処理（数秒間）することにより、ＯＶＡが封入されたリポソームを調製した。このリポソームに２ｍｇ／ｍＬのステアリル化オクタアルギニン溶液又はステアリル化オクタリジンを総脂質量の５モル％になるように添加し、室温で３０分間放置することにより、リポソームの表面にオクタアルギニン（Ｒ８）又はオクタリジン（Ｋ８）を導入して、ＯＶＡ及びスルホローダミンＢを含むＲ８リポソームとＫ８リポソームを調製した。【００５０】
Ｃ５７ＢＬ／６マウスの骨髄から単離したＤＣを１０ｎｇ／ｍＬ ＧＭ−ＣＳＦを含む無血清培地に懸濁し、１．５×１０6 ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌのＤＣに対して、上記の各リポソームを、脂質濃度０、４０、６０、８０、１００μMになるように添加（最終容量は５００μL／ｗｅｌｌ）して、３７℃、５%ＣＯ2で２時間培養後、１０ｎｇ／ｍＬ ＧＭ−ＣＳＦを含む血清培地を１．５ｍＬ添加し、さらに３時間培養した。培養後、細胞を回収し、同じ組成の培地で２回洗浄した後、サンプルを抗原提示定量用と取り込み定量用に分けた。【００５１】
イ）リポソームの取り込み定量用サンプルを１．４ｍＭコール酸で処理し、４５０×ｇ、４℃、５分間遠心処理した沈殿を０．１％ｗ／ｖアジ化ナトリウム／ＰＢＳ １ｍＬに懸濁し、再度４５０×ｇ、４℃、５分間遠心処理して、１ｍＬの１．４ｍＭコール酸／ＰＢＳ１ｍＬを加えピペッティングし、４５０×ｇ、４℃、５分間の遠心処理を２回繰り返した。その後、１ｍＬ ＰＢＳで細胞を２回洗浄し、ＰＢＳに懸濁した後、ナイロンメッシュに通してＦＡＣＳチューブへ移し、ＦＡＣＳ測定を行った。【００５２】
ロ）抗原提示用サンプルを４５０×ｇ、４℃、５分間遠心処理して、血清培地に懸濁（１×１０6 ｃｅｌｌｓ／ｍＬ）した後、９６穴プレートに２×１０5 ｃｅｌｌｓのＤＣと１×１０5 ｃｅｌｌｓのＳ３Ｚを入れ、３７℃、５%ＣＯ2、１５時間共培養した。共培養したＤＣとＢ３Ｚの上清をマイクロチューブに回収し、各ウェルを２００μＬ ＰＢＳで洗浄し、洗液をマイクロチューブに回収した後、各ウェルにクロロフェノールレッドβ−Ｄ−ガラクトピラノシド（ＣＰＲＧ）緩衝液５０μＬを加えた。２０００ｒｐｍ、４℃、５分間遠心処理後、細胞をＣＰＲＧ緩衝液 ５０μＬで再懸濁し、遮光下で３７℃、４時間インキュベートして、５９５ｎｍの吸光度を測定した。【００５３】
以上の結果、両リポソームともＤＣへの取り込み量は同程度であったが、ＭＨＣクラスＩ分子を介した抗原提示は、Ｒ８リポソームにおいてのみ認められ、Ｋ８リポソームでは見られなかった（図２）。【００５４】
４）リポソームの取り込み経路の確認
１．２ｍｇのＥＰＣ、０．０２２ｍｇのコレステロール（Ｃｈｏｌ）、０．６０８μｇのＣＨＥＭＳ（ＥＰＣ：Ｃｈｏｌ：ＣＨＥＭＳ＝７５：２８．７５：１．２５）を０．２ｍＬのクロロホルムに溶解した溶液２００μＬをガラス試験管に分取し、窒素ガスを吹き付けて蒸発乾固させ、脂質膜を形成させた。１０ｍＭスルホローダミンＢを含む１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ緩衝液０．２ｍＬを脂質膜に添加し、室温で１０分間放置することによって水和させた。水和後、超音波槽で超音波処理（数秒間）することにより、スルホローダミンＢが封入されたリポソームを調製した。このリポソームに２ｍｇ／ｍＬのステアリル化オクタアルギニン溶液又はステアリル化オクタリジンを総脂質量の５モル％になるように添加し、室温で３０分間放置することにより、リポソームの表面にオクタアルギニン（Ｒ８）又はオクタリジン（Ｋ８）を導入して、スルホローダミンＢを含むＲ８リポソームとＫ８リポソームを調製した。【００５５】
Ｃ５７ＢＬ／６マウスの骨髄から単離したＤＣを１０ｎｇ／ｍＬ ＧＭ−ＣＳＦを含む無血清培地に懸濁し、１．０×１０6 ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌのＤＣに対して、終濃度２ｍＭとなるようにアミロライドを加え、最終容量を５００μＬに調節して３７℃、５％ＣＯ2、３０分間インキュベーション後、上記の各リポソームを脂質濃度５０μMになるように添加して、３７℃、５％ＣＯ2で１時間インキュベーションした。１０ｎｇ／ｍＬ ＧＭ−ＣＳＦを含む血清培地を１．０ｍＬ添加してピペッティングした後、細胞を遠心処理して回収し、さらにさらに１．４ｍＭコール酸／ＰＢＳを１ｍＬ加えピペッティングして室温で３分間放置し、ＰＢＳで洗浄後、ナイロンメッシュを通してＦＡＣＳチューブに移した。ＦＡＣＳ測定の後、細胞を３時間培養した。培養後、細胞を回収し、同じ組成の培地で２回洗浄した後、サンプルをＡｃｈｒｏｐｌａｎ ６．３ｘ／０．９ Ｗ Ｐｈ３を用いて顕微鏡観察した。【００５６】
マクロピノサイトーシス阻害剤であるアミロライドを共存させると、両リポソームともに、取りこみが有意に阻害された（図３ａ、図３ｂ各右写真）。このことから、Ｒ８修飾リポソームもＫ８修飾リポソームも同じ取り込みメカニズムで、取り込まれることが示唆された。【００５７】
５）リポソームの封入物放出能の確認
１．１１６ｍｇのＤＯＰＥ、0.38mgのＥＰＣ、0.608μgのＣＨＥＭＳ（ＤＯＰＥ：ＥＰＣ：ＣＨＥＭＳ＝７５：２３．７５：１．２５）を０．２ｍＬのクロロホルムに溶解した溶液２００μＬをガラス試験管に分取し、窒素ガスを吹き付けて蒸発乾固させ、脂質膜を形成させた。０．２５ｍｇ／ｍＬ ローダミンラベル化デキストラン（７０ｋＤａ）を含む１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ緩衝液０．２ｍＬを脂質膜に添加し、室温で１０分間放置することによって水和させた。水和後、超音波槽で超音波処理（数秒間）することにより、ローダミンラベル化デキストランが封入されたリポソームを調製した。このリポソームに２ｍｇ／ｍＬの ステアリル化オクタアルギニン溶液又はステアリル化オクタリジンを総脂質量の５モル％になるように添加し、室温で３０分間放置することにより、リポソームの表面にオクタアルギニン（Ｒ８）又はオクタリジン（Ｋ８）を導入して、ローダミンラベル化デキストランを含むＲ８リポソームとＫ８リポソームを調製した。【００５８】
４）と同様にしてＤＣを回収し、上記のリポソームを脂質濃度１００μＭになるように添加した（最終容量５００μＬ）後、３７℃、５％ＣＯ2、２時間インキュベーションし、１０ｎｇ／ｍＬ ＧＭ−ＣＳＦを含む血清培地を加え、全量を１ｍＬとした。３７℃、５％ＣＯ2、１６時間インキュベーションし、細胞懸濁液１００μＬをガラスボトムディッシュに播いてさらに３７℃、５％ＣＯ2、２０分間インキュベーションした。細胞を洗浄後、１００μＬの無血清培地と０．５μＬの１0μＭ Ｌｙｓｏｔｒａｃｋｅｒを加え、共焦点レーザースキャン顕微鏡（レンズ：Ｐｌａｎ−Ａｐｏｃｈｒｏｍａｔ ６３×／１．４ Ｏｉｌ ＤＩＣ）で観察した。    【００５９】
両リポソームを取り込んだ細胞は、いずれも細胞質が赤色に染まっていることが観察され、リポソームに内封していたデキストランが細胞質中に放出され、拡散していることが明らかになった（図４）。【００６０】
６）成熟化したＤＣへのリポソームの取り込み
マウス骨髄から単離し、１０％牛胎児血清、ＰＳ、１０ｎｇ／ｍＬのＧＭ−ＣＳＦを含む１ｍＬ ＲＰＭＩ１６４０培地で７日間分化誘導したＤＣ（５×１０５個）を培養プレートに播種したものに、アジュバントとして１μｇ／ｍＬ ＣｐＧ−オリゴＤＮＡを添加した。異なる経過時間（０、２、５、１１、２３、４７時間後）において細胞を回収し、ＰＢＳで２回洗浄後、４）で調製したスルホローダミンＢを含むＲ８リポソーム及びＫ８リポソームをそれぞれ最終脂質濃度が０．１ｍＭとなるように含む無血清培地０．５ｍＬに細胞を懸濁し、３７℃で１時間インキュベートした。インキュベート終了後、培地を除去し、フローサイトメトリー用のバッファー（０．５％牛血清および０．１％ＮａＮ3を含むＰＢＳ）で３回洗浄した。洗浄後、細胞を０．５ｍＬのフローサイトメトリー用バッファーで懸濁し、ナイロンメッシュを通した後、フローサイトメーター（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ製）によって細胞に含まれる蛍光量を定量した。【００６１】
ＤＣの免疫表現形解析は、成熟化マーカーであるＣＤ８６を対象としたフローサイトメーターを用いて行った。ＤＣをフローサイトメトリー用バッファーで２回洗浄した後、同バッファーに懸濁した後、過剰量のコントロールモノクロナール抗体（ＩｇＧ１κ）を加え、３０分インキュベートすることで、非特異的な抗体の結合をブロッキング処理した。その後、細胞をフローサイトメトリー用バッファーで２回洗浄し、ＦＩＴＣ結合抗マウスＣＤ８６抗体を加えて、暗所４℃で３０分インキュベートした。その後、フローサイトメトリー用バッファーで２回洗浄し、上記と同様にフローサイトメーターによって細胞の蛍光量を測定し、Ｃｅｌｌ Ｑｕｅｓｔ Ｓｏｆｔｗａｒｅ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ製）を用いて解析した。ＤＣの成熟化は、ＣＤ８６の相対的な発現レベルに基づいて評価した。イソタイプのコントロールとして、抗ラットＣＤ８６（ＩｇＧ２ａ）を用いた。【００６２】
その結果、ＤＣが成熟化するにつれてＲ８非修飾リポソームの取り込み量は低下する一方、Ｒ８リポソームは未成熟状態から既にＲ８非修飾リポソームに比べて非常に高い取り込み量を示し、その取り込み量はＤＣが成熟化しても維持されていることが明らかになった（図５）。【００６３】
７）成熟化したＤＣでの抗原提示
６）と同様に分化誘導したＤＣ（１．２×１０6ｃｅｌｌｓ）に、２μｇ／ｍＬのＯＶＡ溶液及び同量のＯＶＡを封入したＲ８リポソームをそれぞれ添加し、３７℃で２時間インキュベーションした。細胞をＰＢＳで二回洗浄し、10%牛胎児血清、ＰＳ、及び５０μＭのメルカプトエタノールを含むＲＰＭＩ１６４０培地２ｍＬを添加し、最終的な成熟化を誘導するために、１μｇ／ｍＬのＣｐＧ−オリゴＤＮＡを添加し、２２時間培養した。【００６４】
また、６）と同様の操作によって成熟化させたＤＣに、２μｇ／ｍＬのＯＶＡ溶液及び同量のＯＶＡを封入したＲ８リポソームをそれぞれ添加し、３７℃で２時間インキュベーションし、ＰＢＳで２回洗浄した。２×１０5ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌのＤＣと１×１０5ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌのＢ３ＺＴ細胞を平底９６ウェルプレート中で一晩共培養した後、細胞を０．１ｍＬのＰＢＳで洗浄し、０．１ｍＬの５ｍＭ発色性ｌａｃＺ基質溶液（ＣＰＲＧ及び０．５％ＮＰ４０を含むＰＢＳ）を細胞溶解液中に添加し、３７℃で４時間インキュベートした後の５９５ｎｍにおける吸光度を測定することによってｌａｃＺ活性を評価した。【００６５】
その結果、未成熟状態のＤＣに取り込ませたＲ８リポソームのみならず、成熟状態のＤＣでも著しく高い抗原提示が確認された。また、モデル抗原のみを取り込ませた場合に比べて、Ｒ８リポソームを取り込ませた場合において高い抗原提示が確認された（図６）。【００６６】
８）細胞性免疫誘導
６）と同様にしてアジュバント（ＣｐＧ）を用いて成熟化させたＤＣに対して、ＯＶＡ封入Ｒ８リポソームを添加して２４時間インキュベートした細胞を、Ｃ５７ＢＬ／６マウスの皮下に投与した。1週間毎に２回、Ｒ８リポソームで刺激したＤＣを投与し、さらに1週間後に、ＯＶＡ抗原発現細胞（ＥＧ−７）とコントロール細胞（ＥＬ−４）をターゲット細胞として（Ｅ：Ｔ比＝２００：１）、クロムリリースアッセイによって細胞傷害活性（ＣＴＬ活性）を評価した。その結果、高い特異的ＣＴＬ活性（約４０％）が認められた（図７）。【００６７】
９）仮想腫瘍抗原に対する免疫誘導
前記１）と同様にしてＯＶＡ４０μｇを封入したオクタアルギニンリポソーム（Ｒ８リポソーム）を作製し、Ｃ５７ＢＬ／６マウス （雌７週齢）のわき腹皮下に６６０ｎｍｏｌの同リポソームを１週間おきに２回投与し、さらにその１週間後にＯＶＡを仮想腫瘍抗原として発現するマウス腫瘍細胞（Ｅ．Ｇ．７−ＯＶＡ、ＡＴＣＣ社より購入）８×１０５個を、皮下に接種した。その後、腫瘍の大きさを継時的に測定した。一方、ＯＶＡを封入していないＲ８リポソーム６６０ｎｍｏｌを作製し、これを１週間おきに２回、わき腹皮下に投与したＣ５７ＢＬ／６マウス、及びコントロールとして何も投与していないＣ５７ＢＬ／６マウスにおいても、同様にＥ．Ｇ．７−ＯＶＡ ８×１０５個を接種する実験を行い、腫瘍の大きさを継時的に測定した。【００６８】
その結果、何も封入していないＲ８リポソーム、及び何も投与していないコントロール群では腫瘍細胞が著しく増殖したのに対して、ＯＶＡを封入したＲ８リポソームを投与した群では腫瘍細胞の増殖が抑制されたことが確認された（図８）。これらの結果により、Ｒ８リポソームは封入された抗原に対する細胞性免疫を誘導し、癌に対するワクチンとなり得ることが確認された。
【産業上の利用可能性】
【００６９】
本発明のリポソームは、抗原提示細胞に対してＭＨＣクラスＩ分子を介した抗原提示を選択的に行わせることが出来、細胞性免疫を特異的に誘導することができる。また本発明のリポソームは、成熟化した樹状細胞に対しても抗原を取り込ませることが出来る。【００７０】
公知のｐＨ感受性リポソームや膜融合性リポソームなどを用いて細胞質に抗原を送達するだけでは、ＭＨＣクラスＩI分子を介した抗原提示が誘起されるのに対して、本発明のリポソームは、ＭＨＣクラスＩ分子を介した抗原提示のみを特異的に誘起することができる。このことから、本発明のリポソームは、細胞性免疫誘導剤として利用することが出来る。また、本発明のリポソームは、抗原性物質の取り込み機構が遮断されている成熟化樹状細胞にも効率よく取り込まれることから、成熟化抗原提示細胞に対して高効率かつ持続的な抗原提示を誘起することが出来る。
【図１】
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【図２】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図３ａ】
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【図３ｂ】
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【図４】
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【国際調査報告】
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