(57)【要約】  本発明は、リポソームであって、１種または２種以上の機能性脂質（たとえば、荷電脂質、分極性脂質、脂溶性脂質、水溶性脂質など他の化合物と化学的に相互作用するもの）を含む脂質で構成されている内膜と、１種または２種以上の機能性脂質を含むまたは含まない脂質で構成されている外膜とからなる脂質二分子膜層を有し、少なくとも、当該内膜に含まれるいずれか１つの種類の機能性脂質については、その内膜における量が、その外膜における量を上回るとの条件を満たすことを特徴とし、造影剤（水酸基を有する中性物質）や抗癌活性を有するsiRNA（アニオン性物質）などを内包させるリポソームとして好適であり、薬剤類の内包率や分散安定性、コントロールリリースなどが改善されたリポソーム製剤を提供する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
１種または２種以上の機能性脂質を含む脂質で構成されている内膜と、
１種または２種以上の機能性脂質を含むまたは含まない脂質で構成されている外膜とからなる脂質二分子膜層を有し、
少なくとも、当該内膜に含まれるいずれか１つの種類の機能性脂質については、その内膜における量が、その外膜における量を上回るとの条件を満たすことを特徴とするリポソーム。
【請求項２】
前記内膜に含まれる機能性脂質の少なくとも１種が、他の化合物と化学的に相互作用するものであることを特徴とする、請求の範囲第１項に記載のリポソーム。
【請求項３】
前記機能性脂質が、荷電脂質、分極性脂質、脂溶性脂質および水溶性脂質からなる群より選択される１種または２種以上であることを特徴とする請求の範囲第１項に記載のリポソーム。
【請求項４】
膜構成成分および溶媒以外の化合物を内包していることを特徴とする請求の範囲第１項に記載のリポソーム。
【請求項５】
前記化合物が塩基配列を有するアニオン性物質であることを特徴とする請求の範囲第４項に記載のリポソーム。
【請求項６】
前記塩基配列を有するアニオン性物質が抗癌活性を有するsiRNAであることを特徴とする、請求の範囲第５項に記載のリポソーム。
【請求項７】
前記化合物が水酸基を有する中性物質であることを特徴とする請求の範囲第４項に記載のリポソーム。
【請求項８】
前記水酸基を有する中性物質が造影剤であることを特徴とする請求の範囲第７項に記載のリポソーム。
【請求項９】
下記工程（１）〜（４）を有することを特徴とするリポソームの製造方法。
（１）一次乳化工程：超臨界または亜臨界状態の二酸化炭素、水性溶媒（Ｗ1）、およびリポソームの内膜を構成する混合脂質成分（Ｆ1）を撹拌することにより、Ｗ1／ＣＯ2エマルションを調製する工程；
（２）二次乳化工程：水性溶媒（Ｗ2）およびリポソームの外膜を構成する混合脂質成分（Ｆ2）の混合液に、上記工程（１）により得られたＷ1／ＣＯ2エマルションを添加し、撹拌することにより、Ｗ1／ＣＯ2／Ｗ2エマルションを調製する工程；
（３）上記工程（２）により得られたエマルションに含まれる有機溶媒を除去することにより、Ｆ1を内膜、Ｆ2を外膜とするリポソームの懸濁液を調製する工程；
（４）上記工程（３）により得られたリポソームの懸濁液、または当該リポソームの凍結乾燥物を再分散させた水性溶媒に、リポソームに内包させるべき化合物を添加し、撹拌する工程；
但し、上記工程（１）のＦ1に含まれる少なくとも１つの種類の機能性脂質について、その量は、上記工程（２）のＦ2に含まれるその機能性脂質の量よりも多いものとする。
【請求項１０】
下記工程（１）〜（４）を有することを特徴とする、リポソームの製造方法。
（１）一次乳化工程：超臨界または亜臨界状態の二酸化炭素、水性溶媒（Ｗ1）、リポソームに内包させるべき化合物、およびリポソームの内膜を構成する混合脂質成分（Ｆ1）を撹拌することにより、Ｗ1／ＣＯ2エマルションを調製する工程；
（２）二次乳化工程：水性溶媒（Ｗ2）およびリポソームの外膜を構成する混合脂質成分（Ｆ2）の混合液に、上記工程（１）により得られたＷ1／ＣＯ2エマルションを添加し、撹拌することにより、Ｗ1／ＣＯ2／Ｗ2エマルションを調製する工程；
（３）上記工程（２）により得られたエマルションに含まれる有機溶媒を除去することにより、Ｆ1を内膜、Ｆ2を外膜とするリポソームの懸濁液を調製する工程；
但し、上記工程（１）のＦ1に含まれる少なくとも１つの種類の機能性脂質について、その量は、上記工程（２）のＦ2に含まれるその機能性脂質の量よりも多いものとする。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、医薬、食品、化粧品のドラッグキャリアとして利用可能なリポソームに関する。
【背景技術】
【０００２】
リポソームは、リン脂質を主成分とする脂質二分子膜からなる閉鎖小胞体である。細胞膜と類似の構造および機能を有するため、免疫系を刺激しにくく（低抗原）、素材としての安全性が高い。また、水溶性の薬剤を脂質二分子膜で囲まれる内部の水相に、脂溶性の薬剤類を二分子膜の中に保持することができ、本来不安定で失活しやすい薬効成分を安定的に内包させることが可能である。このようなことから、医薬、化粧品などの分野におけるリポソームの応用、特に、薬物送達システム（Drug Delivery System: DDS）への応用に好適な薬剤内包リポソーム（リポソームの粒径や脂質膜の性質の調整、特定細胞に対する標的性の付与など）や、その調製方法について、盛んに研究、開発が行われている。【０００３】
なお、本発明において１つのリポソームを構成するための脂質二分子膜は、１つでもよいし、複数であってもよい。すなわち、脂質二分子膜が１つの場合は、当該二分子膜がリポソームの外殻を構成する。一方、１つのリポソームが複数の脂質二分子膜で構成される場合は、複数の脂質二分子膜のうちいずれか一つが、リポソームの外殻を構成し、残りの脂質二分子膜はその外殻を構成する脂質二分子膜の内部に存在することになる。【０００４】
従来のリポソームは、脂質二分子膜を一段階で形成する方法により製造された、内外膜の脂質の成分構成が同じものが一般的である（たとえば特許文献１参照）。また、リポソームの体内動態には外膜の化学的性質が関与することから、たとえば水溶性を向上させるために外膜の脂質にポリオキシアルキレン基を結合させるなど、通常のリポソームを調製した後に外膜を修飾する手法が用いられることもある（たとえば非特許文献１参照）。【０００５】
しかしながら、送達すべき薬剤に接するリポソームの内膜の構成成分を、外膜とは異なる態様とすることにより、薬剤の内包率の向上やコントロールリリース（徐放性）などの体内動向の改善を図る手法、あるいは内外膜の構成成分の異なるリポソームの製造方法は、これまでに提案されていなかった。
【特許文献１】特開２００５−１６２６７８号公報
【非特許文献１】Biophys. J. 35, 637-652, 1981
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明は、薬剤類の内包率や分散安定性、コントロールリリースなどが改善されたリポソーム製剤を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者は、たとえば、薬剤類などの化合物と化学的に相互作用する機能性脂質を外膜よりも内膜に多く含むなど、内外膜の構成成分（機能性脂質の量）が相違するリポソームは、そのような機能性脂質を内外膜に同量含むリポソームよりも、薬剤類の内包率や分散安定性、コントロールリリースに優れること（このような本発明のリポソームを、以下「内膜機能性リポソーム」と称することもある）、また、従来のリポソームの製造方法（超臨界二酸化炭素法）を改良することにより、そのようなリポソームを効率的に製造することが可能であること等を見出し、本発明を完成させるに至った。【０００８】
すなわち、本発明のリポソームは、１種または２種以上の機能性脂質を含む脂質で構成されている内膜と、１種または２種以上の機能性脂質を含むまたは含まない脂質で構成されている外膜とからなる脂質二分子膜層を有し、少なくとも、当該内膜に含まれるいずれか１つの種類の機能性脂質については、その内膜における量が、その外膜における量を上回るとの条件を満たすことを特徴とする。この内膜に含まれる機能性脂質の少なくとも１種は、他の化合物と化学的に相互作用するものであることが望ましい。また、上記「機能性脂質」としては、荷電脂質、分極性脂質、脂溶性脂質および水溶性脂質からなる群より選択される１種または２種以上の機能性脂質が好ましい。【０００９】
このような本発明のリポソームは、膜構成成分および溶媒以外の化合物を内包していることを、望ましい態様の一つとする。そのような化合物の好ましいものとしては、塩基配列を有するアニオン性物質、たとえば抗癌活性を有するsiRNA、あるいは、水酸基を有する中性物質、たとえば造影剤などが挙げられる。【００１０】
また、本発明は、上述のようなリポソームの好ましい製造方法を提供する。すなわち、本発明のリポソームの製造方法の一つは、下記工程（１）〜（４）を有することを特徴とする；
（１）一次乳化工程：超臨界または亜臨界状態の二酸化炭素、水性溶媒（Ｗ1）、およびリポソームの内膜を構成する混合脂質成分（Ｆ1）を撹拌することにより、Ｗ1／ＣＯ2エマルションを調製する工程；
（２）二次乳化工程：水性溶媒（Ｗ2）およびリポソームの外膜を構成する混合脂質成分（Ｆ2）の混合液に、上記工程（１）により得られたＷ1／ＣＯ2エマルションを添加し、撹拌することにより、Ｗ1／ＣＯ2／Ｗ2エマルションを調製する工程；
（３）上記工程（２）により得られたエマルションに含まれる有機溶媒を除去することにより、Ｆ1を内膜、Ｆ2を外膜とするリポソームの懸濁液を調製する工程；
（４）上記工程（３）により得られたリポソームの懸濁液、または当該リポソームの凍結乾燥物を再分散させた水性溶媒に、リポソームに内包させるべき化合物を添加し、撹拌する工程；
但し、上記工程（１）のＦ1に含まれる少なくとも１つの種類の機能性脂質について、その量は、上記工程（２）のＦ2に含まれるその機能性脂質の量よりも多いものとする。【００１１】
また、本発明のリポソームの製造方法のもう一つは、下記工程（１）〜（４）を有することを特徴とする；
（１）一次乳化工程：超臨界または亜臨界状態の二酸化炭素、水性溶媒（Ｗ1）、リポソームに内包させるべき化合物、およびリポソームの内膜を構成する混合脂質成分（Ｆ1）を撹拌することにより、Ｗ1／ＣＯ2エマルションを調製する工程；
（２）二次乳化工程：水性溶媒（Ｗ2）およびリポソームの外膜を構成する混合脂質成分（Ｆ2）の混合液に、上記工程（１）により得られたＷ1／ＣＯ2エマルションを添加し、撹拌することにより、Ｗ1／ＣＯ2／Ｗ2エマルションを調製する工程；
（３）上記工程（２）により得られたエマルションに含まれる有機溶媒を除去することにより、Ｆ1を内膜、Ｆ2を外膜とするリポソームの懸濁液を調製する工程；
但し、上記工程（１）のＦ1に含まれる少なくとも１つの種類の機能性脂質について、その量は、上記工程（２）のＦ2に含まれるその機能性脂質の量よりも多いものとする。
【発明の効果】
【００１２】
本発明により、薬剤類の内包率や分散安定性、コントロールリリースなどの特性に優れた内膜機能性リポソームを効率的に製造することが可能となり、ＤＤＳにおける薬剤内包リポソームの利用に大きく寄与する。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１３】
脂質二分子膜（リポソーム膜）構成成分
＜機能性脂質＞
本発明における「機能性脂質」とは、リポソームの内膜または外膜を構成しうる脂質のうち、他の化合物（リポソームの調製時に用いられる膜構成成分および溶媒以外の化合物）と化学的に相互作用する脂質、あるいは、生理活性作用を有するなどの機能性を持った脂質をいう。より具体的には、たとえば、リポソームに内包させる薬剤類の内包率や保持効率の向上に寄与しうる、主としてリポソームの内膜に含まれることが望ましい脂質、あるいは、リポソームの生体内での動向（ターゲティング性など）に関与する、主としてリポソームの外膜に含まれることが望ましい脂質が挙げられる。【００１４】
本発明では、リポソームの内膜および外膜に同一の種類の機能性脂質が含まれていてもよく、また、内膜および外膜に含まれる機能性脂質の種類が異なるものであってもよい。ただし、本発明のリポソームは、詳細は後述するが、内膜に含まれる少なくとも１つの種類の機能性脂質について、その内膜における量が、その外膜における量を上回るとの条件を満たす。たとえば、リポソームに内包させるべき化合物の保持に寄与しうるある種類の機能性脂質が、内膜だけに含まれ、外膜には含まれていないような態様のリポソームは、望ましいものの一つである。【００１５】
上記「相互作用」は、「他の化合物」をリポソームに保持することに寄与するものであれば特に限定されるものではないが、たとえば、水酸基やアミノ基等との水素結合、イオン性結合、その他の化学的な相互作用であって、他の化合物を付着、吸着、結合させることができる性質のものをいう。すなわち、リポソームに内包させる化合物およびリポソーム膜を構成する機能性脂質は、相互作用の面で好適な組み合わせとなるよう、それらの態様を適切に調整することが望ましい。【００１６】
さらに、上記「相互作用」は、リポソーム構造の安定化に寄与するものでもよい。リポソーム構造の安定化は脂質同士の相互作用、あるいは「他の化合物」と脂質との相互作用により、脂質の配列が強固になることはよく知られており、この効果により、壊れにくいリポソーム構造を構築できる。【００１７】
以下、本発明において使用することのできる機能性脂質として、「荷電脂質」、「分極性脂質」、「脂溶性脂質」および「水溶性脂質」を挙げて説明するが、機能性脂質はこれらに何ら限定されるものではなく、同様に、リポソームへの内包率や保持効率あるいは安定性の向上に寄与しうる相互作用を発揮しうる、またはリポソームの生体内での動向に関与しうる、その他の脂質を用いることもできる。【００１８】
＜荷電脂質＞
本発明における荷電脂質は、生理学的ｐＨで正または負の荷電を有し、他の化合物と静電気的な相互作用により結合しうる脂質全般をいう。【００１９】
カチオン性脂質としては、たとえば、1,2-ジオレイルオキシ-3-(トリメチルアンモニウム)プロパン（DOPTAP）、N,N-ジオクタデシルアミドグリシルスペルミン（DOGS）、ジメチルジオクタデシルアンモニウムブロミド（DDAB）、N-[1-(2,3-ジオレイルオキシ)プロピル]-N,N,N-トリメチルアンモニウムクロリド（DOTMA）、2,3-ジオレイルオキシ-N-[2(スペルミン-カルボキサミド)エチル]-N,N-ジメチル-1-プロパンアミニウムトリフルオロアセテート（DOSPA）、N-[1-(2,3-ジミリスチルオキシ)プロピル]-N,N-ジメチル-N-(2-ヒドロキシエチル)アンモニウムブロミド（DMRIE）、あるいは、ジパルミトイルホスファチジン酸（DPPA）とヒドロキシエチレンジアミンとのエステル、ジステアロイルホスファチジン酸（DSPA）とヒドロキシエチレンジアミンとのエステルなどが挙げられる。【００２０】
また、カチオン性の官能基を導入したコレステロール誘導体も、上記荷電脂質に含まれる。たとえば、3-β-[N-(N',N'-ジメチルアミノエタン)-カルバモイル]-コレステロール（略称DC-Chol）は、かかるカチオン性コレステロールの一つとして望ましいものである（Biochem Biophys Res Commun 179, 1991, 280-285.、Chem. Pharm. Bull. 53, 2005, 871-880.参照）。【００２１】
一方、アニオン性リン脂質としては、たとえば、ホスファチジルセリン、ジパルミトイルホスファチジルセリン（DPPS）、ジステアロイルホスファチジルセリン（DSPS）、ホスファチジルグリセロール、ジパルミトイルホスファチジルグリセロール（DPPG）、ジステアロイルホスファチジルグリセロール（DSPG）、ホスファチジルイノシトール、ジパルミトイルホスファチジルイノシトール（DPPI）、ジステアロイルホスファチジルイノシトール（DSPI）、ホスファチジン酸、ジパルミトイルホスファチジン酸（DPPA）、ジステアロイルホスファチジン酸（DSPA）等の負に荷電したグリセロリン脂質が挙げられる。【００２２】
なお、上記のようなリン脂質は、卵白、大豆もしくはその他の動植物に由来するもの（レシチン等）であっても、合成または半合成により得られたもの（リン脂質の部分的もしくは完全な水素添加物、またはポリエチレングリコールやアミノグリカン類を導入したリン脂質誘導体等）であってもよい。【００２３】
＜分極性脂質＞
たとえば、脂肪酸エステル（Ｒ−ＣＯ−Ｏ−Ｒ′）は、本発明における分極性脂質として好適なものの一種である。リポソーム膜の表面（閉鎖空間内に面する側）において、脂肪族エステル分子のエステル結合部が、リポソームに内包された化合物（たとえば後述するような水酸基を有する中性物質）と相互作用し、水素結合などの化学的な結合を形成することにより、その化合物の内包率の向上に寄与するものと考えられる。【００２４】
上記脂肪酸エステルの脂肪酸残基であるＲは、飽和脂肪酸残基または不飽和脂肪酸残基のいずれでもよく、好ましくは、直鎖であるか、または分岐していてもよい飽和脂肪酸残基である。そのような脂肪酸残基の炭素数は５〜２６であることが好ましく、１５〜２４であることがより好ましい。炭素数が５未満であると脂質中に十分に取り込まれなくなり、膜構造から遊離して安定性に欠け、一方で炭素数が２８以上であると生体適合性が低くなる。【００２５】
脂肪酸エステルを構成する脂肪酸としては、具体的には、バレリアン酸（吉草酸）（Ｃ５）、カプロン酸（Ｃ６）、エナント酸（Ｃ７）、カプリル酸（Ｃ８）、ペラルゴン酸（Ｃ９）、カプリン酸（Ｃ１０）、ラウリン酸（Ｃ１２）、ミリスチン酸（Ｃ１４）、ペンタデシル酸（Ｃ１５）、パルミチン酸（Ｃ１６）、マルガリン酸（Ｃ１７）、ステアリン酸（Ｃ１８）、アラキジン酸（Ｃ２０）、ベヘン酸（Ｃ２２）、リグノセリン酸（Ｃ２４）などが挙げられる。【００２６】
また、上記脂肪酸エステルのＲ′は、直鎖でも分岐していてもよい炭素数１〜４のアルキル基もしくはアルケニル基であり、アルキル基（時にメチル基またはエチル基）が好ましい。このアルキル基は、さらにハロゲン原子、アミノ基、ヒドロキシル基、メルカプト基、ニトロ基、アルコキシ基、カルボキシル基、カルバモイル基、スルホン酸基、ピリジル基などによって置換されていてもよい。Ｒ′が親水基により置換された脂肪酸エステルは両親媒性であり、内包される薬剤物質と特異的な相互作用も生じうるため、より好ましい。【００２７】
本発明では、上記のようなＲおよびＲ′のいずれの組み合わせによる脂肪酸エステルを用いることもできるが、好ましい脂肪酸エステルとしては、パルミチン酸メチルエステル、アラキジン酸メチルエステル、リグノセリン酸メチルエステルなどが挙げられる。なお、糖エステルである脂肪酸ショ糖エステルや脂肪酸ソルビタンエステル、ポリオキシエチレン基を有するポリオキシエチレン・脂肪酸エステルなどを用いることもできる。【００２８】
＜脂溶性脂質＞
脂溶性脂質としては、たとえば、コレステロールのエステル誘導体で、エステル部分が脂溶性の化合物が挙げられる。このような脂溶性脂質を膜成分に含むリポソームは、経口投与・腸管吸収の経路による取り込みの効率が高くなると考えられる。【００２９】
＜水溶性脂質＞
水溶性脂質としては、たとえば、コレステロールにポリオキシアルキレン基（−(ＣＨ2ＣＨ2Ｏ)nＨ）を導入した化合物などが挙げられる。膜構成脂質にポリオキシアルキレン基を導入することにより、リポソームの表面が親水性になり、リポソームの安定性が向上（崩壊性・凝集性などが改善）し、また、体内で異物として認識されなくなるといった効果が得られる。【００３０】
＜その他の脂質＞
本発明のリポソーム膜の構成成分としては、前述のような機能性脂質の他、中性リン脂質、糖脂質、ステロール類、グリコール類、脂肪族アミンなど、公知の各種の化合物を用いることができる。【００３１】
中性リン脂質としては、たとえば、ホスファチジルコリン、ジパルミトイルホスファチジルコリン（DPPC）、ジステアロイルホスファチジルコリン（DSPC）、ジミリストリルホスファチジルコリン（DMPC）、ジオレイルホスファチジルコリン（DOPC）、フォスファチジルエタノールアミンなどの中性グリセロリン脂質や、スフィンゴミエリン等のスフィンゴリン脂質が挙げられる。【００３２】
糖脂質としては、たとえば、ジガラクトシルジグリセリド、ガラクトシルジグリセリド硫酸エステル等のグリセロ脂質；ガラクトシルセラミド、ガラクトシルセラミド硫酸エステル、ラクトシルセラミド、ガングリオシドＧ７、ガングリオシドＧ６、ガングリオシドＧ４等のスフィンゴ糖脂質が挙げられる。【００３３】
ステロール類としては、たとえば、コレステロール、ジヒドロコレステロール、コレステロールエステル、フィトステロール、シトステロール、スチグマステロール、カンペステロール、コレスタノール、ラノステロール、さらに、１−Ｏ−ステロールグルコシド、１−Ｏ−ステロールマルトシド、１−Ｏ−ステロールガラクトシドといったステロール誘導体が挙げられ、特にコレステロールが好ましい。【００３４】
ステロール類を使用する場合、リポソーム膜の安定性への寄与などの観点から、リン脂質（PEG-リン脂質を除く）／ステロール類のモル比は、一般的には１００／６０〜１００／９０、好ましくは１００／７０〜１００／８５の範囲である。【００３５】
なお、コレステロールは、前述のようにエステル部に所定の構造を導入することでカチオン性脂質や脂溶性脂質となるほか、ポリアルキレンオキシド導入用のアンカーにもなり、ポリオキシアルキレン鎖の先端に、種々の機能性物質を共有結合により固定化することも可能である（特開平09-003093号公報等参照）。【００３６】
グリコール類としては、たとえば、エチレングリコール、ジエチレングリコール、トリエチレングリコール、プロピレングリコール、ジプロピレングリコール、トリメチレングリコール、1,4-ブタンジオールが挙げられる。グリコール類を用いることにより、リポソームに内包させる水溶性薬剤類の保持効率を向上させることができる。グリコール類を使用する場合、その使用量は、脂質の全質量に対して０．０１〜２０質量％、好ましくは０．０５〜０．１質量％である。【００３７】
脂肪族アミン類としては、製薬学的に許容される直鎖または分岐した炭素数２〜２２の第１級もしくは第２級アミン、たとえば、ステアリルアミン、オクチルアミン、オレイルアミン、リノレイルアミンなどが挙げられる。このような脂肪族アミン類は、リポソームの荷電のために用いることができる。脂肪族アミン類を使用する場合、その使用量は、脂質の全質量に対して０．０１〜０．５質量％、好ましくは０．０５〜０．１質量％である。【００３８】
＜機能性脂質の配合量＞
本発明の内膜機能性リポソームは、内膜に含まれるいずれか１つの種類の機能性脂質について、その内膜における量が、その外膜における量を上回るとの条件を満たすことを特徴とする。少なくとも１種の機能性脂質について上記条件が満たされていればよいのであって、別のある種類の機能性脂質については上記条件を満たさないような態様で内膜および外膜に含まれていてもよく、また、複数の種類の機能性脂質のそれぞれについて上記条件が満たされていてもよい。【００３９】
たとえば、リポソームに内包させるべき化合物の保持に寄与しうる機能性脂質の１つについて、上記の条件を満たすような態様のリポソームは、その製造過程において、リポソームに内包させるべき化合物がリポソーム表面（外部環境と接する面）と相互作用することが抑制されるため、表面がフラットで、凝集しにくく、分散安定性の高いリポソームが得られるようになる。【００４０】
ここで、「機能性脂質の量」とは、後述のような本発明のリポソームの製造方法において、原料として添加する機能性脂質の絶対的な量（モル数）をいい、内膜を形成する工程における上述のような機能性脂質の添加量が、外膜を形成する工程におけるその機能性脂質の添加量を上回るようにすればよい。上述のような効果を考慮すれば、たとえば、リポソームに内包させるべき化合物の保持に寄与しうる機能性脂質を、内膜を形成する工程においてのみ使用し、そのような機能性脂質が内膜のみに含まれるリポソームを調製することは、本発明の望ましい態様の一つといえる。【００４１】
内膜および外膜の機能性脂質量は、公知の知見を利用しながら、リポソームの用途や目的とする機能性の程度、用いる機能性脂質の種類などに応じて適宜調整することができる。後述するような製造方法によれば、特定の機能性脂質の量について、内膜および外膜で所定の割合とすることが可能である。たとえば、前述のような、分散安定性などの高いリポソームを製造といった観点からは、リポソームに内包させるべき化合物の保持に寄与しうる機能性脂質について、内膜の含有量／外膜の含有量の比率が、100／1から100／50の範囲となるようにすることが好ましい。【００４２】
本発明の内膜機能性リポソームの一つの態様としては、たとえば、内膜、外膜ともにジパルミトイルホスファチジルコリン（DPPC）およびコレステロールを主体とし、さらに、薬剤類の保持に寄与する荷電脂質を内膜だけに含有させ、一方でリポソームの安定性や体内動向に関与する水溶性脂質を外膜だけに含有させ、当該荷電脂質の量が当該水溶性脂質の量を上回るものが挙げられる。このような態様のリポソームにおける機能性脂質の配合量は、たとえば、内膜についてはDPPC／Cholesterol／機能性脂質＝１０／２／１程度、外膜についてはDPPC／Cholesterol／機能性脂質＝１０／２／０．１程度が好ましい。【００４３】
リポソームに内包される化合物
本発明の内膜機能性リポソームには、各種の化合物を効率的に内包（保持）させることができる。ここで、上記の「リポソームに内包される化合物」は、リポソームの用途などに応じて適宜選択される物質であり、リポソーム膜を構成している機能性脂質と化学的に相互作用しうる性質のものであって、後述するような製造方法において用いられる、リポソーム膜の構成成分および溶媒以外の化合物をいう。【００４４】
上述のような「リポソームに保持される化合物」の代表的なものは、医薬用のリポソームについて従来使用されているような、各種の薬剤類（所定の目的のための各種有効成分）である。たとえば、水溶液中でカチオンまたはアニオンとなる水溶性の薬剤類であれば、前述の機能性脂質のうち荷電脂質との相互作用により、保持率を高めることができると考えられる。【００４５】
以下、リポソームに内包される化合物について、本発明における好適な薬剤類である「造影剤」および「siRNA」などを例示しながら説明するが、本発明の対象となる化合物はこれらの薬剤類に何ら限定されるものではなく、機能性脂質との相互作用について同様の効果を発揮しうるその他の化合物に対しても同様に適用することができる。【００４６】
なお、本発明では、下記の薬剤類の他、必要に応じて公知の各種の製薬助剤を用いることもできる。たとえば、水溶性アミン系緩衝剤（好ましくはトロメタモールなど）、炭酸塩系緩衝剤などのｐＨ緩衝剤；エデト酸系キレート化剤（たとえばＥＤＴＡＮａ2-Ｃａ）などのキレート化剤；α−トコフェロール、アスコルビン酸などの抗酸化剤；その他、浸透圧調節剤、安定化剤、粘度調節剤、保存剤、無機塩類、さらには血管拡張剤、凝固抑制剤などの薬理的活性物質が挙げられる。【００４７】
＜造影剤＞
本発明で用いることのできるヨード系Ｘ線造影剤用のヨード化合物としては、例えば、イオメプロール、イオパミドール、イオヘキソール、イオペントール、イオプロミド、イオキシラン、イオシミド、イオベンゾール、イオトロラン、イオジキサノール、イオデシモル、イオタスル、メトリザミド、1,3-ビス-(Ｎ-3,5-ビス-(2,3-ジヒドロキシプロピルアミノカルボニル)-2,4,6-トリヨウドフェニル)-Ｎ-ヒドロキシアセチル-アミノ)-プロパンなどの非イオン性ヨード化合物が挙げられる。なかでも、高度に親水性であり、高濃度でも浸透圧が高くならず、かつない点から、イオヘキソール、イオメプロール、イオパミドール、イオトロラン、イオジキサノールが好適である。【００４８】
＜siRNA＞
核酸（ＤＮＡ、ＲＮＡ）およびタンパク質などの生体的高分子（オリゴマーを含む）は、溶媒のｐＨにより正または負に荷電し、前述のような機能性分子と静電的またはその他の相互作用により結合しうる。本発明では、医薬などの用途に向けた生体的高分子を、特に限定されることなくリポソームに内包させることが可能である。【００４９】
近年、遺伝子治療への応用が期待されているsiRNA（small interfering RNA）は、リポソームに内包させる薬剤類として好ましいものの一つであり、たとえば、がん細胞の増殖にとって重要な遺伝子の働きを抑制する抗癌活性を有するsiRNAが挙げられる。また、ＤＮＡもしくはＲＮＡのセンス鎖もしくはアンチセンス鎖、プラスミド、ベクター、ｍＲＮＡなど、用途に応じた塩基配列を有する核酸を用いることができる。【００５０】
＜その他の薬剤類＞
本発明では、上記造影剤やsiRNA以外にも、たとえば、リソマイシン、レボフロキサシン、ストレプトマイシン、リファンピシン、アムホテリシンＢ、ナイスタチン、ミデカマイシンなどの抗菌剤；インターフェロン、エリスロポエチン、インターロイキン、ポルフィルンなどの生体内物質；その他水溶性ビタミン、アスコルビン酸ジパルミタート、ヘスペリジン、ルチン、ナリンジン、ジゴキシンといった水溶性非電解質の薬剤類を、リポソームに効率的に内包させることが可能である。【００５１】
リポソームの製造方法
本発明の内膜機能性リポソームは、以下に説明するような「マイクロカプセル化法」、「膜乳化法」または「超臨界二酸化炭素法」などの手法により製造することができる。本発明のリポソームは、基本的には、マイクロカプセル化法や膜乳化法についての従来と同様の通常の条件（撹拌条件、温度条件、加圧条件など）に従い、一般的な装置、手法を用いて製造することができるが、本発明では、少なくとも１種の機能性脂質の量について、以下に述べる一次乳化工程（内膜の形成）における添加量を、二次乳化工程（外膜の形成）における添加量よりも多くすることが特徴的である。【００５２】
＜マイクロカプセル化法＞
マイクロカプセル化法は、リポソームを製造するための公知の手法であり（たとえば特開2001-139460号公報参照）、その工程の概略は以下の通りである。【００５３】
（１）一次乳化工程：水性溶媒（Ｗ1）、有機溶媒（Ｏ）、およびリポソームの内膜を構成する混合脂質成分（Ｆ1）を撹拌することにより、Ｗ1／Ｏエマルションを調製する。Ｆ1からなる一重膜の内部は水相（Ｗ1）であり、外部は油相（Ｏ）である。【００５４】
（２）二次乳化工程：水性溶媒（Ｗ2）およびリポソームの外膜を構成する混合脂質成分（Ｆ2）の混合液に、上記工程（１）により得られたＷ1／Ｏエマルションを添加し、撹拌することにより、Ｗ1／Ｏ／Ｗ2エマルションを調製する。Ｆ2からなる一重膜の内部はＷ1／Ｏエマルションであり、外部は水相（Ｗ2）である。【００５５】
（３）上記工程（２）により得られたエマルションに含まれる有機溶媒をエバポレータ等で除去することにより、Ｆ1を内膜、Ｆ2を外膜とするリポソームの懸濁液を調製する。【００５６】
（４）上記工程（３）により得られたリポソームの懸濁液、またはそのリポソームの凍結乾燥物を再分散させた水性溶媒に、リポソームに内包させるべき化合物（各種の有効成分など）を添加し、撹拌する。この工程により、Ｆ1を内膜、Ｆ2を外膜とし、所定の化合物を内包したリポソームが得られる。【００５７】
＜膜乳化法＞
膜乳化法もリポソームを調製するための公知の手法であるが（たとえば市川創作(2007): 単分散エマルションを基材とした新規ベシクル調整法によるサイズ制御と内包率の向上. 日本薬学会年会要旨集Vol.127, No1, P205参照）、たとえば以下のような工程で行うことにより、内外膜の膜構成成分の相違するリポソームを調製することができる。【００５８】
（１）一次乳化工程：水性溶媒（Ｗ1）の混合液に圧力をかけ、所定の孔径を有する疎水性の多孔質膜、またはシリコン基板で形成されたマイクロチャンネル（スリット）などを透過させ、リポソームの内膜を構成する混合脂質成分（Ｆ1）が溶解しているヘキサン等の有機溶媒（Ｏ）中に静的に押し出すことにより、Ｗ1／Ｏエマルションを調製する。【００５９】
（２）凍結乾燥工程：上記工程（１）より得られたＷ1／Ｏエマルション（水相の液滴）を液体窒素等で凍結する。続いて、液滴の凍結状態を保持した条件下で、脂質成分を含まないヘキサン等の有機溶媒で上記有機溶媒（Ｏ）を置換した後、その有機溶媒をエバポレータ等で蒸発させ、除去する。なお、このような凍結乾燥工程により、生成するリポソームの粒径を他の製造方法による粒径よりも大きなもの（１０００〜３０００ｎｍ程度）とすることができる。【００６０】
（３）二次乳化工程：上記工程（２）により得られた凍結乾燥物を、リポソームの外膜を構成する混合脂質成分（Ｆ2）が溶解した水性溶媒（Ｗ2）中で水和させる。この工程により、Ｆ1を内膜、Ｆ2を外膜とするリポソームの懸濁液を調製する。【００６１】
（４）上記工程（３）により得られたリポソームの懸濁液、またはそのリポソームの凍結乾燥物を再分散させた水性溶媒に、リポソームに内包させるべき化合物（各種の有効成分など）を添加し、撹拌する。この工程により、Ｆ1を内膜、Ｆ2を外膜とし、所定の化合物を内包したリポソームが得られる。【００６２】
＜超臨界二酸化炭素法＞
従来の超臨界二酸化炭素法（たとえば特開2005-162678号公報参照）では、一般的に、内外膜ともに同様の脂質成分で構成されているリポソームが得られる。本発明では、前述のマイクロカプセル化法の油相として、通常の有機溶媒ではなく、超臨界状態（亜臨界状態を含む）の二酸化炭素を用いることにより、内外膜の脂質成分の構成が相違し、しかも従来のマイクロカプセル化法よりも内包率などの特性が改善されたリポソームを調製することができる。従来の超臨界二酸化炭素法はそのリポソーム形成メカニズムの考察から、リポソーム製造法の分類においては逆送蒸留法の範疇にあると考えられている。逆送蒸留法では内外膜の脂質成分の構成が相違するリポソームは製造できず、溶媒の蒸留溜去が必要なことから、製造法としては制約が多い。改良した超臨界二酸化炭素法である２段階乳化法は、こうした制約を克服し、分散安定性が高く、粒度分布の狭い、SLV(一枚膜)のリポソームを調製することができる。【００６３】
かかる製造方法の工程の概略は以下の通りである。
（１）一次乳化工程：超臨界（亜臨界を含む）状態におかれた二酸化炭素と、水性溶媒（Ｗ1）およびリポソームの内膜を構成する混合脂質成分（Ｆ1）とを撹拌することにより、Ｗ1／ＣＯ2エマルションを調製する。Ｆ1からなる一重膜の内部は水相（Ｗ1）であり、外部は油相（ＣＯ2）である。
（２）二次乳化工程：水性溶媒（Ｗ2）およびリポソームの外膜を構成する混合脂質成分（Ｆ2）の混合液に、上記工程（１）により得られたＷ1／ＣＯ2エマルションを添加し、撹拌することにより、Ｗ1／ＣＯ2／Ｗ2エマルションを調製する。Ｆ2からなる一重膜の内部はＷ1／ＣＯ2エマルションであり、外部は水相（Ｗ2）である。
（３）上記工程（２）により得られたエマルションに含まれる有機溶媒をエバポレータ等で除去することにより、Ｆ1を内膜、Ｆ2を外膜とするリポソームの懸濁液を調製する。【００６４】
（４）上記工程（３）により得られたリポソームの懸濁液、またはそのリポソームの凍結乾燥物を再分散させた水性溶媒に、リポソームに内包させるべき化合物（各種の有効成分など）を添加し、撹拌する。この工程により、Ｆ1を内膜、Ｆ2を外膜とし、所定の化合物を内包したリポソームが得られる。【００６５】
＜上記製造方法の異なる態様＞
上述のような態様のマイクロカプセル化法、膜乳化法および超臨界二酸化炭素法はいずれも、まず、空のリポソームを調製し、その後、内包させるべき化合物と撹拌することにより、その化合物を空のリポソームに取り込ませている。【００６６】
このような方法の他、上記マイクロカプセル化法、膜乳化法および超臨界二酸化炭素法それぞれの工程（１）において、水性溶媒（Ｗ1）に内包させるべき化合物（各種の有効成分など）を溶解させておくことにより、工程（４）によらずとも、目的とするリポソームを調製することも可能である。【００６７】
＜その他の工程＞
上述のような方法におけるリポソームを調製する工程のほか、必要に応じて、その他の工程を適宜設けてもよい。【００６８】
たとえば、リポソームを調製した後、さらに他の化合物と反応させることにより、外膜を構成する脂質に所定の官能基、化学的構造（たとえばリンカーを介して所定の細胞へのターゲティング性を付与しうるリガンドが結合した部位、あるいはポリエチレングリコール鎖のように親水性等を付与する部位）を導入するような工程を設けてもよい。【００６９】
また、リポソームの粒径分布を所望の範囲内に揃え、不純物の除去、滅菌等を行うための濾過工程などを、必要に応じてさらに設けてもよい。たとえば、孔径０.１〜０.４μｍのポリカーボネート膜またはセルロース膜をフィルターとして装着した静圧式押出し装置に通すことにより、中心粒径が１００〜３００ｎｍ程度であるリポソームが効率よく調製される。このようなサイズのリポソームは、毛細血管を閉塞するおそれがほとんどないと同時に、がん組織近辺の血管にできる間隙を通過できるといった利点を有する。上記の静圧式押出し装置としては、例えば、日油リポソーム社製「エクストルーダー」、野村マイクロサイエンス社製「リポナイザー」などが挙げられる。【００７０】
さらに、リポソームの懸濁液が得られた後は、さらにそれを凍結乾燥し、リポソームを使用までの間の保管に適した態様にすることが望ましい。凍結乾燥は、従来のリポソームを製造する場合と同様の手段や装置を用いて行うことができる。たとえば、間接加熱凍結方法、冷媒直膨方法、熱媒循環方法、三重熱交換方法、重複冷凍方法などに従い、適切な条件下（温度：−１２０〜−２０℃、圧力：１〜１５Pa、時間：１６〜２６時間など）で凍結乾燥を行えばよい。
【実施例】
【００７１】
実施例１
脂肪酸エステルを内壁のみに含有するリポソーム造影剤の製造
（１）マイクロカプセル化法によるリポソームの製造
１Ｌの撹拌機付き耐圧容器にて、ＤＰＰＣ（日本油脂製）３５ｇとＤＰＰＳ（日本油脂製）５ｇとリグノセリン酸メチルエステル２．５ｇを、水２００ｇに懸濁後、ヘキサン２８０ｇを加え、温度２０℃、回転数４７０ｒｐｍにて、均一に分散させ、Ｗ／Ｏ型エマルション溶液を得た。【００７２】
別に用意した１０Ｌのステンレス容器に、水６ｋｇとメタノール１００ｍｌとＤＰＰＣ（日本油脂製）３５ｇとを入れ、直径８ｃｍの平羽根タービン翼（３枚羽根）にて３７０ｒｐｍで撹拌、大気圧、２０℃の条件下、上記Ｗ／Ｏエマルション溶液を水中に３０分かけて添加していき、リポソーム溶液を得た。次に、このリポソーム溶液をエバポレータで減圧下、４０℃の湯浴上で、溶媒除去を行った。得られた水溶液を凍結乾燥して粉末状のリポソームを得た。【００７３】
（２）リポソーム造影剤の製造
上記（１）で得られた粉末状のリポソームを「オムニパーク２４０」（コニカミノルタエムジー株式会社製造影剤：イオヘキソールを517.7mg/ml含有）６５ｇを加えて再水和、混合し、リポソーム造影剤を製造した。【００７４】
［比較例１］
脂質二分子膜を構成する内膜と外膜に脂肪酸エステルを等量含有するリポソーム造影剤の製造
温めた（８０℃）リグノセリン酸メチルエステル２５ｍｇを容器に採り、そこへエタノール０．２ｍｌを加えて、８０℃の温浴中でリグノセリン酸メチルエステルを溶かした。エタノールに溶かしたリグノセリン酸メチルエステルへ、予め温めておいた（５０℃）「オムニパーク２４０」６．５ｇを加えて混合した。この混合物に、脂質としてジパルミトイルフォスファチジルコリン（ＤＰＰＣ）５００ｍｇとジパルミトイルフォスファチジルセリン（ＤＰＰＳ）５０ｍｇを加え、これを５０℃に設定した恒温槽に入れ、ホモジナイザーを差し込んで毎分１６０００回転により撹拌した。脂質が混合された後に６０分間放置し、リポソーム造影剤を得た。【００７５】
実施例１および比較例１により得られたリポソーム造影剤それぞれの、内包率および平均粒径の測定結果を表１に示す。
なお、実施例において内包率および平均粒径の測定は次の手法で実施した。
＜内包率の評価＞
得られた試料を20mLの小瓶に入れ、蓋をして、蓋の周囲をシールテープで密閉した。そのサンプルを23℃、湿度55％の雰囲気で、60分間暗所保管した。その後、その試料を等張の食塩水で透析し、透析終了後にエタノールを添加してリポソームを破壊して、吸光度の測定によりリポソーム内のヨウド化合物量を求めた。試料中の全ヨウド化合物量に対するリポソーム内のヨウド化合物量の比率を内包率（質量％）として表した。
＜平均粒径の評価＞
粒径は、水溶性薬剤を内包するリポソームを含む分散液を、動的光散乱粒径測定器（シスメックス社、Malvern HPPS）を用いて、25℃の条件下で測定した。【００７６】
【表１】
2008140081.tif 000002
【００７７】
表１の結果からリポソームを構成する脂質二分子膜のうち、脂肪酸エステルを内壁のみに含有するリポソームは、内壁と外壁に等量含有するリポソームに比べて、造影剤の内包率が５２％に向上していることが分かる。【００７８】
実施例２
カチオン脂質を脂質二分子膜の内膜のみに含有するsiRNA内包リポソームの製造
（１）マイクロカプセル化法によるリポソームの製造
１Ｌの撹拌機付き耐圧容器にて、ＤＰＰＣ（日本油脂製）３０ｇとコレステロール（日本油脂製）１５ｇとＤＯＴＭＡ（N-(2,3-オレイロキシ)プロピル-N,N,N-トリメチル塩化アンモニウム）１５ｇを、水２００ｇに懸濁後、ヘキサン２８０ｇを加え、温度２０℃、回転数４７０ｒｐｍにて、均一に分散させ、Ｗ／Ｏ型エマルション溶液を得た。【００７９】
別に用意した１０Ｌのステンレス容器に、水６ｋｇとメタノール１００ｍｌとＤＰＰＣ（日本油脂製）３５ｇとを入れ、直径８ｃｍの平羽根タービン翼（３枚羽根）にて３７０ｒｐｍで撹拌、大気圧、２０℃の条件下、上記Ｗ／Ｏエマルション溶液を水中に３０分かけて添加していき、リポソーム溶液を得た。次に、このリポソーム溶液をエバポレータで減圧下、４０℃の湯浴上で、溶媒除去を行った。得られた水溶液を凍結乾燥して粉末状のリポソームを得た。【００８０】
（２）siRNA内包リポソームの製造
上記（１）で得られた粉末状のリポソーム８０ｍｇを、siRNA（１ｍｇ，Dharmacon社製商品名「siRNA-Luc+」）の水溶液５ｍｌで水和、混合し、siRNA内包リポソームを製造した。【００８１】
［比較例２］
脂質二分子膜を構成する内膜と外膜にカチオン脂質を等量含有するsiRNA内包リポソームの製造
特表2005-538967号公報に記載の手法に従い、ＤＳＰＣ:コレステロール：ＰＥＧ−ＤＳＧ：ＤＯＴＭＡ＝２０：４５：１０：２５である膜構成脂質成分を合計５０ｍｇ溶解させた水−エタノール(１：１)溶液５ｍｌと、siRNA（Dharmacon社製）を５ｍｇ溶解させた水溶液とを調製した後、蠕動式ポンプミキサーを用いて両水溶液を等速度（６０ｍＬ／分）で導入し、混合した。【００８２】
実施例２および比較例２により得られたそれぞれのsiRNA内包リポソームの内包率および平均粒径の測定結果を表２に示す。この結果から脂質二分子膜の外膜の表面電位を示すゼータ電位がゼロに近くなったことから、カチオン性脂質が外膜には少ないことが分かる。そして、リポソームを構成する脂質二分子膜のうち、カチオン性脂質が外膜に比べて内膜に多いときはsiRNAの内包率が７６％に向上していることが分かる。【００８３】
【表２】
2008140081.tif 000003
【００８４】
実施例３
カチオン性プルランを脂質二分子膜の内膜のみに含有するsiRNA内包リポソームの製造
（１）マイクロカプセル化法によるリポソームの製造
１Ｌの撹拌機付き耐圧容器にて、ＤＰＰＣ（日本油脂製）３０ｇとコレステロール（日本油脂製）１０ｇとカチオン性プルラン５ｇを、水２００ｇに懸濁後、ヘキサン２８０ｇを加え、温度２０℃、回転数４７０ｒｐｍにて、均一に分散させ、Ｗ／Ｏ型エマルション溶液を得た。【００８５】
別に用意した１０Ｌのステンレス容器に、水６ｋｇとメタノール１００ｍｌとＤＰＰＣ（日本油脂製）３５ｇとを入れ、直径８ｃｍの平羽根タービン翼（３枚羽根）にて３７０ｒｐｍで撹拌、大気圧、２０℃の条件下、上記Ｗ／Ｏエマルション溶液を水中に３０分かけて添加していき、リポソーム溶液を得た。次に、このリポソーム溶液をエバポレータで減圧下、４０℃の湯浴上で、溶媒除去を行った。得られた水溶液を凍結乾燥して粉末状のリポソームを得た。【００８６】
（２）siRNA内包リポソームの製造
上記（１）で得られた粉末状のリポソーム８０ｍｇを、siRNA（１ｍｇ，Dharmacon社製商品名「siRNA-Luc+」）の水溶液５ｍｌで水和、混合し、siRNA内包リポソームを製造した。【００８７】
［比較例３］
脂質二分子膜を構成する内膜と外膜にカチオン性プルランを等量含有するsiRNA内包リポソームの製造
（１）マイクロカプセル化法によるリポソームの製造
１Ｌの撹拌機付き耐圧容器にて、ＤＰＰＣ（日本油脂製）３０ｇとコレステロール（日本油脂製）１０ｇとカチオン性プルラン（特開2006-028061号公報の［0018］段落に準じた方法により調製）５ｇを、水２００ｇに懸濁後、ヘキサン２８０ｇを加え、温度２０℃、回転数４７０ｒｐｍにて、均一に分散させ、Ｗ／Ｏ型エマルション溶液を得た。【００８８】
別に用意した１０Ｌのステンレス容器に、水６ｋｇとメタノール１００ｍｌとＤＰＰＣ（日本油脂製）３０ｇとコレステロール（日本油脂製）１０ｇとカチオン性プルラン５ｇとを入れ、直径８ｃｍの平羽根タービン翼（３枚羽根）にて３７０ｒｐｍで撹拌、大気圧、２０℃の条件下、上記Ｗ／Ｏエマルション溶液を水中に３０分かけて添加していき、リポソーム溶液を得た。次に、このリポソーム溶液をエバポレータで減圧下、４０℃の湯浴上で、溶媒除去を行った。得られた水溶液を凍結乾燥して粉末状のリポソームを得た。【００８９】
（２）siRNA内包リポソームの製造
上記（１）で得られた粉末状のリポソーム８０ｍｇを、siRNA（１ｍｇ，Dharmacon社製商品名「siRNA-Luc+」）の水溶液５ｍｌで水和、混合し、siRNA内包リポソームを製造した。【００９０】
実施例３および比較例３により得られたsiRNA内包リポソームそれぞれの、内包率および平均粒径の測定結果を表３に示す。【００９１】
【表３】
2008140081.tif 000004
【００９２】
実施例３および比較例３により得られたそれぞれのsiRNA内包リポソームの内包率および平均粒径の測定結果を表３に示す。この結果から実施例３の脂質二分子膜の外膜の表面電位を示すゼータ電位が比較例３に比べてゼロに近くなったことから、カチオン性脂質が外膜には少ないことが分かる。そして、リポソームを構成する脂質二分子膜のうち、カチオン性脂質が外膜に比べて内膜に多いときはsiRNAの内包率が７１％に向上していることが分かる。【００９３】
実施例４
カチオン脂質を内壁にのみ、トランスフェリン修飾ＰＥＧ脂質を外壁にのみ含有するsiRNA内包リポソームの製造
（１）マイクロカプセル化法によるリポソームの製造
１Ｌの撹拌機付き容器にて、ＤＰＰＣ（日本油脂製）３０ｇとコレステロール（日本油脂製）１５ｇとＤＯＴＭＡ（N-(2,3-オレイロキシ)プロピル-N,N,N-トリメチル塩化アンモニウム）１５ｇを、水２００ｇに懸濁後、ヘキサン２８０ｇを加え、温度２０℃、回転数４７０ｒｐｍにて、均一に分散させ、Ｗ／Ｏ型エマルション溶液を得た。【００９４】
別に用意した１０Ｌのステンレス容器に、水６ｋｇとメタノール１００ｍｌとＤＰＰＣ（日本油脂製）３５ｇと“ＤＳＰＥ（ジステアロイルホスファチジルエタノールアミン）−ＰＥＧ−ＯＭｅ”１．５ｇと“ＤＳＰＥ−ＰＥＧ−ＣＯＯＨ”０．２ｇとを入れ、直径８ｃｍの平羽根タービン翼（３枚羽根）にて３７０ｒｐｍで撹拌、大気圧、２０℃の条件下、上記Ｗ／Ｏエマルション溶液を水中に３０分かけて添加していき、リポソーム溶液を得た。【００９５】
（２）トランスフェリンの導入
上記（１）で得られたリポソーム溶液に、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノ-プロピル)カルボジイミド塩酸５０ｍｇと、N-ヒドロキシスルホスクシンイミド１００ｍｇとを加え、室温で１０分間放置した後、トランスフェリン２００ｍｇを加え、室温で３時間撹拌した。200,000×ｇで３０分間遠心分離し、沈殿物を９％ショ糖溶液に再懸濁した。続いて、クエン酸鉄−クエン酸ナトリウムを加え、室温で１５分間撹拌した。これを200,000×ｇで３０分間遠心分離し、沈殿物を９％ショ糖溶液に再懸濁した。【００９６】
得られたリポソーム溶液をエバポレータで減圧下、４０℃の湯浴上で、溶媒除去を行った。得られた水溶液を凍結乾燥して粉末状のリポソームを得た。【００９７】
なお、腫瘍細胞の表面には通常の細胞よりも多くのトランスフェリンレセプターが存在することから、上述のようにして導入したトランスフェリンは、リポソームの腫瘍細胞へのターゲティングに寄与する。【００９８】
（３）siRNA内包リポソームの製造
上記（２）で得られた粉末状のリポソーム８０ｍｇを、siRNA（１ｍｇ，Dharmacon社製商品名「siRNA-Luc+」）の水溶液５ｍｌで水和、混合し、siRNA内包リポソームを製造した。【００９９】
実施例５
油相に超臨界二酸化炭素を使用したカチオン脂質を内壁にのみ、トランスフェリン修飾ＰＥＧ脂質を外壁にのみ含有するsiRNA内包リポソームの製造
（１）改良超臨界二酸化炭素法によるリポソームの製造
２００ｍＬの撹拌機付き耐圧容器にて、ＤＰＰＣ（日本油脂製）０．５１ｇとコレステロール（日本油脂製）０．１８ｇとＤＯＴＭＡ（Ｎ−（２，３−オレイロキシ）プロピル−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリメチル塩化アンモニウム）０．０４ｇを、エタノール  １４．３ｍＬに溶解後密閉して、超臨界二酸化炭素８５ｇを５分で導入し、温度６０℃、１９ＭＰａ加圧状態で撹拌した。
撹拌の回転数は５０ｒｐｍとし、ＨＰＬＣを使用して１．６ｍＬ／ｍｉｎの搬送速度で容器内に水５ｍＬを導入して均一に分散させ、Ｗ／Ｏ型エマルション溶液を得た。【０１００】
別に用意した５００ｍＬの攪拌機付き耐圧容器にて、ＤＰＰＣ（日本油脂製）０．２５ｇ、コレステロール（日本油脂製）０．１０ｇ、“ＤＳＰＥ−ＰＥＧ−ＯＭｅ”０．０２ｇと“ＤＳＰＥ−ＰＥＧ−ＣＯＯＨ”０．００８ｇとを、エタノール  １４．３ｍＬに溶解後、さらに水４４５ｇを添加して密閉し、超臨界二酸化炭素を適量導入して、温度６０℃、８ＭＰａ加圧状態とした。回転数は５９ｒｐｍで撹拌しながら、ＨＰＬＣを使用して上記Ｗ／Ｏ型エマルション溶液を１０ｍＬ／ｍｉｎの搬送速度で５００ｍＬの攪拌機付き耐圧容器に導入した。２００ｍＬの撹拌機付き耐圧容器中のＷ／Ｏ型エマルションを３５分かけてすべて搬送したのち、減圧して二酸化炭素を排出し、リポソーム溶液を得た。【０１０１】
（２）トランスフェリンの導入
上記（１）で得られたリポソーム溶液に、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノ-プロピル)カルボジイミド塩酸５０ｍｇと、N-ヒドロキシスルホスクシンイミド１００ｍｇとを加え、室温で１０分間放置した後、トランスフェリン２００ｍｇを加え、室温で３時間撹拌した。200,000×ｇで３０分間遠心分離し、沈殿物を９％ショ糖溶液に再懸濁した。続いて、クエン酸鉄−クエン酸ナトリウムを加え、室温で１５分間撹拌した。これを200,000×ｇで３０分間遠心分離し、沈殿物を９％ショ糖溶液に再懸濁した。【０１０２】
得られたリポソーム溶液をエバポレータで減圧下、４０℃の湯浴上で、溶媒除去を行った。得られた水溶液を凍結乾燥して粉末状のリポソームを得た。【０１０３】
（３）siRNA内包リポソームの製造
上記（２）で得られた粉末状のリポソーム８０ｍｇを、ホタルルシフェラーゼ遺伝子の発現を抑制するsiRNA（１ｍｇ，Dharmacon社製商品名「siRNA-Luc+」）の水溶液５ｍｌで水和、混合し、siRNA内包リポソームを製造した。【０１０４】
ＲＮＡｉ効果の比較試験
２４穴ポリスチレン製細胞培養プレート（ファルコン社製）に、ヒト肝癌細胞（HuH-7cell）を５×１０4cell/well播種し、２４時間培養した後、「LipofectAMINE」（Invitrogen社製、1.22μＬ／well）を用い、ホタルルシフェラーゼプラスミドＤＮＡ（Promega社製「pGL-3」、0.084μｇ／well）およびウミシイタケルシフェラーゼプラスミドＤＮＡ（Promega社製「pRL-TK」、0.75μｇ／well）のレポーター遺伝子を、OptiMEM（Invitrogen社製）中で細胞にトランスフェクションした。【０１０５】
つづいて、上記実施例３、比較例３、実施例４および実施例５により得られたリポソームを再水和した溶液(siRNA濃度、100 mM)を添加し、２４時間１０％血清存在下で細胞に接触させた。【０１０６】
その後、細胞を回収し、「Dual Luciferase Reporter Assay System」（Promega社製）により、上記レポーター遺伝子の発現量を測定した。そして、ホタルルシフェラーゼ発現量／ウミシイタケルシフェラーゼ発現量([pGL]/[pRL])の値により、ＲＮＡｉ効果を比較した。結果は表４の通りである。【０１０７】
【表４】
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【０１０８】
以上の培養細胞による評価実験では、培養細胞で活性になった２種類のプラスミドから放出されるレポーター遺伝子、すなわちホタルルシフェラーゼ遺伝子およびウミシイタケルシフェラーゼ遺伝子のうち、前者の発現量が優位に低下していることが、遺伝子の産物であるタンパク質の発現量（[pGL]および[pRL]）の比較により示された。そして、ホタルルシフェラーゼ遺伝子の発現量が優位に低下するそのレベルの大小は、ホタルルシフェラーゼ遺伝子の発現を抑制するsiRNAの絶対量に左右される。すなわち、[pGL]／[pRL]の値（％）が高いほど、ホタルルシフェラーゼ遺伝子の発現量が高く、siRNAの絶対量が少ない（siRNAの内包率が低い）と言える。逆に[pGL]／[pRL]の値（％）が低いほど、ホタルルシフェラーゼ遺伝子の発現量が低く、siRNAの絶対量が多い（siRNAの内包率が高い）と言える。そこで、表４の結果は、siRNAのみを培養細胞に接触させた場合はsiRNAのよく知られた不安定性による分解・絶対量低下のために遺伝子発現量低下はわずか（１００％−８２％＝１８％）なのに対し、実施例４，５はリポソーム内でsiRNAが安定に存在するために遺伝子発現量低下が大きくなったと解される。さらに、比較例３に比べ実施例３はリポソーム内のsiRNAの絶対量が多いために、遺伝子発現量低下が大きくなったと解される。
【国際調査報告】
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