【誤訳訂正書】
【提出日】令和3年6月28日(2021.6.28)
【誤訳訂正１】
【訂正対象書類名】特許請求の範囲
【訂正対象項目名】全文
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
（ａ）活性化試薬を用いて、Ｔ細胞培養物を活性化して、活性化Ｔ細胞培養物を生成し；
（ｂ）ベクターを用いて、活性化されたＴ細胞培養物を形質導入して、形質導入されたＴ細胞培養物を生成し；
（ｃ）形質導入されたＴ細胞培養物を拡大し；
（ｄ）（ｃ）の拡大したＴ細胞培養物を濃縮し；及び
（ｅ）（ｄ）の濃縮されたＴ細胞培養物を回収して、遺伝子修飾されたＴ細胞培養物を生成する
ことを含む、遺伝子修飾されたＴ細胞培養物の自動化生成のための方法であって、拡大されたＴ細胞培養物及び濃縮されたＴ細胞培養物のいずれか又は両方を洗浄することをさらに含み、
（ａ）〜（ｅ）は完全に密閉された細胞工学システムによって行われ、（ａ）〜（ｅ）は遺伝子修飾されたＴ細胞培養物を生成するプロセスを介して最適化され、
細胞工学システムが前記方法を開始する前に、（ａ）のＴ細胞培養物、活性化試薬、ベクター、及び／又は細胞培養培地を含み、
前記細胞工学システムが、
細胞培養チャンバー;
温度センサー、ｐＨセンサー、グルコースセンサー、酸素センサー、二酸化炭素センサー、乳酸センサー／モニター、及び／又は光学密度センサーのうちの１つ又は複数；
細胞培養培地を保存するための低温チャンバー;
前記細胞培養チャンバーを含み、かつ、熱障壁によって低温チャンバーから分離されている、高温チャンバー;
細胞培養チャンバーに接続された１つ又は複数の流体経路
を備え、
（a）のＴ細胞培養物が少なくとも１つのアクセサリー細胞を含む、方法。
【請求項２】
アクセサリー細胞が単球又は単球由来細胞を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
アクセサリー細胞が、ＣＤ２８、ＣＤ４０、ＣＤ２、ＣＤ４０Ｌ及び／又はＩＣＯＳを含む、Ｔ細胞受容体に対する抗原を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項４】
（ａ）活性化試薬を用いて、Ｔ細胞培養物を活性化して、活性化Ｔ細胞培養物を生成し；
（ｂ）ベクターを用いて、活性化されたＴ細胞培養物を形質導入して、形質導入されたＴ細胞培養物を生成し；
（ｃ）形質導入されたＴ細胞培養物を拡大し；
（ｄ）（ｃ）の拡大したＴ細胞培養物を濃縮し；及び
（ｅ）（ｄ）の濃縮されたＴ細胞培養物を回収して、遺伝子修飾されたＴ細胞培養物を生成する
ことを含む、遺伝子修飾されたＴ細胞培養物の自動化生成のための方法であって、拡大されたＴ細胞培養物及び濃縮されたＴ細胞培養物のいずれか又は両方を洗浄することをさらに含み、
（ａ）〜（ｅ）は完全に密閉された細胞工学システムによって行われ、（ａ）〜（ｅ）は遺伝子修飾されたＴ細胞培養物を生成するプロセスを介して最適化され、
プロセスが自己調整プロセスであり、
（ａ）温度センサー、ｐＨセンサー、グルコースセンサー、酸素センサー、二酸化炭素センサー、乳酸センサー／モニター、及び光学密度センサーの１つ又は複数を用いてモニタリングし；並びに
（ｂ）モニタリングに基づいて、形質導入されたＴ細胞培養物の温度、ｐＨレベル、グルコースレベル、酸素レベル、二酸化炭素レベル、及び光学密度の１つ又は複数を調整する
ことを含み、形質導入されたＴ細胞培養物の酸素レベルがＴ細胞培養物に対して最適化され、
細胞工学システムが前記方法を開始する前に、（ａ）のＴ細胞培養物、活性化試薬、ベクター、及び／又は細胞培養培地を含み、
前記細胞工学システムが、
細胞培養チャンバー;
温度センサー、ｐＨセンサー、グルコースセンサー、酸素センサー、二酸化炭素センサー、乳酸センサー／モニター、及び／又は光学密度センサーのうちの１つ又は複数；
細胞培養培地を保存するための低温チャンバー;
前記細胞培養チャンバーを含み、かつ、熱障壁によって低温チャンバーから分離されている、高温チャンバー;
細胞培養チャンバーに接続された１つ又は複数の流体経路
を備え、
（ａ）Ｔ細胞培養物が少なくとも１つのアクセサリー細胞を含む、方法。
【請求項５】
細胞工学システムが、ステップ（ａ）〜（ｅ）のうちの１つ又は複数の間に酸素供給コンポーネントを通じて細胞培養培地を再循環させる、請求項４に記載の方法。
【請求項６】
（ａ）活性化試薬を用いて、Ｔ細胞培養物を活性化して、活性化Ｔ細胞培養物を生成し；
（ｂ）ベクターを用いて、活性化されたＴ細胞培養物を形質導入して、形質導入されたＴ細胞培養物を生成し；
（ｃ）形質導入されたＴ細胞培養物を拡大し；
（ｄ）（ｃ）の拡大したＴ細胞培養物を濃縮し；及び
（ｅ）（ｄ）の濃縮されたＴ細胞培養物を回収して、遺伝子修飾されたＴ細胞培養物を生成する
ことを含む、遺伝子修飾されたＴ細胞培養物の自動化生成のための方法であって、拡大されたＴ細胞培養物及び濃縮されたＴ細胞培養物のいずれか又は両方を洗浄することをさらに含み、
（ａ）〜（ｅ）は完全に密閉された細胞工学システムによって行われ、（ａ）〜（ｅ）は遺伝子修飾されたＴ細胞培養物を生成するプロセスを介して最適化され、細胞工学システムが、ステップ（ａ）〜（ｅ）の間に、栄養素、老廃物、放出されたサイトカイン、及び／又は溶解ガスを再循環させ、
細胞工学システムが前記方法を開始する前に、（ａ）のＴ細胞培養物、活性化試薬、ベクター、及び／又は細胞培養培地を含み、
前記細胞工学システムが、
細胞培養チャンバー;
温度センサー、ｐＨセンサー、グルコースセンサー、酸素センサー、二酸化炭素センサー、乳酸センサー／モニター、及び／又は光学密度センサーのうちの１つ又は複数；
細胞培養培地を保存するための低温チャンバー;
前記細胞培養チャンバーを含み、かつ、熱障壁によって低温チャンバーから分離されている、高温チャンバー;
細胞培養チャンバーに接続された１つ又は複数の流体経路
を備え、
（ａ）のＴ細胞培養物が少なくとも１つのアクセサリー細胞を含む、方法。
【請求項７】
細胞工学システムによって提供される二酸化炭素レベルがステップ（ｃ）の間に減少する、請求項６に記載の方法。
【請求項８】
細胞工学システムが、形質導入されたＴ細胞培養物の供給、洗浄、モニタリング、及び選択のうちの１つ又は複数の複数回のラウンドを行うように構成されている、請求項７に記載の方法。
【請求項９】
濃縮が、遠心分離、沈降後の上清除去、又は濾過を含み、プロセスが、遠心分離又は濾過のパラメータを調整することをさらに含む、請求項８に記載の方法。
【請求項１０】
ステップ（ａ）の後に、活性化されたＴ細胞培養物から活性化試薬を除去することをさらに含む、請求項１に記載の方法。
【請求項１１】
（ａ）活性化試薬を用いて、Ｔ細胞培養物を活性化して、活性化されたＴ細胞培養物を生成し；
（ｂ）ベクターを用いて、活性化されたＴ細胞培養物を形質導入して、形質導入されたＴ細胞培養物を生成し；
（ｃ）形質導入されたＴ細胞培養物を拡大し；
（ｄ）（ｃ）の拡大されたＴ細胞培養を濃縮し；及び
（ｅ）（ｄ）の濃縮されたＴ細胞培養物を回収して、遺伝子修飾されたＴ細胞培養物を生成する
ことを含む、遺伝子修飾されたＴ細胞培養物の自動化生成のための方法であって、
（ａ）〜（ｅ）は、完全に密閉された自動化細胞工学システムによって行われ、及び
（ａ）〜（ｅ）の各々は、最適化された細胞密度（細胞／ｍＬ）及び最適化された細胞密集度（細胞／ｃｍ２）を有するＴ細胞培養物を用いて行われ、
細胞工学システムが前記方法を開始する前に、（ａ）のＴ細胞培養物、活性化試薬、ベクター、及び／又は細胞培養培地を含み、
前記細胞工学システムが、
細胞培養チャンバー;
温度センサー、ｐＨセンサー、グルコースセンサー、酸素センサー、二酸化炭素センサー、乳酸センサー／モニター、及び／又は光学密度センサーのうちの１つ又は複数；
細胞培養培地を保存するための低温チャンバー;
前記細胞培養チャンバーを含み、かつ、熱障壁によって低温チャンバーから分離されている、高温チャンバー;
細胞培養チャンバーに接続された１つ又は複数の流体経路
を備え、
（ａ）のＴ細胞培養物が少なくとも１つのアクセサリー細胞を含む、自動化生成のための方法。
【請求項１２】
（ａ）の最適化された細胞密度が約０．０５×１０６細胞／ｍＬ〜約６０×１０６細胞／ｍＬである、請求項１１に記載の方法。
【請求項１３】
（ａ）の最適化された細胞密集度が約０．１×１０６細胞／ｃｍ２〜約６０×１０６細胞／ｃｍ２である、請求項１１又は請求項１２に記載の方法。
【請求項１４】
活性化試薬が抗体又は樹状細胞を含む、請求項１１〜１３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１５】
抗体が表面に固定化されている、請求項１４に記載の方法。
【請求項１６】
表面がビーズの表面である、請求項１５に記載の方法。
【請求項１７】
抗体が可溶性抗体である、請求項１４に記載の方法。
【請求項１８】
抗体が、抗ＣＤ３抗体及び抗ＣＤ２８抗体の少なくとも１つを含む、請求項１４〜１７のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１９】
少なくとも約１億個の生存可能な遺伝子修飾されたＴ細胞を生成する、請求項１１〜１８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２０】
少なくとも約２０億個の生存可能な遺伝子修飾されたＴ細胞を生成する、請求項１１〜１９のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２１】
遺伝子修飾されたＴ細胞培養物がキメラ抗原受容体Ｔ（ＣＡＲ  Ｔ）細胞培養物である、請求項１１〜２０のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２２】
ベクターがキメラ抗原受容体をコードする、請求項２１に記載の方法。
【請求項２３】
Ｔ細胞培養物が末梢血単核細胞及び／又は精製Ｔ細胞を含む、請求項１２〜２２のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２４】
アクセサリー細胞が単球を含む、請求項１１に記載の方法。
【請求項２５】
アクセサリー細胞が、ＣＤ２８、ＣＤ４０、ＣＤ２、ＣＤ４０Ｌ及び／又はＩＣＯＳを含む、Ｔ細胞受容体に対する抗原を含む、請求項１１に記載の方法。
【請求項２６】
形質導入が、ウイルス感染、エレクトロポレーション、膜破壊、又はそれらの組み合わせを含む、請求項１１〜２５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２７】
ベクターがレンチウイルスベクター又はレトロウイルスである、請求項１１〜２６のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２８】
形質導入が、細胞培養培地中でベクターを混合し、及び培地中のベクターを活性化されたＴ細胞培養物に均一に送達することを含む、請求項１１〜２７のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２９】
拡大が、形質導入されたＴ細胞培養物の供給、洗浄、モニタリング、及び選択の少なくとも１つ又は複数を含む、請求項１１〜２８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項３０】
形質導入されたＴ細胞培養物の酸素レベルが、細胞密度及び細胞密集度に対して最適化される、請求項１１〜２９のいずれか一項に記載の方法。
【請求項３１】
細胞工学システムが、ステップ（ａ）〜（ｅ）の１つ又は複数の間に酸素供給コンポーネントを通じて細胞培養培地を再循環させる、請求項１１〜３０のいずれか一項に記載の方法。
【請求項３２】
酸素再循環が、ステップ（ａ）〜（ｃ）の間にシリコーンチューブによって提供される、請求項３１に記載の方法。
【請求項３３】
細胞工学システムが、ステップ（ａ）〜（ｅ）の間に栄養素、老廃物、放出されたサイトカイン、及び／又は溶解ガスを再循環させる、請求項１１〜３２のいずれか一項に記載の方法。
【請求項３４】
細胞工学システムによって提供される二酸化炭素レベルがステップ（ｃ）の間に減少する、請求項１１〜３３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項３５】
栄養素、老廃物、放出されたサイトカイン、及び／又は溶解ガスの再循環が、約０．０５×１０６細胞／ｍＬ〜約６０×１０６細胞／ｍＬの密度、及び約０．１×１０６細胞／ｃｍ２〜約６０×１０６細胞／ｃｍ２の密集度を有する細胞を用いて均一に提供される、請求項１１〜３４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項３６】
細胞工学システムが、形質導入されたＴ細胞培養物の複数回のラウンドの供給、洗浄、モニタリング、及び選択を行うように構成されている、請求項１１〜３５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項３７】
濃縮が、遠心分離、沈降後の上清除去、又は濾過を含む、請求項１１〜３６のいずれか一項に記載の方法。
【請求項３８】
細胞工学システムが複数のチャンバーを含み、ステップ（ａ）〜（ｅ）の各々が細胞工学システムの複数のチャンバーの異なるチャンバーにおいて行われる、請求項１１〜３７のいずれか一項に記載の方法。
【請求項３９】
ステップ（ａ）の後に、活性化されたＴ細胞培養物から活性化試薬を除去することをさらに含む、請求項１１〜３８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項４０】
（ｂ）における形質導入後にベクターを除去することをさらに含む、請求項１１〜３９のいずれか一項に記載の方法。
【請求項４１】
（ａ）活性化試薬を用いて、Ｔ細胞培養物を活性化して、活性化されたＴ細胞培養物を生成し；
（ｂ）ベクターを用いて、活性化されたＴ細胞培養物を形質導入して、形質導入されたＴ細胞培養物を生成し；
（ｃ）形質導入されたＴ細胞培養物を拡大し、形質導入された細胞培養物は拡大中に振とうされず；
（ｄ）（ｃ）の拡大されたＴ細胞培養物を濃縮し；及び
（ｅ）（ｄ）の濃縮されたＴ細胞培養物を回収して、遺伝子修飾されたＴ細胞培養物を生成する
ことを含む、遺伝子修飾されたＴ細胞培養物の自動化生成のための方法であって、（ａ）〜（ｅ）は、完全に密閉された自動化細胞工学システムによって行われ、少なくとも約２０億個の生存可能な遺伝子修飾されたＴ細胞を生成し、
細胞工学システムが前記方法を開始する前に、（ａ）のＴ細胞培養物、活性化試薬、ベクター、及び／又は細胞培養培地を含み、
前記細胞工学システムが、
細胞培養チャンバー;
温度センサー、ｐＨセンサー、グルコースセンサー、酸素センサー、二酸化炭素センサー、乳酸センサー／モニター、及び／又は光学密度センサーのうちの１つ又は複数；
細胞培養培地を保存するための低温チャンバー;
前記細胞培養チャンバーを含み、かつ、熱障壁によって低温チャンバーから分離されている、高温チャンバー;
細胞培養チャンバーに接続された１つ又は複数の流体経路
を備え、
（ａ）のＴ細胞培養物が少なくとも１つのアクセサリー細胞を含む、方法。
【請求項４２】
アクセサリー細胞が単球又は単球由来細胞を含む、請求項４１に記載の方法。
【請求項４３】
アクセサリー細胞が、ＣＤ２８、ＣＤ４０、ＣＤ２、ＣＤ４０Ｌ及び／又はＩＣＯＳを含む、Ｔ細胞受容体に対する抗原を含む、請求項４２に記載の方法。
【請求項４４】
形質導入されたＴ細胞培養物の酸素レベルがＴ細胞培養物に対して最適化される、請求項４１に記載の方法。
【請求項４５】
細胞工学システムが、ステップ（ａ）〜（ｅ）のうちの１つ又は複数の間に酸素供給コンポーネントを通じて細胞培養培地を再循環させる、請求項４１に記載の方法。
【請求項４６】
細胞工学システムが、栄養素、老廃物、放出されたサイトカイン、及び／又は溶解ガスを再循環させる、請求項４１に記載の方法。
【請求項４７】
細胞工学システムによって提供される二酸化炭素レベルがステップ（ｃ）の間に減少する、請求項４１に記載の方法。
【請求項４８】
細胞工学システムが、形質導入されたＴ細胞培養物の複数回のラウンドの供給、洗浄、モニタリング、及び選択を行うように構成されている、請求項４１に記載の方法。
【請求項４９】
ステップ（ａ）の後に、活性化されたＴ細胞培養物から活性化試薬を除去することをさらに含む、請求項４１に記載の方法。
【請求項５０】
（ｂ）における形質導入後にベクターを除去することをさらに含む、請求項４１に記載の方法。
【誤訳訂正２】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】００５４
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【００５４】
[0077]本明細書に記載される様々な方法は、形質導入された免疫細胞培養物の酸素レベルが免疫細胞培養物に対して最適化されるような方法で実施される。この最適化は、本明細書に記載されるように、所望の細胞表現型の促進を含む、所望の表現型特性を有する多数の生存細胞の生成を可能にする。実施形態では、酸素レベル又は濃度は、ステップ（ａ）から（ｅ）のうちの１つ又は複数の間に酸素供給コンポーネント（oxygenation component；酸素供給構成要素）を通じて細胞培養培地を再循環する細胞工学システムによって最適化される。本明細書に記載されるように、酸素化（oxygenation；酸素供給）は、シリコーンベースのチューブコンポーネントを含む１つ又は複数の流体経路を通じて適切に生じる。
【誤訳訂正３】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】００７７
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【００７７】
[00100]例示的な実施形態では、図１７及び図１８に示されるように、エレクトロポレーションユニット１７０６は、細胞工学システム１７０２の外側に配置される。このような実施形態では、形質導入は、第１の無菌の閉じた接続部（例えば、接続チューブ１７０４）を介して、活性化免疫細胞培養物を第１のチャンバーからエレクトロポレーションユニットに移し、活性化免疫細胞培養物をベクターでエレクトロポレーションして、形質導入された免疫細胞培養物を生成し、第２の無菌の閉じた接続部（例えば、接続チューブ１７０４）を介して、細胞工学システムの第２のチャンバーに形質導入された免疫細胞培養物を移す。
【誤訳訂正４】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】０１０１
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【０１０１】
[00124]形質導入されたＴ細胞の拡大。一部の実施形態では、形質導入されたＴ細胞培養物（又は他の免疫細胞培養物）は、所定の培養サイズ（すなわち、細胞の数）まで拡大される。所定の培養サイズは、臨床使用、すなわち、患者への輸血、研究開発作業などに適した十分な数の細胞を含み得る。一部の実施形態では、患者への投与のためのＣＡＲ  Ｔ細胞の臨床用量又は治療用量は、約１０５個の細胞、約１０６個の細胞、約１０７個の細胞、約１０８個の細胞、約１０９個の細胞、又は約１０１０個の細胞である。一部の実施形態では、本方法は、少なくとも１個、少なくとも２個、少なくとも３個、少なくとも４個、少なくとも５個、少なくとも１０個、少なくとも１５個、少なくとも２０個、少なくとも２５個、少なくとも３０個、少なくとも３５個、少なくとも４０個、少なくとも４５個、少なくとも５０個、少なくとも６０個、少なくとも７０個、少なくとも８０個、少なくとも９０個、又は少なくとも１００個の臨床用量のＣＡＲ  Ｔ細胞を生成する。一部の実施形態では、形質導入されたＴ細胞培養物は、約０．１Ｌから約５Ｌ、約０．１Ｌから約２Ｌ、又は約０．２Ｌから約２Ｌの総体積まで拡大される。一部の実施形態では、形質導入されたＴ細胞培養物は、約０．１Ｌ、約０．２Ｌ、約０．３Ｌ、約０．４Ｌ、約０．５Ｌ、約０．６Ｌ、約０．７Ｌ、約０．８Ｌ、約０．９Ｌ又は約１．０Ｌの総体積に拡大される。また、細胞生成プロセスの段階に応じて、必要に応じて、プロセスを通じて体積を変えることができる。一部の実施形態では、所定の培養サイズは、細胞工学システムのユーザーによって入力される。ユーザーは、生成される所望の細胞数（例えば、１０１０個のＣＡＲ  Ｔ細胞）として事前に所定の培養サイズを入力するか、又は生成される臨床用量又は治療用量の所望の数（例えば、１０回の臨床用量又は治療用量のＣＡＲ  Ｔ細胞）として所定の培養サイズを入力することができる。実施形態では、本明細書に記載される方法により生成されるＣＡＲ  Ｔ細胞の数は、少なくとも約１億（すなわち、１×１０６）個の細胞、又は少なくとも約３億個、少なくとも約５億個、少なくとも約６億個、少なくとも約７億個、少なくとも約８億個、少なくとも約９億個、少なくとも約１０億（すなわち１×１０９）個、少なくとも約１１億個、少なくとも約１２億個、少なくとも約１３億個、少なくとも約１４億個、少なくとも約１５億個、少なくとも約１６億個、少なくとも約１７個、少なくとも約１８億個、少なくとも約１９億個、少なくとも約２０億（すなわち２×１０９）個の細胞であり、例えば、少なくとも約２１億個、少なくとも約２２億個、少なくとも約２３億個、少なくとも約２４億個、少なくとも約２５億個、少なくとも約２６億個、少なくとも約２７億個、少なくとも約２８億個、少なくとも約２９億個、又は少なくとも約３０億個のＣＡＲ  Ｔ細胞である。
【誤訳訂正５】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】０１０４
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【０１０４】
[00127]実施形態では、モニタリングは、温度センサー、ｐＨセンサー、グルコースセンサー、酸素センサー、二酸化炭素センサー、及び／又は光学密度センサーによるモニタリングを含む。したがって、一部の実施形態では、細胞工学システムは、温度センサー、ｐＨセンサー、グルコースセンサー、酸素センサー、二酸化炭素センサー、及び／又は光学密度センサーのうちの１つ又は複数を含む。追加の実施形態では、細胞工学システムは、所定の培養サイズに基づいて、細胞培養物の温度、ｐＨ、グルコース、酸素レベル、二酸化炭素レベル、及び／又は光学密度を調整するように構成される。例えば、細胞工学システムが、細胞培養物の現在の酸素レベルが低すぎて所望の細胞培養サイズに必要な増殖を達成できないと検出した場合、細胞工学システムは、例えば、酸素化細胞培養培地を導入することによって、細胞培養培地を酸素化細胞培養培地で置き換えることによって、又は細胞培養培地を酸素供給コンポーネント（すなわち、シリコーンチューブ）に流すことによって、細胞培養物の酸素レベルを自動的に増加させる。別の実施例では、細胞工学システムが、細胞培養物の現在の温度が高すぎること、及び細胞が急速に増殖しすぎている（例えば、細胞の過密の可能性が望ましくない特性につながる可能性がある）ことを検出した場合、細胞工学システムは、細胞の安定した増殖速度（又は必要に応じて指数関数的な増殖速度）を維持するために、細胞培養物の温度を自動的に下げる。なおさらなる実施形態では、細胞工学システムは、細胞増殖速度及び／若しくは細胞数、又はｐＨ、酸素、グルコースなどの他のモニタリング因子に基づいて、細胞供給のスケジュール（すなわち、新鮮な培地及び／又は栄養素を細胞培養物に提供すること）を自動的に調整する。細胞工学システムは、培地（及び洗浄液などの他の試薬）を低温チャンバー（例えば、４℃又は−２０℃）に保存するように構成され、細胞培養物に加温された培地を導入する前に、室温チャンバー又は高温チャンバー（例えば、それぞれ２５℃又は３７℃）で培地を温めるように構成され得る。
【誤訳訂正６】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】０１３２
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【０１３２】
[00155]一部の実施形態では、細胞工学システムは、細胞生成方法（ＣＡＲ  Ｔ生成を含む）の間、チャンバー全体に二酸化炭素を提供する。ＣＯ２は、細胞培養の標的ｐＨを維持するのに役立ち、これは、細胞の成長（ｇｒｏｗｔｈ）と増殖（ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ）に重要である。一部の実施形態では、細胞工学システムは、細胞培養のＣＯ２レベルをモニタリングし、測定されたＣＯ２レベルに基づいて提供されるＣＯ２の量を調整する。例えば、細胞培養が増加するにつれて、細胞によって生成されるＣＯ２の量に対応する増加があり、細胞工学システムは提供されるＣＯ２の量を減らす。細胞培養の所望のＣＯ２レベルは、例えば、約１％、約２％、約３％、約４％、約５％、約６％、約７％、約８％、約９％、又は約１０％のＣＯ２であり、ユーザーによって定義され得る。細胞工学システムは、測定された細胞培養のＣＯ２レベルに基づいて、提供されるＣＯ２の量を絶えず調整しているため、細胞工学システムは、生成プロセス全体にわたって所望のＣＯ２レベルを維持することができる。溶存ＣＯ２は、一般的に、溶液を酸性化するため（水と反応して炭酸を形成するため）、細胞培養のＣＯ２量はまた培養物のｐＨに影響を与える可能性がある。したがって、細胞培養で安定したＣＯ２レベルを維持すると、より安定したｐＨが得られる場合がある。よって、実施形態では、細胞培養物のｐＨレベルは、生成プロセスの間、実質的に一定のままである。さらなる実施形態では、形質導入された細胞培養物のｐＨレベルは、拡大ステップの間、実質的に一定のままである。
【誤訳訂正７】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】０１３５
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【０１３５】
[00158]細胞培養物の増殖条件はまた、細胞収量を改善し得る。例えば、高いガス透過性チューブ及び細胞培養チャンバー内の連続的な酸素の再循環によって促進される、細胞工学システムのより高い酸素レベルは、細胞増殖を増加させる可能性がある。細胞培養の状態を絶えずモニタリングし、それに応じて調整を行う細胞工学システムの能力はまた有利であり得る。例えば、細胞工学システムは、細胞培養物のＣＯ２、Ｏ２、Ｎ２、及び／又はｐＨレベルをモニタリングし、ＣＯ２、Ｏ２、又はＮ２のレベルを調整することができる。栄養素はまた、タイムリーで一貫した方法で提供され、細胞培養物に均一に分配される。したがって、本明細書に記載されるＣＡＲ  Ｔ細胞を含む遺伝子修飾された免疫細胞を生成する自動化方法は、有利には、手動方法、又は柔軟性のある培養バッグを利用する方法と比較して、より高い細胞収量をもたらす。したがって、一部の実施形態では、本明細書に記載される細胞工学システムを利用するＣＡＲ  Ｔ細胞を含む遺伝子修飾された免疫細胞の自動化生成のための方法は、細胞培養用の柔軟性のあるガス透過性バッグを利用する方法よりも、少なくとも１０％多い、少なくとも１５％多い、少なくとも２０％多い、少なくとも２５％多い、少なくとも３０％多い、少なくとも３５％多い、少なくとも４０％多い、少なくとも４５％多い、少なくとも５０％多い、少なくとも５５％多い、少なくとも６０％多い、少なくとも６５％多い、少なくとも７０％多い、少なくとも７５％多い、少なくとも８０％多い、少なくとも８５％多い、少なくとも９０％多い、少なくとも９５％多い、又は少なくとも１００％多い細胞を生成する。実施形態では、本明細書に記載される方法によって生成される細胞の数は、少なくとも約２１億、少なくとも約２２億、少なくとも約２３億、少なくとも約２４億、少なくとも約２５億、少なくとも約２６億、少なくとも約２７億、少なくとも約２８億、少なくとも約２９億、又は少なくとも約３０億の細胞を含む、少なくとも約２０億（すなわち、２×１０９）細胞である。
【誤訳訂正８】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】０１５７
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【０１５７】
[00180]実施形態２２は、細胞工学システムが、ステップ（ａ）〜（ｅ）のうちの１つ又は複数の間に酸素供給コンポーネントを通じて細胞培養培地を再循環させる、実施形態１〜２１の方法を含む。
【誤訳訂正９】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】０１８９
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【０１８９】
[00212]実施形態５４は、細胞工学システムが、ステップ（ａ）〜（ｅ）のうちの１つ又は複数の間に酸素供給コンポーネントを通じて細胞培養培地を再循環させる、実施形態３１〜５３の方法を含む。
【誤訳訂正１０】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】０２２０
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【０２２０】
[00243]実施形態８５は、細胞工学システムが、ステップ（ａ）〜（ｅ）のうちの１つ又は複数の間に酸素供給コンポーネントを通じて細胞培養培地を再循環させる、実施形態６３〜８４の方法を含む。
【誤訳訂正１１】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】０２５１
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【０２５１】
[00274]実施形態１１６は、細胞工学システムが、ステップ（ａ）〜（ｅ）のうちの１つ又は複数の間に酸素供給コンポーネントを通じて細胞培養培地を再循環させる、実施形態９６〜１１５の方法を含む。
【誤訳訂正１２】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】０２６１
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【０２６１】
[00284]実施形態１２６は、形質導入が、第１の無菌の閉じた接続部を介して、活性化された免疫細胞培養物を第１のチャンバーからエレクトロポレーションユニットに移し、活性化された免疫細胞培養物をベクターでエレクトロポレーションを行い、形質導入された免疫細胞培養物を生成し、第２の無菌の閉じた接続部を介して、形質導入された免疫細胞培養物を細胞工学システムの第２のチャンバーに移すことを含む、実施形態１２５の方法を含む。
【誤訳訂正１３】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】０２８０
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【０２８０】
[00303]実施形態１４５は、細胞工学システムが、ステップ（ａ）〜（ｅ）のうちの１つ又は複数の間に酸素供給コンポーネントを通じて細胞培養培地を再循環させる、実施形態１２５〜１４４の方法を含む。
【誤訳訂正１４】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】０３５３
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【０３５３】
[00376]シリコーンチューブを介したガス交換はまた、ｐＨレベルをサポートする。つまり、培養の開始時に、培地はＣＯ２が豊富な環境とのガス交換によって標的ｐＨを維持する。培養中の細胞数が増加すると、細胞は乳酸及びＣＯ２を生成し、ＣＯ２環境の必要性を取り除く。コクーン環境のＣＯ２は、培養期間中に減少し、ｐＨの維持に役立った。パーマライフバッグは、培養プロセス全体を通じて５％ＣＯ２環境で保存される従来のプロトコールに従った。
【誤訳訂正１５】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】０３７０
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【０３７０】
[00396]コクーン（商標）ＡＣＴＥＳカセットは、ＢＤ  Ｑ−Ｓｙｔｅメスルアーロックエンドを備えた２つのサンプリングポート、並びにこれらの場所に無菌的に接続された、コクーン（商標）カセットからの接続チューブセットを介した細胞懸濁液の自動化移動を可能にするカニューレを備えた入口及び出口ポートを有する。ＰｏＣの研究中、コクーン（商標）カセット、エレクトロポレーションリザーバー、エレクトロポレーションカートリッジ、及び接続チューブセット間のコネクション（接続部；ｃｏｎｎｅｃｔｉｏｎ）は無菌的に接続され、コクーン（商標）とエレクトロポレーションシステム間の滅菌ループを次のように作製した。
【誤訳訂正１６】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】０３７１
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【０３７１】
[00397]ＩＣＵ  Ｍｅｄｉｃａｌのスピロス（登録商標）オスルアーロック終端コネクターを備えた接続チューブセットを、コクーン（商標）の２つのＢＤ  Ｑ−Ｓｙｔｅメスルアーロックサンプリングポートに接続した。コクーン（商標）カセットからエレクトロポレーションリザーバーへの滅菌経路を作製するために、接続チューブセットの他のスピロス（登録商標）オスルアーロックコネクション（ＩＣＵ  Ｍｅｄｉｃａｌ）をエレクトロポレーションリザーバーのメスルアーロック入口チューブに接続した。修飾エレクトロポレーションリザーバーをエレクトロポレーションカートリッジに接続するために、修飾エレクトロポレーションリザーバードレーンラインのメスルアーロック端部をエレクトロポレーションカートリッジ入口のスピロス（登録商標）オスルアーロックコネクション（ＩＣＵ  Ｍｅｄｉｃａｌ）に取り付けた。トランスフェクトされた細胞を回収するために、エレクトロポレーションカートリッジのスピロス（登録商標）オスルアーロック出力コネクションは、２番目のエレクトロポレーションリザーバーのメスルアーロックコネクター入口に接続された。２番目のエレクトロポレーションリザーバードレインラインのメスルアーロック端部は、コクーン（商標）カセットの２番目の自動化サンプリングポートにある接続チューブセットのスピロス（登録商標）オスルアーロックコネクターに接続された。
【誤訳訂正１７】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】０３７２
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【０３７２】
[00398]実施形態において、コクーン（商標）ポンプは、トランスフェクトされた細胞をコクーン（商標）増殖チャンバーに移し、細胞の無菌移動が可能な第２のエレクトロポレーションリザーバー又は他の回収容器を利用して、コクーン（商標）カセットの増殖チャンバーへの送達前に新たにトランスフェクトされた細胞を回収する。修飾エレクトロポレーションリザーバーの入口及び出口のＰＶＣチューブライン間の無菌ルアーロックコネクションの代わりに、無菌溶接技術を使用することができ、ＰＶＣチューブを備えた接続チューブセットが可能である。
【誤訳訂正１８】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】０３７３
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【０３７３】
[00399]本明細書に記載される細胞工学システム（コクーン）はまた、コクーン（商標）機器の中空シャフトを通じて内部コクーン（商標）環境から誘導されるチューブを介して、コクーン（商標）カセットとエレクトロポレーションユニット間の無菌の閉じた接続部を可能にする。「トランペットアーム」と呼ばれるこの中空シャフトは、主要なプロセスパラメータの制御を失うことなく、外部環境からコクーン（商標）培養チャンバーの内部環境へのアクセスを提供する。コクーン（商標）とエレクトロポレーションユニット間の細胞運動は、ペリスタポンプ及び２つの独立した制御システムのソフトウェアを使用したが、複合システムのソフトウェアも利用して、独立したポンプシステムを制御することができる。
【誤訳訂正１９】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】０３７６
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【０３７６】
[00402]前述のコクーン（商標）カセット、接続チューブセット、及び修飾エレクトロポレーションリザーバーコネクションを使用して（図１７）、１１ｍＬのリン酸緩衝液（Ｌｏｎｚａ）は、コクーン（商標）ポンプを使用してコクーン（商標）カセットから修飾エレクトロポレーションリザーバーに移された。エレクトロポレーションプログラムを使用して、ＰＢＳ溶液の模擬トランスフェクションを行い、１１ｍＬ体積を２番目の修飾エレクトロポレーションリザーバーに移動した。次に、コクーン（商標）ポンプ及びソフトウェアを使用して、１１ｍＬ体積を２番目の修飾エレクトロポレーションリザーバーからコクーン（商標）カセットの出力バッグに移した。コクーン（商標）リザーバーからサテライトバッグに移動される量は、１回の実行で１１ｍＬと推定された。実際の体積は、最初の修飾エレクトロポレーションリザーバー、２番目の修飾エレクトロポレーションリザーバー、及びコクーン（商標）出力バッグに移した後、血清ピペットを使用して測定された。通過基準は、最初の修飾エレクトロポレーションリザーバーからコクーン（商標）出力バッグへの≧９０％の流体回収率で確立された。
細胞懸濁液試験
[00403]１×１０８及び５×１０８の総生存可能なＰＢＭＣは、滅菌コクーン（商標）ＡＣＴＥＳカセットの５％ヒト血清Ａ／Ｂ（Ｓｉｇｍａ）及び１０ｎｇ／ｍＬのＩＬ−２（Ｐｅｐｒｏｔｅｃｈ）が補足されたＸ−ＶＩＶＯ  １５培地（Ｌｏｎｚａ）で構成される４５０ｍＬの完全Ｔ細胞培地で拡大される。３日目に、４４０ｍＬの培養上清を取り出し、無菌性及びマイコプラズマ試験のために保持する。細胞は、９０ｍＬの補足Ｐ３エレクトロポレーション溶液（Ｌｏｎｚａ）で希釈される。次に、細胞をコクーン（商標）カセットで約１０ｍＬの細胞懸濁液に濃縮し、コクーン（商標）サテライトバッグに移す。追加１０ｍＬの補足Ｐ３エレクトロポレーション溶液で増殖チャンバーを洗浄し、コクーン（商標）サテライトバッグの細胞懸濁液に添加するオプションが評価される。Ｎｕｃｌｅｏｃｏｕｎｔｅｒ  ＮＣ−２００（Ｃｈｅｍｏｍｅｔｅｃ）、マイコプラズマを使用して重複した細胞数を測定するために、サテライトバッグ内の濃縮細胞から試料を取り出し、無菌状態を保持する。次に、前述のように、コクーン（商標）ポンプ及び接続チューブセットを介して、細胞を修飾エレクトロポレーションリザーバーに移す。エレクトロポレーションユニットポンプ及びＥＯ−２１０プログラムを使用して、Ｔ細胞にｐｍａｘ  ＧＦＰベクター（Ｌｏｎｚａ）をトランスフェクトし、トランスフェクトされた細胞を２番目の修飾エレクトロポレーションリザーバーに移す。次に、コクーン（商標）ポンプは、修飾エレクトロポレーションリザーバーからコクーン（商標）ＡＣＴＥＳカセットの増殖チャンバーに細胞を移す。重複細胞数、マイコプラズマ、及び無菌性試験のために、ＡＣＴＥＳカセット増殖チャンバーから細胞の試料を取り出す。この手順は、細胞がトランスフェクトされないが、代わりに模擬エレクトロポレーションプログラムＣＡ−１００を使用してエレクトロポレーションユニットを通過する対照培養物で繰り返される。この手順は、３人の異なるドナーを使用して評価される；新たに単離されたものと凍結保存されたＰＢＭＣロットの両方である。
【誤訳訂正２０】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】０３７９
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【０３７９】
コクーン（商標）とエレクトロポレーションユニット間で移動されたトランスフェクトされた細胞の拡大
[00406]１×１０８及び５×１０８の総生存可能なＰＢＭＣをコクーン（商標）カセットで拡大及び濃縮し、エレクトロポレーションＬＶユニットの滅菌コネクションを介してトランスフェクトし、「オクタンコクーン（商標）とエレクトロポレーションＬＶユニット間の細胞間の移動、細胞懸濁液テスト」に関する方法セクションで前述したように、コクーン（商標）に滅菌的に移す。トランスフェクトされた細胞は、最も関連性の高い、最適化された自動化コクーン（商標）プロトコールを使用して、コクーン（商標）カセット増殖チャンバーで最大１５日間培養される。対照は、Ｔ−２２５フラスコ（Ｃｏｒｎｉｎｇ）又はＧＲＥＸ  １００（Ｗｉｌｓｏｎ  Ｗｏｌｆ）培養容器で３日間拡大される。３日目に、対照培養を無菌的及び手動で濃縮し、エレクトロポレーションＬＶユニットＥＯ−２１０プログラムを介してトランスフェクトし、最大１５日間の継続的な拡大のために元の容器に戻す。この手順は、新たに単離され又は凍結保存されたＰＢＭＣロットからの３人の異なるドナーを使用して評価される。