(57)【要約】【課題】  通常の条件下で蛋白質分解酵素によるプロテオリシスが困難である蛋白質または蛋白質集合体を効果的に、ペプチドまたはアミノ酸に分解する。【解決手段】  本発明の蛋白質の分解方法では、従来酵素によるプロテオリシスが行われない難分解性の蛋白質または蛋白質集合体を、酵素の存在下で、加圧下に置く。加圧下で難分解性の蛋白質または蛋白質集合体の立体構造が変化し、酵素によるプロテオリシスを受け易い構造になる。この立体構造の変化した蛋白質が酵素により分解される。。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
常圧下においてプロテオリシス抵抗性の蛋白質または蛋白質集合体を加圧下で酵素の存在下で分解する、蛋白質の分解方法。
【請求項２】
前記プロテオリシス抵抗性の蛋白質集合体は、同一または異なる蛋白質単体が会合した蛋白質集合体である、請求項１に記載の蛋白質の分解方法。
【請求項３】
前記加圧により、蛋白質の配座異性体の構造を変化させる、および／または蛋白質集合体を蛋白質単体に解離させた上で配座異性体の構造を変化させる、請求項１または２に記載の蛋白質の分解方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、常圧下においてプロテオリシス抵抗性の蛋白質または蛋白質集合体を分解する、蛋白質の分解方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
酵素によるプロテオリシスが、加圧により促進される例は知られている（例えば、非特許文献１参照）。非特許文献１では、反応速度論による見かけの活性化体積が負になることから、反応の促進は、圧力による酵素自身の活性の増大によるものであると分析された。
【０００３】
一方、蛋白質には、通常の蛋白質分解酵素によるプロテオリシスが困難な蛋白質または蛋白質集合体が存在することが知られている。これらの蛋白質または蛋白質集合体では、ポリペプチド鎖は折れたたまれて堅固な構造をとるため、そのままでは蛋白質分解酵素の触媒部位に結合できないか、たとえ結合しても分解されない。そのため、通常の条件下では蛋白質分解酵素によるプロテオリシスが困難となる。
【０００４】
また、蛋白質集合体の中でも多くの神経変性疾患やアミロイド疾患では、その病態から、配座異性化した蛋白質分子の線維状集合体の蓄積が病因と関わっていると考えられている。これらの線維状集合体は、通常の蛋白質分解酵素によるプロテオリシスが極めて困難である。
【０００５】
したがって、通常の条件下で蛋白質分解酵素によるプロテオリシスが困難であるこれらの蛋白質または蛋白質集合体を効果的に分解することが重要となる。
【非特許文献１】Ｍｏｒｉｌｄ，Ｅ．，「Ｔｈｅ  ｔｈｅｏｒｙ  ｏｆ  ｐｒｅｓｓｕｒｅ  ｅｆｆｅｃｔｓ  ｏｎ  ｅｎｚｙｍｅ」,  Ａｄｖ．Ｐｒｏｔ．  Ｃｈｅｍ．,  ３４巻、ｐｐ９３−１６６、（１９８１）
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
すなわち、本発明は、上記問題に鑑みなされたものであり、その目的は、通常の条件下で蛋白質分解酵素によるプロテオリシスが困難である蛋白質または蛋白質集合体を効果的に、ペプチドまたはアミノ酸に分解する方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者らは、加圧下における蛋白質の態様について研究を重ねてきた。その結果、通常の条件下では蛋白質分解酵素によるプロテオリシスが困難である蛋白質または蛋白質集合体を、蛋白質分解酵素の存在下で加圧することにより、これらの蛋白質が分解される新たな機構を見出し、本発明を完成した。すなわち、本発明は以下のとおりである。
【０００８】
本発明の蛋白質の分解方法では、常圧下においてプロテオリシス抵抗性の蛋白質または蛋白質集合体を加圧下で酵素の存在下で分解する。
【０００９】
前記プロテオリシス抵抗性の蛋白質集合体は、同一または異なる蛋白質単体が会合した蛋白質集合体であってもよい。
【００１０】
難分解性の蛋白質を効率的に分解する新たな機構では、前記加圧により、分解されるべき蛋白質の配座異性体の構造（立体構造）を変化させる、および／または分解されるべき蛋白質集合体を蛋白質単体に解離させ、さらに配座異性体（立体構造）の構造を変化させる。
【発明の効果】
【００１１】
本発明の方法では、従来酵素によるプロテオリシスが行われない難分解性の蛋白質または蛋白質集合体を、酵素の存在下で、加圧下に置く。加圧下で難分解性の蛋白質または蛋白質集合体の立体構造が変化し、酵素によるプロテオリシスを受け易い構造になる。この立体構造の変化した蛋白質が酵素により分解される。この結果、常圧下においてプロテオリシス抵抗性の蛋白質または蛋白質集合体を酵素により分解することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１２】
【図１】図１は、上記試料溶液を、３７℃で１ｂａｒ（０．１ＭＰａ）〜３５００ｂａｒ（３５０ＭＰａ）間で段階的に圧力を変え、５０分間処理をした結果を示すＳＤＳ−ＰＡＧＥの写真である。
【図２】図２は、トリプトファンの蛍光を用いて、加圧下におけるα−キモトリプシン固有の折りたたみ配座異性体の安定性を測定した結果を示すグラフである。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１３】
以下に、本発明を詳細に説明する。本発明の蛋白質の分解方法は、常圧下においてプロテオリシス抵抗性の蛋白質または蛋白質集合体を加圧下で酵素の存在下で分解するものである。
【００１４】
［蛋白質］
本発明の分解の対象となる蛋白質は、常圧下においてプロテオリシス抵抗性の蛋白質または蛋白質集合体である。例えば、球状蛋白質、線維状蛋白質などの蛋白質、同一または異なる蛋白質単位が会合した蛋白質集合体である。本発明の方法を用いると、これらの蛋白質または蛋白質集合体を効率よく分解することができる。これらの蛋白質または蛋白質集合体には、分解効率は悪くとも常圧下で、酵素による分解を受けるものあるいは酵素なしに高圧下で分解する蛋白質を含んでいてもよい。本発明の方法において、特に優れている点は、常圧では酵素による分解を受けない蛋白質または蛋白質集合体を、高圧下で分解することができることである。
【００１５】
本発明の分解の対象となる蛋白質または蛋白質集合体は、上記のものであれば特に制限はない。これらの蛋白質は蛋白質単独でも、あるいは食品、ウイルス、医療用器具または金属・ガラス・セラミックス等への付着物または廃棄物等に含まれるものであっても良く、生体に存在するものであっても良い。例えば、ユビキチンなどの球状蛋白質、コラーゲンや筋肉などの線維状蛋白質、アミロイド線維などである。
【００１６】
［分解のメカニズム］
本発明者らは、高圧ＮＭＲ（Ｎｕｃｌｅａｒ  Ｍａｇｎｅｔｉｃ  Ｒｅｓｏｎａｎｃｅ：核磁気共鳴）を用いて蛋白質の構造に関する研究を長年行ってきた。この研究により、蛋白質の構造における新しい熱力学的特徴が解明されてきた。例えば、球状蛋白質の一例として、ユビキチンが知られている。ユビキチンは、７６個のアミノ酸からなる小分子の蛋白質である。ユビキチンは、蛋白質分解のタグなどの機能を有する。ユビキチンは、基本的な折りたたみ構造を有する。本発明者らは、極めて生理的な状態においてでさえも、ユビキチンが、基本的な折りたたみ配座異性体（フォールド構造）だけでなく、局所開裂配座異性体（局所オープン構造）、部分的な無秩序配座異性体（局所変性構造）、無秩序配座異性体（完全変性構造）などを含む様々な配座異性体（コンフォーメーション）の間に動的平衡が存在することを見出した。しかしユビキチンにおいて、通常の状態では平衡はほとんど基本的な折りたたみ配座異性体に傾き、部分的な無秩序配座異性体、無秩序配座異性体は、極めて少ない。このため、ユビキチンは、α−キモトリプシンによるプロテオリシスに強く抵抗する。しかしながら、一般に生理条件に近い水溶液中では、無秩序配座異性体の実効体積は、基本的な折りたたみ配座異性体の実効体積と比べて、小さいことが知られている。
【００１７】
この水溶液に１キロバール（１ｋｂａｒ（１００ＭＰａ））程度の圧力を加えると、体積の小さな無秩序配座異性体の濃度が劇的に増大する。これは、配座異性体間の実効体積の差ΔＶによって、もともと少ない無秩序配座異性体の割合が、圧力に対して指数関数式
ｅｘｐ（−ＰΔＶ/ＲＴ）に従って増加するためである。ここにＰは圧力、ΔＶは折りたたみ配座異性体が無秩序配座異性体に変わるときの体積変化（通常は負）、Ｒは気体定数、Ｔは絶対温度である。この式から、ΔＶの値が判ると、加圧により無秩序配座異性体の割合がいくら増えるのかがわかる。ΔＶの値は蛋白質の種類、温度、溶媒条件等によって異なるが、高圧ＮＭＲまたは高圧蛍光法等の公知の方法を用いて予め決定しておくことができる。例えばΔＶ＝−９０ｍｌ／ｍｏｌの場合、  ２０００ｂａｒ（２００ＭＰａ）まで加圧すると無秩序配座異性体の割合は１０００倍程度増える。
【００１８】
無秩序配座異性体では蛋白質分子は軟らかく、簡単に酵素の活性中心にはまり込むため、酵素による迅速な加水分解を受ける。すなわち、本発明は、酵素によるプロテオリシスを受け易い無秩序配座異性体の濃度を、加圧により劇的に増加させ、ペプチドやアミノ酸へと加水分解するものである。無秩序配座異性体は、基本的な折りたたみ配座異性体と動的平衡にあるため、分解されてもまた基本的な折りたたみ配座異性体から供給される。このようにして蛋白質の加水分解反応が進行し、一定時間が経過すると、折りたたみ配座異性体を含む全ての蛋白質分子が分解されてしまう。
【００１９】
なお、上記構成は、ユビキチンを例にして説明したが、これに限定されるものではなく、他の蛋白質や、同一または異なる蛋白質単体が会合した蛋白質集合体なども同様のメカニズムである。
【００２０】
また、蛋白質集合体の場合は、反応は２段階に起こる。まず、加圧により蛋白質集合体が蛋白質単体（多くは基本的な折りたたみ配座異性体）に解離し、解離した蛋白質単体が加圧下で無秩序配座異性体へと転移して酵素により分解される。
【００２１】
このように、本発明の蛋白質の分解方法では、加圧によって蛋白質の配座異性体の構造の変化あるいは蛋白質集合体の解離と配座異性体の構造の変化を引き起こし、酵素による蛋白質分解を行う。
【００２２】
適用する圧力は、分解対象である蛋白質により最適の値を選択すればよい。例えば、５００ｂａｒ（５０ＭＰａ）、１０００ｂａｒ（１００ＭＰａ）、さらに２０００ｂａｒ（２００ＭＰａ）等である。圧力の上限は、特に制限はないが、酵素の機能を阻害しない程度であれば良い。例えばα−キモトリプシンの場合、３０００ｂａｒ（３００ＭＰａ）以下である。
【００２３】
使用する酵素は特に制限はなく、通常のプロテオリシスに用いられる酵素を使用することができる。例えば、α−キモトリプシン、ペプシン、ズブチリシン、プロテアーゼＫなどである。
【００２４】
本発明の蛋白質の分解方法では、分解対象である蛋白質と分解酵素とを例えばトリス−塩酸緩衝液などの緩衝液などに溶解または分散させたものを耐圧容器に入れて、加圧する。反応時間は、加圧する圧力、分解対象である蛋白質、使用する酵素の種類などにより異なる。加圧する圧力、分解対象である蛋白質、使用する酵素の種類などを考慮して、適する反応条件を適宜決定すすればよい。また、温度やｐＨは、使用する酵素が機能を発揮する温度、ｐＨ領域を適宜選択すればよい。
【００２５】
本発明の蛋白質の分解方法を用いて、従来酵素で分解できない、または困難とされていたさまざまな蛋白質や蛋白質集合体を、加圧によって、酵素を用いた温和な条件下で分解することができる。この方法を、例えば、食品の安全性・栄養価・消化性の向上、疾患の原因となる異常化蛋白質集合体・ウイルス等の除去、医療用器具・廃棄物等に付着した難分解性蛋白質の除去などに利用することができる。
【実施例】
【００２６】
以下、実施例により本発明を説明するが、本発明はかかる実施例に限定されるものではない。
【００２７】
（実験）
ユビキチン（シグマ社製）とウシの膵臓タイプＩＩのα−キモトリプシン（シグマ社製）とを、さらに精製せずに用いた。試料液として、ユビキチン（３１μＭ）、α−キモトリプシン（３μＭ）を含む、１０ｍＭ  トリス−塩酸緩衝液（ｐＨ７．０）を用いた。この溶液を、それぞれ上限４０００ｂａｒ（４００ＭＰａ）まで異なる圧力で、最大６０分まで時間間隔を変えて、ハンドポンプ（ＴＰ−５００、Ｔｅｒａｍｅｃｓ社製）に接続した高圧容器（ＰＣＩ−４００）に入れた。試料溶液の温度は、３７℃に保った。圧力は、５分以内に所望の圧力になるように加圧した。加圧後適当な時間が経過した後、１分以内に１ｂａｒ（０．１ＭＰａ）まで減圧した。その後、ユビキチンの分解を調べるために、反応生成物をＳＤＳ−ＰＡＧＥ（ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動）で分析した。
【００２８】
α−キモトリプシン（３μＭ／１０ｍＭ  トリス−塩酸緩衝液（ｐＨ７．０））の圧力に対する形態安定性は、別個に、３７℃で１ｂａｒ（０．１ＭＰａ）〜４０００ｂａｒ（４００ＭＰａ）まで圧力を変えて、トリプトファン（Ｔｒｐ）の蛍光を測定した。装置は、ハンドポンプ（ＴＰ−５００、Ｔｅｒａｍｅｃｓ社製）に接続した高圧容器（ＰＣＩ−４００）を備えた蛍光分光光度計（島津製作所（株）製、ＲＦ−５３００ＰＣ）を用いた。
【００２９】
（結果）
図１は、上記試料溶液を、３７℃で１ｂａｒ（０．１ＭＰａ）〜３５００ｂａｒ（３５０ＭＰａ）間で段階的に圧力を変えて、５０分間処理をした結果を示す、ＳＤＳ−ＰＡＧＥの写真である。図１において、各レーンは、左から、Ｕｂ（ユビキチン）、ＣＴ（α−キモトリプシン）、ａ（圧力：１ｂａｒ（０．１ＭＰａ））、ｂ（圧力：５００ｂａｒ（５０ＭＰａ））、ｃ（圧力：１０００ｂａｒ（１００ＭＰａ））、ｄ（圧力：１５００ｂａｒ（１５０ＭＰａ））、ｅ（圧力：２０００ｂａｒ（２００ＭＰａ））、ｆ（圧力：２５００ｂａｒ（２５０ＭＰａ））、ｇ（圧力：３５００ｂａｒ（３５０ＭＰａ））を意味する。また、ユビキチンは、各レーンの下側に存在するバンドであり、α−キモトリプシンは、１４．４ｋＤａと３０ｋＤａ付近に２つのバンドが存在する。
【００３０】
図１から、圧力が１ｂａｒ（０．１ＭＰａ）では、ユビキチンの分解はほとんど起こらないことがわかる。しかし、加圧によりユビキチンが分解されたことがわかる。圧力が５００ｂａｒ（５０ＭＰａ）で、わずかにユビキチンが分解し始め、１０００ｂａｒ（１００ＭＰａ）、１５００ｂａｒ（１５０ＭＰａ）まで、ユビキチン分子の減少が続く。圧力が２０００ｂａｒ（２００ＭＰａ）で、ユビキチンのバンドはほぼ完全に消滅し、ユビキチンが分解されたことがわかる。すなわち、α−キモトリプシンによるユビキチンの分解には、５０分という圧力処理時間において、少なくとも２０００ｂａｒ（２００ＭＰａ）が必要であることがわかる。
【００３１】
図２は、加圧下におけるα−キモトリプシン固有の折りたたみ配座異性体の構造安定性を、トリプトファンの蛍光によって測定した結果を示す。図２において、横軸は波長（ｎｍ）を、縦軸は強度（ａ．ｕ．）を示す。最大発光波長（λｍａｘ）は、初期は３３２．２ｎｍであった。このことから、トリプトファン残基は、α−キモトリプシンの折りたたみ構造の中に埋め込まれていることを示唆した。加圧後、３０００ｂａｒ（３００ＭＰａ）以下では、λｍａｘは３３２〜３３６ｎｍ内にとどまった。このことから、３０００ｂａｒ（３００ＭＰａ）以下の加圧では、α−キモトリプシン中のトリプトファン残基の状態に大きな変化がないことがわかる。一方、３．８ｋｂａｒ（３８０ＭＰａ）に加圧した場合、λｍａｘは、３５０．５ｎｍに変化した。このことから、この圧力では、α−キモトリプシンはほぼ完全に変性していると考えられる。以上から、３０００ｂａｒ（３００ＭＰａ）以下の加圧では、１ｂａｒ（０．１ＭＰａ）の加圧の場合と同等ではないとしても、α−キモトリプシンの触媒作用に大きな影響がないことがわかった。
【図２】
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【図１】
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