(57)【要約】【課題】目的タンパク質を安定かつ大量に発現し且つ精製も容易となる、葉緑体等の色素体を利用した一連の技術を提供する。【解決手段】植物の色素体に目的遺伝子を導入して発現させるためのベクターであって、多角体遺伝子と、前記目的遺伝子を挿入可能なクローニング部位とを有するベクターが提供される。本発明のベクターを用いて葉緑体等の色素体に目的遺伝子を導入することにより、色素体内で、目的タンパク質が多角体に格納された形で発現される。色素体に多角体遺伝子と目的遺伝子とが導入され、多角体遺伝子と目的遺伝子とを色素体内で発現可能である組換え植物、当該組換え植物を用いた目的タンパク質の製造方法も提供される。【選択図】図６
2010029069.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
植物の色素体に目的遺伝子を導入して発現させるためのベクターであって、多角体遺伝子と、前記目的遺伝子を挿入可能なクローニング部位とを有することを特徴とするベクター。
【請求項２】
前記色素体は、葉緑体であることを特徴とする請求項１に記載のベクター。
【請求項３】
前記色素体内で作用するプロモーターをさらに有し、当該プロモーターは前記多角体遺伝子を制御可能であることを特徴とする請求項１又は２に記載のベクター。
【請求項４】
前記クローニング部位は、前記プロモーターが制御可能な位置に設けられていることを特徴とする請求項３に記載のベクター。
【請求項５】
前記プロモーターは、ｐｓｂＡプロモーターであることを特徴とする請求項３又は４に記載のベクター。
【請求項６】
前記多角体遺伝子は、Bombyx mori cypovirus由来のものであることを特徴とする請求項１〜５のいずれかに記載のベクター。
【請求項７】
色素体に多角体遺伝子と目的遺伝子とが導入され、多角体遺伝子と目的遺伝子とを色素体内で発現可能であることを特徴とする組換え植物。
【請求項８】
請求項１〜６のいずれかに記載のベクターによって目的遺伝子が色素体に導入されてなり、多角体遺伝子と目的遺伝子とを色素体内で発現可能であることを特徴とする組換え植物。
【請求項９】
前記色素体は、葉緑体であることを特徴とする請求項７又は８に記載の組換え植物。
【請求項１０】
請求項７〜９のいずれかに記載の組換え植物の組織から、前記目的遺伝子がコードする目的タンパク質を多角体タンパク質の内部に格納された形で取得することを特徴とするタンパク質の製造方法。
【請求項１１】
前記組織は、葉であることを特徴とする請求項１０に記載のタンパク質の製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ベクター、組換え植物、並びに、タンパク質の製造方法に関し、さらに詳細には、葉緑体等の色素体内で目的タンパク質を多角体として発現可能なベクター、色素体に多角体遺伝子と目的遺伝子とが導入された組換え植物、並びに、当該組換え植物から目的タンパク質を多角体タンパク質の内部に格納された形で取得するタンパク質の製造方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
カイコに感染するウイルスが作る多角体タンパク質を利用した遺伝子発現系が開発されている（非特許文献１）。そして、特定のペプチドを付加した任意の目的タンパク質と多角体タンパク質とを同時に発現させることにより、多角体タンパク質の結晶に目的タンパク質を固定化（多角体の内部に格納）できることが知られている（非特許文献２）。この技術を利用して細胞増殖因子などの有用タンパク質を固定化し、再生医療などに応用することが期待されている。
【０００３】
一方、植物に目的タンパク質をコードする遺伝子を導入し、当該目的タンパク質を生産させる技術について、様々な基礎研究が行われている。一般に、植物によれば目的タンパク質を低コストで生産させることができる。例えば、経口ワクチンを米で生産する技術（非特許文献３）や、葉緑体遺伝子組換え技術を用いてワクチンを生産する技術（非特許文献４，５）が知られている。
【０００４】
【非特許文献１】コウリバリー（Coulibaly）ら，ネイチャー（Nature），２００７年３月１日，第４４６巻，ｐ．９７−１０１
【非特許文献２】モリ（Mori）ら，ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー（Journal of Biological Chemistry），２００７年，第２８２巻，ｐ．１７２８９−１７２９６
【非特許文献３】ノチ（Nochi）ら，ザ・プロシーディング・オブ・ザ・ナショナル・アカデミー・オブ・サイエンシーズ・オブ・ザ・ＵＳＡ（The Proceedings of the National Academy of Sciences of the U.S.A.），２００７年，第１０４巻，ｐ.１０９８６−１０９９１
【非特許文献４】チェボル（Chebolu）ら，プラント・バイオテクノロジー・ジャーナル（Plant Biotechnology Journal），２００７年，第５巻，ｐ.２３０−２３９
【非特許文献５】ダニエル（Daniell）ら，ジャーナル・オブ・モレキュラー・バイオロジー（Journal of Molecular Biology），２００１年，第３１１巻，ｐ.１００１−１００９
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
多角体タンパク質の発現系としては、これまで、昆虫細胞を用いた系が主に採用されてきた。しかし、この系を利用して目的タンパク質を生産する場合には、（１）培養タンクなどの初期投資コストが高い、（２）培養に必要な原料費の変動の影響を受けやすい、（３）ウイルスを使用するため安全性に関するリスクを伴う、といった問題点がある。
【０００６】
植物に目的タンパク質を生産させる場合で、核遺伝子組換え技術を利用する場合は、（１）タンパク質の発現量が低く、株によっても発現量が大きく変わる、（２）複数の遺伝子（例えば、多角体タンパク質と目的タンパク質の各遺伝子）を同時に発現する植物体の作製に長い年月を要する、（３）花粉を介した遺伝子汚染のリスクがある、といった問題点がある。
【０００７】
一方、植物に目的タンパク質を生産させる場合で、葉緑体等の色素体の遺伝子組換え技術を利用する場合は、（１）タンパク質の発現量が非常に高く、安定している、（２）複数の遺伝子の同時発現が容易、（３）母性遺伝するため花粉を介した遺伝子汚染のリスクはほとんどない、といった利点を有する。これらの利点は上記した他の発現系の問題点をほぼ解消するものである。しかしながら、（４）目的タンパク質の種類によっては発現産物が安定して蓄積しない、（５）発現したタンパク質の精製が煩雑である、といった問題点があり、これらの課題を解決する技術開発が望まれている。
【０００８】
上記現状に鑑み、本発明は、目的タンパク質を安定かつ大量に発現し且つ精製も容易となる、葉緑体等の色素体を利用した一連の技術を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
上記した課題を解決するための請求項１に記載の発明は、植物の色素体に目的遺伝子を導入して発現させるためのベクターであって、多角体遺伝子と、前記目的遺伝子を挿入可能なクローニング部位とを有することを特徴とするベクターである。
【００１０】
本発明は植物の色素体に目的遺伝子を導入して発現させるためのベクターに係るものであり、多角体遺伝子と、前記目的遺伝子を挿入可能なクローニング部位とを有する。本発明のベクターのクローニング部位に目的タンパク質をコードする遺伝子（目的遺伝子）を挿入して色素体に導入すると、色素体内で多角体遺伝子と目的遺伝子とが同時に発現可能となる。その結果、色素体内で、目的タンパク質を多角体タンパク質の内部に格納された状態（多角体タンパク質に固定化された状態）で発現させることができる。本発明のベクターによれば、色素体内で目的タンパク質が安定に蓄積できる組換え植物を作製することができ、目的タンパク質の単離・精製が極めて容易となる。
【００１１】
請求項２に記載の発明は、前記色素体は、葉緑体であることを特徴とする請求項１に記載のベクターである。
【００１２】
本発明のベクターは、葉緑体に目的遺伝子を導入して発現させるためのものである。葉緑体はそのゲノム配列の解明も進んでおり、発現系もよく研究されている。本発明のベクターによれば、目的タンパク質を安定に生産できる組換え植物をきわめて容易に作製することができる。
【００１３】
請求項３に記載の発明は、前記色素体内で作用するプロモーターをさらに有し、当該プロモーターは前記多角体遺伝子を制御可能であることを特徴とする請求項１又は２に記載のベクターである。
【００１４】
本発明のベクターは、色素体内で作用するプロモーターをさらに有するものであり、当該プロモーターが多角体遺伝子を制御可能である。本発明では、ベクター自身が有するプロモーターで多角体遺伝子を制御できるので、色素体内における多角体遺伝子の発現を容易かつ確実に制御することができる。
【００１５】
請求項４に記載の発明は、前記クローニング部位は、前記プロモーターが制御可能な位置に設けられていることを特徴とする請求項３に記載のベクターである。
【００１６】
本発明のベクターでは、クローニング部位がベクター上のプロモーターが制御可能な位置に設けられている。かかる構成により、多角体遺伝子と挿入された目的遺伝子とを同じプロモーターの制御下に置くことができ、色素体に導入する際のベクターの構成を簡略化することができる。
【００１７】
前記プロモーターがｐｓｂＡプロモーターである構成が好ましい（請求項５）。
【００１８】
前記多角体遺伝子がBombyx mori cypovirus由来のものである構成が好ましい（請求項６）。
【００１９】
請求項７に記載の発明は、色素体に多角体遺伝子と目的遺伝子とが導入され、多角体遺伝子と目的遺伝子とを色素体内で発現可能であることを特徴とする組換え植物である。
【００２０】
また請求項８に記載の発明は、請求項１〜６のいずれかに記載のベクターによって目的遺伝子が色素体に導入されてなり、多角体遺伝子と目的遺伝子とを色素体内で発現可能であることを特徴とする組換え植物である。
【００２１】
本発明は組換え植物に係るものであり、色素体に多角体遺伝子と目的遺伝子とが導入されている。そして、本発明の組換え植物は、多角体遺伝子と目的遺伝子とを色素体内で発現可能である。本発明の組換え植物によれば、目的タンパク質が多角体タンパク質の内部に格納された状態で色素体内で発現されるので、目的タンパク質を葉などの組織から容易に取得することができる。
【００２２】
請求項９に記載の発明は、前記色素体は、葉緑体であることを特徴とする請求項７又は８に記載の組換え植物である。
【００２３】
かかる構成により、葉などの組織から目的タンパク質を容易かつ大量に取得することができる。
【００２４】
請求項１０に記載の発明は、請求項７〜９のいずれかに記載の組換え植物の組織から、前記目的遺伝子がコードする目的タンパク質を多角体タンパク質の内部に格納された形で取得することを特徴とするタンパク質の製造方法である。
【００２５】
本発明はタンパク質の製造方法に係るものであり、本発明の組換え植物から目的タンパク質を多角体タンパク質の内部に格納された形で取得する。本発明のタンパク質の製造方法によれば、目的タンパク質を多角体タンパク質に固定化された状態で回収することができるので、タンパク質の単離・精製が容易である。さらに、目的タンパク質の収量も高いものとなる。
【００２６】
請求項１１に記載の発明は、前記組織は、葉であることを特徴とする請求項１０に記載のタンパク質の製造方法である。
【００２７】
かかる構成により、葉緑体に蓄積された目的タンパク質（多角体タンパク質の内部に格納されている）を容易かつ効率的に取得することができる。
【発明の効果】
【００２８】
本発明のベクターによれば、目的遺伝子を多角体遺伝子と同時発現可能な状態で葉緑体等の色素体内に導入することができる。その結果、目的タンパク質が安定に蓄積できる組換え植物を作製することができ、色素体からの目的タンパク質の単離・精製が極めて容易となる。
【００２９】
本発明の組換え植物についても同様であり、葉緑体等の色素体内に目的タンパク質が安定に蓄積できるとともに、色素体からの目的タンパク質の単離・精製が極めて容易となる。
【００３０】
本発明のタンパク質の製造方法によれば、目的タンパク質が高収量で得られるとともに、目的タンパク質の単離・精製が極めて容易となる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００３１】
本発明の１つの様相は、植物の色素体に目的遺伝子を導入して発現させるためのベクターであって、多角体遺伝子と、前記目的遺伝子を挿入可能なクローニング部位とを有することを特徴とするベクターである。本発明のベクターは「植物の色素体で目的遺伝子を発現させる」ためのものであり、色素体内で生物学的に活性なものである。具体的には、色素体ゲノムに組み込み可能であるか自己複製可能であること、多角体遺伝子と目的遺伝子が色素体内で適宜のプロモーターで制御されること、等の機能を有している。
【００３２】
色素体の例としては、葉緑体、アミロプラスト、クロモプラスト等を挙げることができる。好ましい実施形態では、色素体が葉緑体である。
【００３３】
本発明のベクターにおける多角体遺伝子と挿入される目的遺伝子を制御するプロモーターは、色素体内で作用するプロモーターであればよく、色素体ゲノム上に存在するプロモーターでもよいし、ベクター上のプロモーターでもよい。目的遺伝子と共にプロモーターを挿入してもよい。好ましい実施形態では、ベクターは、色素体内で作用するプロモーターをさらに有し、当該プロモーターは前記多角体遺伝子を制御可能である。本実施形態で採用されるベクター上のプロモーターは、色素体内で作用するプロモーターであれば特に限定はなく、各種のものが採用可能である。バクテリア等の他の生物由来のプロモーターであっても、色素体内で作用できるものであれば採用できる。プロモーターの具体例としては、ｐｓｂＡプロモーター、ｒｂｃＬプロモーター、ｒｒｎプロモーター、ａｃｃＤプロモーター、ｐｓｂＤプロモーター、等が挙げられる。より好ましい実施形態では、プロモーターがｐｓｂＡプロモーターである。ｐｓｂＡプロモーターは高発現性のプロモーターであり、目的タンパク質の生産に有利である。
【００３４】
本発明のベクターが有する多角体遺伝子の由来としては特に限定はないが、例えば、Bombyx mori cypovirus由来の多角体遺伝子（Arella, M. et al., J. Virol., 62:211, 1988 に記載）を採用することができる。
【００３５】
本発明のベクターは、目的遺伝子が挿入可能なクローニング部位を有する。例えば、適宜の制限酵素サイトを配置することにより、クローニング部位とすることができる。クローニング部位の位置としては特に限定はないが、好ましい実施形態では、多角体遺伝子を制御するベクター上のプロモーターが制御可能な位置に設けられている。本実施形態では、多角体遺伝子と目的遺伝子の両方をベクター上のプロモーターで制御できるので、ベクターの構成を簡略化できる。クローニング部位は、多角体遺伝子の上流・下流のいずれに設けてもよい。
【００３６】
上記のように、本発明のベクターは、少なくとも多角体遺伝子とクローニング部位を有するが、その他の要素をさらに有してもよい。他の要素としては、薬剤耐性遺伝子（スペクチノマイシン耐性遺伝子等）、各種の制御配列（プロモーター、ターミネーター等）、タンパク質の翻訳効率やｍＲＮＡの安定性に寄与するＵＴＲ（Untranslated Region）、リボゾーム結合部位（ＲＢＳ）をコードする配列、シグナルペプチドをコードする配列、色素体ゲノムの一部と相同性を有する配列、などが挙げられる。
【００３７】
本発明のベクターに挿入される目的遺伝子は、コード領域のみからなるものでもよいし、他の配列を伴ったものでもよい。他の配列としては、プロモーター、ターミネーター、ＵＴＲ、ＲＢＳをコードする配列、シグナルペプチドをコードする配列、などが挙げられる。
【００３８】
本発明の他の様相は、色素体に多角体遺伝子と目的遺伝子とが導入され、多角体遺伝子と目的遺伝子とを色素体内で発現可能であることを特徴とする組換え植物である。さらに、上記した本発明のベクターによって目的遺伝子が色素体に導入されてなり、多角体遺伝子と目的遺伝子とを色素体内で発現可能であることを特徴とする組換え植物も包含する。本発明の組換え植物における植物種としては特に限定はないが、色素体遺伝子組換えの系がよく研究されている植物種が好ましい。例えば、タバコ、レタス、キャベツ、ダイズ、ジャガイモ、トマト、トウモロコシ、イネ、ポプラ、クラミドモナス（藻類）、ユーグレナ（藻類）が挙げられる。
【００３９】
本発明のベクターを使って葉緑体に目的遺伝子を導入する方法としては、例えば、パーティクルガンを用いる方法が挙げられる。すなわち、微細な金属粒子の表面に目的タンパク質遺伝子が挿入された本発明のベクターを付着させ、葉緑体等の色素体に直接打ち込む。すると、例えば、色素体内に導入されたベクターと色素体ゲノムとの間で相同組換えが起こり、多角体遺伝子と目的タンパク質遺伝子とが発現可能な状態で葉緑体ゲノムに組み込まれる。
【００４０】
本発明のさらに他の様相は、本発明の組換え植物の組織から、前記目的遺伝子がコードする目的タンパク質を多角体タンパク質の内部に格納された形で取得することを特徴とするタンパク質の製造方法である。組織としては葉緑体等の色素体を含むものであれば特に限定はないが、好ましくは、葉である。葉は葉緑体を多く含むので、目的タンパク質を高収量で取得できる。なお、本発明においては色素体内に目的タンパク質が蓄積されるが、多角体タンパク質は熱、乾燥、プロテアーゼ、酸に強いので、採取原となる組織（葉など）は生の状態に限らず、乾燥した状態や、熱、プロテアーゼ、酸などで処理したものでもよい。
【００４１】
組織から「多角体タンパク質内に格納された形の目的タンパク質」を単離する方法としては、例えば、組織を破砕・抽出して得たタンパク質溶液を洗い、可溶性タンパク質を除去し、その後、不溶性タンパク質を分散させた溶液から分子の大きさにより多角体を分画する手法（フィルター）などで単離する方法が挙げられる。なお、この際、プロテアーゼ処理など種々のタンパク質精製手法を用いても良い。
【００４２】
本発明のタンパク質の製造方法で製造された目的タンパク質の用途について、以下に説明する。医療分野では、例えば、ＦＧＦ２のようなサイトカインを格納した多角体は、再生医療に応用することができる。また、経口ワクチンを格納した多角体を生産すれば、多角体は酸に強い性質があるので、腸管免疫を引き起こす経口ワクチンのドラッグデリバリーシステムに応用することができる。いずれの場合も、昆虫細胞を用いる従来の方法よりも安全性の面で有利である。畜産分野では、例えば、フィターゼや消化酵素を格納した多角体を家畜飼料に混ぜて投与すれば、家畜生産管理の面で有用である。産業用酵素の分野では、洗剤に含まれるようなプロテアーゼ、あるいはアミノ酸や糖の生産に使用される産業用酵素を多角体に格納することで、これまで熱や乾燥に弱かった酵素を大量に生産・保存するのに有用である。さらなる分野として、プロテインバンクやプロテインライブラリーへの応用や、プロテインチップや感染症診断への応用が考えられる。またさらに、葉緑体が必要とするタンパク質を多角体に格納することで、環境変化に強い作物の生産に役立つ可能性がある。また多角体は分解されにくいため、カーボンストアとして二酸化炭素の減少に寄与する可能性もある。
【００４３】
以下に、実施例をもって本発明をさらに具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
【実施例１】
【００４４】
（１）ベクターの構築
pBluescript SK+プラスミド（インビトロジェン社）のマルチクローニングサイトに、タバコ葉緑体ゲノムの１６ＳｒＤＮＡとｔｒｎＶ遺伝子を含む領域と相同な１．８ｋｂｐのＤＮＡ断片Ａ、及びｒｐｓ７／１２を含む領域と相同な１．２ｋｂｐのＤＮＡ断片Ｂを挿入した。当該マルチクローニングサイト上の未使用サイトを潰した後、ＤＮＡ断片ＡとＤＮＡ断片Ｂの間に、スペクチノマイシン耐性を付与するａａｄＡカセット（ｒｒｎプロモーター、ａａｄＡ遺伝子（スペクチノマイシン耐性遺伝子）、ｐｓｂＡターミネーターを含む）及びマルチクローニングサイトを導入した。このマルチクローニングサイトに、多角体遺伝子を発現するカセット（ｐｓｂＡプロモーター及びその５’ＵＴＲ、ｐｈｄ遺伝子（Bombyx mori cypovirus由来の多角体遺伝子）、ｒｐｓ１６ターミネーターを含む）を導入し、葉緑体遺伝子組換えベクターpRV112A'_Phdを構築した。ベクターpRV112A'_Phdの構成を図１に示す。図１中、「ＴｐｓｂＡ」はｐｓｂＡターミネーター、「Ｐｒｒｎ」はｒｒｎ１６プロモーター、「ＰｐｓｂＡ」はｐｓｂＡプロモーター、「Ｔｒｐｓ１６」はｒｐｓ１６ターミネーターを表す。すなわち、ベクターpRV112A'_Phdは、ａａｄＡカセットと多角体遺伝子を発現するカセットとが連結された基本構造を有し、その両端に葉緑体ゲノムとの相同組換えを可能にする１．８ｋｂｐと１．２ｋｂｐの領域を有している。そして、ｐｈｄ遺伝子とｒｐｓ１６ターミネーターとの間に想定されるクローニング部位に目的遺伝子を挿入することにより、葉緑体内で、多角体遺伝子と目的遺伝子がｐｓｂＡプロモーターの制御下で同時に発現可能なベクターとすることができる。
【００４５】
（２）ベクターのタバコ葉への導入
タバコ葉緑体ゲノムのｔｒｎＶ遺伝子とｒｐｓ７／１２遺伝子との間に多角体遺伝子を組み込むために、上記（１）で構築したpRV112A'_Phdをパーティクルガン（バイオラッド社製）にてタバコ葉の葉緑体に導入した。スペクチノマイシン選抜により得られた７個体のシュートより、全ＤＮＡを調製し、ＰＣＲ法を用いて遺伝子導入の確認を行った。これにより、５個の候補クローンを選抜した。
【００４６】
各々の候補の全ＤＮＡ１．５μｇに対して制限酵素ＳａｃＩＩで処理し、１％アガロースゲル電気泳動に供した。図２に示すＤＮＡ断片をプローブ（ＤＩＧ標識）に用いてサザンブロット解析を行った。図３はサザンブロット解析の結果を表す写真である。図３中、「ＷＴ」は野生型タバコ（比較例）、「Ａ，Ｃ，Ｅ，Ｆ，Ｇ」はいずれも選抜された候補クローン、「Ｐｏｓｉ」は陽性対照、「Ｍａ」は分子量マーカーである。すなわち、候補クローンではいずれも４．０ｋｂｐのバンドが検出され、相同組換えによる目的位置への遺伝子の挿入が認められた。一方、比較例では１．５ｋｂｐのバンドのみが検出され、４．０ｋｂｐのバンドは検出されなかった。以上より、多角体遺伝子が葉緑体ゲノムに組み込まれた組換えタバコのクローンを選抜することができた。
【００４７】
（３）組換えタバコの作出
上記（２）で選抜した組換えタバコのクローンを栽培し、組換えタバコを作出した。葉から全タンパク質を抽出した。１２μｇの全タンパク質を１２．５％ポリアクリルアミドゲルを用いたＳＤＳ−ＰＡＧＥに供し、ＣＢＢ染色を行った。さらに、同様のＳＤＳ−ＰＡＧＥを行った後、多角体タンパク質に対する抗体を用いたウエスタンブロット解析を行った。図４は全タンパク質のＳＤＳ−ＰＡＧＥ／ＣＢＢ染色の結果を表す写真、図５は全タンパク質のウエスタンブロット解析の結果を表す写真である。図４，５中、「ＷＴ」は野生型タバコ（比較例）、「Ａ」は組換えタバコ（実施例）、「８００〜８００００」は８００個から８００００個の精製された多角体（コントロール）である。すなわち、実施例の組換えタバコにおいて、多角体タンパク質が高濃度に蓄積していた（図４，５の矢印）。
【００４８】
作出した組換えタバコの葉を共焦点レーザー顕微鏡にて観察した。図６は共焦点レーザー顕微鏡による観察結果を表す写真である。図６中、ＷＴは野生型タバコ（比較例）、Ａは組換えタバコ（実施例）を示し、上の３枚は明視野像、下の３枚は葉緑体自家蛍光の観察像である。図６に示すように、実施例のタバコ葉（Ａ）では野生型（ＷＴ）には見られない四角い構造体が観察された。この四角い構造体が多角体タンパク質の結晶と考えられた。
【００４９】
（４）多角体タンパク質の製造
上記（３）で作出した組換えタバコの葉を切り取り、６０℃で２日間乾燥させた。乾燥させた葉を抽出バッファー（１００ｍＭ リン酸バッファー（ｐＨ６．０），０．１％ ＴｒｉｔｏｎＸ−１００）中で破砕した。破砕液を、ペーパータオルに通して大きい不溶物を取り除いた後、遠心分離に供し沈殿を回収した（試料１）。試料１の沈殿を抽出バッファーで再懸濁し、保留粒子６μｍのろ紙でろ過してろ液を回収し、遠心分離に供し沈殿を回収した（試料２）。試料１、２とは別の葉を用い、試料２と同様の手順で沈殿を回収した（試料３）。ただし、ろ過は吸引ろ過法で行った。さらに、再懸濁時のバッファーとしてＴｒｉｔｏｎＸ−１００を含まない抽出バッファーを用い、その他は試料３と同様の手順で沈殿を回収した（試料４）。比較例として、野生型のタバコを用いて同様にして各試料を調製した。各試料についてＳＤＳ−ＰＡＧＥを行い、ＣＢＢ染色を行った。結果を図７に示す。図７中、「Ｗ」は野生型（比較例）、「Ａ」は組換えタバコ（実施例）、「１〜４」は試料の番号、「Ｐ」は多角体タンパク質（陽性対照）、「Ｍａ」は分子量マーカーを示す。すなわち、実施例では試料１〜３に多角体タンパク質と同様の位置にバンドが検出された（図７の矢印）。なお、試料４では多角体タンパク質に相当するバンドは検出されず、界面活性剤（ＴｒｉｔｏｎＸ−１００）を加えることでろ紙を通過しやすくなることが分かった。一方、野生型ではどの試料にも多角体に相当するバンドは検出されなかった。以上より、本実施例で作出した組換えタバコの葉が多角体タンパク質を発現していることが示された。さらに、乾燥した葉からも多角体タンパク質を簡易に調製することができることが示された。
【実施例２】
【００５０】
実施例１で構築したpRV112A'_Phdのｐｈｄ遺伝子とｒｐｓ１６ターミネーターとの間に、ＢｇｌＩＩサイトとＸｈｏＩサイトを設けた。このサイトにリボゾーム結合部位（ＲＢＳ）をコードする配列ＧＧＡＧＧ、並びに、多角体に特異的に取り込むためのシグナルをコードする配列（配列番号１）を導入し、新たなベクターを構築した（図８）。本ベクターのシグナル配列の下流にＧＦＰ遺伝子あるいはＦＧＦ２遺伝子を挿入した２種類のベクターを作製した。
【実施例３】
【００５１】
実施例２で構築したベクター（図８）のシグナル配列の下流に、Gateway（インビトロジェン社；登録商標）システム対応のベクターにするための配列である「attR1-[CmR-ccdB]-attR2」を導入し、デスティネーションベクターとした（図９）。目的遺伝子を導入する場合には、Gatewayシステムを用いて目的遺伝子をＢＰ反応によりドナーベクターpDONR221（インビトロジェン社）へ導入し、次いで、ＬＲ反応により上記のデスティネーションベクターへ導入する。
【図面の簡単な説明】
【００５２】
【図１】ベクターpRV112A'_Phdの構造を模式的に表す説明図である。
【図２】サザンブロット解析で用いたプローブの位置を説明する説明図である。
【図３】サザンブロット解析の結果を表す写真である。
【図４】全タンパク質のＳＤＳ−ＰＡＧＥ／ＣＢＢ染色の結果を表す写真である。
【図５】全タンパク質のウエスタンブロット解析の結果を表す写真である。
【図６】共焦点レーザー顕微鏡による観察結果を表す写真である。
【図７】粗精製後のタンパク質のＳＤＳ−ＰＡＧＥ／ＣＢＢ染色の結果を表す写真である。
【図８】実施例２で構築したベクターの構造を模式的に表す説明図である。
【図９】実施例３で構築したベクターの構造を模式的に表す説明図である。
【図１】
2010029069.tif 000003
【図２】
2010029069.tif 000004
【図８】
2010029069.tif 000005
【図９】
2010029069.tif 000006
【図３】
2010029069.tif 000007
【図４】
2010029069.tif 000008
【図５】
2010029069.tif 000009
【図６】
2010029069.tif 000010
【図７】
2010029069.tif 000011
【配列表】
2010029069000001.app