(57)【要約】      （修正有）【課題】味覚受容体（Ｔ１Ｒ）と称する哺乳類Ｇタンパク質結合受容体ファミリーを提供する。【解決手段】Ｔ１Ｒ１及びＴ１Ｒ３が同時発現することにより、グルタミン酸一ナトリウム塩を含むうま味刺激物質に応答する味覚受容体となる。また、Ｔ１Ｒ２及びＴ１Ｒ３受容体が同時発現することにより、天然及び人工甘味料を含む甘味刺激物質に応答する味覚受容体となる。うま味刺激及び甘味刺激にそれぞれ応答する化合物を特定するためのアッセイにおけるＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３及びＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３を含むヘテロオリゴマー味覚受容体を使用することからなる。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
少なくとも１種のＴ１Ｒ２ポリペプチドと、少なくとも１種のＴ１Ｒ３ポリペプチドを含む組換え又は単離されたＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３受容体であって、
（１）それぞれ配列番号６、配列番号１０、受入番号ＡＡＤ１８０７０、受入番号ＡＡＫ３９４３８、受入番号ＡＡＤ１８０７０、及び受入番号ＮＰ１１４０７９によって表されるか又はコードされるヒト、マウス、及びラットＴ１Ｒ２アミノ酸配列の何れかに対して、少なくとも８０％の同一性を有する少なくとも１種のＴ１Ｒ２ポリペプチドと、
それぞれ配列番号４、配列番号７、受入番号ＡＡＫ５５５３７、受入番号ＡＡＫ３９４３６、受入番号ＢＡＢ４７１８１、受入番号ＮＰ１１４０７８、受入番号ＡＡＫ５５５３６、受入番号ＡＡＫ０１９３７、配列番号９及び配列番号１１によって表されるか又はコードされるヒト、マウス、及びラットＴ１Ｒ３アミノ酸配列の何れかに対して、少なくとも８０％の同一性を有する少なくとも１種のＴ１Ｒ３ポリペプチドとを含み、うま味刺激物質に特異的に結合及び／又は活性化される受容体；或いは、
（２）該Ｔ１Ｒ２ポリペプチド及び該Ｔ１Ｒ３ポリペプチドの何れか一方又は両方がキメラであり、該Ｔ１Ｒ２ポリペプチド及び該Ｔ１Ｒ３ポリペプチドは、キメラでない場合には、上記（１）で定義されるＴ１Ｒ２ポリペプチド又はＴ１Ｒ３ポリペプチドであり、
キメラＴ１Ｒ２ポリペプチドは、上記（１）で定義されるＴ１Ｒ２ポリペプチドの細胞外ドメインを含み、残りが他のＧＰＣＲペプチドのドメインである、機能性ＧＰＣＲペプチドとして定義されるか、上記（１）で定義されるＴ１Ｒ２ポリペプチドの膜貫通ドメインを含み、残りが他のＧＰＣＲペプチドのドメインである、機能性ＧＰＣＲペプチドとして定義され、
キメラＴ１Ｒ３ポリペプチドは、上記（１）で定義されるＴ１Ｒ３ポリペプチドの細胞外ドメインを含み、残りが他のＧＰＣＲペプチドのドメインである、機能性ＧＰＣＲペプチドとして定義されるか、上記（１）で定義されるＴ１Ｒ３ポリペプチドの膜貫通ドメインを含み、残りが他のＧＰＣＲペプチドのドメインである、機能性ＧＰＣＲペプチドとして定義され、うま味刺激物質に特異的に結合及び／又は活性化される受容体。
【請求項２】
それぞれ配列番号６、配列番号１０、受入番号ＡＡＤ１８０７０、受入番号ＡＡＫ３９４３８、受入番号ＡＡＤ１８０７０、及び受入番号ＮＰ１１４０７９によって表されるか又はコードされるヒト、マウス、及びラットＴ１Ｒ２アミノ酸配列の何れかに対して、少なくとも８０％の同一性を有する少なくとも１種のＴ１Ｒ２ポリペプチドと、
それぞれ配列番号４、配列番号７、受入番号ＡＡＫ５５５３７、受入番号ＡＡＫ３９４３６、受入番号ＢＡＢ４７１８１、受入番号ＮＰ１１４０７８、受入番号ＡＡＫ５５５３６、受入番号ＡＡＫ０１９３７、配列番号９及び配列番号１１によって表されるか又はコードされる、ヒト、マウス、及びラットＴ１Ｒ３アミノ酸配列の何れかに対して少なくとも８０％の同一性を有する少なくとも１種のＴ１Ｒ３ポリペプチドとを含む請求項１に記載の受容体。
【請求項３】
それぞれ配列番号６、配列番号１０、受入番号ＡＡＤ１８０７０、受入番号ＡＡＫ３９４３８、受入番号ＡＡＤ１８０７０、及び受入番号ＮＰ１１４０７９によって表されるか又はコードされる、ヒト、マウス、及びラットＴ１Ｒ２アミノ酸配列の何れかに対して少なくとも９０％の同一性を有する少なくとも１種のＴ１Ｒ２ポリペプチドと、
それぞれ配列番号４、配列番号７、受入番号ＡＡＫ５５５３７、受入番号ＡＡＫ３９４３６、受入番号ＢＡＢ４７１８１、受入番号ＮＰ１１４０７８、受入番号ＡＡＫ５５５３６、受入番号ＡＡＫ０１９３７、配列番号９及び配列番号１１によって表されるか又はコードされるヒト、マウス、及びラットＴ１Ｒ３配列の何れかに対して、少なくとも９０％の同一性を有する少なくとも１種のＴ１Ｒ３ポリペプチドとを含む請求項１に記載の受容体。
【請求項４】
それぞれ配列番号６、配列番号１０、受入番号ＡＡＤ１８０７０、受入番号ＡＡＫ３９４３８、受入番号ＡＡＤ１８０７０、及び受入番号ＮＰ１１４０７９によって表されるか又はコードされる、ヒト、マウス、及びラットＴ１Ｒ２アミノ酸配列の何れかに対して少なくとも９５％の同一性を有する少なくとも１種のＴ１Ｒ２ポリペプチドと、
それぞれ配列番号４、配列番号７、受入番号ＡＡＫ５５５３７、受入番号ＡＡＫ３９４３６、受入番号ＢＡＢ４７１８１、受入番号ＮＰ１１４０７８、受入番号ＡＡＫ５５５３６、受入番号ＡＡＫ０１９３７、配列番号９及び配列番号１１によって表されるか又はコードされるヒト、マウス、及びラットＴ１Ｒ３配列の何れかに対して、少なくとも９５％の同一性を有する少なくとも１種のＴ１Ｒ３ポリペプチドとを含む請求項１に記載の受容体。
【請求項５】
配列番号６によって表されるか又は配列番号１０によってコードされるヒトＴ１Ｒ２アミノ酸配列に対して、少なくとも９０％の同一性を有する少なくとも１種のＴ１Ｒ２ポリペプチド、及び配列番号７によって表されるか又は配列番号９によってコードされるヒトＴ１Ｒ３アミノ酸配列に対して、少なくとも９０％の同一性を有する少なくとも１種のＴ１Ｒ３ポリペプチドの両方又は一方を含む請求項１に記載の受容体。
【請求項６】
前記Ｔ１Ｒ２ポリペプチド及び前記Ｔ１Ｒ３ポリペプチドが同じ動物種に由来する請求項１記載の受容体。
【請求項７】
前記Ｔ１Ｒ２ポリペプチド及び前記Ｔ１Ｒ３ポリペプチドが異なる動物種に由来する請求項１記載の受容体。
【請求項８】
前記キメラＴ１Ｒ２ポリペプチド又は前記キメラＴ１Ｒ３ポリペプチドを含む、請求項１に記載の受容体。
【請求項９】
前記キメラＴ１Ｒ２ポリペプチド及び前記キメラＴ１Ｒ３ポリペプチドを含む、請求項１に記載の受容体。
【請求項１０】
前記Ｔ１Ｒ２ポリペプチドが、配列番号６によって表されるか又は配列番号１０によってコードされるヒトＴ１Ｒ２アミノ酸配列に対して、少なくとも９０％の同一性を有する、請求項１に記載の受容体。
【請求項１１】
前記Ｔ１Ｒ２ポリペプチドが、受入番号ＡＡＤ１８０７０によって表されるラットＴ１Ｒ２アミノ酸配列に対して少なくとも９０％の同一性を有する、請求項１に記載の受容体。
【請求項１２】
前記Ｔ１Ｒ２ポリペプチドが、受入番号ＡＡＫ３９４３８又は受入番号ＮＰ１１４０７９によって表されるか又はコードされるマウスＴ１Ｒ２アミノ酸配列に対して、少なくとも９０％の同一性を有する、請求項１に記載の受容体。
【請求項１３】
前記Ｔ１Ｒ３ポリペプチドが、受入番号ＡＡＫ５５５３７、受入番号ＢＡＢ４７１８１、受入番号ＮＰ１１４０７８又は受入番号ＡＡＫ０１９３７によって表されるか又はコードされるマウスＴ１Ｒ３アミノ酸配列に対して、少なくとも９０％の同一性を有する、請求項１に記載の受容体。
【請求項１４】
前記Ｔ１Ｒ３ポリペプチドが、配列番号７によって表されるか又は配列番号９によってコードされるヒトＴ１Ｒ３アミノ酸配列に対して、少なくとも９０％の同一性を有する、請求項１に記載の受容体。
【請求項１５】
前記Ｔ１Ｒ３ポリペプチドが、配列番号４によって表されるか又は配列番号１１によってコードされるラットＴ１Ｒ３アミノ酸配列に対して、少なくとも９０％の同一性を有する、請求項１に記載の受容体。
【請求項１６】
前記Ｔ１Ｒ２ポリペプチドが、配列番号６によって表されるか又は配列番号１０によってコードされるヒトＴ１Ｒ１アミノ酸配列に対して、少なくとも９５％の同一性を有する、請求項１に記載の受容体。
【請求項１７】
前記Ｔ１Ｒ２ポリペプチドが、受入番号ＡＡＤ１８０７０によって表されるラットＴ１Ｒ２アミノ酸配列に対して少なくとも９５％の同一性を有する、請求項１に記載の受容体。
【請求項１８】
前記Ｔ１Ｒ２ポリペプチドが、受入番号ＡＡＫ３９４３８又は受入番号ＮＰ１１４０７９によって表されるか又はコードされるマウスＴ１Ｒ２アミノ酸配列に対して、少なくとも９５％の同一性を有する、請求項１に記載の受容体。
【請求項１９】
前記Ｔ１Ｒ３ポリペプチドが、受入番号ＡＡＫ５５５３７、受入番号ＢＡＢ４７１８１、受入番号ＮＰ１１４０７８又は受入番号ＡＡＫ０１９３７によって表されるか又はコードされるマウスＴ１Ｒ３アミノ酸配列に対して、少なくとも９５％の同一性を有する、請求項１に記載の受容体。
【請求項２０】
前記Ｔ１Ｒ３ポリペプチドが、配列番号７によって表されるか又は配列番号９によってコードされるヒトＴ１Ｒ３アミノ酸配列に対して、少なくとも９５％の同一性を有する、請求項１に記載の受容体。
【請求項２１】
前記Ｔ１Ｒ３ポリペプチドが、配列番号４によって表されるか又は配列番号１１によってコードされるラットＴ１Ｒ３アミノ酸配列に対して、少なくとも９５％の同一性を有する、請求項１に記載の受容体。
【請求項２２】
請求項１から２１の何れか一項に記載の受容体を含む組成物。
【請求項２３】
請求項１から２０の何れか一項に記載の受容体を発現する細胞。
【請求項２４】
ＨＥＫ−２９３、ＣＯＳ細胞、ＣＨＯ細胞及びにアフリカツメガエル卵母細胞からなる群から選択される請求項２３に記載の細胞。
【請求項２５】
固相に結合している請求項１〜２１の何れか一項に記載の受容体。
【請求項２６】
溶液中の請求項１〜２１の何れか一項に記載の受容体。
【請求項２７】
脂質二重層又は小胞中の請求項１〜２１の何れか一項に記載の受容体。
【請求項２８】
請求項１〜２１の何れか一項に記載の受容体に結合、及び／又は該受容体を活性化、阻害、増強及び／又は調節する化合物を特定することにより、味覚を調節する化合物を特定する方法。
【請求項２９】
前記受容体が固相に結合している請求項２８に記載の方法。
【請求項３０】
前記受容体が溶液中にある請求項２８に記載の方法。
【請求項３１】
前記受容体が脂質二重層又は小胞中にある請求項２８に記載の方法。
【請求項３２】
前記化合物を特定するために受容体結合アッセイを用いる請求項２８に記載の方法。
【請求項３３】
前記化合物を特定するために受容体活性に基づくアッセイを用いる請求項２８に記載の方法。
【請求項３４】
前記受容体を細胞で発現させる請求項２８に記載の方法。
【請求項３５】
前記細胞がＨＥＫ−２９３、ＣＯＳ又はＣＨＯ細胞である請求項３４に記載の方法。
【請求項３６】
前記化合物を受容体の細胞内取込みに対するその効果により特定する請求項３４に記載の方法。
【請求項３７】
前記化合物を受容体のリン酸化に対するその効果により特定する請求項３４に記載の方法。
【請求項３８】
前記化合物をアレスチン転移に対するその効果により特定する請求項３４に記載の方法。
【請求項３９】
二次メッセンジャーのアッセイを用いる請求項３４に記載の方法。
【請求項４０】
前記二次メッセンジャーがｃＡＭＰ又はＩＰ3である請求項３９に記載の方法。
【請求項４１】
電位感受性又はカルシウム感受性色素を用いる請求項３４に記載の方法。
【請求項４２】
前記細胞が少なくとも１種のＧタンパク質を発現する請求項３４に記載の方法。
【請求項４３】
前記Ｇタンパク質が乱交雑Ｇタンパク質である請求項４２に記載の方法。
【請求項４４】
前記乱交雑Ｇタンパク質がＧα15又はＧα16である請求項４３に記載の方法。
【請求項４５】
前記受容体をウイルスベクターを用いて発現させる請求項３４に記載の方法。
【請求項４６】
前記ウイルスベクターを哺乳類細胞で発現させる請求項４５に記載の方法。
【請求項４７】
前記受容体を膜結合形として分離する請求項２８に記載の方法。
【請求項４８】
前記化合物を前記受容体によるＧタンパク質活性化に対するその効果により特定する請求項４２に記載の方法。
【請求項４９】
前記化合物を受容体のコンホメーションに対するその効果により特定する請求項３４に記載の方法。
【請求項５０】
前記コンホメーション変化をタンパク質分解に対する感受性の変化により検出する請求項４９に記載の方法。
【請求項５１】
前記コンホメーション変化をＮＭＲ分光法により検出する請求項４９に記載の方法。
【請求項５２】
前記コンホメーション変化を蛍光分光法により検出する請求項４９に記載の方法。
【請求項５３】
前記化合物を前記受容体に対する放射標識又は蛍光標識リガンドの結合に対するその効果により特定する請求項２８に記載の方法。
【請求項５４】
前記標識化合物の置換を蛍光偏向又はＦＲＥＴアッセイにより測定する請求項５３に記載の方法。
【請求項５５】
高処理能力スクリーニングアッセイである請求項２８に記載の方法。
【請求項５６】
受容体活性をリポーター遺伝子に関連づける請求項２８に記載の方法。
【請求項５７】
前記リポーター遺伝子がルシフェラーゼ、アルカリホスファターゼ、β−ガラクトシダーゼ又はβ−ラクタマーゼである請求項５６に記載の方法。
【請求項５８】
前記受容体を、表面発現を促進するペプチドに融合させる請求項３４に記載の方法。
【請求項５９】
前記ペプチドがＰＤＺドメイン相互作用性ペプチドである請求項５８に記載の方法。
【請求項６０】
前記受容体に対する前記化合物の効果を前記受容体のＸ線結晶構造に基づいて予測する請求項２８に記載の方法。
【請求項６１】
前記化合物を、前記受容体を発現するヒト以外の動物に対するその効果により特定する請求項２８に記載の方法。
【請求項６２】
前記化合物を行動に対するその効果により特定する請求項６１に記載の方法。
【請求項６３】
前記化合物を味覚受容体細胞に対するその効果により特定する請求項６１に記載の方法。
【請求項６４】
前記ヒト以外の動物がマウス、又はラットである請求項６１〜６３のいずれか１項に記載の方法。
【請求項６５】
前記化合物を、前記受容体を発現する酵母細胞に対するその効果により特定する請求項３４に記載の方法。
【請求項６６】
前記化合物を化合物のコンビナトリアルライブラリーから特定する請求項２８に記載の方法。
【請求項６７】
前記化合物をペプチドライブラリーから特定する請求項２８に記載の方法。
【請求項６８】
前記化合物を小分子のランダム化ライブラリーから特定する請求項２８に記載の方法。
【請求項６９】
請求項２８に記載の方法により特定された化合物を用いて動物における味覚を変化させる方法。
【請求項７０】
前記味覚がうま味である請求項６９に記載の方法。
【請求項７１】
前記動物がヒト、イヌ、ネコ、ウシ、ヒツジ又はブタである請求項６９に記載の方法。
【請求項７２】
前記化合物を食物、飲料又は経口薬剤組成物中に配合する請求項６９に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本出願は、以下のすべてが参照により全部が本明細書に組み込まれる、２００１年６月２６日出願の米国仮出願第６０／３００，４３４号、２００１年７月３日出願の米国実用出願第０９／８９７，４２７号、２００１年７月１３日出願の米国仮出願第６０／３０４，７４９号、２００１年８月８日出願の米国仮出願第６０／３１０，４９３号、２００１年１１月２１日出願の米国仮出願第６０／３３１，７７１号、２００１年１２月１４日出願の米国仮出願第６０／３３９，４７２号及び２００２年１月３日出願の米国出願第１０／０３５，０４５号、２００２年４月１５日出願の米国仮出願第６０／３７２，０９０号及び２００２年４月２２日出願の米国仮出願第６０／３７４，１４３号に対する優先権を主張する。
【０００２】
本発明は、Ｔ１Ｒ受容体が集合して機能的味覚受容体を形成するという発見に一部関する。特に、Ｔ１Ｒ１及びＴ１Ｒ３が同時発現することにより、グルタミン酸一ナトリウム塩を含むうま味刺激物質に応答する味覚受容体となることが発見された。また、Ｔ１Ｒ２及びＴ１Ｒ３受容体が同時発現することにより、天然及び人工甘味料を含む甘味刺激物質に応答する味覚受容体となることが発見された。また、本発明は、うま味刺激及び甘味刺激にそれぞれ応答する化合物を特定するためのアッセイにおけるＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３及びＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３を含むヘテロオリゴマー味覚受容体の使用に関する。
【０００３】
さらに、本発明は、構成的又は誘導的条件下でＴ１Ｒ１及びＴ１Ｒ３あるいはＴ１Ｒ２及びＴ１Ｒ３の組合せを安定又は一時的に同時発現する細胞系の構築に関する。
【０００４】
うま味及び甘味調節化合物を特定するための細胞を用いるアッセイ、特に、蛍光分析画像法を用いて受容体活性を検出する高処理能力スクリーニングアッセイにおけるこれらの細胞系の使用も提供する。
【背景技術】
【０００５】
味覚系は、外界の化学組成物に関する感覚情報を提供する。哺乳類は、少なくとも５種の基本的味覚、すなわち、甘味、苦味、酸味、塩味及びうま味を有すると考えられている。例えば、Ｋａｗａｍｕｒａ  ｅｔ  ａｌ．、Ｉｎｔｒｏｄｕｃｔｉｏｎ  ｔｏ  Ｕｍａｍｉ：Ａ  Ｂａｓｉｃ  Ｔａｓｔｅ（１９８７年）、Ｋｉｎｎａｍｏｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．、第５４巻、７１５〜３１頁（１９９２年）、Ｌｉｎｄｅｍａｎｎ、Ｐｈｙｓｉｏｌ．Ｒｅｖ．、第７６巻、７１８〜６６頁（１９９６年）、Ｓｔｅｗａｒｔ  ｅｔ  ａｌ．、Ａｍ．Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．、第２７２巻、１〜２６頁（１９９７年）を参照。各味覚は、舌の表面に認められる味覚受容体細胞中で発現する別個のタンパク質受容体又は複数の受容体により媒介されると考えられる（Ｌｉｎｄｅｍａｎｎ、Ｐｈｙｓｉｏｌ．Ｒｅｖ．、第７６巻、７１８〜７１６頁（１９９６年））。苦味、甘味及びうま味を認識する味覚受容体は、Ｇタンパク質結合受容体（ＧＰＣＲ）スーパーファミリーに属している（Ｈｏｏｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｃｅｌｌ、第９６巻、４５１頁（１９９９年）、Ａｄｌｅｒ  ｅｔ  ａｌ．、Ｃｅｌｌ、第１００巻、６９３頁（２０００年））。（他の種類の味覚は、イオンチャンネルにより媒介されると考えられている。）
【０００６】
Ｇタンパク質結合受容体は、内分泌機能、外分泌機能、心拍数、脂肪分解及び炭水化物代謝のような他の多くの生理機能を媒介する。そのような多くの受容体の生化学的分析及び分子クローニングにより、これらの受容体の機能に関する多くの基本原理が明らかにされた。例えば、米国特許第５，６９１，１８８号は、ＧＰＣＲへのリガンド結合時にこの受容体がＧαサブユニットの表面上のＧＴＰによる結合ＧＤＰの置換とその後のＧβ及びＧγサブユニットからのＧαサブユニットの解離を促進することによりヘテロトリマーＧタンパク質の活性化をもたらすコンホメーション変化をどのように受けるかを記述している。遊離のＧαサブユニットとＧβγ複合体は、様々なシグナル伝達経路の下流エレメントを活性化する。
【０００７】
本発明は、味覚特異的ＧＰＣＲｓの３メンバーＴ１Ｒクラスに関する。以前にＴ１Ｒ受容体は味覚受容体として機能すると仮定され（Ｈｏｏｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｃｅｌｌ、第９６巻、５４１〜５１頁（１９９９年）、Ｋｉｔａｇａｗａ  ｅｔ  ａｌ．、Ｂｉｏｃｈｅｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ  Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ、第２８３巻、２３６〜４２頁（２００１年）、Ｍａｘ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎａｔ．Ｇｅｎｅｔ．第２８巻、５８〜６３頁（２００１年）、Ｍｏｎｔｍａｙｅｕｒ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎａｔ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．第４巻、４１２〜８頁（２００１年）、Ｓａｉｎｚ  ｅｔ  ａｌ．、Ｊ．Ｎｅｕｒｏｃｈｅｍ．第７７巻、８９６〜９０３頁（２００１年））、Ｎｅｌｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．（２００１年）は最近、ラットＴ１Ｒ２及びＴ１Ｒ３がいっしょに作用して甘味刺激を認識することを示した。本発明は２件の発明に関する。第一に、ラットＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３の場合と同様に、ヒトＴ１Ｒ２及びＴ１Ｒ３がいっしょに作用して甘味刺激を認識する。第二に、ヒトＴ１Ｒ１及びＴ１Ｒ３がいっしょに作用してうま味刺激を認識する。したがって、Ｔ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３は甘味受容体として機能すると考えられ、Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３は哺乳類におけるうま味受容体として機能すると考えられる。Ｔ１Ｒ１とＴ１Ｒ３との機能の相互依存性及びＴ１Ｒ２とＴ１Ｒ３との機能の相互依存性の考えられる説明は、構造的に関連性のあるＧＡＢＡB受容体（Ｊｏｎｅｓ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎａｔｕｒｅ、第３９６巻、５３１６〜２２頁（１９９８年）、Ｋａｕｐｍａｎｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎａｔｕｒｅ、第３９６巻、６８３〜７頁（１９９８年）、Ｗｈｉｔｅ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎａｔｕｒｅ、第３９６巻、６７９〜８２頁（１９９８年）、Ｋｕｎｅｒ  ｅｔ  ａｌ．、Ｓｃｉｅｎｃｅ、第２８３巻、７４〜７７頁（１９９９年））と同様に、Ｔ１Ｒｓはヘテロダイマー複合体として機能するということである。しかし、この機能の相互依存性は、最終的に機能的に独立したモノマー又はホモ多重結合受容体を生じさせる、必要であるが、一時的な相互作用を反映している可能性もある。
【０００８】
甘味及びうま味受容体として機能する味覚受容体の同定とキャラクタリゼーションは、甘味及びうま味を調節する（増強又は阻害する）化合物を特定するためのアッセイにおけるこれらの受容体の使用を促進するので、重要である。これらの化合物は、ヒト又は動物消費用の食物、飲料、薬物の味及び美味性を改善するのに有用であると思われる。特に、機能的甘味受容体を用いるアッセイにより、新規の甘味料の発見がなされる可能性がある。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
そのために、味覚を媒介する、本明細書ではＴ１Ｒと称する哺乳類Ｇタンパク質結合受容体のファミリーを提供することが本発明の目的である。
【００１０】
活性を保持する、例えば、甘味又はうま味刺激物質により活性化され、かつ／又は結合するそのようなＴ１Ｒｓの断片又は変異体を提供することが本発明の他の目的である。
【００１１】
そのようなＴ１Ｒｓ、その断片又は変異体をコードする核酸配列又は分子を提供することが本発明の他の目的である。
【００１２】
正又は負の遺伝子転写及び／又は翻訳及び／又はタンパク質輸出に関与するプロモーター、エンハンサー又は他の配列のような少なくとも１つの調節配列と作動的に連結されているそのようなＴ１Ｒｓあるいはその断片又は変異体をコードする核酸配列を含む発現ベクターを提供することが本発明の他の目的である。
【００１３】
そのようなＴ１Ｒｓあるいはその断片又は変異体の少なくとも１つ、及び好ましくはＴ１Ｒｓあるいはその断片又は変異体の組合せを機能的に発現するヒトあるいはヒト以外の細胞、例えば、哺乳類、酵母、虫又は昆虫細胞を提供することが本発明の他の目的である。
【００１４】
そのようなＴ１Ｒｓの少なくとも１つの少なくとも断片を含むＴ１Ｒ融合タンパク質又はポリペプチドを提供することが本発明の他の目的である。
【００１５】
以下で特定するｈＴ１Ｒ核酸配列及びその保存的に修飾された変異体の１つを有する核酸配列と少なくとも５０％、好ましくは７５％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％又は９９％同じである核酸配列を含むＴ１Ｒポリペプチドをコードする分離核酸分子を提供することが本発明の他の目的である。
【００１６】
以下で特定するＴ１Ｒアミノ酸配列及びその保存的に修飾された変異体の１つの群から選択されるアミノ酸配列と少なくとも３５〜５０％、好ましくは６０％、７５％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％又は９９％同じであるアミノ酸配列を有し、その断片の長さが少なくとも２０、好ましくは４０、６０、８０、１００、１５０、２００又は２５０アミノ酸であるポリペプチドをコードする分離核酸分子を提供することが本発明のさらなる目的である。場合により、その断片が抗Ｔ１Ｒ抗体に結合する抗原断片であってよい。
【００１７】
多くて１０、好ましくは５、４、３、２又は１アミノ酸残基に変化が存在する前記断片の変異体を含む分離ポリペプチドを提供することが本発明のさらなる目的である。
【００１８】
Ｔ１Ｒ１及び／又はＴ１Ｒ３が変異体又は断片であるＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３の組合せ、並びにＴ１Ｒ２及び／又はＴ１Ｒ３が変異体又は断片であるＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３の組合せを提供することが本発明の他の目的である。
【００１９】
そのようなＴ１Ｒｓあるいはその断片又は変異体の作動物質又は拮抗物質を提供することが本発明の他の目的である。
【００２０】
内在性形質膜タンパク質、特に、Ｔ１ＲｓのようなＧＰＣＲｓの表面発現を促進することができるＰＤＺドメイン相互作用性ペプチド（本明細書ではＰＤＺＩＰと称する）を提供することが本発明の他の目的である。ＰＤＺＩＰを含むベクター、そのようなベクターを発現する宿主細胞、及び表面発現を促進するためにＰＤＺＩＰを用いる方法を提供することも本発明の目的である。
【００２１】
味覚調節化合物、特に、甘味及びうま味調節化合物を特定するためのアッセイ、特に高処理能力アッセイを提供することが本発明の好ましい目的である。そのようなアッセイでは、本明細書に開示する、Ｔ１Ｒｓあるいはその断片又は変異体の組合せ、あるいはそのようなＴ１Ｒｓあるいはその断片又は変異体をコードする遺伝子を用いることが好ましい。そのような組合せはｈＴ１Ｒ１／ｈＴ１Ｒ３及びｈＴ１Ｒ２／ｈＴ１Ｒ３を含むことが最も好ましい。
【００２２】
Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３又はＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３味覚受容体を調節する、例えば、これらの受容体が味覚刺激に応答する能力を増強する化合物を特定することは、本発明の特に好ましい実施形態である。例えば、以下で述べるように、５’−ＩＭＰ又は５’−ＧＭＰがＬ−グルタミン酸塩に対するうま味（Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３）の応答性を増強することが発見された。これらの調節化合物は、種々の甘味又はうま味刺激物質の活性を増強し、味覚の増大及び／又は、活性が対象アッセイにより特定される味覚調節物質により増強される特定の甘味又はうま味誘発化合物の低い濃度での、同じ味覚の誘発をもたらす。
【００２３】
１つ又は複数の化合物を少なくとも１種の開示したＴ１Ｒｓ、その断片又は変異体、好ましくはヒトＴ１Ｒｓの組合せと接触させる段階を含む味覚に関して前記１つ又は複数の化合物を評価するための好ましいアッセイを提供することが本発明のさらなる目的である。
【００２４】
１つ又は複数の化合物をｈＴ１Ｒ２とｈＴ１Ｒ３との組合せあるいはｈＴ１Ｒ２及び／又はｈＴ１Ｒ３の断片、キメラ又は変異体を含む複合体と接触させる段階を含む、１つ又は複数の化合物を哺乳類、好ましくはヒトにおける甘味知覚を増強、模擬、阻害かつ／又は調節するそれらの能力についてスクリーニングする方法を提供することが本発明のより特定的な目的である。
【００２５】
１つ又は複数の化合物をｈＴ１Ｒ１とｈＴ１Ｒ３との組合せあるいはｈＴ１Ｒ１及びｈＴ１Ｒ３の断片、キメラ又は変異体を含む複合体と接触させる段階を含む、１つ又は複数の化合物を哺乳類、好ましくはヒトにおける味覚、特にうま味知覚を増強、模擬、阻害かつ／又は調節するそれらの能力についてスクリーニングする方法を提供することが本発明の他の特定的な目的である。
【００２６】
味覚、特に甘味知覚を増強、模擬、阻害かつ／又は調節する化合物を特定する際に用いるためのｈＴ１Ｒ２及びｈＴ１Ｒ３あるいはその断片、変異体又はキメラを同時発現する細胞を産生させることが本発明の他の特定的な目的である。
【００２７】
味覚、特にうま味知覚を増強、模擬、阻害かつ／又は調節する化合物を特定する際にアッセイを用いるためのｈＴ１Ｒ１及びｈＴ１Ｒ３あるいはその断片、変異体又はキメラを同時発現する細胞を産生させることが本発明の他の特定的な目的である。
【００２８】
１つ又は複数のＴ１Ｒｓを発現又は発現しないように遺伝的に改変されたヒト以外の動物を生産することが本発明の他の目的である。
【００２９】
Ｔ１Ｒｓ又はその組合せを用いるアッセイを用いて、食物及び飲料組成物中の着香成分として特定された化合物を用いることが本発明の他の目的である。特に、食物及び飲料組成物中で甘味阻害物質、増強物質、調節物質又は模擬物質としてｈＴ１Ｒ２及び／又はｈＴ１Ｒ３と相互作用する化合物並びにうま味阻害物質、増強物質、調節物質又は模擬物質としてｈＴ１Ｒ１及び／又はｈＴ１Ｒ３と相互作用する化合物を用いることが本発明の目的である。
【００３０】
例えば、魚養殖用の動物飼料調合物の味を調節する化合物を特定するためにＴ１Ｒｓ、特にヒト以外のＴ１Ｒｓを使用することが本発明の他の目的である。
【００３１】
ｈＴ１Ｒ１／ｈＴ１Ｒ３又はｈＴ１Ｒ２／ｈＴ１Ｒ３を安定に同時発現する真核生物、好ましくは哺乳類又は昆虫細胞系、Ｔ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３又はＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３に関連して発現するとき、機能的味覚受容体を生ずるＧタンパク質、例えば、Ｇα１５又は他のＧタンパク質も発現する好ましくはＨＥＫ−２９２細胞系を提供することが本発明の好ましい目的である。
【００３２】
Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３又はＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３、好ましくはｈＴ１Ｒ１／ｈＴ１Ｒ３又はｈＴ１Ｒ２／ｈＴ１Ｒ３を安定に発現する真核生物細胞系、好ましくは哺乳類又は昆虫細胞を提供することが本発明の他の好ましい目的である。好ましい実施形態において、そのような細胞は、Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３又はＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３と結合して機能的うま味又は甘味受容体を生じさせるＧα１５又は他のＧタンパク質を安定に発現するＨＥＫ−２９２細胞を含む。
【００３３】
うま味又は甘味を調節する化合物を特定するための構成的又は誘導条件下でＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３又はＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３を安定又は一時的に発現するＨＥＫ−２９２又は他の細胞系を用いるアッセイ、好ましくは高処理能力アッセイを提供することも本発明の目的である。
【００３４】
ラクティソール（甘味阻害物質）又は構造的に関連する物質のＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３（うま味）味覚受容体への結合に影響を及ぼす化合物の能力に基づいて、Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３うま味受容体を増強し、模擬し、阻害し、かつ／又は調節する化合物を特定することが本発明の他の特定的な目的である。
【課題を解決するための手段】
【００３５】
本発明は、同時発現したとき、Ｔ１Ｒｓの種々の組合せが味覚刺激に応答する機能的味覚受容体を生ずるという発見に関する。特に、本発明は、Ｔ１Ｒ２及びＴ１Ｒ３受容体が同時発現することにより、甘味刺激に応答するヘテロオリゴマー味覚受容体となるという発見に関する。また、本発明は、Ｔ１Ｒ１及びＴ１Ｒ３が同時発現することにより、グルタミン酸一ナトリウム塩のようなうま味刺激物質に応答する味覚受容体となるという発見に関する。
【００３６】
本発明はまた、Ｔ１Ｒ１及びＴ１Ｒ３を好ましくはヒトにおいて、又はＴ１Ｒ２及びＴ１Ｒ３を好ましくはヒトにおいて同時発現する細胞系に関する。好ましい実施形態において、これらの細胞系は構成的又は誘導的に多量の受容体を発現する。これらの細胞系は、Ｔ１Ｒ１及びＴ１Ｒ３又はＴ１Ｒ２及びＴ１Ｒ３を一時的又は安定に発現する細胞を含む。
【００３７】
また、本発明は、甘味又はうま味を調節する化合物を特定するためのＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３味覚受容体又はＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３受容体を用いるアッセイ、特に高処理能力スクリーングアッセイ、好ましくは高処理能力の細胞を用いるアッセイを提供する。本発明はまた、これらの化合物が甘味又はうま味を調節することを確認するための味覚試験を含むアッセイを提供する。
【図面の簡単な説明】
【００３８】
【図１】ラットＴ１Ｒｓ、ヒトカルシウム感知受容体及びラットメタボトロピックグルタミン酸受容体の配列アライメントを包含する。
【図２】ｈＴ１Ｒ２及びｈＴ１Ｒ３が味覚組織において発現していることを示すＲＴ−ＰＣＲ増幅実験結果を包含する。
【図３】甘味刺激物質の様々な濃度でヒトＴ１Ｒ２、Ｔ１Ｒ３及びＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３で一時的にトランスフェクトしたＧα１５を安定に発現するＨＥＫ細胞における種々の甘味刺激物質（ａ）；数種の甘味刺激物質に対するヒトＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３の用量応答（ｂ）；グルマリンの存在下でのショ糖に対するヒトＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３の応答、及びグルマリンの存在下でのイソプロテレノールに対する内因性β２−アドレナリン受容体の応答；によって誘発される機能データ（細胞内カルシウム応答）を包含する。ｃは、種々の甘味料に対する正規化した応答を包含する。
【図４】ｈＴ１Ｒ２／ｈＴ１Ｒ３、ｒＴ１Ｒ２／ｒＴ１Ｒ３、ｈＴ１Ｒ２／ｒＴ１Ｒ３及びｒＴ１Ｒ２／ｈＴ１Ｒ３で一時的にトランスフェクトしたＧα１５を安定に発現するＨＥＫ細胞における３５０ｍＭショ糖、２５ｍＭトリプトファン、１５ｍＭアスペルテーム及び０．０５％モネリンに対する細胞内カルシウム応答を包含する。
【図５】Ｇα１５を安定に発現するＨＥＫ細胞をｈＴ１Ｒ２及びｈＴ１Ｒ３又はｈＴ１Ｒ３単独で一時的にトランスフェクトし、カルシウム色素Ｆｌｕｏ−４及び甘味刺激物質（１２．５ｍＭシクラメート）と接触させた、蛍光プレート反応器を用いたアッセイの結果を包含する。
【図６】ｈＴ１Ｒ２及びｈＴ１Ｒ３が、様々な甘味刺激物質（ｔｒｐ、シクラメート、ショ糖、ネオテーム、アスパレーム（ａｓｐａｒａｍｅ）、サッカリン及びＡｃｅｋ）との用量特異的相互作用に基づき、一緒にヒト甘味受容体として機能することを示す正規化した用量応答曲線を包含する。
【図７】重要なリガンド結合残存物がこれらの分子に認められることを示すｍＧｌｕＲ１及びＴ１Ｒ１に関する構造情報を包含する。
【図８】ａ〜ｃは、Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３で一時的にトランスフェクトしたＧα１５を安定に発現するＨＥＫ細胞が細胞内カルシウムに基づくアッセイにおいてグルタミン酸塩に応答することを示す機能データを包含する。  ａは、細胞内カルシウムがグルタミン酸塩濃度の増加に応答して増加することを示す。  ｂは、細胞内カルシウムがＩＭＰ（２ｍＭ）、グルタミン酸塩（０．５ｍＭ）及び０．２ｍＭ  ＩＭＰに対して応答することを示す。  ｃは、Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３が０．２ｍＭ  ＩＭＰの存在下及び非存在下でグルタミン酸塩に対して応答することを示す。
【図９】ａ及びｂはそれぞれ、Ｍｙｃ標識ｈＴ１Ｒ２を用いた免疫蛍光染色アッセイの結果及びＰＤＺＩＰペプチド（配列番号１）の組み込みが形質膜上のＴ１Ｒ（ｈＴ１Ｒ２）の発現を増強したことを示すＦＡＣＳ実験の結果を包含する。
【図１０】ａからｂは、ｈＴ１Ｒ２／ｈＴ１Ｒ３が種々の甘味刺激物質に応答することを示すカルシウム画像データを包含する。
【図１１】ｈＴ１Ｒ１／ｈＴ１Ｒ３を安定に発現する細胞系のうま味刺激物質に対する自動蛍光画像化法による応答を示す。
【図１２】ｈＴ１Ｒ２／ｈＴ１Ｒ３を安定に発現する細胞系の甘味刺激物質に対する自動蛍光画像化法による応答を示す。
【図１３】０．２ｍＭ  ＩＭＰの存在下及び非存在下でＬ−グルタミン酸塩に対するヒトＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３味覚受容体を誘導的に発現する細胞系における自動蛍光画像化法を用いて測定した用量応答曲線を示す。
【図１４】ヒトＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３味覚受容体（１−１７クローン）を誘導的に発現する細胞系のＬ−アミノ酸のパネルに対する応答を示す。１０ｍＭの種々のＣ−アミノ酸を１ｍＭ  ＩＭＰの存在下及び非存在下で試験した。
【図１５】ヒトＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３味覚受容体（１−１７クローン）を誘導的に発現する細胞系のＬ−アミノ酸のパネルに対する応答を示す。活性アミノ酸に関する用量応答を０．２ｍＭ  ＩＭＰの存在下で測定した。
【図１６】ラクティソールがヒトＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３及びヒトＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３の受容体活性を阻害することを示す。
【発明を実施するための形態】
【００３９】
本発明は、したがって、異なるＴ１Ｒｓの組合せ、好ましくはＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３又はＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３の同時発現により生ずる機能的味覚受容体、好ましくはヒト味覚受容体、並びに同時発現により機能的味覚受容体、すなわち、甘味受容体（Ｔ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３）又はうま味受容体（Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３）を生ずる対応する分離核酸配列あるいはその断片、キメラ又は変異体を提供する。
【００４０】
文献に報告されているように、味覚細胞特異的ＧＰＣＲｓのＴ１Ｒファミリーのメンバーが知られており、すべてが参照により全部が本明細書に組み込まれるＨｏｏｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｃｅｌｌ、第９６巻、５４１〜５５１頁（１９９９年）、国際公開第００／０６５９２号、国際公開第００／０６５９３号及び米国特許出願番号第０９／７９９，６２９号に特定されている。
【００４１】
より詳細には、本発明は子となる味覚細胞特異的ＧＰＣＲの同時発現に関する。これらの核酸及びそれらにコードされる受容体は、味覚細胞特異的ＧＰＣＲの「Ｔ１Ｒ」ファミリーのメンバーと称される。本発明の特定の実施形態において、同時発現するＴ１Ｒファミリーメンバーは、ｒＴ１Ｒ１、ｒＴ１Ｒ２、ｒＴ１Ｒ３、ｍＴ１Ｒ１、ｍＴ１Ｒ２、ｍＴ１Ｒ３、ｈＴ１Ｒ１、ｈＴ１Ｒ２及びｈＴ１Ｒ３などである。理論に束縛されることを望まないが、これらの味覚細胞特異的ＧＰＣＲｓは味変換経路の構成要素であり、甘味及びうま味刺激物質及び／又は他の種類の味を呈する他の味覚刺激物質の味覚検出に関与すると考えられている。
【００４２】
本明細書においてＴ１Ｒファミリーメンバーが他のＴ１Ｒファミリーメンバーと共に作用して、甘味及びうま味受容体として機能するということは確証されている。以下の実験的実施例でさらに詳細に開示するように、ｈＴ１Ｒ２及びｈＴ１Ｒ３を同時発現する異種細胞がヒト甘味を反映する仕方で甘味刺激物質により選択的に活性化されることが実証された。例えば、ｈＴ１Ｒ２及びｈＴ１Ｒ３を同時発現するＨＥＫ−２９３−Ｇα１５細胞はシクラメート、ショ糖、アスパルテーム及びサッカリンに対して特異的に応答し、これらの化合物の用量反応は精神物理的味覚検出法の閾値と相関する。したがって、ｈＴ１Ｒ２及びｈＴ１Ｒ３を同時発現する細胞は、甘味感覚を模擬、調節、阻害かつ／又は増強する化合物を特定するためのスクリーニング、好ましくは、高処理能力スクリーニングに用いることができる。
【００４３】
また、実験的実施例におけるデータにより裏づけられているように、ｈＴ１Ｒ１及びｈＴ１Ｒ３を同時発現する細胞がヒトうま味を反映する仕方でグルタミン酸塩（グルタミン酸一ナトリウム塩）及び５’−リボヌクレオチドにより選択的に活性化されることが示された。例えば、ｈＴ１Ｒ１及びｈＴ１Ｒ３を同時発現するＨＥＫ−２９３−Ｇα１５細胞はグルタミン酸塩に対して特異的に応答し、このうま味を呈する化合物の用量反応はその精神物理的味覚検出法の閾値と相関する。さらに、ＩＭＰのような５’−リボヌクレオチドはＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３受容体のグルタミン酸塩応答を増強する。これは、うま味の相乗作用特性である。したがって、ｈＴ１Ｒ１及びｈＴ１Ｒ３を同時発現する細胞は、うま味感覚を模擬、調節、阻害かつ／又は増強する化合物を特定するためのスクリーニング、好ましくは、高処理能力スクリーニングに用いることができる。
【００４４】
さらに、実施例における実験データにより示されたように、Ｔ１Ｒ１及びＴ１Ｒ３を安定かつ誘導的に同時発現する細胞は、うま味刺激物質Ｌ−グルタミン酸塩及びＬ−アスパラギン酸塩に対して選択的に応答し、他のＬ−アミノ酸に対しては弱く応答するにすぎず、そして、はるかに高い実施例における実験データにより濃度では、Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３受容体をうま味刺激を調節する（増強又は阻害する）化合物を特定するアッセイに用いることができるというさらなる証拠が得られたことが示された。
【００４５】
また、実施例における実験データにより裏づけられているように、Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３又はＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３を同時発現する細胞系はそれぞれうま味又は甘味刺激物質に対して応答し、定量的な用量反応が、Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３又はＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３受容体を受容体作動物質及び拮抗物質、例えば、ＭＳＧ代用物、うま味阻害物質、新規人工及び天然甘味料並びに甘味阻害物質を特定するのに用いることができるという結論をさらに裏づけていることが示された。
【００４６】
また、実験的実施例におけるデータにより裏づけられているように、甘味阻害物質ラクティソールがＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３甘味受容体及びＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３うま味受容体の両方を阻害することが示された。このことから、Ｔ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３又はＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３へのラクティソールの結合に影響を及ぼす化合物をスクリーニングするアッセイは甘味又はうま味を増強、模擬、調節又は阻害する化合物を特定するのに用いることができることが示唆される。ラクティソールがＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３及びＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３受容体の両方を阻害するという事実から、これらの受容体が、ラクティソール及び潜在的に他の味覚調節物質が結合する共通のサブユニットを共有していることが示唆される。したがって、これにより、甘味を増強、模擬、調節又は阻害する一部の化合物はうま味に対して同様な作用を有し、また、その逆も言えることが示唆される。
【００４７】
さらに、実験的実施例におけるデータにより裏づけられているように、Ｔ１Ｒｓ、すなわち、Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３又はＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３を安定に同時発現する細胞系は、自動蛍光画像法によりアッセイしたとき、様々な甘味及びうま味刺激物質に対して非常に効果的に、すなわち、一時的にトランスフェクトした細胞よりも実質的に大きい程度に応答することが示された。したがって、これらの細胞系は、甘味及びうま味を調節、阻害、模擬又は増強する化合物を特定するための高処理能力スクリーニングアッセイ用に特に適している。しかし、本発明は、Ｔ１Ｒ又はその組合せを一時的に発現する細胞を用いるアッセイも含む。
【００４８】
さらに、適用例は、一部のＴ１Ｒｓが共に、具体的にはＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３及びＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３が作用すること、そして、そのような受容体の組合せをアッセイ、好ましくは高処理能力アッセイに用いることができることを示すデータを含んでいるが、対象発明はＴ１Ｒ１、Ｔ１Ｒ２及びＴ１Ｒ３単独あるいは他のタンパク質、例えば、他のＧＰＣＲｓと組み合わせて用いるアッセイも含むことを注意すべきである。
【００４９】
それに関して、甘味受容体はＴ１Ｒ２のみからなり、かつ／又はうま味受容体はＴ１Ｒ１のみからなっていて、Ｔ１Ｒ３受容体はおそらくＴ１Ｒ２又はＴ１Ｒ１の表面発現を促進するように機能していると推測される。
【００５０】
あるいは、甘味及びうま味受容体はＴ１Ｒ１及び／又はＴ１Ｒ２の制御のもとに差別的に処理されるＴ１Ｒ３のみにより構成されていると想定される。この種の受容体発現は、カルシトニン関連受容体のＲＡＭＰ依存性プロセシングと類似していると思われる。
【００５１】
Ｔ１Ｒアッセイにより特定される化合物は、食物及び飲料の味を調節するために用いることができる。以下でさらに詳細に記載する適切なアッセイは、異なるＴ１Ｒ受容体、そのキメラ又は断片、特にＮ末端リガンド結合ドメインを含む断片の組合せの１つを用いる直接結合アッセイを含む、実施例としての全細胞アッセイ及び生化学的アッセイなどである。本発明における使用に適切なアッセイの例は、以下でより詳細に記載するが、ＧＰＣＲの分野において知られているものである。
【００５２】
Ｔ１Ｒ味覚受容体又はＴ１Ｒ味覚受容体の組合せ又は他の異種（非Ｔ１Ｒ）タンパク質、例えば、他のＧＰＣＲｓと共に発現するＴ１Ｒ受容体への種々の化合物又は化合物の混合物の結合を定量する、あるいは、Ｔ１Ｒ味覚受容体を発現する細胞の活性化を定量するアッセイを設計することができる。これは、ＨＥＫ−２９３、ＣＨＯ及びＣＯＳ細胞のような異種細胞中で安定又は一時的に発現する味覚受容体により実現することができる。
【００５３】
アッセイは、Ｇα１５又はＧα１６あるいは他の乱交雑Ｇタンパク質又はＧタンパク質変異型あるいは内性Ｇタンパク質のようなＧタンパク質も（好ましくは安定に）発現する細胞を用いることが好ましいであろう。さらに、アッセイにおいてＧβ及びＧγタンパク質も発現させてもよい。
【００５４】
上で特定した受容体又は受容体の組合せを発現又は含む細胞又は組成物を用いた甘味又はうま味に対する化合物の効果は、カルシウム感受性色素、電位感受性色素の使用、ｃＡＭＰアッセイ、蛍光標識リガンド又は3Ｈ−グルタミン酸塩のような放射性リガンドを用いる直接結合アッセイ又は転写アッセイ（ルシフェラーゼ又はβ−ラクタマーゼのような適切なリポーターを用いる）を含む様々な手段により検討することができる。
【００５５】
本発明による１種又は複数のＴ１Ｒｓと共に用いることができるアッセイは、実施例としての、生細胞の遺伝的選択を用いるアッセイ、全細胞又は膜断片又は精製Ｔ１Ｒタンパク質を用いるアッセイ、ｃＡＭＰ及びＩＰ３のような二次メッセンジャーを用いるアッセイ、アレスチンの細胞表面への転移を検出するアッセイ、試験に供したリガンドにより細胞表面上の受容体発現の喪失を検出する（細胞内取込み）アッセイ、直接リガンド結合アッセイ、阻害物質を用いる競合的結合アッセイ、ｉｎ  ｖｉｔｒｏで翻訳されたタンパク質を用いるアッセイ、リガンドの結合時のコンホメーション変化（例えば、タンパク質分解、蛍光又はＮＭＲにより証明される）を検出するアッセイ、ハエ、虫又はマウスのような、Ｔ１Ｒ又はＴ１Ｒ組合せを発現するヒト以外のトランスジェニック動物を用いる行動アッセイ、Ｔ１Ｒ遺伝子を含む組換えウイルスを感染させた細胞を用いるアッセイなどである。
【００５６】
Ｔ１Ｒ又はＴ１Ｒ断片（又はＴ１Ｒｓの組合せ又はＴ１Ｒと他のタンパク質との組合せ）のＸ線結晶構造を決定し、特定のＴ１Ｒ受容体又は受容体組合せに結合かつ／又は増強、模擬、阻害又は調節する化合物を分子モデリング法により予測するのに用いる、構造に基づくアッセイも本発明の範囲内にある。より具体的には、本発明は、Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３（好ましくはｈＴ１Ｒ１／ｈＴ１Ｒ３）及び／又はＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３（好ましくはｈＴ１Ｒ２／ｈＴ１Ｒ３）の結晶構造の決定及びＴ１Ｒ受容体活性を調節する分子を特定するための構造に基づく設計方法におけるそのような結晶構造の使用を含む。
【００５７】
本発明は特に、１種又は複数の全長Ｔ１Ｒ受容体あるいはＴ１Ｒ１、Ｔ１Ｒ２又はＴ１Ｒ３の断片、好ましくは、Ｎ末端ドメインを発現する細胞、例えば、哺乳類、酵母、昆虫又は他の異種細胞を用いて実施する生化学的アッセイを含む。そのようなアッセイにおける化合物の効果は、競合的結合アッセイ、例えば、放射性グルタミン酸又はＩＭＰ、蛍光（例えば、蛍光偏光、ＦＲＥＴ）又はＧＴＰｙ35Ｓ結合アッセイを用いて測定することができる。言及したように、好ましい実施形態において、そのようなアッセイでは、Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３又はＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３及びＧα１５のような適切なＧタンパク質を安定に同時発現する細胞系を用いる。他の適切なＧタンパク質としては、参照により全部が本明細書に組み込まれる米国出願番号第０９／９８４，２９２号及び第６０／２４３，７７０号に開示されているキメラ及び変異Ｇタンパク質などがある。
【００５８】
さらに、改善された特性、例えば、表面発現又はＧタンパク質結合が増強された改変受容体を構築することができる。これらのＴ１Ｒ変異体は細胞を用いるアッセイ及び生化学的アッセイに組み込むことができる。
【００５９】
ヒトＴ１Ｒｓに関する本発見を他の動物種、例えば、げっ歯類、ブタ、サル、イヌ及びネコ並びにおそらく魚のような非哺乳類に拡張できると想像される。これに関して、いくつかの魚Ｔ１Ｒ断片が下記の実施例１で特定されている。したがって、本発明は動物飼料調合物用の化合物のスクリーニングに適用例を有する。
【００６０】
本発明はさらに、様々なＴ１Ｒｓ及びその組合せの種々の対立遺伝子変異体を用い、それにより、対立遺伝子変異体を発現する個体における特定の味覚を誘発する化合物又はすべての個体における特定の味覚を誘発する化合物の特定を可能にするスクリーニングを含む。そのような化合物は、一般的に食物の味をより良くするのに用いることができる。
【００６１】
Ｔ１Ｒコード核酸は、味覚細胞において特異的に発現するので、味覚細胞の同定のための有用なプローブともなる。例えば、Ｔ１Ｒポリペプチド及びタンパク質のプローブを用いて、葉状、有郭及び茸上乳頭に存在する味覚細胞並びにゲシュマックストライフェン、口腔、胃腸上皮及び喉頭蓋に存在する味覚細胞を同定することができる。特に、Ｔ１Ｒｓを検出する方法を用いて、甘味及び／又はうま味刺激あるいは他の種類の味を呈する他の味覚刺激に敏感な味覚細胞を同定することができる。例えば、Ｔ１Ｒ２及び／又はＴ１Ｒ３を安定又は一時的に発現する細胞は、本明細書における試験から甘味刺激に対して応答すると予測されよう。同様に、Ｔ１Ｒ１及び／又はＴ１Ｒ３を発現する細胞は、うま味刺激に対して応答すると予測されよう。本発明のＴ１Ｒタンパク質及びポリペプチドをコードする核酸は、参照により全部が本明細書に組み込まれる国際公開第００／０３５３７４号に開示されている方法により遺伝子工学的に処理され、増幅され、合成され、かつ／又は組換えにより発現させた様々な源から分離することができる。本発明により発現させることができるＴ１Ｒｓの一覧は、実施例に記載する。しかし、本発明は、そのようなＴ１Ｒ配列及び特に他の動物種のＴ１Ｒｓに基づいて構築された他の特異的Ｔ１Ｒｓ又は断片、変異型又はキメラの発現及び使用を含むことを強調すべきである。
【００６２】
開示されているように、本発明の重要な態様は、これらの味覚細胞特異的ＧＰＣＲｓの調節物質、例えば、活性化物質、阻害物質、刺激物質、増強物質、作動物質及び拮抗物質をスクリーニングする複数の方法である。味覚伝達のこのような調節物質は、味覚シグナル伝達経路の調節に有用である。これらのスクリーニングの方法を用いて、味覚細胞活性の高親和性の作動物質及び拮抗物質を特定することができる。次に、これらの調節化合物を食品産業において味を個別調整、例えば、食品の甘味及び／又はうま味を調節するのに用いることができる。
【００６３】
本発明は、甘味及びうま味の味覚を媒介する特異的Ｔ１Ｒｓ及びＴ１Ｒ受容体の組合せを同定することができるので、甘味及びうま味に関する以前の理解の不足を矯正するものである。したがって、一般的に本出願は、Ｔ１Ｒクラスの味覚特異的Ｇタンパク質結合受容体及び味覚におけるそれらの特異的機能に関する発明者らの発見並びにこれらの発見と味覚の分子的基礎のより十分な理解との関係に関する。
【００６４】
甘味及びうま味（グルタミン酸一ナトリウム塩の味）の分子的基礎は、不可解である。最近、Ｔ１Ｒｓと称される３メンバークラスの味覚特異的Ｇタンパク質結合受容体が同定された。Ｔ１Ｒの重複する発現パターンと構造的に関連するＧＡＢＡB受容体がヘテロ二量体であるという証明とから、Ｔ１Ｒｓがヘテロ二量体受容体として機能することが示唆される。以下の実施例において、本発明は、異種細胞におけるヒトＴ１Ｒ１、Ｔ１Ｒ２及びＴ１Ｒ３の機能的同時発現、すなわち、Ｔ１Ｒ１及びＴ１Ｒ３を同時発現する細胞はうま味刺激により活性化され、Ｔ１Ｒ２及びＴ１Ｒ３を同時発現する細胞は甘味刺激により活性化されることを記載している。Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３及びＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３の活性は、精神物理的検出法の閾値と相関性を示した。さらに、５’−リボヌクレオチドＩＭＰはグルタミン酸塩に対するＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３応答を増強すること（うま味の相乗作用特性）が認められた。これらの所見は、特異的Ｔ１Ｒｓ及びＴ１Ｒｓの個別に異なる組合せが甘味及びうま味受容体として機能することを示している。
【００６５】
ヒトの苦味、甘味及びうま味の知覚は、Ｇタンパク質結合受容体により媒介されると考えられる（Ｌｉｎｄｅｍａｎｎ  Ｂ．、ｐｈｙｓｉｏｌ．Ｒｅｓ．第７６巻、７１８〜６６頁（１９９６年））。最近、ヒトゲノムの評価によりＴ２Ｒクラスの苦味受容体が明らかにされた（Ａｄｌｅｒ  ｅｔ  ａｌ．、Ｃｅｌｌ、第１００巻、６１３〜７０２頁（２０００年）、Ｃｈａｎｄｒａｓｇｅｋａｒ  ｅｔ  ａｌ．、Ｃｅｌｌ、第１００巻、７０３〜１１頁（２０００年）、Ｍａｔｓｕｎａｍｉ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎａｔｕｒｅ、第４０４巻、６０１〜６０４頁（２０００年））が、甘味及びうま味の受容体は同定されなかった。最近、他のクラスの候補味覚受容体であるＴ１Ｒｓが同定された。Ｔ１Ｒｓは最初にラット味覚組織由来のサブトラクテッドｃＤＮＡライブラリーの大規模配列決定により（これによりＴ１Ｒ１が同定された）、その後、Ｔ１Ｒ１に基づく縮重ＰＣＲ（これがＴ１Ｒ２の同定につながった）により同定された（Ｈｏｏｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｃｅｌｌ、第９６巻、５４１〜５５１頁（１９９９年））。最近、本願発明者ら及び他者らは、ヒトゲノムデータバンクにおけるＴ１Ｒファミリーの第３のおそらく最終のメンバーであるＴ１Ｒ３を同定した（Ｋｉｔａｇａｗａ  ｅｔ  ａｌ．、Ｂｉｏｃｈｅｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ  Ｃｏｍｍｕｎ．第２８３巻、第１号、２３６〜４２頁（２００１年）、Ｍａｘ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎａｔ．Ｇｅｎｅｔ．第２８巻、第１号、５８〜６３頁（２００１年）、Ｓａｉｎｚ  ｅｔ  ａｌ．、Ｊ．Ｎｅｕｒｏｃｈｅｍ．第７７巻、第３号、８９６〜９０３頁（２００１年）、Ｍｏｎｔｍａｙｅｕｒ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎａｔ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．第４巻、４９２〜８頁（２００１年））。効果的に、マウスＴ１Ｒ３はマウスにおける甘味に影響を及ぼす遺伝子座であるＳａｃを含むゲノム区間にマップされる（Ｆｕｌｌｅｒ  ｅｔ  ａｌ．、Ｊ．Ｈｅｒｅｄ．第６５巻、３３〜６頁（１９７４年）、Ｌｉ  ｅｔ  ａｌ．、Ｍａｍｍ．Ｇｅｎｏｍｅ、第１２巻、１３〜１６頁（２００１年））。したがって、Ｔ１Ｒ３は甘味受容体として機能すると予測された。最近の高分解能遺伝地図研究でマウスＴ１Ｒ３とＳａｃとの関連性が補強された（Ｆｕｌｌｅｒ  Ｔ．Ｃ．、Ｊ．Ｈｅｒｅｄ．第６５巻、第１号、３３〜３６頁（１９７４年）、Ｌｉ  ｅｔ  ａｌ．、Ｍａｍｍａｌ．Ｇｅｎｏｍｅ、第１２巻、第１号、１３〜１６頁（２００１年）。
【００６６】
興味深いことに、これまでは機能的に発現していたすべてのＣファミリー受容体（メタボトロピックグルタミン酸塩受容体、ＧＡＢＡB受容体、カルシウム感知受容体（Ｃｏｎｉｇｒａｖｅ  Ａ．Ｄ．、Ｑｕｉｎｎ  Ｓ．Ｊ．、Ｂｒｏｗｎ  Ｅ．Ｍ．、Ｐｒｏｃ  Ｎａｔｌ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  ＵＳＡ、第９７巻、４８１４〜９頁（２０００年））及び魚嗅覚受容体（Ｓｐｅｃａ  Ｄ．Ｊ．  ｅｔ  ａｌ．、Ｎｅｕｒｏｎ、第２３巻、４８７〜９８頁（１９９９年））がアミノ酸により活性化されることが示された。このような共通の特徴が、Ｔ１Ｒｓがアミノ酸を認識し、またＴ１Ｒｓが甘味のあるアミノ酸に加えてグルタミン酸塩の検出に関与するという可能性を生じさせている。あるいは、ラット味覚組織における選択的発現と、受容体活性化閾値がグルタミン酸の精神物理的検出法の閾値とが類似していることから、ｍＧｌｕＲ４メタボトロピックグルタミン酸受容体の転写変異型がうま味受容体であると提唱された（Ｃｈａｕｄｈａｒｉ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎａｔ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．第３巻、１１３〜１１９頁（２０００年））。この仮説は、味覚組織におけるｍＧｌｕＲ４変異型の発現レベルが極めて低いことと、ｍＧｌｕＲ４ノックアウトマウスのグルタミン酸味覚が事実上変化しない（Ｃｈａｕｄｈａｒｉ  ａｎｄ  Ｒｏｐｅｒ、Ａｎｎ．Ｎ．Ｙ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．第８５５巻、３９８〜４０６頁（１９９８年））ことと調和させることが困難である。さらに、野生型受容体のグルタミン酸結合ポケットを形成する残基の大部分だけでなく、球状Ｎ末端グルタミン酸結合ドメインのほぼ半分も欠く味覚受容体変異型は構造的にありそうもない（Ｋｕｎｉｓｈｉｍａ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎａｔｕｒｅ、第４０７巻、９７１〜７頁（２０００年））。
【００６７】
げっ歯類におけるＴ１Ｒ発現パターンの比較分析により、Ｔ１Ｒ２及びおそらくＴ１Ｒ１がそれぞれＴ１Ｒ３と同時発現することが示された（Ｈｏｏｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｃｅｌｌ、第９６巻、５４１〜５１頁（１９９９年）、Ｋｉｔａｇａｗａ  ｅｔ  ａｌ．、Ｂｉｏｃｈｅｍ  Ｂｉｏｐｈｙ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．第２８３巻、２３６〜２４２頁（２００１年）、Ｍａｘ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎａｔ．Ｇｅｎｅｔ．第２８巻、５８〜６３頁（２００１年）、Ｍｏｎｔｍａｙｅｕｒ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎａｔ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．第４巻、４９２〜８頁（２００１年）、Ｓａｉｎｚ  ｅｔ  ａｌ．、Ｊ．Ｎｅｕｒｏｃｈｅｍ、第７７巻、８９６〜９０３頁（２００１年））。さらに、Ｃファミリー受容体の共通のテーマとして二量体化が発生している。すなわち、メタボトロピックグルタミン酸及びカルシウム感知受容体はホモ二量体であり（Ｒｏｍｏｍａｎｏ  ｅｔ  ａｌ．、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．第２７１巻、２８６１２〜６頁（１９９６年）、Ｏｋａｍｏｔｏ  ｅｔ  ａｌ．、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．第２７３巻、１３０８９〜９６頁（１９９８年）、Ｈａｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．第２７４巻、１００００８〜１３頁（１９９９年）、Ｂａｉ  ｅｔ  ａｌ．、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．第２７３巻、２３６０５〜１０頁（１９９８年））、構造的に関連するＧＡＢＡB受容体はヘテロ二量体である（Ｊｏｎｅｓ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎａｔｕｒｅ、第３９６巻、６７４〜９頁（１９９８年）、Ｋａｕｐｍａｎｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎａｔｕｒｅ、第３９６巻、６８３〜６８７頁（１９９８年）、Ｗｈｉｔｅ    ｅｔ  ａｌ．、Ｎａｔｕｒｅ、第３９６巻、６７９〜６８２頁（１９９８年）、Ｋｕｎｅｒ  ｅｔ  ａｌ．、Ｓｃｉｅｎｃｅ、第２８３巻、７４〜７７頁（１９９９年））。本願発明者らは、異種細胞における  Ｔ１Ｒｓの機能的同時発現により、ヒトＴ１Ｒ２がヒトＴ１Ｒ３と共に甘味受容体として機能し、ヒトＴ１Ｒ１がヒトＴ１Ｒ３と共にうま味受容体として機能することを立証した。
【００６８】
以前には改良型人工甘味料の開発は甘味のアッセイが存在しないことにより阻まれていたので、本明細書で述べた発見は特に重要である。実際、すべてがｈＴ１Ｒ２／ｈＴ１Ｒ３を活性化する５種の一般的に使用されている市販の甘味料は思いがけなく発見された。同様に、骨の折れる方法である官能検査以外には、うま味を調節する化合物を特定するアッセイは存在しない。以下で述べる実験結果により実証されているように、ヒト甘味及びうま味受容体が同定され、これらの受容体に関するアッセイ、具体的には、機能的Ｔ１Ｒ味覚受容体、すなわち甘味又はうま味受容体を安定に発現する細胞を用いるアッセイが開発されたので、これらの問題は現在、多少とも解決されている。
【００６９】
それに基づいて、本発明は、Ｔ１Ｒファミリーが味蕾において作用するように、味覚調節化合物の甘味及びうま味に対する効果のリポーター分子として作用する、味覚調節化合物を検出し、特徴付けるアッセイを提供する。甘味及びうま味を個別に調節し、模擬し、増強し、かつ／又は阻害する化合物を特定するアッセイを特に提供するが、これらは本発明の範囲内にある。ＧＰＣＲｓの活性及び特にＧＰＣＲ活性に影響を及ぼす化合物をアッセイする方法は、よく知られており、本発明のＴ１Ｒファミリーメンバー及びその機能の組合せに適用可能である。適切なアッセイは上に特定した。
【００７０】
特に、対象ＧＰＣＲｓは、例えば、リガンド結合、イオン濃度、膜電位、電流、イオン流速、転写、受容体−リガンド相互作用、二次メッセンジャー濃度の変化をｉｎ  ｖｉｔｒｏ及びｉｎ  ｖｉｖｏで測定するためのアッセイに用いることができる。他の実施形態において、Ｔ１Ｒファミリーメンバーは細胞内で組換えにより発現させることができ、ＧＰＣＲ活性を介しての味覚変換の調節は、Ｃａ2+濃度及びｃＡＭＰ、ｃＧＭＰ又はＩＰ3のような細胞内メッセンジャーの変化を測定することによりアッセイすることができる。
【００７１】
特定のアッセイにおいて、Ｔ１Ｒポリペプチドのドメイン、例えば、細胞外、膜貫通又は細胞内ドメインが異種ポリペプチドに融合されていて、それにより、キメラポリペプチド、例えば、ＧＰＣＲ活性を有するキメラタンパク質を形成している。Ｎ末端リガンド結合ドメインを含むＴ１Ｒ１、Ｔ１Ｒ２又はＴ１Ｒ３の断片の使用が特に予想される。そのようなタンパク質は、例えば、Ｔ１Ｒ受容体のリガンド、作動物質、拮抗物質又は他の調節物質を特定するためのアッセイにおいて有用である。例えば、Ｔ１Ｒポリペプチドは、形質膜のトラフィッキングあるいは分泌経路による成熟及びターゲッティングを促進する異種シャペロン配列を有するキメラ受容体として真核細胞中で発現させることができる。任意選択の異種配列は、Ｃ末端ＰＤＺＩＰ断片（配列番号１）のようなＰＤＺドメイン相互作用ペプチドであってよい。ＰＤＺＩＰは、ＥＲ輸出シグナルであり、本発明によれば、本明細書に記載するＴ１Ｒ受容体のような異種タンパク質の表面発現を促進することが示された。より具体的には、本発明の１態様において、ＰＤＺＩＰは、嗅覚受容体、Ｔ２Ｒ味覚受容体及び本明細書に記載するＴ１Ｒ味覚受容体のような問題のある膜タンパク質の適切なターゲッティングを促進するために用いることができる。
【００７２】
そのようなキメラＴ１Ｒ受容体は、ＨＥＫ−２９３細胞のようないかなる真核細胞においても発現させることができる。細胞は、Ｇタンパク質、好ましくはＧα15又はＧα16のような乱交雑Ｇタンパク質あるいは広範囲のＧＰＣＲｓを細胞内シグナル伝達経路又はホスホリパーゼＣのようなシグナル伝達タンパク質に連結させることができる他のタイプの乱交雑Ｇタンパク質を含むことが好ましい。そのような細胞内のそのようなキメラ受容体は、細胞中のＦＵＲＡ−２依存性蛍光を検出することにより細胞内カルシウムの変化を検出することによるような標準的方法を用いて検出することができる。好ましい宿主細胞が適切なＧタンパク質を発現しない場合、参照により全部が本明細書に組み込まれる、米国出願第６０／２４３，７７０号、２００１年１０月２９日出願の米国出願第０９／９８４，２９７号及び２００１年１１月２１日出願の米国出願第０９／９８９，４９７号に記載のような乱交雑Ｇタンパク質をコードする遺伝子をそれらの宿主細胞にトランスフェクションすることができる。
【００７３】
味覚変換の調節物質を検定する別の方法としては、Ｔ１Ｒポリペプチド、その一部、すなわち、細胞外ドメイン、膜貫通領域又はそれらの組合せあるいはＴ１Ｒファミリーメンバーの１つ又は複数のドメインを含むキメラタンパク質；Ｔ１Ｒポリペプチド、断片又は融合タンパク質を発現する卵母細胞又は組織培養細胞；Ｔ１Ｒファミリーメンバーのリン酸化及び脱リン酸化；ＧＰＣＲｓに結合するＧタンパク質；リガンド結合アッセイ；電圧、膜電位及びコンダクタンス変化；イオン流束アッセイ；ｃＧＭＰ、ｃＡＭＰ及びイノシトール三リン酸（ＩＰ３）のような細胞内二次メッセンジャーの変化並びに細胞内カルシウム濃度の変化を用いるｉｎ  ｖｉｔｒｏリガンド結合アッセイなどがある。
【００７４】
さらに、本発明は、味覚変換の調節の検討及び味覚受容体細胞の特異的同定を可能にする、Ｔ１Ｒ核酸及びタンパク質発現を検出する方法を提供する。Ｔ１Ｒファミリーメンバーは、父性及び法医学調査のための有用な核酸プローブも提供する。Ｔ１Ｒ遺伝子も葉状、茸状、有郭、ゲシュマックストライフェン及び喉頭蓋味覚受容体細胞のような味覚受容体細胞を同定するための核酸プローブとして有用である。Ｔ１Ｒ受容体も味覚受容体細胞を同定するのに有用なモノクローナル及びポリクローナル抗体を発生させるために用いることができる。
【００７５】
機能的には、Ｔ１Ｒポリペプチドは、味覚伝達に関与すると考えられており、Ｇタンパク質と相互作用して味覚シグナル伝達を媒介することができる関連する７種の貫膜Ｇタンパク質結合受容体を含む（例えば、Ｆｏｎｇ、Ｃｅｌｌ  Ｓｉｇｎａｌ、第８巻、２１７頁（１９９６年）、Ｂａｌｄｗｉｎ、Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．、第６巻、１８０頁（１９９４年）を参照）。構造的には、Ｔ１Ｒファミリーメンバーのヌクレオチド配列は、細胞外ドメイン、７種の膜貫通ドメイン及び細胞質ドメインを含む関連する関連するポリペプチドをコードする。他の動物種の関連Ｔ１Ｒファミリー遺伝子は、本明細書において実施例で開示するＴ１Ｒ核酸配列又はその保存的に修飾された変異体と少なくとも約５０ヌクレオチドの長さ、場合によって１００、２００，５００又はそれ以上のヌクレオチドの長さの領域にわたり少なくとも約５０％及び場合によって６０％、７０％、８０％又は９０％のヌクレオチド配列同一性を共有するか、あるいは、以下において実施例で開示するＴ１Ｒポリペプチド又はその保存的に修飾された変異体と少なくとも２５アミノ酸の長さ、場合によって５０〜１００アミノ酸の長さのアミノ酸領域にわたり少なくとも約３５〜５０％及び場合によって６０％、７０％、８０％又は９０％のアミノ酸配列同一性を共有するポリペプチドをコードする。
【００７６】
Ｔ１Ｒファミリーメンバーに特徴的ないくつかの共通アミノ酸配列又はドメインも同定された。例えば、Ｔ１Ｒファミリーメンバーは、一般的に、Ｔ１Ｒ共通配列１及び２（それぞれ配列番号２及び３）と少なくとも約５０％、場合によって５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５〜９９％又はより高い同一性を有する配列を含む。したがって、これらの保存ドメインは、同一性、特異的ハイブリダイゼーション又は増幅あるいはドメインに対して産生させた抗体による特異的結合により、Ｔ１Ｒファミリーのメンバーを同定するのに用いることができる。Ｔ１Ｒ共通配列は、例として次の配列を含む。
Ｔ１Ｒファミリー共通配列１：（配列番号２）
（ＴＲ）Ｃ（ＦＬ）（ＲＱＰ）Ｒ（ＲＴ）（ＳＰＶ）（ＶＥＲＫＴ）ＦＬ（ＡＥ）（ＷＬ）（ＲＨＧ）Ｅ
Ｔ１Ｒファミリー共通配列２：（配列番号３）
（ＬＱ）Ｐ（ＥＧＴ）（ＮＲＣ）ＹＮ（ＲＥ）Ａ（ＲＫ）（ＣＧＦ）（ＶＬＩ）Ｔ（ＦＬ）（ＡＳ）（ＭＬ）
【００７７】
これらの共通配列は本明細書に記載するＴ１Ｒポリペプチドに認められるものを含むが、他の生物のＴ１Ｒファミリーメンバーは、本明細書に具体的に記載する共通配列と約７５％又はそれ以上の同一性を有する共通配列を含むと予想される。
【００７８】
Ｔ１Ｒヌクレオチド及びアミノ酸配列の特定の領域は、Ｔ１Ｒファミリーメンバーの多形性変異体、種間同族体及び対立遺伝子を同定するために用いることができる。この同定は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏで例えば、ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で又はＰＣＲ（例えば、上で同定されたＴ１Ｒ共通配列をコードするプライマーを用いる）により、あるいは他のヌクレオチド配列との比較のためのコンピュータシステムにおける配列情報を用いて行うことができる。単一種集団内のＴ１Ｒ遺伝子の異なる対立遺伝子も、対立遺伝子配列の差が集団のメンバー間の味覚の相違を制御しているかどうかを判断する際に有用であろう。古典的なＰＣＲタイプの増幅及びクローニング技術は、例えば、同義性プライマーが種にわたる関連遺伝子を検出するのに十分なものである場合に、新規のＴ１Ｒｓを分離するのに有用である。
【００７９】
一般的に、Ｔ１Ｒファミリーメンバーの多形性変異体及び対立遺伝子の同定は、約２５アミノ酸又はそれ以上、例えば、５０〜１００アミノ酸のアミノ酸配列を比較することにより行うことができる。おおよそ少なくとも３５〜５０％、及び場合により６０％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５〜９９％又はそれ以上のアミノ酸同一性は一般的に、タンパク質がＴ１Ｒファミリーメンバーの多形性変異体、種間同族体又は対立遺伝子であることを示している。配列の比較は、下記の配列比較アルゴリズムのいずれかを用いて行うことができる。Ｔ１Ｒポリペプチド又はその保存領域に特異的に結合する抗体も、対立遺伝子、種間同族体及び多形性変異体を同定するのに用いることができる。
【００８０】
Ｔ１Ｒ遺伝子の多形性変異体、種間同族体及び対立遺伝子は、推定上のＴ１Ｒ遺伝子又はタンパク質の味覚細胞特異的発現を検討することにより確認することができる。一般的に、本明細書に開示するアミノ酸配列を有するＴ１Ｒポリペプチドは、Ｔ１Ｒファミリーメンバーの多形性変異体又は対立遺伝子の同定を立証するための推定上のＴ１Ｒポリペプチドとの比較における陽性対照として用いることができる。多形性変異体、対立遺伝子及び種間同族体は、Ｇタンパク質結合受容体の７種の貫膜構造を保持していると予想される。さらなる詳細については、関連Ｔ１ＲファミリーメンバーであるＧＰＣＲ−Ｂ３ｓを開示しており、この開示と一致した方法で参照により本明細書に組み込まれる国際公開第００／０６５９２号を参照。ＧＰＣＲ−Ｂ３受容体は、本明細書ではｒＴ１Ｒ１及びｍＴ１Ｒ１と称している。さらに、また関連Ｔ１ＲファミリーメンバーであるＧＰＣＲ−Ｂ４ｓを開示しており、その内容がこの開示と一致した方法で参照により本明細書に組み込まれる国際公開第００／０６５９３号を参照。ＧＰＣＲ−Ｂ４受容体は、本明細書ではｒＴ１Ｒ２及びｍＴ１Ｒ２と称している。前述のように、本発明は、Ｔ１Ｒ受容体活性を調節し、それにより、甘味及び／又はうま味を調節する分子を特定するための、Ｔ１Ｒ又はＴ１Ｒの組合せ、例えば、ｈＴ１Ｒ２／ｈＴ１Ｒ３又はｈＴ１Ｒ１／ｈＴ１Ｒ３のＸ線結晶構造を用いる構造に基づくアッセイも含む。
【００８１】
本発明はまた、Ｔ１Ｒ受容体を増強、模擬、阻害及び／又は調節する分子を特定するためのアッセイ、好ましくは高処理能力アッセイも提供する。いくつかのアッセイにおいて、Ｔ１Ｒファミリーメンバーの特定のドメインを他のＴ１Ｒファミリーメンバーの特定のドメイン、例えば、細胞外、膜貫通又は細胞内のドメイン又は領域と組み合わせて用いる。他の実施形態において、細胞外ドメイン、膜貫通領域又はその組合せを固体基材に結合させ、例えば、リガンド、作動物質、拮抗物質又はＴ１Ｒポリペプチドに結合し、かつ／又はその活性を調節することができる他の分子を分離するのに用いることができる。
【００８２】
様々な保存的突然変異及び置換は、本発明の範囲内にあると想定される。例えば、ＰＣＲ、遺伝子クローニング、ｃＤＮＡの部位特異的突然変異誘発、宿主細胞のトランスフェクション及びｉｎ  ｖｉｔｒｏ転写などの組換え遺伝子技術の既知のプロトコールを用いてアミノ酸置換を実施することは、当技術分野の技術のレベル内にある。次に変異体を活性についてスクリーニングすることができる。
【００８３】
定義
本明細書において用いているように、以下の用語は、特に指定しない限り、それらについて記載する意味を有する。
【００８４】
「味覚細胞」は、群に組織化されて、舌の味蕾を形成する、例えば、葉状、茸状及び有郭細胞などの感覚上皮細胞を含む（例えば、Ｒｏｐｅｒ  ｅｔ  ａｌ．、Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．第１２巻、３２９〜３５３頁（１９８９年）を参照）。味覚細胞は、口蓋並びに食道及び胃のような他の組織にも認められる。
【００８５】
「Ｔ１Ｒ」は、葉状、茸状及び有郭細胞並びに口蓋及び食道の細胞のような味覚細胞中で発現するＧタンパク質結合受容体のファミリーの１つ又は複数のメンバーを指す（例えば、参照により全部が本明細書に組み込まれる、Ｈｏｏｎ    ｅｔ  ａｌ．、Ｃｅｌｌ、第９６巻、５４１〜５５１頁（１９９９年）を参照）。このファミリーのメンバーは、国際公開第００／０６５９２号においてＧＰＣＲ−Ｂ３及びＴＲ１と、また国際公開第００／０６５９３号においてＧＰＣＲ−Ｂ４及びＴＲ２とも称されている。ＧＰＣＲ−Ｂ３は、本明細書ではｒＴ１Ｒ１と、ＧＰＣＲ−Ｂ４はｒＴ１Ｒ２と称している。味覚受容体細胞は、形態に基づいて（例えば、Ｒｏｐｅｒ、前出、参照）、あるいは、味覚細胞中で特異的に発現しているタンパク質の発現によっても同定することができる。Ｔ１Ｒファミリーメンバーは、甘味変換のための受容体として作用する、又は他の様々な種類の味を区別する能力を有する。ｈＴ１Ｒ１、ｈＴ１Ｒ２及びｈＴ１Ｒ３を含む代表的なＴ１Ｒ配列は、以下の実施例に示されている。
【００８６】
「Ｔ１Ｒ」核酸は、「Ｇタンパク質結合受容体活性」を有する７種の膜貫通領域を有するＧＰＣＲｓのファミリーをコードする。例えば、それらは、細胞外刺激に応答してＧタンパク質に結合し、ホスホリパーゼＣ及びアデニル酸シクラーゼのような酵素の刺激によりＩＰ３、ｃＡＭＰ、ｃＧＭＰ及びＣａ2+のような二次メッセンジャーの産生を促進することができる（ＧＰＣＲｓの構造及び機能の説明については、例えば、Ｆｏｎｇ、前出、及びＢａｌｄｗｉｎ、前出を参照）。単一味覚細胞は、多くの別個のＴ１Ｒポリペプチドを含む。
【００８７】
したがって、「Ｔ１Ｒ」ファミリーという用語は、（１）Ｔ１Ｒポリペプチド、好ましくは実施例１に示されているものと、約２５アミノ酸、場合により５０〜１００アミノ酸のウインドウにわたって、少なくとも約３５〜５０％アミノ酸配列同一性、場合により約６０、７５、８０、８５、９０、９５、９６、９７、９８又は９９％アミノ酸配列同一性を有し、（２）実施例１に開示するＴ１Ｒポリペプチド配列及びその保存的に修飾された変異体からなる群から好ましくは選択されるアミノ酸を含む免疫原に対して産生させた抗体に特異的に結合し、（３）ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下で、実施例１に含まれているＴ１Ｒ核酸配列及びその保存的に修飾された変異体からなる群から選択される配列と特異的にハイブリダイズする核酸分子（少なくとも１００、場合により少なくとも約５００〜１０００ヌクレオチドのサイズを有する）によりコードされ、あるいは（４）実施例１に示すＴ１Ｒアミノ酸配列からなる群から選択されるアミノ酸配列と少なくとも約３５〜５０％同一である配列を含む、多形性変異体、対立遺伝子、突然変異体及び種間同族体を指す。
【００８８】
位相幾何学的には、特定の化学的感覚ＧＰＣＲｓは、「Ｎ末端ドメイン」、「細胞外ドメイン」、７種の膜貫通領域並びに対応する細胞質及び細胞外ループを含む「膜貫通ドメイン」、「細胞質ドメイン」及び「Ｃ末端ドメイン」を有する（例えば、Ｈｏｏｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｃｅｌｌ、第９６巻、５４１〜５５１頁（１９９９年）、Ｂｕｃｋ  ＆  Ａｘｅｌ、Ｃｅｌｌ、第６５巻、１７５〜１８７頁（１９９１年）を参照）。これらのドメインは、疎水性及び親水性ドメインを同定する配列分析プログラムのような当業者に知られている方法を用いて構造的に同定することができる（例えば、Ｓｔｒｙｅｒ、Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ（第３版、１９８８年）を参照、また、ｄｏｔ．ｉｍｇｅｎ．ｂｃｍ．ｔｍｃ．ｅｄｕで見いだされるのようなインターネットを用いる多数の配列分析プログラムのいずれかも参照）。そのうようなドメインは、キメラタンパク質の生産に、また、本発明のｉｎ  ｖｉｔｒｏアッセイ、例えば、リガンド結合アッセイに有用である。
【００８９】
したがって、「細胞外ドメイン」は、細胞膜から突き出ていて、細胞の細胞外面に露出しているＴ１Ｒポリペプチドのドメインを指す。そのようなドメインは一般的に、細胞の細胞外面に露出している「Ｎ末端ドメイン」を含み、場合により、細胞の細胞外面に露出している膜貫通ドメインの細胞外ループの部分、すなわち、膜貫通領域２及び３の間、膜貫通領域４及び５の間並びに膜貫通領域６及び７の間のループを含み得る。
【００９０】
「Ｎ末端ドメイン」は、Ｎ末端から始まり、最初の膜貫通の始まりに近い領域まで延びている。より具体的には、本発明の一実施形態において、このドメインはＮ末端から始まり、アミノ酸位置５６３プラス又はマイナス約２０アミノ酸におけるほぼ保存グルタミン酸の位置で終わる。これらの細胞外ドメインは、可溶性及び固相におけるｉｎ  ｖｉｔｒｏリガンド結合アッセイに有用である。さらに、下記の膜貫通領域も細胞外ドメインと共にリガンドに結合することができ、したがって、ｉｎ  ｖｉｔｒｏリガンド結合アッセイにも有用である。
【００９１】
７つの「膜貫通領域」を含む「膜貫通ドメイン」は、形質膜内にあるＴ１Ｒポリペプチドのドメインを指し、対応する細胞質（細胞内）及び細胞外ループも含んでいてよい。一実施形態において、この領域は、アミノ酸位置５６３プラス又はマイナス約２０アミノ酸における保存グルタミン酸残基から始まり、８１２プラス又はマイナス約１０アミノ酸位置におけるほぼ保存チロシンアミノ酸残基の位置で終わるＴ１Ｒファミリーメンバーのドメインに対応する。７種の膜貫通領域並びに細胞外及び細胞質ループは、Ｋｙｔｅ  ＆  Ｄｏｏｌｉｔｔｌｅ、Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．第１５７巻、１０５〜３２頁（１９８２年）又はＳｔｒｙｅｒ、前出に記載のような標準的方法を用いて同定することができる。
【００９２】
「細胞質ドメイン」は、細胞の内側に面するＴ１Ｒポリペプチドのドメイン、例えば、「Ｃ末端ドメイン」並びに膜貫通ドメインの細胞内ループ、例えば、膜貫通領域１及び２の間の細胞内ループ、膜貫通領域３及び４の間の細胞内ループ並びに膜貫通領域５及び６の間の細胞内ループを指す。「Ｃ末端ドメイン」は、該タンパク質の最後の膜貫通ドメインとＣ末端にわたり、通常細胞質内にある領域を指す。一実施形態において、この領域は、８１２プラス又はマイナス約１０アミノ酸位置におけるほぼ保存チロシンアミノ酸残基から始まり、ポリペプチドのＣ末端まで続いている。
【００９３】
「リガンド結合領域」又は「リガンド結合ドメイン」は、味覚受容体、特に、受容体の少なくとも細胞外ドメインを実質的に組み込んでいる味覚受容体由来の配列を指す。一実施形態において、リガンド結合領域の細胞外ドメインは、Ｎ末端ドメイン、及び場合により、膜貫通ドメインの細胞外ループのような膜貫通ドメインの一部を含んでいてよい。リガンド結合領域は、リガンド、並びに、より具体的には、味、例えば、甘味又はうま味を増強、模擬、阻害及び／又は調節する化合物に結合することができる。
【００９４】
本発明のＴ１Ｒ受容体又はポリペプチドに関連する句である「ヘテロ多量体」又は「ヘテロ多量体複合体」は、少なくとも１種のＴ１Ｒ受容体と他の受容体、一般的に他のＴ１Ｒ受容体ポリペプチド（又は、他に代わるべきものとして、他の非Ｔ１Ｒ受容体ポリペプチド）との機能的結合を指す。明確にするために、Ｔ１Ｒｓの機能的相互依存性は、本願書においてヘテロ二量体味覚受容体複合体としてのそれらの可能な機能を反映していると記載している。しかし、先に論じたように、機能的相互依存性は、あるいは間接的相互作用を反映している可能性がある。例えば、Ｔ１Ｒ３は、独立に味覚受容体として作用することができるＴ１Ｒ１及びＴ１Ｒ２の表面発現を単に促進するために機能している可能性がある。あるいは、機能的味覚受容体は、カルシウム関連受容体のＲＡＭＰ依存性プロセシングと類似した、Ｔ１Ｒ１又はＴ１Ｒ２の制御下で差別的に処理されるＴ１Ｒ３のみから構成されている可能性がある。
【００９５】
Ｔ１Ｒファミリーメンバー媒介味覚変換を調節する化合物を試験するためのアッセイに関連する句である「機能的影響」は、間接的又は直接的に受容体の影響、例えば、機能的、物理的及び化学的影響の下にあるパラメーターの測定を含む。それは、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ、ｉｎ  ｖｉｖｏ及びｅｘ  ｖｉｖｏでのリガンド結合、イオン流束の変化、膜電位、電流、転写、Ｇタンパク質結合、ＧＰＣＲリン酸化及び脱リン酸化、コンホメーション変化に基づくアッセイ、シグナル伝達、受容体−リガンド結合、二次メッセンジャー濃度（例えば、ｃＡＭＰ、ｃＧＭＰ、ＩＰ３又は細胞内Ｃａ2+）を含み、また、神経伝達物質又はホルモン放出の増加又は減少のような他の生理的影響も含む。
【００９６】
アッセイに関連する「機能的影響の測定」は、間接的又は直接的にＴ１Ｒファミリーメンバーの影響、例えば、機能的、物理的及び化学的影響の下にあるパラメーターを増加又は減少させる化合物のアッセイを意味する。そのような機能的影響は、当業者に知られている手段、例えば、分光学的特性（例えば、蛍光、吸光度、屈折率）、流体力学的（例えば、形状）、クロマトグラフ又は溶解特性、パッチクランプング、電圧感受性色素、全細胞電流、放射性同位体流出、誘導マーカー、卵母細胞Ｔ１Ｒ遺伝子発現の変化；組織培養細胞Ｔ１Ｒ発現；Ｔ１Ｒ遺伝子の転写活性化；リガンド結合アッセイ；電圧、膜電位及びコンダクタンス変化；イオン流束アッセイ；ｃＡＭＰ、ｃＧＭＰ及びイノシトール三リン酸（ＩＰ３）のような細胞内二次メッセンジャーの変化；細胞内カルシウム濃度の変化；神経伝達物質放出、コンフォーメションアッセイ等により測定することができる。
【００９７】
Ｔ１Ｒ遺伝子又はタンパク質の「阻害物質」、「活性化物質」及び「調節物質」は、味覚変換のｉｎ  ｖｉｔｒｏ及びｉｎ  ｖｉｖｏアッセイを用いて特定された阻害、活性化又は調節分子、例えば、リガンド、作動物質、拮抗物質並びにそれらの同族体及び模擬物質を指すのに用いられる。
【００９８】
阻害物質は、例えば、結合し、刺激を部分的又は完全に阻害し、活性化を減少、妨害、遅延させ、味覚伝達を不活性化、脱増感又はダウンレギュレートする化合物、例えば、拮抗物質である。活性化物質は、例えば、結合し、刺激し、増加させ、開き、活性化し、促進し、活性化を増強し、味覚伝達を増感又はアップレギュレートする化合物、例えば、作動物質である。調節物質は、例えば、受容体と、活性化物質又は阻害物質に結合する細胞外タンパク質（例えば、エブネリン及び疎水性キャリヤーファミリーの他のメンバー）との相互作用を変化させる化合物；Ｇタンパク質；キナーゼ（例えば、受容体の不活性化及び脱増感に関与するロドプシンキナーゼ及びベータアドレナリン受容体キナーゼの同族体）；並びに受容体を不活性化及び脱増感もするアレスチンなどである。調節物質としては、Ｔ１Ｒファミリーメンバーの遺伝学的に修飾された変異型、例えば、活性の変化を有する変異型、並びに、天然及び合成リガンド、拮抗物質、作動物質、小化学分子等があり得る。阻害物質及び活性化物質のそのようなアッセイは、例えば、細胞又は細胞膜中でＴ１Ｒファミリーメンバーを発現させ、調味料、例えば、甘味料の存在下又は非存在下で推定上の調節化合物を投与し、次いで、上記のように味覚変換に対する機能的影響を測定することなどである。可能な活性化物質、阻害物質又は調節物質で処理したＴ１Ｒファミリーメンバーを含むサンプル又はアッセイを阻害物質、活性化物質又は調節物質を含まない対照サンプルと比較して、調節の程度を検討する。陽性対照サンプル（例えば、調節物質を添加しない甘味料）は、相対Ｔ１Ｒ活性値が１００％であるとする。
【００９９】
陰性対照サンプル（例えば、味覚刺激物質を添加しない緩衝液）は、相対Ｔ１Ｒ活性値が０％であるとする。Ｔ１Ｒの阻害は、陽性対照サンプルと調節物質との混合により、Ｔ１Ｒ活性値が陽性対照値と比較して、約８０％、場合により５０％又は２５〜０％となるときに達成される。調節物質のみによるＴ１Ｒの活性化は、Ｔ１Ｒ活性値が陽性対照値と比較して、１０％、２５％、５０％、７５％、場合により１００％、場合により１５０％、場合により２００〜５００％又は１０００〜３０００％より高いときに達成される。
【０１００】
「精製された」、「実質的に精製された」及び「分離された」という用語は、本明細書で用いているように、本発明の化合物が通常その自然の状態では結合している他の異なる化合物が含まれない状態を指し、そのため、「精製された」、「実質的に精製された」及び「分離された」対象は、所与のサンプルの質量の重量％で、少なくとも０．５％、１％、５％、１０％又は２０％及びさらに好ましくは、少なくとも５０％又は７５％を含む。好ましい一実施形態において、これらの用語は、所与のサンプルの質量の重量％で、少なくとも９５％を含む本発明の化合物を指す。本明細書で用いているように、「精製された」、「実質的に精製された」及び「分離された」という用語は、核酸又はタンパク質について言うとき、哺乳類、特にヒトの体内に自然に存在する場合と異なった精製又は濃度の状態を指す。（１）他の結合した構造又は化合物からの精製、あるいは（２）通常、哺乳類、特にヒトの体内で結合していない構造又は化合物との結合を含む、哺乳類、特にヒトの体内に自然に存在するよりも大きい精製又は濃度の程度は、「分離された」の意味の範囲内にある。本明細書に記載の核酸又はタンパク質あるいは核酸又はタンパク質のクラスは、当業者に知られている様々な方法又は工程により、分離することができ、あるいは、さもなくば、それらが通常自然では結合していない構造又は化合物と結合させることができる。
【０１０１】
「核酸」又は「核酸配列」という用語は、１本又は２本鎖の形態のデオキシリボヌクレオチド又はリボヌクレオチド  オリゴヌクレオチドを指す。この用語は、核酸、すなわち、天然ヌクレオチドの既知の類似体を含むオリゴヌクレオチドを含む。この用語はまた、合成骨格を有する核酸様構造を含む（例えば、Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ  ａｎｄ  Ａｎａｌｏｇｕｅｓ、ａ  Ｐｒａｃｔｉｃａｌ  Ａｐｐｒｏａｃｈ、編Ｆ．Ｅｃｋｓｔｅｉｎ、Ｏｘｆｏｄ  Ｕｎｉｖ．Ｐｒｅｓｓ（１９９１年）、Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ  Ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ、Ａｎｎａｌｓ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｎ．Ｙ．Ａｃａｄｅｍｙ  ｏｆ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ、第６００巻、編Ｂａｓｅｒｇａ  ｅｔ  ａｌ．（ＮＹＡＳ１９９２年）、Ｍｉｌｌｉｇａｎ、Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．第３６巻、１９２３〜１９３７頁（１９９３年）、Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  ａｎｄ  Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ（１９９３年、ＣＲＣ  Ｐｒｅｓｓ）、国際公開第９７／０３２１１号、国際公開第９６／３９１５４号、Ｍａｔａ、Ｔｏｘｉｃｏｌ．Ａｐｐｌ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．第１４４巻、１８９〜１９７頁（１９９７年）、Ｓｔｒａｕｓｓ−Ｓｏｕｋｕｐ、Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ、第３６巻、８６９２〜８６９８頁（１９９７年）、Ｓａｍｓｔａｇ、Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｄｒｕｇ  Ｄｅｖ、第６巻、１５３〜１５６頁（１９９６年）を参照）。
【０１０２】
特に示さない限り、特定の核酸配列は、保存的に修飾されたその変異体（例えば、同義性コドン置換）及び相補的配列並びに明確に示された配列も暗黙的に含む。具体的には、同義性コドン置換は、例えば、１つ又は複数の選択されるコドンの第３の位置が混合塩基及び／又はデオキシイノシン残基で置換されている配列を発生させることにより達成することができる（Ｂａｔｚｅｒ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｒｅｓ．第１９巻、５０８１頁（１９９１年）、Ｏｈｔｓｕｋａ  ｅｔ  ａｌ．、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．第２６０巻、２６０５〜２６０８頁（１９８５年）、Ｒｏｓｓｏｌｉｎｉ  ｅｔ  ａｌ．、Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｐｒｏｂｅｓ、第８巻、９１〜９８頁（１９９４年））。核酸という用語は、遺伝子、ｃＤＮＡ、ｍＲＮＡ、オリゴヌクレオチド及びポリヌクレオチドと同義で用いられる。
【０１０３】
「ポリペプチド」、「ペプチド」及び「タンパク質」という用語は、本明細書では同義で用い、アミノ酸残基のポリマーを指す。これらの用語は、１つ又は複数のアミノ酸残基が対応する天然に存在するアミノ酸の人工的化学的擬似体であるポリマー並びに天然に存在するアミノ酸ポリマー及び天然に存在しないアミノ酸ポリマーに適用される。
【０１０４】
「形質膜転移ドメイン」又は単に「転移ドメイン」は、ポリペプチドコード配列に組み込まれたとき、ドメインがない場合よりも、ハイブリッド（「融合」）タンパク質を高い効率で「護送」又は「転移」させることができるポリペプチドドメインを意味する。例えば、「転移ドメイン」は、ウシロドプシン受容体ポリペプチド、すなわち、７回膜貫通受容体のアミノ末端から得ることができる。しかし、他の転移促進配列ができるので、すべての哺乳動物のロドプシンを用いてもよい。したがって、転移ドメインは、７回膜貫通融合タンパク質を形質膜に転移させるのに特に効率がよく、アミノ末端転移ドメインを含むタンパク質（例えば、味覚受容体ポリペプチド）は、ドメインがない場合よりも効率よく形質膜に輸送される。しかし、本発明のＴ１Ｒ受容体の場合のように、もしポリペプチドのＮ末端が結合に際して活性ならば、他の転移ドメインの使用が好ましいと言える。例えば、本明細書に記載のようなＰＤＺドメイン相互作用性ペプチドを用いることができる。
【０１０５】
本明細書に記載する「転移ドメイン」、「リガンド結合ドメイン」及びキメラ受容体組成物も具体例としての配列に実質的に対応する構造及び活性を有する「類似体」又は「保存的変異体」及び「擬似体」（ペプチド擬似体）を含む。したがって、「保存的変異体」又は「類似体」又は「擬似体」は、本明細書で定義したように、変化が実質的にポリペプチドの（保存的変異体の）構造及び／又は活性を変化させないような修飾アミノ酸配列を有するポリペプチドを指す。これらは、アミノ酸配列の保存的に修飾された変異体、すなわち、タンパク質活性にとって重要でない残基のアミノ酸置換、付加又は欠失、あるいは、重要なアミノ酸の置換さえも構造及び／又は活性を実質的に変化させないような類似の特性（例えば、酸性、塩基性、正又は負に荷電、極性又は非極性等）を有する残基によるアミノ酸の置換を含む。
【０１０６】
特に、「保存的に修飾された変異体」は、アミノ酸及び核酸配列の両方に適用される。特定の核酸配列に関しては、保存的に修飾された変異体は、同じ又は本質的に同じアミノ酸配列をコードする核酸を指し、あるいは、核酸がアミノ酸配列をコードしない場合には、本質的に同じ配列を指す。遺伝コードの同義性のゆえに、多数の機能的に同じ核酸が所与のタンパク質をコードする。
【０１０７】
例えば、コドンＧＣＡ、ＧＣＣ、ＧＣＧ及びＧＣＵはすべて、アミノ酸アラニンをコードする。したがって、アラニンがコドンにより指定されるすべての位置において、コドンは、コードされるポリペプチドを変化させることなく記述される対応するコドンのいずれかに変化し得る。
【０１０８】
そのような核酸変異体は、保存的に修飾された変異体の１つの種である「サイレント変異体」である。ポリペプチドをコードする本明細書におけるすべての核酸配列は、核酸のすべての可能なサイレント変異体も記述する。当業者は、核酸中の各コドン（通常メチオニンの唯一のコドンであるＡＵＧ及び通常トリプトファンの唯一のコドンであるＴＧＧを除く）が修飾されて、機能的に同じ分子が生じることがあり得ることを認識するであろう。したがって、ポリペプチドをコードする核酸の各サイレント変異体は、記述された各配列に内在する。
【０１０９】
機能的に類似のアミノ酸を記載した同類置換表は、当技術分野においてよく知られている。例えば、同類置換を選択するための１つの具体例としてのガイドラインは次の通りである（オリジナル残基に続いて具体例としての置換）。ａｌａ／ｇｌｙ又はｓｅｒ；ａｒｇ／ｌｙｓ;ａｓｎ／ｇｌｎ又はｈｉｓ；ａｓｐ／ｇｌｕ；ｃｙｓ／ｓｅｒ；ｇｌｎ／ａｓｎ；ｇｌｙ／ａｓｐ；ｇｌｙ／ａｌａ又はｐｒｏ；ｈｉｓ／ａｓｎ又はｇｌｎ；ｉｌｅ／ｌｅｕ又はｖａｌ；ｌｅｕ／ｉｌｅ又はｖａｌ；ｌｙｓ／ａｒｇ又はｇｌｕ又はｇｌｕ；ｍｅｔ／ｌｅｕ又はｔｙｒ又はｉｌｅ；ｐｈｅ／ｍｅｔ又はｌｅｕ又はｔｙｒ；ｓｅｒ／ｔｈｒ；ｔｈｒ／ｓｅｒ；ｔｒｐ／ｔｙｒ；ｔｒｙ／ｔｒｐ又はｐｈｅ；ｖａｌ／ｉｌｅ又はｌｅｕ。別の具体例としてのガイドラインは、それぞれが互いに同類置換であるアミノ酸を含む次の６群を用いる。１）アラニン（Ａ）、セリン（Ｓ）、トレオニン（Ｔ）、２）アスパラギン酸（Ｄ）、グルタミン酸（Ｅ）、３）アスパラギン（Ｎ）、グルタミン（Ｑ）、４）アルギニン（Ｒ）、リシン（Ｉ）、５）イソロイシン（Ｉ）、ロイシン（Ｌ）、メチオニン（Ｍ）、バリン（Ｖ）及び６）フェニルアラニン（Ｆ）、チロシン（Ｙ）、トリプトファン（Ｗ）（例えば、Ｃｒｅｉｇｈｔｏｎ、Ｐｒｏｔｅｉｎｓ、Ｗ．Ｈ．Ｆｒｅｅｍａｎ  ａｎｄ  Ｃｏｍｐａｎｙ（１９８４年）、Ｓｃｈｕｌｔｚ  ａｎｄ  Ｓｃｈｉｍｅｒ、Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ  ｏｆ  Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ、Ｓｐｒｉｎｇｅｒ−Ｖｒｌａｇ（１９７９年）も参照）。当業者は、上記の置換が唯一の可能な置換ではないことを認識するであろう。例えば、すべての荷電アミノ酸を、正であるか負であるかにかかわりなく、互いに同類置換とみなすことができる。さらに、コードされた配列において単一アミノ酸又はわずかな割合のアミノ酸を変化させ、加え、又は欠失させる個々の置換、欠失又は付加も「保存的に修飾された変異体」とみなすことができる。
【０１１０】
「擬似体」及び「ペプチド擬似体」という用語は、ポリペプチド、例えば、本発明の転移ドメイン、リガンド結合ドメイン又はキメラ受容体の実質的に同じ構造及び／又は機能特性を有する合成化合物を指す。擬似体は、アミノ酸の合成による非天然類似体から完全に構成されているか、あるいは、部分的に天然ペプチドアミノ酸及び部分的にアミノ酸の非天然類似体からなるキメラ分子であってよい。擬似体はまた、置換が擬似体の構造及び／又は活性をも実質的に変化させない限り、任意の量の天然アミノ酸同類置換を組み込むことができる。
【０１１１】
保存的変異体である本発明のポリペプチドの場合と同様に、ルーチンの実験により、擬似体が本発明の範囲内にあるかどうか、すなわち、その構造及び／又は機能が実質的に変化していないかどうかを判定できるであろう。ポリペプチド擬似組成物は、一般的に次の３構造群に属する天然に存在しない構造成分を含んでいてよい。すなわち、ａ）天然アミド結合（「ペプチド結合」）連結以外の残基連結群、ｂ）天然に存在するアミノ酸残基の代わりの非天然残基、又はｃ）二次構造擬似体を誘導、すなわち二次構造、例えば、βターン、γターン、βシート、αらせんコンホメーション等を誘導又は安定化する残基。ポリペプチドは、その残基のすべて又は一部が天然ペプチド結合以外の化学的手段により連結されているとき、擬似体と特徴付けることができる。個々のペプチド擬似残基は、ペプチド結合、例えば、グルタルアルデヒド、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドエステル、２官能性マレイド、Ｎ，Ｎ’−ジシクロヘキシルカルボジイミド（ＤＣＣ）又はＮ，Ｎ’−ジイソプロピル  カルボジイミド（ＤＩＣ）のような他の化学結合又はカップリング手段により連結させることができる。伝統的アミド結合（「ペプチド結合」）連結の代わりとなり得る結合基は、例えば、ケトメチレン（例えば、−Ｃ（＝Ｏ）−ＮＨ−の代わりの−Ｃ（＝Ｏ）−ＣＨ2−）、アミノメチレン（ＣＨ2−ＮＨ）、エチレン、オレフィン（ＣＨ＝ＣＨ）、エーテル（ＣＨ2−Ｏ）、チオエーテル（ＣＨ2−Ｓ）、テトラゾール（ＣＮ4）、チアゾール、レトロアミド、チオアミド又はエステルなどである（例えば、Ｓｐａｔｏｌａ、Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ａｎｄ  Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ｏｆ  Ａｍｉｎｏ  Ａｃｉｄｓ，Ｐｅｐｔｉｄｅｓ  ａｎｄ  Ｐｒｏｔｅｉｎｓ、第７巻、２６７〜３５７頁、「Ｐｅｐｔｉｄｅ  Ｂａｃｋｂｏｎｅ  Ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎｓ」、Ｍａｒｃｅｌｌ  Ｄｅｋｋｅｒ、ＮＹ（１９８３年）を参照）。ペプチドは、天然に存在するアミノ酸残基の代わりにすべて又は一部の非天然残基を含むことによっても擬似体と特徴付けることができる。非天然残基については、科学及び特許文献に十分に記載されている。
【０１１２】
「標識」又は「検出可能部分」は、分光学的、光化学的、生化学的、免疫化学的又は化学的手段により検出可能な組成物である。例えば、有用な標識としては、32Ｐ、蛍光色素、電子密度が高い試薬、（例えば、ＥＬＩＳＡに一般的に使用されるような）酵素、ビオチン、ジゴキシゲニン、あるいは、例えば放射性標識をペプチドに組み込むことにより検出可能にすることができる、又はペプチドと特異的に反応する抗体を検出するために用いられるハプテン及びタンパク質などがある。
【０１１３】
「標識核酸プローブ又はオリゴヌクレオチド」は、プローブの存在をプローブに結合している標識の存在を検出することにより検出することができるように、標識にリンカー又は化学結合により共有結合で、あるいは、イオン、ファンデルワールス、静電又は水素結合により非共有結合で結合したものである。
【０１１４】
本明細書で用いているように「核酸プローブ又はオリゴヌクレオチド」は、１つ又は複数の種類の化学結合により、通常相補的塩基対合により、通常水素結合の形成により、相補的配列の標的核酸に結合することができる核酸と定義される。本明細書で用いているように、プローブは、天然（すなわち、Ａ、Ｇ、Ｃ又はＴ）あるいは修飾塩基（７−デアザグアノシン、イノシン等）を含んでいてよい。さらに、プローブ中の塩基は、ハイブリダイゼーションを妨害しない限り、ホスホジエステラーゼ結合以外の結合により連結されていてよい。したがって、例えば、プローブは、構成塩基がホスホジエステラーゼ結合でなく、ペプチド結合に連結されているペプチド核酸であってよい。プローブは、ハイブリッド条件の厳密性によって、プローブ配列との完全な相補性を欠く標的配列と結合することができることは、当業者により理解されよう。プローブは、場合により、同位体、発色団、発光団、色素原などにより直接標識するか、あるいは、ビオチンなどに間接的に標識し、ストレプトアビジン複合体を後に結合させてもよい。プローブの存在又は非存在を検定することにより、選択配列又はサブ配列の存在又は非存在を検出することができる。
【０１１５】
核酸の一部について用いるとき、「異種」という用語は、核酸が自然では互いに同じ関係で認められない２つ又はそれ以上のサブ配列を含むことを示している。例えば、新規の機能の核酸を作るために配列させた無関係の遺伝子からの２つ又はそれ以上の配列、例えば、１つの源からのプロモーターと他の源からのコーティング領域を有する核酸を一般的に組換えにより生成させる。同様に、異種タンパク質は、自然では互いに同じ関係で認められない２つ又はそれ以上のサブ配列を含むタンパク質（例えば、融合タンパク質）を示す。
【０１１６】
「プロモーター」は、核酸の転写を誘導する核酸配列のアレイと定義される。本明細書で用いているように、プロモーターは、ポリメラーゼＩＩ型プロモーターの場合のＴＡＴＡエレメントのように、転写開始部位の近くの必要な核酸配列を含む。プロモーターはまた、場合により、転写開始部位から数千塩基対に位置することができる遠位エンハンサー又はリプレッサーエレメントを含む。「構成」プロモーターは、ほとんどの環境及び発生条件下で活性であるプロモーターである。
【０１１７】
「誘導」プロモーターは、環境又は発生制御下で活性であるプロモーターである。「作動的に連結された」という用語は、核酸発現制御配列（プロモーター又は転写因子結合部位のアレイのような）と第２の核酸配列との間の機能的連結を指し、それにより核酸発現制御配列が第２の該配列に対応する核酸の転写を誘導する。
【０１１８】
本明細書で用いているように、「組換え」は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏで合成又は他の方法で操作されたポリヌクレオチド（例えば、「組換えポリヌクレオチド」）を、細胞又は生物学的システム中で遺伝子産物を生産するために組換えポリヌクレオチドを用いる方法を、あるいは、組換えポリヌクレオチドによりコードされるポリペプチド（「組換えタンパク質」）を指す。「組換え手段」は、本発明の転移ドメイン及び本発明のプライマーを用いて増幅される核酸を含む融合タンパク質の発現、例えば、誘導又は構成性発現のために、発現カセット又はベクターへの種々の源からの様々なコーディング領域又はドメイン又はプロモーター配列の連結反応も含む。
【０１１９】
本明細書で用いているように、「安定な細胞系」は、安定に、すなわち長期にわたって、異種核酸配列、すなわち、Ｔ１Ｒ又はＧタンパク質を発現する細胞系を指す。好ましい実施形態において、そのような安定な細胞系は、適切な細胞、一般的に哺乳類細胞、例えば、ＨＥＫ−２９３細胞をＴ１Ｒ発現構造、すなわち、Ｔ１Ｒ１、Ｔ１Ｒ２及び／又はＴ１Ｒ３を含む線状化ベクターでトランスフェクトして生産されるであろう。最も好ましくは、そのような安定な細胞系は、ｈＴ１Ｒ１及びｈＴ１Ｒ３又はｈＴ１Ｒ２及びｈＴ１Ｒ３を発現する２つの線状化プラスミドを同時トランスフェクトし、適切な選択方法により、安定に組み込まれたこれらの遺伝子を有する細胞系を発生させることにより、生産されるであろう。さらに好ましくは、細胞系は、Ｇα15のようなＧタンパク質も安定に発現するであろう。
【０１２０】
「選択的に（又は特異的に）ハイブリダイズする」という句は、特定のヌクレオチド配列が複雑な混合物（例えば、全細胞又はライブラリーＤＮＡもしくはＲＮＡ）中に存在する場合に、ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下である分子が該配列のみに結合、二重鎖形成又はハイブリダイズすることを指す。
【０１２１】
「ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件」という句は、プローブが一般的に核酸の複雑な混合物中でその標的サブ配列とハイブリダイズするが、他の配列とはハイブリダイズしない条件を指す。厳密条件は、配列依存性であり、異なる環境中では異なる。配列が長いほど、高温度で特異的にハイブリダイズする。核酸のハイブリダイゼーションに関する広範な指針は、Ｔｉｊｓｓｅｎ、Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ  ｉｎ  Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ａｎｄ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ−Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ  ｗｉｔｈ  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ｐｒｏｂｅｓ、「Ｏｖｅｒｖｉｅｗ  ｏｆ  ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ  ｏｆ  ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｔｈｅ  ｓｔｒａｔｅｇｙ  ｏｆ  ｎｕｃｌｅａｒ  ａｃｉｄ  ａｓｓａｙｓ」（１９９３年）に見いだされる。一般的に、厳密条件は、規定のイオン強度ｐＨにおける特定の配列の融点（Ｔｍ）より約５〜１０℃低い温度として選択する。Ｔｍは、標的に対して相補的なプローブの５０％が平衡において標的配列とハイブリダイズする温度（規定のイオン強度、ｐＨ及び濃度下）である（標的配列が過剰に存在するとき、Ｔｍでは平衡においてプローブの５０％が占有される）。厳密条件は、ｐＨ７．０〜８．３において塩濃度が約１．０Ｍナトリウムイオン、一般的に約０．０１〜１．０Ｍナトリウムイオン濃度（又は他の塩）で、温度が短いプローブ（例えば、１０〜５０ヌクレオチド）に対しては少なくとも約３０℃で、長いプローブ（例えば、５０ヌクレオチドより長い）に対しては少なくとも約６０℃である条件である。厳密条件は、ホルムアミドのような不安定化剤の添加によっても達成できる。選択的又は特異的ハイブリダイゼーションの場合、陽性シグナルはバックグラウンドの少なくとも２倍であり、場合によりバックグラウンドハイブリダイゼーションの１０倍である。具体例の厳密条件は次の通りである。５０％ホルムアミド、５×ＳＳＣ及び１％ＳＤＳ、４２℃でインキュベート、又は、５×ＳＳＣ、１％ＳＤＳ、６５℃でインキュベート、０．２×ＳＳＣで洗浄、６５℃で０．１％ＳＤＳ。そのようなハイブリダイゼーション及び洗浄段階は、例えば、１、２、５、１０、１５、３０、６０分間又はそれ以上の分時にわたって行うことができる。
【０１２２】
厳密条件下で互いにハイブリダイズしない核酸は、それらがコードするポリペプチドが実質的に関連している場合、依然として実質的に関連している。これは、例えば、核酸のコピーが遺伝コードにより許容される最大コドン同義性を用いて造られるときに起こる。そのような場合、核酸は一般的に中程度にストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下でハイブリダイズする。具体例としての「中程度にストリンジェントなハイブリダイゼーション条件」としては、４０％ホルムアミド、１Ｍ  ＮａＣｌ、１％ＳＤＳの緩衝液中３７℃でのハイブリダイゼーション及び１×ＳＳＣで４５℃で洗浄などである。そのようなハイブリダイゼーション及び洗浄段階は、例えば、１、２、５、１０、１５、３０、６０分間又はそれ以上の分時にわたって行うことができる。陽性ハイブリダイゼーションは、バックグラウンドの少なくとも２倍である。当業者は、別のハイブリダイゼーション及び洗浄条件を用いて同様の厳密性の条件を得ることができることを認識するであろう。
【０１２３】
「抗体」は、抗原に特異的に結合し、それを認識する免疫グロブリン遺伝子又はその断片のフレームワーク領域を含むポリペプチドを指す。認識される免疫グロブリン遺伝子は、κ、λ、α、γ、δ、ε及びμ定常部遺伝子並びに極めて多数の可変部遺伝子を含む。軽鎖は、κ又はλと分類される。重鎖は、γ、μ、α、δ又はεと分類され、それらはさらにそれぞれ、免疫グロブリンクラスＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＡ、ＩｇＤ及びＩｇＥを定義する。
【０１２４】
具体例としての免疫グロブリン（抗体）構造ユニットは、四量体を含む。各四量体は、ポリペプチド鎖の２つの同じ対からなり、各対は１つの「軽」（約２５ｋＤａ）及び１つの「重」鎖（約５０〜７０ｋＤａ）を有する。各鎖のＮ末端は、主として抗原認識の役割を担っている約１００〜１１０又はそれ以上のアミノ酸の可変部を定める。「可変軽鎖」（ＶＬ）及び「可変重鎖」（ＶＨ）という用語は、それぞれこれらの軽及び重鎖を指す。
【０１２５】
「キメラ抗体」は、（ａ）定常部又はその一部が変化し、置換され、又は交換され、その結果、抗原結合部位（可変部）が、異なる又は変化したクラス、エフェクター機能及び／又は種、あるいは、キメラ抗体に新規の特性を付与する完全に異なった分子、例えば、酵素、トキシン、ホルモン、成長因子、薬物等の定常部に連結されている、あるいは、（ｂ）可変部又はその一部が変化し、異なる又は変化した抗原特異性を有する可変部で置換又は交換された、抗体分子である。
【０１２６】
「抗Ｔ１Ｒ」抗体は、Ｔ１Ｒ遺伝子、ｃＤＮＡ又はそのサブ配列によりコードされたポリペプチドに特異的に結合する抗体又は抗体断片である。
【０１２７】
「イムノアッセイ」は、抗原に特異的に結合する抗体を用いるアッセイである。イムノアッセイは、抗原を分離し、標的とし、かつ／又は定量するために、特定の抗体の特異的結合特性を使用することを特徴とする。
【０１２８】
抗体に「特異的に（又は選択的に）結合する」、あるいはタンパク質又はペプチドについて言及する場合、「特異的に（又は選択的に）免疫反応性を示す」という句は、タンパク質及び他の生物学的実体の異種集団中のタンパク質の存在を決定する結合反応を指す。したがって、指定されたイムノアッセイ条件下では、指定の抗体は、特定のタンパク質にバックグラウンドの少なくとも２倍結合し、サンプル中に存在する他のタンパク質に有意な量で実質的に結合しない。そのような条件下での抗体への特異的結合は、特定のタンパク質に対するその特異性について選択される抗体を必要とする。例えば、ラット、マウス又はヒトのような特定の動物種からＴ１Ｒファミリーメンバーに対して酸性させたポリクローナル抗体は、Ｔ１Ｒポリペプチド又はその免疫原性部分と特異的に免疫反応性で、Ｔ１Ｒポリペプチドのオーソログ又は多形性変異体及び対立遺伝子を除く、他のタンパク質と免疫反応性でないポリクローナル抗体のみを得るために選択することができる。この選択は、他の動物種のＴ１Ｒ分子又は他のＴ１Ｒ分子と交差反応する抗体を除外することにより達成することができる。Ｔ１Ｒ  ＧＰＣＲファミリーメンバーのみを認識するが、他のファミリーのＧＰＣＲｓは認識する抗体も選択することができる。
【０１２９】
様々な種類のイムノアッセイを用いて、特定のタンパク質と特異的に免疫反応性の抗体を選択することができる。例えば、固相ＥＬＩＳＡイムノアッセイを常法により用いてタンパク質と特異的に免疫反応性の抗体を選択する（特異的免疫反応性を検討するために用いることができるイムノアッセイの種類と条件の記述については、例えば、Ｈａｒｌｏｗ  ＆  Ｌａｎｅ、Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ、Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ（１９８８年）を参照）。一般的に、特異的又は選択的反応は、バックグラウンドシグナル又はノイズの少なくとも２倍であり、より一般的にはバックグラウンドの１０〜１００倍以上である。
【０１３０】
「選択的に結合する」という句は、上で定義したように、他と「選択的にハイブリダイズする」核酸の能力、あるいは、上で定義したように、タンパク質に「選択的に（又は特異的に）結合する」抗体の能力を指す。
【０１３１】
「発現ベクター」という用語は、原核、酵母、真菌、植物、昆虫又は哺乳類細胞を含む任意の細胞中で本発明の核酸配列をｉｎ  ｖｉｔｒｏ又はｉｎ  ｖｉｖｏで、構成的に又は誘導的に発現させる目的のための組換え発現システムを指す。この用語は、線状又は環状発現システムを含む。この用語は、エピソームのまま又は宿主細胞ゲノムに組み込まれる発現システムを含む。発現システムは、自己複製する能力をもつことができるか、あるいは、できない、すなわち、細胞中で一時的発現のみを誘導することができる。この用語は、組換え核酸の転写に必要な最小限の要素のみを含む組換え発現カセットを含む。
【０１３２】
「宿主細胞」は、発現ベクターを含み、発現ベクターの複製又は発現を支持する細胞を意味する。宿主細胞は、大腸菌のような原核細胞並びにＣＨＯ、Ｈｅｌａ、ＨＥＫ−２９３等、例えば、培養細胞、外植片及びｉｎ  ｖｉｖｏ細胞のような酵母、昆虫、両生類、虫又は哺乳類細胞のような真核細胞であってよい。
【０１３３】
Ｔ１Ｒポリペプチドの分離及び発現
本発明のＴ１Ｒｓあるいはその断片又は変異体の分離及び発現は、下記のように実施することができる。味覚受容体リガンド結合領域をコードする核酸の増幅にＰＣＲプライマーを用いることができ、そして、これらの核酸のライブラリーを場合によって発生させることができる。次に、これらの核酸又はライブラリーの機能的発現のために、個々の発現ベクター又は発現ベクターのライブラリーを用いて宿主細胞を感染又はトランスフェクトすることができる。これらの遺伝子及びベクターは、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ又はｉｎ  ｖｉｖｏで造り、発現させることができる。当業者は、核酸の発現を変化させ、制御するための所望の表現型は、本発明のベクター内で遺伝子及び核酸（例えば、プロモーター、エンハンサー等）の発現又は活性を調節することにより得ることできることを認識するであろう。発現又は活性を増加又は減少させるための記載された既知の方法のいずれかを用いることができる。本発明は、科学及び特許文献に十分に記載されている当技術分野で知られているいずれかの方法又はプロトコールと組み合わせて実施することができる。
【０１３４】
本発明の核酸配列及び本発明を実施するために用いられる他の核酸は、ＲＮＡ、ｃＤＮＡ、ゲノムＤＮＡ、ベクター、ウイルス又はそのハイブリッドであろうとも、遺伝子工学的に処理した、増幅した、かつ／又は組換えにより発現させた様々な源から分離することができる。哺乳類細胞のほかに、例えば、細菌、酵母、昆虫又は植物系を含む組換え発現システムを用いることができる。
【０１３５】
あるいは、これらの核酸は、例えば以下に記載されているように、よく知られている化学合成法によりｉｎ  ｖｉｔｒｏで合成することができる。Ｃａｒｒｕｔｈｅｒｓ、Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈｒｂｏｒ  Ｓｙｍｐ．Ｑｕａｎｔ．Ｂｉｏｌ．第４７巻、４１１〜４１８頁（１９８２年）、Ａｄａｍｓ、Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．第１０５巻、６６１頁（１９８３年）、  Ｂｅｌｏｕｓｏｖ、Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．第２５巻、３４４０〜３４４４頁（１９９７年）、Ｆｒｅｎｋｅｌ、Ｆｒｅｅ  Ｒａｄｉｃ．Ｂｉｏｌ．Ｍｅｄ．第１９巻、３７３〜３８０頁（１９９５年）、Ｂｌｏｍｍｅｒｓ、Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ、３３巻、７８８６〜７８９６頁（１９９４年）、Ｎａｒａｎｇ、Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．第６８巻、９０頁（１９７９年）、Ｂｒｏｗｎ、Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．第６８巻、１０９頁（１９７９年）、Ｂｅａｕｃａｇｅ、Ｔｅｔｒａ．Ｌｅｔｔ．第２２巻、１８５９頁（１９８１年）、米国特許第４，４５８，０６６号。２本鎖ＤＮＡ断片は、相補鎖を合成し、適切な条件下で鎖を一緒にアニーリングして、あるいは、適切なプライマー配列を含むＤＮＡポリメラーゼを用いて相補鎖を加えて、得ることができる。
【０１３６】
例えば、配列中の突然変異体を得るためのサブクローニング、標識プローブ、配列決定、ハイブリダイゼーション等の核酸の操作のための技術は、科学及び特許文献に十分に記載されている。例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ、編、  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  ｍａｎｕａｌ（第２版）、第１〜３巻、Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ（１９８９年）、Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ、Ａｕｓｕｂｅｌ、編、Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ，Ｉｎｃ．、Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ（１９９７年）、Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ  ｉｎ  Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ａｎｄ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ：Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ  Ｗｉｔｈ  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｐｒｏｂｅｓ、Ｐａｒｔ  Ｉ、Ｔｈｅｏｒｙ  ａｎｄ  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ、Ｔｉｊｓｓｅｎ、編、Ｅｌｓｅｖｉｅｒ、Ｎ．Ｙ．（１９９３年）を参照。
【０１３７】
核酸、ベクター、キャプシド、ポリペプチド等は、当業者によく知られている多くの一般的手段のいずれかにより分析し、定量することができる。これらは、例えば、ＮＭＲ、分光光度法、ラジオグラフィー、電気泳動、キャピラリー電気泳動、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）、薄層クロマトグラフィー（ＴＬＣ）及び超拡散クロマトグラフィーのような分析生化学法、様々な免疫学的方法、例えば、液体又はゲル沈降素反応、免疫拡散、免疫電気泳動、ラジオイムノアッセイ（ＲＩＡｓ）、酵素結合イムノソルベントアッセイ（ＥＬＩＳＡ）、免疫蛍光アッセイ、サザン分析、ノーザン分析、ドットブロット分析、ゲル電気泳動（例えば、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）、ＲＴ−ＰＣＲ、定量的ＰＣＲ、他の核酸又は標的又はシグナル増幅法、放射性標識法、シンチレーション計数法及びアフィニティクロマトグラフィーなどである。
【０１３８】
味覚受容体リガンド結合領域をコードする核酸断片を増幅するためにオリゴヌクレオチドプライマーを用いることができる。本明細書に記載する核酸も増幅技術を用いてクローン又は定量的に測定することができる。増幅法も当技術分野でよく知られており、例えば、ポリメラーゼ連鎖反応、ＰＣＲ（ＰＣＲ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ、ａ  Ｇｕｉｄｅ  ｔｏ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ａｎｄ  Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ、Ｉｎｎｉｓ編、Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ、Ｎ．Ｙ．（１９９０年）、ＰＣＲ  Ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ、Ｉｎｎｉｓ編、Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ、Ｎ．Ｙ．（１９９５年））、リガーゼ連鎖反応（ＬＣＲ）（例えば、Ｗｕ、Ｇｅｎｏｍｉｃｓ、第４巻、５６０頁（１９８９年）、Ｌａｎｄｅｇｒｅｎ、Ｓｃｉｅｎｃｅ、第２４１巻、１０７７頁、（１９８８年）、Ｂａｒｒｉｎｇｅｒ、Ｇｅｎｅ、第８９巻、１１７頁（１９９０年）を参照）、転写増幅（例えば、Ｋｗｏｈ、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、第８６巻、１１７３頁（１９８９年）を参照）、自己持続配列複製（例えば、Ｇｕａｔｅｌｌｉ、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、。第８７巻、１８７４頁（１９９０年）を参照）、Ｑベータレプリカーゼ増幅（例えば、Ｓｍｉｔｈ、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．第３５巻、１４７７〜１４９１頁（１９９７年）を参照）、自動Ｑ−ベータレプリカーゼ増幅アッセイ（例えば、Ｂｕｒｇ、Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｐｒｏｂｅｓ、第１０巻、２５７〜２７１（１９９６年）を参照）及び他のＲＮＡポリメラーゼを用いる手法（例えば、ＮＡＳＢＡ、Ｃａｎｇｅｎｅ、Ｍｉｓｓｉｓｓａｕｇａ、Ｏｎｔａｒｉｏ）、また、Ｂｅｒｇｅｒ、Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｅｎｚｙｍｏｌ．第１５２巻、３０７〜３１６頁（１９８７年）、Ｓａｍｂｒｏｏｋ、Ａｕｓｕｂｅｌ、米国特許第４，６８３，１９５号及び第４，６８３，２０２号、Ｓｏｏｋｎａｎａｎ、Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、第１３巻、５６３〜５６４頁（１９９５年）も参照）などがある。プライマーは、「ドナー」の７回膜貫通受容体の元の配列を保持するように設計することができる。あるいは、プライマーは、保存的置換（例えば、疎水性残基について疎水性、上記の議論を参照）又は機能的に温和な置換（例えば、形質膜挿入を妨げない、ペプチダーゼによる切断をもたらす、受容体の折り畳みをもたらす）であるアミノ酸残基をコードすることができる。増幅されたならば、核酸は、個別に又はライブラリーとして、当技術分野で知られている方法により、所望ならば、常用の分子生物学的方法を用いて様々なベクターのいずれかにクローンすることができる。ｉｎ  ｖｉｔｒｏで増幅された核酸のクローニングの方法は、例えば、米国特許第５，４２６，０３９号に記載されている。
【０１３９】
プライマー対は、Ｔ１Ｒファミリーメンバーのリガンド結合領域を選択的に増幅するように設計することができる。これらの領域は、異なるリガンド又は味覚物質ごとに異なっている可能性がある。したがって、１つの味覚物質に対して最小限の結合領域であるものは、別の味覚物質に対して限定されすぎていることがあり得る。したがって、種々の細胞外ドメイン構造を含む種々のサイズの結合領域を増幅させてよい。
【０１４０】
同義性プライマー対の設計のパラダイムは、当技術分野においてよく知られている。例えば、共通同義性ハイブリッドオリゴヌクレオチドプライマー（ＣＯｎｓｅｎｓｕｓ−ＤＥｇｅｎｅｒａｔｅ  Ｈｙｂｒｉｄ  Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ  Ｐｒｉｍｅｒ）（ＣＯＤＥＨＯＰ）戦略コンピュータプログラムは、ｈｔｔｐ：／／ｂｌｏｃｋｓ．ｆｈｃｒｃ．ｏｒｇ／ｃｏｄｅｈｏｐ．ｈｔｍｌとしてアクセスでき、既知の味覚受容体リガンド結合領域として、一連の関連タンパク質配列から始まるハイブリッドプライマー予測のために、ＢｌｏｃｋＭａｋｅｒ多重配列アライメントサイトから直接連結されている（例えば、Ｒｏｓｅ、Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．第２６巻、１６２８〜１６３５頁（１９９８年）、Ｓｉｎｇｈ、Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ、第２４巻、３１８〜３１９頁（１９９８年）を参照）。
【０１４１】
オリゴヌクレオチドプライマー対を合成する手段は、当技術分野でよく知られている。「天然」塩基対又は合成塩基対を用いることができる。例えば、人工ヌクレオ塩基の使用により、プライマー配列を操作し、増幅産物のより複雑な混合物を得る汎用性のある手法が可能となる。人工ヌクレオ塩基の種々のファミリーは、内部結合回転による多重水素結合配向を推定して、同義性分子認識の手段を得ることができる。これらの類似体のＰＣＲプライマーの単一位置への組み込みにより、増幅産物の複雑なライブラリーを得ることができる。例えば、Ｈｏｏｐｓ、Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．第２５巻、４８６６〜４８７１頁（１９９７年）を参照。非極性分子も天然ＤＮＡ塩基の形状を模擬するために用いることができる。アデニンの非水素結合形状模擬は、チミンの非極性形状模擬と対照して効率的かつ選択的に再現することができる（例えば、Ｍｏｒａｌｅｓ、Ｎａｔ．Ｓｔｒｕｃｔ．Ｂｉｏｌ．第５巻、９５０〜９５４頁（１９９８年）を参照）。例えば、２つの同義性塩基は、ピリミジン塩基６Ｈ、８Ｈ−３，４−ジヒドロピリミド［４，５−ｃ］［１，２］オキサジン−７−オン又はプリン塩基Ｎ６−メトキシ−２，６−ジアミノプリンであってよい（例えば、Ｈｉｌｌ、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、第９５巻、４２５８〜４２６３頁（１９９８年）を参照）。本発明の実例としての同義性プライマーは、ヌクレオ塩基類似体５’−ジメトキシトリチル−Ｎ−ベンゾイル−２’−デオキシ−シチジン，３’−［（２−シアノエチル）−（Ｎ，Ｎ−ジイソプロピル）］−ホスホルアミダイトを組み込んでいる（配列中の「Ｐ」については、上記を参照）。このピリミジン類似体水素は、Ａ及びＧ残基を含むプリンと結合する。
【０１４２】
本明細書に開示する味覚受容体と実質的に同じである多形性変異体、対立遺伝子及び種間同族体は、上記の核酸プローブを用いて分離することができる。あるいは、Ｔ１Ｒ同族体も認識し、選択的に結合する、Ｔ１Ｒポリペプチドに対して産生させた抗血清又は精製抗体を用いて発現同族体を免疫学的に検出することにより、発現ライブラリーを用いて、Ｔ１Ｒポリペプチド並びに多形性変異体、対立遺伝子及びその種間同族体をクローンすることができる。
【０１４３】
味覚受容体のリガンド結合領域をコードする核酸は、同義性プライマー対を用いて適切な核酸配列の増幅（例えば、ＰＣＲ）により得ることができる。増幅する核酸は、任意の細胞又は組織のゲノムＤＮＡあるいは味覚受容体発現細胞由来のｍＲＮＡ又はｃＤＮＡであってよい。
【０１４４】
一実施形態において、転移配列に融合されたＴ１Ｒｓをコードする核酸を含むハイブリッドタンパク質コード配列を構築することができる。また、化学感覚受容体、特に味覚受容体の他のファミリーの転移モチーフ及び味覚物質結合ドメインを含むハイブリッドＴ１Ｒｓも提供する。これらの核酸配列は、転写又は翻訳制御要素、例えば、転写及び翻訳開始配列、プロモーター及びエンハンサー、転写及び翻訳ターミネーター、ポリアデニル化配列及びＲＮＡへのＤＮＡの転写に有用な他の配列に作動的に連結させることができる。組換え発現カセット、ベクター及び形質転換体の構成において、プロモーター断片を用いて、すべての所望の細胞又は組織中の所望の核酸の発現を誘導することができる。
【０１４５】
他の実施形態において、融合タンパク質は、Ｃ末端又はＮ末端転位配列を含んでいてよい。さらに、融合タンパク質は、例えば、タンパク質の検出、精製又は他の適用例のための追加の要素を含んでいてよい。検出及び精製促進ドメインは、例えば、固定化金属の精製を可能にするポリヒスチジン路、ヒスチジン−トリプトファンモジュール又は他のドメインのような金属キレート化ペプチド、マルトース結合タンパク質、固定化免疫グロブリンの精製を可能にするタンパク質ＡドメインあるいはＦＬＡＧＧ延長／アフィニティ精製システム（Ｉｍｍｕｎｅｘ  Ｃｏｒｐ．、ワシントン州シアトル）に用いられるドメインなどである。
【０１４６】
ファクターＸａ（例えば、Ｏｔｔａｖｉ、Ｂｉｏｃｈｉｍｉｅ、第８０巻、２８９〜２９３頁（１９９８年）を参照）、ズブチリシンプロテアーゼ認識モチーフ（例えば、Ｐｏｌｙａｋ、Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｅｎｇ．第１０巻、６１５〜６１９頁（１９９７年）を参照）、エンテロキナーゼ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、カリフォルニア州サンディエゴ）等を転移ドメイン（効率のよい形質膜発現のため）と残りの新たに翻訳されたポリペプチドとの間に含めることは、精製の促進に有用である。例えば、１構築体は、６ヒスチジン残基と、続いて、エンテロキナーゼ切断部位であるチオレドキシン（例えば、Ｗｉｌｌｉａｍｓ、Ｂｉｏｃｈｅｍｉｔｒｙ第３４巻、１７８７〜１７９７頁（１９９５年）を参照）及びＣ末端転移ドメインに結合した、ポリペプチドをコードする核酸配列を含むことができる。ヒスチジン残基は検出と精製を促進し、一方、エンテロキナーゼ切断部位は融合タンパク質の残りの部分の所望のタンパク質の精製の手段を提供する。融合タンパク質をコードするベクターに関する技術及び融合タンパク質の適用例は、科学及び特許文献に十分に記載されている。例えば、Ｋｒｏｌｌ、ＤＮＡ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．第１２巻、４４１〜５３頁（１９９３年）を参照。
【０１４７】
リガンド結合ドメインをコードするベクターを含む、個別の発現ベクター又は発現ベクターのライブラリーとしての発現ベクターは、ゲノムあるいは細胞質又は細胞核に導入することができ、科学及び特許文献に十分に記載されている様々な従来の技術により発現させることができる。例えば、Ｒｏｂｅｒｔｓ、Ｎａｔｕｒｅ、第３２８巻、７３１頁（１９８７年）、Ｂｅｒｇｅｒ、前出、Ｓｃｈｎｅｉｄｅｒ、Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｅｘｐｒ．Ｐｕｒｉｆ．第６４３５巻、１０頁（１９９５年）、Ｓａｍｂｒｏｏｋ、Ｔｉｊｓｓｅｎ、Ａｕｓｂｅｌを参照。生物学的試薬及び実験装置の製造業者からの製品情報も既知の生物学的方法に関する情報を提供する。ベクターは、ＡＴＣＣ又はＧｅｎＢａｎｋライブラリーのような源から得られる天然源から分離、あるいは、合成又は組換え法により調製することができる。
【０１４８】
核酸は、細胞中で安定に又は一時的に発現させた発現カセット、ベクター又はウイルスを用いて発現させることができる（例えば、エピソーム発現システム）。形質転換細胞及び配列に選択可能な表現型を付与するために、選択マーカーを発現カセット及びベクターに組み込むことができる。例えば、選択マーカーは、宿主ゲノムへの組み込みの必要がないように、エピソームの維持及び複製のためにコードすることができる。例えば、所望のＤＮＡ配列で形質転換した細胞の選択を可能にするために、マーカーは抗生物質耐性（例えば、クロラムフェニコール、カナマイシン、Ｇ４１８、ブラスチシジン、ハイグロマイシン）又は除草剤耐性（例えば、クロロスルフロン又はＢａｓｔａ）をコードすることができる（例えば、Ｂｌｏｎｄｅｌｅｔ−Ｒｏｕａｕｌｔ、Ｇｅｎｅ、第１９０巻、３１５〜３１７頁（１９９７年）、Ａｕｂｒｅｃｈｔ、Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｅｘｐ．Ｔｈｅｒ．第２８１巻、９９２〜９９７頁（１９９７年）を参照）。ネオマイシン又はハイグロマシシン様基質に耐性を付与する選択マーカー遺伝子は組織培養中でのみ使用することができるので、化学耐性遺伝子もｉｎ  ｖｉｔｒｏ及びｉｎ  ｖｉｖｏで選択マーカーとして用いることができる。
【０１４９】
キメラ核酸配列は、７回膜貫通ポリペプチド内のＴ１Ｒリガンド結合ドメインをコードすることができる。７回膜貫通受容体ポリペプチドは類似の１次配列並びに２次及び３次構造を有するので、構造ドメイン（例えば、細胞外ドメイン、ＴＭドメイン、細胞質ドメイン等）は配列分析により容易に同定することができる。例えば、相同モデリング、フーリエ解析及びらせん周期性検出は、７回膜貫通受容体配列の７つのドメインを同定し、特徴付けることができる。迅速フーリエ変換（ＦＦＴ）アルゴリズムを用いて、分析済み配列の疎水性及び変動のプロファイルを特徴付ける優勢周期を評価した。周期性検出増強及びαらせん周期性指数の評価は、例えば、Ｄｏｎｎｅｌｌｙ、Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｓｃｉ．第２巻、５５〜７０頁（１９９３年）に記載のように実施することができる。他のアライメント及びモデリングのアルゴリズムは、当技術分野でよく知られている。例えば、Ｐｅｉｔｓｃｈ、Ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ  Ｃｈａｎｎｅｌｓ第４巻、１６１〜１６４頁（１９９６年）、Ｋｙｔｅ＆Ｄｏｏｌｉｔｔｌｅ、Ｊ．Ｍｅｄ．Ｂｉｏ．第１５７巻、１０５〜１３２頁（１９８２年）、Ｃｒｏｎｅｔ、Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｅｎｇ．第６巻、５９〜６４頁（１９９３年）を参照。
【０１５０】
本発明はまた、指定の核酸及びアミノ酸配列を有するＤＮＡ及びタンパク質だけでなく、ＤＮＡ断片、特に、例えば、４０、６０、８０、１００、１５０、２００又は２５０ヌクレオチドあるいはそれ以上の断片並びに例えば、１０、２０、３０、５０、７０、１００又は１５０アミノ酸あるいはそれ以上の断片も含む。場合により、核酸断片は、Ｔ１Ｒファミリーメンバーに対して産生させた抗体に結合することができる抗原性ポリペプチドをコードすることができる。さらに、本発明のタンパク質断片は、場合により、Ｔ１Ｒファミリーメンバーに対して産生させた抗体に結合することができる抗原性断片であり得る。
【０１５１】
本明細書に記載するＴ１Ｒポリペプチドの少なくとも１つのうちの１つの少なくとも１０、２０、３０、５０、７０、１００又は１５０アミノ酸あるいはそれ以上を含み、他のＧＰＣＲ、好ましくは７回膜貫通スーパーファミリーのメンバーのすべて又は一部を表す別のアミノ酸に結合したキメラタンパク質も予想される。これらのキメラは、本発明の受容体と他のＣＰＣＲとから調製することができ、あるいは、本発明のＴ１Ｒ受容体の２つ又はそれ以上を組み合わせて調製することができる。一実施形態において、キメラの１部は、本発明のＴ１Ｒポリペプチドの細胞外ドメインに対応するか、又は由来するものである。他の実施形態において、キメラの１部は、本明細書に記載のＴ１Ｒポリペプチドの細胞外ドメイン及び膜貫通ドメインの１つ又は複数に対応するか、又は由来し、残りの１部又は各部分が他のＧＰＣＲ由来である。キメラ受容体は当技術分野でよく知られており、それらを造る技術並びにそれに含めるためのＧタンパク質結合受容体のドメイン又は断片の選択及び境界もよく知られている。したがって、当業者のこの知識を用いてそのようなキメラ受容体を容易に造ることができる。そのようなキメラ受容体を用いることにより、例えば、本明細書に具体的に開示する受容体の１つの味覚選択性特性と、従来技術のアッセイシステムに用いられるよく知られている受容体のような他の受容体のシグナル伝達特性とを結合させることができる。
【０１５２】
上記のように、天然Ｔ１Ｒ受容体あるいは天然Ｔ１Ｒ受容体の組合せ又は結合と類似のそのようなキメラは、甘味又はうま味に通常影響を及ぼす分子に結合し、かつ／又はそれにより活性化されるであろう。機能的キメラＴ１Ｒ受容体又は受容体の組合せは、単独あるいは他のＴ１Ｒｓ又は他のＧＰＣＲｓ（それら自体キメラであってよい）と共に発現するときに結合する、味覚刺激、特に、甘味（Ｔ１Ｒ２／３）又はうま味刺激（Ｔ１Ｒ１／３）により活性化される分子である。甘味を惹起する分子は、ショ糖、アステルテーム、キシリトール、シクラメート等の天然及び人工甘味料などである。うま味を惹起する分子は、グルタミン酸塩及びグルタミン酸塩類似物並びに５’−ヌクレオチドのような天然Ｔ１Ｒ１及び／又はＴ１Ｒ３に結合する他の化合物などである。
【０１５３】
例えば、リガンド結合ドメイン、細胞外ドメイン、膜貫通ドメイン、細胞質ドメイン、Ｎ末端ドメイン、Ｃ末端ドメイン又はそのいずれかの組合せは、異種タンパク質に共有結合させることができる。例えば、Ｔ１Ｒ細胞外ドメインを異種ＧＰＣＲ膜貫通ドメインに共有結合させることができ、あるいは、異種ＧＰＣＲ細胞外ドメインをＴ１Ｒ膜貫通ドメインに共有結合させることができる。他の適切な異種タンパク質、例えば緑色蛍光タンパク質を用いることができる。
【０１５４】
本発明のＴ１Ｒｓ、断片、キメラ又は変異体を発現させるための宿主細胞も本発明の範囲内にある。本発明のＴ１Ｒｓ、断片又は変異体をコードするｃＤＮＡのようなクローンした遺伝子又は核酸の高レベルの発現を得るために、当業者は一般的に、問題の核酸配列を、転写を誘導する強いプロモーターを含む発現ベクターに、転写／翻訳ターミネーターに、並びに、タンパク質をコードする核酸の場合には、翻訳開始のためのリボソーム結合部位に、サブクローンする。適切な細菌プロモーターは、当技術分野でよく知られており、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋらに記載されている。しかし、細菌又は真核生物発現システムを用いることができる。
【０１５５】
異種ヌクレオド配列を宿主細胞に導入するためのよく知られている方法を用いることができる。これらは、リン酸カルシウムトランスフェクション、ポリブレン、プロトプラスト融合、エレクトロポレーション、リポソーム、マイクロインジェクション、プラスマベクター、ウイルスベクター、並びに宿主細胞にクローンゲノムＤＮＡ、ｃＤＮＡ、合成ＤＮＡ又は他の異種遺伝物質を導入するための他のよく知られている方法（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋらを参照）などである。遺伝子工学の用いる特定の手順によって、問題のＴ１Ｒ、断片又は変異体を発現させることができる宿主細胞へ、少なくとも１つの核酸分子の導入に成功することができれば、それでよい。
【０１５６】
発現ベクターを細胞に導入した後、トランスフェクトされた細胞を問題の受容体、フラグンメント又は変異体の発現に有利な条件下で培養し、次いで、標準的方法を用いて培養から回収する。そのような方法の例は当技術分野でよく知られている。この開示と一致した方法で参照により本明細書に組み込まれる、例えば、国際公開第００／０６５９３号を参照。
【０１５７】
Ｔ１Ｒポリペプチドの検出
核酸ハイブリダイゼーション法を用いるＴ１Ｒ遺伝子及び遺伝子発現の検出に加えて、Ｔ１Ｒｓを検出するために、例えば、味覚受容体細胞並びにＴ１Ｒファミリーメンバーの変異体を同定するためにイムノアッセイも用いることができる。イムノアッセイを用いて、Ｔ１Ｒｓを定性的又は定量的に分析することができる。適用可能な技術の一般的な概要は、Ｈａｒｌｏｗ＆Ｌａｎｅ、Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ（１９８８年）に見いだすことができる。
【０１５８】
１．Ｔ１Ｒファミリーメンバーに対する抗体
Ｔ１Ｒファミリーメンバーと特異的に反応するポリクローナル及びモノクローナル抗体を生産する方法は、当業者に知られている（例えば、Ｃｏｌｉｇａｎ、Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ（１９９１年）、Ｈａｒｌｏｗ＆Ｌａｎｅ、前出、Ｇｏｄｉｎｇ、Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ  ａｎｄ  Ｐｒａｃｔｉｃｅ（第２版、１９８６年）及びＫｏｈｌｅｒ＆Ｍｉｌｓｔｅｉｎ、Ｎａｔｕｒｅ、第２５６巻、４９５〜４９７頁（１９７５年）を参照）。そのような技術としては、ファージ又は同様のベクターにおける組換え抗体のライブラリーからの抗体の選択による抗体の調製並びに免疫化ウサギ又はマウスによるポリクローナル及びモノクローナル抗体の調製などがある（例えば、Ｈｕｓｅ  ｅｔ  ａｌ．、Ｓｃｉｅｎｃｅ、第２４６巻、１２７５〜１２８１頁（１９８９年）、Ｗａｒｄ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎａｔｕｒｅ、第３４１巻、５４４〜５４６頁（１９８９年）を参照）。
【０１５９】
Ｔ１Ｒファミリーメンバーと特異的に反応する抗体を生産するために、多くのＴ１Ｒを含む免疫原を用いることができる。例えば、組換Ｔ１Ｒポリペプチド又はその抗原性断片を本明細書に記載のように分離することができる。適切な抗原性領域は、例えば、Ｔ１Ｒファミリーのメンバーを同定するために用いられる共通領域などである。組換えタンパク質は、上記のように真核又は原核細胞中で発現させることができ、一般的に上記のように精製することができる。組換えタンパク質は、モノクローナル又はポリクローナル抗体の生産のための好ましい免疫原である。あるいは、本明細書に開示した配列から得られ、担体タンパク質に結合させた合成ペプチドを免疫原として用いることができる。天然に存在するタンパク質も純粋又は不純の形で使用することができる。次に、生成物は、抗体を産生することができる動物中に注射する。タンパク質を測定するためのイムノアッセイでその後に用いるために、モノクローナル、ポリクローナル抗体のいずれを生成してもよい。
【０１６０】
ポリクローナル抗体を生産する方法は、当業者に知られている。例えば、同系繁殖系のマウス（例えば、ＢＡＬＢ／Ｃマウス）又はウサギをフロイントのアジュバントのような標準アジュバント及び標準免疫化プロトコールを用いてタンパク質で免疫化する。免疫原調製物に対する動物の免疫応答を検査用採血を行ってモニターし、Ｔ１Ｒに対する反応性の力価を決定する。免疫原に対する抗体の適切に高い力価が得られた場合、動物から血液を採集し、抗血清を調製する。所望ならば、タンパク質に反応性の抗体を濃縮するために抗血清のさらなる分画を行うことができる（Ｈａｒｌｏｗ＆Ｌａｎｅ、前出を参照）。
【０１６１】
モノクローナル抗体は、当業者に知られている様々な手法により得ることができる。簡単に述べると、所望の抗原で免疫化した動物の脾臓細胞を一般的に骨髄腫細胞との融合により固定化することができる（Ｋｏｈｌｅｒ＆Ｍｉｌｓｔｅｉｎ、Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．第６巻、５１１〜５１９頁（１９７６年）を参照）。固定化の別の方法は、エプスタインバールウイルス、腫瘍遺伝子又はレトロウイルスによる形質転換あるいは当技術分野でよく知られている他の方法である。単一固定化細胞から生じたコロニーを、抗原に対する所望の特異性及び親和性の抗体の生産についてスクリーニングし、そのような細胞により産生されたモノクローナル抗体の収量を、脊椎動物宿主の腹腔への注射を含む様々な手法により増加させることができる。あるいは、Ｈｕｓｅ  ｅｔ  ａｌ．、Ｓｃｉｅｎｃｅｓ、第２４６巻、１２７５〜１２８１（１９８９年）により略述された一般的プロトコールに従って、ヒトＢ細胞のＤＮＡライブラリーをスクリーニングすることにより、モノクローナル抗体又はその結合断片をコードするＤＮＡ配列を分離することができる。
【０１６２】
モノクローナル抗体及びポリクローナル血清を収集し、イムノアッセイ、例えば、固体担体に固定化した免疫原を用いる固相イムノアッセイにおいて免疫原タンパク質に対して力価測定する。一般的に、１０４以上の力価を有するポリクローナル抗血清を選択し、非Ｔ１Ｒポリペプチド又は他のＴ１Ｒファミリーメンバー又は他の生物の他の関連タンパク質に対するそれらの交差反応性について、競合的結合イムノアッセイを用いて試験する。特異的ポリクローナル抗血清及びモノクローナル抗体は、通常、少なくとも約０．１ｍＭ、より通常には約１ｐＭ、場合により少なくとも約０．１ｐＭ又はより良好な値、また場合により少なくとも０．０１ｐＭ又はより良好な値のＫｄで結合する。
【０１６３】
一旦Ｔ１Ｒファミリーメンバー特異抗体が得られれば、個々のＴ１Ｒタンパク質及びタンパク質断片を様々なイムノアッセイにより検出することができる。免疫学的及びイムノアッセイ方法の総説については、Ｂａｓｉｃ  ａｎｄ  Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ（Ｓｔｉｔｅｓ  ＆  Ｔｅｒｒ編、第７版、１９９１年）を参照。さらに、本発明のイムノアッセイは、Ｅｎｚｙｍｅ  Ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ（Ｍａｇｇｉｏ編、１９８０年）及びＨａｒｌｏｗ＆Ｌａｎｅ、前出において広範に総説されている、いくつかの構成のいずれかにおいて実施することができる。
【０１６４】
２．免疫学的結合アッセイ
Ｔ１Ｒタンパク質、断片及び変異体は、多くのよく認識されている免疫学的結合アッセイのいずれかを用いて検出し、かつ／又は定量することができる（例えば、米国特許第４，３６６，２４１号、第４，３７６，１１０号、第４，５１７，２８８号及び第４，８３７，１６８号を参照）。一般的イムノアッセイの総説については、Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌｏｇｙ：Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  ｉｎ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌｏｇｙ、第３７巻（Ａｓａｉ編、１９９３年）、Ｂａｓｉｃ  ａｎｄ  Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ（Ｓｔｉｔｅｓ＆Ｔｅｒｒ編、第７版、１９９１年）も参照。免疫学的結合アッセイ（又はイムノアッセイ）では、一般的に最適のタンパク質又は抗原（この場合、Ｔ１Ｒファミリーメンバー又はその抗原性サブ配列）に対して特異的に結合する抗体を用いる。抗体（例えば、抗Ｔ１Ｒ）は、当業者によく知られている多くの手段のいずれかにより、及び上記のように生産することができる。
【０１６５】
イムノアッセイにおいても、抗体と抗原により形成される複合体に特異的に結合し、標識するための標識物質をしばしば用いる。標識物質はそれ自体、抗体／抗原複合体を含む部分の１つであってよい。したがって、標識物質は、標識Ｔ１Ｒポリペプチド又は標識抗Ｔ１Ｒ抗体であってよい。あるいは、標識物質は、抗体／Ｔ１Ｒ複合体に特異的に結合する第２抗体のような第３の部分であってよい（第２抗体は、第１抗体が得られる動物種の抗体に対して一般的に特異的である）。プロテインＡ又はプロテインＧのような免疫グロブリン定常部に特異的に結合することができる他のタンパク質も標識物質として用いることができる。これらのタンパク質は、様々な動物種の免疫グロブリン定常部と強い非免疫原性反応性を示す（例えば、Ｋｒｏｎａｌ  ｅｔ  ａｌ．、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．第１１１巻、１４０１〜１４０６頁（１９７３年）、Ａｋｅｒｓｔｒｏｍ  ｅｔ  ａｌ．、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．第１３５巻、２５８９〜２５４２頁（１９８５年）を参照）。標識物質は、ストレプトアビジンのような他の分子が特異的に結合することができるビオチンのような検出可能な部分で修飾することができる。様々な検出可能な部分は、当業者によく知られている。
【０１６６】
アッセイを通して、インキュベーション及び／又は洗浄段階が試薬の各組合せの後に必要である。インキュベーション段階は、約５秒から数時間まで、場合により約５分から約２４時間まで変わり得る。しかし、インキュベーション時間は、アッセイ方式、抗原、溶液の量、濃度等に依存する。通常、アッセイは、１０℃〜４０℃のような温度範囲で行うことができるが、周囲温度で実施される。
【０１６７】
Ａ．非競合的アッセイ方式
サンプル中のＴ１Ｒポリペプチドを検出するためのイムノアッセイは、競合的又は非競合的であってよい。非競合的イムノアッセイは、抗原の量を直接測定するアッセイである。１つの好ましい「サンドイッチ」アッセイにおいて、例えば、抗Ｔ１Ｒ抗体を、それらが固定化されている固体基体に直接結合させることができる。これらの固定化抗体が試験サンプル中に存在するＴ１Ｒポリペプチドを捕捉する。Ｔ１Ｒポリペプチドは、そのように固定化され、次いで、標識を帯びている第２Ｔ１Ｒ抗体のような標識物質により結合される。あるいは、第２抗体は、標識を欠いてもよいが、次に、第２抗体が得られる動物種の抗体に対して特異的な標識第３抗体により結合される。第２又は第３抗体は一般的に、検出可能な部分を得るために、例えば、ストレプトアビジンのような他の分子が特異的に結合することができるビオチンのような検出可能な部分で修飾されている。
【０１６８】
Ｂ．競合的アッセイ方式
競合的アッセイでは、サンプル中に存在するＴ１Ｒポリペプチドの量を、サンプル中に存在する未知のＴ１Ｒポリペプチドにより抗Ｔ１Ｒ抗体から置換された（競合脱離した）既知の添加（外因性）Ｔ１Ｒポリペプチドの量を測定することにより間接的に測定する。１つの競合的アッセイにおいて、既知量のＴ１Ｒポリペプチドをサンプルに加え、次いで、サンプルをＴ１Ｒに特異的に結合する抗体と接触させる。抗体に結合する外因性Ｔ１Ｒポリペプチドの量は、サンプル中に存在するＴ１Ｒポリペプチドの濃度に逆比例する。特に好ましい実施形態において、抗体が固体基体に固定化されている。抗体に結合したＴ１Ｒポリペプチドの量は、Ｔ１Ｒ／抗体複合体に存在するＴ１Ｒポリペプチドの量を測定するか、あるいは、残りの複合体化していないタンパク質の量を測定して決定する。Ｔ１Ｒポリペプチドの量は、標識されたＴ１Ｒ分子を供給することによって検出することができる。
【０１６９】
ハプテン阻害アッセイが他の好ましい競合的アッセイである。このアッセイでは、既知のＴ１Ｒポリペプチドを固体基体に固定化する。既知量の抗Ｔ１Ｒ抗体をサンプルに加え、次いで、サンプルを固定化Ｔ１Ｒと接触させる。既知の固定化Ｔ１Ｒに結合した抗Ｔ１Ｒ抗体の量は、サンプル中に存在するＴ１Ｒポリペプチドの量に逆比例する。再び、固定化された抗体の量は、抗体の固定化された画分又は溶液中に残っている抗体の画分を検出することにより検出することができる。検出は、抗体が標識されている場合には直接に行うことができ、又は上記のように抗体に特異的に結合する標識部分の後の添加により間接的に行うことができる。
【０１７０】
Ｃ．交差反応性の測定
競合的結合方式のイムノアッセイは、交差反応性の測定にも用いることができる。例えば、本明細書に開示する核酸配列により少なくとも部分的にコードされたタンパク質を固体担体に固定化することができる。固定化抗原への抗血清の結合に対して競合するタンパク質（例えば、Ｔ１Ｒポリペプチド及び同族体）をアッセイに加える。固定化タンパク質への抗血清の結合に対して競合する添加タンパク質の能力を、それ自体と競合する本明細書に開示する核酸配列によりコードされたＴ１Ｒポリペプチドの能力と比較する。上記のタンパク質の公差反応性の割合を標準計算法により計算する。上記の添加タンパク質のそれぞれと１０％未満の交差反応性を示す抗血清を選択し、プールする。交差反応性抗体は場合により、考慮された添加タンパク質、例えば、関連性が小さい同族体を用いる免疫吸収によりプールした抗血清から除去する。さらに、Ｔ１Ｒファミリーのメンバーを同定するのに用いられる保存モチーフを表すアミノ酸配列を含むペプチドは、交差反応性の判定に用いることができる。
【０１７１】
免疫吸収させた及びプールした抗血清を上記の競合的結合免疫アッセイに用いて、Ｔ１Ｒファミリーメンバーのおそらく対立遺伝子又は多形性変異体と考えられる第２のタンパク質を免疫原性タンパク質（すなわち、本明細書に開示する核酸配列によりコードされたＴ１Ｒポリペプチド）と比較する。この比較を行うために、２つのタンパク質をそれぞれ広範囲の濃度で分析し、固定化タンパク質への抗血清の結合の５０％を阻害するのに必要な各タンパク質の量を測定する。結合の５０％を阻害するのに必要な第２のタンパク質の量が、結合の５０％を阻害するのに必要な本明細書に開示する核酸配列によりコードされたタンパク質の量の１０倍未満の場合、第２のタンパク質は、Ｔ１Ｒに対して発生したポリクローナル抗体に特異的に結合するという。
【０１７２】
Ｔ１Ｒ保存モチーフに対して産生させた抗体は、Ｔ１ＲファミリーのＧＰＣＲｓに対してのみ特異的に結合する抗体を調製するのにも用いることができるが、他のファミリーのＧＰＣＲｓに対するものには用いることはできない。
【０１７３】
Ｔ１Ｒファミリーの特定のメンバーに特異的に結合するポリクローナル抗体は、他のＴ１Ｒファミリーメンバーを用いて交差反応性抗体を除去することにより、調製することができる。種特異ポリクローナル抗体は、同様にして調製することができる。例えば、ヒトＴ１Ｒ１に特異的な抗体は、オーソロガス配列、例えば、ラットＴ１Ｒ１又はマウスＴ１Ｒ１と交差反応性である抗体を除去することにより、調製することができる。
【０１７４】
Ｄ．他のアッセイ方式
ウエスタンブロット（イムノブロット）分析を用いて、サンプル中のＴ１Ｒポリペプチドの存在を検出し、定量する。この手法は一般的に、分子量に基づきゲル電気泳動によりサンプルタンパク質を分離し、分離したタンパク質を適切な固体担体（ニトロセルロースフィルター、ナイロンフィルター又は誘導体化ナイロンフィルター）に移し、サンプルをＴ１Ｒポリペプチドに特異的に結合する抗体と共にインキュベートすることを含む。抗Ｔ１Ｒポリペプチド抗体は、固体担体上のＴ１Ｒポリペプチドに特異的に結合する。これらの抗体は、抗Ｔ１Ｒ抗体に特異的に結合する標識抗体（例えば、ヒツジ抗マウス抗体）を用いて直接標識することができるか、あるいは後に検出することができる。
【０１７５】
他のアッセイ方式としては、特定の分子（例えば、抗体）に結合するように設計されたリポソーム及び放出カプセル封入試薬又はマーカーを用いるリポソームイムノアッセイ（ＬＩＡ）が挙げられる。放出された化学物質を標準的手法により検出する（Ｍｏｎｒｏｅ  ｅｔ  ａｌ．、Ａｍｅｒ．Ｃｌｉｎ．Ｐｒｏｄ．Ｒｅｖ．第５巻、３４〜４１頁（１９８６年）を参照）。
【０１７６】
Ｅ．非特異的結合の低減
当業者は、イムノアッセイにおける特異的結合を最小限にすることがしばしば望ましいことを認識しているであろう。特に、アッセイが固体基体に固定化されている抗原又は抗体を用いるものである場合、基体への非特異的結合の量を最小限にすることが望ましい。そのような非特異的結合を低減する手段は、当業者によく知られている。一般的に、この手法は、タンパク質性組成物で基体をコーティングすることを含む。特に、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、脱脂粉乳及びゼラチンのようなタンパク質組成物が広く使用されており、粉乳が最も好ましい。
【０１７７】
Ｆ．標識
アッセイに用いられる特定の標識又は検出可能な基は、アッセイに用いる抗体の特異的結合を有意に妨げない限り、本発明の重要な態様ではない。検出可能な基は、検出可能な物理的又は化学的特性を有する物質であってよい。そのような検出可能な標識は、イムノアッセイの分野において十分に発達しており、一般的に、そのような方法において有用なほとんどの標識は、本発明に適用することができる。したがって、標識は、分光学的、光化学的、生化学的、免疫化学的、電気的、光学的又は化学的手段により検出可能なあらゆる組成物である。本発明における有用な標識としては、磁気ビーズ（例えば、ＤＹＮＡＢＥＡＤＳＴＭ）、蛍光色素（例えば、フルオレセインイソチオシアネート、テキサスレッド、ローダミン等）、放射性標識（例えば、3Ｈ、125Ｉ、14Ｃ、35Ｓ）、酵素（例えば、西洋ワサビ、リン酸アルカリ及びＥＬＩＳＡに一般的に用いられている他のもの）コロイド金又は着色ガラス又はプラスチックビーズ（例えば、ポリスチレン、ポリプロピレン、ラテックス等）のような測色標識などがある。
【０１７８】
標識は、当技術分野で知られている方法によりアッセイの所望の成分に直接又は間接的に結合させることができる。上記のように、広範囲の標識を用いることができるが、必要とする感度、化合物との複合の容易さ、安定性要件、利用可能な機器及び廃棄規定に応じて標識を選択する。
【０１７９】
非放射性標識は、間接的な手段により結合させることが多い。一般的に、リガンド分子（例えば、ビオチン）を分子に共有結合させる。次いで、リガンドは、検出可能な酵素、蛍光化合物又は化学発光化合物のような本質的に検出可能であるか、又はシグナル系に共有結合する、他の分子（例えば、ストレプトアビジン）に結合する。リガンド及びそれらの標識は、Ｔ１Ｒポリペプチドを認識する抗体又は抗Ｔ１Ｒを認識する第２抗体と適切に組み合わせて用いることができる。
【０１８０】
分子は、例えば、酵素又は蛍光団との複合など、シグナル発生化合物に直接的に結合させることもできる。標識としての問題の酵素は、主としてヒドロラーゼ、特に、ホスファターゼ、エステラーゼ及びグリコシダーゼ又はオキシドターゼ、特に、ペルオキシダーゼである。蛍光化合物としては、フルオレセイン及びその誘導体、ローダミン及びその誘導体、ダンシル、ウンベリフェロン等がある。化学発光化合物としては、ルシフェリン及び２，３−ジヒドロフタラジンジオン、例えば、ルミノールなどがある。用いることができる種々の標識又はシグナル発生システムに関する総説については、米国特許第４，３９１，９０４号を参照。
【０１８１】
標識を検出する手段は、当業者によく知られている。したがって、例えば、標識が放射性標識である場合、検出手段は、シンチレーションカウンター又はオートラジオグラフィーにおけるような写真フィルムなどである。標識が蛍光標識である場合、標識は適切な波長の光で蛍光色素を励起し、発生した蛍光を検出することにより検出することができる。蛍光は、写真フィルムにより、電荷結合素子（ＣＣＤｓ）又は光電子倍増管等の電子的検出器の使用により、視覚的に検出することができる。同様に、酵素標識は、酵素の適切な基質を用い、得られた反応生成物を検出することにより検出することができる。最後に、単純な測色標識は、標識に伴う色を単に観察して検出することができる。したがって、様々なディップスティックアッセイにおいて、結合した金はしばしばピンク色に見えるが、様々な複合ビーズはビーズの色に見える。
【０１８２】
一部のアッセイ方式は、標識化合物の使用を必要としない。例えば、凝集アッセイを用いて、標的抗体の存在を検出することができる。この場合、抗原被覆粒子を標的抗体を含むサンプルにより凝集させる。この方式では、いずれの化合物も標識する必要がなく、標的抗体の存在は簡単な目視検査により検出される。
【０１８３】
調節物質の検出
試験化合物が本発明のＴ１Ｒ受容体にｉｎ  ｖｉｔｒｏ及びｉｎ  ｖｉｖｏで特異的に結合するかどうかを検討するための組成物及び方法を以下に記載する。本発明のＴ１Ｒポリペプチドへのリガンド結合の影響を評価するために、細胞生理学の多くの側面をモニターすることができる。これらのアッセイは、化学感覚受容体を発現する完全な細胞について、透過性化細胞について、あるいは、標準的方法により生成させた膜断片又はｉｎ  ｖｉｔｒｏでの新規合成タンパク質について実施することができる。
【０１８４】
ｉｎ  ｖｉｖｏでは味覚受容体が味覚物質に結合し、化学的刺激の電気的シグナルへの変換を開始する。活性化又は阻害されたＧタンパク質が次に標的酵素、チャンネル及び他のエフェクタータンパク質の特性を変化させる。いくつかの例は、視覚系におけるトランンスデューシンによるｃＧＭＰホスホジエステラーゼ、刺激性Ｇタンパク質によるアデニル酸シクラーゼ、Ｇｑ及び他の同族Ｇタンパク質によるホスホリパーゼＣの活性化並びにＧｉ及び他のＧタンパク質による種々のチャンネルの調節である。ホスホリパーゼＣによるジアシルグリセロール及びＩＰ３の生成並びにその結果としてのＩＰ３によるカルシウム動態化のような下流の結果も検討することができる。
【０１８５】
アッセイのＴ１Ｒタンパク質又はポリペプチドは、実施例１に開示するものから選択されるＴ１Ｒポリペプチド配列あるいはその断片又は保存的に修飾された変異体を有するポリペプチドから選択することが好ましい。場合により、断片及び変異体は、抗Ｔ１Ｒ抗体に結合する抗原性断片及び変異体であってよい。場合により、断片及び変異体は、甘味料又はうま味味覚物質に結合又はそれにより活性化されてよい。
【０１８６】
あるいは、アッセイのＴ１Ｒタンパク質又はポリペプチドは、真核生物宿主細胞由来のものであってよく、実施例１に開示するＴ１Ｒポリペプチド配列あるいはその断片又は保存的に修飾された変異体とアミノ酸配列の同一性を有するアミノ酸サブ配列を含んでいてよい。一般的に、アミノ酸配列の同一性は、少なくとも３５〜５０％、あるいは場合により７５％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％又は９９％である。場合により、アッセイのＴ１Ｒタンパク質又はポリペプチドは、細胞外ドメイン、膜貫通領域、膜貫通ドメイン、細胞質ドメイン、リガンド結合ドメイン等のＴ１Ｒタンパク質のドメインを含んでいてよい。さらに、上記のように、Ｔ１Ｒタンパク質又はそのドメインを異種タンパク質に共有結合により連結させて、本明細書に記載するアッセイに用いるキメラタンパク質を創ることができる。
【０１８７】
Ｔ１Ｒ受容体活性の調節物質は、上記のような組換え又は天然に存在するＴ１Ｒタンパク質又はポリペプチドを用いて試験する。Ｔ１Ｒタンパク質又はポリペプチドは、組換え又は天然に存在するものを分離し、細胞中で同時発現させ、細胞から得られる膜内で同時発現させ、組織又は動物において同時発現させることができる。例えば、舌切片、舌から分離した細胞、形質転換細胞又は膜を用いることができる。調節は、本明細書に記載するｉｎ  ｖｉｔｒｏ又はｉｎ  ｖｉｖｏアッセイの１つを用いて試験することができる。
【０１８８】
例えば、以下の実験的実施例で開示されているように、特定の５1ヌクレオチド、例えば、５1ＩＭＰ又は５1ＧＭＰは、Ｌ−グルタミン酸塩の活性を増強させて、うま味受容体を活性化するか、又はＬ−Ｌ−グルタミン酸塩又はＬ−アスパラギン酸塩のようなうま味刺激物質によるうま味受容体の活性化を阻害する。
【０１８９】
１．ｉｎ  ｖｉｔｒｏ結合アッセイ
味覚変換も本発明のＴ１Ｒポリペプチドを用いて、可溶性又は固体状態反応によりｉｎ  ｖｉｔｒｏで検討することができる。特定の実施形態において、リガンド結合を検定するために、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ可溶性又は固体状態反応にＴ１Ｒリガンド結合ドメインを用いることができる。
【０１９０】
例えば、Ｔ１ＲのＮ末端ドメインがリガンド結合に関与していると予測される。より具体的には、Ｔ１Ｒｓは、大きい、約６００アミノ酸の細胞外Ｎ末端セグメントを特徴とするＧＰＣＲサブファミリーに属している。これらのＮ末端セグメントは、リガンド結合ドメインを形成していると考えられ、したがって、Ｔ１Ｒ作動物質及び拮抗物質を特定するための生化学的アッセイに有用である。リガンド結合ドメインは、膜貫通ドメインの細胞外ループのような細胞外ドメインの付加的な部分により形成されている可能性がある。
【０１９１】
ｉｎ  ｖｉｔｒｏアッセイは、メタボトロッピックグルタミン酸受容体のようなＴ１Ｒｓに関連する他のＧＰＣＲｓについて用いられた（例えば、Ｈａｎ  ａｎｄ  Ｈａｍｐｓｏｎ、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．第２７４巻、１０００８〜１００１３頁（１９９９年）を参照）。これらのアッセイは、放射性又は蛍光標識リガンドの置換、固有蛍光の変化又はタンパク質溶解感受性の変化の測定等を伴う。
【０１９２】
本発明のＴ１Ｒポリペプチドのヘテロ多量体複合体へのリガンド結合は、溶液中、場合により固相に結合させた２層膜中で、脂質単層中で、又は小胞中で試験することができる。調節物質の結合は、例えば、  分光学的特性（例えば、蛍光、吸光度、屈折率）、流体力学的（例えば、形状）、クロマトグラフィー又は溶解性特性の変化を用いて試験することができる。
【０１９３】
本発明の他の実施形態において、ＧＴＰγ35Ｓアッセイを用いることができる。上記のように、ＧＰＣＲの活性化により、Ｇタンパク質複合体のＧαサブユニットは、刺激されて、結合ＧＤＰをＧＴＰと交換する。Ｇタンパク質交換活性のリガンド媒介性刺激は、推定上のリガンドの存在下でのＧタンパク質への添加放射性標識ＧＴＰγ35Ｓの結合を測定する生化学的アッセイにおいて測定することができる。一般的に、問題の化学感覚受容体を含む膜をＧタンパク質複合体と混合する。可能性のある阻害物質及び／又は活性化物質及びＧＴＰγ35Ｓをアッセイに加え、Ｇタンパク質へのＧＴＰγ35Ｓの結合を測定する。結合は、液体シンチレーション計数法又はシンチレーションプロキシミティアッセイ（ＳＰＡ）を含む当技術分野で知られている他の手段により測定することができる。他のアッセイ方式では、蛍光標識ＧＴＰγＳを利用することができる。
【０１９４】
２．蛍光偏光アッセイ
他の実施形態において、蛍光偏光（「ＦＰ」）に基づくアッセイを用いてリガンド結合を検出し、モニターすることができる。蛍光偏光は、平衡結合、核酸ハイブリダイゼーション及び酵素活性を測定するための汎用性のある実験室技術である。蛍光偏光アッセイは、遠心分離、ろ過、クロマトグラフィー、沈殿又は電気泳動のような分離段階を必要としない点で均一である。これらのアッセイは、溶液中で実時間で、直接的に行われ、固定化相を必要としない。偏光の測定は迅速で、サンプルを破壊しないので、偏光値は繰り返して、また、試薬の添加後に測定することができる。一般的に、この手法を用いて、低いピコモルからマイクロモルまでの偏光値を測定することができる。この項では、本発明のＴ１Ｒポリペプチドへのリガンドの結合を単純かつ定量的方法で測定するのに、どのようにして蛍光偏光を用いるのかを述べる。
【０１９５】
蛍光標識分子を平面偏光により励起させたとき、その分子は、その分子旋光度に逆比例する偏光の程度を有する光を放射する。大きい蛍光標識分子は、励起状態時（フルオレセインの場合、４ナノ秒）に比較的に静止した状態に留まり、光の偏光は、励起と放射との間で比較的一定に留まっている。小さい蛍光標識分子は、励起状態時に速やかに回転し、偏光は励起と放射との間で有意に変化する。したがって、小分子は低い偏光値を有し、大分子は高い偏光値を有する。例えば、１本鎖フルオレセイン標識オリゴヌクレオチドは、比較的低い偏光値を有するが、相補鎖とハイブリド形成したとき、より高い偏光値を有する。本発明の化学感覚受容体を活性化又は阻害する味覚物質結合を検出し、モニターするためにＦＰを用いる場合、蛍光標識味覚物質又は自己蛍光味覚物質を用いることができる。
【０１９６】
蛍光偏光（Ｐ）は次のように定義される。
【０１９７】
【数１】
2010189391.tif 000002
【０１９８】
ここで、Πは励起光面に平行な放射光の強度であり、Ｉｎｔ⊥は励起光面に垂直な放射光の強度であり、Ｐは光の強度の比で、無次元数である。例えば、Ｂｅａｃｏｎ（商標登録）及びＢｅａｃｏｎ  ２０００（商標）をこれらのアッセイに関連して用いることができる。そのようなシステムは、一般的に偏光をミリ偏光単位（１偏光単位＝１０００ｍＰ単位）で表す。
【０１９９】
分子旋光度とサイズとの関係は、Ｐｅｒｒｉｎ式により記述される。読者は、この式の十分な説明が記載されている、Ｊｏｌｌｅｙ  Ｍ．Ｅ．（１９９１年）、Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ  Ｔｏｘｉｃｏｌｏｇｙ、２３６〜２４０頁を参照。要約すると、Ｐｅｒｒｉｎ式は、偏光が、分子が約６８．５゜の角度を回転するに必要な時間である回転緩和時間に直接比例することを記述している。回転緩和時間は、粘度（η）、絶対温度（Ｔ）、分子容（Ｖ）及び気体定数（Ｒ）に次の式により関連づけられる。
【０２００】
【数２】
2010189391.tif 000003
【０２０１】
回転緩和時間は、小分子（例えば、フルオレセイン）では小さく（約１ナノ秒）、大分子（例えば、免疫グロブリン）では大きい（約１００ナノ秒）。粘度及び温度を一定に保持するならば、回転緩和時間、したがって、偏光は、分子容に直接関係づけられる。分子容の変化は、蛍光標識分子の他の分子との相互作用、解離、重合、分解、ハイブリダイゼーション又はコンホメーションの変化に起因する可能性がある。例えば、蛍光偏光は、プロテアーゼ、ＤＮアーゼ及びＲＮアーゼによる大きい蛍光標識ポリマーの酵素切断を測定するために用いられている。蛍光偏光はまた、タンパク質／タンパク質相互作用、抗体／抗原結合及びタンパク質／ＤＮＡ結合における平衡結合を測定するために用いられている。
【０２０２】
Ａ．固相状態及び可溶性高処理能力アッセイ
他の実施形態において、本発明は、ヘテロオリゴマーＴ１Ｒポリペプチド複合体あるいは細胞又は組織同時発現Ｔ１Ｒポリペプチドを用いる可溶性アッセイを提供する。好ましくは、細胞は、機能的Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３（うま味）味覚受容体又はＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３（甘味）味覚受容体を安定に同時発現する。他の実施形態において、本発明は、Ｔ１ＲポリペプチドあるいはＴ１Ｒポリペプチドを発現する細胞又は組織を固相基体又は味覚刺激物質に結合させ、Ｔ１Ｒ受容体と接触させ、適切な標識又はＴ１Ｒ受容体に対して産生させた抗体を用いて結合を検出する、高処理能力方式での固相に基づくｉｎ  ｖｉｔｒｏアッセイを提供する。
【０２０３】
本発明の高処理能力アッセイでは、１日に数千種の調節物質又はリガンドをスクリーニングすることが可能である。特に、マイクロタイタープレートの各ウエルを用いて選択した可能性な調節物質に対する独立したアッセイを行うことができ、あるいは、もし濃度又はインキュベーション時間効果が認められる場合には、５〜１０ウエルを用いて１つの調節物質を試験することができる。したがって、１枚の標準マイクロタイタープレートで約１００種（例えば、９６種）の調節物質についてアッセイを行うことができる。１５３６ウエルプレートを用いる場合、１枚のプレートで約１０００種から約１５００種の化合物についてアッセイを容易に行うことができる。各プレートウエルで複数の化合物のアッセイを行うことも可能である。１日当たり数枚の異なるプレートを用いてアッセイを行うことが可能であり、本発明の統合システムを用いて、最大約６，０００〜２０，０００種の化合物のアッセイによるスクリーニングが可能である。最近、試薬操作に対するマイクロフルーイディック手法が開発された。
【０２０４】
対象とする分子は、固体状態構成要素に直接的又は間接的に、共有結合部又は非共有結合部を介して、例えばタグを介して結合させることができる。タグは多様な構成要素のいずれであってもよい。一般的に、標識に結合する分子（標識バインダー）を固体担体に結合させ、問題の標識した分子（例えば、問題の味覚変換分子）を、標識と標識バインダーとの相互作用により固体担体に結合させる。
【０２０５】
文献に十分に記載されている既知の分子相互作用に基づいて、多数の標識及び標識バインダーを用いることができる。例えば、標識が、例えば、ビオチン、プロテインＡ又はプロテインＧのような天然バインダーを備えている場合、適切な標識バインダー（アビジン、ストレプトアビジン、ニュートラアビジン、免疫グロブリンのＦｃ部等）と共に用いることができる。ビオチンのような天然バインダーを有する分子に対する抗体も広く利用可能であり、適切な標識バインダーである（ＳＩＧＭＡ  Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍｉｃａｌｓ１９９８年カタログ、ＳＩＧＭＡ（ミズーリ州セントルイス）を参照）。
【０２０６】
同様に、ハプテン性又は抗原性化合物を適切な抗体と組み合わせて、標識／標識バインダー対を生成させることができる。何千もの特異抗体が市販されており、他の多くの抗体が文献に記載されている。例えば、１つの一般的な配置において、標識が第１抗体であり、標識バインダーが第１抗体を認識する第２抗体である。抗体−抗原相互作用に加えて、受容体−リガンド相互作用も標識及び標識バインダー対として適切である。例えば、細胞膜受容体の作動物質及び拮抗物質（例えば、トランスフェリン、ｃ−キット、ウイルス受容体リガンド、サイトカイン受容体、ケモカイン受容体、インターロイキン受容体、免疫グロブリン受容体及び抗体のような細胞受容体−リガンド相互作用、ならびにカドヘリンファミリー、インテグリンファミリー、セレクチンファミリー等、例えば、Ｐｉｇｏｔｔ＆Ｐｏｗｅｒ、Ｔｈｅ  Ａｄｈｅｓｉｏｎ  Ｍｏｌｅｃｉｌｅ  Ｆａｃｔｓ  Ｂｏｏｋ  Ｉ（１９９３年）を参照）。同様に、トキシン及び毒液、ウイルスエピトープ、ホルモン（例えば、オピエート、ステロイド等）、細胞内受容体（例えば、ステロイド、甲状腺ホルモン、レチノイド及びビタミンＤを含む様々な小リガンドの作用を媒介する；ペプチド）、薬物、レクチン、糖、核酸（線状及び環状ポリマー配置）、オリゴ糖、タンパク質、リン脂質及び抗体はすべて種々の細胞受容体と相互作用することができる。
【０２０７】
ポリウレタン、ポリエステル、ポリカーボネート、ポリ尿素、ポリアミド、ポリエチレンイミン、ポリアリーレンスルフィド、ポリシロキサン、ポリイミド及びポリアセテートのような合成ポリマーも適切な標識又は標識バインダーを形成し得る。この開示の検討に際して当業者にとって明らかなように、他の多くの標識／標識バインダー対も本明細書に記載のアッセイシステムに有用である。
【０２０８】
ペプチド、ポリエーテル等の一般的なリンカーも標識となり得るものであり、約５〜２００アミノ酸のポリｇｌｙ配列のようなポリペプチド配列などが挙げられる。そのようなフレキシブルなリンカーは、当業者に知られている。例えば、ポリ（エチレングリコール）リンカーは、Ｓｈｅａｒｗａｔｅｒ  Ｐｏｌｙｍｅｒｓ，Ｉｎｃ．（アラバマ州ハンツビル（Ｈｕｎｔｓｖｉｌｌｅ））から入手可能である。これらのリンカーは、場合により、アミド結合、スルフヒドリル結合又は異種官能基結合を有していてよい。
【０２０９】
標識バインダーを現在利用可能な種々の方法を用いて固体基体に固定する。固体基体は一般的に、標識バインダーの一部との反応性を有する化学基を表面に固定する化学試薬に基体の全部又は一部を曝露することにより、誘導体化又は官能基化する。例えば、より長い鎖部分への結合に適した基は、ヒドロキシル、チオール及びカルボキシル基などである。アミノアルキルシラン及びヒドロキシアルキルシランを用いて、ガラス表面のような様々な表面を官能基化することができる。そのような固相生体高分子アレイの構成は、文献に十分に記載されている。例えば、Ｍｅｒｒｉｆｉｅｌｄ、Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｉｃ．第８５巻、２１４９〜２１５４頁（１９６３年）（例えば、ペプチドの固相合成を記載）、Ｇｅｙｓｅｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｊ．Ｉｍｍｕｎ．Ｍｅｔｈ．第１０２巻、２５９〜２７４頁（１９８７年）（ピン上の固相成分の合成を記載）、Ｆｒａｎｋ＆Ｄｏｒｉｎｇ、Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ、第４４巻、６０３１６０４０（１９８８年）（セルロースディスク上の種々のペプチド配列の合成を記載）、Ｆｏｄｏｒ  ｅｔ  ａｌ．、Ｓｃｉｅｎｃｅ、第２５１巻、７６７〜７７７頁（１９９１年）、Ｓｈｅｌｄｏｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ、第３９巻、第４号、７１８〜７１９頁（１９９３年）及びＫｏｚａｌ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎａｔｕｒｅ  Ｍｅｄｉｃｉｎｅ、第２巻、第７号、７５３７５９頁（１９９６年）（すべてが固体基体に固定された生体高分子のアレイを記載）を参照。基体に標識バインダーを固定する非化学的手法としては、熱、ＵＶ光による架橋等の他の一般的な方法がある。
【０２１０】
３．細胞を用いるアッセイ
処理の好ましい実施形態において、Ｔ１Ｒタンパク質又はポリペプチドの組合せを真核細胞中で、非修飾形で、あるいは、分泌経路によりその突然変異及びターゲッティングを促進する異種シャペロン配列を含む、又は好ましくは含まないキメラ、変異体又は切断型受容体として一時的又は安定に同時発現させる。そのようなＴ１Ｒポリペプチドは、ＨＥＫ−２９３細胞のようなあらゆる真核細胞中で発現させることができる。細胞は、機能的Ｇタンパク質、例えば、Ｇα１５又は以前に同定されたキメラＧタンパク質、あるいは、キメラ受容体を細胞内シグナル伝達経路又はホスホリパーゼＣのようなシグナル伝達タンパク質に結合させることができる他のＧタンパク質を含むことが好ましい。また、そのような細胞は味覚刺激物質に対する強い応答（同じＴ１Ｒの組合せを一時的に発現する細胞に関連）を示すことが見いだされた（実験的実施例に示すように）ので、Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３又はＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３を安定に同時発現する細胞を発生させることが好ましい。そのような細胞中のＴ１Ｒ受容体の活性化は、細胞中のＦｌｕｏ−４依存性蛍光を検出して細胞内カルシウムの変化を検出することによるなどの標準的な方法を用いて検出することができる。そのようなアッセイは、この適用例において示す実験所見の基礎である。
【０２１１】
活性化ＧＰＣＲ受容体は、しばしば受容体のＣ末端部（及びおそらく他の部位も）リン酸化するキナーゼの基質である。したがって、活性化物質は、放射性標識ＡＴＰから受容体への32Ｐの転移を促進するであろう。これは、シンチレーションカウンターにより検定することができる。Ｃ末端部のリン酸化は、アレスチン様タンパク質の結合を促進し、Ｇタンパク質の結合を妨げる。ＧＰＣＲシグナル伝達及びシグナル伝達を検定する方法の一般的総説については、例えば、Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ、第２３７巻及び第２３８巻（１９９４年）及び第９６巻（１９８３年）、Ｂｏｕｒｎｅ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎａｔｕｒｅ、第３４９巻、１１７〜２７頁（１９９１年）、Ｂｏｕｒｎｅ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎａｔｕｒｅ、第３４８巻、１２５〜３２頁（１９９０年）、Ｐｉｔｃｈｅｒ  ｅｔ  ａｌ．、Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．第６７巻、６５３〜９２頁（１９９８年）を参照。
【０２１２】
Ｔ１Ｒ調節は、推定上のＴ１Ｒ調節物質により処理したＴ１Ｒポリペプチドの応答を無処理対照サンプル又は既知「陽性」対照を含むサンプルの応答と比較することにより、検定することができる。そのような推定上のＴ１Ｒ調節物質は、Ｔ１Ｒポリペプチド活性を阻害又は活性化する分子などである可能性がある。一実施形態において、対照サンプル（活性化物質又は阻害物質で処理していない）は、相対Ｔ１Ｒ活性値として１００％を有するとする。対照に対するＴ１Ｒ活性値が約９０％、場合により５０％、場合により２５〜０％であるとき、Ｔ１Ｒポリペプチドの阻害が達成されている。対照に対するＴ１Ｒ活性値が１１０％、場合により１５０％、２００〜５００％又は１０００〜２０００％であるとき、Ｔ１Ｒポリペプチドの活性化が達成されている。
【０２１３】
イオン流束の変化は、Ｔ１Ｒポリペプチドを発現する細胞又は膜のイオン分極（すなわち、電位）の変化を測定することにより評価することができる。細胞分極の変化を測定する１つの手段は、電圧固定法及びパッチ固定法により電流の変化を測定する（それにより、分極の変化を測定する）ことである（例えば、「細胞接着」モード、「内外反転」モード及び「全細胞」モード、Ａｃｋｅｒｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎｅｗ  Ｅｎｇｌ．Ｊ  Ｍｅｄ．第３３６巻、１５７５〜１５９５頁（１９９７年）を参照）。全細胞電流は、標準的方法を用いて都合よく測定される。他の既知のアッセイは、電圧感受性色素を用いる放射性標識イオン流束アッセイ及び蛍光アッセイなどである（例えば、Ｖｅｓｔｅｒｇａｒｒｄ−Ｂｏｇｉｎｄ  ｅｔ  ａｌ．、Ｊ．Ｍｅｍｂｒａｎｅ  Ｂｉｏｌ．第８８巻、６７〜７５頁（１９８８年）、Ｇｏｎｚａｌｅｓ＆Ｔｓｉｅｎ、Ｃｈｅｍ．Ｂｉｏｌ．第４巻、２６９〜２７７頁（１９９７年）、Ｄａｎｉｅｌ  ｅｔ  ａｌ．、Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｍｅｔｈ．第２５巻、１８５〜１９３頁（１９９１年）、Ｈｏｌｅｖｉｎｓｋｙ  ｅｔ  ａｌ．、Ｊ．Ｍｅｍｂｒａｎｅ  Ｂｉｏｌｏｇｙ、第１３７巻、５９〜７０頁（１９９４年）を参照）。
【０２１４】
ポリペプチドの機能に対する試験化合物の影響は、上記のパラメーターのいずれかを検討することにより測定することができる。ＧＰＣＲ活性に影響を及ぼす適切な生理学的変化を用いて、本発明のポリペプチドに対する試験化合物の影響を評価することができる。機能に関する結果を完全な細胞又は動物を用いて検討する場合、伝達物質の放出、ホルモンの放出、既知及び未確認遺伝子マーカーに対する転写変化（ノーザンブロット）及びＣａ2+、ＩＰ３、ｃＧＭＰ又はｃＡＭＰのような細胞内二次メッセンジャーの変化のような種々の影響も測定することができる。
【０２１５】
ＧＰＣＲｓの好ましいアッセイは、受容体活性を報告するイオン又は電圧感受性色素を負荷した細胞を対象とするものである。そのような受容体の活性を測定するためのアッセイは、試験した化合物の活性を評価するための対照として他のＧタンパク質結合受容体の既知の作動物質及び拮抗物質も用いることができる。調節化合物（例えば、作動物質、拮抗物質）を特定するためのアッセイにおいて、細胞質内のイオンの濃度又は膜電位の変化をそれぞれイオン感受性又は膜電位蛍光指示計をモニターする。用いることができるイオン感受性指示計及び電位プローブの主なものは、分子プローブ１９９７年カタログ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｐｒｏｂｅｓ  １９９７  Ｃａｔａｌｏｇ）に開示されている。Ｇタンパク質結合受容体については、Ｇα１５及びＧα１６のような乱交雑Ｇタンパク質を最も適切なアッセイに用いることができる（Ｗｉｌｋｉｅ  ｅｔ  ａｌ．、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ’１  Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．第８８巻、１００４９〜１００５３頁（１９９１年））。
【０２１６】
受容体の活性化により、その後の細胞内事象、例えば、二次メッセンジャーの増加が始まる。一部のＧタンパク質結合受容体の活性化は、ホスファチジルイノシトールのホスホリパーゼＣ媒介性加水分解によるイノシトール三リン酸（ＩＰ３）の生成を刺激する（Ｂｅｒｒｉｄｇｅ＆Ｉｒｖｉｎ、Ｎａｔｕｒｅ、第３１２巻、３１５〜２１頁（１９８４年））。ＩＰ３は次に、細胞内貯蔵カルシウムイオンの放出を刺激する。したがって、細胞質カルシウムイオン濃度の変化又はＩＰ３のような二次メッセンジャー濃度の変化を、Ｇタンパク質結合受容体機能を評価するのに用いることができる。そのようなＧタンパク質結合受容体を発現する細胞は、細胞内貯蔵体からのカルシウム放出及び形質膜イオンチャンネルを経ての細胞外カルシウムの流入の寄与による細胞質カルシウム濃度の増加を示す。
【０２１７】
好ましい実施形態において、Ｔ１Ｒポリペプチド活性を、受容体をホスホリパーゼＣシグナル伝達経路に連結させる乱交雑Ｇタンパク質を含む異種細胞中で、安定に又は一時的に、好ましくは安定に、同時発現するＴ１Ｒ遺伝子により測定する（Ｏｆｆｅｒｍａｎｎｓ＆Ｓｉｍｏｎ、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．第２７０巻、１５１７５〜１５１８０頁（１９９５年）を参照）。好ましい実施形態において、細胞系がＨＥＫ−２９３（通常、Ｔ１Ｒ遺伝子を発現しない）であり、乱交雑Ｇタンパク質がＧα１５である（Ｏｆｆｅｒｍａｎｎｓ＆Ｓｉｍｏｎ、前出）。味覚変換の調節は、Ｔ１Ｒポリペプチドに結合する分子の投与によるＴ１Ｒシグナル伝達経路の調節に応答して変化する細胞内Ｃａ2+濃度の変化を測定することにより検定する。Ｃａ2+濃度の変化は、場合により蛍光Ｃａ2+指示色素及び蛍光分析画像法により測定する。
【０２１８】
他の実施形態において、ホスファチジルイノシトール（ＰＩ）の加水分解は、参照により本明細書に組み込まれる米国特許第５，４３６，１２８号に従って分析することができる。簡単に述べると、アッセイには、３Ｈ−ミオイノシトールによる細胞の４８時間以上にわたる標識が含まれる。標識した細胞を試験化合物で１時間処理する。処理した細胞を溶解し、クロロホルム−メタノール−水で抽出した後、イノシトールリン酸をイオン交換クロマトグラフィーにより分離し、シンチレーション計数法により定量する。刺激比率は、作動物質の存在下でのｃｐｍと緩衝液の存在下でのｃｐｍとの比を計算することにより求める。同様に、阻害比率は、拮抗物質の存在下でのｃｐｍと緩衝液（作動物質を含んでいても、含まなくてもよい）の存在下でのｃｐｍとの比を計算することにより求める。
【０２１９】
他の受容体アッセイに、細胞内環状ヌクレオチド、例えば、ｃＡＭＰ又はｃＧＭＰの濃度の測定を含めることができる。受容体の活性化により環状ヌクレオチドの減少がもたらされる場合、アッセイにおいて受容体活性化化合物を細胞に加える前に、細胞内環状ヌクレオチド濃度を増加させる物質、例えば、フォルスコリンに細胞を曝露させることが好ましいと思われる。一実施形態において、細胞内ｃＡＭＰ又はｃＧＭＰの変化は、イムノアッセイを用いて測定することができる。Ｏｆｆｅｒｍａｎｎｓ＆Ｓｉｍｏｎ、Ｊ．Ｂｉｏ．Ｃｈｅｍ．第２７０巻、１５１７５〜１５１８０頁（１９９５年）に記載されている方法を用いてｃＡＭＰの濃度を測定することができる。また、Ｆｅｌｌｅｙ−Ｂｏｓｃｏ  ｅｔ  ａｌ．、Ａｍ．Ｊ．Ｒｅｓｐ．Ｃｅｌｌ  ａｎｄ  Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．第１１巻、１５９〜１６４頁（１９９４年）に記載されている方法を用いてｃＧＭＰの濃度を測定することができる。さらに、ｃＡＭＰ及び／又はｃＧＭＰを測定するためのアッセイキットは、参照により本明細書に組み込まれる米国特許第４，１１５，５３８号に記載されている。
【０２２０】
他の実施形態において、転写レベルを測定して、シグナル伝達に対する試験化合物の影響を評価することができる。問題のＴ１Ｒポリペプチドを含む宿主細胞を相互作用をもたらすのに十分な時間試験化合物と接触させた後、遺伝子発現のレベルを測定する。そのような相互作用をもたらす時間の長さは、時間を経過させ、転写のレベルを時間の関数として測定するなどにより、実験的に決定することができる。転写の量は、当業者に適切であることが知られている方法を用いて測定することができる。例えば、問題のタンパク質のｍＲＮＡ発現をノーザンブロットを用いて検出してもよく、あるいは、それらのペプチド産物をイムノアッセイを用いて同定してもよい。あるいは、リポーター遺伝子を用いる転写に基づくアッセイを、参照により本明細書に組み込まれる米国特許第５，４３６，１２８号に記載のように用いることができる。リポーター遺伝子は、例えば、クロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ、ルシフェラーゼ、β−ガラクトシダーゼ、β−ラクタマーゼ及びアルカリホスファターゼであってよい。さらに、問題のタンパク質を、緑色蛍光タンパク質のような第２の受容体への結合により間接的リポーターとして用いることができる（例えば、Ｍｉｔｉｌｉ＆Ｓｐｅｃｔｏｒ、Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、第１５巻、９６１〜９６４頁（１９９７年）を参照）。
【０２２１】
次いで、転写の量を試験化合物の非存在下での同じ細胞中の転写の量と比較するか、問題のＴ１Ｒポリペプチドを含まない実質的に同じ細胞中の転写の量と比較することができる。実質的に同じ細胞は、組換え細胞は調製したが、異種ＤＮＡの導入により修飾されていなかった同じ細胞から得ることができる。転写の量の差は、試験化合物が問題のＴ１Ｒポリペプチドの活性をなんらかの仕方で変化させたことを示している。
【０２２２】
４．化学感覚受容体を発現するヒト以外のトランスジェニック動物
本発明のＴ１Ｒ味覚受容体配列の組合せを発現するヒト以外の動物も受容体アッセイに用いることができる。そのような発現は、化学感覚受容体又はそのリガンド結合領域をコードする核酸を安定又は一時的にトランスフェクトしたヒト以外の動物を試験化合物と接触させることにより、試験化合物が哺乳類味覚膜貫通受容体複合体にｉｎ  ｖｉｖｏで特異的に結合するかどうかを検討し、受容体ポリペプチド複合体に特異的に結合することにより、動物が試験化合物に対して反応するかどうかを検討するために用いることができる。
【０２２３】
本発明のベクターをトランスフェクト又は感染させた動物は、特定の受容体又はその組合せに結合することができる味覚刺激物質を特定し、特徴づけるためのアッセイに特に有用である。ヒト味覚受容体配列を発現するそのようなベクター感染動物は、味覚刺激物質及び例えば、細胞生理学（例えば、味覚ニューロンに対する）、ＣＮＳに対する、又は行動に対するそれらの影響のｉｎ  ｖｉｖｏスクリーニングに用いることができる。あるいは、Ｔ１Ｒ又はその組合せを発現する安定な細胞系は、特定の受容体又はその組合せを安定に発現する、生産したクローントランスジェニック動物への核酸輸送ドナーとして用いることができる。所望の異種ＤＮＡを発現するクローン動物を生産するために核酸輸送体を用いる方法は、マサチューセッツ大学（Ａｄｖａｎｃｅｄ  Ｃｅｌｌ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｉｎｃ．に対して実施許諾）及びＲｏｓｌｉｎ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ（Ｇｅｒｏｎ  Ｇｏｒｐ．に対して実施許諾）に付与されたいくつかの発行済み米国特許の主体である。
【０２２４】
核酸及びベクターを個別に、又はライブラリーとして感染／発現させる手段は、当技術分野でよく知られている。様々な個別の細胞、器官又は丸ごとの動物パラメーターを様々な手段により測定することができる。本発明のＴ１Ｒ配列は、例えば、感染因子、例えばアデノウイルス発現ベクターを用いて送達することにより動物味覚組織中で同時発現させることができる。
【０２２５】
内因性味覚受容体遺伝子は、依然として機能を果たすことができ、野生型（天然）活性は依然として存在し得る。他の状況において、すべての味覚受容体活性が導入された外因性ハイブリッド受容体によるものであることが望ましい場合、ノックアウトラインの使用が好ましい。ヒト以外のトランスジェニック動物、特に、トランスジェニックマウスの構成並びに形質転換細胞を発生させるための組換え構成体の選択及び調製の方法は、当技術分野においてよく知られている。
【０２２６】
「ノックアウト」細胞及び動物の構成は、哺乳類細胞中の特定の遺伝子の発現のレベルを、遺伝子のＤＮＡ配列のある部分が抑制されるのを遮断する役割を果たす新しいＤＮＡ配列をゲノムに導入することにより減少又は完全になくすことができるという前提に基づいている。また、「遺伝子トラップ挿入」を用いて宿主遺伝子を崩壊させることができ、マウス胚幹細胞（ＥＳ）を用いてノックアウトトランスジェニック動物を生産することができる（例えば、Ｈｏｌｚｓｃｈｕ、Ｔｒａｎｓｇｅｎｉｃ  Ｒｅｓ、第６巻、９７〜１０６頁（１９９７年）を参照）。外因性配列の挿入は一般的に相補的核酸配列間の相同的組換えによっている。外因性配列は、エキソン、イントロン又は転写調節配列のような修飾されるべき標的遺伝子のある部分、あるいは標的遺伝子の発現のレベルに影響を及ぼすことができるゲノム配列あるいはその組合せである。多能性胚幹細胞における相同的組換えによる遺伝子ターゲッティングにより、問題のゲノム配列を精密に修飾することが可能となる。あらゆる手法を用いて、ノックアウト動物を造り、スクリーニングし、増殖させることができる。例えば、Ｂｉｊｖｏｅｔ、Ｈｕｍ．Ｍｉｌ．Ｇｅｎｅｔ．第７巻、５３〜６２頁（１９９８年）、Ｍｏｒｅａｄｉｔｈ、Ｊ．Ｍｏｌ．Ｍｅｄ．第７５巻、２０８〜２１６頁（１９９７年）、Ｔｏｊｏ、Ｃｙｔｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、第１９巻、１６１〜１６５頁（１９９５年）、Ｍｕｄｇｅｔｔ、Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．第４８巻、１６７〜１８４頁（１９９５年）、Ｌｏｎｇｏ、Ｔｒａｎｓｇｅｎｉｃ  Ｒｅｓ．第６巻、３２１〜３２８頁（１９９７年）、米国特許第５，６１６，４９１号、第５，４６４，７６４号、５，６３１，１５３号、第５，４８７，９９２号、第５，６２７，０５９号、第５，２７２，０７１号、国際公開第９１／０９９５５号、国際公開第９３／０９２２２号、国際公開第９６／２９４１１号、国際公開第９５／３１５６０号、国際公開第９１／１２６５０号を参照。
【０２２７】
本発明の核酸は、「ノックアウト」ヒト細胞及びそれらの子孫を生産するための試薬としても用いることができる。同様に、本発明の核酸は、マウスにおける「ノックイン」細胞を産生するための試薬としても用いることができる。ヒト又はラットＴ１Ｒ遺伝子配列は、マウスノムにおけるオーソロガスＴ１Ｒを置換することができる。このようにして、ヒト又はラットＴ１Ｒを発現するマウスが生産される。次いで、このマウスを用いてヒト又はラットＴ１Ｒｓの機能を分析し、そのようなＴ１Ｒｓのリガンドを特定することができる。
【０２２８】
ａ．調節物質
Ｔ１Ｒファミリーメンバーの調節物質として試験される化合物は、小化合物あるいはタンパク質、核酸又は脂質のような生物学的物質であってよい。それらの例として、５1ＩＭＰ及び５1ＧＭＰなどがある。水溶液に溶ける化合物が試験されることが非常に多いが、本質的にあらゆる化合物を本発明のアッセイにおける可能性のある調節物質又はリガンドとして用いることができる。アッセイ段階を自動化し、化合物を都合のよい源から供給することにより、大きい化学ライブラリーをスクリーニングするためのアッセイを設計することができる。これらのアッセイは一般的に並行して実施される（例えば、ロボットアッセイにおけるマイクロタイタープレート上のマイクロタイターフォーマットで）。化学ライブラリーは多くの化学反応のうちの１つ（例えば、Ｓｅｎｏｍｙｘ独占の化学）により合成することができることは認識されよう。さらに、Ｓｉｇｍａ（ミズーリ州セントルイス）、Ａｌｄｒｉｃｈ（ミズーリ州セントルイス）、Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ（ミズーリ州セントルイス）、Ｆｌｕｋａ  Ｃｈｅｍｉｋａ−Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａ  Ａｎａｌｙｔｉｋａ（スイス、ブークス）等の化合物の多くの供給業者が存在する。
【０２２９】
１つの好ましい実施形態において、高処理能力スクリーニング法は、多数の味覚に影響を及ぼす可能性のある化合物（可能な調節物質又はリガンド化合物）を含むコンビナトリアル化学又はペプチドライブラリーを提供することを含む。次いで、そのような「コンビナトリアル化学ライブラリー」又は「リガンドライブラリー」を本明細書に記載するように１つ又は複数のアッセイにおいてスクリーニングして、所望の特有の活性を示すライブラリーメンバー（特定の化学種又はサブクラス）を特定する。そのようにして特定された化合物は、通常の「リード化合物」とすることができ、あるいは、それら自体、可能な又は実際の味覚調節物質として用いることができる。
【０２３０】
好ましくは、そのようなライブラリーは、Ｔ１Ｒ又はＴ１Ｒｓの組合せ、すなわち、Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３又はＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３並びに好ましくは適切なＧタンパク質、例えば、Ｇα15を安定に発現する細胞又は細胞系に対してスクリーニングする。以下の実施例に示すように、そのような安定な化合物は味覚刺激物質、例えば、うま味又は甘味刺激物質に対する非常に顕著な応答を示す。しかし、１つ又は複数のＴ１Ｒｓを一時的に発現する細胞及び細胞系もそのようなアッセイに用いることができる。
【０２３１】
コンビナトリアル化学ライブラリーは、試薬のような多数の「構築ブロック」を組み合わせることにより、化学合成又は生物学的合成により得られた種々の化合物の集合である。例えば、ポリペプチドライブラリーのような線状コンビナトリアル化学ライブラリーは、所定の化合物の長さ（すなわち、ポリペプチド化合物中のアミノ酸の数）について、あらゆる可能な方法で一連の化学的構築ブロックを組み合わせることにより形成される。化学的構築ブロックのそのようなコンビナトリアルミキシングにより、数千から数百万の化合物を合成することができる。
【０２３２】
コンビナトリアル化学ライブラリーの調製及びスクリーニングは、当業者に知られている。そのようなコンビナトリアル化学ライブラリーは、ペプチドライブラリーを含むが、これらに限定されない（例えば、米国特許第５，０１０，１７５号、Ｆｕｒｋａ、Ｉｎｔ．Ｊ．Ｐｅｐｔ．Ｐｒｏｔ．Ｒｅｓ．第３７巻、４８７〜４９３頁（１９９１年）及びＨｏｕｇｈｔｏｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎａｔｕｒｅ、第３５４巻、８４〜８８巻（１９９１年）を参照）。化学的多様性ライブラリーを発生するための他の化学も用いることができる。そのような化学は、次のものを含むが、これらに限定されない。すなわち、ペプトイド（例えば、ＰＣＴ公告番号ＷＯ９１／１９７３５）、コードされたペプチド（例えば、ＰＣＴ公告番号ＷＯ９３／２０２４２）、ランダム生体オリゴマー（例えば、ＰＣＴ公告番号ＷＯ９２／０００９１）、ベンゾジアゼピン（例えば、米国特許第５，２８８，５１４号）、ヒダントイン、ベンゾジアゼピン及びジペプチドのようなダイバーソマー（ｄｉｖｅｒｓｏｍｅｒ）（Ｈｏｂｂｓ  ｅｔ  ａｌ．、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．第９０巻、６９０９〜６９１３頁（１９９３年））、ビニローグポリペプチド（Ｈａｇｉｈａｒａ  ｅｔ  ａｌ．、Ｊ．Ａｍｅｒ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．第１１４巻、６５６８頁（１９９２年））、グルコース足場を有する非ペプチド擬似体（Ｈｉｒｓｃｈｍａｎｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｊ．Ａｍｅｒ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．第１１４巻、９２１７〜９２１８頁（１９９２年））、小化合物ライブラリーの類似有機合成（Ｃｈｅｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｊ．Ａｍｅｒ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．第１１６巻、２６６１頁（１９９４年））、オリゴカルバメート（Ｃｈｏ  ｅｔ  ａｌ．、Ｓｃｉｅｎｃｅ、第２６１巻、１３０３頁（１９９３年））、ペプチジルホスホネート（Ｃａｍｐｂｅｌｌ  ｅｔ  ａｌ．、Ｊ．Ｏｒｇ．Ｃｈｅｍ．第５９巻、６５８頁（１９９４年））、核酸ライブラリー（Ａｕｓｕｂｅｌ、Ｂｅｒｇｅｒ  ａｎｄ  Ｓａｍｂｒｏｏｋ、すべて前出）、ペプチド核酸ライブラリー（米国特許第５，５３９，０８３号）、抗体ライブラリー（Ｖａｕｇｈｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、第１４巻、第３号、３０９〜３１４頁（１９９６年）及びＰＣＴ／ＵＳ９６／１０２８７）、炭水化物ライブラリー（Ｌｉａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．、Ｓｃｉｅｎｃｅ、第２７４巻、１５２０〜１５２２頁（１９９６年）及び米国特許第５，５９３，８５３号）、小有機分子ライブラリー（ベンゾジアゼピン、Ｂａｕｍ、Ｃ＆ＥＮ、１月１８日、３３頁（１９９３年）；チアゾリジノン及びメタチアザノン、米国特許第５，５４９，９７４号；ピンロリジン、米国特許第５，５２５，７３５号及び第５，５１９，１３４号；モルホリノ化合物、米国特許第５，５０６，３３７号；ベンゾジアゼピン、第５，２８８，５１４号等）。
【０２３３】
コンビナトリアルライブラリーの調製用装置は、市販されている（例えば、３５７ＭＰＳ、３９０ＭＰＳ（Ａｄｖａｎｃｅｄ  Ｃｈｅｍ  Ｔｅｃｈ、ケンタッキー州ルイスビル）、Ｓｙｍｐｈｏｎｙ（Ｒａｉｎｉｎ、マサチューセッツ州ウォーバーン）、４３３Ａ（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ、カリフォルニア州フォスターシティー）、９０５０Ｐｌｕｓ（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ、マサチューセッツ州ベッドフォード）。さらに、多くのコンビナトリアルライブラリー自体が市販されている（例えば、ＣｏｍＧｅｎｅｘ、ニュージャージー州プリンストン；Ｔｒｉｐｏｓ，Ｉｎｃ．、ミズーリ州セントルイス；３Ｄ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ、ペンシルバニア州エックストン；Ｍａｒｔｅｋ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、メリーランド州コロンビア等）。
【０２３４】
本発明の１態様において、Ｔ１Ｒ調節物質は、それにより所望の様態で生成物、組成物又は成分の味を調節するために食品、菓子、薬剤組成物又はその成分に用いることができる。例えば、甘味感覚を増強するＴ１Ｒ調節物質は、生成物又は組成物を甘くするために加えることができ、うま味感覚を増強するＴ１Ｒ調節物質は、セイバリー味を増加させるために食物に加えることができる。あるいは、甘味及び／又はうま味を遮断するためにＴ１Ｒ拮抗物質を用いることができる。
【０２３５】
ｂ．キット
Ｔ１Ｒ遺伝子及びそれらの相同体は、化学感覚受容体細胞の同定に、法医学及び父性決定に、味覚変換の検討に有用なツールである。Ｔ１Ｒプローブ及びプライマーのようなＴ１Ｒ核酸と特異的にハイブリダイズするＴ１Ｒファミリーメンバー特異試薬並びにＴ１Ｒポリペプチドに特異的に結合するＴ１Ｒ特異試薬、例えば、Ｔ１Ｒ抗体は、味覚細胞発現及び味覚変換制御を検討するために用いられる。
【０２３６】
サンプル中のＴ１ＲファミリーメンバーのＤＮＡ及びＲＮＡの存在の有無についての核酸アッセイとしては、サザン分析、ノーザン分析、ドットブロット、ＲＮアーゼ保護、Ｓ１分析、ＰＣＲのような増幅法及びｉｎ  ｓｉｔｕハイブリダイゼーションのような当業者に知られている多くの技術がある。ｉｎ  ｓｉｔｕハイブリダイゼーションにおいては、例えば、後続の解釈と分析のために細胞形態を保存しつつ、細胞内でのハイブリダイゼーションに利用可能なように標的核酸をその細胞環境から放出させる。以下の論文にｉｎ  ｓｉｔｕハイブリダイゼーションの技術の概要が記載されている。Ｓｉｎｇｅｒ  ｅｔ  ａｌ．、Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ、第４巻、２３０２５０頁（１９８６年）、Ｈａａｓｅ  ｅｔ  ａｌ．、Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｖｉｒｏｌｏｇｙ、ＶＩＩ巻、１８９〜２２６頁（１９８４年）及びＮｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ：Ａ  Ｐｒａｃｔｉｃａｌ  Ａｐｐｒｏａｃｈ（Ｎａｍｅｓ  ｅｔ  ａｌ．編、１９８７年）。さらに、Ｔ１Ｒポリププチドは、上記の様々なイムノアッセイ技術により検出することができる。試験サンプルは、一般的に陽性対照（例えば、組換えＴ１Ｒポリペプチドを発現するサンプル）及び陰性対照と比較する。
【０２３７】
本発明はまた、Ｔ１Ｒファミリーメンバーの調節物質をスクリーニングするためのキットを提供する。そのようなキットは、容易に入手可能な材料及び試薬から調製することができる。例えば、そのようなキットは以下の材料のいずれか１つ又は複数を含めることができる。Ｔ１Ｒ核酸又はタンパク質、反応管及びＴ１Ｒ活性試験指示書。場合により、キットに、生物学的に活性なＴ１Ｒ受容体あるいは味覚受容体を含む生物学的に活性なＴ１Ｒを安定又は一時的に発現する細胞系を含めてよい。キットの所期のユーザ及びユーザの特定のニーズに応じて、本発明により様々なキット及び構成要素を調製することができる。
【０２３８】
例
本発明を上文で詳細に記述したが、好ましい実施形態を例示するために、以下の実施例を記載する。これらの実施例は、例示を目的とするものであって、本発明の範囲を限定するものではない。
【０２３９】
本明細書に示すタンパク質配列において、１文字コードＸ又はＸａａは２０種の一般的なアミノ酸残基のいずれかを意味する。本明細書に示すＤＮＡ配列において、１文字コードＮ又はｎは４種の一般的なヌクレオチド塩基Ａ、Ｔ、Ｃ又はＧのいずれかを意味する。
【実施例１】
【０２４０】
イントロンを含まないｈＴ１Ｒ発現構成体の生産
イントロンを含まないｈＴ１Ｒ発現構成体をｃＤＮＡ法及びゲノムＤＮＡ法の組合せによるクローンした。全長ｈＴ１Ｒ１発現構成体を得るために、クローンｈＴ１Ｒ１区分（受入番号ＡＬ１５９１７７）において同定された２つの５’コード化エキソンをＰＣＲオーバーラップにより結合させ、次いで、５’−切断型精巣ｃＤＮＡクローンに結合させた。ｈＴ１Ｒ２発現構成体を部分的に配列決定したｈＴ１Ｒ２ゲノム区分から得た。２つの欠落ｈＴ１Ｒ２  ５’エキソンを、対応するラットコード配列から得られたプローブを用いてクローンゲノム区分のショットガンライブラリーをスクリーニングすることにより同定した。次いで、コード化エキソンをＰＣＲオーバーラップにより結合させて、全長発現構成体を生成させた。ｈＴ１Ｒ３発現構成体は、配列決定済みｈＴ１Ｒ３ゲノム区分（受入番号ＡＬ１３９２８７）からＰＣＲオーバーラップにより得た。ラットＴ１Ｒ３を、ｈＴ１Ｒ３系縮重ＰＣＲにより得られたｒＴ１Ｒ３エキソン断片を用いてラット味覚組織由来のｃＤＮＡライブラリーから分離した。部分ｈＴ１Ｒ１  ｃＤＮＡ、ｒＴ１Ｒ２  ｃＤＮＡ及び部分ｈＴ１Ｒ２ゲノム配列は、Ｄｒ．Ｃｈａｒｌｅｓ  Ｚｕｋｅｒ（カリフォルニア大学、サンディエゴ）から入手した。
【０２４１】
上記のＴ１Ｒクローン配列並びに他の全長及び部分Ｔ１Ｒ配列の核酸及びアミノ酸配列を以下に示す。
配列番号４
アミノ酸配列ｒＴ１Ｒ３
2010189391.tif 000004
配列番号５
アミノ酸配列ｈＴ１Ｒ１
2010189391.tif 000005
配列番号６
アミノ酸配列ｈＴ１Ｒ２
2010189391.tif 000006
配列番号７
アミノ酸配列ｈＴ１Ｒ３
2010189391.tif 000007
配列番号８
核酸配列ｈＴ１Ｒ１
2010189391.tif 000008
2010189391.tif 000009
配列番号９
核酸配列ｈＴ１Ｒ３
2010189391.tif 000010
2010189391.tif 000011
2010189391.tif 000012
配列番号１０
核酸配列ｈＴ１Ｒ２
（配列表７）
2010189391.tif 000013
2010189391.tif 000014
配列番号１１
核酸配列ｒＴ１Ｒ３
2010189391.tif 000015
2010189391.tif 000016
2010189391.tif 000017
【０２４２】
また、魚Ｔ１Ｒｓの２つのオーソロガス対のＣ末端に対応する次の概念的翻訳が未公表ゲノム配列断片から得られ、提供されている。フグＴ１ＲＡが受入番号「ｓｃａｆｆｏｌｄ  １６４」から得られ、フグＴ１ＲＢが受入番号ＬＰＣ６１７１１から得られた。テトラドンＴ１ＲＡが受入番号ＡＬ２２６７３５から得られ、テトラドンＴ１ＲＢが受入番号ＡＬ２２２３８１から得られた。概念的翻訳（「Ｘ」）における不明確性は、データベース配列における不明確性に起因している。
配列番号１２
Ｔ１ＲＡフグ
2010189391.tif 000018
配列番号１３
Ｔ１ＲＡテトラドン
2010189391.tif 000019
配列番号１４
Ｔ１ＲＢフグ
2010189391.tif 000020
配列番号１５
Ｔ１ＲＢテトラドン
2010189391.tif 000021
【０２４３】
さらに、公表ドメインにおけるマウス及びラットＴ１Ｒｓ及び対立遺伝子の変異体に関する受入番号及び参考文献の引用を以下に示す。
ｒＴ１Ｒ１（受入番号ＡＡＤ１８０６９）（Ｈｏｏｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｃｅｌｌ、第９６巻、第４号、５４１〜５１頁（１９９９年））
ｒＴ１Ｒ２（受入番号ＡＡＤ１８０７０）（Ｈｏｏｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｃｅｌｌ、第９６巻、第４号、５４１〜５９頁（１９９９年））
ｍｒＴ１Ｒ１（受入番号ＡＡＫ３９４３７）；ｍＴ１Ｒ２（受入番号ＡＡＫ３９４３８）；ｍＴ１Ｒ３（受入番号ＡＡＫ５５５３７）（Ｍａｘ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎａｔ．Ｇｅｎｅｔ．第２８巻、第１号、５８〜６３頁（２００１年）；ｒＴ１Ｒ１（受入番号ＡＡＫ７０９２）（Ｌｉ  ｅｔ  ａｌ．、Ｍａｍｍ．Ｇｅｎｏｍｅ、第１２巻、第１号、１３〜１６頁（２００１年）；ｍＴ１Ｒ１（受入番号ＮＰ１１４０７３）；ｍＴＲ１（受入番号ＡＡＫ０７０９１）（Ｌｉ  ｅｔ  ａｌ．、Ｍａｍｍ．Ｇｅｎｏｍｅ、第１２巻、第１号、１３〜１６頁（２００１年）；ｒＴ１Ｒ２（受入番号ＡＡＤ１８０７０）（Ｈｏｏ  ｅｔ  ａｌ．、Ｃｅｌｌ、９６６４、５４１〜５５１頁（１９９９年）；ｍＴ１Ｒ２（受入番号ＮＰ１１４０７９）；ｍＴ１Ｒ３（受入番号ＡＡＫ３９４３６）；ｍＴ１Ｒ３（受入番号ＢＡＢ４７１８１）；（Ｋｉｔａｇａｗａ  ｅｔ  ａｌ．、Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍ．第２８３号、第１号、２３６〜４２頁（２００１年））；ｍＴ１Ｒ３（受入番号ＮＰ１１４０７８）；ｍＴ１Ｒ３（受入番号ＡＡＫ５５５３６）（Ｍａｘ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎａｔ．Ｇｅｎｅｔ．第２８巻、第１号、５８〜６３頁（２００１年）；及びｍＴ１Ｒ３（受入番号ＡＡＫ０１９３７）。
【実施例２】
【０２４４】
ヒト及びラットＴ１Ｒｓの配列アライメント
上記から選択したクローンＴ１Ｒ配列の対応するラットＴ１Ｒｓに対するアライメントを行った。図１に示すように、ヒトＴ１Ｒ１、ヒトＴ１Ｒ２及びヒトＴ１Ｒ３並びにラットＴ１Ｒ３の以前に記載したＴ１Ｒｓ（受入番号ＡＡＤ１８０６９を有するｒＴ１Ｒ１及び受入番号ＡＡＤ１８０７０を有するｒＴ１Ｒ２）、ラットｍＧｌｕＲ１メタボトロピックグルタミン酸受容体（受入番号Ｐ２３３８５）及びヒトカルシウム検出受容体（受入番号Ｐ４１１８０）に対するアライメントを行った。比較を明確にするために、ｍＧｌｕＲ１及びカルシウム検出受容体のＣ末端を切り離す。７種の可能な膜貫通セグメントを青色の枠で囲む。ｍＧｌｕＲ１結晶構造中のグルタミン酸塩側鎖カルブチレートに接触する残基は赤色の枠で囲み、グルタミン酸塩αアミノ酸部分に接触する残基は緑色の枠で囲む。サブユニット間ジスルフィドに基づく構成体に含まれているｍＧｌｕＲ１及びカルシウム検出受容体システイン残基は、紫色で囲む。これらのシステインは、Ｔ１Ｒ１及びＴ１Ｒ２には保存されていないが、潜在的に類似のＴ１Ｒ３システイン残基を含むアライメントの分解領域にあり、これも紫色で囲む。
【実施例３】
【０２４５】
ｈＴ１Ｒ２及びｈＴ1Ｒ3が味覚組織中の発現されることのＲＴ−ＰＣＲによる実証
図２に示すように、ｈＴ１Ｒ２及びｈＴ１Ｒ３は味覚組織において発現し、両遺伝子の発現は、切除されたヒト有郭乳頭のＲＴ−ＰＣＲにより検出することができる。
【実施例４】
【０２４６】
異種細胞中のＴ１Ｒｓの異種発現の方法
Ｇα１５を安定に発現するＨＥＫ−２９３誘導体（Ｃｈａｎｄｒａｄｈｅｋａｒ  ｅｔ  ａｌ．、Ｃｅｌｌ第１００巻、第６号、７０３〜１１頁（２０００年））を、１０％ＦＢＳ、ＭＥＭ非必須アミノ酸（Ｇｉｂｃｏ  ＢＲＬ）及び３μｇ／ｍｌブラスチシジンを補足したダルベッコ修正イーグル培地（ＤＭＥＭ、Ｇｉｂｃｏ  ＲＲＬ）中で３７℃で成長させ、維持した。カルシウム画像化実験のために、細胞を最初に２４ウエル組織培養プレートに播種し（約０．１×１０6細胞／ウエル）、Ｍｉｒｕｓ  Ｔｒａｎｓｌｔ−２９３（ＰａｎＶｅｒａ）を用いてリポフェクションによりトランスフェクトした。グルタミン酸及びグルコース誘発性脱感作を最小限にするために、トランスフェクションの約２４時間後に補足ＤＭＥＭを低グルコースＤＭＥＭ／ＧｌｕｔａＭＡＸ（Ｇｉｂｃｏ  ＢＲＬ）と交換した。２４時間後に細胞にダルベッコのＰＢＳ緩衝液（ＤＰＢＳ、Ｇｉｂｃｏ  ＢＲＬ）中３μＭのカルシウム色素Ｆｌｕｏ−４（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｐｒｏｂｅｓ）を室温で１．５時間負荷した。２５０μｌＤＰＢＳで置換した後、味覚刺激物質を補足した２００μｌＤＰＢＳを室温で添加して、刺激を行った。カルシウム動員をＩｍａｇｉｎｇ  Ｗｏｒｋｂｅｎｃｈ  ４．０ソフトウエア（Ａｘｏｎ）を用いてＡｘｉｏｖｅｒｔ  Ｓ１００ＴＶ顕微鏡（Ｚｅｉｓｓ）でモニターした。Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３及びＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３の応答は、著しく一過性であり、カルシウムの増加が１５秒以上持続することはまれであり、非同時性であった。したがって、応答細胞の数の時間的推移は比較的一定であり、したがって、一定の時点、一般的に刺激物質を添加してから３０秒後に応答細胞の数を手動で数えて、細胞応答を定量した。
【実施例５】
【０２４７】
ヒトＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３は甘味受容体として機能する
Ｇα１５を安定に発現するＨＥＫ細胞をヒトＴ１Ｒ２、Ｔ１Ｒ３及びＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３で一時的にトランスフェクトし、ショ糖の濃度の増加に応答しての細胞内カルシウムの増加についての測定を行った（図３ａ）。また、数種の甘味刺激物質についてＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３の用量応答を測定した（図３ｂ）。応答細胞の最大パーセンテージは、異なる甘味料で１０〜３０％の範囲の差があった。明確にするために、用量応答を応答細胞の最大パーセンテージに対して正規化した。図３の値は、４回の独立した応答の平均値±ｓ．ｅ．である。味覚試験により決定した精神物理学的味覚検出閾値をＸ軸に丸印で示す。グルマリン（ろ過済み１０ｇ／ｌ  Ｇｙｍｎｅｍａ  ｓｙｌｖｅｓｔｒｅ水性抽出物の５０倍希釈溶液）は、２５０ｍＭショ糖に対するＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３の応答を阻害したが、２０μＭイソプロテレノールに対する内因性β２−アドレナリン受容体の応答は阻害しなかった（図３（ｂ））。図３（ｃ）に種々の甘味料（ショ糖、アスパルテーム、Ｄ−トリプトファン及びサッカリン）に対するＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３同時発現細胞系の正規化応答を示す。
【実施例６】
【０２４８】
ラットＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３も甘味受容体として機能する
Ｇα１５を安定に発現するＨＥＫ細胞をｈＴ１Ｒ２／ｈＴ１Ｒ３、ｒＴ１Ｒ２／ｒＴ１Ｒ３、ｈＴ１Ｒ２／ｒＴ１Ｒ３及びｒＴ１Ｒ２／ｈＴ１Ｒ３で一時的にトランスフェクトした。次いで、これらのトランスフェクトした細胞の、３５０ｍＭショ糖、２５ｍＭトリプトファン、１５ｍＭアスパルテーム及び０．０５％のモネリンに応答しての細胞内カルシウムの増加についての測定を行った。ショ糖及びアスパルテームに関する結果は、図４に示すが、ｒＴ１Ｒ２／ｒＴ１Ｒ３も甘味受容体として機能することを示している。また、これらの結果は、Ｔ１Ｒ２がＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３リガンド特異性を制御している可能性があることを示唆している。
【実施例７】
【０２４９】
蛍光に基づく自動アッセイを用いたＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３の応答
Ｇα１５を安定に発現するＨＥＫ細胞をｈＴ１Ｒ２及びｈＴ１Ｒ３で一時的にトランスフェクトした。これらの細胞にカルシウム色素Ｆｌｕｏ−４を負荷し、甘味料に対するそれらの応答を蛍光プレートリーダーを用いて測定した。図５にｈＴ１Ｒ２／ｈＴ１Ｒ３を発現した細胞及びｈＴ１Ｒ３のみを発現した細胞（Ｊ１９−２２）のシクラメート（１２．５ｍＭ）応答を示す。得られた蛍光結果は、これらの味覚刺激物質に対する応答がｈＴ１Ｒ２／ｈＴ１Ｒ３を発現した細胞においてのみ起こることを示している。図６に正規化用量応答曲線を示す。その結果は、甘味刺激物質との用量特異的相互作用があることから、ｈＴ１Ｒ２とｈＴ１Ｒ３が一緒にヒト味覚受容体として機能していることを示している。特に、図６にショ糖、トルプトファン及び他の種々の市販甘味料に対する用量応答を示す。これらの結果は、アッセイにおいて得られた順位序列および閾値がヒト甘味味覚の値を密接に反映しているので、Ｔ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３がヒト甘味受容体であることを示している。
【実施例８】
【０２５０】
ｍＧｌｕＲ１のリガンド結合残基がＴ１Ｒ１に保存されている
図６に示すように、ｍＧｌｕＲ１の重要なリガンド結合残基がＴ１Ｒ１に保存されている。グルタミン酸塩とｍＧｌｕＲ１との相互作用が示され、いくつかの重要な残基が図１と同じ色スキームに従って強調されている。
【実施例９】
【０２５１】
ヒトＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３はうま味受容体として機能する
Ｇα１５を安定に発現するＨＥＫ細胞をヒトＴ１Ｒ１、Ｔ１Ｒ３及びＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３で一時的にトランスフェクトし、グルタミン酸塩の濃度の増加（図８（ａ））並びに０．５ｍＭグルタミン酸塩、０．２ｍＭ  ＩＭＰ及び０．５ｍＭグルタミン酸塩＋０．２ｍＭ  ＩＭＰ（図８（ｂ））に応答しての細胞内カルシウムの増加についての測定を行った。ヒトＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３の用量応答を０．２ｍＭ  ＩＭＰの存在下及び非存在下でグルタミン酸塩について測定した（図８（ｃ））。応答細胞の最大パーセンテージは、グルタミン酸塩に対して約５％であり、グルタミン酸塩＋ＩＭＰに対して約１０％であった。明確にするために、用量応答を応答細胞の最大パーセンテージに対して正規化した。値は、４回の独立した応答の平均値±ｓ．ｅ．である。味覚試験により決定した味覚検出閾値をＸ軸に丸印で示す。
【実施例１０】
【０２５２】
移入（ｅｘｐｏｒｔ）配列としてのＰＤＺＩＰ
６つの残基ＰＤＺＩＰ配列（ＳＶＳＴＷ（配列番号１））をｈＴ１Ｒ２のＣ末端に融合し、次いで、キメラ受容体（すなわち、ｈＴ１Ｒ２−ＰＤＺＩＰ）を免疫蛍光及びＦＡＣＳ走査データを用いてモニターした。図９Ａ及び図９Ｂに示すように、ＰＤＺＩＰ配列を含めることにより、ｈＴ１Ｒ２−ＰＤＺＩＰの表面発現がｈＴ１Ｒ２と比べて増加した。より具体的には、図９Ａに、ｍｙｃ標識ｈＴ１Ｒ２の免疫蛍光染色により、ＰＤＺＩＰが形質膜上のｈＴ１Ｒ２の量を有意に増加させたことが実証されたことを示す。図９Ｂに同じ結果を示しているＦＡＣＳ分析データを示す。ｍｙｃ標識ｈＴ１Ｒ２を発現した細胞を点線で、ｍｙｃ標識ｈＴ１Ｒ２−ＰＤＺＩＰを発現した細胞を実線で示す。特に、図１０ＡにＨＢＳ緩衝液中の未トランスフェクトＧα１５安定宿主細胞を示し、図１０Ｂに甘味料ｎｏ．５プール（ＨＢＳ緩衝液中で、サッカリン、シクラミン酸ナトリウムアセスルフェームＫ及びアスパルテーム−各２０ｍＭ）中のｈＴ１Ｒ２−ＰＤＺＩＰトランスフェクトＧα１５安定宿主細胞を示し、図１０Ｃに甘味料ｎｏ．５プール中のｈＴ１Ｒ３−ＰＤＺＩＰトランスフェクトＧα１５安定宿主細胞を示し、図１０Ｄに甘味料ｎｏ．５プール中のｈＴ１Ｒ２−ＰＤＺＩＰ／ｈＴ１Ｒ３−ＰＤＺＩＰコトランスフェクトＧα１５安定宿主細胞を示す。さらに、図１０Ｅ〜１０Ｈに、ショ糖−Ｅ：ＨＢＳ緩衝液中０ｍＭ；Ｆ：３０ｍＭ；Ｇ：６０ｍＭ及びＨ：２５０ｍＭに対するｈＴ１Ｒ２／ｈＴ１Ｒ３コトランスフェクトＧα１５安定宿主細胞の用量依存的応答を示す。図１０Ｉ〜１０Ｌに、個々の甘味料−Ｉ：アスパルテーム（１．５ｍＭ）；Ｊ：アセスルフェームＫ（１ｍＭ）；Ｋ：ネオテーム（２０ｍＭ）；Ｌ：シクラミン酸ナトリウム（２０ｍＭ）に対するｈＴ１Ｒ２／ｈＴ１Ｒ３コトランスフェクトＧα１５安定宿主細胞の応答を示す。図１０のカルシウム像により示されているように、ｈＴ１Ｒ２及びｈＴ１Ｒ３は両者とも甘味刺激物質による活性の刺激を必要とする。
【実施例１１】
【０２５３】
Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３又はＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３を安定に同時発現する細胞系の発生
それぞれｈＴ１Ｒ１又はｈＴ１Ｒ２発現構成体（Ｔ１Ｒ１の場合はプラスミドＳＡＶ２４８５、Ｔ１Ｒ２の場合はプラスミドＳＡＶ２４８６）及びｈＴ１Ｒ３（Ｔ１Ｒ３の場合はプラスミドＳＸＶ５５０）をそれぞれ含む線状化ＰＥＡＫ１０由来（Ｅｄｇｅ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）ベクター及びｐＣＤＮＡ３．１／ＺＥＯ由来（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）ベクターをＧα１５発現細胞系にトランスフェクトすることにより、ヒトＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３又はヒトＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３を安定に同時発現する細胞系を発生させた。特に、線状化ＳＡＶ２４８６及びＳＸＶ５５０を、Ｇα15を安定に発現するＡｕｒｏｒａ  ＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅのＨＥＫ−２９３細胞系に同時トランスフェクトすることにより、Ｔ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３安定細胞系を発生させた。線状化ＳＡＶ２４８５及びＳＸＶ５５０を、Ｇα15を安定に発現する同じＨＥＫ−２９３細胞系に同時トランスフェクトすることにより、Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３安定細胞系を発生させた。ＳＡＶ２２４８５／ＳＸＶ５５０及びＳＡＶ２４８６／ＳＸＶ５５０トランスフェクションの後に、プロマイシン耐性及びゼオシン耐性コロニーを選択し、拡大し、カルシウム画像化法により、甘味又はうま味刺激物質に対する応答を試験した。細胞を、ＧｌｕｔａＭＡＸ、１０％透析済みＦＢＳ及び０．００３ｍｇ／ｍｌブラスチシジンを補足した低グルコースＤＭＥＭ中３７℃で０．０００５ｍｇ／ｍｌプロマイシン（ＣＡＬＢＩＯＣＨＥＭ）及び０．１ｍｇ／ｍｌゼオシン（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）で選択した。耐性コロニーを拡大し、甘味刺激物質に対するそれらの応答を蛍光顕微鏡により評価した。ＶＩＰＲ−ＩＩ機器（Ａｕｒｏｒａ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）を用いた自動蛍光分析画像化法のために、Ｔ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３安定細胞を最初に９６ウエルプレート（約１００，０００細胞／ウエル）に播種した。２４時間後に、細胞にＰＢＳ中０．００５ｍＭのカルシウム色素ｆｌｕｏ−３−ＡＭ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｐｒｏｂｅｓ）を室温で１時間負荷した。７０μｌＰＢＳで置換した後、味覚刺激物質を添加した７０μｌＰＢＳを室温で添加して、刺激を行った。化合物の添加の２０〜３０秒後の蛍光（４８０ｎｍ励起、５３５ｎｍ発光）応答を平均し、化合物添加前に測定したバックグラウンド蛍光で補正し、０．００１ｍＭイオノマイシン（ＣＡＬＢＩＯＣＨＥＭ）（カルシウムイオノフォア）に対する応答に対して正規化した。
【０２５４】
これらの細胞系を甘味又はうま味刺激物質に曝露させたとき、活性クローンについては、一般的に８０〜１００％の細胞が味覚刺激物質に対して応答したことが認められた。意外にも、個々の細胞の応答の大きさは一時的にトランスフェクトした細胞のそれよりも著しく大きかった。
【０２５５】
この所見に基づいて、本願発明者らは、上記のようなＡｕｒｏｒａ  ＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓのＶＩＰＲ−ＩＩ機器を用いた自動蛍光分析画像化法によりＴ１Ｒ安定細胞系の活性を試験した。２つのＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３及び１つのＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３細胞系の応答をそれぞれ図１１及び１２に示す。
【０２５６】
注目すべきことに、応答細胞数の増加と応答の大きさの増加とがあいまって、一時的にトランスフェクトした細胞と比較して１０倍以上の活性の増加がもたらされた。（比較すると、Ｔ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３により一時的にトランスフェクトした細胞のイオノマイシン応答の割合は、最適条件化で約５％であった。）さらに、安定に発現したヒトＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３及びＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３について得られた用量応答は、ヒト味覚検出閾値と相関していた。これらの安定細胞系が頑強なＴ１Ｒ活性を有していることから、それらが、甘味又はうま味受容体を調節し、したがって、甘味又はうま味を調節、増強、阻害又は模擬する化合物、例えば、小分子を特定するための、化学ライブラリーの高処理能力スクリーニングにおける使用に十分に適していることが示唆される。
【実施例１２】
【０２５７】
うま味刺激物質に選択的に応答するＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３を誘導により同時発現する細胞系の発生
うま味受容体を安定に発現したＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３  ＨＥＫ２９３細胞系は、一時的にトランスフェクトした細胞と比較して、活性の頑強な向上を示す。しかし、短所は、細胞増殖中に急速に活性を失うことがあり得ることである。
【０２５８】
また、これらの所見は、（ｉ）Ｔ１Ｒ１／ＴＲ１Ｒ３がうま味受容体であり、（ｉｉ）Ｔ１Ｒ１／ＴＲ１Ｒ３を頑強に発現する細胞系、好ましくは、安定及び／又は誘導性Ｔ１Ｒ１／ＴＲ１Ｒ３細胞系をうま味の新規の調節物質を特定するために、アッセイ、好ましくは、化学ライブラリーの高処理能力スクリーニングに用いることができるという発明者らの仮説を支持している。うま味を強化する調節物質を用いてもよい。
【０２５９】
Ｔ１Ｒ１／ＴＲ１Ｒ３安定細胞系の不安定性を克服するために、ＨＥＫ−Ｇα15細胞をＧｅｎｅＳｗｉｔｃｈシステム（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて誘導によりＴ１Ｒ１／ＴＲ１Ｒ３を発現するように工学的に処理した。ヒトＴ１Ｒ１及びＴ１Ｒ３のｐＧｅｎｅ由来ゼオシン耐性発現ベクター（Ｔ１Ｒ１についてはプラスミドＳＸＶ６０３、Ｔ１Ｒ３についてはプラスミドＳＸＶ６１１）並びにＧｅｎｅＳｗｉｔｃｈタンパク質を運ぶプロマイシン耐性ｐＳｗｉｔｃｈ由来ベクター（プラスミドＳＸＶ６２８）を線状化し、ＨＥＫ−Ｇα15細胞系にコトイランスフェクトした。ゼオシン耐性及びプロマイシン耐性コロニーを選択し、拡大し、可変の量のミフェプリストンで誘導し、うま味刺激物質に対する応答についてカルシウム画像化法を用いて試験した。
【０２６０】
Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３の誘導性発現は、頑強な活性をもたらした。例えば、誘導細胞の約８０％がＬ−グルタミン酸に応答したが、一時的にトランスフェクトした細胞は１０％応答した。より具体的には、ヒトＴ１Ｒ１及びヒトＴ１Ｒ３を発現するｐＧｅｎｅ由来ゼオシン耐性発現ベクター並びにＧｅｎｅＳｗｉｔｃｈタンパク質を運ぶプロマイシン耐性ｐＳｗｉｔｃｈ由来ベクターを線状化し、Ｇα15細胞系にコトイランスフェクトした。細胞を、ＧｌｕｔａＭＡＸ、１０％透析済みＦＢＳ及び３μｇ／ｍｌブラスチシジンを補足したダルベッコ修正イーグル培地中３７℃で０．５μｇ／ｍｌプロマイシン（ＣＡＬＢＩＯＣＨＥＭ）及び１００μｇ／ｍｌゼオシン（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）で選択した。耐性コロニーを拡大し、１０-10Ｍミフェプリストンによる誘導の後にうま味刺激に対するそれらの応答をＬｉ  ｅｔ  ａｌ．、ＰＮＡＳ、第９９巻、７号、４６９２〜４６９６頁（２００２）に従って蛍光顕微鏡により測定した。
【０２６１】
ＦＬＩＰＲ機器（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｄｅｖｉｃｅ）を用いた自動蛍光分析画像化法のために、１クローン（クローン１−１７と称した）からの細胞を１０-10Ｍミフェプリストンの存在下で９６ウエルプレート（約８００，０００細胞／ウエル）に播種し、４８時間インキュベートした。次いで、細胞にＰＢＳ中３μＭのカルシウム色素ｆｌｕｏ−４−ＡＭ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｐｒｏｂｅｓ）を室温で１．５時間負荷した。
【０２６２】
５０μｌＰＢＳで置換した後、種々の味覚刺激物質を補足した５０μｌＰＢＳを室温で添加して、刺激を行った。応答細胞を個別に数えることによりＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３受容体活性を定量することが必要であった（Ｌｉ  ｅｔ  ａｌ．、ＰＮＡＳ第９９、７号、４６９２〜４６９６頁（２００２年））（受容体の活性が低いため）以前の一時的Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３うま味受容体発現システムと対照的に、対象の誘導発現システムはクローン１−１７に実質的に高い活性をもたらしたため、画像化細胞の視野にわたり最大蛍光増加（４８０ｎｍ励起、５３５ｎｍ発光）を合計して測定することにより受容体活性を定量することが可能であった。４回の独立した測定における最大蛍光を平均し、化合物添加前に測定したバックグラウンド蛍光で補正し、０．００２ｍＭイオノマイシン（ＣＡＬＢＩＯＣＨＥＭ）に対する応答に対して正規化した。
【０２６３】
これらの結果を図１３に示す。特に、図１３に０．２ｍＭ  ＩＭＰの存在下及び非存在下でＬ−グルタミン酸塩について測定した用量応答曲線を示す。図において、各値は、４回の独立した測定を合わせた最大蛍光の平均値（バックグラウンド蛍光で補正）である。これらの用量応答曲線は、Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３で一時的にトランスフェクトした細胞について測定したものに対応している。
【０２６４】
種々のＬ−アミノ酸を用いてスクリーニングすることにより、うま味Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３味覚受容体の選択性も評価した。得られた結果は、Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３がうま味Ｌ−アミノ酸（Ｌ−グルタミン酸及びＬ−アスパラギン酸）により選択的に活性化されることを示している。
【０２６５】
種々のＬ−アミノ酸の存在下で試験した１−１７クローンの応答の実験結果を図１４及び図１５に示す。図１４に１−１７細胞系を１ｍＭ  ＩＭＰの存在下で１０ｍＭの濃度の種々のＬ−アミノ酸と接触させた実験の結果を示す。
【０２６６】
図１５に０．２ｍＭ  ＩＭＰの存在下で測定した活性アミノ酸の用量応答曲線を示す。各値は、４回の独立した測定の平均値である。
【０２６７】
これらの実験で得られた結果は、うま味刺激物質に対するうま味受容体の特異性及び選択性を裏づけている。うま味刺激物質Ｌ−グルタミン酸塩及びＬ−アスパラギン酸塩は種々の濃度でＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３受容体を有意に活性化した（図１４及び１５）が、ヒトＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３受容体を活性化した他のＬ−アミノ酸は受容体をわずかに、しかもより高い濃度で活性化したにすぎなかった。
【０２６８】
したがって、これらの結果は、うま味刺激物質に対するＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３受容体の選択性と、うま味受容体を活性化する化合物、例えば、Ｌ−グルタミン酸塩又はＬ−アスパラギン酸塩、あるいは、うま味受容体を活性化するＬ−グルタミン酸塩の活性を増強する化合物、例えば、５’−ＩＭＰ又は５’−ＧＭＰ、あるいは、Ｌ−グルタミン酸塩及びＬ−アスパラギン酸塩のようなうま味刺激物質によるうま味受容体の活性化を阻害する化合物を特定するための自動蛍光画像化機器を用いる高処理能力アッセイ用としてのこの誘導性安定発現システムの適合性を裏づけている。
【０２６９】
これらのアッセイを用いて特定された化合物は、うま味刺激物質を模擬又は阻害するための食物及び飲料組成物中の調味料としての適用の可能性を有する。
【実施例１３】
【０２７０】
ラクティソールはヒトＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３及びＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３の受容体活性並びに甘味及びうま味味覚を阻害する
アルキルカルボン酸であるラクティソールは選択的な甘味阻害物質であると考えられていた（例えば、Ｌｉｎｄｌｅｙ（１９８６年）米国特許第４，５６７，０５３号及びＳｃｈｉｆｆｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｃｈｅｍ  Ｓｅｎｓｅｓ第２４巻、４３９〜４４７頁（１９９９年）を参照）。Ｔ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３をトランスフェクトしたＨＥＫ−Ｇα15細胞の種々の濃度のラクティソールの存在下での１５０ｍＭショ糖に対する応答を測定した。ラクティソールは、ヒトＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３の活性を阻害し、ＩＣ50は２４μＭである。
【０２７１】
Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３うま味及びＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３甘味受容体は、共通のサブユニットを共有している。したがって、Ｔ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３甘味受容体を阻害するラクティソールがＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３うま味受容体に対して同様な効果を有する可能性があるという仮説が立てられた。本願発明者らは、１０ｍＭ  Ｌ−グルタミン酸に対するヒトＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３の応答に対するラクティソールの影響を試験した。Ｔ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３甘味受容体の場合と同様に、ラクティソールは、Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３の活性を阻害し、ＩＣ50は１６５μＭであった。ムスカリン様アセチルコリン受容体はラクティソールによって阻害されないため、ラクティソール阻害は、例えば、Ｇα15媒介性シグナル伝達の非特異的阻害ではなく、Ｔ１Ｒ受容体における拮抗作用を反映している。
【０２７２】
本願発明者らは次に、ヒトうま味に対するラクティソールの効果を評価した。１及び２ｍＭラクティソールの存在下での味覚閾値を、Ｓｃｈｉｆｆｍａｎら（Ｃｈｅｍ．Ｓｅｎｓｅｓ、第２４巻、４３９〜４４７頁（１８９８年））の方法に従って、０．２ｍＭ  ＩＭＰの存在下又は非存在下でのうま味刺激物質Ｌ−グルタミン酸塩、甘味刺激物質ショ糖及びＤ−トリプトファン並びに塩味刺激物質塩化ナトリウムについて測定した。ミリモル濃度のラクティソールは、甘味及びうま味刺激物質については検出閾値を劇的に増加させたが、塩味刺激物質については増加させなかった。これらの結果を図１６に示す。
【０２７３】
結論すると、（ｉ）これらの所見はＴ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３が唯一のうま味受容体であるという発明者らの仮説をさらに支持しており、（ｉｉ）Ｔ１Ｒ１／Ｔ１Ｒ３及びＴ１Ｒ２／Ｔ１Ｒ３受容体は構造的に関連するラクティソールドメインを共有している可能性がある。
【０２７４】
前記の詳細な説明には本発明のいくつかの実施形態が記載されているが、上記の記述は例示であるにすぎず、開示された発明を限定するものではないことを理解すべきである。本発明は、特許請求の範囲によってのみ限定されるものである。
【図１】
2010189391.tif 000022
【図２】
2010189391.tif 000023
【図３】
2010189391.tif 000024
【図４】
2010189391.tif 000025
【図５】
2010189391.tif 000026
【図６】
2010189391.tif 000027
【図７】
2010189391.tif 000028
【図８】
2010189391.tif 000029
【図９】
2010189391.tif 000030
【図１０】
2010189391.tif 000031
【図１１】
2010189391.tif 000032
【図１２】
2010189391.tif 000033
【図１３】
2010189391.tif 000034
【図１４】
2010189391.tif 000035
【図１５】
2010189391.tif 000036
【図１６】
2010189391.tif 000037
【配列表】
2010189391000001.app