(57)【要約】  【課題】煩雑な前処理操作を要さず、非特異的反応を抑制可能な免疫分析方法を提供することを目的とする。  【解決手段】本発明の免疫分析方法は、検出部を有し、かつ前記検出部に固定化抗体が固定された多孔質体を含む検体分析用具を用い、試料中の分析対象物である抗原と、前記抗原に対する標識化抗体とを、前記検出部に導入することにより、前記抗原を介して前記標識化抗体と前記固定化抗体とが複合体を形成し、前記複合体における前記標識化抗体の前記標識を検出する免疫分析方法であって、前記試料を前記検出部に導入する前に、前記試料とγ−グロブリンとを接触させることを特徴とする。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
検出部を有し、かつ前記検出部に固定化抗体が固定された多孔質体を含む検体分析用具を用い、
検体中の分析対象物である抗原と、前記抗原に対する標識化抗体とを、前記検出部に導入することにより、前記抗原を介して前記標識化抗体と前記固定化抗体とが複合体を形成し、前記複合体における前記標識化抗体の前記標識を検出する免疫分析方法であって、
前記検体を前記検出部に導入する前に、前記検体とγ−グロブリンとを接触させることを特徴とする免疫分析方法。
【請求項２】
前記検体分析用具が、さらに、前記検体を供給するための検体供給部と、前記標識化抗体を保持する標識化抗体保持部とを有するラテラルフロー型の検体分析用具であり、
前記検体分析用具において、
前記検体供給部に保持された前記検体が、前記標識化抗体保持部に移動し、
前記標識化抗体と前記検体が、前記検出部に移動し、
前記γ−グロブリンが、前記検体供給部および前記標識化抗体保持部の少なくとも一方に配置されている請求項１記載の免疫分析方法。
【請求項３】
前記γ−グロブリンを含む液状試料を、前記検体供給部および前記標識化抗体保持部の少なくとも一方に配置し、
前記液状試料中の前記γ−グロブリン濃度を、０．１ｍｇ／ｍＬ〜２ｍｇ／ｍＬの範囲とする請求項２記載の免疫分析方法。
【請求項４】
前記検体分析用具が、フロースルー型の検体分析用具であり、前記検体と前記標識化抗体の混合前もしくは混合時に、前記検体と前記γ−グロブリンとを接触させる請求項１記載の免疫分析方法。
【請求項５】
前記γ−グロブリンを含む液状試料を、前記検出部に導入し、
前記液状試料中の前記γ−グロブリン濃度を、０．１ｍｇ／ｍＬ〜２ｍｇ／ｍＬの範囲とする請求項４記載の免疫分析方法。
【請求項６】
前記標識化抗体の標識が、着色不溶性担体粒子および酵素のいずれか一方である請求項１から５のいずれか一項に記載の免疫分析方法。
【請求項７】
前記着色不溶性担体粒子が、着色ラテックス粒子および金属コロイド粒子のいずれか一方である請求項６記載の免疫分析方法。
【請求項８】
前記検出部に、前記固定化抗体に代えて、固定化抗原が固定化され、
前記検体中の前記分析対象物が、前記抗原に代えて、抗体であり、
前記抗原に対する前記標識化抗体に代えて、前記抗体に対する標識化抗原を用い、
前記抗体を介して前記標識化抗原と前記固定化抗原とが前記複合体を形成し、
前記複合体における前記標識化抗原の前記標識を検出する請求項１から７のいずれか一項に記載の免疫分析方法。
【請求項９】
請求項１記載の免疫分析方法に用いる検体分析用具であって、
前記検出部を有し、かつ前記検出部に前記固定化抗体が固定された多孔質体を含む検体分析用具。
【請求項１０】
前記検体分析用具が、さらに、前記検体を供給するための検体供給部と、前記標識化抗体を保持する標識化抗体保持部とを有するラテラルフロー型の検体分析用具であり、
前記検体分析用具において、
前記検体供給部に保持された前記検体が、前記標識化抗体保持部に移動し、
前記標識化抗体と前記検体が、前記検出部に移動し、
前記γ−グロブリンが、前記検体供給部および前記標識化抗体保持部の少なくとも一方に配置されている請求項９記載の検体分析用具。
【請求項１１】
前記γ−グロブリンを含む液状試料を、前記検体供給部および前記標識化抗体保持部の少なくとも一方に配置し、
前記液状試料中の前記γ−グロブリン濃度が、０．１ｍｇ／ｍＬ〜２ｍｇ／ｍＬの範囲である請求項１０記載の検体分析用具。
【請求項１２】
フロースルー型の検体分析用具であり、前記検体と前記標識化抗体の混合前もしくは混合時に、前記検体と前記γ−グロブリンとを接触させる請求項９記載の検体分析用具。
【請求項１３】
前記γ−グロブリンを含む液状試料が、前記検出部に導入され、
前記液状試料中の前記γ−グロブリン濃度が、０．１ｍｇ／ｍＬ〜２ｍｇ／ｍＬの範囲である請求項１２記載の検体分析用具。
【請求項１４】
前記標識化抗体の標識が、着色不溶性担体粒子および酵素のいずれか一方である請求項９から１３のいずれか一項に記載の検体分析用具。
【請求項１５】
前記着色不溶性担体粒子が、着色ラテックス粒子および金属コロイド粒子のいずれか一方である請求項１４記載の検体分析用具。
【請求項１６】
前記検出部に、前記固定化抗体に代えて、固定化抗原が固定化され、
前記検体中の分析対象物が、前記抗原に代えて、抗体であり、
前記抗原に対する前記標識化抗体に代えて、前記抗体に対する標識化抗原を用い、
前記抗体を介して前記標識化抗原と前記固定化抗原とが複合体を形成し、
前記複合体における前記標識化抗原の前記標識を検出する請求項９から１５のいずれか一項に記載の検体分析用具。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、免疫分析方法およびそれに用いる検体分析用具に関する。
【背景技術】
【０００２】
近年、感染症の診断において、細菌やウイルス等の病原体の抗原を、免疫反応を利用して検出する検体分析用具が普及している。前記検体分析用具では、簡便かつ迅速に測定可能なことから、イムノクロマトグラフィー法が汎用されている。前記イムノクロマトグラフィー法による検体分析用具の測定原理は、つぎのとおりである。すなわち、まず、鼻腔等から検体を採取し、前記検体を含む試料を準備する。そして、多孔質膜に固定化抗体が固定された検出部を有する検体分析用具を準備する。この検体分析用具に、着色粒子等で標識した標識化抗体と、前記試料とを加える。前記試料中に分析対象物である抗原が存在すると、前記抗原を介して、前記標識化抗体と前記固定化抗体とが複合体を形成し、前記着色粒子等の標識により多孔質膜上の検出部が着色する。前記標識としては、着色粒子の他に、酵素と、酵素反応により着色する基質との組み合わせもある。
【０００３】
しかし、前記イムノクロマトグラフィー法による検体分析用具を用いて検体を分析すると、検体中に抗原が存在しないにもかかわらず、非特異的結合反応が観察されることがある。特に、検体が、鼻汁や咽頭検体等のように粘稠性を有する場合に、前記非特異的結合反応は顕著である。この原因として、粘稠性検体に含まれるムチンが、検体を展開する多孔質膜の孔を物理的に塞ぎ、さらに、前記検体中に含まれる剥離した上皮細胞等の細胞を凝集させて前記多孔質膜孔を閉塞するため、検体中の抗原が、多孔質膜内を毛細管現象により移動できなくなることを挙げる報告もある（例えば、特許文献１）。この非特異的結合反応は、誤診につながる可能性があり、検体分析用具に対する分析精度の信頼性にも影響する。そこで、検体を、検体分析用具適用前に前処理する、非特異的反応の抑制方法（例えば、特許文献１および２等）が提案されている。しかし、前処理による非特異的反応の抑制方法は、ろ過操作等を要するため、測定操作が煩雑になり、検体分析用具の利便性が損なわれる。
【０００４】
【特許文献１】特開２００５−２４３２３号公報
【特許文献２】特開２００５−２４３２４号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
そこで、本発明は、煩雑な前処理操作を要さず、簡便に非特異的反応を抑制可能な、検体分析用具を用いた免疫分析方法およびこの免疫分析方法に用いる検体分析用具を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明の免疫分析方法は、検出部を有し、かつ前記検出部に固定化抗体が固定された多孔質体を含む検体分析用具を用い、
検体中の分析対象物である抗原と、前記抗原に対する標識化抗体とを、前記検出部に導入することにより、前記抗原を介して前記標識化抗体と前記固定化抗体とが複合体を形成し、前記複合体における前記標識化抗体の前記標識を検出する免疫分析方法であって、
前記検体を前記検出部に導入する前に、前記検体とγ−グロブリンとを接触させることを特徴とする。
【発明の効果】
【０００７】
本発明者は、検体分析用具を用いた免疫分析方法における非特異的反応の抑制を目的として、一連の研究を重ねた。その中で、検体が固定化抗体と接触するまでに、検体をγ−グロブリンに接触させることにより、前記非特異的反応が抑制されることを見出し、本発明に到達した。本発明の免疫分析方法および検体分析用具によれば、非特異的反応を、煩雑な前処理無しで抑制することが可能であり、分析の信頼性が向上する。本発明による前記非特異的反応の抑制効果は、検体が粘稠性を有する場合に、特に有効である。また、本発明は、検体分析用具を用いるため利便性が高い。
【発明を実施するための最良の形態】
【０００８】
本発明において、前記検体が前記固定化抗体と接触する前としては、特に限定されず、例えば、前記検体と前記標識化抗体との接触前、前記検体と前記標識化抗体との接触時、前記検体の前記標識化抗体との接触後から前記固定化抗体との接触前までの間等が挙げられる。
【０００９】
本発明の免疫分析方法において、前記検体分析用具が、さらに、前記検体を供給するための検体供給部と、前記標識化抗体を保持する標識化抗体保持部とを有するラテラルフロー型の検体分析用具であり、
前記検体分析用具において、
前記検体供給部に保持された前記検体が、前記標識化抗体保持部に移動し、
前記標識化抗体と前記検体が、前記検出部に移動し、
前記γ−グロブリンが、前記検体供給部および前記標識化抗体保持部の少なくとも一方に配置されていてもよい。
【００１０】
本発明の免疫分析方法において、前記γ−グロブリンを含む液状試料を、前記検体供給部および前記標識化抗体保持部の少なくとも一方に配置し、
前記液状試料中の前記γ−グロブリンの濃度を、０．１ｍｇ／ｍＬ〜２ｍｇ／ｍＬの範囲としてもよい。
【００１１】
本発明の免疫分析方法において、前記多孔質体が、多孔質膜であり、前記検体供給部が、サンプルパッドであり、前記標識化抗体保持部が、コンジュゲートパッドであってもよい。本発明の免疫分析方法において、例えば、前記γ−グロブリンを含む液状試料を前記サンプルパッドおよび前記コンジュゲートパッドの少なくとも一方に含浸させることにより、前記γ−グロブリンを、前記検体供給部および前記標識化抗体保持部の少なくとも一方に配置してもよい。
【００１２】
本発明の免疫分析方法において、前記検体分析用具が、フロースルー型の検体分析用具であり、前記検体と前記標識化抗体の混合前もしくは混合時に、前記検体と前記γ−グロブリンとを接触させてもよい。
【００１３】
本発明の免疫分析方法において、前記γ−グロブリンを含む液状試料を、前記検出部に導入し、
前記液状試料中の前記γ−グロブリンの濃度を、０．１ｍｇ／ｍＬ〜２ｍｇ／ｍＬの範囲としてもよい。
【００１４】
本発明の免疫分析方法において、前記標識化抗体の標識が、着色不溶性担体粒子および酵素のいずれか一方であってもよい。
【００１５】
本発明の免疫分析方法において、前記着色不溶性担体粒子が、着色ラテックス粒子および金属コロイド粒子のいずれか一方であってもよい。
【００１６】
本発明の免疫分析方法において、前記検出部に、前記固定化抗体に代えて、固定化抗原が固定化され、
前記検体中の前記分析対象物が、前記抗原に代えて、抗体であり、
前記抗原に対する前記標識化抗体に代えて、前記抗体に対する標識化抗原を用い、
前記抗体を介して前記標識化抗原と前記固定化抗原とが前記複合体を形成し、前記複合体における前記標識化抗体の前記標識を検出してもよい。
【００１７】
本発明の検体分析用具は、前記本発明の免疫分析方法に用いる検体分析用具であって、
前記検出部を有し、かつ前記検出部に前記固定化抗体が固定された多孔質体を含むのが好ましい。
【００１８】
本発明の検体分析用具は、さらに、前記検体を供給するための検体供給部と、前記標識化抗体を保持する標識化抗体保持部とを有するラテラルフロー型の検体分析用具であり、
前記検体分析用具において、
前記検体供給部に保持された前記検体が、前記標識化抗体保持部に移動し、
前記標識化抗体と前記検体が、前記検出部に移動し、
前記γ−グロブリンが、前記検体供給部および前記標識化抗体保持部の少なくとも一方に配置されていてもよい。
【００１９】
前記ラテラルフロー型の検体分析用具において、前記γ−グロブリンを含む液状試料を、前記検体供給部および前記標識化抗体保持部の少なくとも一方に配置し、
前記液状試料中の前記γ−グロブリンの濃度が、０．１ｍｇ／ｍＬ〜２ｍｇ／ｍＬの範囲であってもよい。
【００２０】
前記ラテラルフロー型の検体分析用具において、前記多孔質体が、多孔質膜であり、前記検体供給部が、サンプルパッドであり、前記標識化抗体保持部が、コンジュゲートパッドであってもよい。前記ラテラルフロー型の検体分析用具において、例えば、前記γ−グロブリンを含む液状試料を、前記サンプルパッドおよび前記コンジュゲートパッドの少なくとも一方に含浸させることで、前記γ−グロブリンが、前記検体供給部および前記標識化抗体保持部の少なくとも一方に配置されてもよい。
【００２１】
本発明の検体分析用具は、フロースルー型の検体分析用具であってもよい。この場合、前記検体と前記標識化抗体の混合前もしくは混合時に、前記検体と前記γ−グロブリンとを接触させてもよい。
【００２２】
前記フロースルー型の検体分析用具において、前記γ−グロブリンを含む液状試料が、前記検出部に導入され、
前記液状試料中の前記γ−グロブリンの濃度が、０．１ｍｇ／ｍＬ〜２ｍｇ／ｍＬの範囲であってもよい。
【００２３】
本発明の検体分析用具において、前記標識化抗体の標識が、着色不溶性担体粒子および酵素のいずれか一方であってもよい。
【００２４】
本発明の検体分析用具において、前記着色不溶性担体粒子が、着色ラテックス粒子および金属コロイド粒子のいずれか一方であってもよい。
【００２５】
本発明の検体分析用具は、前記検出部に、前記固定化抗体に代えて、固定化抗原が固定化され、
前記検体中の分析対象物が、前記抗原に代えて、抗体であり、
前記抗原に対する前記標識化抗体に代えて、前記抗体に対する標識化抗原を用い、
前記抗体を介して前記標識化抗原と前記固定化抗原とが複合体を形成し、前記複合体における前記標識化抗体の前記標識を検出する検体分析用具であってもよい。
【００２６】
つぎに、本発明について例を挙げて詳細に説明する。
【００２７】
本発明において、前記γ−グロブリンは、例えば、マウス、ウサギ、ウシ、ブタ、ウマ、ヒツジ、ヤギ等の哺乳動物、ニワトリ等の鳥類、ヒト等の動物種由来のものでもよく、特に制限されない。前記γ−グロブリンとしては、特に限定されないが、例えば、ＩｇＧ、ＩｇＡ、ＩｇＭ、ＩｇＤ、ＩｇＥおよびＩｇＹ等の免疫グロブリン、Ｓ−アルキル化γ−グロブリン、Ｓ−スルホ化γグロブリン等の科学的に修飾されたγ−グロブリン誘導体等が挙げられ、好ましくは、ＩｇＧである。前記γ−グロブリンは、例えば、塩析、イオン交換クロマトグラフィおよびゲルろ過等の工程により調製されたものでもよく、あるいは市販品でもよく、特に制限されない。前記γ−グロブリンの具体例としては、例えば、前記動物の血漿の硫安分画から、ＤＥＡＥイオン交換クロマトグラフィにより回収したグロブリン分画や、さらに、このグロブリン分画から、プロテインＡまたはプロテインＧによるアフィニティクロマトグラフィにより精製したＩｇＧ等が挙げられる。
【００２８】
本発明において、前記γ−グロブリンは、例えば、前記検体分析用具の作製または前記検体分析用具を用いた分析において、前記検体分析用具に導入される液状試料に含まれていてもよい。前記液状試料としては、特に限定されないが、例えば、前記検体の抽出液（希釈液）、前記標識化抗体を含む抗体液、前記検体供給部に含浸させる含浸液等が挙げられる。前記抽出液は、例えば、検体分析用具の前記検体供給部、前記多孔質体等に含浸させてもよい。また、本発明において、例えば、前記抗体液を標識化抗体保持部形成材料に含浸させ、それを乾燥させて、前記標識化抗体保持部を作製してもよい。そして、本発明において、例えば、前記含浸液を検体供給部形成材料に含浸させ、それを乾燥させて、前記検体供給部を作製してもよい。
【００２９】
前記液状試料中の前記γ−グロブリン濃度は、特に限定されないが、例えば、０．１ｍｇ／ｍＬ〜２ｍｇ／ｍＬの範囲である。前記濃度を前記範囲とすれば、非特異的反応の抑制効果を向上させ、かつ分析感度を低下させることなく、高精度に分析可能である。前記濃度は、好ましくは、０．２ｍｇ／ｍＬ〜１．５ｍｇ／ｍＬの範囲であり、より好ましくは、０．５ｍｇ／ｍＬ〜１．０ｍｇ／ｍＬの範囲である。
【００３０】
前記液状試料は、緩衝液、界面活性剤、抗菌剤等を含んでいてもよい。前記緩衝液としては、特に制限されず、例えば、トリス緩衝液、リン酸緩衝液、酢酸緩衝液、ホウ酸緩衝液等が挙げられる。前記緩衝液のｐＨは、特に限定されないが、例えば、ｐＨ４〜１０の範囲であり、好ましくは、ｐＨ６〜９の範囲である。前記界面活性剤としては、特に制限されず、例えば、陰イオン性界面活性剤、非イオン性界面活性剤、両性界面活性剤等が挙げられる。前記抗菌剤としては、特に限定されず、例えば、アジ化ナトリウム、５−クロロ−２−メチル−４−イソチアゾリン−３−オン、２−メチル−４−イソチアゾリン−３−オン等が挙げられる。
【００３１】
本発明において、前記検体としては、特に限定されず、例えば、鼻腔吸引液、鼻腔洗浄液、鼻腔ぬぐい液、鼻汁、咽頭ぬぐい液、含漱液、唾液、全血、血清、血漿、汗、尿等の生体試料等が挙げられ、好ましくは、粘稠性を有する検体である。前記粘稠性を有する検体としては、特に限定されないが、例えば、鼻腔吸引液、鼻腔洗浄液、鼻腔ぬぐい液、鼻汁、咽頭ぬぐい液、含漱液、唾液等が挙げられる。前記検体は、液状のものに限られず、固体状のものを緩衝液等に溶解したものでもよく、例えば、細胞、糞便等の生体試料、動物および植物等の食物や加工食品等の食品等が挙げられる。前記緩衝液としては、特に限定されないが、例えば、前述の緩衝液等が挙げられる。
【００３２】
本発明において、前記検体中の前記分析対象物としては、例えば、Ａ型インフルエンザウイルス、Ｂ型インフルエンザウイルス、Ｃ型インフルエンザウイルス、アデノウイルス、ＲＳウイルス、コロナウイルス、アストロウイルス、ノロウイルス、麻疹ウイルス、ロタウイルス、ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）、ヒトＴ細胞白血病ウイルス（ＨＴＬＶ−１）、Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）、Ｃ型肝炎ウイルス（ＨＣＶ）、ヘルペスウイルス、マイコプラズマ、梅毒トレポネーマ、クラミジア・トラコマチス、結核菌、大腸菌群、Ａ群溶連菌、Ｂ群溶連菌、肺炎球菌、ブドウ球菌、ＭＲＳＡ、レジオネラ、腸管出血性大腸菌Ｏ１５７、ベロ毒素、サルモネラ、クロストリジウム・ディフィシル、ヘリコバクター・ピロリ、ＣＲＰ、ＨＢｓ抗原、ＨＢｓ抗体、ＨＢｃ抗原、ＨＢｃ抗体、ＨＢｅ抗原、ＨＢｅ抗体、前立腺特異抗原（ＰＳＡ）、ヒト絨毛性性腺刺激ホルモン（ｈＣＧ）、黄体形成ホルモン（ＬＨ）、トロポニンＴ、トロポニンＩ、ミオグロビン、Ｄ−ダイマー、便中ヘモグロビン、ヘモグロビンＡ１ｃ、ＩｇＥ抗体等の病原体抗原、抗体、癌マーカー、ホルモン等の生体成分、残留農薬、環境ホルモン、食品中のアレルギー物質等が挙げられ、特に制限されない。
【００３３】
本発明において、前記標識化抗体としては、特に限定されず、例えば、着色不溶性担体粒子を結合させた抗体でもよく、酵素を結合させた抗体でもよい。
【００３４】
本発明において、前記着色不溶性担体粒子としては、特に限定されず、例えば、着色ラテックス粒子、金属コロイド粒子、着色ポリメチルメタクリレート粒子、着色ポリ乳酸粒子、着色多孔性ガラス粒子、着色シリカ粒子、着色アガロース粒子、着色デキストラン粒子等が挙げられる。前記着色ラテックス粒子としては、特に限定されないが、例えば、青色ラテックス粒子、赤色ラテックス粒子等が挙げられる。前記金属コロイド粒子としては、特に限定されないが、例えば、金コロイド粒子、白金コロイド粒子等が挙げられる。前記着色不溶性担体粒子の平均粒子径は、特に限定されず、前記着色ラテックス粒子の場合には、例えば、０．０５μｍ〜５μｍの範囲であり、好ましくは、０．１μｍ〜１μｍの範囲であり、前記金属コロイド粒子の場合には、例えば、２ｎｍ〜１００ｎｍの範囲であり、好ましくは、１０ｎｍ〜５０ｎｍの範囲である。
【００３５】
前記酵素としては、反応して基質を着色させるものであればよく、特に限定されないが、例えば、パーオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β−Ｄ−ガラクトシダーゼ等が挙げられる。
【００３６】
前記基質としては、前記酵素に反応して着色するものであれば特に限定されない。前記基質としては、例えば、２，２´−アジノ−ビス（３−エチルベンゾチアゾリン−６−スルホン酸）（ＡＢＴＳ）、３，３´，５，５´−テトラメチルベンチジン（ＴＭＢ）、ジアミノベンチジン（ＤＡＢ）、５−ブロモ−４−クロロ−３−インドリルリン酸（ＢＣＩＰ）、４−メチルウムベリフェニル−β−Ｄ−ガラクトシド（４ＭＵＧ）、３−（２´−スピロアダマンタン）−４−メトキシ−４−（３´´−β−Ｄ−ガラクトピラノシル）フェニル−１，２−ジオキセタン（ＡＭＧＰＤ）等が挙げられる。
【００３７】
前記標識化抗体の抗体としては、分析対象物である抗原と結合するものであれば特に限定されず、例えば、前述の各種抗原等に対する抗体が挙げられる。前記抗体は、ＩｇＧ、ＩｇＡ、ＩｇＭ、ＩｇＤ、ＩｇＥおよびＩｇＹのいずれであってもよく、例えば、ＩｇＧ、ＩｇＡ、ＩｇＭ、ＩｇＤ、ＩｇＥおよびＩｇＹ等の免疫グロブリン分子、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２等の抗体フラグメント等が挙げられる。前記抗体は、例えば、マウス、ウサギ、ウシ、ブタ、ウマ、ヒツジ、ヤギ等の哺乳動物、ニワトリ等の鳥類、ヒト等の動物種由来のものでもよく、特に制限されない。前記抗体の動物種は、前記γ−グロブリンの動物種と同じでもよく、異なっていてもよい。また、前記抗体としては、例えば、前記動物種由来の血清から、従来公知の方法により作製してもよく、あるいは市販の各種抗体を利用してもよく、特に制限されない。前記抗体としては、ポリクローナル抗体およびモノクローナル抗体のいずれを用いてもよく、前記抗原等に応じて適宜設定できる。
【００３８】
前記標識化抗体が、前記着色不溶性担体粒子を結合させた抗体の場合、前記標識化抗体は、例えば、前記着色不溶性担体粒子を緩衝液等に懸濁し、この懸濁液に前記抗体を加えた反応液中で、前記着色不溶性担体粒子と前記抗体とを反応させて調製してもよい。前記緩衝液としては、特に限定されないが、例えば、前記緩衝液等が挙げられる。また、前記標識化抗体の調製において、前記懸濁液中の前記着色不溶性担体粒子の濃度は、特に制限されないが、例えば、０．００１〜１０重量％の範囲であり、好ましくは、０．０１〜１重量％の範囲である。そして、前記反応液中の前記抗体の濃度も、特に制限されないが、例えば、０．０１〜２０ｍｇ／ｍＬの範囲であり、好ましくは、０．１〜５ｍｇ／ｍＬの範囲である。
【００３９】
前記標識化抗体が、前記酵素を結合させた抗体の場合、前記標識化抗体の調製方法は、特に限られず、例えば、従来公知の方法を用いてもよい。
【００４０】
本発明において、前記固定化抗体の抗体としては、例えば、前記標識化抗体と同じ抗原に結合可能な抗体であれば特に制限されず、例えば、前述の抗体等が挙げられる。前記固定化抗体の多孔質体への固定方法としては、特に制限されないが、例えば、塗布装置等を用いて、多孔質体上に前記固定化抗体を含む抗体液を塗布し、乾燥機等により風乾させる等、従来公知の方法を用いることができる。前記抗体液は、例えば、前記固定化抗体を緩衝液等に懸濁して調製してもよく、特に制限されない。前記緩衝液としては、特に限定されないが、例えば、前記緩衝液等が挙げられる。また、前記固定化抗体を含む抗体液中の前記抗体の濃度は、特に制限されないが、例えば、０．０１〜２０ｍｇ／ｍＬの範囲であり、好ましくは、０．１〜５ｍｇ／ｍＬの範囲である。
【００４１】
前述のように、本発明において、前記検体中の分析対象物が、前記抗原に代えて、抗体であり、前記固定化抗体に代えて、固定化抗原が前記検出部に固定化され、前記抗原に対する前記標識化抗体に代えて、前記抗体に対する標識化抗原であってもよい。前記検体中の分析対象物が抗体である場合、前記抗体としては、特に制限されず、例えば、前述の抗体等が挙げられ、前記固定化抗原の抗原および前記標識化抗原の抗原としては、前記抗体に結合可能な抗原であれば特に制限されず、例えば、前述の抗原等が挙げられる。前記固定化抗原の作製方法は、例えば、従来公知の方法等が挙げられ、特に制限されない。また、本発明において、前記固定化抗原の多孔質体への固定方法としては、例えば、従来公知の方法等を用いることができ、特に制限されない。前記標識化抗原としては、特に限定されず、例えば、着色不溶性担体粒子を結合させた抗原でもよく、酵素を結合させた抗原でもよい。前記標識化抗原の作製方法としては、例えば、従来公知の方法等が挙げられ、特に制限されない。前記検体中の分析対象物が、前記抗原に代えて、前記抗体である場合には、本発明の検体分析用具は、前記標識化抗体保持部に代えて、標識化抗原保持部を有する。
【００４２】
つぎに、本発明の免疫分析方法および検体分析用具について、例を挙げて説明する。ただし、本発明は、以下の例に限定されない。
【００４３】
（実施形態１）
図１に、本例の検体分析用具１を示す。本例の検体分析用具１は、試験片２がケース体３に収容された構成である。図１（Ａ）は、前記試験片２の平面図であり、図１（Ｂ）は、図１（Ａ）のＩ−Ｉ方向に見た断面図であり、図１（Ｃ）は、前記検体分析用具１の平面図である。同図に示すように、本例の検体分析用具１は、ラテラルフロー型である。前記試験片２は、支持体２１上に前記支持体２１より長さの短い多孔質膜２２が配置され、この多孔質膜２２表面上の一端（同図において左側端部）側にコンジュゲートパッド２３が配置され、前記コンジュゲートパッド２３表面上に、さらに、サンプルパッド２４が配置されている。本例の検体分析用具１において、前記多孔質膜２２が、前記多孔質体である。また、本例の検体分析用具１において、前記コンジュゲートパッド２３が、前記標識化抗体保持部である。そして、本例の検体分析用具１において、前記サンプルパッド２４が、前記検体供給部であり、前記サンプルパッド２４側が、前記検体の流れの上流側となる。前記多孔質膜２２表面上には、上流側から順に、前記固定化抗体（図示せず）がライン状に固定された検出部４ａおよび４ｂが形成されている。さらに、前記多孔質膜２２表面上の他端（同図において右側端部）側に、吸収パッド２５が配置されている。前記コンジュゲートパッド２３は、その全体が前記多孔質膜２２の上に載った状態であってもよいし、その一部のみが前記多孔質膜２２の上に載った状態であってもよい。同図においては、前記コンジュゲートパッド２３の一端（同図において左側端部）側は、前記多孔質膜２２の端部（同図において左側端部）から前記支持体２１上へと垂らされ、前記支持体２１の一端（同図において左側端部）側に固定されている。前記サンプルパッド２４は、その全体が前記コンジュゲートパッド２３の上に載った状態であってもよいし、その一部のみが前記コンジュゲートパッド２３の上に載った状態であってもよい。同図においては、前記サンプルパッド２４の一端（同図において左側端部）側は、前記コンジュゲートパッド２３の端部（同図において左側端部）から前記支持体２１上へと垂らされ、前記支持体２１の一端（同図において左側端部）に固定されている。また、前記吸収パッド２５の一端（同図において右側端部）側は、前記多孔質膜２２表面の他端（同図において右側端部）から前記支持体２１上へと垂らされ、前記支持体２１の他端（同図において右側端部）に固定されている。前記ケース体３は、中空の直方体である。前記ケース体３表面の一端（同図において左側端部）側に孔が貫通され、試料孔３１が形成されている。また、前記ケース体３表面の中央部が矩形に切り取られて、計測窓３２が形成されている。前記試験片２は、前記ケース体３内に収容され、前記検出部４ａおよび４ｂは、前記計測窓３２直下に位置して露出しており、前記サンプルパッド２４は、前記試料孔３１直下に位置している。
【００４４】
前記支持体２１の材質としては、特に制限されず、例えば、ポリエチレンテレフタレート、ポリエチレン、ポリスチレン、ポリエステル、酢酸セルロース等が挙げられる。また、前記支持体２１の形状としては、特に制限されず、例えば、フィルム状、シート状、板状等が挙げられる。前記支持体２１の形および大きさは、特に制限されず、前記検体分析用具の構成等に応じて、適宜設定できる。
【００４５】
前記多孔質膜２２は、毛細管作用を奏するものであれば特に限定されず、例えば、セルロース膜、酢酸セルロース、ニトロセルロース等のセルロース誘導体膜、ガラスフィルター、濾紙等が挙げられる。本発明において、前記多孔質膜２２の形状は、特に限定されず、例えば、長方形、円形等が挙げられる。本発明において、前記多孔質膜２２の大きさは、特に制限されず、適宜設定できる。本発明において、前記多孔質体は、前記多孔質膜２１に限られず、例えば、ポリマービーズ、ガラスビーズ、二酸化チタン、セルロース、塩類、疎水化多糖類等の粒状物質または微粒子粉末等であってもよく、多孔質構造であれば特に制限されない。本発明において、前記多孔質体の形状および大きさは、特に制限されず、適宜設定できる。
【００４６】
前記多孔質膜２２は、例えば、常法により前記支持体２１上に配置でき、具体的には、両面テープや接着剤を用いて、前記支持体２１上に固定してもよい。
【００４７】
前記コンジュゲートパッド２３の材質としては、特に制限されず、例えば、ポリエチレン、グラスファイバー、レーヨン、ナイロン、紙、セルロース等が挙げられる。前記コンジュゲートパッド２３の形状および大きさは、特に制限されず、適宜設定できる。本発明において、前記標識化抗体保持部は、前記コンジュゲートパッド２３に限られず、標識化抗体を保持可能であればよく、特に制限されない。
【００４８】
本例において、前記コンジュゲートパッド２３は、γ−グロブリン、青色ラテックス標識抗Ａ型インフルエンザモノクローナル抗体および赤色ラテックス標識抗Ｂ型インフルエンザモノクローナル抗体を含んでいる。
【００４９】
前記コンジュゲートパッド２３は、例えば、γ−グロブリンおよび前述の二つの標識化抗体を含む抗体液を含浸させた後、風乾等により乾燥させて作製する。前記γ−グロブリンの前記抗体液中の濃度は、特に制限されないが、例えば、前述の範囲である。また、各標識化抗体の前記抗体液中の濃度は、特に制限されず、適宜設定できる。本発明において、前記標識化抗体保持部に含浸させる成分としては、標識化抗体以外に特に制限されず、例えば、γ−グロブリン、緩衝液等が挙げられる。
【００５０】
前記サンプルパッド２４の材質としては、特に制限されず、例えば、前記コンジュゲートパッド２３で挙げた材料等を用いてもよい。前記サンプルパッド２４の形状および大きさは、特に制限されず、適宜設定できる。本発明において、前記検体供給部は、前記サンプルパッド２４に限られず、試料を適用可能であれば特に制限されない。
【００５１】
本発明において、前記γ−グロブリンは、前記検体供給部、前記標識化抗体保持部および前記液状試料のうちの少なくとも一つに含まれていればよく、二つ以上に含まれていてもよい。前記検体供給部および前記標識化抗体保持部の少なくとも一方に含まれる前記γ−グロブリン量は、特に制限されないが、後述する検体抽出液１２０μＬに対して、例えば、０．０１ｍｇ以上である。
【００５２】
本発明において、例えば、検体分析用具の一つの部位が、前記検体供給部と前記標識化抗体保持部とを兼ねていてもよい。すなわち、本発明において、例えば、前記コンジュゲートパッド２３が、前記検体供給部と前記標識化抗体保持部とを兼ねていてもよく、前記サンプルパッド２４が、前記検体供給部と前記標識化抗体保持部とを兼ねていてもよい。
【００５３】
前記検出部４ａは、例えば、抗Ａ型インフルエンザウイルスモノクローナル抗体が固定化されたＡ型インフルエンザウイルス検出部であり、前記検出部４ｂは、例えば、抗Ｂ型インフルエンザウイルスモノクローナル抗体が固定化されたＢ型インフルエンザウイルス検出部である。
【００５４】
本例の検体分析用具１では、多孔質膜２２の幅方向に伸びる二本のライン状に検出部を形成したが、本発明の検体分析用具は、これに限定されず、検出部の個数は、１〜１０個の範囲で自由に設定でき、また検出部の形状も、ライン状以外に、例えば、矩形、円形等が挙げられる。
【００５５】
前記吸収パッド２５の材質としては、特に制限されず、例えば、前記サンプルパッド２４の材料等が挙げられる。前記吸収パッド２５の形状および大きさは、特に制限されず、適宜設定できる。
【００５６】
前記ケース体３の材質としては、特に限定されず、例えば、ポリエチレン、ポリスチレン、ポリプロピレン、アクリロニトリル−ブタジエン−スチレン共重合合成樹脂等が挙げられる。前記ケース体３の形状および大きさは、特に制限されず、前記試験片の形状および大きさ等に応じて適宜設定できる。
【００５７】
つぎに、本例の検体分析用具１を用いた免疫分析方法の一例について、図１に基づき説明する。
【００５８】
まず、抽出液を準備する。前記抽出液としては、例えば、前述の緩衝液等が挙げられる。ついで、鼻腔内の鼻甲介を綿棒で拭って、鼻腔ぬぐい液（検体）を採取する。つぎに、前記綿棒を前記抽出液に浸して前記検体を抽出し、検体抽出液を調製する。
【００５９】
つぎに、前記サンプルパッド２４に、前記検体抽出液を滴下する。滴下した前記検体抽出液は、前記サンプルパッド２４に供給され、さらに、下層の前記コンジュゲートパッド２３に供給される。前記検体抽出液により、前記コンジュゲートパッド２３に含まれる前記γ−グロブリンおよび前記標識化抗体が溶解する。前記検体抽出液が分析対象物である抗原を含む場合には、抗原抗体反応により、前記標識化抗体と前記抗原とが結合し、抗原−標識化抗体結合体を形成する。そして、前記抗原−標識化抗体結合体は、毛細管現象により、前記多孔質膜２２中を移動して検出部４ａおよび４ｂに導入され、前記検出部４ａおよび４ｂの前記固定化抗体に結合して複合体を形成する。前記複合体の形成により、検出部４ａおよび４ｂが着色する。
【００６０】
この一連の反応について、図２の模式図に基づき、具体的に説明する。同図において、図１と同一部分には同一符号を付している。すなわち、まず、図２（Ａ）に示すように、検出部４に固定化抗体５を固定した、多孔質膜２２を準備する。ついで、前記多孔質膜２２の一端（同図において左側端部）に、抗原７を含む検体抽出液および標識化抗体６を導入する。同図において、６１は抗体であり、６２は標識である。つぎに、図２（Ｂ）に示すように、標識化抗体６は、抗原７と結合して抗原−標識化抗体結合体８を形成する。前記結合体８は、同図において矢印で示すように、毛細管現象により、多孔質膜２２内を長手方向に移動して検出部４に到達する。ついで、図２（Ｃ）に示すように、前記結合体８は、抗原７を介して、前記固定化抗体５と結合し複合体９を形成する。前記複合体９の形成により、検出部４が標識６２によって着色する。前記検出部４に保持されなかった検体抽出液は、前記吸収パッド２５に吸収される。本例において、前記検体抽出液に、Ａ型インフルエンザウイルス抗原が含まれる場合には、前記複合体９の形成により、前記検出部４ａが青色に着色する。また、本例において、前記検体抽出液に、Ｂ型インフルエンザウイルス抗原が含まれる場合には、前記複合体９の形成により、前記検出部４ｂが赤色に着色する。本発明では、所定時間経過後、前記着色を、例えば、目視で確認してもよく、分析機器等を用いて、前記検出部４の反射率もしくは透過率等から光学的に測定してもよく、特に制限されない。前記所定時間は、特に限定されないが、例えば、５〜１５分の範囲である。
【００６１】
（実施形態２）
本例の検体分析用具１は、前記γ−グロブリンが、前記コンジュゲートパッドではなく、前記サンプルパッドに含まれていること以外は、実施形態１と同様にして作製する。
【００６２】
本例において、前記サンプルパッド２４は、γ−グロブリンを含む前記含浸液を含浸後、風乾等により乾燥させて作製する。本発明において、前記サンプルパッド２４に前記含浸液を含浸させる場合、前記γ−グロブリンの前記含浸液中の濃度は、特に制限されず、例えば、前述の範囲である。本例において、前記含浸液としては、特に限定されず、例えば、前述の緩衝液等が挙げられる。
【００６３】
つぎに、本例の検体分析用具１を用いた免疫分析方法の一例を、図１および図２に基づき説明する。まず、実施形態１と同様にして検体抽出液を調製する。前記検体抽出液を、前記サンプルパッド２４に滴下する。前記検体抽出液により、前記サンプルパッド２４に含まれる前記γ−グロブリンが溶解し、前記検体抽出液と共に、前記コンジュゲートパッド２３に供給される。前記検体抽出液および前記γ−グロブリンにより、前記コンジュゲートパッド２３に含まれる二つの前記標識化抗体６が、溶解する。前記検体抽出液が分析対象物である抗原７を含む場合には、抗原抗体反応により、前記標識化抗体６と前記抗原７とが結合し、抗原−標識化抗体結合体８を形成する。そして、実施形態１と同様にして、前記抗原−標識化抗体結合体８が、前記多孔質膜２２中を毛細管現象により移動し、前記固定化抗体５に結合し、複合体９を形成する。前記複合体９により、前記検出部４ａおよび４ｂが着色する。前記着色を、実施形態１と同様に、目視または分析機器等により確認する。
【００６４】
（実施形態３）
本例の検体分析用具１は、前記γ−グロブリンが、前記コンジュゲートパッドに含まれていないこと以外は、実施形態１と同様にして作製する。
【００６５】
つぎに、本例の検体分析用具１を用いた免疫分析方法の一例を、図１および図２に基づき説明する。まず、γ−グロブリンを０．１〜２ｍｇ／ｍＬの範囲で添加した抽出液（試料）を準備する。そして、γ−グロブリンを含む前記抽出液を用いること以外は、実施形態１と同様にして、前記検体抽出液を調製する。つぎに、前記サンプルパッド２４に、前記検体抽出液を滴下する。滴下された前記検体抽出液は、前記サンプルパッド２４に供給され、さらに、下層の前記コンジュゲートパッド２３に供給される。前記検体抽出液により、前記コンジュゲートパッド２３に含まれている前記標識化抗体６が、溶解する。前記検体抽出液が検出対象物である抗原７を含む場合には、抗原抗体反応により、前記標識化抗体６と前記抗原７とが結合し、抗原−標識化抗体結合体８を形成する。そして、実施形態１と同様にして、前記抗原−標識化抗体結合体８が前記多孔質膜２２中を毛細管現象により移動し、前記固定化抗体５に結合し、複合体９を形成する。前記複合体９により、前記検出部４ａおよび４ｂが着色する。前記着色を、実施形態１と同様に、目視または分析機器等により確認する。
【００６６】
実施形態１〜３では、試験片およびケース体から構成された検体分析用具を用いたが、本発明では、これらの例に限られず、例えば、前記試験片のみから構成される検体分析用具を用いてもよい。
【００６７】
（実施形態４）
図３に、本例の検体分析用具１を示す。図３（Ａ）は、本例の検体分析用具１の平面図であり、図３（Ｂ）は、図３（Ａ）のＩ−Ｉ方向に見た断面図である。前記二図において、同一部分には同一符号を付している。前記二図に示すように、本例の検体分析用具１は、フロースルー型である。図３（Ａ）に示すように、本例の検体分析用具１では、矩形の多孔質膜２２の上面の一部に、固定化抗体を円状に固定し、検出部４が形成されている。本例において、例えば、前記検出部４は、抗ＲＳウイルスモノクローナル抗体が固定化されたＲＳウイルス検出部である。そして、図３（Ｂ）に示すように、前記多孔質膜２２の下には、吸収パッド２５を接触状態で配置する。
【００６８】
つぎに、前記検体分析用具１を用いた本例の免疫分析方法の一例について、図３に基づき説明する。
【００６９】
まず、γ−グロブリンおよび前記標識化抗体を含有する抗体液（試料）を準備する。一方、鼻腔内の鼻甲介を綿棒で拭って、鼻腔ぬぐい液（検体）を採取する。そして、前記綿棒を前記抗体液に浸して前記検体を抽出し、検体抽出液を調製する。つぎに、前記多孔質膜２２の上方から、前記検体抽出液を滴下し、前記検出部４に導入する。前記検体抽出液が分析対象物である抗原を含む場合には、抗原抗体反応により、前記標識化抗体は、前記抗原を介して前記検出部４の前記固定化抗体に結合し、複合体を形成する。前記複合体の形成により、検出部４が着色する。この一連の反応について、図４（Ａ）および図４（Ｂ）の模式図に基づき、具体的に説明する。前記二図において、図１〜図３と同一部分には、同一符号を付している。図４（Ａ）に示すように、固定化抗体５を固定した検出部４を含む多孔質膜２２を準備する。前記多孔質膜２２の上方から、抗原７および標識化抗体６を含む検体抽出液を適用する。同図において、６１は抗体であり、６２は標識である。図４（Ｂ）に示すように、標識化抗体６は、抗原７を介して前記固定化抗体５と結合し、複合体９を形成する。前記複合体９の形成により、前記検出部４が標識６２によって着色する。また、検体抽出液中の他の液体等は、矢印で示すように、多孔質膜２２の厚み方向に浸透し、吸収パッド２５で吸収される。本例において、前記検体抽出液にＲＳウイルス抗原７が含まれる場合には、前記検出部４が赤色に着色する。本例において、前記着色の確認方法は、特に制限されない。本例では、実施形態１と同様に、所定時間経過後、前記着色を、例えば、目視で確認してもよく、分析機器等を用いて、前記検出部４の反射率もしくは透過率等から光学的に測定してもよい。前記所定時間は、特に限定されないが、例えば、５〜１５分の範囲である。
【実施例】
【００７０】
つぎに、本発明の実施例について、比較例と併せて説明する。ただし、本発明は、下記の実施例および比較例に限定ないし制限されない。
【００７１】
（実施例１）
本例では、図１に示す検体分析用具１を用いて、試料中のＡ型およびＢ型インフルエンザウイルスを検出した。
【００７２】
＜インフルエンザウイルス検出用検体分析用具の作製＞
本例の検体分析用具１は、以下のようにして作製した。
【００７３】
（１）青色ラテックス標識抗Ａ型インフルエンザウイルスモノクローナル抗体液の調製
まず、２０ｍｍｏｌ／Ｌのホウ酸緩衝液（ｐＨ８．２）に、青色ラテックス粒子（粒子径０．３μｍ、セラダイン社製）を、１重量％の濃度になるように懸濁し、懸濁液を得た。この懸濁液に、１ｍｇ／ｍＬ濃度の抗Ａ型インフルエンザウイルスモノクローナル抗体（フィッツジェラルド社製）を１：１の容量比で混合して、室温で６０分間反応させた。つぎに、前記反応液を遠心分離後、上清を除去し、１ｗ／ｖ％ウシ血清アルブミン含有ホウ酸緩衝液（ｐＨ８．２）で再懸濁した。前記再懸濁液を遠心分離後、上清を除去し、下記組成のラテックス分散用緩衝液２．５ｍＬに懸濁し、青色ラテックス標識抗Ａ型インフルエンザウイルスモノクローナル抗体液を調製した。
【００７４】
（ラテックス分散用緩衝液の組成）
成分                            濃度        
トリス緩衝液（ｐＨ８．４）        ２５ｍｍｏｌ／Ｌ
ＮａＣｌ                        １００ｍｍｏｌ／Ｌ
ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）        １ｗ／ｖ％
【００７５】
（２）赤色ラテックス標識抗Ｂ型インフルエンザウイルスモノクローナル抗体液の調製
赤色ラテックス標識抗Ｂ型インフルエンザウイルスモノクローナル抗体液は、前記青色ラテックス粒子ではなく、赤色ラテックス粒子（粒子径０．３μｍ、セラダイン社製）を用い、前記抗Ａ型インフルエンザウイルスモノクローナル抗体ではなく、抗Ｂ型インフルエンザウイルスモノクローナル抗体（フィッツジェラルド社製）を用いたこと以外は、前記青色ラテックス標識抗Ａ型インフルエンザウイルスモノクローナル抗体液と同様にして、調製した。
【００７６】
（３）コンジュゲートパッド形成用シートの作製
前記青色ラテックス標識抗Ａ型インフルエンザウイルスモノクローナル抗体液および前記赤色ラテックス標識抗Ｂ型インフルエンザウイルスモノクローナル抗体液を１：１の比率で混合して混合液を調製した。混合液２．２ｍＬを、幅１ｃｍ、長さ３０ｃｍに裁断したガラスフィルター（ミリポア社製）に含浸させ、乾燥機を用いて７０℃で４５分間乾燥し、コンジュゲートパッド形成用シートを作製した。
【００７７】
（４）抗体固定化膜形成用シートの作製
ニトロセルロースメンブレン（ミリポア社製）を幅３ｃｍ、長さ３０ｃｍの帯状に裁断した。前記裁断したニトロセルロースメンブレンを、抗体塗布装置（バイオドット社製）にセットし、帯の長辺側の一端から１１ｍｍ離れた部分に、抗Ａ型インフルエンザウイルスモノクローナル抗体（フィッツジェラルド社製）をライン状に塗布して検出部４ａを形成し、前記一端から１５ｍｍ離れた部分に、抗Ｂ型インフルエンザウイルスモノクローナル抗体（フィッツジェラルド社製）をライン状に塗布して検出部４ｂを形成した。前記抗体を塗布したメンブレンを、乾燥機を用いて４０℃で２０分間乾燥し、前記ニトロセルロースメンブレン（多孔質膜）に抗体が固定化された抗体固定化膜形成用シートを作製した。
【００７８】
（５）検体分析用具の作製
試験片２を、以下のようにして作製した。まず、ろ紙（ミリポア社製）を幅２．６ｃｍ、長さ３０ｃｍに裁断して、サンプルパッド形成用シートを準備した。また、ろ紙（ワットマン社製）を幅２．９ｃｍ、長さ３０ｃｍに裁断して、吸収パッド形成用シートを準備した。さらに、両面テープ付のプラスチックシートを幅７．７ｃｍ、長さ３０ｃｍに裁断して、支持体形成用シートを準備した。そして、前記支持体形成用シート上に、前記抗体固定化膜形成用シート、コンジュゲートパッド形成用シート、サンプルパッド形成用シートおよび吸収パッド形成用シートを、各短辺側の両端を揃えて、つぎのようにして積層した。まず、前記支持体形成用シートの幅方向中央領域に、前記抗体固定化膜形成用シートを貼付した。本例の検体分析用具１は、前記検出部４ａ側を上流側とし、前記検出部４ｂ側を下流側とした。つぎに、前記抗体固定化膜形成用シートの前記検出部４ｂ側端部から、下流側の前記支持体形成用シート端部上に、前記抗体固定化膜形成用シートと７ｍｍ重なるようにして、前記吸収パッド形成用シートを貼付した。そして、前記抗体固定化膜形成用シートの前記検出部４ａ側端部から、上流側の前記支持体形成用シート端部上に、前記抗体固定化膜形成用シートと１ｍｍ重なるようにして、前記コンジュゲートパッド形成用シートを貼付した。そして、さらに前記コンジュゲートパッド形成用シート上に前記サンプルパッド形成用シートを積層した。前記積層したシートを、シートの長さ方向を幅方向とする４ｍｍ幅の短冊状に裁断し、幅４ｍｍ、長さ７７ｍｍの試験片２を作製した。前記試験片２を、試料孔３１および計測窓３２を備えたケース体３に封入し、本例の検体分析用具１を作製した。本例の検体分析用具１において、前記多孔質膜形成用シートの裁断部分が、多孔質膜２２であり、前記コンジュゲートパッド形成用シートの裁断部分が、コンジュゲートパッド２３であり、前記サンプルパッド形成用シートの裁断部分が、サンプルパッド２４であり、前記吸収パッド形成用シートの裁断部分が、吸収パッド２５である。
【００７９】
＜インフルエンザウイルスの検出＞
本例の検体分析用具１を用いて、以下のようにして、検体中のインフルエンザウイルスを分析した。本例において、前記検体として、綿棒で採取した鼻腔ぬぐい液の検体１０例（検体１〜１０）を使用した。なお、前記検体中のインフルエンザウイルスの存在の有無は、下記（６）に示すＲＴ−ＰＣＲ法を用いて確認した。
【００８０】
（６）ＲＴ−ＰＣＲ法によるインフルエンザウイルスの検出
本例では、Ｗａｎｇｄｏｎｇ  Ｚｈａｎｇ  ａｎｄ  Ｄａｖｉｄ．Ｈ．ＥｖａｎｓによるＡ型およびＢ型インフルエンザウイルスのマトリックス蛋白検出方法（Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｖｉｒｏｌｏｇｉｃａｌ  ｍｅｔｈｏｄｓ、１９９１年、３３巻、１６５−１８９頁）を用いて、前記ＲＴ−ＰＣＲ法を実施した。前記ＲＴ−ＰＣＲ法による検出の結果、検体１〜６は、インフルエンザウイルスが検出されず（陰性）、検体７および８は、Ａ型インフルエンザウイルスが検出され（Ａ型陽性）、検体９および１０は、Ｂ型インフルエンザウイルスが検出された（Ｂ型陽性）。
【００８１】
（７）検体分析用具を用いたインフルエンザウイルスの検出
本例では、前記１０検体について、つぎのようにして、本例の検体分析用具１を用いて分析した。まず、前記検体を表１に示す組成の抽出液０．７ｍＬに懸濁し、懸濁液を調製した。そして、前記懸濁液１２０μＬを、前記サンプルパッド２４に滴下した。滴下１５分後に、前記検出部４ａおよび４ｂの着色の有無を目視により確認し、前記インフルエンザウイルスの存否を判定した。前記目視による判定において、前記検出部４ａが青色の場合はＡ型インフルエンザ陽性、前記検出部４ｂが赤色の場合はＢ型インフルエンザ陽性、着色のない場合は陰性と判定した。
【００８２】
（表１）抽出液の組成
成分                                            濃度      
トリス緩衝液（ｐＨ７．５）                      ５０ｍｍｏｌ／Ｌ
Ｔｗｅｅｎ２０                                    ０．５ｗ／ｖ％
ＮａＣｌ                                          ０．９ｗ／ｖ％
ＢＳＡ                                            １ｗ／ｖ％
ウシγ−グロブリン（オリエンタル酵母工業社製）    １ｍｇ／ｍＬ
【００８３】
（比較例１）
本例では、前記抽出液として、表１の組成からウシγ−グロブリンを除いた組成の抽出液を用いたこと以外は、実施例１と同様にして、インフルエンザウイルスを検出した。
【００８４】
表２に、実施例１および比較例１の分析結果を示す。同表において、「−」は陰性を示し、「＋」は陽性を示す。同表に示すように、比較例１では、１０検体中３検体（検体１、２および３）が、Ａ型インフルエンザ陽性と判定され、ＲＴ−ＰＣＲ法による判定結果と異なっていた。一方、実施例１では、全ての判定結果が、ＲＴ−ＰＣＲ法による判定結果と一致した。すなわち、前記３検体について、抽出液中に１ｍｇ／ｍＬのγ−グロブリンを添加することにより、正しい判定結果が得られた。
【００８５】
【表２】
2010060297.tif 000002
【００８６】
（実施例２）
本例では、検体として、実施例１と同様にして採取した検体１２例（検体１１〜２２）を使用した。そして、前記検体中のインフルエンザウイルスの有無を、実施例１と同様に、ＲＴ−ＰＣＲ法を用いて確認した。前記ＲＴ−ＰＣＲ法による検出の結果、検体１１〜１８は、インフルエンザウイルスが検出されず（陰性）、検体１９および２０は、Ａ型インフルエンザウイルスが検出され（Ａ型陽性）、検体２１および２２は、Ｂ型インフルエンザウイルスが検出された（Ｂ型陽性）。一方、本例では、実施例１と同様にして、検体分析用具１を作製した。そして、前記検体分析用具１を用いて、前記１２検体について、実施例１と同様にして、インフルエンザウイルスを検出した。
【００８７】
（実施例３）
本例では、前記混合液に、さらに、ウシγ−グロブリン（オリエンタル酵母工業社製）を０．５ｍｇ／ｍＬの濃度になるように添加した混合液を用いて、前記コンジュゲートパッドを作製したこと以外は、実施例１と同様にして、検体分析用具１を作製した。そして、前記検体分析用具１を用いて、前記１２検体について、実施例２と同様にして、インフルエンザウイルスを検出した。なお、本例において、前記γ−グロブリンは、前記懸濁液１２０μＬ中に０．１２ｍｇ含まれ、前記コンジュゲートパッド中に約０．０１５ｍｇ含まれた。
【００８８】
表３に、実施例２および実施例３の分析結果を示す。同表において、「−」は陰性を示し、「＋」は陽性を示す。同表に示すように、実施例２（γ−グロブリン濃度０ｍｇ／ｍＬ）では、１２検体中、１０検体において、ＲＴ−ＰＣＲ法と同じ分析結果が得られた。しかし、実施例２では、ＲＴ−ＰＣＲ法では陰性の検体１２がＡ型インフルエンザ陽性、同法では陰性の検体１８がＡ型およびＢ型インフルエンザ共に陽性と判定され、２検体について、正しい分析結果が得られなかった。一方、実施例３では、前記検体１２および１８の分析結果は、ＲＴ−ＰＣＲ法と同様に陰性となり、１２検体全てにおいて、正しい分析結果が得られた。すなわち、分析結果が偽陽性であった２検体について、１ｍｇ／ｍＬ濃度のγ−グロブリンを含む抽出液に加え、さらに、コンジュゲートパッドにγ−グロブリンを含浸させることにより、正しい判定結果を得ることができた。
【００８９】
【表３】
2010060297.tif 000003
【００９０】
（実施例４）
本例では、標識化抗体の標識粒子、抗体、検出部および各多孔質体が、後述のように異なること以外は、実施例１と同じ構成の検体分析用具を用いて、検体中のＲＳウイルスを検出した。
【００９１】
＜ＲＳウイルス検出用検体分析用具の作製＞
本例の検体分析用具を、以下のようにして作製した。
【００９２】
（１）抗体液（金コロイド標識抗ＲＳウイルスモノクローナル抗体液）の作製
本例では、前記青色ラテックス粒子および前記赤色ラテックス粒子ではなく、金コロイド粒子（粒子径２０ｎｍ、ＢＢＩ社製）を用い、前記抗Ａ型インフルエンザウイルスモノクローナル抗体および抗Ｂ型インフルエンザウイルスモノクローナル抗体ではなく、抗ＲＳウイルスモノクローナル抗体（フィッツジェラルド社製）を用い、前記ラテックス分散用緩衝液ではなく、金コロイド分散用緩衝液（２０ｍｍｏｌ／Ｌトリス緩衝液、ｐＨ８．０）を用いたこと以外は、実施例１と同様にして、抗体液（金コロイド標識抗ＲＳウイルスモノクローナル抗体液）を作製した。
【００９３】
（２）コンジュゲートパッドの作製
本例では、前記含浸させる抗体液として、前記青色ラテックス標識抗Ａ型インフルエンザウイルスモノクローナル抗体液および前記赤色ラテックス標識抗Ｂ型インフルエンザウイルスモノクローナル抗体液ではなく、前記金コロイド標識抗ＲＳウイルスモノクローナル抗体液を用いたこと以外は、実施例１と同様にして、コンジュゲートパッド２３を作製した。
【００９４】
（３）抗体固定化膜の作製
本例では、前記抗Ａ型インフルエンザウイルスモノクローナル抗体ではなく、抗ＲＳウイルスモノクローナル抗体（フィッツジェラルド社製）を検出部４ａに塗布し、前記検出部４ｂに抗体を塗布しなかったこと以外は、実施例１と同様にして、抗体固定化膜２２を作製した。
【００９５】
（４）検体分析用具の作製
本例では、前記コンジュゲートパッド２３および前記抗体固定化膜２２を用い、実施例１と同様にして、検体分析用具を作製した。
【００９６】
＜ＲＳウイルスの検出＞
前記検体分析用具を用いて、以下のようにして、検体中のＲＳウイルスを分析した。前記検体としては、鼻腔内の鼻甲介を綿棒で拭って採取した鼻腔ぬぐい液の検体６例（検体２３〜２８）を使用した。なお、前記検体中のＲＳウイルスの存在の有無は、下記（５）に示すＲＴ−ＰＣＲ法を用いて確認した。
【００９７】
（５）ＲＴ−ＰＣＲ法によるＲＳウイルスの検出
本例では、Ｊ．ＳｔｏｃｋｔｏｎらによるＲＳウイルスの検出方法（Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ、１９９８年、３６巻、１０号、２９９０−２９９５頁）を用いて、前記ＲＴ−ＰＣＲ法を実施した。前記ＲＴ−ＰＣＲ法による検出の結果、検体２３〜２６は、ＲＳウイルスが検出されず（陰性）、検体２７および２８は、ＲＳウイルスが検出された（陽性）。
【００９８】
（６）検体分析用具を用いたＲＳウイルスの検出
本例では、下記６検体について、本例の検体分析用具を用い、次のようにして分析した。まず、本例に用いる抽出液として、前記表１の組成の抽出液のγ−グロブリン濃度を、１ｍｇ／ｍＬではなく、０．１２５ｍｇ／ｍＬとした抽出液（試料）を準備した。そして、前記検体を前記抽出液０．８ｍＬに懸濁し、懸濁液を調製した。前記懸濁液１２０μＬを、前記サンプルパッド２４に滴下した。滴下１５分後に、前記検出部４ａの着色の有無を目視により確認し、前記ＲＳウイルスの存否を判定した。前記目視による判定において、前記検出部４ａが赤色の場合は陽性、着色のない場合は陰性と判定した。
【００９９】
（実施例５）
本例では、前記抽出液中のγ−グロブリン濃度を、０．１２５ｍｇ／ｍＬではなく、０．２５ｍｇ／ｍＬにしたこと以外は、実施例４と同様にして、ＲＳウイルスを検出した。
【０１００】
（実施例６）
本例では、前記抽出液中のγ−グロブリン濃度を、０．１２５ｍｇ／ｍＬではなく、０．５ｍｇ／ｍＬにしたこと以外は、実施例４と同様にして、ＲＳウイルスを検出した。
【０１０１】
（実施例７）
本例では、前記抽出液中のγ−グロブリン濃度を、０．１２５ｍｇ／ｍＬではなく、１ｍｇ／ｍＬにしたこと以外は、実施例４と同様にして、ＲＳウイルスを検出した。
【０１０２】
（実施例８）
本例では、前記抽出液中のγ−グロブリン濃度を、０．１２５ｍｇ／ｍＬではなく、２ｍｇ／ｍＬにしたこと以外は、実施例４と同様にして、ＲＳウイルスを検出した。
【０１０３】
（比較例２）
本例では、前記抽出液中のγ−グロブリン濃度を、０．１２５ｍｇ／ｍＬではなく、０ｍｇ／ｍＬにしたこと以外は、実施例４と同様にして、ＲＳウイルスを検出した。
【０１０４】
表４に、実施例４〜８および比較例２の分析結果を示す。同表において、「−」は陰性を示し、「＋」は陽性を示す。同表に示すように、比較例２では、ＲＴ−ＰＣＲ法により陰性と分析された検体４例（検体２３〜２６）が、全て陽性と分析され、正しい分析結果が得られなかった。一方、抽出液中に０．１２５〜２ｍｇ／ｍＬの濃度範囲でγ−グロブリンを添加した実施例４〜８では、全ての検体（検体２３〜２８）が、ＲＴ−ＰＣＲ法と同じ分析結果となり、正しい分析結果が得られた。
【０１０５】
【表４】
2010060297.tif 000004
【産業上の利用可能性】
【０１０６】
本発明の免疫分析方法および検体分析用具によれば、イムノクロマトグラフィー法による免疫分析において、煩雑な前処理を要さずに、簡便に、非特異的反応を抑制できる。本発明は、臨床検査、生化学検査、医学研究等の分野に適用可能であり、その用途は限定されず、広い分野に適用可能である。
【図面の簡単な説明】
【０１０７】
【図１】図１（Ａ）は、本発明の検体分析用具を構成する試験片の一例を示す平面図である。図１（Ｂ）は、図１（Ａ）に示す試験片のＩ−Ｉ方向に見た断面図である。図１（Ｃ）は、図１（Ａ）に示す試験片を収容した本発明の検体分析用具の一例を示す平面図である。
【図２】図２（Ａ）、図２（Ｂ）および図２（Ｃ）は、本発明のラテラルフロー型検体分析用具における着色反応過程の一例を示す模式図である。
【図３】図３（Ａ）は、本発明の検体分析用具のその他の例を示す平面図である。図３（Ｂ）は、図３（Ａ）に示す検体分析用具のＩ−Ｉ方向に見た断面図である。
【図４】図４（Ａ）および図４（Ｂ）は、本発明のフロースルー型検体分析用具における着色反応過程の一例を示す模式図である。
【符号の説明】
【０１０８】
１                検体分析用具
２                試験片
２１              支持体
２２              多孔質膜、抗体固定化膜
２３              コンジュゲートパッド
２４              サンプルパッド
２５              吸収パッド
３                ケース体
３１              試料孔
３２              計測窓
４、４ａ、４ｂ    検出部
５                固定化抗体
６                標識化抗体
６１              抗体
６２              標識
７                抗原
８                抗原−標識化抗体結合体
９                複合体
【図１】
2010060297.tif 000005
【図２】
2010060297.tif 000006
【図３】
2010060297.tif 000007
【図４】
2010060297.tif 000008