(57)【要約】【課題】新規単離抗原性ポリペプチド、およびコアＢ２／Ｄゲノムに属し、偏共性大腸菌には存在しないポリヌクレオチドを提供する。【解決手段】本発明は、患者の集団において免疫応答を誘導することおよび細菌感染を予防することを可能にするワクチン組成物の製造のための、配列番号１３４のポリペプチドの使用に関する。好ましくは、この使用において、ワクチン組成物は、腸管外大腸菌株に特異的であり、配列番号１３４の抗原性ポリペプチドの有効量を、配列番号１〜６６および１３３、１３５〜１４５の任意のポリペプチド（ただし、配列番号８は除外）、担体とともに含有してなるものである。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
患者の集団において免疫応答を誘導することおよび細菌感染を予防することを可能にするワクチン組成物の製造のための、配列番号１３４のポリペプチドの使用。
【請求項２】
ワクチン組成物は、腸管外大腸菌株に特異的であり、配列番号１３４の抗原性ポリペプチドの有効量を、配列番号１〜６６および１３３、１３５〜１４５の任意のポリペプチド（ただし、配列番号８は除外）、担体とともに含有してなるものである、請求項１に記載の使用。
【請求項３】
尿路系感染症、腎盂腎炎、敗血症、菌血症、新生児髄膜炎を予防するための請求項２に記載の使用。
【請求項４】
ワクチン組成物は、さらに、黄色ブドウ球菌またはＢ群ブドウ球菌などの他のバクテリア、または全身性感染症に関する他のバクテリアに対しての成分を含む、請求項１〜３のいずれか１つに記載の使用。
【請求項５】
ＥｘＰＥＣ  Ｂ２／Ｄサブグループに帰属する大腸菌株に引き起こされた腸管外感染の予防に用いられる医薬組成物であって、配列番号１３４のペプチドの有効量を、医薬的に許容し得る担体と組み合わせて含む、医薬組成物。
【請求項６】
大腸菌感染を予防するための医薬組成物の製造のための配列番号１３４のポリペプチドの使用。
【請求項７】
ＥｘＰＥＣ  Ｂ２／Ｄサブグループに属する大腸菌株に引き起こされる腸管外感染を緩和するか、および／または処置するための医薬組成物であって、配列番号１３４のペプチドに対する抗体を、医薬的に許容し得る担体と組み合わせて含む、医薬組成物。
【請求項８】
大腸菌感染を緩和するか、および／または処置するための医薬組成物の製造のための、配列番号１３４のポリペプチドに対する抗体の使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は病原菌株、特に腸管外大腸菌株に特異的な新規生成物に関する。
【０００２】
より詳しくは、本発明は生成物としての抗原性ポリペプチドおよび当該ポリペプチドに対する抗体、ならびにそれぞれのワクチンとしての使用および免疫療法における使用に関する。
【背景技術】
【０００３】
大腸菌（Escherichia coli）は恐らくもっとも良く知られた細菌種であって、臨床微生物学研究室においてもっとも一般的に単離される菌の一つであり、種々の型の大腸菌に関し、またそれらが原因となる感染症に関して多くの誤解のある菌の一つでもある。
【０００４】
ヒトに対し生物学的意味のある大腸菌株は大まかに以下の３つの主要群に分類することができる：
１．偏共性株であり、正常細菌叢の一部である。
【０００５】
２．腸内病原菌であり、正常細菌叢の一部ではない。この群は種々の病原型（ＥＰＥＣ、ＥＨＥＣ、ＥＴＥＣ、ＥＩＥＣ）を含むが、シゲラ（Shigella）は含まない。
【０００６】
３．腸管外菌株（ＥｘＰＥＣ）であり、胃腸管（ＧＩ）外での感染に関与するが、正常菌叢の一部でもあり得る。宿主はすべて易感染性であってもなくてもこれらの感染に対して感受性である。
【０００７】
ＥｘＰＥＣ菌株は主たる尿路感染症（ＵＴＩ）、取分け膀胱炎、腎盂腎炎、およびカテーテル関連感染症の原因となる。
【０００８】
また、これらの菌株は腹部感染症、院内肺炎、新生児髄膜炎、柔組織感染、および骨感染の原因ともなる。これら局在化のいずれもが臓器不全の場合の敗血症の危険のある菌血症となり得る。事実、ＥｘＰＥＣ菌株は血液培養から分離されるもっとも一般的なグラム陰性細菌である。
【０００９】
米国では、細菌性敗血症の発症が毎年７５０，０００事例あり、その２２５，０００例が死亡原因となっている。１６９０の症例に関する最近の研究では、同定された主たるバクテリア種がＥｘＰＥＣ（症例の１６％）であり、次が黄色ブドウ球菌（症例の１４％）であることを示した。
【００１０】
これらの数値は院内感染および市中感染両方におけるＥｘＰＥＣ菌株の重要性を証明するものである。
【００１１】
ＥｘＰＥＣ株は大腸菌株の同種亜集団に相当する。大腸菌株内の系統発生的関連性を分析すると、大腸菌はＡ、Ｂ１、Ｂ２およびＤと命名される４つの主要な系統発生群に属すことが判明した。
【００１２】
ＥｘＰＥＣ株の病原性は細胞外微生物の病原性であること、すなわち、これらの菌株は細胞外液での増殖によく適合し、多形核による食作用に効率的に抵抗する。初期の研究は、細胞外増殖に重要であるとされる病原性因子が主にＢ２／Ｄ大腸菌に見出されること、従ってＢ２／ＤサブグループにはＥｘＰＥＣの大半が含まれることを示唆しているとしていた。このことはＢ２／Ｄ菌株がＡおよびＢ１菌株よりもより病原性であることを示す動物実験により再確認された。引き続いての疫学的研究が事実上これらの仮説を確認した。Ｂ２／Ｄ分離株は主として新生児髄膜炎（８７％）および市中または院内尿性敗血症（それぞれ９３％および８５％）の原因菌株である。
【００１３】
同様の結果が膀胱炎（７０％がＢ２大腸菌単独による）について報告されており、従って、ＥｘＰＥＣの重要性を証明するものである。
【００１４】
これらの最近の知見は、Ｂ２／Ｄサブグループの菌株が細胞外液中での増殖にもっとも適合する大腸菌コア・ゲノムであることを示している。
【００１５】
このコア・ゲノムに加えて、ＥｘＰＥＣ菌株は腸管外大腸菌感染症（尿路感染症（ＵＴＩ）、尿性敗血症、新生児髄膜炎など）の異なる病因と関連する病原性因子をコードする様々な病原性の島を持つ。主たる病原性因子としては、細胞外増殖にとって重要であることがよく知られている被膜、および鉄キレート化システム（例えば、エロバクチン（aerobactin）およびエンテロケリン（enterochelin））がある。さらに、病因によっては、これらの菌株が毒素（ＣＮＦ、ヘモリシンなど）、アドヘシン（ｐａｐ、ｓｆａなど）およびその他の鉄キレート化システムを産生し得る。
【００１６】
Ｂ２／Ｄ大腸菌が病原性大腸菌株の別個の亜集団に相当するという概念は、Ｂ２／Ｄ大腸菌がヒトの糞便からあまねく分離されるものではないという事実により再確認される。これら菌株は僅か１１％の個体から回収されるが、一方、ＡおよびＢ１のサブグループはヒト母集団個体の７４％の糞便に存在する。
【００１７】
上記のように、ＥｘＰＥＣ株の病原性は細胞外液で繁殖する能力に、また多形核による補体と食作用の殺菌活性に抵抗する能力に依存する。従って、他の細胞外病原菌（ヘモフィラス・インフルエンザ（Haemophilus influenzae）、肺炎連鎖球菌（Streptococcus pneumonieae）、および髄膜炎菌（Neisseria meningitidis））については、ＥｘＰＥＣに対する防御抗原が、血清のオプソニン作用および／または殺菌活性を増進する抗体を誘発しなければならない。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１８】
上記の論述を考慮すると、有効な抗原はＢ２／Ｄ大腸菌の母集団に主として提示されなければならない。他の細胞外病原と同様に、被膜の多糖は理想的な抗原であるはずであるが、殆どの病原性Ｂ２株はＫ１多糖を発現する。後者はＢ群の髄膜炎菌の構造に一致する構造を有し、非抗原性で、脳と共通の抗原を共有する。もう一つの可能な標的はリポ多糖（ＬＰＳ）である。しかし、様々なサブグループか共有する多くの異なるＬＰＳ血清型が存在する。
【課題を解決するための手段】
【００１９】
本発明者らは今回、Ｂ２／Ｄゲノムによりコードされるが、ＡおよびＢ１大腸菌株には欠けている幾つかの特定の成分が、抗原として特に有用であり、またＥｘＰＥＣによる病因を特異的に予防することができることを見出した。これら抗原性成分の相同体は他の病原性バクテリア種にも見出され、従って、これらバクテリアが原因となる病因を予防するために有用である。従って、ＥｘＰＥＣ株に特異的な生成物およびその使用についての文献は、いずれもこれらの種の成分を包含する。
【００２０】
例えば、相同性抗原は以下の種に存在し、そのままバクテリアによる疾患の予防に使用し得る：
シュードモナス・エルギノーサ（Pseudomonas aeruginosa）、エシェリキア・コリ（Escherichia coli）Ｏ１５７：Ｈ７、エルシニア・ペスティス（Yersinia pestis）、ビブリオ・コレラ（Vibrio cholerae）、レジオネラ・ニューモフィラ（Legionella pneumophila）、サルモネラ・エンテリカ（Salmonella enterica）、サルモネラ・チフィムリウム（Salmonella typhimurium）、ヘモフィルス・インフルエンザ（Haemophilus influenzae）、ナイセリア・メニンギチジス（Neisseria meningitidis）、ナイセリア・ゴノレエ（Neisseria gonorrhoeae）、バシラス・アンスラシス（Bacillus anthracis）、ブルコルデリア・カパシア（Burkholderia cepacia）、カンピロバクター・ジェジュニ（Campylobacter jejuni）、クラミジア・ニューモニエ（Chlamydia pneumoniae）、クラミジア・トラコマティス（Chlamydia trachomatis）、クロストリジウム・ボツリヌム（Clostridium botulinum）、クロストリジウム・ディフィシレ（Clostridium difficile）、クリプトコッカス・ネオホルマンス（Cryptococcus neoformans）、エンテロバクター・クロアケ（Enterobacter cloacae）、エンテロコッカス・フェカリス（Enterococcus faecalis）、ヘリコバクター・ピロリ（Helicobacter pylori）、クレブシエラ・ニューモニエ（Klebsiella pneumoniae）、マイコバクテリウム・レプレ（Mycobacterium leprae）、マイコバクテリウム・ツベルクローシス（Mycobacterium tuberculosis）、シュードモナス・エルギノーサ（Pseudomonas aeruginosa）、サルモネラ・パラティフィ（Salmonella paratyphi）、サルモネラ・ティフィ（Salmonella typhi）、スタフィロコッカス・アウレウス（Staphylococcus aureus）、クレブシエラ・ニューモニエ（Klebsiella pneumoniae）、リステリア・モノサイトゲネス（Listeria monocytogenes）、モキサレラ・カタラリス（Moxarella catarrhalis）、シゲラ・ジセンテリア（Shigella dysenteriae）、シゲラ・フレクスネリ（Shigella flexneri）、シゲラ・ソンネイ（Shigella sonnei）、スタフィロコッカス・エピエルミディス（Staphylococcus epidermidis）、ストレプトコッカス・ニューモニエ（Streptococcus pneumoniae）、および上記種のいずれかの属に入る種。
【００２１】
従って、本発明の目的は、新規単離抗原性ポリペプチド、およびコアＢ２／Ｄゲノムに属し、偏共性大腸菌には存在しないポリヌクレオチドを提供することにある。
【００２２】
本発明のもう一つの目的は、かかる抗原性ポリペプチドまたはペプチド性フラグメントに対して生起させた抗体を提供することにある。
【００２３】
本発明のさらなるもう一つの目的は、当該ポリヌクレオチドを含むベクターおよび宿主細胞を提供することにある。
【００２４】
本発明のもう一つの目的は、ＥｘＰＥＣに起因する腸管外感染症およびＥｘＰＥＣ抗原性ポリペプチドに相同の抗原性ポリペプチドを発現する他の病原性菌株に起因する病因に特異的なワクチン組成物を提供することにある。
【００２５】
また、本発明は腸管外であるヒトまたは動物のコンパートメントにおける大腸菌の成長（全身性下痢性感染症、例えば、敗血症、腎盂腎炎、または新生児髄膜炎）を検出および処置する手段に関する。
【図面の簡単な説明】
【００２６】
【図１】クローニングと発現後のタンパク質精製結果を示す、アフィニティカラム精製後の組換えタンパク質のクマシーブルー染色ＳＤＳゲルである。
【図２】Ｂ２／Ｄ対照標準株からのゲノムＤＮＡとのハイブリダイゼーション後のＤＮＡアレイの写真である。
【発明を実施するための形態】
【００２７】
本発明にて使用される単離した抗原性ポリペプチドはＢ２／Ｄ大腸菌に特異的であり、大腸菌のＡおよびＢ１分離株には存在しないポリペプチド内から選択する。それらはコアＢ２／Ｄゲノムに属する遺伝子がエンコードし、共生大腸菌には存在しない。
【００２８】
それらは配列番号１１から６６もしくは１３３〜１４５の配列または配列番号１１から６６もしくは１３３〜１４５の全配列のそれぞれと最少２５％の同一性を有する相同配列からなる群において選択される配列を有する。
【００２９】
配列番号１４、１５、１７、２１、２２、２３、２８、２９、３０、３２、３６、３８、３９、４１〜４４、４６、４９、５０、５２から５５、５８、６０、６３、１３３〜１３８の配列を有する単離したポリペプチドは新規のポリペプチドであり、従って、本発明の一部である。
【００３０】
また、本発明は相同性単離抗原性ペプチドにも関係し、該べプチドは上記定義の配列番号の配列を有するポリペプチド、取分け配列番号１４、１５、１７、２１、２２、２３、２８、２９、３０、３２、３６、３８、３９、４１〜４４、４６、４９、５０、５２から５５、５８、６０、６３、１３３〜１３８の配列を有するポリペプチドに少なくとも２５％の同一性を有するポリペプチド、またはデフォルトパラメータによるＢＬＡＳＴＰまたはＢＬＡＳＴＸを用いて決定した場合に、当該配列番号に対応する配列をもつポリペプチドの少なくとも５個、少なくとも１０個、少なくとも２０個、少なくとも３０個、少なくとも４０個、少なくとも５０個、少なくとも６０個もしくは６０個を超える連続的アミノ酸からなるフラグメントに少なくとも２５％の同一性を有するポリペプチドを含んでなる。
【００３１】
当該ポリペプチドは以下の工程からなる方法により得られる：
ａ−配列分析にもとづき、外膜に位置しているか、またはバクテリアが分泌するポリペプチドの配列を選択する工程；
ｂ−Ｂ２／Ｄ臨床分離株に保存された当該ポリペプチドをコードする遺伝子を同定する工程；
ｃ−工程ａにて同定し、工程ｂにてＢ２／Ｄ分離株に保存されたものであると判定したポリペプチドを精製する工程；
ｄ−動物モデルを使用し、該ポリペプチドの免疫原性を試験する工程。
【００３２】
本発明において、用語“保存された”(conserved)とは、該ポリペプチドをコードする遺伝子が、Ｂ２／Ｄ分離株中に少なくとも５０％の頻度で、好ましくは６０％を超える頻度、より好ましくは８０％を超える頻度、さらにより好ましくは８５％を超える頻度で存在し、またＡ／Ｂ分離株中には４０％未満、好ましくは２０％未満、より好ましくは１５％未満存在することを意味する。
【００３３】
工程ｃにおいて使用される動物モデルは感染成熟(adult)動物で、最終的に免疫低下する動物である。
【００３４】
成熟動物、取分けマウスを腹腔内感染させ、最終点では動物が死に至るかおよび／または菌血症となるか測定する。
【００３５】
動物は、例えば、好中球減少を誘発するシクロホスファミドを注射することにより免疫低下させることができる。かかるモデルは免疫低下した患者において、大腸菌による敗血症予防のために該抗原を使用することを保証するだろう。もう一つの動物モデルは２〜３日令の乳仔マウスである。
【００３６】
Ｂ２／Ｄの性質を保存し、上記方法の工程ｄに定義した抗原である変異体または分別配列もまた本発明の一部である。本明細書において“変異体”という用語は元の基本配列に関して挿入および／または欠失および／または置換を有する配列を意味するものとする。本明細書において“分別”(fractional)という用語は元の基本配列のフラグメントを意味するものとする。
【００３７】
本発明はまた、普遍的遺伝子コードに従い、またこのコードの縮重を考慮した上記定義のようなポリペプチドをコードする単離したポリヌクレオチドの使用にも関する。“ポリヌクレオチド”という用語はｃＤＮＡを含むＤＮＡなど、ｍＲＮＡを含むＲＮＡなどのヌクレオチド配列を包含する。
【００３８】
当該ポリヌクレオチドは、好ましくは配列番号７７から配列番号１３２または１４６から１５８に相当する配列を有する。
【００３９】
より好ましくは、当該ポリヌクレオチドは配列番号８０、８１、８３、８７、８８、８９、９４，９５、９６、９８、１０２、１０４、１０５、１０７〜１１０、１１２、１１５、１１６、１１８、１１９、１２６、１２７、１３０、１３２、１３５、１４６〜１５１に相当する配列を有する。
【００４０】
本発明はまた当該ポリヌクレオチドの相同体にも関する。当該相同体は、デフォルトパラメータによるＢＬＡＳＴＮを用いて決定した場合に、当該配列をもつポリヌクレオチドに少なくとも２５％の同一性を有するか、または当該配列番号の１つを有するポリヌクレオチドの少なくとも１５個、少なくとも３０個、少なくとも６０個、少なくとも９０個、少なくとも１２０個、少なくとも１５０個、少なくとも１８０個もしくは１８０個を超える連続したヌクレオチドからなるフラグメントに少なくとも２５％の相同性を有し、それらは本発明によるポリペプチドの抗原性を有するポリペプチドをコードし得る限りにおいて、本発明に包含されるものである。
【００４１】
本出願はまた当該ポリヌクレオチドの少なくとも１つを含んでなるベクターおよび遺伝子工学により形質転換した細胞を目的とするものであり、該細胞は形質移入により当該ポリヌクレオチドの少なくとも１種および／または本発明による少なくとも１種のベクターを含んでなることを特徴とし、および／または当該形質転換がこの細胞により上記定義のようなポリヌクレオチドに相当する少なくとも１種のポリペプチドの産生を誘導することを特徴とする。
【００４２】
本発明はまたそれ故に大腸菌に対するワクチンとして有用な抗原性ポリペプチドを単離同定する方法に関する。
【００４３】
かかる方法は以下の工程を含んでなる：
ａ−配列分析にもとづき、外膜に位置しているか、またはバクテリアが分泌するポリペプチドの配列を選択する工程；
ｂ−Ｂ２／Ｄ臨床分離株に保存された当該ポリペプチドをコードする遺伝子を同定する工程；
ｃ−工程ａにて同定し、工程２にてＢ２／Ｄ分離株に保存されたものであると判定したポリペプチドを精製する工程；
ｄ−動物モデルを使用し、該ポリペプチドの免疫原性を試験する工程。
【００４４】
選択した抗原性ポリペプチドは、単独または組合せで、病原性および感染部位（ＵＴＩ、腎盂腎炎、敗血症、菌血症、新生児髄膜炎）に関係なく、ＥｘＰＥＣ株による感染予防のために抗体応答を誘発することが可能である。
【００４５】
かかるポリペプチドは取分け配列番号１から配列番号６６もしくは１３３〜１４５の配列を有するか、または相同性配列に相当する。
【００４６】
従って、本発明は大腸菌腸管外感染に特異的なワクチン組成物であって、上記定義の少なくとも１種の抗原性ポリペプチドまたはそのフラグメントの有効量と担体とを含んでなり、特に、配列番号１から配列番号６６の少なくとも１種のポリペプチドを含んでなる組成物に関するが、配列番号８と１３３〜１４５およびその相同性ポリペプチドは除外する。
【００４７】
かかるワクチン組成物は尿路系感染、腎盂腎炎、敗血症、菌血症、新生児髄膜炎の予防に特に有用である。
【００４８】
本発明のワクチン組成物は以下の患者について適応とする：
−免疫抑制した患者、理想的には免疫抑制療法の開始前の患者；癌、糖尿病、白血病の患者、移植患者、長期ステロイド療法を受けている患者。
【００４９】
−大腸菌感染の危険の高い外科手術前の患者（腹部外科手術）
−すべての症例において、本発明の大腸菌ワクチンは黄色ブドウ球菌ワクチンと併用して投与し得る。
【００５０】
−再発ＵＴＩの患者、取分け１回の腎盂腎炎のエピソードをもつ患者
−新生児感染の予防には母体のワクチン接種を必要とし、潜在的な問題を避けるために妊娠のかなり前にワクチン接種を要する。理想的には、かかるワクチンは遅発性新生児感染をも予防するために、Ｂ群連鎖球菌多糖感染ワクチンと併用すべきである。指摘すべきことは、妊婦においてＢ２／Ｄ大腸菌に対する抗体のレベルを誘発することは、常に妊娠という状況下で危険性のあるＵＴＩをも予防し得ることである。
【００５１】
当該ワクチン組成物の剤形および用量は、標的とした適応症、所望の投与方法、および検討下の患者（年齢、体重）の関数として当業者が開発し、調整することが可能である。
【００５２】
これらの組成物は１種以上の生理学的に不活性な基剤（ベヒクルvehicle）と、特に、剤形および／または所望の投与方法に適した賦形剤を含有してなる。
【００５３】
例えば、該ワクチンはアジュバントとしてアルミニウム・ベース無機塩を含む無菌水中の精製ポリペプチド懸濁液とし、最初と追加（ブースター）の注射として皮下投与することができる。
【００５４】
上で同定したポリペプチドに対して起こした抗体もまた本発明の一部である。
【００５５】
該抗体は生理的条件下に（インビボまたはインビボ類似）ヒトまたは動物生体に投与した場合、またＥＬＩＳＡ型条件下に当該結合生成物をアッセイおよびインビトロ法に使用しようとする場合に、当該ポリペプチドに結合することができる。かかる抗体はヒトまたは動物において、ＥｘＰＥＸ株の腸管外増殖を有利に阻害する。
【００５６】
該抗体は新生児または外科的手技を受ける患者などのリスク集団における重篤な感染症の処置および予防のために、ポリペプチド抗原に特異的な抗体による免疫療法での適用に特に有用である。これらの適用のために、特異的ヒトモノクローナル抗体（Ｍａｂ）を該ペプチドまたはポリペプチドから誘導し得る。
【００５７】
本発明によるポリペプチドを使用してかかる抗体を製造する方法は、当業者が利用可能である。当該方法は簡便な方法であり、詳しくは、ウサギなどの動物の免疫と生成した血清の採取、および任意工程としての得られた血清の精製からなる。モノクローナル抗体の製造に適した技法はケーラーとミルシュタインの方法である（Kohler and Milstein, Nature 1975, 256: 495-497）。
【００５８】
当該抗体は意図するヒトまたは動物の細胞を認識しない。
【００５９】
特に、ポリペプチド抗原に特異的なモノクローナル抗体による免疫療法適用例としては、新生児または外科的手技を受ける患者などのリスク集団における重篤な感染症の処置および予防である。これらの適用のためには、特異的ヒトモノクローナル抗体を該ペプチドまたはポリペプチドから誘導する。
【００６０】
該抗体またはそのフラグメントをヒトに投与しようとする場合には有利にヒト化する。
【００６１】
別法として、ヒト化Ｍａｂは該抗原に特異的なマウスまたはラットのＭａｂから誘導し得る。これらの完全にヒト化したＭａｂは、常套の分子技法を用いて、親となるマウスまたはラットの抗菌性抗体の相補性決定領域をヒトのＩｇＧ１カッパ重鎖および軽鎖の枠組みに接続することで構築する。
【００６２】
本発明はまた望ましくない腸管外大腸菌の存在もしくは不存在の診断のために、および／または腸管外大腸菌の感染の診断のために、配列番号１４、１５、１７、２１、２２、２３、２８、２９、３０、３２、３６、３８、３９、４１〜４４、４６、４９、５０、５２から５５、５８、６０、６３、１３３〜１３８の配列を有するポリペプチド、抗体またはポリヌクレオチドの少なくとも１種をその有効量で使用することを目的とする。
【００６３】
かかる化合物の存在または不存在の検出は、具体的には、ヌクレオチドのハイブリダイゼーションにより、ＰＣＲ増幅により、またはそのポリペプチド生成物の検出により実施し得る。かかる化合物の存在検出により、Ｂ２／Ｄ大腸菌が存在すると結論することができる。
【００６４】
本発明はまた望ましくない大腸菌増殖を軽減および／または予防および／または処置するための医薬組成物に関し、該組成物は上記定義の少なくとも１種のポリペプチド、特に、配列番号１〜６６から１３３〜１４５の配列を有するポリペプチドの有効量を、医薬的に許容し得る担体と組合わせて、含有してなる。
【００６５】
好適な医薬組成物は、配列番号１４、１５、１７、２１、２２、２３、２８、２９、３０、３２、３６、３８、３９、４１〜４４、４６、４９、５０、５２から５５、５８、６０、６３、１３３〜１３８の配列を有する少なくとも１種のポリペプチドを含有してなる。
【００６６】
また、本発明は組成物の製造、詳しくは、大腸菌感染（例えば、全身性および非下痢性感染症）などの望ましくない大腸菌の増殖、腸管外大腸菌の存在または衛生上の汚染を軽減および／または予防および／または処置する医薬組成物製造のために、上記定義のポリペプチドを使用することを目的とする。
【００６７】
図１および２を参照しながら、以下の実施例に従い本発明を説明するが、これら実施例は本発明を制限するものではない。
【実施例１】
【００６８】
配列１〜６６および１３３〜１４５から選択したポリペプチドの免疫原性アッセイ(配列番号８を除く)
選択したポリペプチドのクローニング発現と精製
配列番号２８に相当するポリペプチドをエンコードする配列番号９５を有する核酸を、古典的なクローニング法に従って、原核細胞発現ベクター中で、シグナル配列（１６個の最初のアミノ酸をコードする）なしにクローン化した。組換えプラスミドを用い、大腸菌株ＢＬ２１を形質転換した。組換えプラスミドを含む形質転換細胞をアンピシリン１００μｇ／ｍｌ含有するＬＢ培地で選択した。個々のクローンを取り出し、１ｍＭのＩＰＴＧ存在下に増殖させ、組換えタンパク質の発現を誘導した。培養細胞の全タンパク質を細胞溶解により抽出した。組換えタンパク質はアフィニティカラムで精製した。
【００６９】
クローニングおよび発現後のタンパク質精製
ＩＰＴＧ誘発バクテリアの全細胞溶菌液をＮｉ−ＮＴＡマトリックス（キアゲン（Qiagen）登録商標）と４℃で６０分間混合し、カラムに負荷load)した。カラムを洗浄して非特異結合を除き、組換えタンパク質は溶出バッファー（ｐＨ５.９）１ｍｌにより３回溶出した。次いで該タンパク質を溶出バッファー（ｐＨ４.５）１ｍｌにより４回溶出した。
【００７０】
図１はアフィニティカラム精製後の組換えタンパク質のクマシーブルー染色ＳＤＳゲルを表す；ＰＭ：マーカー；Ｅ１〜Ｅ４：各精製フラクションから収集したサンプル。矢印は組換えタンパク質に相当するバンドを示す。
【００７１】
動物モデルにおける免疫原性試験
配列番号２８からのポリペプチド調製物をスイスマウスに注射し、以下のように抗体応答を誘発した：
第０日に該タンパク質２０μｇをＰＢＳと完全フロイントアジュバントの１：１溶液１００μｇとして注射することにより第１回の免疫を実施した。対照動物にはＰＢＳと完全フロイントアジュバントの１：１溶液１００μｌを注射した。
【００７２】
追加の注射（ブースター）は第２１日目にＰＢＳと完全フロイントアジュバントの１：１溶液１００μｌ中タンパク質１０μｇで実施した。
【００７３】
ワクチン接種動物の血清はマウスの尾部に穿刺し、血液を引き抜き調製した。
【００７４】
動物血清中の特異抗体検出はブースター注射前２０日目に、標準的プロトコールに従い、ウエスタンブロット法により実施した。精製したポリペプチドを電気泳動（１レーンあたり１０μｇ）に付し、ニトロセルロース膜に移行させた。
【００７５】
この膜は次いでＰＢＳ／０.１％トゥイーン２０／５％粉ミルクと３５分間インキュベーションして飽和させた。
【００７６】
希釈した血清をこの膜と４５分間インキュベートした。膜はＰＢＳ／トゥイーンで５分間３回洗浄した。次いで、結合した抗体を西洋わさびペルオキシダーゼ酵素にカップル結合した抗マウスＩｇＧで認識した。ＰＢＳ／トゥイーンで３回、ＰＢＳで３回洗浄した後、色素源基質ＤＡＢと過酸化水素を添加して酵素活性を呈示させた。
【００７７】
結果：１／１００に希釈したワクチン接種動物の血清は、注射したポリペプチドに相当するユニークバンドを呈示した。対照動物の血清には該ポリペプチドに対する抗体を検出できなかった。
【００７８】
第４２日目にシクロホスファミド３００μｌを、また第４５日目に２００μｌをマウスの腹腔内に注射し、好中球減少症を誘発して攻撃感染に対する感受性を上昇させた。第４６日目にワクチン接種マウスおよび対照マウスに、大腸菌Ｂｗｔ２／Ｄ株Ｃ５をＬＤ５０（致死用量）の１０倍に等しい用量で腹腔内注射し、攻撃した。
【００７９】
選択したポリペプチドの免疫原性と選択したポリペプチドによるワクチン接種が賦与した予防効果を、攻撃後３日目のワクチン接種動物の生存により評価した。
【００８０】
ポリペプチドの免疫原性を証明するワクチン接種のもう一つの例：
−２４匹のＢａｌｂ／ｃマウス、メス、６週令に該タンパク質と完全フロイントアジュバントを皮下注射することにより免疫し、１４匹の対照マウスにはＣＦＡとＰＢＳを注射した。
【００８１】
−３週間後、１０μｇのタンパク質と不完全フロイントアジュバントをブースター注射した。
【００８２】
ワクチン接種プロトコール：
０日目：組換えタンパク質２０μｇのＣＦＡ溶液０.１ｍｌにより、マウス（２４匹）を皮下投与免疫化
２１日目：組換えタンパク質１０μｇのＩＦＡ溶液０.１ｍｌによる追加免疫
６１日目：血液サンプル採取−免疫マウス４匹−対照マウス２匹
→抗原特異抗体応答の分析（ＥＬＩＳＡ）
全溶菌液のＷＢ（ウエスタンブロット）
６２日目：マウスの攻撃
６２日目の攻撃の前に、６１日目に血清を集め、ワクチン接種動物での抗体応答を分析した。
【００８３】
・免疫マウスの血清ＷＢ分析を実施し、上記の免疫に使用した組換えタンパク質に対する抗体応答を検出した。
【００８４】
・ＥＬＩＳＡアッセイを設定し、ワクチン接種動物の抗体力価を測定した。
【００８５】
−  各組換えタンパク質は９６穴プレート上に２００ｎｇ／１００μｌコーティングバッファーと共に被覆し、そのプレートを３％ＢＳＡ／ＰＢＳで飽和した。
【００８６】
−  血清はＰＢＳ１×／１％ＢＳＡにより１：５００から１：１０２４０００に２倍系列希釈し、ペルオキシダーゼ結合したウサギ抗マウスＩｇＧおよびＯＰＤ（ｏ−フェニレンジアミン）色素源基質を用いて抗体結合を呈示させた。
【００８７】
−  サノフィ（Sanofi）ディアグノスティック・パスツールＰＲ２１００（登録商標）によりＯＤ４９５を読み取る。
【００８８】
・結果：
【表１】
2010189411.tif 000002
【００８９】
・バクテリアが発現した未変性抗原を認識する血清能力を評価するために、ウエスタンブロットを全バクテリア溶菌液についても実施した。
【００９０】
この目的のために、ＯＤ６００＝０.５〜０.６まで鉄キレート化剤を添加したかまたは添加しないＬＢ培地中でバクテリアを増殖させ、１００００ｒｐｍで５分間遠心分離することによりペレット化した。このペレットをＳＤＳ含有１Ｘ負荷バッファー中に再懸濁して溶菌し、ゲル上を移動させる前に９５℃で５分間加熱した。次いで、ウエスタンブロットアッセイを対照の血清およびワクチン接種動物の血清について実施した。
【００９１】
表２の結果は、組換えタンパク質に対しての、また大腸菌溶菌液に対してのワクチンを接種したマウスの血清について得られた結果を示す。
【表２】
2010189411.tif 000003
【００９２】
・防御アッセイ、エンドポイント：死亡率
第６２日目に、ワクチン接種マウス２０匹および対照マウス１０匹に、Ｂ２群に属する大腸菌病原性株を、ＬＤ５０（５.１０５ｃｆｕ／マウス）に等しい用量で腹腔内注射により攻撃投与した。死亡率を４８時間目に記録する。表３の結果はワクチン接種マウス群と対照マウス群における生存の差を表す防御率として表したものである。
【表３】
2010189411.tif 000004
【００９３】
・防御アッセイ、エンドポイント：菌血症
第６２日目に、ワクチン接種マウス１０匹および対照マウス５匹に、Ｂ２群に属する大腸菌病原性株をＬＤ５０（１.１０５ｃｆｕ／マウス）の１／５に等しい用量で腹腔内注射により攻撃投与した。この感染用量でマウスは４８日まで生きながらえた。４８時間目に各マウスについてヘパリンの存在下に血液採取した。菌血症を評価するために、血液をＬＢ培地に塗布し、一夜培養後にコロニー数を計測した。
【実施例２】
【００９４】
臨床分離株においてＢ２／Ｄ群大腸菌に特異的なＯＲＦのＤＮＡ配列の分布
Ｂ２／Ｄ群大腸菌に特異的なＤＮＡアレイ(array)膜を作製するために、大腸菌のＢ２／Ｄコアゲノムに特異的なものとして同定したＯＲＦに相当するＤＮＡをＰＣＲにより増幅し、当業者の標準法を用いてナイロン膜にスポットした。
【００９５】
３０種の大腸菌臨床分離株（その内の２３種は病理学的症状からのもので、６種はヒトの正常叢から単離）からの染色体ＤＮＡを調製し、３３Ｐにて放射性標識した。
【００９６】
これら臨床分離株からのＤＮＡを次いでＢ２／Ｄ特異ＤＮＡアレイにハイブリッド形成させた。その結果をリン画像分析計で読取り、スポットの反応性は画像分析ソフトウエアにて分析した。ハイブリダイゼーションが特定のＯＲＦに対して陽性シグナルを与えた場合、このＯＲＦは分離株のゲノムに存在すると考えられる。該アレイの精度管理は、図２に示した大腸菌の対照標準株からのプローブＤＮＡのハイブリダイゼーションにより行う。図２はＢ２／Ｄ対照標準株のゲノムとハイブリダイゼーションさせた後のＤＮＡアレイの写真を示す。
【００９７】
これらの実験に用いた方法の詳細はティンスレイら（Tinsley et al., Methods Enzymol., 2002, 358; 188-207）が以前に記載している。
【００９８】
表４に示した結果は、大腸菌株の３つの異なる群、Ａ、ＢおよびＤにおける各ＯＲＦ検出の頻度として表す。
【表４ａ】
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【００９９】
【表４ｂ】
2010189411.tif 000006
【０１００】
【表４ｃ】
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【０１０１】
【実施例３】
【０１０２】
ＥｘＰＥＣによる如何なる感染をも予防することを企図するワクチン組成物
配列番号２８からなる配列がコードするポリペプチドを毒素と接合させ、生理的に不活性な基剤に加える。
【０１０３】
この接合ペプチドは小児用ワクチンに任意に加える。
【０１０４】
組成物は無菌とし、非経口、皮下または筋肉内に注射し得る。
【０１０５】
当該組成物はスプレーによって粘膜に噴霧してもよい。
【図１】
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【図２】
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