(57)【要約】【課題】生体分子等の分析に用いる発光を一定の発光量で安定に得ることができる発光測定方法および装置を提供する。【解決手段】被検物質とそれに結合した発光酵素とが表面上に固定化された検査基板5に紫外線により活性化される発光基質を含んだ試薬を供給する供給工程と、前記試薬が供給された検査基板5に紫外線8を照射する照射工程と、前記紫外線により活性化された発光基質と前記被検物質とが反応して発生する発光をＣＣＤ2などで測定する測定工程とを行う。前記照射工程では、前記反応による単位時間当たりの発光が一定となるように所定の時間、紫外線8を照射する。【選択図】図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
被検物質を分析するための発光測定方法であって、前記被検物質とこの被検物質に結合した発光酵素とが表面上に固定化された基板に、紫外線により活性化される発光基質を含んだ試薬を供給する供給工程と、前記試薬が供給された基板に紫外線を照射する照射工程と、前記紫外線により活性化された発光基質と前記発光酵素とが反応して発生する発光を測定する測定工程とを有しており、前記照射工程では、前記反応による単位時間当たりの発光が一定となる所定の時間、紫外線を照射することを特徴とする発光測定方法。
【請求項２】
前記試薬中の発光基質は、紫外線照射で解離する保護基を結合させることで不活性化されていることを特徴とする請求項１に記載の発光測定方法。
【請求項３】
前記発光基質がアデノシン−５´−３リン酸であり、前記保護基がパラ−ニトロフェニルエチル基であり、前記発光基質の反応を触媒する発光酵素がルシフェラーゼであることを特徴とする請求項２に記載の発光測定方法。
【請求項４】
前記紫外線の照射時間が少なくとも３０秒であることを特徴とする請求項１から請求項３のいずれかに記載の発光測定方法。
【請求項５】
被検物質を分析するための発光測定装置であって、発光酵素と結合した被検物質が固定化されていて、その上に紫外線により活性化される発光基質を含んだ試薬が供給された基板を載置するステージと、前記ステージ上の基板に紫外線を照射する光源と、前記紫外線により活性化された発光基質と前記被検物質とが反応して発生する発光を測定する測定部とを備えたことを特徴とする発光測定装置。
【請求項６】
前記試薬中の発光基質は、紫外線照射で解離する保護基を結合させることで不活性化されていることを特徴とする請求項５に記載の発光測定装置。
【請求項７】
前記発光基質がアデノシン−５´−３リン酸であり、前記保護基がパラ−ニトロフェニルエチル基であり、前記発光酵素がルシフェラーゼであることを特徴とする請求項６に記載の発光測定装置。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、化学発光や生物発光を測定して被検物質を分析する発光測定方法及び発光測定装置に関する。
【背景技術】
【０００２】
従来、化学発光や生物発光を利用した分析方法のなかで、酵素を用いる発光を利用して、ＤＮＡ、ＲＮＡ、タンパク質などの生体分子あるいは化学物質を酵素高感度に検出あるいは測定可能であることが多数報告されており、サザンハイブリダイゼーション、ノーザンハイブリダイゼーション、ウエスタンブロッティング、酵素結合免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）、ドットブロッティング、及びマイクロアレイ等の手法に応用されている。使用される酵素には、西洋ワサビ由来ペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β−ガラクトシダーゼなどがある（例えば、非特許文献１及び非特許文献２参照）。
【０００３】
西洋ワサビ由来ペルオキシダーゼを使用する場合、ルミノールと過酸化水素とを発光基質とすると、発光効率は１％程度と低く（例えば、非特許文献３参照）、また発光持続性も低く、発光反応の開始初期に発光極大を示した後、発光が急激に減衰する。これを改良するためにアクリジン誘導体を基質とすることが提案されていて（例えば特許文献１、特許文献２、及び非特許文献４参照）、ルミノールを用いるときに比べて発光の持続性が向上することが示されている。
【０００４】
アルカリホスファターゼ、β―ガラクトシダーゼについては、発光基質としてアダマンチルジオキセタン誘導体を用いる方法が提案されており（例えば、非特許文献５、非特許文献６、及び非特許文献７参照）、これによれば、ペルオキシダーゼ−ルミノールに比べて発光効率が２５％まで向上し、単位時間当たりの発光量も安定に持続する。このため、サザンハイブリダイゼーション、ノーザンハイブリダイゼーション、ウエスタンブロッティングなど、生体分子あるいは化学物質をメンブレンに固定して、メンブレンで生成される発光をフィルムに露光することにより検出する方法が従来から実施されている。この方法は、フィルムの至適な露光条件を得るために露光を繰り返し行えるという利点を有している（例えば、特許文献３、特許文献４、特許文献５参照）。
【０００５】
他の発光酵素として、ホタル由来のルシフェラーゼが従来より知られている。このルシフェラーゼは、発光効率は８８％と高いものの、それ自体の安定性が低かったのであるが、アミノ酸配列の一部を遺伝子操作により置換することで耐熱安定性を向上させ得ることが示された（例えば、特許文献６、非特許文献８及び非特許文献９参照）。さらに、このルシフェラーゼも、発光反応の開始初期に発光極大を示した後に発光が急激に減衰するものであったが、反応試薬溶液中に補酵素Ａ及び高濃度の還元剤を添加することで発光持続性を向上させ得ることが示された（例えば、特許文献７、特許文献８、特許文献９及び特許文献１０参照）。
【特許文献１】米国特許第６８７２８２８号公報
【特許文献２】米国特許第７２４７７２６号公報
【特許文献３】米国特許第５５４３２９５号公報
【特許文献４】米国特許第５５７８２５３号公報
【特許文献５】米国特許第５８９１６２６号公報
【特許文献６】米国特許第６０７４８５９号公報
【特許文献７】米国特許第５２８３１７９号公報
【特許文献８】米国特許第５６５０２８９号公報
【特許文献９】特表平６−５００９２１号公報
【特許文献１０】特開２００１−２２４３９８号公報
【非特許文献１】レオング（Leong, M.M.）ら, J. Histochem. Cytochem., 34巻, 1645頁, 1986年
【非特許文献２】ベック（Beck, S.）ら, Anal. Chem., 62巻, 2258頁, 1990年
【非特許文献３】ロスウェル（Roswell, D.F.）ら, Methods Enzymol., 57巻, 409頁, 1978年
【非特許文献４】アクハバン−タフティ（Akhavan-Tafti, H.）ら, J. Org. Chem., 63巻, 930頁, 1998年
【非特許文献５】シャープ（Schaap, A.P.）ら, Tetrahedron Lett., 28巻, 935頁, 1987年
【非特許文献６】シャープ（Schaap, A.P.）ら, Tetrahedron Lett., 28巻, 1155頁, 1987年
【非特許文献７】シャープ（Schaap, A.P.）ら, Tetrahedron Lett., 28巻, 1159頁, 1987年
【非特許文献８】カジヤマ（Kajiyama, N.）ら, Biochemistry, 32巻, 13795頁, 1993年
【非特許文献９】カジヤマ（Kajiyama, N.）ら, Biosci. Biotechnol. Biochem., 58巻, 1170頁, 1994年
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
ルシフェラーゼは、上述のように補酵素Ａ及び高濃度の還元剤の添加によって発光の持続性を向上できるようになったものの、つまり発光が急激に減衰することはなくなったものの、徐々に減衰することは避け得ない。低濃度の生体分子を検出するために測定時間を長く設定したり、一度の反応工程で繰り返し測定を行ったりする場合に、一定の発光量を安定して得ることは依然として困難である。
【０００７】
本発明は、上記問題に鑑み、生体分子等の分析に用いる発光を一定の発光量で安定に得ることができる発光測定方法および装置を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
上記課題を解決するために、本発明の発光測定方法は、被検物質を分析する際に、前記被検物質とこの被検物質に結合した発光酵素とが表面上に固定化された基板に、紫外線により活性化される発光基質を含んだ試薬を供給する供給工程と、前記試薬が供給された基板に紫外線を照射する照射工程と、前記紫外線により活性化された発光基質と前記発光酵素とが反応して発生する発光を測定する測定工程とを行い、前記照射工程では、前記反応による単位時間当たりの発光が一定となる所定の時間、紫外線を照射することを特徴とするもので、紫外線を照射することで発光基質を活性化して反応を開始させるので、発光を安定に持続させることができる。
【０００９】
前記試薬中の発光基質は、紫外線照射で解離する保護基を結合させることで不活性化されていることを特徴とする。前記発光基質がアデノシン−５´−３リン酸であり、前記保護基がパラ−ニトロフェニルエチル基であり、前記発光基質の反応を触媒する発光酵素がルシフェラーゼであることを特徴とする。前記紫外線の照射時間が少なくとも３０秒であることを特徴とする。
【００１０】
また本発明の発光測定装置は、発光酵素と結合した被検物質が固定化されていて、その上に紫外線により活性化される発光基質を含んだ試薬が供給された基板を載置するステージと、前記ステージ上の基板に紫外線を照射する光源と、前記紫外線により活性化された発光基質と前記被検物質とが反応して発生する発光を測定する測定部とを備えたことを特徴とする。
【００１１】
前記試薬中の発光基質は、紫外線照射で解離する保護基を結合させることで不活性化されていることを特徴とする。
前記発光基質がアデノシン−５´−３リン酸であり、前記保護基がパラ−ニトロフェニルエチル基であり、前記発光酵素がルシフェラーゼであることを特徴とする。
【発明の効果】
【００１２】
本発明の発光測定方法及び発光測定装置によれば、紫外線を照射することで発光基質を活性化して反応を開始させるようにしたため、発光を安定に持続させることができ、測定時間を長くとって低濃度域の検出を行ったり、測定を繰り返す場合も、一定の発光量を安定して得ることが可能である。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１３】
以下、本発明の実施の形態を図面に基づいて説明する。
まず、発光酵素として従来より用いられているルシフェラーゼの発光反応について説明する。発光反応は次式で表される。
【００１４】
【化１】
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ルシフェラーゼは、マグネシウムイオン（Ｍｇ２＋）を酵素活性化因子とし、ルシフェリンとＡＴＰ（アデノシン−５´−３リン酸）と酸素（Ｏ２）とを基質としたときに、酵素活性を発揮して、オキシルシフェリン、ＡＭＰ（アデノシン−５´−１リン酸）、ピロリン酸（ＰＰｉ）、及び二酸化炭素（ＣＯ２）を生成させ、それに伴って発光（ｈν）が生じる。この際にルシフェラーゼと基質とが接触すると瞬時に反応が進行するため、前述したように反応開始初期に発光極大に達し、その後に急激に発光が減衰する。この発光の急激な減衰を防止するために、反応試薬溶液に補酵素Ａと高濃度のジチオスレオトールを添加することが提案されている。
【００１５】
ルシフェラーゼによる発光の経時的変化を図７に示す。補酵素Ａとジチオスレオトールの少なくとも一方を含む３種類の反応試薬溶液I、II、IIIを用い、それぞれの発光輝度を１分毎に追跡した。反応試薬溶液I、II、IIIには、共通して、１ｍＭ-ＡＴＰ、１ｍＭルシフェリン、０．１５ｍＭエチレンジアミン四酢酸、１０ｍＭ硫酸マグネシウム、１ｍｇ／ｍＬ牛血清アルブミン、２５ｍＭトリシン−水酸化ナトリウム（ｐＨ７．８）を含有させた。反応試薬溶液I（結果を○で示す）はさらに０．１ｍＭジチオスレイトールを添加した。反応試薬溶液II（結果を△で示す）はさらに０．１ｍＭジチオスレイトールと１ｍＭ補酵素Ａとを添加した。反応試薬溶液III（結果を□で示す）はさらに１ｍＭ補酵素Ａと３５ｍＭジチオスレイトールとを添加した。図７の結果によれば、発光の減衰は、補酵素Ａと高濃度のジチオスレオトールを添加した反応試薬溶液IIIにおいて、これらの双方を添加していない反応試薬溶液I、IIに比べて緩和されているが、単位時間当たり一定の発光量は持続されていない。
【００１６】
これに対し、本発明では、ルシフェラーゼの基質を不活性にするために予め保護基を結合させる。たとえば、ＡＴＰに保護基としてパラ−ニトロフェニルエチル基を結合させたもの、つまり、Ｐ３−［１−（２−ニトロフェニル）エチル］ＡＴＰ（Caged−ＡＴＰと呼ばれている）（化２）を使用する。Caged−ＡＴＰに紫外線を照射すると、パラ−ニトロフェニルエチル基が解離して遊離のＡＴＰ（化３）が生じ、それによりルシフェラーゼの反応が開始し、発光が生じる。この際に紫外線を連続照射することとし、単位時間当たり一定の発光量の持続を確保する。
【００１７】
【化２】
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【００１８】
【化３】
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なお、Caged−ＡＴＰなどのCaged化合物に紫外線を照射してＡＴＰなどの化合物を遊離させることは既知である（例えば、McCray, J.A.ら，Proc. Natl. Acad. Sci. USA，77巻，7237頁，1980年、特表２００４−５１４４６０、特表２００４−５３５５８４）。紫外線はパルス光がミリ〜ナノ秒オーダー照射されている。かかるパルス光では、Caged化合物は十分解離した状態とならず、一定の発光量の持続は困難である。
【００１９】
図１は本発明の一実施形態の発光測定装置の概略構成を示す。発光測定装置の本体１は暗箱となっており、外部からの光を遮断するように設計されている。本体１には、検査基板５を載置するためのステージ４と、検査基板５からの発光を撮影するためのＣＣＤ２およびそれにピントを合わせるために装着されたレンズ群３と、検査基板５に紫外線８を照射するブラックライト７とが設置されている。
【００２０】
検査基板５は、図２（ａ）に示すように、基板に適当な固定化処理を施して、試料をスポット９としてアレイ状に多数固定化したものであり、同時多検出を実現可能である。このような検査基板５は、マイクロアレイと呼称されていて既知であり、既知の装置で作製することができる（Nature Genetics Supplement，21巻，15頁，1999年；特表平１０−５０３８４１号公報；米国特許６６１３２８４号公報；米国特許６６９２７０１号公報等）。スポット９の個数は理解し易いように便宜的に示したものであり、図示したスポット数に限定されない。
【００２１】
この検査基板５上に、図２（ｂ）に示すように、スポット９の形成領域を囲む堰６を仮想線で示すように密着させて載置する。このことにより、スポット９の形成領域に液滴を貯留可能なリザーバーが形成され、測定のための処理に必要な液滴をスポット９の表面上に保持することが可能となる。
【００２２】
以下、検査基板５を作製する手順および発光測定方法について具体的に説明する。
図３（ａ）に示す検査基板５は、ニトロセルロースで表面をコートした１インチ×３インチ大のガラス基板（Gentel Biosciences社製）を用い、スポット９として、濃度既知のヒトＩｇＥ（免疫グロブリンＥ）１０を、３ｆｍｏｌ、１ｆｍｏｌ、０．３ｆｍｏｌ、０．１ｆｍｏｌとなるように１枚の基板上に固定化してある。スポット９のスポット径は５１５μｍとした。検査基板５上には、スポット９の形成領域を囲む堰６を密着させて載置している。堰６は内寸２１×２１ｍｍである。
【００２３】
堰６で囲われた基板表面を、室温にて、３％スキムミルクを含有する０．４５Ｍ塩化ナトリウム、０．１％Ｔｗｅｅｎ２０、２５ｍＭトリス−塩酸（ｐＨ７．４）の溶液でブロッキング処理した。この際には、液層厚１ｍｍになるように滴下し、３０分振盪処理した。
【００２４】
次に、図３（ｂ）に示すように、３.３μＭのビオチン１１で標識した抗ヒトＩｇＥ抗体１２を各スポット９のヒトＩｇＥ１０に結合させた。この際にはビオチン１１／抗ヒトＩｇＥ抗体１２を液層厚１ｍｍになるように滴下し、室温で６０分振盪処理した。余剰の抗ヒトＩｇＥ抗体１２を除去するために、０．４５Ｍ塩化ナトリウム、０．１％Ｔｗｅｅｎ２０、２５ｍＭトリス−塩酸（ｐＨ７．４）の溶液にて１分間洗浄する処理を３回繰り返した。
【００２５】
次に、図３（ｃ）に示すように、１ｎＭのストレプトアビジン１３を予め結合させた、ビオチン標識したルシフェラーゼ１４（Biotinylated Luciferase(BLU-Y)(CD：60407)、キッコーマン社製）をスポット９に結合している抗ヒトＩｇＥ抗体１２に結合させた。この際には、ストレプトアビジン１３／ビオチン標識したルシフェラーゼ１４を液層厚１ｍｍになるように滴下し、６０分間の振盪処理をした。余剰のストレプトアビジン１３／ビオチン標識したルシフェラーゼ１４を除去するために、０．４５Ｍ塩化ナトリウム、０．１％Ｔｗｅｅｎ２０、２５ｍＭトリス−塩酸（ｐＨ７．４）の溶液にて１分間洗浄する処理を３回繰り返した。以上により、スポット９中のヒトＩｇＥ１０に、その固定化量に応じて、ビオチン標識したルシフェラーゼ１４が間接的に結合した状態となり、発光測定の準備が完了する。
【００２６】
再び図１を参照する。検査基板５を発光測定装置のステージ４に載置し、堰６で囲われた検査基板５の表面に発光反応試薬溶液を液層厚１ｍｍになるように滴下した。発光反応試薬溶液の組成は、２ｍＭ Caged−ＡＴＰ、２ｍＭルシフェリン、１ｍＭ補酵素Ａ、０．１５ｍＭエチレンジアミン四酢酸、１０ｍＭ硫酸マグネシウム、３５ｍＭジチオスレイトール、１ｍｇ／ｍＬ牛血清アルブミン、２５ｍＭトリシン−水酸化ナトリウム（ｐＨ７．８）とした。この発光反応試薬溶液の組成は、図７にて説明した反応試薬溶液IIIと比べて、２ｍＭ Caged−ＡＴＰ、２ｍＭルシフェリンが異なっている。その他は同じである。
【００２７】
次に、検査基板５にブラックライト７（東芝ライテック社製、極大波長３５２ｎｍ、紫外線放射強度６６μＷ／ｃｍ２）より紫外線８を一定時間照射してルシフェラーゼの発光反応を開始させ、紫外線８の照射を停止した後に１分毎にＣＣＤ２（ビットラン社製、１４０万画素）を露光した。発光輝度を追跡した結果を図４及び図５に示す。
【００２８】
図４は、紫外線の照射時間を変え、検査基板５に３ｆｍｏｌにてＩｇＥを固定化したスポット９から生じた発光の輝度の経時変化を追跡したグラフである。図４（ａ）は１分毎の発光輝度値を示し、図４（ｂ）は同発光輝度値の積算値を示している。図中、○は１５秒間、△は３０秒間、□は６０秒間、紫外線を照射した結果を表している。
【００２９】
１５秒間の紫外線照射では、図４（ａ）に示す通り、反応開始４分後に極大の発光を示し、それから次第に発光が減衰していった。このため、図４（ｂ）に示す積算の発光輝度値は、反応初期の１５分程度までは反応時間に比例して増加しているが、１５分を経過した後は反応時間との比例関係から乖離している。
【００３０】
３０秒間の紫外線照射では、図４（ａ）に示す通り、発光輝度値は反応初期には１５秒照射の場合と比べて低いが、反応開始７分後から一定値が持続した。このため、図４（ｂ）に示す積算の発光輝度値は、反応時間に比例して増加している。
【００３１】
６０秒間の紫外線照射では、図４（ａ）に示す通り、発光輝度値は１５秒あるいは３０秒照射の場合と比べて有意に高く、反応開始５分後からほぼ一定値となった。このため、図４（ｂ）に示す積算の発光輝度値は、反応時間に比例して増加し、１５秒照射の場合と比較しても有意に高い。
【００３２】
図５は、紫外線の照射時間を変え、検査基板５に３ｆｍｏｌ、１ｆｍｏｌ、０．３ｆｍｏｌ、０．１ｆｍｏｌにてＩｇＥを固定化した各スポット９から生じた発光の輝度の経時変化を追跡したグラフである。図５（ａ）は紫外線を１５秒、図５（ｂ）は同３０秒、図５（ｃ）は同６０秒、照射した結果である。なお、図中○は３ｆｍｏｌ、●は１ｆｍｏｌ、△は０．３ｆｍｏｌ、黒△は０．１ｆｍｏｌの基板５に固定化し、形成したスポット９のＩｇＥ量をそれぞれ示している。
【００３３】
紫外線照射時間に対する各ＩｇＥ量での発光輝度値を比較した場合、３ｆｍｏｌ及び１ｆｍｏｌのスポットにおいて、６０秒まで紫外線を連続的に照射することで、優位に発光輝度値が増加することが示されている。一方、０．３ｆｍｏｌ、０．１ｆｍｏｌのスポットでは、紫外線照射時間に依存することなく経時的にも量的にもほぼ一定の発光量である。
【００３４】
なお、図４及び図５には図示していないが、紫外線を照射しない場合、つまり反応試薬溶液を滴下したのみの場合は、ルシフェラーゼからの発光は観察されなかった。
これらの結果は、検査基板５上において、高濃度に被検物質が存在するスポット９でルシフェラーゼ量が高くなり、紫外線照射時間に依存して発光が増大すること、またその場合に、少なくとも３０秒間の紫外線照射で一定の発光量を持続的に生成できることを示している。
【００３５】
したがって、紫外線照射時間が長くなるに従い、Caged−ＡＴＰからＡＴＰへ変換される際の遷移状態の中間体の量が増加し、その中間体からのＡＴＰの生成量が増大することとなり、ルシフェラーゼ量が高い場合に発光量が増大することが考えられる。
【００３６】
発光は単位時間当たり一定量で起きているので、図６に示すように、Caged−ＡＴＰ中間体は、そのオルトフェニルメチル基に紫外線のエネルギー（図中＊印）が蓄積されていると考えられる。つまりCaged−ＡＴＰの一部が、そのオルトフェニルメチル基に紫外線のエネルギーが蓄積したCaged−ＡＴＰ中間体に遷移し、その後にオルトフェニルメチル基が解離してＡＴＰに変換され、この際に放出される紫外線のエネルギーが再びCaged−ＡＴＰに蓄積され、新たなCaged−ＡＴＰ中間体が生じる、という図示した反応スキームが進行していると思われる。
【００３７】
以上のように本発明においては、紫外線により活性化される発光基質、特にCaged化合物と総称される保護基を有する物質を発光基質として用い、紫外線を一定時間連続して照射することで保護基を解離させて活性状態とするので、この活性状態（遷移状態）の発光基質が時間当たり一定量生成されることとなり、ルシフェラーゼによる発光を長時間、一定に持続させることが可能となる。
【００３８】
そして、ルシフェラーゼによる発光を長時間、一定に持続させることが可能であることにより、生体分子あるいは化学物質を測定する際に、アルカリホスファターゼ及びβ―ガラクトシダーゼでの発光測定および検出と同様に、検出（あるいは露光）時間を長くとって低濃度の生体分子等を検出すること、あるいは、検出（あるいは露光）を繰り返す場合も同等の発光量を得ること、が可能となる。紫外線照射条件は連続照射であるため、パルス光を発生させるときのような高電圧を要求せず、測定装置自体も小型化することが可能となる。
【００３９】
なお、紫外線照射により解離する保護基としてパラ−ニトロフェニル）エチル基を例示したが、これに限らず、１−（４，５−ジメトキシ−２−ニトロフェニル基、４，５−ジメトキシ−２−ニトロベンゾイル基、（３´，５´−ジメトキシルフェニル）−２−オキソ−２−フェニル基、α−カルボキシ−２−ニトロベンゾイル基、５−カルボメトキシ−２−ニトロベンゾイル基、［（５−カルボメトキシ−２−ニトロベンゾイル）オキシ］カルボニル基等も使用可能である。
【００４０】
また、ＩｇＥを抗体を利用して測定するマイクロアレイ分析を例示したが、マイクロアレイに限らず、周知のサザンハイブリダイゼーション、ノーザンハイブリダイゼーション、ウエスタンブロッティング、酵素結合免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）、ドットブロッティング等による検出、測定の用途に適用できる。
【産業上の利用可能性】
【００４１】
本発明の発光測定方法及び発光測定装置は、ルシフェラーゼなどの発光の減衰を抑えること、つまり単位時間当たり一定の発光量を持続的に生成させることが可能となり、前記発光を利用した生体分子や化学物質等の測定及び検出用途に有用である。
【図面の簡単な説明】
【００４２】
【図１】本発明の一実施形態の発光測定装置の概念図
【図２】本発明の一実施形態の発光測定方法の対象である検査基板の概念図
【図３】図２の検査基板の作製手順および発光測定方法を説明する概念図
【図４】図３の発光測定方法により得られる発光輝度の経時変化を示すグラフ
【図５】図３の発光測定方法により得られる発光輝度の経時変化を示す他のグラフ
【図６】図３の発光測定方法における発光基質の活性化スキームを示す図
【図７】従来の発光測定方法により得られる発光輝度の経時変化を示すグラフ
【符号の説明】
【００４３】
１    発光測定装置
２    ＣＣＤ
３    レンズ群
４    ステージ
５    基板
６    堰
７    ブラックライト
８    赤外線
９    スポット
１０  免疫グロブリンＥ
１１  ビオチン
１２  抗免疫グロブリンＥ抗体
１３  ストレプトアビジン
１４  ルシフェラーゼ
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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