(57)【要約】【課題】新たな、ＩｇＡ分泌促進方法、免疫バランス改善方法、および、高脂血症改善方法を提供し、新たな、ＩｇＡ分泌促進剤、免疫バランス改善剤、および、高脂血症改善剤を提供することを課題とする。【解決手段】トリュフの子実体、菌糸体または／およびそれらの処理物によるＩｇＡ分泌促進方法、免疫バランス改善方法、および、高脂血症改善方法を提供する。また、トリュフの子実体、菌糸体または／およびそれらの処理物を含有するＩｇＡ分泌促進剤、免疫バランス改善剤、および、抗高脂血症剤を提供する。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
トリュフを含有し、かつ、ＩｇＡ分泌促進効果、免疫バランス改善効果、又は、抗高脂血症効果から選ばれる１以上の効果を有する剤。
【請求項２】
ＩｇＡ分泌促進効果を有する請求項１に記載の剤。
【請求項３】
請求項２に記載の剤を摂取することを特徴とするＩｇＡ分泌促進方法。
【請求項４】
免疫バランス改善効果を有する請求項１に記載の剤。
【請求項５】
請求項４に記載の剤を摂取することを特徴とする免疫バランス改善方法。
【請求項６】
抗高脂血症効果を有する請求項１に記載の剤。
【請求項７】
請求項６に記載の剤を摂取することを特徴とする高脂血症改善方法。
【請求項８】
トリュフを含有する剤を１日当たり１ｇ以上摂取することを特徴とする請求項３、５または７いずれか１項に記載の方法。
【請求項９】
請求項１に記載の剤を含むことを特徴とする機能性食品。
【請求項１０】
トリュフが人工栽培及び液体培養したものであることを特徴とする請求項９に記載の機能性食品。
【請求項１１】
トリュフが子実体および／またはその抽出物であることを特徴とする請求項９に記載の機能性食品。
【請求項１２】
トリュフが乾燥させたトリュフであることを特徴とする請求項１に記載の剤。
【請求項１３】
トリュフが粉砕したトリュフであることを特徴とする請求項１に記載の剤。
【請求項１４】
トリュフが乾燥させたトリュフであることを特徴とする請求項３、５または７いずれか１項に記載の方法。
【請求項１５】
トリュフが粉砕したトリュフであることを特徴とする請求項３、５または７いずれか１項に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、トリュフの子実体、菌糸体または／及びそれらの処理物によるＩｇＡ分泌促進方法、免疫バランス改善方法、高脂血症改善方法、及びそれらを含有するＩｇＡ分泌促進剤、免疫バランス改善剤、抗高脂血症剤に関する。 
【背景技術】
【０００２】
キノコ類は、様々な生理活性を有することが知られており、機能性食品素材として注目されている。キノコ類の生理活性については、サルノコシカケ科およびキコブタケ科をはじめとする食用キノコ類の熱湯抽出物が腫瘍細胞であるＳａｒｃｏｍａ１８０に対して、抗腫瘍活性を示すことが示されており（非特許文献１）、最近では、食用キノコの抗腫瘍活性はβ−Ｄ−グルカンと呼ばれる分子量数十万の多糖類に由来することが明らかにされている。β−Ｄ−グルカンのこういった機能は宿主の細胞性免疫、すなわち、キラーＴ細胞やナチュラルキラー細胞の機能を増強し、癌細胞の増殖を抑制することに基づくとされている。一方、液性免疫に及ぼす作用に関しては、乾燥アガリクスの熱湯抽出物がマウスインターロイキン−１β（ＩＬ−１β）やインターロイキン−６（ＩＬ−６）の産生を促すことが知られている（非特許文献２）。
【０００３】
また、これまでに、腸管免疫を介して免疫を賦活化しようとする試みにおいて、キノコ類や乳酸菌などの食材が検討されており、キノコ類については糞便中における分泌型イムノグロブリンＡ（ＩｇＡ）産生促進による腸管免疫賦活効果があると示されている（特許文献１）。
【０００４】
また、ヒメマツタケの子実体および／または菌糸体を、水、有機溶媒およびそれらの混合物よりなる群から選ばれた溶媒で抽出処理して得られるエキスが、抗高脂血症効果を有することが報告されている（特許文献２）。
【０００５】
しかし、セイヨウショウロ科のキノコ、いわゆるトリュフの機能性における検討としては、子実体または菌糸体の水溶性溶媒において抗炎症作用を有する画分を抽出し、化粧料や食品、医薬品に応用することが提案されているに止まっており（例えば特許文献３、４）、これまでトリュフによってＩｇＡ分泌促進、免疫バランス改善、抗高脂血症効果を生み出す手法は知られていなかった。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】特開平５−２５２９００号公開公報
【特許文献２】特開２００１−３２２９４５号公開公報
【特許文献３】特許第３１９９２８３号登録公報
【特許文献４】特開２００２−２４９４３８号公開公報
【非特許文献】
【０００７】
【非特許文献１】Ａｄｖａｎｃｅｓ  ｉｎ  Ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ａｎｄ  Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，１９７６年，第３２号，ｐ２３５-２７５
【非特許文献２】Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｐｈａｒｍ．，１９９６年，第１８号，ｐ２９５-３０３
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
従って、本発明は、トリュフの子実体、菌糸体または／及びそれらの処理物によるＩｇＡ分泌促進方法、免疫バランス改善方法、高脂血症改善方法、及びトリュフの子実体、菌糸体または／及びそれらの処理物を含有するＩｇＡ分泌促進剤、免疫バランス改善剤、抗高脂血症剤を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明者らは、トリュフに、ＩｇＡ分泌促進、免疫バランス改善、抗高脂血症の各効果があることを見出し、本発明を完成させた。
【００１０】
すなわち、本発明は、かかる知見に基づいて完成されたものであり、以下の発明を包含する。
【００１１】
［１］トリュフを含有し、かつ、ＩｇＡ分泌促進効果、免疫バランス改善効果、又は、抗高脂血症効果から選ばれる１以上の効果を有する剤。
【００１２】
［２］ＩｇＡ分泌促進効果を有する［１］に記載の剤。
【００１３】
［３］［２］に記載の剤を摂取することを特徴とするＩｇＡ分泌促進方法。
【００１４】
［４］免疫バランス改善効果を有する［１］に記載の剤。
【００１５】
［５］［４］に記載の剤を摂取することを特徴とする免疫バランス改善方法。
【００１６】
［６］抗高脂血症効果を有する［１］に記載の剤。
【００１７】
［７］［６］に記載の剤を摂取することを特徴とする高脂血症改善方法。
【００１８】
［８］トリュフを含有する剤を１日当たり１ｇ以上摂取することを特徴とする［３］、［５］または［７］いずれか１項に記載の方法。
【００１９】
［９］［１］に記載の剤を含むことを特徴とする機能性食品。
【００２０】
［１０］トリュフが人工栽培及び液体培養したものであることを特徴とする［９］に記載の機能性食品。
【００２１】
［１１］トリュフが子実体および／またはその抽出物ことを特徴とする［９］に記載の機能性食品。
【００２２】
［１２］トリュフが乾燥させたトリュフであることを特徴とする［１］に記載の剤。
【００２３】
［１３］トリュフが粉砕したトリュフであることを特徴とする［１］に記載の剤。
【００２４】
［１４］トリュフが乾燥させたトリュフであることを特徴とする［３］、［５］または［７］いずれか１項に記載の方法。
【００２５】
［１５］トリュフが粉砕したトリュフであることを特徴とする［３］、［５］、または、［７］いずれか１項に記載の方法。
【発明の効果】
【００２６】
本発明によれば、トリュフの子実体、菌糸体または／及びそれらの処理物によるＩｇＡ分泌促進方法、免疫バランス改善方法、高脂血症改善方法、及びそれらを含有するＩｇＡ分泌促進剤、免疫バランス改善剤、抗高脂血症剤が提供される。 
【図面の簡単な説明】
【００２７】
【図１】本発明の実施例１に係る糞便中ＩｇＡグラフである。
【図２】本発明の実施例２に係る血清中ＩｇＧ１グラフである。
【図３】本発明の実施例２に係る血清中ＩｇＧ２ａグラフである。
【図４】本発明の実施例２に係る血清中ＩｇＧ２ａ／ＩｇＧ１比グラフである。
【図５】本発明の実施例３に係る血清中中性脂肪（ＴＧ）グラフである。
【図６】本発明の実施例３に係る血清中遊離脂肪酸（ＦＦＡ）グラフである。
【図７】本発明の実施例３に係る血清中総コレステロール（Ｔ-ＣＨＯ）グラフである。
【発明を実施するための形態】
【００２８】
以下、本発明について詳しく説明する。
【００２９】
本発明において使用される菌類は、子のう菌類セイヨウショウロ科に属する菌類であれば良く、特に制限はないが、白トリュフ（Tuber magnatum）及び／又は黒トリュフ（Tuber indicum及びTuber melanosporum）が好ましく用いられる。Tuber aestivum、Tuber borchi、Tuber macrosporum、Tuber mesentericumも用いることが可能である。
【００３０】
本発明で使用される子のう菌類セイヨウショウロ科に属する菌類の形態としては、例えば天然品や人工栽培された子実体、液体培養された菌糸体またはそれらの処理物を使用することが可能である。この場合の種菌は、子のう菌類セイヨウショウロ科に属する菌類から適当な方法により無菌操作によって採取することができる。特に子実体を形成する菌類にあっては、生子実体の内部組織から無菌的に一部を切り出すことで、容易に種菌を得ることができる。
【００３１】
子実体の栽培の場合は以下のように行う。その場合の培養基には食用菌等に用いられるものを使用する。この鋸屑（木屑または木片）と米糠その他の栄養素などを混合・調製した培養基を子実体培養に用いることは公知のことである。種菌を培養基に穿った穴に注入し、低温に継続して培養する。その後、一週間ほどで培地全面に白色の菌糸がケバ立ったように生育しはじめ、１〜２ケ月で充分に菌糸が蔓延する。３〜４ケ月もすると、白色の気菌糸で覆われた培地表面に２〜３ｃｍ程度の子実体原基が形成される。
【００３２】
菌糸体の場合、例えば、以下に述べるような液体培養によって得ることができる。液体培養に用いる培地は、一般に糸状菌（従属栄養型の腐生菌）の培地が使用可能である。望ましくは、窒素源としてイーストエキストラクト、モルトエキストラクト、コーンスチープリカー、乾燥酵母及びその粕、ペプトン、ブイヨン、各種アミノ酸類、各種アンモニウム塩及びアンモニア化合物などが使用できる。炭素源は、天然物抽出液から得られるデンプン、デキストリン、オリゴ糖の他、一般に培地に利用されるグルコース、キシロース、シュークロース、マルトース、ガラクトース、マンノースなどが望ましい。培地に添加する塩類は、硫酸マグネシウム、リン酸水素２カリウム、リン酸２水素アンモニウム、硫酸アンモニウムなどが好ましい。液体培養では、培養日数の経過とともに菌糸体は増殖するが、菌糸体量が最大値になった後では、過培養によって菌糸体の一部は自己溶解を始め収量は減じるようになる。従って必要以上に培養を続けることは好ましくなく、種菌接種後の収量が最大になる時点で菌糸体を回収するのが好ましい。
【００３３】
子実体または液体培養された菌糸体は、乾燥、粉砕操作を経て本願の機能性食品となる。乾燥方法としては、特に制限はないが、自然乾燥、加熱乾燥、送風乾燥、蒸気乾燥、噴霧乾燥等の方法が挙げられるが、凍結乾燥法を用いると、熱により変質がなく、粉砕も容易であり、嗜好性に優れたものが得られるため好ましい。トリュフ子実体または菌糸は、回収、洗浄後、必要に応じて適当な大きさに、例えば２ｃｍ程度以下の大きさに、細断すると後の粉砕操作が容易となる。凍結乾燥の場合、−２０℃以下に設定された雰囲気下、例えば−２０℃以下に設定された公知の冷凍庫で凍結する工程を行う。この凍結工程は、氷晶が生じないように−３０℃以下に設定された雰囲気下、さらに好ましくは−４０℃以下に設定された雰囲気下で急速凍結すると好適である。凍結後、真空乾燥により凍結乾燥する。
【００３４】
次に、得られた凍結乾燥品を粉砕し、微細化する。粉砕の方法としては、公知の方法であれば特に限定されず、例えば、カッター等による微裁断、ミル等による微粉砕、ローラーやグラインダー等による磨砕等が挙げられる。粉砕の方法は、配合するものの種類や目的に応じて適宜選択すればよく、粒径に特に制限はない。また、トリュフ子実体または菌糸体を酵素処理し、その処理物を機能性食品とすることも可能である。酵素としては、細胞壁を形成する多糖を基質とする酵素とそれ以外の成分を基質とする酵素を挙げることができる。酵素としては、例えば、グルカナーゼ、キチナーゼ、プロテアーゼ、ペクチナーゼ、リパーゼ、セルラーゼ、キシラナーゼ、マンナナーゼ、ヘミセルラーゼ、ヌクレアーゼ等が挙げられ、これらを組み合わせて使用することが好ましい。また、酵素の由来としては特に限定されないが、例えばAspergillus niger、Aspergillus melleus、Aspergillus oryzae、Rhizopus niveus、Bacillus subtilis、Arthrobacter sp.、Trichoderma viride由来のものが好ましい。
【００３５】
子実体または液体培養された菌糸の抽出液も本発明の機能性食品に含まれる。その抽出方法は、特に限定されないが、連続式、バッチ式等の方法で、一般的な方法により、任意の時間、冷浸または温浸することで行うことが可能である。また亜臨界条件により効率よく抽出することも可能である。例えば、上記子実体または液体培養された菌糸やその乾燥物を、抽出溶媒に室温にて数分以上、好ましくは1時間以上浸漬する、または抽出溶媒と共に数分以上、好ましくは１時間以上加熱、または加熱還流する等により抽出を行い、その後、抽出液から濾過等で抽出残渣を取り除くことにより、抽出物を得ることができる。得られた抽出物を減圧あるいは限外濾過等で濃縮して濃縮物とすることも可能である。さらに、必要に応じて溶媒を完全に除去して乾固するかまたは凍結乾燥させてもよい。なお、上記抽出に用いる子実体、菌糸体やその乾燥物には、抽出処理の前に必要に応じて細断、粉砕等の処理、酵素処理を施してもよい。
【００３６】
抽出溶媒としては、例えば、水、低級１価アルコール類（メタノール、エタノール、１−プロパノール、２−プロパノール、１−ブタノール、２−ブタノール等）、液状多価アルコール（１，３−ブチレングリコール、プロピレングリコール、グリセリン等）、ケトン類（アセトン、メチルエチルケトン等）、アセトニトリル、エステル類（酢酸エチル、酢酸ブチル等）、炭化水素類（ヘキサン、ヘプタン、流動パラフィン等）、エーテル類（エチルエーテル、テトラヒドロフラン、プロピルエーテル等）が挙げられる。好ましくは、水、低級１価アルコール及び液状多価アルコールが良く、特に好ましくは、水、エタノール、１，３−ブチレングリコール及びプロピレングリコールが良い。これらの溶媒は１種でも２種以上を混合して用いても良い。
【００３７】
また、この抽出物は、抽出した溶液のまま用いても良く、必要に応じて、濃縮、希釈、濾過等の処理および活性炭等による脱色、脱臭処理をして用いても良い。更には、抽出した溶液を濃縮乾固、噴霧乾燥、凍結乾燥等の処理を行い、乾燥物として用いても良い。
【００３８】
本発明のＩｇＡ分泌促進剤、アレルギー改善剤、抗高脂血症剤には、上記抽出物をそのまま使用しても良く、この抽出物の効果を損なわない範囲内で、通常の食品、化粧品、医薬部外品、医薬品に用いられる成分である油脂類、ロウ類、炭化水素類、脂肪酸類、アルコール類、エステル類、界面活性剤、金属石鹸、ｐＨ調整剤、防腐剤、香料、保湿剤、粉体、紫外線吸収剤、増粘剤、色素、酸化防止剤、キレート剤、賦形剤、安定剤、保存剤、結合剤、崩壊剤等の成分を配合することもできる。
【００３９】
本発明のＩｇＡ分泌促進剤、免疫バランス改善剤、抗高脂血症剤は上記のような乾燥粉体としてそのまま用いるだけでなく、種々の剤形とすることもできる。例えば、経口投与のためには、錠剤、カプセル剤、散剤、顆粒剤、丸剤、液剤、乳剤、懸濁剤、溶液剤、酒精剤、シロップ剤、エキス剤、エリキシル剤とすることができるが、これらに限定されない。また本発明の剤を持続性、徐放性のものとしてもよい。そしてこれらは、用途又は好みに応じて、液状として供することができる。あるいはハードカプセル、ソフトカプセルなどのカプセル錠、錠剤、丸剤もしくは糖衣錠としてか、又は粉末状、顆粒状、茶状、ティーバッグ状等の形状で提供され得る。さらには食品への添加素材として、例えば飴、チョコレート、ガム、焼き菓子、アイスなどの、菓子や、例えばふりかけ、スパイス、ドレッシング、マヨネーズ、ソースなどの調味料、例えばチーズ、バター、ホイップ、マーガリンなどの乳製品、例えばパン、ご飯、麺類などの穀物製品に配合して提供され得る。これらはその形状や好みに応じてそのまま食しても、例えば、ご飯や麺類にふりかけて食することも可能である。水、お湯もしくは牛乳などに溶いて飲んでも良い。また、加工食品として、ソーセージ、卵加工製品、食肉加工製品、シチュー、カレー、サラダ、スープ等に配合しても良い。
【００４０】
本発明のトリュフ子実体または液体培養された菌糸体からなる機能性食品は特異臭もなく、食品に配合して食品組成物とした場合、その風味を損うことなく栄養的に優れたものとなすことができる。また他の一般的な食品素材と組み合わせて使用することも可能であり、特にアガリクス茸、アワビ茸、霊芝、シイタケ、ハナビラタケなどのキノコ類から得られる乾燥粉砕物や抽出物などと組み合わせると、栄養的に補完しあい、特に優れたものとなることから好ましい。
【００４１】
以上のように機能性食品や食品として利用するばかりでなく、栄養食品や健康食品等食品の技術分野のほか医療分野において広範に使用できるものである。食品として使用する場合には、上述したように通常の食品ないし食品添加物と全く同様に使用することができ、例えば、加熱したり、溶解したり、他の食品等に添加混合しても何ら差し支えなく、また場合によってはそのまま使用することも可能である。 医薬として使用する場合には、経口又は非経口投与することができる。経口投与の場合には、例えば常法にしたがい、錠剤、顆粒剤、粉末剤、カプセル剤、散剤とすることができ、又、非経口投与の場合には、例えば注射薬製剤、点滴剤、坐剤として使用することができる。投与経路は、本発明の各促進剤を安全かつ効果的に投与することができれば、特に限定されるものではない。このような条件が満たされる限り、皮下投与、静脈内投与、筋肉内投与、局所投与、直腸内投与等の非経口投与であってもよく、経口投与であってもよい。簡便であり、自己投与が容易であるという観点からは、経口投与が好ましい。
【００４２】
本発明の剤を経口投与する場合、摂取する量は１日当たり１ｇ以上であることが好ましく、５ｇ以上であることがより好ましい。本発明の剤又は食品に含まれるトリュフ子実体又は抽出物の割合は、１重量％以上であることが好ましく、５重量％以上であることがより好ましい。
【００４３】
以下に、本発明の製造例、その効果を説明するための試験例を挙げるが、これらは本発明を何ら限定するものではない。
【００４４】
（製造例１）（人工栽培黒トリュフ子実体サンプルの製造）
カラマツの大鋸屑、小麦粉、栄養分（バナナ、蜂蜜、エビオス、ペプトン、塩化カルシウム、ハイポネックス）および水を、大鋸屑：小麦粉：栄養分：水＝１００：１１：２：５０の重量比で含む菌床基材を準備した。 この菌床基材（５８０ｇ）を、９００ｃｃのポリプロピレン製の培養瓶に入れ、常法に従って培養瓶を滅菌した後に、黒トリュフ（T.indicum）の種菌（０．５ｇ）を接種した。 その後、この培養瓶を、２３℃の温度下で、２１０日間放置することによりトリュフ子実体を形成させた。子実体を除く菌床部分を取り出し、凍結乾燥ののち粉砕し、２０ｇの乾燥粉末を得た。
【００４５】
（製造例２）（エリンギ子実体サンプルの製造）
４００ｇの市販のエリンギ（ホクト株式会社）をスライスし、凍結乾燥後に粉砕、２０ｇの乾燥粉末を得た。
【００４６】
（実施例１）（人工栽培黒トリュフ子実体乾燥粉末投与における糞便中ＩｇＡ濃度の評価）
ＢＡＬＢ／ｃ系ＳＰＦ雄性マウス(日本チャ−ルスリバー製)２４匹を６週齢で購入し、１週間馴化飼育後、７週齢にて、Ｃｏｎｔｒｏｌ群（蒸留水をマウス体重１．０ｇあたり０．０１ｍＬ／日投与）、製造例１で製造した人工栽培黒トリュフ子実体乾燥粉末投与群を投与量別にそれぞれ２群（各６匹）、比較として製造例２で製造した市販のエリンギ子実体乾燥粉末投与群の４群に分けた。人工栽培黒トリュフ子実体乾燥粉末高用量投与群および低用量投与群の投与量は、それぞれ１０００ｍｇ／ｋｇ体重（人工栽培トリュフ粉末を０．１ｇ／ｍＬとなるよう蒸留水に懸濁し、マウス体重１．０ｇあたり０．０１ｍＬ／日投与）、および３００ｍｇ／ｋｇ体重（人工栽培トリュフ高用量懸濁液を３．３倍希釈し、マウス体重１．０ｇあたり０．０１ｍＬ／日投与）とした。市販エリンギ子実体乾燥粉末投与群の投与量は１０００ｍｇ／ｋｇ体重とした。被験物質投与開始前（０日とする）、開始後３、７、１４、２８、３５および４２日の糞便を回収した。回収後、糞便乾燥重量０.１ｇに対し９倍量のＰＢＳ（５０ｍＭ EDTA、０．１ｍｇ/ｍＬ トリプシン阻害剤、０．００１ｍｏｌ／Ｌ フッ化フェニルメチルスルホニルを含む）を加え４℃下で1時間静置後ホモジナイズした。その後４℃下において ３０００ｒｐｍ、１０分間遠心して得た上清を総ＩｇＡ測定用サンプルとした。糞便中ＩｇＡ濃度はＥＬＩＳＡキット（マウスＥＬＩＳＡ ＩｇＡ測定キット、ＥＬＩＳＡ Ｓｔａｒｔｅｒ Ａｃｃｅｓｏｒｙ Ｐａｃｋａｇｅ Ｋｉｔ（以上すべてＢＥＴＨＹＬ製）を用いて測定した。
【００４７】
【表１】
2010222265.tif 000002
【００４８】
（実施例２）（人工栽培黒トリュフ子実体乾燥粉末投与における血清中ＩｇＧ１およびＩｇＧ２ａ濃度の評価）
ＢＡＬＢ／ｃ系ＳＰＦ雄性マウス(日本チャ−ルスリバー製)２４匹を６週齢で購入し、１週間馴化飼育後、７週齢にて、Ｃｏｎｔｒｏｌ群、製造例１で製造した人工栽培黒トリュフ子実体乾燥粉末投与群を投与量別にそれぞれ２群（各６匹）、比較として製造例２で製造した市販のエリンギ子実体乾燥粉末投与群の４群に分けた。人工栽培黒トリュフ子実体乾燥粉末低用量投与群および高用量投与群の投与量は、それぞれ３００ｍｇ／ｋｇ体重、および１０００ｍｇ／ｋｇ体重とした。Ｃｏｎｔｒｏｌ群及び人工栽培黒トリュフ子実体乾燥粉末投与群への投与は実施例１と同様に行った。市販エリンギ子実体乾燥粉末投与群の投与量は１０００ｍｇ／ｋｇ体重とした。投与終了後、イソフルラン麻酔下で開腹し、腹部大静脈より全採血した。採取する血液は室温で約２時間静置した後、３０００ｒｐｍ、１５分間遠心分離し血清を得た。得られた血清はＩｇＧ１およびＩｇＧ２ａ測定用サンプルとし、測定日まで−８０℃下で凍結保存した。血清中ＩｇＧ１、ＩｇＧ２ａ濃度はＥＬＩＳＡキット（マウスＥＬＩＳＡ ＩｇＧ１測定キット、マウスＥＬＩＳＡ ＩｇＧ２ａ測定キット、ＥＬＩＳＡ Ｓｔａｒｔｅｒ Ａｃｃｅｓｓｏｒｙ Ｐａｃｋａｇｅ Ｋｉｔ（以上すべてＢＥＴＨＹＬ製））を用いて測定した。
【００４９】
【表２】
2010222265.tif 000003
【００５０】
【表３】
2010222265.tif 000004
【００５１】
【表４】
2010222265.tif 000005
【００５２】
（実施例３）（人工栽培黒トリュフ子実体乾燥粉末投与における血液中脂質類濃度の評価）
ＢＡＬＢ／ｃ系ＳＰＦ雄性マウス(日本チャ−ルスリバー製)２４匹を６週齢で購入し、１週間馴化飼育後、７週齢にて、Ｃｏｎｔｒｏｌ群、製造例１で製造した人工栽培黒トリュフ子実体乾燥粉末投与群を投与量別にそれぞれ２群（各６匹）、比較として製造例２で製造した市販のエリンギ子実体乾燥粉末投与群の４群に分けた。人工栽培黒トリュフ子実体乾燥粉末低用量投与群および高用量投与群の投与量は、それぞれ３００ｍｇ／ｋｇ体重、および１０００ｍｇ／ｋｇ体重とした。Ｃｏｎｔｒｏｌ群及び人工栽培黒トリュフ子実体乾燥粉末投与群への投与は実施例１と同様に行った。市販エリンギ子実体乾燥粉末投与群の投与量は１０００ｍｇ／ｋｇ体重とした。投与終了後、イソフルラン麻酔下で開腹し、腹部大静脈より全採血した。採取する血液は室温で約２時間静置した後、３０００ｒｐｍ、１５分間遠心分離し血清を得た。得られた血清は中性脂肪（ＴＧ）、遊離脂肪酸（ＦＦＡ）および総コレステロール（Ｔ−ＣＨＯ）濃度の測定用サンプルとし、測定日まで−８０℃下で凍結保存した。血清中ＴＧ、ＦＦＡ濃度およびＴ−ＣＨＯは測定キット（トリグリセライド−Ｅテストワコー、ＮＥＦＡ−Ｃテストワコーおよびコレステロール−Ｅテストワコー（以上すべて和光純薬製））を用いて測定した。
【００５３】
【表５】
2010222265.tif 000006
【００５４】
【表６】
2010222265.tif 000007
【００５５】
【表７】
2010222265.tif 000008
【図１】
2010222265.tif 000009
【図２】
2010222265.tif 000010
【図３】
2010222265.tif 000011
【図４】
2010222265.tif 000012
【図５】
2010222265.tif 000013
【図６】
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【図７】
2010222265.tif 000015