(57)【要約】【課題】本発明は、新規アミラーゼ活性測定用基質及び該基質を含有したアミラーゼ活性測定試薬、並びに該基質又は試薬を使用したアミラーゼ活性測定方法の提供を目的とする。【解決手段】  一般式（Ｉ）2010068777.tif 000023（式中、ｎは、０〜８の整数）で表されるマルトオリゴ糖誘導体を含有し、試料中に存在するアミラーゼ活性を測定するためのアミラーゼ活性測定基質及び該基質を含有する試薬、並びに該基質又は試薬を用いたアミラーゼ活性の測定方法。【選択図】図２
2010068777.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
一般式（Ｉ）
【化１】
2010068777.tif 000021
（式中、ｎは、０〜８の整数）で表されるマルトオリゴ糖誘導体を含有し、試料中に存在するアミラーゼ活性を測定するためのアミラーゼ活性測定基質。
【請求項２】
前記試料中に複数のアミラーゼアイソザイムが存在し、該アミラーゼアイソザイムを識別するための請求項１に記載のアミラーゼ活性測定基質。
【請求項３】
ｎが２の４糖から構成される請求項１又は２に記載のアミラーゼ活性測定基質。
【請求項４】
請求項１乃至３のいずれかの基質を含有するアミラーゼ活性測定試薬。
【請求項５】
一般式（Ｉ）
【化２】
2010068777.tif 000022
（式中、ｎは、０〜８の整数）で表されるマルトオリゴ糖誘導体を、アミラーゼを含有する試料と接触させて反応させ、該アミラーゼ活性を測定する方法。
【請求項６】
前記試料中に複数存在するアミラーゼアイソザイムを識別するための請求項５に記載のアミラーゼ活性を測定する方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、新規アミラーゼ活性測定用基質及び該基質を含有したアミラーゼ活性測定試薬、並びに該基質又は試薬を使用したアミラーゼ活性測定方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
α−アミラーゼは、デンプンをはじめとするマルトオリゴ糖のα１，４結合を加水分解する酵素である。法医学分野においては唾液であることの証明、大便であることの証明、膣分泌液であることの証明等に用いられている。また、医療分野においては血液検査の指標の一つとして、膵臓疾患等のマーカーとして用いられてきた。法医学分野においては、一般的に、劣悪な環境に置かれた試料からのアミラーゼ活性の測定となるため、酵素の多くが失活していることが想定され、従って、できるだけ高感度の検査法が必要とされている。
【０００３】
また、法医学、医療両分野において、アミラーゼのアイソザイム分析は重要である。アミラーゼは、主として唾液腺細胞、膵腺房細胞から分泌されており、免疫活性、酵素の安定性などの違いにより、S型（唾液由来）とP型（唾液以外、例えば膵液由来）の２つのアイソザイムに分類されている。医療分野においては、アミラーゼ活性値の異常が認められ場合、活性値の異常を示すアイソザイム活性を測定することにより、疾患の原因臓器の特定が可能となる。例えば、体液又は尿中のＰ型アミラーゼ活性が高ければ膵炎などの膵臓疾患が疑われ、Ｓ型アミラーゼ活性が高ければ耳下腺炎又は顎下腺炎など唾液腺疾患の可能性が示唆される。
【０００４】
現在、アミラーゼ活性を測定する方法として、ブルースターチ法、ヨードデンプン法、酵素法（特許文献１）などが使用されている。しかし、これらの方法は、低感度性、操作の煩雑さ、基質構造の不明確さ、などの問題点が指摘されている。また、ＦＲＥＴを利用したマルトオリゴ糖誘導体を基質とするアミラーゼ活性測定方法（非特許文献１）も報告されており、測定感度の改善が期待されているが、蛍光のバックグラウンドの影響により低いアミラーゼ活性の測定における困難性が未だ存在しており、さらなる改善が望まれている。一方、アミラーゼアイソザイムを識別する方法としては、等電点電気泳動、ＥＬＩＳＡ、基質抗体阻害法（特許文献２）等が報告されているが、いずれの方法も操作が煩雑であり、結果を得るまでに長時間を要していた。
【０００５】
【非特許文献１】Ｎｉｓｈｉｍｕｒａ，Ｃａｒｂｏｈｙｄｒ．Ｌｅｔ．，４：７７-８４  ２００１
【特許文献１】特許第３９０１９９０号
【特許文献２】特許第３８６２０５８号
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
以上のように、アミラーゼ活性の高感度測定方法並びにアミラーゼアイソザイムの識別に関する簡便で正確な測定方法を開発すべく多くの研究が行われている。
本発明は、簡便で高感度にアミラーゼ活性を検出することが可能であり、また、アミラーゼアイソザイムの識別をも可能とする基質及び試薬の提供、並びに、該基質又は試薬を用いたアミラーゼ活性の測定方法の提供を目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者らは、マルトオリゴ糖の非還元末端をナフチル基、還元末端をダンシル基で化学修飾した基質により、ＦＲＥＴを利用した測定方法の感度を向上させ、さらに、該基質をアミラーゼアイソザイムの識別に効果的に利用できることを見出し、本発明を完成させた。
ＦＲＥＴを利用したアミラーゼ活性の測定法に関する従来技術（非特許文献１）においては、ナフチル基からの蛍光（３３３ｎｍ）のバックグラウンドが元々高いことから、微量のアミラーゼ活性が測定誤差の範囲に入ってしまい検出が困難であった。この点について、本発明の基質を用いると、３３３ｎｍの蛍光のバックグラウンドを従来技術（非特許文献１）の約１０分の１に抑えることが可能となり、微量なアミラーゼ活性の測定が可能となった。さらに、本発明の基質を用いると、測定感度が向上されることから、アミラーゼアイソザイムを識別することも可能となる。
【０００８】
すなわち、本発明は、一般式（Ｉ）
【化３】
2010068777.tif 000003
（式中、ｎは、０〜８の整数）で表されるマルトオリゴ糖誘導体を含有し、試料中に存在するアミラーゼ活性を測定するためのアミラーゼ活性測定基質及び該基質を含有する試薬、並びに該基質又は試薬を用いたアミラーゼ活性の測定方法を提供する。
さらに、本発明の基質又は該基質を含有する試薬は、アミラーゼアイソザイムの識別にも使用することができる。
【発明の効果】
【０００９】
本発明の基質又は該基質を含有する試薬を用いると、従来法に比較して、アミラーゼの検出感度を顕著に向上させることができる（例えば、ブルースターチ法と比較して、約１０倍程度）。
【００１０】
また、本発明のアミラーゼ活性測定方法を用いると、アミラーゼアイソザイム（例えば、Ｐ型、Ｓ型）の識別が可能となる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１１】
本発明により、一般式（Ｉ）で示されるアミラーゼ活性測定用の基質及び該基質を含有アミラーゼ活性測定用試薬が提供される。
一般式（Ｉ）において、ｎは、マルトオリゴ糖の、糖の数に依存する整数であり、例えば、０〜８、１〜７、２〜６、２〜５であり、好ましくは、２、４、５である。本発明の基質は、当業者において周知の方法により合成することができる。また、一般式（Ｉ）で表される本発明に係るアミラーゼ測定用の基質には、特に断らない限り、その構造異性体（例えば、幾何異性体及び光学異性体など）も含まれる。例えば、限定はしないが、ナフチル基への結合位置は、１位又は２位が好ましく、特に、２位が好ましい。本発明に係るアミラーゼ活性測定用基質は、例えば、ｎが４、２−ナフチル基を蛍光ドナーとする場合には、以下に示すスキーム１のように合成することができる。
【００１２】
【化４】
2010068777.tif 000004
スキーム１
【００１３】
すなわち、α-シクロデキストリンをＯ−アセチル化後、アセトリシス反応を用いて直鎖状のマルトオリゴ６糖を合成する。還元末端のブロモ化、チオアセチル化を経由しチオペンテニルグリコシドとする。脱Ｏ−アセチル化、非還元末端のナフチリデン化、Ｏ−アセチル化、ナフチリデンの還元開裂反応、脱Ｏ−アセチル化を行い、非還元末端の６位の水酸基のみがナフチルエーテル化された蛍光性マルトオリゴ糖を合成する。次いで、還元末端の２重結合にアミノエタンチオールのラジカル付加反応とダンシル化を行うことにより、還元末端及び非還元末端の両方に蛍光官能基を持った蛍光性マルトオリゴ６糖を合成することができる。
【００１４】
本発明の基質又は試薬を用いたアミラーゼ活性の測定は、アミラーゼ、特にα−アミラーゼを含む試料に対して適用することができる。該試料は、溶液状態であっても、乾燥状態であってもよく、乾燥状態にある場合には、該乾燥試料に測定用緩衝液（本発明の基質を含んでも含んでなくてもよい）などを噴霧する方法等により、容易に測定可能な条件を整えることができる。従って、本発明に係るアミラーゼ活性の測定方法は、唾液、大便、膣分泌液などを含む体内由来の試料の他、家具や什器表面上に付着した試料中のアミラーゼの活性測定にも適用することができる。
【００１５】
本発明のアミラーゼ活性の測定方法は、一般式（Ｉ）で示されるマルトオリゴ糖誘導体の基質を、アミラーゼを含む試料と接触させ、一般式（Ｉ）の基質とアミラーゼとを反応させることによって生じる、基質由来の蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）反応の変化を検出し、該変化をアミラーゼの量に換算することで、アミラーゼ活性を測定するものである（図１）。アミラーゼの活性測定条件は、当業者によって従来行われている測定条件であれば、いかなる条件であっても測定可能であり、例えば、反応温度を約２５℃〜約４０℃、好ましくは３７℃、ｐＨを約６〜約８、好ましくはｐＨ７程度とし、反応時間は、約1分〜約１０時間程度の間に、適当な時間間隔（例えば、約１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１５、２０、２５、３０、５０、１００、１５０、２００分間隔等）で数回蛍光強度変化を検出する条件などにより測定することができる。
【００１６】
本発明のアミラーゼ活性測定用試薬は、本発明の基質以外にも、当業者においてアミラーゼ活性測定に必要と思われる物質、又は、アミラーゼ活性測定に効果的に作用する物質など、その他の添加物質を含んでもよい。このような添加物質としては、限定はしないが、例えば、界面活性剤、安定化剤、防腐剤、キレート剤などを使用することができる。また、本発明のアミラーゼ活性測定試薬は、適当な緩衝液中に溶解させた状態で提供することもできる。こうような緩衝液としては、当業者が容易に選択される範囲に含まれる緩衝液が使用可能であり、例えば、ＰＩＰＥＳ，ＨＥＰＥＳ，ＭＥＳなどのグッド緩衝液のように、ｐＨが弱酸性から弱アルカリ性の測定条件下において干渉効果を示すものであれば、如何なるものを使用してもよい。
【００１７】
本発明の試薬は、キットの形態で、適当な容器又はパック中に使用説明書と共に含めることができる。本発明に係る試薬がキットとして供給される場合、基質を含む該試薬の構成成分を、活性構成成分の機能を低下することを回避するなどの必要に応じて、各構成成分を別々に包装してもよい。キット中に含まれる試薬は、構成成分が活性を長期間有効に持続し、構成成分を吸着せず、また、変質させない材質の容器中に供給される。また、キットに使用説明書が添付される場合、その使用説明は、紙又は他の材質上に印刷されて供給されてもよく、及び／又はフロッピー（登録商標）ディスク、ＣＤ−ＲＯＭ、ＤＶＤ−ＲＯＭ、Ｚｉｐディスク、ビデオテープ、オーディオテープなどの電気的又は電磁的に読み取り可能な媒体として供給されてもよい。あるいは、キットの製造者によって指定され又は電子メール等で通知されるウェブサイトに掲載されていてもよい。
以下の実施例は、本発明のアミラーゼ活性測定用基質の合成例とアミラーゼ活性測定方法及び測定結果を示すものである。本発明の実施例は、あくまでも例示にすぎず、本発明の範囲を限定するものではない。
【実施例】
【００１８】
〔合成例１〕マルトオリゴ６糖誘導体の基質
α−シクロデキストリン（ＣＤ）完全アセチル化体
無水酢酸  （１４ｍＬ）に酢酸ナトリウム（１．００ｇ，１２．２ｍｍｏｌ）を加え、１２０℃に加熱した。α−シクロデキストリン（２．００ｇ，２．０６ｍｍｏｌ）を徐々に加え、反応液を１２０℃で３時間攪拌した。反応液を室温に戻し、氷水を加え、一晩攪拌した。反応液に大量の水を加え、析出物をろ取した。メタノールによる再結晶化で精製し、結晶状のα−シクロデキストリン完全アセチル化体（２．４３ｇ，６８．２４％）を得た。
【００１９】
Ｇ６完全アセチル化体
α−シクロデキストリン完全アセチル化体（１．０ｇ，０．５８ｍｍｏｌ）を無水酢酸  （９．８ｍＬ）に溶解し、濃硫酸（０．２ｍＬ）を加え、５０℃で１７時間攪拌した。反応液を０℃に冷却し、ピリジン（１．０ｍＬ）を加え中和した。反応液を濃縮後、シリカゲルカラムクロマトグラフィー［トルエン−酢酸エチル（１：３（ｖ／ｖ））で精製し、直鎖状のマルトオリゴ６糖完全アセチル化体（６７０ｍｇ，６３．２％）を得た。
【００２０】
Ｇ６チオアセチル化体
マルトオリゴ６糖完全アセチル化体（３０．０ｇ，１６．３ｍｍｏｌ）を氷酢酸（６０．０ｍＬ）に溶解し、無水酢酸（６．０ｍＬ）を加えた。反応容器を水浴（室温）に設置し、３０％  臭化水素／酢酸溶液（３０．０ｍＬ）を加え、密栓をして、室温で４時間攪拌した。反応液を濃縮し、臭化糖の粗精製物を得た。得られた、臭化糖の粗精製物をＤＭＦ（３０ｍＬ）に溶解し、反応液を、０℃に冷却後、チオ酢酸カリウム（５．６０ｇ，４８．９ｍｍｏｌ）を加え、反応液を室温に戻し、一晩攪拌した。反応液を酢酸エチルで希釈し、冷水、冷飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、飽和食塩水の順に飽和食塩水で抽出を行い、有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥した。この有機層をセライトろ過し、ろ液を濃縮後、シリカゲルカラムクロマトグラフィー［トルエン−酢酸エチル（１：２（ｖ／ｖ））で精製し、マルトオリゴ６糖チオアセチル化体（１．３４ｇ，６２．２％）を得た。後、シリカゲルカラムクロマトグラフィー［トルエン−酢酸エチル（２：３（ｖ／ｖ））で精製し、マルトオリゴ６糖チオアセテート（１８．１ｇ，５９．９％）を得た。
【表１】
2010068777.tif 000005
【００２１】
Ｇ６チオペンテニルアセチル化体
マルトオリゴ６糖チオアセテート（５５０ｍｇ，０．３０ｍｍｏｌ）をＤＭＦ（２．８ｍＬ）に溶解し、５−ブロモ−１−ペンテン（４０μＬ，０．４５ｍｍｏｌ）を加えた。反応液を、−３０℃に冷却し、ジエチルアミン（０．６２ｍＬ，６．０ｍｍｏｌ）を滴下し、滴下終了後、反応液を室温に戻し、２時間攪拌した。反応液を酢酸エチルで希釈し、冷水、飽和食塩水の順に抽出を行い、有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥した。この有機層をセライトろ過し、ろ液を濃縮後、シリカゲルカラムクロマトグラフィー［トルエン−酢酸エチル（１：２（ｖ／ｖ））で精製し、マルトオリゴ６糖チオペンテニルグリコシドアセチル化体（４５８ｍｇ，８１．５％）を得た。
【表２】
2010068777.tif 000006
【００２２】
Ｇ６チオペンテニルＯＨ体
マルトオリゴ６糖チオペンテニルグリコシド完全アセチル化体（１１．０ｇ，５．８７ｍｍｏｌ）をメタノール（２２０ｍＬ）に溶解し、ナトリウムメトキシド（３１７ｍｇ，５．８７ｍｍｏｌ）を加え、室温で４時間攪拌した。反応液を強酸性陽イオン交換樹脂ＩＲ−１２０Ｂ（Ｈ＋型）で中和後、イオン交換樹脂をガラスフィルターでろ取し、ろ液を濃縮した。残渣をメタノールで溶解しＧＰＣ（ｗａｔｅｒ）による精製を行い、脱保護体を定量的に得た。
【表３】
2010068777.tif 000007
【００２３】
Ｇ６  ４，６−Ｏ−ナフチリデン体
２−ナフトアルデヒド−ジイソブチルアセタール（１．３８ｇ，４．６４ｍｍｏｌ）をＤＭＦ（２５．０ｍＬ）に溶解し、マルトオリゴ６糖チオペンテニルグリコシド（２．５０ｇ，２．３２ｍｍｏｌ）、１０−（＋）−カンファスルホン酸（２６５ｍｇ，１．１６ｍｍｏｌ）を加え、水流アスピレーターによる減圧下、５０℃で２時間攪拌した。反応液を、０℃に冷却し、トリエチルアミン（１．６ｍＬ）を加え中和した。反応液を濃縮後、ピリジン（１５．０ｍＬ）、無水酢酸（１５．０ｍＬ）を加え、室温で３日間攪拌した。反応液を濃縮後、冷飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、飽和食塩水の順にクロロホルムで抽出を行い、有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥した。この有機層をセライトろ過し、ろ液を濃縮後、シリカゲルカラムクロマトグラフィー［トルエン−酢酸エチル（１：１（ｖ／ｖ））で精製し、４，６−Ｏ−ナフチリデンマルトオリゴ６糖アセチル化体（９８４ｍｇ，２２．０％）を得た。また、原料の完全アセチル化体（２．３１ｇ，５３．１％）を回収した。
【表４】
2010068777.tif 000008
【００２４】
Ｇ６ナフチルＡｃ体
４，６−Ｏ−ナフチリデンマルトオリゴ６糖（１．７０ｇ，０．８８ｍｍｏｌ）をＴＨＦ（２５．０ｍＬ）に溶解し、ＭＳ４Å（３．４０ｇ）、ボラン−トリメチルアミン錯体（８９７ｍｇ，１２．３ｍｍｏｌ）を加え、室温で１時間攪拌した。反応容器を氷浴（０℃）に設置し、塩化アルミニウム（１．６０ｇ，１２．３ｍｍｏｌ）を加え、室温で４時間攪拌した。反応液を綿濾過し、冷飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、飽和食塩水の順にクロロホルムで抽出を行い、有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥した。この有機層をセライトろ過し、ろ液を濃縮後、シリカゲルカラムクロマトグラフィー［トルエン−酢酸エチル（２：３（ｖ／ｖ））で精製し、６−Ｏ−ナフチルマルトオリゴ６糖アセチル化体（１．３０ｇ，７６．５％）を得た。
【表５】
2010068777.tif 000009
【００２５】
Ｇ６ナフチルＯＨ体
６−Ｏ−ナフチルマルトオリゴ６糖アセチル化体（１．１８ｇ，０．６１ｍｍｏｌ）をメタノール（２４．０ｍＬ）に溶解し、ナトリウムメトキシド（３３ｍｇ，０．６１ｍｍｏｌ）を加え、室温で一晩攪拌した。反応液を強酸性陽イオン交換樹脂ＩＲ−１２０Ｂ（Ｈ＋型）で中和後、イオン交換樹脂をガラスフィルターでろ取し、ろ液を濃縮した。残渣をメタノールで溶解し、セファデックスＬＨ−２０（ＭｅＯＨ）によるゲルろ過精製を行い、脱保護体を定量的に得た。
【表６】
2010068777.tif 000010
【００２６】
Ｇ６アミン体
６−Ｏ−ナフチルマルトオリゴ６糖チオペンテニルグリコシド体（３００ｍｇ，０．２４７ｍｍｏｌ）をメタノール（１．０ｍＬ）に溶解し、水（１．０ｍＬ）、２−メルカプトエチルアミン塩酸塩（２８３ｍｇ，２．４７ｍｍｏｌ）を加え、完全溶解させた。室温で紫外線を２時間照射後、反応液をそのままセファデックスＬＨ−２０（ＭｅＯＨ）によりゲルろ過精製を行い、６−Ｏ−ナフチルマルトオリゴ６糖アミン体塩酸塩を定量的に得た。
【表７】
2010068777.tif 000011
【００２７】
Ｇ６ダンシル体
６−Ｏ−ナフチルマルトオリゴ６糖アミン体（１００ｍｇ，０．０７７ｍｍｏｌ）をメタノール（５．０ｍＬ）に溶解し、塩化ダンシル（８３ｍｇ，０．３０８ｍｍｏｌ）を加えた。反応容器を水浴（室温）に設置し、トリエチルアミン（２１μＬ，０．１５４ｍｍｏｌ）を滴下した。３時間攪拌後、反応液をそのままセファデックスＬＨ−２０（ＭｅＯＨ）によりゲルろ過精製を行い、次いでＧＰＣ（ＭｅＯＨ）による精製を行い、ダンシルマルトオリゴ６糖を定量的に得た。
【表８】
2010068777.tif 000012
【００２８】
〔合成例２〕マルトオリゴ７糖誘導体の基質
β−シクロデキストリン（ＣＤ）完全アセチル化体
無水酢酸（１４ｍＬ）に酢酸ナトリウム（１．００ｇ，１２．２ｍｍｏｌ）を加え、６０℃に加熱した。β−シクロデキストリン（２．００ｇ，１．７６ｍｍｏｌ）を徐々に加え、反応液を１４０℃で２時間攪拌した。反応液を室温に戻し、氷水を加え、一晩攪拌した。反応液に大量の水を加え、析出物をろ取した。メタノールによる再結晶化で精製し、結晶状のβ−シクロデキストリン完全アセチル化体（２．１１ｇ，５９．４％）を得た。
【００２９】
Ｇ７完全アセチル化体
β−シクロデキストリン完全アセチル化体（１０．２ｇ，５．０６ｍｍｏｌ）を無水酢酸（１０２ｍＬ）に溶解し、濃硫酸（２．０ｍＬ）を加え、５０℃で１２時間攪拌した。反応液を０℃に冷却し、ピリジン（１０ｍＬ）を加え中和した。反応液を濃縮後、シリカゲルカラムクロマトグラフィー［トルエン−酢酸エチル（２：７（ｖ／ｖ））で精製し、直鎖状のマルトオリゴ７糖完全アセチル化体（５．９８ｇ，５５．９％）を得た。
【００３０】
Ｇ７チオアセチル化体
マルトオリゴ７糖完全アセチル化体（２２．７ｇ，１０．７ｍｍｏｌ）を氷酢酸（４５．０ｍＬ）に溶解し、無水酢酸（４．５ｍＬ）を加えた。反応容器を水浴（室温）に設置し、３３％臭化水素／酢酸溶液（２３．０ｍＬ）を加え、密栓をして、室温で４時間攪拌した。反応液をクロロホルムで希釈し、冷純水、冷飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、飽和食塩水の順にクロロホルムで抽出を行い、有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥した。この有機層をセライトろ過し、ろ液を濃縮し、臭化糖の粗精製物を得た。得られた、臭化糖の粗精製物をＤＭＦ（２２０ｍＬ）に溶解し、反応液を、０℃に冷却後、チオ酢酸カリウム（３．６６ｇ，３２．１ｍｍｏｌ）を加え、反応液を室温に戻し、一晩攪拌した。反応液を酢酸エチルで希釈し、冷飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、飽和食塩水の順に飽和食塩水で抽出を行い、有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥した。この有機層をセライトろ過し、ろ液を濃縮後、シリカゲルカラムクロマトグラフィー［トルエン−酢酸エチル（１：２（ｖ／ｖ））で精製し、マルトオリゴ７糖チオアセチル化体（１．３４ｇ，６２．２％）を得た。後、シリカゲルカラムクロマトグラフィー［トルエン−酢酸エチル（２：３（ｖ／ｖ））で精製し、マルトオリゴ７糖チオアセテート（１５．８ｇ，６９．１％）を得た。
【表９】
2010068777.tif 000013
【００３１】
Ｇ７チオペンテニルアセチル化体
マルトオリゴ７糖チオアセテート（２．１３ｇ，１．００ｍｍｏｌ）をＤＭＦ（２１．０ｍＬ）に溶解し、５−ブロモ−１−ペンテン（１７３μＬ，２．００ｍｍｏｌ）を加えた。反応液を、−１５℃に冷却し、ジエチルアミン（２．１ｍＬ，２０ｍｍｏｌ）を滴下し、滴下終了後、反応液を室温に戻し、５時間攪拌した。反応液を酢酸エチルで希釈し、飽和食塩水で抽出を行い、有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥した。この有機層をセライトろ過し、ろ液を濃縮後、シリカゲルカラムクロマトグラフィー［トルエン−酢酸エチル（２：３（ｖ／ｖ））で精製し、マルトオリゴ７糖チオペンテニルグリコシドアセチル化体（１．３４ｇ，６２．２％）を得た。
【表１０】
2010068777.tif 000014
【００３２】
Ｇ７チオペンテニルＯＨ体
マルトオリゴ７糖チオペンテニルグリコシド完全アセチル化体（８．００ｇ，３．７０ｍｍｏｌ）をメタノール（１６０ｍＬ）に溶解し、ナトリウムメトキシド（１９９ｍｇ，３．７０ｍｍｏｌ）を加え、室温で一晩攪拌した。反応液を強酸性陽イオン交換樹脂ＩＲ−１２０Ｂ（Ｈ＋型）で中和後、イオン交換樹脂をガラスフィルターでろ取し、ろ液を濃縮した。残渣をメタノールで溶解しＧＰＣ（ＭｅＯＨ）による精製を行い、脱保護体を定量的に得た。
【表１１】
2010068777.tif 000015
【００３３】
Ｇ７  ４，６−Ｏ−ナフチリデン体
２−ナフトアルデヒド−ジイソブチルアセタール（８５０ｍｇ，２．８ｍｍｏｌ）をＤＭＦ（１８．０ｍＬ）に溶解し、マルトオリゴ７糖チオペンテニルグリコシド（１．７７ｍｇ，１．４ｍｍｏｌ）、１０−（＋）−カンファスルホン酸（１６２ｍｇ，０．７ｍｍｏｌ）を加え、水流アスピレーターによる減圧下、５０℃で２時間攪拌した。反応液を室温に戻し、反応容器を水浴（室温）に設置し、トリエチルアミン（１．７ｍＬ）を加え中和した。反応液を濃縮後、ピリジン（１０．０ｍＬ）、無水酢酸（１０．０ｍＬ）を加え、室温で一晩攪拌した。反応液を濃縮後、冷飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、飽和食塩水の順に酢酸エチルで抽出を行い、有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥した。この有機層をセライトろ過し、ろ液を濃縮後、シリカゲルカラムクロマトグラフィー［トルエン−酢酸エチル（１：１（ｖ／ｖ））で精製し、４，６−Ｏ−ナフチリデンマルトオリゴ７糖アセチル化体（５１８ｍｇ，１６．３％）を得た。また、原料の完全アセチル化体（１．８４ｇ，５９．３％）を回収した。
【表１２】
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【００３４】
Ｇ７ナフチルＡｃ体
４，６−Ｏ−ナフチリデンマルトオリゴ７糖（５１８ｍｇ，０．２３３ｍｍｏｌ）をＴＨＦ（７．５ｍＬ）に溶解し、ＭＳ４Å（１．０３ｇ）、ボラン−トリメチルアミン錯体（２３９ｍｇ，３．２７ｍｍｏｌ）を加え、室温で３０分間攪拌した。反応容器を水浴（室温）に設置し、塩化アルミニウム（４３５ｍＬ，３．２７ｍｍｏｌ）を加え、室温で３時間攪拌した。反応液を綿濾過し、冷１  Ｍ  塩酸、冷飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、飽和食塩水の順にクロロホルムで抽出を行い、有機層を無水硫酸ナトリウムで乾燥した。この有機層をセライトろ過し、ろ液を濃縮後、シリカゲルカラムクロマトグラフィー［トルエン−酢酸エチル（４：５（ｖ／ｖ））で精製し、６−Ｏ−ナフチルマルトオリゴ７糖アセチル化体（２３０ｍｇ，４４．６％）を得た。
【表１３】
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【００３５】
Ｇ７ナフチルＯＨ体
６−Ｏ−ナフチルマルトオリゴ７糖アセチル化体（１１０ｍｇ，０．０５０ｍｍｏｌ）をメタノール（２．０ｍＬ）に溶解し、ナトリウムメトキシド（２．７ｍｇ，０．０５０ｍｍｏｌ）を加え、室温で一晩攪拌した。反応液を強酸性陽イオン交換樹脂ＩＲ−１２０Ｂ（Ｈ＋型）で中和後、イオン交換樹脂をガラスフィルターでろ取し、ろ液を濃縮した。残渣をメタノールで溶解しＧＰＣ（ＭｅＯＨ）による精製を行い、脱保護体（７０ｍｇ）を定量的に得た。
【表１４】
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【００３６】
Ｇ７アミン体
６−Ｏ−ナフチルマルトオリゴ７糖チオペンテニルグリコシド体（１３６ｍｇ，０．０９４６ｍｍｏｌ）をメタノール（０．４５ｍＬ）に溶解し、水（０．４５ｍＬ）、２−メルカプトエチルアミン塩酸塩（１０７ｍｇ，０．９４６ｍｍｏｌ）を加え、完全溶解させた。室温で紫外線を３時間照射後、反応液をそのままセファデックスＬＨ−２０（ＭｅＯＨ）によりゲルろ過精製を行い、６−Ｏ−ナフチルマルトオリゴ７糖アミン体塩酸塩（１１４ｍｇ，８０．９％）を得た。
【表１５】
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【００３７】
Ｇ７ダンシル体
６−Ｏ−ナフチルマルトオリゴ７糖アミン体（５０ｍｇ，０．０３３ｍｍｏｌ）をメタノール（２．５ｍＬ）に溶解し、塩化ダンシル（３６ｍｇ，０．１３４ｍｍｏｌ）を加えた。反応容器を水浴（室温）に設置し、トリエチルアミン（９．３ｍＬ，０．０６７ｍｍｏｌ）を滴下した。３時間攪拌後、反応液をそのままセファデックスＬＨ−２０（ＭｅＯＨ）によりゲルろ過精製を行い、次いでＧＰＣ（ＭｅＯＨ）による精製を行い、ダンシルマルトオリゴ７糖（４７ｍｇ，８３．２％）を得た。
【表１６】
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【００３８】
〔実施例１〕蛍光性マルトオリゴ６糖を用いたアミラーゼ活性の測定
上記のように合成した蛍光性マルトオリゴ６糖（合成例１）を用いて、アミラーゼ活性の測定を行った。
合成した蛍光性マルトオリゴ６糖を、８．３μＭになるようにＨＥＰＥＳバッファー（１０ｍＭ  ＨＥＰＥＳ  ｐＨ７．２，１０ｍＭ  ＣａＣｌ２，０．０１％  ＮａＮ３，）、３ｍＬ中にあらかじめ溶解しておき、そこに検査サンプルであるＡｍｙｌａｓｅ（a-amylase from human saliva (Lee bio solutions inc., St. Louis, Missouri, USA)、a-amylase from human pancreas (Elastin products co. inc., Owensville, Missouri, USA)）０．０３Ｕ／ｖｉａｌ（ｃａｒａｗａｙ  ｍｅｔｈｏｄ（Caraway, W T. Am. J. Clin. Path., 32 97-99 (1959)）を加え、３７℃、３０分加温後、蛍光強度を測定した。測定は、９分毎に行った。その結果、検査サンプルにアミラーゼが存在していると、３３３ｎｍの蛍光強度が増大し、５３０ｎｍの蛍光強度が減弱したのに対し（図２)、検査サンプルにアミラーゼが存在しないと蛍光強度の変化は認められなかった。また、蛍光強度の増減は酵素量が多い程大きかった。
本方法による測定において、基質の加水分解速度とアミラーゼ濃度（酵素活性）との間には一次相関が認められたことから（図３）、蛍光強度の変化から、酵素活性の定量も可能である。
【００３９】
〔実施例２〕アミラーゼアイソザイム（Ｐ型、Ｓ型）の識別
次に、本発明の方法により、アミラーゼアイソザイムの識別が可能であることを以下に示す。
膵由来のアミラーゼＰ型及び唾液由来のアミラーゼＳ型の酵素活性は、ブルースターチ法（Phadebas（登録商標）、 (Magle Life Sciences, Lund, Sweden)（Myersら，J Forensic Sci, 53:862-867, 2008）で同一の活性になるように希釈したものを使用した。ブルースターチ法では、同等の酵素活性であったが、本基質（６糖）では約２倍の分解速度（酵素活性）の差が認められた（図４）。従って、本発明の方法では、唾液由来のアミラーゼ（Ｓ型）活性を強く検出することができ、同量の酵素活性の強さの差により、アイソザイムの識別を行うことが可能となる。具体的には、ｃａｒａｗａｙ法で標準品のＳ型、Ｐ型アミラーゼの活性が、各々、１μＵになるように濃度調製行った後、既知の混合比率で調製したＳ型Ｐ型標準酵素について、本発明の基質を用いて活性測定を行う。本発明の基質はＳ型とＰ型で反応速度が異なるため、Ｓ型Ｐ型標準酵素の検量線を作成することができる（図５）。次に検査試料のアミラーゼ酵素活性を測定した後、作成した検量線を用いてＳ型及びＰ型アイソザイムの混合比率を算出することができる。
【産業上の利用可能性】
【００４０】
本発明のアミラーゼ活性測定基質及び該基質を含有する試薬は、法医学分野及び医療分野において、証拠物の特定あるいは疾患原因の特定を行うにあたり、優れた効果を発揮することが期待される。
【図面の簡単な説明】
【００４１】
【図１】図１は、本発明のアミラーゼ測定用基質（マルトオリゴ糖６糖の誘導体の場合）によるＦＲＥＴについて説明した図である。
【図２】図２は、本発明のアミラーゼ測定用基質（マルトオリゴ糖６糖の誘導体の場合）溶液にアミラーゼを添加した際の経時的な蛍光強度の変化を示した図である．各線はそれぞれアミラーゼ添加後、０分、９分、１８分、２７分を示す。時間の経過と共に、３３０ｎｍの蛍光強度が増大し、５３０ｎｍの蛍光強度が減少している。
【図３】図３は、本発明のアミラーゼ測定用基質（マルトオリゴ糖６糖の誘導体の場合）溶液に各濃度のアミラーゼを添加した際の酵素反応速度（基質分解速度）を示した図である。ｃａｒａｗａｙ法にて検定した酵素をそれぞれの濃度になるように反応液に加え、酵素添加後３分後に蛍光測定を行い、その蛍光強度変化より速度（初速度）を算出した。Ｘ軸は酵素濃度、Ｙ軸は該当濃度に対する速度をプロットしたものである（測定は各４回行い、点は平均、エラーバーは標準偏差を示す。）。酵素濃度の増加と共に酵素反応速度が増加している。
【図４】本発明の方法により検出されるＰ型及びＳ型の酵素活性の差を示す。  ブルースターチ法で同一の活性を示すＰ型（膵臓由来）及びＳ型（唾液腺由来）アイソザイムについて、本発明の基質を用いて酵素活性（加水分解速度）を測定したところ、Ｓ型アミラーゼの酵素活性が、Ｐ型の約２倍の強さで検出された。
【図５】本発明の基質を用いて作成したＰ型Ｓ型混合標準酵素の検量線を示す。Ｓ型及びＰ型アイソザイムを、各々、１００％及び０％、５０％及び５０％、０％及び１００％の混合比率になるように調製したＰ型Ｓ型混合標準酵素サンプルの活性を測定し、Ｓ型アイソザイムの存在比率（Ｘ軸）に対し、酵素活性（蛍光強度）をプロットした。検査試料の酵素活性が、例えば速度が１８０の場合、図５の検量線から、Ｓ型７５％、Ｐ型２５％の混合比率であると評価することができる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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