(57)【要約】      （修正有）【課題】幹細胞から線維芽細胞への分化誘導促進効果による、幹細胞から皮膚組織の再生を目的とした線維芽細胞及び／又は人工真皮の製造方法、またこれらを用いた皮膚の再生方法を提供する。【解決手段】紫麦の種子抽出物により、幹細胞から線維芽細胞への分化誘導を顕著に促進させることで、幹細胞から線維芽細胞または人工真皮の作製を極めて効率的に行うことが可能となる。また、作製した線維芽細胞または人工真皮は、皮膚組織へ移植した場合、組織の再生能力を著しく向上させる。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
幹細胞を紫麦（学名：Ｈｏｒｄｅｕｍ  ｖｕｌｇａｒｅ  Ｌ．）の種子抽出物の存在下で培養することを特徴とする、線維芽細胞。
【請求項２】
幹細胞を紫麦（学名：Ｈｏｒｄｅｕｍ  ｖｕｌｇａｒｅ  Ｌ．）の種子抽出物の存在下で培養することを特徴とする、人工真皮。
【請求項３】
幹細胞を紫麦（学名：Ｈｏｒｄｅｕｍ  ｖｕｌｇａｒｅ  Ｌ．）の種子抽出物の存在下で培養することを特徴とする、線維芽細胞又は人工真皮の製造方法。
【請求項４】
紫麦（学名：Ｈｏｒｄｅｕｍ  ｖｕｌｇａｒｅ  Ｌ．）の種子抽出物を含有することを特徴とする、幹細胞の線維芽細胞への分化誘導促進剤。
【請求項５】
請求項１記載の線維芽細胞を含有することを特徴とする、医薬組成物。
【請求項６】
幹細胞を紫麦（学名：Ｈｏｒｄｅｕｍ  ｖｕｌｇａｒｅ  Ｌ．）の種子抽出物の存在下で培養した、線維芽細胞及び／又は人工真皮を用いることを特徴とする、皮膚の再生方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、紫麦（学名：Ｈｏｒｄｅｕｍ  ｖｕｌｇａｒｅ  Ｌ．）の種子抽出物および該成分の持つ、幹細胞から線維芽細胞への分化誘導促進効果による、幹細胞から皮膚組織の再生を目的とした線維芽細胞及び／又は人工真皮の製造方法と、これらを用いた皮膚の再生方法に関する。詳しくは、紫麦の種子抽出物は、哺乳動物の幹細胞に対して、線維芽細胞への分化誘導促進効果を有し、さらに、該効果により、幹細胞から線維芽細胞及び／又は人工真皮の作製を極めて効率的に行い、且つこれらを生体に移植した場合に、皮膚組織の再生能力を高める技術などに関する。
【背景技術】
【０００２】
脊椎動物、特に哺乳動物の組織は、傷害もしくは疾患、又は加齢などに伴い細胞・臓器の損傷が起こった場合、再生系が働き、細胞・臓器の損傷を回復しようとする。この作用に、当該組織に備わる幹細胞が大きな役割を果たしている。幹細胞は、あらゆる細胞・臓器に分化する多能性を有しており、この性質により細胞・組織の損傷部を補うことで回復に導くと考えられている。このような幹細胞を応用した、次世代の医療である再生医療に期待が集まっている。
【０００３】
哺乳動物における幹細胞研究で最も進んでいる組織は骨髄である。骨髄には生体の造血幹細胞が存在しており、すべての血液細胞再生の源であることが明らかにされた。さらに骨髄には、造血幹細胞とは別に、その他の臓器（例えば、骨、軟骨、筋肉、脂肪など）へ分化可能な幹細胞が包含されていることが報告されている（非特許文献１）。
さらに、近年、骨髄以外にも、肝臓、膵臓、脂肪など、あらゆる臓器・組織に幹細胞が存在することが明らかにされ、各臓器・組織の再生および恒常性維持を司っていることがわかってきた（非特許文献２〜５参照）。また、各組織に存在する幹細胞は可塑性に優れており、今まで自己複製が不可能であった臓器や組織の再生にも利用できる可能性がある。
近年、これらの幹細胞を、臓器や組織の再生へ応用するため、細胞移植治療や組織工学（再生医療や再生美容）の分野において研究が進められている（非特許文献６）。
また、幹細胞は他の細胞に比べて分裂能が高く、胚性幹細胞（ＥＳ細胞）などは、ほぼ無限に増殖すると考えられている（非特許文献７）。
幹細胞の持つこの能力は、今後の再生医療や再生美容には極めて重要である。すなわち、再生医療や再生美容では組織を再生するための細胞が必要であり、この細胞に限りがあっては、十分に組織を再生できない。この点、幹細胞は無限に増殖することが可能であり、かつ多能性も備えていることから、組織再生用の細胞又は組織を無限に調製できる細胞として期待が大きい。
【０００４】
【非特許文献１】Ｐｉｔｔｅｎｇｅｒ  Ｍ．  Ｆ．，  ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９９９，２８４，１４３−１４７
【非特許文献２】Ｇｏｏｄｅｌｌ  Ｍ．  Ｆ．，  ｅｔ  ａｌ．，  Ｎａｔ．  Ｍｅｄ．，  １９９７，３，１３３７−１３４５
【非特許文献３】Ｚｕｌｅｗｓｋｉ  Ｈ．，  ｅｔ  ａｌ．，  Ｄｉａｂｅｔｅｓ，  ２００１，５０，５２１−５３３
【非特許文献４】Ｓｕｚｕｋｉ  Ａ．，  ｅｔ  ａｌ．，  Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ，  ２０００，３２，１２３０−１２３９
【非特許文献５】Ｚｕｋ  Ｐ．  Ａ．，  ｅｔ  ａｌ．，  Ｔｉｓｓｕｅ  Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，  ２００１，７，２１１−２２８
【非特許文献６】西川  伸一ら，実験医学，２００８，２６，７４−８０
【非特許文献７】末盛  博文，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，２００３，４０，９８−１０５
【０００５】
また、幹細胞の再生医療や再生美容への応用を考えた場合、最も重要な課題は、再生したい臓器や組織の細胞に幹細胞を効率よく分化誘導させる技術の開発が重要であり、さらに、目的の細胞に分化誘導できたとしても、臓器や組織は三次元的に構築されているため、これを再現できなければ、生体に移植しても、その効果（臓器、組織の再生）を発揮できない。
すなわち、生体外において幹細胞を培養し、目的の細胞に自由自在に分化誘導させ、再生したい臓器や組織に類似した三次元的な構築を行う技術を開発できれば、今後の再生医療や再生美容の飛躍的な発展が望める。
【０００６】
特に、皮膚組織は、複雑な三次元構造を取っており、また、人の身体の最外層に備わっているため、外的傷害によるダメージを受けやすい組織である。また、人の外観や美容に大きく関わる組織であり、この組織の再生技術を進歩させることは極めて重要な課題である。
【０００７】
これまでに、人の皮膚組織を人工的に培養し、移植することで皮膚組織を再生する技術の研究が幾つか行われている。特に、人工表皮シートによる表皮組織の再生に関しては、Ｇｒｅｅｎらが開発した人工表皮シートの作製技術（非特許文献８、９、１０）により、現在では、この技術をもとに株式会社ジャパン・ティッシュ・エンジニアリングから、ヒト細胞・組織利用医療機器として、厚生労働省から製造承認（２１９００ＢＺＺ０００３９０００）を受けた人工表皮シートの提供が行われている。
【非特許文献８】Ｐｈｉｌｌｉｐｓ  Ｔ.  ｅｔ  ａｌ.，  J.  Ａｍ．  Ａｃａｄ.  Ｄｅｒｍａｔｏｌ.，  １９８９，２１，１９１−１９９
【非特許文献９】Ｈ．Ｇｒｅｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，  ＰＮＡＳ，２００３，１００，１５６２５−１５６３０
【非特許文献１０】Ｈ．Ｇｒｅｅｎ，Ｏ．Ｋｅｈｉｎｄｅ，Ｊ．Ｔｈｏｍａｓ，ＰＮＡＳ  ＵＳＡ，１９７９，７６，５６６５−５６６８
【０００８】
これに対して、人工真皮を用いた真皮組織の再生に関しては、幾つかの試みがなされているが未だ満足のいく技術の開発には至っていない。例えば、コラーゲンやグリコサミノグリカンのみで製作したスポンジ状の人工真皮（非特許文献１１）や、その他の基質タンパクを利用した人工真皮の作製技術（非特許文献１２）などが報告されている。しかしながら、これらの人工真皮には線維芽細胞は含まれていないため、移植しても生着せず瘢痕組織を形成するなどの問題や、弾力性、柔軟性の面で課題が多く残されている。
【０００９】
【非特許文献１１】Ｙａｎｎａｓ  ＩＶ．  ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｉｅｎｃｅ，１９８２，２１５，１７４−１７６
【非特許文献１２】Ａｎｓｅｌ  Ｊ．  ｅｔ  ａｌ．，  J.  Ｉｎｖｅｓｔ．  Ｄｅｒｍａｔｏｌ．，１９９０，９４，１０１−１０７
【００１０】
また近年では、ヒト線維芽細胞を含めた、人工真皮や人工皮膚の作製方法に関しても報告されている（特許文献１、２、３、４、５）。
【００１１】
【特許文献１】特表２００４−５２２５４５
【特許文献２】特開２００２−２１８９７１
【特許文献３】特開２００４−１２１５２３
【特許文献４】特開２００５−１３０８３８
【特許文献５】特開２００８−１２５５４０
【００１２】
しかし、熊谷は、これら技術を用いて作製した人工真皮を移植したとしても、生着率が悪く、皮膚の再生能力を必ずしも高めるものではないことを報告している（非特許文献１３）。また、人工真皮の作製に用いる線維芽細胞に関しても、実際に人工真皮を作製するために必要な細胞数まで増殖させるには長い時間を要し、かつ線維芽細胞の分裂回数には限界があるため、十分な量の線維芽細胞を確保できず、人工真皮の作製にも限界が生じ、広範囲の皮膚の再生には対応できないのが現状である。
【００１３】
【非特許文献１３】熊谷憲夫，ティッシュエンジニアリング２００５，２００５，１１９−１２８
【００１４】
このような中、人工真皮の作製に、幹細胞の応用が期待されている。しかし、今のところ、幹細胞を応用した線維芽細胞や人工真皮の作製方法に関しては報告がなく、未だ開発がなされていない。
【００１５】
つまり、無限に増殖し多分化能（本発明の場合は線維芽細胞への分化能）を持つ幹細胞の能力を活かし、幹細胞を組織の再生に必要な数まで増殖させ、さらに線維芽細胞への分化誘導を促進させることで、組織を再生させるために十分な量の線維芽細胞を確保し、かつ三次元的に人工真皮を構築させる技術を開発することで、皮膚組織の再生能力を高める線維芽細胞または人工真皮の作製技術が望まれている。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【００１６】
かかる状況に鑑み、本発明は、上記のような従来技術における問題点を解決し、幹細胞から線維芽細胞への分化誘導促進効果による、幹細胞から皮膚組織の再生を目的とした線維芽細胞及び／又は人工真皮の製造方法よ、これらを用いた皮膚の再生方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１７】
本発明者らは、上記課題の解決に向けて鋭意検討を行った結果、紫麦の種子抽出物に、優れた幹細胞の線維芽細胞への分化誘導促進効果を見出し、さらに、該抽出物を用いて幹細胞から作製した線維芽細胞及び人工真皮は、極めて皮膚組織の再生能力に優れていることを発見し、本発明を完成するに至った。
【００１８】
即ち本発明は、以下のとおりである。
（１）幹細胞を紫麦（学名：Ｈｏｒｄｅｕｍ  ｖｕｌｇａｒｅ  Ｌ．）の種子抽出物の存在下で培養することを特徴とする、線維芽細胞。
（２）幹細胞を紫麦（学名：Ｈｏｒｄｅｕｍ  ｖｕｌｇａｒｅ  Ｌ．）の種子抽出物の存在下で培養することを特徴とする、人工真皮。
（３）幹細胞を紫麦（学名：Ｈｏｒｄｅｕｍ  ｖｕｌｇａｒｅ  Ｌ．）の種子抽出物の存在下で培養することを特徴とする、線維芽細胞又は人工真皮の製造方法。
（４）紫麦（学名：Ｈｏｒｄｅｕｍ  ｖｕｌｇａｒｅ  Ｌ．）の種子抽出物を含有することを特徴とする、幹細胞の線維芽細胞への分化誘導促進剤。
（５）前記（１）記載の線維芽細胞を含有することを特徴とする、医薬組成物。
（６）幹細胞を紫麦（学名：Ｈｏｒｄｅｕｍ  ｖｕｌｇａｒｅ  Ｌ．）の種子抽出物の存在下で培養した、線維芽細胞及び／又は人工真皮を用いることを特徴とする、皮膚の再生方法。
【００１９】
以下、本発明をさらに詳細に説明する。
【００２０】
本発明は、紫麦の種子抽出物の持つ、幹細胞から線維芽細胞への分化誘導促進効果による、幹細胞から皮膚組織の再生を目的とした線維芽細胞及び／又は人工真皮の製造方法と、これらを用いた皮膚の再生方法を提供する。
【００２１】
本発明に用いる紫麦とは、頴、頴果、茎又は葉が紫色の大麦のことを指し、学名はＨｏｒｄｅｕｍ  ｖｕｌｇａｒｅ  Ｌ．である。例えば、大麦の品種ではＯＵＣ３２１、ＣＩ１５８、ＣＩ２４４等が挙げられる。
【００２２】
上記紫麦の種子抽出物の調製に際し、使用する部位は特に限定されるものではないが、種子を含む植物体そのままを用いることも可能であり、また、必要に応じて、花、葉、茎、根などより選択した部位を混合して用いても良い。より好ましくは種子のみを用いるのが良い。また、抽出には、植物体そのままを使用しても良く、乾燥、粉砕、細切等の処理を行ってから抽出を行っても良い。
【００２３】
抽出する溶媒としては、例えば、水、低級アルコール類（メタノール、エタノール、１−プロパノール、２−プロパノール、１−ブタノール、２−ブタノール等）、液状多価アルコール（１，３−ブチレングリコール、プロピレングリコール、グリセリン等）、ケトン類（アセトン、メチルエチルケトン等）、アセトニトリル、エステル類（酢酸エチル、酢酸ブチル等）、炭化水素類（ヘキサン、ヘプタン、流動パラフィン等）、エーテル類（エチルエーテル、テトラヒドロフラン、プロピルエーテル等）が挙げられる。好ましくは、水、低級アルコール及び液状多価アルコールが良く、特に好ましくは、水、エタノールが良い。これらの溶媒は１種でも２種以上を混合して用いても良い。また、抽出法は特に限定されないが、加熱による抽出が好ましい。さらに上記抽出溶媒に酸やアルカリを添加してｐＨ調整して用いてもよい。
【００２４】
紫麦の種子抽出物は、抽出した溶液のまま用いても良く、必要に応じて、濃縮、稀釈、濾過等の処理及び活性炭等による脱色、脱臭処理をして用いても良い。特に、抽出した溶液を濃縮乾固、噴霧乾燥、凍結乾燥等の処理を行い、乾燥物として用いることが好ましい。
【００２５】
幹細胞を培養する培地、線維芽細胞への分化誘導を行う際の培地又は人工真皮を調製する培地などに含有する紫麦の種子抽出物の含有量は、特に限定されないが、乾燥物として０．００００１〜１０重量％であることが好ましく、０．０００１〜１重量％含まれる濃度で使用することが最も好ましい。０．００００１重量％未満であると本発明の効果が十分に発揮されにくい場合がある。
【００２６】
また、本発明の紫麦の種子抽出物は、幹細胞から線維芽細胞への分化誘導促進剤としての応用や、これを用いた分化誘導技術による幹細胞からの線維芽細胞や人工真皮の製造方法への応用が可能である。また、これら用途以外にも、細胞培養用添加剤、研究用試薬、医療用試薬、細胞移植剤をはじめとし、医薬品、医薬部外品、化粧品、食品等への配合や応用が可能である。
【００２７】
本発明の幹細胞としては、本発明の目的に沿うものであれば、胚性の幹細胞（ＥＳ細胞）、もしくは、骨髄、血液、皮膚、脂肪、脳、肝臓、膵臓、腎臓、筋肉やその他の組織に存在する、未分化な状態の細胞（総称して、体性幹細胞と記す）、さらには遺伝子導入などにより人工的に作製された幹細胞を示しており、また、これら幹細胞は、初代培養細胞、継代培養細胞、凍結細胞いずれであってもよい。好ましくは、骨髄、血液、皮膚、脂肪組織由来の幹細胞に対してより効果を発揮する。また、哺乳動物における、幹細胞の分化の方向性、および、分化の過程等について同等の特性を持っていれば、全ての哺乳動物に応用が可能である。例えば、ヒト、サル、マウス、ラット、モルモット、ウサギ、ネコ、イヌ、ウマ、ウシ、ヒツジ、ヤギ、ブタ等の哺乳動物の幹細胞に対して効果を発揮することができる。
【００２８】
本発明の幹細胞を培養する培地または線維芽細胞への分化誘導を行う時の培地、また、それら培地と同時に用いる添加剤としては、例えば以下のものを使用できるが、限定されるものではない。
【００２９】
具体的には、細胞の生存に必要な成分（無機塩、炭水化物、ホルモン、必須アミノ酸、非必須アミノ酸、ビタミン）を含む基本培地、例えば、Ｄｕｌｂｅｃｏ‘ｓ  Ｍｏｄｉｆｉｄｅ  Ｅａｇｌｅ  Ｍｅｄｉｕｍ（Ｄ−ＭＥＭ），Ｍｉｎｉｍｕｍ  Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ  Ｍｅｄｉｕｍ（ＭＥＭ），ＲＰＭＩ１６４０，Ｂａｓａｌ  Ｍｅｄｉｕｍ  Ｅａｇｌｅ（ＢＭＥ），Ｄｕｌｂｅｃｏ‘ｓ  Ｍｏｄｉｆｉｄｅ  Ｅａｇｌｅ  Ｍｅｄｉｕｍ：Ｎｕｔｒｉｅｎｔ  Ｍｉｘｔｕｒｅ  Ｆ−１２（Ｄ−ＭＥＭ／Ｆ−１２），Ｇｌａｓｇｏｗ  Ｍｉｎｉｍｕｍ  Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ  Ｍｅｄｉｕｍ（Ｇｌａｓｇｏｗ  ＭＥＭ），ハンクス液（Ｈａｎｋ‘ｓ  ｂａｌａｎｃｅｄ  ｓａｌｔ  ｓｏｌｕｔｉｏｎ），ＭＣＤＢ１５３倍地などに、増殖因子として塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）、白血球遊走阻止因子（ＬＩＦ）の少なくともいずれか１種を添加した培地が用いられ、好ましくは、これら増殖因子の全てが含有されたものである。また、必要に応じて、上皮細胞増殖因子（ＥＧＦ）、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）、ビタミン類、インターロイキン類、インスリン、トランスフェリン、ヘパリン、ヘパラン硫酸、コラーゲン、フィブロネクチン、プロゲステロン、セレナイト、Ｂ２７−サプリメント、Ｎ２−サプリメント、ＩＴＳ−サプリメント、抗生物質が含有されてもよい。
【００３０】
また、上記以外には、１〜２０％の含有率で血清が含まれることが好ましい。しかし、血清はロットの違いにより成分が異なり、その効果にバラツキがあるため、ロットチェックを行った後に使用することが好ましい。
【００３１】
幹細胞を培養する培地の市販品としては、インビトロジェン製の間葉系幹細胞基礎培地、三光純薬製の間葉系幹細胞基礎培地、ＴＯＹＯＢＯ社製のＭＦ培地、幹細胞用無血清培地ＳＴＫ２（ＤＳファーマバイオメディカル社製）、ＭＣＤＢ１５３培養液（Ｓｉｇｍａ社製）やＳｉｇｍａ社製のハンクス液（Ｈａｎｋ‘ｓ  ｂａｌａｎｃｅｄ  ｓａｌｔ  ｓｏｌｕｔｉｏｎ）などを用いることができる。また、幹細胞から線維芽細胞への分化誘導を行う時の培地の市販品としては、Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ  Ｍｅｄｉｕｍ（三光純薬製）、正常ヒト線維芽細胞用培地（ＤＳファーマバイオメディカル社製）やＳｉｇｍａ社製のハンクス液（Ｈａｎｋ‘ｓ  ｂａｌａｎｃｅｄ  ｓａｌｔ  ｓｏｌｕｔｉｏｎ）などを用いることができる。なお、培地の交換は２〜３日に１回行うことが好ましいが、より好ましくは毎日行うことが好ましい。
【００３２】
幹細胞の培養または幹細胞から線維芽細胞へ分化誘導する場合の容器としては、使い捨てのシャーレを使用することが好ましく、また、セルカルチャーインサート（ファルコン社製）などを使用してもよい。
【００３３】
また、上記の方法で幹細胞から分化誘導させた線維芽細胞は、一般的に体外で培養後、創傷部や組織を再生させたい部位に直接注射などで移植に用いることも可能である。すなわち、細胞医薬品や医薬品組成物として使用され、具体的な症例としては、シワ、タルミの美容治療、熱傷、先天性表皮水疱症、下腿潰瘍、難治性潰瘍などの臨床治療に用いられるが、限定されるものではない。
【００３４】
さらに、人工真皮の培養方法としては、幹細胞または幹細胞から分化させた線維芽細胞を播種し、１型コラーゲンゲル（新田ゼラチン社製）に１．５ｘ１０５個／ｍＬの濃度で細胞を包埋し、培養することで人工真皮を作製することが望ましいが、限定されるものではない。
【００３５】
その他、人工真皮を作製する容器としては、使い捨てのシャーレを使用することが好ましく、プラスチックディッシュ（ファルコン社製）、２４ウェルプレート（ファルコン社製）の他、セルカルチャーインサート（ファルコン社製）を使用することが好ましい。
【００３６】
本発明の人工真皮を作製する培地、または同時に用いる添加剤としては、例えば以下のものを使用できるが、限定されるものではない。
【００３７】
具体的には、細胞の生存に必要な成分（無機塩、炭水化物、ホルモン、必須アミノ酸、非必須アミノ酸、ビタミン）を含む基本培地、例えば、Ｄｕｌｂｅｃｏ‘ｓ  Ｍｏｄｉｆｉｄｅ  Ｅａｇｌｅ  Ｍｅｄｉｕｍ（Ｄ−ＭＥＭ），Ｍｉｎｉｍｕｍ  Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ  Ｍｅｄｉｕｍ（ＭＥＭ），Ｂａｓａｌ  Ｍｅｄｉｕｍ  Ｅａｇｌｅ（ＢＭＥ），Ｄｕｌｂｅｃｏ‘ｓ  Ｍｏｄｉｆｉｄｅ  Ｅａｇｌｅ  Ｍｅｄｉｕｍ：Ｎｕｔｒｉｅｎｔ  Ｍｉｘｔｕｒｅ  Ｆ−１２（Ｄ−ＭＥＭ／Ｆ−１２），Ｇｌａｓｇｏｗ  Ｍｉｎｉｍｕｍ  Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ  Ｍｅｄｉｕｍ（Ｇｌａｓｇｏｗ  ＭＥＭ），ＭＣＤＢ１５３に、添加因子として上皮細胞増殖因子（ＥＧＦ）、塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）を添加した培地が用いられ、好ましくは、これら全ての因子が含有されたものである。また、必要に応じて、ビタミン類、インターロイキン類、トランスフェリン、セレナイト、ＩＴＳ−サプリメント、抗生物質が含有されてもよい。
【００３８】
また、上記以外には、５〜１０％の含有率で血清が含まれることが好ましい。しかし、血清はロットの違いにより成分が異なり、その効果にバラツキがあるため、ロットチェックを行った後に使用することが好ましい。
【００３９】
また、人工真皮を作製する培地の市販品としては、正常ヒト線維芽細胞用無血清培地（ＤＳファーマバイオメディカル社製）、Ｓｉｇｍａ社製のハンクス液（Ｈａｎｋ‘ｓ  ｂａｌａｎｃｅｄ  ｓａｌｔ  ｓｏｌｕｔｉｏｎ）などを用いることができる。なお、培地の交換は２〜３日に１回行うことが好ましいが、より好ましくは毎日行うことが望まれるが、限定されるものではない。
【００４０】
上記の方法で作製した人工真皮は、一般的に体外で人工真皮を作製後、創傷部や組織を再生させたい部位に直接移植される。具体的な症例としては、シワ、タルミの美容治療、熱傷、先天性表皮水疱症、下腿潰瘍、難治性潰瘍などの治療に用いられるが、限定されるものではない。
【発明の効果】
【００４１】
本発明の紫麦の種子抽出物は、幹細胞から線維芽細胞への分化誘導を顕著に促進させることで、幹細胞から線維芽細胞または人工真皮の作製を極めて効率的に行うことが可能となった。また、本発明により作製した線維芽細胞または人工真皮は、皮膚組織へ移植した場合、組織の再生能力を著しく向上させた。以上より、本発明は、組織の再生の分野において大きく貢献できるものであり、医学、医薬品、医薬部外品、美容、健康分野への応用が期待される。
【発明を実施するための最良の形態】
【００４２】
以下、次に本発明を詳細に説明するため、具体的且つ詳細な実施例を挙げるが、本発明はこれらに何ら限定されるものではない。
【００４３】
次に本発明を詳細に説明するため、実施例として本発明に用いる紫麦の種子抽出物の製造例および幹細胞の未分化状態の維持効果を示す実験例を挙げるが、本発明はこれに限定されるものではない。
【００４４】
以下に、紫麦の種子を用いた溶媒抽出物の製造例を示す。
【実施例１】
【００４５】
製造例１  紫麦（種子）の熱水抽出物
紫麦の種子５０ｇに精製水５００ｍＬを加え、９５〜１００℃で１時間抽出した後、濾過し、その濾液を濃縮乾固して、紫麦（種子）の熱水抽出物を９．２ｇ得た。
【００４６】
製造例２  紫麦（種子）の５０％エタノール抽出物
紫麦の種子５０ｇに５０（ｖ／ｖ）％エタノール５００ｍＬを加え、常温で５日間抽出した後、濾過し、その濾液を濃縮乾固して、紫麦（種子）の５０％エタノール抽出物を３．８ｇ得た。
【００４７】
製造例３  紫麦（種子）のエタノール抽出物
紫麦の種子５０ｇにエタノール５００ｍＬを加え、常温で５日間抽出した後、濾過し、その濾液を濃縮乾固して、紫麦（種子）のエタノール抽出物を１．２ｇ得た。
【実施例２】
【００４８】
以下に、実施例１で示した製造例１〜３の紫麦の種子抽出物を用いた、幹細胞の線維芽細胞への分化誘導促進効果を評価し、該抽出物の幹細胞から線維芽細胞への分化誘導促進剤としての性能を確認する実験例とその結果を示す。
【００４９】
実験例１  幹細胞の線維芽細胞への分化誘導促進効果の評価
ヒト幹細胞培養液（ＴＯＹＯＢＯ社製）を用いて培養したヒト体性幹細胞（ＤＳファーマバイオメディカル社製）を９６ｗｅｌｌプレートに５ｘ１０３個播種し、紫麦の種子抽出物（製造例１〜３）を最終濃度が０．００１％になるように添加して７日間培養を続けた。７日後、幹細胞から線維芽細胞への分化誘導効率について評価した。線維芽細胞への分化誘導効果の指標としては、１型コラーゲンの遺伝子発現（発現が高いほど線維芽細胞へ分化が促進した）を測定した。具体的には、細胞からＴａｑＭａｎ  ＧＥＮＥ  Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  Ｃｅｌｌｓ−ｔｏ−ＣｔＴＭｋｉｔ（アプライドバイオシステム社）を用いてｍＲＮＡを抽出し、リアルタイムＰＣＲにより１型コラーゲンの遺伝子発現を測定した。
抽出物未添加時のコラーゲン遺伝子の発現をコントロール（１００％）とした場合の、紫麦の種子抽出物（製造例１〜３）添加時のコラーゲン発現の増減（％）を算出し、幹細胞から線維芽細胞への分化誘導促進効果の評価を行った。
なお、本実験例では、一般的に線維芽細胞の分化誘導因子として使用されているＦｉｂｒｏｂｌａｓｔ  Ｇｒｏｗｔｈ  Ｆａｃｔｏｒ（ＦＧＦ：線維芽細胞成長因子）１０ｎｇ／ｍＬ（Ｐｅｐｒｏ  Ｔｅｃｈ社製）を陽性コントロールとして設定し、比較対象とした。
【００５０】
これらの試験結果を表１に示した。その結果、紫麦の種子抽出物（製造例１〜３）全てに、顕著な線維芽細胞への分化誘導促進効果が認められた。以上より、紫麦の種子抽出物に極めて優れた線維芽細胞への分化誘導促進効果を明らかとし、紫麦の種子抽出物の分化誘導促進剤としての効果を確認した。これら紫麦の種子抽出物の分化誘導促進効果は、現在、線維芽細胞の分化誘導因子として一般的に用いられているＦＧＦに比べても、顕著に高い効果を示した。
なお、本実験例で用いた幹細胞以外にも、胚性幹細胞（ＥＳ細胞）、その他、未分化な状態の細胞（体性幹細胞）についても試験を行ったところ、同様な効果が確認できた。
【００５１】
【表１】
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【実施例３】
【００５２】
以下に、実施例１で示した製造例１〜３の紫麦の種子抽出物を用いた幹細胞から線維芽細胞の作製方法と作製した線維芽細胞による皮膚組織の再生能力を確認する実験例とその結果を示す。
【００５３】
実験例２  幹細胞から線維芽細胞の作製方法
幹細胞用無血清培地ＳＴＫ２（ＤＳファーマバイオメディカル社製）を用いて、マウス皮下脂肪組織由来幹細胞を培養し、増殖した幹細胞を、６ｃｍディッシュに１ｘ１０６個播種した。播種１日後、細胞の生着を確認し、線維芽細胞へ分化誘導を行った。具体的には、Ｄｕｌｂｅｃｏ‘ｓ  Ｍｏｄｉｆｉｄｅ  Ｅａｇｌｅ  Ｍｅｄｉｕｍ（Ｄ−ＭＥＭ）培地（ＧＩＢＣＯ社製）に、ＩＴＳ−Ｘサプリメント（１００倍希釈、ＧＩＢＣＯ社製）、ペニシリン（１００ｕｎｉｔ／ｍＬ、Ｓｉｇｍａ社製）とストレプトマイシン（１００μｇ／ｍＬ、Ｓｉｇｍａ社製）、ウシ血清（Ｓｉｇｍａ社製、２％）に紫麦の種子抽出物（製造例１〜３）を最終濃度が０．００１％になるように添加した分化誘導用の培養液に換え、引き続き１４日間培養を続けた。これにより、幹細胞から線維芽細胞へ分化誘導した。なお、抽出物（製造例１〜３）を添加しない培養液にて、同様に作製した線維芽細胞をコントロールとし、また、一般的に線維芽細胞の分化誘導因子として使用されているＦｉｂｒｏｂｌａｓｔ  Ｇｒｏｗｔｈ  Ｆａｃｔｏｒ（ＦＧＦ：線維芽細胞成長因子）１０ｎｇ／ｍＬ（Ｐｅｐｒｏ  Ｔｅｃｈ社製）を陽性コントロールとして設定し、比較対象とした。
【００５４】
実験例３  作製した線維芽細胞の皮膚組織の再生能力の評価
バイオプシーパンチ（ＫＡＩ社）を用いて、ヌードマウスの背部に直径５ｍｍの創傷部位を作製し、実験例２で作製した線維芽細胞（コントロール、ＦＧＦまたは各抽出物を添加して作製したもの）をそれぞれ創傷部位に移植した。具体的には、調製した線維芽細胞１ｘ１０８個を生理食塩水（大塚製薬工業社製）10μＬに懸濁し、創傷部に注射器にて直接投与した。その後、移植部位はテガダームＴＭ（３Ｍ社）で保護し、１４日間飼育を行った。１４日目にそれぞれの創傷部位の直径ｍｍを測定し、コントロールを移植した創傷部位の直径ｍｍをコントロール（１００％）とし、これに対して、ＦＧＦまたは紫麦の種子抽出物（製造例１〜３）を用いて作製した各線維芽細胞を移植した創傷部位の直径ｍｍを算出し、創傷部位の再生能力について比較した。
すなわち、コントロールより皮膚の再生能力が高ければ、創傷部位の直径ｍｍは小さくなることから、この変化を相対的に算出し、再生能力（％）として示した。
【００５５】
これらの試験結果を表２に示した。その結果、実験例２で作製した線維芽細胞のうち、作製時に紫麦の種子抽出物（製造例１〜３）を用いて作製した線維芽細胞全てにおいて極めて高い皮膚の再生能力（％）を示した。この皮膚の再生能力は、現在までに報告があるＦＧＦ（陽性コントロール）に比べても、顕著に高い効果であった。
以上より、本製造方法により幹細胞から紫麦の種子抽出物を用いて分化誘導させた線維芽細胞は、極めて高い皮膚の再生能力を示した。
なお、本実験例で用いた幹細胞以外にも、胚性幹細胞（ＥＳ細胞）、その他、未分化な状態の細胞（体性幹細胞）についても同様な試験を行ったところ、いずれも顕著な皮膚の再生能力の向上が認められた。
【００５６】
【表２】
2010022326.tif 000003
【実施例４】
【００５７】
以下に、実施例１で示した製造例１〜３の紫麦の種子抽出物を用いた人工真皮の作製方法とその人工真皮による皮膚組織の再生能力を確認する実験例とその結果を示す。
【００５８】
実験例４  幹細胞を用いた人工真皮の作製方法
ヒト幹細胞培養液（ＴＯＹＯＢＯ社製）を用いて培養したヒト体性幹細胞（ＤＳファーマバイオメディカル社製）を、１型コラーゲンゲル（新田ゼラチン社製）に１．５ｘ１０５個／ｍＬの濃度で包埋し、２４ｗｅｌｌプレートに播種して人工真皮をさらに７日間培養し、幹細胞から線維芽細胞への分化誘導を促進させつつ人工真皮を作製した。この時に、紫麦の抽出物（製造例１〜３）を最終濃度が０．００１％になるように添加し７日間培養した。なお、紫麦の抽出物（製造例１〜３）を添加しないで作製した人工真皮をコントロールとし、また、一般的に線維芽細胞の分化誘導因子として使用されているＦｉｂｒｏｂｌａｓｔ  Ｇｒｏｗｔｈ  Ｆａｃｔｏｒ（ＦＧＦ：線維芽細胞成長因子）１０ｎｇ／ｍＬ（Ｐｅｐｒｏ  Ｔｅｃｈ社製）を添加した培養液にて作製したものを陽性コントロールとして設定し、比較対象とした。
【００５９】
実験例５  人工真皮による皮膚の組織の再生能力の評価
バイオプシーパンチ（ＫＡＩ社）を用いて、ヌードマウスの背部に直径５ｍｍの創傷部位を作製し、実験例４で作製した各人工真皮（コントロール及び各抽出物を添加して作製したもの）をそれぞれ創傷部位に移植した。移植部位はテガダームＴＭ（３Ｍ社）で保護し、その後７日間飼育を行った。７日目にそれぞれの創傷部位の直径ｍｍを測定し、コントロールを移植した創傷部位の直径ｍｍをコントロール（１００％）とし、これに対して、ＦＧＦまたは紫麦の種子抽出物（製造例１〜３）を用いて作製した各人工真皮を移植した創傷部位の直径ｍｍを算出し、創傷部位の再生能力について比較した。
すなわち、コントロールより皮膚の再生能力が高ければ、創傷部位の直径ｍｍは小さくなることから、この変化を相対的に算出し、再生能力（％）として示した。
【００６０】
これらの試験結果を表３に示した。その結果、実験例４で作製した人工真皮のうち、作製時に紫麦の種子抽出物（製造例１〜３）を用いて作製した人工真皮全てにおいて極めて高い皮膚の再生能力（％）を示した。この皮膚の再生能力は、現在までに報告があるＦＧＦ（陽性コントロール）に比べても、顕著に高い効果であった。
なお、本実験例で用いた幹細胞以外にも、胚性幹細胞（ＥＳ細胞）、その他、未分化な状態の細胞（体性幹細胞）についても同様な試験を行ったところ、いずれも顕著な皮膚の再生能力の向上が認められた。
【００６１】
【表３】
2010022326.tif 000004
【００６２】
以上の結果より、紫麦の種子抽出物は、幹細胞から線維芽細胞への分化誘導を促進し、かつ本発明による幹細胞から作製した線維芽細胞及び人工真皮は、それらを移植した場合、皮膚の再生能力を優位に向上させることを確認した。
【００６３】
本発明の、紫麦の種子抽出物は、従来の技術に比べて、幹細胞の線維芽細胞への分化誘導を顕著に促進させることを見出し、さらに、これを応用することで、極めて質の高い皮膚組織の再生能力に優れた線維芽細胞及び人工真皮を簡便かつ効率的に作製する技術を確立した。
【産業上の利用可能性】
【００６４】
本発明の活用例として、再生医療、再生美容への応用が期待される。例えば、本発明の紫麦の種子抽出物は、幹細胞から線維芽細胞への分化誘導促進剤として有用であり、また、これを利用することで、再生医療、再生美容に用いる皮膚の再生能力の高い線維芽細胞や人工真皮を安全かつ効率よく作製することが可能となる。さらに、本発明の紫麦の種子抽出物を直接注入または経口投与、塗布、貼付などにより導入させることで、組織に存在する幹細胞に直接効果を与え、線維芽細胞への分化を促進させることも可能である。これにより、直接的な皮膚組織の再生も期待できる。
すなわち、本発明は、再生医療、再生美容における、幹細胞から線維芽細胞への分化誘導促進剤であり、かつ、幹細胞からの線維芽細胞や人工真皮の作製技術及び皮膚の再生技術として利用が可能である。