(57)【要約】【課題】移植臓器の虚血後再灌流障害の発生を防ぎ、さらに、臓器の低温保存を必要としない臓器保存液を提供すること。【解決手段】Ｎ末端アシル化ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２を有効成分とする保存液とする。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
次式で表される化合物を有効成分として含有することを特徴とする細胞または臓器の保存液。
【化１】
2010239963.tif 000006
（式中のＲは、アシル基を示す）
【請求項２】
アシル基の炭素数が６〜２８であることを特徴とする請求項１の細胞または臓器の保存液。
【請求項３】
有効成分の濃度が１０μＭ〜１０００μＭであることを特徴とする請求項１または２の細胞または臓器の保存液。
【請求項４】
次式で表される化合物を有効成分として含有する細胞または臓器の保存液に、細胞または臓器を浸漬することを特徴とする細胞または臓器の保存方法。
【化１】
2010239963.tif 000007
（式中のＲは、アシル基を示す）
【請求項５】
保存液に有効成分として含有される化合物は、アシル基の炭素数が６〜２８であることを特徴とする請求項４の細胞または臓器の保存方法。
【請求項６】
保存液の有効成分の濃度が１０μＭ〜１０００μＭであることを特徴とする請求項４または５の細胞または臓器の保存方法。
【請求項７】
保存液の温度は、５〜３７℃であることを特徴とする請求項４から６のいずれかの細胞または臓器の保存方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、細胞または臓器保存液および保存方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
本発明者らは、ヤママユガ科（Saturniidae）の天蚕（Antheraea yamamai）に関する研究の中で、アミノ酸配列、アスパラギン酸−イソロイシン−ロイシン−アルギニン−グリシン（ＤＩＬＲＧ）を有し、Ｃ末端がアミド化されており、分子量が５７０．９５９である新規なペプチドを見出し、このペプチドの休眠制御作用、ガン細胞の増殖抑制作用を明らかにすることで、特許を取得している（特許文献１、２）。なお、このペプチドは、本発明者らによって、「ヤママリン」と命名されてもいる。
【０００３】
また、本発明者らは、前記ペプチドの細胞浸透性および細胞増殖抑制活性を上昇させるために、ペプチド誘導体についての研究を進め、パルミチン酸との結合体（「Ｃ１６−ヤママリン」と命名されている）の顕著な細胞増殖抑制活性を報告している（非特許文献１）。
【０００４】
一方、医療技術の進歩に伴い、臓器の移植手術が広く行われるようになっている。傷病者における臓器の障害が甚だ大きく、通常の治療による回復が見込めない場合には、提供者の臓器を被提供者に移植して治療する。移植手術のために臓器提供者（ドナー）から摘出された移植臓器は、血流が途絶し血流を介した酸素の供給がない状態（虚血状態）で、移植まで数分から数時間に渡り保存される。この際、保存温度や保存液などの保存条件が適切に選択されなかったり、移植までに長時間を要する場合がある。こうした場合、移植によって移植臓器内の血流が回復した際（再灌流時）に、移植臓器に基質的あるいは機能的な障害が生じる場合がある。例えば、肝臓移植においては、移植後に凝固活性の亢進や血栓形成を伴って微小循環障害に陥り、グラフト肝機能不全が認められる場合がある。このような障害は、一般的に移植臓器の虚血後再灌流障害とよばれている。
【０００５】
こうした症状を防ぎ、移植用臓器を生理的に良好な状態で保存するための方法についての検討がなされてきた。そして、現在までに報告されている臓器保存法は、１）灌流法、２）単純浸漬保存方法、の２つの方法に大別される。
【０００６】
灌流法は、保存期間中に臓器灌流を行って、細胞に必要な酸素や栄養素を補給し、かつ老廃物を除去することで、臓器の代謝を維持し、保存期間の延長を図るものである。しかしながら、灌流法による臓器保存には、灌流温度、灌流圧、灌流量、灌流液の組成など様々な因子が関係するため、詳細な至適条件が確立されていない。
【０００７】
一方、単純浸漬保存法は、臓器を低温に保持して細胞の代謝を抑制することで、酸素欠乏による組織障害を防止する方法であり、簡便かつ有効な方法として、臨床現場では、広く用いられている。具体的には、摘出前あるいは摘出後に、流入血管などから、低温の保存液を用いて臓器の血管床から血液成分を洗浄後、摘出臓器を同保存液に浸漬する方法が一般的である。
【０００８】
実用化されている臓器保存液としては、グルコースと諸種の電解質を含んでなるユーロコリンズ液と、不浸透成分、膠質浸透圧成分、エネルギー代謝促進成分及びホルモンをそれぞれ含んでなるウィスコンシン液がよく知られている。しかしながら、ユーロコリンズ液は生存能力の高い腎臓には有効であるが、腎臓以外の臓器に対しては、組織・細胞に対する保護効果が十分でないと言われており、また、ウィスコンシン液は製剤として不安定であり、調製後は低温保存しなければならない欠点があると言われている。
【０００９】
このような欠点を克服するため、様々な臓器保存液も提案されている（例えば、特許文献３、４、５）。しかしながら、これらの臓器保存液も、製剤の調製と恒常性の維持が難しく、また、水に対する溶解度が低いなどの問題を有しているものもある。
【００１０】
さらに、上記のいずれの臓器保存液においても、臓器を低温に保持する必要があるため、移植後の臓器の機能回復が妨げられているという根本的な問題もある。さらに、冷却装置などを必要とし、臓器の搬送時の負担が大きいことも改善すべき点として指摘されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１１】
【特許文献１】特許第3023790号
【特許文献２】特許第3579711号
【特許文献３】特開2000-191401号公報
【特許文献４】特開2002-60301号公報
【特許文献５】特開2005-306749号公報
【非特許文献】
【００１２】
【非特許文献１】Yang et al.  A Palmitonyl Conjugate of an Insect Pentapeptide Causes Growth Arrest in Mammalian Cells and Mimics the Action of Diapause Hormone (2007).
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１３】
本発明は、上記の背景から、移植臓器の虚血後再灌流障害の発生を防ぎ、さらに、臓器の保存温度を低温としなくとも、十分な保存効果を発揮する臓器保存液を提供することを課題としている。
【課題を解決するための手段】
【００１４】
臓器を保存するためには、細胞レベルでの保存が必要不可欠である。したがって、本発明は、上記の課題を解決するため、以下の細胞または臓器の保存液および保存方法を提供する。
【００１５】
第１には、次式で表される化合物を有効成分として含有することを特徴とする細胞または臓器の保存液を提供する。
【００１６】
【化１】
2010239963.tif 000002
（式中のＲは、アシル基を示す）
【００１７】
第２には、アシル基の炭素数が６〜２８である前記第１の細胞または臓器の保存液を提供し、第３には、有効成分の濃度が１０μＭ〜１０００μＭである前記第１または２の細胞または臓器の保存液を提供する。
【００１８】
そして、第４には、次式で表される化合物を有効成分として含有する細胞または臓器の保存液に、細胞または臓器を浸漬することを特徴とする細胞または臓器の保存方法を提供する。
【００１９】
【化１】
2010239963.tif 000003
（式中のＲは、アシル基を示す）
【００２０】
第５には、保存液に有効成分として含有される化合物は、アシル基の炭素数が６−２８であることを特徴とする前記第４の細胞または臓器の保存方法を提供し、第６には、有効成分の濃度が１０μＭ〜１０００μＭである前記第４または５の細胞または臓器の保存方法を提供し、第７には、保存液の温度は、５〜３７℃である前記第４から第６の細胞または臓器の保存方法を提供する。
【発明の効果】
【００２１】
本発明の細胞または臓器保存液によれば、細胞の酸素消費量を可逆的に抑制することができるため、細胞または臓器の保存に有効である。さらに、臓器移植においては、移植臓器を低温に保持しなくとも、酸素欠乏による臓器の組織障害を防止することができ、移植後の臓器の機能回復がスムーズに行なわれる。
【図面の簡単な説明】
【００２２】
【図１】ＤＭＳＯ、パルミチン酸、Ｎ末端アシル化ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２を各濃度で添加したときの酸素消費量の測定結果を示す図である。グラフ上の記号＊および記号＊＊は有意水準を示し、＊は、p＜0.005、＊＊は、p＜0.001を示している。
【図２】培地に、Ｃ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２、パルミチン酸およびＤＭＳＯを添加した後に回収し、基質を添加し、回収細胞の酸素消費速度の測定結果を示す図である。
【図３】Ｃ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２（Ｃ−１６ヤママリン）による慢性骨髄性白血病細胞の保存効果（増殖抑制効果）を示す図である。
【図４】Ｃ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２（Ｃ−１６ヤママリン）によるＨＵＶＥＣの保存効果（増殖抑制効果）を示す図である。
【図５】Ｃ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２（Ｃ−１６ヤママリン）によるＮＨＤＦの保存効果（増殖抑制効果）を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００２３】
本発明は、細胞の酸素消費量を抑制することで、長期間の細胞または臓器の保存を可能とするための保存液である。（以下、「本発明の保存液」という）。
本発明の保存液は、有効成分として以下の化合物を含有している。
【００２４】
【化１】
2010239963.tif 000004
【００２５】
この化合物における式中のＲは、アシル基を示しており（以下、「Ｎ末端アシル化ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２」という）、このＮ末端アシル化ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２は、従来、本発明者らの研究によって見出された、「アスパラギン酸−イソロイシン−ロイシン−アルギニン−グリシンを有し、Ｃ末端がアミド化されたペプチド」（以下、「ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２」という）のＮ末端に、アシル基を導入することで合成することができる。ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２は、例えば、天蚕（Antheraea yamamai）の幼虫から単離、精製したものを使用することもできるし、公知のペプチド合成法により製造したものを使用することもできる。またその他の方法によって取得することもできるが、経済性、大量生産性等を考慮すれば、ペプチド合成法による取得が好ましい。
【００２６】
そして、アシル基の導入は、公知の方法で行なうことができ、Ｎ末端アシル化ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２におけるアシル基の炭素数は、細胞浸透性、細胞の酸素消費量抑制効果の観点から、６〜２８とするのが好ましく、特に好ましくは、炭素数１６のパルミトイル基である。
【００２７】
そして、本発明の保存液は、Ｎ末端アシル化ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２が、細胞および臓器の酸素消費量を可逆的に抑制することができるという新規な知見に基づいている。このような昆虫由来のペプチドを利用した臓器保存液も、従来全く知られていない。
【００２８】
そして、酸素消費抑制効果が可逆的であることは、細胞および臓器の保存剤として有用であることを意味している。
【００２９】
すなわち、本発明の保存液は、Ｎ末端アシル化ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２を溶液として調製したものであるが、例えば、移植臓器を保存する場合、保存期間中は、臓器を保存液に浸漬することで酸素消費量を抑制し、移植前に、保存液から臓器を取り出すことで、再び、臓器の酸素消費量を正常に戻すことができる。したがって、酸素欠乏による臓器の組織障害を防止することができる。
【００３０】
さらに、Ｎ末端アシル化ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２は、化学構造の骨格となるアミノ酸の数が５と少なく、極めて短い低分子であることから、例えば、保存液の調製および恒常性の維持が容易である。また、常温での保存が可能で、保存性、取扱い性にも優れ、長時間の保存も可能である。
【００３１】
また、本発明の保存液は、Ｎ末端アシル化ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２単独の形態であっても、Ｎ末端アシル化ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２とそれ以外の、例えば、グルコース、マルトース、シュークロース、ラクトース、ラフィノース、トレハロース、マンニトール、ヒドロキシエチル澱粉、プルランなどの糖質、グルコン酸、乳酸、酢酸、プロピオン酸、β−ヒドロキシ酪酸、クエン酸などの有機酸、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化マグネシウム、塩化カルシウム、燐酸二水素ナトリウム、燐酸二水素カリウム、燐酸水素二ナトリウム、燐酸水素二カリウム、炭酸水素ナトリウム、炭酸水素カリウム、炭酸ナトリウム、炭酸カリウムなどの電解質、Ｌ−アスコルビン酸、ビタミンＥなどのビタミン、グリシン、グルタミン酸、リジンなどのアミノ酸、抗利尿ホルモン、インスリンなどのホルモン、クエン酸、クエン酸塩、ヘパリン、エデト酸ナトリウムなどの抗凝固剤、カルシウム拮抗剤、アドレナリンβ受容体拮抗剤、アンギオテンシン変換酵素阻害剤などの降圧剤、アデノシン酸燐酸などの核酸塩基、凍結防止蛋白質などの凍結防止剤、活性酸素消去剤、細胞賦活剤、抗生物質、抗血小板因子、肝障害抑制剤、賦形剤、結合剤、崩壊剤、分散剤、粘性剤、再吸収促進剤、界面活性剤、溶解補助剤、保存剤、防腐剤、乳化剤、等張化剤、安定化剤、緩衝剤、ｐＨ調整剤などの、臓器保存液に通常一般に配合される成分の１又は複数との組成物としての形態であってもよい。
【００３２】
また、この発明の保存液を、例えば、ユーロコリンズ液やウィスコンシン液などの公知の臓器保存液に配合して用いるときには、それらの臓器保存能を改善することもできる。
【００３３】
さらに、この発明の保存剤によって、細胞、臓器を保存する場合は、保存液中のＮ末端アシル化ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２の濃度は、例えば、１０μＭ〜１０００μＭ、好ましくは、１０μＭ〜１００μＭの範囲とするのが好ましい。
【００３４】
そして、本発明の保存液を使用する条件として好ましい適用温度は、５〜３７℃、特に好ましくは、２５〜３７℃である。本発明の保存液は、従来のように、必ずしも低温で臓器を保存する必要がないため、移植後の臓器の機能回復がスムーズに行われることになる。もちろん、臓器移植においては機能回復の問題はあるが、保存液の温度を低温（例えば、５℃以下）とすることもでき、この場合は、さらに長期間の細胞、臓器の保存が可能となる。
【００３５】
そして、本発明の保存液の対象となる細胞は、例えば、ヒトまたは非ヒト動物の組織から単離した幹細胞、皮膚細胞、粘膜細胞、肝細胞、膵島細胞、神経細胞、軟骨細胞、内皮細胞、上皮細胞、骨細胞、筋細胞を含み、さらに、家畜などの動物や魚類の精子、卵子または受精卵、昆虫細胞、植物細胞などが含まれる。
【００３６】
さらに、本発明の保存液の対象となる臓器には、皮膚、血管、角膜、腎臓、心臓、肝臓、臍帯、腸、神経、肺、胎盤または膵臓などが含まれる。
【実施例】
【００３７】
以下に、本発明の実施例について説明する。本発明は、以下の実施例に限定されるものではない。
【００３８】
＜１＞Ｎ末端アシル化ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２の合成
ペプチド合成装置（ＰＳＳＭ−８、（株）島津製作所製）を用いて、通常の方法によってペプチド、アスパラギン酸−イソロイシン−ロイシン−アルギニン−グリシン−ＮＨ２（ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２）を合成した。ついで、樹脂上でパルミトイル化した後に、切り出し反応に付し、下記の化学構造からなるＣ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２を得た。
【００３９】
【化２】
2010239963.tif 000005
【００４０】
なお、精製は逆相カラム Develosil−ＯＤＳ HG-5（２０ｍｍ×２５０ｍｍ、野村化学（株）製）をＨＰＬＣのシステム（ガリバー（株）日本分光）に接続して行った。溶出は、４ｍｌ／分の流速で、０．１％トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）の存在下でアセトニトリルの濃度勾配（０〜１２０分で０〜１００％）を用いて行い、活性画分を溶出せしめた。吸光度は２２０ｎｍで測定した。ペプチドは、サンプルプレート上で等量のマトリックス（４０％アセトニトリル／０．１％ＴＦＡα−ＣＨＣＡを飽和させたもの）と混合した後乾燥させ、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ（Discovery、（株）島津製作所製）によって構造確認した。
【００４１】
また、上記以外の手法としては、一旦、遊離のＤＩＬＲＧ−ＮＨ２を得た後に、そのＮ末端に、炭素数１６のパルミチン酸を結合させてパルミトイル基を導入して（アシル化）、Ｃ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２を合成することもできる。
【００４２】
以下、Ｃ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２を例にして説明するが、本発明の保存液の有効成分におけるアシル基の炭素数は、６〜２８であればよく、Ｃ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２の例に限定されるものではない。
【００４３】
＜２＞Ｃ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２の活性試験
（１）細胞系統
ショウジョウバエの胚子由来培養細胞系統であるSchneider S2細胞を遠心分離し、回収した。
【００４４】
（２）透過化細胞の調製
遠心により回収した細胞に、透過化処理剤であるジギトニンを添加し、透過化処理細胞を調製した。ジギトニンによる処理は、細胞膜を基質透過性とすることができるため、ミトコンドリアを分離することなく、ミトコンドリアの酸素消費量を測定することができる。
【００４５】
（３）酸素消費量の測定
（ｉ）測定方法
５×１０７の透過化処理細胞を検定用培地に添加し、培地中のＣ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２の濃度は、０μＭ（添加なし）、５０μＭ、１００μＭに調製した。基質は、5mMのコハク酸を使用した。
【００４６】
比較のため、溶媒であるＤＭＳＯとパルミチン酸を用意し、培地中の濃度は、それぞれ、０μＭ（添加なし）、５０μＭ、１００μＭに調製したものを対照区とした。基質は、5mMのコハク酸を使用した。
【００４７】
酸素消費量は、クラークタイプのキュベット電極により、培地中の溶存酸素量を測定することで求め、時間ごとの溶存酸素量から傾きを算出することで、酸素消費速度（nmol O2/min/5×107 cells）とした。測定時の温度は、２７℃とした。
（ii）結果
結果を、図１に示す。ＤＭＳＯ対照区の酸素消費量は、０μＭ（添加なし）で１３．６１、５０μＭで１５．３４、１００μＭで１６．６７、であった。パルミチン酸対照区の酸素消費量は、０μＭ（添加なし）で１１．３２、５０μＭで１１．９２、１００μＭで１０．５８、であった。そして、Ｃ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２を添加しなかった場合（０μＭ）の酸素消費量は１３．７６であり、Ｃ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２の濃度５０μＭで１２．３５、１００μＭで４．７６であった。
【００４８】
また、呼吸阻害剤（ＫＣＮ）を添加した場合、ＤＭＳＯ、パルミチン酸およびＣ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２を添加しても酸素消費量は０になった。
【００４９】
以上の結果から、Ｃ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２は、濃度が高くなるにしたがって、酸素消費量抑制効果が高まることが分かった。特に、１００μＭにおいては、酸素消費量抑制効果が顕著であった。また、常温でも十分な酸素消費量抑制効果があることが示された。
【００５０】
そして、比較として用いたパルミチン酸、ＤＭＳＯには、酸素消費量抑制効果は認められず、Ｃ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２との間に有意差が確認された。なお、図１におけるグラフ上の記号＊および記号＊＊は有意水準を示し、＊は、p＜0.005、＊＊は、p＜0.001を示している。
【００５１】
（４）可逆性試験
（i）試験方法
Ｃ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２に酸素消費抑制効果が認められたことから、この効果の可逆性について検討した。
【００５２】
透過化処理細胞を含む検定培地に、Ｃ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２、パルミチン酸およびＤＭＳＯを、濃度が１００μＭとなるように添加した。すなわち、図１の１００μＭの場合に示されるように、Ｃ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２の添加によって、細胞の酸素消費速度を低下状態とした。
【００５３】
その後、透過化処理細胞を、1,000g、 5min遠心、沈殿を回収し、5mMのコハク酸を基質として添加し、再度、酸素消費速度（nmol O2/min/5×107 cells）を測定した。
【００５４】
（ii）結果
図２に示すように、回収細胞の酸素消費速度は、ＤＭＳＯで７．４４、パルミチン酸で６．４４、Ｃ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２で４．５２であった。すなわち、Ｃ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２とパルミチン酸では、酸素消費速度にほとんど差が見られなかった。したがって、Ｃ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２による酸素消費抑制活性は、可逆的であることが分かった。
【００５５】
なお、上記酸素消費量測定（１００μＭの場合）と比較して、回収細胞の酸素消費速度が全体的に低下しているのは、遠心により回収できなかった細胞が存在するためである。上記酸素消費量測定（１００μＭの場合）に確認された酸素消費速度の有意差が、上記の通り、回収細胞では、Ｃ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２添加区とパルミチン酸対照区との間に確認されなかったことから、Ｃ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２による酸素消費抑制活性は、可逆的であると判断することができる。
【００５６】
以上の通り、Ｃ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２の酸素消費抑制効果が可逆的であることから、Ｃ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２を有効成分とすることで、細胞および臓器の保存液として有効利用であることが明らかになった。
【００５７】
＜３＞細胞保存効果の確認試験
（１）Ｋ５６２(ＣＭＬ、慢性骨髄性白血病)
Ｋ５６２細胞を、１０％ＦＣＳ(牛胎児血清)を含むＲＰＭＩ培地(日水製薬（株）製)中で、37℃、CO2濃度5%条件下で種培養を行なった。その後、種細胞を96well培養プレートに、1ウエル当たり100μLの2.5×104cell/mL細胞を分注した。更に、細胞を分注した培養プレートに、以下の３条件で、被検物質を添加し、37℃、CO2濃度5%条件下で培養を行なった。
【００５８】
なお、以下、この実施例では、「Ｃ１６−ＤＩＬＲＧ−ＮＨ２」を便宜的に「Ｃ１６−ヤママリン」と記す。
１）ＰＢＳを１ウェル当たり1μL添加(Ｃ１６−ヤママリンは無添加)
２）ＤＭＳＯに溶解した250μMのＣ１６−ヤママリンを１ウェル当たり0.5μL添加(終濃度12.5μM)  
３）ＤＭＳＯに溶解した250μMのＣ１６−ヤママリンを１ウェル当たり1.0μL添加(終濃度25μM)
細胞数は、WST-1アッセイ(Premix WST-1 タカラバイオ（株）製)による増殖確認試験で０日、１日、２日、３日、７日目に測定した。すなわち、対象のマイクロプレートの１ウェル当たり10μLのPremix WST-1を加え、37℃、CO2濃度5%条件下で1時間から4時間インキュベートした後、450nmで吸光度を測定した。なお、WST-1アッセイによる細胞数は、あらかじめ作成した検量線より求めた。
【００５９】
結果を図３に示す。培養開始時に、Ｃ−１６ヤママリンを添加することで、継代培養することなしに１週間培養することができた。同様に、Ｃ−１６ヤママリンは添加濃度依存的に細胞数を抑制することがわかった。すなわち、細胞の酸素消費量が抑制されたことで、細胞の増殖も抑制されたと判断することができる。なお、無添加系では、細胞の増殖が速く、３日目には死細胞が増加していた。
【００６０】
このように、Ｃ−１６ヤママリンの添加により、細胞を長期間継代なしで培養することが可能であり、Ｃ−１６ヤママリンを培養液に添加・培養することで、細胞培養担当者の継代培養に関する労力を著しく軽減することができる。
【００６１】
（２）ＨＵＶＥＣ（正常ヒト臍帯静脈血管内皮細胞）
ＨＵＶＥＣ（クラボウ社製）を、解凍後、Hu-Media-EG2(クラボウ社製)中で、37℃、CO2濃度5%条件下で種培養を行なった。その後、種細胞を96well培養プレートに、1ウエル当たり100μLの2.5×104cell/mL細胞を分注した。本プレートを37℃、CO2濃度5%条件下で、1日培養を行い、細胞がウエル底面に接着したことを確認した後、培養プレートに、以下の２条件で、被検物質を添加し、37℃、CO2濃度5%条件下で培養を行なった。
１）ＰＢＳを１ウェル当たり1μL添加(Ｃ１６−ヤママリンは無添加)
２）ＤＭＳＯに溶解した250μMのＣ１６−ヤママリンを１ウェル当たり0.5μL添加(終濃度12.5μM)
７日間被検物質添加下で、培養した後、培養上清を除去し、新たなHu-Media-EG2(被検物質含まず)中で、37℃、CO2濃度5%条件下でさらに培養を継続した。細胞数は、WST-1アッセイ(Premix WST-1、タカラバイオ（株）製) による増殖確認試験で被検物質添加後０日、３日、７日目と培地交換後３日、７日目に測定した。すなわち、対象のマイクロプレートの１ウェル当たり10μLのPremix WST-1を加え、37℃、CO2濃度5%条件下で1時間から4時間インキュベートした後、450nmで吸光度を測定した。なお、WST-1アッセイによる細胞数は、あらかじめ作成した検量線より求めた。
【００６２】
結果を図４に示す。無添加系では、7日目でコンフラントになり、細胞の死滅が始まったのに対し、培養開始時にＣ１６−ヤママリンを添加した場合には、細胞の増殖が顕著に抑制され、さらに、培地中から、Ｃ１６−ヤママリンを除去することにより、増殖を開始することが確認された。
【００６３】
Ｃ１６−ヤママリン添加により、細胞の酸素消費量が抑制され、細胞を増殖可能な状態で、37℃で培養器の中で保存することができることが確認された。
【００６４】
（３）ＮＨＤＦ（正常ヒト成人皮膚繊維芽細胞）
NHDF（クラボウ社より購入）を、解凍後、Medium106SにLSGS特注増殖添加剤（クラボウ社、製品番号：KE-6350）を加えた培地（クラボウ社製）中で、37℃、CO2濃度5%条件下で種培養を行なった。その後、種細胞を96well培養プレートに、1ウエル当たり100μLの2.5×104cell/mL細胞を分注した。本プレートを37℃、CO2濃度5%条件下で、1日培養を行い、細胞がウエル底面に接着したことを確認した後、培養プレートに、以下の２条件で、被検物質を添加し、37℃、CO2濃度5%条件下で培養を行なった。
１）ＰＢＳを１ウェル当たり1μL添加（Ｃ１６−ヤママリンは無添加）
２）ＤＭＳＯに溶解した250μMのC16−ヤママリンを１ウェル当たり0.5μL添加(終濃度12.5μM)
７日間被検物質添加下で、培養した後、培養上清を除去し、新たなMedium106SにLSGS特注増殖添加剤を加えた培地（被検物質含まず）中で、37℃、CO2濃度5%条件下でさらに培養を継続した。細胞数は、WST-1アッセイ(Premix WST-1 タカラバイオ（株）製)による増殖確認試験で被検物質添加後０日、３日、７日目と培地交換後３日、７日目に測定した。すなわち、対象のマイクロプレートの１ウェル当たり10μLのPremix WST-1を加え、37℃、CO2濃度5%条件下で1時間から4時間インキュベートした後、450nmで吸光度を測定した。なお、WST-1アッセイによる細胞数は、あらかじめ作成した検量線より求めた。
【００６５】
結果を図５に示す。無添加系では、7日目でコンフラントになり、細胞の死滅が始まったのに対し、培養開始時にＣ１６−ヤママリンを添加した場合には、細胞の増殖が顕著に抑制され、さらに、培地中から、Ｃ１６−ヤママリンを除去することにより、増殖を開始することが確認された。
【００６６】
Ｃ１６−ヤママリン添加により、細胞の酸素消費量が抑制され、細胞を増殖可能な状態で、37℃で培養器の中で保存することができることが確認された。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【配列表】
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