(57)【要約】【課題】新規な生命形態を生成するための方法を提供する。【解決手段】本発明は、新規な生命形態を生成するための方法であって、以下のステップ：  ａ）微生物クローンのゲノムの不可逆的な変更；  ｂ）より高く安定な増殖速度を選択することの可能な条件下における数多くの世代の間にステップａ）において得られた変更されたクローンに由来する微生物の大きな集団の培養；  ｃ）ステップｂ）の培養集団内の子孫クローンであって、ステップａ）の変更をまだ行っているものの単離、を含む前記方法に関する。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
組換えN-ホルミル化されないポリペプチドの発現のためのMet-tRNAiトランスホルミラーゼ活性を欠損する真正細菌宿主細胞。
【請求項２】
Met-tRNAiトランスホルミラーゼをコードする遺伝子もしくはデホルミラーゼをコードする遺伝子、又はその両方において改変されている、請求項１記載の真正細菌宿主細胞。
【請求項３】
真正細菌宿主細胞が、
ａ）真正細菌宿主細胞のゲノムの不可逆的な改変；
ｂ）より高く安定な増殖のための選択を可能にする条件下における、多数の世代にわたる、ステップａ）で得られた改変されたクローンに由来す細胞の大きな集団の培養；及び
ｃ）ステップａ）の改変を依然として有する、ステップｂ）の培養集団内の子孫クローンの単離
によって選択された、請求項１又は２記載の真正細菌宿主細胞。
【請求項４】
３７℃での成長速度が、Met-tRNAiトランスホルミラーゼ活性を欠損していない真正細菌宿主細胞の成長速度とほぼ同じである、請求項１〜３のいずれか１項記載の真正細菌宿主細胞。
【請求項５】
大腸菌改変株である、請求項１〜３のいずれか１項記載の真正細菌宿主細胞。
【請求項６】
４２℃で増殖することができる、請求項４記載の真正細菌宿主細胞。
【請求項７】
N-ホルミル化ペプチドの混入しない組換えタンパク質又はペプチドを製造する方法であって、該タンパク質又はペプチドをコードする遺伝子がMet-tRNAiトランスホルミラーゼ活性を欠損する真正細菌宿主細胞において発現される、前記方法。
【請求項８】
前記真正細菌宿主細胞が、請求項１〜６のいずれか１項記載の細胞である、請求項７記載の方法。
【請求項９】
前記真正細菌宿主細胞が、前記発現されたポリペプチドのコーディング配列を含むベクターで形質転換される、請求項７又は８記載の方法。
【請求項１０】
前記真性細菌宿主が３７℃で培養される、請求項７〜９のいずれか１項記載の方法。
【請求項１１】
請求項７〜１０のいずれか１項記載の方法によって得られる、組換えN-ホルミル化されないポリペプチドを含む細菌調製物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、新規な生命形態を生成するための方法であって、以下のステップ：
ａ）微生物クローンのゲノムの不可逆的な変更；
ｂ）より高く安定な増殖速度を選択することの可能な条件下における数多くの世代の間にステップａ）において得られた変更されたクローンに由来する微生物の大きな集団の培養；
ｃ）ステップｂ）の培養集団内の子孫クローンであってステップａ）の変更をまだ有しているものの単離。
を含む前記方法に関する。
【０００２】
本発明は、特に細菌中、より特別には真性細菌ホスト中での組換えタンパクの生産に特に有用である。最小限培地及び複合栄養培地中、30℃、37℃及び42℃において野生型に近い速度で成長する、Met−ｔRNAｉトランスホルミラーゼ遺伝子及びポリペプチドデホルミラーゼ遺伝子欠損の真性細菌ホストが記載される。この真性細菌タンパク合成においては、Ｎ−ホルミルメチオニンは開始メチオニンとして必要でなく、タンパク合成は替わりに非修飾メチオニンによって開始される。この真性細菌中にＮ−ホルミルメチニンを保持するペプチドがないことは、医薬として使用される組換えタンパクの発現に特別に好適である。
【背景技術】
【０００３】
工業的使用のための細菌の劇的な一時変異の多くの試みは、そのような一時変異がほとんどの場合、致死的であるか、又は競争力のない不安定な生物へ導くために、失敗した。
【０００４】
例えば；真性細菌においては、ペプチド合成はＮ−ホルミルメチオニンｔＲＮＡにより読まれるメチオニン開始コドンにおいて開始される。翻訳開始に先立って、担当のtRNAのメチオニル部分がMet-tRNAiトランスホルミラーゼの作用でN-ホルミル化される。自然のタンパクからN-ホルミル基は、ポリペプチドデホルミラーゼ（E.C.3.5.1.27）によって除去され、開始メチオニンはその後メチオニンアミノペプチダ−ゼによって切断され除かれて、プライマーメチオニンサイクルが完結する。対照的に、古細菌と真核生物は、N-ホルミル化及びデホルミル化活性を欠くプライマーメチオニンサイクルを有する（総説としてMazel et al., 1994, 1996を参照のこと）。
【０００５】
真性細菌ホスト中における真核生物タンパクの発現により、しばしばN-末端ホルミルメチオニル残基を保持する組換えタンパクが生産される（例としては以下の：ウシソマトスタチン[Bogosian et al., 1989]；ウナギ成長ホルモン[Sugimoto et al., 1990]；ヒト顆粒球コロニー刺激因子[Clogston et al., 1992]；ウシ脂肪酸結合タンパク[Specht, et al., 1994]；ウシシトクロームＰ450[Dong et al., 1995]；メタノテルムス・フェルビダス（Methanothermus fervidus)ヒストンＡ[Sandman et al., 1995]；ヒトインターロイキン−5[Rose et al., 1992]；ヒト副甲状腺ホルモン[Rabbani et al., 1988 ; Hogset et al., 1990]；ヒトガンマインターフェロン[Honda et al., 1989]を含む）。さらに、N-ホルミルメチオニンの保持は内因性の大腸菌（E. coli）タンパク中に見出された（Haus hild-Rogat, 1968 ; Marasco et al., 1984 ; Milligan and Koshland, 1990）。
【０００６】
N-ホルミル化されたペプチドは、哺乳類免疫系にとっての真性細菌感染の主要な指標であり、高度に免疫原性であり、不完全な脱ホルミル化は、例えば治療目的でN-ホルミル化された製剤の使用を阻止する。
【０００７】
この問題を回避するためのいくつかのアプローチ、例えば、トリメトプリム及びシメチジンの存在下における発現（Sandman et al., 1995）、ホスト中でのペプチドデホルミラーゼの過剰発現（米国特許第6,190,902号）、in vitro で特異的なプロテアーゼによって除去されることのできるN-末端ペプチドとの、又は非細胞質区画中の新生タンパクの輸送中に切断されるN-末端リーダーペプチドのいずれかとの融合タンパクとしての発現、が提案された。最後にN-ホルミル基はまた、弱酸による加水分解により除去され、またはN-ホルミルメチオニンを保持するタンパクの分画の精製方法によって、正確にプロセシングされたタンパクから分離されることができる。
【０００８】
これらの各アプローチは重要な不利益を有する。トリメトプリム及びシメチジンの添加は、費用が高く、組換えタンパクを発現する培養の操作を必要とし、ホストの成長を遅らせるかも知れない。ペプチドデホルミラーゼの過剰発現は、ホスト中で安定なプラスミド構築物であって、さらには脱ホルミル化が100％未満の有効性であるように選択されるものを必要とする。融合タンパクの発現には、正確な分子構造を必要とし；酸による化学的加水分解は、残りのタンパクにダメージを与える。最後に、これらのアプローチは、どれも組換えタンパクに又は内因性のホストペプチドからの混入物に由来するN-ホルミル化ペプチドを絶対的に含まないということを保証するものではない。
【０００９】
上記の欠点は、仮にN-トランスホルミル化系を有さない細菌中でペプチドが生産されるならば、解決されるものである。しかし、この系とともに何十億年も進化してきた細菌にとっては、この系を除くことは普通は死又は深刻な障害であって究極的には競争力がなく遺伝的に不安定な生物に導くこととなる。実際に、これらの一時変異された細菌が一時変異されない細菌と接触した場合、それらは、失われた機能的遺伝要素を回復するか、又はそれらはより競争力のある自然の細菌のために単に消滅する。
【００１０】
N-トランスホルミル化活性のない細菌の出現を見るには、何十億年もの進化を必要とすると考えることもできる。
【００１１】
本発明との関係で、N-トランスホルミル化系は通常N-トランスホルミル化系を有する細菌中で不活性化された。選択的な過程に続いて、遺伝的に安定であって自然の細菌と競合できる種がたった１ヶ月で得られた。
【００１２】
本発明は、進化を再生させることによって、すべての種類の工業において有用な新しい種を構成するであろう新しい生物を得る可能性を開く。
【発明の概要】
【００１３】
説明
したがって、最初の実施態様において本発明は、以下のステップ：
ａ）微生物クローンのゲノムの不可逆的な変更；
ｂ）栄養供給によって制限されない亢進した増殖を選択することの可能な条件下における数多くの世代の間にステップａ）において得られた変更された微生物クローンの大きな集団の培養；そして
ｃ）子孫クローンが、ステップａ）の変更をまだ有するステップａ）の微生物クローンに比べて亢進した代謝活性を有する間に、ステップｂ）の培養集団内の前記クローンを亢進した増殖速度に基づいて単離すること。
を含む、微生物菌株の進化の再生を行う方法に関する。
【図面の簡単な説明】
【００１４】
【図１】真性細菌中のプライマーメチオニンサイクル(左)及び古細菌及び真核生物(右)metＧ，met-tRNAシンテターゼ；fmt、met-tRNAiトランスホルミラーゼ；def、ポリペプチドデホルミラーゼ；map、メチオニンアミノペプチダーゼ；aa、アミノ酸；f、ホルミル：pp、ポリペプチド。(３)の後に修飾。
【図２】永続的な増殖下でのin  vivoのD（def-fmt)突然変異体。ａ、細胞は、最小限培地中、３７℃において永続的な増殖下に保たれる。５×１０８細胞／mlの濁度固定装置による管理が適用された。成長速度は、２４時間にわたって平均化する。２の独立した試行が示される。ｂ、インプット（１）及びプロセス（２，３，４；a中の番号及び白丸）中に単離された進化した菌株が最小限寒天培地において３７℃で３６時間の間成長させられた。
【図３】in  vivoにおけるD(def-fmt)突然変異体の増加した突然変異速度における進化。２の独立した試行が示される。
【図４】慣用の濁度固定装置中の接着性の変異体の出現及び選択、そしてPCT国際出願公開第ＷＯ00/34433号に記載された装置による接着性の変異体の対抗選択。ポイント１で開始し、接着性の変異体は懸濁液中の細胞と競合させられ、静的な変異体の周期的な破壊ポイント３において再確立され；ａ、バッチ培養において測定された集団の成長速度。ｂ、細胞物質のガラス表面への接着。単離物（ａ中のポイント１−６）はガラス管内で３７℃、２０時間培養された。矢印は、培養の間に表面上に蓄積した物質を指す。
【発明を実施するための形態】
【００１５】
この方法において、微生物種は大腸菌のような細菌であることができる。
【００１６】
ステップｂ）及びｃ）は本質的に進化の再生から成り、これは、延長された期間（大腸菌については、約１ヶ月）培養された後に得られた細菌の増殖速度は、ステップａ）の細菌に比べて顕著に増加していることを意味する。
【００１７】
例えば、ステップｃ）における進化の再生後に得られた細菌の増殖速度は自然の細菌の増殖速度に匹敵する。この再生は、新しい種への又は自然の細菌の系統発生的分岐の発生への進化を安定化する一連の突然変異の獲得の結果である。
【００１８】
特別な実施態様において、新しい種は自然の細菌と競合することができる。これに関して、新しい種は、自然の細菌の存在下においてさえも遺伝的に安定であり、それは上記方法の完結後に得られた細菌が、自然の（最初の）細菌の表現型及び遺伝型へ復帰できないということを意味する。言い換えれば、上記新しい種は安定しているために、遺伝的に自然の細菌に復帰できない。
【００１９】
上記新しい種は、例えばヒト化された細菌であることができる。新しい種の細菌によって獲得された、一連の突然変異は、遺伝的に安定なタグを構成し、そのような新しい種のための特別な分類を形成する。上記分類は、ステップｂ）及びｃ）の間に獲得された代謝の変更に由来する。
【００２０】
ステップｃ）は、最小限培地中で３７℃以上において実施されることができ、重要な特徴は無制限に栄養が供給されるということである。さらに、ステップｃ）における単離は、ステップｂ）の細菌が増殖速度のプラトーに達したときに実施されることができる。これらのステップを繰り返すことにより、単離されたクローンが満足のいく増殖速度、例えば自然の細菌に匹敵する速度、を示すまで、連続していくつかの最大増殖速度に達することができる。
【００２１】
特異的な実施態様において、上記変更はステップａ）の少なくとも１の遺伝子の不活性化である。上記不活性化は、欠失、突然変異、又は他の生物からの他の配列との置換であることができる。
【００２２】
上記遺伝子は、Met-tRNAiトランスホルミラーゼをコードするfmt遺伝子であることができる。この場合、ステップａ）は完全なdef-fmtオペロンの欠失を含むことができる。上記のように、自然の細菌は大腸菌であることができる。
【００２３】
したがって、この場合、ステップｃ）の細菌はＮ−ホルミル化活性を欠損している。
【００２４】
本発明はまた、上で定義された方法も対象とし、該方法中でステップｂ）及びｃ）は、以下の：
ａ）培養（３８）を受け入れる、少なくとも最初の、及び少なくとも第２の培養容器（４，６）；
ｂ）ガス供給源（１２）；
ｃ）培地供給源（１８）；
ｄ）滅菌剤（２１）の供給源（２０）；及び
ｅ）前記２の培養容器（４，６）どうしと同様に、前記２の培養系（４又は６）の１と前記培地供給源（１８）を選択的に連結する手段及び前記他方の培養容器（４，６）と前記滅菌剤（２１）の前記供給源（２０）とを選択的に連結する手段を有する導管系。
を含む装置によって実施される。この装置及び上記の番号は、すべてＰＣＴ国際出願公開第ＷＯ００／３４４３３号に詳説されており、より特別には説明中に参考文献として援用されている図１において解説されている。
【００２５】
他の実施態様においては、本発明は上で定義された方法によって得られた突然変異された細菌を目的とし、ここで前記細菌は、遺伝学的に自然の細菌に復帰することのできない新しい種を構成する。他の実施態様においては、本発明は、上で定義された方法によって得られた突然変異された細菌を目的とし、ここで前記細菌は自然の細菌とは異なる系統発生的クラスに属する。
【００２６】
そのような突然変異された細菌は、増殖速度については自然の細菌に匹敵しうる。それは新しい分類へ導くタグを構成するいくつかの獲得した突然変異を含み、該突然変異は、自然の細菌の前でさえ、遺伝学的に安定である。
【００２７】
本発明は、変更されていない細菌に比べて増加した増殖速度を示す一方、そのゲノムの不可逆的な変更を含む微生物株に関する。さらに、この微生物株は亢進した代謝活性又は異なる情報処理プロセスを有することができる。
【００２８】
本発明はまた、少なくとも１の遺伝子の不活性化によって一時変異された突然変異された細菌を対象とし、ここで、前記細菌は遺伝学的に安定な新しい種へ導く、誘発された再生進化の間に突然変異を獲得した。獲得された突然変異は安定で且つ新しい分類へ導くタグを構成する。
【００２９】
より特別には、本発明は、不活性化されたMet-tRNAトランスホルミラーゼを含む突然変異された細菌に関し、ここで、前記細菌は遺伝学的に安定な新しい種へ導く、誘発された再生進化の間に突然変異を獲得した。前記細菌は、ホルミル−metペプチドを産生せず、増殖速度については自然の細菌に匹敵することができる。
【００３０】
本発明は、2001年７月２６日に寄託番号I-2707でCNCMに寄託されたβ２１３７株（Collection Nationale de Cultures de Microorganismes, Institute Pasteur, 28 rue du Docteur Roux, 75724 Paris cedex 15, France）を目的とする。
【００３１】
本発明の上記細菌は問題のペプチド又はタンパクのコード配列を含むベクターで形質転換されることができる。より特別には、それらはホルミル化されていないペプチド又はタンパクである。
【００３２】
上記のとおり、本発明は不活性化されたMet-tRNAトランスホルミラーゼを含む突然変異された細菌に関し、ここで、前記細菌は遺伝学的に安定な新しい種へ導く、誘発された再生進化の間に突然変異を獲得した。この細菌は真核細胞のものに類似したプライマーメチオニンサイクルを有する大腸菌株である。この株はMet-tRNAiトランスホルミラーゼ及びポリペプチドデホルミラーゼをコードするdef-fmtオペロンをもはや含まず、したがってMet-tRNAiをN-ホルミル化することができない。したがって、上記の技術のいずれかによる発現タンパクからのN-ホルミル基の除去は、もはや不要である。
【００３３】
大腸菌からのfmt及びdef遺伝子は先に単離され（Guillon et al., 1992; Mazel et al., 1994）、真性細菌間で高度に保存されていることが示された（Mazel et al.,）。fmt遺伝子（Guillon et al., 1992）又は完全なdef−fmtオペロン（Mazel et al., 1994, D[def-fmt]）のいずれかの欠失突然変異体が作り出された。得られた突然変異体は、成長が重度に障害されたことが報告された。fmt突然変異体は３７℃、富栄養培地中で８．６１倍低下した成長速度を有し、４２℃では成長しない（Guillon et al., 1992）。def-fmt突然変異体は、最小限培地中、３７℃において同様の成長速度の減少を有し，且つ成長はこの培地中、４２℃において完全に障害を受ける。fmt遺伝子のみの欠失が突然変異体を生存能力のあるものとするにも拘わらず、def遺伝子のみの欠失がfmt遺伝子のdef-fmtバックグラウンド中への再導入同様に致死的であり（Mazel et al., 1994）、細菌の必須タンパクは脱ホルミル化されなくてはならず、及び／又は開始メチオニンがこれらのタンパクを機能させるために切断されなくてはならないことを実証している。
【００３４】
本発明の目的のために、最小限培地中、３７℃においてその成長速度が親である野生型細菌の成長速度とほぼ同じになるまで、永続的な増殖のもとに、亢進した成長速度を示すdef-fmt欠失突然変異体が選択される。
【００３５】
したがって、本発明は、fmt及びdef遺伝子を含まないが堅実な速度で成長するような変更された翻訳機構を有する真性細菌のような細菌を目的とする。前記ホルミルフリーの大腸菌菌株は、３７℃より高い温度で成長し、組換えタンパク及びN-ホルミル化ペプチドの混入しないペプチドの発現のために使用されることができる。
【００３６】
本発明はまた、少なくとも１の遺伝子が不活性化されている細菌の再生進化を誘発する方法にも関し、該方法は以下のステップ：
ａ）前記突然変異された細菌を、懸濁液中で持続的な増殖状態且つ一定の細胞密度で培養すること；
ｂ）細菌の亜集団が再生進化を引き起こす突然変異を獲得する間の延長された期間の後に、増加した増殖速度に基づいて、まだ最初の突然変異を有する、前記亜集団を選択すること。上記最初の突然変異は、少なくとも１の遺伝子又は、完全なオペロンの一部分の不活性化から成ることができる。再生進化は、自然の又は人工的な環境に適応する、新しい遺伝的に安定な種へ導く一連の突然変異の獲得を可能とする。
を含む。
【００３７】
本発明はまた、一時変異した情報伝達プロセスを有する安定な細菌菌株を生成する方法に関し、該方法は以下のステップ：
ａ）微生物クローンのゲノムの不可逆的な変更；
ｂ）より高く安定な増殖速度を選択することの可能な条件下における数多くの世代の間にステップａ）において得られた変更されたクローンに由来する微生物の大きな集団の培養；
ｃ）ステップｂ）の培養集団内の子孫クローンであって、ステップａ）の変更をまだ行っているものの単離。
を含む。“一時変異した情報伝達”という用語は、究極的に新規な生命形態に導く非自然の情報処理プロセスを意味することができる。
【００３８】
本発明はまた、系統発生的な分類の変化に導く微生物進化を行う方法に関し、該方法は、以下のステップ：
ａ）微生物クローンのゲノムの不可逆的な変更；
ｂ）より高く安定な増殖速度を選択することの可能な条件下における数多くの世代の間にステップａ）において得られた変更されたクローンに由来する微生物の大きな集団の培養；
ｃ）ステップｂ）の培養集団内の子孫クローンであって、ステップａ）の変更をまだ行っているものの単離。
を含む。
【００３９】
本発明はまた、新規な生命の形態を生成する方法に関し、該方法は、以下のステップ：
ａ）微生物クローンのゲノムの不可逆的な変更；
ｂ）より高く安定な増殖速度を選択することの可能な条件下における数多くの世代の間にステップａ）において得られた変更されたクローンに由来する微生物の大きな集団の培養；
ｃ）ステップｂ）の培養集団内の子孫クローンであって、ステップａ）の変更をまだ行っているものの単離。
を含む。
【００４０】
上記の方法において、ステップｂ）は、栄養供給によって制限されることなく、亢進された増殖を選択することの可能な条件下における数多くの世代の間にステップａ）において得られた微生物クローンの大きな集団の培養から成ることができ；そしてステップｃ）は、増加した増殖速度に基づいてステップｂ）の培養された集団内の子孫クローンの単離、ここで、前記クローンはステップａ）の変更をまだ有する一方、ステップａ）に比べて亢進した代謝活性を有する、から成ることができる。
【実施例】
【００４１】
実施例１：def-fmt突然変異体における亢進した成長速度の選択
I-材料と方法
１．１  菌株
γ２０４５
我々の対照菌株はγ２０４５である：
大腸菌MG1655Δ（def-fmt）::cat，dnaQ::miniTn10[CmR，TcR]
【００４２】
MG1655は、大腸菌の野生型K12菌株（EMBO J.(1994)13:914-923を参照のこと。）である。Δ（def-fmt）は、ポリペプチドデホルミラーゼ及びMet-tRNAiトランスホルミラーゼをコードするdef-fmtオペロンの欠失を意味する。この対立遺伝子については記載がある（EMBO J.(1994)13:914-923）。
::catという記載は、Δ（def-fmt）遺伝子座中のcat（クロラムフェニコールアセチル−トランスフェラーゼ）遺伝子の挿入を意味する。
::dnaQ::mini10は、dnaQ遺伝子（DNAポリメラーゼのイプシロンサブユニット、プルーフリーディングサブユニット）がテトラサイクリン耐性を与えるミニトランスポソンTn10の挿入によって中断されることを意味する。
[CmR，TcR]は、上記菌株がクロラムフェニコール（25micg/ml）及びテトラサイクリン（１５micg/ml）に耐性があることを意味する。
【００４３】
この細菌菌株は、def-fmtオペロンを欠失し、結果としてMet-tRNAiトランスホルミラーゼ及びポリペプチドデホルミラーゼ活性が欠けている。この菌株はまた、dnaQの突然変異を有し、結果として突然変異誘発表現型を示す。この菌株は、最小限の複合栄養培地中で30℃、37℃及び42℃で野生型に近い速度で成長するように選択されたβ2124の派生株である（37℃において、LB中で約25分及び炭素源として最終濃度0.2％のマンニトールを含むMS最小限培地中で約80分（Richaud(1993),J. Biol. Chem. 268:26827-26835）。もとのβ2124菌株はMS最小限培地+マンニトール中で37℃で約200分の成長速度を示す。β2124の派生株であるγ2045は、37℃、最小限培地中の永続的な増殖のもとで、その成長速度が親野生型細菌であるMG1655の成長速度に達するまで亢進されることにより選ばれた。上記突然変異体の表現型は、γ2045中の対立遺伝子の置換を通じてプラスミド又はクロモソームから発現されたdnaQ野生型対立遺伝子の補充によって救済されることができる。
【００４４】
β2137
我々の対照菌株はβ2137である。
大腸菌MG1655,Δfmt::cat[44℃S，CmR]
【００４５】
MG1655は大腸菌（EMBO J.(1994)13:914-923を参照のこと。）の野生型K12菌株である。Δfmtは、Met-tRNAiトランスホルミラーゼをコードするfmt遺伝子の欠失を意味する。この対立遺伝子については記載がなく、fmt内部のPstIの欠失である（ヌクレオチド247〜484）。
::catという記載は、cat（クロラムフェニコールアセチル−トランスフェラーゼ）遺伝子の欠失のPstI部位への挿入を意味する。cat遺伝子は、Δ（def-fmt）::cat対立遺伝子（EMBO J.(1994)13:914-923を参照のこと。）の構築のために使用されるものと同一である。
[44℃S，CmR]は、上記菌株が温度感受性であり、クロラムフェニコール耐性であること（25micg/ｍｌ）を意味する。
【００４６】
この細菌菌株はfmt遺伝子の欠失を有し、及び結果としてMet-tRNAiトランスホルミラーゼ活性を欠く。この菌株は、MG1655の派生株であり、MS最小限培地+マンニトール中、37℃において、約200分の成長速度を有する。
【００４７】
データ：
【００４８】
【化１】
2010051332.tif 000002
【００４９】
【化２】
2010051332.tif 000003
【００５０】
【化３】
2010051332.tif 000004
【００５１】
【化４】
2010051332.tif 000005
【００５２】
1．2  培地
菌株は、最小限培地（４mM クエン酸×H2O、1mM MgSO4×7H2O、10mM NH4Cl, 0.2% w/v マンニトール及び1ml/ｌNTA−トレースエレメント＊）中、３７℃で培養された。固体培地は、1.8％の寒天を含んだ。
（＊NTA-トレースエレメント×1000）
【００５３】
【表１】
2010051332.tif 000006
【００５４】
１．３  連続培養
大腸菌β2124又はβ2116の集団を、37℃において、Mutzel 及びMarliereによりPCT国際出願公開第ＷＯ00/34433号中記載された装置中で連続的な増殖の下に維持した。
【００５５】
培養容積は26.0mlであった。濁度固定装置による管理が適用され、培養のOD600nmが約1.0に保たれた。培養容積（V)から計算した成長速度及びR=W/V  1/ln２による新鮮な培地の流れ（W)を24時間にわたって平均した。計算された成長速度はバッチ培養から得られた成長速度と比較した。
【００５６】
原液を、0.1mlDMSOを1mlの装置から抜き取ったサンプルと混合して調製し、-70℃で保存した。
【００５７】
II−結果：N-ホルミル-フリーポリペプチドの発現のための大腸菌菌株
真性細菌におけるペプチド合成はN-ホルミルメチオニンtRNAにより読まれるメチオニン開始コドンから始まる。翻訳開始に先立って、担当のtRNAのメチオニル部分がMet-tRNAiトランスホルミラーゼの作用によってN-ホルミル化される。N-ホルミル基は自然のタンパクからポリペプチドデホルミラーゼによって除去され、開始メチオニンがその後、メチオニンアミノペプチダーゼによって切断されることができ、プライマーメチオニンサイクル（図1a）が完結する。対照的に、古細菌及び真核細胞は、N-ホルミル化及び脱ホルミル化活性を欠くプライマーメチオニンサイクルを有する（図1b）。
【００５８】
真性細菌ホスト中における真核生物のタンパクの発現は、しばしばN-末端ホルミルメチオニル残基を保持する組換えタンパクの産生を引き起こす。N-ホルミル化されたペプチドが高度に免疫原性であるため、不完全な脱ホルミル化は、例えばそれらの治療目的の使用をあらかじめ排除する。この問題を回避するためのいくつかのアプローチ、例えばトリメトプリム及びシメチジンの存在下での発現（Sandman, K., Gryling. R.A. and Revve, J.N. (1995)）：Improved N-terminal processing of recombinant proteins synthesized in E. coli. Biotechnology 13, 504-506)又は、ホスト中におけるペプチドデホルミラーゼの過剰発現（Warren, W.C., Bentle, K.A. Schlittler, M.R., Schwane, A.C., O'Neil, J.P. and Bogosian, G.(1996):Increased Production of peptide deformylase eliminates retention of formylmethionine in bovine somatotropin overproduced in E. coli. Gene 174, 235-238）、が提案された。
【００５９】
本願発明者らは、ポリペプチドデホルミラーゼ及びmet-tRNAiトランスホルミラーゼをコードするdef-fmtオペロンの欠失により大腸菌におけるプライマーメチオニンサイクルを単純化し、そして懸濁液中の永続的な増殖下における増加した成長速度（そしてしたがって、増加したタンパク合成速度）に関して選択することにより、得られた不完全な菌株を改善して、ラジカル溶液の候補を選んだ。
【００６０】
本願発明者らは、大腸菌からdef及びfmt遺伝子を単離し、両遺伝子を欠く欠失突然変異体（D[def-fmt]）を作り出した（Mazel, D., Pochet, S. and Marliere, P.(1994):Genetic characterization of polypeptide deformylase, a distinctive enzyme of eubacterial translation. EMBO J. 13, 914-923)。得られた菌株は、生存可能であるが、その成長速度は最小限培地中、37℃において、１時間あたり0.9から0.25に劇的に低下した。
【００６１】
生きている細胞におけるタンパク合成はタンパクとリボソームのrRNA成分の複合的な集合の共同した作用、tRNAのアミノアシル化の触媒因子、翻訳の開始、伸長、及び終了ならびに初期のポリペプチドの成熟に関する因子のホストに依存する。N-末端ホルミル化は、真性細菌を古細菌及び真核生物と区別する、最もよく保存された特徴の一つである。対応の反応を触媒する酵素の除去は、したがって、タンパク合成の効率をその最適の野生型から遠く損なうものである。このタイプの遺伝的障害からの進化的再生は、細菌の翻訳機構を真核生物において見出されるものにより類似したものとさせる複数の適応性の突然変異を必要とする。目的のex vivoの進化のための最新の技術は野生型のD（def-fmt）バックグラウンド中のタンパク合成速度を再確立する、適応性の突然変異を予測し、選択することは不可能である。
【００６２】
濁度固定装置管理体制における懸濁液中の永続的な増殖下のin vivoにおけるD（def-fmt）突然変異体の進化の結果、約1ヶ月（約300世代）の永続的な選択の後の野生型の成長速度に近い、増加する成長速度を有する変異体を得た（図２）。我々は、最小限寒天上の成長についてテストした進化した派生株のバイオマス産生が、投入したD（def-fmt）突然変異体に比較して劇的に増加したことを観察した。進化する集団の成長速度の段階的増加は、連続的な適応性の突然変異の選択及び固定化を引き起こす。我々は、タンパクmet-tRNAシンテターゼ、一定のリボソームタンパク、開始因子２、及びメチオニンアミノペプチダーゼが作り出された菌株において変更されていることの証拠を有する。
【００６３】
進化のプロセスは、集団中での変異を増加させることによって加速されることができる（図３）。選択下における集団内の突然変異速度が約1000倍に増加した場合、野生型の成長速度は、図２に示されたプロセスに必要とされる時間の約半分以内であると予測された。
【００６４】
懸濁液中の細胞の連続的な増殖のための最近の技術には大きな欠点があり、それは、装置の内側表面に固着して連続的又は条件的な希釈により与えられる選択的な圧力から逃れる、接着性の変異体の選択である（Chao, L. and Ramsdell, G. (1985): The effects of wall populations on coexistence of bacteria in the liquid phase of chemostat cultures. J. Gen. Microbiol. 131, 1229-1236）。基本的には、これは懸濁液中での細胞の一連の継代培養によって回避されることができ（Lenski, R.E. and Travisano, M, (1994) :Dynamics of adaptation and diversification :A 10,aaa-generation experiment with bacterial populations. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91, 6808-6814）、懸濁液中の細胞を頻繁に新鮮な培養容器に移す技術（すなわち、表面が定期的に廃棄される）によって静的な変異体に選択的な不利益をもたらす。工業的規模では、連続的な継代培養技術は系統的に開発されていない、なぜなら、それは労力を要し、移行の間に絶対的な無菌性を必要とするからである。
【００６５】
もっぱら懸濁液中の細胞集団の永続的な増殖のための自動化された技術は、PCT国際出願公開第ＷＯ00/34433号中に提案されている。図３に示されたものに類似した実験の過程の間に、装置操作は静的な接着性の変異体がそれ以上破壊されず、自由に懸濁液中の細胞と競合できるように行われる。高度に接着性の変異体は、迅速に蓄積した（データは示さない。）。これと並行して、集団の成長速度は減少し、これらの静的な変異体が懸濁液中の細胞に課された選択的圧力を受けにくいことを示している。適切な装置の操作が再確立された時点で、これらの変異体は急速にそして効果的に進化する集団から除去された。
【００６６】
結果
PCT国際出願公開第ＷＯ00/34433号中に記載された自動化装置は、定義された選択的条件下の生きた細胞の永続的な増殖を可能とし、そして突然変異した細菌の再生進化に特に適している。
【００６７】
上記自動化プロセスは、頻繁にそして効果的に装置のいずれ部分においても静的な変異体を破壊し、不定の期間、懸濁液中の細胞の連続的な増殖に対する主要な障害を克服する。
【００６８】
我々は、真核生物に類似したプライマーメチオニンサイクルを有する大腸菌派生株を作り出した。該菌株は、N-ホルミル-フリーポリペプチドの大腸菌における発現を提供するであろう。
【００６９】
独自の遺伝的及び代謝的インプリントを有する進化した微生物菌株は工業適応性の微生物系統の多様化のための原型として役立つであろう。
【００７０】
参考文献
Bogosian, G. et al.,(1989) Biosynthesis and incorporation into protein of norleucine by Escherichia coli J. Biol. Chem. 264:531-539.
Clogston, C. L., Hsu, Y. R. Boone, T. C. and Lu, H. S.: Detection and quantitation of recombinant granulocyte colony-stimulationg factor charge isoforms: comparative analysis by cationic-exchange chromatography, isoelectric focusing gel electrophoresis, and peptide mapping. Anal. Biochem. 202(1992)375-383
Dong, M. S., Guo, Z., Philips, D. R., Bell, L. C., and L.C., Howard, E., Blair, I.A., Gillam, E. M. J., Baba, T., Waterman, M. R. and Guengerich, F. P.: Retention of N-formylmethionine in recombinant bacterial cytochrome P450 enzymes containing the N-terminal sequence MALLLAVFL. FASEB J. 9(1995)A1486
Guillon, J, M., Mechulam, Y., Schmitter, J. M., Blanquet, S. and Fayat, G.:Disruption of the gene for Met-tRNA-fMet formyltransferase severely impairs growth of Escherichia coli. J. Bacteriol. 174(1992)4294-4301
Hauschild-Rogat, P.: N-formylmethionine as a N-terminal group of E. coli ribosomal protein. Mol. Gen. Genet. 102(1968)95-101
Hogset, A., Blingsmo, O. R., Gautvik, V. T., Saether, O., Jacobsen, P. B., Gordeladzo, J. O., Alestrom, P. and Gautvik, V. T., Saether, O., Jacobsen, P. B., Gordeladzo, J. O., Alestrom, P. and Gautvik, K. M. Expression of Human Parathiroid Hormone In Eschericia Coli Biochemical and Biophysical Research Commuications 166:1(1990)50-60.
Honda, S., Asano, T., Kajio, T., and Nishimura, O. Eschrichia coli-Derived Human Interferon-.gamma. with Cys-Tyr-Cys at the N-terminus is Partially N.sup..alpha.-Acylated. Archives of Biochemistry and Biophysics 269(1989)612-622
Marasco, W. A., Phan, S. H. Krutzsch, H., Showell, H. J., Feltner, D. E., Nairn, R., Becker, E. L. and Ward, P. A.: Purification and identification of formyl-methionyl-leucyl-phenylalanine as the major peptide neutrophil chemotactic factor produced by Escherichia coli. J. Biol. Chem. 259(1984)5430-5439
Mazel, D., Pochet, S. and Marliere, P.: Genetic characterization of polypeptide deformylase, a distinctive enzyme of eubacterial translation. EMBO J. 13(1994) 914-923
Milligan, D. L. and Koshland, Jr., D. E.: The amino terminus of the aspartate chemoreceptor is formylmethionine. J. Biol. Chem. 265(1990)4455-4460
Rabbani, S. A., Yasuda T., Bennett H. P. J., Sung, W. L. Zahab, D. M., Tam, C. S. Goltman, D., and Hendy, G. N. Recombminant Human Parathyroid Hormone Synthesized in Escherichia coli. Journal of Biological Chemistry 263:3(1988)1307-1313
Rose, K., Regamey, Plk Anderegg, R., Wells, T., Proudfoot, A., Human interleukin-5 expressed in Escherichia coli has N-terminal modifications. Biochem J. 286(1992) 825-828
Sandman, K., Grayling, R. A. and Reeve, J. N. Improted N-terminal Processing of Recombinant Proteins Synthesized in Escherichia coli. Biotechnology 13 (1995)504-506
Spechtk Blk Oudenampsen-Kruger, E., Ingendoh, A., Hillenkamp, F., Lezius, A.G. and Spener. F.: N-terminal variants of fatty acid-binding protein from bovine heart overexpression in Escherichia coli. J. Biotechnol. 33(1994)259-269
Sugimoto, S., Yamaguchi, K. and Yokoo, Y.: Isolation and characterization of recombinant eel growth hormone expressed in Escherichia coli. J. Chromatog. 515(1990)483-494.
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【配列表】
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