(57)【要約】【課題】無血清培地における初代細胞（特に初代鳥類細胞）の培養を可能にする方法であって、（Ｉ）対数期における細胞の成長及び（ＩＩ）定常期における細胞の維持を可能にする方法を提供すること。【解決手段】  本発明は初代細胞の培養方法に関する。初代細胞は成長因子及び付着因子からなる群より選択される因子を含む無血清培地で培養される。この初代細胞培養方法はポックスウイルスなどのウイルスを増幅させる方法の１工程にすることができる。このウイルス増幅方法では、成長因子及び付着因子からなる群より選択される因子を含む無血清培地中で初代細胞を培養する。次に、それらの細胞をウイルスに感染させ、子孫ウイルスが産生されるまでその感染細胞を無血清培地で培養する。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
成長因子及び付着因子からなる群より選択される因子を含む無血清培地で、初代鳥類細胞を培養することを特徴とする、初代鳥類細胞の培養方法。
【請求項２】
初代鳥類細胞がニワトリ胚線維芽細胞（ＣＥＦ）である、請求項１記載の方法。
【請求項３】
成長因子が上皮成長因子（ＥＧＦ）、特に組換えヒトＥＧＦである、請求項１又は２記載の方法。
【請求項４】
ＥＧＦの濃度が５〜２０ｎｇ／ｍｌ培地の範囲にある、請求項３記載の方法。
【請求項５】
付着因子がフィブロネクチンである、請求項１又は２記載の方法。
【請求項６】
フィブロネクチンの濃度が１〜１０μｇ／ｃｍ２細胞培養器表面の範囲にある、請求項５記載の方法。
【請求項７】
培地が成長因子及び付着因子から選択される２種以上の因子を含む、請求項１又は２記載の方法。
【請求項８】
培地が請求項４及び請求項６記載の濃度範囲にあるＥＧＦ及びフィブロネクチンを含む、請求項７記載の方法。
【請求項９】
培地が微生物抽出物、植物抽出物及び非哺乳類動物からの抽出物から選択される１種以上の添加物をさらに含む、請求項１〜８のいずれか１つに記載の方法。
【請求項１０】
微生物抽出物が酵母抽出物又はイーストレート限外濾過液である、請求項９記載の方法。
【請求項１１】
植物抽出物がイネ抽出物又はダイズ抽出物である、請求項９記載の方法。
【請求項１２】
非哺乳類動物からの抽出物が魚抽出物である、請求項９記載の方法。
【請求項１３】
ウイルスを増幅させる方法であって、次の工程：
（ｉ）請求項１〜１２のいずれか１つに記載の方法に従って初代鳥類細胞を培養する工程、
（ｉｉ）前記初代鳥類細胞に前記ウイルスを感染させる工程及び
（ｉｉｉ）子孫ウイルスが産生されるまで無血清培地で前記感染細胞を培養する工程
を含み、前記初代鳥類細胞が前記ウイルスの増殖的複製を可能にする細胞である方法。
【請求項１４】
初代鳥類細胞がニワトリ胚線維芽細胞（ＣＥＦ）である、請求項１３記載の方法。
【請求項１５】
ウイルスがムンプスウイルス、麻疹ウイルス、狂犬病ウイルス、日本脳炎ウイルス、黄熱ウイルス、インフルエンザウイルス及びポックスウイルスから選択される、請求項１３又は１４記載の方法。
【請求項１６】
ポックスウイルスがオルトポックスウイルスである、請求項１５記載の方法。
【請求項１７】
オルトポックスウイルスがワクシニアウイルスである、請求項１６記載の方法。
【請求項１８】
ワクシニアウイルスが変異ワクシニアウイルスアンカラ（Ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｖａｃｃｉｎｉａ  ｖｉｒｕｓ  Ａｎｋａｒａ）である、請求項１７記載の方法。
【請求項１９】
ポックスウイルスが弱毒化ウイルス又は組換えウイルスである、請求項１５〜１８のいずれか１つに記載の方法。
【請求項２０】
工程（ｉｉ）及び（ｉｉｉ）の一方又は両方で使用される無血清培地が、成長因子及び付着因子から選択される因子を含有しない、請求項１３〜１９のいずれか１つに記載の方法。
【請求項２１】
工程（ｉｉｉ）の後に１つ以上の精製工程を設ける、請求項１３〜２０のいずれか１つに記載の方法。
【請求項２２】
請求項１３〜２１のいずれか１つに記載の方法によって得られるポックスウイルス。
【請求項２３】
請求項１３〜２１のいずれか１つに記載の方法によって産生されるポックスウイルスを含む組成物。
【請求項２４】
医薬又はワクチンとしての請求項２２記載のポックスウイルス又は請求項２３記載の組成物。
【請求項２５】
ワクチンを製造するために、請求項２２記載のポックスウイルス又は請求項２３記載の組成物を使用する方法。
【請求項２６】
処置又は予防接種を必要とするヒトを含む動物に、その処置又は予防接種を施す方法であって、その動物又はヒトに請求項２２記載のポックスウイルス又は請求項２３記載の組成物を投与することを特徴とする、前記処置又は予防接種を施す方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は初代細胞の培養方法に関する。初代細胞は、成長因子及び付着因子からなる群より選択される因子を含む無血清培地で培養される。この初代細胞培養方法は、ポックスウイルスなどのウイルスを増幅させる方法の１工程にすることができる。このウイルス増幅方法では、成長因子及び付着因子からなる群より選択される因子を含む無血清培地中で初代細胞を培養する。次に、それらの細胞をウイルスに感染させ、その感染細胞を子孫ウイルスが産生されるまで無血清培地で培養する。
【背景技術】
【０００２】
弱毒化ウイルス又は組換えウイルスなどのウイルスワクチンは、そのほとんどが、細胞培養系から製造される。ウイルス／ワクチン生産に使用される細胞として、細胞株（すなわちバイオリアクター中の単一細胞浮遊培養として、又は組織培養フラスコもしくはローラーボトルの細胞支持面に形成された単層として、生体外で継続的に成長する細胞）を挙げることができる。ウイルスの生産に使用される細胞株の例には、ポリオウイルスの製造に使用されるヒト胎児肺細胞株ＭＲＣ−５や、麻疹ウイルス、ムンプスウイルス及び風疹ウイルス（ＭＭＲ  ＩＩ）（Ｍｅｒｋ  Ｓｈａｒｐ  ＆  Ｄｏｈｍｅ）の製造に使用されるヒト胎児肺細胞株ＷＩ−３８などがある。
【０００３】
ワクチンの製造には細胞株だけでなく初代動物細胞も使用される。ウイルス生産に使用される初代細胞の例はニワトリ胚線維芽細胞（ＣＥＦ細胞）である。これらの細胞は、麻疹ウイルス及び日本脳炎ウイルス（Ｐａｓｔｅｕｒ  Ｍｅｒｉｅｕｘ）、ムンプスウイルス（Ｐｒｏｖａｃｃｉｎｅ製）、狂犬病ウイルス（Ｃｈｉｒｏｎ  Ｂｅｒｈｉｎｇ  ＧｍｂＨ  ＆  Ｃｏ．製）、黄熱ウイルス（Ａｐｒｉｌｖａｘ製）、インフルエンザウイルス（Ｗｙｅｔｈ  Ｌａｂｓ及びＳｍｉｔｈＫｌｉｎｅ  ＆  Ｂｅｅｃｈａｍ製）ならびに変異ワクシニアウイルスアンカラ（ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｖａｃｃｉｎｉａ  ｖｉｒｕｓ  Ａｎｋａｒａ：ＭＶＡ）の生産に使用される。
【０００４】
多くの場合、ＣＥＦ細胞が使用される。なぜなら、多くのウイルスワクチンは、有毒な病原性ウイルスをＣＥＦ細胞での連続継代により弱毒化することによって作製されるからである。弱毒化ウイルスはもはや疾患を引き起こさないが、有毒型ウイルスに対する強力な防御免疫を刺激する能力はまだ持っている。このタイプのウイルスの一例はＭＶＡである。このウイルスは、ヒト及びほとんどの動物で、その複製が著しく制限される。ＭＶＡは種々のヒト病原体に由来する抗原を発現させるために使用することができるので、ＭＶＡはワクチンベクターとして発展している。ＭＶＡなどの弱毒化ウイルスは、ヒト細胞では増殖させないことが好ましい。なぜなら、ヒト由来の細胞中でそれらのウイルスが再び複製能力を持つようになるかもしれないという懸念があるからである。しかし、ヒト細胞内で複製する能力を回復したウイルスがヒトに投与されると、それは健康リスクになる可能性があり、その個体が免疫不全状態である場合は特にその可能性が高い。そのため、ＭＶＡなど、一部の弱毒化ウイルスは、ヒトでの使用が想定されている場合には、厳密にＣＥＦ細胞から製造されている。
【０００５】
また、ＣＥＦ細胞は、ＣＥＦ細胞でしか増殖しないウイルスにも使用される。そのようなウイルスの例は、特に鳥類ウイルス、例えばアビポックスウイルス、特にカナリア痘ウイルス、ＡＬＶＡＣ、鶏痘ウイルス及びＮＹＶＡＣである。
【０００６】
生体外培養条件下で成長する細胞株及び初代細胞は、（Ｉ）対数期における細胞複製と、（ＩＩ）細胞がもはや分裂しなくなった後の（すなわち細胞が定常期にある時の）細胞維持とを支えることができる特殊な成長及び維持培地を必要とする。よく用いられる細胞培養培地は、ビタミン類、アミノ酸類、必須微量元素及び糖類を含有する富栄養塩類溶液を含んでいる。細胞の成長と維持を支えるのに必要な成長ホルモン、酵素及び生物活性タンパク質が、通常、培地への補助添加物として、動物血由来血清製品の形で添加される。動物血由来血清製品の例は、ウシ胎仔血清、ニワトリ血清、ウマ血清及びブタ血清である。これらの血清は、赤血球と白血球とが既に除去されている血液画分から得られる。ＣＥＦ細胞などの初代細胞は動物血清源への依存性が細胞株よりも高い。したがって、初代細胞は通常、５〜１０％の血清（ほとんどの場合、ウシ胎仔血清（ＦＣＳ））を含んでいる細胞培養培地で培養される。
【０００７】
動物血清は、細胞の成長に必要な因子だけでなく、もともと付着細胞として成長する細胞が培養器の細胞支持面に付着するために必要とする因子も含んでいる。したがって、付着細胞にとっては、それらが成長して単層を形成することができるように、十分な血清を培地に加えることが不可欠である。
【０００８】
残念ながら、ウシ／ウシ胎仔血清も、他の動物に由来する血清も、ウイルスなどの病原体を偶発的に含んでいる可能性がある。これらの病原体は、ワクチン又は細胞培養中で産生される他の任意の医薬製品を使った処置又は予防接種を受ける動物／ヒトに伝達されてしまう危険が、潜在的に存在する。このことは、細胞培養製品が免疫不全状態のヒトに投与される場合には、特に重大である。よく使用されるウシ血清補助添加物に付随する多くの潜在的大問題の一つは、細胞培養から製造された製品と接触する動物／ヒトにウシ海綿状脳症（ＢＳＥ）を引き起こす物質を伝達する可能性である。
【０００９】
細胞培養における動物血清の使用に伴いうる危険を考慮して、動物製品を使用しない製造工程が、極めて望ましいことが明らかになっている。
【００１０】
この目標に向けて、動物血清を補充する必要のない特殊な培地が、細胞株を継続的に成長させるため、かつ継続的に成長する細胞株でウイルスを生産するために、それぞれ開発されている。細胞株を培養するために使用することができる、そのような無血清培地の例はＧｉｂｃｏ  ＢＲＬ／Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ製のＶＰ−ＳＦＭである。製造者の情報によると、ＶＰ−ＳＦＭは特に、ＶＥＲＯ、ＣＯＳ−７、ＭＤＢＫ、Ｈｅｐ２、ＢＨＫ−２１及び他の重要な細胞株の成長（Ｐｒｉｃｅ，Ｐ．及びＥｖｅｇｅ，Ｅ．，Ｆｏｃｕｓ  １９９７，１９：６７−６９）と、前記細胞株でのウイルス生産用に設計されている。この培地での初代細胞の培養に関して入手できる情報はない。
【００１１】
米国特許第５，５０３，５８２には、４％ウシ血清を含む培地でＣＥＦ細胞を培養した後、それらの細胞を無血清培地中での鶏痘ウイルスに感染させることが開示されている。Ｓｐａｔａｒｏ，Ａ．Ｃ．ら、Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｓｃｉ．１９７６；２１，４０７−４１３には、単層が形成されていれば、ＣＥＦ細胞を無血清培地中で２４時間維持できることが開示されている。したがって、これらの両刊行物によれば、播種後の細胞培養に使用される培地は血清を含んでいる。既に表面に付着していて定常期に達している細胞の維持にしか、無血清培地は使用されなかった。血清を含まない従来の培地、例えば１９９培地やＲＰＭＩ−１６４０などを使って播種を行うと、単層は形成されず、細胞は培地中に生育不能な凝集体を形成する。
【００１２】
特許文献１は、動物細胞を生体外培養するための特殊な無血清培地に言及している。特許文献１に開示されている培地で培養することができる細胞は、哺乳動物、鳥類、昆虫又は魚類から得られる細胞を含む動物由来の細胞である。哺乳類細胞はヒト由来の初代細胞であってもよい。初代鳥類細胞への言及はない。
【００１３】
特許文献２には、細胞を増殖及び発生させるための無血清培地が開示されている。これらの細胞は、好ましくは、造血細胞及び骨髄間質細胞である。初代鳥類細胞には言及されていない。
【００１４】
特許文献３には、細胞株ＢＨＫ、Ｖｅｒｏ又はＭＲＣ−５などの足場依存性哺乳類細胞を成長させるための無血清培地が開示されている。特許文献３は初代細胞にも鳥類細胞にも言及していない。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１５】
【特許文献１】国際公開第９８／１５６１４号明細書
【特許文献２】米国特許第５，４０５，７７２号明細書
【特許文献３】国際公開第９８／０４６８０号明細書
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１６】
無血清培地における初代細胞（特に初代鳥類細胞）の培養を可能にする方法であって、（Ｉ）対数期における細胞の成長及び（ＩＩ）定常期における細胞の維持を可能にする方法を提供することが本発明の目的である。さらに、細胞が付着細胞である場合、培地は、好ましくは、（ＩＩＩ）細胞培養器の表面への付着細胞の付着を可能にすることができる。無血清条件下で初代細胞を使用することによってウイルスを生産する方法を提供することが、本発明のもう１つの目的である。
【課題を解決するための手段】
【００１７】
本発明は、初代細胞を培養する方法であって、成長因子及び付着因子からなる群より選択される因子を含む無血清培地中で細胞を培養することを特徴とする方法を提供する。
【００１８】
本発明によれば、もともと付着細胞として成長する初代細胞は、播種後に細胞培養器の表面に付着し、対数期では単層が形成されるまで成長する。本発明によれば、細胞の付着及び対数成長時に使用される培地中で静止細胞を維持することができる。
【００１９】
本発明の方法は単層を形成する細胞に限定されない。もう一つの態様によれば、本発明の方法は、例えばもともと浮遊培養で成長する細胞（例：リンパ球又は他のタイプの血液細胞）や、もともとは付着細胞として成長するが浮遊培養で成長するように適応させた細胞など、他のあらゆるタイプの初代細胞に使用することができる。
【００２０】
後述するように、これらの細胞は、ワクチンとして役立ちうるウイルスの無血清増幅に使用することもできる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２１】
もともと付着細胞として成長する初代細胞が、血清が存在しなくても、（Ｉ）許容できない量の凝集体を形成せずに細胞培養器の表面に効果的に付着することができ、（ＩＩ）対数期に成長させることができるということは予想外だった。というのも、初代細胞は血清に含まれる多種多様な因子及び成分に依存すると一般に考えられていたからである。さらに、無血清培地で培養した場合、付着細胞は、細胞培養器の表面に付着しない生育不能な凝集体を形成するとも考えられていた。したがって、付着初代細胞を付着させ成長させるのに、成長因子及び付着因子からなる群より選択される因子を無血清培地に加えれば足りるということは予想外だった。また、浮遊培養で培養される初代細胞を、本発明の方法で用いられる培地を使って成長させることができるということも予想外だった。さらに、成長因子及び付着因子からなる群より選択される因子を含んでいる無血清培地中で、ニワトリ胚線維芽細胞（ＣＥＦ）などの初代鳥類細胞を培養して、許容できない量の凝集体を形成させずに、細胞培養器の表面に付着させることができるということも驚きだった。というのも、成長因子又は付着因子を含まない無血清培地における鳥類細胞の成長は、非常に悪いことが知られていたからである。すなわち、成長因子及び付着因子から選択される因子を無血清培地に加えることによって、初代鳥類細胞の低い成長性を著しく改善できるということは予想外だった。
【００２２】
本明細書で使用する「初代細胞」という用語は当業者にはよく知られている。以下の定義に限定されるわけではないが、「初代細胞」という用語は、動物又はヒトの組織、器官又は生物から新たに単離された細胞を指し、これらの細胞は、継続的かつ無限に複製及び分裂することはできない。通常、初代細胞が細胞培養で分裂する回数は１００回未満であり、５０回未満、２５回未満であることが多い。したがって初代細胞は不死化を起こしていない。初代細胞の例は、臍帯血リンパ球及びヒト又は動物線維芽細胞である。動物線維芽細胞の好適例は鳥類線維芽細胞、最も好ましくはニワトリ胚線維芽細胞（ＣＥＦ細胞）である。初代ヒト線維芽細胞の好適例は、ヒト包皮線維芽細胞である。
【００２３】
初代細胞を単離できる方法は当業者にはよく知られている。一般に、初代細胞培養物は組織、器官又は胚から直接得られる。組織、器官又は胚にプロテアーゼ処置を施して単細胞を得る。次に、本発明の方法に従って、生体外培養条件下で細胞を培養する。
【００２４】
より具体的に述べると、プロテアーゼ消化したニワトリ胚からＣＥＦ細胞を得る。本発明によれば、ＣＥＦ細胞は、固体細胞支持面に付着した付着細胞として最もよく成長する。細胞は複製を開始し、単層を形成する。動物血清を含まない標準的な培養培地を使って（胚消化後の）ＣＥＦ細胞を生体外で培養すると、細胞は、時には固体細胞支持面に付着することもあるだろうが、複製してコンフルエントな細胞単層を形成することはなく、時間と共に固体培養支持面からゆっくりとはがれるだろう。これに対して、本発明の方法に従ってＣＥＦ細胞を培養すると、細胞は固体支持体に付着し、対数期では単層が形成されるまで成長し、数日間は定常期に留まることができる。
【００２５】
付着初代細胞に関して、無血清培地における「細胞の培養」という用語は、培養器に無血清培地中の細胞を播種すること、対数期において、単層が形成されるまで細胞をその無血清培地中で成長させること、及び（又は）単層が形成されるとすぐに無血清培地中で細胞を維持することを指す。より好ましくは、無血清培地における「細胞の培養」という用語は、細胞の培養過程全体を通して動物血清製品が存在することのないように、上述した工程の全てが無血清培地で行われる方法を指す。したがって、より一般的な意味として、「無血清培地における細胞の培養」という用語は、単層の形成につながる全ての培地が無血清培地であるという事実を指す。成長因子及び付着因子から選択される因子は、上記の全工程で使用される培地に含めることができる。しかし、そのような因子は、細胞の付着及び（又は）対数成長条件下での細胞の成長に用いられる培地だけに加えれば十分であるかもしれない。
【００２６】
浮遊培養で成長する細胞に関して、無血清培地における「細胞の培養」という用語は、培養器に無血清培地中の細胞を播種すること、対数期において無血清培地中で細胞を成長させること、及び（又は）さらなる複製が起こらない飽和密度に到達したらすぐに無血清培地中で細胞を維持することを指す。より好ましくは、無血清培地における「細胞の培養」という用語は、細胞の培養全体を通して動物血清製品が存在することのないように、上述した工程の全てが無血清培地中で行われる方法を指す。成長因子群から選択される因子は、好ましくは上記の全工程で使用される培地に含めることができる。しかし、そのような因子は、細胞の播種及び（又は）対数成長条件下での細胞の成長に用いられる培地だけに加えれば十分であるかもしれない。また、以下に詳述するように、適当なインキュベーション条件を選択すれば（例えば「波（ｗａｖｅ）」インキュベーションの適用により）、通常は付着細胞として成長する細胞を、浮遊培養細胞として培養することも可能であるかもしれない。本発明の方法はこのタイプの培養にも適合する。
【００２７】
「無血清」培地という用語は、動物又はヒト由来の血清を含有しない任意の細胞培養培地を指す。好適な細胞培養培地は当業者には知られている。これらの培地は、塩類、ビタミン類、緩衝剤、エネルギー源、アミノ酸及び他の物質を含む。ＣＥＦ細胞の無血清培養に適した培地の一例は１９９培地である（Ｍｏｒｇａｎ，Ｍｏｒｔｏｎ及びＰａｒｋｅｒ；Ｐｒｏｃ．Ｓｏｃ．Ｅｘｐ．Ｂｉｏｉ．Ｍｅｄ．１９５０，７３，１；Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓなどから入手することができる）。
【００２８】
本発明の方法で使用される培地、特にＣＥＦ細胞などの付着細胞に使用される培地は、成長因子及び付着因子からなる群より選択される因子を含有する。付着因子の一例はフィブロネクチンである。
【００２９】
もともとは付着細胞として成長する細胞であるにもかかわらず浮遊培養で培養される細胞の場合（これは例えばＣＥＦ細胞などで可能である）、成長因子群から選択される因子を使用することは特に好ましい。このタイプの培養に有用な成長因子の例は、組換えウシ、マウス、ニワトリ又はヒト上皮成長因子（ＥＧＦ）である。最も好ましいのは、組換えヒトＥＧＦ（ｒｈ−ＥＧＦ）である（Ｃｈｅｍｉｃｏｎ  Ｉｎｔ．、カタログ番号ＧＦ００１）。
【００３０】
もともと浮遊培養で成長する細胞の場合、培地は、好ましくは、ＥＧＦを含む成長因子群から選択される因子を含むことができる。このタイプの細胞にとって成長因子は非付着細胞に特異的な因子であることが最も好ましい。そのような成長因子の例は、インターロイキン類、ＧＭ−ＣＳＦ、Ｇ−ＣＳＦなどである。どのタイプの因子がどのタイプの細胞に適しているかは、当業者であれば日常的な実験で容易に判定することができる。
【００３１】
無血清培地に添加する因子がＥＧＦ、特にｒｈ−ＥＧＦである場合は、これを１〜５０ｎｇ／ｍｌ、より好ましくは５〜２０ｎｇ／ｍｌの濃度で培地に加えることが好ましい。ただし、細胞タイプが異なると、最適な結果を得るために要求される血清中のＥＧＦ濃度も多少異なりうることは、当業者にはわかるだろう。
【００３２】
無血清培地に添加される付着因子がフィブロネクチン（例えばＣｈｅｍｉｃｏｎ  Ｉｎｔ．；ヒト血漿フィブロネクチン；カタログ番号ＦＣ０１０）である場合は、これを１〜５０、より好ましくは１〜１０μｇ／ｃｍ２細胞培養器表面の濃度で培地に加えることが好ましい。ただし、細胞タイプが異なると、最適な結果を得るために要求される血清中のフィブロネクチン濃度も多少異なりうることは、当業者にはわかるだろう。
【００３３】
本発明によれば、特に細胞が付着細胞である場合は、成長因子及び付着因子から選択される因子を１つだけ培地に添加すれば十分である。しかし、成長因子及び付着因子から選択される２種以上の因子を培地に加えることもできる。特に初代細胞がＣＥＦ細胞などの付着細胞である場合、培地は、好ましくはＥＧＦとフィブロネクチンとを、好ましくは上記載の濃度範囲で含むことができる。
【００３４】
培地は微生物抽出物、植物抽出物、及び非哺乳類動物からの抽出物から選択される１種以上の添加物をさらに含むこともできる。微生物抽出物は、好ましくは酵母抽出物又はイーストレート限外濾過液である。植物抽出物は、好ましくはイネ抽出物又はダイズ抽出物である。非哺乳類動物からの抽出物は、好ましくは魚抽出物である。
【００３５】
本発明の好ましい一態様として、成長因子又は付着因子から選択される因子を添加しておいた市販の無血清培地にアスパラギンを加えることができる。より好ましくは、ウイルス感染の際に使用する培地にアスパラギンを加える（下記参照）。市販の無血清培地は、通常、濃度範囲０．３〜１．０ｍＭのアスパラギンを含んでいる。培地に補充するアスパラギンの好適量は０．５〜１．５ｍＭの範囲にある。最も好ましいのは１ｍＭのアスパラギン補充である。培地中のアスパラギンの総濃度は、好ましくは２ｍＭ未満、より好ましくは０．８〜１．８ｍＭである。培地中の最も好ましいアスパラギン濃度は１．３ｍＭである。
【００３６】
さらにまた、好ましくは、グルタミンを培地に加えることができる。より好ましくは、ウイルス感染の際に使用する培地にグルタミンを加える（下記参照）。培地に補充するグルタミンの好適量は１〜５ｍＭの範囲、より好ましくは２〜４ｍＭの範囲にある。市販の培地はそのほとんどがグルタミンを含有していないので、これら範囲は培地中の好ましい総濃度とも一致する。
【００３７】
さらにもう１つの態様によれば、本発明は、以下の工程を含むウイルス増幅方法に関する。すなわち、第１工程では、上述の方法に従って初代細胞を培養する。すなわち、細胞タイプに応じて成長因子及び付着因子からなる群より選択される因子を含む無血清培地で初代細胞を培養する。上記初代細胞培養方法の説明で示した条件、定義、好ましい態様、及び好ましい−最も好ましい態様の順序は全て、本発明のこの態様によるウイルス増幅方法の第１工程の定義にも当てはまる。第２工程では、初代細胞をウイルスに感染させる。第３工程では、無血清培地中で子孫ウイルスが産生されるまで感染細胞をインキュベートする。
【００３８】
「ウイルスの増幅」という用語は、感染細胞におけるウイルスの増殖的ウイルス複製によってウイルス量を増加させるという目的に、本発明の方法が好ましく使用されることを明確にするために用いられている。言い換えると、投入ウイルス量に対する産生ウイルス量の比は、好ましくは１を超えるべきである。したがって、本発明では、個々のウイルスについて、そのウイルスが増殖的に複製することのできる初代細胞を選択する。「増殖的複製」という用語は、あるウイルスが、ある初代細胞において、感染性子孫ウイルスが産生され、投入ウイルスに対する産生ウイルスの比が１を超える程度に複製されるという事実を指す。
【００３９】
どのウイルスをどのタイプの初代細胞で増殖的に複製させることができるかは、当業者には知られている。例えば、増幅すべきウイルスがヒトサイトメガロウイルスである場合、初代細胞をヒト包皮線維芽細胞にすることができ、増幅すべきウイルスが麻疹ウイルス、ムンプスウイルス、狂犬病ウイルス、日本脳炎ウイルス、黄熱ウイルス、インフルエンザウイルス、又はポックスウイルス、例えばワクシニアウイルス、特に変異ワクシニアウイルスアンカラ（ＭＶＡ）である場合には、初代細胞をＣＥＦ細胞にすることができる。
【００４０】
この態様の第２工程で初代細胞を感染させる方法は、当業者には知られている。例えば、単にウイルスを培地に加えるだけでもよい。あるいは、培地を除去し、ウイルスを新鮮培地に加え、それを細胞に加えてもよい。効率よく感染させるには、ウイルス濃度が高くなるように、ウイルス／培地懸濁液の量をできる限り少なくするべきである。ウイルスの付着後に追加の培地を加えることもできる。
【００４１】
第３工程では、子孫ウイルスが産生するまで細胞を無血清培地に接種する。
【００４２】
このウイルス増幅方法の第２工程及び第３工程で使用する無血清培地は、先に使用したものと同じ培地、すなわち、細胞タイプに応じて成長因子及び付着因子から選択される因子を含む無血清培地でありうる。しかし費用を節約するために、第２工程と第３工程の一方又は両方で、成長因子及び付着因子から選択される因子を含有しない無血清培地を使用することもできる。
【００４３】
上に概説したように、全ての段階で、培地にはアスパラギン及び（又は）グルタミンを補充することができ、その場合、培地中のアスパラギンの総濃度は、好ましくは上に定義したとおりである。
【００４４】
子孫ウイルスは、当業者に知られている方法で濃縮し、精製することができる。
【００４５】
好ましい一態様では、本ウイルス増幅方法をポックスウイルスの増幅に使用する。したがって、この好ましい態様によれば、本発明は、ポックスウイルスを増幅させる方法であって、次の工程：（Ｉ）上述の方法（すなわち、細胞タイプに応じて、成長因子及び付着因子からなる群より選択される因子を含む無血清培地で初代細胞を培養する方法）に従って初代細胞を培養する工程、（ＩＩ）その初代細胞をポックスウイルスに感染させる工程、及び（ＩＩＩ）子孫ウイルスが産生されるまで感染細胞を無血清培地で培養する工程を含む方法に関する。
【００４６】
無血清条件下で培養される細胞でポックスウイルスを増幅させることができるということは予想外だった。というのも、既知の無血清培地では細胞の成長が非常に悪いからである。したがって、既にストレスを受けている細胞は、ポックスウイルスの有意な増幅が起こる前に、ポックスウイルス感染に伴う余分なストレスによって死んでしまうと予想された。
【００４７】
ポックスウイルスは、好ましくはオルトポックスウイルスである。オルトポックスウイルスの例はアビポックスウイルス及びワクシニアウイルスである。
【００４８】
「アビポックスウイルス」という用語は、例えば鶏痘ウイルス、カナリア痘ウイルス、ジュンコ痘ウイルス（Ｕｎｃｏｐｏｘｖｉｒｕｓ）、マイナ痘ウイルス、鳩痘ウイルス、オウム痘ウイルス、ウズラ痘ウイルス、クジャク痘ウイルス、ペンギン痘ウイルス、スズメ痘ウイルス、ムクドリ痘ウイルス及び七面鳥痘ウイルスなど、任意のアビポックスウイルスを指す。好ましいアビポックスウイルスはカナリア痘ウイルス及び鶏痘ウイルスである。
【００４９】
カナリア痘ウイルスの一例はレンチュラー（Ｒｅｎｔｓｃｈｌｅｒ）株である。ＡＬＶＡＣと呼ばれるプラーク精製されたカナリア痘ウイルス（米国特許第５，７６６，５９８号）は、ブダペスト条約の規定に基づいて、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション（Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｔｙｐｅ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ：ＡＴＣＣ）に受託番号ＶＲ−２５４７として寄託された。もう１つのカナリア痘ウイルス株は、ＬＦ２  ＣＥＰ  ５２４  ２４  １０  ７５と呼ばれる市販のカナリア痘ワクチン株であり、Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ  Ｍｅｒｉｅｕｘ，Ｉｎｃ．から入手することができる。
【００５０】
鶏痘ウイルスの例はＦＰ−１、ＦＰ−５及びＴＲＯＶＡＣ（米国特許第５，７６６，５９８号）株である。ＦＰ−１は、一日齢のニワトリにワクチンとして使用するために改変されたデュベット（Ｄｕｖｅｔｔｅ）株である。この株は、０  ＤＣＥＰ  ２５／ＣＥＰ６７／２３０９  Ｏｃｔｏｂｅｒ  １９８０と呼ばれる市販の鶏痘ウイルスワクチン株であり、Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ  Ｍｅｒｉｅｕｘ，Ｉｎｃ．から入手することができる。ＦＰ−５は、ニワトリ胚由来の市販の鶏痘ウイルスワクチン株であり、Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（Ｄｉｖｉｓｉｏｎ  ｏｆ  Ｓｃｈｅｒｉｎｇ  Ｃｏｒｐ．），Ｍａｄｉｓｏｎ，Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ，Ｕｎｉｔｅｄ  Ｓｔａｔｅｓ  Ｖｅｔｅｒｉｎａｒｙ  Ｌｉｃｅｎｓｅ  Ｎｏ．１６５，ｓｅｒｉａｌ  Ｎｏ．３０３２１から入手することができる。
【００５１】
ワクシニアウイルスの例は、天壇（Ｔｅｍｐｌｅ  ｏｆ  Ｈｅａｖｅｎ）株、コペンハーゲン株、パリ株、ブダペスト株、大連（Ｄａｉｒｅｎ）株、ガム（Ｇａｍ）株、ＭＲＩＶＰ株、パー（Ｐｅｒ）株、タシケント株、ＴＢＫ株、トム（Ｔｏｍ）株、ベルン株、パトワダンガル（Ｐａｔｗａｄａｎｇａｒ）株、ＢＩＥＭ株、Ｂ−１５株、リスター（Ｌｉｓｔｅｒ）株、ＥＭ−６３株、ニューヨーク市公衆衛生局（Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ  Ｃｉｔｙ  Ｂｏａｒｄ  ｏｆ  Ｈｅａｌｔｈ）株、エルストリー株、池田（Ｉｋｅｄａ）株及びＷＲ株である。本発明は、好ましくは変異ワクシニアウイルスアンカラ（ＭＶＡ）を使って行われる（Ｓｕｔｔｅｒ，Ｇ．ら［１９９４］Ｖａｃｃｉｎｅ  １２：１０３２−４０）。典型的なＭＶＡ株は、ヨーロピアン・コレクション・オブ・アニマル・セル・カルチャーズ（Ｅｕｒｏｐｅａｎ  Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ  ｏｆ  Ａｎｉｍａｌ  Ｃｅｌｌ  Ｃｕｌｔｕｒｅｓ）に受託番号ＥＣＡＣＣ  Ｖ００１２０７０７として寄託されているＭＶＡ  ５７５である。最も好ましいのは、２００１年１１月２２日に欧州特許庁に出願されたＰＣＴ出願ＰＣＴ／ＥＰ０１／１３６２８（発明の名称「Ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｖａｃｃｉｎｉａ  Ａｎｋａｒａ  Ｖｉｒｕｓ  Ｖａｒｉａｎｔ（変性ワクシニアアンカラウイルス変異体）」）に記載されているＭＶＡ−ＢＮ又はその誘導体である。ＭＶＡ−ＢＮは、ヨーロピアン・コレクション・オブ・アニマル・セル・カルチャーズに、受託番号ＥＣＡＣＣ  Ｖ０００８３００８として寄託されている。ＭＶＡ−ＢＮの特徴、ＭＶＡがＭＶＡ−ＢＮ又はその誘導体であるかどうかの評価を可能にする生物学的アッセイの説明、及びＭＶＡ−ＢＮ又はその誘導体の取得を可能にする方法は、上に挙げたＰＣＴ出願に開示されており、その出願内容は参照により本明細書に組み込まれるものとする。
【００５２】
本発明の方法に従って増幅されるウイルスは野生型ウイルス、弱毒化ウイルス又は組換えウイルスでありうる。
【００５３】
「組換えウイルス」という用語は、ウイルスゲノム中に本来はそのウイルスゲノムの一部でない異種遺伝子が挿入されている任意のウイルスを指す。異種遺伝子は、治療遺伝子、免疫応答を誘導するためのエピトープを少なくとも１つは含んでいるペプチドをコードする遺伝子、アンチセンス発現カセット又はリボザイム遺伝子でありうる。組換えウイルスを構築する方法は当業者には知られている。最も好ましいポックスウイルスベクターはＭＶＡ、特にＭＶＡ  ５７５及びＭＶＡ−ＢＮである（上記参照）。
【００５４】
「弱毒化ウイルス」は、病原性ウイルスから派生したウイルスであるが、宿主生物が感染した時の死亡率及び（又は）罹病率が、非弱毒化親ウイルスよりも低いウイルスである。弱毒化ポックスウイルスの例は当業者には知られている。弱毒化ワクシニアウイルスの一例はＭＶＡ株、特にＥＣＡＣＣに受託番号Ｖ０００８３００８として寄託されている株である（上記参照）。
【００５５】
上述のように、ポックスウイルスの場合、初代細胞は、好ましくはＣＥＦ細胞又は初代アヒル胚線維芽細胞などの初代鳥類細胞とすることができる。ここでも、どの初代細胞がどのポックスウイルスの増幅に適しているかは当業者には知られている。ＣＥＦ細胞はＭＶＡの増幅には特に好ましい。ＣＥＦ細胞でＭＶＡを増幅する場合、ＥＧＦ及びフィブロネクチンから選択される因子を１つ又は２つ選択することが、好ましい態様である。
【００５６】
本発明の方法をＣＥＦ細胞におけるＭＶＡの増幅に用いる場合、培地の出発ｐＨは約７．０〜約８．５の範囲にあることが好ましい。７．０の出発ｐＨは特に好ましい。
【００５７】
さらに本発明は、上述の方法によって得られるウイルス、特にポックスウイルスに関する。好ましい一態様では、ポックスウイルスがワクシニアウイルスであり、最も好ましくはＭＶＡ−ＢＮなどのＭＶＡ株である。
【００５８】
さらに本発明は、本発明の方法によって産生されるウイルス、特にポックスウイルスを含んでいる組成物に関する。上述のように、ポックスウイルスは、好ましくはワクシニアウイルスであり、最も好ましくはＭＶＡ−ＢＮなどのＭＶＡ株である。上記のウイルス増幅方法が用いられるので、本組成物は、動物血清中に含まれる産生物及び（又は）感染因子を含有しない。これに対して、従来の方法で生産されたウイルスを含んでいる組成物は、動物血清に由来する残留化合物を含んでいる。ワクシニアウイルス株などのポックスウイルス、特にＭＶＡ−ＢＮなどのＭＶＡ株を含んでいる組成物の場合は、特にそうであるといえる。
【００５９】
さらに本発明は、医薬又はワクチンとしてのウイルス、特に上に定義したウイルスに関する。ウイルスが野生型ウイルス又は弱毒化ウイルスである場合は、そのウイルスそのものに対する予防接種のために、そのウイルスを使用することができる。この目的には、弱毒化ウイルスが特に好ましい。ウイルスがそのウイルスゲノムに対して異種である遺伝子から発現されるタンパク質を発現させる組換えウイルスである場合は、そのウイルスそのもの、及び（又は）発現した当該異種タンパク質に対する予防接種を行うことができる。組換えウイルスがアンチセンスＲＮＡやリボザイムなどの治療遺伝子を発現させる場合は、そのウイルスを医薬として使用することができる。
【００６０】
さらに本発明は、ワクチンを製造するための、上に定義したウイルス又は上に定義した組成物の使用に関する。
【００６１】
さらに本発明は、処置又は予防接種を必要とするヒトを含む動物にその処置又は予防接種を施す方法であって、上に定義したウイルス又は上に定義した組成物を、その動物又はヒトの身体に投与することを含む方法に関する。
【００６２】
別段の表示がない限り、以下の実施例では、無血清培地は１９９培地（Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）である。添加するＥＧＦは通常、Ｃｈｅｍｉｃｏｎから入手した組換えヒトＥＧＦである。フィブロネクチン（ＦＮ）はＣｈｅｍｉｃｏｎから入手した。
【実施例】
【００６３】
＜実施例１＞
ニワトリ胚線維芽細胞（ＣＥＦ）の調製
特定病原体除去（ＳＰＦ）受精卵の貯蔵期間は４℃で１２日を超えないようにした。卵を孵卵器に入れ、３７．８℃±８℃で１０〜１２日間インキュベートした。１０〜２０ｍｌのＰＢＳを使って、最大１１個の卵につき１枚のペトリ皿を用意した。卵を専用の鶏卵箱に入れ、卵殻の外側を滅菌するために、バシロール（Ｂａｃｉｌｌｏｌ）で十分に処理した。乾燥後、卵に孔を開けて、殻を注意深く取り除いた。漿尿膜を取りのけた。脚を持って胚を持ち上げてから、頭部を切り離した。次に、用意しておいたペトリ皿に胚を移した。脚を除去した後、胴体をＰＢＳで再び洗浄した。最大１１個の胴体を２０ｍｌのプラスチック製注射器に入れ、三角フラスコ中に絞り出した。胴体１つあたり５ｍｌの予熱（３７℃）したトリプシン／ＥＤＴＡ溶液を加え、磁気撹拌子を使ってその溶液を無血清培地と共に室温で１５分間撹拌した。トリプシン処理した細胞を１層の網を通してビーカーに注いだ。全ての細胞を１本の２２５ｍｌ遠心管に移し、卓上遠心機を使って２０℃、４７０×ｇで７分間遠心分離した。上清を捨てた後、１０ｎｇ／ｍｌのＥＧＦを含む予熱（３７℃）した新鮮無血清成長培地（胴体１つあたり１ｍｌ）に、上下に十分なピペット操作を行うことによりペレットを再懸濁した。１０ｎｇ／ｍｌ  ＥＧＦを含む予熱（３７℃）した新鮮無血清成長培地を加えて、総体積を１５０ｍｌにした。遠心分離工程を繰り返した。上清を取り除き、ペレットを上述のように再懸濁した。１０ｎｇ／ｍｌ  ＥＧＦを含む予熱（３７℃）した新鮮無血清成長培地を加えて総体積を１００ｍｌにした。以下の項で説明するように細胞数を数えた。１０ｎｇ／ｍｌ  ＥＧＦを含む無血清培地を使って、必要量の細胞をローラーボトルに播種し、３７℃でインキュベートした。播種後４日目に細胞はウイルス感染を行える状態になった。
【００６４】
＜実施例２＞
細胞密度の算出
細胞懸濁液（ＣＥＦ調製の項を参照）の試料を採取して、１体積のトリパンブルーと混合しすることにより、Ｆｕｃｈｓ−ＲｏｓｅｎｔｈａｌからＨｅｍｏｃｙｔｏｍｅｔｅｒ  Ｆａｓｔ  Ｒｅａｄ  １０２という名称で供給されている血球計算板の１６個の小区画あたりの最終細胞数を２０〜１００細胞にした（１：２〜１：１０希釈）。細胞の再凝集／沈降を防ぐために、細胞を再懸濁した直後に試料を採取した。色素が死細胞中に間違いなく入るように、トリパンブルーと共に数分間インキュベートした後、１０μｌの細胞懸濁液を血球計算板に加えた。１０倍対物レンズを使って光学顕微鏡下で白い生細胞だけを数えた。全体として３×１６個の小区画からなる３つの代表的大区画を計数した。各大区画からはＬ字状に２つの縁部だけを計数に含めた。計数した細胞の平均値を求め、次の式を使って最終細胞濃度を計算した：平均細胞数×希釈率×１０４＝細胞数／ｍｌ。最後に、細胞懸濁液を所望の作業濃度まで希釈した。
【００６５】
＜実施例３＞
成長因子及びフィブロネクチンから選択される因子を無血清培地に添加することがＣＥＦ単層の形成に及ぼす効果
予備実験として、本発明者らは、ＦＣＳを含まない１９９培地を使用した場合、ＣＥＦ細胞は細胞培養器の表面に付着しないことを明らかにした。また、単層も形成されない。７％ＦＣＳを含有する１９９培地を使用すると、正常な単層形成が観察される。添加物を培地に加えた場合に、無血清１９９培地におけるＣＥＦ細胞の付着及び成長を達成することができるかどうかを解析した。試験した添加物には、組換え上皮成長因子（ｒ−ｈＥＧＦ）及びフィブロネクチン（ＦＮ）が含まれる。
【００６６】
これらの実験では、種々の添加物を単独で又は組み合わせて含有する１９９培地でＣＥＦ細胞を成長させた。添加物を何も含まない１９９培地で成長させた細胞を陰性対照とした。７％ＦＣＳを含む１９９培地で培養した細胞を陽性対照とした。実験は全て、３ｍｌの培地を含む６穴細胞培養プレートで行った。添加物は供給者のデータシートに従って処理してから細胞培養に使用した。フィブロネクチンは使用前に細胞培養プレートの表面に２５分間吸着させた。フィブロネクチンは３μｇ／ｃｍ２の濃度で使用し、ＥＧＦは１０ｎｇ／ｍｌの濃度で使用した。細胞を加える前に、細胞培養プレートをフィブロネクチン含有培地に２５分間接触させた。
【００６７】
試験対象添加物を含む各培養培地を２つ一組にして培養した。６穴細胞培養プレートを３７℃で４日間インキュベートした。１日目から４日目まで、顕微鏡を使って細胞の付着と成長を評価した。
【００６８】
陽性対照の場合はＣＥＦ細胞の正常な付着と成長が観察された。添加物を含まない１９９培地の場合は、ＣＥＦ細胞の付着はほとんど観察できなかった。１９９培地に添加したＥＧＦの使用により、添加物を含まない１９９培地と比較して、単層の形成に決定的な改善が見られた。細胞は付着して典型的な線維芽細胞の形態を形成することがわかった。さらに、４日間の全期間にわたって継続的な成長を観察することができた。培養培地にフィブロネクチンを添加することにより、細胞付着の改善も達成された。ＥＧＦとフィブロネクチンを両方とも添加したところ、ＥＧＦだけ及びフィブロネクチンだけを添加した場合と比較して多少の改善が得られた。
【００６９】
要約すると、添加物ＥＧＦ及びフィブロネクチンの使用により、無血清１９９培地におけるＣＥＦ細胞の単層形成を補助することができると結論する必要がある。
【００７０】
さらに、並行実験として１×１０７個のＣＥＦ細胞を、１０％ＦＣＳを含む培地、ＦＣＳを含まない培地、及びＦＣＳは含まないがＥＧＦを含む培地に播種した。播種の２日後に細胞数を数えた。細胞数は、それぞれ播種に使用した細胞数の４２％、６％及び４４％になった。したがって、ＥＧＳを含む無血清培地に播種した細胞に関する結果は、ＦＣＳを含む培地で得られる結果と同程度に良好であり、血清もＥＧＦも含まない培地よりもかなり良好であった。さらに、ＥＧＦを含む培地を種々の標準的無血清培地、例えばＤＭＥＭ、Ｏｐｔｉ−Ｍｅｍ又は２９３−ＳＦＭなどと比較した。そのために１×１０７個のＣＥＦ細胞を種々の無血清培地に播種し、４日間培養した。ＥＧＦを含む培地で培養した細胞の数は、無血清ＤＭＥＭ、Ｏｐｔｉ．Ｍｅｍ及び２９３−ＳＦＭで培養した細胞の数より、それぞれ２４倍、５倍及び１２倍多かった。
【００７１】
＜実施例４＞
ＭＶＡによるＣＥＦ細胞の感染
ローラーボトルに播種して４日後にＣＥＦ細胞を感染させた。この時点で、細胞は適切な単層に成長していた。細胞をＭＯＩが１又は０．１のＭＶＡに感染させた。感染を行うためにフラスコから成長培地を除去した。ローラーボトル１本ごとに、望ましい量のウイルスを、血清を含まない適当な感染培地２０ｍｌで希釈した。この段階では無血清培地は成長因子及びフィブロネクチンから選択される因子を含んでもよいし、含まなくてもよい。細胞をウイルスと共にローラーボトル培養器中、０．３〜０．５ｒｐｍ、３７℃で１時間インキュベートした。１時間後にローラーボトルを適当な無血清成長培地で満たし、総体積をローラーボトル１本あたり２００ｍｌにした。この段階では無血清培地は成長因子及びフィブロネクチンから選択される因子を含んでもよいし、含まなくてもよい。４８時間後又は７２時間後にローラーボトルを−２０℃に凍結することにより、ウイルス複製を停止させた。
【００７２】
＜実施例５＞
感染ＣＥＦ細胞からのウイルス抽出物の調製及びＭＶＡの力価測定
凍結したローラーボトルを室温で融解した。融解工程中に細胞はローラーボトルの表面からはがれ、フラスコを振とうすることにより機械的に取り除くことができる。ウイルス／細胞懸濁液を採取し、小分けする。感染細胞からウイルスを放出させるために、ウイルス／細胞懸濁液を３回凍結／融解した。凍結／融解したウイルス試料を力価測定に使用した。
【００７３】
力価測定は、ウイルス懸濁液の１０倍希釈系列を使用し、各希釈率につき試料を８つずつ使って、９６穴プレート中の第１継代ＣＥＦ細胞で行った。感染後に抗ワクシニアウイルス抗体と適当な染色液とを使って感染細胞を可視化した。詳述すると、アッセイの０日目に、初代ＣＥＦ細胞（「ニワトリ胚線維芽細胞（ＣＥＦ）の調製」の項を参照されたい）をトリプシン処理し、「細胞密度の算出」の項で説明したように計数した。７％ＦＣＳを含むＲＰＭＩ培地で細胞を希釈して、１×１０５細胞／ｍｌにした。この希釈後に９６穴プレートの各ウェルに、マルチチャンネルピペットを使って１００μｌずつ播種した。細胞を３７℃及び５％ＣＯ２で終夜インキュベートした。力価測定の対象であるウイルス試料（「感染ＣＥＦ細胞からのウイルス抽出物の調製」の項を参照されたい）を、血清を含まないＲＰＭＩを使って、１０−１から１０−１２まで１０倍ずつ連続希釈した。この連続希釈は、深底９６穴プレートの全ウェルに９００μｌのＲＰＭＩを加えることによって行われる。１行目の全ウェルに１００μｌのウイルス試料を加えて混合した。その後、マルチチャンネルピペットを使って次の行のウェルに１００μｌの各試料を移した。希釈を行っている間は、深底９６穴プレートを氷上に置いた。プレートを３７℃及び５％ＣＯ２で５日間インキュベートして感染を進行させた。５日後にワクシニアウイルス特異抗体を使って細胞を免疫組織化学染色した。染色のために９６穴プレートを容器の上で上下逆さにすることによって培養培地を除去した。１００μｌ／ウェルのメタノール／アセトン（１：１）混合液を使って細胞を室温で１０分間固定した。固定液を除去し、プレートを風乾した。乾燥後、細胞をＰＢＳで１回洗浄し、抗ワクシニアウイルス抗体（３％ＦＣＳを含むＰＢＳで１：１０００に希釈した抗ワクシニアウイルス抗体・ウサギポリクローナル・ＩｇＧ画分（Ｑｕａｒｔｅｔｔ、ドイツ・ベルリン、＃９５０３−２０５７））と共に、室温で１時間インキュベートした。抗体を除去した後、細胞をＰＢＳで２回洗浄し、ＨＲＰ結合（セイヨウワサビペルオキシダーゼ結合）抗ウサギ抗体（３％ＦＣＳを含むＰＢＳで１：１０００に希釈した抗ウサギＩｇＧ抗体・ＨＲＰ結合・ヤギポリクローナル（Ｐｒｏｍｅｇａ、ドイツ・マンハイム、＃Ｗ４０１１））と共に、室温で１時間インキュベートした。再び細胞をＰＢＳで洗浄し、ｏ−ジアニシジン又はＴＭＢで染色した。ｏ−ジアニシジン染色法を用いる場合は、５０ｍＭリン酸クエン酸緩衝液６０ｍｌあたり５ｍｇのｏ−ジアニシジンと１８０μｌの３０％Ｈ２Ｏ２とからなる染色液１００μｌ／ウェルと共に、細胞をインキュベートした。細胞が褐色に染色されるまで細胞を室温でインキュベートした。１〜３時間後には感染細胞が明瞭に見えた。ＴＭＢ染色法を用いる場合は、細胞を３０μｌ／ウェルの１．２ｍＭ  ＴＭＢ（Ｓｅｒａｍｕｎ  Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃａ  ＧｍｂＨ）と共にインキュベートした。１５分のインキュベーション時間後に、ＴＭＢ溶液を除去し、細胞をＰＢＳで１回洗浄した。感染細胞は暗青色に見える。プレートを感染細胞について採点した。ウイルス力価はスピアマン（Ｓｐｅａｒｍａｎ）とケルバー（Ｋａｅｒｂｅｒ）の式を使って計算した。ＴＣＩＤ５０を計算するために褐色細胞又は青色細胞を示す各ウェルを陽性と記録した。アッセイパラメータは一定に保たれるので、以下の簡略化した式を使用した。
【００７４】
ウイルス力価［ＴＣＩＤ５０／ｍｌ］＝１０［ａ＋１．５＋ｘａ／８＋ｘｂ／８＋ｘｃ／８］
ａ＝８つのウェルの全てが陽性である最後の列の希釈率
ｘａ＝ａ＋１列目の陽性ウェル数
ｘｂ＝ａ＋２列目の陽性ウェル数
ｘｃ＝ａ＋３列目の陽性ウェル数。
【００７５】
＜実施例６＞
無血清培地におけるＣＥＦ細胞の最適播種密度及びＣＥＦ細胞の感染に関するＭＶＡの最適量
無血清ＣＥＦ成長に関して、最適播種細胞密度は７．５×１０７細胞／８５０ｃｍ２（ローラーフラスコ１本の表面）であると決定された。細胞は播種後４日目には大きな塊を形成せずに良好な単層を形成することでき、この時点で感染させることができた。
【００７６】
無血清法で培養したＣＥＦ細胞からのＭＶＡ産生量を最大にするのに最適なウイルス接種レベルと感染時間とを決定するための実験を行った。本発明の培地にＣＥＦ細胞を７．５×１０７細胞／８５０ｃｍ２の密度で播種した。播種後４日目に細胞を０．０５〜１．０  ＴＣＩＤ５０／細胞の範囲にある様々なＭＶＡ量に感染させた。最適な結果は０．１  ＴＣＩＤ５０／細胞のＭＶＡで得られた。
【００７７】
＜実施例７＞
培養及びＭＶＡ感染に関する無血清培地の至適ｐＨ
ＭＶＡ感染及び他のポックスウイルス感染は７．０未満のｐＨに弱い。ポックスウイルスは酸性ｐＨでは安定でなく、液体ウイルス製剤として貯蔵する際の安定性及びウイルス完全性を確保するために、精製ポックスウイルスはｐＨ７．０より高い緩衝溶液中に保存することが推奨される。様々な出発ｐＨで感染を行った場合のウイルス収量に対する影響を決定するために実験を行った。ローラーボトルに１０ｎｇ／ｍｌ  ＥＧＦ＋４ｍＭ  Ｌ−グルタミンを含む無血清培地中のＣＥＦ細胞を通常の方法で播種し、４日間培養した。１０ｎｇ／ｍｌ  ＥＧＦ＋Ｌ−グルタミンと１ｍＭアスパラギンとを含む無血清培地中、６．５〜９．０の様々なｐＨで、細胞を０．１  ＴＣＩＤ５０／細胞のＭＶＡに感染させた。感染７２時間後に培地のｐＨを測定し、細胞抽出物を通常の方法で力価測定することによりウイルス収量を決定した。その結果を以下の表に記載する。この表は感染開始時の培地の初期ｐＨがウイルス収量に及ぼす影響を表している。
【００７８】
【表１】
2010148522.tif 000002
【００７９】
Ｌ−グルタミン及びアスパラギンを補充した１０ｎｇ／ｍｌ  ＥＧＦを含む無血清培地で感染を行った場合、７．０〜８．５の出発ｐＨではウイルス産生量は比較的一定していたが、出発ｐＨが６．５及び９．０の場合はウイルス産生量が低かった。最もよい収量は出発ｐＨ７．０で得られた。市販されている標準的な無血清培地は、通常、７．４のｐＨを持つ。したがって、無血清培地のｐＨを７．０に調節することによりウイルス収量の改善を助長することができる。
【００８０】
＜実施例８＞
無血清培地に添加したアスパラギンの効果
ＣＥＦ細胞の培養時及びＭＶＡによるＣＥＦ細胞の感染時にはアスパラギンの量が制限因子になりうることが予備実験によって明らかになった。培養工程及び感染工程における無血清培地中のアスパラギンの枯渇を克服するために、ＣＥＦ細胞を感染させる前に補助添加物としてアスパラギンを培地に追加した。培地に補充するアスパラギンの最適量を決定するために、ローラーボトルに１０ｎｇ／ｍｌ  ＥＧＦ＋４ｍＭ  Ｌ−グルタミンを含む無血清培地中のＣＥＦ細胞（７．５×１０７細胞／８５０ｃｍ２）を播種した。播種の４日後に、様々なアスパラギン濃度（０．５、１．０及び１．５ｍＭ）を補充した１０ｎｇ／ｍｌ  ＥＧＦ＋４ｍＭ  Ｌ−グルタミンを含む無血清培地中で、０．１  ＴＣＩＤ５０／細胞のＭＶＡに細胞を感染させた。感染７２時間後にウイルス複製を停止させ、ウイルス力価を決定した。その結果を以下の表に示す。この表は、感染段階で様々なレベルのアスパラギンを補充したＣＥＦ細胞からのＭＶＡの産生量を示している。力価は１種類のアスパラギン補充につき３本のローラーボトルの平均を表す。
【００８１】
【表２】
2010148522.tif 000003
【００８２】
これらの結果は、１０ｎｇ／ｍｌ  ＥＧＦを含む無血清培地にアスパラギンを補充するとウイルス産生量が向上しうるということと、感染工程には１ｍＭの補充が最適であることを証明している。
【手続補正書】
【提出日】平成22年3月17日(2010.3.17)
【手続補正１】
【補正対象書類名】特許請求の範囲
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
次の工程：
・成長因子を含む無血清培地でＣＥＦ細胞を培養する工程、
・前記ＣＥＦ細胞にポックスウイルスを感染させる工程、及び
・子孫ポックスウイルスが産生されるまで無血清培地で感染細胞を培養する工程、
を含み、
この際、前記ＣＥＦ細胞が前記ポックスウイルスの増殖的複製を可能にする細胞であることを特徴とする、ポックスウイルスを増幅させる方法。
【請求項２】
成長因子が上皮成長因子（ＥＧＦ）である、請求項１記載の方法。
【請求項３】
上皮成長因子（ＥＧＦ）が組換えヒトＥＧＦである、請求項２記載の方法。  
【請求項４】
ＥＧＦの濃度が５〜２０ｎｇ／ｍｌ培地の範囲にある、請求項２又は３記載の方法。
【請求項５】
培地が２種以上の成長因子を含む、請求項１記載の方法。
【請求項６】
培地が微生物抽出物、植物抽出物及び非哺乳類動物からの抽出物から選択される１種以上の添加物をさらに含む、請求項１〜５のいずれか１つに記載の方法。
【請求項７】
微生物抽出物が酵母抽出物又はイーストレート限外濾過液である、請求項６記載の方法。
【請求項８】
植物抽出物がイネ抽出物又はダイズ抽出物である、請求項６記載の方法。
【請求項９】
非哺乳類動物からの抽出物が魚抽出物である、請求項６記載の方法。
【請求項１０】
ポックスウイルスがオルトポックスウイルスである、請求項１〜９のいずれか１つに記載の方法。
【請求項１１】
オルトポックスウイルスがワクシニアウイルスである、請求項１０記載の方法。
【請求項１２】
ワクシニアウイルスが変異ワクシニアウイルスアンカラ（Ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｖａｃｃｉｎｉａ  ｖｉｒｕｓ  Ａｎｋａｒａ）である、請求項１１記載の方法。
【請求項１３】
ポックスウイルスが弱毒化ウイルス又は組換えウイルスである、請求項１０〜１２のいずれか１つに記載の方法。
【請求項１４】
ＣＥＦ細胞にポックスウイルスを感染させる工程と、
子孫ポックスウイルスが産生されるまで無血清培地で感染細胞を培養する工程と、
の一方又は両方で使用される無血清培地が成長因子を含有しない、請求項１〜１３のいずれか１つに記載の方法。
【請求項１５】
無血清培地でＣＥＦ細胞を培養する工程、
ＣＥＦ細胞にポックスウイルスを感染させる工程、及び
子孫ポックスウイルスが産生されるまで無血清培地で感染細胞を培養する工程、
で使用される無血清培地が成長因子を含む、請求項１〜１３のいずれか１つに記載の方法。
【請求項１６】
子孫ポックスウイルスが産生されるまで無血清培地で感染細胞を培養する工程後に、１つ以上の精製工程を設ける、請求項１〜１５のいずれか１つに記載の方法。
【請求項１７】
請求項１〜１６のいずれか１つに記載の方法によって産生されるポックスウイルスを含む組成物。
【請求項１８】
動物血清に含まれる産生物及び／又は感染因子を含有しない、請求項１７記載の組成物。
【請求項１９】
医薬又はワクチンとしての請求項１７又は１８記載の組成物。
【請求項２０】
ワクチンを製造するための、請求項１７又は１８記載の組成物の使用。
【請求項２１】
ヒトを含む動物の処置用又は予防接種用薬剤を製造するための、請求項１７又は１８記載の組成物の使用。
【外国語明細書】
2010148522000001.pdf