(57)【要約】      （修正有）【課題】大腸菌細胞から標的タンパク質を抽出する方法の提供。【解決手段】大腸菌全細胞を含む溶液のｐＨを低下させて酸性細胞溶液を形成し、細胞を破壊して酸性溶液中にタンパク質を放出させ、放出されたタンパク質から細胞片を遠心分離して異種標的タンパク質に富んだタンパク質産物を得る。細胞の破壊にはポリエチレンイミン（ＰＥＩ）溶解促進剤と２価カチオンを添加すると共に、流動層クロマトグラフィーを用いた精製を行う。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
大腸菌細胞から標的タンパク質を抽出する方法において、
ａ）異種標的タンパク質を発現する大腸菌全細胞を含む溶液のｐＨを低下させて酸性細胞溶液を形成し、
ｂ）細胞を破壊して酸性溶液中にタンパク質を放出させ、
ｃ）放出されたタンパク質から細胞片を分離して異種標的タンパク質に富んだタンパク質産物を得る方法。
【請求項２】
ｐＨを、約４．０〜約５．０のｐＨまで低下させる、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
ｐＨを、約４．０〜約４．５のｐＨまで低下させる、請求項２に記載の方法。
【請求項４】
ｐＨを４．０以下まで低下させる、請求項１に記載の方法。
【請求項５】
上記分離が遠心分離である、請求項１に記載の方法。
【請求項６】
タンパク質産物から異種標的タンパク質を精製することを更に含む、請求項５に記載の方法。
【請求項７】
上記精製がカラムクロマトグラフィーを含む、請求項６に記載の方法。
【請求項８】
上記カラムクロマトグラフィーが流動層クロマトグラフィーである、請求項７に記載の方法。
【請求項９】
大腸菌細胞溶液に少なくとも一の溶解促進剤を添加することを更に含む、請求項１に記載の方法。
【請求項１０】
上記少なくとも一の溶解促進剤が、上記ｐＨの低下の前に溶液に添加される、請求項９に記載の方法。
【請求項１１】
上記少なくとも一の溶解促進剤が、上記ｐＨの低下の前に又はそれと同時に溶液に添加される、請求項９に記載の方法。
【請求項１２】
少なくとも一の溶解促進剤が二価カチオンを含む、請求項９に記載の方法。
【請求項１３】
二価カチオンがマグネシウム又はカルシウムである、請求項１２に記載の方法。
【請求項１４】
少なくとも一の溶解促進剤がポリエチレンイミン（ＰＥＩ）である、請求項９に記載の方法。
【請求項１５】
少なくとも一の溶解促進剤が二価カチオンとＰＥＩを含有する、請求項９に記載の方法。
【請求項１６】
二価カチオンが約１０ｍＭから約１５０ｍＭの濃度で添加される、請求項１２に記載の方法。
【請求項１７】
ＰＥＩが５０ｗ／ｖ％溶液の約０．２から約０．３ｖ／ｖ％の濃度で添加される、請求項１４に記載の方法。
【請求項１８】
上記分離が流動層クロマトグラフィーを含む、請求項７に記載の方法。
【請求項１９】
破壊された大腸菌細胞の溶液の、バイオマス−バイオマス相互作用、バイオマス−樹脂相互作用、又はその組み合わせを低減させる方法であって、
ａ）異種標的タンパク質を発現する大腸菌全細胞を含む溶液のｐＨを低下させて酸性細胞溶液を形成し、
ｂ）細胞を破壊して酸性溶液中にタンパク質を放出させることを含み、破壊された細胞溶液の、バイオマス−バイオマス相互作用、バイオマス−樹脂相互作用、又はその組み合わせを、非酸性ｐＨで破壊された細胞溶液と比較して低減させる方法。
【請求項２０】
ｐＨを、約４．０〜５．０まで低下させる、請求項１９に記載の方法。
【請求項２１】
ｐＨを、約４．０〜４．５まで低下させる、請求項２０に記載の方法。
【請求項２２】
ｐＨを、４．０以下まで低下させる、請求項２１に記載の方法。
【請求項２３】
大腸菌細胞溶液に少なくとも一の溶解促進剤を添加することを更に含む、請求項１９に記載の方法。
【請求項２４】
少なくとも一の溶解促進剤が二価カチオンを含む、請求項２３に記載の方法。
【請求項２５】
二価カチオンがマグネシウム又はカルシウムである、請求項２４に記載の方法。
【請求項２６】
少なくとも一の溶解促進剤がＰＥＩである、請求項２３に記載の方法。
【請求項２７】
少なくとも一の溶解促進剤が二価カチオンとＰＥＩを含有する、請求項２３に記載の方法。
【請求項２８】
二価カチオンが約１０ｍＭから約１５０ｍＭの濃度で添加される、請求項２４に記載の方法。
【請求項２９】
ＰＥＩが５０ｗ／ｖ％溶液の約０．２から約０．３ｖ／ｖ％の濃度で添加される、請求項２６に記載の方法。
【請求項３０】
破壊された大腸菌細胞の溶液中のフロキュレントを改変する方法であって、
ａ）異種標的タンパク質を発現する大腸菌全細胞を含む溶液のｐＨを低下させて酸性細胞溶液を形成し、
ｂ）細胞を破壊して酸性溶液中にタンパク質を放出させることを含み、放出されたタンパク質溶液中のフロキュレントの含水量が、非酸性溶液の場合と比較して酸性溶液で細胞が破壊された場合により大である方法。
【請求項３１】
ｐＨを、約４．０〜５．０まで低下させる、請求項３０に記載の方法。
【請求項３２】
ｐＨを、約４．０〜４．５まで低下させる、請求項３１に記載の方法。
【請求項３３】
ｐＨを、４．０以下まで低下させる、請求項３２に記載の方法。
【請求項３４】
大腸菌細胞溶液に少なくとも一の溶解促進剤を添加することを更に含む、請求項３０に記載の方法。
【請求項３５】
少なくとも一の溶解促進剤が二価カチオンを含む、請求項３４に記載の方法。
【請求項３６】
少なくとも一の二価カチオンがマグネシウム又はカルシウムである、請求項３５に記載の方法。
【請求項３７】
少なくとも一の溶解促進剤がＰＥＩである、請求項３４に記載の方法。
【請求項３８】
少なくとも一の溶解促進剤が二価カチオンとＰＥＩを含有する、請求項３４に記載の方法。
【請求項３９】
二価カチオンが約１０ｍＭから約１５０ｍＭの濃度で添加される、請求項３５に記載の方法。
【請求項４０】
ＰＥＩが５０ｗ／ｖ％溶液の約０．２から約０．３ｖ／ｖ％の濃度で添加される、請求項３７に記載の方法。
【請求項４１】
請求項１に記載の方法によって産生されたタンパク質産物。
【請求項４２】
請求項１９に記載の方法によって産生されたタンパク質産物。
【請求項４３】
請求項３０に記載の方法によって産生されたタンパク質産物。
【発明の詳細な説明】
【発明の開示】
【０００１】
この出願は、２００２年９月６日に出願された米国仮出願第６０／４０８６５３号に基づく優先権を主張し、米国を除く全ての国を指定して２００３年９月５日に、米国国籍の企業であるジェネンテック・インク名義のＰＣＴ国際特許出願として出願されたものである。
【０００２】
発明の背景
製薬用又は診断用タンパク質産物を製造するための生物工学的方法は、様々な供給源から対象の産物を得るために抽出及び精製工程を一般に用いる。タンパク質の供給源は、細菌、酵母、及び哺乳動物細胞培養液、及び天然に生じる組織の抽出物を例えば含みうる。
【０００３】
一般に、抽出及び精製工程は数多くあり、様々な技術を必要とする。製造される産物のタイプ、その意図される用途及び他の因子が、どの工程が最も適切であるか、どの程度の精製が有利か、どのようにして精製を達成できるかに影響を与える。一般に、所望される産物純度が高くなればなるほど、その方法で利用される工程は多くなる。
【０００４】
標準的なタンパク質精製プロトコルは、一般に細胞の破壊で始まり、標的タンパク質から細胞及び／又は組織片を除去する清澄化工程を含む。溶液を清澄化する一つの一般的な方法は遠心分離による。遠心分離工程の効率は粒子サイズ、粒子と廻りの液の密度差、原料の粘度等々に依存する。大腸菌のような小細胞から得られた液では、小さい粒子サイズと高い粘度が遠心分離における供給能力を低減させ、清澄化プロセスを妨げうる。よって、遠心分離工程に精密濾過を組み合わせることがしばしば推奨されている。精密濾過は遭遇する問題の幾つかを多少とも解決するが、精密濾過膜の汚れが更なる問題となりうる。
【０００５】
タンパク質精製プロセスにおけるそれぞれの付加工程は精製コストと全体の収量の双方に影響を及ぼす。従って、製造者等は最も経済的な形で所望の製品純度を得ることを求めている。製造コストを低減する一つの方法は精製プロセスにおける工程数を減少させることである。あるいは、既存プロセスの工程を改変又は向上させて各工程におけるタンパク質の損失を減少させることができる。
【０００６】
プロセスの工程を削減することによって収量を増加させる一つの方法は流動層クロマトグラフィー(expanded bed chromatography)（「ＥＢＣ」）である。ＥＢＣは安定な流動床で吸収剤を利用する技術である。細胞片及び／又は組織片を含む液からタンパク質を精製するためにＥＢＣが使用される場合は、前段階の遠心分離は不要である。ＥＢＣの使用によりプロセス工程が削減されるが、製品ロスとプロセシング上の不具合の双方がＥＢＣでは生じうる。ＥＢＣ装置はフリットを含むカラム中に吸着剤を維持し、カラムに充填された液中の細胞片により汚染される恐れがある。フリットの汚染は製品の収量を減少させ、極端な場合にはプロセスを使用できないものにする場合がある。
従って、低コストでより高純度のタンパク質の精製を行うことができるプロセスと方法に対する必要性が残っている。
【０００７】
発明の概要
本発明は、大腸菌細胞からタンパク質を抽出する方法において、異種標的タンパク質を発現する大腸菌全細胞又は破壊細胞を含む溶液のｐＨを低下させて、酸性細胞溶液を形成し、放出されたタンパク質から細胞片を分離して異種標的タンパク質に富んだタンパク質産物を得る方法を提供する。
また、本発明は、大腸菌細胞からタンパク質を抽出する方法において、異種標的タンパク質を発現する大腸菌全細胞を含む溶液のｐＨを低下させて酸性溶液を形成し、細胞を破壊して酸性溶液中にタンパク質を放出させ、放出されたタンパク質から細胞片を分離して異種標的タンパク質に富んだタンパク質産物を得る方法を提供する。
【０００８】
本発明は異種標的タンパク質を発現する大腸菌全細胞又は破壊細胞の溶液に少なくとも一の溶解促進剤を添加することを更に含む上述の方法をまた提供する。
本発明は、破壊された大腸菌細胞の溶液の、バイオマス−バイオマス相互作用、バイオマス−樹脂相互作用、又はその組み合わせを低減させる方法であって、異種標的タンパク質を発現する大腸菌全細胞を含む溶液のｐＨを低下させて酸性細胞溶液を形成し、細胞を破壊して酸性溶液中にタンパク質を放出させることを含み、破壊された細胞溶液の、バイオマス−バイオマス相互作用、バイオマス−樹脂相互作用、又はその組み合わせを、細胞破壊後にｐＨが低下した細胞の非酸性溶液と比較して低減させる方法をまた提供する。
【０００９】
本発明は、破壊された大腸菌細胞の溶液中の、フロキュレント（綿状沈殿物）を改変する方法であって、異種標的タンパク質を発現する大腸菌全細胞を含む溶液のｐＨを低下させて酸性細胞溶液を形成し、細胞を破壊して酸性溶液中にタンパク質を放出させることを含み、放出されたタンパク質溶液中のフロキュレントの含水量が、細胞破壊後にｐＨが低下している非酸性溶液の場合と比較して酸性溶液で細胞が破壊された場合により大である方法をまた提供する。
本発明は、破壊された大腸菌細胞の溶液の粘度を低下させる方法であって、異種標的タンパク質を発現する大腸菌全細胞を含む溶液のｐＨを低下させて酸性細胞溶液を形成し、細胞を破壊して酸性溶液中にタンパク質を放出させることを含み、破壊された細胞溶液の粘度が、細胞破壊後にｐＨが低下している非酸性溶液の場合と比較して低減される方法をまた提供する。
【００１０】
発明の詳細な記載
ここで使用される場合、「約」という用語は、明示的に示されているか否かにかかわらず、あらゆる数値に適用される。「約」という用語は一般に記載値に均等である（すなわち同じ機能又は結果を有する）と考える数値範囲を意味する。多くの場合、「約」という用語は最も近い有効数字に四捨五入される数を含みうる。
【００１１】
本発明の方法は、一般に、大腸菌細胞からの異種標的タンパク質の抽出に関する。ここで使用される場合、「異種標的タンパク質」という用語は、宿主細胞、組織又は種により通常は発現されない組換えタンパク質を意味する。異種タンパク質の例には、限定はされないが、大腸菌中で産生されるＡｐｏ２Ｌ／Ｔｒａｉｌ、Ｆａｂ ＶＥＧＦ、及び抗組織因子抗体が含まれる。異種標的タンパク質を抽出する方法により、異種標的タンパク質に富んでいるが他の成分もまた含みうるタンパク質産物が得られることが一般に理解される。そのような他の成分の例には、限定されるものではないが、例えば宿主細胞又は組織、細胞片、及び細胞ブロスにより正常に発現されるタンパク質が含まれる。
【００１２】
ここで使用される場合、「バイオマス」という用語は少なくとも細胞片を意味する。
「バイオマス−バイオマス相互作用」は、一般に、凝集に至りうる細胞片間の相互作用を意味する。「バイオマス−樹脂相互作用」は、一般に、細胞片をカラムに付着させ得、カラムの汚染に最終的に寄与しうるＥＢＣカラム樹脂と細胞片の間の相互作用を意味する。
ここで使用される場合、「細胞を破壊する」という語句は、細胞を含む溶液に細胞の内容物を放出するあらゆるプロセスを意味する。「細胞を破壊する」方法の例には、限定されるものではないが、ホモジナイゼーション、リゾチーム、超音波処理、凍結融解、フレンチプレス、及び他の化学的、機械的又は物理的細胞破壊方法が含まれる。「細胞を破壊する」プロセス工程は、一又は複数の工程、例えば４パスのホモジナイゼーション法を用いる複数工程で達成できる。
【００１３】
ここで使用される場合、「放出されたタンパク質から細胞片を分離する」工程は様々な既知の技術によって達成することができる。そのような技術の例には、限定されるものではないが、例えば遠心分離、精密濾過、充填床クロマトグラフィー(「ＰＢＣ」)、流動層クロマトグラフィー(「ＥＢＣ」)、又は他のタイプのカラムクロマトグラフィーが含まれる。「放出されたタンパク質から細胞片を分離する」工程は全ての細胞片を完全に分離することは必要としない。
遠心分離は放出されたタンパク質から細胞片を分離するために使用することができる。任意の遠心分離プロセスを用いることができる。遠心分離の特定のパラメーターは、異種標的タンパク質の性質（例えばアミノ酸及び電荷）及び異種標的タンパク質を発現する宿主細胞又は組織の性質のような因子に少なくとも部分的に依存するであろう。使用できる遠心分離プロセスの一例は連続ディスクスタック遠心機である。
【００１４】
ＥＢＣを放出されたタンパク質から細胞片を分離するために使用することができる。ＥＢＣは、清澄化、初期精製又は濃縮を必要とすることなく粗粒子含有液から所望のタンパク質が精製される単一パス操作である。必要ではないが、ＥＢＣは、前清澄化、精製又は濃縮工程、例えば遠心分離、精密濾過等と共に利用できる。
【００１５】
ＥＢＣは、粒子の沈殿速度と上方流液体速度のバランスによって引き起こされる平衡中に懸濁される吸着剤床を使用する。吸着剤は床中に拡大し、細胞、細胞片、及び溶液中に存在しうる他の粒状物質の比較的妨害のない通過を可能にする吸着剤粒子間の距離（この距離はクロマトグラフィー技術で使用される用語では空隙容量に相当する）をつくり出す。
ＥＢＣを使用して細胞片から放出されたタンパク質を分離するためにＥＢＣを使用する特定の方法及びプロトコルが一般に知られている。例えば「Expanded Bed Adsorption, Principles and Methods」AB(18-1124-26)編, アマシャム・ファルマシア・バイオテック出版を参照のこと。有用なプロトコルの特定のパラメーターは、分離される異種標的タンパク質、それが分離される宿主細胞又は組織、及び他のそのような因子の性質に少なくとも部分的に依存する。
【００１６】
本発明の方法は、異種標的タンパク質を発現する大腸菌全細胞を含む溶液のｐＨを低下させて酸性細胞溶液を形成する工程を含む。ここで使用される場合、「大腸菌全細胞」とは破壊されなかった大腸菌細胞を意味する。ここで使用される場合、「酸性」とは７．０未満のｐＨを持つことを意味する。「非酸性」という用語は７．０以上のｐＨを有することを意味する。
本発明の方法において、全細胞溶液のｐＨは、約４．０〜５．０のｐＨ、より好ましくは約４．０〜４．５まで好ましくは低下させられる。あるいは、ｐＨは、４．０以下まで低下させることができ、例えば異種標的タンパク質の性質に依存して、約２．０まですら低下させることができる。
【００１７】
溶液のｐＨの低下は一般に酸を添加することによって達成される。任意の酸を使用することができる。低下したｐＨで緩衝能を持つ酸、例えばクエン酸、酢酸等々が好ましい。一般に、酸は約５０から１００ｍＭの濃度で添加されるが、より高い又は低い濃度もまた使用できる。
驚いたことに、細胞が破壊される前に全細胞溶液のｐＨを低下させて酸性溶液を生成すると、特定のプロセス及び製品利点が得られることが発見された。例えば、細胞破壊前にｐＨを低下させると、粘度、凝集、流量、プロセス系、及びプロセス時間を改善することができる。細胞破壊前にｐＨを低下させると、異種標的タンパク質の収量と品質をまた改善することができる。
【００１８】
一般に、ｐＨを低下させる利点は、ｐＨが７より減少するにつれて増大する。細胞破壊の前にｐＨを低下させることはまた異種タンパク質を含むタンパク質産物の純度を増大させるのに役立ちうる。信頼できるものではないが、全細胞溶液のｐＨを低下させることは、細胞が破壊されたあとに溶液から細胞片及び全細胞汚染物を除去することによってタンパク質産物の純度を向上させるのに役立つと思われる。ｐＨが酸性ｐＨまで低下させられると、異種標的タンパク質の純度は一般に増大する。更に、ｐＨがｐＨ５から４まで低下すると、標的タンパク質の純度は、例えばｐＨ６から５への降下に関連してより実質的な増大を示す。
【００１９】
本発明の方法は、場合によっては、また好ましくは、全細胞溶液か、又は酸性全細胞溶液、又は破壊された細胞溶液に少なくとも一種の溶解促進剤を添加することを含む。好ましくは、少なくとも一種の溶解促進剤は、ｐＨの低下の前、又はそれと同時に、より好ましくは前に、全細胞溶液に添加される。
一般に、溶解促進剤は異種標的タンパク質の溶解度を向上させるのに有効な量が添加され、異種標的タンパク質及びホモジネート又は全細胞溶液の性質に少なくとも部分的に依存しうる。一般に、溶解促進剤の量を増加させると、異種標的タンパク質の溶解度が増加する。
【００２０】
溶解促進剤は、好ましくは、マグネシウム（Ｍｇ＋２）、カルシウム（Ｃａ＋２）等のような二価カチオンを含む分子である。本発明の方法に使用される好適な溶解促進剤には、限定されるものではないが、硫酸マグネシウム（ＭｇＳＯ４）、塩化マグネシウム（ＭｇＣｌ２）、硫酸カルシウム（ＣａＳＯ４）、及び塩化カルシウム（ＣａＣｌ２）が含まれる。
溶解促進剤は一般に水性形態で、約１０ｍＭから約１５０ｍＭ、好ましくは約３０ｍＭから約１２０ｍＭの最終濃度となる量が添加される。
【００２１】
ポリエチレンイミン（「ＰＥＩ」）はまた本発明の方法において溶解促進剤として機能しうる。一般に、ＰＥＩは水性形態で、５０ｗ／ｖ％溶液の約０．１から約０．５ｖ／ｖ％、好ましくは約０．２％から約０．３％の最終濃度となる量が添加される。
少なくとも一種の溶解促進剤は単独で又は組み合わせて使用することができ、任意の工程でプロセスに添加することができるが、好ましくは細胞破壊前に添加される。
【００２２】
本発明は、破壊された大腸菌細胞の溶液における、バイオマス−バイオマス相互作用、バイオマス−樹脂相互作用、又はその組み合わせを低減させる方法であって、異種標的タンパク質を発現する大腸菌全細胞を含む溶液のｐＨを低下させて酸性細胞溶液を形成し、細胞を破壊してタンパク質を放出させ、破壊された細胞溶液の、バイオマス−バイオマス相互作用、バイオマス−樹脂相互作用、又はその組み合わせを、細胞破壊後にｐＨが低下した細胞の非酸性溶液と比較して低減させる方法をまた提供する。
溶液のバイオマス−バイオマス相互作用、バイオマス−樹脂相互作用、又はその組み合わせのレベルはまた例えばＥＢＣ、ＰＢＣ、遠心分離又は精密濾過のような溶液が受けるプロセスに対するその効果に基づいてモニターすることができる。これらの効果には、限定されるものではないが、細胞片の凝集（ホモジネート又はバイオマス又はフロキュレーションの形成とも呼ばれる）、カラムを通過する流量、フリットの汚れ、連続ディスクスタック遠心機の汚染、ＥＢＣカラムでの背圧、又はカラム入口スクリーンの汚れ等々が含まれる。
【００２３】
また、本発明は、破壊された大腸菌細胞の溶液の粘度を低下させる方法であって、異種標的タンパク質を発現する大腸菌全細胞を含む溶液のｐＨを低下させて酸性溶液を形成し、細胞を破壊して酸性溶液中にタンパク質を放出させ、破壊された細胞溶液の粘度が、細胞破壊後にｐＨが低下している非酸性溶液の場合と比較して低減される方法をまた提供する。
粘度は、この明細書を読んだ当業者に知られている任意の方法によって測定することができる。粘度を測定するための装置の例には、限定されるものではないが、Ｅｎｇｌｅｒ、Ｓａｙｂｏｌｔ、及び  Ｒｅｄｗｏｏｄ粘度計が含まれる。例示的粘度計の全てが、標準径のオリフィスを通る試験液の流量又は液体カラムを通過する金属球の流量によって速度を示す。他のタイプの粘度計は試験液中に浸漬した回転スピンドル又は羽根の速度を利用する。粘度計の他の例示的なタイプにはＢｒｏｏｋｆｉｅｌｄ及びＫｒｅｂｓ-Ｓｔｏｒｍｅｒ装置が含まれる。
【００２４】
また、本発明は、破壊された大腸菌細胞の溶液中のフロキュレント（綿状沈殿物）を改変する方法であって、異種標的タンパク質を発現する大腸菌全細胞を含む溶液のｐＨを低下させて酸性溶液を形成し、細胞を破壊してタンパク質を放出させることを含み、放出されたタンパク質溶液中のフロキュレントの含水量が、細胞破壊後にｐＨが低下している非酸性溶液の場合と比較して酸性溶液で細胞が破壊された場合により大である方法をまた提供する。
ここで使用される場合、「フロキュレントを改変する」という語句は、含水量を増加させ、フロキュラントの凝集の傾向を低減させる等の変化を含む。
ホモジネート中のフロキュレントをモニターする他の方法は、連続ディスクスタック遠心機の汚れをモニターすることである。一実施態様では、これは濁度を測定することによって測定することができる。濁度はＮＴＵ(National Turbidity Units)で測定することができる。
【実施例】
【００２５】
次の実施例は例証のために提供するもので発明を限定することを意図するものではない。
実施例１
破壊前の大腸菌細胞の条件付けがタンパク質フロキュレーションを改変する
抗ＶＥＧＦ抗体断片(Rhufab V2, Chen等, 1999 J. Mol. Biol. 293: 865-881)を発現する導入遺伝子を含む大腸菌細胞を、６０ｍＭのクエン酸の添加により細胞溶液のｐＨをｐＨ４．０まで低下させることによりホモジナイゼーション前に前条件付けを行った。溶解促進剤のＭｇＳＯ４をまた約１２０ｍＭの濃度になるまで細胞溶液に添加した。８０００ｐｓｉｇ、２〜８℃でモデルＨＣ-８０００／３Ａホモジナイザー(Microfluidics Corp., Newton, MA)を用いた４回のホモジナイゼーションによって細胞を破壊した。ホモジナイゼーション後、５容量の水をホモジネートに添加し、２５ｍｌ／分(３００ｃｍ／ｈｒ)の流量で、ホモジネートをＥＢＣ入口スクリーン(多層式ＳＳ３１６Ｌ、１００ｐｍ、１．８ｍｍ厚、２．５ｃｍ直径)(G. Bopp & Co., Zurich, Switzerland)に通過させた。
【００２６】
同様にして、コントロール細胞を４回のホモジナイゼーションにより破壊したが、ｐＨ４．０でＭｇＳＯ４を添加しないホモジナイゼーション後条件付けを施した。ＭｇＳＯ４（１２０ｍＭ）と２容量の水と共に酸をホモジナイズした細胞に添加した。得られた物質を遠心分離してペレット状の不溶性物質を得た。コントロール上清を上述したＥＢＣ入口スクリーンにかけた。図１及び２及び以下の表に示された結果は、ｐＨ４．０でＭｇＳＯ４の存在下での大腸菌細胞の前条件付けでバイオマス−バイオマス相互作用を低減させたことを実証している。この減少は、後条件付けホモジネートの１１ｐｓｉｇに対する前条件付けホモジネートの０ｐｓｉｇとの背圧差に見られるように、タンパク質液のフロキュレーションの減少によって裏付けられる（表１並びに図１参照）。図１はホモジナイゼーション前条件付けとホモジナイゼーション後条件付けに対する時間の関数としての圧を証明している。
2010111700.tif 000002
図２は、後条件付けコントロールに見出されるフロキュレーション物質が前条件付け試料のスクリーンにはないことを証明している。これらの結果は、細胞破壊前にｐＨを低下させてタンパク質を放出させると、バイオマス−バイオマス相互作用が減少することを裏付けている。
【００２７】
実施例２
破壊前の大腸菌細胞の条件付けが連続ディスクスタック遠心機の汚れを減少させる
ｐＢＲ３２２ベースのプラスミドベクターを用いて、大腸菌細胞(株：６０Ｅ４, 遺伝子型：W3110 DfhuA DphoA DhtrA DompT Dptr ilvG2096 DrhaRDfucP)中にＦａｂＶＥＧＦを発現する導入遺伝子(Chen等, 1999, J. Mol. Bio., 293: 865-881)を発現させた。ベクターはより多いコピー数をつくり出すためにｒｏｐ欠失を有しており、転写のためにｐｈｏＡプロモーターを用いている。 各遺伝子は、周辺質への搬出のために抗体遺伝子の前に熱安定エンテロトキシンＩＩシグナル配列を含んでいた。プラスミドにはテトラサイクリン耐性とアンピシリン耐性の双方とも損なわれていなかった。醗酵は、増殖するにつれて細胞がリン酸塩を枯渇させ、ｐｈｏＡプロモーターの誘導を生じるように、倍地中のリン酸塩量を固定して１０Ｌ規模で実施した。大腸菌細胞を、６０ｍＭのクエン酸を添加して細胞溶液のｐＨをｐＨ４．０まで低下させることによってホモジナイゼーション前条件付けした。溶解促進剤ＭｇＳＯ４をまた約６０ｍＭの濃度になるまで細胞液に加えた。細胞を、８０００ｐｓｉｇ、２〜８℃にてモデルＨＣ-８０００／３Ａホモジナイザー(Microfluids, Inc.) を用いた４回のホモジナイゼーションにより破壊した。ホモジナイゼーション後、２容量の水をホモジネートに添加し、ホモジネートを、１．０Ｌ／分の流量で連続ディスクスタック遠心機(Model PX205, Alfa Laval, Inc., Richmond, VA)で遠心分離した。シュート割合を、ボウル容積の６０％に達するたびに一回シュートするように設定した。
【００２８】
同様にして、コントロール細胞を４回のホモジナイゼーションにより破壊したが、ホモジナイゼーション後条件付けを施した。ＭｇＳＯ４（６０ｍＭ）と２容量の水と共に６０ｍＭのクエン酸をホモジナイゼーションした細胞に添加し、ｐＨ４．０とした。得られた物質を遠心分離してペレット状不溶性物質を得た。
連続ディスク遠心機の汚れを、遠心分離処理されたタンパク質ホモジネートの濁度（ＮＴＵ）の増加として測定した。データを表２にまとめたが、破壊前にｐＨを低下させて溶解促進剤を添加することによって細胞を前条件付けすると遠心機の汚れ（溶液濁度）を減少させたことを実証する。
2010111700.tif 000003
【００２９】
図３は、ホモジナイゼーション前条件付け及びホモジナイゼーション後条件付けに対して連続ディスクスタック遠心機で遠心分離して得たペレットを示す。図３から分かるように、フロキュレントのコンシステンシーは非常に異なっている。ホモジナイゼーション前条件付け工程からのペレットはより高い水分含量を有しているようであり、ホモジナイゼーション後条件付け工程からのペレットよりもより滑らかな「固形物」をつくっている。これらの結果は、破壊前に細胞が前条件付けされるとバイオマス−バイオマス相互作用が低減することを裏付けている。
【００３０】
実施例３
破壊前の大腸菌細胞の条件付けはＥＢＣカラムの流量を増加させる
流量に対する前条件付けの効果を分析するために、実施例１に上述したようにして調製した前条件付け細胞から得たＦａｂ ＶＥＧＦホモジネートと、コントロールとして、後条件付けホモジネートを、３０ｃｍの樹脂定着床と９０ｃｍの流動層高さのＳＰＸＬストリームライン(Amersham Bioscience, Inc. Piscataway,NJ)ＥＢＣカラム(２．６ｃｍ直径ｘ１００ｃｍ高さ)にそれぞれ添加した。ＥＢＣカラムにはそれぞれＥＢＣインレットスクリーン(多層式ＳＳ３１６Ｌ、１００ｐｍ、１．８ｍｍ厚、２．５ｃｍ直径)を装備させた。カラムを通るホモジネートの流速を、コントロールとしてバッファーを使用して互いに比較した。前及びホモジナイゼーション後条件付け試料を、条件付けｐＨ４．５、５．０、５．５、６．０及び６．５で調製した。
結果を図4にまとめるが、ホモジナイゼーション前条件付けがＥＢＣカラムを通る流量の増加をもたらすことを裏付けている。流速はまたｐＨが低下すると増大した。これらの結果はバイオマス−バイオマス相互作用の減少とバイオマス−ＥＢＣ樹脂相互作用の減少を裏付けており、前条件付けでより良好な流速が得られたことを示している。
【００３１】
実施例４
バイオマス−樹脂相互作用に対する溶解促進剤濃度の効果
Ａｐｏ２Ｌ(Pitlie等, 1996,J Bio. Chem., 271: 12687-12690)を発現する導入遺伝子を含む大腸菌細胞(株：４３Ｅ７，遺伝子型：W3110 DfhuA phoADE15 D(argF-lac)169ptr3 degP41 DompT(DnmpC-fepE)ilvG2096)を用いてタンパク質を発現させた。ｐｈｏＡプロモーター推進転写を伴うｐＢＲ２２ベースのプラスミドベクターを発現に用いた。プラスミドは産生向上のために３つのｔＲＮＡを含み、テトラサイクリン耐性とアンピシリン耐性の双方とも損なわれていなかった。細胞を、８０００ｐｓｉｇ、２〜８℃でモデルＨＣ-８０００／３Ａホモジナイザー(Microfluidics Inc.)を用いて４回のホモジナイゼーションによって細胞を破壊した。
【００３２】
溶解促進剤ＭｇＳＯ４を添加して、約４５ｍＭ又は３０ｍＭの濃度までホモジネートを条件付けした。２容量の水を加え、ホモジネートのｐＨを、６０ｍＭのクエン酸によってｐＨ６．５に調節した。条件付けホモジネートを、６５ｃｍの樹脂定着床と１９５ｃｍの流動層高さのＳＰストリームライン(Amersham Bioscience, Inc.)を含むＥＢＣカラム(２．５ｃｍ直径ｘ２１０ｃｍ高さ)に通した。ＥＢＣカラムにはＥＢＣインレットスクリーン(多層式ＳＳ３１６Ｌ、１００ｐｍ、１．８ｍｍ厚、２．５ｃｍ直径) (Amersham Bioscience, Inc.)が装備された。カラムの流速は２００ｃｍ／ｈｒであった。
図５は、保存相が異なった量のＭｇＳＯ４で条件付けしたＥＢＣカラム中の２つのホモジネート溶液における樹脂−バイオマス相互作用の差を示した後にトップスクリーンから取った樹脂の写真画像を示す。高濃度のＭｇＳＯ４（４５ｍＭ）で条件付けしたホモジネートは、より多い樹脂の凝集を示した３０ｍＭのＭｇＳＯ４で条件付けしたものより少ない樹脂−バイオマス相互作用を示した。
【００３３】
実施例５
タンパク質溶解度に対する溶解促進剤の濃度の効果
抗組織因子抗体(Presta等, 2001,Chromo. Haemost., 85: 379-89)を発現する導入遺伝子を含む大腸菌細胞(株：６０Ｈ４，遺伝子型：W3110 DfhuA phoADE15 D(argF-lac)169 degP41 deoC Dprc spr DmanA)を、８０００ｐｓｉｇ、２〜８℃でモデルＨＣ-８０００／３Ａホモジナイザー(Microfluidics Inc.)を用いた４回のホモジナイゼーションによって破壊した。様々な濃度のＰＥＩ及びＭｇＳＯ４の二種の溶解促進剤を０ｍＭ、１０ｍＭ、２０ｍＭ、３０ｍＭ、４０ｍＭ又は５０ｍＭの濃度まで添加することによってホモジネートを条件付けした。溶液のｐＨを、クエン酸を添加してｐＨ４．０まで調節し、調節した溶液に２容量の水を添加した。ホモジネートを遠心分離して固形物を除去し、上清をポーラス-Ｇアフィニティーカラム(Perceptives Biosystems)に添加した。低ｐＨバッファーでカラムからタンパク質を溶出させ、定量した。
図６は、各試験試料に対する上清中の抗組織因子抗体タンパク質の濃度を示している。これらの結果は、ＭｇＳＯ４又はＰＥＩの溶解促進剤の量が増加すると、より多くのタンパク質が得られることを示している。
【００３４】
実施例６
ＥＢＣ樹脂容量に対する溶解促進剤濃度の効果
Ａｐｏ２Ｌ／ＴＲＡＩＬ(Ashkenazi等, 1999, J. Clin. Invest., 104: 155-162)を発現する導入遺伝子を含む大腸菌細胞を、８０００ｐｓｉｇ、２〜８℃でモデルＨＣ-８０００／３Ａホモジナイザー(Microfluidics, Inc.)を用いた４回のホモジナイゼーションによって破壊した。ホモジナイゼーション後、溶解促進剤ＭｇＳＯ４を１０ｍＭ、２０ｍＭ、又は４０ｍＭの濃度まで添加することによってホモジネートを条件化処理した。コントロールホモジネートはＭｇＳＯ４を含んでいないものとした。ついで、ホモジネートのｐＨを、６０ｍＭのクエン酸を添加してｐＨ６．５まで調節し、調節した溶液に２容量の水を添加した。ついで、条件化されたホモジネートを、過剰の条件付けホモジネート下、１５ｍＬのコニカルプラスチックスクリューキャップチューブ中で、１ｍＬのＥＢＣ樹脂、ＳＰストリームライン(Amersham Bioscience, Inc. )と混合した。
条件付けホモジネート溶液のそれぞれに対する樹脂の容量を決定し、データを図７に示す。溶解促進剤ＭｇＳＯ４が存在すると、１０ｍＭ及び２０ｍＭでＡｐｏ２Ｌに対して樹脂の容量が増加した。しかし、ＭｇＳＯ４濃度が増加しつづけると（４０ｍＭ）、樹脂容量は減少した。この減少は、ＭｇＳＯ４濃度の増加によって溶液の伝導率が増加したためであろう。
【００３５】
実施例７
タンパク質純度に対するｐＨの調節の効果
抗組織因子抗体を発現する導入遺伝子を含む大腸菌細胞を、８０００ｐｓｉｇ、２〜８℃でモデルＨＣ-８０００／３Ａホモジナイザー(Microfluidics, Inc.)を用いた４回のホモジナイゼーションによって破壊した。０．２％のＰＥＩの添加によってホモジネートを条件付けした。１００ｍＭの溶解促進剤ＭｇＳＯ４、２５０ｍＭのＮａＣｌ、１００ｍＭのＮａ２ＳＯ４を含む様々な塩をまた添加した。溶液のｐＨを、クエン酸を添加してｐＨ４．０、５．０、６．０又は７．０まで調節し、２容量の水を添加した。ホモジネートを遠心分離し、上清を、クーマシーブルー染色を伴う１０％ビス-トリス／ＭＯＰＳ(Novex,Inc.)でのＳＤＳ-ＰＡＧＥ分析にかけた。
図８は得られたタンパク質産物を示す電気泳動ゲルである。ゲルは、細胞ホモジネートのｐＨが７．０から４．０まで減少すると、ホモジネート中に存在する汚染タンパク質（つまり、異種タンパク質抗組織因子抗体以外のタンパク質）の量が減少することを裏付けている。ｐＨが５．０から４．０まで落ちると、大腸菌ホモジネート中で所望される異種タンパク質産物の劇的な増大が見られた。
【００３６】
実施例８
タンパク質純度に対するｐＨ調節の効果 
抗組織因子抗体を発現する導入遺伝子を含む大腸菌細胞を、８０００ｐｓｉｇ、２〜８℃でモデルＨＣ-８０００／３Ａホモジナイザー(Microfluidics, Inc.)を用いた４回のホモジナイゼーションによって破壊した。０．２％のＰＥＩと１００ｍＭのＭｇＳＯ４の２種の溶解促進剤の添加によってホモジネートを条件化処理した。溶液のｐＨを、クエン酸を添加してｐＨ４．０、５．０、６．０又は７．０まで調節し、２容量の水を添加した。ホモジネートを遠心分離し、上清を、ブラッドフォード染色試薬(Pierce Chemical Co., Rockford, IL)を伴うプロテインＧカラム(Perceptive Biosystems, Inc.)を使用したＨＰＬＣにかけた。データを以下の表３に示したが、これは、タンパク質が酸性ｐＨで条件付けされたホモジネートから産生されるとタンパク質純度を何倍も増加させることを裏付けている。
【００３７】
2010111700.tif 000004
【００３８】
実施例９
溶解促進剤と溶解促進剤を伴わないでＰＢＣを用いたＥＢＣの比較
充填床クロマトグラフィー精製を次のようにして実施した。Ａｐｏ２Ｌ／Ｔｒａｉｌを発現する導入遺伝子を含む大腸菌細胞を、８０００ｐｓｉｇ、２〜８℃でモデルＨＣ-８０００／３Ａホモジナイザー(Microfluidics, Inc.)を用いた４回のホモジナイゼーションにかけた。ホモジナイゼーション後、２容量の水を添加し、０．３重量％の最終濃度になるようにポリエチレンイミンをまた添加した。ついで、１．０Ｌ／分の流量で、ホモジネート溶液を連続ディスクスタック遠心機(Model PX205, Alfa Laval,Inc.)で遠心分離した後、その上清をＳＰセファロースＦＦカラム(２．５ｘ２０ｃｍ) (Amersham Biosciences)で精製した。
ＥＢＣ精製を次のようにして実施した。Ａｐｏ２Ｌ／Ｔｒａｉｌを発現する導入遺伝子を含む大腸菌細胞を、８０００ｐｓｉｇ、２〜８℃でモデルＨＣ-８０００／３Ａホモジナイザー(Microfluidics, Inc.)を用いた４回のホモジナイゼーションにかけた。ホモジナイゼーション後、硫酸マグネシウム（ＭｇＳＯ４）を３０ｍＭの最終濃度になるまで添加し、２容量の水を加え、溶液のｐＨをｐＨ６．５に調節した。ついで、（２．５ｘ６５）ｃｍカラム及び（２．５ｘ１４ｃｍ）カラム中のＳＰストリームライン(Amersham Bioscience, Inc.)吸着剤を用いてＥＢＣにかけた。
【００３９】
表４は３通りの方法でのＡｐｏ２Ｌ／Ｔｒａｉｌの回収を比較している。
2010111700.tif 000005
上で用いたＥＢＣプロトコルはＰＢＣプロトコルと同じ流量（２００ｃｍ／ｈｒ）及び同じ負荷体積（２容量の水）を生じた。従って、総括負荷プロセス時間にロスはなく、４．５時間であった。溶解促進剤としてのＭｇＳＯ４の添加は、ｐＨが７．５から６．５まで減少したときにＡｐｏ２Ｌ／Ｔｒａｉｌの溶解度を高めるのに役立ち、よって、ＥＢＣ樹脂容量を増大させた。ＭｇＳＯ４は、低密度樹脂の凝集生成がＥＢＣ負荷相中に最小化されるようにホモジネート−樹脂相互作用を減少させ、よってタンパク質の回収を向上させた。
【００４０】
実施例１０
ホモジネート条件付けを伴う流動層クロマトグラフィーと充填床クロマトグラフィーの比較
充填床クロマトグラフィー（ＰＢＣ）精製を次のようにして実施した。Ａｐｏ２Ｌ／Ｔｒａｉｌを発現する導入遺伝子を含む大腸菌細胞を、８０００ｐｓｉｇ、２〜８℃でモデルＨＣ-８０００／３Ａホモジナイザー(Microfluidics, Inc.)を用いた４回のホモジナイゼーションにかけた。ホモジナイゼーション後、２容量の水を加え、ポリエチレンイミンを０．３重量％の最終濃度になるまで添加した。ついで、１．０Ｌ／分の流量で、連続ディスクスタック遠心機(Model PX205, Alfa Laval, Inc.)で遠心分離した。上清をＳＰセファロースＦＦカラム(２．５ｘ２０)ｃｍ(Amersham Biosciences)で精製した。
流動層クロマトグラフィー（ＥＢＣ）精製を次のようにして実施した。Ａｐｏ２Ｌ／Ｔｒａｉｌを発現する導入遺伝子を含む大腸菌細胞を、８０００ｐｓｉｇ、２〜８℃でモデルＨＣ-８０００／３Ａホモジナイザー(Microfluidics, Inc.)を用いた４回のホモジナイゼーションにかけた。ＭｇＳＯ４をホモジネートに添加して３０ｍＭのＭｇＳＯ４の最終濃度を得た。溶液のｐＨをまたｐＨ６．５に調節し、５容量の水を加えた。ついで、（２．５ｘ３０）ｃｍカラム及び（２．５ｘ１４ｃｍ）カラム中のＳＰストリームライン吸着剤(Amersham Bioscience, Inc.)を用いてＥＢＣにかけた。
【００４１】
以下の表５は３通りの方法でのＦＡＢ Ｖ２（ＡＭＤ）の回収を比較している。
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上で利用したＥＢＣプロトコルではＰＢＣプロトコルのものよりも４倍長い全負荷時間であったが（２４時間対６時間）、ＥＢＣを用いるとタンパク質の回収が大きく増加した。ＭｇＳＯ４はホモジネート-ホモジネート相互作用及びホモジネート-樹脂相互作用の双方を低減する作用をし、ＥＢＣプロトコルのプロセスパラメーターを改善した。ホモジナイゼーション（前条件付け）前のｐＨの調節はまたホモジネート-ホモジネート相互作用を減少させることによってプロセシングを補助し、タンパク質の収量を更に増加させる（データは示さず）。
【００４２】
上記の明細書、実施例、データは本発明の組成物の製造及び用途の完全な説明を提供する。本発明の多くの実施態様を、本発明の精神と範囲を逸脱することなく作製することができるので、本発明は添付の特許請求の範囲に基づく。
本明細書は多くの特許及び文献の引用を含む。あらゆる目的のために、完全に記載されているものとして、それぞれを出典明示によりここに取り込む。
【図面の簡単な説明】
【００４３】
【図１】ＥＢＣ中のホモジナイゼーション後及びホモジナイゼーション前条件付けホモジネートに対する時間の関数として背圧（ｐｓｉ）を比較するグラフである。
【図２】ホモジナイゼーション後及びホモジナイゼーション前条件付けホモジネートによるフリットの汚れを比較する写真である。
【図３】遠心分離したホモジナイゼーション後及びホモジナイゼーション前条件付け溶液からのペレットを比較する写真である。
【図４】ホモジナイゼーション後条件付けホモジネート、ホモジナイゼーション前条件付けホモジネート及び４．０〜６．５の範囲のｐＨのバッファー溶液のＥＢＣに対する流速(ｃｍ／ｈｒ)のグラフである。
【図５】３０ｍＭ及び４５ｍＭのＭｇＳＯ４のホモジネートとＥＢＣ樹脂の間の相互作用の写真である。
【図６】可変濃度のＭｇＳＯ４及びポリエチレンイミンの溶液中のＦａｂ'２濃度（ｍｇ／ｍＬ）のグラフである。
【図７】様々な濃度のＭｇＳＯ４でのＡｐｏ２Ｌタンパク質に対する樹脂の容量（ｇＡｐｏ２Ｌ／Ｌ樹脂）の棒グラフである。
【図８】溶解促進剤又は様々な塩の何れかを含む４から７のｐＨの抗組織因子ホモジネートのＳＤＳ-ＰＡＧＥゲルである。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【外国語明細書】
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