(57)【要約】【課題】末梢知覚神経障害（例えば、糖尿病に関連したもの又はＡＩＤＳ療法において起こりうる副作用としてのものが挙げられる。）や、中枢神経障害（例えば、アルツハイマー病が挙げられる。この場合においては、記憶の喪失は、コリン作動性ニューロンの損失の結果である。）の治療に用い得る。）の治療に用い得る薬剤を提供する。【解決手段】活性成分として組換えプロＮＧＦを含有する薬剤であって、該組換えプロＮＧＦが、Ｎ末端に完全なプロ配列が連結したβ−ＮＧＦであり、かつ、Ｎ末端に完全なプロ配列を有する該プロＮＧＦが、生物学的又は生理学的活性を有するものである薬剤。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
活性成分として組換えプロＮＧＦを含有する薬剤であって、該プロＮＧＦが、Ｎ末端に完全なプロ配列が連結したβ−ＮＧＦであり、かつ、Ｎ末端に完全なプロ配列を有する該プロＮＧＦが、生物学的又は生理学的活性を有するものである薬剤。
【請求項２】
生物学的又は生理学的活性が、後根神経節アッセイで測定されるものである、請求項１の薬剤。
【請求項３】
神経障害治療剤である、請求項２の薬剤。
【請求項４】
請求項１の薬剤の製造のための組換えプロＮＧＦの使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、変性した不活性なプロＮＧＦを再生しそしてプロ配列を切除することによる、β−ＮＧＦを製造するための方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
神経成長因子（β−ＮＧＦ）は、交感神経系ニューロン及び知覚神経系ニューロンの成長と生存に必要な栄養因子の一つである(Levi-Montalcini, R., Science 237 (1987) 1154; Thoenen, H., et al.,
Physiol. Rev. 60 (1980) 1284; Yankner, B. A., et al., Annu. Rev. Biochem. 51
(1982) 845)。更には、β−ＮＧＦは、中枢神経系のコリン作動性ニューロンの成長、分化及び活力を促進する(Hefti,
F. J., J. Neurobiol. 25 (1994) 1418)。組換えヒト神経成長因子についての可能性のある治療適用としては、末梢知覚神経障害、例えば、糖尿病に関連したもの又はＡＩＤＳ療法において起こりうる副作用としてのものが挙げられる。組換えヒトβ−ＮＧＦについての他の適用としては、中枢神経障害、例えば、アルツハイマー病が挙げられる。この場合においては、記憶の喪失は、コリン作動性ニューロンの損失の結果である。
【０００３】
ヒトβ−ＮＧＦは、241個のアミノ酸よりなるプレプロタンパク質として翻訳される。プレペプチド（18アミノ酸）が、小胞体（ＥＲ）中へのトランスロケーションに際して切除される一方、その結果生じたプロタンパク質は、その後Ｎ及びＣ末端においてプロセシングを受ける（プロ配列（103アミノ酸）及び末尾の２個のアミノ酸の除去）。従って、成熟ヒトＮＧＦは、１１８個のアミノ酸を含む。それは、ネズミのβ−ＮＧＦと相同性を示し、該タンパク質と、僅か１２個のアミノ酸置換によって異なっているに過ぎない。臨床試験の実施又は治療薬としての可能性のある用途研究のためには、β−ＮＧＦは、大量に入手できなければならない。この因子をより多量に与える天然の源の一つに、マウスの顎下腺がある。しかしながら、それらからの調製物は、種々の二量よりなる不均質な混合物であり、治療に用いるには適さない。更には、患者には該タンパク質のヒト型のものを投与するのが望ましい。しかしながら、ヒト組織においては、種々の神経栄養因子は、ごく僅かな濃度にしか存在しない。
【０００４】
従って、β−ＮＧＦを治療剤として使用するためには、組換えの手段による該タンパク質の製造が唯一の可能性である。これは、２つの方法によって達成できよう。すなわち、細胞培養又は細菌の何れかにおける組換え体の発現である。真核細胞発現系は、タンパク質を非常に少ない量でしか提供しない傾向があり、そして比較的に高価である(Barnett, J., et al., J. Neurochem. 57 (1991) 1052; Schmelzer, C.
H., et al., J. Neurochem. 59 (1992) 1675; US 5,683,894)。
【０００５】
対照的に、原核生物発現系は、所望のタンパク質を多量に提供する。しかしながら、真核生物発現系とは対照的に、細菌は、前駆体タンパク質を正しい仕方でプロセシングすることができない。多くの他の組換え哺乳類遺伝子の発現におけると同様に、細菌中における組換えβ−ＮＧＦの産生は、生物学的に不活性な翻訳産物をもたらし、それは次いで凝集体（いわゆる、封入体（IBs））の形で細胞内に蓄積する。
【０００６】
そのような封入体から成熟β−ＮＧＦの再生を行うことは、しかしながら、タンパク質濃度が非常に低い（10μｇ／ｍＬ未満）場合にのみ、且つ、非常に低い収率（約10％まで）でのみ可能である。そのような方法は、例えば、EP-A 0 544 293、米国特許第5,606,031号、米国特許第5,235,043号並びに国際公開WO 97/47735に記載されている。ＮＧＦ／ＢＤＮＦファミリーの神経栄養因子のサルファイト分解（sulfitolysis）による再生は、国際公開WO 95/30686に記載されている。
【０００７】
国際公開WO 97/47735には、タンパク質の脱変性のための改良方法が記載されている。この方法においては、チオール基を有する低分子量物質の存在下において、変性を起こす濃度の変性剤溶液中に不活性タンパク質が溶解される。その後、この溶解されたタンパク質は、この強度に変性性の溶液から、変性性でないか又は変性性の弱い別の溶液中に移され、そこにおいて、チオール成分によってジスルフィド結合が開き次いで生物学的活性を有するコンフォメーションをタンパク質がとる仕方で該タンパク質中にジスルフィド結合が新たに形成されて、該タンパク質は生物学的に活性なコンフォメーションをとる。このタイプの改良された方法を用いると、β−ＮＧＦの脱変性の達成しうる収率は約10％である。
【発明の概要】
【０００８】
本発明の一目的は、単純であって且つ高収率で活性なＮＧＦを与える、β−ＮＧＦの製造のための改良された方法を提供することである。
【０００９】
この目的は、生物学的に活性なβ−ＮＧＦを製造するための、不活性型で存在し且つ非常に溶解性の低い、好ましくは原核細胞において組換えにより製造した後封入体の形で得られるものである、プロ型の再生による方法であって、該方法は、変性性濃度の変性剤溶液に溶解性の乏しい不活性型のプロＮＧＦを溶解させ、プロＮＧＦを、その中において溶解した変性プロＮＧＦが天然のＮＧＦ中に存在するジスルフィド結合によって決定される生物学的に活性なコンフォメーションをとるものである変性性でないか又は変性性の弱い溶液中に、溶解性を維持したまま移し、その後、プロ配列を除去して、単離できる活性ＮＧＦを得ることを特徴とする方法を提供することによって解決された。
【００１０】
驚くべきことに、不活性β−ＮＧＦの試験管内（in vitro）再生に際して、プロ配列が再生過程に対し必須且つ積極的効果を有すること、及び、本発明によれば、最も単純な仕方で再生を達成できそれにより、これ迄知られて居らずしかも可能とは思われなかった収率を、再生された活性β−ＮＧＦにつき達成できることが示された。
【図面の簡単な説明】
【００１１】
【図１】組換えヒトプロＮＧＦの発現のための、プロＮＧＦプラスミド構築物pET11a-proNGFを示す。
【図２】それぞれ、誘導前及び後の、E. coli株BL21（DE3）pET11a-proNGF/pUBS520の粗抽出物の、並びに封入体調製物の、SDS PAGEゲル（15％）のクマジー染色を示す（Laemmli, UK, Nature 227(1970) 680に従ったＳＤＳ  ＰＡＧＥ）。Ｕ：誘導前の粗抽出物、Ｉ：４時間の誘導後の粗抽出物、Ｐ：封入体ペレット、Ｓ：可溶性上清。
【図３】Fig.2a：  100ｍＭトリス／塩酸、１Ｍ Ｌ−アルギニン、５ｍＭ ＧＳＨ、１ｍＭＧＳＳＧ、５ｍＭ ＥＤＴＡ中での、10℃における組換えヒトプロＮＧＦの折り畳みに対するｐＨ値の効果を示す。タンパク質濃度は50μｇ／ｍＬ、折り畳み時間は３時間であった。２つの測定シリーズの平均値が示されている。
【図４】Fig.2b:  組換えヒトプロＮＧＦの折り畳みに対する種々の濃度のＬ−アルギニンの効果を表す。再生はｐＨ9.5において行われ、他の条件はｐＨを変化させたときに用いたのと同じであった。２つの測定シリーズの平均値が示されている。
【図５】Fig.2c：  組換えヒトプロＮＧＦの折り畳みに対する種々の濃度のＧＳＨの効果を示す。ＧＳＳＧの濃度は１ｍＭ、Ｌ−アルギニンの濃度は１Ｍであった。他の再生パラメーターは、アルギニンにつき変化させたときに用いたのと同じであった。２つの測定シリーズの平均値が示されている。
【図６】Fig.2d：  組換えヒトプロＮＧＦの折り畳みに対する種々の濃度のＧＳＳＧの効果を示す。ＧＳＨの濃度は５ｍＭであった。他の折り畳みパラメーターは、ＧＳＨにつき変化させたときに用いたとの同じであった。２つの測定シリーズの平均値が示されている。
【図７】Fig.2e：  天然型組換えヒトプロＮＧＦの収率に対する種々の量の塩酸グアニジニウム（GdmCl）の効果を示す。ＧＳＨ及びＧＳＳＧの量は、それぞれ、５ｍＭ及び0.5ｍＭであった。他の再生条件は、ＧＳＳＧにつき変化させたときに用いたのと同じであった。２つの測定シリーズの平均値が示されている。
【図８】Fig. 2f：  組換えヒトプロＮＧＦの折り畳みの収率に対する種々のタンパク質濃度の効果を示す。全てのサンプルにおいて、塩酸グアニジニウムの濃度は200ｍＭであった。他の折り畳みパラメーターは何れも塩酸グアニジニウムにつき変化させたときに用いたのと同じであった。単一の測定シリーズのみが示されている。
【図９】Fig.3：  Poros 20 HS（Perseptive Biosystems, カラム容積1.7ｍＬ）陽イオン交換クロマトグラフィーによる組換えヒトプロＮＧＦの精製の溶出プロフィールを示す。
【図１０】Fig.4：  Poros 20 HSによる組換えヒトプロＮＧＦの精製のＳＤＳ  ＰＡＧＥゲル（Nesterenko,M. V., et al., J. Biochem. Biophys. Methods 28 (1994) 239による、15％、銀染色）を示す（１：カラムに負荷された再生プロＮＧＦ、２：ボイド、３：画分４（66ないし69ｍＬ）、４：画分５（69ないし72ｍＬ）、５：画分６（72ないし75ｍＬ）、６：画分７（75ないし78ｍＬ）、７：画分８（78ないし81ｍＬ）、８：画分９（81ないし84ｍＬ）、９：画分10（84ないし87ｍＬ）。
【図１１】Fig.5：  組換えヒトプロＮＧＦのＵＶスペクトルを示す。
【図１２】Fig.6：  組換えヒトプロＮＧＦのIEX-HPLC溶出図を示す（カラム物質：Poros 20 HS、100ｍｍ×4.6ｍｍカラム、PerseptiveBiosystems Company）。
【図１３】Fig.7：  組換えヒトプロＮＧＦのRP-HPLC溶出図を示す（カラム物質：Poros 10 R1、100ｍｍ×4.6ｍｍカラム、PerseptiveBiosystems Company）。
【図１４】Fig.8：  組換えヒトプロＮＧＦのトリプシンによる限定されたタンパク質分解のＳＤＳゲル（15％クマジー染色）を示す（Ｍ：10ｋＤａマーカー、１：組換えヒトプロＮＧＦ標準、２：組換えβ−ＮＧＦ標準、トリプシン：組換えヒトプロＮＧＦ質量比約１：40、４：１：100、５：１：250、６：１：500、７：１：1000、８：１：2000、９：１：2500、10：トリプシン不含大豆トリプシンインヒビター含有対照）。
【発明を実施するための形態】
【００１２】
語「プロＮＧＦ」は、Ｎ末端にプロ配列の連結したβ−ＮＧＦを意味する。本発明によれば、該プロ配列として、プロ配列全体（米国特許第5,683,894号、; Ullrich, A., et al., Nature 303
(1983) 821; SWISS-PROT protein sequence database No. P01138）又はその部分, 好ましくは完全なドメインを用いることができる。Suter et al. (EMBO
J. 10, 2395 (1991))は、COS-7細胞培養系における正しい分泌に基づいて、ネズミのβ−ＮＧＦのプロペプチドの生体内（in vivo）での機能についての詳細な研究を行った。この目的のために、プロ配列が５つの領域に分割された。これらの配列１個又はより多くを欠如した変異体が作成された。アミノ酸−52ないし−26（「ドメインＩ」）並びに−６ないし−１（「ドメインII」）を含む配列領域が、生物学的に活性のβ−ＮＧＦの発現と分泌に必須であることが見出された。ドメインＩが発現に必須である一方、ドメインIIは、正しいタンパク質分解プロセシングに必要である。驚くべきことに、プロＮＧＦは生体内でβ−ＮＧＦ同様に活性を有することが示された。従って、プロＮＧＦもまた、治療に用い得る。
【００１３】
溶解性の乏しい不活性なプロＮＧＦは、原核生物の細胞質ゾルにおける該タンパク質の過剰発現に際して形成される。この場合、組換えによって製造されたプロＮＧＦは、細胞質中に、不溶性且つ凝集した形で止まる。これらのタンパク質凝集体、それらの単離及びそれらの精製は、例えば、Marston, F. A., Biochem. J. 240 (1986)に記載されている。これらの不活性なタンパク質凝集体（封入体）を単離するためには、発酵の後、原核細胞が破壊される。
【００１４】
細胞の破壊は、例えば、超音波処理、高圧分散、又はリゾチームによって、慣用の方法により行うことができる(Rudolph, R., et al. (1997); Folding proteins. In: Creighton, T. E.
(ed.): Protein Function: A Practical Approach. Oxford University Press, pp.
57-99)。それは、好ましくは、0.1 mol／Ｌ トリス／塩酸等のような、中性又は弱酸性のｐＨに調節するのに適した、懸濁媒質として働く緩衝液中において行われる。細胞の破壊の後、不溶性成分（封入体）が、適した任意の仕方で、好ましくは遠心又は濾過によって取り出され、次いで、封入体を無傷で残すがしかしそれ以外の細胞タンパク質を可能な限り溶解させるもの、例えば、所望によりBrij（登録商標）のような緩和な洗剤を添加した水又はリン酸緩衝液等、による１回又はより多くの洗浄ステップに付される。その後、不溶性の画分（ペレット）を、可溶化及び再生のための、本発明に従った方法に付す。
【００１５】
変性剤として、封入体タンパク質の可溶化に通常用いられる変性剤がある。塩酸グアニジニウムその他のグアニジニウム塩、チオシアナート等、並びに尿素及びその誘導体が、好ましく用いられる。更には、これらの変性剤の混合物も使用できる。
【００１６】
変性剤の濃度は、変性剤のタイプに依存し、当業者には容易に決定できる。変性剤の濃度（変性濃度）は、可溶性の乏しい変性タンパク質の完全な可溶化が達成できれば十分である。塩酸グアニジニウムについては、それらの濃度は、通常３ないし８ mol／Ｌ、好ましくは５ないし７ mol／Ｌの範囲である。尿素については、該濃度は通常６ないし10 mol／Ｌの範囲である。変性性の弱い溶液は、タンパク質中に正しいジスルフィド結合の形成を、そしてそれにより該タンパク質の天然の３次構造の形成を可能にする濃度に変性剤を含んだ溶液である。好ましくは、強い及び弱い変性性の溶液は、それらの濃度が係数100又はそれ以上異なる。
【００１７】
更には、封入体タンパク質の完全なモノマー化のためには、可溶化に際してジチオスレイトール（ＤＴＴ）、ジチオエリスリトール（ＤＴＥ）又は２−メルカプトエタノール等のような還元剤を、10〜400ｍＭの濃度、特に好ましくは20〜100ｍＭの濃度に添加するのが有利である。
【００１８】
可溶化に続いて、含まれている場合のある還元剤を除去するために、透析が、好ましくは変性剤を変性濃度に含有する溶液に対して、行われる。透析を行う相手となる溶液は、変性性溶液中に存在するのと同濃度に変性剤を含有するのが便利である。
【００１９】
次いで、本発明の方法に従った再生が、中性ないしアルカリ性領域のｐＨ、好ましくは７と10の間、特に好ましくは7.5と9.5の間のｐＨにおいて行われる。緩衝剤液には、如何なる慣用の緩衝剤を使用してもよい。好ましくは、トリス緩衝剤又はリン酸緩衝剤等のような当業者に知られている緩衝剤が、再生剤として用いられる。変性されたタンパク質を再生緩衝液へ移すためには、可溶化されたタンパク質は再生緩衝液に希釈されるか又は再生緩衝液に対して透析される。それによって、変性剤の濃度も希釈されて（変性性の弱い溶液）、タンパク質の更なる変性は起こらない。変性剤濃度が最初に低下する際に、既に再生過程は起こり得る。タンパク質を、変性性でないか変性性の弱い溶液へ移すための条件は、タンパク質が実質的に溶液の状態に維持されることを保証するよう、適切に選択される必要がある。これは、簡便には、ゆっくりした連続的又は段階的な希釈によって達成できる。タンパク質の再生が可能な限り完全であるような仕方で又は変性剤がほぼ完全に除去されるような仕方で、例えば透析により、変性剤が希釈されることが好ましい。
【００２０】
好ましくは、再生は、再生の収率にプラスの効果を有する低分子量の補助剤の存在下に行われる。そのような補助剤は、例えば米国特許第5593865号に記載されている。再生に際して低分子量補助剤として特に好ましいのは、アルギニンであり、0.2ないし1.5Ｍの濃度とするのが便利である。
【００２１】
本発明の方法によれば、再生は好ましくは、チオール成分を、その還元された及び酸化された形で添加することによって行われる。好ましいチオール成分としては、グルタチオンの還元型（GSH）及び酸化型（GSSG）、システアミン及びシスタミン、システイン及びシスチン、又は２−メルカプトエタノール及び２−ヒドロキシエチルジスルフィドが挙げられる。酸化型及び還元型のこれらチオール試薬の添加によって、折り畳まれたポリペプチド鎖内のジスルフィド結合の形成が、再生すなわち、折り畳まれたポリペプチド鎖内部の又は鎖間の誤ったジスルフィド結合の「再配置」に際して、達成できる（Rudolph et al., 1997, 上記引用個所）。
【００２２】
簡便には、本発明の方法は、低温（好ましくは約10℃）での再生において行われる。本発明による方法の過程において、再生は0.5ないし５時間で、好ましくは１ないし２時間で達成される。
【００２３】
空気中に存在する酸素による還元剤の酸化を防止するためにそして遊離のＳＨ基を保護するために、ＥＤＴＡ等のような錯体形成剤を、好ましくは１〜20ｍＭ、特に好ましくは約10ｍＭの濃度に添加するのが便利である。
【００２４】
語「β−ＮＧＦの活性」は、β−ＮＧＦの生物学的活性を示す。生物学的に活性なβ−ＮＧＦは、二量体の形で存在する。活性は、ＤＲＧアッセイ（後根神経節アッセイ）により測定することができる、Levi-Montalcini, R., et al., Cancer Res. 14 (1954) 49, 及び Varon, S., et al., Meth. in Neurochemistry 3 (9172) 203。このアッセイにおいては、ヒヨコ胚の分離した後根神経節からの知覚神経系ニューロンの刺激及び生存が、神経突起形成によってモニターされる。
【００２５】
プロ配列は、成熟タンパク質とは別のドメインである。これら２個のドメインの間に、露出したプロテアーゼ切断部位がある。これらの部位は、適当なプロテアーゼによって特異的に切断することができる。例えば、トリプシンは、リシン又はアルギニン等のような塩基性アミノ酸の次を切断する。もしもトリプシンに対するプロＮＧＦの比率を適当に調節しておくと、正しく折り畳まれた、成熟タンパク質はこのプロテアーゼによっては切断されない。対照的に、変性タンパク質並びに折り畳み途中の中間体は、プロテアーゼによる攻撃に弱い配列を露出させている。トリプシン様基質特異性を有するプロテアーゼが、プロＮＧＦのプロセシングにとって好ましい。これらのプロテアーゼは、該タンパク質分子の活性部位を消化することなしに該タンパク質を切断する。トリプシン様プロテアーゼとしては、数種のセリンプロテアーゼ（例えば、トリプシンそれ自体又はγ−ＮＧＦ）が考えられる。トリプシンは、好ましく用いられる。限定されたタンパク質分解のためには、タンパク質は、１：40ないし１：2500（トリプシン：プロＮＧＦの比）、好ましくは１：40ないし１：250という大きな質量比で用いられる。タンパク質分解は、１分ないし24時間、好ましくは１ないし60分というインキュベーション時間を用い、０℃ないし37℃、好ましくは０℃ないし20℃という温度にて行われる。緩衝剤としては、プロテアーゼの活性を阻害しない緩衝剤が使用される。10〜100ｍＭの濃度範囲のリン酸及びトリス緩衝剤が好ましい。この限定されたタンパク質分解は、該プロテアーゼの最適のｐＨ範囲にて行われ、ｐＨ７〜８の媒質が好ましい。インキュベーション時間の終了後、特異的阻害剤、好ましくは１ないし５ｍＭのＰＭＳＦ（フェニルメチルスルホニルフルオリド）、若しくは大豆トリプシンインヒビターの、好ましくは1.0ないし５ｍｇトリプシン当たり１ｍｇの添加によって、又は、酸、好ましくは塩酸の添加によりｐＨを２〜３に低下させることによって、タンパク質分解は停止される（Rudolph, R., et al. (1997); Folding proteins. In: Creighton, T. E.
(ed.): Protein Function: A Practical Approach. Oxford University Press, pp.
57-99; 米国特許第5,683,894号）。
【００２６】
以下の実施例、刊行物及び図面は、本発明を更に説明するものであり、本発明の範囲は請求の範囲から明らかである。記述されたプロセスは、例示でありことを意図したものであり、本発明の目的を記述している。
【００２７】
実施例１
プロＮＧＦをコードするｃＤＮＡの、E.
coli発現ベクターへのクローニング
プロＮＧＦ構築物のクローニングのために、NovagenのＴ７発現系を選択した（Studier, F. U., et al.,
J. Mol. Biol. 189 (1986) 113）。プロＮＧＦをコードするＤＮＡ配列は、強いＴ７転写シグナルの制御下にある。宿主株として、E. coli BL21（DE3）を用いた。その染色体は、Ｔ７ ＲＮＡポリメラーゼの遺伝子を含む。このＲＮＡポリメラーゼの発現は、従ってプロＮＧＦの発現は、ＩＰＴＧ（イソプロピル−β−Ｄ−チオガラクトシド）によって誘導される。
【００２８】
ヒトプロＮＧＦのｃＤＮＡは、Boehinger
MannheimのベクターpMGL-SIG-proNGF（PL
No. 1905）からのＰＣＲ増幅によって得られた。プロＮＧＦをコードするそのＤＮＡ配列の5'末端にNdeI制限部位を及び3'末端にBamHI制限部位を、変異誘発プライマーを用いて導入した。ＰＣＲ産物を、ベクターpET11a（Novagen）のマルチクローニング領域のNdeI/BamHI制限部位に挿入した（Fig.1）。
【００２９】
次のプライマーをＰＣＲに用いた。
フォワードプライマー「FwProNGF」：
【化１】
2010280717.tif 000002
【００３０】
リバースプライマー「RevNGF」：
【化２】
2010280717.tif 000003
【００３１】
ベクター中へのクローニングの後、ヌクレオチド配列をＤＮＡ配列決定により確認した。
【００３２】
実施例２
ａ）  E. coli中におけるヒトプロＮＧＦの発現
組換え細菌株の培養のために、終夜培養を準備した。この目的のため、適当な液量のLB培地に100μｇ／ｍＬのアンピシリン及び50μｇ／ｍＬのカナマイシンを加えた。
【００３３】
ＬＢ培地（１Ｌ）：  10ｇ  トリプトン
10ｇ  酵母エキス
５ｇ  塩化ナトリウム
【００３４】
培地に単一コロニーを接種して、37℃にて終夜震盪した。
【００３５】
翌朝、100μｇ／ｍＬのアンピシリン及び50μｇ／ｍＬのカナマイシンを含有する所望液量の２×YT培地に、終夜培養物を１：100（v/v）の割合で接種した。培養物を37℃及び200〜250ｒｍｐにて、0.5〜0.8のＯＤ600に達するまで震盪した。その後、３ｍＭのＩＰＴＧによって同じ温度で４時間、プロＮＧＦの発現を誘導した。その後、遠心して細胞を収穫し、直ちに破壊するか又は−70℃に冷凍保存した。
【００３６】
２×ＹＴ培地（１Ｌ）：  17ｇ  トリプトン
10ｇ  酵母エキス
５ｇ  塩化ナトリウム
【００３７】
ｂ）  封入体の単離
細菌細胞中では、組換えタンパク質は凝集体の形で存在する。これらの「封入体」の調製を、Rudolph, R., et al. (1987); Folding proteins. In: Creighton, T. E.
(ed.): Protein Function: A Practical Approach. Oxford University Press, pp.
57-99.に従って行った。
【００３８】
細胞の破壊のために、各５ｇの細胞ペレットを、25ｍＬの100ｍＭトリス／塩酸 ｐＨ7.0；１ｍＭ
ＥＤＴＡに再懸濁させた。その後、湿った細胞塊１ｇにつき1.5ｍｇのリゾチームを添加し、４℃にて30分間インキュベートし、その後、Gaulin細胞破壊器を用いて細胞を破壊した。次いで、粗ホモジネートに３ｍＭのＭｇＣｌ２並びに10μｇ／ｍＬのＤＮaseを加え、25℃にて30分間インキュベートした。ＤＮase消化の後、0.5体積の60ｍＭ ＥＤＴＡ、６％Triton
X-100、1.5Ｍ ＮａＣｌ ｐＨ7.0を加えて不溶性細胞成分を可溶化し、次いで４℃にて30分間インキュベートした。13000ｒｐｍにて10分間の遠心により封入体を収集した。その後、それらを、各100ｍＬの100ｍＭトリス／塩酸、ｐＨ7.0；20ｍＭ
ＥＤＴＡで４回洗浄し、−20℃で保存した。
【００３９】
この仕方で、10ＬのE. coli培養物（約44ｇの細胞湿重量）から約４ｇの封入体ペレットを再現可能に得ることができた。調製物は常に、約90〜95％の組換えヒトプロＮＧＦを含有していた（Fig.2）。
【００４０】
実施例３
ａ）  封入体の可溶化
封入体ペレット400ｍｇを、２ｍＬの可溶化緩衝液（100ｍＭトリス／塩酸、ｐＨ8.0；６ｍＭ 塩酸グアニジニウム；100ｍＭ ＤＴＴ；10ｍＭ ＥＤＴＡ）に懸濁させ、25℃にて２時間インキュベートし、コールドルーム内で13,000ｒｐｍにて30分間遠心した。その後、上清を除去し１Ｍ塩酸でｐＨ３〜４に調整した。可溶化された材料を、各300ｍＬの６Ｍ 塩酸グアニジニウム、ｐＨ4.0、10ｍＭ ＥＤＴＡに対して３回透析に付した。すなわち、25℃にて２時間づつ２回、そしてコールドルーム内で終夜（12℃、16〜18時間）である。次いで、Bradford (Bradford, M. M., Anal. Biochem. 72 (1976) 248)の方法を用いて、タンパク質濃度を測定した。組換えヒトプロＮＧＦの濃度は、40〜50ｍｇ／ｍＬであった。
【００４１】
ｂ）  組換えヒトプロＮＧＦの再生の最適化
実施例３ａ）で調製した可溶化した材料から生物学的に活性な組換えヒトプロＮＧＦを製造するために、それらを種々の再生緩衝液で希釈した。最適な折り畳み条件を決定するために、次のパラメーターを、掲げた順番に変化させた。
ａ）  温度及び時間
ｂ）  ｐＨ
ｃ）  アルギニン濃度
ｄ）  ＧＳＨ／ＧＳＳＧ濃度
ｅ）  塩酸グアニジニウム濃度
ｆ）  タンパク質濃度
【００４２】
結果を表１及び２並びにFig.2a-fに示す。折り畳みサンプル中の再生されたプロＮＧＦの量は、ＲＰ−ＨＰＬＣにより定量した。この目的のために、各925μＬの折り畳みサンプルを所定の時点で採取し、75μＬの32％塩酸で処理して折り畳み反応を停止させた。RP-HPLC分析には、Poros 10 R1 HPLCカラム及びBeckman Gold HPLCシステムを、溶媒モジュール125NM、検出器168、オートサンプラー507、及び分析ソフトウェア"Gold V 8.10"と共に用いた。得られた溶出ピークは、"peakfit"プログラム バージョン2.01を用いて当てはめを行った。収率の定量的測定のためには、精製した天然型組換えヒトプロＮＧＦを用いて標準グラフを作成した。組換えヒトプロＮＧＦ封入体は非常に純粋であったことから、定量分析のためには、再生サンプルにおいて用いたタンパク質の総量は組換えヒトプロＮＧＦの量と等しいと見なした。示した測定結果は各２つの測定値の平均である。
【００４３】
表１
組換えヒトプロＮＧＦの折り畳みに際した最適な温度及び時間の決定。各再生サンプルのタンパク質濃度は50μｇ／ｍＬであった。折り畳み緩衝液は、以下よりなるものであった。
100ｍＭ トリス／塩酸  ｐＨ9.5
１Ｍ Ｌ−アルギニン
５ｍＭ ＧＳＨ
１ｍＭ ＧＳＳＧ
５ｍＭ ＥＤＴＡ
測定シリーズは数回実施され、指数関数を用いて当てはめを行った。２つの測定値の平均値が示されている
【００４４】
【表１】
2010280717.tif 000004
【００４５】
表２
この表は、組換えヒトプロＮＧＦの折り畳みに対する、種々の濃度のＧＳＨ／ＧＳＳＧ（ＧＳＨ＝還元型グルタチオン；ＧＳＳＧ＝酸化型グルタチオン）の効果を示す。使用した再生緩衝液は以下よりなるものであった。
100 ｍＭトリス／塩酸  ｐＨ9.5
１Ｍ Ｌ−アルギニン
５ｍＭ ＥＤＴＡ
折り畳み時間は、10℃にて３時間であった。表において、個々の折り畳みサンプルは、収率が低くなる順に提示されている。２つの測定シリーズの平均収率が示されている。
【００４６】
【表２】
2010280717.tif 000005
【００４７】
ｃ）  調製スケールでの組換えヒトプロＮＧＦの再生
折り畳み緩衝液（100ｍＭ
トリス／塩酸 ｐＨ9.5；１Ｍ Ｌ−アルギニン；５ｍＭ ＧＳＨ；0.5ｍＭ
ＧＳＳＧ；５ｍＭ ＥＤＴＡ）で希釈することにより、組換えヒトプロＮＧＦを再生した。折り畳みは、タンパク質濃度50μｇ／ｍＬで行われた。再生サンプルは、10℃にて３時間インキュベートした。
【００４８】
ｄ）  イオン交換クロマトグラフィーによる精製
再生された材料を、10Ｌの50ｍＭリン酸ナトリウム ｐＨ7.0；１ｍＭ ＥＤＴＡ（IEX緩衝液Ａ）に対して透析し、そして20,000ｒｐｍで30分間遠心した。上清をPoros 20 HSカラムに載せ、塩勾配（IEX緩衝液Ｂ：50ｍＭリン酸ナトリウムｐＨ7.0、１Ｍ塩化ナトリウム、１ｍＭ ＥＤＴＡ）を用いて溶出させた。タンパク質は、980ｍＭ塩化ナトリウムで溶出された（Fig.3）。非天然型の組換えヒトプロＮＧＦは、変性条件を用いることによってのみカラムから除去できた。
【００４９】
実施例４
組換えヒトプロＮＧＦの特徴付け
ａ）  ＵＶ分光光度法による濃度及び分子量の測定
精製サンプル中の組換えヒトプロＮＧＦの濃度を定量するために、50ｍＭリン酸ナトリウムｐＨ7.0、１ｍＭ ＥＤＴＡに対して透析したサンプルについて、240から340ｎｍのＵＶスペクトルをとった（Fig.5；スペクトルは、Beckman DU 640分光光度計を用いて得た）。サンプル中の組換えヒトプロＮＧＦ濃度は、280ｎｍの吸収により測定した。評価は理論モル吸光係数25,680Ｌ／（mol×ｃｍ）（Gill, S. C., et al., Anal. Biochem.
182 (1989) 319に従って計算した）及び単量体当たり24,869Ｄａの分子量（ExPASy プログラム "pI/Mw"により計算し、３個のジスルフィド結合に関して修正した）に基づいて行った。スペクトルを用いて得た値は、Bradford法により決定された濃度に密接に相関した。分子量決定は、電子スプレー・マススペクトル法により行った。組換えプロＮＧＦの理論質量は24,869Ｄａである。実験により得られた値は24,871Ｄａであった。
【００５０】
ｂ）  ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動を用いた純度分析及び分子量測定
15％ポリアクリルアミドゲルを使用した。各サンプルは、１％（v/v）の２−メルカプトエタノールを含有した。ＳＤＳゲル中において、組換えヒトプロＮＧＦは、予測したよりも僅かに高い見かけの分子量を示した。すなわち約30ｋＤａ（24.8ｋＤａでなく）（Fig.2）。
【００５１】
ｃ）  ＩＥＸ−ＨＰＬＣによる純度分析
24μｇ（0.48ｍｇ／ｍＬの組換えヒトプロＮＧＦを含有するサンプル50μＬ）のタンパク質を、50ｍＭリン酸ナトリウムｐＨ7.0；１ｍＭ ＥＤＴＡで平衡化したPoros 20 HSカラム（125×４ｍｍ）に載せ、５ｍＬ／分の流速で、10分間かけた０から100％Ｂ（Ｂ＝50ｍＭリン酸ナトリウムｐＨ7.0；２Ｍ塩化ナトリウム；１ｍＭ ＥＤＴＡ）の直線的グラジエントにより溶出した（Fig.6）。280ｎｍの吸光度を検出に用いた（分析ソフトウェアChromeleonバージョン3.14を用いたGyncotek HPLCシステム）。
【００５２】
ｄ）  ＲＰ Ｃ４ ＨＰＬＣを用いた純度分析
3.1μｇの組換えヒトプロＮＧＦ（0.21ｍｇ／ｍＬの組換えヒトプロＮＧＦ15μＬ）を、0.13％ＴＦＡで平衡化したPoros 10 R1カラム（100ｍｍ×４ｍｍ；Perseptive Biosystems）に載せた。タンパク質を、0.8ｍＬ／分の流速で、33分間かけた非直線的グラジエント（０〜４分：６％Ｂ；４〜９分：６〜30％Ｂ；９〜24分：30〜69％Ｂ；24〜25分：69〜100％Ｂ；25〜30分：100％Ｂ）により溶出させた。溶離液Ｂとして、80％アセトニトリル中の0.1％（v/v）ＴＦＡを用いた。220ｎｍにおける吸光度を検出に用いた（分析ソフトウェア"Gold V
8.10"を用いたBeckman "Gold" HPLC システム）。天然型の組換えヒトプロＮＧＦは、保持時間14.28分の位置に、単一ピークとして溶出された（Fig.7）。
【００５３】
ｅ）  Ｎ末端配列の分析
Ｎ末端配列分析には、ＲＰ ＨＰＬＣによってほぼ精製された、可溶化した封入体を用いた。Ｎ末端配列を、Applied Biosystems 476A タンパク質配列決定装置を用いて決定した。次のアミノ酸配列が得られた。
H2N-Met-Glu-Pro-His-Ser-Glu-Ser-Asn-Val
【００５４】
ｆ）  組換えヒトプロＮＧＦの生物学的活性
組換えヒトプロＮＧＦの生理学的活性を、ＤＲＧアッセイ（後根神経節アッセイ）を用いて定量した（Levi-Montalcini, R., et al., Cancer Res. 14 (1954) 49; Varon, S., et
al., Meth. in Neurochemistry 3 (9172) 203）。このアッセイにおいては、７〜８日齢のヒヨコ胚の後根神経節から分離した知覚ニューロンの刺激及び生存が、神経突起形成によって測定される。組換えヒトプロＮＧＦサンプルは、培地を用いて0.019ないし20.00ｎｇ／ｍＬに調整した。試験サンプル当たり、15,000個のニューロンを用いた。37℃にて48時間のインキュベーションの後、生存細胞の数を測定した。既知濃度の組換えヒトβ−ＮＧＦの溶液を、参照サンプルとして用いた。定量的評価は、いわゆるＥＣ50値に基づいて行った。すなわち、ニューロンの半数の生存を促進するＮＧＦの濃度である。組換えヒトプロＮＧＦについては、0.369ｎｇ／ｍＬというＥＣ50値が得られた。比較として、組換えヒトβ−ＮＧＦについて得られたＥＣ50値は、0.106ｎｇ／ｍＬであった。組換えヒトβ−ＮＧＦと組換えヒトプロＮＧＦとの分子量の相違を考慮すると、成熟組換えヒトβ−ＮＧＦは、生物学的活性の高さが組換えヒトプロＮＧＦの２倍である。
【００５５】
実施例５
ａ）  組換えヒトプロＮＧＦの限定的タンパク質分解による生物学的に活性な成熟組換えヒトβ−ＮＧＦの製造
ヒトプロＮＧＦは、そのプロ配列の最後のアミノ酸としてアルギニン残基を含んでいる。従って、この前駆体から、トリプシンのような、適した基質特異性のプロテアーゼを用いた限定的タンパク質分解によって、試験管内（in vitro）で成熟組換えヒトβ−ＮＧＦを得ることができる。
【００５６】
500μＬの精製組換えヒトプロＮＧＦを、50ｍＭトリス／塩酸ｐＨ8.0に対して透析した。透析後、ＵＶスペクトルによりタンパク質濃度は0.49ｍｇ／ｍＬと測定された。各消化サンプルに、20μｇのプロＮＧＦを用いた。タンパク質分解の後、このサンプル３μｇ（６μＬに対応）をＳＤＳ
ＰＡＧＥにより分析した。トリプシン原液として、0.1μｇ／ｍＬ又は0.01μｇ／ｍＬを、それぞれ用いた。大豆トリプシンインヒビター（STI）の濃度は１ｍｇ／ｍＬとした。両タンパク質は、凍結乾燥粉末として提供され（メーカー：それぞれ、Boehringer Mannheim及びSigma）、上記緩衝液に溶解された。
【００５７】
トリプシン／組換えヒトプロＮＧＦ（rh proNGF）の種々の質量比を、限定的タンパク質分解において用いた（表３を参照）。氷上30分間のインキュベーションの後、各反応を５μｇのSTIによって停止させた。対照目的で、プロテアーゼ無添加の組換えヒトプロＮＧＦも氷上でインキュベートし、次いでSTIを加えた。
【００５８】
【表３】
2010280717.tif 000006
【００５９】
ｇ）  Ｎ末端配列決定による切除産物分析
トリプシン：組換えヒトプロＮＧＦの質量比  ａ）１：40；ｂ）１：100、及びｃ）１：250の消化サンプルを、Ｎ末端配列決定による更に詳細な分析に付した。13ｋＤａのバンドが、数個の種を含んでいた（Fig.8）：
Ｎ末端１：Met-104・・・・；
Ｎ末端２：Val-35・・・・；
Ｎ末端３：Ser1・・・・；（成熟組換えヒトβ−ＮＧＦ）
Ｎ末端４：Gly10・・・・；
【００６０】
これらのペプチドは、種々のサンプルに種々の量で存在していた。
サンプルａ）：Ｎ末端２：Ｎ末端３：Ｎ末端４＝４：５：２
サンプルｂ）：Ｎ末端２：Ｎ末端３＝１：１；  Ｎ末端４は痕跡量。
サンプルｃ）は、ＲＰ Ｃ３ ＨＰＬＣによって更に分析された（カラム：Nucleosil 500-5 C3-RPN; 125ｍｍ×４ｍｍ）。２つのピークが得られた：ピーク１（12.32分）：Ｎ末端１；ピーク２（14.88分）：Ｎ末端２及びＮ末端３の比率２：３。
【００６１】
調製スケールで成熟組換えヒトβ−ＮＧＦを組換えヒトプロＮＧＦから得るために、1.3ｍｇの組換えヒトプロＮＧＦ（50ｍＭトリス／塩酸ｐＨ8.0中、濃度0.46ｍｇ／ｍＬ）に、質量比１：250（トリプシン：組換えヒトプロＮＧＦ）のトリプシンを加えた。サンプルを氷上30分間インキュベートした。その後、質量ベースで大豆トリプシンインヒビターの40倍過剰量により、プロテアーゼを不活性化した。切除サンプルを、50ｍＭリン酸ナトリウムｐＨ7.0；１ｍＭ ＥＤＴＡに対して透析し、次いで陽イオン交換カラムにかけた（1.7ｍＬ Poros 20 HS; Perseptive Biosystems）。０ないし２Ｍ塩化ナトリウムの直線的塩グラジエントで、切除産物が単一ピークとして溶出された。約840ｍＭ塩化ナトリウムの塩濃度での溶出物が、対照実験における成熟組換えヒトβ−ＮＧＦに対応した。精製された切除産物の収率は17％であった
【００６２】
精製された切除産物の生物学的活性を、ＤＲＧアッセイにより試験した。それは、成熟組換えヒトβ−ＮＧＦの活性に対応していた（表４）。
【００６３】
【表４】
2010280717.tif 000007
【００６４】
参考文献
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【００６５】
配列番号１及び２は、pET11a-proNGFの構築のためのオリゴヌクレオチドを示す。
配列番号３は、ヒトプロＮＧＦのｃＤＮＡのヌクレオチド配列並びにその翻訳産物のアミノ酸配列を示す。
配列番号４は、翻訳産物のアミノ酸配列を示す。
【産業上の利用可能性】
【００６６】
本発明のプロＮＧＦは、生体内で、β−ＮＧＦ同様に活性を有する。従って、当該プロＮＧＦは、末梢知覚神経障害（例えば、糖尿病に関連したもの又はＡＩＤＳ療法において起こりうる副作用としてのものが挙げられる。）や、中枢神経障害（例えば、アルツハイマー病が挙げられる。この場合においては、記憶の喪失は、コリン作動性ニューロンの損失の結果である。）の治療に用い得る。
【図１】
2010280717.tif 000008
【図２】
2010280717.tif 000009
【図３】
2010280717.tif 000010
【図４】
2010280717.tif 000011
【図５】
2010280717.tif 000012
【図６】
2010280717.tif 000013
【図７】
2010280717.tif 000014
【図８】
2010280717.tif 000015
【図９】
2010280717.tif 000016
【図１０】
2010280717.tif 000017
【図１１】
2010280717.tif 000018
【図１２】
2010280717.tif 000019
【図１３】
2010280717.tif 000020
【図１４】
2010280717.tif 000021
【配列表】
2010280717000001.app