(57)【要約】      （修正有）【課題】糖尿病によって引き起こされる網膜病変の予防又は治療におけるプラスミノゲンの作用に関し、さらには異なるタイプの糖尿病関連の網膜病変に対する全く新しい治療ストラテジーの提供。【解決手段】被験者に有効量投与されるプラスミノゲンを含む、被験者の糖尿病によって引き起こされる網膜病変の予防及び／又は治療剤。前記網膜病変は糖尿病によって引き起こされる網膜新生血管の形成、網膜炎症、網膜萎縮、網膜細胞アポトーシス、網膜組織構造損傷を含むことを特徴とする。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
被験者に有効量投与されるプラスミノゲンを含む、被験者の糖尿病によって引き起こされる網膜病変の予防及び／または治療剤。
【請求項２】
前記網膜病変は糖尿病によって引き起こされる網膜新生血管の形成、網膜炎症、網膜萎縮、網膜細胞アポトーシス、網膜組織構造損傷を含むことを特徴とする、請求項１に記載の剤。
【請求項３】
前記プラスミノゲンは、配列２と少なくとも８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の配列同一性を有し、且つ依然としてプラスミノゲン活性を有することを特徴とする、請求項１または２に記載の剤。
【請求項４】
前記プラスミノゲンは、配列１４によって示されるプラスミノゲン活性フラグメントを含み、且つ依然としてプラスミノゲン活性を有するタンパク質であることを特徴とする、請求項１〜３のいずれかに記載の剤。
【請求項５】
前記プラスミノゲンはＧｌｕ−プラスミノゲン、Ｌｙｓ−プラスミノゲン、ミニプラスミノゲン、マイクロプラスミノゲン、δ（ｄｅｌｔａ）−プラスミノゲンまたはそれらの任意の組み合わせから選ばれるものであることを特徴とする、請求項１〜４のいずれかに記載の剤。
【請求項６】
前記プラスミノゲンは、体表、静脈内、筋肉内、皮下、吸入、椎管内または直腸投与、局所注射による投与、及び／または角膜上における遺伝子銃による局所投与、結膜下注射、前房内注射、点眼剤による角膜上投与、側頭縁からの前室内への注射、基質内注射、電気パルスと組み合わせた角膜投与、角膜内注射、網膜下注射、硝子体内注射及び眼内注射により全身または局所にて投与されることを特徴とする、請求項１〜５のいずれかに記載の剤。
【請求項７】
前記プラスミノゲンは一種類または複数種類の他の薬物と組み合わせて投与でき、前記他の薬物は抗糖尿病薬、抗心脳血管疾患薬、抗血栓薬、高血降下薬、高脂血症治療薬、抗感染薬及びその他の併発する疾患を治療するための通常の薬物であることを特徴とする、請求項１〜６のいずれかに記載の剤。
【請求項８】
有効用量のプラスミノゲンを含有する容器、及び被験者の糖尿病によって引き起こされる網膜病変の予防及び／または治療における製品の投与を指導するプロトコルを含むことを特徴とする、被験者の糖尿病によって引き起こされる網膜病変を予防及び／または治療するための製品。
【請求項９】
さらに一種類または複数種類の他の薬物の容器を含む、請求項８に記載の製品。
【請求項１０】
前記他の薬物は抗糖尿病薬、抗心脳血管疾患薬、抗血栓薬、血圧降下薬、高脂血症治療薬、抗感染薬物及びその他の併発疾患を治療するための通常の薬物であることを特徴とする、請求項９に記載の製品。
【請求項１１】
前記プロトコルはさらに前記プラスミノゲンは前記他の薬物を投与する前、投与と同時、及び／または後に投与できることを説明するものであることを特徴とする、請求項９または１０に記載の製品。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明はプラスミノゲンの糖尿病によって引き起こされる内臓臓器及び血管の組織細胞損傷、神経、網膜組織の細胞損傷の抑制おける用途に係り、これとともにプラスミノゲンの糖尿病によって引き起こされる網膜病変を予防または治療することにおける用途に係り、さらには糖尿病によって引き起こされる異なるタイプの網膜病変に対してまったく新しい予防及び／または治療ストラテジーを提供する。
【背景技術】
【０００２】
糖尿病は一連の複数の遺伝及び環境要素の共同作用によってもたらされるインスリン分泌の減少またはインスリン作用欠陥によって引き起こされる、体内の糖、タンパク質、脂肪、水及び電化質の代謝混乱が生じる内分泌、代謝症候群である。それは慢性の血糖水準上昇を特徴とし、長く続いた場合は目、腎臓、肝臓などの臓器の慢性合併症をもたらす。糖尿病自身及びその合併症は人類の健康を大きく脅かし、糖尿病及びその合併症の治療は世界的な重大な公共衛生問題となっている。
【０００３】
糖尿病網膜症は最もよく見られる糖尿病性眼疾患であり、視力の減退または失明をもたらす。統計によれば、５０％の糖尿病患者は病程１０年前後で該病変が現れ、１５年以上では８０％に達する。糖尿病の病状がひどく、年齢が大きいほど、発病の確率が高い。
【０００４】
プラスミンはプラスミノゲン活性化系（ＰＡ系）の重要な成分である。それは広スペクトルのプロテアーゼであり、細胞外マトリックス（ＥＣＭ）の幾つかの成分を加水分解することができ、これらの成分はフィブリン、ゼラチン、フィブロネクチン、ラミニン及びプロテオグリカンを含む（非特許文献１）。また、プラスミンは一部のプロマトリックスメタロプロテアーゼ（ｐｒｏ−ＭＭＰ）を活性化させて活性のあるマトリックスメタロプロテアーゼ（ＭＭＰ）にすることができる。そのためプラスミンは細胞外タンパク加水分解作用の一つの重要な上流調節因子である（非特許文献２，３）。プラスミンはプラスミノゲンが二種類の生理性のＰＡ：組織型プラスミノゲン活性化剤（ｔＰＡ）またはウロキナーゼプラスミノゲン活性化剤（ｕＰＡ）をタンパク質加水分解することで形成されるものである。プラスミノゲンは血漿及びその他の体液中における相対レベルが比較的高く、従来的にはＰＡ系の調節は主にＰＡの合成及び活性レベルよって実現されると考えられている。ＰＡ系成分の合成は異なる要素によって厳格的な調節を受け、これらの要素は例えばホルモン、成長因子及びサイトカインである。また、この他に、プラスミンとＰＡの特定の生理的阻害剤を含む。プラスミンの主な阻害剤はα２−抗プラスミン（α２−ａｎｔｉｐｌａｓｍｉｎ）である。一部の細胞表面には直接加水分解する活性のあるｕＰＡ特異性細胞表面受容体（ｕＰＡＲ）（非特許文献４，５）がある。
【０００５】
プラスミノゲン（ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ，ｐｌｇ）は単一鎖の糖タンパク質であり、分子量は約９２ｋＤａである（非特許文献６，７）。プラスミノゲンは主に肝臓で合成され、大量に細胞外液中に存在する。血漿中のプラスミノゲンの含有量は約２μＭである。そのためプラスミノゲンは組織と体液中のタンパク質加水分解活性の巨大な潜在的ソースである（非特許文献８，９）。プラスミノゲンには二種類の分子形式が存在する：グルタミン酸−プラスミノゲン（Ｇｌｕ−ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ）及びリシン−プラスミノゲン（Ｌｙｓ−ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ）である。天然的に分泌され及び断裂していない形のプラスミノゲンは一つのアミノ基末端（Ｎ−末端）を有するグルタミン酸であり、そのためグルタミン酸−プラスミノゲンと呼ばれる。しかし、プラスミンが存在する場合、グルタミン酸−プラスミノゲンはＬｙｓ７６−Ｌｙｓ７７において加水分解されてリシン−プラスミノゲンとなる。グルタミン酸−プラスミノゲンと比較した場合、リシン−プラス
ミノゲンとフィブリンはより高い親和力を有し、さらにより高い速度でＰＡｓによって活性化されることができる。この二つの形式のプラスミノゲンのＡｒｇ５６０−Ｖａｌ５６１ペプチド結合はｕＰＡまたはｔＰＡによって切断され、これによりジスルフィド結合によって接続された二重鎖プロテアーゼプラスミンが形成される（非特許文献１０）。プラスミノゲンのアミノ基末端は五つの同由来トリサイクルを含み、即ちいわゆるｋｒｉｎｇｌｅであり、カルボキシル末端部分はプロテアーゼドメインを含む。一部のｋｒｉｎｇｌｅはプラスミノゲンとフィブリン及びその阻害剤α２−ＡＰの特異性相互作用を介在するリシン結合部位を有する。最新的に、３８ｋＤａのプラスミノゲンはフラグメントであり、ｋｒｉｎｇｌｅ１−４を含み、血管生成の効果的な阻害剤である。このフラグメントはアンギオスタチンと命名され、いくつかのプロテアーゼがプラスミノゲンを加水分解することによって生成される。
【０００６】
プラスミンの主な基質はフィブリンであり、フィブリンの溶解は病理性血栓の形成を予防するキーポイントである（非特許文献１１）。プラスミンはさらにＥＣＭの幾つかの成分に対する基質特異性を有し、これらはラミニン、フィブロネクチン、プロテオグリカン及びゼラチンを含み、これはプラスミンがＥＣＭ再建において重要な作用を有することを示している（非特許文献７，１２，１３）。間接的に、プラスミンはさらにいくつかのプロテアーゼ前駆体を活性プロテアーゼに変換することによりＥＣＭのその他の成分を分解し、ＭＭＰ−１、ＭＭＰ−２、ＭＭＰ−３及びＭＭＰ−９を含む。そのため、以下のように提唱する人がいる。プラスミンは細胞外タンパク加水分解の一つの重要な上流調節因子である（非特許文献１４）。また、プラスミンはいくつかの潜在的な形の成長因子を活性化させる能力を有する（非特許文献１５，１６，１７）。体外において、プラスミンはさらに補体系の成分を加水分解させて走化性の補体フラグメントを放出することができる。
【０００７】
従来の治療方法では主に基礎治療を含み、即ち血糖を制御した上でさらに定期的に眼部検査及び眼部疾患に対して補助的治療を行う。我々は、自発性糖尿病マウスを研究対象として意外にも以下について見出した。プラスミノゲン及び／またはプラスミンは内臓臓器、血管、神経及び網膜の損傷を抑えることにおいて、及び糖尿病性網膜病変を予防または治療する面において優れた治療効果を有し、且つ安全性が高い。そのため、プラスミノゲンは網膜病変を含む糖尿病合併症を治療する新しいストラテジーとなることができる。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００８】
【非特許文献１】Ａｌｅｘａｎｄｅｒ  ＣＭ  ａｎｄ  Ｗｅｒｂ，Ｚ．（１９９１）．Ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ  ｍａｔｒｉｘ  ｄｅｇｒａｄａｔｉｏｎ．Ｉｎ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌｏｇｙ  ｏｆ  Ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ  Ｍａｔｒｉｘ，Ｈａｙ  ＥＤ，ｅｄ．（Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ：Ｐｌｅｎｕｍ  Ｐｒｅｓｓ），ｐｐ．２５５−３０２
【非特許文献２】Ｗｅｒｂ，Ｚ．，Ｍａｉｎａｒｄｉ，Ｃ．Ｌ．，Ｖａｔｅｒ，Ｃ．Ａ．，ａｎｄ  Ｈａｒｒｉｓ，Ｅ．Ｄ．，Ｊｒ．（１９７７）．Ｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓ  ａｃｔｉｖｉａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｌａｔｅｎｔ  ｃｏｌｌａｇｅｎａｓｅ  ｂｙ  ｒｈｅｕｍａｔｏｉｄ  ｓｙｎｏｖｉａｌ  ｃｅｌｌｓ．Ｅｖｉｄｅｎｃｅ  ｆｏｒ  ａ  ｒｏｌｅ  ｏｆ  ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ  ａｃｔｉｖａｔｏｒ．Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．２９６，１０１７−１０２３．
【非特許文献３】Ｈｅ，Ｃ．Ｓ．，Ｗｉｌｈｅｌｍ，Ｓ．Ｍ．，Ｐｅｎｔｌａｎｄ，Ａ．Ｐ．，Ｍａｒｍｅｒ，Ｂ．Ｌ．，Ｇｒａｎｔ，Ｇ．Ａ．，Ｅｉｓｅｎ，Ａ．Ｚ．，ａｎｄ  Ｇｏｌｄｂｅｒｇ，Ｇ．Ｉ．（１９８９）．Ｔｉｓｓｕｅ  ｃｏｏｐｅｒａｔｉｏｎ  ｉｎ  ａ  ｐｒｏｔｅｏｌｙｔｉｃ  ｃａｓｃａｄｅ  ａｃｔｉｖａｔｉｎｇ  ｈｕｍａｎ  ｉｎｔｅｒｓｔｉｔｉａｌ  ｃｏｌｌａｇｅｎａｓｅ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ  ８６，２６３２−２６３６
【非特許文献４】Ｓｔｏｐｐｅｌｌｉ，Ｍ．Ｐ．，Ｃｏｒｔｉ，Ａ．，Ｓｏｆｆｉｅｎｔｉｎｉ，Ａ．，Ｃａｓｓａｎｉ，Ｇ．，Ｂｌａｓｉ，Ｆ．，ａｎｄ  Ａｓｓｏｉａｎ，Ｒ．Ｋ．（１９８５）．Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ−ｅｎｈａｎｃｅｄ  ｂｉｎｄｉｎｇ  ｏｆ  ｔｈｅ  ａｍｉｎｏ−ｔｅｒｍｉｎａｌ  ｆｒａｇｍｅｎｔ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｕｒｏｋｉｎａｓｅ  ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ  ａｃｔｉｖａｔｏｒ  ｔｏ  ａ  ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｏｎ  Ｕ９３７ｍｏｎｏｃｙｔｅｓ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ８２，４９３９−４９４３．
【非特許文献５】Ｖａｓｓａｌｌｉ，Ｊ．Ｄ．，Ｂａｃｃｉｎｏ，Ｄ．，ａｎｄ  Ｂｅｌｉｎ，Ｄ．（１９８５）．Ａ  ｃｅｌｌｕｌａｒ  ｂｉｎｄｉｎｇ  ｓｉｔｅ  ｆｏｒ  ｔｈｅ  Ｍｒ  ５５，０００ｆｏｒｍ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｈｕｍａｎ  ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ  ａｃｔｉｖａｔｏｒ，ｕｒｏｋｉｎａｓｅ．Ｊ．Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．１００，８６−９２．
【非特許文献６】Ｗｉｍａｎ，Ｂ．ａｎｄ  Ｗａｌｌｅｎ，Ｐ．（１９７５）．Ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ  ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ  ｂｅｔｗｅｅｎ“ｇｌｕｔａｍｉｃ  ａｃｉｄ”ａｎｄ“ｌｙｓｉｎｅ”ｆｏｒｍｓ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ  ａｎｄ  ｔｈｅｉｒ  ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎ  ｗｉｔｈ  ｔｈｅ  ＮＨ２−ｔｅｒｍｉｎａｌ  ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ  ｐｅｐｔｉｄｅ  ａｓ  ｓｔｕｄｉｅｄ  ｂｙ  ａｆｆｉｎｉｔｙ  ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ．Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．５０，４８９−４９４．
【非特許文献７】Ｓａｋｓｅｌａ，Ｏ．ａｎｄ  Ｒｉｆｋｉｎ，Ｄ．Ｂ．（１９８８）．Ｃｅｌｌ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ  ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ：ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ  ｆｕｎｃｔｉｏｎｓ．Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．４，９３−１２６
【非特許文献８】Ｒａｕｍ，Ｄ．，Ｍａｒｃｕｓ，Ｄ．，Ａｌｐｅｒ，Ｃ．Ａ．，Ｌｅｖｅｙ，Ｒ．，Ｔａｙｌｏｒ，Ｐ．Ｄ．，ａｎｄ  Ｓｔａｒｚｌ，Ｔ．Ｅ．（１９８０）．Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ  ｂｙ  ｔｈｅ  ｌｉｖｅｒ．Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２０８，１０３６−１０３７
【非特許文献９】Ｗａｌｌeｎ  Ｐ（１９８０）．Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ｏｆ  ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ．Ｉｎ  Ｆｉｂｒｉｎｏｌｙｓｉｓ，Ｋｌｉｎｅ  ＤＬ  ａｎｄ  Ｒｅｄｄｙ  ＫＫＮ，ｅｄｓ．（Ｆｌｏｒｉｄａ：ＣＲＣ
【非特許文献１０】Ｓｏｔｔｒｕｐ−Ｊｅｎｓｅｎ，Ｌ．，Ｚａｊｄｅｌ，Ｍ．，Ｃｌａｅｙｓ，Ｈ．，Ｐｅｔｅｒｓｅｎ，Ｔ．Ｅ．，ａｎｄ  Ｍａｇｎｕｓｓｏｎ，Ｓ．（１９７５）．Ａｍｉｎｏ−ａｃｉｄ  ｓｅｑｕｅｎｃｅ  ｏｆ  ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ  ｃｌｅａｖａｇｅ  ｓｉｔｅ  ｉｎ  ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ：ｈｏｍｏｌｏｇｙ  ｗｉｔｈ“ｐｒｏ”ｐａｒｔ  ｏｆ  ｐｒｏｔｈｒｏｍｂｉｎ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ  ７２，２５７７−２５８１．
【非特許文献１１】Ｃｏｌｌｅｎ，Ｄ．ａｎｄ  Ｌｉｊｎｅｎ，Ｈ．Ｒ．（１９９１）．Ｂａｓｉｃ  ａｎｄ  ｃｌｉｎｉｃａｌ  ａｓｐｅｃｔｓ  ｏｆ  ｆｉｂｒｉｎｏｌｙｓｉｓ  ａｎｄ  ｔｈｒｏｍｂｏｌｙｓｉｓ．Ｂｌｏｏｄ  ７８，３１１４−３１２４．
【非特許文献１２】Ａｌｅｘａｎｄｅｒ，Ｃ．Ｍ．ａｎｄ  Ｗｅｒｂ，Ｚ．（１９８９）．Ｐｒｏｔｅｉｎａｓｅｓ  ａｎｄ  ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ  ｍａｔｒｉｘ  ｒｅｍｏｄｅｌｉｎｇ．Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．１，９７４−９８２．
【非特許文献１３】Ｍｉｇｎａｔｔｉ，Ｐ．ａｎｄ  Ｒｉｆｋｉｎ，Ｄ．Ｂ．（１９９３）．Ｂｉｏｌｏｇｙ  ａｎｄ  ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ｏｆ  ｐｒｏｔｅｉｎａｓｅｓ  ｉｎ  ｔｕｍｏｒ  ｉｎｖａｓｉｏｎ．Ｐｈｙｓｉｏｌ  Ｒｅｖ．７３，１６１−１９５．
【非特許文献１４】Ｃｏｌｌｅｎ，Ｄ．（２００１）．Ｈａｍ−Ｗａｓｓｅｒｍａｎ  ｌｅｃｔｕｒｅ：ｒｏｌｅ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ  ｓｙｓｔｅｍ  ｉｎ  ｆｉｂｒｉｎ−ｈｏｍｅｏｓｔａｓｉｓ  ａｎｄ  ｔｉｓｓｕｅ  ｒｅｍｏｄｅｌｉｎｇ．Ｈｅｍａｔｏｌｏｇｙ．（Ａｍ．Ｓｏｃ．Ｈｅｍａｔｏｌ．Ｅｄｕｃ．Ｐｒｏｇｒａｍ．）１−９．
【非特許文献１５】Ｒｉｆｋｉｎ，Ｄ．Ｂ．，Ｍｏｓｃａｔｅｌｌｉ，Ｄ．，Ｂｉｚｉｋ，Ｊ．，Ｑｕａｒｔｏ，Ｎ．，Ｂｌｅｉ，Ｆ．，Ｄｅｎｎｉｓ，Ｐ．，Ｆｌａｕｍｅｎｈａｆｔ，Ｒ．，ａｎｄ  Ｍｉｇｎａｔｔｉ，Ｐ．（１９９０）．Ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ  ｃｏｎｔｒｏｌ  ｏｆ  ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ  ｐｒｏｔｅｏｌｙｓｉｓ．Ｃｅｌｌ  Ｄｉｆｆｅｒ．Ｄｅｖ．３２，３１３−３１８．
【非特許文献１６】Ａｎｄｒｅａｓｅｎ，Ｐ．Ａ．，Ｋｊｏｌｌｅｒ，Ｌ．，Ｃｈｒｉｓｔｅｎｓｅｎ，Ｌ．，ａｎｄ  Ｄｕｆｆｙ，Ｍ．Ｊ．（１９９７）．Ｔｈｅ  ｕｒｏｋｉｎａｓｅ−ｔｙｐｅ  ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ  ａｃｔｉｖａｔｏｒ  ｓｙｓｔｅｍ  ｉｎ  ｃａｎｃｅｒ  ｍｅｔａｓｔａｓｉｓ：ａ  ｒｅｖｉｅｗ．Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ  ７２，１−２２．
【非特許文献１７】Ｒｉｆｋｉｎ，Ｄ．Ｂ．，Ｍａｚｚｉｅｒｉ，Ｒ．，Ｍｕｎｇｅｒ，Ｊ．Ｓ．，Ｎｏｇｕｅｒａ，Ｉ．，ａｎｄ  Ｓｕｎｇ，Ｊ．（１９９９）．Ｐｒｏｔｅｏｌｙｔｉｃ  ｃｏｎｔｒｏｌ  ｏｆ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ  ａｖａｉｌａｂｉｌｉｔｙ．ＡＰＭＩＳ  １０７，８０−８５．
【非特許文献１８】Ｍａｒｄｅｒ  Ｖ  Ｊ，Ｎｏｖｏｋｈａｔｎｙ  Ｖ．Ｄｉｒｅｃｔ  ｆｉｂｒｉｎｏｌｙｔｉｃ  ａｇｅｎｔｓ：ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ  ａｔｔｒｉｂｕｔｅｓ，ｐｒｅｃｌｉｎｉｃａｌ  ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｃｌｉｎｉｃａｌ  ｐｏｔｅｎｔｉａｌ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｔｈｒｏｍｂｏｓｉｓ  ａｎｄ  Ｈａｅｍｏｓｔａｓｉｓ，２０１０，８（３）：４３３−４４４．
【非特許文献１９】Ｈｕｎｔ  Ｊ  Ａ，Ｐｅｔｔｅｗａｙ  Ｊｒ  Ｓ  Ｒ，Ｓｃｕｄｅｒｉ  Ｐ，ｅｔ  ａｌ．Ｓｉｍｐｌｉｆｉｅｄ  ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ  ｐｌａｓｍｉｎ：ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｆｕ−ｎｃｔｉｏｎａｌ  ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ  ｏｆ  ａ  ｎｏｖｅｌ  ｔｈｒｏｍｂｏｌｙｔｉｃ  ｍｏｌｅｃｕｌｅ  ｗｉｔｈ  ｐｌａｓｍａ−ｄｅｒｉｖｅｄ  ｐｌａｓｍｉｎ［Ｊ］．Ｔｈｒｏｍｂ  Ｈａｅｍｏｓｔ，２００８，１００（３）：４１３−４１９．
【非特許文献２０】Ｓｏｔｔｒｕｐ−Ｊｅｎｓｅｎ  Ｌ，Ｃｌａｅｙｓ  Ｈ，Ｚａｊｄｅｌ  Ｍ，ｅｔ  ａｌ．Ｔｈｅ  ｐｒｉｍａｒｙ  ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ：Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｗｏ  ｌｙｓｉｎｅ−ｂｉｎｄｉｎｇ  ｆｒａｇｍｅｎｔｓ  ａｎｄ  ｏｎｅ“ｍｉｎｉ”−ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ（ＭＷ，３８，０００）ｂｙ  ｅｌａｓｔａｓｅ−ｃａｔａｌｙｚｅｄ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｌｉｍｉｔｅｄ  ｐｒｏｔｅｏｌｙｓｉｓ［Ｊ］．Ｐｒｏｇｒｅｓｓ  ｉｎ  ｃｈｅｍｉｃａｌ  ｆｉｂｒｉｎｏｌｙｓｉｓ  ａｎｄ  ｔｈｒｏｍｂｏｌｙｓｉｓ，１９７８，３：１９１−２０９．
【非特許文献２１】Ｎａｇａｉ  Ｎ，Ｄｅｍａｒｓｉｎ  Ｅ，Ｖａｎ  Ｈｏｅｆ  Ｂ，ｅｔ  ａｌ．Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ  ｈｕｍａｎ  ｍｉｃｒｏｐｌａｓｍｉｎ：ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｐｏｔｅｎｔｉａｌ  ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ  ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｔｈｒｏｍｂｏｓｉｓ  ａｎｄ  Ｈａｅｍｏｓｔａｓｉｓ，２００３，１（２）：３０７−３１３．
【非特許文献２２】Ｌｉｕ，Ｍ．，ｅｔ  ａｌ．，ＮａｏＸｉｎＴｏｎｇ  Ｉｎｈｉｂｉｔｓ  ｔｈｅ  Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  ｏｆ  Ｄｉａｂｅｔｉｃ  Ｒｅｔｉｎｏｐａｔｈｙ  ｉｎ  ｄｂ／ｄｂ  Ｍｉｃｅ．Ｅｖｉｄ  Ｂａｓｅｄ  Ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ  Ａｌｔｅｒｎａｔ  Ｍｅｄ，２０１５．２０１５：ｐ．２４２５１７．
【非特許文献２３】Ｌｉｕ，Ｍ．，ｅｔ  ａｌ．，Ａｄｍｉｎｉｓｔｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｄａｎｈｏｎｇ  Ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ  ｔｏ  ｄｉａｂｅｔｉｃ  ｄｂ／ｄｂ  ｍｉｃｅ  ｉｎｈｉｂｉｔｓ  ｔｈｅ  ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  ｏｆ  ｄｉａｂｅｔｉｃ  ｒｅｔｉｎｏｐａｔｈｙ  ａｎｄ  ｎｅｐｈｒｏｐａｔｈｙ．Ｓｃｉ  Ｒｅｐ，２０１５．５：ｐ．１１２１９．
【非特許文献２４】Ｂｅｌｌ，Ｗ．Ｒ．，Ｗ．Ｒ．Ｇｒｅｅｎ，ａｎｄ  Ｍ．Ｆ．Ｇｏｌｄｂｅｒｇ，  Ｈｉｓｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｉｃ  ａｎｄ  ｔｒｙｐｓｉｎ  ｄｉｇｅｓｔｉｏｎ  ｓｔｕｄｉｅｓ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｒｅｔｉｎａ  ｉｎ  ｉｎｃｏｎｔｉｎｅｎｔｉａ  ｐｉｇｍｅｎｔｉ．Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌｏｇｙ，２００８．１１５（５）：ｐ．８９３−７．
【非特許文献２５】Ｆｅｉｔ−Ｌｅｉｃｈｍａｎ，Ｒ．Ａ．，ｅｔ  ａｌ．，Ｖａｓｃｕｌａｒ  ｄａｍａｇｅ  ｉｎ  ａ  ｍｏｕｓｅ  ｍｏｄｅｌ  ｏｆ  ｄｉａｂｅｔｉｃ  ｒｅｔｉｎｏｐａｔｈｙ：  ｒｅｌａｔｉｏｎ  ｔｏ  ｎｅｕｒｏｎａｌ  ａｎｄ  ｇｌｉａｌ  ｃｈａｎｇｅｓ．Ｉｎｖｅｓｔ  Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ  Ｖｉｓ  Ｓｃｉ，２００５．４６（１１）：ｐ．４２８１−７．
【非特許文献２６】李小▲ろ▼,不同病程糖尿病大鼠視網膜病理改変及其ＶＥＧＦ、ＰＥＤＦ的動態表達、ｉｎ研究生院２０１３、寧夏医科大学（李小▲ろ▼,異なる病程の糖尿病ラットの網膜病理的改変及びそのＶＥＧＦ、ＰＥＤＦの動的発現、ｉｎ研究生院２０１３、寧夏医科大学）：銀川．ｐ．１−５９．
【非特許文献２７】Ｍｅｎｇｙａｎｇ  Ｌｉｕ，Ｑｕａｎ  Ｐａｎ，Ｙｕａｎｌｉ  Ｃｈｅｎ  ｅｔ  ａｌ．ＮａｏＸｉｎＴｏｎｇ  Ｉｎｈｉｂｉｔｓ  ｔｈｅ  Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  ｏｆ  Ｄｉａｂｅｔｉｃ  Ｒｅｔｉｎｏｐａｔｈｙ  ｉｎ  ｄｂ／ｄｂ  Ｍｉｃｅ．Ｅｖｉｄ  Ｂａｓｅｄ  Ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ  Ａｌｔｅｒｎａｔ  Ｍｅｄ．２０１５：２４２５１７．
【非特許文献２８】Ｃｕｎｈａ−Ｖａｚ  Ｊ，Ｂｅｒｎａｒｄｅｓ  Ｒ：Ｎｏｎｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｖｅ  ｒｅｔｉｎｏｐａｔｈｙ  ｉｎ  ｄｉａｂｅｔｅｓ  ｔｙｐｅ  ２．Ｉｎｉｔｉａｌ  ｓｔａｇｅｓ  ａｎｄ  ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｐｈｅｎｏｔｙｐｅｓ，Ｐｒｏｇ  Ｒｅｔｉｎ  Ｅｙｅ  Ｒｅｓ  ２００５，２４：３５５−３７７．
【非特許文献２９】Ｒｏｙ  Ｓ，Ｓａｔｏ  Ｔ，Ｐａｒｙａｎｉ  Ｇ，Ｋａｏ  Ｒ：Ｄｏｗｎｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｆｂｒｏｎｅｃｔｉｎ  ｏｖｅｒｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｒｅｄｕｃｅｓ  ｂａｓｅｍｅｎｔ  ｍｅｍｂｒａｎｅ  ｔｈｉｃｋｅｎｉｎｇ  ａｎｄ  ｖａｓｃｕｌａｒ  ｌｅｓｉｏｎｓ  ｉｎ  ｒｅｔｉｎａｓ  ｏｆ  ｇａｌａｃｔｏｓｅ−ｆｅｄ  ｒａｔｓ．Ｄｉａｂｅｔｅｓ  ２００３，５２：１２２９−１２３４．
【非特許文献３０】Ｐａｌｍｅｒ，Ｂｉｆ  Ｆ．；Ｃｌｅｇｇ，Ｄｅｂｏｒａｈ  Ｊ．（２０１４）．″Ｏｘｙｇｅｎ  ｓｅｎｓｉｎｇ  ａｎｄ  ｍｅｔａｂｏｌｉｃ  ｈｏｍｅｏｓｔａｓｉｓ″．Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ａｎｄ  Ｃｅｌｌｕｌａｒ  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙ．３９７：５１−５７．
【非特許文献３１】Ｃｏｏｐｅｒ，Ｍａｒｋ；Ｄｉｍｉｔｒｉａ  Ｖｒａｎｅｓ；Ｓｈｅｒｉｆ  Ｙｏｕｓｓｅｆ；Ｓｔｅｖｅｎ  Ａ．Ｓｔａｃｋｅｒ；Ａｌｉｓｏｎ  Ｊ．Ｃｏｘ；Ｂｉｓｈｏｙ  Ｒｉｚｋａｌｌａ；Ｄａｖｉｄ  Ｊ．Ｃａｓｌｅｙ；Ｌｅｏｎ  Ａ．Ｂａｃｈ；Ｄａｒｒｅｎ  Ｊ．Ｋｅｌｌｙ；Ｒｉｃｈａｒｄ  Ｅ．Ｇｉｌｂｅｒｔ（Ｎｏｖｅｍｂｅｒ  １９９９）．Ｉｎｃｒｅａｓｅｄ  Ｒｅｎａｌ  Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｏｆ  Ｖａｓｃｕｌａｒ  Ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ  Ｇｒｏｗｔｈ  Ｆａｃｔｏｒ（ＶＥＧＦ）ａｎｄ  Ｉｔｓ  Ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ＶＥＧＦＲ−２ｉｎ  Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ  Ｄｉａｂｅｔｅｓ″．Ｄｉａｂｅｔｅｓ．４８（１１）：２２２９−２２３９．
【非特許文献３２】Ｗａｎｇ  Ｌ，Ｃｈａｎｖｏｒａｃｈｏｔｅ  Ｐ，Ｔｏｌｅｄｏ  Ｄ，Ｓｔｅｈｌｉｋ  Ｃ，Ｍｅｒｃｅｒ  ＲＲ，Ｃａｓｔｒａｎｏｖａ  Ｖ，Ｒｏｊａｎａｓａｋｕｌ  Ｙ（２００８）．Ｐｅｒｏｘｉｄｅ  ｉｓ  ａ  ｋｅｙ  ｍｅｄｉａｔｏｒ  ｏｆ  Ｂｃｌ−２ｄｏｗｎ−ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ  ａｎｄ  ａｐｏｐｔｏｓｉｓ  ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ  ｂｙ  ｃｉｓｐｌａｔｉｎｉｎ  ｈｕｍａｎ  ｌｕｎｇ  ｃａｎｃｅｒ  ｃｅｌｌｓ．Ｍｏｌ  Ｐｈａｒｍａｃｏｌ  ７３，１１９−１２７．
【非特許文献３３】Ｍｏｕｎｇｊａｒｏｅｎ  Ｊ，Ｎｉｍｍａｎｎｉｔ  Ｕ，Ｃａｌｌｅｒｙ  ＰＳ，Ｗａｎｇ  Ｌ，ＡＺａｄ  Ｎ，Ｌｉｐｉｐｕｎ  Ｖ，Ｃｈａｎｖｏｒａｃｈｏｔｅ  Ｐ，Ｒｏｊａｎａｓａｋｕｌ  Ｙ（２００６）．Ｒｅａｃｔｉｖｅ  ｏｘｙｇｅｎ  ｓｐｅｃｉｅｓ  ｍｅｄｉａｔｅ  ｃａｓｐａｓｅ  ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ  ａｎｄ  ａｐｏｐｔｏｓｉｓ  ｉｎｄｕｃｅｄ  ｂｙ  ｌｉｐｏｉｃ  ａｃｉｄ  ｉｎ  ｈｕｍａｎ  ｌｕｎｇ  ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ  ｃａｎｃｅｒ  ｃｅｌｌｓ  ｔｈｒｏｕｇｈ  Ｂｃｌ−２ｄｏｗｎｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ．Ｊ  Ｐｈａｒｍａｃｏｌ  Ｅｘｐ  Ｔｈｅｒ  ３１９，１０６２−１０６９．
【非特許文献３４】Ｒ．Ｌａｎｇｈｏｒｎ  ａｎｄ  Ｊ．Ｌ．Ｗｉｌｌｅｓｅｎ．Ｃａｒｄｉａｃ  Ｔｒｏｐｏｎｉｎｓ  ｉｎ  Ｄｏｇｓ  ａｎｄ  Ｃａｔｓ．Ｊ  Ｖｅｔ  Ｉｎｔｅｒ  Ｍｅｄ  ２０１６；３０：３６−５０．
【非特許文献３５】Ｄｉｍｉｔｒｉｏｓ  Ｄａｖａｌｏｓ，Ｋａｔｅｒｉｎａ  Ａｋａｓｓｏｇｌｏｕ．Ｆｉｂｒｉｎｏｇｅｎ  ａｓ  ａ  ｋｅｙ  ｒｅｇｕｌａｔｏｒ  ｏｆ  ｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎ  ｉｎ  ｄｉｓｅａｓｅ．Ｓｅｍｉｎａｒｓ  ｉｎ  Ｉｍｍｕｎｏｐａｔｈｏｌｏｇｙ，２０１２．３４（１）：４３−６２．
【非特許文献３６】Ｖａｌｖｉ  Ｄ，Ｍａｎｎｉｎｏ  ＤＭ，Ｍｕｌｌｅｒｏｖａ  Ｈ，ｅｔ  ａｌ．Ｆｉｂｒｉｎｏｇｅｎ，ｃｈｒｏｎｉｃ  ｏｂｓｔｒｕｃｔｉｖｅ  ｐｕｌｍｏｎａｒｙ  ｄｉｓｅａｓｅ（ＣＯＰＤ）ａｎｄ  ｏｕｔｃｏｍｅｓ  ｉｎ  ｔｗｏ  Ｕｎｉｔｅｄ  Ｓｔａｔｅｓ  ｃｏｈｏｒｔｓ．Ｉｎｔ  Ｊ  Ｃｈｒｏｎ  Ｏｂｓｔｒｕｃｔ  Ｐｕｌｍｏｎ  Ｄｉｓ  ２０１２；７：１７３−８２．
【非特許文献３７】Ｍｏｕｎｇｊａｒｏｅｎ  Ｊ，Ｎｉｍｍａｎｎｉｔ  Ｕ，Ｃａｌｌｅｒｙ  ＰＳ，Ｗａｎｇ  Ｌ，Ａｚａｄ  Ｎ，Ｌｉｐｉｐｕｎ  Ｖ，Ｃｈａｎｖｏｒａｃｈｏｔｅ  Ｐ，  Ｒｏｊａｎａｓａｋｕｌ  Ｙ（２００６）．Ｒｅａｃｔｉｖｅ  ｏｘｙｇｅｎ  ｓｐｅｃｉｅｓ  ｍｅｄｉａｔｅ  ｃａｓｐａｓｅ  ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ  ａｎｄ  ａｐｏｐｔｏｓｉｓ  ｉｎｄｕｃｅｄ  ｂｙ  ｌｉｐｏｉｃ  ａｃｉｄ  ｉｎ  ｈｕｍａｎ  ｌｕｎｇ  ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ  ｃａｎｃｅｒ  ｃｅｌｌｓ  ｔｈｒｏｕｇｈ  Ｂｃｌ−２  ｄｏｗｎｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ．Ｊ  Ｐｈａｒｍａｃｏｌ  Ｅｘｐ  Ｔｈｅｒ  ３１９，１０６２-１０６９．
【非特許文献３８】Ｋａｒｍｅｎ  Ａ，Ｗｒｏｂｌｅｗｓｋｉ  Ｆ，Ｌａｄｕｅ  ＪＳ（Ｊａｎ  １９５５）．Ｔｒａｎｓａｍｉｎａｓｅ  ａｃｔｉｖｉｔｙ  ｉｎ  ｈｕｍａｎ  ｂｌｏｏｄ．Ｔｈｅ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ．３４（１）：１２６-３１．
【非特許文献３９】Ｗａｎｇ  ＣＳ，Ｃｈａｎｇ  ＴＴ，Ｙａｏ  ＷＪ，Ｗａｎｇ  ＳＴ，Ｃｈｏｕ  Ｐ（Ａｐｒ２０１２）．Ｉｍｐａｃｔ  ｏｆ  ｉｎｃｒｅａｓｉｎｇ  ａｌａｎｉｎｅ  ａｍｉｎｏｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ  ｌｅｖｅｌｓ  ｗｉｔｈｉｎ  ｎｏｒｍａｌ  ｒａｎｇｅ  ｏｎ  ｉｎｃｉｄｅｎｔ  ｄｉａｂｅｔｅｓ．Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｆｏｒｍｏｓａｎ  Ｍｅｄｉｃａｌ  Ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ＝Ｔａｉｗａｎ  Ｙｉ  Ｚｈｉ．１１１（４）：２０１-８．
【非特許文献４０】Ｓ．Ｒ．Ｃｈａｐｌａｎ，ｅｔ  ａｌ．，Ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ  ａｓｓｅｓｓｍｅｎｔ  ｏｆ  ｔａｃｔｉｌｅ  ａｌｌｏｄｙｎｉａ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｒａｔ  ｐａｗ，  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｎｅｕｒｏｓｃｉｅｎｃｅ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ５３（１９９４）５５−６３．
【非特許文献４１】Ｚｗａｒｔ  Ｂ，Ｃｉｕｒａｎａ  Ｃ，Ｒｅｎｓｉｎｋ  Ｉ，Ｍａｎｏｅ  Ｒ，Ｈａｃｋ  ＣＥ，ｅｔ  ａｌ．（２００４）Ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ  ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ  ｂｙ  ａｐｏｐｔｏｔｉｃ  ｃｅｌｌｓ  ｏｃｃｕｒｓ  ｐｒｅｄｏｍｉｎａｎｔｌｙ  ｖｉａ  ＩｇＭ  ａｎｄ  ｉｓ  ｌｉｍｉｔｅｄ  ｔｏ  ｌａｔｅ  ａｐｏｐｔｏｔｉｃ（ｓｅｃｏｎｄａｒｙ  ｎｅｃｒｏｔｉｃ）ｃｅｌｌｓ．Ａｕｔｏｉｍｍｕｎｉｔｙ３７：９５-１０２．
【非特許文献４２】Ｚｈａｎｇ  Ｍ，Ｔａｋａｈａｓｈｉ  Ｋ，Ａｌｉｃｏｔ  ＥＭ，Ｖｏｒｕｐ−Ｊｅｎｓｅｎ  Ｔ，Ｋｅｓｓｌｅｒ  Ｂ，ｅｔ  ａｌ．（２００６）Ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｌｅｃｔｉｎ  ｐａｔｈｗａｙ  ｂｙ  ｎａｔｕｒａｌ  ＩｇＭ  ｉｎ  ａ  ｍｏｄｅｌ  ｏｆ  ｉｓｃｈｅｍｉａ／ｒｅｐｅｒｆｕｓｉｏｎ  ｉｎｊｕｒｙ．Ｊ  Ｉｍｍｕｎｏｌ  １７７：４７２７-４７３４．
【非特許文献４３】Ｋｉｍ  ＳＪ，Ｇｅｒｓｈｏｖ  Ｄ，Ｍａ  Ｘ，Ｂｒｏｔ  Ｎ，Ｅｌｋｏｎ  ＫＢ（２００２）Ｉ−ＰＬＡ２  Ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ  ｄｕｒｉｎｇ  Ａｐｏｐｔｏｓｉｓ  Ｐｒｏｍｏｔｅｓ  ｔｈｅ  Ｅｘｐｏｓｕｒｅ  ｏｆ  Ｍｅｍｂｒａｎｅ  Ｌｙｓｏｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｃｈｏｌｉｎｅ  Ｌｅａｄｉｎｇ  ｔｏ  Ｂｉｎｄｉｎｇ  ｂｙ  Ｎａｔｕｒａｌ  Ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ  Ｍ  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  ａｎｄ  Ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ  Ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ．Ｔｈｅ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ  Ｍｅｄｉｃｉｎｅ１９６：６５５-６６５．
【発明の概要】
【０００９】
一方において、本発明は被験者の糖尿病によって引き起こされる内臓臓器の組織細胞損傷を修復する方法に係り、前記被験者にプラスミノゲンまたはプラスミンを投与することを含む。一方において、本発明はさらにプラスミノゲンまたはプラスミンを被験者の糖尿病によって引き起こされる内臓臓器の細胞損傷を修復させることに用いる用途に係り、上記被験者にプラスミノゲンまたはプラスミンを投与することを含む。一つの実施形態において、前記内臓臓器は肝臓、心臓、腎臓を含む。これとともに、本発明はさらに被験者の糖尿病によって引き起こされる神経及び網膜組織損傷を修復する方法、及びプラスミノゲンまたはプラスミンを被験者の糖尿病によって引き起こされる神経及び網膜組織損傷の修復における用途に係り、被験者に対してプラスミノゲンまたはプラスミンを投与することを含む。
【００１０】
本発明はさらに糖尿病によって引き起こされる網膜病変を予防及び／または治療する方法に係り、及びプラスミノゲンまたはプラスミンの糖尿病によって引き起こされる網膜病変の予防及び／または治療に用いる用途に係り、前記被験者に対してプラスミノゲンまたはプラスミンを投与することを含む。
【００１１】
一つの実施形態において、前記網膜病変は糖尿病によって引き起こされる網膜新生血管の形成、網膜炎症、網膜萎縮、網膜細胞アポトーシス、網膜組織損傷、網膜血管損傷を含む。一つの実施形態において、前記フィブリンプラスミンは配列２、６、８、１０または１２と少なくとも８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の配列同一性を有し、さらに依然としてプラスミン活性を有するものである。一つの実施形態において、前記プラスミノゲンはプラスミノゲン活性フラグメントを有し、さらに依然としてプラスミノゲン活性を有するタンパク質である。一つの実施形態において、前記プラスミノゲンはＧｌｕ−プラスミノゲン、Ｌｙｓ−プラスミノゲン、ミニプラスミノゲン、マイクロプラスミノゲン、δ−プラスミノゲンまたはそれらの任意の組み合わせから選択されるものである。一つの実施形態において、前記プラスミノゲンは、体表、静脈内、筋肉内、皮下、吸入、椎管内、直腸投与、局所注射による投与、及び／または角膜における遺伝子銃による局所投与、結膜下注射、前房内注射、点眼剤による角膜上投与、側頭縁から前室への注射、基質内注射、電気パルスと組み合わせた角膜投与、角膜内注射、網膜下注射、硝子体内注射及び眼内注射により全身または局所にて投与される。一つの実施形態において、前記プラスミノゲンは一種類または複数種類の他の薬物、前記他の薬物は抗糖尿病薬、抗心脳血管疾患薬、抗血栓薬、抗高血圧薬、高脂血症治療薬、抗感染薬及びその他の併発疾患を治療するための通常の薬物と組み合わせて投与できる。
【００１２】
一つの実施形態において、前記被験者は哺乳動物であり、好ましくはヒトである。
【００１３】
一つの実施形態において、前記糖尿病によって引き起こされる網膜病変は糖尿病による微小血管病変によってもたらされるものである。
【００１４】
一つの実施形態において、前記被験者のプラスミンまたはプラスミノゲンは低下してい
る。具体的には、前記低下は先天的、継発的、及び／または局所的なものである。
【００１５】
一つの実施形態において、プラスミノゲンと配列２、６、８、１０または１２は少なくとも８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の配列同一性を有し、且つ依然としてプラスミノゲン活性を有する。一つの実施形態において、プラスミノゲンは配列２、６、８、１０または１２に基づいて、１−１００、１−９０、１−８０、１−７０、１−６０、１−５０、１−４５、１−４０、１−３５、１−３０、１−２５、１−２０、１−１５、１−１０、１−５、１−４、１−３、１−２、１個のアミノ酸を追加、削除及び／または置換したもので、且つ依然としてプラスミノゲン活性を有するタンパク質である。一つの実施形態において、プラスミノゲンはプラスミノゲン活性フラグメントを含有し、且つ依然としてプラスミノゲン活性を有するタンパク質である。一つの実施形態において、プラスミノゲンはＧｌｕ−プラスミノゲン、Ｌｙｓ−プラスミノゲン、ミニプラスミノゲン、マイクロプラスミノゲン、δ−プラスミノゲンまたはそれらの任意の組み合わせから選ばれるものである。一つの実施形態において、プラスミノゲンは以下から選ばれる保存的（ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｖｅ）な置換バリアントである：Ｇｌｕ−プラスミノゲン、Ｌｙｓ−プラスミノゲン、ミニプラスミノゲン、δ−プラスミノゲンまたはマイクロプラスミノゲン。一つの実施形態において、プラスミノゲンはヒト天然プラスミノゲンであり、例えば配列２が示すプラスミノゲンのオルソログであり、例えば、霊長類動物またはげっ歯類動物に由来するプラスミノゲンのオルソログであり、例えばゴリラ、アカゲザル、マウス、ウシ、ウマ、イヌに由来するプラスミノゲンのオルソログである。もっとも好ましくは、本発明のプラスミノゲンのアミノ酸配列は配列２、６、８、１０または１２に示される通りである。
【００１６】
前記プラスミノゲンは単独で投与でき、さらにその他の薬物と組み合わせて投与でき、さらに網膜病変の薬物予防及び／または治療以外のその他の療法、例えばレーザー治療などと、組み合わせて投与できる。
【００１７】
一つの実施形態において、前記プラスミノゲンは適切なポリペプチド担体または安定剤と組み合わせて投与される。一つの実施形態において、前記プラスミノゲンは毎日０．０００１−２０００ｍｇ／ｋｇ、０．００１−８００ｍｇ／ｋｇ、０．０１−６００ｍｇ／ｋｇ、０．１−４００ｍｇ／ｋｇ、１−２００ｍｇ／ｋｇ、１−１００ｍｇ／ｋｇ、１０−１００ｍｇ／ｋｇ（体重一キロあたりで計算）または０．０００１−２０００ｍｇ／ｃｍ２、０．００１−８００ｍｇ／ｃｍ２、０．０１−６００ｍｇ／ｃｍ２、０．１−４００ｍｇ／ｃｍ２、１−２００ｍｇ／ｃｍ２、１−１００ｍｇ／ｃｍ２、１０−１００ｍｇ／ｃｍ２（体表面積平方センチメートルあたりで計算）の用量を投与し、好ましくは少なくとも一回繰り返し、好ましくは毎日投与する。局所投与の場合、前記用量はさらに状況に応じて調整することができる。
【００１８】
もう一方で、本発明はプラスミノゲンまたはプラスミンの被験者の糖尿病によって引き起こされる内臓臓器及びその血管組織損傷を修復するための薬物、製品、薬物キット中における用途に係る。一つの実施形態において、前記内臓臓器は肝臓、心臓及び腎臓を含む。これとともに、本発明はプラスミノゲンまたはプラスミンの被験者の糖尿病によって引き起こされる神経及び網膜組織損傷を修復するための薬物、製品、薬物キット中における用途に係る。本発明はさらにプラスミノゲンまたはプラスミンの被験者の糖尿病によって引き起こされる網膜病変を予防及び／または治療するための薬物、製品、薬物キット中における用途に係る。一つの実施形態において、前記網膜病変は網膜新生血管の形成、網膜炎症、網膜萎縮、網膜細胞アポトーシス、網膜組織構造損傷、網膜血管アポトーシスを含む。
【００１９】
一つの実施形態において、前記プラスミノゲンは配列２、６、８、１０または１２と少
なくとも８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の配列同一性を有し、且つ依然としてプラスミノゲン活性を有する。一つの実施形態において、前記プラスミノゲンはプラスミノゲン活性フラグメントを含有し、且つ依然としてプラスミノゲン活性を有するタンパク質である。一つの実施形態において、前記プラスミノゲンはＧｌｕ−プラスミノゲン、Ｌｙｓ−プラスミノゲン、ミニプラスミノゲン、マイクロプラスミノゲン、δ−プラスミノゲンまたはそれらの任意の組み合わせから選ばれるものである。一つの実施形態において、前記プラスミノゲンは、体表、静脈内、筋肉内、皮下、吸入、椎管内または直腸投与、局所注射による投与、及び／または角膜における遺伝子銃による局所投与、結膜下注射、前房内注射、点眼剤による角膜上投与、側頭縁から前室への注射、基質内注射、電気パルスと組み合わせた角膜投与、角膜内注射、網膜下注射、硝子体内注射及び眼内注射により全身または局所にて投与される。一つの実施形態において、前記プラスミノゲンは一種類または複数種類の他の薬物、前記他の薬物は抗糖尿病薬、抗心脳血管疾患薬、抗血栓薬、抗高血圧薬、高脂血症治療薬、抗感染薬物及びその他の併発疾患を治療するための通常の薬物と組み合わせて投与できる。
【００２０】
一つの実施形態において、前記被験者は哺乳動物であり、好ましくはヒトである。
【００２１】
一つの実施形態において、前記糖尿病によって引き起こされる網膜病変は糖尿病による微小血管病変によってもたらされるものである。
【００２２】
一つの実施形態において、前記被験者のプラスミンまたはプラスミノゲンは低下する。具体的には、前記低下は先天的、継発的、及び／または局所的なものである。
【００２３】
一つの実施形態において、プラスミノゲンは配列２、６、８、１０または１２と少なくとも８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の配列同一性を有し、且つ依然としてプラスミノゲン活性を有する。一つの実施形態において、プラスミノゲンは配列２、６、８、１０または１２に基づいて、１−１００、１−９０、１−８０、１−７０、１−６０、１−５０、１−４５、１−４０、１−３５、１−３０、１−２５、１−２０、１−１５、１−１０、１−５、１−４、１−３、１−２、１個のアミノ酸を追加、削除及び／または置換したもので、且つ依然としてプラスミノゲン活性を有するタンパク質である。一つの実施形態において、プラスミノゲンはプラスミノゲン活性フラグメントを含有し、且つ依然としてプラスミノゲン活性を有するタンパク質である。一つの実施形態において、プラスミノゲンはＧｌｕ−プラスミノゲン、Ｌｙｓ−プラスミノゲン、ミニプラスミノゲン、マイクロプラスミノゲン、δ−プラスミノゲンまたはそれらの任意の組み合わせから選ばれるものである。一つの実施形態において、プラスミノゲンは以下から選ばれる保存的な置換バリアントである：Ｇｌｕ−プラスミノゲン、Ｌｙｓ−プラスミノゲン、ミニプラスミノゲン、δ−プラスミノゲンまたはマイクロプラスミノゲン。一つの実施形態において、プラスミノゲンはヒト天然プラスミノゲンであり、例えば配列２が示すプラスミノゲンのオルソログであり、例えば、霊長類動物またはげっ歯類動物に由来するプラスミノゲンのオルソログであり、例えばゴリラ、アカゲザル、マウス、ウシ、ウマ、イヌに由来するプラスミノゲンのオルソログである。もっとも好ましくは、本発明のプラスミノゲンのアミノ酸配列は配列２、６、８、１０または１２に示される通りである。
【００２４】
前記プラスミノゲンは単独で投与することもでき、また他の薬物と組み合わせても投与できる。さらに網膜病変の薬物による予防及び／治療以外の他の療法、例えばレーザー治療などと組み合わせて投与できる。
【００２５】
一つの実施形態において、前記プラスミノゲンは適切なポリペプチド担体または安定剤と組み合わせて投与する。一つの実施形態において、前記プラスミノゲンは毎日０．００
０１−２０００ｍｇ／ｋｇ、０．００１−８００ｍｇ／ｋｇ、０．０１−６００ｍｇ／ｋｇ、０．１−４００ｍｇ／ｋｇ、１−２００ｍｇ／ｋｇ、１−１００ｍｇ／ｋｇ、１０−１００ｍｇ／ｋｇ（体重一キロあたりで計算）または０．０００１−２０００ｍｇ／ｃｍ２、０．００１−８００ｍｇ／ｃｍ２、０．０１−６００ｍｇ／ｃｍ２、０．１−４００ｍｇ／ｃｍ２、１−２００ｍｇ／ｃｍ２、１−１００ｍｇ／ｃｍ２、１０−１００ｍｇ／ｃｍ２（体表面積平方センチメートルあたりで計算）の用量で投与し、好ましくは少なくとも一回繰り返し、好ましくは毎日投与する。局所投与の場合、前記用量はさらに状況に応じてさらに調整できる。
【００２６】
もう一方で、本発明は被験者の糖尿病によって引き起こされる内臓臓器及びその血管組織損傷を修復するプラスミノゲンまたはプラスミン、及び被験者の糖尿病によって引き起こされる内臓臓器及びその血管組織損傷を修復するためのプラスミノゲンまたはプラスミンを含有する薬物組成物、または該組成物を含有する製品また薬物キットに係る。一つの実施形態において、前記内臓臓器は肝臓、心臓及び腎臓を含む。これと共に、本発明は被験者の糖尿病によって引き起こされる神経及び網膜組織損傷を修復するためのプラスミノゲンまたはプラスミン、及び被験者の糖尿病によって引き起こされる神経及び網膜組織損傷を修復するためのプラスミノゲンまたはプラスミンを含有する薬物組成物、または該組成物を含有する製品、薬物キットに係る。本発明はさらに被験者の糖尿病によって引き起こされる網膜病変を予防及び／または治療するためのプラスミノゲンまたはプラスミン、及び被験者の糖尿病によって引き起こされる網膜病変を予防及び／または治療するためのプラスミノゲンまたはプラスミンを含有する薬物組成物、及び該組成物を含有する製品または薬物キットに係る。一つの実施形態において、前記網膜病変は網膜新生血管の形成、網膜炎症、網膜萎縮、網膜細胞アポトーシス、網膜組織構造損傷、網膜血管アポトーシスを含む。
【００２７】
一つの実施形態において、前記プラスミノゲンは配列２、６、８、１０または１２と少なくとも８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の配列同一性を有し、且つ依然としてプラスミノゲン活性を有する。一つの実施形態において、前記プラスミノゲンはプラスミノゲン活性フラグメントを含有し、且つ依然としてプラスミノゲン活性を有するタンパク質である。一つの実施形態において、前記プラスミノゲンはＧｌｕ−プラスミノゲン、Ｌｙｓ−プラスミノゲン、ミニプラスミノゲン、マイクロプラスミノゲン、δ−プラスミノゲンまたはそれらの任意の組み合わせから選ばれるものである。一つの実施形態において、前記プラスミノゲンは体表、静脈内、筋肉内、皮下、吸入、椎管内または直腸投与、局所注射による使用、及び／または角膜における遺伝子銃による局所投与、結膜下注射、前房内注射、点眼剤による角膜上投与、側頭縁から前室内への注射、基質内注射、電気パルスと組み合わせた角膜投与、角膜内注射、網膜下注射、硝子体内注射及び眼内注射によりに全身または局所にて投与される。一つの実施形態において、前記プラスミノゲンは一種類または複数種類の他の薬物と、前記他の薬物は抗糖尿病薬、抗心脳血管疾患薬、抗血栓薬、抗高血圧薬、高脂血症治療薬、抗感染薬物及びその他の併発疾患を治療するための通常の薬物と組み合わせて投与できる。
【００２８】
一つの実施形態において、前記被験者は哺乳動物であり、好ましくはヒトである。
【００２９】
一つの実施形態において、前記糖尿病によって引き起こされる網膜病変は糖尿病による微小血管障害によってもたらされるものである。
【００３０】
一つの実施形態において、前記被験者プラスミンまたはプラスミノゲンは低下している。具体的には、前記低下は先天的、継発的、及び／または局所的なものである。
【００３１】
一つの実施形態において、プラスミノゲンは配列２、６、８、１０または１２は少なく
とも８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の配列同一性を有し、且つ依然としてプラスミノゲン活性を有する。一つの実施形態において、プラスミノゲンは配列２、６、８、１０または１２に基づいて、１−１００、１−９０、１−８０、１−７０、１−６０、１−５０、１−４５、１−４０、１−３５、１−３０、１−２５、１−２０、１−１５、１−１０、１−５、１−４、１−３、１−２、１個のアミノ酸を追加、削除及び／または置換したもので、且つ依然としてプラスミノゲン活性を有するタンパク質である。一つの実施形態において、プラスミノゲンはプラスミノゲン活性フラグメントを含有し、且つ依然としてプラスミノゲン活性を有するタンパク質である。一つの実施形態において、プラスミノゲンはＧｌｕ−プラスミノゲン、Ｌｙｓ−プラスミノゲン、ミニプラスミノゲン、マイクロプラスミノゲン、δ−プラスミノゲンまたはそれらの任意の組み合わせから選ばれるものである。一つの実施形態において、プラスミノゲンは以下から選ばれる保存的な置換バリアントである：Ｇｌｕ−プラスミノゲン、Ｌｙｓ−プラスミノゲン、ミニプラスミノゲン、δ−プラスミノゲンまたはマイクロプラスミノゲン。一つの実施形態において、プラスミノゲンはヒト天然プラスミノゲンであり、例えば配列２が示すプラスミノゲンのオルソログであり、例えば、霊長類動物またはげっ歯類動物に由来するプラスミノゲンのオルソログであり、例えばゴリラ、アカゲザル、マウス、ウシ、ウマ、イヌに由来するプラスミノゲンのオルソログである。もっとも好ましくは、本発明のプラスミノゲンのアミノ酸配列は配列２、６、８、１０または１２に示される通りである。
【００３２】
前記プラスミノゲンは単独で投与でき、または他の薬物と組み合わせて投与できる。さらに網膜病変の薬物による予防及び／治療以外の他の療法、例えばレーザー治療などと組み合わせて投与できる。
【００３３】
一つの実施形態において、前記プラスミノゲンは適切なポリペプチド担体または安定剤と組み合わせて投与する。一つの実施形態において、前記プラスミノゲンは毎日０．０００１−２０００ｍｇ／ｋｇ、０．００１−８００ｍｇ／ｋｇ、０．０１−６００ｍｇ／ｋｇ、０．１−４００ｍｇ／ｋｇ、１−２００ｍｇ／ｋｇ、１−１００ｍｇ／ｋｇ、１０−１００ｍｇ／ｋｇ（体重一キロあたりで計算）または０．０００１−２０００ｍｇ／ｃｍ２、０．００１−８００ｍｇ／ｃｍ２、０．０１−６００ｍｇ／ｃｍ２、０．１−４００ｍｇ／ｃｍ２、１−２００ｍｇ／ｃｍ２、１−１００ｍｇ／ｃｍ２、１０−１００ｍｇ／ｃｍ２（体表面積平方センチメートルあたりで計算）の用量で投与し、好ましくは少なくとも一回繰り返し、好ましくは毎日投与する。局所投与の場合、前記用量はさらに状況に応じてさらに調整することができる。
【００３４】
一つの実施形態において、前記製品または薬物キットは有効用量のプラスミノゲン／プラスミンを含有する容器を含む。好ましくは、該製品または薬物キットはさらに一種類または複数種類の他の薬物を含有する容器を含む。該製品または薬物キットはさらに使用プロトコル（使用説明書）を含むことができ、該プロトコルは前記プラスミノゲンまたはプラスミンが糖尿病によって引き起こされる内臓臓器及びその血管組織損傷、神経または網膜組織損傷、または前記網膜症の予防及び／または治療に用いることができることを説明するものであり、さらには以下のように説明できる。即ち、前記プラスミノゲンまたはプラスミンはその他の薬物を投与する前、投与と同時、及び／または後に投与することができる。
【００３５】
一つの実施形態において、前記プラスミノゲンは適切なポリペプチド担体または安定剤と組み合わせて投与する。一つの実施形態において、前記プラスミノゲンは毎日０．０００１−２０００ｍｇ／ｋｇ、０．００１−８００ｍｇ／ｋｇ、０．０１−６００ｍｇ／ｋｇ、０．１−４００ｍｇ／ｋｇ、１−２００ｍｇ／ｋｇ、１−１００ｍｇ／ｋｇ、１０−１００ｍｇ／ｋｇ（体重一キロあたりで計算）または０．０００１−２０００ｍｇ／ｃｍ
２、０．００１−８００ｍｇ／ｃｍ２、０．０１−６００ｍｇ／ｃｍ２、０．１−４００ｍｇ／ｃｍ２、１−２００ｍｇ／ｃｍ２、１−１００ｍｇ／ｃｍ２、１０−１００ｍｇ／ｃｍ２（体表面積平方センチメートルあたりで計算）の用量で投与し、好ましくは少なくとも一回繰り返し、好ましくは毎日投与する。局所投与の場合、前記用量はさらに状況に応じてさらに調整することができる。
【００３６】
もう一方で、本発明はプラスミノゲンの被験者の糖尿病性眼部微小血管障害を予防及び／または治療するための薬物、製品または薬物キットの製造における用途に係る。本発明はさらに新しい糖尿病性眼部微小血管障害を予防及び／または治療する方法に係り、または前記被験者の糖尿病性眼球微小血管障害を予防及び／治療することにおけるプラスミノゲンまたはプラスミンの用途に係り、前記被験者にプラスミノゲンまたはプラスミンを投与することを含む。本発明はもう一方において被験者の糖尿病性眼部微小血管障害を予防及び／治療するためのプラスミノゲンまたはプラスミン、被験者の糖尿病性眼部微小血管障害を予防及び／また治療するためのプラスミノゲンまたはプラスミンを含有する薬物組成物、または被験者の糖尿病性微小血管障害の予防及び／治療に用いる、プラスミノゲンまたはプラスミンを含有する製品または薬物キットに係る。
【００３７】
一つの実施形態において、前記プラスミノゲンと配列２、６、８、１０または１２は少なくとも８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％の配列同一性を有し、且つ依然としてプラスミノゲン活性を有する。一つの実施形態において、プラスミノゲンは配列２、６、８、１０または１２に基づいて、１−１００、１−９０、１−８０、１−７０、１−６０、１−５０、１−４５、１−４０、１−３５、１−３０、１−２５、１−２０、１−１５、１−１０、１−５、１−４、１−３、１−２、１個のアミノ酸を追加、削除及び／または置換したもので、且つ依然としてプラスミノゲン活性を有するタンパク質である。一つの実施形態において、プラスミノゲンはプラスミノゲン活性フラグメントを含有し、且つ依然としてプラスミノゲン活性を有するタンパク質である。一つの実施形態において、プラスミノゲンはＧｌｕ−プラスミノゲン、Ｌｙｓ−プラスミノゲン、ミニプラスミノゲン、マイクロプラスミノゲン、δ−プラスミノゲンまたはそれらの任意の組み合わせから選ばれるものである。一つの実施形態において、プラスミノゲンは以下から選ばれる保存的な置換バリアントである：Ｇｌｕ−プラスミノゲン、Ｌｙｓ−プラスミノゲン、ミニプラスミノゲン、δ−プラスミノゲンまたはマイクロプラスミノゲン。一つの実施形態において、プラスミノゲンはヒト天然プラスミノゲンであり、例えば配列２が示すプラスミノゲンのオルソログであり、例えば、霊長類動物またはげっ歯類動物に由来するプラスミノゲンのオルソログであり、例えばゴリラ、アカゲザル、マウス、ウシ、ウマ、イヌに由来するプラスミノゲンのオルソログである。もっとも好ましくは、本発明のプラスミノゲンのアミノ酸配列は配列２、６、８、１０または１２に示される通りである。
【００３８】
前記の糖尿病性眼部微小血管障害の予防及び治療は網膜無細胞毛細血管の形成、網膜萎縮病変の改善、網膜炎症の修復、及び／または網膜細胞及び血管細胞のアポトーシスを抑制することを含む。
【００３９】
一つの実施形態において、前記プラスミノゲンは適切なポリペプチド担体または安定剤と組み合わせて投与される。一つの実施形態において、前記プラスミノゲンは毎日０．０００１−２０００ｍｇ／ｋｇ、０．００１−８００ｍｇ／ｋｇ、０．０１−６００ｍｇ／ｋｇ、０．１−４００ｍｇ／ｋｇ、１−２００ｍｇ／ｋｇ、１−１００ｍｇ／ｋｇ、１０−１００ｍｇ／ｋｇ（体重一キロあたりで計算）または０．０００１−２０００ｍｇ／ｃｍ２、０．００１−８００ｍｇ／ｃｍ２、０．０１−６００ｍｇ／ｃｍ２、０．１−４００ｍｇ／ｃｍ２、１−２００ｍｇ／ｃｍ２、１−１００ｍｇ／ｃｍ２、１０−１００ｍｇ／ｃｍ２（体表面積平方センチメートルあたりで計算）の用量で投与し、好ましくは少な
くとも一回繰り返し、好ましくは毎日投与する。局所投与の場合、前記用量はさらに状況に応じてさらに調整することができる。
【００４０】
一方において、本発明はプラスミノゲンまたはプラスミンの、被験者の糖尿病によってもたらされる生体組織及び内臓臓器の損傷（ダメージ）を予防及び／または治療するための薬物、製品、薬物キットの製造における用途に係る。一つの実施形態において、前記組織及び内臓臓器の損傷（ダメージ）は大脳、心臓、肝臓、肺臓、腎臓、神経、網膜、皮膚、胃腸管の損傷（ダメージ）を含む。一方において、本発明はプラスミノゲンの被験者の糖尿病合併症を予防及び／または治療するための薬物、製品、薬物キットにおける用途に係る。一つの実施形態において、前記糖尿病合併症は糖尿病によって引き起こされる糖尿病性大脳病変、糖尿病性心臓病変、糖尿病性肝臓病変、糖尿病性腎臓病変、糖尿病性肺臓病変、糖尿病性神経病変、糖尿病網膜症、糖尿病性皮膚病変である。
【００４１】
一方において、本発明は製薬方法に係り、プラスミノゲンまたはプラスミンと薬学的に許容し得る担体から、被験者の糖尿病によってもたらされる生体組織及び内臓臓器の損傷（ダメージ）を予防及び／または治療するための薬物、製品、薬物キットに製造することを含む。一つの実施形態において、前記組織及び内臓臓器の損傷（ダメージ）は大脳、心臓、肝臓、肺臓、腎臓、神経、網膜、皮膚、胃腸管の損傷（ダメージ）を含む。一方において、本発明は製薬方法に係り、プラスミノゲンまたはプラスミンの薬学的に許容し得る担体を、被験者の糖尿病合併症を予防及び／または治療するための薬物、製品、薬物キットに製造することを含む。一つの実施形態において、前記糖尿病合併症は糖尿病によって引き起こされる糖尿病性大脳病変、糖尿病性心臓病変、糖尿病性肝臓病変、糖尿病性腎臓病変、糖尿病性肺臓病変、糖尿病性神経病変、糖尿病網膜症、糖尿病性皮膚病変である。
【００４２】
一方において、本発明は被験者の糖尿病によってもたらされる生体組織及び内臓臓器の損傷（ダメージ）を予防及び／または治療するためのプラスミノゲンまたはプラスミン、プラスミノゲンまたはプラスミンを含有する薬物組成物、製品、薬物キットに係るものである。一つの実施形態において、前記組織及び内臓臓器の損傷（ダメージ）は大脳、心臓、肝臓、腎臓、肺臓、神経、網膜、胃腸管、皮膚の損傷（ダメージ）を含む。一方において、本発明は被験者の糖尿病合併症を予防及び／または治療するプラスミノゲン、プラスミノゲンを含有する薬物組成物、製品または薬物ボックスに係る。一つの実施形態において、前記糖尿病合併症は糖尿病によって引き起こされる糖尿病性大脳病変、糖尿病性心臓病変、糖尿病性肝臓病変、糖尿病性肺臓病変、糖尿病性腎臓病変、糖尿病性神経病変、糖尿病網膜症、糖尿病性皮膚病変である。
【００４３】
一方において、本発明は被験者の糖尿病によってもたらさる生体組織及び内臓臓器損傷（ダメージ）を予防及び／または治療する方法に係り、被験者にプラスミノゲンまたはプラスミン、プラスミノゲンまたはプラスミンを含有する薬物組成物、製品、薬物キットを投与することを含む。本発明はさらにプラスミノゲンまたはプラスミン、プラスミノゲンまたはプラスミンを含有する薬物組成物、製品、薬物キットの被験者の糖尿病によってもたらされる生体組織及び内臓臓器損傷（ダメージ）を予防及び／または治療する用途に係るものである。一つの実施形態において、前記組織及び内臓臓器の損傷（ダメージ）は大脳、心臓、肝臓、肺臓、腎臓、神経、網膜、胃腸管、皮膚に対する損傷（ダメージ）を含む。一方において、本発明は被験者の糖尿病合併症を予防及び／または治療する方法に係り、被験者にプラスミノゲンまたはプラスミン、プラスミノゲンまたはプラスミンを含有する薬物組成物、製品または薬物キットを投与することを含む。本発明はさらにプラスミノゲンまたはプラスミン、プラスミノゲンまたはプラスミンを含有する薬物組成物、製品または薬物キットの、被験者の糖尿病合併症を予防及び／治療することにおける用途を含む。一つの実施形態において、前記糖尿病合併症は糖尿病によって引き起こされた糖尿病性大脳病変、糖尿病性心臓病変、糖尿病性肝臓病変、糖尿病性肺臓病変、糖尿病性腎臓病
変、糖尿病性神経病変、糖尿病網膜症、糖尿病性皮膚病変である。
【００４４】
一つの実施形態において、前記被験者のプラスミンまたはプラスミノゲンは低下している。具体的には、前記低下は先天的、継発的、及び／または局所的なものである。
【００４５】
本発明は本発明の実施形態どうしの技術的特徴のすべての組み合わせを明確にカバーし、且つこれらの組み合わせ後の技術構成は本出願で明確に開示され、前記技術構成が単独且つ明確に開示されているのと一緒である。また、本発明はさらに各実施形態及び要素のすべてのサブの組み合わせをカバーし、さらに本明細書中において開示され、それぞれのサブの組み合わせが単独且つ明確に本明細書中において開示されているのと一緒である。
【図面の簡単な説明】
【００４６】
【図１】２４〜２５週齢の糖尿病マウスに対してプラスミノゲンを３１日間連続的に投与した後の体重変化を示したものである。結果はプラスミノゲンが動物体重に対して影響が大きくないことを示している。
【図２】２４〜２５週齢の糖尿病マウスに対してプラスミノゲンを３１日間連続的に投与した後の網膜のＨＥ観察結果を示したものである。
【図３】２４〜２５週齢の糖尿病マウスに対してプラスミノゲンを３１日間連続的に投与した後の網膜ＰＡＳ染色の観察結果を示したものである。
【図４】２４〜２５週齢の糖尿病マウスに対してプラスミノゲンを３１日間連続的に投与した後の網膜ＶＥＧＦ免疫染色結果を示したものである。
【図５】２４〜２５週齢の糖尿病マウスに対してプラスミノゲンを１５日間連続的に投与した後の血清中Ｄ−二量体の含有量の測定結果を示したものである。
【図６】２４〜２５週齢の糖尿病マウスに対してプラスミノゲンを３１日間連続的に投与した後の網膜Ｂｃｌ−２免疫染色結果を示したものである。
【図７】２４〜２５週齢の糖尿病マウスに対してプラスミノゲンを３１日間連続的に投与した後の血清心筋トロポニンＩ濃度の測定結果を示したものである。
【図８】２４〜２５週齢の糖尿病マウスに対してプラスミノゲンを３１日間連続的に投与した後の腎臓Ｂｃｌ−２免疫染色の観察結果を示したものである。
【図９】２４〜２５週齢の糖尿病マウスに対してプラスミノゲンを３１日間連続的に投与した後の腎臓フィブリン免疫染色の観察結果を示したものである。
【図１０】２４〜２５週齢の糖尿病マウスに対してＰＢＳ（Ａ）またはプラスミノゲン（Ｂ）を３１日間連続的に投与した後の血清ＡＬＴ測定結果を示したものである。
【図１１】２４〜２５週齢のｄｂ／ｄｂマウスに対してプラスミノゲンを３１日間連続的に投与した後の肝臓フィブリン免疫染色の観察結果を示したものである。
【図１２】２４〜２５週齢のｄｂ／ｄｂマウスに対してプラスミノゲンを投与した後の０、４、７、１１、１６日目に行った機械的接触に誘発される疼痛に対する応答能力の測定結果を示したものである。
【図１３】２４〜２５週齢のｄｂ／ｄｂマウスに対してプラスミノゲンを投与した後の０、４、７、１１、１６日目に行った冷刺激に対する感知能力の測定結果を示したものである。
【図１４】２４〜２５週齢の糖尿病後期の神経損傷マウスに対してプラスミノゲンを１５日間投与した後の坐骨神経フィブリン免疫組織染色の観察結果を示したものである。
【図１５】２４〜２５週齢のｄｂ／ｄｂマウスに対してプラスミノゲンを３１日間投与した後の腎臓ＩｇＭ免疫染色の観察結果を示したものである。
【発明を実施するための形態】
【００４７】
１、定義
「糖尿病」は遺伝的要素、免疫機能の乱れ、微生物感染及びその毒素、フリーラジカル毒素、精神要素などの各種病気誘発因子が生体に作用することによってもたらされる、イ
ンスリン減退、インスリン抵抗などによって引き起こされる糖、タンパク質、脂肪、水及び電解質等の一連の代謝の乱れが生じる症候群であり、臨床的には高血糖を主な特徴とする。
【００４８】
「糖尿病合併症」は糖尿病プロセスにおける血糖のコントロール不良によってもたらされる身体のその他の臓器または組織のダメージまたは機能障害であり、肝臓、腎臓、心臓、網膜、神経系のダメージまたは機能障害等を含む。世界保健機関（ＷＨＯ）の統計によれば、糖尿病合併症は１００種類以上あり、現在における合併症が最も多い疾患である。
【００４９】
「糖尿病性微小血管障害」とは糖尿病患者の生体の各臓器または組織の微小循環において異なる程度の異常がもたらす微小血管障害である。微小血管障害が形成するプロセスは概ね以下である：微小循環の機能性改変、内皮損傷、基膜の厚み増大、血液粘度の上昇、赤血球の凝集、血小板の粘着及び凝集、最終的には微小血栓形成及び／または微小血管閉塞をもたらす。「糖尿病性眼部微小血管障害」とは、糖尿病によってもたらされる眼部微小血管障害を言う。
【００５０】
前記「糖尿病性微小血管障害」は組織または臓器の局所血管損傷、血流不順、細胞の酸素欠乏、血液凝塊の形成、血栓及び炎症をもたらし、さらには周辺の組織及び臓器の機能に影響し、これにより「糖尿病合併症」をもたらし、このため、本発明の請求項の技術構成における「糖尿病性微小血管障害」及び「糖尿病合併症」という用語に言及した場合、いずれも糖尿病によって引き起こされる血栓形成をカバーするものである。
【００５１】
「糖尿病性網膜病変」は糖尿病によって引き起こされる網膜組織学及び機能変化の病変であり、主に糖尿病によって引き起こされる微小血管の病変によってもたらされるものである。糖尿病性網膜病変は最もよく見られる糖尿病性眼病であり、よく視力の減退または失明をもたらすことがある。統計によれば、５０％の糖尿病患者は病程１０年前後で該病変が現れ、１５年以上では８０％に達する。糖尿病の病状がひどく、年齢が大きいほど、発病の確率が高い。
【００５２】
「プラスミン」は血液中に存在する非常に重要な酵素であり、フィブリン凝塊をフィブリン分解生成物及びＤ−二量体に加水分解できる。
【００５３】
「プラスミノゲン」はプラスミンの酵素前駆体の形であり、ｓｗｉｓｓ  ｐｒｏｔ中の配列に基づいて、シグナルペプチドを含有する天然ヒト由来プラスミノゲンのアミノ酸配列（配列４）は計算によれば８１０個のアミノ酸からなり、分子量は約９２ｋＤであり、主に肝臓において合成され且つ血液中で循環できる糖タンパク質であり、該アミノ酸配列をコードするｃＤＮＡ配列は配列３に示される通りである。フルサイズのプラスミノゲンは七つのドメインを含む：Ｃ末端に位置するセリンプロテアーゼドメイン、Ｎ末端に位置するＰａｎ  Ａｐｐｌｅ（ＰＡｐ）ドメイン及び５つのＫｒｉｎｇｌｅドメイン（Ｋｒｉｎｇｌｅ１−５）を含む。ｓｗｉｓｓ  ｐｒｏｔ中の配列を参照すれば、そのシグナルペプチドは残基Ｍｅｔ１−Ｇｌｙ１９を含み、Ｐａｐは残基Ｇｌｕ２０−Ｖａｌ９８を含み、Ｋｒｉｎｇｌｅ１は残基Ｃｙｓ１０３−Ｃｙｓ１８１を含み、Ｋｒｉｎｇｌｅ２は残基Ｇｌｕ１８４−Ｃｙｓ２６２を含み、Ｋｒｉｎｇｌｅ３は残基Ｃｙｓ２７５−Ｃｙｓ３５２を含み、Ｋｒｉｎｇｌｅ４は残基Ｃｙｓ３７７−Ｃｙｓ４５４を含み、Ｋｒｉｎｇｌｅ５は残基Ｃｙｓ４８１−Ｃｙｓ５６０を含む。ＮＣＢＩデータによれば、セリンプロテアーゼドメインは残基Ｖａｌ５８１−Ａｒｇ８０４を含む。
【００５４】
Ｇｌｕ−プラスミノゲンは天然のフルサイズのプラスミノゲンであり、７９１個のアミノ酸からなる（１９個のアミノ酸からなるシグナルペプチドを含まない）、該配列をコードするｃＤＮＡ配列は配列１に示される通りであり、そのアミノ酸配列は配列２に示され
る通りである。体内において、さらにＧｌｕ−プラスミノゲンの第７６−７７位のアミノ酸の位置で加水分解することにより形成されたＬｙｓ−プラスミノゲンが存在し、例えば配列６に示されるものであり、該アミノ酸配列をコードするｃＤＮＡ配列は配列５が示す通りである。Δ−プラスミノゲン（δ−ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ）はフルサイズのプラスミノゲンにＫｒｉｎｇｌｅ２−Ｋｒｉｎｇｌｅ５構造の欠損が生じているフラグメントであり、Ｋｒｉｎｇｌｅ１及びセリンプロテアーゼドメインのみしか含有せず（非特許文献１８，１９）、δ−プラスミノゲンのアミノ酸配列（配列８）を報告している文献があり（非特許文献１９）、該アミノ酸配列をコードするｃＤＮＡ配列は例えば配列７に示す通りである。ミニプラスミノゲン（Ｍｉｎｉ−ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ）はＫｒｉｎｇｌｅ５及びセリンプロテアーゼドメインからなり、残基Ｖａｌ４４３−Ａｓｎ７９１（シグナルペプチドＧｌｕ−プラスミノゲン配列を含まないＧｌｕ残基を開始アミノ酸とする）について文献が報告しており（非特許文献２０）、そのアミノ酸配列は配列１０に示される通りであり、該アミノ酸配列をコードするｃＤＮＡ配列は配列９が示す通りである。しかしマイクロプラスミノゲン（Ｍｉｃｒｏ−ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ）はセリンプロテアーゼドメインのみ含有し、そのアミノ酸配列は残基Ａｌａ５４３−Ａｓｎ７９１（シグナルペプチドを含まないＧｌｕ−プラスミノゲン配列のＧｌｕ残基は開始アミノ酸である）と文献が報告し（非特許文献２１）、特許文献ＣＮ１０２１５４２５３Ａはそれが残基Ｌｙｓ５３１−Ａｓｎ７９１を含むと開示し（シグナルペプチドを含まないＧｌｕ−プラスミノゲン配列のＧｌｕ残基を開始アミノ酸とする）、本特許の配列は特許文献ＣＮ１０２１５４２５３Ａを参照でき、そのアミノ酸配列は配列１２に示される通りであり、該アミノ酸配列をコードするｃＤＮＡ配列は配列１１に示される通りである。
【００５５】
本発明の「プラスミン」と「フィブリンプラスミン」、「繊維タンパクプラスミン」は互いに置き換えて使用でき、その意味は同じである。「プラスミノゲン」と「フィブリンプラスミノゲン」、「繊維タンパクプラスミノゲン」は互いに置き換えて使用でき、その意味は同じである。
【００５６】
循環プロセスにおいて、プラスミノゲンは閉鎖した非活性コンフォメーションであるが、血栓または細胞表面に結合した際、プラスミノゲン活性化剤（ｐｌａｓｍｉｎｏｇｅｎ
ａｃｔｉｖａｔｏｒ，ＰＡ）の介在下において、開放性のコンフォメーションを有する活性プラスミンとなる。活性を有するプラスミンはさらにフィブリン凝塊をフィブリン加水分解生成物及びＤ−二量体に加水分解して、これにより血栓を溶解させる。そのうちプラスミノゲンのＰａｐドメインはプラスミノゲンを非活性閉鎖コンフォメーションに維持する重要な決定クラスターであり、しかしＫＲドメインは受容体及び基質上のリシン残基と結合できるものである。プラスミノゲン活性化剤としての酵素は、既に複数種類知られ、以下を含む：組織プラスミノゲン活性化剤（ｔＰＡ）、ウロキナーゼプラスミノゲン活性化剤（ｕＰＡ）、カリクレイン及び凝結因子ＸＩＩ（ハーゲマン因子）などである。
【００５７】
「プラスミノゲン活性フラグメント」とはプラスミノゲンのタンパク質において、基質中のターゲット配列と結合してタンパク質加水分解機能を発揮できる活性フラグメントである。本発明はプラスミノゲンの技術構成に係り、プラスミノゲン活性フラグメントでプラスミノゲンの代替とする技術構成を含む。本発明に記載のプラスミノゲン活性フラグメントはプラスミノゲンのセリンプロテアーゼドメインを含むタンパク質であり、好ましくは、本発明に記載のプラスミノゲン活性フラグメントは配列１４、配列１４と少なくとも８０％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％の同一性のアミノ酸配列を含有するタンパク質を含むものである。そのため、本発明に記載のプラスミノゲンは該プラスミノゲン活性フラグメントを含み、且つ依然として該プラスミノゲン活性を有するタンパク質を含む。
【００５８】
現在、血液中のプラスミノゲン及びその活性測定方法は以下を含む：組織フィブリンプ
ラスミノゲン活性化剤の活性に対する測定（ｔ−ＰＡＡ）、血漿組織プラスミノゲン活性化剤抗原に対する測定（ｔ−ＰＡＡｇ）、血漿組織プラスミノゲン活性に対する測定（ｐｌｇＡ）、血漿組織プラスミノゲン抗原に対する測定（ｐｌｇＡｇ）、血漿組織プラスミノゲン活性化剤の阻害物活性に対する測定、血漿組織プラスミノゲン活性化剤の阻害物抗原に対する測定、血漿プラスミン−抗プラスミン複合物に対する測定（ＰＡＰ）。最もよく見られる測定方法は発色基質法である：測定対象の血漿中にストレプトキナーゼ（ＳＫ）と発光基質を添加し、測定対象の血漿中のＰＬＧはＳＫの作用下においてＰＬＭとなり、後者は発光基質に作用し、その後に分光光度計で測定し、吸光度の増加はプラスミノゲンの活性と正比例関係となる。この他にも免疫化学法、ゲル電気泳動法、免疫比濁法、放射免疫拡散法などを用いて血液中のフィブリンプラスミノゲン活性に対して測定を行う。
【００５９】
「オルソロジー（ｏｒｔｈｏｌｏｇｙ）」とは異なる種どうしのオルソログ（ｏｒｔｈｏｌｏｇ）であり、タンパク質の相同物もＤＮＡの相同物も含む。それは具体的に異なる種どうしの同じ祖先の遺伝子から進化して得られるタンパク質または遺伝子を言う。本発明のプラスミノゲンはヒト天然プラスミノゲンを含み、さらには異なる種に由来する、プラスミノゲン活性を有するプラスミノゲン直系同源物または直系同系物である。
【００６０】
「保存的置換バリアント」とはそのうちの一つの指定されたアミノ酸残基が改変されたがタンパク質または酵素の全体のコンフォメーション及び機能を変えないものであり、これは類似の特性（例えば酸性、アルカリ性、疎水性など）のアミノ酸でペアレントタンパク質中のアミノ酸配列中のアミノ酸を置換するものを含むがこれらに限られない。類似の性質を有するアミノ酸は知られている通りである。例えば、アルギニン、ヒスチジン及びリシンは親水性のアルカリ性アミノ酸であり且つ互いに置き換えることができる。同じように、イソロイシンは疎水アミノ酸であり、ロイシン、メチオニンまたはバリンによって置換されることができる。そのため、機能の類似する二つのタンパク質またはアミノ酸配列の類似性は異なる可能性もある。例えば、ＭＥＧＡＬＩＧＮアルゴリズムに基づいて７０％〜９９％の類似性（同一性）を有する。「保存的置換バリアント（変異体）」はさらにＢＬＡＳＴまたはＦＡＳＴＡアルゴリズムに基づいて６０％以上のアミノ酸同一性を有するポリペプチドまたは酵素を含み、７５％以上に達すればさらによく、最も好ましくは８５％以上に達し、さらには９０％以上に達するのが最も好ましく、さらに天然またはペアレントタンパク質または酵素と比較して同じまたは基本的に類似する性質または機能を有する。
【００６１】
「分離された」プラスミノゲンとは天然環境から分離及び／または回収されたプラスミノゲンタンパク質である。いくつかの実施形態において、前記プラスミノゲンは（１）９０％を超える、９５％を超える、または９８％を超える純度（重量で計算した場合）になるまで精製され、例えばＬｏｗｒｙ法によって決まるもので、例えば９９％（重量で計算した場合）を超えるまで精製される、（２）少なくともスピニングカップ配列分析装置によりＮ末端または内部アミノ酸配列の少なくとも１５個の残基が得られる程度になる精製される、または（３）同質性になるまで精製される。該同質性はクマシーブリリアントブルーまたは銀染色により還元性または非還元性条件下のドデシル硫酸ナトリウムーポリアクリルアミノゲル電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）によって決まるものである。分離されたプラスミノゲンはバイオエンジニアリング技術により組み換え細胞から製造することができ、さらに少なくとも一つの精製ステップで分離されたプラスミノゲンを含む。
【００６２】
用語の「ポリペプチド」、「ペプチド」及び「タンパク質」は本明細書において互いに置き換えて使用でき、いかなる長さのアミノ酸の重合体をも指し、遺伝的にコードされた及び非遺伝的にコードされたアミノ酸、化学的または生化学的に修飾されまたは派生したアミノ酸、及び修飾されたペプチド主鎖を有するポリペプチドを含む。該用語は融合タンパク質を含み、異種性アミノ酸配列を有する融合タンパク質を含むがこれに限られず、異
種性と同種性由来のリーダー配列（Ｎ端メチオニン残基を有するか有しない）を含む融合物；等々である。
【００６３】
参照ペプチド配列の「アミノ酸配列同一性パーセンテージ（％）」の定義は、必要な時にギャップを導入することで最大のパーセンテージ配列の同一性を実現した後、如何なる保存的な置換も配列同一性の一部として見なさない場合、候補配列中における参照ポリペプチド配列中のアミノ酸残基と同じアミノ酸残基のパーセンテージである。パーセンテージのアミノ酸配列の同一性を測定することを目的とした比較は本分野の技術範囲における複数種類の方式によって実現でき、例えば公衆が入手できるコンピュータソフトウエア、例えばＢＬＡＳＴ、ＢＬＡＳＴ−２、ＡＬＩＧＮまたはＭｅｇａｌｉｇｎ（ＤＮＡＳＴＡＲ）ソフトウエアによって実現できる。当業者は引用配列の適切なパラメータを決めることができ、比較対象の配列のフルサイズを比較することで最大比較の要求を実現するための如何なるアルゴリズムも含む。しかし、本発明の目的のために、アミノ酸配列の同一性パーセンテージは配列比較コンピュータソフトウエアＡＬＩＧＮ−２により得られるものである。
【００６４】
ＡＬＩＧＮ−２を用いることによりアミノ酸配列を比較する場合、アミノ酸配列Ａと所定のアミノ酸配列Ｂのアミノ酸配列同一性％（または所定のアミノ酸配列Ｂのあるアミノ酸配列と同一性を有する所定のアミノ酸配列Ａの占める％）は以下のように計算される：
分数Ｘ／Ｙ×１００
【００６５】
そのうちＸは配列比較プログラムＡＬＩＧＮ−２において該プログラムのＡ及びＢの比較において同一でマッチングすると評価したアミノ酸残基の数であり、且つそのうちＹはＢにおけるアミノ酸残基の総数である。以下のように理解するべきである：アミノ酸配列Ａの長さとアミノ酸配列Ｂの長さが等しくない場合、ＡのＢに対するアミノ酸配列の同一性％は、ＢのＡに対するアミノ酸配列同一性％とは異なる。明確に説明した場合を除き、本文中において使用するすべてのアミノ酸配列同一性値％は前記の段落に記載の通りであり、ＡＬＩＧＮ−２コンピュータプログラムによって得られるものである。
【００６６】
本文において使用されているように、用語の「治療」及び「処理」は期待される薬理及び／または生理的効果が得られることを言う。前記効果は疾患またはその症状を完全または一部予防すること、及び／または疾患及び／またはその症状を一部または完全に治癒するものとすることができる。さらに以下を含む：（ａ）疾病が被験者の体内で発生することを予防し、前記被験者は疾患の要因を持っているが、該疾患を有すると診断されていない状況である；（ｂ）疾患を抑制し、その形成を阻害する；及び（ｃ）疾患及び／またはその症状を減軽し、即ち疾患及び／またはその症状を減退させる。
【００６７】
用語の「個体」、「被験者」及び「患者」は本明細書中において互いに置き換えて使用でき、哺乳動物を指し、ネズミ（ラット、マウス）、ヒト以外の霊長類、ヒト、イヌ、ネコ、有蹄動物（例えばウマ、ウシ、ヒツジ、ブタ、ヤギ）などを含むがこれらに限られない。
【００６８】
「治療上有効量」または「有効量」とは、哺乳動物またはその他の被験者に投与され、疾患の治療に用いられる際に疾患の前記予防及び／または治療を実現するプラスミノゲンの量である。「治療上有効量」は使用するプラスミノゲン、治療しようとする被験者の疾患及び／または症状の重症度及び年齢、体重などに従って変化するものである。
【００６９】
２、本発明のプラスミノゲンの製造
プラスミノゲンは自然界から分離及び精製され、さらに治療の用途に用いられるものであり、さらには標準的な化学ペプチド合成技術によって合成することができる。化学的手
法によりポリペプチドを合成する際、液相または固相で合成を行うことができる。固相ポリペプチド合成（ＳＰＰＳ）（配列のＣ末端アミノ酸を不溶性支持体に附着させ、順番に配列中の残りのアミノ酸を添加する）はプラスミノゲンの化学的合成に適したものである。各種形式のＳＰＰＳ、例えばＦｍｏｃ及びＢｏｃは、プラスミノゲンの合成に用いることができる。固相合成に用いられる技術は以下に記載されている：Ｂａｒａｎｙ及びＳｏｌｉｄ−Ｐｈａｓｅ  Ｐｅｐｔｉｄｅ  Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ；３−２８４ページ、Ｔｈｅ
Ｐｅｐｔｉｄｅｓ：Ａｎａｌｙｓｉｓ，Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ，Ｂｉｏｌｏｇｙ．第二巻：Ｓｐｅｃｉａｌ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｐｅｐｔｉｄｅ  Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ，Ｐａｒｔ  Ａ．，Ｍｅｒｒｉｆｉｅｌｄ，ｔら  Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，８５：２１４９−２１５６（１９６３）；Ｓｔｅｗａｒｔら，Ｓｏｌｉｄ  Ｐｈａｓｅ  Ｐｅｐｔｉｄｅ  Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ，２ｎｄ  ｅｄ．Ｐｉｅｒｃｅ  Ｃｈｅｍ．Ｃｏ．，Ｒｏｃｋｆｏｒｄ，Ｉｌｌ．（１９８４）；及びＧａｎｅｓａｎ  Ａ．２００６Ｍｉｎｉ  Ｒｅｖ．Ｍｅｄ  Ｃｈｅｍ．６：３−１０及びＣａｍａｒｅｒｏ  ＪＡら  ２００５Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｐｅｐｔ  Ｌｅｔｔ．１２：７２３−８。簡単に言えば、その上にペプチド鎖の機能性ユニットにより不溶性の多孔ビーズを処理する。カップリング／脱保護の繰り返し循環後に、附着した固相の遊離Ｎ末端アミンと単一のＮ保護を受けているアミノ酸ユニットをカップリングさせる。それから、該ユニットを脱保護し、他のアミノ酸と接続する新しいＮ末端アミンを露出させる。ペプチドを固相上に固定したままにし、それからそれを切除する。
【００７０】
標準的な組み換え方法により本発明のプラスミノゲンを生産する。例えば、プラスミノゲンをコードする核酸を発現ベクター中に挿入し、それと発現ベクター中の制御配列を操作可能に連結させる。発現制御配列はプロモーター（例えば天然に関連されているプロモーター、または異種由来のプロモーター）、シグナル配列、エンハンサー素子及び転写終了配列を含むが、これらに限られない。発現の制御はベクター中の真核プロモーター系とすることができ、前記ベクターは真核宿主細胞（例えばＣＯＳまたはＣＨＯ細胞）を形質転換またはトランスフェクションさせる。一旦ベクターを適切な宿主に導入すれば、ヌクレオチド配列の高レベル発現及びプラスミノゲンの収集及び精製の条件下において宿主を維持できる。
【００７１】
適切な発現ベクターは通常宿主体内において附加体または宿主染色体ＤＮＡの整合部分として複製される。通常、発現ベクターは選択マーカー（例えばアンピシリン耐性、ハイグロマイシン耐性、テトラサイクリン耐性、カナマイシン耐性またはネオマイシン耐性）を含み、外部由来に期待のＤＮＡ配列によって形質転換されたそれらの細胞に対して測定を行うことに有用である。
【００７２】
大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ）はクローンするターゲット抗体をコードするポリヌクレオチドの原核宿主細胞の例である。その他の使用に適した微生物宿主は桿菌を含み、例えばバチルス・サブチリス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ  ｓｕｂｔｉｌｉｓ）及びその他の腸内細菌科（Ｅｎｔｅｒｏｂａｃｔｅｒｉａｃｅａｅ）、例えばサルモネラ属（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ）、セラチア属（Ｓｅｒｒａｔｉａ）、及び各種シュードモナス属（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）種である。これらの原核宿主において、発現ベクターを生成でき、通常は宿主細胞と許容する発現制御配列（例えば複製開始点）を含むものである。また、多くの公知のプロモーターが存在し、例えば乳糖プロモーター系、トリプトファン（ｔｒｐ）プロモーター系、β−ラクタマーゼプロモーター系、またはファージλ由来のプロモーター系である。プロモーターは通常発現を制御し、遺伝子配列を操縦する場合、さらにリボソームの結合位置配列を有し、転写及び翻訳を起動させてもよい。
【００７３】
その他の微生物、例えば酵母も発現に用いることができる。酵母（例えば出芽酵母（Ｓ．ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ））及びピキア（Ｐｉｃｈｉａ）が適した酵母宿主細胞の例であ
り、そのうちの適切な担体は必要に応じて発現制御配列（例えばプロモーター）、複製開始点、終止配列など含む。典型的なプロモーターは３−ホスホグリセリン酸キナーゼ及びその他の糖分解酵素を含む。誘導型酵母はエタノール脱水素酵素、イソ細胞色素Ｃ、及び麦芽糖とガラクトースの利用のための酵素のプロモーターによって起動される。
【００７４】
微生物以外に、哺乳動物細胞（例えば体外細胞培養物中において培養された哺乳動物細胞）も本発明のプラスミノゲンの発現に用いることができる（例えばターゲット抗−Ｔａｕ抗体をコードするポリヌクレオチド）。Ｗｉｎｎａｃｋｅｒ，Ｆｒｏｍ  Ｇｅｎｅｓ  ｔｏ  Ｃｌｏｎｅｓ，ＶＣＨ  Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ，Ｎ．Ｙ．，Ｎ．Ｙ．（１９８７）参照。適した哺乳動物宿主細胞はＣＨＯ細胞系、各種Ｃｏｓ細胞系、ＨｅＬａ細胞、骨髄腫細胞系、及び形質転換されたＢ細胞またはハイブリドーマである。これらの細胞に用いられる発現ベクターは発現制御配列、例えば複製開始点、プロモーター、及びエンハンサー（Ｑｕｅｅｎら，Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｒｅｖ．８９：４９（１９８６））、及び必要とされる加工情報位置、例えばリボソームの結合位置、ＲＮＡの切断位置、ポリアデノシン酸化位置、及び転写終止子配列を含むことができる。適切な発現制御配列の例はウサギ免疫グロブリン遺伝子、ＳＶ４０、アデノウイルス、ウシ乳頭腫ウィルス、サイトメガロウイルスなどの派生のプロモーターである。Ｃｏら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４８：１１４９（１９９２）を参照すること。
【００７５】
一旦合成（化学または組み換え方式）されれば、本分野の標準的な手順、例えば硫酸アンモニウム沈殿、アフィニテイカラム、カラムクロマトグラフィー、高速液相クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）、ゲル電気泳動などにより本発明に記載のプラスミノゲンを精製することができる。該プラスミノゲンは基本的に純粋なものであり、例えば少なくとも約８０％から８５％の純度で、少なくとも約８５％〜９０％の純度で、少なくとも約９０％〜９５％の純度で、または９８％〜９９％の純度またはさらに純度が高いものであり、例えば汚染物を含まず、前記汚染物は例えば細胞砕片、ターゲット抗体以外の大分子などである。
【００７６】
３、薬物配合剤
必要とする純度のプラスミノゲンと選択可能な薬用担体、賦形剤、または安定剤（Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，第１６版，Ｏｓｏｌ，Ａ．ｅｄ．（１９８０））を混合して凍結乾燥製剤または水溶液を形成して治療用の配合剤を得る。許容可能な担体、賦形剤、安定剤は所要の用量及び濃度下において被験者に対して毒性がなく、さらに例えばリン酸塩、クエン酸塩及びその他の有機酸などの緩衝剤を含む。抗酸化剤はアスコルビン酸和メチオニンを含む；防腐剤（例えばベンジルジメチルステアリルアンモニウムクロリド水和物；塩化ヘキサメチレンジアミン；塩化ベンザルコニウム（ｂｅｎｚａｌｋｏｎｉｕｍ  ｃｈｌｏｒｉｄｅ）、ベンゼトニウムクロリド；フェノール、ブタノールまたはベンジルエタノール；アルキルパラヒドロキシ安息香酸エステル、例えばメチルまたはプロピルのパラヒドロキシ安息香酸エステル；ピロカテコール；レソルシノール；シクロヘキサノール；３−ペンチルエタノール；ｍ−クレゾール）；低分子量ポリペプチド（少なくとも１０個の残基を有するもの）；タンパク質例えば血清アルブミン、ゼラチン、または免疫グロブリン；親水性重合体、例えばポリゼニールピロリドン；アミノ酸、例えばグリシン、グルタミン、アスパラギン酸、ヒスチジン、アルギニンまたはリシンである；単糖、二糖及びその他の炭水化物はブドウ糖、マンノース、またはデキストリンを含む；キレート剤は例えばＥＤＴＡである；糖類は例えばショ糖、マンニトール、フコースまたはソルビトールである；塩形成イオン、例えばナトリウム；金属複合体（例えば亜鉛−タンパク複合体）；及び／または非イオン界面活性剤、例えばＴＷＥＥＮＴＭ、ＰＬＵＲＯＮＩＣＳＴＭまたはポリエチレングリコール（ＰＥＧ）である。好ましくは凍結乾燥された抗−ＶＥＧＦ抗体配合剤であり、ＷＯ  ９７／０４８０１に記載されているとおりであり、本明細書において参考とされるものである。
【００７７】
本発明の配合剤は治療を必要とする具体的な症状の必要とする一種類以上の活性化合物を含有してもよく、好ましくは活性が相補的で互いに副作用を有しないものである。例えば、血圧降下薬、抗不整脈薬、糖尿病治療薬等である。
【００７８】
本発明のプラスミノゲンは例えば凝集技術または界面重合によって作られるマイクロカプセル中に被包されることができ、例えば、膠質薬物輸送系（例えば、リポソーム、アルブミンミクロスフェア、マイクロエマルジョン剤、ナノ粒子及びナノカプセル）中に入れまたはエマルジョン状液中のヒドロキシメチルセルロースまたはゲルーマイクロカプセル及びポリ―（メタアクリル酸メチル）マイクロカプセル中に入れることができる。これらの技術は以下に開示されている。Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ  １６ｔｈ  ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｏｓｏｌ，Ａ．Ｅｄ．（１９８０）。
【００７９】
体内に投与することに用いられる本発明のプラスミノゲンは必ず無菌である必要がある。これは凍結乾燥及び再度配合する前または後に除菌ろ過膜でろ過することで容易に実現できる。
【００８０】
本発明のプラスミノゲンは緩衝製剤を調製できる。緩衝製剤の適切な実例は一定の形状を有し且つ糖タンパクを含む固体の疎水性重合体の半透過基質を含み、例えば膜またはマイクロカプセルである。緩衝基質の実例はポリエステル、水性ゲル（例えばポリ（２−ヒドロキシエチル−メタアクリル酸エステル）（Ｌａｎｇｅｒら，Ｊ．Ｂｉｏｍｅｄ．Ｍａｔｅｒ．Ｒｅｓ．，１５：１６７−２７７（１９８１）；Ｌａｎｇｅｒ，Ｃｈｅｍ．Ｔｅｃｈ．，１２：９８−１０５（１９８２））またはポリ（ビニールエタノール）、ポリラクチド（米国特許３７７３９１９，ＥＰ  ５８，４８１）、Ｌ−グルタミン酸とγメチル−Ｌ−グルタミン酸の共重合体（Ｓｉｄｍａｎ，ら，Ｂｉｏｐｏｌｙｍｅｒｓ  ２２：５４７（１９８３）），分解できないエチレン−ビニルアセテート（ｅｔｈｙｌｅｎｅ−ｖｉｎｙｌ  ａｃｅｔａｔｅ）（Ｌａｎｇｅｒ，ら，出所は前記と同じ）、または分解可能な乳酸−ヒドロキシ酢酸共重合体、例えばＬｕｐｒｏｎ  ＤｅｐｏｔＴＭ（乳酸−ヒドロキシ酢酸共重合体及びリュープロレリン（ｌｅｕｐｒｏｌｉｄｅ）酢酸エステルからなる注射可能なミクロスフェア体）、及びポリＤ−（−）−３−ヒドロキシ酪酸を含む。重合体、例えばエチレン−酢酸エチル及び乳酸−ヒドロキシ酢酸は、持続的に１００日間以上分子を放出することができ、しかしいくつかの水性ゲルがタンパク質を放出する時間は比較的短い。関連のメカニズムに応じてタンパク質を安定化させる合理的なストラテジーにより設計できる。例えば、凝集のメカニズムが硫化ジスルフィド結合の交換によって分子間Ｓ−Ｓ結合を形成するであれば、メルカプト基残基を修飾することにより、酸性溶液中から凍結乾燥させ、湿度を制御し、適切な添加剤を用いて、及び特定の重合体基質組成物を開発することで安定化を実現する。
【００８１】
４、投与及び用量
異なる方式、例えば静脈内、腹膜内、皮下、頭蓋骨内、髄腔内、動脈内（例えば頸動脈）、筋肉内、鼻内、体表または皮内投与または脊髄または脳内輸送により本発明の薬物組成物の投与を実現できる。エアロゾル製剤例えば鼻噴霧製剤は活性剤を含有する精製した水性またはその他の溶液及び防腐剤と等張剤を含有する。眼内に投与する場合はこのような製剤を眼結膜と許容し得るｐＨ及び等張状態に調整する必要がある。
【００８２】
胃腸外での投与に用いられる製造物は無菌水性または非水性溶液、懸濁液及び乳剤を含む。非水性溶媒の例はプロピレングリコール、ポリエチレングリコール、オリーブオイルのような植物油、及び注射可能な有機エステル、例えばオレイン酸エチルである。水性担体は水、エタノール性／水性溶液、乳剤または懸濁液を含み、食塩水及び緩衝媒介を含む
。胃腸外媒介物は塩化ナトリウム溶液、リンガーデキストロース、デキストロース及び塩化ナトリウム、または固定油である。静脈内媒介物は液体及び栄養補充物、電気分解補充物などを含む。されには防腐剤及びその他の添加剤、例えば抗微生物製剤、抗酸化剤、キレート剤、不活性ガスなども存在してもよい。
【００８３】
医療関係者は各種臨床的要素により用量の案を決めることができる。例えば医学分野で公知のように、任意の患者の用量は複数の要素によって決められ、これらの要素は患者の体型、体表面積、年齢、投与される具体的な化合物、性別、投与回数及び経路、全体の健康度、及び同時に投与するその他の薬物を含む。本発明が含有するプラスミノゲンの薬物組成物の用量の範囲は例えば被験者体重に対して毎日約０．０００１〜２０００ｍｇ／ｋｇであり、または約０．００１〜５００ｍｇ／ｋｇ（例えば０．０２ｍｇ／ｋｇ，０．２５ｍｇ／ｋｇ，０．５ｍｇ／ｋｇ，０．７５ｍｇ／ｋｇ，１０ｍｇ／ｋｇ，５０ｍｇ／ｋｇなど）である。例えば、用量は１ｍｇ／ｋｇ体重または５０ｍｇ／ｋｇ体重または１−５０ｍｇ／ｋｇの範囲とすることができ、または少なくとも１ｍｇ／ｋｇである。この例示性の範囲より高いまたは低い用量もカバーされ、特に前記の要素を考慮した場合である。前記範囲中の中間用量も本発明の範囲内に含まれるものである。被験者は毎日、隔日、毎週または経験分析によって決められた任意のスケジュール表に従ってこのような用量を投与できる。例示的な用量の日程表は連続数日１−１０ｍｇ／ｋｇ投与することである。本発明の薬物の投与過程において糖尿病網膜症及びその関連疾患の治療効果及び安全性はリアルタイムに評価、定期的に評価すべきである。
【００８４】
５、治療効力及び治療安全性
本発明の一つの実施形態はプラスミノゲン／プラスミンを用いて被験者を治療した後、治療効力及び治療安全性に対して判断を行うことに係る。そのうち前記治療効力を判断する方法は以下を含むが、これらに限られない：１）被験者の視力の矯正、本発明中のプラスミノゲンを用いて被験者に対して治療を行った後、患者の視力が回復また改善されることが予期される。例えば、患者の視力、立体視覚、コントラスト感受度、暗さへの適応、色覚及び視野が回復または改善されることが予期される；２）電気生理学的検査：例えば網膜電図、眼電図、視覚誘発電位などを含む；３）眼底検査：直接、間接的な眼底鏡検査、三面鏡下における細隙灯検査、眼底蛍光血管造影、ＯＣＴなどを含む；４）視神経検査、被験者の神経病変、眼外筋麻痺、調節障害及び視神経萎縮などの検査を含み、被験者が本発明のプラスミノゲン治療を受けた後、視神経機能が修復または改善されることが予期される；５）屈折異常、血糖の上昇は房水の浸透圧低下を引き起こし、房水が硝子体内に浸透し、硝子体の屈折度が変化して近視となり、血糖が低下する際に房水の浸透圧が上昇し、硝子体内の水分が外に浸透し、相対的な遠視を形成し、被験者は本発明のプラスミノゲン治療を受けた後に、視神経機能が回復または改善されることが予期される；6)眼圧検査、被験者は本発明のプラスミノゲン治療を受けた後に眼圧が正常に回復または改善され、例えば１０〜２１ｍｍＨｇ間になることが予期される。また、本発明はさらにプラスミノゲンを用いて被験者に対して治療を行う過程中及び過程後において、薬物の不良反応に対してモニタリング及び評価を行うことに係る。
【００８５】
６、製品または薬物キット
本発明の一つの実施形態は製品または薬物キットに係るものであり、糖尿病によって引き起こされる網膜病変及びその関連疾患の治療に用いられる本発明のプラスミノゲンを含有する。前記製品は好ましくは一つの容器、ラベルまたはパンフレットを含む。適切な容器はボトル、小瓶、注射器などである。容器は各種材料例えばガラスまたはプラスチックから作られることができる。前記容器は組成物を含有し、前記組成物は本発明の疾患または症状を有効に治療し且つ無菌の入口を有する（例えば前記容器は静脈輸液用パックまたは小瓶であり、皮下注射針によって貫通される栓を含む）。前記組成物中の少なくとも一種類の活性化剤がプラスミノゲン／プラスミンである。前記容器上にあるまたは添付され
ているラベルは前記組成物を本発明の前記糖尿病によって引き起こされる網膜病変及びその関連疾患の治療に用いられると説明するものである。前記製品はさらに薬用緩衝液を含有する第二容器を含み、前記薬用緩衝液は例えばリン酸塩緩衝の食塩水、リンガー溶液及びブドウ糖溶液である。さらには商業及び使用者の角度から見ると必要とされるその他の物質、即ちその他の緩衝液、希釈剤、濾過物、針及び注射器を含むことができる。また、前記製品は使用説明を有するパンフレットを含み、これは例えば前記組成物の使用者にプラスミノゲン組成物及び疾患の治療に伴うその他の薬物を患者に投与することを指示するものである。
【００８６】
＜実施例＞
１、実験動物
Ｃ５７ＢＬＫＳ由来のｄｂ／ｄｂ糖尿病マウスを使用し、Ｃ５７ＢＬＫＳ由来のｄｂ／＋ヘテロ接合体マウスを健常コントロール（対照）とし、それは南京生物医薬研究所から購入されたものである。ｄｂ／ｄｂマウスの１０周齢以上で血糖レベルが１５ｍＭより高いマウスを実験に用いて、対照グループとしては同齢の血糖レベルが７．８ｍＭ未満のｄｂ／＋ヘテロ接合体マウスを使用する。動物は中国国家基準に満たす実験動物使用環境に適合した環境で飼育されたものである。
【００８７】
２、実験の設計：
選出されたマウスをランダムに２つのグループに分け、即ちｄｂ／ｄｂモデルグループ（モデルグループ）及びｄｂ／ｄｂプラスミノゲン治療グループ（治療グループ）とする。選出されたｄｂ／ｄｂマウスは２４−２５週齢に網膜病変が生じ、それから尾部からの静脈注射方式によりプラスミノゲンを投与し、投与量は約２ｍｇ／０．２ｍＬ／匹／日であり、実験周期は３１日間であり、プラスミノゲンを投与する当日を実験の１日目と記録する。プラスミノゲンを投与する前日と実験後の毎週においてすべてのグループの動物に対して関連の測定を行う。
【００８８】
３、網膜血管準備及びそのＰＡＳ染色及び無細胞毛細血管のカウント：
文献（非特許文献２２〜２４）の報道を参照して、網膜血管を準備する。具体的なステップは以下である：マウスの眼球を摘出してからすぐに４％パラホルムアルデヒドＰＢＳ緩衝液中で終夜固定させる。眼球から網膜を分離させた後に室温条件下において水で終夜洗い流し、それから３７℃条件下において３％パンクレアチン（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，Ｇｒａｎｄ  Ｉｓｌａｎｄ，ＮＹ）で２−３ｈ消化する。組織を純水中に移し、解剖顕微鏡下において周囲附着組織上から網膜血管を分離させ、きれいなスライドガラス上に固定させ、自然に充分に乾燥させてからＰＡＳ溶液中で染色し、水で洗い流してから脱水して封入を行う。製造された網膜血管を顕微鏡下で観察する。ＰＡＳ染色密度はＩｍａｇｅ−Ｐｒｏ  Ｐｌｕｓ  ６．０ソフトウエアを用いて分析が行われる。
【００８９】
網膜中部の４〜６視野中の無細胞毛細血管数をランダムにカウントする。細胞核がなく、毛細血管壁しかない毛細血管を無細胞毛細血管と言う（非特許文献２５）。データは１０ｍｍ２あたりの無細胞毛細血管数で示される。
【００９０】
４、網膜のパラフィン切片のＨＥ染色：
マウスの眼球を摘出してから４％パラホルムアルデヒドＰＢＳ緩衝液中で２４−４８時間固定させ、固定した後の眼球はエタノールで段階的に脱水してからキシレンで透明にしてからパラフィンで包埋させる。それからパラフィン切片に対してＨＥ染色を行い、顕微鏡下で網膜病変を観察する。
【００９１】
５、網膜ＶＥＧＦ、ｂｃｌ−２、Ｆ４／８０、フィブリン免疫組織染色（非特許文献２２、２６）
眼球に対して通常パラフィン切片を作り、脱パラフィンして再水和させてから、切片に対して高温修復を１５ｍｉｎ行う。過酸化水素水で１５分間インキュベーションする。１０％の正常ヒツジ血清液（Ｖｅｃｔｏｒｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）を用いて１時間封止を行い、一次抗体を４℃で終夜インキュベーションし、ＴＢＳで洗い流し、二次抗体を滴加し、室温で１時間インキュベーションし、顕色させる。ヘマトキシリンで再度染色させ、段階的に透明になるまで脱水してから封入を行い、観察に備える。各眼球に対して２枚の構造が完全な網膜切片を取り、それぞれの切片に対してランダムに５つの視野を選択し、Ｉｍａｇｅ−Ｐｒｏ  Ｐｌｕｓ  ６．０画像処理ソフトウエアで各グループの染色エリアの平均光学密度値を分析する。
【実施例１】
【００９２】
実施例１はプラスミノゲンの糖尿病マウスの体重に対する影響に関するものである。
【００９３】
２４−２５週齢のｄｂ／ｄｂオスマウス２０匹を取り、ランダムに二つのグループに分け、溶媒ＰＢＳ投与対照グループとプラスミノゲン投与グループで、各グループ１０匹である。実験開始当日を０日目として体重計測してグループ分けを行い、実験２日目からプラスミノゲンまたはＰＢＳを投与してさらに１日目と記録し、３１日間連続的に投与する。プラスミノゲン投与グループのマウスに対して２ｍｇ／０．２ｍＬ／匹／日に応じて尾部静脈からプラスミノゲンを注射し、溶媒ＰＢＳ投与対照グループに対して同じ体積のＰＢＳを投与する。０、４、７、１１、１６、２１、２６、３１日目にそれぞれ体重を測定する。
【００９４】
結果が示すように、プラスミノゲン投与グループと溶媒ＰＢＳ投与対照グループは０、４、７、１１、１６、２１、２６、３１日目に顕著な体重の差異が見られない（図１）。これはプラスミノゲンが動物の体重に対して影響が大きくないことを示している。
【実施例２】
【００９５】
実施例２はプラスミノゲンの糖尿病マウス網膜に対する保護作用に関するものである。
【００９６】
２４−２５週齢のｄｂ／ｄｂオスマウス２０匹を取り、ランダムに二つのグループに分け、溶媒ＰＢＳ投与対照グループ及びプラスミノゲン投与グループで、各グループ１０匹である。実験開始当日を０日目として体重計測してグループ分けを行い、実験２日目からプラスミノゲンまたはＰＢＳを投与して１日目と記録し、３１日間連続的に投与する。プラスミノゲン投与グループのマウスに対して２ｍｇ／０．２ｍＬ／匹／日に応じて尾部静脈からプラスミノゲンを注射し、溶媒ＰＢＳ投与グループに対して同じ体積のＰＢＳを投与する。３２日目にマウスを殺処分して左側眼球を取り、４％パラホルムアルデヒド中で２４時間固定する。固定後の眼球をエタノールで段階的に脱水させて及びキシレンで透明にしてからパラフィンで包埋させる。組織切片の厚みは５μｍであり、切片を脱パラフィンさせてさらに再水和させてからヘマトキシリン及びエオジンで染色させ（ＨＥ染色）、１％塩酸エタノールで分化させ、アンモニア水で安定化させ、さらにエタノールで段階的に脱水させて封入し、顕微鏡下において４００倍下にて切片に対して観察を行う。
【００９７】
糖尿病性網膜病変において網膜に萎縮が生じ、網膜の外網状層（ｏｕｔｅｒ  ｐｌｅｘｉｆｏｒｍ  ｌａｙｅｒ，ＯＰＬ）、外顆粒層（ｏｕｔｅｒ  ｎｕｃｌｅａｒ  ｌａｙｅｒ，ＯＮＬ）、視細胞層（感光層，ｐｈｏｔｏｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｌａｙｅｒ，ＰＬ）及び網膜全体が薄くなってしまう（非特許文献２７）。そのため、以上四つの厚みパラメータを用いて網膜の損傷状況の判断を行うことができる。
結果が示すように、溶媒ＰＢＳ投与比較グループのマウスの網膜内は、各層構造が嵩高く、細胞の配列が不規則で、網膜神経節細胞及び内顆粒層細胞の配列が乱れ、網膜色素上皮細胞が増殖している（図２Ａ）；プラスミノゲン投与グループは溶媒ＰＢＳ投与対照グ
ループを比較した場合、網膜内の各層細胞の配列が規則的で、且つ網膜ＯＰＬ、ＯＮＬ、ＰＬの厚み及び全体の厚みにおいて、前者が後者より厚いことが観察されている（図２Ｂ）。これはプラスミノゲンを注射することで糖尿病マウスの網膜損傷の損傷を促進できることを示している。
【実施例３】
【００９８】
実施例３はプラスミノゲンの糖尿病末期マウスの網膜損傷に対する改善に関するものである。
【００９９】
２４−２５週齢のｄｂ／ｄｂオスマウス２０匹を取り、ランダムに二つのグループに分け、溶媒ＰＢＳ投与対照グループとプラスミノゲン投与グループで、各グループ１０匹ずつである。実験開始当日を０日目として体重計測してグループ分けを行い、実験２日目からプラスミノゲンまたはＰＢＳを投与して且つ１日目と記録し、３１日間連続的に投与する。プラスミノゲン投与グループのマウスに対して２ｍｇ／０．２ｍＬ／匹／日に応じて尾部静脈からプラスミノゲンを注射し、溶媒ＰＢＳ投与グループに対して同じ体積のＰＢＳを投与する。３２日目にマウスを殺処分して左側眼球を取り、パラホルムアルデヒド固定液において２４時間固定を行う。固定後の眼球から網膜を剥離した後、１ｍＬ  ３％パンクレアチン（Ｓｏｌａｒｂｉｏ）のＥＰチューブ中に入れ、振動テーブルにおいて３７℃で２〜３ｈ振動消化させる。網膜に軟化、脱落の現象が現れてからていねいに網膜を蒸留水の入ったＥＰチューブ中に移し、振動テーブルにおいて３７℃で２〜３ｈ振動させ、網膜上の余分な組織を脱落させる。優しく網膜を処理し、血管層のみが残るようにしてからスライド上にサンプルを広げて載せ、自然乾燥させる。網膜をＳｃｈｉｆｆ氏液で染色させ（ＰＡＳ染色）、１％塩酸エタノールで分化させ、アンモニア水で安定化させ、さらにエタノールで段階的に脱水させてキシレンで透明にしてから封入を行い、顕微鏡下で４００倍にて観察を行う。
【０１００】
関連の研究が示すように、糖尿病は網膜の病変を引き起こし、網膜血管内皮細胞の増殖、周細胞の損失及び無細胞血管の形成をもたらす（非特許文献２８，２８）。
【０１０１】
実験結果から分かるように、プラスミノゲン投与グループ（図３Ｂ）と比較して、溶媒ＰＢＳ投与対照グループ（図３Ａ）のｄｂ／ｄｂマウス網膜毛細血管の管径の太さが不均一で、血管の管壁が厚くなり深く染色され、血管内皮細胞（Δ）が増殖し、周細胞（↓）が明らかに減少している。これに対してプラスミノゲン投与グループは病理的に明らかに減軽されている；定量分析により、プラスミノゲン投与グループと溶媒ＰＢＳ投与対照グループを比較した場合、無細胞血管の長さ（図３Ｃ）が顕著に低下し、且つ統計学的分析結果から顕著な差異があると示されている。これはプラスミノゲンが糖尿病後期のマウス網膜損傷の修復を顕著に促進できることを示している。
【実施例４】
【０１０２】
実施例４はプラスミノゲンの糖尿病マウスの網膜損傷の修復促進に関するものである。
【０１０３】
２４−２５週齢のｄｂ／ｄｂオスマウス２０匹を取り、ランダムに二つのグループに分け、溶媒ＰＢＳ投与対照グループとプラスミノゲン投与グループで、各グループ１０匹ずつである。実験開始当日を０日目として体重計測してグループ分けを行い、実験２日目からプラスミノゲンまたはＰＢＳを投与して且つ１日目と記録し、３１日間連続的に投与する。プラスミノゲン投与グループのマウスに対して２ｍｇ／０．２ｍＬ／匹／日に応じて尾部静脈からプラスミノゲンを注射し、溶媒ＰＢＳ投与グループに対して同じ体積のＰＢＳを投与する。３２日目に眼球を取り４％パラホルムアルデヒド中において２４時間固定させる。固定後の眼球をエタノールで段階的に脱水させ及びキシレンで透明にした後にパラフィンで包埋させる。組織切片の厚みは５μｍであり、切片を脱パラフィンさせて再水
和した後にさらに１回水洗いする。３％過酸化水素水で１５分間インキュベーションし、２回水洗いし、毎回５分間である。１０％の正常ヒツジ血清液（Ｖｅｃｔｏｒ  ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で１時間封止する；時間になった後に、ヒツジ血清液を廃棄し、ＰＡＰマーカーで組織を囲む。ウサギ抗マウスＶＥＧＦ抗体（Ａｂｃａｍ）４℃で終夜インキュベーションし、ＴＢＳで２回洗い、毎回５分間である。ヤギ抗ウサギＩｇＧ（ＨＲＰ）抗体（Ａｂｃａｍ）二次抗体を室温で１時間インキュベーションし、ＴＢＳで２回洗い、毎回５分間である。ＤＡＢキット（Ｖｅｃｔｏｒ  ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で顕色させ、３回水洗いした後にヘマトキシリンで３０秒複再染色して、流水で５分間流す。透明になるよう段階的に脱水してから封止させ、顕微鏡下で４００倍にて切片を観察する。
【０１０４】
ＶＥＧＦは血管内皮増殖因子であり、生体の血管が損傷している状況下においてその発現が高くなる（非特許文献３０，３１）。そのため、ＶＥＧＦの発現は血管損傷の状況を示すことができる。
【０１０５】
結果は以下を示している。溶媒ＰＢＳ投与対照グループ（図４Ａ）の網膜各層中のＶＥＧＦの発現は顕著にプラスミノゲン投与グループ（図４Ｂ）より高く、これはプラスミノゲンの注射が網膜ＶＥＧＦの発現を抑制し、糖尿病マウスの網膜損傷の修復を促進できることを示している。
【実施例５】
【０１０６】
実施例５はプラスミノゲンの糖尿病によってもたらされる網膜微小血栓の溶解促進に関するものである。
【０１０７】
２４−２５週齢のｄｂ／ｄｂオスマウス１０匹を取り、ランダムに二つのグループに分け、溶媒ＰＢＳ投与対照グループとプラスミノゲン投与グループで、各グループ５匹ずつである。実験開始当日を０日目として体重計測してグループ分けを行い、実験２日目からプラスミノゲンまたはＰＢＳを投与して且つ１日目と記録し、１５日間連続的に投与する。プラスミノゲン投与グループのマウスに対して２ｍｇ／０．２ｍＬ／匹／日に応じて尾部静脈からプラスミノゲンを注射し、溶媒ＰＢＳ投与グループに対して同じ体積のＰＢＳを投与する。最終回の投薬から２４時間後に眼球を摘出して採血し、全血を静置した後に血清を用いて血液中のＤ−二量体の含有量（Ｄ−ｄｉｍｅｒ）を測定する。
【０１０８】
結果は以下を示している。投薬１５日後に、血清中のＤ−二量体の含有量が顕著に上昇し（図５）、これはプラスミノゲンを投与した後に、糖尿病によってもたらされる網膜微小血栓が顕著に溶解していることを示している。
【実施例６】
【０１０９】
実施例６はプラスミノゲンの糖尿病マウスの網膜細胞アポトーシス阻害タンパク質の発現の促進に関するものである。
【０１１０】
２４−２５週齢のｄｂ／ｄｂオスマウス２０匹を取り、ランダムに二つのグループに分け、溶媒ＰＢＳ投与対照グループとプラスミノゲン投与グループで、各グループ１０匹ずつである。実験開始当日を０日目として体重計測してグループ分けを行い、実験２日目からプラスミノゲンまたはＰＢＳを投与して且つ１日目と記録し、３１日間連続的に投与する。プラスミノゲン投与グループのマウスに対して２ｍｇ／０．２ｍＬ／匹／日に応じて尾部静脈からプラスミノゲンを注射し、溶媒ＰＢＳ投与グループに対して同じ体積のＰＢＳを投与する。３２日目に眼球を取り４％パラホルムアルデヒド中において２４時間固定させる。固定した後の眼球をエタノールで段階的に脱水させ及びキシレンで透明にした後にパラフィンで包埋させる。組織切片の厚みは５μｍで、切片を脱パラフィンさせて再水
和させた後にさらに１回水洗いする。３％過酸化水素水で１５分間インキュベーションし、２回水洗いし、毎回５分間である。１０％の正常ヒツジ血清液で１時間封止する；それからヒツジ血清液を廃棄し、ＰＡＰマーカーで組織を囲む。ウサギ抗マウスＢｃｌ−２抗体（Ａｂｃａｍ）４℃で終夜インキュベーションし、ＴＢＳで２回洗い、毎回５分間である。ヤギ抗ウサギＩｇＧ（ＨＲＰ）抗体（Ａｂｃａｍ）二次抗体を室温で１時間インキュベーションし、ＴＢＳで２回洗い、毎回５分間である。ＤＡＢキット（Ｖｅｃｔｏｒ  ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で顕色させ、３回水洗いした後にヘマトキシリンで３０秒再染色して、流水で５分間流す。透明になるよう段階的に脱水してから封止させ、顕微鏡下で４００倍にて切片を観察する。
【０１１１】
Ｂｃｌ−２は細胞アポトーシス阻害タンパクであり、アポトーシス刺激因子の作用下において発現が減少するように制御される（非特許文献３２，３３）。結果は以下を示している。溶媒ＰＢＳ投与対照グループ（図６Ａ）の網膜中におけるＢｃｌ−２の発現は顕著にプラスミノゲン投与グループ（図６Ｂ）より低い。これはプラスミノゲンが、糖尿病マウスの網膜細胞アポトーシス阻害分子Ｂｃｌ−２の発現を促進させ、これにより網膜細胞のアポトーシスを抑制できることを示している。
【実施例７】
【０１１２】
実施例７はプラスミノゲンの糖尿病末期の心筋損傷の修復の促進に関するものである。
【０１１３】
２４−２５週齢のｄｂ／ｄｂオスマウス２８匹を取り、ランダムに二つのグループに分け、溶媒ＰＢＳ投与対照グループ１２匹、プラスミノゲン投与グループ１６匹である。実験開始当日を０日目として体重測定してグループ分けを行い、実験２日目からプラスミノゲンまたはＰＢＳを投与して且つ１日目と記録し、連続的に３１日間投与する。プラスミノゲン投与グループのマウスに対して２ｍｇ／０．２ｍＬ／匹／日に応じて尾部静脈からプラスミノゲンを注射し、溶媒ＰＢＳ投与対照グループに対して同じ体積のＰＢＳを投与する。３２日目に眼球を摘出して採血を行い、３５００ｒ／ｍｉｎにて１５−２０分間遠心させ、さらに上澄みを取って心肌トロポニンＩの濃度測定を行う。
【０１１４】
心筋トロポニンＩ（ｃａｒｄｉａｃ  ｔｒｏｐｏｎｉｎ，ＣＴＮＩ）は心筋損傷の重要なマーカーであり、その血清濃度は心筋損傷の程度を反映できる（非特許文献３４）。結果は以下を示している。プラスミノゲン投与グループの心筋トロポニンＩの濃度は明らかに溶媒ＰＢＳ対照グループより低く、且つ極めて顕著な統計学差異を有する（図７）。これはプラスミノゲンが顕著に糖尿病後期のマウスの心筋損傷の修復を顕著に促進できることを示している。
【実施例８】
【０１１５】
実施例８はプラスミノゲンの糖尿病末期マウスの腎臓アポトーシス阻害因子Ｂｃｌ−２の発現促進に関するものである。
【０１１６】
２４−２５週齢のｄｂ／ｄｂオスマウス２０匹を取り、ランダムに二つのグループに分け、溶媒ＰＢＳ投与対照グループとプラスミノゲン投与グループで、各グループ１０匹ずつである。実験開始当日を０日目として体重計測してグループ分けを行い、実験２日目からプラスミノゲンまたはＰＢＳを投与してさらに１日目と記録し、３１日間連続的に投与する。プラスミノゲン投与グループのマウスに対して２ｍｇ／０．２ｍＬ／匹／日に応じて尾部静脈からプラスミノゲンを注射し、溶媒ＰＢＳ投与グループに対して同じ体積のＰＢＳを投与する。３２日目にマウスを殺処分して腎臓を取り１０％中性ホルマリン固定液中において２４時間固定させる。固定後の腎臓をエタノールで段階的に脱水させ及びキシレンで透明にした後にパラフィンで包埋させる。組織切片の厚みは５μｍで、切片を脱パラフィンさせて再水和した後にさらに１回水洗いする。３％過酸化水素水で１５分間イン
キュベーションし、２回水洗いし、毎回５分間である。１０％の正常ヒツジ血清液（Ｖｅｃｔｏｒ  ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で１時間封止する；時間になってから、ヒツジ血清液を廃棄し、ＰＡＰマーカーで組織を囲む。ウサギ抗マウスＢｃｌ−２抗体（Ａｂｃａｍ）４℃で終夜インキュベーションし、ＴＢＳで２回洗い、毎回５分間である。ヤギ抗ウサギＩｇＧ（ＨＲＰ）抗体（Ａｂｃａｍ）二次抗体を室温で１時間インキュベーションし、ＴＢＳで２回洗い、毎回５分間である。ＤＡＢキット（Ｖｅｃｔｏｒ  ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で顕色させ、３回水洗いした後にヘマトキシリンで３０秒再染色して、流水で５分間流す。透明になるよう段階的に脱水してから封止させ、顕微鏡下で２００倍下において切片を観察する。
【０１１７】
Ｂｃｌ−２は細胞アポトーシス阻害タンパクであり、アポトーシス刺激因子の作用下において発現が減少するように制御される（非特許文献３２，３３）。Ｂｃｌ−２の免疫組織染色の結果は以下を示している。プラスミノゲン投与グループ（図８Ｂ）の腎細管上皮細胞の陽性発現着色は明らかに溶媒ＰＢＳ投与対照グループ（図８Ａ）より色が深く、且つ前者の着色範囲がより広い。定量分析の結果は観察結果と一致し、且つ顕著な差異を有する（図８Ｃ参照）。これはプラスミノゲンが、糖尿病マウスの腎臓細胞アポトーシス阻害分子Ｂｃｌ−２の発現を促進させ、これにより糖尿病マウスの腎臓細胞のアポトーシスを抑制できることを示している。
【実施例９】
【０１１８】
実施例９はプラスミノゲンの糖尿病末期マウス腎臓フィブリン加水分解の促進に関するものである。
【０１１９】
２４−２５週齢のｄｂ／ｄｂオスマウス２０匹を取り、ランダムに二つのグループに分け、溶媒ＰＢＳ投与対照グループとプラスミノゲン投与グループで、各グループ１０匹である。実験開始当日を０日目として体重計測してグループ分けを行い、実験２日目からプラスミノゲンまたはＰＢＳを投与してさらに１日目と記録し、３１日間連続的に投与する。プラスミノゲン投与グループのマウスに対して２ｍｇ／０．２ｍＬ／匹／日に応じて尾部静脈からプラスミノゲンを注射し、溶媒ＰＢＳ投与グループに対して同じ体積のＰＢＳを投与する。３２日目にマウスを殺処分して腎臓を取り１０％中性ホルマリン固定液中において２４時間固定する。固定後の腎臓をエタノールで段階的に脱水させ及びキシレンで透明にした後にパラフィンで包埋させる。組織切片の厚みは５μｍで、切片を脱パラフィンさせて再水和した後にさらに１回水洗いする。３％過酸化水素水で１５分間インキュベーションし、２回水洗いし、毎回５分間である。１０％の正常ヒツジ血清液（Ｖｅｃｔｏｒ  ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で１時間封止する；時間になってから、ヒツジ血清液を廃棄し、ＰＡＰマーカーで組織を囲む。ウサギ抗マウスフィブリン（フィブリノーゲン）抗体（Ａｂｃａｍ）４℃で終夜インキュベーションし、ＴＢＳで２回洗い、毎回５分間である。ヤギ抗ウサギＩｇＧ（ＨＲＰ）抗体（Ａｂｃａｍ）二次抗体を室温で１時間インキュベーションし、ＴＢＳで２回洗い、毎回５分間である。ＤＡＢキット（Ｖｅｃｔｏｒ  ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で顕色させ、３回水洗いした後にヘマトキシリンで３０秒再染色して、流水で５分間流す。透明になるよう段階的に脱水してさせてから封止を行い、顕微鏡下で２００倍下にて切片を観察する。
【０１２０】
フィブリノーゲンはフィブリンの前駆体であり、組織に損傷が存在する状況下において、生体の損傷に対する刺激応答反応として、フィブリノーゲンは加水分解されてフィブリンとなる（非特許文献３５〜３７）。そのためフィブリンレベルを損傷の程度の一つの指標とすることができる。
【０１２１】
結果は以下を示している。プラスミノゲン投与グループ（図９Ｂ）と溶媒ＰＢＳ投与対照グループ（図９Ａ）を比較した場合、プラスミノゲン投与グループのマウスの陽性着色
が浅い。これはプラスミノゲンを注射することで糖尿病マウスの沈着フィブリンを減少させることができ、プラスミノゲンは糖尿病マウスの腎臓損傷に対して修復作用を有することを示している。
【実施例１０】
【０１２２】
実施例１０はプラスミノゲンの糖尿病マウスの肝臓損傷の修復促進に関するものである。
【０１２３】
２５−２８週齢のｄｂ／ｄｂオスマウス９匹を取り、ランダムに二つのグループに分け、溶媒ＰＢＳ投与対照グループ３匹、プラスミノゲン投与グループ６匹である。実験開始当日を０日目として体重測定してグループ分けを行い、実験２日目からプラスミノゲンまたはＰＢＳを投与して且つ１日目と記録し、連続的に３１日間投与する。プラスミノゲン投与グループのマウスに対して２ｍｇ／０．２ｍＬ／匹／日に応じて尾部静脈からプラスミノゲンを注射し、溶媒ＰＢＳ投与グループに対して同じ体積のＰＢＳを投与する。プラスミノゲンを３１日間投与した後に眼球を摘出して全血を採取し、血清が析出してから４℃、３５００ｒ／ｍｉｎにて１０分間遠心させ、上澄み液を取って測定を行う。本実験はグルタミン酸ピルビン酸アミノ基転移酵素測定薬物キット（南京建成生物工程研究所、品番Ｃ００９−２）を使用して、ライトマン−フランケル法（Ｒｅｉｔｍａｎ−Ｆｒａｎｋｅｌ）を用いて血清中のグルタミン酸ピルビン酸アミノ基転移酵素（ＡＬＴ）の含有量を測定する。
【０１２４】
グルタミン酸ピルビン酸アミノ基転移酵素は肝臓の健康状態を示す重要な指標であり（非特許文献３８、３９）、グルタミン酸ピルビン酸アミノ基転移酵素の正常参考値の範囲は９〜５０Ｕ／Ｌである。測定結果は以下を示している。溶媒ＰＢＳ投与対照グループの血清中のＡＬＴの含有量は明らかに正常な生理的数値より高く、プラスミノゲン投与グループは既に体内の正常レベルに戻り、且つプラスミノゲン投与グループは溶媒ＰＢＳ投与対照グループより顕著に低く、且つ統計学的差異を有する（図１０）。これは糖尿病末期モデルマウスにおいて、プラスミノゲンを注射することでより効果的に肝損傷を修復できることを示している。
【実施例１１】
【０１２５】
実施例１１はプラスミノゲンの糖尿病末期マウス肝臓組織の炎症修復の促進に関するものである。
【０１２６】
２４−２５週齢のｄｂ／ｄｂオスマウス１０匹を取り、ランダムに二つのグループに分け、溶媒ＰＢＳ投与対照グループとプラスミノゲン投与グループで、各グループ５匹ずつである。実験開始当日を０日目として体重計測してグループ分けを行い、実験２日目からプラスミノゲンまたはＰＢＳを投与して且つ１日目と記録し、３１日間連続的に投与する。プラスミノゲン投与グループのマウスに対して２ｍｇ／０．２ｍＬ／匹／日に応じて尾部静脈からプラスミノゲンを注射し、溶媒ＰＢＳ投与グループに対して同じ体積のＰＢＳを投与する。プラスミノゲンの３１日間投与した後にマウスを殺処分して解剖して肝臓を取り１０％中性ホルマリン固定液中において２４時間固定させる。固定後の肝臓組織をエタノールで段階的に脱水させ及びキシレンで透明化した後にパラフィンで包埋処理を行う。組織切片の厚みは５μｍであり、切片を脱パラフィンさせさらに再水和してから一回水洗いする。３％過酸化水素水で１５分間インキュベーションし、水で２回洗い、毎回５分間である。１０％の健常ヒツジ血清液（Ｖｅｃｔｏｒ  ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で１時間封止する；時間になった後に、ヒツジ血清を遠心により廃棄し、ＰＡＰマーカーで組織を囲む。Ｆ４／８０のウサギポリグローナル抗体（Ａｂｃａｍ）４℃で終夜インキュベーションし、ＴＢＳで２回洗い、毎回５分間である。ヤギ抗ウサギＩｇＧ（ＨＲＰ）抗体（Ａｂｃａｍ）二次抗体を室温で１時間インキュベーションし、ＴＢ
Ｓで２回洗う。ＤＡＢキット（Ｖｅｃｔｏｒ  ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で顕色させ、３回水洗いした後にヘマトキシリンで３０秒再染色して、流水で５分間洗い流す。透明になるよう段階的に脱水してから封止させ、切片を顕微鏡下で４００倍にて観察する。
【０１２７】
Ｆ４／８０はマクロファージマーカーであって、炎症反応の程度及び段階を示すことができる。その結果は以下を示している。プラスミノゲン投与グループ（図１１Ｂ）と溶媒ＰＢＳ投与対照グループ（図１１Ａ）を比較した場合、プラスミノゲン投与グループのマウスのＦ４／８０陽性レベルは明らかに低下し、これはプラスミノゲンを投与した後肝臓組織の炎症が減軽されていることを示している。図１１ＣはＦ４／８０免疫組織陽性発現数の定量分析の結果であり、プラスミノゲン投与グループのＦ４／８０の発現量が顕著に減少され、且つ統計学的差異を有し、プラスミノゲンは糖尿病マウスの肝臓の炎症を減軽させられることを示している。
【実施例１２】
【０１２８】
実施例１２はプラスミノゲンの糖尿病後期神経損傷マウスの機械的触刺激によって誘発される疼痛の応答能力修復の促進に関するものである。
【０１２９】
２４〜２５週齢のｄｂ／ｄｂオスマウスを１０匹取り、ランダムに二つのグループに分け、溶媒ＰＢＳ投与対照グループ及びプラスミノゲン投与グループで、各グループ５匹ずつである。実験開始当日を０日目として体重測定してグループ分けを行い、実験２日目からプラスミノゲンまたはＰＢＳを投与して且つ１日目と記録し、連続的に１５日間投与する。プラスミノゲン投与グループのマウスに対して２ｍｇ／０．２ｍＬ／匹／日に応じて尾部静脈からプラスミノゲンを注射し、溶媒ＰＢＳ投与グループに対して同じ体積のＰＢＳを投与する。プラスミノゲン投与後の０、４、７、１１、１６日目にＶｏｎ−Ｆｒｅｙファイバー（Ｓｔｏｅｌｔｉｎｇ，ＵＳＡ）を用いて動物の機械性損傷に関する感受度を測定する。２．０ｇの力を開始力として、まずその左足を測定する。５回の刺激中に２回の足を引っ込める反応があれば陽性で、陽性であれば、１ランク小さい力でその右足に対して刺激を行う；陰性であれば、１ランク大きい力でその右足を刺激し、このように左右足を交互に刺激し、刺激の間隔は５分間であり、全部で６回刺激し、それからＳ．Ｒ．Ｃｈａｐｌａｎ  ｅｔ  ａｌ．（１９９４）（非特許文献４０）で紹介した方法によりその５０％足の引っ込めが生じる閾値を計算する。
【０１３０】
研究により、溶媒ＰＢＳ投与対照グループと比較して、プラスミノゲン投与グループの糖尿病マウスの機械的触刺激によって誘発される疼痛に対する反応の均一性が向上し、且つ１６日目測定した際に溶媒ＰＢＳ投与対照グループと比較して極めて顕著な差異が見られている（図１２）。これはプラスミノゲンが神経損傷末期の糖尿病マウスの機械的触刺激による痛み（ｍｅｃｈａｎｉｃａｌ  ａｌｌｏｄｙｎｉａ）に対する応答能力が修復されていることを示している。
【実施例１３】
【０１３１】
実施例１３はプラスミノゲンの糖尿病後期の神経損傷マウスの冷刺激感知に対する修復に関するものである。
【０１３２】
２４〜２５週齢のｄｂ／ｄｂオスマウスを１０匹取り、ランダムに二つのグループに分け、溶媒ＰＢＳ投与対照グループ及びプラスミノゲン投与グループで、各５匹である。実験開始当日を０日目として体重測定してグループ分けを行ってから生理実験を始め、実験２日目からプラスミノゲンまたはＰＢＳを投与して且つ１日目と記録し、連続的に１５日間投与する。プラスミノゲン投与グループのマウスに対して２ｍｇ／０．２ｍＬ／匹／日に応じて尾部静脈からプラスミノゲンを注射し、溶媒ＰＢＳ投与対照グループに対して同
じ体積のＰＢＳを投与する。投薬後の０、４、７、１１、１６日目に針注射器で一滴のアセトン液滴を押し出してさらにｄｂ／ｄｂマウスの足裏に接触させ、それが足裏全体を覆うようにする。左足から始め、３分間間隔で交互にその左右足を刺激し、全部で１０回刺激し、その足を引っ込める反応の回数を統計する。反応パーセンテージ＝足を引っ込めた回数／刺激回数×１００のパーセンテージである。
【０１３３】
実験結果は以下を示している。０及び４日目に、プラスミノゲン投与グループ及び溶媒ＰＢＳ投与対照グループはアセトン刺激に対して顕著な差異がなく、７日目から顕著な差異が観察され、１６日目に極めて顕著な差異が観察され、Ｐ値＜０．０００１である（図１３）。これは投薬１５日後に、糖尿病マウスがほぼ完全に冷刺激に対する反応を回復したことを示し、プラスミノゲンが糖尿病後期マウスの神経の冷刺激に対する応答能力を極めて顕著に修復したことを示している。
【実施例１４】
【０１３４】
実施例１４はプラスミノゲンが糖尿病後期の神経損傷マウスの神経組織のフィブリンレベルを減少させることに関するものである。
【０１３５】
２４〜２５週齢のｄｂ／ｄｂオスマウスを１０匹取り、ランダムに二つのグループに分け、溶媒ＰＢＳ投与対照グループ及びプラスミノゲン投与グループで、各５匹である。実験開始当日を０日目として体重測定してグループ分けを行い、実験２日目からプラスミノゲンまたはＰＢＳを投与して且つ１日目と記録し、連続的に１５日間投与する。プラスミノゲン投与グループのマウスに対して２ｍｇ／０．２ｍＬ／匹／日に応じて尾部静脈からプラスミノゲンを注射し、溶媒ＰＢＳ投与対照グループに対して同じ体積のＰＢＳを投与する。１６日目にマウスを殺処分して坐骨神経を取り１０％中性ホルマリン固定液中において２４時間固定する。固定後の坐骨神経をエタノールで段階的に脱水させ及びキシレンで透明にした後にパラフィンで包埋させる。組織切片の厚みは５μｍで、切片を脱パラフィンさせて再水和した後にさらに１回水洗いし、それからＰＡＰマーカーで組織を囲む。３％ＴＢＳで希釈した過酸化水素水で１５分間インキュベーションし、３回水洗いする。１０％の正常ヒツジ血清液（Ｖｅｃｔｏｒ  ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で１時間封止し、余分な血清を除去する。ウサギ抗マウスフィブリン（フィブリノーゲン）抗体（Ａｂｃａｍ）４℃で終夜インキュベーションし、ＴＢＳで３回洗う。ヤギ抗ウサギＩｇＧ（ＨＲＰ）抗体（Ａｂｃａｍ）二次抗体を室温で１時間インキュベーションし、ＴＢＳで３回洗う。ＤＡＢキット（Ｖｅｃｔｏｒ  ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で顕色させ、３回水洗いした後にヘマトキシリンで３０秒再染色して、流水で５分間洗い流す。透明になるよう段階的に脱水してから封止を行い、顕微鏡下で４００倍下にて切片を観察する。
【０１３６】
フィブリノーゲンはフィブリンの前駆体であり、組織に損傷が存在する状況下において、生体の損傷に対する刺激応答反応として、フィブリノーゲンは加水分解されてフィブリンとなり、そのためフィブリンレベルを損傷の程度の一つの指標とすることができる（非特許文献３５〜３７）。フィブリンは組織損傷後に血栓を形成する主な成分であり、そのため、フィブリンレベルを血栓の一つの指標とすることができる。
【０１３７】
研究により、溶媒ＰＢＳ投与対照グループ（図１４Ａ）と比較した場合、プラスミノゲン投与グループ（図１４Ｂ）のマウスの坐骨神経フィブリンのレベルが低下している。これは、プラスミノゲンはフィブリンレベルを低下させる機能を有し、損傷がある程度修復されていることを示している。また、プラスミノゲンは神経組織周囲の血栓の溶解を促進できることを示している。
【実施例１５】
【０１３８】
実施例１５はプラスミノゲンの糖尿病末期マウスの腎臓損傷の減軽に関するものである。
【０１３９】
２４〜２５週齢のｄｂ／ｄｂオスマウスを８匹取り、ランダムに二つのグループに分け、溶媒ＰＢＳ投与対照グループ及びプラスミノゲン投与グループで、各グループ４匹ずつである。実験開始当日を０日目として体重測定してグループ分けを行い、実験２日目からプラスミノゲンまたはＰＢＳを投与して且つ１日目と記録し、連続的に３１日間投与する。プラスミノゲン投与グループのマウスに対して２ｍｇ／０．２ｍＬ／匹／日にて尾静脈からプラスミノゲンを注射し、溶媒ＰＢＳ投与対照グループに対して同じ体積のＰＢＳを投与する。３２日目に生理的指標を測定してから、マウスを殺処分して肝臓組織を取り１０％中性ホルマリン固定液中において２４時間固定させる。固定した後の肝臓組織をエタノールで段階的に脱水させ及びキシレンで透明にした後にパラフィンで包埋させる。組織切片の厚みは５μｍで、切片を脱パラフィンさせて再水和した後にさらに１回水洗いする。３％過酸化水素水で１５分間インキュベーションし、２回水洗いし、毎回５分間である。ヤギ抗マウスＩｇＭ（ＨＲＰ）抗体（Ａｂｃａｍ）室温で１時間インキュベーションし、ＴＢＳで２回洗い、毎回５分間である。ＤＡＢキット（Ｖｅｃｔｏｒ  ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．，ＵＳＡ）で顕色させ、３回水洗いした後にヘマトキシリンで３０秒再染色して、流水で５分間洗い流す。透明になるよう段階的に脱水してから封止させ、顕微鏡下で４００倍下にて切片を観察する。
【０１４０】
ＩｇＭ抗体はアポトーシス及び壊死した細胞を除去する過程において重要な役割を果たし、細胞のアポトーシス及び壊死細胞が多ければ多いほど、局所ＩｇＭ抗体のレベルがより高い（非特許文献４１〜４３）。そのため、局所ＩｇＭ抗体レベルは組織器官の損傷状況を反映することができる。
【０１４１】
結果は以下を示している。プラスミノゲン投与グループ（図１５Ｂ）のマウス腎糸球体ＩｇＭの陽性着色は溶媒ＰＢＳ投与対照グループより浅く（図１５Ａ）、且つ範囲も対照グループより小さく、統計分析の結果と観察結果は一致している（図１５Ｃ）。これはプラスミノゲンを注射した後の腎糸球体の損傷が明らかに改善され、プラスミノゲンは糖尿病マウスの生体損傷に対して顕著な保護及び修復機能を有することを反映している。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【配列表】
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