(57)【要約】【課題】哺乳類細胞に対する細胞接着性を有するセラック修飾化物を提供すること。【解決手段】セラック修飾化物では、構造体中の水酸基、及びカルボキシ基のうちの少なくとも一方が化学修飾されている。セラック修飾化物は、細胞接着性を有する。前記セラック修飾化物から成る膜の表面に水を滴下してから１８０秒後に前記表面における水の接触角を測定した場合、前記接触角が５９度より大きいことが好ましい。前記化学修飾は、（ａ）炭素数が１以上の主鎖と、前記主鎖に結合した芳香環又は環状アルキルと、前記主鎖、前記芳香環、及び前記環状アルキルのいずれかにおける置換基とを有する誘導体、（ｂ）直鎖若しくは分岐構造を持つ炭素数が１以上の脂肪族誘導体、又は（ｃ）構造中にケイ素を有する誘導体による化学修飾であることが好ましい。【選択図】図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
構造体中の水酸基、及びカルボキシ基のうちの少なくとも一方が化学修飾され、
細胞接着性を有するセラック修飾化物。
【請求項２】
請求項１に記載のセラック修飾化物であって、
前記セラック修飾化物から成る膜の表面に水を滴下してから１８０秒後に前記表面における水の接触角を測定した場合、前記接触角が５９度より大きいセラック修飾化物。
【請求項３】
請求項１又は２に記載のセラック修飾化物であって、
前記化学修飾は、（ａ）炭素数が１以上の主鎖と、前記主鎖に結合した芳香環又は環状アルキルと、を有する誘導体による化学修飾、（ｂ）直鎖若しくは分岐構造を持つ炭素数が１以上の脂肪族誘導体による化学修飾、又は（ｃ）構造中にケイ素を有する誘導体による化学修飾であるセラック修飾化物。
【請求項４】
請求項１又は２に記載のセラック修飾化物であって、
前記化学修飾は、（ａ）炭素数が１以上の主鎖と、前記主鎖に結合した芳香環又は環状アルキルと、前記主鎖、前記芳香環、及び前記環状アルキルのいずれかにおける置換基とを有する誘導体による化学修飾、（ｂ）直鎖若しくは分岐構造を持つ炭素数が１以上の脂肪族誘導体による化学修飾、又は（ｃ）構造中にケイ素を有する誘導体による化学修飾であり、
前記（ａ）における前記置換基は、水素、炭素数が１以上５以下の脂肪族基、ハロゲン基、ホルミル基、アルコキシ基、ヒドロキシ基、カルボキシ基、又はエステル基であるセラック修飾化物。
【請求項５】
請求項３又は４に記載のセラック修飾化物であって、
前記（ｂ）における前記脂肪族誘導体の炭素数は３以上９以下であるセラック修飾化物。
【請求項６】
請求項１〜５のいずれか１項に記載のセラック修飾化物であって、
前記化学修飾は、ベンジル基、ヘキシル基、又はイソプロピル基による化学修飾であるセラック修飾化物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本開示はセラック修飾化物に関する。
【背景技術】
【０００２】
従来、セラックは、幅広い分野に使用されている。非特許文献１〜３に、セラックを医療分野で使用することが記載されている。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００３】
【非特許文献１】RSC Advances, 7, 53401-53406 (2017).
【非特許文献２】Journal of Material Science, 53(2-3) (2018), DOI: 10.1007/s10853-018-2241-4.
【非特許文献３】Soft Matter, 8, 5069-5077 (2012).
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
セラックを、例えば、ＤＤＳ（Drug Delivery System）担体等に使用することが考えられる。ＤＤＳ担体は、組織や臓器再生に関する薬剤に用いられる。そのため、ＤＤＳ担体の材料は、哺乳類細胞に対する細胞接着性を有する必要がある。セラックは、そのままでは、哺乳類細胞に対する細胞接着性を有さない。本開示の１つの局面は、哺乳類細胞に対する細胞接着性を有するセラック修飾化物を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００５】
本開示の１つの局面は、構造体中の水酸基、及びカルボキシ基のうちの少なくとも一方が化学修飾され、細胞接着性を有するセラック修飾化物である。本開示の１つの局面であるセラック修飾化物は、哺乳類細胞に対する細胞接着性を有する。
【図面の簡単な説明】
【０００６】
【図１】培養日数と細胞数との関係を表すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【０００７】
本開示の例示的な実施形態について図面を参照しながら説明する。
１．セラック修飾化物の構成
本開示のセラック修飾化物は、セラックの構造体中の水酸基、及びカルボキシ基のうちの少なくとも一方が化学修飾されたものである。セラック修飾化物において、構造体中の水酸基と、構造体中のカルボキシ基とのうち、一方のみが化学修飾されていてもよいし、両方が化学修飾されていてもよい。
【０００８】
セラックとは、体長０．６ｍｍ前後のラックカイガラムシがマメ科、クワ科等の特定の樹木の枝に分泌する樹枝状物質から精製される天然樹脂である。セラックの構造体は、例えば、２〜５個程度の構成単位がオリゴエステル化したものである。構成単位は、例えば、アレウリチン酸等の長鎖脂肪酸と、ジャラール酸、ラクシジャラール酸等の樹脂酸とがエステル結合したものである。  
セラック修飾化物は、哺乳類細胞に対する細胞接着性を有する。セラックの構造体中の水酸基、及びカルボキシ基のうちの少なくとも一方を化学修飾することにより、セラック修飾化物は、哺乳類細胞に対する細胞接着性を有する。
【０００９】
セラック修飾化物から成る膜の表面に水を滴下してから１８０秒後に、膜の表面における水の接触角を測定した場合、接触角が５９度より大きいことが好ましい。接触角が５９度より大きい場合、セラック修飾化物が有する細胞接着性が一層顕著になる。
【００１０】
接触角の具体的な測定方法は以下のとおりである。接触角の測定には、SImage mini7（Excimer Inc., Japan)を使用する。カバーガラス上に、スピンコートの方法により、セラック修飾化物の膜を形成する。次に、１μLの蒸留水を膜表面に滴下する。滴下してから１８０秒後に、膜の表面における蒸留水の接触角を測定する。接触角の測定は、膜の５箇所でそれぞれ行う。５箇所で測定した接触角の平均値を、接触角の測定結果とする。
【００１１】
化学修飾は、セラックの構造体中に含まれる水酸基、アルデヒド基、又はカルボキシ基に対する化学修飾である。化学修飾は、例えば、（ａ）炭素数が１以上の主鎖と、前記主鎖に結合した芳香環又は環状アルキルと、前記主鎖、前記芳香環、及び前記環状アルキルのいずれかにおける置換基とを有する誘導体による化学修飾である。前記（ａ）における置換基は、例えば、水素、炭素数が１以上５以下の脂肪族基、ハロゲン基、ホルミル基、アルコキシ基、ヒドロキシ基、カルボキシ基、又はエステル基である。前記（ａ）として、例えば、ベンジル基等が挙げられる。
【００１２】
化学修飾は、例えば、（ｂ）直鎖若しくは分岐構造を持つ炭素数が１以上の脂肪族誘導体による化学修飾である。前記（ｂ）における脂肪族誘導体の炭素数は、例えば、３以上９以下である。前記（ｂ）として、例えば、ヘキシル基、イソプロピル基等が挙げられる。
化学修飾は、例えば、（ｃ）構造中にケイ素（Ｓｉ）を有する誘導体による化学修飾である。前記（ｃ）として、例えばトリメチルシリル基（ＴＭＳ）、ターシャリブチルジメチルシリル基（ＴＢＤＭＳ）が挙げられる。
【００１３】
本開示のセラック修飾化物は、例えば、医療分野の製品の材料として使用できる。医療分野の製品として、例えば、ＤＤＳ担体等が挙げられる。
本開示のセラック修飾化物は、例えば、熱硬化特性、皮膜形成性、電気絶縁性、添加成分との高い混和性、生分解性、生体無毒性、医薬品を徐放させる特性等において優れる。
【００１４】
２．実施例
（２−１）ベンジル基修飾セラックの製造
５００ｍＬナスフラスコにセラック（ＰＥＡＲＬ-Ｎ８１１、岐阜セラツク社製）５ｇを入れた。次に、同じナスフラスコに脱水ＤＭＦ（富士フィルム和光純薬社製）５０ｍＬを添加し、セラックを溶解した。
【００１５】
次に、乳鉢ですりつぶした炭酸カリウム（富士フィルム和光純薬社製）１．６８ｇと、ベンジルブロミド（富士フィルム和光純薬社製）０．７９ｍＬとを、同じナスフラスコに加え、６０℃で３時間加熱撹拌を行った。炭酸カリウムの添加量は、セラックのカルボキシ基に対して２当量であった。ベンジルブロミドの添加量は、セラックのカルボキシ基に対して１．１当量であった。
【００１６】
室温まで放冷した後、吸引濾過により反応溶液から大部分の炭酸カリウムを瀘別した。次に、濾液の溶媒を減圧留去し、残渣を得た。得られた残渣をジクロロメタン（関東化学社製）に溶解して再度濾過することで炭酸カリウムを完全に除去した。次に、貧溶媒であるヘキサン（関東化学社製）を加えてセラックを沈殿させた。次に、遠心分離により上清成分と沈殿成分とに分け、セラックを含まない上清成分を捨てた。
【００１７】
得られた沈殿成分をジクロロメタンに一旦溶解した後、再度ヘキサンを加えて沈殿させた。次に、遠心分離により上清成分と沈殿成分とに分け、上清成分を捨てた。この操作をさらに２回行うことで、セラック成分から反応試薬残渣を除去した。
【００１８】
最後に、減圧ポンプにて真空乾燥を行い、ベンジル基修飾セラックを得た。ベンジル基修飾セラックはセラック修飾化物に対応する。ベンジル基修飾セラックの収量は３．５ｇであった。仕込みのセラックの量を基準とした収率は７０％であった。
【００１９】
カルボキシ基へのベンジル基の修飾率を、酸滴定によるフリーのカルボキシ基の定量及び１Ｈ-ＮＭＲにより測定した。カルボキシ基へのベンジル基の修飾率とは、全てのカルボキシ基に対する、ベンジル基により修飾されたカルボキシ基の比率である。カルボキシ基へのベンジル基の修飾率は、９６％以上であった。１Ｈ-ＮＭＲの測定結果は以下のとおりであった。
【００２０】
１Ｈ-ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ―ｄ６、２５℃、５ｐｐｍより低磁場側のみ記述）９．６９５ｐｐｍ（１Ｈ、―ＣＨＯ）、７．３６６ｐｐｍ（５Ｈ、ベンジル基由来Ａｒ-Ｈ）、６．４２９ｐｐｍ（１Ｈ、-ＣＨ（ＯＣＯ-（ＣＨ２）７-ＣＨ（ＯＨ）-ＣＨ（ＯＨ）-（ＣＨ２）５―ＣＨ２ＯＨ）-ＣＨ＝Ｃ（ＣＯＯ-ＣＨ２-Ｃ６Ｈ５）-）、５．８０９（１Ｈ、-ＣＨ（ＯＣＯ-（ＣＨ２）７-ＣＨ（ＯＨ）-ＣＨ（ＯＨ）-（ＣＨ２）５―ＣＨ２ＯＨ）-ＣＨ＝Ｃ（ＣＯＯ-ＣＨ２-Ｃ６Ｈ５）-）、５．１５１（２Ｈ、ベンジル基由来-ＣＨ２-Ａｒ）
（２−２）ｎ−ヘキシル基修飾セラックの製造
５００ｍＬナスフラスコにセラック（ＰＥＡＲＬ-Ｎ８１１、岐阜セラツク社製）５ｇを入れた。次に、同じナスフラスコに脱水ＤＭＦ（富士フィルム和光純薬社製）５０ｍＬを添加し、セラックを溶解した。
【００２１】
次に、乳鉢ですりつぶした炭酸カリウム（富士フィルム和光純薬社製）１．７ｇと、１-ブロモヘキサン（富士フィルム和光純薬社製）０．９５ｍＬとを、同じナスフラスコに加え、６０℃で３時間加熱撹拌を行った。炭酸カリウムの添加量は、セラックのカルボキシ基に対して２当量であった。１-ブロモヘキサンの添加量は、セラックのカルボキシ基に対して１．１当量であった。
【００２２】
室温まで放冷した後、吸引濾過により反応溶液から大部分の炭酸カリウムを瀘別した。次に、濾液の溶媒を減圧留去し、残渣を得た。得られた残渣をエタノール（富士フィルム和光純薬社製）に溶解して再度濾過することで炭酸カリウムを完全に除去した。次に、貧溶媒であるヘキサン（関東化学社製）を加えてセラックを沈殿させた。次に、遠心分離により上清成分と沈殿成分とに分け、セラックを含まない上清成分を捨てた。
【００２３】
得られた沈殿成分をエタノールに一旦溶解した後、再度ヘキサンを加えて沈殿させた。次に、遠心分離により上清成分と沈殿成分とに分け、上清成分を捨てた。この操作をさらに２回行うことで、セラック成分から反応試薬残渣を除去した。
【００２４】
最後に、減圧ポンプにて真空乾燥を行い、ｎ−ヘキシル基修飾セラックを得た。ｎ−ヘキシル基修飾セラックはセラック修飾化物に対応する。ｎ−ヘキシル基修飾セラックの収量は４．１０ｇであった。仕込みのセラックの量を基準とした収率は８２％であった。
【００２５】
カルボキシ基へのｎ−ヘキシル基の修飾率を、酸滴定によるフリーのカルボキシ基の定量により測定した。カルボキシ基へのｎ−ヘキシル基の修飾率とは、全てのカルボキシ基に対する、ｎ−ヘキシル基により修飾されたカルボキシ基の比率である。カルボキシ基へのｎ−ヘキシル基の修飾率は、９１％以上であった。
【００２６】
（２−３）イソプロピル基修飾セラックの製造
５００ｍＬナスフラスコにセラック（ＰＥＡＲＬ-Ｎ８１１、岐阜セラツク社製）５ｇを入れた。次に、同じナスフラスコに脱水ＤＭＦ（富士フィルム和光純薬社製）５０ｍＬを添加し、セラックを溶解した。
【００２７】
次に、乳鉢ですりつぶした炭酸カリウム（富士フィルム和光純薬社製）１．７ｇと、１-ブロモ−２−メチルプロパン（富士フィルム和光純薬社製）０．７６ｍＬとを、同じナスフラスコに加え、６０℃で３時間加熱撹拌を行った。炭酸カリウムの添加量は、セラックのカルボキシ基に対して２当量であった。１-ブロモ−２−メチルプロパンの添加量は、セラックのカルボキシ基に対して１．１当量であった。
【００２８】
室温まで放冷した後、吸引濾過により反応溶液から大部分の炭酸カリウムを瀘別した。次に、濾液の溶媒を減圧留去し、残渣を得た。得られた残渣をエタノール（富士フィルム和光純薬社製）に溶解して再度濾過することで炭酸カリウムを完全に除去した。次に、貧溶媒であるヘキサン（関東化学社製）を加えてセラックを沈殿させた。次に、遠心分離により上清成分と沈殿成分とに分け、セラックを含まない上清成分を捨てた。
【００２９】
得られた沈殿成分をエタノールに一旦溶解した後、再度ヘキサンを加えて沈殿させた。次に、遠心分離により上清成分と沈殿成分とに分け、上清成分を捨てた。この操作をさらに２回行うことで、セラック成分から反応試薬残渣を除去した。
【００３０】
最後に、減圧ポンプにて真空乾燥を行い、イソプロピル基修飾セラックを得た。イソプロピル基修飾セラックはセラック修飾化物に対応する。イソプロピル基修飾セラックの収量は３．６９ｇであった。仕込みのセラックの量を基準とした収率は７３％であった。
【００３１】
カルボキシ基へのイソプロピル基の修飾率を、酸滴定によるフリーのカルボキシ基の定量により測定した。カルボキシ基へのイソプロピル基の修飾率とは、全てのカルボキシ基に対する、イソプロピル基により修飾されたカルボキシ基の比率である。カルボキシ基へのｎ−ヘキシル基の修飾率は、６７％以上であった。
【００３２】
（２−４）細胞増殖性の評価
ベンジル基修飾セラック、ｎ−ヘキシル基修飾セラック、イソプロピル基修飾セラック、ヒドロキシエチル基修飾セラック、及び未修飾セラックについて、細胞接着性を評価した。ヒドロキシエチル基修飾セラックは、構造体中のカルボキシ基をヒドロキシエチル基で修飾したセラック修飾物である。未修飾セラックは、構造体中の水酸基、及びカルボキシ基のどちらも化学修飾されていないセラックである。
【００３３】
細胞接着性の評価方法は以下のとおりである。評価対象の５０質量％エタノール溶液を調製した。評価対象は、ベンジル基修飾セラック、ｎ−ヘキシル基修飾セラック、イソプロピル基修飾セラック、ヒドロキシエチル基修飾セラック、及び未修飾セラックのうちのいずれかである。
【００３４】
次に、評価対象の５０質量％エタノール溶液を、カバーガラス（松波ガラス、φ１５ｍｍ）上にスピンコートした。その結果、カバーガラスの表面に評価対象の膜が形成された。次に、評価対象の膜が形成されたカバーガラスを２４穴プレートに設置し、紫外線滅菌を行った。
【００３５】
次に、評価対象の膜が形成されたカバーガラスに、１００００ｃｅｌｌの播種を行った。播種した細胞は、マウス由来の線維芽細胞であるＮＩＨ３Ｔ３細胞であった。
次に、ＤＭＥＭ培地（１０％  ＦＢＳ、１００  ｕｎｉｔ／ｍＬのペニシリン−ストレプトマイシン含有）に浸漬した状態で、ＣＯ２インキュベーター（３７℃、５％ＣＯ２）内で培養を行った。
【００３６】
播種１日後、３日後、５日後、及び７日後の細胞数を、ＣＥＬＬ  ＣＯＵＮＴＩＮＧ  ＫＩＴ−８（同仁化学）により測定した。
評価対象の膜を形成していないカバーガラス（松波ガラス、φ１５ｍｍ）についても、同様の操作を行った。なお、このカバーガラスは細胞接着性を有する。評価対象の膜を形成していないカバーガラスを、ポジティブコントロールとする。
【００３７】
培養日数と細胞数との関係を図１に示す。図１における「カバーガラス」は、ポジティブコントロールである。
ベンジル基修飾セラック、ｎ−ヘキシル基修飾セラック、及びイソプロピル基修飾セラックの場合、ポジティブコントロールと同等の細胞増殖がみられた。未修飾セラックの場合、全く細胞増殖が見られなかった。ヒドロキシエチル基修飾セラックの場合、ＤＭＥＭ培地に浸漬してから数時間以内に溶解してしまったため、細胞接着性を評価できなかった。
【００３８】
ベンジル基修飾セラック、ｎ−ヘキシル基修飾セラック、及びイソプロピル基修飾セラックの場合、カバーガラス上に形成されたセラック修飾化物の膜が細胞接着性を有し、細胞に対し無毒であるため、細胞が増殖したと推測される。  
（２−５）増殖した細胞の形態観察
ベンジル基修飾セラック、ｎ−ヘキシル基修飾セラック、及びイソプロピル基修飾セラックについて、増殖した細胞の形態を観察した。形態の観察方法は以下のとおりである。
【００３９】
前記「（２−４）細胞増殖性の評価」の場合と同様に、カバーガラスの表面に評価対象の膜を形成した。評価対象は、ベンジル基修飾セラック、ｎ−ヘキシル基修飾セラック、又はイソプロピル基修飾セラックである。
【００４０】
次に、評価対象の膜を形成したカバーガラスを、２４穴プレートに設置し、紫外線滅菌を行った。次に、評価対象の膜が形成されたカバーガラスに、１００００ｃｅｌｌの播種を行った。播種した細胞はＮＩＨ３Ｔ３細胞であった。
【００４１】
次に、ＤＭＥＭ培地（１０％  ＦＢＳ、１００  ｕｎｉｔ／ｍＬのペニシリン−ストレプトマイシン含有）に浸漬した状態で、ＣＯ２インキュベーター（３７℃、５％ＣＯ２）内で培養を行った。
所定時間の培養後、カバーガラスを設置したウエルの培地を吸引し、ＰＢＳ（−）を用いて細胞表面の洗浄を行った。次に、４％パラホルムアルデヒド／リン酸緩衝液（ＰＦＡ／ＰＢＳ、和光純薬）をウエルに１ｍＬ加え、評価対象の膜上に細胞を固定した。
【００４２】
次に、ＰＢＳ（−）を用いて細胞表面の洗浄を行った。ＰＢＳ（−）を吸引した後、透過処理液をウエルに１ｍＬ加えて、細胞を透過処理した。透過処理液は、ＴｒｉｔｏｎＸ−１００（和光純薬）をＰＢＳ（−）で１０００倍希釈した液であった。
【００４３】
透過処理液を吸引した後、ＰＢＳ（−）を用いて細胞表面の洗浄を行った。ＰＢＳ（−）を吸引した後、１％ＢＳＡブロッキング液をウエルに１ｍＬ加え、ブロッキングした。１％ＢＳＡブロッキング液は、アルブミン血清由来コーンフラクション（ＢＳＡ、和光純薬）をＰＢＳ（−）で１００倍希釈した液であった。
【００４４】
ブロッキング液を吸引した後、ＰＢＳ（−）を用いて細胞表面の洗浄を行った。ＰＢＳ（−）を吸引した後、染色液をウエルに５０μＬ添加し、アクチン骨格を染色した。染色液は、蛍光色素修飾ファロイジン（Ｐｈａｌｌｏｉｄｉｎ，  Ｇｒｅｅｎ  Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ  Ｃｏｎｊｕｇａｔｅ，Ａｃｔｉｎ−ｓｔａｉｎ４８８、Ｃｙｔｏｓｋｅｌｅｔｏｎ社）をＰＢＳ（−）で４０倍に希釈した液であった。
【００４５】
染色液を吸引した後、ＰＢＳ（−）を用いて細胞表面の洗浄を行った。ＰＢＳ（−）を吸引した後、カバーガラスをウエルから取り出した。次に、カバーガラス上に封入剤（ＶＥＣＴＡＳＨＩＥＬＤ  Ｍｏｕｎｔｉｎｇ  Ｍｅｄｉｕｍ、Ｖｅｃｔｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社）を数滴滴下し、細胞の核を染色し、封入した。封入剤は、核の染色試薬であるＤＡＰＩを含んでいた。
【００４６】
評価対象の膜を形成していないカバーガラス（松波ガラス、φ１５ｍｍ）についても、同様の操作を行った。なお、このカバーガラスは細胞接着性を有する。評価対象の膜を形成していないカバーガラスを、ポジティブコントロールとする。
【００４７】
共焦点レーザスキャン顕微鏡（ＬＳＭ８８０、カールツァイス社）を用い、波長３５５、４８８ｎｍのレーザをカバーガラス上に照射し、蛍光画像を取得した。Ｚ軸方向のみを変化させた複数の蛍光画像を蓄積させた画像を取得し、解析ソフト（ＺＥＮ）で画像解析を行った。
【００４８】
画像解析の結果、ベンジル基修飾セラック、ｎ−ヘキシル基修飾セラック、及びイソプロピル基修飾セラックの場合、ポジティブコントトロールと同様に、良好な細胞接着と増殖性が見られた。
（２−６）接触角の測定
ベンジル基修飾セラック、ｎ−ヘキシル基修飾セラック、イソプロピル基修飾セラック、ヒドロキシエチル基修飾セラック、及び未修飾セラックについて、接触角を測定した。測定方法は上述したとおりである。測定結果を表１に示す。
【００４９】
【表１】
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ベンジル基修飾セラック、ｎ−ヘキシル基修飾セラック、及びイソプロピル基修飾セラックの接触角は、未修飾セラックの接触角に比べて大きかった。ヒドロキシエチル基修飾セラックの接触角は、未修飾セラックの接触角に比べて小さかった。
【００５０】
また、ベンジル基修飾セラック、ｎ−ヘキシル基修飾セラック、及びイソプロピル基修飾セラックは、熱硬化特性、皮膜形成性、電気絶縁性、添加成分との高い混和性、生分解性、生体無毒性、医薬品を徐放させる特性等において優れる。
【００５１】
３．他の実施形態
以上、本開示の実施形態について説明したが、本開示は上述の実施形態に限定されることなく、種々変形して実施することができる。
【００５２】
（１）上記各実施形態における１つの構成要素が有する機能を複数の構成要素に分担させたり、複数の構成要素が有する機能を１つの構成要素に発揮させたりしてもよい。また、上記各実施形態の構成の一部を省略してもよい。また、上記各実施形態の構成の少なくとも一部を、他の上記実施形態の構成に対して付加、置換等してもよい。
【００５３】
（２）上述したセラック修飾化物の他、当該セラック修飾化物を構成要素とする製品、セラック修飾化物の製造方法等、種々の形態で本開示を実現することもできる。
【図１】
2020186295.tif 000004