(57)【要約】      （修正有）【課題】生体由来の検体から、複数の病原体を同時に検出する方法、および該方法を実行するためのキットの提供。【解決手段】検体中の微生物を検出する方法であって、（１）前記検体を、界面活性剤を含むＰＣＲ緩衝液と混合する工程；（２）複数のチューブを連結したチューブストリップであって、各チューブにＤＮＡポリメラーゼおよび１種または２種以上のＰＣＲプライマー対を含むＰＣＲ反応用固体組成物を含むチューブに、工程（１）で得られた混合液の一部をそれぞれ添加する工程；および、（３）前記チューブ内に生成したＰＣＲ産物を検出する工程を含む方法。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
検体中の微生物を検出する方法であって、
（１）前記検体を、界面活性剤を含むＰＣＲ緩衝液と混合する工程；
（２）複数のチューブを連結したチューブストリップであって、各チューブにＤＮＡポリメラーゼおよび１種または２種以上のＰＣＲプライマー対を含むＰＣＲ反応用固体組成物を含むチューブに、工程（１）で得られた混合液の一部をそれぞれ添加する工程；および、
（３）前記チューブ内に生成したＰＣＲ産物を検出する工程
を含む方法。
【請求項２】
前記検体が、前房水または硝子体である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記検体の量が、１２〜２０μＬである、請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
前記微生物が、単純ヘルペスウイルス１型（ＨＳＶ-１）および２型（ＨＳＶ-２）、水痘帯状疱疹ウイルス（ＶＺＶ）、エプスタイン・バール・ウイルス（ＥＢＶ）、ヒトヘルペスウイルス６型（ＨＨＶ-６）、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）、ヒト成人Ｔ細胞白血病ウイルス（ＨＴＬＶ-１）、梅毒トレポネーマおよびトキソプラズマからなる群より選ばれる、請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。
【請求項５】
前記工程（１）において、界面活性剤が、非イオン性界面活性剤である、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
【請求項６】
前記工程（１）において、ＰＣＲ緩衝液が、ＫＣｌ、ＭｇＣｌ２およびｄＮＴＰミックス（ｄＡＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＣＴＰおよびｄＴＴＰからなる混合物）を含むトリス緩衝液である、請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法。
【請求項７】
前記工程（１）において、ＰＣＲ緩衝液が、ＤＮＡポリメラーゼに吸着する生体由来の負電荷物質およびＤＮＡに吸着する生体由来の正電荷物質であってＰＣＲを阻害する物質に結合し、前記負電荷物質および正電荷物質のＰＣＲ阻害作用を中和する物質を含む、請求項１〜６のいずれか１項に記載の方法。
【請求項８】
前記工程（２）において、チューブストリップが、２〜１２チューブストリップである、請求項１〜７のいずれか１項に記載の方法。
【請求項９】
前記工程（２）において、ＰＣＲプライマー対が、単純ヘルペスウイルス1型（ＨＳＶ-１）もしくは2型（ＨＳＶ-２）、水痘帯状疱疹ウイルス（ＶＺＶ）、エプスタイン・バール・ウイルス（ＥＢＶ）、ヒトヘルペスウイルス６型（ＨＨＶ-６）、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）、ヒト成人Ｔ細胞白血病ウイルス（ＨＴＬＶ-１）、梅毒トレポネーマまたはトキソプラズマを検出するためのＰＣＲプライマー対である、請求項１〜８のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１０】
前記工程（２）において、各チューブに含まれる２種のＰＣＲプライマー対が、以下の組み合わせである、請求項１〜９のいずれか１項に記載の方法。
（i）glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase（ＧＡＰＤＨ）遺伝子検出用プライマー対およびTATA-binding protein（TBP）遺伝子検出用プライマー対
（ii）ＨＳＶ-１検出用プライマー対およびＶＺＶ検出用プライマー対
（iii）ＨＳＶ-２検出用プライマー対およびＨＨＶ-６検出用プライマー対
（iv）ＥＢＶ検出用プライマー対およびＣＭＶ検出用プライマー対
（v）ＨＴＬＶ-１検出用プライマー対および梅毒トレポネーマ検出用プライマー対
【請求項１１】
前記工程（２）において、ＰＣＲ反応用固体組成物が、ＰＣＲ増幅産物を蛍光検出するための１種または２種以上の蛍光色素で標識されたオリゴヌクレオチドプローブを含む、請求項１〜１０のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１２】
前記蛍光色素が、ＦＡＭ（６−ｃａｒｂｏｘｙｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ）、ＲＯＸ（６−ｃａｒｂｏｘｙ−Ｘ−ｒｈｏｄａｍｉｎｅ）、Ｃｙ５（Ｃｙａｎｉｎｅ系色素）およびＨＥＸ（４，７，２’，４’，５’，７’−ｈｅｘａｃｈｌｏｒｏ−６−ｃａｒｂｏｘｙｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ）からなる群より選ばれる、請求項１１に記載の方法。
【請求項１３】
前記工程（２）において、ＰＣＲ反応用固体組成物が、凍結乾燥により調製された、請求項１〜１２のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１４】
前記工程（３）において、ＰＣＲ産物の検出が、リアルタイム測定によって行われる、請求項１〜１３のいずれか1項に記載の方法。
【請求項１５】
検体中の微生物を検出するキットであって、
前記検体を混合するための、界面活性剤を含むＰＣＲ緩衝液を含むチューブ１；および、
チューブ１に含まれる混合液の一部を添加するための、複数のチューブを連結したチューブストリップであって、各チューブにＤＮＡポリメラーゼおよび１種または２種以上のＰＣＲプライマー対を含むＰＣＲ反応用固体組成物を含むチューブ２；
を備えるキット。
【請求項１６】
前記界面活性剤が、非イオン性界面活性剤である、請求項１５に記載のキット。
【請求項１７】
前記ＰＣＲ緩衝液が、ＫＣｌ、ＭｇＣｌ２およびｄＮＴＰミックス（ｄＡＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＣＴＰおよびｄＴＴＰからなる混合物）を含むトリス緩衝液である、請求項１５または１６に記載のキット。
【請求項１８】
前記ＰＣＲ緩衝液が、ＤＮＡポリメラーゼに吸着する生体由来の負電荷物質およびＤＮＡに吸着する生体由来の正電荷物質であってＰＣＲを阻害する物質に結合し、前記負電荷物質および正電荷物質のＰＣＲ阻害作用を中和する物質を含む、請求項１５〜１７のいずれか１項に記載のキット。
【請求項１９】
前記ストリップチューブが、２〜１２チューブストリップである、請求項１５〜１８のいずれか１項に記載のキット。
【請求項２０】
前記ＰＣＲプライマー対が、単純ヘルペスウイルス１型（ＨＳＶ-１）もしくは２型（ＨＳＶ-２）、水痘帯状疱疹ウイルス（ＶＺＶ）、エプスタイン・バール・ウイルス（ＥＢＶ）、ヒトヘルペスウイルス６型（ＨＨＶ-６）、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）、ヒト成人Ｔ細胞白血病ウイルス（ＨＴＬＶ-１）、梅毒トレポネーマまたはトキソプラズマを検出するためのＰＣＲプライマー対である、請求項１５〜１９のいずれか１項に記載のキット。
【請求項２１】
前記各チューブに含まれる２種のＰＣＲプライマー対が、以下の組み合わせである、請求項１５〜２０のいずれか１項に記載のキット。
（i）glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase（ＧＡＰＤＨ）遺伝子検出用プライマー対およびTATA-binding protein（TBP）遺伝子検出用プライマー対
（ii）ＨＳＶ-１検出用プライマー対およびＶＺＶ検出用プライマー対
（iii）ＨＳＶ-２検出用プライマー対およびＨＨＶ-６検出用プライマー対
（iv）ＥＢＶ検出用プライマー対およびＣＭＶ検出用プライマー対
（v）ＨＴＬＶ-１検出用プライマー対および梅毒トレポネーマ検出用プライマー対
【請求項２２】
前記ＰＣＲ反応用固体組成物が、ＰＣＲ増幅産物を蛍光検出するための１種または２種以上の蛍光色素で標識されたオリゴヌクレオチドプローブを含む、請求項１５〜２１のいずれか１項に記載のキット。
【請求項２３】
前記蛍光色素が、ＦＡＭ（６−ｃａｒｂｏｘｙｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ）、ＲＯＸ（６−ｃａｒｂｏｘｙ−Ｘ−ｒｈｏｄａｍｉｎｅ）、Ｃｙ５（Ｃｙａｎｉｎｅ系色素）およびＨＥＸ（４，７，２’，４’，５’，７’−ｈｅｘａｃｈｌｏｒｏ−６−ｃａｒｂｏｘｙｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ）からなる群より選ばれる、請求項２２に記載のキット。
【請求項２４】
前記ＰＣＲ反応用固体組成物が、凍結乾燥により調製された、請求項１５〜２３のいずれか１項に記載のキット。
【請求項２５】
遺伝子の検査方法であって、
（１）検体と界面活性剤を含むＰＣＲ緩衝液と混合する工程；
（２）上記工程（１）で得られた混合液の一部をＤＮＡポリメラーゼおよびglyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase（ＧＡＰＤＨ）検出用プライマー対および/又はTATA-binding protein（TBP）検出用プライマー対を含むＰＣＲ反応用固体組成物に添加する工程；
（３）上記工程（１）で得られた混合液の一部をＤＮＡポリメラーゼおよび１種または２種以上のＰＣＲプライマー対を含むＰＣＲ反応用固体組成物に添加する工程；および、
（４）前記工程（２）および（３）の結果生成したＰＣＲ産物を検出する工程
を含む遺伝子の検査方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、生体由来の検体から、複数の感染微生物を同時に検出する方法、および該方法を実行するためのキットに関する。具体的には、前房水あるいは硝子体などの検体から、眼感染症のひとつである感染性ぶどう膜炎の原因となる複数の病原体を、ポリメラーゼ連鎖反応（polymerase chain reaction、ＰＣＲ）により同時に検出する方法、および該方法を実行するための試薬キットに関する。
【背景技術】
【０００２】
ぶどう膜炎は眼内に炎症を起こす疾患の総称であり、重症例では、高率に失明などの視覚障害を引き起こす。ぶどう膜炎は、サルコイドーシス、原田病、ベーチェット病などの非感染性ぶどう膜炎と、病原体による感染性ぶどう膜炎とに分類される。非感染性ぶどう膜炎は、ステロイド剤などの免疫抑制剤による薬物治療が行われるが、感染性ぶどう膜炎では、原因となる病原体に対応する薬剤により治療する必要がある。しかし、感染性ぶどう膜炎と非感染性ぶどう膜炎との鑑別は、臨床所見のみでは困難である場合があり、診断の遅れまたは不適切な治療により症状が重篤化する症例が存在する。このため、ぶどう膜炎における病原体の存在および病原体の同定を早期に行うことは、適切な治療方法の選択および症状の重篤化の防止のために重要である。
【０００３】
感染性ぶどう膜炎の原因となる病原体としては、ウイルス、細菌、真菌、原虫などが挙げられるが、ウイルスを原因とする感染性ぶどう膜炎の発症頻度が最も高い。原因となるウイルスとしては、単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶ）１型および２型、水痘帯状疱疹ウイルス（ＶＺＶ）、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）などのヘルペスウイルス属、ならびにヒト成人Ｔ細胞白血病ウイルス（ＨＴＬＶ-１）などが挙げられる。感染性ぶどう膜炎の診断や治療を行う上で感染体の同定は重要な情報となる。このため、眼内局所における感染ウイルスを同定するためには、前房から採取された前房水や眼内から採取された硝子体などを検体として使用する必要がある。
【０００４】
前房は、角膜と水晶体との間にある空間であり、その空間を満たす前房水を検体として、病原体の同定のためにＰＣＲによる遺伝子検査が行われている。しかしながら前房水の採取量は、通常１００μＬ以下であり、複数の病原体を検出するには検体量が不足する場合がある。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
上記の検体が不足する原因としては、ＰＣＲに供する核酸を検体から抽出する場合、一般に、抽出操作工程において一定量の試料の損失が生じるためである。特に微量の検体から核酸を抽出する場合、抽出操作工程における試料の損失によってＰＣＲに供する試料量を十分に確保することができない場合がある。さらに、感染性ぶどう膜炎においては、原因となる病原体は、主要なもので、単純ヘルペスウイルス１型（ＨＳＶ-１）および２型（ＨＳＶ-２）、水痘帯状疱疹ウイルス（ＶＺＶ）、エプスタイン・バール・ウイルス（ＥＢＶ）、ヒトヘルペスウイルス６型（ＨＨＶ-６）、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）、ヒト成人Ｔ細胞白血病ウイルス（ＨＴＬＶ-１）、細菌である梅毒トレポネーマならびに原虫であるトキソプラズマの９種類が挙げられる。これらの項目をすべて検出するには、一定量の検体が必要となるが、そもそも前房水は少量しか採取できない。また、それぞれの病原体を個別に検出するためには、それぞれの病原体ごとにＰＣＲ試薬およびＰＣＲプライマー等を調製する必要があるが、検出対象の数が多くなると、試薬の入れ間違いなどのヒューマンエラーが生じる可能性が高くなり、誤った検出結果を与える危険性もある。
【０００６】
本発明の目的は、微量の検体であっても、複数の病原体を、同時に、かつ迅速に検出することができる検出方法、および該方法を実行するためのキットを提供することにある。さらに本発明の目的は、簡便な検出工程を採用することにより、病原体の検出操作におけるヒューマンエラーを回避することのできる検出方法、および該方法を実行するためのキットを提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
すなわち、本発明の目的は、以下の発明により達成される。
〔１〕
検体中の微生物を検出する方法であって、
（１）前記検体を、界面活性剤を含むＰＣＲ緩衝液と混合する工程；
（２）複数のチューブを連結したチューブストリップであって、各チューブにＤＮＡポリメラーゼおよび１種または２種以上のＰＣＲプライマー対を含むＰＣＲ反応用固体組成物を含むチューブに、工程（１）で得られた混合液の一部をそれぞれ添加する工程；および、
（３）前記チューブ内に生成したＰＣＲ産物を検出する工程；
を含む方法。
〔２〕
前記検体が、前房水または硝子体である、〔１〕に記載の方法。
〔３〕
検体の量が、１２〜２０μＬである、〔１〕または〔２〕に記載の方法。
〔４〕
前記微生物が、単純ヘルペスウイルス１型（ＨＳＶ-１）および２型（ＨＳＶ-２）、水痘帯状疱疹ウイルス（ＶＺＶ）、エプスタイン・バール・ウイルス（ＥＢＶ）、ヒトヘルペスウイルス６型（ＨＨＶ-６）、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）、ヒト成人Ｔ細胞白血病ウイルス（ＨＴＬＶ-１）、梅毒トレポネーマおよびトキソプラズマからなる群より選ばれる、〔１〕〜〔３〕のいずれかに記載の方法。
〔５〕
前記工程（１）において、界面活性剤が、非イオン性界面活性剤である、〔１〕〜〔４〕のいずれかに記載の方法。
〔６〕
前記工程（１）において、ＰＣＲ緩衝液が、ＫＣｌ、ＭｇＣｌ２およびｄＮＴＰミックス（ｄＡＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＣＴＰおよびｄＴＴＰからなる混合物）を含むトリス緩衝液である、〔１〕〜〔５〕のいずれかに記載の方法。
〔７〕
前記工程（１）において、ＰＣＲ緩衝液が、ＤＮＡポリメラーゼに吸着する生体由来の負電荷物質およびＤＮＡに吸着する生体由来の正電荷物質であってＰＣＲを阻害する物質に結合し、前記負電荷物質および正電荷物質のＰＣＲ阻害作用を中和する物質を含む、〔１〕〜〔６〕のいずれかに記載の方法。
〔８〕
前記工程（２）において、チューブストリップが、２〜１２チューブストリップである、〔１〕〜〔７〕のいずれかに記載の方法。
〔９〕
前記工程（２）において、ＰＣＲプライマー対が、単純ヘルペスウイルス1型（ＨＳＶ-１）もしくは2型（ＨＳＶ-２）、水痘帯状疱疹ウイルス（ＶＺＶ）、エプスタイン・バール・ウイルス（ＥＢＶ）、ヒトヘルペスウイルス６型（ＨＨＶ-６）、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）、ヒト成人Ｔ細胞白血病ウイルス（ＨＴＬＶ-１）、梅毒トレポネーマまたはトキソプラズマを検出するためのＰＣＲプライマー対である、〔１〕〜〔８〕のいずれかに記載の方法。
〔１０〕
前記工程（２）において、各チューブに含まれる２種のＰＣＲプライマー対が、以下の組み合わせである、〔１〕〜〔９〕のいずれかに記載の方法。
（i）glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase（ＧＡＰＤＨ）遺伝子検出用プライマー対およびTATA-binding protein（TBP）遺伝子検出用プライマー対
（ii）ＨＳＶ-１検出用プライマー対およびＶＺＶ検出用プライマー対
（iii）ＨＳＶ-２検出用プライマー対およびＨＨＶ-６検出用プライマー対
（iv）ＥＢＶ検出用プライマー対およびＣＭＶ検出用プライマー対
（v）ＨＴＬＶ-１検出用プライマー対および梅毒トレポネーマ検出用プライマー対
〔１１〕
前記工程（２）において、ＰＣＲ反応用固体組成物が、ＰＣＲ増幅産物を蛍光検出するための１種または２種以上の蛍光色素で標識されたオリゴヌクレオチドプローブを含む、〔１〕〜〔１０〕のいずれかに記載の方法。
〔１２〕
前記蛍光色素が、ＦＡＭ（６−ｃａｒｂｏｘｙｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ）、ＲＯＸ（６−ｃａｒｂｏｘｙ−Ｘ−ｒｈｏｄａｍｉｎｅ）、Ｃｙ５（Ｃｙａｎｉｎｅ系色素）およびＨＥＸ（４，７，２’，４’，５’，７’−ｈｅｘａｃｈｌｏｒｏ−６−ｃａｒｂｏｘｙｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ）からなる群より選ばれる、〔１１〕に記載の方法。
〔１３〕
前記工程（２）において、ＰＣＲ反応用固体組成物が、凍結乾燥により調製された、〔１〕〜〔１２〕のいずれかに記載の方法。
〔１４〕
前記工程（３）において、ＰＣＲ産物の検出が、リアルタイム測定によって行われる、〔１〕〜〔１３〕のいずれかに記載の方法。
〔１５〕
検体中の微生物を検出するキットであって、
前記検体を混合するための、界面活性剤を含むＰＣＲ緩衝液を含むチューブ１；および、
チューブ１に含まれる混合液の一部を添加するための、複数のチューブを連結したチューブストリップであって、各チューブにＤＮＡポリメラーゼおよび１種または２種以上のＰＣＲプライマー対を含むＰＣＲ反応用固体組成物を含むチューブ２；
を備えるキット。
〔１６〕
前記界面活性剤が、非イオン性界面活性剤である、〔１５〕に記載のキット。
〔１７〕
前記ＰＣＲ緩衝液が、ＫＣｌ、ＭｇＣｌ２およびｄＮＴＰミックス（ｄＡＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＣＴＰおよびｄＴＴＰからなる混合物）を含むトリス緩衝液である、〔１５〕または〔１６〕に記載のキット。
〔１８〕
前記ＰＣＲ緩衝液が、ＤＮＡポリメラーゼに吸着する生体由来の負電荷物質およびＤＮＡに吸着する生体由来の正電荷物質であってＰＣＲを阻害する物質に結合し、前記負電荷物質および正電荷物質のＰＣＲ阻害作用を中和する物質を含む、〔１５〕〜〔１７〕のいずれかに記載のキット。
〔１９〕
前記チューブストリップが、２〜１２ウェル・ストリップチューブである、〔１５〕〜〔１８〕のいずれかに記載のキット。
〔２０〕
前記ＰＣＲプライマー対が、単純ヘルペスウイルス１型（ＨＳＶ-１）もしくは２型（ＨＳＶ-２）、水痘帯状疱疹ウイルス（ＶＺＶ）、エプスタイン・バール・ウイルス（ＥＢＶ）、ヒトヘルペスウイルス６型（ＨＨＶ-６）、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）、ヒト成人Ｔ細胞白血病ウイルス（ＨＴＬＶ-１）、梅毒トレポネーマまたはトキソプラズマを検出するためのＰＣＲプライマー対である、〔１５〕〜〔１９〕のいずれかに記載のキット。
〔２１〕
前記各チューブに含まれる２種のＰＣＲプライマー対が、以下の組み合わせである、〔１５〕〜〔２０〕のいずれかに記載のキット。
（i）glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase（ＧＡＰＤＨ）遺伝子検出用プライマー対およびTATA-binding protein（TBP）遺伝子検出用プライマー対
（ii）ＨＳＶ-１検出用プライマー対およびＶＺＶ検出用プライマー対
（iii）ＨＳＶ-２検出用プライマー対およびＨＨＶ-６検出用プライマー対
（iv）ＥＢＶ検出用プライマー対およびＣＭＶ検出用プライマー対
（v）ＨＴＬＶ-１検出用プライマー対および梅毒トレポネーマ検出用プライマー対
〔２２〕
前記ＰＣＲ反応用固体組成物が、ＰＣＲ増幅産物を蛍光検出するための１種または２種以上の蛍光色素で標識されたオリゴヌクレオチドプローブを含む、〔１５〕〜〔２１〕のいずれかに記載のキット。
〔２３〕
前記蛍光色素が、ＦＡＭ（６−ｃａｒｂｏｘｙｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ）、ＲＯＸ（６−ｃａｒｂｏｘｙ−Ｘ−ｒｈｏｄａｍｉｎｅ）、Ｃｙ５（Ｃｙａｎｉｎｅ系色素）およびＨＥＸ（４，７，２’，４’，５’，７’−ｈｅｘａｃｈｌｏｒｏ−６−ｃａｒｂｏｘｙｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ）からなる群より選ばれる、〔２２〕に記載のキット。
〔２４〕
前記ＰＣＲ反応用固体組成物が、凍結乾燥により調製された、〔１５〕〜〔２３〕のいずれかに記載のキット。
〔２５〕
遺伝子の検査方法であって、
（１）検体と界面活性剤を含むＰＣＲ緩衝液と混合する工程；
（２）上記工程（１）で得られた混合液の一部をＤＮＡポリメラーゼおよびglyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase（ＧＡＰＤＨ）検出用プライマー対および/又はTATA-binding protein（TBP）検出用プライマー対を含むＰＣＲ反応用固体組成物に添加する工程；
（３）上記工程（１）で得られた混合液の一部をＤＮＡポリメラーゼおよび１種または２種以上のＰＣＲプライマー対を含むＰＣＲ反応用固体組成物に添加する工程；および、
（４）前記工程（２）および（３）の結果生成したＰＣＲ産物を検出する工程
を含む遺伝子の検査方法。
【発明の効果】
【０００８】
本発明によれば、検体（例えば前房水）から核酸を抽出する工程が不要であるため、微生物の検出工程における検体の損失がほとんど生じない。このため、微量の検体であっても、複数の病原微体を同時に、かつ迅速に検出することができる。さらに、本発明における微生物検出工程は簡便であるため、検出操作におけるヒューマンエラーを回避することができる。
【図面の簡単な説明】
【０００９】
【図１Ａ】と
【図１Ｂ】と
【図１Ｃ】本発明の方法およびキットならびに定量ＰＣＲ（ｑＰＣＲ）法を用いて、病原体の存在が疑われる５３例のヒト前房水または硝子体を分析した結果を示す図である。
【図２】図１A、図１Bと図１Cにおいて、本発明の方法およびキットを用いて得たＣｑ値ならびに定量ＰＣＲ（ｑＰＣＲ）法で得た定量値（コピー／ｍＬ）の相関性を示す図である。
【図３Ａ】と
【図３Ｂ】本発明の方法およびキットならびに定量ＰＣＲ（ｑＰＣＲ）法を用いて、非感染性ぶどう膜炎と診断された５１例のヒト前房水または硝子体を分析した結果を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
本発明は、検体中の微生物を検出する方法である。該方法は、（１）前記検体を、界面活性剤を含むＰＣＲ緩衝液と混合する工程；（２）複数のチューブを連結したチューブストリップであって、各チューブにＤＮＡポリメラーゼおよび１種または２種以上のＰＣＲプライマー対を含むＰＣＲ反応用固体組成物を含むチューブに、工程（１）で得られた混合液の一部をそれぞれ添加する工程：および、（３）前記チューブ内に生成したＰＣＲ産物を検出する工程；を含む。
【００１１】
本発明の方法において使用される検体としては、眼組織から得られる固形物、粘性物または液性物を用いることができるが、ぶどう膜炎における病原体の感染を診断するためには、前房水または硝子体の使用が好ましい。前房水の採取量は、一般に５０〜１００μＬ程度である。本発明においては、１２〜２０の前房水または硝子体を使用して微生物の感染を検出することができるが、測定対象とする微生物の数に応じて、１２μＬ未満であっても検出が可能である。
【００１２】
本発明の方法において、検出対象となる病原体は、ウイルス、細菌、真菌、原虫などが挙げられる。ウイルスには、ＤＮＡウイルスおよびＲＮＡウイルスが含まれる。ＤＮＡウイルスとしては、単純ヘルペスウイルス１型（ＨＳＶ-１）および２型（ＨＳＶ-２）、水痘帯状疱疹ウイルス（ＶＺＶ）、エプスタイン・バール・ウイルス（ＥＢＶ）、ヒトヘルペスウイルス６型（ＨＨＶ-６）、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）などが、またＲＮＡウイルスとしては、ヒト成人Ｔ細胞白血病ウイルス（ＨＴＬＶ-１）などが挙げられるが、これらに限定されることはない。細菌としては、梅毒トレポネーマなどが、また原虫としては、トキソプラズマなどが検出対象となるが、やはりこれらに限定されることはない。ＰＣＲにおいて、標的遺伝子領域の増幅に使用するプライマー対（フォワードおよびリバース）の選択により、種々の病原体を検出対象とすることができる。
【００１３】
前房水および硝子体などの検体は、界面活性剤を含むＰＣＲ緩衝液と混合することにより、前房水および硝子体などに含まれる病原体の溶解が、ＰＣＲ中に促進されると考えられる。ＰＣＲ緩衝液に含まれる界面活性剤としては、陰イオン界面活性剤、陽イオン界面活性剤、両性界面活性剤または非イオン界面活性剤を選択することができる。好ましくは、非イオン性界面活性剤であり、検体との混合時に０.０５〜５％（w/v）であることが好ましい。本発明の一実施態様において、前記ＰＣＲ緩衝液は、ＫＣｌ、ＭｇＣｌ２およびｄＮＴＰミックス（deoxyribonucleotide 5’-triphosphate；ｄＡＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＣＴＰおよびｄＴＴＰからなる混合物）を含む。前記ＰＣＲ緩衝液はトリス塩酸が好ましいが、これに限定されない。ｄＮＴＰ、ＭｇＣｌ２、ＫＣｌおよび緩衝液について、当業者であれば適切な濃度を設定することができる。例えば、ＭｇＣｌ２が１.５ｍＭ、ＫＣｌが３５ｍＭ、ｄＮＴＰがそれぞれ２００μＭおよびトリス塩酸が１０ｍＭである。本発明の一実施態様において、前記ＰＣＲ緩衝液は、ＤＮＡポリメラーゼに吸着する生体由来の負電荷物質（例えば、ある種の糖および色素等）およびＤＮＡに吸着する生体由来の正電荷物質（例えば、ある種のタンパク質等）であってＰＣＲを阻害する物質に結合し、前記負電荷物質および正電荷物質のＰＣＲ阻害作用を中和する物質を含む。前記ＰＣＲ緩衝液として、遺伝子増幅用試薬Ampdirect（登録商標、島津製作所）またはAmpdirect Plus（登録商標、島津製作所）を使用することができる。
【００１４】
検体と前記ＰＣＲ緩衝液との混合液は、ＤＮＡポリメラーゼおよび１種または２種以上のＰＣＲプライマー対を含むＰＣＲ反応用固体組成物に直接添加することによりＰＣＲを開始することができる。前記ＤＮＡポリメラーゼは、好熱性細菌由来の耐熱性ＤＮＡポリメラーゼであり、Ｔａｑ、Ｔｔｈ、ＫＯＤ、Ｐｆｕおよびこれらの変異体を使用することができるが、これらに限定されない。ＤＮＡポリメラーゼによる非特異的増幅を避けるため、ホットスタートＤＮＡポリメラーゼを使用してもよい。ホットスタートＤＮＡポリメラーゼとしては、抗ＤＮＡポリメラーゼ抗体が結合したＤＮＡポリメラーゼまたは酵素活性部位を熱感受性化学修飾したＤＮＡポリメラーゼが挙げられるが、抗ＤＮＡポリメラーゼ抗体が結合したＤＮＡポリメラーゼが好ましい。
【００１５】
本発明の方法において、複数の病原微生物を同時に検出するため、１種または２種以上のＰＣＲプライマー対を含むＰＣＲ反応用固体組成物を含む複数のチューブに、前記工程（１）で得られた混合液の一部を同時に添加する。前記工程（１）において、一人の患者から得られた検体を１本のチューブ内で混合液とし、この混合液を、プライマー対を含む複数のチューブに添加し、ＰＣＲを行うことにより、複数の病原微生物を同時に検出することができる。前記工程（２）において、前記ＰＣＲ反応用固体組成物を含むチューブに、前記工程（１）で得られた混合液を添加することにより、前記ＰＣＲ反応用固体組成物が溶解し、サーマルサイクリングを行うことでＰＣＲが進行する。本発明の一実施態様において、前記工程（２）における複数のチューブを連結したチューブストリップは、２〜１２ＰＣＲ用チューブストリップである。このチューブストリップは、そのままリアルタイムＰＣＲに供することができる。
【００１６】
前記工程（２）において、病原体を検出するＰＣＲプライマー対として、単純ヘルペスウイルス1型（ＨＳＶ-１）もしくは2型（ＨＳＶ-２）、水痘帯状疱疹ウイルス（ＶＺＶ）、エプスタイン・バール・ウイルス（ＥＢＶ）、ヒトヘルペスウイルス６型（ＨＨＶ-６）、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）、ヒト成人Ｔ細胞白血病ウイルス（ＨＴＬＶ-１）、梅毒トレポネーマまたはトキソプラズマの標的遺伝子領域の増幅を行うためのＰＣＲプライマー対が使用されるが、これらに限定されない。これらのＰＣＲプライマー対は、２種を組み合わせて、１ウェルに含まれる前記ＰＣＲ反応用固体組成物に加えることができる。これにより、１ウェルで２種類の病原微生物を検出することができるので、検出を迅速に行うことができる。
【００１７】
検体量を節約し、複数の標的遺伝子を同時に増幅する方法としてマルチプレックスＰＣＲが提案されている（Sugita S, et al. Br J Ophthalmol. 2008;92:928-932.およびSugita S, et al. Ophthalmology. 2013;120:1761-1768.）。マルチプレックスＰＣＲは、ひとつのＰＣＲ反応系において複数のＰＣＲプライマー対を使用することにより、複数の遺伝子領域を同時に増幅する方法である。この方法では、検体量の節約ができることに加えて、複数の病原微生物を同時に検出することができるという利点がある。しかしながら、ＰＣＲを実施する前に、検体から核酸を抽出する必要があった。また、マルチプレックスＰＣＲにおいては、それぞれのＰＣＲプライマー対による標的遺伝子領域の増幅が、ひとつのＰＣＲ反応系において良好に進行するように、使用するプライマーの設定および反応条件の検討が必要である。
【００１８】
このように、１ウェルに２種類のＰＣＲプライマー対を添加する場合、プライマーの交差反応が生じると、正確な測定が困難となる。また、プライマー対の間において、増幅効率が大きく異なる場合にも、正確な測定ができない場合がある。検出精度に優れたプライマー対の組み合わせとして、内部標準の組み合わせとしては、（i）glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase（ＧＡＰＤＨ）遺伝子検出用プライマー対およびTATA-binding protein（ＴＢＰ）遺伝子検出用プライマー対が好ましいが、これらに限定されない。ＧＡＰＤＨ遺伝子は、ハウスキーピング遺伝子として、多くの組織や細胞中に共通して一定量発現する遺伝子であり、ＰＣＲの進行を確認する陽性コントロールとして使用する。ＴＢＰは、ＴＡＴＡボックスと呼ばれるＤＮＡ配列に結合する基本転写因子であり、細胞数を反映するので、細胞が採取され、検体に含まれることを確認するコントロールとして使用する。病原微生物検出用プライマー対としては、（ii）ＨＳＶ-１検出用プライマー対およびＶＺＶ検出用プライマー対、（iii）ＨＳＶ-２検出用プライマー対およびＨＨＶ-６検出用プライマー対、（iv）ＥＢＶ検出用プライマー対およびＣＭＶ検出用プライマー対、ならびに（v）ＨＴＬＶ-１検出用プライマー対および梅毒トレポネーマ検出用プライマー対の組み合わせが好ましいが、これらに限定されない。また、３種類の病原微生物を同時に検出するために、３種以上のＰＣＲプライマー対を加えてもよい。各プライマーの塩基配列は、当業者であれば、標的遺伝子の塩基配列情報に基づいて適切に設計することができる。
【００１９】
前記工程（２）におけるＰＣＲ反応用固体組成物は、ＰＣＲ増幅産物を蛍光検出するための１種または２種以上の蛍光色素で標識されたオリゴヌクレオチドプローブを含む。ＰＣＲを実行するウェルに、１種類のＰＣＲプライマー対が加えられている場合には、リアルタイム測定するための蛍光色素は１種類でよいが、２種類のＰＣＲプライマー対が加えられている場合には、２種類の異なる蛍光色素が必要となる。この蛍光色素としては、ＦＡＭ（６−ｃａｒｂｏｘｙｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ）、ＲＯＸ（６−ｃａｒｂｏｘｙ−Ｘ−ｒｈｏｄａｍｉｎｅ）、Ｃｙ５（Ｃｙａｎｉｎｅ系色素）およびＨＥＸ（４，７，２’，４’，５’，７’−ｈｅｘａｃｈｌｏｒｏ−６−ｃａｒｂｏｘｙｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ）からなる群より選ぶことができるが、他の蛍光色素を使用することもできる。オリゴヌクレオチドプローブの塩基配列は、当業者であれば、ＰＣＲ増幅産物の塩基配列情報に基づいて適切に設計することができる。
【００２０】
ＰＣＲ条件（温度、時間およびサイクル数）の設定は、当業者であれば容易に行うことができる。本発明の一実施態様において、ＰＣＲ産物はリアルタイム測定によりモニターされる。ＰＣＲ産物のリアルタイム測定は、リアルタイムＰＣＲとも呼ばれる。リアルタイムＰＣＲ では、通常ＰＣＲ増幅産物を蛍光により検出する。蛍光検出方法には、インターカレーター性蛍光色素を用いる方法および蛍光標識プローブを用いる方法がある。インターカレーター性蛍光色素としては、ＳＹＢＲ（登録商標）Ｇｒｅｅｎ Ｉが使用されるが、これに限定されるわけではない。インターカレーター性蛍光色素は、ＰＣＲによって合成された二本鎖ＤＮＡに結合し、励起光の照射により蛍光を発する。この蛍光強度を測定することにより、ＰＣＲ増幅産物の生成量を測定することができる。
【００２１】
蛍光標識プローブとしては、加水分解プローブ、Molecular Beacon、サイクリングプローブなどが挙げられるが、これらに限定されるわけではない。加水分解プローブは、５'末端が蛍光色素で、また３'末端がクエンチャー物質で修飾されたオリゴヌクレオチドである。加水分解プローブは、ＰＣＲのアニーリングステップで鋳型ＤＮＡに特異的にハイブリダイズするが、プローブ上にクエンチャーが存在するため、励起光を照射しても蛍光の発生は抑制される。その後の伸長反応ステップで、Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼのもつ５'→３'エキソヌクレアーゼ活性により、鋳型ＤＮＡにハイブリダイズした加水分解プローブが分解されると、蛍光色素がプローブから遊離し、クエンチャーによる蛍光の発生の抑制が解除されて蛍光を発する。この蛍光強度を測定することにより、増幅産物の生成量を測定することができる。前記蛍光色素としては、ＦＡＭ（６−ｃａｒｂｏｘｙｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ）、ＲＯＸ（６−ｃａｒｂｏｘｙ−Ｘ−ｒｈｏｄａｍｉｎｅ）、Ｃｙ５（Ｃｙａｎｉｎｅ系色素）およびＨＥＸ（４，７，２’，４’，５’，７’−ｈｅｘａｃｈｌｏｒｏ−６−ｃａｒｂｏｘｙｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ）など挙げられるが、これらに限定されない。前記クエンチャーとしては、ＴＡＭＲＡ（登録商標）、ＢＨＱ（Ｂｌａｃｋ Ｈｏｌｅ Ｑｕｅｎｃｈｅｒ、登録商標）、ＭＧＢ−Ｅｃｌｉｐｓｅ（登録商標）およびＤＡＢＣＹＬなどが挙げられるが、これらに限定されない。２種類以上のＤＮＡ標的配列を区別して検出するためには、それぞれ異なる蛍光色素で標識した２種類以上のオリゴヌクレオチドプローブ（例えば加水分解プローブ）を用いてＰＣＲを行う。
【００２２】
ＰＣＲ産物のリアルタイム測定において、使用する蛍光色素に対応した蛍光フィルターを用いてＰＣＲ産物の増幅曲線をモニターする。ＰＣＲサイクル数に応じて蛍光強度が増加する場合には、検体における分析対象の病原体の存在が陽性であると判定され、一方、ＰＣＲにおいて蛍光強度が増加しない場合は陰性であると判定される。
【００２３】
一実施態様において、前記工程（２）におけるＰＣＲ反応用固体組成物は、凍結乾燥により調製される。ただし、該ＰＣＲ反応用固体組成物に含まれる酵素などの活性が維持される限りにおいて、凍結乾燥に限定されない。固体組成物とすることにより、前記工程（１）で得られた混合液を添加するだけで、ＰＣＲを開始することができるので、測定操作が簡便なものとなる。また、使用する前の保管も簡易なものとなる。
【００２４】
本発明では、検体中の微生物を検出するキットが提供される。該キットは、前記検体を混合するための、界面活性剤を含むＰＣＲ緩衝液を含むチューブ１、および、
チューブ１に含まれる混合液の一部を添加するための複数のチューブを連結したチューブストリップであって、各チューブにＤＮＡポリメラーゼおよび１種または２種以上のＰＣＲプライマー対を含むＰＣＲ反応用固体組成物を含むチューブ２；を備える。
【００２５】
本発明のキットは、本発明の微生物を検出する方法を実施するために使用される。前記キットに含まれるチューブ１は界面活性剤を含む。界面活性剤としては、陰イオン界面活性剤、陽イオン界面活性剤、両性界面活性剤または非イオン界面活性剤を選択することができる。好ましくは、非イオン性界面活性剤であり、検体との混合時に０.０５〜５％（w/v）となるように前記チューブ１に加えることが好ましい。本発明の一実施態様において、チューブ１には、ｄＮＴＰミックス（deoxyribonucleotide 5’-triphosphate；ｄＡＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＣＴＰおよびｄＴＴＰからなる混合物）、ＭｇＣｌ２、ＫＣｌおよび緩衝液が含まれる。前記緩衝液はトリス塩酸が好ましいが、これに限定されない。当業者であれば、ＰＣＲ時に、ｄＮＴＰ、ＭｇＣｌ２、ＫＣｌおよび緩衝液が適切な濃度となるように、これらを前記チューブ１に添加することができる。例えば、ＰＣＲ時に、ＭｇＣｌ２が１.５ｍＭ、ＫＣｌが３５ｍＭ、ｄＮＴＰがそれぞれ２００μＭおよびトリス塩酸が１０ｍＭになるようにチューブ１に添加する。本発明の一実施態様において、チューブ１には、ＤＮＡポリメラーゼに吸着する生体由来の負電荷物質（例えば、ある種の糖および色素等）およびＤＮＡに吸着する生体由来の正電荷物質（例えば、ある種のタンパク質等）であってＰＣＲを阻害する物質に結合し、前記負電荷物質および正電荷物質のＰＣＲ阻害作用を中和する物質が含まれる。本発明の一実施態様において、遺伝子増幅用試薬Ampdirect（登録商標、島津製作所）またはAmpdirect Plus（登録商標、島津製作所）を、前記チューブ１に加えることができる。
【００２６】
本発明のキットは、ＰＣＲ反応用固体組成物を含むチューブ２を複数含む。一実施態様において、該チューブ２は、ウェルが連結された２〜１２チューブストリップである。該チューブストリップは、市販のものを使用することができる。チューブ材質としてはポリプロピレンなどが使用できる。チューブ色としては、無着色または白色が好ましい。前記ＰＣＲ反応用固体組成物は、ＤＮＡポリメラーゼおよび１種または２種以上のＰＣＲプライマー対を含む。前記ＤＮＡポリメラーゼは、好熱性細菌由来の耐熱性ＤＮＡポリメラーゼであり、Ｔａｑ、Ｔｔｈ、ＫＯＤ、Ｐｆｕおよびこれらの変異体を使用することができるが、これらに限定されない。ＤＮＡポリメラーゼによる非特異的増幅を避けるため、ホットスタートＤＮＡポリメラーゼを使用してもよい。ホットスタートＤＮＡポリメラーゼとしては、抗ＤＮＡポリメラーゼ抗体が結合したＤＮＡポリメラーゼまたは酵素活性部位を熱感受性化学修飾したＤＮＡポリメラーゼが挙げられるが、抗ＤＮＡポリメラーゼ抗体が結合したＤＮＡポリメラーゼが好ましい。
【００２７】
前記チューブ２は、病原体に対する１種類または２種類のＰＣＲプライマー対を含む。２種類のＰＣＲプライマー対を加える場合、プライマーの交差反応および増幅効率の大きな相違をさけ、正確な測定ができるよう、内部標準の組み合わせとしては、（i）glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase（ＧＡＰＤＨ）遺伝子検出用プライマー対およびTATA-binding protein（TBP）遺伝子検出用プライマー対が好ましく、病原微生物検出用プライマー対としては、（ii）ＨＳＶ-１検出用プライマー対およびＶＺＶ検出用プライマー対、（iii）ＨＳＶ-２検出用プライマー対およびＨＨＶ-６検出用プライマー対、（iv）ＥＢＶ検出用プライマー対およびＣＭＶ検出用プライマー対、ならびに（v）ＨＴＬＶ-１検出用プライマー対および梅毒トレポネーマ検出用プライマー対の組み合わせが好ましい。ＰＣＲプライマー対の組み合わせはこれらに限定されるものではなく、正確な測定ができる限りにおいて、任意の組み合わせとすることができる。前記チューブ２には、３種以上のＰＣＲプライマー対を加えてもよい。
【００２８】
前記チューブ２は、ＰＣＲ増幅産物を蛍光検出するための１種または２種以上の蛍光色素で標識されたオリゴヌクレオチドプローブを含む。通常、加えられる蛍光色素の数は、同一チューブに加えられるＰＣＲプライマー対の数と同じである。蛍光色素としては、ＦＡＭ（６−ｃａｒｂｏｘｙｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ）、ＲＯＸ（６−ｃａｒｂｏｘｙ−Ｘ−ｒｈｏｄａｍｉｎｅ）、Ｃｙ５（Ｃｙａｎｉｎｅ系色素）およびＨＥＸ（４，７，２’，４’，５’，７’−ｈｅｘａｃｈｌｏｒｏ−６−ｃａｒｂｏｘｙｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ）からなる群より選ぶことができるが、他の蛍光色素を使用してもよい。
【００２９】
一実施態様において、前記チューブ２に含まれるＰＣＲ反応用固体組成物は、凍結乾燥により調製することができる。すべての要素を含む溶液状のＰＣＲ反応用組成物を、チューブ２に加え、一般的な方法により凍結乾燥し、固体組成物が得られる。
【実施例】
【００３０】
次に実施例を挙げて本発明を詳細に説明するが、本発明の範囲はこれらよって限定されない。
【実施例１】
【００３１】
〔５３例の感染性ぶどう膜炎陽性検体の分析〕
感染性ぶどう膜炎が疑われる５３例の患者から得られた検体の前房水または硝子体２０μＬを、１８０μＬのＰＣＲ緩衝液と混合した。混合後のＰＣＲ緩衝液の組成は、０.０５％（w/v）非イオン性界面活性剤、１.５ｍＭ ＭｇＣｌ２、３５ｍＭ ＫＣｌおよびそれぞれ２００μＭ ｄＮＴＰ（ｄＡＴＰ、ｄＧＴＰ、ｄＣＴＰおよびｄＴＴＰ）とした。得られた混合液２０μＬを、ＰＣＲ反応用固体組成物を含む８連チューブストリップの各チューブに分注した。ストリップチューブ内のＰＣＲ反応用固体組成物は、ＤＮＡポリメラーゼ、およびチューブごとに異なるＰＣＲ増幅産物を蛍光検出するための蛍光色素標識したオリゴヌクレオチドプローブ、さらに、１種または２種の異なるＰＣＲプライマー対を含む。ＰＣＲプライマー対の組み合わせは以下の通りとした。
（i）glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase（ＧＡＰＤＨ）遺伝子検出用プライマー対およびTATA-binding protein（TBP）遺伝子検出用プライマー対
（ii）ＨＳＶ-１検出用プライマー対およびＶＺＶ検出用プライマー対
（iii）ＨＳＶ-２検出用プライマー対およびＨＨＶ-６検出用プライマー対
（iv）ＥＢＶ検出用プライマー対およびＣＭＶ検出用プライマー対
（v）ＨＴＬＶ-１検出用プライマー対および梅毒トレポネーマ検出用プライマー対
（vi）トキソプラズマ検出用プライマー対
【００３２】
病原体の検出用ＰＣＲプライマー対として、以下の塩基配列のものを使用した。
また、本明細書に記載されている配列表記のRとMは、それぞれRがa,gに、Mがa,cに対応する。
ＧＡＰＤＨ遺伝子検出用プライマー対
（フォワード）5'-tgtgctcccactcctgatttc-3'（配列番号１）
（リバース）5'-cctagtcccagggctttgatt-3'（配列番号２）
TBP遺伝子検出用プライマー対
（フォワード）5'-gcaccactccactgtatccc-3'（配列番号３）
（リバース）5'-cccagaactctccgaagctg-3'（配列番号４）
ＨＳＶ-１検出用プライマー対
（フォワード）5'-cgcatcaagaccacctcctc-3'（配列番号５）
（リバース）5'-gtcagctcgtgRttctg-3'（配列番号６）
増幅する標的遺伝子：ＵＬ２７
ＶＺＶ検出用プライマー対
（フォワード）5'-tcactaccagtcatttctatccatctg-3'（配列番号７）
（リバース）5'-gaaaacccaaaccgttctcgag-3'（配列番号８）
増幅する標的遺伝子：ＯＲＦ２９
ＨＳＶ-２検出用プライマー対
（フォワード）5'-cgcatcaagaccacctcctc-3'（配列番号９）
（リバース）5'-gtcagctcgtgRttctg-3'（配列番号１０）
増幅する標的遺伝子：ＵＬ２７
ＨＨＶ-６検出用プライマー対
（フォワード）5'-gaagcagcaatcgcaacaca-3'（配列番号１１）
（リバース）5'-acaacatgtaactcggtgtacggt-3'（配列番号１２）
増幅する標的遺伝子：Ｕ３８
ＥＢＶ検出用プライマー対
（フォワード）5'-ctgggcaaggagctgtttg-3'（配列番号１３）
（リバース）5'-ggccgcttgtaaaattgca-3'（配列番号１４）
増幅する標的遺伝子：ＢＭＲＦ１
ＣＭＶ検出用プライマー対
（フォワード）5'-tcgcgcccgaagagg-3'（配列番号１５）
（リバース）5'-cggccggattgtggatt-3'（配列番号１６）
増幅する標的遺伝子：ＵＬ８３
ＨＴＬＶ-１検出用プライマー対
（フォワード）5'-ggccacctgtccagagca-3'（配列番号１７）
（リバース）5'-actgtagagctgagccgataacg-3'（配列番号１８）
増幅する標的遺伝子：Ｔａｘ
梅毒トレポネーマ検出用プライマー対
（フォワード）5'-aggcatgttcgatgcagttt-3'（配列番号１９）
（リバース）5'-ttttcgcccaatacctcaac-3'（配列番号２０）
増幅する標的遺伝子：４７ｋＤａ抗原遺伝子
トキソプラズマ検出用プライマー対
（フォワード）5'-tcccctctgctggcgaaaagt-3'（配列番号２１）
（リバース）5'-agcgttcgtggtcaactatcgattg-3'（配列番号２２）
増幅する標的遺伝子：Ｂ１遺伝子
【００３３】
ＰＣＲによる増幅産物を検出するためのオリゴヌクレオチドプローブは、５'末端が蛍光色素ＦＡＭまたはＲＯＸで標識されたものを使用した。使用したすべてのオリゴヌクレオチドプローブは、３'末端がクエンチャー物質ＢＨＱで修飾されたものを使用した。プローブの塩基配列は以下のものを使用した。ＧＡＰＤＨ遺伝子検出用プローブ
5'-aaaagagctaggaaggacaggcaacttggc-3'（配列番号２３）（ＦＡＭ標識）
TBP遺伝子検出用プローブ
5'-acccccatcactcctgccacgc-3'（配列番号２４）（ＲＯＸ標識）
ＨＳＶ-１検出用プローブ
5'-tggcaacgcggcccaac-3'（配列番号２５）（ＦＡＭ標識）
ＶＺＶ検出用プローブ
5'-tgtctttcacggaggcaaacacgt-3'（配列番号２６）（ＲＯＸ標識）
ＨＳＶ-２検出用プローブ
5'-cggcgatgcgccccag-3'（配列番号２７）（ＦＡＭ標識）
ＨＨＶ-６検出用プローブ
5'-aacccgtgcgccgctccc-3'（配列番号２８）（ＲＯＸ標識）
ＥＢＶ検出用プローブ
5'-ctcggctgtggagcaggcttcc-3'（配列番号２９）（ＦＡＭ標識）
ＣＭＶ検出用プローブ
5'-caccgacgaggattccgacaacg-3'（配列番号３０）（ＲＯＸ標識）
ＨＴＬＶ-１検出用プローブ
5'-Mtcacctgggaccccatcgatgga-3'（配列番号３１）（ＦＡＭ標識）
梅毒トレポネーマ検出用プローブ
5'-ggcgcgttccgtcagcaatt-3'（配列番号３２）（ＲＯＸ標識）
トキソプラズマ検出用プローブ
5'-tctgtgcaactttggtgtattcgcag-3'（配列番号３３）（ＲＯＸ標識）
【００３４】
前房水、或いは硝子体を混合したＰＣＲ緩衝液により溶解したＰＣＲ反応用固体組成物を含む８連チューブストリップは、リアルタイムＰＣＲ装置（ロシュ・ダイアグノスティック社コバス  ｚ４８０装置など）を用いて、加水分解プローブ法によりＰＣＲ反応をモニターした。ＰＣＲ条件として、９５℃／１０秒間の初期変性を行い、次いで９５℃／５秒間−６０℃／２０秒間のＰＣＲを４５サイクル行った。対象とする病原微生物の存在（陽性）または非存在（陰性）は、Ｃｑ値（増幅曲線が閾値線（Threshold Line）と交差するサイクル数）を基に判断した。また、対照として、各検体よりＤＮＡを精製した後、リアルタイムＰＣＲ（ｑＰＣＲ）法によってコピー数を定量した。
【００３５】
本発明の方法により測定した病原体について、リアルタイムＰＣＲ（ｑＰＣＲ）法と比較した結果を図１に示す。また、リアルタイムＰＣＲ（ｑＰＣＲ）法による定量値と本発明の方法により測定したＣｑ値との相関を図２に示す。
【００３６】
図１の結果より、リアルタイムＰＣＲ（ｑＰＣＲ）法で定量することのできた５３例の陽性検体は、本発明の方法を用いて測定した場合でもすべて陽性であった。図１の結果より、ＨＳＶ−１、ＨＳＶ−２、ＶＺＶ、ＥＢＶ、ＣＭＶ、ＨＨＶ−６、ＨＴＬＶ−１、梅毒トレポネーマ、およびトキソプラズマが同定されていることが示された。また、図２の結果より、定量値とＣｑ値の間に相関性があることが示された。
【実施例２】
【００３７】
〔非感染性ぶどう膜炎と診断された検体の分析〕
非感染性ぶどう膜炎と診断された患者から得られた５１例の検体について、リアルタイムＰＣＲ（ｑＰＣＲ）法および本発明の方法により測定した結果を図３に示す。リアルタイムＰＣＲ（ｑＰＣＲ）法ではすべての検体において陰性であったが、本発明の方法においてもすべて陰性であった。すなわち、両法から得られる測定結果は一致することが示された。
【図１Ａ】
2020198809.tif 000002
【図１Ｂ】
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【図１Ｃ】
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【図２】
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【図３Ａ】
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【図３Ｂ】
2020198809.tif 000007
【配列表】
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