(57)【要約】【課題】新規な生体試料の透明化方法及び生体試料脱色剤の提供。【解決手段】両性界面活性剤を含む脱色剤を用いて生体試料に含まれる色素を除去する工程を備える、生体試料の透明化方法。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
両性界面活性剤を含む脱色剤を用いて生体試料に含まれる色素を除去する工程を備える、生体試料の透明化方法。
【請求項２】
前記両性界面活性剤はベタイン型両性界面活性剤である、請求項１に記載の生体試料の透明化方法。
【請求項３】
前記両性界面活性剤は炭素数１０以上のアルキル基を有するスルホベタイン型両性界面活性剤である、請求項１又は請求項２に記載の生体試料の透明化方法。
【請求項４】
前記脱色剤はアルカリ性である、請求項１〜請求項３のいずれか１項に記載の生体試料の透明化方法。
【請求項５】
前記生体試料に含まれる色素を除去する工程の前に、ホルムアルデヒドを含む固定剤を用いて前記生体試料を固定する工程をさらに備え、前記固定剤のホルムアルデヒドの濃度が２質量％以下である、請求項１〜請求項４のいずれか１項に記載の生体試料の透明化方法。
【請求項６】
前記生体試料に含まれる色素を除去する工程の後に、イオヘキソールを含む封入剤を用いて前記生体試料を封入する工程をさらに備える、請求項１〜請求項５のいずれか１項に記載の生体試料の透明化方法。
【請求項７】
両性界面活性剤を含む、生体試料脱色剤。
【請求項８】
前記両性界面活性剤はベタイン型両性界面活性剤である、請求項７に記載の生体試料脱色剤。
【請求項９】
前記両性界面活性剤は炭素数１０以上のアルキル基を有するスルホベタイン型両性界面活性剤である、請求項７又は請求項８に記載の生体試料脱色剤。
【請求項１０】
前記脱色剤はアルカリ性である、請求項７〜請求項９のいずれか１項に記載の生体試料脱色剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、生体試料の透明化方法及び生体試料脱色剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
植物、動物等の生体由来の試料を観察する際に、試料に含まれる色素を除去して視認性を高める（透明化）方法が種々検討されている（例えば、非特許文献１参照）。植物由来の試料を透明化する方法としては、ホルムアルデヒドで固定した試料を尿素、非イオン性界面活性剤（ＴｒｉｔｏｎＸ−１００）及びグリセロールを含む試薬で処理する方法（Ｗａｒｎｅｒらの方法）、尿素、アニオン性界面活性剤であるデオキシコール酸ナトリウム及びキシリトールを含む試薬（ＣｌｅａｒＳｅｅ）で処理する方法、試料を包埋したアクリルアミドゲルをアニオン性界面活性剤であるドデシル硫酸ナトリウムで処理する方法（ＰＥＡ−ＣＬＡＲＩＴＹ）などが提案されている。
【０００３】
これらの方法は、試料の脱色を界面活性剤により行うため、有機溶媒等を用いる場合に比べて試料に導入された蛍光タンパク質が失活しにくく、透明化後の蛍光タンパク質の蛍光を観察する場合に適している。一方、処理の完了までに数日から数週間を要するため、処理時間の短縮化の面で改善の余地がある。
【０００４】
試料中の蛍光タンパク質の失活を抑制しながら試料の透明化を短時間で達成できる方法としては、段階的に濃度を上げた２，２’−チオジエタノールによりホルムアルデヒドで固定した試料を処理する方法（ＴＯＭＥＩ−ＩＩ）が提案されている。この方法では、数時間から１日程度で試料を透明化することができる一方、色素の除去率の面で改善の余地がある。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００５】
【非特許文献１】顕微鏡  Ｖｏｌ．５１、Ｍｐ．３（２０１６）
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
上述したように、生体試料を観察する目的や手法に応じた要請に応えるために、生体試料を透明化する多様な手法の開発が待たれている。
本発明は上記事情に鑑み、新規な生体試料の透明化方法及び生体試料脱色剤を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
前記課題を達成するための手段には、以下の実施態様が含まれる。
＜１＞両性界面活性剤を含む脱色剤を用いて生体試料に含まれる色素を除去する工程を備える、生体試料の透明化方法。
＜２＞前記両性界面活性剤はベタイン型両性界面活性剤である、＜１＞に記載の生体試料の透明化方法。
＜３＞前記両性界面活性剤は炭素数１０以上のアルキル基を有するスルホベタイン型両性界面活性剤である、＜１＞又は＜２＞に記載の生体試料の透明化方法。
＜４＞前記脱色剤はアルカリ性である、＜１＞〜＜３＞のいずれか１項に記載の生体試料の透明化方法。
＜５＞前記生体試料に含まれる色素を除去する工程の前に、ホルムアルデヒドを含む固定剤を用いて前記生体試料を固定する工程をさらに備え、前記固定剤のホルムアルデヒドの濃度が２質量％以下である、＜１＞〜＜４＞のいずれか１項に記載の生体試料の透明化方法。
＜６＞前記生体試料に含まれる色素を除去する工程の後に、イオヘキソールを含む封入剤を用いて前記生体試料を封入する工程をさらに備える、＜１＞〜＜５＞のいずれか１項に記載の生体試料の透明化方法。
＜７＞両性界面活性剤を含む、生体試料脱色剤。
＜８＞前記両性界面活性剤はベタイン型両性界面活性剤である、＜７＞に記載の生体試料脱色剤。
＜９＞前記両性界面活性剤は炭素数１０以上のアルキル基を有するスルホベタイン型両性界面活性剤である、＜７＞又は＜８＞に記載の生体試料脱色剤。
＜１０＞前記脱色剤はアルカリ性である、＜７＞〜＜９＞のいずれか１項に記載の生体試料脱色剤。
【発明の効果】
【０００８】
本発明によれば、新規な生体試料の透明化方法及び生体試料脱色剤が提供される。
【図面の簡単な説明】
【０００９】
【図１】試料の脱色条件の評価結果を示すグラフである。
【図２】試料の固定条件の評価結果を示すグラフである。
【図３】試料の封入条件の評価結果を示すグラフである。
【図４】実施例で作製した試料の写真である。
【図５】実施例で作製した試料の蛍光顕微鏡写真である。
【図６】実施例で作製した試料の写真である。
【図７】実施例で作製した試料の写真である。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
以下、本発明を実施するための形態について詳細に説明する。但し、本発明は以下の実施形態に限定されるものではない。以下の実施形態において、その構成要素（要素ステップ等も含む）は、特に明示した場合を除き、必須ではない。数値及びその範囲についても同様であり、本発明を制限するものではない。
本明細書において「工程」との語には、他の工程から独立した工程に加え、他の工程と明確に区別できない場合であってもその工程の目的が達成されれば、当該工程も含まれる。
【００１１】
＜生体試料の透明化方法＞
本開示の生体試料の透明化方法は、両性界面活性剤を含む脱色剤を用いて生体試料に含まれる色素を除去する工程（脱色工程）を備える。
【００１２】
両性界面活性剤を含む脱色剤は、他の界面活性剤を含む脱色剤に比べて生体試料に含まれる色素の除去効率に優れ、高い透明度を実現できる。また、有機溶媒等を用いる場合に比べて試料中の蛍光タンパク質の失活が抑制されるため、蛍光を観察する場合にも好適である。
【００１３】
（脱色工程）
脱色工程を実施する方法は特に制限されず、一般的な手法で行うことができる。例えば、両性界面活性剤を含む脱色剤に試料を接触させた状態で、所望の透明度が得られるまで放置することで行うことができる。
【００１４】
脱色剤に含まれる両性界面活性剤の種類は特に制限されず、公知の両性界面活性剤から試料中の色素を除去しうるものを選択して用いることができる。中でもベタイン型両性界面活性剤が好ましく、スルホベタイン型両性界面活性剤がより好ましい。脱色剤に含まれる両性界面活性剤は、１種のみでも２種以上の組み合わせであってもよい。
【００１５】
スルホベタイン型の両性界面活性剤の中でも、色素の除去効率の観点からは、炭素数が炭素数１０以上のアルキル基を有するスルホベタイン型両性界面活性剤が好ましく、炭素数が１０〜１６のアルキル基を有するスルホベタイン型両性界面活性剤がより好ましく、炭素数が１０〜１２のアルキル基を有するスルホベタイン型両性界面活性剤がさらに好ましく、炭素数が１０のアルキル基を有するスルホベタイン型両性界面活性剤（カプリリルスルホベタイン）が特に好ましい。
【００１６】
脱色剤は、両性界面活性剤をリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）、リン酸ナトリウムバッファー等の溶媒に溶解した状態であってもよい。この場合、脱色剤中の両性界面活性剤の濃度は特に制限されず、所望の透明度、試料の種類、処理条件等に応じて選択できる。例えば、脱色剤全体の５質量％〜４０質量％の範囲内から選択してもよい。
【００１７】
脱色剤は、必要に応じて両性界面活性剤及び溶媒以外の成分を含有してもよい。具体的には、ｐＨ調整剤、酸化防止剤、防腐剤等が挙げられる。
【００１８】
本開示の方法は、脱色工程に加えて他の工程を備えていてもよい。例えば、脱色工程の前に試料を固定する工程（固定工程）を備えていてもよく、脱色工程の後に試料を封入する工程（封入工程）を備えていてもよい。さらには、脱色工程と同時又は脱色工程の後に試料をアルカリ処理する工程（以下、アルカリ処理工程ともいう）を備えていてもよい。
【００１９】
（固定工程）
固定工程を実施する方法は特に制限されず、一般的な手法で行うことができる。試料を固定することで、試料の劣化を抑制でき、物理的強度や化学的安定性を向上することができる。
【００２０】
固定に用いる固定剤の種類は特に制限されず、公知のものから選択できる。例えば、ホルムアルデヒド、ファーマー液（酢酸とエタノールの混合液）、グルタルアルデヒド、アセトン等が挙げられる。固定剤は、有効成分をＰＢＳ等の溶媒に溶解した状態であってもよい。
【００２１】
試料中の蛍光タンパク質の蛍光輝度を維持する観点からは、固定剤としてはホルムアルデヒドを含むものが好ましい。ホルムアルデヒドを含む固定剤を用いて試料の固定を行う場合、固定剤中のホルムアルデヒドの濃度は特に制限されず、所望の透明度、試料の種類、処理条件等に応じて選択できる。例えば、固定剤全体の０．１質量％〜１０質量％の範囲内から選択してもよい。
【００２２】
固定される試料に蛍光タンパク質が導入されている場合、固定後の蛍光輝度が充分に維持されることが望ましい。本発明者らの検討の結果、固定後の蛍光輝度を維持する観点からは、固定剤中のホルムアルデヒドの濃度は通常の濃度（４質量％程度）より低いことが好ましいことがわかった。具体的には、固定剤中のホルムアルデヒドの濃度は２質量％以下であることが好ましく、１．５質量％以下であることがより好ましく、１質量％であることがさらに好ましい。固定剤中のホルムアルデヒドの濃度の下限値は特に制限されないが、０．５質量％以上であることが好ましい。
【００２３】
（封入工程）
封入工程を実施する方法は特に制限されず、一般的な手法で行うことができる。試料を封入するためのスライドガラスや観察に使用するレンズの屈折率に近い屈折率を有する封入剤で試料を処理することで、試料の光散乱が抑制され、深部をより観察しやすくなる。
【００２４】
封入に用いる封入剤の種類は特に制限されず、公知のものから選択できる。例えば、イオヘキソール、２，２’−チオジエタノール、グリセロール、スクロース溶液等が挙げられる。封入剤は、有効成分をＰＢＳ等の溶媒に溶解した状態であってもよい。
【００２５】
試料中の蛍光タンパク質の蛍光輝度を維持する観点からは、封入剤としてはイオヘキソールを含むものが好ましい。イオヘキソールを含む封入剤を用いて試料の封入を行う場合、封入剤中のイオヘキソールの濃度は特に制限されず、所望の透明度、試料の種類、処理条件等に応じて選択できる。例えば、封入剤全体の３０質量％〜１００質量％の範囲内から選択してもよい。
【００２６】
（アルカリ処理工程）
アルカリ処理工程を実施する方法は特に制限されず、一般的な手法で行うことができる。アルカリ処理工程を実施することで、固定、脱色等の化学処理により不安定になった試料中の蛍光タンパク質を回復させ、良好な蛍光輝度を維持することができる。
【００２７】
アルカリ処理工程を実施する方法として具体的には、上述した脱色工程に用いる脱色剤としてアルカリ性のものを用いる（すなわち、脱色工程とアルカリ処理工程を同時に行う）方法、脱色後の試料をアルカリ性の液体に接触させる方法などが挙げられる。
【００２８】
処理工程の簡略化と、試料中の蛍光タンパク質の蛍光輝度を維持する観点からは、脱色工程に用いる脱色剤としてアルカリ性のものを用いる方法が好ましい。アルカリ性の脱色剤としては、両性界面活性剤をアルカリ性の溶媒（リン酸ナトリウムバッファー等）に溶解したものなどが挙げられる。
【００２９】
アルカリ処理工程は、ｐＨ７〜１０の範囲内で行うことが好ましく、ｐＨ７〜９の範囲内で行うことがより好ましく、ｐＨ７．５〜８．５の範囲内で行うことがさらに好ましい。
【００３０】
（生体試料）
本開示の方法で処理される生体試料は特に制限されず、植物、動物、菌類等のあらゆる生物に由来する試料であってよい。生体試料は遺伝子組み換え、化学処理等の加工がなされたものであってもよい。
【００３１】
生体試料が植物に由来するものである場合、植物の種類は特に制限されない。例えば、被子植物及び裸子植物のいずれであってもよく、被子植物の場合、単子葉植物及び双子葉植物のいずれであってもよい。また、試料は植物の葉、根、茎、胚、花弁、果実、種子、表皮等の各種器官又は組織であってもよい。
【００３２】
生体試料が動物に由来するものである場合、動物の種類は特に制限されない。例えば、哺乳類、爬虫類、鳥類、両生類、魚類等の脊椎動物であってもよく、貝類、昆虫類、甲殻類、線虫類等の無脊椎動物であってもよい。また、試料は動物の脳、骨、内蔵、筋肉、神経、皮膚、胚等の各種器官又は組織であってもよい。
【００３３】
生体試料が菌類に由来するものである場合、菌類の種類は特に制限されない。例えば、キノコ類、カビ類等であってもよい。
【００３４】
＜生体試料脱色剤＞
本開示の生体試料脱色剤（以下、脱色剤ともいう）は、両性界面活性剤を含む。
本開示の脱色剤は、両性界面活性剤の作用により試料に含まれる色素の除去を行う。このため、試料中の色素が充分に除去され、高い透明度が達成できる。また、有機溶媒等を用いて脱色する場合に比べて試料中の蛍光タンパク質の失活が抑制されるため、試料中の蛍光を観察する場合にも好適である。
【００３５】
本開示の脱色剤は、上述した生体試料の透明化方法に用いるものであってもよい。脱色剤及びこれに含まれる両性界面活性剤の詳細及び好ましい態様は、上述した透明化方法で使用する脱色剤及びこれに含まれる両性界面活性剤の詳細及び好ましい態様と同様である。
【００３６】
脱色剤は、両性界面活性剤を含む脱色剤と、固定剤、封入剤等とを組み合わせたキットの状態であってもよい。固定剤及び封入剤は、上述した透明化方法で使用する固定剤及び封入剤と同じものであってもよい。
【実施例】
【００３７】
以下、本発明を実施例により更に具体的に説明する。ただし、本発明はこの実施例に限定されるものではない。
【００３８】
＜試験例１  脱色条件の検討＞
（１）試料として蛍光タンパク質（ＧＦＰ）を導入したシロイヌナズナの地上部（発芽期）を使用し、ホルムアルデヒドを用いた固定を行った。具体的には、固定剤として２質量％ホルムアルデヒドを含むＰＢＳ（ｐＨ７．４）を１．５ｍＬチューブに１．０ｍＬ加え、そこに試料を入れた。次いで、チューブの口をパラフィルムで塞ぎ、針で数箇所穴を開けた。この状態で１０分間脱気処理を行い、その後５０分間室温（２５℃、以下同様）で静置した。
（２）固定剤を取り除き、ＰＢＳを添加して室温で５分間静置した。
（３）ＰＢＳを取り除き、新たなＰＢＳを添加して室温で１０分間静置した。
（４）ＰＢＳを取り除き、新たなＰＢＳを添加して室温で１０分間静置した。
【００３９】
工程（１）〜（４）を順に実施した後、ＰＢＳを取り除き、脱色剤を添加し、遮光し室温にて２４時間穏やかに振盪した。脱色剤としては、下記に示す界面活性化剤をそれぞれ２０質量％の濃度で含む１００ｍＭリン酸ナトリウムバッファーを使用した。１００ｍＭリン酸ナトリウムバッファーとしては、１００ｍＭＮａＨ２ＰＯ４溶液と、１００ｍＭＮａ２ＨＰＯ４溶液をｐＨ８．０になるように混合した溶液を使用し、脱色と同時にアルカリ処理を行った。
【００４０】
界面活性剤１…両性界面活性剤（カプリリルスルホベタイン、アルキル基の炭素数１０）
界面活性剤２…両性界面活性剤（ラウリルスルホベタイン、アルキル基の炭素数１２）
界面活性剤３…両性界面活性剤（ミリスチルスルホベタイン、アルキル基の炭素数１４）
界面活性剤４…両性界面活性剤（パルミチルスルホベタイン、アルキル基の炭素数１６）
界面活性剤Ｃ１…アニオン性界面活性剤（ドデシル硫酸ナトリウム）
界面活性剤Ｃ２…ノニオン性界面活性剤（ＴｒｉｔｏｎＸ−１００）
【００４１】
脱色処理により流出したクロロフィルの吸光度を、吸光光度計により測定した結果を図１に示す。図中のエラーバーは標準誤差（ｎ＝１０）を示す。図１に示すように、両性界面活性剤を用いて脱色した場合のクロロフィルの吸光度はアニオン性界面活性剤又はノニオン性界面活性剤を用いて脱色した場合よりも大きく、脱色効率により優れていた。
【００４２】
＜試験例２  固定条件の検討＞
固定剤に含まれるホルムアルデヒドの濃度を１質量％から２質量％又は４質量％に変更したこと以外は試験例１と同様にして、試料の固定を行った。
【００４３】
固定した試料の蛍光輝度を蛍光実体顕微鏡により測定し、固定前の試料の蛍光輝度を１００としたときの割合（％）を計算した結果を図２に示す。図中のエラーバーは標準誤差（ｎ＝１０）を示す。図２に示すように、ホルムアルデヒドの濃度が１質量％である場合に固定後の蛍光輝度の固定前の蛍光輝度に対する割合がもっとも大きく、次いで２質量％、４質量％の順であった。
【００４４】
＜試験例３  封入条件の検討＞
試験例１と同様にして試料を固定した後、ＰＢＳを取り除き、脱色剤（２０質量％カプリリルスルホベタインを含む１００ｍＭリン酸ナトリウムバッファー）を添加した後遮光し室温にて６日間穏やかに振盪した。次いで、脱色液を取り除き、下記に示す封入液を１ｍＬ添加後、遮光し室温にて６０分間穏やかに振盪した。
【００４５】
封入剤１…７０質量％イオヘキソールを含むＰＢＳ
封入剤２…９７質量％２，２’−チオジエタノールを含むＰＢＳ
封入剤Ｃ１…ＰＢＳ
【００４６】
封入後の試料の蛍光輝度を蛍光実体顕微鏡により測定し、固定直後の試料の蛍光輝度を１００とした時の割合（％）を計算した結果を図３に示す。図中のエラーバーは標準誤差（ｎ＝１０）を示す。図３に示すように、封入剤１を用いて封入した試料は、封入剤２を用いて封入した試料に比べ、固定直後の輝度を１００としたときの蛍光輝度の割合が大きく、蛍光タンパク質の失活がより抑制されていた。
【００４７】
＜実施例１＞
試料として蛍光タンパク質（ＧＦＰ）を導入したシロイヌナズナの地上部（発芽期）を使用し、試験例１と同様にして固定した後、試験例２と同様にして脱色剤（２０質量％のカプリリルスルホベタインを含む１００ｍＭリン酸ナトリウムバッファー）を用いて脱色した。次いで、脱色剤を取り除き封入剤（７０質量％イオヘキソールを含むＰＢＳ）を用いて封入した。
【００４８】
＜比較例１−１＞
固定剤に含まれるホルムアルデヒドの濃度を４質量％に変更したこと以外は試験例１の工程（１）〜（４）と同様にして、試料の固定を行った。固定後の試料に対し、下記（１）〜（７）の工程を順に実施した。
（１）１０質量％２，２’−チオジエタノールを含むＰＢＳを添加し、１０分間静置した。
（２）１０質量％２，２’−チオジエタノールを含むＰＢＳを取り除き、３０質量％２，２’−チオジエタノールを含むＰＢＳを添加し、１０分間静置した。
（３）３０質量％２，２’−チオジエタノールを含むＰＢＳを取り除き、５０質量％２，２’−チオジエタノールを含むＰＢＳを添加し、１０分間静置した。
（４）５０質量％２，２’−チオジエタノールを含むＰＢＳを取り除き、７０質量％２，２’−チオジエタノールを含むＰＢＳを添加し、１０分間静置した。
（５）７０質量％２，２’−チオジエタノールを含むＰＢＳを取り除き、９７質量％２，２’−チオジエタノールを含むＰＢＳを添加し、１０分間静置した。
（６）９７質量％２，２’−チオジエタノールを含むＰＢＳを取り除き、９７質量％２，２’−チオジエタノール及び０．００２５質量％没食子酸プロピルを含むＰＢＳ中で６０分間静置した。
（７）９７質量％２，２’−チオジエタノール及び０．００２５質量％没食子酸プロピルを含むＰＢＳで試料を封入した。
【００４９】
＜比較例１−２＞
固定剤に含まれるホルムアルデヒドの濃度を４質量％に変更したこと以外は試験例１の工程（１）〜（４）と同様にして、試料の固定を行った。固定後の試料からＰＢＳを取り除き、新たなＰＢＳを添加し２４時間静置した。次いでＰＢＳを取り除き、新たなＰＢＳで試料を封入した。
【００５０】
実施例１、比較例１−１、比較例１−２で得た処理後の試料を、方眼紙（１マス１ｍｍ四方）の上に置いた状態で撮影した写真を図４に示す。図４に示すように、実施例１の試料は色素がほぼ除去され、方眼紙が透けて見える程度に透明化されていた。比較例１−１の試料は、方眼紙が透けて見える程度に透明化されていたが、色素が完全に除去されず緑色を呈していた。比較例１−２の試料は透明化が進まず、色素もほとんど除去されず、方眼紙が透けて見えなかった。
【００５１】
実施例１、比較例１−１、比較例１−２で得た処理後の試料を、蛍光顕微鏡を用いて撮影した写真を図５に示す。図５に示すように、実施例１、比較例１−１の試料はともにＧＦＰの蛍光が観察されたが、実施例１においてより深部の蛍光が明るく観察された。
【００５２】
＜実施例２＞
試料としてイネの葉を使用し、実施例１と同様にして試料の固定、脱色及び封入を行った。ただし、脱色時の静置時間を７日間とした。
【００５３】
＜比較例２＞
試料としてイネの葉を使用し、比較例１−２と同様にして試料の固定、ＰＢＳ中での静置及び封入を行った。ただし、固定後のＰＢＳ中での静置時間を７日間とした。
【００５４】
実施例２、比較例２で得た処理後の試料を、方眼紙（１マス１ｍｍ四方）の上に置いた状態で撮影した写真を図６に示す。図６に示すように、実施例２の試料は色素がほぼ除去され、方眼紙が透けて見える程度に透明化されていた。比較例２の試料は色素がほとんど除去されず、方眼紙が透けて見えなかった。
【００５５】
＜実施例３＞
試料としてマウス（品種：Ｃ５７ＢＬ／６Ｊ）の脳を使用した。固定剤（４質量％パラホルムアルデヒドを含むＰＢＳ）を用いて灌流固定を行ったマウスから脳を取り出し、固定剤を添加し４℃で２４時間静置した。厚さ２ｍｍの脳切片を作成し、下記（１）〜（５）の工程を順に実施した。
（１）脱色剤１（２０質量％カプリリルスルホベタインを含む１００ｍＭリン酸ナトリウムバッファー）を添加し、１６時間穏やかに振盪した。振盪終了後に写真（１６ｈ）を撮影した。
（２）脱色剤１を取り除き、脱色剤２（１８．７質量％イオヘキソール、２０質量％カプリリルスルホベタインを含むＰＢＳ）を添加し、６時間穏やかに振盪した。
（３）脱色剤２を取り除き、脱色剤３（２８．１質量％イオヘキソール、２０質量％カプリリルスルホベタインを含むＰＢＳ）を添加し、６時間穏やかに振盪した。振盪開始から２時間後に写真（２４ｈ）を撮影した。
（４）脱色剤３を取り除き、封入剤１（５６．２質量％イオヘキソールを含むＰＢＳ）を添加し、１２時間穏やかに振盪した。
（５）封入剤１を取り除き、封入剤２（７０質量％イオヘキソールを含むＰＢＳ）を添加し、８時間穏やかに振盪した。振盪終了後に写真（４８ｈ）を撮影した。
【００５６】
＜比較例３−１＞
実施例３と同様にして固定及び切片作成を行い、下記（１）〜（５）の工程を順に実施した。
（１）脱色剤１（２質量％サポニンを含むＰＢＳ）を添加し、１６時間穏やかに振盪した。振盪終了後に写真（１６ｈ）を撮影した。
（２）脱色剤１を取り除き、脱色剤２（１８．７質量％イオヘキソール、２質量％サポニンを含むＰＢＳ）を添加し、６時間穏やかに振盪した。
（３）脱色剤２を取り除き、脱色剤３（２８．１質量％イオヘキソール、２質量％サポニンを含むＰＢＳ）を添加し、６時間穏やかに振盪した。振盪開始から２時間後に写真（２４ｈ）を撮影した。
（４）脱色剤３を取り除き、脱色剤４（５６．２質量％イオヘキソール、２質量％サポニンを含むＰＢＳ）を添加し、１２時間穏やかに振盪した。
（５）脱色剤４を取り除き、封入剤（７０質量％イオヘキソールを含むＰＢＳ）を添加し、８時間穏やかに振盪した。振盪終了後に写真（４８ｈ）を撮影した。
【００５７】
＜比較例３−２＞
実施例３と同様にして固定及び切片作成を行った試料にＰＢＳを添加し、４８時間穏やかに振盪した。ＰＢＳの添加から１６時間後に写真（１６ｈ）を、２４時間後に写真（２４ｈ）を、４８時間後に写真（４８ｈ）を撮影した。
【００５８】
実施例３、比較例３−１、比較例３−２に示す方法で処理した試料を、方眼紙（１マス１ｍｍ四方）の上に置いた状態で撮影した写真（１６ｈ、２４ｈ、４８ｈ）を図７に示す。図７に示すように、実施例３の試料は処理時間が長くなるにつれて脱色と透明化が進んでいた。比較例３−１の試料は処理時間が長くなるにつれて透明化が進んでいたが、脱色は実施例３ほどには進んでいなかった。比較例３−２の試料は処理時間が長くなっても脱色と透明化がほとんど進まなかった。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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