(57)【要約】【課題】細胞診スクリーニングを正確で迅速に行うための、細胞の乾燥がなく、塗抹が均一でしかも細胞剥離がほとんどなく、染色性も均一で鮮明な標本を作成する。【解決手段】ポリエチレングリコール、及び増粘多糖類を含む細胞処理試薬を提供する。細胞処理試薬は、細胞固定のために、細胞浮遊液と混合したときの最終濃度として１０〜７０ｖ／ｖ％の濃度となるアルコールを含んでもよい。また、このような細胞処理試薬により、顕微鏡標本を作製する方法を提供する。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
増粘多糖類を含む細胞処理試薬。
【請求項２】
ポリエチレングリコール及び増粘多糖類を含む細胞処理試薬。
【請求項３】
増粘多糖類が、キサンタンガム、グァーガム、セルロース、カラギーナン若しくはゲランガム、又はそれらの誘導体から選択される１種又は２種以上の組み合わせである請求項１又は２に記載の細胞処理試薬。
【請求項４】
増粘多糖類が、グァーガム誘導体及び／又はセルロース誘導体である請求項３に記載の細胞処理試薬。
【請求項５】
アルコールをさらに含む、請求項１〜４のいずれか１項に記載の細胞処理試薬。
【請求項６】
細胞浮遊液と、請求項１〜５のいずれか１項に記載の細胞処理試薬とを混合するステップと、
生じた沈渣をスライドガラスに塗抹乾燥するステップと
を含む、顕微鏡標本を作製する方法。
【請求項７】
細胞浮遊液と、細胞処理試薬との混合液における増粘多糖類の濃度が、０．００１ｗ／ｖ％〜１０ｗ／ｖ％である、請求項６に記載の方法。
【請求項８】
細胞浮遊液と、細胞処理試薬との混合液におけるアルコール濃度が、１０〜７０ｖ／ｖ％％である、請求項６又は７に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は臨床細胞検査等の分野に用いられる細胞処理試薬及び細胞固定液、並びに顕微鏡標本を作製する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
臨床細胞検査学等においては、細胞の形態や構造を観察するため、或いは細胞の数やその種類を検査するために、顕微鏡を用いた細胞の観察が広く行われている。
特に臨床細胞診検査は、病理組織検査に比べ検体の採取に制約が少なく、広範な対象に適用できる。更に患者に対する負荷が軽く、標本作製が簡便・安価であること等の理由から集団検診、日常検査、精密検査等の広範囲において各種疾患の鑑別や疾患の程度の判定、治療効果の判定、経過観察等のために行われる。
【０００３】
また、近年子宮頚部癌等の発癌機構の一部が明らかになり、早期発見のため臨床細胞学的検査（細胞診検査）と分子生物学的検査（ＨＰＶ−ＤＮＡ検査）が併用されるようになってきた。そのため子宮頚部の細胞を採取後、液状細胞固定液中に保存し、細胞診検査とＨＰＶ−ＤＮＡ検査の両方が測定可能なＬＢＣ法（ｌｉｑｕｉｄ−ｂａｓｅｄ−ｃｙｔｏｌｏｇｙ、液状処理細胞診法）が広まってきた。ＬＢＣ法によれば細胞診標本を作製する際の塗抹不良や乾燥等の技術的エラーを減少させる事ができる。
【０００４】
従来の直接塗抹の方法では、尿、体腔液等の液状検体の場合、遠心後沈渣をスライドガラスに塗り広げるか、ストリッヒ標本にするか、機器によりオートスメアにするか、フィルターを用いて貼り付ける等にて標本を作製し、その後、乾燥しないうちに濡れたままで９５％アルコールに浸すか、又は滴下固定液、スプレー固定等を用いて湿固定することにより行われる（非特許文献１及び２）。しかし、スライドガラス等からの細胞剥離が強いため、細胞が完全に剥がれ落ちてしまうこともある。細胞の剥離防止のため、コーティングスライドを用いたり、直接塗抹スライドグラスをアルコール等で固定後ポリエチレングリコールを含むスプレー固定液をさらにかけて一旦乾燥させる等が必要となることが多い（特許文献１及び２）。しかし、それでもなお、染色過程でのガラス面からの細胞剥離が問題となる。
【０００５】
また、子宮頚部擦過、子宮体部内膜や穿刺物等の様に材料が粘稠や血液性で細胞が多量に得られる場合や、反対に病変が乾燥気味であったり、硬かったりして細胞が少数しか得られない場合でも同様に、直接塗抹法が選択される。しかし、細胞の塗抹が厚すぎる又は薄すぎる場合、均一でない場合、細胞が初めから乾燥している場合、ガラス面に付着せず、既に剥離している場合には、濡れたままで固定する湿固定が出来ず、剥離してしまったり、均一な固定が得られないために固定不良標本になったり、安定した均一な染色性が得られない等の問題が生じる。
【０００６】
一方、ＬＢＣ法は、検体採取後採取具から細胞を液状の固定液中に直接保存し、その固定済み細胞を使ってスライドガラスに塗抹する。そのため、ＬＢＣ法では乾燥がなく、比較的均一に集細胞して塗抹でき、不適正標本の割合が減少するとされている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００７】
【特許文献１】特開２００９−３１６８８号公報
【特許文献２】特開２００７−２０２４７２号公報
【非特許文献】
【０００８】
【非特許文献１】細胞診標本作成マニュアル（体腔液）、２００８年８月１日発行  第１版  細胞検査士会発行
【非特許文献２】細胞診標本作成マニュアル（泌尿器）、２００８年８月１日発行  第１版  細胞検査士会発行
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
本発明は、細胞の乾燥がなく、塗抹が均一でしかも細胞剥離がほとんどなく、染色性も均一で鮮明であるため、細胞診スクリーニングが正確で迅速に行える標本を作成するための試薬であって、標本作製が専用の自動化機器を使用しなくても用手法にて、どこでも簡便迅速にしかも安価で行える細胞処理試薬又は細胞固定剤を提供することを目的とする。また、上記標本を作製するための、顕微鏡標本の作製方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
上記目的を達成するために、本発明は、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）及び増粘多糖類を含む細胞処理試薬が提供される。ポリエチレングリコールは標本を乾燥させる際に保湿状態を保つ効果が有り、増粘多糖類はＰＥＧによるガラス上からの剥離を防ぐ効果があると考えられる。
増粘多糖類としては、キサンタンガム、ローカストビーンガム、ヒドロキシプロピルガム、ペクチン、グァーガム、グァーガム、ジェランガム、エチルセルロース、カラギーナン、デキストリン及びその誘導体を１種又は２種以上組み合わせて使用することができる。
例えば、誘導体として、グァーガム誘導体（グアーヒドロキシプロピルトリモ二ウムクロリド、ヒドロキシプロピルグアーヒドロキシプロピルトリモ二ウムクロリド等のカチオン化グァーガム）、セルロース誘導体（ヒドロキシプロピルセルロース、カルボキシメチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース等）などを使用することができる。
【００１１】
上記細胞処理試薬には、細胞浮遊液と混合したときの最終的な濃度として、０．００１ｗ／ｖ％〜１０ｗ／ｖ％となるように増粘多糖類を含ませることができ、最終濃度０．０１ｗ／ｖ％以上、例えば、０．０１〜５．０ｗ／ｖ％となるよう増粘多糖類を含ませることが望ましい。より好ましくは、増粘多糖類の最終濃度０．０５〜５ｗ／ｖ％とすることができ、最も好ましくは、増粘多糖類の最終濃度０．１〜２．５ｗ／ｖ％とすることができる。なお、当業者は、増粘多糖類の種類、検体の種類、状態、固定法、染色法等に応じて、増粘多糖類の濃度を適宜に変更することができる。例えば、当業者は、血液を多く含む検体の場合には増粘多糖類の濃度を高めにしたり、粘性の高い検体や血液を含まない検体の場合には、増粘多糖類の濃度を減らす等、適宜に増粘多糖類の濃度を変更可能である。本発明の細胞処理試薬は、既固定細胞を含む検体を処理することにより、細胞の剥離や細胞の乾燥がほとんどなく、固定、塗抹、染色性が均一な優れた標本を作製することができる。
【００１２】
上記細胞処理試薬は、細胞固定のためのアルコールをさらに含んでもよく、使用されるアルコールは、エタノールが好ましい。エタノール濃度は、検体と混ぜ合わせた後の濃度として７０ｖ／ｖ％以下、例えば、１０〜７０ｖ／ｖ％となるよう調整することが好ましい。対象となる検体の種類や固定の程度に併せて、細胞処理試薬中のアルコール濃度を適宜変更することができる。アルコールをさらに含む本発明の細胞処理液は、未固定検体を固定するのみならず、細胞の剥離、乾燥がほとんどなく、固定、塗抹、染色性が均一な優れた標本を作製することができる。
上記細胞処理試薬に含まれるポリエチレングリコールは、重量平均分子量４００〜４０００のものが好ましい。
【００１３】
本発明のさらに別の態様としては、細胞浮遊液に、上記細胞処理試薬を加えるステップと、生じた沈渣をスライドガラスに塗抹乾燥するステップとを含む、顕微鏡標本を作製する方法が提供される。
【発明の効果】
【００１４】
本発明の方法によれば、含まれる細胞が少数でも、又は細胞塊の多い検体でも細胞の剥離、乾燥がほとんどなく、固定、塗抹、染色性が均一な優れた標本を、短時間に通常のスライドガラス上に低コストで作製できる。また、その方法は単純であり、廃棄物も少ないうえ、婦人科子宮頚部癌のリスク判定のためのＨＰＶ−ＤＮＡテスト用と共通の検体を利用して顕微鏡標本を作成できる。
また、未固定の体液サンプル、例えば、尿を簡便に固定処理して、低コストで短時間に細胞の剥離、乾燥がほとんどない、固定、塗抹、染色性が均一な優れた標本を作製できる。
【００１５】
本発明の細胞処理試薬は、検体と混合した後の濃度が１０〜７０％程度のアルコール水溶液となるような細胞固定液としても使用することが可能である。本発明の細胞処理試薬及び処理液以外に必要となるのは、汎用されているスライドガラス（例えば、未処理のスライドガラス）、スピッツ、ピペット又はスポイト等であり、専用の器具を必要としない点で、例えば、尿などの液状検体などでは、従来のＬＢＣ標本の作製と比べて経済的であり、廃棄物も少ない。
【００１６】
従来の婦人科ＬＢＣ標本でも、バックグラウンドの細菌、壊死物質、白血球が幾分除かれ細胞が観察し易くなっているが、本発明の方法では、細胞の壊死、白血球、細菌、結晶又は細胞集塊等を調節して塗抹することができ、組織の構築情報、バックグラウンド等についても詳細に観察することができる。そのため、例えば、従来の婦人科ＬＢＣ標本と比べて、より多くの情報が得られる。
【図面の簡単な説明】
【００１７】
【図１】実施例１において作成されたスライドグラスを示す写真である。
【図２】実施例１において作成されたスライドグラスを示す写真である。
【図３】実施例１において作成されたスライドグラスを示す写真である。
【図４】実施例２において作成されたスライドグラスを示す写真である。
【図５】実施例２において作成されたスライドグラスを示す写真である。
【発明を実施するための形態】
【００１８】
本発明は、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）及び増粘多糖類を含む細胞処理試薬に関する。また、本発明の細胞処理試薬は、細胞固定のためにアルコールをさらに含むことができる。アルコールをさらに含む細胞処理試薬は、特に、未固定検体又は固定の程度が低い検体に用いることができる。
【００１９】
本発明の細胞処理試薬に含まれるアルコールとしては、エタノール、メタノール、プロパノール、ブタノール等を使用することができる。これらのうち、エタノール及びメタノールが特に好ましい。
細胞処理試薬に含まれるアルコール濃度は、検体の種類、形状、検体に含まれる細胞の量によって、任意に変更可能である。例えば、検体と混合後の濃度として、７０ｖ／ｖ％以下、例えば、約１０〜７０ｖ／ｖ％、好ましくは約２０〜５０ｖ／ｖ％とすることができる。
【００２０】
水は、ＰＥＧ、多糖類及びアルコールを所定の濃度とするための希釈に必要な分だけ、細胞処理試薬に添加する。希釈するための水として、蒸留水等を使用することができる。
【００２１】
本発明の細胞処理試薬に含まれるＰＥＧとしては、重量平均分子量４００〜４０００程度のＰＥＧを使用することができる。例えば、ＰＥＧ１５４０を使用することができる。
細胞処理試薬に含まれるＰＥＧ濃度は、最終濃度として、約１〜１０ｗ／ｖ％とすることができ、例えば、１〜３ｗ／ｖ％とすることができる。
【００２２】
本発明の細胞処理試薬に含まれる増粘多糖類としては、公知の任意の増粘多糖類を使用することができ、例えば、ローカストビーンガム、グァーガム、カラギーナン、ペクチン、キサンタンガム、ジェランガム、ダイユータンガム、デンプン、デキストリン、タマリンドガム、アラビアガム及びカードラン、並びにその誘導体を使用することができる。増粘多糖類は、１種類のみを使用することもでき、又は２種以上の増粘多糖類を混合して使用することができる。これらの増粘多糖類は、市販されており、当業者には容易に入手可能である。
本発明の細胞処理試薬に含まれる増粘多糖類の種類及び濃度は、検体の種類、形状、検体に含まれる細胞の量や血液の量によって、任意に変更可能であるが、細胞処理試薬と細胞浮遊液との混合液における増粘多糖類の最終濃度としてとして、０．００１ｗ／ｖ％〜１０ｗ／ｖ％となるように増粘多糖類を含ませることができ、最終濃度０．０１ｗ／ｖ％以上、例えば、０．０１〜５．０ｗ／ｖ％となるよう増粘多糖類を含ませることが望ましい。より好ましくは、増粘多糖類の最終濃度０．０５〜５ｗ／ｖ％とすることができ、最も好ましくは、増粘多糖類の最終濃度０．１〜２．５ｗ／ｖ％とすることができる。当業者は、検体の種類や状態、染色法等に応じて、これらの濃度を任意に変更可能である。
【００２３】
使用可能な細胞診検体の採取方法は特に限定されず、任意の方法にて得られた材料が可能である。例えば、排出、分泌、洗浄、穿刺、吸引、擦過などの方法により、検体を採取することができる。
【００２４】
未固定の液状の検体の場合には、本発明のアルコールを含有する細胞処理液を、遠心後の沈渣に混和して固定処理を行うことができる。擦過物や穿刺吸引液等により得られる検体の場合には、本発明のアルコールを含有する細胞処理液に検体を直接混和して３０分以上固定する方法が挙げられる。細胞を固定するためには、ＨＰＶ−ＤＮＡテストと共用のＬＢＣ用固定液、市販の細胞固定液、１０〜７０％程度のアルコール液及び本発明のアルコールを含有する細胞処理液等、任意の細胞固定液が使用でき、特に限定されない。本発明のアルコールを含有する細胞処理液を使用した場合には、検体を固定できると同時に、スライドガラスからの検体をはがれ難くする効果をも付与できるため、特に好ましい。
【００２５】
液状の検体には、体腔液、尿、消化液、Ｃｙｓｔ液、洗浄液（例えば、気管支洗浄液、気管支肺胞洗浄など）を例示することができる。
【００２６】
以下に、固定後の細胞をスライドガラス標本とする一般的な方法の例を説明するが、当業者は、対象となる検体などに応じて、標本作成法を変更可能である。５ｍｌ用の突底スピッツに本発明の細胞処理液を１ｍｌ程度分注しておき、固定済み細胞浮遊液を４ｍｌ程度加える。含まれる細胞量に応じて液量を適宜調節することもできる。
【００２７】
次に、遠心し沈渣を得る。子宮頚部のＬＢＣ標本の様に細菌、白血球を幾分除いて標本にしたい場合は、２０００ｒｐｍにセットし電源をＯＮにして２〜５秒程度、尿などの液状検体の細胞の少ない検体の場合や、細菌、結晶、壊死物質、白血球等を観察する場合、必要に応じて１〜３分程度遠心し、上清を除き沈渣を得る。
【００２８】
試薬処理後の固定細胞沈渣をピペットにて混和後、コーティングしていない通常のスライドガラスに短軸に帯状に塗沫し、冷風等で完全に乾燥させる。短軸に塗抹するのは、通常染色機等は長軸に上下動して染色するため横短軸帯状に塗抹する事により均一な染色性が得られる。
【００２９】
乾燥した標本は９５％アルコールで２０分程再固定し、必要に応じ、パパニコロウ染色、粘液染色等の特殊染色をする。
【００３０】
以下に実施例に基づいて本発明を説明するが、下記の実施例は本発明を説明するためのものであり、本発明を限定するためのものではない。
【実施例】
【００３１】
＜実施例１：子宮頚部の擦過（ブラシ検体）の固定サンプル＞
子宮頚部の擦過ブラシ検体を市販の固定液（ＬＢＣ固定液、ＴｈｉｎＰｒｅｐ（登録商標）、ホロジックジャパン株式会社製）に入れて懸濁し、そのうち約４ｍｌをサンプル液とした。このサンプル液に、ＰＥＧ１５００を３ｗ／ｖ％、増粘多糖類を０．５ｗ／ｖ％、エタノールを３％（武藤化学株式会社製、病理染色用エタノール１００）含む試薬１ｍｌを加えて遠心操作した。ピペットを用いて、得られた沈渣をスライドガラスに塗りつけ、乾燥後、パパニコロウ染色をした。なお、サンプル液と試薬との混合液中では、ＰＥＧ１５００及び増粘多糖類は、最終濃度がそれぞれ、０．６ｗ／ｖ％、０．０１ｗ／ｖ％となる。
【００３２】
用いた増粘多糖類は、キサンタンガム（商品名ＫＥＬＴＲＯＬ  ＣＧ−Ｔ、三晶株式会社、以下同じ）、ローカストビーンガム（商品名ＧＥＮＵ（登録商標）ＧＵＭ  ｔｙｐｅ  ＲＬ−２００−Ｊ）、ヒドロキシプロピルガム（商品名ＪＡＧＵＡＲ  ＨＰ−１２０）、ペクチン（商品名ＧＥＮＵ（登録商標）ＨＭペクチン  ＵＳＰ−Ｌ）、カチオン化グァーガム（商品名ＪＡＧＵＡＲ  Ｃ−５００）、カチオン化グァーガム（商品名ＪＡＧＵＡＲ  ＥＸＣＥＬ）、キサンタンガム（商品名ＫＥＬＺＡＮ）、グァーガム（商品名ＪＡＧＵＡＲ  ８１１）、ヒドロキシプロピルセルロース（商品名ＫＬＵＣＥＬ  Ｈ）、エチルセルロース（商品名ＥＣ  Ｎ−５０）、ジェランガム（商品名ＫＥＬＣＯＧＥＬ  ＣＧ−ＬＡ）、カラギーナン（商品名ＧＥＮＵＬＡＣＴＡ（登録商標）  カラギーナン  Ｐ−１００−Ｊ）、グァーガム（商品名ＳＵＰＥＲＧＥＬ  ＣＳＡ  ２００／５０）、ジェランガム（商品名ＫＥＬＣＯＧＥＬ  ＣＧ−ＨＡ）、キサンタンガム（商品名ＫＥＬＺＡＮ  ＡＳＸＴ）のいずれかである。
【００３３】
作成したスライドの写真を図１〜３に示す。図１中、左から、増粘多糖類として、キサンタンガム（商品名ＫＥＬＴＲＯＬ  ＣＧ−Ｔ）、ローカストビーンガム（商品名ＧＥＮＵ（登録商標）ＧＵＭ  ｔｙｐｅ  ＲＬ−２００−Ｊ）、ヒドロキシプロピルガム（商品名ＪＡＧＵＡＲ  ＨＰ−１２０）、ペクチン（商品名ＧＥＮＵ（登録商標）ＨＭペクチン  ＵＳＰ−Ｌ）、カチオン化グァーガム（商品名ＪＡＧＵＡＲ  Ｃ−５００）を使用したものである。図２中、左から、増粘多糖類として、カチオン化グァーガム（商品名ＪＡＧＵＡＲ  ＥＸＣＥＬ）、キサンタンガム（商品名ＫＥＬＺＡＮ）、グァーガム（商品名ＪＡＧＵＡＲ  ８１１）、ヒドロキシプロピルセルロース（商品名ＫＬＵＣＥＬ  Ｈ）、エチルセルロース（商品名ＥＣ  Ｎ−５０）を使用したものである。図３中、左から、増粘多糖類として、ジェランガム（商品名ＫＥＬＣＯＧＥＬ  ＣＧ−ＬＡ）、カラギーナン（商品名ＧＥＮＵＬＡＣＴＡ（登録商標）  カラギーナン  Ｐ−１００−Ｊ）、グァーガム（商品名ＳＵＰＥＲＧＥＬ  ＣＳＡ  ２００／５０）、ジェランガム（商品名ＫＥＬＣＯＧＥＬ  ＣＧ−ＨＡ）、キサンタンガム（商品名ＫＥＬＺＡＮ  ＡＳＸＴ）を使用したものである。
【００３４】
サンプルのスライドガラスからのはがれ難さ、細胞のばらけ具合、顕微鏡下における見易さ（顕鏡容易性、染色性、細胞の散在性、細胞の鮮明さ）、総合評価を表１〜３にまとめた。
【００３５】
【表１】
2020103205.tif 000002
【００３６】
【表２】
2020103205.tif 000003
【００３７】
【表３】
2020103205.tif 000004
【００３８】
上記の表において、サンプルのスライドからのはがれ難さを、○：はがれ難い、△：ややはがれ難い、×：はがれ易い、により示した。細胞のばらけ具合を、○：ばらけている、△：ややばらけている、×：ばらけていない、により示した。また、顕微鏡下による見易さ（顕鏡容易性）を、○：見易い、△：やや見易い、×：見辛い、として示し、はがれ難さ、ばらけ具合と見易さを総合した評価として、○：優れている、△：良好、×：劣る、とした。以下の表でも、同様とする。
【００３９】
いずれの増粘多糖類を用いた場合でも、はがれ難さ、細胞のばらけ具合、顕微鏡下による見易さは、増粘多糖類を使用していない場合と比べて向上していた。
【００４０】
＜実施例２：子宮頚部の擦過（ブラシ検体）の固定サンプル＞
実施例１同様に作成した約２ｍｌのつぶ状固形物の混在したサンプル液、及び血液の多いサンプル液に、それぞれ、ＰＥＧ１５００を３ｗ／ｖ％、増粘多糖類（０ｗ／ｖ％、０．１ｗ／ｖ％、１ｗ／ｖ％、又は５ｗ／ｖ％）、エタノールを５％含む試薬２ｍｌを加えて混合液として遠心操作した。ピペットを用いて、得られた沈渣をスライドガラスに塗りつけ、パパニコロウ染色をした。なお、サンプル液と試薬との混合液中では、ＰＥＧ１５００の最終濃度は１．５ｗ／ｖ％、増粘多糖類の最終濃度は、０ｗ／ｖ％、０．０５ｗ／ｖ％、０．５ｗ／ｖ％又は２．５ｗ／ｖ％となる。
【００４１】
作成したスライドの写真を図４及び５に示す。図４では、血液がほとんど含まれていない検体（非血性検体）であり、図５では、血液の多く含まれている検体（血性検体）を用いている。
図４中上段は、増粘多糖類として、ペクチン（ＧＥＮＵＲ  ＨＭペクチン  ＵＳＰ−Ｌ）を用いたものであり、下段は、キサンタンガム（ＫＥＬＺＡＮ）を用いたものである。図５上段は、増粘多糖類として、ジェランガム（ＫＥＬＣＯＧＥＬ  ＣＧ−ＬＡ）を用いたものであり、下段はグァーガム（ＳＵＰＥＲＧＥＬ  ＣＳＡ  ２００／５０）を用いたものである。図４及び５中、増粘多糖類の最終濃度は、左から、０ｗ／ｖ％、０．０５ｗ／ｖ％、０．５ｗ／ｖ％及び２．５ｗ／ｖ％である。
サンプルのスライドガラスからのはがれ難さ、顕微鏡下における見易さ（顕鏡容易性）を表４〜７にまとめた。
【００４２】
【表４】
2020103205.tif 000005
【００４３】
【表５】
2020103205.tif 000006
【００４４】
【表６】
2020103205.tif 000007
【００４５】
【表７】
2020103205.tif 000008
【００４６】
いずれの増粘多糖類を用いた場合でも、はがれ難さ、顕微鏡下による見易さは、増粘多糖類を使用していない場合と比べて向上していた。いずれの増粘多糖類を用いた場合でも、はがれ難く、顕微鏡下における見易さが向上したスライドグラス検体を作製することができることが示された。
【図１】
2020103205.tif 000009
【図２】
2020103205.tif 000010
【図３】
2020103205.tif 000011
【図４】
2020103205.tif 000012
【図５】
2020103205.tif 000013