(57)【要約】【課題】  栽培期間を大幅に短縮することができるハナビラタケの種菌の製造方法及びこの種菌を用いたハナビラタケの製造方法を提供すること。【解決手段】  通気性の良い固形培地を作成する培地作成工程と、該培地作成工程で作成した固形培地にハナビラタケの菌糸を接種する菌糸接種工程と、菌糸を接種した固形培地に弱い光を与えるとともに、通気培養を行う培養工程とで構成されることを特徴とする。【選択図】  図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
通気性の良い固形培地を作成する培地作成工程と、該培地作成工程で作成した固形培地にハナビラタケの菌糸を接種する菌糸接種工程と、菌糸を接種した固形培地に弱い光を与えるとともに、通気培養を行い種菌を培養する培養工程とを含むハナビラタケの種菌の製造方法。
【請求項２】
前記培養工程では、０．１ルクス乃至５ルクス程度の光を連続又は間欠状態のいずれかで与えることを特徴とする請求項１に記載のハナビラタケの種菌の製造方法。
【請求項３】
前記培養工程では、１日当たり０．１リットル〜０．５リットル程度の空気を通気させて通気培養を行うことを特徴とする請求項１又は請求項２のいずれかに記載のハナビラタケの種菌の製造方法。
【請求項４】
通気性の良い固形培地を作成する培地作成工程と、該培地作成工程で作成した固形培地にハナビラタケの菌糸を接種する菌糸接種工程と、菌糸を接種した固形培地に弱い光を与えるとともに、通気培養を行い種菌を培養する培養工程と、該培養工程で培養された前記種菌を栽培用培地に接種する種菌接種工程と、該種菌接種工程で前記種菌を接種した前記栽培用培地を培養する子実体培養工程と、該子実体培養工程後に高湿度環境下で子実体を生長させる発生工程とを含むハナビラタケの製造方法。
【請求項５】
前記培養工程では、０．１ルクス乃至５ルクス程度の光を連続又は間欠状態のいずれかで与えることを特徴とする請求項４に記載のハナビラタケの製造方法。
【請求項６】
前記培養工程では、１日当たり０．１リットル〜０．５リットル程度の空気を通気させて通気培養を行うことを特徴とする請求項４又は請求項５のいずれかに記載のハナビラタケの製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明はハナビラタケの高速栽培が可能なハナビラタケの種菌の製造方法及びこの種菌を用いたハナビラタケの製造方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
褐色腐朽菌に分類されるハナビラタケは、カラマツなど針葉樹に生える希少なきのこであり、歯ごたえが良く旨味が有る上に純白の色合いと葉ボタン状の形態的特徴を持つ有望な食用キノコである。このハナビラタケは、１９９３年７月１８日に埼玉県立熊谷農業高校で原木栽培に初めて成功したが（非特許文献１）、原木栽培では、商業的な大量栽培が出来ないので、培地成分に純粋澱粉類を添加することによりビン栽培による商業的栽培が可能となった（非特許文献２、特許文献１）。
【０００３】
その後、ハナビラタケの栽培方法等について様々な工夫がなされ子実体形成率の向上が報告されている。（特許文献２乃至７）しかしながら、どの文献報告を見てもハナビラタケ栽培では、菌糸の接種から収穫に至るまでの栽培期間が長く高速栽培をすることができなかった。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【非特許文献１】読売新聞、１９９３年７月１８日  県北地域ニュース
【非特許文献２】Ｍｕｓｈｒｏｏｍ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ａｎｄ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  ＶＯＬ．１  Ｎｏ．１  Ｏｃｔｏｂｅｒ，１９９４  研究レポート：ハナビラタケの人工栽培  １５〜１７頁
【特許文献１】特願平９−２２８６４８号公報
【特許文献２】特開２００５−２１１２１号公報
【特許文献３】特開２００２−３６９６２１号公報
【特許文献４】特開２００５−５２０６８号公報
【特許文献５】特開２００５−１３７２６３号公報
【特許文献６】特開２００７−１０４９９６号公報
【特許文献７】特開２００８−２３０９９１号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
本発明は以上のような従来の欠点に鑑み、栽培期間を大幅に短縮することができるハナビラタケの種菌の製造方法及びこの種菌を用いたハナビラタケの製造方法を提供することを目的としている。
【０００６】
本発明の前記ならびにそのほかの目的と新規な特徴は次の説明を添付図面と照らし合わせて読むと、より完全に明らかになるであろう。
ただし、図面はもっぱら解説のためのものであって、本発明の技術的範囲を限定するものではない。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
上記目的を達成するために、本発明の請求項１に記載のハナビラタケの種菌の製造方法は、通気性の良い固形培地を作成する培地作成工程と、該培地作成工程で作成した固形培地にハナビラタケの菌糸を接種する菌糸接種工程と、菌糸を接種した固形培地に弱い光を与えるとともに、通気培養を行い子実体原基又は幼子実体を形成させた種菌を培養する培養工程とで構成されることを特徴とする。
【０００８】
請求項２に記載のハナビラタケの種菌の製造方法の前記培養工程では、０．１ルクス乃至５ルクス程度の光を連続又は間欠状態で与えることを特徴とする。
【０００９】
請求項３に記載のハナビラタケの種菌の製造方法の前記培養工程では、１日当たり０．１リットル〜０．５リットル程度の空気を通気させて通気培養を行うことを特徴とする。
【００１０】
請求項４に記載のハナビラタケの製造方法は、通気性の良い固形培地を作成する培地作成工程と、該培地作成工程で作成した固形培地にハナビラタケの菌糸を接種する菌糸接種工程と、菌糸を接種した固形培地に弱い光を与えるとともに、通気培養を行い子実体原基又は幼子実体を形成させた種菌を培養する培養工程と、該培養工程で培養された前記種菌を引き続き前記培地又は新たな培地に接種した状態で高湿度環境下におき、子実体を生長させる発生工程とで構成されることを特徴とする。
【００１１】
請求項５に記載のハナビラタケの製造方法の前記培養工程では、０．１ルクス乃至５ルクス程度の光を連続又は間欠状態で与えることを特徴とする。
請求項６に記載のハナビラタケの製造方法の前記培養工程では、１日当たり０．１リットル〜０．５リットル程度の空気を通気させて通気培養を行うことを特徴とする。
【発明の効果】
【００１２】
以上の説明から明らかなように、本発明にあっては次に列挙する効果が得られる。
（１）菌糸を接種した固形培地に弱い光を与えるとともに、通気培養を行うことにより、ハナビラタケ種菌の形成速度を速め、ハナビラタケ種菌やハナビラタケの子実体の栽培日数を大幅に短縮することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１３】
図１乃至図５は本発明の第１の実施形態を示す説明図である。
【図１】第１の実施形態を示すハナビラタケ種菌及びハナビラタケの製造方法の工程図。
【図２】保存菌株１による実験結果を示す表。
【図３】保存菌株２による実験結果を示す表。
【図４】保存菌株３による実験結果を示す表。
【図５】保存菌株４による実験結果を示す表。
【発明を実施するための形態】
【００１４】
以下、図面に示す本発明を実施するための形態により、本発明を詳細に説明する。
図１乃至図５に示す本発明を実施するための第１の形態において、１はハナビラタケの種菌の製造方法であり、２は、ハナビラタケの種菌の製造方法１を使用して生産されたハナビラタケの種菌を用いてハナビラタケを製造するハナビラタケの製造方法である。
【００１５】
ハナビラタケの種菌の製造方法１は、通気性の良い固形培地を作成する培地作成工程３と、該培地作成工程３で作成した固形培地にハナビラタケの菌糸を接種する菌糸接種工程４と、菌糸を接種した固形培地に弱い光を与えるとともに、通気培養を行い種菌を培養する培養工程５とで構成されている。
【００１６】
また、ハナビラタケの製造方法２は、前記ハナビラタケの種菌の製造方法１で製造した種菌を培地に接種する種菌接種工程６と、この種菌接種工程６で種菌を接種した培地を培養する子実体培養工程７を行い、この子実体培養工程７を行った後、高湿度環境下におき、子実体を生長させる発生工程８をさらに行うものである。
【００１７】
培地作成工程３では、通気性の良い物質を含む固形培地を作成する。通気性の良い固形培地とは、目の粗いカラマツの大鋸屑に米や麦等粒状の澱粉類、保水性と通気性を兼ね備えたバーミキュライト、赤玉土、パーライト等の無機化合物を含む培地である。これらの培地に注水し例えば６５％程度で撹拌手段を用いて撹拌を行い、さらに混ぜ込み接種が出来る機器に詰め込みオートクレーブ滅菌を行って培地を作成する。
【００１８】
このように作成した固形培地に、培地量の４〜６％、好ましくは５％程度の菌糸を接種し、撹拌手段を用いて撹拌することにより培地機材に均等に菌糸を混ぜ合わせる菌糸接種工程４を行う。この菌糸を接種した培地を種菌瓶に軽く詰め種菌用培地を作り、次工程（培養工程５）にてハナビラタケの種菌の培養を行う。
【００１９】
培養工程５では、培地の通気培養を行うが、この通気培養は、ハナビラタケの菌糸生長最適温度である２０〜２３℃、湿度６０〜８０％程度の環境の培養室で、外部からフィルター等の無菌処理手段を介して無菌処理し、きれいな空気を培地に微量に送り込み通気する。
【００２０】
前記培地に無菌状態の空気を通す場合の通気量は、本実施形態においては、１日当たり０．１リットル〜０．５リットル程度で良い。接種直後から１週間程度は通気せず培地機材に菌糸を活着させ、培養日数の経過と共に通気量を多くする。
【００２１】
また、望ましくは弱い光を与えて培養を行う。ここで弱い光とは、０．１ルクスから５ルクス程度の光を与えるということであり、連続でも良いし又は間欠投与でもよい。
【００２２】
通気培養を続けると、子実体原基や幼子実体が形成され、この段階で通気培養を終了する。この子実体原基や幼子実体はハナビラタケの種菌として使用することができるものであり、ハナビラタケの種菌の製造としては、この時点で培養を終了する。
【００２３】
なお、そのまま通気培養を続けると培地内の子実体原基や幼子実体が生長してしまい種菌として使えなくなるので、速やかにこの種菌（子実体原基又は幼子実体）を冷蔵保存することにより１年以上経過しても高速栽培用種菌として使用することができる。
【００２４】
この種菌を用いてハナビラタケの栽培を行う場合には、栽培用に培地を作成する。前述の工程に続き、種菌接種工程６、子実体培養工程７及び発生工程８を行う。
【００２５】
種菌接種工程６では、栽培用の培地を作成し、この培地に種菌を接種する。
栽培用の培地に使う材料としては、例えば、針葉樹、広葉樹のオガクズやその混合物、コーンコブ等イネ科の乾燥粉砕物などが使用でき、針葉樹のオガクズが好適である。
【００２６】
特にカラマツの大鋸屑が良く、発酵して熟成した物が最適である。培地栄養源としては、各種の澱粉類が使用でき、一般的には乾燥して粉砕したものを使う。これらの澱粉類を培地機材に１％〜１５％程度添加するが、澱粉類の濃度が低いと子実体は白色で美しいが収量が低くなる。
【００２７】
また、澱粉類の濃度が高くなるに従って収量は増加するが、子実体が厚くなり、黄土色になるので７％〜１０％程度が好適である。この澱粉類としては穀類を精製する過程でできる糠の成分だけでもハナビラタケを栽培することは可能であるが、純粋澱粉が多い方が好ましい。
【００２８】
本実施形態においては、小麦粉やトウモロコシ粉、大麦粉等の栄養源を入れ撹拌後、含水率６５％程度になるように調整して使用している。
【００２９】
次に行われる培地の滅菌については、常圧滅菌でも高圧滅菌でも良い。常圧滅菌の場合は、滅菌時間が長くなり効率が悪いので高圧滅菌が好適である。培地の中心部分が１００℃を超えてから１１８℃〜１２０℃程度の温度で９０分程蒸気滅菌を行い、滅菌後は、速やかに無菌環境の空間で２０℃以下に成るように冷却する。
【００３０】
本発明の製造方法で製造した種菌を使い、無菌空間で接種機等を使い接種孔と培地表面が薄く覆われる程度の量を接種する。接種量は、種菌の含水率により異なる。オガクズ種菌の接種量は１２ｇ〜２５ｇ程度であるが、高速栽培用種菌の接種量は２０ｇ以上接種する方が良い。
【００３１】
次に、子実体培養工程７について説明する。
一般的きのこの菌床栽培を行っている培養室は、暗黒培養であるが、本実施形態の子実体培養工程７では、弱い光環境の下で培養を行う。ハナビラタケの菌糸生長と子実体の生長速度は、強い光の環境下では反比例するが、弱い光の環境では、菌糸も正常に生長し同時にキノコも生育する特性がある。なお、弱い光とは０．１ルクス〜数ルクス程度の明るさの光環境である。
【００３２】
子実体の発生速度を均等に整えるためには弱い光を均等に与えることが大事である。ハナビラタケの菌糸生育温度は１５℃〜２８℃程度であるが、１８℃〜２５℃の温度帯で菌糸伸長が良好であり、培養最適温度は、２０℃〜２３℃程度である。培養室の二酸化炭素濃度は、一般的なきのこのでは１５００ｐｐｍを超えない様にしているがハナビラタケでは、３０００ｐｐｍを超えても支障を来たさない。
【００３３】
１０日程培養すると外部よりボトルの肩口に薄く菌糸の伸長が見られ、肩口上部に白色菌膜が確認できるようになる。日を追うごとに肩口の菌糸の色は白さを増し、菌膜は瓶口方向へ幅を増して行く。２週間程度培養すると肩口より１５mm程菌糸が伸長する。この程度菌糸が生長したらボトルの蓋を外し、子実体の生長具合を観察する。なお、汚染を心配すると思うが、この時期に蓋を外し、観察を行っても汚染することは無い。
【００３４】
子実体原基や幼子実体が大きく生長し透明な湧水が沢山見られるようであれば子実体培養工程７を終了し、発生工程８に移行する。子実体原基を接種した場合と幼子実体を接種した場合は、多少の違いが見られる。子実体原基を接種した場合は子実体原基が丸く大きく生長し、その上に無数の湧水が見られる。実体顕微鏡で確認すると湧水部分に幼子実体が出来ている。幼子実体の場合には、肌色であったものがより白さを増し大きく生長を始める。
【００３５】
子実体培養工程７が終了した培地は、発生室に移し高湿度環境下で子実体を生長させる発生工程８を行う。
【００３６】
栽培室の湿度環境は、８０％〜１００％の高湿度帯が良好であるが、風量により大きく異なるので弱い風量にして９０％〜９５％の湿度を維持する。温度は、１５℃〜２８℃で生長するが培養室と同じ２０℃〜２３℃程度が最適である。１５℃以下の環境では子実体に黄変が出るので注意が必要である。また光環境は弱い光でも明るい光環境でも良い。２４時間連続照明しても、明暗１２時間の間欠照明でも生長に差が出るわけではない。蛍光灯照明の場合は光源に近いハナビラタケは赤外線により乾燥するのでＬＥＤ等熱の発生が少ない照明の方が良い。生長速度を整えるためには、均等な明るさを与える様に気を付けることである。また多くの栽培きのこでは、発生室の二酸化炭素濃度が１０００ｐｐｍを超えない様に調整するが、ハナビラタケは柄の有るキノコと違い二酸化炭素濃度に鈍感であり、３０００ｐｐｍを超えても子実体の形状に支障を来たさない性質があるので部屋の換気回数や時間は少なめでも良い。
【００３７】
１か月程度栽培すると花弁が大きく開いてくるので、胞子形成が少ない若い子実体を収穫するように心がける。栽培期間が長くなると花弁が大きく開き、子実体の体積も大きくなるが、若い状態よりも子実体重量が減少し、胞子の形成により黄土色になるので収穫時期は注意が必要である。培養１４日、栽培３０日を目安に収穫する。高速栽では接種から４５日程度で収穫が可能である。
【００３８】
本発明のハナビラタケの製造方法を用いて栽培実験を行った。なお比較のために従来の方法での栽培も行った。この栽培実験で用いられたハナビラタケは菌株を限定して栽培を行った。野生の株や保存されている菌株の場合には、芽出しや子実体の発生にばらつきが見られる為、選抜や育種を行い芽出しや子実体の発生の良い菌株を使った。
【００３９】
日本産ハナビラタケの種について各所より集めた野生株や保存されている菌株に付いて８２系統の遺伝子解析を行った結果、殆どの株は、Ｓｐａｒａｓｓｉｓ  ｌａｔｉｆｏｌｉａであり、一部の関西地方や中部地方のアカマツ帯に分布している種名の確定していないＳｐａｒａｓｓｉｓ  ｓｐ．であった。手持ちの２００株程の菌株についても調べたがＳｐａｒａｓｓｉｓ  ｃｒｉｓｐａという種は見当たらない。日本産ハナビラタケについての論文や特許に記載されているＳｐａｒａｓｓｉｓ  ｃｒｉｓｐａについては、慎重に扱うべきである。
【実施例１】
【００４０】
ハナビラタケの保存菌株１（日本産のＳｐａｒａｓｓｉｓ  ｌａｔｉｆｏｌｉａ）を用いた実施例である。
検体Ｎｏ．１は従来の栽培方法を用いたもので、カラマツの大鋸屑に接種してオガクズ種菌を作成した。栽培用培地は、３年間発酵したカラマツの大鋸屑に粉砕した大麦粉を８％加え、加水して含水率６５％に調整した。これを８５０ｍｌのポリプロピレンの栽培瓶に５８０ｇ充填し、直径２０ｍｍの接種孔を市販の穴あけ機を用いて栽培瓶の中央に１つ開けた後１１８℃で９０分間滅菌した。その後培地温度が２０℃以下に下がってからオガクズ種菌を接種孔と培地表面に２０ｇ接種した。温度２１℃〜２４℃、湿度６０％〜７０％の培養室で培養を行った。接種後５０日で栽培瓶のほぼ全体に菌糸が蔓延したところで発生操作として菌掻きを行った。発生操作後１０日程でハナビラタケの子実体形成が見られ、形成率は１００％であった。蓋を取って栽培室に移動し、湿度９５％〜９７％、温度２０℃〜２３℃、１〜３ルクスの明るさで１４時間照明、二酸化炭素濃度が１５００ｐｐｍを超えない様にした環境で子実体の生育をさせ、上限まで生育したとみられる接種から９６日目に収穫した。試験栽培３２本に付き１本当たり１４７ｇの収量であり、全収量は４．７ｋｇであった。
【００４１】
検体Ｎｏ．２も検体Ｎｏ．１と同様な手順によって培養し、接種から２６日目に子実体原基が大きく生長し、沢山の湧水が見られたので特別な発生操作をせず栽培室に移動した。栽培室の芽出しは、発生操作を行っていないのでばらつきが見られたが、３週間後には平均的に生長が整ってきた。上限まで生育したとみられる接種から６５日目に収穫した。試験栽培３２本に付き１本当たり１４９ｇの収量であり、全収量は、４．８ｋｇであった。
【００４２】
検体Ｎｏ．３は、本発明のハナビラタケの製造方法を使用したもので、オガクズ接種ではなく、あらかじめ子実体原基を多量に形成させた種菌を２０ｇ接種し培養を行った。それ以外は検体Ｎｏ．１と同様の手順で培養した。接種後１５日目には子実体原基が１００％大きく生長し、沢山の湧水が見られたので発生室に移動した。接種してから４６日後に収穫した。試験栽培３２本に付き１本当たり１５１ｇの収量であり、全収量は、４．８ｋｇであった。
【００４３】
検体Ｎｏ．４は、本発明のハナビラタケの製造方法を使用したもので、あらかじめ幼子実体を多量に形成させた種菌を２０ｇ接種し培養を行った。それ以外は同様の手順で培養した。接種後１４日目には子実体原基が１００％大きく生長し沢山の湧水が見られたので発生室に移動し、接種してから４５日後に収穫した。試験栽培３２本に付き１本当たり１５０ｇの収量であり、全収量は、４．８ｋｇであった。
【００４４】
これらの栽培結果を図２の表にまとめて示す。各検体による収量に大差は見られないが、栽培期間に大幅な相違が見られ、本発明のハナビラタケの製造方法を使用したものについては、従来の方法に比べ短期間で収穫することができた。
【実施例２】
【００４５】
実施例２は、ハナビラタケの保存菌株２（日本産のＳｐａｒａｓｓｉｓ  ｌａｔｉｆｏｌｉａ）を用いた実施例である。
【００４６】
検体Ｎｏ．１は実施例１の検体Ｎｏ．１と同様な手順により培養した。接種後５２日で栽培瓶のほぼ全体に菌糸が蔓延したところで発生操作として菌掻きを行った。発生操作後１０日でハナビラタケの子実体形成が見られ、形成率は１００％であった。栽培工程も実施例１と同様に行い接種してから９４日目に収穫した。試験栽培３２本に付き１本当たり１４２ｇの収量であり、全収量は４．５ｋｇであった。
【００４７】
検体Ｎｏ．２は実施例１の検体Ｎｏ．２と同様な手順によって培養し、接種から２７日目に子実体原基が大きく生長し、沢山の湧水が見られたので特別な発生操作をせず栽培室に移動した。栽培室の芽出しは、発生操作を行っていないのでばらつきが見られたが、３週間後には平均的に生長が整ってきた。上限まで生育したとみられる接種から６７日目に収穫した。試験栽培３２本に付き１本当たり１４５ｇの収量であり、全収量は、４．６ｋｇであった。
【００４８】
検体Ｎｏ．３は実施例１の検体Ｎｏ．３と同様な手順によって培養し、接種後１６日目には子実体原基が１００％大きく生長し、沢山の湧水が見られたので発生室に移動した。接種してから４７日後に収穫した。試験栽培３２本に付き１本当たり１４３ｇの収量であり、全収量は、４．６ｋｇであった。
【００４９】
検体Ｎｏ．４は実施例１の検体Ｎｏ．４と同様な手順によって培養し、接種後１４日目には子実体原基が１００％大きく生長し沢山の湧水が見られたので発生室に移動した。接種してから４５日後に収穫した。試験栽培３２本に付き１本当たり１４６ｇの収量であり、全収量は、４．７ｋｇ．であった。
【００５０】
これらの栽培結果を図３の表にまとめて示す。各検体による収量に大差は見られないが、栽培期間に大幅な相違が見られ、本発明のハナビラタケの製造方法を使用したものについては、従来の方法に比べ短期間で収穫することができた。
【実施例３】
【００５１】
実施例３は、ハナビラタケの保存菌株３（日本産のＳｐａｒａｓｓｉｓ  ｓｐ．）を用いた実施例である。
【００５２】
検体Ｎｏ．１は実施例１の検体Ｎｏ．１と同様な手順により培養した。接種後５５日で栽培瓶のほぼ全体に菌糸が蔓延したところで発生操作として菌掻きを行った。発生操作後１０日でハナビラタケの子実体形成が見られ、形成率は１００％であった。栽培工程も実施例１と同様に行い９８日目に収穫した。保存菌株３の子実体は、花弁が大きく開き花弁の周辺部に切れ込みが無く、明らかに保存菌株１や保存菌株２とは異なる特性が見られた。試験栽培３２本に付き１本当たり１４６ｇの収量であり、全収量は、４．７ｋｇであった。
【００５３】
検体Ｎｏ．２は実施例１の検体Ｎｏ．２と同様な手順によって培養し、接種から２７日目に子実体原基が大きく生長し、沢山の湧水が見られたので特別な発生操作をせず栽培室に移動した。栽培室の芽出しは、発生操作を行っていないのでばらつきが見られたが、３週間後には平均的に生長が整ってきた。上限まで生育したとみられる接種から７２日目に収穫した。保存菌株３の子実体は、花弁が大きく開く特性が見られた。試験栽培３２本に付き１本当たり１４３ｇの収量であり、全収量は、４．６ｋｇであった。
【００５４】
検体Ｎｏ．３は実施例１の検体Ｎｏ．３と同様な手順によって培養し、接種後１７日目には子実体原基が１００％大きく生長し、沢山の湧水が見られたので発生室に移動した。接種してから４８日後に収穫した。保存菌株３の子実体は、花弁が大きく開く特性が見られた。試験栽培３２本に付き１本当たり１４１ｇの収量であり、全収量は、４．５ｋｇであった。
【００５５】
検体Ｎｏ．４は実施例１の検体Ｎｏ．４と同様な手順によって培養し、接種後１５日目には幼子実体が１００％大きく生長し、沢山の湧水が見られたので発生室に移動した。接種してから４７日後に収穫した。保存菌株３の子実体は、花弁が大きく開く特性が見られた。試験栽培３２本に付き１本当たり１４５ｇの収量であり、全収量は、４．６ｋｇであった。
【００５６】
これらの栽培結果を図４の表にまとめて示す。各検体による収量に大差は見られないが、栽培期間に大幅な相違が見られた。保存菌株３の子実体は、保存菌株１や２に比べ子実体が大きく開き花弁の周辺部に切れ込みが無く丸い特性が見られた。
【実施例４】
【００５７】
実施例４は、ハナビラタケの保存菌株４（ヨーロッパ産のＳｐａｒａｓｓｉｓ  ｃｒｉｓｐａ）を用いた実施例である。
【００５８】
検体Ｎｏ．１は実施例１の検体Ｎｏ．１と同様な手順により培養した。接種後５７日で栽培瓶のほぼ全体に菌糸が蔓延したところで発生操作として菌掻きを行った。発生操作後１２日でハナビラタケの子実体形成が見られ、形成率は１００％であった。栽培工程も実施例１と同様に行い接種してから１０３日目に収穫した。保存菌株４の子実体は、花弁が小さい特性が見られた。試験栽培３２本に付き１本当たり１５８ｇの収量であり、全収量は、５，１ｋｇであった。
【００５９】
検体Ｎｏ．２は実施例１の検体Ｎｏ．２と同様な手順により培養した。接種から２９日目に子実体原基が大きく生長し、沢山の湧水が見られたので特別な発生操作をせず栽培室に移動した。栽培室の芽出しは、発生操作を行っていないのでばらつきが見られたが、３週間後には平均的に生長が整ってきた。上限まで生育したとみられる接種から７８日目に収穫した。保存菌株の子実体は、花弁が小さく開く特性が見られた。試験栽培３２本に付き１本当たり１６０ｇの収量であり、全収量は、５．１ｋｇであった。
【００６０】
検体Ｎｏ．３は実施例１の検体Ｎｏ．３と同様な手順によって培養し、接種後１７日目には子実体原基が１００％大きく生長し、沢山の湧水が見られたので発生室に移動した。接種してから４７日後に収穫した。保存菌株４の子実体は、花弁が小さくく開く特性が見られた。試験栽培３２本に付き１本当たり１４７ｇの収量であり、全収量は、４．７ｋｇであった。
【００６１】
検体Ｎｏ．４は実施例１の検体Ｎｏ．４と同様な手順によって培養し、接種後１５日目には幼子実体が１００％大きく生長し、沢山の湧水が見られたので発生室に移動した。接種してから４６日後に収穫した。保存菌株４の子実体は、花弁が小さく開く特性が見られた。試験栽培３２本に付き１本当たり１４８ｇの収量であり、全収量は、４．７ｋｇであった。
【００６２】
これらの栽培結果を図５の表にまとめて示す。各検体による収量に大差は見られないが、栽培期間に大幅な相違が見られた。保存菌株４の子実体は、保存菌株１、２、３に比べ子実体が小さく開く特性が見られた。また４菌株中栽培期間はやや遅いが、収量は多かった。
【００６３】
４つの菌株を使い４つの異なる栽培方法により１６通りの栽培結果を比較すると菌株や種が異なっても芽出しの良い株を使えば１００％子実体を形成することが判る。また、従来のように培地全体に菌糸が蔓延した後に発生操作をする栽培方法では、栽培期間が長くなり効率が悪い。
【００６４】
ハナビラタケの特性である暗い光の照射の元で栄養菌糸を伸ばしながら子実体の生長を促す栽培方法でも栽培期間を短縮できるが、あらかじめ本発明のハナビラタケの種菌の製造方法により製造された大量の子実体原基や幼子実体を形成させた種菌用い、この種菌を接種して子実体を培養する本発明のハナビラタケ栽培方法を行えば、より高速に栽培を行うことが出来、商業規模での栽培において大きくコストダウンを図ることが可能になる。
【産業上の利用可能性】
【００６５】
本発明はハナビラタケを製造する産業で利用される。
【符号の説明】
【００６６】
１：ハナビラタケの種菌の製造方法、
２：ハナビラタケの製造方法、
３：培地作成工程、            ４：菌糸接種工程、
５：培養工程、                ６：種菌接種工程、
７：子実体培養工程、          ８：発生工程。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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