(57)【要約】【課題】  試料中に含まれる動物細胞の検出方法であって、当該動物細胞を、周辺環境に依存せず、高感度に検出可能な方法を提供すること。【解決手段】  細胞膜結合因子を用いた動物細胞の検出方法であって、動物細胞を細胞膜結合因子と接触させる工程と、前記細胞膜結合因子を動物細胞内に取り込ませる工程と、動物細胞内に取り込まれた前記細胞膜結合因子を検出する工程と、を含む前記検出方法により、前記課題を解決する。【選択図】  図２
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
細胞膜結合因子を用いた動物細胞の検出方法であって、動物細胞を細胞膜結合因子と接触させる工程と、前記細胞膜結合因子を動物細胞内に取り込ませる工程と、動物細胞内に取り込まれた前記細胞膜結合因子を検出する工程と、を含む前記検出方法。
【請求項２】
動物細胞が造腫瘍性細胞である、請求項１に記載の検出方法。
【請求項３】
動物細胞が人工多能性幹細胞であり、細胞膜結合因子がＢＣ２ＬＣＮまたは抗ＴＲＡ−１−６０抗体である、請求項２に記載の検出方法。
【請求項４】
動物細胞内に取り込まれた細胞膜結合因子を検出する工程を、当該動物細胞を保持可能な空間に保持した状態で検出する、請求項１から３のいずれかに記載の検出方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、細胞検出方法に関する。特に本発明は、細胞膜結合因子を用いた、動物細胞検出方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
一般的に試料中に含まれる目的細胞を検出する場合、当該細胞内および／または細胞外に発現している抗原を認識する抗体を用いた免疫染色等を実施し検出する。なお、前記目的細胞のサイズや比重が特徴的である場合、あらかじめ当該サイズに基づく分離や密度勾配遠心による分離をした後に前述した免疫染色等する方法もある。また、前記目的細胞が発現しているｍＲＮＡに相補的な配列を有した、蛍光標識したオリゴヌクレオチドを細胞内に導入し、前記標識由来の蛍光によって前記目的細胞を検出する方法もある（非特許文献１）。
【０００３】
しかしながら、目的細胞が前記抗原を発現していても、染色後における当該目的細胞の周辺環境によっては、前記目的細胞の検出が困難なことがあった。例えば、人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）の検出を、当該細胞の表面タンパク質と親和性を有した蛍光標識レクチンであるｒＢＣ２ＬＣＮ−ＦＩＴＣ（富士フイルム和光製薬社製）による蛍光染色で行おうとした際、当該染色後の細胞の周辺環境のｐＨが低いとＦＩＴＣ由来の蛍光強度が低下し、検出が困難となった。またｉＰＳ細胞の検出を、多能性幹細胞マーカーであるＴＲＡ−１−６０に対するＡｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４８８（商品名）等で蛍光標識した抗体や前述したｒＢＣ２ＬＣＮ−ＦＩＴＣによる蛍光染色で行おうとした際、当該染色後に電気伝導度の低い溶液（低塩濃度の溶液）にさらすと、検出が困難となった。したがって、目的細胞を、当該細胞染色後の周辺環境に依存せず、高感度に検出可能な系の構築が求められた。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００４】
【非特許文献１】Ｍｉｋｉ．Ｋ  ｅｔ．ａｌ．，「Ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ  Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ  ａｎｄ  Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｃｅｌｌ  Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ  Ｕｓｉｎｇ  Ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ  ＭｉｃｒｏＲＮＡ  Ｓｗｉｔｃｈｅｓ」；Ｃｅｌｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ；１６（６），６９９−７１１（２０１５）
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
本発明の課題は、試料中に含まれる動物細胞の検出方法であって、当該動物細胞を、周辺環境に依存せず、高感度に検出可能な方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
上記課題を解決するために、本発明者らは鋭意検討を重ねた結果、造腫瘍性細胞が細胞膜の取り込み能力に優れることを見出し、本発明に到達した。
【０００７】
すなわち本発明は以下の通り例示できる。
［１］  細胞膜結合因子を用いた動物細胞の検出方法であって、動物細胞を細胞膜結合因子と接触させる工程と、前記細胞膜結合因子を動物細胞内に取り込ませる工程と、動物細胞内に取り込まれた前記細胞膜結合因子を検出する工程と、を含む前記検出方法。
［２］  動物細胞が造腫瘍性細胞である、［１］に記載の検出方法。
［３］  動物細胞が人工多能性幹細胞であり、細胞膜結合因子がＢＣ２ＬＣＮまたは抗ＴＲＡ−１−６０抗体である、［２］に記載の検出方法。
［４］  動物細胞内に取り込まれた細胞膜結合因子を検出する工程を、当該動物細胞を保持可能な空間に保持した状態で検出する、［１］から［３］のいずれかに記載の検出方法。
【０００８】
以下、本発明を詳細に説明する。
【０００９】
本発明の検出対象である動物細胞に特に限定はないが、細胞膜を細胞内に取り込む能力を有するものが好ましく、取り込み能力の高い細胞がより好ましい。細胞膜を細胞内に取り込む能力は検出対象動物細胞の種類によって異なると考えられることから、当該取り込み能力に基づき、検出対象動物細胞を同定することができるといえる。検出対象動物細胞の好ましい態様として、人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）や胚性幹細胞（ＥＳ細胞）といった、再生医療分野で用いられる造腫瘍性細胞が、細胞膜の取り込み能力に優れることから、あげられる。ｉＰＳ細胞やＥＳ細胞より分化して得られる細胞医薬品中に、未分化のｉＰＳ細胞やＥＳ細胞が含まれていると、これら未分化細胞による、がん化のおそれがある。したがって、前記細胞医薬品中に、未分化のｉＰＳ細胞やＥＳ細胞が含まれていないかを、高感度（例えば、１００万個の細胞中に１個の確率で未分化のｉＰＳ細胞やＥＳ細胞を検出可能な感度）で検出する必要がある。例えば、ｉＰＳ細胞由来分化細胞と未分化ｉＰＳ細胞が混在している場合に本発明の検出方法を適用すると、ｉＰＳ細胞由来分化細胞と比較して未分化ｉＰＳ細胞は細胞膜取り込み能力が高いため、細胞膜の取り込み現象を検出することで、未分化ｉＰＳ細胞を高感度に検出することが可能となる。従って、本発明の方法は、前記高感度の検出を成し得る方法であり、細胞医薬品中の造腫瘍性細胞の検出に好ましい方法といえる。
【００１０】
本発明において細胞膜結合因子とは、検出対象動物細胞が有する細胞膜に結合する分子であれば、特に限定はない。細胞膜結合因子は細胞膜とともに細胞内に取り込まれる。取り込まれた細胞結合因子を検出することで、細胞膜の取り込み現象を検出することができる。細胞内に取り込まれた細胞膜結合因子を検出対象とすると、細胞表面の細胞膜結合因子を検出対象とするよりも、細胞周辺の環境からの影響を受けにくい点からも、検出方法として優れる。細胞膜結合因子の一例として、検出対象動物細胞が有する細胞膜に局在する脂質や糖鎖、前記細胞膜タンパク質に結合可能な抗体やリガンド、長い側鎖を有しリン脂質と親和性が高く前記細胞膜に挿入可能な一般的な細胞膜染色試薬、が挙げられる。具体例として、検出対象動物細胞がｉＰＳ細胞である場合の、細胞膜結合因子の好ましい態様として、ｉＰＳ細胞膜タンパク質と親和性を有したレクチンであるＢＣ２ＬＣＮや、ｉＰＳ細胞など多能性幹細胞のマーカーであるＴＲＡ−１−６０に対する抗体があげられる。また検出対象動物細胞が、ｉＰＳ細胞などの造腫瘍性細胞である場合、細胞膜結合因子として、長い側鎖を有しリン脂質と親和性が高く前記細胞膜に挿入可能な細胞膜染色試薬である、ＰＫＨ２６（シグマアルドリッチ社製）を利用することができる。ＰＫＨ２６を利用する場合は、ＰＫＨ２６で細胞膜を染色した後、細胞内に取り込まれたか否かで判別することによって造腫瘍性細胞の検出にも利用できる。
【００１１】
動物細胞を細胞膜結合因子を含む溶液にさらす工程は、前記結合因子を一般的な細胞染色に用いるＰＢＳ（Ｐｈｏｓｐｈａｔｅ  ｂｕｆｆｅｒｅｄ  ｓａｌｔｓ）やＨＥＰＥＳ（４−（２−ＨｙｄｒｏｘｙＥｔｈｙｌ）−１−ＰｉｐｅｒａｚｉｎｅＥｔｈａｎｅＳｕｌｆｏｎｉｃ  ａｃｉｄ）を含む緩衝液で溶解して得られる溶液を用いてさらせばよい。前記結合因子の溶解に用いる溶媒、前記溶液にさらす時間などは、検出に用いる細胞膜結合因子の動物細胞への結合特性に応じ、適宜設定すればよい。なお前記溶液に、細胞膜結合因子の非特異的な吸着を抑制するために効果的なＴｗｅｅｎ  ２０（商品名）（Ｐｏｌｙｏｘｙｅｔｈｙｌｅｎｅ（２０）  Ｓｏｒｂｉｔａｎ  Ｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅ）などの界面活性剤や、ＢＳＡ（Ｂｏｖｉｎｅ  ｓｅｒｕｍ  ａｌｂｕｍｉｎ）などのタンパク質を適宜含ませてもよく、生細胞間の結合抑制に効果的なＥＤＴＡ（ＥｔｈｙｌｅｎｅＤｉａｍｉｎｅ  ＴｅｔｒａＡｃｅｔｉｃ  ａｃｉｄ）などのキレート剤を適宜含ませてもよい。
【００１２】
動物細胞に取り込まれた細胞膜結合因子を検出する工程は特に限定しない。例えば、細胞膜結合因子として蛍光標識した物質を使用した場合は、蛍光顕微鏡やフローサイトメーターなどを用いて当該標識した蛍光物質に基づき検出すればよく、細胞膜結合因子として抗体を用いた場合は、当該抗体に対する標識抗体で標識した後、前記標識に由来する蛍光または化学発光に基づき検出すればよい。
【００１３】
なお前記検出工程を、顕微鏡や光学検出器を用いて行なう場合、細胞膜結合因子を取り込んだ動物細胞を含む懸濁液を、前記細胞を保持可能な空間に保持した状態で検出すると操作簡便性の観点から好ましい。細胞を空間に保持する態様として、具体的に例示すれば、保持部を有した基板に導入し、前記保持部に前記細胞を保持した後、顕微鏡や光学検出器などで観察するとよい。保持部の例として、前記細胞を収納可能な孔や、前記細胞を固定可能な材料（例えば、ポリ−Ｌ−リジン）で覆われた面があげられる。なお保持部の大きさを前記細胞を一つだけ保持可能な大きさとすると、特定細胞の採取および解析（形態学的分析、組織型分析、遺伝子分析など）が容易に行なえる点で好ましい。また細胞を保持部に保持させる際、誘電泳動力を用いると、保持部に細胞を効率的に保持できる点で好ましい。誘電泳動力を用いる場合、具体的には、交流電圧を印加することで誘電泳動を発生させ、保持部内へ細胞を導入すればよい。印加する交流電圧は、保持部内の細胞の充放電が周期的に繰り返される波形を有した交流電圧であると好ましく、周波数を１００ｋＨｚから３ＭＨｚの間とし、電界強度を１×１０５から５×１０５Ｖ／ｍの間とすると特に好ましい（ＷＯ２０１１／１４９０３２号および特開２０１２−０１３５４９号公報参照）。好ましい基板の一態様として、特開２０１０−０１３５４９号公報に開示の粒子固定用構造体があげられる。
【発明の効果】
【００１４】
本発明により、試料中に含まれる動物細胞を、当該細胞の周辺環境の影響を受けにくく、かつ／または高感度に検出できる。
【図面の簡単な説明】
【００１５】
【図１】実施例１の結果を示す図である。（Ａ）は固定ｉＰＳ細胞をｒＢＣ２ＬＣＮ−ＦＩＴＣで染色後、０．５％（ｗ／ｖ）ＢＳＡと０.２ｍＭ  ＥＤＴＡを含むＰＢＳ（以下、Ｂｕｆｆｅｒ  Ａ）にさらして観察した蛍光像であり、（Ｂ）は固定ｉＰＳ細胞をｒＢＣ２ＬＣＮ−ＦＩＴＣで染色後、低塩濃度溶液（７．５％（ｗ／ｖ）スクロース、０．３％（ｗ／ｖ）グルコース、０．６％（ｗ／ｖ）ＨＥＰＥＳを含んだ水溶液）にさらして観察した蛍光像であり、（Ｃ）は未固定ｉＰＳ細胞をｒＢＣ２ＬＣＮ−ＦＩＴＣで染色後、Ｂｕｆｆｅｒ  Ａにさらして観察した蛍光像であり、（Ｄ）は未固定ｉＰＳ細胞をｒＢＣ２ＬＣＮ−ＦＩＴＣで染色後、前記低塩濃度溶液にさらして観察した蛍光像である。
【図２】実施例２の結果を示す図である。（Ａ）は室温で静置した未固定ｉＰＳ細胞と未固定ＭＲＣ−５細胞の蛍光像であり、（Ｂ）は細胞膜結合因子が取り込まれた細胞（集積細胞）の割合を示す結果である。（Ｂ）のうち、実線黒ひし形は未固定ｉＰＳ細胞を室温でさらしたときの結果であり、点線黒ひし形は未固定ｉＰＳ細胞を４℃でさらしたときの結果であり、実線白丸は未固定ＭＲＣ−５細胞を室温でさらしたときの結果であり、点線白丸は未固定ＭＲＣ−５細胞を４℃でさらしたときの結果である。
【図３】実施例３の結果を示す図である。
【実施例】
【００１６】
以下、実施例を用いて本発明をさらに詳細に説明するが、本発明は当該例に限定されるものではない。
【００１７】
実施例１  細胞の周辺環境による蛍光標識細胞膜結合因子による染色比較
細胞としてｉＰＳ細胞を、細胞膜結合因子としてｉＰＳ細胞の表面タンパク質と親和性を有するＢＣ２ＬＣＮをそれぞれ用い、染色後の周辺環境（塩濃度）の違いによる蛍光標識細胞膜結合因子による染色比較を行なった。
【００１８】
（１）未固定ｉＰＳ細胞と固定ｉＰＳ細胞の調製
（１−１）ヒトｉＰＳ細胞株である２０１Ｂ７株（ｉＰＳアカデミアジャパン社製）を、ｉＭａｔｒｉｘ（ニッピ社製）をコートしたポリスチレンプレート（培養基材）上で、ＳｔｅｍＦｉｔ  ＡＫ０２Ｎ培地（タカラバイオ社製）を用いて培養した。
（１−２）ＰＢＳで洗浄後、ＴｒｙｐＬＥ  ｓｅｌｅｃｔ（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ社製）とＶｅｒｓｅｎｅ  Ｓｏｌｕｔｉｏｎ（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ社製）との混合液を添加し、１０分間３７℃で静置することによって、培養基材よりｉＰＳ細胞を剥離した。
（１−３）剥離したｉＰＳ細胞を、ＳｔｅｍＦｉｔ  ＡＫ０２Ｎ培地にＹ−２７６３２（富士フイルム和光純薬社製：濃度１０μＭ）を添加した培地（以下、ＳｔｅｍＦ＋Ｙ培地）で回収した。
（１−４）回収したｉＰＳ細胞を遠心（１６０×ｇ、５分間）後、ＰＢＳで洗浄し、これを「未固定ｉＰＳ細胞」とした。
（１−５）洗浄したｉＰＳ細胞をマイルドホルム１０Ｎ（富士フイルム和光純薬社製）に３０分間浸すことで固定し、ＰＢＳで２回洗浄した。この細胞を「固定ｉＰＳ細胞」とした。
【００１９】
（２）蛍光標識ｒＢＣ２ＬＣＮによる染色
（１−４）で作製した未固定ｉＰＳ細胞、および（１−５）で作製した固定ｉＰＳ細胞を、ｒＢＣ２ＬＣＮ−ＦＩＴＣ（富士フイルム和光純薬社製）（１：１００）とＤＡＰＩ（４’，６−ＤｉＡｍｉｄｉｎｏ−２−ＰｈｅｎｙｌＩｎｄｏｌｅ）（１：５００）を含むＢｕｆｆｅｒ  Ａ（０．５％（ｗ／ｖ）ＢＳＡと０.２ｍＭ  ＥＤＴＡを含むＰＢＳ）に６０分間室温で浸し染色した。
【００２０】
（３）周辺環境条件の変化
以下に示す方法により、細胞染色後の周辺環境をＢｕｆｆｅｒ  Ａから低塩濃度溶液に変化させた。
（３−１）低塩濃度溶液として、７．５％（ｗ／ｖ）スクロース、０．３％（ｗ／ｖ）グルコースおよび０．６％（ｗ／ｖ）ＨＥＰＥＳを含む水溶液（水酸化カリウムでｐＨ７．３に調整）を作製した。
（３−２）染色後のｉＰＳ細胞に、Ｂｕｆｆｅｒ  Ａまたは（３−１）で作製した低塩濃度溶液を添加し、遠心（１６０×ｇ、５分間）した。
（３−３）遠心後、上清を除去し、新たにＢｕｆｆｅｒ  Ａまたは低塩濃度溶液を添加して遠心する洗浄作業を２回繰り返した。
（３−４）染色洗浄後のｉＰＳ細胞を蛍光顕微鏡（オリンパス社製：ＩＸ８３）にて観察した。
【００２１】
結果（蛍光像）を図１に示す。固定ｉＰＳ細胞に対しｒＢＣ２ＬＣＮ−ＦＩＴＣによる染色を行なった場合、当該細胞の周辺環境をＢｕｆｆｅｒ  Ａ（図１（Ａ））から低塩濃度溶液（図１（Ｂ））に置換することで、当該細胞由来の蛍光が失われ、蛍光顕微鏡での観察が困難となった。一方、未固定ｉＰＳ細胞に対しｒＢＣ２ＬＣＮ−ＦＩＴＣによる染色を行なった場合、前記染色工程時にｒＢＣ２ＬＣＮ−ＦＩＴＣがｉＰＳ細胞内に取り込まれるため、当該細胞の周辺環境をＢｕｆｆｅｒ  Ａ（図１（Ｃ））から低塩濃度溶液（図１（Ｄ））に置換しても、当該細胞由来の蛍光は残存しており、蛍光顕微鏡での観察が容易になった。
【００２２】
実施例２  細胞膜結合因子の取り込み活性に基づく細胞識別（その１）
以下に示す方法により、細胞膜結合因子の取り込み活性の違いに基づく、ｉＰＳ細胞と造腫瘍性を有しない他の細胞との識別を試みた。
【００２３】
（１）ｉＰＳ細胞およびＭＣＲ−５細胞の調製
（１−１）未固定ｉＰＳ細胞を、実施例１（１）に記載の方法で調製した。
（１−２）造腫瘍性を有しない細胞として、ＭＲＣ−５細胞（ヒト胎児肺由来線維芽細胞：ＪＣＲＢ細胞バンクより分譲）を選択した。未固定ＭＲＣ−５細胞は、１０％（ｗ／ｖ）ＦＢＳ（Ｆｅｔａｌ  Ｂｏｖｉｎｅ  Ｓｅｒｕｍ）を含むＤＭＥＭ（富士フイルム和光純薬社製）を用いて培養後、実施例１（１）に記載の未固定ｉＰＳ細胞のときと同様の方法を用いて剥離など行ない、調製した。
【００２４】
（２）細胞染色
細胞膜染色キットＰＫＨ２６を用いて細胞膜の染色を行なった。
（２−１）（１）で調製した、未固定ｉＰＳ細胞および未固定ＭＲＣ−５細胞を前記染色キット付属のＤｌｉｕｅｎｔ  Ｃ  １００μＬに懸濁した。
（２−２）終濃度が２０μＭとなるように調製した、ＰＫＨ２６を含むＤｌｉｕｅｎｔ  Ｃ  １００μＬを懸濁添加し、室温で３分間静置した。
（２−３）静置後、４℃に冷やしたＳｔｅｍＦ＋Ｙ培地を添加し、遠心（４℃，１６０×ｇ、５分間）を行なった。
（２−４）遠心後、上清を除去し、４℃に冷やしたＰＢＳを添加した。その後、室温または４℃で、３０分間、６０分間、もしくは９０分間静置した。
【００２５】
（３）細胞観察
（２）で静置後の細胞懸濁液を９６ｗｅｌｌ  ＭｉｃｒｏＰｌａｔｅ（ＣＯＲＮＩＮＧ社製）に入れ、蛍光顕微鏡（オリンパス社製：ＩＸ８３）にて観察し（対物レンズ２０倍）、少なくとも、任意の３視野の画像（蛍光像）を取得した。
【００２６】
室温で９０分間静置後の細胞染色結果（蛍光像）を図２（Ａ）に示す。未固定ｉＰＳ細胞では、細胞膜に挿入したＰＫＨ２６が当該細胞内に取り込まれる様子が確認できた（図２（Ａ）白矢印）。
【００２７】
また各温度（室温または４℃）および各静置時間（０分、３０分間、６０分間または９０分間）で取得した画像から算出した、各視野における集積細胞の割合［％］（１００×［細胞膜結合因子が細胞内に取り込まれた細胞数］／［総細胞数］）を、各温度（室温または４℃）および各細胞（ｉＰＳ細胞、ＭＲＣ−５細胞）毎に時系列でプロットしたグラフを図２（Ｂ）に示す。室温で静置した場合、細胞膜に挿入したＰＫＨ２６を細胞内に取り込む細胞の割合（集積細胞の割合）は、ＭＲＣ−５細胞に比べｉＰＳ細胞のほうが高いことが分かる（ＭＲＣ−５細胞：１４．８±３．２％，ｉＰＳ細胞：５６．８±６．５％）。この結果より、ｉＰＳ細胞とＭＲＣ−５細胞とを、細胞内への細胞膜結合因子の取り込み活性の違いに基づき、識別できることが分かる。なお４℃で静置した場合は、ｉＰＳ細胞内への細胞膜結合因子の取り込みが抑制されていることから、細胞膜結合因子の取り込みが細胞生理活性によることが分かる。
【００２８】
実施例３  細胞膜結合因子の取り込み活性に基づく細胞識別（その２）
以下に示す方法により、細胞膜結合因子の取り込み活性に基づく、造腫瘍性細胞と正常細胞との識別を試みた。
【００２９】
（１）細胞の調製
造腫瘍性細胞としてｉＰＳ細胞とＰＣ−９細胞（ヒト肺腺癌細胞：免疫生物研究所より入手）を、造腫瘍性を有しない正常細胞としてＴＩＧ−３細胞（ヒト胎児肺由来線維芽細胞：ＪＣＲＢ細胞バンクより分譲）を、それぞれ選択した。未固定ｉＰＳ細胞は、実施例１（１）に記載の方法で調製した。未固定ＰＣ−９細胞は１０％（ｗ／ｖ）ＦＢＳを含むＲＰＭＩ１６４０（富士フイルム和光純薬社製）、未固定ＴＩＧ−３細胞は１０％（ｗ／ｖ）ＦＢＳを含むαＭＥＭ（富士フイルム和光純薬社製）にて其々培養を行い、０．０５％  Ｔｒｙｐｓｉｎ＋０．５ｍＭＥＤＴＡ溶液（富士フイルム和光純薬社製）を用いて細胞を剥離した。その後は実施例２（１）に記載の未固定ＭＲＣ−５細胞の調製法と同様の方法で調製した。
【００３０】
（２）細胞染色
（２−１）細胞膜染色キットＰＫＨ２６を用いて、実施例２（２−１）および（２−２）に記載の方法で細胞を染色後、室温でＳｔｅｍＦ＋Ｙ培地を添加し、遠心（室温、１６０×ｇ、５分間）を行なった。
（２−２）遠心後、上清を除去した細胞に、室温でＳｔｅｍＦ＋Ｙ培地を添加し、室温で６０分間静置した。
（２−３）静置後の細胞を、実施例２（３）と同様な方法で蛍光顕微鏡（オリンパス社製：ＩＸ８３）を用いて観察した。
【００３１】
各視野における集積細胞の割合［％］（１００×［細胞膜結合因子が細胞内に取り込まれた細胞数］／［総細胞数］）を、各細胞毎（ｉＰＳ細胞、ＰＣ−９細胞、ＴＩＧ−３細胞）で比較した結果を図３に示す。細胞膜に挿入したＰＫＨ２６を細胞内に取り込む細胞の割合（集積細胞の割合）は、正常細胞（ＴＩＧ−３細胞）に比べ造腫瘍性細胞（ｉＰＳ細胞およびＰＣ−９細胞）のほうが高いことが分かる（ｉＰＳ細胞：７４．９±６．９％，ＰＣ−９細胞：６３．３±５．８％，ＴＩＧ−３細胞：２６．１±６．７％）。以上の結果から、細胞膜結合因子の取り込み活性の違いに基づく細胞識別は、ｉＰＳ細胞に限らず、造腫瘍性細胞（ｉＰＳ細胞やＰＣ−９細胞など）と（造腫瘍性を有しない）正常細胞（ＭＲＣ−５細胞やＴＩＧ−３細胞など）との識別に広く利用できることがわかる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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