(57)【要約】      （修正有）【課題】膵内分泌前駆細胞の集団を動物に移植することにより、動物の血糖値を低下させる方法を提供する。【解決手段】患者における血糖値を低下させるための薬剤の製造におけるカプセル化した膵内分泌前駆細胞の集団の使用であって、前記膵内分泌前駆細胞は、ＢＭＰ阻害能を持つ因子及びＴＧＦ−β受容体Ｉキナーゼ阻害剤を添加した培地中で膵臓内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現する細胞からｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて分化するものであり、且つ、ＮＧＮ３、ＮＫＸ６．１、ＮｅｕｒｏＤ、ＩＳＬ１、ＰＤＸ１、ＰＡＸ４、ＮＫＸ２．２、ＰＡＸ６又はＡＲＸを発現するものである、前記使用。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
カプセル化した膵内分泌前駆細胞の集団を動物に移植することにより、動物の血糖値を
低下させる方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
（関連出願の相互参照）
本出願は、２０１０年８月１２日に出願された、米国特許仮出願第６１／３７３，１０
９号の利益を主張するものであり、当該出願を本明細書にその全容において、かつあらゆ
る目的について援用するものである。
【０００２】
（発明の分野）
本発明は、膵内分泌前駆細胞の集団を動物に移植することにより、動物の血糖値を低下
させる方法を提供する。
【背景技術】
【０００３】
Ｉ型糖尿病の細胞置換療法の進歩及び移植可能なランゲルハンス島の不足により、生着
に適したインスリン産生細胞、すなわちβ細胞の供給源の開発に注目が集まっている。１
つの手法として、例えば、胚性幹細胞のような多能性幹細胞から機能性のβ細胞を生成す
ることがある。
【０００４】
脊椎動物の胚発生において、多能性細胞は、原腸形成として知られているプロセスで３
つの胚葉（外胚葉、中胚葉、及び内胚葉）を含む細胞のグループを生じる。例えば、甲状
腺、胸腺、膵臓、腸、及び肝臓等の組織は、内胚葉から中間段階を経て発現する。このプ
ロセスにおける中間段階は、胚体内胚葉の形成である。胚体内胚葉細胞は、例えばＨＮＦ
３β、ＧＡＴＡ４、ＭＩＸＬ１、ＣＸＣＲ４及びＳＯＸ１７などの多くのマーカーを発現
する。
【０００５】
膵臓の形成は、胚体内胚葉の膵臓内胚葉への分化により起こる。膵臓内胚葉の細胞は膵
臓−十二指腸ホメオボックス遺伝子、ＰＤＸ１を発現する。ＰＤＸ１が存在しない場合、
膵臓は、腹側芽及び背側芽の形成を越えて発育しない。したがって、ＰＤＸ１の発現は、
膵臓器官形成において重要な工程を印している。成熟した膵臓は、他の細胞型の中でも、
外分泌組織及び内分泌組織を含む。外分泌組織及び内分泌組織は、膵臓内胚葉の分化によ
って生じる。
【０００６】
島細胞の特徴を保持する細胞がマウスの胚細胞から誘導されたことが報告されている。
例えば、Ｌｕｍｅｌｓｋｙら（Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２９２：１３８９，２００１）は、マウ
スの胚幹細胞の、膵島と同様のインスリン分泌構造への分化を報告している。Ｓｏｒｉａ
ら（Ｄｉａｂｅｔｅｓ  ４９：１５７，２０００）は、ストレプトゾトシン糖尿病のマウ
スにおいて、マウスの胚幹細胞から誘導されたインスリン分泌細胞が糖血症を正常化する
ことを報告している。
【０００７】
一例において、ホリ（Ｈｏｒｉ）ら（ＰＮＡＳ  ９９：１６１０５，２００２）は、ホ
スホイノシチド３−キナーゼ（ＬＹ２９４００２）の阻害剤でマウス胚性幹細胞を処理す
ることにより、β細胞に類似した細胞が生じたことを開示している。
【０００８】
別の例では、Ｂｌｙｓｚｃｚｕｋら（ＰＮＡＳ  １００：９９８，２００３）が、Ｐａ
ｘ４を構成的に発現しているマウス胚幹細胞からのインスリン産生細胞の生成を報告して
いる。
【０００９】
Ｍｉｃａｌｌｅｆらは、レチノイン酸が、胚幹細胞のＰＤＸ１陽性膵臓内胚葉の形成に
対する関与を調整することができることを報告している。レチノイン酸は、胚における原
腸形成の終了時に該当する期間中、胚性幹細胞分化の４日目に培養液に添加すると、ＰＤ
Ｘ１発現の誘導に最も効果的である（Ｄｉａｂｅｔｅｓ  ５４：３０１，２００５）。
【００１０】
Ｍｉｙａｚａｋｉらは、ＰＤｘ１を過剰発現しているマウス胚幹細胞株を報告している
。彼らの結果は、外因性のＰＤｘ１発現が、得られた分化細胞内でインスリン、ソマトス
タチン、グルコキナーゼ、ニューロゲニン３、ｐ４８、Ｐａｘ６、及びＨｎｆ６遺伝子の
発現を明らかに増加させたことを示している（Ｄｉａｂｅｔｅｓ  ５３：１０３０，２０
０４）。
【００１１】
Ｓｋｏｕｄｙらは、アクチビンＡ（ＴＧＦ−βスーパー族の構成員）が、マウス胚性幹
細胞中で膵臓外分泌遺伝子（ｐ４８及びアミラーゼ）、並びに内分泌遺伝子（ＰＤｘ１、
インスリン及びグルカゴン）の発現を上方制御することを報告している。最大の効果は、
１ｎＭアクチビンＡを使用して観察された。また、インスリン及びＰＤＸ１のｍＲＮＡ発
現レベルはレチノイン酸に影響されないが、３ｎＭ  ＦＧＦ７処理により、ＰＤｘ１の転
写物量が増加する結果となることが認められた（Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｊ．３７９：７４９，
２００４）。
【００１２】
Ｓｈｉｒａｋｉらは、胚幹細胞のＰＤＸ１陽性細胞への分化を特異的に高める増殖因子
の効果を研究した。Ｓｈｉｒａｋｉらは、ＴＧＦ−β２によってＰＤＸ１陽性細胞がより
高い比率で再現性よく得られたことを観察している（Ｇｅｎｅｓ  Ｃｅｌｌｓ．２００５
Ｊｕｎ；１０（６）：５０３〜１６）。
【００１３】
Ｇｏｒｄｏｎらは、血清が存在せず、かつＷｎｔシグナル伝達阻害剤と共にアクチビン
が存在する条件下で、マウス胚性幹細胞からの短尾奇形［陽性］／ＨＮＦ−３β［陽性］
内胚葉細胞への誘導を示した（米国特許出願公開第２００６／０００３４４６（Ａ１）号
）。
【００１４】
Ｇｏｒｄｏｎら（ＰＮＡＳ，Ｖｏｌ  １０３，１６８０６ページ，２００６）は、「Ｗ
ｎｔ及びＴＧＦ−β／ノーダル／アクチビンシグナル伝達は、前側原始線条の生成のため
に同時に必要である」と述べている。
【００１５】
しかしながら、胚幹細胞発育のマウスモデルは、例えば、ヒト等のより高等な哺乳動物
内の発育プログラムを正確に模倣しない恐れがある。
【００１６】
Ｔｈｏｍｓｏｎらは、ヒト胚盤胞から胚幹細胞を単離した（Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２８２：
１１４、１９９８）。同時に、Ｇｅａｒｈａｒｔ及び共同研究者は、胎児腺組織から、ヒ
ト胚性生殖細胞（ｈＥＧ）株を誘導した（Ｓｈａｍｂｌｏｔｔら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．
Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  ９５：１３７２６，１９９８）。単に白血病抑制因子（ＬＩ
Ｆ）と共に培養することにより分化しないようにすることができるマウス胚幹細胞とは異
なり、ヒト胚幹細胞は、非常に特殊な条件下で維持する必要がある（米国特許第６，２０
０，８０６号、国際公開第９９／２０７４１号；国際公開第０１／５１６１６号）。
【００１７】
Ｄ’Ａｍｏｕｒらは、高濃度のアクチビン及び低濃度の血清の存在下でのヒト胚性幹細
胞由来の胚体内胚葉の濃縮化された培養物の作製を述べている（Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔ
ｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  ２００５）。これらの細胞をマウスの腎臓皮膜下で移植することに
より、いくつかの内胚葉性器官の特徴を有する、より成熟した細胞への分化が見られた。
ヒト胚幹細胞誘導による胚体内胚葉細胞は、ＦＧＦ−１０の添加後、ＰＤＸ１陽性細胞に
更に分化することができる（米国特許出願公開第２００５／０２６６５５４（Ａ１）号）
。
【００１８】
Ｄ’Ａｍｏｕｒら（Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ−２４，１３９２〜１
４０１（２００６））は、「ヒト胚性幹（ｈＥＳ）細胞を、膵臓ホルモンインスリン、グ
ルカゴン、ソマトスタチン、膵臓ポリペプチド及びグレリンを合成できる内分泌細胞へと
変換する分化プロセスを開発した」と述べている。このプロセスは、内分泌ホルモンを発
現する細胞経由で類胚体内胚葉、腸管内胚葉、膵臓内胚葉及び内分泌前駆体に類似する段
階に細胞を向わせることにより、インビボでの膵臓器官形成を模倣する。
【００１９】
別の例では、Ｆｉｓｋらは、ヒト胚幹細胞から膵島細胞を産生する系を報告している（
米国特許出願公開第２００６／００４０３８７（Ａ１）号）。この場合、分化経路を３つ
の段階に分割した。先ず、ヒト胚性幹細胞を、酪酸ナトリウムとアクチビンＡの組み合わ
せを用いて内胚葉に分化した。次いで、細胞を、ノギンなどのＴＧＦ−βアンタゴニスト
とＥＧＦ又はベータセルリンとの組み合わせで培養して、ＰＤＸ１陽性細胞を生成する。
最終分化をニコチンアミドにより誘発させた。
【００２０】
一例では、Ｂｅｎｖｅｎｉｓｔｒｙらは、「我々は、ＰＤＸ１の過剰発現が、膵臓に多
く見られる遺伝子の発現を増強させたことを結論し、インスリン発現の誘導には、インビ
ボでのみ存在する更なるシグナルを必要とする可能性がある。」と述べている（Ｂｅｎｖ
ｅｎｉｓｔｒｙら、Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ  ２００６；２４：１９２３〜１９３０）。
【００２１】
別の例では、米国特許出願公開第２００８／０２４１１０７（Ａ１）号は、ａ）インス
リンを生産していない細胞を得る工程；及びｂ）高濃度のグルコースを含有し、細胞はイ
ンスリンを分泌する培地と共に細胞をインキュベートする工程を含む、インスリンを分泌
する細胞の製造方法を請求する。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００２２】
したがって、膵臓内分泌細胞、膵臓ホルモン発現細胞、又は膵臓ホルモン分泌細胞に分
化する可能性を維持する一方で、現在の臨床上の必要性に対処するように拡張可能な、多
能性幹細胞株を確立するための条件を開発する著しい必要性がなお存在する。本発明者ら
は、膵臓内分泌細胞まで進むヒト胚幹細胞の分化の効率を改善する代替的な手法を採用し
た。
【課題を解決するための手段】
【００２３】
一実施形態では、本発明は、膵内分泌前駆細胞の集団を動物に移植することにより、動
物の血糖値を低下させる方法を提供する。
【図面の簡単な説明】
【００２４】
【図１】ストレプトゾトシンの５回注射により糖尿病状態にされ、次いで腎臓カプセル下で分化したヒトＥＳ細胞を移植（段階４）した、ＳＣＩＤマウス中の０日目の血糖値。続く数か月の血糖を追跡することによって、高血糖が前糖尿病レベルまで徐々に減少したことが明らかになった。以降の腎臓除去は、糖尿病の急速な再発を招いた。
【図２】血糖値の低下と比例して漸次的に増加することを示している、移植後の表示した週での血漿サンプル中のヒトＣ−ペプチド測定値。
【図３】腎臓カプセル下で又はＴｈｅｒａＣｙｔｅ器具内で皮下移植された細胞のレシピエントにおいて得られる比較可能なＣ−ペプチド値。
【発明を実施するための形態】
【００２５】
開示を分かりやすくするため、限定の目的ではなく、本発明の詳細の説明を、本発明の
しかるべき特徴、実施形態又は適用を説明又は例示する下記の小項目に分割する。
【００２６】
定義
幹細胞は、単独の細胞レベルで自己複製及び分化して、自己複製前駆細胞、非再生前駆
細胞、及び最終分化細胞を含む、後代細胞を生成する能力で定義される未分化細胞である
。幹細胞は、また、インビトロで複数の胚葉層（内胚葉、中胚葉及び外胚葉）から様々な
細胞系の機能的細胞へと分化する能力によって、並びに移植後に複数の胚葉層の組織を生
じ、胚盤胞への注入後、全部ではないが殆どの組織に寄与する能力によって特徴付けられ
る。
【００２７】
幹細胞は、発生上の能力によって、（１）全ての胚性又は胚体外細胞のタイプを生ずる
能力を有することを意味する、分化全能性、（２）全ての胚性細胞のタイプを生ずる能力
を有することを意味する、分化万能性、（３）特定の組織、臓器、又は生理学的な系内で
全ての細胞系統のサブセットを生ずる能力を有する、分化多能性（例えば、造血幹細胞（
ＨＳＣ）は、ＨＳＣ（自己再生性）、血球限定的寡能性前駆細胞、及び、血液の通常の成
分である全ての細胞種及び要素（例えば、血小板）を生じうる）、（４）多能性幹細胞よ
りも限定された細胞系統のサブセットを生ずる能力を有することを意味する、分化寡能性
、及び（５）単一の細胞系統（例えば、精原幹細胞）を生ずる能力を有することを意味す
る、分化単一性に分類される。
【００２８】
分化は、特殊化されていない（「分化決定していない」）又は比較的特殊化されていな
い細胞が、例えば、神経細胞又は筋細胞などの特殊された細胞の特徴を獲得するプロセス
である。分化細胞又は分化を誘導された細胞は、細胞系内でより特殊化された（「分化決
定した」）立場を選んだ細胞である。用語「分化決定した」は、分化プロセスに適用され
るとき、通常の環境下で特定の細胞型又は細胞型の小集合に分化し続ける地点まで分化経
路において進行してしまっており、通常の環境下で異なる細胞型に分化することができな
いか、又は低分化細胞型に戻ることができない細胞を指す。脱分化は、細胞が細胞系統内
でさほど特殊化されて（又は分化決定した）いない立場に戻るプロセスを指す。本明細書
で使用されるとき、細胞系統は、細胞の遺伝、すなわちその細胞がどの細胞から来たか、
またどの細胞を生じ得るかを規定する。ある細胞系は、その細胞を発生及び分化の遺伝ス
キーム内に位置付ける。系統特異的マーカーは、対象とする系統の細胞の表現型と特異的
に関連した特徴を指し、分化決定されていない細胞の、対象とする系統への分化を評価す
るために使用することができる。
【００２９】
本明細書で使用するとき、「胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞」、
又は「段階１細胞」、又は「段階１」は、以下のマーカー：ＳＯＸ−１７、ＧＡＴＡ４、
ＨＮＦ−３β、ＧＳＣ、ＣＥＲ１、Ｎｏｄａｌ、ＦＧＦ８、Ｂｒａｃｈｙｕｒｙ、Ｍｉｘ
様ホメオボックスタンパク質、ＦＧＦ４  ＣＤ４８、ｅｏｍｅｓｏｄｅｒｍｉｎ（ＥＯＭ
ＥＳ）、ＤＫＫ４、ＦＧＦ１７、ＧＡＴＡ６、ＣＸＣＲ４、Ｃ−Ｋｉｔ、ＣＤ９９又はＯ
ＴＸ２のうちの少なくとも１つを発現している細胞を指す。胚体内胚葉系に特徴的なマー
カーを発現している細胞としては、原始線条前駆体細胞、原始線条細胞、中内胚葉細胞及
び胚体内胚葉細胞が挙げられる。
【００３０】
本明細書で使用するとき、「膵臓内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞」は
、以下のマーカー：ＰＤＸ１、ＨＮＦ−１β、ＰＴＦ１α、ＨＮＦ６、又はＨＢ９のうち
の少なくとも１つを発現している細胞を指す。膵臓内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現
する細胞としては、膵臓内胚葉細胞、原腸管細胞、後部前腸細胞が挙げられる。
【００３１】
本明細書で使用するとき、「膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞」は、
以下のマーカー、すなわち、ＮＥＵＲＯＤ、ＩＳＬ１、ＰＤＸ１、ＮＫＸ６．１、ＭＡＦ
Ｂ、インスリン、グルカゴン又はソマトスタチンのうちの少なくとも１つを発現している
細胞を指す。膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞としては、膵臓内分泌細
胞、膵臓ホルモン発現細胞、及び膵臓ホルモン分泌細胞、並びにβ−細胞系の細胞を含む
。
【００３２】
本明細書で使用するとき、「胚体内胚葉」は、原腸形成中、胚盤葉上層から生じ、胃腸
管及びその誘導体を形成する細胞の特徴を保持する細胞を指す。胚体内胚葉細胞は、以下
のマーカー：ＨＮＦ３β、ＧＡＴＡ４、ＳＯＸ１７、Ｃｅｒｂｅｒｕｓ、ＯＴＸ２、ｇｏ
ｏｓｅｃｏｉｄ、Ｃ−Ｋｉｔ、ＣＤ９９、及びＭＩＸＬ１を発現する。
【００３３】
本明細書で言うところの「マーカー」は、対象とする細胞で差異的に発現される核酸又
はポリペプチド分子である。この文脈において、差異的な発現は、陽性マーカーのレベル
の増大及び陰性マーカーのレベルの減少を意味する。マーカー核酸又はポリペプチドの検
出可能なレベルは、他の細胞と比較して対象とする細胞において充分に高いか又は低いこ
とから、当該技術分野において知られる各種の方法のいずれを用いても対象とする細胞を
他の細胞から同定及び区別可能である。
【００３４】
本明細書で使用するとき、「膵内分泌細胞」又は「膵臓ホルモン発現細胞」は、以下の
ホルモン：インスリン、グルカゴン、ソマトスタチン、及び膵臓ポリペプチドのうちの少
なくとも１つを発現することができる細胞を指す。
【００３５】
本明細書で使用するとき、「膵内分泌前駆細胞」は、ＮＧＮ３を発現し、かつ内分泌系
の細胞（限定するものではないが膵島ホルモン発現細胞が挙げられる）へと更に分化し得
る胚体内胚葉系の多能性細胞を指す。内分泌前駆細胞は、ＰＤＸ１陽性膵臓内胚葉細胞な
どの低分化の胚体内胚葉系細胞と比較して、多くの異なる細胞、組織及び／又は器官型へ
と分化することはできない。
【００３６】
本明細書で使用するとき、「膵臓ホルモン産生細胞」は、以下のホルモン：インスリン
、グルカゴン、ソマトスタチン、及び膵臓ポリペプチドのうちの少なくとも１つを産生す
ることができる細胞を指す。
【００３７】
本明細書で言うところの「膵臓ホルモン分泌細胞」は、以下のホルモン：インスリン、
グルカゴン、ソマトスタチン、及び膵臓ポリペプチドの内の少なくとも１つを分泌するこ
とが可能な細胞を指す。
【００３８】
多能性幹細胞の単離、増殖及び培養
多能性幹細胞の特徴付け
多能性幹細胞は、段階特異的胚抗原（ＳＳＥＡ）３及び４、並びにＴｒａ−１−６０及
びＴｒａ−１−８１と呼ばれる抗体によって検出可能なマーカーのうちの１つ以上を発現
する（Ｔｈｏｍｓｏｎら、Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２８２：１１４５，１９９８）。インビトロ
で多能性幹細胞を分化させると、ＳＳＥＡ−４、Ｔｒａ−１−６０、及びＴｒａ−１−８
１の発現が消失し（存在する場合）、ＳＳＥＡ−１の発現が増大する。未分化多能性幹細
胞は、典型的には、アルカリホスファターゼ活性を有し、製造業者（Ｖｅｃｔｏｒ  Ｌａ
ｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｂｕｒｌｉｎｇａｍｅ、Ｃａｌｉｆ．）により説明されるように
、細胞を４％パラホルムアルデヒドで固定した後、基質としてＶｅｃｔｏｒ  Ｒｅｄを使
用して展開することにより検出可能である。未分化の多能性幹細胞は、典型的には、ＲＴ
−ＰＣＲによって検出されるＯｃｔ−４及びＴＥＲＴも発現する。
【００３９】
増殖させた多能性幹細胞の別の望ましい表現型は、３つの胚葉の全て、すなわち、内胚
葉、中胚葉、及び外胚葉組織の細胞に分化する能性である。多能性幹細胞の多能性は、例
えば細胞を重症複合型免疫不全症（ＳＣＩＤ）マウスに注入し、４％パラホルムアルデヒ
ドを使用して、形成された奇形腫を固定した後、次いでそれらを３つの胚葉からの細胞型
の痕跡に関して組織学的に検査することにより確認することができる。あるいは、多能性
は、胚様体を形成し、この胚様体を３つの胚葉に関連したマーカーの存在に関して評価す
ることにより決定され得る。
【００４０】
増殖させた多能性幹細胞株は、標準的なＧバンド法を使用し、対応する霊長類種の発表
されている核型と比較することで、核型決定され得る。細胞は「正常な核型」を有するこ
とが望ましく、「正常な核型」とは、細胞が正倍数体であり、ヒト染色体が全て揃ってお
りかつ目立った変質のないことを意味する。
【００４１】
多能性幹細胞の供給源
使用してもよい多能性幹細胞の種類としては、妊娠期間中の任意の時期（必須ではない
が、典型的には妊娠約１０〜１２週よりも前）に採取した前胚性組織（例えば胚盤胞など
）、胚性組織、又は胎児組織を含む、妊娠後に形成される組織に由来する多能性細胞の株
化細胞系が挙げられる。非限定的な例は、例えばヒト胚性幹細胞株Ｈ１、Ｈ７及びＨ９（
ＷｉＣｅｌｌ）などのヒト胚性幹細胞又はヒト胚生殖細胞の株化細胞系である。また、こ
うした細胞の初期の株化又は安定化の際に本開示の組成物を使用することも考えられるが
、その場合には、供給源となる細胞は供給源の組織から直接採取される１次多能性細胞で
ある。フィーダー細胞の不在下で既に培養された多能性幹細胞集団から採取した細胞も好
適である。例えば、ＢＧ０１ｖ（ＢｒｅｓａＧｅｎ，Ａｔｈｅｎｓ，ＧＡ）などの変異型
ヒト胚幹細胞株も好適である。
【００４２】
一実施形態では、ヒト胚幹細胞は、Ｔｈｏｍｓｏｎら（米国特許第５，８４３，７８０
号、Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２８２：１１４５，１９９８、Ｃｕｒｒ．Ｔｏｐ．Ｄｅｖ．Ｂｉｏ
ｌ．３８：１３３  ｆｆ．，１９９８、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ
．Ａ．９２：７８４４，１９９５）に記載されているように調製される。
【００４３】
多能性幹細胞の培養
一実施形態では、多能性幹細胞は、典型的には、多能性幹細胞を様々な方法で支持する
、フィーダー細胞の層上で培養される。あるいは、多能性幹細胞は、本質的にフィーダー
細胞を含まないが、それにも拘わらず、実質的な分化を受けないで多能性幹細胞の増殖を
支持する培養系中で培養される。無フィーダー培養液中での多能性幹細胞の無分化での増
殖は、別の細胞型で以前に培養することによって馴化された培地を使用して支持される。
あるいは、無フィーダー培養液中での多能性幹細胞の無分化での増殖は、合成培地を使用
して支持される。
【００４４】
例えば、Ｒｅｕｂｉｎｏｆｆら（Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  １８：
３９９〜４０４（２０００））及びＴｈｏｍｐｓｏｎら（Ｓｃｉｅｎｃｅ  ６  Ｎｏｖｅ
ｍｂｅｒ  １９９８：ｖｏｌ．２８２，ｎｏ．５３９１，ｐｐ．１１４５〜１１４７）は
、マウス胚性線維芽細胞のフィーダー細胞層を用いたヒト胚盤胞からの多能性幹細胞株の
培養について開示している。
【００４５】
Ｒｉｃｈａｒｄｓら（Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ  ２１：５４６〜５５６，２００３）は、
１１種類の異なるヒト成人、胎児、及び新生児フィーダー細胞層についてヒト多能性幹細
胞の培養を支持する能力の評価を行っている。Ｒｉｃｈａｒｄｓらは、「成人の皮膚線維
芽フィーダー細胞上で培養したヒト胚性幹細胞系は、ヒト胚性幹細胞の形態を有し、多能
性を維持する」と述べている。
【００４６】
米国特許出願公開第２００２００７２１１７号は、無フィーダー培養液中で霊長類多能
性幹細胞の増殖を支持する培地を生成する細胞株を開示している。使用される細胞株は、
胚組織から得た又は胚幹細胞から分化した間葉系細胞株、及び繊維芽細胞様細胞株である
。米国特許出願公開第２００２００７２１１７号は、また、一次フィーダー細胞層として
の細胞株の使用も開示している。
【００４７】
別の例で、Ｗａｎｇら（Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ  ２３：１２２１〜１２２７，２００５
）は、ヒト胚性幹細胞由来のフィーダー細胞層上でのヒト多能性幹細胞の長期間増殖のた
めの方法を開示している。
【００４８】
別の例で、Ｓｔｏｊｋｏｖｉｃら（Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ  ２００５  ２３：３０６〜
３１４，２００５）は、ヒト胚性幹細胞の自発的分化に由来するフィーダー細胞システム
を開示している。
【００４９】
更なる例で、Ｍｉｙａｍｏｔｏら（Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ  ２２：４３３〜４４０，２
００４）は、ヒト胎盤から得たフィーダー細胞源を開示している。
【００５０】
Ａｍｉｔら（Ｂｉｏｌ．Ｒｅｐｒｏｄ  ６８：２１５０〜２１５６，２００３年）は、
ヒト包皮に由来するフィーダー細胞層を開示している。
【００５１】
別の例で、Ｉｎｚｕｎｚａら（Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ  ２３：５４４〜５４９，２００
５）は、ヒト出生後包皮線維芽細胞からのフィーダー細胞層を開示している。
【００５２】
米国特許第６６４２０４８号は、無フィーダー培養液中で、霊長類多能性幹（ｐＰＳ）
細胞の増殖を支持する培地、及びそのような培地の作製に有用な細胞を開示している。米
国特許第６６４２０４８号は、「本発明は、胚性組織から得られるか、あるいは胚性幹細
胞から分化した間葉系及び線維芽細胞様の細胞系を含む。本開示では、こうした細胞系を
誘導し、培地を調整し、この馴化培地を用いて幹細胞を増殖させるための方法を説明及び
図示する」と述べている。
【００５３】
別の例で、国際特許出願公開第ＷＯ２００５０１４７９９号は、哺乳動物細胞の維持、
増殖及び分化のための馴化培地を開示している。国際公開第２００５０１４７９９号は、
「本発明に従って作製される培地は、マウス細胞、特にＭＭＨ（Ｍｅｔマウス肝細胞）と
呼ばれる分化かつ不死化したトランスジェニック肝細胞の細胞分泌活性によって馴化され
る」と述べている。
【００５４】
別の例で、Ｘｕら（Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ  ２２：９７２〜９８０，２００４）は、ヒ
トテロメラーゼ逆転写酵素を過剰発現するように遺伝子改変されたヒト胚性幹細胞由来細
胞誘導体から得られた馴化培地を開示している。
【００５５】
別の例で、米国特許出願公開第２００７００１００１１号は、多能性幹細胞を維持する
ための合成培地を開示している。
【００５６】
代替的な培養システムは、胚幹細胞の増殖を促進することができる増殖因子で補足され
た無血清培地を使用する。例えば、Ｃｈｅｏｎら（ＢｉｏＲｅｐｒｏｄ  ＤＯＩ：１０．
１０９５／ｂｉｏｌｒｅｐｒｏｄ．１０５．０４６８７０、２００５年１０月１９日）は
、無フィーダー、無血清培養システムを開示し、ここで胚幹細胞は、胚幹細胞の自己複製
を誘発することができる異なる増殖因子で補足された非血清代替（ＳＲ）培地中で維持さ
れる。
【００５７】
別の例で、Ｌｅｖｅｎｓｔｅｉｎら（Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ  ２４：５６８〜５７４、
２００６）は、繊維芽細胞又は馴化培地の不在下で、ｂＦＧＦで補足された培地を使用し
て、胚幹細胞を長期間培養する方法を開示している。
【００５８】
別の例で、米国特許出願公開第２００５０１４８０７０号は、血清及び繊維芽細胞フィ
ーダー細胞を含まない合成培地中でのヒト胚性幹細胞の培養方法であって、この方法が、
アルブミン、アミノ酸、ビタミン、ミネラル、少なくとも１つのトランスフェリン又はト
ランスフェリン代用物質、少なくとも１つのインスリン又はインスリン代用物質を含有す
る培地中で幹細胞を培養する工程を含み、この培地が、哺乳動物胎児血清を本質的に含有
せず、線維芽細胞フィーダー層以外の供給源からも供給され、線維芽細胞増殖因子シグナ
ル伝達受容体を活性化することが可能な少なくとも約１００ｎｇ／ｍＬの線維芽細胞増殖
因子を含有し、この培地がフィーダー細胞又は馴化培地なしで未分化状態の幹細胞の増殖
を支持するものを開示している。
【００５９】
別の例で、米国特許出願公開第２００５０２３３４４６号は、未分化の霊長類始原幹細
胞を含む幹細胞の培養に有用な合成培地を開示している。溶液中で培地は、培養されてい
る幹細胞と比較して実質的に等張である。所定の培養において、特定の培地は、基本培地
、並びに実質的に未分化の始原幹細胞の増殖の支持に必要な、ある量のｂＦＧＦ、インス
リン、及びアスコルビン酸の各々を含有する。
【００６０】
別の例で、米国特許第６８００４８０号は、「一実施形態で、霊長類由来の始原幹細胞
の増殖を支持するうえで有効な低浸透圧、低内毒素の基本培地を含む、実質的に未分化状
態の霊長類由来の始原幹細胞を増殖させるための細胞培地が提供される。この基本培地は
、霊長類由来の始原幹細胞の増殖を支持するうえで有効な栄養血清、並びにフィーダー細
胞及びフィーダー細胞由来の細胞外マトリクス成分からなる群より選択される基質と組み
合わされる。培地は、非必須アミノ酸、抗酸化剤、並びにヌクレオシド及びピルビン酸塩
からなる群から選択される第１の増殖因子を更に含む」と述べている。
【００６１】
別の例で、米国特許出願公開第２００５０２４４９６２号は、「一態様で本発明は、霊
長類の胚性幹細胞を培養する方法を提供する。基本的に哺乳動物胎児血清を含まない（基
本的にいかなる動物血清も含まないことが好ましい）培養液中で、線維芽細胞フィーダー
層以外の供給源から供給された線維芽細胞増殖因子の存在下で幹細胞を培養する。好まし
い形態では、充分な量の線維芽細胞増殖因子を添加することによって、幹細胞の培養を維
持するために従来必要とされていた線維芽細胞フィーダー層の必要性がなくなる」と述べ
ている。
【００６２】
更なる例で、国際公開第２００５０６５３５４号は、フィーダー及び血清を本質的に含
まない合成等張培地であって、この培地が、ａ．基本培地、ｂ．実質的に未分化の哺乳類
幹細胞の増殖を支持するのに充分な量のｂＦＧＦ、ｃ．実質的に未分化の哺乳類幹細胞の
増殖を支持するのに充分な量のインスリン、ｄ．実質的に未分化の哺乳類幹細胞の増殖を
支持するのに充分な量のアスコルビン酸を含む合成等張培地を開示している。
【００６３】
別の例で、国際公開第２００５０８６８４５号は、未分化の幹細胞を維持するための方
法であって、この方法が、幹細胞をトランスフォーミング増殖因子β（ＴＧＦ−β）族タ
ンパク質の構成員、線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ）族タンパク質の構成員、又はニコチン
アミド（ＮＩＣ）に、所望の結果を得るのに充分な時間細胞を未分化な状態に維持するの
に充分な量で、曝露することを含む、方法を開示している。
【００６４】
多能性幹細胞を、好適な培養基質上に播いてもよい。一実施形態で、好適な培養基質は
、例えば基底膜から誘導されたもの、又は接着分子受容体−リガンド結合の一部を形成し
得るもの等の細胞外マトリクス成分である。一実施形態で、好適な培養基材は、ＭＡＴＲ
ＩＧＥＬ（登録商標）（Ｂｅｃｔｏｎ  Ｄｉｃｋｅｎｓｏｎ）である。ＭＡＴＲＩＧＥＬ
（登録商標）は、Ｅｎｇｅｌｂｒｅｔｈ−Ｈｏｌｍ  Ｓｗａｒｍ腫瘍細胞からの可溶性製
剤であり、室温でゲル化して再構成基底膜を形成する。
【００６５】
他の細胞外マトリクス成分及び成分混合物は代替物として好適である。増殖させる細胞
型に応じて、これは、ラミニン、フィブロネクチン、プロテオグリカン、エンタクチン、
ヘパラン硫塩、及び同様物を、単独で又は様々な組み合わせで含んでもよい。
【００６６】
多能性幹細胞を、細胞の生存、増殖、及び所望の特徴の維持を促進する培地の存在下、
及び好適な分布で基質上に播いてもよい。この特徴の全部は、播種分布に細心の注意を払
うことによりメリットが得られるものであり、当業者ならば容易に決定することができる
。
【００６７】
好適な培地を、以下の成分、例えば、ダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ）、Ｇｉ
ｂｃｏ  ＃  １１９６５−０９２；ノックアウトダルベッコ改変イーグル培地（ＫＯ  Ｄ
ＭＥＭ）、Ｇｉｂｃｏ  ＃  １０８２９−０１８；ハムＦ１２／５０％ＤＭＥＭ基本培地
；２００ｍＭ  Ｌ−グルタミン、Ｇｉｂｃｏ  ＃  １５０３９−０２７；非必須アミノ酸
溶液、Ｇｉｂｃｏ＃１１１４０−０５０；β−メルカプトエタノール、Ｓｉｇｍａ  ＃  
Ｍ７５２２；ヒト組み換え塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）、Ｇｉｂｃｏ  ＃  １
３２５６−０２９等から調製することもできる。
【００６８】
膵内分泌前駆細胞の形成
一実施形態では、本発明は、膵内分泌前駆細胞を産生する方法であって：
ａ．多能性幹細胞を培養する工程、
ｂ．多能性幹細胞を、胚体内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現する細胞に分化させる
工程、
ｃ．胚体内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現する細胞を、膵臓内胚葉系統に特徴的な
マーカーを発現する細胞に分化させる工程、
ｄ．胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞を、膵内分泌前駆細胞へと分
化させる工程を含む方法を提供する。
【００６９】
本発明で用いるのに好適な多能性幹細胞としては、例えば、ヒト胚性幹細胞株Ｈ９（Ｎ
ＩＨコード：ＷＡ０９）、ヒト胚性幹細胞株Ｈ１（ＮＩＨコード：ＷＡ０１）、ヒト胚性
幹細胞株Ｈ７（ＮＩＨコード：ＷＡ０７）、及びヒト胚性幹細胞株ＳＡ００２（Ｃｅｌｌ
ａｒｔｉｓ，Ｓｗｅｄｅｎ）が挙げられる。多能性細胞に特徴的な以下のマ−カー：ＡＢ
ＣＧ２、ＣＲＩＰＴＯ、ＣＤ９、ＦＯＸＤ３、コネキシン４３、コネキシン４５、ＯＣＴ
４、ＳＯＸ２、Ｎａｎｏｇ、ｈＴＥＲＴ、ＵＴＦ−１、ＺＦＰ４２、ＳＳＥＡ−３、ＳＳ
ＥＡ−４、Ｔｒａ  １−６０又はＴｒａ  １−８１のうちの少なくとも１つを発現する細
胞も本発明での使用に適している。
【００７０】
胚体内胚葉系に特徴的なマーカーは、ＳＯＸ１７、ＧＡＴＡ４、ＨＮＦ３β、ＧＳＣ、
ＣＥＲ１、Ｎｏｄａｌ、ＦＧＦ８、短尾奇形、Ｍｉｘ−様ホメオボックスタンパク質、Ｆ
ＧＦ４  ＣＤ４８、エオメソダーミン（ＥＯＭＥＳ）、ＤＫＫ４、ＦＧＦ１７、ＧＡＴＡ
６、ＣＸＣＲ４、Ｃ−Ｋｉｔ、ＣＤ９９、及びＯＴＸ２からなる群から選択される。胚体
内胚葉系に特徴的なマーカーのうちの少なくとも１つを発現している細胞は本発明での使
用に好適である。本発明の一態様では、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している
細胞は、原始線条前駆細胞である。別の態様では、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発
現している細胞は、中内胚葉細胞である。別の態様では、胚体内胚葉系に特徴的なマーカ
ーを発現している細胞は、胚体内胚葉細胞である。
【００７１】
膵臓内胚葉系に特徴的なマーカーは、ＰＤＸ１、ＨＮＦ１β、ＨＮＦ６、ＨＢ９及びＰ
ＲＯＸ１からなる群から選択される。膵内胚葉系に特徴的なこれらのマーカーのうちの少
なくとも１つを発現する細胞が本発明における使用に適している。本発明の一態様では、
膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞は、膵内胚葉細胞である。
【００７２】
膵内分泌前駆細胞に特徴的なマーカーは、ＮＧＮ３、ＮＫＸ６．１、ＮｅｕｒｏＤ、Ｉ
ＳＬ１、ＰＤＸ１、ＰＡＸ４、ＮＫＸ２．２、又はＡＲＸからなる群から選択される。本
発明で使用するのに好適な細胞は、膵内分泌前駆細胞に特徴的なマーカーを少なくとも１
つ発現している細胞である。
【００７３】
胚体内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現する細胞の形成
多能性幹細胞は、当該技術分野における任意の方法、又は本発明で提案される任意の方
法により、胚体内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現する細胞に分化され得る。
【００７４】
例えば、多能性幹細胞は、ダムール（Ｄ’Ａｍｏｕｒ）らにより開示される方法に従っ
て胚体内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現する細胞に分化させることができる（Ｄ’Ａ
ｍｏｕｒら，Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  ２３，１５３４〜１５４１（
２００５））。
【００７５】
例えば、多能性幹細胞は、ＳｈｉｎｏｚａｋｉらＤｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  １３１，１
６５１〜１６６２（２００４）に開示されている方法に従って、胚体内胚葉系統に特徴的
なマーカーを発現している細胞に分化され得る。
【００７６】
例えば、多能性幹細胞は、ＭｃＬｅａｎら、Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ  ２５、２９〜３８
（２００７）に開示されている方法に従って、胚体内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現
している細胞に分化され得る。
【００７７】
例えば、多能性幹細胞は、ダムール（Ｄ’Ａｍｏｕｒ）らにより開示される方法に従っ
て胚体内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現する細胞に分化させることができる（Ｄ’Ａ
ｍｏｕｒら，Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  ２４，１３９２〜１４０１（
２００６））。
【００７８】
例えば、多能性幹細胞は、多能性幹細胞を、血清の不在下、アクチビンＡを含有する培
地中で培養し、次いで細胞をアクチビンＡ及び血清と共に培養し、次いで細胞を異なる濃
度のアクチビンＡ及び血清と共に培養することにより、胚体内胚葉系統に特徴的なマーカ
ーを発現する細胞に分化され得る。この方法の例は、Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏ
ｌｏｇｙ  ２３，１５３４〜１５４１（２００５）に開示されている。
【００７９】
例えば、多能性幹細胞は、多能性幹細胞を、血清の不在下、アクチビンＡを含有する培
地中で培養し、次に細胞を、別の濃度の、血清を含むアクチビンＡと共に培養することに
より、胚体内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現する細胞に分化され得る。この方法の例
は、Ｄ’ＡｍｏｕｒらによるＮａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２００５に開
示されている。
【００８０】
例えば、多能性幹細胞は、多能性幹細胞を、血清の不在下、アクチビンＡ及びＷｎｔリ
ガンドを含有する培地中で培養し、次にＷｎｔリガンドを除去し、細胞を血清を含むアク
チビンＡと共に培養することにより、胚体内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現する細胞
に分化され得る。この方法の例は、Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  ２４，
１３９２〜１４０１（２００６）に開示されている。
【００８１】
例えば、多能性幹細胞は、ＬｉｆｅＳｃａｎ，Ｉｎｃ．に譲渡された米国特許出願第１
１／７３６，９０８号に開示される方法に従って、多能性幹細胞を処理することによって
、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現する細胞へと分化させることができる。
【００８２】
例えば、多能性幹細胞は、ＬｉｆｅＳｃａｎ，Ｉｎｃ．に譲渡された米国特許出願第１
１／７７９，３１１号に開示される方法に従って、多能性幹細胞を処理することによって
、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現する細胞へと分化させることができる。
【００８３】
例えば、多能性幹細胞は、米国特許出願第６０／９９０，５２９号に開示される方法に
従って、多能性幹細胞を処理することによって、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現
する細胞へと分化させることができる。
【００８４】
例えば、多能性幹細胞は、米国特許出願第６１／０７６，８８９号に開示される方法に
従って、多能性幹細胞を処理することによって、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現
する細胞へと分化させることができる。
【００８５】
例えば、多能性幹細胞は、米国特許出願第６１／０７６，９００号に開示される方法に
従って、多能性幹細胞を処理することによって、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現
する細胞へと分化させることができる。
【００８６】
例えば、多能性幹細胞は、米国特許出願第６１／０７６，９０８号に開示される方法に
従って、多能性幹細胞を処理することによって、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現
する細胞へと分化させることができる。
【００８７】
例えば、多能性幹細胞は、米国特許出願第６１／０７６，９１５号に開示される方法に
従って、多能性幹細胞を処理することによって、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現
する細胞へと分化させることができる。
【００８８】
胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現する細胞のキャラクタリゼーション
胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現する細胞の形成は、以下の特定のプロトコルの
前後に、マーカーの存在に関して試験することにより判定することができる。多能性幹細
胞は、典型的には、そのようなマーカーを発現しない。したがって、多能性細胞の分化は
、細胞がそれらの発現を開始した際に検出される。
【００８９】
分化の効率は、胚体内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現する細胞により発現されたタ
ンパク質マーカーを特異的に認識する薬剤（例えば、抗体等）に、処理した細胞集団を暴
露することにより測定され得る。
【００９０】
培養又は単離された細胞中のタンパク質及び核酸マーカーの発現を評価する方法は、当
該技術分野における標準である。これらの方法としては、定量的逆転写酵素ポリメラーゼ
連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）、ノーザンブロット、インシチュハイブリダイゼーション（例
えば、Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇ
ｙ（Ａｕｓｕｂｅｌら編集，２００１増刊号（supplement））参照）、並びにイムノアッ
セイ、例えば切片材料の免疫組織化学的分析、ウェスタンブロッティング、及び完全細胞
で利用できるマーカーについてのフローサイトメトリー分析（ＦＡＣＳ）（例えば、Ｈａ
ｒｌｏｗ及びＬａｎｅ，Ｕｓｉｎｇ  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ
Ｍａｎｕａｌ，Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ：Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏ
ｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ（１９９８）参照）が挙げられる。
【００９１】
多能性幹細胞の特徴は当業者に周知であり、多能性幹細胞の更なる特徴は、継続して同
定され続けている。多能性幹細胞のマーカーとして、例えば、以下のもの：ＡＢＣＧ２、
ｃｒｉｐｔｏ、ＦＯＸＤ３、ＣＯＮＮＥＸＩＮ４３、ＣＯＮＮＥＸＩＮ４５、ＯＣＴ４、
ＳＯＸ２、Ｎａｎｏｇ、ｈＴＥＲＴ、ＵＴＦ１、ＺＦＰ４２、ＳＳＥＡ−３、ＳＳＥＡ−
４、Ｔｒａ  １−６０、Ｔｒａ  １−８１の１つ以上の発現が挙げられる。
【００９２】
多能性幹細胞を本発明の方法で処理した後、胚体内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現
する細胞により発現される、例えばＣＸＣＲ４等のタンパク質マーカーを特異的に認識す
る薬剤（例えば、抗体等）に処理した細胞集団を暴露することにより、分化した細胞を精
製することができる。
【００９３】
胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現する細胞から膵臓内胚葉系に特徴的なマーカー
を発現する細胞の形成
胚体内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現している細胞は、当該技術分野の任意の方法
、又は本発明で提案する任意の方法により、膵臓内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現し
ている細胞に分化され得る。
【００９４】
例えば、胚体内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現する細胞は、Ｄ’Ａｍｏｕｒら、Ｎ
ａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  ２４，１３９２〜１４０１（２００６）に開
示されている方法に従って、膵臓内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現する細胞に分化す
ることができる。
【００９５】
例えば、胚体内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現している細胞は、胚体内胚葉系統に
特徴的なマーカーを発現している細胞を、繊維芽細胞増殖因子及びヘッジホッグシグナル
伝達経路阻害剤ＫＡＡＤ−シクロパミンで処理した後、繊維芽細胞増殖因子及びＫＡＡＤ
−シクロパミンを含有する培地を除去し、続いて細胞をレチノイン酸、繊維芽細胞増殖因
子及びＫＡＡＤ−シクロパミンを含有する培地中で培養することにより、膵臓内胚葉系統
に特徴的なマーカーを発現する細胞に更に分化される。この方法の例は、Ｎａｔｕｒｅ  
Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  ２４，１３９２〜１４０１（２００６）に開示されている
。
【００９６】
本発明の一態様では、ＬｉｆｅＳｃａｎ，Ｉｎｃ．に譲渡された米国特許出願第１１／
７３６，９０８号に従って、胚体内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現する細胞をレチノ
イン酸及び少なくとも１種類の線維芽細胞増殖因子で所定の時間処理することによって、
胚体内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現する細胞を膵臓内胚葉系統に特徴的なマーカー
を発現する細胞に更に分化させる。
【００９７】
本発明の一態様では、ＬｉｆｅＳｃａｎ，Ｉｎｃ．に譲渡された米国特許出願第１１／
７７９，３１１号に従って、胚体内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現する細胞をレチノ
イン酸及び少なくとも１種類の線維芽細胞増殖因子で所定の時間処理することによって、
胚体内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現する細胞を膵臓内胚葉系統に特徴的なマーカー
を発現する細胞に更に分化させる。
【００９８】
本発明の１つの態様では、胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞を米国
特許出願第６０／９９０，５２９号に記載の方法に従って処理することにより、膵臓内胚
葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと胚体内胚葉系に特徴的なマーカーを発現
している細胞を更に分化させる。
【００９９】
膵臓内胚葉系に特徴的なマーカーを発現する細胞のキャラクタリゼーション
膵臓内胚葉系統に特徴的なマーカーは、当業者に周知であり、膵臓内胚葉系統の特徴を
示す追加のマーカーが、継続して同定されている。これらのマーカーを、本発明に従って
処理された細胞が分化して膵臓内胚葉系統の特徴を示す性質を獲得したことを確認するた
めに使用することができる。膵臓内胚葉系に特異的なマーカーとしては、例えば、ＨＬＸ
Ｂ９、ＰＴＦ−１α、ＰＤＸ１、ＨＮＦ６、ＨＮＦ−１βなどの転写因子の１つ以上のも
のの発現が挙げられる。
【０１００】
分化の効率は、膵臓内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現している細胞により発現され
たタンパク質マーカーを特異的に認識する薬剤（例えば、抗体等）に、処理した細胞集団
を暴露することにより測定することができる。
【０１０１】
培養又は単離された細胞中のタンパク質及び核酸マーカーの発現を評価する方法は、当
該技術分野における標準である。これらには、定量的逆転写酵素ポリメラーゼ連鎖反応（
ＲＴ−ＰＣＲ）、ノーザンブロット、インシチュハイブリダイゼーション（例えば、Ｃｕ
ｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ（Ａｕｓ
ｕｂｅｌら編集，２００１増刊号（supplement）参照）、並びにイムノアッセイ、例えば
切片材料の免疫組織化学的分析、ウェスタンブロッティング、及び完全細胞で利用できる
マーカーについてのフローサイトメトリー分析（ＦＡＣＳ）（例えば、Ｈａｒｌｏｗ及び
Ｌａｎｅ，Ｕｓｉｎｇ  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａ
ｌ，Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ：Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ
Ｐｒｅｓｓ（１９９８）参照）が挙げられる。
【０１０２】
膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現する細胞からの膵内分泌前駆細胞の形成
本発明の一態様では、膵臓内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞は、ＢＭＰ
阻害能を持つ因子及びＴＧＦ−β受容体Ｉキナーゼ阻害剤を添加した培地で膵臓内胚葉系
に特徴的なマーカーを発現している細胞を培養することにより、膵内分泌前駆細胞に分化
される。
【０１０３】
一実施形態では、ＢＭＰ阻害能を持つ因子はノギンである。ノギンは、約１００ｐｇ／
ｍＬ〜約５００μｇ／ｍＬの濃度で使用することができる。一実施形態では、ノギンは１
００ｎｇ／ｍＬの濃度で使用される。
【０１０４】
一実施形態では、ＴＧＦ−β受容体Ｉキナーゼ阻害剤は、ＡＬＫ５阻害剤ＩＩ（Ｃａｌ
ｂｉｏｃｈｅｍ，Ｃａ）である。ＡＬＫ５阻害剤ＩＩを約０．１μＭ〜約１０μＭの濃度
で使用してもよい。一実施形態では、ＡＬＫ５阻害剤ＩＩは濃度１μＭで使用される。
【０１０５】
一実施形態では、培地は４５００ｍｇ／Ｌのグルコースと１％のＢ２７を含有している
ＤＭＥＭである。
【０１０６】
一実施形態では、細胞は培地で４日間にわたって培養される。
【０１０７】
分化効率は、被処理細胞集団を、膵内分泌前駆細胞により発現されたタンパク質マーカ
ーを特異的に認識する剤（例えば抗体）に曝露することにより決定することができる。
【０１０８】
培養又は単離された細胞中のタンパク質及び核酸マーカーの発現を評価する方法は、当
該技術分野における標準である。これら方法としては、定量的逆転写酵素ポリメラーゼ連
鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）、ノーザンブロット、インシチュハイブリダイゼーション（例え
ば、Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ
（Ａｕｓｕｂｅｌら編集、２００１増刊号（supplement）参照））、並びにイムノアッセ
イ、例えば切片材料の免疫組織化学的分析、ウェスタンブロッティング、及び完全細胞で
利用できるマーカーについてのフローサイトメトリー分析（ＦＡＣＳ）（例えば、Ｈａｒ
ｌｏｗ及びＬａｎｅ，Ｕｓｉｎｇ  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  
Ｍａｎｕａｌ，Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ：Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒ
ａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ（１９９８）参照）が挙げられる。
【０１０９】
多能性幹細胞の特徴は当業者に周知であり、多能性幹細胞の更なる特徴は、継続して同
定されている。多能性幹細胞のマーカーとして、例えば、以下のもの：ＡＢＣＧ２、ｃｒ
ｉｐｔｏ、ＦＯＸＤ３、ＣＯＮＮＥＸＩＮ４３、ＣＯＮＮＥＸＩＮ４５、ＯＣＴ４、ＳＯ
Ｘ２、Ｎａｎｏｇ、ｈＴＥＲＴ、ＵＴＦ１、ＺＦＰ４２、ＳＳＥＡ−３、ＳＳＥＡ−４、
Ｔｒａ  １−６０、Ｔｒａ  １−８１の１つ以上の発現が挙げられる。
【０１１０】
多能性幹細胞を本発明の方法で処理した後、処理した細胞集団を、膵内胚葉系に特徴的
なマーカーを発現する細胞により発現されるタンパク質マーカー（例えばＣＸＣＲ４など
）を特異的に認識する薬剤（抗体など）に曝露することにより、分化した細胞を精製する
ことができる。
【０１１１】
膵臓内胚葉系に特徴的なマーカーは、ＰＤＸ１、ＨＮＦ−１β、ＰＴＦ１α、ＨＮＦ６
、ＨＢ９及びＰＲＯＸ１からなる群から選択される。膵内胚葉系に特徴的なこれらのマー
カーのうちの少なくとも１つを発現する細胞が本発明における使用に適している。本発明
の一態様では、膵内胚葉系に特徴的なマーカーを発現している細胞は、膵内胚葉細胞であ
る。
【０１１２】
膵内分泌前駆細胞に特徴的なマーカーは、ＮＧＮ３、ＮＫＸ６．１、ＮＥＵＲＯＤ、Ｉ
ＳＬ１、ＰＤＸ１、ＰＡＸ４、ＮＫＸ２．２、ＰＡＸ６又はＡＲＸからなる群から選択さ
れる。
【０１１３】
膵内分泌前駆細胞からの膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現する細胞の形成
一実施形態では、本発明の方法により産生した膵内分泌前駆細胞を、膵内分泌系に特徴
的なマーカーを発現している細胞へと更に分化させてもよい。
【０１１４】
膵内分泌前駆細胞は、当該技術分野の任意の方法、又は本発明で提案する任意の方法に
より、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現する細胞へと分化させることができる。
【０１１５】
例えば、本発明の方法に従って得られる、膵内分泌前駆細胞を、エキセンディン４を含
有している培地で膵内分泌前駆細胞を培養し、次にエキセンディン４を含有している培地
を除去し、エキセンディン１、ＩＧＦ−１及びＨＧＦを含有している培地で培養すること
により、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと更に分化させる。この方
法の例は、Ｄ’Ａｍｏｕｒら、Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２００６に
開示されている。
【０１１６】
例えば、本発明の方法に従って得られる膵内分泌前駆細胞を、ＤＡＰＴ（Ｓｉｇｍａ−
Ａｌｄｒｉｃｈ，ＭＯ）及びエキセンディン４を含有している培地で膵内分泌前駆細胞を
培養することにより、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと更に分化さ
せる。この方法の例は、Ｄ’ＡｍｏｕｒらのＮａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ
，２００６に開示されている。
【０１１７】
例えば、本発明の方法に従って得られる膵内分泌前駆細胞を、エキセンディン４を含有
している培地で膵内分泌前駆細胞を培養することにより、膵内分泌系に特徴的なマーカー
を発現する細胞へと更に分化させる。この方法の例は、Ｄ’ＡｍｏｕｒらのＮａｔｕｒｅ
Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２００６に開示されている。
【０１１８】
例えば、本発明の方法に従って得られる膵内分泌前駆細胞を、米国特許出願第１１／７
３６，９０８号（ＬｉｆｅＳｃａｎ，Ｉｎｃ．に譲渡）に開示された方法に従って、Ｎｏ
ｔｃｈシグナル経路を阻害する因子で膵内分泌前駆細胞を処理することにより、膵内分泌
系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと更に分化させる。
【０１１９】
例えば、本発明の方法に従って得られる膵内分泌前駆細胞を、米国特許出願第１１／７
７９，３１１号（ＬｉｆｅＳｃａｎ，Ｉｎｃ．に譲渡）に開示された方法に従って、Ｎｏ
ｔｃｈシグナル経路を阻害する因子で膵内分泌前駆細胞を処理することにより、膵内分泌
系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと更に分化させる。
【０１２０】
例えば、本発明の方法に従って得られる膵内分泌前駆細胞を、米国特許出願第６０／９
５３，１７８号（ＬｉｆｅＳｃａｎ，Ｉｎｃ．に譲渡）に開示された方法に従って、Ｎｏ
ｔｃｈシグナル経路を阻害する因子で膵内分泌前駆細胞を処理することにより、膵内分泌
系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと更に分化させる。
【０１２１】
例えば、本発明の方法に従って得られる膵内分泌前駆細胞を、米国特許出願第６０／９
９０，５２９号（ＬｉｆｅＳｃａｎ，Ｉｎｃ．に譲渡）に開示された方法に従って、Ｎｏ
ｔｃｈシグナル経路を阻害する因子で膵内分泌前駆細胞を処理することにより、膵内分泌
系に特徴的なマーカーを発現している細胞へと更に分化させる。
【０１２２】
膵内分泌系に特徴的なマーカーは、ＮＥＵＲＯＤ、ＩＳＬ１、ＰＤＸ１、ＮＫＸ６．１
、ＰＡＸ４、ＰＡＸ６、ＮＧＮ３及びＮＫＸ２．２からなる群から選択される。一実施形
態では、膵内分泌細胞は、以下のホルモン：インスリン、グルカゴン、ソマトスタチン、
及び膵臓ポリペプチドのうちの少なくとも１つを発現することができる。本発明で使用す
るに好適なものは、膵内分泌系の特徴を示すマーカーを少なくとも１つ発現する細胞であ
る。本発明の一態様において、膵内分泌系に特徴的なマーカーを発現する細胞は、膵内分
泌細胞である。膵内分泌細胞は、膵臓ホルモン発現細胞であってよい。また、膵内分泌細
胞は膵臓ホルモン分泌細胞であってもよい。
【０１２３】
本発明の一態様では、膵内分泌細胞は、β細胞系に特徴的なマーカーを発現する細胞で
ある。β細胞系に特徴的なマーカーを発現している細胞は、ＰＤＸ１、並びに以下の転写
因子：ＮＧＮ３、ＮＫＸ２．２、ＮＫＸ６．１、ＮＥＵＲＯＤ、ＩＳＬ１、ＨＮＦ３β、
ＭＡＦＡ、ＰＡＸ４、及びＰＡＸ６のうちの少なくとも１つを発現する。本発明の一態様
では、β細胞系に特徴的なマーカーを発現している細胞は、β細胞である。
【０１２４】
治療
一態様では、本発明は、Ｉ型糖尿病に罹患しているかあるいはＩ型糖尿病を発症するリ
スクを有する患者を治療する方法を提供する。一実施形態では、本方法は、多能性幹細胞
を培養すること、多能性幹細胞をインビトロでβ細胞系に分化させること、及びβ細胞系
の細胞を患者に移植することを包含する。代替的な実施形態では、本方法は、多能性幹細
胞を培養すること、多能性幹細胞をインビトロで膵内分泌前駆細胞に分化させること、及
び膵内分泌前駆細胞を患者に移植することを包含する。
【０１２５】
更に別の態様では、本発明は、ＩＩ型糖尿病に罹患しているかあるいはＩＩ型糖尿病を
発症するリスクを有する患者を治療する方法を提供する。一実施形態では、本方法は、多
能性幹細胞を培養すること、多能性幹細胞をインビトロでβ細胞系に分化させること、及
びβ細胞系の細胞を患者に移植することを包含する。代替的な実施形態では、本方法は、
多能性幹細胞を培養すること、多能性幹細胞をインビトロで膵内分泌前駆細胞に分化させ
ること、及び膵内分泌前駆細胞を患者に移植することを包含する。
【０１２６】
適切であるならば、患者を、移植した細胞の生存及び機能を亢進する医薬品又は生理活
性物質により更に治療してもよい。それらの薬剤は、例えば特に、インスリン、ＴＧＦ−
β１、２、及び３を含むＴＧＦ−β族の構成員、骨形成タンパク質（ＢＭＰ−２、−３、
−４、−５、−６、−７、−１１、−１２、及び−１３）、繊維芽細胞増殖因子−１及び
−２、血小板由来増殖因子−ＡＡ及び−ＢＢ、多血小板血漿、インスリン増殖因子（ＩＧ
Ｆ−Ｉ、ＩＩ）、増殖分化因子（ＧＤＦ−５、−６、−７、−８、−１０、−１５）、血
管内皮由来増殖因子（ＶＥＧＦ）、プレイオトロフィン、エンドセリンを含んでもよい。
他の医薬化合物としては、例えば、ニコチンアミド、グルカゴン様ペプチド−Ｉ（ＧＬＰ
−１）及びＩＩ、ＧＬＰ−１及び２模倣体、エキセンディン−４、レチノイン酸、副甲状
腺ホルモン、例えば米国特許出願公開第２００４／０２０９９０１号及び同第２００４／
０１３２７２９号に開示される化合物のようなＭＡＰＫ阻害剤などが挙げられる。
【０１２７】
多能性幹細胞を、レシピエントに移植する前にインスリン産生細胞に分化させてもよい
。特別な実施形態では、多能性幹細胞を、レシピエントに移植する前にβ細胞へと完全に
分化させる。あるいは多能性幹細胞は、未分化又は一部が分化した状態でレシピエントに
移植してもよい。更なる分化をレシピエント内で行ってもよい。
【０１２８】
胚体内胚葉細胞、又はあるいは膵臓内胚葉細胞、又はあるいはβ細胞を、分散された細
胞として埋め込んでもよく、又は肝門静脈内に注入され得るクラスターとして形成しても
よい。あるいは、細胞を、生体適合性の分解性ポリマー支持体、多孔性の非分解性デバイ
ス内に提供してもよく、又は宿主免疫応答から保護されるよう封入してもよい。埋め込み
部位としては、例えば肝臓、天然の膵臓、腎被膜下空間、網、腹膜、漿膜下空間、腸、胃
、又は皮下ポケットが挙げられる。
【０１２９】
埋め込まれた細胞の更なる分化、生存又は活性を向上するために、増殖因子、抗酸化剤
又は抗炎症剤などの追加の因子を、細胞の投与前に、投与と同時に、又は投与後に投与し
てもよい。しかるべき実施形態で、増殖因子を、投与された細胞をインビボで分化させる
ように使用する。これらの因子を、内在性細胞により分泌し、投与された細胞にその場で
（in situ）で曝露してもよい。埋め込まれた細胞には、当該技術分野で既知の内因性の
及び外因性の増殖因子の任意の組み合わせにより、分化を誘発させることもできる。
【０１３０】
埋め込みに使用する細胞の量は、患者の状態及び治療に対する応答を含む、多数のさま
ざまな要因に基き、当業者により決定され得る。
【０１３１】
一態様では、本発明は糖尿病に罹患しているかあるいは糖尿病を発症するリスクを有す
る患者を治療する方法を提供する。本方法は、多能性幹細胞を培養し、培養した細胞をイ
ンビトロでβ細胞系に分化させ、この細胞を３次元支持体に埋め込むことを含む。細胞を
、患者に埋め込む前に、この支持体上にインビトロで維持してもよい。あるいは細胞を含
む支持体を、インビトロで更に培養することなく直接患者に埋め込んでもよい。支持体は
、場合により、埋め込まれた細胞の生存及び機能を亢進する少なくとも１つの医薬品を組
み込んでもよい。
【０１３２】
本発明の目的のために使用するのに好適な支持体材料には、組織修復に有用な組織鋳型
、導管、バリア及びリザーバが挙げられる。より詳細には、発泡体、スポンジ、ゲル、ヒ
ドロゲル、織物、及び不織構造の形態を有する合成及び天然材料であって、インビトロ及
びインビボで使用されて、生物組織を再構築又は再生し、また走化性薬剤を送達して組織
増殖を誘発する材料が、本発明の方法の実施における使用に適切である。例えば、米国特
許第５，７７０，４１７号、同第６，０２２，７４３号、同第５，５６７，６１２号、同
第５，７５９，８３０号、同第６，６２６，９５０号、同第６，５３４，０８４号、同第
６，３０６，４２４号、同第６，３６５，１４９号、同第６，５９９，３２３号、同第６
，６５６，４８８号、米国特許出願公開第２００４／００６２７５３（Ａ１）号、米国特
許第４，５５７，２６４号及び同第６，３３３，０２９号に開示されている材料を参照さ
れたい。
【０１３３】
医薬品が組み込まれた支持体を形成するために、支持体を形成するのに先立ち、薬剤を
ポリマー溶液と混合することもできる。あるいは加工された支持体上に、医薬品を好まし
くは医薬担体の存在下で被覆してもよい。医薬品は、液体、超微粒子状固体、又は任意の
他の適切な物理的形態として存在し得る。あるいは医薬品の放出速度を変更するために、
支持体に賦形剤を加えてもよい。別の実施形態では、抗炎症性化合物である少なくとも１
種の医薬化合物（例えば米国特許第６，５０９，３６９号に開示される化合物）を支持体
に組み込む。
【０１３４】
支持体を、抗アポトーシス化合物である少なくとも１種の医薬化合物、例えば米国特許
第６，７９３，９４５号に開示されている化合物と共に組み込んでもよい。
【０１３５】
支持体を、線維症阻害剤である少なくとも１種の医薬化合物、例えば米国特許第６，３
３１，２９８号に開示されている化合物と共に組み込んでもよい。
【０１３６】
支持体を、血管新生を促進させることができる少なくとも１種の医薬化合物、例えば米
国特許出願公開第２００４／０２２０３９３号及び同第２００４／０２０９９０１号に開
示されている化合物と共に組み込んでもよい。
【０１３７】
支持体を、免疫抑制化合物である少なくとも１種の医薬化合物、例えば、米国特許出願
公開第２００４／０１７１６２３号に開示されている化合物と共に組み込んでもよい。
【０１３８】
支持体を、例えば、なかんずく、ＴＧＦ−β１、２、及び３を含むＴＧＦ−β族の構成
員、骨形成タンパク質（ＢＭＰ−２、−３、−４、−５、−６、−７、−１１、−１２、
及び−１３）、繊維芽細胞増殖因子−１及び−２、血小板由来増殖因子−ＡＡ及び−ＢＢ
、多血小板血漿、インスリン増殖因子（ＩＧＦ−Ｉ、ＩＩ）、増殖分化因子（ＧＤＦ−５
、−６、−８、−１０、−１５）、血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）、プレイオトロフィン
、エンドセリンなどの増殖因子である、少なくとも１種の医薬化合物と共に組み込んでも
よい。他の医薬化合物としては、例えばニコチンアミド、低酸素誘導因子１−α、グルカ
ゴン様ペプチド−Ｉ（ＧＬＰ−Ｉ）、ＧＬＰ−１及びＧＬＰ−２疑似体、並びにＩＩ、エ
キセンディン４、ノーダル、ノギン、ＮＧＦ、レチノイン酸、副甲状腺ホルモン、テネイ
シン−Ｃ、トロポエラスチン、トロンビン由来ペプチド、カテリシジン、デフェンシン、
ラミニン、フィブロネクチン及びビトロネクチンなどの接着性細胞外マトリックスタンパ
ク質の細胞−及びヘパリン−結合ドメインを含む生物ペプチド、例えば米国特許出願公開
第２００４／０２０９９０１号及び同第２００４／０１３２７２９号に開示されている化
合物などのＭＡＰＫ阻害剤を挙げることができる。
【０１３９】
スキャフォールドの中への本発明の細胞の組み込みは、スキャフォールド上に細胞を単
に沈着させることにより達成できる。細胞は、単に拡散により骨格内に入ることができる
（Ｊ．Ｐｅｄｉａｔｒ．Ｓｕｒｇ．２３（１  Ｐｔ  ２）：３〜９（１９８８））。細胞
播種の効率を向上させるために、いくつかの他の手法が開発されている。例えば、軟骨細
胞をポリグリコール酸骨格上に播種する際に、スピナーフラスコが使用された（Ｂｉｏｔ
ｅｃｈｎｏｌ．Ｐｒｏｇ．１４（２）：１９３〜２０２（１９９８））。細胞播種のため
の他の手法は遠心法の使用であり、これは播種する細胞に与えるストレスを最小にし、か
つ播種効率を高める。例えば、Ｙａｎｇらは、遠心分離細胞固定法（ＣＣＩ）と呼ばれる
細胞播種方法を開発した（Ｊ．Ｂｉｏｍｅｄ．Ｍａｔｅｒ．Ｒｅｓ．５５（３）：３７９
〜８６（２００１））。
【０１４０】
本発明を以下の実施例によって更に説明するが、本発明はこれらの実施例により限定さ
れるものではない。
【０１４１】
参考文献
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【０１５１】
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ｒｏｍ  ｈｕｍａｎ  ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ  ｇｅｎｅｒａｔｅｓ
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ｌｌｓ  ｉｎ  ｖｉｖｏ」（Ｎａｔ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ  ２６，４４３〜５２（２０
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【０１５２】
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ｃｒｅａｔｉｃ  ｅｎｄｏｄｅｒｍ  ｄｅｒｉｖｅｄ  ｆｒｏｍ  ｈｕｍａｎ  ｅｍｂｒ
ｙｏｎｉｃ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ  ｉｎ  ａｔｈｙｍｉｃ  ｎｕｄｅ  ｒａｔｓ」（Ａ
ｍ  Ｊ  Ｐｈｙｓｉｏｌ  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ  Ｍｅｔａｂ．２０１０  Ｊｕｎ  ２９
．）［出版前にオンラインで先行公開］。
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Ｌｅｅ  ＳＨ、Ｈａｏ  Ｅ，Ｓａｖｉｎｏｖ  ＡＹ、Ｇｅｒｏｎ  Ｉ、Ｓｔｒｏｎｇｉ
ｎ  ＡＹ、Ｉｔｋｉｎ−Ａｎｓａｒｉ  Ｐ．「Ｈｕｍａｎ  ｂｅｔａ−ｃｅｌｌ  ｐｒｅ
ｃｕｒｓｏｒｓ  ｍａｔｕｒｅ  ｉｎｔｏ  ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ  ｉｎｓｕｌｉｎ−ｐ
ｒｏｄｕｃｉｎｇ  ｃｅｌｌｓ  ｉｎ  ａｎ  ｉｍｍｕｎｏｉｓｏｌａｔｉｏｎ  ｄｅｖ
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ｎｇｅｎ  ｍｉｎｉｐｉｇ  ａｓ  ａ  ｍｏｄｅｌ  ｏｆ  ｄｉａｂｅｔｅｓ，ｗｉｔｈ
ｓｐｅｃｉａｌ  ｆｏｃｕｓ  ｏｎ  ｔｙｐｅ  １  ｄｉａｂｅｔｅｓ  ｒｅｓｅａｒ
ｃｈ」（Ｉｌａｒ  Ｊ  ４５：３０３〜３１３，２００４）。
【０１５９】
Ｍｉｌｌｅｒ  ＥＲ  ａｎｄ  Ｕｌｌｒｅｙ  ＤＥ．「Ｔｈｅ  ｐｉｇ  ａｓ  ａ  ｍ
ｏｄｅｌ  ｆｏｒ  ｈｕｍａｎ  ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ」（Ａｎｎｕ  Ｒｅｖ  Ｎｕｔｒ  
７：３６１〜３８２，１９８７）。
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Ｖｏｄｉｃｋａ  Ｐ、Ｓｍｅｔａｎａ  Ｋ，Ｊｒ．、Ｄｖｏｒａｎｋｏｖａ  Ｂ、Ｅｍ
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ｔｌｉｋ  Ｊ．「Ｔｈｅ  ｍｉｎｉａｔｕｒｅ  ｐｉｇ  ａｓ  ａｎ  ａｎｉｍａｌ  ｍ
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Ｋｕｒｉｈａｒａ−Ｂｅｒｇｓｔｒｏｍ  Ｔ、Ｗｏｏｄｗｏｒｔｈ  Ｍ、Ｆｅｉｓｕｌ
ｌｉｎ  Ｓ、及びＢｅａｌｌ  Ｐ．「Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｈｅ
Ｙｕｃａｔａｎ  ｍｉｎｉａｔｕｒｅ  ｐｉｇ  ｓｋｉｎ  ａｎｄ  ｓｍａｌｌ  ｉｎ
ｔｅｓｔｉｎｅ  ｆｏｒ  ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ」
（Ｌａｂ  Ａｎｉｍ  Ｓｃｉ  ３６：３９６〜３９９，１９８６）。
【０１６２】
Ｓｗｉｎｄｌｅ  ＭＭ、Ｓｍｉｔｈ  ＡＣ，Ｌａｂｅｒ−Ｌａｉｒｄ  Ｋ、及びＤｕｎ
ｇａｎ  Ｌ．「Ｓｗｉｎｅ  ｉｎ  Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ：Ｍａｎａ
ｇｅｍｅｎｔ  ａｎｄ  Ｍｏｄｅｌｓ」（Ｉｌａｒ  Ｊ  ３６：１〜５，１９９４）。
【０１６３】
Ｂｅｌｌｉｎｇｅｒ  ＤＡ、Ｍｅｒｒｉｃｋｓ  ＥＰ、及びＮｉｃｈｏｌｓ  ＴＣ．「
Ｓｗｉｎｅ  ｍｏｄｅｌｓ  ｏｆ  ｔｙｐｅ  ２  ｄｉａｂｅｔｅｓ  ｍｅｌｌｉｔｕｓ
：ｉｎｓｕｌｉｎ  ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ，ｇｌｕｃｏｓｅ  ｔｏｌｅｒａｎｃｅ，ａｎ
ｄ  ｃａｒｄｉｏｖａｓｃｕｌａｒ  ｃｏｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ」（Ｉｌａｒ  Ｊ  ４
７：２４３〜２５８，２００６）。
【０１６４】
Ｈａｉｎｓｗｏｒｔｈ  ＤＰ、Ｋａｔｚ  ＭＬ、Ｓａｎｄｅｒｓ  ＤＡ、Ｓａｎｄｅｒ
ｓ  ＤＮ、Ｗｒｉｇｈｔ  ＥＪ、及びＳｔｕｒｅｋ  Ｍ．「Ｒｅｔｉｎａｌ  ｃａｐｉｌ
ｌａｒｙ  ｂａｓｅｍｅｎｔ  ｍｅｍｂｒａｎｅ  ｔｈｉｃｋｅｎｉｎｇ  ｉｎ  ａ  ｐ
ｏｒｃｉｎｅ  ｍｏｄｅｌ  ｏｆ  ｄｉａｂｅｔｅｓ  ｍｅｌｌｉｔｕｓ」（Ｃｏｍｐ  
Ｍｅｄ  ５２：５２３〜５２９，２００２）。
【０１６５】
Ｍａｒｓｈａｌｌ  Ｍ、Ｏｂｅｒｈｏｆｅｒ  Ｈ、及びＳｔａｕｂｅｓａｎｄ  Ｊ．「
Ｅａｒｌｙ  ｍｉｃｒｏ−  ａｎｄ  ｍａｃｒｏ−ａｎｇｉｏｐａｔｈｙ  ｉｎ  ｔｈｅ
ｓｔｒｅｐｔｏｚｏｔｏｃｉｎ  ｄｉａｂｅｔｉｃ  ｍｉｎｉｐｉｇ」（Ｒｅｓ  Ｅｘ
ｐ  Ｍｅｄ（Ｂｅｒｌ）１７７：１４５〜１５８，１９８０）。
【０１６６】
Ｐｈｉｌｌｉｐｓ  ＲＷ、Ｐａｎｅｐｉｎｔｏ  ＬＭ、Ｗｉｌｌ  ＤＨ、及びＣａｓｅ
ＧＬ．「Ｔｈｅ  ｅｆｆｅｃｔｓ  ｏｆ  ａｌｌｏｘａｎ  ｄｉａｂｅｔｅｓ  ｏｎ  
Ｙｕｃａｔａｎ  ｍｉｎｉａｔｕｒｅ  ｓｗｉｎｅ  ａｎｄ  ｔｈｅｉｒ  ｐｒｏｇｅｎ
ｙ」（Ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ  ２９：４０〜４５，１９８０）。
【０１６７】
Ｅｖｅｎｔｏｖ−Ｆｒｉｅｄｍａｎ  Ｓ、Ｔｃｈｏｒｓｈ  Ｄ、Ｋａｔｃｈｍａｎ  Ｈ
、Ｓｈｅｚｅｎ  Ｅ、Ａｒｏｎｏｖｉｃｈ  Ａ、Ｈｅｃｈｔ  Ｇ、Ｄｅｋｅｌ  Ｂ、Ｒｅ
ｃｈａｖｉ  Ｇ、Ｂｌａｚａｒ  ＢＲ、Ｆｅｉｎｅ  Ｉ、Ｔａｌ  Ｏ、Ｆｒｅｕｄ  Ｅ、
Ｒｅｉｓｎｅｒ  Ｙ．「Ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  ｐｉｇ  ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ  ｔｉｓｓ
ｕｅ  ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ  ｆｏｒ  ｔｈｅ  ｔｒｅａｔｍｅｎｔ  ｏｆ  
ｄｉａｂｅｔｅｓ」（ＰＬｏＳ  Ｍｅｄ．２００６  Ｊｕｌ；３（７）：ｅ２１５）。
【０１６８】
Ｃａｓｔａｉｎｇ  Ｍ、Ｐｅａｕｌｔ  Ｂ、Ｂａｓｍａｃｉｏｇｕｌｌａｒｉ  Ａ、Ｃ
ａｓａｌ  Ｉ、Ｃｚｅｒｎｉｃｈｏｗ  Ｐ、Ｓｃｈａｒｆｍａｎｎ  Ｒ．「Ｂｌｏｏｄ  
ｇｌｕｃｏｓｅ  ｎｏｒｍａｌｉｚａｔｉｏｎ  ｕｐｏｎ  ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉ
ｏｎ  ｏｆヒトｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  ｐａｎｃｒｅａｓ  ｉｎｔｏ  ｂｅｔａ−ｃｅｌｌ
−ｄｅｆｉｃｉｅｎｔ  ＳＣＩＤ  ｍｉｃｅ」（Ｄｉａｂｅｔｏｌｏｇｉａ．２００１  
Ｎｏｖ；４４（１１）：２０６６〜７６）。
【０１６９】
Ｌａｒｓｅｎ  ＭＯ、Ｒｏｌｉｎ  Ｂ、Ｒａｕｎ  Ｋ、Ｂｊｅｒｒｅ  Ｋｎｕｄｓｅｎ
Ｌ、Ｇｏｔｆｒｅｄｓｅｎ  ＣＦ、Ｂｏｃｋ  Ｔ．「Ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｂ
ｅｔａ−ｃｅｌｌ  ｍａｓｓ  ａｎｄ  ｆｕｎｃｔｉｏｎ  ｉｎ  ｔｈｅ  Ｇｏｔｔｉｎ
ｇｅｎ  ｍｉｎｉｐｉｇ」（Ｄｉａｂｅｔｅｓ  Ｏｂｅｓ  Ｍｅｔａｂ  Ｓｕｐｐｌ  ２
：１７０〜９，２００７）。
【０１７０】
ｖａｎ  ｄｅｒ  Ｗｉｎｄｔ  ＤＪ、Ｅｃｈｅｖｅｒｒｉ  ＧＪ、Ｉｊｚｅｒｍａｎｓ
ＪＮ、Ｃｏｏｐｅｒ  ＤＫ．「Ｔｈｅ  ｃｈｏｉｃｅ  ｏｆ  ａｎａｔｏｍｉｃａｌ  
ｓｉｔｅ  ｆｏｒ  ｉｓｌｅｔ  ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ」（Ｃｅｌｌ  Ｔｒａ
ｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ２００８；１７（９）：１００５〜１４）。
【実施例】
【０１７１】
ヒト胚性幹細胞株Ｈ１細胞を、ＭＡＴＲＩＧＥＬ（１：３０希釈）をコートしたプレー
ト上で培養し、以下のプロトコルを使用して膵内分泌前駆細胞へと分化させた：
ａ．２％のＢＳＡ（カタログ＃  １５２４０１，ＭＰ  Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ，Ｏｈｉ
ｏ）、１００ｎｇ／ｍＬのアクチビンＡ（Ｒ  ＆  Ｄ  Ｓｙｓｔｅｍｓ，ＭＮ）、２０ｎ
ｇ／ｍＬのＷＮＴ−３ａ（カタログ＃  １３２４−ＷＮ−００２，Ｒ  ＆  Ｄ  Ｓｙｓｔ
ｅｍｓ，ＭＮ）及び８ｎｇ／ｍＬのｂＦＧＦ（カタログ＃  １００−１８Ｂ，Ｐｅｐｒｏ
Ｔｅｃｈ，ＮＪ）を添加したＲＰＭＩ培地（カタログ＃２２４００，Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅ
ｎ，Ｃａ）で１日培養した後に、２％のＢＳＡ、１００ｎｇ／ｍＬのアクチビンＡ、８ｎ
ｇ／ｍＬのｂＦＧＦを添加したＲＰＭＩ培地で更に２日間にわたって処理し（段階１）、
次いで
ｂ．２％のＢＳＡ及び５０ｎｇ／ｍＬのＦＧＦ７を添加したＤＭＥＭ／Ｆ１２（カタロ
グ番号１１３３０，Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，Ｃａ）で３日間にわたって培養し（段階２）
、次いで
ｃ．１％のＢ２７（＃１７５０４−０４４，Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，ＣＡ）、５０ｎｇ
／ｍＬのＦＧＦ７、０．２５μＭのシクロパミン−ＫＡＡＤ（＃２３９８０４，Ｃａｌｂ
ｉｏｃｈｅｍ，ＣＡ）、２μＭのレチノイン酸（ＲＡ）（Ｓｉｇｍａ，ＭＯ）及び１００
ｎｇ／ｍＬのノギン（Ｒ  ＆  Ｄ  Ｓｙｓｔｅｍｓ，ＭＮ）を添加した表１に記載の異な
る基本培地を使用して４日間にわたって培養し（段階３）、次いで
ｄ．１％のＢ２７（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，ＣＡ）、１００ｎｇ／ｍＬのノギン及び１
μＭのＡＬＫ５阻害剤ＩＩ（カタログ＃  ６１６４５２，Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ，Ｃａ）
を添加した、表１に記載の異なる基本培地を使用して３日間にわたって培養した（段階４
）。
【０１７２】
本明細書の全体を通じて引用した刊行物は、その全体を参照により本明細書に組み込む
ものとする。以上、本発明の様々な態様を実施例及び好ましい実施形態を参照して説明し
たが、本発明の範囲は、上記の説明文によってではなく、特許法の原則の下で適宜解釈さ
れる以下の特許請求の範囲によって定義されるものである点は認識されるであろう。
【図１】
2020196728.tif 000002
【図２】
2020196728.tif 000003
【図３】
2020196728.tif 000004
【手続補正書】
【提出日】令和2年8月28日(2020.8.28)
【手続補正１】
【補正対象書類名】特許請求の範囲
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
患者における血糖値を低下させるための薬剤の製造におけるカプセル化した膵内分泌前駆細胞の集団の使用であって、
前記膵内分泌前駆細胞は、ＢＭＰ阻害能を持つ因子及びＴＧＦ−β受容体Ｉキナーゼ阻害剤を添加した培地中で膵臓内胚葉系統に特徴的なマーカーを発現する細胞からin vitroにおいて分化するものであり、且つ、ＮＧＮ３、ＮＫＸ６．１、ＮｅｕｒｏＤ、ＩＳＬ１、ＰＤＸ１、ＰＡＸ４、ＮＫＸ２．２、ＰＡＸ６又はＡＲＸを発現するものである、
前記使用。
【請求項２】
前記カプセル化した膵内分泌前駆細胞の集団は、患者に移植されるものである、請求項１に記載の使用。
【請求項３】
前記膵内分泌前駆細胞は、肝臓、天然の膵臓、腎被膜下空間、網、腹膜、漿膜下空間、腸、胃、又は皮下ポケットへの細胞に移植されるものである、請求項２に記載の使用。
【請求項４】
ＢＭＰ阻害能を持つ因子が、ノギンである、請求項１に記載の使用。
【請求項５】
ＴＧＦ−β受容体Ｉキナーゼ阻害剤が、ＡＬＫ５阻害剤ＩＩである、請求項１に記載の使用。
【請求項６】
前記培地が、４５００ｍｇ／Ｌのグルコースと１％のＢ２７を含有しているＤＭＥＭである、請求項１に記載の使用。
【請求項７】
前記膵内分泌前駆細胞は前記培地中で４日間にわたって分化する、請求項１に記載の使用。
【請求項８】
さらに増殖因子、抗酸化剤又は抗炎症剤の使用を含む、請求項１に記載の使用。
【請求項９】
前記患者が、Ｉ型糖尿病又はＩＩ型糖尿病に罹患しているか、あるいはそれを発症するリスクを有する患者である、請求項１に記載の使用。
【外国語明細書】
2020196728000001.pdf